Автореферат диссертации по медицине на тему Бактериальная транслокация при острой обтурационной непроходимости кишечника (экспериментальное исследование)
На правах рукописи
Круглянский Юрий Михайлович
Бактериальная транслокация при острой обтурационной непроходимости кишечника.
(экспериментальное исследование).
14.00.27 - хирургия.
АВТОРЕФЕРАТ
Диссертации на соискание учёной степени кандидата медицинских наук
Москва-2007
003068199
Работа выполнена в ГОУ ВПО Московской медицинской академии им. И.М. Сеченова и в Сургутском государственном университете Научный руководитель доктор медицинских наук,
профессор Александр Николаевич Афанасьев
Официальные оппоненты: доктор медицинских наук,
профессор Евгений Михайлович Липницкий
доктор медицинских наук,
профессор Нана Николаевна Хачатрян
Ведущая организация: Российский государственный
медицинский университет
Защита состоится « ^У» 2007 г. в ^^ часов на
заседании Диссертационного Совета Д.208.040.03 при ГОУ ВПО Московской медицинской академии им. И.М. Сеченова (119992, Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2).
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГОУ ВПО ММА им. И.М. Сеченова (117998, Москва, Нахимовский проспект, д. 49).
Автореферат разослан « / 2007 г.
Учёный секретарь Диссертационного Совета доктор медицинских наук,
профессор Александр Михайлович Шулутко
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ.
Актуальность темы. Прогноз исхода при острой непроходимости кишечника (ОНК) во многом определяется развитием гнойно-септических осложнений, которые при прогрессировании заболевания приобретают генерализованный характер [Дедерер Ю.М., 1971; Ерюхин И.А., Петров В.П., Ханевич М.Д., 1999; Vincent P., Colombel J.F., Lescut D. et al., 1988; Deitch E.A. 1994]. Даже в наше время, учитывая появление эффективных методов лечения, частота грозных осложнений и показатели летальности при ОНК не имеют стойкой тенденции к снижению. Причинами этого можно считать сложный механизм патогенеза заболевания, звенья которого влияют на жизненноважные системы и органы организма [Биккинеев Ф.Г., 1988; Белобородов В.Б., Джексенбаев О.Ш., 1991; Deitch Е.А., 1990,1992; Bone R.C., 1994; Morrison D.S., Bucklin S.E, 1995].
Тяжесть местной и системной воспалительной реакции во многом определяется синдромом энтеральной недостаточности, который является главной причиной эндогенной интоксикации, развития синдрома системного воспалительного ответа, абдоминального сепсиса, септического шока и полиорганной недостаточности [Бабаджанов Б.Д., 1990; Белокуров Ю.Н. и др., 1991; Попова Т.С. и др., 1991; Белобородов В.Б., 1997; Carneo C.J., Meakins J.L., Marshall J.L. et al., 1986; Cohen J., 1995; Lemaire L.C. et al., 1997; Balk R. 2000]. Развивающиеся критические нарушения водно-электролитного баланса, циркуляторная гипоксия кишечной стенки, дисбактериоз с проксимальной микробной колонизацией кишечника, активация реакций окислительного стресса, значительное нарушение антиоксидантной защиты, местного иммунитета и барьерной функции слизистой оболочки - вот лишь немногие из основных изменений, характеризующих этот симптомокомплекс [Попова Т.С. и др., 1991; Курыгин A.A., Ханевич М.Д., 1992; Гельфанд Б.Р. и др., 1996, 1997; Гаин Ю.М., Леонович С.И., Алексеев С.А. 2001; Богомолова H.H., 2002;
King C.E., Toskes P.P., 1979; Marshall J.C., Christou N.V., Meakins J.L., 1993; Deitch E.A., 1990, 1991, 1994]. В итоге создаются благоприятные условия для возникновения феномена «бактериальной транслокации», который является главным компонентом так называемого «сепсиса кишечного происхождения». При этом роль эндогенной микрофлоры является ведущей [Ерюхин И.А., Петров В.П., Ханевич М.Д., 1999; Брискин Б.С., Хачатрян H.H., 2001; Леванов A.B., 2001; Berg R.D., 1985, 1996, 1999; Deitch Е.А., 1989,1990,1994; Martinez J., 1993].
В этой связи, проводимая терапия направлена только на следствие патофизиологических нарушений, а наиболее важные патогенетические аспекты заболевания - внутрикишечная гипертензия, микробиологическая экосистема кишки, состояние её интрамурального кровотока, уровень депрессии со стороны иммунной системы слизистой, не всегда учитываются клиницистами, чем и можно объяснить известную неудовлетворённость результатами лечения [Абдулмеджидов А.Ю., Ахмадулинов М.Г., 1985; Агаев Б.А., Шугаоров М.А., 1986; Кочеровец В.И. и др., 1992; Липницкий Е.М. и др., 2003; Marshall J.C. et al., 1988, 1996; Mainous M.R. et al., 1993; Eleftheriadis E. et al. 1996]. Поэтому комплексное изучение факторов, приводящих к транслокации эндогенной микрофлоры из просвета кишки при ОНК, представляет значительный интерес для исследования. Необходимость экспериментального анализа причин нарушения кишечного барьера при непроходимости кишечника и развития бактериальной транслокации, как основного индуктора абдоминального сепсиса в этом случае, вытекает из запросов клиники. Вот почему эти исследования актуальны для раскрытия основных звеньев патогенеза бактериальной транслокации при одном из тяжелейших хирургических заболеваний органов брюшной полости - ОНК.
Цель исследования: Цель исследования заключается в комплексном изучении факторов, приводящих к бактериальной транслокации и их взаимосвязи в эксперименте на модели острой обтурационной
непроходимости кишечника, с последующим внедрением этих результатов в клиническую практику. Задачи исследования:
1. Изучить влияние внутрикишечной гипертензии на состояние интрамуральной гемоциркуляции и её роль в развитии циркуляторно-гипоксических нарушений кишечной стенки в зависимости от сроков ОНК.
2. Исследовать морфологические изменения в кишечной стенке, мезентериальных лимфатических узлах (МЛУ), печени и лёгких через 24, 48 и 72 ч от момента обтурации.
3. Оценить влияние свободно-радикальных реакций, состояние антиоксидантной системы кишечной стенки и роль ингибитора ксантиноксидазы на характер бактериальной транслокации и проницаемость эпителиального кишечного барьера.
4. Изучить интенсивность бактериальной транслокации и определить видовой и количественный состав микроорганизмов в кишечной стенке, МЛУ, печени, лёгких, крови и перитонеальном экссудате в зависимости от сроков эксперимента.
5. Исследовать состояние местного иммунитета в кишечной стенке, МЛУ и ретикулозндотелиальной системы печени.
Научная нопизпа работы: Разработана экспериментальная модель тракслокации бактерий из кишечника в МЛУ, печень, лёгкие, кровеносное русло и перитонеальный экссудат при острой механической непроходимости кишечника. Изучена динамика роста внутрикишечного давления в тонкой и толстой кишке и влияние его на интрамуральную гемоциркуляцию. Определены закономерности бактериальной транслокации в кишечную стенку, мезентериальные лимфатические узлы, печень, лёгкие, а также инфицирование крови и перитонеального экссудата у животных с тонко- и толстокишечной непроходимостью в динамике патологического процесса. Произведена комплексная оценка видового и количественного состава микроорганизмов, обнаруженных в
лимфатических узлах брыжейки, печени, лёгких, крови и перитонеальном экссудате. Исследован характер реакций перекисного окисления липидов (ПОЛ), активность ксантиноксидазы, как основного прооксидантного метаболита кишечной стенки и их влияние на бактериальную транслокацию.
Теоретическая и практическая значимость: На модели механической обтурационной непроходимости кишечника уже через сутки после начала эксперимента была выявлена инфицированность МЛУ, портальной крови и ткани печени. При прогрессировании патологического процесса наблюдается тенденция к системному распространению инфекции. Эти обстоятельства имеют важное клиническое значение для определения верной тактики лечения и профилактики системных гнойно-септических осложнений. Результаты бактериологических методов исследования указывают на приоритет контаминации тканей и биологических жидкостей грамотрицательной флорой, что должно учитываться в клинике при назначении рациональной антибактериальной терапии. Внедрение результатов исследования: Основные положения работы используются в учебном и лечебном процессах в клинике общей хирургии ММА им. И.М. Сеченова и ГКБ № 23 им. Медсантруд. Положения, выносимые на защиту:
1. Нарушение проницаемости эпителиального кишечного барьера является главной причиной бактериальной транслокации при ОНК. Патоморфологические изменения барьерной функции слизистой оболочки тонкой кишки происходят раньше и они более выраженные, чем в толстой кишке.
2. На целостность слизистой оболочки кишки негативно воздействуют несколько факторов - внутрикишечная гипертензия, инициирующая циркуляторно-гипоксические расстройства, активация реакций ПОЛ, при этом основная роль здесь отводится ксантиноксидазе, с одновременной депрессией антиоксидантной системы, токсическому воздействию
бактериальных токсинов и лизосомальных ферментов нейтрофилов, нарушение системы местного иммунитета кишечной стенки.
3. Аллопуринол, как ингибитор ксантиноксидазы способен снижать интенсивность бактериальной транслокации.
4. Чаще процессу транслокации подвергались микроорганизмы из семейства Ег^егоЬа^епасеае.
5. Бактериальная транслокация при острой непроходимости кишечника является главным индуктором системного распространения инфекта, развития синдрома системного воспалительного ответа, абдоминального сепсиса, полиорганной дисфункции.
Апробация диссертации: состоялась на кафедре общей хирургии ММА им. И. М. Сеченова на базе ГКБ № 23 им. «Медсантруд». Материалы исследования были представлены на медицинском факультете СурГУ в 2005, на Всероссийском научном форуме «Хирургия 2005» и на научно-практической конференции в г. Твери (декабрь 2006). По теме диссертации опубликовано 8 научных работ.
Объём н структура работы: Диссертация состоит из введения, обзора литературы, 4 глав собственных исследований, заключения, выводов, практических рекомендаций и указателя литературы. Работа изложена на 162 страницах машинописного текста, иллюстрирована 44 рисунками, содержит 18 таблиц. Библиография включает 254 источника, из них 146 отечественных и 108 иностранных.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ. Для выполнения поставленных задач было проведено восемь серий экспериментов на 92 половозрелых кроликах обоего пола весом от 2500 до 4000 гр. Оперативные вмешательства и выведение животных из эксперимента выполнены под наркозом с соблюдением «Правил проведения эксперимента на животных. Использовали ингаляционный масочный эфирный наркоз.
Всех кроликов мы разделили на три группы. I группа с тонкокишечной непроходимостью (п=36), II группа - с толстокишечной (п=36). Каждая из этих двух групп была подразделена на 3 подгруппы - А, В, С, численностью 10 животных в подгруппе А, 12 животных в подгруппе В и 14 - в подгруппе С. В подгруппу А входили животные с 24 ч непроходимостью, в подгруппу В - с 48 ч ОНК, в подгруппу С - с 72 ч острой механической непроходимостью кишечника. В III контрольной группе животных - D (п=10) моделирование обтурационной непроходимости кишечника не выполнялось.
После обработки операционного поля с соблюдением правил асептики животным выполнялась срединная лапаротомия. В I группе кроликов строго у брыжеечного края подвздошной кишки без вовлечения в патологический процесс брыжейки проводили лигатуру, накладывали кисетный шов, который затягивали до создания обтурации. Во II группе животных таким же образом моделировалась толстокишечная обтурационная непроходимость в дистальном отделе толстой кишки. Брюшная стенка послойно ушивалась наглухо. Релапаротомии выполнялись через 24 ч в подгруппах А, через 48 ч в подгруппах В, через 72 ч - в подгруппах С. Кроме того, мы создали подгруппу (восьмую) животных - Alio (п=10). Кроликам в этой подгруппе в течение 3 сут до проведения эксперимента мы давали аллопуринол per os из расчёта 50 мг/кг в сут. После этого приступали к моделированию 72-х часовой тонкокишечной непроходимости по отработанной схеме. Срок обтурации нами выбран из-за наибольшей степени патобиохимических и гистологических изменений в кишечной стенке. Тонкая кишка нами была выбрана из-за высокой концентрации ксантиноксидазы в слизистой последней.
1. Для исследования внутрикишечной гипертензии и интрамуральной гемоциркуляции кишечной стенки мы использовали устройство для
измерения внутрикишечного давления (ВКД), разработанное В.В. Дарвиным [1996], принцип работы которого основан на изменении освещённости фоторезистора при нарастании внешнего избыточного давления, что регистрируется контрольно-измерительным прибором, шкала которого проградуирована в мм рт.ст. Интрамуральное артериальное и венозное давление измеряли по модифицированному методу М.З. Сигала [1980]. Регистрировали максимальное артериальное давление при появлении пульсирующей струи крови в контурированном сосуде. Минимальное артериальное давление фиксировалось, когда просвет артериального сосуда полностью восстанавливался. Интрамуральное венозное давление регистрировалось после того, как заполнялась соответствующая вена. Ангиоархитектонику желудочно-кишечного тракта изучали методом прижизненной трансиллюминационной ангиоскопии.
2. Для определения реакций свободного радикального окисления в слизистой оболочке тонкой и толстой кишки исследовали уровень диеновых конъюгат, малонового диальдегида и активность ксантиноксидазы. Состояние антиоксидантной системы (АОС) оценивали на основании активности ферментов супероксиддисмутазы (СОД) и каталазы. Прижизненный забор слизистой оболочки тонкой и толстой кишки осуществлялся во время релапаротомии. Ткани исследовали методом электронно-парамагнитного резонанса на радиоспектрометре «Радиометр R - 1307» (Россия). ПОЛ определялось путём измерения активного вещества тиобарбитуровой кислоты в наномолях с малональдегидом в качестве стандарта. Активность измерялась в наномолях на 1 гр ткани. Для промежуточных продуктов липопероксидации активность измерялась в наномолях на мг в минуту. Активность ксантиноксидазы определяли адаптированным методом Parks [Parks D.A. 1986]. Активность каталазы определяли по методу Aebi [Aebi Н., 1984]. Активность фермента СОД измеряли по методу McCord et Fridovich [McCord J.M., Fridovich I., 1969]
3. Для проведения морфологических, морфометрических и гистобактериоскопических исследований фрагменты стенки кишки, МЛУ, внутренних органов фиксировали в 10% нейтральном растворе формалина. После обезвоживания в спиртах восходящей концентрации материал заливали в парафин по общепринятой схеме. Парафиновые срезы толщиной 5-7 мкм окрашивали гематоксилином и эозином для морфологического и морфометрического исследования и по Романовскому-Гнмзе для бактериоскопического исследования.
4. Для исследования транслокации в экстраинтестиналькые органы фрагменты МЛУ, печени, лёгких и селезёнки гомогенизировали, полученную взвесь сеяли на чашки Петри. Любой рост культур принимали за бактериальную транслокацию. В дальнейшем выделяли чистые культуры и проводили их видовую идентификацию по Берджи [1997]. Исследуемый материал смотрели под микроскопом в мазках, окрашенных по Граму и в нативных препаратах для изучения морфологии микроорганизмов. Культивирование портальной и системной крови проводили на жидких обогащенных питательных средах для прямого посева крови, полужидкой среде Тароцци для выявления анаэробной флоры, средах Haemoline Performance фирмы bioMerieux (Франция). При появлении роста на гемосредах, делали мазки, окрашивали их по Граму и производили высевы на соответствующие селективные питательные среды с последующей идентификацией. Во время релапаротомии производили посез перитонеального экссудата. Для транспортировки материала использовали стерильные герметичные флаконы с транспортной средой Amies. Далее засеивали материал на чашки Петри с 5% кровяным агаром к при наличии роста культур производили морфологическую и тинкториальную идентификацию в мазках, окрашенных по Граму. После микроскопического исследования сеяли материал на плотные селективные питательные среды. Для выращивания аэробных микроорганизмов чашки помещали в термостат при температуре 37 С на 24-72 часа.
Культивирование анаэробных микроорганизмов производили в анаэростатах, в которые предварительно помещали газогенераторные пакеты с катализатором BioMerieux (Франция).
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.
1). Влияние внутрикишечной гипертензии на интрамуралъную гемоииркуляиию при острой непроходимости кишечника.
Результаты внутриполостной тонометрии и трансиллюминационной ангиотензометрии показали, что в группе животных с тонкокишечной непроходимостью в подгруппе А максимальное интрамуральное артериальное давление равняется 68.5+3.6 мм рт.ст., минимальное артериальное давление - 39.0+2.8 мм рт.ст., а интрамуральное венозное давление было на уровне 22.4+2.2 мм рт.ст. (р<0.05). При этом, внутрикишечное давление равнялось 9.6+0.3 мм рт.ст. У животных в подгруппе В максимальное интрамуральное артериальное давление (далее - max. ИАД) было 57.0+3.1 мм рт.ст., минимальное интрамуральное артериальное давление (далее - min. ИАД) составляло 28.1+2.3 мм рт.ст., интрамуральное венозное давление (ИВД) - 25.3+1.8 мм рт.ст. (р<0.03). При этом, внутрикишечное давление (ВКД) равнялось 13.7+0.6 мм рт.ст. При 72 ч непроходимости шах. ИАД - 42.3+2.5 мм рт.ст., min. ИАД 21.2+2.0 мм рт.ст., а ИВД составило 29.6+1.9 мм рт.ст. (р<0.05). При этом ВКД было - 18.4+0.8 мм рт.ст. В контрольной группе животных max. ИАД составило 75.0+2.1 мм рт.ст., min. ИАД - 45.0+2.6 мм рт.ст, ИВД - 20.5+1.8 мм рт.ст. (р<0.02).
При толстокишечной непроходимости в подгруппе А шах. ИАД составило 54.7+3.4 мм рт.ст., min ИАД - 31.6+3.2 мм рт.ст., ИВД - 17.7+2.1 мм рт.ст (р<0.05). При показателях ВКД - 8.6+0.3 мм рт:ст. В подгруппе В max. ИАД равнялось - 40.8+2.6 мм рт.ст., min. ИАД - 21.6+1.7 мм рт.ст., а ИВД - 20.6+1.4 мм рт.ст. (р<0.01) при значениях ВКД 16.2+0.9 мм рт.ст. В
подгруппе С max. ИАД было 30.8+2.5 мм рт.ст., min ИАД - 20.5+2.8 мм рт.ст, а ИВД составило - 23.5+2.2 мм рт.ст. (р<0.03). При этом, внутрикишечная гипертензия достигала значения 26.3+1.0 мм рт.ст.
Показатели максимального интрамурального артериального давления в контрольной группе были на цифрах 60.0+3.2 мм рт.ст., минимального интрамурального артериального давления - 37.5+2.4 мм рт.ст., а интрамурального венозного давления - 16.0+1.8 мм рт.ст. (р<0.05).
Таким образом, результаты внутрикишечной тонометрии демонстрируют рост ВКД при прогрессировании сроков ОНК. По нашим данным, через 72 ч ВКД в тонкой кишке превышает контрольные величины в 13 раз, а в толстой - в 14 раз. Внутрикишечная гипертензия (ВКГ) является - инициирующим фактором . в развитии деструктивных -изменений кишечной стенки, связанных с гипоперфузией органа. По данным ангиотензометрии было выявлено, что при прогрессировании ВКГ и сроков эксперимента соответственно, происходит неуклонное снижение ИАД и рост ИВД.
Возникающие гемодинамические нарушения в обеих группах при постоянно нарастающей ВКГ иллюстрируют проявление циркуляторной гипоксии и ишемии кишечной стенки, что в итоге приводит к нарушению целостности эпителиального барьера.
2). Механизмы реакций окислительного стресса и антиоксидантная система слизистой оболочки тонкой и толстой кишки.
В обеих группах животных происходит активное накопление продуктов ПОЛ в кишечной стенке (табл. 1). При прогрессировании сроков непроходимости возрастала активность ксантиноксидазы, причём при тонкокишечной обтурации активность фермента через 72 ч в слизистой оболочке была выше в 22.5 раз по сравнению с толстокишечной непроходимостью, что может говорить о высоком напряжении процессов пероксидазного катализа в слизистой оболочке тонкой кишки (табл. 2).
Таблица 1. Содержание продуктов ПОЛ в слизистой оболочке тонкой и толстой кишки при непроходимости кишечника.
Тонкокишечная Толстокишечная
Время после непроходимость непроходимость
Подгруппы создания Малоновый Диеновые Малоновый Диеновые
животных обтурации диальдегид конъюгаты диальдегид конъюгаты
(в часах) нмоль/г нмоль/мг нмоль/г нмоль/мг
ткани (М+ш) мин (М±т) ткани (М±т) мин (М±т)
А 24 26.4+1.1 18.3 + 1.5 12.4 ±1.2 4.0 ±0.9
В 48 31.7 + 0.9 24.2 ±1.4 16.2 ±1.5 5.9 ±1.8
С 72 56.8+1.7 44.6 ±1.2 18.1 + 1.7 7.9 ± 1.3
Группа О контроль 9.6 ±1.2 4.2 + 0.7 4.7 ±1.1 1.8 ±0.6
Таблица 2. Активность кСантиноКсидазы в слизистой оболочке тонкой и толстой кишки при острой обтурационной непроходимости.
Время после Активность Активность
Подгруппы создания обтурации ксантиноксидазы в ксантиноксидазы в
ЖИВОТНЫХ (в часах) тонкой кишке толстой кишке
мЕ/г (М±т) мЕ/г (М±т)
А 24 55.6 ±0.9 2.4 ±0.4
В 48 79.2 ±3.1 3.1 ±0.3
С 72 121.7 ±4.6 5.4 ±0.2
ГруппаЭ контроль 23.9 ±0.4 1.7 ±0.2
Интересная закономерность прослеживается при анализе системы антиоксидантной защиты в слизистой оболочке тонкой и толстой кишки. В подгруппах А через 24 ч имеется достоверное увеличение показателей каталазы и СОД по сравнению с контрольной группой, что указывает на компенсаторную функцию антиоксидантной системы и адекватность антиоксидантных адаптационных реакций, при прогрессировании сроков эксперимента до 48 и особенно 72 ч происходит неуклонное снижение показателей ферментов АОС, что говорит о несостоятельности антиоксидантной защиты клеток и необратимости ишемического повреждения клеток продуктами ПОЛ (табл. 3).
Подгруппы животных Время после создания обтурации (в часах) Тонкокишечная непроходимость Толстокишечная непроходимость
Катализа мЕ/г (М+т) СОДмЕ/г (М+т) Каталаза мЕ'г (М+т) СОДмЕ/г (М+т)
А 24- 19.6 + 0.4 57.5 +1.1 12.3 + 0.7 28.7 ±1.2
в 48 14.S + 0.4 30.9 + 0.9 8.4 + 0.6 16.3 ±1.1
с 72 4.3 ±0.2 11.7 ±0.6 2.1+0.2 4.5 ±0.3
Группа D контроль 13.2 + 0.6 34.8+1.2 7.6 + 0.5 16.9 ±0.4
Заметно отличается активность КСО в подгруппе Alio. Оказалось, что активность ксантиноксидазы в слизистой оболочке у животных, получавших аллопуринол в пред- и послеоперационном периоде снижается на 56.9% по сравнению с подгруппой животных, не получавших аллопуринол что в количественном соотношении составило 52.4+2.6 мЕ/г и 121.7+4.6 мЕ/г (р<0.05). Содержание МДА и ДК з подгруппе Alio также достоверно снижалось на 44.7% и 61.2% соответственно по сравнению с подгруппой С (р<0.02).
Итак, полученные результаты свидетельствуют о выраженных изменениях в системе ПОЛ-АОС. В динамике патологического процесса возрастает активность реагадш ПОЛ, КСО в кишечной стенке, с одновременной депрессией АОС, что характеризует ишемическое повреждение кишечной стенки продуктами перокеидации и обуславливает нарушение целостности кишечного барьера. Антиоксидантные ферменты через 24 ч от начала эксперимента достоверно превышают контрольные величины, что может говорить о мобилизации антиоксидантной, цитопротективной системы в ответ на ишемическое повреждение, однако уже через 48 ч эти компенсаторные реакции нивелируются, прогрессивно снижаясь к 72 ч. При ингибировании КСО с помощью ашгопуринола можно добиться снижения активности реакций ПОЛ и стабилизации барьерной функции слизистой оболочки.
3). Морфологические исследования кишечной стенки и внутренних органов при острой непроходимости кишечника.
При гистологическом исследовании стенки тонкой кишки через 24,48 и 72 ч обнаружена картина острого энтерита. При исследовании через 72 ч обнаружены резкие некротические изменения слизистой оболочки (СО). При прогрессировании патологического процесса было выявлено уменьшение высоты ворсинок и глубины крипт. Увеличивается степень инфильтрации собственной пластинки и межкриптального пространства нейтрофилами. В составе СО снижается количество межэпителиальных лимфоцитов, зрелых и незрелых плазмоцитов, макрофагов.
При гистологическом исследовании стенки толстой кишки через 24, 48 и 72 ч у всех животных обнаружена картина острого колита. Некротические изменения поверхностного отдела СО у животных возникли через 72 часа. При увеличении сроков непроходимости снижается глубина крипт, количество бокаловидных клеток, число митозов на крипту. Увеличивается клеточная плотность инфильтрата, число лимфоцитов в поверхностном эпителии крипт, возрастает количество зрелых и незрелых плазмоцитов, макрофагов.
При гистологическом исследовании МЯУ выявлена повышенная реакция лимфоцитов и плазмоцитов в лимфоидных фолликулах, отёк стромы мозгового вещества и уменьшение ширины корковой части. При увеличении сроков обтурации обнаруживается резкая септическая реакция, стаз в сосудах МЦР, редукция клеточных элементов лимфоидной ткани.
В печени была выявлена гидропическая дистрофия гепатоцитов с перипортальной гистиолимфоцитарной инфильтрацией. Значительная реакция купферовских клеток. При прогрессировании непроходимости выявляется тотальная баллонная дистрофия гепатоцитов с очагами фокального колликвационного некроза и перифокальной инфильтрацией нейтрофилами и лимфоцитами. Купферовские клетки с резкой реакцией и гипертрофией ядер.
В ткани лёгких в интерстиции отдельные очаги пневмонии и периваскулярная инфильтрация лимфоцитами. На более поздних сроках -множественные кровоизлияния и сливные множественные очаги интерстициальной пневмонии. Вокруг сосудов в межальвеолярных перегородках - скопления нейтрофилов.
Таким образом, данные морфологических и морфометрических исследований кишечной стенки и внутренних органов демонстрируют сначала компенсаторные, а затем и необратимые изменения кишечного барьера, грубые структурные нарушения, происходящие в МЛУ, печени и лёгких. Помимо морфологических изменений в кишечной стенке и внутренних органах, возникающие иммунные нарушения эпителиального кишечного барьера, МЛУ, печени приводят к транслокации эндогенной микрофлоры в экстраинтестинальные органы и через стенку кишки.
4). Результаты исследования видового и количественного состава микрофлоры при бактериальной транслокаиии во внутренние органы, кровь и перитонеальный экссудат. а). Мезентериальные лимфатические узлы: При тонкокишечной обтурации в подгруппе А инфицированность МЛУ составила 60%. При увеличении сроков обтурации до 48 и 72 ч бактериальная транслокация в МЛУ наблюдалась у всех животных и достигала 100%. При толстокишечной непроходимости в подгруппе А бактериальная транслокация в МЛУ наблюдалась в 44.4%, в подгруппе В - в 55.6%, а при прогрессировании моделируемой патологии до 3 суток транслокация в МЛУ была обнаружена у всех животных, что составило 100%.
б). Печень: У кроликов с 24 ч тонкокишечной непроходимостью транслокация бактерий в печень была обнаружена в 40%. При увеличении срока эксперимента до 2 сут инфицированность паренхимы печени была отмечена уже у 70% животных, а при 72 часовой непроходимости - в 90%
случаев. У кроликов II группы в подгруппе А транслокация в печень составила 22.2%, у животных подгруппы В бактериальная транслокация выявлена уже в 55.6% наблюдений, а при увеличении обтурации до 72 ч (подгруппа С) микроорганизмы культивировались из печени у всех животных - в 100%.
в). Лёгкие: Ни одного случая роста культур бактерий мы не обнаружили в подгруппах А. У кроликов с 48 ч тонкокишечной обтурацией бактериальная транслокация в лёгкие была обнаружена только в 20%. При увеличении сроков непроходимости до трёх суток количество животных с положительным ростом бактериальных культур возрастало до 30%. Во второй группе животных только у двух из девяти особей в подгруппе В выявлена бактериальная транслокация в лёгкие, что составило 22.2%. При прогрессировании обтурации до 3-х суток частота транслокации микрофлоры в лёгкие возрастает в два раза и составляет уже 40%.
г). Селезёнка: В подгруппах А бактериального роста из ткани нами не было получено. В первой группе при прогрессировании сроков эксперимента были получены положительные культуры ткани селезёнки в 30% случаев при двух и трёх суточной обтурации. Характер и частота БТ в селезёнку по сравнению с транслокацией в лёгкие не претерпевают существенных изменений при толстокишечной непроходимости. При 48 ч непроходимости транслокация микрофлоры выявлена в 22.2%, а при 72 ч -у 40% кроликов.
Видовой состав микрофлоры представлен в табл. 4,5.
д). Портальная кровь: У животных первой группы в подгруппе А портальная бактериемия была обнаружена у 4 животных (40%), в подгруппе В - у 7 животных (70%), в подгруппе С микроорганизмы были обнаружены в портальном русле уже у всех 10 животных, что составило 100%. При толстокишечной непроходимости в подгруппе А бактерии
выделены из крови у 2 животных (22.2%), в подгруппе В уже у 4 (44.4%), а в подгруппе С портальная бактериемия определялась у 10 животных, что составило 100%. В отличие от сравниваемой подгруппы С, где бактериемия была выявлена в 100% случаев, у животных подгруппы Alio, бактерии в портальной крови были обнаружены только в 44.4%
е). Системная кровь: В подгруппах А во всех случаях системная кровь была стерильной, а в подгруппах В и С бактерии в системном кровотоке были выявлены в 20% в каждой подгруппе при тонкокишечной обтурации. Во второй группе животных при увеличении сроков обтурации до двух суток инфицированность артериальной крови была выявлена в 22.2%, а при трёх суточной непроходимости эта цифра увеличивается вдвое - бактериемия выявлена уже у 4 животных, что составило 40%. В подгруппе Alio мы также не получили роста бактерий в системной крови ни в одном случае.
ж). Перитонеальный экссудат: Через 24 ч от создания тонкокишечной обтурации положительный рост был получен в 30%, через 48 ч инфицированность экссудата определяется уже у 50% животных, а в подгруппе С - в 90% наблюдений. При 24 ч толстокишечной непроходимости инфицирование брюшной полости выявлено в 22.2% наблюдений. При увеличении сроков эксперимента до двух суток микроорганизмы обнаруживались в перитонеальном экссудате в 44.4%, а в подгруппе С - у всех десяти кроликов (100%). В подгруппе животных, получавших аллопуринол (Alio), микроорганизмы обнаружены в перитонеальном экссудате в 55.6%, что почти в два раза меньше по сравнению с подгруппой С.
Видовой состав микрофлоры представлен в табл. 6,7.
У животных подгруппы С, не получавших аллопуринол, инфицированность МЛУ была в 100% случаев, а печени - в 90%, у
животных же подгруппы Alio, которые получали аллопуринол, бактериальная транслокация в МЛУ была обнаружена только в 55.6%, печень - 33.3%.
Таблица 4. Бактериальная транслокация при тонкокишечной обтурации во всех
подгруппах с учётом ассоциации микроорганизмов в колониях.
Микроорганизмы Тонкокишечная обтурация n (%)
МЛУ Печень Лёгкие Селезёнка
Escherichia coli 17 (65.4) 14 (70) 3(60) 3(50)
Klebsiella spp. 4 (15.4) 3 (15) 1(20) 2 (33.3)
Proteus mirabilis 3(11.5) 3(15) 0(0) 0(0)
Enterobacter cloacae 2 (7.7) 1(5) 0(0) 0(0)
Citrobacter spp. 2 (7.7) 2(10) 0(0) 0(0)
Enterococcus faecalis 5 (19.2) 4(20) 1(20) 1 (16.7)
Bacteroides fragilis 6 (23.1) 4(20) 1(20) 1 (16.7)
Clostridium perf. 1 (3.9) 0(0) 0(0) 0(0)
Staphylococcus aureus 3(11.5) 2(10) 0(0) 0(0)
Pseudomonas aeruginosa 3(11.5) 2(10) - 0 (0) 1 (16.7)
Таблица 5. Бактериальная транслокация при толстокишечной обтурации во всех
подгруппах с учётом ассоциации микроорганизмов в колониях.
Микроорганизмы Толстокишечиая обтурация n (%)
МЛУ Печень ЛЬгкие Селезёнка
Escherichia coli 13 (68.4) 10(58.9) 3(50) 3(50)
Klebsiella spp. 3(15.8) 2(11.8) 1 (16.7) 1 (33.3)
Proteus mirabilis 3(15.8) 2(11.8) 0(0) 0(0)
Enterobacter cioacse 3(15.8) 2(11.8) 0(0) 0(0)
Citrobacter spp. 1 (5.3) 0(0) 0(0) 0(0)
EnterocKcra faecalis 4(21.1) 4(23.5) 0(0) 1 (16.7)
Bacteroid«s frapüs 7 (36.9) 6(35.3) 2 (33.3) 2(33.3)
Clostridium perf. 2(10.5) 1(5.9) 0(0) 0(0)
Staphylococcus aureus 2(10.5) 3(17.7) 0(0) 0(0)
Pseudomonas aeruginosa 4(21.1) 4(23.5) 1 (16.7) 1 (16.7)
Бактериального роста культур из лёгких и селезёнки в подгруппе Alio не было обнаружено ни в одном случае. Напротив, у животных подгруппы С транслокация в лёгкие и селезёнку была в 30%.
Таблица 6. Бактериальная транслокация в кровь и перитонеальный экссудат при
тонкокишечной обтурации во всех подгруппах животных.
Тонкокишечная обтурация n (%)
Микроорганизмы Портальная кровь Системная кровь Перитонеальный экссудат
Escherichia coli 8(38.1) 2(50) 4 (23.5)
Klebsiella spp. 2 (9.5) 0(0) 2(11.8)
Proteus mirabilis 3 (14.3) 0(0) 1 (5.9)
Enterobacter
cloacae 2(9.5) 0(0) 1 (5.9)
Citrobacter spp. 1 (4.8) 0(0) 1 (5.9)
Enterococcns..... -. - . ..... . „ .
faecalis 3 (14.3) 1(25) 2(11.8)
Bacteroides
fragilis 5(23.8) 1(25) 4(23.5)
Clostridium perf. 1 (4.8) 0(0) 1 (5.9)
Staphylococcus aureus 2(9.5) 0(0) 1 (5.9)
Pseudomonas
aeruginosa 3 (14.3) 1(25) 3 (17.7)
Таблица 7. Бактериальная транслокация в кровь и перитонеальный экссудат при
толстокишечной обтурации во всех подгруппах животных.
MirepooprainaMti Толстокишечная обтурация n (%)
Портальная кровь Системная кровь Перитонеальный экссудат
Escherichia coli 5(31.3) 3(50) 4(25)
Klebsiella spp. 1 (6.3) 1 (16.7) 1(6.3)
Proteus mirabilis 2 (12.5) 0(0) 1 (6.3)
Enterobacter cloacae 1 (6.3) 0(0) 0(0)
Citrobacter spp. 1 (6.3) 0(0) 0(0)
Enterococcus faecalis 2 (12.5) 2 (33.3) 3 (18.8)
Bacteroides fragilis 4(25) 2(33.3) 5(31.3)
Clostridium perf. 1 (6.3) 0(0) 1 (6.3)
Staphylococcus aureus 2 (12.5) 0(0) 2 (12.5)
Pseudomonas aeruginosa 2(12.5) 1 (16.7) 2 (12.5)
Итак, в обеих группах животных была выявлена бактериальная транслокация в органы, кровь и перитонеальный экссудат, причём с увеличением сроков непроходимости расширяется видовой и количественный состав высеваемой микрофлоры. Среди микроорганизмов наиболее часто высеивалась кишечная палочка. В контрольной группе транслокации микроорганизмов не отмечено.
Аллопуринол, ингибируя активность КСО, согласно нашим результатам, способен снижать интенсивность бактериальной транслокации.
ВЫВОДЫ
1. Прогрессирующая внутрикишечная гипертензия является пусковым фактором, вызывающим ухудшение интрамуральной перфузии и микроциркуляции. Через 72 ч ишемические изменения слизистой и нарушение микроциркуляции в стенке тонкой кишки регистрируются при более низких цифрах ВКД - 18.4+0.8 мм рт.ст., чем в стенке толстой -26.3+1.0 мм рт.ст.
2. При тонкокишечной непроходимости ВКД через 24, 48 и 72 ч увеличивается соответственно в 6.9, 9.8 и 13.1 раз, что приводит к снижению максимального ИАД на 8.7%, 24% и 43.6%, характеризующего циркуляторную ишемию и увеличению ИВД, свидетельствующего о нарушении венозного оттока на 9.3%, 23.4% и 44.4% соответственно по сравнению с контролем. При обтурации толстой кишки давление в ней через 24, 48 и 72 ч увеличивается соответственно в 4.5, 8.5 и 13.8 раз, со снижением максимального ИАД на 8.8%, 32% и 48.7% и увеличением ИВД на 10.6%, 30.6% и 46.9%.
3. В патогенезе ишемического повреждения кишечной стенки важное значение имеет активация процессов перекисного окисления липидов и снижение активности антиоксидантной системы. Одним из основных
генераторов ПОЛ в стенке тонкой кишки является ксантиноксидаза, значение которой через 24,48 и 72 ч увеличивается на 133%, 231% и 409% соответственно. Активность последней в тонкой кишке в 22.5 раз выше, чем в толстой, что приводит к более ранним и выраженным ишемическим повреждениям тканей. После компенсаторного увеличения активности основных ферментов антиоксидантной системы через 24 ч, происходит прогрессирующее снижение их активности через 48 и 72 ч.
4. Аллопуринол приводит к снижению активности ксантиноксидазы в тонкой кишке через 72 ч на 56.9%, что способствует стабилизации барьерной функции слизистой оболочки и снижению бактериальной траислокации в мезентериальные лимфатические узлы на 44.4%, печень -56.7%, портальную кровь и перитонеальный экссудат на 55.6% и 34.4% соответственно.
5. Основной причиной бактериальной транслокации является нарушение целостности эпителиального кишечного барьера, которое развивается уже через 24 ч, с инфицированием мезектериальных лимфатических узлов, портальной крови и печени в обеих группах животных. С увеличением сроков непроходимости до 72 ч расширяется видовой и количественный состав микроорганизмов в качестве микробных ассоциаций, при этом необратимые морфологические изменения слизистой оболочки кишки приводят к поступлению бактерий в кишечную стенку, перитонеальный экссудат, кровеносное и лимфатическое русло, внутренние органы. Наиболее часто культивировались микроорганизмы семейства ЕЩего'оа^еласеае. При толстокишечкой непроходимости частота траислокации облигатных анаэробов выше, чем при тонкокишечной обтурации.
6. Процессу транслокации микрофлоры способствует прогрессирующий дефицит и несостоятельность гуморального и клеточного местного иммунитета тонкой кишки, мезектериальных лимфатических узлов и ретикулоэндотелиальной системы печени. При
тонкокишечной обтурации происходит постепенное снижение количества незрелых и зрелых плазмоцитов, макрофагов. Напротив, при толстокишечной непроходимости наблюдается увеличение активности клеток местной иммунной системы. Несостоятельность барьерной функции звёздчатых ретикулоэндотелиоцитов печени может знаменовать собой переход воспалительного процесса на системный уровень, развитие синдрома системного воспалительного ответа и абдоминального сепсиса.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. Учитывая, что нарушение целостности эпителиального барьера и развитие бактериальной транслокации через кишечную стенку наступают через 24 ч, сроки операции, направленной на устранение непроходимости кишечника, декомпрессию кишки с использованием современных методов детоксикации и деконтаминации в этот период времени являются наиболее оптимальными.
2. В комплексное лечение острой* непроходимости кишечника необходимо включить современную иммуннокорригирующую терапию, гепатотропные препараты для мобилизации барьерной функции печени.
3. Аллопуринол - ингибитор ксантиноксидазы, обладающий антиоксидантным, антигипоксическим и цитопротективным действием, может быть рекомендован для стабилизации целостности эпителиального барьера и уменьшения бактериальной транслокации.
СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ:
1). Круглянский Ю.М., Афанасьев А.Н., Дарвин В.В. Роль внутрикишечной гипертензии при острой обтурационной непроходимости кишечника в эксперименте. // СурГУ Ханты-Мансийского авт. Округа // Сб. науч. трудов № 22. - 2005. - С. 112-118.
2). Афанасьев А.Н., Круглянский Ю.М., Сотников Д.Н. Влияние внутрикишечной гипертензии на интрамуральную гемоциркуляцию при
острой обтурационной кишечной непроходимости. // Материалы Всероссийского научного форума «Хирургия 2005». - С. 14-16.
3). Круглянский Ю.М., Афанасьев А.Н. Сотников Д.Н. Свободнорадикальные реакции и антиоксидантная система слизистой оболочки при острой обтурационной непроходимости кишечника. // Материалы Всероссийского научного форума «Хирургия 2005». - С. 86-88.
4). Гостищев В.К., Афанасьев А.Н., Круглянский Ю.М., Сотников Д.Н. Бактериальная транслокация в условиях острой непроходимости кишечника. // Вестник РАМН. - 2006. -№ 9-10. - С. 34-38.
5). Афанасьев А.Н., Круглянский Ю.М., Сотников Д.Н. Реакции окислительного стресса и антиоксидантная система в слизистой оболочке при механических формах непроходимости кишечника. // Материалы научно-практической конференции врачей России. - Тверь. - 2006. - С. 303-304.
6). Афанасьев А.Н., Круглянский Ю.М., Сотников Д.Н. Бактериальная транслокация при острой обтурационной непроходимости кишечника. Некоторые патофизиологические аспекты. // Материалы научно-практической конференции, посвященной 140-летию ГКБ № 23 им. «Медсантруд». - М. - 2006. - С. 175-176.
7). Афанасьев А.Н., Круглянский Ю.М., Сотников Д.Н. Видовой и количественный состав микрофлоры в экстраинтестинальных органах, крови и перитонеальном экссудате при механических формах непроходимости кишечника. // Материалы научно-практической конференции, посвященной 140-летию ГКБ № 23 им. «Медсантруд». - М. -2006.-С. 177-178.
8). Афанасьев А.Н., Круглянский Ю.М., Сотников Д.Н. Нарушение системы местного иммунитета при механических формах непроходимости кишечника. // Материалы научно-практической конференции, посвященной 140-летию ГКБ № 23 им. «Медсантруд». - М. - 2006. - С. 179-180.
Подписано в печать /3.03, ^ Формат 60 х 90 1/16
Объем Тираж 100 экз.
Заказ № У О
Отпечатано в ООО КПСФ «Спецстройсервис-92» Отдел оперативной полиграфии 101000, Москва, Мясницкая, 35, стр.2
Оглавление диссертации Круглянский, Юрий Михайлович :: 2007 :: Москва
ВВЕДЕНИЕ.
ГЛАВА 1. СОВРЕМЕННЫЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЯ О БАКТЕРИАЛЬНОЙ ТРАНСЛОКАЦИИ ПРИ ОСТРОЙ ОБТУРАЦИОННОЙ НЕПРОХОДИМОСТИ КИШЕЧНИКА (Обзор литературы).
1.1. Краткие морфо-функциональные сведения о кишечном барьере.
1.2. Организация иммунной системы тонкой кишки.
1.3. Транслокация эндогенной микрофлоры. Механизмы и пути миграции.
1.4. Факторы, нарушающие целостность эпителиального кишечного барьера.
1.4.1. Внутрикишечная гипертензия.
1.4.2. Циркуляторно-гипоксический фактор.
1.4.3. Токсический и микробный фактор. Механизмы нарушения кишечной микробиологической экосистемы.
1.4.4. Роль окислительного стресса в нарушении целостности кишечного барьера. Образование активных оксидантов в условиях кишечной ишемии. Метаболический фактор.
1.4.5. Фактор нарушения иммунных механизмов.
1.5. Вклад бактериальной транслокации в развитие эндогенной интоксикации, синдрома системной воспалительной реакции, абдоминального сепсиса, полиорганной недостаточности.
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.
2.1. Общая характеристика экспериментального материала.
2.2. Методы исследования внутрикишечной гипертензии и интрамуральной гемоциркуляции кишечной стенки.
ГЛАВА 5. МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ, МОРФОМЕТРИЧЕСКИЕ И БАКТЕРИОСКОПИЧЕСИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ КИШЕЧНОЙ СТЕНКИ И ВНУТРЕННИХ ОРГАНОВ.
5.1. Морфологические и морфометрические изменения стенки тонкой кишки.
5.2. Морфологические и морфометрические изменения стенки толстой кишки.
5.3. Морфологические изменения в МЛУ, печени и лёгких при тонкокишечной непроходимости.
5.4. Морфологические изменения в МЛУ, печени и лёгких при толстокишечной непроходимости.
5.5. Гистобактериоскопические исследования кишечной стенки и внутренних органов при тонкокишечной непроходимости.
5.6. Гистобактериоскопические исследования кишечной стенки и внутренних органов при толстокишечной непроходимости.
5.7. Резюме.
ГЛАВА 6. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ ВИДОВОГО И КОЛИЧЕСТВЕННОГО СОСТАВА МИКРОФЛОРЫ ПРИ БАКТРИАЛЬНОЙ ТРАНСЛОКАЦИИ ВО ВНУТРЕННИЕ ОРГАНЫ, КРОВЬ И ПЕРИТОНЕАЛЬНЫЙ ЭКССУДАТ.
6.1. Бактериологические исследования транслокации эндогенной микрофлоры в экстраинтестинальные органы при тонко- и толстокишечной непроходимости.
6.1.1. Мезентериальные лимфатические узлы.
6.1.2. Печень.
6.1.3. Лёгкие.
6.1.4. Селезёнка.
6.2. Сравнение характера бактериальной транслокации во внутренние органы в подгруппах Alio и С.
6.3. Бактериологические исследования транслокации эндогенной микрофлоры в кровь и перитонеальный экссудат при тонко- и толстокишечной непроходимости.
6.3.1. Портальная кровь.
6.3.2. Системная кровь.
6.3.3. Перитонеальный экссудат.
6.4. Резюме.
Введение диссертации по теме "Хирургия", Круглянский, Юрий Михайлович, автореферат
Актуальность проблемы.
Прогноз исхода при ОНК во многом определяется развитием гнойно-септических осложнений, которые при прогрессировании заболевания приобретают генерализованный характер [Дедерер Ю.М., 1971; Ерюхин И.А., Петров В.П., Ханевич М.Д., 1999; Vincent P., Colombel J.F., Lescut D. et al., 1988; Deitch E.A. 1994]. Даже в наше время, учитывая появление эффективных методов лечения, частота грозных осложнений и показатели летальности при ОНК не имеют стойкой тенденции к снижению. Причинами этого можно считать сложный механизм патогенеза заболевания, звенья которого влияют на жизненноважные системы и органы организма [Биккинеев Ф.Г., 1988; Белобородов В.Б., Джексенбаев О.Ш., 1991; Deitch Е.А., 1990, 1992; Bone R.C., 1994; Morrison D.S., Bucklin S.E, 1995].
Тяжесть местной и системной воспалительной реакции во многом определяется синдромом энтеральной недостаточности, который является главной причиной эндогенной интоксикации, развития синдрома системного воспалительного ответа, абдоминального сепсиса, септического шока и полиорганной недостаточности [Бабаджанов Б.Д., 1990; Белокуров Ю.Н. и др., 1991; Попова Т.С. и др., 1991; Белобородов В.Б., 1997; Carrico C.J., Meakins J.L., Marshall J.L. et al., 1986; Cohen J., 1995; Lemaire L.C. et al., 1997; Balk R. 2000]. Развивающиеся критические нарушения водно-электролитного баланса, циркуляторная гипоксия кишечной стенки, дисбактериоз с проксимальной микробной колонизацией кишечника, активация реакций окислительного стресса, значительное нарушение антиоксидантной защиты, местного иммунитета и барьерной функции слизистой оболочки - вот лишь немногие из основных изменений, характеризующих этот симптомокомплекс [Попова Т.С. и др., 1991; Курыгин А.А., Ханевич М.Д., 1992; Гельфанд Б.Р. и др., 1996, 1997; Гаин Ю.М., Леонович С.И., Алексеев С.А. 2001; Богомолова Н.Н., 2002; King С.Е., Toskes P.P., 1979; Marshall J.C., Christou N.V., Meakins J.L., 1993; Deitch E.A., 1990, 1991, 1994]. В итоге создаются благоприятные условия для возникновения феномена «бактериальной транслокации», который является главным компонентом так называемого «сепсиса кишечного происхождения». При этом роль эндогенной микрофлоры является ведущей [Ерюхин И.А., Петров В.П., Ханевич М.Д., 1999; Брискин Б.С., Хачатрян Н.Н., 2001; Леванов А.В., 2001; Berg R.D., 1985, 1996, 1999; Deitch Е.А., 1989, 1990, 1994; Martinez J., 1993].
В этой связи, проводимая терапия направлена только на следствие патофизиологических нарушений, а наиболее важные патогенетические аспекты заболевания - внутрикишечная гипертензия, микробиологическая экосистема кишки, состояние её интрамурального кровотока, уровень депрессии со стороны иммунной системы слизистой, не всегда учитываются клиницистами, чем и можно объяснить известную неудовлетворённость результатами лечения [Абдулмеджидов А.Ю., Ахмадулинов М.Г., 1985; Агаев Б.А., Шуюоров М.А., 1986; Кочеровец В.И. и др., 1992; Липницкий Е.М. и др., 2003; Marshall J.C. et al., 1988, 1996; Mainous M.R. et al., 1993; Eleftheriadis E. et al. 1996]. Поэтому комплексное изучение факторов, приводящих к транслокации эндогенной микрофлоры из просвета кишки при ОНК, представляет значительный интерес для исследования. Необходимость экспериментального анализа причин нарушения кишечного барьера при непроходимости кишечника и развития бактериальной транслокации, как основного индуктора абдоминального сепсиса в этом случае, вытекает из запросов клиники. Вот почему эти исследования актуальны для раскрытия основных звеньев патогенеза бактериальной транслокации при одном из тяжелейших хирургических заболеваний органов брюшной полости - ОНК.
Цель и задачи исследования.
Цель исследования: изучение факторов, приводящих к бактериальной транслокации и их взаимосвязи в эксперименте с последующим внедрением этих результатов в клиническую практику.
Задачи:
1. Изучить влияние внутрикишечной гипертензии на состояние интрамуральной гемоциркуляции и её роль в развитии циркуляторно-гипоксических нарушений кишечной стенки в зависимости от сроков ОНК.
2. Исследовать морфологические изменения в кишечной стенке, мезентериальных лимфатических узлах, печени и лёгких через 24, 48 и 72 ч от момента обтурации.
3. Оценить влияние свободно-радикальных реакций, состояние антиоксидантной системы кишечной стенки и роль ингибитора ксантиноксидазы на характер бактериальной транслокации и проницаемость эпителиального кишечного барьера.
4. Изучить интенсивность бактериальной транслокации и определить видовой и количественный состав микроорганизмов в кишечной стенке, мезентериальных лимфатических узлах, печени, лёгких, крови и перитонеальном экссудате в зависимости от сроков эксперимента.
5. Исследовать состояние местного иммунитета в кишечной стенке, мезентериальных лимфатических узлах и ретикулоэндотелиальной системы печени.
Научная новизна работы:
Разработана экспериментальная модель транслокации бактерий из кишечника в мезентериальные лимфатические узлы, печень, лёгкие, кровеносное русло и перитонеальный экссудат при острой механической непроходимости кишечника. Изучена динамика роста внутрикишечного давления в тонкой и толстой кишке и влияние его на интрамуральную гемоциркуляцию.
Определены закономерности бактериальной транслокации в кишечную стенку, мезентериальные лимфатические узлы, печень, лёгкие, а также инфицирование крови и перитонеального экссудата у животных с тонко- и толстокишечной непроходимостью в динамике патологического процесса.
Произведена комплексная оценка видового и количественного состава микроорганизмов, обнаруженных в лимфатических узлах брыжейки, печени, лёгких, крови и перитонеальном экссудате.
Исследован характер реакций перекисного окисления липидов (ПОЛ), активность ксантиноксидазы, как основного прооксидантного метаболита кишечной стенки и их влияние на бактериальную транслокацию. При этом установлено, что ингибитор ксантиноксидазы - аллопуринол, способен снижать транслокацию кишечной флоры в экстраинтестинальные органы и ткани. Выявлено, что одновременно с активацией реакций ПОЛ в кишечной стенке прогрессивно снижается активность антиоксидантной системы, что способствует нарушению эпителиального кишечного барьера.
Произведён сравнительный анализ морфологических, морфометрических и гистобактериоскопических изменений стенки тонкой и толстой кишки и внутренних органов, окислительных реакций и системы антиоксидантной защиты, состояния местного иммунитета кишечной стенки, а также внутрикишечной гипертензии и микроциркуляторных расстройств, особенностей бактериальной транслокации при тонко- и толстокишечной непроходимости.
Теоретическая и практическая значимость:
На модели механической обтурационной непроходимости кишечника уже через сутки после начала эксперимента была выявлена инфицированность мезентериальных лимфатических узлов, портальной крови и ткани печени. При прогрессировании патологического процесса наблюдается тенденция к системному распространению инфекции. Эти обстоятельства имеют важное клиническое значение для определения верной тактики лечения и профилактики системных гнойно-септических осложнений. Результаты бактериологических методов исследования указывают на приоритет контаминации тканей и биологических жидкостей грамотрицательной флорой, что должно учитываться в клинике при назначении рациональной антибактериальной терапии.
Основной причиной бактериальной транслокации является несостоятельность кишечного барьера, что является основанием для использования комплекса мер, направленных на стабилизацию и защиту барьерной функции кишечного эпителия. Это скорейшая декомпрессия кишки, выбор оптимального способа энтеральной детоксикации и деконтаминации.
Непосредственный цитопротективный эффект оказывает аллопуринол с антиоксидантным и антигипоксическим механизмами действия. Цитопротективный эффект аллопуринола достигается ингибированием ксантиноксидазы кишечной стенки, что значительным образом снижает активность реакций ПОЛ в слизистой тонкой кишки, тем самым, стабилизируя её барьерную функцию.
Внедрение результатов исследования:
Основные положения работы используются в учебном и лечебном процессах в клинике общей хирургии ММА им. И.М. Сеченова и ГКБ № 23 им. Медсантруд.
Положения, выносимые на защиту:
1. Нарушение проницаемости эпителиального кишечного барьера является главной причиной бактериальной транслокации при ОНК. Патоморфологические изменения барьерной функции слизистой оболочки тонкой кишки происходят раньше и они более выраженные, чем в толстой кишке.
2. На целостность слизистой оболочки кишки негативно воздействуют несколько факторов - внутрикишечная гипертензия, инициирующая циркуляторно-гипоксические расстройства, активация реакций ПОЛ, при этом основная роль здесь отводится ксантиноксидазе, с одновременной депрессией антиоксидантной системы, токсическому воздействию бактериальных токсинов и лизосомальных ферментов нейтрофилов, нарушение системы местного иммунитета кишечной стенки.
3. Аллопуринол, как ингибитор ксантиноксидазы способен снижать интенсивность бактериальной транслокации.
4. Чаще процессу транслокации подвергались микроорганизмы из семейства Enterobacteriaceae.
5. Бактериальная транслокация при острой непроходимости кишечника является главным индуктором системного распространения инфекта, развития синдрома системного воспалительного ответа, абдоминального сепсиса, полиорганной дисфункции.
Апробация диссертации: состоялась на кафедре общей хирургии ММА им. И. М. Сеченова на базе ГКБ № 23 им. «Медсантруд». Материалы исследования были представлены на медицинском факультете СурГУ в 2005, на Всероссийском научном форуме «Хирургия 2005» и на научно-практической конференции в г. Твери (декабрь 2006).
Публикации: По теме диссертации опубликовано 8 научных работ.
Объём и структура работы:
Диссертация состоит из введения, обзора литературы, 4 глав собственных исследований, заключения, выводов, практических рекомендаций и указателя литературы.
Заключение диссертационного исследования на тему "Бактериальная транслокация при острой обтурационной непроходимости кишечника (экспериментальное исследование)"
выводы
1. Прогрессирующая внутрикишечная гипертензия является пусковым фактором, вызывающим ухудшение интрамуральной перфузии и микроциркуляции. Через 72 ч ишемические изменения слизистой и нарушение микроциркуляции в стенке тонкой кишки регистрируются при более низких цифрах ВКД - 18.4+0.8 мм рт.ст., чем в стенке толстой -26.3+1.0 мм рт.ст.
2. При тонкокишечной непроходимости ВКД через 24, 48 и 72 ч увеличивается соответственно в 6.9, 9.8 и 13.1 раз, что приводит к снижению максимального ИАД на 8.7%, 24% и 43.6%, характеризующего циркуляторную ишемию и увеличению ИВД, свидетельствующего о нарушении венозного оттока на 9.3%, 23.4% и 44.4% соответственно по сравнению с контролем. При обтурации толстой кишки давление в ней через 24, 48 и 72 ч увеличивается соответственно в 4.5, 8.5 и 13.8 раз, со снижением максимального ИАД на 8.8%, 32% и 48.7% и увеличением ИВД на 10.6%, 30.6% и 46.9%.
3. В патогенезе ишемического повреждения кишечной стенки важное значение имеет активация процессов перекисного окисления липидов и снижение активности антиоксидантной системы. Одним из основных генераторов ПОЛ в стенке тонкой кишки является ксантиноксидаза, значение которой через 24, 48 и 72 ч увеличивается на 133%, 231% и 409% соответственно. Активность последней в тонкой кишке в 22.5 раз выше, чем в толстой, что приводит к более ранним и выраженным ишемическим повреждениям тканей. После компенсаторного увеличения активности основных ферментов антиоксидантной системы через 24 ч, происходит прогрессирующее снижение их активности через 48 и 72 ч.
4. Аллопуринол приводит к снижению активности ксантиноксидазы в тонкой кишке через 72 ч на 56.9%, что способствует стабилизации барьерной функции слизистой оболочки и снижению БТ в мезентериальные лимфатические узлы на 44.4%, печень - 56.7%, портальную кровь и перитонеальный экссудат на 55.6% и 34.4% соответственно.
5. Основной причиной БТ является нарушение целостности эпителиального кишечного барьера, которое развивается уже через 24 ч, с инфицированием мезентериальных лимфатических узлов, портальной крови и печени в обеих группах животных. С увеличением сроков непроходимости до 72 ч расширяется видовой и количественный состав микроорганизмов в качестве микробных ассоциаций, при этом необратимые морфологические изменения слизистой оболочки кишки приводят к поступлению бактерий в кишечную стенку, перитонеальный экссудат, кровеносное и лимфатическое русло, внутренние органы. Наиболее часто культивировались микроорганизмы семейства Enterobacteriaceae. При толстокишечной непроходимости частота транслокации облигатных анаэробов выше, чем при тонкокишечной обтурации.
6. Процессу транслокации микрофлоры способствует прогрессирующий дефицит и несостоятельность гуморального и клеточного местного иммунитета тонкой кишки, мезентериальных лимфатических узлов и ретикулоэндотелиальной системы печени. При тонкокишечной обтурации происходит постепенное снижение количества незрелых и зрелых плазмоцитов, макрофагов. Напротив, при толстокишечной непроходимости наблюдается увеличение активности клеток местной иммунной системы. Несостоятельность барьерной функции звёздчатых ретикулоэндотелиоцитов печени может знаменовать собой переход воспалительного процесса на системный уровень, развитие синдрома системного воспалительного ответа и абдоминального сепсиса.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. Учитывая, что нарушение целостности эпителиального барьера и развитие бактериальной транслокации через кишечную стенку наступают через 24 ч, сроки операции, направленной на устранение непроходимости кишечника, декомпрессию кишки с использованием современных методов детоксикации и деконтаминации в этот период времени являются наиболее оптимальными.
2. В комплексное лечение острой непроходимости кишечника необходимо включить современную иммуннокорригирующую терапию, гепатотропные препараты для мобилизации барьерной функции печени.
3. Аллопуринол - ингибитор ксантиноксидазы, обладающий антиоксидантным, антигипоксическим и цитопротективным действием, может быть рекомендован для стабилизации целостности эпителиального барьера и уменьшения бактериальной транслокации.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2007 года, Круглянский, Юрий Михайлович
1. Абдулмеджидов А.Ю., Ахмадулинов М.Г. Специфические и неспецифические механизмы защиты организма при острой кишечной непроходимости // Наука практическому здравоохранению - Махачкала, 1985.-С. 84.
2. Агаев Б.А., Шукюров М.А. Микроциркуляторные расстройства при острой кишечной непроходимости // Сб. тез. докл. II респ. съезда хирургов АзССр. -Баку, 1986.-С. 172-173.
3. Агафонов А.А., Обыденнов С.А. Состояние микроциркуляторного русла тонкого кишечника и сократительная функция миокарда при острой кишечной непроходимости // Микроциркуляторные аспекты сердечнососудистых заболеваний. Казань. 1982. - С. 4.
4. Алмагамбетов К.Х. Транслокация бактерий из кишечника и её предупреждение энтеросорбентами.: Дисс. . докт. мед. наук. Целиноград. 1992.-242 с.
5. Асанов О.Н., Ханевич М.Д., Скрябин О.Н. и др. Состояние кровотока слизистой оболочки желудка и тонкой кишки при остром разлитом перитоните // Вестн. хир. 1990.- Т. 145, №8.- С. 17-20.
6. Аманов Н.А. Количественные взаимоотношения отдельных представителей микрофлоры желудочно-кишечного тракта экспериментальных животных в норме и иммуносупрессии имураном // Ж. микробиол. 1983. - №6. - С. 77-80.
7. Аманов Н.А., Гариб Ф.Ю., Умаров Я.А. Микробная экология кишечника и её изменение под влиянием иммунодепрессантов // Антибиотики и химиотерапия. 1989. - №6. - С. 17-20.
8. Ашмарин И.П., Васильев Н.Н., Амбросов В.А. Быстрые методы статистической обработки и планирования эксперимента. Л. - 1975. - 253 с.
9. Бабаджанов Б.Д. Кишечно-печёночная недостаточность при остром разлитом перитоните и пути её коррекции.: Автореф. дисс. . докт. мед. наук. Ташкент. - 1990. - 24 с.
10. Белобородое В.Б., Джексенбаев О.Ш. Эндотоксины грамотрицательных бактерий, цитокины и концепция септического шока: Современное состояние проблемы // Анестезиол. и реаниматол. 1991. - №4. - С. 41-43.
11. Белобородое В.Б. Сепсис современная проблема клинической медицины // Русс. мед. журн. - 1997. - Том 5. - №24. - С. 1591-1596.
12. Белобородова Н.В., Разумовский А.Ю. Изучение транслокации кишечной микрофлоры в кровь мезентериальных сосудов и лимфоузлы у детей с синдромом портальной гипертензии // Вестник РАМН. 1994. - №3 .-С .42-45.
13. Белобородова Н.В., Бирюков А.В. Проницаемость кишечного барьера // Пат. физ. и эксп. терапия. 1992. - №3. - С. 52-55.
14. Белокуров Ю.Н., Майоров М.И., Флегонтов Б.В., Баранов Г.А. Структура эндогенной интоксикации при острой кишечной непроходимости и пути её коррекции // Вестн. хир. 1991. - №5. - С. 83-85.
15. Биккинеев Ф.Г. Нарушение трансорганного кровотока при острой кишечной непроходимости и методы их коррекции. (Экспериментальное исследование).: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Горький. - 1988. - 21 с.
16. Билибин А.Ф., Маркова В.А., Двуреченская Г.С. Дисбактериозы кишечника // Тер. архив. 1975. - №8. - С. 9-18.
17. Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования., М. 1982. - 452 с.
18. Брискин Б.С., Хачатрян Н.Н. Внутрибольничные инфекции и их профилактика: взгляд хирурга // Consilium medicum. 2001. - т.4. - №6. - С. 309-312.
19. Брискин Б.С., Хачатрян Н.Н., Савченко З.И. и др. Некоторые аспекты лечения тяжёлых форм распространённого перитонита // Consilium medicum Хирургия. - 2002. - №2. - С. 17-22.
20. Брискин Б.С., Хачатрян Н.Н., Савченко З.И. и др. Иммунные нарушения и иммунокоррекция при интраабдоминальной инфекции // Consilium medicum -Хирургия. 2004. - №2. - С. 16-21.
21. Блохина И.Н., Дорофейчук В.Г. Дисбактериозы., JI. 1979. - 125 с.
22. Бобков А.И., Брехов Е.И., Сухорукое В.А. и др. Стрессовые нарушения гормональной регуляции и метаболизма при острых воспалительных заболеваниях брюшной полости, осложненных развитием перитонита // Хирургия. 1992. - №4. - С. 94-100.
23. Богомолова Н.Н. Коррекция синдрома энтеральной недостаточности при кишечной непроходимости.: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Иркутск. -2002. - 22 с.
24. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах., М. 1972. - 252 с.
25. Врублевский О.П., Исаева Н.П., Эделева Н.В. Прогнозирование и профилактика инфекционно-септических осложнений при тяжёлой травме и кровопотере // Анест. и реаниматол. 1983. - №1. - С. 41-44.
26. Гаин Ю.М., Леонович С.И., Алексеев С.А. Энтеральная недостаточность при перитоните: теоретические и практические аспекты, диагностика и лечение. Молодечно, 2001. - 256 с.
27. Галеев Ю.М. Сравнительное исследование бактериальной транслокации в условиях экспериментального перитонита методом динамической гамма-сцинтиграфии.: Дисс. . канд. мед. наук. Иркутск. - 2001. - 128 с.
28. Гельфанд Б.Р., Бурневич С.З., Гиткович В.Е., Гайнулин Ш.М. Абдоминальный сепсис современный взгляд на нестареющую проблему (часть I) // Вестн. интенсив, терапии. 1996; 4: с. 29-35.
29. Гельфанд Б.Р., Гологорский В.А., Бурневич З.С., Подачин П.В., Юсупов С.Г., Гиткович В.Е. Абдоминальный сепсис современный взгляд на нестареющую проблему (часть И) // Стратегия и тактика лечения. Вестн. интенсив, терапии. 1997; 1-2: с.73-79.
30. Гельфанд Б.Р., Бурневич С.З., Подачин П.В., Юсупов С.Г., Гельфанд Е.Б., Брюхов А.Н. Абдоминальный сепсис современный взгляд на нестареющую проблему (часть III) //Вестн. интенсив, терапии. 1998; 1: с. 12-16.
31. Гельфанд Б.Р., Матвеев Д.В. Роль портальной бактериемии и эндотоксинемии в патогенезе полиорганной недостаточности при перитоните // Вестн. хир., 1992., №1. - С. 22-28.
32. Гельфанд Б.Р., Гологорский В.А., Бурневич С.З., Подачин П.В., Гайнулин Ш.М. Селективная деконтаминация и детоксикация желудочно-кишечного тракта в неотложной абдоминальной хирургии и интенсивной терапии // Вестн. интенсив, терапии. 1995; 1: с. 8-11.
33. Гельфанд Б.Р., Филимонов М.И., Бурневич С.З. Абдоминальный сепсис // Русс. Мед. журн. 1998; 6 (11): 697-706.
34. Гельфанд Б.Р., Проценко Д.Н., Игнатенко О.В., Ярошецкий А.И. Синдром интраабдоминальной гипертензии (Обзор литературы) // Consilium medicurn/Хирургия. Приложение №1. - 2005. - С. 20-25.
35. Глущенко Е.В. Морфология органов иммунной системы в постреанимационном периоде // Патогенез, клиника и терапия постреанимационной болезни. Омск. - 1983. - с. 110.
36. Гончарова Г.И., Дорофейчук В.Г., Смолянская А.З., Соколова К.Я. Микробная экология кишечника в норме и при патологии // Антибиотики и химиотер. 1989. - т. 34. - №6. - С. 462-465.
37. Горская Е.М. Адгезия микробов к эпителиальным клеткам кишечника. // Антибиотики и микроэкология человека и животных. 1988. С. 79-82.
38. Горская Е.М., Манохина И.М., Горелов А.В. и др. Методические рекомендации по определению адгезии бактерий кишечного происхождения к эпителиальным клеткам тонкого и толстого кишечника., М. 1989. - 7 с.
39. Гостищев В.К., Сажин П.В., Авдовенко A.J1. Перитонит.: М. Медицина, -1992.-С. 222.
40. Гостищев В.К. Пути и возможности профилактики инфекционных осложнений в хирургии // Методические рекомендации «Рациональные подходы к профилактике инфекционных осложнений в хирургии». 1997. -С. 2-11.
41. Гринев М.В., Громов М.И., Комраков В.Е. Хирургический сепсис. СПб. - М.: ОАО «Типография «Внешторгиздат». - 2001. - 315 с.
42. Дарвин В.В. Внутрикишечная гипертензия в нарушении заживления кишечного шва.: Дисс. . докт. мед. наук. Караганда. 1996. С. 303.
43. Дедерер Ю.М. Патогенез и лечение острой непроходимости кишечника // М. Медицина. 1971. - 208 с.
44. Дикштейн Е.А., Ровенская Н.М. Патоморфология и патогенез острой неокклюзионной ишемии кишечника // Архив патологии. 1984. - т. №46. -вып. №5.- С. 27-32.
45. Добряков Б.С., Лебзак К.Ф. О влиянии внутрикишечной гипертензии на интрамуральный кровоток // Науч. тр. Новосиб. мед. инст. 1979. - т.99. - С. 34-36.
46. Дорохин К.С., Спас В.В. Патофизиологические аспекты синдрома эндогенной интоксикации // Анестезиол. и реаниматол. 1994. - №1. - С.56 -60.
47. Ерюхин И.А., Петров В.П., Ханевич М.Д. Кишечная непроходимость.: Руководство для врачей. СПб.: Питер, 1999. - 448 с.
48. Ерюхин И.А., Белый В.Я., Вагнер В.К. Воспаление как общебиологическая задача., Л.-1989.-231 с.
49. Ерюхин И.А., Лихтарев И.А., Пичуев А.В., Белый В.Я. Нарушение функции тонкой кишки в генезе интоксикации при остром гнойном перитоните в эксперименте // Вестн. хир. 1980. - Т. 134, № 2 - С. 35-40.
50. Жижин Ф.С. Гемодинамика тонкой кишки при повышении внутрипросветного давления // Интраорганная гемодинамика пищеварительной и выделительной систем. Горький: ГМИ, 1985- С. 48-53.
51. Завада Н.В., Гаин Ю.М., Алексеев С.А. Хирургический сепсис: Учебное пособие. Минск: Новое знание, 2003. - 237 с.
52. Запорожец А.А. Механизм возникновения и профилактика перитонита после операций на желудочно-кишечном тракте.: Дисс. . д-ра мед. наук: 14.00.27, 14.00.16. Минск, 1984. - 330 с.
53. Затула Д.Г., Резник С.Р. Влияние метаболитов споровых сапрофитных бактерий на организм человека и животных. Киев: Наукова Думка 1973.
54. Кандалиев А.Б. Функциональное состояние, кровоток и оксигенация печени при острой кишечной непроходимости // Патология органов пищеварения. Нальчик, 1983.-С. 144-148.
55. Каньшина Н.Ф. Органопатология бактериального шока // Архив патологии. 1983. - №12. - С. 20-27.
56. Келина Ю.Ю. Иммунобиохимические механизмы интоксикационного синдрома при остром разлитом перитоните // Анестезиология и реаниматология. 1996. - №5. - С. 24-26.
57. Ковальчук В.К. Морфологический эквивалент противобактериальной барьерной функции эпителия кишок.: Автореф. дисс. . докт. мед. наук., М.-1988.-45 с.
58. Ковальчук В.К. Некоторые особенности неспецифической защиты слизистой оболочки кишок по данным ультраструктурного анализа. Киев. -1987. С. 341-342.
59. Козлов В.К. Иммунопатогенез и цитокинотерапия хирургического сепсиса. -СПб: Изд-во «Ясный свет». 2002. - 48 с.
60. Колбасин П.Н. Некоторые вопросы морфогенеза постишемических репаративных процессов в тонкой кишке после ликвидации непроходимости // Тр. Крым. мед. ин-та. 1983. - т. 101. - С. 130-132.
61. Конюхова С.Г., Дубикайтис А.Ю., Шабуневич J1.B. и др. Роль активации ПОЛ в патогенезе экспериментального перитонита // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1989. - T.CYII.N - 5о. 25. - С. 557-559.
62. Кочеровец В.И., Петраков А.А., Понаморёва Т.Р., Михайлова B.C. Методические рекомендации по микробиологической диагностике заболеваний, вызванный неспорообразующими анаэробными бактериями., М.- 1986.- 49 с.
63. Кочеровец В.И., Перегудов С.И., Ханевич М.Д. Синдром избыточной колонизации тонкой кишки // Антибиот. и химиотер. 1992. - Том 37. №3. -С. 39-44.
64. Кравчук А.П. Нарушение гемодинамики и моторики тонких кишок при острой кишечной непроходимости.: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. -Казань. 1984.
65. Красноголовец В.Н. Дисбактериоз кишечника ., М.- 1989.- 208 с.
66. Кригер А.Г., Линденберг А.А. Эндогенная интоксикация при перитоните: (Обзор литературы) // Вестн. хир. 1985. - Т. 134. - №3. - С. 130-133.
67. Кубышкин В.А., Веретенцев В.Н. К патогенезу кишечной непроходимости. // Вест. хир. 1989. - т. 142. - №5. - С. 130-134.
68. Куваева И.Б. Обмен веществ организма и кишечная микрофлора., М.-1979.- 253 с.
69. Куприянов В.В. и др. Микроциркуляторное русло. М.: Медицина, 1975. -216 с.
70. Курыгин А.А., Ханевич М.Д. Дренирование тонкой кишки и интенсивная терапия при перитоните и кишечной непроходимости. СПб., 1992. - 71 с.
71. Лебедев А.С. Содержание малонового диальдегида в крови крыс в восстановительном периоде после смертельной кровопотери // Патогенез, клиника, терапия постреанимационной болезни., Омск.- 1983,- с. 106.
72. Лебзак К.Ф. Внутрикишечная гипертензия и интрамуральный кровоток при паралитических состояниях желудочно-кишечного тракта в влияние декомпрессии на течение перитонита.: Дисс. . канд. мед. наук. -Новосибирск. 1980.
73. Леванов А.В. Феномен бактериальной транслокации условно патогенных микроорганизмов из ЖКТ // Антибиотики и химиотерапия. 2001. - т.46. -№5. - С. 28-30.
74. Лизько Н.Н. Новые экспериментальные модели в микроэкологии // Антибиотики и химиотер.-1989.-№6.- с. 443-448.
75. Липницкий Е.М., Ардатская М.Д., Топчий С.Н. Прогностическое и диагностическое значение низкомолекулярных метаболитов толстокишечной микрофлоры у больных с раком толстой кишки. Протокол 2596-го заседания Московского общества хирургов от 02.11.2006.
76. Лиходед В.Г., Ющук Н.Д., Яковлев М.Ю. Роль эндотоксинов грамотрицательных бактерий в инфекционной и неинфекционной патологии // Архив патологии. 1996. - Т. 58. - №2. - С. 8-13.
77. Лиходий С.С., Перченко Г.П., Калугина С.К., Сейтембетов Т.С. Активность супероксиддисмутазы тканей крыс во время смерти и после оживления // Целиноград., 1986, депо в ВИНИТИ 31.01.86, № 713 В.
78. Лопухин Ю.М. Экспериментальная хирургия. М.: Медицина, 1971. -196 с.
79. Лызиков А.Н. Постишемическая защита тонкой кишки при острой хирургической патологии брюшной полости.: Дисс. . докт. мед. наук: 14.00.27.-М., 1993.-309 с.
80. Маеда X., Акаике Т. Оксид азота и кислородные радикалы при инфекции, воспалении и раке // Биохимия. 1998. - 63, С. 1007-1020.
81. Макарова Н.П., Коничева И.Н. Синдром эндогенной интоксикации при сепсисе // Анестезиол. и реаниматол. 1995. - №6. - С. 4-9.
82. Марко О.П., Корнева Т.К. О кишечном дисбактериозе // Сов. медицина .-1974.-№5.-с. 88-90.
83. Мартынова В.А., Толкачёва Т.В., Ермакова Г.Л. и др. Кишечный дисбактериоз как причина эндогенного инфицирования больных // Совет, медицина. 1981. - №10. - с. 36-39.
84. Мецлер Д. Биохимия: химические реакции в живой клетке: в 3-х т. М.: Мир, 1976. -Т.2.-531 с.
85. Микельсаар М.Э., Тюри М.Э. Микрофлора стенки желудочно-кишечного тракта до и после экспериментального дисбактериоза // Акт. вопросы иммунодиагностики и иммунорегуляции. V науч. конф. иммунологов ЭССР. Таллин. - 1982. - с. 210-212.
86. Микельсаар М.Э. Возможные критерии дисбиоза кишечника по микрофлоре фекалий // Аутофлора человека в норме и патологии и её коррекция., Горький. 1988. - с. 15-22.
87. Микробиология и иммунология: Учебник / Под ред. Воробьёва А.А. М.: Медицина, 1999.-464 с.
88. Милюков В.Е. Морфофункциональные изменения гемомикроциркуляторного русла в стенках тонкой при острой кишечной непроходимости и после её оперативного устранения, (экспериментальное исследование).: Автореф. дис. . докт. мед. наук. Москва. - 2001. - 46 с.
89. Морозов И.А., Лысиков Ю.А., Питран Б.В. и др. Всасывание и секреция в тонкой кишке. М., 1988.
90. Наливайко A.M. Изменения в лимфоидных органах у крыс при острой гипоксии // Архив анат. гист. и эмбриол. 1982. - №6. - с. 87-91.
91. Никитенко В.И. Роль транслокации бактерий в патогенезе хирургической инфекции // Хирургия. 2001. - №2. - С. 63-66.
92. Пасечка Н.В. Морфогенез деструктивных регенераторных процессов слизистой оболочки тонкой кишки при тяжёлых ожогах и применение антиоксидантов.: Автореф. дисс. . канд. мед. наук . М. - 1989. - 24 с.
93. Пермяков Н.К., Галанкина И.Е., Титова Г.П. и др. Бактериальный шок // Архив патологии. 1982. - Вып. 3. - С. 19-26.
94. Перфилев Д.Ф. Бактериемия при разлитом перитоните // Хирургия. -1987.-№7.-С. 26-30.
95. Петровская В.Г. Марко О.П. Микрофлора человека в норме и патологии., М.- 1976.-c.276.
96. Подильчак М.Д., Огоновский В.К. Послеоперационный перитонит // Клин, хир.- 1992. № 4. - С. 54-57.
97. Подопригора Г.И. Гнотобиологические модели в медико-биологических исследованиях // Основные принципы организации биомедицинских экспериментов на животных., М. 1979. - с. 40-48.
98. Подопригора Г.И. Иммунные и неспецифические механизмы колонизационной резистентности // Антибиотики и колонизационная резистентность. М. - 1990. - вып. XIX. - с. 16-25.
99. Помелов B.C., Жумадинов Ж.Ш. Синдром полиорганной недостаточности в хирургии // Хирургия. 1990. - № 7. - С. 158-161.
100. Попова Т.С., Тамазашвили Т.Ш., Шестопалов А.Е. Синдром энтеральной недостаточности в хирургии. М., 1991.
101. Радбиль О.С. Свободные радикалы и заболевания органов пищеварения: (Обзор литературы) // Клинич. Медицина. 1989. - Том 67. - №3. - с. 17-21.
102. Решетников Е.А., Шипилов Г.Ф., Чуванов М.В. Дискуссионные вопросы диагностики и лечения сепсиса // Хирургия. 1999. - №10. - С. 13-15.
103. Русаков В.И., Гульянц Э.С., Лукаш Н.А. и др. Патогенез острой непроходимости кишечника // Ростов-на-Дону. Изд-во Ростовского ун-та. -1985.- 198 с.
104. Русаков В.И., Гульянц Э.С. и др. О единой концепции патогенеза непроходимости кишечника // Вест. Хир. 1985. - №6. - С. 55-60.
105. Русаков В.И., Лукаш Н.А. и др. Патогенез острой кишечной непроходимости // Хирургия. 1982. - №10, С. 5-10.
106. Русаков В.И., Лукаш Н.А., Крахмалёв П.А. Интенсивность перекисного окисления липидов в мембранах эритроцитов при развитии острой непроходимости кишечника и после её устранения // Скорая и неотложная медицинская помощь. Ростов н/Д, 1983. С. 27-29.
107. Рябов Г.А. Синдромы критических состояний. М.: Медицина. 1994. -386 с.
108. Савельев B.C., Гельфанд Б.Р. Инфекция в абдоминальной хирургии: настоящее и будущее проблемы. Вестн. хир. 1990; 6: 3-7.
109. Саенко В.Ф. Сепсис // Сепсис и антибактериальная терапия: Сб. статей и рефератов. Киев: Нора-Принт, 1997. - С. 4-6.
110. Сапожков А.Ю., Никольский В.И. Декомпрессия кишечника. Пенза, 1992.- 138 с.
111. Сачек М.Г., Косинец А.Н., Адаменко Г.П. Иммунологические аспекты хирургической инфекции. Витебск, 1994. - 139 с.
112. Светухин A.M., Жуков А.О. Вопросы терминологии и классификации сепсиса // Анналы хирургии. 1996. - №1. - С. 47-50.
113. Светухин A.M., Саркисов Д.С., Жуков А.О. Хирургический сепсис -определение понятия. Вопросы терминологии // Хирургия. 1999. - № 10. С. 4-8.
114. Середин В.Г. Миграция анаэробных бактерий в стенке тонкой кишки при её острой непроходимости // Клинич. хирургия. 1988. - №4. - С. 37-39.
115. Симонян К.С. Перитонит. М.: Медицина, 1971. - 296 с.
116. Смирнов В.В. и др. О некоторых механизмах возникновения бессимптомной бактериемии. Микробиол. журн. 1988; 50: 5: 56-59
117. Смолянская А.З. Дисбактериозы инфекционные процессы смешанной этиологии // Антибиотики и мед. биотехнол. - 1987. - №3. - с. 186-190.
118. Спиженко Ю.П. Определение всасывающей функции желудочно-кишечного тракта в комплексной диагностике острой тонкокишечной непроходимости.: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. 1998.
119. Струков А.И., Петров В.И., Пауков B.C. Острый разлитой перитонит. -М.: Медицина, 1987. 288 с.
120. Стручков В.И., Гостищев В.К., Стручков Ю.В. Руководство по гнойной хирургии. М.: Медицина, 1984. - 512 с.
121. Сумбаев В.В., Розанов А.Я. Исследование in vitro регуляции активности ксантиноксидазы печени крыс восстановителями-антиоксидантами // Укр. биохим. журн. 1998. - 70, № 6. - С. 47-52.
122. Сумбаев В.В. Влияние восстановителей-антиоксидантов и кофеина на активность ксантиндегидрогеназы // Укр.биохим.журн., 1999. 71, № 3. - С. 39-43.
123. Титова Г.П., Платонова Г.А., Попова Т.С., Тропская Н.С. и др. Морфофункциональные нарушения в тонкой кишке при острой кишечной непроходимости // Архив патологии. 1999. - №2. - С. 27-30.
124. Фельдман Ю.М., Маханева Ю.Г., Шапиро А.В., Кузьменко В.Д. Количественное определение бактерий в клинических материалах // Лабор. дело. 1984. - №10. - С. 616-619.
125. Филимонов М.И., Гельфанд Б.Р. Состояние барьерной функции брюшины и желудочно-кишечного тракта при распространённом перитоните // Анналы хир. 1997. - №5. - С. 29-32.
126. Хавкин А.И. Микробиоценоз кишечника и иммунитет // Русс. мед. журн. -2003.-Т. 11. №3. - С. 122-125.
127. Хаитов P.M., Пинегин Б.В. Вторичные иммунодефициты: Клиника, диагностика, лечение // Иммунология. 1999. - №1. - С. 14-17.
128. Ханевич М.Д. Синдром энтеральной недостаточности при перитоните и кишечной непроходимости.: Дисс. . докт. мед. наук: 14.00.27. СПб. -1993.-318 с.
129. Хачатрян Н.Н. Формирование защитно-адаптивных механизмов при перитоните и их коррекция.: Автореф. дисс. . докт. мед. наук: 14.00.27. -М. 1995. - 25 с.
130. Чахава О.Б., Горская Е.М., Рубан С.З. Микробиологические и иммунологические основы гнотобиологии., М. 1982. - 160 с.
131. Чернух A.M. Микроциркуляция., М. 1976. - 441 с.
132. Чернух A.M., Подопригора Г.И., Кранчев А.К. Изучение путей проникновения бактерий in vivo через стенку кишечника у гнотобиологических и обычных животных // Бюлл. экспер. биол. и мед. -1978.-№6.-с. 654-657.
133. Чекарёва Г. А., Рябова С.С., Карпова В.В., Волкоедов B.C. Микроциркуляторные и морфологические нарушения после временной интестинальной ишемии в эксперименте // Архив патологии. 1980. - №4. -с. 58-63.
134. Чернов В.Н., Белик Б.М. Портальная и системная бактериемия как проявление функциональной недостаточности энтерального барьера при острой кишечной непроходимости // Вестн. хир. 1998. - №4. - С. 46-49.
135. Чернов В.Н., Белик Б.М., Поляк А.И., Васильева Л.И., Брагина Л.Е., Марголин Г.Б. Оценка защитно-барьерной функции тонкой кишки у больных острой непроходимостью кишечника // Вестн. интенсив, терапии. 1998. -№4. - С. 25-27.
136. Шендеров Б.А. Колонизационная резистентность и антимикробные препараты // Антибиотики и колонизационная резистентность., М. 1990. -вып. XIX.-с. 5-15.
137. Шкарупета М.М., Мальцева Н.Н. Изучение иммуномоделирующего действия нормальной микрофлоры кишечника. // Иммунология. 1989. - №2.- с. 26-30.
138. Шуюоров М.А. Нарушение микроциркуляции и их коррекция при острой кишечной непроходимости (экс.-клин, исс-е).: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Баку. - 1986. - 22 с.
139. Эсперов Б.Н. Некоторые вопросы внутрибрюшного давления // Тр. Куйбышев, мед. ин-та. 1956. - Т. 6. - С. 239-247.
140. Эпштейн-Литвак Р.В., Вилыпанская Ф.Л. Бактериологическая диагностика дисбактериозов кишечника // Метод, рекомендации., М. 1977.- 34 с.
141. Ягнятинская A.M. О биологической роли ксантиноксидазы // Успехи современной биологии. 1985. - №1. - С. 38-51.
142. Akcay M.N., Capan M.Y., Gundogdu С. et al. Bacterial translocation in experimental intestinal obstruction // J. intern. Med. Res. 1996; 24: P. 17-26.
143. Akyildiz M., Ersin S., Oymaci E. et al. Effects of somatostatin analogues and vitamin С on bacterial translocation in an experimental intestinal obstruction model of rats // J. invest. Surg. 2000. - Vol.13, N 3. - P. 169-173.
144. Alexander J.W., Bayce S.T., Babcock G.F. et al. The process of microbial translocation // Ann. Surg. 1990. - 212. - P. 469-512.
145. Balk R. Severe sepsis and septic shock. Definitions, Epidemiology and Clinical Manifestations // Crit. Care Clin. 2000. - Vol. 16. N 2. - P. 214-226.
146. Batt R.M., Rutgers H.C., Sancak A.A. Enteric bacteria: friend or foe? // J. Small Anim. Pract. 1996. - Vol. 37, N 6. - P. 261-267.
147. Berg R.D., Garlington A.W. Translocation of certain indigenous bacteria from the gastrointestinal tract to the mesenteric lymph nodes and other organs in a gnotobiotic mouse model // Infect. Immun. 1979. - Vol. 23. - P. 403-411.
148. Berg R.D. Translocation of indigenous bacteria from the intestinal tract // Human intestinal microflora in health and disease. San Diego: Academic Press. -1983: P. 332-352.
149. Berg R.D. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract of thymectomized mice // Curr. Microbiol. 1982; Vol. 7: P. 169-174.
150. Berg R.D. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract of mice receiving immunosuppresive chemotherapeutic agents // Curr. Microbiol. 1983; Vol. 8: P. 285-292.
151. Berg R.D. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract // Adv. exp. Med. Biol. 1999. - Vol. 473. - P. 11-30.
152. Berg R.D. The indigenous gastrointestinal microflora // Trends. Microbiol. 1996. Nov. 4 (11). P. 430-5.
153. Berg R.D. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract // Trends. Microbiol. 1995. Apr. 3 (4). P. 149-54.
154. Berg R.D. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract // J. Med. -1992.-23 (3-4).-P. 217-44.
155. Berg R.D. Translocation of enteric bacteria in health and disease // Curr. Stud. Hematol. Blood Transfus. 1992. (59). - P. 44-65.
156. Berg R.D., Wommack E., Deitch E.A. Immunosuppression and intestinal bacterial overgrowth synergistically promote bacterial translocation // Arch. Surg. 1988. Nov. - 123 (11). P. 1359-64.
157. Cruz N., Alvarez X., Berg R.D., Deitch E.A. Bacterial translocation across enterocytes: results of a study of bacterial-enterocyte interactions utilizing Caco-2 cells // Shock. 1994. - Jan; 1(1).: P. 67-72.
158. Deitch E.A. Multiple organ failure. Pathophysiology and potential future therapy // Ann. Surg. 1992. - Vol. 216. - P. 117-134.
159. Deitch E.A. Simple intestinal obstruction causes bacterial translocation in man // Arch. Surg. 1989. - Vol. 124. - P. 699-701.
160. Deitch E.A. The role of intestinal barrier failure and bacterial translocation in the development of systemic infection and multiple organ failure // Arch. Surg. -1990; Vol. 125 (3):. P. 493-94.
161. Deitch E.A., Berg R.D., Specion R.D. Endotoxin promotes the traslocation of bacteria from the gut //Arch. Surg. 1987. Vol. - 122 (2): P. 185-190.
162. Deitch E.A., Winteran J., Berg R.D. The gut as a portal of entry for bacteremia // Ann. Surg. 1987; Vol. 205 (6):. P. 681-92.
163. Deitch E.A., Bridges W.M., Ma J.W., Ma L., Berg R.D. et al. Obstructed intestine as a reservoir for systemic infection // Am. J. Surg. 1990; Vol. - 159 (2): P. 394-401.
164. Deitch E.A., Specian R.D., Berg R.D. Induction of early-phase tolerance to endotoxin-induced mucosal injury, xanthine oxidase activation, and bacterial translocation in a model of systemic inflammation // J. Trauma. 1992. - Feb; 32 (2). P. 141-147.
165. Deitch E.A., Specian R.D., Berg R.D. Endotoxin-induced bacterial translocation and mucosal permeability: role of xanthine oxidase, complement activation and macrophage products // Crit. Care Med. 1991. - Jun; 19 (6).: P. 758-91.
166. Deitch E.A., Ma L., Grisham M.B. et al. Endotoxin-induced bacterial translocation is related to xanthine oxidase mediated mucosal injury // The 33-rd World Congress of Surgery: Abstract Book / Toronto, Canada. - 1989. - P. 8-8.
167. Deitch E.A. Bacterial translocation: influence of different modes of power supply// Gut. (England).- 1994.- Vol. 35. Suppl.l.- P. S23-S27.
168. Deitch E.A., Xu D.Z., Lu Q., Deitch D.C., Naruhn M.D. Oral-TPN and N-TPN-Induced Bacterial Translocation Is Associated with Loss of Intestinal Barrier Function against Bacteria // Ann. Surg. 1995. - Vol. 221: P. 299-307.
169. Deitch E.A., Xu D.Z., Qi. L., Berg R.D. Bacterial translocation from the gut impairs systemic immunity // Surgery. 1991. - Mar. - 109 (3). - P. 269-76.
170. Dickinson E., Tuncer R., Nadler E. et al. NOX, a novel nitric oxide scavenger, reduces bacterial translocation in rats after endotoxin challenge // Amer. J. Physiol. 1999. - Vol. 277, N 6, pt. 1. - G. 1281-1287.
171. Dijkstra H.M., Manson W.L., Klasen H.J., van der Waaij D. Effect of polymyxin В on intestinal bacterial translocation in Pseudomonas aeruginosa wound-colonized burned mice // Europ. surg. Res. 1992. - Vol. 24, N 2. - P. 6976.
172. Edmiston C.E., Condon R.E. Bacterial translocation // Surg. Gynecol. Obstet. 1991. - Vol. 173, N 1. - P. 73-83.
173. Eizaguirre I., Aldazabal P., Barrena M.J. et al. Bacterial translocation to the thoracic duct in a setting of ischemia, partial resection and reperfusion of the porcine liver // Pediatr. Surg. Int. 1999. - Vol. 15, N 3. - P. 160-163.
174. Eizaguirre I., Aldazabal P., Barrena M.J. et. al. Bacterial translocation is favored by the preservation of the ileocecal valve in experimental short bowel with total parenteral nutrition // Europ. J. Pediatr. 1999. - Vol. 9, N 4. - P. 220-223.
175. Eleftheriadis E., Kotzampassi K., Papanotas K. et al. Gut ischemia, oxidative stress, and bacterial translocation in elevated abdominal pressure in rats // Wld J. Surg. 1996. - Vol. 20, N 1. - P. 11-16.
176. Erbil Y., Berber E., Seven R. et al. The effect of intestinal transit time on bacterial translocation // Acta chir. belg. 1998. - Vol. 98, N 6. - P. 245-249
177. Evans W.E., Darin J.C. Effect of enterectomy in endotoxin shock. 1966. -Surgery. 60: 1021-1029
178. Fazal N., Shamim M., Khan S.S. et al. Neutrophil depletion in rats reduces burn-injury induced intestinal bacterial translocation // Crit. Care Med. 2000. -Vol. 28, N5.-P. 1550-1555.
179. Foitzik Т., Kruschewski M., Kroesen A.J. Does glutamin reduce bacterial translocation? A study in two animal models with impaired gut barrier // Int. J. colorectal Dis. 1999. - Vol. 14. - P. 143-149.
180. Fukushima R., Kobayashi S., Okinaga K. et al. Bacterial translocation to the thoracic duct in a setting of ischemia, partial resection and reperfusion of the porcine liver // Nippon. Geka. Gakkai. Zasshi. 1998. - Vol. 99, N 8. - P. 497450.
181. Fukushima R., Gianotti L., Alexander W. The primary site of bacterial translocation // Arch. Surg. 1994; Vol. 129: P. 53-58.
182. Gautreaux M.D., Deitch E.A., Berg R.D. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract to various segments of the mesenteric lymph node complex // Infect.Immun. 1994. - May; 62 (5). P. 2132-4.
183. Gianotti L, Alexander J.W., Fukushima R., Pyles T. Reduction of bacterial translocation with oral fibroblast growth factor and sucralfate // Amer. J. Surg. -1993. Vol. 165, N 1. - P. 195-201.
184. Grisham M.B., Hernandez L.A., Granger D.N. Xanthine oxidase and neutrophil infiltration in intestinal ischemia // Am. J. Physiol. 1986; Vol. 251: P. 567-574.
185. Guo W., Wang X., Andersson R. et al. Bacterial translocation and reticuloendothelial function after implantation of abdominal drainage in the rat // Ital. J. Gastroenterol. 1993. - Vol. 25, N 4. - P. 161-167.
186. Kale I.T., Kuzu M.A., Berkem H. et al. The presence of hemorrhagic shock increases the rate of bacterial translocation in blunt abdominal trauma // J. Trauma. 1998. - Vol. 44, N 1. - P. 171-174.
187. Katayama M., Xu D., Specian R.D., Deitch E.A. Role of bacterial adherence and the mucus barrier on bacterial translocation: effects of protein malnutrition and endotoxin in rats // Ann. Surg. 1997. Vol. 225. P. 317-326.
188. King C.E., Toskes P.P. Small intestinal bacterial overgrowth // Gastroenterology. 1979; Vol. 76: P. 1035-1055.
189. Kooij A. A re-evaluation of the tissue distribution and physiology of xanthine oxidoreductase // Histochem. J. 1994; Vol. 26: P. 889-915.
190. Kucharzik Т., Lugering N., Rautenberg K., Lugering A., Schmidt M.A., Stoll R., Domschke W. Role of M cells in intestinal barrier function // Ann. NY Acad. Sci. 2000. - Vol. 915: P. 171-83.
191. Kucukaydin M., Kocaoglu C., Koksal F., Kontas O. Detection of intestinal bacterial translocation in subclinical ischemia-reperfusion using the polymerase chain reaction technique // J. pediatr. Surg. 2000. - Vol. 35, N 1. - P. 41-43.
192. Lemaire L.C., van Lanschot J.J., Stoutenbeek C.P., van Deventer S.J., Wells C.L., Gouma D.J. Bacterial translocation in multiple organ failure: cause or epiphenomenon still unproven // Br. J. Surg. 1997. - Vol. 84: P. 1340-50.
193. Levine J.S., Jacobson E.D. Intestinal ischemic disorders // dig. Sci. 1995. -Vol. 13.-P. 3-24.
194. Ljungdahl M., Lundholm M., Katouli M. et al. Bacterial translocation in experimental shock is dependent on the strains in the intestinal flora // Scand. J. Gastroenterol. 2000. - Vol. 35, N 4. - P. 389-397.
195. Mainous M.R., Xu D.Z., Deitch E.A. Role of xanthine oxidase and prostaglandins in inflammatory-induced bacterial translocation // Circulatory Shock. 1993. - Vol. 40: P. 99-104.
196. Marshall J.C., Christou N.V., Meakins J.L. The gastrointestinal tract. The "undrained abscess" of multiple organ failure // Ann. Surg. 1993. - Vol. 218, N 2. - P. 111-119.
197. Marshall J.C., Nathens A.B. The gut in critical illness: evidence from human studies // Shock. 1996. - Vol. 6, Suppl. 1. - P. 10-16.
198. Marshall J.S., Christou N.V., Horn R. The microbiology of MOF. The proximal gastrointestinal tract as occult reservoir of pathogens // Arch. Surg. -1988; 123 (4): P. 309-19.
199. Marshall J.C., Christou N.V., Meakins J.C. Small bowel bacterial overgrowth and systemic immunosuppression in experimental peritonitis // Surgery. 1988; Vol. 104 (2): P. 404-10.
200. McCord J.M. Oxygen-derived free radicals in postischemic tissue injury // N. Engl. J. Med. 1985; Vol. 312: P. 354-364.
201. Martinez J. The intestines, their role in the critical patient and the concept of bacterial translocation // Rev. Med. Chil. 1993. - Vol. 121, N 7. - P. 800-810.
202. Maxson R.T., Dunlap J.P, Tryka F. et al.The role of the mucus gel layer in intestinal bacterial translocation // J. surg. Res. 1994. - Vol. 57, N 6. - P. 682686.
203. Mishima S., Xu D.Z., Lu Q., Deitch E.A. The relationship among Nitric Oxide Production, Bacterial Translocation, and Intestinal Injury after Endotoxin challenge in Vivo // J. Trauma. 1998. - Vol. 44: P. 175-182.
204. Moriwaki Y., Yamamoto Т., Yamaguchi K. et al. Immunohistochemical localisation of xanthine oxidase in human tissues // Acta Histochem. Cytochem. -1996; Vol. 29: P. 153-162.
205. Nakasaki H., Mitomi Т., Tajima Т. et al. Gut bacterial translocation during total parenteral nutrition in experimental rats and its countermeasure // Amer. J. Surg. 1998. - Vol. 175, N 1. - P. 38-43.
206. O'Boyle C.J., MacFie J., Mitchell C.J. et al. Microbiology of bacterial translocation in humans // Gut. 1998; Vol. 42: P. 29-35.
207. Orotz M.R.W., Deitch E.A., Ding J., Xu D.Z. Huang Q. The intestinal cytokine response after gut ischemia-role of gut barrier failure // Ann. Surg. -1999. Vol. 229: P. 478-486.
208. Osman N.E., Westrom В., Karlsson B. Serosal but not mucosal endotoxin exposure increases intestinal permeability in vitro in the rat // Scand. J. Gastroenterol. 1998. - Vol. 33, N 11. - P. 1170-1174.
209. Owens W.E., Berg R.D. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract of thymectomized mice // Curr. Microbiol. 1982; Vol. 7: P. 169-174.
210. Parks D.A., Granger D.N. Xanthine oxidase: biochemistry, distribution and physiology // Acta Physiol. Scand. 1986; Vol. 548 (suppl): P. 87-99.
211. Parks D.A., Buckley G.B., Granger D.N. Role of oxygen-derived free radicals in digestive tract diseases // Surgery. 1983; Vol. 94: P. 415-422.
212. Parks D.A., Williams Т.К., Beckmann J.S. Conversion of xanthine dehydrogenase to xanthine oxidase in ischemic rat intestine // Am. J. Physiol. -1988; Vol. 254: P. 768-774.
213. Peregudov S.I., Khanevich M.D. The small intestine as the origin of bacteremia in acute diffuse peritonitis // Nutr. Hosp. 1996. - Vol. 6, N 6. - P. 317-320.
214. Roscher R., Oethinger W., Beger H.G. Bacterial microflora, endogenous endotoxin, and prostaglandins in small bowel obstruction // Am. J. Surg. 1988. -Vol. 155.-P. 348-353.
215. Sagar P.M., MacFie J., Sedman P., May J., Mancey-Jones В., Johnstone D. Intestinal obstruction promotes gut translocation of bacteria. // Dis. Colon Rectum. 1995; Vol. 38: P. 640-644.
216. Saugstad O.D. Role of xanthine oxidase and its inhibitor in hypoxia: reoxygenation injury // Pediatrics. 1996; Vol. 98: P. 103-107.
217. Schimpl G., Feierl G., Linni K. et al. Bacterial translocation in short-bowel syndrome in rats // Europ. J. Pediatr. 1999. - Vol. 9, N 4. - P. 224-227.
218. Sedman P.C., MacFie J., Sagar P. et al. The prevalence of gut translocation in humans // Gastroenterology. 1994; Vol. 107: P. 643-649.
219. Sun Z., Wang X., Deng X. et al. Phagocytic and intestinal endothelial and epithelial barrier function during the early stage of small intestinal ischemia and reperfusion injury // Shock. 2000. - Vol. 13, N. 3. - P. 209-216.
220. Sykes P.A., Boulter K.H., Schofield P.H. The microflora of the obstructed bowel // Br. J. Surg. 1976; Vol. 9: P. 721-5.
221. Tanaka Y., Jotwani R., Watanabe К., Tanaka K. et. al. Effect of Escherichia coli lipopolysaccharide on Bacteroides fragilis abscess formation and mortality in mice // Microbiol. Immunol. 1994. - Vol. 38, N 2. - P. 97-102
222. Tancrede C.H., Andremont A.O. Bacterial translocation and Gram-negative bacteraemia in patients with haematological malignancies // J. Infect. Dis. 1985; Vol. 152: P. 99-103.
223. Topham R.W., Jackson M.R., Joslin S.A. et al // Studies of the ferroxidase activity of native and chemically modified xanthine oxidoreductase. Biochem. J. -1986; Vol. 235: P. 39-44.
224. Van der Waaij, Berghuis-de Vries, Lekkerkerk-van der Wees. Colonization resistance of the digestive tract and the spread of bacteria to the lymphatic organs in mice //J. Hyg. 1971; Vol. 70: P. 335-342.
225. Vincent P., Colombel J.F., Lescut D. et al. Correspondence: bacterial translocation in patients with colorectal cancer//J. Infect. Dis. 1988; Vol. 158: P. 1395-1396.
226. Wajner M., Harkness R.A. Distribution of xanthine dehydrogenase and oxidase activities in human and rabbit tissues // Biochim. Biophys. Acta. 1989; Vol. 991: P. 79-84.
227. Wells C.L., Maddaus M.A., Simmons R.L. Proposed mechanisms for the translocation of intestinal bacteria // Rev. infect. Dis. 1988. - Vol. 10, N 5. - P. 958-979.
228. Wells C.L., van de Westerlo E.M., Jechorek R.P., Erlandsen S.L. Intracellular survival of enteric bacteria in cultured human enterocytes // Shock. 1996. - Vol. 6, N 1. - P. 27-34.
229. Wells C.L. Relationship between intestinal microecology and the translocation of intestinal bacteria // Antonie Van Leeuwenhoek. 1990. - Vol. 58: P. 87-93.
230. Xu D.Z., Lu Q., Ouillery D., Cruz N., Berg R.D., Deitch E.A. Mechanisms of Endotoxin-lnduced Intestinal Injury in a Hyperdynamic Model of Sepsis // J. Trauma. 1993. - Vol. 34: P. 676-683.
231. Zarkin B.A., Lillemoe K.D., Cameron J.L. et al. The triad of Streptococcus bovis bacteremia, colonic pathology, and liver disease // Ann. Surg. 1990. - Vol. 211, N6.-P. 786-791.
232. Zhi-Yong S., Dong Y.L., Wang X.H. Bacterial translocation and multiple system organ failure in bowel ischemia and reperfusion // J. Trauma. 1992. -Vol. 32, N2.-P. 148-153.