Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Сальмонеллез овец в южных регионах России
На правахрукописи
ДЖАМБУЛАТОВ
ЗАЙДИН МАГОМЕДОВИЧ
САЛЬМОНЕЛЛЕЗ ОВЕЦ В ЮЖНЫХ РЕГИОНАХ РОССИИ
16.00.03. - Ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология
Автореферат
диссертации на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук
Москва 2004
Работа выполнена в Дагестанской государственной сельскохозяйственной академии, ФГУ «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» и ФГОУ ВПО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина».
Научные консультанты: заслуженный деятель науки РД, доктор
ветеринарных наук, профессор Ахмедов Магомед Муртазалиевич; доктор биологических наук, профессор Тихонов Игорь Владимирович.
Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук, профессор
Никифоров Лев Иванович; доктор ветеринарных наук, профессор Караваев Юрий Дмитриевич; доктор ветеринарных наук, профессор Белоусов Василий Иванович.
Ведущая организация: Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической ' промышленности (ВНИиТИБП).
Защита состоится 16 июня 2004 г. в 10 часов на заседании диссертационного совета Д.220.042.01 в Московской государственной академии ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина (109472, Москва, ул. Академика Скрябина, 23. Тел. (095) 377-93-83).
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке МГАВМиБ.
Автореферат разослан _2004 г.
Ученый секретарь диссертационного совета
Брылина В.Е.
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность темы. В современных условиях особая ответственность ложится на науку, призванную ускорить разработку и внедрение в ветеринарную практику современных методов диагностики и средств специфической профилактики болезней животных, обеспечивающих мониторинг наиболее распространенных зооантропо-зоонозов, к числу которых относится и возбудитель сальмонеллеза. По заключению комитета экспертов ВОЗ (1991) сальмонеллез не имеет себе равных по сложности диагностики, профилактики и лечения.
Сальмонеллез поражает сельскохозяйственных и диких животных различных видов, преимущественно молодняк, и характеризуется широким бактерионосительством, вызывает тяжелейшие токси-коинфекции у людей. Так, в нашей стране, по сообщениям Загаевск-го И., Жорницкого А. (1977), Поповой П. и др. (1982), Ахмедова А. (1983), в структуре заболеваемости всех зоонозов сельскохозяйственных млекопитающих и птиц сальмонеллез составляет 15 - 45 %
Борьба с сальмонеллезом включает комплекс мероприятий, в которых значительная роль отводится вакцинопрофилактике. За последние десятилетия исследователями с успехом используются достижения в изучении генетики бактерий для получения вакцинных штаммов со стабильно сниженной вирулентностью и улучшенными иммуногенными свойствами.
Для специфической профилактики сальмонеллеза у телят, поросят и птиц предложен ряд инактивированных и живых вакцин, но вопрос разработки высокоиммуногенного биопрепарата против сальмонеллезного аборта овец до сих пор остается открытым.
Торгово-экономические связи России с другими странами мира, в том числе завоз в страну животных и продуктов убоя, ставят перед ветеринарной службой серьезную проблему по предотвращению заноса из-за рубежа возбудителей различных инфекционных болезней, и в первую очередь сальмонеллеза
Несмотря на достигнутые определенные успехи в изучении сальмонеллеза животных, многие вопросы, связанные с краевой эпизоотологией, особенностями экологии, разработкой простых методов диагностики, остаются нерешенными Совершенствование качества,-а также разработка новых вакцин против сальмонеллез-• лого аборта-овец является актуальной задачей, особенно для республик Северного Кавказа.
Цель и задачи исследований. Целью данной работы является изучение эпизоотологических особенностей и этиологической структуры сальмонеллеза свец в республиках,
сийской Федерации, а также разработка и внедрение научно обоснованной системы мер борьбы с сальмонеллезом овец
Для достижения указанной цели необходимо было решить следующие задачи:
1. Изучить эпизоотическую ситуацию и эффективность противо-сальмонеллезных мероприятий в регионе Северного Кавказа в период с 1991 по 2002 гг.
2. Выяснить этиологическую структуру заболеваемости овец сальмонеллезом в регионе за 12 лет.
3. Изучить биологические свойства штаммов-изолятов.
4. Определить свойства наиболее перспективных штаммов-изолятов для последующего использования их в качестве производственных, обращая особое внимание на иммуногенность и абортогенность. ,
5. Изготовить лабораторные и производственные образцы вакцин и оценить их эффективность.
6. Разработать нормативную документацию на вакцину (наставление по применению, ТУ, инструкцию по изготовлению препарата) и представить для регистрации и сертификации вакцины.
7. Разработать и внедрить в ветеринарную практику научно обоснованную систему мероприятий. по борьбе с сальмонеллезом овец.
Научная новизна.
Впервые изучены эпизоотологические особенности и этиологическая структура сальмонеллеза овец на юге Российской Федерации.
Селекционированы аттенуированные штаммы S.abortusovis с высокой иммуногенностью.
Разработана технология производства живой сухой вакцины против сальмонеллезного аборта овец.
Разработан и научно обоснован комплекс мероприятий по борьбе с сальмонеллезом овец с учетом зональных особенностей и системы ведения овцеводства в регионе.
Научная и практическая значимость. .
1. Разработаны и утверждены Департаментом ветеринарии Л'^СХ Российской Федерации:.
- временное наставление по применению сухой живой вакцины против сальмонеллеза овец из штамма S.abortusovis № 105;
- технические условия - ТУ 9384-001 -00493600-01;
- инструкция по изготовлению и контролю сухой живой вакцины против сальмонеллеза овец из штамма S.abortusovis № 105.
2. Разработан сборник дополнительных материалов к ветери-
нарному закогю.аательству (выпуск III), утв. Комитетом Правительства Республики Дагестан го ветеринарии 18 мая 1995 г., № 01.
3. Разработаны и внедрены в ветеринарную практику методические указания «Диагностика инфекционных болезней», утвержденные НТС Комитета Правительства РД по ветеринарии 04.02.2003 г. (пр. № 6).
4. Разработаны и внедрены в ветеринарную практику рекомендации «Сальмонеллез овец и меры борьбы с ним», утвержденные НТС Комитета Правительства РД по ветеринарии 04.02 2003 г. (пр №6).
5. Разработаны и утверждены Департаментом ветеринарии РФ методические рекомендации «Выделение и идентификация бактерий желудочно-кишечного тракта животных» (М., 2004).
6. Создано учебно-методическое пособие «Выделение и идентификация условно-патогенных микроорганизмов и сальмонелл при острых кишечных заболеваниях молодняка животных», утвержденное учебно-методическим объединением высших учебных заведений РФ по образованию в области ветеринарии и зоотехнии 10 02.2003 г (пр. №2).
Апробация работы.
Основные результаты проведенных исследований были доложены на республиканской научно-практической конференции «Состояние и перспективы развития животноводства в Дагестане» (Махачкала, 1996); Международной конференции, посвященной 30-летию Прикаспийского ЗНИВИ «Современное состояние и перспективы интеграции ветеринарной науки и практики в условиях реформирования сельскохозяйственного производства прикаспийского региона» (Махачкала, 1997); Международной научно-практической конференции, посвященной 40-летию ВНИИВВиМ «Диагностика, профилактика и меры борьбы с особо опасными и экзотическими болезнями животных» (Покров, 1998); Всероссийской научно-производственной конференции «Разработка и освоение производства нового поколения лекарственных средств для животных и их применения в ветеринарной практике» (Ставрополь, 2000); республиканской научно-практической конференции «Проблемы ветеринарии в Дагестан.; в современных условиях» (Махачкала, 2000); республиканской научно-практической конференции, посвященной 100-летию со дня рождения заслуженного деятеля науки РД, докт. вет. наук, проф. Спасского В.В. «Актуальные проблемы ветеринарной медицины» (Махачкала, 2002); межрегиональной юбилейной научно-практической конференции, посвященной 70-летию образования ДГСХА «ВУЗ и АПК: задачи, проблемы и пути решения» (Махачкала, 2002); IV Международной
научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и ветеринарно-санитарного контроля сельскохозяйственной продукции» (Москва, 2002).
Основные положения, выносимые на защиту:
1. Особенности эпизоотического процесса и этиологической структуры сальмонеллеза овец в республиках, краях и областях Южного федерального округа Российской Федерации.
2. Результаты изучения биологических свойств штаммов-изолятов.
3. Высокоиммуногенный аттенуированный штамм S. aboгtusovis № 105 для изготовления вакцины.
4. Результаты применения живой сухой вакцины против сальмо-неллезного аборта овец. :
Объем и структура диссертации; Диссертация изложена на 176 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения результатов исследований, выводов, сведений о практическом использовании полученных научных результатов, практических предложений, библиографического списка и приложений. Работа содержит 36 таблиц и 13 рисунков. Список литературы включает 378 источников, из которых 189 отечественных и 189 иностранных.
СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ Материалы и методы исследований
Исследования проведены в период с 1989 по 2003 гг. на кафедре эпизоотологии и микробиологии Дагестанской государственной сельскохозяйственной академии; в лаборатории лептоспироза и сальмонеллеза Прикаспийского зонального НИВИ, отделе по контролю бактерийных препаратов ВГНКИ, республиканских и зональных ветеринарных лабораториях, неблагополучных по сальмонел-лезу овец хозяйствах южного региона Российской Федераций, а также на кафедре биотехнологии ФГОУ ВПО Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скрябина.
В основу исследований положен комплексный метод эпизоото-логического обследования хозяйств, бактериологический, серологический и гистологический методы. Также проведены клинико-эпизоотологические, паталогоанотомические исследования, селекция штаммов сальмонелл, разработка и производственные испытания живой вакцины против сальмонеллезного аборта овец.
Сбор эпизоотологических данных проведен на основе анализа статистических отчетов Главных управлений ветеринарии республик, краев и областей Северного Кавказа.
Заболеваемость, смертность и количество вакцинированных против сальмонеллеза овец рассчитывали на 100 тыс. голов.
В работе использованы суягные овцематки - 381216 гол; ягнята разного возраста - 1439 гол; морские свинки массой 300-350 г - 70 гол; белые мыши массой 14-16 г- 3285 шт.
Бактериологическому исследованию общепринятыми методами подвергнуто 1585 проб патологического материала от овец и при этом, выделено 313 эпизоотических штаммов S.abortusovis. Данную работу проводили в соответствии с методическими указаниями по бактериологической диагностике сальмонеллезов животных, рекомендованных ГУВ МСХ СССР 30.12.71 г.
У выделенных эпизоотических штаммов сальмонелл изучили морфологические, тинкториальные, культуральные, биохимические, патогенные и вирулентные свойства по общепринятым методикам.
Чувствительность культур сальмонелл к антибиотикам определяли в соответствии с «Методическими указаниями по определению чувствительности к антибиотикам возбудителей инфекционных болезней сельскохозяйственных животных» (утверждены ГУВ МСХ 0.10.1971 г.).
Серологическую идентификацию сальмонелл проводили с применением поливалентной сыворотки (АВСДЕ), моновалентными О-и Н-сыворотками, руководствуясь схемой антигенной структуры сальмонелл по Кауфману-Уайту. • •
Восстановление Н-агглютиногенности у культур, не реагирующих с Н-сыворотками, осуществляли методом отбора подвижных клоков в полужидком МПА, проверкой самоагглютинации (РА с каплей физраствора) и методом термоагглютинации (в пробе кипячения). .
Вирулентность штаммов сальмонелл определяли по величине ,50%-ной летальной дозе (1-О50) для белых мышей. Животным вводили полученный штамм S.abortusovis и через 21 день после иммунизации заражали вирулентной культурой соответствующего серо-вара в дозе 51_О50. . ,
Иммуногенную активность разработанной вакцины изучали по величине 50%-ной иммунизирующей дозе (ЕО^ для белых мышей. Для этого S.abortusovis выращивали на МПА и готовили микробную взвесь в концентрации 1 млрд/см3 м.к. Затем культуру прогревали в водяной бане при температуре 56-58°С в течение часа. Полученную вакцину проверяли на стерильность высевами на МПА, МПБ и МППБ и вводили белым мышам опытных групп подкожно в дозах 40,0; 8,0;
1,6 и 0,32 млн м.к., соответственно, используя по 5-6 мышей на каждую дозу. Через 21 день вакцинированных и контрольных животных заражали 51650 вирулентного штамма Э.аЬогШзомз. Результаты учитывали через 10 дней.
Селекцию и изучение аттенуированного штамма S.abortusovis № 105 на молекулярном уровне проводили совместно с сотрудниками ВГНКИ и ГНЦ прикладной микробиологии.
Остаточную вирулентность штамма определяли путем 6-кратного пассажа через организм чувствительных животных, определением 1-05о У выделенных субкультур, а иммуногенную активность (ЕО50) - заражением белых мышей.
Стерильность, безвредность, активность и контроль живой сухой вакцины из штамма S.abortusovis изучены по общепринятым методикам.
Профилактическую эффективность живой сухой вакцины из штамма S.abortusovis изучали в производственных условиях.
Статистическая обработка полученных данных проведена по методу Кербера в модификации Ашмарина и Воробьева (1962)
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
Эпизоотологические показатели при сальмонеллезе овец на Северном Кавказе
Сальмонеллез мелкого рогатого скота имеет широкое распространение и регистрируется в различных регионах Российской Федерации.
В течение последних 12 лет в южных регионах России зарегистрировано 71,51 % неблагополучных по сальмонеллезу пунктов от их общего количества в стране, из них 77,34 % - в 1991-1996 гг, и 22,66%-в 1997-2002 гг.
Из общего количества неблагополучных пунктов, зарегистриро: ванных на Северном Кавказе, 41,41% выявлено в Республике Дагестан; 43,36% - Ставропольском и 8,59% - Краснодарском краях; 3,52% - Кабардино-Балкарской республике; 2,34% - Ростовской области и 0,78% - Ингушской республике.
Заболеваемость во все годы исследований была наиболее высокой в республике Дагестан (от 1,21 до 6,87); в Ставропольском крае в 2001 и 2002 гг - от 0,46 до 2,65 и в Краснодарском крае в 2001 и 2002 гг. - от 0,04 до 0,05. В Кабардино-Балкарской республике она не превышала 0,03; Ростовской области в 1991, 1992 и 1998 гг. колебалась от 0,004 до 0,02 (табл. 1).
В целом, заболеваемость овец сальмонеллезом на юге России в 1997-2002 гг., по сравнению с 1991-1996 гг., снизилась в 6,1 рэ'1, в том числе: по Республике Дагестан - в 5,6 раз; Кабардино-Балкарской республике - в 6,5 раз; Ставропольскому краю - в 5,8 раз; Ростовской области - в 8 раз. В то же время отмечено увеличение заболеваемости в Краснодарском крае в 5,6 раза.
Летальность от сальмонеллеза овец по Северо-Кавказскому региону превышает таковую, в целом по России, на 0,74. Индекс за 12 лет составил +15,3. Самая высокая летальность овец отмечена в Республике Дагестан и Ставропольском крае.
1. Эпизоотологические показатели при сальмонеллезе овец за 1991-2002 гг.
Республики, |Заболева-края и области емость Смертность Летальность Вакцинация
Российская Федерация 17,2+ 0,05 2,4+ 0,2 14,5+0,1 -
Северо-кавказский экономический район 12,3+0,5 1,8+0,5 15,2+0,05 8336369+150
Республика Дагестан 8,08+ 0,1 1,05+0,05 12,9+0,2 184651+ 100
Кабардино-Балкарская республика 0,08+0,01 0,02+0,001 26,6+1,5 35199+50
Чечено-Ингушская республика 0,03+0,01 0,002+0,001 6,6+0,05 1373336+150
Республика Северная Осетия -Алания - - - 372692+150
Краснодарский край 0,27+0,001 0,07+0,01 24,16+0,5 4915394+500
Ставропольский край 3,10+0,05 0,71+0,05 22,9+1,1 1392626+300
Ростовская область 0,04+0,01 0,01+0,01 27,7+0,5 62471+50
Примечание: показатели заболеваемости и смертности даны в расчете на 100 тыс. голов скота, а летальность и вакцинация - в абсолютных значениях.
Несмотря на это, объем вакцинации животных против сальмо-неллеза в южных регионах, как и по всей стране, уменьшается. Ежегодно, в среднем, в республиках, краях и областях Северного Кавказа вакцинируется против сальмонеллеза 8336369±150 голов овец.
Индекс снижения вакцинированных овец в 1997-2002 гг., по сравнению с 1991-1996 гг., отмечен в Республике Дагестан (-2,7), Чечено-Ингушской республике (-1,3), Северной Осетии - Алания (23,8), Ставропольском крае (-4,2), Краснодарском крае (-15,6), Ростовской области (-14,8).
Таким образом, в овцеводческих хозяйствах Северо-Кавказского региона отмечено увеличения летальности овец от сальмонеллеза и уменьшение количества вакцинированного поголовья.
Осуществление противосальмонеллезных мероприятий не всегда приводит к желаемым результатам. Особенно это касается южных регионов, где развито отгонное ведение животноводства и имеются благоприятные природно-климатические условия для сохранения возбудителя сальмонеллеза во внешней среде.
Установлено, что основным источником возбудителя сальмо-неллезной инфекции овец являются больные животные. В распространении сальмонеллеза решающую роль играют бесконтрольные перемещения переболевших животных - сальмонеллоносителей с одних сезонных пастбищ на другие, внутри районов и хозяйств, а также завоз животных для племенных и хозяйственных целей без предварительного исследования их на сальмонеллез.
Впервые сальмонеллез овец в РД зарегистрирован официально в 1952 г., хотя не исключено, что эта инфекция имела место и в предыдущие годы, но проходила под другими диагнозами (бруцеллез, хламидиозы и т.д.).
В последующие годы сальмонеллез был выявлен в 22 хозяйствах, расположенных на зимних отгонных пастбищах.
Так, в 1956-1960 гг. вспышки инфекции сальмонеллезной этиологии отмечены в различных хозяйствах РД, при этом абортировало более 30% овцематок и пало до 15% ягнят. Во всех хозяйствах диагноз на сальмонеллез был подтвержден выделением из патма-териала S.aboгtusovis.
В дальнейшем сальмонеллез овец принял тенденцию к широкому распространению и регистрировался в различных зонах Республики.
Наибольшее количество неблагополучных пунктов (от 95,5 до 172,7%), заболевших (от 1,1 до 3,7%) и павших животных (от 0,2 до 0,4%) отмечены в 1990-1993 гг. В последующие годы количество неблагополучных пунктов колебалось в пределах 2-9, заболевших -18-861 и павших - 2-66 %. .
Процент падежа овец, к общему количеству заболевших, составил от 1,5 до 61,1.
Необходимо отметить, что значительно высок и удельный вес сальмонеллеза в инфекционной патологии овец.
Из всех инфекционных болезней овец, встречающихся в РД (бруцеллез, инфекционная энтеротоксемия, анаэробная дизентерия ягнят, пастереллез, некробактериоз, копытная гниль, бешенство, злокачественный отек, сибирская язва, оспа, лептоспироз, колибак-териоз) на долю сальмонеллеза приходится от 0,8 до 42,2 неблагополучных пунктов, от 0,9 до 51,1 заболевших и от 0,7 до 18,8 павших животных.
Особенностью эпизоотического процесса в республике является высокий уровень заболеваемости овец и различное клиническое проявление и течение болезни в хозяйствах, как с отгонной системой, так и со стационарным содержанием. В одних хозяйствах сальмонеллез проявляется в виде эпизоотии, вызывая заболевание овец разного возраста независимо от породы, и протекает с большим отходом, в других - в виде абортов, поражая только суягных овцематок, а в третьих - бессимптомно.
Важное значение в прогнозировании и осуществлении противо-сальмонеллезных мероприятий имеет выяснение сезонности заболевания. С этой целью для установления сезонности проявления сальмонеллезной инфекции данные о количестве неблагополучных пунктов, заболевших и павших животных за 12 лет распределены нами по сезонам года (табл. 2).
2. Сезонность сальмонеллеза (1991-2002 гг.)
Период года Кол-во неблагополучных пунктов Заболело Пало
всего % гол % гол %
Цекабрь-февраль 67 1 26,17 996 8,08 92 4,89
Март-май 186 72,66 11321 91,84 1784 94,79
Июнь-август 3 1.17 10 0,08 6 0,32
Сентябрь-ноябрь - «► - - - -
Из материалов таблицы видно, что сальмонеллез у овец встречается чаще в весенние месяцы. Из 256 неблагополучных пунктов на этот период падает 72,66%, в которых заболело 91,84% и пало 94,79%; на зимний, соответственно, 26,17%, 8,08% и 4,89%.
Инфицированность пастбищ всех природно-климатических зон Республики Дагестан сохраняется: в весенний период-до 3 мес, в летний - 2 мес, в осенний - 7 мес. и в зимний - 6 мес, что важно 'учитывать при определении сроков карантинирования пастбищ.
В последние годы на отгонных пастбищах, как и по всей республике, климатические условия установились более благоприятные (отсутствие резких температурных колебаний, тепло, осадки, хороший травостой на пастбищах), что, на наш взгляд, привело к улучшению эпизоотической ситуации по сальмонеллезу овец. Так, если количество неблагополучных пунктов в 1990-1992 гг.' составляло 72,7%, то в 1994-1999 гг. оно снизилось до 18,9%, а в 2000-2002 гг. -до 8,4%.'
Немаловажное значение в распространении сальмонеллеза сельскохозяйственных животных имеют перегоны Ежегодно в рес-
публике дважды в год (весной и осенью) перегоняются 1 млн 445 тыс. овец и коз общественного стада и более 500 тыс. голов, овец индивидуального сектора.
Сложившаяся эпизоотическая. ситуация .безусловно требует научного подхода к решению данной проблемы и повышения ответственности практических ветеринарных специалистов за качественное проведение диагностических,.-дечебно-профилактических и.оздоровительных мероприятий.
Клиническая картина сальмонеллеза у овец
Клинические признаки сальмонеллеза изучены нами у 375 голов, в том числе: 251 овцематки, 92 ягнят 2-5-дневного возраста и 32 ягнят в возрасте 15 дней и старше.. Причем у 217. овцематок и ягнят заболевание протекало, в основном, остро, а у 34 овцематок - бессимптомно. При этом абортировало. 55-60% суягных овцематок (возраст 3-4 года), задержание последа наблюдалось у 37 %, летальность доходила до 15-35% от числа заболевших.
Все ягнята, заболевшие в первые дни жизни, погибали, а падеж ягнят старшего возраста был в пределах 60-70%.
Характерными клиническими признаками являлись: у овцематок - беспокойство за 1-2 суток до наступления преждевременных родов, отсутствие аппетита, подергивание задними конечностями, лихорадка ^ - 40-41,5°С), учащение пульса и дыхания. За 2-3 часа до аборта у овцематок. появлялась отечность наружных половых органов, которая распространялась на промежность и внутреннюю поверхность бедра. Животные часто ложились, отмечалось набухание вагины, а также скрежетание зубов и стоны. После аборта из половых путей обычно выделялось кровянисто-слизистое истечение, которое в дальнейшем делалось ихорозным, гнойно-гемморагическим. При этом овцематки погибали на 2-5 день после аборта.
У 24 овец сальмонеллез протекал бессимптомно. При этом отмечались только угнетение и отсутствие аппетита.
У ягнят 2-5-дневного возраста болезнь протекала остро. При этом ягнята переставали сосать, наблюдалась адинамия, температура повышалась до 41,5-42°С, дыхание становилось учащенным, наблюдались мышечная дрожь,- стоны и нередко понос. Больные ягнята, как правило, погибали.
У ягнят 2-3-недельного возраста и старше болезнь осложнялась пневмонией и артритами. Состояние у ягнят было угнетенным, Дыхание затруднено, температура тела ремитирующая, наблюдался
кашель, выделение слизисто-гнойного истечения из носовых полостей, исхудание. На 2-3 день болезни появлялся понос - испражнения неприятного запаха с хлопьями слизи или фибрина, иногда с примесью крови. В большинстве случаев болезнь заканчивалась летально.
Во всех случаях диагноз был подтвержден выделением культур S.aboгtusovis и серологически.
- Таким образом, сальмонеллез у мелкого рогатого скота протекает по-разному, в зависимости от тяжести течения болезни. Наиболее характерными признаками являются аборты у овцематок на 34 месяце суягности, рождение слабых, нежизнеспособных ягнят, задержание последа, метриты и эндометриты. У ягнят заболевание протекает преимущественно остро и сопровождается лихорадкой, угнетением, запорами, сменяющимися поносами и пневмониями. Аборты сальмонеллезной этиологии у суягных овцематок достигает 55-60%, а гибель ягнят 60-100%.
Патологоанатомические изменения органов и тканей
Патологоанатомическому вскрытию было подвергнуто 128 животных, павших от сальмонеллеза (овцематок - 32, ягнят - 96). Патматериал отобран в 10 хозяйствах РД, неблагополучных по данной болезни.
Абортировавшие плоды были обычно покрыты шерстью, у 5% плодов шерстяной покров отсутствовал. При вскрытии в брюшной и грудной полости обнаруживали серозный или серозно-фибриозный экссудат темно-красного цвета. Подкожная клетчатка часто отечная. Мышцы студенисто инфильтрованы.
При вскрытии павших от сальмонеллеза овец и ягнят наиболее характерные макроскопические изменения обнаруживали в желудочно-кишечном тракте, паренхиматозных органах, а у суягных и абортировавших овцематок, кроме того, в матке, плодовых оболочках и мертвом плоде.
Сердце округлое, увеличено в объеме, миокард тусклый, дряблый. На эпи- и эндокарде обнаруживали точечно-полосчатые кровоизлияния, в сердечной сорочке находили около 100 см3 мутного транссудата.
Легкие отечные, очагово-гиперемированы, имеют пеструю окраску. При подостром и хроническом течениях находили лобулярные очаги катарально-гнойной или фибринозной пневмонии. В просвете гортани, трахеи и крупных бронхов обнаруживали слизисто-пенистую жидкость. Слизистая оболочка дыхательных путей была гиперемирована и усеяна точечными кровоизлияниями.
13
Печень, как правило, была увеличена в объеме, очагово гипере-мирована и имела рисунок-мускатного ореха. Под ее капсулой и в толще органа располагались точечные и полосчатые кровоизлияния и мелкие серовато-желтые некротические очаги. Желчный пузырь наполнен тягучей желчью темно-зеленого цвета, слизистая оболочка отечная и полнокровная.
Селезенка несколько увеличена, дрябловатая, под капсулой и по краям виднеются точечные кровоизлияния. На разрезе соскоб незначительный, наблюдается мелкоточечная зернистость паренхимы.
Почки гиперемированы, консистенция их дряблая, под капсулой располагаются точечно-полосчатые кровоизлияния, а граница между корковым и мозговым слоями сглажена.
Слизистая оболочка сычуга и тонкого отдела кишечника набухшая, неравномерно гиперемирована, с точечно-полосчатыми кровоизлияниями.
Мизентериальные лимфатические узлы увеличены в объеме, сочные, с мелкими кровоизлияниями в паренхиме.
У павших абортировавших овцематок наиболее типичные изменения обнаруживали преимущественно в матке. Слизистая оболочка ее гиперемирована и усеяна точечно-полосчатыми кровоизлияниями. В ее полости содержится слизисто-гнойный экссудат с примесью крови, имеющий неприятный запах.' Здесь же находили обрывки некро-тизированной, распадающейся на части плаценты.
При гистологическом исследовании паренхиматозных органов патологические изменения обнаруживали в паренхиматозных органах и лимфатических узлах.
Характерными для сальмонеллеза овец структурными изменениями в печени являлись множественные микронекрозы внутри печеночных долек, образованные в результате распада части гепато-цитов на зернисто-глыбчатую массу. При иммунолюминесцентной микроскопиии в центральной части микронекрозов обнаруживали ярко светящиеся клетки сальмонелл. Кроме того, отмечено образование внутри печеночных долек множественных мелких гранулем; состоящих из эпителиоидных клеток, гистоцитов и лимфоцитов. В цитоплазме тканевых макрофагов выявляли фрагментированные, а также целые сальмонеллы. В гепатоцитах обнаруживали зернистую, жировую и вакуольную дистрофию, а также нарушение балочной структуры печеночных долек с гибелью большого числа ге-патоцитов, значительную гиперемию внутридольковых капилляров и центральной вены с деструкцией и слущиванием эндотелиоцитов, перикапиллярным эритродиапедезом и периваскулярным отеком. При подостром и хроническом течении сальмонеллеза указанные
изменения были выражены менее значительно и, как правило, проявлялись пролиферацией эндотелиальных и адвентициальных клеток с образованием между печеночными балками соединительнотканных островков, состоящих из лимфоцитов, гистоцидов, фиброб-ластов и плазматических клеток.
В сердце обнаруживали дистрофические изменения, выражавшиеся набуханием, зернистостью, потерей мышечными волокнами поперечной и продольной исчерченности и сопровождавшиеся полнокровием сосудов, периваскулярным отеком, диапедезными кровоизлияниями и выходом нейтрофилов из просвета сосудов в окружающую ткань.
В почках выявляли дистрофические изменения нефроцитов как проксимального, так и дистального канальцев, зернистую дистрофию, некробиоз и некроз отдельных клеток и микронекрозы в паренхиме. Капилляры клубочков, межканальцевые капилляры, пре-капилляры и венулы были расширены, с чередованием участков сужения. В них эритроциты агрегированы и закупоривают просвет капилляров. В таких участках наблюдали деструкцию эндотелиоци-тов и слушивание их в просвет сосуда. Эти изменения сопровождались периваскулярными отеками и эритродиапедезом.
При гистоисследовании в красной пульпе селезенки обнаруживали большое количество эритроцитов и пролиферацию лимфоид-ных, гистиоцитарных и плазматических клеток. Под селезеночной капсулой, вокруг трабекул и по ходу мелких сосудов находили очаги диапедезных кровоизлияний и микронекрозов. В белой/пульпе наблюдали признаки гиперплазии лимфатических фолликулов за счет возникновения светлых центров размножения и увеличения лимфоцитов вокруг центральной артерии.
В подчелюстных, заглоточных, средостенных и в брыжеечных лимфатических узлах структурные изменения были выражены в виде "серозно-катарального воспаления и крупноклеточной гиперплазии.-Серозно-катаральный лимфаденит характеризовался расширением синусов и наполнением их серозной жидкостью с содержащимися в ней нейтрофилами, эозинофилами, лимфоцитами и дескваминиро-ванными эпителиальными клетками. В таких участках обнаруживали некротические очаги. В подострых и хронических случаях течения сальмонеллеза выявляли гиперпластические процессы со стороны лимфатических фолликулов с резким расширением герминативных центров и элементов ретикулярной гистиоцитарной системы и стро-1 мы. Особенно много плазматических клеток обнаруживали по периферии лимфофолликулов и в паракортикальной зоне. Как в корковом, так и мозговом слоях лимфоузлов, по ходу мелких сосудов, рac-
полагались диапедезные кровоизлияния Методом флуоресцирующих антител в паренхиме лимфоузлов, преимущественно в гистиоцитах, вне клеток, а также в просвете кровеносных сосудов выявляли отдельные или целые колонии сальмонелл, которые образовывали, микробную эмболию мелких сосудов.
Таким образом, при сальмонеллезе в паренхиматозных органах больных овец развиваются значительные структурные изменения, которые характеризуются зернисто-жировой дистрофией гепатоци-тов, нефроцитов и миокардиоцитов, завершающихся частичной их гибелью. Кроме этого в печени, вследствие поступления в ее паренхиму большого количества сальмонелл, их размножения и выделения ими энтеротоксинов, развиваются множественные мелкие очаги некрозов, а также сальмонеллезные гранулемы, состоящие из лимфоидных, плазмоцитарных и гистиоцитарно-макрофагальных клеток Аналогичная реакция выявляется также в селезенке и в ме-зентериальных лимфатических узлах. При специальном гистолю-минесцентном окрашивании гистологических срезов из этих органов выявляется большое количество плазматических клеток, цитоплазма которых содержит иммуноглобулины
Эти данные указывают на активную защитную реакцию организма овец в ответ на антигенное воздействие возбудителя инфекции, которая завершается выработкой напряженного иммунитета у пе-ребояевших животных. Вследствие этого не происходит повторное заражение овец, и в следующий сезон, в основном, заболевают первокотки.
Биологическая характеристика выделенных штаммов S. abortusovis
Морфологию S. abortusovis и колоний изучили у 213 выделенных штаммов. Для этого сальмонеллы высевали в МПБ, инкубировали при температуре 37°С в течение 16-18 ч, а затем рассевали на МПА. . ,
Было установлено, что S abortusovis представляет собой гра-мотрицательные палочки с закругленными концами, длиной 0,8-3,2 и шириной 0,4-0,6 мкм В мазках располагаются единично или группами Спор и капсул не образуют, подвижны.
Через 18-20 ч после культивирования установили, что большинство колоний различаются между собой по размерам, форме, очер-ченности края, прозрачности и характеру поверхности.
При этом 35 штаммов (16,5%) имели колонии в S-форме, 159 (74,6%) - в R-форме и 19 (8,9%) - находились в переходной форме.
Следовательно, более 70% эпизоотических штаммов после первых пересевов диссоциировали, что необходимо учитывать при селекции штаммов.
Рост сальмонелл на обычных питательных средах был скудный, в виде мелких, круглых, просвечивающихся с приподнятым центром колоний. Особенно медленно росли "свежевыделенные" штаммы. При изучении их в затемненном поле микроскопа обнаруживается радиальная исчерченность колоний.
Просвечивающиеся, с сине-голубоватым оттенком колонии легко снимаются петлей с поверхности агара, некоторые колонии имели вид блестящей росы с пуговкообразным очертанием и ровными краями или неправильной формы. По мере старения колонии мутнели, в середине появлялись темные точки. На эритритагаре штаммы образовывали рассыпчатые колонии и лучше росли при добавлении 3-5% сыворотки крови овец. При культивировании на среде Плоскирева колонии были прозрачные или бледно-розового цвета. В местах сплошного роста отмечался зеленоватый оттенок. На висмут-сульфитном агаре колонии окрашивались в черный цвет с металлическим блеском.
Ферментативные свойства изучены у 285 штаммов S.aboгtusovis. Все штаммы сальмонелл ферментировали с образованием кислоты и газа глюкозу, мальтозу, маннит; 273 (95,8%) культур расщепляли арабинозу 228 (80%) - дульцит 278 (97,5%) - ксилозу и 281 (98,6%) - сорбит, 281 штамм (98,6%); не ферментировали лактозу и сахарозу, продуцировали сероводород.
Таким образом, S.aboгtusovis обладают различными морфологическими и ферментативными свойствами, однако коррелятивная связь при этом не выявлена.
Идентификация и селекция штаммов S.abortusovis
Серогрупповую и серовариантную принадлежность сальмонелл определили у 313 эпизоотических штаммов.
Установили, что 312 сальмонелл, относятся к сероварианту S aboгtusovis, что составляет 99,7%, а одна культура - к S.dublin
(0,3%).
Следует отметить, что из 313 изученных штаммов 21 (6,7%) обладали слабо выраженными антигенными свойствами, причем 6 штаммов агглютинировались только сывороткой 0-4, а 15 - не имели первой (специфической) или второй (неспецифической) фазы Н-антигенов.
С целью восстановления Н-антигенов, культуры засевали в МПБ и выращивали при температуре 37°С в течение 18-20 часов, затем
пересевали 2-3 раза через каждые 4 ч, после чего бульонную культуру вносили в открытую стеклянную трубочку, которую помещали в полужидкий МПА и культивировали при температуре 37°С 18-20 ч.
Для обнаружения фазы Н-антигена использовали феномен роения по Гарду. После 13-15-кратных отборов у всех штаммов активность О-антигена увеличилась, восстановилась или улучшилась выраженность и Н-антигена, причем первой фазы у 13 (61,9%) и второй - у 8 штаммов сальмонелл (38,1%).
Существенным недостатком эпизоотических штаммов S abortusovis является их быстрая диссоциация при частых пересевах и долгом хранении в полужидком агаре. При этом просматриваются два типа колоний в S-форме. прозрачные, со слегка голубоватым оттенком и непрозрачные (плотные). Эти штаммы слабо агглютинировались монорецепторными сальмонеллезными сыворотками и значительно снижали вирулентные свойства. У 10 клонов (11,6%) отмечалась самоагглютинация с физиологическим раствором и у 54 (62,8%) - термоагглютинация.
Изучение в косопроходящем свете клонов 86 штаммов в S-форме показало, что колонии сальмонелл были выпуклыми, мелкозернистыми или гомогенными, зеленовато-желтого цвета с ровными краями. Колонии переходных форм имели исчерченную поверхность, а также красное, красно-зеленое или красно-желтое свечение. Колонии же в R-форме были плоскими, тусклыми, с изрезанными краями, серо-голубого цвета.
Проба кипячения позволяет выявить начальную стадию диссоциации при еще сохранившейся круглой форме и гладкой поверхности колоний. Колонии серо-голубого цвета, рыхлые с сетчатой исчерченностью поверхности самоагглютинировали 'как в физило-гоческом растворе на стекле, так и в пробе кипячения. При этом микробная масса оседала на дно пробирки, а надосадочная жидкость просветлялась полностью. Клоны зеленовато-желтые, мелкозернистые, яркие с четко очерченным краем оставались в виде равномерной взвеси при кипячении и не самоагглютинировали в РА на стекле с физиологическим раствором Колонии красно-желтые, крупно-зернистые, с коричневой сетчатой исчерченностью в пробирках при кипячении давали мелкую зернистость и не самоагглютинировали в РА на стекле с физиологическим раствором.
Полученные результаты являются существенным критерием для отбора вакцинных штаммов S.abortusovis.
Вирулентные свойства штаммов S.abortusovis
Вирулентные свойства 86 эпизоотических штаммов изучены нами на 2608 белых мышах массой 14-16 г., 19 ягнятах - 15-20-дневного возраста и 30 суягных овцематках.
В работе использовали 42 эпизоотических штамма S.abortusovis.
Установлено, что высоковирулентными были 5 выделенных штаммов, у которых Ши колебалась в пределах 1,0- * 105; вирулентными - 28 штаммов, с величиной Ю^от 1,0 *'106 до 1..0 * 10е; слабовирулентными - 7, Юм У которых составляла 1,25 * 10® - 2,0 * 10®. Две культуры не вызывали гибели мышей при заражении максимальными дозами.
Из селекционированных сальмонелл был отобран штамм S.abortusovis 701/1 и изучены его вирулентные свойства на 19 ягнятах 15-20-дневного возраста. Ягнят заразили внутрибрюшинно: животным первой группы вводили 10 млрд м. к., второй - 25, третьей -50, четвертой - 100, соответственно. При этом ягнята реагировали на заражение повышением температуры тела в среднем на 0,5— 1,0°С на дозу 100 млрд м.к., которая сохранялась не более 2-3 суток. Других заметных изменений в общем состоянии ягнят не наблюдалось. Следовательно, штамм 701/1 для ягнят является слабовирулентным.
Вирулентные свойства штаммов 105, 123 и 162 изучены на 30 суягных овцематках, которых за 15-30 дней до окота заражали внутрибрюшинно в дозах 10, 5 и 1 млрд м. к. (по 3 овцематки на дозу), а трем овцематкам культуру вводили непосредственно в плод в дозе 1 млрд м.к. За животными вели наблюдение в течение 30 дней.
Установили, что из овцематок, зараженных в дозе 10 млрд м. к., окотилось 4 (13,3%), абортировало - 3 (10%) и пало - 2 (6,6 %); соответственно - от дозы 5 млрд. м.к. - 4 (13,3%), - 4 (13,3 %), - 1 (3,3%) и 1 млрд м.к. - 3 (10%) - 6 (21 %). Все три овцематки, зараженные в плод, абортировали на 2-5 день.
Из 30 овцематок, зараженных разными культурами, благополучно окотились 11 голов (36,7%), абортировали - 16 (53,3%) и пали -3(10%).
Полученные данные свидетельствуют о слабой вирулентности эпизоотических штаммов S.abortusovis для суягных овцематок.
Токсинообразование изучили у 25 штаммов S abortusovis. С этой целью культуры выращивали в бульоне Хоттингера во флаконах в течение.15 суток при температуре 37°С. Через 1, 3, 6, 10 и 15 суток культивирования сальмонелл определяли рН среды, концентрацию микробных клеток и их токсичность.
19
Токсичность культур определяли на белых мышах массой 14-16 г, которым внутрибрюшинно вводили по 0,12; 0,25; 0,5 и 1,0 млрд м.к. предварительно прогретой культуры сальмонелл. Наблюдение за животными вели в течение пяти суток.
Во всех случаях при введении суточной культуры мышам, животные оставались живы. Трехсуточные культуры убивали не более 11-12 % мышей, а 5-, 10- и 15- суточные -до 40-46 %. •
Полученные данные свидетельствуют о токсинообразовании эпизоотических штаммов S.abortusovis, но их слабой токсигенности.
Нами проведена большая работа по селекции культур сальмонелл для получения аттенуированного вакцинного штамма воздействием стрептомицина. Исследования были направлены на выяснение чувствительности к стрептомицину ф^), стрептомициноре-зистентности фг=г) и выявление стрептомицинозависимого мутанта
Для этого 0,1 см3 суточной культуры (10е микробных клеток) засевали на МПА со стрептомицином. Посевы выдерживали в термостате при температуре 37° в течение 48-72 ч.
Было установлено, что все штаммы росли на среде со стрептомицином, что свидетельствует о их резистентности к данному антибиотику. .
Штамм Э.аЬогШзоу^ 701/1 в концентрациях 104, 103, 102 м. к. не вызывал гибель белых мышей в течение 7-14 дней и, по сравнению с другими штаммами, стабильно рос на среде со стрептомицином в концентрации 50 ед/мл.
Поэтому, дальнейшие исследования были направлены на получение его стрептомицинозависимых мутантов. Всего изучено 1012 колоний, в результате чего выявлен клон, ауксотрофный по стрептомицину.
В последующем изучали его остаточную вирулентность и имму-ногенную активность..
,Для определения остаточной вирулентности белым мыцом внутрибрюшинно вводили Э.аЬогШзоу^ 701/1 в дозах от 108 до 104 м.к.
Во всех случаях все мыши в течение 14 дней (срок наблюдения) оставались живы, что указывает на слабую остаточную вирулентность штамма.
Для выяснения иммуногенной активности штамма S.abortusovis 701/1 белым мышам массой 12-14 г. подкожно инокулировали убитую нагреванием в течение часа при температуре 56-60°С культуру сальмонелл в дозе от 106до" 102 м.к. Через 21 день этих же мышей заражали внутрибрюшинно вирулентной культурой S.abortusovis 65
в дозе 7 1_О50. Иммунизированные мыши в 60-80 % случаев (в зависимости от дозы) остались живы, что свидетельствует об иммуно-генной активности штамма Э аЬогШвоу^701/1 (ИД50 = 303,2 микробных клеток).
Учитывая перспективность штамма S.abortusovis 701/1 для создания вакцины, мы поставили перед собой задачу более детально изучить этот штамм и, прежде всего, выяснить стабильность его культурально-морфологических, биохимических, антигенных, имму-ногенных и вирулентных свойств.
Было установлено, что S.abortusovis 701/1; пассированные через организм белых мышей, не повышали свои вирулентные свойства. По морфологии все клетки были однотипны, ферментативные свойства штамма не имели отличий от исходной культуры.
Для определения иммуногенной активности штамма S.abortusovis 701/1 было проведено 2 серии опытов. В обоих случаях мышей вакцинировали убитой нагреванием суточной культурой сальмонелл этого штамма в дозах 100,10 и 1 млн м. к. Мышам контрольной группы аналогично вводили физраствор. -
Каждую группу мышей через 21 день после вакцинации разделили на 2-подгруппы и для проверки иммуногенности штамма S.abortusovis 701/1 в опытных и контрольных группах половину мышей искусственно заразили вирулентной культурой S.abortusovis 3089/17 (табл. 3).
3. Результаты изучения остаточной вирулентности исходной, культуры штамма S.abortusovis 701/1 (опыт 1)
Доза, м. к. Кол-во мышей, шт Пало, шт Осталось в живых
Кол-во %
1,25 х 10у 60 50 10 16
1 х 103 60 40 20 33
7,5 х 10° 60 10 50 83
5* 10° 60 - 60 100
2,5 х ю° 60 - 60 100
Было установлено, что в группах вакцинированных мышей после заражения вирулентными культурами сальмонелл остались живы 60% животных, тогда как в контрольной группе пало 80-32% мышей.
Белые мыши, зараженные культурой штамма S abortusovis 701/1 в дозах 250 и 500 млн, остались живы в 100% случаев.
Полученные данные свидетельствует о слабой остаточной вирулентности штамма S.abortusovis 701Д. - '
Таким образом, установлено, что культурально-морфологичес-кие, биохимические, антигенные, вирулентные и иммуногенные свойства пассажных культур штамма S.abortusovis 701/1 были постоянными, а сам штамм обладает стабильной, пониженной вирулентностью и выраженной иммуногенной активностью.
Диагностика сальмонеллеза овец
• Серологические исследования. Вариабильность клинического течения и многообразие клинических признаков значительно затрудняют диагностику сальмонеллеза. Поэтому ведущее значение в подтверждении диагноза на сальмонеллез имеют лабораторные методы исследования - серологический и бактериологический. . В данном разделе отображены результаты серологических и бактериологических исследований, проведенных нами в Республике Дагестан на протяжении 13 лет.
4. Результаты исследований сыворотки крови овцематок • на сальмонеллез в РА
Год Исследовано гол Реагировало положительно
гол %
1990 6641 48 0,7-
1991 997 56 5,6
1992 4965 71 1.4
1993 7692 105 1.4
1994 2323 83 3.6 -
1995 1841 16 0,9
1996 3223 14 0.4
1997 2480 22 . 0,9
1998 987 9 0.9
1999 267 7 2.6
2000 375 12 3,2
2001 113 5 4,4
2002 750 11 1.5
Итого 32654 459 - • 1.4
Серологическому исследованию подвергали пробы сыворотки крови овец, взятых в неблагополучных и угрожаемых по сальмо-неллезу хозяйствах республики. Реакцию агглютинации ставили с сальмонеллезными антигенами производства Краснодарской биофабрики в разведении 1:50 и выше (табл. 4).
Как следует из табл. 4, за 13 лет в РД исследовано 32654 пробы
сыворотки крови от абортировавших овцематок и ягнят. Положительные результаты получены в 459 случаях, что составляет 1,4%.
Из общего числа положительных сывороток в титре 1:50 реагировало 27 голов (5,9%); 1:100-15 (3,3%); 1:200 - 249 (54,2%); 1:400 -51 (11,1%); 1:800 - 63 (13,7%); 1:1600 - 33 (7,2%); 1:3200 -18 (3,9%) и 1:6400-3(0,7%) голов.
Анализ серологических исследований показывает, что сальмо-неллозоносительство среди овец колеблется от 0,4 до 5,6%. Эти данные, на наш взгляд, несут рекогносцировочный характер, но не отражают действительную эпизоотическую ситуацию по сальмо-неллезу овец в республике и могут быть ориентировочными.
Совместно с сотрудниками ВГНКИ и Прикаспийского зонального НИВИ нами изготовлен эритроцитарный сальмонеллезный антиген для реакции непрямой гемагглютинации. Специфичность и активность диагностикума изучена исследованием 1014 проб сыворотки крови, взятых от 989 клинически здоровых и 25 абортироеанных овцематок Реакции ставили в разведениях 1:25 - 1:1600 и выше. Параллельно сыворотки исследовали на бруцеллез в РА, РСК и РИГА. Данные представлены в табл. 5.
5. Результаты исследований сыворотки крови овцематок на сальмонеллез в РИГА
Исследовано овцематок Всего, гол Положительно реагировали
сальмонеллез бр /цеппез
1:25 | 1:50 1:100 ' 1:200 1:400 ! 1:800 1:1600 < а. ! РСК | РИГА
Клинически здоровые 989 156 44 10 6 6 - - 8 37 7
Абортировавшие 25 25 25 25 25 25 25 25 - - -
Итого 1014 181 69 35 31 31 25 25 8 37 7
Как следует из табл. 5, на сальмонеллез в титрах 1:25 - 1:1600 реагировали все абортировавшие овцематки, а из клинически здоровых реагировали в титрах 1:25 - 156 (15,8%), 1:50 - 44 (28,2%),. 1:100-10 (6,4%), 1:200 - 6 (3,8%) и 1:400 - 9 (3,8%), соответственно.
Одновременно на сальмонеллез и бруцеллез дали положительную реакцию 52 пробы сыворотки крови (33,3%), в том числе в РА -8 (15,4%), РСК- 37 (71,2%) и РИГА - 7 (13,5%).
Полученные данные свидетельствуют о специфичности и активности сальмонеллезного эритроцитарного антигена для РИГА и перспективности данной реакции в диагностике сальмонеллеза овец.
Следует отметить, что серологические исследования неэффективны при диагностике острых форм сальмонеллеза, но незаменимы для выявления больных в хронической форме или бактерионосителей и удобны при проведении массовых обследований овец.
Бактериологические исследования. Бактериологическому исследованию подвергли кровь овец в первые 4 дня заболевания, а также истечения из родовых путей, паренхиматозные органы, свежие абортированные плоды и мезентериальные лимфатические узлы, взятые в 26 неблагополучных по сальмонеллезу овец хозяйствах РД (табл. 6).
6. Результаты бактериологических исследований патматериала от больных сальмонеллезом овец
Материал для исследований Количество проб Выделено культур сальмонелл
всего %
Всего 1585 313 100
Кровь 93 21 22,6
Околоплодная жидкость 32 22 68,8
Печень 365 81 22,2
Селезенка 365 45 12,3 .
Почки 365 30 8,2
Лимфоузлы 365 114 31,2
Было выделено 313 культур, в том числе: из крови - 21 (22,6%), околоплодной жидкости - 22 (68,8 %), печени - 81 (22,2%), селезенки - 45 (12,3 %), почек - 30 (8,2 %) и лимфоузлов -114 (31,2 %).
Наибольшая персистенция сальмонелл отмечена в лимфоузлах, печени и селезенке.
Из питательных сред наилучшими для выделения сальмонелл и дальнейшего поддержания их биологических свойств оказались эритроцитагар и бактоагар Плоскирева.
Изучение вирулентности и иммуногенных свойств штамма З.аЬог^вомв 105
Штамм-S.abortusovis 105 был отобран нами как наиболее перспективный для изготовления вакцины.
В дальнейшем морфологические, культуральные, вирулентные и иммуногенные свойства штамма изучены нами аналогично с изучением штамма S.abortusovis 701/1.
В мазках с агаровых и из бульонных культур, окрашенных по Граму, морфология сальмонелл была однотипна.
24
Штамм растет на питательных средах, содержащих стрептомицин и рифампицин.
Штамм S.abortusovis 105 сохранял авирулентные свойства при многократном пассировании через организм чувствительных животных. Остаточная вирулентность его для белых мышей составляет 3,6-10® м.к., что свидетельствует о стабильности аттенуации.
Иммуногенную активность селекционированного штамма S.aboгtusovis № 105 изучали на белых мышах массой 14-16 г., в сравнении с гретой в течение 1 часа при температуре 56-58°С культурой сальмонелл этого же штамма/
Было установлено, что иммуногенная активность селекционированного штамма S.aboгtusovis 105 превышала таковую у нативного, в среднем, в 2,8 раза,' что, по нашему мнению, важно при отборе производственных вакцинных штаммов. Данный штамм депонирован в коллекции микроорганизмов ФГУ «ВГНКИ».
Эпизоотологические и экономические показатели эффективности применения различных вакцинных препаратов против сальмонеллеза овец
В основе борьбы с сальмонеллезом сельскохозяйственных животных, помимо общих ветеринарно-санитарных мероприятий, лежит специфическая профилактика.
Для иммунизации овец предложены различные вакцины: инакти-вированная депонированная формол-тиомерсаловая; ассоциированные - против салмонеллеза, колибактериоза и пастереллеза; хламидиоза, кампилобактериоза, сальмонеллеза и лептоспироза.
Представляют определенный интерес работы последних лет по созданию живых вакцин из штамма S.aboгtusovis и S.typhimunum
Несмотря на перспективность живых вакцин при сальмонеллезе овец, они до настоящего времени, не получили широкого практического применения. Проблема эта требовала своего неотлагательного решения, для чего основное внимание было обращено на получение высокоиммуногенного вакцинного штамма со стабильно сниженной вирулентностью.
Исходя из изложенного, перед нами были поставлены такие задачи, как изучение эпизоотологической эффективности формол-тиомерсаловой вакцины и живых вакцин из штамма Sabortusovis (Болгария) и S. typhimurium-274 (Киргизия); селекция высокоимму-ногенного штамма S.aboгtusovis для изготовления живой вакцины лротив сальмонеллеза овец; разработка технологии промышленного изготовления живой вакцины из штамма S.aboгtusovis 105.
Производственные испытания указанных вакцин проводили с разрешения ГУВ МСХ СССР (письмо № 433-6 от 4 мая 1988 г., приказ № 117 от 26 октября 1988 г.), комиссионно в неблагополучных по сальмонеллезу овец хозяйствах РД.
Для получения достоверных результатов иммуноген,ная активность указанных вакцин'изучена нами предварительно в экспериментальных условиях на белых мышах. Лабораторных животных иммунизировали различными дозами вакцин (от 10 до 0,0001 млн м. к. в1 см3) и через 21 день после вакцинации заражали внутрибрю-шинно вирулентной культурой Э.аЬогШзомз в дозе 5 |_О50.
Было установлено, что изучаемые вакцины предохраняли мышей от гибели лишь в дозах 100, 10 и 1 млн м. к., причем формол-тиомерсаловая вакцина - на 10-20 %, Болгарская - 20-40 % и Киргизская - 25-43 %, а из штамма 8.аЬог1ивоу|8 № 105 - 90-95 %.
Эпизоотологическая эффективность указанных вакцин изучена нами и в производственных условиях (табл. 7).
Из материалов табл. 7 видно, что в опытной группе овцематок, иммунизированных формолтиомерсаловой вакциной, абортировало 72 головы, а в контрольной 105, соответственно, Болгарской - 88 и 162, Киргизской- 363 и 382.
7. Результаты сравнительного изучения эпизоотологической эффективности противосальмонеллезных вакцин
Количество хозяйств Вакцинировано, гол Контроль, гол Абортировало, %
из вакцинированных из контрольных
Формолтиомерсаловая вакцина <
1 239 297 "30,1 35,4
Живая Волга рская вакцина (З.аЬогШэоугё)
8 3199 • 3074 •22 44,6
Живая Киргизская вакцина (в^урЫтигшт N9 274)
19 20489 17398 1,8 - 2,2
Таким образом, анализ результатов испытания вакцин показал недостаточную эпизоотологическую эффективность формолтио-мерсаловой вакцины (многократное введение суягным овцематкам с ревакцинацией за 60 дней до окота в больших дозах и высокая реактогенность), что не позволяют применять ее в широком масштабе для иммунизации овец. За 1985-1990 гг. формолтиомерса-ловой вакциной в РД вакцинировано более 1,5 млн овец, из которых заболело 7520 и пало 976. В 1991-1995 гг. количество иммунизированного овцепоголовья, по сравнению с предыдущим периодом,
сократилось в 3,4 раза, а в 1996-2002 гг., по сравнению с 19951996 гг. - в 38,2 раза. Это объясняется тем, что практические ветеринарные врачи ограничивают применение формолтиомерсаловой вакцины из-за недостаточной ее эффективности.
Применение живых вакцин из штамма S.abortusovis (Болгария) снижало количество абортов среди иммунизированных овец в 1,8 раза, а у привитых S.typhimurium № 274 (Киргизия) особых различий в количестве абортов среди вакцинированных и контрольных не отмечено. Данные вакцины не обеспечивают у привитых овец напряженного длительного иммунитета и они до настоящего времени не получили широкого практического применения, поскольку обладают высокой реактогенностью и слабой иммуногенностью.
В этом плане большая надежда возлагается на живые вакцины, применение которых позволит не только профилактировать аборты, заболеваемость и падеж овец от сальмонеллеза, но и резко снизить трудовые и материальные затраты на проводимые мероприятия и получать дополнительную мясную и шерстную продукцию.
Стоимость обработки одной овцы формолтиомерсаловой вакциной составляет - 28,8 руб, а живой вакциной - 0,16 руб, что в 180 раз дешевле.
Экономический эффект от применения живой вакцины, по сравнению с формолтиомерсаловой, только за счет снижения трудовых и материальных затрат, составляет 2964000 руб или 29,64 рубля на рубль затрат на одну овцематку. Следовательно, применение живой вакцины против сальмонеллеза овец экономически более выгодно.
Нами была разработана технология производства сухой живой вакцины из штамма S abortusovis № 105, которая является является наиболее иммуногенной, а по себестоимости - экономически более выгодной.
На Ставропольской биофабрике нами изготовлено около 300 тыс. доз живой сухой вакцины и разработана "нормативно-техническая документация на препарат.
Производственные испытания живой сухой вакцины из штамма З.аЬогШвомв 105
Эпизоотологическая эффективность опытной сухой живой вакцины против сальмонеллеза .овец из штамма S.abortusovis 105 проверена нами комиссионно, согласно приказа Комитета Правительства РД по ветеринарии № 65 от 17 ноября 1999 г., в 35 неблагополучных и угрожаемых хозяйствах 3 зон зимних пастбищ и 12 районов РД.
Вакцину вводили овцам, в соответствии с наставлением по ее применению однократно, подкожно в дозе 2 см3 за 25-10 дней до и спустя 1-1,5 месяца после осеменения. За вакцинированным поголовьем вели постоянное наблюдение, периодически подвергали клиническому осмотру с определением состояния течения процесса суягности и выхода ягнят по завершению окота. Данные представлены в табл. 8.
Как следует из материалов таблицы было вакцинировано 249106 овцематок, в том числе: за 20-25 дней до осеменения 174106 и спустя 1-1,5 месяца после осеменения - 75 тыс. голов; Контролем служили 43666 овцематок. При этом в опытных отарах не было ни одного случая абортов сальмонеллезной этиологии. Окот овец прошел без осложнений и на 100 овцематок получено от 90 до 110 ягнят, тогда как среди овцематок контрольной группы отмечены аборты в пределах от 1,2 до 7,1%. Диагноз на сальмонел-лез у овец контрольных групп был подтвержден бактериологически.
8. Результаты производственных испытаний вакцины живой сухой против сальмонеллеза овец из штамма S.abortusovis № 105
Количество хозяйств, • где проводилась вакцинация овец Всего вакцинировано овцематок, гол Контрольные животные, гол Аборты сальмонеллезной этиологии, %
Вакцинированные Контрольные
35 249106 43666 - 4,2
Таким образом, результаты испытаний свидетельствуют о высокой эпизоотологической эффективности живой сухой вакцины из штамма S.aboгtusovis № 105. На вакцину разработана и утверждена нормативно-техническая документация (наставление, ТУ, инструкция по изготовлению). ...
Совершенствование мер борьбы с сальмонеллезом овец
Осуществление мероприятий в соответствии с инструкцией по борьбе с сальмонеллезом животных позволило, в последние годы, улучшить эпизоотическую ситуацию в стране по сальмонеллезу. Вместе с тем, в некоторых регионах, особенно в Северо-Кавказском экономическом районе, сальмонеллез овец встречается из года в год и имеет тенденцию к распространению. Этому способствуют отгонно-пастбищное содержание животных, наличие благоприятных климатических условий для сохранения возбудителя во внешней среде, отсутствие надежных средств для специфической профилак-
тики и методов диагностики, а также должного внимания со стороны практических ветеринарных специалистов к вопросам диагностики, дифференциальной диагностики и лечения. Все это приводит к тому, что остается определенный процент переболевших животных-сальмонеллоносителей, которые являются потенциальным источником возбудителя инфекции.
С учетом изложенного и на основании результатов собственных исследований нами разработаны рекомендации «Диагностика и меры борьбы с сальмонеллезом овец», которые были одобрены Ученым советом Даггоссельскохозяйственной академии и научно-техническим советом МСХ Республики Дагестан (протокол № 6 от 4. 02. 03 г.) и внедрены в ветеринарную практику.
Мероприятия по борьбе с сальмонеллезом овец должны быть направлены на повышение резистентности организма овцематок и новорожденных ягнят к заболеванию, недопущение заноса инфекции в благополучные хозяйства, ликвидацию источников возбудителя инфекции в неблагополучных хозяйствах, своевременную организацию и проведение комплекса ветеринарно-санитарных и зоо-гигиенических правил подготовки суягных овцематок к окотам.
В благополучных по сальмонеллезу овец хозяйствах основное внимание должно быть-уделено эпизоотологическому надзору и проведению общих профилактических мероприятий, для чего категорически запрещается:
-приобретение из неблагополучных хозяйств баранов-производителей и овцематок для племенных и хозяйственных целей;
-пастьба и водопой овец с животными неблагополучных хозяйств, особенно на трассах перегона;
-завоз и скармливание животным кормов из неблагополучных хозяйств;
- кормление ягнят-двойняшек и сирот под случайными матками; -перемещение овцепоголовья чабанов и соединение их с основной отарой без ветеринарного свидетельства и предварительного исследования на сальмонеллез;
-использование спермы больных или переболевших баранов-производителей (сальмонеллоносителей) для искусственного осеменения или для вольной случки.
Из ветеринарно-санитарных мероприятий необходимо: -проводить плановые серологические обследования не менее 20-25 % овец в РА или РИГА к объему поголовья;
- дважды в год (весной и осенью) проводить механическую очистку кошар, сакманов, с последующей дезинфекцией и дератизацией.
Всех восприимчивых животных угрожаемых хозяйств вакцинировать живой сухой вакциной из штамма S.abortusovis 105 однократно за 20-25 дней до или спустя 1-1,5 месяца после осеменения.
При появлении сальмонеллеза хозяйство объявляется неблагополучным и проводят следующие мероприятия:
-в срочном порядке в лабораторию направляют патматериал для уточнения диагноза;
-всех животных подвергают диспансеризации с изоляцией больных и подозреваемых в заболевании в отдельную отару;
-для ухода и кормления больных выделяют специально обслуживающий персонал со спецодеждой;
- абортированные плод, плаценты, трупы овцематок, и ягнят сжигают;
-категорически запрещается перемещение и перегруппировки овец внутри хозяйства, района;
- всех больных овцематок и баранов-производителей сдают на убой;
• - ягнят, подозреваемых в заболевании, изолировать, содержать в теплых, чистых сакманах без сквозняков, сырости и резких колебаний температуры и кормить под матерью через каждые 2-3 часа;
- больным ягнятам с лечебной целью вводят внутримышечно 23-кратно гипериммунную сыворотку в дозе 15-30 см3 (в зависимости от возраста). Лучший эффект дает комплексное применение сыворотки с антибиотиками - левомицитином (0,05 г/кг внутрь 2-3 раза в день), тетрациклином (3-5 мг на кг веса 2-3 раза в течение 6-7 дней), а также фуразолидоном в дозах 0,3-0,5 г 2 раза в день 6-7 дней подряд;
- навоз подвергают биотермическому обезвреживанию;
- инфицированные пастбища разрешается использовать летом через 2 мес, а зимой - через 6 мес после проведения комплекса лечебно-профилактических мероприятий.
Хозяйство объявляется благополучным через 1 год после прекращения болезни - и проведения заключительных ветеринарно-санитарных мероприятий.
Повсеместное применение в РД разработанных нами мер борьбы с сальмонеллезом овец позволило сократить число положительно реагирующих животных на сальмонеллез, а также гибель овцематок и отход молодняка более чем в 5 раз.
выводы
1. Сальмонеллез мелкого рогатого скота имеет довольно значительное распространение в южном регионе России. Количество неблагополучных пунктов в Северо-Кавказском экономическом районе в 1991-2002 гг составило 71% от их общего числа, имеющихся в стране.
2. Сальмонеллез овец в Южном регионе носит эпизоотический характер: число неблагополучных пунктов составляет 41%, заболеваемость - 8%, смертность -1,1%.
3. Распространению сальмонеллеза способствуют массовые перегруппировки и перемещения овец-сальмонеллоносителей, особенно в период осенних перегонов; водопой из инфицированных водоемов; почвы с нейтральной или слабо щелочной реакцией, определяющие длительное сохранение сальмонелл во внешней среде; нарушение ветеринарно-санитарных и зоогигиенических условий содержания и кормления животных.
4. Наиболее характерными признаками сальмонеллеза у овцематок являются аборты на 3-4 месяца суягности, рождение слабых, нежизнеспособных ягнят, задержание последа, метриты и эндометриты. Аборты сальмонеллезной этиологии у суягных овцематок достигает 55-60%, а гибель ягнят 60-100%. У ягнят болезнь протекает преимущественно остро и сопровождается лихорадкой, угнетенностью, запорами, сменяющимися поносами и пневмониями.
5. Патологоанатомические изменения у овец и ягнят в большинстве случаев проявляются в виде септико-токсических процессов, гастроэнтеритов, некротических изменений в паренхиматозных органах и плаценте, резкого увеличения селезенки.
6. От павших овцематок, ягнят, абортировавших плодов выделено 313 изолятов сальмонелл, которые при идентификации отнесены к сероварианту Э.аЬ011и80у|8-312 (99,7%) и Э ^ЬНп-1 (0,3%). Выделенные штаммы были патогенны для белых мышей, имели наибольшую чувствительность к тетрациклину, левомицитину, мономи-цину и меньшую - к неомицину, полимиксину, стрептомицину.
7. Генетическими маркерами селекционированного штамма Э.аЬогШзсмз № 105 является его способность расти в питательной среде с содержанием более 200 мкг/см3 стрептомицина и рифампи-цина.
8. Остаточная вирулентность штамма Э.аЬогШзомз № 105 для мышей составила 1,1 * 10е мк/мл. Шестикратный пассаж через организм чувствительных животных не повышает остаточную вирулентность. Иммуногенная активность штамма в 5,3 раза выше исходного.
9. Разработана технология производства живой вакцины из селекционированного штамма Б^Ьси^с^ № 105. Сравнительное изучение полученной вакцины с инактивированной тиомерсаловой и живыми (из штамма S.typhimurium-274 (Киргизия) и штамма Б abortusovis (Болгария) показало ее высокую эпизоотологическую эффективность.
10. Разработана и внедрена в ветеринарную практику обоснованная система мероприятий против сальмонеллеза овец, включающая в себя лабораторную диагностику и специфическую профилактику с применением высокоиммуногенной живой вакцины, что существенно повысило эффективность противосальмонеллезных мероприятий и улучшило эпизоотическую обстановку по сальмо-неллезу овец не только в южном регионе, но и в целом по России.
11. Экономический эффект от применения живой вакцины из селекционированного штамма Б^Ьси^с^ № 105, в расчете на одну овцематку, составил 29,64 рубля на рубль затрат.
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
1. Мероприятия против сальмонеллеза овец необходимо проводить в соответствии с "Рекомендациями по диагностике и мерам профилактики при сальмонеллезах" (Одобрено научно-техническим советом МСХ РД, 2002 г.).
2. Селекционированный аттенуированный штамм Б abortusovis № 105 может быть использован в качестве вакцинного для специфической профилактики сальмонеллеза мелкого рогатого скота.
3. Для оценки иммуногенности, безвредности и остаточной вирулентности штаммов S.abortusovis в качестве лабораторных моделей рекомендуется использовать белых мышей.
4. В неблагополучных и угрожаемых по сальмонеллезу хозяйствах, районных и регионах овец следует вакцинировать "Вакциной против сальмонеллеза овец из штамма S.abortusovis № 105". Вакцину готовят, контролируют качество и применяют согласно "Инструкции по изготовлению и контролю", "Техническим условиям", "Временного наставления по применению" (Утверждены и согласованы с Департаментом ветеринарии МСХ РФ в 2001 г.)
5. Система мероприятий по борьбе с сальмонеллезом овец будет представлена в Департамент ветеринарии МСХ РФ для включения в "Инструкцию о мероприятиях по борьбе с сальмонеллезами животных и птиц". Применение этой системы в ветеринарной практике обеспечит стойкое благополучие овцеводства страны по сальмонеллезу."
6. Материалы работы используются в учебном процессе в сельскохозяйственных вузах по специальности 310800 (Ветеринария).
СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО МАТЕРИАЛАМ ДИССЕРТАЦИИ
1. Джамбулатов З.М. Сборник дополнительных материалов к ветеринарному законодательству //Выпуск III.- Утв. Комитетом Правительства Республики Дагестан по ветеринарии 18 мая 1995 г., № 01.- Махачкала, 1995, 156 с.
2. Джамбулатов З.М., Ахмедов М.М. Эпизоотологический надзор за инфекциями в Республике Дагестан //Республ. науч.-практич. конф. «Состояние и перспективы развития животноводства в Дагестане»: Тез. докл.- Махачкала: ДГСХА, 1996.-С. 98-100.
3. Джамбулатов З.М., Ахмедов М.М., Юсупов О.Ю. Некоторые вопросы эпизоотологии сальмонеллеза овец в Дагестане //Междунар. конф., посвящ. 30-летию Прикаспийского ЗНИВИ «Современное состояние и перспективы интеграции ветеринарной науки и практики в условиях реформирования сельскохозяйственного производства прикаспийского региона»: Тез. докл.- Махачкала: ПЗНИВИ, 1997.- С. 82-84.
4. Джамбулатов З.М., Ахмедов М.М." Состояние мер борьбы с зоо-антропонозами //Междунар. науч.-практич. конф., посвящ. 40-летию ВНИиВВиМ «Диагностика, профилактика и меры борьбы с особо опасными и экзотическими болезнями животных»: Тез. докл.- Покров ВНИИВВиМ, 1998.-С. 145-148.
5. Устарханов П.Д., Ахмедов М.М., Джамбулатов З.М., Гами-дов Ю.Х. Клинико-эпизоотологические и патоморфологические особенности сальмонеллеза овец в Прикаспийском регионе //Сб. науч. тр. «Этика и профессиональное мастерство в образовании и ветеринарии».- Барнаул: АГАУ, 2000.- С. 172-173.
6. Ахмедов М.М., Джамбулатов З.М., Малахов Ю.А., Юсу» пов О.Ю., Заерко В.И., Ахмедова A.M., Гаджимиева М.М: Специфическая профилактика сальмонеллеза сельскохозяйственных животных //Всерос. науч.-произв. конф. «Разработка и освоение производства нового поколения лекарственных средств для животных и их применения в ветеринарной практике»: Тез. докл. - Ставрополь: ФГУП «Ставропольская биофабрика», 2000. - С. 100-101.
7. Ахмедов М.М., Джамбулатов З.М., Устарханов П.Д., Маха чевА.И., Кайтмазова М.Г., Мусиев Д.Г., Гамидов Ю.Х. Некоторые вопросы эпизоотологии сальмонеллеза -животных и птиц в Дагестане //Республ. науч.-практич. конф. «Проблемы ветеринарии в Дагестане в современных условиях»: Тез. докл. - Махачкала: ПЗНИВИ, 2000. - С. 8-9.
8. Джамбулатов З.М. Организация деятельности госветслужбы. //Ветеринария. - 2001 .-№11.- С.3-4.
9. Джамбулатов З.М. Биологические свойства эпизоотических штаммов сальмонелл //Республ. науч.-практич..конф., посвящ летию со дня рождения засл. деят. науки РД, досгяаеиов^ь
БИБЛИОТЕКА CfiwATt
СЭ РО {
Спасского В В. «Актуальные проблемы ветеринарной медицины»: Тез. докл. - Махачкала: ДГСХА, 2002. - С. 43.
10. Кайтмазова М.Г., Ахмедов М.М., Джамбулатов З.М., Хали-ковMX, Алиев А.Д. Сальмонеллез птиц //Республ. науч -практич. конф., посвящ. 100-летию со дня рождения засл. деят. науки РД, докт. вет. наук, проф. Спасского В.В. «Актуальные проблемы ветеринарной медицины»: Тез. докл. - Махачкала: ДГСХА, 2002. - С. 72-73.
11. Джамбулатов З.М., Ахмедов М.М., Кайтмазова М.Г. Актуальность проблемы сальмонеллезов //Межрегион, юбил. науч.-практич. конф., посвящ. 70-летию образования ДГСХА «ВУЗ и АПК: задачи, проблемы и пути решения»: Сб. науч. тр. - Махачкала- ДГСХА, 2002. - С. 11-14.
12. Ахмедов М.М., Джамбулатов З.М., Малахов Ю.А. Разработка средств специфической профилактики сальмонеллеза овец // IV Меж-дунар. науч.-практич. конф. «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и ветеринарно-санитарного контроля сельскохозяйственной продукции»: Тез. докл. - М.: МГУПБ, 2002. - Т. 2. - С. 34.
13. Джамбулатов З.М. Ветеринарная защита животных при перегоне на сезонные пастбища //Ветеринария. - 2003. - № 2. - С. 3-5
14 Джамбулатов З.М., Ахмедов М.М. Эпизоотология и меры профилактики сальмонеллеза овец // Ветеринария. - 2003. - № 5. - С. ' 718.
15. Ахмедов М.М., Джамбулатов З.М., Девришов Д.А. Диагностика инфекционных болезней //Методические указания /Утв. НТС Комитета Правительства РД по ветеринарии 04 02.2003 г., пр. № 6. - Махачкала: ДГСХА, 2003, 24 с.
16. Джамбулатов З.М., Ахмедов М.М. Сальмонеллез овец и меры борьбы с ним //Рекомендации: Утв. НТС Комитета Правительства РД по ветеринарии 04.02.2003 г,, пр. № 6. - Махачкала: ДГСХА. - 2003,19 с.
17. Воронин Е.С., Грязнева Т.Н., Тихонов И.В., Девришов Д.А., Джамбулатов З.М., Ахмедов М.М. Выделение и идентификация условно-патогенных микроорганизмов и сальмонелл при острых кишечных заболеваниях молодняка животных //Учебно-методическое пособие: Утв. учебно-методическим объединением высших учебных заведений РФ по образованию в области ветеринарии и зоотехнии 10 02.2003 г, пр. № 2. - М.: МГАВМиБ, 2003, 105 с.
18 Ургуев К.Р., Джамбулатов З.М., Ашаханов X.- Руководство по эпизоотологии, диагностике, профилактике и мерам борьбы с инфекционными болезнями животных в Дагестане //Монография, - Махачкала; изд-во «Газетно-журнальная типография», 2003, 420 с.
19 Джамбулатов З.М'., Ахмедов М.М.Сальмонеллез - медицинская и ветеринарная проблема //Науч.-практич. конф.,' посвящен. 35-летию Прикаспийского зонального НИВИ Тез. докл.-Махачкала НИВИ, 2003. -С. 40.
Сдано в производство 12.04.2004 г. Ризограф Тираж 100 Заказ 160 Издательско-полиграфический отдел ФГОУ ВПО МГАВМиБ им. К.И. Скрябина.
109472, Москва, ул. Академика Скрябина, 23
1-92 1*
Оглавление диссертации Джамбулатов, Зайдин Магомедович :: 2004 :: Москва
ВВЕДЕНИЕ.
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
1.1. Распространение сальмонеллеза в Российской Федерации и за ее пределами.
1.2. Биологические свойства сальмонелл.
1.3. Роль сальмонелл в патологии животных.
1.4. Патогенез и клинические признаки сальмонеллеза овец.
1.5. Диагностика сальмонеллеза животных.
1.6. Специфическая профилактика сальмонеллеза.
1.6.1. Инактивированные вакцины.
1.6.2. Живые вакцины.
1.6.3. Ассоциированные вакцины.
1.7. Лечение овец при сальмонеллезе.
2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.
2.1. Материалы и методы.
2.1.1. Материалы.
2.1.2. Методы.
2.2. Результаты исследований.
2.2.1. Эпизоотологические показатели при сальмонеллезе овец на Северном Кавказе.
2.2.1.1. Источники и пути распространения сальмонеллеза овец.
2.2.1.2. Клиническая картина сальмонеллеза у овец.
2.2.1.3. Патологоанатомические изменения органов и тканей.
2.2.2. Биологическая характеристика выделенных культур S.abortusovis.
2.2.2.1. Морфологические, тинкториальные, культуральные свойства
2.2.2.2. Ферментативные свойства штаммов.
2.2.3. Идентификация и селекция штаммов S.abortusovis.
2.2.4. Вирулентные свойства штаммов S.abortusovis.
2.2.5. Токсические и токсигенные свойства выделенных культур.
2.2.6. Чувствительность S.abortusovis к антибиотикам.
2.2.7. Диагностика сальмонеллеза овец.
2.2.7.1. Серологические исследования.
2.2.7.2. Бактериологические исследования.
2.2.7.3. Изучение вирулентности и иммуногенных свойств штамма S.abortusovis № 105.
2.2.8. Совершенствование специфической профилактики сальмонеллеза овец.
2.2.8.1. Эпизоотологические и экономические показатели эффективности применения различных вакцинных препаратов.
2.2.8.2. Разработка технологии промышленного производства живой сухой вакцины из селекционированного штамма S.abortusovis № 105.
2.2.8.3. Производственные испытания вакцины.
2.2.9. Совершенствование мер борьбы с сальмонеллезом овец.
3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ.
4. ВЫВОДЫ.
5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.
Введение диссертации по теме "Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология", Джамбулатов, Зайдин Магомедович, автореферат
Актуальность темы
В современных условиях особая ответственность ложится на науку, призванную ускорить разработку и внедрение в ветеринарную практику современных методов диагностики и средств специфической профилактики болезней животных, обеспечивающих мониторинг наиболее распространенных зооантропозоонозов, к числу которых относится и возбудитель сальмонеллеза. По заключению комитета экспертов ВОЗ (1991) сальмонеллез не имеет себе равных по сложности диагностики, профилактики и лечения (36). .
Сальмонеллез поражает сельскохозяйственных и диких животных различных видов, преимущественно молодняк, и характеризуется широким бактерионосительством, вызывает тяжелейшие токсикоинфекции у людей. Так, в нашей стране, по сообщениям Загаевского И., Жорницкого А., 1977; Поповой П. и др., 1982; Ахмедова А., 1983, в структуре заболеваемости всех зоонозов сельскохозяйственных млекопитающих и птиц сальмонеллез составляет 15 -45% (И, 12, 50,51, 132).
Современная систематика представителей рода Salmonella насчитывает более 2500 сероваров, объединенных в 52 серогруппы, из которых на территории Европы диагностируются 150. Однако у сельскохозяйственных животных заболевание вызывается определенными адаптированными сероварами сальмонелл, в частности, у телят - S.dublin, овец - S.abortusovis, поросят -S.choleraesuis и у животных других видов и птиц - S.typhimurium (81, 122).
Борьба с сальмонеллезом включает комплекс мероприятий, в которых значительная роль отводится вакцинопрофилактике. За последние десятилетия исследователями с успехом используются достижения в изучении генетики бактерий для получения вакцинных штаммов со стабильно сниженной вирулентностью и улучшенными иммуногенными свойствами.
Для специфической профилактики сальмонеллеза у телят, поросят и птиц предложен ряд инактивированных и живых вакцин, но вопрос разработки высокоиммуногенного биопрепарата против сальмонеллезного аборта овец до сих пор остается открытым.
Торгово-экономические связи России с другими странами мира, в том числе завоз в страну животных и продуктов убоя, ставят перед ветеринарной службой серьезную проблему по предотвращению заноса из-за рубежа возбудителей различных инфекционных болезней, и, в первую очередь, сальмонел-леза.
Несмотря на достигнутые определенные успехи в изучении сальмонеллеза животных, многие вопросы, связанные с краевой эпизоотологией, особенностями экологии, разработкой простых методов диагностики, остаются не решенными. Совершенствование качества, а также разработка новых вакцин против сальмонеллезного аборта овец, являются актуальной задачей, особенно для республик Северного Кавказа.
Учитывая исключительную актуальность проблемы заболевания животных сальмонеллезом, его тенденцию к дальнейшему распространению, а также увеличение роли в патологии человека и животных, социально-экономический ущерб и отсутствие надежных средств специфической профилактики сальмонеллезного аборта у овец, на протяжении последних лет в планах научно-исследовательских работ Прикаспийского зонального НИВИ и Даггоссельхозакадемии предусматривалось решение упомянутых вопросов.
Цель и задачи исследований.
Целью данной работы является изучение эпизоотологических особенностей и этиологической структуры сальмонеллеза овец в республиках, краях и областях юга Российской Федерации, а также разработка и внедрение научно обоснованной системы мер борьбы с сальмонеллезом овец.
Для достижения указанной цели необходимо было решить следующие задачи:
1. Изучить эпизоотическую ситуацию и эффективность противосальмонел-лезных мероприятий в регионе Северного Кавказа в период с 1991 по 2002 гг.
2. Выяснить этиологическую структуру заболеваемости овец сальмонеллезом в регионе за 12 лет.
3. Изучить биологические свойства штаммов-изолятов.
4. Определить свойства наиболее перспективных штаммов-изолятов для последующего использования их в качестве производственных, обращая особое внимание на иммуногенность и абортогенность.
5. Изготовить лабораторные и производственные образцы вакцин и оценить их эффективность.
6. Разработать нормативную документацию на вакцину (наставление по применению, ТУ, инструкция по изготовлению препарата) и предОставить для регистрации и сертификации вакцины.
7. Разработать и внедрить^ ветеринарную практику научно обоснованную систему мероприятий по борьбе с сальмонеллезом овец.
Научная новизна полученных результатов
Впервые изучены эпизоотологические особенности и этиологическая структура сальмонеллеза овец на юге Российской Федерации.
Селекционированы аттенуированные штаммы S.abortusovis с высокой им-муногенностью.
Разработана технология производства живой сухой вакцины против саль-монеллезного аборта овец.
Разработан и научно обоснован комплекс мероприятий по борьбе с сальмонеллезом овец с учетом зональных особенностей и системы ведения овцеводства в регионе.
Научная и практическая значимость полученных результатов
1. Разработаны и утверждены Департаментом ветеринарии МСХ Российской Федерации:
- врехМенное наставление по применению сухой живой вакцины против сальмонеллеза овец из штамма S.abortusovis № 105;
- технические условия - ТУ 384-113-00494185-96;
- инструкция по изготовлению и контролю сухой живой вакцины против сальмонеллеза овец из штамма S.abortusovis № 105.
2. Разработан сборник дополнительных материалов к ветеринарному законодательству (выпуск III), утв. Комитетом Правительства Республики Дагестан по ветеринарии 18 мая 1995 г., № 01.
3. Разработаны и внедрены в ветеринарную практику методические указания «Диагностика инфекционных болезней», утвержденные НТС Комитета Правительства РД по ветеринарии 04.02.2003 г. (пр. № 6).
4. Разработаны и внедрены в ветеринарную практику рекомендации «Сальмонеллез овец и меры борьбы с ним», утвержденные НТС Комитета Правительства РД по ветеринарии 04.02.2003 г. (пр. № 6).
5. Разработаны и утверждены Департаментом ветеринарии РФ методические рекомендации «Выделение и идентификация бактерий желудочно-кишечного тракта животных» (М., 2004 г.).
6. Создано учебно-методическое пособие «Выделение и идентификация условно-патогенных микроорганизмов и сальмонелл при острых кишечных заболеваниях молодняка животных», утвержденное учебно-методическим объединением высших учебных заведений РФ по образованию в области ветеринарии и зоотехнии 10.02.2003 г. (пр. № 2).
Личный вклад соискателя
Автору принадлежат организация и непосредственное осуществление исследований, анализ и теоретическое обобщение полученных данных, формулирование выводов, разработка технической документации на сухую живую вакцину против сальмонеллеза овец из штамма S.abortusovis № 105. В работе использованы материалы, полученные лично автором.
Апробация результатов диссертации
Основные результаты проведенных исследований были доложены на республиканской научно-практической конференции «Состояние и перспективы развития животноводства в Дагестане» (Махачкала, 1996); международной конференции, посвященной 30-летию Прикаспийского ЗНИВИ «Современное состояние и перспективы интеграции ветеринарной науки и практики в условиях реформирования сельскохозяйственного производства прикаспийского региона» (Махачкала, 1997); международной научно-практической конференции, посвященной 40-летию ВНИИВВиМ «Диагностика, профилактика и меры борьбы с особо опасными и экзотическими болезнями животных» (Покров, 1998); Всероссийской научно-производственной конференции «Разработка и освоение производства нового поколения лекарственных средств для животных и их применение в ветеринарной практике» (Ставрополь, 2000); республиканской научно-практической конференции «Проблемы ветеринарии в Дагестане в современных условиях» (Махачкала, 2000); республиканской научно-практической конференции, посвященной 100-летию со дня рождения заслуженного деятеля науки РД, докт. вет. наук, проф. Спасского В.В. «Актуальные проблемы ветеринарной медицины» (Махачкала, 2002); межрегиональной юбилейной научно-практической конференции, посвященной 70-летию образования ДГСХА «ВУЗ и АПК: задачи, проблемы и пути решения» (Махачкала, 2002); 4-ой международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и ветеринарно-санитарного контроля сельскохозяйственной продукции» (Москва, 2002).
Публикации
По результатам диссертации опубликовано 19 научных работ, в т.ч. монография, сборник дополнительных материалов к ветеринарному законодательству, учебно-методическое пособие, методическое указание, методические рекомендации, 3 статьи в научных журналах, 11 статей и тезисов докладов в сборниках конференций. Зарегистрировано 4 отчета по законченным темам.
Объем и структура диссертации
Диссертация изложена на 176 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения результатов исследований, выводов, практических предложений, библиографи
Заключение диссертационного исследования на тему "Сальмонеллез овец в южных регионах России"
4. ВЫВОДЫ
1. Сальмонеллез мелкого рогатого скота имеет довольно значительное распространение в южном регионе России. Количество неблагополучных пунктов в Северо-Кавказском экономическом районе в 1991-2002 гг. составило 71 % от их общего числа, имеющихся в стране.
2. Сальмонеллез овец в Южном регионе носит эпизоотический характер: число неблагополучных пунктов составляет 41 %, заболеваемость - 8 %, смертность -1,1%.
3. Распространению сальмонеллеза способствуют массовые перегруппировки и перемещения овец-сальмонеллоносителей, особенно в период осенних перегонов; водопой из инфицированных водоемов; почвы с нейтральной или слабо щелочной реакцией, определяющие длительное сохранение сальмонелл во внешней среде; нарушение ветеринарно-санитарных и зоогигиениче-ских условий содержания и кормления животных.
4. Наиболее характерными признаками сальмонеллеза у овцематок являются аборты на 3-4 месяца суягности, рождение слабых, нежизнеспособных ягнят, задержание последа, метриты и эндометриты. Аборты сальмонеллезной • этиологии у суягных овцематок достигает 55-60 %, а гибель ягнят - 60-100 %. У ягнят болезнь протекает преимущественно остро и сопровождается лихорадкой, угнетенностью, запорами, сменяющимися поносами и пневмониями.
5. Патологоанатомические изменения у овец и ягнят в большинстве случаев проявляются в виде септико-токсических процессов, гастроэнтеритов, некротических изменений в паренхиматозных органах и плаценте, резкого увеличения селезенки.
6. От павших овцематок, ягнят, абортировавших плодов выделено 313 изолятов сальмонелл, которые при идентификации отнесены к сероварианту S.abortusovis-312 (99,7 %) и S.dublin-1 (0,3 %). Выделенные штаммы были патогенны для белых мышей, имели наибольшую чувствительность к тетрациклину, левомицетину, мономицину и меньшую - к неомицину, полимиксину, стрептомицину.
7. Генетическими маркерами селекционированного штамма S.abortusovis № 105 является его способность расти в питательной среде с содержанием более 200 мкг/см3 стрептомицина и рифампицина.
8. Остаточная вирулентность штамма S.abortusovis № 105 для мышей соо ставила 1,1 х 10 м.к./мл. Шестикратный пассаж через организм чувствительных животных не повышает остаточную вирулентность. Иммуногенная активность штамма в 5,3 раза выше исходной.
9. Разработана технология производства живой вакцины из селекционированного штамма S.abortusovis № 105. Сравнительное изучение полученной вакцины с инактивированной тиомерсаловой и живыми (из штамма S.typhimurium-274 (Киргизия) и штамма S.abortusovis (Болгария) показало ее высокую эпизоотологическую эффективность.
10. Разработана и внедрена в ветеринарную практику обоснованная система мероприятий против сальмонеллеза овец, включающая в себя лабораторную диагностику и специфическую профилактику с применением высокоим-муногенной живой вакцины, что существенно повысило эффективность про-тивосальмонеллезных мероприятий и улучшило эпизоотическую обстановку по сальмонеллезу овец не только в южном регионе, но и в целом по России.
11. Экономический эффект от применения живой вакцины из селекционированного штамма S.abortusovis № 105, в расчете на одну овцематку, составил 29,64 рубля на рубль затрат.
5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
1. Мероприятия против сальмонеллеза овец необходимо проводить в соответствии с "Рекомендациями по диагностике и мерам профилактики при сальмонеллезах" (Одобрено научно-техническим советом МСХ РД, 2002 г.)
2. Селекционированный аттенуированный штамм S.abortusovis № 105 может быть использован в качестве вакцинного для специфической профилактики сальмонеллеза мелкого рогатого скота.
3. Для оценки иммуногенности, безвредности и остаточной вирулентности штаммов S.abortusovis в качестве лабораторных моделей рекомендуется использовать белых мышей.
4. В неблагополучных и угрожаемых по сальмонеллезу хозяйствах, районных и регионах овец следует вакцинировать "Вакциной против сальмонеллеза овец из штамма S.abortusovis № 105". Вакцину готовят, контролируют качество и применяют согласно "Инструкции по изготовлению и контролю", "Техническим условиям", "Временного наставления по применению" (Утверждены и согласованы с Департаментом ветеринарии МСХ РФ в 2001 г.)
5. Система мероприятий по борьбе с сальмонеллезом овец будет представлена в Департамент ветеринарии МСХ РФ для включения в "Инструкцию о мероприятиях по борьбе с сальмонеллезами животных и птиц". Применение этой системы в ветеринарной практике обеспечит стойкое благополучие овцеводства страны по сальмонеллезу.
6. Материалы работы используются в учебном процессе в сельскохозяйственных вузах по специальности 310800 - «Ветеринария», квалификации -ветеринарный врач.
Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2004 года, Джамбулатов, Зайдин Магомедович
1. Авцын А.И., Пархоменко Ю.Н., Емельяненко И.И. Энтеротоксины сальмонелл и молекулярные механизмы их действия // Успехи совр. биологии. -1987. -Вып.1. -Т.1-3. -С.18-30.
2. Агабабян М.М. О сальмонеллезном бактерионосительстве у овец // Науч. тр. Ставр. с.-х. ин-та. -1973. -Вып.36. -С.310-313.
3. Аливердиев А.А., Раджабов М.Д. О сальмонеллоносительстве при паратифе овец // Сб. науч. раб. Даг. НИВИ. -1-76. -Т.8. -С.22-27.
4. Андреева З.М., Щобухова Т.С., Янкина Н.Ф. Иммуноферментный анализ для определения антител к сальмонеллам // Методы иммуноферментного анализа в биологии и медицине. -М., 1983. -С.62-64,
5. Андросова С.В., Першин Е.Я. К вопросу об экологической толерантности сальмонелл, выделенных из воды поверхностных водоемов // ЖМЭИ. -1982.-№ 6. -С.33-35.
6. Арбузова В.А. Материалы к биологии сальмонелл, патогенезу и эпидемиологии сальмонеллезов: Автореф. дис.докт. мед. наук. -Л.: ЛГСМИ.1975,-36 с.
7. Архангельский И.И., Яровой П.Ф., Новак Д.Д. Квасцовая вакцина и ее роль в профилактике паратифа телят // Профилактика и лечение заболеваний молодняка сельхозживотных. -М.: Сельхозгиз, 1957. -С.181 184.
8. Архангельский И.И., Баданин Н.В. Заразные болезни телят // Паратиф (сальмонеллез). -М.: Сельхозгиз, 1960, -С.5-68.
9. Архангельский И.И., Караваев Ю.Д., Сидорчук А.А. Экспресс-метод диагностики сальмонеллезов овец // Ветеринария. -1976. -№ 4. -С.108-109.
10. Архангельский И.И., Яровой П.Ф., Новак Д.Д. Вакцина против паратифа телят//Ветеринария. -1995. -№ 1.- С 16-23.
11. Ахмедов A.M. Сальмонеллезы (паратифы) молодняка. -М.: Колос, 1971. -С. 9-18.
12. Ахмедов A.M. Сальмонеллезы молодняка. -М.: Колос. -1983. -238 с.
13. Байдевлятов A.M., Герман В.И., Кипрыч В.В. и др. Система ветеринар-но-санитарных мероприятий в промышленном птицеводстве. -М.- Киев: Урожай, 1987.-152 с.
14. Батурина О.Ш., Матвиенко Б.А., Арзымбетов Д.Е. Комплексная иммунопрофилактика хламидиоза и сальмонеллеза овец // Бюлл. ВИЭВ, -1986. -Т.62. -С. 18-20.
15. Байтурина О.Ш., Матвиенко Б.А. Вирусный аборт овец в некоторых хозяйствах Казахстана // Тр. Алма-Атинского вет. ин-та. -1969. -Т.15. -С.112-118.
16. Бакулов И.А., Буткин Е.Т., Ведерников В.А., Юрков Г.Г. Эпизоотология с микробиологией. -М.: Колос, 1981. -С. 124-131.
17. Банников А.А. Хуршудянц Р.С. Паратиф овец в условиях Ставропольского края // В кн.: «Болезни овец и коз». -М. -1955.
18. Башкатов Г.А., Конеев И.М., Новиков В.Г. Вопросы эпизоотологии сальмонеллеза овец в Ставропольском крае // Болезни овец в Ставропольском крае: Ставрополь. -1991. -С.24-32.
19. Белая И.Ф., Данилкин В.К. Реакция коагглютинации в диагностике пищевых токсикоинфекций // Сов. медицина. -1984. -№ 10. -С.91-93.
20. Белик Н.В., Гришина В.А. Этиология массовых абортов у овец в хозяйствах Уральской области // Болезни сельскохозяйственных животных и птиц, их профилактика и лечение // Сб. научн. тр.- Л., -1976. -Вып. 43. -С. 73.
21. Белоусов В.И. Средства специфической профилактики и диагностики хламидиоза, кампилобактериоза, сальмонеллеза и лептоспироза животных: Автореф. дисс. докт. вет. наук. -М., 1997. -41 с.
22. Бияшев К.Б., Ахметсадыков Н.Н., Тулкибаев К.А. Апробация живых вакцин против сальмонеллезного аборта овец // Вестник, с-х. науки Казахстана. -Алма-Ата. -1991. -№ 2. -С.88-90.
23. Блохина И.В., Хахарева Т.Н., Белова Т.П. Значение антибиотико-резистентности возбудителей сальмонеллеза в эпидемиологии и тактика борьбы с инфекцией // Антибиотики. -1984. -№ 2. -С. 112-116.
24. Блохина И.В., Брусникина А.И., Анисимова JI.C. Генетические детерминанты резистентности к антибиотикам бактерий рода Salmonella // Антибиотики и мед. биотехнология. -1987. -Т.22. -№ 8. -С.591-597.
25. Блюгер А.Ф., Новицкий И.Н., Теребкова З.Ф. Сальмонеллез. -М.- Рига: Зинатне, 1975.-330 с.
26. Бойцов А.Г. Санитарная микробиология. -JL: ЛГСМИ, 1988. 71 с.
27. Бондаренко В.М., Романова Ю.М. Иммунобиологические препараты нового поколения и методы их контроля. -М., 1988. -258 с.
28. Борисович Ю.Ф., Кириллов JI.B. //Ветеринарные препараты: Справочник. -М.: Колос. -1981. -448 с.
29. Борьба с сальмонеллезом: роль ветеринарии и пищевой гигиены // Доклад комитета экспертов ВОЗ №774. -Женева, ВОЗ: 1991. -83 с.ЗО. Брода П. Плазмиды. -М.: Мир, -1982. -220 с.
30. Бутьянов Д.Д., Степанов Г.В. Напряженность иммунитета при одновременной вакцинации телят против пастереллеза, сальмонеллеза и трихофитии //Проблемы ветер, иммун. ВАСХНИЛ. Агропромиздат, 1985, -С.113-114.
31. Ведерников» В.А., Погталев П.С., Землянова В.И. Сальмонеллезы и листериоз сельскохозяйственных животных в РФ //Межд. симпоз. «Пищевые зоонозы», 1-3 марта 1995 г., М.: Россия. -С.35.
32. Войно-Ясенецкий М.В. Биология и патология инфекционных процессов. -Л.: Медицина, 1981. -207 с.
33. Воложанцев Н.Я., Светоч Э.Л., Барзилов А.С. Получение вакцинных штаммов сальмонелл с помощью инсерционного мутагенеза // Ветеринария. -1997. -№ 9. -С. 20-24.
34. Волкова А.А. Роль паратифа в этиологии абортов каракульских овец // Бюлл. Узбек. НИВИ, -1935. -№ 4.
35. Волкова А.А., Жбрыкунов А.И., Свириденко В.Ф. Из опыта изученияпаратифа овец // Ветеринария. -1973. -№ 2. -С.49-50.
36. Воронин Е.С., Девришов Д.А., Петров Р.В. Концепция, этиология и профилактика диарей и респираторных болезней новорожденных телят // Тез. докл. Всерос. конф. инф. бол. молодн. с.-х. жив-х. -М., 1996. -С.8-9.
37. Гельберт У.Д. Ветеринарная микробиология. -М.: Колос, 1974. -312 с.
38. Грошкин П.И:, Зайцев Р.В. Влияние стимуляторов роста на накопление сальмонелл в бульоне Хоттингера //Матер. Всес. конф. «Эпиз. эпид. ср-ва ди-агн. терап. и специф. проф. инф. болезн., общих для человека и животных».-Львов, 1988, С.267-268.
39. Гурвич Б.М., Куралов A.M., Легких А.С. Первые итоги экспериментального изучения паратифного аборта овец // Тр. Новочерк. вет. зоотехн. инта. 1 Конной Армии. -1934. -Вып.11.
40. Девришов Д.А. Разработка и изучение свойств иммуномодуляторов и биологических препаратов для профилактики и лечения болезней молодняка сельскохозяйственных животных: Автореф. дисс. . докт. биол. наук. -М., -2000. -53 с.
41. Дереза А.Ф. Сальмонеллез // В кн.: Профилактика инфекционных болезней животных. -Минск: Ураджай, 1998. -С.65-68.
42. Дранкин Р.И. Продукты питания и инфекции. -М.: Из-во Саратов, унта. -1984. -258 с.
43. Дорошкевич Л.Ц., Каральников Б.В. О новой реакции угнетения пассивной агглютинации эритроцитов, нагруженных антителами //Тезисы 13-й конф. Казахск. ИЭМ. -Алма-Ата, 1972. -С. 197.
44. Дружинина Г.Ю., Попова Л.М. Вспышки сальмонеллезной инфекции за рубежом // Остр. Каш. инфек. -1995. -Вып.9. -С.60-68.
45. Емельянов П.А. Современное состояние бактериологической диагностики //Материалы XV Всесоюзн. съезда эпидемиологов, микробиологов и инфекционистов. Тбилиси, 1970. -С.134-136.
46. Емельяненко П.А., Дунаев Г.В., Кудлай Д.Г. и др. Ветеринарная мик-робиология.-М.: Колос. -1982. -302 с.
47. Жуков Г.В. Паратиф молодняка. М.: Россельхозгиз, 1962. -170 с.
48. Загаевский И.С. Об эпизоотологической роли сальмонеллезоноситель-ства при паратифе животных //Ветеринария. -1962. -№ 4.
49. Загаевский И.С., Жорницкий А.Л. Сальмонеллезы животных. -Киев: Урожай, 1977.-114 с.
50. Заерко В.И. Производство живых вакцин против сальмонеллеза животных на питательных средах из непищевого сырья: Автореф. дис.канд. вет.наук. М., 1966.-18 с.
51. Зарубинский B.C. О паратифозном аборте овец // Сб. науч. тр. Львовского гос. вет. ин-та. -1949. -Вып. 1. -Т.2.
52. Звягин И.В., Хорьков И.А. и др. Методические рекомендации по разработке режимов замораживания-высушивания биологических препаратов,- М., 1981,-С.ЗЗ.
53. Иванов М.М., Байхунов Я.К., Бжевская А.Н. Некоторые материалы по паратифу овец // Тр. Алма-Атинского вет. зоотех. ин-та, 1948.
54. Иванов М.М. К вопросу специфической профилактики бруцеллеза и паратифа овец // Тр. Гос. науч. контр, ин-та ветпрепаратов. -1959. -Т.8. -С.40-45.
55. Иванов В.Г. Сальмонеллы в импортной рыбной муке // Ветеринария. -1978.-№ 11. -С.56-58.
56. Информационный бюллетень Всесоюзного центра по сальмонеллезам. -М., -1984. -№ 8.-61 с.
57. Информационный бюллетень Всесоюзного центра по сальмонеллам. -М., 1987. -№ 12. -64 с.
58. Информационный бюллетень Всесоюзного центра по сальмонеллам. -М., 1990. -№ 14. -67 с.
59. Иренков И.П., Лучко М.А. Инактивированная вакцина для профилактики сальмонеллеза у мелкого рогатого скота // Матер, межд. симп, «Пищевые запасы». -М., 1995. -С.67-68.
60. Исламов Р.З., Алтаев Б. Профилактика сальмонеллеза овец // Ветеринария.-1990.-№ 8.-С.12-13.
61. Кадымов Р.А., Сафаров Ю.Б. Опыты по вакцинации, овец // Ветеринария. -1971. -№11.
62. Кадымов Р.А., Сафаров Ю.Б. Ассоциированная и комплексная вакцинация животных. -М., 1974. -271с.
63. Кадымов Р.А. Ассоциированная и комплексная вакцинация в интенсивном животноводстве и ее экономическая эффективность. -М., 1983. -С.55-83.
64. Казарян B.C., Щакарян Г. К этиологии и профилактике белого поноса у ягнят // Тр. Армян. НИВИ. -1935. -Вып.1.
65. Калина Г.П. Сальмонеллы в окружающей среде. -М.: Медицина, 1978. -С.8-92.
66. Караваев Ю.Д. Хламидиозный аборт овец (этиология, диагностика, специфическая профилактика): Диссерт. докт. вет. наук. -М., 1999. 52 с.
67. Каральник Б.В., Ли-В.П., Денисов Г.И. Определение при помощи реакции пассивной гемагглютинации антигенов S.tuphimurium в выделениях детей, больных сальмонеллезом //Микробиология. -1988. -№ 8. -С.39-43.
68. Карпухин Г.И., Шапиро Н.И., Андриевская Р.А. Химические вакцины для профилактики кишечных инфекций. -М., 1979. -С.20-34.
69. Касьяненко A.M., Григорьева Л.В. Санитарная микробиология эвтроф-ных водоемов. -М., Киев: Здоровье, 1985. -224 с.
70. Килессо В.А. Кишечные заболевания сальмонеллезной этиологии и меры профилактики. -М.: Медицина, 1969.
71. Килессо В.А., Болотовский В.М. Этиологическая структура сальмонеллеза у людей и животных и серологические типы сальмонелл, выделенных из внешней среды // Советская медицина. -1973. -№ 5. -С. 128.
72. Килессо В.А., Рожнова С.Ш. Этиологическая структура сальмонелле-зов у людей и животных и серологические типы сальмонелл, выделенных из внешней среды // В кн.: Кишечные инфекции. -М.: Медицина, 1975. -С.71-74.
73. Килессо В.А. Актуальные вопросы эпидемиологии и инфекционных болезней. -М., 1979. -С. 102-110.
74. Килессо В.А. Род Salmonella // В кн.: Энтеробактерии. -М.: Медицина, 1985. -С.121-164.
75. Киржаев Ф.С., Яковлев С.С. Сравнительная оценка активности и специфичности антигенов для диагностики сальмонеллезов птиц // Ветеринария, 1987, -№ 9. -С.62-64.
76. Кириллова В.В. Селекционированные штаммы сальмонелл для изготовления инактивированных вакцин против сальмонеллеза животных: Дис. . канд. вет. наук. -М., 1988. -200 с.
77. Кирпиченок В.А., Медведев А.П. Испытание пирогенала и левамизола при вакцинации кроликов против сальмонеллеза //Матер.Всес. конф. эпиз. эпид. ср-ва диагн. и терап. инф. болезн. общих для человека и животных. -Львов, 1988.-С.279-280
78. Кирьянов Е.А. Вертикальный механизм заражения и болезни животных. -Владивосток.: Изд-во Дальневосточного ин-та. -1988. -С.77-96.
79. Ковалев В.А. Краевая эпизоотология и специфическая профилактика хламидиозного аборта овец и коз (на примере Таджикской ССР): Автореф. дисс. докт. вет. наук. -Казань, 1983. -33 с.
80. Костромитов Н.А., Домский И.А., Бояринцев Л.Е. Поливалентная инак-тивированная гидроокись алюминиевая вакцина против сальмонеллеза сельскохозяйственных животных // Бюллетень ВИЭВ. -М., 1989. -Вып.71. -С.66-72.
81. Кравченко А.Т., Соколов М.И. Адсорбция специфических полисахаридов бактерий эритроцитами человека // Микробиология. -1946. -№ 12. -С.10.
82. Красюк JI.C. Сальмонеллезы животных // ЖМЭИ. -1970. -№ 5. -С.5-69.
83. Кузьмин Н.А. Ускоренное обнаружение паратифозных бактерий в мясе и патологическом материале животных // Тр. MBA. -М., 1960. -Т.31.
84. Кулиева Э.М. Некоторые эпидемиологические особенности сальмонеллезов в Азербайджане // Матер. Всес. конф. эпиз., эпид., ср-ва диагн., терап. и проф. инф. болезн. общих для человека и животных. -Львов. -1998. -С.288.
85. Куликовский А. Актуальность проблемы сальмонеллеза // Вопросы питания. 1991. -№ 2. -С.75-76.
86. Куриленко А.Н., Крупальник В.Л. Инфекционные болезни молодняка с.-х. животных. -М.: Колос. -2000. С.38.
87. Лебедев О.А. Оптимизация схемы применения вакцин против сальмонеллеза молодняка: Автореф. дис. канд. вет. наук. -М., 1997. -20 с.
88. Леви М.Н., Степакова С.А., Егорова М.Н. Обнаружение антигенов возбудителя брюшного тифа в выделениях больных и смывах с предметов // Микробиология. -1973. -№ 5. -С.25-28.
89. Литинский Ю.И., Герок Г.И., Сидоровский Ю.И. Использование феномена роения с целью выделения чистых культур сальмонелл из испражнений //Микробиология. -1976. -№ 6. -С.73-79.
90. Лучко М.А. Вибриоз овец (эпизоотология, клиническое проявление, биологические свойства возбудителя, диагностика, экспериментальное воспроизведение, патогенез и специфическая профилактика): Автореф. дисс. . док. вет. наук. -М., 1977. -33 с.
91. Маббут Н., Джамал Г. Распределение и эпидемиологическое значение серотипов сальмонелл домашних животных и птиц в Ливане // Бюлл. ВОЗ. -1971.-№ 1. -Т.42. -С. 163-166.
92. Максимова Т.Е. и др. Специфическая профилактика колибактериоза и сальмонеллеза телят и поросят //Тр. Узб. НИВИ. -1981. -Т.30. -4.72. -С.69-72.
93. Малахов Ю.А. Особенности эпизоотологии, совершенствование диагностики и специфической профилактики лептоспироза сельскохозяйственных животных: Автореф. дисс. докт. вет. наук. -М., 1978. -36 с.
94. Малявин А.Г. Колипаратифозные (кишечные) болезни // Ветеринарная лабораторная практика. -1963. -Т.1.
95. Малявин А.Г., Полкинова А.Н., Фисенко О.Ф. Специфическая профилактика и терапия сальмонеллеза у ягнят и овец //Труд, науч.-контр. ин-та ветпрепар. -1964. -Т.12. -С.272-280.
96. Малявин А.Н., Аганина JI.C., Казеев Р.С. и др. Сальмонеллезы и бактерионосительство //Ветеринария. -1972. -№.11. -С.50-51.
97. Маракуша Б.И., Петровская В.Г. Энтеротоксигенность штаммов Salmonella различного происхождения //ЖМЭИ.-1988 г. № З.-С.З-Ю.
98. Маркова C.PIi Чувствительность штаммов эшерихий и сальмонелл к антибиотикам //В кн.: Профилактика инфекционных болезней животных в Узбекистане. 1984. - С.43-46.
99. Матвиенко Б.А. Сальмонеллы // В кн.: Ветеринарная микробиология. -М.:Колос, 1982. С.154-173.
100. Матвиенко Б.А. Сальмонеллы живбтных. Актуальные вопросы иммунопрофилактики сальмонеллезов животных // В кн.: Болезни с/х животных. Алма-Ата, 1986. С.32-66.
101. Матвиенко Б.А. Сальмонеллы животных биологическая и ветеринарная проблема. //Матер. Всес. конф. «Эпиз., эпид., ср-ва диагн., терап. и спец. проф. инф. болезн. общих для! человека и животных». - Львов, -1988, - С.293-294.
102. Михайлова Ю.М. Диагностическое значение реакции непрямой гем-магглютинации при пищевых токсикоинфекциях сальмонеллезной этиологии. //Лаб. дело.-1963. -№ 8. С.26-30.
103. Морозов С.Д. К вопросу изготовления концентрированных гидро-окисьалюминиевых вакцин против паратифозного аборта лошадей и овец: Автореф. дис. канд. вет. наук. -Алма-Ата, 1960. -19 с.
104. Мунблит В.Я., Тальрозе В.Л., Трофимов В.И. Термоинактивация микроорганизмов. -М.: Наука, 1985. -247 с.
105. Набиев Д.Н. К вопросу изучения паратифа овец в Таджикистане // Тр. Тадж. НИВИ. -1963. -Т.1. -С.63-68.
106. Набиев Д.Н. Паратифозный аборт овец // Колхоз.-совхоз, пр-во Таджикистан. -1963. -№7. -С.45-46.
107. Насыров Н.Г., Мазитов Н.А., Черникова М.П. Об этиологии аборта овец. Профилактика и меры борьбы с болезнями овец // Тез. докл. на науч. со-вещ. -Махачкала, 1973. -С. 143-144.
108. Нефедьев А.И. Паратиф овец: Автореф. дисс. канд. вет. наук.1. Ставрополь, 1954.
109. Николаенко Н.И., Нефедьев А.И. Паратиф овец и меры борьбы с ним // Ветеринария. -1950. -№ 6.
110. Николаенко Н.И., Нефедьев А.И. Паратиф овец и опыт получения вакцины // Тр. Саратовск. с-х. ин-та. -1950. -Вып.5. -С.3-23.
111. Николаенко Н.И. К вопросу профилактики паратифа овец // Тр. Став-роп. с-х. ин-та. -1956. -Вып.7. -С.299-306.
112. Николаенко Н.И., Егорова Е.А. Бактериограф против паратифа овец и опыт применения его в производстве // Тр. Ставроп. с-х. ин-та. -1958. -Вып.8.
113. Никольский М.Н. О паратифе овец // Ветеринария. -1952. -№ 11.
114. Овод В.В., Вершигора А.Е. Адгезивность бактерий // Успехи совр. биолог. -1982. -Т.94. -С.213-214.
115. Омурзакова К.С. Экология и биологические свойства сальмонелл: Автореф. дис.канд. биол. наук. -Алма-Ата, 1990. -22 с.
116. Орлов Е.С. О паратифозном аборте овец // Ветеринария. -1949. -№11.
117. Орлов Е.С. Паратиф // В кн.: Болезни овец.-М.: Сельхозгиз. -1963. -С.82-89.
118. Основы технологии сухих препаратов //В кн. Долинов К.Е.- М.: Меtдицина, 1969. -С.231.
119. Пак С.Г., Турьянов М.Х., Пальцев М.В. Сальмонеллез. -М.: Медицина. -1988. -304 с.
120. Панин А.Н., Груздев К.И., Обухов И.А. и др. Методические указания по выявлению возбудителей сальмонеллеза методом полимеразной цепной реакции. Владимир,-1997.- 45 с.
121. Поглазов Б.Ф. Закономерности сборки элементарных биологических культур. -М., 1977. -145 с.
122. Покровский В.И. Острые кишечные инфекции // Совр. мед. -1979. -№ 5. -С.6-13.
123. Покровский В.И., Килессо А.В., Ющук Н.А. Сальмонеллезы, результаты и перспективы их научных исследований // Совр. медицина. -1981. -№ 5. -С.3-8.
124. Покровский В.И. Факультативные грамотрицательные палочки: бактерии семейства Enterobacteriaceae // В кн.: Медицинская микробиология. -М.: ГЭОТАР Медицина, 1999. -1200 с.
125. Полоцкий Ю.Е. Взаимодействие микробов с энтероцитами при экспериментальном изучении кишечных инфекций // Арх. патол. -1980. -№ 3. -С.82-89.
126. Полоцкий Ю.Е., Авдеева Т.А. Адгезивность, инвазивность и энтеро-токсичность возбудителей кишечных инфекций //Микробиол. -1981. -№ 5. -С.23-32.
127. Попов Б.В. Борьба с заразными и незаразными заболеваниями овец в Ставропольском крае / В кн.: Болезни овец и коз // Тр. 40-го Пленума вет. секц. ВАСХНИИЛ. -М.: Сельхозгиз, 1955.
128. Попова Л.М., Чайка Н.А. Сальмонеллезы за рубежом // В кн.: Острые кишечные инфекции. -Л.-1982. -Вып.6. -С.31-41.
129. Попова П.П., Ременцова А.А., Ким А.А. Экология сальмонелл и эпидемиология сальмонеллезов. -Алма-Ата: Наука.'-1987. -С.3-108.
130. Проспект института биохимии и физиологии АН Киргизии. -Фрунзе, 1988 «Живая вакцина против сальмонеллеза овец».
131. Раджабов М.Д. Вопросы краевой эпизоотологии и иммунопрофилактики паратифа овец в Дагестане: Автореф. дисс. канд. вет. наук. -Тбилиси.1966. -21 с.
132. Рахманин П.П., Куликовский А.В. Эпизоотическое состояние и меры борьбы с сальмонеллезом // Ветеринария. -1989. -№ 7. -С.40-44.
133. Ревенко И.П. Бактериофаги и их использование в ветеринарной практике. -Киев: Урожай. -1978. -88 с.
134. Рекомендации по методике эпизоотологического исследования /Под. ред. И.А.Бакулова. -Покров, 1975. -73 с.
135. Рогозин И.И., Беляков В.В. Ассоциированная иммунизация и экстренная профилактика.-JI., 1968.
136. Роль биологической изменчивости микроорганизмов в эволюции эпидемического процесса сальмонеллезов /С.Рожнова, В.Килессо, О.Христюхина и др. // Современный этап эволюции эпидемического процесса. -М., 1989. -С.44-51.
137. Романенко В.Ф. Сальмонеллез // Инфекционные желудочно-кишечные болезни свиней. -М.: Колос, 1984. -С.94-111.
138. Рубцов И.В., Галимзянов Х.М., Ермольник Г.А. Оценка диагностической значимости реакции энзиммеченных антител при сальмонеллезах // Мат. конф. «Эпидем., клиника, диагн. и проф. антропонозных и зоонозных инфекций». -Астрахань, 1982. -С.89-90.
139. Рыскулов К.Н., Вечернина Л.М., Жуманалиев А.Н. и др. Краевая эпизоотология и этиологическая структура бактериальных инфекций овец // Тр. Кирг. НИВИ. -1987. -Т.1. -С.65-71.
140. Свириденко В.Ф., Джамгырчиева Т.Т. Специфическая профилактика сальмонеллеза в Киргизии // Матер. Всес. конф. «Эпиз., эпид., ср-ва диагн., терап. и спец. проф. инф. болезн., общих для человека и животных». -Львов. -1988. -С.321-322.
141. Селиванов А.В. Влияние факторов кормления и содержания на течение и развитие паратифозной инфекции у овец // Тр. ВИЭВ. -1952. -Т. XIX. -Вып.1.
142. Селиванов А.В. Паратиф овец. -М.: Сельхозгиз. -1959. -96 с.
143. Селиванов А.В. Бациллоносительства и бацилловыделения при паратифе овец // Ветеринария. -1951. -№ 8.
144. Сидорчук А.А. Усовершенствование диагностики сальмонеллеза овец: Автореф. дис. канд. вет. наук. -М. -1978. -20 с.
145. Смирнов В.А., Чаплинский В.М., Андреева З.А. и др. Научные основы производства диагностических препаратов // Сыворотка для идентификации энтеробактерий. Киев: Наук, думка, 1980. -С.21-24.
146. Смирнова Н.И. Возбудитель сальмонеллеза // В кн.: Ветеринарная микробиология и иммунология/ Под ред. Н.А.Радчук и др. -М.: Агропромиз-дат. -1991. -С.209-216.
147. Соколов Е.И. Клиническая иммунология. -М.: Медицина. -1998.-270 с.
148. Солоняк Л.Д., Рачковская Ю.К., Васи В.В. Патогенность сальмонелл тифимуриум при интраназальном заражении белых мышей // В кн.: Острые кишечные инфекции. -Л. -1983. -Вып.7. -С.95-98.
149. Степанова Л.К. Антигенная структура сальмонелл и роль поверхностных антигенов в вирулентности и иммуногенности: Автореф. дис. докт. мед. наук. -М. -1980. -С.38-40.
150. Стремилов П.М., Усольцев В.А., Ероков В.Н. и др. Абортогенные инфекции овец в Восточном Забайкалье и перспективы борьбы с ними // Ветер. Побл. Забайкалья /Сб. науч. тр. СО РАСХН.- Новосибирск.- 1993. -С.3-6.
151. Тавельский П.В. Инфекционный аборт овец // Тр. ГИЭВ. -1930. -Вып.1. -Т.7. -С. 122-128.
152. Тавельский П.В. Дальнейшее исследование по инфекционному аборту овец. Положение Bact. paratyphi abortus ovis в системе паратифозных бактерий
153. Тр. ГИЭВ. -1931. -Вып.2. -Т.7.
154. Таги-Заде М.А. Характеристика микробных культур, выделенных при паратифе овец в условиях Азейбарджана // Тр. Азерб. с-х. ин-та. I960. -Т.11. -С.177-180.
155. Таги-Заде М.А. Некоторые вопросы паратифа овец // Тр. Азерб. с-х. ин-та.-1961.-Вып. 12.
156. Таги-Заде М.А. Бациллоносительство и патологические титры при сальмонеллезе овец // Тр. Азерб. СХИ. -Кировобад, 1979. -Т.4. -С.7-9.
157. Теш А.И., Чекишев В.М. Влияние тиосульфата натрия и ПС 1/1 на напряженность противосальмонеллезного иммунитета у телят // В кн.: Общ. и част, инфекц. болезни с-х. животных. -Новосибирск. -1990- С.95-103.
158. Тришкина Е.Т. Чувствительность к антибиотикам некоторых микроорганизмов и роль резистентных сальмонелл в патологии животных: Автореф. дис. докт. вет. наук. -М., 1974. -38 с.
159. Трухманов В.Г. Ассоциированные вакцины. -М., 1964.
160. Урбан В.П., Широбокова М.М., Кузнецов М.И. Профилактика инфекционных болезней. -Л., -1981. -84 с.
161. Урбан В.П. Иммунопрофилактика инфекционных болезней животных. // В кн.: Проблемы ветеринарной иммунол. -М., 1985. -С. 13-17.
162. Урбан В.П. Болезни молодняка // В кн.: Краткий справочник ветеринарного врача. -Владимир: Агропромиздат, 1990. -С. 170.
163. Фарзалиев М.М., Мамедов М. О паратифозном аборте овец // Тр. Азерб. НИВИ, 1962. -Т. 14.
164. Фарзалиев М.М., Халимбеков М.Н., Самойлов П.Н. и др. Данные по эпизоотологии паратифа овец в Дагестане // Тр. Даг. с-х. ин-та. -1962. Т. 12.
165. Фарзалиев М.М., Самойлов П.П., Аливердиев А.А. Изучение этиологии абортов у овец на отгонных пастбищах Дагестана // Тр. Даг. с-х. ин-та. -1962.-Т. 12.
166. Харди К.Д. Плазмиды. Методы. -М.: Мир, 1990. -С.11-18.
167. Хахарева Т.Н., Белова Т.А., Шевлягина JI.K. и др. Биологическая характеристика сальмонелл тифимуриум различного происхождения // В кн.: Острые кишечные инфекции. -JI. -1982. -С.76-84.
168. Хоменко Н.А., Татаринова С.Д. Метод флуоресцирующих антител // В кн.: Энтеробактерии. -М.:Медицина, -1985. -254 с.
169. Хуршудянц Р.С. К вопросу эпизоотологии паратифа овец в условиях Ставропольского края: Автореф. дисс. канд. вет. наук. -Ставрополь, 1956.
170. Цион Р.А., Львов В.М. Болезни молодняка селськохозяйственных животных. -М,: Сельхозиздат. -1963. -296 с.
171. Чекишев В.М., Теш А.И. Стимуляция специфического противосаль-монеллезного иммунитета. // Матер. Всес. конф. «Эпиз., эпид., ср-ва диагн., терап. и спец. проф. инф. болезн., общих для человека и животных». -Львов. -1988. С. 333-334.
172. Чирков П.А. Паразитические членистоногие и позвоночные животные резервуары возбудителей сальмонеллезов. -Фрунзе: Илам, 1984. -С.34-160.
173. Шамардин В.А., Жиглов В.И. Серологическая диагностика сальмонеллезов // В кн.: Болезни с-х животных. -Алма-Ата, 1986. -С.67-82.
174. Шевченко Ф.А. Биологическая характеристика Bact. paratyphi abortus ovis / Наркомиздат. Узбек. ССР. // Тр. ин-та эпидемиол. и микробиол. -1935. -Т.П.
175. Ширяева В.И., Иванова В.А. Серовары сальмонелл, выделенных на Московском мясокомбинате // В кн.: Матер, межвузов, научн. конф. -1967. -С.56-60.
176. Шкарупа В.Ф., Калюжный И.И., Тарасов И.И. Способ профилактики бронхопневмонии у телят / А.с. 1639659AI ССР. МКИ Ф 61 К 39/00. // Саратов. зоотех.-вет. ин-т. №4333722/15. Заявл. 2.10.87. Опубл. 07.04.91. Бюл. №13.
177. Шур И.В. Пищевые токсикоинфекции паратифозного характера. -М.: Сельхозгиз. -1953.
178. Шур И.В. Заболевания сальмонеллезной этиологии. -2-е изд. перераб. и доп. -М.: Медицина. -1970. -304 с.
179. Шур И.В. Заболевания сальмонеллезной этиологии. -М.: Медицина. -1979. -304 с.
180. Шустер Б.Ю. Сальмонеллезы у животных // Инфекц. болезн. животных / Под ред. Д.Ф.Осидзе -М.: Агропромиздат. -1987. -С. 195-203.
181. Шустер Б.Ю., Малахов Ю.А. Живые вакцины из рибосомальных мутантов сальмонелл с двойным блоком вирулентности // Соверш. методов гос. контроля вет. препаратов / Тез. докл. Всесоюзн. научн. конф. ВГНКИ. -М., 1991. -С.138-139.
182. Эссель А.Е. Реакция непрямой гемагглютинации. -Д.: Медицина. -1965.-С.52.
183. Яковлева О.Н., Романова Ю.М., Петровская В.Г. Влияние R-плазмид штаммов S.typhimurium различного происхождения на вирулентность сальмонелл // ЖМЭИ. -1983. -№ 3. -С.40-46.
184. Aitken I.D., Robinson L.W., Anderson I.E. Enzootic abortion: experimentalinfection // Proc. Sheep. Vet. Soc. -1981. -V.5. P.53-60.
185. Amin E. Isolation of Salmonella from horses in Sudan // Bull. Animal. Health and Prood Afr. -1986. -V.34. -N 1. -P. 15-20.
186. Amin J.D., Silsmore A.J. A serological survey of same abortifacient diseases of sheep and goats in the Maiduguri of Nigeria // Bull. Anim. Health. Prod. Africa. -1993. -V.41. -N2. -P.123-128.
187. Anderson M., Hartman P. Directimmunoassay for detection of Salmonelain foods and feeds // Ahhl. Envir. Microbiol. -1985. -V.49. -N 5. -P. 1124-1127.
188. Anderson M., Blandchard P. The clinical syndromes caused by Salmonella infections // Veter. Med. (Edvardsville). -1989. -Vol.4. -N 8. -P.816-819.
189. Anderson M., Smith В., Ulrich J. Vaccination of calves with a modified bacterin or oil-in-water emulsion contanining alkali-detoxfied Salmonella typhi-murium lipopolyssaccharide // Amer. J. Res. -1991. -V.52. -N 4. -P.596-601.
190. Animal Health Yearbook FAO-WHO-O.L.E. -Italy, 1970.
191. Annon. Salmonella on the rise // J.Fermers. Weekly. -1985. -V.102 (4). -P.23-27.
192. Arbid M., el-Habbak M., Hanafy M. Toxicological and biological studies on Japanes quails fed graded levels of furazolidone // Acta Vet. Hung. -1990. -V.38. -N 4. -P.271-273.
193. Awad H., El-Horiri M., Eidaras A. Field studies and laboratory diagnosis of cases of abortion in Sheep //Abstracts. -1986. -P.912-915.
194. Вавасо D. Paratyphoid of sheep and measure of fight against him in Al-banii // Megd. with.th. Magazine. -1959. -№ 1. -S.132-139.
195. Bagley V.N. Herd health program // Sheep Breder. -1982. -V.102. -N 7. -P. 18-20.
196. Bagley V.N. Disease reduce reproduction rate in Utah Sheep flocks // Utah Farmer-Stockman. -1998. -V.108. -N 12. -P.5.
197. Baker T.R., Faull W.B., Rankin T.E.F. An outbreek of Salmoneleosis in Sheep // Vet. Res. -1971. -V.88. -P.270-277.
198. Baker D.W., Stone W.S.A. Study of Spirillum ovis infection in a Croup of Ewes Maintained Under Observation for Two Successive Lambing Seasons // Cornell Vet., 29, (Jan., 1939), -P.30-34.
199. Cytotonic enterotoxins and cytotaxic factor produced by S.enteritidis and S.typtimurium / S.Baloda, A.Faris, K.Krovacek et al // Toxcicon. -1983. -V.21. -P.785-796.
200. Barrow P. Salmonella enteritidis vaccine research // Poultry Int. -1990. -V.29. -N 13. -P.38-40.
201. Beer K., Durrling H. Zur Epizootologie der Salmonellosen // Z.Gesamte Hug. und. Genzgeb. -1989. -V.35. -Nil. -P.640-642.
202. Bergey's. Manual of Systematic Bacteriology. -9-th ed / Eds. J.Holf, N.Krieg. -Baltimora London. -1984. -V.l. -P.42.
203. Bey R.F., Auran N.E., Johnson R.C. Immunogenicity of whole cell and outer envelope vaccines in hamsters // Infect. Immunol. -1974. -V.10. -P. 10511056.
204. Bioch N., Dialio J. Serological survey on Sheep and goats in four department of Niger // Rev. Elev. Med. Veter. Pays-Tropicaux. -1991. -V.44. -N 4. -P.397-404.
205. Bogac К., Улецина П., Атанааев Ч. Распространение на сольмонелоз-ния аборт по овците в България за период 1970-1984 гг. // Ветер, мед. науки. -1986. -Вып.23.-Т.5-С.92-99.
206. Bonde G. Salmonella and other pathogenic bacteria // Water Supply and Health Proc. Int. Symp. Noordwijkerhout., 27-29 aug. 1980., Amsterdam. -1981. -P.l-11.
207. Bruns H., Gasters. Paratyphusepidet de in einer Hamuelherde, Hadurck bedingte Massenerk-Rankungen an Fleischvergifbung in Uberruhp (Landkreds Essen) //Zeit. -Schrift fur Hugiene and infecton Skrankhedten. -1920. -V.90.
208. Boyden S.V. The absorption of protein on erythrocytes treated with tannic acid and Subsequent hemagglutination by antiprotain sera // J. Exp. Med. -1951.1. V.93.-N 1. -Р.107-120.
209. Bozinovic-Saljinski Т., Gramatikovski G. Incidens of Salmonella abortus ovis infection in Macedonia (in Croat) // Vet. Glasnik. -1960. -V.14. -P.251-253.
210. Buchner L., Wermter R., Henkel S. Zum Nachweis von Salmonellen in Huhnereiern unter Berucksichtigung eines Stichprobenplanes // Arch. Lebensmitiel hyg. -1991. -V.42. -N 4. -P.86-89.
211. Bulgin M. Salmonella dublin: what veterinareans shold know // J. Amer. Vet. Med. Assoc. -1983. -N 2. -P.l 16-118.
212. Carlsson H.E., Linberg A.A., Hammarstrom S. Titration of antibodies to Salmonella O-antigens by enzyme Linked immunosorbent assay // Infect. Immun. -1972.-V.6. -P.703-708.
213. Cercetari privind epizootologia si profilaxia spesifica a parainfluente la ovin. /• V.Carstet, P.Darie, C.Barboi et al.// -Arch. Veter. -1982. -V.16. -P.l 11-119.
214. Cerri D. Sulla presenza di Salmonella in animali selvatici di alcune province della Toscana//Ann/Fac. Med. Vet. Pisa. -1985. -V.37. -P. 121-127.
215. Cerquetti M.C. et al. // FEMS Microbiol. Lettrs. -1995. -P. 132.
216. Coops A.N., Caplan M.N. Localization of antigen in tissune cell 2. Improved in a method for the detection antigen by meens of fluorescent antibody // J. Experim. Med. -1950. -V.91. -N 1. -P.l-13.
217. Contini A. Patologia ovicaprina // Italia agr. -1986. -V.123. -N 1. -P.224-239.
218. Cox N., Bailey J. The role of the Hatchery and hatchery environment in the colonization of baby chicks with Salmonellae // Poultry Sci. -1989. -V.68. -Suppl. -P. 178.
219. Life threatening Salmonella enteritidis phage type 4 gastroenteritis in infancy / J.Cross, R.Gorge, A.Booth et al. // Lancet. -1989. -N 8638. -P.625.
220. Avirulent salmonellae expressing virulence antigens from other pathogenes for use orally administered vaccines / R.Curtis, S.Kelly, P.Gulig et al. // In.: Virulence mechanisms in bacterial pathogens / Ed. J. Roth. -Washington. -1988. -P.311-328.
221. Stable recombinant avirulent Salmonella vaccine strains / R. Curtis, S.Kelly, P.Gulig et al. // In. Immunobiol. Proteins and Peptides. V. Vaccines-Mech., Design, and Appl.: Proc. 5 th Int. Symp., Alberta, Oct. 2-5. 1988. //New-York. -1989. -P.33-47.
222. Dalssgaard K. Adjuvant // Vet. Immunol. Immunopathol. -1987. -V.127. -P.145-152.
223. Deom J., Mortelmans J. Consideraratons sur le role patogene de Salmonella typhimurium cher le monton an congobelge // Bull. Agricole Congo Beige Land-wovakungig Tijdschrift. -1954. -45/2.
224. Dennis S.M., Armstrong T.M. Ovine abortion due to Salmonella typhimurium in Western Australia // Austr. Vet. J. -1965. -V.41. -P.78-181.
225. Desgrandchamps D., Altwegg M. Salmonellen Gastroenteritis: Ursachen, Folgen, therapeutische Perspektiven // Schweiz. Med. Wochenschr. -1990. -Nov.24. -V.120. -N 47.-P. 1751-1754.
226. Edwards P., Eweng W. Identification of Enterobacteriaceae // Minneapolis; Burgens Publisching Co. -1972. -P.357.
227. Edel W., Visser G. Veterinare Hoofdinspectie van de Valksgezondheid. Salmonella enteritidis in Nederland // Tijdschr. -Diergeneeskd. -1988. -Apr. -1. -V.l 14. -P405-410.
228. Comparison of Salmonella Bio-Enza Beod immunnoassay metnod an conventional procedure for detection of Salmonella in foods / K.Eckner, R.Flowers, B.Robison et al. //J.Food Prot. -1987. -V.50. -P.379-385.
229. Eiquer Т., Caffer M., Fronchkowsky G. Importancia de la Salmonella enteritidis en brotes de enfermedades transmitidas por alimentos en Argentina, anos 1986-1988 // Rev. Argent. Microbiol. -1990. -Jan-Mar. -V.22. -N 1. -P.31-36.
230. Endrejat E. Uber Salmonella abort der Schafe // Doutsche tier rztliche Wochensthrift. -1955.-V.62. -N 23/24.
231. Encouraging trend in incidence of human Salmonellosis new. // Vet. Rec. -1989. -V.125. -Nov. 18. -N.21. -P.516-517.
232. Use of live attenuated bacteria to stimulate immunity / N.Fairweather,
233. S.Chatfield, I.Charles et al. // Res. Microbiol. -1990. -V.141. -N 7-8. -P.769-773.
234. McFaydihean F., Stockman S. Report of Department al Committee on epizootic abortion // Board. Agr. Fisch. -1913.
235. McFarland D., Solisbury R., Osborne H., Tebsou T. Investigation into sheep abortion in New Zealand // Austr. Vet. J.' -1952. -V.28. -P.221.
236. Franclin A., Linne Т., Rehbinder V. Plasmid profile analysis and restriction enzyme fingez-printing of Salmonella DO-group strains // APMIS. -1990. -Jul. -V.98. -N 7. -P.665-668.
237. Fuorara E.S., Freter K. Protection against enteric bacterial intection by sec-retory-IgA antibodies // J. Immunol. -1973. -V.l 11. -P.395-403.
238. Gast K., Stephens J. Incidence and in vitro acquisition of transferable drug resistance in Salmonella arizonae // J. Poultry Sci. -1985. -V.64. -N 5. -P882-890.
239. Gates N. Disease countrol in confiment // Sheep Production. Sheepbreder and Sheepman. -1982. -V.102. -N415. -P. 108-109.
240. Geissler H., Lelescas J., Kosters J. Zum Nachweis von Salmonellen nach dem Transport von Eintagskuken // Berlin und munch, tierarztl. Wochenschr. -1982. -Bd.95. -N 21. -S.424-426.
241. Генев X. Проиъвения вверху заразного пометано по овцить предизви-кано оть Заст. // Бугарка земледьлака. Камара. Науч. -1939. -№ 1.
242. Gibson Е.А. An autbreak of Salmonella dublin infection in goats // Vet. Res.-1957. -V.6. -P.44.
243. Growther R.W, Salmonella infection in sheep in Ouprus // Vet. Res. -1957. -V.69. -N 29. -P.695-698.
244. Guibs P. Food poisoning-current concerns: pap how safe our food / Prok. II th Brit. Nut. Found. Annu. Conf. -London, 1989 // BNF Nutr. Bull. -1989. -V.14. -Suppl. -N 1. -P.92-102.
245. Cloning and characterization of the see 4 and fia genes of serovars lai and bim respectively / R.Hartskeers, H.Kemp, E.Bal et al. // Int. Lept. Soc. First meet Nantes (France). -9-12 September, 1996.
246. Heider G. Epizootisch-epidemischs tspekte bei Salmonelen-Infektketten inder Geflugel Production // Z.Gesamte -Hug. -1989. -Nov. -V.35. -Nil. -S.643-645.
247. Higachi L., Tamura A., Iwanda M. Studies in the etiology of the psittacosis group // Ann. New-York Accad. Sci. -1962. -V.79. -P.466-467.
248. Immunity induced by live attenuated Salmonella vacines / C.Hormaeche, H.Joysey, L.Desilva et al. // Res. Microbiol. -1990. -V.144. -N 7-8. -P.757-764.
249. Hosie B.D. Sheep abortion: chlamydiosis and salmonellesis // Surveilance-Wellington. -1991. -V. 18. -N 2. -P. 19-20.
250. Comparison of give defferent serological method for the determination of antichlamydia antibodies in the serum / T.Hubrecht, F.Vebbek, R.Vauhoof et al. // Diegnostic Proced. -1994. -P.267.
251. Hughes D., Gehll W. An improved enzyme immunoassay for the detection of Salmonella // J.Food Sci. -1987. -N 9. -P.446-447.
252. Hummel P. Et al. Syrvey of Salmonella in mesenteric lymph nodes galebladder wall and jijumim from healthy pigss loughtered in Taiwain // Chinese Journ. Microbiol. -1978. -V.ll. -P.93.ф
253. Ichiki A., Parish C. Detection of Salmonella in foods // Immunocem. -1972. -V.9. -P.153-167.
254. Ischiguro N. et al. A longitudinal epizootiologycal study of salmonella infection on a pigyery // Jan. Journ. Vet. Sci. -1979. -V.41. -P.211.
255. Jensen R., Miller V.A., Hammarlund M.A., Graham W.R. Vibrionic Abortion in Sheep. I. Transmission and Immunity // Am. J. Vet. Res. -1957. -V.XVIII. -N67.
256. Jensen R., Miller V.A., Molleli T.A. Placental pathology of Sheep with vibriosis //A.J.V.R. -1961. -V.22. -P.169-185.
257. Jensen R. Enzootic abortion in ewes: in book: Diesease of Sheep. Philadelphia.-1974.-P.46-51.
258. Jensen R. Salmonella abortin in book. Desease of sheep., Philadelphia. -1974. -P.57-60.
259. Kapur M.P., Kulshzeshtha R.C., Kalra D.S. Salmonella serotypes from sheep and their significance // Indian Vet. J. -1982. -V.59. -N 5. -P.331-334.
260. Kazur M., Kulshreshta R., Kalra D. Salmonella serotypes from sheep and their significance // Indian. Vet. J. -1982. -V.59. -N 5. -P.331-334.
261. Kauffmann F. Zur Klassifikation und Nomenklatur der Salmonella Species //Zbl. Bacteriol. Reihe A. -1973. -Bd. 223. -H.Y. -S.508-512.
262. Cloning and Characterization of the sec 4 and fla genes of serovars lai and bim respective / H.Kemp, R.Hartskeers, E.Bal et al. // Int. Lept. Soc. First meet Nantes (France) 9-12 September. -1996.
263. Kirbride C.A. Diagnosis in 1, 784 ovino abortion and stillbirths // J. Veer. Diagn. Invest. -1993. -V.5. -N 3. -P.398-402.
264. Kirdride C.A. Gates C., Collins Т., Ritchie A. Ovine abortion associated with an anaerobic bacterium / J.A.V.M.A. -1985. -V.186. -N 8. -P.789-791.
265. Kihlstrom E., Latkovic S. Ultrastructural studies on the interacton between Salmonella typhimurium 395 M and Hela cells // Infect, and Immun. -1978. -Vol.22. -N 3. -P.804-809.
266. Keogh E., North E., Warburton M. Hamagglutinins of the hacmophylus groub//Nature. -1947. -160 (4221). -P.63-64.
267. McKinley G et al. Incidence of Salmonellae in fecal samples of production swine and swine at Slaughter plants in the United States in 1978 // Appl. Environ. Microbiol. -1980. -V.40. -P.562.
268. Klink E., Smulders F. A comparison of different enrichement media for the isolation of Salmonella dublin from livers, kidneys and muscles of Salmonella-positive veal calves // Int. J. Food Microbiol. -1990. -May. -V.10. -N 3-4. -P. 177182.
269. Kovarik K. Arizonova infecke u krut, epizootologie a diagnostica // Veteri-narstvi. -1980. -N 8. -P.363-364.
270. Krieg H.F., Holt J.G. (Edr) Bergey s Manual of Systematic Bacteriology // Williams Wilking. Baltimore. -1984.
271. Lee A.M., Serviner L.H. An Investigation of severe Losses from Abortion in Ewes // J.A.V.M.A. -1992. (Jan. 1938). -P.68-71.
272. Le Munior., Rohde R., Taylor J. Nomenclature des Salmonella // Ann. Inst.
273. Pasteur. -1970. -V.l 19. -P.206-210.
274. Le Minor. Evolution du probleme des Salmonelloses dans le monde // Bull. Aead/ nat. med. -1980. -V.l64. -N 6. -P.524-527.
275. Les bonyries. Dadot., Berthelon. Avortment paratyhigue de la brebis // Bull. Acad. Vet. Fr. -1933. -V.86. -P.318-321.
276. Liberman H. Reinigung und Konzentrirung animaler Viren-Jena.: Fischer. -1982.-141 S.
277. Linklater K. Contining problem of abortion in sheep flocks // Scottish Farm. -1985. -V.95. -N 4817. -P.13-14.
278. Lovel K. Member of the Salmonella Group causing abortion in sheep. // Path. Bact.-1931.-N34.
279. Luderitz 0., Staub A., Westphae 0. Stadies on the O-antigen salmonella // Bacter. Rew. -1981. -V.30. -P. 192.
280. Manley. Contagions abortion of sheep an goats // Cuprus. Vet. Bull. -1934. -N 6.
281. Machado I., Bernardo F. Prevalence of Salmonella in chicken carcasses in Portugal. //J. Appl. Bacteriol. -1990. -V.69. -N 4. -P.477-480.
282. Machado I. Salmonella isolation from animals // J. Appl. Bacteriol. -1992. -V.73.-N 2. -P. 123-148.
283. Salmonella isolated from animals and feed stuffs in Sweden during 19781982 / L.Martensson, T.Holmberg, B.Hurvell et al. // Nord. Veterinarmed. -1984. -V.36. -N 11. -P.371-393.
284. Die Verhatung und Bekamfung der Salmonellosen bei Rind und Schwein / H.Meyer, F.Gold, DJentsch et al. // Z.Gesamte Hug. Und Grenzgeb. -1989. -V.35. -Nil. -P650-653.
285. Meyer H. Preventing salmonella infection through vaccination // Poultry Int.-1994. -March. -P.58.
286. Minga U., Kikopa R. A record of salmonella isolation from animals in Tanzania made between 1965 and 1982 // Bull. Anim. Helth and Prod. Afr. -1987. -V.35.-N4. -P.328-330.
287. Mitchell D., Starzyk M. Survival of Sqalmonella and other indicator mi-croorganims//Canad. J. Microbiol. -1975. -V.21. -N9. -P.1410-1421.
288. Modonaugh P.L., Shin S.J., Timoney J.F. Salmonella serotypes from animals in New York State 1978-1983 // Cornell. Veter, -1986. -V.76. -N 1. -P.30-36.
289. Moreno-Lores Т., Tornovist M. Vaccination against acute respiratory enteric disease during calfood-Rports summaries // Intern, congr. dis. cattle. -Tel-Aviv.-1980. -P.388.
290. Morse E.V., Myhrom E.P., Greenwood D.E. Salmonellosis in man and animals as environ-mental health problem // J.Environ. Sci. and Health. -1976. -V.ll.-N 12. -P.755-769.
291. Moull G.R., Joung R.E. Field observations on Salmonellosis in transporte rams // Aust. Vet. J. -1951. -V.27. -N 7.
292. Mudler K. Probioties as attach against Salmonella contamination // Misset. Poultry. -1991. -N 2. -P. 122-129.
293. Mura D. Prophylaxis of Salmonella abortus in sheep // Vet. Bull. -1952. -V.22. -N 8.
294. Mura D., Altirri., Contini A. Salmonella abortion in sheep // Vet. Bull. -1953. -V.23. -N 1.
295. Mura D., Contini А. Источники и пути распространения сальмонеллез-ного инфекционного аборта овец и коз (значение самца производителя) // Реф. журн. биол. -1956. -№ 5.
296. Nardi D., Pinto F. Abortion in sheep caused by Salmonella abortusovis and Br. melitensis in Apulia Italy // Vet. Bull. -1953. -V 23. -N 29.
297. Nevjestic A., Vijic В., Greogorovic V., Cancovic M. Aktuela zdravstvena problematica ovacau Yugoslaviji//Vet. Glasnik. -1983. V.37. -Nil. -P.815-823.
298. Nickol A., Bonventre P. Acquired immunity against mouse typhoid: genetic restriction and comparative efficacy of ribosomal and conventional vaccines // J. Med. Microbiol. -1981. -V.14. -N 4. -P.419-433.
299. Investigation of a food-born outbreak of Salmonellosis among hospital employees / S.Opal, K.Mayer, F.Roland et al. // Am. J. Infect, control. -1989. -Jun.1. V.17. -N 3. -P. 141-147.
300. Osterom J. Epidemiological stadies and proposes preventive measures in the fidht against human Salmonellosis // Int. J. Food. Microbiol. -1991. -V.12. -N 1. -P.41-45.
301. Prevolance of Salmonella and multiple antimicrobial resistent Salmonella in California diares / R.Pacer, J.Spika, M.Thurmond et al. // J. Amur. Vet. Med. Assoc. -1989. -V.195. -N 1. -P.59-63.
302. Padua M. de F.Patologia dos pequenos ruminantes: Salmonellose em ovi-nos e caprinos na regiao do Alentejo // Rep. Trab. Lab. Nac. Investig. Veter. Lisboa. -1988. -V.20. -P.51-58.
303. Recovery of Salmonella group froon blood and Salmonella group C2 from feces and serological evidance of dual in one patient / C.Papasian, W.Bartholomed, E.Neter et al // J.Clin. Microbiol. -1984. -V.20. -N 3. -P.584-585.
304. Parasite found to cause abortion in U.S. flocks // Sheep breeder. -1985. -V.105. -N 3. -P.22-23.
305. Pardon P., Sanchis R., Lantier F., et al. A live attenuated vaccine against salmonella abortus ovis abortion in ewes //Реф. Nutr. Develop. -1984. -V.24. -N 2. -P.207.
306. Пат. 86744 CPP МКИ A 61 К 39/112, С 12№4/20. Vaccin antisalmonelic aviar/ I.-V. Patruscu, P.Stiube, I.Muntean et al.: Centrul de Cercetaris si Bioprepa-rate pentru Pasari si Animale Mici. -N 108082. Заявл. 06.07.82. Опубл. 30.04.85.
307. Pegreffi G. Avortment des brebis du aux. B. Paratuphique // Bull. Sez. Itad. Soc. Intern. Microb. -1934. -V.6. -P.280-283.
308. Toxiinfecciones alimentarios en la Comunidad Autonoma Vasca (19841986) / I.Perales, I.Muniz, C.Zigorraga et al // Enferm. Infec. Microbiol. Clin. -1989. -Dec. -V.7. -N 10. -P.525-529.
309. Peizer K.D. Salmonellosis // J. Am. Veter. Med. Assn. -1989. -V.195. -N4. -P.456-463.
310. Peretti V. Infections abortion in sheep. 1 Infections abortion of bacterial origin // Bulletin des G.T.V. -1994. -N 3. -P.93-97.
311. Perlman P. Salmonellae//Ann. Acad. Sci. -1965. -V.124. -P.377.
312. Person M., Ekwall E., Hamarsfrom L. Immunoglobulin G and A subclass pattern of human antibodies to Shigella fiexneri and Salmonella serogroup В and D lipopolisaccharide O-antigens. // Infect. Immun. -1987. -V.52. -N 3. -P.834-839.
313. Salmonella des animaux, des viandes et des farines isolees en Belgique au cours de 1984. Serotypes, biotypes ont resistance / P.Phole, P.Lintrman, C.Schlicker et al. // Ann. Med. Vet. -1985. -V.129. -N 2. -P.121-129.
314. Salmonella typhimurium chez i'homme et chez les animaux domestiques / P.Pohl, I.Thomas, C.Chysels et al. // Arch. Belgez Med. Soc. -1974. -V.32. -N 3. -P.12-16.
315. Pohi P., Lintermans P. Epidemiologic des Salmonelloses bovines en Belgique au cours d'un quart de siecle (1960-1985) // Ann. Med. Veter. -1984. -V.128. -N 8. -P.615-623.
316. Epidemiological study of Salmonella enteritidis strains of animal origin in Belgium. / P.Phol, P.Lintrmans, M.Marin et al. // Epidemiol. Infect. -1991. -Feb. -V.106.-N 1.-Р.1Ы6.
317. Pop M., Vasin C., Vicescu I. Cercetari epizootologice si de laborator privind avorturile infectioase la ovine, inregistrate in Judetul Ciuj // Inst. Agron. (Ciuj-Napoca). Fac. agr. Catedra Med. Veter. -1989, -V.15, -P.571-576.
318. Porsh S. Salmonellesen aus der sicht des verbanches // Vet. -1991. -V.6. -N 5. -P.24-26.
319. Prevention abortion // Sheep Breeder. -1986. -V.106. -N 12. -P.21.
320. Puccini V. Le Salmonellesi degli ovini in alcune province meridianali dal 1950-1961 // Atti (Societa Italiana delle Sciense Veterinarie). -Faenza. -1962. -Fol.16. -P.2.
321. Raevuori M., Seuna E., Nurmi E. An epidemic of salmonella infantis infection in Finnish broiler chickens in 1975-76 // Acta Vet. Scand. -1991. -N 19. -P.317-330.
322. Rampling A., Upson R., Brown D. Nitrofurantoin resistance in isolated of Salmonella enteritidis phage type 4 11 J. Antimicrob. Chemother. -1990. -Feb.1. V.25.- № 2. -Р.285-290.
323. Report С. Antibiotic resistance of Salmonella in Europe and the United States // Rev. Infect. Dis. -1981. -V.3. -N 6. -P.l 105-1126.
324. Rey M. Conceptions nouvelles dans la preparation des vaccins et usage des vaccinations // M/S/: Med. Sci. -1987. -V.3. -N 2. -P.91-99.
325. Dedection of salmonella C, D and Vi-antigens by coagglutination blod cultures from patients with Salmonella infections / R.Rockhill, M.Lesmana, M.Moechtar et al. // South. Asian. J. Trop. Med. Pub. Hith. -1980. -V.ll. -P.441-445.
326. Rodolakis A., Fensterbank R., Pardon P. Vaccine vivants // Parte. -1985. -V.321. -P.23-25.
327. Rowie B. Salmonella-grossens Salmonellosis of sheep // J. Hyg. Camb. -1975.-V.62. -P. 124-129.
328. Rowie В., Hall. M., McGoy J. Salmonella-grossens a new serotype containing a new somatic (O) antigen 6.7. // J. Hyg. Camb. -1976. -V.77. -P.355.
329. Salisbyrg R.M. Salmonellosis of sheep // In. Sheep farming annuel. -1957. -P.139-143.
330. Salmela J. Continuous emphasis on salmonella control // Poultry Int. -1994. -May. -V.33. -N 5. -P.14-16.
331. Sarvamahgala D., Shivananda P. Coagglutination technique for indentifica-tion of Salmonella. // Indian. J. Med. Res. -1983. -V.78. -P.459-464.
332. Shearer G.C. An outbreak of abortion in ewes due to Salmonella dublin // Vet. Rec. -957. -V.69. -N 29. -P.693-695.
333. Shermer O., Ehrlich D. Beitrage uber paratyphuse rkkrankungen der Haustiere, Berliner tierartzliche Wochenschrift. -1921. -S.469.
334. Endogenous endophthalmitis due to Salmonella tyohimurium / I.Sholet, S.Davidson, H. Boichis et al. // Ann. Ophthalmol. -1983. -V.15. -N 4. -P.321-322.
335. Sieburth I.Men. Indirect hemmagglutination stadies on Salmonelosis of chickens //J. Immunol. -1957. -V.58. -P.380-386.
336. Singh P., Gupta M. Multiple drug resistence in Salmonellae isolated at
337. Shimla // Ind. J. Med. Sci. -1987. -V.41. -N 2. -P.34-36.
338. Der Einfluss von Starterkulturen und verschiedenen Zusatzsioffen auf das Wachstum von Salmonella senfienberg in der Rohwurs / M.Sirvio, E.Nurmi, E.Puolanne et al. // Fleichwirschaft, 1977. -N 57. -P.l007-1002.
339. Soerjadi-Liem A., Cumming R. Studies on the incidence of Salmonella carriers in broiler flicks entering a poultry processing plant in Australia// Poultry Sci. -1984. -V.63. -N 5. -P.892-895.
340. Smith H.W., Buxton A. Isolation of Salmonelloe from feces of domestic animals // Brit. Vet. J. -1951. -V.l. -P.1478.
341. Smith H.W., Buxton A. An outbreak of salmonella schwarz tzengrund infection in poultry // T.Pathol. Bacter. -1951. -V.63. -P.459.
342. Smith H. Observations on the flora of the alimentary tract of animals and factors affecting its composition // Journal of Pathology and Bacteriology. -1965. -V.89. -P.92-95
343. Smith H., Tucker J. The virulence of salmonella strains for chickens; their excretion by infected chickens // Journal of Hygiene, Cambrige. -1980. -V.84. -P.479-488.
344. Smitz Т., Sonn R. A study of ewe abortion in oregon // Proceed. -1984. -V.26. -P.181-192.
345. Sprengler D. Infectiose Verlammundsckrankheiten bei Schafen // Dt. Schafzucht. -1988. -V.80. -N 1. -P.6-9.
346. Enzootic abortion in ewes 1 Transmission of the disease / Stamp I.T., McEwen A.D., Watt A. et al. // J. Vet. Res. -1950. -V.62. -P.252-259.
347. Staples S., Ascher S., Gianella R. Antigenic structura Salmonella // J. Biol. Chem. -1980. -V.255. -P.232-236.
348. Stephan J., Geiger W. Paratyphusbaccterien als Vrsache seuchenhoftes
349. Verlanmens // Deutsche tierartzliche Wochenschrift. -1992. -N 39.
350. Studdert M.T. Bedsonia associated with abortion in sheep and cattle // Dess. Abst. -1966. -V.26. -P.62-76.
351. Suhaci I., Isopescu I. Paratuphoid abortion of ewes in Rumania // Arch. Vet.-1937. -V.29. -P.17-27.
352. Suveges Т., Toth I. Incidence of Salmonella abortus ovis in ees in Hungary // Magy Allotorv. JapJia. -1962. -V.l7. -P.410-405.
353. Сумров И., Стойчев С. Принос къь изученавето на сальмонеллезния аборт по овцете // Науч. тр. сер. живот, вет. дело. -1956. -Т.1. -№ 1. -С.33-38.
354. Salmonella control program intriduced new. // J. Am. Vet. Med. -Assoc. -1990. -Apr. -V.196. -N 8. -P1217.
355. Tadjbakhch H., Baba-Ali G., Haghigat M. Incidence des porteurs de salmonella chez les moutons et les chameaux en Iran // Rev. Med. Vet. (FR). -1992. -V.143.-N4. -P.361-365.
356. Travnirek M-, Dravesky Т., Balaschak J. Bivalentna vaccina proti chlamy-diovemu a paratyfovemu zmetaniu ovic // Veterinarstvi. -1986. -V.36. -N 12. -P.548.
357. Turulli C., Dalvit P., Casati D. Aborti infective negli ovi-caprine // Obiet. Doc. Veter. -1989. -V.10. -N 7/8. -P.27-33.
358. Vaccination-against salmonella // Poultry Int. -1994. -December. -P.90.
359. Vaccine will prevent abortion in sheep // Colorado rancher Farmer. -1984. -V.38.-N 13.-P.14.
360. Paratyphoid dysentery and Paratyphoid abortion in a flock of bread yearling ewes / C.Vickers, B.Bierer, R.Atkinsin et al. // J.A.V.M.A. -1958. -V.l32. -P.22-23.
361. Watson W.A. Salmonella dublin infection in a lambing flock // Vet. Rec. -1960. -4.12. -P.62-65.
362. Watts P.S., Wall M. The 1951 Salmonella typhimurium epidemis in sheep in South Australia // Ausnr. Vet. J. -1952, -V.28.
363. Antibody levels in Milk of Vaccinated and unvaccinated cows against Organisms of Neonatal Diarrhoe / T.Wieda, H.Bengelsdorf, D.Bernhard et al. // J. Vet. Med. -1987. -V.34. -P.495-503.
364. Witte uber mencheuchaftes Verlammen der Schafe, hervergezufen durch Paratyphus B.Bazillen // Berliner tierarztliche Wochenschrift. -1924. -S.659.
365. Vichery H. The history of the discovery of the aminoacid // Protein. Chem. -1972.-V.26. -N 1. -P.82-172.
366. Vielitz E. Salmonella control programmes worldwide // Poultry Int. -1994. -March. -P.32-38.
367. Virulence and immunogeniciti of plasmid-cured Salmonella serovar enteri-tidis AL 1192 against cattle // M.Nakamura, S.Sato, S.Suzuki et al. // Jap. J. Vet. Sci. -1988. -V.50. -N3. -P.706-713.
368. Vyttebroek E., Devriese L. Een proef met een geattenueerde levende Salmonella typhimurium enstof ter bescherming tegen eenexperimentele Salmonella-infectie bij duiven// Fiid. hr. cliergenesk. -1989. -V.l 14. -N 7. -P.381-383.
369. Wieclawska-Rams Z., Popielewicz K. Masowe zatrucie pokarmowe wy-wolane. // Przeql. epidem. -1976. -V.30. -N 2. -P.275-278.
370. Wiggins В., Alexander M. Minimum bacterial density for bacteriophage replication: implications for significance of bacteriphages in natural ecosystems // Appl. and Environ. Microbiol. -1985. -V.49. -N 1. -P. 19-23.
371. Worbes H., Streu T. Aborte beim Schaf// Mh. Veter-Med. -1988. -V.43. -N 6. -P.207-212.
372. Wray C., Tood J., Hinton M. The epidemiologi of Salmonella typhimurium infection in caves: Excretion of S. typhimurium in the feaces of calves in different management systems // Veter. Res. -1987. -V.21. -N13. -P.293-296.
373. Zwart D. Notes an Salmonella infections in animals in Chana // Res. in Vet. Sc. -1962. -V.3. -N 4.