Автореферат и диссертация по фармакологии (15.00.01) на тему:Совершенствование комплексной технологии лекарственных средств из фукуса пузырчатого (Fucus vesiculosus L.)

ДИССЕРТАЦИЯ
Совершенствование комплексной технологии лекарственных средств из фукуса пузырчатого (Fucus vesiculosus L.) - диссертация, тема по фармакологии
АВТОРЕФЕРАТ
Совершенствование комплексной технологии лекарственных средств из фукуса пузырчатого (Fucus vesiculosus L.) - тема автореферата по фармакологии
Облучинская, Екатерина Дмитриевна Санкт-Петербург 2004 г.
Ученая степень
кандидата фармацевтических наук
ВАК РФ
15.00.01
 
 

Автореферат диссертации по фармакологии на тему Совершенствование комплексной технологии лекарственных средств из фукуса пузырчатого (Fucus vesiculosus L.)

На правах рукописи

Q&^ "

ОБЛУЧИНСКАЯ Екатерина Дмитриевна

СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ КОМПЛЕКСНОЙ ТЕХНОЛОГИИ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ ИЗ ФУКУСА ПУЗЫРЧАТОГО (Fucus vesiculosus L.)

15.00.01. Технология лекарств и организация фармацевтического дела

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата фармацевтических наук

САНКТ-ПЕТЕРБУРГ 2004

Диссертационная работа выполнена на кафедре микробиологии Санкт-Петербургской государственной химико-фармацевтической академии (СГГХФА) Министерства Здравоохранения Российской Федерации и лаборатории альгологии Мурманского морского биологического института (ММБИ) Кольского научного центра (КНЦ) Российской академии наук (РАН).

Научные руководители: доктор технических наук,

профессор Галынкин Валерий Абрамович

кандидат биологических наук,

старший научный сотрудник Воскобойников Григорий Михайлович

Официальные оппоненты: доктор фармацевтических наук, профессор

доктор фармацевтических наук, профессор

Вайнштейн Виктор Абрамович Мирошниченко Юрий Владимирович

Ведущая организация: Научно-исследовательский технологический институт антибиотиков и ферментов (г. Санкт-Петербург)

Защита состоится «28» семти2%>л_2004 г. в часов на заседании Диссертационного совета Д 208.088.01 при Санкт-Петербургской государственной химико-фармацевтической академии по адресу: 197376, Санкт-Петербург, ул. Проф. Попова, д. 14.

Автореферат разослан «_»_2004 г.

Ученый секретарь Диссертационного совета доктор фармацевтических наук

M B. Рыжкова

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Значительное место в современной медицине занимают лекарственные препараты из растительпого сырья. Несмотря на широкий ассортимент существующих фитопрепаратов, поиск и создание новых эффективных и удобных для применения лекарств на основе биологически активных веществ (БАВ) растительного происхождения не теряют своей актуальности.

Источниками ценных БАВ служат бурые водоросли: ламинариевые и фукусовые. Фукусовые водоросли, в отличие от ламинариевых, традиционно мало используются как для получения пищевых продуктов, так и для выделения БАВ, хотя являются продуцентами веществ с широким спектром фармакологических свойств.

Fucus vesiculosus L. (фукус пузырчатый, далее фукус) является массовым видом литорали Баренцева и Белого морей и содержит такие БАВ, как альгиновая кислота и ее соли, маннит, полиненасыщенные жирные кислоты, стерины, пигменты и другие. Кроме того, в состав фукуса пузырчатого входит полисахарид фукоидан, обладающий иммуномодулирующими свойствами, гепариноподобным действием, противовирусной и противомикробной активностью. Доказаны также гастропротекторный эффект, общеукрепляющее воздействие фукоидана, противоопухолевая активность этого полисахарида. Однако ни в нашей стране, ни за рубежом не создано препаратов на основе фукоидана, притом, что фармакологические исследования проводятся более 30 лет. Отсутствие научно обоснованной технологии фукоидансодержащих препаратов сдерживает внедрение этого ценного полисахарида в медицинскую практику.

В связи с вышеизложенным представляется актуальным совершенствование комплексной технологии, позволяющей получать наряду с традициошгыми веществами из бурых водорослей (маннита и альгината натрия) новые высокоэффективные лекарственные средства, с созданием на их основе перспективных лекарственных форм, удобных в применении и стабильных при хранении.

Цели и задачи исследования. Цель настоящей работы — совершенствование комплексной технологии переработки фукусовых водорослей с получением маннита, альгината натрия и новых лекарственных средств: густого экстракта и сухого экстракта.

В соответствии с заявленной целью нами были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать качественные и количественные характеристики сухого сырья и шрота фукуса пузырчатого, используемых для получения БАВ.

2. Изучить влияние технологических факторов на кинетику процессов экстрагирования сырья (слоевищ фукуса и шрота), выходы и концентрацию БАВ.

3. Разработать оптимальную технологию сухого экстракта фукуса пузырчатого (СЭФП), содержащего полисахарид фукоидан. Изучить технологические свойства и стабильность

4. Разработать методики качественного и количественного анализа новых лекарственных средств - густого экстракта фукуса пузырчатого (ГЭФП) и СЭФП.

5. Определить физико-химические показатели выделяемых в процессе комплексной технологии маннита и альгината натрия в соответствии с нормативной документацией.

6. Провести комплекс исследований по разработке рационального состава и технологии гранул СЭФП в твердых желатиновых капсулах. Установить срок годности препарата на основе СЭФП.

7. Разработать нормативную документации на слоевища фукуса пузырчатого, густой и сухой экстракты фукуса, капсулы с гранулами СЭФП.

Научная новизна. Изучение фитохимического состава слоевищ фукуса пузырчатого позволило установить перспективность использования данного вида сырья для производства лекарственных средств. 'Впервые показана возможность получения маннита, густого и сухого экстрактов, альгината натрия методом последовательных экстракций из фукуса. Выявлено, что изменение последовательности использования экстрагентов приводит к более полному извлечению БАВ сырья, к повышению степени чистоты конечных продуктов. Разработан оригинальный способ получения СЭФП в процессе комплексной переработки фукуса. Получены данные о гигроскопичности СЭФП при влажности воздуха более 75%. Обоснован состав вспомогательных веществ при гранулировании СЭФП.

Практическая значимость Разработан и утвержден лабораторный регламент ЛР 02699872-01-2003 на производство густого экстракта фукуса, маннита, сухого экстракта фукуса, альгината натрия. Новая комплексная технология прошла апробацию на базе научно-производственной лаборатории Института Химии Коми научного центра РАН (г. Сыктывкар) и на предприятии

000 «Сирена» (г. Санкт-Петербург), что подтверждено соответствующими актами.

Разработаны состав и способ получения гранул СЭФП в твердых желатиновых капсулах. Составлена технологическая схема и описание технологии гранул СЭФП, определены технологические параметры, необходимые для лабораторного регламента на производство готового лекарственного средства — СЭФП в виде гранул в твердых желатиновых капсулах.

Составлены проекты фармакопейных статей предприятия на слоевища фукуса пузырчатого, ГЭФП, СЭФП и гранулы СЭФП в твердых желатиновых капсулах.

Апробация работы. Основные результаты диссертации доложены и обсуждены на ежегодных конференциях молодых ученых Мурманского морского биологического института 1999-2004; I и II Всероссийских конференциях «Химия и технология растительных веществ», 2000 и 2002 гг.;

1 Всероссийской конференции «Морские прибрежные экосистемы: водоросли, беспозвоночные и продукты их переработки», Москва - Галицыно, 2002; Всероссийской конференции молодых ученых, посвящ. 140-летию со дня рожд. Н.М. Книповича, Мурманск, 2002. Материалы работ представлены на V и VI Международных съездах «Актуальные проблемы создания новых

лекарственных препаратов природного происхождения», 2001 и 2002 гг.; 7th International Phycological Congress, Thessaloniki, Greece, 2001; International Symposium «Chemistry and Biology ofMarine Organism», Greece, 2003 и других.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 19 работ.

Связь задач исследования с проблемным планом фармацевтических наук. Диссертация выполнена в соответствии с планом научно-исследовательских работ Санкт-Петербургской Государственной химико-фармацевтической академии и Мурманского морского биологического института КНЦ РАН.

Объем в структура диссертации. Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, трех глав, содержащих результаты экспериментальных исследования и их

обсуждении, выводов, списка литературы и приложения. Работа изложена на_

страницах машинописного текста, содержит 65 таблиц, 18 рисунков. Список литературы включает 288 источника.

В обзоре литературы сриведены краткие сведепия о химическом составе бурых водорослей, рассмотрены основные БАВ макрофитов, их терапевтическое действие, препараты и биологически активные добавки на их основе. Обобщены современные аспекты гранулирования и создания лекарственных препаратов в виде капсул. Вторая глава содержит характеристику объектов исследования, выбор методов и разработку методик анализа слоевищ фукуса и препаратов на его основе, описание методов и приборов, используемых в работе. В третье главе изложены результаты экспериментальных исследований по совершенствованию' технологии комплексной переработки фукуса. Четвертая глава посвящена изучению фармакологической активности СЭФП. В пятой главе представлены результаты исследований по разработке оптимальной технологии лекарственного препарата па основе СЭФП в виде гранул в твердых желатиновых капсулах. Приложение включает проекты ФСП на слоевища фукуса пузырчатого, густой и сухой экстракты фукуса, капсулы сухого экстракта, акты и другие материалы.

Считаю своим долгом поблагодарить руководство и администрации Санкт-Петербургской государственной химико-фармацевтической академии и Мурманского морского биологического института за предоставленную возможность выполнить диссертационную работу, и лично директора академика РАН Г.Г. Матишова за поддержку и вникание к исследованиям молодых ученых, и аспирантов.

На защиту выносятся:

Результаты экспериментальных исследований по совершенствованию комплексной технологии лекарственных средств из фукуса - манкита, густого и сухого экстрактов, альгиката натрия; материалы по разработке методик анализа фукуса, густого и сухого экстрактов фукуса; экспериментальные данные по созданию препарата с сухим экстрактом фукуса в виде гранул в твердых желатиновых капсулах; экспериментальные данные по изучению стабильности СЭФП и гранул СЭФП в твердых желатиновых капсулах.

ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

В обзоре литератури (глава 1) представлены основные сведения по ботаннко-морфологическш характеристике и фитохимическому составу бурых

водорослей, терапевтической активности БАВ, входящих в их состав. Рассмотрены особенности технологии БАВ, получаемых из бурых водорослей. Дан анализ современных аспектов технологии гранулирования лекарственных веществ и их фасовки в капсулы, проанализированы основные технологические и физико-химические факторы, влияющие на их качество.

Материалы и методы исследования (глава 2). В качестве объекта исследования использовали сухие водоросли фукус пузырчатый (Fucus vesiculosus L.) семейства фукусовых (Fucales), заготовленные в августе и сентябре в период с 1999 по 2003 гг. в губе Дальнезеленецкой Баренцева моря в районе биостанции Мурманского морского биологического института. Для определения числовых показателей сырья выбраны методы и разработаны методики качественного и количественного анализа. Разработан проект ФСП на слоевища фукуса пузырчатого.

Таблица 1

Числовые показатели слоевищ фукуса_

Наименование определяемого показателя Количественное содержание, % от аб.сух.масс.

Дата заготовки сырья

авг. 1999 авг. 2000 сент. 2001 сент. 2002 авг. 2003

Лльпиноная кислота 20,56±2,23 23,97+1,84 22,57±1,73 21,1411,62 23,2911,97

Фукоидан 13,87±2,02 14,70±1,7 14,41±1,89 14,3211,12 14,9111,06

Ламинаран 0,64Ю,02 0,6210,03 0,61 ±0,05 0,69Ю,04 0,6010,02

Маннят 12,08±1,67 10,8811,93 11,56+1,13 11,1411,89 1 ОД 112,06

Сумма липидов и пигментов 3,57±0,39 3,63±0,48 2,9910,61 3,09Ю,52 3,4710,70

Сумма экстрактивных веществ, извлекаемых водой 23,11±0,73 21,3210,98 22,0911,89 20,7611,03 20,9711,17

Иод 0,13±0,02 0,12±0,01 0,1410,01 0,1510,01 0,1010,02

Азот 1,36+0,03 1,02±0,07 1,8310,06 1,6510,09 0,9610,11

Влажность 12,01±0,36 12,4110,24 11,1710,29 123310,18 11,8510,44

Общая зола 25,01±1,13 22,18±1,36 20,6211,07 21,7711,42 23,4611,78

В качестве критериев стандартизации выбраны следующие качественные показатели: присутствие полисахаридов подтверждали образованием осадка при добавлении этанола 95%, машина — выпадением осадка при взаимодействии с аммиачным раствором сульфата меди, наличие суммы липидов — методом тонкослойной хроматографии (ТСХ), хлорофилла -спектрофотометрическим методом. Количественный анализ полисахаридов проводили по модифицированным методикам спектрофотометрически. Для определения альгиновой кислоты использовали цветную реакцию уроновых кислот с 3,5-диметилфенолом. Содержание фукоидана определяли по реакции L-фукозы с L-цистеином, ламинарана — глюкозооксидазным методом. Количество маннита, хлорофилла и йода оценивали спектрофотометрнчески, сумму липидов и пигментов - гравиметрически. Результаты оценки числовых показателей сухих водорослей F. vesiculosus представлены в таблице 1.

Определены технологические свойства сырья (измельчепность, фракционный состав, насыпная масса, сыпучесть, угол откоса). Исследована набухаемость фукуса в различных растворителях.

На основании анализа данных литературы и выполненных собственных исследований разработаны методики качественного и количественного анализа густого и сухого экстрактов из фукуса. Составлены проекты ФСП на густой и сухой экстракты фукуса.

Поиск оптимальных условий процессов экстрагирования фукуса и гранулирования сухого экстракта проводили с помощью метода математического планирования эксперимента Бокса-Уилсона. Статистическую обработку полученных результатов осуществляли с помощью программы «Statistica 5.0» (StatSoft Inc., USA, 1998).

СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ ТЕХНОЛОГИИ КОМПЛЕКСНОЙ ПЕРЕРАБОТКИ ФУКУСА ПУЗЫРЧАТОГО (Глава 3).

На основании данных литературы (Некрасова и др., 1998; Ожигова и др., 2001), а также собственных предварительных экспериментов установлено, что для выделения ГЭФП из фукуса лучшими экстрагентами являются азеотропная смесь метиленхлорида со спиртом этиловым, хлороформ, метанол, гексан. Экстрагирование сырья осуществляли методами циркуляционной экстракции в аппарате Сокслета и мацерации с нагреванием. По окончании процесса экстракции, вытяжку фильтровали, концентрировали на роторном испарителе до получения густого экстракта. Густой экстракт сушили в вакуум-сушильном шкафу.

Результаты экспериментов (рис. 1) показывают, что использование метода циркуляционной экстракции привело к увеличению технологических выходов ГЭФП на 12-16%. Установлено, что наиболее эффективным экстрагентом для получения ГЭФП является азеотропная смесь метиленхлорида с этанолом, при этом технологический выход составил 88,09±0,89%.

Рис. 1. Зависимость техналогического выхода ГЭФП от метода экстрагирования и применяемого экстрагепта. Качественная и количественная характеристика полученного ГЭФП по разработанной технологии представлена в таблице 3.

Таблица 3

Характеристика густых экстрактов, полученных из различных образцов фукуса

№ п/п Год сбора сырья Выход ГЭФП от количества сырья, % Выход от суммы липидови пигментов, % Содержание хлорофилла, % Количество пятен и их расположение, определяемое методом тех

1 1999 2,97±0,45 83,12±1,76 8,19±0,20 5 (на старте и с Ш=0,13; 0,25; 0,47; 0,86)

2 2000 ЗД(>±039 88,09±0,89 8,63±0,35 6 (на старте и с ЯМ),24; 0,46; 0,83; 0,98)

3 2001 2,50±0,33 83,47±1,06 7Д7±0,1б 5 (на старте и с Ш^О.М; 0,24; 0,48; 0,84)

4 2002 2,56±0,50 82,69±1,62 6,54±0Д7 5 (на старте и с 1УЧ),15; 0,26; 0,46; 0,82)

5 2003 2,89±0,40 83Л±1,47 6,79±0,10 5 (на старте и с №0,14; 0,22; 0,48; 0,85)

На основании полученных результатов, а также имеющихся сведений о биологической активности липидно-пигмеитного комплекса фукусовых водорослей разработан проект ФСП на густой экстракт фукуса пузырчатого, обладающего свойствами биогенного стимулятора.

Следующий этап совершенствуемой технологии комплексного использования фукусовых водорослей - выделение маннита. Установлено, что в шроте фукуса, оставшегося после получения ГЭФП, содержится значительное количество маннита, альгиновой кислоты и фукоидана (табл. 4).

Таблица 4

Характеристика шрота фукуса_

Наименование определяемого показателя Количественная характеристика показателя

Дата сбора сырья

авг. 1999 авг. 2000 сент. 2001 сент. 2002 авг. 2003

Содержание маннита, % 11,93±0,83 11,06±1,64 11,33±1,07 10,87±1,66 9,96±1,71

Содержание альгиновой к-ты,% 20,74*2,09 23,07±2,21 22,15±1,75 21,01±1,85 22,94*1,11

Содержание фукоидапа, % 14,06±1,63 14,91±1,42 14,67*1,80 14,37±1,73 15,09±2,13

Влажность, % 0,53±0,05 0,27±0,04 0,68±0,05 0,81 ±0,06 0,34*0,03

Общая зола, % 24,67±1,20 23,03±1,12 19,94±1,34 21,46±1,18 22,98±1,50

С целью совершенствования существующей технологии маннита, действующей на Архангельском опытно-промышлешюм водорослевом комбинате (АОПВК) проведено сравнительное исследование двух методов экстрагирования - мацерации при нагревании (традиционный) и циркуляционной экстракции в аппарате Сокслета. В качестве экстрагента использовали спирт этиловый 95%. Выход неочищенного маннита, полученного методом мацерации, составил 62,97+1,38%, методом циркуляционной экстракции - 92,38+1,50%.

Совершенствование технологии маннита из шрота фукуса привело к повышению выхода данного вещества на 30% за счет применения более эффективного способа экстрагирования (табл. 5).

Таблица 5

Характеристика технического машшта, получемного двумя разными способами

№ Год сбора Способ экстракции Масса Выход от Содержание

п/п сырья сырья, г количества маннита в сырье, % маннитав образце, %

1 1999 Мацерация 250 62,9741,38 86,55±0,97

2 2000 200 60,3542,00 823041,11

3 2001 300 58,1042,74 В4,0741,35

4 2002 200 63,0841,55 85,461:1,44

5 2003 400 59,9041,05 83,5440,81

6 1999 Циркуляционная 500 95,1842,10 85,1941,50

7 2000 экстракция 600 93,6341,56 88,0340,62

8 2001 300 92,9741,82 86,9140,70

9 2002 350 92,26*0,95 86,2240,65

10 2003 400 94,11±1,43 87,6441,09

Для очистки технического маннита попользовали метод колоночной хроматографии (сорбент оксид алюминия). Степень чистоты маннита составила 99,12±1,56%, общий технологический выход - 72,13±2,06%.

Третьим этапом комплексной технолопга является получение сухого экстракта, содержащего фукоидан. Из литературы известно, что для выделения фукоидана применяют воду очищенную, растворы НС1, растворы Са02, и спиртоводные смеси с содержанием этанола 10-40%. Для получения фукоидансодержащего экстракта, исследовали следующие методы экстрагирования сырья - мацерацию с перемешиванием при комнатной температуре и при нагревании, и перколяцию. В качестве сырья использовали шрот фукуса, оставшегося после получения ГЭФП и маннита, характеристика которого представлена в таблице 6.

Таблица 6

Характеристика шрота фукуса после извлечения ГЭФП и маннита

Наименование определяемого показателя Количественная характеристика показателя

Дата сбора

авт. 1999 авг. 2000 сеят. 2001 сент. 2002 авг. 2003

Содержание альгииовой к-ты, % 20,3442,18 23,6541,85 222441,63 21,3741,55 22,7840,95

Содержание фукоидана, % 13,7141,79 14,3341,13 14,0741,88 14,1541,64 14,8242,01

Влажность, % 0,3940,06 0,4140,04 03340,05 0,5540,04 0,4840,05

Общая зола, % 24,1541,10 22,7341,24 19)6541,18 21,5141,20 22,6741,06

На рис. 2 и 3 представлены данные о содержании фукоидана, альпшата натрия и экстрактивных веществ в извлечениях, полученных методами двухступенчатой мацерации с перемешиванием (п=80 об/мин) и перколяции при комнатной температуре. Наибольшая концентрация фукоидана достигнута в извлечениях, экстрагируемых 0,1 н раствором соляной кислоты и 10% этанолом. Технологические выходы фукоидама в пересчете на содержание этого полисахарида в сырье составили: при мацерации ОДн НС1 - 25,34± 1,12% и 10% этанолом - 21,26±0,89%; при перколщии - 40,22±0,79 (0,1н НС1) и 42,40±0,69 (10% этанол). Результаты проведенных экспериментов показывают,

что метод перколяции позволяет получать вытяжки с большей концентрацией фукоидана.

Рис. 2. Содержание БАВ в вытяжках, Рис. 3. Содержание БАВ в вытяжках,

полученных методом двухступенчатой полученных методом перколяции.

мацерации.

Низкие значения технологических выходов фукоидана (до 42,40%), указывают на невысокую эффективность экстрагирования сырья при комнатной температуре применяемыми методами.

Изучено влияние температуры на переход фукоидана в вытяжку. Для этого шрот водорослей экстрагировали в течение 6 ч методом одноступенчатой мацерации при различных температурных режимах.

Рис. 4. Влияние температуры на концентрацию фукоидана в вытяжке, при использовании

различных экстрагентов. В ходе экспериментов (рис. 4) установлено, что повышение температуры оказывает существенное влияние на увеличение содержания фукоидана в

вытяжках. Максимальный выход фукоидана достигнут при экстрагировании 0,1 н раствором НС1 и составил 49-51% при температуре выше 60°С.

Для определения наиболее эффективной концентрации спиртоводной смеси при получении фукоидансодержащего экстракта, изучена зависимость содержания фукоидана, альгиновой КЕСЛОТЫ И экстрактивных веществ в вытяжке от концентрации этанола. Установлено, что экстрагирование шрота фукуса 5% и 10% растворами спирта этилового приводит к получению вытяжек с содержанием фукоидана 6,03% и 5,94% соответственно (в пересчете на технологический выход - 41% и 40%), однако содержание экстрактивных веществ в первом случае выше, что нежелательно из-за перехода большого количества балластных веществ в экстракт.

С целью повышения выхода фукоидана использовали экстракцию с принудительной циркуляцией экстрагента, что позволило увеличить концентрацию фукоидана в извлекателе в среднем на 1,4% (технологический выход увеличился на 9,5% и составил 51%). Время наступления динамического равновесия находилось в интервале 10-12 часов по сравнению с 12-14 часами в обычных условиях, что свидетельствует о целесообразности использования предложенного приема.

Исследовано влияние температуры на содержание фукоидана в вытяжке при экстрагировании 10% этанолом. Показано, что при повышении температуры значительно возрастает количество фукоидана, перешедшего в извлекатель. Оптимум температуры находился в диапазоне 60-80 С, технологический выход увеличился до 70-75%.

Для оптимизации процесса экстрагирования фукоидана из шрота фукуса применили метод математического планирования эксперимента по Боксу-Уилсону с последующим крутым восхождением критерия оптимизации У (выход фукоидана).

Факторы, влияющие па процесс экстрагирования, их уровни и интервалы варьирования определены на основе анализа литературы и экспериментальных данных и представленные в таблице 7.

Таблица 7

Интервалы и уровни варьирования факторов _

Х| Фактор Уровень Интервал варьирования

нижнкЗ ОСЕОВНОЙ верхний

X, Продолжительность, настаивания, ч 6 9 12 3

х2 Температура, "С 20 40 60 20

Х3 рН 1.3 4.0 6,5 2,5

Х4 Измельченпость сырья Бср., мм 1.0 2,0 3,0 1,0

х5 Модуль экстракции (сырье: экстрагент) 1:8 1:10 1:12 1:2

По данным, полученным в ходе экспериментов, рассчитано уравнение регрессии:

У=57,83+9,97X1+10,88X2-6,46X3+3,30X4 [1]

Анализ уравнения показывает, что на процесс экстрагирования фукоидана оказывают влияние продолжительность настаивания, температура, рН, измельченность сырья. Соотношение сырье : экстрагент в выбранном диапазоне варьирования не влияет на выход фукоидана (фактор незначим).

Значительное влияние на выход фукоидана оказывает продолжительность настаивания (степень влияния фактора 42,51%). На втором месте по степени важности для достижения полноты экстрагирования находится повышение температуры (степень влияния фактора 35,71%). Следующий по степени влияния фактор - рН (степень влияния фактора 15,00%): снижение этого показателя приводит к существенному увеличению концентрации фукоидана в вытяжке, так как фукоидан хорошо растворим в кислой среде. Кроме вышеперечисленных факторов немаловажную роль, согласно уравнению регрессии, играет и измельченность сырья - степень влияния фактора 3,91%.

При экстрагировании фукуса в оптимальных условиях получена вытяжка с выходом фукоидана 97,11± 1,16%, экстрактивных веществ - 15,68±0,56%, альгиновой кислоты - 0,97+0,17%. Установленный режим был реализован на базе Института Химии КомиНЦ УрО РАН при наработке экстракта для проведения клинических испытаний.

Для очистки фукоидансодержащего экстракта использовали два способа. Способ 1: 3-х кратное переосаждение 95% этанолом с предварительным диализом в воде очищенной. По окончании процесса переосаждения осадок сушили в вакуум-сушильном шкафу. Технологический выход фукоидансодержащего экстракта составил 79,23+1,19%.

Способ 2: ультрафильтрация. Вытяжку пропускали через ультрафильтрационный аппарат, диализовали, затем концентрировали и сушили на лиофильной сушилке. Технологический выход экстракта, содержащего фукоидан, составил 83,37+1,19%.

Таблица 8

Характеристика сухого экстракта фукуса

из различных образцов сырья__

№ серии Способ сушки и очистки Выход от количества фукоидана, % Содержание фукоидана в экстракте, % Общая зола, % Влажность, %

01.99 Лиофильная сушка, ультрафильтрация 82,96±1,25 88,00±0,90 22,76±1,39 4,79±0,55

03.00 84.05i.U2 88,45±0,78 21,34±1,27 4,31 ±0,60

05.01 83,21±0,95 88,87±0,75 22,15±1,44 4,6110,47

07.02 85,36±1,10 88,72±0,64 23,00±1,38 4,51 ±0,63

09.03 83,44±1,45 88,96*0,91 21,62±1,50 4,47±0,41

02.99 Вакуумная сушка, диализ 79,65.1:1,30 85,22±0,86 28,81±1,88 3,84±0,50

04.00 79,23±1,28 85,06x0,80 31,17±1,70 4,03±0,53

06.01 79,16±0,94 85,54±0,69 29,55±1Д4 3,95±0,69

08.02 79,53±1,11 85,86±0,90 27,90±1,08 4Д7±0,54

10.03 79,07±1,15 85,11±1,00 29,75±1,16 3,78±0,40

Результаты анализа сухих экстрактов, полученных по двум разным схемам очистки и сушки, представлены в таблице 8. Экстракты, полученные способом 2, содержали более высокое значение фукоидана и меньшую зольность. Таким образом, способ ультрафильтрации является более предпочтительным для очистки фукоидансодержащего экстракта по сравнению с диализом через целлофановую мембрану, так как увеличивает технологический выход и улучшает качественные и количественные характеристики СЭФП. Преимущество способа 2 заключается в отсутствии энергоемких стадий

концентрирования в вакууме, которые могут отрицательно повлиять на качественные характеристики полисахарида фукоидана.

Для создания проекта ФСП были разработаны методики качественного и количественного (анализа СЭФП: подобраны условия проведения анализов, концентрации определяемых растворов с учетом чувствительности и погрешностей методов.

Для оценки технологических свойств СЭФП исследованы фракционный состав, сыпучесть, насыпная масса, остаточная влага, влагопоглощаемость различных серий сухого экстракта. Данные исследования фракционного состава демонстрируют его существенную зависимость от способа сушки экстракта. Лиофильно высушенный экстракт мелкодисперсный, содержание в нем пылевидной фракции составляет 80,21%. Экстракт, высушенный в вакууме, имеет большое количество более крупных частиц размером от 2,00 до 0,315 мм (78,43%).

Таблица 9

№ п/п Способ сушки Насыпная масса, кг/м3 Сыпучесть, г/с Угол естествениого откоса, 0 Нрессуемость, МН/м2

1. Вакуумзая 179±37 Не обладает 58 Не обладает

2. Лнофилыгая 237112 Не обладает 61 Не обладает

Анализ результатов сравнительного исследования технологических свойств экстрактов фукуса (табл. 9) в зависимости от способов сушки показывает, что оба экстракта имеют плохие характеристики. Отсутствие прессуемости и сыпучести свидетельствует о том, что экстракты нельзя прессовать или помещать в капсулы без предварительного гранулирования.

Рис. 5. Зависимость влагопоглощения сухих экстрактов от времени экспозиции при разных

значениях относительной влажности воздуха. Для выбора оптимальных условий хранения экстрактов были изучены их гигроскопические свойства при относительной влажности воздуха 66%, 75% и

100% (рис. 5). На основании полученных данных сделан вывод, что СЭФП высокогигроскопичен и следует соблюдать особые условия его хранения (в герметичной таре при относительной влажности воздуха ниже 75%).

С целью установления срока годности СЭФП методом «ускоренного старения» были исследованы 5 серии экстракта. Определен срок годности сухого экстракта фукуса- 2 года (срок наблюдения).

Завершающим этапом комплексной технологии является получение альгината натрия. Наиболее часто в качестве экстрагента в данном случае применяют раствор карбоната натрия. По существующим технологиям обязательно проводят предварительную очистку сырья от водорастворимых примесей. Для выделения альгината натрия нами предложено использовать высушенный шрот фукуса, который освобожден от липофильных и водорастворимых веществ на предыдущих этапах, поэтому необходимость в проведении предварительной очистки сырья отпадает. В таблице 10 представлена характеристика шрота.

Таблица 10

Традиционно альгинаты выделяют мацерацией сырья при температуре 50°С с перемешиванием или без. Проведено сравнительное исследование содержание альгиновой кислоты в вытяжках, полученных методами двухступенчатой мацерации с перемешиванием и перколяции с принудительной циркуляцией экстрагента (рис. 6). Процессы экстрагирования проводили при температуре 50°С.

Рис. 6. Содержание альгиновой кислоты в вытяжках в зависимости от метода экстрагирования.

Определены значения выходов альпшовой кислоты от содержания в шроте, которые составили от 82,95% до 87,00% при перколяции, от 68,99% до 74,09% при мацерации.

Полученные результаты подтверждают преимущество метода перколяции по сравнению с мацеращией для экстрагирования альгинатов. Как следует из данных, представленных на рис. 6, несмотря на значительное повышение выхода альгиновой кислоты по сравнению с традиционным способом, не удалось достигнуть максимального извлечения этого полисахарида. Возможно, это связано с недостаточной длительностью процесса, а также невысокой температурой экстракции - 50°С, поэтому проведено исследование влияния этих факторов на полноту экстрагирования альгиновой кислоты. Установлено, что при повышении температуры значительно возрастает количество альгиновой кислоты, перешедшей в вытяжки. Оптимальные значения температуры находятся в диапазоне 60-80°С, технологический выход увеличивается до 97%..

При изучении кинетики экстрагирования альгиновой кислоты методом перколяции определевю, что наступление динамического равновесия в системе «сырье - экстрагент» наступает через 5 ч настаивания, выход при вытеснении составляет 96-99%.

Полученные извлечения обрабатывали концентрированной серной кислотой. Образовавшийся осадок отделяли, растворяли в 1,5% растворе гидрокарбоната натрия. Раствор альгината натрия диализоваля через целлофановую мембрану, затем диализат однохратно осаждали 95% этанолом. Алъгинат натрия сушили в вакуум-сушильном шкафу. Технологический выход альгината натрия составил 82,42±2,59%, содержание альгината в препарате 95,31±1,83%. В соответствии с разработанным способом получения и очистки альгината натрия были наработаны 5 серий препарата, характеристики которых представлены в таблице 11.

Таблица 11

№ серии Год сбора сырья Выход от количества сырья, % Содержание альгината натрия в препарате, % Влажность, %

01.99. А 1999 17,46±2,40 95,35±1,07 6,83±0,90

02.99.А | 1999 17,69±2Д5 95,71 ±1,47 7,04±1,15

05.01.А ( 2001 19,89±1,95 94,29±0,70 539±1Д0

09.03.А 1 2003 19,74±1,12 96,12±1,68 6,50±1,10

10.03.А | 2003 20,42±1,75 95,10±1,27 7,14±1,18

Результаты исследований показывают, что разработанная технология позволяет получать альгинат натрия с высоким технологическим выходом и достаточно высокой степенью чистоты. Достоинством данного метода является отсутствие энергоемкой стадии вакуум-выпаривания вытяжек, который нежелательно сказывается на качественных показателях альпшатов.

На рисунке 7 приведена технологическая схема усовершенствованной комплексной технологии использования фукуса.

Рис. 7. Схема комплексной технологии переработки фукуса

ИЗУЧЕНИЕ ФАРМАКОЛОГИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ СУХОГО ЭКСТРАКТА ИЗ ФУКУСА ПУЗЫРЧАТОГО (Глава 4)

Фармакологические исследования проведены в Испытательном лабораторном центре Института травматологии и ортопедии им. P.P. Вредена под руководством профессора Афиногенова Г.Е.

Определена острая токсичность сухого экстракта фукуса методом Кербера при пероральном введении. Установлено, что СЭФП относится к классу малотоксичных веществ (DL^o при пероральном введении составляет >2500 мг/кг массы тела).

На основании результатов доклинической оценки иммуномодулирующей активности СЭФП установлено, что при пероральном введении экстракт фукуса выступает как потенциальный стимулятор иммуногенеза.

Изучена сорбционная способность СЭФП по отношению к метиленовому синему и к метаболитам (альбумину, глюкозе, креатинину, мочевине) (рис. 8).

Рис. 8. Адсорбционная способность исследуемых веществ Экспериментальные данные показали, что СЭФП обладает достаточно высокими сорбционными свойствами по сравнению с другими медицинскими сорбентами, такими как лигнин, Полисорб, МКЦ-102.

РАЗРАБОТКА ТЕХНОЛОГИИ ЛЕКАРСТВЕННОГО ПРЕПАРАТА НА .

ОСНОВЕ СУХОГО ЭКСТРАКТА ФУКУСА ПУЗЫРЧАТОГО В ВИДЕ ГРАНУЛ В ТВЕРДЫХ ЖЕЛАТИНОВЫХ КАПСУЛАХ (Глава 5) Для получения лекарственного препарата на основе сухого экстракта фукуса, учитывая его низкие технологические характеристики, а также высокую дисперсность и гигроскопичность, выбрана лекарственная форма в виде гранул в твердых желатиновых капсулах. С целью улучшения физико-химических и технологических свойств СЭФП в качестве вспомогательных веществ исследовали лактозу, крахмал, муку, каолин и сахарозу. Провели изучение влагопоглощающей способности модельных смесей этих компонентов с СЭФП

(соотношение 1:1) при относительной влажности 100% (рис. 9) и установили, что наименьшее поглощение влаги происходит в смеси с лактозой.

Рис. 9. Влагоноглощающая способность модельных смесей с СЭФП.

Так как экстракт фукуса пузырчатого по химическому составу представляет собой сумму фракций полисахарида фукоидана, растворимого в воде и образующего с водой вязкие высокомолекулярные растворы, то в качестве связующего агента использовали воду очищенную. Методом влажной и смешанной грануляции было получено несколько гранулятов с содержанием СЭФП 0,2 г. Изучили влагопоглощаюшую способность при 100%, время распадаемости, прочность на истирание полученных гранулятов (табл. 12). На основании проведенных экспериментов для гранулирования СЭФП выбран метод смешанной грануляции.

Таблица 12

№ п/п Метод грануляции Состав гранулируемой смеси, г Влагосодержание при экспозиции 4 ч, % Распадаемость, мин Прочность на истираемость, %

I Влажная грануляция Лактоза - 0,2 Вода очищенная - 0,05 2,71 5,08±0,4 99,82±1,13

2 Лактоза - 0,4 Вода очищенная - 0,05 2,55 5,67±0,5 99,28±2,00

3 Лактоза - 0,2 Вода очищенная - 0,07 Гранулообразоваяия не произошло

4 Лактоза - 0,4 Вода очищенная - 0,07 2,43 8,17±0,3 100±0,60

5 Смешанная грануляция Лактоза - 0,2 Вода очищенная - 0,05 2,29 2,58±0,5 98,77±1,10

б Лактоза - 0,4 Вода очищенная - 0,05 1,84 2,22±0,4 98,16±0,75

7 Лактоза - 0,2 Вода очищенная - 0,07 2,05 3,50±0,3 99,70±0,54

8 Лактоза - 0,4 Вода очищенная - 0,07 1,67 3,03 ±0,5 99,98±0,33

Для установления оптимальных условий грануляции применили метод математического планирования эксперимента по Боксу-Уилсопу с использованием V* реплики от полного факторного эксперимента. В качестве критериев оптимизации выбраны насыпная масса 0^), фракционный состав сыпучесть с предварительной вибрацией и естественная сыпучесть (УД поскольку эти параметры важны для дальнейшего наполнения капсул.

Факторы и интервалы варьирования, выбранные на основании литературных и экспериментальных данных, представлены в таблице 13.

Таблица 13

Фактор Уровень Интервал

нижпий основной верхний варьирования

XI Количество наполнителя 100 125 150 25

относительно экстракта, % г 10,0 12,5 15,0 2,5

Х2 Количество увлажнителя 50,0% 62,5% 75,0% 12,5%

относительно экстракта, % г 5,0 6,25 7,5 2,5

Х3 Количество

опудривакяцего агента, % г 0 0 0,5 0,125 1,0 0,250 0,5 0,125

Хд Размер отверстий гранулятора, мм 0,50 0,75 1,0 0,25

Х5 Остаточная влажность

гранулята, % 1,6 2,3 3,0 0,70

Установлено, что зависимость критериев оптимизации от указанных выше факторов выражается следующими уравнениями регрессии: У1=698,8-69,1Х1+55,2Х2+8,8ХЗ-82,ЗХ4-40,5Х5 [2]

У2=86,81+1,14Х1+6,41ХЗ+4,84Х4-2ДЗХ5 [3]

УЗ=8,65-0,71Х2+О,73ХЗ [4]

У4=11,68-1,14Х2+1,24Х3 [5]

В условиях адекватности (по критерию Фишера) уравнения регрессии реальному процессу проведено крутое восхождение для критерия оптимизации (насыпная масса). Определены оптимальные условия процесса гранулирования экстракта фукуса: количество наполнителя - 112,5% от количества СЭФП, количество увлажнителя - 62,5%, количество опудривающего агента - 0,55%, размер отверстий гранулятора - 0,50 мм, остаточная влажность гранулята не более 2,0%.

При гранулировании сухого экстракта в приведенных условиях получены гранулы с фракцией 0,25-0,50 мм с выходом 92,83+2,61%, остаточной влажностью 1,98+0,2%, насыпной массой 935+7 кг/м3, сыпучестью естественной 13,17+1,45г/с, сыпучестью с вибрацией 10,38+1,29 г/с.

Составлено описание технологического процесса получения гранул СЭФП методом смешанной грануляции и фасовки гранул в капсулы, а также технологическая схема данного производства.

Выбраны критерии стандартизации и подготовлен проект ФСП на гранулы СЭФП в твердых желатиновых капсулах. Наработаны серии капсул с гранулами сухого экстракта фукуса, которые были проанализированы в

соответствии с требованиями проекта ФСП. Полученные результаты (табл. 14) свидетельствуют, что препарат серий 1-5 отвечает всем требованиям показателей качества. Низкое значение времени распадаемости наряду с растворением 100% позволяют сделать предположение о высокой биодоступности капсул с гранулами СЭФП in vitro.

Таблица 14

№ серии Отклонение от средней массы, % Реакция на подлинность Содержание фухошинав 10 капсулах, г Распада-емость, мин Растворение, %

полиса-хариды фукондан

Требования Не более 10 Образование осадка при добавлении спирта этил. 96% С серной кислотой хонц. и 5 мл 1% раствора Ь-цисгеина Максимумы поглощения при 396 нм и 430 нм. Не менее 1,50 г Не более 15 Не менее 75%

1 2,80 Положит Положит 1,76±D,08 3±1 100

2 2,06 Положит Положит 1,75iO,06 4±1 100

3 6,48 Положит Положит 1,73±0,05 3±1 100

4 2,26 Положит Положит 1,76*0,07 2±1 100

5 3,60 Положит Положит 1,79±0,08 4±1 100

Рис. 10 и 11. Влагопоглощающая способность гранул СЭФП и капсул с гранулами СЭФП.

Исследована влагопоглощающая способность капсул с гра1гулами СЭФП в условиях повышенной влажности воздуха 75% и 100% (рис. 10 и 11). Установлено, что гранулы СЭФП в желатиновых капсулах обладают меньшей

способностью сорбировать влагу по сравнению с суммарной влагопоглощаемостью капсул и гра!гул. Определение влагосодержания гранул СЭФП, помещенных в капсулы, показало, что их гигроскопичность значительно снизилась и практически не менялась за экспериментальный период.

Влагопрошщаемость двух видов упаковок с капсулами СЭФП исследовали при относительной влажности воздуха 100% и 75% и температуре 20°С и различном времени экспозиции. На основании полученных данных установлено, что оба вида упаковки капсул СЭФП полностью обеспечивают сохранность капсул в течение экспериментального периода при 75% и 100% относительной влажности воздуха.

Методом «ускоренного старения» была исследована стабильность гранул СЭФП в твердых желатиновых капсулах. Установлено, что препарат серий 1-5 по показателям качества соответствовал требованиям проекта ФСП в течение экспериментального периода, определен срок годности капсул с гранулами

0.2.г СЭФП-2 года.

ВЫВОДЫ

1. Предложена комплексная технология лекарственных средств из фукуса пузырчатого (Fucus vesiculosus): густого экстракта, маннита, альгината натрия, сухого экстракта.

2. Установлено, что густой экстракт фукуса пузырчатого целесообразно получать методом циркуляционной экстракции с использованием в качестве экстрагента азеотропной смеси хлористый метилен : этиловый спирт. Получен ГЭФП с высоким технологическим выходом (88,09±0,89%).

3. Примените способа циркуляционной экстракции шрота фукуса позволяет получать технический маннит с выходом 92,3 8± 1,50%, что превышает выход по существующей технологии на 30%. Очистка методом колоночной хроматографии обеспечивает получение из него фармакопейного машшта высокой степени чистоты (99,12± 1,56%).

4. Доказано преимущество метода перколяции с периодической циркуляцией экстрагента для выделения альгината натрия по сравнению с методом мацерации. Получен фармакопейный альгинат натрия с высоким выходом (82,42±2,59%) и степенью чистоты (95,31±1,83%).

5. Создана технология сухого экстракта фукуса. Оптимизация процесса экстрагирования шрота методом математического планирования эксперимента позволила достигнуть высокого значения выхода фукоидана (97,11± 1,16%). Применение способа ультрафильтрации вытяжки обеспечило увеличение содержания фукоидана в сухом экстракте до 88,72±0,71%. Установлена высокая гигроскопичность сухого экстракта фукуса пузырчатого.

6. Разработан научно обоснованный способ гранулирования сухого экстракта фукуса пузырчатого. Предложен лекарственный препарат в виде гранул сухого экстракта фукуса 0,2 г в твердых желатиновых капсулах. Показана его высокая доступность в опытах in vitro и стабильность при хранении в течение не менее 2 лет.

7. Разработаны проекты ФСП на слоевища фукуса пузырчатого, на сухой экстракт фукуса пузырчатого, густой экстракт фукуса пузырчатого, гранулы экстракта фукуса пузырчатого ОД г в твердых желатиновых капсулах. Составлен и утвержден лабораторный регламент на производство густого экстракта, маннита, сухого экстракта, альгината натрия. Список опубликованных работ по теме диссертации.

1. Облучинская Е.Д. Анализ содержания фукоидана в сухих экстрактах Fucus vesiculosus L. / Материалы конф. молод, уч. ММБИ. Мурманск: ММБИ КНЦРАН. 2000. с. 51-53.

2. Облучинская Е.Д. Сезонные изменения содержания полисахаридов фукусовых водорослей Баренцева моря / Материалы конф. молод, уч. ММБИ. Мурманск: ММБИ КНЦ РАН. 2001. с. 65-70.

3. Obluchinskaya E.D. Effect of the external factors on the composition of seaweed polysaccharides ofthe Arctica / Phycologia. v. 40. N 4. suppl. 2001. P. 88.

4. Облучинская Е,Д. Новое в технологии переработки бурых водорослей / Тез. докл. Ш форума представителей промышл. предприятий, научн. и проекта, организаций в обл. биотехнологии. Санкт-Петербург. 2001. с. 32-33.

5. Воскобойников Г.М., Галынкин В. А., Облучинская Е.Д. Новая технология комплексной переработки бурых водорослей / Материалы V Межд. съезда «Актуальные проблемы создания новых лекарственных препаратов природного происхождения». Санкт-Петербург. Петродворец. 2001. с. 71-74.

6. Облучинская Е.Д., Воскобойников Г.М., Галынкин В.А. Содержание алъгиновой кислоты и фукоидана в фукусовых водорослях Баренцева моря / Прикладная биохимия и микробиология. 2002. т. 38. № 2. с. 213-216. (Obluchinskaya E.D., Voskoboinikov G.M., Galynkin V.A. Contents of alginic acid and fucoidan in Fucus algy ofthe Barents sea / Appl. Biochem. and Microbiol. 2002. v. 38. N 2. pp. 186-188. Translated from Prikladnaya Biohimiya i Mikrobiologiya. 2002. v. 38. N2. pp. 213-216).

7. Облучинская Е.Д., Афиногенова АХ. Сорбционная активность биомассы бурых водорослей Баренцева моря / Материалы конф. молод, уч. ММБИ. Мурманск: ММБИ КНЦ PAR 2002. с. 117-123.

8. Облучинская Е.Д., Воскобойников Г.М., Афиногенов Г.Е., Афиногенова А.Г. Изучение сорбциошюй активности бурых водорослей / Материалы VI Межд. съезда «Актуальные проблемы создания новых лекарственных препаратов природного происхождения». Санкт-Петербург. 2002. с. 581-585.

9. Облучинская Е.Д. Комплексная технология переработки водорослей рода Fucus / Материалы Всерос. семинара «Новые достижения в химии и химической техпологии растительного сырья». Барнаул. 2002. с. 252-254.

10. Облучинская Е.Д. Содержание полисахаридов в фукусовых водорослях Баренцева моря / «XXI век - перспективы развития рыбохозяйствешгай пауки». Материалы Всерос. иытернет-коиф. молод, уч. Владивосток. 2002. с. 168-172.

11. Облучинская Е.Д., Воскобойников Г.М., Афиногенов Г.Е., Афиногенова А.Г. Исследование сорбциошюй активности бурых водорослей Баренцева моря / Материалы Всерос. конф. «Химия и технология растительных веществ». Казань. 2002. с. 106.

12. Облучинская Е.Д. Влияние факторов внешней среды на динамику содержания полисахаридов бурых водорослей Баренцева моря / Тез. докл.

Всерос. конф. мол. уч., посвящ. 140-летию со дня рожд. Н.М. Книповича. Мурманск. 2002. с. 158.

13. Облучинская Е.Д. Динамика содержания полисахаридов бурых водорослей Баренцева моря под влиянием различных факторов / Тез. докл. конф. мол. уч. Сыктывкар. 2002. с. 79.

14. Облучинская Е.Д. Изучение изменения содержания полисахаридов бурых водорослей под влиянием факторов внешней среды / Тез. докл. Первой Всерос. конф. «Морские прибрежные экосистемы: водоросли, беспозвоночные и продукты их переработки». Москва, Галицыно. 2002. с. 86.

15. Облучинская Е.Д. Совершенствование технологии экстракта из фукусовых водорослей Баренцева моря / Материалы конф. молод, уч. ММБИ. Мурманск: ММБИ КНЦ РАН. 2003. с. 108-112

16. Obluchinskaya E.D. Chemical constituents and pharmacological activity of a new extract from Fucus vesiculosus / Thesis of Intern. Symp. "Chemistry and Biology ofMarine Organism'*, Greece, 2003. P. 117.

17. Облучинская Е.Д. Разработка комплексной технологии получения БАВ из фукусовых водорослей / Материалы конф. молод, уч. ММБИ. Мурманск: ММБИ КНЦ РАН. 2004. с. 100-108.

18. Облучинская Е.Д., Воскобойников Г.М., Минина С.А. Полисахариды в бурых водорослях / Фармация. № 3.2004. с. 15-18.

19. Облучинская Е.Д., Минина С.А. Совершенствование способа получения экстракта из фукусовых водорослей / Хим.-фарм. журн. т. 38. № 6. 2004. с. 3537.

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата фармацевтических наук

ЛР № 021251 от 23.10.97. Подписано в печать 23.06.2004. Тираж 100. Заказ 520. Санкт-Петербургская государственная химико-фармацевтическая академия. Издательство СПХФА—член Издательско-полиграфической ассоциации вузов Санкт-Петербурга, 197376, С-Петербург, ул. Профессора Попова, 14

- 14109

 
 

Оглавление диссертации Облучинская, Екатерина Дмитриевна :: 2004 :: Санкт-Петербург

Введение.

Глава 1. Обзор литературы.

1.1. Ламинариевые и фукусовые водоросли Баренцева и Белого морей и их характеристика.

1.2. Фотохимический состав промысловых бурых водорослей.

1.2.1. Моносахариды, маннит.

1.2.2. Полисахариды: альгиновая кислота и ее соли, фукоидан, ламинаран.•.

1.2.3. Липиды и пигменты.

1.2.4. Макро-и микроэлементы.

1.2.5. Азотсодержащие вещества.

1.3. Методы анализа БАВ водорослей.

1.3.1. Количественное определение маннита.

1.3.2. Качественный и количественный анализ полисахаридов бурых водорослей.

1.3.2.1. Качественный анализ полисахаридов бурых водорослей.

1.3.2.2. Количественный анализ полисахаридов бурых водорослей.

1.3.3. Качественный и количественный анализ липидов и пигментов.

1.3.3.1. Липиды: качественный анализ.

1.3.3.2. Количественное определение общей суммы липидов.

1.3.3.3. Качественный и количественный анализ пигментов.

1.4. Терапевтическое действие БАВ, выделяемых из бурых водорослей.

1.5. Особенности технологии БАВ, получаемых из водорослей.

1.6. Современные аспекты гранулирования лекарственных веществ и их фасовки в капсулы.

1.6.1. Методы грануляции.

1.6.2. Факторы, влияющие на качество гранул.

1.6.3. Фасовка гранул в капсулы.

 
 

Введение диссертации по теме "Технология лекарств и организация фармацевтического дела", Облучинская, Екатерина Дмитриевна, автореферат

Актуальность темы. Значительное место в современной медицине занимают лекарственные препараты из растительного сырья. Несмотря на широкий ассортимент существующих фитопрепаратов, поиск и создание новых эффективных и удобных для применения лекарств на основе биологически активных веществ (БАВ) растительного происхождения не теряют своей актуальности.

Источниками ценных БАВ служат бурые водоросли: ламинариевые и фукусовые. Фукусовые водоросли, в отличие от ламинариевых, традиционно мало используются для получения как пищевых продуктов, так и выделения БАВ, хотя являются продуцентами веществ с широким спектром фармакологических свойств.

Fucus vesiculosus L. (фукус пузырчатый) является массовым видом литорали Баренцева и Белого морей и содержит такие БАВ, как альгиновая кислота и ее соли, маннит, полиненасыщенные жирные кислоты, стерины, пигменты и другие. Кроме того, в состав фукуса пузырчатого входит полисахарид фукоидан, обладающий иммуномодулирующими свойствами, гепариноподобным действием, противовирусной и противомикробной активностью. Доказаны также гастропротекторный эффект, общеукрепляющее воздействие фукоидана, противоопухолевая активность этого полисахарида. Однако ни в нашей стране, ни за рубежом не создано препаратов на основе фукоидана, притом, что фармакологические исследования проводятся более 30 лет. Отсутствие научно обоснованной технологии фукоидансодержащих препаратов сдерживает внедрение этого ценного полисахарида в медицинскую практику.

В связи с вышеизложенным представляется актуальным совершенствование комплексной технологии, позволяющей получать наряду с традиционными веществами из бурых водорослей (маннита и альгината натрия), новые высокоэффективные средства (густой и сухой экстракты), и разработка на их основе перспективных лекарственных форм, удобных в применении и стабильных при хранении.

Цели и задачи исследования. Цель настоящей работы -совершенствование комплексной технологии переработки фукусовых водорослей с получением маннита, альгината натрия и новых лекарственных средств: густого экстракта и сухого экстракта. б

В соответствии с заявленной целью нами были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать качественные и количественные характеристики сухого сырья и шрота фукуса пузырчатого, используемых для получения БАВ. Усовершенствовать технологию комплексного использования фукуса пузырчатого.

2. Изучить влияние технологических факторов на кинетику процессов экстрагирования сырья (слоевищ фукуса и шрота), выходы и концентрацию БАВ.

3. Разработать оптимальную технологию сухого экстракта фукуса пузырчатого (СЭФП), содержащего полисахарид фукоидан. Изучить технологические свойства СЭФП.

4. Выбрать методы и разработать методики качественного и количественного анализа новых лекарственных средств - густого экстракта фукуса пузырчатого (ГЭФП) и СЭФП.

5. Определить физико-химические показатели выделяемых в процессе комплексной технологии маннита и альгината натрия в соответствии с нормативной документацией.

6. Провести комплекс исследований по разработке рационального состава и технологии гранул СЭФП в твердых желатиновых капсулах. Определить срок годности СЭФП и готовой лекарственной формы на его основе в виде гранул в твердых желатиновых капсулах.

7. На основании полученных результатов разработать нормативную документации на слоевища фукуса пузырчатого, густой и сухой экстракты I фукуса, капсулы с гранулами СЭФП.

Научная новизна. Изучение фотохимического состава и технологических свойств слоевищ фукуса позволило установить перспективность использования данного вида сырья для производства лекарственных средств.

Впервые показана возможность получения маннита, густого и сухого экстрактов и альгината натрия методом последовательных экстракций из фукуса пузырчатого. Выявлено, что изменение последовательности использования экстрагентов приводит к более полному извлечению БАВ сырья, к повышению степени чистоты конечных продуктов. Установлен оптимальный способ получения и гранулирования СЭФП в процессе комплексной переработки фукуса. Теоретически и экспериментально обоснован состав вспомогательных веществ при гранулировании СЭФП с 7 учетом его технологических и физико-химических свойств. Получены данные о гигроскопических свойствах СЭФП и препарата на его основе в виде гранул в твердых желатиновых капсулах при влажности воздуха более 75%.

Практическая значимость Разработан и утвержден лабораторный регламент JIP 02699872-01-2003 на производство густого экстракта фукуса, маннита, сухого экстракта фукуса, альгината натрия. Новая комплексная технология прошла апробацию на базе научно-производственной лаборатории Института Химии Коми научного центра РАН (г. Сыктывкар) и на предприятии ООО «Сирена» (г. Санкт-Петербург), что подтверждено соответствующими актами.

Разработаны состав и способ получения гранул СЭФП в твердых желатиновых капсулах. Составлена технологическая схема и описание технологии гранул СЭФП, определены технологические параметры, необходимые для лабораторного регламента на производство готового лекарственного средства - СЭФП в виде гранул в твердых желатиновых капсулах.

Составлены проекты фармакопейных статей предприятия на слоевища фукуса пузырчатого, ГЭФП, СЭФП и гранулы СЭФП гранул в твердых желатиновых капсулах.

Апробация работы. Основные результаты диссертации доложены и обсуждены на ежегодных конференциях молодых ученых Мурманского морского биологического института 1999-2004, г. Мурманск; I Всероссийской конференции «Химия и технология растительных веществ», г. Сыктывкар, 2000; Ш форуме представителей промыпш. предприятий, научных и проектных организаций в области биотехнологии, г. Санкт-Петербург, 2001; V Международном съезде «Актуальные проблемы создания новых лекарственных препаратов природного происхождения», г. Санкт

Петербург, Петродворец, 2001; 7 International Phycological Congress,

Thessaloniki, Greece, 2001; VI Международном съезде «Актуальные проблемы создания новых лекарственных препаратов природного происхождения», Санкт-Петербург, 2002; Всероссийском семинаре «Новые достижения в химии и химической технологии растительного сырья»,

Барнаул, 2002; Всероссийской Интернет-конференции молодых ученых «XXI век - перспективы развития рыбохозяйственной науки», Владивосток, 2002;

П Всероссийской конференции «Химия и технология растительных 8 веществ», Казань, 2002; Всероссийской конференции молодых ученых, посвящ. 140-летию со дня рожд. Н.М. Книповича, Мурманск, 2002; Первой Всероссийской конференции «Морские прибрежные экосистемы: водоросли, беспозвоночные и продукты их переработки», Москва-Галицыно, 2002; International Symposium «Chemistry and Biology of Marine Organism», Greece, 2003.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 19 работ.

Связь задач исследования с проблемным планом фармацевтических наук. Диссертация выполнена в соответствии с планом научно-исследовательских работ Санкт-Петербургской Государственной химико-фармацевтической академии и Мурманского морского биологического института КНЦ РАН.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Совершенствование комплексной технологии лекарственных средств из фукуса пузырчатого (Fucus vesiculosus L.)"

ОБЩИЕ ВЫВОДЫ

1. Предложена комплексная технология лекарственных средств из фукуса пузырчатого (Fucus vesiculosus): густого экстракта, маннита, альгината натрия, сухого экстракта.

2. Установлено, что густой экстракт фукуса пузырчатого целесообразно получать методом циркуляционной экстракции с использованием в качестве экстрагента азеотропной смеси хлористый метилен : этиловый спирт. Получен ГЭФП с высоким технологическим выходом (88,09±0,89%).

3. Применение способа циркуляционной экстракции шрота фукуса позволяет получать технический маннит с выходом 92,38±1,50%, что превышает выход по существующей технологии на 30%. Очистка методом колоночной хроматографии обеспечивает получение из него фармакопейного маннита высокой степени чистоты (99,12±1556%).

4. Доказано преимущество метода перколяции с периодической циркуляцией экстрагента для выделения альгината натрия по сравнению с методом мацерации. Получен фармакопейный альгинат натрия с высоким выходом (82,42±2,59%) и степенью чистоты (95,31±1,83%).

5. Создана технология сухого экстракта фукуса. Оптимизация процесса экстрагирования шрота методом математического планирования эксперимента позволила достигнуть высокого значения выхода фукоидана (97,11±1,16%). Применение способа ультрафильтрации вытяжки обеспечило увеличение содержания фукоидана в сухом экстракте до 88,72±0,71%. Установлена высокая гигроскопичность сухого экстракта фукуса пузырчатого.

6. Разработан научно обоснованный способ гранулирования сухого экстракта фукуса пузырчатого. Предложен лекарственный препарат в виде гранул сухого экстракта фукуса 0,2 г в твердых желатиновых капсулах. Показана его высокая доступность в опытах in vitro и стабильность при хранении в течение не менее 2 лет.

7. Разработаны проекты ФСП на слоевища фукуса пузырчатого, на сухой экстракт фукуса пузырчатого, густой экстракт фукуса пузырчатого, гранулы экстракта фукуса пузырчатого 0,2 г в твердых желатиновых капсулах. Составлен и утвержден лабораторный регламент на производство густого экстракта, маннита, сухого экстракта, альгината натрия.

Заключение.

На основании проведенного обзора литературы можно сделать следующие выводы:

Бурые водоросли являются ценным сырьем для получения БАВ, которые обладают широким спектром фармакологической активности. Перспективен комплексный подход к переработке макрофитов с целью получения индивидуальных компонентов, а также лекарственных средств, содержащих сумму БАВ водорослевого происхождения. Существующие технологии направлены в основном на получение традиционных продуктов из бурых водорослей - маннита, альгиновой кислоты и ее солей, липидного концентрата. Другие БАВ макрофитов такие, например, как фукоидан, из-за отсутствия рациональных способов получения, в нашей стране не производятся и не находят применения в медицине.

Фукусовые водоросли - перспективное сырье для получения БАВ. Запасы фукоидов на побережье Баренцева моря оцениваются специалистами как значительные (более 300 тонн), данные виды водорослей имеют широкое распространение, произрастают в удобных для заготовки местах - на литорали.

F. vesiculosus - представитель фукусовых на побережье Баренцева и Белого морей, используется за рубежом для производства коммерческого фукоидана, для которого многочисленными исследованиями установлены иммуномодулирующая, антикоагулянтная, антитромботическая, противоопухолевая активности.

Получение фукоидана в процессе комплексного использования сырья находится в стадии разработки, предлагаемые технологии обладают рядом существенных недостатков (многостадийность, длительность, применение дорогостоящих реагентов, низкие технологические выходы). Поэтому проведение исследований в области разработки комплексной технологии БАВ из бурых водорослей актуально.

Глава 2. Материалы и методы исследования.

2.1. Материалы исследования.

2.1.1. Характеристика фукуса пузырчатого.

Fucus vesiculosus L. - фукус пузырчатый. Цельное сырье. Слоевища фукуса пузырчатого в виде крупных кустов до 100 см высоты, с плоскими ветвями, со срединной жилкой, с ровными или слегка волнистыми краями, дихотомически и неправильно разветвленными, обычно с парными пузырями. Рецептакулы округлые и овальные, простые и вильчатые образуются на концах ветвей. Цвет цельных слоевищ от темно-оливкового до зеленовато-черного. Запах своеобразный. Вкус солоноватый.

Измельченное или шинкованное сырье. Кусочки слоевищ различной формы и размеров. Цвет зеленовато-черный. Запах своеобразный. Вкус солоноватый.

В работе использованы высушенные водоросли фукус пузырчатый (F. vesiculosus) 3-6 лет, собираемые ежегодно в августе и сентябре в период с 1999 по 2003 гг. в губе Дальнезеленецкой Баренцева моря в районе биостанции Мурманского морского биологического института. Высушенные водоросли фукус пузырчатый измельчали на мельнице лабораторной «Эксцельсиор» типа ДМ. Для получения более мелких частиц использовали дисмембратор.

2.1.1.1. Определение числовых показателей сырья.

Фукус пузырчатый не входит в реестр лекарственных растений, поэтому определение числовых показателей мы проводили исходя из целей и задач данного исследования и биохимического состава водорослей данной систематической группы на основании методов ГОСТ 26185-84, Справочника биохимика (1991), Руководства по физиологическим и биохимическим методам анализа водорослей (Сиренко и др., 1975) и другим справочным материалам (Усов и Кирьянов, 1994; Усов, 1999; Усов и др., 2001; Percival et al., 1967; Larsen, 1978; Scott, 1979; Loban et al., 1985)

Ранее было отмечено (см. п. 1.2., стр. 11-19), что водорослевое сырье не отличается постоянством своего биохимического состава, и в зависимости от систематической принадлежности вида, возраста растений, мест обитания, сезонных и других факторов содержание большинства БАВ водорослей меняется. Поскольку основными продуктами совершенствуемой технологии использования фукусовых водорослей являлись полисахариды (фукоидан и натриевая соль альгиновой кислоты), было проведено исследование по

49 изучению сезонной динамики накопления этих БАВ. Установлено (Облучинская и др., 2002), что у всех четырех видов фукусовых водорослей Баренцева моря в летне-осенний период обнаружено наибольшее количество альгиновой кислоты - около 20 %. Содержание альгиновой кислоты увеличивалось от весны к осени. У водорослей F. vesiculosus ее количество в апреле уменьшалось до 8,40+1,91%, в конце августа - в начале сентября составляло (23,97±1,84%). Количество фукоидана не претерпевало значительных изменений под влиянием сезонных факторов в биомассе фукусов. Так у F. vesiculosus содержание фукоидана в апреле составляло 12,12±1,12%, в августе 14,70±1,70%, в декабре 10,00±1,81%. По результатам проведенного исследования можно сделать вывод, что сбор и заготовку фукусовых водорослей Баренцева моря следует проводить в летне-осенний период, когда отмечается максимальное накопление альгиновой кислоты и фукоидана.

Для продолжения работ по совершенствованию комплексной технологии лекарственных средств из фукусовых водорослей использованы слоевища фукуса пузырчатый (F. vesiculosus), собранный в августе и сентябре в 1999-2003 гг. Результаты определения числовых показателей этого вида макрофитов по представлены в таблице 2.1.1.1.1.

 
 

Список использованной литературы по фармакологии, диссертация 2004 года, Облучинская, Екатерина Дмитриевна

1. Агафонов А.В. Средство, обладающее адаптогенным действием. Патент РФ 2135203 // Б.И. 1999. № 23.

2. Адлер Ю.П., Маркова Е.В., Грановский Ю.В. Планирование эксперимента при поиске оптимальных условий. М.: Наука. 1976. 278 с.

3. АжгихинИ.С. Технология лекарств. М.: Медицина. 1975. 511 с.

4. Ажгихин И.С., Шпаков Ю.Н., Кипиана Р.Е. и др. Морская фармация. Теория и практика нового направления в фармацевтической науке. Кишинев: Штинца. 1982. 260 с.

5. Алюшин М.Т., Артемьев А.Н, Астраханова М.М. и др. Технология лекарственных средств на фармацевтических производственных предприятиях // Сборник научных трудов НИИ Фармации МЗРФ / НИИ фармации. М. 1994. С. 100-137.

6. Аминина Н.М., Клочкова Н.Г. Перспективы развития производства по переработке водорослей на побережье Камчатки // Рыбн. хозяйство. 2003. № 3. С. 54-56.

7. Аразашвили А.И. Биологически активные вещества и другие природные соединения морских водорослей. Тбилиси: Изд. «Мицниереба». 1980. 336 с.

8. Барашков Г.К., Сравнительная биохимия водорослей. М.: Пищ. промышленность. 1972. 336 с.

9. Батраков С.Г., Бондаренко С.В., Митрофанова Т.К., Сухоруков А.К. Способ получения липидного концентрата из водорослей. Патент РФ 93002017/14 А 61 К 35/80 // Б.И. № 4. 1994.

10. Ю.Беликов В.Г., Пономарев В.Д., Коковкин-Щербак Н.И. Применение математического планирования и обработка результатов эксперимента в фармации. М: Медицина. 1973. 232 с.

11. Белоусов В.А., Вальтер М.Б. Основы дозирования и таблетирования лекарственных порошков. М.: Наука. 1980. 114 с.

12. Беленький Д.М. Элементы количественной оценки фармакологического эффекта. Л.: Гос. изд. мед. лит. 1963.

13. Беляков Н.А. Энтеросорбция. Центр сорбционных технологий. Ленинград. 1991.112 с.

14. Беляков Н.А., Королькова С.В. Адсорбенты. Каталог справочник. СПб: МАЛО, Санкг- Петербург. 1997. 55 с.

15. Билан М.И., Грачев А.А. Строение фукоидана из бурой водоросли Fucus evanescens//Биоорг. химия. 2003. Т. 32. № 3. С. 464-469.

16. Биопрепараты и продукты лечебно-профилактического назначения из морских гидробионтов. Владивосток. 2000. 20 с. ;

17. Блинова Е. И., Хромов В. М. Рост и развитие сахаристой ламинарии -Laminaria saccharina (L.) Lamour. в Дальнезеленецкой губе Баренцева моря //Промысловые водоросли и их использование. М.: ВНИРО. 1981. С. 6-17.

18. Большаков В.Н. Вспомогательные вещества в технологии лекарственных форм//Л.: ЛХФИ. 1991. 48 с.

19. Быковский А.Ф., Миллер Г.Г., Подкидышева Л.Н. и др. Способ ингибиции ВИЧ-инфекции. Патент РФ 2019186 А 61 К 35/80 // Б.И. 1995. № 30.

20. Вальтер М.Б., Тютенков О.П., Филлипин Н.А. Постадийный контроль в производстве таблеток. М.: Медицина. 1982. 207 с.

21. Василенко Ю.К., Кайшева Н.Ш. К механизму детоксицирующего действия кислых полисахаридов при свинцовой интоксикации у крыс // Хим.-фарм. журн. 2003. Т. 35. № 3. С. 12-15.

22. Верболович П. А., Верболович В.П. // Большая медицинская энциклопедия. М.: Советская энциклопедия. 1986. С. 15-16.

23. Вилесов Н.Т. Процесс гранулирования в промышленности. Киев: Техника. 1976. 192 с.

24. Возжинская В. Б. Беломорские фукоиды, их распределение, биология развития, продукция // Основы биологической продуктивности океана. М.: Наука. 1971. С. 172-182.

25. ВозжинскаяВ. Б. Донные макрофиты Белого моря. М.: Наука. 1986. 191 с.

26. Возжинская В.Б., Цапко А.С., Блинова Е.И. и др. Промысловые водоросли СССР. Справочник. М.: Пищ. промышл. 1971. 270 с.

27. Воронин Е.П., Пахлов Е.М., Власова Н.М. и др. // Фармац. журн. 1999. № 4. С. 61-64.

28. Воронова Ю.Г., Подкорытова А.В. Водоросли: их роль в экономике стран и жизнеобеспечении людей // Рыбн. хоз. 1993. № 2. С. 34-35.

29. Воронова Ю.Г., Резина Н.И., Спичак М.К. Новое в использовании морских водорослей в пищу // Рыбн. хозяйство. 1992. № 3. С. 36-38.

30. Воскобойников Г. М. Тяжелые металлы в промысловых водорослях // Промысловые и перспективные для использования водоросли и беспозвоночные Баренцева и белого морей. Апатиты: КНЦ РАН. 1998. С. 250-257.

31. Воскобойников Г.М., Камнев А.Н. Морфо-функциональные изменения хлоропластов в онтогенезе водорослей. СПб. Наука. 1991. 96 с.

32. Воскобойников Г.М., Зубова Е.Ю. Биохимический состав промысловых бурых водорослй // Промысловые и перспективные для использования водоросли и беспозвоночные Баренцева и Белого морей. Апатиты: Изд. КНЦ РАН. 1998. С. 306-322.

33. Гершанович М.Л., Беспалов В.Г., Александров В.А., Бараш Н.Ю. Клиническое изучение таблетированной пищевой добавки кламин в онкологии. СПб.: Эскулап. 1996. 88 с.

34. Городничев В .И., Егорова В.Н. Определение форм связи влаги в лекарственных гранулятах // Хим. фарм. журн. 1972. № 7. С. 47-50.35.ГОСТ 8321-74. Маннит.

35. ГОСТ 26185-84. Водоросли морские, травы морские и продукты их переработки.

36. Государственная фармакопея ХЗ издания. В 2-томах. М.: Медицина. Т. 1. 1987. 336 с. Т. 2.1989.400 с.

37. Гуреева С.М., Грошовый Т.А., Борзунов Е.Е. и др. Производство таблеток. Сообщение Ш. Вспомогательные вещества в производстве таблеток методом влажной грануляции // Фармацевтич. журн. (укр.). 1994. №4. С. 79-84.

38. Гурин И.С., Ажгихин И.С., Биологически активные вещества гидробионтов источник новых лекарств и препаратов. М.: Наука. 1981. 186 с.

39. Дихтярев С.И., Шнейнгарт М.В., Скакун Н.Н., Казаринов Н.А. Технологические аспекты разработки и внедрения лекарственных форм из импортных субстанций // Всеросс. научн. конф. «Актуальные проблемы создания новых лекарственных средств». СПб. 1996. С. 88.

40. Джус В. Е. Распределение и запасы промысловых бурых водорослей Мурманского прибрежья Баренцева моря. Препринт. Апатиты: КФ АН СССР. 1984. 89 с.

41. Добродеева JI.K., Белозеров В.П., Кондакова Н.И., Цымбаленко Н.В. Пищевые добавки водорослевого происхождения для профилактики и лечения иммунодефицитных состояний. // Лечебно-профилактическая программа «Обеспечение». Архангельск. 1996.

42. Драйпер П., Смит Г. Прикладной регрессионный анализ. пер. с англ. - М. Финансы и статистика. 1987. 608 с.

43. Дробышев. В.П. Способ лечения и профилактики бронхо-легочных заболеваний. Патент РФ 93057770/14 А 61 Л 35/80 // Б.И. 1997. № 22.

44. Ермак И.М., Хотимченко Ю.С. Физико- химические свойства, применение и биологическая активность каррагинана полисахарида красных водорослей//Биология моря. 1997. Т. 23. № 3. С. 129-142.

45. Ефимова И.Б. Дополнение к флоре морских водорослей арктических морей России // Ботан. журн. 1995. № 7. С. 97-100.

46. Зайцев В.П., Ажгихин И.С., Гандель В.Г. Комплексное использование морских организмов. М.: Пищ. промышленность. 1980. 280 с.

47. Звягинцева Т.Н., Сундукова Е.В., Елякова Л.А. Способ получения ламинарана. Патент РФ 1642725 С 08 В 37/18 // Б.И. 1996. № 21.

48. Игнатова М.С., Османов И.М., Харина Е.А., Длин В.В., Аксенова Н.В., Юрьева Э.А., Алексеева Н.В. Способ лечения нефропатий в экологически неблагоприятных условиях у детей. Патент РФ 2139713 // Б.И. 1999. № 29.

49. Изучение и применение лечебно-профилактических препаратов на основе природных БАВ // Под ред. Беспалова В.Г., Некрасовой В.Б. СПб.: Эскулап. 2000. 468 с.

50. Казарян Р.В., Кудинова С.П., Прохорова Л.В. и др. Р-каротин субстанция для производства лекарственных форм // Росс, национ. конгресс «Человек и лекарство». М. 1999. С. 414.

51. Кайшева Н.Ш., Компанцев В.А. Способ получения медицинского очищенного альгината натрия. Патент РФ 2197249. А 61 К 31/734, 35/80, А 61 Р 39/00 // Б.И. 2003. № 3.

52. Камнев А.Н. Структура и функции бурых водорослей. М. 1989. 200 с.

53. Камнев А.Н., Тропин И.В. Возраст, закономерности роста и формирования ассимилирующей поверхности таллома у беломорской Laminaria saccharina (L.) Lamour. // Известия АН. Серия биолог. 1999. № 3. С. 296-303.

54. Кизеветтер И.В., Суховеева М.В., Шмелькова Л.П. Промысловые морские водоросли и травы Дальневосточных морей. М.: Легкая и пищ. промышленность. 1981. 112 с.

55. Классен П.В., Гришаев Н.Г., Шомин И.П. Гранулирование. М.: Химия. 1991.238 с.

56. Корзун В.Н., Сагло В.И., Беседина Т.В., Воронова Ю.Г. Использование морских продуктов в лечебном питании животных, подвергшихся157облучению низкими дозами радиации // Вопросы питания. 1993. № 2. С. 36-38.

57. Коробков В.А. Внедрение природных сорбентов в практику профилактической энтеросорбции токсичных металлов // Тез. доклад, научн.-праьсгич. конф. «Нетрадиционные объекты морского промысла и перспективы их использования». Мурманск. 1997. С. 69-74.

58. Компанцев В.А., Кайшева Н.Ш., Самокиш И.И., Компанцева Е.В. Способ получения биологически активных веществ из ламинарии для медицинских целей. Патент РФ 2194525 А 61 К 35/80, 31/734, А 61 Р 39/00, 1/10 // Б.И. 2002. № 36.

59. Кузнецов В.В. Биологические особенности основных представителей беломорской флоры и условия их промыслового использования // Тр. Всесоюз. совещания работников водорослевой промышленности СССР. Архангельск. 1962. Т. 1. С. 131-140.

60. Левинтон Ж.Б., Семоченко А.И. Пищевая ценность и токсикология продуктов моря. М.: Союзмединформ. 1989. 72 с.

61. Лесиовская Е.Е., Фролова Н.Ю., Дрожжина Е.В. и др. Биологически активные добавки. Справочник. СПб.: Сова; М.-: ЭКСМО- Пресс. 2001. 544 с.

62. Лоенко Ю.Н., Лямкин Г.П., Артюков А.А., Еляков Г.Б. Биологически активные полисахариды морских водорослей и морских цветковых растений//Раст. ресурсы. 1991. Т. 27. № 3. С. 150-160.

63. Макаров В. Н., Шошина Е. В. Рациональное использование водорослей-макрофитов прибрежья Кольского полуострова (современное состояние и перспективы исследования). Препринт. Апатиты: КНЦРАН. 1993. 52 с.

64. Макаров В.Н., Шошина Е.В. Динамика сезонного роста Laminaria saccharina в Баренцевом море // Биология моря. 1996. N 4. С. 238-248.

65. Макаров В.Н., Макаров М.В., Шошина Е.В. Современное состояние зарослей ламинарии сахаристой Баренцева моря, методы прогнозирования запасов и паспортизация ее коммерческой ценности. Препринт. Апатиты: КНЦРАН. 1997.44 с.

66. Макаров М.В. Влияние ультрафиолетовой радиации на рост и размножение доминантных видов водорослей-макрофитов Баренцева моря. Автореферат на соиск. уч. степени канд. биологич. наук. СПб. 1999. 22 с.

67. Макаров М.В. Изменение белкового состава ламинарий под влиянием факторов внешней среды // Промысловые и перспективные для использования водоросли и беспозвоночные Баренцева и Белого морей. Апатиты: Изд. КНЦРАН. 1998. С. 128-150.

68. Макаров М.В., Макаров В.Н., Шошина Е.В. Биология и экология ламинариевых, фукусовых и красных водорослей // Промысловые и перспективные для использования водоросли и беспозвоночные Баренцева и Белого морей. Апатиты: Изд. КНЦ РАН. 1998. С. 154-210.

69. Макарова Р.Н., Самокиш И.И., Компанцев В.А., Кайшева Н.Ш. и др. Способ получения биологически активных веществ из ламинарии. Патент РФ 2028153. А 61 К 35/80 // Б.И. № 4. 1 ч. 1995.

70. Мартынов Ю.Д., Северцев С.А., Северцева О.В. Способ получения биологически ценных продуктов методом десублимации // Матер. VI Междун. съезда «Актуальные проблемы создания новых лекарственных препаратов природного происхождения». СПб. 2002. С. 97-99.

71. Максимова О.В. Некоторые сезонные особенности развития и определения возраста беломорских фукоидов // Донная флора и продукция краевых морей СССР. М.: Наука. 1980.'С. 73-78.

72. Маслова Г.В., Василевский П.Б., Степанова Н.В. Способ получения альгиновой кислоты и альгината натрия из бурых водорослей. Патент РФ // Б.И. 2003. №7.

73. Матишов Г. Г., Павлова JI. Г., Зензеров В. С. Биологически активные вещества в водорослях-макрофитах Восточного Мурмана // ДАН. 1997. Т. 357. №5. С. 717-718.

74. Махкамов С.М. Основы таблеточного производства. Ташкент: Медицина. 1974. 154 с.

75. Машковский М.Д. Лекарственные средства. Харьков: Торсинг. 1997. В 2-х томах. Т. 1. 560 е., Т. 2. 592 с.

76. Машковский М.Д. Проблема стабильности и сроков годности лекарств актуальна для России // Фарматека. 1996. № 1. С. 38.

77. Методические рекомендации по изучению общетоксического действия фармакологических средств. Ведомости фармакологического комитета. 1998. №1.27 с.

78. Минина С.А., Громова Н.А. Теория и аппаратурное оформление процесса экстракции. Л.: ЛХФИ. 1985. 39 с.

79. Минина С.А., Легостева А.Б. Способ определения сапонинов в экстракте женьшеня. Патент РФ 1480568 // Б.И. 1994. № 22.

80. Минина С.А., Райсян В.Д., Ефимова Л.С. и др. Оптимизация процесса грануляции глютаминовой кислоты // Хим.-фарм. журн. 1980. № 11. С. 8892.

81. Минина С.А., Шигарова Л.В., Вайнпггейн В.А. Оптимизация процесса экстрагирования корня женьшеня //Хим.-фарм. журн. 1998. № 7. С. 42-45.

82. Минина С.А., Шигарова Л.В., Чижиков Д.В., Ефимова Л.С. Оптимизация процесса гранулирования сухого экстракта женьшеня // Хим.-фарм. журн. 1996. №10. С. 28-31.

83. Минина С.А., Шиков А.Н., Полякова Л.В. Совершенствование технологии настойки «Биоженьшень» методом перколяции // Мат. Всерос. научн. конф. «Химия и технология лекарственных веществ». СПб. 1994. С. 49.

84. Миронова Э.М., Гришин Е.В. Средство для лечения глазных заболеваний «Оковидит». Патент РФ 2125427 // Б.И. 1999. № 3.

85. Назаренко П.В. Разработка критериев оценки качества сухого экстракта сбора «Барвихинский чай» и гранул на его основе // Мат. V междун. съезда «Актуальные проблемы создания новых лек. препаратов природн. происхождения». СПб. 2001. С. 344-345.

86. Налимов В.В. Теория эксперимента. М.: Наука. 1971. 208 с.

87. Настойки, экстракты, элексиры и их стандартизация //Под. ред. Багировой В.Л., Северцева В.А. СПб.: СпецЛит. 2001. 223 с.

88. Некрасова В.Б., Беспалов В.Г., Никитина Т.В., Курныгина В.Т. Способ переработки бурых водорослей. Патент РФ 2132622. А 23 L 1/04, А 61 К 35/60//Б.И. 1999. № 19.

89. Некрасова В.Б., Беспалов В.Г. Никитина Т.В., Курныгина В.Т. Биологически активная добавка. Патент РФ 2152737 // Б.И. 2000. № 16.

90. Некрасова В.Б., Курныгина В.Т., Никитина Т.В., Фрагина А.Н. Кормовая добавка. Патент РФ 2086147 // Б.И. 1997. № 22.

91. Некрасова В.Б., Никитина Т.В., Малыгина М.А., Бокова Е.М. Способ получения экстракта фукусного. Патент РФ 2126688 6А 61 К 35/80 // Б.И. 1999. № 6.

92. Некрасова В.Б., Никитина Т.В., Курныгина В.Т., и др. Средство для профилактики рака «Кламин». Патент РФ 2034560 // Б.И. 1995. № 13.

93. Некрасова В.Б., Никитина Т.В., Осидак JI.B., и др. Средство защиты организма от острых респираторных инфекций. Патент РФ 2127116. // Б.И. 1999. №7.

94. Некрасова В.Б., Полянская Т.Б. Рациональное применение отходов производства маннита // Пищевая и перераб. пром. 1987. № 11. С. 24-25.

95. Нехорошее М.В., Поздняков Ю.И., Борщевская М.И. Способ получения маннита из бурых водорослей. Патент РФ 2078579 А 61 К 35-80 // Б.И. 1997. №13.

96. Никаноров Е.И., Некрасова В.Б. Способ обеззараживания шовного и перевязочного материала. Патент РФ 2046605 // Б.И. 1996. № 36.

97. Николаева С.М., Асеева Т.А., Николаева Г.Г. Сухие экстракты из растений основа создания современных лекарственных форм // Физиолого-биохимич. аспекты изуч. лекарств, растений. Материалы межд. совещания. Новосибирск. 1998. С. 142-143.

98. Облучинская Е.Д. Комплексная технология переработки водорослей рода Fucus / Мат. Всерос. семинара «Новые достижения в химии и химической технологии растительного сырья». Барнаул. 2002. С. 252-254.

99. Облучинская Е.Д. Анализ содержания фукоидана в сухих экстрактах Fucus vesiculosus L. /Мат. молод, конф. ММБИ. Мурманск. 2000. С. 51-53.

100. Облучинская Е.Д., Воскобойников Г.М., Галынкин В.А. Содержание альгиновой кислоты и фукоидана в фукусовых водорослях Баренцева моря./ Прикладная биохимия и микробиология. 2002. Т. 38. № 2. С. 213216.

101. Оводов Ю.С. Полисахариды цветковых растений: структура и физиологическая активность // Биоорг. химия. 1998. Т. 24. С. 483-501.

102. Ожигова М.Г., Минина С.А. Об определении и выделении липидно-стерольного комплекса из смеси растительного сырья // Мат. V межд. съезда «Актуальные проблемы создания новых лекарственных препаратов природного происхождения». 2001. С. 121-123.

103. Орлов А.И., Борц М.С., Степных Ю.П., Аридов А.Ф., Ковалев С.Г. Адаптогенное средство. Патент РФ 2139082 //Б.И.: 1999. № 28.

104. Павлова Л.Г., Зензеров B.C. Лабораторная технология получения йода и альгината из бурых водорослей-макрофитов Баренцева моря // Современные технологии и прогноз в полярной океанологии и биологии. Апатиты: Изд. КНЦРАН. 1999. С. 124-145.

105. Парчевский В.П. Морские водоросли в диете человека: здоровье и превентивная медицина // Промысловые и перспективные дляi 161использования водоросли и беспозвоночные Баренцева и Белого морей. Апатиты: Изд. КНЦРАН. 1998. С. 333-338.

106. Первушкин С.В., Тархова М.О., Сохина А.А. и др. Лекарственные формы для лечения гнойных ран и способ лечения гнойных ран. Патент РФ 96116368/14, А 61 К 35/78, 35/80, 9/06, 9/20 //Б.И. 1998. № 31.

107. Петров Ю.Е. Ламинариевые и фукусовые водоросли морей СССР: Автореф. дис. .д-ра биол. наук. Л. 1975. 53 с.

108. Петров Ю.Е. Отдел бурые водоросли (Phaeophyta) // Жизнь растений. М. 1977. Т. 3. С. 144-192.

109. Плецитый К.Д., Давыдова Т.В., Фомина В.Г. и др. Изучение иммуномодулирующих свойств Р-каротина в клинике // Вопросы питания. 1995. №6. С. 14-16.

110. Подкорытова А.В., Аминина Н.М., Ковалева Е.А., Кадникова И.А. БАВ морских водорослей и их значение в лечебно-профилактическом питании // Мат. междун. конф. «Технологическая переработка гидробионтов». Москва. 1994. С. 134-136.

111. Подкорытова А.В., Аминина Н.М., Левачев М.М., Мирошниченко В.А. Функциональные свойства альгинатов и их использование в лечебно-профилактическом питании//Вопр. питания. 1998. Т. 67. № 3. С. 26-29.

112. Подкорытова А.В., Аминина Н.М., Зимина Л.С., Кушева О.А. Способ комплексной переработки бурых водорослей. Патент РФ 2070808. А 23 L/052 // Б.И. № 36. 1996.

113. Подкорытова А.В., Аминина Н.М., Соколова В.М. Лечебно-профилактические и структурообразующие продукты из бурых водорослей //Рыб. хоз-во. 1996. № 5. С. 63-64.

114. Подкорытова А.В., Константинова Н.Ю. Консервы из морских водорослей //Рыбное хозяйство. 1994. № 3. С. 48-50

115. Подкорытова А.В., Ковалева Е.А. Способ получения пищевого полуфабриката из ламинариевых водорослей. Патент РФ 2041656 // Б.И. 1995. №29.

116. Подкорытова А.В., Кушева О.А., Кадникова А.И., Соколова В.М. Способ получения студнеобразователей из смеси морских красных водорослей. Патент РФ 210 9461. А 23 L 1/0532 // Б.И. 1998. № 12.

117. Пономарев В.Д. Экстрагирование лекарственного сырья. М.: Медицина. 1976. 204 с.

118. Преображенский В.Н., Василенко В.В., Матвеев А.А. Р-каротиноиды и возможность их использования в лечении заболеваний органов пищеварения // Клинич. медицина. 1997. № 7. С. 43-45.

119. Промысловые и перспективные для использования водоросли и беспозвоночные Баренцева и Белого морей / Под. ред. Матишова Г.Г. Апатиты: Изд-во КНЦ РАН. 1998. 628 с.

120. Решетников В.И. Оценка адсорбционной способности энтеросорбентов и их лекарственных форм // Хим.-фарм. журн. 2003. Т. 37. № 5. С. 28-32.

121. Розкин М.Я., Левина М.Н., Ефимов B.C., Усов А.И. // Фармаколог, и токсиколог. 1991. Т. 54. № 5. С. 40-42.

122. Рощин Н.И. Псевдоожижение в производстве лекарств. М.: Медицина. 1981. 184 с.

123. Руководство по современной тонкослойной хроматографии / Под ред. Волошука A.M. М.: Изд. Научного совета РАН по хроматографии. 1994. 312 с.

124. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению фармакологических веществ. Под ред. Фмсенко Ф.П. Изд. Минздрава РФ. 2000. 400 с.

125. СаутР., Уиттик А. Основы альгологии. М: Мир. 1990. 597 с.

126. Саутин С.Н. Планирование эксперимента в химии и химической технологии. Химия. 1975. 308 с.

127. Саутин С.Н., Лунин А.Е. Теоретические основы планирования экспериментальных исследований. Л.: ЛТИ им. Ленсовета. 1978. 64 с.

128. Северцев С.А. Оборудование и аппаратура для новых технологий сушки биологических продуктов. М.: Минздрав РФ 1991. 112 с.

129. Сиренко Л.А., Сакевич А.И., Осипов Л.Ф. Методы физиолого-биохимического исследования водорослей в гидробиологической практике. Киев: Наукова думка. 1975. 247 с.

130. Современное отечественное и зарубежное производство продукции из водорослей // Обработка рыбы и морепродуктов / Рыбное хозяйство. 1989. вып. 4. 46 с.

131. Сорокин А.Л., Пельтихина Т.С. Ламинариевые водоросли Баренцева моря. Мурманск: изд. ПИНРО. 1991. 187 с.

132. Спичак М.К., Елецкий Б.Д., Бойков Ю.А. Проект «Мариэкопром» // Рыб. хоз-во. 1994. № 3. С. 48-50.

133. Способ получения маннита, йода, хлоридов натрия и калия, как побочных продуктов при получении альгината натрия. Патент Японии 910926 № 3-15-68 МКИ 5 А 23 L 1/337 // И.С.М. 1993. № 5.С. 34.

134. Способ приготовления пищевого продукта из сырья на основе бурых водорослей. Патент Японии 841212//И.С.М. 1994. № 5. С. 307

135. Справочник биохимика // Досон Р., Эллиот Д., Эллиот У., Джонс К., М.: Мир. 1991. 544 с.

136. Справочник по химическому составу и технологическим свойствам водорослей, беспозвоночных и морских млекопитающих // Под ред. Быкова В.П. М.: Изд. ВНИРО. 1999. 262 с.

137. Столяров Б.В., Савинов И.М., Витенберг А.Г. и др. Практическая газовая и жидкостная хроматография. СПб.: Изд. СПб ун-та. 1998. 612 с.

138. Тенцова А.И. Современные аспекты использования вспомогательных веществ в фармацевтической технологии (обзор). М. Вып. 2. 1981. 71 с.

139. Технологическая инструкция 268-85 по производству альгината нартия технического из беломорской ламинарии, утв. 16 июня 1985. «Севрыба».

140. Технология и стандартизация лекарств. Под ред. Георгиевского В.П., Конева Ф.А. Харьков: ООО «Рирег». 1996. 784 с.

141. Тринус Ф.П. Фармакотерапевтический справочник. Киев: Изд. «Здоровья». 1988. 640 с.

142. Тютенков О.Л., Филлипин Н.А. Приборы для оценки качества сырья, полупродуктов и готовых форм в производстве таблеток. Обзорная информация. Хим.-фарм. промышленность. Минмедпром. 1977. № 8.

143. Усов А.И. Альгиновые кислоты и альгинаты: методы анализа, определения состава и установления строения // Успехи химии. 1999. Т. 68. №11. С. 1051-1061.

144. Усов А.И. Особенности установления первичной структуры фукоиданов бурых водорослей // Мат. II Всерос. конф. «Химия и технология растительных веществ». Казань. 2002. С. 91.

145. Усов А.И., Смирнова Г.П., Билан М.И., Шашков А.С. Полисахариды водорослей 53. Бурая водоросль Laminaria saccharina (L.) Lam. как источник фукоидана//Биоорг. химия. 1998. Т. 24. С. 437-445.

146. Усов А.И., Кирьянов А.В. Полисахариды водорослей. 47. Выделение фракций фукоидана из бурой водоросли Laminaria cichorioides М. // Биоорг. химия. 1994. Т. 20. № 12. С. 1342-1348. .

147. Усов А.И., Клочкова Н.Г. Бурые водоросли Камчатки как источник маннита//Биоорг. химия. 1994. Т. 20. № 11. С. 1236-1241.

148. Усов А.И., Кошелева Е.А., Яковлев А.П. Полисахариды водорослей. XXXV. Полисахаридный состав некоторых бурых водорослей Японского моря//Биоорг. химия. 1985. Т. 11. № 6. С. 830-836.

149. Усов А.И., Смирнова Г.П., Клочкова Н.Г. Полисахариды водорослей. 55. Полисахаридный состав некоторых бурых водорослей Камчатки // Биоорг. химия. 2001. Т. 27. №6. С. 444-448.

150. Фомин В.В., Вайнштейн В.А., Каухова И.Е., Лимаренко Ю.А. Способ комплексной переработки сухого сырья водорослей. Патент РФ 2142812 А 61 К 35/60, В 01 D 11/02 // Б.И. 1999. № 34.

151. Фрагина А.И., Никитина Т.В., Некрасова В.Б., Курныгина В.Т. Производные хлорофилла в отходах переработки сырья видов Laminaria Lam. //Раст. ресурсы. 1992. Т. 28. № 2. С. 89-93.

152. Френкель Л.А., Оридорога В.А., Безуглая Л.П. и др. Изучение противорадиационных свойств производных альгиновой кислоты // Тез. докл. конф. «Эффективность использования препаратов из морских водорослей в медицине». Архангельск. 1995. С. 7-8.

153. Хохряков К.Б. Модифицированный метод определения маннита и альгиновой кислоты в бурых водорослях // Тез. докл. 3 Всесоюз. конф. по морской биологии. Севастополь. 1988. С. 173-174.

154. Хроматография. В двух частях. Под. ред. Березкина В.Г. М.: Мир. 1986. Ч. 1.336 с. 4.2. 422 с.

155. Шигарова Л.В. Разработка и оптимизация технологии препаратов из корня женьшеня // Автореф. дисс. на соискание учен, степени канд. фарм. наук. СПб. 1998. 23 с.

156. Шигарова Л.В., Чижиков Д.В., Минина С.А., Ефимова Л.С. Об оценке гигроскопичности лекарственных препаратов // Тез. доклад. Ш Российского национального конгресса «Человек, и лекарство». 1996. М. С. 327.

157. Шошина Е. В. Фукусовые водоросли //Промысловые и перспективные для использования водоросли и беспозвоночные Баренцева и Белого морей. Апатиты: изд. КНЦ РАН. 1998. С. 174- 187.

158. Ясницкий Б.Г., Безуглая Л.П., Дольберг Е.В. Альгиновая кислота в фармации и медицине // Фармация. 1979. Т. 28. № 6. С. 58-62.

159. Agrawal R.M. Manufacturing of tablets // Pharma Times. 1990. V. 22. N 9. P. 31-32.

160. Ako H., Ota E., Ogasawara A. Omega-3 fatty acids in Hawaii seafood // Hawaii Med. J. 1996. v. 53. P. 142-145.

161. Applgren C., Eskilson L. Novel method for the granulation and coating of pharmacologically active substances // Drug Dev. and Ind. Pharm. 1990. V. 16. N15. P. 2345-2451.

162. Arasaki S., Arasaki T. Vegetables from the sea. Tokio. 1983. 196 p.

163. Asakawa A., Ohwada K., Tanaka N. The seasonal variation in chemical composition of Eisinea bicyclis and Ecklonia cava, collected from the coast of Shima Peninsula // Bull. natl. res. inst. aquaculture Japan Yoshokukenho. 1988. N 13. P. 33-44.

164. Bakele W. Trockenkompaktierung in der Pharmazeutischen Industrie // Pharma. Ind. 1994. N 2. P. 74-79.

165. Belegand J. Evalution toxicologique et nutritionelle des alginates // Sci. Alim. 1988. V. 6. N 4. P. 535-544.

166. Ben-Amotz A., Rachmilevich В., Greenberg S. et al. Natural beta-carotene and whole body irradiation in rats // Radiat. Environ. Biophys. 1996. V. 35. P. 285-288.

167. Beress A., Wassermann O., Tahhan S. et al. A new procedure for the isolation of anti- HIV compounds (polysaccharides and polyphenols) from the marine alga Fucus vesiculosus // J. Nat. Prod. 1996. V. 59. P. 478-488.

168. Bi A., Shao X. On quality analysis of kelp from different producing area used as industrial chemicals // Shandong Fish. Qilu Yuye. 1995. V. 12. N 2. P. 27-29.

169. Bilan M.I., Smirnova G.P., Shashkov A.S. et al. Features of establishment of primary structure fiicoidans of brown algaes // Carbohydr. Res. 2002. V. 337. P. 719-730.

170. Black W.A.P., Dewar E.D., Woodward F.N. Manufacture of algal chemicals. IV. Laboratory-scale isolation of fiicoidan from brown marine algae // J. Food Agric. 1952. N 3. P. 122-129.

171. Boissonvidal C., Chaubet F., Chevolot L., et al. Relationship between antithrombotic activities of fucans and their structure // Drug Development Res. 2000. V. 51. N4. P. 216-224.

172. Bonotto S., van der Ben D., Santulli A., Cinelli F. Microalga, blue-green bacteria Macroalga having a commercial interest // Atti del Convegno1.ternazionale "Conversion delle saline in aquaculturra'7 Maggio. 1986. P. 165181.

173. Boren Т., Falk P., Roth K.A. et al. Attachment of Helicobacter pylori to human gastric epithelium mediated by blood group antigens // Science. 1993. V. 262. P. 1892-1895.

174. Cardellina J.H., Munro M.H., Fuller R.W. et al. A chemical screening strategy for the dereplication and prioritisation of HIV- inhibitory aqueous natural products extracts // J. Nat. Prod. 1993. V. 56. P. 1123-1129.

175. Carlson L. Seasonal variation in growth, reproduction and nitrogen content of Fucus vesiculosus L. in the Oresund, southern Sweden // Bot Mar. 1991. V. 34. P. 447-453.

176. Clare K. In industrial gums, polysaccharides and their derivatives. (Eds Whistler R.L., BeMiller J.N.). Academic Press. New York, San Diego. 1993. P. 105.

177. Chapman V.J., Chapman D.J. Seaweed's and their uses. Chapman and Hall. London; New York. 1980. 248 p.

178. Chevolot L., Foucault A., Chaubet F. et al. Further data on the structure of brown seaweed fucans relationships with anticoagulant activity // Carbohydrate Res. 1999. V. 319. N 1-4. P. 154-165.

179. Chevolot L., Mulloy В., Ratiskol J., Foucault A., Colliecjouault S. A Disaccharide Repeat Unit Is the Major Structure in Fucoidans from 2 Species of Brown-Algae // Carbohydrate Res. 2001. V. 330. N 4. P. 529-535.

180. Chizhov A.O., Dell A., Morris H.R. et all. A study of fucoidan from the browm seaweeds Chorda filum // Carbohydrate Res. 1999. V. 320. P. 108-119.

181. Colliec S., Boissonvidal C., Jozefonvicz J. A Low Molecular Weight Fucoidan Fraction from the Brown Seaweed ;Pelvetia Canaliculata // Phytochem. 1994. V. 35. N 3. P. 697-700.

182. Colliec S., Fischer A.M., Taponbretaudiere J. et al. Anticoagulant properties of a fucoidan fraction // Thrombosis Res. 1991. V. 64. N 2. P. 143 154.

183. Christenser L.A., Johasen H.E., Schaefer T. Moisture-activated dry granulation in a high shear mixer// Drug Dev. and Ind. Pharm. 1994. V. 20. N 14. P. 2195-2213.

184. During J., Bruhn Т., Zurborn K. et all. Anticoagulant fucoidan fractions from Fucus vesiculosus induce platelet activation in vitro // Trombones Research. 1997. V. 85. N 6. P. 479-491.

185. De Vries C.E., Van Norden C.J. Effects of dietary fatty acid composition on tumor grows and metastasis//Anticancer Res. 1992. V. 12. P. 1513-1522.

186. Durig J., Bruhn Т., Zurborn K.H., et al. Anticoagulant fucoidan fractions from Fucus vesiculosus induce platelet activation in vitro // Thromb. Res. 1997. V. 85. P. 479-491.

187. Espinosa S., Matsuhiro B. Carbohydrates in Antarctic brown seaweeds // Ser. Scient. Institute of Antarctic chil. 1992. N 42. P. 61-68.

188. Ertesvag H., Valla S. Applications of alginates // Polymer Degradation Stability. 1998. V. 59. N 1-3. P. 85-91.

189. Fan X., Han L., Zheng N. The analysis of nutrient components in some Chinese edible seaweeds // Chin. J. Mar. Drugs Zhongguo Haiyang Yaowu. 1993. V. 12. N4. P. 32-38.

190. Ferreiros C.M., Criado M.T. Purification and partial characterization of a Fucus Vesiculosus agglutinin // Rev. Esp. Fisiol. 1983. V. 39. P. 51-59.

191. Foster T.P., Parrott E.L. Effect of processing on release from an inert, heterogeneous matrix // Drug Dev. and Ind. Pharm. 1990. V. 16. N 8. P. 13091324.

192. Fourest E., Volesky B. Alginate properties and heavy metal biosorbtion by marine algae //Appl. Biochem. Biotech. 1997. V. 67. N 3. P. 215-226.

193. Fujii Т., Kuda Т., Saheki K., Okuzumi M. Fermentation of water soluble polysaccharides of brown algae by human intestinal bacteria in vitro // Nippon Suisan Gakkaishi. 1992. V. 58. N 1. P. 147 152.

194. Fujii Y., Sakamoto S., Ben-Amotz A., Nagasawa H. Effects of beta-carotene-rich algae Dunaniella bardawil on the dynamic change of normal and neoplastic mammary cells and general metabolism in mice // Anricancer Res. 1993. V. 13. P. 389-393.

195. Giraux J.L., Taponbretaudiere J., Matou S., Fischer A.M. Fucoidan, as heparin, induces tissue factor pathway inhibitor release from cultured human endothelial cells // Thrombosis Haemostasis. 1998 V. 80. N 4. P. 692-695.

196. Goftfried S., Hare T. Preformation the role of moisture in solid dosage forms //Drug Dev. and Ind. Pharm. 1989. V. 15. N 10. P. 1715-1741.

197. Gong Y.F., Huang Z., Qiang M.Y. et al. Suppression of radioactive stroncium absorbtion by sodium alginate in animals and human subject // Biomed. Envir. Sci. 1991. V. 4. P. 273-282.

198. Hajela K, Kayestha R, Sumati. Carbohydrate induced modulation of cell membrane. IV: Interaction with mucin and fucoidan totally immobilizes the human platelet membrane // Indian J. Biochem. Biophys. 1996. V. 33. P. 308310.

199. Hanawa Т., Watana A., Tsuchiya T. et al. New oral dosage for elderly patients // Chem. and Pharm. Bull. 1995. V. 43. N 5. P. 872-876.

200. Harada H., Noro Т., Kamei Y Selective antitumor activity in vitro from marine algae from Japan coasts //Biol. Pharm. Bull. 1997. V. 20. P. 541-546.

201. Haug A. Composition and properties of Alginates. Rep. 30. Norwegian Institute of Seaweeds Research. Torndheim. 1964. 239 p.

202. Haug A. Preparation of alginic acid by extraction of algae. Patent USA 3396158. Publ. 06.08.1968. Nat. CI. 260-290.6.

203. Henley W.J., Dunton K.H. A seasonal comparison of carbon, nitrogen, and pigment content in Laminaria solidungula and L. saccharina (Phaeophyta) in the Alaskan Arctic // J. Phycol. 1995. V. 31. N 3.P. 325-331.

204. Holm P., Shaefer Т., Kristen H.G. Pelletization by controlled wet granulation in a high-shear mixer // STP Pharma Sci. 1993. V. 3. N 4. P. 286293.

205. Hoppe H.A., Levring Т., Tanaka Y. Marine alga in Pharmaceutical science. Berlin -New York. 1979. P. 351.

206. Hou X.L., Yan X.J., Chai C.F. Chemical-Species of Iodine in Some Seaweeds П Iodine- Bound Biological Macromolecules // J. Radioanalytical Nuclear Chem. 2000. V. 245. N 3. P. 461-467.

207. Indergaard M., Minsaas J. Animal and human nutrition// Seaweeds resourse in Europe: uses and potencial / Ed. Guiry M.D., Blunden G. J.W. Chinchester. 1991. P. 21-64.

208. Indergaard M., Ostgaard K. Polysaccharides for food and pharmaceutical uses//Ed. Guiry M.D., Blunden G. J.W. Chinchester. 1991. P. 169-184.

209. Indergaard M., Skjak-Braek G. and Jensen A. Studies on the influence of nutrients on the composition and Structure of alginate in Laminaria saccharina //Bot. Marina. 1990. V. 33.N 3. P. 277-288.

210. Itoh H., Noda H., Amano H., et al. Antitumor activity and immunological properties of marine algal polysaccharides, especially fucoidan, prepared from Sargassum thunbergii of Phaeophyceae // Anticancer. Res. 1993. V. 13. P. 2045-2052.

211. Itoh H., Noda H., Amano H., Ito H. Immunological analysis of inhibition of lung metastases by fucoidan (giv a) prepared from brown seaweed sargassum thunbergii // Anticancer Res. 1995. V. 15.N5B. P. 1937-1947.

212. Jensen A. Present and future needs for algae and algal products // Hydrobiologia. 1993. V. 260-261. P. 15-23.

213. Lindher H., Kleinebudde P. Use of powdered cellulose for the production of pellets by extrusion (spheromsation) // J. Pharm. and Pharmacol. 1994. V. 46. N1. P. 2-7.

214. Kain J. M., Dawes C. P. Useful european seaweeds: past, hopes and present cultivation//Hydrobiologia. 1987. V. 151-152. P. 173 181.

215. Kitamura К., Matsuo M., Yasui Т. Fucoidan from Brown Seaweed Laminaria-Angustata Var Longissima // Agr. Biol. Chem. Tokyo. 1991. V. 55. P. 615-616.

216. Kokubo H., Nakamura S., Sunada H. Effect of several cellulosic binders on particle size distribution in fluidized bed granulation // Chem. Pharm. Bull. 1995. V. 43. P. 1402-1406.

217. Konig G.M., Wrigth A.D., Sticher O. et al. Biological activities of seected marine natural products // Planta Med. 1994. V. 60. P. 532-537.

218. Knoll A.G. Extrusion process cuts pill-production costs by 60% // Chem. Ind. 1994. V. 101. N10. P. 23-25.

219. Kuda Т., Yokoyama M., Fujii T. Fermentable dietary fiber in dried products of brown algae and their effects on fecal microflora and levels of plasma lipid in rats // Fish. Sci. 1998. V. 64. N 4. P. 582-588.

220. KylinH., Hope-Seyler's Z. // Physiol. Chem. 1913. v. 83. P. 171.

221. Larripa J.B., Mudry-de-Pargament M., Labal-de-Vinuesa M., Mayer A.M.S. Macrocystis purifera from Argentina: Sodium alginate, fucoidan and laminaran.

222. Genotoxicity // ХП-th International Seaweed Symposium. 1987. V. 151-152. P. 491-496.

223. Larsen A. Handbook of phycological methods. Physiological and biochemical methods. (Eds J.A. Hellebust, J.S. Craigie). Cambridge University Press, Cambridge. 1978. P.143.

224. Lewis G., Stanly N., Guist G. Commercial production and applications of algal hydrocolloids. University of Washington. Seattle. 1988. 348 p.

225. Lindher H., Klienebudde P. Use of powdered cellulose for the production of pellets by extrusion (spheronisation) // J. Pharm. And Pharmacol. 1994. V. 46. Nl.P. 2-7.

226. Lobban C.S., Harrison P.J., Duncan M.J. The physiological ecology of seaweeds. Cambridge University Press. 1985. 242 p.

227. Makarov V.N., Makarov M.V., Schoschina E.V. Seasonal dynamics of growth in the Barents sea seaweeds: endogenous and exogenous regulation // Botanica Marina. 1999 V. 42. N 1. P. 43-49.

228. Mauray S., Sternberg C., Theveniaux J. et al. Venous antithrombotic and anticoagulant activities of a fucoidan fraction // Thrombosis Haemostasis. 1995. V. 74. N5. P. 1280-1285.

229. Mayer A.M.S., Diaz A., Pesce A., Criscuolo M. et all. Biological activity in Macrocystis purifera from Argentina: Sodium alginate, fucoidan and laminaran.

230. Antiviral activity // ХП-th International Seaweed Symposium. 1987. V. 151152. P. 497-500.

231. Miller I.J. Alginate composition of some New Zealand brown seaweeds // Phytochem. 1996. V. 41.N5.P. 1315-1317.

232. Millet J. Jouault S.C. Mauray S. et al. Antithrombotic and anticoagulant activities of a low- molecular-weight fucoidan by the subcutaneous route // Thrombosis Haemostasis. 1999. V. 81. N 3. P. 391-395.

233. Munda I. M. On the chemical composition, distribution and ecology of some common marine algae from Iceland // Botanica Mar. 1972. V. 15. P. 1-45.

234. Nagaoka M., Shibata H., Kimura I.T.et all. Structural study of fucoidan from Cladosiphon okamuranus Tokida// Glycoconjugata J. 1999. V. 16. P. 19-26.

235. Nagumoto Т., Nishino T. // Polysaccharides in medicinal applications / Ed. S. Dumitriu N.Y.: Marcel Dekker. Inc. 1996. P. 545-574.

236. Nishino Т., Kiyohara H., Yamada H., Nagumo T. An anticoagulant fiicoidan from the brown seaweed Ecklonia kurome // Phytochemistry. 1991. V. 30. N 2. P. 535-539.

237. Nishino Т., Nishioka C., Ura H., Nagumo T. Isolation and partial characterization of a novel amino sugar-containing fiican sulfate from commercial Fucus vesiculosus fiicoidan // Carbohydr. Res. 1994. V. 255. P. 213-224.

238. Nishino Т., Yokoyama G., Dobashi K., Fujihara M., Nagumo T.I. / Carbohydr. Res. 1989. V. 186. № 1. P. 119 129.

239. Nisizawa K. Preparation and marketing of seaweeds as food // Production and utilization of products from commercial seaweeds. Rome. 1987. P. 147-189

240. Noda H., Amano H., Arashima K., Nisizawa K. Antitumor activity of marine algae //Hydrobiologia. 1990. N 204/205. P. 577-584.

241. Okuzumi J., Nishino H., Murakoshi M. et al. Inhibitory effects of fucoxanthine, a natural carotinoid, on N-myc expression and cell cycle progression in human malignant tumor cells // Cancer Lett. 1990. V. 55. P. 7581.

242. Okuzumi J., Takahashi Т., Yamane T. et al. Inhibitory effects of fiicoxanthine, a natural carotinoid, on N-ethyl-N'-nitro- N- nitrosoguanidine-induced mouse duodental carcinogenesis // Cancer Lett. 1993. V. 68. P. 159168.

243. Paskins-Hurlburt A.J., Tanaka Y., Skoryna S.C. Isolation and metal binding properties of fucoidan //Bot. Marina. 1976. V. XIX. P. 327-328.

244. Patankar M.S., Oehninger S., Barnett Т., et al. A revised structure for fiicoidan may explain some of its biological activities // J. Biol. Chem. 1993. V. 268. P. 21770-21776.

245. Percival E., McDowwell R.H. Chemistry and enzymology of marine algal polysaccharides. Academic Press. London. 1967. 99 p.

246. Percival E., McDowwell R.H. In encyclopedia of plant physiology. Vol. 13B. (Eds Tanner W., Loewus F.A.). Springer-Verlag. Berlin. 1981. 277 p.

247. Pinakkar R., Brash D.J. Composition and block structure of alginates from New Zealand browm seaweeds // Carbohyd. Res. 1996. V. 293. N 1. P. 119132.

248. Rao C.K., Singbal S.Y.S. Seasonal variations in halides in marine brown algae from Porbandar and Okha coasts (NW coast of India) // Indian J. Mar. Sci. 1995. V. 24. P. 137-141.

249. Roberts D.D., Ginsburg V. Sulfated glycolipids and cell adhesion // Arch. Biochem. Biophys. 1998. V. 267. P. 405-415.

250. Roek-Holtzhauer Y. Uses of seaweeds in cosmetics // Seaweeds resource in Europe: uses and potential / Ed. Guiiy M.D., Blunden G. J.W. Chinchester. 1991. P. 83-94.

251. Rangaiuh K.V., Chattaraj S.C., Das S.K. Effects at process variables and excipients on tabletting parameters at nofloxacin tablets // Drug Dev. and Ind. Pharm. 1994. V. 20. N 13. P. 2175-2182.

252. Rohera В., Zahir A. Granulation in a fluidized bed: effect of binders and their concentrations on granule growth and modelling the relationship between granule and binder concentration // Drug Dev. and Ind. Pharm. 1993. V. 19. N 7. P. 773-792.

253. Ruperez P., Sauracalixto F. Dietary Fiber and Physicochemical Properties of Edible Spanish Seaweeds // Eur. Food Res. Technology. 2001. V. 212. N 3. P. 349-354.

254. Schacter Т., Holm P., Kristensen H.G. Melt granulation in a laboratory seale high shear mixer // Drug Dev. and Ind. Pharm. 1990. V. 16. N 8. P. 12421477.

255. Schaeffer D.J., Krylov V.S. Anty-HIV activity of extracts and compounds from alga and cyanobacteria // Ecotoxicology Envir.• Safety. 2000. V. 45. N 3.1721. P. 208-227.

256. Schall С., Latumus F., Heumann K.G. Biogenic volatile organoiodine and organobromine compounds released from polar macroalgae // Chemosphere. 1994. V. 28. N 7. P. 1315-1324.

257. Scott R.W. Physiological and biochemical methods // Analytical Chemistry. 1979. N51. P. 936-940.

258. Shchipunov Y.A., Mukhaneva O.G., Zvyagintseva T.N. et al. rheological properties of aqueous fucoidan solution // Vysokomolek. Soedineniya. 2000. V. 42. N1. P. 93-101.

259. Shniyukova E.I. Characteristic of reserve polysaccharides of some Cyanophyta, Rhodophyta and Chlorophyta species // Algologiya. 1994. V. 4. N 3.P. 29-38.

260. Skjak-Break G., Martinsen A. In seaweeds resources in Europe, Uses and potential. (Eds Guiry M.D., Blunden G.). Wiley, New York. 1991. 219 p.

261. Schoschina E. V. On Laminaria hyperborea on the Murman coast of the Barents Sea // Sarsia. 1997. V. 82. P. 371 373.

262. Schoschina E. V., Makarov V. N., Voskoboinikov G. M., Hoek C. van den. Growth and reproductive phenology of nine inertial algae on the Murman coast of the Barents Sea // Bot. Mar. 1996. V. 39. P. 83 -93.

263. Stoke B.T., Smidsrod O., Bruheim P., et al. Distribution of uronate residues in alginate chains in relation to alginate gelling // Macromolecules. 1991. V. 24. N 16. P. 4637-4345.

264. Sukenik A., Takahashi H., Mokady S. Dietary1 lipids from marine algae enhance the amount of liver and blood omega-3 fatty acids in rats // Ann. Nutr. Metab. 1994. V. 38. P.85-96.

265. Takayama M., Narita Y., Sugawara K., Fukuda M. Content and characteristics of vitamine В 12 in some seaweeds // J. Nutr. Sci. Vitaminol. Tokyo. 1996. V. 42. P. 497-505.

266. Taw N. Iodine in seaweeds // Manila Philippines Bfar. 1992. 55 p.

267. Thomas P.C., Subbaramaiah K. Seasonal variations in growth, reproduction, alginic acid, mannitol, iodine and ash contents of brown alga Sargassum wightii //Indian J. Mar. Sci. 1991. V. 20. N3. P. 169-175.

268. Thorlacius H., Vollmar В., Seyfert U.T. et al. The polysaccharides fucoidan inhibits microvascular thrombus formation independently from P-selectin and L-selectin function in vitro // Eur. J. Clinical Investigation. 2000. V. 30. N 9. P. 804-810.

269. Tramier G., Helmlinger P. Food ingredient based on marine plants and its manufacture // French patent application. FR 2 650 941 Al .1991.

270. Ukita Kenji Murakami Toshio Preparation of essential oils loaded granule by melt granulation // Drug Dev. and Ind. Pharm. 1994. V. 20. N 6. P. 981-992.

271. Venegas M., Matsuhiro В., Edding M.E. Alginate composition of Lessonia trabeculata (Laminariales, Pheophyta) growing in exposed and sheltered habitats //Bot. mar. 1993. V. 36. N 1. P. 47-51.

272. Vojnovic P., Moneghini M., Rubessa F. Simultaneous optimization of several response variables in a granulation process // Drag Dev. and Ind. Pharm. 1993. V. 19. N 12. P. 1479-1496.

273. Vojnovic P., Moneghini M., Rubessa F. Optimisation of granulates in a high shear mixer by mixture design // Drug Dev. and Ind. Pharm. 1994. V. 20. N6. P. 1035-1047.

274. Vrecer F., Kramar A. Study of dissolution of pentoxifylline from sustained release tablets based on alginate matrix //Farm. Vestn. Ljubljana. 1994. V. 45. N4. P. 335-345.

275. Williams C.J., Adrehold D., Edyvean R.G.J. Comparison between biosorbents for the removal of metal ions from aqua's solutions // Wat. Res. 1998. V. 32. N1. P. 216-224

276. Xue C.H., Fang Y., Lin H. et al. Chemical characters and antioxidative properties of sulfated polysaccharides from laminaria-japonica // J. Appl. Phycol. 2001. V. 13. N 1. P. 67-70.

277. Yan X., Chuda Y., Suzuki M., Nagata T. Fucoxanthin as the major antioxidant in Hijikia fusiformis, a common edible seaweed // Biosci. Biotechnol. Biochem. 1999. V. 63. N 3. P. 605-607.

278. Yoshimura A., Yoshikawa K., Oishi K. Iodine distribution in blades of several Laminarias grown in the same sea area // Nippon Suisan Gakkaishi Bull. Jap.-Soc. Sci. Fish. 1992. V. 58. N 7. P. 1373-1379.

279. Zvyagintseva T.N., Solov'eva T.F., Elyakova L.A., Yermak I.M. Polysaccharides from the Russia Pacific coast algae and their enzymatic transformation//Marine Technol. Soc. J. 1996. V. 30. N 1. P. 35-39.