Автореферат диссертации по медицине на тему Клинико-иммунологическая оценка течения БЦЖ-вакцинного процесса и формирования противотуберкулезного иммунитета
На правах рукописи
Санакоева Людмила Павловна
КЛИНИКО-ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ТЕЧЕНИЯ БЦЖ-ВАКЦИИ НОГ О ПРОЦЕССА И ФОРМИРОВАНИЯ ПРОТИВОТУБЕРКУЛЕЗНОГО ИММУНИТЕТА (КЛИНИКО^ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ)
14 00 09 — педиатрия
АВТОРЕФЕРАТ
диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук
Пермь - 2007
003064663
Работа выполнена в государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Пермская государственная медицинская академия имени академика Е А Вагнера Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию»
НАУЧНЫЕ КОНСУЛЬТАНТЫ:
Заслуженный деятель науки РФ, доктор медицинских наук, профессор
Академик РАН и РАМН,
доктор медицинских наук, профессор
Корюкина Ирина Петровна
Черешнев Валерий Александрович
ОФИЦИАЛЬНЫЕ ОППОНЕНТЫ:
доктор медицинских наук, профессор
доктор медицинских наук, профессор доктор медицинских наук, профессор
Ахмадеева Эльза Набиакметовна
Иллек Ян Юрьевич
Санникова Наталья Евгеньевна
Ведущая организация -
Научный центр здоровья детей РАМН, г Москва
Защита состоится « 5 » октября 2007 года в 10 часов на заседании диссертационного Совета Д 208 067 02 при ГОУ ВПО «Пермская государственная медицинская академия имени академика Е А Вагнера Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию» по адресу 614000, г Пермь, ул Куйбышева, 39
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГОУ ВПО «Пермская государственная медицинская академия имени академика ЕА Вагнера Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию» по адресу 614990, г Пермь, ул Коммунистическая, 26
Автореферат разослан «_»
2007г
Ученый секретарь диссертационного совета доктор медицинских наук, профессор
В В Щекотов
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность проблемы
Важное место в профилактической работе педиатра занимает вакцинопрофи-лактика, направленная на создание у детей активного специфического иммунитета против наиболее опасных и распространенных инфекций, в том числе туберкулеза, по которому в России сложилась крайне неблагоприятная эпидемиологическая ситуация, характеризующаяся ростом всех эпидемических показателей по детскому туберкулезу (В А Аксенова, 2001, 2004, В А Соколов, 1997, 2003) С целью создания активного противотуберкулезного иммунитета у детей в Национальном календаре профилактических прививок (приказ МЗ РФ № 229 от 27 06 2001 г ) предусмотрена вакцинация на 3-7 день жизни всех новорожденных, не имеющих противопоказаний, с ревакцинацией в 7 и (или) 14 лет (приказ МЗ РФ №109 от 21 03 2003) Осуществление специфической профилактики туберкулеза возложено на медицинских работников общей педиатрической лечебной сети и является приоритетным методом среди мероприятий по защите от туберкулеза детей раннего возраста Охват детей Б ЦЖ -вакцинациеи в последние годы достиг оптимальных цифр (95,9 - 99%) (О И Король, 1999, В А Аксенова, 2004, А А Шурыгин, 2005), и, несмотря на это, уменьшения инфицированно-сти и заболеваемости туберкулезом детей раннего и дошкольного возраста не наблюдается (В А Аксенова, 2005, JIВ Бурухина, 2006) Одной из причин сложившейся ситуации является изменение иммунобиологической реактивности организма детей под влиянием внешних и внутренних неблагоприятных факторов, увеличение груза генетических факторов, ухудшение в последние годы состояния здоровья с увеличением числа детей со сниженной противоинфекционной защитой (А А Баранов, 2001, Н В Зайцева, 2003, Н И Захарова, 2006) Это не может не влиять на течение вакцинного процесса и формирование адаптивного противотуберкулезного иммунитета (Л А Митинская, 1964, Л К Фазлеева, 1973, 1996, БЕ Кноринг,1995, ЕФ Черну-шенко, 1996, М П Костинов, 2002) Как следствие этого - низкая эффективность иммунизации, не обеспечивающая гарантированную защиту от туберкулезной инфекции Очевидно, тактика проведения иммунопрофилактики у детей с отклонениями в состоянии здоровья должна быть индивидуализирована и включать мероприятия, направленные на повышение эффективности вакцинации (Р В Петров, 1976, 1986, А А Сохин, 1981, CK Ткаченко, 1986, ТВ Косенкова, 2000) По такой технологии есть положительный опыт повышения иммунологической эффективности вакцинации детей против других инфекций (М П Костинов, 2002, О А Перминова, 2002, И И Львова, 2004, Т А Щукина, 2005), а также экспериментальные данные по противотуберкулезной иммунизации животных с разными моделями иммунной недостаточности (Е Ф Чернушенко, 1996) Однако в отношении иммуннопрофилактики туберкулеза у детей такой подход не применялся В результате, у детей с соматической патологией состояние противотуберкулезного иммунитета не исследовано
Это особенно важно для повышения эффективности профилактики у детей из групп риска заболевания туберкулезом (Л А Митинская, 1996) Одной из таких групп риска являются дети раннего возраста, имеющие хронические расстройства питания по типу гипотрофии, сопровождающейся вторичной иммуннологической недостаточное гью, преимущественно клеточного звена иммунитета (К Д Плецитый, 1980, А А Сохин, 1984, В В Сахаров, 1997, ЕИ Соколов, 1998, В В Чиркин, 1999, ВС Смирнов, 2000, ДК Новиков, 2003, К А Лебедев, 2003, RK Chandra, 1977, Т Yoneda, 1989), имеющего ведущее значение в механизмах защиты от туберкулеза (И С Фрейдлин, А А Тотолян, 2001, БР Блум, 2002, А Г Чучалин, 2004, ММ Авербах, 2005, JL Flynn, 2001) На увеличение в последние годы числа детей с недостаточностью питания указывают данные официальной статистики, свидетельствующие о наибольшей распространенности этой патологии у детей первых 2-х лет жизни и, особенно, в семьях социального риска (А А Баранов, 2003, Л А Щеплягина, 2004, Н А Красавина, 2006, Е Д Басманова, 2006), в которых имеется одновременно высокий риск заболевания туберкулезом (ЮП Пивоваров, 1997, О И Король, 1999) Однако состояние противотуберкулезного иммунитета после вакцинации БЦЖ у детей с гипотрофией не исследовано
Сдерживающим фактором в изучении иммунных аспектов противотуберкулезной вакцинации у детей с отклонениями в состоянии здоровья является отсутствие у педиатров объективных критериев оценки напряженности противотуберкулезного иммунитета Несмотря на многолетние исследования по иммунологической пере-
стройке организма ребенка, наступающей после внутрикожного введения вакцины БЦЖ (В И Пузик, 1966, А А Ефимова, 1968, МА Авербах, В И Литвинов 1970, 1976, Л А Митинская, 1975) и бесспорные доказательства эффективности специфической иммунопрофилактики туберкулеза, вопросы, связанные с индивидуальной оценкой напряженности противотуберкулезного иммунитета, разработаны только на экспериментальном материале (ММ Авербах, В И Литвинов, 1970, В И Литвинов, В А Клюев, 1971, А К Абрамовская, 1981) У детей эта проблема остается открытой, так как рекомендуемые для этой цели туберкулиновые пробы и величина поствакцинального рубчика не имеют строгого параллелизма с состоянием резистентности против туберкулеза, особенно в отдаленные сроки после вакцинации (М М Авербах, 1970, А А Ефимова, 1973, Л А Митинская, 1975, ЛФ Буренкова,1975) Клеточно-опосредованные иммунологические реакции, характеризующие состояние Т-клеточного звена иммунитета (М М Авербах, 1970, Г Н Калмыкова, 1973, В Я Гер-герт, 1976), из-за трудности индивидуальной оценки результатов, не позволили им «прижиться» в практической педиатрии
Исходя из вышеизложенного, в педиатрии велика необходимость в простых и надежных тестах, позволяющих оценить напряженность противотуберкулезного иммунитета у любого вакцинированного ребенка с соматической патологией На кафедре патофизиологии ПГМА под руководством профессора В Н Каплина были разработаны методы диагностики, основанные на ранних специфических реакциях клеток крови (нейтрофилов, лимфоцитов) при инфекционных заболеваниях и вакцинации (ГИ Лузина, 1987, ЛП Санакоева, 1988, ЛН Шляпникова, 1989, АХ Мамунц, 1992, Л Г Казанцева, 1993, ТВ Касимова, 1998, ДР Хачапуридзе, 2001) Исследований с применением комплекса этих специфических реакций, характеризующих функциональное состояние фагоцитарного звена, клеточного и гуморального звеньев иммунитета, для контроля за течением БЦЖ-вакцинного процесса и формированием противотуберкулезного иммунитета у детей не проводилось Существующие на сегодня жесткие регламентированные сроки противотуберкулезной вакцинации и ревакцинации не исключают возможности научных исследований в направлении индивидуальной оценки противотуберкулезного иммунитета. Необходимость изучения этих вопросов диктуется еще и тем, что в современной эпидемиологической обстановке возрастает доля детей дошкольного возраста среди инфицированных и больных туберкулезом (В А Аксенова, 2005), что указывает на угасание противотуберкулезного иммунитета к этому периоду (А А Ефимова, 1968, В М Борис, 1982)
Цель исследования
Установить особенности формирования противотуберкулезного иммунитета после вакцинации БЦЖ в эксперименте, у здоровых детей и детей раннего возраста с гипотрофией 2-3 степени, применив комплекс методов, основанных на выявлении специфических реакций клеток крови и антителообразования
Задачи исследования
1 Определить в динамике становление противотуберкулезного иммунитета в условиях экспериментального БЦЖ-вакцинного процесса с помощью комплекса лабораторных тестов, включающих определение количественного и качественного состава лейкоцитов крови, состояния фагоцитарной защиты, специфических изменений ФАЛ крови, специфической адгезивной способности лимфоцитов крови и специфического антителообразования
2 Выявить возрастные особенности формирования противотуберкулезного иммунитета при экспериментальном БЦЖ-вакцинном процессе
3 Усовершенствовать метод диагностической оценки определения специфической адгезивной способности лимфоцитов крови при вакцинации БЦЖ
4 Обосновать возможность применения предложенного комплекса специфических реакций для индивидуальной оценки активности БЦЖ-вакцинного процесса и состояния противотуберкулезного иммунитета у детей
5 Дать клиническую характеристику БЦЖ-вакцинному процессу у здоровых детей и определить закономерности становления у них противотуберкулезного иммунитета в динамике поствакцинального периода с помощью комплекса специфических тестов, апробированных в эксперименте
б Определить клинические особенности гипотрофии 2-3 степени тяжести у детей Пермского региона, оценить состояние системы противомикробной защиты, выявить у них особенности течения БЦЖ-вакцинного процесса и формирования противотуберкулезного иммунитета с помощью апробированного в эксперименте и у здоровых детей комплекса специфических реакций
Научная новизна
Впервые проведено комплексное клинико-экспериментальное исследование по вакцинации БЦЖ в Пермском регионе, включающее оценку клинического течения вакцинного процесса, состояния естественной противоинфекционной защиты организма, реакций специфического иммунитета (специфических изменений ФАЛ крови, специфической адгезивной способности лимфоцитов крови, специфического антите-лообразования), результаты которого необходимы для эффективной организации специфической профилактики туберкулеза в условиях детской поликлиники
Впервые в регионе изучено течение БЦЖ-вакцинного процесса у здоровых детей и детей с тяжелыми расстройствами питания по типу гипотрофии и выявлены клинические особенности его течения Показано, что у здоровых детей эффективность вакцинации, определяемая по размерам прививочных, рубчиков, за 20 лет сохраняется стабильной, течение прививочной реакции не изменилось, а послевакцин-ная аллергия по пробе Манту с 2 ТЕ ППД-Л в первые 2 года после вакцинации стала выявляться чаще У детей с гипотрофией установлены отклонения от физиологического течения вакцинного процесса, проявляющиеся медленным развитием кожной прививочной реакции, с более частым вовлечением в процесс регионарных лимфатических узлов, с большей частотой осложнений, в редком развитии послевакцинной аллергии и рубчиков оптимальной величины
Впервые в экспериментальных условиях для контроля за течением БЦЖ-вакцинного процесса применен комплекс специфических реакций, включающий индивидуальную оценку специфических изменении ФАЛ крови, специфической адгезивной способности лимфоцитов крови и продукции специфических антител Установлено, что данный комплекс реакций многогранно характеризует становление противотуберкулезного иммунитета и может использоваться для его индивидуальной оценки в любой срок поствакцинального периода. Показана высокая эффективность оценки специфических изменений ФАЛ крови в определении активности вакцинного процесса и состояния противотуберкулезного иммунитета, специфической адгезивной способности лимфоцитов - в определении состояния противотуберкулезного иммунитета и его напряженности, но малая информативность определения специфических антител для оценки противотуберкулезного иммунитета Установлены в эксперименте возрастные особенности формирования специфических реакций при противотуберкулезной вакцинации, и выявлено влияние возраста на клеточное звено противотуберкулезного иммунитета
Усовершенствован метод исследования специфической адгезивной способности лимфоцитов крови с унифицированной количественной оценкой реакции по ИС-РО, позволяющему после вакцинации БЦЖ выявлять индивидуальное состояние напряженности противотуберкулезного иммунитета
Впервые применен предложенный комплекс специфических реакций для индивидуальной количественной оценки специфического иммунного ответа у здоровых детей в динамике БЦЖ-вакцинного процесса Установлен характер, выраженность и продолжительность специфических реакций в организме вакцинированных детей, свидетельствующих об угасании противотуберкулезного иммунитета через 3 года после вакцинации по всем специфическим показателям (кожному рубчику, туберкулиновой чувствительности, ИСФэаг> ИСА, ИСРО)
Впервые дана клиническая характеристика тяжелых расстройств питания по типу гипотрофии у детей в Пермском регионе и особенности формирования у них противотуберкулезного иммунитета после БЦЖ-вакцинации Установлен высокий процент детей первых 4-х месяцев жизни среди детей с тяжелой гипотрофией, выявлена большая распространенность у них недостаточности фагоцитоза. Показано, что противотуберкулезный иммунитет достигает у них наибольшей напряженности через 5-9 месяцев с последующим быстрым угасанием через 1 год
Изучены взаимосвязи предложенных специфических реакций и связь их с туберкулиновой чувствительностью по пробе Манту с 2 ТЕ ППД-Л и величиной после-
вакцинного рубчика Показано, что для оценки противотуберкулезного иммунитета преимущество имеют изученные специфические реакции клеток крови, выявляющие иммунный ответ даже при отсутствии прививочного рубчика и отрицательной пробе Манту
Практическая значимость
Работа направлена на решение проблемы индивидуальной оценки противотуберкулезного иммунитета у детей, вакцинированных БЦЖ, и в перспективе - повышения эффективности противотуберкулезной вакцинации
Предложенный комплекс специфических реакций, простых в выполнении и высоко информативных, позволяет осуществлять индивидуальный контроль за течением иммунологического процесса после вакцинации БЦЖ, за формированием специфического иммунитета Фагоцитарный тест и исследование специфической адгезивной способности лимфоцитов крови позволяют индивидуально и дифференцированно от периода вакцинального процесса оценить характер, интенсивность и длительность изменений, вызванных вакциной БЦЖ В связи с этим, методы перспективны для изучения проблемы формирования противотуберкулезного иммунитета у детей с различной хронической патологией, с осложненным течением вакцинного процесса, с отсутствием кожного рубчика, с отрицательной пробой Манту с 2 ТЕ ППД-Л
Полученные данные о иммунобиологической реактивности здоровых детей и детей с тяжелой гипотрофией, вакцинированных БЦЖ, необходимы педиатрам для адекватного наблюдения за клиническим течением вакцинного процесса и раннего выявления осложнений с последующей своевременной консультацией фтизиопедиат-
Ра
Определены практические рекомендации по применению методов исследования специфического изменения ФАЛ крови, специфической адгезивной способности лимфоцитов крови, специфического антителообразования у детей после вакцинации БЦЖ Показан низкий иммунизирующий эффект вакцины БЦЖ у детей с гипотрофией 2-3 степени, что является основанием считать этих детей группой риска по заболеванию туберкулезом
Полученные данные о причинах развития тяжелых расстройств питания по типу гипотрофии у детей раннего возраста в Пермском регионе позволят сконцентрировать усилия многих служб для организации и осуществления комплекса профилактических мероприятий и ранней диагностики этого заболевания
Внедрение результатов исследования
Результаты исследования иммунобиологической реактивности детей, вакцинированных БЦЖ, внедрены в работу иммунологических лабораторий и используются в работе поликлиник ДГКБ №13, ДГКБ №15 и Пермской краевой детской клинической больницы Полученные данные по клиническим аспектам противотуберкулезной вакцинации используются в учебном процессе на кафедре педиатрии ФПК и ППС ГОУ ВПО «ПГМА им ак Е А Вагнера Росздрава» По результатам исследований изданы информационное письмо «Фагоцитарный тест в диагностике туберкулезной инфекции и в оценке противотуберкулезной вакцинации у детей» (г Пермь, 1995) и методические рекомендации «Применение метода диагностического определения специфической фагоцитарной реакции у детей при вакцинации БЦЖ и туберкулезной инфекции» (г Пермь, 2006) Методы определения специфических изменений ФАЛ крови и специфической адгезивной способности лимфоцитов крови могут быть использованы в ЛПУ после включения их в медико-экономические стандарты для иммунологических лабораторий
Личное участие автора
Автором проведены анализ всей необходимой медицинской документации, клиническое обследование детей, вакцинация БЦЖ кроликов и весь период наблюдения за ними Автором выполнены все специфические дополнительные лабораторные исследования у экспериментальных животных, детей, взрослых (исследование ФАЛ крови, определение специфического изменения ФАЛ, специфической адгезивной способности лимфоцитов, РИГА), анализ истатистическая обработка полученных результатов
Апробация работы
Основные положения диссертации обсуждены на 9-й Межинститутской научной конференции (Челябинск, 1989), на 4-ом Всесоюзном съезде патофизиологов (Кишинев, 1989), на 2-й научной межвузовской конференции «Актуальные вопросы клинической педиатрии, акушерства и гинекологии» (Киров, 1993), на 1-й научно-практической конференции Ассоциации детских врачей Пермской области (Пермь, 1996), на Всероссийском симпозиуме (с международным участием) «Клиническая лаборатория на пороге XXI века синтез традиций и новаций (аналитика, диагностика, техника, экономика» (Москва, 1999), на областной научной конференции молодых ученых «Молодежная наука Прикамья» (Пермь,2000), на Всероссийской конференции «Внутриутробные инфекции плода и новорожденного» (Саратов, 2000), на 5-й Международной научной конференции «Здоровье семьи - 21 век» (Мармарис, 2001), на I Всероссийской научно-практической конференции «Здоровье и образование ребенка» (Пермь, 2002), на 2-й конференции иммунологов Урала (Пермь, 2002), на научной сессии ПГМА (Пермь, 1998, 2001), на II Всероссийской научно-практической конференции «Здоровье и образование» (Пермь, 2004), на Юбилейной научной сессии ПГМА им ак Е А Вагнера (Пермь, 2006), на 9-м Всероссийском съезде эпидемиологов, микробиологов и паразитологов (Томск, 2006), межкафедральных заседаниях по педиатрии и фтизиатрии ГОУ ВПО «ПГМА Росздрава» (2003,2007)
Публикации
По материалам исследования опубликовано 25 работ, в том числе 5 статей в центральных журналах рецензируемых ВАК РФ, 1 информационное письмо по рекомендации управления научных исследований МЗ и МП РФ от 21 12 1994, 1 методические рекомендации ГОУ ВПО ПГМА им ак Е А Вагнера Имеются 3 патента на изобретения
Объем и структура работы
Диссертационная работа изложена на 510 страницах машинописного текста Состоит из введения, пяти глав, заключения, выводов и рекомендаций практическому здравоохранению Указатель литературы включает 311 отечественных и 68 иностранных источников Работа иллюстрирована 21 рисунками, 130 таблицами, содержит 2 клинических примера
Положения, выносимые на защиту
1 Экспериментальный БЦЖ-вакцинный процесс сопровождается фазным течением кожной прививочной реакции, количественными и качественными изменениями лейкоцитов крови, изменением состояния фагоцитарной защиты, специфическим повышением ФАЛ крови, повышением специфической адгезивной способности РОЛ крови и специфическим антителообразованием, отражающих формирование противотуберкулезного иммунитета, на становление которого влияет возраст экспериментальных животных
2 Для индивидуальной оценки эффективности противотуберкулезной вакцинации у детей наряду с послевакцинным рубчиком, туберкулиновой чувствительностью по пробе Манту с 2 ТЕ ППД-Л рекомендуется применять комплекс методов, выявляющих специфический иммунный ответ исследование специфических изменений ФАЛ крови, определение специфической адгезивной способности лимфоцитов крови и РИГА с модифицированным способом оценки
3 У детей с гипотрофией 2-3 степени эффективность противотуберкулезной вакцинации ниже, чем у здоровых детей Дети с гипотрофией имеют недостаточность фагоцитарной защиты, отклонения от физиологического течения БЦЖ-вакцинного процесса, которые сопровождаются нарушением нормального механизма формирования адаптивного противотуберкулезного иммунитета
Автор выражает глубокую благодарность безвременно ушедшему заел деятелю науки РФ, д мн, профессору В Н Каплину, заел деятелю науки РФ, дмн, профессору ИП Корюкиной, академику РАН и РАМН, дмн, профессору В А Черешневу, профессору В А Четвертных, зав лабораторией БАП НПО Биомед, кбн ГМ Сафоновой зав отделением раннего возраста Пермской КДКБ С Г Ефишовой, зам главного врача по поликлинике детской больницы №15 НН Широковой, зам главного врача по поликлинике детской больницы №13 ТА Федорович
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ
Материалы и методы исследования
Клинико-эксперименталыгое исследование было проведено в период 1996-2006 гг в г Перми Для экспериментальных целей использованы 18 животных 8 половозрелых и 10 неполовозрелых кроликов породы шиншилла, предоставленных из питомника Пермского НПО «Биомед» Были созданы 2 экспериментальные модели БЦЖ-вакцинного процесса В эксперименте №1 использовали 8 половозрелых кроликов массой тела от 2830 до 4050г (2830±190г), из них 7 кроликов вакцинированы внутри-кожно вакциной БЦЖ в дозе 0,05 мг (серия 10 К 638, годн июнь 2001г, г Ставрополь) У всех животных до вакцинации и в различные сроки после нее (через 1, 5, 7 сут, 2, 3 нед , 1, 1,5, 2, 2,5, 3, 4, 5, 6 мес ) исследовали характер и величину кожного прививочного знака, количество лейкоцитов и лейкоцитарную формулу периферической венозной крови, неспецифические показатели ФАЛ крови (ФЧ, ИАФСТ) Из специфических показателей прошвотуберкулезаого иммунитета определяли специфические изменения ФАЛ крови (ИСФЭаг, ИСФЭк), продукцию противотуберкулезных антител (ИСТ), специфическую адгезивную способность РОЛ крови (процент РОЛ, ИСА, ИСРО) В эксперименте №1 в качестве контроля использовали результаты исследования этих же кроликов до иммунизации, а также 1 не вакцинированного кролика, обследуемого каждый раз с иммунизированными животными
В эксперименте №2, проведенном через 5 месяцев после окончания эксперимента №1, использовали 10 неполовозрелых кроликов массой тела от 2050 до 2350 г (2166±33 г, в сравнении с экспериментом №1, р=0,001), из них 6 животных были вакцинированы внутрикожно вакциной БЦЖ в дозе 0,05 мг (серия 10 К 638, годн июнь 2001г, г Ставрополь), а 4 не вакцинированных кролика составили контрольную группу на каждый день исследования В эксперименте №2 исследования проводились до и после противотуберкулезной иммунизации в те же сроки, что и в эксперименте №1, и дополнительно - через 3, 10 и 17 суток после вакцинации, продолжительность наблюдения была короче - до 3-х месяцев В эксперименте №2 у кроликов изучались только специфические показатели противотуберкулезного иммунитета При исследовании продукции AT дополнительно проведено определение ПТАТ класса IgM При выполнении экспериментов соблюдались «Правила проведения работ с использованием экспериментальных животных»
Для выполнения клинической части работы обследованы 507 человек, в том числе 414 детей и 93 взрослых Было выделено 2 основные группы детей, вакцинированных БЦЖ 1-я группа - 225 практически здоровых детей, в том числе 115 мальчиков и 110 девочек, обследованных через 1, 1,5, 2, 3-4, 5-9 мес, 1-1,5 г, 2, 3, 4, 5-6, 7 лет после прививки, 2-я группа - 160 детей с гипотрофией 2-3 ст, в том числе 81 мальчик и 79 девочек, обследованных через 1-1,5, 2, 3-4, 5-9 мес, 1-1,5 г, 2 г после противотуберкулезной иммунизации
Контрольную группу составили 29 детей, неинфицированных микобактериями, в том числе 21 ребенок без вакцинации БЦЖ (14 мальчиков и 7 девочек, контрольная группа №1), 8 детей в отдаленные сроки после вакцинации БЦЖ (более 4 лет, 3 мальчика и 5 девочек, контрольная группа №2), и 93 здоровых взрослых 19-35 лет, неинфицированных микобактериями (доноры, студенты, контрольная группа №3) Распределение детей в зависимости от возраста представлено в таблице 1
Таблица 1
Распределение детей в зависимости от возраста
Клиническая группа 1-4 мес 5 мес-1 г 2 г 3-4 г 5-7 лет
1-я основная (п = 225) 42 61 29 48 45
2-я основная (п = 160) 82 70 8 - -
Контрольная № 1 (п = 21) 18 3 - - -
Контрольная № 2 (п = 8) - - - - 8
Дети 1-й основной группы проживали в г Перми и наблюдались в поликлиниках ДГКБ №13, №15 Отбор детей в группу здоровых вакцинированных БЦЖ, проведен на основании комплексной оценки состояния здоровья (приказ МЗ РФ № 621 от 30 12 2003) В группу включены практически здоровые дети, в том числе с 1-й группой здоровья - 35 (15,6%) и 2-й группой здоровья - 190 детей (84,4%), вакцинированные БЦЖ, неинфицированные микобактериями, не имеющие среди родственников больных туберкулезом и указаний на контакт с больным туберкулезом, не болевших ранее дизентерией Зонне Отбор детей для лабораторного обследования проводился в соответствии со следующими критериями срок после вакцинации БЦЖ 1 мес-7 лет, отсутствие на момент взятия анализов острых заболеваний, наличие информированного согласия родителей
Дети с гипотрофией (2-я основная группа), вакцинированные БЦЖ, наблюдались в отделении раннего возраста Пермской КДКБ и обследовались согласно существующим медико-экономическим стандартам (приказ № 132 от 10 03 2004, г Пермь) Диагноз ставился на основании данных анамнеза, клинического симптомо-комплекса и результатов лабораторного обследования, с использованием существующей классификации хронических расстройств питания (Г И Зайцева, Л А Строганова, 1981г) Клинические аспекты течения гипотрофии изучены у 160 детей Отбор детей с гипотрофией для специального лабораторного исследования состояния противоинфекционной защиты и противотуберкулезного иммунитета проводился в соответствии со следующими критериями наличие постнатальной гипотрофии 2-3 ст тяжести экзогенной этиологии, срок после поступления в стационар 10-14 дней, отсутствие на момент взятия анализов острой инфекции, срок после вакцинации БЦЖ 1 мес - 2 года, наличие информированного согласия родителей
У вакцинированных детей обеих основных групп при анализе медицинской документации - «Истории развития ребенка» ф 112у, фОбЗу, ф 02бу, особое внимание уделено данным по вакцинации БЦЖ (дате вакцинации, дозе вакцины, записи педиатра об осмотре местной прививочной реакции в 1, 3, 6 мес и 1 год), состоянию здоровья ребенка в первые 4 месяца после вакцинации, результатам пробы Манту с 2 ТЕ ППД-Л за предшествующий период, при опросе - эпидемиологическому анамнезу по туберкулезу и дизентерии Зонне (заболеваемости родственников туберкулезом, контактам с больным туберкулезом, наличии дизентерии в анамнезе), при клиническом осмотре - характеру и величине местной прививочной реакции, состоянию регионарных лимфатических узлов, при обследовании - оценке результатов пробы Манту с 2 ТЕ ППД-Л
Количество детей 2-х основных групп, обследованных на состояние фагоцитарной защиты и противотуберкулезного иммунитета, отражено в табл 2
Таблица 2
Количество детей основных групп, обследованных на показатели фагоцитарной _защиты и противотуберкулезного иммунитета __^
Основная группа Туберкулиновая чувствительность по пробе Манту с 2 ТЕ ППД-Л Уровень фагоцитарной защиты Специфические изменения ФАЛ Специфическая адгезия лимфоцитов Специфическое антателообра-зовзние Определение ПТАТЧдМ
№ 1 157 132 219 132 115 115
№2 20 76 90 46 67 39
У детей и экспериментальных животных применялись единые методы дополнительного лабораторного обследования для оценки уровня фагоцитарной защиты и специфического противотуберкулезного иммунитета (В Н Каплин,1996) На все методы получены патенты Все исследования проведены автором работы на базе научной лаборатории кафедры патофизиологии ПГМА им ак Е А Вагнера
Для оценки состояния системы противомикробной защиты применен метод исследования ФАЛ крови с модифицированным способом оценки по индексу активности фагоцитов, соотнесенному со стандартами (В Н Каплин с соавт, 1999) В качестве ОФ использовали формалинизированные эритроциты барана (ФЭБ) с концентрацией 50-60 млн/мл, изготавливаемые в НПО «Биомед» Время экспозиции крови с ФЭБ 20 минут ФАЛ крови оценивали путем определения среднего числа поглощенных ОФ на 1 нейтрофил из 100 сосчитанных (ФЧ) и индекса активности фагоцитов (ИАФ), рассчитываемого делением суммы объектов, поглощенных активными фаго-
цитами (поглотивших 3 и более объектов), на сумму малоактивных фагоцитов (поглотивших 1-2 объекта) Оценку проводили по индексу активности фагоцитов, соотнесенного со стандартом, для этого индекс активности фагоцитов обследуемого делили на величину индекса в стандарте с такой же величиной ФЧ, как у обследуемого, ИАФСТ У детей при величине индекса ниже 0,7 диагностировали недостаточность фагоцитарной защиты, выше 1,4 - ее активацию, при величине 0,7-1,4 диагностировали нормальный уровень активности фагоцитов У экспериментальных животных были разработаны свои стандарты, критерии оценки приведены в табл 3
Таблица3
Специфические показатели противотуберкулезного иммунитета у кроликов и у детей
Специфические реакции Специфические показатели Нормативные значения V кроликов Нормативные значения у детей
Состояние системы фагоцитарной защиты ИАФст 0,5-1,7 0,7-1,4
Иммунная фагоцитарная реакция ИСФэаг 0,2-2,0 0 6-1,5
Фагоцитарная реакция, выявляющая бактериемию ИСФэк 0,2-2,0 0,6-1,5
Специфическая адгезиваная способность РОЛ ИСА 0,4-1,5 0,4-1,8
Специфическая адгезивная способность РОЛ 1-го класса ИСРО 0-0,9 Менее 2,0
Исследование ПТАТ в РИГА ист 0,5-2,0 Более 4,0
Для исследования специфических изменений ФАЛ крови использовали метод диагностического определения специфических изменений фагоцитоза (В Н Каплин с соавт, 1990) Исследование ФАЛ проводилось в одной пробе крови со смесью взвесей специфического и контрольного ОФ В качестве ОФ использовали эритроциты из коммерческих стандартных эритроцитарных антигенных сухих диагностикумов, выпускаемых для РИГА (РАО «Биопрепарат» Санкт-Петербургский НИИВС), с фиксированными на них специфическими субстанциями микобактерий (туберкулезный фосфатид, специфический объект) и шигелл Зонне (контрольный объект) Использовали два вида эритроцитов, содержащих специфические субстанции микробов различной структуры Применение ЭД различной структуры было необходимо для индикации двух вариантов специфических изменений фагоцитоза Для определения специфического изменения фагоцитоза, обусловленного иммунной реакцией, применяли эритроциты, содержащие антиген (Эаг) Для определения специфической реакции, обусловленной непосредственным воздействием на фагоциты циркулирующих в крови микробных субстанций, использовали эритроциты, содержащие комплекс АГ+АТ+ПСХ (Эк) для выявления специфического изменения ФАЛ крови, обусловленного иммунной реакцией, в качестве специфического ОФ применяли Эаг/туб, в качестве контрольного - Эаг/диз Для микроскопического различения в мазках эритроцитов из разных ЭД проводили предварительную окраску Эаг/диз раствором анилинового красителя черного цвета Для исследования использовали взвесь Эаг/туб с конценрацией эритроцитов 60 - 80 млн/мл и взвесь Эаг/диз с концентрацией клеток 80 - 100 млн/мл Для определения реакции, возникающей в результате прямого контакта бактериальных субстанций с фагоцитами, использовали эритроциты со сложным комплексом (Эк) Для их приготовления использовали уже готовые рабочие взвеси Эаг/диз и Эаг/туб, соответствующие им иммунные сыворотки активностью в РИГА 816 ГЕ (сыворотки входят в комплект коммерческих ЭД), надосадочную жидкость центрифугата взвеси соответствующих нативных бактерий (вакцины БЦЖ и бактерий Зонне) активностью в РТНГА 5 АЕ Использовали для исследования взвесь Эк/туб с концентрацией клеток в ней 60 - 80 млн/мл и взвесь Эк/диз с концентрацией эритроцитов - 80-100 млн/мл При исследовании ФАЛ использовали смесь специфического и контрольного объектов в соотношении 1 1 У обследуемых лиц брали кровь из пальца или из вены в объеме, 0,1 мл или 0,5 мл, соответственно, и стабилизировали раствором глюгицира (соотношение 4 1) Пробу крови в объеме 5 мкл вносили в лунку
планшета для иммунологического исследования Добавляли равный объем смеси взвесей специфических и неспецифических объектов, выдерживали в течение 15 минут в термостате при температуре 37°С Далее из каждой пробы делали мазки на предметном стекле, фиксировали в метаноле 3 минуты, высушивали, окрашивали по Романовскому-Гимзе Мазки микроскопировали под иммерсионным объективом и учитывали фагоцитоз одновременно двух объектов - специфического и контрольного, дифференцируя их по окраске Учитывали поглотительную способность 100 лейкоцитов Определяли сумму фагоцитированных объектов каждого вида По результатам подсчета вычисляли для каждого ОФ фагоцитарное число (ФЧ) - среднее число фагоцитированных объектов каждого вида на один из подсчитанных леикоцитов По такой же методике проводили исследование ФАЛ крови у контрольных лиц Количественную оценку ФАЛ у обследуемого осуществляли не по абсолютным значениям ФЧ, а путем расчета индекса специфического фагоцитоза (ИСФ) Для расчета ИСФ у обследуемых использовали средние данные ФАЛ контрольных лиц Значения ФЧ каждого объекта вакцинированных детей или экспериментальных животных выражали в процентах от средней величины ФЧ соответствующего объекта у контрольных лиц ИСФ рассчитывали по формуле
ФЧВС„ х 100% ФЧВНССП х 100 %
ИСФ =-:-
Ср ФЧс к Ср ФЧк„есп
где - ФЧ всп - фагоцитарное число специфического объекта у вакцинированных, ФЧвнесп - фагоцитарное число неспецифического объекта у вакцинированных, Ср ФЧ ксп - среднее значение фагоцитарного числа специфического объекта у контрольных лиц (или животных), Ср ФЧкнесп - среднее значение фагоцитарного числа неспецифического объекта у контрольных лиц (или животных)
У детей величина индекса выше 1,5 указывала на относительное повышение фагоцитоза специфического объекта (специфическое повышение ФАЛ), а ниже 0,6 -на его снижение (специфическое снижение ФАЛ) Трактовку значений ИСФ в отношении различных ОФ проводили в соответствии со следующими критериями
- ИСФэаг более 1,5 свидетельствовал о повышении фагоцитоза Эаг/туб, обусловленном иммунной реакцией,
- ИСФэаг менее 0,6 свидетельствовал о снижении фагоцитоза Эаг/туб, обусловленном специфической аллергией,
- ИСФЭк более 1,5 или менее 0,6 свидетельствовал о повышении или снижении, соответственно, фагоцитоза Эк/туб, обусловленном циркуляцией в крови субстанций БЦЖ
Степень отклонения величины ИСФ от нормальных значений отражала выраженность этой реакции
Для исследования специфического розеткообразования лимфоцитов использовали модифицированный метод определения специфической адгезивной способности лимфоцитов крови (Л П Санакоева с соавт, 2007) В качестве объектов адгезии использовали эритроциты из тех же коммерческих сухих антигенных эритроцитарных диагностикумов для РНГА антигенного туберкулезного (Эаг/туб, специфический объект) и шигеллезного Зонне (Эаг/диз, контрольный объект), выпускаемых для РНГА РАО «Биопрепарат» Санкт-Петербургским НИИВС Эаг/диз предварительно окрашивали анилиновым красителем черного цвета Использовали взвесь Эаг/туб с концентрацией 80-100 млн/мл и взвесь Эаг/диз с концентрацией клеток 100 млн/мл Непосредственно перед проведением исследования взвеси Эаг/туб и Эаг/диз смешивали в соотношении 1 1 Кровь обследуемого в объеме 0,1 мл стабилизировали раствором глюгицира в соотношении 4 1, отстаивали 30 минут при комнатной температуре и отсасывали плазму с лейкоцитами, не опасаясь небольшой примеси эритроцитов Взвесь лейкоцитов в объеме 10 мкл вносили в лунку микропланшета для РНГА, смешивали с равным объемом смеси взвесей Эаг/туб и Эаг/диз и выдерживали при комнатной температуре 8 минут Далее из каждой пробы делали мазки на предметном стекле, фиксировали в метаноле 3 минуты, высушивали, окрашивали по Романовскому-Гимзе Мазки микроскопировали под иммерсионным объективом и учитывали одновременно количество Эаг/туб и Эаг/диз, адгезированных РОЛ, и лимфоцитами, ад-гезировавшими по 1 объекту В группу розеткообразующих включали лимфоциты с адгезией трех и более объектов одной специфичности Учитывали 30 РОЛ и 20 лим-
фоцитов с адгезией одного объекта Производили диагностическую оценку специфической адгезии по унифицированному количественному критерию - индексу специфической адгезии (ИСА), рассчитываемому по формуле
диз
ИСА =
А(1Г6/А(1)'
ЛЮ
где Арол иАролаиз - суммы адгезии Эаг/туб и Эаг/диз у розеткообразующих лимфоцитов, А (1) 'у и А (1)диз- суммы адгезии тех же объектов у лимфоцитов, адгези-ровавших по одному объекту
У детей при величине ИСА выше 1,8 диагностировали наличие специфического иммунного ответа Способ позволял обходиться без формирования контрольной группы
Далее проводили количественный учет Эаг/туб и Эаг/диз, адгезированных только РОЛ, в зависимости от расположения объектов на мембране клеток Выделяли РОЛ 1-го класса и РОЛ 2-го класса. К РОЛ 1-го класса («иммунные» РОЛ) относили РОЛ, представленные розетками первого порядка (не менее 3-х объектов одной специфичности, расположенных плотно друг к другу, «полюсно» или тотально по всей поверхности), и розетками второго порядка (не менее 3-х объектов одной специфичности, расположенных «полюсно», в сочетании с любым количеством объектов, расположенных на других участках мембраны клеток) К РОЛ 2-го класса относили РОЛ, представленные розетками третьего порядка (объекты одной специфичности, расположенные на мембране лимфоцитов в виде пар, в сочетании с любым количеством одиночно расположенных) и розетками четвертого порядка (РОЛ 4-го порядка, «диффузные», не менее 3-х объектов одной специфичности, с разрозненным расположением объектов на мембране лимфоцитов)
Подсчитывали в отдельности сумму адгезированных объектов разной специфичности в так называемых «иммунных» лимфоцитарных розетках (РОЛ 1-го класса), и в так называемых «диффузных» розетках (РОЛ 4-го порядка) Вычисляли индекс специфического расположения объектов (ИСРО) по формуле
где УрсДуб - сумма Эаг/туб, адгезированных розеткообразующими лимфоцитами, образующими «иммунные» розетки, £роиДиз - сумма Эаг/диз, адгезированных розеткообразующими лимфоцитами, образующими иммунные розетки, Еро туб и £родДНз -суммы эритроцитов из соответствующих туберкулезного и дизентерийного ЭД, адгезированных розеткообразующими лимфоцитами, образующими «диффузные» розетки
У детей при величине индекса 2,0 и выше диагностировали напряженный противотуберкулезный иммунитет, а при величине индекса ниже 2,0 - его отсутствие
Проводили также учет процентной доли РОЛ в зависимости от специфичности адгезированных объектов (РОЛ^ - с адгезией Эаг/тублц РОЛдш - с адгезией Эаг/диз) и от их расположения на мембране лимфоцитов (РОЛ у° 1-го и 2-го класса, РОЛдщ 1-го и 2-го класса)
Для исследования специфического антителообразования использовали метод диагностического исследования титров антител в РНгА с модифицированной оценкой (В Н Каплин с соавт, 1996) Продукцию АТ исследовали в РНГА классическим микрометодом, но с модифицированной оценкой результатов реакции, повышающей ее диагностическую значимость В качестве антигена для выявления в сыворотке крови циркулирующих ПТАТ применялся сухой туберкулезный (фосфатидный) ЭД для РНГА В качестве неспецифического контроля в реакциях антителообразования использован титр ПДАТ, исследуемый в РНГА с шигеллезным Зонне ЭД (оба ЭД производства РАО «Биопрепарат» Санкт-Петербургского НИИВС) АТ определяли путем последовательных двойных разведений сыворотки, начиная с 1 2 Титр определяли по конечному разведению, при котором еще имелась агглютинация на 3+ При оценке
ХрО туб /1ро'
И
ИСРО =
диз
2]рОД1ув/Его'
д
результатов РИГА был использован унифицированный показатель - индекс специфического сдвига титров антител (ИСТ), который рассчитывался по формуле
где Тв,уб - титр ПТАТ у вакцини , ___ титр ПДАТ у вакцинирован-
ных, СрТ^бИ СрТкди:Г средние титры ПТАТ и ПДАТ у контрольных лиц
У детей при значении ИСТ выше 4,0 констатировали специфический сдвиг титра AT, который свидетельствовал о повышенной продукции ПТАТ, при ИСТ ниже 0,5 - депрессию синтеза ПТАТ При значениях 0,5 - 4 - отсутствие специфического гуморального ответа
У экспериментальных вакцинированных животных стандарты ИАФСТ, нормативы всех специфических показателей противотуберкулезного иммунитета впервые были разработаны в настоящих исследованиях, эти результаты приведены в табл 3 Принцип оценки их аналогичен тому, что применялся у детей
Для учета ПТАТ, принадлежащих к разным классам иммуноглобулинов, использовали РИГА с применением 0,1М 2-меркаптоэтанола (2-МЭ) (HP Линг и Д Кэтти, 1991) Наличие ПТАТ класса IgM определяли путем добавления к сыворотке обследуемого 2-МЭ, который при наличии IgM вызывает диссоциацию IgM-пентамеров, в результате чего они утрачивают агглютинирующую способность Параллельное исследование в РНГА ПТАТ в сыворотке вакцинированных без добавления и с предварительным добавлением 2-МЭ позволяло по изменению титров AT (в 4 раза) обнаруживать ПТАТ-IgM Остаточные агглютинирующие свойства сыворотки были обусловлены наличием в ней ПТАТ-IgG
Для обработки полученного материала использовали программы Microsoft bxcel, BIOSTAT Оценивалась характеристика изучаемой выборки - нормальность распределения данных В случае нормального распределения данных использовали расчет среднего (выборочного) (М), выборочного стандартного отклонения (а) и стандартной ошибки среднего (ш) Достоверность различий между группами оценивали по парному (для зависимых выборок) и непарному (для независимых выборок) t-критерию Стьюдента при нормальном распределении Если распределение не соответствовало нормальному, то достоверность различий вычисляли по непараметрическому критерию Манна-Уитни Также для расчета достоверности между группами использовали критерий хи-квадрат При анализе качественных признаков рассчитывали долю (процентную характеристику), стандартную ошибку доли, а при сравнении процентного соотношения между двумя группами использовали критерий Z Степень связи между изучаемыми признаками определяли с помощью коэффициента корреляции (Спирмена, Пирсона) для количественных данных Различия или показатели связи считали статистически значимьми при р<0,05
В результате экспериментального исследования, проведенного у 7 половозрелых и 6 молодых кроликов, установлено, что на месте введения вакцины БЦЖ появлялась кожная реакция, которая имела фазное течение и ограничивалась сроками у половозрелых кроликов 7 сут -3 мес, у молодых 5 сут -3 мес У половозрелых кроликов инфильтративно-экссудативная фаза (стадия папулы, инфильтрата, пустулы) наблюдалась с 7 дня до 1 месяца, с развитием инфильтрата наибольшего диаметра через 2-3 недели (6,7±0,5 мм) и образованием пустулы у 4-х из 7 кроликов (57%) Продуктивная фаза (рассасывание инфильтрата и формирование узелка) у большинства кроликов начиналась через 1 месяц, с нарастанием процесса к 1,5-2 месяцам, и сопровождалась достоверным уменьшением размеров кожного знака (4,0±0,6, р<0,02) Фаза фиброза (внутрикожное уплотнение плоской или линейной формы), с 2-х месяцев, хорошо определяемая через 2,5 месяца у всех кроликов, через 3 месяца закончилась формированием рубчика (3,7±0,3 мм) Через 4-5 месяцев существенных изменений со стороны кожного знака не установлено Через 6 месяцев в единичном случае наблюдалось исчезновение кожного знака
Для течения кожной прививочной реакции у молодых кроликов было характерным раннее появление инфильтрации, протекающей более выраженно (рис 1) В начальный период и в разгар инфильтративной фазы, который по срокам совпадал с
ист=
Результаты исследования и их обсуждение
взрослыми, а также на высоте продуктивной фазы диаметр кожного знака у молодых кроликов был достоверно больше (р<0,05) Через 14 суток и с 2-х месяцев по диаметру кожного знака различий не выявлено Пустуляция инфильтрата наблюдалась раньше (через 2 недели) и в 3 раза реже (у 16,7 %,р<0,05) Фаза рассасывания и уплотнения наступала позднее, через 1 месяц она определялась только у 33% (у взрослых кроликов 85,7%) У молодых кроликов чаще, чем у взрослых, определялся рубчик менее 3 мм (33% и 0%, соответственно, р=0,000) Течение кожной прививочной реакции свидетельствовало о более низком иммунизирующем эффекте вакцины БЦЖ у молодых кроликов в сравнении с половозрелыми животными
Изменения состава клеток крови происходили параллельно фазам кожной реакции и иммуногенеза и позволяли наблюдать последовательность включения тех или иных иммунных механизмов Подтверждением тому являлась выявленная в инфильт-ративную фазу высокая прямая корреляционная связь между количеством лейкоцитов и диаметром папулы на месте введения вакцины (1=0,99, р=0,049), а также тенденция к высокой обратной связи между диаметром кожного знака и абсолютным содержанием лимфоцитов в крови в продуктивную фазу кожного процесса, с 1 мес до 2,5 мес, 0=0,93, р=0,06)
Инфильтративно-эксеудативная Продуктивная фаза Фаза фиброза
и 1-1-г—-J-1-1-1--1-1-—i
¡SSSKKerCT« fiS
И К W Ч tj 5 Я Я" ,„ Sf Я
н н н щ 3 ° Я «""«в;
>ч >1 >> Е[ О О О О О
« ° u ffs S § « s
—^ — взрослые кролики ■ молодые коолики
Рис 1 Сравнительная характеристика динамики диаметра кожного знака у кроликов разного возраста после вакцинации БЦЖ( *-по сравнению с взрослыми р<0,05)
Было установлено, что общее количество лейкоцитов в течение первых 3 недель после вакцинации существенно не менялось Начиная с 1 и до 4 месяцев, отмечались колебания их количества в пределах контрольных значений, а лейкоцитоз выявлен только через 2 месяца (16431±1552/мкл, против контроля 11626±1642/мкл, р<0,05) Фазовые колебания наблюдались наиболее отчетливо у моноцитов (рис 2) Они первыми отреагировали на вакцину в виде моноцитопении через 1 сутки В дальнейшем их количество снижалось накануне смены фаз воспаления в начале продуктивной фазы (через 1 мес ), при реактивации процесса (через 6 мес ) И наоборот, мо-ноцитоз наблюдался при нарастающем инфильтративном (через 7 сут ) и продуктивном процессах, в период хорошо выраженных иммунных реакций (через 2 мес) Характерной была динамика эозинофилов (рис 2)
конголь
эозинофшы - моноциты
Рис 2 Динамика моноцитов и эозинофилов венозной крови половозрелых кроликов после вакцинации БЦЖ (абс знач х109/л )
Эозинофилия, выявленная одновременно с моноцитозом в начале фазы инфильтрации (через 5-7сут) и в конце продуктивной фазы (через 2 мес ), свидетельствовала о нарастающей специфической сенсибилизации, идущей параллельно развитию реакциям иммунитета Но наиболее стабильными были изменения количества лимфоцитов и нейтрофилов В период развития специфических клеточных иммунных реакций между их относительными количествами выявлена высокая обратная корреляционная связь (1=0,95, р=0,000) (рис 3) %
90 80 70 60 50 40 30 20 10 0
75,36* 77,36*
63,64 бт 57 А" 70'43* 68,57
у 12* 75,21* 72,71* -т*г- -А 6° 07
62,21 59,86
30,14 31,57
30,64 ^^-Г00^ "»б 21,71* 17,71* 20,57^_
1Я 71* 22,14* Ъ'21
■нейтрофилы
—А—лимфоциты
Рис 3 Динамика нейтрофилов и лимфоцитов венозной крови иммунизированных кроликов в первые 6 месяцев после БЦЖ-вакцинации (*-по сравнению с исходным р<0,05)
Лимфоцитоз определялся с 1 месяца с наступлением продуктивной фазы и сохранялся после заживления кожного аффекта длительно до 6 месяцев Наибольшая степень лимфоцитоза выявлена через 2 и 2,5 месяца (12275±1011/мкл и 12249±820/мкл) Наряду с лимфоцитозом отмечалось волнообразное повышение в крови лимфобластов (через 2,5, 5, 6 мес ) Содержание нейтрофилов имело обратную динамику, снижение их в крови наблюдалось с 1 мес до 4 мес , с наименьшим их количеством через 1 и 1,5 месяца (1937±442/мкл и 1995±142/мкл)
Таким образом, оценка состава лейкоцитов крови, наряду с местной кожной реакцией, являлась еще одним критерием текущего иммунологического процесса
Исследование ФАЛ крови, как системного показателя естественной противо-микробной защиты, с оценкой поглотительной способности фагоцитов по ИАФСТ, проведенное сначала у невакцинированных кроликов для разработки стандартов ИАФ, показало, что у них, как и у людей, имелась отчетливая прямая линейная зависимость между ФЧ и ИАФ (0,93, р=0,006) Контрольные значения ИАФ у кроликов, рассчитанного по стандартам, составили 0,5-1,7 При значениях ИАФСТ ниже 0,5, констатировали недостаточность фагоцитарной защиты, а выше 1,7 - активацию фагоцитоза Было установлено, что после вакцинации БЦЖ у кроликов выявлялась активация фагоцитоза, имеющая двухволновый характер (рис 4)
Первая волна наблюдалась через 7 суток с появлением кожного инфильтрата, ИАФСТ повысился до 1,75±0,21 (контроль 1,09±0,03, р<0,05) Уровень ИАФСГ тесно коррелировал со средним диаметром кожного знака в период от 7 суток до 2,5 месяцев (г=0,85, р=0,02) ИАФсх достигал наибольшей выраженности через 3 недели (7,0±1,49) В этот период индивидуальный уровень ИАФСТ также коррелировал с диаметром инфильтрата (г—1,0, р=0,01б) Угасание инфильтративной реакции с одновременным нарастанием пролиферативных процессов в продуктивную фазу сопровождались нормализацией активности фагоцитов (через 2 месяца ИАФСТ снизился до 1,17±0,20, против контроля 1,09±0,03, р>0,05) Вторая волна активации ФАЛ наблюдалась с 3 до 5 месяцев, при уже зажившем кожном аффекте, была менее выраженной (через 3 месяца ИАФСТ 3,47±0,69, по сравнению с 3 неделями, р=0,04), что может свидетельствовать о реактивации вакцинного процесса и об активирующем действии вакцины БЦЖ на систему фагоцитарной защиты На всем протяжении наблюдаемого периода обратная связь наблюдалась в парах ФЧ - ИАФСТ (г=0,80, р=0,01) Нормализация показателей фагоцитоза произошла через 6 месяцев
Рис 4 Динамика ФЧ и ИАФШ У половозрелых кроликов после вакцинации БЦЖ (*-по сравнению с исходным р<0,05)
При индивидуальной оценке состояния фагоцитарной защиты выявлены в основном 2 ее варианта нормальное состояние и активация Наибольшее число случаев
с активацией фагоцитоза наблюдалось через 3-4 недели после прививки в фазу инфильтрации (83,3%-100%) и через 3 месяца в фазу фиброза (85,7%), а наибольшее число случаев с нормальными показателями ФАЛ - через 1,5-2,5 месяца в продуктивную фазу (71,4%) Корреляционной зависимости показателей ФАЛ и клеток крови не выявлено ИАФст - это интегральный показатель, фокусирующий на себе множественные регулирующие влияния систем организма, который является не только количественным показателем, а в большей мере - функциональным, отражающим активность вакцинного процесса и степень адекватности реакции противомикробной защиты на микробный стимул (В Н Каплин, 1996)
Изменения неспецифического фагоцитоза по времени совпадали со специфическим изменением ФАЛ крови и в последующем сопровождали их В связи с тем, что исследования специфических изменений ФАЛ крови у кроликов проводились впервые, сначала были проведены исследования ФАЛ у 18 невакцинированных кроликов, чтобы показать возможность применения у них данного метода. Установлено, что у них также, как и у людей, существует высокая прямая корреляционная связь между фагоцитозом Эаг/туб и Эаг/диз (по ФЧ г=0,99, р<0,001) и фагоцитозом Эк/туб и Эк/диз (по ФЧ 1=0,83, р<0,05), что позволило оценивать специфические изменения ФАЛ по ИСФЭаг и ИСФЭк Были определены нормативные значения ИСФ для кроликов (0,2-2,0), которые не зависимо от возраста животных и от времени исследования в двух экспериментах оказались одинаковыми, стабильными и могли использоваться как эталон для индивидуальной оценки специфических изменений ФАЛ у вакцинированных животных не только в рамках одного эксперимента, но и в разных экспериментах
У кроликов после вакцинации БЦЖ было установлено специфическое повышение фагоцитоза Эаг/туб Повышение ИСФэаг характеризующее иммунную реакцию, имело двухволновый характер (рис 5) Первая волна повышения начиналась через 7 дней с появлением кожного инфильтрата (ИСФЭаг повысился в 2,8 раза) Повышение ФАЛ определялось на протяжении всех 3-х фаз кожной реакции до 3 месяцев, достигало наибольшей выраженности через 10-21 день, превышая 6-15 раз контрольную величину (р<0,05) ИСФэаг сохранялся стабильно высоким на стадии инфильтрата и узелка (до 2 месяцев), снижаясь в фазу фиброза, через 2,5-3 месяца После образования рубчика через 4-5 месяцев реакция не выявлялась
—♦—ИСФЭаг -а- ИСФЭк
Рис 5 Динамика ИСФ-)аг и ИСФж У кроликов после вакцинации БЦЖ (*-по сравнению с исходным р<0,05)
Вторая волна менее интенсивного повышения фагоцитоза Эаг/туб, наблюдалась через 6 месяцев после вакцинации При индивидуальной оценке наиболее часто повышение фагоцитоза Эаг/туб определялось у кроликов в активный период кожной прививочной реакции с 10 суток (у 100%) до 3 месяцев с момента вакцинации
(87,5%) Наиболее редко реакция выявлялась через 5 месяцев - у 28,6% кроликов Через 6 месяцев наблюдалось увеличение частоты реакции до 57,1% Выявлена высокая прямая корреляционная связь средних значений ИСФЭаг и диаметра кожного знака в динамике поствакцинального периода (г=0,87, р <0,01)
При исследовании фагоцитоза Эк/туб, с оценкой ИСФЭк, характеризующего бактериемию, выявлены специфические изменения ФАЛ у большинства кроликов в виде ее повышения, также имевшие волнообразный характер (рис 5) Первая волна специфической реакции соответствовала активному периоду кожного процесса, с 5-х суток до 3-х месяцев, предшествовала появлению иммунной фагоцитарной реакции Средние значения ИСФэк были максимальными через 2-4 недели (4,57±1,23 и 5,43±1,95) Вторая волна установлена спустя 6 месяцев после иммунизации, уже при закончившемся кожном процессе Наиболее часто реакция вьивлялась в фазу кожного инфильтрата, через 2-3 недели (у 91,7% - 76,9% кроликов), и в период реактивации вакцинного процесса, через 6 месяцев (у 85,7%) В другие сроки реакция встречалась реже (до 2-х недель и после 1,5 месяцев) и была менее выраженной До 5-х суток и через 5 месяцев не выявлена ни у одного вакцинированного Имелась заметная прямая корреляционная связь между средними значениями ИСФЭаг и ИСФЭк в динамике поствакцинального периода с 7 дней до 6 месяцев(г= 0,58, р< 0,05)
Фагоцитарный тест (с одновременным учетом результатов фагоцитоза Эаг/туб и Эк/туб) оказался высокоспецифичным и чувствительным как в период активного вакцинного процесса с 10 суток до 3 месяцев, выявляя специфические изменения ФАЛ у 100% (через 10 сут) - 84,6% (через 1 мес) - 75% (через 3 мес), так и через 6 месяцев, выявляя специфическую реакцию у 85,7%
Результаты исследования ФАЛ с Эаг/туб и Эк/туб у молодых кроликов не выявили существенного влияния возраста на величину и частоту изменения ФАЛ крови во все сроки наблюдения, кроме 5 суток и 2-х недель Через 5 суток у молодых кроликов в 3 раза чаще определялась реакция, отражающая бактериемию (по ИСФЭк 50% и 14,3%, соответственно, р=0,000) Через 2 недели иммунная реакция у молодых животных была в 6 раз менее выраженной (ИСФэаг 3,40± 1,30 и 20,8±5,2, соответственно, р=0,004), и определялась в 2 раза реже, чем в группе половозрелых кроликов (у 50% и 100%, соответственно, р=0,000)
Таким образом, специфические изменения ФАЛ, выявленные после вакцинации БЦЖ, отражали процесс формирования противотуберкулезного иммунитета, характеризовали активность специфического процесса Повышение фагоцитоза Эаг/туб и Эк/туб в отдаленный период с момента вакцинации свидетельствовало о наличии противотуберкулезного иммунитета, поддерживаемого длительной персистенцией вакцинного штамма БЦЖ в организме иммунизированных животных, факт которой доказан многими исследователями (ОМ Бурькова, 1955, ММ Авербах, В И Литвинов, 1970, А К Абрамовская, 1981)
С целью оценки клеточного звена противотуберкулезного иммунитета изучена реакция специфического розеткообразования лимфоцитов крови Было установлено, что у ^кроликов до вакцинации в структуре РОЛ независимо от возраста преобладали РОЛдиз Доля РОЛту не превышала 23% в группе взрослых кроликов и 15% в группе молодых животных (р>0,05) Вследствие этого у кроликов до вакцинации суммарная адгезия неспецифических объектов РОЛ превышала суммарную адгезию специфических объектов (в 5 раз у взрослых и в 6,7 раз у молодых) Между АРОл и АРОл выявлена высокая прямая корреляционная связь (г=0,97, р<0,002), что позволило проводить оценку адгезивной способности РОЛ не по абсолютному количеству адзирован-ных объектов, отличающемуся большой вариабельностью, а по стабильному относительному показателю - ИСА Была рассчитана нормативная величина ИСА, которая в обеих возрастных группах невакцинированных кроликов оказалась одинаковой 0,4 -1,5 Была выявлена высокая прямая корреляционная связь между значениями АРол и ИСА (г=0,89, р=0,007)
Результаты анализа структуры РОЛ в зависимости от расположения объектов на мембранах клеток показали, что отличительной чертой у невакцинированных кроликов было отсутствие у них РОЛ 1-го класса с адгезией специфических объектов (рис 6) Все РОЛту были представлены исключительно РОЛ17 2-го класса Количество адгезированных специфических объектов в РОЛ 2-го класса также уступало суммарной адгезии неспецифических объектов (в 4 раза меньше у взрослых кроликов и в 5,3 раза меньше - у молодых) Была установлена тесная прямая корреляционная связь
между абсолютными величинами адгезии специфических и нешецнфических объектов и РОЛ 2-го класса (т=0,Эб, р=0,000), между абсолютными величинами адгезии специфических объектов РОЛ 2-ю класса и РОЛ 4-го порядка (1=0,60, р=0,011), между абсолютными величинами адгезии неепецифических объектов РОЛ 2-го класса и РОЛ 4-го порядка (г=0,79. р=1),02), Это позволило производить оценку адгезивной способности РОЛ1"' 1-го класса не но абсолютному количеству адгезированпых Эаг/туб, а но относительному показателю - ИСРО. Были определены его нормативные значения дли кроликов: 0-0,9.
В поствакцинальный период у кроликов обеих возрастных групп и структуре РОЛ установлены изменения одинаковой калравлеш юсти: происходило (¡срсрасп'рс-делегше процентного содержания РОЛ ц. адгезией объектов разной специфичности профессии