Автореферат и диссертация по медицине (14.01.14) на тему:Комбинированная антибиотикопрофилактика местных инфекционно-воспалительных осложнений при операциях на альвеолярном отростке (части) челюсти
- Ученая степень
- кандидата медицинских наук
- ВАК РФ
- 14.01.14
Автореферат диссертации по медицине на тему Комбинированная антибиотикопрофилактика местных инфекционно-воспалительных осложнений при операциях на альвеолярном отростке (части) челюсти
На правах рукописи
УДК 616.716.86 - 002-*
4839974
Яхьяев Михаил Исакович
КОМБИНИРОВАННАЯ АНТИБИОТИКОПРОФИЛАКТИКА МЕСТНЫХ ИНФЕКЦИОННО-ВОСПАЛИТЕЛЬНЫХ ОСЛОЖНЕНИЙ ПРИ ОПЕРАЦИЯХ НА АЛЬВЕОЛЯРНОМ ОТРОСТКЕ (ЧАСТИ)
ЧЕЛЮСТИ
14.01.14 - Стоматология 03.02.03 - Микробиология
Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук
1 с [..¡АР 20П
Москва - 2011
4839974
Работа выполнена в ГОУ ДПО «Российская медицинская академия последипломного образования Росздрава» и в ГОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет» Минздрав-соцразвития России.
Научные руководители: доктор медицинских наук, профессор
Ушаков Рафаэль Васильевич доктор медицинских наук, профессор Царев Виктор Николаевич
Официальные оппоненты: доктор медицинских наук, профессор
Панин Андрей Михайлович доктор медицинских наук, профессор Быков Анатолий Сергеевич
Ведущая организация: ФГОУ ДПО «Институт повышения
квалификации Федерального медико-биологического агентства»
/
Защита состоится 22 марта 2011 года в ч7 час<<_^__ мин. на заседании диссертационного совета Д 208.041.07 при ГОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет» Минздрав-соцразвития России (127473, г. Москва, ул. Делегатская, 20/1).
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Московского государственного медико-стоматологического университета (127206, Москва, ул. Вучетича, д. 10а).
Автореферат разослан (О*- ■_2011 года.
Ученый секретарь диссертационного совета кандидат медицинских наук,
доцент О.П. Дашкова
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность проблемы
Вопрос о проведении антибактериальной профилактики при амбулаторных хирургических операциях в настоящее время является весьма дискутабельным. При проведении операций в условиях так называемых «инфицированных» ран, к которым относится цистэктомия, резекция верхушки корня, гранулемэктомия, проводимая во время обострения процесса, антибиотики, как правило, назначаются системно в послеоперационный период (Т.Г.Робустова с соавт., 1998, 2006; Р.В.Ушаков, В.Н.Царев, 2005 и др.). Кроме этого, для профилактики инфекционно-воспалительных осложнений возможно использование антимикробных препаратов местно - в составе комплексных препаратов или остеотропных средств (например, Колапол, КоллапАн с антибиотиками).
Состав микрофлоры при хроническом периодонтите изучен достаточно подробно (А.В.Митронин, 2003-2006). Вместе с тем спектр микроорганизмов при воспалительных осложнениях (например, нагноении радикулярной кисты) до конца не определен, что затрудняет выбор антимикробного препарата для профилактики послеоперационных осложнений и лечения обострения процесса.
В последние годы существенно изменился спектр чувствительности к антибиотикам анаэробных бактерий, вызывающих инфекционно-воспалительные заболевания челюстно-лицевой области (В.Н.Царев, Р.В.Ушаков, 2004). Широкое распространение получила устойчивость к наиболее часто применяемым в стоматологической практике препаратам имидазольного ряда (метронидазолу, нитазолу, орнидазолу, тинидазолу), причём как среди грамположительных неспорообразующих палочек (актиномицеты, пропионибактерии, коринебактерии), так и анаэробных кокков. Обычным явлением стала устойчивость анаэробных штаммов бактерий к линкомицину и клиндамицину. Среди штаммов пародонтопато-
генных анаэробных бактерий, циркулирующих в России (Prevotella intermedia, Porphyromonas gingivalis, Aggregatibacter actinomycetemcomitans), выявлены гены резистентности к тетрациклинам и макролидам (эритромицину) с частотой 56,8 и 11,8 % соответственно. Другой проблемой является способность многих антибиотиков замедлять процессы регенерации костной ткани, что ограничивает их местное применение.
В стоматологии получили широкое распространение биокомпозитные остеопластические препараты на основе коллагена, в частности Колапол и КолапАн. Вместе с тем при их использовании часто наблюдается неудовлетворительное формирование костной ткани. Отсутствие или снижения эффекта регенерации при проведении костнопластических операций, особенно с использованием материалов, содержащих коллаген, может быть обусловлено присутствием в зоне операции пародонтопатогенных микроорганизмов, которые активно выделяют метталлопротеиназы, в частности коллагенозу.
Таким образом, определение видов микроорганизмов контамини-рованных и инфицированных ран челюстных костей, их чувствительность к антимикробным препаратам и определение путей профилактики распространения инфекции является актуальным.
Цель работы
Разработать тактику комбинированной антибиотикопрофилактики местных инфекционно-воспалительных осложнений после операций на альвеолярном отростке (альвеолярной части) челюсти в условиях первичной микробной контаминации и инфицирования.
Задачи исследования
1. Изучить структуру микрофлоры контаминированных и инфицированных («грязных») операционных ран альвеолярных отростков (частей) челюсти.
2. Провести сравнительное изучение влияния антибиотиков цефалоспоринового ряда на возможных возбудителей инфекционно-воспалительных осложнений при хирургических стоматологических вмешательствах, в том числе виды, способные вырабатывать ферменты, разрушающие коллаген.
3. Определить тактику применения коллагенсодержащих остеотропных материалов, модифицированных антибиотиками в лечении инфицированных костных ран альвеолярного отростка, в сочетании с системным назначением цефалоспориновых антибитиоков с учетом синергизма и антагонизма препаратов.
4. Изучить возможность проведения активных хирургических вмешательств на инфицированной костной ране на фоне комбинированной антибиотикопрофилактики.
Научная новизна
Впервые изучено влияние пролонгированного цефалоспоринового препарата цефтибутена на анаэробную микрофлору полости рта и послеоперационной раны (условно-чистой, контаминированной и «грязной») при разных амбулаторных стоматологических вмешательствах и определены перспективы его применения в стоматологической практике.
Дано клинико-лабораторное обоснование применения цефтибутена в сочетании с коллагенсодержашими костнопластическими материалами, содержащими метронидазол в хирургической стоматологической практике.
Практическая значимость.
Предложена схема периоперационной профилактики местных инфекционно-воспалительных осложнений при использовании для костнопластических целей коллагенсодержащих препаратов в сочетании с системной антибиотикопрофилактикой.
Для системной антибиотикопрофилактики при стоматологических хирургических вмешательствах предложено использовать новый пролонгированный цефалоспориновый препарат Цефтибутен.
Основные положения, выносимые на защиту
1. Цефтибутен обладает выраженным антимикробным действием в отношении микрофлоры, принимающей участие в инфицировании костных ран челюстных костей, в том числе видов, продуцирующих коллагеназу. Эффективность данного антимикробного препарата выше, чем у других антибиотиков цефалоспоринового ряда.
2. Цефтибутен эффективен в отношении микрофлоры послеоперационной раны ин витро и ин виво.
3. Для профилактики местных инфекционно-воспалительных послеоперационных осложнений после сложного удаления зубов, удаления зубов при обострении периодонтита, операций цистэктомии, резекции верхушки корня целесообразно использовать антибиотикопрофилактику с применением пролонгированной формы цефалоспорина Цефтибутен в комбинации с местным применением коллагенсодержащих биокомпозиционных материалов Колапол и КоллапАн, содержащих метронидазол.
Внедрение результатов исследования
Полученные результаты клинических и микробиологических методов исследования используются в лечебном процессе стоматологической клиники ООО «Сильвия» (г. Москва).
Апробация работы
Основные положения работы доложены на научно-практической конференции Научно-исследовательского медико-стоматологического института (НИМСИ при МГМСУ, 2007, 2008), на совместном заседании кафедр: стоматологии РМАПО, ортопедической и общей стоматологии РМАПО, микробиологии, иммунологии и вирусологии МГМСУ (протокол № 6 от 22 июня 2009 г.); совместном заседании кафедры госпитальной
терапевтической стоматологии, пародонтологии и гериатрической стоматологии; кафедры микробиологии, вирусологии, иммунологии ГОУ ВПО МГМСУ; лаборатории молекулярно-биологических исследований НИМСИ ГОУ ВПО МГМСУ; кафедры стоматологии ГОУ ДПО РМАПО (протокол № 10 от 25 июня 2009 г.).
Публикации
По материалам исследования опубликовано 4 печатные работы, в том числе 2 — в журналах, рекомендованных ВАК Минобрнауки РФ.
Личное участие автора
Автор проводил обследование и лечение пациентов, ассистировал на операциях и проводил их самостоятельно, проводил забор материала для лабораторных исследований, производил 3/4 лабораторных исследований, систематизацию и статистическую обработку полученных данных, лично готовил научные работы по теме диссертации.
Объем и структура диссертации
Диссертационная работа состоит из введения, глав «Обзор литературы», «Материалы и методы исследования», глав собственных результатов исследования, обсуждения результатов и заключения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы. Обзор литературы включает 285 источников, в том числе 104 отечественных и 181 - иностранных авторов.
Диссертация изложена на 122 страницах компьютерного текста Times New Roman. Диссертация иллюстрирована 14 таблицами, 25 рисунками.
Диссертационная работа выполнена в рамках научно-отраслевой программы «Последипломное образование медицинских кадров» (регистрационный номер 01200216501).
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материалы и методы исследования
Для решения настоящих задач исследования было проведено обследование и лечение 120 больных в возрасте от 19 до 67 лет. Среди них было 70 мужчин и 50 женщин. Распределение пациентов по полу и возрасту представлено в табл. 1.
Таблица 1
Распределение обследуемых пациентов по полу и возрасту
Возраст (лет) Мужчины Женщины
18-35 18(25,7%) 11 (22,0 %)
36-50 35 (50 %) 22 (44,0 %)
51-65 17(24,3%) 17(34,0%)
ВСЕГО 70(100%) 50(100%)
Обследование проводилось по общепринятой методике, включающей опрос и осмотр больного. При опросе больного обращалось внимание на наличие аллергических заболеваний и реакций на медикаменты, перенесенные и сопутствующие заболевания.
Рентгенологические исследования проводились у всех пациентов до операции цистэктомии, резекции верхушки корня, удаления зуба и через 3 и 5-6 месяцев.
В первую группу вошли пациенты, операции в полости рта которых, согласно мнению В.Н.Царева и Р.В.Ушакова (2004), относились к разряду контаминированных. Этим пациентам проводились операции удаления третьих нижних моляров, при частичном или полном прорезывании зубов, перекороните (24 человека), всем пациентам удаление зубов проводилось с использованием остеотомии. Кроме этого, в группу вошли пациенты, которым зубы удалялись по поводу радикулярной кисты или деструктивных форм периодонтита вне обострения (24 человека), удаление имплантатов
(3 человека), 24 пациента, которым операции проводились при радикулярной кисте челюсти или кисто-гранулеме с признаками развития негнойного воспаления. Всего в первую группу вошли 75 пациентов, которые были разделены на 2 подгруппы. В первой после проведения оперативного вмешательства в костный дефект (лунку удаленного зуба) вводился Колапол или КоллапАн с метронидозолом (33 человека), во второй группе (42 пациента) в костную рану вводились эти же препараты, но без антибиотика. В данной подгруппе профилактика воспалительных осложнений проводилась с использованием антибиотика для перорального применения группы цефалоспоринов - цефтибутена (за 60 минут до операции и в течение 4 дней после операции (дозировка - по 0,4 г 1 раз в сутки независимо от приёма пищи).
Вторую группу составили пациенты, имеющие так называемые «грязные» операционные раны, т.е. операции на заведомо инфицированных тканях. Это пациенты, которым проводили удаление зубов при обострении хронического периодонтита, цистэктомия, гранулемэктомия с резекцией верхушки корня при нагноении, явления перикоронита при затрудненном прорезывании 8 нижних зубов на фоне гнойного воспаления.
В группу вошли 45 пациентов в возрасте от 27 до 58 лет. Пациенты также были разделены на 2 подгруппы: в основной подгруппе (22 человека) пациенты принимали до и после операции пероральный антибиотик цефтибутен) в сочетании с введением в операционную рану после обработки гнойной костной раны остеотропных средств Колапол и КоллапАн, с метронидазолом.
Во второй подгруппе - контрольной (23 человека) - назначались только антибиотик цефтибутен перорально до и после операции и остеотропные материалы без антибиотика. Выбор препаратов обусловлен тем, что большинство видов бактерий, способных вызывать воспалительные процессы в полости рта, чувствительны к данным антибиотикам, которые к тому же взаимно дополняют друг друга по своему антибактериальному спектру.
Контроль эффективности комплекса профилактических мероприятий и профилактических мер, проводимых в контрольной группе, осуществлялся по данным клинического осмотра. Были выбраны следующие признаки, отражающие течение раннего послеоперационного периода:
1. Боль в области операционной раны.
2. Повышение температуры тела.
3. Отек мягких тканей лица.
4. Увеличение регионарных лимфатических узлов.
5. Наличие отека слизистой оболочки в зоне операции и прилегающих областях.
6. Наличие гиперемии слизистой оболочки в области линии швов.
7. Наличие отделяемого из раны.
8. Прилегание краев раны (Акылбеков Д.И., 2004).
Использовалась балльная оценка, где 0 - отсутствие признака, 1 - признак выражен слабо, 2 - выражен умеренно, 3 - выражен сильно.
Оценка течения раннего послеоперационного периода проводилась у всех пациентов 2 групп обследования на 1, 3 и 7-е сутки после операции.
Для контроля антимикробной эффективности препарата и его влияния на микробиоценоз полости рта проводились микробиологические исследования. Микробиологическое исследование включало выделение микрофлоры со слизистой оболочки в области линии швов и идентификацию выделенных бактерий с использованием техники анаэробного культивирования. Взятие материала осуществлялось двухкратно:
1) до операции (определение исходного фона для контроля последующего устранения вирулентных штаммов);
2) на 2-3 сутки (до чистки зубов и обработки препаратами) при разведении краев раны во время перевязки, что требуется по технологии применения коллагенсодержащих препаратов.
Культивирование анаэробных культур бактерий осуществлялось в анаэростате с бескислородной газовой смесью, состоящей из 80 % азота, 10 %
ю
водорода, 10 % углекислого газа при температуре 37 °С от 48 часов до 7 дней. С помощью комплекса морфологических, культуральных и биохимических признаков устанавливался вид выделенных бактерий. Биохимическая идентификация чистых культур анаэробных бактерий, стрептококков и грамотрицательных бактерий проводилась с помощью тест-систем фирмы API (Франция) и Roche (Германия).
Всего выделено, идентифицировано и проанализировано 240 штаммов, в том числе 203 штамма облигатно-анаэробных и микроаэрофильных бактерий (84,6%) и 37 штаммов (15,4%) аэробных и факультативно-анаэробных бактерий, в том числе 14 штаммов (5,8 %) дрожжеподобных грибов рода Candida.
Чувствительность клинических изолятов, выделенных у больных до начала антибактериальной терапии, проводилась традиционным способом дисков с использованием автоматического диспенсера производства Himedia (Великобритания-Индия).
Чувствительность к антибактериальным препаратам различных классов культур анаэробных и микроаэрофильных бактерий с определением минимальной подавляющей концентрации для 90 % штаммов (МПК90), выделенных из периодонтальных очагов, осуществлялась с помощью кассетного микрометода (Р.В.Ушаков, В.Н.Царёв, 1991), представляющего собой модификацию диффузионного способа определения чувствительности в плотной агаровой среде (5%-й кровяной гемин-агар).
Результаты клинических и лабораторных исследований обрабатывались методами вариационной статистики с определением средней величины и её ошибки, критерия Стьюдента для множественных сравнений и далее, используя программу «Excel» (MS Office), с учётом количества выборки, определялась вероятность различий Р. Статистически достоверными считались значения Р < 0,05.
Статистическая значимость изменения частоты обнаружения
вирулентных видов бактерий после лечения проводилась с использованием критерия Z оценки доверительных интервалов для разности долей с помощью компьютерной программы «Biostat» (McGraw Hill).
Результаты исследования чувствительности кассетным микрометодом штаммов анаэробных и микроаэрофильных бактерий, выделенных в исследованиях из одонтогенных очагов, к антибиотикам группы цефалоспоринов для перорального приёма представлены в табл. 2.
Таблица 2
Минимальная подавляющая концентрация (МПК90) антибактериальных препаратов группы пероральных цефалоспоринов для клинических штаммов анаэробных и микроаэрофильных бактерий, колонизирующих полость рта (мкг/мл)
Штаммы Препарат
Цефалексин Цефадроксил Цефаклор Цефтибутен
Aggregatibacter actinomycetemcomitans 16,0 16,0 16,0 4,0
Actinomyces israelii 1,0 1,0 1,0 0,06
Fusobacterium nucleatum 8.0 4,0 2,0 1,0
Streptococcus intermedius 16,0 16,0 8,0 2,0
Porphyromonas gingivalis 4,0 4,0 4,0 2,0
Prevotella intermedia 2,0 2,0 2,0 1,0
Peptostreptococcus micros 8,0 8,0 4,0 0,12
Очевидно, что МПК90 цефтибутена по сравнению с аналогами (цефалексин, цефадроксил, цефаклор) достоверно ниже в отношении всех исследуемых штаммов и составляла в исследованиях от 0,06 до 4,0 мкг/мл.
Аналогичная картина наблюдалась при исследовании штаммов факультативно-аэробных бактерий: Actinomyces naeslundii, Haemophylus spp., Enterococcus faecalis, Streptococcua sanguis, Enterobacter spp., Klebsiella pneumoniae.
МПК9о цефтибутена по сравнению с аналогами (цефалексин, цефадроксил, цефаклор) была в 2-10 раз ниже в отношении всех исследуемых штаммов и составляла от 0,06 до 2,0 мкг/мл.
По данным литературы (Newman М., Winkelhoff А., 2004) при использовании стандартной дозы цефалоспоринов их концентрация в сыворотке крови составляет 5-17 мкг/мл, то есть полностью перекрывает МПКэд для исследованных нами штаммов. Соответственно сомнительным можно считать бактерицидный эффект большинства препаратов в отношении Aggregatibacter actinomycetemcomitans, так как МПК90 составляет 16 мкг/мл. Аналогично можно это утверждать в отношении эффекта цефалексина и цефадроксила на Streptococcus intermedius. Что касается цефтибутена, то данный препарат выгодно отличался от аналогов, так как МПК90 была достоверно ниже концентрации в сыворотке крови - в 4 раза для Aggregatibacter actinomycetemcomitans, в 8 раз - для Streptococcus intermedius и Porphyromonas gingivalis, в 17-250 раз - для прочих видов.
Учитывая необходимость подбора оптимального препарата с «противоанаэробным» механизмом действия для местного применения, было проведено исследование данных штаммов с препаратами, наиболее часто применяемыми в стоматологической практике для этой цели: метронидазол, линкомицин, клиндамицин, доксициклин.
Следует обратить внимание на то, что по литературным данным (Newman М., Winkelhoff А., 2004; В.Н. Царёв, Р.В. Ушаков, 2004) из всех представленных препаратов только метронидазол создаёт довольно высокие концентрации в сыворотке крови — 14-15 мкг/мл, в то время как антибиотики - линкомицин и клиндамицин - до 2 мкг/мл, а доксициклин - до 3 мкг/мл.
Поэтому метронидазол высоко активен в отношении таких вирулентных анаэробных видов, как Porphyromonas gingivalis, Prevotella intermedia, Peptostreptococcus micros, которые не всегда эффективно подавляются антибиотиками. Недостатком метронидазола является отсутствие активности в отношении Aggregatibacter actinomycetemcomitans, Streptococcus intermedius,
Actinomyces spp., а также представителей аэробных видов - стрептококков, энтерококков, грамотрицательных кишечных бактерий, которые выделяются из одонтогенных очагов гораздо реже, чем анаэробные виды. Кроме того, известны литературные данные (В.Н.Царёв, Р.В.Ушаков, 2004) об отсутствии синергизма действия имидазолов с линкозамидами и тетрациклинами, но высокий синергизм действия на микроорганизмы с антибиотиками группы цефалоспоринов.
В связи с этим мы остановили свой выбор на метронидазоле как необходимом компоненте остеопластических материалов для местного применения при операциях на контаминированных и гнойных ранах. Метронидазол обладает высокой активностью в отношении ряда вирулентных облигатно-анаэробных бактерий - возбудителей гнойного воспаления и выраженным синергизмом с цефтибутеном - антибиотиком группы пролонгированных цефалоспоринов, который был выбран в качестве основного препарата для системной антибиотикопрофилактики и терапии в послеоперационном периоде.
Общее состояние у всех пациентов основной и контрольных групп на следующие сутки после операции было удовлетворительным. Лишь 11 пациентов отмечали общее недомогание.
У пациентов, имеющих «контаминированные» микроорганизмами операционные раны, при проведении клинического осмотра наблюдалась следующая картина. Пациенты предъявляли жалобы на боли в области послеоперационной раны - 11 человек (18,3%), 6 пациентов (14,3%), которым системная антибиотикопрофилактика не назначалась и 5 (15,2%), которые принимали антибиотики. Боли, как правило, не носили сильный характер и легко снимались приемом анальгетиков.
У пациентов 2-й группы (операции «грязные») послеоперационные боли отмечали 8 человек (36,4 %) без системной антибиотикопрофилактики и только 2 из 23 (8,7 %), которым проводилась комбинированная профилактика местных воспалительных осложнений.
При осмотре полости рта у 75 пациентов 1-й группы и 45 пациентов 2-й группы отмечено, что пациенты, которым проводился комплекс профилактических мероприятий с использованием антибиотиков, отмечали наличие отека слизистой оболочки в области операционной раны, как правило, по переходной складке, реже в подъязычной области. У ряда пациентов отмечалась гиперемия слизистой оболочки, что объясняется не столько развитием воспалительного процесса, сколько застойными явлениями в послеоперационной зоне, вызванными нарушением микроциркуляции, которая имеет место при операционной травме.
В целом раны были чистыми, состояние наложенных швов удовлетворительное.
Число пациентов, которые предъявляли жалобы на послеоперационные боли, уменьшилось. Однако у пациентов, которым не проводилась системная антибиотикопрофилактика, число таких пациентов снижалось менее активно (с 14 до 11 или с 22,6% до 13,0%), в то время как на фоне приема антибиотика цефтибутен - с 11 (19,6 %) до 2 (3,6%). Аналогичная картина наблюдалась и по уровням температуры тела. На фоне приема антибиотиков лишь у одного пациента после удаления 8-го зуба на фоне перекоронита было повышение температуры тела до 37,2 °С, то без антибиотиков у 8 пациентов сохранялась субфебрильная температура (было 16,1 % , через 3 суток -11,8%)
Важным, на наш взгляд, обстоятельством, характеризующим качество проведенной профилактики, является восстановление костной ткани в области послеоперационного дефекта.
К сожалению, нам удалось отследить только 64 пациента (53,3 %), так как другие не явились на контрольный осмотр по причинам отъезда, занятости, продолжения лечения в других лечебных учреждениях.
Как видно из представленной таблицы, число пациентов, у которых отсутствовал эффект от применения коллагенсодержащих остеотропных материалов, было незначительным - 6 человек, причем все они не получали
антибиотикопрофилактику системно, при этом 4 имели при первичном обращении признаки воспаления, а у 2 этих признаков не было.
Следует отметить, что заполнение дефекта костью не зависело от размеров костного дефекта после операции.
Как видно, Колапол и КоллапАн показали себя достаточно активными материалами. В исследуемых группах не наблюдались абсолютно отрицательные результаты и осложнения, связанные с отсутствием роста костной ткани или нагноением послеоперационной раны. При заполнении дефекта, образующегося во время цистэктомии, формирование самого максимального объема костной ткани «доступного» составило 10 случаев (58,8 %).
Аналогичные результаты получены и при операции резекции верхушки корня, так и при удалении третьих нижних моляров.
Хорошие количественные данные полученного «полезного» объема костной ткани можно объяснить тем, что создаются оптимальные, естественные условия, где Колапол и КоллапАн проявляют лучшие свои качества, способствуя формированию полноценной костной ткани.
При количественном исследовании степени обсеменённости раны до и в процессе лечения (рис. 1) отмечалась высокая степень обсеменённости микроаэрофильными стрептококками с выраженной альфа- и бета-гемолитической активностью (S. sanguis, S. milleri, S. intermedins), а также энтерококками, которую регистрировали в пределах 5,1 ±0,3 lgCFU. Обсеменённость менее агрессивными гамма-стрептококками и пептострептококками была существенно ниже (4,2±0,2 lgCFU; Р<0,05). На 2-3 сутки после операции уровень обсеменённости достоверно увеличивался, но был ниже критического числа (5,8+0,3 lgCFU), в том числе для таких опасных видов как Enterococcus faecaJis и Staphylococcus epidermidis (5,6+0,3 lgCFU) -см. рис. 2.
Рисунок 1. Обсемснснность материала грам(+)кокками (до).
Рисунок 2 Обсеменённость материала фам(+)кокками на 2-3 сут.
Ig КОЕ
lg КОЕ
□ Streptococcus ■ Enterococcus
□ Staphylococcus О Peptostrep
□ Streptococcus ■ Enterococcus О Staphylococcus □ Peptostrep
У пациентов второй подгруппы, которым применяли остеопластический материал с антибиотиком (метронидазолом), динамика «микробного пейзажа» существенно отличалась.
На 2-3 день после операции в материале из зоны швов резко увеличивалась частота выделения представителей всех рассматриваемых групп. Так, Streptocoocus sanguis выявляли в 100 % случаев, прочие виды анаэробных и микроаэрофильных стрептококков - от 41,6 до 87,5 %.
Существенно увеличилась частота выделения других видов резидентов полости рта - в 'А случаев выделяли Peptostreptococcus anaerobius и С or ine bacterium spp.
Представители пародонтопатогенных видов бактерий выявлялись с той же частотой, что и во время операции.
Из полученных данных также настораживает стабильная (почти без изменений) частота обнаружения Enterococcus faecalis (до 48,3 %), грибов Candida albicans (16,7%) и нарастание частоты выявления Staphylococcus epidermidis (до 50 %). Кроме того, неблагоприятной тенденцией следует считать возрастание частоты выявления грам-отрицательных анаэробов с высокой протеазной активностью Fusobacterium spp. (до 33 %) и находки
грам-отрицательных палочек из группы энтеробактерий - Enterobacter spp. Citrobacter spp. (8,3 %).
При количественном исследовании степени обсеменённости раны до и в процессе лечения отмечалась высокая степень обсеменённости микроаэрофильными стрептококками с выраженной альфа- и бета-гемолитической активностью (S. sanguis, S. milleri, S. intermedius), которую регистрировали в пределах 5,4+0,3 lgCFU, т.е. ниже критического числа. Обсеменённость менее агрессивными гамма-стрептококками и пепто-стрептококками была существенно ниже (4,2±0,2 lgCFU; Р<0,05).
Однако на 2-3 сутки после операции уровень обсеменённости принципиально отличался от таковой в подгруппе пациентов, которым проводили местное лечение остеопластическим материалом с метронидазолом. Отмечено статистически достоверное увеличение уровня обсеменённости как микроаэрофильными стрептококкам до критического числа (6,1+0,3 lgCFU), так и такими опасными видами, как Enterococcus faecalis и Staphylococcus epidermidis (6,2+0,3 lgCFU).
При применении антибиотиков в комплексном лечении гнойной раны наблюдалось существенное снижение частоты выявления как резидентной, так и пародонтопатогенной микробной флоры. Так, Streptocoocus sanguis выделялся в 3 раза реже (36 %), Streptococcus intermedius - в 10 раз реже (9,1%). Коринебактерии и актиномицеты выявлялись в 13,6% случаев, а основные пародонтопатогенные виды - Prevotella endodontis и Porphyromonas gingivalis - также в 5-6 раз реже.
Наиболее устойчивыми к антибактериальной терапии оказались Enterococcus faecalis (22,7 %) и, разумеется, Candida albicans выделяли в 27 % случаев.
Выявленные тенденции, которые свидетельствуют о высокой эффективности выбранной схемы лечения, были подтверждены проведённым анализом обсеменённости гнойной раны в послеоперационном периоде.
Степень обсеменённости представителями таких групп анаэробных микробов, как S. sanguis, Corinebacterium spp., Enterococcus faecalis Staphylococcus spp., была весьма значительной и составляла 5,8±0,3 CFU. От 4,5±0,3 CFU до 5,1±0,3 CFU составляла обсеменённость представителями пародонтопатогенных видов (табл. 3 ). На 2-3 день применения антибактериальных препаратов - цефтибутена перорально и метронидазола в составе остеопластического материала местно, обсеменённость снижалась ниже «критического числа», особенно у пародонтопатогенных видов.
Таблица 3
Частота выделения микробной флоры из воспалительных очагов у пациентов с операциями на «грязных» ранах при комбинированном применении антибиотиков - системно и местно в составе остеопластического материала (п=22)
Вид микроба Во время операции На 2-3 день после операции
Число больных Индекс частоты, % Число больных Индекс частоты, %
1. Streptocoocus sanguis 22 100,0 8 36,4
2. Streptococcus intermedius 20 90,9 2 9,1
4. Streptococcus milleri 13 59,1 0 0,0
S.Peptostreptococcus spp. 12 54,5 0 0,0
6. Corinebacterium spp. 12 54,5 3 13,6
7. Propionibacterium spp. 13 59,1 0 0,0
8. Actinomyces spp. 15 68,2 3 13,6
9. Veillonella spp. 12 54,5 0 0,0
10. Prevotella oralis б 27,3 2 9Д
11. Prevotella endodontis 12 54,5 2 9,1
12.Porphyromonas gingivalis 13 59,1 3 13,6
12. Fusobacterium spp. 15 68,2 2 9,1
13. Enterobacter spp. 5 22,7 0 0,0
14. Citrobacter spp. 3 13,6 0 0,0
15. Enterococcus faecalis 17 77,3 5 22,7
15. Staphylococcus aureus 3 13,6 0 0,0
16. Staphylococcus epidermidis 6 27,3 2 9,1
16. Candida albicans 5 22,7 6 27,3
У пациентов второй подгруппы, которые получали антибактериальное лечение только местно в составе остеопластического материала, процессы эрадикации микробной флоры происходили не столь успешно, после оперативного вмешательства.
Количественное исследование обсеменённости показало, что все перечисленные виды, также как и в предыдущей группе, обнаруживались в значительных количествах как при вскрытии гнойного очага во время операции, так и после наложения швов (значения колебались от 6,5 до 6,1 ^ СБи), то есть стабилизировались в пределах критического числа, что обусловливало высокий риск прогрессирования воспалительного процесса и неудачной регенерации тканей.
Таким образом, Цефтибутен обладает выраженным антимикробным действием в отношении микрофлоры, принимающей участие в инфицировании костных ран челюстных костей, в том числе видов, продуцирующих коллагеназу. Эффективность данного антимикробного препарата, выше, чем у других антибиотиков цефалоспоринового ряда. Цефтибутен эффективен в отношении микрофлоры послеоперационной раны ин витро и ин виво.
ВЫВОДЫ
1. При костно-пластических операциях на инфицированной ране (при операциях резекция верхушки корня, цистэктомия (особенно после нагноения кисты), удалении зубов по поводу обострения периодонтита или при затрудненном прорезывании, перикороните и пр.) выделяется смешанная
микрофлора с преобладанием вирулентных видов микробной флоры, колонизирующих полость рта, в частности, пародонтопатогеной группы.
2. Использование биокомпозитных материалов на основе коллагенов и гидроксиаппатита кальция (Колапол, КоллапАн) без антибитиотика, даже при назначении системной профилактики с применением цефтибутена, снижает уровень бактериальной обсемененности костной раны, однако не приводит к полной санации костного дефекта.
3. Комбинация местного применения коллагенсодержащих биокомпозитных материлов (Колапол, КоллапАн) с метронидазолом и назначением цефтибутена системно приводит к активному снижению микробной обсемененности инфицированной костной раны ниже критического уровня, позволяет избежать местных воспалительных осложнений и сохраниться костнопластическому коллагенсодержащиму материалу в костном дефекте.
4. Применение активной хирургический тактики, комбинация костнопластических материалов, содержащих линкомицин, и назначение антимикробных препаратов (цефтибутен) системно в до и послеоперационный период позволяет проводить хирургические вмешательства с костной пластикой даже в инфицированной костной ране.
5. Проведение активных хирургических вмешательств на инфицированной костной ране с использованием костнопластических материалов, не содержащих антибиотиков, возможно на фоне системной антимикробной терапии с целенаправленным воздействием на микроорганизмы, вырабатывающие коллагенозу или блокирующие ее, в частности препарат пролонгированного действия цефтибутен.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. При проведении хирургических стоматологических вмешательств при обострении хронического воспалительного процесса в периодонте или нагноении радикулярной кисты, удалении зубов при обострении
периодонтита или перекоронита следует использовать до- и послеоперационную антибиотикопрофилактику с применением цефтибутена.
2. Для системной антибиотикопрофилактики антибиотик цефтибутен рекомендуется назначать за 60 минут до операции и в течение 4 дней после операции (дозировка - по 0,4 г 1 раз в сутки независимо от приёма пищи).
3. Для комбинированной антибиотикопрофилактики при инфицированных («грязных») ранах предлагается системное использование антибиотика цефтибутен и местного остеопластического материала с антибактериальным компонентом (колапАн или колапол с метронидазолом), что позволяет проводить активную хирургическую тактику.
Печатные работы, опубликованные по теме диссертации
1. Царёв В.Н., Ушаков Р.В., Николаева E.H., Староверова А.О., ЯхьяевМ.И. Выявление маркеров пародонтопатогенных бактерий у пациентов с заболеваниями сердечно-сосудистой системы // Стоматолог. - 2008. - № 3. -С. 14-18.
2. Митронин A.B., Царёв В.Н., Ясникова Е.Я., Черджиева Д.А., Яхьяев М.И. Особенности тактики консервативного лечения пациентов острым апикальным периодонтитом // Стоматолог. - 2009. - № 4. - С. 6-10.
3. Яхьяев М.И., СофиомаровШ. Тактика антибиотикопрофилактики воспалительных осложнений при амбулаторных хирургических вмешательствах челюстно-лицевой области // DentalForum. - 2009. — № 2. - С. 16-22.
4. Яхьяев М.И., Ушаков Р.В., Царёв В.Н., Павлов С.А. Особенности клинико-лабораторной диагностики и антибактериальной профилактики воспалительных заболеваний головы и шеи в амбулаторной стоматологической практике // Российская стоматология. - 2009. - № 6. -С. 64-71.
Отпечатано в РИО МГМСУ 127473, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20, стр. 1. Заказ № 427. Тираж 100 экз.
Оглавление диссертации Яхьяев, Михаил Исакович :: 2011 :: Москва
ВВЕДЕНИЕ.
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Роль микрофлоры полости рта в развитии инфекционных осложнений при операциях в полости рта.
1.2. Место антибиотиков в профилактике инфекционно-воспалительных осложнений в хирургической стоматологии.
1.3. Дефекты челюстных костей и коллагенсодержащие материалы для их замещения.
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Характеристика обследованных пациентов и методы клинического обследования.
2.2. Микробиологическое исследование.
2.3. Определение чувствительности анаэробных бактериальных культур к антибиотикам.
2.4. Определение минимальной подавляющей концентрации (МПК) исследуемых антибактериальных препаратов.
2.5. Характеристика используемых препаратов и схемы антибиотикопрофилактики.
2.6. Методы статистической обработки результатов исследования.
ГЛАВА 3. КЛИНИКО-ЛАБОРАТОРНОЕ ОБОСНОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ
КОМБИНИРОВАННОЙ АНТИБИОТИКОПРОФИЛАКТИКИ
МЕСТНЫХ ИНФЕКЦИОННО-ВОСПАЛИТЕЛБНЫХ
ОСЛОЖНЕНИЙ
3.1. Результаты исследования чувствительности выделенных штаммов возбудителей к цефалоспоринам и антибактериальным препаратам других групп.
3.2. Сравнительная оценка динамики клинических показателей при использовании комбинированной антибиотикопрофилактики в различных хирургических стоматологических вмешательствах.
3.3. Состав микрофлоры первично контаминированных и инфицированных послеоперационных ран и ее изменения при проведении периоперационной антибиотикопрофилактики.
Введение диссертации по теме "Стоматология", Яхьяев, Михаил Исакович, автореферат
Актуальность проблемы
Вопрос о проведении антибактериальной профилактики при амбулаторных хирургических операциях в настоящее время является весьма дискутабельным. При проведении операций в условиях так называемых «инфицированных» ран, к которым относится цистэктомия, резекция верхушки корня, гранулемэктомия, проводимая во время обострения процесса, антибиотики, как правило, назначаются системно в послеоперационный период (Т.Г.Робустова с соавт, 1998, 2006; Р.В.Ушаков, В.Н.Царев, 2005 и др.). Кроме этого, для профилактики инфекционно-воспалительных осложнений возможно использование антимикробных препаратов местно - в составе комплексных препаратов или остеотропных средств (например, Колапол, Коллапан с антибиотиками).
Состав микрофлоры при хроническом периодонтите изучен достаточно подробно (А.В.Митронин, 2003-2006). Вместе с тем спектр микроорганизмов при воспалительных осложнениях (например, нагноении радикулярной кисты) до конца не определен, что затрудняет выбор антимикробного препарата для профилактики послеоперационных осложнений и лечения обострения процесса.
В последние годы существенно изменился спектр чувствительности к антибиотикам анаэробных бактерий, вызывающих инфекционно-воспали-тельные заболевания челюстно-лицевой области (В.Н.Царев, Р.В.Ушаков, 2004). Широкое распространение получила устойчивость к наиболее часто применяемым в стоматологической практике препаратам имидазольного ряда (метронидазолу, нитазолу, орнидазолу, тинидазолу), причём как среди грамположительных неспорообразующих палочек (актиномицеты, пропиони-бактерии, коринебактерии), так и анаэробных кокков. Обычным явлением стала устойчивость анаэробных штаммов бактерий к линкомицину и клиндамицину. Среди штаммов пародонтопатогенных анаэробных бактерий, циркулирующих в России {Prevotella intermedia, Porphyromonas gingivalis, Aggregatibacter actinomycetemcomitans), выявлены гены резистентности к тетрациклинам и макролидам (эритромицину) с частотой 56,8 и 11,8% соответственно. Другой проблемой является способность многих антибиотиков замедлять процессы регенерации костной ткани, что ограничивает их местное применение.
В стоматологии получили широкое распространение биокомпозитные остеопластические препараты на основе коллагена, в частности Колапол и Коллапан. Вместе с тем при их использовании часто наблюдается неудовлетворительное формирование костной ткани. Отсутствие или снижение эффекта регенерации при проведении костнопластических операций, особенно с использованием материалов, содержащих коллаген, может быть обусловлено присутствием в зоне операции пародонтопатогенных микроорганизмов, которые активно выделяют метталлопротеиназы, в частности коллагенозу.
Таким образом, определение видов микроорганизмов контамини-рованных и инфицированных ран челюстных костей, их чувствительность к антимикробным препаратам и определение путей профилактики распространения инфекции является актуальным.
Цель работы
Разработать тактику комбинированной антибиотикопрофилактики местных инфекционно-воспалительных осложнений после операций на альвеолярном отростке (альвеолярной части) челюсти в условиях первичной микробной контаминации и инфицирования.
Задачи исследования
1. Изучить структуру микрофлоры контаминированных и инфицированных («грязных») операционных ран альвеолярных отростков (частей) челюсти.
2. Провести сравнительное изучение влияния антибиотиков цефалоспо-ринового ряда на возможных возбудителей инфекционно-воспалительных осложнений при хирургических стоматологических вмешательствах, в том числе виды, способные вырабатывать ферменты, разрушающие коллаген.
3. Определить тактику применения коллагенсодержащих остеотропных материалов, модифицированных антибиотиками в лечении инфицированных костных ран альвеолярного отростка, в сочетании с системным назначением цефалоспориновых антибитиоков с учетом синергизма и антагонизма препаратов.
4. Изучить возможность проведения активных хирургических вмешательств на инфицированной костной ране на фоне комбинированной антибиотикопрофилактики.
Научная новизна
Впервые изучено влияние пролонгированного цефалоспоринового препарата цефтибутена на анаэробную микрофлору полости рта и послеоперационной раны (условно-чистой, контаминированной и «грязной») при разных амбулаторных стоматологических вмешательствах и определены перспективы его применения в стоматологической практике.
Дано клинико-лабораторное обоснование применения цефадроксила в сочетании с коллагенсодержашими костнопластическими материалами, содержащими метронидазол в хирургической стоматологической практике.
Практическая значимость
Предложена схема периоперационной профилактики местных инфекционно-воспалительных осложнений при использовании для костнопластических целей коллагенсодержащих препаратов в сочетании с системной антибиотикопрофилактикой.
Для системной антибиотикопрофилактики при стоматологических хирургических вмешательствах предложено использовать новый пролонгированный цефалоспориновый препарат Цефтибутен.
Основные положения, выносимые на защиту
1. Цефтибутен обладает выраженным антимикробным действием в отношении микрофлоры, принимающей участие в инфицировании костных ран челюстных костей, в том числе видов, продуцирующих коллагеназу. Эффективность данного антимикробного препарата, выше, чем у других антибиотиков цефалоспоринового ряда.
2. Цефтибутен эффективен в отношении микрофлоры послеоперационной раны in vitro и in vivo.
3. Для профилактики местных инфекционно-воспалительных послеоперационных осложнений после сложного удаления зубов, удаления зубов при обострении периодонтита, операций цистэктомии, резекции верхушки корня целесообразно использовать антибиотикопрофилактику с применением пролонгированной формы цефалоспорина Цефтибутен в комбинации с местным применением коллагенсодержащих биокомпозиционных материалов Колапол и Коллапан, содержащих метронидазол.
Внедрение результатов исследования
Полученные результаты клинических и микробиологических методов исследования используются в лечебном процессе стоматологической клиники ООО «Сильвия» (г. Москва).
Апробация работы
Основные положения работы доложены на научно-практической конференции Научно-исследовательского медико-стоматологического института (НИМСИ при МГМСУ, 2007, 2008), на совместном заседании кафедр: стоматологии РМАПО, ортопедической и общей стоматологии РМАПО, микробиологии, иммунологии и вирусологии МГМСУ (протокол № 6 от 22 июня 2009 г.); совместном заседании кафедры госпитальной терапевтической стоматологии, пародонтологии и гериатрической стоматологии; кафедры микробиологии, вирусологии, иммунологии ГОУ ВПО МГМСУ; лаборатории молекулярно-биологических исследований НИМСИ ГОУ ВПО МГМСУ; кафедры стоматологии ГОУ ДПО РМАПО (протокол № 10 от 25 июня 2009 г.).
Публикации
По материалам исследования опубликовано 3 печатные работы, в том числе 2 - в журналах, рекомендованных ВАК Минобрнауки РФ.
Личное участие автора
Автор проводил обследование и лечение пациентов, ассистировал на операциях и проводил их самостоятельно, проводил забор материала для лабораторных исследований, производил 3/4 лабораторных исследований, систематизацию и статистическую обработку полученных данных, лично готовил научные работы по теме диссертации.
Объем и структура диссертации
Заключение диссертационного исследования на тему "Комбинированная антибиотикопрофилактика местных инфекционно-воспалительных осложнений при операциях на альвеолярном отростке (части) челюсти"
ВЫВОДЫ
1. При костно-пластических операциях на инфицированной ране (при операциях резекция верхушки корня, цистэктомии (особенно после нагноения кисты), удалении зубов по поводу обострения периодонтита или при затрудненном прорезывании, перикороните и пр.) выделяется смешанная микрофлора с преобладанием вирулентных видов микробной флоры, колонизирующих полость рта, в частности, пародонтопатогеной группы.
2. Использование биокомпозитных материалов на основе коллагенов и гидроксиаппатита кальция (Колапол, Коллапан) без антибитиотика, даже при назначении системной профилактики с применением цефтибутена, снижает уровень бактериальной обсемененности костной раны, однако не приводит к полной санации костного дефекта.
3. Комбинация местного применения коллагенсодержащих биокомпозитных материлов (Колапол, Коллапан) с метронидазолом и назначением цефтибутена системно приводит к активному снижению микробной обсемененности инфицированной костной раны ниже критического уровня, позволяет избежать местных воспалительных осложнений и сохраниться костнопластическому коллагенсодержащиму материалу в костном дефекте.
4. Применение активной хирургический тактики, комбинация костнопластических материалов, содержащих линкомицин, и назначение антимикробных препаратов (цефтибутен) системно в до и послеоперационный период позволяют проводить хирургические вмешательства с костной пластикой даже в инфицированной костной ране.
5. Проведение активных хирургических вмешательств на инфицированной костной ране с использованием костнопластических материалов, не содержащих антибиотиков, возможно на фоне системной антимикробной терапии с целенаправленным воздействием на микроорганизмы, вырабатывающие коллагенозу или блокирующие ее, в частности препарата пролонгированного действия цефтибутен.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. При проведении хирургических стоматологических вмешательств при обострении хронического воспалительного процесса в периодонте или нагноении радикулярной кисты, удалении зубов при обострении периодонтита или перекоронита следует использовать до- и послеоперационную антибиотикопрофилактику с применением цефтибутена.
2. Для системной антибиотикопрофилактики антибиотик цефтибутен рекомендуется назначать за 60 минут до операции и в течение 4 дней после операции (дозировка — по 0,4 г 1 раз в сутки независимо от приёма пищи).
3. Для комбинированной антибиотикопрофилактики при инфицированных («грязных») ранах предлагается системное использование антибиотика цефтибутен и местного остеопластического материала с антибактериальным компонентом (Коллапан или Колапол с метронида-золом), что позволяет проводить активную хирургическую тактику.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2011 года, Яхьяев, Михаил Исакович
1. Абу Бакер Кифах Фахти. Применение биорезорбируемой мембраны «Пародонкол» для оптимизации заживления дефекта челюсти после цистэктомии : дис. . канд. мед. наук. - М., 2000. — 127 с.
2. Авазматова JI.K. Клинико-морфологическая характеристика одонто-генных кист челюстей у детей : дис. . канд. мед. наук. М., 1971. - С. 294.
3. Акылбеков Д. И. Профилактика инфекционных осложнений внутри-костной имплантации с применением отечественного антисептического препарата «Амидент» : дис. . канд. мед. наук. М., 2004. - 103 с.
4. Андрусон М.В. Клиника и патоморфология околокорневых кист челюстей : дис. . канд. мед. наук-Харьков, 1955. С. 344.
5. Андрусон М.В. Клинико-морфологическое исследование околокорневых кист челюстей // Стоматология. — 1959. — № 3. — С. 44-46.
6. Аносов В. Лазерное препарирование твердых тканей зубов : обзор // Стоматолог. 2006. - №9. - С. 68-70.
7. Антибактериальная терапия. Практическое руководство / под ред. Л.С.Страчунского, Ю.Б.Белоусова, С.Н.Козлова. М. : Фармединфо, 2000.
8. Аснина С.А., Агапов B.C., Панасюк А.Ф. Хирургическое лечение радикулярных кист челюстных костей с использованием биокомпозиционного материала «Остеоматрикс» // Институт стоматологии. 2004. - № 2. - С. 43-44.
9. Бадалян В.А. Хирургическое лечение периапекальных деструктивных изменений с использованием остеопластического материала на основе гидроксиапатита : дис. . канд. мед. наук. М., 2003. - С. 211.
10. Бах Г. Применение лазерных систем в эндодонтии // Стоматолог. -2006. -№ 12.-С. 24-27.
11. Беклемишев Н.Д. Иммунология и иммунорегуляция (при инфекциях, инвазиях и аллергиях). М. : Медицина, 1986. — 256 с.
12. Белоусов Ю.Б., Шатунов С.М. Антибактериальная химиотерапия. -М. :Р-ВРАЧ.-2001.
13. Вернадский Ю.И. Основы челюстно-лицевой хирургии и хирургической стоматологии. — М. : Медицинская литература, 2007. — 416 с.
14. Бойматов М.Б. Применение биокомпозиционного материала на основе гидроксиапатита при хирургическом лечении костных полостей челюстей : дис. . канд. мед. наук. -М., 1995. —174 с.
15. Большая Российская энциклопедия лекарственных средств. Т. I. — М. : Ремедиум, 2001.
16. Большая Российская энциклопедия лекарственных средств. Т. 11. М. : Ремедиум, 2001.
17. Ботбаев Б.Д. Хирургическое лечение больных с кистами челюстей с использованием биогенных пластических материалов на основе брефокостии гидроксилапатита : клинико-эксперим. исслед. : дис. . канд. мед. наук.
18. Галецкий Д.В. Оценка эффективности различных методов хирургического лечения одонтогенных кист челюстей : дис. . канд. мед. наук. Спб., 2003. - С. 206.
19. Григорьянц Л.А., Рабухина H.A., Бадалян В.А. Применение остеопластических материалов при хирургическом лечении больных с радикулярными кистами, прорастающими в в/ч синус и полость носа // Клиническая стоматология. 1998. - № 3. - С. 36-38.
20. Губайдуллина Ж.Я., Цегельник JI.H. Опухоли и опухолеподобные поражения и кисты лица, органов полости рта, челюстей и шеи / под ред. Т.Г.Робустовой // Хирургическая стоматология. М., 1990. — С. 462-468.
21. Губайдуллина Ж.Я., Цегельник JI.H., Лузина В.В., Топленинова Д.Ю. Опыт лечения больных с обширными кистами челюстей // Стоматология. 2007. - № 1. - С. 84-86.
22. Джафар А. Новые технологии в стоматологии // Стоматология сегодня. -2005.-№7.-С. 44.
23. Дьердь С. Хирургия полости рта и челюстно-лицевой области. Кисты челюстно-лицевой области. — Киев : Книга плюс, 2005. — С. 75-90.
24. Ермолаев И.И. Одонтогенные опухоли и опухолеподобные образования : дис. . д-ра мед. наук. М., 1994.
25. Ефимов Ю.В. Хирургическое лечение кист челюстей с математическим моделированием действительных размеров остаточной костной полости : автореф. дис. . канд. мед. наук. М., 1994. - С. 20.
26. Завадский Р. В. Профилактика воспалительнрых осложнений операций на альвеолярном отростке : дис. . канд. мед. наук. М., 2002. - 118 с.
27. Зуев В.П., Безруков В.М., Панкратов A.C., Григорьянц JI.A. Оперативное лечение кист челюстей с использованием гидроксиапатита ультравысокой дисперстности // Стоматология. -1998.-№4.-С. 23-27.
28. Иванов С.Ю., Ушаков А.И., Панин A.M., Ломакин М.В., Гончаров И.Ю. Пластиночные системы стоматологических имплантатов : методическое пособие. М. : ММСИ, 1997. - 38 с.
29. Иванов С.Ю., Царев В.Н., Чувилкин В.И., АкылбековД.И. Препрат «Амидент»: эффективность при профилактике воспалительных осложнений при дентальной имплантации // Сб. ст. всероссийской научно-практической конференции стоматологов. Уфа, 2002. -С.146-148
30. Иорданишвили А.К. Заболевания, повреждения и опухоли челюстно-лицевой области (Кисты челюстно-лицевой области и шеи). СПб. : СПЕЦЛИТ, 2007. - С. 97-111.
31. Иорданишвили А.К., Ковалевский A.M., Гололобов В.Г. Современные оптимизаторы репаративного остеогенеза // В сб.: Новые технологии в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии. Ривьера. — Спб., 1996. -С. 28-29.
32. Калайдов А.Ф. О современных тенденциях развития метода направленной регенерации // Стоматология. 1997. - № 3. - С. 5.
33. Колкер И.И., Вишневская С. М., Зиновева Т. Д. Микробиология ран : Раны и раневая инфекция / под ред. М. И. Кузина и Б. М. Костюченок. -2-е изд. -М. : Медицина, 1990. С. 149-168.
34. Конев Д. Киста, «флюс», абсцесс и флегмона // Медицинский бизнес. -2005.-№ 1.-С. 20-21.
35. Кулаков A.A., Рабухина H.A., Адонина О.В. Диагностические возможности компьютерной томографии в изучении одонтогенных кист, проросших в полость верхнечелюстных пазух // Стоматология. -2005. -№ 1.-С. 36-40.
36. Левкович А.Н. Хирургическое лечение околокорневых кист и хронического периодонтита с сохранением анатомической формы и функции зуба : автореф. дис. канд. мед. наук. — Киев, 1990. С. 22.
37. Лошкарев В.П., Баученкова Е.В. Современные методы лечения радикулярных кист с использованием биопланта в условиях областной стоматологической поликлиники // Стоматология. — 1998. — № 5. — Т. 77. С. 38-40.
38. Маянский А.Н., Пазюк Е.А., Маянская И.В. Резервы фагоцитоза у больных инфекционно-аллергическими заболеваниями // Иммунодефицита и аллергия. Всес. симп. Тез. М., 1986. - С. 261-262.
39. Мигунов Б.И. Патологическая анатомия заболеваний зубочелюстной системы и полости рта. М., 1963.
40. Миронюк В.А. Клиническая и рентгенологическая диагностика одонто-генных кист челюстей : автореф. дис. . канд. мед. наук. Одесса, 1965.-С. 19.
41. Мирсаева Ф.З. Хирургическое лечение одонтогенных кист с применением трансплантатов // Новое в стоматологии. — 1999. — № 1. — С. 21-34.
42. Неупокоев Н.И., Неупокоева Н.В. Околокорневая киста зубов верхней челюсти как причина одонтогенного гайморита // Стоматология. — 1991.-№3.-Т. 70.-С. 62-63.
43. Никитин A.A., Заусова О.В., Титова Н.В. Использование биокомпозиционного материала на основе ситалла при хирургическом лечении кист челюстей // Стоматология. 2007. — № 1. - С. 84-86.
44. Никитин A.A., Титова Н.В., Карачунский Г.М. Хирургическое лечение образований челюстей у детей с использованием биокомпозиционных материалов // Стоматология. 2005. - № 2. - Т. 84 - С. 40-43.
45. Новикова Л.А. Сравнительная оценка плацентарной ткани человека у больных с околокорневыми кистами челюстей : дис. . канд. мед. наук. Уфа, 1990. - 194 с.
46. Овруцкий Г.Д., Лившиц Ю.Н., Лукиных Л.М. Неоперативное лечение околокорневых кист челюстей. М. : Медицина, 1999. — С. 119.
47. Околот Т.Ф. Хирургическое лечение околокорневых кист и кистогранулем с сохранением зубов : клинико-эксперим. исслед. : дис. . канд. мед. наук. Минск, 1968. - С. 229.
48. Очиров Е. А. Профилактика воспалительных сложнений дентальной имплантации с применением хлоргексидинсодержащих препаратов : дис. . канд. мед. наук. М., -2004, -114 с.
49. Панин A.M. Новое поколение биокомпозиционных остеопластических материалов (разработка, лабораторно-клиническое обоснование, клиническое внедрение) : автореф. дис. . д-ра. мед. наук. М, 2004. -С. 24.
50. Парунова С.Н. Влияние микрофлоры полости рта на регенерацию тканей пародонта у больных сахарным диабетом : автореф. дис. канд. мед. наук. М., 2004. - С. 27.
51. Петров Р.В. Регуляция функций иммунной системы // Архив патологии. 1983. - № 4. - Т. 45. - С. 3-11.
52. Петров Р.В., Лопухин Ю.М., Чередеев А.Н. Оценка иммунного статуса человека // Методич. рекомендации МЗ СССР. М., 1984. - С. 31.
53. Петрова А.И. Состояние местного иммунитета полости рта у больных генерализованным пародонтитом и его коррекция лецетиновыми препаратами с биоантиоксидантами // «Вестник стоматологии». 2001. - № 4. — С. 28-33.
54. Рабухина H.A., Аржанцев А.П. Стоматология и челюстно-лицевая хирургия // Атлас рентгенограмм. МИА, 2002. — С. 4-33.
55. Рабухина H.A., Грудянов А.И., Ерохин А.И. с соавт. Новые подходы к рентгенологическому исследованию при воспалительных заболеваниях пародонта // Пародонтология. — 2002. № 3 (24). - С. 8-14.
56. Робустова Т.Г. (ред.) Хирургическая стоматология. / 2-е изд. М. : Медицина, 2000. - С. 688.
57. Робустова Т.Г., Лебедев К.А. и др. Иммунный статус в полости рта (методические рекомендации). М., 1990, - 28 с.
58. Рыбаков П.А. Хирургическое лечение больных с периапекальными очагами деструкции челюстей с использованием аллоимплантатов антимикробного действия : автореф. дис. . д-ра мед. наук. М., 2006.- 19 с.
59. Самсыгина Г.А. Макролиды и фагоцитоз // Антибиотики и химиотерапия. 1999. - № 2, С. 33-36.
60. Серебрийский И.Я., Антонова М.А. Фагоцитарный индекс в клинике и профилактике дизентерии // ЖМЭИ. 1950. - № 4. - С. 43-44.
61. Смиренская Т.Ф., Агапов B.C. Дифференциальная диагностика одонтогенных кист и доброкачественных опухолей верхней челюсти // Стоматология. 1981. - № 5. - Т. 60. - С. 53-55.
62. Солнцев A.M., Тимофеев A.A. Одонтогенные воспалительные заболевания. — Киев : Здоровье, 1989. С. 232.
63. Соловьев М., Семенов Г., Галецкий Д. Оперативное лечение одонтогенных кист // Стоматолог. 2005. - № 3. - С. 23-29.е.
64. Соловьев М.М., Семенов Г.М., Галецкий Д.В. Оперативное лечение одонтогенных кист. Механизм роста одонтогенных кист. Классификация одонтогенных кист. Клиническая картина. Диагностика. Осложнения одонтогенных кист. СПб. : Спец. лит., 2004. - С. 7-22.
65. Страчунский JI.C., Козлов P.C. Антибиотикопрофилактика в хирургии: взгляд клинического фармаколога. // Рациональные подходы к профилактике инфекционных осложнений в хирургии : методические рекомендации. Москва, 1997.-С. 12-21.
66. Страчунский JI.C., Козлов P.C. Антибиотикопрофилактика в хирургии: взгляд клинического фармаколога. // Рациональные подходы к профилактике инфекционных осложнений в хирургии : методические рекомендации. Москва, 1997. - С. 23-24.
67. Тазин И.Д., Байдина Т.Ф., Итин В.И., Гюнтер В.Э. Эндооссальная имплантация в клинике дентальной имплантологии г. Томска. // Казанский вестник стоматологии. — 1996. — № 2. — С. 136.I
68. Трунин Д.А. Новые методы хирургического лечения одонтогенных кист челюстей с использованием деминирализованного костного брефоматрикса : автореф. дис. . канд. мед. наук. Самара, 1992. - 19 с.
69. Ушаков Р.В., Царев В.Н. Этиология и этиотропная терапия неспецифических инфекций в стоматологии. Иркутск, 1997. - 116 с.
70. Ушаков Р.В., Царёв В.Н., Абакарова Д.С.,Чухаджян Г.А. Применение адгезивных двухслойных стоматологических плёнок «Диплен-Дента» в стоматологии. — М., 2002. — 25 с.
71. Ушаков Р.В., Царев В.Н., Завадский Р.В. Профилактика послеоперационных осложнений в хирургической стоматологии методом подслизистой : сборник научных трудов международной конференции «Копейкинский байкальские чтения» 28-29 июня. —2001.1. С.179-180.
72. Ушаков Р.В., Царев В.Н., Лопырев В.А. и др. Антибактериальная активность антисептиков, применяемых в стоматологии // Журнал инфекционной патологии. 1996. - № 2. - С. 23-25.
73. Ушаков Р.В., Царев В.Н., Сердюк E.H., Ласточкин A.A. Профилактика инфекционно-воспалительных осложнений в хирургической стоматологии : учебное пособие. М., 2003. - 40 с.
74. Ушаков Р.В., Царев В.Н. Микрофлора полости рта и ее значение в развитии стоматологических заболеваний // Стоматология для всех. — 1998.-№3.-С. 22-24.
75. Ушаков Р.В., Царев В.Н. Местное антимикробное лечение в стоматологии. М. : Медиапресс, — 2003. — 138 с.
76. Холенков Д. Диодная лазерная система Sirolaser компактность и эффективность // Медицинский бизнес. - 2007. - № 1. — С. 8-11.
77. Царев В.Н., Давыдова М.М. Микробиология полости рта // Учебное пособие. М. : УМО МЗ РФ, 2006. - 45 с.
78. Царев В.Н., Тарасенко И.В., Лазарихина Н.М. Применение лазерных технологий в пародонтологии // Материалы конференции XI Международной конференции челюстно-лицевых хирургов и стоматологов. Спб., 2006. - С. 189.
79. Царев В.Н., Ушаков Р.В., Давыдова М.М. Лекции по клинической микробиологии для студентов стоматологических факультетов. -Иркутск, 1996. 82 с.
80. Царев В.Н., Ушаков Р.В., Ласточкин A.A. Принципы профилактики инфекционно-воспалительных осложнений в стоматологической практике. // 5-я конференция «Современные проблемы антимикробной химиотерапии». Москва. 2003 г. - С.54-55.
81. Царёв В.Н., Ушаков Р.В., Плахтий Л.Я., Чухаджян Г.А. Применение адгезивных плёнок «Диплен-Дента» в комплексном лечении пародонтита. -М., 2002. 88 с.
82. Царёв В.Н., Чувилкин В.И., Мегрелишвили H.A.,Романов А.Е. Особенности влияния хлоргексидин-содержащих препаратов на состояние микробиоценоза полости рта у больных пародонтитом. — 2003.-№ 2 (27).-С. 49-53.
83. Царёв В.Н., Чувилкин В.И., Плахтий Л.Я., Филатова Н. Применение макролидных антибиотиков нового поколения в стоматологической практике. М., - 2002. - 31 с.
84. Царёв В.Н., Иванов С.Ю., Чувилкин В.И, Акылбеков Д.И. Результаты изучения влияния различных лекарственных форм хлоргексидина на клеточный фактор воспаления in vitro // Тр. Российск. нац. конгр. «Человек и лекарство». М., 2002. - С. 718.
85. Шварцман Я.С., Хазенсон Л.Б. Местный иммунитет. Л., 1978. -С. 63-102.
86. Шишкова H.A. Влияние биокомпозиционных материалов на регенерацию костной ткани при заполнении дефектов челюстных костей после удаления радикулярных кист челюстей : дис. . канд. мед. наук. М, 2005. - С. 149.
87. Шишкова Н.В., Аснина С.А., Агапов B.C., Шишканов A.B. Оптимизация хирургического лечения радикулярных кист верхней челюсти больших размеров // Всерос. конф. «Профилактика основных стоматологических заболеваний» ЦНИИС. М., 2002. - С. 150-151.
88. Штраубе Г.И. Эффективность использования различных групп биогенных композиционных материалов при хирургическом лечении околокорневых кист челюстей. Роль эндодонтической подготовки зубов к операции // Стоматолог. — 2006. — № 11. — С. 56-58.
89. Энциклопедия лекарств. Регистр лекарственных средств России (РЛС). -2003. С. 17-24.
90. Энциклопедия лекарств. Регистр лекарственных средств России (PJIC). -2004. С.110-111.
91. Яковлев В.П. Клиническая фармакология новых фторхинолонов : сб. «Антибиотики» Вып. 1. М., 1997. - С. 78-86.
92. Яковлев С.В. Значение новых фторхинолонов при внебольничных инфекциях дыхательных путей // Инфекции и антимикробная терапия. 2001. - Т. 3. - № 4. С. 12-14.
93. Abrahams J J., Oliverio P.J. Odontogenic cysts: improved imaging with a dental CT software program // Am. J. Neuroradiol. 1993. - Vol. 14, № 2. -P. 367-374.
94. Adeyemo W.L., Ladeinde A.L., Ogunlewe M.O. Influence of trans-operative complications on socket healing following dental extractions. J. Contemp Dent Pract. 2007, Jan 1; 8 (1). - P. 52-9.
95. Adeyemo W.L., Ladeinde A.L., Ogunlewe M.O. Clinical evaluation of postextraction site wound healing. J Contemp Dent Pract. 2006 Jul 1; 7(3). -P. 40-9.
96. Almendros-Marques N., Berini-Aytes L., Gay-Escoda C. Influence of lower third molar position on the incidence of preoperative complications. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 2006 Dec; 102(6). P. 72532. - Epub 2006 Jul 14.
97. Appelbaum P.C. , Gillespie S.H., Burley C.J., Tillotson G.S. Antimicrobial selection for community-asquired lower tract infections in the 21st centure: A review of gemifloxacin. // Int. J. Antimicrob. Agents. 2004. - V. 23. -P. 412-420.
98. Appelbaum P.C., Hunter P. The fluoroquinolone antibacterials: past, present and future perspectives. // Int. J Antimicrob. Agents. 2000. - V. 16. - № 5. -P. 5-15.
99. Aquino M., Muzquiz y Limón R. Computed tomography of dentigerous cyst : (Rep. of a case) // Pract. Odontol. 1990. - № 3. - Vol. 11. - P. 47-56.
100. Ball P., Mandell L., Patou G., Dankner W., Tillotson G. A new respiratory fluoroquinolone, oral gemifloxacin: a safety profile in context // Int. J. Antimicrob. Agents. 2004. - V. 23. - P. 421-429.
101. Baron M., Haas R., Dortbudak O., Watzek G.Experimentally induced peri-implantitis: a review of different treatment methods described in the literature. Int J Oral Maxillofac Implants. 2000 Jul-Aug; 15(4):533-44
102. Barry A.L., Fuchs P.S. In vitro activities of sparfloxacin, tosufloxacin, ciprofloxacin and fleroxacin // Antimicrob. Agents Chemother. 1991. - V.35. - S. 955-960.
103. Bernhard J. The Biggest Advancement in fifty years? // Biolase Corporate Profile.-2000.-P. 4.
104. Bifano C.A., Edgin W.,A,. Colleton C., Bifano S.L., Constantino P.D. Preliminary evaluation of hydroxyapatite cement as an augmentation device in the edentulous atrophic canine mandible // Oral. Surg. 1998. May. -Vol. 85. —№ 5. - P. 512-516.
105. Blondeau J., Missaghi B. Gemifloxacin: a new fluoroquinolone. // Expert Opin. Pharmacother. 2004. - V. 5. - № 5. - P. 1117-1152.
106. Blondeau J., Missaghi B. Gemifloxacin: a new fluoroquinolone. // Expert Opin. Pharmacother. 2004. - V. 5. - № 5. - P. 1117-1152.
107. Brondum N. Jensen V.J. Recurrence of keratocysts and decompression treat ment // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. 1991. - Vol. 72, № 3. -P.265-274
108. Brook I. In vitro efficacies of quinolones and clindamycin for treatment of infections with Bacteroides fragilis and/or Escherichia coli in mice: correlation with in vitro susceptibilities // Antimicrob. Agents Chemother. -1993.-V. 37.-S. 997-1000.
109. Brook The role of anaerobic bacteria in mediastinitis. Drugs. 2006; 66(3) : 315-20.
110. Buchmann R., Khoury F., Pingel D., Lange D.E. The microflora recovered from the outer-surfaces of the Frialit-2 implanto-prosthetic connector. Clin Oral Implants Res. 2003 Feb; 14(1) : 28-34.
111. Caiafa A.M. In vitro antimicrobial susceptibilities of three Porphyromonas spp and responses in the oral cavity of cats to treatment with selected antimicrobial drugs. Aust Vet J. 2000 Aug; 78(8) : 533-7.
112. Callis S., Lemmer J., Touyz L.Z. Antibiotic prophylaxis in periodontal surgery. A retrospective study. J Dent Assoc S Afr. 1996 Dec; 51(12) : 806-9.
113. Catuogno C., Jones M.N. The antibacterial properties of solid supported liposomes on Streptococcus oralis biofilms. Int J Pharm. 2003 May 12; 257(1-2) : 125-40.
114. Chaffee N.R., Lowden K., Tiffee J.C., Cooper L.F. Periapical abscess formation and resolution adjacent to dental implants: a clinical report. Prosthet Dent. -2001 Feb; 85(2) : 109-12.
115. Claiaman L., Putter F., Beckmann H. Healing of continuosis-wave and rapid super pilsed, carbon dioxide laser induced bone defects // J.Oral Surg. -1978.-Vol. 36. P. 932-937.
116. Clarizio LF.Peri-implant infections. Atlas Oral Maxillofac Surg Clin North Am. 2000 Mar; 8(1) : 35-54.
117. Deppe H. Das Anwendungsspektrum des C02-Lasers (À.=10,6 |un) // Laser Journal. 4/2003. - P. 18-20.
118. Dorland S. Illustratrd Medical Dictionary (Cyst). Toronto, 1999.
119. Doyle C., Tanner E.T., Bonfild W. In vitro in vivo evalution of polyhydrocxybutyrate and of polyhydrocxybutyrate reinforced with hydroxeapatite // Biomaterials. 1991. Nov. - Vol. 12. - № 9. - P. 841-847.
120. DuPont G.A. Understanding dental plaque; biofilm dynamics. J Vet Dent 1997; 14: 91-94.
121. Marsh P.D., Bradshaw D.J. Dental plaque as a biofilm. J Industrial Microbiology.-1995; 15 : 169-175.
122. Eliasson S., Isacsson G., Kondell P.A. Lateral periodontal cysts. Clinical, ra-diographical and histopathological findings // J. Oral Maxillofac. Surg. -1989.-Vol. 18, №4.-P. 191-194.
123. Ellervall E., Bjorklund F., Rohlin M., Vinge E., Knutsson K. Antibiotic prophylaxis in oral health care: administration strategies of general dental practitioners. Acta Odontol Scand. 2005 Nov; 63(6) : 321-9.
124. Feres M., Haffajee A.D., Allard K., Som S., Goodson J.M., Socransky S.S. Antibiotic resistance of subgingival species during and after antibiotic therapy. J Clin Periodontol. 2002 Aug; 29(8) : 724-35.
125. Figueiredo R., Valmaseda-Castellon E., Berini-Aytes L., Gay-Escoda C.Delayed-onset infections after lower third molar extraction: a case-control study. J Oral Maxillofac Surg. 2007 Jan; 65(1) : 97-102.
126. Folwaczny M., Mehl A., Haffner C., Benz C., Hickel R. Root Substance removal with Er:YAG laser radiation at different working parameters usinga newly developed delivery system // J. Periodontal 71. 2000. -P. 147-155.
127. Fuchs P.S. Methods of measuring susceptibility of anaerobic bacteria to trovafloxacin, including quality control parameters // Clin. Microb. & Infect. Disseases. 1996. - V. 15. - suppl. 15. - S. 676-682.
128. Gater L. Why lasers; why now? // AGD Impact May 2005. - P. 10-15.
129. Geiger G. Ameloblast proliferation within dentigerous cysts of the jaw bone // Dtsch. Zeitschr. Mund-Kiefer-Gesichts-Chir. 1991. - Bd. 15, № 2. -S. 107-117.
130. Genco R.J., Ho A.W. et al. Models to evaluate the role of stress in periodontal disease // Ann. Periodontol. 1998. - Vol. 3. - P. 288-302.
131. George K., Zafiropoulos G.G., Murat Y., Hubertus S., Nisengard R.J. Clinical and microbiological status of osseointegrated implants. // J.-Periodontol. 1994. - Aug. - V. 65. - № 8. — P. 766-770.
132. Gerhards F., Kuffner H.D., Wagner W. Pathological fractures of the mandible // J. Oral Maxillofac. Surg. 1998. - Vol. 27, № 3. - P. 186-190.
133. Goff S. We're liking lasers. A Survey Report // Dental Products Report Exclusive. 2005, April. - P. 4.
134. Goldman M. P. Cutaneous and Cosmetic Laser Surgery. Mosby. Elsevier. -2006, 387 p.
135. Goldstein E.J. Comparative activity of ciprofloxacin, ofloxacin, sparfloxacin, temafloxacin, CI-960, CI-990, and WIN 57273 against anaerobic bacteria/Antimicrob. Agents Chemother. 1992. - V. 36. -S. 1158-1162.
136. Goldstein E.J. Comparative activity of ciprofloxacin, ofloxacin, sparfloxacin, temafloxacin, CI-960, CI-990, and WIN 57273 against anaerobic bacteria // Antimicrob. Agents Chemother. 1992. - V. 36. -S. 1158-1162.
137. Gordon S., Clarke S., Creaves D. at al. Molecular immunobiology of macrofages: resent progress // Current immunol. 1995. — Vol. 7. -P. 24-33.
138. Grossner-Schreiber B., Griepentrog M., Haustein I., Muller W.D., LangeK.P., Briedigkeit H., Gobel U.B. Plaque formation on surface modified dental implants. An in vitro study. Clin Oral Implants Res. 2001 Dec; 12(6): 543-51.
139. Gutierrez-Perez J.L. Third molar infections. : Med Oral Patol Oral Cir Bucal. -2004; 9 Suppl: 122-5; 120-2.
140. Gwaltney J.M.Jr., Wiesinger B.A., Patrie J.T. Acute community-acquered bacterial sinusitis: The value of antimicrobial treatment and the natural history/ Clin. Infect. Dis. 2004. - V. 38. - № 2. - P. 227-233.
141. Haffajee A.D., Socransky S.S. Evidence of bacterial etiology: a historical perspective. Periodontology. -2000, 1994; 5: 7-25.
142. Halpern L.R., Dodson T.B. Does prophylactic administration of systemic antibiotics prevent postoperative inflammatory complications after third molar surgery? J Oral Maxillofac Surg. -2007 Feb;.65(2).:. 177-85.
143. Hanson L.A., Ahlstedt S., Andersson B. he biological properties of secretory IgA // RES. J. Reticuloendothel. Soc. 1980, V. 28 (suppl), - P. 1-9.
144. Haskell E.W., Stanley H., Goldman S. A new appoach to vital root resection // J. Pepiodontol. 1980. - Vol. 51, № 4. - P. 217-224.
145. Heydenrijk K., Meijer H.J., van der Reijden W.A., Raghoebar G.M., Vissink A, Stegenga B. Microbiota around root-form endosseous implants: a review of the literature. Int J Oral Maxillofac Implants. 2002 Nov-Dec; 17(6) : 829-38.
146. Heydenrijk K., Raghoebar G.M., Meijer H.J., Van Der Reijden W.A., Van Winkelhoff A.J., Stegenga B. Two-part implants inserted in a one-stage or a two-stage procedure. A prospective comparative study. J Clin Periodontol. -2002 Oct; 29(10) : 901-9.
147. Hoffmeister B., Harle F. Zysten im Kiefer 4 besichtsbereicheine Katam-nestische Studie an 3353 Zysten // Dtsch. Zahnarztl. Z. 1985. - Bd. 40, №6.-S. 610-614.
148. Hopper F.E. Bilateral cyst of the mandibule. A unique opportunity // Br. Dent.J. 1982. - Vol. 153, № 8. - P. 306-307.
149. Hultin M., Gustafsson A., Hallstrom H., Johansson L.A., Ekfeldt A., Klinge B. Microbiological findings and host response in patients with peri-implantitis. Clin Oral Implants Res. 2002 Aug; 13(4) : 349-58.
150. Iatrou J.A., Legakis N. et al. Anaerobic bacteria in jaw cycts // Brin. J. Oral. Macsillofac. Surg. 1988. - V. 26. - № 1. - P. 62-69.
151. Ibbott C.G., Kovach R.J., Carlson-Mann L.D. Acute periodontal abscess associated with an immediate implant site in the maintenance phase: a case report. // Int. J. - Oral. - Maxillofac. - Implants. - 1993. - № 8. - V.6. -P. 699-702.
152. Ikeshima A., Ozawa M., Yamamoto H. et al. Differential diagnosis between cyst and tumor. Dentigerous cyst and ameloblastoma containing test // J. NihonUniv. School Dent. 1990. - Vol. 32, № 1. - P. 19-26.
153. Keating, G. M., and L. J. Scott. Moxifloxacin: a review of its use in the management of bacterial infections. Drugs. -200464 : 2347-2377.
154. Keller U. Erbium: YAG Laser in der oralchirurgie // Deutscher Zahnarzte Kalender.-1998.-P. 113.
155. Keller U., Hibst R, Lasersysteme fur die orale Hart-und Weichgeweb-schirurgie-Gewebewirkungen und Indikationen // Lasermedizin. — 1994. —№ 10.-P. 208.
156. Klinge B., Gustafsson A., Berglundh T. A systematic review of the effect of anti-infective therapy in the treatment of peri-implantitis. Clin Periodontol. -2002; 29 Suppl 3 : 213-25; discussion 232-3.
157. Knabe C., Gildenhaar K., Berger G. et al. Morfological evaluation of osteoblasts cultured on different calcium phosphate ceramics // Biomaterials. 1997. - Vol. 18. - № 20. - P. 1339-1342.
158. Kokich V., Nappen D., Shapiro P. Gingival contour and clinical crown length: Their effects on the esthetic appearance of maxillary anterior teeth // Am J Orthod. 1984. - 86. - P. 89-94.
159. Konig J., Storcks V., Kocher Т., Bossmann К., Plagmann Н.С.Anti-plaque effect of tempered 0.2 % Chlorhexidine rinse: an in vivo study. // J Clin Periodontol. 2002 Mar; 29(3) : 207-10.
160. Korkusuz F., Uchida A., Shinto Y., Araki N., Ono K. Exsperimental implant-related osteomyelitis treated by antibiotic-calcium hydroxyapatite ceramic composites // J. Bone. Joint. Surg. Br. 1993. Jan. - Vol. 75. -№ l.-P. 111-114.
161. Koulmann M., Robinson J.J. Traitement des grands kystes radiculodentaire // Bordeaux Med. 1983. - Vol. 16, № 4. - P. 523-529.
162. Kozlovsky A., Mozes O., Nemcovsky C.E., Artzi Z. Differential diagnosis and treatment strategies for peri-implant diseases Refiiat Hapeh Vehashinayim. 2003 Jul; 20(3) : 30-41,
163. Kreisler M., Kohnen W., Marinello C., Götz H., Jansen В., Duschner H. Dekontamination von Oberflächen enossaler Implantate mit dem Er:YAG Laser jahrestagung // DGZMK, 2001, 11-13 Okt. Mannheim.
164. Kreisler M., Schoof J., Langnau E. Temperaturentwicklung am ImplantatKnochen-Interface Wahrend lasergestutzter Oberflachendecontaminatipn 34 / Jahrestagung der Arbeitsgenforschung (AfG) in der DGZMK, -2002, 10-11 Jan., Mainz.
165. Kruger E.,Wurtbington Р. Хиругическое лечение кист // Квинтэссенция.- 1991. № 5/6. - С. 381-395.
166. Kusumoto К., Bessho К., Fujimura К. Et al. Comparison of ectopic osteoinduction in vitro by recombinant human BMP-2 end recombinant xenopus BMP-4/7 heterodimer // Biochem. Biophys. Ree. Commun. 1997.- Vol. 239. № 2. - P. 575-579.
167. Lang N.P., Mombelli A., Tonetti M.S., Bragger U., Hammerle C.H. Clinical trials on therapies for peri-implant infections. Ann Periodontol. -1997 Mar; 2(1) : 343-56.
168. Latrow L.A., Legachis N. Anaerobic bacteria in jaw cyst // Br. J. Oral Maxillo-fac. Surg. 1988. - Vol. 26, - № 1. - P. 62-64.
169. Lawler B., Sambrook P.J., Goss A.N. Antibiotic prophylaxis for dentoalveolar surgery: is it indicated? Aust Dent J. 2005 Dec; 50 (4 Suppl 2) : S54-9.
170. Ramaraj P.N., Cariappa KM.Is there a need for antibiotic prophylaxis after routine dental extraction in diabetic patients? Br J Oral Maxillofac Surg. -2006 Oct; 44(5) : 421.
171. Leonhardt A, Dahlen G, Renvert S. Five-year clinical, microbiological, and radiological outcome following treatment of peri-implantitis in man. Periodontol. -2003 Oct; 74(10) : 1415-22.
172. Leonhardt A, Renvert S, Dahlen G.Microbial findings at failing implants. Clin Oral Implants Res. 1999 Oct; 10(5) : 339-45.
173. Almstahl A, Wikstrom M, Kroneld U. Microflora in oral ecosystems in primary Sjogren's syndrome. Rheumatol. -2001 May;28(5) : 1007-13.
174. Limeres Posse, J., E. Vázquez García, M. Otumuro Rial, F. Caamaño Durán, I. Tomás Carmona, and P. Diz Dios. Eficacia clínica del moxifloxacino en el tratamiento de abscesos odontogénicos submucosos. Semergen. -2006.32 : 58-62.r
175. Limeres, J., I. Tomás, M. Alvarez, and P. Diz. Empirical antimicrobial therapy for odontogenic infections. Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 2005. 100 : 263.
176. Lin P. Der Bakterizide effektes lasers // J. Dental Res. 1996. - Vol. 34. -P. 44-49.
177. Lockhart, P. B., M. T. Brennan, M. L. Kent, H. J. Norton, and D. A. Weinrib. Impact of amoxicillin prophylaxis on the incidence, nature, and duration of bacteremia in children after intubation and dental procedures. Circulation. 2004. 109 : 2878-2884.
178. Longman LP, Preston AJ, Martin MV, WilsonNH.Endodontics in the adult patient: the role of antibiotics. J Dent. 2000 Nov; 28(8) : P. 539-548.
179. Lopez-Carriches C, Gomez-Font R, Martinez-Gonzalez JM, Donado-Rodriguez M.Influence of smoking upon the postoperative course of lower third molar surgery. Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2006 Jan 1; 11(1) : E56-60.
180. Lucas GQ, Lucas ON.Preventive action of short-term and long-term chlorhexidine rinses. Acta Odontol Latinoam. 1999; 12(1) : 45-58.
181. Lustmann J., Ulmansky M., Fuxbrunner A., Lewis A. Photoacustic injury and bone healing following 193 nm excimer laser ablation // Laser Surg. Med. 1992. - № 12. - P. 390.
182. Lynch D.P., Madden C.R. The botryoid odontogenic cyst // J. Periodontology. 1985. - Vol. 56, № 3. - S. 163-170.
183. MacGowan, A. P. Moxifloxacin (Bay 12-8039): a new methoxy quinolone antibacterial. Expert Opin. Investig. Drugs. 1999.8 : 181-199.
184. Maestre Vera JR, Gomez-Lus Centelles ML.Antimicrobial prophylaxis in oral surgery and dental procedures. : Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2007 Jan 1; 12(1) : E44-52.
185. Magmisson B.C., Borrman H. The lateral periodontal cyst // Br. J. Oral Maxillofac. Surg. 1991. - Vol. 29, № 1. - P. 54-61.
186. Malcmacher L. Lasing is amazing // Common Sense Dentistry, 2004, June. -P. 140.
187. Mancini, Garbonare A.O., Heremans J.E. Immunochemical quantitation of antigens by Single radial diffusion // Immunochemistry. 1965. - № 2. -P. 235-251.
188. Mandell L., Tillotson G. Streptococcus pneumoniae: drug resistance and optimal therapeutic approaches // Today' Therapeutics Trends. 2004. -V. 22.-№2.-P. 121-145.
189. Maroo S.V. Clinico-radiological aspects of dentigerous cysts // East Afr. Med. J. 1991. - Vol. 68, № 4. - P. 249-254.
190. Martin MV, Kanatas AN, Hardy P. Antibiotic prophylaxis and third molar surgery. : Br Dent J. -2005, Mar 26; 198(6) : 327-30.
191. Mikkonen M., Kullaa-Mikkonen A., Kotileinen R. Clinical and radiologic re-examination ol apicoectomized teeth // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. 1983. - Vol. 55, № 3. - P. 302-306.
192. Milazzo, I., G. Blandino, R. Musumeci, G. Nicoletti, A. M. Lo Bue, and A. Speciale. Antibacterial activity of moxifloxacin against periodontal anaerobic pathogens involved in systemic infections. Int. J. Antimicrob. -Agents 2002. 20 : 451-456.
193. Miller R. J. Lasers in Oral Implantology // Dental Practice -September/October 2006 P. 112-114
194. Miserendino L.J. The history and development of laser dentistry. In: Miserendino L.J., Pick R.M.: Laser in dentistry // Quintessence, Chicago, -1995
195. Mitra T. ablation diologischen Hartgewebes mit gepulsten IR-Lasern. Diss. Med., Düsseldorf, 2002.
196. Mombelli A, Lang NP.The diagnosis and treatment of peri-implantitis. Periodontol 2000. 1998 Jun; 17 : 63-76.
197. Mombelli A, Marxer M, Gaberthuel T, Grunder U, Lang NP.The microbiota of osseointegrated implants in patients with a history of periodontal disease. J Clin Periodontol. -1995 Feb; 22(2) : 124-30.
198. Mombelli A, Tonetti MS, Bragger U, Hammerle CH Clinical trials on therapies for peri-implant infections. Ann Periodontol. 1997 Mar; 2(1) : 343-56.
199. Mombelli A., Marxer M., Gaberthuel T., Grunder U., Lang N.P. The microbiota of osseointegrated implants in patients with a history of periodontal disease. // J. Clin. - Periodontol. - 1995. - Feb. - № 22 - V. 2. -P. 124-130.
200. Mombelli A.Microbiology and antimicrobial therapy of peri-implantitis. Periodontol. -2000. 2002; 28 : 177-89.
201. Moritz A., Schoop U., Goharkhay K., Schauer P. Treatment of periodontak pockets a diode laser // Laser Surg Med. 1998. -№ 22. - P. 302-311.
202. Motta A., Lo Bianco A., Arecuri C. Cystostomia. Preliminary surgery for avoluminous cyst // Dent. Cadmos. 1990. - Vol.58, № 15. - P. 90-96.
203. Muller E, Gonzalez YM, Andreana S.Treatment of peri-implantitis: longitudinal clinical and microbiological findings—a case report. Implant Dent.-1999; 8(3): 247-54.
204. Muller H.-P. Parodontologie. Georg Thieme Verlag. Stuttgart&New York. 2001.-241 s.
205. Munoz-Guerra MF, Gonzalez-Garcia R, Capote AL, Escorial V, Gias LN.Subperiosteal abscess of the orbit: an unusual complication of the third molar surgery. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 2006 Nov; 102(5) : e9-13.
206. Newman M.G. The role of infection and anti-infection treatment in regenerative therapy. // J. Periodontol. - 1993. - Nov. - V. 64. - № 11.-P. 1166-1170.
207. Nociti FH Jr, Cesco De Toledo R, Machado MA, Stefani CM, Line SR, Goncalves RB.Clinical and microbiological evaluation of ligature-induced peri-implantitis and periodontitis in dogs. Clin Oral Implants Res. 2001, Aug; 12(4) : 295-300.
208. Noriko T, Kento T, Tsuneji O, Motohiro M, Kozue M, Makoto S, Shohei K. A clinical study on unfavorable cases of dental implant Kokubyo Gakkai Zasshi. 2003, Sep; 70(3) : 182-9.
209. Oberhofer О. Рутинное использование KaVo Key Laser 3 в терапии и эндодонтии // Dental Market. 2005. - № 2. - С. 16-19.
210. Okita W., Ichimura К., Iinuma Т. Dentigerous cyst of the maxilla and its im age diagnosis // Rhinology. 1991. - Vol. 29, №4. - P. 307-321.
211. Oliver W. Er:YAG lasergefuhrte (2,94 nm) Wurzelspitzenresektion und Zystektomie // Laser Journal. 2002. - № 3.
212. Olivier W. Experimentelle Osteotomien mit dem Er:YAG-Laser im Vergleich zu konventionellen Techniken // Laser Journal. 2/2003. -P. 10-14.
213. Olivier W. Mit Blick auf atraumatische Präparation positive zu bewerten // DZW-Spezial. 5/03. - P. 40.
214. Orosz M, Philipp N, Sarkozi K, Gabris K. The use of aminopenicillin combined with a beta-lactamase inhibitor in outpatients of oral surgery and dentistry.: Fogorv Sz. 2005 Jun; 98(3) : 109-11.
215. Palmer NA, Pealing R, Ireland RS, Martin MV.A study of prophylactic antibiotic prescribing in National Health Service general dental practice in England. Br Dent J. 2000 Jul 8; 189(1) : 43-6.
216. Partsch C. Zur Bechandlung der Kieferzysten // Dtsch. Monatsschr. Zahnheilkd. 1900. - Bd. 4. - S. 252-261.
217. Partsch C. Uber Kieferzysten // Dtsch. Monatsschr. Zahnheilkd. 1882. -Bd.7. - S. 272-290.
218. Peppard J.V., Orlans E., Andrew E. Elimination into bile of circulating antigen by endogenous IgA antibodies in rats // Immunology. 1982. -V. 45, №3,-P. 467-472/
219. Planells del Pozo P, Barra Soto MJ, Santa Eulalia Troisfontaines E. Antibiotic prophylaxis in pediatric odontology. An update. Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2006 Jul 1; 11 (4) : E352-7.
220. Poeschl PW, Eckel D, Poeschl E.Postoperative prophylactic antibiotic treatment in third molar surgerya necessity? J Oral Maxillofac Surg. 2004 Jan; 62(1) : 3-8.
221. Poeschl PW, Eckel D, Poeschl E.Postoperative prophylactic antibiotic treatment in third molar surgerya necessity? J Oral Maxillofac Surg. 2004 Jan; 62(1) : 3-8.
222. Portoriero R., Tonelli M.P., Cameval G., Mombelli A., Nyman S.R., Lang N.P. Experimentalli induced peri-implant mucositis. A clinical study in humans. // Clin. Oral. - Implants. - Res. - 1994. - Dec. - V. 5. - № 4. -P. 254-259
223. Powell CA, Mealey BL, Deas DE, McDonnell HT, Moritz AJ. Post-surgical infections: prevalence associated with various periodontal surgical procedures. : J Periodontol. 2005, Mar; 76(3): 329-33.
224. Prieto-Prieto J, Calvo A.Microbiological basis of oral infections and sensitivity to antibiotics. Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2004; 9 Suppl : 15-8; 11-4.
225. Quirynen M., Bollen C.M., Eyssen H., Van-Steenberghe D. Microbial penetration along the implant components of the Branemark system. An in vitro study. // Clin. Oral. - Implants. - Res. - 1994. - Dec. - V. 5. - № 4. -P. 239-244.
226. Rajasuo A, Nyfors S, Kanervo A, Jousimies-Somer H, Lindqvist C, Suuronen R.Bacteremia after plate removal and tooth extraction. Int J Oral Maxillofac Surg. -2004 Jun; 33(4) : 356-60.
227. Rechmann P., Dan S. Goldin, Hennig T. Er:YAG Laser in Dentistry: An overview Proc. SPIE. 1998. - Vol. 3248.
228. Rey C., Yina A., Tofighi A. et al. Maturation of poorly crystallin apatites: Chemical and structurae aspects in vivo and invitro // Cells Mater. 1995. -Vol. 5. - № 4. - P. 345-356.
229. Roche Y, Yoshimori RN In-vitro activity of spiramycin and metronidazole alone or in combination against clinical isolates from odontogenic abscesses. Antimicrob Chemother. 1997. Sep; 40(3) : 353-7.
230. Romanos G. E. Atlas derchirugischen Laserzahnheikunde. Munchen-Jena, - 1999.
231. Romanos G. E., Siar Ch. H., Toh Ch. Heilungsprozesse bei Inzisionen in der oralen Mukosa von Affen mittels supergepulster C02-Laser // Laser Journal. -3/2004-P. 22-25.
232. Roos-Jansaker AM, Renvert S, Egelberg J.Treatment of peri-implant infections: a literature review // J Clin Periodontol. 2003 Jun; 30(6) : 467-85.
233. Rose L. F., Mealey B.L. Periodontics Medicine, Surgery, and Implants. ELSEVIER MOSBY. 2004. - 990 p.
234. Rose RER outine prophylactic antibiotics for arthroplasty patients receiving dental care. Is it necessary? // West Indian Med J. 2003 Dec; 52(4) : 317-20.
235. Rush DE, Abdel-Haq N, Zhu JF, Aamar B, Malian M.Clindamycin versus Unasyn in the treatment of facial cellulitis of odontogenic origin in children. // Clin Pediatr (Phila). 2007 Mar; 46(2) : 154-9.
236. Sakuma T. An immunological study of radicular cyst // J. Tokyo Dent. Coll. Soc. 1974. - Vol. 74, № 2. - P. 312-323.
237. Sanchis JM, Saez U, Penarrocha M, Gay C. Tetracycline compound placement to prevent dry socket: a postoperative study of 200 impacted mandibular third molars. J Oral Maxillofac Surg. 2006 Oct; 64(10) : 1571.
238. Sbordone L, Bortolaia C.Oral microbial biofilms and plaque-related diseases: microbial communities and their role in the shift from oral health to disease.Clin Oral Investig. 2003 Dec; 7(4) : 181-8.
239. Sedeno X. Одонтогенные кисты // Стоматологический бизнес. — 2006. -№3, 11 мая-С. 11-15.
240. Semmler R. C02-Laser in der Zahnheilkunde // Verlag Media-Plant. 1996. -№ l.-P. 17-39.
241. Slavkin HC. Biofilms, microbial ecology and Antoni Van Leeuwenhoek // J Am Dent Assoc. 1997; 128 : 492-495.
242. Soehren SE.Similarities between the development and treatment of plaque-induced peri-implantitis and periodontitis // J Mich Dent Assoc. 1996 Mar; 78(3) : 32-6.
243. Spangler S.K., et al. Susceptibility of anaerobic bacteria to trovofloxacin: comparison with other quinolones and non-quinolone antibiotics // Inf. Dis. In Clin. Pract. 1996. - V.5 (suppl.3). - S. 101-109.
244. Spangler S.K., et al. Susceptibility of anaerobic bacteria to trovofloxacin: comparison with other quinolones and non-quinolone antibiotics // Inf. Dis. In Clin. Pract. 1996. - V.5 (suppl.3). - S. 101-109.
245. Stass H., Dalhoff A., Kubitza D., Schuhly U. Pharmacokinetics, safety, and tolerability of ascending single doses of moxifloxacin, a new 8-methoxyquinolone, administered to healthy subjects // Antimicrob. Agents Chemother. 1998. - V. 42. - P. 2060-5.
246. Sugerman PB, Barber MT. Patient selection for endosseous dental implants: oral and systemic considerations. Int J Oral Maxillofac Implants. 2002 Mar-Apr; 17(2) : 191-201 .
247. Suh JJ, Simon Z, Jeon YS, Choi BG, Kim CK. The use of implantoplasty and guided bone regeneration in the treatment of peri-implantitis: two case reports. Implant Dent. 2003; 12(4) : 277-82.
248. Suzuki M. Treatment of jaw cysts with an irrigational method // J. Oral Surg. 1985. - Vol. 14, № 5. - P. 408-423.
249. Suzuki Y, Daitoku K, Minakawa M, Fukui K, Fukuda I. Infective endocarditis with congenital heart disease. Jpn J Thorac Cardiovasc Surg. -2006 Jul; 54(7) : 297-300.
250. Takai S, Kuriyama T, Yanagisawa M, Nakagawa K, Karasawa T. Incidence and bacteriology of bacteremia associated with various oral and maxillofacial surgical procedures. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 2005 Mar; 99(3) : 292-8.
251. Tang Z, Cao C, Sha Y, Lin Y, Wang X. Effects of non-surgical treatment modalities on peri-implantitis. Zhonghua Kou Qiang Yi Xue Za Zhi. 2002 May; 37(3) : 173-5.
252. Tanner A., Stillman N. Oral and dental infections with anaerobic bacteria: clinical features, predominant pathogens, and treatment. // Clin. Infect. -Dis. - 1993. - Jun. - V. 16. - № 4. - P. 304-309.
253. Tomas I, Alvarez M, Limeres J, Potel C, Medina J, Diz P. Prevalence, duration and aetiology of bacteraemia following dental extractions. Oral Dis. 2007 Jan; 13(1) : 56-62.
254. Torabinejad M., Eby W.C., Neidorf I.J. Inflammatory and immunological aspects of the pathogenesis of human periapical lesions // J. Endodontol. -1985. -№ 11.-P. 479-482.
255. Uribe R, Penarrocha M, Sanchis JM, Garcia O. Marginal peri-implantitis due to occlusal overload. A case report. Med Oral. 2004 Mar-Apr; 9(2) : 159-62.
256. Van Winkelhoff AJ, Goene RJ, Benschop C, Folmer T. Early colonization of dental implants by putative periodontal pathogens in partially edentulous patients. Clin Oral Implants Res. 2000 Dec; 11(6) : 511-20.
257. Van Winkelhoff AJ, Wolf JW Actinobacillus actinomycetemcomitans-associated peri-implantitis in an edentulous patient. A case report. J Clin Periodontol. 2000 Jul; 27(7): 531-5.
258. Waldman BJ, Mont MA, Hungerford DS.Total knee arthroplasty infections associated with dental procedures. Clin Orthop. 1997 Oct; (343) : P. 164-172.
259. Wang H.L., Bunyaratavei P., Labadie M., Shyr J., MacNeil R. L. Comparison of 2 clinical techniques for treatment of gingival recession // J. Periodont.-2001.-Vol. 72. № 10-P. 1301-1311.
260. A1 science Springer-Verlang London Limited. - 2005. - 12 p.
261. Williams JD, Sefiton AM. Comparison of macrolide antibiotics. J Antimocrob Chemother. 1993; 31(suppl.C): 11-26.
262. Yingling NM, Byrne BE, Hartwell GR. Antibiotic use by members of the American Association of Endodontists in the year 2000: report of a national survey. J Endod. 2002 May; 28(5) : P. 396-404.
263. Yu W., Nairn J., Lanzafame R.J. Expression of growth factor in early wound healing in rat skin // Laser Surg Med. 1994. - № 15. - p. 251-259.
264. Zinner R., Muller W., Wachtel D. Experimented Untersuchungen an wurzelspitzenresezierten Zahnen zur Beurteilung bakterieller Penetration // Stomatol. DDR. 1984. - Bd.34, № 6. - S. 333-341.