Автореферат и диссертация по медицине (14.01.09) на тему:Патогенетическое обоснование и терапевтическая коррекция нестабильности клеточного генома при ангине как стрептококковой инфекции (клинико-экспериментальное исследование)

ДИССЕРТАЦИЯ
Патогенетическое обоснование и терапевтическая коррекция нестабильности клеточного генома при ангине как стрептококковой инфекции (клинико-экспериментальное исследование) - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Патогенетическое обоснование и терапевтическая коррекция нестабильности клеточного генома при ангине как стрептококковой инфекции (клинико-экспериментальное исследование) - тема автореферата по медицине
Кравченко, Ирина Эдуардовна Москва 2011 г.
Ученая степень
доктора медицинских наук
ВАК РФ
14.01.09
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Патогенетическое обоснование и терапевтическая коррекция нестабильности клеточного генома при ангине как стрептококковой инфекции (клинико-экспериментальное исследование)

На правах рукописи

КРАВЧЕНКО ИРИНА ЭДУАРДОВНА

ПАТОГЕНЕТИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ И ТЕРАПЕВТИЧЕСКАЯ КОРРЕКЦИЯ НЕСТАБИЛЬНОСТИ КЛЕТОЧНОГО ГЕНОМА ПРИ АНГИНЕ КАК СТРЕПТОКОККОВОЙ ИНФЕКЦИИ (КЛИНИКО-ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ)

¡4.01.09 — инфекционные болезни

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук

1 5 СЕН 2011

Москва 2011

4852979

Работа выполнена в Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Казанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации

Научные консультанты:

доктор медицинских наук, профессор

член - корреспондент РАМН, доктор медицинских наук, профессор

Фазылов Вильдан Хайруллаевич Бри ко Николай Иванович

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор

доктор медицинских наук, профессор

доктор медицинских наук, профессор

Шабалина Светлана Васильевна Беляева Наталья Михайловна Еровиченков Александр Анатольевич

Ведущая организация - ГОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации.

Защита диссертации состоится «_»_2011 г. в_часов на

заседании диссертационного Совета Д 208.114.01 ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора по адресу: 111123, г. Москва, ул. Новогиреевская, д. За.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФБУН «ЦНИИ эпидемиологии» Роспотребнадзора.

Автореферат разослан « »_2011 года.

Ученый секретарь диссертационного совета, доктор медицинских наук,

профессор Горелов Александр Васильевич

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность исследования

Заболевания, вызванные стрептококком группы А, широко распространены во всем мире, а ангина среди стрептококкозов по частоте регистрации занимает первое место [Брико н.И. и соавт., 2006]. По данным ВОЗ около 616 млн. случаев стрептококковых тонзиллофарингитов ежегодно диагностируется среди всего населения планеты [Carapetis J., 2005]. В России более 10 млн. детей и лиц юношеского возраста переносят респираторную стрептококковую инфекцию [Покровский В.И. и соавт., 2006]. Исследования, проводимые в различных странах, указывают на рост заболеваемости населения стрептококковыми инфекциями и появление тяжелых форм заболевания, обусловленных изменчивостью возбудителя [Kaplan E.L., 1989; Dajani A.S., 1992; Bisno, 1995; Фа-зылов В.Х., 1996; Еровиченков A.A., 2003; Factor S.H., 2005; Shulman S.T., 2008]. Стрептококковые инфекции остаются одной из важных причин нетрудоспособности населения, что позволило ВОЗ рассматривать их в ряду актуальных медицинских и социально-экономических проблем современного здравоохранения [WHO, 2005].

Формирование рецидивирующего течения стрептококковой ангины и частое развитие осложнений, несмотря на проводимую этиотропную терапию, позволяет предполагать наличие еще неизученных патогенетических механизмов в инфекционном процессе при данном заболевании.

Ведущим возбудителем ангины является Streptococcus pyogenes, оказывающий на организм разностороннее действие в связи с наличием множества факторов патогенности. Среди последних наиболее значимы экзотоксины (суперантигены), влияющие на тропные органы на рецепторном уровне, изменяя их функцию и обуславливая особенности клинического течения заболевания [Norgren M., Holm S., 1992; Mollick A. et al., 1993; Norrby-Teglund A., 1996; Cunningham M.D., 2000; Покровский В.И., 2006].

В научной литературе имеются сообщения, свидетельствующие о возможности инфекционных агентов, в том числе и S. pyogenes, вызывать поражения ядерных структур клеток [Manna G.K., 1975; Thelestam M, 1979; Rosin M.P. et al., 1994; Калинин Л.В., 1995; Чернова O.A., 1996; Hara-Kudo Y., 2001; Xiong M., 2001; Chen T.R., 2001; Ильинских H.H., 2005]. При этом формируется феномен нестабильности клеточного генома (НГ), который индуцируется многими экзо- и эндогенными факторами. Предполагается, что в формировании нестабильности генома участвуют несколько механизмов, три из которых наиболее значимы: во-первых, повышение интенсивности процессов мутагенеза в клетках организма; во-вторых — снижение эффективной работы геномпротек-торных систем; в третьих - накопление в периферической крови клеток с повреждениями в генетическом аппарате [Акифьев А.П., 1993; Семенов В.В., 1995,2007; Крыжановский Г.Н., 2001; Weitzman M.D., 2010].

При развитии инфекционного процесса в организме повышение интенсивности мутагенных процессов может быть вызвано действием самого возбудителя заболевания и его токсинов, активацией процессов перекисного окисле-

ния липидов, лекарственными препаратами, используемыми в лечении [Бе-киш В.Я., 2004; Mosovska S., 2010].

Формирование нестабильности клеточного генома при патологии может быть обусловлено снижением функциональной активности антиоксидантной системы, как геномпротекторной системы клетки [Порошенко Г.Г., 1995; Зенков Н.К., 2001; Ильинских H.H. и др., 2005; Будников Г.К., 2005]. Иммунная система, осуществляющая контроль генетического постоянства организма, при дисфункции ее факторов, способствует увеличению числа клеток с цитогенеггическими нарушениями [Burnet F.M., 1971; Кауфман P.C., 1989; Михайленко A.A., 2004; Notkins A.L., 2007; Зарецкая Ю.В., 2002]. Состояние генетически детерминированных ферментных систем биотрансформации, метаболизирующих лекарственные препараты, применяемые в лечении, определяет различную устойчивость к заболеваниям и эффективность проводимой терапии [Холодов J1.E. и др., 1985; Nelson D.R. et al„ 1993; Nebert D.W., 2001; Гармонов С.Ю., 2004; Кукес В.Г., 2008]. Отсюда понимание патогенеза ангины стрептококковой этиологии с позиции генетической концепции приобретает особое значение.

Актуальность поиска рациональных средств патогенетического лечения, направленных на «фармакологическую защиту генома» [Дурнев А.Д., 1998, 2010; Середенин С.Б., 2004] у пациентов со стрептококковой ангиной на фоне традиционной антибиотикотерапии позволили нам включить в исследование отечественный лекарственный препарат пиримидинового ряда «ксимедон» (гидроксиэтилдиметилдигидропиримидин). В серии экспериментальных и клинических исследований доказано его антиоксидантное, мембраностабилизи-рующее, иммуномодулирующее и антимутагенное действие [Слабнов Ю.Д., 1997; Цибулькин А.П., 1998; Черепнев Г.В., 2000; Валеева И.Х., 2004], что обусловило использование препарата в клинике инфекционных болезней [Гилмул-линаФ.С., 1997; Фазульзянова А.И., 1999; Мустафин И.Г., 1999].

На основании вышеизложенного и, исходя из актуальности нерешенных клинико-патогенетических и лечебно-диагностических проблем стрептококковых инфекций, в том числе ангины, нами были сформулированы цели и задачи данного исследования.

Цель исследования - обосновать клинико-патогенетические механизмы дестабилизации клеточного генома при стрептококковой ангине и разработать способ их терапевтической коррекции с учетом биотрансформации лекарственных средств.

Задачи исследования:

1. Выявить особенности клинического течения ангины, обусловленной S. pyogenes, на современном этапе.

2. Изучить состояние клеточного генома у больных стрептококковой ангиной и обосновать конкретные механизмы, провоцирующие появление хромосомной изменчивости.

3. Установить роль процессов перекисного окисления липидов и антиок-сидантного потенциала организма в реализации повреждения клеточного генома при различных формах ангины в динамике заболевания.

4. Оценить состояние иммунной системы и специфического иммунного ответа у больных ангиной стрептококковой этиологии и выявить взаимосвязь с цитогенетическими показателями.

5. Изучить состояние систем биотрансформации ксенобиотиков у больных стрептококковой ангиной на основании определения фенотипов ацетили-рования и микросомального окисления.

6. В эксперименте определить мутагенную и токсигенную активность штаммов Streptococcus pyogenes, выделенных от наблюдаемых пациентов с ангиной, и на клеточно-ферментативных моделях установить оксидантную активность лекарственных препаратов, используемых в этиопатогенетической терапии стрептококковой ангины.

7. Провести корреляционный анализ взаимосвязей цитогенетических нарушений, оксидантно-антиоксидантного потенциала, иммунного статуса, систем биотрансформации и систематизировать факторы риска рецидивирующего течения ангины.

8. Оценить влияние ксимедона на клиническое течение ангины, интенсивность мутагенеза, оксидантно-антиоксидантный потенциал, иммунный статус и системы биотрансформации в динамике заболевания и разработать показания к его применению в комплексной терапии больных ангиной.

Научная новизна и теоретическая значимость работы

Установлено новое патогенетическое звено ангины стрептококковой этиологии, обусловленное повреждением генетического аппарата соматических клеток с учетом воздействия экзо- и эндомутагенов, антимутагенных систем, которое раскрывает ранее неизвестные механизмы взаимосвязи возбудителя и макроорганизма.

Определена роль оксидантно-антиоксидантного потенциала и иммунной системы в дестабилизации клеточного генома у больных стрептококковой ангиной.

Впервые изучено состояние метаболических ферментных систем биотрансформации ксенобиотиков, установлена их взаимосвязь с уровнем цитогенетических нарушений и выявлен риск развития тяжелого, рецидивирующего течения ангины у лиц с медленным фенотипом ацетилирования.

Впервые в экспериментальных условиях доказано наличие у штаммов S. pyogenes, выделенных от больных ангиной, мутагенных свойств и идентифицирована их токсигенная активность.

На основании комплексной оценки цитогенетических, иммунологических показателей и оксидантно-антиоксидантного потенциала выявлены факторы риска рецидивирующего и тяжелого течения заболевания с угрозой хрониза-ции.

Дано клинико-патогенетическое обоснование влияния ксимедона на механизмы нестабильности клеточного генома через его корригирующее действие на активность оксидантно-антиоксидантной, иммунной систем, а также систем биотрансформации - ацетилирования и микросомального окисления при стрептококковой ангине.

Практическая значимость работы

1. Для прогнозирования исходов заболевания и оценки эффективности проводимой терапии у больных различными формами стрептококковой ангины разработан и апробирован скрининговый комплекс лабораторных тестов, отражающих состояние генома соматических клеток и метаболических факторов, влияющих на этот процесс.

2. Для индивидуальной коррекции лечения больных стрептококковой ангиной рекомендовано определение фенотипов ацетилирования и окисления. Высокий риск рецидивирующего и тяжелого течения ангины для лиц с медленными фенотипами ацетилирования и окисления позволит определять прогноз заболевания и тактику лечения в каждом конкретном случае.

3. Для коррекции цитогенетических нарушений, дисбаланса в оксидант-но-антиоксидантной, иммунной системах и индукции процессов ацетилирования и окисления предложен эффективный метод патогенетической терапии больных тяжелым и рецидивирующим течением стрептококковой ангины отечественным лекарственным средством ксимедон, который способствует ускорению процесса выздоровления и сокращению рецидивов болезни.

Положения, выносимые на защиту

1. При стрептококковой ангине формируется ранее неизвестный тип патологического процесса - нестабильность клеточного генома, определяющий тяжесть заболевания и прогноз его рецидивирования при участии ряда мутагенов и антимутагенных агентов.

2. Оксидативный стресс является неспецифическим звеном патогенеза стрептококковой ангины, в условиях которого значительно возрастает действие продуктов перекисного окисления липидов на геном организма в целом.

3. Иммунопатогенез стрептококковой ангины определяется изменением количественного состава иммунокомпетентных клеток и их функционального состояния. Этот процесс сопровождается развитием генетических нарушений в соматических клетках: увеличением содержания в периферической крови эритроцитов с микроядрами и лимфоцитов с аберрациями хромосом.

4. Системы биотрансформации (ацетилирования и микросомального окисления) у больных стрептококковой ангиной определяют скорость метаболизма лекарственных средств в организме, влияя на процессы мутагенеза, формирование цитогенетических нарушений и обуславливают особенности течения заболевания.

5. Возбудитель заболевания Streptococcus pyogenes способствует формированию феномена нестабильности генома соматических клеток у больных ангиной, обладая токсигенной активностью и проявляя мутагенный эффект.

6. Комплексное бактериологическое, биохимическое, цитогенетическое и иммунологическое обследование больных стрептококковой ангиной позволяет прогнозировать рецидивирующее течение заболевания, развитие осложнений и дифференцированно назначать антиоксидантную, антимутагенную и иммуно-модулирующую терапию.

Внедрение в практику

Результаты настоящего исследования используются в учебном процессе кафедры инфекционных болезней, кафедры биологии и медицинской генетики КГМУ, кафедры инфекционных болезней Казанской государственной медицинской академии (КГМА) на додипломном и последипломном уровнях подготовки специалистов.

Результаты диссертационной работы внедрены в лечебно-диагностический процесс Республиканской клинической инфекционной больницы г. Казани, Набережночелнинской инфекционной больницы, 11-й городской поликлиники г. Казани, Всероссийского научного центра молекулярной диагностики и лечения Минздрава РФ (г. Москва).

Установлены новые медицинские показания к применению препарата пи-римидинового ряда ксимедон (гидроксиэтилдиметилдигидропмримидин) - рекомендовано его использование в комплексной патогенетической терапии больных стрептококковой ангиной, как препарата обладающего иммунотроп-ным действием (регистрационное удостоверение ЛС-000045, нормативная документация ЛС-000045-050311).

Публикации

По теме диссертации опубликовано 58 научных и 6 учебно-методических работ, из них 15 статей - в журналах, рекомендованных ВАК для докторских диссертаций. Основные положения проведенных исследований вошли в учебное пособие для ординаторов и интернов «Синдром тонзиллита в клинической практике» (2003), в учебное пособие с грифом УМО «Инфекционные болезни» (2007), в методические рекомендации для врачей «Применение ксимедона в клинической практике» (2009), в электронное учебное пособие с грифом УМО «Инфекционные болезни» (2010), в учебно-методическое пособие для слушателей последипломного образования «Синдром тонзиллита в клинической практике» 2-е издание (2010), в учебно-методическое пособие для слушателей последипломного образования «Иммунотропная терапия в клинике внутренних болезней» (2010).

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 373 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, 4 глав собственных исследований, обсуждения, выводов, практических рекомендаций, библиографического списка, включающего 284 отечественных и 173 иностранных источников. Работа иллюстрирована 63 таблицами и 60 рисунками.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Клиническая характеристика больных

Набор материала проводился на клинической базе кафедры инфекционных болезней КГМУ (зав. кафедрой - д-р мед. наук, профессор В.Х. Фазылов) в Республиканской клинической инфекционной больнице (РКИБ) им. проф.

А.Ф. Агафонова г. Казани (гл. врач - В.А. Саматов). Отдельные фрагменты работы выполнены при участии врача-инфекциониста РКИБ, кандидата медицинских наук Р.Г.Зариповой.

Под наблюдением находились 330 больных стрептококковой ангиной (мужчин - 47%, женщин - 53%) в возрасте от 17 до 56 лет (24,17±0,6 лет), из них 82,7% - в возрасте от 17 до 30 лет. Группу контроля составили 140 здоровых лиц. Из исследования исключались больные с тяжелой сопутствующей патологией (нарушением функции печени, почек, сердца и др.) и хроническими воспалительными заболеваниями в фазе обострения.

Пациенты получали полную информацию о проводимой терапии и давали письменное информированное согласие на включение их в исследование. Протокол клинического обследования одобрен Республиканским Комитетом по Этическим вопросам при МЗ Республики Татарстан (протокол № 9 от 26.12.2006 г.).

Диагностику стрептококковой ангины осуществляли на основании 3 ведущих клинических синдромов: интоксикации, тонзиллита и регионарного лимфаденита. При бактериологическом исследовании мазков со слизистой оболочки миндалин у 84,2% больных был выделен S. pyogenes. У 80 (24,2%) больных этиологический диагноз был также подтвержден определением антител к А-полисахариду (А-ПСХ) S. pyogenes.

По кратности заболевания выделяли (согласно классификациям Ляшенко Ю.И., 1985; Солдатова И.Б., 1994) группы пациентов с первичной 166 (50,3%) и повторной ангиной - 164 (49,7%) человек. Из группы больных повторной ангиной были выделены пациенты с часто рецидивирующей ангиной (ЧРА) при возникновении рецидивов заболевания более 3 раз в год-56 (17%) человек.

Лакунарная ангина диагностирована у 279 (84,5%) пациентов, фибриноз-но-некротическая - у 51 (15,5%). У 265 (80,3%) больных наблюдалась двухсторонняя локализация процесса, а поражение одной миндалины имело место у 19,7% больных.

По анамнестическим данным зарегистрированы сопутствующие заболевания вне фазы обострения у 53 (15,9%) пациентов: хронический гастрит - у 14 (4,2%), хронический пиелонефрит - у 15 (4,5%), хронический бронхит - у 14 (4,2%) и другие заболевания - у 10 (3%) больных.

У больных первичной и повторной формами ангины достоверно чаще преобладало среднетяжелое течение заболевания (в 77,1 и 78,8% случаев соответственно, р<0,05), при рецидивирующей форме у 24 (42,9%) больных заболевание имело тяжелое течение. У 98,2% (55 больных) рецидивирующей ангиной наблюдалось изменение ткани миндалин с формированием признаков, характерных для хронического процесса. Лакунарная ангина у 229 (82,1%) пациентов имела среднетяжелое течение, фибринозно-некротическая ангина у 35 (68,6%) больных - тяжелое течение (р<0,01; критерий х2).

Установлено, что длительность ведущих клинических синдромов заболевания (интоксикационного, тонзиллярного, регионарного лимфаденита) была больше при рецидивирующей ангине по сравнению с первичными и повторными формами (р<0,01), при фибринозно-некротической ангине по сравнению с

лакунарной (р<0,05), а также при тяжелом течении заболевания по сравнению со среднетяжелым (р<0,001) (табл. 1).

Таблица I

Длительность ведущих клинических синдромов

у пациентов стрептококковой ангиной _

Критерии распределения Синдром интоксикации Тоизиллярный синдром Регионарный лимфаденит

По кратности

Первичная ангина 6,06±0,17 7,81±0,15 6,39±0,19

Повторная ангина 5,82±0,21 7,85±0,21 6,56±0,2

ЧРА 7,26±0,41 9,55±0,45 7,7±0,32

Р (перв/ЧРА) <0,01 <0,01 <0,001

Р (повт/ЧРА) <0,01 <0,01 <0,01

По местному процессу

Лакунарная ангина 6,04±0,14 8,1±0,18 6,6±0,16

Фибринозно-некротическая ангина 7,03±0,33 8,93±0,28 7,1 ±0,3 7

Р (лакун/фибр-некр) <0,01 <0,05 >0,05

По тяжести

Среднетяжелое течение 5,89±0,15 7,8±0,17 6,35±0,15

Тяжелое течение 7,29±0,31 9,27±0,37 7,84±0,24

Р (сртя ж/тяж) <0,001 <0,01 <0,001

По полу

Мужчины 6,19±0,16 8,23±0,19 6,8±0,14

Женщины 5,73±0,14 7,74±0,12 6,12±0,18

Р (муж/жен) <0,05 <0,05 <0,01

Примечание: Р - значения достоверности различий сравниваемых показателей в группах.

Выявлены некоторые различия в клинической картине заболевания в зависимости от пола, которые показывают, что ангина протекала тяжелее у мужчин, чем у женщин и проявлялась большей продолжительностью ведущих клинических синдромов: интоксикационного (соответственно 6,1&£0,16 дня и 5,73±0,14 дня, р<0,05), тонзиллярного (соответственно 8,23±0,19 дня и 7,74±0,12 дня, р<0,05) и регионарного лимфаденита (соответственно 6,8±0,14 дня и 6,12±0,18 дня, р<0,01). Частые рецидивы ангин в анамнезе имели место у 34 (22%) мужчин, что в 1,8 раз выше, чем у женщин - у 22 (12,6%).

Методы исследования

Исследования проводились в острый период заболевания (2-4-й дни болезни) - при поступлении больного в стационар, в периоде ранней реконвалес-ценции (7-10-й дни болезни) - при выписке и в периоде поздней реконвалес-ценции (через 1 и 3 месяца после выписки из стационара).

1. Цитогенетические исследования проведены на кафедре биологии и мед. генетики КГМУ (зав. - проф. В.В. Семенов). Использовали метод регистрации эритроцитов с микроядрами (ЭМ) и метод учета лимфоцитов с аберрациями хромосом (АХ) в периферической крови человека.

Регистрацию ЭМ осуществляли согласно рекомендациям по «Оценке мутагенной активности факторов окружающей среды в клетках разных органов млекопитающих микроядерным методом» [2001].

Регистрацию лимфоцитов с АХ осуществляли по протоколу методики Бочкова Н.П. [1989].

2. Определение продуктов перекисного окисления липидов (ПОЛ) выполнено в биохимической лаборатории ЦНИЛ КГМУ (вед. н.с., д-р биол. наук -И.Х. Валеева): определяли гидроперекиси липидов (ГП) и малоновый диальде-гид (МДА) в сыворотке крови по методу Гаврилова В.Б. согласно руководству по «Биохимическим методам исследования общих механизмов повреждения и воздействия ксенобиотиков» [1998].

3. Исследование состояния антиоксидантной системы проведено на кафедре аналитической химии Казанского государственного университета (д-р хим. наук, проф. Г.К. Будников) по оценке антиоксидантной ёмкости (АОЕ) плазмы крови кулонометрическим методом с использованием электрогенери-рованного брома [Погорельцев В.И., 2004].

Определение церулоплазмина (ЦП) в сыворотке крови проводили по методу Тена Э.В. согласно руководству по «Биохимическим методам исследования общих механизмов повреждения и воздействия ксенобиотиков» [1998].

4. Исследование факторов клеточного звена иммунитета и опсонофагоци-тарной системы выполнено в иммунологической лаборатории РПЦБ СПИД и ИЗ МЗ РТ (зав. - д-р мед. наук, проф. И.Г. Мустафин), в том числе определение популяций и субпопуляций лимфоцитов в непрямой реакции иммунофлюорес-ценции с моноклонапьными антителами серии ИКО МП «Диагнотех» (г. Москва) на проточном цитофлуориметре «FACScan» («Becton Dickinson», USA). Сывороточные иммуноглобулины классов А, М, G (IgA, IgG, IgM) определяли методом турбодиметрии на биохимическом анализаторе ФП - 900 по методике Лукичевой Т.М. [1991] и Кудряшевой Н.М. [1993], циркулирующие иммунные комплексы (ЦИК) - методом преципитации полиэтиленгликолем 6000 по Digeon М. et al. [1977], а общекомплементарную активность сыворотки - по 50% гемолизу эритроцитов барана по Mayer М., Kabat Е. [1961]. Фагоцитарную активность нейтрофилов (ФАН) оценивали по способности клеток захватывать St. aureus (процент нейтрофилов, фагоцитировавших стафилококк), определяли также фагоцитарное число (ФЧ) (среднее число St. aureus, захваченных одной клеткой), абсолютный фагоцитарный показатель (АФП) (общее количество частиц St. aureus, фагоцитированных нейтрофилами). Метаболическую активность нейтрофилов исследовали в тесте с нитросиним тетразолием (HCT - тесте) в спонтанном и индуцированном вариантах в модификации Виксмана М.Е. и Маянского А.Н. [1979].

5. Определение уровня антител к А-полисахариду (А-ПСХ) Streptococcus pyogenes проводили в лаборатории стрептококковых инфекций Первого МГМУ им. И.М. Сеченова (зав. - чл.-корр. РАМН, проф. Н.И. Брико) с помощью им-муноферментной тест-системы [Клейменов Д.А., 2009].

6. Исследование состояния метаболических ферментных систем ацетили-рования и микросомального окисления выполнено на кафедре аналитической

химии Казанского государственного технологического университета (д-р хим. наук, проф. С.Ю. Гармонов).

Фенотип ацетилирования (ФА) исследовали путем определения тест-маркера процесса ацетилирования изониазида (гидразида изоникотиновой кислоты - ГИНК) в моче спектрофотометрическим методом [Гармонов С.Ю., 2004].

Фенотип окисления (ФО) исследовали путем определения тест-маркера процесса окисления антипирина в слюне спектрофотометрическим методом [Аширметов А.Х., 1990].

7. Определение токсигенности культур Streptococcus pyogenes, выделенных от наблюдаемых больных ангинами, проводили в лаборатории стрептококковых инфекций Первого МГМУ им. И.М. Сеченова (зав. - чл.-корр. РАМН, проф. Н.И. Брико) методом ПЦР - амплификации специфических фрагментов генов spe А, spe В, spe С, spe F.

8. Определение мутагенной активности Streptococcus pyogenes выполняли в ЦНИЛ КГМУ под руководством зав. каф. биологии и мед. генетики КГМУ, д-ра мед. наук, проф. В.В. Семенова в модельных системах на белых мышах и растениях Crepis capillaris.

Использовались цитогенетические методы регистрации перестроек хромосом в клетках меристемы семян высшего растения Crepis capillaries (скерда) [Руководство ВОЗ, 1989] и анализ микроядер в нормохромных эритроцитах периферической крови мышей согласно рекомендациям по «Оценке мутагенной активности факторов окружающей среды в клетках разных органов млекопитающих микроядерным методом» [2001].

9. Исследования про- и антиоксидантной активности лекарственных препаратов (пенициллина, цефазолина, ксимедона) были выполнены в ЦНИЛ Российского ГМУ (зав. отделом молекулярной биологии - д-р мед. наук, проф. Л.Г. Коркина) в трех модельных системах, имитирующих физиологические процессы, связанные с: 1) гиперпродукцией гидроксильного радикала, 2) «кислородным взрывом» макрофагов и 3) перекисным окислением липидов.

Статистическую обработку полученных результатов проводили при помощи стандартных программ Microsoft Excel и пакета статистических программ SPSS (Windows 13.0) с использованием критерия Колмагорова-Смирнова - для проверки формы распределения, критерия Сгьюдента - для парных сравнений, критерия Манна-Уитни - для сравнения двух малых выборок, критерия Нью-мена-Кейлса - для множественных сравнений. Для оценки значимости различий качественных признаков в группах использовали критерий хи-квад-рат. Для оценки значимости корреляционной связи между признаками использовался параметрический коэффициент Пирсона и непараметрический коэффициент ранговой корреляции Спирмена [Гланц С., 1998]. Все нижеследующие положения и выводы базируются на данных статистического анализа, подтвержденных с надежностью р<0,05.

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ Цитогенетический статус больных стрептококковой ангиной в острый период характеризовался увеличением числа эритроцитов с микроядрами по сравнению с показателями здоровых лиц в среднем в 1,5 раза (р<0,001) независимо от формы заболевания (табл. 2).

Таблица 2

Динамика уровня эритроцитов с микроядрами (ЭМ%) у больных различными формами ангины

Клинические формы ангины Острый период (2-4 д.б.) Период ранней реконв. (7-10 д.б.) Период поздней реконв. Р

через 1 м-ц через 3 м-ца

1 2 3 4

Первичная (п=77) *»* 0,16±0,01 **• 0,19±0,01 0,12±0,01 0,11±0,01 (1-2)>0,05 (2-3)<0,001 (1-4)0,001

Повторная (п=81) ** 0,17±0,02 »♦» 0,23±0,01 * 0,15±0,02 0Д0±0,01 (1-2)0,05 (2-3)0,01 (1-4)<0,01

Рецидивир (п=12) ** 0,18±0,02 **# 0,29±0,02 * 0,1б±0,02 0,08±0,03 (1-2)0,05 (2-3) 0,01 (1-4)0,05

Р (перв/повт) >0,05 >0,05 >0,05 >0,05

Р (перв./ЧРА) >0,05 <0,05 >0,05 >0,05

Р (повт/ЧРА) >0,05 <0,05 >0,05 >0,05

Лакунарная (п=139) 0,17±0,01 *** 0,20±0,01 0,12±0,01 0,11±0,01 (1-2)0,05 (2-3)0,001 (1-4)0,001

Фибринозно-некротическая (п=31) *** 0,17±0,01 »** 0,23±0,02 *« 0,16±0,01 0,09±0,02 (1-2)0,05 (2-3)0,01 (1-4)<0,01

Р (лакун./фиб-некр) >0,05 >0,05 <0,01 >0,05

Примечание: число эритроцитов с микроядрами у здоровых лиц (п =40) -0,11±0,01%; *-р<0,05; **-р<0,01; ***-р<0,001 - значения достоверности по сравнению с показателями здоровых лиц.

В период ранней реконвалесценции прослеживается нарастание числа ЭМ с увеличением кратности заболевания: при первичной ангине - на 18,8% от исходного уровня в острый период (0,19±0,01%; р<0,001), при повторной - на 35,3% (0,23±0,01%; р<0,001) и при рецидивирующей ангине - на 55,6%, (0,29±0,01%; р<0,001). Снижение числа ЭМ до уровня здоровых лиц у больных первичной ангиной происходило через 1 месяц, повторной и рецидивирующей формах только через 3 месяца диспансерного наблюдения (ДН).

Характер местного процесса также отразился на цитогенетических показателях. В острый период ангины зарегистрирован одинаковый уровень ЭМ (0,17±0,01%; р<0,001) как при лакунарной, так и при фибринозно-некротической ангине, в 1,5 раза превышающий данный показатель у здоровых

лиц. В период ранней и поздней реконвалесценции отмечались более выраженные цитогенетические изменения при фибринозно-некротической ангине (соответственно 0,23±0,02%; р<0,001 и 0,16±0,01%; р<0,01) по сравнению с лакунар-ной ангиной (соответственно 0,20±0,01%; р<0,001 и 0,12±0,01%; р>0,05). При фибринозно-некротической ангине уровень ЭМ снизился до значений контрольной группы только через 3 месяца.

Распределение больных стрептококковой ангиной в зависимости от пола показало равномерное повышение уровня ЭМ в острый период заболевания в группах мужчин и женщин (0,16±0,01%; р<0,01). К периоду ранней реконвалесценции данный показатель снизился в группе женщин на 17,6% (0,13±0,01%; р<0,05) и повысился в группе мужчин на 6% (0,17±0,01%; р<0,001), что привело к появлению достоверных различий между группами (р<0,01). Через 1 месяц от начала заболевания наблюдалось дальнейшее снижение количества ЭМ до уровня здоровых лиц в группе женщин, а в группе мужчин нормализация уровня ЭМ произошла только через 3 месяца (0,11 ±0,01%; р>0,05).

Для уточнения полученных результатов нами применен еще один цитоге-нетический метод — подсчет числа лимфоцитов с АХ в периферической крови. У здоровых лиц (п=40) спонтанный уровень АХ составил 2,00±0,57%. У больных ангиной (п=35) в острый период заболевания нами зарегистрировано достоверное повышение количества лимфоцитов с АХ, которое в 2,6 раз (5,22±0,63%; р<0,001) превышало уровень спонтанных аберраций в контрольной группе здоровых лиц. На 7-10 дни от начала лечения наблюдалось дальнейшее увеличение количества лимфоцитов с АХ (6,П±0,53%; р<0,05) и незначительное снижение через 1 месяц от начала заболевания, однако их уровень оставался достоверно выше, чем в контрольной группе (5,11±0,57%; р<0,01).

Таким образом, результаты, полученные с использованием двух цитоге-нетических методов, косвенно свидетельствуют о формировании нестабильности генетического аппарата соматических клеток (эритроцитов и лимфоцитов периферической крови) у больных ангиной в острый период заболевания, сохранении цитогенетических нарушений в периоде ранней реконвалесценции и купировании их только через 1-3 месяца ДН. Анеугенные эффекты достоверно выше у пациентов с часто рецидивирующим течением и фибринозно-некротической формой ангины, а также у лиц мужского пола. Полученные данные согласуются с результатами ряда исследований [Makino S., 1965; Малышев К.В., 2000; Ильинских Н.И., 2005; Tatar А, 2005; Гайнетдинова Д.Д., 2006], в которых также была установлена связь цитогенетических нарушений с тяжестью заболевания. По данным Pickering [1968] и Liew [1973] у большинства женщин мутагенная чувствительность ниже, чем у мужчин. Установленные нами различия в клиническом течении ангины между мужчинами и женщинами с констатацией более тяжелого течения в группе мужчин позволяют провести параллель с более выраженными цитогенетическими нарушениями в группе мужчин, что является одним из факторов, подтверждающих связь наследственно-конституциональных особенностей с развитием заболевания.

Следующим этапом наших исследований явилось выявление факторов мутагенеза, способствующих появлению хромосомной изменчивости в клетках периферической крови. Наиболее тесно, на наш взгляд, процесс генерации мутагенов связан с состоянием оксидантно-антиоксидантной системы. При бактериальных инфекциях, в результате нарушения механизмов свободнорадикального окисления, происходит избыточное накопление свободных радикалов, вызывающих нарушение проницаемости, структуры и функции биомембран, повреждение липидов, белков, нуклеиновых кислот, изменение биоэнергетики регуля-торных и защитных функций иммунитета [Владимиров Ю.А., 1991; Romero F.J., 1998; Зенков Н.К., 2001; Ахмедов Д.Р., 2004; Evans M.D., 2007; Павелкина В.Ф., 2010]. Антиоксидантные системы (АОС) ограничивают развитие радикальных окислительных процессов, удерживая про - и антиоксидантное равновесие в пределах нормальной реакции и являются наиважнейшей системой защиты генома [Waters M.D., 1990; Алекперов У.К., 1992; Серединин С.Б., 2004].

Результаты исследования оксидантно-антиоксидантного потенциала в острый период в зависимости от кратности заболевания показали наличие различий в динамике маркеров первичного и вторичного звена липопероксидации. У больных первичной ангиной в остром периоде более активно протекали процессы ПОЛ, чем у больных повторной ангиной, что выражалось в повышении концентрации ГП при первичной ангине в 3,8 раза (26,25±0,49 отн.ед.мл; р<0,001), при повторной - в 3,3 раза (23,15±0,31 отн.ед.мл; р<0,001) относительно показателя здоровых лиц (7,00±0,27 отн.ед.мл). Отмечено повышение концентрации МДА, как маркера вторичного звена липопероксидации, в 3,9 раза (7,93±0,49 мкмоль/л; р<0,001) при первичной и в 3,2 раза (6,35±0,35 мкмоль/л; р<0,001) при повторной ангине по сравнению с уровнем здоровых лиц (2,00±0,14,мкмоль/л). В периоде ранней реконвалесценции наблюдалось снижение ГП (22,92±0,55 отн.ед.мл; р<0,001) и нарастание МДА (8,63±0,62 мкмоль/л; р<0,001) у больных первичной ангиной и, наоборот, нарастание ГП (24,39±0,35 отн.ед.мл; р<0,001) и снижение МДА (5,79±0,55 мкмоль/л; р<0,001) при повторной ангине. В периоде поздней реконвалесценции (через 1 месяц) регистрировалось постепенное снижение ГП и МДА в обеих группах, однако, уровня здоровых лиц данные показатели достигли только через 3 месяца в группе больных первичной ангиной (7,44±0,37 отн.ед.мл; р>0,05 и 2,68±0,35 мкмоль/л; р>0,05) и оставались достоверно выше нормы при повторной ангине (8,40±0,28 отн.ед.мл; р<0,01 и 3,76±0,26 мкмоль/л; р<0,001). Наши результаты согласуются с данными, полученными Загидулинной А.И. [2005], Нагоевой М.Х. [2010], Павелкиной В.Ф. [2010] при исследовании процессов ПОЛ у больных стрептококковыми инфекциями.

Состояние антиоксидантной системы мы оценивали путем определения церулоплазмина (ЦП) и антиоксидантной емкости (АОБ) плазмы крови.

Концентрация ЦП у больных ангиной в острый период заболевания повышалась на 8,2% (б0,76±1,18 мг/%; р<0,01) при первичной и на 19,1% (66,92±2,13 мг/%; р<0,001) - при повторной форме по сравнению с уровнем здоровых лиц (56,20±1,02 мг/%). В периоде ранней реконвалесценции достоверно высокий уровень ЦП регистрировался в обеих группах (68,62±0,26 мг/%

и 62,85±1,6 мг/% соответственно; р<0,01), а через 3 месяца ДН - только у больных повторной ангиной (59,02±0,49 мг/%; р<0,05).

В острый период заболевания как при первичной, так и повторной формах ангины наблюдалось снижение АОЕ крови в 2,0 раза (соответственно 12,38±0,32 кКл/л и 12,99±0,24 кКл/л; р<0,001) по сравнению с контрольной группой (25,0±0,11 кКл/л). Через 3 месяца ДН происходила нормализация АОЕ при первичной ангине (25,9±0,51 кКл/л; р>0,05) и сохранялись низкие значения при повторной (24,22±0,46 кКл/л; р<0,05).

Результаты исследования оксидантно-антиоксидантного потенциала в зависимости от характера местного процесса показали, что в острый период заболевания процессы липопероксидации активнее протекают в группе больных ла-кунарной ангиной. Так, выявлено повышение содержания ГП в острый период заболевания в 3,7 раза (26,05±0,32 отн.ед.мл; р<0,001) при лакунарной ангине и в 3,4 раза (24,01±0,38 отн.ед.мл; р<0,001) при фибринозно-некротической с достоверной разницей между данными клиническими формами (р<0,001). Через 1 месяц наблюдалось незначительное уменьшение концентрации ГП при обеих клинических формах по сравнению с периодом ранней реконвапесценции. Через 3 месяца содержание ГП в периферической крови снижалось до показателей здоровых лиц при первичной ангине (7,69±0,24 отн.ед.мл; р>0,05) и оставалось выше на 37,3% при ФНА (9,61±0,43 отн.ед.мл; р<0,001).

Об активности оксидазных процессов свидетельствовали также достоверно высокие показатели МДА в острый период при лакунарной (8,03±0,42 мкмоль/л.; р<0,001) и фибринозно-некротической формах ангины (6,18±0,29 мкмоль/л.; р<0,001), которые сохранялись на тех же значениях в период ранней реконвапесценции, соответственно превышая в 4 и 3 раза уровень здоровых лиц (2,00±0,14 мкмоль/л). Через 3 месяца после выписки из стационара содержание МДА в крови снизилось до нормы у больных лакунарной ангиной (2,78±0,36 мкмоль/л; р>0,05) и оставалось на 79% выше уровня здоровых лиц при ФНА (3,59±0,32 мкмоль/л; р<0,001), что указывает на торпидность купирования процессов липопероксидации при тяжелом течении у пациентов фибринозно-некротической ангиной.

Уровень ЦП в остром периоде повышался на 17,8% (66,23±1,05 мг/%; р<0,001) при лакунарной и на 10,6% (62,14±0,86 мг/%; р<0,001) при ФНА. В периоде поздней реконвапесценции уровень ЦП при фибринозно-некротической форме сохранялся повышенным на 5,3% (59,2±0,72 мг/%; р<0,05) по сравнению с показателями здоровых лиц.

Оценка антиоксидантной емкости крови у больных лакунарной и фибринозно-некротической ангиной показала снижение данного показателя в острый период заболевания в 2 раза в обеих группах (соответственно 12,41±0,35 кКл/л; р<0,001 и 11,26±0,28 кКл/л; р<0,001) по сравнению с уровнем здоровых лиц (25,00±0,11 кКл/л). При ФНА данный показатель был достоверно ниже, чем при лакунарной ангине на 9,3% (р<0,05). Через 3 месяца при фибринозно-некротической форме уровень АОЕ плазмы крови оставался достоверно ниже контрольных значений (23,5±0,49 кКл/л; р<0,01), тогда как у реконвалесцентов лакунарной ангины наблюдалась нормализация данного показателя.

Корреляционный анализ цитогенетического статуса и процессов перекис-ного окисления липидов показал наличие прямых корреляционных связей между уровнем эритроцитов с микроядрами и концентрацией ГП и МДА в периферической крови на протяжении всего периода наблюдения (табл. 3).

Таблица 3

Показатели корреляционного анализа цитогенетического (ЭМ) и оксидантно-антиоксидантного статуса (ГП, МДА, ЦП, АОЕ) у больных стрептококковой ангиной

Показатели Острый период (2-4 д.б.) п = 47 Период раиией реконвалесценции (7-10 д.б.) п = 40 Период поздней реконвалесценции

через 1 месяц п = 40 через 3 месяца п = 25

ЭМ/ГП г = 0,08 г = 0,20 г = 0,56* г = 0,01

ЭМ/МДА г = 0,47* г = 0,14; г =0,24 г = 0,14

ЭМ / ЦП г ~ 0,31 г = 0,52* г = 0,44* г = 0,38

ЭМ/АОЕ г = -0,55* г=—0,16 г = -0,36* г = -0,08

Примечание: г - коэффициент линейной корреляции по степеням: слабая - 0±0,29; средняя - 0,3±0,69; сильная - 0,7±1 и значения достоверности коэффициента корреляции: *-р<0,05; **-р<0,01; ***-р<0,001.

В то же время установлена обратная корреляционная связь между уровнем цитогенетических нарушений (ЭМ) и напряженностью антиоксидантной системы (АОЕ).

Так, в острый период заболевания существует прямая достоверная корреляция между показателями ЭМ/МДА (г = 0,47; р<0,05) и прямые корреляционные связи между ЭМ/ГП (г = 0,08), ЭМ/ЦП (г = 0,31). Выявлена обратная средняя корреляционная связь с высокой степенью достоверности между ЭМ/АОЕ (г = - 0,55; р<0,05), что обосновывает увеличение количества клеток с цитоге-нетическими нарушениями на фоне превалирования оксидантных процессов и снижения активности антиоксидантной системы.

В периоде ранней реконвалесценции наблюдалась прямая линейная зависимость между показателями ЭМ/ГП и ЭМ/МДА, прямая средняя корреляция с высокой степенью достоверности между уровнем ЭМ/ЦП (г = 0,52; р<0,05) и обратная корреляция между ЭМ/АОЕ (г = -0,16).

В периоде поздней реконвалесценции (через 1 месяц) прослеживалась прямая линейная связь с высокой степенью достоверности между ЭМ/ГП (г = 0,56; р<0,05) и прямая корреляция между ЭМ/МДА (г = 0,24), объясняющая динамику снижения уровня ЭМ на фоне уменьшения содержания продуктов первичного и конечного звеньев липопероксидации. В данный период заболевания была отмечена средняя обратная достоверная связь между ЭМ/АОЕ (г = — 0,36; р<0,05) и прямая средняя достоверная корреляция между ЭМ/ЦП (г = 0,44; р<0,05), свидетельствующая о взаимообусловленности снижения уровня ЭМ и ЦП, а также снижение количества эритроцитов с микроядрами на фоне повышения значений антиоксидантной емкости плазмы. Это соответствует периоду восстановления числа ЭМ до физиологической нормы при активизации антиок-

сидантной системы организма у реконвалесцентов ангины. Через 3 месяца ДН достоверно значимых корреляционных связей не выявлено, что объясняется купированием патологического процесса и переходом рассматриваемых показателей в состояние динамического равновесия.

Полученные данные позволяют предположить, что нарушение равновесия в оксидантно-антиоксидантной системе организма является одной из причин интенсификации процессов эндомутагенеза. Известно, что ГП взаимодействуют с пиримидиновыми азотистыми основаниями и SH - группами белков и вследствие ошибок в экспозиционной репарации ДНК индуцируют точечные мутации [Аурбах Ш., 1978; Gutterge J.M.C., 1983; Ильинских H.H., 1986; Evans M.D., 2007]. Ранее было также установлено мутагенное действие малонового диальдегида, легко реагирующего с белками и ДНК [Szabad J., 1983; Жур-ков B.C., 1991; Гончарова Р.И., 1993].

Одной из систем, регулирующих генетическое постоянство организма, является иммунная система, посредством которой происходит элиминация из организма цитогенетически аберрантных клеток [Jager L., 1990; Михайлен-ко A.A., 2004; Notkins, A.L., 2007; Huang Y., 2009]. Нами проведено комплексное иммунологическое обследование больных ангиной, включающее феноти-пирование лимфоцитов и исследование опсонофагоцитарной системы (табл. 4).

Результаты исследования показали, что изменения иммунологических показателей зависели от кратности болезни, характера местного процесса и периода заболевания. В острый период ангины наблюдалось достоверное снижение относительного количества СОЗ+лимфоцитов при рецидивирующей (66,91 ±1,79%; р<0,01) и первичной ангине (68,60±1,04%; р<0,01) при тенденции к снижению у больных повторной формой заболевания (70,71±1,28%; р<0,05). Уменьшение числа CD4+ лимфоцитов (р<0,05) на фоне увеличения CD8+ клеток (р<0,05) установлено только при первичной ангине, что может быть связано с чрезмерной активацией пролиферативных процессов и связью рецепторов S. pyogenes с мембранами лимфоцитов [Фазылов В.Х., 1996]. Еровиченковым A.A. [2008] выявлена волнообразность изменений Т-клеточной реактивности в ответ на стимуляцию парциальными специфическими антигенами S. pyogenes -гиалуронидазой, стрептолизином О у больных стрептококовыми инфекциями.

Высокие значения лимфоцитов HLA — DR+ и CD25+ независимо от кратности заболевания свидетельствовали об активации иммунокомпетентных клеток лимфоидного ряда. Наиболее высокий уровень активированных лимфоцитов регистрировался при первичной ангине (22,07±2,82%; р<0,01 и 16,04±1,87%; р<0,01) и далее, в порядке убывания, следуют рецидивирующая (21,33±3,12%; р<0,01 и 16,13±3,40%; р<0,05) и повторная (17,30±3,10%; р<0,05 и 13,38±2,55%; р<0,05) формы ангины.

Показатели опсонофагоцитарной системы (ОФС) характеризовались значительным увеличением спонтанной функционально-метаболической активности нейтрофилов, регистрируемой по НСТ-тесту. Так, наиболее высокое значение спонтанного НСТ-теста зарегистрировано при рецидивирующей ангине (в 4,8 раз выше уровня здоровых!), несколько ниже при первичной и повторной ангине (в 3,6 и в 2,4 раза соответственно).

Таблица 4

Показатели клеточного иммунитета и опсонофагоцитарной системы у больных ангиной в острый период в зависимости от кратности заболевания

Показатели, Здоровые лица Первичная ангина Повторная ангина Рецидивир. ангина Достоверность

измерения п=51 п=48 п—26 п=28

1 2 3 4 р 2-3 р 2-4 рЗ-4

Лейкоциты-Ю'/л 4,8810,18 7,96±0.35*** 7,08*0,42»»» 8,18*0,42*** *

Лимфоциты Ю'/л % 1,84*0,09 38,70*1,38 1,72*0,07 25,17*1,09*»» 1,65*0,14 24,64*1,52»»» 1,65*0,10 21,87*1,53***

СОЗ-Ю'/л 1,36*0,05 1, 19*0,05» 1,17*0,11 1,11*0,08*

% 73,07*1,23 68,60*1,04»» 70,71*1,28 66,91*1,79»* *

С ЕМ-Ю'/л 0,78*0,04 0,66*0,03»» 0,78*0,10 0,66*0,04»

% 43,09*0,99 38,66*1,33» 46,36*1,32» 40,13*1,68 *** »»

С0810''/л 0,56*0,02 0,58*0,04 0,47*0,03» 0,56*0,04 *

% 29,84*1,06 32,94*1,09» 28,82*0,98 33,35*1,94» *+ *

т/г. 1,54*0,08 1,28*0,07*» 1,74*0,11 1,30*0,09» *»

С016'109/л 0,27*0,02 0,32*0,02» 0,29*0,22 0,31*0,03

% 14,42*1,04 18,22*1,21» 18,04*1,11» 18,45*1,40*

НЬЛ-ОИ ю'/л 0,23*0,02 0,28*0,03» 0,27*0,04 0,30*0,02*

% 12,74*0,81 18,94*1,28»»» 16,40*1,14»» 17,35*1,91*

С025-Ю'/л 0,19±0,02 0,25*0,03» 0,23*0,03 0,24*0,03

% 10,62*0,94 15,00*0,97»» 14,04*1,11* 14,86*1,52*

С072 Ю'/л 0,16*0,01 0,17*0,02 0,14*0,01 0,14*0,01

% 8,79±0,96 9,89*0,65 8.64*0,54 8,96*0,52

Нейтрофнлы Ю'/л 2,67*0,12 5,65*0,30*** 5,22*0,39*»* 6,05*0,35**»

% 55,20* 1,47 67,56*1,25»*» 69,00*1,62*** 72,13*1,45»** *

ФАН % 79,26*1,40 77,91*1,30 83,21*1,18» 69,16*1,62* *• **

ФЧ аиг) 5,62±0,22 5,38*0,88 4,77*0,34* 3,85*0,14*** * *

АФП (БС. аиг) 11,95*0,68 18,89*1,66»» 23,10*4,99* 17,48*1,40»»

Спон. НСТ % 9,00*1,71 36,84*2,97»»» 22,41*2,44*** 41,00*2,15**» *** • **

Стим. НСТ % 58,25*2,32 55,34*2,65 59,95*3,05 57,61*3,37

ЦИК опт.ед. 0,029*0,002 0,056*0,003»»» 0,057*0,01»** 0,050*0,003**»

С Н;о опт. ед. 60,50*2,54 67,43*2,84» 64,78*3,54 61,87*2,12

Сыв. IgA, г/л 2,19*0,09 2,58*0,11»» 2,43*0,14 2,81*0,20*»

Сыв. IgG, г/л 13,54*0,32 17,08*0,86»» 19,21*1,00»»* 18,36*0,75»»»

Сыв. ^М, г/л 2,12*0,08 2,15*0,09 2,04*0,11 2,15*0,14

Примечание: * -р<0,05; ** -р<0,01; *** -р<0,001 - показатели достоверности по сравнению с группой здоровых лиц. В остальных случаях указатель достоверности р>0,05.

При повторной ангине повышалась фагоцитарная активность нейтрофи-лов (83,21±1,18%; р<0,05), тогда как при рецидивирующей форме отмечалось ее угнетение (69,1б±1,62% при контроле 79,2±1,4%; р<0,05). У больных ангиной независимо от кратности заболевания в острый период отмечалось повышенное содержание сывороточного 1§А и ЦИКов (р<0,001). Значения 1{>М находились на уровне здоровых лиц.

В периоды ранней и поздней реконвалесценции в группе больных первичной ангиной наблюдалась нормализация содержания CD3+, CD4+, CD8+, CD16+ лимфоцитов; при повторной ангине сохранялись достоверно низкие значения CD3+ лимфоцитов (66,25±2,3%; р<0,001) и высокие - CD16+ лимфоцитов (23,25±2,7%; р<0,01). В динамике заболевания отмечалось существенное увеличение содержания HLA - DR+ клеток к периоду ранней реконвалесценции при первичной и повторной ангине. К периоду поздней реконвалесценции происходило дальнейшее нарастание HLA - DR+ лимфоцитов при повторной на 14,3% (32,5±4,0%; р<0,001), рецидивирующей на 28,8% (30,07±4,24%; р<0,001) формах и снижение при первичной форме на 16,4% (27,25±4,74%; р<0,01) по сравнению с предыдущим периодом.

Изучение фенотипа лимфоцитов и показателей опсонофагоцитарной системы в зависимости от местного патологического процесса в острый период заболевания показало достоверное снижение количества CD3+, CD4+ лимфоцитов и увеличение лимфоцитов с маркерами активации HLA - DR+ и CD25+ как при лакунарной, так и при фибринозно-некротической ангине. К периоду поздней реконвалесценции содержание CD3+, CD4+ лимфоцитов при лакунарной ангине не отличалось от показателей здоровых лиц, а при фибринозно-некротической ангине сохранялись достоверно низкие значения вышеуказанных маркеров (64,33±4,24%; р<0,01 и 37,33±2,29%; р<0,05 соответственно). Изменения со стороны ОФС в сравниваемых группах за время наблюдения характеризовались достоверно более высоким содержанием IgG, ЦИК, показателя стимулированного НСТ-теста при фибринозно-некротической ангине относительно лакунарной (р<0,05).

Проведение корреляционного анализа в динамике заболевания (рис. 1) позволило выявить наличие обратных корреляционных связей между 3M/CD4+ и прямых корреляционных связей между ЭМ/HLA - DR и ЭМ /сп НСТ на всех этапах наблюдения.

Рис. 1. Динамика корреляционных взаимосвязей цитогенети-ческого и иммунного статусов у больных ангиной стрептококк-ковой этиологии по периодам болезни (п=47)

Примечание: степень корреляционной связи: слабая - 0±0,29; средняя - 0,3±0,69; сильная -0,7±1 и значения достоверности коэффициента корреляции: *- р<0,05; *- р0,01;***- р<0,001.

Корреляционные связи с высокой степенью достоверности установлены между ЭМ/С04+ (г = - 0,42; р<0,05) и ЭМ/НЬА - ЭЯ (г = 0,71; р<0,001) в периоде ранней реконвалесценции, а также между ЭМ/С025+ (г = 0,31; р<0,05) и ЭМ /сп НСТ (г = 0,43; р<0,05) в периоде поздней реконвалесценции. Известно,

что возрастание продукции лимфоидными клетками дегидрогеназ приводит к увеличению образования перекисей, которые активно взаимодействует с пири-мидиновыми азотистыми основаниями и SH - группами белков хроматина, инициируя нарушения в системе репарации и мутационные изменения [Nathan C.F. et al„ 1979].

Таким образом, нестабильность генома у больных стрептококковой ангиной развивалась на фоне изменений в иммунокомпетентной системе, которые чаще формируются по типу вторичного иммунного ответа на предварительный контакт с распространенным инфекционным патогенном - S. pyogenes. Активация процессов перекисного окисления липидов в результате инфекционного воспаления приводит к деструкции мембран клеток, иммуносупрессии, нарушению цитокинового баланса [Rink L. et al, 1996; Еровиченков A.A., 2003;Павелкина В.Ф., 2010, Нагоева М.Х, 2010]. Установленное нами повышение в периферической крови лимфоцитов с АХ и снижение уровня CD4+ -лимфоцитов позволяет предположить, что цитогенетические поражения имму-нокомпетентных клеток могут обусловить недостаточность иммунного ответа, способствующего сохранению возбудителя в организме. Взаимосвязь цитогене-тических нарушений и показателей иммунореактивности выявлена при целом ряде инфекционных заболеваний, в том числе и при скарлатине [Бацков С.С., 2005; Жукова О.Б., 2005; Пирогова Н.П., 2005; Ильинских H.H., 2005], что свидетельствует о неспецифичности некоторых цитогенетических эффектов.

Обращает внимание значительное увеличение содержания ЦИК в сыворотке крови больных ангиной. Известно, что в образовании иммунных комплексов участвуют те классы иммуноглобулинов, которые связывают комплемент. Этим процессам способствует и фагоцитарная недостаточность с высвобождением лизосомальных ферментов, в том числе и ДНКаз, способных вызывать изменения в числе и структуре хромосом [Фримель X., 1986; Фогель Ф., 1990]. Длительное сохранение ЦИКов и цитогенетических нарушений у больных повторной, рецидивирующей и фибринозно-некротической формами ангины позволяет говорить о латентной инфекции, индуцирующей потенциальные повреждения в ДНК и «продленный мутагенез».

С целью изучения специфического иммунного ответа при ангине, вызванной S. pyogenes, в группе больных (п=80) и в контрольной группе здоровых лиц (п=50) проведено определение уровня AT к группоспецифическому А

- полисахариду (А - ПСХ) S. pyogenes (табл. 5).

В острый период заболевания доля пациентов, положительных по содержанию антител к А — ПСХ, составила 57%, в период ранней реконвалесценции

- 61% и в период поздней реконвалесценции - 48%. У пациентов с лакунарной и первичной формами ангины достоверно высокий уровень антител сохранялся в течение 3 месяцев наблюдения.

При фибринозно-некротической и повторной формах ангины высокий уровень антител к А - ПСХ в остром периоде заболевания (1,274±0,11; р<0,01 и 1,188±0,07; р<0,001 соответственно) снижался до показателей здоровых лиц в периоде ранней реконвалесценции при ФНА (0,942±0,15; р>0,05) и через 1 месяц при повторной ангине (0,978±0,09; р>0,05), однако через 3 месяца вновь по-

вышался до достоверно высоких значений при обеих формах заболевания (1,218±0,14; р<0,05 и 1,109±0,11; р<0,05 соответственно).

Таблица 5

Динамика специфических антител к А — ПСХ у пациентов стрептококковой ангиной в зависимости от характера местного процесса и кратности заболевания

X» Форма Острый пе- Ранняя Поздняя реконвалесценции

ангины риод рек-цня (через 1 мес.) (через 3 мес.)

1 Лахунарная 1,151±0,06*** 1,222±0,07*** 1,031±0,07** 1,125±0,09**

п=67 п=52 п=43 п=11 п=10

2 Фибр,- некротич. п=13 1,274±0,И** п=9 0,942±0,15 п=6 1,152±0,11* п=3 1,218±0,14* п=3

Р(1-2) >0,05 >0,05 >0,05 >0,05

Первичная 1,169±0,09*** 1,145±0,09*** 1,132±0,12* 1,179±0,15*

п=38 п=31 п=26 п=6 п=7

Повторная 1,188±0,07*** 1,23б±0,102*** 0,978±0,09 1,109±0,11*

п=42 п=30 п=23 п=7 п=6

Р(3-4) >0,05 >0,05 >0,05 >0,05

Примечание: уровень антител к А-ПСХ определяли по значению коэффициента позитивности (КП). Знаки: *-р< 0,05; **-р< 0,01; ***-р< 0,001 - показатели достоверности по сравнению с уровнем антител к А-ПСХ у здоровых лиц (КП - 0,77±0,03).

Наличие высокого уровня антител к А-ПСХ в периоды поздней реконва-лесценции у большей части обследованных больных, на наш взгляд, может свидетельствовать о продолжающейся антигенной стимуляции. Было установлено, что значительная частота высоких уровней антител к А-ПСХ в течение года от начала заболевания выявляется у больных острой ревматической лихорадкой [Мясоедова С.Е., 1995], а также при артритах, ассоциированных со стрептококковой инфекцией [Абельдяев Д.В., 2005]. Таким образом, определение уровня АТ к А-ПСХ у больных ангиной в динамике заболевания является одним из критериев диагностики стрептококковой инфекции и может использоваться в качестве дополнительного метода для подтверждения этиологии заболевания, прогнозирования исходов и коррекции лечения.

Дестабилизация генома, характеризуемая цитогенетическими нарушениями, может бьггь связана с особенностями функционирования генетически детерминированных систем биотрансформации (окисления и ацетилирова-ния), осуществляющих метаболизм лекарственных средств в организме. К первой фазе биотрансформации относятся реакции с участием цитохромов Р - 450 монооксигеназной системы ферментов, которые осуществляют широкий круг биохимических реакций, направленных на поддержание гомеостаза организма. Ко второй фазе биотрансформации относятся процессы Ы-ацетилирования ксенобиотиков, эндогенных веществ, содержащих аминогруппу [Суханова М.Ж., 1997; ОшкоуксЬ Е.А., 2003; 1г^е1тап - БипсШе^ М., 2004; Кукес В.Г., 2008].

Функциональное состояние системы микросомального окисления было изучено у 39 здоровых лиц и 32 больных стрептококковой ангиной. При кон-

центрации антипирина до 5 мкг/мл выделяли быстрый фенотип окисления, 5-17 мкг/мл - средний, свыше 17 мкг/мл - медленный фенотип окисления. При фе-нотипировании активности цитохромов Р-450 в контрольной группе имело место следующее соотношение фенотипов окисления (ФО): быстрый - у 20,0%, средний - у 44,0% и медленный — у 36,0% здоровых лиц.

В острый период заболевания у 17 (53,1%) больных стрептококковой ангиной зарегистрирован медленный, у 11 (34,4%) - средний и у 4 пациентов (12,5%) - быстрый ФО. В группах больных лакунарной, первичной ангиной и в группе женщин преобладали больные со средним ФО (в 50%, 50% и 54,6% случаев соответственно). При рецидивирующем течении заболевания, фибринозно-некротической ангине и в группе мужчин достоверно чаще регистрировался медленный ФО (у 57,2%, 60% и 61,9% больных; р<0,05, критерий х2)-

Изучение активности процессов ацетилирования было проведено у 85 больных стрептококковой ангиной и 110 здоровых лиц (табл. 6). При значении фракции дозы экскретируемого ГИНК в моче до 7% выделяли быстрый фенотип, свыше 7% - медленный фенотип ацетилирования. В контрольной группе здоровых лиц наблюдалось равномерное распределение быстрого и медленного фенотипов — по 50%.

Таблица 6

Распределение фенотипов ацетилирования у больных стрептококковой ангиной

в зависимости от пола, кратности и формы заболевания

Показатель Фенотип ацетилирования Разница по группам (р) 1-2

Быстрый абс. / % Медленный абс. / %

Пол:

мужчины (п=28) 9 (32,1 %) 19 (67,9 %) <0,05

женщины (п=57) 40 (70,2 %) 17 (29,8 %) <0,05

Форма ангины:

лакунарная(п=61) 38 (62,3 %) 23 (37,7 %) <0,05

фибр.-некротич. (п=24) 10(41,7%) 14 (58,3 %) >0,05

Кратность заболевания:

первичная(п=42) 24 (57,1 %) 18 (42,9 %) >0,05

повторная (п=43) 16 (37,2 %) 27 (62,7 %) <0,05

Примечание: уровень значимости р<0,05, критерий

Фенотипирование активности N-ацетилтрансферазы (NAT) показало преобладание при первичной ангине быстрого ФА (у 57% пациентов), при повторной ангине - медленного ФА (у 62,7% пациентов; р<0,05). У 62% больных лакунарной ангиной в острый период заболевания установлен быстрый тип ацетилирования (р<0,05), при ФНА у 58,3% пациентов - медленный ФА. В группе мужчин достоверно чаще регистрировался медленный ФА (67,9%; р<0,05), а в группе женщин - быстрый ФА (70,2%; р<0,05).

Результаты проведенного исследования показали, что у больных с быстрым ФА наблюдается более раннее выздоровление, чем в группе больных с медленным ФА, что проявляется меньшей длительностью ведущих синдромов

заболевания - интоксикационного (4,8±0,27 и 5,9±0,49 дня соответственно; р<0,05), тонзиллярного (6,26±0,28 и 7,5±0,39 дня соответственно; р<0,01), регионарного лимфаденита (5,0±0,21 и 6,5±0,49 дня соответственно; р<0,01).

Нами были изучены взаимосвязи выявленных цитогенетических изменений в эритроцитах периферической крови больных стрептококковыми ангинами с функционированием генетически детерминированных процессов ацетили-рования. Уровень цитогенетических нарушений был наименьшим у больных с быстрым фенотипом ацетилирования (0,17±0,01%), тогда как в группе медленных ацетиляторов наибольшим (0,23±0,02%). Различия между группами достоверны (р<0,05). Между показателями ЭМ/быстрый ФА выявлена обратная средняя корреляционная связь при повторной ангине (г = -0,37; р<0,05) и обратная корреляционная связь - при ФНА (г = -0,18). Зарегистрированы различной степени обратные корреляционные связи между ЭМ/медленный ФА у больных первичной (г = -0,41; р<0,05), фибринозно-некротической (г = -0,72; р<0,01), лакунарной (г = -0,31) и повторной формами ангины (г = -0,33). В периоде ранней реконвалесценции установлено отсутствие значимых корреляционных связей между ЭМ/быстрый ФА при первичной, повторной и лакунарной ангине (г = 0,025, г = -0,18 и г = -0,05; р>0,05 соответственно) и наличие средних обратных корреляционных связей между ЭМ/медленный ФА при повторной и фибринозно-некротической формах (г = -0,35 и г = -0,66 соответственно; р<0,05).

Сравнительные клинико-лабораторные исследования при повторной и фибринозно-некротической формах ангины показали наличие достоверных связей между низкой активностью N-ацетилтрансферазы и выраженностью цитогенетических изменений. Установлено, что интенсивность процессов ацетилирования прямо пропорциональна транскрипционной активности ДНК [Тищенко Л.И., 1971; Jetter А., 2004; Кукес В.Г., 2008], что объясняет существующую взаимосвязь метаболических процессов в организме с состоянием генетического аппарата соматических клеток.

Результаты ранее проведенных исследований свидетельствуют, что индуктором мутагенеза является сам S. pyogenes и его токсины [Ильинских Н.Н., 2005]. Известно, что стрептококки группы А вырабатывают широкий спектр суперантигенов (пирогенных экзотоксинов), которые они используют для атаки на организм хозяина [A. Norrby-Teglund, М. Norgren, 1992; J.A. Mollick et al., 1993; M.D. Cunningham, 2000]. Исследования последних лет показывают, что стрептококки не только адгезируют эпителиальную клетку, но и проникают внутрь [La Penta et al., 1994; R.L. Greco et al, 1995; Fluckiger et al., 1998; Jadoun J. et al., 1998; G.S. Molinari et al., 1998]. В клетке стрептококки способны располагаться вокруг ядерной оболочки, проникать внутрь ядра и лизировать зону, расположенную вокруг ядрышка [Ильинских И.Н., 2005].

Поэтому следующим этапом нашей работы было проведение экспериментальных исследований, направленных на изучение токсигенных и мутагенных свойств S. pyogenes.

Изучение токсигенных свойств проведено у 28 штаммов S. pyogenes, выделенных от наблюдавшихся нами больных ангиной методом ПЦР-ампли-фикации специфических фрагментов генов spe A, spe В, spe С и spe F (рис. 2).

зйЛакуп ■ Фи&р |<еир ^ Первим ш Рецидив

spe A spe В spe С spe F

Супер антигены

Рис. 2. Спектр основных токсинов (суперантигенов) в штаммах S. pyogenes от больных различными формами ангины

Примечание: количество исследованных штаммов (п=28); * - уровень значимости р<0,05; критерий -¿.

В результате проведенных исследований ген spe В обнаружен нами у 100% исследованных штаммов S. pyogenes. Как известно, он контролирует выработку пирогенного экзотоксина В и является одним из главных факторов патогенности СГА: ингибирует клеточные и гуморальные факторы иммунной защиты организма, оказывает деструктивное действие на цитоплазматическую мембрану эпителия [Yu С.Е., Ferretti, 1991; Burns E.H., 1996; Брико Н.И., 2006; Тотолян A.A., 2008]. Ген митогенного фактора spe F (mf) также выявлен у 100% штаммов. Он представляет собой многофункциональный белок, который обладает митогенны-ми, суперантагенными свойствами и повышает проницаемость сосудистой стенки [M.D. Cunningham, 2000; V.L. Arcus, 2000; Т. Proft, 2003; Покровский В.И., 2006].

Ген spe С был выявлен у 10 (77%) штаммов (р<0,05), полученных от больных повторной ангиной, и у 4 (57,1%) штаммов (ри0,05) - от больных фибриноз-но-некротической ангиной. Соответственно обнаружение гена spe С можно считать прогностически неблагоприятным фактором в отношении развития рецидивирующего течения заболевания. Ген spe А определен в материале от больного с тяжелым течением фибринозно-некротической ангины. Наличие данного суперантигена связывают с формированием тяжелого течения инфекционного процесса [C.R. Weeks, J.J. Ferrety, 1984; G.A. Bohach et al., 1990; A.J. Allen et al., 1995; Брико Н.И., 2006]. Ранее нами установлено, что данные формы ангины сопровождаются наиболее выраженными цитогенетическими нарушениями.

Таким образом, полученные результаты позволяют считать, что течение стрептококковой ангины (тяжесть, кратность, форма заболевания) в определенной мере обусловлено особенностями возбудителя и связано с токсигенностью

S. pyogenes. Спектр экзотоксинов, продуцируемых данным возбудителем, можно рассматривать как один из факторов, обуславливающих нарушение стабильности клеточного генома.

Изучение мутагенных свойств S. pyogenes. В эксперименте оценена анеугенная активность двух биологических материалов - экстракта (ЭК) и живой культуры (ЖК) S. pyogenes в сопоставлении с действием промутагена цик-лофосфамида. Исследовали 5 доз экстракта S. pyogenes (3,75-10"2 мкг/мл, 3,75-10'мкг/мл, 3,75 мкг/мл, 37,5-мкг/мл, 375-мкг/мл) и 3 дозы живой культуры S. pyogenes (510s КОЕ/мл, 1-Ю6 КОЕ/мл, 2-Ю6 КОЕ/мл).

Обрабатывали семена Crepis capillaries (скерды) экстрактом и живой культурой S. pyogenes в различных концентрациях (рис. 3).

Экстр ашг

0,02 0,04 о,: 0,4 0,6

, I-1-1-1-

днстшиир ов.-шная вода

20,0 30.0 40.0 200,С 300,0 4000 —I-1-1-1» КОЭ.'мл

5 Ю'

ТАЮ

110'

1.25-10" 1,5-10° 1.-510"

210°

)-ровеыь здоыосомных айеррндш. ица>тшруемын псстрэктом Sbzpbxoccuspyogenes Нювень vpi.MUf смтлл nieppruUH тиияфуси.ш здвай tyiî. р-.'Н Streptococcus pyogenes споытамыьп! уровень хромосомных аберраций (в опыте с диеткАшрованноп водоii)

Рис. 3. Перестройки хромосом в клетках семян Crépis capillaris после обработки их экстрактом и живой культурой S. pyogenes Примечание: * р<0,05; ** р<0,01; *** pO.OOl - показатели достоверности по сравнению со спонтанным уровнем аберраций хромосом в контрольной группе семян; в остальных случаях р>0,05.

Ось абсцисс - шкала концентраций живой культуры S. pyogenes в КОЕ/мл;

(-) шкапа концентраций экстракта S. pyogenes в мкг/мл;

(//) - переход на порядок выше в мкг/мл;

ось ординат - шкала уровня хромосомных аберраций в %.

В контрольной группе семена проращивались в дистиллированной воде, спонтанный уровень хромосомных аберраций составил 0,85±0,35%. Экстракт в концентрации 3,75-10*' мкг/мл и 3,75-10"'мкг/мл мкг/мл не индуцировал в клетках аберрации хромосом (во всех случаях р>0,05). При замачивании семян в растворе экстракта в концентрации 3,75 мкг/мл и выше уровень перестроек хромосом достоверно отличался от контроля. Наибольшее количество аберраций хромосом регистрировалось при обработке семян Crepis capillaris экстрактом S. pyogenes в концентрации 3,75 мкг/мл и живой культурой S. pyogenes в концентрации 1 млн КОЕ/мл. Дальнейшее повышение концентраций не приводило к возрастанию эффекта.

Анализ количества микроядер в периферической крови мышей контрольной группы с 1 по 16 сутки позволил установить их среднее значение -0,37±0,01% (рис. 4).

В опытной группе мышей на протяжении первых трёх суток после введения экстракта или живой культуры в различных концентрациях уровень ЭМ не превышал показатели контрольной группы. На 3-5 сутки отмечалось достоверное повышение числа ЭМ при введении ЭК в концентрации 3,75 мкг/мл (1,37±0,03%; р<0,001 и 1,27±0,03%; р<0,001) и ЖК в концентрации 1 млн КОЕ/мл (0,98±0,02%; р<0,001 и 1,14±0,02%; р<0,001). На седьмые и последующие сутки уровень микроядер снизился до нормальных значений.

Урммь

МЮфеЯНР N

Рис. 4. Динамика уровня эритроцитов с микроядрами в периферической крови мышей при обработке их экстрактом S. pyogenes, живой культурой S. pyogenes и циклофосфамидом Примечание: концентрация ЭК S. pyogenes - 3,75 мкг/мл; концентрация ЖК S. pyogenes - 1 млн КОЕ/мл, циклофосфамида - 50 мг/кг; уровень микроядер в контрольной группе мышей (0,37±0,01%) представлен горизонтальной линией; * р<0,05; ** р<0,01; *** р<0,001 - показатели достоверности по сравнению с контрольной группой мышей, в остальных случаях р>0,05.

С целью контроля группе мышей вводился цитостатический препарат циклофосфамид, который обладает доказанным мутагенным эффектом [Дурнев, 1998]. В отличие от биосубстратов циклофосфамид индуцировал пик появления микроядер в периферической крови мышей на 2 сутки (2,25±0,03%; р<0,001) со снижением до контрольных значений на 6 сутки. Известно, что активация циклофосфамида в микросомальной системе приводит к образованию активных форм кислорода, которые активируют самоподдерживающие радикал - генерирующие системы, например, процессы перекисного окисления липидов [Kanekal, 1994; Дурнев, 1998], что позволяет предположить аналогичное действие экстракта и живой культуры S. pyogenes.

Уровень цитогенетических нарушений как в эксперименте на Crepis capillaries, так и в эксперименте на мышах выше при воздействии экстракта стрептококка. Это подтверждается достоверными отличиями в образовании ЭМ при введении мышам экстракта и живой культуры S. pyogenes (1,37±0,03% и 1,14±0,02% соответственно; р<0,001) и различиями в уровне хромосомных аберраций при обработке данными биологическими субстратами семян Crepis capillaries (3,97±0,74% и 2,75±0,51% соответственно; р>0,05).

Таким образом, метаболиты стрептококка обладают мутагенной активностью и способны индуцировать потенциальные повреждения в ДНК. Принимая во внимание общность происхождения и генетическое единство живого, можно предположить, что формирование НГ при ангине, обусловленной S. pyogenes, является сложным, мультифакторным, многоэтапным процессом с участием инфекта.

Используемые в процессе лечения лекарственные средства могут, с одной стороны, усиливать активацию свободнорадикальных процессов в организме и, соответственно, являться факторами, способствующими дестабилизации генома соматических клеткок, с другой - наличие антиоксидантных свойств у лекарственных препаратов может оказывать благоприятное действие на течение заболевания и его исход.

В этом контексте была проведена оценка антирадикальной и антиок-сидантной активности лекарственных препаратов, используемых в лечении больных стрептококковой ангиной, в модельных системах (рис. 5)

г-бс -о ЦТ ен f* ял

f f U

is е > —|

V 1 г г» г ка ПН ЯР N *

1ИН

О 0.1 0.2 0,5 1

а б

Рис. 5. Оценка антирадикальной (а) и антиоксидантной (б) активности бензилпенициллина, цефазолина, ксимедона

Влияние препаратов на генерацию гидроксильного радикала (рис. 5а) исследовалось хемилюминесцентным методом (ХЛ) в реакции Фентона: Ре2+ + Н202 => Ре3+ + НО- + НО-. Антиоксидантым эффектом по отношению к гидро-ксильному радикалу обладал ксимедон. Цефазолин и бензилпенициллин, реагируя с радикалом, давали прирост ХЛ, свидетельствующий об образовании реактивных интермедиатов (прооксидантный эффект).

Результаты исследования оксидантной/антиоксидантной активности препаратов (рис. 56) по их способности запускать ПОЛ или ингибировать железо-индуцированное ПОЛ желточных липопротеинов (регистрировался уровень малонового диальдегида) показали, что ксимедон, бензилпенициллин, цефазолин не обладают окислительной активностью и способны предотвращать ПОЛ, инициируемое железом, при концентрациях уже около 0,1 мг/мл. Однако при больших концентрациях положительный эффект бензилпенициллина нивелируется, в тоже время у препарата ксимедон усиливается.

Таким образом, препараты пенициллин, цефазолин не являются активными окислителями и обладают умеренной антиокислительной активностью, однако, реагируя со свободными радикалами, они могут приводить к образованию реактивных интермедиатов, способствующих активации процессов мутагенеза. Препарат ксимедон обладает антиоксидантной активностью и может использоваться в комплексной терапии больных ангиной с целью коррекции состояния окидантно-антиоксидантной системы, как основной геномпротекторной системы организма.

Клинико-цитогенетические, биохимические и иммунотропные эффекты ксимедона

Цитогенетические нарушения в клетках периферической крови (эритроцитах и лимфоцитах) свидетельствуют о наличии в патогенезе стрептококковой ангины важного звена - неспецифического повреждения генома. Являясь патологическим процессом, он логически реализуется в нарушение нормальной экспрессии генов, что осложняет течение заболевания, существенно снижает эффективность лечения и способствует хронизации процесса. В тоже время имеется разработанная и хорошо зарекомендовавшая себя на практике теория «фармакологической защиты генома», которая предполагает использование в коррекции цитогенетических нарушений лекарственных препаратов, у которых наряду со специфической фармакологической активностью выражен и антимутагенный компонент [Waters M.D., 1990; Дурнев А.Д., 1998; Серединин С.Б., 2004; Жанатаев А.К., 2010].

Полученные результаты явились основанием для проведения корригирующей терапии выявленных нарушений отечественным препаратом пирими-динового ряда «ксимедон» (гидроксиэтиддиметилдигидропиримидин) с ранее доказанным антиоксидантным, регенераторным, иммуномодулирующим и антимутагенным действием [Нурмухаметова Э.Б., 1993; Гилмуллина Ф.С., 1997; Фазульзянова А.И., 1999; Мустафин И.Г., 1999; Малышев К.В., 2000; Черепнев Г.В., 2000; Погорельцев В.И., 2005].

Формирование сравниваемых групп пациентов стрептококковой ангиной методом случайной выборки позволило выделить статистически репрезентативные по полу, возрасту, срокам госпитализации и клиническим показателям основную группу (110 человек), получавшую отечественный препарат ксимедон по 0,5 г 3 раза в день в течение 7 дней на фоне базисной терапии, и группу сравнения (220 человек) - на базисной терапии (препарат бензилпенициллин по 4 млн ЕД в сутки внутримышечно).

Клинико-цитогенетический, иммунологический и биохимический мониторинг обеих групп проводили в острый период заболевания (2-4 д.б.), в периоды ранней (7-10 д.б.) и поздней реконвалесценции (через 1 и 3 месяца диспансерного наблюдения).

Клинические эффекты ксимедона характеризовались достоверным сокращением длительности синдрома интоксикации в среднем на 1,5 дня (р<0,01), сроков купирования локального тонзиллярного синдрома на 2,0 дня (р<0,001) и регионарного лимфаденита - на 1,6 дня (р<0,01) при всех клинических формах стрептококковой ангины. Клиническая эффективность ксимедона обусловлена воздействием препарата на отдельные патогенетические механизмы, что было доказано в целом ряде экспериментально-клинических исследований [Череп-нев Г.В., 1994, 2000; Слабнов Ю.Д., 1997; Гилмуллина Ф.С., 1997; Цибулькин А.П., 1998; Фазульзянова А.И., 1999; Измайлов С.Г., 2001 и др.]

Влияние ксимедона на цитогенетический статус больных стрептококковой ангиной (рис. 6) характеризовалось восстановлением уровня ЭМ до показателей здоровых лиц уже в периоде ранней реконвалесценции при первичной ангине, и через месяц от начала заболевания - при повторной.

»Острый пер Раняярек « через 1 мес к Через Змее

Оси | Сравн ! Оен Срэвн

п=34 п=43 п=32 п-В1

Первичная п=93 Повторная п-77

Рис. 6. Динамика уровня эритроцитов с микроядрами у больных основной группы и группы сравнения в зависимости от кратности заболевания Примечание: число ЭМ у здоровых лиц (п=40) - 0,11±0,01%; * - значения достоверности в сравнении с показателями здоровых лиц.

Рассчитывали антимутагенный эффект (АЭ) препарата, по формуле, позволяющей установить процент снижения ЭМ в процессе лечения: АЭ= (ЭМ] -ЭМ2)/ЭМ|Х100 [Гайнетдинова Д.Д, 2005.]. При этом антимутагенный эффект (АЭ) ксимедона у пациентов первичной ангиной в периоде ранней реконвалесценции составил 43,7% (р<0,001), у больных повторной ангиной через 1 месяц - 41,2% (р<0,01). В группе сравнения зарегистрированы достоверно высокие значения ЭМ на данных сроках наблюдения.

При лакунарной ангине у пациентов основной группы отмечалось уменьшение числа ЭМ с достижением уровня здоровых лиц на 7-10 дни болезни (0,08±0,02%; АЭ ксимедона - 52,9%; р<0,001), при фибринозно-

некротической ангине - через I месяц диспансерного наблюдения (0,12±0,01%; АЭ ксимедона - 29,4%; р<0,05). В группе сравнения на этих сроках сохранялись достоверно высокие значения ЭМ (соответственно 0,21±0,01%; р<0,001 и 0,23±0,02%; р<0,001).

Применение ксимедона в комплексной терапии больных основной группы привело к снижению количества лимфоцитов с цитогенетическими повреждениями на 17% в периоде ранней реконвапесценции, однако данный показатель оставался достоверно выше уровня здоровых лиц (4,33±0,15; р<0,01). Через I месяц от начала заболевания произошло дальнейшее снижение количества лимфоцитов с АХ в 1,8 раза с достижением уровня контрольной группы (2,83±0,12; р>0,05) при сохранении достоверно высоких значений в группе сравнения (рис. 7). Антимутагенный эффект препарата составил 45,8% (р<0,001).

Рис. 7. Уровень лимфоцитов с аберрациями хромосом у больных основной группы и группы сравнения в динамике заболевания

Примечание: число лимфоцитов с аберрациями хромосом у здоровых лиц (п=40) 2,0(Ы),18%; основная группа (п=20); группа сравнения (п=15); * - значения достоверности по сравнению с показателями здоровых лиц.

Таким образом, фармакологическая коррекция выявленных нарушений препаратом ксимедон показала высокую антимутагенную эффективность данного препарата, доказанную двумя цитогенетическими методами. Ранее проведенными исследованиями [Черепнев Г.В., 2000] было установлено, что ксимедон обладает геномпротекторным (антимутагенным) эффектом, ингибируя индукцию точковых мутаций, усиливая репарацию ДНК, снижая частоту хромосомных аберраций в лимфоцитах и образование микроядер в клетках эритроид-ного ряда. Геномпротекторная активность ксимедона, возможно, объясняется его антиоксидантными свойствами [Малышев К.В., 2000; Вапеева И.Х., 2004] и митохондриальными ДНК - полимераза - и ДНК - топоизомераза - 1 - зависимыми механизмами [Черепнев Г.В., 2002], что приводит к уменьшению активных форм кислорода, вызывающих мутации.

Нами также выявлено корригирующее влияние ксимедона на оксидантно-антиоксидантную систему (рис. 8). Уровень ГП в основной группе при первичной ангине на 7-9-е дни болезни снизился на 27,8% (14,85±0,67 отн.ед.мл; р<0,001), а при повторной - на 13,7% (18,91±0,58 отн.ед.мл; р<0,01) по сравнению с исходными данными и достиг контрольных значений через 3 месяца. В

группе сравнения наблюдалось более медленное снижение содержания ГП - на 12,7% (22,92±0,55 отн.ед.мл; р<0,01) при первичной и повышение на 5,6% (24,39±0,35 отн.ед.мл; р<0,001) при повторной форме. В группе сравнения через 3 месяца ДН уровень ГП оставался достоверно выше контрольных значений (8,4±0,28 отн.ед/мл; р<0,01). Имелась достоверная разница между сравниваемыми группами на всех этапах выздоровления (р<0,05; критерий х2).

8 6 4 2 О

—♦--основная сравнения —»-'основная -»- сравнения

Рис. 8. Динамика показателей оксидантно-антиоксидантного потенциала у больных повторной ангиной на фоне лечения ксимедоном и базисной терапии Примечание. Содержание МДА у здоровых лиц (п=30) - 2,00 ±0,14 мкмоль/л; АОЕ -25,0±0,11 кКл/л. Основная группа (п=20), группа сравнения (п=22); *-р<0,05,**-р<0,01,***-р<0,001 -значения достоверности по сравнению с показателями здоровых лиц.

Уровень МДА в основной группе при первичной ангине снизился на 32,5% (5,59±0,72 мкмоль/л; р<0,001), а при повторной - на 26,2% (5,13±0,46 мкмоль/л; р<0,001) в периоде ранней реконвалесценции и достиг показателя здоровых лиц в периоде поздней реконвалесценции. В тоже время в группе сравнения через 3 месяца ДН оставались достоверно высокие значения МДА (3,76±0,26 мкмоль/л; р<0,001) у пациентов повторной ангиной.

Определение содержания ЦП в периферической крови у пациентов основной группы показало его снижение в периоде ранней реконвалесценции при первичной на 8,7% (64,93±1,18 мг/%; р<0,01), при повторной ангине - на 9,2% (65,03±1,39 мг/%; р<0,001) по сравнению с острым периодом заболевания и достижение уровня здоровых лиц через 3 месяца диспансерного наблюдения. В группе сравнения наблюдалось повышение ЦП на 12,9% (68,62±1,7 мг/%; р<0,001) при первичной и снижение на 9,2% (62,85±1,6 мг/%; р<0,01) при повторной ангине с сохранением достоверных отличий с уровнем здоровых лиц в периоде поздней реконвалесценции.

Показатель АОЕ крови у пациентов основной группы к периоду ранней реконвалесценции повысился на 39,3% (17,61±0,34 кКл/л; р<0,001) при первичной ангине, на 43,4% (18,72±0,34 кКл/л; р<0,001) - при повторной ангине с дос-

здороаые

2-4Д.6. 7-Юд.б. ч-э 1мес. ч-э 3 нес.

'<0,001

2-4дб. 7-Юд.б. чэ 1 мес. ч-зЗмес.

мкмоль/л МДА

тижением уровня здоровых лиц через 1 и 3 месяца ДН соответственно. В группе сравнения произошло повышение АОЕ на 27,1% (15,73±0,57 кКл/л; р<0,001) и 25,5% (17,43±0,51 кКл/л; р<0,001) соответственно, без достижения уровня здоровых лиц в периоде поздней реконвалесценции у пациентов повторной ангиной.

При лакунарной ангине у пациентов основной группы в периоде ранней реконвалесценции наблюдалось снижение уровня ГП на 13,5% (17,87±0,34 отн.ед.мл; р<0,001), при фибринозно-некротической - на 20,9% (18,57±0,39 отн.ед.мл; р<0,001) по сравнению с исходными показателями. В тоже время в группе сравнения не отмечалось динамического изменения содержания ГП в периферической крови.

Уровень МДА у пациентов лакунарной ангиной из основной группы уменьшился на 42,9% (4,00±0,71 мкмоль/л; р<0,01), фибринозно-некротической - на 43,3% (4,99±0,74 мкмоль/л; р<0,001) по сравнению с исходными показателями, достигнув уровня здоровых лиц через 3 месяца ДН. В группе сравнения сохранялись достоверно высокие значения МДА при обеих клинических формах.

У пациентов основной группы отмечалось снижение ЦП при лакунарной ангине на 9,8% (64,56±0,96; р<0,001), при фибринозно-некротической -на 8,7% (61,96±0,77; р<0,001) по сравнению с исходными данными с достижением уровня здоровых лиц в периоде поздней реконвалесценции. Уровень АОЕ плазмы крови у пациентов лакунарной ангиной из основной группы при сопоставлении с исходными показателями повысился на 31,4% (17,07±0,39 кКл/л; р<0,001), фибринозно-некротической - на 111,9% (21,25±0,42 кКл/л; р<0,001), достигая значений контрольной группы через 3 месяца ДН. В группе сравнения АОЕ плазмы крови при фибринозно-некротической ангине через 3 месяца ДН оставалась достоверно низкой (23,5±0,49 кКл/л; р<0,01).

Проведенные исследования свидетельствуют об ингибирующем влиянии ксимедона на оксидазные процессы на уровне первичного и вторичного звеньев липопероксидации и стимулирующем влиянии на систему антиоксидантной защиты, что опосредованно способствует уменьшению цитогенетических нарушений у больных стрептококковой ангиной. Констатирована более медленная динамика восстановления равновесия в системе ПОЛ-АОС у пациентов повторной и фибринозно-некротической формами ангины.

Механизмы иммуномодулирующей активности ксимедона связаны со стимуляцией метаболических процессов в клетке, усиливающих регенерацион-ные способности клеточной мембраны, с выраженной активацией процессов Т-лимфоцитарной трансформации [Слабнов Ю.Д., 1997; Цибулькин А.П., 2005], с повышением аффинности клеточных Е - рецепторов [Измайлов С.Г., 2001].

В наших исследованиях иммуномодулирующий эффект препарата «кси-медон» проявлялся нормализацией соотношения и содержания основных популяций и субпопуляций лимфоцитов (СБЗ+, С04+, С08+, С016+, СО72+) к периоду ранней реконвалесценции у больных рецидивирующей и фибринозно-некротической формами ангины.

Под действием ксимедона повышенная экспрессия активационных маркеров НЬА - ОЯ+, СБ25+ в острый период заболевания снижалась до нормы

для СБ25+ антигена к периоду ранней реконвапесценции и для НЬА - 011+ антигена- к периоду поздней реконвалесценции. В группе сравнения весь период наблюдения оставалось высоким содержание НЬА - ЭЯ+ лимфоцитов (рис. 9).

■ острый Г№СИ*ОЙ - ¡»К'Ш4А * поадял» реч-иыл

Рис. 9. Влияние ксимедона па относительное содержание НЬА-ОК-

лимфоцитов у больных ангиной в зависимости от кратности заболевания Примечание: первичная ангина (п=48): основ (п=23), сравн (п=25); повторная (п=26): основ (п=13), сравн (п=13); рецидивирующая (п=28): основ (п=15), сравн (п=13). Знаки: *-р<0,05; **-р<0,01; ***-р<0,001 - значения достоверности по сравнению с показателями здоровых лиц (п=51).

Независимо от кратности заболевания и характера местного процесса отмечалось восстановление функционально-метаболической активности ней-трофилов в спонтанном и стимулированном НСТ-тесте. Содержание ЦИКов, сывороточных IgA и снижалось до уровня здоровых лиц (р>0,05) через 1 месяц ДН. В тоже время в группе сравнения сохранялись достоверно высокие значения этих показателей в течение всего срока наблюдения. Нормализующий эффект ксимедона на содержание иммуноглобулинов и ЦИК мы связываем с ограничением повышенной поликлональной активации лимфоцитов и модификацией рецепторов фагоцитов, в частности Рс-рецептора, что обуславливает повышение связывания ЦИКов и их последующую элиминацию [Мус-тафин И.Г., 1999].

При включении ксимедона в комплексную терапию больных ангиной выявлено его индуцирующее действие на активность процессов микросомального окисления (табл. 7). Процессы индукции микросомальных оксидаз (МО) были наиболее выражены в основной группе больных у лиц с медленным фенотипом окисления - 66,3±4,8% и достоверно отличались от индукции МО в группе сравнения - 41,8±6,34%; р<0,01. Среди средних окислителей индукция МО активнее протекала в группе больных, получавших ксимедон и составила 58,8±3,82%, что на 39,2% выше, чем в группе сравнения - 19,6±2,41%; р<0,001. У лиц с быстрым ФО из группы сравнения индукция ферментов МО составила 69,4±2,32%, и это достоверно выше, чем у быстрых окислителей из основной группы, где индуктивные процессы составили 33,2±1,9%; р<0,001.

Таким образом, на фоне лечения препаратом ксимедон процессы индукции наиболее выражены у больных с медленным фенотипом окисления. В тоже время низкую индукцию МО в группе быстрых окислителей, получавших ксимедон, можно рассматривать как компенсаторную реакцию, направленную на снижение скорости метаболизма лекарственных средств.

Таблица 7

Индукция процессов микросомального окисления у пациентов стрептококковой ангиной на фоне базисной терапии и лечения ксимедоном

Фенотип окисления С^и™ мкг/мл р (сравн/ основ)

Основная группа п=17 р (1-2) Группа сравнения п=15 Р (1-2)

До лечения > После лечения 2 До лечения 1 После лечепия 2

Быстрый (< 5%) 4,Г4±0,94 3,0310,13 >0,05 3,74±0,19 1,20±0,19 <0,001

Индукция % 33,2±1,9 69,4±2,32 <0,001

Средний (5- 17%) 12,83±0,8 | 10,96±1,0 | >0,05 10,53±1,2 | 11,26±0,7 | >0,05

Индукиим % 58,8±3,82 19,6±2,41 <0,001

Медленный (> 17%) 27,7±2,28 | 21,42±1,9 | <0,05 27,98±1,4 | 25,47±1,7 | >0,05

Индукция % 66,3±4,8 41,8±6,34 <0,01

Примечание: С0бщ, мкг/мл - содержание антипирина в слюне пациентов. Быстрый ФО - < 5 мкг/мл; средний ФО -5-17 мкг/мл; медленный ФО - > 17 мкг/мл.

В основной группе на фоне лечения ксимедоном наблюдалось перераспределение фенотипов окисления у больных стрептококковой ангиной таким образом, что их соотношение приблизилось к соотношению в группе здоровых лиц (17,6% - быстрый и по 41,2% средний и медленный фенотипы, р>0,05; критерий х2) при сохранении достоверных различий в распределении ФО в группе сравнения (6,7% - быстрый, 33,3% средний и 60% медленный фенотипы, р<0,01; критерий

Изучение влияния препарата ксимедон на метаболическую систему аце-тилирования позволило выявить его индукционный эффект на активность фермента Ы-ацетилтрансферазы (табл. 8).

Таблица 8

Индукция процессов ацетилирования у больных стрептококковой ангиной на фоне базисной терапии и лечения препаратом ксимедон

Группы больных ангиной Тип ацетилирования Фракция дозы ГИНК до начала лечения, % Фракция дозы ГИНК по окончанию лечения, % Р Индукция, %

Сравнения (п=42) Быстрый (п=21) 3,63 ± 0,39 4,93 ± 0,93 >0,05 39±2,61

Медленный (п=21) 11,57 ±0,73 8,15 ±0,94 <0,01 45±4,23

Основная (п=43) Быстрый (п=28) 4,25 ± 0,28 5,18 ±0,6 >0,05 Нет

Медленный (п=15) 10,27 ±0,75 6,59 ± 1,01 <0,01 62,5± 9,08

Примечание: фракция дозы ГИНК - содержание тест-маркера изониазида в моче пациентов в %; быстрый ФА - < 7%; медленный ФА - > 7%.

Сравнительный анализ показал, что в группе больных, получавших базисную терапию (п=42), имеется тенденция к увеличению скорости ацетилиро-вания у пациентов с медленным ФА (индукция 45±4,23%; pD0,01), но не достигаются значения фармакокинетических параметров тест-препаратов, характерных для быстрых ацетиляторов. В группе больных с быстрым ФА процессы индукции составили 39±2,61%; р>0,05.

Индукция процессов окисления и ацетилирования у больных стрептококковой ангиной на фоне лечения препаратом ксимедон, сопровождалась снижением уровня ЭМ в группе как быстрых, так и медленных ацетиляторов с достоверной разницей при сопоставлении с группой сравнения (р<0,05). Возможно, что в результате активирования системы окислительного метаболизма ксимедон стабилизирует цитохромы, защищая от воздействия таких ингибиторов как окись углерода, азот, другие ксенобиотики и лекарственные средства [Жарехи-на A.B., 2008]. Индукция фермента N-ацетилтрансферазы, катализирующего процессы ацетилирования, приводит к снижению побочных эффектов аминосо-держащих лекарственных препаратов, особенно у медленных ацетиляторов [Grant D.M., 1989, Кукес В.Г., 2008].

Таким образом, препарат ксимедон, по-видимому, проявляет эффект индуктора метаболических процессов ацетилирования и микросомального окисления и ускоряет темпы выздоровления, стимулируя антиоксидантную и иммунную защиту организма и опосредованно воздействуя на генетический аппарат [Слабнов Ю.Д., 1997; Гармонов С.Ю., 2006,2010; Киселева Т.А., 2007].

Изучение отдаленных результатов проведенной терапии осуществлялось путем диспансерного наблюдения (ДН) за реконвалесцентами (п=105) в течение 3 месяцев после выписки из стационара. Клиническая характеристика исходного состояния реконвалесцентов перед началом ДН показала сохранение увеличения миндалин до I—II степени у 6 (10,2%) человек основной группы и у 12 (26%) группы сравнения, р<0,05; наличие регионарного лимфаденита в виде увеличения тонзиллярных лимфоузлов у 5 (8,5%) и у 10 (21,7%) человек соответственно; р<0,05. В течение 3 месяцев ДН рецидивы возникли у 4 (6,8%) переболевших из основной группы (п=59) и у 8 (17,4%) -из группы сравнения (п=46); р<0,05. В основной группе отмечено уменьшение числа рецидивов болезни по отношению к группе сравнения после первичной формы в 3 раза (3,4% и 14,3% реконвалесцентов соответственно, р<0,05; критерий х2) и частоты обострений при повторной форме в 2 раза (10% и 20% реконвалесцентов соответственно; рШ0,05). У реконвалесцентов лакунарной ангины на фоне приема ксимедона число рецидивов уменьшилось в 3,5 раза (3,8% и 13,5% реконвалесцентов соответственно; р<0,05), фибринозно-некротической ангиной в 2,3 раза (14,3% и 33,3% реконвалесцентов соответственно; р<0,01).

В процессе наблюдения клинические параметры коррелировали с результатами цитогенетических исследований и изменениями в оксидантно-антиоксидантной и иммунной системах. Данная взаимосвязь проявлялась снижением уровня ЭМ у пациентов основной группы уже в периоде ранней рекон-валесценции в отличие от группы сравнения, в которой регистрировались дос-

товерно высокие уровни эритроцитов с микроядрами и лимфоцитов с аберрациями хромосом (р<0,05).

Выраженность цитогенетических изменений в организме реконвалесцен-тов группы сравнения при повторной ангине коррелировала с дисбалансом в оксидантно-антиоксидантной системе, что проявлялось сохранением достоверно высоких значений МДА (р<0,001) и достоверно низких значений АОЕ (р<0,05) в течение 3 месяцев. В основной группе на данном сроке наблюдения показатели оксидантно-антиоксидантного потенциала находились в состоянии динамического равновесия.

Проведенные в процессе наблюдения иммунологические исследования показали, что у реконвалесцентов основной группы снижение количества активированных HLA-DR лимфоцитов и ЦИК до показателей здоровых лиц произошло через 1 месяц от начала заболевания. В тоже время в группе сравнения количество HLA-DR+ лимфоцитов и ЦИК оставалось достоверно высоким в течение первого месяца у реконвалесцентов первичной и лакунарной формами ангины и в течение 3 месяцев у реконвалесцентов фибринозно-некротической и повторной формами ангины.

Отдаленные клинические результаты комплексной патогенетической терапии больных стрептококковой ангиной с использованием препарата ксиме-дон, показали ее положительное действие, заключающееся в уменьшении количества рецидивов заболевания и наиболее быстрой и эффективной нормализацией цитогенетических, иммунологических показателей и факторов оксидантно-антиоксидантной системы.

Таким образом, в лечении больных стрептококковой инфекцией необходимо учитывать две основные составляющие - особенности возбудителя заболевания, S. pyogenes, и состояние восприимчивого организма. При попадании S. pyogenes в организм человека развивается целый ряд перестроек по различным направлениям, которые в конечном итоге приводят к формированию нестабильности генома. До настоящего времени не разработана единая теория формирования НГ и, соответственно, способы, предотвращающие развитие этого состояния [Семенов В.В., 2009; Mosovska S., 2010].

Проведенные нами исследования позволили выявить новые аспекты в развитии ангины стрептококковой этиологии. Установлено наличие ранее неизвестного при ангине патогенетического звена - нестабильности генома соматических клеток, который можно рассматривать как типовой патологический процесс, учитывая тот факт, что нестабильность генома является эволюционно детерминированным свойством живого, закономерно формирующимся при заболевании (Крыжановский Г.Н., 2002].

Представлены возможные механизмы формирования нестабильности генома при ангине (рис. 10):

- действие возбудителя заболевания S. pyogenes и состояние иммунной системы восприимчивого организма;

- активация процессов перекисного окисления липидов в результате инфекционного воспаления и снижение активности антиоксидантных систем, нейтрализующих эти процессы;

- действие лекарственных препаратов, используемых в лечении, и состояние систем биотрансформации, осуществляющих их метаболизм.

Результирующей данных альтернативных процессов является дестабилизация генетического аппарата соматических клеток.

Рис. 10. Механизмы формирования нестабильности генома при ангине, обусловленной S. pyogenes

Нестабильность генома приводит к нарушениям экспрессии генов, в конечном итоге, провоцирующим изменения процессов метаболизма в различных звеньях, что представляет потенциальную опасность в плане прогрессирования последующих мутагенных процессов. С целью купирования патологических процессов рекомендовано проведение лекарственной терапии, направленной на «фармакологическую защиту генома». Высокой эффективностью в этом плане обладает отечественный препарат пиримидинового ряда «ксимедон».

Выдвинутые нами положения могут быть использованы для дальнейшего, более углубленного изучения патогенеза заболеваний стрептококковой этиологии.

ВЫВОДЫ

1. На современном этапе особенности стрептококковой ангины характеризуются преимущественным развитием заболевания у лиц молодого возраста, преобладанием лакунарной формы, тяжелым течением заболевания при фибри-нозно-некротической форме, в том числе более тяжелым и часто рецидивирующим течением у мужчин.

2. У больных стрептококковой ангиной в острый период заболевания наблюдаются цитогенетические изменения, проявляющиеся увеличением в периферической крови числа эритроцитов с микроядрами и лимфоцитов с аберрациями хромосом. При фибринозно-некротической и повторной формах заболевания признаки нестабильности клеточного генома сохраняются в периоде

Оксидантная система

Нсстебдашоеть гедома

Антнокснданг-пая система

Иммунный ответ

бнотюансфоюмацни

Лекарственные npenapaiw

поздней реконвалесценции, что определяет формирование рецидивов болезни в течение первых 3 месяцев диспансерного наблюдения.

3. В острый период стрептококковой ангины происходит активация процессов перекисного окисления липидов и снижение антиоксидантной защиты организма с накоплением гидроперекисных продуктов, обладающих мутагенным действием. В периоде поздней реконвалесценции купирование цитогене-тических нарушений происходит на фоне нормализации оксидантно-антиоксидантного потенциала. Установлена прямая корреляционная связь между уровнем цитогенетических нарушений и концентрацией продуктов липопе-роксидации и обратная - между уровнем эритроцитов с микроядрами и антиоксидантной емкостью плазмы, что свидетельствует об интенсификации процессов мутагенеза на фоне дисбаланса в оксидантно-антиоксидантной системе.

4. В острый период ангины стрептококковой этиологии развивается дисбаланс в клеточном звене иммунитета и опсонофагоцитарной системе, проявляющийся уменьшением содержания лимфоцитов и их основных субпопуляций (CD3+, CD4+), повышением количества лимфоцитов с маркерами активации (HLA - DR+, CD25+) на фоне угнетения фагоцитарной активности нейтрофи-лов и образования большого количества ЦИКов. В периоде реконвалесценции изменения в иммунной системе у больных фибринозно-некротической и рецидивирующей формами ангины сохраняются.

5. У больных стрептококковой ангиной преобладают медленный фенотип окисления и быстрый фенотип ацетилирования. При повторной, фибринозно-некротической формах болезни и особенно у лиц мужского пола достоверно чаще регистрируются медленные фенотипы окисления и ацетилирования, которые коррелируют с выраженными цитогенетическими изменениями и изменениями оксидантно-антиоксидантного потенциала, сохраняющимися в периоде поздней реконвалесценции, что обуславливает более длительное течение инфекционного процесса,

6. Выделенные от пациентов с ангиной штаммы Streptococcus pyogenes обладают токсигенной активностью, обусловленной продукцией пирогенных экзотоксинов spe В, spe F, spe С, а также способны индуцировать аберрации хромосом в клетках Crepis capillaris и повышать уровень эритроцитов с микроядрами в периферической крови лабораторных животных, что свидетельствует об их мутагенной активности.

7. В эксперименте на клеточно-ферментативных моделях препараты бен-зилпенициллин и цефазолин не являются активными окислителями, однако при активации свободнорадикальных процессов приобретают прооксидантные свойства, что свидетельствует об их возможном участии в процессах мутагенеза у больных ангиной на фоне развития дисбаланса в оксидантно-антиоксидантной системе; препарат ксимедон обладает антиоксидантной активностью, что обосновывает его применение в комплексной патогенетической терапии стрептококковой ангины.

8. К факторам риска рецидивирующего течения ангины относятся длительное сохранение (в течение 1-3 месяцев) цитогенетических нарушений в соматических клетках (повышение уровня эритроцитов с микроядрами и лим-

фоцитов с аберрациями хромосом), дисбаланс в оксидантно-антиоксидантной (повышение гидроперекисей, малонового диальдегида и снижение антиокси-дантной емкости плазмы) и иммунной системах (снижение уровня CD4, повышение HLA-DR лимфоцитов, повышение функционально-метаболической активности нейтрофилов по НСТ-тесту, ЦИК), наличие у пациента медленного фенотипа ацетилирования.

9. Включение отечественного лекарственного средства ксимедон в комплексную терапию больных стрептококковой ангиной оказывает положительное влияние на клиническое течение заболевания, способствуя сокращению продолжительности интоксикационного, тонзиллярного синдромов и регионарного лимфаденита, а в отдаленном периоде наблюдения уменьшению числа рецидивов болезни. Клинические эффекты ксимедона сопровождаются антимутагенным, антиоксидантным, иммуномодулирующим действием, а также индуцирующим влиянием на метаболические ферментные системы ацетилирования и микросомального окисления.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Для уточнения диагноза стрептококковой ангины и проведения дифференциальной диагностики с тонзиллитами другой этиологии рекомендуется исследование уровня антител к А-ПСХ S. pyogenes и использование экспресс-идентификации S. pyogenes на основе выявления генов эритрогенных токсинов spe В и spe F (mf) с помощью ПЦР.

2. Для диагностики степени тяжести заболевания, прогнозирования рецидивов, мониторинга патогенетической терапии рекомендуется включать в комплекс обследования больных стрептококковой ангиной в острой фазе и в периоде ранней реконвалесценции определение цитогенетических (эритроциты с микроядрами), иммунологических (CD3+, CD4+, CD 16+, HLA-DR+, ФАН, ЦИК) показателей и маркеров оксидантно-антиоксидантного потенциала (гидроперекиси, малоновый диальдегид, церулоплазмин, антиоксидантная емкость плазмы крови).

3. Для оптимизации эффективности этиопатогенетического лечения и индивидуализации терапии рекомендуется определение фенотипов окисления и ацетилирования у больных с тяжелым и рецидивирующим течением стрептококковой ангины путем определения фракции дозы изониазида в моче в течение 6 часов и оценки среднего уровня содержания антипирина в слюне в течение 12 часов.

4. При рецидивирующем и тяжелом течении стрептококковой ангины с целью коррекции цитогенетических нарушений, дисбаланса в оксидантно-антиоксидантной и иммунной системах, а также индукции процессов биотрансформации лекарственных препаратов (при медленном фенотипе ацетилирования и окисления) в остром периоде заболевания рекомендуется включать в комплексную патогенетическую терапию лекарственный препарат ксимедон в таблетированной форме (по 0,5 г 3 раза в день в течение 7 дней).

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Кравченко, И.Э. Фенотипическая характеристика моноцитов периферической крови у больных ангиной стрептококковой этиологии и ее изменение при имму-нокорригирующей терапии / И.Э. Кравченко, И.Г. Мустафин // Съезд инфекциони-стов.-М., I998.-C.221-222.

2. Кравченко, И.Э. Динамика ЭКГ у больных ангиной / И.Э. Кравченко,

B.Х. Фазылов, Г.Ф. Фахрутдинова // Современные технологии диагностики и терапии инфекционных болезней: материалы науч. конф.-СПб., 1999.—С. 135—136.

3. Кравченко, И.Э. Сравнительная клинико-микробиологическая характеристика и антивирулентность при ангине в инфекционных стационарах / И.Э. Кравченко, Г.Х. Муртазина, В.Х. Фазылов, J1.K. Цукерман // Общество, семья, здоровье: материалы науч.-практ. конф., посвящ. 75-летию службы санитарного просвещения РТ.-Казань, 1999.-С.12.

4. Кравченко, И.Э. Применение отечественных иммунотропных препаратов в комплексной терапии рецидивирующих форм стрептококовой инфекции / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, Ф.С. Гилмуллина, И.Г. Мустафин II Материалы конференции, посвященной 70-летию Пака.-М., 2000.-С.98-100.

5. Кравченко, И.Э. Динамика показателей иммунитета у больных ангиной / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, И.Г. Мустафин // Актуальные проблемы инфекционной патологии: материалы юбил. науч.-практ. конф., посвящ. 100-летию клинической инфекционной больницы № 1 им. А.Ф. Агафонова.-Казань, 2000.-С.250.

6. Кравченко, И.Э. Изменение уровня естественной колонизации буккального эпителия у больных различными формами ангины в динамике заболевания / И.Э. Кравченко, Г.Ф. Фахрутдинова, В.Х. Фазылов // Актуальные проблемы инфекционной патологии: материалы юбил. науч.-практ. конф., посвящ. 100-летию клинической инфекционной больницы № 1 им. А.Ф. Агафонова.-Казань, 2000.-С.104.

7. Кравченко, И.Э. Иммунный статус у больных ангиной и его коррекция препаратом ксимедон / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, И.Г. Мустафин, Г.А. Таирова II Инфекционные болезни: диагностика, лечение, профилактика: Рос.-Итал. науч. конф.-СПб., 2000.-С.266.

8. Кравченко, И.Э. Естественная колонизация буккального эпителия у больных ангиной / И.Э. Кравченко, Г.Ф. Фахрутдинова, В.Х. Фазылов II Современные проблемы эпидемиологии, диагностики и лечения инфекционных и аллергических заболеваний: материалы юбил. конф. КНИЭМ.-Казань, 2000.-С.53.

9. Кравченко, И.Э. Состояние гуморального антибактериального иммунитета у больных ангиной / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, О.Д. Зинкевич, H.A. Сафина // Современные проблемы эпидемиологии, диагностики и лечения инфекционных и аллергических заболеваний: материалы юбил. конф. КНИЭМ.-Казань, 2000.-С.52-53.

10. Кравченко, И.Э. Показатели центральной гемодинамики у реконвалесцен-тов ангины с повышенным титром аутоантител к миокарду / И.Э. Кравченко, Ю.А. Гречухина, В.Н. Ослопов, В.Х. Фазылов II Материалы VII научно-практической конференции молодых ученых.-Казань, 2002.-С.47.

11. Кравченко, И.Э. Определение антигена Streptococcus pyogenes в сыворотках крови больных ангиной / И.Э. Кравченко, Г.Ф. Фахрутдинова, В.Х. Фазылов, Л.И. Мингазова II Материалы VI Российского съезда инфекционистов.-СПб., 2003.-

C.399.

12. Кравченко, И.Э. Юшнико-иммунологический статус и его коррекция при ангине препаратом «ксимедон» / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, О.Д. Зинкевич,

стике и лечении инфекционных болезней: VII Рос. съезд инфекционистов.-Н. Новгород, 2006.-С.89.

25. Кравченко, Н.Э. Изучение влияния препарата ксимедон на фенотипы окисления у больных стрептококковой ангиной / И.Э. Кравченко, Р.Г. Зарипова, В.Х. Фазылов, С.Ю. Гармонов, A.B. Яковлева // Человек и лекарство: материалы XTV Рос. на-цион. конгр.-М., 2007.-С.555.

26. Кравченко, И.Э. Влияние ксимедона на показатели оксидантно-антиоксидантной системы у больных стрептококковым тонзиллитом / И.Э. Кравченко, Р.Г. Зарипова, В.Х. Фазылов // Материалы юбилейной научно-практической конференции, посвященной памяти заведующих кафедрой инфекционных болезней КГМУ - 120-летию со дня основателя кафедры, проф. Б.А. Вольтера и 90-летию его ученика, проф. А.Е. Резника.-Казань, 2007.-С.78.

27. Кравченко, И.Э. Изменения в системе антиоксидантной защиты у больных стрептококковым тонзиллитом и возможности коррекции ксимедоном / И.Э. Кравченко, Р.Г. Зарипова, В.Х. Фазылов // Материалы юбилейной научно-практической конференции, посвященной памяти заведующих кафедрой инфекционных болезней КГМУ - 120-летию со дня основателя кафедры, проф. Б.А. Вольтера и 90-летию его ученика, проф. А.Е. Резника.-Казань, 2007.-С.79.

28. Кравченко, И.Э. Фснотипирование процессов ацетилирования у больных рожей и корригирующая терапия ксимедоном / И.Э. Кравченко, Р.Г. Зарипова,

B.Х. Фазылов // Материалы юбилейной научно-практической конференции, посвященной памяти заведующих кафедрой инфекционных болезней КГМУ - 120-летию со дня основателя кафедры, проф. Б.А. Вольтера и 90-летию его ученика, проф.

A.Е. Резника-Казань, 2007.-С.80.

29. Кравченко, И.Э. Влияние ксимедона на состояние метаболических систем ацетилирования и окисления у больных стрептококковыми ангинами / И.Э. Кравченко, Р.Г. Зарипова, С.Ю. Гармонов, Н.С. Шитова, Т.Н. Галиуллина // Человек и лекарство: материалы XV Рос. национ. конгр.-М., 2008.—С. 179—180.

30. Кравченко, И.Э. Исследование процессов ацетилирования у больных рожей на фоне базисной терапии и лечения ксимедоном / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов,

C.Ю. Гармонов, A.B. Яковлева, Т.Н. Галиуллина И Человек и лекарство: материалы XV Рос. национ. конгр.-М., 2008.-С.180.

31. Кравченко, И.Э. Косвенное определение активности микросомальных окси-даз гепатоцитов и ее фармакологическая коррекция ксимедоном при стрептококковой ангине / И.Э. Кравченко, С.Ю. Гармонов, Н.С. Шитова, A.B. Яковлева, Зарипова,

B.Х. Фазылов//Химико-фармацевтический журнал-2008,—№ 12.-С.З-7.

32. Кравченко, И.Э. Оценка метаболических систем ацетилирования и окисления и их терапевтическая коррекция ксимедоном / И.Э. Кравченко, С.Ю. Гармонов, Р.Г. Зарипова, В.Х. Фазылов, A.B. Яковлева // Казанский медицинский журнал,-2008,—№ 4.-С.452-457.

33. Кравченко, И.Э. Генетическая характеристика токсигенности культур стрептококков группы А, выделенных от больных ангиной / И.Э. Кравченко, Н.Ф. Дмитриева, A.C. Ещина, М.Ю. Кириллов, Ю.М. Тимофеев, Н.И. Брико // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.-2009.—№ I.-C.76-78.

34. Кравченко, И.Э. Клинико-диагностическое значение определения антител к А-полисахариду Streptococcus pyogenes и использование ксимедона в комплексной терапии больных ангиной / И.Э. Кравченко, Д.А. Клейменов, В.Х. Фазылов, Н.И. Брнко // Эпидемиология и инфекционные болезни.-2009.-№ 3.-С.57-61.

35. Кравченко, И.Э. Индукционное влияние ксимедона на активность микросо-мальных оксидаз печени человека / И.Э. Кравченко, С.Ю. Гармонов, Н.С. Шитова, A.B. Жарехина, В.И. Погорельцев, Т.А. Киселева, И.Е. Зыкова // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии.-2010,—№ 4.—С.31—35.

36. Кравченко, И.Э. Нестабильность генома при стрептококковой ангине - механизмы, коррекция / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов // Инфекционные болезни: материалы 1 ежегод. Всерос. конгр. по инфекционным болезням.-2009.-Том 9, прил. 4,-С.103.

37. Кравченко, И.Э. Streptococcus pyogenes, как фактор инициации нестабильности генома при ангине стрептококковой этиологии / И.Э. Кравченко, В.В. Семенов, Е.С. Кашпаева II Актуальные проблемы инфекционной патологии: материалы Рос. юбип. науч.-практ. конф., посвящ. 85-летию кафедры инфекционных болезней и эпидемиологии ГОУ ВПО Сибирский гос. мед. университет Росздрава.-Томск, 2009.-С.89-91.

38. Кравченко, И.Э. Диагностическое и прогностическое значение определения антител к А-полисасхариду Streptococcus pyogenes у больных ангиной / И.Э. Кравченко, Н.И. Брико И Проблемы современной эпидемиологии. Перспективные средства и методы лабораторной диагностики и профилактики актуальных инфекций: материалы Всерос. науч. конф.-СПб., 2009.-C.102-I03.

39. Кравченко, И.Э. Идентификация Streptococcus pyogenes у больных ангиной методом ПЦР Проблемы современной эпидемиологии / И.Э. Кравченко, Н.И. Брико // Перспективные средства и методы лабораторной диагностики и профилактики актуальных инфекций: материалы Всерос. науч. конф.-СПб., 2009.-С. 102.

40. Кравченко, И.Э. Нестабильность клеточного генома при патологических состояниях инфекционного генеза / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, В.В. Семенов / Эпидемиология и инфекционные болезни.-2010.—№4.-С.47-49.

41. Кравченко, И.Э. Патогенетические механизмы ангины, как стрептококковой инфекции / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, В.В. Семенов // Инфекционные болезни: материалы II ежегод. Всерос. конгр. по инфекционным болезням.-2010.-Том 8, прил. 1.-С. 157.

42. Кравченко, И.Э. Генетически детерминированные процессы ацетилирова-ния у больных рожей и их фармакологическая коррекция / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, С.Ю. Гармонов // Инфекционные болезни: материалы Н ежегод. Всерос. конгр. по инфекционным болезням.-2010.-Том 8, прил. 1.-С. 156-157.

43. Кравченко, И.Э. Патогенетические механизмы нестабильности генома при ангине, обусловленной Streptococcus pyogenes / И.Э. Кравченко И Медицинская генетика: материалы VI съезда Рос. общ. мед. генетиков.-Ростов н/Д, 2010.-С.94.

44. Кравченко, И.Э. Нестабильность генома у больных рожей и корригирующая терапия / И.Э. Кравченко, Г.И. Айбатова // Актуальные вопросы инфекционной патологии: материалы юбил. науч.-практ. конф., посвящ. 85-летию создания кафедры.-Казань, 2010.-С.81.

45. Кравченко, И.Э. Эффективность препарата ксимедон в комплексной терапии больных стрептококковой ангиной / И.Э. Кравченко, Р.Г. Зарипова // Актуальные вопросы инфекционной патологии: материалы юбил. науч.-практ. конф., посвящ. 85-летию создания кафедры.-Казань, 2010.-С.80.

46. Кравченко, И.Э. Патогенетические механизмы ангины, обусловленной Streptococcus pyogenes / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, В.В. Семенов // Актуальные

вопросы инфекционной патологии: материалы юбил. науч.-практ. конф., посвящ. 85-летию создания кафедры.-Казань, 2010.-С.82.

47. Кравченко, И.Э. Новые аспекты в патогенезе стрептококковой ангины / Н.Э. Кравченко, В.В. Семенов // Материалы 2-ой международной телеконференции по медицине, биологии и экологии.-Томск, 2010.-С.28.

48. Кравченко, И.Э. Оценка антиоксидангной эффективности лекарственных препаратов, применяемых в лечении стрептококковой ангины / И.Э. Кравченко // Молекулярная медицина и безопасность: материалы VII науч.-практ. конф. с междунар. участием.-М., 2010.-С.105-107.

49. Кравченко, И.Э. Клинико-экспериментальный анализ дестабилизации генома при ангине, обусловленной Streptococcus pyogenes / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазьшов,

B.В. Семенов // Журнал инфектологии: материалы I конгр. Евро-Азиатского общества по инфекционным болезням «Проблема инфекции в современной медицине».-2010,-Том 2, № 4.-С.76.

50. Гармонов, С.Ю. Методы оценки и регуляция активности генетически детерминированных метаболических ферментных систем организма человека /

C.Ю. Гармонов, И.Э. Кравченко, З.Ч. Нгуэн, И.Ф. Мингазетдинов, Т.А. Киселева,

B.Х. Фазылов//Биомедицина.-2010.—№ 3.-C.3ÍM1.

51. Фазылов, В.Х. Ксимедон в клинике инфекционных болезней / В.Х. Фазылов, А.И. Фазульзянова, И.Э. Кравченко, Ф.С. Гилмуллина // Практическая медицина.^ 1.-№1(48).~С.214-219.

52. Кравченко, И.Э. Нестабильность генома при ангине стрептококковой этиологии / И.Э. Кравченко, Е.С. Кашпаева, В.В. Семенов, A.J1. Масленникова // Казанский медицинский журнал.-20И.-Том 92, № 3.-С.413—416.

53. Kravchenko, I.E. The role of Streptococcus pyogenes and some metabolites in formation of genomic instability by tonsillitis of patient / I.E. Kravchenko, V.V. Semenov, E.C. Kochpaeva // European Human Genetics conference Amsterdam, The Netherlands, мау 201 l.-ESHG, 2011. - Control No. -J03.19- P 158.

54. Гармонов, С.Ю. Оценка активности метаболических ферментных систем у больных стрептококковыми ангинами с целью персонализации лечения / С.Ю. Гармонов, З.Ч. Нгуэн, A.B. Жарехина, И.Э. Кравченко // Инфекционные болезни: материалы III ежегод. Всерос. конгр. по инфекционным болезням.-2011.-Том 9, прил. 1-

C.188.

55. Гармонов, С.Ю. Персонализированный прием ксимедона в качестве индуктора системы микросомальных оксидаз / С.Ю. Гармонов, И.Э. Кравченко // Человек и лекарство: материалы XVIII Рос. нац. конгр.-М., 2011.-С.502.

56. Кравченко, И.Э. Персонализация лечения больных стрептококковыми ангинами на основе определения активности метаболических ферментных систем / И.Э. Кравченко, Н.И. Брико, В.Х. Фазылов II Эпидемиология и инфекционные бо-лезни.-2011 .-№ 4.-С.4-7.

57. Кравченко, И.Э. Патогенетические аспекты ангины, как стрептококковой инфекции / И.Э. Кравченко // Практическая медицина.-2011 .-№ 3(51 ).-С.202-206.

58. Кравченко, И.Э. Синдром тонзиллита в клинической практике: учеб. пособ. для интернов и ординаторов / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов.-Казань, 2008.-76 с.

59. Кравченко, И.Э. Инфекционные болезни Гриф УМО: учеб. пособ. для самостоят. работы «луд. леч. фак-та / И.Э. Кравченко .-Казань, 2009.-126 с.

60. Кравченко, И.Э. Синдром тонзиллита в клинической практике: учеб.-метод. пособ. для слушателей ПДО и ДПО / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов.-Изд. 2-е, пере-раб. и доп.-Казань, 2010.-79 с.

61. Кравченко, И.Э. Применение ксимедона в клинической практике: учеб.-метод. пособ. для слушателей ПДО и ДПО / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, А.И. Фа-зульзянова, Ф.С. Гилмуллина.-Казань, 2010.-40 с.

62. Кравченко, И.Э. Инфекционные болезни: электрон, учеб. пособ. с грифом УМО / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, Ф.С. Гилмуллина, А.И. Загидуллина.-Самара, 2010.

63. Кравченко, И.Э. Иммунотропная терапия в клинике внутренних болезней: учеб.-метод. пособ. для слушателей ПДО и ДПО I И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, А.И. Фазульзянова, Ф.С. Гилмуллина-Казань, 2011.-42 с.

64. Кравченко, И.Э. Способ определения состояния генома у больных ангиной стрептококковой этиологии / И.Э. Кравченко, В.В. Семенов: удостоверение на рацпредложение АССР - 005 от 5.10.2010 г., выдано ГОУ ВПО «Казанский государственный медицинский университет».

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

АОС -антиоксидантная система

АОЕ - антиоксидантная ёмкость А - ПСХ - А - полисахарид

АХ -аберрации хромосом

АЭ - антимутагенный эффект

ГТ1 -гидроперекиси ГИНК - гидразид изоникотиновой кислоты

д.б. -день болезни

да - диспансерное наблюдение

жк -живая культура

ЛА -лакунарная ангина

ЛВ -лекарственное вещество

МДА -малоновый диальдегид

МЯ - микроядра

НСТ-тест - тест восстановления нитроси-него тетразолия

ПОЛ - перекисное окисление липидов

САГ - суперантигены

СГА - стрептококки группы А

ФА - фенотип ацетилирования

ФА - фагоцитарная активность нейтро-

филов

ФГА - фитогемагглютинин

ФНА - фибринозно-некротическая ангина

ФО - фенотип окисления

ЦП - церулоплазмин

ЦИК - циркулирующие иммунные комплексы

ЧРА - часто рецидивирующая ангина

ЭК -экстракт

ЭМ - эритроциты с микроядрами

ИАТ -Ы-ацетилтрансфераза

Подписано в печать 17.06.2011. Тираж 100 экз. Заказ 11-92 Отдел оперативной полиграфии ГАУ «РМБИЦ» 420059 Казань, ул. Хади Такташа, 125

 
 

Оглавление диссертации Кравченко, Ирина Эдуардовна :: 2011 :: Москва

Наименование глав Стр.

Оглавление

Перечень условных сокращений

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Современные представления о патогенезе ангины как стрептококковой инфекции

1.1.1. Этиологическая структура и общая характеристика стрептококковой инфекции на современном этапе

1.1.2. Роль Streptococcus pyogenes в патогенезе ангины

1.2. Феномен нестабильности клеточного генома в инфекционном процессе, его связь с эндомутагенами и регулирующими системами

1.2.1. Оксидантно-антиоксидантный статус как эндомутагенная система

1.2.2. Иммунный ответ при ангине как стрептококковой инфекции и роль иммунной системы в регуляции стабильности клеточного генома

1.3. Генетически детерминированные ферментные системы био трансформации (окисления и ацетилирования) в норме и патологии и их возможное участие в формировании нестабильности генома

1.4. Фармакологическая коррекция клеточных мутагенных процессов

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Клиническая характеристика больных

2.2. Методы исследования

2.2.1. Стандартные методы лабораторной диагностики

2.2.2. Специальные методы исследования

2.2.2.1. Цитогенетические методы

2.2.2.2. Определение содержания продуктов перекисного окисления липидов (ПОЛ)

2.2.2.3. Оценка состояния антиоксидаптной системы

2.2.2.4. Определение показателей клеточного, гуморального иммунитета и факторов неспецифической резистентности организма

2.2.2.5. Определение уровня антител к А - полисахариду Streptococcus pyogenes

2.2.2.6. Оценка состояния ферментных систем ацетилирования и микросомального окисления

2.2.2.7. Определение токсигенности культур стрептококков группы А, выделенных от больных ангинами

2.2.2.8. Методы оценки про - и антиоксидантной активности лекарственных препаратов (пенициллина, цефазолина, ксимедона)

2.2.2.9. Определение мутагенной активности Streptococcus pyogenes в эксперименте

ГЛАВА 3. КЛИНИКО-ПАТОГЕНЕТИЧЕСКИИ АНАЛИЗ ЦИТОГЕНЕТИЧЕСКИХ, ИММУНОЛОГИЧЕСКИХ, ОКСИДАНТНО-АНТИОКСИДАНТНЫХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ И СИСТЕМ БИОТРАНСФОРМАЦИИ У ПАЦИЕНТОВ СТРЕПТОКОККОВОЙ АНГИНОЙ В ДИНАМИКЕ ЗАБОЛЕВАНИЯ

3.1. Цитогенетические исследования

3.1.1. Результаты исследования уровня эритроцитов с микроядрами в периферической крови- у пациентов стрептококковой ангиной в динамике заболевания

3.1.2. Исследование количества лимфоцитов с аберрациями хромосом

3.2. Оксидантно-антиоксидантный статус больных стрептококковой ангиной

3.2.1. Состояние оксидантно-антиоксидаитпой системы у больных стрептококковой ангиной с учетом кратности заболевания

3.2.2. Состояние оксидантно-антиоксидантной сисхемы у больных стрептококковой ангиной с учсюм характера местного процесса

3.3. Иммунологические исследования

3.3.1. Сравнительная характеристика показателей иммунного статуса у больных стрептококковой ангиной с учетом кратное ги заболевания

3.3.2. Сравнительная характеристика показателей иммунного ciaiyTca у больных лакунарной и фибринозно-пекротической ангиной в динамике заболевания

3.3.3. Сосюяние специфического иммунного ответа у больных стрептококковой ангиной по результатам определения уровня антител к А - полисахариду Streptococcus pyogenes

3.4. Системы биотрансформации у больных стрептококковой ангиной

3.4.1. Оценка процессов микросомального окисления у больных стрептококковой ангиной

3.4.2. Оценка состояния метаболической системы ацетилирования у больных стрептококковой ангиной

3.5. Корреляционный анализ взаимосвязей цитогенетического, оксидантно-антиоксидантного, иммунного ciaiycoB и систем биотрансформации у больных стрептококковой ангиной

ГЛАВА 4. КЛИНИКО-ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ОБОСНОВАНИЕ ТОКСИЧЕСКОГО ПОВРЕЖДЕНИЯ КЛЕТОЧНОГО ГЕНОМА ПРИ СТРЕПТОКОККОВОЙ ИНФЕКЦИИ С ОЦЕНКОЙ КЛЕТОЧНО-ФЕРМЕНТАТИВНОЙ АКТИВНОСТИ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ, ПРИМЕНЯЕМЫХ В ЭТИОПАТОГЕНЕТИЧЕСКОЙ ТЕРАПИИ АНГИНЫ

4.1. Влияние Streptococcus pyogenes на цитогенетические структуры растений и животных в эксперименте

4.1.1. Оценка кластогенной активности экстракта и живой культуры Streptococcus pyogenes в эксперименте на клетках семян Crepis capillaries

4.1.2. Оценка кластогенной активности экстракта и живой культуры Streptococcus pyogenes в остром опыте на мышах

4.2. Характеристика токсигенности культур стрептококков группы А, выделенных от больных ангинами, и взаимосвязь с клиническим течением заболевания

4.3. Оценка про - и аптиоксидантпои активности лекарственных препаратов пенициллин, цефазолин, ксимедоп в химических ферментативных и клеточных модельных системах

ГЛАВА 5. КЛИНИКО-ПАТОГЕИЕТИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ ФАРМАКОЛОГИЧЕСКОЙ ЗАЩИТЫ КЛЕТОЧНОГО ГЕНОМА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ОТЕЧЕСТВЕННОГО ЛЕКАРСТВЕННОГО СРЕДСТВА КСИМЕДОН У БОЛЬНЫХ АНГИНОЙ СТРЕПТОКОККОВОЙ ЭТИОЛОГИИ

5.1. Влияние препарата ксимедон на клиническое течение стрептококковой ангины

5.2. Влияние ксимедона на цитогенетический статус больных при различных клинических формах стрептококковой ангины

5.3. Влияние ксимедона на оксидантно-аптиоксидантный статус больных стрептококковой ангиной

5.4. Влияние ксимедона на параметры иммунитета у больных стрептококковой ангиной

5.4.1. Иммунокорригирующая эффективность применения ксимедона в комплексной терапии больных ангиной с различной кратностью заболевания

5.4.2. Эффективность применения ксимедона в комплексной терапии больных ангиной с различным характером местного процесса

5.4.3. Влияние ксимедона на уровень антител к А - полисахариду у больных ангиной в динамике заболевания

5.5. Оценка влияния препарата ксимедон на метаболические ферментные системы биотрансформации у больных стрептококковой ангиной

5.5.1. Оценка влияния препарата ксимедон на активность процессов микросомального окисления у больных стрептококковой ангиной

5.5.2. Оценка влияния препарата ксимедон па активность процессов ацетилирования у больных стрептококковой ангиной

5.6. Катамнестические данные изучения влияния препарата ксимедон на течение инфекционного процесса у больных стрептококковой ангиной

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

ВЫВОДЫ

 
 

Введение диссертации по теме "Инфекционные болезни", Кравченко, Ирина Эдуардовна, автореферат

Актуальность:

Заболевания, вызванные стрептококком группы А (СГА), широко распространены во всем мире, а ангина среди стрептококкозов по частоте регистрации занимает первое место [36]. По данным ВОЗ около 616 млн. случаев стрептококковых тонзиллофарингитов ежегодно диагностируется среди всего населения планеты [301]. В России более 10 млн. детей и лиц юношеского возраста переносят респираторную стрептококковую инфекцию [203]. Исследования, проводимые в различных странах, указывают на рост заболеваемости населения стрептококковыми инфекциями и появление тяжелых форм заболевания, обусловленных изменчивостью возбудителя [357, 334, 295, 255, 87, 323, 429]. Стрептококковые инфекции остаются одной из важных причин нетрудоспособности населения, что позволило ВОЗ рассматривать их в ряду актуальных медицинских и социально-экономических проблем современного здравоохранения [443].

Формирование рецидивирующего течения стрептококковой ангины и частое развитие осложнений, несмотря на проводимую эгиотропную терапию, позволяет предполагать наличие еще не изученных патогенетических механизмов в инфекционном процессе при данном заболевании.

Ведущим возбудителем ангины является Streptococcus pyogenes, оказывающий на организм разностороннее действие в связи с наличием множества факторов патогенности. Среди последних наиболее значимы экзотоксины (суперантигены), влияющие па тройные органы па рецепторном уровне, изменяя их функцию и обуславливая особенности клинического течения заболевания [399, 388, 402, 315, 203].

В научной литературе имеются сообщения, свидетельствующие о возможности инфекционных агентов, в том числе и S. pyogenes, вызывать поражения ядерных структур клеток [377, 444, 422, 113, 277, 338, 455, 306, 107]. При этом формируется феномен нестабильности клеточного генома (ИГ), который индуцируется многими экзо- и эндогенными факторами. Предполагается, что в формировании нестабильности генома участвуют несколько механизмов, три из которых наиболее значимы: во-первых, повышение интенсивности процессов мутагенеза в клетках организма; во-вторых — снижение эффективной работы гепомпротекгорных систем; в третьих - накопление в периферической крови клеток с повреждениями в генетическом аппарате [6, 221, 223, 134, 453].

При развитии инфекционного процесса в организме повышение интенсивности мутагенных процессов может быть вызвано действием самого возбудителя заболевания и его токсинов, активацией процессов перекисиого окисления липидов, лекарственными препаратами, используемыми в лечении [24,390].

Формирование нестабильности клеточного генома при патологии может быть обусловлено снижением функциональной активности антиоксидантной системы, как геномпротекторной системы клетки [205, 102, 107, 38]. Иммунная система, осуществляющая контроль генетического постоянства организма, при дисфункции ее факторов, способствует увеличению числа клеток с цитогенетическими нарушениями [299, 117, 169, 404, 97]. Состояние генетически детерминированных ферментных систем биотрансформации, метаболизирующих лекарственные препараты, применяемые в лечении, определяет различную устойчивость к заболеваниям и эффективность проводимой терапии [268, 394, 393, 64, 139]. Отсюда понимание патогенеза ангины стрептококковой этиологии с позиции генетической концепции приобретает особое значение.

Актуальность поиска рациональных средств патогенетического лечения, направленных на «фармакологическую защиту генома» [84, 85, 229] у пациентов со стрептококковой ангиной на фоне традиционной антибиогикотерапии позволили нам включить в исследование отечественный лекарственный препарат пиримидинового ряда «ксимедоп» (гидроксиэтилдиметилдигидропиримидин). В серии экспериментальных и клинических исследований доказано его антиоксидантпое, мембраностабилизирующее, иммуномодулирующее и антимутагенное действие [236, 272, 275, 48], что обусловило использование препарата в клинике инфекционных болезней [70, 254, 172].

На основании вышеизложенного и, исходя из актуальности нерешенных клинико-патогенетических и лечебно-диагностических проблем стрептококковых инфекций, в том числе ангины, нами были сформулированы цели и задачи данного исследования.

Цель исследования:

Обосновать клинико-патогенетические механизмы дестабилизации клеточного генома при стрептококковой ангине и разработать способ их терапевтической коррекции с учетом биотрапсформации лекарственных средств.

Задачи исследования:

1. Выявить особенности клинического течения ангины, обусловленной Streptococcus pyogenes, на современном этапе.

2. Изучить состояние клеточного генома у больных стрептококковой ангиной и обосновать конкретные механизмы, провоцирующие появление хромосомной изменчивости.

3. Установить роль процессов перекисного окисления липидов и антиоксидантного потенциала организма в реализации повреждения клеточного генома при различных формах ангины в динамике заболевания.

4. Оценить состояние иммунной системы и специфического иммунного ответа у больных ангиной стрептококковой этиологии и выявить взаимосвязь с цитогенетическими показателями.

5. Изучить состояние систем биотрансформации ксенобиотиков у больных стрептококковой ангиной на основании определения фенотипов ацетилировапия и микросомального окисления.

6. В эксперименте определить мутагенную и токсигенную активность штаммов Streptococcus pyogenes, выделенных от наблюдаемых пациентов с ангиной, и на клеточно-ферментативных моделях установить оксидантпую активность лекарственных препаратов, используемых в этиопатогенетической терапии стрептококковой ангины.

7. Провести корреляционный анализ взаимосвязей цитогенетических нарушений, оксидантно-антиоксидантного потенциала, иммунного статуса, систем биотрансформации и систематизировать факторы риска рецидивирующего течения ангины.

8. Оценить влияние ксимедона на клиническое течение ангины, интенсивность мутагенеза, оксидантно-антиоксидантный потенциал, иммунный статус и системы биотрансформации в динамике заболевания и разработать показания к его примепеишо в комплексной терапии больных ангиной.

Научная новизна и теоретическая значимость работы

Установлено новое патогенетическое звено ангины стрептококковой этиологии, обусловленное повреждением генетического аппарата соматических клеток с учетом воздействия экзо- и эндомутагенов, антимутагеииых систем, которое раскрывает ранее неизвестные механизмы взаимосвязи возбудителя и макроорганизма.

Определена роль оксидантно-антиоксидантного потенциала и иммунной системы в дестабилизации клеточного генома у больных стрептококковой ангиной.

Впервые изучено состояние метаболических ферментных систем биотрансформации ксенобиотиков, установлена их взаимосвязь с уровнем цитогенетических нарушений и выявлен риск развития тяжелого, рецидивирующего течения ангины у лиц с медленным фенотипом ацетилирования.

Впервые в экспериментальных условиях доказано наличие у штаммов S. pyogenes, выделенных от больных ангиной, мутагенных свойств и идентифицирована их токсигенная активность.

На основании комплексной оценки цитогенетических, иммунологических показателей и оксидантно-антиоксидантного потенциала выявлены факюры риска рецидивирующего и тяжелого течения заболевания с угрозой хронизации.

Дано клинико-патогенешческое обоснование влияния ксимедона па механизмы нестабильности клеточного генома через его корригирующее действие на активность оксидантно-апгиоксидантной, иммунной систем, а также систем биотрансформации - ацешлирования и микросомальпого окисления при стрептококковой ангине.

Практическая значимость работы

1. Для прогнозирования исходов заболевания и оценки эффективности проводимой терапии у больных различными формами стрептококковой ангины разработан и апробирован скрининговый комплекс лабораторных тестов, отражающих состояние генома соматических клеток и метаболических факторов, влияющих на этот процесс.

2. Для индивидуальной коррекции лечения больных стрептококковой ангиной рекомендовано определение фенотипов ацетилировапия и окисления. Высокий риск рецидивирующего и тяжелого течения ангины для лиц с медленными фенотипами ацетилировапия и окисления позволит определять прогноз заболевания и тактику лечения в каждом конкретном случае.

3. Для коррекции цитогенетических нарушений, дисбаланса в оксидантно-антиоксидантной, иммунной системах и индукции процессов ацетилирования и окисления предложен эффективный метод патогенетической терапии больных тяжелым и рецидивирующим течением стрептококковой ангины отечественным лекарственным средством ксимедон, который способствует ускорению процесса выздоровления и сокращению рецидивов болезни.

Положения, выносимые на защиту

1. При стрептококковой ангине формируется ранее неизвестный тип патологического процесса — нестабильность клеточного генома, определяющий тяжесть заболевания и прогноз его рецидивирования при участии ряда мутагенов и антимутагенных агентов.

2. Оксидативный стресс является неспецифическим звеном патогенеза стрептококковой ангины, в условиях которого значительно возрастает действие продуктов перекиспого окисления липидов на геном организма в целом.

3. Иммунопатогенез стрептококковой ангины определяется изменением количественного состава иммунокомпетентиых клеток и их функционального состояния. Этот процесс сопровождается развитием генетических нарушений в соматических клетках: увеличением содержания в периферической крови эритроцитов с микроядрами и лимфоцитов с аберрациями хромосом.

4. Системы биотрансформации (ацетилирования и микросомального окисления) у больных стрептококковой ангиной определяют скорость метаболизма лекарственных средств в организме, влияя на процессы мутагенеза, формирование цитогенетических нарушений и обуславливаюi особенности течения заболевания.

5. Возбудитель заболевания, Streptococcus pyogenes, способствует формированию феномена нестабильности генома соматических клеток у больных ангиной, обладая токсигенной активностью и проявляя мутагенный эффект.

6. Комплексное бактериологическое, биохимическое, цитогенетическое и иммунологическое обследование больных стрептококковой ангиной позволяет прогнозировать рецидивирующее течение заболевания, развитие осложнений и дифференцированно назначать антиоксидантную, ангимутагенную и иммуномодулирующую терапию.

7. Отечественное лекарственное средство ксимедон в комплексной терапии ангины оказывает антимутагенное действие за счет антиоксидантпого и иммуномодулирующего эффектов, что сопровождается положительной клинической динамикой в виде сокращения длительности интоксикационного, тонзиллярного синдромов, регионарного лимфаденита и ускорением процессов выздоровления.

Апробация работы

Материалы диссертации были доложены и обсуждены на V Съезде Российского общества медицинских генетиков (г. Москва, 2005); I конференции «Качественное использование лекарств и фармаконадзор» с международным участием (г. Казань, 2005); Российской научно-практической конференции, посвященной 110-летию кафедры инфекционных болезней Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова (г. Санкт-Петербург, 2006); VII Российском съезде инфекционистов «Новые технологии в диагностике, лечении инфекционных болезней» (г. Н. Новгород, 2006); Европейской конференции генетиков (г. Амстердам, 2006); Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (г. Москва, 2007); Юбилейной научно-практической конференции, посвященной памяти заведующих кафедрой инфекционных болезней Казанского государственного медицинского университета (КГМУ) - 120-летию со дня рождения основателя кафедры, профессора Б.А. Вольтера и 90-летию профессора А.Е. Резника (г. Казань, 2007); XV Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (г. Москва, 2008); I Ежегодном конгрессе инфекционистов (г. Москва, 2009); Всероссийской научной конференции «Проблемы современной эпидемиологии. Перспективные средства и методы лабораторной диагностики и профилактики актуальных инфекций» (г. Санкт-Петербург, 2009); II Ежегодном конгрессе инфекционистов (г. Москва, 2010); VI Съезде Российского общества медицинских генетиков (г. Ростов-на-Дону, 2010); юбилейной научно-практической конференции, посвященной 85-летию создания кафедры инф. болезней КГМУ «Актуальные вопросы инфекционной патологии» (г. Казань, 2010); II международной телеконференции по медицине, биологии и экологии (г. Томск, 2010); II Конгрессе Международного общества клинических фармакологов и фармацевтов стран СНГ (г. Москва, 2010 г); VII Научно-практической конференции с международным участием «Молекулярная медицина и безопасность» (г. Москва, 2010); Первом Конгрессе ЕвроАзиатского Общества по инфекционным болезням «Проблема инфекции в современной медицине» (г. Санкг-Петербург, 2010); III Ежегодном конгрессе инфекционистов (г. Москва, 2010); Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (г. Москва, 2011); Европейской конференции генетиков (г. Амстердам, 2011).

Диссертационная работа заслушивалась на расширенных заседаниях кафедры инфекционных болезней и научно-проблемной комиссии КГМУ по «Диагностике, лечению и профилактике инфекционных болезней» в 2009 и 2011 гг.

Внедрение в практику

Результаты настоящего исследования используются в учебном процессе кафедры инфекционных болезней, кафедры биологии и медицинской генетики КГМУ, кафедры инфекционных болезней Казанской государственной медицинской академии (КГМА) на додипломном и последипломном уровнях подготовки специалистов.

Результаты диссертационной работы внедрены в лечебно-диагносгический процесс Республиканской клинической инфекционной больницы г. Казани, Ыабережночелнинской инфекционной больницы, 11-й городской поликлиники г. Казани, Всероссийского научного центра молекулярной диагностики и лечения Минздрава РФ (г. Москва).

Установлены новые медицинские показания к применению препарата пиримидинового ряда ксимедон (гидроксиэтилдиметилдигидропмримидин) -рекомендовано его использование в комплексной патогенетической терапии больных стрептококковой ангиной, как препарата обладающего иммунотропным действием (регистрационное удостоверение ЛС-000045, нормативная документация ЛС-000045-050311).

Публикации

По теме диссертации опубликовано 58 научных и 6 учебно-методических работ, из них 15 статей — в журналах, рекомендованных ВАК для докторских диссертаций. Основные положения проведенных исследований вошли в учебное пособие для ординаторов и интернов «Синдром тонзиллита в клинической практике» (2003), в учебное пособие с грифом УМО «Инфекционные болезни» (2007), в методические рекомендации для врачей «Применение ксимедона в клинической практике» (2009), в электронное учебное пособие с грифом УМО «Инфекционные болезни» (2010), в учебно-методическое пособие для слушателей последипломного образования «Синдром тонзиллита в клинической практике» 2-е издание (2010), в учебно-методическое пособие для слушателей последипломного образования «Иммупотропная терапия в клинике внутренних болезней» (2010).

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена па 373 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, 4 глав собственных исследований, обсуждения, выводов, практических рекомендаций, библиографического списка, включающего 284 отечественных и 173 иностранных источников и приложения. Работа иллюстрирована 63 таблицами и 60 рисунками.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Патогенетическое обоснование и терапевтическая коррекция нестабильности клеточного генома при ангине как стрептококковой инфекции (клинико-экспериментальное исследование)"

выводы

1. На современном этапе особенности стрептококковой ангины характеризуются преимущественным развитием заболевания у лиц молодого возраста, преобладанием лакунарной формы, тяжелым течением заболевания при фибринозно-некротической форме, в том числе более тяжелым и часю рецидивирующим течением у мужчин.

2. У больных стрептококковой ангиной в острый период заболевания наблюдаются цитогенетические изменения, проявляющиеся увеличением в периферической крови числа эритроцитов с микроядрами и лимфоцитов с аберрациями хромосом. При фибринозно-некротической и повторной формах заболевания признаки нестабильности клеточного генома сохраняются в периоде поздней реконвалесценции, что определяет формирование рецидивов болезни в течение первых 3 месяцев диспансерного наблюдения.

3. В острый период стрептококковой ангины происходит активация процессов перекисного окисления липидов и снижение антиоксидантной защшы организма с накоплением гидроперекисных продуктов, обладающих мутагенным действием. В периоде поздней реконвалесценции купирование цитогенетических нарушений происходит на фоне нормализации оксидантно-ан гиоксидантного потенциала. Установлена прямая корреляционная связь между уровнем цитогенетических нарушений и концентрацией продуктов липопероксидации и обратная - между уровнем эритроцитов с микроядрами и антиоксидантной емкостью плазмы, что свидетельствует об интенсификации процессов мутагенеза на фоне дисбаланса в оксидантно-антиоксидангпой системе.

4. В острый период ангины стрептококковой этиологии развивается дисбаланс в клеточном звене иммунитета и опсонофагоцитарной системе, проявляющийся уменьшением содержания лимфоцитов и их основных субпопуляций (СЭЗ+, СБ4+), повышением количества лимфоцитов с маркерами активации (НЬА - СЭ25+) на фоне угнетения фагоцитарной активности нейтрофилов и образования большого количества» ЦИКов. В периоде реконвалесценции изменения в иммунной системе у больных фибринозно-некротической и рецидивирующей формами ангины сохраняются.

5. У больных стрептококковой ангиной преобладают медленный феношп окисления и быстрый фенотип ацетилирования. При повторной, фибринозно-некротической формах болезни и особенно у лиц мужского пола достоверно чаще регистрируются медленные фенотипы окисления и ацетилирования, которые коррелируют с выраженными цитогенетическими изменениями, и изменениями оксидантно-антиоксидантного потенциала, сохраняющимися в периоде поздней реконвалесценции, что обуславливает более длшельпое течение инфекционного процесса.

6. Выделенные от пациентов с ангиной штаммы Streptococcus pyogenes обладают токсигенной активностью, обусловленной продукцией пирогенных экзотоксинов spe В, spe F, spe С, а также способны индуцировать аберрации хромосом в клетках Crepis capillaris и повышать уровень эритроциюв с микроядрами в периферической крови лабораторных животных, что свиде!ельствует об их мутагенной активности.

7. В эксперименте на клеточно-ферментативных моделях препараты бензил пенициллин и цефазолин не являются активными окислителями, однако при активации свободнорадикальных процессов приобретают прооксидаитные свойства, что свидетельс i вует об их возможном участии в процессах мутагенеза у больных ангиной на фоне развития дисбаланса в оксидангно-антиоксидантной системе; препарат ксимедон обладает антиоксидантной активностью, что обосновывает его применение в комплексной патогенетической терапии стрептококковой ангины.

8. К факторам риска рецидивирующего течения ангины относя 1ся длительное сохранение (в течение 1 — 3 месяцев) цитогенетических нарушений в соматических клетках (повышение уровня эритроцитов с микроядрами и лимфоцитов с аберрациями хромосом), дисбаланс в оксидантно-антиоксидантной (повышение гидроперекисей, малонового диальдегида и снижение антиоксидантной емкости плазмы) и иммунной системах (снижение уровня СЭ4, повышение НЬА - ЭЯ лимфоцитов, повышение функционально-метаболической активности нейтрофилов по НСТ - тесту, ЦИК), наличие у пациента медленного фенотипа ацетилирования.

9. Включение отечественного лекарственного средства ксимедон в комплексную терапию больных стрептококковой ангиной оказывает положительное влияние на клиническое течение заболевания, способствуя сокращению продолжительности интоксикационного, тонзиллярного синдромов и регионарного лимфаденита, а в отдаленном периоде наблюдения уменьшению числа рецидивов болезни. Клинические эффекты ксимсдона сопровождаются антимутагенным, антиоксидантным, иммуномодулирующим действием, а также индуцирующим влиянием на метаболические ферментные системы ацетилирования и микросомального окисления.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Для уточнения диагноза стрептококковой ангины и проведения дифференциальной диагностики с тонзиллитами другой этиологии рекомендуется исследование уровня антител к А - ПСХ S. pyogenes и использование экспресс-идентификации S. pyogenes на основе выявления генов эритрогенных токсинов spe В и spe F (mf) с помощью ПЦР.

2. Для диагностики степени тяжести заболевания, прогнозирования рецидивов, мониторинга патогенетической терапии рекомендуется включать в комплекс обследования больных стрептококковой ангиной в острой фазе и в периоде ранней реконвалесценции определение цитогенетических (эритроциты с микроядрами), иммунологических (CD3+, CD4+, CD 16+, HLA - DR+, ФАН, ЦИК) показателей и маркеров оксидантио-антиоксидаптного потенциала (гидроперекиси, малоновый диальдегид, церулоплазмин, антиоксидантная емкость плазмы крови).

3. Для оптимизации эффективности этиопатогенетического лечения и индивидуализации терапии рекомендуется определение фенотипов окисления и ацетилирования у больных с тяжелым и рецидивирующим течением стрептококковой ангины путем определения фракции дозы изониазида в моче в течение 6 часов и оценки среднего уровня содержания антипирина в слюне в течение 12 часов.

4. При рецидивирующем и тяжелом течении стрептококковой ангины с целью коррекции цитогенетических нарушений, дисбаланса в оксидаптпо-антиоксидантной и иммунной системах, а также индукции процессов биотрансформации лекарственных препаратов (при медленном фенотипе ацетилирования и окисления) в остром периоде заболевания рекомендуется включать в комплексную патогенетическую терапию лекарственный препарат ксимедон в таблетированной форме (по 0,5 г. 3 раза в день в течение 7 дней).

320

Благодарности

Считаю приятным долгом выразить глубокую благодарность и признательность научным консультантам - зав. кафедрой инфекционных болезней Казанского ГМУ Вильдану Хайруллаевичу Фазылову и зав. кафедрой эпидемиологии Первого ММГУ им. И.М. Сеченова, члену-корреспонденту РАМН, профессору Николаю Ивановичу Брико за постоянную научно-консультативную помощь при проведении данной работы.

Приношу искреннюю благодарность и признательность за консультативную и организационную помощь в выполнении и обсуждении отдельных фрагментов работы зав. кафедрой биологии и медицинской генетики Казанского ГМУ, профессору Валерию Васильевичу Семенову и профессору кафедры аналитической химии Казанского государственного технологического университета Сергею Юрьевичу Гармонову.

Выражаю глубокую благодарность сотрудникам кафедры инфекционных болезней КГМУ, а также коллективу Республиканской клинической инфекционной больницы г. Казани и лично кандидату мед. наук, врачу Райсе Галлиуловне Зариповой за помощь в моей работе.

Огромное спасибо администрации ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» и лично академику РАМН Валентину Ивановичу Покровскому за организацию защиты моей диссертационной работы.

Отдельное спасибо выражаю своей семье и друзьям за проявленное понимание, терпение, заботу и внимание.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2011 года, Кравченко, Ирина Эдуардовна

1. Абдулхаков, P.A. Современные принципы лечения язвенной болезни / P.A. Абдулхаков // Казанский медицинский журнал.—2002.—Т. 83, № 3.— С.233—236.

2. Абельдяев, Д.В. Нозологическая диагностика и исходы артрита, ассоциированного со стрептококковой инфекцией: автореф. дис. . канд. мед. наук / Д.В. Абельдяев.—М., 2005.—30 с.

3. Абрамова, Ж.И. Человек и противоокислительные вещества / Ж.И. Абрамова, Г.И. Оксенгендлер.—Л., 1985.—230 с.

4. Айзензон, М.Г. Мутагенное действие природных и синтетических полинуклеотидов / М.Г. Айзензов, Ю.Н. Александров, Т.И. Бужиевская.— Киев: Наук, думка, 1990.—128 с.

5. Акимов В.Н. Особенности изменений кариотипа лимфоцитов периферической крови больных хроническим вирусным гепатитом С / В.Н. Акимов, С.С. Бацков, С.Ii. Колюбаева // Мед. академический журнал.— 2004.—Т. 5,№ 1.—С.64—69.

6. Акифьсв, А.П. Мутагенез и генетический гомеостаз у высших организмов / А.П. Акифьев, Г.А. Худолий // Вестник Российской академии медицинских наук.—1993.--№ 1.—С.З—9.

7. Алекперов, У. К. Антимутагенез в проблеме компенсационных подходов к охране генофонда / У.К. Алекперов // Наследс твеннос гь человека и окружающая среда.—М.: Наука,1992.—С.191—203.

8. Антонов, П.В. Современное состояние проблемы хронических и медленных нейроинфекций / П.В. Антонов, В.А. Ципзерлинг // Архив патологии.—2001. -№ 1,—С.47—51.

9. Антонова, Т.В. Интенсивность перекисного окисления липидов мембран и метаболизм лимфоцитов у больных вирусными гепатитами / Т.В. Антонова, С.Л. Николаенко // Микробиология эпидемиология и иммунология.—1998.-№ 5.—С.64—67.

10. Арефьев, П.В. Англо-русский толковый словарь генетических терминов / П.В. Арефьев, Л.А. Лисовенко.—М.: Изд-во ВНИРО, 1995.—406 с.

11. Арутюнян, A.B. Методы оценки свободнорадикального окисления и антиоксидантной системы организма / A.B. Арутюнян, Е.Е. Дубинина, H.H. Зыбина.—СПб., 2000.—147 с.

12. Ауэрбах, Ш. Проблемы мутагенеза / Ш. Ауэрбах.—М.: Медицина, 1978.— 360 с.

13. Ахмедов, Д.Р. Клинико-патогенетическое значение антиоксидантной системы при инфекционных заболеваниях / Д.Р. Ахмедов // Клиническая медицина.—1994.-№1.—С.24—27.

14. Аширметов, А.Х. Использование антипирина для оценки активности ферментов монооксигеназной системы печени / А.Х. Аширметов, М.Э. Краковский // Лабораторное дело.—1990.~№ 1.—С. 16—20.

15. Бабич, Н.Ф. К оценке иммунного статуса у больных хроническим тонзиллитом / Н.Ф. Бабич // Актуальные вопросы клинической оториноларингологии: материалы междунар. науч.-практ. конф. оториноларингологов.—М.: 1992.—С.111—112.

16. Бадеева, М.Ю. Нестабильность генома у больных ревматоидным артритом / М.Ю. Бадеева // Материалы VI съезда Российского Общества медицинский генетиков.—Ростов-п-Д, 2010.—С. 16.

17. Базапова, Е.А. Роль различных детерминант полисахарида стрептококка группы А в модуляции активности СД 4 и СД 8 субпопуляций лимфоцитов / Е.А. Базанова, Э.В. Гнездицкая // Иммунология.—1997.—№ 1.—С.30— 32.

18. Бала, М.А. Аутоиммунные реакции при заболеваниях стрептококковой этиологии / М.А. Бала, С.В. Корабельников // Журнал микробиологии эпидемиологии и иммунобиологии.—1993.—-№ 5.—С.83—87.

19. Баранников, A.C. Активность полиморфной N-ацетилтрансферазы при эпилепсии / А. С. Баранников, В. И. Трубников // Журнал невропатологии и психиатрии.—1985.—№ 6.—С.857—861.

20. Баринский, И.Ф. Лейкоцитарные культуры в вирусологических исследованиях / И.Ф. Баринский, А.К. Шубладзе.—М.: Медицина, 1980.— 174 с.

21. Барышников, А.Ю. Моноклональные антитела серии ИКО к дифференцировочным антигенам лимфоцитов человека / А.Ю. Барышников // Гематологии и трансфузиология.—1990.—№ 8.—С.4—7.

22. Безрукова, Г.А. Активация процессов перекисного окисления липидов в эритроцитах при свертывании крови in vitro / Г.А. Безрукова // Гематология и трансфузиология.—1990.—№ 7.—С.8—9.

23. Бекиш, В.Я. Состояние генома хозяина при гельминтозах / В.Я. Бекиш, О.-Я.Л. Бекиш.—Витебск: Изд-во ВГМУ, 2004.—218 с.

24. Беклемишев, Н.Д. Иммунопатология и иммунорегуляция / Н.Д. Беклемишев.—М.: Медицина, 1986.—459 с.

25. Белоблоцкий, Г.А. Состояние нуклеинового обмена у больных активным туберкулезом легких / Г.А. Белоблоцкий // Врачебное дело.—1973.—№ 3.—С.82—83.

26. Беляков, В.Д. Инвазивная стрептококковая инфекция / В.Д. Беляков, Л.А. Ряпис // ЖМЭИ.—1996.—№ 2.—С.37—41.

27. Беляков, В.Д. Стрептококковая инфекция / В.Д. Беляков, А.П. Ходырев, A.A. Тотолян.—Л., 1978.—296 с.

28. Болынев, В.Н. Индукторы h ингибиторы ферментов метаболизма лекарств / В.Н. Большев // Фармакология и токсикология.—1980.—№ 3(43).— С.373—380.

29. Бочаров, Е.Ф. Влияние вирусов на систему иммунитета / Е.Ф. Бочаров, О.В. Шалаурова, А.Ф. Бочаров.—Новосибирск: Наука, 1982.—16 с.

30. Бочков, Н. П. Клиническая генетика / Н.П. Бочков.—М.: ГЭОТАР, 2002.— 448 с.

31. Бочков, Н.П. Наследственность человека и мутагены внешней среды / Н.П. Бочков, А.Н. Чеботарев.—М.: Медицина, 1989.—360 с.

32. Бочоришвили, В. Г. Патология внутренних органов у больных ангиной и хроническим тонзиллитом / В.Г. Бочоришвили.—JL: Медицина, 1991.— 240 с.

33. Брико, Н.И. Болезни, вызываемые стрептококками группы А в начале XXI века: проблемы и перспективы профилактики / Н.И. Брико // Вестник РАМН.—2001.—№ 2.—С.З—6.

34. Брико, Н.И. Инфекции, вызываемые Streptococcus pyogenes / Н.И. Брико, В.И. Покровский // Стрептококки и стрептококкозы.—М.: ГЭОТАР-Медиа, 2006,—С.61—295.

35. Брико, Н.И. Лабораторная диагностика стрептококковых инфекций / Пособие для врачей и научных работников / Н.И. Брико, A.C. Ещина, JI.А. Ряпис.—М.: Хризостом, 2000.—64 с.

36. Будников, Г.К. Химический анализ в медицинской диагностике / Под ред. Г.К. Будникова // Казанский гос университет.—2010.—504 с.

37. Бужиевская, Т.И. Вирусиндуцированный мутагенез в клетках млекопитающих / Т.И. Бужиевская.—Киев: Наук думка, 1984.—260 с.

38. Букринская, А.Г. Молекулярные основы патогенности вирусов / А.Г. Букринская, В.М. Жданов.—М.: Медицина, 1991.—242 с.

39. Буловская, Л.Н. Определение фенотипа N-ацетилтрансферазной активности / Л.Н. Буловская, Г.Н. Борисенко, O.A. Дробаченко // Лабораторное дело.—1990.—№ 10.—С.28—30.

40. Буловская, JI.H. Изучение типа ацетилирования при злокачественных новообразованиях и противоопухолевого действия анагормона ЛКТГ: автореф. дис. . д-ра биол. наук / J1.H. Буловская.—JL, 1980.—23 с.

41. Бурлакова, Е.Б. Перекисное окисление мембран и природные антиоксиданты / Е.Б. Бурлакова // Успехи химии.—1985.—Т.54.—С. 1540— 1558.

42. Бурмистров, С.О. Перекисное окисление липидов, белков и активность антиоксидантной системы сыворотки крови новорожденных и взрослых / С.О. Бурмистров, Е.Е. Дубинина, Е.В. Арутюнян // Акушерство и гинекологии.—1997.—№ 6.—С.36—40.

43. Бышевский, А.Ш. Биохимия для врача. / А.Ш. Бышевский, O.A. Терсенов.—Екатеринбург: Изд-во полиграф, предприят. «Уральский рабочий», 1994.—384 с.

44. Валеева, И.Х. Биохимические методы исследования общих механизмов повреждения и воздействия ксенобиотиков: метод, руководство / И.Х. Валеева, Л.Е. Зиганшина—Казань: КГМУ; ЦНИЛ, 1998.—31 с.

45. Валеева, И.Х. Фармакологическая коррекция нарушений перекисиого окисления липидов, вызываемых ксенобиотиками: автореф. дис. . д-ра мед. наук / И.Х. Валеева.—Казань, 2004.—35 с.

46. Вартанян, Ф.Е. Взаимосвязь генетических и средовых факторов с фармакотерапией / Ф.Е. Вартанян // Клиническая фармакология и терапия.—2006.—№ 15(2).—С.86—88.

47. Виксман, М.Е. Способ оценки функциональной активности нейтрофилов человека по реакции восстановления нитросинего тетразолия: метод, рекомендации / М.Е. Виксман, А.Н. Маянский.—Казань, 1979.

48. Викторов, А.П. Использование антипиринового теста при изучении микросомального окисления лекарственных средств / А.П. Викторов, А.Т. Рыбак // Фармакология и токсикология.—1990.—№ 1(53).—С.74—77.

49. Викторов, А.П. Исследование ацетилирующей способности организма в целях индивидуализации фармакотерапии больных / А.П. Викторов, В.Н. Короткий, Л.И. Голопыхо, Н.Г1. Коржик // Клиническая хирургия.— 1990.—№ 9.—С.74.

50. Владимиров, Ю.А. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах / Ю.А. Владимиров, А.И. Арчаков.—М.: Изд-во «Наука», 1972.—252 с.

51. Владимиров, Ю.А. Свободнорадикальное окисление липидов и физические свойства липидного слоя биологических мембран / Ю.А. Владимиров // Биофизика.—1987.—Т.32, № 5.—С.830—844.

52. Владимиров, Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах / Ю.А. Владимиров // Ю.А. // Соровский образовательный журнал. 2000. - №12 -С. 13-19.

53. ВОЗ. Иммунологическая недостаточность.—Женева, 1980.—42 с. Сер. Технич. докл

54. Волков, В.Т. Клиническое значение мембранодестабилизирующих процессов при сальмонеллезе: автореф. дис. . канд. мед. наук / В.Т. Волков.—СПб., 2002.—22 с.

55. Гайнетдинова, Д.Д. Клинико-экспериментальиый анализ дестабилизации генома у больных детским церебральным параличом (феноменология, механизмы, коррекция): автореф. дис. . д-ра мед. наук / Д.Д. Гайнетдинова.—Казань, 2006.—47 с.

56. Галеева, Н.В. Озонотерапия при вирусных гепатитах А, В и С: дис. . канд. мед. наук / Н.В. Галеева.—Казань-, 2004.—170 с.

57. Галиуллина, JI.A. Клинико-иммунологическая оценка эффективности ксимедона в лечении псориаза / JI.A. Галиуллина, Р.Х. Хафизьянова // Вестник дерматологии и венерологии.—1999.—№ 4.—С.38—39.

58. Гармонов, С.Ю. Аналитические методы исследования генетического полиморфизма организма человека / С.Ю. Гармонов, М.И. Евгеньев, И.Е. Зыкова // Вопросы биологической медицинской и фармацевтической химии.—2004.—№ 1— С. 12.

59. Гармонов, С.Ю. Влияние иммуномодулятора "ксимедона на фармакокинетику гидразида изоникотиновой кислоты в организме человека / С.Ю. Гармонов // Химико-фармацевтический журнал.—2006.— Т.40, № 3.—С. 133—136.

60. Гармонов, С.Ю. Индукционное влияние ксимедона, на активность микросомальных оксидаз печени человека / С.Ю. Гармонов // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии.—2010.—№ 4.— С.31—35.

61. Гармонов, С.Ю. Косвенное определение активности микросомальных оксидаз гепатоцитов и ее фармакологическая коррекция ксимедоном пристрептококковой ангине / С.Ю. Гармонов, И.Э. Кравченко // Химико-фармацевтический журнал.—2006.—Т.40, № 3.—С. 133—136.

62. Гармонов, С.Ю. Методы оценки и регуляция активности генетически детерминированных метаболических ферментных систем организма человека / С.Ю. Гармонов, И.Э. Кравченко // Биомедицина.—2010.—№ 3.—С.39—41.

63. Гелуненко, Е.К. Коробка Ю.Н., Мякина A.B. и др. Циркулирующие иммунные комплексы и гемостаз у больных рожистым воспалением и ангиной. / Е.К. Гелуненко, Ю.Н. Коробка, A.B. Мякина и др. // МРЖ. -1990.- 8.-с.60.

64. Гилмуллина, Ф.С. Естественный ингибирующий фактор в патогенезе иммунных дисфункций при роже и их коррекция ксимедоном: автореф. дис. . канд. мед. наук/Ф.С. Гилмуллина. — Казань, 1997.—22 с.

65. Гинтер, Е.К. Медицинская генетика / Е.К. Гинтер.—М.: Медицина, 2003.— 448 с.

66. Гладышев, Ю.В. Влияние активации перекисного окисления липидов па структуру внезародышевых органов и печени крыс в различные периоды онтогенеза / Ю.В. Гладышев, СИ. Колесников, A.B. Семенюк, В.В. Иванов //Цитология.—1994.—Т. 36, № 1.—С.98—103.

67. Гланц, С. Медико-биологическая статистика /Пер. с англ. — М., Практика, 1998,- 1999.-459 с.

68. Головенко, Н.Я. Сравнительная биохимия чужеродных соединений / Н.Я. Головенко, Т.А. Карасева.—Киев: Наука, 1983.—212 с.

69. Гончарова, Р.И. Антимутагенез как генетический процесс / Р.И. Гончарова // Вестник РАМН,—1993,—№ 1.—С.26—33.

70. Горбунов, С.М. Результаты экспериментальных исследований ксимедопа / С.М. Горбунов, С.Г Измайлов // Ксимедон: науч. сб. материалов эксперимент, и клинич. испытаний.—Казань, 1986.—С.26—30.

71. Губский Ю.А. Регуляция иерекисного окисления липидов в биологических мембранах / Ю.А. Губский // Биохимия животных и человека.—1978.— №2.—С.72—76.

72. Гуськов, Г.Е. Окислительный стресс и экспрессия генов / Г.Е. Гуськов, Т.П. Шкурат, В.Н. Прокофьев // Материалы VI съезда Российского Общества медицинских генетиков.—Ростов-н/Дону, 2010.—С.50.

73. Данилова, Т.А. Fc-рецепторы на клетках эндотелия клапанов сердца. Сопоставление IgG Fc-связывающей активности этих рецепторов стрептококков группы А / Т.А. Данилова // Журнал микробиологии.— 2003.—№ 2.—С.46—51.

74. Данилова, Т.А. Инвазивная инфекция, вызываемая стрептококками группы А, и синдром стрептококкового токсического шока / Т.А. Данилова // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии.—2001.—№ 3.— С.99—105.

75. Дробаченко, О.А. Сравнительная характеристика мономорфного и полиморфного ацетилирования / О.А. Дробаченко, JI.H. Буловская, В.В. Иванова // Клиническая лабораторная диагностика.—1994.—№ 4.—С.49.

76. Дубинин, Н.П. Потенциальные изменения в ДНК и мутации / Н.П. Дубинин—М.: Наука, 1978,—248 с.

77. Дубинина, Л.Г. Структурные мутации в опытах с Crepis capillaries / JI.Г. Дубинина.—М.: «Наука», 1978.—188 с.

78. Дурнев, А.Д. Итоги и перспективы генетической токсикологии / А.Д. Дурнев, Ю.А. Ревазова, Н.П. Бочков // Материалы VI съезда Российского Общества медицинских генетиков.—Ростов-н-Д, 2010.—С.58.

79. Дурнев, А.Д. Мутагены (скрининг и фармакологическая профилактика воздействий) / А.Д. Дурнев, С.Б. Середенин.—М.: Медицина, 1998.—322 с.

80. Евгеньев, М.И. Неинвазивный метод определения биохимического фенотипа ацетилирования / М.И. Евгеньев, С.Ю. Гармонов, Л.А. Зайнутдинов, Т.Г. Маланичева // Казанский медицинский журнал.—2004.— №5.—С. 188—190.

81. Еровиченков, A.A. Клинико-патогеиетическое значение нарушений гемостаза и их коррекция у больных геморрагической рожей: автореф. дис. . д-ра мед. наук / A.A. Еровиченко.—М., 2003.—41 с.

82. Еровиченков, A.A. Т-клеточная реактивность па специфические антигены стрептококка группы А у больных рецидивирующей рожей / A.A. Еровиченков, С.Г. Пак, О.Ф. Белая, Ю.В. Юдина // Клиническая лабораторная диагностика.—2008.-№ 4.—С. 14—18.

83. Жанатаев. А.К. Достижения и перспективы антимутагенной защиты человека / А.К. Жанатаев, А.Д. Дурнев, С.Б. Середенин // Материалы VI съезда Российского Общества медицинских генетиков.—Ростов-н-Д, 2010.—С.61.

84. Жарехина, A.B. Биофармацевтический анализ метаболических систем ацетилирования, окисления и регуляция их ферментативной активности ксимедоном: дис. . канд. мед. наук / A.B. Жарехина. -Казань, 2008.-171 с.

85. Жукова, О.Б. Нарушения иммунофенотипического и цитогенетического статуса лимфоцитов периферической крови при персистенции вирусов клещевого энцефалита и гепатитов В, С: автореф. дис. . канд. мед. наук / О.Б. Жукова.—М., 2005.—22 с.

86. Журков, B.C. О возможности использования эритроцитов периферической крови крыс и человека для выявления мутагенов при длительном их действии / В. С. Журков // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины,—1991 .—№ 9.—С.248—249.

87. Загидуллина, А.И. Патогенетическое значение процессов перекисного окисления липидов, аигиоксидаптной защиты и системы гемостаза, коррекция их нарушений методом озонотерапии при роже: автореф. дис. . канд. мед. наук/ А.И. Загидуллина.—СПб., 2005.—22 с.

88. Зайцев, В.Г. Свободнорадикальные процессы в живых организмах / В. Г. Зайцев // http://ruscience.newmail.ru/glint/lToxi/index.html 2000.

89. Зайчик, А.Ш. Патофизиология. Основы патохимии / А.Ш. Зайчик, Л.П. Чурилов.—СПб.: Элби-СПб., 2001.—Т. 2.-688 с.

90. Зарецкая, Ю.М. Иммунология и иммуногенетика человека / Ю.М. Зарецкая, Е.Г. Хамагонова, М.И. Губарев, М.: Триада. - 2002. - 128 с.

91. Зарипова, Р.Г. Патогенетические механизмы нестабильности клеточного генома, их терапевтическая коррекция при стрептококковой ангине: автореф. дис. . канд. мед. наук / Р.Г. Зарипова.—СПб., 2008.—20 с.

92. Засухина, Г. Д. Мутагенез, антимутагенез, репарация ДИК / Г. Д. Засухи на, Т.А. Синелыцикова//Вестник РАМН.—1993.—№ 1 —С.9—14.

93. Зборовский, А.Б. О состоянии нуклеинового обмена у больных ревматизмом / А.Б. Заборовский, Е.П.Чернышев // Вопросы ревматизма.— 1972.—№ 2.—С. 19—24.

94. Земсков, A.M. Комбинированная иммуннокоррекция / A.M. Земсков, A.B. Караулов, В.М. Земсков.—М.: Наука, 1994—С.234—252.

95. Зенков, II.K. Окислительный стресс: биохимический и патофизиологический аспекты / Н.К. Зенков, В.З. Ланкин, Е.Б. Меньшикова—М., 2001.—132 с.

96. Ибрагимов, О.Б. Экспериментальное обоснование применения ксимедона в качестве антиатеросклеротического лекарственного средс гва: автореф. дис. . канд. мед. наук / О.Б. Ибрагимов.—Казань, 1994.—21 с.

97. Измайлов, С.Г. Ашимикробное действие ксимедона / С.Г. Измайлов // Фармакология и токсикология фосфороорганических и биологически активных веществ.—Казань, 1996.—С. 12.

98. Измайлов, С.Г. Ксимедон в клинической практике / С.Г. Измайлов, Г.А. Измайлов, М.Ю. Аверьянов, B.C. Резник.—Н. Новгород: Изд-во НГМА, 2001,—188 с.

99. Ильина, М.С. Нестабильность генома при ювенильном ревматоидном артрите / М.С. Ильина, С.А. Сенек // Материалы VI съезда Российского Общества медицинских генетиков.—Ростов-н-Д, 2010.—С.74.

100. Ильинских, И.Н. Инфекционная кариопатология / И.Н. Ильинских.— Томск: Изд-во Томск, ун-та, 2005.—168 с.

101. Ильинских, H.Ii. Инфекционный мутагенез / H.H. Ильинских, Е.Ф. Бочаров, И.Н. Ильинских.—Новосибирск: Наука, 1984.—168 с.

102. Ильинских, H.H. Мутагенез при различных функциональных состояниях организма / H.H. Ильинских, М.А. Медведев, С.С. Бессуднова, И.И. Ильинских.— Томск: Изд-во Том. Ун-та, 1990.—228 с.

103. Ильинских, H.H. Цитогенетический гомеостаз и иммунитет / H.H. Ильинских, И.Н. Ильинских, Е.Ф. Бочаров.—Новосибирск: Наука, 1986.— 256 с.

104. Иммунология / под ред. У. Пола.—М.: Мир, 1987.—476 с.

105. Иммунология инфекционного процесса: руководство для врачей; под ред. В.И. Покровского, С.П. Гордиенко, В.И. Литвинова.—М., 1994.—305 с.

106. Калинин, Л.В. Влияние трихинеллезной инвазии и метаболитов трихинелл на хромосомный аппарат соматических клеток хозяина: автореф. дне. канд. мед. наук / Л.В. Калинин.—Витебск, 1995.—19 с.

107. Кальф-Калиф, Я.Я. О лейкоцитарном индексе интоксикации и его практическом значении: автореф. дис. . канд. мед. наук / Я.Я. Кальф-Калиф.—Харьков, 1950.—13с.

108. Камилов, Ф.Х. Пиримидины и их применение в медицине / Ф.Х. Камилов, Д.Н. Лазарева, В.В. Плечев,— Уфа: Изд. БГМИ, 1992.—С.37—75.

109. Касумова, С.К. Функциональное состояние АОС у больных рожей и ее влияние на течение и исход заболевания / С.К. Касумова // VI Российский съезд врачей-инфекционистов.—СПб., 2000.—С.26.

110. Кауфман, P.C. Патогенез вирусных инфекций / P.C. Кауфман, Б.Н. Филде // Вирусология; под ред. Б.Н. Филде, Д. Найн, Р. Ченок и др..—М.: Наука, 1989.—Т. 1.—С.277—305.

111. Кашулина, А.П. Роль перекисного свободнорадикального окисления в патологии и методы его изучения / А.П. Кашулина, E.H. Сотникова // Медицинская консультация.—1996.—№ 2.—С.20—24.

112. Каюмова, Л.С. Оценка фенотипа ацетилирования у больных рожей на фоне базисной терапии и лечения ксимедоном / Л.С. Каюмова, A.B. Яковлева // Молодые учёные в медицине: тез. докл. XII Всерос. науч.-практ. конф.— Казань: КГМУ, 2007.—С. 86.

113. Киселева, Т.А. Метаболические ферментные системы у больных сахарным диабетом 2 типа и их фармакологическая коррекция ксимедоном: авюреф. дис. . канд. мед. наук/Т.А. Киселева.—Казань., 2007.—19 с.

114. Клейменов, Д.А. Эпидемиологическая характеристика стрептококковой (группы А) инфекции и предложения по улучшению ее иммунологической диагностики: авгореф. дис. . канд. мед. наук / Д.А. Клейменов.—М., 2009,—24 с.

115. Ковязина, А.И. Оценка цитогенетических изменений крови у больных туберкулезом легких / А.И. Ковязина, Л.И. Нузберг, К.Н. Яковенко, Н.М. Карпова // Пробл. Туберкулеза. 1981. - № 7. - С 13.

116. Конторщикова, К.Н. Перекисное окисление липидов в норме и патологии / К. Н. Конторщикова.—Н. Новгород: Медицина, 2000.—132 с.

117. Коротких, Н.Г. Кариопатология у больных с острыми воспалительными процессами челюстно-лицевой области, осложненными пролонгированным течением / Н.Г. Коротких, Г.В. Тобоев // Журнал теоретической и практической медицины.—2007.—Т.5, № 4.—С. 326.

118. Кочетова, О.В. Генетические факторы предрасположенности к профессиональной патологии у рабочих нефтехимических производств /

119. В. Кочетова, О.В. Викторова // Медицинская генетика.—2007.—Т.6, №1.—С.36—42.

120. Кочнев, О.С. Антимикробное средство / О.С. Кочнев, С.Г. Измайлов, B.C. Резник, Р.В. Федоров // Изобретения.—1995.—№ 21.—С.17—23.

121. Кочнев, О.С. Ксимедон, как стимулятор репаративной регенерации в хирургической практике / О.С. Кочнев, С.Г. Измайлов // Казанский медицинский журнал.—1990.—№ 5.—С.373—375.

122. Кошпаева, Е. С. Мутагенная и антимутагенная активность крови и ее компонентов у человека и животных: автореф. дис. . канд. биол. наук / Е.С. Кошпаева.—Казань; 2001.—21 с.

123. Кравченко, И.Э. Клинико-иммунологический cTaiyc и его коррекция при ангине: дис. . канд. мед. наук/ И.Э. Кравченко.—Казань, 1998.—150 с.

124. Кравченко, И.Э. Клшшко-иммунологический cTaiyc при ангине и его коррекция препаратом ксимедоном / И.Э. Кравченко, В.Х. Фазылов, О.Д. Зинкевич, И.Г. Мустафин, Г.Ф. Фахругдинова // Казанский медицинский журнал.—2004.—'Г.85, № 3.—С.68—174.

125. Краковский, М.Э. Методы оценки активности монооксигеназной ферментативной системы / М.Э. Краковский, А.Х. Аширметов // Лабораторное дело.—1990.—№ 10,—С.21—26.

126. Крыжановский, Г.Н. Дизрегуляюрная патология: Руководство для врачей и биологов / Под ред. Г.Н. Крыжановского.—М.: Медицина, 2002.—632 с.

127. Кудряшова, Н.М. Иммунотурбидиметрический микрометод определения иммуноглобулинов класса А и М в сыворотке крови на анализаторе ФГ1-900 / Н.М. Кудряшова, Т.И. Лукичева, М.Я. Стрелкова // Клиническая лабораторная диагностика.—1993.—№ 4.—С.63—68.

128. Кужир, Т.Д. Антимутагены и химический мутагенез в системах высших эукариот / Т.Д. Кужир.— Минск: Тэхнология, 1999.—180 с.

129. Кузьмина, Е.И. Перекисное окисление липидов и резистентность эритроцитов у детей, больных дифтерией / Е.И. Кузьмина, И.В. Орлов, В.В. Краснов//Рос. педиатрический журнал.—2001.—№ 2.—С.21—24.

130. Кукес В.Г. Биотрансформация лекарственных препаратов / В.Г. Кукес, В.11. Фисенко, А.К. Стародубцев; под ред. В.Г. Кукеса, В.П. Фисенко.— М.: Палея —М., 2001.—305 с.

131. Кукес, В.Г. Метаболизм лекарственных средств. Научные основы персонализированной медицины / В.Г. Кукес, C.B. Грачев, Д.А. Сычев, Г.В. Раменская.— М.: ГЕОТАР-Медиа, 2008,—304 с.

132. Куценко, С.А. Основы токсикологии / С.А. Куценко.—СПб.: Фолиант-, 2004.—720 с.

133. Кучерова, Н.Т. Изучение хромосомных нарушений у больных гриппом / Н.Т. Кучерова, Т.Ф. Бышовец // Цитология и генетика.—1972.—Т.6, № 4.—С.328—330.

134. Лакин, К.Е. Биотрансформация лекарственных веществ / К.Е. Лакин, Ю.Ф. Крылов.—М.: Медицина, 1981.—342 с.

135. Ланкин, В.З. Свободпорадикальные процессы при заболеваниях сердечнососудистой системы / В.З. Ланкин, А.К. Тихадзе, Ю.Н. Бсленков // Кардиология.—2000.—№ 7.—С.48—61.

136. Ланчинский, В.И. Патогенетические механизмы развития спаечного процесса у гинекологических больных и его послеоперационная профилактика на основе анализа фенотипа ацетилирования: автореф. дис. . канд. мед. наук/В.И. Ланчинский.—М., 1995.—23 с.

137. Лильин, Е.Т. Введение в современную фармакогенетику / Е.Т. Лильин, В.И. Трубников, М.М. Вашоков.—М.: Изд-во, 1984.—160 с.

138. Лисица A.B. База знаний по цитохромам Р 450 : разработка и применение: Автореф. дис. д-ра биол. наук. М.: ГУ НИИ биомед. химии РАМН им. В.Н. Ореховича, 2007. - 44 с.

139. Лобзин, Ю.В. Клиническое значение морфофункционального состояния нейтрофильных гранулоцитов небных миндалин у больных ангиной / Ю.В. Лобзин // Врачебное дело.—1991.—№ 5.—С.77—80.

140. Ломакин, М.С. Иммунобиологический надзор / М.С. Ломакин.—М.: Медицина, 1990—С.20—30.

141. Лукичева, Т.И. Иммуиотурбидиметрическое определение иммуноглобулина класса G на анализаторе ФП-900 / Т.И. Лукичева, В.П. Филонова, P.A. Ильина // Лабораторное дело.—1991.—№ 12.—С.42—47.

142. Лямперт, И.М. Вторичная иммунопатология у больных с острой стрептококковой инфекцией / И.М. Лямперт, В.М. Фролов, М.А. Бала // Терапевтический архив.—1991.—№ 10.—С.38—41.

143. Ляшенко, ТО.И. Ангина / Ю.И. Ляшенко.—М.: Медицина, 1985.—143 с.

144. Ляшенко, Ю.И. Ангина: руководство по инфекционным болезням; под ред. Ю.В. Лобзина.—3-е изд., доп. и перераб.—СПб.: Фолиант, 2003.— 1040 с.

145. Маеда, X. Оксид азота и кислородные радикалы при инфекции, воспалении и раке / X. Маеда, Т. Акаике // Биохимия,-1998.-Т. 63, № 7.-С.1007-1019.

146. Мазинг, Ю.Д. Нейтрофильные гранулоциты и системы защиты организма / Ю.Д. Мазинг//Архив патологии.—1991.—№ 9—С.70—73.

147. Мазурик, В.К. Радиационно-индуцируемая нестабильность генома: феномен, молекулярные механизмы, патогенетическое значение / В.К. Мазурик, В.Ф. Михайлов // Радиационная биология. Радиоэкология.— 2001.—Т. 41, № 3.—С.272—289.

148. Малов, В.А. Свободнорадикальное окисление липидов плазмы крови у больных острыми кишечными инфекциями / В.А. Малов, М.Х. Турьянов, С.Г. Пак и др. // Терапевтический архив.—1988.—№ 11.—75—-78.

149. Малышев, К.В. Генопротекторные свойства ксимедона в комплексном лечении хронического остеомиелита: автореф. дис. . канд. мед. наук / К.В. Малышев.—Казань, 2000.—17 с.

150. Мальцева, Г.С. Бета-гемолитические стрептококки в этиологии хронического тонзиллита / Г.С. Мальцев, Л.А. Бурова // Российскаяоториноларингология.—2008.—№ 3.—С.65—69.

151. Малюта С.С. Взаимодействие чужеродных вирусов с клетками многоклеточных организмов: Автореф. дис. . канд. биол. Наук. Минск, 1985.- 15 с.

152. Мартынова, A.B. Устойчивость штаммов S. Pyogenes, выделенных о г больных инфекциями дыхательных путей / A.B. Мартынова, A.A. Шепарев, В.Б. Туркутюков // Узловые вопросы борьбы с инфекцией: материалы Рос. науч.-практ. конф.—СПб., 2004.—С. 157.

153. Маянский, А.Н. Клинические аспекты фагоцитоза / А.Н. Маянский, О.И. Пикуза.—Казань: «Магариф», 1993.—С.26—64.

154. Мейл, Д. Иммунология / Д. Мейл, Дж. Бростофф, Д.Б. Рот, А. Ройтт: пер. с англ.—М.: Логосфера, 2007.—568 с.

155. Механизмы иммунопатологии: пер. с англ.; под ред. С. Коена, П. Уорда, Р.Т. Мак-Класки—М., 1983.—С.398.

156. Миронов, В.Ю. Перекиспое окисление липидов в патогенезе и клинике инфекционных болезней / В.Ю. Миронов, И.В. Липковская // Врачебное дело.—1988.—№ 6.—С. 119—122.

157. Миронов, И.Л. Случай инвазивной инфекции, вызванной стрептококками группы А / И.Л. Миронов, Е.А. Стенько, С.А. Надеждин // Журнал инфектологии.—2010.—Т. 2, № 4.—С.90.

158. Мирошниченко, И.И. Основы фармакокинетики / И.И. Мирошниченко.— М.: ГЭОТАР-МЕД, 2002.—200 с.

159. Михайленко, A.A. Профилактическая иммунология / A.A. Михайленко, Г.А. Базанов, В.И. Покровский, В.И. Коненков.—М.: Триада, 2004.—448с.

160. МУ 3.1.1885-04. Профилактика инфекциониых болезней. Эпидемиологический надзор и профилактика стрептококковой (группы А) инфекции: метод, указания.

161. МУК 4.2.1890-04 Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам: метод, указания.

162. Мустафин, И.Г. Фенотип лимфоцитов и состояние опсонофагоцитарной системы, их коррекция при некоторых бактериальных инфекциях (ангина, сальмонеллез): дис. . канд. мед. наук / И.Г. Мустафин.—М., 1999.—173 с.

163. Мясоедова, С.Е. Оценка секреторного и гуморального иммунного ответа на групповой полисахарид А при ревматизме / С.Е. Мясоедова, Д.В. Андреева, В.А. Бобков и др. // Клиническая лабораторная диагностика.— 1996.—№ 4.—С.43—45.

164. Нагоев, Б.С. Перекисное окисление липидов и антиоксидантная система у больных с ВИЧ-инфекцией / Б,С. Нагоев, Ж.Х. Сабанчиева // Терапевтический архив.—2007.—№ 12.—С.70—72.

165. Нагоев, Б.С. Состояние показателей прооксидантпой и антиоксидантпой системы у больных бактериальной ангиной / Б.С. Нагоев, М.Х. Нагоева // Эпидемиология и инфекционные болезни.—2008.—№ 5.—С.49—54.

166. Нагоев, Б.С. Состояние функционально-метаболической активности лейкоцитов у больных бактериальной ангиной / Б.С. Нагоев, М.Х. Нагоева // Журнал инфекционные болезни.—2006.—Т.4, № 2.—С.51—53.

167. Нагоева, М.Х. патогенетические аспекты состояния свободно-радикального статуса, иммунитета, цитокинового профиля и среднемолекулярных пептидов у больных ангиной: авторсф. дис. . д-ра мед. наук / М.Х. Нагоева.—М., 2010.—28 с.

168. Нестабильность генома у больных ангиной и возможности фармакологической коррекции ксимсдоном / И.Э. Кравченко, Р.Г. Зарипова, В.Х. Фазылов и др. // Казанский медицинский журнал.— 2006.—Т. 87, № 4.—С.257—261.

169. Нурмухаметова, Э.Б. Клинико-экспериментальное обоснование применения ксимедона при ревматизме: дис. . канд. мед. наук / Э.Б. Нурмухаметова.—Казань, 1993.—158 с.

170. Оганесян, Э.Т. Ферментативное ацетилироваиие ксенобиотиков: его эффективность и роль в проявлении побочного действия / Э.Т. Оганесян, Д.Е. Творовский, С.Х. Муцуева // Биоорганическая химия.—1999.—Т.25, № 8.

171. Осипов, А.Н. Активные формы кислорода и их роль в организме / А.Н. Осипов, O.A. Азизова, Ю.А. Владимирова // Успехи биологической химии.—1990.—Т.31 .—С. 180—208.

172. Оценка метаболических систем ацетилирования и окисления и их терапевтическая коррекция ксимедоном / И.Э. Кравченко, С.Ю. Гармонов, Р.Г. Зарипова и др. // Казанский медицинский журнал.—2008.—№ 4.— С.452—457.

173. Павелкина, В.Ф. Изменение иммунных реакций и их коррекция- при повторных восполительных процессах небных миндалин: автореф. дис. . канд. мед. наук / В.Ф. Павелкина.—Саранск, 1995.—24 с.

174. Павелкина, В.Ф. Клинико-патогенетические аспекты эндогенной интоксикации и ее коррекция при заболеваниях вирусной и бактериальной этиологии: автореф. дис. . д-ра мед. наук / В.Ф. Павелкина.-—М., 2010.— 48 с.

175. Павлова, Е.Б. Клиническая картина и фенотип ацетилирования у больных скарлатиной / Е.Б. Павлова, O.A. Дробаченко // Эколого-социальные вопросы защиты и охраны здоровья молодого поколения на пути в XXI век: сб. материалов.—СПб., 1998—С.405—407.

176. Пескин, A.B. Взаимодействие активного кислорода с ДНК / A.B. Пескин // Биохимия—1997.—Т.62, вып. 12.—С.1571—1578.

177. Петина, Г.К. Особенности гранулоцитов крови больных ангиной / Г.К. Петина // Врачебное дело.—1990.—№ 5.—С.77—80.

178. Петров, Р.В. Оценка иммунного статуса человека: метод, рекомендации / Р.В. Петров, Ю.М. Лопухин, А.Н. Чередеев.—М., 1984.

179. Плужников, М.С. Тонзиллит: клинические и иммунологические аспекты / М.С. Плужников, Г.В. Лавренова, М.Я. Левин, П.Г. Назаров, К.А. Никитин.—СПб.: Диалог, 2004.—222 с.

180. Победииский, Н.М. Исследование фенотипа ацетилирования у больных миомой матки / Н.М. Побединский, М.А. Ботвин, А.И. Ищенко, В.И. Ланчинский // Акушерство и гинекология.—1998.—№ 2.—С.42—43.

181. Побяржин, В.В. Мутагенное воздействие метаболитов карликовых цепней на наследственный аппарат соматических и генеративных клеток хозяина /

182. B.В. Побяржин // Журнал инфектологии.—2010.—Т. 2, № 4.—С.99.

183. Погорельцев, В.И Антиоксидантная активность ксимедона в комплекстном лечении хирургических инфекций / В.И. Погорельцев, В.Ю. Терещенко, A.A. Чиркин и др. // Казанский медицинский журнал.—2005, № 4.—1. C.346—347.

184. Погорельцев, В.И. Исследование антиоксидантного статуса организма человека в хирургии, терапии и стоматологии / В.И. Погорельцев, Г.К. Будников, Г.К. Зиатдинова, И.С. Саркаров.—Казань: КГМУ, 2004.—50 с.

185. Погорельцев, В.И. Основы клинической фармакогенетики: учебное пособие для студентов, интерн., ордин. / В.И. Погорельцев, С.Ю. Гармонов, Д.А. Валимухаметова.—Казань: КГМУ, 1998.—164 с.

186. Погорельцев, В.И. Применение иммуномодулягора ксимедона в качестве индуктора фермента N-ацетилтрансферазы / В.И. Погорельцев, С.Ю. Гармонов, Н.С. Шитова и др. // Клиническая фармакология и фармакотерапия.—2006.—Т. 15, № 2.—С.82—85.

187. Погорельцев, В.И. Применение метода гальваностатической кулонометрии в клинической диагностике антиоксидантного статуса организма человека / В.И. Погорельцев, Г.К. Зиятдинова, Г.К. Будников.—Казань: КГМУ, 2004.—53 с.

188. Позняк, A.A. Аномальные гранулы нейтрофилов у больных ангиной и ОРЗ / A.A. Позняков //Лабораторное дело.—1991.—№ 9.—С.34—35.

189. Покровский, В.И. Иммунология инфекционного процесса: руководство для врачей / В.И. Покровский, С.П. Гордиенко, В.И. Литвинов.—М., 1994.— 305 с.

190. Покровский, В.И. НСТ-тест нейтрофильных лейкоцитов и его клиническое значение: метод, указания / В.И. Покровский, Б.С. Нагоев.—Нальчик, 1983.

191. Покровский, В.И. Стрептококки и стрептококкозы / В.И. Покровский, Н.И. Брико, Л.А. Ряпис,—М.: ГЭОТAP-Медиа, 2006—541 с.

192. Попова, H.A. Действие вируса клещевого энцефалита на хромосомы человека: автореф. дис. . канд. биол. наук/H.A. Попова.—Л., 1989.-—14 с.

193. Порошенко, Г.Г. Антимутагены: подходы к классификации и перспектива поиска активных соединений / Г.Г. Порошенко // Вестник РАМН.— 1995.—№1.—С.38—40.

194. Прайор, У.А. Роль свободнорадикальных реакций в биологических системах / У.А. Прайор // Свободные радикалы в биологии.—М., 1979.— Т.1.—С. 13—76.

195. Ратникова, Л.И. Роль оксида азота в генезе системных нарушений при инфекционной патологии / Л.И. Рагпикова, В.А. Елисеев, С.А. Шип, Т.А. Дубовикова // Журнал инфектологии.—2010.—Т. 2, № 4.—С.101—102.

196. Рахманин, Ю.А. Оценка мутагенной активности факторов окружающей среды в клетках разных органов млекопитающих микроядерным методом: мегод. рекомендации / Ю.А. Рахманин.—М., 2001.—43 с.

197. Резник, B.C. Заявка 2005 124656 РФ, МПК7 С 12 N 9/10 Способ увеличения активности фермента N-ацетилтрансферазы у человека / B.C. Резник, В.И. Погорельцев, С.Ю. Гармонов, Н.С. Шитова, Т.А. Киселева.—приоритет 02.08.2005.—11 с.

198. РЛС — доктор. Ксимедон табл.: ежегод. сб. / гл. ред. Г.Л. Вышковский и др..—М.: РЛС, 2007.—Вып. 10.—959 с. (Регистр лекарственных средств России).

199. Рубин, В.И. Очерки клинической биохимии / В.И.Рубин, М.А. Осадчук, А.Ю. Кулиджанов // Саратов: Изд-во Саратовского мед. университета, 2004. 255 с.

200. Российская Федерация. М-во здравоохранения. О внесении Ксимедона в Государственный Реестр лекарственных средств, разрешенных к применению в медицинской практике и к производству: Приказ М-ва Рос. Федерации от 07.12.93 г. № 287.

201. Рудая, Н.В. Состояние системы ферментов микросомального окисления в зависимости от ацетилтрансферазной активности / Н.В. Рудая, O.E.

202. Савченко // Украинский Биохимический Журнал.—1993.—Т.65, № 6.— С.108.

203. Рудинский, К.А. Роль N-ацетилтрансферазы в развитии воспаления дыхательных путей и прогнозировании эффективности лечения больных бронхиальной астмой: автореф. дис. . канд. мед. наук / К.А. Рудинский.— СПб., 2001.—16 с.

204. Руководство по краткосрочным тестам для выявления мутагенных и канцерогенных химических веществ // Совместное издание Программы ООН по окружающей среде, Международной организации труда и Всемирной организации здравоохранения.—Женева, 1989.—С. 108—124.

205. Ряпис, JI.A. Стрептококки: общая характеристика и методы диагностики / Л.А. Ряпис, Н.И. Брико, A.C. Ещина, Н.Ф. Дмитриева; под ред. Н.И. Брико.—М.: ООО «Медицинское информационное агенство», 2009.—196с.

206. Саприн, А. Н. Ферменты метаболизма и дегоксикации ксенобиотиков / А.

207. Саприн // Усп. биологии, химии XXXII.—М.: Наука, 1991.—С. 146— 169.

208. Селезнев, И. Т. Активность процессов ацетилирования у больных рассеянным склерозом / И. Т. Селезнев // Лабораторное дело.—1984.— №12.—С.754—755.

209. Семенов, Б.Ф. Клеточные и молекулярные основы противовирусного иммунитета / Б.Ф. Семенов, Д.Р. Каулеп, И.П. Баландин.—М.: Медицина, 1982.—239 с.

210. Семенов, В.В. Мутагенез, антимутагенез и регуляторная система клетки / В.В. Семенов // Вестник РАМН.—1995.—№1.—С.41—44.

211. Семенов, B.B. Нестабильность генома при патологии ненаследственпого генеза / В.В. Семенов, Е.С. Кошпаева // Материалы VI съезда Российского Общества медицинских генетиков.—Ростов-н-Д, 2010.—С. 162.

212. Семенов, В.В. Нестабильность генома человека при вирусных заболеваниях и вакцинациях / В.В. Семенов, Е.С. Кошпаева // Казанский медицинский журнал.—2009.—-Т.89, № 6.—С.815—820.

213. Семенов, В.В. Рецепторно — регуляторные механизмы действия антимутагенов / В.В. Семенов // Вестник РАМН.—1997.—№7.—С.28—35.

214. Семенова, E.H. Иммуногенные и протективпые свойства типоспецифических и нетипоспецифических белков клеточной стенки стрептококков группы А: автореф. дис. . канд. биол. наук / E.H. Семенова—М., 1993.—24 с.

215. Сергеев, П.В. Теоретическая и практическая фармакокинетика: методические разработки / П.В. Сергеев, И.Л. Шимановский, К.Г. Гуревич.—М.: РГМУ, 2003.—48 с.

216. Середенин, С.Б. Фармакологическая защита генома / С.Б. Середенин, А.Д. Дурнев.—М.: ВИНИТИ, 1992.—280 с.

217. Серединин, С.Б. Лекции по фармакогенетике / С.Б. Середенин.—М.: МИА, 2004.—303 с.

218. Симонов, Е.А. Наркотики. Методы анализа на коже, в ее придатках и выделениях / Е.А. Симонов, Б.Н. Изотов, A.B. Фесенко.—М.: Анахарсис, 2000.—231 с.

219. Скакун, Н.П. Клиническая фармакогенетика / Н.П. Скакун.—Киев: Здоров'я, 1981.—200 с.

220. Скороходкина, O.B. Ксимедон в базисной терапии аюпической бронхиальной астмы и механизмы реализации его терапевтического эффекта: автореф. дис. . д-ра мед. наук / О.В. Скороходкина.—Казань, 2004.—41 с.

221. Скрипник, J1.M. Состояние перекисного окисления липидов и антиоксидантной системы у больных холерой / JI.M. Скрипник, Е.В. Павленко // VI Российских съезд врачей-инфекционистов.—СПб., 2003.— С.25—26.

222. Слабнов, Ю.Д. Механизмы системного иммунокорригирующего действия ксимедона: автореф. дис. . д-ра мед. наук / Ю.Д. Слабнов.—Казань, 1997.—34 с.

223. Солдатов, И.Б Лекции по оториноларингологии / И.Б. Солдатов.—М., 1994.—286 с.

224. Соради, И. Основы и педиатрические аспекты фармакогене тики / И. Соради.—Будапешт, 1984.—211 с.

225. Суворов, А.Н. Генетическая характеристика патогенных стрептококков групп А и В: автореф. дис. . д-ра. мед. наук / А.Н. Суворов.—СПб, 1997.—30 с.

226. Сулейманов, С.Ш. Влияние фенотипа ацетилирования на эффективность антибиотикотерапии внебольничной пневмонии / С.Ш. Сулейманов, О.В. Молчанова, Н.В. Кирпичникова, A.A. Горбач // Клиническая фармакология и терапия.—2010.—№ 6.—С.150—151.

227. Суханова, М.Ж. N-ацетилирование биогенных аминов у Drosophila virilis / М.Ж. Суханова, Т.М. Хлебодарова, Л.Г. Гренбэк // Генетика.—1997.—№6.—С.788—792.

228. Сычева, Л.П. Применение микроядерных тестов для выявления мутагенов и канцерогенов / Л.П. Сычева, B.C. Журков // Вестник РАМН.—1997.—№7.—С. 14—18.

229. Сычева, Л.П. Современные проблемы и методы оценки мутагенного действия факторов окружающей среды / Л.П. Сычева, B.C. Журков, Ю.А. Ревазова // Материалы VI сьезда Российского Общества медицинских генетиков.—Ростов-н-Д, 2010.—С. 174.

230. Тимошек, Г.М. Хромосомные нарушения у больных геморрагической лихорадкой с почечным синдромом / Г.М. Тимошек, P.A. Канторович, Е.С. Кетиладзе // Актуальные проблемы вирусной инфекции.—М., 1968.—Вып. 3.—С. 13 0—132.

231. Титов, М.Б. Иммунные комплексы при иифекциопных болезнях / М.Б. Титов, Б.Д. Луцик // Врачебное дело.—1983.—№ 1.—С.7—9.

232. Тихонова, H.H. Монооксигеназы печени и фенотип ацетилирования у больных истинной экземой / H.H. Тихонова, А.Х. Аширмегов // Медицинский журнал Узбекистана.—1990.—№ 2.—С.40—42.

233. Тищенко, Л.И. Исследование взаимосвязи процессов ацетилирования гистонов и синтеза РНК в изолированных ядрах / Л.И. Тищенко, A.A. Мюльберг, И.П. Ашмарии // Биохимия.—1971.—Т. 36, № 8.—С.595—600.

234. Тоголян, A.A. Анализ механизмов иммунопатологического постстрептококкового гломерулонефрита (AGN) / A.A. Тотолян, Л.А., Бурова, В.А. Нагорнев, П.В. Пигаревский // Терапевтический архив.— 2008.—№ 6.—С.90—95.

235. Тотолян, A.A. Современные проблемы стрептококковой инфекции / A.A. Тотолян, В.В. Малеев // Журнал микробиологии.—1996.—№ 2.—С.117— 120.

236. Туганбекова, С.К. Состояние метаболических систем (ацетилирования, микросомального окисления) и фагоцитоза при волчаночном нефрите: автореф. дис. . канд. мед. наук/С.К. Туганбекова.—М., 1986.—18 с.

237. Усманова, Л.П. Влияние фенотипа ацетилирования на тяжесть течения и исхода острого вирусного гепатита В / Л.П. Усманова., Н.Б. Касимова, Т.А. Кузнецова//Терапевтический архив.—1996.—Т.68, № 11.—С. 19—20.

238. Ушкалова, В.Н. Контроль перекисного окисления липидов. / В.Н. Ушкалова, Н.В. Иоанидис, Г.Д. Кадочникова, З.М. Деева.—Новосибирск: Изд-во Новосибирского ун-та, 1993.-—181 с.

239. Фазлыева, P.M. О роли перекисного окисления липидов в патогенезе геморрагической лихорадки с почечным синдромом / Нефрология.— 1998.—Т. 2, № 4.—С.32—36.

240. Фазылов, В.Х. Нарушения гемостаза и иммунитета при формировании рецидивов рожи, их терапевтическая коррекция: дис. . д-ра. мед. наук / В.Х. Фазылов—Казань, 1996.—285 с.

241. Фахрутдинова, Г.Ф. Определение антигена Streptococcus pyogenes в сыворотке крови больных ангиной / Г.Ф. Фахрутдинова., В.Х. Фазылов, И.Э. Кравченко // Материалы VI Российского съезда инфекционистов.— СПб., 2003.—С.3999.

242. Филатов, В.Ф. Некоторые закономерности соотношения дефицита барьерной функции миндалин и системного иммунитета и хроническомтонзиллите / В.Ф. Филатов, И.Я. Дикий, В.Д. Яковенко // Вестник оториноларингологии.—1987.—№ 3.—С.61—63.

243. Фогель, Ф. Генетика человека. Т.2 / Ф. Фогель, А. Мотульски.—М.: Мир, 1990.—378 с.

244. Фримель, X. Основы иммунологии / X. Фримель, И. Брой.—М.: Мир, 1986.—254 с.

245. Фролов А.К. Цитогенетические изменения в лимфоцитах периферической крови и иммунитет у больных брюшным тифом и хронических бактерионосителей // Цитология и генетика. — 1979. — Т\.13, № 5. — С361-365.

246. Фролов, В.М. Диагностическое и прогностическое значение циркулирующих иммунных комплексов у больных ангиной / В.М. Фролов, H.A. Пересадин // Врачебное дело.—1990.—№ 6.—С.116—118.

247. Фролов, В.М. Цитогенетические нарушения у больных хроническими вирусными гепатитами В и С / В.М. Фролов, И.Р. Бариляк, Л.Л. Пинский, B.C. Топольницкий // Цитология и генетика.—2000.—№ 4.—С.З—5.

248. Хайбуллина, З.Г. Антиокислительпая активность производных пиримидина и бензимидазола в биохимическом механизме их антитоксического действия: автореф. дис. . канд. биол. наук / З.Г. Хайбуллина.—Уфа, 1994.—22 с.

249. Хамитов, Х.С. К механизму действия ксимедопа / Х.С. Хамитов, Д.А. Валимухаметова, А.П. Цыбулькин и др. // Научный сборник материалов экспериментальных и клинических испытаний.—Казань, 1986.—С.9—25.

250. Хараева, З.Ф. Активность компонентов антиоксидантной системы при генерализованной стафилококковой инфекции / З.Ф. Хараева, Б.С. Нагоев // VI Российский съезд врачей-инфекционистов.—СПб., 2003.— С. 132.

251. Хесин, Р.Б. Непостоянство генома / Р.Б. Хесин.—М.: Наука, 1985.—472с.

252. Холодов, JI.E. Клиническая фармакокинетика / JI.E. Холодов, В.П. Яковлев.—М.: Медицина, 1985.—464 с.

253. Хрипач, JI.B. Оксидантный статус организма и его роль в чувствительности генома к повреждающим факторам окружающей среды: автореф. дис. . д-ра биол. наук/ JI.B. Хрипач.—М., 2003.—51с.

254. Худоногова, Н.Г. Актуальные вопросы патогенеза и лечения рожи / Н.Г. Худоногова // Консилиум.—1999.—№ 5(8) .—С.80-84.

255. Черепнев, Г.В. Апаптоз-регулирующая активность ксимедона: автореф. дис. . д-ра мед. наук / Г.В. Черепнев.—Казань, 2002.—44 с.

256. Черепнев, Г.В. Механизмы реализации биологической активности пиримидиновых производных в иммунокомпетентных клетках: автореф. дис. . канд. мед. наук/Г.В. Черепнев.—Казань, 1994.-—20 с.

257. Черепнев, Г.В. Потенциальная роль антимутагенного эффекта ксимедона в модификации иммунореактивности / Г.В. Черепнев, К.В. Малышев, Ю.Д Слабнов // Экспериментальная и клиническая фармакология.—2000.—№ 6.—С.43-48.

258. Черкасов, B.JI. Клиническое значение определения дискретных антигенов стрептококка группы А и антител к ним в крови у больных рожей / B.J1.

259. Черкасов, Г.И. Анохина, А.Р. Шихман, Н.И. Брико // Клиническая медицина,—1995.—№ 4.—С.97—98.

260. Чернова, O.A. Хромосомные аберрации, индуцированные микоплазменными инфекциями в лимфоцитах периферической крови человека / O.JI. Чернова, E.H. Волкова, В.М. Чернов // Генетика.—1996.— Т. 32, № 6.—С.810—813.

261. Шанин, Ю.Н. Антиоксидантная терапия в клинической практике (теоретическое обоснование и стратегия проведения) / Ю.Н. Шанин, В.Ю. Шанин, Е.В. Зиновьев.—СПб.: ЭЛБИ-СПб., 2003.—128 с.

262. Шапот, B.C. Биохимические аспекты опухолевого роста / B.C. Шапот.— М.: Медицина, 1975.—304 с.

263. Шипилов, М.В. Патогенетическая роль некоторых факторов межклеточного взаимодействия при острой и хронической стрептококковой инфекции: автореф. дис. . канд. мед. наук / М.В. Шипилов.—М., 2001.—22с.

264. Шитова, Н.С. Биофармацевтический анализ генетически детерминированной ферментативной активности метаболических систем организма человека: дис. . канд. хим. наук / Н.С. Шитова.—Казань, 2005.—231 с. '

265. Ягудина, Л.А. Оценка эффективности ксимедона в лечении посттравматических гнойно-воспалительных осложнений / Л.А. Ягудина, Л.Е. Зигапшина, А.П. Цибулькин // Клиническая фармакология и терапия,—2010.—№ 6.—С Л 64—166.

266. Яковлева, О.А Генотипический и фенотипический полиморфизм N-ацетилтрансфераз в роли предикторов бронхолегочных заболеваний / O.A. Яковлева, А.И. Косован, О.В. Дякова, В.В. Царук // Пульмонология.— 2003.—№4,—С.115—121.

267. Ялфимова, Е.Ю. Суперантигены и их роль в патологии / Е.Ю. Ялфимова, A.B. Пронин //Журнал микробиология.—1999.—№ 3.—С.98—104.

268. Allard, J.P. Oxidative stress and plasma antioxidant micronutrients in humans with HIV infection / J.P. Allard, E. Aghdassi, J. Chau et al. // Am J Clin Nutr.—1998.~Vol.67 (1).—P. 143—147.

269. Allen, A.J. Case study: a new infection-triggered, autoimmune subtype of pediatric OCD and Tourette ' s syndrome / A.J. Allen, H.L. Leonard, S.E. Swedo //J. Am. Acad. Child. Adolesc. Psychiatri.—1995—Vol. 34,—P. 307—311.

270. Andersson, U. Simultaneous production of erleukin 2, interleukin 4 and interferon y by activated human blood lymphocytes, ur. / U. Andersson, J. Andersson, A. Lindfors et al. // J. Immunol.—1990.-№ 20.—P. 1591—1596.

271. Arcus, V.L. Conservation and variation in superantigen structure and activity highlighted by the three-dimensional structures of two new superantigens from Streptococcus pyogenes / V.L. Arcus // J. Mol. Biol.-2000.-Vol. 299 (1).-P.157—168.

272. Aula, P. Virus-associated chromosome breakage. A cytogenetic study of chickenpox, measles and mumps patients and of cells cultures infected with measles virus / P. Aula // Ann. Acad. Sei. Penn.—1965.—Vol. 82.—P.64—75.

273. Autrup H. Genetic polymorphisms in human xenobiotica metabolizing enzymes as susceptibility factors in toxic response // Mutation Research /Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis. 2000. - V. 464. - P. 65-76.

274. Barsumian, E.L. Non-specific and specific immunological initogenicity by group A streptococcal pyrogenic exotoxins / E.L. Barsumian, P.M. Schlievert, D.W. Watson // Infect Immun.—1978,—Vol. 22(68).—P. 1—8.

275. Basrna, H. Risk factors in the pathogenesis of invasive group A streptococcal infections: role of protective humoral immunity / H. Basma, A. Norrby-Teglund, Y. Guedez//Infect. Immun.—1999.—Vol. 67.—P.1871—1877.

276. Bellavite, P. The superoxide — forming enzymatic system of phagocytes / P. Bellavite, E. Berton, P. Dri // Reticuloendothel. Soc.—1981.—Vol. 29, № 1.— P.47—60.

277. Birnboim, H.C. Exprysion of oncogenes in human Ieuremias / H.C. Birnboim // Carcinogenesis.—1986.—Vol. 7, № 9.—P. 1511—1517.

278. Bisno, A.L. Group A streptococcal infections: The changing scene /A.L. Bisno // Curr. Opin Infect Dis.—1995.—Vol. 8(2).—P. 117—122.

279. Bisno, A.L. Streptococcal infection of srin anol soft tissues see comments. / A.L. Bisno, D.L. Stevens // N. Engl. J. Med.—1996,—Vol. 334(4).—P.240— 245.

280. Bohach, G.A. Staphilococcal and streptococcal pyrogenic toxins involved in toxik shock syndrome and relate illnesses / G.A. Bohach, D.J. Fast, R.D. Nelson // Crit. Rev. Mikrobiol.—1990.—Vol. 17—P.251—272.

281. Bouchardy C. N acetyltransferase NAT1 and NAT2 genotypes and lung cancer risk / C. Bouchardy et al. // Pharmacogenetics.—1998.—Vol. 8, № 4.— P.291—298.

282. Burnet, F.M. (Бернет Ф.М.) Клеточная иммунология: пер. с англ. / F.M. Burnet—М.: Мир, 1971 —542 с.

283. Bums, Е.Н., Marciel A.M., Musser J.M. Activation of a 66 kilodalton human endothelial cell matrix metallopro tease by Streptococcus pyogenes extracellular cysteine-protease // Infect Immun 1996.—Vol.64(47).—P.44—50.

284. Carapetis, J.R. The Current Evidence for the Burden of Group A Streptococcal Diseases / J.R. Carapetis, A.C. Steer, E.K. Mulholland, M. Weber // World Health Organization, 2005.

285. Catchart, R. Ynvasire group A streptococcus infection / R. Catchall // Proc. Nat. Acad. Sci. USA.—1984.—Vol. 81(4).—P.5653—5637.

286. Cavallion, J.M. Cytokines in streptococcal infections. In «Streptococci and the Host3. Proc. XIII Lacefield Sympos / J.M. Cavallion, H. Muller-Alouf J.E. Alouf // Streptococci and Strept. Dis. Plenum Press.—1997.—P.869—879.

287. Cerrutti, P.A. Prooxidant states and timon promotion / P.A. Cerrutti // Science.—1985.— Vol. 227.—P.376—381.

288. Chaussee, M.A., Growth phase-associated changes in the transcriptome and proteome of Streptococcus pyogenes / M.A. Chaussee, A.V. Dmitriev, E.A. Callegari, M.S. Chaussee //Arch. Microbiol.—2008—№189.—P.27—41.

289. Chou, W.C. Clonal disease of natural killer large granular lymphocytes in Taiwan / W.C. Chou, I.P. Chiang, J.L. Tang // Br. J. Haematol.—1998.— Vol. 103,№4—P.l 124—1128.

290. Cockeril, F.R. Outbrear of inwasive group A streptococcus disease assatabed /

291. F.R. Cockeril, K.L. Mc Donald // JAMA.—1997,—№ 277.—P.38-^13.

292. Colman, G. Changes in the distribution of serotypes of streptococcus pyogenes /

293. G. Colman, A. Tanna, E.T. Gaworzewska // Int. J. Med. Microbiol.—1999.— Vol. 277, № 8 (Supp 22).—P. 14—16.

294. Cortney, U.S. Strategies for prevention of group A streptococcal adhesion and infection /H.S. Cortney, J.B. Dale, D.L. Hasty—1999—P.553—579.

295. Cross, A.S. The human antibody response during natural bacteremic infection with gram-negative bacilli against lipopolysaccharide core determinants /A.S. Cross, Ii. Sidberry, F.C. Sadoff// J. Infect. Dis.—1989.—Vol. 160, № 2.— P.225—236.

296. Cu, G.A. Immunohistochemical and serological evidence for the role of streptococcal proteinase in APSGN / G.A. Cu, S. Mezzano, J.D. Bannan, J.B. Zabriskie // Kidney Int.—1998.—Vol. 54,—P.819—826.

297. Cubba, S. Express characterization of group a streptococcus extracellular cysteme protease and documentation conversion during human invasive eppisades / S. Cubba, D. Low, J.M. Musser // J. Exp. Med.—1999.—Vol. 46, № 5.—P.765-—770.

298. Cunningham, M.W. Pathogenesis of group a streptococcal infections / M.W. Cunningham// Clin. Microbiol. Rev—2000.—Vol. 13, № 3.—P.470—511.

299. D"Angeuc, A.D. CD57+ T lymphocytes are derived from CD57-precursors by differentiation occurring in late immune responses / A.D. D"Angeuc, S. Monier,

300. D. Pilling et al. //Eur. J.Immunol.-l 994.-Vol.24.-P. 1503-1510.

301. Denis, M.G. Acetylation pharmacogenetics / M.G. Denis, K. Morlke, M. Eichelbaum, U.A. Meyer//J. Clin. Invest.—1990.—Vol. 85.—P.968—972.

302. Digeon, M. Detection of circulating immune complexes in human sera by simplified assays with polyethylene glycol / M. Digeon, M. Laver, J. Riza, J.F. Bach //J. Immunol. Methods.—1977.—№ 16.—P. 165—183.

303. Duzhak, T. Genetic polymorphisms of CYP2D6, CYP1A1, GSTM1 and p 53 genes in unique Siberian population of Tundra Nensti / T. Duzhak, D. Mitrofanov, V. Ostashevskii et al. // Pharmacogenetics.—2000.—№ 6.— P.531—537.

304. Efstratiou, A. Group A streptococci in the 1900s / A. Efstratiou // J. Antimicrob. Chemotherapy.—2000,—Vol. 45.—P.3—12.

305. Emerit, I. Reactive oxygen species chromosome mutation and cancer: possible role of clastogenic factors in carcinogenesis / I. Emerit // Free Radic. Biol. Med.—1994.—Vol. 16,№ 1.—P.99—109.

306. Evans, M.D. Oxidative damage to nucleic acids / M.D. Evans, M.S. Cooke.— N.Y., 2007.—228 p.

307. Factor, S.H. Risk factors for Pediatric Invasive Group A Streptococcal Diseases / S.H. Factor, O.S. Levine // Emerging inf. Pis.—2005.—Vol. 11, № 7.— P. 1062—1066.

308. Feil, E.J. Recombination and the population structure of bacterial pathogens /

309. E.J. Feil, B.G. Spratt // Amiy Rev. Microbiol.—2001.—Vol. 55, № 9,—P.561 — 590.

310. Fidellius, R.K. The generation of oxigen radicals: a positive signal lymphocyte activation / R.K. Fidellius // Cell. Immunol.—1988.—Vol. 113,—P. 175—182.

311. Fischetti, V.A. Streptococcal M protein / V.A. Fischetti // Sci. Am.—1991.— Vol. 264.—P.58—65.

312. Fluckiger, U. Immunoglobulins to group A streptoc molecules decrease adherence invasion of human pharyngeal cells / U. Fluckiger, K.F. Jones // Immun.—1998.—Vol. 66, № 5.—P.974—979.

313. Foptunato, E.A. Specific chromosome I breakes induced by human cytomegalovirus / E.A. Foptunato, M.L. Dell Aquilla, D.H. Spector // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.—2000.—Vol. 97, № 2.—P.853—858.

314. Grant, D.M. Human acetyltransferase polymorphisms / D.M. Grant // Mutat. Res.—1997.—Vol. 376, № 1-2.—P.61—70.

315. Greco, R.L. Invasion of cultured human cells bi Streptococcus pyogenes / R.L. Greco, L. De Martino, G. Donnarumma et al. // Res. Microbiol.—1995.—Vol. 146.—P.5551—5560.

316. Gubbay, L. Streptococcal pharyngitis in Argentina. A four-year study / L. Gubbay, A. Ellis, H.G. Lopez, L. Galanternik / Adv. Exp. Med. Biol.—1997.— Vol.418.—P.49—52.

317. Gutteridge JMC. Lipid peroxidation and antioxidants as biomarkers of tissue damage//Clin Chem. 1995. - Vol.41. - P.1819-28.

318. Guidelines for the diagnosis of rheumatic fever: jones criteria, updated 1992 / A.S. Dajani, E. Ayoub, F.Z. Bierman et al. // JAMA.—1992.—Vol. 268.— P.2069—2073.

319. Halliwell, B. Oxygen radicals and tissue damag / B. Halliwell // J. Mol. Cell. Cardiol.—1981.—Vol. 13, Suppl. 1.—P. 36.

320. Hanski, E. Protein F, a fibronectin binding protein, is an adhesin of'the group A streptococcus Streptococcus pyogenes / E. Hanski, M. Caparon // Protein Proc Natl Acad Sci USA.—1992.—Vol. 89, № 617.—P.2—6.

321. Harris, R.Z. Gender effects in pharmacokinetics and pharmacodynamics / R.Z. Harris, L.Z. Benet, J.B. Schwartz //Drugs. 1995; 50: 222-39.

322. Hartman, P.E. Mutagenic and antimutagenic activities of human / P.E. Hartman, M.S. Delbert//Environm. Molec. Mutagen.—1990.—Vol. 15.—P. 145—182.

323. Hein, D.W. Rodent models of the human acetilation polymorphism: Comparisons of recombinant acetiltransferases / D.W. Hein, M.A. Doll, A.J. Fretland et al. // Mutation Research—1997.—Vol. 376.—P.101—106.

324. Hirai, M. Chromosome aberrations in leukocytes of filarial-infected indigenous inhabitants in the Philippines / M. Hirai, K. Omoto, H. Tanaka et al. //Jpn. J. Exp. Med. 1986. - Vol. 56, №6. - P.285-291.

325. Hisato, I. NAT2 gene polymorphism as a possible marker for susceptibility to bladder cancer in Japanese / I.Hisato, K.Takahiko, K.Toshihiro, M.Tetsuro // International journal of urology.—1999.—Vol. 6.—P.446—454.

326. Hampar, B. Chromosomal aberration induced by an animal virus / B. Iiampar, S.A. Ellison//Nature.—1961.—"Vol. 192.—P.145—147.

327. Hribalova, V. Influence antilymphocite and antipolymorphonuclear on the pyrogenic effecs of scarlet fever toxin / V. Hribalova, A. Castrova, J. Perarek // Folia microbial.—1979.—№ 24.—P.428—434.

328. Ingelman Sundberg, M. REVIEW Human drug metabolizing cytochrome P450 enzymes: properties and polymorphisms / M. Ingelman - Sundberg // Naunyn - Schmiedeberg's. Arch Pharmacol.—2004—Vol. 369, № 1.—P.89— 104.

329. Irshaid, I.Y. Acetylator phenotypes of Jordanian diabetics / I.Y. Irshaid, I.H. AI-Hadidi, M. Abuirjeie et al. // Eur. J. Clin. Pharmacol.—1992.—Vol. 43,— P.621—623.

330. Iyer, L. Pharmacogenetics and cancer chemotherapy / L. Iyer, M.J. Ratain // European J. Cancer.—1998.—Vol. 34, № 10.—P.1493—1499.

331. Jadoun, J. Protein F1 is reguired for efficient entry of Streptococcus pyogenes into epithelial cells / J. Jadoun, V. Ozeri, E. Burstein et al. // J. Infect. Dis.— 1998.—Vol. 178.—P. 147—158.

332. Jager, L. Клиническая иммунология и аллергология / под ред. Л.Йегера; пер. с нем.: В 3-х томах.—М.: Медицина, 1990.—Т. 2.—560 с.

333. Jain, S.K. Oxidative stress in chronic hepatitis C: not just a feature of late stage disease / S.K. Jain, P.W. Pemberton, A. Smith et al. // J. Hepatol.—2002 .— Vol. 36, № 6.—P.805—811.

334. Jetter, A. Phenotyping of N-acetyltransferase type 2 by caffeine from uncontrolled dietary exposure / A. Jetter, M. Kinzig-Schippers, M. Illauer et al. // Eur. J. Clin. Pharmacol.—2004,—Vol. 60, № 1.—P.17—21.

335. John, M.C. The measurement and mechanism of lipid peroxidation in biological systems / M.C. John, B. Halliwellb // Trends in biochemical Sciences.—1990.— Vol. 15, № 4.—P.129—135.

336. Jung, T. Interleukin-4 and interleukin-5 are rarely co-expressed by human T cells. / T. Jung, U. Schauer, C. Rieger et al. // Eur. J. Immunol.—1995.—№ 25.—P.2413—2416.

337. Kanekal, S. Metabolism of cyclophosphamide by lypoxygenases / S. Kanekal, J.P. Kehrer//Drug. Metab. Dispos.—1994.—Vol. 22.—P.74—78.

338. Kapur, V. A streptococcus pyogenes extracellular cysteine peptease cleares human fibronectin and vitronectin / V.Kapur, S. Topusis, M.W. Majesky // Microb. Patog.—1993.—№ 15.—P.323—346.

339. Khalili, H. Is there any difference between acetylator phenotypes in tuberculosis patients and healthy subjects / H. Khalili, S. Dashti-Khavidaki, M. Amini, R. Mahjub et al. // Eur. J. Clin. Pharmacol.—2010.—Vol. 66, № 3.p.261—267.

340. Kline, J.B. Analysis of the interaction between the bacterial superantigen streptococcal pyrogenic exotoxin A (SpeA) and the human T cell receptor / J.B. Kline, C.M. Collins // Mol. Microbiol.—1997.—Vol. 24, № 1.—P.191— 202.

341. Kline, J.B. Analysis of the superantigenic activity of mutant and allelic forms of streptococcal pyrogenic exotoxin A / J.B. Kline, C.M. Collins // Infect, lmmun—1996.—Vol. 64, № 3—P.861—869.

342. Kline, J.B. Streptococcal pyogenic exotoxin A / J.B. Kline, C.M. Collins // J. Exp. Med. 1996. - Vol. 96(64). - P. 861—869.

343. Kohen, R. Oxidation of biological systems: oxidative stress phenomena, antioxidants redox reactions, and methods for their guantification / R. Kohen, A. Nyska// Toxicol. Pathol.—2002.—Vol. 30, № 6.—P.620—650.

344. Kotb, M. Bacterial pyrogenic exotoxins as superantigens / M. Kotb // Clin. Microbiol. Rev.—1995.—Vol. 8, № 3.—P.411—426.

345. Kozhemiakin, L.A. Genomic instability and AIDS / L.A. Kozhemiakin, I.G. Bondarenko // Biokhimiia—1992.—Vol. 57.—P. 1417—1426.

346. La Penta, D. Group A streptococci efficienthy invade human respiratory epithelial cells / D. La Penta, C. Rubens, E. Chi, P.P. Cleari // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.—1994.—Vol. 91.—P.12115—12119.

347. Lamagni, T.L. The epidemiology of severe Streptococcus pyogenes associated disease in Europe / T.L. Lamagni, A. Efstratiou, J. Vuopio-Varkila, A Jasir et al. // Euro Surveill.—2005.—Vol. 10, № 9.—P.563.

348. Lancefield, R.C. Current knowledge of type-specific M antigens of group A streptococci / R.C. Lancefield // J. Immunol.—1962.—Vol. 89.—P.307—313.

349. Lanier, L.L. Subpopulations of Human Natural Killer Cells Difined by Expression of the Leu-7(HNK-1) and Leu-11(NK-15) Antigens / L.L. Lanier, A.M. Le, J.H. Philips et al. //J. Immunol.—1983.—Vol. 131.—P.1789—1796.

350. Licinio, L. Pharmacogenetics. The Search for Individualized Therapies / L. Licinio, M.L. Wong.—Weinheim: WILEY VCH Verlag GmbH, 2002.—301 p.

351. Linder, J.A. Antibiotic treatment of children with sore throat / J.A. Linder, D.W. Bates, G.M. Lee, J.A. Finkelstein // JAMA.—2005.—Vol. 294, № 18.— P.2315—2322.

352. Liotte, F.S. Variation in catalase, gluthatione peroxidase in rats livers / F.S. Liotte, A.R. Menghini // Cell, and mol. Biol.—1987.—Vol. 33.—№ 5.— P.611—617.

353. Liu, Y. HBV infection downregulated Mrell expression and induced genome instability / Y. Liu, N. Hou, F. Zhao et al. // Wei Sheng Wu Xue Bao.— 2008.—Vol. 48.—P.1031—1034.

354. Lottcnberg, R. Identification of a specific receptor for plasmin on a group A streptococcus / R. Lottcnberg, C.C. Broder, M.D. Boyle // Infect Immun.— 1987.—"Vol. 55, № 8,—P. 1914—1918.

355. Madndrup Poulsen, T. What are the types and cellular sources of free radicals in the pathogenesis of type 1 (insulin - dependent) diabetes mellitus / T. Madndrup - Poulsen // Diabetologia. - 1993. - Vol. 36,—P.470-^171.

356. Makino, S. Chromosome aberrations in leikocytes of patients with aseptic meningitidis / S. Makino, K. Jamada, J. Kajii // Chromosoma.—1965.—Vol. 16, № 3.—P.372—380.

357. Manna, G.K. Bacterial induced bone-marrow chromosome aberrations in micc and their repair / G.K. Manna, C. Samar // Symp. Struct. Funct. Aspects Chromosomes.—1975.—Vol. 1 .—P. 19.

358. Manna, G.K. Mutagenic potential of human Kalaazar haemoflagellate / G.K. Manna, A.K. Sarkar//Curr. Sci—1989.—Vol. 58.—P. 1268—1271.

359. Marandi, T. Debriziquine and S-mephenytoin hydroxylation polymorphisms in a Russian population living in Estonia / T. Marandi, M.L. Dahl, L. Rago et al. // Eur. J. Clin. Fhermacol.—1997.—№ 3.—Vol. 53, № 4.—P.257—260.

360. Marklund, S. Distribution of Cu Zn superoxide dismutase and Mb - superoxide dismutase in human tissue and extracellular fluids / S. Marklund // Acta physiol. Scand.—1980.—Vol. 110, Suppl. 492.—P. 19—22.

361. Mascini, E.M. Relative avidities of human immunoglobulin G antibodies for streptococcal pyrogenic exotoxins A and B / E.M. Mascini // Clin. Diagn. Lab. Immunol.—1999.—Vol. 6, № 6.—P.977—980.

362. Mayer, M. Experemental Immunochemistiy / M. Mayer, E. Kabat: Springfield, 111, Charles C.Thomas, 1961.

363. Milejski, P. Kliniczne znaczenie badania fenotypu oksydacji i acetylacji u chorych na stwardnienie rozsiane / P. Milejski, K. Orzechowska-Juzwenko, J. Pawlik et al. // Neurologia I Neurochirurgia Polska.—1996.—Vol. 30, № 4.— P.571—579.

364. Milet, R.G. Chromosome aberrations in toxoplasmosis / R.G. Milet, W. Abt, D. Gallegas // Lancet.—1976.—Vol. 1.—P. 1305—1306.

365. Miyawaki, T. Differential expression of apoptosis-related fas antigen on lymphocyte subpopulations in human peripheral blood 1 T. Miyawaki, T. Uehara, R. Nibu et all. // J. Immunol—1992.—№ 149.—P.3753—3758.

366. Molinari, G. Invasion and survival of Streptococcus pyogenes in eukaryotic cells correlates with the source of the clinical isolated / G. Molinari, G.S. Chatwal // J. Infect. Dis—1998.—Vol. 177, № 2.—P. 1600—1607.

367. Mosmann, T.M. The expanding universe of T cell subsets: Thl, Th2 and more / T.M. Mosmann, S. Sad // Immunol. Today.—1996—Vol. 17, № 3,—P. 138— 146.

368. Mosovska, S. Genotoxic and antimutagenic activities of extracts from pseudocereals in the Salmonella mutagenicity assay / S. Mosovska, M. Mikulasova, L. Brindzova et al. // Fjjd. Chem. Toxicol.—2010.—Vol. 33, № 3.—P.254—260.

369. Mylvaganam, H. Emm gene polymorphism among temporally clustered group A streptococcal isolates in western Norway / H. Mylvaganam, B. Bjorvatn, T. Hofstad and A. Osland // APMIS. 2000, - Vol. 108, № 4, P. 303-312.

370. Nathan, C.F. Extracellular cytolysis by activated macrophages and granulocytes. II. Hydrogen peroxide as a mediator of cytotoxicity / C.F. Nathan, S.C. Silverstein, L.N.Brukner // J. Exp. Med.—1979.—Vol. 149.—P. 100—113.

371. Nebert, D.W. Ethnic and genetic differences in metabolism genes and risk oftoxicity and cancer / D.W. Nebert, A.L. Roe // Sci. Total. Environ.—2001.1. Vol. 274(4).—P.93—102.

372. Nelson, D.R. The P450 superfamily: update on new sequences, gene mapping, accession numbers, early trivial names of enzymes, and nomenclature / D.R. Nelson. Part 1 // DNA and Cell Biol.—1993,—Vol.12, №1.—P.l—51.

373. Nelson, D.R. The P450 superfamily: update on new sequences, gene mapping, accession numbers, early trivial names of enzymes, and nomenclature / D. R. Nelson // DNA and Cell Biol. 1993 .-Vol. 12,'№ 2.—P. 11—47.

374. Nichols, W.W. Virus-induced chromosome abnormalities / W.W. Nichols // Ann. Rev/ Microbiol —1970.—Vol. 24.—P.479—500.

375. Nida, S.K. Phage influence on the synthesis of extracellular toxins in group A streptococci / S.K. Nida, J.J. Ferretti // infect Imraun.—1982.—Vol. 36(7).— P.45—50.

376. Nordstrand, A. Pathogenic mechanism of acute poststreptococcal glomerulonephritis / A. Nordstrand, M. Norgren, S.E. Holm // Scand J Infec Dis.—1999.—Vol. 31.—P.523—537.

377. Norgren, M. Genetic diversity in T1M1 group A streptococci in relation to clinical outcome of infection / M. Norgren, A. Norrby, S. Holm // J. infect. Dis.— 1992.—Vol. 166.—P. 1014—1020.

378. Norrby-Teglund, A. Host variation in cytocine responses to superantigens determine the severity of invasive group A streptococcal infection. Part 1/ A. Norrby Tegland // Eur. J. Immunol.—2000.—Vol. 30, № 11.—P.3247—3255.

379. Norrby-Teglund, A. Host variation in cytokine responses to superantigens determine the severity of invasive group A streptococcal infection / A. Norrby-Teglund, S. Chatellier, D.E. Low // Eur. J. Immunol.—2000.—Vol. 30, № 12.— P.3135—3155.

380. Norrby-Teglund, A.R. Evidence for the presence of streptococcal-superantigcn-neutralizing antibodies in normal poly specific immunoglobulin G / A.R. Norrby-Teglund// Infect. Immun.—1996,—Vol. 64(12).—P.5395—5398.

381. Notkins, A.L. Effects of virus infections on the immune system / A.L. Notkins, S.E. Mergenhagen, R.J. Howard // Ann. Rev. Microbiol.—1970.—Vol. 24.— P.523—538.

382. Notkins, A.L. New Predictors of Disease / A.L. Notkins // Scientific American.—2007.— Vol.296.—P.72—79.

383. Okada, T.A. A search for protein cores in chromosomes: is the scaffold or an artefact/ T.A. Okada, D.E. Comings // Amer. Hum. Genet.—1980—Vol. 32.— P.814—832.

384. Orzechowska-Juzwenko, K. Acetylator phenotype in patients with allergic diseases and its clinical significance / K. Orzechowska-Juzwenko, P. Milejski, J. Patkowski et al. // Int J Clin Pharmacol Ther Toxicol—1990.—Vol.28, № 10.—P.420—425.

385. Pak, S.G. Status of the processes of free — radical oxidation and the antioxidation system in patients with a severe course of hepatitis B / S.G. Pak, E.V.Nikitin // Klin Med (Mosk).—1991.—Vol.69(9) — P.4—7.

386. Papageorgiou, A.C. Structural basis for the recognition of superantigen streptococcal pyrogenic exotoxin A (SpeAl) by MHC class II molecules and T -cell receptors / A.C. Papageorgiou // EMBO J. 1999. - Vol. 18(1).-P. 9—21.

387. Par, A. Oxidative stress and antioxidant defense in alcoholic liver disease and chronic hepatitis C / A. Par, E. Roth, G. Jr. Rumi // Orv Hetil.—2000.— Vol. 141(30).—P.655—659.

388. Peterson, P.K. Inhibition of alternative complement pathway opsonization by group A Streptococcal M protein / P.K. Peterson, D. Schmeling, P.P. Geary // J Infect Dis.—1979.— Vol. 139(5).—P.75—85.

389. Pichichero, M.E. The rising incidence of penicillin treatment failures in group A streptococcal tonsillopharyngitis an emerging role the cephalosporins / M.E. Pichichero//Pediatr. Infect. Dis. J.—1991.—Vol. 10(6).—P.50—55.

390. Pickering G.W. High Blood Pressure. London. - Churchill, - 1968. - 203 p.

391. Podbielski, A. The group A streptococcal vir R49 gene controls expression of four structural vir regulon genes / A. Podbielski, A. Flosdorff, J. WeberHeynemann // Infect. Immun.—1995—Vol.63.—P.9—20.

392. Ponsoda, X. Drug biotransformation by human hepatocytes. In vitro/in vivo metabolism by cells from the same donor / X. Ponsoda, E. Pareja, M.J. Gomez-Lechon et al. // J. Hepatol.—2001.—№ 34(1).—P. 19—25.

393. Prasannachandra Vivian D'Souza, Benedicta D'Souza Comparative study on lipid peroxidation and antioxidant vitamins e and cin falciparum and vivax malaria // Indian Journal of Clinical Biochemistry.—2006.—Vol.21 (2).— P.103—106

394. Prof, T. The streptococcal superantigen SMEZ exhibits wide allelic variation, mosaic structure, and significant antigenic variation // T. Profit // J. Exp. Med.— 2000.—Vol. 191(10).—P.1765—1776.

395. Pro ft T. Superantigens and streptococcal toxic shock syndrome / T. Proft // Emerging Infectious Diseases.—2003. Vol. 9(10). - P. 1211—1218.

396. Prussin, C. Detection of intracytoplasmic cytokine using flow cytometry and directly conjugated anti-cytokine antibodies / C. Prussin, D.Metcalfe // J.Immunol. Meth.—1995.—Vol.188.—P. 117—128.

397. Rausy J.L. Risk assessment: toxicity from chemical exposure resulting from enhanced expression of CYP2E1// Toxicology. 1995. - V. 105. - P. 217-223.

398. Rink, L. Induction of a cytokine network bysuperantigens with parallel TH1 and TH2 stimulation / L. Rink, J. Luhm, M. Koester, H. Kirchner // J. Interferon Cytokine Res.—1996.—"Vol. 16, № l.p.41~^7.

399. Romero, F.J. Lipid peroxidation products and antioxidants in human disease / F.J. Romero, F. Bosch-Morell, J. Roma // Environmental Health Perspectives Supplements.—1998.—Vol. 106, №5.

400. Rosin, M.P. Inflammation, chromosomal instability, and cancer: the schistosomiasis model / M.P. Rosin, W.A. Anwar, A. Ward // Cancer Res. -1994.—Vol. 54, № 7.—P.1929—1933.

401. Salvadori, L.G. Group A streptococcus-liposome ELISA antibody titers to group A polysaccharide and opsonophagocytic capabilities of the antibodies / L.G. Salvadori, M.S. Blake, M. McCarty //J Infect Dis.—1995.— Vol. 171(3).— P.593—600.

402. Schuetz, E.G. Interindividual variation in expression of P-glycoprotein in normal human liver and secondary hepatic neoplasms / E.G. Schuetz, K.N. Furaya, J.D. Schuetz //J. Pharmacol. Exp. Ther. 1995; 275: 1011-8.

403. Schwartz, B. GAS Study Group. The changing epidemiology of group A streptococcal infections in the United States: association with serotype / B. Schwartz, R. Facklam, R.F. Breiman // Int J Med Microbiol.—1992.— Vol.277(8).—P.7—19.

404. Set, A. Binary and ternary complexes between T-cell receptor, class II MHC and superantigen in vitro / A. Set, L.J. Stern, T.H.M. Otenhoff // Nature. 1994.— Vol. 369.—P. 324—327.

405. Sevanian, A. Mechanisms and consequences of lipid peroxidation in biological systems / A. Sevanian, P. Hochstein // Annu Rev Nutr.—1985.—№ 5.— P.365—390.

406. Sharer, J.E. Comparisons of phase I and phase II in vitro hepatic enzyme activities of human, dog, rhesus monkey, and cynomolgus monkey / J.E. Sharer //Drug. Metab. Dispos.—1995.—Vol. 23, № 11.—P. 1231—1241.

407. Shulman, S.T. Seven year surveillance of Streptococcal pharyngitis emm types in North America. Session 1. 01.3. XVII Lancefield International Symposium on Streptococci & Streptococcal Diseases. Porto Heli, Greece, June 2008

408. Shundi, L. Damian M. Streptococcal erythrogenic toxin spe A gene detection by polymerase chain reaction in strains isolated in Albania / L. Shundi, M. Damian // Roumanian Archives Of Microbiology And Immunology.—1997.—Vol. 56 (3-4).—P.147—53.

409. Shuto, T. Viral infections and chromosome aberrations / T. Shuto // Bull. Yamaguchi. Med. Sch.—1970.—Vol. 17(1-2).—P. 85—126.

410. Singh, S. Nitric oxide, the biological mediator of the decade: fact or fiction. / S. Singh, T. W. Evans // Eur. Respir. J.—1997.—Vol. 10.—P. 699—707.

411. Skoulakis, Ch. Level of Streptococcus pyogenes in patients with recurrent tonsillitis and tonsillar hypertrophy. / Ch. Skoulakis, E. Tigiroglou, K. Gkarelis, D. // Scandinavian Journal of Infectious Diseases.—2008.—Vol. 40.—P. 899— 903.

412. Stegmayer, B. Septic shock induced by group streptococcal infection: clinical and therapeutic aspects / B. Stegmayer // Scand. J. Infect. Dis.—2001.—Vol. 24(3).—P.589—590.

413. Stollerman, G.H. Rheumatic fever and streptococcal infection / G.H. Stollerman // Clinical cardiology monographs.—New York, 1975.—P. 1—303.

414. Stollerman, G.H. The Importance of the Group A Streptococcus Capsule in the Pathogenesis of Human Infections: A Historical Perspective / G.H. Stollerman, J.B. Dale // Clinical Infectious Diseases. 2008.— Vol. 46(7). - P. 1038—1045.

415. Stoolmiller, A.C. The biosynthesis of hyaluronic acid bi Streptococcus / A.C. Stoolmiller, A. Dorfman // J. Biol. Chem. 1969. - Vol. 244. - P. 236—246.

416. Szabad, J. Pyrogenic exotoxin / J. Szabad, I. Soos // Mutat. Res. 1983. -Vol. 113.-P. 117—133.

417. Tatar, A. Genotoxic effect of ribavirinin patients with Crimean-Congo hemorrhagic fever / A. Tatar, Z. Ozkurt, I. Kiki // Jpn. J. Infect Dis.—2005.— Vol. 5, 58.—P. 313—315.

418. The World Health Organisation (WHO). Current Evidence for the Burden of Group A Streptococcal Diseases (2005).

419. Thelestam, M. Partical purification and cytotoxic effects of Clostridium difficile toxin / M. Thelestam, M. Bronnegard // Toxicon.—1979.—Vol. 17,—P. 192— 193.

420. Thomas, M.L. Differential expression of the leucocyte-common antigen family / M.L. Thomas, L. Lefrancois // Immun.Today.—1988,—№ 9.—P.320—326.

421. Togashi, H High content of lipid hydroperoxides in livers from patients with chronic hepatitis / H. Togashi, H. Shinzawa, T.C. Matsuo // J. Med.—2000.— Vol. 31(1-2) .—P.3—14.

422. Toscano, C. Streptococcal toxic shock syndrome: an unusual toxin gene profile / C. Toscano, P. Paixao, T. Marques // Clinical Microbiology and Infection.— 1998.—Vol.4.-P. 350-351.

423. Urazova, O.I. Cytogenetic impairments of peripheral blood lymphocytes during infectious mononucleosis 11 Bull / O.I. Urazova, L.S. Litvinova, V.V. Novitskii, A.P. Pomogaeva // Exp. Biol. Med.—2001.—Vol. 131(4).—P.392— 393.

424. Vijaya Lakshmi, A.N. Detection of influenza vims induced DNA damage by comet assay / A.N. Vijaya Lakshmi, M.V. Ramana, B. Vijayashree et al. // Mutat Res.—1999.—Vol. 1(442).—P.53—58.

425. Vlaminckx, B.J. Long-term surveillance of invasive group A streptococcal disease in The Netherlands, 1994—2003 / B.J. Vlaminckx, W. van Pelt, L.M. Schouls et al. // Clin Microbiol Infcct.—2005.—Vol. 11(3).—P. 226—231.

426. Waters, M.D. Antimutagenicity profiles of some model compounds / M.D. Waters, A.L. Brady, S.H.E. Frank et al. // Mutat. Res.—1990.—P.57—85.

427. Weeks, C.R. The gene for type A streptococcal exptoxin (erythrogenic toxin) is located in the bacteriophage T12 / C.R. Weeks, J.J. Ferrety // Infect. Immunal.— 1984,—Vol. 46.—P.531—536.

428. Weitzman, M.D. Genomes in conflict: maintaining genome integrity during virus infection / M.D. Weitzman, C.E. Lilley, M.S. Chaurushiya // Annu Rev Microbiol.—2010.—Vol.64.—P.61—81.

429. Woodruff, J.F. The effect of viral infections on the function of the immune system / J.F. Woodruff, J.J. Woodruff // Viral Immunology; ed. By A.L. Notkins.—N.Y., 1975.—P.393—418.

430. Xiong, M. Study on the rat airway epithelial cell injury induced by bacterial infection and its pathogenesis II Zhonghua Bing Li Xue / M. Xiong, H. Xu, D. Che // Za Zhi.—2001.—Vol. 30,№5.—P.353—356.

431. Yu C.E. Frequency of the erythrogenic toxin B and C genes (spe B and spe C) among clinical isolates of group A streptococci / C.E. Yu, J.J. Ferretti // Infect. Immun.—1991 .—Vol. 59( 1).—P.211—215.

432. Zanger, U.M. Cytochrome P 450 2D6: overview and update on pharmacology, genetics, biochemistry / U.M. Zanger, S. Raimundo, M. Eichelbaum // Naunyn Schmiedebergs Arch. Pharmacol—2004.—Vol. 369, № 1.—P.23—37.

433. Показатели, Здоровые Острый период Ранняя рек-ция Поздняя рек-ция Достоверностьлица Гр. сравн. Осн. гр. Гр. сравн. Осн. гр. Гр. сравн. Осн. гр. р 2-3 р 4-5 р 6-7единицы измерения п=51 п=25 п=23 п=22 п=18 п=14 п=12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10

434. Лейкоциты-109/л 4,88±0,18 7,65±0,58*** 8,3910,71*** 4,87±0,31 б,53±0,43** 5,68±0,34* 5,85±1,03 **

435. Лимфоциты-10у/л 1,84±0,09 1,85±0,14 1,58±0,15 1,95±0,12 2,42±0,17** 2,13±019 2,24±0,26 *38,70±1,38 27,48±!,98*** 22,22±2,16*** 40,64±1,95 39,11±2,59 38,71±3,92 34,43±4,76

436. СОЗ-Ю7л 1,36±0,05 1,30±0,10* 1,05±0,09* 1,48±0,11 1,66±0,12* 1,55±0,14 1,61 ±0,2373,07±1,23 69,88±1,88** 66,91±2,1 б** 75,27±2,07 69,06±2,27 71,93±2,43 71,00±2,10 *

437. С04-Ю7л 0,78±0,04 0,71 ±0,06* 0,61±0,04* 0,87±0,07 1,21 ±0,27 0,79±0,09 1,04±0,09 *43,09±0,99 37,78±1,22* 40,32±2,10* 44,09±1,84 43,28±3,11 36,50±1,65** 44,43±3,43 *

438. С08-Ю7л 0,5б±0,02 0,61±0,07 0,54±0,08 0,59±0,05 0,77±0,08* 0,70±0,10 0,56±0,07 * *29,84^1,06 32,76±2,13* 33,09±1,67* 30,76±2,40 31,11±2,72 31,93±2,74 25,29±1,97 *

439. Тх/Т5 1,54±0,08 1,19±0,13* 1,38±0,10* 1,65±0,23 1,57±0,18 1,26±0,12* 1,91±0,25 *

440. С016-Ю7л 0,27±0,02 0,32±0,02* 0,36±0,04* 0,23±0,03 0,43±0,09* 0,27±0,04 0,38±0,08 *14,42±1,04 18,22±1,21** 22,00±2,38** 12,27±1,56 16,56±2,20 11,93±1,41 17,43±3,92 *

441. НЬА-ОЯ 107л 0,23±0,02 0,37±0,05* 0,2 8 ±0,03* 0,63±0,10** 0,52±0,04*** 0,59±0,12** 0,33±0,07 *12,74±0,81 22,07±2,82** 18,94±1,28** 32,61±3,58*** 20,21±1,98** 27,25±4,74** 14,00±2,38 ** *

442. С025 107л 0,19±0,02 0,29±0,05* 0,22±0,02* 0,28±0,04* 0,26±0,03* 0,25±0,05 0,34±0,1310,62±0,94 16,04±1,87** 14,33±1,30** 14,3б±1,67* 11,11±0,84 11,93± 1,65 14,29±4,48

443. С072-Ю'7л 0,16±0,01 0,16±0,02 0,19±0,03 0,16±0,02 0,26±0,04* 0,12±0,01* 0,15±0,03 *8,79±0,96 9,18±0,76 11,30±1,30 8,77±1,23 10,33±1,23 5,86±0,78* 6,57±0,98

444. Нейтрофилы-109/л 2,67±0,12 5,17±0,44*** 6,25±0,62*** 2,53±0,25 ' 3,56±0,34** 3,16±0,34 4,3б±0,91 *55,20±1,47 64,84±2,13*** 70,87±2,59*** 51,23±2,01 52,28±2,53 54,86±4,00 58,71±3,50

445. ФАН (Б!, аиг) % 79,26±1,40 77,92±2,34 78,04±2,21 80,24±1,77 79,67±2,65 82,25±2,79 76,71 ±4,76

446. ФЧ (Бг. аиг) 5,62±0,22 5,03±0,34 5,70±1,81 5,05±0,24 5,01±0,29 5,46±0,57 3,29±0,32*** **

447. АФП (БГ. аиг) 11,95±3,68 17,56±2,3б*** 20,60±3,36*** 10,19±1,03 14,45±1,82 15,25±3,28 12,16±3,27 * *

448. Спон. ИСТ % 9,00±1,71 32,60±5,46*** 38,61±5,08*** 16,25±4,35* 17,33±4,14* 6,75±1,03 10,8б±3,92

449. Стим. НСТ % 58,25±2,32 50,40±5,22 58,43±4,05 22,25±5,65** 37,83±4,21** 36,00±4,94*** 57,29±6,68 * *

450. ЦИК опт.ед. 0,029±0,002 0,054±0,005*** 0,059±0,01*** 0,050±0,005*** 0,050±0,01* 0,052±0,015* 0,038±0,01 *

451. СН5о опт. ед. 60,50±2,54 64,12±2,26* 71,70±2,48* 55,86±3,07* 57,50±5,31 46,43±4,23* 43,57±5,88**

452. Сыв. 1цА, г/л 2,19±0,09 2,71±0,21** 2,44±0,21** 2,82±0,30* 2,58±0,24 2,31±0,33 1,84 ±0,19

453. Сыв. г/л 13,54±0,32 15,77± 1,10** 18,35±1,79** 15,51± 1,55 1б,93±1,87 19,10±2,23* 14,42±2,88

454. Сыв. ^М, г/л 2,12±0,08 2,10±0,14 2,19±0,18 1,91±0,11 2,35±0,17 1,65±0,19* 1,96±0,08 *

455. Показатели, Здоровые Острый период Ранняя рек-ция Поздняя рек-ция Достоверностьлица Гр. сравн. Оси. гр. Гр. сравн. Осн. гр. Гр. сравн. Осн. гр. р 2-3 р 4-5 р 6-7единицы измерения п=51 п=13 п=13 п=11 п=13 п=10 п=12 1 2 3 4 ' 5 6 • 7 8 9 10

456. Лейкоциты-10ч/л 4,88±0,18 7,18±0,50*** 6,82± 1,0,3 6,12±0,34** 6,17±0,43** 5,61±0,28* • 5,23±0,7б

457. Лимфоциты-107п 1,84±0,09 1,60±0,21 1,74±0,33 2,41±0,21* 2,45±0,23* 2,11±0,13 1,99±0,2438,70±1,38 22,92±3,57*** 27,38±3,65 39,91±3,04 41,77±4,98 35,00±1,50 43,00±6,66

458. СОЗ-Ю7л .,3б±0,05 1,12±0,14 1,24±0,26 1,74±0,208 1,67±0,22 1,42±0,12 1,48±0,2473,07±1,23 " 70,85±3,23 70,77±2,33 72,09±3,42 72,69±4,23 66,25±2,30*** 72,13±3,79

459. СЕ>4-107л 0,78±0,04 0.71±0,11 0,79±0,15 1,08±0,12* 1,24±0,10*** 0,84±0,02 0,99±0,1743,09±0,99 44,77±2.89* 45,77±1,90 45,09±2,47 51,85±2,33** 41,00±1,60 48,13±2,87 * *

460. СЭ8-107л 0,56±0,02 0,50±0,08* 0,48±0,09* 0,67±0,09 0,67±0,11 0,62±0,04 0,59±0,0629,84± 1,06 29,54±1,87 27,00±1,30 27,18±1,81 26,08±1,99 30,50±2,30 28,57±1,60 тх/т5 1,54±0,08 1,43±0,14 1,69±0,23 1,72±0,15 2,18±0,19** 1,43±0,09 1,74±0,13 * *

461. С016-Ю7л 0,27±0,02 • 0,31±0,05 0,29±0,04 0,27±0,03 0.30±0,05 0,44±0,04*** 0,23±0,02 ***14,42±1,04 18,77±2,81* 17,64±1,99* 11,36±1,14* 12,00±1,25 23,25±2,70** 12,50^1,84 **

462. НЬА-ЭЯ 107л 0,23±0,02 0,31±0,10 0,26±0,06 0,65±0,12* 0,48±0,14 0,74±0,10*** 0,33±0,06 **12,74±0,81 17,30±3,10* ' 15,31±1,91* 28,44±5,68** 19,00±3,80 32,50±4,00*** 18,38±3,10 ** *

463. С025-Ю7л 0,19±0,02 0,22±0,06 0,25±0,06 0,42±0,08** 0,30±0,05* 0,35±0,03*** 0,27±0,0410,62±0,94 13,38±2,55* 15,31±2,16* 17,09±2,66* 12,08±1,58 16,50±1,30** 13,75±2,53

464. С072-Ю7л 0,16±0,01 0,12±0,03 0,16±0,03 0,21 ±0,03 0,23±0,04 0,10±0,01*** 0.18±0,04 *8,79±0,96 8,23±1,3б 9,15±0,83 8,64±1,24 9,00±0,58 4,75±0,30*** 8,88±1,38 **

465. Нейтрофилы-107л 2,67±0,12 5,54±0,74*** 4,75±0,96*** 3,32±0,27 3,56±0,34** 3,48±0,10 2,97±0,8055,20±1,47 69,38±3,83*** 67,46±3,90*** 53,27±2,09 52,28±2,53 57,75±1,20 51,38±3,50

466. ФАН С51. аиг) % 79,26±1,40 80,3±2,98* 87,23±2,08* 76,27±2,47 84,77±2,16* 84,67±0,92** 74,00±3,80 * **

467. ФЧ (БГ. аиг) 5,62±0,22 4,64±0,86* 5,03±0,29 5,07±0,45 5,18±0,49 3,3б±0,16*** 3,40±0,33***

468. АФП (81. аиг) 11,95±3,68 16,91±4,06* 29,98±1,22*** 13,01±1,69 15,25±3,0б 10,21±0,46* 8,30±2,16

469. Спон. НСТ % 9,00±1,71 21,43±6,61*** 23,62±5,07*** 19,50±5,28* 12,85±2,99 13,50±0,71* 6,38±1,38 **

470. Стим. НСТ% 58,25±2,32 62,14±7,19 57,85±6,64 39,00±7,60* 43,15±4,21* 63,00±5,66 57,50±4,84

471. ЦИК опт.ед. 0,029±0,002 0,059±0,005*** 0,058±0,01*** 0,048±0,005*** 0,046±0,01* 0,045±0,004*** 0,038±0,01

472. СН50опт. ед. б0,50±2,54 64,12±4,26* 63,50±5,01 50,09±2,47** 56,62+4,31 50,25±3,20* 55,57±5,28

473. Сыв. ^А, г/л 2,19±0,09 2,35±0,35 2,49±0,34 3,08±0,36* 2,95±0,31** 2,32±0,30 2,32±0,32

474. Сыв. 1йС, г/л 13,54±0,32 18,13±2,64*** 22,43±2,3.*** 14,44±2,88 18,17±3,12* 14,04±1,20 16,54±2,44

475. Сыв. ^М, г/л 2,12±0,08 2,14±0,26 2,04±,021 2,21 ±0,23 2,45±0,23 2,23±0,20 2,09±0,26

476. Юч/л 0,19±0,02 0,25±0,0б 0,24±0,04 0,30±0,06* 0,29±0,0б 0,24±0,04 0,20±0,05о 10,62±0,94 16,13±3,40* 14,00±1,56* 13,71 ±2,24 10,86±0,94 15,33± 1,68* 9,50±1,90 * *

477. HAH (St. aur) % 79,2б±1,40 66,00±3,47* 71,45±3,23* 73,00±4,48 85,21±3,53 82,33± 1,37 72,67±4,52 *

478. D4 (St. aur) 5,62±0,22 3,64±0,17*** 4,01±0,28*** 3,89±0,50** 5,51±0,57 4,28±1,42 4,15±0,5б* *

479. ДИК опт.ед 0,029±0,002 0,050±0,01*** 0,049±0,01 *** 0,057±0,001*** 0,037±0,006* 0,060±0,01*** 0,036±0,04 * **

480. ГН5оопт. ед 60,50±2,54 62,50±4,02 61,53±4,24 49,71±3,07* 58,79±4,39 37,00±4,44** 47,17±2,42*** * *

481. Ныв Ig А, г/л 2,19±0,09 2,97±0,74** 2,73±0,31** 3,63±0,3б* 3,27±0,26*** 3,29±0,51 * 2,40±0,27

482. Гыв IgG, г/л 13,54±0,32 17,15±1,82** 19,00±1,51** 28,67±6,73* 17,50±3,31 25,86±4,2** 16,01±1,86 * *

483. Гыв IgM, г/л 2,12±0,08 2,09±0,42 2,19±0,27 1,89±0,21 2,35±0,22 2,23±0,42 2,42±0,50

484. Показатели, Здоровые Острый период Ранняя рек-цня Поздняя рск-ция Достоверностьлица Гр. сравн. Оси. гр. Гр. сравн. Осн. гр. Гр. сравн. Осн. гр. р 2-3 P4-5 р 6-7единицы п=51 п=36 п=37 п=30 п=34 п=16 п=16 измерения 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10

485. Лейкоциты- 109/л 4,88±0,18 7,67±0,33*** 7,59±0,55*** " 5,38±0,25 5,84±0,31* 5,37±0,3 5,27±0,70

486. Лимфоциты- 109/л 1,84±0,09 1,70±0,08 1,49±0,16 2,14±0,12 2,39±0,12** 2,08±0,15 2,16±0,1538,70±1,38 25,06±1,37*** 22,44±1,75*** 40,40±1,70 43,09±2,62 39,81±2,97 44,69±4,18

487. CD3-107n. 1,36±0,05 1,20±0,06 1,00±0,13* 1,65±012 1,68±0,09** 1,53±0,11 1,60±0,1573,07±1,23 70,03±1,37* 67,25±1,98* 76,57±1,74 71,21±2,17 73,44±1,91 72,88±2,62 *

488. CD4-107n 0,78±0,04 0,67±0,03 0,66±0,12 0,99±0,08** 1,21±0,17 0,80±0,04 0,99±0,11 *43,09±0,99 40,55± 1,12 43,50±1,94 46,00±1,87 47,68±1,96* 39,06±2,05 45,63±2,34 *

489. С08-Ю7л 0,5б±0,02 0,55±0,05 0,48±0,05 0,64±0,05 0,72±0,06* 0,67±0,09 0,67±0,0529,84±1,0б 31,61±1,31 31,81±1,63 30,40±1,74 29,35±1,11 31,06±2,41 29,47±1,68

490. Tx/Ts 1,54±0,08 1,40±0,08 1,53±0,14 1,64±0,09 1,78±0,12* 1,39±0,12 1,64±0,13

491. CD 16-107л 0,27±0,02 0,28±0,02 026±0,03 0,25±0,03 0,36±0,05 0,30±0,04 0,33±0,0414,42±1,04 16,36±1,06* 17,57±1,89* 12,10Ü ,56 13,88±1,39 14,13±1,98 15.13±2,12

492. HLA-DR 107л 0,23±0,02 0,32±0,03* 0,24±0,03 0,55±0.08*** ' 0,42±0,07* 0,б0±0,12** 0,32±0,04* ***12,74±0,81 19,30±1,80** 16,75±1,22** 30,74±3,01*** 17,63±1,9б* 30,07±4,24*** 16,44±2,20 ***

493. С025-Ю7л 0,19±0,02 0,30±0,02*** 0,19±0,03 0,33±0,04** 0,29±0,03* 0,25±0,03 0,24±0,0310,62±0,94 18,03±1,23*** 16,06±1,14*** 15,33±1,38** 11,29±0,86 13,13±1,49 11,88±1,56 *

494. С072-Ю7Л 0,16±0,01 0,14±0,01 0,15±0,02 0,17±0,02 0,25±0,03** 0,12±0,02 0,18±0,02 * *8,79±0,9б 8,73±0,50 10,17±0,99 8,53±1,03 9,97±0,86 6,31±0,99* 8,56±1,06 *

495. Нейтрофилы-109/л 2,67±0,12 5,36±0.27*** 5,64±0,46*** 2,82±0,20 3,12±0,2б 2,88±0,29 2,83±0,6055,20±1,47 67,48±1,46*** 71,39±1,90*** 51,50±1,70 50,09±2,41 52,88±3,19 49,81±4,53

496. ФАН (St. aur) % 79,26±1,40 78,18±1,49 82,17±1,98 78,86±1,68 83,24±1,84 82,00±2,41 73,27±4,68

497. ФЧ (St. aur) 5,62±0,22 4,91±0,32 5,43±1,33 4,88±0,24* 5,14±0,27 5,19±0,56 3,63±0,26**-* *

498. АФП (St. aur) 11,95±3,68 18,29±1,44*** 20,59±2,55** 11,11±0,98 13,28±1,64 13,51±2,83 8,97±1,67

499. Спон. HCT % 9,00±1,71 27,57±3,91*** 38,31 ±3,73*« 15,00±3,12 14,53±2,62 9,83± 1,16 8,88±2,05

500. Стим. HCT % 58,25±2,32 55,21±4,20 57,03±3,65 21,38±4,27*** 35,47±3,3б*** 42,83±5,56* 49,63±5,24 #*

501. ЦИК опт.ед. 0,029±0,002 0,050±0,003*** 0,055±0,01 *** 0,048±0,004*** 0,039±0,003* 0,049±0,01** 0,038±0,005 *

502. СН5оОПТ. ед. 60,50±2,54 64,44±2,65 . 68,56±4,33 52,20±2,59* 56,79±4,38 44,69±3,82** 50,50£3,82* v

503. Сыв. IgA, г/л 2,19±0,09 2,78±0,15** 2,55±0,17* 3,09±0,24***t- • 2,80±0,19** 2,54±0,30 . 1,99±0,20

504. Сыв. igG, г/л 13,54±0,32 15,11^0,69* 18,03±1,00*** 16,95±2,58 16,66±1,63 19,93±2,46** 16,24±1,61

505. Сыв. IgM, г/л . 2,12±0,08 2,16±0,10 2,19±0,16 1,99±0,11 2,53±0,12 1,96±0,18 2,07±0,25 **

506. Показатели, Здоровые Острый период Ранняя рек-цня Поздняя рек-цня Достоверностьлица Гр. сравн. Осн. гр. Гр. сравн. Осн. гр. Гр. сравн. Осн. гр. р 2-3 р 4-5 р 6-7единицы измерения п=51 п=15 п=14 п=9 п=11 п=8 п=10 12 3 4 5 6 7 8 9 10

507. Лейкоциты- 109/л 4,88±0,18 7,70±1,37** 9,74±1,13*** 5,79±0,б4 б,18±0,87* 5,52±0,83 6,78±0,19***

508. Лимфоциты-10% 1,84±0,09 1,85±0,33 1,95±0,18 2,08±0,25 2,30±0,26 1,79±0,26 2,37±0,17**38,70±1,38 23,44±4,84** 23^3,72-"** 36,43±2,37 42,13±7,07 31,67±2,17** 35,00±2,60

509. СОЗ-Ю7л 1,3б±0,05 1,34±0,22 1,30±0,15 1,44±0,15 1,52±0,33 1,21±0,22 1,73±0,16*73,07±1,23 68,72±1,61* 65,45±2,55* 70,71±4,59 70,63±3,05 64,33±2,45** 72,33± 1,30 #*

510. СЕ>4-107л ' 0,78±0,04 0,78±0,17 , 0,79±0,08 0,81 ±0,12 1,08±0,18 0,67±0,10 1,17±0,13** **43,09±0,99 41,09±4,31 40,45±1,86 39,86±4,15 45,63±3,60 37,33±2,29* 48,00±1.88* **

511. СЭ8-107Л 0,5б±0,02 0,62±0,11 0,бЗ±0,10 0,52±0,08 0,67±0,11 0,61±0,08 0,52±0,0729,84±1,06 34,56±2,48 31,27±2,0б 24,86±3,71 29,25±3,33 34,67±2,31 * 21,33±1,30*** ***т/г, 1,54±0,08 1,22±0,14* 1,35±0,15 1,86±0,58 1,69±0,33 1,07±0,01*** 2,27±0,04*** ***

512. СШ6-107л 0,27±0,02 0,32±0,08 0,39±0,0б 0,21 ±0,04 0,32±0,0 0,30±0,07 0,32±0,0314,42±1,04 18,44±1,78* 20,45±2,59* 10,29±1,78* 14,25±4,71 17,33±4,62 14,67±2,31

513. НЬА-ОЯ 107л 0,23±0,02 0,44±0,14** 0.36±0,04** 0,48±0,11* 0,35±0,07 0,64±0,15** 0,43±0,04***12,74±0,81 23,13±3,30** 18,30±1,75** 23,57±5,34* 14,83±2,72 32,67±4,04*** 18,00±0,29*** **

514. СЭ25-107Л 0,19±0,02 0,20±0,04 0,24±0,04 0,31 ±0,06 0,26±0.03* 0,23±0,05 0.56±0,07*** ***10,62±0,94 11,11 ± 1,70 12,27±1,7б 13,86±2,37 11,50±1,6б 11,67±1,01 22,00±1.44*** ***

515. С072-Ю7Л 0,16±0,01 0,16±0,04 0,19±0,03 0,22±0,05 0,21±0,05 0,09±0,01 ** 0,26±0,04* **8,79±0,9б 8,67±1,57 9,55±1,17 10,71 ± 1,93 8,63±1,11 5,33±0,14** 10,67±1,59 **

516. Нейтрофилы-107л 2,67±0,12 5,88±1,13** 7,30±1,12*** 3,14±0,42 3,47±0,72 3,39±0,39 3,97±0,3655,20±1,47 67,78±4,97* 71,55±4,21*** 53,43±2,96 50,88±6,10 62,33±2,26** 58,33±3,75

517. ФАН (Б!, аиг) % 79,2б±1,40 78,33±5,10 74,09±3,72 74,29±2,67 78,25±4,44 84,00±2,22 76,67±3,46

518. ФЧ (81. аиг) 5,62±0,22 4,19±0,39** 4,15±0,30*** 4,63±0,68 5,29±0,99 3,04±0,26*** 4,62±0,95 „

519. АФП аиг) 11,95±3,68 19,0б±3,12* 22,61±4,18* 10,1 б± 1,25 14,76±4,13 10,20±1,11 8,82±1,41

520. Спои. НСТ% 9,00±1,71 42,33±10,09** 44,45±8,61*** 30,40±4,34* 12,00±5,68 16,06±2,78* 10,33±0,58 *

521. Стим. НСТ % 58,25±2,32 69,33±4,00* 69,91 ±6,27* 41,80±5,00* 34,00±7,63** 43,22±3,12*** 68,33±7,60 * **

522. ЦИК опт.ед. 0,029±0,002 0,05б±0,008** 0,064±0,009*** 0,056±0,011* 0,050±0,007** 0,030±0,002 0,034±0,018

523. СН50опт. ед. 60,50±2,54 66,78±6,б7 68,18±4,70 54,86±2,08 54,75±4,57 56,33±3,17 55,67±2,89

524. Сыв ^А, г/л 2,19±0,09 2,46±0,44 2,44±0,36 2,48±0,57 . 3,24±0,46* 2,62±0,62 2,15±0,20

525. Сыв. 1^0, г/л 13,54±0,32 17,02±1,67** 21,45±1,79*** 19,18±3,19* 19,83±3,14* 16,32±0,65** 13,29±0,89 **

526. Сыв. 1§М, г/л 2,12±0,08 2,12±0,30 2,13±0,17 2,01 ±0,29 2,27±0,32 • 1,60±0,23* 2,43±0,44

527. Торговое название: Ксимедон.

528. МНН или Группировочное название: Гидроксиэтилдиметилдигидро-пиримидин.

529. Лекарственная форма: таблетки.1. Состав на одну таблетку:

530. Активное вещество: гидроксиэтилдиметилдигидропиримидина 0,25 г.

531. Вспомогательные вещества: кальция стеарат, крахмал картофельный,тальк.

532. Описание: Таблетки от белого с кремоватым оттенком до светло-розового с кремоватым оттенком цвета с вкраплениями более интенсивного оттенка, плоскоцилиндрической формы, с фаской и риской.

533. Фармакотерапевтическая группа: репарации тканей стимулятор.1. Код ATX: V03A.

534. Фармакологические свойства1. Фармакодинамика

535. Гиперчувствительность. Лейкоз (острый и хронический), эритремия, детский возраст до 18 лет.1. С осторожностью

536. Больным сахарным диабетом следует чаще определять толерантность к глюкозе, ввиду возможного уменьшения потребности в инсулине.о*?-го-/?1. ЛС-000045-050311-С. 3

537. Применение при беременности и в период грудного вскармливания

538. Применение препарата показано только в тех случаях, когда предполагаемая польза для матери превышает потенциальный риск для плода.

539. В период лечения необходимо решить вопрос о прекращении грудного вскармливания.1. Способ применения и дозы1. Применять внутрь до еды.

540. При глубоких и поверхностных ожогах (подготовке больных к аутодермопластике) — по 0,5 г 3 раза в сутки в течение 20 дней. При проведении кожно-пластических операций препарат назначают до и после операции по 10 дней.

541. При длительно незаживающих ранах, трофических язвах, пролежнях -по 0,5 г 3 раза в день в течение 25-30 дней.

542. При язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки по 0,5 г 2 раза в сутки курсом 12 дней.

543. При отморожениях по 0,25-0,5 г 3-4 раза в день в течение 2-5 недель. •

544. При гнойно-воспалительных заболеваниях мягких тканей и костей по 0,5 г 4 раза в день в течение 10-30 дней.

545. При хроническом остеомиелите до и после операции по 0,5 г 4 раза в день в течение 20-25 суток. Повторные курсы лечения проводят через 6 месяцев на протяжении 1,5 лет.

546. При ангине, роже по 0,5 г 3 раза в день в течение 7-10 дней.

547. При микробной экземе по 0,5 г 3 раза в день в течение 10 дней.

548. При псориазе по 0,5 г 3 раза в день в течение 2-3 недель.

549. При вирусных гепатитах В и С по 0,5 г 3 раза вдень в течение 10 дней.

550. При туберкулезе легких по 0,5 г 4 раза в день в течение 2 месяцев.1. КОПИЯ ЗЕРЕА1. ЛС-000045-050311 С. 4

551. При пневмонии и хроническом бронхите по 0,5 г 4 раза в день в течение 18-21 дня.

552. При хроническом кистозном синусите — по 0,25-0,5 г 4 раза в день в течение 1 месяца.

553. При сальмонеллезе по 0,5 г 3 раза в день в течение 7 дней.

554. При ревматизме по 0,5 г 3 раза в день в течение 3-4 недель.

555. Возможны т диспепсия, аллергические реакции.1. Передозировка

556. В связи с малой токсичностью и большой широтой терапевтического действия Ксимедона случаев токсических проявлений не наблюдалось.

557. Взаимодействие с другими лекарственными средствами

558. Несовместимость Ксимедона с какими-либо лекарственными препаратами не выявлена.

559. Можно комбинировать с анаболическими стероидами, химическими и биологическими антисептиками.

560. Влияние на способность управлять автомобилем и техникой

561. Препарат не влияет на способность управлять транспортными средствами и заниматься другими потенциально опасными видами деятельности, требующими повышенной концентрации. внимания и быстроты психомоторных реакций.1. ЛС-000045-05031 С. 51. Форма выпуска

562. Таблетки 250 мг. По 10 таблеток в контурную ячейковую упаковку или по 50 таблеток в банки оранжевого стекла. 5 контурных ячейковых упаковок или банку вместе с инструкцией по применению помещают в пачку из картона.1. Условия хранения

563. В сухом, защищенном от света месте, при температуре не выше 25 °С. Хранить в недоступном для детей месте.1. Срок годности2 года. Не применять по истечении срока годности, указанного на упаковке.1. Условия отпуска1. По рецепту.

564. Производитель/Организация, принимающая претензии:

565. ОАО "Татхимфармпрепараты 11420091, Россия, г. Казань, ул. Беломорская, 260.843. тел. 571-85-58; факс: 571-85-38

566. E-mail: marketing@tatpharm.ru1. Генеральный директор1. Т.Ш. Ханнанов