Автореферат и диссертация по медицине (14.00.27) на тему:Значение феномена транслокации бактерий из желудочно-кишечного тракта в патогенезе хирургической инфекции при повреждениях (экспериментально-клиническое исследование)
Автореферат диссертации по медицине на тему Значение феномена транслокации бактерий из желудочно-кишечного тракта в патогенезе хирургической инфекции при повреждениях (экспериментально-клиническое исследование)
На правах рукописи в/%/.
Копылов Вадим Анатольевич
Значение феномена транслокации бактерий из желудочно-кишечного тракта в патогенезе хирургической инфекции при повреждениях
(экспериментально-клиническое исследование)
14.00.27 Хирургия 03.00.25 Гистология, цитология, клеточная биология
Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук
Оренбург, 2005
Работа выполнена в Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Оренбургская государственная медицинская академия Министерства здравоохранения Российской Федерации».
Научные руководители:
Заслуженный изобретатель РФ,
доктор медицинских наук,
профессор Никитенко Вячеслав Иванович
доктор биологических наук,
профессор Стадников Александр Абрамович
Официальные оппоненты: доктор медицинских наук,
Слепых Николай Иванович
доктор биологических наук,
профессор Завалеева Светлана Михайловна
Ведущая организация Челябинская государственная медицинская академия.
Защита состоится «27» апреля 2005 года в 10 часов на заоедании диссертационного совета Д 208.066.02 при Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Оренбургская государственная медицинская академия Министерства здравоохранения Российской Федерации» (Россия, 460000, г.Оренбург, ул. Советская, д.6, зал заседаний диссертационного совета).
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГОУ ВПО ОрГМА Минздрава России.
Автореферат разослан » г<\ 2005 года.
Ученый секретарь диссертационного совета, доктор медицинских наук, профессор
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ Актуальность исследования
Проблема хирургической инфекции при травмах является актуальной. Количество гнойно-воспалительных осложнений после травм варьирует от 5% до 50% (R.L. Nichols, S.Florman, 2001). Нагноения случайных ран мягких тканей встречаются в 12-25% (Х.А.Мусалатов с соавт., 1998). Частота гнойно-воспалительных осложнений области хирургического вмешательства колеблется от 2-3 до 22% (В.В. Агаджанян, 1987; Н.В. Корнилов с соавт., 1997; A.B. Кулаков с соавт., 2001; В.И. Ульянов с соавт.,2002; Т.Я.Пхакадзе, З.И.Уразгильдеев, 2002).
Можно выделить следующие направления в поиске действенных путей профилактики хирургической инфекции: совершенствование мероприятий по асептике, антисептике и технике хирургического вмешательства, воздействие на иммунную систему, устранение нарушений микроциркуляции, стимуляция репаративных процессов (В.М.Шаповалов с соавт., 1998; И.Ю.Клюквин с соавт., 1998; C.B. Лохвицкий с соавт., 2002; L. Ameziane et al., 2003). Основные усилия исследователей в настоящее время сосредоточены вокруг разработки и использования новых антибактериальных препаратов, прежде всего антибиотиков (G.V.Russell et al., 2001; F. de Lalla, 2002; C.B. Сергеев и соавт., 2003). Несмотря на огромные затраты, результаты антибиотикопрофилактики не всегда соответствуют ожиданиям (G.A.Franklin et al., 2002; М.А. Wilson, 2003). Появляются новые антибиотикорезистентные штаммы бактерий, развиваются аллергия на химиопрепараты, дисбактериоз и др. (Т. Франклин, Дж. Сноу, 1984; И.А.Ерюхин с соавт., 1997; T. Nakagawaet al., 1998). Наличие недавно обнаруженных механизмов «укрытия» и длительной персистенции стафилококков в тканях различного генеза (A.A. Стадников с соавт., 2003) также ставит под сомнение эффективность дальнейшего развития антибиотикопрофилактики.
Всё более очевидной становится необходимость раскрытия малоизученных аспектов патогенеза хирургической инфекции. До настоящего времени большинство хирургов и микробиологов уверены, что, в основном, бактерии попадают в рану непосредственно из внешней среды. Роль эндогенного
РОГ. I -'1лльиАЯ Ï '".-ütKA С "iupCx* 3
Mb/r-
г » ______
инфицирования явно недооценивается. В то же время доказан феномен транслокации бактерий из желудочно-кишечного тракта, описанный R.D. Berg (1985), В.И. Никитенко (1990). Экспериментальными исследованиями последних лет было установлено, что бактерии могут проникать через неповрежденную стенку желудочно-кишечного тракта во внутренние среды организма. Транслокация обнаружена при различных патологических состояниях (L.C.Lemaire, 1997; D. Adawi et al., 1998; D. Demetriades et al„ 1999), а также в условиях здорового организма (В.К. Есипов, 1999; B.C. Тарасенко, 2000).
Однако остаются неизученными многие механизмы этого явления. Неизвестно, регулируется ли транслокация макроорганизмом, зависит ли этот феномен от дозы и вида бактерий, попавших в желудочно-кишечный тракт, влияет ли характер повреждения на феномен бактериальной транслокации, возникает ли она только вследствие стресса или является защитным механизмом теплокровных, каковы методы блокирования данного пути распространения возбудителей хирургической инфекции. Всё вышеуказанное послужило основанием для выполнения данной работы.
Цель исследования
Целью настоящего исследования явилось изучение значения феномена транслокации в патогенезе хирургической инфекции при повреждениях и определение эффективности нового способа профилактики хирургической инфекции.
Задачи исследования
1. Определены минимальные дозы бактерий штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534, при интрагастральном введении которых регистрируется феномен бактериальной транслокации у здоровых белых крыс.
2. Изучена динамика обсеменения тканей различных органов бактериями при различных дозах инфицирования желудка.
3. Исследовано влияние ранений мягких тканей и закрытых переломов трубчатых костей на транслокацию бактерий у животных.
4. Изучена реакция тканей и органов на транслокацию у здоровых и травмированных животных.
5. Определена эффективность живого бактериального препарата «споробакте-рин жидкий» в качестве средства профилактики хирургической инфекции у больных с ранениями мягких тканей.
Научная новизна исследования
Впервые установлено, что минимальная доза бактерий, при интрагаст-ральном введении которой регистрируется феномен транслокации у здоровых крыс, равна 106 микробных тел на 1 кг веса животного.
Впервые обнаружено, что при ранениях мягких тканей и закрытых переломах конечностей пороговая доза микроорганизмов штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534 снижается и составляет 104 микробных тел на 1 кг веса животного.
Выявлено, что у здоровых и травмированных животных через 6 часов после интрагастрального введения жизнеспособные бактерии обнаруживаются в печени, селезенке, стенке желудка и тонкого отдела кишечника, с преимущественным накоплением в селезенке и печени. В тканях легких, почек, кожи, в крови микроорганизмы не наблюдаются.
Транслокация бактерий контролируется макроорганизмом. У здоровых белых крыс при увеличении числа интрагастрально введенных микроорганизмов в 10000 раз, количество меченых бактерий, обнаруживаемых во внутренних органах, возрастает всего в 1,3 - 5,8 раз.
Впервые установлено, что феномен транслокации микроорганизмов у здоровых животных при микробной нагрузке 104-1010 колониеобразующих единиц штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534 не сопровождается стрессорными изменениями гистологических и цитологических структур гипоталамо-гипофизарной нейросекреторной системы и надпочечников.
Обнаружено, что тяжесть травмы влияет на феномен транслокации. У крыс с закрытыми переломами бедра количество проникающих в печень и селезенку бактерий выше, чем у животных с ранениями мягких тканей.
Установлено, что транслокация Bacillus subtilis 534 у здоровых и травмированных животных происходит интенсивнее, чем Staphylococcus aureus 209Р.
Количество бактерий сенной палочки превышает число стафилококков в тканях области раны в 1,6-2,8 раза, а в области закрытого перелома - в 4,6-5,1 раз.
Выявлено, что микроорганизмы, попадающие в желудочно-кишечный тракт, активно участвуют в течении раневого процесса. Бактерии сенной палочки, локализуясь в очагах травматизации мягких и костных тканей, создают условия для стимуляции репаративных гистогенезов (патент РФ №2202356, 20.04.2003г.). Микроорганизмы Staphylococcus aureus 209Р вызывают усугубление изменений альтеративного характера в области закрытого перелома.
Научно-практическая значимость работы
Транслокация бактерий из желудочно-кишечного тракта может быть механизмом эндогенного инфицирования очагов повреждения, что следует учитывать в клинической практике, в том числе при осуществлении мероприятий по предупреждению госпитальной инфекции. Транслокации подвергаются как условно-патогенные бактерии, так и сапрофиты. Обоснована возможность селективного использования микрофлоры, попадающей в желудочно-кишечный тракт, для регуляции раневого процесса и профилактики хирургической инфекции.
Доказана более высокая эффективность живого бактериального препарата, по сравнению с антибиотиком цефазолином. Использование живого бактериального препарата «споробактерин жидкий» у больных с ранениями мягких тканей способствует снижению частоты хирургической инфекции и более быстрой нормализации клинико-лабораторных показателей.
Положения, выносимые на защиту
1. Транслокация бактерий из желудочно-кишечного тракта - механизм систематического инфицирования очагов повреждения и естественной защиты человека и животных от инфекции. Она регулируется макроорганизмом и зависит от дозы, вида бактерий, характера повреждения.
2. Использование живого бактериального препарата «споробактерин жидкий» у больных с ранениями мягких тканей способствует снижению частоты хирургической инфекции и улучшает течение посттравматического периода.
Апробация результатов исследования
Материалы диссертации доложены и обсуждены на межрегиональной научно-практической конференции «Актуальные вопросы урологии» (Тюмень, 2001), научной конференции «Актуальные проблемы травматологии и ортопедии» (Нижний Новгород, 2001), на международной научно-практической конференции памяти Г.И. Гончаровой «Пробиотические микроорганизмы - современное состояние вопроса и перспективы использования» (Москва, 2002), 3-й Всеармейской научно-практической конференции с международным участием «Инфекция в хирургии - проблема современной медицины» (Москва, 2002), Ш научно-практической конференции врачей Приволжско-Уральского военного округа (Оренбург, 2002), на 5-ом Славяно-Балтийском научном форуме «Санкт-Петербург - Гастро-2003» (Санкт-Петербург, 2003), Санкт-Петербургской Медицинской Ассамблее «Врач-Провизор-Пациент» (Санкт-Петербург, 2003), на IV научно-практической конференции врачей Приволжско-Уральского военного округа (Оренбург, 2003), на областной научно-практической конференции врачей «Актуальные проблемы хирургии повреждений» (Оренбург, 2003), на 6-ом Славяно-Балтийском научном форуме «Санкт-Петербург - Гастро-2004» (Санкт-Петербург, 2004), международной научно-практической конференции «Морфофункциональные аспекты регенерации и адаптационной дифференци-ровки структурных компонентов опорно-двигательного аппарата в условиях механических воздействий» (Курган, 2004), международном конгрессе «Современные технологии в травматологии, ортопедии: ошибки и осложнения - профилактика, лечение» (Москва, 2004), на Российской научно-практической конференции «Узловые вопросы борьбы с инфекцией» (Санкт-Петербург, 2004), научной конференции «Фундаментальные и прикладные проблемы гистологии. Гистогенез и регенерация тканей» (Санкт-Петербург, 2004), на областной конференции хирургов «Актуальные вопросы хирургии: проблемы и пути решения» (Оренбург, 2004).
Публикации
По теме диссертации опубликовано 19 печатных работ, в том числе патент РФ на изобретение №2202356,20.04.2003г.
Структура и объем диссертации
Диссертация изложена на 141 странице машинописного текста. Она состоит из введения, обзора литературы, главы с описанием материалов и методов исследования, 3 глав, в которых изложены результаты собственных исследований, главы обсуждения результатов, выводов, практических рекомендаций и указателя литературы, включающего 216 источников, в том числе 117 работ отечественных и 99 работ зарубежных авторов.
В диссертации имеется 17 рисунков и 25 таблиц.
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ Материалы и методы экспериментальных исследований.
Эксперименты по транслокации бактерий выполнены на 96 лабораторных белых крысах-самцах линии «Август» массой 180-230 г. Все животные были получены из питомников лабораторных животных «Столбовая» и «Рапполово».
В условиях радиоизотопной лаборатории Оренбургской государственной медицинской академии в пробирки с 0,75% стерильным расплавленным мясо-пептонным агаром вносили радионуклид 3Н-лейцин в дозе 1 МБК на одну пробирку. Петлей на косячки агара засевали бактерии штаммов Staphylococcus aureus 209Р или Bacillus subtilis 534. Инкубацию проводили при температуре +37 °С в течение 24 часов. Меченые микроорганизмы смывали стерильным 0,9% раствором натрия хлорида по 2 см3 в каждую пробирку. Путем добавления 0,9% раствора натрия хлорида готовили взвесь с различными концентрациями микробных клеток в 1 см3 . Количество микроорганизмов во взвеси определяли с помощью оптических стандартов мутности на 10 и 20 ЕД (ГИСК им. Л.А.Тарасевича).
В первой серии опытов 42 здоровым крысам интрагастрально вводили различные количества меченых бактерий штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534. Животные были разделены на группы по три крысы в каждой. Каждой группе крыс через рот при помощи тупой толстой иглы вводили определенное количество бактерий: 104, 105, 10б, 107, 108, 109, 1010 микробных тел на 1 кг массы тела животного соответственно (по 0,2 см3).
Всех животных, задействованных в данной серии, выводили из опыта через 6 часов путем ингаляционного введения летальной дозы фторотана. При помощи стерильного инструментария после трехкратной обработки кожи 1% раствором йодопирона забиралась селезенка, печень, ткани желудка и тонкой кишки для бактериологического исследования.
Для гистологического и гистоавторадиографического, морфометрическо-го исследования у животных брали кусочки печени, селезенки, желудка, тонкой, толстой кишки, легких, гипоталамуса, нейрогипофиза, надпочечников, кожи, делали мазки крови.
Во второй серии экспериментов изучалось влияние повреждений мягких тканей на феномен транслокации бактерий. 27 крысам под ингаляционным фторотановым наркозом в области наружной поверхности бедра наносили резаные раны кожи и подкожной жировой клетчатки длиной 1 см. Животных разделили на девять групп по 3 крысы в каждой. Четырем группам вводили через рот меченый штамм Staphylococcus aureus 209Р в количестве 1х103, 1x104, lxlO5, lxlO6 на 1 кг массы тела соответственно. Четырем группам крыс вводили через рот в таких же количествах меченые бактерии штамма Bacillus subtilis 534. Ещё одна группа служила контролем. Животных выводили из опыта путем ингаляционного введения летальной дозы фторотана через 6 часов после введения бактерий. Для гистологического и гистоавторадиографического, морфо-метрического, бактериологического исследования у животных брали те же ткани, что и в первой серии экспериментов, и ткани области раны. Образцы обрабатывались по тем же методикам, что и в первой серии опытов.
В третьей серии экспериментов изучали влияние закрытых переломов трубчатых костей на феномен транслокации бактерий. 27 крысам под ингаляционным фторотановым наркозом наносили закрытые переломы диафиза бедренной кости. Животных разделили на девять групп по 3 крысы в каждой. Четырем группам вводили через рот меченые бактерии штамма Staphylococcus aureus 209Р в количестве 1x103, lxlO4, lxlO5, lxlO6 на 1 кг массы тела соответственно. Четырем группам крыс вводили через рот в таких же количествах меченые Bacillus subtilis 534. Ещё одна группа служила контролем. Животных
выводили из опыта путем ингаляционного введения летальной дозы фторотана через 6 часов после введения бактерий. Выполнялись те же исследования, что и в предыдущих сериях экспериментов. Кроме этого, для гистологического и гис-тоавторадиографического, морфометрического, бактериологического исследований у животных брали ткани области перелома.
Взятые для морфологических исследований органы от животных (опытных и контрольных групп) были подвергнуты однотипной гистологической обработке. При этом кусочки органов фиксировали в 10% водном растворе нейтрального формалина. Мазки крови для высушивания обрабатывали метанолом (стекла с мазками экспонировали 5-6 мин в стаканчике с притертой пробкой, наполненном метанолом). Фиксированные кусочки органов в последующем дегидрировались в спиртах возрастающей концентрации и запивали в парафин -целлоидин.
С каждого объекта на ротационном микротоме изготавливали серийные парафиновые срезы толщиной 6-8 мкм (по 20 стекол). Каждое третье стекло с гистологическими срезами окрашивали гематоксилином Майера и эозином. Остальные гистопрепараты служили для целей гистоавторадиографии.
При приготовлении гистоавтографов использовали жидкую эмульсию типа «М» (производства НИИХИМфото) по методике, предложенной Л.Н.Жинкиным (1959). Эмульсию экспонировали 4 недели с последующим проявлением в амидоловом проявителе. Гистоавтографы окрашивали гематоксилином-эозином. Подсчет треков 3Н-лейцина (зерен восстановленного серебра) осуществляли в полях зрения микроскопа (окулярная вставка 5x5 мм., об. 100, ок. 15). При этом в каждом гистологическом срезе того или иного органа анализировали не менее 100 полей зрения. В мазках крови подсчет гистоавтографов проводили в аналогичных полях зрения (не менее 100 полей для каждого животного).
Для целей электронной микроскопии объекты (крупноклеточные ядра гипоталамуса и нейрогипофиз) последовательно фиксировали в 2,5% растворе глютарового альдегида на 8-колединовом буфере (рН=7,3) и четырехокиси осмия. После дегидратации кусочков в ацетоне возрастающей крепости
проводили их заливку в смолу ЭПОН-812. Ультратонкие срезы, изготовленные на ультратоме LKB-5, подвергали контрастированию в уранилацетате и ацетате свинца с последующем изучением и фотографированием в электронном микроскопе ЭМВ100АК (увеличение хбООО - 40000). Все методики ультраструктурного анализа выполнены в соответствии с рекомендациями M. Hayat (1979).
Морфометрические исследования и анализ количественных параметров проводили с помощью винтового окуляр-микрометра МОВ 4У и измерительных сеток Г. Г. Автандилова (1990).
Для бактериологических исследований взятый материал (ткань печени, селезенки, желудка, тонкой кишки) по 1 г помещали в стерильную посуду, затем проводили измельчение и растирание в фарфоровой ступке со стерильным песком с последующим добавлением 10 см3 0, 9% раствора хлорида натрия. Полученную взвесь стерильной петлей переносили на чашку Петри и распределяли по поверхности 1,5% мясо-пептонного агара после чего инкубировали в термостате при температуре +37 °С в течение 24 часов. Видовую принадлежность бактерий определяли по Берджи (1997). Идентичность выделенных из материалов культур, использованных в эксперименте, подтверждали на основании одинаковых морфологических, тинкториальных, культуральных и биохимических свойств.
Характеристика хирургических больных.
В клинике под нашим наблюдением 60 пациентов со случайными ранениями мягких тканей, получавших лечение в ММУЗ ГКБ №4 г.Оренбурга (главный врач - C.B. Никитин) в 2002-2003 г.г. Мужчин было 44 человека, женщин - 16. Возраст больных был от 16 до 55 лет.
По характеру получения травм бытовых было 42 случая (70%), производственных - 18 случаев (30%). Алкогольное опьянение при поступлении было зафиксировано у 39 человек (65%). По локализации на долю ранений головы приходилось 22 (36,7%) случая. У 12 (20%) больных были раны области нижней конечности. С ранениями верхней конечности наблюдалось 26 (43,3%) пациентов, из них 14 (23,3%) - с ранениями кисти. С колотыми и резаными ранами поступило 20 (33,3%) человек, у 21 (35%) больных были ушибленные раны,
у 19 (31,7%) пациентов наблюдались рвано-скальпированные раны. Больные с размозжениями мягких тканей в исследование не включались.
При поступлении всем исследуемым выполнялась первичная хирургическая обработка ран, экстренная профилактика столбняка. Пациентам с повреждениями конечностей осуществлялась гипсовая иммобилизация. Больные получали ежедневные перевязки с 1% раствором йодопирона, антиагреганты, анти-окиданты, симптоматическую терапию.
Все больные были разделены на три рандомизированные группы по 20 человек, сопоставимые по полу, возрасту, характеру патологии. Пациентам первой группы назначали пробиотик «споробактерин жидкий» в стандартной дозировке по 1 мл два раза в сутки в течение 5 дней. Антибиотики не назначались. Вторая группа получала цефазолин в дозе 1 г внутривенно перед первичной хирургической обработкой раны и затем внутримышечно в течение 48 часов по 1 г три раза в сутки. Третьей группе больных не назначали ни антибиотиков, ни пробиотиков.
Клинические наблюдения включали оценку общего состояния, сроки и качество заживления ран, динамику температуры тела, количества лейкоцитов, эритроцитов и гемоглобина периферической крови, лейкоцитарный индекс интоксикации (Я.Я. Кальф-Калиф, 1941). Показатель нормы составил 1,0+0,06.
Методы статистического анализа результатов.
Статистическая обработка полученных результатов исследования проводились на ПЭВМ IBM PC с помощью программного комплекса Windows, Word и Excel. Использовался метод вариационной статистики с определением достоверности с помощью критерия Стьюдента, а при количестве наблюдений менее 20 - непараметрический метод Вилкоксона для независимых совокупностей (JI.C. Каминский, 1964). В ряде случаев для оценки статистической значимости различий использован критерий знаков.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ Экспериментальные исследования Анализ результатов экспериментов позволил установить ряд закономерностей, касающихся механизмов транслокации бактерий штаммов Staphylococcus
Staphylococcus aureus 209P и Bacillus subtilis 534 у здоровых животных и при механических повреждениях, описании структурных феноменов, возникающих в барьерных эпителиальных тканях слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта, паренхиме, строме печени и селезенки, тканях области повреждения.
Установлено, что у экспериментальных животных бактерии через 6 часов после интрагастрального введения обнаруживаются в стенке желудка, тонкой кишки, в печени, селезенке (рис. 1, 2). В тканях легких, почек, кожи, в крови микроорганизмы не наблюдались. Выявлено, в печени и селезенке здоровых животных количество радиометок бактерий в условных полях зрения светового микроскопа было в 1,6-3,3 раза выше (р<0,005), чем в тканях полых органов гастроинтестинального тракта. У крыс с закрытыми переломами бедра число радиометок в печени и селезенке было в 2,1-4,2 раза выше, чем в других органах. У животных с ранениями мягких тканей число бактерий в селезенке было либо меньше, либо не отличалось от количества радиометок в стенке желудка и тонкого отдела кишечника.
Установлено, что в тканях микроорганизмы сохраняют свою жизнеспособность На это указывают результаты бактериологических исследований. Живые бактерии штамма Staphylococcus aureus 209Р обнаружены в 76 (50%) из 152 высевов, штамма Bacillus subtilis 534 выявлены в 84 (53,8%) из 156 высевов.
Впервые выявлено, что транслокация Bacillus subtilis 534 и Staphylococcus aureus 209Р у здоровых лабораторных крыс начинается при введении бактерий в количестве 106 микробных тел на 1 кг массы тела животного и выше. Можно предположить, что транслокация контролируется макроорганизмом, ибо при увеличении дозы интрагастрально введенных бактерий с 1х106 до 1 х 1010 на 1 кг массы тела, то есть в 10000 раз, число радиометок повышалось в среднем в 1,3 - 8,2 раз.
Таким образом, нашими исследованиями установлено, что транслокация происходит в условиях здорового организма. Это согласуется с данными В.К.Есипова (1999), B.C. Тарасенко (2000), но противоречит публикациям большинства зарубежных исследователей. Последние считают, что
тг^
Рис. 1. Селезенка крысы. Б — скопления стафилококков. Количество введенных бактерий - 1x107 на 1 кг массы тела крысы.
Гистоавтограф, ув.об.40, ок.10
Рис. 2. Участок печени крысы. А - Bacillus subtilis 534. Количество введенных бактерий - 1x106 на 1 кг массы тела крысы.
Гистоавтограф, ув.об.90, ок.10
бактериальная транслокация встречается только при патологических состояниях, сопровождаемых стрессом. Она возникает вследствие механической травмы, ожогов, при геморрагическом шоке, кишечной непроходимости, полиорганной недостаточности, механической желтухе, остром панкреатите, токсических гепатитах и др. (Л.Я. Эберт с соавт., 1979; Е.А. ОексЬ, 1994; Ь.С. Ьегтшге, 1997; О. Ас1а\у1 е1 а1., 1998; О.Бете1пас1ез а а1„ 1999).
Было установлено, что бактерии проникали в кровь и лимфу на участках в основном неповрежденной слизистой оболочки желудка и тонкого отдела кишечника. Это происходило через межклеточные щели и зоны локальной, наблюдаемой и в физиологических условиях десквамации ямочного эпителия желудка и энтероцитов кишки. Вышеизложенное подтверждает обнаружение микроорганизмов в межклеточных пространствах эпителиоцитов желудка и энтероцитов тонкого кишечника, а также электронно-микроскопическое обнаружение микробных клеток внутри эпителиоцитов. Эти результаты
согласуются с данными A.A. Стадникова (2001). Было также выявлено, что у данных животных не происходит транслокации микробов через эпителиальные барьеры толстого отдела кишечника.
Через 6 часов после интрагастрального введения бактерии были обнаружены в клетках фундальных желез, покровном эпителии и собственной пластинке слизистой оболочки желудка и тонкого отдела кишечника. В селезенке меченые бактерии определялись, в основном, в красной пульпе, в синусоидных капиллярах, а также в периартериальной зоне лимфоидных фолликулов. В печени радиометки находились, главным образом, в синусоидальных и желчных капиллярах и перихолангиолярной соединительной ткани. Это закономерность была справедлива как для стафилококка, так и для сенной палочки. Характер распределения меченых бактерий в гистоструктурах желудка, кишечника, обнаружение радиометок бактерий в периваскулярных зонах паренхиматозных органов, в просвете и структурах стенок, в центральных и периферических органах иммуногенеза является доказательством лимфо-гематогенного распространения микроорганизмов. Проведенное нами исследование подтверждает ранее сформулированное положение В. И. Никитенко (1990) о едином механизме транслокации из желудочно-кишечного тракта патогенной и непатогенной микрофлоры.
При микробной нагрузке Ю6-Ю10 колониеобразующих единиц у здоровых крыс гистоструктура печени и селезенки в целом соответствовала той морфологической картине, которая укладывается в общеизвестный стереотип компенсаторно-приспособительных реакций иммунокомпетентных органов, возникающих при антигенной стимуляции. В тканях других органов мы не наблюдали отклонений от обычного строения после введения различных количеств меченых бактерий.
Впервые установлено, что транслокация бактерий у здоровых животных не сопровождается развитием стресса. Морфологический анализ гипоталамо-гипофизарно-адренокортикальной системы показал, что феномен транслокации микроорганизмов через эпителиальные барьеры слизистых оболочек пищеварительного тракта после введения 104-108 бактерий на 1 кг веса животного не
сопровождается стрессорной реакцией. Цитологические изменения в гипотала-мо-гипофизарной нейросекреторной системе, наблюдаемые нами при интрага-стральном введении 109 - 1010 бактерий на 1 кг массы тела животного укладывались в картину умеренной адаптивной активизации экскреции нейропептидов на уровне аксовазальных компонентов нейрогипофиза.
Нашими исследованиями установлено, что транслокация бактерий происходит и у животных с повреждениями, а именно с ранениями мягких тканей и закрытыми переломами бедра. Выявлено, что Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534, через 6 часов после интрагастрального введения, проникают в область раны и зону перелома. Это согласуется с данными ряда авторов (В.И. Никитенко с соавт., 1988; В.В.Смирнов с соавт., 1988; В.И. Никитенко, 1990; С.Г. Кудашев, 2000), которые указывали на попадание микроорганизмов в очаг повреждения.
Нами впервые установлено, что в условиях повреждения мягких и костных тканей порог транслокации Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534 снижался до 104 вводимых перорально бактерий на 1 кг массы тела животного. Можно предположить, что тяжесть травмы влияет на феномен транслокации. У крыс с закрытыми переломами бедра количество проникающих в печень и селезенку бактерий в среднем было выше в 1,27 раз, чем у животных с ранениями мягких тканей.
При сравнительной оценке распределения стафилококков и сенной палочки у здоровых животных и на моделях повреждений были выявлены следующие закономерности. Через 6 часов после интрагастрального введения меченых бактерий здоровым животным в слизистой оболочке желудка, тонкого кишечника преобладала сенная палочка, количество которой было в 1,5-2,6 раза больше, чем стафилококков (р<0,001) в условных полях зрения светового микроскопа. В органах с элементами моноцитарно-макрофагальной системы (печень, селезенка) характер преимущественно выделяемой микрофлоры из тканей несколько отличался. Также преобладала сенная палочка, но количество радиометок последней превышало число стафилококков уже в 1,8-4,7 раз (р<0,001). После введения Ю10 бактерий на 1 кг массы тела животного число радиометок
Bacillus subtilis 534 было выше, чем Staphylococcus aureus 534 в 19,2 раза. В стенке толстой кишки бактерии обоих видов обнаруживались лишь при введении Ю10 микробных тел на 1 кг, а их количество достоверно не различалось (р>0,5) [табл.1].
У животных после нанесения резаных ран наблюдалось примерно такое же соотношение распределения сенной палочки и стафилококка в тканях желудка и кишечника. Напротив, в печени количество Bacillus subtilis 534 резко уменьшилось по сравнению с числом стафилококков, и различия в количестве микроорганизмов не обладали достаточной достоверностью (р>0,1) [табл.2].
После нанесения закрытых переломов наблюдалась похожая картина распределения бактерий. После введения микроорганизмов штамма Bacillus subtilis 534 их количество в слизистой оболочке желудка, тонкого кишечника было в 1,4-1,8 раз больше, чем радиометок стафилококка после введения Staphylococcus aureus 209Р (р<0,001). В селезенке число радиометок Bacillus subtilis 534 было выше лишь в 1,5-2,3 раза. В печени количество сенной палочки превышало число стафилококков в среднем в 1,65 раза. Показатели порога бактериальной транслокации не различались (табл.3). Следует отметить, что количество бактерий сенной палочки превышало число стафилококков в тканях области раны в 1,6-2,8 раза, а в области закрытого перелома - в 4,6-5,1 раз (р<0,001).
Таким образом, у интактных крыс в целом из исследуемых органов преимущественно выделялась меченая культура сенной палочки в количествах, значительно превышающих содержание стафилококка (р<0,001). У животных с повреждениями, наряду со значительным увеличением, в сравнении с показателями стафилококка, содержания сенной палочки в области раны и перелома, отмечено достоверное снижение ее количества, по сравнению со стафилококком, в печени и селезенке (р<0,001). Можно предположить, что в условиях повреждения мягких и костной тканей происходило перераспределение бактерий из печени и селезенки в очаг повреждения, выраженное у животных, получавших микроорганизмы штамма Bacillus subtilis 534.
Таблица 1.
Сравнительные данные о распределении радиоактивных меток в тканях здоровых животных при различных дозах введенных бактерий штаммов
81арЬу1ососсш аигеиБ 209Р и ВасШив виЫШв 534.
№ Кол-во бактерий* Стат. показатели Виды тканей **
селезенка печень желудок тонкая кишка толстая кишка
в. аигеи$ В.8иЬ-Ш: в. аигеш В.зиЬ- в. аигеиз В.яиЬ-йНз в. аигеиз В.виЬ-ННв в. аигеиз В.5иЬ-(11)5
1 1х 104 М± м Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар
2 1х 105 М± м Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар
3 1х 106 М± м 0,17± 0,03 0,8± 0,09 0,48± 0,05 0,92± 0,03 Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар.
Р р<0,001 р<0,001
4 1x10' М± м 0,86± 0,04 1,52± 0,2 0,51± 0,07 1,24± 0,08 0,34± 0,09 0,68± 0,05 0,4± 0,03 0,95± 0,07 Не обнар Не обнар
Р р<0,001 р<0,001 р<0,001 р<0,001
5 1x10* М± м 1,01± 0,07 1,89± 0,12 0,62± 0,05 1,88± 0,04 0,41± 0,05 0,89± 0,06 0,43± 0,07 1,1± 0,03 Не обнар Не обнар
Р р<0,001 р<0,001 р<0,001 р<0,001
6 1х 10' М± м 1,01± 0,15 2,79± 0,1 0,83±0, 02 1,95± 0,08 0,56± 0,06 0,85± 0,09 0,45± 0,04 0,95± 0,07 Не обнар Не обнар
Р р<0,001 р<0,001 р<0,001 р<0,001
7 1х 10'° М± м 1,40± 0,1 4,78± 0,54 0,41± 0,06 7,86± 0,6 0,75± 0,1 1,52± 0,12 0,9± 0,12 1,64± 0,11 0,72± 0,32 0,74± 0,1
Р р<0,001 р<0,001 р<0,001 р<0,001 р>0,5
* - Количество интрагастрально введенных микробных тел на 1 кг массы экспериментального животного.
** - Подсчет производился в условных полях зрения микроскопа (окулярная вставка 0,25 мм2, об.90, ок. 15).
- J
Таблица 2.
Сравнительные данные о распределении радиоактивных меток в тканях при различных дозах введенных бактерий штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtihs 534 у животных с резаными ранами
№ Кол-во бактерий* Стят. показатели Виды тканей **
селезенка печень желудок тонкая кишка область раны
S.aureus B.subtilis S.aureus B.subtilis S.aureus B.subtilis S.aureus B.subtilis S.aureus B.subtilis
1 1х10э М±м Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар
2 lx 104 М±м Р 0,19*0,08 р<0 0,54±0,13 001 0,76±0,19 рХ 0,81±0,21 Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар. 0,95±0,8 р<0 1,5±0,07 001
3 lx 105 М±м Р 0,16±0,04 | 0,75±0,09 р<0,001 0,68±0,09 | 1,21 ±0,1 р<0,001 0,22±0,06 р<0 0,55±0,06 001 0,42±0,04 р<0 0,45±0,04 001 0,82±0,07 | 2,1±0,14 р<0,001
4 1х 10® М±м Р 0,43±0,87 | 1,12±0,09 р<0,001 1,63±0,3 | 1,7±0,24 р>0,1 0,34±0,05 | 0,95±0,07 р<0,001 0,56±0,07 | 0,78±0,05 р<0,001 0,8±0,03 | 2,23±0,19 р<0,001
Таблица 3.
Сравнительные данные о распределении радиоактивных меток в тканях при различных дозах введенных бактерий штаммов _Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtihs 534 у животных с закрытыми переломами._
№ Кол-во бактерий* Стат. показатели Виды тканей **
селезенка печень желудок тонкая кишка область перелома
S.aureus B.subtilis S.aureus B.subtilis S.aureus B.subtilis S.aureus B.subtilis S.aureus B.subtilis
1 lx 103 М±м Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар Не обнар.
2 lx 104 М±м P 0,34±0,08 р<0 0,52±0,05 001 1,2±0,09 р<0 0,49±0,03 001 0,35±0,04 р<0 Не обнар. 001 Не обнар р<0 0,42±0,03 001 0,41 ±0,05 р<0, 1,9±0,05 001
3 lx 105 М±м P 1,77±0,1 | 1,9±0,12 р<0,001 0,9±0,06 | 2,03±0,4 р<0,001 0,57±0,0б | 0,82db0,06 р<0,001 0,42±0,05 | 0,73±0,05 р<0,001 0,45±0,02 | 2,32±0,1 р<0,001
4 1 х 10® М±м P 0,82±0,05 | 1,85±0,21 р<0,001 1,18±0,09 | 1,95±0,06 р<0,001 0,72±0.07 | 0,85±0,04 р<0,001 0,39±0,05 | 0,69±0,04 р<0,001 0,47±0,05 | 2,41 ±0,3 р<0,001
* - Количество интрагастрально введенных микробных тел на 1 кг массы экспериментального животного ** - Подсчет производился в условных полях зрения микроскопа (окулярная вставка 0,25 мм2, об.90, ок. 15)
По нашим данным, транслокация сенной палочки не вызывало усугубления структурных изменений альтеративного характера в тканях области раны, в костной ткани и окружающих место перелома мягких тканях. Согласно результатам гистологического анализа, у животных, получавших бактерии штамма Bacillus subtilis 534, создавались условия для стимуляции репаративных гистогенезов. Так, например, в перинекротической зоне была более отчетливо выражена макрофагальная реакция: отмечены клетки на стадии активного фагоцитоза, численность макрофагов была на 20% выше. Существенно уменьшались признаки кариопикноза и кариолизиса клеток соединительной ткани. Эти материалы использованы при разработке способа стимуляции репаративных процессов длительно незаживающих ран и трофических язв (патент РФ № 2202356).
Напротив, через 6 часов после введения стафилококка гистологическая картина области раны соответствовала обычной картине альтерации и экссудации. В области перелома наблюдалось некоторое усугубление изменений альтеративного характера. Вероятно, транслокация условно-патогенных бактерий может вызвать развитие хирургической инфекции при повреждениях.
Можно предположить, что макроорганизм селективно использует бакте-рии-сапрофиты (сенную палочку) в репаративных процессах. Однако остаются неизвестными механизмы, с помощью которых организм распознает необходимые бактерии и доставляет жизнеспособные микроорганизмы в область повреждения. Это может стать направлением дальнейших исследований. Вышеперечисленные факты согласуются с данными В.И. Никитенко и соавт. (1986, 1990), которые трактуют бактериальную транслокацию, как естественный защитный механизм макроорганизма. Согласно положениям этих ученых, при возникновении повреждения бактерии достигают патологического очага, где локализуются в жизнеспособных тканях, в основном, соединительной, костной и вокруг сосудов. В зоне повреждения микробы выделяют широкий набор антибиотиков, протеолитических ферментов, иммуномодуляторов, фактор роста фиброб-ластов, чем способствуют очищению от некроза и ускорению регенерации.
Клинические исследования
В клинической части работы проведено изучение эффективности живого бактериального препарата «споробактерин жидкий» в качестве средства профилактики хирургической инфекции у больных с ранениями мягких тканей. Лекарственный препарат «споробактерин жидкий» содержит живые бактерии штамма Bacillus subtilis 534, рекомендован МЗ РФ для применения в клинической практике с 1992 года (ВФС 42-371 ВС-92).
Мы сравнивали эффективность профилактики с помощью антибиотика цефазолина и пробиотика «споробактерин жидкий». Первая группа из 20 больных получала препарат «споробактерин жидкий» в стандартной дозировке по 1 мл два раза в сутки в течение 5 дней. Антибактериальные препараты не применялись. Пациентам второй группы (20 человек) назначали цефазолин в дозе 1 г внутривенно перед первичной хирургической обработкой раны и затем внутримышечно в течение 48 часов по 1 г три раза в сутки. Третьей группе, состоящей из 20 больных, не назначали ни антибиотиков, ни пробиотиков. Всем исследуемым выполнялась первичная хирургическая обработка ран. Пациенты получали ежедневные перевязки с 1% раствором йодопирона, антиагреганты, антиокси-данты, симптоматическую терапию.
В результате нашей работы было установлено снижение частоты гнойно-воспалительных осложнений при назначении «споробактерина жидкого». В группе, получавшей цефазолин, осложнения развились у 2 больных (10%), в группе контроля - у 3 человек (15%), после применения пробиотика явлений хирургической инфекции не было. При приеме «споробактерина жидкого» статистически достоверно в более ранние сроки нормализовались температура тела, число лейкоцитов, показатель лейкоцитарного индекса интоксикации. Значительно снизился срок пребывания больных в стационаре. Так, при назначении «споробактерина жидкого» он был равен 6,5 + 1,1; у больных, получавших антибиотик - 8,6 + 0,4; в группе сравнения - 9,4+ 0,3 (р < 0,001).
«Споробактерин жидкий» успешно применялся ранее при лечении холан-гитов, панкреатита, аппендицита (A.A. Третьяков, 1998; В.К. Есипов, 1999; B.C. Тарасенко, 2000). Однако данных в литературе об эффективности этого
пробиотика для профилактики хирургической инфекции при ранениях мягких тканей мы не обнаружили. В настоящее время для профилактики хирургической инфекции при травмах и, в частности, ранениях мягких тканей назначают антибиотики на срок не более 48 часов (S. Esposito et al., 2002; C.B. Сергеев и соавт., 2003; В.М. Simpson et al., 2003; B.D. Adams 2003). Однако пероральное назначение живого бактериального препарата «споробактерин жидкий» может быть методом выбора профилактики гнойно-воспалительных осложнений у больных с ранениями мягких тканей. Лекарственный препарат «споробактерин жидкий» практически не дает нежелательных побочных реакций, относительно дешев, не требует парентерального введения. Все вышеперечисленное обосновывает целесообразность более широкого использования в хирургической практике данного пробиотика, а также, возможно, других живых бактериальных препаратов для профилактики различных форм хирургической инфекции.
Таким образом, можно сделать заключение о том, что феномен транслокации играет гораздо более значительную роль в целостной реакции организма на травму, чем это представлялось ранее. Установлено, что транслокация бактерий жестко регулируется макроорганизмом. Это явление происходит у здоровых животных и не сопровождается стрессорной реакцией, то есть является физиологическим феноменом. При возникновении повреждения проникновение бактерий из желудочно-кишечного тракта во внутреннюю среду организма усиливается. Сапрофитные микроорганизмы подвергаются транслокации в несколько раз интенсивнее, чем условно-патогенные, особенно при травме. Накопление бактерий-сапрофитов в области повреждения также происходит интенсивнее, чем условно-патогенной флоры. Микрофлора желудочно-кишечного тракта активно участвует в раневом процессе и развитии хирургической инфекции. Использование живого бактериального препарата для профилактики гнойно-воспалительных осложнений значительно снижает частоту последних, в том числе и по сравнению с антибиотиками. Применение пробиотика при лечении ранений улучшает течение посттравматического периода.
выводы
1. Транслокация бактерий штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534 у здоровых белых крыс происходит через неповрежденные слизистые оболочки желудка и тонкого отдела кишечника. Феномен транслокации наблюдается при интрагастральном введении микроорганизмов в количестве 106 микробных тел на 1 кг веса животного и выше.
2. У здоровых и травмированных животных после перорального введения жизнеспособные бактерии штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534 обнаруживаются в печени, селезенке, стенке желудка и тонкого отдела кишечника. В тканях легких, почек, кожи, в крови микроорганизмы не регистрируются. В стенке толстой кишки бактерии наблюдаются только после введения Ю10 микробных тел на 1 кг веса крысы.
3. Транслокация сенной палочки, так же как и золотистого стафилококка, жестко контролируется макроорганизмом. У здоровых белых крыс при увеличении дозы интрагастрально введенных микроорганизмов в 10000 раз количество меченых бактерий, обнаруживаемых во внутренних органах, возрастает всего в 1,3 - 8,5 раз. В печени и селезенке здоровых животных число радиометок бактерий в условных полях зрения светового микроскопа в 1,6-3,3 раза выше, а у крыс с переломами - в 2,1- 4,2 раза выше, чем в тканях полых органов гастроинтестинального тракта.
4. У животных с ранениями мягких тканей и закрытыми переломами бедра пороговая доза бактерий, после интрагастрального введения которой возникает транслокация Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534, снижается и составляет 104 микробных тел на 1 кг массы тела. При закрытых переломах бедра количество проникающих в печень и селезенку бактерий выше, чем при ранениях мягких тканей.
5. Феномен транслокации микроорганизмов у здоровых животных при микробной нагрузке Ю4-Ю10 колониеобразующих единиц штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534 не сопровождается стрессорными изменениями гистологических и цитологических структур гипотапамо-гипофизарной ней-росекреторной системы и надпочечников.
6. Транслокация Bacillus subtilis 534 у здоровых и травмированных животных происходит интенсивнее, чем Staphylococcus aureus 209Р. Количество бактерий сенной палочки превышает число стафилококков в тканях области раны в 1,6-2,8 раза, а в области закрытого перелома - в 4,6-5,1 раз.
7. Микрофлора, попадающая в очаг повреждения через желудочно-кишечный тракт, во многом определяют течение раневого процесса. Бактерии сенной палочки, локализуясь в очагах травматизации мягких и костных тканей, создают условия для стимуляции репаративных гистогенезов. Микроорганизмы штамма Staphylococcus aureus 209Р вызывают усугубление изменений альтера-тивного характера в области закрытого перелома.
8. Использование живого бактериального препарата «споробактерин жидкий» у больных с ранениями мягких тканей способствует снижению частоты хирургической инфекции и более быстрой нормализации клинико-лабораторных показателей.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
При выборе лечебной тактики у больных с ранениями мягких тканей следует учитывать, что транслокация бактерий может быть механизмом эндогенного инфицирования. Возможным путем профилактики может быть использование живых бактериальных препаратов (пробиотиков). При ранениях мягких тканей методом выбора профилактики хирургической инфекции может быть назначение вместо антибиотиков лекарственного препарата «споробактерин жидкий». Срок применения препарата - 5 суток, он назначается внутрь по 1 мл два раза в сутки за 15 - 30 минут до еды.
СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ
ДИССЕРТАЦИИ
1. Никитенко В.И., Полякова B.C., Никитенко М.В., Симоненко Е.В., Бородин
B.А., Копылов В.А., Фомина М.В. Препарат споробактерин. Новые данные о механизме действия этого и других живых бактериальных препаратов. // Научный вестник Тюменской медицинской академии.-2001.-№2(10).-с.70-72.
2. Кудашев С.Г., Никитенко В.И., Бородин A.B., Копылов В.А. Новый способ профилактики хирургической инфекции при боевых огнестрельных повреждениях. // Материалы научн. конф. «Актуальные проблемы травматологии и ортопедии», в рамках международного форума «Человек и травма».-Нижний Новгород, 2001.-с. 168-169.
3. Медведкин В.М., Копылов В.А., Воронов О.В. и соавт. Профилактика хирургической инфекции у больных с термической травмой. // Анналы травматологии и ортопедии.-Самара,2001.-№2.-с.47-49.
4. Никитенко В.И., Копылов В.А., Никитенко М.В. Препарат «споробактерин». Новые данные о механизме действия этого и других живых бактериальных препаратов. // Пробиотические микроорганизмы - современное состояние вопроса и перспективы использования. Международная научн.-прак. конф. памяти Г.И.Гончаровой.-Сб. материалов конференции.-М.,2002.-с.51-52.
5. Никитенко В.И., Стадников A.A., Кудашев С.Г., Никитенко М.В., Никитин
C.B., Копылов В.А. Некоторые новые данные о патогенезе, профилактике и лечении хирургической инфекции. // Инфекция в хирургии - проблема современной медицины.-Сб. тезисов 3-й Всеармейской научн.-прак. конф. с международным участием.-М.,2002.-с.49.
6. Никитенко М.В., Копылов В.А. Разработка и испытание новой формы препарата споробактерина - споробактерина жидкого. // Актуальные вопросы военной и практической медицины.-Сб. трудов Ш научн.-прак. конф. врачей Приволжско-Уральского военного округа.-0ренбург,2002.-с.211-213.
7. Ткаченко Е.И., Никитенко В.И., Копылов В.А. Учение о трофологии. Новые итоги и пути развития. // Материалы Санкт-Петербургской медицинской ассамблеи - 2003 «Врач-провизор-пациент».-Санкт-Петербург,2003.-с.76.
8. Чевычалов A.M., Копылов В.А., Исаев С.Ж. и соавт. Применение споробактерина в травматологии. // Материалы Санкт-Петербургской медицинской ассамблеи - 2003 «Врач-провизор-пациент» .-Санкт-Петербург,2003.-с.86.
9. Никитенко В.И., Стадников A.A., Никитенко М.В., Копылов В.А. Новые данные о механизме действия пробиотиков. // Гастроэнтерология Санкт-Петербурга.-2003 .-№2-3 .-с. 115-116.
10. Никитенко В.И., Копылов В.А. Транслокация бактерий - механизм защиты организма от инфекции при повреждениях. // Актуальные проблемы хирургии повреждений.-Материалы областной научн.-прак. конф. врачей.-0ренбург,2003.-с.6-10.
П.Никитенко В.И., Кудашев С.Г., Копылов В.А. Новые принципы профилактики и лечения хирургической инфекции при огнестрельных и неогнестрельных ранениях конечностей. // Актуальные вопросы военной и практической медицины.-Сб. трудов IV научн.-прак. конф. врачей Приволжско-Уральского военного округа.-0ренбург,2003.-с.204-206.
12.Никитенко В.И., Стадников A.A., Копылов В.А. и соавт. Новые данные о ) патогенезе, профилактике и лечении хирургической инфекции при травме. // Современные технологии в травматологии, ортопедии: ошибки и осложнения -профилактика и лечение. Международный конгресс.-Сб. тезисов.-М.,2004.- « с.117-118.
13. Стадников A.A., Копылов В.А. Влияние транслокации бактерий на регенерацию тканей опорно-двигательной системы при повреждениях. // Морфофункциональные аспекты регенерации и адаптационной дифференцировки структурных компонентов опорно-двигательного аппарата в условиях механических воздействий.-Материалы международной научн.-прак. конф.-Курган,2004 .-с.293-295.
14. Никитенко В.И., Стадников A.A., Копылов В.А., Захаров В.В. О ранее неизвестной регулирующей функции бактерий желудочно-кишечного тракта. // Гастроэнтерология Санкт-Петербурга.-2004.-№2-3.-с.М. 100.
15.Никитенко В.И., Копылов В.А., Никитенко М.В. Транслокация бактерий из желудочно-кишечного тракта - естественный защитный механизм. // Гастроэнтерология Санкт-Петербурга.-2004.-№2-3.-с.16-18.
16. Исаев С.Ж., Чевычалов A.M., Копылов В.А. Роль бактерий-сапрофитов в профилактике и лечении раневой инфекции. // Актуальные вопросы хирургии: проблемы и пути решения.-Сб. научн. работ областной конф. хирургов, посвященной 85-летию основания отделенческой клинической больницы ст. Оренбург.-Оренбург,2004-с.89-91.
П.Никитенко В.И., Стадников A.A., Копылов В.А. Новые данные о путях распространения госпитальной инфекции и методе её профилактике. // Узловые вопросы борьбы с инфекцией.-Материалы Российской научн.-прак. конференции.-Санкт-Петербург,2004.-с. 175-176.
18. Копылов В.А., Стадников A.A. Роль транслокации бактерий в регенерации тканей при повреждениях. // Фундаментальные и прикладные проблемы ' гистологии. Гистогенез и регенерация тканей.-Сб. тезисов научн. конф.-Санкт-Петербург,2004.-е.
19. Тарасенко B.C., Стадников A.A., Никитенко М.В., Щетинин А.К., 1 Симоненко Е.В., Стадников Б.А., Шеффер A.B., Аверкиев В.Л., Мельникова
O.A., Дибисова А.Б., Бородин A.B., Фомина М.В., Копылов В.А., Попов A.B., Есипов Д.В., Хотян А.Р. Способ стимуляции репаративных процессов длительно незаживающих ран и трофических язв. // Патент РФ на изобретение № 2202356, 20.04.2003г. (приоритет от 04.12.2000г.).- бюл..№11,2003г.
Подписано в печать 21 03 05 Гарнитура Тайме Тираж 150 экз Заказ № 271 Издательство Общий отдел ГОУ ВПО ОрГМА Минздрава России Лицензия № 021239 от 22 08 97
РНБ Русский фонд
2005-4 47521
( ¡¡ь<
V.J * i /
2 2 АПР 2005
Оглавление диссертации Копылов, Вадим Анатольевич :: 2005 :: Оренбург
Введение.
Глава 1. Клинико-морфологические и микробиологические аспекты хирургической инфекции при механических повреждениях (обзор литературы).
ГЛАВА 2. Материалы и методы исследования.
2.1. Общая характеристика объектов исследования.
2.2. Материал экспериментальных исследований.
2.3.Светооптические гистологические, электронно-микроскопические и гисторадиографические исследования.
2.4. Бактериологические исследования.
2.5. Характеристика хирургических больных.
2.6. Методы статистического анализа результатов.
Глава 3. Изучение механизмов транслокации у животных при введении бактерий штамма Staphylococcus aureus 209Р.
3.1. Исследование транслокации бактерий у здоровых животных.
3.2. Влияние ранений мягких тканей на феномен транслокации у животных.
3.3. Транслокация бактерий при закрытых переломах длинных трубчатых костей у животных.
ГЛАВА 4. Изучение механизмов транслокации у животных при введении бактерий штамма Bacillus subtilis
4.1. Определение дозозавивимых эффектов транслокации бактерий у здоровых животных.
4.2. Влияние ранений мягких тканей на феномен транслокации у животных.
4.3. Транслокация бактерий у животных с закрытыми переломами конечностей.
Глава 5. Профилактика хирургической инфекции у больных с ранениями мягких тканей.
Введение диссертации по теме "Хирургия", Копылов, Вадим Анатольевич, автореферат
Актуальность исследования.
Проблема хирургической инфекции при травмах является актуальной. Количество гнойно-воспалительных осложнений после травм варьирует от 5% до 50% (R.L. Nichols, S.Florman, 2001). Нагноения случайных ран мягких тканей встречаются в 12-25% (Х.А.Мусалатов с соавт., 1998). Частота гнойно-воспалительных осложнений области хирургического вмешательства колеблется от 2-3 до 22% (В.В. Агаджанян, 1987; Н.В. Корнилов с соавт., 1997; А.В. Кулаков с соавт., 2001; В.И. Ульянов с соавт.,2002; Т.Я.Пхакадзе, З.И.Уразгильдеев, 2002).
Можно выделить следующие направления в поиске действенных путей профилактики хирургической инфекции: совершенствование мероприятий по асептике, антисептике и технике хирургического вмешательства, воздействие на иммунную систему, устранение нарушений микроциркуляции, стимуляция репаративных процессов (В.М.Шаповалов с соавт., 1998; И.Ю.Клюквин с соавт., 1998; С.В. Лохвицкий с соавт., 2002; L. Ameziane et al., 2003). Основные усилия исследователей в настоящее время сосредоточены вокруг разработки и использования новых антибактериальных препаратов, прежде всего антибиотиков (G.V.Russell et al., 2001; F. de Lalla, 2002; С.В. Сергеев и соавт., 2003). Несмотря на огромные затраты, результаты антибиотикопрофилактики не всегда соответствуют ожиданиям (G.A.Franklin et al., 2002; М.А. Wilson, 2003). Появляются новые антибиотикорезистентные штаммы бактерий, развиваются аллергия на химиопрепараты, дисбактериоз и др. (Т.Франклин, Дж. Сноу, 1984; И.А.Ерюхин с соавт., 1997; Т. Nakagawa et al., 1998). Наличие недавно обнаруженных механизмов «укрытия» и длительной персистенции стафилококков в тканях различного генеза (А.А.Стадников с соавт., 2003) также ставит под сомнение эффективность дальнейшего развития антибиотикопрофилактики.
Всё более очевидной становится необходимость раскрытия малоизученных аспектов патогенеза хирургической инфекции. До настоящего времени большинство хирургов и микробиологов уверены, что, в основном, бактерии попадают в рану непосредственно из внешней среды. Роль эндогенного инфицирования явно недооценивается. В то же время доказан феномен транслокации бактерий из желудочно-кишечного тракта, описанный R.D. Berg (1985), В.И.Никитенко (1990). Экспериментальными исследованиями последних лет было установлено, что бактерии могут проникать через неповрежденную стенку желудочно-кишечного тракта во внутренние среды организма. Транслокация обнаружена при различных патологических состояниях (L.C. Lemaire, 1997; D.Adawi et al., 1998; D.Demetriades et al., 1999), а также в условиях здорового организма (В.К.Есипов, 1999; В.С.Тарасенко, 2000).
Однако остаются неизученными многие механизмы этого явления. Неизвестно, регулируется ли транслокация макроорганизмом, зависит ли этот феномен от дозы и вида бактерий, попавших в желудочно-кишечный тракт, влияет ли характер повреждения на феномен бактериальной транслокации, возникает ли она только вследствие стресса или является защитным механизмом теплокровных, каковы методы блокирования данного пути распространения возбудителей хирургической инфекции. Всё вышеуказанное послужило основанием для выполнения данной работы.
Цель исследования
Целью настоящего исследования явилось изучение значения феномена транслокации в патогенезе хирургической инфекции при повреждениях и определение эффективности нового способа профилактики хирургической инфекции.
Задачи исследования
1. Определены минимальные дозы бактерий штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534, при интрагастральном введении которых регистрируется феномен бактериальной транслокации у здоровых белых крыс.
2. Изучена динамика обсеменения тканей различных органов бактериями при различных дозах инфицирования желудка.
3. Исследовано влияние ранений мягких тканей и закрытых переломов трубчатых костей на транслокацию бактерий у животных.
4. Изучена реакция тканей и органов на транслокацию у здоровых и травмированных животных.
5. Определена эффективность живого бактериального препарата «споробактерин жидкий» в качестве средства профилактики хирургической инфекции у больных с ранениями мягких тканей.
Научная новизна исследования
Впервые установлено, что минимальная доза бактерий, при интрагастральном введении которой регистрируется, . феномен транслокации у здоровых крыс, равна 10б микробных тел на 1 кг веса животного.
Впервые обнаружено, что при ранениях мягких тканей и закрытых переломах конечностей пороговая доза микроорганизмов штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534 снижается и составляет 104 микробных тел на 1 кг веса животного.
Выявлено, что у здоровых и травмированных животных через 6 часов после интрагастрального введения жизнеспособные бактерии обнаруживаются в печени, селезенке, стенке желудка и тонкого отдела кишечника, с преимущественным накоплением в селезенке и печени. В тканях легких, почек, кожи, в крови микроорганизмы не наблюдаются.
Транслокация бактерий контролируется макроорганизмом. У здоровых белых крыс при увеличении дозы интрагастрально введенных микроорганизмов в 10000 раз, количество меченых бактерий, обнаруживаемых во внутренних органах, возрастает всего в 1,3 - 5,8 раз.
Впервые установлено, что феномен транслокации микроорганизмов у здоровых животных при микробной нагрузке 104-10ш колониеобразующих единиц (КОЕ) не сопровождается стрессорными изменениями гистологических и цитологических структур гипоталамо-гипофизарной нейросекреторной системы и надпочечников.
Обнаружено, что тяжесть травмы влияет на феномен транслокации. У крыс с закрытыми переломами бедра количество проникающих в печень и селезенку бактерий выше, чем у животных с ранениями мягких тканей.
Установлено, что транслокация Bacillus subtilis 534 у здоровых и травмированных животных происходит интенсивнее, чем Staphylococcus aureus 209Р. Количество бактерий сенной палочки превышает число стафилококков в тканях области раны в 1,6-2,8 раза, а в области закрытого перелома - в 4,6-5,1 раз.
1 Выявлено, что микроорганизмы, попадающие в желудочно-кишечный тракт, активно участвуют в течении раневого процесса. Бактерии сенной палочки, локализуясь в очагах травматизации мягких и костных тканей, создают условия для стимуляции репаративных гистогенезов (патент РФ №2202356, 20.04.2003г.). Микроорганизмы Staphylococcus aureus 209Р вызывают усугубление изменений альтеративного характера в области закрытого перелома.
Научно-практическая значимость работы
Транслокация бактерий из желудочно-кишечного тракта может быть механизмом эндогенного инфицирования очагов повреждения, что следует учитывать в клинической практике, в том числе при осуществлении мероприятий по предупреждению госпитальной инфекции. Транслокации подвергаются как условно-патогенные бактерии, так и сапрофиты. Обоснована возможность селективного использования микрофлоры, попадающей в желудочно-кишечный тракт, для регуляции раневого процесса и профилактики хирургической инфекции.
Доказана более высокая эффективность живого бактериального препарата, по сравнению с антибиотиком цефазолином. Использование живого бактериального препарата «споробактерин жидкий» у больных с ранениями мягких тканей способствует снижению частоты хирургической инфекции и более быстрой нормализации клинико-лабораторных показателей.
Положения, выносимые на защиту
1. Транслокация бактерий из желудочно-кишечного тракта - механизм систематического инфицирования очагов повреждения и естественной защиты человека и животных от инфекции. Она регулируется макроорганизмом и зависит от дозы, вида бактерий, характера повреждения.
2. Использование живого бактериального препарата «споробактерин жидкий» у больных с ранениями мягких тканей способствует снижению частоты хирургической инфекции и улучшает течение посттравматического периода.
Апробация результатов исследования
Материалы диссертации доложены и обсуждены на межрегиональной научно-практической конференции «Актуальные вопросы урологии» (Тюмень, 2001), научной конференции «Актуальные проблемы травматологии и ортопедии» (Нижний Новгород, 2001), на международной научно-практической конференции памяти Г.И. Гончаровой «Пробиотические микроорганизмы - современное состояние вопроса и перспективы использования» (Москва, 2002), 3-й Всеармейской научно-практической конференции с международным участием «Инфекция в хирургии - проблема современной медицины» (Москва, 2002), Ш научно-практической конференции врачей Приволжско-Уральского военного округа (Оренбург, 2002), на 5-ом Славяно-Балтийском научном форуме «Санкт-Петербург - Гастро-2003» (Санкт-Петербург, 2003), Санкт-Петербургской Медицинской Ассамблее «Врач-Провизор-Пациент» (Санкт-Петербург, 2003), на IV научно-практической конференции врачей Приволжско-Уральского военного округа (Оренбург, 2003), на областной научно-практической конференции врачей «Актуальные проблемы хирургии повреждений» (Оренбург, 2003), на 6-ом Славяно-Балтийском научном форуме «Санкт-Петербург - Гастро-2004» (Санкт-Петербург, 2004), международной научно-практической конференции «Морфофункциональные аспекты регенерации и адаптационной дифференцировки структурных компонентов опорно-двигательного аппарата в условиях механических воздействий» (Курган, 2004), международном конгрессе «Современные технологии в травматологии, ортопедии: ошибки и осложнения - профилактика, лечение» (Москва, 2004), на Российской научно-практической конференции «Узловые вопросы борьбы с инфекцией» (Санкт-Петербург, 2004), научной конференции «Фундаментальные и прикладные проблемы гистологии. Гистогенез и регенерация тканей» (Санкт-Петербург, 2004), на областной конференции хирургов «Актуальные вопросы хирургии: проблемы и пути решения» (Оренбург, 2004).
Публикации
По теме диссертации опубликовано 19 печатных работ, в том числе патент РФ на изобретение №2202356, 20.04.2003г.
Структура и объем диссертации
Диссертация изложена на 141 странице машинописного текста. Она состоит из введения, обзора литературы, главы с описанием материалов и методов исследования, 3 глав, в которых изложены результаты собственных исследований, главы обсуждения результатов, выводов, практических рекомендаций и указателя литературы, включающего 216
Заключение диссертационного исследования на тему "Значение феномена транслокации бактерий из желудочно-кишечного тракта в патогенезе хирургической инфекции при повреждениях (экспериментально-клиническое исследование)"
выводы.
1. Транслокация бактерий штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534 у здоровых белых крыс происходит через неповрежденные слизистые оболочки желудка и тонкого отдела кишечника. Феномен транслокации наблюдается при интрагастральном введении микроорганизмов в количестве 10б микробных тел на 1 кг веса животного и выше.
2. У здоровых и травмированных животных после перорального введения жизнеспособные бактерии штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534 обнаруживаются в печени, селезенке, стенке желудка и тонкого отдела кишечника. В тканях легких, почек, кожи, в крови через 6 часов после введения микроорганизмы не регистрируются. В стенке толстой кишки бактерии наблюдаются только после введения Ю10 микробных тел на 1 кг веса крысы.
3. Транслокация сенной палочки, так же как и золотистого стафилококка, жестко контролируется макроорганизмом. У здоровых белых крыс при увеличении дозы интрагастрально введенных микроорганизмов в 10000 раз количество меченых бактерий, обнаруживаемых во внутренних органах, возрастает всего в 1,3 - 8,5 раз. В печени и селезенке здоровых животных число радиометок бактерий в условных полях зрения светового микроскопа в 1,6-3,3 раза выше, а у крыс с переломами - в 2,1- 4,2 раза выше, чем в тканях полых органов гастроинтестинального тракта.
4. У животных с ранениями мягких тканей и закрытыми переломами бедра пороговая доза бактерий, после интрагастрального введения которой возникает транслокация Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534, снижается и составляет 104 микробных тел на 1 кг массы тела. При закрытых переломах бедра количество проникающих в печень и селезенку бактерий выше, чем при ранениях мягких тканей.
5. Феномен транслокации микроорганизмов у здоровых животных при микробной нагрузке 104-Ю10 колониеобразующих единиц штаммов Staphylococcus aureus 209Р и Bacillus subtilis 534 не сопровождается стрессорными изменениями гистологических и цитологических структур гипоталамо-гипофизарной нейросекреторной системы и надпочечников.
6. Транслокация Bacillus subtilis 534 у здоровых и травмированных животных происходит интенсивнее, чем Staphylococcus aureus 209Р. Количество бактерий сенной палочки превышает число стафилококков в тканях области раны в 1,6-2,8 раза, а в области закрытого перелома — в 4,6-5,1 раз.
7. Микрофлора, попадающая в очаг повреждения через желудочно-кишечный тракт, во многом определяют течение раневого процесса. Бактерии сенной палочки, локализуясь в очагах травматизации мягких и костных тканей, создают условия для стимуляции репаративных гистогенезов. Микроорганизмы штамма Staphylococcus aureus 209Р вызывают усугубление изменений альтеративного характера в области закрытого перелома.
8. Использование живого бактериального препарата «споробактерин жидкий» у больных с ранениями мягких тканей способствует снижению частоты хирургической инфекции и более быстрой нормализации клинико-лабораторных показателей.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.
При выборе лечебной тактики у больных с ранениями мягких тканей следует учитывать, что транслокация бактерий может быть механизмом эндогенного инфицирования. Возможным путем профилактики может быть использование живых бактериальных препаратов (пробиотиков). При ранениях мягких тканей методом выбора профилактики хирургической инфекции может быть назначение лекарственного препарата «споробактерин жидкий» вместо антибиотиков. Срок применения препарата - 5 суток, назначается внутрь по 1 мл два раза в сутки за 15 - 30 минут до еды.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2005 года, Копылов, Вадим Анатольевич
1. Аврукин А.С., Корнилов Н.В., Емельянов В.Г. Слабые стрессорные факторы — элемент профилактики послеоперационных осложнений при плановой ортопедической хирургии. // Вестник хирургии им. Грекова. 2002. - Т. 161. - №3. - с.70-73.
2. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. М.: Медицина, 1990, 348с.
3. Агаджанян В.В. Эндопротезирование в травматологии и ортопедии: Сб. научных трудов. Саратов, 1987. - с.23-26.
4. Адамян А.А., Гогия Б.Ш., Мурадян Р.Г. Электростимуляция при лечении ран. // Хирургия. 1998. - №1. - с.57-59.
5. Азизов М.Ж., Ханапияев У.Х., Байбеков И.М. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на заживление микробно-обсемененной мягкотканной и костной раны при открытом переломе. // Вестник травматологии и ортопедии им. Н.Н.Приорова. 2003, №3, с.36-38.
6. Алмагамбетов К.Х. Профилактика транслокации кишечной микрофлоры после выведения организма из терминального состояния. ЖМЭИ, 1992, № 5-6, с. 11 -14.
7. Асланов А.Д., Михайлов И.П., Логвина О.Е. Профилактика гнойных осложнений после реконструктивных операций на сосудах у больных пожилого и старческого возраста. // Хирургия. 2003. - №1. - с.9-11.
8. Белобородое В.Б. Выбор антибактериальной терапии при нозокомиальных инфекциях, вызванными продуцентами бета-лактамазрасширенного спектра. // Антибиотики и химиотерапия. 2001. - Т.46. -№12. - с.3-7.
9. Бирюков Ю.В., Волков О.В., Рой С. Повреждения печени. // Хирургия. 1997. - №2. - с.24-27.
10. Блатун JI.A. Современные возможности антимикробной терапии раневых инфекций мягких тканей и остеомиелита. Антибиотики и химиотерапия. 2002. -т.47, №9. - с.31-36.
11. Богомолова Н.С., Орешкина Т.Д., Большаков JI.B. Перспективы использования нового цефалоспоринового антибиотика четвертого поколения в хирургии. // Антибиотики и химиотерапия. 2003. - Т.48. -№7. - с.20-23.
12. Брискин Б.С., Хачатрян Н.Н., Некрасова Н.И. опыт применения имипенема/циластатина (тиенама) в хирургической клинике. // Хирургия. 2000. - №9. - с.56-61.
13. Брюсов П.Г., Хрупкин В.И. Современная огнестрельная травма. // Военно-медицинский журнал. 1996. - № 2 — с.23-27.
14. Булава Г.В., Абакумов М.М. и соавт. Иммунопрофилактика послеоперационных гнойно-воспалительных осложнений при ранениях груди и живота. Хирургия. - 2002. - №7. - с.4-10.
15. Булава Г.В., Абакумов М.М., Друзенко О.А. и соавт. Применение лейкинферона для профилактики гнойных осложнений у пострадавших с ранениями груди. // Хирургия. 1999, №7, с. 35-39.
16. Булава Г.В., Абакумов М.М., Хватов В.Б. Состояние иммунной системы пострадавших с проникающими ранениями груди и живота,осложненными массивной кровопотерей. Хирургия. - 2001. - №4. -с.49-54.
17. Бухарин О.В. Персистенция патогенных бактерий. М.: Медицина; Екатеринбург: УроОРАН. 1999. С.368.
18. Васина Т.А., Картавенко В.И., Меньшикова Е.Д. и соавт. Антибактериальная активность имипенема/циластатина (тиенама) в отношении возбудителей гнойно-септических процессов. // Хирургия. -2002.-№12.-с.45-47.
19. Воленко А.В. Профилактика послеоперационных осложнений ран. // Хирургия. 1998, №9, с. 65-68.
20. Выренков Ю.В., Дмитриев А.Е, Мурылев В.Ю. и соавт. Профилактика гнойных осложнений при операциях на крупных суставах с помощью эндолимфатического введения лекарственных средств. // Хирургия, 1998, №12, с.45-47.
21. Генчиков JI.A. Инфекции, связанные с инвазивными вмешательствами. Профилактика внутрибольничных инфекций. Руководство для врачей. М.-.1993, с.122-125.
22. Гинцбург A.JL, Ильина Т.С., Романова Ю.М. «Quorum sensing» или социальное поведение бактерий. // ЖМЭИ. 2003.-№5.-с.86-93.
23. Горбачев О.С., Веденков В.Г., Битанова Т.В. Современные аспекты клинико-экспериментальных исследований в детской хирургии. // Труды II Московского иедицинского института. 1981. - 160: с. 117120.
24. Гостищев В.К., Омельяновский В.В. Пути и возможности профилактики инфекционных осложнений в хирургии. // Хирургия.-1997,-№3.-с. 11-15.
25. Губченко И.П., Хрупкин В.И., Писаренко JI.B. Применение газотоковой коагуляции для местного лечения при огнестрельныхранах. // Вестник хирургии им. Грекова. 2000. - Т. 159. - №1. - с.33-37.
26. Гуманенко Е.К. Актуалдьные проблемы сочетанных травм. Клин. мед. и пат. физиол. 1995. - №1. - с.9-22.
27. Гуманенко Е.К. Огнестрельные ранения мирного времени. // Вестник хирургии им. Грекова. 1998. - Т. 157. - №5. - с.62-67.
28. Диваков М.Г., Иванов В.П. Профилактика и лечение инфекционных осложнений ран у больных с открытыми переломами костей. // Проблемы профилактической медицины: Сб. науч. тр. Витебск. -1995. - С.80-82.
29. Дмитриенко О.А., Сидоренко С.В., Жуховицкий С.В. Сравнительная эффективность типирования тремя коллекциями бактериофагов штаммов метициллинрезистентного Staphylococcus aureus, выделенных в стационарах г.Москвы. // ЖМЭИ. 2003.-№1 .-с.3-9.
30. Долгушин И.И., Эберт Л.Я., Лифшиц Р.И. Иммунология травмы. // Свердловск: Издательство Уральского университета, 1989, с. 188.
31. Дранник Г.И., Гриневич Ю.А., Дизик Г.М. Иммунотропные препараты. Киев: Здоров'я. 1994. - 285с.
32. Дудник Ю.В. Перспективы создания препаратов, активных в отношении устойчивых форм бактерий. Антибиотики и химиотерапия. 1999. -т.44, №12. - с.15-18.
33. Дудник Ю.В. Экология лекарственной устойчивости. Антибиотики и химиотерапия. -2001. -т.46, №11. с.7-10.
34. Ермоленко Н.А., Французов В.Н. Инфекция в хирургии проблема современной хирургии. Мат. III Всеармейской конференции с международным участием «Инфекция в хирургии — проблема современной хирургии.» - М., 2002; 4-6.
35. Ерофеев В.В., Лирисман И.В., Поликарпова С.В. Антибактериальная терапия при гнойно-септических осложнениях у больных в отделениях реанимации. Хирургия. - 1998. - №12. - с.48-52.
36. Ерюхин И.А. Инфекция в хирургии. Старая проблема накануне нового тысячелетия. (Часть I). // Вестник хирургии им. Грекова, 1998. — Т. 157. №1.- с.85-91.
37. Ерюхин И.А. Инфекция в хирургии. Старая проблема накануне нового тысячелетия (частьП). // Вестник хирургии им. Грекова. — 1998. -Т. 157. №2. - с.87-89.
38. Ерюхин И.А., Шляпников С.А., Лебедев В.Ф. Псевдомембранозный колит и "кишечный сепсис" вследствие дисбактериоза, вызванного антибиотиками. // Вестник хирургии им. Грекова. 1997. — Т. 156. -№2. - с.108-111.
39. Есипов В.К. Патогенетические аспекты острого распространенного перитонита и обоснование рационального метода его лечения. Автореф. дис. д-ра мед. наук, Оренбург, 1999, 48с.
40. Жинкин Л.Н. Применение радиоактивных изотопов в гистологии. // Радиоактивные индикаторы в гистологии. Л.: Изд-во ИЭМ АМН СССР, 1959, с.5-33.
41. Зубков М.Н. Антибиотикопрофилактика и антибиотикотерапия гнойных осложнений в травматологии и ортопедии. // Клин, антимикробная химиотер. —1999.-№ 1.-е. 12-16.
42. Ибишов К.Г. Чрездренажная закрытая ультразвуковая санация брюшной полости в профилактике и лечении инфекционных осложнений огнестрельных ранений живота. // Вестник хирургии им. Грекова. 1999.-Т.158. - №2.-с.40-42.
43. Кадынцев В.А., Кадынцев И.В., Яхлакова Т.В. и соавт. Материалы II пленума Ассоциации травматологов-ортопедов России. Ростов-на-Дону, 1996. с.31-33.
44. Кальф-Калиф Я. Я. О лейкоцитарном индексе интоксикации и его клиническом значении//Врачеб. дело. -1941. -№ 1. -С. 31-33.
45. Каминский JI.C. Статистическая обработка лабораторных и клинических данных. JL: Медицина.-1964.-252 с.
46. Клюквин И.Ю., Охотский В.П., Бялик И.Ф. и соавт. Хирургические аспекты профилактики гнойных осложнений у пострадавших с открытыми переломами длинных костей. // Вестник травматологии и ортопедии им. Н. Н. Приорова. 1997. - №2. - С.37-41.
47. Колесников В.В. Тромбопластиновя коагулопатия у больных с политравмой. // Хирургия 2002. - №9. - с.41-44.
48. Колкер И.И., Жумадилов Ж.Ш. Профилактика послеоперационных гнойно-воспалительных осложнений. Алма-Ата: Наука, 1988. - 144с.
49. Комаров Б.Д., Охотский В.П., Бялик И.Ф. Профилактика и лечение гнойных осложнений открытых переломов. // Сборник тезисов 4-ого Всесоюзного съезда травматологов ортопедов. М. 1981; 1: с.74-76.
50. Кондратьев А.И., Ивченко М.М. Опыт применения максипима в нейрохирургической клинике. // Антибиотики и химиотерапия. 2003. -Т.48.-№7. - с.16-19.
51. Корнев И.И. Стерилизация изделий медицинского назначения в лечебно-профилактических учреждениях. М.: АНМИ 2000, 176с.
52. Корнилов Н.В., Войтович А.В. с соавт. Хирургическое лечение дегенеративно-дистрофических поражений тазобедренного сустава. СПб., 1997.
53. Костюченко А.Л., Вельских А.Н., Тулупов А.Н. Интенсивная терапия постоперационной раневой инфекции и сепсиса. СПб.: Фолиант, 2000.-448с.
54. Кошелев В.Н., Чалык Р.В. Применение внутрисосудистого лазерного облучения крови при травмах органов брюшной полости. // Хирургия. 1998. - №5. - с.40-42.
55. Кудашев С.Г. Экспериментальное обоснование нового способа профилактики хирургической инфекции огнестрельных ран. // Автореф. дис. канд. мед. наук.- Оренбург 2000.- 21 с.
56. Кузин М.И., Костюченок Б.И. Раны и раневая инфекция.-М.Медицина, -1981. -688с.
57. Кузнецов В.Д., Бобовникова Н.В., Михайлов В.Ф. с соавт. Поздние гнойные послеоперационные осложнения. // Хирургия. 1998, №7, с.48-50.
58. Кузьмин И.И. Патогенетические особенности инфекционного процесса в травматологии и ортопедии. // Вестник травматологии и ортопедии им. Н.Н.Приорова. 2000. - №4. - с.67-71.
59. Кулаков А.В., Карсонова М.И., Пинегин Б.В. прогнозирование гнойных осложнений в хирургии с помощью определения аффинности антител. Хирургия. - 2001. - №11. - с.55-58.
60. Лебедев В.Ф., Козлов В.К., Гаврилин С.В. Иммунопатогенез тяжелых ранений и травм: возможность иммунокоррекции. // Вестник хирургии им. Грекова. 2002, Т. 161, №4, с.85-90.
61. Лохвицкий С.В., Тургунов Е.М., Азизов И.С. и соавт. Электроимпульсная обработка тканей новый метод профилактики послеоперационных раневых осложнений. // Вестник хирургии им. Грекова. - 2002. - Т. 161. - №3. - с. 11 -15.
62. Мамедов Л.А., Джафаров Ч.М., Кулиев Е.А. Способы диагностики и профилактики гнойно-воспалительных осложненийпослеоперационных ран. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1999, том 127, №4, с.477-9.
63. Матяшин И.М. Современные задачи профилактики гнойной инфекции в хирургической клинике. // Клиническая хирургия. -1979. — 1. — с.1-8.
64. Меерсон Ф.З., Пшенникова М.Г. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим нагрузкам. М.:1988. - 253с.
65. Мелехов П.А. Тридцатилетний опыт применения первомура в хирургической практике по методу автора. // Вестник хирургии им. Грекова. 2000. - Т. 159. - №3. - с.87-91.
66. Меньшиков Д.Д., Васильев В.А с соавт. Лекарственная чувствительность возбудителей гнойно-септических процессов в стационаре скорой помощи. Антибиотики и химиотерапия. — 2002. -т.47, №3. с. 18-21.
67. Миронов А.Ю., Савицкая К.И., Воробьев А.А. Микрофлора гнойно-септических заболеваний у больных в Московской области. // ЖМЭИ. -2000.-№5.-с.11-15.
68. Мирютин П.В., Костюченко А.Л. Инфекция в хирургии. Надежды и реальность. // Вестник хирургии им. Грекова. 1998. - Т. 157. - №4. -с.121-123.
69. Мусалатов Х.А., Елисеев А.Г., Горшков С.З., Гаркави А.В. Хирургия катастроф. -М., 1998.-с. 159.
70. Никитенко В.И, Бухарин О.В., Никитенко И.К. Явление естественного защитного бактериального механизма при повреждениях. Заявка на открытие № ОТ 11353, ВНИИГПЭ, 1986.
71. Никитенко В.И. Взаимоотношения макроорганизма и бактерий в ране и тканях человека и животных. Хирургия, 1990, № 9, с. 94-99.
72. Никитенко В.И., Никитенко И.К. А.с. 1723116. Штамм бактерий Bacillus subtilis, используемый для получения препарата дляпрофилактики и лечения воспалительных процессов и аллергических заболеваний. опубл. 08.11.86, Бюл. № 21.
73. Никитенко В.И., Никитенко И.К., Пау С.М. и др. Бактериальный препарат для профилактики и лечения воспалительных процессов и аллергических заболеваний. Европатент 0 363 491 В1. Дата приоритета -15.04.1988,22 с.
74. Носов А.А. Магнитолазерное воздействие в профилактике и лечении гнойных послеоперационных осложнений. // МЗ СССР. НИИ лазер, хирургии. Автореф. дис. канд. мед. наук, шифр спец-сти 14.00.27 -М.1989.
75. Оганесян С.С„ Саруханян О.О., Манукян P.M. Медицина катастроф. М.1990. 327с.
76. Окропиридзе Г.Г., Петраков А.А., Арутчева A.JI. Анаэробная бактериемия при гнойно-септических осложнениях у травматологических и хирургических больных. // Хирургия. 1996. -№1. - с.70-72.
77. Охотский В.П., Бялик И.Ф., Клюквин И.Ю. Лечение больных с. гнойными осложнениями открытых переломов длинных костей. // Хирургия. 1998, №10, с.51-53.
78. Павлов Ю.В., Аблицов Ю.А., Успенский Л.В. и соавт. Сочетанное применение низкочастотного ультразвука и фотодинамической терапии для профилактики острых послеоперационных эмпием плевры. //Хирургия. 2001. - №4. - с. 14-16.
79. Палкин Н.Д., Чекашев В.В. Гипохлорит натрия в профилактике гнойных осложнений послеоперационных ран. // Хирургия. 2000, №4, с. 56.
80. Панченков Р.Т., Выренков Ю.Е. и соавт., Эндолимфатическая антибиотикотерапия. М.: Медицина, 1984.
81. Перьянова О.В., Коконков В.А., Жабрович О.А. Микрофлора гнойных ран кожи и мягких тканей и её чувствительность к антибиотикам. Современные проблемы антимикробной химиотерапии: Мат IV Росс конф, 2002; 11.
82. Пхакадзе Т.Я., Богомолова Н.С., Виноградова А.Н. Новые антибиотики и дезинфектанты в хирургии. // Хирургия. 1996. - №1. -с.52-56.
83. Пхакадзе Т.Я., Уразгильдеев З.И. Гнойно-воспалительные осложнения в области тазобедренного сустава у травматолого-ортопедических больных: микробиологические аспекты. Вестник травматологии и ортопедии им. Н.Н.Приорова. 2002. - №1. - с.66-69.
84. Рухляда Н.В., Логинов В.А. Применение первомура для профилактики инфекционных осложнений при плановых операциях на органах брюшной полости. // Вестник хирургии им. Грекова. 2001, Т. 160, №6, с.65-67.
85. Рябочкин В.М., Назаренко Г.И (ред.) Медицина катастроф. М.:"ИНИЛТД". 1996. - 272с.
86. Светухин A.M., Матасов В.М. с соавт. Клиника, диагностика и лечение анаэробной инфекции. Мат. III Всеармейской конференции смеждународным участием «Инфекция в хирургии проблема современной хирургии.» - М., 2002; с.9-13.
87. Селье Г. Очерки об адаптационном синдроме: пер. с англ. // М.: Медицина, I960. -254 е.
88. Сергеев С.В., Эзмекна С., Зеленкина Л.И. и соавт. Тактика комплексной профилактики и лечения гнойно-септических осложнений в клинической травматологии. // Вестник травматологии и ортопедии им. Н.Н.Приорова. 2003. - №3. - с.79-84.
89. Смирнов В.В. с соавт. О некоторых механизмах возникновения бессимптомной бактериемии. Микробиолог, журн., 1988, т. 50, № 5, с. 56-59.
90. Соков Л.П., Соков С.Л. Медицина катастроф. М.: Изд-во Российского университета дружбы народов. 1999.
91. Стадников А.А. Роль гипоталамических нейропептидов во взаимодействии про- и эукариот. Структурно-функциональные аспекты. Екатеринбург: УрО РАН, 2001. 244с.
92. Страчунский Л.С., Белоусов Ю.Б., Козлов С.Н. (ред.) Антибактериальная терапия: Практическое руководство. М.:Фармединфо, 2000.- 357с.
93. ЮО.Тарасенко B.C. Острый деструктивный панкреатит. Некоторые аспекты патогенеза и лечения. Автореф. дис. докт. мед. наук, Оренбург, 2000, 49с.
94. Третьяков А. А. Клинико-экспериментальное обоснование комплексного лечения холангита при механической желтухе. Автореф. дис. д-ра мед. наук. Оренбург, 1998, 44 с.
95. Ульянов В.И., Башилов В.П. с соавт. Надежность стерилизации изделий медицинского назначения. Хирургия. 2002. - №11. - с.55-57.
96. Франклин Т., Сноу Дж. Биохимия антимикробного действия. М.:1984;238.
97. Хаитов P.M., Щельцина Т.Д., Бутиков А.А. Иммуномодулятор "Полиоксидоний" в профилактике и лечении гнойной хирургической инфекции. // Хирургия. 1997. - №1. - с.49-54.
98. Юб.Хрупкин В.И., Писаренко JT.B. Особенности комплексного лечения раневой инфекции при тяжелой сочетанной травме. Мат. III Всеармейской конференции с международным участием «Инфекция в хирургии проблема современной хирургии.» - М., 2002; 44-31.
99. Хрупкин В.И., Писаренко Л.В., Слостин С.М. и соавт. Использование физической плазмы в хирургии ран и раневых осложнений. // Вестник хирургии им. Грекова. 1998. - Т.157. - №2. - с.43-47.
100. Чадаев А.П., Климиашвили А.Д. Современные методы местного медикаментозного лечения инфицированных ран. // Хирургия. 2003. - №1. - с.54-56.
101. Чернов В .И., Велик Б.М., Поляк A.M. Портальная и системная бактериемия как проявление функциональной несостоятельности энтерального барьера при острой непроходимости кишечника. // Вестник хирургии им. Грекова. 1998. - т.157.№4. - с.46-49.
102. ПО.Шальнев Б.И., Петрова В.И. Иммунокоррекция при иммунопатологических состояниях в клинике. Обзорная информация ВНИИМИ. -М.:1988. №4ю.- 79с.
103. Ш.Шаповалов В.М., Куштан Ю.И., Тихилов P.M. Регионарная артериальная инфузия у больных после реконструктивно-восстановительных операций на тазобедренном суставе. // Вестник хирургии им. Грекова. 1998. - Т. 157. - №3. - с.56-57.
104. Шевченко Ю.Л., Гришанин В.А., Матвеев С.А. Госпитальные инфекции и некоторые аспекты её иммунопрофилактики. // Вестник хирургии им. Грекова. 1996. - Т. 155. - №5. - с. 104-105.
105. Н.Яковлев В.П., Светухин A.M. с соавт. Антимикробная терапия больных с гнойно-септическими заболеваниями в отделении интенсивной терапии. Хирургия. 1999. - №10. - с.29-34.
106. Яковлев Г.М., Новиков B.C., Хавинсон В.Х. Резистентность, стресс, регуляция. // Ленинград: Наука, 1990, с. 238.
107. Янов Ю.Н., Ерюхин И.А., Новиков А.Г., Актуальные проблемы эпидемиологии и профилактики послеоперационных инфекций. // Вестник хирургии им. Грекова. 1997. -т.156.№3. - с.106-109.
108. Ярема И.В., Мержвинский М.А., Шишло В.И. Метод лекарственного насыщения лимфатической системы. // Хирургия. 1999. - №1. - с. 1416.
109. Adawi D., Molin G., Jeppsson В. Inhibition of nitric oxide production and the effects of arginine and Lactobacillus administration in an acute liver injury model. Ann. Surg., 1998, Dec., 228(6), 748-755.
110. Alonge Т.О., Ogunlade S.O., Salawu S.A. et al. Microbial isolates in open fractures seen in the accident and emergency unit of a teaching hospital in a developing country. // West Afr J Med 2002 Oct-Dec;21(4):302-4.
111. Ameziane L., Daoudi A, Souhail MS et al. Coverage of tissue loss in the upper limb (ten cases). // Chir Main. 2003 Apr;22(2):95-8.
112. Antony S.J., Stratton C.W., Dummer J.S. Lactobacillus bacteremia: description of the clinical course in adult patients without endocarditis. Ibid 1996; 23:4: 773-778.
113. Aouizerate P., Guizard M. Creation de kits d"antibioprophylaxie chirurgicale: evaluation de Timpact sur les habitudes de prescription. // Therapie 2002 May-Jun;57(3):214-28.
114. Bang N.U., Kammer R.B. Hematologic complications, associated with {3-lactam antibiotics. Rev Infect Dis.l983;5: Suppl 2: 380-389.
115. Barana L., Gastaldo L., Maestri F. et al. Postoperative infection. A prospective analysis of 1396 cases. // Minerva Chir.-1992.-Vol. 47.:1177-87.
116. Barclay L. Perioperative Treatment With G-CSF Reduces Post-Op Infections. // Ann Surg. 2003;239:75-81.
117. Baughman R.P. Antibiotic resistance in the intensive care unit. // Curr Opin Crit Care 2002 Oct;8(5):43 0-4.
118. Berg R.D. Bacterial translocation from the intestines. // Jikken Dobutsu, 1985, Jan, 34(1), 1-16.
119. Berg R.D., Garlington A.W. Translocation of certain indigenous bacteria from the gastrointestinal tract to the mesenteric lymph nodes and other organs in a gnotobiotic mouse model. // Infect. Immun. 1979, Feb., 23(2), 403-11.
120. Bone R.C. Let's agree on terminology: definition of sepsis // Crit. Care. Med. 1991. - Vol.l9,№7. -p.973-976.
121. Bone R.C. Sir Isaac Newton, sepsis, SIRS, and CARS // Crit. Care. Med. -1996. Vol.24, - p.1125-1129.
122. Chiu F.Y., Lin C.F., Chen C.M. Cefuroxime-impregnated cement at primary total knee arthroplasty in diabetes mellitus. A prospective, randomised study. // J Bone Joint Surg Br 2001 Jul;83(5):691-5.
123. Cunney R.J., McNamara E.B., alAnsari N. et al. Community and hospital acquired Staphylococcus aureus septicaemia: 115 cases from a Dublin teaching hospital. J Infect 1996; 33: 1: 11-13.
124. Davey P., Napier A., McMillan J. Audit of antibiotic prophylaxis for surgical patients in three hospital trusts in Tayside. Tayside Area Clinical Audit Commitee. // Health Bull (Edinb) 1999 Mar;57(2):l 18-27.
125. Deeni Y.Y., Sadiq N.M. Antimicrobial properties and phytochemical constituents of the leaves of African mistletoe (Tapinanthus dodoneifolius
126. DC) Danser) (Loranthaceae): an ethnomedicinal plant of Hausaland, Northern Nigeria. // J Ethnopharmacol 2002 Dec;83(3):235-40.
127. Deitch E.A. Bacterial translocation: the influence of dietary variables. Gut., 1994 Jan, 35(1 Suppl), 23-27.
128. Edmiston C.E. Jr., Condon R.E. Bacterial translocation. Surg, Gynecol, Obstet. 1991, Jul,173(1), 73-83.
129. Esposito S, Novelli A, De Lalla F. Profilassi antibiotica in chirurgia: attualita e controversie. // Infez Med 2002 Sep;10(3):131-44.
130. Franlclin G.A, Moore K.B, Snyder J.W. et al. Emergence of resistant microbes in critical care units is transient, despite an unrestricted formulary and multiple antibiotic trials. // Surg Infect (Larchmt) 2002 Summer;3(2): 135-44.
131. Fridkin S.K, Lawton R, Edwards J.R. et al. Analysis of antimicrobial resistance among gram-negative bacilli and antimicrobial use in intensivecare unit patients for 5 years in a Veterans Affairs medical center. 11 Emerg Infect Dis 2002 Jul;8(7):702-7.
132. Gautreaux M.D., Deitch E.A., Berg R.D. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract to various segments of the mesenteric lymph node complex. Infect. Immun. 1994, May, 62(5), 2132-2134.
133. Gauzit R. Apport du linezolide dans le traitement des infections compliquees de la peau et des tissus mous. // Presse Med 2003 Apr 5;32(13 Pt 2):S17-20.
134. Giacometti A., Cirioni O., Greganti G. et al. Antiseptic compounds still active against bacterial strains isolated from surgical wound infections despite increasing antibiotic resistance. // Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2002 Jul;21(7):553-6.
135. Giacometti A., Cirioni O., Schimizzi A.M. et al. Epidemiology and microbiology of surgical wound infections. // J Clin Microbiol 2000 Feb;38(2):918-22.
136. Gillespie W., Walenkamp G. Antibiotic prophylaxis for surgery for proximal femoral and other closed long bone fractures. // Cochrane Database Syst Rev 2000;(2):CD000244.
137. Gillespie WJ, Walenkamp G. Antibiotic prophylaxis for surgery for proximal femoral and other closed long bone fractures. // The Cochrane Library, Issue 2 2003.
138. Gillespie WJ, Walenkamp G. Antibiotic prophylaxis for surgery for proximal femoral and other closed long bone fractures. // Cochrane Database Syst Rev. 2001;(1):CD000244.
139. Goldstein E.J. Anaerobic bacteremia. Clin Infect Dis 1996; 23: Suppl 1: 97101.
140. Gonzalez M.H., Jablon M., Weinzweig N. Open fractures of the hand. // J South Orthop Assoc 1999 Fall;8(3): 193-202.I
141. Grotz M.R., Deitch E.A., Ding J. et al. Intestinal cytokine response after gut ischemia: role of gut barrier failure. Ann. Surg. 1999, Apr., 229(4), 478486.
142. Hanssen A.D., Osmon D.R., The use of prophylactic antimicrobial agents during and after hip arthroplasty. // Clin Orthop 1999 Dec;(369):124-38.
143. Hayat M. Principles and Techniques of Electon Microscopy. Macmillian Press ltd, 1979, 469p.
144. Heineck I., Ferreira M.B., Schenkel E.P. Prescribing practice for antibiotic prophylaxis for 3 commonly performed surgeries in a teaching hospital in Brazil. // Am J Infect Control 1999 Jun;27(3):296-300.
145. Hoffman R.D., Adams B.D. Antimicrobial management of mutilating hand injuries. // Hand Clin 2003 Feb;19(l):33-9.
146. Hooper L.V., Gordon J.I. Commensal host-bacterial relationships in the gut. //Science 2001 May 11 ;292(5519): 1115-8.
147. Jarvis W.R., Martone W.J. Predominant pathogens in hospital infections. // J. Antimicrob. Chemother.-1992.-Vol.29, Suppl. A.: 19-24.
148. Jovanovic M, Janjic Z, Marie D. Principles of management of high-energy injuries of the leg. // Med Pregl. 2002 Sep-C)ct;55(9-10):437-42.
149. Kakkos S.K., Kirkilesis J., Scopa C.D. et al. Nonabsorbable antibiotics reduce bacterial and endotoxin translocation in hepatectomised rats. HPB Surg. 1997, 10(5), 283-289; discussion 289-291.
150. Kingston R., Kiely P., McElwain J.P. Antibiotic prophylaxis for dental or urological procedures following hip or knee replacement. // J Infect 2002 Nov;45(4):243-5.
151. Kirton О.С., 0"Neill P.A., Kestner M. et al. Perioperative antibiotic use in high-risk penetrating hollow viscus injury: a prospective randomized, double-blind, placebo-control trial of 24 hours versus 5 days. // J Trauma.2000 Nov;49(5):822-32.
152. Kustos Т., Kustos I., Kilar F. Effect of antibiotics on cell surface hydrophobicity of bacteria causing orthopedic wound infections. // Chemotherapy 2003 Sep;49(5):237-42.
153. Lemaire L.C. Bacterial translocation in multiple organ failure: cause or epiphenomenon still unproven. Br. J. Surg. 1997, Oct., 84(10), 1340-1350.
154. Levy I., Leibovici L., Drucker M. et al. A prospective study of Gram-negative bacteremia in children. Pediatr Infect Dis J 1996; 15:2: 117-122.
155. Linden P.K. Treatment options for vancomycin-resistant enterococcal infections. // Drugs 2002;62(3):425-41.
156. Lovering A.M., Zhang J., Bannister G.C. Penetration of linezolid into bone, fat, muscle and haematoma of patients undergoing routine hip replacement. // J Antimicrob Chemother 2002 Jul;50(l):73-7.
157. Manfredi R. Antibiotico-resistenza ed infezioni comunitarie. // Recenti Prog Med 2002 Mar;93(3):149-56.
158. Marr K.A., Sexton D.J., Conlon P.J. et al. Catheter-related bacteremia and outcome of attempted catheter salvage in patients undergoing hemodialysis. Ann Intern Med 1997; 127: 4: 275-280.
159. Mazza A. Ceftriaxone as short-term antibiotic prophylaxis in orthopedic surgery: a cost-benefit analysis involving 808 patients. // J Chemother 2000 Sep;12Suppl 3:29-33.
160. McDonald L.C., Yu H.T., Yin H.C. et al. Use and abuse of surgical antibiotic prophylaxis in hospitals in Taiwan. // J Formos Med Assoc China2001 Jan;100(l):5-1.
161. Mini E., Grassi F., Cherubino P. Preliminary results of a survey of the use of antimicrobial agents as prophylaxis in orthopedic surgery. // J Chemother 2001 Nov; 13 Spec No l(l):73-9.
162. Nakagawa Т., Yamane H., Takayama M. et al. Cycloheximide blocs the toxic effect of streptomycin on guinea pigs vestibular hair cells. Acta Otolaryngol./Stockholm 1998;Suppl 538:36-39.
163. Nichols R.L., Florman S. Clinical presentations of soft-tissue infections and surgical site infections. // Clin Infect Dis 2001 Sep 1;33 Suppl 2:S84-93.
164. Nielsen J., Kolmos H.J., Espersen F. Staphylococcus aureus bacteraemia among patients undergoing dialysis-focus on dialysis catheter-related cases. Nephrology, Dialysis, Transplantation 1998; 13: 1: 139-145.
165. Periti P., Mini E., Grassi F. et al. Profilassi antimicrobica della infezione chirurgica in ortopedia. Risultati della indagine epidemiologica promossa per ritalia dal Journal of Chemotherapy. // J Chemother 2000 Jul; 12 Suppl 2:28-38.
166. Postier R.G. Antibiotic-resistant organism infection. // Am Surg 2000 Feb;66(2):l 12-6.
167. Prokop A., Isenberg J., Seifert H. et al. Linezolid—ein neues Antibiotikum zur Behandlung von MRSA-Infektionen in der Unfallchirurgie? 2 Fallberichte. // Unfallchirurg 2002 Mar;105(3):287-91.
168. Rapp R.P. Overview of resistant gram-positive pathogens in the surgical patient. // Surg Infect (Larchmt) 2000;l(l):39-47.
169. Roberts G.J., Holzel H.S., Sure M.R. et al. Dental bacteremia in children. Pediatr Cardiol 1997; 18: 1: 24-27.
170. Rojczuk M., Tscherne H. Bedeutung der praklinischen Versorgung bei offenen Frakturen. // Unfallheikunde. 1982. - 85. - 2. - P.72-75.
171. Russell GV Jr, King C, May CG, et al. Once daily high-dose gentamicin to prevent infection in open fractures of the tibial shaft: a preliminary investigation. // South Med J. 2001 Dec;94(12):l 185-91.
172. Sawyer R.G., Raymond D.P., Pelletier S.J. et al. Implications of 2,457 consecutive surgical infections entering year 2000. // Ann Surg 2001 Jun;233(6):867-74.
173. Schwarz M., Isenmann R., Thomsen J. et al.Efficacy of oral ofloxacin for single-dose perioperative prophylaxis in general surgery—a controlled randomized clinical study. // Langenbecks Arch Surg 2001 Nov;386(6):397-401.
174. Scott K.P. The role of conjugative transposons in spreading antibiotic resistance between bacteria that inhabit the gastrointestinal tract. // Cell Mol Life Sci 2002 Dec;59(12):2071-82.
175. Shinagawa N., Aikawa N., Sekine K. et al. Bacteria isolated from surgical infections and its susceptibilities to antimicrobial agents—special references to bacteria isolated between April 2001 and March 2002. // Jpn J Antibiot 2003 Apr;56(2): 105-37.
176. Shoemaker N.B., Vlamakis H., Hayes K. et al. Evidence for extensive resistance gene transfer among Bacteroides spp. and among Bacteroides and other genera in the human colon. Appl Environ Microbiol 2001; 67: 561-568.
177. Simmen H.P., Largiader F. Basic aspect of the preventive use of antibiotics in general surgery. // Zentralbl. Chir.-1989.-Bd.l 14:1533-9.
178. Simpson B.M., Wilson R.H., Grant R.E. Antibiotic therapy in gunshot wound injuries. // Clin Orthop 2003 Mar;(408):82-5.
179. Steffen E.K., Berg R.D., Deitch E.A. Comparison of translocation rates of various indigenous bacteria from the gastrointestinal tract to the mesenteric lymph node. J. Infect. Dis. 1988, May, 157(5), 1032-1038.
180. Steinau F., Deja M., Wolf S. et al. Stellenwert immunnutritiver enteraler Ernahrung in der operativen Intensivmedizin. // Anaesthesist 2002 Oct;51(10):843-52.
181. Strom M.B., Rekdal O., Svendsen J.S. Antimicrobial activity of short arginine- and tryptophan-rich peptides. // J Pept Sci 2002 Aug;8(8):431-7.
182. Suzuki Т., Itoh К., Kaneko Т., Suzuki H. Inhibition of bacterial translocation from the gastrointestinal tract of mice by oral administration of a culture condensate of Bifidobacterium longum. J. Vet. Med. Sci. 1997, Aug., 59(8), 665-669.
183. Takayama M., Yamane H., Konishi K. et al. Induction of free radicals in the cochlea by an aminoglycoside antibiotics. Ibid. 1997;Suppl:528:19-24.
184. Tambe S.M., Sampath L., Modak S.M. In vitro evaluation of the risk of developing bacterial resistance to antiseptics and antibiotics used in medical devices. // J Antimicrob Chemother 2001 May;47(5):589-98.
185. Tegnell A., Grabowska K., Jacobsson . et al. Study of developed resistance due to antibiotic treatment of coagulase-negative Staphylococci. // Microb Drug Resist 2003 Spring;9(l):l-6.
186. Velmahos G.C., Jindal A., Chan L. Prophylactic antibiotics after severe trauma: more is not better. // Int Surg 2001 Jul-Sep;86(3): 176-83.
187. Weitz-Marshall A.D, Bosse M.J. Timing of closure of open fractures. // J Am Acad Orthop Surg 2002 Nov-Dec;l 0(6):379-84.
188. Wilson M.A. Skin and soft-tissue infections: impact of resistant gram-positive bacteria. // Am J Surg 2003 Nov 28; 186(5 Suppl 1):35-41.
189. Yalcin A.N, Serin S, Gurses E. Surgical antibiotic prophylaxis in a Turkish university hospital. // J Chemother 2002 Aug;14(4):373-7.
190. Zamilpa A, Tortoriello J, Navarro V. et al. Antispasmodic and antimicrobial diterpenic acids from Viguiera hypargyrea roots. // Planta Med 2002 Mar;68(3):281-3.
191. Zoutman D, Chau L, Watterson J. A Canadian survey of prophylactic antibiotic use among hip-fracture patients. // Infect Control Hosp Epidemiol 1999 Nov;20(l l):752-5.