Автореферат и диссертация по медицине (14.00.36) на тему:Биологические свойства рекомбинантных белков ИЛ-18, ИЛ-18СБ и трансгенного растения Daucus carota L., несущего ген ИЛ-18 человека

ДИССЕРТАЦИЯ
Биологические свойства рекомбинантных белков ИЛ-18, ИЛ-18СБ и трансгенного растения Daucus carota L., несущего ген ИЛ-18 человека - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Биологические свойства рекомбинантных белков ИЛ-18, ИЛ-18СБ и трансгенного растения Daucus carota L., несущего ген ИЛ-18 человека - тема автореферата по медицине
Лопатникова, Юлия Анатольевна Новосибирск 2006 г.
Ученая степень
кандидата биологических наук
ВАК РФ
14.00.36
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Биологические свойства рекомбинантных белков ИЛ-18, ИЛ-18СБ и трансгенного растения Daucus carota L., несущего ген ИЛ-18 человека

На правах рукописи

ЛОПАТНИКОВА ЮЛИЯ АНАТОЛЬЕВНА

БИОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА РЕКОМБИНАНТНЫХ БЕЛКОВ ИЛ-18, ИЛ-18СБ И ТРАНСГЕННОГО РАСТЕНИЯ DAUCUS CAROTA L., НЕСУЩЕГО ГЕН ИЛ-18 ЧЕЛОВЕКА

14.00.36 - аллергология и иммунология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание учёной степени кандидата биологических наук

Новосибирск 2006

Работа выполнена в Государственном учреждении научно-исследовательском институте клинической иммунологии Сибирского отделения РАМН

Научный руководитель:

Доктор медицинских наук,

профессор Сенников Сергей Витальевич

Официальные оппоненты: доктор медицинских наук,

профессор Козлов Иван Генрихович

доктор медицинских наук Кожевников Владимир Сергеевич

Ведущая организация:

Государственное учреждение Научно-исследовательский институт фармакологии Томского научного центра СО РАМН

Защита состоится <<, _» дысСьЩ^Л-_2006 г. в /jf¿£0_ часов на заседании диссертационного совета Д 001.001.01 ГУ НИИ клинической иммунологии СО РАМН по адресу: 630099, г. Новосибирск, ул. Ядринцевская, 14

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГУ НИИ клинической иммунологии СО РАМН

Автореферат разослан << >> 2006 г.

Учёный секретарь диссертационного совета

доктор биологических наук

О.Т. Кудаева

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность. Одно из достижений современной медицины состоит в разработке новых лекарственных средств, полученных с помощью генной инженерии человеческих рекомбинантных белков-цитокинов. Цитокинотерапия - это современное, стремительно развивающееся направление, открывающее новые возможности в лечении различных заболеваний. В настоящее время известно несколько сотен цитокинов [Oppenheim, 2003]. Некоторые из них используются в клинической практике с диагностической целью, для профилактики и терапии различных заболеваний.

Перспективным препаратом для создания на его основе лекарственного средства является интерлейкин-18. ИЛ-18- это цитокин, участвующий в функционировании иммунокомпетентных клеток, в том числе и в регуляции экспрессии и продукции многих других цитокинов. ИЛ-18 стимулирует пролиферативную активность Т-лимфоцитов, повышает литическую активность НК-клеток, увеличивает продукцию ИФНу, ГМ-КСФ [Udagawa N.. 1997; Dinarello CA., 1999], ФНО-сс (Fehniger ТА., 1999; Moller В., 2001], ИЛ-2 [Kohno К., 1997; Micallef MJ., 1996], ИЛ-5, ИЛ-6 [Ogura T., 2001; Rodriguez-Galan MC., 2005] ИЛ-8 и ИЛ-lß (Puren AJ., 1998; Wang W., 2001], PGE2 [Kashiwamura S., 2002; Futani H., 2002] активированными T-, B-, НК-клетками. Кроме того, в экспериментах in vitro показано, что ИЛ-18 способен стимулировать экспрессию молекул адгезии (ICAM-1 и VCAM) [Merendino RA., 2003; Morel JC., 2002]. Еще одной из особенностей ИЛ-18 является конститутивная экспрессия клетоками различных систем организма. Это отличает его от многих других иммуномодулирующих цитокинов, которые являются индуцибельными. Описанные иммунорегулирующие свойства ИЛ-18 позволяют исследовать и использовать его в качестве терапевтического препарата в ситуациях, когда требуется активировать ответ Тхелперов 1 типа или НК клеток, то есть противоинфекционная и противоопухолевая защита организма.

Обладая обширным спектром биологических эффектов, ИЛ-18 участвует в патогенезе некоторых заболеваний, сопровождающихся хроническим воспалением и деструкцией тканей, например, при ревматоидном артрите [Olee Т., 1999; Liew В., 2002], диабете [Rothe H., 1998] и болезни Крона [Monteleone G., 1999; Pizzaro P., 1999]. В связи с этим блокатор ИЛ-18, представляющий собой физиологическую ловушку-рецептор, может являться перспективным фактором для отмены побочных действий ИЛ-18. ИЛ-18 связывающий белок (ИЛ-18СБ), являющийся циркулирующим антагонистом ИЛ-18, конститутивно экспрессируется сплено-цитами и относится к суперсемейству иммуноглобулинов. ИЛ-18СБ связывает ИЛ-18 путем формирования высоко аффинного комплекса (Kd=400pM) и тем самым нейтрализует эффекторные функции цитокина ИЛ-18 [Novick D., 1999].

Данные о значительной роли ИЛ-18 в регуляции большого числа иммунных реакций позволяют предположить, что в ближайшем будущем ИЛ-18 и ИЛ-18СБ займут свое достойное место в арсенале препаратов для борьбы с множеством патологических состояний человека.

В качестве продуцентов для получения белков-цитокинов медицинского назначения в настоящее время широко используются клетки бактерий, дрожжей и

млекопитающих. Однако такие системы имеют ряд существенных недостатков. В клетках прокариот не происходят посттрансляционная модификация и фол-динг полипептидных цепей многих эукариотических белков. Клетки дрожжей и млекопитающих лишены подобных недостатков, но их использование в качестве биопродуцентов ограничено высокой себестоимостью выхода рекомбинантных белков [Russel С., 1999]. По сравнению с вышеупомянутыми системами экспрессии растения, как продуценты иммунорегуляторных белков, имеют ряд особенностей и преимуществ. Прежде всего, необходимо отметить, что в клетках высших растений происходят гликозилирование и фолдинг белков, сходные с таковым в клетках млекопитающих. Культивирование растений не требует дорогостоящего оборудования, а сельскохозяйственные масштабы продукции гарантируют доступность рекомбинантного препарата в количествах, достаточных для клинических испытаний и широкого терапевтического использования. В отличие от животных, растительные клетки не содержат в своём составе патогенные для человека вирусы и, таким образом, могут служить безопасным источником рекомбинантных белков медицинского назначения. Исследования в этой области идут в направлении создания трансгенных растений несущих опухолевые, инфекционные антигены или иммунорегуляторные цитокины с целью моделирования специфических иммунных реакций. В ряде случаев, например, при использовании трансгенных растений в качестве "съедобных вакцин" выделение белка в чистом виде не требуется. [Daniell Н., 2001]. В настоящее время с различной эффективностью трансфекции подвергнуты: картофель, кукуруза, салат, люцерна, морковь, томаты, огурцы, табак и некоторые другие [Wigdorovitz А., 1999; Giddings G., 2000; Richter L., 2000; Streatfield S., 2000; Tuboly Т., 2000; Tacket C., 2000].

Таким образом, представлялось актуальным и значимым изучить биологические специфические свойства рчИЛ-18 и рчИЛ-18СБ, полученных по оригинальной методике из продуцента E.coli, в различных экспериментальных моделях, и оценить эффекты перорального введения трансгенного растения Daucus carota L., несущего ген ИЛ-18 человека.

Цель работы: Охарактеризовать биологическую активность рекомбинантных белков ИЛ-18 и ИЛ-18СБ, полученных по оригинальной методике из клеток-продуцентов Escherichia coli, а также иммуномодулирующие эффекты трансгенного растения Daucus carota L., несущего ген ИЛ-18 человека, при перо-ральном применении.

Задачи исследования:

1. Изучить рчИЛ-18 и рчИЛ-18СБ, полученные из продуцентов E.coli по оригинальной методике, в реакции иммуноанализа по связыванию со специфическими антителами.

2. Изучить способность рчИЛ-18 стимулировать продукцию ФНОа, ИФНу мононуклеарными клетками периферической крови человека.

3. Изучить влияние рчИЛ-18 на формирование гуморального и клеточного иммунного ответа у мышей, а также противоопухолевую активность в экспериментальной модели на мышах.

4. Изучить биологическую активность ИЛ-18СБ по отмене специфического

иммунорегуляторного эффекта ИЛ-18 на МНК ПК человека.

5. Исследовать активность ИЛ- 18СБ в эксперименте in vivo по отмене ЛПС-индуцированной летальности и его противоопухолевое действие в мышиной модели меланомы.

6. Исследовать иммунорегуляторные эффекты перорального введения трансгенной по ИЛ-18 моркови Daucus carota L. на показатели гуморального и клеточного иммунного ответа, на продукцию иммунокомпетентными клетками ИФНу, а также противоопухолевую активность в модели уретан индуцированной аденокарциномы легких.

Научная новизна. Впервые показано стимулирующее влияние рчИЛ-18 на реакцию ГЗТ при внутривенном введении интактным животным. Показано противоопухолевое действие рчИЛ-18 в модели солидной ортотопической меланомы В16. Впервые продемонстрировано, что эндогенный ИЛ-18 играет ключевую роль в КонА-индуцированной продукции ФНОальфа, что подтверждено в эксперименте с отменой этого эффекта с помощью ИЛ-18СБ. На модели гематогенного метастазирования меланомы В16 показан антиметастатический эффект введения рчИЛ-18 СБ.

Впервые показано, что трансгенные растения Daucus carota L., несущие ген ИЛ-18 человека, обладают иммуномодулирующей активностью при перораль-ном применении экспериментальными животными. Впервые продемонстрированы противоопухолевые свойства трансгенной моркови, экспрессирующей ген ИЛ-18 человека, при пероральном применении в экспериментальной модели уретан-индуцированной аденокарциномы легких.

Практическая и теоретическая значимость

Показанная специфическая иммунохимическая и биологическая активность in vitro и in vivo ИЛ-18 и ИЛ-18СБ свидетельствует, что рекомбинантные препараты ИЛ-18 и ИЛ-18СБ, полученные по оригинальной методике, могут быть использованы для дальнейшего изучения механизмов их действия и в перспективе для создания на их основе лекарственных препаратов. В результате исследования оптимизирована тест-система для количественного определения ИЛ-18 и ИЛ-18СБ в биологических жидкостях. Представленные результаты о биологической активности in vitro и in vivo рчИЛ-18 и ИЛ-18СБ расширяют представление о иммунорегуляторных свойствах этих белков и вносят существенный вклад в понимание системы этих медиаторов в противоопухолевом иммунитете. Экспериментальные данные по пероральному применению трансгенного растения, несущего ген ИЛ-18, и показанные иммуномодулирующие эффекты являются основой для дальнейшего развития технологий получения трансгенных растений, экспрессирующих иммунорегуляторные медиаторы человека , и их использования с целью профилактики, и возможно, лечения иммунопатологических состояний.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Рекомбинантные человеческие ИЛ-18 и ИЛ-18СБ, полученные по оригинальной методике из продуцента E.coli, обладают специфической биологической и противоопухолевой активностью.

2. Трансгенное растение Daucus carota L., несущее ген ИЛ-18 человека, обладает иммуномодулирующими свойствами и противоопухолевой активностью.

Апробация работы. Материалы диссертации доложены и обсуждены на: 1) 6-й отчетной конференции ГУ НИИКИ СО РАМН (Новосибирск, 2003г.), 2) 7-ом Всероссийском научном форуме с международным участием имени академика В.И. Иоффе «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге» (Санкт-Петербург, 2003г.), 3) объединенном иммунологическом форуме (Екатеринбург, 2004г.), 4) 8-ом всероссийского научном форуме с международным участием имени В.И. Иоффе «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге» (Санкт-Петербург, 2004г.), 5) «Технология й онкология» Санкт-петербург 2005г, 6) 4-ая конференция иммунологов Урала (Уфа, 2005), 7) Всероссийском научном симпозиуме «Цитокины, стволовая клетка, иммунитет» (Новосибирск 2005г), 8) Всероссийской научно-практической конференции посвященной 15-летнему юбилею Красноярского Краевого Центра по профилактике и борьбе со СПИД и другими инфекционными заболеваниями. «Дни иммунологии в Сибири» (Красноярск 2005), 9) Московской международной конференции «Биотехнология и медицина» (Москва 2006), 10) «Иммунопатогенез и иммунотерапия основных заболеваний человека: от эксперимента к клинике» 7-ой отчетной конференции ГУ НИИКИ СО РАМН (Новосибирск 2006).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 20 работ, в том числе 1 статья в центральной и 3 в зарубежной печати.

Объем и структура работы. Диссертация написана в традиционном стиле и состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, главы результатов собственных исследований, обсуждения полученных результатов и выводов. Материал изложен на 127 страницах машинописного текста, включающего 15 рисунков. Прилагаемая библиография содержит ссылки на 249 литературных источника, в том числе 244 иностранных.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

Объекты исследования:

1. Лабораторные животные. В работе использовались мыши (самки) линии С57В1/6, BALB/c и гибриды (CBAxC57Bl/6)Fl- (CBF1) в возрасте 3-6 месяцев (600 голов). Мыши получены из питомника лабораторных животных СО РАМН (пос. Нижняя Ельцовка г. Новосибирска) и НИЛ ЭВМ Томского Научного Центра СО РАМН.

2. Мононуклеарные клетки периферической крови условно здоровых доноров в возрасте от 20 до 50 лет. Результаты, представленные в данной работе, получены при обследовании 30 человек.

Рекомбинантные белки и трансгенное растение

В Новосибирском ИХБФМ СО РАН был осуществлен химико-ферментативный синтез гена IL-18 человека и осуществлена экспрессия рекомбинантного IL-18 в клетках E.coli штамма BL21(DE3). В Новосибирском институте ХБФМ СО РАН также был получен ИЛ-18 связывающий белок из штамма E.coli BL21(DE3) с помощью плазмиды рЕТ. На базе Института цитологии и генетики СО РАН совместно с Новосибирским институтом ХБФМ СО РАН было получено трансгенное растение морковь -Daucus carota L - продуцент ИЛ-18 человека. Непосредственно агробактериальную трансформацию растений проводили на базе ВНИИ селекции и семеноводства овощных культур РАСХН (Москва).

Экспериментальные модели.

1 .Мышиная меланома. .....

Для данной экспериментальной модели использовалась перевиваемая клеточная линия мышиной меланомы В16. Клетки вводились подкожно в район холки [Pardini RS., 1984; Papermaster BW., 1980], либо внутривенно [Kolber DL., 1995] в количестве 2 х 105 на мышь. На 23 день, после прививки опухоли, измерялся вес солидной опухоли при подкожном введении. Опухолевый процесс при внутривенном введении оценивали, подсчитывая число и измеряя средний диметр метастазов при помощи бинокулярной лупы при ее собственном увеличении х2 и окуляром х7 со стандартной окулярной линейкой.

2. Мышиная аденокарцинома легких

Индукция опухоли проводилась на мышах линии BALB/c . Раствор уретана 10% вводился внутрибрюшинно, из расчета 0,7мг уретана на 1 гр. веса мыши, 8 раз с интервалом в 3 дня. Опухолевый процесс оценивали путем подсчета количества и измерения диаметра аденоматозных образований у каждого животного при помощи бинокулярной лупы при ее собственном увеличении х2 и окуляром х7 со стандартной окулярной линейкой. [Ложкин И.Н., 1996].

3.Липополисахарид индуцированная летальность.

Опыт проводился на мышах линии BALB/c. Животным внутрибрюшинно вводили ИЛ-18СБ в дозе 5мг/кг, и через 10 минут внутрибрюшинно ЛПС (E.coli 0111:В4) в дозе 15мг/кг. Выживаемость оценивали в течении недели ежедневно [Faggioni R., 2001].

Гистологическое исследование меланомы. Солидную опухоль фиксировали в 10% нейтральном формалине, заключали в парафин. Срезы толщиной 5-8 мкм окрашивали гематоксилином и эозином. В тестовом поле определяли частоту встречаемости митозов опухолевых клеток, оценивали инфильтрацию окружающих тканей, определяли размер некроза, оценивали ангиогенез опухоли.

Пероральное введение Daucas carota L.

Мыши получали дополнительно к стандартному рациону, в течение определенного времени, морковь обычную или несущую ген ИЛ-18, в дозе 1,7-2гр/мышь ежедневно.

Методы выделения и культивирования клеток человека и животных

1. Выделение мононуклеарных клеток (МНК) из периферической крови человека осуществляли согласно [Boyum А., 1968].

2.Получение спленоцитов мышей проводили по методике описанной [Гольд-берг Д.А., 1992].

3.Культивирование клеток (1*10бкл/мл) проводили в среде RPMI-1640 (содержащей 10% ЭТС, 80мкг/мл гентамицина, 2мМ L-глутамина, 5x10 s меркапто-этанола) 24, 48 и 72 часа при 37°С во влажной атмосфере с 5% С02.

Оценка пролиферативной активности клеток.

Интенсивность пролиферации оценивали через 72 часа по включению Н3-тимидина в нуклеопротеидные фракции клеток. Н3-тимидин вносили по 1 мкО/лунка за 16 часов до конца культивирования, клетки осаждали на фильтры (Flow) с помощью прибора Ceil Harvester (Flow Labs).

Определение количественного содержания цитокинов электрохемилюми-несцентным методом

В проведенной работе использовались меченные биотином и рутением антитела против человеческих цитокинов: ФНОа, ИФНу, ИЛ-18СБ (R&D System, UK), ИЛ-18 (PeproTech), а также рекомбинантные цитокины ФНОа (PharMingen, USA), ИФНу (Thomae, Biberach, Germany) и ИЛ-18 (PeproTech) для создания калибровочного стандарта. Для создания наборов рчИЛ-18 и рчИЛ-18СБ получали поликлональные кроличьи антитела по стандартной схеме [Иммунология Методы, под ред. Лефковитса. 1983]. Подготовку реактивов и определение каждого цитокина проводили, как описано ранее [Sennikov S.V. 2000].

Оценка клеточного ответа на Т-зависимый антиген (эритроциты барана ЭБ) Клеточный иммунитет оценивали по степени выраженности реакции гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ) [Yoshikai Y., 1979].

Определение уровня первичного гуморального ответа (IgM АОК) на Тзависимый антиген (ЭБ). Способность мышей к гуморальному иммунному ответу на ЭБ оценивали на пике ответа на пятые сутки по количеству локальных зон гемолиза [Cunningham A.J., 1965].

Статистическая обработка данных

Статистическая обработка результатов производилась при помощи программы «Statistica 5.0». При нормальном распределении выборки, для статистической проверки использовался t-критерий Стьюдента, данные представлены в виде средней и стандартной ошибки средней (М±т). Если исследуемые выборки не подчинялись нормальному распределению, использовались непараметрические критерии Манн-Уитни и Уилкоксона, данные представлены в виде медианы (Me) и размаха квартилей. Для оценки выживаемости использовали тест log-rank.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Характеристика рекомбинантного человеческого Интерлейкина 18.

На первом этапе проведенной работы нами был оптимизирован протокол для определения рчИЛ-18 методом ЭХЛ, который включал в себя кроличьи поликлональные антитела меченные биотином и моноклональные антитела фирмы PeproTech меченные рутениевой меткой, в соотношении 1:1, а также определенный протокол анализа на приборе ORIGEN(USA). Данный набор использовался для подбора условий получения и хранения рекомбинантного препарата.

Биологические специфические свойства рчИЛ-18 in vitro.

Следующим этапом исследования рекомбинантного белка стало изучение биологической активности рчИЛ-18 по влиянию на пролиферативную активность МНК ПК человека в культуре и продукцию ими иммунорегуляторных цитокинов ИФНу и ФНОа. Оценка пролиферации иммунокомпетентных клеток, не показала достоверного влияния исследуемого препарата рчИЛ-18 на популяцию МНК ПК (данные не представлены). При исследовании продукции иммунорегуляторных цитокинов, нами было выявлено достоверное повышение продукции ИФНу в ответ на моностимуляцию рчИЛ-18 в дозе 40нг/мл. Также в нашем эксперименте показано, что рчИЛ-18 способен самостоятельно без дополнительной стимуляции увеличивать продукцию ФНОа МНК ПК по сравнению со спонтанной продукцией (рисунок 1).

Таким образом, полученные результаты свидетельствуют, что рекомбинантный белок, полученный из продуцента E.coli, обладает специфической биологической активностью в тестах in vitro на популяцию МНК ПК.

ФНОа

3000 -

2500 -

с.

2000 -

с

1500 -

1000 -

500 -

0

-+-Г

!■ i ■=

спонтанная

КонА

ИЛ-18

КонА+ИЛ-18

ИФНг

25000 с; 20000

5

= 15000 10000 5000 0

ж

спонтанная

КонА

ИЛ-18 КонА+ИЛ-18

Рис.1. Эффект рчИЛ-18 на продукцию ФНОа и ИФНу в культуре МНК ПК человека. Клетки культивировали 24 и 48 часов соответственно в присутствии Коиканавалина А(5 мкг/мл) и рчИЛ-18(40нг/мл). Данные представлены как медиана и размах квартилей. На рисунке стрелками обозначены статистически достоверные различия при р<0.05.

Для дальнейшего исследования рекомбинантного белка ИЛ-18 человека было необходимо оценить биологическую активность не только in vitro, но и in vivo

Влияние рчИЛ-18 на формирование иммунного ответа в экспериментальных моделях in vivo.

По литературным данным известно, что ИЛ-18 в различных экспериментальных моделях стимулирует показатели клеточного иммунитета [Kawakami К., 2000; Kitching AR., 2000]. Наш опыт мы проводили при системном - внутривенном введении препарата рчИЛ-18 в дозе 1мкг/мышь 5-кратно через день интакт-ным животным. На мышах линии CBF1 мы оценивали гуморальный и клеточный иммунный ответ по антителообразованию и выраженности реакции ГЗТ соответственно. По количеству АОК IgM к эритроцитам барана не выявлено достоверного влияния ИЛ-18 на формирование первичного гуморального иммунного ответа. Изучение клеточного иммунного ответа показало, что рчИЛ-18 в дозе 1мкг/мышь стимулирует реакцию ГЗТ (рисунок 2), что согласуется с данными полученными рядом авторов в других экспериментальных моделях, и говорит о том, что полученный препарат рчИЛ-18 обладает специфической активностью и способен сдвигать баланс иммунного ответа у интактных животных в сторону клеточного иммунного ответа.

Рис.2. Влияние внутривенного введения рчИЛ-18 на показа- . тели клеточного иммунного ответа. ИЛ-18 (1мкг/мышь) или физ. раствор вводились мышам линии CBF1 5-кратно в/в через день. (М ±т) На рисунке стрелками обозначены статистически достоверные различия при р<0.05.

Полученные результаты по изучению биологических свойств in vitro и in vivo свидетельствуют, что препарат рчИЛ-18 обладает иммуномодулирующими свойствами, которые предполагают его участие в противоопухолевой защите организма. Так как терапия злокачественных новообразований одно из приоритетных направлений для возможного использования рчИЛ-18, поэтому на следующем этапе нашего исследования мы изучили рекомбинантный препарат ИЛ-18 в экспериментальной модели меланомы.

Противоопухолевая активность рчИЛ-18.

По литературным данным известно, что механизмы противоопухолевой активности ИЛ-18 включают в себя: усиление экспрессии FasL на НК и Т-клетках [Tsutui, 1996], увеличение цитотоксической активности НК и Т клеток [Ushio S, 1996], ингибирование ангиогенеза [Coughlin СМ., 1998], а также стимуляцию продукции ИФНу, который сам обладает рядом противоопухолевых свойств [Okamura Н, Nagata К, 1995]. Данные механизмы предполагают прямое и опосредованное влияние ИЛ-18 на солидную опухоль, исходя из этого, мы исследовали рекомбинантный препарат ИЛ-18 в опыте с ортотопической мышиной ме-ланомой В-16. Показано, что внутривенное введение мышам рчИЛ-18 приводит к снижению веса солидной меланомы В16 , причем вес опухоли был обратно пропорционален кратности введения цитокина (рисунок 3). Качественное гистологическое исследование подтвердило полученные результаты, показав, что исследуемый препарат подавляет митотическую активность опухолевых клеток, усиливает дегенеративные процессы, уменьшает васкуляризацию опухоли и повышает ее инфильтрацию лимфоцитами, макрофагами и плазматическими клетками.

Продолжительность жизни экспериментальных животных при 1-, 2- и 3-кратном введении статистически достоверно увеличивалась в сравнении с контрольной группой. Значимого влияния кратности введения препарата на вес и выживаемость экспериментальных животных не обнаружено.

Таким образом, мы можем утверждать, что исследуемый нами препарат обладает противоопухолевой активностью в модели солидной ортотопической меланомы В16.

'•t ¿i

ВЫЖИВАЕМОСТЬ

70 60 50 40 -30 -20 -10 О

ЯГ

ОЩ

Sii- ifS sw

1ЩЩЯ ..

вес ортотопическои меланомы Рис 3> Влияние внутривенного

введения рчИЛ-18 на вес солидной опухоли и выживаемость мышей. Клетки меланомы В16 вводились п/к в район холки в количестве 200тыс/мышь мышам линии С57В16. ИЛ-18 в дозе 1мкг/мышь или физ. раствор вводились в/в через день. Взвешивание опухоли проводили на 23 день. Выживаемость оценивалась ежедневно до последней мыши. Данные представлены как медиана и размах квартилей. На рисунке стрелками обозначены достоверные различия при р< 0.05. Группы:

1- интактная

2- конроль 3-кратно (физ. рас твор)

3- рчИЛ-18 1-кратно

4- рчИЛ-18 2-кратно

5- рчИЛ-18 3-кратно

Полученные результаты свидетельствуют о том, что исследуемый препарат рчИЛ-18, полученный по оригинальной методике из продуцента E.coli, определяется иммунохимически и обладает специфической биологической активностью, увеличивая продукцию ИФНу, ФНОа МНК ПК человека и стимулируя клеточный иммунный ответ. А также проявляет противоопухолевую активность в модели ортотопической меланомы В16, увеличивая выживаемость и снижая вес солидной опухоли.

Характеристика рекомбинантного человеческого ИЛ-18СБ.

После изучения биологических свойств рчИЛ-18,следующим этапом нашей работы стало изучение ИЛ-18СБ и его способности блокировать эффекты экзо- и эндогенного ИЛ-18 в различных моделях. Рекомбинантный белок ИЛ-18СБ был получен в ИХБФМ СО РАН по оригинальной методике из продуцента E.coli несущего плазмиду рЕТ с геном ИЛ-18СБ человека. В совместной работе, с помощью оптимизированного протокола ЭХЛ, была отработана методика получения рчИЛ-18СБ с заданными характеристиками, который сохранял свою способность связываться со специфическими антителами при хранении. Для дальнейшего исследования рекомбинантного белка необходимо было определить его функциональную активность в экспериментальных моделях.

Изучение биологической активностирч11Л-18СБ in vitro.

ИЛ-18СБ, который проявляет свое действие, блокируя эффекты ИЛ-18, был исследован в эксперименте по влиянию на продукцию ФНОа культурой МНК ПК человека. Полученные нами данные свидетельствуют, что ИЛ-18СБ статистически достоверно отменяет стимулированную рчИЛ-18 продукцию ФНОа культурой мононуклеарных клеток человека. Следует отметить, что при отмене стиму-

лирующего действия Конканавалина А с помощью ИЛ-18СБ, продукция ФНОа снижается до спонтанного уровня, что свидетельствует о значительном участии эндогенного ИЛ-18 в Кон А-стимулированной продукции ФНОа (рисунок 4).

Продукция ФНОа

пг/мл

А-►

спонтанная КонА ИЛ-18 КонА+ИЛ-18 ИЛ-18СБ ИЛ-18 + ИЛ- КонА + ИЛ- КонА +ИЛ-18

(5мкг/мл) (40нг/мл) (80мкг/мл) 18СБ 18СБ + ИЛ-18СБ

Рис. 4. Эффект рчИЛ-18СБ на продукцию ФНОа в культуре МНК ПК человека. Клетки культивировали 24 в присутствии различных стимуляторов. Данные представлены как медиана и размах квартилей. На рисунке стрелками обозначены статистически достоверные различия при р<0.05. п= 8

После подтверждения активности рчИЛ-18СБ in vi tro, следующий этап работы был посвящен оценке действия исследуемого препарата in vivo.

Исследование биологической активности рчИЛ-18СБ in vivo.

Для исследования биологической активности рчИЛ-18СБ in vivo была использована модель ЛПС-индуцированной летальности мышей, предложенная Faggioni R [Faggioni R 2001]. В этой модели повреждение печени зависит от индукции экспрессии FasL на местных Т и НК клетках. Fas/FasL система является центральной в патогенезе воспаления печени, которое встречается в клинике различных гепатитов [Hayashi N., 1999; Ryo К., 2000]. В нашем опыте рчИЛ-18СБ (5мг/кг), введенный внутрибрюшинно за 10 минут до инъекции ЛПС (в дозе 15 мг/кг, LD90), достоверно увеличивал выживаемость мышей по сравнению с контрольной группой (рисунок 5). Поскольку в этой модели ИЛ-18 СБ показал себя блокатором летальности мышей, мы можем утверждать, что эндогенный ИЛ-18 является одним из центральных медиаторов, запускающих весь кас-

Рис.5. Эффект ИЛ-18СБ на ЛПС-индуцированную летальность мышей. Мышам линии BALB/c за десять минут до инъекции ЛПС (0111:В4 в дозе 15мг/кг), вводился рчИЛ-18СБ (5мг/кг). Мониторинг выживаемости проводился в течение 7 дней. n=20, log-rank test: р=0,00191.

кад реакции после введения липополисахарвд

Влияние рчИП-18СБ на ЛПС-индуцированную летальность у мылей

_ 100

л

о 60

¡8 40

1 ?0

л

0

-ИЛ-18СБ -контроль

4 Дни

Таким образом, проверив биологические специфические свойства рчИЛ-18СБ мы определили, что он отменяет стимулирующие действие ИЛ-18 на продукцию ФНОа в культуре МНК ПК, a также ингибирует действие эндогенного ИЛ-18 in vivo, отменяя липополисахарид индуцированную летальность мышей. Следующим этапом работы стало изучение противоопухолевой активности.

Противоопухолевая активность рчИЛ-18СБ.

Несмотря на то, что ИЛ-18 активно участвует в противоопухолевой защите организма, некоторые его свойства могут проявлять двойственную активность. Например, стимулируя экспрессию молекул адгезии ICAM-1 и VCAM-1, ИЛ-18 может способствовать инфильтрации опухоли иммунокомпетентными клетками [Yamada Т., 2005], однако это же качество может являться патогенетическим фактором при метастазировании злокачественных новообразований [Vidal-Vanaclocha F., 2000]. Исходя из этого рчИЛ-18СБ как блокатор эффектов ИЛ-18, и в том числе как ингибитор экспрессии молекул адгезии [Carrascal МТ., 2003], был исследован в гематогенной модели мышиной меланомы В16. В этой модели опухолевые клетки, введенные внутривенно через полые вены, попадают в правое предсердие и затем через малый круг кровообращения оседают в легких.

В нашем опыте мы оценивали выраженность опухолевого процесса путем подсчета количества опухолевых узлов и измерения их диаметра. Были использованы различные обработки рчИЛ-18СБ, как то: пред-, пост-, и пред+пост обработка. В качестве контроля использовалась группа с пред+пост обработкой физиологическим раствором. Нами получены следующие результаты: ИЛ-18СБ проявляет свое противоопухолевое действие через снижение количества метастазов, но не влияет на их диаметр (рисунок 6).

Рис. 6. Влияние внутрибрюшинного введения рчИЛ-18СБ на опухолевый процесс в гематоге-ной метастатической модели В16. Клетки мышиной меланомы В16 вводились в/в 200тыс/мышь, ИЛ-18СБ (20мкг/мышь) или физ. раствор вводились в/бр. Предобработка включала в себя введения за 24, и за 3 часа до прививки опухоли, постобработка включала в себя введения через 24, 48 п 72 часа после прививки опухоли. На 20 день, легкие фиксировали в формалине и проводили подсчет количества и измерение диаметра метастазов, при помощи бинокулярной лупы при ее собственном увеличении х2 и окуляром х7 со стандартной окулярной линейкой. Данные представлены как медиана и размах квартилей. 11а рисунке стрелками обозначены статистически достоверные различия при р<0.05. Группы:

1- интактная,

2- контроль- пред+постобработка физ. раствором,

3- предобработка рчИЛ-18СК

4- постобработка рчИЛ-18СБ

5- пред+постобработка рчИЛ-18СБ

Таким образом, экспериментальные данные свидетельствуют о том, что рчИЛ-18СБ, полученный из продуцента Е. coli, обладает биологической активностью,

Диаметр опухолевых узлов

1 2 3 4 5

Количество опухолевых узлов

1 2 3 4 5

выражающейся в отмене специфического действия ИЛ-18, как в моделях in vitro, так и in vivo, и, кроме того, обладает противоопухолевой активностью, снижая число метастазов в модели гематогеной меланомы В16.

Полученные в совместной работе рекомбинантные белки рчИЛ-18 и рчИЛ-18СБ были выделены из продуцента E.coli, несущего плазмиду с определенным геном. Это наиболее широко используемый способ наработки рекомбинантного продукта, однако, он имеет свои недостатки, поэтому в последние годы активно развивается направление по получению и использованию белков, продуцирующихся в трансгенных растениях. В своей работе мы исследовали растение Deutens carota L. (морковь обыкновенная) трансфецированную цитокином ИЛ-18 человека, предварительно оценив его биологические свойства in vitro и in vivo. Биологическая характеристика трансгенного растения Daucus carota L. несущего ген рчИЛ-18 человека.

Трансформация и получение растений Daucus carota L. была осуществлена при сотрудничестве трех институтов: ИХБФМ СО РАН, ИЦиГ СО РАН, ВНИИС-СОК РАСХН. В ИХБФМ СО РАН было подтверждено наличие гена Ил-18 человека в ДНК растений методом ПЦР, а также наличие белка ИЛ-18 в экстракте корнеплодов поколения ТЗ методом иммуноблота.

Влияние перорального введения траясгенной моркови несущей гея чИЛ-18 на функигюналъные свойства спленоцитов мышей.

На первом этапе исследования мы определили влияние перорального введения моркови, экспрессирующей ген ИЛ-18 человека, на пролиферативную активность и продукцию ИФНу спленоцитами мышей. Экспериментальные животные содержались на стандартном рационе (интактная группа), либо с добавлением трансгенной (опытная группа), или обычной моркови того же сорта и выращенной в тех же условиях (контрольная группа). Установлено, что прием в пищу трансгенной моркови, в течение 16 дней не влияет на спонтанную и митоген-индуцированную пролиферативную активность спленоцитов. Функциональные свойства спленоцитов мышей, получавших трансгенную морковь, оценивали по способности к продукции ими иммунорегуляторного цитокина ИФНу. Было показано, что пероральное применение трансгенной моркови увеличивает спонтанную продукцию ИФНу спленоцитами мышей опытной и контрольной группы по сравнению с интактной группой. Стимулированная продукция ИФНу спленоцитами была достоверно выше у мышей опытной группы по сравнению с интакт-

Рис. 7. Влияние перорального применения трансгенной IIJI-18 моркови на продукцию ИФНу спленоцитами мышей. Мыши CBF1 получали к стандартному рациону трансгенную или обычную морковь в дозе 1,7-2 гр/мышь в течение 16 дней. Клетки селезенки выделялись и культивировались без и в присутствии Конканавалина А (5м кг/мл) 48 часов, ИФНу определяли в супернатантах методом ЭХЛ. Данные представлены как медиана и размах квартилей. На рисунке стрелками обозначены статистически достоверные различия при р<0.05.

ной и контрольной группами (рисунок 7).

14000

12000

10000

"Ь 8000

х еооо в

s 4000 2000 о

□ интактная

■ контрольная

■ опытная

спонтанная

КонА стимулированная

Полученные результаты свидетельствует о наличии специфических иммуномо-дулирующих свойств трансгенной по гену чИЛ-18 моркови при пероральном применении.

Влияние пероральиого применения трансгенной моркови на формирование иммунного ответа в экспериментальной модели на мышах.

Предыдущие опыты показали, что введение мышам рчИЛ-18 стимулирует клеточный иммунный ответ, в форме увеличения реакции ГЗТ. Соответственно, было целесообразно изучить, будет ли ИЛ-18 человека, продуцирующийся в трансгенной моркови, оказывать подобное действие на формирование иммунных реакций у мышей in vivo. Было установлено, что добавление в пищу трансгенной моркови в указанной дозе в течение 16 дней достоверно стимулирует формирование клеточного иммунного ответа у мышей опытной группы по сравнению с интактной и контрольной группами (рисунок 8). При изучении формирования гуморального иммунного ответа не было выявлено достоверного влияния пероральиого применения трансгенной моркови с ИЛ-18 на уровень первичного ответа (IgM АОК) на Т зависимый антиген (данные не представлены).

Рис.8. Влияние пероральиого применения трансгенного растения Daucus carota L., несущего ген ИЛ-18, на выраженность реакции ГЗТ. Мыши CBF1 получали к стандартному рациону трансгенную или обычную морковь в дозе 1,7-2 гр/мышь в течение 16 дней. (М±т) На рисунке стрелками обозначены статистически достоверные различия при р<0.05.

Противоопухолевая активность перорачъного применения трансгенного растения несупиего ген ИЛ-18.

Для изучения противоопухолевых свойств трансгенного растения несущего ген чИЛ-18 использовалась модель уретан-индуцированной аденокарциномы легких на мышах линии BALB/c. В данной модели, как показано [Bentel J.M. 1989] через 4 месяца после начала обработки уретаном у 100% мышей в легких обнаруживаются множественные опухолевые узлы с морфологией аденом. В наших опытах показано, что употребление в пищу моркови, несущей ген чИЛ-18, приводит к достоверному уменьшению числа аденоматозных узлов у опытной группы по сравнению с контрольной и интактной группами, а также снижению среднего диаметра аденом у опытной и контрольной группами по сравнению с интактной (рисунок 9).

Рис. 9.Влияние перорального применения трансгенной моркови на опухолевый процесс в модели уретан-индуцированной аденокар-циномы легких. Мыши линии BALB/c получали трансгенную или обычную морковь в дозе 1,7-2 гр/мышь 16 дней ежедневно, и 2 месяца по 3 раза в неделю. Через 4 месяца легкие фиксировали в 10% формалине и проводили подсчет количества и измерение диаметра аденоматозных образований, при помощи бинокулярной лупы при ее собственном увеличении х2 и окуляром х7 со стандартной окулярной линейкой. п=36 Данные представлены как медиана и размах квартилей.. На рисунке стрелками обозначены статистически достоверные различия пои в<0.05.

Поскольку данная модель аденомы легких является истинной опухолью и может служить моделью доброкачественного и злокачественного процесса [Bentel J.M. 1989], мы предполагаем, что ИЛ-18 человека, продуцирующийся в клетках трансгенного растения, может оказывать противоопухолевое действие через механизмы, описанные в литературе, а именно стимуляцию экспрессии FasL, увеличение цитотоксичности Т- и НК-клеток, ингибирование ангиогенеза, стимуляцию продукции иммунорегуляторных цитокинов и др.

Таким образом, полученные данные свидетельствуют о том, что трансгенная морковь, несущая,ген ИЛ-18 человека, обладает активностью, схожей с реком-бинантным белком, в частности, стимулирует продукцию ИФНу спленоцитами мышей и реакцию ГЗТ, а также проявляет противоопухолевую активность в модели уретан-индуцированной аденокарциномы легких. На основании проделанной работы были сделаны следующие выводы. ВЫВОДЫ.

1. Рекомбинантный белок ИЛ-18 человека, полученный по оригинальной методике из клеток продуцентов E.coli, обладает специфическими для этого белка иммунохимическими и биологическими свойствами: он связывается со специфическими антителами в реакции иммуноанализа и стимулирует продукцию ИФНу и ФНОа МНК ПК человека.

2. Полученный рекомбинантный ИЛ-18 человека обладает биологической активностью in vivo, так как стимулирует при введении мышам реакцию гиперчувствительности замедленного типа и проявляет противоопухолевую активность в модели ортотопической солидной меланомы, увеличивая продолжительность жизни мышей и снижая вес опухоли.

3. Рекомбинантный человеческий ИЛ-18 связывающий белок, полученный по

Количество аденоматозных образований

количество О СП о

■ & ■ V'C.*»

5

0

интактная

д

"•V.'.-SK

контрольная

£

-2. 16 I 12

Диаметр аденоматозных образований

л

интактная

контрольная

оригинальной методике из клеток продуцентов E.coli, обладает специфическими для этого белка иммунохимическими и биологическими свойствами: он связывается со специфическими антителами в реакции иммуноанализа и отменяет специфические эффекты рчИЛ-18 в тестах in vitro.

4. Полученный рекомбинантный человеческий ИЛ-18 связывающий белок обладает биологической активностью in vivo: отменяет ЛПС-индуцированную летальность экспериментальных животных и проявляет противоопухолевую активность, снижая число метастазов в гематогенной модели мышиной ме-ланомы

5. Пероральное введение трансгенной по гену ИЛ-18 моркови Daiicus carota L. оказывает биологическое специфическое влияние: стимулирует продукцию ИФНу спленоцитами мышей, стимулирует клеточный иммунный ответ у экспериментальных животных, в форме увеличения реакции ГЗТ, и ингиби-рует опухолевый процесс в уретан-индуцированной модели аденокарциномы легких у мышей.

6. Рекомбинантные белки ИЛ-18, ИЛ-18СБ человека, полученные из продуцента E.coli, и трансгенное растение Dauern carota L. , несущее ген ИЛ-18 человека, обладают рядом специфических биологических эффектов и противоопухолевыми свойствами.

СПИСОК РАБОТ ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ.

1. Якушенко Е.В.. Лопатникова Ю.А., Храпов Е.А., Курамшин Д.Х., Лыков

A.П., Ведина Л.А., Филипенко М.Л., Сенников C.B., Власов В.В., Козлов

B.А. Биологическая активность рекомбинантного человеческого интерлей-кина-18. // Иммунология, иммуногенетика, иммунопатология. Материалы 6-й отчетной конференции ГУ НИИКИ СО РАМН.Новосибирск, 2003. Стр.256-258.

2. Якушенко Е.В., Лопатникова Ю.А., Храпов Е.А., Курамшин Д.Х., Ведина Л.А., Филипенко М.Л., Сенников C.B., Власов В.В., Козлов В.А. Биологическая активность рекомбинантного человеческого интерлейкина-18. Материалы 7 Всероссийского научного Форума «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге» 2003, И Медицинская иммунологя, 2003, т.5, №3-4, стр. 429.

3. Лопатникова Ю.А., Якушенко Е.В., Храпов Е.А., Балданов Н.В., Жеребцо-ва Н.О., Филипенко М.Л., Сенников C.B., Козлов В.А. Интерлейкин-18: противоопухолевая активность. Тезисы доклада объединенного иммунологического форума. Екатеринбург 31 мая- 4 июня 2004. Russian Journal of Immunology 2004, V9, Supplement 1, p.49.

4. Yakushenko E.V., Lopatnikova J.A., Khrapov E.A, FilipenkoM.L., Pustoshilova N.M., Zakabunin A.I, Sennikov S.V., Kozlov V.A. Biological and specific activity of recombinant human Interleukin-18. // In "Immunology 2004.Cytokine Network, and Regulatory Cells, Signaling, and Apoptosis" 2004, Medimond, In-ernational proceedings, p.423-428.

5. Якушенко E.B., Лопатникова Ю.А., Храпов E.A., Филипенко М.Л., Пусто-шилова Н.М., Закабунин А.И., Сенников C.B., Козлов В.А. Получение ре-комбинантных цитокинов ИЛ-18 и ИЛ-18 связывающего протеина и исследование их биологической активности. // Материалы VIII Всероссий-

ского научного форума с международным участием имени В.И.Иоффе «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге., 2004 том 6, №3-5, стр. 263-264.

6. Сенников C.B., Филипенко M.JL, Якушенко Е.В., Храпов Е.А., Лопатнико-ва Ю.А., Дейнеко Е.В., Закабунин А.И., Пустошилова Н.М., Шумный В.К., Власов В.В., Козлов В.А. ИЛ-18 как стимулятор клеточного иммунитета. // Сборник тезисов 1 Российско-американской конференции «Биотехнология и онкология» Санкт-Петербург 29-31 мая 2005.Стр.35.

7. Якушенко Е.В., Лопатникова Ю.А, Задорожный A.B., Закабунин А.И., Пустошилова Н.М., Филипенко М.Л., Храпов Е.А., Воронина E.H., Сенников C.B., Козлов В.А.. Экспрессия ИЛ-18 связывающего белка человека в клетках E.Coli. И изучение биологической активности рекомбинантного белка. // Сборник тезисов 1 Российско-американской конференции «Биотехнология и онкология» Санкт-Петербург 29-31 мая, 2005. Стр.146-147.

8. Лопатникова Ю.А., Якушенко Е.В., Дейнеко Е.В., Храпов Е.А., Воронина E.H., Филипенко М.Л., Сенников C.B., Шумный В.К., Козлов В.А. Изучение иммунорегуляторных эффектов перорального применения трансгенной моркови несущей ген ИЛ-18. // Материалы Всероссийского научного симпозиума «Цитокины. Стволовая клетка. Иммунитет», 2005, т.4, №2,стр.119.

9. Лопатникова Ю.А., Якушенко Е.В., Храпов Е.А., Воронина E.H., Филипенко М.Л., Пустошилова Н.М., Закабунин А.И., Сенников C.B., Козлов В.А. Исследование биологической активности рекомбинантных ИЛ-18 и ИЛ-18 связывающего белка. // Материалы Всероссийского научного симпозиума «Цитокины. Стволовая клетка. Иммунитет», 2005, т.4, №2, стр.120.

10. Храпов Е.А., Воронина E.H., Закабунин А.И., Лопатникова Ю.А., Якушенко Е.В., Сенников C.B., Пустошилова Н.М., Козлов В.А., Филипенко М.Л. Получение рекомбинантного интерлейкина-18 человека в клетках E.coli. // Материалы Всероссийского научного симпозиума «Цитокины. Стволовая клетка. Иммунитет», 2005, т.4, №2, стр.125.

11. Якушенко Е.В., Лопатникова Ю.А, Сенников C.B. Характеристики интерлейкина-18 и его роль в иммунном ответе. // Медицинская иммунология. 2005, том 7, №4, стр.355-364

12. Лопатникова Ю.А., Якушенко Е.В., Храпов Е.А., Воронина E.H., Сенников C.B.i Филиппенко М.Л., Е.В.Дейнеко, Закабунин А.И., Пустошилова Н.М., Шумный В.К., Власов В.В., Козлов В.А. ИЛ-18: биологические свойства и противоопухолевая активность рекомбинантного белка и трансгенного растения Daucus carota L. II Дни иммунологии в Сибири, Красноярск, 2005, Стр.134-136.

13. Храпов Е.А., Задорожный A.B., Воронина E.H., Филипенко М.Л., Козлова Ю.Н., Литовченко Л.Л., Канынина A.B., Закабунин А.И., Пустошилова Н.М., Якушенко Е.В., Лопатникова Ю.А., Сенников C.B., Козлов В.А. Получение и изучение биологической активности рекомбинантного ИЛ-18 связывающего белка// Материалы Всероссийской конференции «Фундаментальные науки-медицине», 2005, Новосибирск, стр.105.

14. Лопатникова Ю.А., Якушенко Е.В., Сенников C.B., Храпов Е.А., Воронина E.H., Филипенко MJL, Дейнеко Е.В., Филипенко Е.А., Пухначева H.A., Тюкавин Г.Б., Шмыкова H.A., Шумный В.К., Козлов В.А. "Трансгенная

морковь, экспрессирующая ИЛ-18 и ее иммуномодулирующие свойства." «Иммунология Урала», 2005, №1(4), стр. 140-141.

15. Якушенко Е.В., Лопатникова Ю.А., Храпов Е.А., Воронина E.H., Филипенко М.Л., Закабунин А.И., Пустошилова Н.М., Сенников C.B., Власов В.В., Козлов В.А. "Рекомбинантный человеческий интерлейкин-18: биологическая активность и противоопухолевые свойства." «Иммунология Урала»,

2005, №1(4), стр. 162-163.

16. Е.В.Якушенко, Ю.А.Лопатникова, Ю.Н Козлова, Н.М. Пустошилова, М.Л.Филипенко, Е.А.Храпов, С.В.Сенников, В.А.Козлов. Получение ре-комбинантного интерлейкин-18 связывающего белка, изучение его биоло-гичекой активности и антиметастатичекого действия. Московская международная конференция «Биотехнология и медицина» Москва 2006, стр 150.

17. Khrapov Е.А., Lopatnikova J.A., Voronina E.N., Yakushenko E.V., Zakabunin A.I., Sennikov S.V., Pustoshilova N.M., Kozlov V.A., Filipenko M.L. Expression of human IL-18 in E.coli and biological activity of recombinant protein. In «Biotechnology in biology and medicine. Editors: A.M. Egorov and G. Zaikov,

2006, Nova Science Publishers, Inc., New York, p. 19-25.

18. Yakushenko E.V., Lopatnikova J.A., Khrapov E.A., Deineko E.V., Filipenko M.L., Voronina E.N., Turchinovich A.A., Filipenko E.A., Pukhnatcheva N.A., Schmikova N.A., Shumny V.K., Sennikov S.V., Kozlov V.A.. Use of transgenic carrot plants producing human interleukin-18 for modulation of mouse immune response. In «Biotechnology in biology and medicine. Editors: A.M. Egorov and G. Zaikov, 2006, Nova Science Publishers, Inc., New York, p.74-81.

19. Лопатникова Ю.А., Якушенко E.B., Храпов E.A., Воронина E.H., Сенников C.B., Филипенко М.Л., Дейнеко Е.В., Пустошилова Н.М., Шумный В.К., Козлов В.А. ИЛ-18: биологические свойства и противоопухолевая активность рекомбинантного белка и трансгенного растения Daucus carota L. несущего ген ИЛ-18 человека. Иммунопатогенез и иммунотерапия основных заболеваний человека :от эксперимента к клинике. Материалы 7-й отчетной конференции ГУ НИИКИ СО РАМН, Новосибирск 2006, стр 61-67

20. Якушенко Е.В., Лопатникова Ю.А., Сенников C.B., Храпов Е.А., Воронина E.H., Филипенко М.Л., Козлова Ю.Н., Пустошилова Н.М., Козлов В.А. Получение рекомбинантного интерлейкин-18 связывающего белка и исследование его биологической и специфической активности. Иммунопатогенез и иммунотерапия основных заболеваний человека: от эксперимента к клинике. Материалы 7-й отчетной конференции ГУ НИИКИ СО РАМН, Новосибирск 2006, стр 94-98

Подписано в печать 15.11.06 г. Формат 60 х 84/16 Усл. печ. л. 1,0. Тираж 100 экз. Изд. № 126п/06. Заказ № 447п

Отпечатано в типографии НГМУ г. Новосибирск, ул. Залесского, 4. Тел.: (383) 225-24-29

 
 

Оглавление диссертации Лопатникова, Юлия Анатольевна :: 2006 :: Новосибирск

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

ОГЛАВЛЕНИЕ.

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР.

1.1. МОЛЕКУЛЯРНАЯ СТРУКТУРА ИЛ-18,

ЕГО РЕЦЕПТОРА И ИЛ-18СБ.И

1.2. БИОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ИЛ-18.

1.3. РОЛЬ ИЛ-18 В ПАТОГЕНЕЗЕ ИММУНО-ОПОСРЕДОВАННЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ.

1.4. БИОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ИЛ- 18СБ И ВОЗМОЖНОСТИ ЕГО ТЕРАПЕТИЧЕСКОГО ИСПОЛЬЗОВАНИЯ.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. ХАРАКТЕРИСТИКА РЕКОМБИНАНТНОГО ЧЕЛОВЕЧЕСКОГО ИНТЕРЛЕЙКИНА

3.1.1. ИММУНОХИМИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА рчИЛ-18, ПОЛУЧЕННОГО ИЗ

ПРОДУЦЕНТА Е. COLI.

3.1.2. БИОЛОГИЧЕСКИЕ СПЕЦИФИЧЕСКИЕ

СВОЙСТВА рчИЛ-18 IN VITRO.

3.1.3. ВЛИЯНИЕ рчИЛ-18 НА ФОРМИРОВАНИЕ

ИММУННОГО ОТВЕТА В ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ МОДЕЛЯХ IN VIVO.

3.1.4. ПРОТИВООПУХОЛЕВАЯ АКТИВНОСТЬ рчИЛ-18.

3.2. ХАРАКТЕРИСТИКА РЕКОМБИНАНТНОГО ЧЕЛОВЕЧЕСКОГО ИЛ-18 СВЯЗЫВАЮЩЕГО БЕЛКА.

3.2.1. ИММУНОХИМИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА рчИЛ-18СБ.

3.2.2. ИЗУЧЕНИЕ БИОЛОГИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ рчИЛ-18СБ IN VITRO.

3.2.3. ИССЛЕДОВАНИЕ БИОЛОГИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ рчИЛ-18СБ IN VIVO.

3.2.4. ПРОТИВООПУХОЛЕВАЯ АКТИВНОСТЬ рчИЛ-18СБ.

3.3. ИММУНОМОДУЛИРУЮЩИЕ СВОЙСТВА

ТРАНСГЕННОГО РАСТЕНИЯ DAUCUS CAROTA L., НЕСУЩЕГО ГЕН ИЛ-18 ЧЕЛОВЕКА 3.3.1. ВЛИЯНИЕ ПЕРОРАЛЬНОГО ВВЕДЕНИЯ ТРАНСГЕННОЙ МОРКОВИ, НЕСУЩЕЙ ГЕН чИЛ-18, НА ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ СВОЙСТВА

СПЛЕНОЦИТОВ МЫШЕЙ.

3.3.2. ВЛИЯНИЕ ПЕРОРАЛЬНОГО ПРИМЕНЕНИЯ ТРАНСГЕННОЙ МОРКОВИ НА ФОРМИРОВАНИЕ ИММУННОГО ОТВЕТА В ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ МОДЕЛЯХ НА МЫШАХ.

3.3.3. ПРОТИВООПУХОЛЕВАЯ АКТИВНОСТЬ ПЕРОРАЛЬНОГО ПРИМЕНЕНИЯ ТРАНСГЕННОГО РАСТЕНИЯ, НЕСУЩЕГО ГЕН ИЛ-18.

 
 

Введение диссертации по теме "Аллергология и иммулология", Лопатникова, Юлия Анатольевна, автореферат

Актуальность

Одно из достижений современной медицины состоит в разработке новых лекарственных средств, полученных с помощью генной инженерии человеческих рекомбинантных цитокинов. Цитокины - это белковые или полипептидные продукты, которые являются медиаторами межклеточных коммуникаций и служат связующим звеном между иммунной и другими системами организма [5]. В настоящее время известно несколько сотен цитокинов, некоторые из них используются в клинической практике с диагностической целью, для профилактики и терапии различных заболеваний [152].

Перспективным препаратом для создания на его основе лекарственного средства является-интерлейкин-18. ИЛ-18-это цитокин, участвующий в функционировании иммунокомпетентных клеток, в том числе и в регуляции экспрессии и продукции многих других цитокинов. ИЛ-18 стимулирует пролифе-ративную активность Т-лимфоцитов, повышает литическую активность НК-клеток, увеличивает продукцию ИФНу, ГМ-КСФ [41, 223], ФНО-а [49, 125], ИЛ-2 [97, 121], ИЛ-5, ИЛ-6 [78, 144, 176], ИЛ-8 и ИЛ-10 [170, 228], PGE2 [54, 86] активированными T-, В-, НК-клетками. ИЛ-18 проявляет противоопухолевую активность через стимуляцию продукции ИФНу, оксида азота N0 [94, 79, 224], снижение ангиогенеза [33, 205], повышение активности НК-клеток и ци-тотоксических Т-лимфоцитов [122], повышение экспрессии апоптогенного фактора Fas -ligand [59, 64]. В экспериментах in vitro также показано, что ИЛ-18 способен стимулировать экспрессию молекул адгезии (ICAM-1 и VCAM) [120, 129]. Еще одной из особенностей ИЛ-18 является конститутивная экспрессия многими типами клеток различных систем организма. Это отличает его от многих других иммуномодулирующих цитокинов, которым свойственна индуцибельная экспрессия.

Обладая обширным спектром биологических эффектов, ИЛ-18 участвует в патогенезе некоторых заболеваний, сопровождающихся хроническим воспалением и деструкцией тканей, например, при ревматоидном артрите [109, 150], диабете [179,180] и болезни Крона [127,166]. В связи с этим, блокатор ИЛ-18, представляющий собой физиологическую ловушку-рецептор, может являться перспективным фактором для отмены побочных действий ИЛ-18. ИЛ-18 связывающий белок (ИЛ-18СБ), являющийся циркулирующим антагонистом ИЛ-18, конститутивно экспрессируется спленоцитами и относится к суперсемейству иммуноглобулинов. ИЛ-18СБ связывает ИЛ-18 путем формирования высоко аффинного комплекса (Кс1=400рМ) и тем самым нейтрализует эффекторные функции цитокина ИЛ-18 [141].

Данные о значительной роли ИЛ-18 в регуляции большого числа иммунных реакций позволяют предположить, что в ближайшем будущем ИЛ-18 и ИЛ-18 СБ займут свое достойное место в арсенале препаратов для борьбы с множеством патологических состояний человека.

В качестве продуцентов для получения белков-цитокинов медицинского назначения, в настоящее время широко используются клетки бактерий, дрожжей и млекопитающих. Однако такие системы имеют определенные недостатки. В клетках прокариот не происходят посттрансляционная модификация и фолдинг многих эукариотических белков. Использование клеток дрожжей и млекопитающих ограничено высокой себестоимостью выхода рекомбинантных белков [181]. По сравнению с вышеупомянутыми системами экспрессии, растения, как продуценты иммунорегуляторных белков, имеют ряд особенностей и преимуществ. Прежде всего, необходимо отметить, что в клетках высших растений происходят гликозилирование и фолдинг белков, сходные с таковыми в клетках млекопитающих. Культивирование растений не требует дорогостоящего оборудования, а сельскохозяйственные масштабы продукции гарантируют доступность рекомбинантного препарата. Исследования в этой области идут в направлении создания трансгенных растений несущих опухолевые, инфекционные антигены или иммунорегуляторные цитокины, с целью моделирования специфических иммунных реакций. В ряде случаев, например, при использовании трансгенных растений в качестве "съедобных вакцин" выделение белка в чистом виде не требуется. [36]. В настоящее время с различной эффективностью трансфекции подвергнуты: картофель, кукуруза, салат, люцерна, морковь, томаты, огурцы, табак и некоторые другие [58, 174, 196, 203, 222, 232]. Данная технология относится к социально значимым для России и найдет широкое применение для лечения вторичных иммунодефицитов, воспалительных и аутоиммунных заболеваний.

Таким образом, принимая во внимание уникальность любых рекомби-нантных продуктов, основанную на особенностях продуцентов, методов выделения, очистки и хранения полученных препаратов, мы решили изучить биологические специфические свойства рчИЛ-18 и рчИЛ-18СБ, полученных по оригинальной методике из продуцента E.coli, в различных экспериментальных моделях. Поскольку существуют данные по эффективности перорального введения антигенов и цитокинов, а также есть полученные в последние годы результаты по использованию трансгенных растений, нам представлялось актуальным в данной работе оценить эффекты перорального введения трансгенного растения Daucus carota L., несущего ген ИЛ-18 человека.

Цель работы:

Охарактеризовать биологическую активность рекомбинантных белков ИЛ-18 и ИЛ-18СБ, полученных по оригинальной методике из клеток-продуцентов Escherichia coli, а также иммуномодулирующие эффекты трансгенного растения Daucus carota L, несущего ген ИЛ-18 человека, при пероральном применении.

В соответствие с целью были поставлены следующие задачи.

Задачи исследования: 1. Изучить рчИЛ-18 и рчИЛ-18СБ, полученные из продуцентов E.coli по оригинальной методике, в реакции иммуноанализа по связыванию со специфическими антителами.

2. Изучить способность рчИЛ-18 стимулировать продукцию ФНОа, ИФНу мо-нонуклеарными клетками периферической крови человека.

3. Изучить влияние рчИЛ-18 на формирование гуморального и клеточного иммунного ответа у мышей, а также противоопухолевую активность в экспериментальной модели на мышах.

4. Изучить биологическую активность ИЛ-18СБ по отмене специфического иммунорегуляторного эффекта ИЛ-18 на МНК ПК человека.

5. Исследовать активность ИЛ- 18СБ в эксперименте in vivo по отмене ЛПС-индуцированной летальности и его противоопухолевое действие в мышиной модели меланомы.

6. Исследовать иммунорегуляторные эффекты перорального введения трансгенной по ИЛ-18 моркови Daucus carota L. на показатели гуморального и клеточного иммунного ответа, на продукцию иммунокомпетентными клетками ИФНу, а также противоопухолевую активность в модели уретан индуцированной аденокарциномы легких.

Научная новизна: Впервые показано стимулирующее влияние рчИЛ-18 на реакцию ГЗТ при внутривенном введении интактным животным. Показано противоопухолевое действие рчИЛ-18 в модели солидной ортотопической меланомы В16. Впервые продемонстрировано, что эндогенный ИЛ-18 играет ключевую роль в КонА-индуцированной продукции ФНОальфа, что подтверждено в эксперименте с отменой этого эффекта с помощью ИЛ-18СБ. На модели гематогенного мета-стазирования клеток меланомы В16 показан антиметастатической эффект введения рчИЛ-18СБ.

Впервые показано, что трансгенные растения Daucus carota L., несущие ген ИЛ-18 человека, обладают иммуномодулирующей активностью при перораль-ном применении экспериментальными животными. Впервые продемонстрированы противоопухолевые свойства трансгенной моркови, экспрессирующей ген ИЛ-18 человека, при пероральном применении в экспериментальной модели уретан-индуцированной аденокарциномы легких.

Практическая и теоретическая значимость:

Показанная специфическая иммунохимическая и биологическая активность in vitro и in vivo ИЛ-18 и ИЛ-18СБ свидетельствует, что рекомбинантные препараты ИЛ-18 и ИЛ-18СБ, полученные по оригинальной методике, могут быть использованы для дальнейшего изучения механизмов их действия и в перспективе для создания на их основе лекарственных препаратов. В результате исследования оптимизирована тест-система для количественного определения ИЛ-18 и ИЛ-18СБ в биологических жидкостях. Представленные результаты о биологической активности in vitro и in vivo рчИЛ-18 и ИЛ-18СБ расширяют представление о иммунорегуляторных свойствах этих белков и вносят существенный вклад в понимание системы этих медиаторов в противоопухолевом иммунитете. Экспериментальные данные по пероральному применению трансгенного растения, несущего ген ИЛ-18, и показанные иммуномодулирующие эффекты являются основой для дальнейшего развития технологий получения трансгенных растений, экспрессирующих иммунорегуляторные медиаторы человека, и их использования с целью профилактики и, возможно, лечения иммунопатологических состояний.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Рекомбинантные человеческие ИЛ-18 и ИЛ-18СБ, полученные по оригинальной методике из продуцента E.coli, обладают специфической биологической и противоопухолевой активностью.

2. Трансгенное растение Daucus carota L., несущее ген ИЛ-18 человека, обладает иммуномодулирующими свойствами и противоопухолевой активностью.

Апробация материалов диссертации.

Материалы диссертации доложены и обсуждены на: 1) 6-й отчетной конференции ГУ НИИКИ СО РАМН (Новосибирск, 2003г.), 2) 7-ом Всероссийском научном форуме с международным участием имени академика В.И. Иоффе «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге» (Санкт-Петербург, 2003г.), 3) объединенном иммунологическом форуме (Екатеринбург, 2004г.), 4) 8-ом всероссийского научном форуме с международным участием имени В.И. Иоффе «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге» (Санкт-Петербург, 2004г.), 5) «Технология и онкология» Санкт-Петербург 2005г, 6) 4-ой конференции иммунологов Урала (Уфа, 2005), 7) Всероссийском научном симпозиуме «Цитокины, стволовая клетка, иммунитет» (Новосибирск 2005г), 8) Всероссийской научно-практической конференции посвященной 15-летнему юбилею Красноярского Краевого Центра по профилактике и борьбе со СПИД и другими инфекционными заболеваниями. «Дни иммунологии в Сибири» (Красноярск 2005), 9) Московской международной конференции «Биотехнология и медицина» (Москва 2006), 10) «Иммунопатогенез и иммунотерапия основных заболеваний человека: от эксперимента к клинике» 7-ой отчетной конференции ГУ НИИКИ СО РАМН (Новосибирск 2006).

САМОСТОЯТЕЛЬНОСТЬ ВЫПОЛНЕННОЙ РАБОТЫ.

Создание генетических конструкций и модификация бактериальных клеток (Е. coli) проводилась сотрудниками группы фармакогеномики ИХБФМ СО РАН, г. Новосибирск (руководитель к.б.н. М.Л. Филипенко). Получение и очистка рекомбинантных белков проводилась сотрудниками ООО «Центр инженерной иммунологии» г. Новосибирск (руководитель к.м.н. Н.М. Пустошило-ва). Трансфекция растения моркови Daucus carota L. проводилась в ВНИИ селекции и семеноводства овощных культур РАСХН (Москва).

Результаты, представленные в данной работе, получены лично автором на базе лаборатории молекулярной иммунологии ГУ НИИ КИ СО РАМН.

Большую признательность автор выражает научному руководителю работы профессору, д.м.н. С.В. Сенникову за подробное конструктивное обсуждение полученных результатов, а также всем сотрудникам лаборатории молекулярной иммунологии за благожелательное отношение в ходе выполнения работы.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Биологические свойства рекомбинантных белков ИЛ-18, ИЛ-18СБ и трансгенного растения Daucus carota L., несущего ген ИЛ-18 человека"

выводы.

1. Рекомбинантный белок ИЛ-18 человека, полученный по оригинальной методике из клеток продуцентов E.coli, обладает специфическими для этого белка иммунохимическими и биологическими свойствами: он связывается со специфическими антителами в реакции иммуноанализа и стимулирует продукцию ИФНу и ФНОа МНК ПК человека.

2. Полученный рекомбинантный ИЛ-18 человека обладает биологической активность in vivo, так как стимулирует при введении мышам реакцию гиперчувствительности замедленного типа и проявляет противоопухолевую активность в модели ортотопической солидной меланомы, увеличивая продолжительность жизни мышей и снижая вес опухоли.

3. Рекомбинантный человеческий ИЛ-18 связывающий белок, полученный по оригинальной методике из клеток продуцентов E.coli, обладает специфическими для этого белка иммунохимическими и биологическими свойствами: он связывается со специфическими антителами в реакции иммуноанализа и отменяет специфические эффекты рчИЛ-18 в тестах in vitro.

4. Полученный рекомбинантный человеческий ИЛ-18 связывающий белок обладает биологической активностью in vivo: отменяет ЛПС-индуцированную летальность экспериментальных животных и проявляет противоопухолевую активность, снижая число метастазов в гематогенной модели мышиной меланомы.

5. Пероральное введение трансгенной по гену ИЛ-18 моркови Daucus carota L. оказывает биологическое специфическое влияние: стимулирует продукцию ИФНу спленоцитами мышей, стимулирует клеточный иммунный ответ у экспериментальных животных, в форме увеличения реакции ГЗТ, и ингибирует опухолевый процесс в уретан-индуцированной модели аде-нокарциномы легких у мышей.

6. Рекомбинантные белки ИЛ-18, ИЛ-18СБ человека, полученные из продуцента E.coli, и трансгенное растение Daucus carota L., несущее ген ИЛ-18 человека, обладают рядом специфических биологических эффектов и противоопухолевыми свойствами.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Обобщая результаты, можно заключить, что полученный в совместной работе с ИХБФМ СО РАН рекомбинантный белок рчИЛ-18 определяется иммунохимически, связываясь со специфическими антителами в тесте имму-ноанализа, стабилен при хранении и калибруется в этой системе при разведении, обладая при этом специфической биологической активностью. А именно, рчИЛ-18 стимулирует продукцию ИФНу и ФНОа МНК ПК человека. При изучении влияния рчИЛ-18 на формирование иммунного ответа установлено, что в экспериментальной модели на мышах исследуемый препарат увеличивает выраженность реакции ГЗТ, сдвигая баланс в сторону клеточного иммунного ответа, при этом стимуляции гуморального ответа в форме увеличения антителообразующих клеток IgM обнаружено не было.

Рекомбинантный ИЛ-18СБ, полученный по оригинальной методике из продуцента E.coli, проявляет иммунохимическую активность в тесте имму-ноанализа, связываясь со специфическими антителами, и сохраняет эту способность при хранении. Как растворимый рецептор ИЛ-18, ИЛ-18СБ блокирует его действие, отменяя стимулированную экзо- и эндогенным ИЛ-18 продукцию ФНОа. Нужно отметить, что продукция ФНОа в ответ на Конка-навалинА зависит главным образом от эндогенного ИЛ-18, поскольку добавление в культуру его блокатора - ИЛ-18СБ снижает КонА-стимулированную продукцию ФНОа до спонтанного уровня.

Данные, полученные при исследовании биологической активности ИЛ-18СБ in vivo, свидетельствуют о том, что рекомбинантный препарат отменяет ЛПС-индуцированную летальность мышей, опосредованную главным образом последовательной индукцией продукции ИЛ-18, ИФНу и FasL гепато-цитами.

Также показано, что оба препарата рчИЛ-18 и рчИЛ-18СБ обладают противоопухолевой активностью в разных моделях, что связано с различными механизмами их противоопухолевого действия. ИЛ-18 через ингибирова-ние ангиогенеза, стимуляцию продукции ФНОа и ИФНу, увеличение цитотоксичности НК и Т клеток влияет на вес и выживаемость экспериментальных животных в модели ортотопической меланомы В16. ИЛ-18СБ подавляет экспрессию молекул адгезии, стимулированную эндогенным ИЛ-18, и, таким образом, ингибирует процесс метастазирования в гематогенной метастатической модели мышиной меланомы В16.

Трансгенное растение Daucus carota L., несущее ген ИЛ-18 человека, было получено при сотрудничестве трех институтов: ИХБФМ СО РАН, ИЦиГ СО РАН, ВНИИССОК РАСХН. Исследование биологической активности трансгенных растений при пероральном применении в экспериментальных моделях на мышах показало, что ИЛ-18, экспрессирующийся и продуцирующийся в растительных клетках, обладает теми же свойствами что и ре-комбинантный белок. Установлено, что пероральное употребление трансгенной моркови несущей ген ИЛ-18 человека, в течение 16 дней увеличивает продукцию ИФНу спленоцитами мышей, а также стимулирует клеточный иммунный ответ в форме увеличения реакции ГЗТ. Противоопухолевая активность трансгенного растения исследовалась в модели длительно развивающейся уретан-индуцированной аденокарциномы легких. Полученные данные свидетельствуют о том, что ИЛ-18, продуцирующийся в трансгенной моркови, ингибирует опухолевый процесс в данной экспериментальной модели на мышах.

Исходя из представленных выше результатов, мы делаем вывод, что полученные по оригинальной методике рекомбинантные белки ИЛ-18 и ИЛ-18СБ человека стабильны при хранении и обладают специфической биологической активностью, и, кроме того, оказывают противоопухолевое действие в различных экспериментальных моделях. Полученное трансгенное растение -морковь Daucus carota L., при пероральном применении обладает специфическими биологическими свойствами аналогичными рекомбинантному белку ИЛ-18, а также противоопухолевой активностью. Таким образом, все полученные препараты обладают специфической биологической активностью, что позволяет продолжить разработки по созданию на их основе лекарственных средств.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2006 года, Лопатникова, Юлия Анатольевна

1. Гольдберг Е.Д., Дыгай A.M., Шахов В.П. Методы культуры ткани в гематологии. Томск: Изд-во Том. Ун-та, 1992.- 86С.

2. Иммунология. Методы исследования. Под. Ред. И.Лефковитса, М."Мир", 1983

3. Ложкин И.Д. Симпатическая иннервация и продукция интерлейкина-1 макрофагами при канцерогенезе. Дисс. На соискание уч. Степени кандидата медицинских наук. Новосибирск 1996

4. Хаитов P.M., Пинегин Б.В. Иммунная система желудочно-кишечного тракта: особенности строения и функционирования в норме и при патологии // Иммунология. -1997. №5. С.4-7.

5. Ярилин А.А. Основы иммунологии Москва «МЕДИцина» 1999 с. 237247.

6. Adachi О., Kawai T., Takeda К., Matsumoto M., Tsutsui H., Sakagami M., Nakanishi K., Akira S. Targeted disruption of the MyD88 gene results in loss of IL-1- and IL-18-mediated function// Immunity. -1998. -V. 9. -P. 143-50.

7. Aizawa Y., Akita K., Taniai M., Torigoe K., Mori T., Nishida Y., Ushio S., Nukada Y., Tanimoto T., Ikegami H., Ikeda M., Kurimoto M. Cloning and expression of interleukin-18 binding protein // FEBS Lett. -1999. -V. 445. -P. 338-42.

8. Bacon C.M., Petricoin E.F., Ortaldo J.R., Rees R.C., Larner A.C., Johnston J.A., O'Shea J.J. Interleukin 12 induces tyrosine phosphorylation and activation of STAT4 in human lymphocytes // Proc Natl Acad Sci USA. -1995. -V. 92. -P. 7307-11.

9. Banda N.K., Vondracek A., Kraus D., Dinarello C.A., Kim S.H., Bendele A., Senaldi G., Arend W.P. Mechanisms of inhibition of collagen-induced arthritis by murine IL-18 binding protein//J Immunol. 2003. -V. 170. -P. 2100-5.

10. Barbulescu K., Becker C., Schlaak J.F., Schmitt E. IL-12 and IL-18 differentially regulate the transcriptional activity of the human IFNgamma promoter in primary CD4+ T lymphocytes // J Immunol. -1998. -V. 160. -P. 36423647.

11. Bazan J.F., Timans J.C., Kastelein R.A. A newly defined interleukin-1? // Nature. -1996. -V. 379. -P. 6566-591.

12. Bentel J.M., Lykko A.W., Smith G.J. Cloned murine non malignant, spontaneously transformed and chemical tumor-derived cell lines related to the type2 pneumocytes // Cell Biol Int Rep. 1989. - V. 13. - №9. - P.729-738.

13. Bessis N., Boissier M.C. Novel pro-inflammatory interleukins: potential therapeutic targets in rheumatoid arthritis // Joint Bone Spine. -2001. -V. 68. -P. 477-81.

14. Boyum A. Separation of leucocytes from blood and bone marrow // Scand J Clin Lab Invest. -1968. -V .21. -P. 97.

15. Budar F., Thia-Toong, Van Montagu M. Agrobacterium-mediated gene transfer results mainly in transgenic plants trans-mitting T-DNA as a single Men-delian factor// Genetics. -1986. -V. 114. -P. 303-313.

16. Burns J.M., Dairaghi D.J., Deitz M., Tsang M., Schall T.J. Comprehensive mapping of poxvirus vCCI chemokine-binding protein. Expanded range of ligand interactions and unusual dissociation kinetics // J Biol Chem. -2002. -V. 277. -P. 2785-9.

17. Cai G., Kastelein R.A., Hunter C.A. IL-10 enhances NK cell proliferation, cytotoxicity and production of IFN-gamma when combined with IL-18 // Eur J Immunol. -1999. -V. 29. -P. 2658-65.

18. Calderara S., Xiang Y., Moss B. Orthopoxvirus IL-18 binding proteins: affinities and antagonist activities // Virology. -2001. -V. 279. -P. 22-6.

19. Cao R., Farnebo J., Kurimoto M., Cao Y. Interleukin-18 acts as an angiogene-sis and tumor suppressor //FASEB J. -1999. -V. 13. -P. 2195-202.

20. Carfi A., Smith C.A., Smolak P.J., McGrew J., Wiley D.C. Structure of a soluble secreted chemokine inhibitor vCCI (p35) from cowpox virus // Proc Natl Acad Sci USA. -1999. -V. 96. -P. 12379-83.

21. Companjen A., van der Wei L., van der Fits L., Laman J., Prens E. Elevated interleukin-18 protein expression in early active and progressive plaque-type psoriatic lesions // Eur Cytokine Netw. -2004. -V. 15. -P. 210-6.

22. Conti B., Jahng J.W., Tinti C., Son J.H., Joh T.H. Induction of interferon-gamma inducing factor in the adrenal cortex // J Biol Chem. -1997. -V. 272. -P. 2035-7.

23. Conti B., Park L.C., Calingasan N.Y., Kim Y., Kim H., Bae Y., Gibson G.E., Joh T.H. Cultures of astrocytes and microglia express interleukin 18 // Brain Res Mol Brain Res. -1999. -V. 67. -P. 46-52.

24. Culhane A.C., Hall M.D., Rothwell N.J., Luheshi G.N. Cloning of rat brain interleukin-18 cDNA // Mol Psychiatry. -1998. -V. 3. -P. 362-6.

25. Cunningham A.J. A method of increased sensitivity for detecting single antibody-forming cells // Nature. -1965. V. 207. -P. 1106-7.

26. Daniell H., Streatfield S., Wycoff K. Medical molecular farming: production of antibodies, biopharmaceuticals and edible vaccines in plants // Trends in Plant Sci. -2001. -V. 6. -P. 219-226.

27. Dao T., Ohashi K., Kayano T., Kurimoto M., Okamura H. Interferon-gamma-inducing factor, a novel cytokine, enhances Fas ligand-mediated cytotoxicity of murine T helper 1 cells//Cell Immunol. -1996. -V. 173. -P. 230-5.

28. De Cosa B., Moar W., Lee S. et al. Overexpression of Bt cry2Aa2 operon in chloroplasts leads to formation of insecticidal crystals // Nature Biotechnol. -2001.-V. 19. -P. 71-74.

29. De la Riva G., Gonzalez-Cabrera J., Vazquez-Padron R., Ayra-Pardo C. Agrobacterium tumefaciens: a natural tool for plant transformation // Electronic J. of Biotechnol. 1998. -V. 1. -P. 215-230.

30. Demeure C.E., Tanaka H., Mateo V., Rubio M., Delespesse G., Sarfati M. CD47 engagement inhibits cytokine production and maturation of human dendritic cells // J Immunol. -2000. -V. 164. -P. 2193-9.

31. Dinarello C.A. IL-18: A TH1-inducing, proinflammatory cytokine and new member of the IL-1 family//J Allergy Clin Immunol. -1999. -V. 103. -P. 1124.

32. Dinarello C.A. Interleukin-18. // Methods. -1999. -V. 19. -P. 121-32.

33. Dinarello C.A. Targeting interleukin 18 with interleukin 18 binding protein // Ann Rheum Dis. -2000. -V. 59. -P. 117-20.

34. Eaton A.D., Xu D., Garside P. Administration of exogenous interleukin-18 and interleukin-12 prevents the induction of oral tolerance // Immunology. -2003.-V. 108.-P. 196-203.

35. Edelbaum O., Stein D., Holland N. et al. Expression of active human interferon-beta in transgenic plants // J. of Interferon Res. -1992. -V. 12. -P. 449453.

36. Fas/Fas ligand-mediated models of liver disease in mice // J Immunol. -2001. -V. 167. -P. 5913-20.

37. Fassbender K., Mielke O., Bertsch T., Muehlhauser F., Hennerici M., Kuri-moto M., Rossol S. Interferon-gamma-inducing factor (IL-18) and interferon-gamma in inflammatory CNS diseases // Neurology. -1999. -V. 53. -P. 11046.

38. Finnegan J., McElroy D. Transgene inactivation: Plants fight back! // Bio/Technology. -1994. -V. 12. -P. 883-887.

39. Fromm E.M., Taylor L.P., Walbot V. Expression of genes transferred into monocot and dicot plant cells by electropora-tion // Proc. Natl Acad. Sci. USA. -1985. -V. 82. -P. 5824-5825.

40. Fujioka N., Akazawa R., Ohashi K., Fujii M., Ikeda M., Kurimoto M. Inter-leukin-18 protects mice against acute herpes simplex virus type 1 infection // J Virol.-1999.-V. 73.-P. 2401-9.

41. Fukami T., Miyazaki E., Matsumoto T., Kumamoto T., Tsuda T. Elevated expression of interleukin-18 in the granulomatous lesions of muscular sarcoidosis // Clin Immunol. -2001. -V. 101. -P. 12-20.

42. Giddings G., Allison G., Brooks D., Carte A. Transgenic plants as factors for biopharmaceuticals //: Nature Biotechnol -2000. -V. 18. -P. 1151-1155.

43. Golab J. Interleukin 18~interferon gamma inducing factor~a novel player in tumour immunotherapy? // Cytokine. -2000. -V. 12. -P. 332-8.

44. Hang Lu.,Caixima S., Brunhan R.Chlamidia Trachomatis infection of epithelial cells induces the activation of caspase-1 and release of mature 11-18 // J Immunol. -2000. -V. 165. -P1463-1469.

45. Hayashi N., Mita E. Involvement of Fas system-mediated apoptosis in pathogenesis of viral hepatitis // J Viral Hepat. -1999. -V. 6. -P. 357-65.

46. Heberle-Bors E., Charvat B., Thompson D. et al. Genetic analysis of T-DNA insertion into tobacco genome // Plant Cell Rep. -1988. -V. 7. -P. 571-574.

47. Heinzmann A., Gerhold K., Ganter K., Kurz T., Schuchmann L., Keitzer R., Berner R., Deichmann K.A. Association study of polymorphisms within inter-leukin-18 in juvenile idiopathic arthritis and bronchial asthma // Allergy. -2004. -V. 59. -P. 845-9.

48. Horsch R.B., Fraley R.T., Rogers S.G. et al. Inheritance of functional foreign genes in plants// Science. -1984. -V. 223. -P. 496-499.

49. Hoshino T., Wiltrout R.H., Young H.A. IL-18 is a potent coinducer of IL-13 in NK and T cells: a new potential role for IL-18 in modulating the immune response // J Immunol. -1999. -V. 162. -P. 5070-7.

50. Hultgren O., Eugster H.P., Sedgwick J.D., Korner H., Tarkowski A. TNF/lymphotoxin-alpha double-mutant mice resist septic arthritis but display increased mortality in response to Staphylococcus aureus // J Immunol. -1998. -V. 161.-P. 5937-42.

51. Jablonska E., Jablonski J. Effect of IL-18 on the release of IL-6 and its soluble receptors: sIL-6Ralpha and sgpl30 by human neutrophils // Immunol Invest. -2002. -V.31.-P. 159-67.

52. Jablonska E., Puzewska W., Charkiewicz M. Effect of IL-18 on leukocyte expression of iNOS and phospho-IkB in patients with squamous cell carcinoma of the oral cavity. //Neoplasma. -2006. -V. 53. -P. 200-5.

53. Janssen R., Grutters J.C., Ruven H.J., Zanen P., Sato H., Welsh K.I., du Bois R.M., van den Bosch J.M. No association between interleukin-18 gene polymorphisms and haplotypes in Dutch sarcoidosis patients // Tissue Antigens. -2004. -V. 63. -P. 578-83.

54. Jia H.Y., Du J., Zhu S.H., Ma Y.J., Chen H.Y., Yang B.S., Cai H.F. The roles of serum IL-18, IL-10, TNF-alpha and sIL-2R in patients with chronic hepatitis C // Hepatobiliary Pancreat Dis Int. -2002. -V. 1. -P. 378-82.

55. Ju D.W., Tao Q., Lou G., Bai M., He L., Yang Y., Cao X. Interleukin 18 transfection enhances antitumor immunity induced by dendritic cell-tumor cell conjugates // Cancer Res. -2001. -V. 61. -P. 3735-40.

56. Kalina U., Ballas K., Koyama N., Kauschat D., Miething C., Arnemann J., Martin H., Hoelzer D., Ottmann O.G. Genomic organization and regulation of the human interleukin-18 gene // Scand J Immunol. -2000. -V. 52. -P. 525-30.

57. Kampfer H., Kaiina U., Muhl H., Pfeilschifter Frank S. Counterregulation of interleukin-18 mRNA and protein expression during cutaneous wound repair in mice //J Invest Dermatol. -1999. -V. 113. -P. 369-74.

58. Kashiwamura S., Ueda H., Okamura H. Roles of interleukin-18 in tissue destruction and compensatory reactions // J Immunother. -2002. -V. 11. -P. S4-11.

59. Kawakami K., Qureshi M.H., Zhang T., Okamura H., Kurimoto M., Saito A. IL-18 protects mice against pulmonary and disseminated infection with Cryptococcus neoformans by inducing IFN-gamma production // J Immunol. -1997.-V. 159.-P. 5528-34.

60. Kinjo Y., Kawakami K., Uezu K., Yara S., Miyagi K., Koguchi Y., Hoshino T., Okamoto M., Kawase Y., Yokota K., Yoshino K., Takeda K., Akira S.,

61. Saito A. Contribution of IL-18 to Thl response and host defense against infection by Mycobacterium tuberculosis: a comparative study with IL-12p40 // J Immunol. -2002. -V. 169. -P. 323-9.

62. Kitching A.R., Tipping P.G., Kurimoto M., Holdsworth S.R. IL-18 has IL-12-independent effects in delayed-type hypersensitivity: studies in cell-mediated crescentic glomerulonephritis // J Immunol. -2000. -V. 165. -P. 4649-57.

63. Kito T., Kuroda E., Yokota A., Yamashita U. Cytotoxicity in glioma cells due to interleukin-12 and interleukin-18-stimulated macrophages mediated by in-terferon-gamma-regulated nitric oxide // J Neurosurg. -2003. -V. 98. -P. 38592.

64. Klein S.A., Ottmann O.G., Ballas K., Dobmeyer T.S., Pape M., Weidmann E., Hoelzer D., Kalina U. Quantification of human interleukin 18 mRNA expression by competitive reverse transcriptase polymerase chain reaction // Cytokine. -1999. -V. 11. -P. 451-8.

65. Klein T., Wolf D., Wu R., Sanford J. High-velocity microprojectiles for delivering nucleic acids into living cells // Nature. -1987. -V. 327. -P. 70-72.

66. Kohyama M., Saijyi K., Hayashida M., Yasugi T., Kurimoto M., Direct activation of human CD8+ cytotoxic T lymphocytes by interleukin-18 // Cancer Res.-1998.-V89.-P. 1041-1046.

67. Kolber D.L., Knisely T.L., Maione T.E. Inhibition of development of murine melanoma lung metastases by systemic administration of recombinant platelet factor 4 // J Natl Cancer Inst. -1995. -V. 87. -P. 304-9.

68. Kretowski A., Mironczuk K., Karpinska A., Bojaryn U., Kinalski M., Puchalski Z., Kinalska I. Interleukin-18 promoter polymorphisms in type 1 diabetes // Diabetes. -2002. -V. 51. -P. 3347-9.

69. Kumagai M., Turpen T.H., Weinzettl N. et al. High-level expression of biologically active alpha-trichosanthin in trans-fected plants by an RNA viral vector // Proc. Natl Acad. Sei. USA. -1993. -V. 90. -P. 427-430.

70. Kusnadi A. Production of recombinant proteins in transgenic plants: practical considerations // Biotechnology and Bioen-gineering. -1997. -V. 56. -P. 473-484.

71. Lauwerys B.R., Renauld J.C., Houssiau F.A. Synergistic proliferation and activation of natural killer cells by interleukin 12 and interleukin 18 // Cytokine.-1999.-V. 11.-P. 822-30.

72. Lee S.Y., Huang C.K., Zhang T.F., Schofield B.H., Burks A.W., Bannon G.A., Sampson H.A., Li X.M. Oral administration of IL-12 suppresses anaphylactic reactions in a murine model of peanut hypersensitivity // Clin Immunol. -2001. -V. 101. -P. 220-8.

73. Leung B.P., Mclnnes I.B., Esfandiari E., Wei X.Q., Liew F.Y. Combined effects of IL-12 and IL-18 on the induction of collagen-induced arthritis // J Immunol. -2000. -V. 164. -P. 6495-502.

74. Lewkowich I.P., HayGIass K.T. Endogenous IFN-gamma and IL-18 production directly limit induction of type 2 immunity in vivo // Eur J Immunol. -2002. -V. 32. -P. 3536-45.

75. Liew F.Y., Mclnnes I.B. Role of interleukin 15 and interleukin 18 in inflammatory response // Ann Rheum Dis. -2002. -V. 61. -P. 100-2.109

76. Mahmoud R.A., el-Ezz S.A., Hegazy A.S. Increased serum levels of inter-leukin-18 in patients with diabetic nephropathy // Ital J Biochem. -2004. -V. 53.-P. 73-81.

77. Matzke A., Neuhuber F., Park Y. et al. Homology-dependent gene silencing in transgenic plants: epistatic silencing loci contain multiple copies of methylated transgenes // Mol. Gen. Genet. -1994. -V. 244. -P. 219-229.

78. Matzke M., Matzke A. How and why do plants inactivate homologous transgenes? // Plant Physiol. -1995. -V. 107. -P. 679-685.

79. Maurer C.A., Friess H., Kretschmann B., Wildi S., Muller C., Graber H., Schilling M., Buchler MW. Over-expression of ICAM-1, VCAM-1 and ELAM-1 might influence tumor progression in colorectal cancer // Int J Cancer.-1998. -V. 79. -P. 76-81.

80. Mayne M., Cheadle C., Soldman S., Cermelli C., Yamoto Y., Gene expression profile of herpesvirus-infected T cells obtained using immunomicroar-rays: induction of proinflammatory machanisms // Journel of Virology. -2001. -V. 75. -P. 11641-11650.

81. McDaniel O.D., Yamout S., Aru G., Moore C.K. IL-18 gene polymorphism and expression correlates with coronary vasculopathy following transplantation //Hum Immunol. -2003. -V. 64. -P. S10.

82. Menassa R., Nguyen V., Jevnikar A. et al. A self-contained system for the field production of plant recombinant inter-leukin-10 // Mol. Breeding. -2001. -V. 8.-P. 177-185.

83. Mencacci A., Bacci A., Cenci E., Montagnoli C., Fiorucci S., Casagrande A., Flavell R.A., Bistoni F., Romani L. Interleukin 18 restores defective Thl immunity to Candida albicans in caspase 1-deficient mice // Infect Immun. -2000. -V. 68.-P. 5126-31.

84. Moller B., Kukoc-Zivojnov N., Kessler U., Rehart S., Kaltwasser J.P., Hoel-zer D., Kalina U., Ottmann O.G. Expression of interleukin-18 and its monokine-directed function in rheumatoid arthritis // Rheumatology (Oxford). -2001.-V. 40. -P. 302-9.

85. Monteforte G.M., Takeda K., Rodriguez-Sosa M., Akira S., David J.R., Satoskar A.R. Genetically resistant mice lacking IL-18 gene develop Thl response and control cutaneous Leishmania major infection // J Immunol. -2000. -V. 164. -P. 0-3.

86. Monteleone G., Trapasso F., Parrello T., Biancone L., Stella A., Iuliano R., Luzza F., Fusco A., Pallone F. Bioactive IL-18 expression is up-regulated in Crohn's disease//J Immunol. -1999. -V. 163. -P. 143-7.

87. Morel J.C., Park C.C., Woods J.M., Koch A.E. A novel role for interleukin-18 in adhesion molecule induction through NF kappa B and phosphatidy-linositol (PI) 3-kinase-dependent signal transduction pathways // J Biol Chem. -2001.-V. 276. -P. 37069-75.

88. Muhl H., Kampfer H., Bosmann M., Frank ., Radeke H., Pfeilschifter J. In-terferon-gamma mediates gene expression of IL-18 binding protein in nonleukocytic cells // Biochem Biophys Res Commun. 2000. -V. 267. -P. 960-3.

89. Mushegian A., Shepherd R. Genetic elements of plant viruses as tools for genetic engineering//Microbiol. Rev. -1995. -V. 12. -P. 548-578.

90. Nakanishi K., Yoshimoto T., Tsutsui H., Okamura H. Interleukin-18 is a unique cytokine that stimulates both Thl and Th2 responses depending on its cytokine milieu // Cytokine Growth Factor Rev. -2001. -V. 12. -P. 72.

91. Nakanishi K., Yoshimoto T., Tsutsui H., Okamura H. Interleukin-18 regulates both Thl and Th2 responses // Annu Rev Immunol. -2001. -V. 19. -P. 423-74.

92. Neuhaus G., Spandenberg G., Mittelstein 0. et al. Transgenic rapesee plants obtained by the microinjection of DNA into microspore-derived embryoids // Plant J.-1987. -V. 75.-P. 30-36.

93. Neutra M.R. Current concept in mucosal immunity. Role of M cells in tran-sepithelial transport of antigens and pathogens to the mucosal immune system // AJP. -1998. -V. 74. -P.785-791.

94. Nolan K.F., Greaves D.R., Waldmann H. The human interleukin 18 gene IL18 maps to Ilq22.2-q22.3, closely linked to the DRD2 gene locus and distinct from mapped IDDM loci //Genomics. -1998. -V. 51. -P. 161-3.

95. Nold M., Hauser I.A., Hofler S., Goede A., Eberhardt W., Ditting T., Geiger H., Pfeilschifter J., Muhl H. IL-18BPa:Fc cooperates with immunosuppressive drugs in human whole blood // Biochem Pharmacol. -2003. -V. 66. -P. 505-10.

96. Nolsoe R.L., Pociot F., Novick D., Rubinstein M., Kim S.H., Dinarello C.A., Mandrup-Poulsen T. Mutation scan of a type 1 diabetes candidate gene: the human interleukin-18 binding protein gene // Ann N Y Acad Sci. -2003. -V. 1005.-P. 332-9.

97. Novick D., Kim S.H., Fantuzzi G., Reznikov L.L., Dinarello C.A., Rubinstein M. IL-18 binding protein: a novel modulator of the Thl cytokine response//Immunity. -1999. -V. 10. -P. 127-36.

98. Ogura T., Ueda H., Hosohara K., Tsuji R., Nagata Y., Kashiwamura S., Okamura H. Interleukin-18 stimulates hematopoietic cytokine and growth factor formation and augments circulating granulocytes in mice // Blood. -2001.-V. 98.-P. 2101-7.

99. Okamura H., Kashiwamura S., Tsutsui H., Yoshimoto T., Nakanishi K. Regulation of interferon-gamma production by IL-12 and IL-18// Curr Opin Immunol. -1998. -V. 10. -P. 259-64.

100. Okamura H., Tsutsi H., Komatsu T., Yutsudo M., Hakura A., Tanimoto T., Torigoe K., Okura T., Nukada Y., Hattori K., et al. Cloning of a new cytokine that induces IFN- gamma production by T cells // Nature. -1995. -V. 378. -P. 88-91.

101. Okamura H., Tsutsui H., Kashiwamura S., Yoshimoto T., Nakanishi K. In-terleukin-18: a novel cytokine that augments both innate and acquired immunity //Adv Immunol. -1998. -V. 70. -P. 281-312.

102. Olee T., Hashimoto S., Quach J., Lotz M. IL-18 is produced by articular chondrocytes and induces proinflammatory and catabolic responses // J Immunol. -1999. -V. 162. -P. 1096-100.

103. Olson J.K., Girvin A.M., Miller S.D. Direct activation of innate and antigen-presenting functions of microglia following infection with Theiler's virus // J Virol. -2001. -V. 75. -P. 9780-9.

104. Oppenhein J.J., Saklatvala J. Clinical applications of cytokines. // Cytokines and thier receptors. 1993. Oxford univercity press, New York .P. 3-15.

105. Osaki T., Peron J.M., Cai Q., Okamura H., Robbins P.D., Kurimoto M., Lotze M.T., Tahara H. IFN-gamma-inducing factor/IL-18 administration mediates IFN-gamma- and IL-12-independent antitumor effects // J Immunol. -1998. -V. 160. -P. 1742-9.

106. Papermaster B.W., Gilliland C.D., McEntire J.E., Smith M.E., Buchok S.J. Lymphokine-mediated immunotherapy studies in mouse tumor systems // Cancer. -1980. -V. 45. -P. 1248-53.

107. Park C.C., Morel J.C., Amin M.A., Connors M.A., Harlow L.A., Koch A.E. Evidence of IL-18 as a novel angiogenic mediator//J Immunol. -2001. -V. 167.-P. 1644-53.

108. Park H.J, Kim J.E, Lee J.Y., Cho B.K, Lee W.J., Kim T, Yoon D„ Cho D. Increased expression of IL-18 in cutaneous graft-versus-host disease // Immunol Lett. -2004. -V. 95.-P. 57-61.

109. Parnet P, Garka K.E, Bonnert T.P, Dower S.K, Sims J.E. IL-lRrp is a novel receptor-like molecule similar to the type I interl eukin-1 receptor and its homologues T1/ST2 and IL-1R AcP // J Biol Chem. -1996. -V. 271. -P. 3967-70.

110. Pietrzak A, Lecewicz-Torun B, Chodorowska G, Rolinski J. Interleukin-18 levels in the plasma of psoriatic patients correlate with the extent of skin lesions and the PASI score // Acta Derm Venereol. -2003. -V. 83. -P. 262-5.

111. Pirhonen J, Sareneva T, Kurimoto M, Julkunen I, Matikainen S. Virus infection activates IL-1 beta and IL-18 production in human macrophages by a caspase-1-dependent pathway // J Immunol. -1999. -V. 162. -P. 7322-9.

112. Plitz T., Saint-Mezard P., Satho M., Herren S., Waltzinger C., de Carvalho Bittencourt M., Kosco-Vilbois M.H., Chvatchko Y. IL -18 binding protein protects against contact hypersensitivity // J Immunol. -2003. -V. 171. -P. 1164-71.

113. Porta C., Spall V., Lin T. et al. The development of cowpea mosaic virus as a potential source of novel vaccines // Intervi-rology. -1996. -V. 39. -P. 79-84.

114. Prinz M., Hanisch U.K. Murine microglial cells produce and respond to in-terleukin-18 // J Neurochem. -1999. -V. 72. -P. 2215-8.

115. Puren A.J., Fantuzzi G., Gu Y., Su M.S., Dinarello C.A. Interleukin-18 (IFNgamma-inducing factor) induces IL-8 and IL-1 beta via TNFalpha production from non-CD 14+ human blood mononuclear cells // Clin Invest. -1998. -V. 101.-P. 711-21.

116. Puren A.J., Razeghi P., Fantuzzi G., Dinarello C.A. Interleukin-18 enhances lipopolysaccharide-induced interferon-gamma production in human whole blood cultures //J Infect Dis. -1998. -V. 178.-P. 1830-4.

117. Ray C.A., Black R.A., Kronheim S.R., Greenstreet T.A., Sleath P.R., Salvesen G.S., Pickup D.J. Viral inhibition of inflammation: cowpox virus encodes an inhibitor of the interleukin-1 beta converting enzyme // Cell.1992.-V. 69.-P. 597-604.

118. Reddy P. Interleukin-18: recent advances // Curr Opin Hematol. -2004. -V. 11.-P. 405-10.

119. Richter L., Thanavala Y., Arntzen C. et al. Production of hepatitis B surface antigen in transgenic plants for oral immuni-zation // Nature Biotechnol. -2000. -V. 18.-P. 1167-1171.

120. Rodriguez-Galan M.C., Bream J.H., Farr A., Young H.A. Synergistic effect of IL-2, IL-12, and IL-18 on thymocyte apoptosis and Thl/Th2 cytokine expression // J Immunol. -2005. -V. 174. -P. 2796-804.

121. Rollwagen F.M., Baqar S. Oral cytokine administration // Immunol Today.1996. -V. 17. -P. 548-5.

122. Rothe H., Hibino T., Itoh Y., Kolb H., Martin S. Systemic production of interferon-gamma inducing factor (IGIF) versus local IFN-gamma expression involved in the development of Thl insulitis in NOD mice // J Autoimmun.1997. -V. 10. -P. 251-6.

123. Rothe H., Jenkins N.A., Copeland N.G., Kolb H. Active stage of autoimmune diabetes is associated with the expression of a novel cytokine, IGIF, which is located near Idd2 // J Clin Invest. -1997. -V. 99. -P. 469-74.

124. Rothe H., Kolb H. The APC1 concept of type I diabetes // Autoimmunity.1998. -V. 27. -P. 179-84.

125. Russel C., Clarke L. Recombinant proteins for genetic disease // Clinical Genet. -1999 -V. 55. -P. 389-394.

126. Ryo K., Kamogawa Y., Ikeda I., Yamauchi K., Yonehara S., Nagata S., Ha-yashi N. Significance of Fas antigen-mediated apoptosis in human fulminant hepatic failure // Am J Gastroenterol. -2000. -V. 95. -P. 2047-55.

127. Sareneva T., Matikainen S., Kurimoto M., Julkunen I. Influenza A virus-induced IFN-alpha/beta and IL-18 synergistically enhance IFN-gamma gene expression in human T cells // J Immunol. -1998. -V. 160. -P. 6032-8.

128. Senkevich T.G., Koonin E.V., Bugert J.J., Darai G., Moss B. The genome of molluscum contagiosum virus: analysis and comparison with other poxviruses // Virology. -1997. -V. 233. -P. 19-42.

129. Sennikov S.V., Krysov S.V., Injelevskaya T.V., Silkov A.N., Grishina L.V., Kozlov V.A. Quantitative analysis of human immunoregulatory cytokines by electrochemiluminescence method // J Immunol Methods. -2000. -V. 275. -P. 81-8.

130. Shapiro L., Puren A.G., Barton H.A., Novick D., Su M.S., Dinarello C.A., Interleukin 18 stimulates HIV type 1 in monocytic cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1998. -V. 95. -P. 12550-12555.

131. Sijmons P., Dekker B., Schrammeijer B. et al. Production of correctly processed human serum albumin intransgenic plants // Bio/Technology. -1990. -V. 8.-P. 217-221.

132. Smith V.P., Bryant N.A., Alcami A. Ectromelia, vaccinia and cowpox viruses encode secreted interleukin-18-binding proteins // J Gen Virol. -2000. -V. 81.-P. 1223-30.

133. Son Y.I., Dallal R.M., Mailliard R.B., Egawa S., Jonak Z.L., Lotze M.T. In-terleukin-18 (IL-18) synergizes with IL-2 to enhance cytotoxicity, interferon-gamma production, and expansion of natural killer cells // Cancer Res. -2001. -V. 61.-P. 884-8.

134. Staub J., Garcia B., Graves J. et al. High-yield production of a human therapeutic protein in tobacco chloroplasts // Na-ture Biotechnol. -2000.-V. 18. -P. 333-338.

135. Stober D., Schirmbeck R., Reimann J. IL-12/IL-18-dependent IFN-gamma release by murine dendritic cells // J Immunol. -2001. -V. 167. -P. 957-65.

136. Streatfield S., Jilka J., Hood E. et al. Plant-based vaccines: unique advantages // Vaccine. -2000. -V. 19. -P. 2742-2748.

137. Strobel S. Immunity induced after a feed of antigen during early life: oral tolerance v. Sensitisation // Proc Nutr Soc. -2001. -V. 60. -P. 437-42.

138. Sugama S., Cho B.P., Baker H., Joh T.H., Lucero J., Conti B. Neurons of the superior nucleus of the medial habenula and ependymal cells express IL-18 in rat CNS // Brain Res. -2002. -V. 958. -P. 1-9.

139. Sugawara I. Interleukin-18 (IL-18) and infectious diseases, with special emphasis on diseases induced by intracellular pathogens // Microbes Infect. -2000. -V. 10. -P. 1257-63.

140. Sugawara I., Yamada H., Kaneko H., Mizuno S., Takeda K., Akira S. Role of interleukin-18 (IL-18) in mycobacterial infection in IL-18-gene-disrupted mice // Infect Immun. -1999. -V. 67. -P. 2585-9.

141. Sugaya M., Nakamura K., Tamaki K. Interleukins 18 and 12 synergistically upregulate interferon-gamma production by murine dendritic epidermal T cells//J Invest Dermatol. -1999. -V. 113. -P. 350-4.

142. Tacket C., Mason H., Losonsky G. et al. Human immune responses to a novel Norwalk virus vaccine delivered in trans-genic potatoes // J. of Infectious Diseases. -2000. -V. 182. -P. 302-305.

143. Takahashi H.K., Weitz-Schmidt G., Iwagaki H., Yoshino T., Tanaka N., Ni-shibori M. Hypothesis: the antitumor activities of statins may be mediated by IL-18.// J Leukoc Biol. -2006. -V. 80. -P. 215-6.

144. Takeda K., Tsutsui H., Yoshimoto T., Adachi O., Yoshida N., Kishimoto T., Okamura H., Nakanishi K., Akira S. Defective NK cell activity and Thl response in IL-18-deficient mice // Immunity. -1998. -V. 8. -P. 383-90.

145. Tan J., Crucian B.E., Chang A.E., Aruga E., Aruga A., Dovhey S.E., Tani-gawa K., Yu H. Interferon-gamma-inducing factor elicits antitumor immunity in association with interferon-gamma production // J Immunother. -1998. -V. 21.-P. 48-55.

146. Tanaka F., Hashimoto W., Okamura H., Robbins P.D., Lotze M.T., Tahara H. Rapid generation of potent and tumor-specific cytotoxic T lymphocytes by interleukin 18 using dendritic cells and natural killer cells // Cancer Res. -2000. -V. 60. -P. 4838-44.

147. Tanaka-Kataoka M., Kunikata T., Takayama S., Iwaki K., Ohashi K., Ikeda M., Kurimoto M. In vivo antiviral effect of interleukin 18 in a mouse model of vaccinia virus infection // Cytokine. -1999. -V. 11. -P. 593-9.

148. Taub D.D., Cox GW. Murine Thl and Th2 cell clones differentially regulate macrophage nitric oxide production // J Leukoc Biol. -1995. -V. 58. -P. 80-9.

149. Tominaga K., Yoshimoto T., Torigoe K., Kurimoto M., Matsui K., Hada T., Okamura H., Nakanishi K. IL-12 synergizes with IL-18 or IL-lbeta for IFN-gamma production from human T cells // Int Immunol. -2000. -V. 12. -P. 15160.

150. Tomura M., Zhou X.Y., Maruo S., Ahn H.J., Hamaoka T., Okamura H., Nakanishi K., Tanimoto T., Kurimoto M., Fujiwara H. A critical role for IL-18 in the proliferation and activation of NK1.1+ CD3- cells // J Immunol. -1998. -V. 160. -P. 4738-46.

151. Toyonaga T., Hino O., Sugai S., Wakasugi S., Abe K., Shichiri M., Yama-mura K. Chronic active hepatitis in transgenic mice expressing interferon-gamma in the liver // Proc Natl Acad Sci U S A. -1994. -V. 91. -P. 614-8.

152. Tracey K.J., Cerami A. Tumor necrosis factor, other cytokines and disease // Annu Rev Cell Biol. -1993. -V. 9. -P. 317-43.

153. Tsutsui H., Matsui K., Okamura H., Nakanishi K. Pathophysiological roles of interleukin-18 in inflammatory liver diseases // Immunol Rev. -2000. -V. 174. -P. 192-209.

154. Tsutsui H., Nakanishi K., Matsui K., Higashino K., Okamura H., Miyazawa Y., Kaneda K. IFN-gamma-inducing factor up-regulates Fas ligand-mediated cytotoxic activity of murine natural killer cell clones // J Immunol. -1996. -V. 157.-P. 3967-73.

155. Tuboly T., Yu W., Bailey A. et al. Immunogenicity of porcine transmissible gastroenteritis virus spike protein ex-pressed in plants // Vaccine. -2000. -V. 18.-P. 2023-2028.

156. Ueno N., Kashiwamura S., Ueda H., Okamura H., Tsuji N.M., Hosohara K., Kotani J., Marukawa S. Role of interleukin 18 in nitric oxide production and pancreatic damage during acute pancreatitis. // Shock. -2005. -V. 24. -P. 56470.

157. Vaucheret H., Beclin C., Fagard M. Post-transcrip-tional gene silencing in plants // J. Cell Sci. -2001. -V. 114. -P. 3083-3091.

158. Wang W., Tanaka T., Okamura H., Sugita M., Higa S., Kishimoto T., Sue-mura M. // Interleukin-18 enhances the production of interleukin-8 by eosinophils. -2001.-V. 31.-P. 1010-6.

159. Wei X.Q., Leung B.P., Arthur H.M., Mclnnes I.B., Liew F.Y. Reduced incidence and severity of collagen-induced arthritis in mice lacking IL-18 // J Immunol. -2001. -V. 166. -P. 517-21.

160. Wen W., Zhang L., Xiao H. The transcription and expression of IL-18 gene in HBV infectors // Zhonghua Yi Xue Za Zhi. -2001. -V. 81. -P. 655-8.

161. Xiang Y., Moss B. IL-18 binding and inhibition of interferon gamma induction by human poxvirus-encoded proteins // Proc Natl Acad Sei USA. -1999. -V. 96. -P. 11537-42.

162. Xu B., Aoyama K., Yu S., Kitani A., Okamura H., Kurimoto M., Ma-tsuyama T., Matsushita T. Expression of interleukin-18 in murine contact hypersensitivity//J Interferon Cytokine Res. -1998. -V. 18. -P. 653-9.

163. Xu D., Chan W.L., Leung B.P., Hunter D., Schulz K., Carter R.W., Mclnnes I.B., Robinson J.H., Liew F.Y. Selective expression and functions of inter-leukin 18 receptor on T helper (Th) type 1 but not Th2 cells // J Exp Med. -1998. -V. 188.-P. 1485-92.

164. Xu D., Trajkovic V., Hunter D., Leung B.P., Schulz K., Gracie J.A., Mclnnes I.B., Liew F.Y. IL-18 induces the differentiation of Thl or Th2 cells depending upon cytokine milieu and genetic background // Eur J Immunol. -2000. -V. 30.-P. 3147-56.

165. Yamano T., Higashi T., Nouso K., Nakatsukasa H., Kariyama K., Yumoto E., Kobayashi Y. Serum interferon-gamma-inducing factor/IL-18 levels in primary biliary cirrhosis // Clin Exp Immunol. -2000. -V. 122. -P. 227-31.

166. Yang H., Leland J.K., Yost D., Massey R.J. Electrochemiluminescence: a new diagnostic and research tool. ECL detection technology promises scientists new "yardsticks" for quantification//Biotechnology (NY). -1994. -V. 12. -P.193-194.

167. Yoon J.W., Jun H.S., Santamaría P. Cellular and molecular mechanisms for the initiation and progression of beta cell destruction resulting from the collaboration between macrophages and T cells // Autoimmunity. -1998. -V. 27. -P. 109-22.

168. Yoshikai Y., Miake S., Matsumoto T., Nomoto K., Takeya K. Effect of stimulation and blockade of mononuclear phagocyte system on the delayed footpad reaction to SRBC in mice // Immunology. -1979. -V. 38. -P. 577-83.

169. Yoshimoto T., Mizutani H., Tsutsui H., Noben-Trauth N., Yamanaka K., Tanaka M, Izumi S., Okamura H., Paul W.E., Nakanishi K. IL-18 induction of IgE: dependence on CD4+ T cells, IL-4 and STAT6 // Nat Immunol. -2000. -V. l.-P. 132-7.

170. Zhang P.A., Wu J.M., Li Y., Yang X.S. Association of polymorphisms of interleukin-18 gene promoter region with chronic hepatitis B in Chinese Han population // World J Gastroenterol. -2005. -V. 11. -P. 1594-8.

171. Zhao Y.X., Tarkowski A.,Impact of interferon-gamma receptor deficiency on experimental Staphylococcus aureus septicemia and arthritis // J Immunol -1995.-V. 155.-P. 5736-42.

172. Zou J., Bird S., Truckle J., Bols N., Hörne M., Secombes C. Identification and expression analysis of an IL-18 homologue and its alternatively spliced form in rainbow trout // Eur J Biochem. -2004. -V. 271. -P. 1913-23.