Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Патоморфология и дифференциальная диагностика гистомоноза кур
На правах рукописи
РГ6 од
Якунин V
Константин Александрович
ПАТОМОРФОЛОГИЯ И ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА ГИСТОМОНОЗА КУР
16.00.02 — патология, онкология и морфология животных
АВТОРЕФЕРАТ
диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук
Саратов 2000
Работа выполнена на кафедре патологической анатомии и патофизиологии животных института ветеринарной медицины и биотехнологии Саратовского государственного аграрного университета им. Н.И. Вавилова.
Научный руководитель: заслуженный деятель науки РФ, доктор ветеринарных наук, профессор Демкин Г.П.
Официальные оппоненты:
академик МАП и РАЕН, заслуженный деятель науки РФ, доктор медицинских наук, профессор Степанов С А;
кандидат ветеринарных наук, доцент Руднев Р.Н.
Ведущая организация: Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им.К.И. Скрябина.
Защита состоится 30 июня 2000 года в 12. 00 часов на заседании диссертационного совета К 120. 72. 04 в институте ветеринарной медицины и биотехнологии Саратовского государственного аграрного университета им. Н.И. Вавилова (аудитория кафедры патологической анатомии).
Адрес : 410005, г. Саратов, ул. Соколовая, 335.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке института ветеринарной медицины и биотехнологии Саратовского Государственного аграрного университета им. Н.И. Вавилова.
Автореферат разослан "с?-/" мая 2000 года.
Ученый секретарь диссертационного^содета-^
кандидат ветеринарных наук, / ^МО/! ^
доцент / /Сг Салаутин В.В.
1. Общая характеристика работы
1.1. Актуальность проблемы
Обеспечение продовольственной безопасности Российской Федерации невозможно без эффективной работы аграрного сектора отечественной экономики. В решении этой важной задачи большое значение имеет развитие птицеводства — наиболее рентабельной и динамичной отрасли сельского хозяйства.
Значительным фактором, сдерживающим развитие птицеводства в России, являются протозойные болезни, среди которых наибольшее распространение имеет гистомоноз ( Седов В.А. с соавт., 1998).
Гистомоноз широко распространен среди индеек, цесарок, перепелок, атак же некоторых видов диких и синантропных птиц. В последние годы гистомоноз стал все чаще отмечаться у кур в птицеводческих хозяйствах Саратовской области.
Ущерб, наносимый этой болезнью, складывается из потерь молодняка, снижения яйценоскости, убойного веса и качества мяса у переболевшей птицы. Смертность бройлеров достигает 5 — 20 % (МсОо1ша1с1 Ь., 1998), а потери прироста составляют 145 — 300 гр ( Ахаев Г., Рахматулин А., 1983).
При достаточно полном и всестороннем изучении гистомоно-за индеек (Ибрагимов А.А., 1965; Демкин Г.П., 1967; Бакулин В.А., 1982; Кашсз Е., 1988 и др.) вопросы патоморфологии и дифференциальной диагностики этого заболевания среди кур описаны, зачастую, разноречиво.
Ограниченные патологоморфологические исследования не дают достаточного представления о болезни и затрудняют ее диагностику. Не решен вопрос о наличии у переболевшей птицы устойчивости к реинвазии гистомонадами, в связи с чем особое значение имеют гистологические исследования лимфоидных органов кур, что позволило бы судить о характере иммуногенеза при заражении птиц простейшими организмами. Слабо изучены и возрастные аспекты патоморфологии гистомоноза, в результате чего затрудняется создание целостной картины патогенеза данного заболевания.
Недостаточно разработаны и освещены критерии дифференциальной диагностики гистомоноза, что вызывает значительные затруднения при постановке диагноза.
Таким образом, изучение патоморфогенеза гистомоноза кур следует считать научной стороной разрешения актуальной задачи современного птицеводства.
1.2. Цель и задачи исследований
Целью нашей работы явилось выявление закономерностей патогенеза гистомоноза кур различного возраста и совершенствование критериев диагностики данного заболевания на основании изучения патоморфологических изменений при спонтанном возникновении и экспериментальном воспроизведении инвазии. В связи с этим предполагается решить следующие задачи:
1. Изучить патоморфологические изменения, их динамику, характер и локализацию поражений при гистомонозе кур.
2. Проследить клинико-морфологические изменения при экспериментальном воспроизведении болезни у цыплят от момента заражения до терминальной стадии.
3. Исследовать динамику изменений в лимфоидных органах "кур при экспериментальном гистомонозе и изучить особенности формирования иммунного ответа у птиц различного возраста.
4. Разработать критерии дифференциальной диагностики гистомоноза кур от заболеваний со сходными патоморфолотческими проявлениями.
5. На основании проведенных исследований разработать рекомендации по диагностике и профилактике гистомоноза кур.
1.3. Научная новизна работы
Изучена динамика морфологических изменений в лимфоидных органах кур различного возраста при экспериментальном воспроизведении болезни.
Разработаны критерии дифференциальной диагностики гистомоноза кур и таких болезней, как пуллороз, сальмонеллез, туберкулез, колигранулематоз, острая форма болезни Марека, лим-фоидный лейкоз, криптоспоридиоз, эймериоз, аспергиллез и ге-теракидоз.
Изучение патоморфологических изменений в динамике болезни позволило расширить существующие представления о патомор-фогенезе гистомоноза кур.
1.4. Практическое значение работы
Рекомендованы к широкому использованию методы патомор-фологической диагностики гистомоноза кур и критерии дифференциации этого заболевания от пуллороза, сальмонеллеза, туберкулеза, колигранулематоза, острой формы болезни Марека, лимфоидного лейкоза, криптоспоридиоза, эймериоза, аспергил-леза и гетеракидоза.
Материалы исследований опубликованы в информационном листке Саратовского ЦНТИ ( 1999г., № 123).
Данные наших исследований используются при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий по курсу патологической анатомии в институте ветеринарной медицины и биотехнологии СГАУ им. Н.И. Вавилова..
Полученные результаты применены при составлении учебно-методического указания "Пуллороз. Колигранулематоз. Гисто-моноз" для студентов факультета ветеринарной медицины.
1.5. Апробация работы
Основные положения диссертации доложены и обсуждены:
— на научной конференции профессорско-преподавательского состава и аспирантов СГАУ им. Н.И. Вавилова по итогам научно-исследовательской и учебно-методической работы за 1998 г. 1 — 6 февраля 1999г.;
— на научной конференции профессорско-преподавательского состава и аспирантов СГАУ им. Н.И. Вавилова по итогам научно-исследовательской и учебно-методической работы за 1999 г. 3 — 4 февраля 2000г.;
— на межкафедральном совещании института ветеринарной медицины и биотехнологии Саратовского Государственного аграрного университета им. Н.И. Вавилова (г. Саратов, 12 мая 2000 г.).
1.6. Публикация результатов исследований
По материалам диссертации опубликовано 5 работ, в которых отражено се основное содержание.
/. 7. Объем и структура диссертации
Работа изложена на 150 страницах машинописного текста, содержит 4 таблицы, иллюстрирована 74 рисунками. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, материалов, методов и результатов собственных исследований, дифференциальной диагностики заболевания, анализа полученных результатов, выводов и практических предложений. Список литературы включает 186 источников, в том числе 77 иностранных.
2. Собственные исследования
2.1. Материалы и методы исследований
Поставленные задачи по изучению патоморфологии гистомо-ноза кур и разработки методов дифференциальной диагностики этого заболевания от болезней со сходной картиной вскрытия были разрешены путем исследования патологического материала от спонтанно заболевших и экспериментально зараженных кур различных возрастных групп.
Всего в ходе исследования вскрыто 1770 павших и вынуждено убитых птиц в возрасте от 1 дня до 2 лет.
Патологоанатомические изменения при гистомонозе изучались путем исследования материала от 184 кур, из которых 144 естественно заболевших и 40 зараженных экспериментально.
Для изучения патоморфологии гистомоноза при его спонтанном возникновении исследовался материал от кур с птицефабрик Саратовской области : "Дергачевской" (Дергачевский район), "Лысогорской" (Лысогорский район), "Татищевской", "Михайловской" (Татихцевский район), "Елшанской" и "Николаевской" (Саратовский район), собраный в 1996 - 1999 гг.
Экспериментальный гистомоноз был воспроизведен на кафедре патологической анатомии и патофизиологии института ветеринарной медицины и биотехнологии Саратовского Государственного аграрного университета им. Н.И. Вавилова. Для эксперимента были сформированы 2 группы цыплят по 20 голов в каждой. Возраст птиц первой группы составлял 25 дней, второй группы — 90 дней. Цыплята были приобретены на птицефабрике им. К. Маркса Энгельсского района Саратовской области. Данная птицефабрика благополучна по инфекционным и инвазионным болезням птиц.
Перед заражением исследовались соскобы со слизистой оболочки клоаки для выявления шетомонад. Кроме этого, исследовался кал от этих цыплят по методу Фюллеборна на наличие яиц гельминтов Heterakis gallinarum. Во всех случаях был получен отрицательный результат.
Заражение птиц проводилось суспензированным материалом, взятом из пораженных участков слепых кишок и печени птиц, у которых гистомоноз был подтвержден лабораторными исследованиями. Для приготовления суспензии предварительно измельченный патологический материал растирали в ступке и разбавляли стерильным 0,9 %-ным раствором хлорида натрия, после чего фильтровали через двухслойный марлевый фильтр (Николаев C.B., 1972). Суспензия температурой 40°С вводилась в прямую кишку на глубину 3 — 5 см в объеме 5 мл шприцем через присоединенную к нему резиновую трубку диаметром 2 мм.
Диагноз ставился на основании эпизоотологических данных, учета клинических и патологоанатомических признаков, а так же результатов бактериологических и гистологических исследований.
Для разработки дифференциальной диагностики гистомоноза кур патоморфологическим исследованиям был подвергнут материал от 45 павших цыплят и кур, естественно заболевших в хозяй-
ствах Саратовской области и подсобных хозяйствах граждан, в том числе от 15 трупов цыплят, больных пуллорозом, по 10 - от больных эймериозом и колигранулематозом и по 5 — от больных туберкулезом и гетеракидозом.
Вскрытие птиц проводилось в течение первых двух часов после табели или убоя. В условиях хозяйств, как исключение, трупы вскрывались в течение первых суток после гибели (преимущественно в холодное время года). Контролем при патоморфолошчес-ких исследованиях служили павшие (главным образом от рас-клева) птицы одного возраста с теми, которых использовали в опыте.
Для гистологических исследований брали кусочки пищевода, железистого и мышечного желудков, поджелудочной железы, печени, слепых кишок, различные участки тонкого и толстого отделов кишечника, головного, спинного и костного мозга, селезенки, фабрициевой бурсы, гардеровой железы, тимуса, сердца, легких, почек и скелетной мускулатуры.
Материал фиксировали в 8 — 10 % -ном водном растворе нейтрального формалина, жидкости Карнуа, 96°-ом и абсолютном этиловом спирте.
Большая часть материала заливалась в парафин и целлоидин-парафин по общепринятой методике (Меркулов Г.А., 1969). С парафиновых блоков получали срезы толщиной 5 — 7 мкм с помощью санного микротома модели Rechert Wien 2712.
Остальные срезы толщиной 10 — 15 мкм готовились на замораживающем микротоме.
При окраске большинства срезов использовали гематоксилин Бемера и эозин.
Определение соединительной ткани в органах осуществлялось путем окраски срезов по Ван-Гизону, тигроидное вещество — окраской по Нисслю.
Кроме того, проводили гистохимические исследования: на ли-пиды — окраской срезов Суданом-III, на РНК — по Браше, на железо — реакцией с ферроцианидом по Перлсу, на гликоген — по Шабадашу.
Определение размеров гистомонад осуществлялось с помощью окуляра-микрометра МОВ-1-15.
Патоморфологические исследования сопровождались фотографированием участков с отклонениями от нормы, для чего использовался микроскоп МБИ-6 с фотонасадкой МФН-12 и фотокамера "Зенит-Е".
С целью исключения сходных с гистомонозом заболеваний проводили бактериологические исследования пораженных слепых ки-
шок, печени, костного мозга и сердца павших и вынужденно убитых птиц с культивированием материала на питательных средах Левина и Эндо. Для обнаружения дрожжевых грибов проводили посевы материала на среду Сабуро. Для бактериоскопического исследования готовили мазки и отпечатки со слизистой оболочки тонких и слепых кишок, пораженных участков печени и окрашивали их краской Романовского-Гимзе. Содержимое кишечника исследовали по методу Фюллеборна.
В результате проведенных исследований из кишечника была выделена Е. coli, в 11,4% случаев в полостях слепых кишок обнаружены гельминты Heterakis gallinarum, патогенная микрофлора и дрожжевые грибы во всех случаях отсутствовали.
2.2. Результаты исследований
2.2.1. Распространение гистомоноза кур в Саратовской области
Патологоанатомическим исследованием 1730 трупов кур разных возрастных групп в 9 птицеводческих хозяйствах 7 районов Саратовской области гистомоноз был установлен на 6 птицефабриках, что указывает на широкое распространение этого заболевания. В табл. 1 представлены результаты патологоанатомичес-ких исследований на б птицефабриках за 4 года.
Таблица 1
Частота выявления гистомоноза кур на птицефабриках Саратовской области в 1996 — 1999 гг.
Количество Устаношюн гистомоноз
Птицефабрика
птиц, гол. Кол-во, гол. %
Ел шанская 450 51 11,3
Михайловская 286 23 8,0
Татшцевская 250 32 12,8
Лысогорская 192 17 8,8
Николаевская 157 13 8,3
Дергачевская 85 8 9,4
Итого: 1420 144 10,14
Как следует из данных таблицы, на птицефабриках Саратовской области гистомоноз является причиной гибели от 8,0 до 12,8 % от числа павших птиц.
В результате патологоанатошгческих исследований 450 голов кур различных возрастных групп, принадлежащих Елшанской птицефабрике, выявлена зависимость частоты обнаружения гистомоноза от возраста птицы. Результаты исследований представлены в табл. 2.
Таблица 2
Частота обнаружения гистомоноза среди кур различных возрастных групп на Елшанской птицефабрике в 1998 г.
Возрастная Количество Установлен гистомоноз
исследованных
дней ПТИЦ, гол. Кол-во, гол. %
0-15 75 2 2,6
15 - 30 62 4 6,4
30 - 45 50 7 14,0
45-60 41 И 26, &
60 - 90 44 9 20,4
90 - 120 48 9 18,7
120 - 150 29 3 10,3
150 - 180 27 2 7,4
180 - 240 29 2 6,8
240 - 300 21 1 4,7
300 — 360 24 1 4,1
Итого: 450 51 11,3
Из приведенных данных следует, что гистомоноз наиболее распространен среди птицы 1 - 4-х месячного возраста. Максимальное поражение отмечается среди цьтлят в возрасте 45 — 60 дней и составляет 26,8 %. При проведении исследований в птице-хозяйствах Саратовской области была выявлена хорошо выраженная сезонная зависимость частоты обнаружения гистомоноза. Результаты исследований представлены в табл. 3.
Таблица 3
Сезонная зависимость частоты обнаружения гистомоноза у кур Елшанской птицефабрики в 1998 году
Сезон года Количество исследованиых Установлен гистомоноз
птиц, гол. Кол-во, гол. %
Зима 115 6 5,2
Весна 125 23 18,4
Лето 110 8 7,3
Осень 100 13 13,0
Итого: 450 51 11,3
Как видно из приведенных данных, пик заболеваемости птиц гистомонозом на Елшанской птицефабрике приходится на весенний период и достигает 18, 4 %, что, видимо, объясняется снижением резистентности организма птиц и благоприятными условиями для жизнедеятельности и распространения возбудителя и его промежуточных хозяев.
2.2.2. Клинико-морфологическая характеристика гистомоноза кур при спонтанном заражении
Клинические признаки болезни проявлялись угнетением больных птиц, отказом от корма, поносом с выделением фекалий светло-желтого цвета, взъерошенностью и матовостью перьевого покрова. Это подтверждает данные большинства исследователей, указывающих на отсутствие характерных симптомов гистомоноза.
Возбудителем гистомоноза являются простейшие Historaonas meleagridis. Свободные формы гистомонад, находящиеся в просвете кишечника и на слизистых оболочках, имеют размеры 25 — 30 мкм. Тканевые формы возбудителя редко достигают 7 мкм, что подтверждает сообщение C.B. Николаева (1972) о большой вариабельности размеров гистомонад.
Патологоанатомическим исследованием птиц, павших при спонтанном возникновении гистомоноза, были выявлены изменения, свойственные терминальной стадии заболевания. При этом основные поражения локализовались в слепых кишках и печени, что согласуется с данными N. Levine (1985).
Поражение слепых кишок отмечалось нами во всех случаях падежа птиц от гистомоноза, хотя степень выраженности патологического процесса у разных особей сильно варьировала.
При вскрытии птиц, павших на ранних стадиях болезни, на слизистых оболочках слепых кишок мы выявляли отложения фибрина в виде крошащихся масс или плотных кожистых пленок светло коричневого цвета, после удаления которых обнажалась гипере-мированная слизистая оболочка с точечными кровоизлияниями.
В результате накопления фибрина в просвете слепых кишок они утолщались и их диаметр достигал 15-20 мм. При разрезе таких кишок в их просвете мы находили большое количество фибрина, который, смешиваясь с содержимым кишечника, приобретал вид рыхлых серо-желтых творожистых масс или плотных слепков, имеющих на разрезе концентрическую слоистость. Просвет слепых кишок при этом сильно уменьшался или полностью исчезал.
У части птиц встречалось неравномерное угощение стенки слепых кишок в виде плотных бугристых выпячиваний диаметром 15 - 20 мм.
У большинства особей после удаления фибрина обнажались значительные язвенные дефекты слизистой оболочки диаметром 10 мм. Эти язвы имели округлую форму, приподнятые гипере-мированные края и углубленный центр.
Указанные признаки позволяют характеризовать поражения слепых кишок как дифтеритический и ульцерозный тифлит, что согласуется с мнением N. Ьеуте (1985), Л. ЬаЬа, Б. ВЬаИасЬагуа (1994) и др.
В отдельных случаях при вскрытии птиц, павших от гистомо-ноза, мы находили прободение стенки одной из слепых кишок и признаки перитонита со скоплением в грудобрюшной полости зловонной жидкости с хлопями фибрина. Аналогичные изменения при пистомонозе индеек были описаны А.А. Ибрагимовым (1965), Г.П. Дсмкиным (1966) и другими исследователями.
Изменения в печени отмечались нами в 76 % случаев падежа птиц от гистомоноза, что указывает на вторичное вовлечение этого органа в общий патологический процесс.
На поверхности печени мы находили единичные вдавленные округлые сероватые очаги диаметром до 15 мм, четко отграниченные от окружающих тканей. На разрезе эти очага имели округлую или конусовидную форму, обращенную вершиной к центру органа. Гораздо реже на поверхности печени и в ее паренхиме выявлялись множественные некротические очаги размером с просяное зерно.
У некоторых особей на капсуле печени (чаще на ее париетальной поверхности) мы обнаруживали отложения фибрина в виде тонких серых пленок, с трудом отделяющихся от органа.
Сходные изменения в печени отмечены В.Е. Симаковым (1973), Ю.П. Илюшечкиным (1982), И. е1 а1. (1988).
В ряде случаев падежа птиц в результате спонтанного заражения гистомонозом характерных очагов на поверхности печени и в ее паренхиме мы не выявляли, но орган при этом имел неравномерную светло-желтую окраску и дряблую консистенцию.
Помимо поражений слепых кишок и печени при спонтанном заражении кур гистомонозом мы устанавливали изменения в железистом желудке, тонком кишечнике, сердце, легких и почках.
В железистом желудке мы находили большое количество мутной густой слизи, после удаления которой обнажались единичные точечные кровоизлияния и мелкие серые узелки размером с просяное зерно.
В тонком кишечнике (главным образом, в двенадцатиперстной кишке) выявлялось большое количество слизи, а так же то-
чечные и пятнистые кровоизлияния. В значительном числе случаев слизистая оболочка кишок подвергалась изъязвлению, в результате чего на ее поверхности образовывались язвы диаметром 4 — 8 мм с запавшим центром и приподнятыми краями, инъецированными кровью.
На слизистой прямой кишки выявлялись поражения, аналогичные таковым в тонком кишечнике. В работах других исследователей, посвященных патологоанатомической характеристике гистомоноза, мы не нашли описания подобных изменений.
Поражения сердца встречались в 47 % случаев и характеризовались скоплением в псрикардиальной полости незначительного количества серозного экссудата, истончением стенок миокарда и увеличением объема сердца.
Легкие в 30 % случаев падежа птиц от гистомоноза имели красноватый цвет, тяжело плавали в воде, при разрезе из альвеол и бронхиол выделялось незначительное количество белой пенистой жидкости, что можно характеризовать как отек легких.
Почки у большинства птиц были сильно увеличены в размерах, набухшие, на разрезе имели пестрый рисунок и точечные кровоизлияния в корковом слое.
В ряде случаев мочеточники были заполнены уратами и имели вид белых тяжей.
При хронической форме болезни, отмечаемой нами у кур старше 6-месячного возраста, изменения в слепых кишках характеризовались признаками ульцерозно-дифтеритического тифлита и были аналогичны поражениям при острой форме гистомоноза при меньшей степени выраженности сосудистой реакции.
Печень у этих птиц была сильно увеличена, имела желто-коричневую окраску и содержала на своей поверхности и в глубине паренхимы крупные некротические очаги. На разрезе эти очаги имели плотную однородную структуру.
2.2.3. Патоморфогенез гистомоноза кур
Проследить динамику морфологических изменений в органах и тканях больных птиц, начиная с ранних этапов заболевания, удалось при экспериментальном воспроизведении гистомоноза. Наши данные показали, что даже на ранних стадиях становления патологического процесса изменения не ограничиваются только слепыми кишками. В ответ на внедрение возбудителя организм реагирует комплексом адаптационных и защитных механизмов.
На начальных этапах заболевания происходит внедрение гис-томонад в слизистую оболочку слепых кишок. Так, на 2-й день
после заражения возбудители выявляются в межклеточном пространстве и кровеносных сосудах подслизистого слоя, что согласуется с данными Л.П. Дьяконова (1971). Проникновение гисто-монад в кровеносные сосуды обусловливает нарушение гемодинамики в кишечной стенке вследствие образования тромбов и нарушения проницаемости сосудистой стенки, что приводит к гиперемии и кровоизлияниям в слизистой оболочке, а так же сильному отеку подслизистого слоя.
Размножение гистомонад в подслизистом слое слепых кишок активизирует пролиферацию псевдоэозинофилов, лимфоидных и гистиоцитарных клеток, совокупность которых формирует вокруг скоплений гистомонад гра1гулемы различного размера.
Давление гранулем на окружающие ткани, а так же сдавливание сосудов муфтами из лимфоидных клеток и гистиоцитов вызывает сильное нарушение трофики эпителия слизистой оболочки, его десквамацию и мукоидоз, что О. СготрЪп, N. КеяЬет (1975) считают ответной реакцией на внедрение паразитов.
Развитие катарально-десквамативного тифлита объясняет появление у больных цыплят поноса, отмечаемого на 5-й день болезни.
Усиленное размножение лимфоидных элементов в цекальных фолликулах, отмечаемое на 6-й день после заражения, проявляется их гиперплазией и усугубляет трофические расстройства в кишечной стенке.
В печени на этой стадии болезни усиливается сосудистая реакции в виде полнокровия центральных вен и балочных капилляров, что В.Е. Симаков (1973) объясняет реакцией печени на поступление в неё токсических продуктов нарушенного обмена веществ.
Внедрение гистомонад в стенки сосудов печени вызывает пролиферацию эндотелия, гистиоцитов и лимфоидных элементов в виде гранулем, которые становятся макроскопически различимыми на 8-й день болезни в виде единичных серо-желтых узелков размером с просяное зерно под капсулой органа.
Исследование пролифератов на рибонуклеиновые кислоты показало обогащение их клеток РНК, что является результатом внедрения возбудителя в ткани и свидетельствует об образовании в организме иммунных веществ.
Увеличение гранулем в печени, тромбоз сосудов и гиалиноз сосудистой стенки приводят к зернистой дистрофии и некрозу гепатоцитов, что объясняет развитие с 8 - 10 дня болезни у ряда особей признаков желтухи и сильное угнетение.
На 10-й день после заражения альтеративные процессы в стенке слепых кишок (наиболее выраженные у 30-дневных цыплят)
отмечаются уже в подслизистом слое и мышечной оболочке и приводят к ее прободению на 12 — 14-й день болезни. Аналогичные изменения в стенке слепых кишок и ее разрыв, сопровождающийся признаками фибринозного перитонита, выявлялись нами при вскрытии птиц, павших в результате спонтанного заражения гистомонозом в условиях хозяйств. Это позволяет расценивать данную стадию болезни как терминальную.
В печени на этой стадии болезни отмечаются множественные очага коагуляционного некроза, многие из которых достигают значительного размера. Вокруг этих очагов отмечается скопление псев-доэозинофилов, лимфоидных и гистиоцитарных клеток. Кроме того, некротические изменения наблюдаются и среди некоторых гранулем.
Колликвационные некрозы в печени, описанные В.Е. Симаковым (1973), нами не отмечались.
В ряде случаев некротические поражения печени отсутствовали, а имеющиеся в ней изменения характеризовались жировой и зернистой дистрофией гепатоцитов, обеднением их гликогеном и появлением жира в виде капель значительного размера, что является результатом поступления в этот орган токсических продуктов нарушенного обмена и свидетельствует об общетоксическом действии гистомонад.
Подтверждением этого служит и вовлечение в патологический процесс других органов.
Так в сердце на 6 — 8-й день после заражения развиваются значительные гемодинамические расстройства, которые к 10 дню приводят к дистрофическим изменениям мышечных волокон миокарда. Позднее это сопровождается пролиферацией псевдоэозинофи-лов, лимфоидных клеток и гистиоцитов, а также скоплением кристаллов гемосидерина.
В головном мозге мы находили полнокровие сосудов мозговых обо^о^1' тт ^щ^ствз мозга р^срИБзскуллржжЫс отскл Бзкуоли33~ цию протоплазмы нейронов, исчезновение Нисслевской зернистости и разроет глиальных клеток с выраженной нейронофагией.
В почках отмечалось сильное кровенаполнение сосудистых клубочков, скопление в просвете капсулы Шумлянского — Боу-мена значительного количества серозного экссудата, зернистая дистрофия и мутное набухание эпителия капсулы и канальцев, а также скопление темосидерина в виде кристаллов.
В скелетных мышцах наблюдались периваскулярные отеки, дистрофия мышечных волокон и уменьшение количества гликогена.
В ряде случаев у зараженных цыплят выявлялись признаки восстановления нарушенной структуры органов. В слепых киш-
ках это проявлялось отторжением некротических масс и регенерацией слизистой оболочки за счет деления сохранившихся эпителиальных клеток. В печени наблюдалось рассасывание некротических масс и появление гигантских многоядерных клеток. Такие процессы регистрировались у зараженных цыплят на 16 — 18 день болезни.
2.2.4. Изменения в лимфоидных органах кур различного возраста при гистомонозе
При исследовании патоморфологических изменений в лимфоидных органах кур разного возраста нами были выявлены некоторые особенности, обусловленные онтогенетическим формированием иммунной системы птиц.
Как при спонтанном заражении птиц гистомонозом, так и при экспериментальном воспроизведении инвазии морфологические трансформации в лимфоидных органах характеризуются их обеднением лимфоидными элементами с разной степенью выраженности, что можно расценивать как состояние иммунодефицита.
У птиц всех возрастов наиболее значительные изменения отмечаются в тимусе. Они проявляются на 4 — 6 день болезни обеднением коркового слоя долек лимфоцитами, стазами и диапедез-ными кровоизлияниями в мозговом слое. На 10-й день болезни происходит слияние телец Гассаля и делимфатизация мозгового слоя долек. В последующие дни усиливается делимфатизация слоев и сглаживается граница между ними. Развившаяся гипоплазия тимуса, по данным Ю.Н. Федорова и O.A. Верховского (1996), свидетельствует об иммунодефиците и, как следствие, неполноценности клеточного иммунитета (Stutman О. et al., 1970; Cain W., David L., 1971).
У отдельных особей со стороны капсулы органа происходит раз-рост соединительной ткани, что Я.И. Лашене и Е.И. Огалиорайте (1968) расценивают как признак крайнего напряжения тимуса.
На аналогичные изменения в тимусе молодых цыплят при заражении их Е. tenella указывают Ю.Ю. Парре с соавт. (1977).
Изменения в другах лимфоидных органах 30-дневных цыплят были не столь значительные и проявлялись усилением сосудистой реакции и увеличением цекальных фолликулов, а также полнокровием капилляров фабрициевой бурсы. Это согласуется с данными Р. Turnbull, G. Snocyenbos (1975) о неспособности птиц раннего возраста осуществлять полноценные иммунные реакции.
У птиц старшего возраста, наряду с изменениями в тимусе, мы устанавливали гиперплазию, а затем сильную делимфотиза-
цию цекальных фолликулов с образованием в них полостей, сосудистые расстройства, отек стромы и разряжение белой пульпы селезенки, обеднение лимфоидных узелков клеточными элементами и сглаживание границы между слоями фабрициевой бурсы. Позднее отмечается сильный разроет стромы со стороны капсулы органа. Указанные изменения свидетельствуют о вовлечении центральных и периферических органов иммунной системы в формирование иммунного ответа на гистомонадную инвазию и наступлении серологической зрелости.
2.2.5. Диагностика и дифференциальная диагностика гистомоноза кур
Диагностика гистомоноза при его типичном проявлении легко осуществима, однако на определенных этапах патогенеза патоло-гоанатомическое проявление этого заболевания и ряда болезней птиц различной этиологии имеет значительное сходство.
Исследование патоморфологических изменений при гистомо-нозе, а так же анализ литературных данных показали необходимость дифференциации этого заболевания от таких болезней, как пуллороз, сальмонеллсз, колигранулематоз, острая форма болезни Марека, лимфоидный лейкоз, туберкулез, криптоспоридиоз,эй-мериоз, аспергиляез и гетеракидоз.
При постановке диагноза на гистомоноз необходимо обращать внимание на характер поражений слепых кишок и печени, а также на клеточный состав в очаге поражения.
При пуллорозе, как и при гистомонозе, в слепых кишках формируются плотные слепки из фибринозно-некрсггических масс. Наряду с этим в печени, миокарде, мышечном желудке и легких образуются бледно-серые некротические узелки.
Гистологическим исследованием пораженных органов выяв-
ттгпат п'ттйпа» пттл Ллтг»глг»тго чт тпттл «^лтил »/«naa'vtrf ni tiai^r»«'» тг Л/UVi 1 UiiV^ViVirilU, WUIV1 up/luji uri j JIV* OiVJUU^HiiUj AUvJVWJX LUlJi 1 IVIVpVJJ 11
лимфоидно-гистиоцитарные гранулемы.
При колигранулематозе, как и при гистомонозе, часто поражаются слепые кишки и печень, однако характер и локализация поражений имеет некоторое отличие. Так, поражение слепых кишок при колигранулематозе чаще отмечается в месте их бифуркации, а очаги в печени в виде бугристых образований возвышаются над поверхностью органа и имеют плотную соединительнотканную капсулу. Подобные образования наблюдаются так же на серозных покровах почек, селезенки и других органов.
При гистологическом исследовании пораженных органов устанавливают их продуктивное воспаление с очагами некроза. Гра-
нуляционная ткань образована эпителиоидными, лимфоидными, плазматическими клетками, фибробластами и гигантскими клетками типа Штернберга.
При туберкулезе слепые кишки поражаются достаточно редко. В печени, легких, селезенке, тонком отделе кишечника находят плотные серовато-желтые милиарные и нодулярные туберкулы, возвышающиеся над поверхностью органов. При длительном течении болезни в центре туберкулов обнаруживается казеоз-ная масса, по периферии которой располагаются гигантские клетки типа Лангганса и соединительнотканная капсула.
Эти очаги образованы эпителиоидными, лимфоидными клетками и эозинофилами. В срезах, окрашенных по Цилю — Нильсену, в некротических массах узелков обнаруживают микобактерии.
При болезни Марека (ее острой форме) возможно поражение желудка и кишечника с фибринозным пропитыванием и некрозом слизистой оболочки. Наряду с этим в паренхиматозных органах образуются многочисленные массивные серовато-розовые очаги, сочные и блестящие на разрезе.
При их гистологическом исследовании обнаруживается диффузная, реже очаговая пролиферация ретикулярных и лимфоидных клеток, а так же полиморфно-клеточные инфильтраты из лимфоцитов, макрофагов и псевдоэозино-филов.
При лимфоидном лейкозе слепые кишки поражаются редко. В печени, почках, селезенке, фабрициевой сумке и других органах выявляются очаговые или диффузные опухолевидные разрастания, образованные лимфобластами.
Криптоспоридиоз характеризуется признаками катаралъно-дес-квамативного воспаления и некроза слизистой оболочки кишечника. В поверхностном слое эпителия и железах слепых кишок обнаруживают возбудителей на разных стадиях развития. В печени больных цыплят устанавливают зернистую и жировую дистрофию гепатоцитов.
При эймериозе, вызываемом Е. 1епе11а, как и при гистомо-нозе, в первую очередь поражаются слепые кишки, в то время как печень вовлекается в общий патологический процесс вторично в результате нарушения общего обмена веществ.
При остром течении эймериоза в слепых кишках развивается геморрагическое воспаление, в случае же хронического воспаления в просвете слепых кишок формируются казеозные пробки, после удаления которых открывается эрозированная слизистая оболочка с точечными кровоизлияниями. Однако, если при гис-
томонозе это сопровождается значительным утолщением стенок кишок, то при эймериозе стенки сильно истончаются.
Гистологическим исследованием пораженных кишок выявляют отек, кровоизлияния и инфильтрацию псевдоэозинофилами слизистой оболочки, в верхних слоях которой находят шизонты и мерозоиты (при окраске по Гише-Романовскому).
При аспергиллезе преимущественно поражаются легкие и воздухоносные пути, и только при генерализации процесса в печени и селезенке находят плотные фиброзные узелки серо-желтого цвета размером с булавочную головку.
Эти гранулемы представляют собой инкапсулированные слоистые или гомогенные массы, по периферии которых расположен слой клеток гистиоцитарного, лимфоидного типа и псевдоэози-нофилы. В центре гранулем обнаруживается мицелий гриба.
При гетеракидозе поражения локализуются только в слепых кишках, где наблюдается диффузный или нодулезный тифлит с образованием бородавчатых разращений. В узелковых утолщениях слизистой оболочки и в просвете слепых кишок обнаруживаются гельминты НегегаЫБ ваШпашт.
Гистологическим исследованием стенок кишок выявляют их инфильтрацию лимфоидными, эпитслиоидными клетками и фиб-робластами, а гельминтологическим исследованием содержимого кишок находят гельминтов, их личинки и яйца.
Таким образом, основным критерием диагностики гистомо-ноза кур и дифференциации этого заболевания от болезней со сходными патологоанатомическими изменениями является уль-церозно-дифтеритический тифлит, некротизирующий гепатит с диффузно-очаговой пролиферацией лимфоидных элементов и выявление в пораженных органах гистомонад.
3. Выводы
1 . Гистомоноз - широко распространенное инвазионное заболевание кур в птицеводческих хозяйствах. Данное заболевание установлено нашеста из девяти обследованных птицефабрик Саратовской области, где обусловливает от 8,0 до 12,8 % падежа птицы.
2 .Гистомоноз не имеет выраженной сезонности, но наиболее часто отмечается в весенний (18,4 ± 2,4 %) и осенний (13,4 ± 1,9 %) периоды. Среди цыплят в возрасте 45 - 60 дней гибель от гисто-моноза наблюдается в 26,8 ± 3, 2 % случаев.
3 . Клинические признаки гистомоноза не характерны, что затрудняет прижизненную диагностику болезни. Основным симпто-
мом заболевания является диаррея с выделением фекалий желто-зеленого цвета. Это сопровождается угнетением, снижением аппетита и продуктивности птицы.
4 .Возбудитель гистомоноза (простейшие Ш^отопаБ тека^Шв) обладает большой вариабельностью размеров. Гисто-монады, находящиеся на поверхности слизистой оболочке слепых кишок и в подслизистом слое, имеют размеры 27 ± 3 мкм, а размер возбудителей, локализующихся в глубоких слоях кишечной стенки и в печени, составляет 6 ± 1 мкм.
5 . Патоморфологаческие изменения как при спонтанном заражении кур гистомонозом, так и при экспериментальном воспроизведении инвазии однотипны и характеризуются ульцероз-но-дифтеритическим и пролиферативным тифлитом, ульцероз-ным энтеритом, некротизирующим гепатитом и формированием лимфоидных гранулем вокруг гистомонад. При этом у цыплят 30-дневного возраста в слепых кишках преобладают альтеративнаые процессы, а у 90-дневных птиц более выражена пролиферация лимфоидных элементов.
б. Гистомонады оказывают на организм птиц общетосическое действие, что проявляется гиперемией и отеком мозга и его оболочек, нейронофагией, признаками серозно-пролиферативного миокардита, серозной пневмонии, серозно-пролиферативного гломерулонеф-рита, зернистой и жировой дистрофией печени и почек.
7 .Характер изменений в лимфоидных органах кур зависит от возраста птицы и обусловлен онтогенетическими особенностями развития иммунной системы. У цыплят 30-дневного возраста преобладают изменения в тимусе, которые характеризуются делимфатизацией коркового и мозгового слоев долек. У 90-дневных цыплят, наряду с тимусом, в формировании иммунного ответа на гистомонадную инвазию участвуют цекаль-ные фолликулы, фабрициева бурса и селезенка, в которых обнаружено обеднение этих органов лимфоидными элементами, что свидетельствует о выраженном иммунодепрессивном действии гистомонад.
8 .Основным критерием диагностики гистомоноза кур и дифференциации его от болезней со сходными патологоанатомичес-кими изменениями является ульцерозно-дифтеритический тифлит, ульцерозный энтерит, некротизирующий гепатит с диффуз-но-очаговой пролиферацией лимфоидных элементов, а также выявление в пораженных органах гистомонад, окрашиваемых эозином в розовый цвет.
4. Предложения для практики
На основании проведенных исследований рекомендуется:
1. Проводить раннюю патоморфологическую диагностику ги-стомоноза кур по характерным изменениям, выявленным нами при экспериментальном воспроизведении болезни: ульцерозно-дифтеритическому тифлиту, ульцерозному энтериту, некротизи-рующему гепатиту, обеднению иммунных органов лимфоидными элементами и формированию лимфоидных гранулем вокруг гис-томонад.
2. При постановке диагноза учитывать разработанные нами критерии дифференциальной диагностики гастомоноза от сходных по патоморфологическим признакам заболеваний птицы: пул-лороза, сальмонеллеза, туберкулеза, колигранулематоза, острой формы болезни Марека, лимфоидного лейкоза, криптоспориди-оза, эймериоза, аспергиллеза и гетеракидоза. Решающее значение при этом имеет характер патоморфологаческих изменений и выявление в пораженных органах гистомонад.
3. Для профилактики гистомоноза в условиях хозяйств проводить комплекс диагностических, санитарно-гигиенических и хи-миопрофилактических мероприятий с применением иммуннокор-ректоров, учитывая низкий иммунный статус птиц до 3-месячного возраста и распространение инвазии в весенний и осенний периоды.
4. Новые сведения по патоморфологии гистомоноза следует включить в качестве учебного материала в программу по подготовке ветеринарных врачей в высших учебных заведениях нашей страны.
Список работ, опубликованных по теме диссертации
1 .Демкин Т.П., Якунин К.А. Особенности патологоанатоми-ческих изменений у цыплят при гистомонозе // Матер, науч. конф., посвящ. 70-летию фак. вет. мед. Воронежского гос. аг-рарн. университета им. К.Д. Глинки. Воронеж, 1997. Ч. 2. — С. 90 - 91.
2. Якунин К А Онтогенетические особенности патологоанатоми-ческих изменений в лимфоидных органах кур при гистомонадной инвазии // Тез. докл. международен. науч.-пракгич. конф. молодых ученых/ ВГАУ им. К.Д. Глинки, Воронеж, 1999. - С. 144.
3 .Якунин К. А. Клинико-морфолотческая диагностика гистомоноза кур // Матер, международ, науч.-практич. конф. по воп-
росам ветеринарии и животноводства / МГАВМиБ, М., 1999. — С. 239 - 240.
4 .Якунин К.А. Дифференциальная диагностика гистомоноза кур : Информ. листок / Саратовский ЦНТИ, Саратов, 1999. -№ 123-99. ~ 4с.
5 .Якунин К.А. Пуллороз. Колигранулематоз. Гистомоноз. Учебно-методическое указание для студентов факультета ветеринарной медицины, Саратов: Лоди, 2000. - 25 с.
Оглавление диссертации Якунин, Константин Александрович :: 2000 :: Саратов
1. Введение
2. Обзор литературы
2.1 Краткая история изучения болезни
2.2 Распространение и эпизоотология гистомоноза
2.3 Экономический ущерб
2.4 Механизм заражения
2.5 Патогенез гистомоноза
2.6 Клинические признаки болезни
2.7 Патологоанатомические изменения
2.8 Гистологические изменения при гистомонозе
2.9 Диагностика гистомоноза
2.10 Дифференциальный диагноз
2.11 Профилактика гистомоноза
3. Материалы и методы исследований
4. Результаты исследований
4.1 Распространение гистомоноза кур в Саратовской области
4.2 Клинические признаки гистомоноза при спонтанном заражении
4.3 Патологоанатомические изменения при спонтанном заражении
4.4 Экспериментальное воспроизведение гистомоноза и его патоморфологическая характеристика
4.4.1 Опыт№
4.4.2 Опыт№
4.5 Патоморфогенез в отдельных органах
4.5.1 Слепые кишки
4.5.2 Печень
4.5.3 Тонкий кишечник •
4.5.4 Сердце
4.5.5 Головной мозг
4.5.6 Почки
4.5.7 Лимфоидные органы 126 4.6 Дифференциальная диагностика гистомоноза кур
Введение диссертации по теме "Патология, онкология и морфология животных", Якунин, Константин Александрович, автореферат
Актуальность проблемы. Обеспечение продовольственной безопасности Российской Федерации невозможно без эффективной работы аграрного сектора отечественной экономики. В решении этой важной задачи большое значение имеет развитие птицеводства — наиболее рентабельной и динамичной отрасли сельского хозяйства.
Существенным препятствием в развитии птицеводства являются инвазионные болезни, среди которых наибольшее распространение имеет гистомоноз.
В литературе эта болезнь описана под разными названиями: монилиаз, "черная голова", энтерогепатит, "гниение печени", тифлогепатит, гистомоноз. Столь обширная номенклатура объясняется трудностями, возникающими в изучении этиологии и патоморфологии данного заболевания.
Гистомонозом болеют куры, индейки, цесарки, перепела, утки и гуси. Встречается эта болезнь среди фазанов и павлинов.
При достаточно полном и всестороннем изучении гистомоноза индеек вопросы патоморфологии и дифференциальной диагностики этого заболевания среди кур описаны недостаточно и разноречиво.
Ограниченные патологоанатомические и гистологические исследования не дают достаточного представления о болезни и затрудняют ее диагностику. Не решен вопрос о наличии у переболевшей птицы устойчивости к реинвазии гистомонадами, в связи с чем особое значение имеют патоморфологические исследования лимфоидных органов, что позволило бы судить о характере иммуногенеза при заражении птиц простейшими организмами.
Недостаточно изучены и возрастные аспекты патоморфологии гистомоноза кур, что не позволяет создать целостной картины патогенеза данного заболевания.
Сходство морфологического проявления гистомоноза и таких болезней кур, как пуллороз, сальмонеллез, туберкулез, колигранулематоз, острая форма болезни Марека, лимфоидный лейкоз, эймериоз, криптоспоридиоз, аспергиллез и гетеракидоз вызывают затруднения при постановке диагноза.
В настоящее время гистомоноз регистрируют во всех странах с промышленным птицеводством.
Продолжающееся распространение этого заболевания среди кур вызывает необходимость углубления исследований во многих направлениях, касающихся эпизоотологии, патогенеза, клинико-морфологических и биологических показателей. Таким образом, изучение патоморфологии гистомоноза кур в сравнительном аспекте следует считать научной стороной разрешения актуальной задачи современного птицеводства.
Цель и задачи работы. Учитывая вышеизложенное, а так же учащение случаев гистомоноза в птицеводческих хозяйствах Саратовской области с нанесением им значительного экономического ущерба, мы поставили целью своего исследования выявление закономерностей патогенеза гистомоноза кур различного возраста и совершенствование критериев диагностики данного заболевания на основании изучения патоморфологических изменений при спонтанном возникновении и экспериментальном воспроизведении инвазии. В связи с этим предполагается решить следующие задачи:
1. Изучить патоморфологические изменения, их динамику, характер и локализацию поражений при гистомонозе кур.
2. Проследить клинико-морфологические изменения при экспериментальном воспроизведении болезни у цыплят от момента заражения до терминальной стадии.
3. Исследовать динамику изменений в лимфоидных органах кур при экспериментальном гистомонозе и изучить особенности формирования иммунного ответа у птиц различного возраста.
4. Разработать критерии дифференциальной диагностики гистомоноза кур от заболеваний со сходными патоморфологическими проявлениями.
5. На основании проведенных исследований разработать рекомендации по диагностике и профилактике гистомоноза кур.
Научная новизна работы Изучена динамика морфологических изменений в лимфоидных органах кур различного возраста при экспериментальном воспроизведении болезни.
Разработаны критерии дифференциальной диагностики гистомоноза кур и таких болезней, как пуллороз, сальмонеллез, туберкулез, колигранулематоз, острая форма болезни Марека, лимфоидный лейкоз, криптоспоридиоз, эймери-оз, аспергиллез и гетеракидоз.
Изучение патоморфологических изменений в динамике болезни позволило расширить существующие представления о патоморфогенезе гистомоноза кур.
Практическое значение работы. Рекомендованы к широкому использованию методы патоморфологической диагностики гистомоноза кур и критерии дифференциации этого заболевания от пуллороза, сальмонеллеза, туберкулеза, колигранулематоза, острой формы болезни Марека, лимфоидного лейкоза, криптоспоридиоза, эймериоза, аспергиллеза и гетеракидоза.
Материалы исследований опубликованы в информационном листке Саратовского ЦНТИ ( 1999г., № 123).
Данные наших исследований используются при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий по курсу патологической анатомии в институте ветеринарной медицины и биотехнологии СГАУ им. Н.И. Вавилова.
Полученные результаты применены при составлении учебно-методического указания " Пуллороз. Колигранулематоз. Гистомоноз" для студентов факультета ветеринарной медицины.
Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и обсуждены: на научной конференции профессорско-преподавательского состава и аспирантов СГАУ им. Н.И. Вавилова по итогам научно-исследовательской и учебно-методической работы за 1998 г. 1 — 6 февраля 1999г.; на научной конференции профессорско-преподавательского состава и аспирантов СГАУ им. Н.И. Вавилова по итогам научно-исследовательской и учебно-методической работы за 1999 г. 3 — 4 февраля 2000г.; на межкафедральном совещании института ветеринарной медицины и биотехнологии Саратовского Государственного аграрного университета им. Н.И. Вавилова (г. Саратов, 12 мая 2000 г.).
Публикация результатов исследований. По материалам диссертации опубликовано 5 работ, в которых отражено ее основное содержание.
Внедрение результатов исследований. Результаты исследований используются при чтении лекций и при проведении лабораторно-практических занятий по патологической анатомии на факультете ветеринарной медицины Саратовского Государственного аграрного университета им. Н.И. Вавилова.
Материалы исследований опубликованы в информационном листке Саратовского ЦНТИ ( 1999г., № 123).
Разработанные критерии дифференциальной диагностики гистомоноза используются при постановке диагноза на птицефабриках и в ветеринарных учреждениях Саратовской области.
Основные положения, выносимые на защиту: характеристика патоморфо-логических изменений при спонтанном и экспериментальном гистомонозе кур; оценка особенностей формирования иммунного ответа на гистомонадную инвазию у кур различного возраста; критерии дифференциальной диагностики гистомоноза кур от заболеваний со сходными патологоанатомическими проявлениями.
Заключение диссертационного исследования на тему "Патоморфология и дифференциальная диагностика гистомоноза кур"
6. Выводы
1. Гистомоноз — широко распространенное инвазионное заболевание кур в птицеводческих хозяйствах. Данное заболевание установлено на шести из девяти обследованных птицефабрик Саратовской области, где обусловливает от 8,0 до 12,8 % падежа птицы.
2. Гистомоноз не имеет выраженной сезонности, но наиболее часто отмечается в весенний (18,4 ± 2,4 %) и осенний (13,4 ±1,9 %) периоды. Среди цыплят в возрасте 45 — 60 дней гибель от гистомоноза наблюдается в 26,8 ± 3, 2 % случаев.
3. Клинические признаки гистомоноза не характерны, что затрудняет прижизненную диагностику болезни. Основным симптомом заболевания является диаррея с выделением фекалий желто-зеленого цвета. Это сопровождается угнетением, снижением аппетита и продуктивности птицы.
4. Возбудитель гистомоноза (простейшие Е^отопаз тека^&Б) обладает большой вариабельностью размеров. Гистомонады, находящиеся на поверхности слизистой оболочке слепых кишок и в подслизистом слое, имеют размеры 27 ± 3 мкм, а размер возбудителей, локализующихся в глубоких слоях кишечной стенки и в печени составляет 6 ± 1 мкм.
5. Патоморфологические изменения как при спонтанном заражении кур гис-томонозом, так и при экспериментальном воспроизведении инвазии однотипны и характеризуются ульцерозно-дифтеритическим и пролиферативным тифлитом, ульцерозным энтеритом, некротизирующим гепатитом и формированием лимфоидных гранулем вокруг гистомонад. При этом у цыплят 30-дневного возраста в слепых кишках преобладают альтеративные процессы, а у 90-дневных птиц более выражена пролиферация лимфоидных элементов.
6. Гистомонады оказывают на организм птиц общетосическое действие, что проявляется гиперемией и отеком мозга и его оболочек, нейронофагией, при
152 знаками серозно-пролиферативного миокардита, серозной пневмонии, сероз-но-пролиферативного гломерулонефрита, зернистой и жировой дистрофией печени и почек.
7. Характер изменений в лимфоидных органах кур зависит от возраста птицы и обусловлен онтогенетическими особенностями развития иммунной системы. У цыплят 30-дневного возраста преобладают изменения в тимусе, которые характеризуются делимфатизацией коркового и мозгового слоев долек. У 90-дневных цыплят, наряду с тимусом, в формировании иммунного ответа на гистомонадную инвазию участвуют цекальные фолликулы, фабрициева бурса и селезенка, в которых обнаружено обеднение этих органов лимфоид-ными элементами, что свидетельствует о выраженном иммунодепрессивном действии гистомонад.
8. Основным критерием диагностики гистомоноза кур и дифференциации его от болезней со сходными патологоанатомическими изменениями является ульцерозно-дифтеритический тифлит, ульцерозный энтерит, некротизирую-щий гепатит с диффузно-очаговой пролиферацией "лимфоидных элементов, а также выявление в пораженных органах гистомонад, окрашиваемых эозином в розовый цвет.
7. Рекомендации для практики
На основании проведенных исследований рекомендуется :
1. Проводить раннюю патоморфологическую диагностику гистомоноза кур по характерным изменениям, выявленным нами при экспериментальном воспроизведении болезни: ульцерозно-дифтеритическому тифлиту, ульцерозно-му энтериту, некротизирующему гепатиту, обеднению иммунных органов лимфоидными элементами и формированию лимфоидных гранулем вокруг гистомонад.
2. При постановке диагноза учитывать разработанные нами критерии дифференциальной диагностики гистомоноза от сходных по патоморфологическим признакам заболеваний птицы: пуллороза, сальмонеллеза, туберкулеза, коли-гранулематоза, острой формы болезни Марека, лимфоидного лейкоза, крип-тоспоридиоза, эймериоза, аспергиллеза и гетеракидоза. Решающее значение при этом имеет характер патоморфологических изменений и выявление в пораженных органах гистомонад.
3. Для профилактики гистомоноза в условиях хозяйств проводить комплекс диагностических, санитарно-гигиенических и химиопрофилактических мероприятий с применением иммуннокорректоров, учитывая низкий иммунный статус птиц до 3-месячного возраста и распространение инвазии в весенний и осенний периоды.
4. Новые сведения по патоморфологии гистомоноза следует включить в качестве учебного материала в программу по подготовке ветеринарных врачей в высших учебных заведениях нашей страны.
Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2000 года, Якунин, Константин Александрович
1. Акулов A.B., Ибрагимов A.A. Материалы по патогенезу тифлогепатита индеек // Матер. 3 Всесоюзной конф. по патологической анатомии животных. — Л., 1967.— С. 191 197.
2. Акулов A.B., Ибрагимов A.A. Гистомоноз // Патологоанатомическая диагностика болезней птиц / Под ред. В.П. Шишкова и др. — М.: Колос, 1978. — С. 233 240.
3. Аллергант Г. Мероприятия по предупреждению гистомоноза цыплят // Ветеринария. — 1965. — № 5. — С. 37 38.
4. Антонов В.Я., Блинов П.Н. Лабораторные исследования в ветеринарии. — М., Колос. — 1971. — С. 326 328.
5. Артемичев М.А. Энтерогепатит индеек. Автореф. дисс. . канд. вет. наук. — М., 1949, —С. 5-9.
6. Артемичев М.А. Тифлогепатит индеек // Болезни птиц / Под. ред. П.М. Свин-цова и A.A. Ушакова. — М.: Сельхозгиз, 1952. — т. 1. — С. 47 49.
7. Артемичев М.А. Тифлогепатит индеек// Болезни птиц / Сост. Ф.М. Орлов, — М.: Изд. с.-х. литературы, 1962. — С. 19.
8. Ахаев Г., Рахматулин А. К эпизоотологии гистомоноза кур в птицеводческих хозяйствах Дагестанской АССР / Дагестанский НИВИ. — 1983. — Деп. во ВНИИТЭИСХ 03. 01. 83, № 22 83.
9. Ахаев Г., Рахматулин А., Колесова Л. Применение трилана при экспериментальном гистомонозе цыплят / Дагестанский НИВИ. — 1983. — Деп. во ВНИИТЭИСХ 03. 01. 83, № 24 83.
10. Ю.Ахаев Г., Рахматулин А., Алиев А. Применение трихопола при гистомонозе кур / Дагестанский НИВИ. — 1983 а. — Деп. во ВНИИТЭИСХ 03. 01. 83, № 25 83.
11. П.Бакулин В.А. Морфологические изменения в иммунокомпетентных органах индюшат при гистомонозе // Тез. докл. 4 науч.-производств. конф. — Л., 1979. —С. 163 165.
12. П.Бакулин В.А. Патоморфология, лечение и профилактика гистомоноза индеек : Автореф. дисс. . канд. вет. наук. —Л., 1981. — 17 с.
13. Бондаренко О.И. Опыты по заражению индюшат и цыплят гистомонозом // Науч. труды / Краснодар. НИВС. — Краснодар, 1972, т. 5. — С. 58 62.
14. Бырка B.C., Каменькова В.А. К патоморфогенезу аспергиллеза птиц // Патоморфология, патогенез и диагностика болезней с.-х. животных. — М., 1980. — С. 226 227.
15. Бырка B.C. О гистомонозе птиц на Украине и его проявлении // Болезни птиц при интенсив, методах ведения отрасли. — Киев, 1988. — С. 57 64.
16. Бычкова Е.И. Эпизоотология и профилактика аскаридоза и гетеракидоза кур в условиях Белоруссии // Возбудители и переносчики паразитов и меры борьбы с ними. — 1988. — С. 46.
17. Величкин П.А., Голубков В.Ф., Соловьянов В.В. Эффективность панакура ( фенбендазола) при аскаридозе и гетеракидозе кур // Матер, науч. конф. Все-союз. об-ва гельминтологов. — 1984. — № 34. — С. 106 109.
18. Вертинский К.И., Шишков В.П., Стрельников А.П. Аспергиллез // Патолого-анатомическая диагностика болезней птиц / Под ред. В.П. Шишкова и др. — М.: Колос, 1978. — С. 212 217.
19. Гельсберген Т. Заразные болезни птиц. — М.: Сельхозгиз, 1934. — С. 19 -21.
20. Герман В., Ольховик Л. Отчего нахохлились индюшата? // Приусадебное хоз-во. — 1997. — № 4. — С. 66-67.
21. Дацевич Л.И. Тифлогепатит глухарей и фазанов // Дичеразведение в охотничьем хозяйстве РСФСР . — М., 1982, с. 179 187.
22. Демкин Г.П. Патоморфологические изменения при тифлогепатите индеек: Автореф. дис. . канд. вет. наук. — Саратов. — 1966. — 21 с.
23. Демкин Г.П. Дифференциальная диагностика острой болезни Марека у кур в сравнении с колигрануломатозом и гистомонозом // Информ. листок / Саратовский ЦНТИ. — 1977. — № 32 77. — 4 с.
24. Демкин Г.П. Дифференциальная клинико-морфологическая диагностика острой формы болезни Марека от сходных заболеваний: колигрануломатоза, лимфоидного лейкоза и гистомоноза // Сб. науч. работ / Сарат. зоовет. ин-т. — Саратов, 1978, вып. 16. — С. 34 42.
25. Долгова З.А. Влияние фенацизола, йодофена, пиперазин-адипината и тиа-бендазола на содержание и распределение гликогена в тканях личинок гете-ракисов // Бюл. Всесоюз. ин-та гельминтологии им. Скрябина. — 1989. — № 52, —С. 15-17.
26. Дорошко И.Н., Кучеренко 3.0. Энтерогепатит индеек и цыплят // Ветеринария. — 1938. — № 4. — С. 15 -16.
27. ЗО.Заблоцкий В.Т. Иммунитет при протозойных болезнях животных // С. -х. биология / Сер. Биология животных. — М., 1997. — № 4. — С. 102 108.
28. Золотарев М.Г. Кокцидиоз ( эймериоз) печени цыплят // Ветеринария. — 1965, — №8, — С. 58-60.
29. Ибрагимов A.A. Патоморфология тифлогепатита индеек : Автореф. дисс. . канд. вет. наук. — М., 1965. — 16 с.
30. Ибрагимов A.A. О патологической анатомии и патогенезе энтерогепатита ( тифлогепатита) индеек // Тр. 1ВИЭВ. — М., 1966. — т. 32. — С. 263 272.
31. Ибрагимов A.A. О применении реактива Шиффа для окраски возбудителей кокцидиоза, тифлогепатита и кандидамикоза в гистологических срезах // Труды / ВСХИЗО. — М., 1975, вып. 98. — С. 51 56.
32. Иващенко JI.B. Экспериментальный гистомоноз цыплят породы белый леггорн. — В кн.: Болезни птиц. — Новочеркасск, 1977. — С. 16 20.
33. Иващенко Л.В., Петунин Ф.А. Экспериментальный гистомоноз гусей. — В кн.: Паразитар. болезни с. х. животных и меры борьбы с ними. — Алма-Ата, 1979. —С. 122.
34. Иващенко JI.B., Щербаха Ю.И. Патоморфология экспериментального гисто-моноза фазанов. — В кн.: Патоморфология, патогенез и диагностика болезней с. х. животных. — М., 1980. — С. 236 - 237.
35. Илюшечкин Ю.П., Николаев C.B., Николаева JI.H. Культивирование Histomonas meleagridis на искусственных питательных средах // Сб. науч. тр. / Алт. н.- и. вет. станция. — 1972, вып. 3. — С. 194 -198.
36. Илюшечкин Ю.П., Бакулин В.А., Щербаков A.C. Патологоморфологические изменения при экспериментальном гистомонозе индеек // Науч. основы вет,-проф. мероприятий в пром. птицеводстве : Тез. докл. / Всесоюз. науч. конф. — Кишинев, 1977. — С. 129 130.
37. Илюшечкин Ю.П., Диковская В.Е., Высоцкая В.А. Изучение острой токсичности нового антигистомонадного препарата трилана // Разработка, апробация и гос. контроль вет. препаратов: Тез. докл. науч. конф. — М., 1981. — С. 165 166.
38. Илюшечкин Ю.П., Бакулин В.А., Мишин B.C. Иммуноморфогенез при гистомонозе индеек // Вет. обеспечение крупных животновод, комплексов: Тез. докл. науч.-производств. конф. — Л., 1982. — С. 125 126.
39. Ищенко Г.Д., Капитанаки М.В. К эпизоотологии тифлогепатита индеек в Краснодарском крае // Тр./ Краснодарск. НИВС. — 1972. — т. 5. — С. 49 51.
40. Ищенко Г.Д. Гистомоноз павлинов // Сб. науч. тр. / Сев.- Кавк. зон. н. и. вет. ин-т. —Краснодар, 1975. — С. 150 - 152.
41. Кегеян A.C. К вопросу о культивировании Histomonas meleagridis на искусственных питательных средах // Материалы науч. сессии по итогам исслед. работ/Арм. НИИЖиВ. — Ереван, 1973. — С. 182 183.
42. Кегеян A.C. Гистомоноз индеек в Армении // Сб. работ / ЛВИ. — Л., 1974. — вып. 37. — С. 22 27.
43. Кегеян A.C. Гистомоноз кур в условиях Армении // Материалы науч. сессии по итогам исслед. работ/Арм. НИИЖиВ. —Ереван, 1977. — С. 169 170.
44. Кегеян A.C. Гистомоноз индеек в Армянской ССР и меры борьбы // Науч. тр. / Арм. НИИЖиВ. — Ереван, 1979. — т. 13. — С. 217 220.
45. Кегеян A.C. Гистомоноз птиц в Армении, меры борьбы и профилактика // Материалы 2-ой Закавк. конф. по паразитологии. — Ереван, 1981. — С. 289 -290.
46. Кириченко В.П. К вопросу эпизоотологии и профилактики гистомоноза индеек в хозяйствах Ростовск. обл. // Тр. / Донской СХИ. — 1970. — т. 6. — вып. 3. —С. 71-73.
47. Кириченко В.П. Эпизоотология гистомоноза индеек и разработка мер борьбы с этим заболеванием в хозяйствах Ростовской области : Автореф. дисс.канд. вет. наук. — ст. Персиановка. — 1972. — 16 с.
48. Коблова И.А. Эффективные препараты при гистомонозе индеек // Ветеринария. — 1982 а. — № 1. — С. 43 -44.
49. Коблова И.А. Нитазол при гистомонозе индеек // Ветеринария. —- 1982. — №8, —С. 37-38.
50. Колабский H.A., Дубовой Б.Л. Гистомоноз птиц и методы его диагностики // Ветеринария. — 1970. — № 11. — С. 42 43.
51. Колабский H.A., Дубовой Б.Л. О гистомонозе цыплят и методах его диагностики//Сб. работ / ЛВИ. — Л., 1971.— вып. 31. — С. 46-51.
52. Колосова Д.M. Криптоспоридиоз кур в Саратовской области (диагностика, эпизоотология, патоморфология) : Автореф. дисс. . канд. вет. наук. — Саратов, 1999, — 19 с.
53. Коровин Р.Н., Зеленский В.П. Опухолевые болезни птиц. — М.: Колос, 1984. — С. 209-218.
54. Коровин Р.Н., Зеленский В.П., Грошева Г.А. Лабораторная диагностика болезней птиц. — М.: Агропромиздат, 1989. — С. 184 188.
55. Королев A.M., Коровин Р.Н. Патоморфологическая диагностика болезни Марека у цыплят // Сб. науч. тр. / ВНИТИП. — 1978. — № 46. — С. 84 90.
56. Крылов М.В. Тифлогепатит ( гистомоноз) . — В кн.: Справочник по болезням птиц. — Л., 1969. — С. 126 128.
57. Кудрявцева Т.П., Борисова С.П. Колигранулематоз молодняка птиц // Матер. Всесоюзн. конф. по болезням молодняка с.-х. ж х и птиц. — М., 1964. — С. 217-218.
58. Кудрявцева Т.П., Борисова С.П. Патоморфология колигранулематоза кур // Тр. / ВИЭВ. — 1966. — т. 32. — С. 293 302.
59. Кудрявцева Т.П. Лейкоз животных. — М. : Россельхозиздат. — 1974. — С. 148 155.
60. Ларин С.А. Гистомоноз. В кн.: Болезни птиц. — Алма Ата: Кайнар, 1975. — С. 131 - 132.
61. Лашене Я.И., Сталиорайте Е.И. О сущности так называемой акцидентальной инволюции вилочковой железы // Арх. пат. — 1968. — № 12. — С. 14 -19.
62. Малахов A.B. Эффективность некоторых производных бензимидазола при аскаридозе и гетеракидозе кур // Тр. / ВИГиС. — 1983. — № 26. — С. 87 92.
63. Меркулов Г.А. Курс патологогистологической техники. — Л.: Медицина, 1969, —424 с.
64. Михайлова С.А., Клепина Н.В., Антонов B.C. Возрастные особенности формирования иммунорезистентности у цыплят-бройлеров // Ветеринария. — 1987, — №6, — С. 11-14.
65. Николаев C.B. Профилактика гистомоноза индеек // Ветеринария. — 1971. — №5, —С. 71-72.
66. Николаев C.B. Гистомоноз индеек и меры борьбы с ним : Автореф. дисс. канд. вет. наук. —Баку, 1972. — 16 с.70.0тте В.Ф. Болезни и вредители домашней птицы. — Вольмар: изд. автора, 1911.
67. Парре Ю.Ю., Хуссар Ю.П., Шатшнейдер Т.К. Морфологические изменения в лимфоидных органах цыплят при инвазии Е. tenella // Матер. 6 -й Всесоюз. конф. по патологической анатомии ж-х . — Тарту, 1977. — С. 206.
68. Павлющик Т.Е., Карасев Н.Ф. Гистомоноз глухарей в вольерах Березинского заповедника // Заповедники Белоруссии. — 1977. — вып. 1. — С. 130 134.
69. Петров В.А., Романенко В.Г. Тифлогепатит ( гистомоноз) кур // Птицеводство. — 1953. —№ 3. — С. 12-13.
70. Петров В.А., Романенко В.Г. О заболеваемости кур тифлогепатитом (гистомонозом) // Тр. / Ростовск. НИВС. — 1960. — вып. 12. — С. 87 89.
71. Петроченко В.И., Протасевич М.В. Гетеракидоз и гистомоноз. Профилактика гистомоноза индюшат путем проведения мероприятий против гетеракидоза // Тр. / ВИГиС. — 1970 (1971). — т. 1. — С. 177 -180.
72. Потапов А. Гематологические показатели при экспериментальном тифлоге-патите индеек// Птицеводство, 1973. — № 7. — С. 45 -50.
73. Протасевич М.В. Взаимоотношения Heterakis gallinarum и Histomonas meleagridis и профилактика гистомоноза индеек путем проведения комплекса противогетеракидозных мероприятий : Автореф. дисс. . канд. биол. наук. — М., 1968. — 16 с.
74. Рахматулин А.Ф. Испытание химиопрепаратов при гистомонозе кур // Профилактика болезней птиц в условиях Дагестана. — 1983. — С 3 -10.
75. Ридала В.И. Гистомоноз индеек и борьба с этой болезнью // Сб. науч. тр. / Эстонская с.-х. академия. — 1983. — № 141. — С. 45 57.
76. Романенко В.Г., Петров В.А. О заболеваемости кур тифлогепатитом (гистомонозом) // Тр. / Ростовская НИВС. — 1960. — № 12. — С. 166 170.
77. Романенко В.Г., Павлов И.А. Сезонная динамика заражения почвенных оли-гохет личинками аскаридий и гетеракисов ( домашних птиц) // Совершенствование технологии производства птицеводческой продукции. — 1982. — С. 65 67.
78. Ротов В.И. Туберкулез птиц. — Киев : Урожай, 1976. — С. 71 76. ЙЗ.Салаутин В.В. Патоморфология экспериментального сальмонеллеза цыплят,вызванного Б. е^епИсЦБ // Сб. науч. тр. / СХИ. — Саратов, 1992. — С. 96 -98.
79. Салаутин В.В. Патоморфологическое и эпидемиологическое значение диагностики сальмонеллезов у птиц // Науч. аспекты профил. и терапии болезней с.-х. ж ивотных : Материалы науч. конф. — Воронеж, 1997. — С. 102 103.
80. Сарахатунов А.З., Синицына М.П. Гистомоноз птицы и меры борьбы с ним // Сельск. хоз-во Туркменистана. — 1985. — № 5. — С. 19 20.
81. Седов В.А., Пивнева В.Д., Сидоркина Т.И. К вопросу распространения про-тозойных болезней животных в России // Вестник ветеринарии. — М., 1998. — №7(1). —С. 19.
82. Сеник Г. А. К патологической картине кокцидиоза цыплят // Тр. 3-й Всесо-юз. конф. по патологической анатомии животных / ЛВИ. — Л., 1967. — С. 245 -246.
83. Сергеев В.П. Паразитарные болезни: проблемы новые и старые // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. — 1991. — 10 : 66. — С. 15 — 18.
84. Симаков В.Е. Патолого-анатомическая характеристика тифлогепатита кур // Матер. Всесоюз. межвузовск. конф. по патанатомии / КВИ. — Казань, 1969.
85. Симаков В.Е. Экспериментальные исследования тифлогепатита ( гистомоноза) кур // Матер. XVIII науч. конф./ Благовещенский СХИ. — Благовещенск, 1970.— С. 27-29.
86. Симаков В.Е. Патологическая морфология тифлогепатита ( гистомоноза) кур : Автореф. дис. . канд. вет. наук. —М., 1973. — 19 с.
87. Симаков В.Е. Некоторые вопросы патогенеза тифлогепатита кур // Тр. / Примор. НИВС. — 1975. — вып.1. — С. 88 -92.
88. Симоварт Х.-Э., Парре Ю. О распространении и носительстве гистомоноза в стаде индеек. — В кн.: Паразитол. исследования в Прибалтике. Рига, 1976, с. 70 72.
89. Скрябин К.И. Ветеринарная паразитология и инвазионные болезни. — М.: СХГ, 1937.
90. Смирнов А.Н. К вопросу диагностики колигранулематоза кур // Матер. Все-союзн. конф. по болезням молодняка с.-х. ж х и птиц. — М., 1964. — С. 219 -220.
91. Тараненко И.Л., Кривутенко А.И. Патоморфология и дифференциальная диагностика гетеракидоза и гистомоноза индеек. — В кн.: Исследования в обл. ветеринарии. (Ч. 2). Одесса, 1975, с. 22 -25 .
92. Тараненко И.Л. Эпизоотология и профилактика гетеракидоза индеек. — В кн.: Болезни птиц при интенсивных методах ведения отрасли. — 1988. — С. 65 70.
93. ЮО.Тартаковский М.Г. Трихомонады индеек в связи с вопросом об энтерогепа-тите. — В кн.: Объяснение к экспонатам лаборатории на Всероссийской выставке в г. Санкт Петербурге. — СПб.,1913.
94. Тюрин В.Н. Патологоанатомическая картина при вспышке тифлогепатита у тетеревов // Дичеразведение в охотничьем хозяйстве. — М., 1985. — С. 163 -164.
95. Федоров В.В. Цитологический метод диагностики острой формы болезни Марека ( нейролимфоматоза) // Сб. работ / ЛВИ. — 1976. — вып. 43. — С. 195 197.
96. Федоров Ю.Н., Верховский О-А. Иммунодефицита домашних животных.1. М., 1996.—С. 69.
97. Сельское хозяйство Сибири. — 1959. — №7. — С. 15-17. Ю8.Шубин В.А., Ибрагимов A.A. Колигранулематоз // Патологоанатомическая диагностка болезней птиц / Под ред. В.П. Шишкова и др. — М.: Колос, 1978.1. С. 178 182.
98. Щенников С.Т. Энтерогепатит. —В кн.: Ветеринарно-санитарный контроль на птицеперерабатывающих предприятиях. —М., 1964. — С. 92.
99. Ю.Якимов В.JI. Энтерогепатит индеек. — В кн.: Ветеринарная протозоология. — М.: СельхозГИЗ, 1931.
100. Bardelli P., Menzani С. Entero hepatite infectiva ( Blackhead) // Vehr. XIII Intern, tierarzte. kongr. — Zurich, 1938, vol. 2. — P. 848 - 855.
101. Bradley R.E., Johnson I., Reid W. Apparatent abligate relations tip between Histomonas meleagridis and Escherichia coli in producing disease // J. Parasitol., 1964, vol. 50 ( 2). — P. 167 172.
102. Cain W.A., David L.A. Long term reconsitution of bursectomised chickens // J. of Immunology, 1971, vol. 107, № 2. — P. 598 -600.
103. Chin R.P., Eleazer Т.Н., Hughes P.E. AAAP disease reports // Avian Dis., 1988, vol.32.— P. 852-859.
104. Chute A.M., Lund E.E., Wilkins G.S. Comparative Responses of White Leggorn and New Hampshire Chickens to Experimental Infectious with Histomonas meleagridis and Heterakis gallinaarum // Poultry Sci., 1976, vol. 55. — № 2. — P. 710.
105. Ciurea V., Macarie I., Brinzoiv M. Cerutary histopathologice pentre diagnostical histomonozei aviare // Lucrari stiint. Inst. Agron. N. Baloesch, 1960, vol. 4. — P. 141-153.
106. Clarkson M.J. The progressive pathology of Heterakis-produced histomoniasis in turkeys //Res. Vet. Sci., 1962, vol. 3. — № 4. — P. 433 448.
107. Dickinson E.M. Infectious entero hepatitis in the peafowl // J. of the American Vet. Med. Associattion, 1930, vol. 74, № 4. — P. 176 - 180.
108. Dinamica de invasion de Heterakis gallinarum en la gallina / Calvo A., Birova Viera, Ovies D., Perez Y.A. // Rev. avicult., 1981, vol. 25, № 1 2. — P. 15 - 21.
109. Doll J.P., Franker C.K. Experimental histomoniasis in gnotoliotie turkeys. Infection and histopathology of the bacteria-free host // J. Parasit., 1963, vol. 49. — №3,—P. 411-414.
110. Farmer R.K., Huges K.Z., Whiting G. Infectious Enterohepatitis ( blackhead) in Turkeys : A study of the pathology of the Artificially Induced Disease // J. Comp. Path. Therap., 1951. —№ 61. —P. 251 262.
111. Fujimoto V. Unitial lessions in chickens infected with IM strain of Mareks disease virus // J. Jap. Vet. Res., 1974, vol. 22. — № 33. — P. 80 94.
112. Gibbs B.S. The occurence of the protozoan parasite Histomonas meleagridis in the adults and eggs other the cecal worm Heterakis gallinarum // J. Protozool., 1962, vol. 9, —№3.—P. 288-293.
113. Hemslly L.A. Histomoniasis ( blackhead) in broiler chickens // Vet. Ree., 1964, vol. 76 (37).— P. 1017-1018.
114. Histomoniasi in polli di allivamento intensivo/ Gallazzi D., Sironi G., Canti M., Passera A.// Clin Veter., 1988, vol. 111. — P. 68 72.
115. Histopatological diagnosis of avian histomoniasis / Ciurea V., Macarie I., Paul I., Brinzoiv M.; Inst. Agron., Bucharest, 1960, vol. 4. — P. 17.
116. Homer B.L., Butcher G.D. Histomoniasis in Leggorn Pullets on a Florida Farm // Avian Dis., 1991, vol. 35, №3. — P. 621 624.
117. Hordon-Smith C., Long P.L. The infection of chickens ( Gallus gallus with histomonad suspensions // J. Parasitol., 1956, vol. 46. — P. 79 90.
118. Hutyra F., Marek J., Manninger R. Spezielle Pathologie und Therapie der Haustiere // Zweiter Band. Vess. Gustav Fisher verlag, Jena, 1959. — P. 19.132.1vanics E. What is blackhead // Poultry, 1988, vol. 4, № 1. — P. 45 47.
119. Johnson E.P., Lange C.E. Blood alteratious in typhlohepatitis of turkeys, with notes onthe disease// J. Parasitol., 1939. — № 25. — P. 157 167.
120. Jowett W. Blackhead. Infectious entero hepatitis or typhlohepatitis, a disease of young turkeys // J. of Comp. Path, and Therap. — 1911, vol. XXIV. — P. 289.
121. Kalia M.L. Histomoniasis ( entero hepatitis) in indegenous fowls // J. Indian Vet., 1958. — № 35. — P. 105 - 107.
122. Kemp R.L., Franson J.C. Transmission of Histomonas meleagridis to domestic fowl by means of earthworms recovered from pheasant yard soil // Avian Dis., 1975, vol.19. — № 4. — P. 741 744.
123. Kemp R.L., Springer W.T. Histomoniasis. In: Disease of poultry, 7th ed. M.S. Hofstad, B.W. Calnek, C.F. Helmboldt , Jr., eds. Iowa State University Press, Ames, Iowa, 1978. — P. 832 840.
124. Köhler H. Zur Histologischen Differential diagnose der Koligranulomas und der Tuberculose der Hühner // Dtsch. Tierarztl. Uschr,, 1951, vol. 58. — P. 177.
125. Köhler H. Das sog. Koligranulomas der Hühner // Arch. Exper. Vet. Med., 1965, vol. 5. — P. 75.
126. Kubo M., Kodama Y. Electron microscopic observations on the liver and cecum of fighting chickens with histomoniasis // J. Japan Veter. Med. Assn., 1989, vol. 42, №3.— P. 194- 196.
127. Kuprowski M. Zur Pathogenese und Morphologie der Moniliasis der ^ Hühnervögel // Dt. tierärzte wschr., 1960, jg. 67. — № 7. — S. 185 189.
128. Laha R., Bhattacharya D. Histomoniasis in birds // Asian Livestock, 1994, vol. 19, №11. — P. 146- 149.
129. Levine N.D. Flagellates : Histomonas, Dientamoeba, and related forms. In: Veterinary protozoology. Iowa State University Press, Ames, Iowa, 1985. P. 80 -85.
130. Lund E.E., Augustine C.P., Ellis J.D. Immunizing action of in vitro attenuated Histomonas meleagridis in chickens and turkeys // Expt. Parasitol., 1966. — № 18. — P. 403 -407.
131. LundE.E. Histomoniasis. — In : Disease of Poultry, 1972. — P. 990.
132. MacManus I.F.A. Histological and Histochemical Uges of Periodic Acid // Stin. Tech., 1948, vol. 23. — P. 99 107.
133. Madsen H. On the interaction between Heterakis gallinarum, Ascardia galli, " blackhead" and the chicken // J. Helminthol., 1962, vol. 36. — P. 107 142.
134. Malewitz T.D., Calchoun M.Z. The normal hematological picture of turkeys poults and blood alterations caused by enterohepatitis // Amer. J. Vet. Res., 1957, vol. 18.— № 67. — P. 396 399.
135. Malhorta S.K. Population distribution of Heterakis pusilla in Gallus gallus L. from India // J. Helmintology, 1983, vol. 57, № 2. — P. 117 -126.
136. Marion Far M. Further observations on survivae of the protozoan parasite Histomonas meleagridis and eggs of poultry nematodes infeces of infected birds // Cornell veterinary, 1961, vol. 51. —№ 1. — P. 3 -13.
137. McDougald L.R., Galloway R.B. Blackhead disease : In vitro isolation of Histomonas meleagridis as a potentially useful diagnostic acid // Avian Dis., 1973, vol. 17. — P. 847 850.
138. McDougald L.R., Reid W.M. Histomonas and relatives. — In : Parasitic Protosoa of Medical and Veterinary Importance. J.P Krier, ed. Academic Press, New York , NY, 1978.— P. 139-161.
139. McDougald L.R. Other protozoal diseases of the intestinal tract. — In: Disease of Poultry, 8th ed. M.S. Hofstad, H.J. Barnes, B.W. Calnec et al., eds. Iowa State University Press, Ames, Iowa, 1984. — P. 717 727.
140. McDougald L.R. Protozoa. In : Disease of Poultry, 10th ed. B.W. Calnec, H.J. Barnes, C.W. Beard et al, eds. Iowa State University Press, Ames, Iowa, 1997. — P. 865 -912.
141. McDougald L.R. Intestinal protozoa important in poultpy // Poultry Sc., 1998, vol. 77, № 8. —P. 1156 1158.
142. McGregor J.K. Further observations on the control of blackhead with nitrofuran compounds // Canad. J. Compar. Med., 1954, vol. 18. — № 11. — P. 397 400.
143. McGuire W.C., Cavett J.W. Blood studies on histomoniasis in turkeys // Poult. Sci. J., 1952, — №31.
144. Meyer J.R. Blackhead of turkeys I I Arch. Inst. biol. Dep. agric. anim. — S. Paulo, 1935,—P. 85 -94.
145. Minarik P. Histomoniaza (cernohlavost) krut // Chovatel, 1986, vol. 25, № 4. — P. 77.
146. Payne L.N. Natura dellimta verso la mallatia di Marek // Allevatori, 1977, vol. 27. — № 12, — P. 32-35.
147. Payne L.N. Viral limphomagenesis in the domestic fowl : a review // Proc. Roy. Soc. Med., 1977 a, vol. 70. — № 8. — P. 559 563.
148. Riddell C., Gajadhar A. Cecal and hepatic granulomas in chickens associated with Heterakis gallinarum infection // Avian Dis., 1988, vol. 32, № 4. — P. 836 838.
149. Ruff M.D., McDougald L.R., Hansen M.F. Isolation of Histomonas meleagridis from emryonated eggs of Heterakis gallinarum // J. Protozool., 1970, vol. 17. P. 10 -11.
150. Russel K.G., Reid W.M., Malcohn R.W. Studies on the etiology of blackhead disease : the roles of Histomonas meleagridis and Candida albicans // Unated Stats Poultry Sei., 1966, vol. 45 ( 6 ). P. 1296 - 1302.
151. Русев И., Владимирова А., Томов Й. Дехелминтизация на ярки с Levamisole и Rintal premix 2, 4 % при смесена инвазия с A. galli, Н. gallinarum и Raillietina spp. // Ветер. Сб., 1987, № 85 (4). — С. 26 28.
152. Seifried О. Ensootische Typhlo hepatitis bei Fruthühnern ( Amöbiasis ) // B. tierärzte wschr. — 1924, s. 65.
153. Sharma R.K., Singh К., Saxena K.K. Effect of parbendasole and piperazine adipinate on the activity of some enzymes of Ascaridia galli and Heterakis gallinae // Veter. Parasitol., 1987, vol. 24, № 3 4. - P. 211 - 220.
154. Shiefer B., Mehnert B. Untersuchungen zur Ätiologie und Pathogenese der Typhlohepatitis der Hühnervögel // Zbl. Veterinarmed., 1963, vol. 10. — № 1. — S. 28-48.
155. Smith T. An infectious disease among turkeys caused by protosoa ( infecious enterohepatitis ) // Bureau of Animal Industry US Dept. of Agric. — Washington D.C. — 1895, vol. 8.
156. Soulsby E.J.L. Protozoa. In: Helminths, arthropoods and protozoa of domesticated animals, 7th ed. Lea & Febiger, Philadelphia, 1982. P. 567 - 572.
157. Stephenson J., Hughes D.L. Observations on the epizootigy of enterohepatitis ( blackhead) in turkeys // Xth Worlds Poult. Congr. — Edinburgh, 1954. — P. 282 -284.
158. Stutman O., Yunis E., Good R. Studies of thymus function // J. of Experimental Med., 1970, vol. 132. — №3. — P. 583 600.
159. Turnbull P.C., Snocyenbos G.H. Experimental salmonellosis in the chickens. Fate and host response in alimentary canal, liver and spleen // Avian. Dis., 1974. — № 18, — P. 153 177.
160. Tyzzer E.E. Developmental phases of the protosoon of" Blackhead" in turkeys // J. Med,Res., 1919, vol. 40. —P. 210 -217.
161. Tyzzer E.E., Fabyan M. Further studies of "Blackhead" in turkeys with special reference to transmission by inoculation // J. Inf. Dis., 1920. — № 20. — P. 207 -239.
162. Ugorski L. Blackhead in turkeys // Vet. Med., 1952. — № 5. — P. 207 209.
163. Venkataratnam A., Clarkson M.J. The effect of histomoniasis on the Blood eels on the fowl // Res. Vet. Sei., 1963. — № 4. — P. 603 608.
164. Wang R., Charoenvit Y., Corradin G. Induction of protective polyclonal antibodies by immunization with a Plazmodiurn yoelii circumsporozoite protein multiple antigen vaccine // J. Immunol., 1995, vol. 154, № 6. P. 2784 - 2793.170
165. Wehr E.E. Blackhead of turkeys primarily transmitted through cecal worai eggs // J. Parasit., 1954, vol. 40. — № 5. — P. 26.
166. Wetzel R., Enigk K. Zur Ätiologie der Blinddarm Leberent-Zündung der Hühnervögel ( Blackhead) // Vehr. XIII Intern, tierärzte. kongr. — Zürich, 1938, vol. 2, —P. 856 -862.
167. Wilkins D., Lee D.L. Qualitative and quantitative histochemical changes in the caecum and liver of turkeys infected with Histomonas meleagridis // JJ Parasitol., 1976, vol. 72. —№ 1,—P. 51 -63.
168. Whiteman C.E., Bickford A.A. Histomoniasis. In: Avian disease manual, 3rd ed. H.J. Barnes, R.J. Eckroade, O.T. Fletcher, eds. American Association of Avian Pathologist, Kennett Square, Pa., 1988. — P. 188 -191.
169. Yazwinski T.A., Anrews P., Holtzen H. Dose-titration of fenbendazole in the treatment of poultry nematodiasis // Avian Dis., 1986, vol. 30, № 4. P. 716 - 718.
170. Yoshio I., Shingo Y., Noboru I. " KeM6e kshkio KaMxo" // J. Jap. Soc. Poultry Dis., 1982, vol. 18, № 3. P. 120 - 123.
171. Zeakes S.J., Hansen M.F., Röbel R.J. Increased susceptibility of bobwhites ( Colinus virginianus) to Histomonas meleagridis after exposure to sevin insecticide // Avian Dis., 1981, vol. 25, № 4. P. 981 - 987.