Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.03) на тему:Классическая чума свиней: территориальное распределение и анализ эпизоотического процесса в Волгоградской области

ДИССЕРТАЦИЯ
Классическая чума свиней: территориальное распределение и анализ эпизоотического процесса в Волгоградской области - диссертация, тема по ветеринарии
АВТОРЕФЕРАТ
Классическая чума свиней: территориальное распределение и анализ эпизоотического процесса в Волгоградской области - тема автореферата по ветеринарии
Стариков, Александр Михайлович Покров 2005 г.
Ученая степень
кандидата ветеринарных наук
ВАК РФ
16.00.03
 
 

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Классическая чума свиней: территориальное распределение и анализ эпизоотического процесса в Волгоградской области

УДК 616.98:578.833.31:616-036.22

На правах рукописи

СТАРИКОВ АЛЕКСАНДР МИХАЙЛОВИЧ

КЛАССИЧЕСКАЯ ЧУМА СВИНЕЙ: ТЕРРИТОРИАЛЬНОЕ РАСПРЕДЕЛЕНИЕ И АНАЛИЗ ЭПИЗООТИЧЕСКОГО ПРОЦЕССА В ВОЛГОГРАДСКОЙ ОБЛАСТИ

16.00.03 - ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание учёной степени кандидата ветеринарных наук

Покров - 2005 г.

Работа выполнена в Государственном научном учреждении Всероссийском научно-исследовательском институте ветеринарной вирусологии и микробиологии Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИВ-ВиМ РОССЕЛЬХОЗАКАДЕМИИ)

Научный руководитель:

доктор ветеринарных наук, профессор Куриннов Виктор Васильевич

Официальные оппоненты:

доктор ветеринарных наук,

старший научный сотрудник Кушнир Анатолий Тимофеевич

(ГНУ ВНИИВВиМ)

доктор ветеринарных наук,

профессор Байбиков Тауфик Закарьевич

(ФГУВНИИЗЖ)

Ведущее учреждение: ФГУ Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов

Защита состоится « 23 » декабря 2005г. в 1200 часов на заседании диссертационного совета Д 006.003.01 при Государственном научном учреждении Всероссийском научно-исследовательском институте ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии по адресу: 601120, г. Покров Владимирской области, ГНУ ВНИИВВиМ Тел/факс: (09243)62125.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке института.

Автореферат разослан « 23 » ноября 2005 г. Учёный секретарь диссертационного совета, кандидат биологических наук -

В.Я. Савукова

lld HU

llQio

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

1.1. Актуальность проблемы

Благодаря мерам, предпринимаемым государственной ветеринарной службой России, число вспышек КЧС к концу 90-х годов 20-го века значительно сократилось - с 67 в 1995 г., до 6 и 1 в 2003 и 2004 гг. соответственно. Однако, несмотря на сложившуюся благоприятную эпизоотическую ситуацию, КЧС по-прежнему представляет наибольшую экономическую опасность для стабильного ведения свиноводства во всех типах хозяйств и, в первую очередь, промышленных свинокомплексах. Так, за период развития индустриального свиноводства, вирус был занесён в 17 крупных свиноводческих хозяйств и комплексов с поголовьем от 50 до 216 тыс. голов. Это свидетельствует о том, что существующие меры ветеринарно-санитарных и профилактических мероприятий пока не обеспечивают искоренение болезни и гарантированную защиту свиноводческих хозяйств от заноса вируса.

Данные эпизоотологических наблюдений свидетельствуют о длительной циркуляции вируса КЧС у свиней в крупных свинокомплексах и среди диких кабанов, приводящей к стационарности и природной очаговости болезни (Прудников С.И., 1997; Джупина С.И., 2000; Сергеев В.А., 2001; Панова Н.Е., 2001; Коломыцев A.A., 2003;), при этом возможный период времени и все механизмы сохранения вируса в указанных популяциях свиней точно не установлены и полностью неизвестны.

Волгоградская область является крупнейшим аграрным регионом южного федерального округа страны, где свиноводство является одной из наиболее важных отраслей животноводства. За период 1992 - 2003 гг. была установлена 21 вспышка КЧС в племенных, средних и мелкотоварных кресть-янско-фермерских хозяйствах и свинокомплексе ЗАО «Краснодонский», которые значительно осложнили эпизоотическую ситуацию и производственно-экономические отношения, поэтому актуальность болезни для ветеринарной службы и производителей свинины в области очевидна.

Для обеспечения благополучия свиноводческих хозяйств Волгоградской области по КЧС необходимо знание всех факторов и особенностей регионального эпизоотологического процесса в современных условиях ведения свиноводства, включающие системы выращивания, структуру и плот-

ность популяций свиней, полный:

вспышек и РОС. НАЦИОНАЛЬНАЯ БИБЛИОТЕКА .

«мммммм-манмммц^« Л

эффективность противоэпизоотических мероприятий, что позволит усовершенствовать меры борьбы с болезнью в области и в целом в стране. 1.2. Цель и задачи исследований.

Основная цель работы: территориальное распределение, анализ эпизоотического процесса классической чумы свиней и усовершенствование мер борьбы с болезнью в Волгоградской области.

В соответствии с поставленной целью работы определены следующие задачи:

- изучить экономические условия развития свиноводства и провести ретроспективный эпизоотологический анализ вспышек КЧС в масштабах области и страны;

- изучить основные эпизоотологические показатели при вспышках КЧС в свинокомплексах, средних и мелких откормочных фермах и среди диких кабанов: заболеваемость, смертность, летальность, эффективность диагностики болезни, длительность циркуляции, способы передачи и риски заноса вируса;

- изучить состояние популяционного иммунитета против классической чумы у свиней при вспышке в промышленном свинокомплексе;

- определить противоэпизоотическую и экономическую эффективность ве-теринарно-санитарных мероприятий;

- изучить эпизоотологию КЧС среди диких кабанов и определить их роль в региональном эпизоотическом процессе;

- усовершенствовать схему эпизоотологического обследования и противо-эпизоотические мероприятия при вспышках КЧС в крупных свиноводческих комплексах, в хозяйствах других типов и среди диких кабанов.

1.3. Научная новизна

Научная новизна результатов, полученных при выполнении работы, состоит в следующем:

1. В сравнительно-историческом и природно-географическом аспектах впервые проведён анализ развития региональной эпизоотической ситуации по классической чуме свиней и диких кабанов Волгоградской области за период с 1980 -2004 гг. в разрезе «территориальный округ-район-хозяйство-отдельная ферма (участок)»;

2. Определены основные эпизоотологические показатели и причинно-следственные связи возникновения, течения и исхода КЧС и установлено, что интенсивность и формы эпизоотического процесса в Волгоградской области зависят от изменения пропорции в структуре свиноводства, технологии выращивания свиней, сроков подозрения болезни и алгоритма проведения противоэпизоотических мероприятий;

3. Установлен основной фактор риска инфицирования, влияющий на эпизоотологию КЧС в Волгоградской области - увеличение численности популяции свиней в крестьянско-фермерских хозяйствах населённых пунктов в 2 раза по сравнению со специализированными свиноводческими хозяйствами, в которых вероятность заноса полевого вируса выше (88,1%) по сравнению с закрытыми хозяйствами (2-5%).

4. При плотности содержания свиней от 6 до 39 гол. на 100 га пашни период неблагополучия территориальных образований области (округов, районов) площадью более 17 тыс. км2 может быть от 1 года до 5 лет.

1.4. Практическая значимость и реализация результатов исследований

Результаты исследований стали основой для совершенствования профилактики и противоэпизоотических мероприятий для ликвидации КЧС при вспышках болезни на территории Волгоградской области, являясь составной частью Целевой программы по обеспечению устойчивого эпизоотического благополучия территории Волгоградской области по классической чуме свиней на 2005-2010 годы.

Разработаны «Рекомендации по профилактике и мерам борьбы с классической чумой свиней в свиноводческих хозяйствах (предприятиях) и среди диких кабанов на территории Волгоградской области», утверждённые начальником областного Управления ветеринарии 11.11.2004 г., которые в настоящее время являются основой для планирования противоэпизоотических мероприятий.

Выделенный и паспортизированный в коллекции микроорганизмов ГНУ ВНИИВВиМ умеренно- вирулентный штамм «Краснодонский» вируса КЧС используется при проведении НИР.

1.5. Апробация работы

Результаты собственных исследований доложены и обсуждены на: областных научно-практических конференциях ветеринарных врачей (г. Волго-

град, 2002-2004 гг.), Международной научно-практической конференции «Биолого-экологические проблемы заразных болезней диких животных и их роль в патологии сельскохозяйственных животных и людей» (г. Покров, 2002 г.), заседаниях Учёного совета ГНУ ВНИИВВиМ (г. Покров, 2002-2004 гг.).

1.6. Публикации

Материалы основных результатов диссертационной работы опубликованы в 5-ти научных статьях, в том числе 2 - в ведущих научных изданиях.

1.7. Основные положения диссертационной работы, выдвигаемые на защиту:

- географическая локализация вспышек КЧС, региональные особенности, основные показатели эпизоотического процесса, факторы риска и передачи, обуславливающие распространение и сохранение вируса в популяциях свиней в свиноводческих хозяйствах Волгоградской области;

- эпизоотологическая и экономическая оценка противоэпизоотических мероприятий в свиноводческих хозяйствах закрытого типа;

- роль кабанов в распространении и сохранении вируса классической чумы свиней на территории Волгоградской области;

- совершенствование мер борьбы с КЧС.

1.8. Личный вклад соискателя

Основная часть исследований выполнена автором лично. В выполнении отдельных разделов диссертационной работы принимали участие ветеринарные специалисты Управления ветеринарии и главные ветеринарные врачи Волгоградской области: Филиппов Н.В., [Милевский В .Г. , Рахметёв И.А.,

Саяпин А.Г., Шумило Л.Н. (разделы З.2.4., 3.2.8.), научные сотрудники ГНУ ВНИИВВиМ: доктор ветеринарных наук, профессор Хрипунов Е.М., доктор ветеринарных наук Коломыцев А.А. (раздел 3.2.8.), кандидат биологических наук Лыска В.М. (раздел З.2.5.4.).

1.9. Объём и структура диссертации

Диссертация изложена на 135 листах машинописного текста и включает: введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение, выводы, практические предложения, список литературы (220 источников, в том числе 159 зарубежных), дополнена приложением. Работа иллюстрирована 23 таблицами, 21 рисунком.

2. Собственны исследования

2.1. Материалы и методы

Вирус. В работе использовали вирулентный штамм "Ши-Мынь", в виде клеточно-культурального варианта "Ши-Мынь-51" (вирус 51-55-го пассажей в культуре клеток РК-15), с активностью Ю6'0 ККИДзо/щ,, получен в лаборатории Диагностики ГНУ ВНИИВВиМ;

Вакцины:- вирусвакцина сухая культуральная против классической чумы свиней "ЛК-ВНИИВВиМ", производства Покровского завода биопрепаратов;

- вирусвакцина против классической чумы свиней (ВГНКИ) из штамма «К» сухая культуральная, производства Щёлковского биокомбината; - вирусвакцина «КС» против классической чумы свиней, живая культуральная, сухая концентрированная производства НПО «Нарвак». - вирусвакцина против классической чумы свиней сухая порошковидная для пероральной иммунизации свиней производства ГНУ ВНИИВВиМ Культуры клеток

-перевиваемые культуры клеток почки поросёнка (РК-15, БК-б). Клетки периодически поддерживались и хранились в лаборатории "Культур клеток с музеем клеточных штаммов" ГНУ ВНИИВВиМ;

Диагностические препараты "Набор препаратов для иммунофлуоресцентной диагностики классической чумы свиней", производства ГНУ ВНИИВВиМ.

Основные методы эпизоотологического исследования

Для проведения эпизоотологических исследований и анализа причин и условий возникновения и распространения КЧС использован единый метод эпизоотологического обследования, включающий сравнительно-историческое, сравнительно-географическое описание, аналитические эпи-зоотологические и лабораторные исследования (Сосов Р.Ф.,Глушков А.А., 1974 г.), систему эпизоотологического мониторинга особо опасных, экзотических, малоизученных, в том числе зооантропонозных болезней животных (Бакулов И. А. и соавт., 2001 г.), а также методы профильного, когортного и случай-контроль исследования (ТИгивЯеИ в.,1986 г., Макаров В.В., 2001 г.).

В работе также были использованы инструктивные документы: Инструкция о мероприятиях по предупреждению и ликвидации классической чумы свиней (№ 044-3 от 30.03.1990 г.), Рекомендации о мероприятиях по пре-

дупреждению и ликвидации классической чумы свиней у кабанов в охотничьих хозяйствах (№13-4-12/1116 от 12.08.1999 г.);

Методы лабораторной диагностики классической чумы свиней

Выделение и идентификацию вируса КЧС из патологического материала проводили в соответствии с Методическими указаниями по лабораторной диагностике классической чумы свиней, утверждёнными Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода России 30.12.96 г.

Методы определения напряжённости иммунитета против классической чумы свиней

Определение напряжённости иммунитета у свиней против классической чумы проводили согласно Методических указаний по определению эффективности вакцинации и иммунитета против классической чумы свиней (утверждены Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода России 04.08.92 г. №22-6).

Статистические методы обработки результатов

Статистическую обработку результатов проводили с использованием стандартных эпизоотологических методов (Сосов Р.Ф., Глушков A.A., 1974; Thrusfield М. ,1986) и пакета прикладных программ Statgraphics (Version 2.1.).

2.2. Результаты исследований

2.2.1. Природно-географические и экономические условия развития свиноводства Волгоградской области, имеющие эпизоотологическое значение при классической чуме домашних свиней и диких кабанов

Волгоградская область входит в состав южного федерального округа Российской Федерации и занимает площадь 113 тыс. км2, из них 78% составляют земли сельскохозяйственного назначения. На территории области расположены 1506 населенных пунктов, которые входят в состав 39 муниципальных образований 8 региональных округов.

Агропромышленный комплекс Волгоградской области обеспечивает кормовые ресурсы для развития животноводства и свиноводства в частности. На территории области расположено около 40 специализированных свиноводческих предприятий в 22-х районах Волжского, Иловлинского, Ка-лачевского, Михайловского, Новоаннинского, Урюпинского и Фроловского региональных округов. Наиболее крупный индустриальный свиноводческий комплекс ЗАО «Краснодонский», производственной мощностью на 108 000 свиней, расположен в Иловлинском районе. По приблизительным подсчё-

там в 1999-2003 гг. численность крестьянско-фермерские хозяйств, в которых выращивают свиней, составляет около 250-300 тыс. мелких ферм и подворий.

В результате проведения в последнее десятилетие аграрных реформ важной особенностью в изменении структуры свиноводства является перераспределение численности свиней между сельскохозяйственными предприятиями и крестьянско-фермерскими хозяйствами. Так, с 1995 г. количество свиней в крестьянско-фермерских хозяйствах стало выше, чем в сельскохозяйственных предприятиях примерно в 1,8 раза (669,7 тыс. гол. и 374,1 тыс. гол., соответственно) и такая тенденция изменения отношения численности сохраняется.

В целом по области численность поголовья свиней, по сравнению с началом 90-х годов, снизилось примерно в 2-5 раз и в настоящее время составляет около 500 000 голов.

Локализация и популяция диких кабанов

Волгоградская область относится к малолесным регионам страны, но с относительно благоприятными условиями обитания диких кабанов. Общая площадь лесного фонда составляет 540,3 тыс. га.

Наибольшая численность диких кабанов в северных (Руднянский, Еланский, Жирновский, Даниловский), северо-восточных (Камышинский, Котовский), северо-западном (Михайловский), центральном (Ольховский) и юго-восточном (Среднеахтубинский) районах, которые входят в состав 6- ти заповедников, расположенных в Доно-Медведицской гряде и имеют общую границу.

Основные естественные и искусственные границы обитания кабанов -поймы рек Волги, Дона с притоками, Цымлянское водохранилище, железные и автомобильные дороги федерального и местного значения.

Анализ учётных данных показал постепенный рост численности кабанов с 1606 гол. в 2001 г. до 3399 гол. в 2004 г. В целом, по области их плотность с 1999 по 2004 г.г. была неизменной и составляла около 20 животных на 1000 га заповедников.

Таким образом, перераспределение пропорции в структуре свиноводства в пользу мелко-товарных и крестьянско-фермерских хозяйств и активное распространение обитания кабанов являются важными эпизоотологиче-скими факторами, которые необходимо учитывать для усовершенствования мер контроля КЧС на территории области.

2.2.2. Эволюция классической чумы среди домашних свиней и диких кабанов

2.2.2.1. Общая эпизоотическая ситуация и главные эпизоотические индикаторы проявления классической чумы свиней в период с 1980-2003 гг. в РФ и Волгоградской области

В связи с тем, что стратегия профилактики КЧС в нашей стране основана на применении живых вакцин, сроки наблюдения и оценка уровня инцидентности КЧС в области изучены по периодам применения разных вакцин, начиная с 1974 года в сравнении с официальными данными по РФ (табл.1).

Таблица 1

Сравнительная эпизоотическая ситуация по КЧС в РФ и Волгоградской области за период 1974-2004 гг.

Периоды (ГГ.) Кол-во свиней(млн) Вакцинировано свиней (млн) Кол-во вспышек всего/год Заболело всего (тыс Упревалекгностъ Пало всего (тыс )/летальность (%)

РФ | область РФ | область РФ | область РФ | область РФ | область

«АСВ»

19741983 347,2 10,9 * 13,0 118/12 6/0,6 * * • *

АСВ, «К»(ВГНКИ), ЛК-ВНИИВВнМ

19841989 236 7,16 * 8,26 109/18 14/2 144,5/61 14,6/204 54,9/38 3,8/26

«К»(ВГНКИ), ЛК-ВНИИВВнМ

19901998 234,3 7,6 385,1 9,16 324/36 9/1 243,9/104 9,5/125 123,2/50,5 3,0/31,5

ЛК-ВНИИВВиМ, КС

19992004 99,7 3,12 169,4 4,72 60/10 10/1,7 10,9/11 3/100 5,2/47,7 1,9/63

Обозначение: * - данных нет или они не полные

Инцидентность вспышек КЧС во времени и от типа применяемых вакцин различалась. Так, до 1984 года, когда применяли только лапинизиро-ванную вакцину «АСВ» КЧС, в РФ (РСФСР) регистрировали ежегодно -всего 118 вспышек, в том числе в Волгоградской области в 1980- 1982 гг. 6 вспышек. В период с 1984 по 1989 гг. применяли 3 типа вакцин: лапинизи-рованную «АСВ» и 2 кулиуральные «К»(ВГНКИ) и JIK-ВНИИВВиМ. За это время в РФ КЧС также регистрировали ежегодно, но инцидентность вспышек значительно не снизилась (109 вспышек), а в области увеличилась до 14 вспышек (в 1984 г. -2 вспышки, в 1985 г. - 12 ). От общего количества вспышек болезни в РФ в 1985 году 50% были установлены в Волгоградской области.

Период с 1990 г. по 1998 г., когда использовали только культуральиые вакцины («К»ВГНКИ и ЛК-ВНИИВВиМ), по уровню инцидентности КЧС был самым сложным, количество вспышек в РФ было 324, в среднем, 36 вспышек в год. В области за этот период было установлено 9 спорадических вспышек, кроме 1990, 1991 и 1997 гг., когда болезнь не регистрировали.

За период наблюдения с 1999 по 2004 гг., когда применяли вирусвак-цины JIK-ВНИИВВиМ и КС, количество первичных вспышек КЧС среди домашних свиней в РФ было 60, из них в области - 10 (3 вспышки среди диких кабанов).

Уровень превалентности случаев заболевания КЧС в области был достоверно выше (100-204 животных на 100 тыс. гол. при Р <0,05), т.е. охват поголовья болезнью и её распространение при вспышках значительно превышали этот показатель по стране, однако достоверных различий в смертности и летальности по стране и области не обнаружено (Р> 0,1-0,2).

Таким образом, несмотря на применение живых вакцин, КЧС имела различные формы проявления, от спорадических случаев до эпизоотий. Годовые показатели превалентности заболевания свиней в области, даже без разграничения на первичные и вторичные вспышки и периоды благополучия, по сравнению с данными по РФ были выше, что свидетельствует о значительном масштабе проблемы КЧС в Волгоградской области.

2.2.2.2. Районирование, инцидентность и географическая локализация вспышек КЧС среди домашних свиней и диких кабанов

По доступным данным ветеринарной отчётности с 1974 по 1978 гг. КЧС на территории области не регистрировали. За период с 1979 по 1981 гг. было установлено 5 первичных и 108 вторичных вспышек в Городищен-ском, Иловлинском и Еланском районах. В 1984-1985 гг. 14 первичных и 15 вторичных вспышек болезни, установленные в 6-ти северо-западных и центральных районах Михайловского и Урюпинского региональных округов области (Нехаевский, Ольховский, Алексеевский, Кумылженский, Михайловский и Урюпинский), которые имеют общую границу, по уровню инцидентности и распространению можно расценивать как эпизоотию КЧС продолжительностью 1 год. После 6-тилетнего благополучия установлены вспышки КЧС в Котельниковском районе (1992 г. - 2,1993 г. -1 и 1996 г. -

1), которые представляли собой последовательную цепь событий, которые также можно характеризовать как проявление болезни эпизоотического типа в течение 5-ти лет. Остальные вспышки, установленные в частном секторе и подсобных или откормочных хозяйствах Калачёвского, Фро-ловского и Старополтавского районов в 1994-1995 гг., были спорадическими. В 1997 г. вспышек КЧС не было установлено, в 1998 г. - одна спорадическая вспышка в частном секторе в Светлоярском районе. В 1999 г. эпизоотическая ситуация осложнилась установлением КЧС среди диких кабанов и передачей вируса домашним свиньям в двух граничащих Клетском и Фро-ловском районах и Камышинском районе. В 2001 г. болезнь была установлена в 2-х свинокомплексах, в Киквидзенском районе и ЗАО «Краснодонский», в 2002 г. - в Камышинском районе среди кабанов и племенном хозяйстве СПК «Семёновское», в 2003 г. в Жирновском районе, подсобном хозяйстве АПК «Жирновский».

Таким образом, за период с 1980 по 2004 гг. было установлено 35 вспышек КЧС в 18 районах, что составляет около 50% всей территории Волгоградской области.

2.2.23. Эпизоотологические и клинико-патологические характеристики вспышек классической чумы свиней в свиноводческих хозяйствах с различной плотностью содержания животных

Структура свиноводства в Волгоградской области разнообразна, сложились различные типы хозяйств, поэтому вспышки КЧС сгруппированы согласно размеру стад, данных о вакцинации, заболеваемости, смертности и летальности.

Для установления факторов, влияющих на эпизоотологию КЧС и риск инфицированности хозяйств, определяли отношения между количеством вспышек, типом и размерами свиноводческих хозяйств. Установлено, что риск заноса вируса КЧС наиболее высоким был в открытых крестьянско-фермерских хозяйствах (88,1%), невысокий (5,1-5,9%) в закрытых хозяйствах с высокой плотностью содержания свиней и самый низкий (2%) в специализированных племенных хозяйствах.

В изолированных свиноводческих хозяйствах эпизоотологические показатели отличались от таковых открытых, крестьянско-фермерских (и подсобных откормочных). Так, в последних заболеваемость, смертность и летальность были значительно выше и составили 25; 14,5 и 58,6% соответственно (табл. 2).

Таблица 2

Эпизоотологические показатели при вспышках КЧС в хозяйствах различного типа

Категория хозяйства Количество хозяйств, пунктов/ вспышек КЧС Животных (всего) Эпизоотологические показатели

Количество заболевших Количество павших П (%) С (%) Л (%)

Закрытые 23/2« 206178 28832 9041 14 4 31

Открытые 12/208 3788 944 553 25 14,5 58,6

Итого 32/236 209966 29776 9594 14 4,6 32

Обозначения. П - превалентносгь; С - смертность; Л - летальность

В связи с тем, что заболеваемость и летальность при вспышках КЧС в хозяйствах различного типа значительно отличалась, проведено сравнение обнаруживаемых клинических признаков и патологоанатомических изменений в зависимости от интенсивных эпизоотологических показателей (рис 1).

Ежедневная

Рис 1. Летальность "до" и "после" подозрения КЧС в закрытом (племхозяйство СПК "Семёновское" Камышинского р-она) и открытом (п/х "Общепит" Урюпинского р-она) хозяйствах

Установлено, что в хозяйствах закрытого типа, в которых регулярно проводилась вакцинация, патогномонические признаки болезни, подтверждённые лабораторными исследованиями, были в группах доращивания и отсутствовали у взрослых свиней (свиноматки, хряки, свиньи на откорме). Время от момента обнаружения первичных симптомов болезни до её подтверждения составляло от 3-х до 5-ти недель. На основании этих данных можно классифицировать форму течения болезни как хроническую.

В хозяйствах открытого типа, в которых вакцинация не проводилась или проводилась нерегулярно, период времени от обнаружения первичных

симптомов болезни до подозрения КЧС был значительно короче и составлял 1-2 недели.

Ретроспективными исследованиями динамики заболеваемости в свинокомплексе промышленного типа (ЗАО «Краснодонский») предположительно установлено, что интервал между первыми эпизоотологическими данными и сообщением о подозрении КЧС у поросят секторов участка 4 был около 4 месяцев.

Таким образом, учитывая особенности эпизоотического процесса в хозяйствах открытого типа и особенно, в популяциях с высокой концентрацией свиней (свинокомплексы) на фоне вакцинации, наиболее важно раннее определение симптомов и патологоанатомических изменений в органах вынужденно убитых или павших, имеющих отношение к КЧС, для достижения максимального сокращения периода между заносом вируса КЧС и подозрением болезни (и, соответственно, установлением диагноза).

В связи с очевидными отличиями эпизоотологического процесса КЧС после заноса вируса в крупных свиноводческих хозяйствах с интенсивным технологическим потоком животных, отсутствует выраженная граница между его двумя формами (спорадической и эпизоотической). Для установления масштабов поражения и темпа распространения болезни проведены детальные эпизоотологические исследования вспышки КЧС в ЗАО «Краснодонский» в 2001 г. с использованием профильного, когортного и случай-контроль методов, т.е. в целом всего свинокомплекса, участков, секторов всех половозрастных групп свиней неблагополучного (№1) и благополучного (№2) комбинатов.

Наиболее проблематичным было состояние здоровья у поросят- молочников (до отъёма) и поросят 26-112-ти дневного возраста в секторах до-ращивания. Эпизоотологические показатели в наблюдаемый период имели значительные колебания и динамика их заболеваемости совпадала по времени. Так, с ноября 2000 г. до марта 2001 г. достоверно выражена тенденция роста заболеваемости и смертности среди поросят групп доращивания от 2122 до 55.3% и смертности от 12,8 до 27,8%. Летальность была невысокой и редко превышала 50%, за исключением месяцев, когда имели место наивысшая заболеваемость и смертность (декабрь 2000 г. и март-апрель 2001 г.). За апрель, в результате проведения ветеринарно-санитарных мероприятий, было вынужденно убито 2032 поросёнка.

В связи с тем, что лабораторными исследованиями КЧС была установлена только в 2-х секторах (№38 и № 50) проведён эпизо-отологический анализ заболеваемости и летальности поросят во всех секторах участка 4 комбината №1, имевших косвенные контакты с неблагополучными секторами.

Данные, представленные на рис.2, свидетельствуют о высоком темпе распространения болезни и очевидном основании для подозрения КЧС также в других секторах №№ 42 и 43 (КИ= 1) и секторах №№31, 45, в которых КИ » 1 (0,8 и 0,9, соответственно).

ки

Номер сектора и дата постанови! животных

Рис.2 Темп проявления случаев болезни в секторах участка 4 комбината 1 по коэффициентам инцидентности (КИ)

После проведения противоэпизоотических мероприятий и убоя животных в период карантина, с конца июня по 28 июля 2001 г., на участке 4 комбината №1 установлено увеличение смертности до 15,5%. На основании результатов клинического осмотра и характерных патологоанатомических изменений павших и вынужденно убитых поросят было сделано заключение о рецидиве КЧС. Поэтому по рекомендации профессора Сергеева В.А. все животные участка 4 были вакцинированы вакциной КС в прививной дозе 200-300 тыс. ИмД50/животное- Вакцинацией в таком режиме в течение 4-х мес. после установления вторичной вспышки в комплексе с общими ветеринар-но-санитарными мерами, было достигнуто оздоровление хозяйства, что было подтверждено клиническими, вирусологическими и серологическими ис-

следованиями напряжённости иммунитета и производственными

показателями сохранности поросят 4 участка (срок наблюдения 2 года).

2.2.2.4. Исследование напряжённости поствакцинального иммунитета у свиней против классической чумы при вспышке КЧС в ЗАО «Краснодонский»

Для специфической профилактики КЧС в 2000 г. до момента подтверждения вспышки КЧС свиней вакцинировали вакциной «JIK-ВНИИВВиМ» производства Покровского завода биопрепаратов. После установления вспышки КЧС для экстренной вакцинации, согласно действующей инструкции, применяли вирусвакцину против классической чумы свиней (ВГНКИ) из штамма «К» производства Щёлковского биокомбината и вирусвакцину JIK-ВНИИВВиМ. В последующем, с августа по ноябрь 2001 г. внедрялась вакцина КС (переходный период), а с ноября 2001 г. по настоящее время для профилактики КЧС применяется только этот препарат.

Из данных рис.3 видно, что в неблагополучном по КЧС секторе 38 количество устойчивых к заражению поросят перед первой вакцинацией (40-45 дн. возраст) до подтверждения вспышки было 10% от числа обследованных, что является допустимым для уровня колостральных антител в этот период жизни, однако после вакцинации процент устойчивых животных к вирусу КЧС увеличился незначительно. Только 40% обследованных поросят 80-85 дн. возраста (через 40-45 дней после вакцинации) имели титр вирус-нейтрализующих антител 1:16 и выше.

После подтверждения первичной вспышки КЧС и однократного экстренного введения 10 000 ИмД50/животное вакцин из штамма «К»(ВГНКИ) и JIK-ВНИИВВиМ поросятам участка 4 через 1 мес. в июне смертность снизилась до 7.1%, однако в июле и последующие месяцы отмечено увеличение количества восприимчивых животных и смертности (рецидив КЧС). И только после переходного периода применения вакцины КС по схеме 30-90 дней в дозе 200-300 тыс.ИмД50 с апреля по июнь 2002 г. (срок наблюдения) было

Среднегеометрический титр вирус нейтрализующих антител

85%

Вакцинация I 1000 Имя |

10% 2Л

10-15 дн.

40-45 дн.

80-85 дн.

% устойчивых 100 90 80 70 60 50 40 Э0 20 ■ -10 0

Возраст поросят

Рис 3 Серологический профиль вируснейтрализующих антител и % популяционной устойчивости поросят в возрасте 10-15 дн. (молочников) и доращивания (сектор 38, участок 4, комбинат №1) Пробы крови отобраны 23.03.2001 г.

достигнуто повышение количества устойчивых животных до 80% и снижение смертности до технологической нормы. На основании данных серологического обследования установлено, что в секторах с повышенной смертностью имели место существенные (г=0.972, Р<0,01) положительно линейные отношения между процентом восприимчивых животных (титр вируснейтрализующих антител 1:8 и ниже) и процентом смертности. На каждый 1 процент увеличения количества восприимчивых к заражению процент смертности увеличился на 0,4 процента.

Таким образом, на основании эпизоотологических данных и серологических исследований однократная экстренная вакцинация в дозе 10000 ИмД5о/ЖИвотное в период карантина имела кратковременное положительное влияние (около 1-2-х месяцев), можно констатировать факт о продолжающейся циркуляции полевого вируса КЧС среди поросят оставшихся секторов участка 4.

2.2.3. Вирусологический мониторинг, установление источников вируса КЧС в инфицированных хозяйствах и путей передачи

Для определения эпизоотологического статуса подозреваемых в инфицировании вирусом КЧС хозяйств с 1982 г. обследовано 39 свиноком-

плексов, крестьянско-фермерских хозяйств и в 20 случаях лабораторными исследованиями была установлена КЧС.

Из всего количества первичных вспышек КЧС, установленных в 19812002 гг. в хозяйствах всех типов, 2 (6 %) были связаны с закупкой инфицированных поросят, 4 (13 %) с известным непрямыми контактами с контами-нированным транспортом, 9 (28%) со скармливанием не обезвреженных помоев от домашних свиней, 2 (6%) заносом обслуживающим персоналом, 4 (13%)- с использованием помоев от убоя диких кабанов. В ряде хозяйств, где установлена КЧС, слежение за болезнью было затруднено, так как свиньи не имели идентификационных номеров и информация относительно их передвижения (в т.ч. обслуживающего персонала) была недостаточной. Так, в 11 случаях (34%) не удалось установить происхождение вспышек.

2.2.4. Экономический ущерб и эффективность стратегии ликвидации КЧС в свинокомплексах закрытого типа

При официальном установлении диагноза КЧС план противоэпизо-отических мероприятий и методы ликвидации болезни были дифференцированы для угрожающей зоны и зоны наблюдения. Угрожающая зона -комбинат №1, зона наблюдения - комбинат №2 и селекционно-гибридный центр (СГЦ). Нанесенный ущерб (прямые и косвенные потери) определяли только за период карантина. Всего за этот период пало и вынужденно убито 1658 гол. Прямые потери (убой, очистка помещений, мойка, дезинфекция) и косвенные потери от недополученной продукции составили 6 млн. руб. В случае допущения убоя всех поросят участка 4 комбината №1, с учётом затрат на восстановление поголовья (но без ликвидации свиноматок), ущерб составил бы около 66 млн. рублей.

Таким образом, в существующих экономических условиях, несмотря на эпизоотологическую целесообразность полного убоя, выбор стратегии ликвидации в экономическом отношении складывается в пользу принятых мер. Однако, реальная угроза возникновения вторичных вспышек из-за неполного убоя поросят в секторах доращивания, может привести к непредсказуемым эпизоотологическим последствиям.

2.2.5. Вспышки КЧС среди диких кабанов с передачей вируса домашним свиньям и противоэпизоотические мероприятия

Впервые детальные эпизоотологические данные взаимосвязанных случаев КЧС среди кабанов и домашних свиней в Волгоградской области были доступны при 2-х спорадических вспышках на территории государственного зоологического заказника "Центральный" в Арчединском и Донском охотохозяйствах в пойме р. Дон (Фроловский и Клетский районы) в 1998 -1999 гг.

На основании инцидентности вспышек КЧС среди диких кабанов и их территориального местоположения и вторичных вспышек в частном подворье охотников и 3-х населённых пунктах эпизоотический процесс можно характеризовать как эпизоотию болезни, в котором ведущая роль как источника вируса в эпизоотологической цепи принадлежала инфицированным диким кабанам.

Поскольку миграция инфицированных кабанов была ограничена реками Дон, Медведица, Арчеда, Иловля, автомобильной дорогой федерального значения и железной дорогой Москва-Волгоград, эпизоотический процесс КЧС ограничился указанными естественными и искусственными границами.

Вторая вспышка КЧС, эпизоотологически связанная с инфицированными дикими кабанами, произошла в сентябре 2002 г. в племенном хозяйстве СПК «Семёновское» Камышинского района. КЧС у кабанов и домашних свиней племенного хозяйства была подтверждена лабораторными исследованиями.

Таким образом, установленные на территории Волгоградской области вспышки КЧС среди диких кабанов в охотохозяйствах Клетского и Фролов-ского районов и Камышинского района дают основание для подозрения природной очаговости болезни на указанных территориях.

Поскольку инфицированные дикие кабаны были основными источниками вируса для домашних свиней, с целью прерывания эпизоотической цепи и создания популяционного иммунитета были разработаны мероприятия по профилактике и ликвидации классической чумы свиней среди кабанов на территории Волгоградской области, которые включали, наряду с общими мерами, проведение оральной иммунизации на благополучных территориях

(районах) и в неблагополучных охотохозяйствах. В качестве вакцинного препарата для оральной иммунизации была использована вирус-вакцина против классической чумы свиней сухая порошковидная для перо-ральной иммунизации свиней. Программа вакцинации кабанов была начата во второй половине февраля 1999 г. одновременно в 20 районах области и продолжается по настоящее время.

За период с 2000 по 2004 г.г. среди отстреленных и случайно обнаруженных павших кабанов признаков КЧС не было обнаружено, как на ранее угрожаемых территориях (Арчединское, Донское и Камышинское охотохозяйства), так и территориях наблюдения (охотохозяйствах, расположенных на территории граничащих районов) и в благополучных по КЧС охотохозяйствах области.

2.2.6. Усовершенствование ветеринарно-санитарных мероприятий против КЧС

В настоящее время выполнение противоэпизоотических мероприятий против КЧС регламентируется Инструкцией № 044-3 от 1990 г. «О мероприятиях по предупреждению и ликвидации классической чумы свиней», однако энзоотичность КЧС на территории Волгоградской области и возможная стационарность болезни в хозяйствах закрытого типа свидетельствуют о необходимости их усовершенствования.

Прежде всего, в связи со структурированностью свиноводства и различными способами выращивания свиней необходимо проводить учёт и классифицировать все хозяйства и населённые пункты по эпизоотологиче-скому статусу КЧС «в режиме реального времени», так как отсутствие таких данных приводит к несвоевременному планированию и запоздалому проведению профилактических мероприятий, что, в последующем, влияет на их противоэпизоотическую и экономическую эффективность.

При подозрении КЧС, наряду с учётом данных ветеринарной отчётности, в план эпизоотологического обследования неблагополучного хозяйства (инфицированной фермы, свинокомплекса) необходимо включать получение следующих данных:

- тип и структура хозяйства (открытое или закрытое, племенное, откормочное или смешанное);

количество животных по категориям;

- полные хронологические сведения о причинах подозрения и время уведомления государственной ветеринарной службы;

- количество и результаты вирусологических и серологических исследований проб;

- передвижение животных в недавнем прошлом (месяцы);

- предполагаемые источник вируса и время заноса в хозяйство (популяцию).

Вторым аспектом мониторинга КЧС является регулярное обследование хозяйств при подозрении и при подтверждении случаев болезни (в период карантина), проведение которого может бьггь осуществлено по схеме, представленной на рисунке 4. Ключевой частью этой схемы является многократное инспектирование хозяйства государственной ветеринарной службой после поступления сообщения о подозрении КЧС.

На основании классификации случая, данных эпизоотологического обследования и лабораторных исследований государственной ветеринарной службой принимаются решения о проведении соответствующих мероприятий согласно установленного эпизоотического статуса хозяйства и территории (районе), где оно расположено.

Важной особенностью контроля является обследование через 28 и 56 дней после наложения карантина и заключительная инспекция, в результате которой на основании анализа заболеваемости и результатов лабораторных исследований в хозяйстве отменяется карантин.

Сроки карантина

В существующей стратегии и тактике ликвидации КЧС в крупных хозяйствах основные ожидаемые результаты возлагаются на экстренную вакцинацию всего поголовья живой вакциной в повышенных дозах (10000 -ИМД50/МЛ и более) в комбинации с убоем больных и подозреваемых в заболевании животных, дезинфекцией, запретом передвижения животных, продажи живых свиней, сырого мяса и свинопродуктов (кож, сала и т .д.).

Рис 4 Схема мониторинга КЧС в хозяйстве при подозрении и подтверждении болезни

Однако, частичным убоем и экстренной вакцинацией в ЗАО «Краснодонский» не удалось добиться полного предотвращения циркуляции полевого вируса среди популяции поросят участка 4 за обозначенный инструкцией период 30-ти дневного карантина.

Одним из условий, способствующих решению данной проблемы, может быть увеличение срока карантина как минимум до 4 месяцев и проведение вакцинации поросят групп доращивания в дозе 200-300 тыс. ИмД 50/цд/животное в течение всего карантина и не менее 6 мес. после его отмены. Режим вакцинации свиней в зоне наблюдения (благополучный комбинат и племферма) обычный.

В условиях интенсивного технологического потока животных наиболее экономически трудным является принятие решения (согласно «Инструкции») о выводе всех свиноматок производственной зоны, перевод их в цех откорма и полный убой, так как пока до конца неизвестно о приживлении полевого вируса у вакцинированных свиноматок. Поэтому, на данном этапе исследований вопрос о ликвидации свиноматок пока остаётся открытым, но известно одно, что выведение из оборота всех свиноматок производственной зоны приведёт к нарушению стабильности получения поросят, технологического потока и в целом экономики свинокомплекса.

Проведённые эпизоотологические исследования и анализ вспышек КЧС на территории Волгоградской области в разрезе «область - район - хозяйство- отдельные животные» и «дикие кабаны- домашние свиньи» позволили оценить реальную ситуацию по КЧС в рамках отдельной федеральной административной части РФ во времени и пространстве. Полученные данные основных эпизоотологических показателей (инцидентность, превалент-ность, смертность, летальность), факторов риска и диагностических критериев на уровне районов, популяций (стада хозяйств) и отдельных животных, а также экономической и противоэпизоотической эффективности мер профилактики и борьбы могут быть основой для более полного понимания эпизоотического процесса КЧС и для разработки национальной программы ликвидации болезни в РФ.

3. Выводы

1. Ретроспективный анализ инцидентности вспышек КЧС, периодов неблагополучия 18 районов и годовых показателей превалентности на 100

тыс. животных свидетельствуют о значительных масштабах

распространения и энзоотичности болезни на территории Волгоградской области.

2. Установленная связь между количеством вспышек и типом свиноводческих хозяйств показала, что наиболее высокий риск заноса вируса КЧС имеет место для открытых крестьянско-фермерских (88,1%), невысокий (5,1-5,9%) для закрытых специализированных и самый низкий (2%) для племенных.

3. В изолированных свиноводческих хозяйствах закрытого типа интенсивные эпизоотологические показатели отличаются от таковых в открытых, крестьянско-фермерских. Так в последних, заболеваемость, смертность и летальность значительно выше и составляет 25%, 14,5% и 58,6%, и 14%, 4% и 31% соответственно.

4. Уровни эпизоотологических показателей при вспышках болезни в популяциях свиней с высокой плотностью (в хозяйствах закрытого типа) часто не совпадают с клиническими симптомами и патологоанатомически-ми изменениями, что значительно влияет на интервал между заносом вируса в хозяйство и подозрением КЧС. В хозяйствах открытого типа он составлял 1-2 недели, в хозяйствах закрытого типа - от 3-5 недель до 4-х месяцев, что в целом, влияет на время постановки окончательного диагноза и эффективность противоэпизоотических мероприятий.

5. При проведении противоэпизоотических мероприятий в неблагополучном по КЧС промышленном свинокомплексе однократная экстренная вакцинация в дозе 10000 ИмД50/жив<тюе с частичным убоем свиней в неблагополучных помещениях имеет лишь кратковременное положительное влияние (около 2-х месяцев), но не предотвращает циркуляцию полевого вируса.

6. Положительная линейная регрессия между смертностью и количеством восприимчивых поросят даёт основание считать низкую популяцион-ную устойчивость (40% и ниже) фактором эпизоотологического риска для возникновения КЧС в случае заноса полевого вируса и одной из причин вторичных вспышек, как в угрожаемой зоне (очаге), так и в зонах наблюдения.

7. Из всего количества первичных вспышек КЧС, установленных в Волгоградской области в 1981-2004 гг. лидирующими факторами заноса КЧС в хозяйства закрытого типа были передача вируса контаминированным транспортом (13%) и закупка инфицированных ремонтных свиней (6%); в хозяйства открытого типа - скармливание необезвреженных помоев (28%),

контакт с обслуживающий персоналом (6%) и связь с инфицированными дикими кабанами (13%).

8. Установленные вспышки КЧС среди диких кабанов обусловили новый региональный эпизоотологический фактор риска для домашних свиней и организацию проведения противоэпизоотических мероприятий для предотвращения природной очаговости болезни на территории Волгоградской области.

9. Основные положения усовершенствования стратегии профилактики и ликвидации КЧС в закрытых хозяйствах (свинокомплексах) должны включать:

- для благополучных - регулярные вирусологические диагностические исследования и серологический мониторинг популяционного иммунитета у репродуктивных животных и поросят групп доращивания;

для неблагополучных - увеличение срока карантина до 2- месяцев и выполнение режима вакцинации при использовании повышенных доз (200300 ИмД 5о/животное) в течение периода карантина и не менее 6-ти месяцев после его отмены с соблюдением необходимых ветеринарно-санитарных ограничений.

6. Практические предложения: Разработаны «Рекомендации по профилактике и мерам борьбы с классической чумой свиней в свиноводческих хозяйствах (предприятиях) и среди диких кабанов на территории Волгоградской области», утверждённые начальником Управления ветеринарии Волгоградской области 11.11.2004 г., которые используются ветеринарными специалистами областного и районного звена при ежегодном планировании противоэпизоотических мероприятий против инфекционных болезней животных;

Предложена схема мониторинга при подозрении КЧС и после подтверждения болезни в промышленных свиноводческих комплексах. Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Стариков A.M., Филиппов Н.В., Соловьянов В.В., Дубинин B.C., Сирот-кин B.C. Эпизоотологический надзор при классической чуме свиней в условиях отдельно взятого региона РФ // Проблемы ветеринарии на рубеже веков: Материалы научно-практической конференции. - Нижний Новгород, 2001.- С.101-102.

2. Хрипунов Е.М., Евсеева С.Д., Жестерев В.И., Куриннов В.В., Коломыцев A.A., Фертиков В.И., Егоров А.Н., Пархомцев С.А., Стариков A.M. Диагностика и профилактика классической чумы свиней у диких кабанов // Вестник охотоведения, 2004, т.1. - №1. - С. 65-69.

3. Филиппов Н.В., Соловьянов В.В., Стариков A.B. Некоторые эпизоотоло-гические аспекты в животноводстве // Производство пищевых продуктов в соответствии с требованиями концепции здорового питания и другие вопросы: Материалы Всероссийской конференции РПК «Политехник»,- Волгоград, 2004,- С. 87-89.

4. Куриннов В.В.,Забережный А.Д., Гребенникова Т.В., Коломыцев A.A., Стрижаков A.A., Лыска В.М., Васильев А.П., Стариков A.M., Медведева Е.Ю. Клиническая и лабораторная диагностика классической чумы свиней // Ветеринария. -2004. -№5. - С.18-21.

5. Куриннов В.В., Стариков A.M., Лыска В.М., Стрижаков A.A., Коломыцев A.A., Новиков Б.В., Юрков С.Г. Напряжённость иммунитета против КЧС у животных в промышленных свинокомплексах // Ветеринария.- 2005.- №1.- С. 19-23.

Отпечатано в типографии ГНУ ВНИИВВиМ, г Покров Владимирской области Тира* 70 экз.

№24755

РНБ Русский фонд

2006-4 27610

 
 

Оглавление диссертации Стариков, Александр Михайлович :: 2005 :: Покров

1. ВВЕДЕНИЕ.

1.1. Актуальность работы.

1.2. Цель и задачи исследований.

1.3. Научная новизна. л 1.4. Практическая значимость и реализация результатов исследований.

1.5. Апробация работы.

1.6. Публикации.

1.7. Основные положения диссертационной работы, выдвигаемые на защиту.

1.8. Личный вклад соискателя.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

2.1. Классическая чума свиней: вирус, болезнь, диагностика и специфическая профилактика.

2.1.1. Современная таксономия, патогенность вируса.

2.1.2. Болезнь, патогенез, иммунитет.:

2.1.3. Лабораторная диагностика.

2.1.3.1. Обнаружение вируса и вирусного антигена.;.

2.1.3.2.0бнаружение вирусспецифических антител.

2.1.4. Вакцины.

2.2. Современные особенности эпизоотического процесса классической чумы свиней.

2.2.1. Глобальная эпизоотическая ситуация в мире и странах ЕС.

2.2.2. Основные эпизоотологические показатели КЧС в РФ.

2.2.2.1. Инцидентность и географическое распространение КЧС среди домашних свиней.2i

2.2.2.2. Эпизоотология КЧС среди кабанов.

2.2.3. Источники и пути передачи вируса КЧС.

2.3. Стратегии борьбы с классической чумой свиней.

2.3.1. Контроль КЧС среди домашних свиней в Европе.

2.3.2. Стратегия без применения вакцинации.

2.3.3. Альтернативная стратегия, основанная на «не-вакцинации».

2.3.4. Стратегия, включающая чрезвычайную вакцинацию.

2.3.5. Меры борьбы с КЧС среди диких кабанов.

3.0. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3.1. Материалы и методы.

3.1.1. Материалы.

3.1.1.1.Виру

3.1.1.2. Вакцины.

3.1.1.3. Животные.

3.1.1.4. Культуры клеток.

3.1.1.5. Питательные среды, сыворотка.

3.1.1.6. Основные реактивы, приборы.

3.1.2. Методы.-.

3.1.2.1. Основные методы эпизоотологического исследования.

3.1.2.2. Методы учёта количества и плотности обитания кабанов.

3.1.2.3. Методы лабораторной диагностики классической чумы свиней.

3.1.2.4. Методы определения напряжённости иммунитета против классической чумы свиней.

3.1.2.5. Определение форм течения болезни.

3.1.2.6. Статистические методы обработки результатов.•.

3.2. Результаты исследований.

3.2.1. Природно-географические и экономические условия развития свиноводства Волгоградской области, имеющие эпизоотологическое значение при 1 классической чуме домашних свиней и диких кабанов.

3.2.2. Локализация и популяция диких кабанов.

3.2.3. Эволюция классической чумы среди домашних свиней и диких кабанов.47 •

3.2.3.1. Общая эпизоотическая ситуация и главные индикаторы проявления классической чумы свиней в период с 1980-2003 г.г. в РФ и Волгогра- • декой области.

3.2.3.2. Районированние, инцидентность и географическая локализация t . вспышек КЧС среди домашних свиней и диких кабанов.

3.2.4. Эпизоотологические и клинико-патологические характеристики вспышек классической чумы свиней в свиноводческих хозяйствах с различной плотностью содержания животных.

3.2.5. Эпизоотологическая характеристика вспышки классической чумы свиней в свинокомплексе промышленного типа ( ЗАО «Краснодонский»).

3.2.5.1. Общая производственно-экономическая характеристика хозяйства.

3.2.5.2. Обнаружение вспышки КЧС.

3.2.5.3. Ретроспективные эпизоотологические исследования.

3.2.5.4. Исследование напряжённости поствакцинального иммунитета у свиней против классической чумы.

3.2.6. Вирусологический мониторинг, установление источников вируса КЧС в неблагополучных хозяйствах и путей его передачи.

3.2.7. Экономический ущерб и эффективность стратегии ликвидации КЧС в свинокомплексах закрытого типа.

3.2.8. Вспышки КЧС среди диких кабанов с передачей вируса домашним свиньям и противоэпизоотические мероприятия.

3.2.9. Усовершенствование ветеринарно-санитарных мероприятий против КЧС

4. Обсуждение.lOf)

5. Выводы.

6. Практические предложения.

 
 

Введение диссертации по теме "Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология", Стариков, Александр Михайлович, автореферат

1.1. Актуальность работы

Благодаря огромным усилиям, прилагаемым государственной ветеринарной службой для контроля классической чумы свиней (КЧС) к концу 90-х годов 20-го века число вспышек в РФ значительно сократилось - с 67 в 1995 г, до 6 и 1 в 2003 и 2004 годах соответственно. Несмотря на сложившуюся в последние годы благоприятную эпизоотическую ситуацию КЧС по-прежнему представляет наибольшую экономическую опасность для стабильного ведения свиноводства во всех типах хозяйств и в первую очередь, промышленных свинокомплексах. Так, за период развития индустриального ' t л „ . свиноводства и применение стратегии систематической вакцинации, вирус I был занесён в 17 крупных свиноводческих хозяйств и комплексов с поголовьем от 50 до 216 тыс. голов. Это указывает на то, что существующие меры ветеринарно-санитарных и профилактических мероприятий пока не обеспечивают гарантированную защиту свиноводческих хозяйств от заноса вируса.

Данные эпизоотологических наблюдений свидетельствуют о длительной циркуляции вируса КЧС у свиней в крупных свинокомплексах и среди диких кабанов, приводящей к стационарности и природной очаговости болезни (15, 28, 45), при этом возможный период времени и все механизмы сохранения вируса в указанных популяциях точно не установлены и полностью неизвестны.

Волгоградская область является крупнейшим аграрным регионом южного федерального округа страны, где свиноводство является одной из наиболее важных отраслей животноводства. За период 1992 - 2003 гг. была установлена 21 вспышка КЧС в племенных, средних и мелкотоварных кресть-янско-фермерских хозяйствах и свинокомплексе ЗАО «Краснодонский», которые значительно осложнили эпизоотическую ситуацию и производственно-экономические отношения, поэтому актуальность болезни для ветеринарной службы и производителей свинины в области очевидна.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Классическая чума свиней: территориальное распределение и анализ эпизоотического процесса в Волгоградской области"

5. Выводы

1. Ретроспективный анализ инцидентности вспышек КЧС, периодов неблагополучия 18 районов и годовых показателей превалентности на 100 тыс. животных свидетельствуют о значительных масштабах распространения и энзоотичности болезни на территории Волгоградской области.

2. Установленная связь между количеством вспышек и типом свиноводческих хозяйств показала, что наиболее высокий риск заноса вируса КЧС имеет место для открытых крестьянско-фермерских (88,1%), невысокий (5,1-5,9%) для закрытых специализированных и самый низкий (2%) для племенных.

3. В изолированных свиноводческих хозяйствах закрытого типа интенсивные эпизоотологические показатели отличаются от таковых в открытых, крестьянско-фермерских. Так в последних, заболеваемость, смертность и летальность значительно выше и составляет 25%, 14,5% и 58,6%, и 14%, 4% и 31% соответственно.

4. Уровни эпизоотологических показателей при вспышках болезни в популяциях свиней с высокой плотностью (в хозяйствах закрытого типа) часто не совпадают с клиническими симптомами и патолого-анатомическими изменениями, что значительно влияет на интервал между заносом вируса в хозяйство и подозрением КЧС. В хозяйствах открытого типа он составлял 1-2 недели, в хозяйствах закрытого типа - от 3-5 недель до 4-х месяцев, что в целом, влияет на время постановки окончательного диагноза и эффективность противоэпизоотических мероприятий.

5. При проведении противоэпизоотических мероприятий в неблагополучном по КЧС промышленном свинокомплексе однократная экстренная вакцинация в дозе 10000 ИмД50/Животное с частичным убоем свиней в неблагополучных помещениях имеет лишь кратковременное положительное влияние (около 2-х месяцев), но не предотвращает циркуляцию полевого вируса.

6. Положительная линейная регрессия между смертностью и количеством восприимчивых поросят даёт основание считать низкую популяцион-ную устойчивость (40% и ниже) фактором эпизоотологического риска для возникновения КЧС в случае заноса полевого вируса и одной из причин вторичных вспышек, как в угрожаемой зоне (очаге), так и в зонах наблюдения.

7. Из всего количества первичных вспышек КЧС, установленных в Волгоградской области в 1981-2004 гг. лидирующими факторами заноса КЧС в хозяйства закрытого типа были передача вируса контаминированным транспортом (13%) и закупка инфицированных ремонтных свиней (6%); в хозяйства открытого типа - скармливание необезвреженных помоев (28%), контакт с обслуживающий персоналом (6%) и связь с инфицированными дикими кабанами (13%).

8. Установленные вспышки КЧС среди диких кабанов обусловили новый региональный эпизоотологический фактор риска для домашних свиней и организацию проведения противоэпизоотических мероприятий для предотвращения природной очаговости болезни на территории Волгоградской области.

9. Основные положения усовершенствования стратегии профилактики и ликвидации КЧС в закрытых хозяйствах (свинокомплексах) должны включать:

- для благополучных - регулярные вирусологические диагностические исследования и серологический мониторинг популяционного иммунитета у репродуктивных животных и поросят групп доращивания;

- для неблагополучных - увеличение срока карантина до 2- месяцев и выполнение режима вакцинации при использовании повышенных доз

300 ИмД 5о/животное) в течение периода карантина и не менее 6-ти месяцев после его отмены с соблюдением необходимых ветеринарно-санитарных огра

6. Практические предложения:

- «Рекомендации по профилактике и мерам борьбы с классической чумой свиней в свиноводческих хозяйствах (предприятиях) и среди диких кабаР нов на территории Волгоградской области», утверждённый начальником Управления ветеринарии Волгоградской области 11.11.2004 г, которые используются ветеринарными специалистами областного и районного звена при ежегодном планировании противоэпизоотических мероприятий против инфекционных болезней животных;

- схема мониторинга КЧС при подозрении и установлении болезни (в период карантина и посткарантинный период) в промышленных свиноводческих комплексах.

Заключение

Классическая чума свиней (КЧС) - высоко контагиозная мультиси-стемная геморрагическая вирусная болезнь свиней, которая может проявляться в виде острого, подострого или хронического, медленного течения, но может также протекать не замеченной. Существующая стратегия вакцинации и карантина, как основных противоэпизоотических мероприятий, в целом влияет на поддержание относительного благополучия области (и страны) по КЧС, но полностью не ограничивает распространение вируса среди популяции домашних свиней и кабанов и энзоотичность болезни является актуальной проблемой. Пока трудно предсказать, как будет развиваться эпизоотология КЧС в будущем, но имеющийся опыт борьбы и полученные результаты, обосновывающие проведение постоянного мониторинга, увеличение прививной дозы, периода вакцинации и срока карантина в благополучных хозяйствах и при вспышках КЧС в комбинации с регулярной оральной вакцинацией кабанов, могут быть базой для совершенствования нормативных документов и разработки государственной программы предотвращения распространения вируса, а в будущем, полной ликвидации КЧС на территории Волгоградской области и в целом по стране.

 
 

Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2005 года, Стариков, Александр Михайлович

1. Бабкин В.М. Особенности течения, диагностики и профилактики классической чумы свиней: дис. . канд. вет. наук: 16.00.03. Покров, 1993.- 131 с.

2. Бакулов И.А., Книзе А.В, Котляров В.М. и др. Система эпизоотологического мониторинга особо опасных, экзотических, малоизученных, вАничений.том числе зооантропонозных болезней животных. М., 2001.- 72 с.

3. Васильев А.П. Разработка твёрдофазного иммуноферментного анализа для прямого обнаружения антигенов вируса классической чумы свиней: автореф. дис. .канд. биол. наук. Покров, 2005. - 28 с.

4. Вишняков И.Ф. Диагностика вирусных болезней животных: состояние и перспективы // Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии: труды международной научно практической конференции/ГНУ ВНИИВВиМ. - Покров, 1992.- С. 221-230.

5. Вишняков И.Ф. Средства диагностики вирусных болезней животных: состояние и перспективы // Классическая чума свиней неотложные проблемы науки и практики / ГНУ ВНИИВВиМ. - Покров, 1995.'-.С. 45-49.

6. Воробьёв А.В. Земельные ресурсы Волгоградской области. Волгоград: «Станица-2», 1997. -. 132 с.

7. Воробьёв А.В. Поселения Волгоградской области. Волгоград: «Ста-ница-2», 2001.-315 с.

8. Гусев А.А., Дрыгин В.В. Совершенствование диагностической работы в ветеринарных лабораториях России // Современные аспекты ветеринарной патологии животных: материалы научной конференции / ВНИИЗЖ. Владимир, 1998. - С. 14-18.

9. Джупина С.И., Прудников С.И. Особенности классической чумы свиней в Сибири // Ветеринария, 1995. №8. - С. 8-12.

10. Джупина С.И. Роль диких животных в эпизоотологии классических инфекций сельскохозяйственных животных и меры контроля эпизоотического процесса // Болезни и паразиты диких животных. М., 1992.-С. 20-26.

11. Джупина С.И. Классическая чума свиней. Эпизоотический процесс и его контроль. М., 2000. - 172 с.

12. Егоров А.Н. Опыт борьбы с болезнями диких животных и профилактика эпизоотии на охраняемой территории // Болезни и паразиты диких животных. М., 1992. - С. 50-56.

13. Жеетерев В.И., Мищанин В.А. Чурбанова Г.Н. и др. Возможность экспресс-защиты свиней от заболевания КЧС // Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии: материалы научной конференции / ВНИИВВиМ. Покров, 1992. - С. 104.

14. Инструкция о мероприятиях по предупреждению и ликвидации классической чумы свиней: утв. Главным управлением ветеринарии МСХ СССР 30 марта 1990г.

15. Инструкция о мероприятиях по предупреждению и ликвидации классической чумы диких кабанов в охотничьих хозяйствах: утв. Главным управлением ветеринарии ГК СМ СССР по продовольствию и закупкам 24 октября 1990 г.

16. Кадастр неблагополучных пунктов по классической чуме свиней в Российской Федерации (1973-1996гг.). Покров, 1997.- 36 с.

17. Коломыцев А.А., Вишняков И.Ф., Жеетерев В.И. Международное совещание по проблеме "Меры контроля классической чумы свиней в Европе среди диких кабанов"// Вестник Российской академии с/х наук.- 1998. №6. -С. 21-23.

18. Коломыцев А.А. Особенности эпизоотического процесса классической чумы свиней и совершенствование мер борьбы: дис. . д-ра вет. наук: 16.00.03 Покров, 2003. -347 с.

19. Корицкая М. А. Иммунобиологические свойства вакцинного штамма КС вируса классической чумы свиней: автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 2005. - 28 с.

20. Куриннов В.В. Эпизоотологические, клинические и диагностические исследования при классической чуме свиней // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. 1999. - № 1. - С. 42-45.

21. Куриннов В.В. Средства и методы дифференциальной лабораторной диагностики классической чумы свиней // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 1999. - № 3. - С. 55-59.

22. Ломанов И.К., Борисов Б.П., Володина О.А. Ресурсы основных видов охотничьих животных и охотничьи угодья России (1991-1995 г.г.). -М., ЦНИЛ, 1996.-226 с.

23. Ломанов И.К. Численность основных видов охотничьих животных на территории Российской Федерации по данным государственной службы учёта охотничьих ресурсов России: статистические данные. М.; ЦНИЛ. - 1998.-20 с.

24. Ломанов И.К. Состояние охотничьих животных в Российской Федерации / ГУ Центрохотконтроль. М., 2004. - Вып. 6. - 213 с.

25. Лутовинов В.И. Биолого-экологический анализ охотничьих угодий и болезней диких и домашних животных Новгородской области: автореф. дис. . канд. биол. наук. Покров, 2004. - 26 с.

26. Макаров В.В., Джупина С.И., Коломыцев А.А. Классическая чума свиней-особенности эпизоотического процесса и проблемы на современном этапе // Аграрная Россия. -2001. №3. - С. 42-48.

27. Мищенко Н.К. Разработка культуральной вирусвакцины для специфической профилактики КЧС: автореф.дис. . докт. вет.наук. -М., 1981.-29 с.

28. Непоклонов Е.А. Классическая чума свиней: разработка методов лабораторной диагностики и средств специфической профилактики: автореф. дис. . докт. биол. наук. М., 2000. -46 с.

29. Николаева Н. Структура и свойства вируса классической чумы свиней: автореф. дис. . канд. биол. наук. Владимир, 1983. -20 с. .

30. Основные показатели развития животноводства Российской Федерации в 1990-2002 годах / МСХ РФ. М., 2003. -335 с.

31. Павлов В.Г. Роль ассоциативных и смешанных инфекций в патологии свиней // Вет. пробл. в промышл. свиноводстве .- Киев, 1983. С. 1920.

32. Павлов В.Х. Вирусоносительство при классической чуме свиней у домашних и диких свиней и их роль как источников возбудителя инфекции: дис. . канд. вет. наук. Покров, 1989. -215 с.

33. Панова Н.Е. Вирусоносительство у свиней в стационарном очаге классической чумы: эпизоотологические, вирусологические и иммунологические аспекты: автореф. дис. . канд. вет. наук. Новосибирск, 2001.- 17 с.

34. Попов В.И. Разработка и усовершенствование средств и способов специфической профилактики классической чумы свиней: дис. док. вет.наук: 16.00.03. Покров, 1981.-479 с.

35. Прудников С.И. Современные особенности проявления эпизоотического процесса классической чумы свиней в хозяйствах Сибири и Дальнего Востока: автореф. дис. . докт. вет. наук. Новосибирск, 1997. - 43 с.

36. Рекомендации о мероприятиях по предупреждению и ликвидации классической чумы свиней у кабанов в охотничьих хозяйствах: ут-вержд. Департаментом ветеринарии МСХ РФ 12 августа 1999г.

37. Семенихин А.Л., Вишняков И.Ф. Состояние и перспективы мер борьбы с классической чумой свиней // Классическая чума свиней неотложные проблемы науки и практики: материалы научно-практической конференции / ВНИИВВиМ. - Покров, 1995.- С. 16-22.

38. Сергеев В.А. Вирусные вакцины. Киев: Урожай, 1993. - 368 с.

39. Сергеев В.А., Непоклонов Е.А., Алипер Т.И. Классическая чума свиней в промышленном свиноводстве // Ветеринария. 2001. - № 9. - С. 10-15.

40. Сосов Р.Ф., Глушков А.А. Методические указания по применению статистических методов в эпизоотологии. М., 1974. - 67 с.

41. Состояние ветеринарного обслуживания в 1998 году. / МСХ и П РФ, Департамент ветеринарии. Москва, 1998. - 21 с. .

42. Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я., Соловьёв Б.Г., Фомина Н.В. Вирусные болезни животных / ВНИТИБП. М., 1998.- 928 с.

43. Толокнов А.С., Егорова А.И., Пронин И.А. и др. Опыт ликвидации классической чумы свиней на свинокомплексе «Ильиногорский» Нижегородской области // материалы конференции посвященной 100-летию открытия вируса ящура. Владимир, 1997. - С. 103-104.

44. Хрипунов Е.М., Евсеева С.Д., Жеетерев В.И. Диагностика и профилактика классической чумы свиней у диких кабанов // Вестник охотоведения. 2004. - Т. 1. - №1. - С. 65-69.

45. Шарнин В.Н. Делаем ставку на эффективность // Промышленное и племенное свиноводство.- 2004. №1. - С. 4-9.

46. Шиков А.Т., Гришок Л.П. Экологические и эпизоотологические особенности классической чумы диких кабанов // Классическая чума свиней неотложные проблемы науки и практики: материалы научно-практической конференции / ВНИИВВиМ. - Покров, 1995. - С 37-38.

47. Albina Е. CSF epidemios surveillance in French wild boars. // Measures to Control Classical Swine Fever in European Wild Boar. Italy, Perugia, 1998. - P. 68-75.

48. Annual reports of OIE reference laboratories and collaborating centers / Office International des Epizooties. 1997. - P. 10.

49. Aynaud J.M. Edite de la multiplication "in vitro" d'un clone du virus de la peste porcine // Rech. Veter. 1968. - P. 25-36.

50. Aynaud J.M. Peste porcine classique: les facteus d'identification in vitro (marqueurs genetiques) du virus en relation avec le pouvoir pathogene pour le pore / Aynaud J.M., Galicher C., Lombard J. // Annals Rech.Vet. 1972. - Vol. 3. - P.209-235.

51. Aynaud M., Classical Swine Fever and Related Viral Infections // Martinus Nijhod. Boston, 1988. - P. 165-180.

52. Bakkali Z. Preparation of diagnostic of pestiviruses by biomolecular methods / Bakkali Z., Gonzague M., Burger C. And Cruciere. / Proc. Sec. Symp. On Pestiviruses. Lion, 1992. - P. 227- 229.

53. Batza H.J. Neue Wege einer Qberregionalen Seuchenbekampfung am Beispil der Schweinepest // Zuchtungkunde. 1996. - Vol. 68, № 6. - P; 451-468.

54. Becher P. Futher characterization of Border Disease Virus isolates: evidence for the more than three species within the genus pestivirus / Becher P., Konig M., Paton D.J., Thiel H.J. // Virology, 1995. - Vol. 209. - P. 200-206.

55. Belak S., Ballagipordany A. Application of the Polymerase Chain-Reaction (PCR) in Veterinary Diagnostic Virology // VETERINARY RESEARCH COMMUNICATIONS, 1993. - Vol. 17. - Iss. 1. - P. 55-72.

56. Biront P., Leunen J. Vaccines // Classical Swine Fever and Related Viral Infections / Biront P., Leunen J. / edited by B. Liess, Boston, 1988. - P. 181-200.

57. Bodon L. Occurrence of contaminanting viruses in various swine fever virus streins // Acta Vet. Acad. Sci. 1975. - Vol.25. - P. 291-296.

58. Bruderer U. Combined testing of serum samples for antigen and antibody yields optimal detection of classical swine fever / Bruderer U., Depner K.R., Plagemann R. // Thid ESVV Symposium on Pestivirus Infections. -Lelystad, 1996.-P. 144-147.

59. Caij A. Potential use of monoclonal antibodies recognizing structural and non-structural hog cholera virus proteins as diagnostics tools / Caij A., et al. // Proc. Sec. Symp. on Pestiviruses, Lion, 1992. - P. 219-222.

60. Caij A. Production and characterization on monoclonal antibodies against hog cholera virus / Caij A., et al. / /Arch. Virology, 1993. Vol. 131. - P. 185-192.

61. Canal C.W. Differentiation of classical swine fever virus from ruminant pestiviruses by reverse transcription and polymerase chain reaction (RT OCR) / Canal C.W., et al. // Vet. Microbiol. 1996. - Vol. 48. - P. 373379.

62. Carbrey E.A. Diagnostic procedurs // Classical Swine Fever and Related Viral Infactions, ed.by Liess B. Boston, 1988. - P.99-114.

63. Carbrey E.A. Natural infection of pigs with bovine viral diarrhea virus and its differential diagnosis from hog cholera / Carbrey E.A. et al. //Am.Vet.Med.Assoc. 1976. - Vol.169. - P. 1217-1219.

64. CEDITEST Differentiation of pestiviruses by an immunoperoxidase test, using monoclonal antibodies against hog cholera virus (classical swine fever virus-CSFV), ID-DIO. Lelystad, 1996.

65. Chenut G. Oral immunisation of swine with a classical swine fever vaccine (Chinese strain) and transmission studies in rabbits and sheep / Chenut, G, et al. // Vet. Microbiol. 1999. - Vol. 64. - P. 265-276.

66. Cole C.G. History of hog cholera research in the US Department of Agriculture 1884-1960 / Cole C.G., et al. // Agriculture Information Bulletin. -1962.-No. 241.-USDA.

67. Collett M.S., Recent Advances in Pestivirus Research / Collett M.S., et al. // J.Jen.Virol. 1989. - V.70. - part 2. - P. 253-260.

68. Collett M.S. Molecular genetics of pestiviruses / Collett M.S., et al. // Сотр. Immun. Microbiol. Infect. Dis., 1992. - Vol. 15, № 3. - P. 145-154.

69. Corthier G. Activite antigenique comparee de deux togavirus: le virus de lapeste porcine et le virus de la maladie des muqueuses / Corthier G., et al. // Ann. Rech. Vet. 1974. - Vol. 5. - P. 373-393.

70. Council Directive 2001/89 EC on Community measures for the control of Classical Swine Fever (80 12X11 EEC). Official Journal of the European Communities, L 316, 1. 12. 2001.

71. Dahle J. Neutralizing antibody development following sequential inoculation of pigs with strains of bovine viral diarrhea virus and hog cholera virus / Dahle J., Liess В., Frey H.R. // Vet. Med. 1987. - В 34. - P. 729-739.

72. Darbyshire J.H. A serological relationship between swine fever and mucosal disease of cattle // Vet.Rec. I960. - Vol. 72. - P. 331-334.

73. De las Mulas J.M. Immunohistochemical detection of hog cholera viral glycoprotein 55 in paraffin-embedded tissues / De las Mulas J.M. et al. // Vet. Diagn. Invest. 1997. - Vol. 9. - P. 16-20.

74. Degert D. Monoclonal Antibodies to Bovine Viral Diarrhea Virus Cross Reactivities to Field Isolates and Hog Cholera Virus Strains / Degert D. et al. // Can. J. Vet.Res. - 1994. - Vol. 58. - P. 71-74.

75. Dekker A. Six antigenic groups within the genus pestivirus as identified by cross-neutralisation assay / Dekker A., Wensvoort G., Terpstra C. // Vet. Microbiol. 1995.- Vol. 47, №3-4.-P. 317-329.

76. Depner K.R. Evaluation of the enzyme-linked immunosorbent assay for the rapid screening and detection of classical swine fever virus antigen in blood of pigs / Depner K.R. et al. // Rev. sci.tech. Off. int. Epiz. 1995. - №14. -P. 677-689.

77. Depner K.R. Classical swine fever in wild boar (Sus scrofa) experimental infections and viral persistence / Depner K.R. et al. //Dtsch. Tierarztl. Wochenschr. Vol. 102. - P. 381- 384.

78. Depner K.R. Sensitivity of antigen ELISA in used in the CSF diagnostics / Depner K.R. et al. // Diagnostic procedures and measures to control classical swine fever in domestic pigs and the european wild boar. Pulawy, 1996. - P. 61-63.

79. Depner K.R. Influence of breed-related factors on the course of classical swine fever virus infection / Depner K.R. et al. // Vet.Rec. 1997. Vol. 140. - P. 506-507.

80. Depner K. Survival of classical swine fever virus in the wild boar population. Measures to Control Classical Swine Fever in European Wild Boar .Italy, Perugia, 1998. P. 53. ?

81. Depner K.R., Kern, В., Liess B. Epidemiologische Relevanz der Persistenz von KSP Virus beim Schwarzwild (Sus scrofa sp.), Amtstierarztlicher Di-enst und Lebensmittelkontrolle 5 I, 1998. - P. 244-248.

82. DIAGNOSTIC PROCEDURES FOR THE CONFORMATION OF DIFFERENTIAL OF CLASSICAL SWINE FEVER // Counsul Directive of 22 January 1980 introduction Community measures for the control of

83. Classical Swine Fever, 91/685 Counsul Directive of December 1991, ANNEX 1.

84. Diagnostic Procedures and Measures to Control Classical Swine Fever in Domestic Pigs and European Wild Boar. Pulawy, 1996. - P. 145.

85. Done S.H. Congenital infection of pigs with ruminant-type pestiviruses//Сотр. Pathol. 1994. - Vol.111, №2. - P. 151-163.

86. Dunne H.W. Hog cholera // Diseases of Swine (Eds Dunne HW and Leman A.D) 4th Edition Iowa State University Press, Ames. Iowa, 1975. -P. 189-255.

87. Edvards S. The development of an international referens panel of monoclonal antibodies for the differentiation of hog cholera virus from pestiviruses / Edvards S., Moenning V. and Wensvoort G. // Vet. Microbiol. -1991. -№29. P. 101-108.

88. Edwards S. Antigenic differences among pestiviruses / Edwards S. Paton D.// Vet. Clin. North. Am. Food Anim. Pract. 1995. - Vol. 11, №3. -P. 563-577.

89. Edwards S. Classical swine fever: the global situation Veterinary Microbiology // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 103-119.

90. Ehrensperger F. Immunological aspects of the infection // Classical Swine Fever and Related Viral Infections edited by В Liess. - Boston, 1988.-P. 143-164.

91. Ellis P.R. The economics of swine fever control and eradication in Diagnosis and Epizootology of Classical Swine Fever // Comm. European Communities. 1976. - P. 236-248.

92. EU COUNCIL DIRECTIVE 80/217/EEC of 22 January 1980, introducing community measures for the control of classical swine fever //Official jornal of the European Communities. 1980. - Vol. 47. - P. 11-23.

93. EU COUNCIL DIRECTIVE 2001/89/EC of 23 October 2001 on Community measures for the control of classical swine fever. CONSLEG: 2001L0089 —01/05/2004.

94. Final report on research project 96HS022 / Commission decision 96/553/EC. Commission European Community, VI/6311/98-EN.

95. Fletcher, W.O. A Field trial to determine the feasibility of delivering oral vaccines to wild swine / Fletcher, W.O., et al. // J. Wildlife Dis. -1990.-Vol. 26.-P. 502-510.

96. Francki R.I.B. Classification and nomenclature of viruses / Francki R.I.B. et al. //Fifth Report of the International Committee on Taxonomy ofp viruses. Wien & New York, 1991.

97. Grebennicova T.V., PCR detection of classical swine fever virus vaccine strain in blood of immunized animals / Grebennicova T.V., et al. // Therd ESVV Symposium on Pestivirus Infections. Lelystad, 1996.1. P. 135-139.

98. Greiser-Wilke I., Structure and presentation of a database in the world wide web of the CSF virus isolates held at the EU reference laboratory / Greiser-Wilke I., et al. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 131-136.

99. Hanson, R.P. Origin of hog cholera // J. Am. Vet. Med. Assoc. -1957.-Vol. 131. P. 211-218.

100. Harding J.D.J. Congenital tremors in piglets and their relation to swine fever / Harding J.D.J., Done J.T., and Darbyshire J.H. // Vet. Rec. -1966.-Vol. 79.-P. 388-390.

101. Harding M. Revers Transcriptase PCR Assay for Detection of Hog Cholera Virus / Harding M., et al. // Clin.Microbiol. 1994. Vol. 32, № 10. - P. 2600-2602.

102. Have P. Detection of antibodies against swine fever virus by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) // Acta vet. Scand. 1984. - № 25. -P. 462-465.

103. Hofmann, M.A. Rapid characterization of new pestivirus strains by direct sequencing of PCR-amplified cDNA from the 5' non-coding region / Hofmann, M.A., Brechtbuehl, K., StaEuber, N. // Arch. Virol. 1994. -Vol. 139.-P. 217-219.

104. Holm-Jensen M. Detection of antibodies against hog cholera virus and bovine viral diarrhoea virus in porcine serum. A comparative examination using CF, PL A and NPLA assays // Acta vet. Scand. 1981. - Vol. 22. -P. 85-98.

105. Jensen H. Detection of antibodies against hog cholera virus in bovine virus diarrhoea virus in porcine serum. A comporative examination using CF, PLA and NPLA assays. // Acta vet. Scand. 1981. - Vol. 22. - P. 85-98.

106. Ishikawa K. Comparison of the entire nucleotide and deduced amino acid sequences of the attenuated hog cholera vaccine strain GPE" and the wild-type parental strain ALD / Ishikawa K., et al. // Arch. Virol. 1995. -Vol. 140.-P. 1385-1391.

107. Kaden V. Oral immunisation of wild boar against classical swine fever: evaluation of the first field study in Germany / Kaden V., et al. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 239-252.

108. Koenen F. Epidemiological characteristics of an outbreak of classical swine fever in an area of highbpig density / Koenen F. et al. // Vet.-Rec. -1996.-Vol. 139. P. 367-372.

109. Komaniwa H. Micro Method for Performing Titration and Neutralization Test of Hog Cholera Virus Established Porcine Kidney Cell Strain / Komaniwa H., Fukusho A. and Shimizu Y. // Natl. Inst. Anim. Health Q. -1981,-Vol. 21.-P. 153-158.

110. Kosmidou A. Differentiation of classicsl swine fever virus (CSFV) strains using monoclonal antibodies against structural glicoproteins / Kosmidou A., et al.//Vet. Microbiol. 1995.-Vol. 47, № 1-2. - P. 111-118.

111. Laddomada A. Incidence and control of classical swine fever in European wild boar// Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 121-130.

112. Laude H. Virus de la peste porcine classique: isolement d'une souche cytolytique a parer de cellules IB-RS- 2 // Ann. Microbiol. 1978. - Vol. 129A.-P. 553-561.

113. Laude H. et Gelfi J. Diagnostic serologique de la peste porcine classique utilisation d'une souche cytolytique pour la recherche des anticorps neutralisants en microplaque // Ann. Rech. Vet. 1980. - Vol. 3. - P. 313319.

114. Laude H. Hog holera virus: arts and facts // Ann Rech Vet. 1987. -Vol. 18. - P. 127-138.

115. Liess B. Untersuchungen uber die Europaische Schweinepest. V. Er-mittlung inapparent infizierten Schvveine in der Ferkelerzeugenbestanden in drei Ortschaften / Liess В., et al. // Berl. Munch. Tierarztl. Wschr. 1975. -Vol. 88.-P. 397-409.

116. Liess B. Pathogenesis and epidemiology of hog cholera // Ann. Rech. Vet. 1987. - Vol. 18. - P. 139-145.

117. Liess B. Courses of hog cholera virus infection. // Regional biotechnology workshop on diagnosis of classical swine fever. Pulawy, 1994. - P. 1-6.

118. Liu S.T. Rapid detection of hog cholera virus in tissues by the polymerase chain reaction / Liu S.T., et al. // Virol. Meth. 1991. - Vol. 35. - P. 227-236.

119. Lowing P. Classical swine fever virus diversity and evoluation / Lowing P., Ibata G., Needham J., Paton D.// Gen. Virol. 1996. - Vol.77. -P. 1311-1321.

120. Manual of Diagnosis Tests and Vaccin for Terrestrial Animals, 5 th edition. 2004. - 17 p.

121. Matschullat G. Feldinfektion mit ВVD-Virus bein Schwein: Epidemiologic und Diagnostik / Matschullat G. et al. // Deutsche Tierarztliche Wochenschrift. 1994. - Vol. 101, №1. - P. 22-26.

122. Mengeling W.L. Host response to persistent infaction with hog cholera virus / Mengeling W.L., Cheville N.F. // Proc.of 72nd Ann.Meet. US Animal Health Ass. 1968. - P. 283-296.

123. Mengeling W.L. A fluorescent microplaque assay for hog cholera virus. // Arch.Virus. 1968. - Vol. 23. - P. 27-39.

124. Mengeling W.L., Packer R.A. Pathogenesis of chronic hog cholera. Hostresponse / Mengeling W.L., Packer R.A. // Am. J. Vet. Res. 1969. -Vol. 30.-P. 409-417.

125. Measures to Control Classical Swine Fever in European Wild Boar. -Italy, Perugia, 1998. Sala dei Notari-Palazzo Comunale. -145 p.

126. Meyers, G. Classical swine fever virus: recovery of infectious viruses from cDNA constructs and generation of recombinant cytopathogenic defective interfering particles / Meyers G., Thiel H.J., Rumenapf T. // Virol. -1996.-Vol. 70.-P. 1588-1595.

127. Meyers, G. Molecular characterization of pestiviruses / Meyers, G., Thiel, H.J.// Adv. Virus Res. 1996. - Vol. 47. - P. 53-118.

128. Mc. Goldrick A. Closed one-tube reverse transcription nested polymerase chain reaction for the detection of pestiviral RNA with fluorescent probes / Mc. Goldrick A., et al. // Virol. Methods, 1999. - Vol. 79. - P. 85-95.

129. Mihaita, S. Incercari de imunizare pestei porcine cu virus lapinizat ► sub forma de aerosoli (nota I) / Mihaita, S., Popa, M., Albu, T. / Lucrar. Stiint. Inst. Ser. Vacc. Pasteur. Bucaresti, 1962. - Vol. 6 - P. 57-65.

130. Muller T. Testung eines neuen Koders fur die orale Immunisierung des Rotfuchses (Vulpes vulpes) gegen / Muller, T. et al. // Tierarztl. Wschr. 1993.-Vol.106.-P. 41-46.

131. Moennig V. Pestivirus // Vet. Microb. 1990. - Vol. 23. - P. 35-54.

132. Moennig V. The pestiviruses / Moennig V., and Plagemann G.W. // Adv. Virus Res., 1992. - Vol. 41. - P. 53-98.

133. Moennig V. Introduction to classical swine fever virus, disease and control policy // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 93-102.

134. Moormann R.J.M. Molecular cloning and nucleotide sequence of hog cholera virus, strain Brescia and mapping the genomic region encoding envelope protein El / Moormann R.J.M., et al. // Virol. 1990. - Vol. 177. -P. 184-198.

135. Moormann R. The potential use of marker vaccines for classical swine fever / Moormann R., et al. // Therd ESVV Symposium on Pestivirus Infections. Lelystad, 1996. - P. 180- 187.

136. OIE, International Animal Health Code / Office International des Epizooties. Paris, 1998. - P. 147-154.

137. O.I.E. World Animal Health. Paris, 1992-1999. - P. 1993-2000.

138. Paton D.J. An ELISA detecting antibody to conserved pestivirus epitopes / Paton D.J., Edwards S., Wensvoort G. // Virol. Meth. 1991.'- Vol. 31.-P. 315-324.

139. Paton D.J. BVD monoclonal antibodies: relationchip between viral protein specificity and viral strain specificity / Paton D.J., Sands J.J., Roehe P.M. // Arch. Virol. 1991. - Vol. 3. - P. 47-54.

140. Paton D.J. Congenital infection of pigs with ruminant-type pestiviruses / Paton D.J., Done S.H. // Сотр. Pathol. 1994. - Vol. 111, № 2. -P. 151-163.

141. Paton D.J. Infaction of pigs and cattle with bovine viral diarrhea virus on a farm in England / Paton D.J., Simpson V. and Done S.H.// Vet. Rec. -1994.-Vol. 131.-P. 185-188.

142. Paton D.J. A proposed division of the pestivirus genus using monoclonal antibodies, suppored by cross-neutralisation assay and genetic sequencing / Paton D.J., et al. // Vet. Res. 1995. - Vol. 26. - P. 92-109.

143. Paton D.J. Classical swine fever virus: a ring test to evaluate RT-PCR detection methods / Paton D.J., et al. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. -P. 159-174.

144. Pirtle E.C. Relationship between the soluble antigen of hog cholera and bovine viral diarrhoea viruses prepared in tissue culture / Pirtle E.C., Gutekunst D.E. // Vet. Rec., 1964. - Vol. 76. - P. 1177-1180.

145. Pirtle E.C., Kniazeff A.J. Susceptibility of cultured mammalian cells » to infaction with virulent and modified hog cholera viruses / Pirtle E.C.,

146. Kniazeff A.J.// Am. J. Vet. Res. 1968. - Vol. 29. - P. 1033-1040.

147. Plant I.W. Immunological relationship between Border disease, mucosal disease and swine fever / Plant I. W., et al. // Vet. Rec. 1973. - Vol. 92.

148. Report from the scientific veterinary committee on guidelines for a classical swine fever emergency vaccination programme Document VI/7389/94-EN, Comm. EC.

149. Report on Annual Meeting of National Swine Fever Laboratories.

150. Austria, Vienna, 1997. P. 96.

151. Report from the scientific veterinary committee (adopted 17 September 1997) the use of marker vaccines in the control of infectious disease in particular classical swine fever. Document VI/8119/97-AL, Comm. EC.

152. Proceeding of Second Symposium on Pestiviruses. 1-3 okt., 1992, Marcel Merieux, 1993. P. 269.

153. Proceeding of the Third Symposium on Pestiviruses. 19-20 sept., 1996, The Netherlands, Lelystad, 1996. P. 192.

154. Ressang A.A. The diagnosis of hog cholera in the Netherlands / Ressang A.A. and Boer J.L. // Bull.off.int.epiz. 1971. - Vol. 75. - P. 519-531.

155. Ressang A. A. Studies on the pathogenesis of hog cholera .1. Demonstration of hog cholera virus subsiquent to oral exposure // Zbl. Vet. Med. -1973.-Vol.20.-P. 256-271.

156. Roche P.M. Polymerase chain reaction amplification of segments of pestivirus genomes / Roche P.M., Woodward M.J. // Arch. Virol. 1991. -Suppl. 3. - P. 231-238.

157. Rutili, D. Peste suina classica: prove di vaccinazione per via orale con l'impiego di esche, Atti Soc. / Rutili, D., Frescura, Т., Titoli, F. // Ital. Sci. Vet. 1988. - XLII. - P. 789-791.

158. Sakoda Y. A new assay for classical swine fever virus based on cyto-pathogenicity in porcine kidney cell line FS-L3 / Sakoda Y., Yamaguchi O., Fukusho A. // Virol. Meth. 1998. - Vol. 70. - P. 93-101.

159. Saatkampa H.W. Economic aspects of the control of classical swine fever outbreaks in the European Union / Saatkampa H.W., Berentsenb P.B.M., Horst H.S. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 221-237.

160. Sasahara, J. Field experiment of hog cholera vaccine prepared in guinea-pig kidney cell culture / Sasahara, J., et al. // Natl. Inst. Anim. Hllh. 1969,-Quart. 9.-P. 83-91.

161. Saunders G.C. Development and Evaluated of an Enzyme-Labeled Antibody Test for the Rapid Detection of Hog Cholera Antibodies // Am. J. Vet. Res. 1976. - Vol. 38, № 1. - P. 21-25.

162. Shannon A.D. Detection of hog cholera virus antigens in experimentally infected pigs using an antigen-capture ELISA / Shannon A.D., et al. // Vet. Microbiol. 1993. - Vol. 34. - P. 233-248.

163. Shih-Tung Liu. Rapid detection of hog cholera virus in tissues by the polymerase chain reaction / Shih-Tung Liu., et al. //Virol. Meth. 1991. -Vol. 35. - P. 227-236.

164. Smit A.J. Laboratory experience during the classical swine fever virus epizootic in the Netherlands in 1997-1998 / Smit A.J., et al. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol.73. - P. 197-208.

165. Snowdon W.A. The role of disease virus in the control of swine fever / Snowdon W.A. and French E.L. // Diagnosis and Epizootiology of Classical Swine Fever. Comm. of the European Communities, EUR 5486. -1976.-P. 159-183.

166. Stegeman A. The 1997-1998 epidemic of classical swine fever in the Netherlands / Stegeman A., et al. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 183-196.

167. Szent-Ivanyi T. The history of classical swine fever control in Hungary and experiences with the production and use of C-strain vaccine // Report FAO/CEC Seminar on African Swine Fever and Hog Cholera. Rome, 1984.-Vol. 10. - P. 22-25.

168. Susa, M. Pathogenesis of classical swine fever: B-lymphocyte deficiency caused by hog cholera virus / Susa, M. et al. // Virol. 1992. - Vol. 66.-P. 1171-1175.

169. Terpstra C. Control of swine fever in enzootic areas by regional vaccination for limited periods using C-strain virus // Proc Int Pig Vet Congr., Mexico City, 1982. Vol. 7. - P. 127-135.

170. Terpstra C. Experience with regional vaccination against swine fever in enzootic areas for limited periods using C-strain virus / Terpstra С and Robijns KG. // Tijdschr Diergeneeskd, 1977. Vol. 102. - P. 106-12.

171. Terpstra C. Antibody Response against Swine Fever Following Vaccination with C-Strain Virus / Terpstra C. and Tielen J.M. // Zbl. Vet. Med. В. 1976.-Bd.23.-Heft 10.-P. 809-821.

172. Terpstra C. Epizootiology of swine fever // Vet. Quarterly, 1987. -Vol. 9. - P. 50-60.

173. Terpstra C. Potency control of modified live viral vaccines for veterinary use / Terpstra C. and Kroese A.H. // Vaccine, 1996. - Vol. 14, № 1. -P. 13-18.

174. Thibault J.C. Principle and use of antigen capture ELISA for the diagnosis of classical swine fever. JCT 109/NM le 04/10/94.

175. Thiel H.J. Hog Cholera: Molecular composition of virions from a Pestivirus / Thiel H.J., et al. // Virol. 1991. - Vol. 65, №9. - P. 4705-4712.

176. Trautwein G. Pathology and pathogenesis of the disease. // Classical Swine Fever and Related Viral Infections / edited by B. Liess. Boston,1988.-P. 27-54.

177. Thrusfield M. Veterinary epidemiology Butterworths.- London, Boston, Durban, Singapore, Sydney, Toronto, Wellington, 1986. P. 280.

178. Van Oirchot J.T. A congenital persistent swine fever infaction. I.Clinical and virological observations / Van Oirchot J.T., Terpstra C. A. // Vet. Microbiol. 1977. - Vol. 2. - P. 121-132.

179. Van Oirschot J.T. Description of the virus infection. // Classical Swine Fever and Related Viral Infections / edited by В.- Liess, Boston, 1988. P. 1-25.

180. Van Oirschot, J.T. Hog cholera. / Shaw, B.E, et al. (Eds.) // Diseases Of Swine, 8th Edition. Iowa State University Press.- Iowa, 1999. P. 159172.

181. Van Oirschot J.T. Vaccinology of classical swine fever: from lab to field // Vet. Microbiol. 2003. - Vol. 96, № 4. - P. 367-384.

182. Vilcek S. Genetic variability of classical swine fever virus / Vilcek S. et al. // Virus Research, 1996. - Vol. 43. - P. 137- 147.

183. Wengler G. Family Flaviviridae. Classification and Nomenclature Of Viruses. Fifth report of the International Committee on Taxonomy of Viruses / Wengler G., et al. .- Springer, Berlin, 1991. P. 223-233.

184. Wensvoort G. Classical swine fever. A Changing clinical picture / Wensvoort G., Terpstra C. //Tijdschr. Diergeneesk, 1985. - Vol. 110. - P. 263-269.

185. Wensvoort G. An Enzyme Immunoassay Employing Monoclonal Antibodies and Detecting Specifically Antibodies to Classical Swine Fever Virus / Wensvoort G., Bloemraad M. and Terpstra C. // Vet. Microbiol. -1988.-Vol. 17.-P. 129-140.

186. Wensvoort C. Bovine viral diarrhoea infections in piglets from sows vaccinated against swine fever with contaminated vaccine / Wensvoort C. and Terpstra C. // Res. Vet. Sci., 1988. - Vol. 45. - P. 143-148.

187. Wensvoort G. Characterization of porcine and some ruminant pestiviruses by cross-neutralization / Wensvoort G., Terpstra C., De Kluyver E.P. // Vet. Microbiol. 1989. - Vol. 20. - P. 291-306.

188. Westergaard J.M. Epidemiology of classical swine fever // Diagnostic procedures and measures to control classical swine fever in domestic pigs and the European wild boar. Pulawy, 1996. - P. 119-130.

189. Wirz B. Detection of hog cholera virus and differentiation from other pestiviruses by polymerase chain reaction / Wirz В., et al. // Clin. Microbiol. 1993.-Vol. 31.-P. 1148-1154.

190. Wise G.H. Eradication of hog cholera from the United States //,Prac--tices in Veterinary Public Health and Preventive Medicine in the United States .- Iowa State University Press, 1986. - P. 199-223.

191. Young S.H. The use of supplemental tests in the diagnosis and eradication of hog cholera // Am. Vet. Med. Assoc. 1970. - Vol. 157. - P. 1855-1859.