Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.03) на тему:Микробиологический мониторинг желудочно-кишечного тракта журавлей

ДИССЕРТАЦИЯ
Микробиологический мониторинг желудочно-кишечного тракта журавлей - диссертация, тема по ветеринарии
АВТОРЕФЕРАТ
Микробиологический мониторинг желудочно-кишечного тракта журавлей - тема автореферата по ветеринарии
Мироненко, Антонина Петровна Благовещенск 2006 г.
Ученая степень
кандидата ветеринарных наук
ВАК РФ
16.00.03
 
 

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Микробиологический мониторинг желудочно-кишечного тракта журавлей

На правах рукописи

МИРОНЕНКО АНТОНИНА ПЕТРОВНА

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ МОНИТОРИНГ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА ЖУРАВЛЕЙ

16.00.03 — ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

БЛАГОВЕШЕНСК-2006

Работа выполнена на кафедре эпизоотологии, паразитологии и микробиологии института ветеринарной медицины н зоотехнии ФГОУ ВПО «^Дальневосточный государственный аграрный университет» в Архарннской районной и Амурской областной ветеринарных лабораториях

Научные руководители: кандидат ветеринарных наук, профессор

Бурик Виктор Владимирович • кандидат ветеринарных наук, доцент Землянская Наталья Ивановна

Официальные оппоненты:

Ведущая организация

доктор ветеринарных наук, профессор Салнмов Рафаель Мамед-оглы; кандидат ветеринарных наук КопеЙкин Юрий Александрович

Приморская государственная сельскохозяйственная академия

Защита состоится «Х^ »2006 года в часов на заседании диссертационного совета" КМ 220.027.01 в Федеральном государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Дальневосточный государственный аграрный университет» по адресу: 675003, г. Благовещенск, ул. Политехническая, 86

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке университета

Автореферат разослан А2006 года

Ученый секретарь диссертационного совета.

доктор ветеринарных наук, профессор Мачдро Н.М.

1 ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

1.1 Актуальность темы. Государственный природный заповедник «Хинганский», при котором с 1988 года действует станция реинтродукции редких видов птиц, расположен на юго-востоке Амурской области. Основная задача станции — отработка методик сохранения редких журавлей в ареале обитания.

Содержание и разведение диких птиц в неволе неразрывно связано с появлением у них различных патологий. Обеспечение здоровья журавлей в искусственных условиях является одной из основных проблем вольерного содержания (Петров Ю.Ф., Воробушков А.Г., Ефимова П.А., 1981; Бессарабов Б.Ф., 1983; Амонова М.Б., Мамедова Н.М.1993; Борисенкова А.Н., 2003; Булатов A.C., 2003; Салаутин ВВ., 2004).

В естественной среде обитания выживание популяций идет за счет естественного отбора. При содержании в неволе дикая птица гораздо сложнее проходит адаптацию и акклиматизацию, и именно от человека зависит выживание популяций редких видов журавлей.

Чтобы пополнить природные популяции редких видов журавлей здоровой птицей, необходимо слежение за эпизоотической ситуацией на станции, в связи с чем возникает необходимость проведения мониторинговых микробиологических исследований самой птицы, кормов, водных источников и других объектов.

Изучение экологических характеристик ■ условно-патогенных микроорганизмов позволяет определить ' эпизоотическую ситуацию при полувольном содержании редких видов птиц, прогнозировать вероятную вспышку инфекционной болезни (Роздана О.И., 2002).

Кроме того, на сегодня отсутствуют точные данные по оценке уровня циркуляции микроорганизмов в желудочно-кишечном тракте японских и даурских журавлей, содержащихся на станции ре итродукции.

1.2 Цель и задачи исследования. Изучить микрофлору верхнего и нижнего отделов желудочно-кишечного тракта японских и даурских журавлей, содержащихся на станции реинтродукции Хин ганского государственного природного заповедника, водных источников н кормов для журавлей.

Для достижения цели были поставлены задачи:

1. Провести бактериологический мониторинг зева и клоаки журавлей в условиях станции реинтродукции в зависимости от возраста и вида;

2. Изучить изолированную микрофлору зева и клоаки редких видов журавлей, ее видовой состав и свойства;

3. Дать качественную характеристику кормов и воды, используемых для журавлей;

4. Установить взаимосвязь микробной обсемененности зева, клоаки, кормов, воды.

1.3 Научная новизна исследования. Впервые в условиях вольерного разведен и я журавлей проведен бактериологический мониторинговый анализ с позиции ветеринарной науки. Изучены биологи чески е и экологические характеристики изолированных микробных культур.

1.4 Теоретическая и практическая значимость работы. Описана изолированная из верхнего и нижнего отделов желудочно-кишечного тракта микрофлора в зависимости от возраста и вида журавлей, определены количественный н качественный состав микроорганизмов, их биохимические, патогенные свойства и чувствительность к антибиотикам, с целью контроля за эпизоотической ситуацией при полувальном содержании журавлей в условиях станции реинтродукции.

Материалы исследований могут быть использованы в диагностической работе бактериологическими лабораториями для сравнения сапрофитной и патогенной микрофлоры у журавлей, при разработке профилактических мероприятий на станциях реинтродукции редких видов птиц, а также в учебном процессе при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий со студентами биологического профиля.

1.5 Реализация результатов исследований Полученные результаты используются в областной Амурской и районной Архаринской ветлабораториях при диагностике бактериальных инфекций журавлей, в учебной и научной работе на кафедрах биологического профиля в ВУЗах России.

1.6 Основные^положения, выносимые на защиту:

- морфологическая характеристика микроорганизмов, изолированных от журавлей в зависимости от возраста и вида;

- видовой состав, тинотариальные, культурально-биохимические свойства изолированных культур, чувствительность их к антибиотикам;

- бактериологическая характеристика кормов и воды, используемых для журавлей.

1.7 Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и обсуждены на международных конференциях в Дальневосточном государственном аграрном университете «Болезни животных Дальнего Востока» (г.Благовещенск, 1999), «Биологические ресурсы российского дальнего Востока (г.Благовещенск, 2004); на научных конференциях в Дальневосточном госагроуниверситете (1999-2006 гг.) и ученых советах Хинганского заповедника (2000,2001г.).

1.8 Публикации. Основные результаты научных исследований отражены в 7 печатных работах.

Тема диссертационной работы является составной частью комплексной программы кафедры эпизоотологии, паразитологии и микробиологии ФГОУ ВПО «Дальневосточный государственный аграрный университета» «Ветеринарное благополучие» № гос.рег.01200503575

1.9 Объем и структура диссертации Диссертационная работа излажена на 122 страницах компьютерного набора и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, практических предложений и списка используемой литературы, содержащего 128 источника, из них 38 иностранных авторов. Работа иллюстрирована 33 таблицами и 35 рисунками.

2 СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 2.1 Материал и методы исследований

Исследования проводили с 1999 по 2005 гг. на кафедре эпизоотологии, паразитологии и микробиологии института ветеринарной медицины и зоотехнии ФГОУ ВПО ДальГАУ, в бактериологическом отделе Амурской областной и Архаринской районной ветеринарных лабораториях.

Объектом исследования служили даурские и японские журавли, принадлежащие станции реинтродукции Хинганского государственного природного заповедника в количестве 12 голов, подобранных по принципу аналогов. Птица была разделена на взрослых (1987-1998 гг. рождения) и молодняк (птенцов) 2004 года рождения (когда проводили основные мониторинговые исследования). Схема постановки опыта представлена в таблице 1.

Таблица 1 Схема постановки опыта

. № Вид птиц Кличка . Год , Живая масса.

особей и рождения кг М±т

групп

1. Японские журавли Саламе 2004 8,6

2. I (молодняк) Ташина 2004 8,0 83±0,174

3. Джельмен 2004 8,3

4. Японские журавли Гонгор 1989 11

5. II (взрослые) Архара 1987 9,2 10,17±0,524

6. Капитон 1998 10,3

7. Даурские журавли Кой 2004 7,2

8. III (молодняк) Картей 2004 6,8 6,83±0,203

9. Парис 2004 6,5

10. Даурские журавли Ханка 1998 7,8

11. VI (взрослые) Майкур 1996 8,2 8,0±0,116

12. Урия 1997 8,0

Журавли имели хорошее физиологические состояние, клинически здоровы, развивались согласно технологическим требованиям орнитологов, видимых анатомических дефектов в развитии не имели.

Для бактериологического исследования отобрали 16 пропиток из ротовой полости и 88 проб фекальных масс (проведено 3456 бактериологических исследований), 12 проб воды (проведено 36 исследований) н 18 проб зернофуража (проведено 396 исследований).

Мониторинговые исследования желудочно-кишечного тракта журавлей включали: эпизоотологический анализ, изучение количественного и качественного состава микроорганизмов, выделенных с ротовой полости, содержимого клоаки, питьевой воды, кормов, а также тинкториальные, кул ьтурально-би »химические характеристики микроорганизмов,

чувствительность их к антибиотикам.

От опытных групп еженедельно, в одно и то же время отбирали пропитки слизи из ротовой полости и пробы содержимого клоаки. Для этого журавлей усаживали на землю, фиксируя их собственным телом.

Пробы зернофуража отбирали по мере поступления, всего отобрано 18 образцов, которые исследовали на количество и качество микробов. Общее количество микроорганизмов подсчитывали на мясопептонном агаре (МПА).

Изучение морфологических, культуральных, тин ктори альных, биохимических, серологических и патогенных свойств выделенных микроорганизмов производили по общепринятым методикам (Биргер М.О., 1983; Герхард Ф., 1983; Антонов Б.И., 1986).

Морфологические свойства выделенных бактерий изучали методом световой микроскопии. Препараты готовили из суточных агаровых и бульонных культур микробов. Для световой микроскопии использовали микроскопы МБИ-6, МБР, осветитель ОИ-19.

Для изучения тиикториальных свойств микроорганизмов мазки окрашивали по Граму, Романовскому- Гимзе, 2%-ным раствором фуксина и с использованием 3%-ного раствора КОН по методу С.И. Кондратьева (1983).

Подвижность микроорганизмов определяли просмотром висячей и раздавленной капли, микроскопией в затемненном поле, посевом в полужидкий агар.

Для дифференциации бактериальные посевы производили на среды: мясопептонный агар (МПА), мясопепгонный бульон (МПБ), мясопептонный печеночный бульон (МППБ), мясопептонный желатин (МПЖ), глюкозно-глицериновый и кровяной МПА, среды Гисса, Эндо, Левина, Плоскирева, Кли'глера, висмут-сульфит агар и молоко. Для выявления дрожжей и грибков использовали среду Сабуро и Чапека.

Рост культур микроорганизмов на разных питательных средах наблюдали в течение 1-7 суток, отмечали характер роста колоний, их размеры, учитывали при этом форму, края, блеск, цвет, профиль, консистенцию и структуру колоний. При культивировании микроорганизмов в жидких питательных средах отмечали наличие осадка, его количество и характер, степень помутнения среды, оттенок, толщину и консистенцию

пленки при поверхностном росте культуры, учитывали образование пристеночного кольца и изменение цвета среды.

Протеолитические свойства микроорганизмов определяли путем установления способности разжижать МПЖ. Степень протеолиза определяли по образованию микроорганизмами индола и сероводорода с помощью индикаторных бумажек, пропитанных 12%-ным раствором щавелевой кислоты и 10%-ным раствором уксусного свинца. Соответственно результаты учитывали через 18-24 часа. Контролем служили заведомо индоло-сероводородообразующне культуры микроорганизмов и питательная среда без посевов.

При изучении биохимических свойств микроорганизмов использовали среды Гисса. Посевы культур осуществляли по общепринятой методике бактериологической петлей. После инкубирования в термостате в течение 16-24 часов учитывали результаты ферментации углеводов по изменению цвета питательной среды и образованию газов.

Чувствительность микроорганизмов к различным антибиотикам определяли методом диффузии в агар с применением стандартных дисков, изготовленных НИЦФ г. Санкт-Петербурга серии ТУ 9398-001-39484474-2000 со сроком годности один год. Оценку результатов проводили с учетом наличия или отсутствия зоны задержки роста микроорганизмов согласно «Методическим указаниям по определению чувствительности микроорганизмов к антибиотикам методом диффузии в агар с использованием дисков» (Чайковский С.М., Гнвенхаль Н.И., Руван С.П., 1984).

При изучении патогенных свойств микроорганизмов, кроме постановки биопробы, выявляли гемолитические и плазмокоагулируюшие (у кокковых форм бактерий) способности. С этой целью бактериальные культуры высевали на мясопептонный агар в чашках Петри, содержащий 5% дефибринированной крови барана. При росте микроорганизмов, обладающих гемолитическими свойствами, вокруг колоний в результате лизиса эритроцитов образуется прозрачная зона. Учет реакций производили после 20-24 часов инкубации в термостате при 37°С.

При фотографировании использовали фотоаппарат «Зенит» и м и крофотон асадку МФН-14.

Экспериментальный материал обрабатывали методами вариационной статистики.

Пропитки из ротовой полости тут же помещали в стерильные колбы, а содержимое клоаки переносили в стерильные чашки Петри для дальнейшего бактериологического исследования.

Для определения патогенности микрофлоры применяли биопробу на белых мышах массой 14-16 грамм.

Взвесь бактерий (500 млн/мл) из агаровой 24-часовой культуры в дозе 0,2 мл внутрибрюшинно вводили трем белым мышам. Наблюдение за зараженными животными вели в течение 3-5 дней.

Статистическую обработку осуществляли методами вариационной статистики с применением программы Microsoft Exell.

2.2 Морфологическая характеристика микроорганизмов, изолированных от

журавлей в зависимости от возраста и вида 2.2.1 Морфология микроорганизмов, изолированных из ротовой полости журавлей

Различные формы микроорганизмов определяли путем подсчета в пяти полях зрения под иммерсионной системой микроскопа с применением лейкоцитарного счетчика. Полученные результаты приведены в таблице 2 и рисунке 1.

Таблица 2 Микробная обсемененность ротовой полости японских и даурских журавлей

Группы Общее число микробов млн. в мл Формы микроорганизмов, в %

Палочковидные Кокковидные

грампо-ложи-тельные грам отрицательные монококки диплококки стрепто -кокки стафилококки

I 8,бЗ± 0,308" 31,00± 1,155" 69,00± 1,155'" 6,00± 0,577" 11,00± 0,577"' 30,67± 0,333'" 52,33± 0,882"*

II 7,3 б± 0,275" 40,33± 1,764" 59,67± 1,764"' 7,00± 1,779 10,б7± 2,404* 20,33± 2,186* 62,00± 2,646"

Ш 4,60± 0,246" 37,67± 2,333" 62,33± 2,333" 11,33± 1,764' 28,33± 1,453" 14,67± 1,764* 45,67± 1,453"

IV 3,83± 0,039'" зиз± 1,202" 68,67± 1,202 12,33± 1,764* 25,67± 1,764" 10,67± 1,202*' 51,33± 2,333**

Примечание: * средняя арифметическая достоверность в 95% случаев (Р<0,05) ** средняя арифметическая достоверность в 99% случаев <Р<0,01) *** средняя арифметическая достоверность в 99,9% случае в (Р<0,001)

Наибольшее количество микроорганизмов выделено из ротовой полости молодых японских журавлей 8,63±0,308 млн/мл, что на 14,71% больше, чем у взрослых японских журавлей. Количество грамположительных микроорганизмов было больше у взрослых японских журавлей, а грамотрицательных - у молодых — на 9,33%. Наибольшее количество стрептококков выделено из ротовой полости молодых японских журавлей, а стафилококков - у взрослых - 30,67±0,333 и 62,0(>±2,646% соответственно.

Количество монококков оказалось больше у взрослых японских журавлей -7,00±1,779%, а диплококков было на 0,33% больше в ротовой полости молодых японских журавлей.

Количество микроорганизмов выделенных, из ротовой полости даурских журавлей, в зависимости от возраста также отличалось. Общее число микроорганизмов было больше на 16,74% у молодых особей. Количество грамположительных микроорганизмов оказалось больше на 6,34% у молодых особей, а грамотрицательных — у взрослых даурских журавлей. Монококков и стафилококков было больше в ротовой полости взрослых даурских журавлей 12,33±1,764 и 51,33±2,333% соответственно, а диплококков и стрептококков было больше на 2,66 и 4% соответственно в ротовой полости молодых даурских журавлей.

□ Японский О Даурский

Рисунок 1 Морфология микроорганизмов ротовой полостн журавлей в зависимости от вида

Морфологические свойства микроорганизмов выделенных из ротовой полости журавлей в зависимости от вида также отличались (рисунок 1), Общее количество микроорганизмов в ротовой полости японских журавлей было на 47,06% больше, чем у даурских. Наиболее существенно различалось содержание кокковой микрофлоры. Количество монококков и диплококков было больше на 5,33 и 16,16% соответственно в ротовой полости даурских журавлей, а стрептококков и стафилококков, наоборот, у японских журавлей на 12,83 и 8,67% соответственно.

2.2,2 Морфология микроорганизмов, выделенных из содержимого клоаки

Микробная обсемененность клоаки также изменяется в зависимости от возраста журавлей (таблица 3). Общее количество микроорганизмов, выделенных из содержимого клоаки молодых японских журавлей, было на 24,24% больше, чем у взрослых японских, Грамположительных микроорганизмов на 12,33% больше в клоаке взрослых японских журавлей, а грамотрицательных, наоборот, — у молодых. Монококков и стрептококков было меньше в клоаке взрослых японских журавлей на 4 и 10% соответственно, а диплококков и стафилококков, наоборот - у молодых японских особей на 4,67 и 11% соответственно.

Таблица 3 Микробная обсемененность клоаки японского __и даурского журавлей_

Группы Общее Формы микроорганизмов, в %

число Палочковидные Кокковиди ые

микробов в грамме млн. грампО-ложн-тельные грамот-ри нательные монококки диплококки стрептококки стафи-локок-ки

I 81,16± 20,67± 79,33± 15,00± 11,33± 25,00± 47,00±

0,144 1,453" 1,453'" 1,732* 0,882** 1,155" 2,082"

II б1,49± 33,00± 67,00± П,00±0, 1б,00± 15,00± 58,00±

0,402"* 1,155" 1,155"* 577 1,999* 1,732' 1,155"*

III 44,69± 25,33± 74,67± 10,33± 25,00± 30,67± 34,00±

0,173 0,882" 0,882*** 0,882" 0,577*'* 1,202** 0,577

IV 37,39± 27,33± 72,67± 10,00± 17,33± 29,00± 43,67±

0,419 0,882" 0,882*'* 0,577** 0,882" 1,528" 1,453'*

Примечание: * средняя арифметическая достоверность в 95% случаев (Р<0,05) ** средняя арифметическая достоверность в 99% случаев (Р<0,01) *** средняя арифметическая достоверность в99,9%случаев (Р<0,001)

У даурских журавлей общее количество микроорганизмов, выделенных из клоаки, было также больше у молодых особей - на 16,33%, грамположительных было меньше в клоаке молодых на 2%, а грамотрицательных - в клоаке взрослых даурских журавлей тоже на 2%. Количество монококков и стрептококков в клоаке даурских журавлей в зависимости от возраста изменялось незначительно, разница составила 0,33 и 1,67% соответственно в пользу таковых у молодых даурских журавлей. Количество диплококков было на 7,67% больше в клоаке молодых даурских журавлей, а стафилококков на 9,67% - в клоаке взрослых даурских журавлей.

Изучая микробную обсемененность клоаки в зависимости от вида журавлей (рисунок 2) было установлено, что у японских журавлей общее количество микроорганизмов, выделенных из клоаки, в одном миллилитре было на 42,46% выше, чем у даурских'. Наиболее существенно отличалось содержание кокковой микрофлоры. Диплококков и стрептококков было на 7,5 и 9,84% больше в клоаке даурских журавлей, а стафилококков, наоборот, на 13,66% было больше

у японских журавлей. %

80 70 60 50 40 , 30 20 10 0

И даурские о японские

Рисунок 2 Морфология микроорганизмов клоаки журавлей в зависимости от вида, в %

1 1 -,, '73 .,67 ш р 1 ж 73. щ р ш 17 '

1- '""■ Г. ■ ■ •' ■ ; кг,« ДА . ЯГ

ЖЙЯЙ ш ЙШ; щ Щ 11 Жзо.0

ш

В процессе исследований установлена корреляционная зависимость между, микроорганизмами, выделенными из ротовой полости и клоаки журавлей, независимо от возраста и вида (коэффициент корреляции колебался от 0,47 до 0,88).

ZJ Видовой состав, культурально-бнохнмическне свойства изолированных культур, чувствительность их к антибиотикам

2.3.1 Характеристика и культу рал ьно-биохнмнчес кис свойства микроорганизмов, изолированных из ротовой полости и содержимого клоаки журавлей

Наиболее часто из ротовой полости и клоаки журавлей выделялась культура Escherichia coli, инфнцированностъ верхнего и нижнего отделов желудочно-кишечного тракта данным микроорганизмом составила 100 и 88,64% соответственно (таблица 4).

Таблица 4 Видовой состав микроорганизмов изолированных от журавлей

Виды микроорганизмов Пропитки из ротовой полости n=16 Содержимое клоаки п-88

количество культур %от общего количества количество культур %от общего количества

Escherichia coli 16 100 78 88,64

Citrobacter diversus 5 31,25 55 62,5

Enterobacter aerogenes 7 43,75 - -

Enterobacter cloaceae - - 52 59,09

Proteus vulgaris 8 50,0 70 79,55

Staphylococcus epidermidis 6 37,5 - -

Streptococcus faecalis - - ■ 61 69,32

Salmonella pultorum, - - 27 30,68

Salmonella gallinarum - - 29 32,95

Из проб клоаки было больше выделено, чем из ротовой полости культур Citrobacter diversus и Proteus vulgaris на 31,25 и 29,55% соответственно. Культура Enterobacter aetogenes была выделена из 7 (43,75%) проб ротовой полости, а Enterobacter cloaceae обнаружен в 52 (59,09%) пробах фекальных масс. В пропитках из ротовой полости журавлей находили также Staphylococcus epidermidis, инфицированность проб составила - 37,5%, Из проб фекалий были выделены культуры Streptococcus faecalis, Salmonella pul forum, Salmonella gallinarum в 69,32; 30,68 и 32,95% случаев.

Escherichia coli на мясо-пептонном бульоне вызывала интенсивное помутнение, на мясо-пептонном агаре росла в виде сочных, блестящих, выпуклых, гладких, с ровными краями колоний круглой формы, на среде Эндо колонии были S-формы малинового цвета с металлическим блеском.

Salmonella pullorum и Salmonella gallinarum на МП А образовывали колонии серовато-белого цвета с голубоватым оттенком, диаметром 1-3 мм с ровными краями, на МПБ вызывали помутнение с образованием на дне пробирки осадка, а на поверхности - пленки и пристеночного кольца, на висмутсульфит агаре росли в виде мелких единичных (до 1 мм), плотных блестящих правильной формы колоний черного цвета.

Proteus vulgaris — на МП А, средах Плоски рева, Эндо образовывал сплошной ползучий рост матового цвета.

Citrobacter diversus на МПА образовывал колонии средних размеров, сероватого цвета, блестящие, выпуклые с ровными краями.

Enterobacter cloaceae - на среде Левина рос в виде мелких (до 1 мм), выпуклых, полупрозрачных, блестящих с ровными краями колоний.

Streptococcus faecalis - на МПА образовывал отдельные колонии размером до 3 мм, слегка желтоватого цвета с ровными краями, зона гемолиза эритроцитов на кровяном агаре отсутствовала.

Stafilococcus epidepmidis рос на МПА, средах Плоскирева, Эндо в виде колоний размером 3-4 мм, плоских с ровными краями, тягучей консистенции, серого цвета, на МПБ образовывал слабое равномерное помутнение.

Большинство выделенных от журавлей микроорганизмов ферментировали глюкозу, сахарозу, мальтозу — 85,71% культур, показывали положительную реакцию с молоком (71,43%) (рисунок 3). Отрицательные биохимические свойства в отношении лактозы и сахарозы проявили Salmonella pullorum, Salmonella gallinarum, в отношении мальтозы - Escherichia coli, маннита - Proteus vulgaris, Streptococcus faecalis, Staphylococcus epidepmidis, глюкозы - Citrobacter diversus и Staphylococcus epidepmidis. Три (42,86%) культуры Escherichia coli, Citrobacter diversus и Proteus vulgaris показывали положительную реакцию с индолом. Образовывали сероводород Proteus vulgaris, Streptococcus faecalis, Staphylococcus epidepmidis и представитли рода Salmonella, что составило 57,14% от всех выделенных культур. Усваивали цитрат на среде Симмонса Salmonella pullorum, Salmonella gallinarum, Citrobacter diversus, Enterobacter cloaceae, что составило 42,86% от всех выделенных культур.

Подвижностью обладали 71,42% культур микроорганизмов, выделенных от журавлей: Escherichia coli, Citrobacter diversus, Enterobacter cloaceae, Proteus vulgaris.

14

подвижность 71,42

57,14 «5,71

Рисунок 3 Процент микроорганизмов выделенных, от японских и даурских журавлей, чувствительных к основным тестам

Все изолированные культуры патогенными свойствами не обладали. Падежа лабораторных животных не зафиксировано. Физиологическое состояние зараженных культурами белых мышей в течение пяти дней не изменялось. При убое и вскрытии мышей во , внутренних органах патштогоанатомических изменений не обнаружено.

2.3.2 Чувствительность микроорганизмов, выделенных от журавлей, к антимикробным препаратам

Е. coli, выделенная из ротовой полости журавлей, наибольшую чувствительность проявила к гентамицину, левомицетину, неомицину, стрептомицину и тетрациклину, количество чувствительных культур к указанным антибиотикам составило 100; 93,75; 81,25, 87,5; 68,75 % соответственно. Диаметры зон задержки роста культур колебались от 13,8±0,84 мм - у полимиксина до 2 7,б± 1,29 мм — у гентамицнна.

Citrobacter diversus, выделенная из ротовой полости журавлей, оказалась чувствительной к левомицетину, стрептомицину, гентамицину и полимиксину. Низкие антибиотические свойства к данному микроорганизму проявили тетрациклин и неомицин, всего лишь 40% и 20% культур Citrobacter diversus были чувствительны к этим антибиотикам. Диаметры зон задержки роста Citrobacter diversus вокруг испытанных антибиотиков колебался от 1б,2±0,77 мм -у неомицина до 27,4±3,62 мм — у левомнцетина.

Enterobacter aerogenes, выделенная из ротовой полости журавлей, проявила высокую чувствительность к гентамицину (100%), неблагоприятное влияние оказывали также стрептомицин и полимиксин, 85,71 и 71,43% микроорганизмов Enterobacter aerogenes были чувствительны к данным антибиотикам. Более половины культур Enterobacter aerogenes - 57,14% оказались чувствительны к левомицетину и стрептомицину. Умеренная устойчивость Enterobacter aerogenes была к неомицину н канамицину - 85,71 и 57,14% культур. Диаметры зон задержки роста колебались от 15,б±0,41 мм - у неомнцинадо 28,0±3,63 мм-около дискаслевимицетином.

Proteus vulgaris был чувствителен к гентамицину (100%), стрептомицину (87,5%), тетрациклину (87,5%), левомицетину (75%) и полимиксину (62,5%). Наименьшую активность в отношении Proteus vulgaris, выделенного из ротовой полости журавлей, проявили неомицин и канамицин, соответственно 62,5 и 50% культур были умеренно устойчивы к указанным антибиотикам. Диаметры зон задержки роста Proteus vulgaris около дисков с антибиотиками колебался от 14,4±0,79мм — неомнцинадо 25,8±2,14 мм диска с левом и цети ном.

Культура Staphylococcus epidermidis, выделенная из ротовой полости журавлей, показала высокую чувствительность к гентамицину, стрептомицину, канамицину, левомицетину, полимикину и тетрациклину, 100, 83,33 и 66,67%, выделенных Staphylococcus epidermidis, были чувствительны к вышеуказанным антибиотикам. Умеренную устойчивость Staphylococcus epidermidis проявил в отношении неомицина — 66,67% культур. Диаметры зон задержки роста культур колебались от 13,2±1,58 мм — около диска с пол им икс и ном до 28,0±3,27 мм около диска с левом ицетином.

В целом же все культуры, выделенные из ротовой полости журавлей, были чувствительны к левомицетину, гентамицину, стрептомицину и тетрациклину, диаметры зон задержки роста микроорганизмов, выделенных из ротовой полости журавлей составили 273±0,36, 23,76±1,24, 20,18±1,09 и 21,52±0,86 мм соответственно (таблица 5).

Культура E.coli, выделенная из клоаки, была чувствительная к гентамицину (100%), доклициклину (85,89%), левомицетину (79,49 %), тетрациклину (73,08%) (таблица 6). Наименьшую активность в отношении E.coli, выделенной из клоаки журавлей, проявили линкоспектин и канамицин, соответственно 100 н 88,46 % культур обладали устойчиввостью к указанным антибиотикам. Бактерия рода сальмонелл, выделенные из клоаки журавлей, были чувствительны к гентамицину (100%), левомицетину (77,78% культур- Salmonella pullorum и 72,41% Salmonella gallinarum) и доклициклину (77,78% культур- Salmonella pu 11 orum и 65,52% Salmone I la gallinarum).

Низкую активность по отношению к бактериям сальмонеллезной группы проявляли линкоспиктин, стрептомицин и канамицин, Citrobacter diversus, выделенная из клоаки японских и даурских журавлей, была чувствительна к гентамицину, тетрациклину, канамицину, левомицетину и стрептомицину, Enterobacter cloaceae - к гентамицину, левомицетину, стрептомицину, тетрациклину и доклициклину. Proteus vulgaris и Streptococcus faecalis были чувствительны гентамицину. Proteus vulgaris обладал также чувствительностью к левомицетину и доклициклину, а Streptococcus faecalis - к левомицетину, стрептомицину и тетрациклину.

Таблица 5 Бактериальная активно«!, антибиотиков к микроорганизмам, выделен ны из зева

даурских и японских жураалей

Антибиотики Диаметры зон задержки роста микроорганизмов, мм Среднее Mim

Escherichia coli Citrobacter diversus Enterobacter aerogenes Proteus vulgaris Staphylococcus epiderraidU

Левомииетин 27,1*2,26 27,4±3,ó2 28,0*3,63 25,8*2,14 28.(¡tí,27 27(3*0,36

Стрептомицин 18,0*0,54 20,6±0,83 19,3*0,85 18,3*0,57 24,МД 20,2*1,09

Гентошцнн 27,6*1,29 23,6*1,76 21,6*1,05 20,0¿0,32 26,0*0,58 23,8*1,24

Канаыицин 17.6Kt.31 2Ц±Ь82 16,7±0,78 17,9±î,19 21,0*1,21 18,9*0,83

Полимшснп 13,8*0,84 16,6*1,46 15,8*1,68 13,9*0,85 13,2*1,58 14,7*0,58

Тетрациклин 22,3*0,43 18,6*0,73 22,6*1,59 20,1 ±0,45 24,0± 1,47 21,5*0,86

Неомицин 18,2*0,38 16.2dt0.77 15,6dbO,41 14,4±0,79 16,3*0,92 16,1*0,55

Таблица б Баетсриальная активность антибиотиков к микроорганизмам, выделенных из содержимого клоаки

даурских и японских журавлей

Антибиотики Диаметры зон задержки роста микроорганизмов, мм Среднее М+т

ВсЬегШа СОК $а1тсше!1а риНотт, 5а1топе!1а ^аШпагит СйгоЬаш ЕтегоЬас1ег с1оасеае Ргйеиз ЗиерЮсоссиз Гаеса11а

Левомнцетин 24,9^0,73 21,3±0,42 23,1±0,85 24,210,67 22,5±0,54 23,0±0,37 26,4±0,51 23,б±0р9

Стрептомицин 15,010,24 15,110,25 14,0±0,17 19,2±0,47 20Д±0,61 16,1±0Д1 23,Э±0,52 17,{±1,19

Гашшцин 15Д±0,И 19,9^0,38 19,5±0,67 18,4±0,19 18,1±0,21 20,2x0,27 21,5*0,12 19,010,71

Доклициклин 20,1*0,26 20,1±0,17 21,2±0.% 19,210,42 21,1±0,67 21,110,15 19,! ±0,45 20,310,31

Канамицин 12,2±0,21 17,1±0,41 1б,3±0,29 20,4«,43 16,210,29 14,1 ±0,09 15,2±0,16 15,910,91

Тетрациклин 20,2±0,24 . 18,9±0,49 20,2±0,55 22,1*0,31 23,410,58 18.1±0,29 20.4l0.3i 20,510,63

Неомицнн 14,2±0,16 14,41:0,24 15,110,38 18ДЮ.47 17,1±0,37 14,1±0,14 16,1±0,ЭЗ 15,710,57

Липкоспсктии 7,1±0,12 6,5±0,73 9,И0,39 8,210,14 9Д±0,09 7,410,19 И,НО,41 8,410^5

2.4 Бактериологическая характеристика кормов и воды используемых для журавлей

Среднее количество микрофлоры в одном грамме пробы зернофуража составила 3304100. В среднем в разведении с пробой зернофуража ЫО"4 выросла 16,17±0,929 колония (Р<0,001), в разведении l:10"s - 8,44±0,668 колоний микроорганизмов и в разведении hlO"6 - 2,17±0,459 (Р<0,001) колоний. Наибольшее количество микроорганизмов обнаружено в пробе Хз 15, — среднее количество выросших колоний по разведениям составило 13,33±5,239, наименьшее - в пробе № 14 - 4,67±2,90б.

Во всех 18 пробах зернофуража вырастала культура E.coli (100%). Культура Citrobacter была выделена в 55,56% проб зернофуража, 50% приходилось на культуры типированные как Enterobacter cloacene, Proteus vulgaris, Staphylococcus. Культура Micrococcus была выделена в 44,44% случаев. Стрептококки выделялись в 7 (38,89%) пробах зернофуража

(рисунок 4). %

120 100 80 60 40 20

Рисунок 4 Микробная обсемеценность зернофуража пшеницы в % от общего количества проб

Сальмонеллы были выделены из проб № 1; 15; 17, то есть в 16,67% случаев, а Clostridia perfringens — в 11,11% проб зернофуража. Таким образом, во всех случаях исследования пшеницы присутствует условно- патогенная микрофлора, представленная в основном E.coli, Clostridia perfringens, Salmonella, Streptococcus, Staphylococcus, Micrococcus, Citrobacter, Enterobacter cloacene и Proteus vulgaris.

В сравнительном аспекте определена обсеменен кость зернофуража пшеницы, ротовой полости, содержимого клоаки журавлей и воды

(рисунок 5). %

♦ ротовая полость - клоака

—*—корма —вода

Рисунок 5 Микробная обсемененность ротовой полости, клоаки журавлей, зернофуража и воды в % от общего количества исследованных проб

Наиболее часто из ротовой полости, содержимого клоаки и зернофуража пшеницы выделяется культура Escherichia coli, в 100; 88,64 и 100% случаев соответственно.

Среднее количество Citrobacter было обнаружено в зернофураже пшеницы • 55,56%. Представители рода Enterobacter были выделены в 50% случаев из зернофуража, а инфицированность ротовой полости и клоаки составила 43,75% и 59,09%. Обсемененность Proteus ротовой полости и зернофуража составила 50%, а содержимого клоаки - 79,55%. Из зернофуража на 12,5% больше выделено представителей рода Staphylococcus, по сравнению с выделенными из ротовой полости. Представители рода Salmonella в пропитках с ротовой полости обнаружены не были, но 16,67% проб зернофуража было инфицировано, что на 15,15% меньше, чем обсемененность клоаки журавлей. В трех пробах воды (25%) коли-титр, бактериальная обсемененность превышала норму. В этих же пробах, кроме E.coli, присутствует также условно-патогенная кишечная микрофлора Enterobacter cloacae, Citrobacter diversus. Причем в 75% случаев из питьевой воды выделена чистая культура E.coli, в 16,67% - смесь культур E.coli + Citrobacter diversus и лишь в одном случае (8,33%) - смесь культур E.coli + Enterobacter cloacae.

ВЫВОДЫ

1. Наибольшее количество микроорганизмов содержится в роговой полости молодых японских журавлей 8,63+0,308 млн/ мл; наименьшее - у взрослых даурских 3,83+0,039. Ротовая полость молодняка журавлей богаче микрофлорой в сравнении со взрослыми — на 14,71% - у японского и 16,74%-у даурского. При этом в процентном отношении преобладают грамотрицательные формы (64,34; 65,50%) и стафилококки (57,17; 48,50%).

2. Количество микроорганизмов в одном грамме содержимого клоаки японских журавлей на 42,46% выше, чем у даурских, у молодняка их больше - у японских на 24,24%, даурских - на 16,33%. Наибольшее количество микроорганизмов обнаружено у молодых японских журавлей 81,16+0,144 в одном грамме, преобладают грамотрицательные палочки (73,17; 73,67%) и стафилококки (52,5; 38,84%).

3. Видовой состав изолированной микрофлоры ротовой полости представлен E.coli (100%), Proteus vulgaris (50,0%); Enterobacter (43,75%), Staphylococcus epidermitis (37,5%) и Citrobacter diversus (31,25%). В содержимом клоаки было больше выделено, чем из ротовой полости культур Citrobacter diversus и Proteus vulgaris на 31,25 и 29,55% соответственно. Культура Enterobacter aerogenes была выделена из 7 (43,75%) проб ротовой полости, а Enterobacter cloaceae обнаружен в 52 (59,09%) пробах фекальных масс.

4. Из выделенных культур 71,42% обладали подвижностью, 71,43% -показали положительную реакцию с молоком, ферментировали глюкозу, сахарозу, мальтозу — 85,71%; лактозу —54,14%, маннит- 57,14%, усваивали цитрат на среде Симмонса 42,85%, продуцировали индол и сероводород — 42,86 и 51,14% процентов микроорганизмов соответственно.

5. Микробная обсемененность зернофуража в процентах от общего количества проб представлена: E.coli (100%), Citrobacter (55,56%), Enterobacter cloacene (50%), Proteus vulgaris (50%), Staphylococcus (50%), Micrococcus (44,44%), Streptococcus (38,89%). В трех пробах воды (25%), коли-титр, бактериальная обсемененность превышала допустимые нормы. В воде присуствовали E.coli, Enterobacter cloacae, Citrobacter diversus.

6. Установлена сильная прямая корреляционная связь между микробной обсемененностью зева и корма г=0,93; зева и воды г=0,85; корма и воды г=0,91. Между микробной обсемененностью зева и клоаки, воды и клоаки, клоаки и корма выявлена умеренная корреляционная зависимость, коэффициент корреляции был соответственно 0,34; 0,44 и 0,51.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Материалы диссертации используются в практической деятельности Хинганского государственного природного заповедника. Сотавлена справка о результатах бактериологических исследований журавлей в ОГУ «Архаринская районная станция по борьбе с болезнями животных». Материалы могут быть использованы:

- в диагностической работе специалистов ветеринарных лабораторий Амурской области;

- при разработке профилактических мероприятий в случае возникновения инфекционных болезней;

- в учебном процессе при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий со студентами институтов ветеринарной медицины и зоотехнии и биологических факультетов вузов.

СПИСОК работ, опубликованных по теме диссертации

1. Мироненко, А.П. Экологический мониторинг японских и даурских журавлей Хинганского заповедника / А.П. Мироненко // Биологические ресурсы российского Дальнего Востока: Материалы Международной научно-практической конференции 23-24 сентября 2004 г.- Благовещенск: ДальГАУ, 2004,-С. 168-172.

2. Мироненко, А.П. Микробиологический мониторинг ротовой полости журавлей /А.П.Мироненко, Н.И. Землянская // Проблемы зоотехнии, ветеринарии и биологии животных на Дальнем Востоке: сб. науч. тр. ДальГАУ.- Благовещенск: ДальГАУ, 2005.- С.127-131.

3. Мироненко, А.П. Морфология, физиология и патогенез микроорганизмов, изолированных от журавлей / А,П. Мироненко // Проблемы зоотехнии, ветеринарии и биологии животных на Дальнем востоке: сб.науч. тр. ДальГАУ.- Благовещенск: ДальГАУ, 2005.- С.140-143.

4. Мироненко, А.П. Микрофлора содержимого клоаки редких видов журавлей станции реинтродукции Хинганского заповедника / А.П. Мироненко, Н.И. Землянская // Биологические ресурсы Российского Дальнего Востока: материалы между нар. науч.-практич. конф. (23-24 сентября 2004 г> Благовещенск: ДальГАУ, 2004,- С. 198-200.

5. Мироненко, А.П. Определение активности антибиотиков к микрофлоре пищеварительного тракта журавлей / А.П. Мироненко, Н.И. Землянская // Болезни животных Дальнего Востока: сб. науч. тр. ДальГАУ.-Благовещенск: ДальГАУ, 2005.- С.67-70.

6. Мироненко, А.П. Количественный и качественный состав микрофлоры зернофуража, скармливаемого журавлям / А.П. Мироненко it Болезни животных Дальнего Востока: сб.науч. тр. ДальГАУ.- Благовещенск: ДальГАУ, 2006.- С. 38-40.

7. Мироненко, А. П. Видовой состав микроорганизмов, изолированных из пищеварительного тракта журавлей / А.П. Мироненко // - Математическая морфология: Электронный математический и медико-биологический журнал. -Т.5 .-Вы п .4.-2006.U RL:

http ://www. Smolensk, ru/user/s ema/MMORPH/N-l 2-htm t/m ¡ronenko/mi rotlenko-2 .htm http:/Avww. smolensk. ru/user/s ema/MMORPH/TITl „HTM hm>://www. smolensk.ni/itsef/s ema/M MORPH/N-12-htm l/TITL-12. htm http :/AvwW- smolensk. ru/uscr/s ema/M MOR PH/N- i 2-html/cont.htm

Мироненко Антонина Петровна

МИКРОБИОЛОЛПТЧЕСКИЙ МОНИТОРИНГ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА ЖУРАВЛЕЙ

Автореферат

Лицензия ЛР 020427 от 25.04.1997 г. Подписано к печати 27.11.2006 г. Формат 60x841/16 Уч.-нзд-л.- 1,0 Тираж 100 экз. Заказ 243

Отпечатано в отделе оперативной полиграфии издательства ДальГАУ 657005, г. Благовещенск, ул. Политехническая, 86.

 
 

Оглавление диссертации Мироненко, Антонина Петровна :: 2006 :: Благовещенск

ВВЕДЕНИЕ.

I ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1 Экологические аспекты природной популяции журавлей.

1.2 Биология даурского и японского журавлей.

1.3 Особенности анатомо-физиологических характеристик птиц.

1.4 Экология микробного пейзажа у птиц.

II СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1 Материал и методы исследований.

2.2 Результаты исследований.

2.2.1 Деятельность станции реинтродукции Хинганского заповедника

2.2.2 Морфологическая характеристика и видовой состав микроорганизмов изолированных от журавлей.

2.2.3 Культурально-биохимическая характеристика выделенных культур

2.2.4 Чувствительность выделенных культур к антибиотическим веществам.

2.2.5 Характеристика микробных изолятов из кормов и воды.

 
 

Введение диссертации по теме "Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология", Мироненко, Антонина Петровна, автореферат

Актуальность темы. Государственный природный заповедник «Хин-ганский», при котором с 1988 года действует Станция реинтродукции редких видов птиц, расположен на юго-востоке Амурской области. Основная задача Станции - отработка методик сохранения редких журавлей в ареале обитания.

Содержание и разведение диких птиц в неволе неразрывно связано с появлением у них различных патологий. Обеспечение здоровья журавлей в искусственных условиях является одной из основных проблем вольерного содержания (Петров Ю.Ф., Воробушков А.Г., Ефимова П.А., 1981; Бессара-бов Б.Ф., 1983; Аманова М.Б., Мамедова Н.М., 1993; Борисенкова А.Н, 2003; Булатов А.С., 2003; Салаутин В.В., 2004).

В естественной среде обитания выживание популяций идет за счет естественного отбора. При содержании в неволе дикая птица гораздо сложнее проходит адаптацию и акклиматизацию, и именно от человека зависит выживание популяций редких видов журавлей.

Чтобы пополнить природные популяции редких видов журавлей здоровой птицей, необходимо слежение за эпизоотической ситуацией на станции, в связи, с чем возникает необходимость проведения мониторинговых микробиологических исследований самой птицы, кормов, водных источников и других объектов.

Изучение экологических характеристик условно-патогенных микроорганизмов позволяет определить эпизоотическую ситуацию при полувольном содержании редких видов птиц, прогнозировать вероятную вспышку инфекционной болезни (Роздина О.И., 2002).

Кроме того на сегодня отсутствуют точные данные по оценке уровня циркуляции микроорганизмов в желудочно-кишечном тракте японских и даурских журавлей, содержащихся на станции реитродукции.

Цель исследования. Проведение микробиологического мониторинга желудочно-кишечного тракта японских и даурских журавлей на Станции реинтродукции Хинганского государственного природного заповедника.

Задачи исследований:

1. Провести бактериологический мониторинг зева и клоаки журавлей в условиях станции реинтродукции, в зависимости от возраста и вида журавлей;

2. Изучить изолированную микрофлору зева и клоаки редких видов журавлей, ее видовой состав и свойства;

3. Дать качественную характеристику кормов и воды используемых для журавлей;

4. Установить взаимосвязь микробной обсемененности зева, клоаки, кормов, воды.

Научная новизна исследования. Впервые в условиях вольерного разведения журавлей проведен бактериологический мониторинговый анализ с позиции ветеринарной науки. Изучены биологические и экологические характеристики изолированных микробных культур.

Теоретическая и практическая значимость работы. Материалы диссертации использовались для сравнения сапрофитной и патогенной микрофлоры у журавлей.

Основные положения, выносимые на защиту: Морфологические, физиологические и патогенные свойства микроорганизмов, изолированных от журавлей в зависимости от возраста и видовой принадлежности птиц.

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и обсуждены на международных конференциях в Дальневосточном государственном аграрном университете «Болезни животных Дальнего Востока» (г.Благовещенск, 1999), «Биологические ресурсы российского дальнего Востока (г.Благовещенск, 2004); на научных конференциях в Дальневосточном госагроуниверситете (1999-2006 гг.) и учёных советах Хинганского заповедника (2000, 2001г.).

Публикации. Основные результаты научных исследований отражены в 7 печатных работах.

Тема диссертационной работы является составной частью комплексной программы кафедры эпизоотологии, паразитологии и микробиологии ФГОУ ВПО «Дальневосточный государственный аграрный университета» «Ветеринарное благополучие» № гос.рег.01200503575.

Объем и структура диссертации. Диссертационная работа изложена на 122 страницах компьютерного набора и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, практических предложений и списка используемой литературы, содержащего 128 источника, из них 38 иностранных авторов. Работа иллюстрирована 33 таблицами и 35 рисунками.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Микробиологический мониторинг желудочно-кишечного тракта журавлей"

IV выводы

1. Наибольшее количество микроорганизмов содержится в ротовой полости молодых японских журавлей 8,63+0,308 млн/ мл; наименьшее - у взрослых даурских 3,83+0,039. Ротовая полость молодняка журавлей богаче микрофлорой в сравнении со взрослыми - на 14,71% - у японского и 16,74%) у даурского. При этом в процентном отношении преобладают грамотрица-тельные формы (64,34; 65,50%) и стафилококки (57,17; 48,50%).

2. Количество микроорганизмов в одном грамме содержимого клоаки японских журавлей на 42,46% выше, чем у даурских, у молодняка их больше - у японских на 24,24%, даурских на 16,33%. Наибольшее количество микроорганизмов обнаружено у молодых японских журавлей 81,16+0,144 в одном грамме, преобладают грамотрицательные палочки (73,17; 13,61%) и стафилококки (52,5; 38,84%).

3. Видовой состав изолированной микрофлоры ротовой полости представлен E.coli (100%), Proteus vulgaris (50,0%); Enterobacter (43,75%), Staphylococcus epidermitis (37,5%) и Citrobacter diversus (31,25%). Содержимого клоаки было больше выделено, чем из ротовой полости культур Citrobacter diversus и Proteus vulgaris на 31,25%о и 29,55% соответственно. Культура Enterobacter aerogenes была выделена из 7 (43,75%) проб ротовой полости, a Enterobacter cloaceae обнаружен в 52 (59,09%) пробах фекальных масс.

4. Из выделенных культур 71,42%) обладали подвижностью, 71,43% -показали положительную реакцию с молоком, ферментировали глюкозу, сахарозу, мальтозу - 85,71%>; лактозу -54,14%), маннит- 57,14%), усваивали цитрат на среде Симмонса 42,85%), продуцировали индол и сероводород -42,86% и 51,14%о процентов микроорганизмов соответственно.

5. Микробная обсемененность зернофуража в процентах от общего количества проб представлена: E.coli (100%), Citrobacter (55,56%), Enterobacter cloacene (50%), Proteus vulgaris (50%), Staphylococcus (50%), Micrococcus (44,44%), Streptococcus (38,89%). В трех пробах воды (25%), коли-титр, бактериальная обсемененность превышала допустимые нормы. В воде присут-свовали E.coli, Enterobacter cloacae, Citrobacter diversus.

6. Установлена сильная прямая корреляционная связь между микробной обсемененностью зева и корма г=0,93; зева и воды г=0,85; корма и воды г=0,91. Между микробной обсемененностью зева и клоаки, воды и клоаки, клоаки и корма, выявлена умеренная корреляционная зависимость, коэффициент корреляции был соответственно 0,34; 0,44 и 0,51.

V ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ И РЕКОМЕНДАЦИИ

Материалы диссертации используются в практической деятельности Хинганского государственного природного заповедника. Составлена справка о результатах бактериологических исследований журавлей в ОГУ «Архарин-ская районная станция по борьбе с болезнями животных». Материалы могут быть использованы:

- в диагностической работе специалистов ветеринарных лабораторий Амурской области;

- при разработке профилактических мероприятий в случае возникновения инфекционных болезней;

- в учебном процессе при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий со студентами институтов ветеринарной медицины и зоотехнии и биологических факультетах ВУЗов.

 
 

Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2006 года, Мироненко, Антонина Петровна

1. Аманова М.Б. Морфофункциональные адаптации слепой кишки ку-рообразных к растительным кормам / М.Б. Аманова, Н.М. Мамедова // Доклады АН (Россия).- 1993.- № 2.- С. 246-247.

2. Андриенко В. Волонтеры на учете журавлей // Газета «Серп и молот».- 2005.-№ 89, 15 октября. С.З.

3. Андронов В.А. Редкие птицы юга Амурской области // Проблемы охраны редких животных.-М.Изд-ю:ЦНИЛПлавохоты РСФСР, 1987-С. 117-121.

4. Андронова Р.С. Результаты работы с журавлями на станции реин-тродукции редких видов птиц / Р.С. Андронова // Информационный бюллетень №3, 2002 С. 18.

5. Андронова Р.С. Морфометрический метод определения пола у молодых японских журавлей / Р.С. Андронова, В.А. Кастрикин // Журавли Евразии / Сб. науч. тр.- М., 2002,- С. 239-243.

6. Андронов В.А. Хасанский природный парк, как район для возможного расселения японских журавлей / В.А. Анронов, Р.С. Андронова, Е.В. Ра-диулов // Журавли Евразии (распределение, численность, биология). Сб.науч.тр.- М., 2002.-С. 135-137.

7. Антонов Б.И. Лабораторные исследования в ветеринарии. Бактериальные инфекции: Справочник / Б.И. Антонов, В.В.Борисова, П.М. Волкова и др.- М.: Агропромиздат, 1986.- 352 с.

8. Арбузова В.А. Спорные вопросы систематики и классификации семейства Enterobacteriaceae // Сб. тез. докл. 3-го Республ. съезда эпидемиологов, микробиологов, инфекционистов и гигиенистов ЭССР.-1977.-Талин,1977.-С.25.

9. Бессарабов Б.Ф. Ветеринарно-санитарные мероприятия по профилактике болезней птиц.- М. Изд-во: Россельхозиздат, 1983.- 190 с.

10. Бессарабов Б.А. Клостридиозы птиц / Б.А. Бессарабов, И. Мельникова, Павар Авинаш Нанаса Хеб // Птицеводство.- 2001.- № 4.- С. 35-37.

11. Болотников И.А. Иммунопрофилактика инфекционных болезней птиц,- М. Изд-во: Россельхозиздат, 1982.- 183 с.

12. Бондаренко В.В. Нематодозы птиц Дальнего Востока / Бондаренко В.В., Бурик В.В.- Лекция,- Благовещнк. Изд-во: БСХИ, 1984.- 51 с.

13. Бориско С. Журавли остаются с нами // Газета «Серп и молот».-2005.-№14, 19 февраля.-СЛ.

14. Бориско С. Праздник птиц и людей // Газета «Серп и молот».-2005.-№ 27, 6 апреля,- С.2.

15. Борисенкова А.Н. Отечественные препараты на основе тилозина при бактериальных болезнях птиц / А.Н. Борисенкова, Т.Н. Рожденственская, О.Б. Новикова, К.А. Головещенко, Е.Н. Елисеева // Ветеринария.- 2003.- № 8,- С.12-14.

16. Букреев С.А. Инвентаризация, мониторинг и охрана ключевых орнитологических территорий России / С.А. Букреев, В.А. Зубакин // Сб. науч. статей,-М., 1999.-С. 159.

17. Букреев С.А. Инвентаризация, мониторинг и охрана ключевых орнитологических территорий России // Материалы совещаний по программе «Ключевые орнитологические территории России (1998-2000).- М., 2000.-Вып.2.-С. 169.

18. Букреев С.А. Инвентаризация, мониторинг и охрана ключевых орнитологических территорий России // Материалы совещаний по программе «Ключевые орнитологические территории России (1998-2000).- М., 2001.-Вып.З.-С. 168.

19. Булатов А.С. Изыскание штамма микроба антагониста в отношении сальмонелл // Ветеринария .- 2003.- № 5.- С. 26-29.

20. Булатов А.С. Биологические особенности сальмонелл, выделенных с объектов птицефабрик / А.С.Булатов, А.Б. Коноленко, И.Б.Павлова // Ветеринария." 2003.- № 1.- С. 55-57.

21. Бычкова Е.И. Обзор гельминтов диких птиц Белорусского Поозерья / Е.И. Бычкова, В.П. Козлов // Микробиология,- № 8.- 1999.- С. 19-22.

22. Васильченко А.А. Птицы Хамар-Дабана.- Новосибирск, Изд-во: Наука, 1987.- 103 с.

23. Винтер С.В. Гнездование японского журавля в Среднем Приамурье // Бюллетень МОНП, отд-ние биол., 1977, Т. 82.- Вып. 6,- С. 39-53.

24. Воробьев А.А. Микробиология / А.А.Воробьев, А.С. Быков, Е.П. Пашков, A.M. Рыбакова.- М. Изд-во Медицина, 1994.- 288 с.

25. Воробьев А.А. Основы микробиологии, вирусологии и иммунологии / А.А.Воробьев, Ю.С. Кривашин, А.С. Быков и др.- М. Изд-во Мастерство, 2001.-224 с.

26. Гагина Т.Н. Птицы Юго-Восточного Забайкалья // Вост.-Сиб. отд. ГО СССР. Биологический сборник.- Иркутск, I960.- С. 179-213.

27. Гафицкий С.В. Весенний пролет японского журавля на крайнем юге Хасанского района (Приморский край) // Журавли Полиарктики.- Владивосток, Изд-во: ДВО АН СССР, 1988,- С. 195-198.

28. Глущенко Ю.Н. Состояние популяций японского и даурского журавлей на Приханкайской равнине в 1986 году / Ю.Н. Глущенко, Ю.В. Шибаев // Журавли Полиарктики (биология, морфология, распространение).- Владивосток, Изд-во: ДВО АН СССР, 1988.- С. 184-187.

29. Голосов И.М. Санитарно-гигиеническая оценка и использование воды в животноводстве / И.М. Голосов, П.Ф. Прибытков.- М. Изд-во: Рос-сельхозиздат, 1978.- 119 с.

30. Горелова П.И. Патогенные свойства кишечной палочки у цыплят / П.И. Горелова // Ветеринария. 1987. - № 6. - С. 28-31.

31. Горошко О.А. Журавли в юго-восточном Забайкалье и северовосточной Монголии // Журавли Евразии, государств, природ, заповед. «Даурский» / Сб. науч. тр.- М., 2002,- С. 90-92.

32. Гусев М.В. Микробиология / М.В. Гусев, JI.A. Минеева.- М.Изд-во МГУ, 1992-448 с.

33. Дзержинский Ф.Я. Задачи эколого-морфологического изучения журавлей // Журавли Полиаркти.- Владивосток, 1988.- С. 88-93.

34. Дурдыев Ш.К. Влияние E.coli на организм птиц, вакцинированных против ньюкаслской болезни // Ветеринария.- 2002,- № 2.- С. 25-26.

35. Ефремов В.Ф. К распространению некоторых птиц Верхнего Приамурья / В.Ф. Ефремов, Н.С. Панькин // Животный мир Дальнего Востока.-Благовещенск, 1977.- Вып. 2.- С. 25-33.

36. Журавли Евразии (распределение, численность, биология) / Под ред. В.В. Морозова, Е.И. Ильяшенко.- М., 2002,- 304 с.

37. Зинин С. Сохранить для будущих поколений // Газета Серп и молот.- 3 ноября 2004.- С.2.

38. Капиашвили 3. Диагностика сальмонеллеза у водоплавающих // Птицеводство.- 2002,- № 1.- С. 32.

39. Каравашенко В.Ф. Кормление сельскохозяйственной птицы.- Киев: Урожай, 1986.-С. 17-21.

40. Кашенцева Т.А. Вольерное разведение журавлей / Т.А. Кашенцева, О.И. Роздина // Журавли Евразии, Омский биосферный гос. природ, заповедник, Московский зоопарк / Сб. науч. тр.- М., 2002.- С. 271-277.

41. Кашенцева Т.А. Коллекция скорлупы яиц в питомнике редких видов журавлей Окского заповедника / Т.А. Кашенцева, Т.В. Жучкова // Журавли Евразии / Сб. науч. тр.- М., 2002.- С. 283-285.

42. Карпуть И.В. Профилактика иммунных дефицитов и желудочно-кишечных болезней у цыплят-бройлеров / И.В. Карпуть, М.П. Бабина // Ветеринария,- 2000.-№ 11,- С. 31-33.

43. Ковалев В.Ф. Антибиотики, сульфаниламиды и и нитрофураны в ветеринарии / В.Ф. Ковалев, И.Б. Волков, Б.В. Виолин и др.- М.: Агропром-издат, 1988.-223 с.

44. Костенко Т.С. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии / Т.С.Костенко, Е.И. Скаршевская, С.С. Гительсон.- М. Изд-во Агро-промиздат, 1989.- 272 с.

45. Костин А.П. Физиология сельскохозяйственных животных / А.П. Костин, Ф.А. Мещеряков, А.А. Сысоев.- М. Изд-во: Колос, 1983.- 479 с.

46. Краткий определитель бактерий Берги / Под.ред. Дж.Хоулта, Г.А.Заварзиной.- М.: Мир, 1980.- 495 с.

47. Куулар У. Ш. Адаптация челюстного аппарата журавлей // Журавли Евразии, гос. Дарвинский музей / Сб. науч. тр.- М., 2002.- С. 244-269.

48. Ликов Б. Эпизоотология сальмонеллезов в популяциях бройлеров / Б. Ликов, М. Паранжилова.- София, Изд-во ЦНИВИ, 1987.- С.

49. Меркурьева Е.К. Биометрия в селекции и генетике сельскохозяйственных животных.- М.: Колос, 1970.- 424 с.

50. Методические указания по санитарно-микологической оценке и улучшению качества кормов // Утверждены начальником Главного управления ветеринарии МСХ СССР 25 февраля 1985.- 68 с.

51. Миринец С. Осенний день журавля // Серп и Молот,- 16 июня 2004.

52. Мрикотт К.Н. Современное состояние гнездовой популяции Японского журавля на восточном побережье озера Ханка // Журавли Евразии, гос. природ, заповед. «Ханкайский» / Сб. науч. тр. М., 2002.- С. 133-134.

53. Николаенко В.П. Бактерицид антисептическое средство нового поколения для птицеводства // Ветеринария.- 2003.-№ 3.- С. 48-51.

54. Нейфельд И.А. Ареал черного журавля в свете имеющихся данных // Орнитология,- М. Изд-во: МГУ, 1977.- Вып. 13.- С. 56-61.

55. Осипова М.А. Результаты учета журавлей на юге Читинской области в 1985-1986 гг. / М.А. Осипова, М.И. Половушкин // Журавли Полиарктики (биология, морфология, распространение).- Владивосток, Изд-во: ДВО АН СССР, 1988.-С. 173-176.

56. Ойвин А.И. Статистическая обработка результатов экспериментальных исследований // Патологическая физиология и экспериментальная терапия, I960,- № 4,- С.76-85.

57. Панин А.Н. Формирование кишечного микробиоценоза у цыплят / А.Н. Панин, Н.И. Малик, И.П. Степаненко // Ветеринария-2000-№7.-С.23-25.

58. Панькин Н.С. О редких птицах Верхнего Приамурья // Редкие птицы Дальнего Востока.- Владивосток Изд-во: АН СССР ДВНЦ Биологопоч-венный институт.- 1981.-С. 117.

59. Паталогоанатомическая диагностика болезней птиц/ Под ред. В.П. Шишкова и др.- М. Изд-во: Колос, 1978.- 440 с.

60. Петров Ю.Ф. Паразитоценозы и ассоциативные болезни сельскохозяйственных животных.- М. Изд-во Колос, 1980.- 365 с.

61. Петров Ю.Ф. Динамика микрофлоры кишечника кур при аскаридозе / Ю.Ф. Петров, А.Г. Воробушков, Н.А. Ефимова // Ветеринария.- 1981.- № 7.- С. 43-44.

62. Попов В.В. К распространению и экологии журавлей в Восточной Монголии // Орнитологические исследования в России.- Улан-Удэ, Изд-во: Бурятского ГУ, 2000.- Вып.2.- С. 189-190.

63. Радчук Н.А. Ветеринарная микробиология и иммунология / Н.А. Радчук, Г.В. Дунаев, Н.М. Колычев и др.- М.: Агропромиздат, 1991.-383 с.

64. Роздина О.И. Некоторые результаты бактериологических исследований журавлей Московского зоопарка // Журавли Евразии (распространение, численность, биология).- М., 2002.- С.286-293.

65. Родкина А.А. Патологоанатомические и гистологические изменения при болезни Гамборо // Ветеринария .- 2003.- № 8.- С. 14-16.

66. Росляков А.Г. Журавли Хабаровского края и Еврейской Автономной области // Журавли Евразии, инст-т водных и экологич. проблем ДВО РАН / Сб. науч. тр. М., 2002.- С. 130-132.

67. Салаутин В.В. Дифференциальная диагностика сальмонеллеза птиц // Ветеринария,- 2004.- № 2.- С. 22-25.

68. Свиридова Т.В. Ключевые орнитологические территории международного значения в Европейской России // Ключевые орнитологические территории в России / Под ред. Т.В. Свиридовой, В.А. Зубакина.- М. Изд-во: Союз охраны птиц России, 2000.- 702 с.

69. Семенский В.М. Анатомия и физиология сельскохозяйственной птицы.- М. Изд-во: Колос, 1968.- 297 с.

70. Смиренский С.М. Ареал и численность японского и даурского журавлей // Орнитология, 1980.- № 5.- С. 26-33.

71. Смиренский С.М. Состояние гнездовий журавлей в Приамурье / С.М. Смиренский, Г.Е. Росляков // Журавли Восточной Азии, 1982.- С. 12-17.

72. Справочник ветеринарного врача птицеводческого предприятия / Н.В. Кожемяка,Ф.С. Кудрявцев,ГА Грошева идр.-М Изд-во: Колос, 1982.-303 с.

73. Флинт В.Е. Новые данные о распространении японского журавля (Grus japonensis) и дальневосточного аиста (Ciconia boyciana) / В.Е. Флинт, С.М. Смиренский // Матеиалы VII Всесоюз. орнитол. конф.- Киев, Изд-во: Наук думка, 1977,-Ч.2.- С. 251.

74. Флинт В.Е. Стерх в Якутии / В.Е. Флинт, А.А. Хищинский // Зоологический журнал, 1975.- № 8.- С. 1197-1212.

75. Флинт В.Е. Совещание по журавлям / В.Е. Флинт, С.М. Смиренский // Охота и охотничье хозяйства, 1980.- № 12.- С. 12-13.

76. Флинт В.Е. Разведение редких видов птиц / В.Е. Флинт, О.С. Габу-зов, А.Г. Сорокин, Т.С. Пономарева.- М., 1986.- С.

77. Флинт В.Е. Семейство журавлиные Gruidae // Птицы СССР, (ку-рообразные, журавлеобразные).- Л., Изд-во: Наука, 1987.- С. 266-335.

78. Чайковский С.М. Методические указания по определению чувствительности микроорганизмов к антибиотикам методом диффузии в агар с использованием дисков / Чайковский С.М., Гивельталь Н.И., Руван С.П., 1984,- 15 с.

79. Шлегель Г. Общая микробиология.- М. Изд-во Мир, 1987.- 567 с.

80. Штанько С. Без вашей помощи не обойтись // Газета «Серп и молот»,- 2004.- № 99, 15 декабря,- С. 2.

81. Штанько С. Волонтеры на учет журавлей // Серп и Молот.- 16 июня 2004.

82. Штанько С. Слет юных экологов // Газета «Серп и молот».- 2005.-№103, 7 декабря.-С. 2.

83. Юдин К.А. Филогения и классификация ржанкообразных // Фауна СССР. Птицы, 1965.-Т.2.-Вып. 1,4.1.- С. 1-186.

84. Archibald Dy., Guo-En-Ma. Crane of the fauna USSR on asiatic in winter // Tez.dokl VII Vsesoyuz. ornitol. konf. CH. 2.- Kiev, 1982,- S.

85. Bisgaard M., Nuttess R. The Taxonomic relationship 33 gramnegative optional anaerobe, chosen from weft at sinusitis: from turkey at faringitis and from blue atrenitis: fenotip and genotip feature (Danmark, FRG), 1981.

86. Bhattacharyya H.M. The Separation Streptococcus fecalis from recovered diseases Gamboro chicken-broiler (India), 1978.

87. Bock W.J. Secondary articulation of the avian mandible // AuK, 1960.-Vol.77.-P.19-55.

88. Bold A. Granes of Mongolia / A. Bold, N. Tseveenmjadag, B.M. Zvonov // Granes and Storks of the Amur river.- M.: Arts Literatyre Publishers, 1995.-P. 42-47.

89. Brygger Kristin E. Perevarivaemost three types offish beside ear cormorant// Condor.- Vol. 95.- 1,- 1993,- P. 25-32.

90. Clench M.H. The Digestion: what image it can be prolonged that birds could spread (the seed and disputes of the plants, bacteria, mushrooms) on greater distances? / M.H. Clench, J. R. Mathias // AuK.- Vol. 109.- 4.- 1992.- P.933-936.

91. George B.A., Fosd A.M. Influence canomecenum on antimicrobes stability intestine stick and streptococci, chosen beside chickens a broiler, 1988

92. Gibbs P. A. The distribution of staphylococcus aureus in apoultry processing plant / P.A. Gibbs, J.T. Patterson, J.K. Thompson.- J. Appl. Bactezid, 1978.-Vol. 44,-№3.-P. 401-410.

93. Glunder G. Krankheiten und Todesursachen bei einheimischen Wild vogeln-Eine Liferaturubersicht / G. Glunder, D. Siymann, W. Kohler // J. Vet. Med. В.- 1991.- Vol.38.- № 4.- P. 241-262.

94. GorenE. The Preventive maintenance salmonella beside chicken intestine microflora adult hens / E by introduction him. Goren, W.A. Jong, 1991.-W.

95. Hibenge F.S.B., Wilcox G.E. Study to pathogenicity four stamm sta-filococcus, chosen from hens with clinical tenosinovitom (Australia), 1982

96. Higuchi H. Satellite tracking of the migration of the Red-crowned crane Grus japonensis / H. Higuchi, I. Minton, K. Ogaki, G. Fugita, K. Momose, M. Ueta, Y. ICanai // Ecological Research, 1998.- Vol. 13.- P. 273-282.

97. Hofer H. Neiere Untersuchungen zur Kopfmorphologie der vogel // Acta XI Cngr. Intenat. Omithol. Basel, 1955.- S. 104-137.

98. Jackson S. Perevarivanie and assimilation hetena beside sea birds / S.Jackson, A.R. Place, L.J. Seiderer // AuK.- Vol. 109.- № 4.- 1992.- P. 757-770.

99. Jiangying С. Distribution and Protection of Cranes and Storks in Inner Mongolia, China // granes and Storks of the Anmur river.- M.: Arts Literatyre Publishers, 1995.- P.48-49.

100. Kashket S. Electron microscopic obeeroations of the saliva dependent aggregation of oral streptococci / S. Kashket, Z. Skobe, P.R. Garant // Arch Oral Bid/- 1978.- Vol. 23.- № 2.- P. 125-129.

101. Kashket S. Electron microscopic obeeroations of the saliva dependent aggregation of oral streptococci / S. Kashket, Z. Skobe, P.R. Garant // Arch Oral Bid/- 1978,- Vol. 23.- № 2.- P. 125-129.

102. Landwall Peter Jnfluence of glucose and dissokved oxygen concentrations on yields of Escherichia coli in dialysis cultyre / Peter Landwall, Tord Holme //J. Gen. Microbiol.-Vol. 103.- №2.- 1977.-P. 353-358.

103. Laverty Gary Physiological dug and regulator transport activity of the lower gut of the birds/ Gary Laverty, Erik Skadhayge // J.Exp.Zod/- Vol. 283,- № 4,- 1999.- P.480-494.

104. Levey Douglas J. Passing insect in digestive tract beside common starling and comparison with other type/ J. Levey Douglas, H.Karasov-Wiliam // AuIC-Vol. 111.-№2,- 1994.-P. 478-485.

105. Masatomi H. Bionics and sociology of tancho the Japanese crane Grus japonensis II Ethogram / H. Masatomi, T. Kitagawa // Journal of the Faculty of Science, Hokkaido Univ., Series VI, Zool, 1975,- Vol. 19.- № 4.- P. 834-873.

106. Matsusara T. Afrieza fracture study on the membrane - associated particles of aerobicaley and anaerobically grown Escherichia coli / T. Matsusara, A. Jshida // J. Gen. and Appl. Microbiol.- Vol. 23.- № 5.- 1977.- P. 275-277.

107. Miikkulainen А. Журавли с радиодатчиками // Linnut.- Vol. 28.- № 2,- 1993.-P.26.

108. Neufeldt I.A. Grus vipio Pallas / I.A. Neufeldt, K. Wunderlich // Atlas der verbreitung palaearlctischer vogel.- Berlin, 1980 a.- Lfg. 8.- S.46.

109. Neufeldt I.A. Grus japonensis (Muller) /1.A. Neufeldt, K. Wunderlich /- Ibid., 1980 b.-Lfg. 8.-S.154.

110. Pycraft W.P. On the morphology and phylogeny of the Palegnathae and Neoynathae // Trans. Zod.Soc. London, 1990.- Vol. 15, № 6, 6.- P. 149-230.

111. Reinertsen R.E. Gipotermiya beside blue: relationship regulator temperature of the body with gastrointestinal system/ R.E. Reinertsen, C. Bech // Naturwissenschaften.- Vol. 81.- № 3.- 1994.- P. 133-136.

112. Rudy Separation of the salmonellas from internal organ of the bird, egg, stern and beddings (PNR), 1992

113. Salanitro J.P. Bacteria is datked from the duodenum ileum and cecum of young chicks / J.P. Salanitro, I.G. Blake, P.A. Muirhead, M. Maglio, J.R. Goodman.- Appl. And Environ. Microbid.- 1978.- Vol. 35.- № 4.- P. 782-790.

114. Shanata M.A. Study salmonelles beside turkey, pathogenicity chosen serotepov and preventive maintenance of the disease (Egypt), 1991

115. Smibh H. Williams is it safe to use Escherichia coli K12 in recombinant PNA experiments?// J. Gnfec diseases.- 1978,- Vol. 137.- №5,- P. 655-660.

116. Spitzer P.R. The Siberian crane at Bharatpur // Proc., 1978 Cgane Workshop, 1979.- P. 249-253.

117. Stack M.V. Comparisen of oral streptococel by pyrolysis GLC / M.V. Stack, H.P. Donoghue, J.E.Tyler, M. Marshall.- Amsterdam e.a.- 1977.- P.57-68.

118. Yamamory T. Ribonucllic acid polymerase mutant of Escherichea coli defective in flagella formation / T. Yamamory, K. Ito, T. Yura, T. Suzuki, T. Hno // J. Bacterid.- Vol. 132,- № 1.- 1977.- P. 254-261.

119. Walkinshaw L.H. Grane of the World.- New York: Winchester Press, 1973 a.- 370 p.