Автореферат диссертации по медицине на тему Биологическая активность обогащенных пролином пептидов системы врожденного иммунитета
На правах руцааиси
ЯМЩИКОВА Елена Владимировна
БИОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ ОБОГАЩЕННЫХ ПРОЛИНОМ ПЕПТИДОВ СИСТЕМЫ ВРОЖДЕННОГО ИММУНИТЕТА
14.03.03 - патологическая физиология
03.01.04 - биохимия
АВТОРЕФЕРАТ
диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук
з ^ а;А:.? Ш1
Санкт-Петербург 2012
005045104
Работа выполнена в Отделе общей патологии и патофизиологии Федерального
государственного бюджетного учреждения «Научно-исследовательский институт
экспериментальной медицины» Северо-Западного отделения Российской академии медицинских наук Научные руководители:
доктор биологических наук, профессор Кокряков Владимир Николаевич
кандидат биологических наук Шамова Ольга Валерьевна
Официальные оппоненты:
Доктор биологических наук, профессор, Санкт-Петербургский институт биорегуляции и геронтологии СЗО РАМН
руководитель лаборатории биогеронтологии Кветная Татьяна Викторовна
Доктор биологических наук, Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования
"Санкт-Петербургский государственный университет"
профессор кафедры биохимии Кулева Надежда Владимировна
Ведущая организация:
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации.
Защита состоится г>С 2012 г. в /У часов на заседании Диссертационного
совета Д 001.022.02 при Федеральном государственном бюджетном учреждении «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» Северо-Западного отделения РАМН по адресу. 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12.
С диссертацией можно ознакомиться в научной библиотеке Федерального государственного бюджетного учреждения «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» Северо-Западного отделения РАМН по адресу: 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12. Автореферат разослан « ^ »
Ученый секретарь диссертационного совета доктор медицинских наук
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность проблемы. Неотложная защита от патогенных микроорганизмов у человека и животных обеспечивается механизмами врожденного иммунитета в ходе реакций воспаления, фагоцитоза, секреции слизи и антимикробных факторов эпителиями барьерных органов (Пигаревский, 1978; Маянский А., Маянский Д., 1989; Корнева, 2003; Кокряков, 2006; Черешнев, Черешнева, 2011; Segal et al., 2005; Nathan, 2006; Lehrer, Lu, 2012; Hancock et al, 2012). Молекулярной основой системы врожденного иммунитета служит комплекс веществ, распознающих патогены и реализующих их элиминацию; среди них важную роль играют катионные антимикробные пептиды (АМП) и белки, содержащиеся в нейтрофилах, моноцитах/макрофагах, клетках барьерных эпителиев.
АМП обладают различной первичной структурой и конформацией молекул, представляя несколько структурных семейств, отличающихся по спектру антимикробной активности и механизмам действия на микроорганизмы. Наряду с антибиотическими свойствами, АМП проявляют разнообразные эффекты в отношении и собственных клеток организма. Наиболее распространено и хорошо изучено семейство дефенсинов. Другим обширным структурным семейством АМП, хотя и значительно менее исследованным, являются обогащенные пролином пептиды, ОПП (или пролин-богатые пептиды - Praline-Rich Peptides, PRP). Эти пептиды обнаружены у животных различных таксономических групп - от беспозвоночных до млекопитающих. ОПП обладают высокой антимикробной активностью преимущественно в отношении грамотрицательных бактерий. Отличительным свойством пептидов этого семейства является низкая токсичность для клеток млекопитающих.
Наличие в структуре ОПП большого количества аминокислотных остатков пролина (до 50%) обусловливает их свойство легко вступать во взаимодействие с различными белковыми молекулами, в том числе участвующими в ключевых биохимических каскадах реакций, которые обеспечивают функционирование иммунной системы. При таком взаимодействии пептиды могут модулировать функциональную активность этих белков, что и обусловливает проявление многообразных эффектов ОПП в отношении собственных клеток организма. Так, PR-39 из лейкоцитов свиньи оказывает противовоспалительное действие, ингибируя активность NADPH-оксидазной системы нейтрофилов (Shi et al., 1996); ускоряет заживление ран, стимулируя синтез синдеканов (Chan, Gallo, 1998); влияет на рост сосудов (Li et al., 2000). Наличие столь разнообразных функциональных свойств предполагает возможность использования подобных пептидов в практической медицине, однако работы, посвященные изучению ОПП, немногочисленны, хотя исследования в этом направлении несомненно актуальны.
Таким образом, высокая антимикробная активность в сочетании с низкой токсичностью для клеток макроорганизма, а также многообразие видов биологической активности, позволяют рассматривать ОПП как перспективную основу для создания новых антибиотических и иммуномодулирующих лекарственных препаратов для коррекции различных видов патологии, а детальное изучение биологических свойств различных представителей этого структурного класса пептидов является важным направлением исследований экспериментальной медицины.
В результате проведенных ранее исследований молекулярных факторов системы врожденного иммунитета животных и человека, обогащенные пролином катионные пептиды из семейства бактенецинов были обнаружены в нейтрофилах домашней козы (Capra hired): бактенецин 5 козы (ChBac5), мини-бакгенецины 7.5 а и ß (mini-ChBac7.5a и mini-ChBac7.5ß),
бактенецин 3.4 (ChBac3.4) (Shamova О. et al., 1999; 2009). Структура и некоторые свойства этих бактенецинов были изучены, однако детальное их исследование не проводилось. Перечисленные пептиды и явились объектами исследования в данной работе. Выбор этих пептидов в качестве объекта исследования был обусловлен не только интересом к ним, как к возможным прототипам для создания лекарственных препаратов, но и тем обстоятельством, что в нейтрофилах коз отсутствуют пептиды из семейства дефенсинов, которые играют важную роль в функционировании системы врожденного иммунитета у человека и многих видов млекопитающих. Таким образом, именно бакгенецины у коз являются основными представителями АМП фагоцитов, и изучение свойств этих молекул представляется важным направлением и с точки зрения фундаментальных аспектов исследования молекулярных факторов врожденного иммуниета.
Дополнительными объектами исследования стали пептиды, представляющие собой различные участки молекулы ChBac5: N-концевой фрагмент (1-20), С-концевой фрагмент (2043), фрагменты 7-22 и 7-14. Изучение фрагментов пептидных молекул дает возможность выявить наиболее значимые для проявления того или иного вида биологической активности участки и поволяет наметить пути для дальнейшего структурно-функционального анализа, направленного на создание лекарственного препарата на основе структуры природного пептида. В литературе имеются данные об антимикробной активности некоторых фрагментов молекулы бактенецина 5 быка - BtBac5 (Raj et al., 1996; Tokunaga et al., 2001; Gennaro et al., 2002), имеющего структурное сходство с ChBac5, хотя и несколько отличающегося по антимикробным эффектам. Однако, исследована, в основном, антимикробная активность фрагментов BtBac5, в то время как другие виды активности фрагментов BtBac5, как и бактенецинов шлейкоцитов шы, остаются практически не изученными.
Целью работы явилось изучение различных видов биологической активности обогащенных пролином пептидов из семейства бактенецинов: антимикробной, липополисахарид-связывающей, цитотоксической и ранозаживляющей.
Для достижения поставленной цели было намечено решение следующих задач:
1. Изучить антимикробную активность обогащенных пролином пептидов и фрагментов их молекул в отношении грамотрицательных и грамположительных бактерий, и грибов. Исследовать антимикробное действие пептидов при их использовании в комбинации с некоторыми другими антибиотическими соединениями.
2. Провести сравнительное изучение влияния исследуемых бактенецинов и фрагментов их молекул, обладающих антимикробной активностью, на проницаемость мембран E.coli ML35p для маркерных молекул.
3. Изучить липополисахарид-связывающую активность пептидов.
4. Оценить токсичность пептидов для эукариотических клеток (гемолитическую активность, цитотоксичнсть для нормальных и опухолевых клеток человека) и исследовать характер цитотоксического действия бактенецинов, для которых выявлено выраженное повреждающее воздействие на клетки.
5. Изучить влияние пептидов на пролиферацию фибробластов человека и динамику процесса заживления кожной раны у экспериментальных животных.
Научная новизна. Получены новые данные об антимикробной активности пептидов из семейства бактенецинов, в том числе об их действии в отношении антибиотикоустойчивых клинических изолятов Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella spp., Acinetobacter baumannii.
Впервые выявлены синергические эффекты антимикробного действия исследуемых бактенецинов при их совместном применении с наночастицами серебра, а также с используемым в клинике антибиотиком - рифампицином.
Впервые изучена липополисахарид-связывающая активность бактенецинов ChBac3.4, mini-ChBac7.5a и фрагментов ChBac5.
Впервые исследованы механизмы цитотоксической активности бакгенецина ChBac3.4. в отношении опухолевых клеток. Показано, что его повреждающее действие на клетки U-937 и К-562 сопровождается инициацией в них процесса апоптоза.
Впервые исследовано влияние бактенецина 5 из лейкоцитов козы (ChBac5) и его фрагментов, а также бактенецинов ChBac3.4 и mini-ChBac7.5a на пролиферацию фибробластов кожи человека; впервые показано свойство ChBac5 ускорять заживление кожной раны, оцениваемое по снижению площади раневой поверхности у экспериментальных животных.
Теоретическое и практическое значение. Исследование направлено на изучение биологической активности обогащенных пролином антимикробных пептидов и их укороченных фрагментов: антимикробной, липополисахаридсвязывающей, цитотоксической и ранозаживляющей. В работе моделировали отдельные стороны иммунных и патофизиологических процессов, сопряженных с защитными противоинфекционными и противоопухолевыми реакциями. Изучение антимикробной активности пептидов in vitro помогает понять молекулярные основы функциональной активности этих соединений, реализующихся в фаголизосомах фагоцитов и на поверхности слизистых респираторного, пищеварительного и урогенитального трактов, а также кожных покровов. Изучение цитотоксической активности открывает возможности для оценки противоопухолевого действия этих соединений. Анализ воздействия этих пептидов на заживление кожных ран важен для понимания роли пептидов лейкоцитарного происхождения в репаративных процессах.
Проведенные исследования определяют направления для дальнейшего структурно-функционального анализа, который позволит реализовать разработку на основе этих пептидов новых антимикробных лекарственных препаратов, активных в отношении антибиотикоустойчивых штаммов бактерий. Выявленные эффекты синергического действия пешвдов с не&лювыми аншбиотическими агентами (наночастицы серебра, рифампицин) открывают новые возможности повышения активности препаратов, созданных на основе ашнмикро&шх пептидов при их сочетанием применении с другими лекарственными веществами.
Установленная в работе митогенная активность бактенецинов свидетельствует о перспективности разработки новых лекарственных препаратов с антимикробным и ранозаживляющим действием на основе структуры ChBac5.
Основные положения, выносимые на защиту 1. Исследуемые обогащенные пролином антимикробные пептиды лейкоцитов козы ChBac5, ChBac3.4, mini-ChBac7.5a и mini-ChBac7.5ß проявляют высокую антимикробную активность, в том числе и в отношении антибиотикоустойчивых штаммов бактерий. Антимикробное действие АМП может быть усилено при их совместном применении с другими
антибиотическими агентами. Наиболее важным участком для проявления антимикробной активности ChBac5, является его N-концевой фрагмент 1-20.
2. Антимикробное действие mini-ChBac7.5a и mini-ChBac7.5|3, ChBac5 и его фрагментов реализуется без существенного нарушения барьерной функции цитоплазматической мембраны E.coli ML-35p; пептид ChBac3.4, который отличается повышенной гидрофобностью молекулы, имеет относительно более выраженное повреждающее действие на цитоплазматическую мембрану E.coli.
3. Изученные пептиды обладают липополисахарид-связывающей активностью.
4. Исследуемые пептиды имеют низкую гемолитическую активность в отношении эритроцитов человека.
5. В концентрациях, превышающих антимикробные, обогащенные пролином пептиды не проявляют токсических эффектов в отношении клеток макроорганизма, за исключением бактенецина ChBac3.4. Повреждающее действие этого пептида на клетки линий U-937 и К-562 сопровождается инициацией в них апоптоза.
6. Некоторые из исследуемых ОПП стимулируют пролиферацию фибробластов кожи человека и ускоряют заживление кожных ран, оцениваемое по снижению площади раневой поверхности у экспериментальных животных.
Личный вклад в проведенные исследования. Личный вклад автора в выполненную работу включал самостоятельное проведение большинства исследований, анализ полученных данных и их интерпретацию. Масс-спектрометрический анализ выполнялся в ЦКП «Аналитическая спектрометрия». Математическое моделирование структур пептидов выполнено И.А.Елисеевым на оборудовании Лаборатории прикладной математики и механики Санкт-Петербургского государственного политехнического университета. Синтез наночастиц серебра и характеристика их физико-химических параметров были проведены сотрудником НИИ Химии силикатов РАН им. Гребенщикова к.х.н. О.Ю.Голубевой.
Апробация работы. Апробация диссертации состоялась 25 января 2012 г. на заседании научной конференции отдела общей патологии и патологической физиологии Научно-исследовательского института экспериментальной медицины РАМН (г. Санкт-Петербург). Основные положения диссертации были представлены на международной научной конференции по биоорганическй химии, биотехнологии и бионанотехнологии, посвященной 75 летию со дня рождения академика Ю.А. Овчинникова (Москва-Пущино, 28 сентября - 2 октября 2009 г.); на конференции «Физиологическая активность регуляторных пептидов» (Москва, 2010 г.); на конференции молодых ученых и специалистов «Фундаментальная наука и клиническая медицина», Санкт-Петербург, 2011 г.; П и Ш международных симпозиумах "Interaction of the nervous and immune systems in health and disease", проводимых 16-19 июня 2009 г. и 7-10 июня 2011 г., Санкт-Петербург; на Научной конференции по биоорганической химии и биотехнологии "X чтения памяти академика Юрия Анатольевича Овчинникова" 14- 17 ноября 2011 г. (Москва-Пущино).
По теме работы опубликовано 12 печатных работ, из них 4 оригинальных статьи в журналах, рекомендованных ВАК, одна статья в сборнике и 7 тезисов докладов.
Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 160 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов, изложения результатов собственных исследований, их обсуждения, общего
заключения и выводов. В диссертации 13 таблиц и 23 рисунка. Прилагаемый список литературы содержит 229 наименования, в том числе 17 отечественных и 212 зарубежных.
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материалы и методы исследования Антимикробные пептиды. Структуры природных бактенецинов из лейкоцитов козы, являющихся объектами иследования:
ChBac3.4 RFRLPFRRPPIRIHPPPFYPPFRRFL-NHi
mini-ChBac7.5-Na RRLRPRRPRLPRPRPRPRPRPR-COOH mini-ChBac7.5-Np RRLRPRRPRLPRPRPRPRPRP-COOH
ChBacS RFRPPIRRPPIRPPFNPPFRPPVRPPFRPPFRPPFRPPIGPFP-NH2
Фрагменты ChBac5: ChBacS (1-20) RFRPPIRRPPIRPPFNPPFR-COOH
ChBacS (20-43) RPPVRPPFRPPFRPPFRPPIGPFP-NHi
ChBacS (7-14) RRPPIRPP-COOH
ChBacS (7-22) RRPPIRPPFNPPFRPP-COOH
На основе приведенных структур с помощью химического синтеза были получены соответствующие пептиды, которые использовались в большинстве экспериментов. Однако, для подтверждения того, что биологическая активность химически синтезированных пептидов не отличается от активности пептидов, выделенных из лейкоцитов, проводили выделение и очистку ОПП из лейкоцитов козы и сравнивали их активность с синтетическими аналогами. Химический синтез бактенецинов ChBac3.4, miniBac7.5Na, ChBac5 и его фрагментов был выполнен сотрудником ГосНИИ ОЧБ к.х.н. Колодкиным Н.И.; химически синтезированный miniBac7.5Np был любезно предоставлен профессором Ральфом Хоффманом (Лейпцигский университет, Германия).
Выделение и очистку ChBac5 и ChBac3.4 из лейкоцитов козы проводили, как описанно ранее (Shamova et al., 1999), с использованием комплекса методов препаративной биохимии, включавшего экстракцию белков и пептидов из гомогенизированных лейкоцитов 10% раствором уксусной кислоты, разделения белковых фракций с помощью ультрафильтрации и препаративного электрофореза в кислой среде. Индивидуальные фракции пептидов получали с помощью обращеннофазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии. Идентификацию и оценку чистоты препаратов осуществляли с помощью аналитического электрофореза в кислой среде (Panyim, Chalkley, 1969) и электрофореза в присутствии додецил-сульфата натрия (Schagger, Von Jagow, 1987), а также с использованием масс-спектрометрии MALDI TOF. Концентрацию белка в пробах определяли спектрофотометрическими методами, используя коэффициенты молярной экстинкции при длине волны 280 нм дая ChBac3.4 и 257 нм для ChBac5, который из ароматических аминокислот содержит только фенилаланин. Крометога, концентрацию белка определяли по методу Бредфорд.
Экспериментальные животные. Эксперименты выполнены на взрослых мышах-самцах гибридах 1 поколения (СВА х С57В16) F,, массой 18-22 г, полученных из питомника РАМН «Рапполово» (Санкт-Петербург). Условия работы с животными соответствовали правилам Европейской Конвенции ET/S 129, 1986 и директивам 86/609 ESC.
Оценку антимикробной активности методом серийных разведений пептидов в питательной среде, содержащей микроорганизмы, проводили в отношении грамотрицательных и грамположительных бактерий (включая золотистый стафилококк, устойчивый к метициллину, и ряд антибиотикоустойчивых клинических изолятов бактерий), а также грибов рода Candida (метод в модификации Tossi et al., 1997). Штаммы микроорганизмов были предоставлены сотрудниками Калифорнийского университета Лос-Анджелеса (США), Университета г. Триеста (Италия), Отдела генетики микроорганизмов ФГБУ НИИЭМ СЗО РАМН, НИИ Травматологии и ортопедии им. Вредена РАМН, ВМА им. Кирова. В качестве питательной среды для бактерий использовали бульон Мюллера-Хинтон, для грибов - Сабуро. Двукратные серийные разведения исследуемых препаратов проводили в 0.01 M натрий-
фосфатном буфере, pH 7.4 с 150 мМ NaCl и вносили в лунки планшетов, содержащие суспензии микроорганизмов - 1х104 КОЕ бактерий на лунку. Определяли минимальные ингибирующие концентрации (МИК) - наименьшие концентрации пептидов, при использовании которой полностью подавлялся рост микроорганизмов в жидкой среде, и затем минимальные бактерицидные концентрации. Эксперименты проводили в помещениях, оснащенными всеми необходимыми средствами защиты для работы с используемыми штаммами микроорганизмов. Результаты представлены, как медианы, полученные по данным 5-6 экспериментов, в которых имелось по 3 параллели для каждой пробы.
Метод радиальной диффузии пептидов в агарозных гелях, содержащих микроорганизмы (Lehrer et al., 1991), использовали для сравнения антимикробной активности природных, полученных из лейкоцитов козы, и химически синтезированных пептидов. Пептиды в серийных разведениях вносили в лунки агарозных гелей, приготовленных на 0.01 М Na-фосфатном буфере, pH 7.4 и содержащих исследуемые микроорганизмы, инкубировали 3 часа при 37°С, заливали агаром, содержащим триптический гидролизат сои, и инкубировали в тех же>оювияхеще20часхж. Далее измеряли диаметр зон ингибирования роста микроорганизмов.
Изучение совместного антимикробного действия пептидов и других антибиотических агентов с целью выявления синергических эффектов осуществляли с помощью серийных разведений пептидов в среде, содержащей микроорганизмы, по методу «Шахматной доски» («Checkerboard titrations») (Jacobs, 1996). После инкубации проб с микроорганизмами в течении 18 часов определяли индексы фракциональной ингибирующей концентрации (иФИК; FIC index - fractional inhibitory concentration index) по формуле: ФИК индекс = ФИК A + ФИК В = (А)/ (МИК А) + (В)/ (МИК В), где А и В- концентрации веществ А и В, соответственно. При иФИК < 0,5, совместное действие препаратов рассматривали, как синергическое, ФИК = 1, как аддитивное; иФИК > 1 - антагонистическое. Исследовали совместное действие обогащенных пролином пептидов и небелковых антибиотических соединений (оксациллина (Sigma, США)), гентамицина (Дальхимфарм, Россия), рифампицина (Sigma, США) и наночастиц серебра (предоставлены сотрудниками НИИ Химии силикатов РАН им. Гребенщикова). Размер наночастиц серебра составлял около 50 нм.
Оценка изменения проницаемости мембран E.coli ML35p для хромогенных маркеров под действием пептидов. Принцип метода и особенности штамма E.coli ML35p описаны ранее (Lehrer et al., 1989; Артамонов и др., 2008). О состоянии внешней и цитоплазматической мембран E.coli ML35p судили по их проницаемости для хромогенных маркеров - нитроцефина (внешняя мембрана) и о-нитрофенил-Р-О-галактопиранозида (ONPG) (цитоплазматическая мембрана). Состав проб в лунках планшета: 2.5 мМ ONPG (Sigma (США)) или 90 мкМ нитроцефина; 2,5 х 107 КОЕ/мл бактерии; 0.01 М Na-фосфатный буфер pH 7.4 с 100 mM NaCl; 0.03% триптический гидролизат сои; пептиды в заданных концентрациях. Измерение оптической плотности растворов при длине волны 486 нм и 420 нм проводили с помощью спектрофотометра SpectraMax 250 фирмы Molecular Devices при температуре 37°С и периодическом встряхивании планшетов. Данные обрабатывали в программе Sigma PIot9. На графиках представлены результаты типичного эксперимента, каждая точка является средним арифметическим из трех значений, полученных для параллельных проб. Эксперименты повторяли минимум Зраза, характер кривых был аналогичным во всех проведенных сериях экспериментов. Молекулярное моделирование. Математическое моделирование структур пептидов выполнено И.А.Елисеевым на оборудовании Лаборатории прикладной математики и механики Санкт-Петербургского государственного политехнического университета. Гидрофобные свойства пептидов были оценены с помощью расчета разности свободных энергий в воде и в среде, моделирующей мембрану (н-октаноле) с использованием программы Matlab. Удельные разности свободных энергий для аминокислот с учетом пептидной связи взяты из работы Wimley, White, 1996.
Оценку липополисахарид-связывающей активности пептидов проводили с помощью Лимулюс теста (Quantitative Chromogenic Limulus Amebocyte Lysate (LAL); Lonza Walkersvile, США) с использованием методов и подходов, описанных в статье Turner et al., 1998. Серийные разведения пептидов инкубировали с лшгаполисахаридом E.coli Oll 1:В4 в конечной концентрации 0.5 Ед/мл в течение 30 мин при 37 °С. Планшет инубировали при 37 "С, измеряя оптическую плотность раствора при 405 нм; вычисляли разницу величин оптической плотности в начале инкубации и через 10 мин - AOD405- Долю связанного ЛПС (в процентах) определяли по формуле: % связанного ЛПС = а(ЛПС без пептида) -а(ЛПС с пептидом) / а(ЛПС без пептида), где а = ДОО405(пептид (или вода) с ЛПС) - ДОО405(пептид (или вода) без ЛПС). Строили кривые зависимости доли связанного ЛПС (в %) от концентрации пептидов в инкубационной среде (программа Sigma Plot 9) и определяли ЭК50 (эффективная концентрация 50% или концентрация пептидов, при которой 50% ЛПС находится в связанном состоянии).
Для анализа гемолитической активности пептидов использовали эритроциты человека, полученные по стандартной методике. К суспензии эритроцитов добавляли серийные разведения пептидов. Для получения положительного контроля (100 % лизис эритроцитов) к эритроцитам вместо пептидов добавляли 10% Triton Х-100; негативного контроля (0 % лизис) -забуференный физиологический раствор (ЗФР). Анализируемые растворы инкубировали при 37 °С в течение 30 мин, затем пробы центрифугировали при 8000 g и измеряли оптическую плотность полученных супернатантов при длине волны 540 нм. Результаты представляли, как средние арифметические ш трех независимых экспериментов ± среднеквадратичное отклонение.
Культивируемые клетки. В работе использовали следующие клеточные линии: клетки эритромиелоидной лейкемии человека К-562, клетки гистиоцитарной лимфомы человека U-937, клетки промиелоцитарной лейкемии человека HL-60, а также нетрансформированные клетки: нормальные фибробласты кожи человека и фибробласты легкого эмбриона человека MRC-5. Культура фибробластов кожи человека была любезно предоставлена сотрудником отдела иммунологии А.С.Трулевым, остальные клеточные линии были из коллекции клеточных культур ИНЦ РАН. Клетки суспензионных линий К-562, U-937, HL-60 культивировали в среде RPMI-1640, дополненной глутамином, гентамицином и 10% эмбриональной телячьей сывороткой. Клетки, образующие монослой, культивировали в среде ДМЕМ, содержащей те же добавки. Нейтрофилы и мононуклеарные лейкоциты периферической крови человека получали из крови здоровых доноров по стандартной методике (Фримель, 1979).
Оценку жизнеспособности клеток и интенсивности их пролиферации исследовали с помощью МТТ-тесга (Mossamann, 1983). Клетки монослойных культур (фибробласты кожи человека, MRC-5) высеивали в планшеты (10000 клеток на лунку) за 20 часов до внесения пептидов, чтобы позволить клеткам сформировать монослой, клетки суспензионных линий вносили непосредственно перед добавлением к ним пептидов в разных концентрациях. Для построения графиков и расчета медианной ингибирующей концентрации пептидов (ИК50) использовали программу Sigma Plot 9. При проведении статистической обработки подсчитывали среднее арифметическое «среднеквадратичное отклонение. Кроме того, для оценки жизнеспособности клеток после их обработки пептидами применяли маркер клеточной гибели - краситель трипановый синий, подсчитывая число погибших клеток, включивших краситель, в камере Горяева.
Определение ферментативной активности каспазы 3 проводили колориметрическим методом по скорости расщепления синтетического субстрата Ac-DEVD-pNAc помощью набора «Caspase3 AssayKit, Colorimetric» («Sigma»). Клетки (1 млн/мл) инкубировали с разными концентрациями пептида в течение 3 часов при 37 °С в трех параллелях. По окончании инкубации клетки обрабатывали в соответствии с рекомендациями изготовителей набора. Полученные пробы в 96-луночных планшетах инкубировали при 37 °С в течении 3 часов, затем оптическую плотность измеряли при 405 нм. На графиках результаты измерения активности представляли в процентах от контроля (клетки без пептида).
Оценку доли клеток, вступивших на путь апоптоза и некроза производили с
помощью набора реагентов «Annexin V-СуЗ Apoptosis Detection kit» (Sigma, США). Клетки (1 млн/мл) инкубировали с разными концентрациями пептида в течение 2 часов при 37 С. Контрольные пробы инкубировали в тех же условиях, но без добавления пептидов. По окончании инкубации клетки обрабатывали в соответствии с рекомендациями производителей набора и подсчитывали под люминесцентным микроскопом количество клеток, включивших тот или иной краситель, определяя, таким образом, количество живых клеток; клеток, погибших по пути некроза; и клеток, находящихся на ранней стадии апоптоза. Анализировали несколько полей зрения, подсчитывая не менее 500 клеток. Результаты выражали в процентах от общего количества клеток и представляли как средние арифметические по данным трех экспериментов ± среднеквадратичное отклонение.
Влияние пептидов на пролиферацию фибробластов кожи человека. Фибробласты кожи человека высеивали в стерильный планшет по 10000 клеток на лунку в среде ДМЕМ с 10 % эмбриональной телячьей сывороткой и добавляли серийные разведения пептидов в той же среде. Планшеты с клетками и пептидами инкубировали в СОг инкубаторе в теченние 72 часов инкубации при 37°С, затем оценивали интенсивность пролиферации фибробластов с помощью МТТ-теста, расчитывая относительный коэффициент пролиферации (ООчоОпыт/ООяоКонтроль).
Влияние пептидов на процесс заживления кожной раны у мышей. Экспериментальным животным под легким эфирным наркозом наносили по две полнослойные кожные раны в области спины, используя одноразовые круглые скальпели для биопсий диаметром 6 мм («Stiefel», Германия). В 1-й, 2-й, 4-й, 6-й и 8-й день эксперимента на поверхность ран наносили раствор ChBac5 в концентрации 2 или 10 мкМ; животным контрольной группы по той же схеме наносили растворитель. Для определения площади раневой поверхности, начиная со второго дня после воздействия, животных фотографировали цифровой фотокамерой, изображения переносили на компьютер, калибровали и измеряли площадь раневого дефекта с помощью программы ImageJ 1.44p (NIH, USA). Результаты выражали в процентах от исходной площади в контрольной группе и представляли как среднее арифметическое значение и среднеквадратичное отклонение (п=6).
Статистическую обработку данных проводили с помощью пакетов программ Excel, Statistica 6.0 и Sigma Plot 11. Для выявления различий между независимыми группами нормально распределенных величин использовали t-критерий Стьюдента; различия между группами считали статистически достоверными при р<0.05.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ Действие пептидов на микроорганизмы
Антимикробная активность обогащенных пролином пептидов. Изучена антимикробная активность пептидов из семейства бактенецинов в отношении ряда грамотрицательных, грамположительных бактерий, а также грибов. В серии предварительных экспериментов показано, что антимикробная активность природных пептидов ChBac3.4 и ChBac5, выделенных нами из лейкоцитов козы, и активность химически синтезированных пептидов не различаются (Таблица 1).
Таблица 1. Минимальные ннгибирующие рост микроорганизмов концентрации обогащенных пролином пептидов, мкМ (метод радиальной диффузии)
Выделенные из лейкоцитов Химически синтезированные
ChBac3.4 ChBac5 ChBac3.4 ChBac5
Escherichia coli ML35p 0.8 ± 0.2 0.7 ± 0.2 0.7 ±0.1 0.7 ±0.1
Listeria monocytogenes EGD 0.9 ± 0.3 0.8 ±0.1 1.0 ±0.2 0.9 ± 0.3
С использованием химически синтезированных пептидов показано, что бактенецины ChBac3.4, mini-ChBac7.5Na, mini-ChBac7.5Nß и ChBac5 проявляют высокую антимикробную активность против грамотрицательных бактерий, причем активность этих пептидов в отношении клинических изолятов Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella spp, Acinetobacter baumannii, устойчивых к ряду традиционно используемых в клинической практике антибиотикам, не отличается от таковой в отношении лабораторных штаммов (Таблица 2).
Таблица 2. Минимальные ингибирующие рост микроорганизмов концентрации обогащенных пролином пептидов, мкМ*.
".....пептид микроорганизм— ChBac 3.4 mini-ChBac 7.5Not mini-ChBa с 7.5NB ChBac5 ChBac5 (1-20) ChBac5 (7-14) ChBac5 (7-22) ChBacS (20-43)
грамотрицательные бактерии
Е. coli АТСС 25922 2 1 1 2 8 >32 >32 16
Е. coli М17 2 2 16 >32 >32 >16
Е. coli ML35p 2 1 1 2 4 >32 >32 >32
Pseudononas aeruginosa АТСС 27853 2 1 1 4 8 >32 >32 >32
Pseudononas aeruginosa клин, изолят 1 1 1 2 8 >32 >32 >32
Klebsiella spp. клин. изол. 4 1 1 4 8 >32 >32 >32
Acinetobacter baumannii клин, изолят 4 1 4 1 - - - -
Acinetobacter baumannii 4174 2 4 - 2 >16 - - >32
грамположительные бакте| )ИИ
Staphylococcus aureus АТСС 25922 8 16 16 >32 >32 >32 >32 >32
MRSA АТСС 33591 8 >32 >32 >32 >32 >32 >32 >32
Staphylococcus intermedius клин, изолят 16 >32 32 32 >32 >32 >32 >32
Micrococcus luteus 1 1 0,5 1 16 >32 >32 >32
Listeria monocytogenes EGD 1 1,25 1,25 1 8 >32 >32 16
грибы
Candida albicans 820 16 32 32 16 >32 >32 >32 >32
Candida parapsilosis клин, изолят 32 >32 >32 32 >32 >32 >32 >32
* -метод серийных разведений антибиотических препаратов в питательной среде, содержащей микроорганизмы. Представлены медианы, полученные из 5-6 независимых экспериментов.
В результате исследования активности бактенецинов в отношении грамположительных бактерий показано, что ChBac5, mini-ChBac7.5Na, mini-ChBac7.5Np демонстрируют высокую активность против Listeria monocytogenes EGD и Micrococcus luteus, но сниженную активность против исследованных штаммов стафилококков. Пептид ChBac3.4 обладает более высокой активностью в отношении стафилококков по сравнению с остальными пептидами.
Из исследуемых фрагментов молекулы пептида ChBac5 лишь N-концевой фрагмент 1-20 обладает антибактериальной активностью. Эти данные согласуются с результатами работ итальянских исследователей, полученными для бактенецина быка BtBac5 (Gennaro et al., 2002) и подтверждают важность присутствия первых трех аминокислотных остатков RFR в молекуле
бактснецинов. Бактенецин быка BtBac5 имеет структурное сходство с ChBac5 из лейкоцитов козы, хотя их антимикробная активность несколько различается (Shamova et al., 1999). В нашей работе установлено, что, в отличие от бактенецина 5 быка, фрагмент 7-22 которого проявлял антигрибковую активность (Tokunaga et al., 2001; Raj et al., 1995, 1996), в случае бактенецина козы ChBac5 фрагмент 7-22, хотя и имеет структурное сходство с таковым BtBac5, но не обладает антимикробной активностью. Таким образом, для проявления антимикробной активности ChBac5 бактерий важна N-концевая часть молекулы.
Минимальные бактерицидные концентрации пептидов в отношении большинства штаммов бактерий при использовании ChBac3.4 и ChBac5 в два раза, а в случае mini-ChBac7.5a и р в 4-8 раз, превышали их минимальные ингибирующие концентрации.
При оценке антимикотического действия исследуемых пролин-богатых пептидов выраженного действия на грибы рода Candida выявлено не было.
Учитывая описанные в литературе данные об ингибирующем действии компонентов сыворотки крови на антимикробную активность большинства АМП, исследовали влияние добавления 10 % сыворотки коров в инкубационную среду на активность бакгенецинов ChBac5, mini-ChBac7.5Na, ChBac3.4 в отношении двух штаммов Acinetobacter baumannii. Результаты представлены в таблице 3.
Таблица 3. Минимальные ингибирующие рост микроорганизмов концентрации (МИК) пептидов при их действии на бактерии в присутствии 10% сыворотки крови
Бактерия МИК (мкМ)* при инкубации с пептидами**
ChBac3.4 ChBac5 mini-ChBac 7.5-Na
-S + S -S + S -S + S
Acinetobacter baumannii 4174 2 8 2 8 4 8
Acinetobacter baumannii (клин.изол.) 4 8 1 4 1 8
* - представлены значении мсдпии, пил^пшпшд иг««»,.»...... ~ ----------------------------------г
изучению активности пептидов ** в среде, содержащей (+ S) и не содержащей (- S) 10 % эмбриональной сыворотки коров.
Показано, что антимикробная активность пептидов снижается в присутствии компонентов сыворотки крови, но не отменяется. Возможно, как и другие АМП, они связываются преимущественно с белками из семейства ингибиторов сериновых протеиназ (серпинами).
Совместное действие пептидов и других антибиотических агентов. Использование комбинаций лекарственных препаратов часто приводит к повышению эффективности их применения и снижает действующие концентрации, что позволяет уменьшить и вероятность проявления побочных эффектов. В данной работе использовали комбинации обогащенных пролитом бакгенецинов и небелковых соединений, обладающих антимикробной активностью (гентамицина, оксациллина, рифампицина и наночастиц серебра). Установлено, что при совместном применении ChBac3.4, в комбинации с наночастицами серебра наблюдаются синергические эффекты в отношении штаммов E.coli ML35p (индекс фракциональных ингибирующих концентраций (иФИК) - 0.5), E.coli АТСС 25922 (иФИК - 0.5) а также клинического изолята Pseudomonas aeruginosa, устойчивого к традиционно используемым в клинике антибиотикам (иФИК- 0.5). При использовании mini-ChBac7.5Na в комбинации с наночастицами серебра также было показано наличие синергических эффектов в отношении этих штаммов микроорганизмов (иФИК - 0.5). В отношении штамма Staphylococcus aureus SG 511 установлено наличие аддитивного эффекта для комбинаций наночастиц серебра с ChBac3.4, и mini-ChBac7.5Na с наночастицами серебра (иФИК - 1). При совместном действии
mini-ChBac7.5Na и рифампицина наблюдаются синергические эффекты в отношении штаммов E.coli ML35p (иФИК - 0.5) и E.coli АТСС 2592 (иФИК - 0.5). Но при совместном действии этого же пептида с гентамицином и оксациллином на те же штаммы синергическое действие не выявляется. При совместном действии ChBac3,4 и рифампицина в отношении штаммов E.coli ML35p и E.coli АТСС 25922 также обнаружено синергическое действие (иФИК - 0.5), но оно отсутствует при совместном применении исследуемого пептида с гентамицином и оксациллином на те же штаммы.
Влияние пептидов на проницаемость мембран E.coli ML35p для маркерных молекул. В результате исследования влияния пептидов на проницаемость внешней мембраны E.coli ML35p для хромогенного маркера нитроцефина показано (Рис. 1.А), что все исследуемые обогащенные пролином пептиды в той или иной степени вызывают увеличение ее проницаемости (о чем свидетельствует возрастание оптической плотности раствора, определяемое появлением в нем цветного продукта расщепления нитроцефина). Фрагменты бактенецина ChBac5(l-20) и ChBac5(20-43) тоже вызывают увеличение проницаемости наружной мембраны E.coli ML35p, хотя и менее выраженное, чем полноразмерный ChBac5. Остальные фрагменты не использовали, так как они практически не обладали антимикробным действием в отношении этой бактерии. Действие исследуемых бактенецинов на цитоплазматическую мембрану бактерии носит иной характер (Рис. 1.Б): в присутствии ChBac3.4 (5 мкМ) увеличение проницаемости мембраны E.coli для маркерной молекулы ONPG наблюдается через 20 минут, в присутствии ChBac5 в той же концентрации эффект наблюдается лишь через 45-50 минут, а в присутствии пептидов mini-ChBac7.5Na, mini-ChBac7.5Nß и фрагмента бактенецина ChBac5(l-20) изменение проницаемости не отличается от проницаемости внешней мембраны бактерии в контроле (бактерия без пептида).
Рисунок 1.
Кинетика изменения проницаемости мембран E.coli ML35p для маркерных молекул при действии антимикробных пептидов (концентрации пептидов в два раза превышали их минимальные ингибирующие концентрации для E.coli). По оси ординат - оптическая плотность раствора, содержащего хромогенный маркер (продукт гидролиза ONPG - о-нитрофенол) при длине волны 420 нм; по оси абсцисс - время инкубации пептидов с бактерией, в минутах. Контролем служили пробы, содержащие бактерии, но в которые вместо пептидов добавляли равные объемы буфера; а также пробы, содержащие стандарт - мембранолитический пептид мелиттнн.
Таким образом, ChBac3.4 проявляет более выраженный и быстро реализующийся эффект в отношении мембран E.coli, чем ChBac5 и остальные изучаемые пептиды. Такое действие на бактериальные мембраны не характерно для описанных в литературе обогащенных пролином АМП. Чтобы выяснить причину различного действия пептидов на мембраны
бактерии проведено сравнение гидрофобных свойств молекул СЬВасЗ.4 и СЬВас5, так как определение этого параметра является одной из важных характеристик белковых молекул и позволяет сделать предположение о возможности встраивания этих молекул в липидные мембраны. Оценка гидрофобных свойств СЬВасЗ.4 и СЬВас5 была осуществлена в результате расчета разности свободных энергий в воде и среде, имитирующей липидный бислой мембраны (н-октаноле): для СЬВас3.4 она имеет значение -16±5 Дж/моль, а для СЬВас5 составляет 700±280 Дж/моль, что позволяет предположить большее сродство СЬВасЗ.4 к липидным мембранам по сравнению с СЬВас5. Таким образом, более выраженное действие пептида СЬВасЗ.4, наблюдаемое в эксперименте, по-видимому, определяется гидрофобными свойствами его молекулы, обусловливающими его облегченное встраивание в липидные бислои, требующее значительно меньших затрат энергии, чем в случае СЬВас5. Эти расчеты подтверждают предположение, что более высокая активность СЫЗасЗ.4 в отношении грамположительных бактерий по сравнению СЬВас5 связана с его большим повреждающим действием на мембраны бактерий.
Оценка липополисахарид-связывающей активности пептидов. Одним из важных функциональных свойств антимикробных пептидов является их способность связывать бактериальный липополисахарид (ЛПС), являющийся ведущим структурным компонентом наружной мембраны грамотрицательных бактерий. Связывание антимикробных пептидов с ЛПС происходит на первой стадии контакта пептидов с микроорганизмами, и от эффективности этого связывания во многом зависит и эффективность антимикробного действия последнего. Для оценки ЛПС-связывающей активности пептидов использовали хромогенный Лимулюс-тест. Данные проведенного анализа представлены в таблице 4, как ЭК50, т.е. концентрации пептидов, при которых 50% ЛПС находится в связанном состоянии.
Таблица 4. Липополисахарид-связывающая активность пептидов (ЭК5о,мкМ)
СЬВас 3.4 штьСЬВас тнй-СЬВас 7.5КР СЬВас5 СЬВас5 (1-20) СЬВас5 (20-43)
8.3±1.2 33± 4.3 23.0±4.1 5.2± 1.0 40.6± 6.3 >80
Липополисахарид-связывающая активность бактенецинов СЬВас5 и СЬВасЗ.4 несколько выше, чем активность ттьСЬВас7.5-Ка и тип-СЬВас7.5-Ыр, а также фрагмента СЬВас5(1-20). С-концевой фрагмент СЬВас5(20-43) проявлял низкую активность по сравнению с другими пептидами. Возможно, его низкая антимикробная активность обусловлена сниженной способностью связываться с бактериальным ЛПС, приводящей к нарушению контакта с бактериальной клеткой, который необходим для реализации антимикробного действия.
Действие пептидов на клетки млекопитающих К настоящему времени описано большое количество обогащенных пролином антимикробных пептидов, включая пептиды насекомых, ракообразных, млекопитающих. Для всех этих ОПП была показана низкая токсичность в отношении эукариотических клеток при использовании в диапазоне концентраций на два порядка превышающих микробоцидные. В задачи нашей работы входило изучение гемолитического действия пептидов из семейства бактенецинов, их эффектов в отношении культивируемых клеток - нормальных и опухолевых, а также исследование влияния пептидов на пролиферацию фибробластов кожи человека.
Гемолитическая активность. Оценка свойства биомолекул вызывать лизис эритроцитов позволяет сделать предположение о наличие повреждающего действия этих соединений на мембраны эукариотических клеток. В результате оценки гемолитической активности бактенецинов в отношении эритроцитов человека показано, что все исследуемые обогащенные пролином пептиды (как химически синтезированные,таки выделенные излейкоцигов) не оказывают выраженного действия на эритроциты даже в концентрации 40-100 мкМ.
Оценка токсического действия обогащенных пролином пептидов на клетки человека в культуре. В то время как большинство изучаемых пептидов по результатам МТТ-теста не проявляют существенных токсических эффектов в отношении исследуемых клеточных линий, эффект СЬВасЗ.4 на эукариотические клетки отличен: пептид проявляет выраженное токсическое действие в отношении ряда культивируемых клеток (Таблица 5), причем его действие более эффективно в отношении опухолевых клеток (гистиоцитарной лимфомы человека и-937, эритромиелоидной лейкемии человека К-562, промиелоцитарной лейкемии человека НЬ-60) по сравнению с нетрансформированными клетками. При этом в присутствии сыворотки крови, токсическое действие пептида, хотя и снижается, но не отменяется полностью. Легочные эмбриональные фибробласты человека (МЯС5), первичные фибробласты кожи человека устойчивы к действию пептида в исследуемом диапазоне концентраций. Однако нейтрофилы и клетки фракции мононуклеарных лейкоцитов человека несколько более чувствительны к повреждающему воздействию СЬВасЗ.4, хотя в присутствии сыворотки крови токсический эффект не наблюдается.
Таблица 5. Цитотоксическое действие С11Вас3.4 и СЬВас5 на опухолевые и нетрансформированные клетки человека в культуре (МТТ-тест)
Клетки ИК50 (мкМ)* при инкубации с пептидами**
СЬВасЗ.4 СЬВас5 пнш-СЬВас 7.5-Ыа пнш-СЬВас 7.5-М
+ Э -8 -э -э - Б
и937 24.4 ± 2.7 8.6 ±2.1 9.3 ± 1.4" >30 >30 >25* >30 >30 >30 >30
К562 21.6 ± 3.8 5.4 ±0.9 >30 >30 >30 >30 >30 >30
НЬ60 10.4 ±3.4 4.8 ±0.9 >30 >30 >30 >30 >30 >30
Нейтрофилы крови человека >30 20.1 ±3.7 >30 >30 >30 >30 >30 >30
Мононуклеары крови человека >30 16.4 ±4.2 >30 >30 >30 >30 >30 >30
МЯС5 >30 >30 >30 >30 >30 >30 >30 >30
Фибробласты кожи человека >30 >30 >25* >30 >30 >25" >30 >30 >30 >30
* - Представлены медианные ннгибирующие концентрации пептидов (ИК50) в мкМ при их действии на клетки ** в среде, содержащей (+ Б) и не содержащей (- Б) 10 % эмбриональной сыворотки коров.
# - данные, полученные для пептидов, выделенных из лейкоцитов козы
Таким образом, цитотоксическая активность бактенецина СЬВасЗ.4 проявляется в большей степени в отношении опухолевых клеток, чем нормальных клеток человека. Причина наблюдаемых различий пока не ясна, возможно они связаны с несколько большим отрицательным зарядом на поверхности опухолевых клеток по сравнению с нормальными, что определяет повышенное сродство пептидов к поверхности этих клеток.
Некоторые механизмы цитотоксического действия СЬВасЗ.4. Чтобы оценить, насколько быстро реализуются токсические эффекты СЬВасЗ.4 на клетки-мишени, изучали динамику и эффективность его токсического действия в отношении клеток 11-937 (клетки гистиоцитарной лимфомы человека) и К-562 (клетки эритромиелоидной лейкемии человека), инкубируя клетки-мишени с пептидом в течении раличных промежутков времени и оценивая количество живых и мертвых клеток с использованием витального красителя трипанового синего. Это, в отличие от МТТ-теста, давало возможность получить немедленный результат (Рис. 2 А и Б). При добавлении к клеткам 4-937 бакгенецина СЬВас3.4 в концентрации 40 мкМ через 30 мин наблюдается снижение количества жизнеспособных клеток на 60 %, однако далее доля живых клеток изменяется менее заметно и через 3 часа полного подавления их жизнеспособности не установлено (Рис.2 А). В концентрациях 20 и 10 мкМ токсическое действие пептида более отсрочено, и выраженный эффект наблюдается лишь через 3 часа. В отношении клеток К-562 характер токсического действия пептида, в целом, сходный (Рис. 2. Б), хотя в концентрациях 40 и20мкМ его действие на клетки этой линии несколько более эффективно, чем в отношении клеток и-937. В более низких концентрациях действие пептида менее выражено.
* 120
*
1 100
а л 80
1 60
§
40
X
1 20
--• — 40 шМ ---л---20 шМ --□--10 шМ -О- 5 шМ
1 А
ж --е- а -----1
О 20 40 60 80 100 120 140 160 180 200
Время, мин
— -•— 40 шМ
—л— 20 цМ
—□— 10 цМ
—с— 5 цМ
Рисунок 2. Динамика токсического действия пептида СЬВас3.4, применяемого в разных концентрациях, в отношении клеток и-937 (А) и К-562 (Б) в культуре (окраска клеток витальным красителем трипановым синим).
По оси У - доля жизнеспособных клеток, в процентах (за 100 % принимали значения для контрольных проб, не содержащих пептида и инкубировавшихся в тех же условиях, что и опытные пробы, и в течение того же промежутка времени); по оси X - время инкубации клеток при 37 °С, в минутах (п = 4-6).
О 20 40 60 80 100 120 140 160 1 80 200
Время, мин
Чтобы выяснить, вызывают ли пептиды клеточную гибель по пути некроза или в некоторых случаях действие пептидов на клетки-мишени сопровождается инициацией в них апоптоза, использовали два подхода: оценивали активность каспазы 3 - ключевой эффекторной каспазы, участвующей в реализации процесса апопотоза; а также выявляли клетки, находящиеся на ранней стадии апоптоза с использованием набора реактивов, содержащего Аннексии V. После инкубации клеток и-937 в течении 3 часов в присутствии СЬВас3.4 в концентрациях 40, 20, 10 и 5 мкМ активность каспазы 3 возрастает по сравнению с контрольными пробами (Рис. 3).
О 1.3 2.5 5 10 20 40 Концентрация пептидов, цМ
Рисунок 3. Активность каспазы 3 клетках и-937 и К-562 при обработке клеток бактенецином СЬВасЗ.4 в течение 3 часов при 37 °С.
За 100% принимали величину активности каспазы 3 в контроле -клетках, инкубировавшихся в тех же условиях, но в отсутствии пептидов.
В аналогичных экспериментах с клетками К-562 также наблюдается увеличение активности каспазы 3, хотя и в несколько меньшем диапазоне концентраций (10-40 мкМ).
Примение набора реагентов, содержащего Аннексии V, дало возможность установить, что при инкубации клеток и-937 с бактенецином в концентрации 20 мкМ около 42 % клеток находятся на ранней стадии апотоза (Рис. 4 А); около 18 % клеток погибают путем некроза. Остальные клетки оказались неповрежденными.
контроль 10 мкМ 20 мкМ 40 мкМ
контроль 10 мкМ 20 мкМ 40 мкМ
Рисунок 4. Оценка количества клеток U-937 (А) и К-562 (Б), находящихся на ранней стадии апоптоза или гибнущих по пути некроза, после их обработки пептидом ChBac3.4.
По оси Y - количество живых клеток или клеток, гибнущих по пути некроза, или апоптоза, в процентах от общего количества клеток. Различия достоверны - по сравнению с числом живых клеток (#), клеток с признаками некроза (+) и апоптоза (*) в контрольных пробах, где клетки инкубировали в тех же условиях, но без добавления пептидов (р<0.05, t-критерий Стьюдента, п=4).
При обработке клеток К-562 этим пептидом в концентрации 20 и 10 мкМ, тоже выявлялось значительное количество клеток, находящиеся на ранней стадии апоптоза (Рис. 4 Б). При более высокой концентрации пептида (40 мкМ) значительно возрастает количество клеток, погибающих по пути некроза для обеих клеточных линий. К настоящему времени в литературе имеются лишь единичные работы, в которых описана способность антимикробных пептидов из нейтрофилов млекопитающих вызывать или модулировать процесс апоптоза клеток in vitro. Так, было показано, что линейный пептид из лейкоцитов быка ВМАР28 инициирует апоптоз опухолевых (К-562, U-937) и нормальных (активированных лимфоцитов человека) клеток (Risso et al., 2002); есть данные о способности АМП человека LL-37 инициировать апоптоз в клетках эпителия дыхательных путей (Barlow et al., 2006), в то время как дефенсины человека вызывают клеточную гибель, в основном, не по пути апоптоза, а по пути некроза (Carlo et al., 2001). С другой стороны, есть работы, в которых сообщается о
способности пептида LL-37 человека, а также пептида PR-39 свиньи ингибировать процесс апоптоза нейтрофильных гранулоцитов (Nagaoka et al., 2006; Ramanathan et al., 2004), хотя механизм наблюдаемых явлений пока не ясен, и противоречивость данных, в некоторой степени объясняется тем, что в различных работах пептиды применяли в разных диапазонах концентраций, а также существенными различиями природы клеток-мишеней. Нами впервые продемонстрировано свойство пептида из семейства бактенецинов инициировать процесс апоптоза в клетках.
Влияние АМП на пролиферацию фибробластов человека. Для многих АМП показано, что в низких концентрациях они обладают митогенным действием. Так, обогащенный пролином PR-39 стимулировал пролиферацию клеток в культуре и ускорял процесс регенерации тканей у экспериментальных животных (Chan, Gallo, 1998). В данной работе изучено влияние ChBac3.4, mini-ChBac7.5-Na, ChBac5 и его фрагментов на пролиферацию фибробластов кожи человека. Рассчитанный на основе данных МТТ-теста относительный коэффициент пролиферации (ОКП) клеток, инкубировавшихся в течение 72 часов в присутствии ChBac5 в концентрациях 1.25, 2.5, 5 и 10 мкМ, достоверно выше этого показателя в контроле, где клетки инкубировали без стимуляции (Рис. 5). В присутствии mini-ChBac7.5-Na в концентрации 10 мкМ (но не в концентрации 5, 2.5 и 1.25 мкМ) тоже наблюдается увеличение ОКП клеток. В случае применения ChBac3.4 достоверных различий с контролем не выявлено.
0 0.625 1.25 2.5 5 10 Концентрация пептида, мкМ
Рисунок 5. Влияние СЬВасЗ.4 и СЬВас5 на пролиферацию фибробластов кожи человека, оцениваемую с помощью относительного коэффициента пролиферации -(ОКП). По оси У - ОКП
(ОО540ОПЫТ / ОБ540КОНТрОЛЬ, где контроль - клетки, инкубировавшихся без пептидов; опыт - с пептидами; инкубация при 72 ч при 37°С в атм. СОг) По оси X - концентрация пептидов в мкМ. Н - СЬВасЗ.4; ■ - СЬВас5; В - 1шш-СЬВас7.5^а * - р < 0.05 по сравнению с контролем (^критерий Стьюдента).
В молекуле ChBac5 присутствует участок RxxPxxP (7-13), имеющийся также у другого ОПП - PR-39 из лейкоцитов свиньи. Благодаря наличию этого участка, PR-39 способен связываться с ЭНЗ-доменами некоторых белков, что обусловливает проявление многообразных эффектов PR-39 в отношении эукариотических клеток и определяет его свойства влиять на пролиферацию эпителиальных клеток, ускорять заживление ран, стимулировать ангиогенез, оказывать противовоспалительное действие (Chan, Gallo, 1998; Li et al., 2000; Shi et al., 1996). В нашей работе изучены эффекты действия на пролиферацию фибробластов различных фрагментов бактенецина ChBac5, содержащих последовательность RxxPxxP (RRPPIRP), составляющую участок с 7 по 13 аминокислоты: N-концевого фрагмента ChBac5( 1-20), фрагментов ChBac5(7-14) и ChBac5(7-22), а также С-концевого фрагмента ChBac5(20-43), не имеющего данного участка (Рис. 6). ОКП клеток достоверно выше в присутствии N-концевого фрагмента молекулы бактенецина ChBac5 - ChBac5(l-20) (в концентрации 10 мкМ). Остальные фрагменты не проявляют стимулирующего действия в отношении фибробластов кожи человека.
19
1.4.
1.2
1.0.
* 0.8 О
0.6. 0.4. 0.2. 0.0-
0.625 1.25 2.5 5
Концентрация пептидов, мкМ
10
Рисунок 6. Влияние фрагментов СЬВас5 на пролиферацию фибро-бластов кожи человека в при инкубации пептидов с клетками 72 часа при 37 °С в атмосфере СОг. По оси У - относительный коэффициент пролиферации — ОКП (Сш5400пыт/(да54ок0нтр0ль) По оси X - концентрация пептидов в мкМ
■СЬВас5 (1-20); Я - СЬВас5 (7-14), Щ - СЬВас5 (7-22), □ -СЬВас5 (20-43). * - р < 0.05 по сравнению с контролем, п=6 ^-критерий Стьюдента).
Эти данные согласуются с результатами, описанными в литературе для РЯ-39: биологическая активность, установленная для полноразмерного РЯ-39, наблюдалась лишь для фрагментов его молекулы, содержащих, как БНЗ-связывающий участок, так и М-концевые аминокислоты. Хотя механизм влияния СЬВас5 на пролиферацию фибробластов пока не выяснен, полученные данные позволяют сделать заключение о важности Т^-концевого участка молекулы С11Вас5 не только для проявления его антимикробной, но и этого вида активности.
Влияние бактенецина на процесс заживления кожной раны у мышей. Учитывая полученные данные об эффектах действия бактенецина СЬВас5 на пролиферацию фибробластов, возник вопрос, обладает ли этот петлиц влиянием на процесс заживлния ран. Изучено влияние пептида на динамику изменения площади полнослойной кожной раны у мышей при обработке ран раствором СЬВас5 (2 мкМи 10 мкМ) в 1-й, 2-й, 4-й, 6-й и 8-й дни после воздействия (Рис. 7).
Рисунок 7. Заживление кожной раны у мышей при обработке ран бактенецином СЬВас5. По оси У - площадь раневой поверхности в процентах от контрольного значения (площадь раневой поверхности у животных, раны которых обрабатывали раствором, не содержащим пептида), измеренного на 2-й день после нанесения раны.
По оси X - дни после нанесения полнослойной кожной раны.
И - СЬВас5 (10 мкМ); ■ - СЬВас5 (2 мкМ); ■ - контроль (без пептида). * - р < 0.05 по сравнению с контрольной группой, в которой измерения проводили в тот же день, что и в опытной, п=5 ^-критерий Стьюдента).
Уже на второй день после нанесения ран площадь раневого дефекта достоверно ниже у мышей, раны которых обрабатывали пептидом в концентрации 10 мкМ по сравнению с контрольной группой, в которой раны обрабатывали тем же растворителем, но без пептида. Аналогичное действие пептида при его применении в концентрации 10 мкМ (но не 2 мкМ)
наблюдается на 4-й, 6-й и 8-й дни после нанесения раны. Во всех группах животных раны заживали путем первичного натяжения, без нагноительных процессов. На 11 день площадь раневого дефекта была незначительна для всех исследуемых групп. На более поздних сроках наблюдения существенного образования рубцов в контрольных и опытных группах животных не выявлялось. Таким образом, показано, что применение СЬВас5 влияет на динамику заживления ран у экспериментальных животных. Дальнейшее изучение этого эффекта даст возможность прояснить механизм действия пептида. Полученные данные позволяют предположить, что данный вид активности, описанный в литературе для РК-39, а также для структурно отличных АМП - дефенсинов, может играть важную роль в модуляции защитных реакций организма. Кроме того, ранозаживляющее действие бактенецина Ш3ас5 в сочетании с его антибактериальной активностью свидетельствует о перспективности изучения возможности применения этого пептида для коррекции патологических процессов, связанных с раневыми инфекциями.
Заключение. Среди различных классов АМП животного происхождения обогащенные пролином пептиды занимают особое место, определяемое особенностями их структуры и функциональных свойств. ОПП обладают избирательностью антимикробного действия и низкой цитотоксической активностью в отношении эукариотических клеток. В настоящей работе продемонстрировано, что минимальные ингибирующие концентрации (МИК) в отношении грамотрицательных бактерий для исследованных ОПП находятся в диапазоне 1-4 мкМ, в то время как цитотоксическое действие в отношении эукариотических клеток, оцениваемое в ИК50, составляет более 30 мкМ. Антимикробные эффекты ОПП могут быть усилены антибиотиком рифампицином и наночастицами серебра, что открывает перспективы для их совместного использования в медицинской и ветеринарной практике.
Среди изученных нами ОПП выявлен пептид СЬВасЗ.4, который, наряду с антибактериальной активностью, проявляет и повышенную цитотоксичность в отношении культуральных опухолевых клеток 11-937, К-562 и НЬ-60, не свойственную другим ОПП. Выявленная активность обусловлена особенностями строения этого пептида, обогащенного гидрофобными аминокислотами.
Важной фунциональной особенностью эндогенных пептидных антибиотиков, в том числе и ОПП, принципиально отличающей их от широко используемых антибиотиков микробного происхождения, являются иммуномодулирующая и усиливающая репаративные процессы активности. В частности, в настоящей работе продемонстрировано митогенное действие пептида СЬВас5 в отношении фибробластов кожи человека и стимулирующее воздействие на заживление кожной раны экспериментальных животных.
Известно, что в нейтрофильных гранулоцитах содержится набор АМП с определенным спектром биологических эффектов, как в отношении микроорганизмов, так и клеток макроорганизма. При этом у человека и некоторых видов животных основную роль таких мультифункциональных молекул играют дефенсины, в то время как у других видов, в лейкоцитах которых отсутствуют дефенсины, аналогичными свойствами обладают пептиды с иными структурами, в частности ОПП. Проведенные исследования свидетельствуют о том, что в лейкоцитах коз содержится набор пептидов, проявляющих разные виды биологической активности, причем каждый из изученных пептидов характеризуется различной степенью проявления того или иного вида активности (антимикробной, цитотоксической, ранозаживляющей). Настоящее исследование функциональной активности ОПП из семейства
бактенецинов дополняет представления о биологической роли этих пептидов в реализации и регуляции различных защитных реакций организма и открывает перспективы их использования для коррекции различных дисфункций организма, вызванных такими патофизиологическими процессами, как воспаление, опухолевый рост и процесс заживления ран.
ВЫВОДЫ:
1. Исследуемые обогащенные пролином антимикробные пептиды бактенецины лейкоцитов козы - ChBac5, ChBac3.4, mini-ChBac7.5a и mini-ChBac7.5ß проявляют высокую антимикробную активность в диапазоне концентраций 1-4 мкМ, в том числе и в отношении антибиотикоустойчивых штаммов (Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella spp., Acinetobacter baumannii), и несколько более низкую в отношении стафилококков (МИК 8-32 и более 32 мкМ). Из исследованных фрагментов СЬВас5 наиболее высокую антимикробную активность проявляет пептид, представляющий собой N-концевой участок (1-20) молекулы. Антимикробное действие пептидов может быть усилено при их совместном применении с другими антибиотическими агентами (рифампицином, наночастицами серебра).
2. Антимикробное действие исследуемых пептидов в концентрации, в 2-4 раза превышающей МИК, реализуется без существенного снижения барьерной функции цитоплазматической мембраны E.coli ML-35p; при этом из исследованных ОПП относительно более выраженное повреждающее действие на цитоплазматическую мембрану E.coli проявляет пептид ChBac3.4, который отличается более высокой гидрофобностью молекулы.
3. Бактенецины ChBac5, ChBac3.4, mini-ChBac7.5a и mini-ChBac7.5ß обладают выраженной способностью связывать свободный липополисахарид. Липополисахаридсвязывающая активность фрагментов СЬВас5 значительно снижена по сравнению с полноразмерным пептидом, что свидетельствует о важности нативной структуры пептида для взаимодействия с отдельными компонентами клеточной стенки бактерий.
4. Исследуемые пептиды имеют низкую гемолитическую активность в отношении эритроцитов человека в концентрациях до 100 мкМ.
5. В концентрациях 1-30 мкМ обогащенные пролином пептиды не проявляют токсических эффектов в отношении культивируемых клеток человека, за исключением наиболее гидрофобного пептида ChBac3.4, который снижает жизнеспособность клеток гистиоцитарной лимфомы U-937, эритролейкемии К-562, миелогенной лейкемии HL-60, но не влияет на жизнеспособность нормальных фибробластов кожи человека в концентрации 30 мкМ. Повреждающее действие пептида на исследованные клетки-мишени сопровождается преимущественной инициацией в них апоптоза при действии пептида в концентрациях 10-20 мкМ, а в концентрации 40 мкМ - некроза. Полученные результаты дают основание предположить, что повышение гидрофобности молекул обогащенных пролином пептидов сопряжено с нарастанием их токсичности в отношении клеток человека.
6. Бактенецины СЬВас5, его фрагмент СЬВас5 (1-20), mini-ChBac7.5a, но не ChBac3.4, стимулируют пролиферацию фибробластов кожи человека. Полученные данные позволяют заключить, что для проявления анализируемого вида активности ChBac5, как и для реализации антимикробной активности, важен N-концевой участок его молекулы.
7. Обработка полнослойных кожных ран у мышей препаратом, содержащим 10 мкМ бактенецина СЬВас5, приводит к более быстрому снижению площади раневого дефекта по сравнению с контрольными животными.
СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ
Статьи, опубликованные в изданиях, рекомендованных ВАК РФ:
1. Орлов Д.С., Шамова О.В., Голубева О.Ю., Пазина Т.Ю., Ямщикова Е.В., Колодкин Н.И., Кокряков В.Н., Корнева ЕА Действие комплексов природных антимикробных пептидов и наночастиц серебра на микроорганизмы // Цитокины и воспаление. - 2010. - том 9, №2. - с. 32-36.
2. Шамова О.В., Орлов Д.С., Ямщикова Е.В., Кокряков В.Н. Изучение взаимодействия антимикробных пептидов с белками из семейства ингибиторов сериновых протеиназ // Фундаментальные исследования. - 2011. - № 9. - с. 344-348.
3. Ямщикова Е.В., Орлов Д.С., Пазина Т.Ю., Трулев А.С., Орлов С.Б., Григорьев А.В., Колодкин Н.И, Кокряков В.Н., Шамова О.В. Влияние антимикробного пептида бактенецина 5 и его укороченных фрагментов на пролиферацию фибробластов кожи человека, и на процесс заживления ран у экспериментальных животных // Современные проблемы науки и образования. - 2012. - № 3.-URL: www.science-education.ru/103.
4. Ямщикова Е.В., Орлов Д.С., Колодкин Н.И., Жаркова М.С., Пазина Т.Ю., Сакуга Г.А., Трулев А.С., Кокряков В.Н., Шамова О.В. Биологическая активность обогащенных пролином защитных пептидов системы врожденного иммунитета // Цитокины и воспаление. -2012. - том 11. - № 1. - с. 36-39.
Статья в сборнике:
5. O.Yu.Golubeva, O.V.Shamova, D.S.Orlov, E.V.Yamshchikova, A.S.Boldina, V.N. Kokryakov. Synthesis and investigation of silver-peptide bioconjugates and investigation in their antimicrobial activity // in: Materials challenges and testing for supply of energy and resources (Ed. by T.Bollinghaus, J. Lexow, T.Kishi, M.Kitagawa). - Springer. - 2012. - P. 163-171.
Тезисы докладов:
6. Yamschikova E.V., Shamova O.V., Ovchinnikova T.V., Orlov D.S., Kokryakov V.N. Antimicrobial activity of two proline-rich peptides from goat leukocytes // Abstracts of the International Conference on Biomolecular Science in honor of the 75th anniversary of the birth of Prof. Yu. Ovcinnikov. - Sept. 28- Oct. 2. - 2009. - Moscow. - P. 435.
7. Yamschikova E.V., Shamova O.V., Orlov D.S., Yuhnev V.A., Ovchinnikova T.V., Kokryakov V.N. Investigation of biological activity of proline-rich antimicrobial peptides // Abstracts of the II International Symposium "Interaction of the nervous and immune systems in health and disease". - June 16 - June 19. - 2009. - Saint Petersburg, Russia. - P. 75-76.
8. Ямщикова E.B. Жаркова. M.A. Овчинникова T.B. Кокряков В.Н. Шамова О.В. Изучение бактерицидного действия пролин-богатых пептидов и их токсических эффектов в отношении клеток человека // Медицинский академический журнал. - 2010. - №5, там 10. - с. 43.
9. Ямщикова Е.В. Жаркова. М.А. Овчинникова Т.В. Кокряков В.Н. Шамова О.В. Изучение антимикробной и липополисахарид-связывающей активности катионных пептидов из семейства бактеницинов // Тезисы конференции «Физиологическая активность регуляторных пептидов». -Москва.- 2010 г.-с. 82-83.
10. Yamschikova E.V., Orlov D.S., Kokryakov V.N., Shamova O.V. Investigation of an ability of proline-rich peptides to penetrate into eukaryotic cells // Abstracts of the III International Symposium "Interaction of the nervous and immune systems in health and disease". - June 7-10. -2011. - Saint Petersburg, Russia. - P.72-73.
11. Ямщикова E.B. Жаркова. M.A. Изучение антимикробного действия природных пептидов бактеницинов в комбинации с другими антибиотическими агентами // Сборник тезисов XIV Всероссийской медико-биологической конференции молодых исследователей «Фундаментальная наука и клиническая медицина - человек и его здоровье», - 16 апреля. -2011 г. - Санкт-Петербург, -с. 311-312.
12. Ямщикова Е.В., Орлов Д.С., Кокряков В.Н., Шамова О.В. Влияние антимикробного пептида бактенецина 5 из лейкоцитов козы на пролиферацию фибробластов кожи человека, а также на процесс ранозаживления у экспериментальных животных // Научная конференция по биоорганической химии и биотехнологии "X чтения памяти академика Юрия Анатольевича Овчинникова" Москва-Пущино. 14 - 17 ноября 2011 г. - с. 92.
Подписано в печать 26.04.12 Формат 60х841/1б Цифровая Печ. л. 1.0 Тираж 100 Заказ 26/04 печать
Отпечатано в типографии «Фалкон Принт» (197101, г. Санкт-Петербург, ул. Большая Пушкарская, д. 54, офис 2)
Оглавление диссертации Ямщикова, Елена Владимировна :: 2012 :: Санкт-Петербург
Введение.
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
1.1. Противоинфекционные защитные системы организма животных.
1.2. Врожденный иммунитет.
1.3. Фагоцитоз.
1.4. Антимикробные пептиды.
1.4.1. Антимикробные пептиды растений и беспозвоночных.
1.4.2 Обогащённые пролином пептиды насекомых.
1.4.3. Антимикробные пептиды млекопитающих.
1.5 Обогащённые пролином пептиды.
1.5.1 Пролин и полипролиновая спираль.
1.5.2 Обогащённые пролином пептиды млекопитающих.
1.6. Механизмы микробоцидного действия антимикробных пептидов.
1.6.1. Механизмы антимикробного действия обогащённых пролином пептидов.
1.6.2. Антимикробная активность обогащённых пролином пептидов.
1.7 Неантибиотические функциональные свойства антимикробных пептидов
1.7.1. Противоопухолевая активность антимикробных пептидов.
1.7.2 Неантимикробная активность обогащённых пролином пептидов.
1.8. Антимикробные пептиды как модель для разработки новых лекарственных средств.
1.8.1 Возможное применение обогащённых пролином пептидов.
2. Материалы и методы.
2.1. Антимикробные пептиды.
2.2. Экспериментальные животные.
2.3. Методы выделения и очистки бактенецинов из лейкоцитов козы, и их идентификации.
2.3.1. Процедура выделения и очистки бактенецинов. из лейкоцитов козы.
2.3.2. Препаративный электрофорез в кислой буферной системе при непрерывной элюции белков из полиакриламидного геля.
2.3.3. Обращеннофазовая высокоэффективная жидкостная хроматография.
2.3.4. Аналитический электрофорез белков и пептидов.
2.4. Методы оценки влияния обогащенных пролином пептидов на микроорганизмы.
2.4.1. Оценка антимикробной активности методом серийных разведений пептидов в питательной среде, содержащей микроорганизмы.
2.4.2. Изучение совместного антимикробного действия пептидов и других антибиотических агентов.
2.4.3. Оценка антимикробной активности пептидов методом радиальной диффузии в агарозных гелях.
2.4.4. Определение чувствительности бактерий к антибиотикам.
2.4.5. Оценка проницаемости мембран бактерий для хромогенных маркеров
2.4.6. Оценка липополисахарид-связывающей активности пептидов.
2.5. Методы оценки влияния обогащенных пролином пептидов на эукариотические клетки.
2.5.1. Анализ гемолитической активности пептидов.
2.5.2. Культивирование клеток.
2.5.3. Получение нейтрофилов и мононуклеарных лейкоцитов из периферической крови человека.
2.5.4. Оценка цитотоксического действия пептидов в отношении эукариотических клеток в культуре.
2.5.5. Окраска мазков клеток по Май-Грюнвальду - Романовскому.
2.5.6. Определение ферментативной активности каспазы 3.
2.5.7. Оценка доли клеток, вступивших на путь апоптоза и некроза с помощью набора реактивов, содержащего Аннексии V.
2.5.8. Влияние пептидов на пролиферацию фибробластов. кожи человека.
2.6. Влияние пептидов на процесс заживления кожной раны у мышей.
3. Результаты исследования.
3.1. Выделение и очистка природных бактенецинов из лейкоцитов.
3.1.1. Процедура выделения и очистки.
3.2. Действие пептидов на микробные клетки.
3.2.1. Антимикробная активность обогащенных пролином пептидов.
3.2.2. Совместное действие пептидов и других антибиотических агентов.
3.2.3. Влияние пептидов на проницаемость мембран Е.соЫ МЬ35р для хромогенных маркеров.
3.2.4. Оценка липополисахарид-связывающей активности пептидов.
3.3. Действие пептидов на клетки млекопитающих.
3.3.1. Гемолитическая активность.
3.3.2. Оценка токсического действия обогащенных пролином пептидов на клетки человека в культуре.
3.3.3. Механизмы цитотоксического действия СЬВас3.4.
3.3.4. Влияние АМП на пролиферацию фибробластов человека.
3.4. Влияние пептидов на процесс заживления кожной раны у мышей
4. Обсуждение результатов.
Введение диссертации по теме "Патологическая физиология", Ямщикова, Елена Владимировна, автореферат
Актуальность проблемы
Неотложная защита от патогенных микроорганизмов у человека и животных обеспечивается механизмами врожденного иммунитета в ходе реакций воспаления, фагоцитоза, секреции слизи и антимикробных факторов эпителиями барьерных органов [Пигаревский, 1978; Маянский А., Маянский Д., 1989; Корнева, 2003; Кокряков, 2006; Черешнев, Черешнева, 2011; Segal et al., 2005; Nathan, 2006; Lehrer, Lu, 2012; Hancock et al., 2012]. Молекулярной основой системы врожденного иммунитета служит комплекс веществ, распознающих патогены и реализующих их элиминацию; среди них важную роль играют катионные антимикробные пептиды (АМП) и белки, содержащиеся в нейтрофилах, моноцитах/макрофагах, клетках барьерных эпителиев.
АМП обладают различной первичной структурой и конформацией молекул, представляя несколько структурных семейств, отличающихся по спектру антимикробной активности и механизмам действия на микроорганизмы. Наряду с антибиотическими свойствами, АМП проявляют разнообразные эффекты в отношении и собственных клеток организма. Наиболее распространено и хорошо изучено семейство дефенсинов. Другим обширным структурным семейством АМП, хотя и значительно менее исследованным, являются обогащенные пролином пептиды, ОПП (или пролин-богатые пептиды - Proline-Rich Peptides, PRP). Эти пептиды обнаружены у животных различных таксономических групп - от беспозвоночных до млекопитающих. ОПП обладают высокой антимикробной активностью преимущественно в отношении грамотрицательных бактерий. Отличительным свойством пептидов этого семейства является низкая токсичность для клеток млекопитающих.
Наличие в структуре ОПП большого количества аминокислотных остатков пролина (до 50%) обусловливает их свойство легко вступать во взаимодействие с различными белковыми молекулами, в том числе участвующими в ключевых биохимических каскадах реакций, которые обеспечивают функционирование иммунной системы. При таком взаимодействии пептиды могут модулировать функциональную активность этих белков, что и обусловливает проявление многообразных эффектов ОПП в отношении собственных клеток организма. Так, PR-39 из лейкоцитов свиньи оказывает противовоспалительное действие, ингибируя активность NADPH-оксидазной системы нейтрофилов [Shi et al., 1996]; ускоряет заживление ран, стимулируя синтез синдеканов [Chan, Gallo, 1998]; влияет на рост сосудов [Li et al., 2000]. Наличие столь разнообразных функциональных свойств предполагает возможность использования подобных пептидов в практической медицине, однако работы, посвященные изучению ОПП, немногочисленны, хотя исследования в этом направлении несомненно актуальны.
Таким образом, высокая антимикробная активность в сочетании с низкой токсичностью для клеток макроорганизма, а также многообразие видов биологической активности, позволяют рассматривать ОПП как перспективную основу для создания новых антибиотических и иммуномодулирующих лекарственных препаратов для коррекции различных видов патологии, а детальное изучение биологических свойств различных представителей этого структурного класса пептидов является актуальным направлением исследований экспериментальной медицины.
В результате проведенных ранее исследований молекулярных факторов системы врожденного иммунитета животных и человека, обогащенные пролином катионные пептиды из семейства бактенецинов были обнаружены в нейтрофилах домашней козы (Capra hired): бактенецин 5 козы (ChBac5), мини-бактенецины 7.5 а и ß (mini-ChBac7.5a и mini-ChBac7.5ß), бактенецин 3.4 (ChBac3.4) [Shamova et al., 1999; 2009]. Структура и некоторые свойства этих бактенецинов были изучены, однако детальное их исследование не проводилось. Перечисленные пептиды и явились объектами исследования в данной работе. Выбор этих пептидов в качестве объекта исследования был обусловлен не только интересом к ним, как к возможным прототипам для создания лекарственных препаратов, но и тем обстоятельством, что в нейтрофилах коз отсутствуют пептиды из семейства дефенсинов, которые играют важную роль в функционировании системы врожденного иммунитета у человека и многих видов млекопитающих. Таким образом, именно бактенецины у коз являются основными представителями АМП фагоцитов, и изучение свойств этих молекул представляется важным направлением и с точки зрения фундаментальных аспектов исследования молекулярных факторов врожденного иммуниета.
Дополнительными объектами исследования стали пептиды, представляющие собой различные участки молекулы ChBac5: N-концевой фрагмент (1-20), С-концевой фрагмент (20-43), фрагменты 7-22 и 7-14. Изучение фрагментов пептидных молекул дает возможность выявить наиболее значимые для проявления того или иного вида биологической активности участки и поволяет наметить пути для дальнейшего структурно-функционального анализа, направленного на создание лекарственного препарата на основе структуры природного пептида. В литературе имеются данные об антимикробной активности некоторых фрагментов молекулы бактенецина 5 быка - BtBac5 [Raj et al., 1996; Tokunaga et al., 2001; Gennaro et al., 2002], имеющего структурное сходство с ChBac5, хотя и несколько отличающегося по антимикробным эффектам. Однако, исследована, в основном, антимикробная активность фрагментов BtBac5, в то время как другие виды активности фрагментов BtBac5, как и бактенецинов из лейкоцитов козы, остаются практически не изученными.
Целью работы явилось изучение различных видов биологической активности природных обогащенных пролином пептидов из семейства бактенецинов: антимикробной, липополисахаридсвязывающей, цитотоксической и ранозаживляющей.
Для достижения поставленной цели было намечено решение следующих задач:
1. Изучить антимикробную активность обогащенных пролином пептидов в отношении грамотрицательных и грамположительных бактерий, и грибов. Исследовать антимикробное действие пептидов при их использовании в комбинации с некоторыми другими антибиотическими соединениями.
2. Провести сравнительное изучение влияния исследуемых бактенецинов и фрагментов их молекул, обладающих антимикробной активностью, на проницаемость мембран E.coli ML35p для маркерных молекул.
3. Изучить липополисахарид-связывающую активность пептидов.
4. Оценить токсичность пептидов для эукариотических клеток (гемолитическую активность, цитотоксичнсть для нормальных и опухолевых клеток человека) и исследовать характер цитотоксического действия бактенецинов, для которых выявлено выраженное повреждающее воздействие на клетки.
5. Изучить влияние пептидов на пролиферацию фибробластов человека и динамику процесса заживления кожной раны у экспериментальных животных.
Научная новизна.
Получены новые данные об антимикробной активности пептидов из семейства бактенецинов, в том числе об их действии в отношении антибиотикоустойчивых клинических изолятов Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella spp., Acinetobacter baumannii.
Впервые выявлены синергические эффекты антимикробного действия исследуемых бактенецинов при их совместном применении с наночастицами серебра, а также с используемым в клинике антибиотиком - рифампицином.
Впервые изучена липополисахарид-связывающая активность бактенецинов ChBac3.4, mini-ChBac7.5a и фрагментов ChBac5.
Впервые исследованы механизмы цитотоксической активности бактенецина ChBac3.4. в отношении опухолевых клеток. Показано, что его повреждающее действие на клетки U-937 и К-562 сопровождается инициацией в них процесса апоптоза.
Впервые исследовано влияние бактенецина 5 из лейкоцитов козы (ChBac5) и его фрагментов, а также бактенецинов ChBac3.4 и mini-ChBac7.5a на пролиферацию фибробластов кожи человека; впервые показано свойство ChBac5 ускорять заживление кожной раны, оцениваемое по снижению площади раневой поверхности у экспериментальных животных.
Теоретическое и практическое значение.
Исследование направлено на изучение биологической активности обогащенных пролином антимикробных пептидов и их укороченных фрагментов: антимикробной, липополисахаридсвязывающей, цитотоксической и ранозаживляющей. В работе моделировали отдельные стороны иммунных и патофизиологических процессов, сопряженных с защитными противоинфекционными и противоопухолевыми реакциями. Изучение антимикробной активности пептидов in vitro помогает понять молекулярные основы функциональной активности этих соединений, реализующихся в фаголизосомах фагоцитов и на поверхности слизистых респираторного, пищеварительного и урогенитального трактов, а также кожных покровов. Изучение цитотоксической активности открывает возможности для оценки противоопухолевого действия этих соединений. Анализ воздействия этих пептидов на заживление кожных ран важен для понимания роли пептидов лейкоцитарного происхождения в репаративных процессах.
Проведенные исследования определяют направления для дальнейшего структурно-функционального анализа, который позволит реализовать разработку на основе этих пептидов новых антимикробных лекарственных препаратов, активных в отношении антибиотикоустойчивых штаммов бактерий. Выявленные эффекты синергического действия пептидов с небелковыми антибиотическими агентами (наночастицы серебра, рифампицин) открывают новые возможности повышения активности препаратов, созданных на основе антимикробных пептидов при их сочетанном применении с другими лекарственными веществами.
Установленная в работе митогенная активность бактенецинов свидетельствует о перспективности разработки новых лекарственных препаратов с антимикробным и ранозаживляющим действием на основе структуры ChBac5.
Основные положения, выносимые на защиту
1. Исследуемые обогащенные пролином антимикробные пептиды ChBac5, ChBac3.4, mini-ChBac7.5a и mini-ChBac7.5ß проявляют высокую антимикробную активность, в том числе и в отношении антибиотикоустойчивых штаммов бактерий. Антимикробное действие АМП может быть усилено при их совместном применении с другими антибиотическими агентами. Наиболее важным участком для проявления антимикробной активности ChBac5 является его N-концевой фрагмент 1-20.
2. Антимикробное действие mini-ChBac7.5a и mini-ChBac7.5ß, ChBac5 и его фрагментов реализуется без существенного нарушения целостности цитоплазматической мембраны E.coli ML-35p; пептид ChBac3.4, который отличается повышенной гидрофобностью молекулы, имеет относительно более выраженное повреждающее действие на цитоплазматическую мембрану E.coli.
3. Изученные обогащенные пролином пептиды обладают липополисахаридсвязывающей активностью.
4. Исследуемые обогащенные пролином пептиды имеют низкую гемолитическую активность в отношении эритроцитов человека.
5. В концентрациях, превышающих антимикробные, обогащенные пролином пептиды не проявляют токсических эффектов в отношении клеток макроорганизма, за исключением бактенецина ChBac3.4. Повреждающее действие этого пептида на клетки линий U-937 и К-562 сопровождается инициацией в них апоптоза.
6. Некоторые из исследуемых ОПП стимулируют пролиферацию фибробластов кожи человека и ускоряют заживление кожных ран, оцениваемое по снижению площади раневой поверхности у экспериментальных животных.
Личный вклад в проведенные исследования
Личный вклад автора в выполненную работу включал самостоятельное проведение большинства исследований, анализ полученных данных и их интерпретацию. Масс-спектрометрический анализ выполнялся в ЦКП «Аналитическая спектрометрия». Математическое моделирование структур пептидов выполнено И.А. Елисеевым на оборудовании Лаборатории прикладной математики и механики Санкт-Петербургского государственного политехнического университета. Синтез наночастиц серебра и характеристика их физико-химических параметров были проведены сотрудником НИИ Химии силикатов РАН им. Гребенщикова к.х.н. О.Ю.Голубевой.
Апробация работы
Апробация диссертации состоялась 25 января 2012 г. на научной конференции отдела общей патологии и патологической физиологии Научно-исследовательского института экспериментальной медицины РАМН (г. Санкт-Петербург).
Основные положения диссертации были представлены
-на международной научной конференции по биоорганическй химии, биотехнологии и бионанотехнологии, посвященной 75-летию со дня рождения академика Ю.А. Овчинникова, (Москва-Пущино, 28 сентября - 2 октября 2009г.);
-на конференции «Физиологическая активность регуляторных пептидов» (Москва, 2010 г.);
- на конференции молодых ученых и специалистов «Фундаментальная наука и клиническая медицина» Санкт-Петербург 2011 г.;
-на II и III международных симпозиумах "Interaction of the nervous and immune systems in health and disease", проводимых 16-19 июня 2009 г. и 7-10. июня 2011 г., Санкт-Петербург;
- на Научной конференции по биоорганической химии и биотехнологии "X чтения памяти академика Ю.А. Овчинникова" 14 - 17 ноября 2011 г. (Москва-Пущино).
По теме работы опубликовано 12 печатных работ, из них 4 оригинальных статьи в журналах, рекомендованных ВАК, одна статья в сборнике и 7 тезисов докладов.
Объем и структура диссертации.
Диссертация изложена на 160 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов, результатов собственных исследований, их обсуждения, заключения и выводов. В диссертации 13 таблиц и 23 рисунка. Прилагаемый список литературы содержит 229 наименований, в том числе 17 отечественных и 212 зарубежных.
Заключение диссертационного исследования на тему "Биологическая активность обогащенных пролином пептидов системы врожденного иммунитета"
Выводы
1. Исследуемые обогащенные пролином антимикробные пептиды бактенецины лейкоцитов козы - ChBac5, ChBac3.4, mini-ChBac7.5a и mini-ChBac7.5ß проявляют высокую антимикробную активность в диапазоне концентраций 1-4 мкМ, в том числе и в отношении антибиотикоустойчивых штаммов (Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella spp., Acinetobacter baumannii), и более низкую в отношении стафилококков (МИК 8-32 и более 32 мкМ). Из исследованных фрагментов СЬВас5 наиболее высокую антимикробную активность проявляет пептид, представляющий собой N-концевой участок (120) молекулы. Антимикробное действие пептидов может быть усилено при их совместном применении с другими антибиотическими агентами (рифампицином, наночастицами серебра).
2. Антимикробное действие исследуемых пептидов в концентрации, в 2-4 раза превышающей МИК, реализуется без существенного снижения барьерной функции цитоплазматической мембраны E.coli ML-35p; при этом из исследованных 01111 относительно более выраженное повреждающее действие на цитоплазматическую мембрану E.coli проявляет пептид СЬВасЗ.4, который отличается более высокой гидрофобностью молекулы.
3. Бактенецины ChBac5, ChBac3.4, mini-ChBac7.5a и mini-ChBac7.5ß обладают выраженной способностью связывать свободный липополисахарид. Липополисахаридсвязывающая активность фрагментов ChBac5 значительно снижена по сравнению с полноразмерным пептидом, что свидетельствует о важности нативной структуры пептида для взаимодействия с отдельными компонентами клеточной стенки бактерий.
4. Исследуемые пептиды имеют низкую гемолитическую активность в отношении эритроцитов человека в концентрациях до 100 мкМ.
5. В концентрациях 1-30 мкМ обогащенные пролином пептиды не проявляют токсических эффектов в отношении культивируемых клеток человека, за исключением наиболее гидрофобного пептида СЬВасЗ.4, который снижает жизнеспособность клеток гистиоцитарной лимфомы 11-937, эритролейкемии К-562, миелогенной лейкемии НЬ-60, но не влияет на жизнеспособность нормальных фибробластов кожи человека в концентрации 30 мкМ. Повреждающее действие пептида на исследованные клетки-мишени сопровождается преимущественной инициацией в них апоптоза при действии пептида в концентрациях 10-20 мкМ, а в концентрации 40 мкМ - некроза. Полученные результаты дают основание предположить, что повышение гидрофобности молекул обогащенных пролином пептидов сопряжено с нарастанием их токсичности в отношении клеток человека.
6. Бактенецины СЬВасб, его фрагмент СЬВасб (1-20), пши-С11Вас7.5а, но не С11Вас3.4, стимулируют пролиферацию фибробластов кожи человека. Полученные данные позволяют заключить, что для проявления анализируемого вида активности ОгВасб, как и для реализации антимикробной активности, важен ^концевой участок его молекулы.
7. Обработка полнослойных кожных ран у мышей препаратом, содержащим 10 мкМ бактенецина СЬВас5, приводит к более быстрому снижению площади раневого дефекта по сравнению с контрольными животными.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Среди различных классов АМП животного происхождения обогащенные пролином пептиды занимают особое место, определяемое особенностями их структуры и функциональных свойств. ОПП обладают избирательностью антимикробного действия и низкой цитотоксической активностью в отношении эукариотических клеток. В настоящей работе продемонстрировано, что минимальные ингибирующие концентрации (МИК) в отношении грамотрицательных бактерий для исследованных ОПП находятся в диапазоне 1-4 мкМ, в то время как цитотоксическое действие в отношении эукариотических клеток, оцениваемое в ИК50, составляет более 30 мкМ. Антимикробные эффекты ОПП могут быть усилены антибиотиком рифампицином и наночастицами серебра, что открывает перспективы для их совместного использования в медицинской и ветеринарной практике.
Среди изученных нами ОПП выявлен пептид СЬВасЗ.4, который, наряду с антибактериальной активностью, проявляет и повышенную цитотоксичность в отношении культуральных опухолевых клеток 11-937, К-562 и НЬ-60, не свойственную другим 01111. Выявленная активность обусловлена особенностями строения этого пептида, обогащенного гидрофобными аминокислотами.
Важной фунциональной особенностью эндогенных пептидных антибиотиков, в том числе и ОПП, принципиально отличающей их от широко используемых антибиотиков микробного происхождения, являются иммуномодулирующая и усиливающая репаративные процессы активности. В частности, в настоящей работе продемонстрировано митогенное действие пептида СЬВас5 в отношении фибробластов кожи человека и стимулирующее воздействие на заживление кожной раны экспериментальных животных.
Известно, что в нейтрофильных гранулоцитах содержится набор АМП с определенным спектром биологических эффектов, как в отношении микроорганизмов, так и клеток макроорганизма. При этом у человека и многих видов млекопитающих основную роль таких мультифункциональных молекул играют дефенсины, в то время как у других видов, в лейкоцитах которых отсутствуют дефенсины, аналогичными свойствами обладают пептиды с иными структурами, в частности 01111. Проведенные исследования свидетельствуют о том, что в лейкоцитах коз содержится набор пептидов, проявляющих разные виды биологической активности, причем каждый из изученных пептидов характеризуется различной степенью проявления того или иного вида активности (антимикробной, цитотоксической, ранозаживляющей). Настоящее исследование функциональной активности ОПП из семейства бактенецинов дополняет представления о биологической роли этих пептидов в реализации и регуляции различных защитных реакций организма и открывает перспективы их использования для коррекции различных дисфункций организма, вызванных такими патофизиологическими процессами, как воспаление, опухолевый рост и процесс заживления ран.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2012 года, Ямщикова, Елена Владимировна
1. Артамонов А.Ю., Шамова О.В., Кокряков,, Орлов Д.С., Фото- и флюориметрические методы оценки проницаемости мембран Е. coli ML-35P // Вестник Санкт-Петербургского университета. 2008. - Сер. 3, №. 2. - с. 139-142.
2. Галактионов В.Г. Эволюционная иммунология. М.: ИКЦ "Академкнига". 2005. - 408 с.
3. Кокряков В.Н., Биология антибиотиков животного поисхождения СПб. «Наука». 1999. - 162 с.
4. Кокряков В.Н., Очерки о врождённом иммунитете СПб. «Наука».2006. 261 с.
5. Корнева Е.А. Введение в иммунофизиологию. ЭЛСБИ-СПб. - Санкт-Петербург. - 2003. - 48с
6. Маркосян К.А., Замятин A.A., Курганов Б.И. Антибактериальные богатые пролином природные олигопептиды и их белки-мишени // Биохимия. 2004. - Т. 69, № 10. - С. 1332-1344.
7. Маянский А.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофакге. Новосибирск. 1989. - 344 с.
8. Мейл Д., Бростофф Дж., Рот Д. Ройт А. Иммунология. М.: Логосфера.2007. 568 с.
9. Мечников И.И. Лекции о сравнительной патологии воспаления. СПб. -1892. 162 с.
10. Мечников И.И. Невосприимчивость в инфекционных болезнях. СПб -1903.-604 с.
11. Пигаревский В.Е. Зернистые лейкоциты и их свойства. М. 1978. - 128с.
12. ПоздеевА.И., Олесова В.Н., Мушеев И.У., Зорин В.Л., Зорина А.И., Зубкова Я.Ю. Экспериментальная оценка пролиферации мезенхимальныхстволовых клеток человека на металлических сплавах // Российский стоматологический журнал. 2007. - Т. 3. - С. 6-8.
13. Северин Е.С. Биохимия. М.: Гэотар-Медиа. 2004. - 779с.
14. Ткаченко С.Б., Кокряков В.И., Ашмарин И.П., Кубатиев А.А. Профенин и PR39x — новые антимикробные пептиды лейкоцитов, регулирующие функциональную активность тромбоцитов // Докл. РАН. -1996. Т. 350, № 5. - С. 704—706.
15. Шамова О.В., Лесникова М.П., Кокряков, и др. Действие дефенсинов на уровень кортикостерона в крови и иммунный ответ при стрессе // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1993. - Т. 115, № 6. - С. 646—649.
16. Ярилин А.А. Иммунология. М. : ГЭОТАР-Медиа. 2010. - 752 с.
17. Aderem A., Underhill D. Mechanisms of phagocytosis in macrophagers // Annu. Rev. Immun. 1999. - V. 17. - P. 593-623.
18. Adzhubei A., Sternberg M., Left-handed Polyproline II Helices Commonly Occur in Globular Proteins // J. Mol. Biol. 1993. - V. 229. - P. 472-493.
19. Agerberth В., Gunne H., Odeberg J., Kogner P., Boman H., Gudmundsson G. FALL-39, a putative human peptide antibiotic, is cysteine-free and expressed inbone marrow and testis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. - V. 92. - P. 195199.
20. Akira S., Takeda K., Kaisho T. Toll-like receptors: critical proteins linking innate and acquired immunity // Nat. Immunol. 2001. - V. 8. - P. 675-680.
21. Amerongen A., Veerman V. Saliva the defender of the oral cavity // Oral Diseases. - 2002. - V. 8. - P. 12-22.
22. Amerongen A., Bolscher J., Veerman E. Salivary Proteins: Protective and Diagnostic Value in Cariology? // Caries Res. 2004. - V. 38. - P. 247-253
23. Andreu D., Rivas L. Animal Antimicrobial Peptides: An Overview // Biopolymers. 1998. - V. 47. - P. 415-433.
24. Bachere E., Gueguen Y., Gonzalez M., de Lorgeril J., Gamier J., Romestand B. Insights into the anti-microbial defense of marine invertebrates: the penaeid shrimps and the oyster Crassostrea gigas // Immunol Rev. 2004. - V. 198. - P. 149-168.
25. Bagella L., Scocchi M., Zanetti M. cDNA sequences of three sheep myeloid cathelicidins // FEBS Lett. 1995. - V. 376. - P. 225-228.
26. Baker M., Maloy W., Zasloff M., Jacob L. Anticancer efficacy of Magainin2 and analogue peptides // Cancer Res. 1993. - V. 53. - P. 3052-3057.
27. Bals R., Lang C., Weiner D., Vogelmeier C., Welsch U., Wilson J. Rhesus monkey (Macaca mulatta) mucosal antimicrobial peptides are close homologues of human molecules // Clin Diagn Lab Immunol. 2001. - V. 8. - P. 370-375.
28. Befus A., Mowat C., Gilchrist M., Hu J., Solomon S., Bateman A. Neutrophil defensins induce histamine secretion from mast cells: mechanisms of action // J. Immunol. 1999. - V. 163. - P. 947-953.
29. Bello J., Bello H., Granados E. Conformation and aggregation of melittin: dependence on pH and concentration // Biochemistry. 1982. - V. 21. - P. 461465.
30. Bensch K., Raida M., Mâgert H., Schulz-Knappe P., Forssmann W. hBD-1: a novel beta-defensin from human plasma // FEBS Lett. 1995. - V. 368. - P. 331335.
31. Beutler B. TLRs and innate immunity // Blood. 2009. - V. 113. - P. 139147
32. Boman H., Agerberth B., Boman A. Mechanisms of action on Escherichia coli of cecropin PI and PR-39, two antibacterial peptides from pig intestine // Infect. Immun. 1993. - V. 61. - P. 2978-2984.
33. Boman H. Peptide antibiotics and their role in innate immunity // Annu Rev Immunol. 1995. - V. 13. - P. 61-92.
34. Bowdish D., Davidson D., Hancock R., A Re-evaluation of the Role of Host Defence Peptides in Mammalian Immunity. Current Protein and Peptide Science. 2005. V. 6. P. 35-51.
35. Brain K., Williamson M., Sudol M. The importance of being proline: the interaction of proline-rich motifs in signaling proteins with their cognate domains // The FASEB Journal. 2000. - V. 14. - P. 231-241.
36. Brogden K. Antimicrobial peptides: pore formers or metabolic inhibitors in bacteria? // Nat. Rev. Microbiol. 2005. - V.3. - P. 238-50.
37. Buttke T., McCubrey J., Owen T. Use of an aqueous soluble tetrazolium/formazan assay to measure viability and proliferation of lymphokine-dependent cell lines // J. Immunol Methods. 1993. - V. 4. - P. 233-240.
38. Casteels P., Ampe C., Jacobs F., Vaeck M., Tempst P. Apidaecins: antibacterial peptides from honeybees // EMBO J. 1989. - V.8. - P. 2387-2391.
39. Casteels P., Ampe C., Riviere L., Van Damme J., Elicone C., Fleming M., Jacobs F., Tempst P. Isolation and characterization of abaecin, a major antibacterial response peptide in the honeybee (Apis mellifera) // Eur. J. Biochem. 1990.-V. 187.-P. 381-386.
40. Casteels P., Tempst P. Apidaecin-type peptide antibiotics function through a non-poreforming mechanism involving stereospecificity // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1994. - V. 199. - P. 39-45.
41. Chan Y., Gallo R. PR-39, a syndecan-inducing antimicrobial peptide, binds and affects pl30(Cas) // J. Biol. Chem. 1998. - V. 273. - P. 28978-28985.
42. Cho J., Kim S. Non-membrane Targets of Antimicrobial Peptides: Novel Therapeutic Opportunities? // Antimicrobial Peptides: Discovery, Design and Novel Therapeutic Strategies. 2010. - P. 234-241.
43. Cho J., Sung B., Kim S. Buforins: histone H2A-derived antimicrobial peptides from toad stomach // Biochim Biophys Acta. 2009. - V. 1788. - P. 1564-1569.
44. Cociancich S., Dupont A., Hegy G., Lanot R., Holder F., Hetru C., Hoffmann J., Bulet P. Novel inducible antibacterial peptides from a hemipteran insect, the sap-sucking bug Pyrrhocoris apterus // Biochem J. 1994. - V. 300. - P. 567-575.
45. Cunliffe R., Kamal M., Rose R., James P., Mahida Y. Expression of antimicrobial neutrophil defensins in epithelial cells of active inflammatory bowel disease mucosa // J. Clin. Pathol. 2002. - V. 55. - P. 298-304
46. Cunliffe R. Alpha-defensins in the gastrointestinal tract // Mol. Immunol. -2003. V. 40. - P. 463-467.
47. Del Sal G., Storici P., Schneider C., Romeo D., Zanetti M. cDNA cloning of the neutrophil bacteriacidal peptide indolicidin // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1992. - V. 187. - P. 467-472.
48. Dutta R., Nagpal S., Salunke D. Functional mapping of apidaecin through secondary structure correlation // Int J Biochem Cell Biol. 2008. - V. 40. - P. 1005-1015.
49. Ehlenberger A., Nussenzweig V. The role of membrane receptors for C3b and C3d in phagocytosis // J. Exp. Med. 1977. - V. 145. - P. 357-371.
50. Fahrner R., Dieckmann T., Harwig S., Lehrer R., Eisenberg D., Feigon J. Solution structure of protegrin-1, a broad-spectrum antimicrobial peptide from porcine leukocytes // Chem BiolO. 1996. - V. 3. - P. 543-550.
51. Fillon Y., Anderson J., Chmielewski J. Cell penetrating agents based on a polyproline helix scaffold // J. Am. Chem. Soc. 2005. - V. 127. - P. 1179811803.
52. Flannagan R., Jaumouille V., Grinstein S. The cell biology of phagocytosis // Annu. Rev. Pathol. 2012. - V. 7. - P. 61-98.
53. Gallo R., Kim K., Bernfield M., Kozak C., Zanetti M., Merluzzi L., Gennaro R. Identification of CRAMP, a cathelin-related antimicrobial peptide expressed in the embryonic and adult mouse // J. Biol. Chem. 1997. V. 272. - P. 13088-13093.
54. Ganz T., Selsted M., Szklarek D., Harwig S., Daher K., Bainton D., Lehrer R. Defensins. Natural peptide antibiotics of human neutrophils // J. Clin. Invest. -1985.-V. 76.-P. 1427-1435.
55. Ganz. T. Defensins: antimicrobial peptides of innate immunity // Nature. -2003. -V. 3. -P.710-720.
56. Garcia-Olmedo F., MolinaF., Alamillo J., Rodriguez-Palenzuela P. Plant defense peptides // Biopolymers. 1998. - V. 47. - P. 479-491.
57. Gennaro R., Skerlavaj B., Romeo D. Purfication Composition and Activity of two Bactenicins Antibacterial Peptides of Bovine Neutrophils // Infect. Immun. -1989.-V. 57.-P. 3142-3146.
58. Gennaro R., Zanetti M., Benincasa M., Podda E., Miani M. Pro-rich Antimicrobial Peptides from Animals: Structure, Biological Functions and Mechanism of Action // Current Pharmaceutical Design. 2002. - V. 8. - P. 763778.
59. Giuliani A., Pirri G., Fabiole S., Nicoletto S. Antimicrobial peptides: an overview of a promising class of therapeutics // Central European Journal of Biology. 2007. - V. 2. - P. 1-33.
60. Gough M., Hancock R., Kelly N. Antiendotoxin activity of cationic peptide antimicrobial agents // Infect. Immun. 1996. - V. 64. - P. 4922-4927.
61. Greenberg S., Grinstien S. Phagocytosis and innate immunity // Curr. Opin. Immunol. 2002. - V. 14. - P. 397-402.
62. Guani-Guerra E., Santos-Mendoza T., Lugo-Reyes S., Teran L. Antimicrobial peptides: General overview and clinical implications in human health and disease // Clin. Immunol. 2010. - V. 135. - P. 1-11.
63. Gudmundsson F., Agerberth B., Odeberg J., Bergman T., Olsson B., Salcedo R. The human gene FALL39 and processing of the cathelin precursor to the antibacterial peptide LL-37 in granulocytes // Eur. J. Biochem. 1996. - V. 238. -P. 325-332.
64. Gueguen Y., Bernard R., Julie F., Paulina S., Delphine D., Franck V., Philippe B., Evelyne B. Oyster hemocytes express a proline-rich peptide displaying synergistic antimicrobial activity with a defensin // Mol. Immunol. 2009. - V. 46. -P. 516-522.
65. Hancock R., Chappie D. Peptide antibiotics // Antimicrobials Agents and Chemotherapy. 1999. - V. 43. - P. 1317-1323.
66. Hara S., Yamakawa M. A novel antibacterial peptide family isolated from the silkworm, Bombyx mori // Biochem J. 1995. - V. 310. - P. 651-656.
67. Harwig S.„ Kokryakov V., Swiderek K., Aleshina G., Zhao C., Lehrer R. Prophenin-1, an exceptionally proline-rich antimicrobial peptide from porcine leukocytes // FEBS Lett. 1995. - V. 362. - P. 65-69.
68. Harwig S., Qu X., Oren A., Shafer W., Lehrer R. Susceptibility of Neisseria gonorrhoeae to Protegrins // Infect. Immun. 1996. - V.64. - P. 1240-1245.
69. Helmerhorst E., Breeuwer P, van't Hof W, Walgreen-Weterings E, Oomen L., Veerman E., Amerongen A., Abee T. The cellular target of histatin 5 on Candida albicans is the energized mitochondrion // J. Biol. Chem. 1999. - V. 274. -P. 7286-7291.
70. Hess B., Kutzner C., van der Spoel D., Lindahl E. GROMACS 4: Algorithms for Highly Efficient, Load-Balanced, and Scalable Molecular Simulation // J. Chem. Theory Comput. 2008. - V.4. - P. 435-447.
71. Hoffmann J. Innate immunity of insects // Curr. Open. Immunol. 1995. - V. 7. - P. 4-10.
72. Hoffmann J., Hetru Ch. Insect defensins: inducible antibacterial peptides // Immunol. Today. 1992. - V. 13. - P. 411-415.
73. Hoffmann J., Reichhart J. Drosophila immunity // Trends in Cell Biology. -1997. V.7. - P. 309-316.
74. Hoffmann J. The immune response of Drosophila // Nature. 2003. - V. 426. - P. 33-38.
75. Hook W., Tsuji S., Siraganian R. Magainin-2 releases histamine from rat mast cells // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1990. - V.193. - P. 50-55.
76. Hoskin D., Ramamoorthy A. Studies on anticancer activities of antimicrobial peptides // Biochim Biophys Acta. 2008. - V. 1778. - P. 357-375.
77. Huang H., Ross C., Blecha F. Chemoattractant properties of PR-39, a neutrophil antibacterial peptide // J. Leukoc. Biol., 1997. - V. 61. - P. 624-629.
78. Jacobs D. Laboratory test habdbook // Lexicimp. 1999. - 825 p.
79. Janeway C. Approaching the asymptote? Evolution and revolution in immunology // Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 1989. - V. 54. - P. 11-16.
80. Janeway C., Medzhitov R. Innate immune recognition // Annu. Rev. Immunol. 2002. - V. 20. - P. 197—216.
81. Jenssen H., Hamill P., Hancock R. Peptide Antimicrobial Agents // Clinical Microbiology Reviews. 2006. - V. 19. - P. 491-511.
82. Johansson J., Gudmundsson G., Rottenberg M., Berndt K., Agerberth B. Conformation-dependent antibacterial activity of the naturally occurring human peptide LL-37 //J. Biol. Chem. 1997. - V. 273. - P. 3718-3724.
83. Kaas Q., Westermann J-Ch., Henriques S.T., Craik D.J. Antimicrobial Peptides in Plants. // Antimicrobial Peptides: Discovery, Design and Novel Therapeutic Strategies. 2010. - 250 p.
84. Kay B., Williamson M., Sudol M. The importance of being proline: the interaction of proline-rich motifs in signaling proteins with their cognate domains // FASEB J. 2000. - V. 14. - P. 231-241.
85. Kerkis A., Hayashi M., Yamane T., Kerkis I. Properties of cell penetrating peptides (CPPs) // IUBMB Life. 2006. - V. 58. - P. 7-13.
86. Klebanoff S., Clark R. The neutrophil: function and clinical disorder. Amsterdam. 1978. - 810 p.
87. Knappe D., Piantavigna S., Hansen A., Mechler A., Binas A., Nolte O., Martin L., Hoffmann R. Oncocin (VDKPPYLPRPRPPRRIYNR-NH2): a novelantibacterial peptide optimized against gram-negative human pathogens // J. Med. Chem. 2010. - V. 53. - P. 5240-5247.
88. Kokryakov V., Harwig K., Panyutich E., Shevchenko A., Aleshina M., Shamova O., Korneva H., Lehrer R. Protegrins: leicocyte amtimicrobial peptides combine features of corticostatic defensins and tachyplesins // FEBS Lett. 1993. -V. 327.-P. 231-236.
89. J., Post M., Volk R., Gao Y., Li M., Metais C., Sato K., Tsai J., Aird W., Rosenberg R., Hampton T., Sellke F., Carmeliet P., Simons M. PR39, a peptide regulator of angiogenesis // Nat. Med. 2000. - V. 6. - P. 49-55.
90. Y., Bennick A. Interaction of tannin with human salivary proline-rich proteins // Arch. Oral. Biol. 1998. - V. 43. - P. 717-728.
91. Mackintosh J., Veal D., Beattie A., Gooley A. Isolation from an ant Myrmecia gulosa of two inducible O-glycosylated proline-rich antibacterial peptides // J. Biol. Chem. 1998. - V. 273. - P. 6139-6143.
92. Marr A., Gooderham W., Hancock R. Antibacterial peptides for therapeutic use: obastacles and realistic outlook // Current Opinion in Pharmacology. 2006. -V.6. - P. 468-472.
93. Masson P., Heremans J. Lactoferrin in milk from different spiecies // Comp. Biochem. and Physiol. 1971. - V. 39. - P. 119-129.
94. Masson P., Heremans J., Schonne E. Lactoferrin, an iron-binding protein in neutrophilic leukocytes // J. Exp. Med. 1969. - V. 130. - P. 643-658.
95. McCray P. Jr, Bentley L. Human airway epithelia express a beta-defensin // Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 1997. - V.16. - P. 343-349.
96. Medzhitov R., Jane way Ch. Innate Immunity // The New England Journal of Medicine. 2000. - V. 343. - P. 338-344.
97. Mosmann T., Rapid Colorimetric Assay for Cellular Growth and Survival: Application to Proliferation and Cytotoxicity Assays // Journal of Immunological Methods. 1983. - V. 65. - P. 55-63.
98. Muller U., Vogel P., Alber G., Schaub G. The innate immune system of mammals and insects // Contrib. Microbiol. 2008. - V. 15. - P. 21- 44.
99. Murphy C., Foster B., Mannis M., Selsted M., Reid T. Defensins are mitogenic for epithelial cells and fibroblasts // J. Cell Physiol. 1993. - V. 155. - P. 408-413.
100. Nagaoka I., Hirota S., Yomogida S., Ohwada A., Hirata M. Synergistic actions of antibacterial neutrophil defensins and cathelicidins // Inflamm. Res. -2000. V. 49. - P. 73-79.
101. Nagaoka I., Suzuki K., Murakami T., Niyonsaba F., Tamura H., Hirata M. Evaluation of the effect of a-defensin human neutrophil peptides on neutrophil apoptosis // Int. J. Mol. Med. 2010. - V. 26. - P. 925-934.
102. Nathan C. Neutrophils and immunity: challenges and opportunities // Nat. Rev. Immunology. 2006. - V. 6. - P. 173-182.
103. Nikaido H. Multidrug Resistance in Bacteria // Annu. Rev. Biochem. 2009. - V. 78. - P. 119-146.
104. Ohba,T., Ishino, M., Aoto, H., Sasaki, T., Interaction of two proline-rich sequences of cell adhesion kinase (3 with SH3 domains of pl30Cas-related proteins and a GTPase-activating protein Graf // Biochem J. 1998. - V. 330. - P. 1249-1254.
105. Ouellette A., Lualdi J. J Biol. Chem. A novel mouse gene family coding for cationic, cysteine-rich peptides. Regulation in small intestine and cells of myeloid origin. 1990 J. Biol. Chem. V. 265 R 9831-9837.
106. Ozinsky A., Smith K.D., Hume D., Underhill D.M. Co-operative induction of pro-inflammatory signaling by Toll-like receptors // J. Endotoxin. Res. 2000. -V. 6. - P. 393-396.
107. Pal K., Banthia A., Majumdar D. Preparation of Transparent Starch Based Hydrogel Membrane with Potential Application as Wound Dressing // Trends Biomater. Artif. Organs. 2006. - V. 20. - P. 59-67.
108. Panyim S., Chalkley R. High resolution acrylamide gel electrophoresis of histones // Arch. Biochem. Biophys. 1969. - V. 130. - P. 337-346.
109. Panyutich A., Shi J., Boutz P., Zhao C., Ganz T. Porcine polymorphonuclear leukocytes generate extracellular microbicidal activity by elastase-mediated activation of secreted proprotegrins // Infect. Immun. 1997. - V. 65. - P. 978-985.
110. Peiser L., Gough P.J., Kodama T., Gordon S. Macrophage class A scavenger receptor-mediated phagocytosis of Escherichia coli: role of cell heterogeneity, microbial strain, and culture conditions in vitro // Infect. Immun. 2000. - V. 68. -P. 1953-1963.
111. Perregaux D. , Bhavsar K., Contillo L., Shi J., Gabel C. Antimicrobial peptides initiate IL-1 beta posttranslational processing: a novel role beyond innate immunity // J. Immunol. 2002. - V. 168. - P. 3024-32.
112. Podda E., Benincasa M., Pacor S., Micali F., Mattiuzzo M., Gennaro R., Scocchi M. Dual mode of action of Bac7, a proline-rich antibacterial peptide // Biochimica Biophysica Acta. 2006. - V. 1760. - P. 1732-41700.
113. Popsueva A., Zinovjeva M., Visser J., Zijlmans J., Fibbe WE, Belyavsky A. A novel murine cathelin-like protein expressed in bone marrow // FEBS Lett. -1996.-V. 391.-P. 5-8.
114. Raj P., Edgerton M. Functional domain and poly-L-proline II conformation for candidacidal activity of bactenecin 5 // FEBS Lett. 1995. -V. 368. - P. 526530.
115. Raj P., Marcus E., Edgerton M. Delineation of an active fragment and poly(L-proline) II conformation for candidacidal activity of bactenecin 5 // Biochemistry. 1996. - V. 35. - P.4314-25.
116. Ramanathan B., Wu H., Ross C., Blecha F. PR-39, a porcine antimicrobial peptide, inhibits apoptosis: involvement of caspase-3 // Dev. Comp. Immunol. -2004.-V. 28.-P. 163-169.
117. Roumestand C., Louis V., Aumelas A., Grassy G., Calas B., Chavanieu A. Oligomerization of protegrin-1 in the presence of DPC micelles. A proton highresolution NMR study // FEBS Lett. 1998. - V. 421. - P. 263-267.
118. Rozgonyi F., Szabo D., Kocsis B., Ostorhazi E., Abbadessa G., Cassone M., Wade J., Otvos L. The antibacterial effect of a proline-rich antibacterial peptide A3-APO // Curr. Med. Chem. 2009. - V. 16. - P. 3996-4002.
119. Sadler K., Eom K., Yang J., Dimitrova Y., Tam J. Translocating proline-rich peptides from the antimicrobial peptide bactenecin 7 // Biochemistry. 2002. -V. 41.-P. 14150-14157.
120. Sang Y., Blecha F. Porcine host defense peptides: expanding repertoire and functions // Dev. Comp. Immunol. 2009. - V. 33. - P. 334-343.
121. Sawyer J., Martin N., Hancock R. Interaction of macrophage cationic proteins with the outer membrane of Pseudomonas aeruginosa // Infect. Immun. -1988. V. 56. - P. 693-698.
122. Schagger H, von Jagow G. Tricine-sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis for the separation of proteins in the range from 1 to 100 kDa // Anal Biochem. 1987. - V. 166. - P. 368-379.
123. Schenkels L., Veerman E., Nieuw A. Biochemical Composition of Human Saliva in Relation To Other Mucosal Fluids // Crit. Rev. Oral. Biol. Med. 1995. -V. 6.-P. 161-175.
124. Schiffmann E., Corcoran B.A., Wahl S.M. N-formylmethionyl peptides as chemoattractants for leucocytes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1975. - V. 72. - P. 1059-1062.
125. Scocchi M., Luthy Ch., Decarli P., Mignogna G., Christen Ph., Gennaro R. The Proline-rich Antibacterial Peptide Bac7 Binds to and Inhibits in vitro the Molecular Chaperone DnaK // Int. J. Pept. Res. Ther. 2009. - V. 15. - P. 147155.
126. Scocchi M., Tossi A., Gennaro R. Proline-rich antimicrobial peptides: converging to a non-lytic mechanism of action // Cell. Mol. Life Sci. 2011. - V. 68.- P. 2317-2330.
127. Scocchi M., Wang S., Zanetti M.,. Structural organization of the bovine cathelicidin gene family and identification of a novel member // FEBS Lett. -1997. V. 417. - P. 311-315.
128. Scott M., Davidson D, Gold M, Bowdish D., Hancock R., The Human Antimicrobial Peptide LL-37 Is a Multifunctional Modulator of Innate Immune Responses // The Journal of Immunology. 2002. - V. 169. - P. 3883-3891.
129. Scott M., Hancock R. Cationic Antimicrobial Peptides and Their Multifunctional Role in the Immune System // Critical Reviews in Immunology. -2000. V. 20. - P. 407-431.
130. Segal A. How neutrophils kill microbes // Annu. Rev. Immunol. 2005. -V. 23. - P. 197-223.
131. Selsted M., Miller S., Henschen A., Ouellette A. Enteric defensins: antibiotic peptide components of intestinal host defense // J. Cell Biol. 1992. - V. 118. -P. 929-932.
132. Shamova O., Brogden K., Zhao C., Nguyen T., Kokryakov V., Lehrer R., Purification and properties of proline-rich antimicrobial peptides from sheep and goat leukocytes // Infection and Immunity. 1999. - V. 67. - P. 4106-4111.
133. Shi J., Ross C.R. Leto. T.L., Blecha F. PR-39, a proline-rich antibacterial peptide that inhibits phagocyte NADPH oxidase activity by binding to Src homology 3 domains of p47 phox // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. - V. 93. - P. 6014-6018.
134. Skerlavaj B., Scocchi M., Tossi A., Romeo D., Gennaro R. In Innovation and Perspectives in Solid Phase Synthesis & Combinatorial Libraries // Scientific Ltd. 1999. - V. 45. - P. 395-398.
135. Snyderman R., Gewurz H., Mergenhagen S.E. Interactions of the complement system with endotoxic lipopolysaccharide. Generation of a factor chemotactic for polymorphonuclear leukocytes // J. Exp. Med. 1968. - V. 128. -P. 259-275.
136. Soballe P., Maloy W., Myrga M., Jacob . Herlyn M. Experimental local therapy of human melanoma with lytic magainin peptides // Int. J. Cancer. 1995. - V. 60. - P. 280-284.
137. Sorensen O., Borregaard N., Cole A. Antimicrobial Peptides in Innate Immune Responses // Trends in Innate Immunity. 2008. - V. 15. - P. 61-77.
138. Sorensen O., Follin P., Johnsen A., Calafat J., Tjabringa G., Hiemstra P., Borregaard N. Human cathelicidin, hCAP-18, is processed to the antimicrobial peptide LL-37 by extracellular cleavage with proteinase 3 // Blood. 2001. - V. 97.-P. 3951-3959.
139. Steinberg D., Hurst M., Fujii C., Kung A., Ho J., Cheng F, Loury D., Fiddes J. Protegrin-1: a Broad-Spectrum, Rapidly Microbicidal Peptide with In Vivo Activity // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 1997. - V. 41. - P. 17381742.
140. Stensvag K., Haug T., Sperstad S., Rekdal O., Indrevoll B., Styrvold OB. Arasin 1, a proline-arginine-rich antimicrobial peptide isolated from the spider crab, Hyas araneus // Dev. Comp. Immunol. 2008. - V. 32. - P. 275-285.
141. Storici P., Del Sal G., Schneider C., Zanetti M. cDNA sequence analysis of an antibiotic dodecapeptide from neutrophils // FEBS Lett. 1992. - V. 314. - P. 187-190.
142. Storici P., Zanetti M. A novel cDNA sequence encoding a pig leukocyte antimicrobial peptide with a cathelin-like pro-sequence // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1993. - V. 196. - P. 1363-1368.
143. Stuart L., Ezekowitz A. Phagocytosis: Elegant Complexity // Immunity. -2005. V. 22. - P. 539-550.
144. Takeda K., Akira S. Toll-like receptors in innate immunity // International Immunology. 2005. - V. 17. - P. 1-14.
145. Tang Y., Yuan J., Osapay G., Osapay K., Tran D., Miller C.J., Ouellette A.J., Selsted M.E. A cyclic antimicrobial peptide produced in primate leukocytes by the ligation of two truncated alpha-defensins // Science. 1999. - V. 5439. - P. 498-502.
146. Termen S., Tollin M., Olsson В., Svenberg T., Agerberth В., Gudmundsson GH. Phylogeny, processing and expression of the rat cathelicidin rCRAMP: a model for innate antimicrobial peptides // Cell Mol. Life Sei. 2003. - V. 60. - P. 536-549.
147. Territo M., Ganz T., Selsted M., Lehrer R. Monocyte-chemotactic activity of defensins from human neutrophils // J. Clin. Invest. 1989. - V. 84. - P. 20172020.
148. Tkachenko S., Kokryakov V, Ashmarin I., Kubatiev A. Antimicribial proteins of neutrophils as regulates of platelet activity // Int. J. Immunotherapy. -1994. V. 10 - P. 159—162.
149. Tokunaga Y., Niidome T., Hatakeyama T., Aoyagi H. Antibacterial activity of bactenecin 5 fragments and their interaction with phospholipid membranes // J Pept. Sci. 2001. - V7. - P. 297-304.
150. Tomasinsig L., Skerlavaj B., Papo N., Giabbai B., Shai Y., Zanetti M. Mechanistic and functional studies of the interaction of a proline-rich antimicrobial peptide with mammalian cells // J. Biol. Chem. 2006. - V. 281. - P. 383-391.
151. Tomasinsing L., Zanetti M. The Cathelicidins Structure, Function and Evolution // Current Protein and Peptide Science. - 2005. - V. 6. - P. 23-34.
152. Toyoshima E., Ohsaki Y., Nishigaki Y., Fujimoto Y., Kohgo Y., Kikuchi K. Expression of syndecan-1 is common in human lung cancers independent of expression of epidermal growth factor receptor // Lung Cancer. 2001. - V. 31. -P. 193-202.
153. Turner J., Cho Y., Dinh N.N., Waring A.J., Lehrer R.I. Activities of LL-37, a cathelin-associated antimicrobial peptide of human neutrophils // Antimicrob Agents Chemother. 1998. - V. 42. - P. 2206-2214.
154. Turvey E., Briode D., Innate Immunity // J. Allergy Clin. Immunol. 2010. - V. 125. - P. 24-32.
155. Underhill D., Ozinsky A. Phagocytosis of microbes: complexity in action // Annu. Rev. Immunol. 2002. - V. 20. - P. 825-852.
156. Vanhoof G., Goossens F., De Meester I., Hendriks D., Scharpe S., Proline motifs in peptides and their biological processing // FASEB J. 1995. - V. 9. - P. 736-744.
157. Vega-Avila E., Pugsley M. An overview of colorimetric assay methods used to assess survival or proliferation of mammalian cells // Proc. West. Pharmacol. Soc.-2011.-V. 54. P. 10-14.
158. Wade D., Boman A., Wahlin B,. Drain C., Andreu D., Boman H., Merrifield R. All-D amino acid-containing channel-forming antibiotic peptides // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. - V. 87. - P. 4761-4765.
159. Wang G. Antimicrobal peptides. Discovery, design and novel therapeutics strategy / Cambridge University Press. 2010. - 230 p.
160. White S., Wimley W. Hydrophobic interactions of peptides with membrane interfaces // Biochim Biophys Acta. 1998. - V. 1376. - P. 339-352.
161. White, S. and Wimley, W. Hydrophobic interactions of peptides with membrane interfaces in BBA-Reviews on Biomembranes // Biochim Biophys Acta. 1998. - V. 1376. - P. 339-352.
162. Wiesner J., Vilcinskas A. Antimicrobial peptides: the ancient arm of the human immune system // Virulence. 2010. - V. 1. - P. 440-464.
163. Williamson M., The structure and function of proline-rich regions in proteins // Biochem. J. 1994. - V. 297. - P. 249-260.
164. Witko-Sarsat V., Rieu P., Descamps-Latscha B., Lesavre P., Halbwachs-Mecarelli L. Neutrophils: molecules, functions and pathophysiological aspects // Lab. Invest. 2000. - V. 80. - P. 617-653.
165. Yang D., Chertov O., Bykovskaia S., Chen Q., Buffo M., Shogan J., Anderson M., Schroder J., Wang J., Howard O., Oppenheim J. Beta-defensins: linking innate and adaptive immunity through dendritic and T cell CCR6 // Science. 1999. - V. 286. - P. 525-528.
166. Yang D., Chen Q., Hoover D., Staley P., Tucker K., Lubkowski J., Oppenheim J. Many chemokines including CCL20/MIP-3 alpha display antimicrobial activity//J. Leukoc. Biology. 2003. - V. 100. - P. 8880-8885.
167. Yasin B., Harwig S., Lehrer R. Susceptibility of Chlamydia trachomatis to protegrins and defensins // Infect. Immun. 1996. - V. 64. - P. 709-713.
168. Yeaman M., Yount N. Mechanisms of Antimicrobial Peptide Action and Resistance // Pharmacological Reviews. 2003. - V. 55. - P. 28-55.
169. Yoo Y., Watanabe S., Watanabe R., Hata K., Shimazaki K., Azuma I. Bovine lactoferrin and Lactoferricin inhibit tumor metastasis in mice // Adv. Exp. Med. Biol. 1998. -V. 443. - P. 285-291.
170. Yount N., Bayer A., Xiong Y. Yeaman M. Advances in Antimicrobial Peptide Immunobiology // Biopolymers (Peptide Science). 2006. - V. 84. - P. 435-358.
171. Zaiou M. Multifunctional antimicrobial peptides: therapeutic targets in several human diseases // J. MolO Med. 2007. - V. 85. - P. 317-329.
172. Zaiou M., Gallo R. Cathelicidins, essential gene encoded mammalian antibiotics // J. Mol. Med. 2002. - V. 80. - P. 549-561.
173. Zanetti M., Gennaro R., Romeo D. Cathelicidins: a novel protein family with a common proregion and a variable C-terminal antimicrobial domain // FEB S Lett. 1995. - V. 374. - P. 1-5.
174. Zanetti M., Litteri L., Griffiths G., Gennaro R., Romeo D. Stimulus-induced maturation of probactenecins, precursors of neutrophil antimicrobial polypeptides // J. Immunol. 1991. - V. 146. - P. 4295-4300.
175. Zanetti M. Cathelicidins, multifunctional peptides of the innate immunity // Journal of Leukocyte Biology. 2004. - V. 75. - P. 39-47.
176. Zanetti M. The Role of Cathelicidins in the Innate Host Defenses of Mammals // Curr. Issues Mol. Biol. 2005. - V. 7. - P. 179-196.
177. Zarrinpar A., Bhattacharyya R., Lim W. The Structure and Function of Proline Recognition Domains // Sci. STKE. 2003. - V. 179. - P. 8-17.
178. Zhao C., Ganz T,. Lehrer R. The structure of porcine protegrin genes // FEBS Lett. 1995. - V. 368. - P. 197-202.
179. Zhu Q., Hu K., Mulay S. Isolation and structure of corticostatin peptides from rabbit fetal and adult lung // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. - V . 85. -P. 592-596.