Автореферат и диссертация по медицине (14.03.03) на тему:Значение антител к ацетилхолиновым рецепторам в оценке эффективности лечения больных миастенией

ДИССЕРТАЦИЯ
Значение антител к ацетилхолиновым рецепторам в оценке эффективности лечения больных миастенией - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Значение антител к ацетилхолиновым рецепторам в оценке эффективности лечения больных миастенией - тема автореферата по медицине
Дедаев, Сергей Игоревич Москва 2012 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.03.03
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Значение антител к ацетилхолиновым рецепторам в оценке эффективности лечения больных миастенией

На правах рукописи

ДЕДАЕВ СЕРГЕЙ ИГОРЕВИЧ

ЗНАЧЕНИЕ АНТИТЕЛ К АЦЕТИЛХОЛИНОВЫМ РЕЦЕПТОРАМ В ОЦЕНКЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ ЛЕЧЕНИЯ БОЛЬНЫХ МИАСТЕНИЕЙ

14.03.03 - патологическая физиология 14.01.11 - нервные болезни

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

2 7 СЕН 2012

Москва-2012

005052432

Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение «Научно-исследовательский институт общей патологии и патофизиологии» Российской академии медицинских наук

Научные руководители: доктор биологических наук,

профессор Карганов Михаил Юрьевич

доктор медицинских наук, профессор

Санадзе Александр Георгиевич

Официальные оппоненты: Меркулов Юрий Александрович

доктор медицинских наук, ФГБУ «НИИ общей патологии и патофизиологии» РАМН Главный научный сотрудник лаборатории нервно-мышечной патологии.

Сидорова Ольга Петровна

доктор медицинских наук, ГЪУЗ МО Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского Ведущий научный сотрудник отделения неврологии.

Ведущее учреждение ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова» Минздравсоцразвития РФ.

Защита диссертации состоится « П » I О 2012 года в 14 часов на заседании Диссертационного совета Д 001.003.01 при ФГБУ «Научно-исследовательский институт общей патологии и патофизиологии» РАМН по адресу: 125315, Москва, Балтийская ул., д.8.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГБУ «Научно-исследовательский институт общей патологии и патофизиологии» РАМН.

Автореферат разослан «II » (р ^ 2012 года

Ученый секретарь Диссертационного совета, кандидат медицинских наук

Скуратовская Лариса Николаевна

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность—проблемы определяется неуклонным ростом частоты заболеваемости миастенией, которая к настоящему времени достигла 24 на 100000 населения. Несмотря на значительные успехи в понимании патогенеза и лечении этого заболевания, по-прежнему имеется достаточно большое число вопросов, которые требуют ответов для уточнения некоторых аспектов патофизиологии миастении и определения эффективности современных методов патогенетического лечения. Одной из ключевых проблем является выяснение роли концентрации аутоантител к ацетилхолиновым рецепторам (АХР). Большинство исследователей считают, что именно эти антитела являются основной антигенной мишенью при миастении (Гехт Б.М. и др., 2002; Санадзе А.Г. и др., 2003; Санадзе А.Г., 2012; Kelly R.B. et al., 1981; Lindstrom J., 1984; WarlowR.S. et al., 1985; Vincent A. et al., 2000; Vincent A. et al., 2008). Несмотря на то, что повышение концентрации антител к АХР наблюдается у 80-85% пациентов с миастенией, корреляции между выраженностью этого показателя и тяжестью клинических проявлений болезни не выявлено (Сиднее Д.В. и др., 2006; Roses A.D. et al., 1981; Zeitlhofer J. et al., 1986; Lindstrom J. et al., 1988; Lindstrom J., 1997; Aurangzeb S. et al., 2009)' Кроме того, помимо антител к АХР выявлены и другие антигенные мишени нервно-мышечного соединения и мышцы, такие как антитела к титину, рианодиновым рецепторам саркоплазматического ретикулума, мышечной специфической тирозинкиназе и др., что в свою очередь позволило выделить серопозитивную и серонегативную формы миастении по отношению к АХР (Щербакова Н.И. и др., 2008; Janossy G. et al., 1986; Drachman D„ 1987; Vieira M.L. et al., 1993; Skeie G.O. et al., 2003; Aurangzeb S. et al, 2009). Единственным информативным показателем оказалось изменение уровня антител к АХР в ответ на использование разных патогенетических методов терапии и хирургического вмешательства (тим(тимомтим)эктомии), но и в этом случае полученные результаты были неоднородными (Olanow C.W. et al., 1982; Limburg P.C. et al., 1983; Oosterhuis H.J. et al„ 1983; Vincent A. et al„ 1983; Oosterhuis H.J. et al„ 1985; Pestronk A. et al„ 1989; Kuks J.B. et al„ 1991). В этой связи изучение изменения концентрации аутоантител к АХР в динамике у одного и того же пациента при применении разных методов патогенетического лечения представляет существенный теоретический и практический интерес.

Важным звеном патогенеза миастении, участвующим в выработке аутоантител к АХР и другим синаптическим и внесинаптическим мишеням, является тимус. Известно, что при сочетании миастении с тимомой повышается уровень антител не только к АХР, но и к титин-белку и рианодиновым рецепторам (Санадзе А.Г. и др., 2003; Санадзе А.Г. и др., 2004; Mohan S. et al., 1994; Aarli J.A. et al., 1998; Yamamoto A.M. et al., 2001; Aarli J.A., 2001; Romi F. et al., 2002; Chen X.J. et al.,'2004). Все

больные миастенией, сочетающейся с тимомой, относятся к группе серопозитивных по отношению к АХР (Сиднев Д.В. и др., 2006; Eymard В. et aL, 1995; Cavalcante P. et al., 2011). Лечение этой группы больных связано с некоторыми трудностями, как правило, проявляющимися в недостаточном эффекте терапии (Санадзе А.Г., 2012; Billre-Turc F. et al., 1997). В этой связи особый интерес представляет анализ динамики клинического состояния больных и уровня антител после хирургического лечения (тим(тимомтим)эктомии).

В оценке состояния пациентов с миастенией общепринято использование Международной клинической классификации тяжести миастении MGFA (Myasthenia Gravis Foundation of America). В оценке мышечной силы использовались шкалы мышечной силы MRC (Medical Research Council) и шкала количественной оценки тяжести клинических проявлений миастении QMGS (Quantitative Myasthenia Gravis Score), которые дают возможность качественного и количественного анализа выраженности двигательных нарушений у больных с миастенией. Объективная оценка силы разных групп мышц, включая дыхательную и бульбарную мускулатуру, с учетом симптома патологической мышечной утомляемости, возможна с использованием шкалы QMGS, которая ранее не использовалась в оценке отечественной популяции больных с миастенией.

Цель и задачи исследования

Целью исследования явилось изучение особенностей взаимозависимости клинического и иммунологического статусов больных миастенией и оценка обратимости двигательных расстройств на фоне патогенетического лечения в зависимости от концентрации антител к ацеталхолиновым рецепторам (АХР).

В соответствии с этим были поставлены следующие задачи;

1. Изучить клинические характеристики тяжести двигательных расстройств у больных миастенией по критериям MGFA и QMGS до и на фоне: 1) глюкокортикоидной терапии; 2) комбинации глюкокортикоидной терапии с последующим хирургическим удалением вилочковой железы.

2. Определить методом радиоиммунного анализа изменение концентрации аутоантител к АХР у больных миастенией на фоне использованных методов патогенетического лечения.

3. Изучить патофизиологическую взаимосвязь между изменением концентрации антител к АХР и динамикой клинических показателей при проведении патогенетического лечения у больных миастенией.

4. Выявить целесообразность определения концентрации аутоантител к АХР в оценке эффективности патогенетического лечения и прогнозе течения миастении.

Научная новизна работы

Впервые проведено комплексное исследование, включающее не только изменение клинических и электрофизиологических показателей, но и учитывающее динамику концентрации аутоантител к АХР при использовании разных методов патогенетического лечения миастении. Впервые на российской популяции показано, что клиническое улучшение состояния больных при оценке через 2-4 месяца после назначения глюкокортикоидов и 9-12 месяцев после проведения тимэктомии в большинстве случаев сопровождается снижением концентрации аутоантител, причем значительное клиническое улучшение совпадает с достоверным уменьшением уровня антител. Показано, что клиническое улучшение состояния через 4-6 недель после удаления тимуса, против ожидания сопровождается временным увеличением уровня антител к АХР с последующим его снижением в дальнейшем. Данное наблюдение, но всей вероятности, является проявлением неспецифического иммунного ответа на хирургическое вмешательство. Впервые в оценке эффективности лечения использована шкала количественной оценки выраженности двигательных нарушений - (ЗМСЭ. Использованный подход к оценке состояния пациентов с миастенией позволяет объективно оценить выраженность двигательного дефекта и степень его компенсации на фоне использованных методов патогенетического лечения.

Теоретическая и практическая значимость работы

Полученные результаты комплексной оценки состояния больных с миастенией, получавших глюкокортикоидлые препараты, подтверждают, что клинический эффект патогенетического лечения больных миастенией ассоциирован с уменьшением концентрации антител к АХР. Однако направленность изменения иммунологических показателей и выбранных клинических параметров оценкн улучшения не всегда совпадают в случаях комбинации иммуносупрессорной терапии с хирургическим удалением тимуса: на ранних этапах после операции у многих больных наблюдается парадоксальное увеличение концентрации антител несмотря на несомненную положительную клиническую динамику. Хорошо известно, что любая хирургическая агрессия является стрессорным фактором для организма, приводящим к ряду неспецифических реакций, в том числе увеличению общего пула иммуноглобулинов сыворотки крови, к которым относятся и антитела к АХР. Это обстоятельство позволяет рассматривать феномен временной гиперпродукции антител к АХР в послеоперационном периоде как проявление иммунологического ответа на операционный стресс. Данное наблюдение является теоретически и пракгически важным для случаев, когда пациент с миастенией в стадии ремиссии вынужден подвергаться стрессорному воздействию, которое в свете неспецифичности иммунологических реакций в ответ на повреждающий фактор может вызвать обострение болезни.

Использование иммунологического исследования концентрации аутоантител к АХР, наряду с клиническими и электрофизиологическими методами позволяет объективно оценить степень улучшения и в перспективе прогнозировать вероятность экзацербации у больных с миастенией, имеющих парадоксальное увеличение концентрации антител к АХР, несмотря на клиническое улучшение.

Полученные в настоящем исследовании результаты используются в лекционных курсах для специалистов неврологов по диагностике и лечению миастении. Алгоритм диагностики с использованием критериев количественной оценки двигательных нарушений (<ЗМС5) и методы радиоиммунологического и иммуноферментного исследования концентрации антител внедрены в клиническую практику и применяется для объективной оценки эффективности патогенетического лечения миастении в Московском миастеническом центре ГБУЗ «ГКБ №51 ДЗМ», ФГБУ «Национальной медико-хирургический Центр им. Н.И. Пирогова» Минздравсоцразвития России, ФГБУ «НЦ неврологии» РАМН и др.

Положения, выносимые на защиту

1. При проведении патогенетического лечения, приводящего к снижению активности патофизиологических механизмов аутоиммунного процесса, улучшение состояния больных миастенией сопровождается снижением уровня антител к АХР.

2. При проведении тимэктомии в послеоперационном периоде может наблюдаться парадоксальное увеличение антител к АХР, несмотря на наблюдаемое улучшение состояния.

3. Степень снижения концентрации антител к АХР в случае клинического улучшения не зависит от пола, возраста пациентов, наличия тимомы и фонового приема поддерживающих доз глюкокортикоидных препаратов.

4. Персисгирующий высокий уровень антител на фоне положительного эффекта от лечения миастении глюкокортикоидными препаратами свидетельствует о сохраняющейся активности патофизиологического процесса, что указывает на высокую вероятность обострения болезни.

Апробация работы

Материалы диссертации были доложены и обсуждены на Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные вопросы диагностики и лечения заболеваний нервной системы», 2010 г., г. Ярославль; XVIII Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство», 2011 г., г. Москва.

Публикации по теме диссертации

Опубликовано 8 статей, из них 6 в журналах, рекомендованных ВАК РФ.

Объем н структура диссертации

Диссертационное исследование изложено на 157 страницах и состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, собственных результатов и их обсуждения, заключения и выводов. Работа включает 34 рисунка и 10 таблиц. Список литературы содержит 265 источников, из них 37 работ отечественных и 228 работ зарубежных авторов.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Обследование пациентов проводилось в Московском Миастеническом центре на базе ГЬУЗ «ГКБ №51ДЗМ». Диагноз миастении основывался на данных клинического осмотра, положительной фармакологической пробе с подкожным введением ингибиторов ацетилхолинэстеразы (0,05% раствор прозернна), результатах электромио1рафического исследования, а также повышенной концентрации антител к АХР, определенной с использованием метода радиоиммунного анализа.

Было обследовано 62 пациента с миастенией в возрасте от 16 до 69 лет. Средний возраст составлял 37,6 ± 17,4 лет (М ± среднее квадратичное отклонение (5)). Среди них было 48 женщин (77%) и 14 мужчин (23%). Оперативное вмешательство па тимусе (тим(тимомтнм)эктомия) и послеоперационные морфологические исследования вилочковой железы проводились в факультетской хирургической клинике им. H.H. Бурденко ГБОУ ВПО «Первый МГМУ им. И М. Сеченова» Минздравсоцразвития РФ (отделение миастении и эндокринной хирургии) и в ФГБУ «Национальный медико-хирургический Центр им. 11.И. Пирогова» Минздравсоцразвития России.

Распределение пациентов по возрасту и полу, приведенное в абсолютных значениях и в процентах, отображено в табл. 1.

Таблица 1.

Распределение пациентов по возрасту и полу.

чч Возраст Пол До 30 лет От 31 до 60 лет 61 год и старше

Женщины 28 (45%) 17(27%) 3 (5%)

Мужчины 5 (8%) 6(10%) 3 (5%)

ВСЕГО: 33 (53%) 23 (37%) 6 (10%)

Как видно из представленных данных, наибольшее количество больных были в возрастной группе до 30 лет - 33 пациента (53%). В возрасте от 31 до 60 лет было 23 пациента (37%). В возрасте старше 60 лет - 6 пациентов (10%).

У 39 пациентов (31 женщина и 8 мужчин), проводилось лечение глюкокортикоидными препаратами. У 23 пациентов (17 женщин и 6 мужчин)

проводилось хирургическое лечение, причем у 16 из них на фоне приема поддерживающих доз глюкокортикоидных препаратов.

Специальная выборка больных для обследования не проводилась.

Распределение по возрасту и полу в разных группах больных миастенией было следующим: соотношение мужчин и женщин при миастении в сочетании с тимомой -1:1.5, при миастенией с поздним началом болезни - 1:1.1, по сравнению с группой больных с ранним началом миастении без тимомы - 1:3 и в целом не отличалось от данных литературы (Сиднев Д.В. и др., 2006; Санадзе А. Г., 2012; Ск^егИшв Н., 1984; МцИег-НеппеНпк Н. с! а1., 1994).Тяжесть заболевания обследованных больных до начала лечения приведена в табл. 2.

Таблица 2.

Тяжесть миастении у пациентов до начала лечения (по МОРЛ).

Тяжесть Лечение"~~^^ 2А 2В ЗА ЗВ 4А 4В

Глкжокортнкоидные препараты 1 5 5 17 4 7

Тим(тимомтим)эктомия 0 4 6 12 0 1

Вссго 1 9 11 29 4 8

Для постановки диагноза и мониторинга состояния пациентов с миастенией применялись следующие методы оценки: клинический статус, состояние надежности иервио-мьгшечной передачи и иммунологических нарушений, имеющих место при этом заболевании.

Клинические методы

Сила мышц (однократное максимальное произвольное усилие) оценивалась по пятибалльной шкале МКС (Я/оЬог А., 1976), где 1 балл - наличие минимальных движений в мышце, но вес конечности больной не удерживает; 2 балла - больной удерживает вес конечности; 3 балла - больной удерживает вес конечности и сопротивляется усилиям изменить ее положение, но сопротивление незначительно; 4 балла - больной хорошо сопротивляется усилиям изменить положение конечности, но имеется некоторое снижение силы; 5 баллов - сила мышцы соответствует возрастной и конституциональной норме обследуемого.

Использование данной шкалы позволяет выявить преимущественное поражения отдельных мышечных групп у больных с разными клиническими формами миастении. Существенными недостатками шкалы являются субъективный фактор, зависящий от физической силы исследователя, отсутствие возможности учесть

симптом патологической утомляемости и затруднение оценки глазодвигательных, бульбарных и дыхательных нарушений.

Для минимизации перечисленных недостатков данной шкалы, использовалась количественная шкала QMGS, предложенная Barohn R.J. в 1998 году (табл. 3). Шкала QMGS позволяет оценивать степень (в баллах от 0 до 3) вовлечения в патологический процесс разных мышц (глазодвигательных, бульбарных, мимических, дыхательных, проксимальных и дистальных мышц конечностей, а также мышц шеи). Степень функционального дефицита определяется по стандартной методике (Barohn R.J., 1998). Исследование проводится на фоне предварительной отмены антихолинэстеразных препаратов не менее чем на 12 часов.

Определяют:

• Наличие или отсутствие, а также степень выраженности (по времени появления) диплопии при взгляде в сторону.

• Птоза при взгляде вверх

• Дизартрии при счете до 50

• Слабости дельтовидной мышцы при отведении вытянутой руки на 90 гр. в сторону в положении сидя

• Слабости мышц шеи при подъеме головы под углом в 45 градусов в положении лежа на спине

• Слабости проксимальных мышц ног при вытягивании прямой ноги под углом в 45 градусов в положении лежа на спине.

• При помощи динамометра определяют слабость мышц кисти в положении сидя. Имеются нормы отдельно для мужчин и отдельно для женщин.

• При помощи спирометра определяют жизненную емкость легких (ЖЕЛ) в процентах от нормы.

• Определяют слабость круговой мышцы глаза

• Нарушение глотания - проба глотанием фиксированного объема воды.

В зависимости от времени появлешм симптома, динамометрического определения силы и спирометрической оценки ЖЕЛ в числитель дроби вносятся показатели в секундах, килограммах или процентах, а в знаменатель соответствующая степень тяжести от 0 до 3. Общепринятые нормативные данные представлены в табл. 3.

Диапазон изменений варьирует от 0 баллов (отсутствие глазодвигательных и бульбарных нарушений, а также мышечной слабости, что характерно для полной ремиссии) до максимально 39 баллов (грубые глазодвигательные и бульбарные нарушения, а также мышечная слабость).

Таблица 3.

Шкала количественной оценки тяжести клинических проявлений миастении.

Предмет исследования Отсутствует Умеренный Средний Тяжелый

Тяжесть 0 1 2 3

(выраженность

симптома)

Диплопия при 6) 11-60 1-10 Спонтанно

боковом взгляде влево

или вправо, секунды

Птоз (взгляд верх), 61 11-60 1-10 Спонтанно

секунды

Мышцы лица Нормальное Полное, слабое, Полное, без Неполное

закрытие века некоторое сопротивление сопротивления

Глотание 14 чашки Нормальное Минима1ьное Тяжелый кашель, Не может глотать

воды покашливание или прочистка горла удушье или носовая регургитация

Разговор после счета Отсутствует на 50 Дизартрия на 30-49 Дизартрия на 10-29 Дизартрия на 9

вслух от 1 до 50

(начало дизартрии)

Вытягивание правой 240 90-239 10-89 0-9

руки (90 градусов

сидячее положение),

секунды

Вытягивание левой 240 90-239 10-89 0-9

руки (90 градусов

сидячее положение),

секунды

Жизненная емкость >80 65-79 50-64 <50

легких, % СП-

должного

Динамометрия

Правая рука, кгВ >45 15-44 5-14 0-4

Мужчины >30 10-29 5-9 0-4

Женщины

Динамометрия

Левая рука, кгВ >35 15-34 5-14 0-4

Мужчины >25 10-24 5-9 0-4

Женщины

Подъем головы (в 120 30-119 1-29 0

положении лежа на

спине 45 градусов),

секунды

Вытягивание правой 100 31-99 1-30 0

ноги (в положении

лежа на спине 45

градусов), секунды

Вытягивание левой 100 31-99 1-30 0

ноги (в положении

лежа на спине 45

градусов), секунды

Данная шкала позволяет оценить важный и патогномоничный для миастении симптом - патологическую мышечную утомляемость. Одновременное использование шкалы ОМСБ и шкалы МЯС в оценке двигательных расстройств у конкретного пациента является оптимальным, поскольку дает объективную информацию о генерализованное™, выраженности и обратимости двигательных нарушений на фоне разных методов патогенетической терапии.

В зависимости от тяжести клинических проявлений, пациенты распределялись по пятибалльной шкале, согласно Международной клинической классификации МОРА (ВагоЬп 1и. et а1., 1998):

1 - изолированная слабость только окулярных мышц;

2 - легкая слабость мышц туловища, проксимальных отделов конечностей, а также вовлечение в процесс орофарингеальных мышц;

3 — умеренная слабость мышц туловища, проксимальных отделов конечностей, а также вовлечение в процесс орофарингеальных или дыхательных мышц;

4 - выраженная слабость мышц туловища, проксимальных отделов конечностей, а также вовлечение в процесс орофарингеальных или дыхательных мышц;

5 - интубация, или нахождение пациента на искусственной вентиляции легких.

А - бульбарные нарушения отсутствовали; В - присутствовали бульбарные

нарушения.

Электромиографнческие методы

Как один из методов электромиографии использовался стандартный метод непрямой ритмической супрамаксимальной стимуляции мышцы с регистрацией М-ответа поверхностными электродами (декремент-тест). Учитывая то, что в исследовании, как правило, принимали участие пациенты с генерализованной формой заболевания, тест проводился на дельтовидной мышце (Рис. I). У больных с выраженными бульбарными расстройствами дополнительно исследовалась двубрюшная мышца. Во всех случаях за 12-24 часа до исследования отменялись ингибиторы ацетилхолинэстеразы. При изучении функционального состояния нервно-мышечной передачи оценивали следующие параметры: амплитуду негативной фазы М-ответа в ответ на одиночный супрамаксимальный стимул (в мВ); величину декремента амплитуды М-ответа при стимуляции мышцы частотой 3 имп/с по отношению 5-го М-ответа к 1-му (в %).

Рисунок 1. Декремент М-ответа -43% при миастении у больного К, 35 лет. Стимуляция подмышечного нерва с частотой 3 Гц; отведение с дельтовидной мышцы. Исследование нервно-мышечной передачи у пациентов проводилось на электромиографе «Нейро-МВП-Микро» фирмы «Нейрософт».

Фармакологические пробы

Для объективизации обратимости блока нервно-мышечной передачи миастенического типа проводилась проба с введением прозерина. По истечении 1224 часов после отмены ингибиторов ацетилхолинэстеразы проводится клиническое и ЭМГ обследования, после чего вводится 0,05% раствор прозерина. Через 40-50 минут после инъекции процедуру клинического осмотра и ЭМГ обследования повторяют по тому же протоколу. Проба считалась положительной в случае нарастания мышечной силы и уменьшения выраженности декремента М-ответа при повторном ЭМГ тестировании через 40-50 минут. Для уменьшения возможных побочных явлений в ответ на стимуляцию мускариновых холинорецепторов после введения прозерина, при необходимости вводилось подкожно 0,2-0,3 мл 0,1% раствора атропина.

Иммунологические методы

Иммунологическое исследование выполнялось в лаборатории полисистемных исследований (руководитель - доктор биологических наук, профессор М.Ю. Карганов) НИИ общей патологии и патофизиологии РАМН.

Концентрацию антител к ацетилхолиновым рецепторам определяют радиоиммунологическим методом с помощью коммерческой тест-системы (DLD Diagnostika GMBH, Германия). Образцы сыворотки крови хранят при -20°С. Перед проведением анализа сыворотки размораживают, отбирают аликвоты по 5 мкл и помещают в пробирки. К пробам добавляют по 100 мкл 125 1-рецептора ацетилхолина, 50 мкл антител к IgG человека, перемешивают и инкубируют в течение 30 мин при комнатной температуре. Затем добавляют по 1 мл промывочного буфера, центрифугируют (3000 g 20 минут), надосадочную жидкость удаляют декантацией. Осадок ресуспензируют и повторяют процедуру промывки. Определяют радиоактивность проб и вычисляют концентрацию антител в нмоль/л по формуле. Повышенной концентрацией антител к АХР считается значение, превышающее 0,50 Нмоль/л.

Статистическая обработка материала

Все данные были обработаны на персональном компьютере с помощью пакета программ STATISTICA 6.0 (Stastistica Inc., USA). Для проверки нормальности распределения полученных данных использовался метод Колмогорова Смирнова. Учитывая нормальное распределение показателен при обработке результатов, приведенных в настоящей работе, использовались параметрические методы, такие как критерий Стьюдента и дисперсионный анализ с вычислением вероятности ошибки «р». Уровень доверительной вероятности во всех типах анализа р<0,05 рассматривали как статически значимый.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Данные, полученные в результате настоящего исследования, позволяют обсудить ряд вопросов связанных с патогенезом миастении и, в частности, роли аутоантител к АХР, как критерия оценки эффективности патогенетической терапии.

Благодаря возросшим методологическим возможностям экспериментальных и клинических иммунологических исследований осуществлен прорыв в понимании патогенеза целого ряда аутоиммунных заболеваний, среди которых оказалась и миастения. Методы, основанные на выявлении иммунного субстрата болезни в виде аутоантител к разным структурам нервно-мышечного соединения и, прежде всего, к субъедипицам АХР, сегодня являются золотым стандартом при диагностике миастении, т.к. повышение концентрации этих антител наблюдается в 80-85% случаев. Вместе с тем, несмотря на высокую диагностическую значимость повышения концентрации антител к АХР, в подавляющем большинстве исследований не выявлено корреляции между выраженностью клинических проявлений миастении и концентрацией аутоантител к АХР (Спдпев Д.В. и др., 2006; Санадзе А.Г., 2012; Lindstrom J., 1997; Aurangzeb S. et al., 2009).

Результаты нашего исследования по определению содержания антител к АХР при миастении выявили ассоциацию клинического улучшения и снижения их концентрации при проведении патогенетического лечения глюкокортикоидными препаратами и после тимэктомии с предшествующей терапией глюкокортикоидными препаратами. Полученные данные позволяют рекомендовать использование факта изменения концентрации антител, как еще одного критерия оценки эффективности проводимого лечения.

Проведенное исследование было разделено на 2 основных этана. Первый этап - определение клинической эффективности разных методов патогенетического лечения - терапии глюкокортикоидными препаратами и тим(тимомтим)эктомии. Второй этап - сопоставление полученного эффекта с изменением концентрации сывороточных антител к АХР.

Определение клинической эффективности проведенного лечения.

История применения глюкокортикоидных препаратов при миастении берет свое начало с 1970-х годов, однако, несмотря на большой опыт применения и бесспорно высокую эффективность, механизм их действия при этом заболевании остается до конца не изученным. Согласно современным представлениям, эффект глюкокортикоидных препаратов на иммунную систему реализуется несколькими путями, включающими угнетение процесса миграции лейкоцитов, ингибирование ряда функций Т-клеток, уменьшение продукции и секреции цитокинов рядом клеток и угнетение созревания дендритических клеток ф^аг-Мапега !. й а1., 2009). Первоначально проводились попытки назначения глюкокортикоидных препаратов в больших дозах на относительно короткое время с быстрой отменой. Это приводило в большинстве случаев к выраженному улучшению состояния, за которым часто следовала экзацербация заболевания (Мапп .1.0. е! аI., 1976). В дальнейшем было доказано, что продолжительный прием поддерживающих доз глюкокортикоидных препаратов позволяет добиваться длительной и устойчивой ремиссии в течение продолжительного времени (Кузин М.И., Гехт Б.М., 1996). Сегодня глюкокортикоиды используются как препараты первого ряда в терапии миастении (1се У.К. е1 а!., 2011; ОИЬив И.Е. е1 а!., 201 1).

тажесть миастении (по МСРА) 4В

Рисунок 2. Распределение 39 больных в зависимости от тяжести состояния до и на фоне лечения глкжокортикоидными препаратами. Ось абсцисс - степень выраженности клинических проявлений миастении по шкале (согласно МОРА), ось ординат - число пациентов.

Согласно данным, полученным в ходе нашего исследования, клиническое улучшение на фоне приема глюкокортикоидных препаратов при оценке через 2-4 месяца после начала лечения наблюдалось у 28 из 39 пациентов (72%). При этом, выраженный эффект, подразумевавший изменение степени тяжести с 4 (А/В) до 2 (А/В) по MGFA, имел место только у 4 пациентов. У остальных 24 пациентов имелась умеренно выраженная положительная динамика в виде снижения степени тяжести заболевания на 1 градацию по MGFA. Полученные данные представлены на рис. 2.

Аналогичные результаты были получены и другими авторами (Evoli А. et al., 1992; Gajdos P. et al., 1999; Schneider-Gold C. et al., 2005), no результатам работ которых, эффект от применения глюкокортикоидных препаратов наблюдался у 70-80% больных с миастенией.

Тимус при миастении играет важную роль в индуцировании первичной иммуногенности, в основе которой лежит нарушение механизмов формирования толерантности Т-лимфоцитов к собственным антигенным белкам тимуса. В их число входят белки субъединиц АХР, а также титин и рианодиновые рецепторы (Санадзе А.Г. и др, 2003; Kaminski H.J. et al„ 1993; Mygland A. et al., 1995; Romi F. et al, 2000). Таким образом, вилочковая железа по современным представлениям является источником провоцирования и поддержания патологического аутоиммунного ответа при миастении (Cavalcante P. et al, 2011).

□ до лечения S после лечения

тяжесть миастении (по MGFA)

Рисунок 3. Распределение 23 больных в зависимости от тяжести состояния до и после проведения тим(тимомтим)эктомии. Обозначения: ось абсцисс - степень выраженности клинических проявлений миастении (согласно MGFA), ось ординат -количество пациентов.

По данным литературы клиническое улучшение при тимэктомии наблюдается в 60-80% случаев, чего не отмечается больше ни при одном другом аутоиммунном заболевании человека (ВиБсИ С. е1 а1., 1996; УетЦа Р. с1 а1., 1999; Рорсяси 1. ^ а1., 2002; Яогш Р. с! а!., 2006).

В настоящем исследовании положительный клинический эффект от тимэктомии при оценке через 9-12 месяцев после операции (рис. 3) наблюдался у 21 из 23 пациентов (91%), что в целом несколько больше, чем по данным ряда других авторов.

У всех больных тимэктомия дала положительный эффект, который условно расценивался как средне выраженный и соответствующий уменьшению тяжести заболевания по МвРЛ на 1 градацию (с 4 до 3 или с 3 до 2).

Наличие только средне выраженного эффекта объясняется тем, что учитывая возможность неблагоприятного исхода при тяжелых формах миастении, до тимэктомии обязательным было назначение глюкокортикоидных препаратов с получением положительного клинического эффекта в виде уменьшения степени тяжести до градации 3 по МвРА. В результате диапазон возможных колебаний клинического эффекта был ограничен.

Сопоставление клинического эффекта и изменении содержание! антител к АХР.

С момента первых исследований, направленных на изучение роли антител к АХР, проводился поиск корреляционных связей между клиническими и иммунологическими изменениями. Однако все попытки выявить корреляцию между концентрацией антител и тяжестью или формой миастении, длительностью заболевания, полом и возрастом пациентов, оказались безуспешными (Санадзе А.Г. и др., 2003; Сиднее Д.В. и др., 2006; ЬтсЫгот .1., 1997; 8ке1е С.О. е! а1„ 2003; Аигаг^геЬ Б. е1 а1„ 2009). Это существенно ограничило информативную ценность уровня антител к АХР и сделало невозможным использование этого иммунологического показателя для определения прогноза течения заболевания и коррекции лечения (Санадзе А.Г., 2012; БкЫе О.О. е1 а1., 2003). Параллельно с этим, проводились попытки сопоставить клинический эффект разных методов патогенетического лечения не столько с уровнем, сколько с индивидуальной флюктуацией концентрации антител к АХР.

В ряде исследований показано частое сочетание клинического улучшения и снижения уровня антител к АХР при терапии глюкокортикоидными препаратами. При этом содержание антител к АХР

уменьшалось более чем на 20% (Schümm F. et al., 1984; Pestronk A. et al., 1989).

В нашем исследовании, при оценке через 2-4 месяца после начала лечения глюкокортикоидами, у 22 из 28 больных (78%), имевших клиническое улучшение наблюдалось уменьшение концентрации сывороточных антител к АХР (р<0,05). При этом существенная положительная динамика (переход на 2 градации по MGFA) всегда совпадала со значимым снижением уровня антител (не менее чем на 40%). Отсутствие клинического эффекта лечения ассоциировалось с отсутствием достоверных колебаний содержания антител или даже его увеличением относительно исходного уровня (табл. 4).

Таблица 4.

Динамика тяжести заболевания (согласно MGFA) и содержания антител к АХР

при лечении глюкокортикоидными препаратами.

Больяые с клявяческвм улучшением Количество DUItRTM (п-28) QMGS до ■ а осле лечека (среднее звачевве в баллах) Ковцевтрацвя антител до ■ после лечения (средвсе звачеяяе в S в я моль/л)

2В-2А 4 8,5 - 3,7 12,5 (4,4) - 7,5 (4,3)

ЗА-2А 2 17,5-4 8,9 (0,7) - 14,5 (0,5)

ЗВ-2А 8 20, 5 - 3,5 14,5 (12,4)-7,3 (6,7)

ЗВ-2В 4 19,7-8 8,9 (2,2)-7,8 (3,0)

4В-ЗВ 4 25,5-18,7 22,4(13,7)- 15,8 (7,2)

4А-ЗА 2 22,5-18,5 13,9 (12,3)-5,6 (3,8)

4А-2А 1 23-4 23,5-5,6

4В-2А 2 25-4,5 14,9 (3,6)-5,4 (2,3)

4В-2В 1 28-9 13,7 — 7,3

Больяые без клянвческого эффекта Количество аацяентов (п=10) QMGS до ■ в осле лечеввя (средне« звачевве в баллах) Кояцевтраявя алтвтел до в после лечеввя (среднее эвачевве в £ в вж«ль/л)

2А-2А I 5-5 16,3-13,1

2В-2В 1 8-9 13,8-16,9

ЗА-ЗА 3 18-16 15,8 (8,3)-19,4 (13,9)

ЗВ-ЗВ 4 18,5-19,7 9,9 (7,2)-10,3 (6,1)

4А-4А 1 14,1-14,3

Пациенты с клиническим ухудшением Количество пациентов (п=1) QMGS до и после лечения (среднее значение в баллах) Концентрация антител до и после лечения (среднее значение в нмоль/л)

ЗВ-4В 1 18-29 7,8-10,8

В ряде исследований показано, что тимэктомия не оказывает существенного влияния на изменение концентрации антител к АХР даже при достаточно длительных

сроках наблюдения (Kornfeld Р. et al., 1981; Olanow C.W. et al., 1982). Однако другие авторы отмечают уменьшение уровня антител, ассоциируемое с клиническим улучшением (Seybold М.Е. et al., 1978; Newsom-Davis J. et al., 1983; Seto M. et al., 1993; Hayashi M., et al., 1995).

Согласно результатам настоящего исследования, при оценке через 9-12 месяцев после оперативного лечения, у 18 из 21 пациента. (86%) клиническое улучшение совпадало со снижением концентрации антител (р<0,05). Степень снижения концентрации антител не зависела от пола и возраста больных. Полученные данные представлены в табл. 5.

При проведении хирургического лечения у 6 из 23 пациентов была выявлена тимома, подтвержденная гистологическим исследованием. Достоверных различий в изменении как клинического состояния, так и уровня антител к АХР в зависимости от наличия тимомы выявлено не было.

Таблица 5.

Динамика тяжести заболевания (согласно MGFA) и содержания антител к АХР

после хирургического лечения.

Больные с клиническим улучшением Количество пациентов (0=21) рМСв до и после лечения (среднее значение в баллах) Концентрация антител к АХР до н после лечения (среднее значение и 5 в нмоль/л)

2В-2А 4 8,2-4,7 16,8(4,4)- 11,5(4,1)

ЗА-2А 4 19 - 5,2 20,6 (6,8)-11,3 (5,8)

ЗВ-2А 7 17,7-3,3 14,5 (8,0)-10,3 (7,8)

ЗВ-2В 5 19,2-7 14,6(7,4)- 11,7(7,2)

4В-ЗВ 1 29-19 7,2-5,0

Пациенты без клинической динамики Количество пациентов (п=2) ОМСв до и после лечения (среднее значение в баллах) Концентрация антител к АХР до и после лечения (среднее значение и 5 в нмоль/л)

ЗА-ЗА 2 19-18,5 24,1 (4,1)-19,4 (7,3)

Помимо мониторинга содержания антител к АХР на относительно поздних сроках, несомненный интерес представляет изменение их уровня в более раннем периоде после тимэктомии.

По данным литературы снижение уровня антител к АХР, сочетающееся с клиническим улучшением выявляется уже через 6-8 недель после операции (Kuks J.B. et al., 1991; Seto M. et al., 1993).

В нашей работе была обследована группа, состоящая из 21 пациента с генерализованной миастенией, при этом почти у всех больных через 4-6 недель после тимэктомии, несмотря на наличие у большинства из них клинического улучшения, уровень антител к АХР существенно повышался.

Некоторые исследователи отмечают эффект, обусловленный непосредственно тимэктомией, без предварительной иммуносупрессии глюкокортикоидными препаратами. Наблюдение за 25 больными,

подвергшимися тимэктомии без сопутствующей пероральной иммуиосупрессии, в течение срока от 1 до 3 лет выявило корреляцию между клиническим улучшением и снижением уровня антител (Vincent A. et al., 1983).

Как было сказано выше, эффективность тимэктомии при миастении составляет от 60 до 80% (Ветшев П.С. и др., 2006; Genkins G. et al., 1987; Busch С. et al., 1996; Venuta F. et al., 1999; Popescu I. et al., 2002). Тем не менее, необходимо подчеркнуть, что эффективность оперативного лечения возросла в связи с внедрением в практику глюкокортикоидпой терапии и до начала применения глюкокортикоидных препаратов составляла 30-40%.

В настоящее время, как правило, применяется органосберегающий подход, который подразумевает проведение оперативного вмешательства на тимусе по строго определенным показаниям. К этим показаниям относят, в первую очередь, наличие опухоли - тимомы, а также недостаточную эффективность консервативной глюкокортикоидной терапии и частые экзацербации. Таким образом, большинство больных подвергаются тимэктомии, принимая поддерживающие дозы глюкокортикоидных препаратов. Также нельзя забывать о риске проведения оперативного вмешательства у пациентов с тяжелыми проявлениями миастении, что, учитывая необходимость дачи наркоза, стресса от проведения операции и возможность развития инфекционных осложнений представляет угрозу жизни пациента. Это обстоятельство диктует необходимость достижения максимально возможной клинической компенсации путем предварительного назначения глюкокортикоидных препаратов (Кузин М.И., Гехт Б.М., 1996, Ветшев П.С. и др., 2006; Санадзе А.Г., 2012). Учитывая выше приведенные факты, тимэктомия обычно осуществляется в комбинации с глюкокортикоидной терапией и только у больных с легким течением заболевания проводится изолировано, т.е. без предварительной лекарственной иммуиосупрессии. Подобный подход значительно увеличивает эффективность тимэктомии, но при этом делает крайне затруднительным оценку эффекта самого оперативного вмешательства.

Некоторые авторы указывают на то, что при комбинации тимэктомии и гормональной терапии антитела снижаются более существенно, чем при проведении операции без предварительной медикаментозной иммуиосупрессии. Более того, есть данные, что при лечении только глюкокортикоидными препаратами антитела к АХР снижаются больше, чем при проведении только тимэктомии без применения других методов иммуносупрессивной терапии (Seybold М.Е., Lindstrom J.M., 1981; Oosterhuis H.J. et al., 1983).

В наше исследование было включено 7 пациентов, у которых хирургическое лечение осуществлялось без предварительной глюкокортикоидной терапии. При этом не выявлено достоверного различия эффекта вмешательства у лиц с изолированным

хирургическим лечением и тимэктомией в рамках комбинированной предварительной терапии глкжокортикоидными препаратами (табл. 6, А и В).

Таблица 6

А. Изменение клинико-иммунологических параметров у пациентов после тимэктомии.

Тяжесть заболевания Число пациентов (>-7) QMGS до н после лечения (среднее значение в баллах) Содержание антител к АХР до и после лечения (среднее значение н 8 в нмоль/л)

ЗВ-2В 1 21-9 21,8 - 21,2

ЗВ-2А 1 16-4 21,9 - 10,3

ЗА-2А 2 18-4,5 18,8 (4,5) -7,7 (5,1)

2В-2А 2 8,5 -5 17,3 (3,1)- 13,0 (3,6)

ЗА-ЗА 1 19-21 27,0- 19,4

В. Изменение клинико-иммунологических параметров у пациентов после комбинированного лечения (глюкокортикоиды+тимэктомия).

Тяжесть заболевания Число пациентов (11=16) QMGS до и после лечения (среднее значение в баллах) Содержание антител к АХР до н после лечения (среднее значение и 6 в нмоль/л)

4В-ЗВ 1 28-20 7,2-5,0

ЗВ-2В 4 19-7,7 12,9(7,3)-9,3(5,7)

ЗВ-2А 6 17,5 - 8 13,3(8,0) - 10,3(8,6)

ЗА-2А 2 22-5,5 22,4(10,3) - 14,8(5,1)

2В-2А 2 11-6,5 16,4(6,9) - 10,1(5,5)

ЗА-ЗА 1 22 - 20 21,2-23,9

В целом, полученные в настоящем исследовании результаты показали (рис. 4), что у большинства больных при применении патогенетических методов лечения миастении, таких как терапия глкжокортикоидными препаратами или проведения тим(тимомтим)эктомии, положительный клинический эффект сопровождается уменьшением уровня антител к АХР (р<0,05).

Также как и другие исследователи, мы выявили группу больных, у которых улучшение состояния не ассоциировалось с уменьшением концентрации антител. Отсутствие клинического улучшения могло сопровождаться уменьшением уровня антител к АХР, но это уменьшение носило, как правило, невыраженный характер.

Проведенное нами исследование выявило несколько большую эффективность хирургического лечения по сравнению с глюкокортикоидной терапией. Аналогичные данные приводят Kuks J.B. et al. (1991) на основании наблюдения 25 больных на сроках от 1 года до 3.5 лет. Необходимо отметить, что другие исследователи отмечали большую эффективность терапии глкжокортикоидными препаратами или их комбинации с азатиоприном (Schümm F. et al., 1984).

Рисунок 4. Варианты изменения клинического статуса и динамика уровня антител к АХР у 62 пациентов с миастенией на фоне патогенетического лечения. Для каждой группы указано число и (%) больных.

Известно, что при миастении использование других методов патогенетического лечения также приводит к уменьшению концентрации аутоантител к АХР. Гак, при проведении илазмафереза и иммуносорбции на фоне клинического улучшения наблюдается снижение уровня антител в среднем на 21.0 ± 5.0% (Dau P.C. et al, 1993). Отмечен драматический клинический эффект ритуксимаба, сопровождавшийся достоверным снижением концентрации антител к АХР (Nowak R.J. et al, 2011). Однако введение человеческого иммуноглобулина несмотря на клинический эффект не сопровождается достоверным уменьшением концентрации антител к АХР в интервале от 2 до 4 недель после окончания курса лечения (Санадзе А.Г, 201 I).

Совокупность собственных данных и результатов, приведенных в литературе, позволяет считать, что границей ожидаемого улучшения является снижение уровня антител более чем на 20% (Schümm F. et al, 1984). Уменьшение концентрации антител на 50% и более, как правило, ассоциируется с достоверным клиническим улучшением.

Таким образом, исследование концентрации антител к АХР до и после использования разных видов патогенетического лечения является важной

составляющей объективной оценки эффективности проводимых мероприятий. Выявление группы больных, у которых клиническое улучшение ассоциируется с незначительным менее 20% снижением уровня антител, с отсутствием изменения или даже увеличением уровня антител к АХР может указывать на неблагополучный прогноз течения болезни с возможным возникновением рецидива или экзацербации миастении.

ВЫВОДЫ

1. Патофизиологической основой нарушения нервно-мышечной передачи при миастении является появление антител к АХР, что позволяет использовать мониторинг их концентрации в оценке эффективности патогенетического лечения и прогноза неблагоприятного течения болезни. Обязательным является определение уровня антител к АХР на сроках 2-4 месяца после начала глюкокортикоидной терапии и 9-12 месяцев после проведения тим(тимомтим)эктомии.

2. Подавление патофизиологических механизмов аутоиммунной агрессии при адекватной патогенетической терапии приводит к ассоциации выраженного положительного клинического эффекта с уменьшением концентрации антител к АХР на 40% и более.

3. Отсутствие снижения концентрации антител к АХР при патогенетическом лечении, несмотря на клиническое улучшение, является признаком сохранения активности патофизиологического процесса и обуславливает высокую вероятность экзацербации болезни. Стабильность или повышение содержания антител к АХР па фоне лечения является неблагоприятным прогностическим фактором.

4. Клиническое улучшение, объективизируемое изменениями класса по шкале MGFA и количественной оценкой выраженности двигательных расстройств rio шкале QMGS, наблюдается у 72% пациентов с миастенией на фоне лечения препаратами глюкокортикондного ряда и у 90% нацистов при комбинированном лечении с предварительным назначением глюкокортикондных препаратов и хирургическим удалением тимуса или тимомы.

5. В 80% случаев положительный клинический эффект глюкокортикоидной терапии и комбинированного лечения с использованием глюкокортикондных препаратов и хирургического удаления тимуса или тимомы сопровождается уменьшением концентрации антител к АХР в среднем на 45%.

6. Изменение концентрации антител к АХР при патогенетическом лечении не зависит от возраста и пола больных, наличия или отсутствия тимомы, а также проведения фоновой терапии глюкокортикоидными препаратами в случае хирургического лечения.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. При оценке эффективности терапии глюкокортикоидньши препаратами и тимом(тимомтим)эктомии у больных с миастенией, а также при прогнозировании дальнейшего течения болезни, целесообразно проведение мониторинга изменения концентрации антител к ацетилхолиновым рецепторам.

2. Оценку клинического эффекта и изменения уровня антител к ацетилхолиновым рецепторам на фоне лечения необходимо проводить через 2-4 .месяца после начала терапии глюкокортикоидными препаратами и через 9-12 месяцев после проведения тим(тимомтим)эктомии.

3. Шкала количественной оценки тяжести клинических проявлений миастении (QMGS) является важным инструментом определения тяжести заболевания у пациентов с миастенией. Использование этой шкалы в совокупности с общепринятой шкалой оценки мышечной силы MRC позволяет повысить объективность оценки и учесть патогномоничньш для миастении симптом патологической мышечной утомляемости.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Щербакова Н.И., Санадзе А.Г., Сиднев Д.В., Галкина О.И., Рудниченко В.А., Самойлов М.И., Дедаев С.И., Карганов М.Ю. Серонегативная миастения: клинические, иммунологические и электрофизиологические характеристики // Клиническая неврология. - 2008. - №1. - С.3-10.

2. Санадзе А.Г., Сиднев Д.В., Касаткина Л.Ф., Дедаев С.И., Карганов М.Ю. Нейромиотоння и миастения у больного с тимомой // Журнал неврологии и психиатрии имени С.С. Корсакова. - 2010. - Т.110. - №5. - С.101-103.

3. Сиднев Д.В., Санадзе А.Г., Дедаев С.И., Карганов М.Ю., Алчинова И.Б. Антитела к ацетилхолиновому рецептору в оценке эффективности патогенетической терапии у больных с миастенией // Журнал неврологии и психиатрии имени С.С. Корсакова. - 2010. - Т.110. - №11. - С.37-40.

4. Шевченко Ю.Л., Ветшев П.С., Санадзе А.Г., Аблицов А.Ю., Сиднев Д.В., Дедяев С.И., Магомедов Б.А. Антитела к ацетилхолиновому рецептору в оценке эффективности тимэктомии у больных с генерализованной миастенией // Вестник Национального медико-хирургического центра им. Н.И. Пирогова. -2011. -Т.6. - №4. - С. 15-19.

5. Sidnev D.V., Sanadze A.G., Dedaev S.I., Karganov M. Yu., Alchinova I.B. Antibodies to acetilcholine receptors in assessment of the efficacy of pathogenetic treatment patient with myasthenia // Neuroscience and Behavioural Phisiology. - 2011. - V.41. -№9. -P.889-893.

6. Дедаев С.И., Санадзе А.Г., Сиднев Д.В. Использование шкалы QMGS для количественной оценки тяжести двигательных расстройств у больных

миастенией // Журнал неврологии и психиатрии имени С.С. Корсакова. — 2012. — Т. 112. - №7. - С.32-35. 7. Никишов В.Н., Богданов Э.И., Санадае А.Г., Сигал Е.И., Сиднев Д.В., Дедаев С.И., Кондратьев А.В. Тимэктомия и антитела к ацетилхолиновому рецептору у больных миастенией: особенности раннего послеоперационного периода // Журнал неврологии и психиатрии имени С.С. Корсакова. - 2012. - Т. 112. - №9. -С.65-69.

Dedaev Sergey Igorevich Pathogenetic role of antibodies against acetylcholine receptors in assessment of myasthenia gravis treatment efficacy.

Myasthenia gravis (MG) is an autoimmune neuromuscular disease with a confirmed pathophysiological role of circulating antibodies against acetylcholine receptors (anti-AChR) at the postsynaptic neuromuscular junction. The test of anti-AchR has a reasonable sensitivity of 80-95%, and is usually positive in up to 85% of cases. The absence of correlation between anti-AchR level and patient's gender, age, severity and clinical course limits the usefulness of immunological test only to diagnostics purposes inMG.

The aim of the study was to analyze the pathophysiological mechanisms and relationship between clinical status and immunological changes in 62 patients with confirmed generalized MG taking pathogenic treatment. In 39 patients (group 1) the treatment was limited with high dosage of glucocorticoids (GL), and in 23 patients (group 2) the surgical removal of the thymus was done. In every patient the severity of symptoms with scales MRC and QMGS and anti-AChR concentration were tested before and 2-4 month after beginning of GL and 9-12 months after thymectomy.

It was shown that in group 1 the clinical improvement was associated with decreased anti-AChR concentration in 80% of cases. The positive clinical dynamics but without significant changes of anti-AChR concentration was associated with high risk of future exacerbation. The evaluation of anti-AChR concentration with obliged simultaneous complex MRC and QMGS clinical assessment may be used for predicting of course of the disease in MG patients. The absence lowering of anti-AChR concentration in comparison with the initial pretreatment level (before GL or thymectomy) is considered as a poor prognostic factor in disease course and reflect the resistance towards both types of treatment and possible activity of main pathophysiological mechanism of anti-AChR production and anti-AChR dependant damage of postsynaptic structures of neuron-muscular junction.

Подписано в печать 07.09.2012 г.

Заказ № 28 Типография ООО "Медлайн-С" 125315, г. Москва, Ленинградский пр-т, д.78, к.5 Тел. (499)152-00-16 Тираж 100 шт.

 
 

Оглавление диссертации Дедаев, Сергей Игоревич :: 2012 :: Москва

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. История изучения патогенетических механизмов миастении.

1.2. Современные представления об иммунных аспектах миастении.

1.3.Методы патогенетического лечения миастении.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Клиническая характеристика обследованных больных.

2.2. Клинические методы.

2.3. Электромиографические методы.

2.4. Фармакологические методы.

2.5. Иммунологические методы.

2.6. Статистическая обработка материала.

ГЛАВА 3. ИЗУЧЕНИЕ КЛИНИЧЕСКОГО ЭФФЕКТА

ПАТОГЕНЕТИЧЕСКИХ МЕТОДОВ ЛЕЧЕНИЯ МИАСТЕНИИ.

3.1. Оценка эффективности лечения глюкокортикоидными препаратами.

3.2. Оценка эффективности хирургического лечения.

ГЛАВА 4. ИЗУЧЕНИЕ ИЗМЕНЕНИЯ КОНЦЕНТРАЦИИ АНТИТЕЛ К АЦЕТИЛХОЛИНОВЫМ РЕЦЕПТОРАМ НА ФОНЕ ПАТОГЕНЕТИЧЕСКОГО

ЛЕЧЕНИЯ МИАСТЕНИИ.

ГЛАВА 5. СОПОСТАВЛЕНИЕ КЛИНИЧЕСКОГО И ИММУНОЛОГИЧЕСКОГО ЭФФЕКТА ТЕРАПИИ

ГЛЮКОКОРТИКОИДНЫМИ ПРЕПАРАТАМИ.

ГЛАВА 6. СОПОСТАВЛЕНИЕ КЛИНИЧЕСКОГО И

ИММУНОЛОГИЧЕСКОГО ЭФФЕКТА ХИРУРГИЧЕСКОГО ЛЕЧЕНИЯ.

ОБСУЖДЕНИЕ.

ВЫВОДЫ.

 
 

Введение диссертации по теме "Патологическая физиология", Дедаев, Сергей Игоревич, автореферат

Актуальность проблемы определяется неуклонным ростом частоты заболеваемости миастенией, которая к настоящему времени достигла 24 на 100000 населения. Несмотря на значительные успехи в понимании патогенеза и лечении этого заболевания, по-прежнему имеется достаточно большое число вопросов, которые требуют ответов для уточнения некоторых аспектов патофизиологии миастении и определения эффективности современных методов патогенетического лечения. Одной из ключевых проблем является выяснение роли концентрации аутоантител к ацетилхолиновым рецепторам (АХР). Большинство исследователей считают, что именно эти антитела являются основной антигенной мишенью при миастении (Гехт Б.М. и др., 2002; Санадзе А.Г. и др., 2003; Санадзе А.Г., 2012; Kelly R.B. et al., 1981; Lindstrom J., 1984; Warlow R.S. et al., 1985; Vincent A. et al., 2000; Vincent A. et al., 2008). Несмотря на то, что повышение концентрации антител к АХР наблюдается у 80-85% пациентов с миастенией, корреляции между выраженностью этого показателя и тяжестью клинических проявлений болезни не выявлено (Сиднев Д.В. и др., 2006; Roses A.D. et al., 1981; Zeitlhofer J. et al., 1986; Lindstrom J. et al., 1988; Lindstrom J., 1997; Aurangzeb S. et al., 2009). Кроме того, помимо антител к АХР выявлены и другие антигенные мишени нервно-мышечного соединения и мышцы, такие как антитела к титин-белку, рианодиновым рецепторам саркоплазматического ретикулума, мышечной специфической тирозинкиназе и др., что в свою очередь позволило выделить серопозитивную и серонегативную формы миастении по отношению к АХР (Щербакова Н.И. и др., 2008; Janossy G. et al., 1986; Drachman D., 1987; Vieira M.L. et al., 1993; Skeie G.O. et al., 2003; Aurangzeb S. et al., 2009). Единственным информативным показателем оказалось изменение уровня антител к АХР в ответ на использование разных патогенетических методов терапии и хирургического вмешательства (тим(тимомтим)эктомии), но и в этом случае полученные результаты были неоднородными (Olanow C.W. et al., 1982; Limburg P.C. et al., 1983; Oosterhuis H.J. et al., 1983; Vincent A. et al., 1983; Oosterhuis H.J. et al, 1985; Pestronk A. et al., 1989; Kuks J.B. et al., 1991). В этой связи изучение изменения концентрации аутоантител к АХР в динамике у одного и того же пациента представляет существенный теоретический и практический интерес.

Важным звеном в патогенезе миастении, участвующим в выработке аутоантител к АХР и другим синаптическим и внесинаптическим мишеням является тимус. Известно, что при сочетании миастении с тимомой повышается уровень антител не только к АХР, но и к титин-белку и рианодиновым рецепторам (Санадзе А.Г. и др., 2003; Санадзе А.Г. и др., 2004; Mohan S. et al., 1994; Aarli J.A. et al., 1998; Yamamoto A.M. et al., 2001; Aarli J.A. 2001; Romi F. et al., 2002; Chen X.J. et al., 2004). Все больные миастенией, сочетающейся с тимомой, относятся к группе серопозитивных по отношению к АХР (Сиднев Д.В. и др., 2006; Eymard В. et al. 1995; Cavalcante P. et al., 2011). Лечение этой группы больных связано с некоторыми трудностями, как правило, проявляющимися в недостаточном эффекте терапии (Санадзе А.Г., 2012; Billre-Turc F. et al., 1997). В этой связи особый интерес представляет анализ динамики клинического состояния больных и уровня антител после хирургического лечения (тим(тимомтим)эктомии).

В оценке состояния пациентов с миастенией общепринято использование Международной клинической классификации тяжести миастении MGFA (Myasthenia Gravis Foundation of America). В оценке мышечной силы использовались шкалы мышечной силы MRC (Medical Research Council) и количественная шкала оценки тяжести клинических проявлений миастении QMGS (Quantitative Myasthenia Gravis Score), которые дают возможность качественного и количественного анализа выраженности двигательных нарушений у больных с миастенией. Объективная оценка силы разных групп мышц, включая дыхательную и бульбарную мускулатуру, с учетом симптома патологической мышечной утомляемости, возможна с использованием шкалы

0>МО8, которая ранее не использовалась в оценке отечественной популяции больных с миастенией.

Цель и задачи исследования

Целью исследования явилось изучение особенностей взаимозависимости клинического и иммунологического статусов больных миастенией и оценка обратимости двигательных расстройств на фоне патогенетического лечения в зависимости от концентрации антител к ацетилхолиновым рецепторам (АХР).

В соответствии с этим были поставлены следующие задачи:

1. Изучить клинические характеристики тяжести двигательных расстройств у больных миастенией по критериям МОБА и С)М08 до и на фоне: 1) глюкокортикоидной терапии; 2) комбинации глюкокортикоидной терапии с последующим хирургическим удалением вил очковой железы.

2. Определить методом радиоиммунного анализа изменение концентрации аутоантител к АХР у больных миастенией на фоне использованных методов патогенетического лечения.

3. Изучить патофизиологическую взаимосвязь между изменением концентрации антител к АХР и динамикой клинических показателей при проведении патогенетического лечения у больных миастенией.

4. Выявить целесообразность определения концентрации аутоантител к АХР в оценке эффективности патогенетического лечения и прогнозе течения миастении.

Научная новизна работы

Впервые проведено комплексное исследование, включающее не только изменение клинических и электрофизиологических показателей, но и учитывающее динамику концентрации аутоантител к АХР при использовании разных методов патогенетического лечения миастении. Впервые на российской популяции показано, что клиническое улучшение состояния больных при оценке через 2-4 месяца после назначения глюкокортикоидов и 9-12 месяцев после проведения тимэктомии в большинстве случаев сопровождается снижением концентрации аутоантител, причем значительное клиническое улучшение совпадает с достоверным уменьшением уровня антител. Показано, что клиническое улучшение состояния через 4-6 недель после удаления тимуса, против ожидания сопровождается временным увеличением уровня антител к АХР с последующим его снижением в дальнейшем. Данное наблюдение, по всей вероятности, является проявлением неспецифического иммунного ответа на хирургическое вмешательство. Впервые в оценке эффективности лечения использована шкала количественной оценки выраженности двигательных нарушений - С£МЮ8. Использованный подход к оценке состояния пациентов с миастенией позволяет объективно оценить выраженность двигательного дефекта и степень его компенсации на фоне использованных методов патогенетического лечения.

Теоретическая и практическая значимость работы

Полученные результаты комплексной оценки состояния больных с миастенией, получавших глюкокортикоидные препараты подтверждают, что клинический эффект патогенетического лечения больных миастенией, ассоциирован с уменьшением концентрации антител к АХР. Однако направленность изменения иммунологических показателей и выбранных клинических параметров оценки улучшения не всегда совпадают в случаях комбинации иммуносупрессорной терапии с хирургическим удалением тимуса: на ранних этапах после операции у многих больных наблюдается парадоксальное увеличение концентрации антител несмотря на несомненную положительную клиническую динамику. Хорошо известно, что любое хирургическое вмешательство является стрессорным фактором для организма, приводящим к ряду неспецифических реакций, в том числе увеличению общего пула иммуноглобулинов сыворотки крови, к которым относятся и антитела к АХР. Это обстоятельство позволяет рассматривать феномен временной гиперпродукции антител к АХР в послеоперационном периоде как проявление иммунологического ответа на операционный стресс. Данное наблюдение является теоретически и практически важным для случаев, когда пациент с миастенией в стадии ремиссии вынужден подвергаться стрессорному воздействию, которое в свете неспецифичности иммунологических реакций в ответ на повреждающий фактор может вызвать обострение болезни.

Использование иммунологического исследования концентрации аутоантител к АХР, наряду с клиническими и электрофизиологическими методами позволяет объективно оценить степень улучшения и в перспективе прогнозировать вероятность экзацербации у больных с миастенией, имеющих парадоксальное увеличение концентрации антител к АХР, несмотря на клиническое улучшение.

Полученные в настоящем исследовании результаты используются в лекционных курсах для специалистов неврологов по диагностике и лечению миастении. Алгоритм диагностики с использованием критериев количественной оценки двигательных нарушений (С)]УЮ8) и методы радиоиммунологического и иммуноферментного исследования концентрации антител внедрены в клиническую практику и применяется для объективной оценки эффективности патогенетического лечения миастении в Московском миастеническом центре ГБУЗ «ГКБ №51 ДЗМ», ФГБУ «Национальный медикохирургический центр имени Н.И. Пирогова» Минздравсоцразвития России, ФГБУ «НЦ неврологии» РАМН и др.

Положения, выносимые на защиту

1. При проведении патогенетического лечения, приводящего к снижению активности патофизиологических механизмов аутоиммунного процесса, улучшение состояния больных миастенией сопровождается снижением уровня антител к АХР.

2. При проведении тимэктомии в послеоперационном периоде может наблюдаться парадоксальное увеличение антител к АХР, несмотря на наблюдаемое улучшение состояния.

3. Степень снижения концентрации антител к АХР в случае клинического улучшения не зависит от пола, возраста пациентов, наличия тимомы и фонового приема поддерживающих доз глюкокортикоидных препаратов.

4. Персистирующий высокий уровень антител на фоне положительного эффекта от лечения миастении глюкокортикоидными препаратами свидетельствует о сохраняющейся активности патофизиологического процесса, что указывает на высокую вероятность обострения болезни.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Значение антител к ацетилхолиновым рецепторам в оценке эффективности лечения больных миастенией"

ВЫВОДЫ

1. Патофизиологической основой нарушения нервно-мышечной передачи при миастении является появление антител к АХР, что позволяет использовать мониторинг их концентрации в оценке эффективности патогенетического лечения и прогноза неблагоприятного течения болезни. Обязательным является определение уровня антител к АХР на сроках 2-4 месяца после начала глюкокортикоидной терапии и 9-12 месяцев после проведения тим(тимомтим)эктомии.

2. Подавление патофизиологических механизмов аутоиммунной агрессии при адекватной патогенетической терапии приводит к ассоциации выраженного положительного клинического эффекта с уменьшением концентрации антител к АХР на 40% и более.

3. Отсутствие снижения концентрации антител к АХР при патогенетическом лечении, несмотря на клиническое улучшение, является признаком сохранения активности патофизиологического процесса и обуславливает высокую вероятность экзацербации болезни. Стабильность или повышение содержания антител к АХР на фоне лечения является неблагоприятным прогностическим фактором.

4. Клиническое улучшение, объективизируемое изменениями класса по шкале 1УЮРА и количественной оценкой выраженности двигательных расстройств по шкале (3]УЮ8, наблюдается у 72% пациентов с миастенией на фоне лечения препаратами глюкокортикоидного ряда и у 90% пациентов при комбинированном лечении с предварительным назначением глюкокортикоидных препаратов и хирургическим удалением тимуса или тимомы.

5. В 80%) случаев положительный клинический эффект глюкокортикоидной терапии и комбинированного лечения с использованием глюкокортикоидных препаратов и хирургического удаления тимуса или тимомы сопровождается уменьшением концентрации антител к АХР в среднем на 45%.

6. Изменение концентрации антител к АХР при патогенетическом лечении не зависит от возраста и пола больных, наличия или отсутствия тимомы, а также проведения фоновой терапии глюкокортикоидными препаратами в случае хирургического лечения.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2012 года, Дедаев, Сергей Игоревич

1. Ветшев П.С., Ипполитов Л.И., Меркулова Д.М., Животов В. А.

2. Хирургическое лечение тимом у больных генерализованной миастенией // Хирургия. 2003. - №10. - С. 15-20.

3. Ветшев П.С., Шкроб О.С., Ипполитов И.Х., Заратьянц О.В., Пономарев А.Б., Мясников Г.М. Опухоли тимуса у больных миастенией // Неврол. журн. 1998. - Т.4. - С. 122-127.

4. Ветшев П.С. Диагностика, хирургическое лечение и прогнозирование его результатов у больных генерализованной миастенией: Автореф. дисс. док. мед. наук.-М.: 1991.

5. Ветшев П.С., Ипполитов И. X., Курочкин А. В. Генерализованная миастения // Врач. 1995. - № 7 - С.2-6.

6. Галил-Оглы Г.А., Порошин К.К., Алипченко Л.А., Крылов Л.М. Опухоли вилочковой железы. // Арх. патологии. 1980. - Т.З. - С.6-16.

7. Гехт Б.М. Синдромы патологической мышечной утомляемости. М.: Медицина, 1974. - 200 с.

8. Гехт Б.М. Теоретическая и клиническая электромиография. Л.: Наука, 1990.-230 с.

9. Гехт Б.М., Ильина H.A. Нервно-мышечные болезни. М.: Медицина, 1982. -350 с.

10. Гехт Б.М., Куралесин М.Г., Гнездицкая A.B., Шагал Д.И. Влияние гормональной терапии на уровень антител к антигенам эпителиальной ткани тимуса при миастении // Журн. невропатол. и психиатр. 1978. -Т.78. -№8. - С.1129-1134.

11. Гехт Б.М., Ланцова В.Б., Сепп Е.К. Роль антител к ацетилхолиновому рецептору в патогенезе миастении // Неврологический журнал. 2002. -Т.8. - Приложение 1. - С.35-37.

12. Зайцев В.Т., Флорикян А.К., Журов Ю.Е. Отдаленные результаты хирургического лечения генерализованной миастении // Клин.хир. -1990. № 10. - С.34-35.

13. Кузин М.И., Шкроб О.С., Голубков В.А. Хирургическое лечение генерализованной миастении // Хирургия. 1981. - №2. - С.72-76.

14. Кузин М.И., Шкроб О.С., Гехт Б.М. Диагностика, хирургическое лечение и его прогноз у больных генерализованной миастенией // Хирургия. -1994. № 4. - С.11-20.

15. Кузин М.И., Гехт Б.М. Миастения. М.: Медицина. - 1996. - 224 с.

16. Лайзек Р.П., Барчи Р.Л. Миастения. М.: Медицина. - 1984. - 272 с.

17. Ланцова В.Б. Исследование белковых соединений тимуса и IgG сыворотки крови при миастении: Автореф. канд. дисс. М: 2002. - 22 с.

18. Ланцова В.Б., Сепп Е.К. Иммунобиохимические особенности IgG антител при миастении // Бюл. эксперим. биол. и мед. 2002. - № 6. -Т.133. - С.678-680.

19. Ланцова В.Б., Сепп Е.К. Антигенные мишени при миастении // Журнал иммунологии и аллергии Т.5. - №1. - 2004. - С.196-198.

20. Поздняков О.М., Бабакова Л.Л. Пластичность нервно-мышечного синапса в патологии. // Журн. невропатол. и психиатр. 1998. - Т.98. - № 3. - С.SO-SS.

21. Поздняков О.М., Бабакова Л.Л., Коломенская Е.А., Кузьмина H.H. Ультраструктуры нервно-мышечного соединения при миастении // Арх. патол. 1975. - Т.37. - №10. - С.55-63.

22. Санадзе А .Г. Электрофизиологические особенности нарушения нервно-мышечной передачи у больных с различными клиническими формами патологии синаптического аппарата мышцы // Автореф. дисс. докт. наук -М.: 2001.-48 с.

23. Санадзе А.Г., Сиднев Д.В., Капитонова Ю.А., Галкина О.И., Давыдова Т.В. Антитела к титину при миастении у лиц пожилого возраста и миастении, сочетающейся с тимомой // Аллергология и иммунология. -2004.-Т5.-№1.-С. 198-200.

24. Санадзе А.Г. Миастения и миастенические синдромы. М.: Литтерра, 2012.-256 с.

25. Сепп Е.К., Ланцова В.Б. Миастения. М.: AHO Учебный центр «Невромед-Клиника», 2008. - 112 с.

26. Сиднев Д.В., Карганов М.Ю., Щербакова Н.И., Алчинова И.Б., Санадзе А.Г. Антитела к ацетилхолиновому рецептору у больных с различными клиническими формами миастении и миастеническим синдромом

27. Ламберта-Итона // Журнал неврологии и психиатрии имени С.С. Корсакова 2006. - Т .106. - №1. - С.55-62.

28. Стоногин В.Д., Богданов А.В. Хирургическое лечение миастении. М.: 1983.-43 с.

29. Успенский Л.В. Хирургическое лечение миастении: Автореф. дис. д-ра мед. наук. М.: 1968. - 23 с.

30. Уткин Ю.Н., Цетлин В.И., Хухо Ф. Структурная организация никотиновых холинёргических рецепторов // Биолог, мембраны. 1999. -Т. 16.-№2.-С.118-134.

31. Харченко В.П., Саркисов Д.С., Ветшев П.С., Галил-Оглы Г.А., Зайратьянц О.В. Болезни вилочковой железы // М.: Триада-Х. 1998. -232 с.

32. Шевнюк М.М. Клиника, диагностика и хирургическое лечение миастении: Дис. д-ра мед. наук. М: 1989. - 291 с.

33. Шевченко Ю.Л., Ветшев П.С., Ипполитов Л.И. и соавт. Сорокалетний опыт лечения генерализованной миастении // Хирургия. 2004. - № 5. -С.32-38.

34. Шекшина С.В., Клюквина Н.Г., Насонов Е.Л., Насонова В.А. Мофетила микофенолат от онкологии до ревматологии // Журнал Фарматека. Ревматология, иммунология. 2006 - №5. - С.68.

35. Aarli J.A. Titin, thymoma, and myasthenia gravis // Arch. Neurol. 2001. Jun;58(6): - P.869-870.

36. Aarli J.A., Stefansson K., Marton L.S., Wollmann R.L. Patients with myasthenia gravis and thymoma have in their sera IgG autoantibodies against titin // Clin. Exp. Immunol. 1990. - Nov;82(2): - P.284-288.

37. Aarli J.A., Skeie G.O., Mygland A., Gilhus N.E. Muscle striation antibodies in myasthenia gravis. Diagnostic and functional significance // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1998. - V.84. - P.505-515.

38. Aarli J.A. Titin, Thymoma, and myasthenia gravis // Arch. Neurol. -2001. -V.58. -P.869-890.

39. Achiron A., Barak Y., Miron S., Sarova-Pinhas I. Immunoglobulin treatment in refractory Myasthenia gravis // Muscle Nerve. 2000. - Apr;23(4). - P.551-555.

40. Araga S., Shawn Galin F., Kishimoto M. et al. Prevention of experimental autoimmune myasthenia gravis by a monoclonal antibody to a complementary for the main immunogenic region of the acetylcholine receptor // J. Immunol. 1996. - V.157. -P.386-392.

41. Arsura E. Experience with intravenous immunoglobulin in myasthenia gravis // Clin. Immunol. Immunopathol. 1989. - Nov;53(2 Pt 2). - P.170-179.

42. AshourM. Prevalence of ectopic thymic tissue in myasthenia gravis and its clinical significance // J Thorac Cardiovasc Surg. 1995. - №10. - P.632-635.

43. Almon R.R., Andrew C.G., Appel S.H. Serum globulin in myasthenia gravis ingibition of bungarotoxin binding to acetylcholine receptors // Science. -1974. V.186. - P.55-57.

44. Amitai V., Zamir R., Vott E. HLA antigens in myasthenia gravis // Isr. J. Med. Sci. 1979. - V.15. - P.872-873.

45. Aurangzeb S., Tariq M., Badshah M., Khan R.S. Relationship between anti-acetylcholine receptor antibody titres and severity of myasthenia gravis // J Pak Med Assoc. 2009 May;59(5) - P.289-292.

46. Baggi F., ToscaniC., Cordiglieri C. Acetylcholine receptor-induced experimental myasthenia gravis: what have we learned from animal models after three decades? // Arch Immunol. 2012 Feb;60(l) P.19-30. Epub 2011 Dec 8.

47. Balestra B., Moretti M., Longhi R., Mantegazza R., Clementi F., Gotti C. Antibodies against neuronal nicotinic receptor subtypes in neurological disorders // J. Neuroimmunol. 2000. - V.102. - P.89-97.

48. Bardsley-Eliot., Nobel S., Foster R.H. BioDrugs // 1999;12: P.363-410.

49. Barohn R.J. How to administer the quantitative Myasthenia Gravis. -Foundation of America, Inc. 1996. P.243.

50. Barohn R.J., Mclntire D., Herbelin L., Wolfe G.I., Nations S., Bryan W.W. Reliability testing of the quantitative myasthenia gravis score // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1998. - V.841. - P.769-772.

51. Batocchi A.P., Evoli A., Di Schino C., Tonali P. Therapeutic apheresis in myasthenia gravis // Ther. Apher. 2000. - Aug;4(4). - P275-279.

52. Berrih-Aknin S., Morel E., Raimond F. The role of the thymus in the Myasthenia Gravis // In: Myasthenia Gravis: biology and treatment / Ed. D. Drahman. N.Y. - 1987. - P.50-70.

53. Blalock A, McGehee HA, Ford FR, et al. The treatment of myasthenia gravis by removal of the thymus gland // Journal of the American Medical Association. 1941. - V. 1117. - P. 1529.

54. Blossom GB, Ernstoff RM, Howells G.A. Thymectomy for myasthenia gravis // Arch Surg. 1993. Aug; - 128(8): - P.855-862.

55. Bofill M., Janossy G., Willcox N., Chilosi M., Trejdosiewicz L.K., Newsom-Davis J. Microenvironments in the normal thymus and the thymus in myasthenia gravis // Am J Pathol. 1985. - V.l 19. - №(3) - P.462-473.

56. Bonifati D.M., Angelini C. Long-term cyclosporine treatment in a group of severe myasthenia gravis patients // J. Neurol. 1997. - Sep;244(9). - P.542-547.

57. Billre-Turc F., Padovani R., Pouget J., Serratrice G., Billre J. Late onset myasthenia: 34 cases in patients over 65 years of age // Rev. Neurol. 1997. -V.256. - №2. - P.129-134.

58. Bromberg M.B., Wald J.J., Forshew D.A. Andomized trial of azathioprine or prednisone for initial immunosupressive treatment of myasthenia gravis // J. Neurol. Sci. 1997. - V.150. -№1. - P.59-62.

59. Buckley C., Newsom-Davis J., Willcox N., Vincent A. Do titin and cytokine antibodies in MG patients predict thymoma or thymoma recurrence? // J. Neurology. 2001. - V.57. -№9. - P. 1579-1582.

60. Busch C., Machens A., Pichlmeier U. Long-term outcome and quality of life after thymectomy for myasthenia gravis // Ann Surg. 1996. Aug; 224(2): -P.225-232.

61. Cahoon W.D. Jr., Kockler D.R. Mycophenolate mofetil treatment of myasthenia gravis // Ann. Pharmacother. 2006. - Feb;40(2). - P.295-298.

62. Carlson B., Wallin J., Pirskanen R. Different HLA DR-DQ assosiations in subgroups of idiopathic Myasthenia Gravis// Immunogenetics. 1990. - V.31. - P.285-290.

63. Castleman B. The pathology of the thymus gland in myasthenia gravis // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1966. - Jan. 26; 135(1). - P.496-505.

64. Cavalcante P., Le Panse R., Berrih-Aknin S., Maggi L., Antozzi C., Baggi F., Bernasconi P., MantegazzaR. The thymus in myasthenia gravis: Site of "innate autoimmunity"? // 2011. -Oct;44(4). P.467-484.

65. Chen X.J., Qiao J., Xiao B.G., Lu C.Z. The significance of titin antibodies in myasthenia gravis—correlation with thymoma and severity of myasthenia gravis//J. Neurol. 2004. - Aug;251(8): - P. 1006-1011.

66. ChristadossP., Tuzun E., Li J., Saini S.S., Yang H. Classical complement pathway in experimental autoimmune myasthenia gravis pathogenesis // Ann N Y AcadSci. 2008;1132. - P.210-219.

67. Ciafaloni E., Massey J.M., Tucker-Lipscomb B., Sanders D.B. Mycophenolate mofetil for myasthenia gravis: an open-label pilot study // Neurology. 2001. -Jan 9;56(1). - P.97-99.

68. Claudio T., Ballivet M., Patrick J., Heinemann S. Nucleotide and deduced amino acid sequences of Torpedo californica acetylcholine receptor gamma subunit // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 1983. - Feb;80(4). - P.l 111-1115.

69. Cole R.N., Reddel S.W., Gervásio O.L., Phillips W.D. Anti-MuSK patient antibodies disrupt the mouse neuromuscular junction // Ann. Neurol. 2008. -Jun;63(6): - P.782-789.

70. Conti-Fine B.M., Milani M., Kaminski H.J. Myasthenia gravis: past, present, and future // J. Clin. Invest. 2006. Nov. 116(11). - P.2843-2854.

71. Compston D.A., Vinsent A., Newsom-Davis J., Batchelor J.R. Clinical pathological HLA antigen and immunological evidence for disease heterogeneity in myasthenia gravis // Brain. 1980. - №103. - P.579-601.

72. Dalby A., Kjaer M., de Fine Olivarius B. Continuous treatment of myasthenia gravis with prednisone // Lancet. 1971. Mar 20;1(7699). - P.597-598.

73. De Baets M., Stassen M.H. The role of antibodies in myasthenia gravis // J. Neurol. Sci. 2002. - Vol. 202. - P.5-11.

74. De Feo L.G., Schottlender J., Martelli N.A., Molfino N.A. Use of intravenous pulsed cyclophosphamide in severe, generalized myasthenia gravis // Muscle Nerve. 2002. - Jul;26(l). - P.31-36.

75. Díaz-Manera J., Rojas-García R. Treatment strategies for myasthenia gravis // Expert Opin. Pharmacother. 2009. - Jun;10(8). - P. 1329-1342.

76. Drachman D.B. Myasthenia gravis. Biology and Treatment // New York. -P.987.

77. Drachman D.B., Adams R.N., Hu R., Jones R.J., Brodsky R.A. Rebooting the immune system with high-dose cyclophosphamide for treatment of refractory myasthenia gravis // Ann. N. Y. Acad.Sci. 2008. - 1132. - P.305-314.

78. Drachman D.B., Angus C.W., Adams R.N., Michelson J.D., Hoffman G.J. Myasthenic antibodies cross-link acetylcholine receptors to accelerate degradation. N Engl J Med. 1978. May 18; 298(20). - P.l 116-1122.

79. Drachman D.B., Kao J., Pestronk A., Toyka V. Myasthenia gravis as a receptor disorder // Ann. N.Y. Acad. Sei. 1976. - V.274. - P.226-234.

80. Drachman D.B., Kao L., Angus C.W., Murphy A. Effect of myasthenic immunoglobulin on ACh receptors of cultured muscle // Trans. Am. Neurol. Assoc. 1977.102. -P.96-100.

81. Drachman D.B. The biology of myasthenia gravis // Annu. Rev. Neurosci. -1981.4.-P.195-225.

82. Drachman D.B., Adams R.N., Josifek L.F., Pestronk A., Stanley E.F. Antibody-mediated mechanisms of ACh receptor loss in myasthenia gravis: clinical relevance // Ann. N. Y. Acad. Sei. 1981.377. - P. 175-188.

83. Drachman D.B., de Silva S., Ramsay D., Pestronk A. Humoral pathogenesis of myasthenia gravis // Ann N Y Acad Sei. 1987. - V.505. - P.90-105.

84. Drachman D.B., Mcintosh K.R., Reim J., Balker L. Strategies for treatment of myasthenia gravis//Ann. N.Y. Acad. Sei. 1993. - V.681. - P.515-528.

85. Eaton L.M. Myasthenia gravis // Wis. Med. J. 1952. Apr; 51(4): - P.378.

86. Eymard B., Berrih-Aknin S. Role of the thymus in the physiopathology of myasthenia // Rev. Neurol. (Paris). 1995.Jan;151(l). - P.6-15.

87. Elmquist D., Hoffmann W.W., Kugelberg T., Quastel D.M. An electrophysiological investigation of neuromuscular transmission in myasthenia gravis // J. Physiol. 1964. - V.174. - P.417-434.

88. Elmqvist D., Quastel D.M. A quantitative study of end-plate potentials in isolated human muscle // J. Physiol. 1965. - Jun.l78(3). - P.505-529.

89. Engel A.G., Tsujihata M., Lindstrom J.M., Lennon V.A. The motor end-plate in myasthenia gravis and in experimental autoimmune myasthenia gravis. A quantatative ultrastructural study // Ann. N.Y. Acad. Sei. 1976. - V.274. -P.60-79.

90. Engel A.G. Molecular biology of end-plate diseases. In M.M. Salpeter (Ed.), The vertebrate neuromuskulär junction // New York: Alan R. Liss. 1987. -V.10. - P.361-424.

91. Evoli A., Batocchi A.P., Palmisani M.T., Lo Monaco M., Tonali P. // Eur. Neurol. 1992. - 32(1). - P.37-43.

92. Evoli A., Batocchi A.P., Tonali P. A practical guide to the recognition and management of Myasthenia gravis // J. Drugs. 1996. - V.52. - № 5. - P.662-670.

93. Fambrough D.M., Drachman D.B., Satyamurti S. Neuromuscular junction in myasthenia gravis: decreased acetylcholine receptors // Science. 1973. -V.19. - №182. - P.293-295.

94. Fateh-Moghadam A., Wick M., Besinger U., Geursen R.G. High-dose intravenous gammaglobulin for myasthenia gravis // Lancet. 1984. - Apr 14; 1(8381). - P.848-849.

95. Gajdos P. Treatment of myasthenia: role of corticoids and immunosuppressive agents // Presse Med. 1999. - Mar 20;28(11). - P.587-589.

96. Gajdos P., Chevret S., Clair B., Tranchant C., Chastang C. Clinical trial of plasma exchange and high-dose intravenous immunoglobulin in myasthenia gravis // Myasthenia Gravis Clinical Study Group. Ann. Neurol. 1997. -Jun;41(6). - P.789-796.

97. Gajdos P., Chevret S., Toyka K. Intravenous immunoglobulin for myasthenia gravis // Cochrane Database Syst. Rev. 2008. - Jan 23;(1). - CD002277. Review.

98. Gautel M., Lakey A., Barlow D.P., Holmez Z., Scales S., Lejnard K. Titin antibodies in myasthenia gravis: identification of a major immunogenic region of titin // Neurology. 1993. - Vol.43(8). - P. 1581-1585.

99. Geld H., Strauss A. Myasthenia gravis: immunologic relationship between muscle and thymus // Lancet. 1969. - V.l. - P.57-60.

100. Gilhus N.E. Autoimmune myasthenia gravis // Expert Rev. Neurother. 2009. -Mar;9(3).-P.351-358.

101. Gilhus N.E., Owe J.F., Hoff J.M., Romi F., Skeie G.O., Aarli J.A. Myasthenia gravis: a review of available treatment approaches // Autoimmune Dis.2011.847393. Epub 2011 Oct 5.

102. Gold R., Dalakas M.C., Toyka K.V. // Lancet Neurol. 2003. - Jan;2(l): -P.22-32.

103. Goldstein G. Isolation of bovine thymin: a polypeptide hormone of the thymus //Nature. 1974.Jan 4;247(5435). -P.l 1-14.

104. Gotti C., Fornasari D., Clementi F. Human neuronal nicotinic receptors // Prog. Neurobiol. 1997. Oct;53(2). - P. 199-237.

105. Grob D., Brunner N.G., Namba T. The natural course of myasthenia gravis and the effect of various therapeutic measures // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1981.- V.377. P.652-669.

106. Grob D., Arsura E.L., Brunner N.G., Namba T. The course of myasthenia gravis and therapies affecting outcome // Ann N Y Acad Sci. 1987. - V.505. -P.472-499.

107. Hayashi M., Manabe K., Takaoka T., Yamada I., Kida K., Matsuda H., Yoshinaga J. Long-term change of anti-acetylcholine receptor antibody in patients with myasthenia gravis after thymectomy // Acta Paediatr. Jpn. 1995.- Jun;37(3).-P.362-366.

108. Hilkevich O., Drory V.E., Chapman J., Korczyn A.D. The use of intravenous immunoglobulin as maintenance therapy in myasthenia gravis // Clin. Neuropharmacol. 2001. - May-Jun;24(3). P. 173-176.

109. Hoch W., McConville J., Helms S., Newsom-Davis J., Melms A., Vincent A. Auto-antibodies to the receptor tyrosine kinase MuSK in patients with myasthenia gravis without acetylcholine receptor antibodies // Nat Med. -2001. Mar;7(3): - P.365-368.

110. Hohlfeld R., Wekerle H. The thymus in myasthenia gravis // Neurol Clin. -1994. V.12. - №(2) - P.331-342.

111. Hohlfeld R., Wekerle H. Reflections on the "intrathymic pathogenesis" of myasthenia gravis // J Neuroimmunol. 2008 Sep 15; P.201-202: Epub 2008 Jul 21.

112. Howard F.M. Jr., Lennon V.A., Finley J. et al. Clinical correlations of antibodies that bind, block, or modulate human acetylcholine receptors in myasthenia gravis// Ann N Y Acad Sci. 1987. - V.505. - P.526-538.

113. Huang S, Tan LM. Research advancement in immunopathogenesis of myasthenia gravis // Neurosci Bull. 2010 Feb;26(l): P.85-89.

114. Ito Y., Miledi R., Molenaar P.C., Vincent A., Polak R.L., Van Gelder M., Davis J.N. Acetylcholine in human muscle // Proceedings of the Royal Society of London, Series B. 1976.-V.192.-№10,-P.475-548.

115. Jani-Acsadi A., Lisak R.P. Myasthenia gravis // Curr. Treat. Options Neurol. -2010. May; 12(3).-P.231-243.

116. Janossy G., Bofill M., Tredosiewicz L. Cellular differentiation of lymphoid subpopulation and their microinviron // The Human Thymus / Ed. H. Muller-Hermellink. Berlin, etc., Springer Verlag. - 1986. - P.89-127.

117. Jee Y.K., Kee D.P., David P.R. Treatment of myasthenia gravis based on its immunopathogenesis // J. Clin. Neurol. 2011 December; 7(4). - P. 173-183.

118. Jenkins R.B. Treatment of myasthenia gravis with prednisone // Lancet. -1972. V.l. - P.765-767.

119. Jensen P. Bril V. A comparison of the effectiveness of intravenous immunoglobulin and plasma exchange as preoperative therapy of myasthenia gravis // J. Clin. Neuromuscul. Dis. 2008. - Mar;9(3). - P.352-355.

120. Juel V.C., Massey J.M. Myasthenia gravis // Orphanet J Rare Dis. 2007 Nov 6; P.44.

121. Hehir M.K., Burns T.M., Alpers J., Conaway M.R., Sawa M., Sanders D.B. // Muscle Nerve. 2010. - May;41(5). - P.593-598.

122. Kaminski H.J., Fenstermaker R.A., Abdul-Karim F.W. Acetylcholine receptor subunit gene expression in thymic tissue // Muscle & Nerve. 1993. - V.l6. -№ (12) - P.1332-1337.

123. Kawanami S., Mori S., Ueda H. Homology between Fas and nicotinic acetylcholine receptor protein in a thymoma with myasthenia gravis— immunohistochemical and biochemical study // Fukuoka Igaku Zasshi. 2000. May;91(5). - P.123-31.

124. Kelly R.B., Keesey J.C., Goymerac V. et al. Immunoregulation of total syntesis in myasthenia gravis // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1981. - V.377. -P.403-410.

125. Keynes G. Thymectomy for myasthenia gravis // Bristol Med Chir J. 1949 Oct; 66(240):-P. 100-102.

126. Kjaer M. Myasthenia gravis and myasthenic syndromes treated with prednisolone // Acta Neurol. Scand. 1993. - V.47. - P.464^174.

127. Kim J.Y., Park K.D., Richman D.P. Treatment of myasthenia gravis based on its immunopathogenesis // J. Clin. Neurol. 2011. Dec;7(4). - P. 173-83.

128. Kirchner T., Tzartos S., Hoppe F. et al. Pathogenesis of myasthenia gravis. Acetylcholine receptor-related antigenic determinants in tumor-free thymuses and thymic epithelial tumors // Am. J. Pathol. 1988. - V.130. - P.268-280.

129. Kondo K., Monden Y. Myasthenia gravis appearing after thymectomy for thymoma // Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2005. Jul. - V.28. - №1. - P.22-25.

130. Krarup C. Evoked responses in normal and diseased muscle with particular reference to twitch potentiation // Acta Neurol. Scand. 1984. - V.68. -P.269-315.

131. Kuks J.B., Oosterhuis H.J., Limburg P.C., The T.H. Anti-acetylcholine receptor antibodies decrease after thymectomy in patients with myasthenia gravis. Clinical correlations // J. Autoimmun. 1991. Apr;4(2). - P. 197-211.

132. Labeit S., Kolmerer B. Titins: giant proteins in charge of muscle ultrastructure and elasticity // Science. 1995. - 0ct.l3;270(5234). - P.293-296.

133. Lai F.A., Meissner G. Structure of the calcium release channel of skeletal muscle sarcoplasmic reticulum and its regulation by calcium // Adv. Exp. Med. Biol.-1990.-269.-P.73-77.

134. Lavrnic D., Vujic A., Rakocevic-Stojanovic V., Stevic Z., Basta I., Pavlovic S., Trikic R., Apostolski S. Cyclosporine in the treatment of myasthenia gravis // Acta Neurol. Scand. 2005. - Apr; 111(4). - P.247- 252.

135. Lennon V.A., Lindstrom J.M., Seybold M.E. Experimental auto-immune myasthenia gravis: Cellular and humoral immune responses // Annals of the New York Academy of Sciences. 1976. - V.10. - P.283-299.

136. Lennon V.A., Ermilov L.G., Szurszewski J.H., Vernino S. Immunization with neuronal nicotinic acetylcholine receptor induces neurological autoimmune disease // J. Clin. Invest. 2003. - V. 111. - P.907-913.

137. Lennon V.A., Seybold M.E., Lindstrom J.M., Cochrane C., Ulevitch R. Role of complement in the pathogenesis of experimental autoimmune myasthenia gravis. J Exp Med. 1978. - Apr 1;147. - P.973-83.

138. Lennon V.A. Serological diagnosis of myasthenia gravis and Lambert- Eaton myasthenic syndrome // Handbook of Myasthenia gravis / R. Lisak, Ed., Marcel Dekker. 1994. - V.7. - P.149-164.

139. Lim A.K., Donnan G., Chambers B., Ierino F.L. // Intern. Med. J. 2007. -Jan;37(l). - P.55-59.

140. Limburg P.C., The T.H., Hummel-Tappel E., Oosterhuis H.J. Anti-acetylcholine receptor antibodies in myasthenia gravis. Part 1. Relation to clinical parameters in 250 patients // J Neurol Sci. 1983 Mar;58(3). - P.357-370.

141. Lindstrom J., Seybold M.E., Lennon V.A., Whittingham S., Duane D.D. Antibody to acetylcholine receptor in myasthenia gravis. Prevalence, clinicalcorrelates, and diagnostic value // Neurology. 1976 Nov; 26(11). - P. 10541059.

142. Lindstrom J. Antibody specificities in autoimmune myasthenia gravis // Neuromuscular Diseases. N.Y. - 1984. - P.481-495

143. Lindstrom J., Shelton D., Fujii Y. Myasthenia gravis // Adv. Immunol. -1988;42 P.233-284.

144. Lindstrom J. Neuronal nicotinic acetylcholine receptors // In: Ion Channels/ edited by Toshio Narahashi. New York. Plenum Press. - 1996. - V.4. -P.337-450.

145. Lindstrom J. Nicotinic Acetylcholine receptors in Health and Disease // Molecular Neurobiology. 1997. - V.15. - №2. - P. 193-222.

146. Lindstrom J. Structure of neuronal nicotinic receptor // In: Neuronal nicotinic receptor / Ed: Clementi F., Fornasari D., Gotti C. Berlin Heidelberg. - Springer-Verlag. - 2000. - V.144. - P.101-162.

147. Lindstrom J. Acetylcholine receptor and myasthenia // Muscle and Nerve. -2000. V.23. - P.453^477.

148. Lisak R. Myasthenia Gravis // In: Surgery of the thymus/ Ed. J.-C. Givel. -Berlin. Springer Verlang. 1990. - P.165-181.

149. Mann J.D., Johns T.R., Campa J.F. Long-term administration of corticosteroids in myasthenia gravis // Neurology 1976. - Aug.26(8). -P.729-740.

150. Meriggioli M.N., Rowin J., Richman J.G., Leurgans S. // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2003. - Sep;998. - P.494-499.

151. Mygland A., Kuwajima G., Mikoshiba K., Tysnes O.B., Aarli J.A., Gilhus N.E. Thymomas express epitopes shared by the ryanodine receptor // J. Neuroimmunol. 1995.0ct;62(l). - P.79-83.

152. Mohan S., Barohn R.J., Jackson C.E., Krolick K.A. Evaluation of miosine-reactive antibodies from a panel of myasthenia gravis patients // Clin. Immunol. Immunopath. 1994. - V.70. - P.266-273.

153. Motomura M. The pathophysiology and treatment of autoimmune neuromuscular junction diseases // Rinsho Shinkeigaku. 2011 Nov;51(ll): P.872-876.

154. Nastuk W.L., Strauss A.J., Osserman K.E. Search for a neuromuscular blocking agent in the blood of patients with myasthenia gravis // Am. J. Med. -1959. Mar;26(3). P.394-409.

155. Nowak R.J., Dicapua D.B., Zebardast N., Goldstein J.M. Response of patients with refractory myasthenia gravis to rituximab: a retrospective study // Ther Adv Neurol Disord. 2011. Sep;4(5). - P.259-266.

156. Olanow C.W., Wechsler A.S., Roses A.D. A prospective study of thymectomy and serum acetylcholine receptor antibodies in myasthenia gravis // Ann Surg. 1982 Aug; 196(2). - P. 113-121.

157. Pahva K., Ikehara S., Pahva S.G., Good R.A. Thymus. 1979. - №1.- P.27-58.

158. Palace J., Newsom-Davis J., Lecky B. A randomized double-blind trial of prednisolone alone or with azathioprine in myasthenia gravis // Myasthenia Gravis Study Group. Neurology. - 1998. - Jun;50(6): - P.1778-1783.

159. Perez M.C., Buot W.L., Mercado-Danguilan C., Bagabaldo Z.G., Renales L.D. Stable remissions in myasthenia gravis // Neurology. 1981. - Jan;31(l). -P.32-37.

160. Provenzano C., Marino M., Scuderi F., Evoli A., Bartoccioni E. Anti-acetylcholinesteraseantibodies associate with ocular myasthenia gravis // J Neuroimmunol. 2010 Jan 25;218(l-2):102-6. Epub 2009 Nov 26.

161. Richman D.P., Agius M.A. Treatment of autoimmune myasthenia gravis // Neurology. 2003 Dec 23;61(12): P. 1652-1661.

162. Romi F., Gilhus N.E., Aarli J.A. Myasthenia gravis: clinical, immunological, and therapeutic advances // Acta Neurol Scand. 2005. - V.lll. - №2. -P.134-141.

163. Romi F., Bo L., Skeie G.O., Myking A., Aarli J.A., Gilhus N.E. Titin and ryanodine receptor epitopes are expressed in cortical thymoma along with costimulatory molecules // J. Neuroimmunol. 2002. - Jul;128(l-2): - P.82-89.

164. Romi F., Kristoffersen E.K., Aarli J.A., Gilhus N.E. The role of complement in myasthenia gravis: serological evidence of complement consumption in vivo // J. Neuroimmunol. 2005. - V. 158. - №1-2. - P. 191-194.

165. Ronager J., Ravnborg M., Hermansen I., Vorstrup S. Immunoglobulin treatment versus plasma exchange in patients with chronic moderate to severe myasthenia gravis // Artif. Organs. 2001. - Dec;25(12). - P.967-973.

166. Sanders D.B., Howard J.F., Jr. Disorders of neuromuscular transmission //1.: Bradely W.G., Daroff R.B., Fenichel G.M., Jancovic J., editors. Neurologythin Clinical Practice. 4 ed. Philadelphia: Butterworth-Heinemann; 2004. -pp.2441-2462.

167. Selcen D., Fukuda T., Shen X.M., Engel A.G. Are MuSK antibodies the primary cause of myasthenic symptoms? // Neurology. 2004. - Jun 8;62(11): - P.1945-1950.

168. Seybold M.E., Lindstrom J.M. Patterns of acetylcholine receptor antibody fluctuation in myasthenia gravis // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1981.377. - P.292-306.

169. Schneider-Gold C., Gajdos P., Toyka K.V., Hohlfeld R.R. Corticosteroids for myasthenia gravis // Cochrane Database Syst. Rev. 2005. - Apr. 18;(2). -CD002828. Review.

170. Schonbeck S., Chrestel S., Hohlfeld R. Myasthenia gravis: prototype of the antireceptor autoimmune diseases // Int. Rev. Neurobiol. 1990.32. - P. 175200.

171. Shigeaki S., Kimiaki U.,Yuriko N.,Norihiro S. Three Types of Striational Antibodies in Myasthenia Gravis // Autoimmune Dis. 2011; - 2011: - 740583

172. Tzartos. S.J. Differences in acetylcholine receptor antibody interactions between extraocular and extremity muscle fiber // Ann. N.Y. Acad. Sci. -1993. V.681. - P.238-255.

173. Oda K., Goto I., Kuroiwa Y., Onoue K., Ito Y. Myasthenia gravis: antibodies to acetylcholine receptor with human and rat antigens // Neurology.1980. May;30(5). P.543-546.

174. Oda K. Differences in acetylcholine receptor-antibody interactions between extraocular and extremity muscle fibers // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1993. Jun 21;681.-P.238-255.

175. Onodera H. Pathogenesis of myasthenia gravis // No To Shinkei. 2006 Nov;58(l 1). - P.987-997.

176. Oosterhuis H.J. Thymectomy in myasthenia gravis. A review // Ital. J. Neurol. Sci. 1983. Dec;4(4). - P.399-407.

177. Oosterhuis H.J. Thymectomy in myasthenia gravis. A review // Ital. J. Neurol. Sci. 1983.Dec;4(4). - P.399-407.

178. Oosterhuis H.J. The diagnosis. In Myasthenia gravis // Edinburgh: Churchill Livingstone. 1984. - P. 142-158.

179. Oosterhuis H.J., Limburg P.C., Hummel-Tappel E., The T.H. Anti-acetylcholine receptor antibodies in myasthenia gravis. Part 2. Clinical and serological follow-up of individual patients // J. Neurol. Sci. 1983.Mar;58(3). - P.371-385.

180. Oosterhuis H.J., Limburg P.C., Hummel-Tappel E., Van den Burg W., The T.H. Anti-acetylcholine receptor antibodies in myasthenia gravis. Part 3. The effect of thymectomy // J Neurol Sci. 1985 Jul;69(3). - P.335-343.

181. Osserman KE, Genkins G. Studies in myasthenia gravis. Review of a 20 year experience in over 1200 patients //J Mount Sinai Hosp. 1971; 38:-P.497-537.

182. Patrick J., Lindstrom J., Culp B., McMillan J. Studies on purified eel acetylcholine receptor and anti-acetylcholine receptor antibody // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1973. Dec;70(12). P.3334-3338.

183. Paletto A.E., Maggi G. Thymectomy in the treatment of myasthenia gravis: results in 320 patients // Int Surg. 1982. - V.67. - P. 13-16.

184. Ragheb S., Lisak R.P. The thymus and myasthenia gravis // Chest Surg Clin N Am. 2001. - V. 11. - №(2) - P.311-327.

185. Ragheb S., Mohamed M., Lisak R.P. Myasthenia gravis patients, but not healthy subjects, recognize epitopes that are unique to the epsilon-subunit of the acetylcholine receptor // J. Neuroimmunol. 2005. Feb;159(l-2). - P.137-145.

186. Pestronik A., Adams R.N., Kuncl R.W., Drachman D.B., Clawson L.L., Cornblath D.R. Differential effects of prednisone and cyclophosphamide on autoantibodies in human neuromuscular disorders // Neurology. -1989. May;39(5). P.628-633.

187. Popescu I., Tomulescu V., Ion V., Tulbure D. Thymectomy by thoracoscopic approach in myasthenia gravis // Surg. Endosc. 2002. - Apr; 16(4). - P.679-684.

188. Prakash K.M., Ratnagopal P., Puvanendran K., Lo Y.L. // J. Clin. Neurosci. -2007. Mar; 14(3). P.278-281.

189. Romi F., Skeie G.O., Aarli J.A., Gilhus N.E. The severity of myasthenia gravis correlates with the serum concentration of titin and ryanodine receptor antibodies // Arch. Neurol. 2000. Nov. - V.57. - №11. - P. 1596-1600.

190. Romi F., Gilhus N.E., Aarli J.A. Myasthenia gravis: disease severity and prognosis // Acta Neurol Scand Suppl. 2006; 183. - P.24-25.

191. Roses A.D., Olanov C.W., McAdams M.W., Lane R.J.M. No direct correlation between serum antyacetylcholine receptor antibody levels and clinical state of individual patient with myasthenia gravis // Neurology. 1981.- V.31. P.220-224.

192. Rowland L.P. Controversies about the treatment of myasthenia gravis//J. Neurol. Neurosurg. Psychiat. 1980. - V.43. - P.644-659.

193. Satiamurti S., Drachman D.B., Slone F. Blocade of acetylcholine receptors: a model of myasthenia gravis // Science. 1975. - V.187. - P.954-957.

194. Sahashi K.A., Engel A.G., Lindstrom J., Lambert E.H., Lennon V.A. Ultrastructural localization of immune complexes (Ig G and C3) at the endplate in experimental autoimmune myasthenia gravis // Neurol. 1978. -V.37. - P.212-223.

195. Sahashi K., Engel A.G., Lambert E.H., Howard F.M. Jr. Ultrastructural localization of the terminal and lytic ninth complement component (C9) at the motor end-plate in myasthenia gravis // J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1980. Mar;39(2). - P. 160-172.

196. Sanders D.B., Evoli A. Immunosuppressive therapies in myasthenia gravis // Autoimmunity. 2010. Aug;43(5-6). - P.428-435.

197. Sathasivam S. Evidence for use of intravenous immunoglobulin and plasma exchange in generalized myasthenia gravis // Adv. Clin. Neurosci. Rehabil. -2009.-9(1).-P.8-10.

198. Scadding G.K., Thomas H.C., Havard C.W. The immunological effects of thymectomy in myasthenia gravis // Clin. Experim. Immunol. 1979. - V.36.- P.205-213.

199. Schumm F., Brinkmann A., Fateh-Moghadam A. Antibody-controlled cytostatic therapy of malignant thymoma with concomitant myasthenia gravis // Dtsch. Med. Wochenschr. 1984.Aug 17;109(33). - P.1244-1246.

200. Seto M., Motomura M., Takeo G., Yoshimura T., Tsujihata M., Nagataki S. Treatment of myasthenia gravis: a comparison of the natural course and current therapies // Tohoku J. Exp. Med. 1993. Jan; 169(1). - P.77-86.

201. Skeie G.O., Apostolski S., Evoli A., Gilhus N.E., Ilia I., Harms L., Hilton-Jones D., Melms A., Verschuuren J., Horge H.W. Guidelines for treatment of autoimmune neuromuscular transmission disorders // Eur. J. Neurol. 2010. -Jul; 17(7). - P.893-902.

202. Skeie G.O., Lunde P.K., Sejersted O.M., Mygland A., Aarli J.A., Gilhus N.E. Autoimmunity against the ryanodine receptor in myasthenia gravis // Acta Physiol. Scand. 2001. - Mar;171(3): - P.379-384.

203. Skeie G.O., Mygland A., Treves S., Gilhus N.E., Aarli J.A., Zorzato F. Ryanodine receptor antibodies in myasthenia gravis: epitope mapping and effect on calcium release in vitro // Muscle Nerve. 2003 Jan;27(l) - P.81-89.

204. Schneider-Gold C., Gajdos P., Toyka K., Hohlfeld R. Corticosteroids for myasthenia gravis // Cochrane Database Syst. Rev. 2005. -V.2.: CD002828.

205. Seybold M.E., Baergen R.N., Nave B., Lindstrom J.M. Anti-acetylcholine-receptor antibody concentrations after thymectomy in patients with myasthenia gravis//Br. Med. J. 1978. Oct 14;2(6144). - P. 1051-1053.

206. Seybold M.E., Lindstrom J.M. Serial antiacetylcholine receptor antibody titers in patients with myasthenia gravis: effects of steroid therapy // Plasmapheresis and the immunology of myasthenia gravis / Dau P.C. (Ed.). -1979. P.307-314.

207. Sheng J.R., Li L.C., Prabhakar B.S., Meriggioli M.N. Acetylcholine receptor-alpha subunit expression in myasthenia gravis: a role for the autoantigen in pathogenesis // Muscle Nerve. 2009 Aug;40(2): P.279-286.

208. Shigeaki S., Kimiaki U.,Yuriko N.,Norihiro S. Three Types of Striational Antibodies in Myasthenia Gravis // Autoimmune Dis. 2011; - 2011: 740583.

209. Simpson J.A. Myasthenia gravis, a new hypothesis // Scotland Med. J. 1960. - V.5. - P.419-436.

210. Somnier F.E. Myasthenia gravis // J. Dan. Med. Bull. 1996. - V.43. - № 1. -P.l-10.

211. Soleimani A., Moayyeri A., Akhondzadeh S. et al. Frequency of myasthenic crisis in relation to thymectomy in generalized myasthenia gravis: a 17-year experience // B.M.C. Neurol. 2004. - V.l 1. - P.4-12.

212. Stalberg E. Clinical electrophysiology in myasthenia gravis // J. Neurol. Neurosurg. Psychiat. 1980. - V.43. - P.622-633.

213. Strauss A.J.L., Kemp P.G. Serum autoantibodies in myasthenia gravis: relective affinity for J-bands of striated muscle as a guede to identification of antigen (S) // J. Immunol. 1967. - V.99. - P.945-953.

214. Strochlic L., Cartaud A., Cartaud J. The synaptic muscle-specific kinase (MuSK) complex: new partners, new functions // Bioessays. 2005. -Nov;27(ll): -P.l 129-1135.

215. Tarrab-Hazdai R., Aharonov A., Abramsky O., Silman I., Fuchs S. Proceedings: Animal model for myasthenia gravis: acetylcholine receptorinduced myasthenia in rabbits, guinea pigs and monkeys // Isr. J. Med. Sci. -1975. Dec;l 1(12).-P.1390.

216. Thorlacius S., LefVert A.K., Aarli J.A., Gilhus N.E., Halvorsen K., Hofstad H., Matre R., Tonder O. Plasma exchange in myasthenia gravis: effect on anti-AChR antibodies and other autoantibodies // Acta Neurol. Scand. 1986. Dec;74(6). - P.486-490.

217. Tindall R.S. Humoral immunity in myasthenia gravis: biochemical characterization of acquired antireceptor antibodies and clinical correlations // Ann. Neurol. 1981. - Nov. 10(5). - P.437-447.

218. Tindall R.S., Rollins J.A., Phillips J.T., Greenlee R.G., Wells L., Belendiuk G. Preliminary results of a double-blind, randomized , placebo-controlled trial of cyclosporine in myasthenia gravis // N. Engl. J. Med. 1987. - 316(12). -P.719-724.

219. Toyka K.V., Brachman D.B., Pestronk A., Kao I. Myasthenia gravis: passive transfer from man to mouse // Science. 1975. - Oct 24;190(4212). - P.397-399.

220. Venuta F., Rendina E.A., De Giacomo T., Delia Rocca G., Antonini G., Ciccone A.M., Ricci C., Coloni G.F. // Eur. J. Cardiothorac. Surg. 1999. -May; 15(5). - P.621-624.

221. Vieira M.L., Cailatt-Zucman S., Gaidos P. Identification by genomic of non DR3 HLA class 11 gens associated with myasthenia gravis // J. Neuroimmunol. 1993. - Y.41. - P. 115-122/

222. Vincent A., McConville J., Farrugia M.E., Newsom-Davis J. Seronegative myasthenia gravis // Semin Neurol. 2004. - Mar;24(l): - P. 125133.

223. Vincent A., Leite M.I. Neuromuscular junction autoimmune disease: muscle specific kinase antibodies and treatments for myasthenia gravis // Curr. Opin. Neurol. 2005.- Oct; 18(5): - P.519-525.

224. Vincent A., Newson-Davis J. Antiacetylcholine receptor antibodies // J. Neurol. Neurosurg. Psychiat. 1980. - V.43. - P.590-600.

225. Vincent A. Acetylcholine receptors and myasthenia gravis // Clin Endocrinol Metab. 1983. - Mar;12(l). - P.57-78.

226. Vincent A. Neuroimmunology of myasthenia gravis // Brain. Behav. Immun.- 1988. Dec;2(4). - P.346-351.

227. Vincent A., Newsom-Davis J., Newton P., Beck N. Acetylcholine receptor antibody and clinical response to thymectomy in myasthenia gravis // Neurology. 1983. - 0ct;33(10). - P.1276-1282.

228. Vincent A. Autoimmunity to acetylcholine receptors in myasthenia gravis // Biochem. Soc. Trans. 1991. Feb; 19( 1). - P. 180-183.

229. Vincent A., Willcox N., Hill M., Curnow J., MacLennan C., Beeson D. Determinant spreading and immune responses to acetylcholine receptors in myasthenia gravis // Immunol. Rev. 1998. - V.164. - P. 157-168

230. Vincent A. Neuroimmunology of myasthenia gravis. // Brain Behav Immun. 1988. - V.2. - № 4. - P.346-351.

231. Vincent A., Beeson D., Lang B. Molecular targets for autoimmune and genetic disorders of neuromuscular transmission // Eur. J. Biochem. 2000. - V.267. -P.6717-6728.

232. Vincent A., McConville J., Farrugia M.E., Bowen J., Plested P., Tang T., Evoli

233. A., Matthews I., Sims G., Dalton P., Jacobson L., Polizzi A., Blaes F., Lang

234. B., Beeson D., Willcox N., Newsom-Davis J., Hoch W. Antibodies inmyasthenia gravis and related disorders // Ann. N. Y. Acad. Sci. -2003. Sep;998. P.324-35.

235. Vincent A. Autoimmune disorders of the neuromuscular junction // Neurol.India. 2008 Jul-Sep;56(3): P.305-313.

236. Warlow R.S., Garlepp M., Teeney D. Antiacetylcholine receptor and antimuscular antibodies in myasthenia gravis. Correlation with MZA, sex and Ig M // Exp. Clin. Immunogen. 1985. - V.2. - №3. - P.158-16.

237. Wekerle T.H., Paterson B., Ketelsen U., Feldman M. Striated muscle fibres differentiate in monolayer cultures of adult thymus reticulum // Nature. -1975.Aug 7;256(5517). P.493-494.

238. Wright G.M., Barnett S., Clarke C.P. Video-assisted thoracoscopic thymectomy for myasthenia gravis // Intern. Med J. 2002 Aug; 32(8): - P.367-371.

239. Yeh J.H., Chiu H.C. Comparison between double-filtration plasmapheresis and immunoadsorption plasmapheresis in the treatment of patients with myasthenia gravis // J. Neurol. 2000. - Jul;247(7). - P.510-513.

240. Yeh J.H., Chen W.H., Chiu H.C., Bai C.H. MuSK antibody clearance during serial sessions of plasmapheresis for myasthenia gravis // J. Neurol. Sci. -2007. Dec 15;263(l-2). -P.191-193.

241. Zahid I., Sharif S., Routledge T., Scarci M. Video-assisted thoracoscopic surgery or transsternal thymectomy in the treatment of myasthenia gravis? // Interact. Cardiovasc. Thorac. Surg. 2011 Jan.; 12(1): - P.40-46. Epub. 2010 Oct 13.

242. Zeitlhofer J., Maida E.M., Mamoli B., Mayr N. Value of acetylcholine receptor antibodies in myasthenia gravis // Wien Med. Wochenschr. 1986. -Jul 15; 136(13).-P.329-332.

243. Zhang Y.F., Ma S., Li J.Y., Yu L., Zhang H.F. The comparative analysis of video-assisted thoracoscopic versus transsternal thymectomy for myasthenia gravis // Zhonghua Wai Ke Za Zhi. 2009. - Mar 1;47(5). - P.366-368.

244. Zinman L., Ng E., Bril V. IV immunoglobulin in patients with myasthenia gravis: a randomized controlled trial // Neurology. 2007. Mar 13;68(11). -P.837-841.