Автореферат и диссертация по медицине (14.00.29) на тему:Обеспечение качества и безопасности полученной эферезом свежезамороженной плазмы в военно-медицинском учреждении
- Ученая степень
- кандидата медицинских наук
- ВАК РФ
- 14.00.29
Оглавление диссертации Кононенко, Светлана Николаевна :: 0 ::
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ
ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1. СОВРЕМЕННЫЕ ПРИНЦИПЫ ПРОИЗВОДСТВЕННОЙ 11 ТРАНСФУЗИОЛОГИИ, НАПРАВЛЕННЫЕ НА ПОВЫШЕНИЕ КАЧЕСТВА И БЕЗОПАСНОСТИ СВЕЖЕЗАМОРОЖЕННОЙ ПЛАЗМЫ
1.1. Современные требования к качеству свежезамороженной 11 плазмы
1.2. Инфекционная безопасность донорской плазмы в медицинских 17 учреждениях
1.3. Иммунологическая безопасность свежезамороженной плазмы
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Характеристика доноров
2.2. Методика получения плазмы от доноров
2.2.1. Дискретный плазмаферез
2.2.2. Автоматический плазмаферез
2.3. Методика лейкофильтрации плазмы
2.4. Замораживание, хранение и размораживание донорской плазмы
2.5. Методы исследования
2.6. Статистическая обработка материала
ГЛАВА 3. СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ ТЕХНОЛОГИИ 53 ПОЛУЧЕНИЯ ПЛАЗМЫ У АКТИВНЫХ ДОНОРОВ-ВОЕННОСЛУЖАЩИХ У
3.1. Оптимизация режимов центрифугирования донорской крови 53 при дискретном плазмаферезе
3.2. Сравнительная оценка качества плазмы, полученной методом 61 автоматического и дискретного плазмафереза
3.3. Влияние концентрации антикоагулянта на клеточный состав и 64 гемостатические свойства донорской плазмы
3.4. Ошибки и опасности при операциях плазмафереза у доноров- 66 военнослужащих
ГЛАВА 4. КАРАНТИНИЗАЦИЯ СВЕЖЕЗАМОРОЖЕННОЙ
ПЛАЗМЫ В ПРОИЗВОДСТВЕННОЙ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ ВОЕННОЙ СТАНЦИИ ПЕРЕЛИВАНИЯ КРОВИ
4.1. Организационные аспекты внедрения метода карантинизации 70 свежезамороженной плазмы в производственную деятельность военной станции переливания крови
4.2. Биохимические и гемостазиологические показатели 90 свежезамороженной плазмы при карантинном хранении
4.3. Экономические аспекты внедрения метода карантинизации . * 92 свежезамороженной плазмы
ГЛАВА 5. ВЛИЯНИЕ ЛЕЙКОФИЛЬТРАЦИИ НА КАЧЕСТВО
ДОНОРСКОЙ ПЛАЗМЫ
5.1. Технологические особенности приготовления 98 лейкофильтрованной плазмы
5.2. Влияние лейкофильтрации на показатели качества донорской 103 плазмы
5.3. Гемостазиологические показатели лейкофильтрованной плазмы 109 после хранения при температуре -30°.-40°С в течение 6 месяцев ЗАКЛЮЧЕНИЕ 112 ВЫВОДЫ 123 ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ 125 СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ
ААБК - Американская ассоциация банков крови
АЛТ - аланинаминотрансфераза
АПТВ - активированное парциальное тромбопластиновое время
AT-III - антитромбин III
ВГС - вирус гепатита С
ВИЧ - вирус иммунодефицита человека
ВМедА - Военно-медицинская академия
ВОЗ - Всемирная Организация здравоохранения впг - вирус простого герпеса
ВЭБ - вирус Эпштейна-Барр
ИЛ - интерлейкин
ЛПУ - лечебно-профилактическое учреждение
МЗРФ - Министерство здравоохранения Российской Федерации
МОРФ - Министерство обороны Российской Федерации
ПА - плазмаферез
ПЦА - плазмоцитаферез
РТПХ - реакция «трансплантат против хозяина»
СЗП - свежезамороженная плазма
СПИД - синдром приобретенного иммунодефицита спк - станция переливания крови спон - синдром полиорганной недостаточности цмв - цитомегаловирус
Введение диссертации по теме "Гематология и переливание крови", Кононенко, Светлана Николаевна, автореферат
Актуальность исследования. Свежезамороженная плазма (СЗП) является необходимым элементом программ трансфузионной терапии при оказании высокотехнологичных видов медицинской помощи, а также при лечении острой кровопотери, ранений и травм, как в повседневных условиях, так в чрезвычайных ситуациях (Данильченко В.В., 1996; Аграненко В.А., 1998; Афонин Н.Н., 2000; Литманович К.Ю. и соавт., 2004; Vincent J.L. et al., 2002). Объем трансфузий СЗП в развитых странах имеет отчетливую тенденцию к увеличению с каждым годом (Holmberg J.A. et al., 2006). В России ежегодно производится более 800 тыс. л плазмы для переливания (Селиванов Е.А., 2004). При этом значительный объем плазмы получают от активных (кадровых) доноров методом плазмафереза.
Возрастающая потребность лечебно-профилактических учреждений в СЗП во многом определяется ее высокой лечебной эффективностью, прежде всего в коррекции гемостазиологических нарушений различного генеза (Баркаган З.С., Момот А.П., 2001; Колосков А.В., 2005; Rosen S., Chiarion М., 2002). Последнее обстоятельство диктует необходимость постоянного совершенствования организационных, технологических и медицинских мероприятий, направленных на обеспечение необходимого качества СЗП. В последние годы в литературе отмечается широкая дискуссия по вопросу обеспечения качества СЗП и разработки его стандартизованных показателей (Белов Е.В., Никитин И.К., 1998; Козлов А.А. и соавт., 2002; Никитин И.К., Козинец Г.И., 2004). Особенно остро вопросы стандартизации производства и качества СЗП возникают при внедрении новых технических средств заготовки и хранения плазмы в производственную деятельность станции переливания крови (СПК), а также в условиях военно-медицинской практики и медицины катастроф.
Проблема качества СЗП непосредственно связана с вопросами безопасности • плазмотрансфузий, прежде всего инфекционной и иммунологической. Несмотря на тщательное лабораторное обследование донорской плазмы на маркеры гемотрансмиссивных инфекций, остается риск переливания плазмы от доноров, инфицированных патогенными вирусами, но без клинических и серологических признаков инфекционного заболевания. Решение этой проблемы находится , в прямой зависимости от внедрения в повседневную деятельность СПК метода карантинизации донорской плазмы с учетом длительности серонегативных периодов при различных вирусных заболеваниях. Несмотря на то, что этот метод повышения вирусной безопасности СЗП используется в службе крови РФ не менее 5 лет, организационно-экономические и медицинские аспекты карантинизации плазмы изучены недостаточно, а имеющиеся сведения в научной литературе характеризуются значительной вариабельностью данных (Каюмова Л.И., 2002; Майданкж Н.П., Янина С.И., 2002; Науменко Е.Б., 2003). Кроме того, при решении проблемы внедрения карантинизации в деятельность службы крови не учитываются особенности социального статуса и жизнедеятельности доноров, в частности доноров-военнослужащих.
Общепризнанным методом обеспечения иммунологической и инфекционной безопасности гемокомпонентной терапии является использование лейкофильтров при производстве или переливании трансфузионных сред (Покровский В.И. и соавт., 2003). Удаление лейкоцитов из эритроцитосодержащих сред и тромбоцитного концентрата широко применяется для профилактики лейкоцитопосредованных побочных эффектов (Мельникова В.Н. и соавт., 2003). Однако необходимость удаления лейкоцитов из плазмы, в частности при ее получении на СПК методом плазмафереза, как и технологические вопросы применения лейкофильтров (в том числе отечественного производства) к настоящему времени не решены, а влияние лейкофильтрации на качество СЗП изучено недостаточно.
Цель работы - оптимизация методов повышения качества и безопасности полученной аферезом свежезамороженной плазмы в военно-медицинском учреждении.
Задачи исследования:
1) оптимизировать методики дискретного и автоматического плазмафереза у доноров для получения высококачественной плазмы;
2) исследовать организационно-экономические и медицинские аспекты внедрения метода карантинизации свежезамороженной плазмы, полученной от активных доноров-военнослужащих;
3) определить влияние лейкофильтрации на качество полученной аферезом донорской плазмы и усовершенствовать методики удаления лейкоцитов из плазмы с помощью современных лейкофильтров.
Научная новизна. Впервые проведена сравнительная оценка различных режимов дискретного и автоматического плазмафереза с использованием современного трансфузиологического оснащения у активных доноров молодого возраста (военнослужащих) и обоснованы оптимальные методики афереза для получения высококачественной плазмы при обеспечении безопасности трансфузиологических операций и повышении производительности заготовки гемокомпонента.
Обоснованы и внедрены в практику новые принципы организации отбора, комплектования и повторного обследования доноров-военнослужащих, позволяющие осуществить в военно-медицинском учреждении карантинизацию не менее 68% полученной аферезом свежезамороженной плазмы от активных доноров, сохранить качество гемокомпонента на протяжении срока карантинного хранения (в течение 6 месяцев при температуре полностью обеспечить потребность лечебных отделений в карантинизованной плазме при незначительной выбраковке компонента в связи с выявлением маркеров гемотрансмиссивных инфекций и минимальном ее удорожании.
Впервые проведена сравнительная оценка влияния лейкофильтрации (с помощью зарубежного и отечественных фильтров) на клеточный состав, гемостазиологические, биохимические и иммунологические показатели полученной аферезом плазмы. Получены новые данные о том, что удаление лейкоцитов из донорской плазмы с помощью отечественного фильтра нового поколения Лейкосеп не снижает гемостатический потенциал фильтрованной плазмы ниже физиологических пределов, не оказывает негативного влияния на биохимические и иммунологические показатели компонента, сопровождается низкими потерями трансфузионной среды и меньшей ее себестоимостью по сравнению с зарубежным аналогом.
Практическая значимость. Показано, что применение автоматического плазмафереза в работе станции переливания крови военно-медицинского учреждения позволяет получать плазму более высокого качества, увеличивает в 2 раза производительность заготовки компонента, снижает в 3,1 раза частоту патологических реакций у активных доноров по сравнению с дискретным аферезом.
Разработаны и апробированы наиболее эффективные при дискретном плазмаферезе режимы центрифугирования донорской крови с использованием современных рефрижераторных центрифуг.
Обоснованы и рассчитаны дополнительные финансовые затраты на производство карантинизованной СЗП в зависимости от типа холодильников и методики афереза, позволяющие планировать финансирование карантинизации плазмы в военно-медицинском учреждении.
Показано, что внедрение лейкофильтров в практическую деятельность военно-медицинского учреждения позволяет производить СЗП, обладающую высоким качеством и иммунологической безопасностью.
Положения, выносимые на защиту: 1. Оптимизация методов получения высококачественной плазмы у активных доноров-военнослужащих в военно-медицинском учреждении достигается индивидуализацией режимов центрифугирования с использованием современных рефрижераторных центрифуг при дискретном плазмаферезе и преимущественным применением автоматического афереза за счет интенсификации заготовки плазмы, снижения частоты патологических реакций у доноров, максимальной сохранности биологических свойств гемокомпонента, организации мониторинга клеточного состава, биохимических и гемостазиологических показателей трансфузионной среды.
2. Карантинизация полученной аферезом свежезамороженной плазмы в военно-медицинском учреждении требует повышения уровня организации, планирования, комплектования и повторного обследования доноров-военнослужащих путем создания нештатного формирования (ответственного за проведение карантинизации), поддержания качества трансфузионной среды на протяжении срока карантинного хранения за счет использования современного низкотемпературного оборудования, сопровождается дополнительной выбраковкой гемокомпонента в связи с выявлением маркеров гемотрансмиссивных инфекций и повышением его стоимости.
3. Применение в службе крови современных лейкофильтров (отечественного и зарубежного производства) позволяет производить соответствующую современным требованиям трансфузионной медицины лейкофильтрованную свежезамороженную плазму, клеточный состав, иммунологические и гемостазиологические показатели которой определяются технологией удаления лейкоцитов из гемокомпонента и особенностями лейкофильтрующих устройств.
Апробация и реализация работы. Основные материалы диссертации доложены на. Российской научно-практической конференции «Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии» (Санкт-Петербург, 2004), на VII Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные вопросы клиники, диагностики и лечения больных в многопрофильном лечебном учреждении» (Санкт-Петербург, 2005), на съезде гематологов и трансфузиологов с международным участием «Совершенствование гематологии и трансфузиологии в современных условиях» (Москва, 2006), на Втором съезде военных врачей медико-профилактического профиля Вооруженных Сил Российской Федерации (Санкт-Петербург, 2006).
Результаты диссертации внедрены в производственную работу станции переливания крови Военно-медицинской академии имени С.М.Кирова, станции переливания крови 442 окружного клинического военного госпиталя имени З.М. Соловьева (г. Санкт-Петербург). Материалы работы используются на практических занятиях со слушателями факультетов руководящего состава и последипломного образования Военно-медицинской академии имени С.М. Кирова. Материалы исследований опубликованы в 13 печатных работах. Результаты работы использованы при подготовке указания Главного военно-медицинского управления МО РФ № 1/1/2/3/8192 от 31 декабря 2003 г. «О временном порядке карантинизации свежезамороженной плазмы в военно-медицинских учреждениях Минобороны России», а также методических указаний «Организация карантинизации свежезамороженной плазмы в военно-медицинских учреждениях», утвержденных начальником медицинской службы Вооруженных Сил РФ 23 июня 2006 года.
По материалам диссертации внедрено 24 рационализаторских предложений.
Объем и структура работы. Диссертация изложена на 149 страницах машинописного текста и содержит введение, обзор литературы, описание материалов и методов исследования, 3 главы собственных исследований, заключение, выводы, практические рекомендации и список литературы, который включает 108 отечественных и 109 зарубежных источников. Диссертация иллюстрирована 30 таблицами и 17 рисунками.
Заключение диссертационного исследования на тему "Обеспечение качества и безопасности полученной эферезом свежезамороженной плазмы в военно-медицинском учреждении"
ВЫВОДЫ
1. Наиболее эффективным при дискретном плазмаферезе является режим центрифугирования донорской крови, характеризующийся фактором разделения 4540 g, длительностью центрифугирования 10 минут при температуре +22°С.
2. Применение автоматического плазмафереза в производственной деятельности станции переливания крови военно-медицинского учреждения позволяет получать плазму с более низким содержанием эритроцитов и лейкоцитов, увеличить в 2 раза производительность заготовки плазмы, снизить в 3,1 раза частоту патологических реакций у доноров по сравнению с дискретным аферезом.
3. В нативной плазме, полученной автоматическим плазмаферезом при соотношении 4% раствора цитрата натрия к крови 1:16,6 в донорской крови, определяется более высокая активность факторов свертывания VIII и V, чем в плазме, полученной из донорской крови с соотношением 4% раствора цитрата натрия к крови 1:12,5.
4. Разработаны принципы организации планирования, комплектования и повторного обследования доноров, позволяющие осуществить в военно-медицинском учреждении карантинизацию не менее 68% полученной аферезом свежезамороженной плазмы от доноров-военнослужащих, поддерживать качество гемокомпонента на протяжении срока карантинного хранения и полностью обеспечить потребность лечебных отделений в карантинизованной плазме.
5. Карантинизация свежезамороженной плазмы, полученной аферезом от активных доноров-военнослужащих, позволяет выбраковать в связи с выявлением маркеров гемотрансмиссивных инфекций до 0,52% объема этого компонента и ведет к ее удорожанию не более чем на 7,5%.
6. Лейкофильтрация полученной аферезом плазмы в течение 2 часов после плазмоэксфузии приводит к уменьшению содержания лейкоцитов без изменений биохимических показателей (содержания общего белка, альбумина, глобулинов, электролитов), не активирует систему комплемента, сопровождается снижением в пределах физиологических колебаний активности фактора V, фактора VIII (фильтр УЛЛ-01), плазминогена (фильтр УЛЛ-01), протеина С (фильтр УЛЛ-01), концентрации интерлейкина-б (фильтр LPS) и интерлейкина-8 (фильтр LPS 2) по сравнению с исходными значениями (до фильтрации). Фильтр Лейкосеп характеризуется более высокой скоростью фильтрации плазмы и низкими потерями трансфузионной среды по сравнению с фильтрами УЛЛ-01 и LPS 2.
7. После хранения в замороженном состоянии при температуре — 30°.- 40°С в течение 6 месяцев в фильтрованной плазме снижается в пределах физиологических колебаний активность фактора V (фильтры УЛЛ-01 и Лейкосеп), фактора VIII (фильтр УЛЛ-01), протеина С (фильтр УЛЛ-01) по сравнению с аналогичными показателями нефильтрованной СЗП при стабильных показателях активности фактора IX, антитромбина III и плазминогена.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. При использовании рефрижераторных центрифуг Jouan KR-4i и Sorval RC-3C Plus для дискретного плазмафереза рекомендуется режим центрифугирования донорской крови, характеризующийся фактором разделения 4540 g, длительностью центрифугирования 10 мин, температурой +22°С.
2. Для сохранения высокой активности факторов свертывания V и VIII в донорской плазме, полученной автоматическим плазмаферезом, целесообразно дозировать 4% раствор цитрата натрия к крови в соотношении 1:16,6.
3. Для снижения частоты патологических реакций при плазмаферезе при комплектовании активных доноров-военнослужащих следует учитывать массу тела (предпочтительно отбирать доноров с массой тела более 70 кг).
4. При расчете стоимости карантинизованной СЗП финансовые затраты на карантинизацию целесообразно определять в 306 руб. на Г л СЗП, полученной дискретным аферезом, или 267 руб. за 1 л СЗП, полученной автоматическим аферезом, при хранении в холодильниках MDF-U 5411. При использовании для хранения плазмы холодильников МШ - НИИМИ 450/45 финансовые затраты на карантинизацию целесообразно определять в 343 руб. на 1 л СЗП, полученной дискретным аферезом, или 304 руб. на 1 л СЗП, полученной автоматическим аферезом.
5. Для удаления лейкоцитов из плазмы, полученной от активных доноров аферезом, рекомендуется в течение 2 часов после плазмоэксфузии использовать лейкофильтры УЛЛ-01, Лейкосеп, LPS 2 KLE.
6. При необходимости обеспечения высокой скорости фильтрации, уменьшения потерь трансфузионной среды и снижения себестоимости лейкофильтрованного гемокомпонента целесообразно применять для удаления лейкоцитов из плазмы отечественный фильтр Лейкосеп.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 0 года, Кононенко, Светлана Николаевна
1. Абдулкадыров К.М. Приоритеты и опасности гемокомпонентной терапии / К.М. Абдулкадыров // Трансфузионная мед. 1995. - № 5. - С. 5558.
2. Аграненко В.А. Компонентная гемотерапия / В.А. Аграненко, С.М. Бахрамов, Л.А. Жеребцов // М.; Ташкент, 1995. С. 64-69.
3. Аграненко В.А. Принципы трансфузионной тактики и компонентной гемотерапии / В.А. Аграненко // Клиническая трансфузиология. М.: Гэотар медицина, 1997. - С. 80-196.
4. Аграненко В.А. Принципы трансфузионной медицины / В.А. Аграненко // Вестн. службы крови России. 1998. - № 2.- С. 5-8.
5. Аграненко В. А. Проблема лейкофильтрации и безопасности гемотрансфузий / В. А. Аграненко, Ю. Н. Токарев // Вестн. службы крови России. 2002. - № 1.- С. 36.
6. Аксенов В.В. Терапевтический аферез: итоги века / В.В. Аксенов // Эфферентная тер. 2000. -Т. 6, № 1. - С. 66-70.
7. Алексеев Л.П. Биологическая роль системы HLA / Л.П. Алексеев // Иммунология 1985. - № 3. - С. 5-10.
8. Афонин Н.И. Современные принципы инфузионно-трансфузионной терапии острой кровопотери / Н.И. Афонин // Вестн. службы крови России. 2000. - №2. - С. 13 - 16.
9. Афонин Н.И. Препараты плазмы и вирусная безопасность трансфузионной терапии / Н.И. Афонин // Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии. — Мат. Рос. науч.- практ. конф. СПб., 2004. — С. 111.
10. Балуда В.П. Лабораторные методы исследования системы гемостаза / В.П. Балуда, З.С. Баркаган, Е.Д. Гольдберг // Томск, 1980. 309 с.
11. Бараташвили Г.Г. Влияние двукратного дискретного эритроцитафереза на организм доноров / Г.Г. Бараташвили // Автореф. дис. . канд. мед. наук. СПб., 2004. - 23 с.
12. Баркаган З.С. Диагностика и контролируемая терапия нарушений гемостаза / З.С. Баркаган, А.П. Момот // М.: «Ньюдиамед-АО», 2001. 296 с.
13. Барышев Б.А. Методы удаления лейкоцитов из крови и ее компонентов / Б.А. Барышев // Трансфузиология. 2002. - № 1.- С. 54-58.
14. Белинин Г.Ю. Осложнения и технические трудности при проведении плазма-, цитафереза / Г.Ю. Белинин, В.В. Рыжко // Мат. 7-ой конф. Московского общества гемафереза. — М., 1999. С. 66.
15. Белов Е.В. Качество продукции, стандарты и служба крови / Е.В. Белов, И.К. Никитин // Тез. науч. конф. «Трансфузиология и служба крови». -М., 1998.-С.188.
16. Бельгесов Н.В. Лабораторный контроль донорской крови в профилактике ВИЧ-инфекции / Н.В. Бельгесов, Е.Б Жибурт, С.В Сидоркевич // Тез. Докл. 3-го Всерос. съезда гематологов и трансфузиологов. СПб., 1996.-С. 66.
17. Беляков Н.А. Основные реакции и осложнения экстракорпоральных операций / Н.А. Беляков, К.Я. Гуревич, А. Л. Костюченко // Эфферентная тер. 1996. - Т. 2, № 4. - С. 16-17.
18. Боровиков В.П. Statistica. Искусство анализа данных на компьютере. СПб.: Питер, 2003. - 688 с.
19. Бубнова Л.Н. Выявляемость антител к вирусу гепатита С у доноров и пациентов Российского НИИ гематологии и трансфузиологии / Л.Н. Бубнова, А.С. Беркос, Т.А. Матвеева // Трансфузиология. 2003. - № 3. -С. 78-83.
20. Бубнова Л.Н. Сравнительная иммунологическая характеристика доноров Санкт-Петербурга / Л.Н. Бубнова, А.С. Беркос, О.В. Рыбина // Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии. Мат. Рос. науч.-практ. конф. - СПб., 2004. - С. 137.
21. Бутина Е.В. HLA-сенсибилизация — риск развития, . посттрансфузионные осложнения, методы профилактики / Е.В. Бутина, Г.А.
22. Зайцева, Ю.И. Югов // Гематол. и трансфузиол. 2003. - Т. 48, № 4. - С. 2629.
23. Воробьев А.А. Прионные инфекции: важнейшие медицинские и ветеринарные аспекты / А.А. Воробьев, В.В. Макаров // Вестн. РАМН. 1997. -№ 6.- С. 3-11.
24. Воробьев А.И. Компонентное донорство / А.И. Воробьев // Новое в трансфузиологии 2003. - Вып. 34. - С. 5-11.
25. Временная инструкция по проведению автоматического донорского плазмафереза на аппарате типа Haemonetics (Гемонетик) PCS -2.-М., 1997.-6 с.
26. Гайдукова С.Н. Гемотрансфузионные реакции: пути решения проблемы / С.Н. Гайдукова, JI.A. Ковалкина, С.В. Выдыборец, JI.A. Спивак // Гематол. и трансфузиол. 2001. - № 1. - С. 24-29.
27. Голосова Т.В. Обеспечение вирусной безопасности гемотрансфузий / Т.В. Голосова, А.В. Сомова, Т.А. Туполева, С.Ю. Багрянцева, А.А. Гуляева \\ Пробл. гематол. и переливания крови. 1998. - № 4.-С. 12-14.
28. Голосова Т.В. Общие принципы национальной концепции вирусной безопасности гемотрансфузий / Т.В. Голосова, Ф.П. Филатов // Гематол. и трансфузиол. 2001. - Т.46, №3. - С.21-23
29. Гузовский Е.В. К вопросу о рациональном использовании плазмы / Е.В. Гузовский // Вестн. службы крови России.- 1998.- № 1.- С. 27-28.
30. Гуревич К.Я. Интенсивный плазмаферез: осложнения и их профилактика / К.Я. Гуревич, А.Н. Вельских, С.А. Матвеев, О.И. Жуков // Клиническая мед. 1992. - № 2. - С. 49-50.
31. Гурия Г.Т. Банк долговременного хранения компонентов крови ГНЦ РАМН. Вопросы карантинизации / Г.Т. Гурия // Гематол. и трансфузиол. 2001. - Т. 46, № 3. - С. 109-111.
32. Данилова Т.Н. Состояние и перспективы развития донорства плазмы / Т.Н. Данилова, И.Е. Молоковская, И.В. Красилыцикова // Новое в трансфузиологии. 1999. - Вып. № 2. - С. 22-25.
33. Данильченко В.В. Перспективы развития донорства крови в Вооруженных Силах / В.В. Данильченко, С.Д. Попов, С.П. Калеко // Воен.-мед. журн. 1996. - № 12. - С. 4-7.
34. Дуткевич И.Г. Достижения и актуальные проблемы трансфузиологии / И.Г. Дуткевич // СПб.: МАЛО, 1998. 20 с.
35. Елов А.А. ПЦР-диагностика цитомегаловирусной инфекции: распространение ЦМВ-носительства среди доноров СПК г. Москвы / А.А. Елов, Н.А. Федоров, Ю.С. Суханов // Трансфузиология и служба крови. Тез. докл. науч. конф. - М., 1998. - С.7.
36. Елыкомов В. А. Карантинизация донорской плазмы и эритроцитов на Алтайской краевой станции переливания крови / В.А. Елыкомов, Т.А.Зяблицкая, И.И. Космогоров, И.В. Елыкомов// Здравоохранение и мед. техника. 2004. -№ 8. — С. 10-11.
37. Жибурт Е.Б. Совершенствование лабораторной диагностики в службе крови / Е. Б. Жибурт // Трансфузиология. 2005. - № 2. - С. 100-105.
38. Жибурт Е.Б. К совершенствованию инфекционной безопасности гемокомпонентной терапии / Е.Б. Жибурт, А.Д. Касьянов // Воен.-мед. журн. 2000.-№3.-С. 51-55.
39. Жибурт Е. Б. Затраты на электроэнергию в стоимости донорской плазмы / Е. Б. Жибурт, А.Ф. Мальцев, П.В. Рейзман // Трансфузиология. -2005.-№2.-"С. 87-92.
40. Калеко С.П. Реакции и осложнения у доноров при аппаратном плазмаферезе / С.П. Калеко, С.В. Рыжков, С.В. Гусев // Воен.-мед. журн. -1993.-№11.-С. 36-38.
41. Калинин Н.Н. Опыт использования отечественного фракционатора крови ФК-3,5 в клинической практике / Н.Н. Калинин // Гематол. и трансфузиол. 1986. - № 5. - С. 43-46.
42. Калинин Н.Н. Плазмаферез на фракционаторах крови / Н.Н. Калинин, В.И. Петрова, Б.Е. Мовшев // Сов. медицина. 1988.- № 12. - С. 2326.
43. Каюмова Л.И. Карантинизация свежезамороженной плазмы в учреждениях службы крови Московской области / Л.И. Каюмова // Трансфузиология. 2002.- № 3. - С. 7-21.
44. Колосков А.В. Обеспечение эффективной и безопасной гемотрансфузионной терапии в многопрофильном стационаре / А.В. Колосков // Автореф. дис. . д-ра мед. наук. СПб., 2005. - 32 с.
45. Красняков В.К. Гемотрансмиссивные инфекции у доноров Санкт-Петербурга / В.К. Красняков, Л.Н. Бубнова, Е.А. Селиванов // Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии. — Мат. Рос. науч.-практ. конф. — СПб., 2004. С. 129.
46. Козлов А.А. О стандартизации свежезамороженной плазмы и криопреципитата / А.А. Козлов, Н.Д. Качалова, Т.М. Простакова // Новое в трансфузиологии. 2002. - Вып. 30. - С. 73-76.
47. Красилыцикова И.В. Влияние многолетнего автоматического интенсивного плазмафереза на аппаратах Haemonetics PCS-2 на некоторые показатели гомеостаза доноров / И.В. Красилыцикова // Автореф. дис. . канд. мед. наук. СПб., 2000. - 30 с.
48. Кузнецова Ю.В. Обзор научной литературы по проблеме удаления лейкоцитов из донорской плазмы / Ю.В. Кузнецова // Трансфузиология. 2005. - № 2. - С. 108-114.
49. Кузьмин Н.С. Совершенствование организации производства компонентов крови в Вооруженных Силах Российской Федерации / Н.С. Кузьмин // Автореф. дис. . канд. мед. наук. -М., 2000. 19 с.
50. Куликова О.В. Основные принципы эффективности трансфузий концентратов тромбоцитов при заболевании системы крови у детей / О.В. Куликова, В.А. Аграненко // Гематол. и трансфузиол. -1999. Т.44, № 3. - С. 35-37.
51. Левченко Л.Б. Дискретный плазмаферез на центрифугах SORVALL / Л.Б. Левченко, Н.Ю. Антипова // Трансфузиология и служба крови. Тез. докл. науч. конф. - М., 1998.-С. 51.
52. Литманович К.Ю. Проблемы безопасности и эффективности гемотрансфузионной терапии / К.Ю. Литманович, Е.А. Селиванов, И.Г. Дуткевич, В.Е. Солдатенков // Эфферентная тер. 2004. - Т. 10, № 3. - С. 3747.
53. Лосева O.K. Современные проблемы трансфузионного сифилиса / O.K. Лосева, М.Н. Хаджимуров // Новое в трансфузиологии. -1997. Вып. 19. -С. 76-77.
54. Львов Д.К. Проблема нерегистрируемых и непредсказуемых инфекций / Д.К. Львов // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1997.-№5.-С. 104-109.
55. Майданюк Н.П. Опыт работы по карантинизации плазмы / Н.П. Майданюк, С.И. Янина // Вестн. службы крови России. 2002. - № 3. - С. 41.
56. Макарик Т.В. Вирусный гепатит: новое в эпидемиологии, методах диагностики и терапии / Т.В. Макарик, Е.А. Романова, О.А. Глинщикова, А.Б. Судариков // Гематол. и трансфузиол. 2001. - № 3. - С. 8687.
57. Марчук А.И. Осложнения при проведении плазмафереза и их профилактика / А.И. Марчук, С.М. Сатин, В.В. Головтеев // Гематол. и трансфузиол. 1987. - № 10. - С. 48-53.
58. Мельникова В.Н. Стандартизация средств гемокомпонентной терапии в отечественной службе крови / В.Н. Мельникова, В .Т. Плешаков, Т.Н. Данилова // Новое в трансфузиологии. 1997. - Вып. 17. - С. 55-58.
59. Мельникова В.Н. Лейкофильтрация крови и ее компонентов: теоретические и практические аспекты / В.Н. Мельникова, В.Т. Плешаков, Е.А. Селиванов, З.П. Беляева // Вестн. службы крови России. 2003. - № 1. -С. 21-24.
60. Мельникова В.Н. Новый эффективный метод лейкодеплеции эритромассы и плазмы консервированной крови / В.Н. Мельникова, Е.А. Селиванов,. В.Т. Плешаков // Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии. Мат. Рос. науч.-практ. конф. - СПб., 2004 - С. 159.
61. Меньшиков В.В. Лабораторные методы исследования в клинике / Под ред. В;В. Меньшикова // М.: Медицина, 1987. 327 с.
62. Минеева Н.В. Иммунологические посттрансфузионные осложнения / Н.В. Минеева // Трансфузиология. 2001. - № 2. - С. 40-51.
63. Наливкина В.В. Сравнительная характеристика различных методов проведения плазмоцитафереза в условиях МУЗ «Станция переливания крови г. Братска» / В.В. Наливкина, А.С. Турыгин // Мат. конф. московского общества гемафереза.-М., 1999.-С. 106-107.
64. Науменко Е.Б. Организация работы по карантинизации плазмы / Е.Б. Науменко // Вестн. службы крови России. 2003. - № 3. - С. 14.
65. Никитин И.К. Карантинизация — дополнительная гарантия вирусной безопасности плазмы и ее препаратов / И.К. Никитин, Т.В. Голосова // Вестн. службы крови России. 2002. - № 1. — С. 10-14.
66. Никитин И.К. Кровь, компоненты крови: хранение, фракционирование, качество и стандарты / И.К. Никитин, Г.И. Козинец // Гематол. и трансфузиол. — 2004. № 4. - С. 36-38.
67. Одинцова А.А. Использование новой технологической линии аппаратного плазмафереза на базе СПК комитета здравоохранения г. Москвы / А.А. Одинцова, О.В. Возилкин, Ю.С. Суханов // Новое в трансфузиологии. 1997.-Вып. 19.-С. 56-59.
68. Осипов Д.А. Применение метода карантинизации в целях повышения безопасности донорской плазмы / Д.А. Осипов, Т.И. Поспелов // Проблемы гематол. и переливания крови. 2005. - № 3. - С. 51-52.
69. Ozier Y. Существуют ли в хирургии абсолютные показания для переливания тромбоцитной массы и свежезамороженной плазмы? / Y. Ozier // Методы сбережения крови в хирургии. Рига, 1997. — С. 28-31.
70. Перфильева Е.А. Совершенствование подсчета клеток в компонентах крови / Е.А. Перфильева, Л.Г. Плесская, Т.В. Фокина, Н.Н. Калинин // Гематол. и трансфузиол. -2003. № 2. - С. 44-47.
71. Петров М.М. Современные проблемы клинической трансфузиологии / М.М. Петров // Здравоохранение и мед. техника.- 2004.- № 2.- С.16-17.
72. Покровский В.И. Применение фильтрационных технологий в клинической и производственной трансфузиологии / В.И. Покровский, Е.А. Селиванов, В.Н. Мельникова, Ю.С. Суханов, В.А. Максимов. Н.М. Шишов// Вестн. службы крови России. 2003. - № 2. - С. 3-5.
73. Полякова И.И. Анализ результатов тестирования доноров на гемотрансмиссивные инфекции / И.И. Полякова, О.Д. Неклюдова, М.И. Лазаренко // Производственная трансфузиология на рубеже XXI века. Мат. науч.-практ. конф. - М., 1999. - С. 54-55.
74. Постановление правительства РФ от 1.01.2002 г. № 1 «О классификации основных средств, включаемых в амортизационные группы»,- М., 2002.- 5 с.
75. Приказ МЗ СССР от 12 апреля 1990 г. № 155 «О совершенствовании деятельности учреждений службы крови в условиях нового хозяйственного механизма». М., 1990. - 52 с.
76. Приказ МЗ СССР от 3 декабря 1990 г. № 394 «Об утверждении положения о комплексном техническом обслуживании, ремонте, монтаже медицинской техники». М., 1991. - 12 с.
77. Приказ МЗ РФ от 14 сентября 2001 года № 364 «Об утверждении порядка медицинского обследования донора крови и ее компонентов».- М., 2001.-13 с.
78. Приказ МЗ РФ от 23 сентября 2002 г. № 295 «Об утверждении Инструкции по проведению донорского прерывистого плазмафереза».- М.: ФГУП «Медсервис», 2003. 6 с.
79. Приказ МЗ РФ от 7 мая 2003 года № 193 «О внедрении в . практику работы службы крови в Российской Федерации методакарантинизации свежезамороженной плазмы». — М.: ФГУП «Медсервис», 2003. 3 с.
80. Редчиц Е.Г. Реологические свойства лейкоцитов и их участие в микроциркуляции крови / Е.Г. Редчиц, A.G. Парфенов // Гематол. и трансфузиол. 1989. - № 12. - С. 40-45.
81. Рутберг Р.А. Простой и быстрый метод одновременного определения скорости рекальцификации и фибрина крови / Р.А. Рутберг // Лаб. дело. 1961. - № 6. - С. 6-7.
82. Русанов В.М. Вирусная безопасность донорской плазмы и лечебных препаратов крови / В.М. Русанов // Здравоохранение и мед. техника. 2004. - № 5 - С. 16-18.
83. Рыжков С.В. Оптимизация проведения плазмоцитафереза на аппарате «Гемонетикс-ЗОС» / С.В. Рыжков, Г.П. Игнатович, Н.Н. Попова, А.В. Чечеткин, А.Н. Плоцкий //Гравитационная хирургия крови.- М., 1983.-С. 122-123.
84. Рыжков С.В. Военно-медицинские аспекты и перспективы применения плазмоцитафереза / С.В. Рыжков, С.Д. Попов // Вопросы заготовки и применения крови, ее компонентов и препаратов в военно-медицинских учреждениях. ВМедА, 1986. - С. 44-48.
85. Селиванов Е.А. Влияние методов замораживания и размораживания плазмы крови на активность прокоагулянтов и антитромбина III / Е.А. Селиванов, Б.А. Барышев, В.А. Кобилянская // Трансфузиология. 2001. - № 4. - С. 61-66.
86. Селиванов Е.А. Служба крови России на современном этапе / Е.А. Селиванов // Здравоохранение и мед. техника. 2004. - № 5. - С. 4 - 6.
87. Селиванов Е.А. Производственная деятельность отделений переливания крови России / Е.А. Селиванов, Т.Н. Данилова, И.Н. Дегтярева // Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии. Мат. Рос. науч,-практ. конф. - СПб., 2004. - С. 132.
88. Селиванов Е.А. Настоящее и будущее службы крови России / Е.А. Селиванов, Т.Н. Данилова // Пробл. гематол. и переливания крови. -2005.-№3.-С. 55.
89. Сидоркевич С.В. Совершенствование производственной деятельности службы крови Вооруженных сил РФ в мирное время / С.В. Сидоркевич // Автореф. дис. . д-ра мед. наук. СПб., 2002. - 42 с.
90. Техническое руководство американской ассоциации банков крови. Пер. с англ.- Милан: Европейская школа трансфузионной медицины, 2000.- С. 183-208.
91. Тотолян А.А. Иммуноглобулины в клинической и лабораторной диагностике / А.А. Тотолян, Н.А. Марфичева, Н.А. Тотолян // СПб.: АО «Стибиум плюс», 1996. 30 с.
92. Трофимова С.А. Трансфузиология на пороге третьего тысячелетия.' Достижения и перспективы / С.А. Трофимова // Трансфузиология. 2001. - № 2. - С. 72-80.
93. Туголуков В.Н. О способах определения протромбина и применении их в клинике / В.Н. Туголуков // Автореф. дис. . канд. мед. наук.-Л., 1952.-15 с.
94. Уразов С.Х. Карантинизация плазмы фактор, гарантирующий вирусную безопасность трансфузионной терапии / С.Х. Уразов, Н.И. Афонин // Вестн. службы крови России. - 2001. -№ 1.-С. 7-12.
95. Федоров А.П. Опыт создания банка карантинизированной плазмы на базе городской станции переливания крови г. Тольятти / А.П. Федоров, Н.А. Остапчук, М.В. Шайдоров // Вестн. службы крови России. 2001. - № 3. -С. 47-49.
96. Филина Н.Г. Опыт работы Красноярской краевой станции переливания крови по карантинизации свежезамороженной плазмы / Н.Г. Филина // Трансфузиология. 2003. - № 2. - С. 20-24.
97. Чижова А.И. Методика отбора проб для контроля качества компонентов крови / Чижова А.И., Мельникова Е.А., Жибурт Е. Б. // Трансфузиология.- 2005. № 2.- С. 84-87.
98. Ядзовский В.В. HLA-генетический профиль русской популяции /
99. B.В. Ядзовский, А.В. Воронин, Л.П. Алексеев // Гематол. и трансфузиол.1998. Т.43, № 1.-С. 30-31.
100. Хаитов P.M. Геномика главного комплекса гистосовместимости: клинические аспекты / P.M. Хаитов, Л.П. Алексеев // Мед. кафедра. 2003. -№ 1. - С. 4-9.
101. Шахгильдян И.В. Эпидемиологические закономерности гепатита
102. C, выявляемые при определении специфических антител методом ИФА / И.В. Шахгильдян, С.Н. Кузин, С.О. Вязов // Сб. мат. семинара «Рош-Москва». М,: Медицина, 1996. - С.73-80.
103. Aznar J.A. Factor VHI/von Willebrand factor complex in methylene blue-treated fresh plasma / J.A. Aznar, R. Molina, J.M. Montoro // Transfusion.1999. Vol. 39, № 7. - P. 748-750.
104. Baeten M. The effect of methylene blue inactivation of whole blood plasma on Fc VIII related to storage time / M. Baeten , A. Rapaile, D.Donnay // Vox Sang. 2004. - Vol. 87, Suppl. 3 . - P. 72.
105. Beaujean F. Leukocyte depletion of red cell concentrates by filtration: influence of blood product temperature (letter) / F.Beaujean, J.M. Segier, C.le Forestier, N. Duedari // Vox Sang. 1992. - Vol. 62, № 4. - P. 242-243.
106. Beeck H. The influence of citrate concentration on the quality of . plasma obtained by automated plasmapheresis: a prospective study / H. Beeck, S.T. Becker, R. Kaeser, K. Wolter, P. Helstern // Transfusion. 1999. - Vol. 39, № 11-12.-P. 1266-1270.
107. Bellomo R. Interleukin-6 and interleukin-8 extration during continuous venovenous hemodiafitration in septic acute renal failure / R. Bellomo, P. Tipping, N. Boyce // Ren. Fail. 1995. - Vol. 17, № 4. - P. 457-466.
108. Benbunan M. Fresh frozen plasma: plasma secured and virus inactivated plasma / M. Benbunan // Nouv. Rev. Fr. Hematol.- 1994.- Vol. 36, Suppl. 1.-P. S91-93.
109. Bernvil S.S. Fresh frozen plasma contains viable progenitor cells -should we irradiate? / S.S.Bernvil, M. Abdulatiff, S.Al-Sedairy, F.Sasich // Vox Sang. 1994. - Vol. 67, № 4. - P. 405.
110. Blajchman M.A. Mechanisms of transfusion-associated immunosuppression / M.A. Blajchman, J.O. Bordin // Curr. Opin. Hematol. 1994. -Vol. 1,№ 6.-P. 457-461.
111. Blajman M.M. Bacterial contamination and proliferation during the storage of celluar blood products / M.M. Blajman // Vox Sang. 1998. - Vol. 74, Suppl. 2.-P. 155-159.
112. Bontadini A. A new tool in white blood cell reduction for packed red cell 5 log depletion / A. Bontadini, F. Fruet, R. Conte // Transfus. Med. 1997. -Vol. 7, № 3.-P. 129-132.
113. Bbrdin J.O. Biologic effects of leukocytes present in transfused cellular blood products / J.O. Bordin, N.M. Heddle, M.A. Blajchman // Blood. -1994. Vol. 84, № 6. - P. 1703-1721.
114. Bowden R. The role of blood product filtration in the prevention of transfusion assotiated cytomegalovirus infection after marrow transplantation / R. Bowden, M. Sayers, M.J. Caus, S.J. Slitter // Transfusion. 1989. - Vol. 29, № 4, -P. 57S.
115. Bowden R. The risk of transfusion cytomegalovirus infection by fresh frozen plasma / R. Bowden, M. Sayers // Transfusion. 1990. - Vol. 30, № 4 - P. 762-763.
116. Burkhardt Т. СЗа and C5a in plasma from different membrane and centrifugal apheresis procedures / T. Burkhardt, T. Burnouf // Vox Sang. 2004. -Vol. 87, Suppl. 3.-P. 119. :
117. Burnouf T. Nanofiltration of single plasma donations: feasibility study / T. Burnouf, M. Radosevich, M. El-Ekiaby // Vox Sang. 2003. - Vol. 84, № 2. -P. 111-119.
118. Bux J. Transfusion-related acute lung injury (TRALI): a serious adverse event of blood transfusion / J. Bux // Vox Sang. 2005. - Vol. 89, № 1. -P. 1-10.
119. Cardigan R. Evolution of a novel filter for leukocyte depletion of fresh plasma / R. Cardigan, J. Sutherland, M. Garwood, K. Swann, M. Stenning, M.J. Seghatchian, L.M. Williamson // Transfus. Med. 1999. - Vol. 9, № 1. - P. 47.
120. Cardigan R. The effect of leucocyte depletion on the quality of fresh-frozen plasma / R. Cardigan, J. Sutherland, M. Garwood // Br. J. Haematol. 2001. -Vol. 114, № 1.-p. 233-240.
121. Carlebjork G. Freezing of plasma and recovery of factor VIII / G. Carlebjork, M. Blomback, P. Pihlstedt // Transfusion. 1986. - Vol. 26, № 2 - P. 159-162.
122. Chabanel A. Plasma leucoreduced the French experience / A. Chabanel, I. Sensebe, M. Masse, J. P. Maurel, D. Hivet // Transfus. Clin. Biol. -2001.-Vol. 8,№1.-P. 36 S.
123. Chabanel A. Quality assessment of seven types of fresh-frozen plasma leucoreduced by specific plasma filtration / A. Chabanel, I. Sensebe, M. Masse // Vox Sang. 2003. - Vol. 84, № 4. - P. 308-316.
124. Collaerts A.J. The mechanism of white cell reduction by synthetic fiber cell filters / A.J. Collaerts, M.L. Gielis, E.D. Spregers, L. Muylle // Transfusion. 1993. - Vol. 33, № 1. - P. 134-138.
125. Colman R.W. Activation of plasminogen by human plasma kallikrein / R.W. Colman // Bioch. Bioph. Res. Commun. 1969. - Vol. 35, № 2. - P. 273279.
126. Cumming A.M. A simple plasma anticoagulant-exchange method to increase the recovery of factor VIII in therapeutic concentrates / A.M. Cumming, R.T. Wensley, L. Winkelman, R.S. Lane // Vox Sang.- 1990. Vol. 58, № 4. - P. 264-269.
127. Davey R.J. Preparation of white cell-depleted red cells for 42-day storage usinge an integral in-line filter / R.J. Davey, R.A. Carmen, T.L. Simon // Transfusion. 1989. - Vol. 29, № 3. - P. 496-499.
128. De Jonge. Effects of different plasma substitutes on blood coagulaton: a comparative review / De Jonge, M. Levi // Crit. Care Med. 2001. - Vol. 29, № 6.-P. 1261-1267.
129. Deslys J.P. Prions and risks for blood transfusion: the situation in 2003 / J.P. Deslys // Transfus. Clin. Biol. 2003. - Vol. 10, № 3. - P. 113-125.
130. Engelfriet C. P. Universal leukocyte-depletion of blood components: cell-concentrates and plasma / C. P. Engelfriet, H. W. Reesink, R. N. L. Pieterz // Vox Sang.-2001.-Vol. 81, № l.-P. 56-77.
131. Equitoni F. MB photoinactivated FFP is effective and safe for treatment of coagulationies and bleeding disordes / F. Equitoni, G.Mistretta, M. Hortencio de Medeiros // Vox Sang. - 2004. - Vol. 87, Suppl. 3. - P. 72.
132. Etlin S. Random quality control: is it always the right approach / S. Etlin, G. Prober, O. Frenkel // Vox Sang. 2004. - Vol. 87, Suppl. 3. - P. 120.
133. Evans R.L. Peripheral human T-cells sensitized in mixed leukocyte culture sensitize and express la-like antigens / R.L. Evans, T.J. Faldetta, R.E. Humphreys // J. Exp. Med. 1978. - Vol. 148, № 5 - P. 1440-1443.
134. Farren T. W. Effect of storage at +4°C for 5 days on coagulation factors in FFP / T. W. Farren, T.A. Lofting, G. S. Dulay // Vox Sang. 2004. - Vol. 87, Suppl. 3.-P. 119.
135. Farrugia A. Use of plasma with high levels of ionized calcium in the production of model scale coagulation factor concentrates / A. Farrugia, S. Duglas, J. James // Tromb. Haemost. 1990. - Vol. 64, № 3. - P. 374-378.
136. Favaloro E.J. Filtered plasma as a potential cause of clinical misdiagnosis: inappropriate testing in a haematology laboratory / E.J. Favaloro, A. Mohammed, R. Coombs, P.A. Mehrabani // Br. J. Biomed. Sci. 1995. - Vol. 52, № 4. - P. 243-248.
137. Galandat R.C.G. A novel hydroxyethyl starch (Voluven) for perioperative plasma volume substitution in cardiac surgery / R.C.G. Galandat, A.W. Siemons, D. Baus // Can J. Anesth. 2000. - Vol. 47, № 12. - P. 1207-1215.
138. Ghio M. Soluble HLA class I, HLA class II, and Fas ligand in blood components: a possible key to explain the immunomodulatory effects of allogeneic blood transfusions / M. Ghio, P. Contini, C. Mazzei // Blood. 1999. - Vol. 93, № 5.-P. 1770-1777.
139. Glaser A. Effectiveness of white cell reduction by filtration with respect to blood storage time / A.Glaser, T.Erpenbeek, M. Bock, M.Heim, W. Mempel // Transfusion. 1993. - Vol. 33, № 6. - P. 536-537.
140. Goldman M. The role of leukodepletion in the control of transfusion-transmitted disease /М. Goldman, G. Delage // Transfus. Med. Rev. 1995. - Vol. 9,№ 1.-P. 9-19.
141. Granato M. Donor awareness and, motivation in donating on an automating system // M. Granato, K.L. Rose // Transfusion. 2006. - Vol. 46, № 9S, Suppl. - P. 206A.
142. Gresens C.J. T- cells in fresh frozen plasma are viable and can respond to mitogen, superantigen and allogeneic monocytes / C.J. Gresens, T.G. Paglieroni, C.B. Moss // Transfusion. 1999. - Vol. 39, № 1. - P. 99-102.
143. Heaton W.A. Effects of 3-5 loglO prestorage leucocyte depletion on red cell storage and metabolism / W.A. Heaton, S. Holme, K. Smith // B. J. Haematol. 1994. - Vol. 87, № 3. - P. 363-368.
144. Heggie A.J. Clinical evalution of the new Pall leucocyte-depletion blood cardioplegia filter (BC1) / A.J. Heggie, J.S. Corders, P.R. Crihton // Perfusion. 1998. - Vol. 13, №1. - P. 17-25.
145. Hellstern P. Manufacture and in vitro characterization of solvent/detergenttreated human plasma / P. Hellstern, H. Sachse, H. Scywinn // Vox Sang.- 1992. Vol. 63, № 3. - P. 178-185.
146. Hiruma K. Effect of leucocyte reduction on the potential alloimmunogenicity of leucocytes in fresh-frozen plasma products / K. Hiruma, Y. Okuyama, K. Minima // Vox Sang. 2001. - Vol. 80, № 1. - P. 51 -56.
147. Holmberg J.A. Blood collection and transfusion in the United States in 2004 / J.A. Holmberg, M.T. Sullivan, R.T. Rockville // Transfusion. 2006. - Vol. 46, № 9S. - P. 193A
148. Hume H.A. Hypotensive reactions: a previously uncharacterized complication of platelet transfusion? / H.A. Hume, M.A. Popovsky, K. Benson // Transfusion. 1996. - Vol. 36, № 8. - P. 904-909.
149. Humpe A. Hepatitis С virus transmission through quarantine fresh-frozen plasma /А. Humpe, T.J. Legler, C.M. Nubling, J. Riggert, G. Unger, C. Wolf// Thromb. Haemost.- 2000.- Vol. 84, № 5.- P. 784 788.
150. Jacobson J.L. Adverse reaction rate in young apheresis donors / J.L. Jacobson, G. Tetteh, C. Baldwin // Transfusion. 2006. - Vol. 46, № 9S, Suppl. -P. 81A.
151. Kazatchkine M.D. Activation of the complement system at the interface between blood and artificial surfaces / M.D. Kazatchkine, M.P. Carreno // Biomaterials. 1988. - Vol. 9, № 1. - P. 30-35.
152. Kliman A. Effect's of infusive plasmapheresis on normal blood donors / A. Kliman, P. Garlone, A. Gaydos, F. Freireich // Blood. 1974. - Vol. 23, №5.-P. 545-566.
153. Kongsgaard U.E. Leucocyte depletion filter removes cancer cells in human blood / U.E. Kongsgaard, M.Y. Wang, G. Kvalheim // Acta Anaesthesiol. Scand. 1996. - Vol. 40, № 1. - P. 118-120.
154. Kretschmer V. Side effect and technical problems in cytapheresis with cell separators. Results of a retrospective multicenter study / V. Kretschmer // Infusionstherapie. 1987. - Vol. 14, Suppl. 4. - P. 7-16:
155. Lambrecht B. Photoinactivation of viruses in human fresh plasma by phenothiazine dyes in combination with visible light / B. Lambrecht, H. Mohr // Vox Sang. 1991. - Vol. 60, № 4. - P. 207-213.
156. Lane T.A. Leukocyte depletion of cellular blood components /Т.А. Lane// Curr. Opin. Hematol. 1994. - Vol. 1, № 6. - P. 443-451.
157. Lau P. The effect of centrifugation time on residues in fresh plazma / P. Lau, M. Sererat, M.V. Bartkowiak, V. Moore // Transfusion. 1983. - Vol. 23, №1.-P. 68-69.
158. Ledeni E. Does plasma influence the efficiency of leucocyte filtration? / E. Ledeni, G. Berlin // Vox Sang. 1994. - Vol. 67, № 1. - P. 20.
159. Le Quere S. Leucodepletion of plasma by automated in-line filtration at room temperature (RT): assessment of a new disposal (Composelect 3904) / S. Le Quere, R. Jauneau, С Adjourn // Transfus. Clin. Biol. 2001. - Vol. 8, № 2. - P. 229S.
160. MacGregor I. Application of a time resolved fiuoroimmunoassay for the analysis of normal prion protein in human blood and its components / I. MacGregor, J. Hope, G. Barnard // Vox Sang. 1999. - Vol. 77, № 1. - P. 88-96.
161. Machuca A. Residual risk of human immunodeficiency virus infection in blood banks. Impact of screening with nucleic acid test / A. Machuca, I. Hewlett //Med. Clin. (Bare). 2003. - Vol. 4, № 11. - P. 418-425.
162. Maddrey W.C. Hepatitis В an important public health issue / W.C. Maddrey//Clin. Lab. - 2001. - Vol. 47, № 1-2. - P. 51-55.
163. Massard S. Plasma leucoreduction with specific filtration using automatic pressure: assessment of a flexible filter Plasmaflex PLAS4 / S. Massard, I. Niel, G. Janus // Transfus. Clin. Biol. 2001. - Vol. 8, № 2. - P. 231S.
164. Masse M. Validation of a simple method to count very low white cell concentration in filtreed red cells or platelets / M. Masse, C. Naegelen, N. Pelligrini//Transfusion. 1992. - Vol. 32, № 6. - P. 565-571.
165. Masse M. Leukocyte count determination in plasma preparation using a highly sensitive couhting method / M. Masse, N. Marpaux, F. Konig, C. Naegelin // Transfusion. 1998. - Vol. 38, № 1. - P. 13.
166. Masse M. Universal leucoreduction of cellular and plazma components process control and perfomance of the leucoreduction process / M. Masse // Transfus. Clin. Biol. 2001. - Vol. 8, № 3. - P. 297-302.
167. Muller N. Evalution of plasma quality prepared by in-line filtration / N. Muller//Transfus. Clin. Biol. 2001. - Vol. 8, № 3. - P. 23 IS.
168. Muylle L. The role of cytokines in blood transfusion reactions / L. Muylle // Blood Rev. 1995. - Vol. 9,№1.-P. 77-83.
169. Nedeljkovic N. Blood processing: strategies for the review of transfusion practice / N. Nedeljkovic, S.Tadic // Vox Sang. 2005. - Vol. 89, Suppl. 1.-P. 173.
170. Nielsen H.J. Leucocyte-derived bioactive substances in fresh frozen plasma / H.J. Nielsen, C. Reimert, A.N. Pedersen, E. Dybkjoer // Br. J. Anaesth. -1997. Vol. 78, № 5. - P. 548-552.
171. Ghto H. HLA antibodies after transfusions of FFP / H. Ohto, H. Yasuda, M. Yokota // Transfusion. 2000. - Vol. 40, № 6. - P. 613-614.
172. O'Neill E.M. Effect of 24-hour whole-blood storage on; plasma clotting factors / E.M. O'Neill, J. Rowley, M. Hansson-Wicher // Transfusion. -1999. Vol. 39, № 4. - P. 488-491.
173. Plante J. Comparative study of plasma gravitational filtration versus under pressure filtration using Pall LPS1 filter / J. Plante, J.M. Reifenberg, C. Maugard, F. Girard // Transfus. Clin. Biol. 2001. - Vol. 8, № 2. - P. 220S.
174. Qu L. Efficacy of Epstein-Barr virus removal by leukoreduction of red blood cells / L. Qu, S. Xu, D. Rowe, D. Trialzi // Transfusion. 2005. - Vol. 45, №4.-P. 591-595.
175. Rapaille A. Prestorage leukocyte reduction with in-line filtration of whole blood: evaluation of red cells and plasma storage/ A. Rapaille, G. Moore, J. Siquet // Vox Sang. 1997. - Vol. 73, № 1. - P. 28- 35.
176. Rider J.R. Leucocytes can be eliminated from plazma be filtration prior to viral inactivation with methilen blue / J.R. Rider, M.A.Winter^ J.M. Payrat // Vox Sang. 1998. - Vol. 74, № 3. - P. 209- 210.
177. Riggert J. Prestorage leukocytedepletion with in-line filtration of whole blood component leukocyte depletion / J. Riggert, G. Simson, J. Dittmann, M. Kohler // Vox Sang. 1995. - Vol. 69, № 3. - P. 201- 205.
178. Riggert J. Prestorage inline filtration of whole blood for obtaining white cell-reduced in-line filtration of whole blood / J. Riggert, D. W.M. Schwartz, J.U. Wieding // Transfusion. 1997. - Vol. 37, № 10. - P. 1039-1044.
179. Roback J.D. The role of leukocyte reduction in minimizing the risk of transfusion-transmission of cell-associated infections agents and immunomodulation / J.D. Roback, C.D. Hillyer // The safety of the blood supply. -New-York, 1999. P. 28-45.
180. Rock G. A. Effect of citrate anticoagulants on factor VIII levels in plasma / G. A. Rock, P. Tittley, V. Fuller // Transfusion. 1988. - Vol. 28, № 2. -P. 248-252.
181. Rosen S. Determination of factor VIII activity in plasma and concentrates: A comparison of methods / S. Rosen, M. Chiarion // Eur. Clin. Lab. -2002.-Vol. 21, №3.-P. 18-21.
182. Saigo K. Accumulation of interleukin-1 receptor antagonist in blood products and the effect of pre-storage leukocyte reduction / K. Saigo, M. Hashimoto, M. Yamamoto // Transfus. Apheresis. Sci. 2003. - Vol. 29, № 2. - P. 187-188.
183. Sawyer L. Inactivanion of blood borne patogenesis apheresis plasma used the Intercept blood system / L. Sawyer, R. Mobabagloob, M. Propst // Vox Sang. - 2004. - Vol. 87, Suppl. 3. - P. 72.
184. Schonewille H. Alloimmunization after blood transfusion in patients with hematologic and oncologic diseases / H. Schonewille, H.L. Haak, A.M. van Zijl // Transfusion. 1999. - Vol.39, № 6. - P.763-771.-
185. Seghatchian J. Cytokines as quality indicators of leucoreduced red all concentrates / J. Seghatchian, P. Krailadsiri, H. Dilger // Transfus. Apheresis. Sci. 2002. - Vol. 26, № 1. - P. 43-46.
186. Seifried E. Costs of safety of blood and blood products / E. Seifried, G. Soedel // Zentralbl. Chir.- 1995.- Vol. 120, № 8.- P. 584 592.
187. Sensebe I. Deleucocytation du plasma: etude de faisabilite multicentrique nationale / I. Sensebe, M. Masse, P. Bergeat, A. Chabanel // Transfus. Clin. Biol. 2000. - Vol. 3, № 2. - P. 340.
188. Silliman C.C. Plasma and lipids from stored packed red blood cells cause acute lung injury in an animal model / C.C. Silliman, N.F. Voelkel, J.D. Allard // J. Clin. Invest.-1998.-Vol. 101, №7. P. 1458-1467.
189. Sonntag J. Complement activation during plasma production depends on the apheresis technique / J. Sonntag, M. Emeis, A. Vornwald // Transfus. Med. -1998. Vol. 8, № 3. - P. 205-208.
190. Stefanou D.C. Leucodepletion during cardiopulmonary bypass reduces blood transfusion and crystalloid requirements / D.C. Stefanou, T. Gourlay, G. Asimakopoulos, K.M. Taylor // Perfusion. 2002 - Vol. 77, № 2. - P. 137-142.
191. Steneker I. Histologic and immunohistochemical studies on the preparation of white cell-poor red cell concentrates: the filtration process using three different polyester filters / I. Steneker, J. Biewenga // Transfusion. 1991. -Vol. 31, №1.-P. 40-46.
192. Suontaka A.M. Stability of blood coagulation factors and inhibitors in blood drawn into half-strength citrate anticoagulant / A.M. Suontaka, O. Akerblom, M. -Blomback // Vox. Sang. 1996. - Vol. 71, № 2. - P. 97-102.
193. Thurlow PJ. Studies of the effect of Pall leucocyte filters LG6 and AV6 in an in vitro simulated extracorporeal circulatory system. / PJ. Thurlow, L. Doolan, R. Sharp // Perfusion. 1995. - Vol. 10, № 5. - P. 291-300.
194. Valery C. The effect of storage of fresh frozen plasma at -80°C for as long as 14 years on plasma clotting protein / C. Valery, A. Gennouai // Transfusion. 2005. - Vol. 45, № 3 S. - P. 73A.
195. Valery C. The effect of storage of fresh frozen plasma at -80°C for 2 years follow by storage at -20°C for long as 15 months / C. Valery A. Gennouai, G. Rago // Transfusion. 2005. - Vol. 45, № 3 S. - P. 73A.
196. Van Der Meer P.F. Collection of heparinized plasma by plasmapheresis / P.F. Van Der Meer, H. Vrielink, R.N. Pietersz // Vox Sang. -1999. Vol. 77, № 3. - P. 137-142.
197. Vignoli C. Automated filtration of plasma: evaluation of feasibility and performances of leukocyte depletion / C.Vignoli, G. Difede, F. Donnadieu // Transfus. Clin. Biol. 2001. - Vol. 8, № 2. - P. 219S.
198. Vincent J.L. Anemia management in critical care / J.L. Vincent // Transfus. Alternatives in Transfus. Med. 2002. - Vol. 4, № 4. - P. 115.
199. Vincent J.L. Anemia and blood transfusion in critically ill patients / J.L. Vincent, J.F. Baron, K. Reinhart // JAMA. 2002. -Vol. 288, № 12. - P. 14991507.
200. Vrielink H. Plasmapheresis with PCS 2: version G.l software / H. Vrielink, Van Der Meer P.F. // Vox. Sang. - 2004. - Vol. 87, Suppl. 3. - P. 119.
201. Wallace E.L. Collection and transfusion of blood components in the United States / E.L. Wallace, D.M. Surgenor, H.S. Hao // Transfusion. 1993. -Vol. 33, №1.-P. 139-144. .
202. Wieding J.U. Contamination of fresh-frozen plasma with viable white cell and proliferable stem cells / J.U. Wieding, K. Vermeyer, J. Dittman // Transfusion. 1994. - Vol. 34, № 2. - P. 185-186.
203. Williamson L.M. Bedside filtration of blood products in the prevention of HLA alloimmunization A prospective randomized study / L.M.
204. Williamson, J.Z. Wiper's, P. Williamson // Blood. 1994. - Vol. 83, № 7. - P. 3028-3035.
205. Williamson L.M. Evaluation of plasma and red cells obtained after leucocyte depletion of whole blood / L.M. Williamson, J.R. Rider, I.D. Swann // Transfus. Med. 1999. - Vol. 9, № 1. - P. 51-61.
206. Willis J.I. White cells in fresh-frozen plasma: evaluation of a new white cell-reduction filter / J.I. Willis, J.A.G. Lown, M.C. Simpson, W.N. Erber // Transfusion. 1998. - Vol. 34, № 7. - P. 645-649.