Автореферат диссертации по медицине на тему Роль межклеточных взаимодействий через щелевые контакты в канцерогенезе
На правах рукописи
КРУТОВСКИХ Владимир Андреевич
РОЛЬ МЕЖКЛЕТОЧНЫХ ВЗАИМОДЕЙСТВИЙ ЧЕРЕЗ ЩЕЛЕВЫЕ КОНТАКТЫ В КАНЦЕРОГЕНЕЗЕ
14.00.14 - онкология
Автореферат диссертации на соискание учёной степени доктора медицинских наук
Санкт-Петербург 2005
Работа выполнена в Международном агентстве по изучению рака Всемирная Организация Здравоохранения, Лион, Франция
Научный консультант: доктор медицинских наук, профессор
ТУРУСОВ Владимир Станиславович
Официальные оппоненты: доктор медицинских наук, профессор
АНИСИМОВ Владимир Николаевич
доктор медицинских наук, профессор ПОЖАРИССКИЙ Казимир Марианович
доктор медицинских наук, профессор КВЕТНОЙ Игорь Моисеевич
Ведущее учреждение: Институт Цитологии РАН РФ, г. Санкт-Петербург
Защита состоится ¿¡муЗ^/^-тЯ 2005 года в часов на
заседании диссертационного совета Д.208.052.01 при НИИ онкологии им. проф. Н.Н. Петрова Минздрава России (197758, Санкт-Петербург, Песочный-2, ул. Ленинградская, д. 68)
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке НИИ онкологии им. Н.Н.Петрова Минздрава России
Автореферат разослан: 02е4$£у<А_2005 года
Ученый Секретарь диссертационного совета Профессор
В.В.Худолей
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность темы. Отличительной особенностью канцерогенеза является многообразие этиологических факторов, вовлеченных в этот процесс. Помимо общепризнанной роли в генезе рака генетических повреждений ряда генов, белковые продукты которых регулируют клеточную пролиферацию, дифференцировку и клеточную смерть (Hanahan D, Weinberg RA, 2000; Vogelstein B, Kinzler KW, 2004), а также осуществляют репарационный контроль клеточного генома, существенный вклад в канцерогенез вносят и нарушения межклеточных взаимодействий (Васильев ЮМ, 1997; Yamasaki H, 1990). Контактируя между собой, клетки получают разнообразную сигнальную информацию, опосредованно влияющую на практически все аспекты их жизнедеятельности. Аппарат межклеточных взаимодействий состоит из нескольких структурно и функционально различных типов межклеточных соединений. Большинство из них - адгезивные соединения, десмосомы, плотные контакты - имеют выраженную структурно-механическую функцию, объединяя клетки в единое целое, т.е. ткань. Щелевые же контакты (ЩК), представляя собой микроскопические водяные канальцы, напрямую соединяющие цитоплазмы клеток, обеспечивают непосредственный обмен метаболитами и сигнальными молекулами между клетками в пределах данной ткани (рис.1).
Рис 1 Схематическое строение щ «пев ого контакта Щелевой ион такт состоит мэ смолпения большого числе индивидуальные мифоканапыде. пронизывающих плазматически« мембраны соседствующих друг с другом клеток Клкдый каналец в свою очеред состоит из дт/к попукжвпов - ион н аксонов. по одном/ с стороны квкдоЯ клетки К*кдыХ коннексои яеп явтея рвзупьтатом сбор*" шести молекул белков коннвксииов Структурно ксннексины представляют собой транс мембранные белю*, четьре пронизывающие латеральные мембраны клеток домены которые перемешаются двумя »мстраклэточными и одной внутриклеточной петлями
Являясь неотъемлемой составной частью комплексного аппарата межклеточных взамодействий, ЩК вносят существенный вклад в обеспечение поддержания разнообразных параметров тканевого гомеостаза (Крутовских ВА, 2000; Kumar NM, Gilula NB, 1996; Willecke K et al., 2002).
Соответственно, нарушение функции щелевых контактов существенно влияет на клеточную пролиферацию, дифференцировку, клеточную гибель, что в свою очередь имеет значительный этиопатогенетический вклад в процесс формирования новообразований (Yamasaki Н, 1990; Yamasaki H, Naus CCG, 1996; Trosko JE., Ruch RJ., 1998; Krutovskikh V, 2002; Ruch RJ., Trosko JE., 2001).
Резкое снижение способности сообщаться между собой через ЩК было отмечено in vitro у опухолевых клеток еще несколько десятилетий назад (Lowenstein WR, Kanno Y. 1966). Этиологическая значимость этого феномена, а также отвечающие за эти нарушения механизмы долгое время оставались во многом неясными, в основном, из-за отсутствия фундаментальных знаний о молекулярной структуре щелевых контактов.
До последнего времени оставалось также неясно, сопровождается ли опухолевый рост in vivo утратой межклеточной сообщаемости через ЩК аналогично феномену, описанному ещё много лет назад в культуре опухолевых клеток.
Благодаря недавнему бурному прогрессу в области биологии межклеточных взаимодействий, в частности, открытие семейства белков ЩК - коннексинов (Сх), стало возможным получение высокоспецифичных антисывороткок и молекулярных генных проб ко многим индивидуальным белкам этого семейства, что существенно расширило экспериментальные возможности в изучении как функции ЩК и входящих в их состав коннексинов, так и механизмов их нарушений в канцерогенезе.
В частности, многочисленные эксперименты по восстановлению межклеточной сообщаемости у коммуникационно дефектных линий раковых клеток путём устойчивой трансфекции в них генов ЩК коннексинов показали, что межклеточная сообщаемость является сильным опухолеподавляющим фактором (Rose В. et al., 1991; Eghbali В, et al., 1991; Chen Sh-Ch. et al., 1995). В то же время в ряде случаев обнаружилось, что подавление опухолеродности клеток при искусственном восстановлении экспрессии в них белков коннексинов далеко не всегда и не обязательно непосредственно связано с улучшением межклеточной сообщаемости. Более того, оказалось, что для подавления
опухолеродного фенотипа важно не само по себе восстановление межклеточной сообщаемости, а в большей мере тип индивидуального коннексина, с помощью которого это было произведено (Mesnil M. et al., 1995).
Таким образом, было предположено, что белки ЩК коннексины, наряду со своей основной функцией обеспечивать межклеточную сообщаемость формированием каналов щелевых контактов, также обладают дополнительными свойствами, имеющими существенное влияние на поведение опухолевых клеток.
Выяснение механизмов повреждения межклеточной сообщаемости при опухолевом процессе может существенно улучшить диагностику рака, способствовать разработке новых методов его лечения, а также способствовать разработке новых онкопрофилактических стратегий.
Цель работы:
Оценка этиопатогенетической значимости нарушений межклеточных взаимодействий через щелевые контакты в канцерогенезе.
Задачи исследования:
1. Выявить функциональные нарушения межклеточной сообщаемости через ЩК на разных этапах канцерогенеза in vivo.
2. Изучить молекулярные механизмы нарушения функций ЩК в экспериментальном и спонтанном канцерогенезе.
3. Выявить молекулярные механизмы подавления опухолевого роста белками ЩК коннексинами.
4. Экспериментально проверить предположение о многофункциональной природе белков коннексинов и оценить потенциальный вклад этих функций в коннексин-опосредованное подавление опухолевого роста.
Научная новизна
Впервые было показано, что в опухолях печени человека межклеточная сообщаемость резко снижена по сравнению с окружающей их непораженной тканью.
Впервые на экспериментальной модели гепатоканцерогенеза крыс было продемонстрировано, что предопухолевые очаговые поражения уже на самых ранних этапах своего формирования могут быть коммуникационно изолированы от окружающей их нормальной паренхимы печени.
Впервые были получены экспериментальные доказательства распространения среди опухолевых клеток через их ЩК сигнальных молекул, запускающих механизм клеточной гибели.
Впервые были обнаружены соматические мутационные повреждения гена коннексина43 (Сх43) в спорадических опухолях толстой кишки человека. Было также выявлено, что мутации гена Сх43 происходят на довольно поздних этапах формирования новообразований колоректального рака, и их возникновение тесно связано с появлением признаков озлокачествления.
Также впервые было обнаружено, что редкие варианты гена коннексина26, вызывающие врождённую доречевую глухоту по рецессивному типу, могут быть дополнительным фактором генетической предрасположенности к ракам желудочно-кишечного тракта.
Научно-практическая значимость. Полученные в работе даные расширяют современные представления о молекулярно-генетических механизмах канцерогенеза и имеют конкретную практическую значимость.
В частности, экспериментально обнаруженная возможность распространения в популяции опухолевых клеток через ЩК вызывающих клеточную гибель сигналов может быть успешно использована для повышения эффективности лекарственной терапии рака.
Специфический характер обнаруженных в опухолях толстой кишки человека мутаций Сх43 - сдвиг рамки считывания из-за инсерции-делеции единичных нуклеотидов в карбоксильно-терминальном домене белка -дополняет имеющиеся ранее представления о молекулярных механизмах канцерогенеза толстой кишки. Разрушение в результате таких мутаций способности Сх43 взаимодействовать с целым рядом сигнально активных белков (Р-катенин, ZO-1, клаудин, дребрин и другие) (Giepmans BNG, Moolenaar WH., 1998, Toyofuku T et al., 1998; Ai Zh et al, 2000; Jin Ch., et al, 2000; Butkevich E. et al., 2004) приводит к неконтролируемой пролиферации опухолевых клеток. Природа этих мутации также убедительно указывает на наличие нераспознанной ранее сигнальной активности Сх43 в контроле опухолевого фенотипа.
Обнаруженная в данной работе тесная взаимосвязь специфического мутационного повреждения Сх43 в его карбокси-терминальной части с появлением признаков инвазивности опухолей толстой кишки может быть использована в клинической практике в качестве нового диагностического критерия опухолевой прогрессии.
Возникающие при раке толстой кишки в результате сдвигающих рамку считывания мутаций новые аминокислотные последовательности в составе белковой молекулы Сх43 обладают сильной антигенностью и могут служить иммуно-диагностической и иммуно-терапевтической мишенью.
Высокая частота гетерозиготных носителей редких вариантов гена Сх26 среди больных раком желудочно-кишечного тракта позволяет использовать наличие этих вариантов в качестве нового критерия для раннего выявления групп повышенного онкологического риска.
Результаты исследования опубликованы в 34 научных публикациях в отечественной и международной научной периодике.
Основные положения, выносимые на защиту:
Опухолевый рост in vivo сопровождается значительным снижением межклеточной сообщаемости через ЩК, в основе чего лежат различные механизмы.
Межклеточная сообщаемость через ЩК является сильным противоопухолевым фактором.
Межклеточная сообщаемость между опухолевыми клетками через ЩК может являться путём распространения в опухолевой клеточной популяции сигналов, запускающих процесс клеточной смерти, что является существенной составляющей опухоль-подавляющего эффекта межклеточной сообщаемости.
Белки ЩК коннексины являются опухолевыми супрессорами, способными подавлять опухолевый рост независимо от межклеточной сообщаемости через ЩК. Именно это свойство и обусловливает ярко выраженную вариабельность противоопухолевого потенциала каждого из 20 известных индивидуальных коннексинов.
Индивидуальные коннексины могут быть избирательно и высоко специфично соматически мутированы в отдельных типах раков человека. Мутационно модифицированные коннексины могут приобретать способствовать ускорять опухолевую прогрессию.
Редкие варианты гена коннексина26 могут быть новым фактором предрасположенности к ракам желудочно-кишечного тракта.
Апробация работы. Диссертация была представлена на международных конференциях по межклеточным щелевым контактам [Хирошима (Япония, 1993), Кей Ларго (США, 1997), Гватт (Швейцария, 1999), Гонолулу (США, 2001), Кембридж (Англия, 2003)], на ежегодных
симпозиумах американской ассоциации по изучению рака (1991, 1993, 1995, 1997, 1999, 2002), международном симпозиуме по раннему выявлению и предотвращению рака (Париж, Франция, 2002). Всего по теме диссертации было сделано 40 устных и постерных презентаций.
Структура и объём диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, пяти глав, описывающих результаты собственных исследований, заключения, выводов и практических рекомендаций. Объём работы составляет 135 страниц. Диссертация проиллюстрирована 45 рисунками и 6 таблицами. Список цитированной литературы содержит 20 отечественных и 239 зарубежных источников.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
В исследованиях были использованы раличные экспериментальные модели химического гепатоканцерогенеза у крыс. В опытах по индукции опухолей печени было использовано 50 Fisher 344 крыс. Ряд исследований был произведён с использованием человеческого опухолевого материала -хирургически удалённые опухоли печени, толстой кишки, желудка, мочевого пузыря, а также образцы крови. Также использовались линии опухолевых клеток грызунов (ВС31) и человека (HeLa, A431).
Межклеточная сообщаемость в опухолях печени in vivo измерялась специально разработанным для этого исследования функциональным методом нанесения уколов красителя Lucifer yellow в толщу полутонких срезов печени, основанном на феномене селективного перетекания красителей через щелевые контакты клеток (Krutovskikh V. et al, 1991, 1995; Krutovskikh V, Yamasaki H., 1995).
Межклеточная сообщаемость в культуре клеток измерялась либо методом микроиньекций красителя Lucifer yellow в отдельные клетки монослоя с последующим количественным подсчётом клеток, в которые перетёк краситель, либо упрощённым методом scrape loading, когда загрузка красителя в клетки производилась путём нанесения пореза монослоя в присутствии в питательной среде красителя Lucifer yellow с последующей полуколичественной оценкой его растекания в соседние неповреждённые клетки.
Опухоль-ассоциированные нарушения экспрессии индивидуальных белков ЩК коннексинов изучались на тканевом уровне рядом непрямых методов (иммуногистохимическая окраска и иммуноблоттинг) с использованием высокоспецифичных антисывороток, полученных в
отделе Многостадийного Канцерогенеза Международного Агентства по Изучению Рака (МАИР) иммунизацией кроликов синтетическими пептидами, соответствующими разным доменам индивидуальных коннексинов. В ряде случаев использовались коммерческие антиконнексиновые антисыворотки (Chemicon Intl, Sigma, Zymed Laboratories Inc., Transduction Laboratories). Иммуногистохимические окраски на белки коннексины производились либо с использованием метода усиления сигнала DAB продукта его последующим серебрением [Merchenthaler I. et al. 1989], либо с использьванием тирамидного метода (TSA™ Fluorescence systems, NEN™ Life Science Products). Выявление опухолевых клеток на криостатных срезах опухолей человека производилось с помощью моноклональмных антикератиновых антител (клон HI), любезно предоставленным Д-ром Трояновским СМ, (Медицинская Школа Вашингтонского Университета, Сент Луис, США). Иммунофлюопесцентно окрашенные препараты исследовались в лазерном конфокальном микроскопе Pascal 510, (С Zeiss, Germany).
Механизмы нарушений межклеточных взаимодействий через ЩК при раке изучались различными молекулярно-биологическими методами. Так, наличие мутационных повреждений генов коннексинов первоначально оценивалось непрямым методом гетеродуплекса. Образцы с выявленным аномальным профилем миграции радиоактивно меченных ПЦР-продуктов генов коннексинов проверялись на наличие в них мутаций последующим прямым секвенированием с использованием наборов ABI Prizm® BigDye™ Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction на оборудовании АВ Applied Biosystems.
Способность белков коннексинов влиять на клеточный рост исследовалась методом устойчивой транс фекции в опухолевые клетки векторов, содержащих соответствующие гены (Invitrogen) и последующей оценки скорости роста полученных в результате отбора устойчивых клонов клеток в культуре.
Противоопухолевый эффект искусственной экспрессии коннексинов после устойчивой трансфекции в опухолевые клетки содержащих эти гены векторов оценивался по динамике развития опухолевых узлов на месте подкожного введения коннексин-экспрессирующих клеточных линий голым мышам.
Мутации белков коннексинов были произведены методом целенаправленного мутагенеза на основе ПЦР с использованием коммерческого набора (QuickChange™ Site-Directed mutagenesis kit, Stratagene).
Вовлечение межклеточной сообщаемости через ЩК в распространение вызывающих клеточную гибель сигналов изучалось на клеточной линии рака мочевого пузыря крысы (линия ВС31) методом спонтанной избирательной загрузки апоптотических клеток красителями-трейсерами (Lucifer yellow и пропидиум йодида). Клеточная гибель измерялась in situ с помощью флюоресцентно меченного маркера апоптоза Annexin V (Boehringer Mannheim), а также по характеру деградации ДНК, выделенной из клеточных гомогенатов.
Статистическая обработка экспериментальных данных производилась с использованием программы GraphPad PRIZMA 3.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
Функциональное состояние межклеточной сообщаемости в опухолях печени человека и крыс
С помощью разработанного для целей данного исследования функционального теста на межклеточную сообщаемость через ЩК в полутонких срезах живых тканей было показано, что её уровень в опухолях печени грызунов и человека значительно ниже, чем в печёночной паренхиме, окружающей исследованные новообразования. Примечательно, что этот показатель был снижен во всех морфологических типах новообразований, включая доброкачественные, а в ряде случаев был снижен даже в таких самых ранних предшественниках новообразований, как микроскопические очаги гепатоцитов с нарушенным ферментным фенотипом (т.н. GGT и/или GST-p положительные очаговые поражения) (Krutovskikh V. et al, 1991,1994).
Метод уколов красителей в печёночную паренхиму крыс с индуцированными GST-p положительными предопухолевыми очагами (рис. 2) также показал, что гетерогенная сообщаемость между популяцией гепатоцитов, входящих в состав таких очагов, и окружающей их нормальной тканью в ряде случаев также отсутствует Эти наблюдения свидетельствуют о том, что очаги повреждённых гепатоцитов могут таким образом оказаться изолированными от негативных сигналов контроля клеточной пролиферации, предположительно циркулирующих через ЩК в нормальной непролиферирующей печени, тем самым предоставляя клеткам возможность бесконтрольно размножаться вплоть до их развития в злокачественные новообразования.
При хроническом воздействии на крыс разными промоторами крысиного гепатоканцерогенеза с различнымми механизмами действия -фенобарбиталом, полихлорированными бифенилами, клофибратом и ДДТ наблюдается значительное снижение уровеня межклеточной сообщаемости в печени и эффект этот носит хронический, но обратимый характер.
При иммуногистохимической окраске на коннексин32 было установленно, что в большинстве случаев опухоли печени человека довольно интенсивно синтезируют этот белок. Однако, в отличие от нормальной печени, где Сх32 локализован исключительно в местах межклеточных взаимодействий латеральных мембран гепатоцитов, в опухолях печени этот белок был обнаружен вне межклеточных контактов -- либо перемещённым в участки не задействованных в межклеточные контакты латеральных мембран, либо внутрь цитоплазм опухолевых клеток, как правило в околоядерное пространство. Отсутствие Сх32 в межклеточных контактах лишало опухолевые клетки возможности формировать функциональные ЩК (рис. 3).
Рис. 3 Экспрессия кйннексина32 (Сж32) и межклеточная сообщаемость в нормальней крысиной печени и гапатоцеллюлярньи слух on як В опухолж наблюдается снижение межклеточной сообщаемости в сочетании с транслокачией белке Сх32 из участков меккпетомньк контактов в цитоплазму (А), ядра (Б) или участки свободных от межклеточные взаимодействия плазматических мембргн (В и Г)
Последующий генетический анализ гена Сх32 в 20 опухолях печени человека позволил исключить мутационную природу нарушений субклеточной локализации этого белка. Дополнительно произведённый нами поиск мутаций в гене коннексина32, на сей раз в опухолях печени крыс, индуцированных генотоксическими канцерогенами диэтилнитрозамином (DEN) или этилгидроксиэтилнитрозамином (EHEN) лишь в одной из 12 отобранных по аномальной на белковом уровне экспрессии Сх32 опухолей была обнаружена точечная мутация G>A во втором нуклеотиде кодона 220, приведшая к замене His на Arg [Omori Y et al., 1996].
Мутационные повреждения индивидуальных генов коннексинов в различных типах опухолей человека
Принимая во внимание этиологическую значимость мутационной природы повреждений критических в этиологии рака генов, а также исходя из предположения, что в разных тканях разные индивидуальные коннексины могут играть биологически различную роль, нами также был произведён мутационный анализ Сх37 в опухолях лёгких и сосудов человека и крыс. В результате впервые было выявлено несколько случаев полиморфизма этого гена человека, которые, однако, оказались не связанными с предрасположенностью к онкозаболеваемости [Krutovskikh V et al., 1996].
В то же время анализ 29 новообразований толстой кишки человека выявил что в этих опухолях гипермутабельность С-концевой части Сх43. Так, по крайней мере треть проанализированных непрямым методом гетеродуплекса образцов из опухолей оказались с очевидными
аномаль
Рис 4 1139ЮСмутйц«яСх43,найдмивяеадооке(м*ноттсистой кишки человека Деления единичного нуклеэтида вжодоне 311 сдигает рамку считывания в результата чего вся последующая белковая струкрура карбоксил шого хвоста белка бьла заменена ив иную уникалыдо 35 аминокислотную последовательность
Последующее прямое секвенирование в большинстве случаев подтвердило наличие мутаций, причём в основном это оказались либо делеция одного нуклеотида (1139delC в двух случаях из 6 проанализированных аденокарцином разной степени дифференцировки, рис. 4), либо инсерция (1280insA, один случай из той же группы 6 аденокарцином, рис. 5). И в том и в другом случаях происходил сдиг рамки считывания, что на белковом уровне приводило к полной смене аминокислотной последовательности участка белка сразу после мутации и, как правило, довольно скоро завершалось появлением преждевременного стоп-кодона.
Замена аминокислотной последовательности в С-концевом домене Сх43 на новые полностью разрушало его способность взаимодействовать с целым рядом сигнально активных белков (например Р-катенин, ZO-1, клаудин, дребрин), что в свою очередь аномально активировало сигнальные системы регуляции клеточного цикла и могло привести к ростовому преимуществу экспрессирующих мутированный Сх43 опухолевых клеток. Примечательно, что другой экспрессируемый энтероцитами толстой кишки коннексин32 в этих же опухолях оказался немутированным.
М/Жжшым I
Рис 5 12вО!п8АмутацияОс43,найденнаяваденоиерцинамв толстой кишки человека кьсерция единичного нуклеотада в коконе 358 сдигеетрамк/ считывания, в результате чего вся последующая белковая структура карбоксильного хвоста белка бьп а заменена на иную уникальную 19 аминокислотную последовательность
Другой особенностью обнаруженных нами мутаций Сх43 в опухолях толстой кишки было их возникновение на довольно поздних этапах развития опухолей. Используя двойную иммуноокраску на Сх43 с антителами к немутированной цитоплазматической петле белка в паре с антителами к конечному эпитопу С-концевого участка Сх43, по избирательному исчезновению иммунореактивносри к С-концевым антителам мы обнаружили, что мутированный Сх43 селективно экспрессировался лишь в опухолевых структурах, составляющих инвазивный фронт опухоли (рис. 6).
Рис.6 Е'Ъимукогхстохимическое выявление опухолевых структур, репрессирующих мутантный Сх43 №бирагельная утрагз иммунсреакгивности к антителам против С-кинцееого домена Сх43 дикого типа (изобрамение слева) при сохранении иммунореактвности к антителам против участка внутренней петли С*43 (изобретение е центре) свидетельствует о мутационной мопификацти Оонца белка Сх43 ^Ъоброкение справа является результатом компьютерного наложения двух предыдущих изображен« д друг на друга
Примечательно, что и морфологически эти опухолевые структуры были заметно более анапластическими по сравнению с остальной массой опухоли.
Всё это по совокупности указывает на то, что экспрессия мутированного Сх43 может вносить значительный вклад в ускорение опухолевой прогрессии спонтанных новообразований толстой кишки человека.
Экпериментальное изучение опухоль-угнетающих свойств белка коннексина43 методом целенаправленного мутагенеза
Как уже упоминалось, частое отсутствие корреляции между интенсивностью межклеточной сообщаемости и способности подавлять опухолеродность неопластических клеток в результате искусственной экспрессии в них белка того или иного коннексина предпологает наличие у коннексинов свойств подавлять опухолевый рост независимо от межклеточной сообщаемости. Для проверки этого предположения нами были произведены структурные изменения белка Сх43, избирательно лишившие этот белок формировать функциональные ЩК. Способность подавления опухолевого роста коммуникационно дефектным Сх43 оценивались по опухолеродности клонов опухолевых клеток стабильно экспрессирующих такие варианты Сх43.
Используя метод целенаправленного мутагенеза, нами были произведены следующие модификации белка Сх43 (см. Рис. 7). Считается, что третий трансмембранный домен коннексинов топологически обращен внутрь каналов щелевых контактов, а периодически встречающиеся в его сотаве полярные кислоты выстилают их внутреннюю поверхность. Соответственно, если в этом домене Сх43 избирательно заменить полярные аминокислоты малого размера на большие (например ТИг154 на Туг), можно ожидать, что просвет формируемого таким коннексином канальца ЩК будет либо сужен, либо полностью непроходим. Кроме того, в этом же домене есть две консервативные полярно заряженные аминокислоты (Ьуз162 и в1и166), замена которых на маленький неполярный аланин может существенно нарушить целостность этого домена.
Дополнительно нами был удален небольшой эпитоп из 7 аминокислот из состава внутренней петли Сх43, расположенный в непосредственной близости от третьего трансмембранного домена, так как предполагалось, что этот участок внутренней петли тоже критичен для пропускной способности ЩК (далее в тексте обозначена как А).
Другим обязательным экспериментальным условием подавления исходной межклеточной сообщаемости у коммуникирующик клеток дополнительной коэкспрессией в них мутантных коннексинов была доминантно негативная природа таких мутантов. То есть, будучи ко-экспрессируемыми с нормальным типом белка Сх43, его мутантные функционально дефектные варианты должны сохранять способность вступать во взаимодействие со своим нормальным аналогом и формировать таким образом функционально дефектный ЩК. Результаты трансфекции описанных выше мутантов в коммуникирующие, экспрессирующие нормальный Сх43 ВС31 клетки подтвердили, что большинство из них обладали доминантно негативными свойствами.
Причём оказалось, что доминантно-негативная инактивация межклеточной сообщаемости в ВСЗ1 клетках наступает либо из-за утраты проходимости каналов ЩК, сформированных в местах межклеточных контактов (мутации Т154У и Д) (рис. 8), либо из-за неспособности коннексиновых комплексов быть доставленными в плазматическую мембрану клеток (мутации К162А и E166G) (рис. 9).
Последующая проверка коммуникационно дефицитных клонов на опухолеродность при их введении под кожу голым мышам выявила существенное различие между клонами этих двух типов. Так, блокировка межклеточной сообщаемости на уровне проницаемости сформированных в латеральной мембране каналов существенно усиливала опухолеродность ВС31 клеток (рис. 8)
В то же время, коммунникационно дефицитные клоны этих же клеток из-за блокировки доставки в их латеральную мембрану белковых комплексов Сх43 не только не становились более опухолеродными, но в ряде случаев казалось бы парадоксально почти полностью утрачивали свойство формировать опухолевые узлы в голых мышах. Таким образом оказалось, что противоопухолевое свойство коннексинов в большей мере зависит от их субклеточной локализации, нежели чем от межклеточной сообщаемости через ЩК, как основной функции этих белков.
Следует, однако, отметить, что полученные в этих опытах результаты не противоречат тому, что межклеточная сообщаемость через ЩК тоже является сильным ингибитором роста опухолевых клеток. Использованные в данной работе ВС31 клетки, несмотря на свою очевидную опухолеродность, обладают достаточно высокой межклеточной сообщаемостью из-за внутренне присущей им способности экспрессировать Сх43. Очевидная на первый взгляд противоречивость сочетания этих двух свойств нашла своё логическое объяснение после того, как уровень межклеточной коммуникации в этих клетках был существенно повышен путём дополнительной трансфекции в них вектора, содержащего дикий тип Сх43. В результате клоны ВС31 клеток с повышенной сообщаемостью при введении голым мышам полностью утратили свою опухолеродность.
Межклеточная сообщаемость между опухолевыми клетками как путь передачи сигналов клеточной гибели
Природа сигналов, которые, распространяясь через ЩК, столь эффективно подавляют рост опухолевых клеток, во многом неясна. Более того, утвердилось устойчивое мнение, что опухолеподавляющее действие межклеточной сообщаемости осуществляется исключительно на уровне регуляции пролиферации. В то же время опухолевый рост, как феномен увеличения клеточной массы новообразования, является результатом дисбаланса двух противоположных являний - клеточного прироста, как результата пролиферации, и клеточной утраты, как результата клеточной гибели. Соответственно, увеличение клеточной массы может быть одинаково достигнуто как усилением клеточной пролиферации, так и подавлением интенсивности клеточной гибели. Учитывая вовлечение межклеточной сообщаемости через ЩК практически во все аспекты клеточной жизнедеятельности, было логично предположить, что через каналы ЩК клетки также могут распространять некие сигналы, способные запускать клеточную смерть.
Было установлено, что хорошо сообщающиеся между собой клетки рака мочевого пузыря крысы ВС31 подвержены кризисам интенсивной клеточной гибели, которая по достижении культурой этих клеток стадии насыщенного монослоя (конфлюентности) приводит к их массовой
гибели. Было отмечено, что в этот момент клетки начинают гибнуть координирование многочисленными группами. С помощью различных методов окраски in situ нами было обнаружено, что единичные клетки с признаками апоптоза обладают соединяющими их с окружающими здоровыми клетками ЩК. Более того, используя феномен избирательной проницаемости плазматической мембраны апоптотических клеток, нам удалось получить прямые доказательства наличия функциональной сообщаемости между умирающими и здоровыми клетками. В результате кратковременной экспозиции монослоя ВС31 клеток с раствором красителя Lucifer yellow или пропидиума йодида происходило селективное проникновение краски внутрь апоптотических клеток. В подавляющем большинстве случаев попавший внутрь таких клеток краситель оставался в их цитоплазме, но иногда обнаруживалось его перетекание в соседствующие здоровые клетки монослоя (рис. 10).
Рис. 10. Наличие межклеточной сообщаемости между единичной помеченной ранним маркёром апоптоза Аннексином V апоптотической клеткой (А) и окружающими её здоровыми клетками монослоя. Сообщаемостъ выявлена растеканием красителя Пропидиуна йодида, исходно попавшего в апогпоичесгую клетку из культуральной среды (В).
Подавление межклеточной сообщаемости ВС31 клеток либо путем искусственной экспрессии доминантно негативного мутанта Сх43, либо длительной обработкой химическим блокатором ЩК - бета-глицерэтиновой кислотой - не повлияло на интенсивность первичного спонтанного апоптоза, происходящего с определённой интенсивностью в отдельных клетках монослоя, но полностью устранило последующее координированное умирание клеток очагами, что в количественном измерении составило снижение уровня клеточной смерти примерно на треть (рис. 11).
Рис. 11. Подавление межклеточной сообщаемости в хорошо сообщающихся между собой ВС31 клетках (А) устойчивой экспрессией доминантно-негативного мутанта Сх43 (В) полностью элиминирует феномен координированной клеточной смерти.
Мы попытались выяснить природу сигналов, распространяющих клеточную гибель в монослое. Исходя из верхнего лимита проницаемости ЩК, оцениваемого в примерно 1кД, было предположено, что ионы Са2+, чье вовлечение в регуляцию апоптоза хорошо известно, могут быть наиболее вероятными кандидатами на эту роль. Действительно, оказалось, что длительная обработка клеток ВС31 избирательно ограничивяющим проницаемость каналов ЩК до ионов Са2+ липопептидом олеамидом, не оказало какого-либо превентивного эффекта против координированной гибели клеток очагами, как это наблюдалось после полной блокировки ЩК бета-глицерэтиновой кислотой или доминантно негативным мутантом Сх43.
Результаты проведенных экспериментов позволяют предположить, что, по крайней мере частично, противоопухолевый эффект межклеточной сообшаемости может осуществляется путём распространения сигналов, запускающих клеточную гибель.
Гетерозиготное носительство редких рецессивно связанных с наследственной глухотой вариантов коннексина-26, как новый возможный фактор генетической предрасположенности к ракам желудочно-кишечного тракта
Индивидуальная чувствительность к окружающим факторам канцерогенеза является одним из важнейших аспектов этого процесса. В
ее основе лежит полиморфизм генов, кодирующих ключевые для возникновения рака белки [Ни JJ. et al., 2002; Goode EL. et al., 2002; Wargovich MJ, Cunningham JE, 2003; Han J. et al., 2004; Erichsen HC, Chanock SJ, 2004; Loktionov A, 2004; Imyanitov EN. et al., 2004].
Известно, что некоторые гены коннексинов обладают выраженным полиморфизмом, и в случае некоторых из них уже показано, что отдельные варианты этих генов могут либо вызывать патологические состояния (как например, Сх32 - нейродегенеративное расстройство Шаркот-Мари-Тус [СМТХ], [Bergoffen J et al., 1993] Сх2б - наследственную несиндромную сенсорную глухоту [Kelsell DR et al., 1997], Сх43 - дефекты развития глаз, зубов и пальцев [ODDD] [Paznekas Wet al., 2003; Richardson R et al., 2004], а в случае Сх31, в зависимости от топологии расположения мутации - либо расстройства слуха, либо кожные заболевания, связанное с нарушением дифференцировки кератиноцитов [Xia JH et al., 1998; Richard G et al., 1998]), либо способствовать развитию тех или иных патологических процессов, как, например, P319S вариант Сх37 - к атеросклерозу [Boerma M etal., 1999].
С целью оценить возможность причастности редких вариантов генов коннексинов к тем или иным формам новообразований мы проанализировали ген Сх26 в образцах ДНК, выделенной у больных раком желудка (28 случаев), толстой и прямой кишки (77 случаев), лёгкого (29 случаев) и молочной железы (50 случаев). В большинстве случаев рака желудка, толстой/прямой кишки и лёгкого ДНК была выделена из опухолевой ткани. У больных же раком молочной железы источником ДНК были образцы крови.
NH2
СООН
Рис 12 Часто встречаемые у больных раком желудочно-кишечного тракта гетерозиготные варианты гена С>25
Было обнаружено, что среди 28 проанализированных больных раком желудка 7, (т.е. почти четверть случаев) оказались гетерозиготными носителями редких вариантов Сх2б. В частности, было найдено по одному больному с генотипом У^/иЛ.,. и У^Ь/иЛ. А в четырёх
случаях была обнаружена гетерозигота М34Т/иЛ. (рис. 12, табл. 1). Все эти варианты Сх2б уже известны как рецессивные индукторы наследственной глухоты.
Анализ 77 больных с раками толстой и прямой кишок выявил 13% гетерозиготное носительство нескольких вариантов Сх26. В этой группе приобладал вариант - 35ёеЮ/иЛ (6 случаев). В двух случаях были обнаружены МДТ/иЛ. и по одному 312ёе114 и Ь90Р. Среди же 29 больных раком лёгкого 3 (почти 10%) оказались носителями либо 35ёеЮ (2случая), либо 312ёе114 (1 случай) аллелей Сх2б (табл.1). И вновь все эти варианты Сх2б уже известны как рецессивные индукторы глухоты.
Таблица 1
Частота гетерозиготных носителей редких вариантов гена Сх2б среди больных различными типами новообразований
35delG М34Т V27I V37I L90P 312dell4 Всего
Рак желудка (С-ГТб) 1/28 4/28 1/28 1/28 0/28 0/28 7/28
Колоректальный рак (С-Пб) 6/77 2/77 0/77 0/77 1/77 1/77 10/77
Рак Лёгкого (С-Пб) 2/29 0/29 0/29 0/29 0/29 1/29 3/29
Рак мол железы (Лион) 0/50 1/50 0/50 0/50 0/50 0/50 1/50
Здоровый контроль (С-Пб) 0/41 0/41 0/41 0/41 0/41 0/41 0/41
Вариант 35delG Cx26 является одной из наиболее частых причин Сх26-опосредованных случаев глухоты [Cryns К, et al., 2004]. Частота гетерозигот этого варианта в здоровых популяциях колеблется от 1.0 до 4.0% [Van Laer L. et al., 2001]. По нашим данным, ни у одного из 41 проанлизированного здорового донора из г. Санкт-Петербурга этого варианта гена Сх26 не было обнаружено. Средняя же чатота гетерозиготных носителей 35delG в России оценивается менее 2% (Маркова ТЖ, соавт., 2002). Значительное повышение частоты гетерозигот этого варианта среди больных раком кишечника свидетельствует в пользу возможного вовлечения мутантного коннексина-26 35delG в кишечный канцерогенез и его гетерозигорное носительство может рассматриваться как новый фактор генетической предрасположенности к этому типу новообразований. О возможной желудочно-кишечной тканеспецифич-ности онкопредрасположенности гетерозиготных носителей Сх26 свидетельствует то, что среди 50 проверенных нами случаев
спорадического рака молочной железы была обнаружена лишь одна гетерозигота M34T/w.t, в то время как частота этой гетерозиготы среди больных раком желудка в нашем исследовании составляла 14,3%.
ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ
Полученные в данной работе результаты свидетельствуют о том, что межклеточная сообщаемость через ЩК является существенным фактором контроля опухолевого фенотипа. Осуществляется это может различными путями - как непосредственным отрицательнным влиянием на пролиферацию клеток, так и регулированием уровня клеточной гибели.
Выявление снижения межклеточной сообщаемости в опухолях, как правило, эпигенетическими, т.е. потенциально обратимыми, путями позволяет использовать активные профилактические меры, направленные на восстановление функции межклеточной сообщаемости как в потенциальных тканях-мишенях задолго то возникновения в них опухолевых очагов, так и в предопухолевых очаговых поражениях. Возможность восстановления межклеточной сообщаемости между опухолевыми клетками в составе уже возникших новообразований также может иметь большое значение для повышения эффективности химиотерапии. Как, показали наши опыты с хорошо сообщающимися между собой опухолевыми клетками, ЩК являются эффективным путём распространения сигналов клеточной гибели.
Не менее важна как с практической, так и с теоретической точек зрения и обнаруженная нами независимая от межклеточной сообщаемости противоопухолевая активность белков индивидуальных коннексинов. Возможность нормализации опухолевого фенотипа этими белками без их участия в формировании ЩК заставляет по-новому оценить их биологию. Для лучшего понимания механизмов коннексин-опосредованного подавления опухолевого роста необходимы дополнительные фундаментальные исследования их биохимических свойств, в первую очередь, поиск их новых белков-партнёров, через взаимодействие с которыми и должны реализовываться противоопухолевые свойства каждого из отдельных коннексинов. С этой точки зрения крайне важны обнаруженные нами опухоль-специфические мутации одного из наиболее важных представителей семейства коннексинов - Сх43. Специфически связанные с опухолевым ростом мутации того или иного гена являются результатом интенсивного отбора из многих случайных только придающих опухолевым клеткам те или иные ростовые или метаболические преимущества. По сути, обнаруженная нами экспрессия
мутированного Сх43 только в инвазирующих структурах опухолей толстой кишки в сочетании с их выраженной дисплазией опосредованно указывают именно на такую возможность. Необходимо также подчеркнуть, что все найденные нами в опухолях толстой кишки мутации Сх43 были локализованы в наиболее многофункциональном С-концевом домене этого белка, вовлечённого в прямые взаимодействия с целым рядом сигнально активных белков и в наименьшей мере из всех остальных доменов белка Сх43 участвующий в регуляции проницаемости щелевых контактов. С этой точки зрения особо важна особо деструктивная на белковом уровне природа найденных нами мутаций коннексина43 - радикально меняющие структуру целого домена точечные делеции или инсерции, приводящие полной ликвидации его функции, в данном случае способности белка Сх43 участвовать в регулирующих клеточную пролиферацию сигнальных цепочках. Именно такие типы мутации (инсерция/делеция) наиболее часто встречаемы в таких известных опухолевых супрессороах, как BRCA-1 и BRCA-2.
И, наконец, обнаруженная нами повышенная частота гетерозиготных носителей редких вариантов коннексина-26 среди больных раком желудочно-кишечного тракта также даёт новое представление о роли этого белка в канцерогенезе. Потенциальная функциональная патогенность часто встречающихся у онкологических больных редких аллелей Сх26 подтверждена развитием глухоты у их гомозиготных носителей. Постоянно пониженный уровень межклеточной сообщаемости из-за наличия того или иного редкого функционально дефектного аллеля Сх26 может внести заметный вклад в промоцию канцерогенеза тех тканей, где экспрессируется этот белок. Не исключено, что дополнительно к уже сделанной нами находке предрасположенность к развитию определённых типов опухолей может быть также обусловлена полиморфизмом и других генов семейства коннексинов, как например Сх31, редкие варианты которго, как это было недавно показано, ответственны за наследственные заболевания кожи, связанные с нарушением дифференцировки кератиноцитов [Richard G et al., 1998]. Раннее выявление «скрытого» гетерозиготного носительства таких потенциально патогенных вариантов коннексинов может быть новым критерием своевременного выявления групп потенциально повышенного онкологического риска. Последующие полномасштабные популяционные исследования должны выявить истинную профилактическую ценность данного наблюдения.
Таким образом, роль нарушений межклеточной сообщаемости в канцерогенезе на осоновании полученных в данном исследовании результатов можно суммировать, как изображено на приведённой схеме. В данный момент нет убедительных доказательств в их причастности к инициации канцерогенеза. Однако, нарушения межклеточных контактов на этапе опухолевой промоции разнообразны по своей природе и их опухоль ускоряющие последствия ощутимы. Обнаружен также и вклад нарушений функции белков ЩК коннексинов и на более позднем этапе опухолевой прогрессии.
ВЫВОДЫ
1. Установлено, что уровень межклеточной сообщаемости через щелевые контакты (ЩК) в опухолях печени как человека, так и крыс, по сравнению с окружающей их нормальной тканью, существенно снижен. Кроме того, уже на самых ранних этапах формирования новообразований печени крыс происходит их коммуникационная изоляция от окружающей нормальной печёночной паренхимы по гетерогенному типу.
2. В основе нарушений межклеточной сообщаемости в опухолях лежат различные механизмы, определяющиеся как гистогенезом опухоли, так и спектром экспрессируемых опухолью индивидуальных белков
ЩК - коннексинов. Наиболее распространённым механизмом функциональной несостоятельности коннексинов в опухолях является их аномальная транслокация из межклеточных контактов латеральных мембран в цитозоль опухолевых клеток.
3. Экспериментальное модулирование интенсивности межклеточной сообщаемости некоторых типов умеренно сообщающихся между собой опухолевых клеток in vitro показало, что полное её подавление значительно повышает их злокачественный потенциал. В то же время, дополнительное увеличение эндогенного уровня межклеточной сообщаемости коммуникирующих между собой раковых клеток в состоянии полностью подавить их опухолеродность in vivo.
4. Противоопухолевый эффект межклеточной сообщаемости частично связан с распространением среди коммуникирующих опухолевых клеток сигнальных молекул, запускающих процесс клеточной гибели апоптозом. Наиболее вероятным посредником передачи клеточной гибели через ЩК среди опухолевых клеток являются ионы Са2+
5. Белки ЩК коннексины способны подавлять опухолеродность клеток независимо от их способности обеспечивать межклеточную сообщаемость формированием канальцев ЩК. Внутрицитоплазматическое перемещение мутационно изменённого белка Сх43 из участков межклеточных контактов латеральных мембран клеток существенно усиливает его коммуникационно-независимый противоопухолевый потенциал.
6. Независимая от межклеточной сообщаемости противоопухолевые свойства коннексинов носит выраженный индивидуальный коннексин-и ткане-специфический характер.
7. Прогрессия спорадических аденокарцином толстой кишки разной степени дифференцировки может сопровождаться соматическими мутационными повреждениями коннексина43. Мутации этого гена возникают на относительно поздних стадиях развития опухолей и тесно связаны с появлением патоморфологических признаков озлокачествления этих новообразований.
8. Гетерозиготное носительство отдельных редких вариантов гена Сх26 может быть дополнительным фактором генетической предрасположенности к ракам желудочно-лишечного тракта.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
Обаруженный нами феномен распространения клеточной гибели в монослое коммуникирующих опухолевых клеток через ЩК может лечь в основу разработки новых подходов к лечению рака. Медикаментозное или биоинженерное повышение коммуникационной способности опухолевых клеток в сочетании с целенаправленной химиотерапией может существенно повысить цитотоксический ответ опухолевых клеток на лечение.
Тесная связь обнаруженных соматических мутационных повреждений гена Сх4В в аденокарциномах толстой кишки с их инвазивно-агрессивным поведением указывает на целесообразность включения в клинико-патоморфологическую практику анализа на мутационные повреждения гена Сх43 как нового критерия озлокачествления аденокарцином толстой кишки
Существенное повышение частоты гетерозиготного носительства отдельных вариантов гена Сх26 среди больных раком желудочно-кишечного тракта указывает на необходимость раннего массового выявления носителей таких гетерозигот Сх26 с целью их дальнейшего наблюдения как группы повышенного онкологического риска. Последующее регулярное обследование этой группы может способствовать раннему выявлению раковых заболеваний и, тем самым, существенно повысить вероятность их последующего полного излечения. Кроме того, учитывая этиопатогенетическую роль вышеуказанных вариантов Сх26 в возникновении прелингвальной несиндромной глухоты по рецессивному типу, массовое выявление гетерозиготных носителей редких вариантов Сх26 позволит также избежать в дальнейшем рождения гомозиготных детей, страдающих врождённой доречевой глухотой.
СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ
1. Роль нарушений межклеточных щелевых контактов в генезе рака и других патологических состояний / ВА Крутовских // Архив Патологии. - 2000. -Т.61, -С. 3-7.
2. Научно-клиническое значение молекулярно-генетических изменений межклеточных щелевых контактов при раке толстой кишки. / Н.А Яицкий, М.В. Дубина, СВ. Васильев, Д.Е. Попов, В.А. Крутовских // Вестник РАМН. - 2003. -Т. 10,- С. 24-29.
3. Новый генетический маркер профессии рака толстой кишки / Н.А. Яицкий, СВ. Васильев, Д.Е. Попов, М.В. Дубина, В.А. Крутовских // Материалы 111-го международного хирургического конгресса «Актуальные проблемы современной хирургии» Москва, Россия, - 2003. - 22-25 февраля, С. 120.
4. Диагностическое значение генетических нарушений коннексина-43 при колоректальном раке / Н.А. Яицкий, М.В. Дубина, СВ. Васильев, Д.Е. Попов, В.А. Крутовских. // Материалы 1-го Российского съезда колопроктологов с международным участием, г. Самара, Россия, - 2003. - 1-3 октября., С. .328329.
5. Aberrant expression of gap junction gene in primary human hepatocellular carcinomas: increased expression of cardiac-type gap junction gene connexin 43 / M. Oyamada, V. Krutovskikh, M. Mesnil, С Partensky, F. Berger, H. Yamasaki. // Molecular Carcinogenesis. -1990. -vol.3, - P. 273-278.
6. Sequential changes of gap junctional intercellular communications during multistage rat liver carcinogenesis: direct measurement of communication in vivo. / V.A. Krutovskikh, M. Oyamada, H. Yamasaki // Carcinogenesis. - 1991. - vol.12, - P. 1701-1706.
7. Cell-cell communication: role in carcinogenesis and tumor suppression. / H. Yamasaki, V.A Krutovskikh, H. Nakazawa, M. Mesnil, D. Fitzgerald. // Atti del III Incontro. La Cancerogenist come processo, Brescia, Italy. -1991.—P. 111-117.
8. Role of intercellular communication in carcinogenesis and tumor suppression. / H. Yamasaki, V.A. Krutovskikh, M. Oyamada, H. Nakazawa, D.J. Fitzgerald. // In Vitro Methods of Toxicology. Eds.: Jolles G. & Cordier A., Academic Press, London, - 1992. -P. 479-491.
9. Gap junctional communication alterations at various regulatory levels of connexin expression and function during animal and human carcinogenesis. / M. Mesnil, M, Oyamada. D.J. Fitzgerald, W.M.F. Jongen, V.A. Krutovskikh, H. Yamasaki. // In: Progress in Cell Research, vol.3 Eds.: Hall J.E., Zampigni G.A. & Davis R.M., Elsevier,-1993.-P. 311-316.
10. Gap junctional intercellular communication and cell proliferation during rat liver carcinogenesis. / H. Yamasaki, V. Krutovskikh, M. Mesnil, A. Columbano, H. Tsuda, N. Ito. // Environmental Health Perspectives. - 1993. - vol. 101(Suppl 5), -P. 191-198.
11. Altered homologous and heterologous gap junctional intercellular communication in primary human liver tumors associated with aberrant protein localization but not gene mutation of connexin 32. / V. Krutovskikh, G. Mazzoleni, N. Mironov, Y. Omory, A.M. Aguelon, M. Mesnil, F. Berger, С Partensky, H. Yamasaki. // Int. J. Cancer. - 1994. - vol. 56, - P. 87-94.
12. Alteration in expression of gap junction proteins in rat liver after treatment with 3,4,5,3',4'- Pentachlorobiphenyl. / Y. Bager, K. Kenne, V. Krutovskikh, M. Mesnil, O. Traub, H. Yamasaki, L. Warngard. // Carcinogenesis. - 1994. - vol.15. -P. 2439-2443.
13. Aberrant control of gap junctional intercellular communication during multistage carcinogenesis. / H. Yamasaki, M. Mesnil, V. Krutovskikh. // Proceedings of the Conference Cancerogenesi ed Anticancerogenesi, Bologna. - 1994. - P. 53-67.
14. Aberrant control of connexin expression and functions in multistage rat and human hepatocarcinogenesis / H.Yamasaki, M. Mesnil, Y. Omori, N. Mironov, V. Krutovskikh. // Progr. Cell Res. - 1995. - vol. 4. - P. 79-82.
15. Negative growth control of HeLa cells by connexin genes: connexin-species specificity. / M. Mesnil, V.A. Krutovskikh, C.Piccoli, C.Elfgang, O.Traub, K.Willecke, H. Yamasaki // Cancer Research. -1995. -vol.55. -P. 629-639.
16. Growth inhibition of connexin 26 in HeLa cells. / M. Mesnil, V. Krutovskikh, C. Piccoli, C.Elfgand, O.Traub, K.Willecke, H.Yamasaki. // Progress in Cell Res. -vol.4. - Editors: Y. Kanno, K. Kataoka, Y. Shiba, Y. Shibata and T. Shimazu. Elsevier Science B.V. (Amsterdam) - 1995. - P. 141-144.
17. Ex vivo dye transfer assay as an approach to study gap junctional intercellular communication. / V. Krutovskikh, H. Yamasaki // Progress in Cell Res., vol.4; Editors: Y. Kanno, K. Kataoka, Y. Shiba, Y. Shibata and T. Shimazu. Elsevier Science B.V. (Amsterdam). - 1995. - P. 93-97.
18. Aberrant control of connexin expression and functions in multistage rat and human hepatocarcinogenesis / H. Yamasaki, M. Mesnil, Y. Omori, N. Mironov, V. Krutovskikh. // Progress in Cell Res. - vol.4. - Editors: Y. Kanno, K. Kataoka, Y. Shiba, Y. Shibata and T. Shimazu. Elsevier Science B.V. (Amsterdam). - 1995. - P. 79-82.
19. Inhibition of rat gap junction intercellular communication by tumor promoting agents in vivo; association with aberrant localization of connexin proteins. / V. Krutovskikh, M. Mesnil, G. Mazzoleni, H. Yamasaki // Lab. Investigation. - 1995. -vol.72.-P. 571-577
20. Connexin 32 and connexin 43 expressed in thyroid epithelial cells assemble into separate gap junctions, which are located in distinct regions of the lateral plasma membrane. / A. Guerrier, P. Fonlupt, I.Morand, R. Rabilloud, C Audebet, V.Krutovskikh, D.Gros, B.Rousset, Y. Munari-Silem // J. Cell Science. - 1995. -vol. 108.-P. 2609-2614.
21. Intercellular communication and carcinogenesis. / H. Yamasaki, M. Mesnil, Y. Omori, N. Mironov, V. Krutovskikh. // Mutation Research. - 1995. - vol.333. - P. 181-188.
22. Lack of liver tumor promoting effects of flavonoids. In vivo and in vitro studies on gap junctional intercellular communication / C Chaumontet, M. Suschetet, E.Honicman-Leban, VA. Krutovskikh, A.-M. Le Bon, R. Berges, C Heberden, M.M. Shahin. H. Yamasaki, P. Martel. // Nutrition and Cancer. - 1996. - vol. 26. -P. 251-263.
23. Human connexin37 is polymorphic but not mutated in tumors. / VA. Krutovskikh, N.M. Mironov, H. Yamasaki // Carcinogenesis. - 1996. - vol. 17. - P. 1761-1763.
24. Connexin32 gene mutation in a chemically induced rat liver tumor. / Y.Omori, VA. Krutovskikh, H. Tsuda, H. Yamasaki // Carcinogenesis. - 1996. - vol. 17. - P. 2077-2080
25. Role of blocked gap junctional intercellular communication in non-genotoxic carcinogenesis. / M. Mesnil, V. Krutovskikh, Y. Omori, H. Yamasaki. // Toxicol. Lett. - 1996. - vol. 82/83. - P. 701-706.
26. Connexin genes cell growth control. / H. Yamasaki, V. Krutovskikh, M. Mesnil, Y. Omori. //Arch. Toxicol. Suppl. -1996. - vol. 18. -P. 105-114.
27. Decreased connexin32 and a characteristic enzyme phenotype in clofibrate-induced preneoplastic lesions not shared with spontaneously occurring lesions in the rat liver. / H. Tsuda, M. Asamoto, Y. Iwahori, T. Hori, T. Ota, H. Baba-Toriyama, N. U
28. ehara, DJ. Kim, V.A. Krutovskikh, N. Takasuka, T. Tsuchiya, M. Mutai, M. Tatematsu, H. Yamasaki// Carcinogenesis.-1996.-vol.17-P. 2441-2448.
29. Triazine derivatives inhibit rat hepatocarcinogenesis but do not enhance gap junctional intercellular communication / T. Hori,-M. Asamoto, V. Krutovskikh, Y. Iwahori, M. Maeda, H. Toriyama-Baba, N. Takasuka. Tsuda H. // Jpn. J Cancer Res. -1997.-vol. 88.-P. 12-17.
30. Differential dose-dependent effect of a-, p-carotenes and lycopene on gap junction intercellular communication in rat liver in vivo. IV. Krutovskikh, M. Asamoto, H. Tsuda // Jpn. J Cancer Res. - 1997. - vol.88. - P. 1121-1124.
31. The role of gap junctional intercellular communication disorders in experimental and human carcinogenesis. / VA Krutovskikh*, H. Yamasaki. // Histology and Histopathology Journal, -1997. -vol.12. -P.761-768. (""Invited reviewer)
32. Enhanced tumorigenicity of rat bladder carcinomas by abrogation of gap junctional intercellular communication /M. Asamoto, H. Toriyama-Baba, V.A. Krutovskikh, S.M. Cohen, H. Tsuda. // Jpn. J Cancer Res. - 1998. - vol. 89. -P. 481-486.
33. Inhibition of intrinsic gap junction intercellular communication and enhancement of tumorigenicity of rat bladder carcinoma BC31 cell line by dominant-negative Cx43 mutant / V.A. Krutovskikh, H. Yamasaki, H. Tsuda, M. Asamoto // Mol. Carcinogenesis. - 1998 - vol. 23, - P. 254-261.
34. Gap junction intercellular communication as a method to test, predict and interpret carcinogenicity / VA. Krutovskikh, H. Yamasaki. // Chapter for "CARCINOGENICITY. Testing, predicting and interpreting carcinogenicity", by Marcel Dekker Inc., Edited by Kitchin K.T. - 1998. - P. 267-289
35. Genetic and epigenetic changes of intercellular communication genes during multistage carcinogenesis. / H. Yamasaki, Y. Omori, M.-L. Zaidan-Dagli, N. Mironov, M. Mesnil, V. Krutovskikh. // Cancer Detection and Prevention. - 1999.-vol.23,No4.-P.273-279.
36. Role of connexin (gap junction) genes in cell growth control and carcinogenesis. / H. Yamasaki. V. Krutovskikh, M. Mesnil, T. Tanaka, M.-L. Zaidan-Dagli, Y.Omori. // Comptes-Rendus de l'Academie des Sciences, Paris, Sciences de la Vie/ Life Science (Elsevier). - 1999. -vol. 322. - P. 151-159.
37. Connexins in tumor suppression and cancer therapy. / H. Yamasaki, Y.Omori, V. Krutovskikh, W. Zhu, N. Mironov, K. Yamakage, M. Mesnil. // In: Gap junction mediated intercellular signalling in health and disease. Published by John Wiley & sons.-1999.-P. 241-260.
38. Human hemangiosarcomas have a common polymorphism but no mutations in the connexin 37 gene / T. Saito, V. Krutovskikh, M.-J. Marion K. Ishak, W.P. Bennett, H. Yamasaki // International J. Cancer, - 2000 - vol. 86. - P. 67-70.
39. Connexin gene mutations in human genetic diseases. / V. Krutovskikh, H. Yamasaki. // Mutation Research, - 2000. -.vol. 462. -P. 197-207.
40. Differential effect of subcellular localization of communication impairing gap junction protein connexin43 on tumor cell growth. / V. Krutovskikh, S.M. Troyanovsky, C. Piccoli, H. Tsuda, M. Asamoto, H. Yamasaki. // Oncogene. - 2000. -vol. 19.-P. 505-513.
41. Gap junction intercellular communication propagates cell death in cancerous cells. / V. Krutovskikh, C. Piccoli, H. Yamasaki // Oncogene, - 2002. - vol. 21. - P. 19891999.
42. Connexin 43, but not connexin 32, is mutated at advanced stages ofhuman sporadic colon cancer. /M. Dubina, N.A. Iaitckii, D.E. Popov, S.V. Vasil'ev, V. Krutovskikh. // Oncogene. - 2002. - vol.21. - P. 4992-4996.
43. Implication of direct host-tumor intercellular interactions in non-immune host resistance to neoplastic growth. / V. Krutovskikh // Seminars in Cancer Biology. -2002. - vol. 12. - P. 267-276 (invited reviewer).
44. Selective alteration ofgap junctional intercellular communication and modulation of differentiation in dominant-negative transfected mouse osteoblast and rat liver oval cell lines. / B. Upham, J. Suzuki, G. Chen, L. McCabe, Ch-Ch. Chang, V. Krutovskikh, H. Yamasaki, J. Trosko. // Molecular Carcinogenesis. - 2003. - vol. 37.-P. 192-201.
45. Delayed liver regeneration and increased susceptibility to chemical hepatocarcinogenesis in transgenic mice expressing a dominant-negative mutant of connexin32 only in liver. / M-L. Zaidan-Dagli, H. Yamasaki, V. Krutovskikh, Y. Omori. // Carcinogenesis. - 2004. - vol. 25. - P. 483-492.
Патент
H.A. Яицкий, В.А. Крутовских, М.В. Дубина, СВ. Васильев, Д.Е. Попов, Н.Н.
Петрищев, К.Г. Шостка, Л.Д. Роман / Способ диагностики злокачественной
прогрессии опухолей толстой кишки // Патент на изобретение № RU2213781C1,
10.10.2003 (приоритет от 18.12.2002г.).
Д777
. ГГЛ-
2 2 ^ ' " "
Оглавление диссертации Крутовских, Владимир Андреевич :: 2005 :: Санкт-Петербург
Список использованных сокращений.
Введение.
Глава 1 Современные представления о структуре и функции щелевых контактов (обзор литературы).
1.1 Топология белков коннексинов и функциональные свойства их отдельных доменов.
1.2 Функция щелевых контактов.
1.3 Нарушение межклеточных щелевых контактов при раке.
1.4 Нарушения функции коннексинов при неопухолевых патологиях человека.
1.5 Экспериментальные модели заболеваний на основе нокаута генов индивидуальных коннексинов у мышей.
Глава 2 Исследования функционального состояния межклеточной сообщаемости через щелевые контакты в опухолях крыс и человека.
2.1 Метод оценки функциональной межклеточной сообщаемости через щелевые контакты в живой ткани печени ex vivo.
2.2 Межклеточная сообщаемость гепатоцитов предопухолевых очаговых поражений печени крыс.
2.3 Подавление межклеточной сообщаемости в печени крыс при хроническом воздействии различных печёночно-специфичных опухолевых промоторов.
2.4 Механизмы нарушений функции щелевых контактов в опухолях печени крыс.
2.5 Оценка фунционального состояния межклеточных щелевых контактов в опухолях печени человека.
Глава 3 Изучение с помощью целенаправленного мутагенеза свойств белка щелевых контактов коннексина 43, регулирующих опухолеродность клеток in vivo.
Глава 4 Вовлечение межклеточных взаимодействий через щелевые контакты в распространение сигналов клеточной гибели.
4.1 ВС31 клетки подвержены массивной спонтанной гибели апоптозом.
4.2 Апоптотические ВСЗ1 клетки экспрессируют Сх43.
4.3 Межклеточная сообщаемость между апоптотическими и здоровыми ВСЗ 1 клетками.
4.4 Апоптотические клетки распространяют через ЩК в окружающую их популяцию здоровых клеток гибель-запускающие сигналы.
4.5 Подавление межклеточной сообщаемости у ВС31 клеток экспрессией доминантно-негативного мутанта Сх43 снижает уровень клеточной гибели.
4.6 Подавление межклеточной сообщаемости блокатором ЩК 18р-глицирэтиновой кислотой также снижает уровень клеточной гибели.
4.7 Ионы кальция, как одни из наиболее вероятных сигнальных молекул, передающих через ЩК клеточную гибель.
Глава 5 Роль мутационных повреждений генов щелевых контактов коннексинов в этногенезе рака человека.
5.1 Поиск мутаций коннексина32 в опухолях печени человека.
5.2 Мутационный анализ коннексина37 в опухолях легкого, молочной железы и сосудов человека.
5.3 Мутации коннексина 43 в опухолях толстой кишки человека.
Глава 6 Редкие рецессивно ассоциированные с наследственной глухотой варианты гена коннексина 26, как новый возможный фактор генетической предрасположенности к раку желудочно-кишечного тракта.
Введение диссертации по теме "Онкология", Крутовских, Владимир Андреевич, автореферат
Актуальность проблемы.
Отличительной особенностью канцерогенеза является многообразие этиологических факторов, вовлеченных в этот процесс. Помимо общепризнанной роли в генезе рака генетических повреждений ряда генов, белковые продукты которых регулируют клеточную пролиферацию, дифференцировку и клеточную смерть (Hanahan D, Weinberg RA, 2000; Vogelstein В, Kinzler KW, 2004), а также осуществляют репарационный контроль клеточного генома, существенный вклад в канцерогенез вносят и нарушения межклеточных взаимодействий (Васильев ЮМ, 1997; Yamasaki Н, 1990). Контактируя между собой, клетки получают разнообразную сигнальную информацию, опосредованно влияющую на практически все аспекты их жизнедеятельности. Аппарат межклеточных взаимодействий состоит из нескольких структурно и функционально различных типов межклеточных соединений. Большинство из них - адгезивные соединения, десмосомы, плотные контакты - имеют выраженную структурно-механическую функцию, объединяя клетки в единое целое, т.е. ткань. Щелевые же контакты (ЩК), представляя собой микроскопические водяные канальцы, напрямую соединяющие цитоплазмы клеток, обеспечивают непосредственный обмен метаболитами и сигнальными молекулами между клетками в пределах данной ткани (рис.1, глава 1).
Являясь неотъемлемой составной частью комплексного аппарата межклеточных взамодействий, ЩК вносят существенный вклад в обеспечение поддержания разнообразных параметров тканевого гомеостаза (Крутовских ВА, 2000; Kumar N.M., GilulaN.B., 1996; Willecke К. с соавт., 2002). с
Соответственно, нарушение функции щелевых контактов существенно влияет на клеточную пролиферацию, дифференцировку, клеточную гибель, что в свою очередь имеет значительный этиопатогенетический вклад в процесс формирования новообразований (Yamasaki Н., 1990; Yamasaki Н.,
Naus C.C.G., 1996; Trosko J.E., Ruch R.J., 1998; Krutovskikh V, 2002; Ruch R.J., Trosko J.E.,2001).
Резкое снижение способности сообщаться между собой через ЩК было отмечено in vitro у опухолевых клеток еще несколько десятилетий назад (Lowenstein W.R., Kanno Y. 1966). Этиологическая значимость этого феномена, а также отвечающие за эти нарушения механизмы долгое время оставались во многом неясными, в основном, из-за отсутствия фундаментальных знаний о молекулярной структуре щелевых контактов.
До последнего времени оставалось также неясно, сопровождается ли опухолевый рост in vivo утратой межклеточной сообщаемости через ЩК аналогично феномену, описанному ещё много лет назад в культуре опухолевых клеток.
Благодаря недавнему бурному прогрессу в области биологии межклеточных взаимодействий, в частности, открытие семейства белков ЩК - коннексинов (Сх), стало возможным получение высокоспецифичных антисывороткок и молекулярных генных проб ко многим индивидуальным белкам этого семейства, что существенно расширило экспериментальные возможности в изучении как функции ЩК и входящих в их состав коннексинов, так и механизмов их нарушений в канцерогенезе.
В частности, многочисленные эксперименты по восстановлению межклеточной сообщаемости у коммуникационно дефектных линий раковых клеток путём устойчивой трансфекции в них генов ЩК коннексинов показали, что межклеточная сообщаемость является сильным опухолеподавляющим фактором (Rose В. с соавт., 1991; Eghbali В, с соавт., 1991; Chen Sh-Ch. с соавт., 1995). В то же время в ряде случаев обнаружилось, что подавление опухолеродности клеток при искусственном восстановлении экспрессии в них белков коннексинов далеко не всегда и не обязательно непосредственно связано с улучшением межклеточной сообщаемости. Более того, оказалось, что для подавления опухолеродного фенотипа важно не само по себе восстановление межклеточной сообщаемости, а в большей мере тип индивидуального коннексина, с помощью которого это было произведено (Mesnil М. с соавт., 1995).
Таким образом, было предположено, что белки ЩК коннексины, наряду со своей основной функцией обеспечивать межклеточную сообщаемость формированием каналов щелевых контактов, также обладают дополнительными свойствами, имеющими существенное влияние на поведение опухолевых клеток.
Выяснение механизмов повреждения межклеточной сообщаемости при опухолевом процессе может существенно улучшить диагностику рака, способствовать разработке новых методов его лечения, а также способствовать разработке новых онкопрофилактических стратегий.
Цель работы.
Оценка этиопатогенетической значимости нарушений межклеточных взаимодействий через щелевые контакты в канцерогенезе.
Задачи исследования:
1. Выявить функциональные нарушения межклеточной сообщаемости через ЩК на разных этапах канцерогенеза in vivo.
2. Изучить молекулярные механизмы нарушения функций ЩК в экспериментальном и спонтанном канцерогенезе.
3. Выявить молекулярные механизмы подавления опухолевого роста белками ЩК коннексинами.
4. Экспериментально проверить предположение о многофункциональной природе белков коннексинов и оценить потенциальный вклад этих функций в коннексин-опосредованное подавление опухолевого роста.
Научная новизна.
Впервые было показано, что в опухолях печени человека межклеточная сообщаемость резко снижена по сравнению с окружающей их непораженной тканью.
Впервые на экспериментальной модели гепатоканцерогенеза крыс было продемонстрировано, что предопухолевые очаговые поражения уже на самых ранних этапах своего формирования могут быть коммуникационно изолированы от окружающей их нормальной паренхимы печени.
Впервые были получены экспериментальные доказательства распространения среди опухолевых клеток через их ЩК сигнальных молекул, запускающих механизм клеточной гибели.
Впервые были обнаружены соматические мутационные повреждения гена коннексина43 (Сх43) в спорадических опухолях толстой кишки человека. Было также выявлено, что мутации гена Сх43 происходят на довольно поздних этапах формирования новообразований колоректального рака, и их возникновение тесно связано с появлением признаков озлокачествления.
Также впервые было обнаружено, что редкие варианты гена коннексина26, вызывающие врождённую доречевую глухоту по рецессивному типу, могут быть дополнительным фактором генетической предрасположенности к ракам желудочно-кишечного тракта.
Научно-практическая значимость работы.
Полученные в работе данные расширяют современные представления о молекулярно-генетических механизмах канцерогенеза и имеют конкретную практическую значимость.
В частности, экспериментально обнаруженная возможность распространения в популяции опухолевых клеток через ЩК вызывающих клеточную гибель сигналов может быть успешно использована для повышения эффективности лекарственной терапии рака.
Специфический характер обнаруженных в опухолях толстой кишки человека мутаций Сх43 - сдвиг рамки считывания из-за инсерции-делеции единичных нуклеотидов в карбоксильно-терминальном домене белка -дополняет имеющиеся ранее представления о молекулярных механизмах канцерогенеза толстой кишки. Разрушение в результате таких мутаций способности Сх43 взаимодействовать с целым рядом сигнально активных белков (р-катешш, ZO-1, кпаудин, дребрин и другие) (Giepmans B.N.G., Moolenaar W.H., 1998, Toyofuku Т. с соавт., 1998; Ai Zh. с соавт., 2000; Jin Ch., с соавт., 2000; Butkevich Е. с соавт., 2004) приводит к неконтролируемой пролиферации опухолевых клеток. Природа этих мутации также убедительно указывает на наличие нераспознанной ранее сигнальной активности Сх43 в контроле опухолевого фенотипа.
Обнаруженная в данной работе тесная взаимосвязь специфического мутационного повреждения Сх43 в его карбокси-терминальной части с появлением признаков инвазивности опухолей толстой кишки может быть использована в клинической практике в качестве нового диагностического критерия опухолевой прогрессии.
Возникающие при раке толстой кишки в результате сдвигающих рамку считывания мутаций новые аминокислотные последовательности в составе белковой молекулы Сх43 обладают сильной антигенностью и могут служить иммуно-диагностической и иммуно-терапевтической мишенью.
Высокая частота гетерозиготных носителей редких вариантов гена Сх26 среди больных раком желудочно-кишечного тракта позволяет использовать наличие этих вариантов в качестве нового критерия для раннего выявления групп повышенного онкологического риска.
Основные положения, выносимые на защиту. Опухолевый рост in vivo сопровождается значительным снижением межклеточной сообщаемости через ЩК, в основе чего лежат различные механизмы ; так 1) межклеточная сообщаемость через ЩК является сильным противоопухолевым фактором; 2) межклеточная сообщаемость между опухолевыми клетками через ЩК может являться путём распространения в опухолевой клеточной популяции сигналов, запускающих процесс клеточной смерти, что является существенной составляющей опухоль-подавляющего эффекта межклеточной сообщаемости.
Белки ЩК коннексины являются опухолевыми супрессорами, способными подавлять опухолевый рост независимо от межклеточной сообщаемости через ЩК. Именно это свойство и обусловливает ярко выраженную вариабельность противоопухолевого потенциала каждого из 20 известных индивидуальных коннексинов.
Индивидуальные коннексины могут быть избирательно и высоко специфично соматически мутированы в отдельных типах раков человека. Мутационно модифицированные коннексины могут приобретать способствовать ускорять опухолевую прогрессию, а редкие варианты гена коннексина26 могут быть новым фактором предрасположенности к ракам желудочно-кишечного тракта.
Апробация работы.
Диссертация была представлена на международных конференциях по межклеточным щелевым контактам [Хирошима (Япония, 1993), Кей Ларго (США, 1997), Гватт (Швейцария, 1999), Гонолулу (США, 2001), Кембридж (Англия, 2003)], на ежегодных симпозиумах американской ассоциации по изучению рака (1991, 1993, 1995, 1997, 1999, 2002), международном симпозиуме по раннему выявлению и предотвращению рака (Париж, Франция, 2002). Всего по теме диссертации было сделано 40 устных и постерных презентаций.
Связь с планом научных исследований: Данное исследование является частью научного проекта отдела канцерогенеза МАИР, одобренного научным советом Международного Агентства по Исследованию Рака.
Публикации.
Результаты исследования опубликованы в 34 научных публикациях в отечественной и международной научной периодике.
Объем и структура диссертации.
Диссертация состоит из введения, обзора литературы, пяти глав, описывающих результаты собственных исследований, заключения, выводов и практических рекомендаций. Объём работы составляет 176 страниц. Диссертация проиллюстрирована 50 рисунками и 7 таблицами. Список цитированной литературы содержит 17 отечественных и 256 зарубежных источников.
Заключение диссертационного исследования на тему "Роль межклеточных взаимодействий через щелевые контакты в канцерогенезе"
ВЫВОДЫ
1. Установлено, что уровень межклеточной сообщаемости через щелевые контакты (ЩК) в опухолях печени, как человека, так и крыс, по сравнению с окружающей их нормальной тканью, существенно снижен. Кроме того, уже на самых ранних этапах формирования новообразований печени крыс происходит их коммуникационная изоляция от окружающей нормальной печёночной паренхимы по гетерогенному типу.
2. В основе нарушений межклеточной сообщаемости в опухолях лежат различные механизмы, определяющиеся как гистогенезом опухоли, так и спектром экспрессируемых опухолью индивидуальных белков ЩК -коннексинов. Наиболее распространённым механизмом функциональной несостоятельности коннексинов в опухолях является их аномальная транслокация из межклеточных контактов латеральных мембран в цитозоль опухолевых клеток.
3. Экспериментальное модулирование интенсивности межклеточной сообщаемости некоторых типов умеренно сообщающихся между собой опухолевых клеток in vitro показало, что полное её подавление значительно повышает их злокачественный потенциал. В то же время, дополнительное увеличение эндогенного уровня межклеточной сообщаемости коммуникирующих между собой раковых клеток в состоянии полностью подавить их опухолеродность in vivo.
4. Противоопухолевый эффект межклеточной сообщаемости частично связан с распространением среди коммуникирующих опухолевых клеток сигнальных молекул, запускающих процесс клеточной гибели апоптозом. Наиболее вероятным посредником передачи клеточной гибели через ЩК среди опухолевых клеток являются ионы Са2+.
5. Белки ЩК коннексины способны подавлять опухолеродность клеток независимо от их способности обеспечивать межклеточную сообщаемость формированием канальцев ЩК. Внутрицитоплазматическое перемещение мутационно изменённого белка Сх43 из участков межклеточных контактов латеральных мембран клеток существенно усиливает его коммуникационно-независимый противоопухолевый потенциал.
6. Независимая от межклеточной сообщаемости противоопухолевые свойства коннексинов носит выраженный индивидуальный коннексин- и ткане-специфический характер.
7. Прогрессия спорадических аденокарцином толстой кишки разной степени дифференцировки может сопровождаться соматическими мутационными повреждениями коннексина43. Мутации этого гена возникают на относительно поздних стадиях развития опухолей и тесно связаны с появлением патоморфологических признаков озлокачествления этих новообразований.
8. Гетерозиготное носительство отдельных редких вариантов гена Сх26 может быть дополнительным фактором генетической предрасположенности к ракам желудочно-лишечного тракта.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. Обнаруженный нами феномен распространения клеточной гибели в монослое коммуникирующих опухолевых клеток через ЩК может лечь в основу разработки новых подходов к лечению рака. Медикаментозное или биоинженерное повышение коммуникационной способности опухолевых клеток в сочетании с целенаправленной химиотерапией может существенно повысить цитотоксический ответ опухолевых клеток на лечение.
2. Тесная связь обнаруженных соматических мутационных повреждений гена Сх43 в аденокарциномах толстой кишки с их инвазивно-агрессивным поведением указывает на целесообразность включения в клинико-патоморфологическую практику анализа на мутационные повреждения гена Сх43 как нового критерия озлокачествления аденокарцином толстой кишки.
3. Существенное повышение частоты гетерозиготного носительства отдельных вариантов гена Сх26 среди больных раком желудочно-кишечного тракта указывает на необходимость раннего массового выявления носителей таких гетерозигот Сх26 с целью их дальнейшего наблюдения как группы повышенного онкологического риска. Последующее регулярное обследование этой группы может способствовать раннему выявлению раковых заболеваний и, тем самым, существенно повысить вероятность их последующего полного излечения. Кроме того, учитывая этиопатогенетическую роль вышеуказанных вариантов Сх26 в возникновении прелингвальной несиндромной глухоты по рецессивному типу, массовое выявление гетерозиготных носителей редких вариантов Сх26 позволит также избежать в дальнейшем рождения гомозиготных детей, страдающих врождённой доречевой глухотой.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2005 года, Крутовских, Владимир Андреевич
1. Божкова В.П., Розанова Н.В. Современное состояние проблемы щелевых контактов и представление об их роли в развитии.// Онтогенез. 1998.-Т. 29, №1, С. 5-20.
2. Божкова В.П. Современное состояние проблемы щелевых контактов и представление об их роли в развитии //Тез. докл. II Съезд биофизиков России. М.: МГУ, 1999.
3. Гайнуллина С.М. Стволовые клетки как клеточная переносящая система: роль щелевых контактов. //Тез. докл. Научная конференция «постгеномная эра в биологии и проблемы биотехнологии». Казань. 2004.
4. Дадали Е.Л., Федотов В.П., Мерсиянова И.А., Исмаилов Ш.М., Руденская Г.Е., Барышникова НВ. Клинические характеристики наследственной моторно-сенсорной невропатии с мутациями в гене коннексина-32. // Медико-генетический научный центр РАМН, Москва.
5. Дадали Е.Л., Угаров И.В., Шаркова И.В. и Кириленко Н.Б. Проблемы классификации наследственных полинейропатий // Медицинская генетика. 2003. Т2. №5. С. 194-2000.
6. Евразии: информационные технологии и моделирование" (WITA-2001). Новосибирск: Сибирское отделение РАН, Институт цитологии и генетики, 2001.
7. Коган Е.А. Автономный рост и прогрессия опухолей. // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии, 2002. - Т. 12, №4, С.45-49.
8. Коган Е.А. Межклеточные взаимодействия при опухолевом росте // М.А. Пальцев, А.И. Иванов. Межклеточные взаимодействия. М.: Медицина, - 1995.-С.127-189.
9. Крутовских В.А. Роль нарушений межклеточных щелевых контактов в генезе рака и других петологических состояний. // Архив Патологии, -2000.-Т. 61,№1 С. 3-7
10. Маркова Т.Г., Мегрелишвилли С.М., Зайцева Н.Г., Шагина И.А. и Поляков A.B. ДНК-диагностика при врожденной и ранней детской тугоухости и глухоте. // Вестник отриноларингологии. 2002 - Т.6., №12, С.15.
11. Сигнаевский М.А. Межклеточные взаимодействия по типу щелевых контактов в клеточных линиях рака предстательной железы человека.// Дисс. канд. мед. наук. СПб. - 1999.
12. Шаровская Ю.Ю., Марголис Л.Б. и Хюльзер Д.Ф. Регуляция проницаемости щелевых контактов в культуре клеток Hela, трансфицированных генами коннесинов Сх32 и Сх26// Тез. докл. II Съезд биофизиков России. М.: МГУ, 1999.
13. Яицкий Н.А, Дубина М.В., Васильев C.B., Попов Д.Е. и Крутовских В.А. Научно-клиническое значение молекулярно-генетических изменений межклеточных щелевых контактов при раке толстой кишки. // Вестник РАМН. 2003 - Т.10, С. 24-29.
14. Ai Zh., Fischer A., Spray D.C., Brown A.M.C. and Fishman G.I. (2000). Wnt-1 regulation of connexin43 in cardiac myocytes. J. Clin. Invest., 105, 161-171.
15. Andrew S.E. and Peters A.C. (2001). DNA instability and human disease. Am. J. Pharmacogenetics, 1, 21-28.
16. Asamoto M., Takahashi S., Imaida K., Shirai T. and Fukushima S. (1994). Increased gap junctional intercellular communication capacity and connexin43 and -26 expression in rat bladder carcinogenesis. Carcinogenesis, 15,2163-2166.
17. Asamoto M., Toriyama-Baba T., Krutovskikh V., Cohen S.M. and Tsuda H. (1998) Enhanced tumorigenecity of rat bladder squamous call carcinoma cells after abrogation of gap junctional intercellular communication. Jpn. J. Cancer Res., 89,481-496.
18. Backer D.L., Evans W.H., Green C.R. and Warner A. (1995). Functional analysis of amino acid sequences in connexin 43 involved in intercellular communication through gap junctions. J. Cell Sci., 108, 1455-1467.
19. Badd S.L. and Lipton S.A. (1998). Calcium tsunamis: do astrocytes transmit cell death messages via gap junctions during ischemia? Nat. Naurosci., 1, 431-432.
20. Bannasch P. (1986). Preneoplastic lesions as end points in carcinogenicity testing. I. Hepatic preneoplasia. Carcinogenesis, 7, 689-695.
21. Bannasch P., Zerban H. and Hacker H.J. (1985). Foci of altered hepatocytes, rat. In: Jones TC, Mohr U and Hunt RD, Eds. Digestive system (Monographs on pathology of laboratory animals), Berlin, Heidelberg, New York, Springer-Verlag, pp. 10-30.
22. Behrens J., Mareel M.M., Van Roy F.M. and Birchmeier W. (1989). Dissecting tumor cell invasion: epithelial cells acquire invasive properties after loss of uvomorulin-mediated cell-cell adhesion. J. Cell Biol., 108, 24352447.
23. Ben-Ze'ev A. (1997). Cytoskeletal and adhesion proteins as tumor suppressors. Current opinion in Cell Biol., 9, 99-108.
24. Berke G., Krutovskikh V. and Yamasaki H. (2003). Connexin 37 gene is not mutated in lung carcinomas 3LL and CMT. Cancer Letters, 195, 67-72.
25. Beyer E.C., Paul D.L. and Goodenough D.A. (1990). Connexin family of gap junction proteins. J. Membrane Biology, 116, 187-194.
26. Bennett M.V.L., Barrio L.C, Bargiello T.A., Spray D.C., Hertzberg E. and Saez J.C. (1991). Gap junctions: new tool, new answers, new questions. Neuron, 6, 305-320.
27. Bergoffen J., Scherer S.S., Wang S., Oronzi Scott M., Bone L.J., Paul D.L., Chen K., Lensch M.W., Chance P.F. and Fischbeck K.H. (1993). Connexinmutations in X-linked Charcot-Marie-Tooth disease. Science, 262, 20392042.
28. Bignold L.P. (2002). The mutator phenotype theory can explain the complex morphology and behavior of cancer. Cell Mol. Life Sci., 58, 950-958.
29. Blanc E.M., Bruce-Keller J. and Mattison M.P. (1998). Astrocytic gapjunctional communication decreases neuronal vulnerability to oxidative• 2+ •stress-induced disruption of Ca homeostasis and cell death. J. Neurochem.,70, 958-970.
30. Brandt BiH. (2002). Molecular diagnostics of solid malignant tumours. Clin. Lab., 48, 605-615.
31. Bond L.S., Bechberger J.F., Khoo N.K.S. and Naus C.C.G. (1994). Transfection of glioma C6 cell with connexin32: the effects of expression of nonendogenous gap junction protein. Cell Growth Differ., 5, 179-186.
32. Bowling N., Huang X., Sandusky G.E., Fouts R.L., Mintze K., Esterman M., Allen P.D. Maddi R., MsCall E., and Vlahos C.J. (2002). Protein kinase C-alfa and -epsilon modulate connexin43 phosphorylation in human heart. J. Mol. Cell. Cardiol., 33, 789-798.
33. Britz-Cunningham S.H., Shah M.M., Zuppan C.W. and Fletcher W.H. (1995). Mutations of the Connexin43 gap-junction gene in patients with heart malformations and defects of laterality. N. Engl. J. Med., 332, 1323-1329.
34. Brobby G.W., Muller-Myhsok B. and Hortsmann R.D. (1998) Connexin 26 R143W mutation associated with recessive nonsyndromic sensoneural deafness in Africa. N. Engl. J. Med., 338,548-549.
35. Bruzzone R., White T.W., Scherer S.S., Fischbeck K.H. and Paul D.L. (1994). Null mutations of connexin32 in patients with X-linked Charcot-Marie-Tooth disease. Neuron, 13, 1253-1260.
36. Budunova I.V. (1994). Alteration of gap junctional intercellular communication during carcinogenesis. The Cancer J., 7, 228-237.
37. Budunova I.V. and Williams G.M. (1994). Cell culture assays for chemicals with tumor promoting or tumor-inhibiting activity based on the modulation of intercellular communication. Cell Biology and Toxicology, 10, 71-116.
38. Bullions L.C., and Levine A.J. (1998). The role of beta-catenin in cell adhesion, signal transduction, and cancer. Cancer Biology, 10, 81-87.
39. Cameron R.G. (1989). Identification of putative first cellular step of chemical hepatocarcinogenesis. Cancer Lett. 47, 163-167.
40. Casey B. and Ballabio A. (1995). Connexin43 mutations in sporadic and familial defects of laterality. N. Engl. J. Med., 333, 941.
41. Castro C., Gomez-Hernandez J.M., Silander K. and Barrio L.C. (1999). Altered formation of hemichannels and gap junction channels by C-terminal connexin-32 mutatioins. J. Neurosci., 19, 3752-3760.
42. Chang W.W.L. and Nadler N.J. (1975). Renewal of the epithelium in the descending colon of the mouse. IV. Cell population kinetics of vacuolated-columnar and mucous cells. Am. J. Anat., 144, 39-56.
43. Chen Sh.-Ch., Pelletier D.B., Ao P. and Boynton A.L. (1995). Connexin43 reverses the phenotype of transformed cell and alters their expression of cyclin/cyclin-dependent kinases. Cell Growth & Differ., 6, 681-690.
44. Chipman J.K. (1995). Connexin genes as tumor suppressor genes? Hum. Exp. Toxicol.; 14, 539-540.
45. Cohn E.S. and Kelley P.M. (1999). Clinical phenotype and mutations in connexin 26 (DFNB1/GJB2), the most common cause of childhood hearing loss. Am. J. Med. Genet. 98, 130-136.
46. Cortina M.L., Kang J., Lin J.H.-C., Bueno E., Hansen T.W., He L., Liu Y. and Nedergaard M. (1998). Astrocytic gap junctions remain open during ischemic conditions. J. Neurosci., 18,2520-2537.
47. Cunliffe J. (1997). Morphostasis: an evolving perspective. Med. Hypotheses, 49, 449-459.
48. Dahl G., Werner R., Levine E. and Rabadan-Diehl C. (1992). Mutational analysis of gap junction formation. Biophys. J.} 62, 172-180.
49. Dang X., Doble B.W. and Kardami E. (2003). The carboxyl-tail connexin-43 localizes to the nucleus and inhibits cell growth. Mol Cell Biochem., 242, 3538.
50. Davidson J.F., Guo H.H. and Loeb L.A. (2002). Endogenous mutagenesis and cancer. Mutation Research, 509, 17-21.
51. Davidson J.S., Baumgarten I.M. and Harley E.H. (1986). Reversible inhibition of intercellular junctional communication by glycyrrhetinic acid. Biochem. Biophys. Res. Comm., 143, 29-36.
52. Denoyelle F, Lina-Granade G, Plauchu H, Bruzzone R, Chaib H, Levi-Acobas F, Weil D and Petit C. (1998). Connexin 26 gene linked to a dominant deafness. Nature, 393, 319-320.
53. Deschenes S.M., Walcott J.L., Wexler T.L., Scherer S.S. and Fischbeck K.H. (1997). Altered trafficking of mutant connexin32. J. Neurosci., 17, 90779084.
54. Doble B.W., Ping P., and Kardami E. (2000). The epsilon subtype of protein kinase C isrequired for cardiomyocyte connexin43 phosphorylation. Circ. Res., 86, 293-301.
55. Dong J., Katz D.R., Eng C.M., Kornreich R. and Desnick R.J. (2001). Nonradioactive detection of the common Connexin 26 167delT and 35delG mutations and frequencies among Ashkenazi Jews. Mol. Genet. Metab., 73, 160-163.
56. Dubina M., Iaitckii N.A., Popov D.E., Vasil'ev S.V. and Krutovskikh V. (2002). Connexin 43, but not connexin 32, is mutated at advanced stages of human sporadic colon cancer. Oncogene, 21, 4992-4996.
57. Duflot-Dancer A., Mesnil M. and Yamasaki H. (1997). Dminant-negative abrogation of connexin-mediated cell growth control by mutant connexin genes. Oncogene, 15 2151-2158.
58. Eghbali B., Kessler J.A., Reid L.M., Roy C. and Spray D.C. (1991). Involvement of gap junctions in tumorigenesis: Transfection of tumor cells with connexin 32 cDNA retards growth in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88,701-10705.
59. Erichsen H.C. and Chanock SJ. (2004). SNPs in cancer research and treatment. Br. J. Cancer. 90, 747-751.
60. Estin D., Li M., Spray D. and Wu J.K. (1999). Connexins are expressed in primary brain tumors and enhance the bystander effect in gene therapy. Neurosurgery, 44, 361-368.
61. Estvill X., Fortina P., Surray S., Rabionet R., Melchionda S., D'Agruma L., Mansfield E., Rappoport E., Govea N., Mila M., Zelante L. and Gasparini P. (1998). Connexin-26 mutations in sporadic and inherited sensorineural deafness. Lancet, 351, 394-398.
62. Everts R.P., Nakatsukasa H., Marseden E.R., Hsia C.C., Dansford H.A. and Thorgeirsson S.S. (1990). Cellular and molecular changes in the early stages of chemical hepatocarcinogenesis in the rat. Cancer Res., 50, 3439-3444.
63. Fields S. and Song O. (1989). A novel genetic system to detect proteinprotein interactions. Nature, 340, 245-247.
64. Fishel R. (2001). The selection for mismatch repair defects in hereditary nonpolyposis colorectal cancer: revising the mutator hypothesis. Cancer Res., 61,7369-7374.
65. Fishman G.I., Moreno A.P., Spray D.C. and Leinwand L.A. (1991). Functional analysis of human cardiac junction channel mutants. Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 88,3525-3529.
66. Fishman G.I., Eddy R.L., Shows T.B., Rosental L. and Leinward L.A. (1991). The human connexin gene family of gap junction proteins: distinct chromosomal locations but similar structures. Genomics, 10, 250-256.80.
67. Fitzgerald D.J., Knowles S.E., Ballard F.J. and Murray A.W. (1983). Rapid and reversible inhibition of junctional communication by tumor promoters in mouse cell line. Cancer Res., 43, 3614-3618.
68. Fitzgerald D.J., Mesnil M., Oyamada M., Tsuda H., Ito N. and Yamasaki H. (1989). Changes in gap junction protein (connexin32) gene expression during rat liver carcinogenesis. J. Cell Biochem., 41,97-102.
69. Foote CI, Zhou L, Zhu X and Nicholson BJ. (1998). The pattern of disulfide linkages in the extracellular loop regions of connexin 32 suggests a model for the docking interface of gap junctions. J. Cell Biol., 140, 1187-1197.
70. Gabriel H.-D., Jung D., Butzler C., Temme A., Traub O., Winterhager E. and Willecke K. (1998). Transplacental uptake of glucose is decreased in embryonic lethal Connexin26-deficient mice. J. Cell Biol., 140, 1453-1461.
71. Giepmans B.N.G. and Moolenaar W.H. (1998). The gap junction protein connexin43 interacts with the second PDZ domain of the zona occludens-1 protein. Current Biology, 8, 931-934.
72. Giepmans B.N., Verlaan T., Hengeveld H., Janseen J., Calafat M.M., Falk M.M., and Moolenaar W.H. (2001). Gap junction protein connexin43 interacts directly with microtubbbules. Curr. Biol., 11, 1364-1368.
73. Giepmans B.N., Verlaan T., and Moolenaar W.H. (2001). Connexin43 interacts with ZO-1 and alfa- and beta-tubulin. Cell Commun. Adhes., 8, 219223.
74. Goldberg G.S., Lampe P.D. and Nocholson B.J. (1999). Selective transfer of endogenous metabolites through gap junctions composed of different connexins. Nat. Cell Biol., 1,457-459.
75. Goldberg G.S., Bechberger J.F., Tajima Y., Merritt M., Omori Y., Gawinowicz M.A., Narayanan R., Tan Y., Sanai Y., Yamasaki H., Naus
76. C.C., Tsuda H. and Nicholson B.J. (2000). Connexin43 suppresses MFG-E8 while inducing contact growth inhibition of glioma cells. Cancer Res., 60, 6018-6026.
77. Gong X., Li E„ Klier G., Huang Q., Wu Y., Lei H., Kumar N.M., Horwitz J. and Gilula N.B. (1997). Disruption of ot3connexin gene leads to proteolysis and cataractogenesis in mice. Cell, 12, 833-843.
78. Goode E.L., Ulrich C.M. and Potter J.D. (2002). Polymorphisms in DNA repair genes and associations with cancer risk. Cancer Epidemil. Biomarkers Prev., 11, 1513-1530.
79. Guan X., Wilson S., Schelender K.K. and Ruch R.J. (1996). Gap junction disassembly and connexin43 dephosphorylation induced by 18-glycyrretinic acid. Mol. Carcinogenesis, 16, 157-164.
80. Guan X., Cravatt B.F., Ehring G.R., Hall J.E., Boger D.L., Lerner R.A. and Gilula N. (1997). The sleep-inducing lipid Oleamide deconvolute gap junction communication and calcium wave transmission in glial cells. J. Cell Biol., 139, 1785-1792.
81. Guldenagel M., Ammermuller J., Feigenspan A., Teubner B., Degen J., Sohl G., Willecke K. and Weiler R. (2001). Visual transmission defidits in mice with targeted disruption of the gap junction gene connexin36. J. Neurosci., 21, 6036-6044.
82. Han J., Hankinson S.E., Ranu H., De Vivo I. and Hunter D.J. (2004). Polymorphisms in DNA double-strand break repair genes and breast cancer risk in the Nurses' healthy study. Carcinogenesis, 25, 189-195.
83. Hanahan D. and Weinberg R.A. (2000). The hallmarks of cancer. Cell, 100, 57-70.
84. Hendrich S. and Pitot H.C. (1987). Enzymes of glutatione metabolism as biochemical markers during hepatocarcinogenesis. Cancer Metastasis Rev., 6, 155-178.
85. Harris K.C., Erbe C.B., Firszt J.B., Flanary V.A. and Wackym P.A. (2002). A novel connexin 26 compound heterozygous mutation results in deafness. Laryngoscope, 112, 1159-1162.
86. Hertig C.M., Eppenberger-Ebenhardt M., Koch S. and Eppenberger H,M. (1996). N-cadherin in adult cardiomyocytes in culture. I. Functional role of N-cadherin and impairment of cell-cell contact by truncated N-cadherin mutant. J. Cell Sci., 109, 1-10.
87. Herve J.-C., Bourmeyster N., and Sarrouilhe D. (2004). Diversity in proteinprotein interactions of connexins: emerging roles. Biochim. Biophys. Acta. 1662,22-41.
88. Holder J.W., Elmore E. and Barrett J.C. (1993). Gap junction function and cancer. Cancer Res., 53, 3475-3485.
89. Hollstein M., Marion M.J., Lehmann T., Welsh J., Harris C.C., Martel-Planche G., Kudters I. and Montesano R. (1994). p53 mutations at A:T base pairs in angiosarcomas of vinyl chloride-exposed factory workers. Carcinogenesis, 15, 1-3.
90. Hu J.J., Mohrenweiser H.W., Bell D.A., Leadon S.A. and Miller M.S. (2002). Symposium overview: gentic polymorphisms in DNA repair and cancer risk. Toxicol. Appl. Pharmacol., 185, 64-73.
91. Huang R.P., Fan Y., Hossain M.Z., Peng A., Zeng Z.L. and Boynton A.L. (1998). Reversion of neoplastic phenotype of human glioblastoma cells by connexin 43. Cancer Res., 58, 5089-5096.
92. Hully J.R., Su Y., Lohse J.K., Griep A.E., Sattler C.A., Haas M.J., Dragan Y., Peterson J., Neveu M. and Pitot H.C. (1994). Transgenic hepatocarcinogenesis in the rat. Am. J. Pathol., 145, 384-397.
93. Imyanitov E.N., Togo A.V. and Hanson K.P. (2004). Searching for cancer-associated gene polymorphisms: promises and obstacles. Cancer Lett., 204, 3-14.
94. Ionasescu V., Ionasescu R. and Searby C. (1996) Correlation between connexin32 gene mutations and clinical phenotype in X-linked dominant Charcot-Marie-Tooth neuropathy. Am. J. Med. Genet., 63, 486-491.
95. Jacobi C., Leipziger J., Nitschke R., Ricken S. and Greger R. (1998). No evidences for cell-to-cell coupling in rat colonic crypts: studies with Lucifer yellow and with photobleaching. Pflugers Arch., 436, 83-89.
96. Jin Ch., Lau A.F. and Mertyn K.D. (2000). Identification of connexin-interacting proteins: application of yeast two-hybrid screen. Methods, 20, 219-231.
97. John S.A., Kondo R., Wang S.Y., Goldhaber J.I. and Weiss J.N. (1999). Connexin-43 hemichannels opened by metabolic inhibition. J. Biol. Chem., 274, 236-240.
98. Juneja S.C., Barr K.J., Eders G.C. and Kidder G.M. (1999) Defects in the germ line and gonads of mice lacking connexin43. Biol. Reprod., 60, 12631270. ,
99. Kelley P.M., Harris D.J., Comer B.C., Askew J.W., Fowler T., Smith S.D. and Kimberling W.J. (1998). Novel mutations in the connexin 26 gene (GJB2) that cause autosomal recessive (DFNB1) hearing loss. Am. J. Hum. Genet. 62, 792-799.
100. Kelsell D.P., Dunlop J., Stevens H.P., Lench N.J., Liang J.N., Parry G., Mueller R.F., and Leigh I.M. (1997). Connexin 26 mutations in hereditary non-syndromic sensorineural deafness. Nature, 387, 80-83.
101. Kinzler K.W. and Vogelstein B. (1996). Lessons from hereditary colorectal cancer. Cell, 87, 159-170.
102. Kirchhoff S., Nelles E., Hagendorff A., Kruger O., Traub O. and Willecke K. (1998). Reduced cardiac conduction velocity and predisposition to arrhythmias in connexin40-deficient mice. Current Biology, 8, 299-302.
103. Klann R.C., Fitzgerald D.J., Piccoli C., Slaga T.J. and Yamasaki H. (1989). Gap junctional intercellular communication in epithelial cell lines fromselected stages of SENCAR mouse skin carcinogenesis. Cancer Res., 49, 699-705.
104. Klaunig J.E. and Ruch RJ. (1990). Role of inhibition of intercellular communication in carcinogenesis. Laboratory Investigation, 62, 135-144.
105. Korinek V., Barker N., Morin P.J., van Wichen D., de Weger R., Kinzler K.W., Vogelstein B. and Clevers H. (1997). Costitutive transcriptional activation by a (3-Catenin-Tcf complex in APC-/- colon carcinoma. Science, 275, 17841787.
106. Kronengold J., Trexler E.B., Bukauskas F.F., Bargiello T.A. and Verselis V.K. (2003). Pore-linig residues identified by single channel SCAM studies in Cx46 hemichannels. Cell Communication and Adhesion. 10,193-199.
107. Krutovskikh V.A., Oyamada M. and Yamasaki H. (1991). Sequential changes of gap junctional intercellular communications during multistage rat liver carcinogenesis: direct measurement of communication in vivo. Carcinogenesis, 12, 1701-1706.
108. Krutovskikh V. and Yamasaki H. (1995). Ex-vivo dye transfer assay as an approach to study gap junctional intercellular communication disorders in hepatocarcinogenesis. In: Progress in Cell Research, 4, 93-97. Ed. Kanno Y. et al., Elsevier Science B.V.
109. Krutovskikh V., Mironov N. Yamasaki H. (1996). Human connexin37 is polymorphic but not mutated in tumors. Carcinogenesis, 17, 1761-1763.
110. Krutovskikh V. and Yamasaki H. (1997). The role of gap junctional intercellular communication disorders in experimental and human carcinogenesis. Histology and Histopathology Journal, 12, 761-768.
111. Krutovskikh V., Asamoto M. and Tsuda H. (1997). Differential dose-dependent effect of □□carotenes and lycopene on gap junction intercellular communication in rat liver in vivo. Jpn. J. Cancer Res., 88, 1121-1124.
112. Krutovskikh V. and Yamasaki H. (2000). Connexin gene mutations in human genetic diseases. Mutation Res., 462, 197-207.
113. Krutovskikh V., Troyanovsky S.M., Piccoli C., Tsuda H., Asamoto M. and Yamasaki H. (2000). Differential effect of subcellular localization of communication impairing gap junction protein connexin43 on tumor cell growth. Oncogene, 19, 505-513.
114. Krutovskikh V., Piccoli C. and Yamasaki H. (2002). Gap junction intercellular communication propagates cell death in cancerous cells. Oncogene, 21, 1989-1999.
115. Kumar N.M. and Gilula N.B. (1996). The gap junction communication channel. Cell, 84, 381-388.
116. Kumar N.M., Friend D.S. and Gilula N.B. (1995). Synthesis and assembly of human □ 1 gap junctions in BHK cells by DNA transfection with the human □ l cDNA. J. Cell Sci., 108, 3725-3734.
117. Kumari SS, Varadaraj K, Valinas V and Brink PR. (2001). Site-directed mutations in thetransmembrane domain M3 of human connexin37 alter channel conductance and gaiting. Biochem. Biophys. Res. Commun., 280, 440-447.
118. Lampe P.D. and Lau A.F. (2000). Regulation of gap junctions by phosphorylation of connexins. Arch. Biochem. Biophys., 384, 205-215.
119. Lampe P.D., TenBroek E.M., Brut J.M., Kurata W.E,. Johnson R.G. and Lau A.F. (2000). Phosphorylation of Connexin43 on serin368 by protein kinase C regulates gap junctional communication. J Cell Biol., 149, 1503-1512.
120. Lecanda F., Towler D.A., Ziambaras K., Cheng S.-L., Koval M., Stainberg T.H. and Civitelli R. (1998). Gap junctional communication modulates gene expression in osteoblastic cells. Mol. Biol. Cell, 9, 2249-2258.
121. Lee W.S., Tomasetto C. and Sager R. (1991). Positive selection of candidate tumor-suppressor genes by subtractive hybridization. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88, 2825-2829.
122. Leube R.E. (1995). The topogenic fate of the polytopic transmembrane proteins, synaptophysin and connexin, is determined by their membrane-spanning domains. J. Cell Sci., 108, 883-894.
123. Li H., Liu T.-F., Lazrak A., Peracchia C., Goldberg G.S., Lampe P.D. and Johnson R.G. (1996). Properties and regulation of gap junctional hemichannels in the plasma membranes of cultured cells. J. Cell Biol., 134, 1019-1030.
124. Lin J.H., Weigel H., Cortina M.L., Liu Sh., Bueno E., Hansen A.J., Hansen T.W., Goldman S. and Negergaard M. (1998). Gap junction mediated propagation and amplification of cell injury. Nat. Neurosci., 1, 494-500.
125. Liu Y., Ke X., Qi Y., Li W. and Zhu P. (2002). Connexin26 gen (GJB2): prevalence of mutations in Chinese population. J. Hum. Genet., 47, 688-690.
126. Loewenstein W.R. and Kanno Y. (1966). Intercellular communication and the control of the tissue growth; lack of communication between cancer cells. Nature, 209, 1248-1249.
127. Loewenstein W.R. and Rose B. (1992). The cell-cell channel in the control of growth. Semin. Cell Biol., 2, 59-79.
128. Loktionov A. (2004). Common gene polymorphisms, cancer progression and prognosis. Cancer Lett., 208, 1-33.
129. Loukola A., Eklin K., Laiho P., Salovaara R., Kristo P., Jarvinen H., Mecklin J.-P., Launonen V. and Aaltonen L.A. (2001). Microsatellite marker analysis in screening for hereditary nonpolyposis colorectal cancer (HNPCC). Cancer Res., 61, 4545-4549.
130. Mackay D., Ionides A., Kibar Z., Rouleau G., Berry V., Moore A., Shiels A. and Bhattacharya S. (1999). Connexin46 mutations in autosomal dominant congenital cataract. Am. J. Hum. Genet. 64, 1357-1364.
131. Martinez A.D., Hayrapetyan V., Moreno A.P., and Beyer E.C. (2003). A carboxyl terminal domain of connexin43 is critical for gap junction plaque formation but not for homo- or hetero-oligomerization. Cell Commun Adhes., 10, 323-328.
132. Mendelboim O., Berke G., Fridkin M., Feldman M., Eisenstein M. and Eisenbach L. (1994). CTL induction by tumor-associated antigen octapeptide derived from a murine lung carcinoma. Nature, 369, 67-71.
133. Milks L.C., Kumar N.M., Houghten R., Unwin N. and Gilula N.B. (1988) Topology of the 32-kd gap junction protein determined by site-directed antibody localizations. The EMBO J., 7, 2967-2975.
134. Miyaki M., Konishi M., Tanaka K., Kikuchi-Yanoshita R., Muraoka M., Yasuno M., Igari T., Koike M., Chiba M. and Mori T. (1997). Germline mutation of MSH6 as the cause of hereditary nonpolyposis colorectal cancer. Nature Genetics, 17,271-272.
135. Mehta P.P., Hotz-Wagenblatt A., Rose B., Shalloway D. and Lowenstein W.R. (1991). Incorporation of the gene for cell-cell channel into transformed cells leads to normalization of growth. J. Membr. Biol., 124, 207-225.
136. Mesnil M. (2002). Connexins and cancer. Biol. Cell., 94, 493-500.
137. Mesnil M., Montesano R. and Yamasaki H. (1986). Intercellular communication of transformed and non-transformed rat liver epithelial cells. Exp. Cell Res., 165, 391-402.
138. Mesnil M., Krutovskikh V.A., Piccoli C., Elfgang C., Traub O., Willecke K. and Yamasaki H. (1995). Negative growth control of HeLa cells by connexin genes: connexin-species specificity. Cancer Res., 55, 629-639.
139. Mesnil M., Piccoli C., Tiraby G., Willecke K. and Yamasaki H. (1996). Bystander killing of cancer cells by herpes simplex virus thymidine kinase gene is mediated by connexins. Proc. Natl. Acad. Sci., 93, 1831-1835.
140. Moorby C. and Patel M. (2001). Dual functions for connexins: Cx43 regulates growth independently of gap junction formation. Exp. Cell Res., 271,238-248.
141. Morin P.J., Sparks A.B., Korinek V., Barker N., Clevers H., Vogelstein B. and Kinzler K.W. (1997). Activation of P-catenin-Tcf signaling in colon cancer by mutation in p-catenin or APC. Science, 275, 1787-1790.
142. Morin P.J. (2000). Beta catenin signaling and cancer. BioEsseys, 21, 10211030.
143. Musil L.S. and Goodenough D.A. (1991). Biochemical analysis of Connexin43 intercellular transport, phosphorylation, and assembly into gap junctional plaques. J. Cell Biol. 115, 1357-1374.
144. Naus CCG, Elisevich K, Zhu D, Belliveau D and Del Maestro R. (1992). In vivo growth of C6 glioma cells transfected with connexin43 cDNA. Cancer Res., 52, 4208-4213.
145. Naus C.C.G., Bond S.L., Berchberger J.F. and Rushlow W. (2000). Identification of genes differentially expressed in C6 glioma cells transfected with connexin43. Brain Res. Brain Res. Review, 32, 259-266.
146. Neilsen P.A. and Kumar N.M. (2003). Differences in expression patterns between mouse connexin-30.2 (Cx30.2) and its putative human orthologue, connexin-31.9. FEBS Lett., 540, 151-156.
147. Nelis E., Haites N. and van Broeckhoven C. (1999). Mutations in the peripheral myelin genes and associated genes in inherited peripheral neuropathies. Hum. Mutat., 13, 11-28.
148. Neveu M.J., Hully J.R., Babcock K.L., Hetzberg E.L., Nicholson B.J., Paul D.L. and Pitot H.C. (1994) Multiple mechanisms are responsible for altered expression of gap junction genes during oncogenesis in rat liver. J. Cell Sci., 107, 83-95.
149. Nicholson B, Dermietzel R, Teplow D, Traub O, Willecke K and Revel JP. (1987). Two homologous protein components of hepatic gap junctions. Nature, 329, 732-734.
150. Nicholson G.A., Yeung L. and Corbett A. (1998). Efficient neuropathophysiologic selection of X-linked Charcot-Marie-Tooth families: ten novel mutations. Neurology, 51, 1412-1416.
151. Nicholson B., Dermietzel R., Teplow D., Traub O., Willecke K. and Revel J.-P. (1987). Two homologous protein components of hepatic gap junctions. Nature, 329, 732-734.
152. Oh S., Ri Y., Bennett M.V.L., Trexler E.B., Verselis V.K. and Bargiello T.A. (1997). Changes in permeability caused by connexin 32 mutations underlie X-linked Charcot-Marie-Tooth disease. Neuron, 19, 927-938.
153. Olbina G., and Eckhart W. (2003). Mutations in the second extracellular region of connexin43 prevent localization to the plasma membrane, but do not affect its ability to suppress cell growth. Mol. Cancer Res., 1, 690-700.
154. Omori Y., Mesnil M. and Yamasaki H. (1996). Connexin 32 mutations from X-linked Charcot-Marie-Tooth disease patients: functional defects and dominant negative effects. Mol. Biol. Cell, 7, 907-916.
155. Omori Y., Krutovskikh V.A., Tsuda H. and Yamasaki H. (1996). Connexin32 gene mutation in a chemically induced rat liver tumor. Carcinogenesis, 17, 2077-2080.
156. Passini M.B., Luceri C., Caderni G. and Dolara P. (1998). Intercellular communication in normal and aberrant crypts of rat colon mucosa. Cancer Letters, 123, 77-81.
157. Paul D.L. (1995). New functions of gap junctions. Current Opinion in Cell Biology, 7, 665-672.
158. Penman S.M., Tsai M.Y., Burn J. and Goodship J.J. (1997). Absence of mutations in the regulatory domain of the gap junction protein connexin 43 in patients with visceroatrial heterotaxy. Heart, 77, 369-370.
159. Pfahnl G. and Dahl G. (1999). Gating of Cx46 gap junction hemichannels by calcium and voltage. Pfugers Arch. 437, 345-353.
160. Piechocki R., Burk R.D. and Ruch R.J. (1999). Regulation of connexin32 and sonnexin43 gene expression by DNA methylation in rat liver cells. Carcinogenesis, 20,401-406.
161. Pochapin M.B., Sanger J.M. and Sanger J.W. (1983). Microinjection of Lucifer yellow CH into sea urchin eggs and embryos. Cell Tissue Res., 234, 309-318.
162. Polakis P. (1997). The adenomatous polyposis coli (APC) tumor suppressor. Biochem. Biophys. Acta, 1332, F127-F147.
163. Proulx A., Lin Z.X. and Naus C.C.G. (1997). Transfection of rhabdomyosarcoma cells with connexin 43 induced myogenic differentiation. Cell growth Differ., 8, 533-540.
164. Rabionet R. and Estivill X. (1999). Allele specific oligonucleotide analysis of the common deafness mutation 35delG in connexin 26 (GJB2) gene. J. Med. Genet. 36 260-261.
165. Rabadan-Diehl S., Dahl G. and Werner R. (1994). A connexin32 mutation associated with Charcot-Marie-Tooth disease does not affect channel formation in oocytes. FEBS Lett., 351, 90-94.
166. Rahman S. and Evans H. (1991). Topography of connexin32 in rat liver gap junctions. Evidence for an intramolecular disulphide linkage connecting the two extracellular peptide loops. J Cell Sci., 100, 567-578.
167. Rawanduzy A., Hansen A., Hansen T.W. and Nedergaard M. (1997). Effective reduction of infarct volume by gap junction blockade in a rodent model of stroke. J. Nerosurg., 87, 916-920
168. Reaume A.G., de Sousa P.A., Kulkarni S,. Langille B.L., Zhu D., Davies T.C., Juneja S.C., Kidder G.M. and Rossant J. (1995). Cardiac malformation in neonatal mice lacking connexin43. Science, 267, 1831-1834.
169. Reed K.E., Westphale E.M., Larson D.M., Wang H.-Z., Veenstra R.D. and Beyer E.C. (1993) Molecular cloning and functional expression of human connexin37, en endothelial cell gap junction protein. J. Clin. Invest., 91, 9971004.
170. Ressot C., Gomes D., Dautigny A., Pham-Dinh D. and Bruzzone R. (1998). Connexin mutations associated with X-linked Charcot-Marie-Tooth disease show two distinct behaviors: loss of function and altered gating properties. J. Neurosci., 18, 4063-4075.
171. Revel J.P. and Karnovsky MJ. (1967). Hexagonal array of subunits in intercellular junctions of the mouse heart and liver. J. Cell Biol., 33, C7-C12.
172. Richard G., Smith L.E., Bailey R.A., Itin P., Hohl D., Epstain Jr. E.H., di Giovanna J.J., Compton J.G. and Bale S.J. (1998). Mutations in the humanconnexin gene GJB3 cause erythrokeratoderma variabilis. Nat. Genet., 20, 366-369.
173. Rodina A., Mittelman L. Piccoli C., Krutovskikh V. and Budunova I. (2005). Gap junction protein connexin26 interacts with transcription factor YAF2. JBC (submitted).
174. Romualdi A., Niessen H., Dombrowski F., Willecke K. and Ott T. (2002) Quantitative analysis of gap junctional intercellular communication in precision-cut mouse liver slices. Cell Tissue Res., 307, 315-320.
175. Rose B., Mehta P.P., and Lowenstein W.R. (1993). The gap junction protein gene suppress tumorigenicity. Carcinogenesis, 14, 1073-1075.
176. Rubin J.B., Verselis V.K., Bennet M.Y. and Bargiello T.A. (1992). A domain substitution procedure and its use to analyze voltage dependence of homotypic gap junctions formed by connexins 26 and 32. Proc. Natl. Acad. USA, 89, 3820-3824.
177. Ruch RJ and Trosko JE. (2001). Gap junction communication in chemical carcinogenesis. Drug Metab. Rev., 33, 117-124.
178. Saez J.C., Connor J.A., Spray D.C. and Bannett M.V.L. (1989). Hepatocyte gap junctions are permeable to the second messenger, inositol 1,4,5-triphosphate, and to calcium ions. Pros. Natl. Acad. Sci. USA., 86, 27082712.
179. Saito T, Barbin A, Omori Y and Yamasaki H. (1997) Connexin 37 mutations in rat hepatic angiosarcomas induced by vinyl chloride. Cancer Res., 57, 375377.
180. Saito T., Krutovskikh V., Marion M.J., Ishak K.G., Bennett W.P. and Yamasaki H. (2000). Human hemangiosarcomas have a common polymorphism but no mutations in the connexin37 gene. Int. J. Cancer, 86, 67-70.
181. Scherer S.S., Xu Y.T., Nelles E., Fischbeck K., Willecke K. and Bone L.J. (1998). Connexin32-null mice develop demyelinating peripheral neuropathy. Glia, 24, 8-20.
182. Scholzen T. and Gerdes J. (2000). The Ki-67 protein: from the known and unknown. J. Cellular Physiology., 182, 311-322.
183. Scott D.A., Kraft M.L., Stone E.M., Sheffield V.C. and Smith R.J.H. (1998). Connexin mutations and hearing loss. Nature, 391, 32.
184. Shiels D, Mackay A, Ionides V Berry A, Moore S and Bhattacharya B. (1998). A missense mutation in the human connexin50 gene (GJA8) underlies autosomal dominant "zonular pulverulent" cataract, on chromosome lq. Am. J. Hum. Genet. 62, 526-532.
185. Shimcha I., Geiger B., Yehuda-Levenberg Sh., Salomon D., and Ben-Ze'ev A. (1996). Suppression of tumorigenicity by plakoglobin: an augmenting effect of N-cadherin. J.Cell Biology, 133, 199-209.
186. Simon A.M., Goodenough D.A., Li En and Paul D.L. (1997). Female fertility in mice lacking connexin37. Nature, 385, 525-529.
187. Simon A.M., Goodenough D.A. and Paul D.L. (1998). Mice lacking connexin40 have cardiac conduction abnormalities characteristic of atrioventricular block and bundle branch block. Current Biology, 8, 295-298.
188. Singal R., Tu Z.J., Vanwert J.M., Ginder G.D. and Kiang D.T. (2000). Modulation of the connexin26 tumor suppressor gene expression through methylation in human mammary epithelial cell lines. Anticancer Res., 20, 5964.
189. Skerrett I.M., Kasperek E., Shin J.H., Ahmed S., and Nicholson B.J. (2003). Mapping conformational changes associated with gap junction channel gating using a disease-related mutation. International Gap junction conference, Cambridge, 2003.
190. Sohl G. and Willecke K. (2004). An update on connexin genes and their nomenclature in mouse and man. Cell Communication and Adhesion, 10, 173-180.
191. Solt D.B. and Farber E. (1976). New principle for the analysis of chemical carcinogenesis. Nature (Lond), 263, 702-703.
192. Sosinsky G. (1995). Mixing of connexins in gap junction membrane channels. Proc Natl Acad Sci USA., 92, 9210-9214.
193. Stauffer K.A. (1995). The gap junction proteins pi-connexin (connexin32) and p2-connexin (connexin26) can form heteromeric hemichannels. J. Biol Chem. 270, 6768-6772.
194. Steel K.P. (1998). One connexin, two diseases. Nature Genetics, 20, 319-320.
195. Steel K.P. (1998). A new era in the genetics of deafness. N. Engl. J. Med., 339, 1545-1547.
196. Steele Jr. E.C., Lyon M.F., Favor J., Guillot P.V., Boyd Y., Church R.L.1998). A mutation in the connexin 50 (Cx50) gene is a candidate for the No2 mouse cataract. Curr. Eye Res., 17 883-889.
197. Stergiopoulos K., Alvarado J.L., Mastroianni M., Ek-Vitorin J.F., Taffet S.M., and Delmar M. (1999). Hetero-domain interactions as mechanisms for the regulation of connexin channels. Circ. Res, 84, 1144-1155.
198. Stojkovic T., Latour P., Vandenberghe A., Hurtevent J.F. and Vermersch P.1999). Sensorineural deafness in X-linked Charcot-Marie-Tooth disease with connexin 32 mutation R142Q. Neurology, 52, 1010-1014.
199. Stout Ch, Goodenough D.A. and Paul D.L. (2004). Connexins: functions without junctions. Current Opinion in Cell Biol., 16, 507-512.
200. Suchyna T.M., Xu L.X., Gao F., Furtner C.R. and Nicholson B.J. (1993). Identification of a proline residue as a transduction element involved in voltage gating of gap junctions. Nature, 365, 847-849.
201. Tan L.W., Bianco T. and Dobrovic A. (2002). Variable promoter CpG island methylation of the putative tumor suppressor gene connexin 26 in breast cancer. Carcinogenesis, 23,231-236.
202. Tatematsu M., Tsuda H., Shirai T., Masui T. and Ito N. (1987). Placental glutatione S-transferase (GST-p) as a new marker for hepatocarcinogenesis: in vivo short-term screening for hepatocarcinogens. Toxicol. Pathol., 15, 6068.
203. Temme A., Buchmann A., Gabriel H.D., Nelles E., Schwarz M. and Willecke K. (1997). High incidence of spontaneous and chemically induced liver tumors in mice deficient for connexin32. Curr. Biol., 7, 713-716.
204. Trosko JE. (2003). The role of stem cells and gap junctional intercellular communication in carcinogenesis. J Biochem Mol Biol. 36, 43-48.
205. Trosko JE, Chang CC, Upham BL and Tai MH. (2004). Ignored hallmarks of carcinogenesis: stem cells and cell-cell communication. Ann. NY Acad Sci., 1028, 192-201.
206. Trosko JE and Ruch RJ. (1998). Cell-cell communication in carcinogenesis. Front. Biosci., 15, d208-236.
207. Trosko JE and Ruch RJ. (2003). Gap junctions as targets for chemoprevention and chemotherapy. Curr. Drug Targets, 3, 465-482.
208. Torok K., Strauffer K. and Evans W.H. (1997). Connexin32 of gap junctions contain two cytoplasmic calmodulin-binding domains. Biochem. J. 326, 479483.
209. Toyofuku T., Yabuki M., Otsu K., Kuzuya T., Hori M. and Tada M. (1998). Direct association of the gap junction protein connexin43 with ZO-1 in cardiac myocytes. J. Biol. Chem., 172, 12725-12731.
210. Verselis V.K., Ginter C.S. and Bargiello T.A. (1994). Opposite voltage gating polarities of two closely related connexins. Nature, 368, 348-351.
211. Vogelstein B. and Kinzler K.W. (2004). Cancer genes and the pathways they control. Nat. Med., 10, 789-799.
212. Wargovich M.J. and Cunningham J.E. (2003). Diet, individual responsiveness and cancer prevention. J Nutr., 133, 2400S-2403S.
213. Wei Ch-J, Xu X, and Lo C. (2004). Connexins and cell signaling in development and disease. Annu. Rev. Cell Dev. Biol., 20, 811-838.
214. White T.W., Deans M.R., Kelsell D.P. and Paul D. (1998). Connexin mutations in deafness. Nature, 394, 630-631.
215. White T.W., Goodenough D.A. and Paul D.L. (1998). Targeted ablation of connexin50 in mice results in microphthalmia and zonular pulverulent cataracts. J. Cell Biol., 143, 815-825.
216. White T.W., Deans M.R., Kelsell D.P. and Paul D.L. (1998). Connexin mutations in deafness. Nature, 394, 630-631.
217. White T.W., Paul D.L., Goodenough D.A. and Bruzzone R. (1995). Functional analysis of selective interactions among rodent connexins. Mol. Biol. Cell, 4,459-470.
218. Willecke K,. Hennemann H., Dahl E., Jungbluth S. and Heynkes R. (1991). The diversity of connexin genes encoding gap junction proteins. Eur. J. Cell Biol., 56, 1-7.
219. Willecke K., Eiberger J., Degen J., Eckardt D., Romualdi A., Guldenagel M., Deutsch U. and Sohl G. (2002). Structural and functional diversity of connexin genes in the mouse and human genome. Biol. Chem., 383, 725-737.
220. Willecke K., Heynkes R., Dahl E., Stutenkemper R., Hennemann H., Jungbluth S., Suchyna T. and Nicholson B.J. (1991). Mouse connexin37: cloning and functional expression of a gap junction gene highly expressed in lung. J. Cell Biol., 114, 1049-1057.
221. Winokur T.S. and Leiberman M.W. (1990). Immunofluorescent analysis of gamma-glutamyl transpeptidase and glutation-S-transferase-P during the initial phase of experimetal hepatocarcinogenesis. Carcinogenesis, 11, 365369.
222. Wolszon L.R., Rehder V., Kater S.B. and Macagno E.R. (1994). Calcium wavee that cross gap junctions may signal neuronal death during development. J. Neurosci., 14, 3437-3448.
223. Yamasaki H. (1990). Gap junctional intercellular communication and carcinogenesis. Carcinogenesis, 7, 1051-1058.
224. Yamasaki H., Mesnil M., Omori Y., Mironov N. and Krutovskikh V. (1995). Intercellular communication and carcinogenesis. Mutat. Res., 333, 181-188.
225. Yamasaki H. and Naus C.C.G. (1996). Role of connexin in growth control. Carcinogenesis, 17,1199-1213.
226. Yeh H.I., Chou Y., Liu H.F., Chamg S.C. and Tsai C.H. (2001). Connexin37 gene polimorphism and coronary arterydisease in Taiwan. Int J Cardiol., 81, 251-255
227. You S., Tu Z.J. and Kiang D.T. (1998). Direct modulation of tumor suppressor connexin 26 gene by human chorionic gonadotropin in rat mammary glands. Cancer Res., 58, 1498-1502.
228. Zhang Y.W., Morita I., Ukeda M., Ma K.W. and Murota S. (2001). Connexin43 suppress proliferation of osteosarcoma U20S cells through post-transcriptional regulation of p27. Oncogene, 20, 4138-4149.
229. Zhou X.W., Pfahnl A., Werner R., Hudder A., Llanes A., Lubeke A. and Dahl G. (1997). Identification of a pore lining segment in gap junction hemichannels. Biophys. J., 72, 1946-1953.
230. Zhu D., Caveney S., Kidder G.M., Naus C.C.G. (1991). Transfection of C6 glioma cells with connexin43 cDNA: analysis of expression, intercellular coupling, and cell proliferation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88, 1883-1887.