Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.03) на тему:Поствакцинальная диагностика бруцеллеза мелкого рогатого скота при различных схемах специфической профилактики
Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Поствакцинальная диагностика бруцеллеза мелкого рогатого скота при различных схемах специфической профилактики
На правах рукописи
□ □345 1731
ДИМОВ Константин Сергеевич
ПОСТВАКЦИНАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА БРУЦЕЛЛЕЗА МЕЛКОГО РОГАТОГО СКОТА ПРИ РАЗЛИЧНЫХ СХЕМАХ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ
16.00.03 - ветеринарная микробиология, вирусология,
эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология
Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук
Новосибирск - 2008
003451731
Работа выполнена в ГНУ Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока СО Россельхозакадемии
Научный руководитель: доктор ветеринарных наук, профессор
Аракелян Петрос Карапетович
Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук, профессор
Салмаков Константин Михайлович,
доктор ветеринарных наук, профессор Храмцов Виктор Викторович
Ведущая организация: ФГУ Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов (ВГНКИ)
Защита состоится 2008 г. в « /Г » часов на заседа-
нии диссертационного совета Д.006.045.01 при ГНУ Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока СО Россельхозакадемии по адресу: 630501, Новосибирская область, Новосибирский район, п. Краснообск, ГНУ ИЭВСиДВ, а/я 8, тел/факс (383) 348-44-62.
С диссертацией можно ознакомиться в ЦНСХБ СО Россельхозакадемии.
Автореферат разослан «¿^ » ^ j 2008 г.
Учёный секретарь диссертационного совета
Стеблева Г.М.
1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность проблемы. В системе противобруцеллезных мероприятий у мелкого рогатого скота в нашей стране специфическая профилактика всегда играла решающую роль (П.Ф. Здродовский, 1953; В.А. Николаев, 1954; М.К. Юсковец, 1960; Е.С. Орлов, 1967; П.С. Уласевич с соавт., 1975; О.Ю. Юсупов, 1983; И.А. Косилов с соавт., 2001). Эффективность вакцин обеспечивал создаваемый и поддерживаемый у животных перманентный иммунитет в сочетании с планомерной поотарной заменой неблагополучного маточного поголовья иммунизированными здоровыми ярками. О неблагополучии хозяйств судили по косвенным эпидемиологическим и эпизоотологическим показателям - случаи заболевания людей бруцеллезом в острой форме, заражение производителей и аборты бруцеллезной этиологии (И.А. Косилов с соавт., 1999).
В девяностые годы массовый процесс распада крупных общественных и организация многочисленных территориально разобщенных мелких частных хозяйств (с совместным содержанием всех половозрастных групп животных) привел к экономическим и техническим сложностям эффективного осуществления официально регламентированных противобруцеллезных мероприятий, в частности, планомерной поотарной замены овец и коз. Ежегодные иммунизации животных против бруцеллеза живыми агглютиногенными вакцинами (в частности, вакциной из штамма 19) традиционным подкожным методом, обеспечивавшие противоэпизоотический и противоэпидемический эффекты, из-за длительно сохраняющихся поствакцинальных реакций, неподдающихся дифференциации, стали практически невозможными (П.К. Аракелян, 1997). В результате, резко возросла заболеваемость людей бруцеллезом в острой форме, главным образом за счет непосредственных контактов с овцами и козами неблагополучных по бруцеллезу отар (В.М. Авилов с соавт., 1999).
Применительно к современным условиям был предложен конъюнктиваль-ный метод иммунизации мелкого рогатого скота живыми агглютиногенными вакцинами в уменьшенной дозе, обеспечивающий поствакцинальную диагностику бруцеллеза в более ранние сроки с помощью РА и РСК (П.К. Аракелян с соавт.; 2001; JI.B. Жарова, 2002; A.C. Димова, 2003). Но определение оптимальных сроков поствакцинальных исследований животных, привитых по новым схемам, осталось необходимым.
В последнее время возобновился интерес ученых и практиков к РНГА. Особого внимания заслуживает эритроцитарный диагностикум, разработанный в Прикаспийском НИВИ(С.Г. Хаиров, 2001). При бруцеллезе мелкого рогатого скота в связи с новыми схемами иммунизации его эффективность не изучали.
В дифференциально-диагностическом и противоэпизоотическом отноше-нии 1 у крупного рогатого скота, привитого вакциной из штамма В.abortus 82, эффективной оказалась РИД с О-полисахаридным (О-ПС) бруцеллезным антигеном (В.М. Чекишев с соавт., 1993; С.К. Димов, 1993; Г.М. Стеблева, 1998).
H.A. Морозова (2002) в экспериментальных условиях установила, что РИД с О-ПС антигеном не может быть использована для объективной дифференциальной диагностики бруцеллеза у многократно подкожно иммунизированных овец вакциной из штамма 19 в дозе 40 млрд. м.к. (реакция сохраняется в течение 12 месяцев у 2,0-5,9% здоровых привитых животных). Было выяснено, что изменение дозы вакцины и метода ее введения влияет на сроки сохранения у животных поствакцинальных РИД в плане их быстрейшего угасания. Однако, убедительных доказательств дифференциально-диагностического и противоэпизо-отического значения этого метода нет.
Известно, что официальный О-полисахаридный антиген для постановки РИД у животных разных видов готовят только из В. abortus (В.М. Чекишев с со-авт., 1993). Поэтому сравнительное изучение диагностической ценности при бруцеллезе у мелкого рогатого скота РИД с О-ПС антигенами, изготовленными по аналогичной методике из В.abortus и B.melitensis, представляет научный и практический интерес с позиций возможной видоспецифичности.
Цель исследований - совершенствование поствакцинальной диагностики бруцеллеза мелкого рогатого скота при различных схемах специфической профилактики.
Задачи исследований:
- провести сравнительную оценку возможности использования РА, РСК, РИГА и РИД с официальным О-ПС антигеном в диагностике бруцеллеза у мелкого рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма В. abortus 19 по различным схемам;
- определить противоэпизоотическое и противоэпидемическое значение РИД с официальным О-ПС антигеном в поствакцинальной диагностике бруцеллеза у мелкого рогатого скота;
- изучить в экспериментальных и производственных условиях дифференциально-диагностическую эффективность РИД с О-ПС антигенами, изготовленными по аналогичной методике из штаммов В.abortus и B.melitensis, при бруцеллезе у мелкого рогатого скота, в том числе после иммунизации вакциной из штамма В.abortus 19 по различным схемам.
Научная новизна. Установлена возможность использования у мелкого рогатого скота при бруцеллезе диагностического комплекса (РА, РСК и РИГА с определенными титрами; РИД с официальным О-ПС антигеном) в ранние сроки (4 мес.) после подкожной и конъюнктивальной иммунизаций, а также проведенных на этом фоне неоднократных конъюнктивальных реиммунизаций вакциной из штамма 19.
В ранние сроки даже после однократной подкожной реиммунизации овец на фоне подкожной иммунизации оказалось возможным применение лишь РИД, и то с определенными издержками (выявление более 2% здоровых животных с реакциями вакцинного происхождения).
Подтверждена противоэпизоотическая и противоэпидемическая эффектив-
ность использования в поствакцинальной диагностике бруцеллеза у мелкого рогатого скота РИД с официальным О-ПС антигеном.
В экспериментальных и производственных условиях при бруцеллезе мелкого рогатого скота доказаны диагностические преимущества РИД с О-ПС антигеном, изготовленным из B.melitensis (М- антигеном), по сравнению с официально выпускаемым О-ПС антигеном, изготовленным из В. abortus (А-антигеном).
Получены результаты, свидетельствующие об определенной видоспеци-фичности О-ПС антигенов, изготовленных из B.abortus и B.melitensis (А- и М-антигенов), обеспечивающей возможность их использования при эпизоотической оценке по бруцеллезу отар овец и коз, иммунизированных вакциной из штамма B.abortus 19, в любые сроки после вакцинации.
Получен патент РФ на изобретение № 2303458 «Способ диагностики бруцеллеза мелкого рогатого скота» от 27 июля 2007 г.
Практическая и теоретическая значимость. Широкое внедрение результатов исследований позволит в значительной степени повысить эффективность контроля эпизоотического процесса бруцеллеза мелкого рогатого скота за счет новых схем иммунизации на основе конъюнктивального метода, а также ранней комплексной поствакцинальной диагностики (включая РИД, в том числе с О-ПС антигеном из B.melitensis) в целях выявления эпизоотически и эпидемически опасных животных.
Результаты сравнительного изучения О-ПС А- и М- антигенов являются основой для дальнейшего совершенствования схем дифференциальной поствакцинальной диагностики бруцеллеза животных.
Апробация полученных результатов. Основные положения диссертации доложены и обсуждены на 6-й международной научно-практической конференции «Аграрная наука Сибири, Монголии, Казахстана и Башкортостана сельскому хозяйству» (Новосибирск, 2003), международной научно-практической конференции «Современные проблемы эпизоотологии» (Новосибирск, 2004), Сибирском международном ветеринарном конгрессе «Актуальные вопросы ветеринарной медицины» (Новосибирск, 2005), 9-й международной научно-практической конференции «Научное обеспечение агропромышленного комплекса азиатских территорий» (Алматы, 2006), 3-й международной конференции «Состояние и перспективы развития производства ветеринарных биопрепаратов (Алматы, 2006), 6-й межрегиональной научно-практической конференции «Проблемы патологии человека и животных в условиях Сибири» (Омск, 2007).
Публикация результатов исследований. По теме диссертации опубликовано 8 научных работ, в том числе две статьи - в журнале, рекомендованном ВАК Минобразования РФ («Ветеринария»).
Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 118 страницах и включает разделы: введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение результатов исследований, выводы, практические предложения, список
литературы, приложение. Работа иллюстрирована 9 таблицами и 7 рисунками. Список литературы содержит 193 источника, в том числе 32 работы иностранных авторов.
Внедрение результатов исследований. Результаты исследований использованы для разработки методических рекомендаций «Концепция оптимальной системы контроля эпизоотического процесса бруцеллеза мелкого рогатого скота в новых условиях овцеводства» (протокол № 3 от 14 сентября 2006 г.) и «Система противобруцеллезных мероприятий у мелкого рогатого скота в условиях Республики Тыва» (протокол № 2 от 30 июня 2008 г.), утвержденных подсекцией «Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока» секции инфекционной патологии отделения ветеринарной медицины Россельхо-закадемии.
Основные положения, выносимые на защиту:
- сравнительная оценка возможности использования РА, РСК, РНГА и РИД с официальным О-ПС антигеном в диагностике бруцеллеза у мелкого рогатого скота после иммунизации вакциной из штамма 19 по различным схемам;
- противоэпизоотическое и противоэпидемическое значение РИД с официальным О-ПС антигеном в поствакцинальной диагностике бруцеллеза мелкого рогатого скота;
- экспериментальные и производственные данные о дифференциально-диагностической эффективности РИД с О-ПС антигенами, изготовленными по аналогичной методике из штаммов В.abortus и B.melitensis, при бруцеллезе у мелкого рогатого скота, в том числе иммунизированного вакциной из штамма В.abortus 19 по различным схемам.
2. СОБСТВЕННЫЕ ИСЛЕДОВАНИЯ 2.1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
Работа выполнена в 2002-2008 годах в ГНУ ИЭВСиДВ и ГНУ ВНИИБТЖ СО Россельхозакадемии, в хозяйствах и госветучреждениях Республики Тыва и других регионов Сибири.
Часть исследований проведена совместно с сотрудниками ИЭВСиДВ и ВНИИБТЖ при практическом содействии ветспециалистов регионов.
Возможность использования в диагностике бруцеллеза мелкого рогатого скота, иммунизированного живой вакциной из агглютиногенного штамма В.abortus 19 по различным схемам, РА, РСК, РНГА, РИД с О-ПС антигеном (изготовленным из В.abortus) изучали как на здоровом, так и на естественно инфицированном поголовье(1008 гол.), подвергавшемся иммунизации (подкожно -доза 40 млрд. м.к., конъюнктивально - доза 4 млрд. м.к.).
От животных брали кровь до вакцинации и в различные сроки после нее. Серологические исследования сывороток крови в выше указанных реакциях
б
проводили согласно официально утвержденным наставлениям.
Противоэпизоотическое и противоэпидемическое значение РИД с официальным О-ПС антигеном в поствакцинальной диагностике бруцеллеза у мелкого рогатого скота определяли по результатам анализа эпизоотической и эпидемической ситуации бруцеллеза в Республике Тыва во взаимосвязи с проводимыми противобруцеллезными мероприятиями, регламентированными соответствующими нормативными и директивными документами (диагностические исследования, вакцинации и др.). Основой для таких исследований явились статистические, отчетные и аналитические данные Департамента ветеринарии, Министерств здравоохранения и сельского хозяйства Республики Тыва, других республиканских и кожуунных (районных) ветеринарных и медицинских учреждений, а также материалы комплексных эпизоотолого-эпидемиологических обследований отдельных кожуунов Республики Тыва с поголовьем более 100 тыс. гол. мелкого рогатого скота.
Диагностическую эффективность при бруцеллезе РИД с О-ПС антигенами, изготовленными по аналогичной методике из штаммов В.abortus и B.melitensis, на первом этапе изучали при комплексном исследовании сывороток крови 49 гол. искусственно инфицированного вирулентными бруцеллами вида melitensis мелкого рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма В.abortus 19 по различным схемам.
Сравнительную диагностическую эффективность указанных двух О-ПС антигенов в дальнейшем изучали по результатам комплексных серологических исследований сывороток крови овец (4170 проб), а также крупного рогатого скота (368 проб), в том числе иммунизированных против бруцеллеза по различным схемам, из неблагополучных и благополучных по бруцеллезу хозяйств.
Подробнее методы и методики решения отдельных конкретных задач изложены в соответствующих разделах диссертации.
2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
2.2.1. Сравнительная оценка возможности использования РА, РСК, РИГА и РИД с официальным О-ПС антигеном в диагностике бруцеллеза у мелкого рогатого скота после иммунизации вакциной из штамма 19 по различным схемам
Анализ результатов исследований на бруцеллез 100 гол. мелкого рогатого скота, привитого подкожно (40 млрд. м.к.) и 203 гол. - конъюнктивально (4 млрд. м.к.), показал, что через 4 месяца после прививки среди животных, привитых подкожно, всего реагировало в различных серологических реакциях 74%, в том числе в РА 100 ME и выше 3%, РСК 1:10 и выше - 23%, РИГА 1:100 и выше - 16%, РИД - 4%; среди животных, привитых конъюнктивально - соответственно 30,4%, 0,0% , 0,0% , 1,9% и 0,0%. Таким образом, в этот срок после
иммунизации можно исследовать комплексом методов (РА, РСК, РНГА и РИД) только сыворотки крови животных, привитых конъюнктивапьно.
Из 278 исследованных проб сывороток крови овец через один год после первичной подкожной иммунизации вакциной из штамма 19 РИД с официальным О-ПС антигеном (изготовленным из В. abortus) была отрицатель-ной во всех пробах. Выявлено 106 проб (38,1%), реагирующих с различной степенью интенсивности в РА, РСК и РНГА. Из общего числа исследованных в РА выявлено всего 69 проб (24,8%) в татре не выше 50 ME; в PCK-S -22 (7,9%), в том числе в титре 1:10 и выше - 7 (2,5%); в PCK-R -5 (1,8%), в т.ч. в титре 1:10 и выше 1 (0,36%); в РНГА - 73 (26,3%), в том числе в титре 1:100 и выше - 6 (2,2%). Следует отметить, что из шести проб, реагировавших в РНГА в титре 1:100, РА не выше титра 50 ME отмечали в двух, РСК- S в титре 1:5 — в одной, в титре 1:10 и выше - трех. Таким образом, очевидна возможность проведения исследований овец на бруцеллез с использованием всего комплекса реакций через 1 год после первичной подкожной иммунизации.
Далее изучили характер реакций у мелкого рогатого скота через 4 месяца после подкожной и конъюнктивальной реиммунизации на фоне первичной подкожной иммунизации.
Из 81 исследованной пробы сывороток крови животных через 4 месяца после подкожной реиммунизации РИД с О-ПС антигеном (изготовленным из В.abortus) была положительной в двух пробах (2,5%). Выявлено 69 проб (85,2%), реагирующих с различной степенью интенсивности в РА, РСК и РНГА. В РА выявлена всего 61 проба (75,3%), в т.ч. в титре не выше 50 ME - 57, в титре 100 ME - 4 (4,9%); в РСК- S -55 (67,9 %), в том числе в титре 1:10 и выше -22 (27,2%); в РСК- R - 8 (9,8), в т.ч. в титре 1:10 и выше - 1 (1,2%); в РНГА - 53 (65,4%), в том числе в титре 1:100 и выше - 31 (38,3%). Следует отметить, что из 31 пробы, реагировавшей в РНГА в титре 1:100 и выше, РА в титре 100 ME и выше и/или РСК в титре 1:10 и выше отмечены в 19 (61,3%) пробах.
Из 125 исследованных проб сывороток крови животных через 4 месяца после конъюнктивальной реиммунизации РИД с О-ПС антигеном (изготовленным из В.abortus) была отрицательной во всех пробах. Выявлено 75 проб (60%), реагирующих с различной степенью интенсивности в РА, РСК и РНГА. В РА выявлено всего 25 проб (20%), в т.ч. все в титре не выше 50 ME; в PCK-S - 32 (25,6%), в том числе в титре 1:10 и выше - 1 (0,8%); в PCK-R - 8 (6,4%), в т.ч. в титре 1:10 и выше 1 (0,8%); в РНГА - 49 (39,2%), в том числе в титре 1:100 и выше - 3 (2,4%). Следует отметить, что из 3 проб, реагировавших в РНГА в титре 1:100 и выше, во всех отмечали РА и/или РСК в титрах не выше 50 ME и 1:5 соответственно.
Таким образом, очевидна возможность проведения с незначительными издержками поствакцинальных исследований с использованием комплекса реакций через 4 месяца после конъюнктивальной реиммунизации на фоне первичной подкожной иммунизации. Использовать указанный диагностический ком-
плекс у мелкого рогатого скота в этот же срок после подкожной реиммунизации на фоне первичной подкожной иммунизации, как показывают полученные результаты исследований, не представляется возможным. РИД с О-ПС антигеном имеет при этом минимальные издержки, выявляя 2,5% животных с поствакцинальными реакциями.
Поствакцинальные реакции у здоровых овец, привитых первично вакциной из штамма 19 конъюнктивально в уменьшенной дозе, а затем реиммунизиро-ванных на указанном фоне этим же методом, изучали в двух благополучных по бруцеллезу хозяйствах на поголовье 200 гол.
До иммунизации и через 1 год после первичной иммунизации у животных РА, РСК, РНГА и РИД с О-ПС антигеном были отрицательными.
После трехкратной конъюнктивальной реиммунизации у животных через 2,5 месяца РИД и РА отсутствовали, а РСК в титре не выше 1:5 и/или РНГА в титре не выше 1:50 были у 3% исследованных животных.
Таким образом, доказана возможность использования комплекса диагностических реакций для серологических исследований на бруцеллез овец через 3 месяца после многократных иммунизаций вакциной из штамма 19 конъюнкти-вальным методом.
2.2.2. Противоэпизоотическое и противоэпидемическое значение РИД с официальным О-ПС антигеном в поствакцинальной диагностике бруцеллеза мелкого рогатого скота
Противоэпизоотическое и противоэпидемическое значение РИД с официальным О-ПС антигеном (изготовленным из В.abortus) в поствакцинальной диагностике бруцеллеза мелкого рогатого скота особенно демонстративно проявилось в Барун-Хемчикском кожууне Республики Тыва.
В 1998 году из-за резко обострившейся эпидемической ситуации (заболеваемость людей бруцеллезом на 100 тыс. населения в 1998 году составила 124,1 - при среднем показателе за 1992-97 годы 28,9) уровень вакцинации овец и коз, и, прежде всего, в частном секторе, возрос до 90,2% (при среднем уровне вакцинации в 1992-97 годах 38,1%). Уровень реагирования исследованного вакцинированного поголовья в РИД в 1998 году составил 5,8%. Затем он стал неуклонно снижаться - до 0,9% в 2001 году. Однако уже в 2002 году он вновь значительно возрос - до 3,6% (зарегистрировано 15 новых острых эпизоотических очагов; в них отмечена и основная заболеваемость бруцеллезом людей). Животных неблагополучных отар в этих очагах в течение последних лет вакцинации против бруцеллеза в большинстве случаев не подвергали. Уровень иммунизации поголовья овец и коз в целом по кожууну снизился с 90,2% в 1998 году до 57,7% в 2002 году.
В 2002 году в связи с чрезвычайной эпидемической ситуацией все поголо-
вье эпизоотических очагов было подвергнуто иммунизации вакциной из штамма 19 с полным охватом. Диагностические исследования и реиммунизации неблагополучного поголовья активно действующих эпизоотических очагов провели и в 2003-2004 годах. В этот период из 15 активно действующих эпизоотических очагов 10 были купированы.
При этом важно отметить, что в указанные годы в кожууне с нашим участием иммунизация (реиммунизация) всего неблагополучного поголовья мелкого рогатого скота вакциной из штамма 19 была проведена конъюнктивальным методом в дозе 4 млрд. м.к., что практически сняло проблему выявления РИД поствакцинального характера. Этим же методом иммунизацию мелкого рогатого скота против бруцеллеза в кожууне осуществляли и в 2005-2006 годах.
Уровень иммунизации животных указанным методом составил в 20032006 годах 54,2; 57,4; 44,4 и 45% соответственно.
Уровень же реагирования в РИД по результатам серологических исследований иммунизированных животных составил в 2003 году 0,9% от числа исследованных (в 2002 году - 3,6%), а в 2004-2006 годах - соответственно 1,6%; 6,4%; 2,9%. Следует отметить, что в указанные годы исследованиям подвергали практически лишь поголовье острых эпизоотических очагов (из-за отсутствия технических и финансовых возможностей).
Случаев заболевания людей острой формой бруцеллеза было выявлено в 2002 году - 32, в 2003 - 19, в 2004 - 15, в 2005 - 7, в 2006 году - 9.
Итак, очевидны противоэпизоотический и противоэпидемический эффекты, связанные с проведением на фоне иммунизаций поголовья овец и коз вакциной из штамма 19 как подкожно в дозе 40 млрд. м.к., так и, начиная с 2003 года, конъюнктивально в дозе 4 млрд. м.к., его диагностических исследований до очередной иммунизации, или после нее (используя провоцирующие свойства вакцины) с помощью РИД и убоя реагирующих. Возможные издержки, связанные с поствакцинальным происхождением реакций у животных, привитых подкожным методом, при ранней поствакцинальной диагностике с помощью РИД (уже через 3 месяца после прививки), не столь уж значительны и несопоставимы с положительным эффектом от купирования эпизоотических очагов, как источников заражения и заболевания людей.
2.2.3. Дифференциально-диагностическая эффективность РИД с О-ПС антигенами, изготовленными по аналогичной методике из штаммов B.abortus и B.melitensis, при бруцеллезе у мелкого рогатого скота, в том числе иммунизированного вакциной из штамма B.abortus 19 по различным схемам
В.М. Чекишевым, автором официального О-ПС бруцеллезного антигена, получаемого из B.abortus, был изготовлен по идентичной технологии антиген из
вакцинного штамма B.melitensis Рев-1. Официальный антиген условно обозначили как А - антиген {abortus), опытный - М - антиген (melitensis).
Диагностическую активность А- и М-антигенов в РИД предварительно проверили при исследовании сывороток крови 49 гол. искусственно инфицированного вирулентными бруцеллами вида melitensis мелкого рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма 19 по различным схемам (таблица 1).
Таблица 1 - Результаты сравнительного изучения активности О-ПС А- и М- бруцеллезных антигенов в РИД на овцах, иммунизированных вакциной из штамма 19, в экспериментальных условиях
Схема иммунизации Исследовано ЖИВОТНЫХ Реагировало в РИД
до заражения (х) после заражения (хх)
всего в т.ч. с антигенами всего в т.ч. с антигенами
А+М А М А+М А М
подкожно + конъюнктивалыга 40+4 млрд. м.к. 9 1 - 1 - 7 2 - 5
подкожно + подкожно 40+40 млрд. м. к. 9 6 - 6 - 5 3 1 1
кшыонгаивалшо+ютонкшвально 4+4 млрд. м.к. 9 - - - - 7 2 - 5
подкожно 40 млрд. м.к. 9 - - - - 3 2 - 1
конъюнктивапьно 4 млрд. м.к. 8 - - - - 6 5 - 1
итого (подопытные животные, аЬог1иБ+ теШегки:) 44 7 - 7 - 28 14 1 13
Контроль (теШепБ^) 5 - - - - 3 2 - 1
Примечание: А-антиген - изготовлен из штамма В.abortus 19
М-антиген - изготовлен из штамма B.melitensis Rev-1 х- на 50-й день после ревакцинации шт. В.abortus 19 хх- на 30-й день после заражения шт. B.melitensis
Интактные животные шестой группы (5 овцематок) служили контролем. Их одновременно с подопытными (первой, второй и третьей групп - через 50 дней после ревакцинации, а четвертой и пятой групп - по истечению 13 месяцев после первичной вакцинации) заражали культурой вирулентного штамма B.melitensis Н-102 в десятикратной инфицирующей дозе (1 млн. м.к.).
Через 50 дней после конъюнктивальной реиммунизации животных вакциной из штамма в малой дозе положительные показания с А-антигеном были у меньшего в 6 раз количества животных, чем в этот же срок после подкожной в полной дозе.
РИД была отрицательной во всех случаях через 50 дней после двукратной конъюнктивальной иммунизации в малой дозе, а также через 13 месяцев после первичной как подкожной, так и конъюнктивальной иммунизации.
Через 30 дней после заражения животных бруцеллами вида melitensis положительные показания РИД зарегистрировали во всех группах, включая контрольную. Однако закономерности реагирования были иными, чем до заражения. Преимущество было явно за М-антигеном. Так, в подопытных группах всего реагировало положительно с обоими антигенами 28 проб, из них только с М-антигеном - 13, а только с А-антигеном лишь одна проба (вторая группа - схема «подкожно+подкожно»). Остальные 14 проб реагировали с обоими антигенами. В контрольной группе положительная РИД была отмечена только у 3 животных (60%), причем только с М-антигеном - у одного. У двух животных положительную РИД зарегистрировали как с М-, так и с А-антигеном.
Из 18-и животных, зараженных В.melitensis как на интактном фоне, так и на фоне иммунизации вакциной из штамма В.abortus 19, с подтвержденным бру-целлоносительством (таблица 2) в РИД реагировало 13 (72,2%). Из них только с А-антигеном реагировало одно животное (7,6%) , только с М-антигеном - 4 (30,8%), а с обоими антигенами - 8 (61,6%).
Таблица 2 - Результаты сравнительного изучения активности О-ПС А- и М-бруцеллезных антигенов в РИД на овцах, иммунизированных вакциной из штамма 19, с подтвержденным бруцеллоносительством после искусственного заражения В. melitensis
Реагировало положительно в РИД
общее число в т.ч. с антигенами
Характеристика CQ X X X реагирующих А+М А М
<D CQ н %к % к об- % к об- % к об-
групп tr; О bti ч i> ш о и числу о m щему о m щему о ш щему
О О S * £ о исследованных Ч о м числу реагирующих с: о и числу реагирующих с; о числу реагирующих
вакцинированные и ревак-цинированные 13 10 76,9 6 60,0 1 10,0 3 30,0
неиммунизированные 5 3 60,0 2 66,6 - - 1 33,4
ИТОГО 18 13 72,2 8 61,5 1 7,7 4 30,8
Экспериментально установленная роль определенной видоспецифичности бруцеллезных А- и М-антигенов была подтверждена и в производственных условиях как на здоровых животных, иммунизированных вакцинами из штаммов В.abortus и В.melitensis (таблица 3), так и на овцах и крупном рогатом скоте из неблагополучных по бруцеллезу хозяйств с естественным течением инфекции (таблица 4). Кроме того, доказано явное преимущество по чувствительности у
овец М-антигена. Причем, из 3 убитых овец, реагировавших только на М-антиген, в двух случаях выделен возбудитель бруцеллеза B.melitensis. Реагирование крупного рогатого скота только на М-антиген можно объяснить реально возможными контактами данного стада с неблагополучными по бруцеллезу (возбудитель - B.melitensis) отарами овец.
Таблица 3 - Результаты сравнительного изучения активности О-ПС бруцеллезных А- и М-антигенов в РИД при исследовании сывороток крови здоровых овец, иммунизированных вакцинами из штаммов В.abortus и B.melitensis, в благополучных по бруцеллезу хозяйствах
Реагировало положительно в РИД
S общее число в т.ч. с антигенами
Схема иммунизации (вакцинный штамм) fix "ii реагирующих А+М А М
iSi ± о о ° 3 ы о о 5 кол-во % к числу исследованных кол-во % к числу реагирующих кол-во %к числу реагирующих кол-во %к числу реагирующих
Рев-1+Рев-1 {B.melitensis) 200 12 6,0 3 25,0 1 8,3 8 66,6
19+19 (В. abortus) 98 6 6,1 5 83,3 1 16,6 - -
Таблица 4 - Результаты исследования сывороток крови от животных с естественным течением бруцеллеза в РИД с разными антигенами
X Реагировало положительно
Количество исследованнь х о общее в том числе с антигенами
Вид животных о о. о m и число реагирующих А+М %к числу реагирующих А %к числу реагирующих М %к числу реагирующих
овцы 21 18 4 22,2 - - 14 77,8
крупный рогатый скот 50 41 36 87,8 3 7,3 2 4,9
При исследовании 104 проб сывороток крови овец неблагополучной по бруцеллезу отары с естественным течением инфекции, вызванной Л.тие/йепш (без вакцинации) выявленные преимущества М-антигена были еще раз подтверждены: РИД о О-ПС антигенами была положительной в 28 пробах (26,9% от числа исследованных), в том числе с обоими антигенами (А и М) - в 20 про-
бах (19,2%) и только с М-антигеном - в 8 пробах (7,7%).
При комплексном серологическом исследовании 409 проб сывороток крови мелкого рогатого скота неблагополучной по бруцеллезу отары через 1 год после последней иммунизации вакциной из штамма В.abortus 19 подкожно в дозе 40 млрд м.к. РИД с О-ПС антигенами была положительной в 23 пробах (5,6% от числа исследованных), в том числе с обоими антигенами (А- и М-) - в 15 пробах (3,7%) и только с антигеном М - в 8 пробах (1,9%).
Из 15 проб сыворотки крови'с положительной РИД с обоими антигенами РИГА с бруцеллезным эритроцитарным диагностикумом в титре 1:200 и выше была в 11 пробах (73,3%). Из их числа РСК в титре 1:20 и выше была в 8 пробах (72,7%). В остальных трех пробах РСК была в титре не выше 1:10, РА - не выше 25 ME.
В 4 пробах с положительной РИД с обоими антигенами РИГА была в титре не выше титра 1:100 (РСК в двух пробах была в титре 1:5, в двух - 1:40; РА в трех пробах была отрицательной в одной - в титре 1:25)
Из 8 проб сывороток крови с положительной РИД только с М-антигеном РИГА с бруцеллезным эритроцитарным диагностикумом в титре 1:200 и выше была в 6 пробах (75%). Из их числа РСК в титре 1:20 и выше была в 5 пробах (83,3%). В одной пробе РСК была в титре 1:10, РА - в титре 50 ME.
В двух пробах с положительной РИД только с М-антигеном РИГА была в титре 1:100 (РСК - в обеих пробах в титре 1:40, РА - в титре не выше 50 ME).
При комплексном серологическом исследовании 221 пробы сывороток крови мелкого рогатого скота неблагополучной по бруцеллезу отары через 1 год после последней иммунизации вакциной из штамма В. abortus 19 конъюнктиваль-но в дозе 4 млрд м.к. РИД была положительной в 14 пробах (6,3% от числа исследованных), в том числе только с М-антигеном во всех 14 пробах.
Из 14 проб сывороток крови с положительной РИД только с М-антигеном РИГА с бруцеллезным эритроцитарным диагностикумом в титре 1:200 и выше была в 9 пробах (64,3%). Из их числа РСК в титре 1:20 и выше была во всех пробах, РА не превышала титр 50 ME.
В 5 пробах с положительной РИД только с М-антигеном РИГА была в титре 1:100 (РСК во всех пробах была в титре 1:20 и выше, РА - в титре не выше 50 ME).
Аналогичные результаты получены в ряде других отар.
Так, при исследовании 2302 проб сывороток крови мелкого рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма 19 по различным схемам, из 8 неблагополучных по бруцеллезу отар, в РИД всего с М- и А-антигенами реагировало 130 проб (5,6% от общего числа исследованных, в отдельных отарах от 3,9 до 22,5% от числа исследованных). От общего числа реагирующих на оба антигена реагировало 38, или 29,3% , только на М-антиген - 90 (69,2%), только на А-антиген - 2 (1,5%).
При исследовании же 480 проб сывороток крови иммунизированного вакциной из штамма 19 мелкого рогатого скота из трех благополучных по бруцел-
лезу отар, в РИД всего с М- и А-антигенами реагировало 3 пробы (0,6% от общего числа исследованных, в отдельных отарах от 0 до 2,1% от числа исследованных). От общего числа реагирующих на оба антигена реагировали все три пробы, соответственно только на М-антиген и только на А-антиген реагирующих не выявлено.
Из полученных результатов очевидны перспективы повышения уровня эффективности поствакцинальной диагностики бруцеллеза у мелкого рогатого скота за счет внедрения в широкую ветеринарную практику РИД с новым О-ПС антигеном, изготовленным по той же методике, что и официальный (из В.abortus), но из B.melitensis. Кроме того, очевидна дифференциально-диагностическая роль обоих антигенов при использовании их в схемах эпизоотической оценки по бруцеллезу стад вакцинированных животных.
3. ВЫВОДЫ
1. После первичной подкожной иммунизации мелкого рогатого скота вакциной из штамма В. abortus 19 диагностические исследования животных оказалось возможным проводить не ранее, чем через 4 месяца только с помощью РИД с официальным О-ПС антигеном (из В.abortus), а через год - с помощью всего изученного диагностического комплекса (включая РИД) с диагностическими титрами РА выше 100 ME, РИГА выше 1:100, PCK-S - выше 1:10.
2. После подкожной однократной реиммунизации животных вакциной из штамма B.abortus 19 на фоне первичной подкожной иммунизации этой же вакциной проводить диагностические исследования с помощью изученного диагностического комплекса оказалось невозможным. Наименьшими издержками обладала РИД с официальным О-ПС антигеном (более 2% здоровых животных с реакциями вакцинного происхождения).
3 Поствакцинальная диагностика после первичной конъюнктивальной иммунизации, а также конъюнктивальных реиммунизаций на фоне первичной конъюнктивальной, и даже подкожной иммунизации вакциной из штамма B.abortus 19 оказалась возможной с использованием всего диагностического комплекса через 3-4 месяца. На фоне первичной подкожной иммунизации установлена целесообразность учитывать в качестве диагностических титры РА выше 100 ME, РНГА - выше 1:100, PCK-S - выше 1:10, а на фоне первичной конъюнктивальной иммунизации - 100 ME и 1:100 и выше, 1:10 и выше соответственно.
4. Диагностические исследования мелкого рогатого скота на бруцеллез в неблагополучных по этой болезни отарах с помощью РИД с официальным О-ПС антигеном на фоне иммунизации животных вакциной из штамма 19, как подкожно в дозе 40 млрд. м.к., так и конъюнктивально в дозе 4 млрд. м.к., с убоем реагирующих, обеспечивают повышение уровня эффективности проти-
вобруцеллезных мероприятий. Так, в одной из неблагополучных территорий в течение четырех лет за счет этого удалось снизить число активно действующих эпизоотических очагов с 15 до 4 (в 3,7 раза), а число случаев заболевания людей бруцеллезом в острой форме - с 32 до 9 (в 3,5 раза).
5. У мелкого рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма В.abortus 19 по разным схемам, с искусственным и естественным инфицированием бруцеллами вида melitensis, при использовании О-ПС М-антигена (из B.melitensis) , по сравнению с официальным О-ПС А-антигеном (из В.abortus), дополнительно выявляли в среднем в 2,25 раза больше инфицированных животных. Эпизоотическая опасность таких животных доказана наличием у них высоких титров РНГА и РСК (1:200 и выше и 1:20 и выше соответственно), а также результатами бактериологических исследований (положительная биопроба, выделение культур).
6. У искусственно и естественно инфицированных бруцеллами вида melitensis овец, иммунизированных вакциной из штамма В.abortus 19 подкожно в дозе 40 млрд. м.к. превалирует регистрация РИД с обоими О-ПС антигенами, а после иммунизации этой же вакциной конъюнктивально в дозе 4 млрд. м.к. -только с О-ПС М-антигеном.
7. У здоровых овец положительную РИД только с О-ПС М-антигеном после иммунизации вакциной из штамма B.abortus 19 не наблюдали, а после иммунизации вакциной из штамма B.melitensis Рев-1 зарегистрировали в 66,6% случаев из общего числа реагировавших на оба антигена. Полученные результаты свидетельствуют об определенной видоспецифичности антигенов, изготовленных из B.abortus и B.melitensis.
4.ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
Использовать в системе противобруцеллезных мероприятий у мелкого рогатого скота в целях повышения уровня ее эффективности:
- конъюнктивальный метод иммунизации овец и коз вакциной из штамма 19, обеспечивающий специфическую защиту, а также выявление в ранние сроки после вакцинации инфицированных животных с помощью РА, РСК, РНГА и РИД;
- РИД с новым О-ПС антигеном, изготовленным из В.иге/г'Гелш'.у, позволяющим выявлять значительно большее количество инфицированных животных;
- РИД с О-ПС антигенами из В.аЪоПт и В.теШетгз для использования в схемах эпизоотической оценки по бруцеллезу вакцинированных животных.
5. СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ
1. Технологичность живой вакцины из штамма 19 на овцах для иммунизации и реиммунизации в уменьшенной дозе при конъюнктивальном методе введения / Соавт.: С.М. Достай, A.C. Димова, П.К. Аракелян и др. //Аграрная наука Сибири, Монголии, Казахстана и Башкортостана сельскому хозяйству: матер. 6-й междунар. науч.-практ. конф. - Новосибирск, 2003. - С. 117-120.
2. Практическая реализация концепции оптимизации противобруцеллезных мероприятий у мелкого рогатого скота в Сибири / Соавт.: С.М. Достай, П.К. Аракелян, И.А. Косилов и др. // Современные проблемы эпизоотологии: матер, междунар. науч.-практ. конф. - Новосибирск, 2004. - С. 20-23.
3. Современные проблемы эпизоотологического надзора при бруцеллезе в Сибири / Соавт.: A.C. Донченко, С.К. Димов, И.А. Косилов и др. // Актуальные вопросы ветеринарной медицины: матер. Сиб. междунар. ветеринар, конгр.-Новосибирск, 2005.-С.112-113.
4. Практический опыт оптимизации системы противобруцеллезных мероприятий у мелкого рогатого скота в экстремальных эпизоотических, эпидемических и социально-экономических условиях / Соавт.: С.К. Димов, П.К. Аракелян, С.М. Достай и др. // Вестник с.-х. науки Казахстана. - 2006. - №6. - С.40-41.
5. Усовершенствование диагностики бруцеллеза у овец / Соавт. П.К. Аракелян, С.К. Димов, О.В. Бондарева // Современное состояние и перспективы развития производства ветеринарных биопрепаратов: матер. 3-й междунар. конф. - Алматы, 2006. - С. 124-127.
6. Эффективность конъюнктивального метода применения вакцины из штамма В.abortus 19 при бруцеллезе мелкого рогатого скота / Соавт.: П.К. Аракелян, И.А. Косилов, С.К. Димов и др. // Ветеринария. - 2006,- № 8. - С. 22-27.
7. РИД с О-ПС антигеном из B.melitensis для диагностики бруцеллеза у овец / Соавт.: П.К. Аракелян, И.А. Косилов, В.М. Чекишев и др. // Ветеринария. -2007.-№3. -С. 23-28.
8. Патент РФ 2303458 от 27.07. 2007 г. Способ диагностики бруцеллеза мелкого рогатого скота / Соавт.: П.К. Аракелян, И.А. Косилов, Е.Б. Барабанова и др. // заявители и патентообладатели ГНУ ВНИИБТЖ и ГНУ ИЭВСиДВ по заявке № 2005122218/13 от 13.07.2005,-Бюл. № 21.
Подписано в печать 07.10.2008г. Формат 60x84/16 Объем 1 п.л. Тираж 100 экз. Заказ № 194
Отпечатано в ООО ИПФ «Агрос» 630501, Новосибирская обл., пос Краснообск
Оглавление диссертации Димов, Константин Сергеевич :: 2008 :: Новосибирск
1. ВВЕДЕНИЕ.
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
2.1. Специфическая профилактика - ведущее звено системы противобруцеллезных мероприятий у мелкого рогатого скота.
2.2. Основные направления оптимизации схем специфической профилактики бруцеллеза мелкого рогатого скота.
2.2.1. Оптимизация методов и способов иммунизации животных живыми противобруцеллезными вакцинами.
2.3. Совершенствование дифференциальной поствакцинальной диагностики бруцеллеза животных в связи с оптимизацией схем специфической профилактики.
2.3.1. Дифференциальная поствакцинальная диагностика бруцеллеза животных на основе применения РИД с О-полисахаридным (О-ПС) антигеном.
Введение диссертации по теме "Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология", Димов, Константин Сергеевич, автореферат
Актуальность проблемы. В системе противобруцеллезных мероприятий у мелкого рогатого скота в нашей стране специфическая профилактика всегда играла решающую роль (П.Ф. Здродовский, 1953; В.А. Николаев, 1954; М.К. Юсковец, 1960; Е.С. Орлов, 1967; П.С. Уласевич с соавт., 1975; О.Ю. Юсупов, 1983; И.А. Косилов с соавт., 2001). Эффективность вакцин обеспечивал создаваемый и поддерживаемый у животных перманентный иммунитет в сочетании с планомерной поотарной заменой неблагополучного маточного поголовья иммунизированными здоровыми ярками. О неблагополучии хозяйств судили по косвенным эпидемиологическим и эпизоотологи-ческим показателям - случаи заболевания людей бруцеллезом в острой форме, заражение производителей и аборты бруцеллезной этиологии (И.А. Косилов с соавт., 1999). ;
В девяностые годы массовый процесс распада крупных общественных и организация многочисленных территориально разобщенных мелких частных хозяйств (с совместным содержанием всех половозрастных групп животных) привел к экономическим и техническим сложностям эффективного осуществления официально регламентированных противобруцеллезных мероприятий, в частности, планомерной поотарной замены овец и коз. Ежегодные иммунизации животных против бруцеллеза живыми агглютиногенными вакцинами (в частности, вакциной из штамма 19) традиционным подкожным методом, обеспечивавшие противоэпизоотический и противоэпидемический эффекты, из-за длительно сохраняющихся поствакцинальных реакций, неподдающихся дифференциации, стали практически невозможными (П.К. Араке-лян, 1997). В результате, резко возросла заболеваемость людей бруцеллезом в острой форме, главным образом за счет непосредственных контактов с овцами и козами неблагополучных по бруцеллезу отар (В.М. Авилов с соавт., 1999).
Применительно к современным условиям был предложен конъюнкти-вальный метод иммунизации мелкого рогатого скота живыми агглютиногенч. ными вакцинами в уменьшенной дозе, обеспечивающий поствакцинальную диагностику бруцеллеза в. более ранние сроки с помощью РА и РСК (П.К. Аракелян с соавт., 2001; JI.B. Жарова, 2002; A.C. Димова, 2003). Но определение оптимальных сроков поствакцинальных исследований, животных, привитых по новым схемам, осталось необходимым.
В последнее время возобновился интерес ученых и практиков к РНГА. Особого внимания заслуживает эритроцитарный диагностикум, разработанный в Прикаспийском НИВИ (С.Г. Хаиров, 2001). При бруцеллезе мелкого рогатого скота в связи с новыми схемами иммунизации его эффективность не изучали.
В- дифференциально-диагностическом и противоэпизоотическом отношении у крупного рогатого скота, привитого вакциной из штамма B.abortus 82, эффективной оказалась РИД с О-полисахаридным (О-ПС) бруцеллезным антигеном (В.М. Чекишев с соавт., 1993; С.К. Димов; 1993; Г.М. Стеблева, 1998).
H.A. Морозова (2002) в экспериментальных условиях установила, что РИД с О-ПС антигеном не может быть использована для объективной дифференциальной диагностики бруцеллеза у многократно подкожно иммунизированных овец вакциной из штаммаЛ9 в дозе 40*млрд. м.к. (реакция1 сохраняется в течение 12 месяцев, у 2,0-5,9% здоровых привитых животных). Было выяснено, что изменение дозы вакцины и метода ее введения влияет на сроки сохранения у животных поствакцинальных РИД в плане их быстрейшего угасания. Однако, убедительных доказательств- дифференциально-диагностического и противоэпизоотического значения этого метода нет.
Известно* что официальный О-полисахаридный антиген для постановки. РИД у животных разных видов готовят только < из B.abortus (В.М. Чекишев,с соавт., 1993). Поэтому сравнительное изучение диагностической ценности при бруцеллезе у мелкого рогатого скота РИД с О-ПС антигенами, изготовленными по аналогичной методике из B.abortus и B.melitensis, представляет научный и практический интерес с позиций возможной видоспецифичности.
Цель исследований — совершенствование поствакцинальной диагностики бруцеллеза мелкого рогатого скота при различных схемах специфической профилактики.
Задачи исследований:
- провести сравнительную оценку возможности использования РА, РСК, РНГА и РИД с официальным О-ПС антигеном в диагностике бруцеллеза у мелкого рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма В. abortus 19 по различным схемам;
- определить противоэпизоотическое и противоэпидемическое значение РИД с официальным О-ПС антигеном в поствакцинальной диагностике бруцеллеза у мелкого рогатого скота;
- изучить в экспериментальных и производственных условиях дифференциально-диагностическую эффективность РИД с О-ПС антигенами, изготовленными по аналогичной методике из штаммов В.abortus и B.melitensis, при бруцеллезе у мелкого рогатого скота, в том числе после иммунизации вакциной из штамма В.abortus 19 по различным схемам. < :"
Научная новизна. Установлена возможность использования у мелкого рогатого скота при бруцеллезе диагностического комплекса (РА, РСК и РНГА с определенными титрами; РИД с официальным О-ПС антигеном) в ранние сроки (4 мес.) после подкожной и конъюнктивальной иммунизаций, а также проведенных на этом фоне неоднократных конъюнктивальных реим-мунизаций вакциной из штамма 19.
В ранние сроки даже после однократной подкожной реиммунизации овец на фоне подкожной иммунизации оказалось возможным применение лишь РИД, и то с определенными издержками (выявление более 2% здоровых животных с реакциями вакцинного происхождения). .
Подтверждена противоэпизоотическая и противоэпидемическая эффективность использования в поствакцинальной диагностике бруцеллеза у мелкого рогатого скота РИД с официальным О-ПС антигеном.
В экспериментальных и производственных условиях при бруцеллезе мелкого рогатого скота доказаны диагностические преимущества РИД с О-ПС антигеном, изготовленным из B.melitensis (М-антигеном), по сравнению с официально выпускаемым О-ПС антигеном, изготовленным из В.abortus (А-антигеном).
Получены результаты, свидетельствующие об определенной видоспеци-фичности О-ПС антигенов, изготовленных из В.abortus и B.melitensis (А- и М-антигенов), обеспечивающей возможность их использования при эпизоотической оценке по бруцеллезу отар овец и коз, иммунизированных вакциной из штамма B.abortus 19, в любые сроки после вакцинации.
Получен патент РФ на изобретение № 2303458 «Способ диагностики бруцеллеза мелкого рогатого скота» от 27 июля 2007 г.
Практическая и теоретическая значимость. Широкое внедрение результатов исследований позволит в значительной степени повысить эффективность контроля эпизоотического процесса бруцеллеза мелкого рогатого скота за счет новых схем иммунизации на основе конъюнктивального метода, а также ранней комплексной поствакцинальной диагностики (включая РИД, в том числе с О-ПС антигеном из B.melitensis) в целях выявления эпизоотически и эпидемически опасных животных.
Результаты сравнительного изучения О-ПС А- и М-антигенов являются основой для дальнейшего совершенствования схем дифференциальной поствакцинальной диагностики бруцеллеза животных.
Апробация полученных результатов. Основные положения диссертации доложены и обсуждены на 6-й международной научно-практической конференции «Аграрная наука Сибири, Монголии, Казахстана и Башкортостана сельскому хозяйству» '(Новосибирск, 2003), международной научно-практической конференции «Современные проблемы эпизоотологии» (Новосибирск, 2004), Сибирском международном ветеринарном конгрессе «Актуальные вопросы ветеринарной медицины» (Новосибирск, 2005), 9-й международной научно-практической конференции «Научное обеспечение агропромышленного комплекса азиатских территорий» (Алматы, 2006), 3-й международной конференции «Состояние и перспективы развития производства ветеринарных биопрепаратов (Алматы, 2006), 6-й межрегиональной научно-практической конференции «Проблемы патологии человека и животных в условиях Сибири» (Омск, 2007).
Публикация результатов исследований. По теме диссертации опубликовано 8 научных работ, в том числе две статьи в журнале, рекомендованном ВАК Минобразования РФ («Ветеринария»).
Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 118 страницах и включает разделы: введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение результатов исследований, выводы, практические предложения, список литературы и приложение. Работа иллюстрирована 9 таблицами и 7 рисунками. Список литературы содержит 193 источника, в том числе 32 работы иностранных авторов.
Заключение диссертационного исследования на тему "Поствакцинальная диагностика бруцеллеза мелкого рогатого скота при различных схемах специфической профилактики"
5.ВЫВОДЫ
1. После первичной подкожной иммунизации мелкого рогатого скота вакциной из штамма В. abortus 19 диагностические исследования животных оказалось возможным проводить не ранее, чем через 4 месяца только с помощью РИД с официальным О-ПС антигеном (из В.abortus), а через год - с помощью всего изученного диагностического комплекса (включая РИД) с диагностическими титрами РА выше 100 ME, РИГА выше 1:100, PCK-S -выше 1:10.
2. После подкожной однократной реиммунизации животных вакциной из штамма В.abortus 19 на фоне первичной подкожной иммунизации этой же вакциной проводить диагностические исследования с помощью изученного диагностического комплекса оказалось невозможным. Наименьшими издержками обладала РИД с официальным О-ПС антигеном (более 2% здоровых животных с реакциями вакцинного происхождения).
3 Поствакцинальная диагностика после первичной конъюнктивальной иммунизации, а также конъюнктивальных реиммунизаций на фоне первичной конъюнктивальной, и даже подкожной иммунизации вакциной из штамма В.abortus 19 оказалась возможной с использованием всего диагностического комплекса через 3-4 месяца. На фоне первичной подкожной иммунизации установлена целесообразность учитывать в качестве диагностических титры РА выше 100 ME, РИГА - выше 1:100, PCK-S - выше 1:10, а на фоне первичной конъюнктивальной иммунизации -100 ME и 1:100 и выше, 1:10 и выше соответственно.
4. Диагностические исследования мелкого рогатого скота на бруцеллез в неблагополучных по этой болезни отарах с помощью РИД с официальным О-ПС антигеном на фоне иммунизации животных вакциной из штамма 19, как подкожно в дозе 40 млрд. м.к., так и конъюнктивально в дозе 4 млрд. м.к., с убоем реагирующих, обеспечивают повышение уровня эффективности про-тивобруцеллезных мероприятий. Так, в одной из неблагополучных территорий в течение четырех лет за счет этого удалось снизить число активно действующих эпизоотических очагов с 15 до 4 (в 3,7 раза), а число случаев заболевания людей бруцеллезом в острой форме - с32до9(вЗ,5 раза).
5. У мелкого рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма В.abortus 19 по разным схемам, с искусственным и естественным инфицированием бруцеллами вида melitensis, при использовании О-ПС М-антигена (из B.melitensis), по сравнению с официальным О-ПС А-антигеном (из В.abortus), дополнительно выявляли в среднем в 2,25 раза больше инфицированных животных. Эпизоотическая опасность таких животных доказана наличием у них высоких титров РИГА и РСК (1:200 и выше и 1:20 и выше соответственно), а также результатами бактериологических исследований (положительная биопроба, выделение культур).
6. У искусственно и естественно инфицированных бруцеллами вида melitensis овец, иммунизированных вакциной из штамма В. abortus 19 подкожно в дозе 40 млрд. м.к. превалирует регистрация РИД с обоими О-ПС антигенами, а после иммунизации этой же вакциной конъюнктивально в дозе 4 млрд. м.к. - только с О-ПС М- антигеном.
7. У здоровых овец положительную РИД только с О-ПС М-антигеном после иммунизации вакциной из штамма В.abortus 19 не наблюдали, а после иммунизации вакциной из штамма B.melitensis Рев-1 зарегистрировали в 66,6% случаев из общего числа реагировавших на оба антигена. Полученные результаты свидетельствуют об определенной видоспецифичности антигенов, изготовленных из В.abortus и B.melitensis.
6.ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
Использовать в системе противобруцеллезных мероприятий у мелкого рогатого скота в целях повышения уровня ее эффективности:
- конъюнктивальный метод иммунизации овец и коз вакциной из штамма 19, обеспечивающий специфическую защиту, а также выявление в ранние сроки после вакцинации инфицированных животных с помощью РА, РСК, РИГА и РИД;
- РИД с новым О-ПС антигеном, изготовленным из B.melitensis, позволяющим выявлять значительно большее количество инфицированных животных;
- РИД с О-ПС антигенами из В.abortus и B.melitensis для использования в схемах эпизоотической оценки по бруцеллезу вакцинированных животных.
Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2008 года, Димов, Константин Сергеевич
1. Авилов, В.М. Состояние и перспектива специфической профилактики бруцеллеза овец / В.М. Авилов, И.А. Косилов, П.К. Аракелян // Ветеринария. 1999. - №3. - С.8-12.
2. Альбертян, М.П. Динамика иммуноморфологических реакций у овец, привитых культурами штаммов В. abortus 19, 104-М,
3. B.melitensis Rev-1 / М.П. Альбертян, К.В. Шумилов //Состояние и перспективы научных исследований по диагностике и профилактике туберкулеза и бруцеллеза и меры борьбы с этими болезнями с.-х. животных. Омск, 1980. -С.264-266.
4. Антонов, Б.И. Реакция иммуннодиффузии в агаровом геле (РИД) с О-ПС антигеном ИЭВСиДВ при диагностике бруцеллеза крупного рогатого скота / Б.И. Антонов, В.М. Чекишев, К.В. Шумилов и др. // Ветеринария. 1994. - N 11. - С. 19-22.
5. Аракелян П.К. Дифференциация больных и вакцинированных против бруцеллеза овец/ П.К. Аракелян // Ветеринария. -1996. -№ 11.1. C. 10-13.
6. Аракелян, П.К. Дифференциация вакцинированных и больных бруцеллезом овец / П.К. Аракелян, Е.Б. Барабанова // Эпизоотология, диагностика, профилактика и меры борьбы с болезнями животных /Сб. научн. тр. СО РАСХН. ИЭВСиДВ. Новосибирск, 1997. -С. 74-77.
7. Аракелян, П.К. Оптимизация противоэпизоотических мероприятий при заболеваниях, вызываемых у овец бруцеллами видов melitensis и ovis: автореф. дис. . д-ра ветеринар, наук. / П.К. Аракелян Омск, 1997.-38 с.
8. Аракелян, П.К. Оптимизация методов применения вакцины из штамма 19 при бруцеллезе овец / П.К. Аракелян, Е.Б. Барабанова, А.Т. Рукин // Ветеринария. 1998. - № 8. - С. 18-21.
9. Аракелян, П.К. Показания РИД с О-полисахаридным антигеном после иммунизации овец против бруцеллеза / П.К. Аракелян, И.А. Ко-силов, Е.Б. Барабанова и др. // Ветеринария. 2000. - № 1. - С.29-30.
10. Аракелян П.К. Усовершенствование специфической профилактики бруцеллеза овец / П.К. Аракелян // Актуальные проблемы бруцеллеза и туберкулеза животных: сб. науч. тр. РАСХН, ВНИИБТЖ. -Омск, 2000-С. 154-156.
11. Аракелян, П.К. Влияние разных методов иммунизации овец вакциной из штамма 19 и кратности прививки на проявление серологических реакций (РА, РСК, РИД) / П.К. Аракелян, И.А. Косилов, H.A. Морозова и др. // там же. С. 77-80.
12. Арбузова, Е.И. Иммунобиологические реакции и приживаемость вакцинного штамма бруцелл при глазном и энтериально-накожном методах введения/ Е.И. Арбузова // Тр. Киргиз. Института эпидемиологии, микробиологии и гигиены, 1961.- С. 113-117.
13. Аскерова, С.А. Получение, характеристика и применение поли-Б антигена из бруцелл для дифференциации поствакцинальных и постинфекционных антител: автореф. дис. . канд. биол. наук. /С.А. Аскерова. М., 1988. - 22 с.
14. Ашепа, М.Б. Опыт оздоровления хозяйств от бруцеллеза / М.Б. Ашепа, Н.В. Маковеев, А.Т. Баннов // Ветеринария. -1973. -№ 2. С.47-48.
15. Бадалян, С.Г. Определение возможности выделения вакцинной культуры из штамма Рев-1 с молоком овцематок, привитых разными дозами этой вакцины в период лактации /С.Г. Бадалян // Бюл. ВИ-ЭВ.-1987. Вып. 64. - С.73-75.
16. Базалей, Ф.К. Применение вакцин из штаммов В.abortus 19 и B.melitensis Rev-1 для профилактики бруцеллеза овец / Ф.К. Базалей, К.П. Евстафиади, И.Ф. Таран и др. // Ветеринария.-1985. -№4. -С.32.
17. Беляева, H.A. Опыт оздоровления овец от бруцеллеза с применением вакцины из штамма 19 в крупных овцеводческих хозяйствах Рос1.Iтовской области: автореф. дис. канд. ветеринар, наук. / H.A. Беляева. -М., 1969.-20с.
18. Бобылев, А.Н. Профилактическая и противоэпизоотическая эффективность адъювант-вакцины из штамма Brucella abortus KB 17/100 против бруцеллеза крупного рогатого скота: дис. . канд. ветеринар. наук. / А.Н. Бобылев. Москва, 2001. - 156 с.
19. Бровик, Е.А. Реактогенность овец при различных способах иммунизации вакциной из штамма B.melitensis Pev-1 / Е.А. Бровик // Бюл. ВИЭВ. 1990. - Вып. 75. - С.25-27.
20. Бровик, Е.А. Имунологическая реактивность овец при различных методах введения вакцины из штамма Brucella melitensis Rev-1: автореф. дис. канд. ветеринар, наук. / Е.А. Бровик. М., 1991. - 23 с.
21. Бровик, Е.А. Влияние различных методов введения вакцины из штамма B.melitensis Rev-1 на иммунологическую реактивность овец / Е.А. Бровик, А.Н. Касьянов // Тез. докл. Ш Всесоюз. конф. по эпизоотологии. Новосибирск, 1991. - С.162-164.
22. Вершилова, П.А. Бруцеллез в СССР и пути его профилактики / П.А. Вершилова, A.A. Голубева // М.: Медицина 1970. -190 с.
23. Глотов, Г.Н. Динамика иммунобиологических реакций у овец, привитых вакциной из штамма 19 в Читинской области / Г.Н. Глотов, Г.И. Глотова// сб. науч. тр. СибНИВИ.- 1966. Вып. 14. - С.139-146.
24. Глотов, Г.Н. Значение ревакцинации и длительность иммунитета у овец привитых вакциной из штамма 19 / Г.Н. Глотов // Ветеринария. 1969.-№3.-С.31-33.
25. Гуляев, А.И. Изучение динамики иммунобиологических реакций у овец, вакцинированных и больных бруцеллезом / А.И. Гуляев // Доклады Каз. Академии с.-х. 1958. - № 3. - С.9-15.
26. Гуляев, А.И. Изучение динамики иммунобиологических реакций у овец, вакцинированных и больных бруцеллезом /А.И. Гуляев // Ветеринария. 1959. - № 5. - С.28-29.
27. Гуляев, А.И. К вопросу дифференциации иммунобиологических реакций у овец вакцинированных и больных бруцеллезом: автореф. дис. .канд. ветеринар, наук. /А.И. Гуляев. Алма-Ата, 1960 - 14с.
28. Дарвишев, К.Д. Серологические особенности организма крупного рогатого скота, больного бруцеллезом и здорового, привитого вакциной из штамма 19 / К.Д. Дарвишев // Ветеринария. 1961. - № 11. - С. 51.
29. Димов, С.К. Теория и практика управления эпизоотическим процессом бруцеллеза: дис. . д-ра ветеринар, наук. / С.К. Димов. Новосибирск, 1993. - 330с.
30. Димова, A.C. Оценка технологичности различных противобруцел-лезных вакцин и схем их применения на крупном и мелком рогатом скоте: автореф. дис. .канд. ветеринар, наук. /A.C. Димова. Новосибирск, 2003.-22с.
31. Жарова, JT.B. Эффективность конъюнктивального метода иммунизации овец против бруцеллеза вакциной из штамма 19: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук. /J1.B. Жарова. Новосибирск, 2002. - 20с.
32. Здродовский, П.Ф. Бруцеллез /П.Ф. Здродовский // М.: Медицина, 1953. -244с.
33. Иванов, A.A. Сравнительная характеристика противоэпизоотиче-ской эффективности некоторых противобруцеллезных вакцин в овцеводческих хозяйствах: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук. / A.A. Иванов. Омск, 1996. - 20с.
34. Иванов, А.Д. Некоторые итоги и перспективы борьбы с бруцеллезом сельскохозяйственных животных в СССР /А.Д. Иванов // Тр. 34-го пленума ветеринар, секции. Москва, 1955. - С 18-24.
35. Иванов, М.М. Оценка эффективности противобруцеллезных вакцин из штаммов 19, 82, 89/23, Н-12 и Рев-1 / М.М. Иванов, А.И. Клима-нов, Г.Г. Попова и др. // Ветеринария. 1971. -№7. -С.32-34.
36. Иванов, Н.П. Реактивность организма овец на введение вакцины из штамма Рев-1 / Н.П. Иванов, К.А. Кашкинбаев, A.A. Султанов // Вестник с.-х. наук Казахстана. 1988. - № 4. - С.70.
37. Кабасова, A.C. Оценка конъюнктивальной противобруцеллезной вакцинации овец по реакции лимфоидных органов: автореф. дис. .канд. ветеринар, наук. / A.C. Кабасова. Семипалатинск, 2003.- 24 с.
38. Кадыров, О. Изучение эффективности иммунизации овец вакциной из штамма Brucella abortus 19 и некоторых вопросов эпизоотологии бруцеллеза в Туркменской ССР: автореф. дис. . канд. ветеринар. наук. / О. Кадыров. Алма-Ата. - 1967. - 22 с.
39. Какоулин, Т.Е. Бруцеллез овец в Иркутской области и испытание новых противобруцеллезных вакцин в эксперименте и в производственных условиях: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук. / Т.Е. Какоулин Улан-Удэ, 1975. - 28с.
40. Какоулин, Т.Е. Опыт оздоровления хозяйств Иркутской области от бруцеллеза овец / Т.Е. Какоулин // Науч.-техн. бюл. ВАСХНИЛ. Сиб.отд-ние. 1980. - Вып.18. - С. 12-15.
41. Канжигитов, Е.К. Профилактика бруцеллеза мелкого рогатого скота: автореф. дис. . д-ра ветеринар, наук. /Е.К. Кинжигитов. Алма-ты, 2006. - 48 с.
42. Касымов, Т.К. Эпизоотология бруцеллеза и оптимизация противобруцеллезных мероприятий в условиях Кыргызстана: автореф. дис. . д-ра . ветеринар, наук. /Т.К. Касымов. Новосибирск, 2002. - 47с.
43. Ким, В.И. Краевая эпизоотология и эффективность средств специфической профилактики при бруцеллезе животных в Киргизии / В.И. Ким, А.И. Беляков, В.А. Коновалов // сб. науч. тр. КиргНИВИ. -Фрунзе, 1988. -С.61-64.
44. Ким, В.И. Эпизоотология бруцеллеза и усовершенствование мер борьбы с ним в условиях отгонного животноводства Кыргызстана: дис. . д-ра ветеринар, наук (в форме научного доклада)./ В.И. Ким. -Новосибирск, 1991. 47с.
45. Киселев, Е.А. Дифференциация вакцинированных и больных бруцеллезом животных с помощью О-полисахаридного антигена: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук. /Е.А. Кисилев. Новосибирск, 1993.-13с.
46. Клочков, Г.С. Эффективность противоэпизоотических мероприятий при бруцеллезе овец / Г.С. Клочков, A.A. Иванов, В.И. Ким // Бруцеллез с.-х. животных: сб. науч. тр. / ВАСХНИЛ. ВНИИБТЖ. - Омск, 1989. -С. 98-106.
47. Клочков, Г.С. Реактогенность вакцины из штамма Рев-1 / Г.С. Клочков, A.A. Скореев // Пути совершенствования профилактики и диагностики бруцеллеза с.-х. животных: сб. науч. тр. Омск, 1990. - С.58-62.
48. Колганова, O.A. Эффективность нового метода диагностики бруцеллеза животных / O.A. Колганова, А.И. Кабанцев // Эпизоотология, диагностика, профилактика и меры борьбы с болезнями животных: сб. науч. тр. / РАСХН. Сиб. отд-ние. ИЭВСиДВ. 1997. С.72-78.
49. Косилов, И.А. К вопросу изучения иммунологических реакций у овец после прививки вакциной из штамма 19 / И.А. Косилов // сб. науч. работ СибНИВИ.- Омск, 1962. Вып.11. -С.43-53.
50. Косилов, И.А. Изучение эффективности иммунизации овец против бруцеллеза вакциной из штамма 19 в эксперименте и хозяйствах Омской области: автореф. дис. . канд. ветеринар.наук / И.А. Косилов. Омск, 1963. - 13с.
51. Косилов, И.А. Оценка иммунологических реакций у овец, иммунизированных вакциной из штамма 19 / И.А. Косилов// Ветеринария,- 1963.- № 7. С.32-36.
52. Косилов, И.А. Опыт применения вакцин из штамма 19 в овцеводческих хозяйствах Омской области / И.А. Косилов // Тез. выступленийна Всесоюзном совещании по проблеме ликвидации бруцеллеза с.-х. животных. М., 1964. - С.84-88.
53. Косилов, И.А. Роль специфической профилактики в системе проти-вобруцеллезных мероприятий / И.А. Косилов // Эпизоотология и меры борьбы с инфекционными болезнями животных. Новосибирск, 1985. — С.30-34.
54. Косилов, И.А. Эффективность противобруцеллезных мероприятий в овцеводстве/ И.А. Косилов // Тез. докл. Всесоюз. конф. "Актуальные вопросы профилактики бруцеллеза и организации медицинской помощи больным" / Новосибирск, 1989. С. 187-189.
55. Косилов, И.А. Противобруцеллезные мероприятия при отгонном овцеводстве / И.А. Косилов, П.К. Аракелян // матер, науч.-практ. Российско-Монгольской конф. «Проблемы развития АПК Монголии». — Новосибирск, 1998. С.78-79.
56. Косилов, И.А. Бруцеллез сельскохозяйственных животных / И.А. Ко-силов, П.К. Аракелян, С.К. Димов и др. // Новосибирск, 1999. -344с.
57. Косилов, И.А. Противоэпизоотическая и противоэпидемическая эффективность специфической профилактики бруцеллеза овец / И.А. Косилов, П.К. Аракелян // Научное обеспечение ветеринарных проблем в животноводстве. Новосибирск, 2000. -С. 120-130.
58. Косилов, И.А. Оптимизация противоэпизоотических мероприятий при бруцеллезе мелкого рогатого скота / И.А. Косилов, П.К. Аракелян // Ветеринария. 2001. - № 6. - С. 12-15.
59. Кочурин, А.И. Значение вакцинации овец штаммом 19 в оздоровлении хозяйств от бруцеллеза / А.И. Кочурин, И.А. Косилов // сб. науч. тр. СибНИВИ. Омск,1966. - Вып. 14. - С.25-33.
60. Курдина, Д.С. Изучение вакцинного штамма B.melitensis Rev-1 / Д.С. Курдина // Сообщение 1. ЖМЭИ.- 1961. - № 11.- С.99-104.
61. Курдина, Д.С. Сравнительное изучение остаточной вирулентности вакцинных штаммов бруцелл разных типов / Д.С. Курдина // Сообщение 2. ЖМЭИ. - 1963. - № 4. - С.97-102.
62. Ламихов, К.Ф. Опыт иммунизации животных против бруцеллеза через неповрежденные слизистые оболочки / К.Ф. Ламихов // сб. науч. работ. Новосибирск, 1958. - Вып.1. - С.17-30.
63. Лебедева, И.В. Экспресс методы диагностики бруцеллеза животных: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук. / И.В. Лебедева. - Алма-ты, 2005.- 30 с.
64. Лим, A.A. Иммунологическая реактивность крупного рогатого скота в зависимости от метода введения вакцины из штамма В.abortus 104-М / A.A. Лим // Бюлл. ВИЭВ. М., 1985.- Вып. 59. - С.7-12.
65. Лим, A.A. Перспективы конъюнктивальной вакцинации крупного рогатого скота против бруцеллеза / A.A. Лим, А.Н. Касьянов,З.П. Мама-това// Бюл. ВИЭВ. -1987. -Вып. 64. - С.68-71.
66. Лим, A.A. Эффективность конъюнктивальной иммунизации крупного рогатого скота против бруцеллеза / A.A. Лим// Доклады ВАСХ-НИЛ. -1988. № 3. - С.44-46.
67. Логинов, Ф.С. К эпизоотологии бруцеллеза в Омской области и значение серологических методов диагностики бруцеллеза у крупного рогатого скота в разных эпизоотических условиях: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук. / Ф.С. Логинов- Омск. 1957. -22с.
68. Локтева, Ф.П. Экспериментальное и производственное испытание бруцеллезной вакцины из штамма 19 на овцах / Ф.П.Локтева, Е.А. Хлопушина, Т.Я. Морозова // Ветеринария. 1959.- № 5. -С.26-28.
69. Локтева, Ф.П. О прививках овцам бруцеллезной вакцины из штамма 19 / Ф.П.Локтева, H.A. Беляева // сб. науч. тр. ЛенНИВИ.-Вып.2. 1965. - С.36-40.
70. Мангазеева, A.C. Вторичный иммунный ответ у крупного рогатого скота после применения некоторых противобруцеллезных вакцин: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук. / A.C. Мангазеева. -Фрунзе, 1976.- 21 с.
71. Морозова, H.A. Значение РИД с О полисахаридным антигеном при поствакцинальной диагностике бруцеллеза овец: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук. / H.A. Морозова. - Новосибирск, 2002. -21с.
72. Муминов, A.M. Результаты изучения конъюнктивального способа иммунизации морских свинок и крупного рогатого скота против бруцеллеза живой вакциной из штамма В.abortus 82 / A.M. Муминов // Тр. КазВИ. Казань,1980.- Т.135. - С.153-159.
73. Мустафин, М.К. Специфическая профилактика^ бруцеллеза крупного рогатого скота: автореф. дис. . д-ра ветеринар, наук. / М.К. Мустафин. Алматы, 2004.- 44 с.
74. Муфтеев, Ф.Г. Изучение эффективности мероприятий по борьбе с бруцеллезом сельскохозяйственных животных в Башкирской АССР: автореф. дис. канд. ветеринар, наук. /Ф.Г. Муфтеев. Казань, 1968.- 20с.
75. Новицкий, A.A. Оптимизация специальных мероприятий против бруцеллеза крупного рогатого скота: дис. . д-ра ветеринар, наук (в форме научного доклада). / A.A. Новицкий Казань, 1989. - 46 с.
76. Орлов, Е.С. Исследование живой вакцины из штамма В.bovis 19 / Е.С. Орлов, О.И. Морякова, В.Е. Карнеева // сб. науч. работ ВИЭВ.-1945.- С.25-33.
77. Орлов, Е.С. Исследование живой вакцины из штамма В.abortus 19 / Е.С. Орлов, О.И. Морякова, В.Е. Карнеева // Сб. работ ВИЭВ. -1949. С.25-33.
78. Орлов, Е.С. Изучение иммунитета у овец, вакцинированных различными штаммами бруцелл / Е.С. Орлов, П.С. Уласевич, М.М. Иванов // Тр. ВИЭВ,- 1962.-Т.29.- С.31-37.
79. Орлов, Е.С. Методы борьбы с бруцеллезом сельскохозяйственных животных/Е.С. Орлов// Ветеринария.-1962. № 5. - С.40-44.
80. Орлов, Е.С. Изучение напряженности иммунитета у овец, вакцинированных штаммами B.abortus 19 и B.melitensis Рев-1 / Е.С. Орлов,
81. П.С. Уласевич, М.М. Иванов // сб. науч. тр. ВИЭВ. 1965. - Т.31.-С.З-7.
82. Орлов, Е.С. О результатах изучения бруцеллеза животных и достижения в борьбе с ним / Е.С. Орлов // сб. науч. тр. ВИЭВ. -Т.34.- 1967.-С.381-394.
83. Орлов, Е.С. Диагностика и специфическая профилактика бруцеллеза в СССР/Е.С. Орлов//Бюл. ВИЭВ, 1971. -Вып. 10.- С.5-12.
84. Орлов, Е.С. Сравнительное изучение вирулентных и иммуногенных свойств шести вакцинных штаммов бруцелл /Е.С. Орлов, П.С. Уласевич, М.М. Иванов и др. // Там же.-С. 160-172.
85. Плотникова, Э.М. Разработка методов и средств иммуномониторинга бруцеллеза животных / Э.М. Плотникова, K.M. Салмаков// Ветеринария.-2003.-№ 12. -С.26-31.
86. Попов, Б.В. Опыт массовой вакцинации овец против бруцеллеза сухой бруцеллезной вакциной из штамма 19 / Б.В. Попов, С.В. Абакин // Ветеринария. -1956. № 10. - С. 15-17.
87. Прудентов, H.A. Об эффективности вакцины из штамма 19 для профилактики бруцеллеза у овец /H.A. Прудентов // сб. науч. тр. Ставроп. НИВС.- 1956. Вып.З. - С.128-131.
88. Прудентов, H.A. Теоретические предпосылки к широкому применению бруцеллезной вакцины из штамма 19 в борьбе с бруцеллезом сельскохозяйственных животных в условиях Ставропольского края/ H.A. Прудентов // сб. науч. тр. ЛенНИВИ.- Вып.11.- 1965. С.19.
89. Прудентов, H.A. Эпизоотическое значение животных, длительно сохраняющих поствакцинальные реакции на вакцину из штамма 19 / H.A. Прудентов, Ф.Я. Полховский, В.М. Аленко // сб. науч тр. ЛенНИВИ.- Вып.11. 1965. - С.9-13.
90. Рукин, А.Т. Совершенствование методов иммунизации овец против бруцеллеза вакциной из штамма В.abortus 19: автореф. дис. .Тканд. ветеринар, наук. /А.Т. Рукин. Омск, 1998. - 20с.
91. Садыков, С.Ж. О результатах производственного испытания вакцины из штамма Рев-1 в хозяйствах Карагандинской области/ С.Ж. Садыков // Инфекционные и незаразные болезни сельскохозяйственных животных в Казахстане / сб. науч. тр.-Алма-ата.-1983.- С.59-63.
92. Саркисян, Г.Е. Аллергическая проба для выявления больного бруцеллезом крупного рогатого скота после вакцинации / Г.Е. Саркисян // Ветеринария. 1967. - № 7. - С. 48-49.
93. Саркисян, Г.Е. Разработка методов дифференциации больного бруцеллезом крупного рогатого скота от сохраняющего в крови антитела в связи с иммунизацией вакциной из штамма 19: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук. / Г.Е. Саркисян. Ереван, 1969. - 17 с.
94. Сатаров, A.C. К вопросу поствакцинальных серологических реакций при спонтанном бруцеллезе овец / A.C. Сатаров // Ученые записки Башкирского НИИСХ. Уфа, 1963. - С.34-35.
95. Сафина, Г.М. Сравнительное изучение иммунобиологических свойств вакцинного штамма B.abortus R-1096: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук / Г.М. Сафина-Казань, 2004. 16 с.
96. Селиванов, A.B. К вопросу иммунизации морских свинок через неповрежденную конъюнктиву живой бруцеллезной вакциной НИИЭГ/ A.B. Селиванов// сб. науч. работ СибНИВИ.- Омск, 1956. -Вып.6. -С.129-138.
97. Селиванов, A.B. Опыт иммунизации овец через неповрежденную конъюнктиву живой бруцеллезной вакциной // сб. науч. работ СибНИВИ. 1956.-С.139-144.
98. Селиванов A.B. Вакцинальная реакция и иммунитет у овец при разных методах введения бруцеллезной вакцины из штамма 19 / A.B. Селиванов, С.Д. Кошуков // Ветеринария. 1959. - №5. - С.29-30.
99. Селиванов, A.B. Испытание в производственных условиях1с0нъюнк-тивального метода вакцинации овец против бруцеллеза вакциной изштамма 19 / A.B. Селиванов, А.Т. Кравец, И.А. Косилов // сб. науч. работ СибНИВИ. -1959. -Вып. 8. С.71-75.
100. Селиванов, A.B. О поствакцинальных реакциях при бруцеллезе овец / A.B. Селиванов, И.А. Косилов // Ветеринария.-1959. № 12. - С.29-32.
101. Скляров, О.Д. Разработка и совершенствование средств и методов диагностики бруцеллеза и кампилобактериоза животных: автореф. дис. . д-ра ветеринар, наук. / О.Д. Скляров. М., 2006.- 48 с.
102. Софиев, Б.И. Применение сухой бруцеллезной вакцины из штамма 19 / Б.И. Софиев, У.С. Срсенов, Г.А. Коломакин и др. // Ветеринария. -1956. -№ 10.-С.40-43.
103. Софронов, Н.В. Наш опыт иммунизации овец вакциной из штамма 19 / Н.В. Софронов, H.H. Новаев // Ветеринария.- 1958. № 10. - С.28-31.
104. Стеблева, Г.М. Усовершенствование дифференциальной диагностики бруцеллеза крупного рогатого скота: автореф. дис . канд. ветеринар, наук. / Г.М. Стеблева. Новосибирск, 1998. -23с.
105. Султанов, A.A. Динамика поствакцинальных антител у ярочек, иммунизированных разными дозами вакцины из штамма РЕВ-1 / A.A. Султанов // сб. науч. тр. КазНИВИ. 1984. С. 3-6.
106. Тарасов, И.А. Экспериментальное заражение овец бруцеллезом через кожные и слизистые покровы / И.А. Тарасов // Тр. экспед. ВИЭМ. М., 1937.-С.45-68.
107. Уласевич, П.С. Стабильность свойств штамма B.melitensis Rev-1 / П.С. Уласевич // Тр. ВИЭВ.- 1965. Т.31. - С. 18-25.
108. Уласевич, П.С. Результаты изучения вакцинного штамма B.melitensis Rev-1 в СССР / П.С. Уласевич // Бюлл.-1971. Вып. 10.- С. 13-17.
109. Уласевич, П.С. Сравнительное изучение на овцах иммуногенных свойств бруцеллезных вакцин из штаммов B.melitensis Rev-1 и В.abortus 19 / П.С. Уласевич, A.A. Аливердиев, О.Ю. Юсупов и др. // сб. науч. тр. ДагНИВИ.-1972. Т.5. - С.70-80.
110. Уласевич, П.С. Применение вакцины из штамма РЕВ-1 в целях профилактики бруцеллеза мелкого рогатого скота / П.С. Уласевич // Тр. ВИЭВ. -1974.- Т. 42. С.217-219.
111. Уласевич, П.С. Изучение эффективности иммунизации овец вакциной из штамма РЕВ-1 в производственных условиях / П.С. Уласевич, A.A. Аливердиев, О.Ю. Юсупов // сб. науч. работ ДагНИВИ. 1974.-Т.6-7. - С.87-90.
112. Уласевич, П.С. Иммунизация овец вакциной из штамма B.melitensis Rev-1 / П.С. Уласевич, A.A. Аливердиев, О.Ю. Юсупов // Ветеринария.- 1975.-№ 12. С.57-59.
113. Файзрахманов, Ш.Р. РИД с О-ПС антигеном у экспериментально вакцинированных и зараженных бруцеллезом животных / Е.А. Киселев, А.Г. Хлыстунов, В.В. Якимов и др. // сб. науч. тр. / РАСХН. Сиб. отд-ние. ИЭВСиДВ. 1993. -С. 119-127.
114. Фомин, A.M. Разработка и совершенствование средств и методов диагностики и специфической профилактики при бруцеллезе крупного рогатого скота: автореф. дис. . д-ра ветеринар, наук / Ä.M. ФоминТ1-Казань, 2001.- 36 с.
115. Хаиров, С.Г. Антиген бруцеллезный эритроцитарный для реакции непрямой гемагглютинации: дис. . д-ра ветеринар, наук. / С.Г. Хаиров. -Махачкала, 2001.- 198 с.
116. Чекишев, В.М. Дифференциация вакцинированных и больных бруцеллезом животных // В.М. Чекишев, Ш.Р. Файзрахманов, Е.А. Киселев и др. //Ветеринария. 1993. -№ 8. - С.25-29.
117. Чекишев, В.М. Способ получения антигена для дифференциальной диагностики вакцинированных и больных бруцеллезных животных / В.М. Чекишев, M.JI. Филиппенко, Е.А. Киселев, и др. // Патент РФ № 132501.- 1993.
118. Чекишев В.М. Новый метод диагностики бруцеллеза животных. Актуальные проблемы ветеринарии /В.М. Чекишев // Матер, междунар. конф. Барнаул (26-30 июня). - 1995. - С. 105-107.
119. Чекишев, В.М. Антигенная структура бруцелл / В.М. Чекишев, А.И. Кабанцев // Проблемы адаптации с.-х. животных: матер, науч.-практ. конф., посвящ. 65-летию Иркутской НИВС Иркутск (22-23 октября 1997г.) / РАСХН. Сиб. Отд-ние. - С.104-105.
120. Чекишев, В.М. Сравнительный анализ различных^^методов"диагностики бруцеллеза крупного рогатого скота / В.М. Чекишев, О.Д.
121. Скляров // Эпизоотология, диагностика, профилактика и меры борьбы с болезнями животных: сб. науч. тр. / РАСХН. Сиб. Отд-ние. ИЭВ-СиДВ. 1997. С.55-61.
122. Черемисин, Г.Г. Результаты двухлетнего применения вакцины из штамма 19 на овцах в условиях ЧИА ССР / Г.Г. Черемисин // Бюл. на-уч.-техн. информации ЛенНИВИ. 1960. - № 9. - С.13-15.
123. Черемисин Г.Г. О состоянии иммунитета у овец, привитых вакциной из штамма 19 / Г.Г. Черемисин, Л.Г. Иванова, О.И. Расторгуева // Ветеринария. 1962. - № 11. - С.37-38.
124. Черемисин, Г.Г. Состояние иммунитета у овец, привитых многократно вакциной из штамма 19 / Г.Г. Черемисин, Л.Г. Иванова, О.И. Расторгуева //Ветеринария. 1969. - № 3. - С.34-35.
125. Шумилов, К.В. Иммунологическая реакция на вакцинные штаммы бруцелл разной вирулентности у овец / К.В. Шумилов, М.П. Альбер-тян // Ветеринария.- 1972. № 10. - С.58-61.
126. Шумилов, К.В. Оптимальные иммунизирующие дозы вакцинных штаммов бруцелл / К.В. Шумилов // Ветеринария. 1979. - №8. - С.31 -34.
127. Шумилов, К.В. Эталонная серия вакцинного штамма B.melitensis Rev-1 / К.В. Шумилов, У.Э. Ниязов, H.A. Михайлов и др. // сб. науч. тр. ВГНКИ. М. -1983. - С.3-11.
128. Юсковец, М.К. Некоторые данные изучения бруцеллезной вакцины из американского штамма 19 / М.К. Юсковец// Ветеринария. 1944. -№ 10. -С.17-20.
129. Юсковец, М.К. Бруцеллез с.-х. животных / М.К. Юсковец // М., 1960.495 с.
130. Юсупов, О.Ю. Иммунологическая реактивность ягнят различного возраста при вакцинации против бруцеллеза / О.Ю. Юсупов // Бюл. ВИЭВ.- 1971. Вып. 10. - С.176-181.
131. Юсупов, О.Ю. Достижения отечественной науки и практики в борьбе с бруцеллезом овец и коз. Эффективность противобруцеллезной вакцины из штамма В.теШетгй КЕУ-1 / О.Ю. Юсупов//Тр. ДагНИВИ.-1981.-Т.12.- С.3-9.
132. Юсупов, О.Ю. Опыт борьбы с бруцеллезом овец / О.Ю. Юсупов // Ветеринария. 1983. - № 6. - С. 15-16.
133. Юсупов, О.Ю. Результаты испытания вакцины из штамма В.теШетгБ КЕУ-1 для иммунизации овцематок и ярок / О.Ю. Юсупов, Л.В. Ма-лушко, С.Г. Хаитов // Тр. ДагНИВИ. 1984. - С.7-9
134. Юсупов, О.Ю. Иммунизация овцематок вакциной из штамма В.теШетХя Яеу-1/О.Ю. Юсупров // Профилактика и лечение болезней с.-х. животных и птиц в Дагестане. Новочеркаск. - 1986.-С.5-14.
135. Юсупов, О.Ю. Система мер борьбы с бруцеллезом овец в условиях отгонного животноводства / О.Ю. Юсупов // сб. матер, науч. сессии РАСХН. М. - 1999. - С.176-177.
136. Alton, G.G. Duration of immunity produced in goats by Rev. 1 Brucella melitensis vaccine / G.G. Alton // J.Comp. Path. 1966. - Vol. 76. - P.241-253.
137. Alton, G.G. Rev.l Brucella melitensis vaccine. The stability of the degree of attenuation / G.G. Alton , S.S. Elberg., D. Crouch // J.Comp. Path. -1967.-Vol.77.-P.293-300.
138. Alton, G.G. Further studies on the duration of immunity produced in goats by the Rev.l Brucella melitensis vaccine / G.G. Alton // J.Comp. Path. 1968. - Vol.78. - P.173-178.
139. Alton, G.G. Brucella melitensis REV-1 and Brucella abortus 45/20 vac- -i eines in coats immynity /G.G. Alton, J.M. Jones, C. Garcia-Carrillo et al.
140. Am / Vet / Ree / -1972. -vol.29. -№ 9. P. 1741-1750.
141. Blasco, J.M. Vaccinacion de ovejas adultas cjn dosis reducidas de vacune Rev.l / J.M. Blasco, A. Lafuente, J. Grecia // J. Agricult. -1983. Vol. 52, № 611.- P.452-453.
142. Blasco, J.M. A note on adult sheep vaccination with reduced-dose of »
143. Brucella melitensis Rev.l / J.M. Blasco, A. Estrada, J. Grecia // Ann. Rech. Vet. 1984. - Vol. 15, N 4. - P.553-556.
144. Ciuchin, F. Revizz per via congiuntivale degli ovini. l.Incidenza e dinamica dellä risposta sierologica / F. Ciuchin, R. Fischetti, C. Pistola // Clin. Vet. 1986. - Vol.109, № 2. - P. 172-177.
145. Diaz, R. Surface antigens of smooth brucellae / R. Diaz, L.M. Jones,
146. D. Leong et al. // J.Bacteriol.- 1968.- Vol. 96.- P.893-901.
147. Diaz, R. Radial immunodifusion test with a brucella polysaccharide antigen for differentiating infected from vaccinated cattle / R. Diaz, P. Garatea, L.M. Jones et al. // J. Clin. Microbiol. 1979. - Vol. 10, № 1. - P.37-41.
148. Elberg, S.S. immunisation against Brucella infection. IY. Immunity conferred on goats by nondependant mutant from a streptomicin-dependant mutant strain of brucella melitensis / S.S. Elberg, W.K. Faunce // J. Bact. 1957. -Vol. 73.- P.211-217.
149. Erasmus, J.A. Ovine brucellosis: repeated vaccination with Rev.l vaccine and the prevalence of the diseases in the Winburg district / J.A. Framus,
150. E.C. Bergh // J. S. Afr. Vet. Assn.- 1985. Vol. 56, № 4. - P.205-208.
151. Falade, S. Studies on Brucella melitensis Rev-1 vaccine in goats / S. Fa-lade // Zbl. Vet. Med. -1981. -Vol. 28B. P.749-758.
152. Fensterbank, R. Comparison between subcutaneous and conjunctival route of vaccination with Rev.l strain against Brucella melitensis infection in ewes / R. Fensterbank, P. Pardon, J. Marly // J. Ann. Rech. Vet. 1982. -Vol. 13.- № 4. - P.295-301.
153. Fensterbank, R., Vaccination of ewes by a single conjunctival administration of Brusella melitensis Rev-1 vaccine / R. Fensterbank, P. Pardon, J. Marly//J. Ann. Ree. Vet. 1985. - № 1. - P.351-356.
154. Fensterbank, R. Conjunctival vaccination of young goats with Brucella melitensis Rev-1 / R. Fensterbank, J.M. Verger, G. Maggyr // J. Ann. Rech. Vet. 1987. - Vol. 18, № 4. - P.397-403.
155. Graumont, R. Immunisation de la chevre primapare contre l'infection experimentale a B.melitensis comparison des vaccins Rev.l et H38 / R. Graumont, L. Dhennin, D. Trap // Developments in Biological Standardization. Basel, 1984. - Vol. 56. - P.629-642.
156. Herzberg, M. Immunisation against Brucella infection. III. Response of mice and guinea pigs to infection of B. melitensis / M. Herzberg, S.S. Elberg // J.Bact. 1955. - Vol. 69. - P.432-435.
157. Jones, L.M. Seriological and bacteriological studies of ewes vaccinated with Brucella melitensis Rev-1 during lactation / L.M. Jones, J. Marly // J. Ann. Rech. Vet. 1975. - Vol. 6. - P. 67-71.
158. Jones, L.M. Evaluation of radial immunodiffusion test with polysaccharide B antigen for diagnosis of bovin brucellosis / L.M. Jones, D.T. Berman, E. Moreno et al. // J.Clin.Microbiol.- 1980.- Vol.12.- P.753-760.
159. Morgan, W.L.B. The degree of protection given by living vaccines against experimental infection with Brucella melitensis in goats / W.L.B. Morgan, A.L. Littejohn, D.J. Mackinson et al. // Bull. Wid. Org. -1966. -Vol. 134. № l7^P.33-40~
160. Neeman, L. The safety of the Rev.l strain of Brucella melitensis for pregnant sheep by natural contact / L. Neeman // J. Refuah Vet. 1968. -Vol. 25. - P.255-260.
161. Nicolleti, P. Comparison of the subcutaneus and conjunctival route of vaccination the Brucella abortus strain 19 vakcin in adult cattle / P. Nicolleti, L.M. Jons, D.T. Berman // J.Am.Med. Assoc. 1978. -Vol.179, № 11. - P.445-449.
162. Plommet, M. La vaccination conjunctivalepar la scuche Br. abortus 19 centre la brucellose bovine Principe et indications // M. Plommet // Bull.Necsical. de la Societo Veterinäre Pratigue de France. 1980. -Vol. 64.-№ 10.-P. 813-823.
163. Plommet, M. La vaccination conjonctivale par la vaccination conjonctivale par la souche B. abortus 19: Principe et indications // M. Plommet // Bull. Soc. Vet. Prat. France. 1981-. - Vol. 65. - № 4.- P.257-262.
164. Plommet, M. Developments in Biological Standartization. M.Plommet, R. Fensterbank// Basel, 1984. Vol. 56. - P. 681-679.