Автореферат диссертации по медицине на тему Влияние новых производных 3-гидроксипиридина на процесс свободнорадикального окисления белков
На правах рукописи
ои^ь08147
Чечет Олег Юрьевич
ВЛИЯНИЕ НОВЫХ ПРОИЗВОДНЫХ 3-ГИДРОКСИПИРИДИНА НА ПРОЦЕСС СВОБОДНОРАДИКАЛЬНОГО ОКИСЛЕНИЯ БЕЛКОВ
14.03.06 - фармакология, клиническая фармакология
АВТОРЕФЕРАТ
диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук
4 ИЮН 2910
САРАНСК-2010
004608147
Работа выполнена на кафедре общей и клинической фармакологии ГОУ ВПО «Нижегородская государственная медицинская академия» Минздравсоцразви-тия России
Научный руководитель: доктор медицинских наук,
профессор Кузин Владимир Борисович,
заведующий кафедрой общей и клинической фармакологии ГОУ ВПО НижГМА Минздрав-соцразвития России, 603005, г. Нижний Новгород, пл. Минина, 10/1
Официальные оппоненты: доктор медицинских наук,
профессор Зорькина Ангелина Владимировна, заведующая кафедрой поликлинической терапии и функциональной диагностики ГОУ ВПО МГУ им. Н.П. Огарева, 430000, г. Саранск, Республика Мордовия, ул. Большевистская, 68
доктор медицинских наук, профессор Гараев Рамиль Ахметович, заведующий кафедрой фармакологии с курсом фармакогнозии КГМУ, 420012, г. Казань, Татарстан, ул. Бутлерова, 49
Ведущая организация: Всероссийский научный центр по безопасности биологически активных веществ
Защита диссертации состоится 2010 года в часов на
заседании диссертационного совета Д 212.117.08 в ГОУ ВПО «Мордовский государственный университет им. Н. П. Огарева» (430000, г. Саранск,- ул. Большевистская, 68).
С диссертацией можно ознакомиться в научной библиотеке ГОУ ВПО «Мордовский государственный университет им. Н. П. Огарева» (430000, г. Саранск, ул. Большевистская, 68).
Автореферат разослан «¿^>>
Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат медицинских наук, доцент
АГ- Голубев
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность исследования.
Организм существует в аэробных условиях, и кислород является одним из активных соединений в тканях. Основной путь метаболизма кислорода сопряжен с его восстановлением по 4-х электронному пути с образованием воды и генерацией энергии. Также в клетках протекают окислительные реакции, в процессе которых атомы кислорода включаются в органические молекулы с образованием реакционно-способных соединений (Дубинина Е.Е., 2006). Данные соединения - свободные радикалы - вызывают окисление мембранных ли-пидов, белков, полисахаридов, нуклеиновых кислот (Зайчик А.Ш., Чурилов Л.П., 2005; Чеснокова Н.П. с соавт., 2007).
Процесс свободнорадикального окисления белков, также как и процесс окисления липидов, носит цепной характер. Воздействие активных форм кислорода (АФК) на белки приводит к нарушению их структуры, сшивке или дефрагментации, что инактивирует рецепторы и ферменты (Барабой В.А., Брехман И.И., 1992; Чеснокова Н.П. с соавт., 2007). Окислительная модификация под действием АФК затрагивает около 240 различных ферментов (Карли Ф., 1997; Ляхович В.В., Вавилин В.А., Зенков В.К., 2005; Чеснокова Н.П. с соавт., 2007). Таким образом, выраженные процессы перекисного окисления белков могут сопровождаться дестабилизацией как структурных, так и функциональных свойств организма в целом.
При окислительном стрессе патогенетически обоснованным является применение средств фармакологической коррекции процессов свободнорадикального окисления - экзогенных антиоксидантов. В последние годы в медицинской практике широкое использование для профилактики и лечения различных патологических состояний получили препараты-антиоксиданты мекси-дол и эмоксипин (Дюмаев K.M. с соавт., 1995; Машковский М.Д., 2000). Эмок-сипин (3-окси-6-метил-2-этилпиридина хлорид) и мексидол (3-окси-6-метил-2-этилпиридина сукцинат) являются производными одного вещества - 3-гидроксипиридина (3-ОП), различающимися только кислотой в составе соли. Однако кислоты обусловливают различия в фармакологических свойствах данных препаратов, например, различия в антигипоксической активности (Лукьянова Л.Д., 1999). Представляется логичным поиск новых лекарственных средств среди других солей 3-ОП.
Исследование вновь синтезированных биологически активных веществ начинают с изучения токсичности, что позволяет установить диапазон переносимых и смертельных доз новых веществ, выбрать эффективные дозы для изучения антиоксидантной активности, а также судить об их общей токсичности.
Для оценки специфической антиоксидантной активности потенциальных ~ ) лекарственных средств важным и необходимым является использование моделей окислительного стресса. Наиболее часто применяют модель иммобилизации животных, так как даже кратковременная иммобилизация (экспозиция, начиная с 30 минут) способна вызвать снижение ресурсов организма и возникновение выраженного окислительного стресса (Рудько Н.П., Давыдов В.В., 2001;
Агаева Р.К., Фастова И.А., 2003; Кравцов В.И. с соавт., 2006; Герасимова Н.Г., Балашов В.П., Кругляков П.П., 2007).
В работе были использованы новые соединения 3-ОП (3-ОП оксалат, 3-ОП малонат, 3-ОП адипинат, 3-ОП малеат, 3-ОП гемисукцинат), синтезированные в Институте биохимической физики имени Н. М. Эмануэля РАН и ГУ НИИ Фармакологии РАМН.
Цель исследования. Изучение влияния новых производных 3-оксипиридина (3-ОП оксалата, 3-ОП малоната, 3-ОП адипината, 3-ОП малеата, 3-ОП гемисукцината) на процессы свободнорадикального окисления белков и на некоторые метаболические показатели в эксперименте.
Задачи исследования:
1. Исследовать общетоксическое действие (летальность, изменения массы крыс и их внутренних органов) и определить условные эффективные дозы (1% и 10% от 1Л}5о) при иммобилизации и введении 3-ОП оксалата, 3-ОП малоната, 3-ОП адипината, 3-ОП малеата, 3-ОП гемисукцината.
2. Изучить показатели свободнорадикального окисления белков и некоторые метаболические показатели в сыворотке крови экспериментальных животных в условиях иммобилизационного стресса.
3. Исследовать показатели перекисного окисления белков в сыворотке крови экспериментальных животных при введении 3-ОП оксалата, 3-ОП малс ната, 3-ОП адипината, 3-ОП малеата, 3-ОП гемисукцината на фоне иммобшн зационного стресса.
4. Изучить некоторые метаболические показатели при введении 3-ОП 01 салата, 3-ОП малоната, 3-ОП адипината, 3-ОП малеата, 3-ОП гемисукцината и фоне иммобилизационного стресса.
Научная новизна работы. Впервые проведено комплексное исследов; ние показателей перекисного окисления белков в условиях иммобилизационю го стресса. Установлено, что через 12 часов иммобилизации увеличивается ш тенсивность окислительной модификации белков в сыворотке крови экспер] ментальных животных.
Изучено содержание различных продуктов свободнорадикального оки ления белков (алифатических альдегид- и кетон-динитрофенилгидразонов не] трального и основного характера) в сыворотке крови экспериментальных Ж1 вотных при введении 3-ОП оксалата, 3-ОП малоната, 3-ОП адипината, 3-0 малеата и З-ОП гемисукцината в дозах 1% и 10% от ЬВ5о на фоне иммобилиз ционного стресса. Выявлено, что наиболее выраженное антиоксидантное дез ствие в отношении процесса перекисного окисления белков оказывают 3-0 оксалат и З-ОП адипинат в дозах 1% от Ьй50, а также З-ОП гемисукцинат в до: 10% от 1Л}50.
Исследованы различные метаболические показатели в сыворотке кро! экспериментальных животных при введении новых производных З-ОП в доз: 1% и 10% от Ы35о на фоне иммобилизационного стресса. Доказано, что для к ждого соединения характерен определенный спектр метаболических показат лей, изменяющихся под его влиянием, который различается при введении из
чаемых производных 3-ОП в условной минимальной и максимальной эффективной дозах.
Практическая ценность работы состоит в том, что полученные данные расширяют представления о спектре фармакологического действия производных 3-ОП (3-ОП оксалата, 3-ОП малоната, 3-ОП адипината, 3-ОП малеата, 3-ОП гемисукцината) и являются экспериментальным обоснованием для дальнейшего доклинического изучения их в качестве перспективной группы для создания лекарственных средств с антиоксидантной активностью.
Основные положения, выносимые на защиту:
1. 12-часовая иммобилизация экспериментальных животных приводит к повышению в сыворотке крови экспериментальных животных интенсивности окислительной модификации белков, а также уровней общего и непрямого билирубина.
2. Большинство из изученных производных 3-ОП проявляет различной степени выраженности антиоксидантную активность. Наиболее выраженное антиоксидантное действие в отношении процесса перекисного окисления белков оказывают 3-ОП оксалат и 3-ОП адипинат в дозах 1% от 1Л)50, а также 3-ОП гемисукцинат в дозе 10% от ЬБ50.
3. Спектр изменяемых метаболических показателей и выраженность этих изменений зависят от особенностей химического строения, а также дозы исследуемых соединений.
Апробация работы. Основные результаты диссертации докладывались на XX съезде физиологического общества имени И.П. Павлова «Нейрофизиология», Москва, 2007 год; V Всемирном конгрессе по иммунопатологии и аллергии, V Европейском конгрессе по астме «Аллергология и иммунология», Москва, 2007 год; III съезде фармакологов России «Фармакология практическому здравоохранению», Санкт-Петербург, 2007 год.
Публикации. По теме диссертации имеется 6 публикаций, в том числе 4 - в изданиях, рекомендованных ВАК РФ.
Структура и объем диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследований, двух глав собственных исследований, обсуждения результатов исследований, выводор, практических рекомендаций, библиографического списка. Работа изложена на 171 страницах текста компьютерного набора, иллюстрирована 18 рисунками, 29 таблицами, 1 фотографией. Библиографический список содержит 307 названий работ, из них 163 отечественных и 144 зарубежных автора.
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Работа выполнена на кафедре общей и клинической фармакологии ГОУ ВПО «Нижегородская государственная медицинская академия».
Эксперименты выполнены на двух видах животных: 108 белых нелинейных мышах-самцах и 97 белых нелинейных крысах-самцах. Все животные по-
лучены из филиала «Столбовая» ГУ «Научный центр биомедицинских технологий РАМН». После получения животные содержались в условиях стандартного вивария Центральной научно-исследовательской лаборатории ГОУ ВПО НижГМА. Средняя масса мышей составила 26,79±0,20 г, крыс - 307,48±3,69 г.
Экспериментальные исследования проводились в соответствии с требованиями нормативных правовых актов, регламентирующих проведение исследований безопасности и эффективности фармакологических веществ в Российской Федерации (Федерального закона «О лекарственных средствах» № 86-ФЗ от 22.06.1998, Приказа МЗ РФ «Об утверждении правил лабораторной практики» № 267 от 19.06.2003) и международными правилами правовых и этических норм использования животных.
Исследуемые соединения представляют собой соли одного основания - 3-окси-6-метил-2-этилпиридина - и различных двухосновных органических кислот. Кислоты в составе исследуемых производных 3-ОП различались количеством СНг-групп.
На первом этапе проводилось исследование острой токсичности новых производных 3-ОП, которое включало определение средней летальной дозы (Ь05о) методом Кербера при однократном внутрибрюшинном введении белым мышам 3-ОП оксалата, 3-ОП малеата и 3-ОП гемисукцината (токсичность 3-ОП малоната и 3-ОП адипината определены в ГУ НИИ фармакологии РАМН, опыты проводились на белых беспородных крысах). Вещества вводились в виде водного раствора объемом 0,3 мл внутрибрюшинно.
Следующий этап исследования был посвящен изучению влияния новых производных 3-ОП на процессы перекисного окисления белков и некоторые метаболические показатели в условиях иммобилизации. Иммобилизация создавалась путем жесткой фиксации крыс в положении на спине за 4 конечности без ограничения подвижности головы. Экспозиция животных - 12 часов (По-шивалов, 1978).
После 12-часовой иммобилизации также оценивалось общетоксическое действие изучаемых соединений по следующим показателям: летальность, масса тела и масса внутренних органов экспериментальных животных.
Изучаемые производные 3-ОП вводились внутрибрюшинно непосредственно перед иммобилизацией в дозах, соответствующих 1% и 10% от Ы}5о-Считается, что указанный интервал доз соответствует условной минимальной и максимальной эффективной дозе (Сернов Л.Н., Гацура В.В., 2000). Для исследования интенсивности процесса перекисного окисления белков и биохимических показателей требуется значительное количество плазмы, поэтому данная серия экспериментов была проведена на крысах с пересчетом средних смертельных доз с одного вида животных (мыши) на другой (крысы) (Сернов, Гацура, 2000).
Было сформировано несколько групп животных. Первая серия исследований (производные 3-ОП в дозе 1% от 1Л}50): 1-я группа (п=7) - 3-ОП оксалат; 2-я группа (п=7) - 3-ОП малонат; 3-я группа (п=7) - 3-ОП адипинат; 4-я группа (п=7) - 3-ОП малеат; 5-я группа (п=7) - 3-ОП гемисукцинат; 6-я группа (п=11) -контрольная (иммобилизация, без введения веществ); 7- я группа (п=15) - ин-
тактные. Вторая серия исследований (производные 3-ОП в дозе 10% от LD50): 1-я группа (п=8) - 3-ОП оксалат; 2-я группа (п=7) - 3-ОП малонат; 3-я группа (п=7) - 3-ОП адипинат; 4-я группа (п=7) - 3-ОП малеат; 5-я группа (п=7) - 3-ОП гемисукцинат; 6-я группа (п=11) - контрольная (иммобилизация, без введения веществ); 7-я группа (п=15) - интактные.
Животные выводились из эксперимента методом декапитации, объектом исследования являлась сыворотка крови экспериментальных животных. Определялась интенсивность окислительной модификации белков по уровню карбонильных производных (Дубинина Е.Е. с соавт., 1995). Также изучались различные биохимические показатели: содержание общего белка (ОБ), глюкозы, триг-лицеридов (ТГ), общего холестерина (ХС), холестерина липопротеинов высокой плотности (ХС-ЛПВП), холестерина липопротеинов низкой плотности (ХС-ЛПНП), концентрация общего, прямого и непрямого билирубина, активность аланин (AJIT) и аспартат (ACT) аминотрансфераз с помощью наборов фирмы «Витал диагностике СПб».
Статистическая обработка полученных результатов проводилась с использованием программы «Stadia 7.0/prof» (№ копии 1434) и оценкой уровня значимости различий между двумя выборками с помощью параметрических и непараметрических критериев.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
В результате проведенных исследований установлено, что самая высокая LD50 отмечается у 3-ОП адипината (1057,20±117,03 мг/кг для крыс). Следовательно, 3-ОП адипинат является наименее токсичным из всех исследованных соединений. В порядке уменьшения токсичным следующим за 3-ОП адипина-том оказался 3-ОП малонат (898,03±75,98 мг/кг для крыс). Самые низкие LD50 отмечаются у трех из пяти изученных соединений - 3-ОП оксалата (410,53±11,55 мг/кг для мышей и 295,58 мг/кг для крыс), 3-ОП малеата (614,69±24,91 мг/кг ля мышей и 442,58 мг/кг для крыс) и 3-ОП гемисукцината (420,64±16,75 мг/кг для мышей и 302,86 мг/кг для крыс), то есть указанные производные 3-ОП являются наиболее токсичными из всех изученных.
Изучение токсичности изучаемых производных 3-ОП в дозах 1% и 10% от LDJ0 при введении их на фоне иммобилизационного стресса по гибели животных выявило следующее. Во время 12-часовой иммобилизации в группе контроля летальность составила 8,33% (1 животное из 12). 3-ОП адипинат, 3-ОП малеат, 3-ОП малонат и 3-ОП гемисукцинат не вызывали гибели животных как в 1%, так и в 10% от LD50 дозах. В отличие от этого, при введении 3-ОП оксалата в дозе 10% от LDjo летальность составила 22,22% (2 животных из 9). Данные факты могут быть связаны с химической структурой исследуемых солей 3-ОП. Так, щавелевая кислота и ее соли (оксалаты) сами по себе отличаются токсичностью (Guo С. et al., 2005; Tracy C.R., Pearle M.S., 2009).
Кроме анализа летальности были исследованы патоморфологические показатели в условиях иммобилизационного стресса. Исследование массы крыс выявило, что отличий в массе интактных животных (327,80±7,21 г) и животных, подвергнутых иммобилизации (322,40±8,84 г), не наблюдается. В отличие от
этого, введение 3-ОП оксалата уже в дозе 1% от Ь05о, а 3-ОП малоната и 3-ОП адипината в дозе 10% от ЬВ5о вызывает снижение массы крыс до 322,40±8,84 г, 271,30±16,65 г и 271,40±16,92 г соответственно.
Изучение массы внутренних органов после 12-часовой иммобилизации показало, что в группе контроля масса таких органов, как сердце (1,10±0,04 г), печень (10,13±0,40 г) и почка (1,07±0,03 г) не отличаются от таковых в группе интактных животных. Вместе с тем масса легких (0,88±0,10 г) и селезенки (2,52±0,15 г) была достоверно меньше аналогичных показателей в группе интактных крыс (1,67±0,09 г и 2,89±0,07 г соответственно). Уменьшение массы легких и селезенки скорее всего связано с организацией полицитемии как первой реакции организма на стрессовое повреждение (Маслова М.Н., 2006).
Введение 3-ОП оксалата в дозе 10% от Ы^о статистически значимо приводит к увеличению массы селезенки (до 1,18±0,05 г) и легких (до 2,98±0,11 г) по сравнению с аналогичными показателями в группе контроля. Сходными с 3-ОП оксалатом оказались 3-ОП гемисукцинат и 3-ОП малеат. Введение 3-ОП гемисукцината в дозе 1 % от 1Л33о приводит к статистически значимому увеличению массы селезенки (до 1,37±0,08 г) и легких (до 3,02±0,12 г), в дозе 10% от ЬБ50 - к увеличению массы сердца (до 1,20±0,06 г), почки (до 1,16±0,03 г) и селезенки (до 1,20±0,06 г) по сравнению с группой контроля. При введении 3-ОП малеата в дозе 1% от ЬЦ50 происходит снижение массы почки (до 0,97±0,06 г) и увеличение массы легких (до 2,83±0,17 г), в дозе 10% от Ь05о - увеличение массы селезенки (до 1,16±0,11 г) по сравнению с контрольной группой. В свете вышеприведенного рассуждения об адаптационной реакции организма на стресс, следует заключить, что данные соединения не вызывают адаптационной полицитемии и, тем самым, проявляют токсическое действие.
Меньшее влияние на морфологические изменения органов оказали 3-ОП малонат и 3-ОП адипинат. Введение 3-ОП малоната в дозе 1% от 1Л>50 достоверно привело к уменьшению массы печени (до 8,70±0,16 г), в дозе 10% от 1ЛЭ5о - к снижению массы почки (до 0,93±0,07 г) по сравнению с группой контроля. Введение 3-ОП адипината в дозе 1% от ЫЭ50 обусловливает снижение массы печени (до 8,34±0,42 г), в дозе 10% от ЬО50 - уменьшение массы печени (до 7,99±0,49 г) и почки (до 0,95±0,05 г) по сравнению с группой контроля.
Обобщая полученные данные, следует заключить, что по совокупности изученных показателей наименьшую токсичность из новых производных 3-ОП продемонстрировал 3-ОП адипинат, далее следуют 3-ОП малонат и 3-ОП малеат, наиболее токсичными веществами оказались 3-ОП оксалат и 3-ОП гемисукцинат.
Изучение влияния новых производных 3-ОП на процессы перекисного окисления белков и некоторые биохимические показатели выявило следующее.
Как свидетельствуют результаты проведенных исследований, в сыворотке крови интактных животных обнаруживаются продукты свободнорадикаль-ного окисления белков, которые вступают в реакцию с 2,4-динитрофенилгидразином. При этом основное количество образовавшихся ди-нитрофенилгидразонов относится к альдегид- и кетон-производным нейтрального характера (табл. 1).
Т а б л и ц а 1
Содержание 2,4-динитрофенилгидразонов в сыворотке крови экспериментальных животных при моделировании
Группа Длина волны, нм
животных 356 363 370 430 530
Контроль 17,45±1,57 18,37±1,62 18,93±1,65 8,42±0,93 1,18±0,18
(иммобилизация) Ри<0,05 Ри<0,05 Ри<0.05
Интактные 14,94±0,82 15,67±0,83 16,00±0,84 7,41±0,43 1,07±0,11
Примечание. Ри - уровень значимости различий по сравнению с интактными животными.
Через 12 часов иммобилизации отмечается повышение интенсивности окислительной модификации белков сыворотки крови экспериментальных животных по сравнению с интактными животными, о чем свидетельствует увеличение содержания 2,4-динитрофенилгидразонов как нейтрального, так и основного характера (табл. 4). При этом наиболее существенно увеличиваются уровни алифатических альдегид- и кетон-динитрофенилгидразонов нейтрального характера, что согласуется с данными литературы об интенсификации процессов свободнорадикального окисления, в том числе белков, при иммобилизаци-онном стрессе (Рудько Н.П., 2002; Агаева Р.К., Фастова И.А., 2003; Гончарова Н.Д., Маренин В.Ю., 2008; Нестеров Ю.В., Теплый Д.Л., Чумакова A.C., 2008; Schraml Е. et al., 2007; Bertagnolli М. et al., 2008).
Изучаемые биохимические показатели в сыворотке крови интактных животных представлены в таблице 2.
Через 12 часов иммобилизации отмечается статистически значимое увеличение содержания общего (на 75,06%; Р<0,05) и непрямого (в 2,13 раза; Р<0,01) билирубина в сыворотке крови экспериментальных животных по сравнению с интактными животными (табл. 2). Выявленные изменения показателей пигментного обмена могут свидетельствовать о вовлечении в общий адаптационный синдром различных звеньев, регулирующих уровень билирубина в крови, что также согласуется с данными литературы, свидетельствующими о динамическом изменении различных биохимических показателей в условиях иммобилизации (Hsu D.Z. et al, 2005; Neri M. et al., 2007; Yildirim A. et al., 2007).
Исследование интенсивности окислительной модификации белков и биохимических показателей на фоне введения изучаемых производных 3-оксипиридина выявило следующее.
З-ОП оксалат в дозе 1% от LD50 снижает интенсивность окислительной модификации белков сыворотки крови экспериментальных животных, индуцированной 12-часовой иммобилизацией животных. Об этом свидетельствуют существенно более низкие по сравнению с группой контроля уровни продуктов свободнорадикального окисления белков, в частности алифатических альдегид--динитрофенилгидразонов нейтрального характера, регистрируемых при длине волны 356 нм и 363 нм (на 25,21% (Р<0,05) и 24,50% (Р<0,05) соответственно), а также алифатических кетон-динитрофенилгидразонов нейтрального характера, обнаруживаемых при длине волны 370 нм - на 23,93% (Р<0,05), и алифатических кетон-динитрофенилгидразонов основного характера, выявляемых при
длине волны 530 нм - на 36,44% (Р<0,05). То есть в дозе 1% от LD50 3-ОП окса-лат проявляет антиоксидантную активность по отношению к процессу окислительной модификации белков. Причем этот эффект более выражен, чем 3-ОП оксалата в дозе 10% от LD50(P<0,05 при длине волны 356 нм и 363 нм) (рис. 1). Выявленная антиоксидантная активность может быть связана с биологическими свойствами солей щавелевой кислоты, в частности, со способностью уменьшать концентрацию ионов кальция в среде и повышать содержание общего белка и ЛПВП-ХС, что способствует более быстрой регенерации поврежденных мембран клеток (Ленинджер A.JL, 1985; Полумисков В.Ю. с соавт., 2004; Репина Е.А. с соавт., 2007; Cerón J.J. et al., 2004).
Таблица2
Показатели белкового, углеводного, жирового и пигментного обмена, активность ферментов при моделировании иммобилизационного стресса (М±т)__
Показатель Группа животных
Контроль (иммобилизация) интакгные
Общий белок, г/л 52,71±2,23 49,15±2,42
Глюкоза, ммоль/л 5,54±0,33 6,02±0,35
Триглицериды, ммоль/л 0,34±0,04 0,38±0,11
Общий холестерин, ммоль/л 1,50±0,12 1,32±0,13
ЛПВП-ХС, ммоль/л 0,78±0,05 0,62±0,07
ЛПНП-ХС, ммоль/л 0,38±0,07 0,31 ±0,05
Общий билирубин, мкмоль/л 7,79±1,41 Ри<0,05 4,45±0,74
Прямой билирубин, мкмоль/л 3,46±0,83 2,42±0,66
Непрямой билирубин, мкмоль/л 4,32±0,81 Ри<0,01 2,03±0,26
Активность АЛТ, нмоль/(схл) 82,48±8,01 83,57±7,24
Активность ACT, нмоль/(с><л) 148,20±13,26 142,60± 11,48
Примечания: Ри - уровень значимости различий по сравнению с интактными животными.
В дозе 10% от ЬО50 3-ОП оксалат способствует лишь незначительному снижению содержания продуктов окислительной модификации белков в сыворотке крови экспериментальных животных при длине волны 356 нм, 363 нм и 370 нм, то есть алифатических альдегид- и кетон-динитрофенилгидразонов нейтрального характера, и одновременному некоторому увеличению уровней продуктов перекисного окисления белков, регистрируемых при длине волны 430 нм и 530 нм (алифатических альдегид- и кетон-динитрофенилгидразонов основного характера) (рис.1). Следовательно, увеличение дозы 3-ОП оксалата не только не приводит к увеличению выраженности антиоксидантного действия указанного соединения на процесс перекисного окисления белков, но даже сопровождается частичным его снижением.
0356 нм Н363 нм 0370 нм Щ430 нм 1530 нм
Р и с. 1. Содержание 2,4-динитрофенилгидразонов в сыворотке крови экспериментальных животных при введении 3-оксипиридина оксалата
Примечания: * - статистическая значимость различий по сравнению с группой контроля; ** - по сравнению с группой животных, которым вводили 3-ОП оксалат в дозе 10% от
1Х>50.
На фоне введения 3-ОП оксалата в дозе 1% от ЬО50 регистрируется значительно более высокий уровень общего белка (14,27%; Р<0,01) и ЛПВП-ХС (на | 34,62%; Р<0,05) в сыворотке крови экспериментальных животных и при этом существенно более низкая концентрация ЛПНП-ХС (на 31,58%; Р<0,05), а также активность аспартат аминотрансферазы (на 28,88%; Р<0,05) по сравнению с группой контроля (табл. 3, стр. 11).
В дозе 10% от ЬОго 3-ОП оксалат существенно не изменяет исследованные метаболические показатели по сравнению с группой контроля (табл. 4, стр. 12).
Различия между группами 3-ОП оксалата в дозах 1% и 10% от 1Ю5о отмечаются только по показателям общего белка, ЛПВП-ХС, уровни которых значительно выше, а также по содержанию ЛПНП-ХС, которое, напротив, меньше на фоне введения изучаемого соединения в дозе 1% от ЬБ50, чем в дозе 10% от ЬВ50 (Р<0,01 по всем трем указанным показателям) (табл. 3, 4).
Таким образом, 3-оксипиридина оксалат в дозе 1% от 1ЛЭ5о вызывает статистически значимое снижение содержания продуктов окислительной модификации белков сыворотки крови экспериментальных животных при длине волны 356 нм, 363 нм, 370 нм и 530 нм (алифатических альдегид-, кетон-динитрофенилгидразонов нейтрального характера и кетон-динитрофенилгидразонов основного характера), а также уровня холестерина липопротеинов низкой плотности и активности аспартат аминотрансферазы, повышение уровней общего белка и холестерина липопротеинов высокой плотности. В дозе 10% от 1Л350 3-оксипиридина оксалат вызывает несущественные изменения интенсивности окислительной модификации белков и содержания исследованных метаболических показателей относительно группы контроля.
3-ОП малонат в дозе 1% от ЬБ5о обусловливает тенденцию к снижению интенсивности окислительной модификации белков сыворотки крови экспериментальных животных. Об этом свидетельствуют более низкие по сравнению с
группой контроля уровни алифатических альдегид- и кетон-динитрофенилгидразонов как нейтрального, так и основного характера при всех исследованных длинах волн (рис. 2).
3-ОПмалонат (1% от 3-ОПмалонат (10% от контроль
LD50) LD50) (иммобилизация)
0356 нм 0363 нм 0370 нм 13430 нм Ш530 нм
Р и с. 2. Содержание 2,4-динитрофенилгидразонов в сыворотке крови экспериментальных животных при введении 3-оксипиридина малоната
Примечания: * - статистическая значимость различий по сравнению с группой контроля; ** - по сравнению с группой животных, которым вводили 3-ОП малонат в дозе 1% от LD 50В дозе 10% от LDS0 3-ОП малонат также вызывает снижение по сравнению с группой контроля содержания продуктов окислительной модификации белков при всех исследованных длинах волн, то есть алифатических альдегид-и кетон-динитрофенилгидразонов как нейтрального, так и основного характера. При этом снижение концентрации алифатических кетон-динитрофенилгидразонов основного характера, регистрируемых при длине волны 530 нм, является более существенным не только по сравнению с группой контроля (на 41,53%; Р<0,05), но и по сравнению с группой животных, которым вводили 3-ОПмалонат в дозе 1% от LD5o (Р<0,05).
Обращает на себя внимание, что увеличение дозы 3-ОП малоната обусловливает менее существенное снижение уровней продуктов окислительной модификации белков нейтрального характера (регистрируемых при длине волны 356 нм, 363 нм и 370 нм) и, напротив, более значительное снижение содержания продуктов основного характера (выявляемых при длине волны 430 нм и 530 нм) относительно данных контрольной группы (рис. 2).
После введения 3-ОП малоната в дозе 1% от LDS0 все изученные метаболические показатели в сыворотке крови существенно не отличаются от таковых в группе контроля (табл. 3).
На фоне введения 3-ОП малоната в дозе 10% от LD50 регистрируется более низкое по сравнению с группой контроля содержание прямого билирубина (на 58,57%; Р<0,01), а также активность ACT (на 10,39%; Р<0,05). При этом концентрация прямого билирубина после введения 3-ОП малоната в дозе 10% от LD5o является более низкой не только по сравнению с группой контроля, но и этого же соединения в дозе 1% от LD50 (Р<0,01) (табл. 3, 4).
ТаблицаЗ
Показатели белкового, углеводного и жирового обмена при введении
производных 3-оксипиридина в дозах 1% и 10% LD50 (M±m)
Группа животных Показатель
Общий белок, г/л Глюкоза, ммоль/л Триглице-риды, ммоль/л Общий холестерин, ммоль/л ЛПВП- ХС, ммоль/л ЛПНП- ХС, ммоль/л
1-я: 3-ОП оксалат (1% LD50) 60,23±1,03 Рк<0,01 Р10<0,01 4,95±0,32 0,38±0,05 1,68*0,11 1,05±0,09 Рк<0,05 Р10<0,01 0Д6±0,04 Рк<0,05 Р10<0,01
1-я: 3-ОП оксалат (10% LD50) 52,82±2,88 4,84±0,40 0,38±0,07 1>72±0,14 0,77±0,05 0,58±0,09
2-я: 3-ОП малонат (1% LD50) 50,92±3,52 6,00±0,43 0,31±0,04 1,55±0,10 0,87±0,10 0,37±0,10
2-я: 3-ОП малонат (10% LD50) 50,11±2,37 5,40±0,34 0,41±0,06 1,62±0,08 0,80±0,11 0,41±0,09
3-я: 3-ОП адипинат (1% LD50) 59,18±3,20 4,77±0,14 Рк<0,01 0,36±0,05 1,87±0,14 1,13±0,13 Рк<0,05 0,40±0,07
3-я: 3-ОП адипинат (10% LD50) 54,23±2,21 4,17±0,26 Рк<0,01 0,27±0,04 1,61±0,07 0,91±0,15 Рк<0,01 0,43±0,13
4-я: 3-ОП малеат (1% LD50) 56,88±2,49 5,92±0,53 Р10<0,05 0,34±0,06 1,65±0,22 Р10<0,05 0,85±0,14 Р10<0,05 0,46±0,09
4-я: 3-ОП малеат (10% LD50) 52,95±3,05 4,29±0,33 Рк<0,05 0,43±0,07 1,27±0,10 0,56±0,06 Рк<0,01 0,28±0,05
5-я: 3-ОП гемисук- цинат (1% LD50) 54,71±2,32 5,7б±0,36 0,38±0,05 1,17±0,09 Рк<0,05 0,55±0,02 Рк<0,001 PI 0<0,01 0,25±0,05
5-я: 3-ОП гемисук-цинат (10% LD50) 56,35±2,12 5,57±0,56 0,38±0,06 1,17±0,12 0,63±0,10 0,24±0,03
Контроль 52,71±2,23 5,54±0,33 0,34±0,04 1,50±0,12 0,78±0,05 0,38±0,07
Примечания: Рк - уровень значимости различий по сравнению с группой контроля; Р10 - по сравнению с группой животных, которым вводили аналогичное производное 3-ОП в дозе 10% от LDS0.
Таким образом, 3-оксипиридина малонат в дозе 1% от LD50 не вызывает существенных изменений интенсивности окислительной модификации белков и изученных метаболических показателей относительно группы контроля. В дозе 10% от LD50 обусловливает снижение содержания алифатических кетон-динитрофенилгидразонов основного характера, регистрируемых при длине волны 530 нм, а также концентрации прямого билирубина и активности аспар-тат аминотрансферазы в сыворотке крови экспериментальных животных. Следовательно, 3-ОП малонат только в дозе 10% от LD50 и только при длине волны 530 нм статистически значимо снижает содержание продуктов перекисного окисления белков, оказывая только в указанной дозе влияние на метаболиче-
ские показатели, снижая активность аспартат аминотрансферазы и содержание прямого билирубина.
Таблица4
Показатели пигментного обмена и активность ферментов при введении производных 3-оксипиридина в дозах 1% и 10% ЬР5Й (М±т)_
Показатель
Группа животных Общий билирубин, мкмоль/л Прямой билирубин, мкмоль/л Непрямой билирубин, мкмоль/л АЛТ, нмоль/(схл) ACT, нмоль/(схл)
1-я: 3-ОП оксалат (1% LD50) 6,95±1,93 2,42±0,21 4,53±0,21 75,3 6± 10,15 105,40±12,15 Рк<0,05
1-я: 3-ОП оксалат (10% LD50) 5,10±1,21 2,42±0,76 2,68±0,51 67,99±4,54 125,40±12,86
2-я: 3-ОП малонат (1% LD50) 6,00±1,49 2,47±0,82 3,52±1,12 74,94±10,53 148,20±11,92
2-я: 3-ОП малонат (10% LD50) 5,81±1,00 1,43±0,27 Рк<0,01 PI <0,01 4,39±1,15 72,28±14,72 132,80±8,01 Рк<0,05
3-я: 3-ОП адипинат (1 % LD50) 4,98±1,04 1,88±0,48 Рк<0,05 3,11±0,82 82,06±13,25 Р!0<0,05 106,30±7,71 Рк<0,05
3-я: 3-ОП адипинат (10% LD50) 7,64±1,99 4,04±1,59 3,61±1,52 65,37±5,07 120,50±10,83
4-я: 3-ОП малеат (1% LD50) 6,47±0,95 2,95±0,17 Рк<0,01 3,52±1,04 Р10<0,05 72,57±8,56 146,50±15,5'
4-я: 3-ОП малеат (10% LD50) 5,73±1,35 3,03±1,13 2,71±0,39 Рк<0,05 80,47±5,05 131,90±19,21
5-я: 3-ОП гемисук- цинат (1 % LD50) 4,61±0,53 Рк<0,01 2,02±0,17 Рк<0,01 2,60±0,39 Рк<0,05 89,58±9,02 125,80±21,12
Р10<0,05
5-я: 3-ОП гемисук-цинат (10% LD50) 5,17±0,48 2,52±0,56 2,65±0,48 Рк<0,05 91,77±12,02 173,40±21,09
Контроль 7,79±1,41 3,46±0,83 4,32±0,81 82,48±8,01 148,20±13,2<
Примечания: Рк - уровень значимости различий по сравнению с группой контроля; Р - по сравнению с группой животных, которым вводили аналогичное производное 3-ОП в дозе 1% от LD¡o; PIO - по сравнению с группой животных, которым вводили аналогичное производное 3-ОП в дозе 10% от LD50.
3-ОП адипинат характеризуется самой высокой LD50 для крыс при внут рибрюшинном пути введения (1057,20±117,03 мг/кг). Полученные данные сс гласуются с данными литературы, свидетельствующими о низкой токсичност данной соли, позволяющей использовать её в качестве пищевых добавок (Пр! ложение 7 к СанПиН 2.3.2.1078-01 «Пищевые добавки, не оказывающие вре, ного воздействия на здоровье человека при использовании для изготовлеш пищевых продуктов»).
3-ОП адипинат в дозе 1% от ЬО50 снижает интенсивность окислительной модификации белков сыворотки крови экспериментальных животных, индуцированной 12-часовой иммобилизацией, о чем свидетельствуют значительно более низкие по сравнению с группой контроля уровни продуктов свободноради-кального окисления белков. В частности, алифатических альдегид-динитрофенилгидразонов нейтрального характера, регистрируемых при длине волны 356 нм и 363 нм, (соответственно на 30,09% (Р<0,01) и 29,12% (Р<0,01) ' относительно данных контрольной группы), алифатических кетон-динитрофенилгидразонов нейтрального характера, выявляемых при длине волны 370 нм, - на 27,84% (Р<0,01 - по сравнению с группой контроля), а также алифатических кетон-динитрофенилгидразонов основного характера, обнаруживаемых при длине волны 530 нм, - на 34,75% (Р<0,05 - по сравнению с данными контрольной группы). Следовательно, в дозе 1% от ЬБ50 3-ОП адипинат I оказывает антиоксидантное действие в отношении процесса перекисного окисления белков (рис. 3).
3-ОП адипинат (1 % от 3-ОП адипинат (10% от контроль
LD50) LD50) (иммобилизация)
Я356 нм 11363 нм ¡3370 нм D430 нм И530 нм
Р и с. 3. Содержание 2,4-динитрофенилгидразонов в сыворотке кровн экспериментальных животных при введении 3-оксипиридина адипината
Примечания: * - статистическая значимость различий по сравнению с группой контроля.
В дозе 10% от LD50 3-ОП адипинат обусловливает лишь незначительное по сравнению с группой контроля снижение содержания продуктов окислительной модификации белков сыворотки крови экспериментальных животных при всех исследованных длинах волн. Следовательно, увеличение дозы 3-ОП адипината не приводит к увеличению выраженности антиоксидантной активности этого соединения в отношении процесса перекисного окисления белков (рис. 3).
После введения 3-ОП адипината в дозе 1% от LD50 отмечается более высокий уровень ЛПВП-ХС (на 44,87%; Р<0,05) и при этом существенно более низкое содержание глюкозы (на 13,90%; Р<0,01), прямого билирубина (на 45,66%; Р<0,05), а также более низкая активность ACT (на 28,27%; Р<0,05) в сыворотке крови экспериментальных животных по сравнению с группой контроля (табл. 3).
На фоне введения 3-ОП адипината в дозе 10% от ЦЭ50 уровень глюкозы значительно меньше такового в группе контроля (на 24,73%; Р<0,01), а концентрация ЛПВП-ХС, напротив, выше аналогичного показателя у животных контрольной группы (на 16,67%; Р<0,01) (табл. 4).
Различия между группами 3-ОП адипината в дозах 1% и 10% от ЬБ50 отмечаются только по величине активности аланин аминотрансферазы, которая значительно выше на фоне введения указанного производного 3-оксипиридина в дозе 1% от Ш5п, чем в дозе 10% от Ю50 (Р<0,05) (табл. 3,4).
Таким образом, 3-оксипиридина адипинат в дозе 1% от ЬБзо по сравнению с группой контроля приводит к уменьшению содержания продуктов окислительной модификации белков при длине волны 356 нм, 363 нм, 370 нм и 530 нм (алифатических альдегид-, кетон-динитрофенилгидразонов нейтрального характера и кетон-динитрофенилгидразонов основного характера соответственно), а также уровней глюкозы, прямого билирубина, активности аспартат аминотрансферазы, повышению уровня холестерина липопротеинов высокой плотности. В дозе 10% от 1Л}50 вызывает незначительное изменение содержания продуктов окислительной модификации белков по сравнению с группой контроля и существенное снижение уровня глюкозы, а также повышение содержания холестерина липопротеинов высокой плотности. Следовательно, 3-ОП адипинат в дозе 1% от ЬО50 обладает не только выраженными антиокси-дантными свойствами, но и оказывает положительное влияние на динамику ряда метаболических показателей, снижая уровень прямого билирубина, активность аспартат аминотрансферазы, повышая содержание холестерина липопротеинов высокой плотности.
3-ОП малеат в дозе 1% от ЬО50 обусловливает тенденцию к снижению интенсивности окислительной модификации белков сыворотки крови экспериментальных животных. Это подтверждается более низким по сравнению с группой контроля содержанием всех изученных продуктов (алифатических альдегид- и кетон-динитрофенилгидразонов как нейтрального, так и основного характера) (рис. 4).
В дозе 10% от ЫЭбо 3-ОП малеат также вызывает незначительное по сравнению с группой контроля снижение содержания таких продуктов окислительной модификации белков, как алифатические альдегид- и кетон-динитрофенилгидразоны нейтрального характера (при длине волны 356 нм, 363 нм и 370 нм), а также алифатические кетон-динитрофенилгидразоны основного характера (при длине волны 530 нм). При этом уровень алифатических альде-гид-динитрофенилгидразонов основного характера, регистрируемых при длине волны 430 нм, даже несколько увеличивается по сравнению с группой контроля (рис. 4). Увеличение дозы 3-ОП малеата не приводит к увеличению выраженности антиоксидантной активности данного соединения.
После введения 3-ОП малеата в дозе 1% от 1ЛЭ5о регистрируется более низкий уровень прямого билирубина в сыворотке крови животных опытной группы по сравнению с контрольной (на 14,74%; Р<0,01). При этом содержание глюкозы, общего холестерина, ЛПВП-ХС и непрямого билирубина превышает
аналогичные показатели в группе 3-ОП малеата в дозе 10% от ЬО50 (Р<0,05 по всем перечисленным показателям) (табл. 3).
З-ОП малеат (1% от 3-ОП малеат (10% от контроль
1Л550) ЬБ50) (иммобилизация)
■ 356 нм И363 нм ¡3370 нм П430 нм И530 нм
Р и с. 4. Содержание 2,4-динитрофенилгидразонов в сыворотке крови экспериментальных животных при введении 3-оксипиридина малеата
На фоне введения 3-ОП малеата в дозе 10% от 1Л)5о отмечается более низкое по сравнению с группой контроля содержание глюкозы (на 22,56% Р<0,05), ЛПВП-ХС (на 28,21%; Р<0,01) и непрямого билирубина (на 37,27%; Р<0,05) в сыворотке крови экспериментальных животных, а по сравнению с группой этого же соединения в дозе 1% от ЬБ50- более низкие уровни глюкозы, общего холестерина, ЛПВП-ХС и непрямого билирубина (Р<0,05 по всем указанным показателям) (табл. 4).
Таким образом, 3-оксипиридина малеат в дозе 1% от 1Л)5о вызывает уменьшение содержания прямого билирубина. В дозе 10% от ЬВ5о обусловливает снижение уровней глюкозы, холестерина липопротеинов высокой плотности и непрямого билирубина. При этом указанное производное 3-гидроксипиридина в обеих исследованных дозах не оказывает существенного влияния на интенсивность окислительной модификации белков сыворотки крови экспериментальных животных.
3-ОП гемисукцинат в дозе 1% от ЬВ50 обусловливает тенденцию к снижению интенсивности окислительной модификации белков сыворотки крови экспериментальных животных, о чем свидетельствуют несколько более низкие по сравнению с группой контроля уровни алифатических альдегид- и. кетон-динитрофенилгидразонов нейтрального и основного характера (рис. 5).
В дозе 10% от ЬО50 3-ОП гемисукцинат существенно снижает интенсивность окислительной модификации белков сыворотки крови экспериментальных животных, что подтверждается более низким по сравнению с группой контроля содержанием всех изученных продуктов свободнорадикального окисления белков (алифатических альдегид- и кетон-динитрофенилгидразонов нейтрального и основного характера). Причем содержание алифатических альде-гид-динитрофенилгидразонов нейтрального характера, регистрируемых при длине волны 356 нм и 363 нм, в опытной группе меньше аналогичных показателей в группе контроля на 28,48% (Р<0,05) и 28,91% (Р<0,05) соответственно.
Концентрация алифатических кетон-динитрофенилгидразонов нейтрального характера, регистрируемых при длине волны 370 нм, ниже таковой в группе контроля на 26,20% (Р<0,05) (рис. 5).
Следовательно, 3-ОП гемисукцинат, в отличие от всех изученных производных 3-гидроксипиридина, в дозе 10% от ЬБ50 оказывает антиоксидантное действие в отношении процесса перекисного окисления белков сыворотки крови экспериментальных животных, причем более выраженное, чем в дозе 1 % от ЬЭзо.
3-ОП гемисукцинат (1% 3-ОП гемисукцинат (10% контроль
от 1Л>50) от 1ЛЭ50) (иммобилизация)
¡§356 нм ИЗ63 нм £3370 нм ШЗОнм ШЗОнм
Р и с. 5. Содержание 2,4-динитрофенилгидразонов в сыворотке крови экспериментальных животных при введении 3-оксипиридина гемисукци-ната
Примечания: * - статистическая значимость различий по сравнению с группой контроля; ** - по сравнению с группой животных, которым вводили 3-ОП гемисукцинат в дозе 1% от ГХЬо-
На фоне введения 3-ОП гемисукцината в дозе 1% от ЬБ5о регистрируется значительно более низкий уровень общего холестерина (на 22%; Р<0,05) и ЛПВП-ХС (на 29,5%; Р<0,001), а также общего (на 41%; Р<0,01), прямого (на 42%; Р<0,01) и непрямого (на 40%; Р<0,05) билирубина в сыворотке крови экспериментальных животных по сравнению с группой контроля (табл. 3).
В дозе 10% от Ы35о 3-ОП гемисукцинат уменьшает концентрацию общего холестерина (на 22%; Р<0,05) и непрямого билирубина (на 39%; Р<0,05) по ! сравнению с группой контроля (табл. 4).
Различия между группами 3-ОП гемисукцината в дозах 1% и 10% от ЬО50 отмечаются только по уровню ЛПВП-ХС и прямого билирубина (Р<0,01 и 1 Р<0,05 соответственно). Причем оба указанных показателя выше в группе гемисукцината в дозе 10% от ЬО50 (табл. 3, 4).
Таким образом, 3-оксипиридина гемисукцинат в дозе 1% от ЬО50 оказывает несущественное влияние на процесс перекисного окисления белков. При этом обусловливает статистически значимое снижение уровней общего холестерина, холестерина липопротеинов высокой плотности, общего, прямого и непрямого билирубина. В дозе 10% от ЬВ50 вызывает уменьшение содержания продуктов окислительной модификации белков при длине волны 356 нм, 363 нм и 370 нм (соответственно алифатических альдегид- и кетон-
динитрофенилгидразонов нейтрального характера), а также уровней общего холестерина и непрямого билирубина. Следовательно, 3-ОП гемисукцинат обладает антиоксидантной активностью, которая статистически значимо проявляется только на уровне максимальной эффективной дозы данного соединения.
Таким образом, анализ представленных данных позволяет заключить, что наиболее токсичными из изученных соединений при внутрибрюшинном введении являются 3-ОП оксалат, 3-ОП гемисукцинат и 3-ОП малеат, а наименее токсичными - 3-ОП малонат и 3-ОП адипинат.
Показатели общетоксического действия новых производных 3-гидроксипиридина в дозах 1% и 10% от 1ЛЭ50 на фоне иммобилизационного стресса свидетельствуют о том, что это действие имеет определенные особенности у различных соединений, характеризуется органотропностью и является дозозависимым. Дозозависимое действие производных 3-ОП подтверждается и данными литературы (Смирнов Л.Д. с соавт., 1982; 1987).
Комплексный анализ результатов выполненных исследований показателей перекисного окисления белков, индуцированного 12-часовой иммобилизацией, на фоне введения изучаемых производных 3-гидроксипиридина в дозах 1% и 10% от ЬБ50 показал, что большинство из изученных соединений в той или иной степени снижает уровни продуктов окислительной модификации белков сыворотки крови экспериментальных животных, то есть проявляет различной степени выраженности антиоксидантную активность. При этом наиболее выраженное антиоксидантное действие в отношении процесса перекисного окисления белков оказывают: 3-ОП оксалат и 3-ОП адипинат в дозах 1% от Ь05о, а также 3-ОП гемисукцинат в дозе 10% от ЬВ5о.
Вместе с тем, при введении 3-ОП оксалата в дозе 10% от 1Л}5о наблюдается некоторое увеличение содержания алифатических альдегид- и кетон-динитрофенилгидразонов основного характера, а 3-ОП малеата в дозе 10% от ЫЭ5о - незначительное повышение концентрации алифатических альдегид-динитрофенилгидразонов основного характера, что может свидетельствовать о возможном прооксидантном действии изучаемых соединений в указанных дозах в отношении процесса перекисного окисления белков.
Анализ результатов исследования метаболических показателей на фоне введения изучаемых производных 3-гидроксипиридина свидетельствует о том, что для каждого соединения характерен определенный спектр показателей, изменяющихся под его влиянием. Причем спектр изменяемых метаболических показателей различается при введении производных 3-гидроксипиридина в условной минимальной и максимальной эффективной дозах.
ВЫВОДЫ
1. Иммобилизация экспериментальных животных в течение 12 часов приводит к увеличению интенсивности окислительной модификации белков, а также уровней общего и непрямого билирубина в сыворотке крови экспериментальных животных.
2. 3-оксипиридина оксалат в дозе 1% от ЬВ50 снижает интенсивность окислительной модификации белков, уровень холестерина липопротеинов низкой плотности и активность аспартат аминотрансферазы, а также повышает уровни общего белка и холестерина липопротеинов высокой плотности .в условиях иммобилизации. В дозе 10% от ЬО50 не оказывает существенного влияния на процесс перекисного окисления белков и исследованные метаболические показатели.
3. 3-оксипиридина малонат в дозе 1% от 1Л)5о оказывает незначительное влияние на процесс свободнорадикального окисления белков и изученные метаболические показатели, В дозе 10% от 1ЛЭ50 снижает интенсивность окислительной модификации белков, в частности, содержание алифатических кетон-динитрофенилгидразонов основного характера, а также уровень прямого билирубина и активность аспартат аминотрансферазы в сыворотке крови экспериментальных животных в условиях иммобилизации.
5. 3-оксипиридина адипинат в дозе 1% от 1Л}50 уменьшает интенсивность окислительной модификации белков, а также уровни глюкозы, прямого билирубина и активность аспартат аминотрансферазы; повышает уровень холестерина липопротеинов высокой плотности. В дозе 10% от ЬО50 вызывает несущественное изменение показателей перекисного окисления белков, снижая при этом уровень глюкозы и повышая содержание холестерина липопротеинов высокой плотности в сыворотке крови экспериментальных животных в условиях иммобилизации.
6. 3-оксипиридина малеат в обеих исследованных дозах не оказывает существенного влияния на процесс свободнорадикального окисления белков в условиях иммобилизации. В дозе 1% от ЬБ50 снижает содержание прямого билирубина; в дозе 10% от 1Л350 - уменьшает уровни глюкозы, холестерина липопротеинов высокой плотности и непрямого билирубина.
7. 3-оксипиридина гемисукцинат в дозе 1% от Ы)5о обусловливает незначительное изменение показателей перекисного окисления белков, уменьшая при этом уровни общего холестерина, холестерина липопротеинов высокой плотности, общего, прямого и непрямого билирубина. В дозе 10% от ЬЛ^о снижает интенсивность окислительной модификации белков, а также уровни общего холестерина и непрямого билирубина в условиях иммобилизации.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
Из исследуемых соединений:
- 3-ОП оксалат и 3-ОП адипинат в дозах 1% от Ь050, а также 3-ОП гемисукцинат в дозе 10% от 1Л)50 могут быть рекомендованы для дальнейшего изучения их антиоксидантного действия;
- 3-ОП оксалат в дозе 1% от 1Ю50 и 3-ОП гемисукцинат в обеих исследованных дозах - для исследования их гиполипидемического действия;
- 3-ОП адипинат в обеих исследованных дозах, а также 3-ОП малеат в дозе 10% от ЬБ50 - для изучения их гипогликемического действия;
- 3-ОП оксалат и 3-ОП адипинат в дозах 1% от Ы)50, а также 3-ОП мало-нат в дозе 10% от 1Ю50 - для исследования их цитопротекторного действия.
СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ
1. Чечет И.В. Реакции свободно-радикального окисления, их участие в патогенезе некоторых заболеваний и возможности ингибирования производными 3-оксипиридина / И.В. Чечет, О.Ю. Чечет, В.Б. Кузин // Нижегородский медицинский журнал. - 2006. - № 7. - С. 93-99.
2. Чечет И.В. Фармакологические свойства производных 3-гидрокси-пиридина - препаратов эмоксипин и мексидол / И.В. Чечет, О.Ю. Чечет, В.Б. Кузин // Нижегородский медицинский журнал. - 2006. - № 8. - С. 153-157.
3. Кузин В.Б. Исследование антигипоксической активности некоторых новых производных 3-оксипиридина / И.В. Чечет, О.Ю. Чечет, В.Б. Кузин // Психофармакология и биологическая наркология. - 2007. - Т. 7, Спец. выпуск (сентябрь) (Мат. III съезда фармакологов России «Фармакология - практическому здравоохранению», СПб, 23-27 сентября 2007 г.), ч. 1. - С. 1755.
4. Чечет И.В. Исследование острой токсичности новых производных 3-гидроксипиридина / И.В. Чечет, О.Ю. Чечет, В.Б. Кузин // Нижегородский медицинский журнал. - 2008. - № 1. - С. 119-121.
5. Смирнов Л.Д. Исследование антигипоксической активности новых производных 3-гидроксипиридина / Л.Д. Смирнов, Ю.В. Кузнецов, В.Б. Кузин, И.В. Чечет, О.Ю. Чечет // Нижегородский медицинский журнал. - 2008. - № 3. -С. 145-148.
6. Чечет О.Ю. Влияние на процесс перекисного окисления белков новых производных 3-гидроксипиридина /О.Ю. Чечет, А.Л. Барсук, В.Б. Кузин // Современные технологии в медицине. - 2010. - № 2. - С. 22-25.
Подписано к печати 14.05.10. Формат 60х84'/16 Бумага писчая. Печать офсетная. Гарнитура «Тайме» Усл. печ. л. 1. Тираж 100 экз. Заказ 31.
Полиграфический участок НГМА 603005, Н. Новгород, ул. Алексеевская, 1
Оглавление диссертации Чечет, Олег Юрьевич :: 2010 :: Саранск
Список используемых сокращений
ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Механизмы свободнорадикального окисления
1.2. Механизм свободнорадикального окисления белков
1.3. Антиоксидантная система организма ■
1.4. Стресс и реакции свободнорадикального окисления
1.4.1. Общее понятие стресса
1.4.2. Стресс, изменение биохимических показателей и их связь с балансом про- и антиоксидантных систем организма
1.5. Возможности ингибирования реакций свободнорадикального окисления антиоксидантами
1.6. Основные характеристики производных пиридина с точки зрения антиоксидантных свойств
1.6.1. Характеристика пиридина
1.6.2. Характеристика производных 3-оксипиридина
1.6.3. Связь химической структуры производных 3-оксипиридина и их биологической активности
1.7. Лекарственные препараты - производные 3-оксипиридина
1.8. Клиническое применение препаратов 2-этил-6-метил-3-оксипи-ридина
1.9. Новые производные 3-оксипиридина
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
2.1. Основные этапы исследований
2.2. Схема эксперимента
2.3. Характеристика исследуемых соединений
2.4. Характеристика доз и пути введения исследуемых производных 3-оксипиридина •
2.5. Моделирование острого иммобилизационного стресса
2.6. Характеристика методов исследования
2.6.1. Методы изучения общетоксического действия
2.6.1.1. Метод изучения острой токсичности
2.6.1.2. Метод изучения общетоксического действия производных 3-оксипиридина в дозах 1% и 10% от LD50 на фоне иммобилизационного стресса
2.6.2. Метод определения интенсивности окислительной модификации белков
2.6.3. Метод определения содержания общего белка
2.6.4. Метод определения концентрации глюкозы в крови
2.6.5. Метод определения концентрации триглицеридов
2.6.6. Метод определения концентрации общего холестерина
2.6.7. Метод определения концентрации холестерина липопротеинов высокой и низкой плотности
2.6.8. Метод определения концентрации билирубина
2.6.9. Метод определения активности аланин аминотрансферазы
2.6.10. Метод определения активности аспартат аминотрансферазы
2.6.11. Методы статистической обработки полученных результатов
ГЛАВА 3. ИССЛЕДОВАНИЕ ОБЩЕТОКСИЧЕСКОГО ДЕЙСТВИЯ НОВЫХ ПРОИЗВОДНЫХ 3-ГИДРОКСИПИРИДИНА
3.1. Изучение острой токсичности производных 3 -гидроксипиридина
3.2. Изучение общетоксического действия производных 3-гидроксипи- 70 ридина в дозах 1% и 10% от LD50 на фоне иммобилизационного стресса
ГЛАВА 4. ИССЛЕДОВАНИЕ ПОКАЗАТЕЛЕЙ СВОБОДНОРА-ДИКАЛЬНОГО ОКИСЛЕНИЯ БЕЛКОВ И НЕКОТОРЫХ МЕТАБОЛИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ПРИ ВВЕДЕНИИ НОВЫХ ПРОИЗВОДНЫХ 3-ГИДРОКСИПИРИДИНА В УСЛОВИЯХ ИММОБИЛИЗАЦИИ
4.1. Исследование показателей свободнорадикального окисления белков
4.1.1. Исследование интенсивности окислительной модификации белков в условиях иммобилизационного стресса
4.1.2. Исследование интенсивности окислительной модификации белков при введении 3-оксипиридина оксалата в условиях иммобилизационного стресса
4.1.3. Исследование интенсивности окислительной модификации белков при введении 3-оксипиридина малоната в условиях иммобилизационного стресса
4.1.4. Исследование интенсивности окислительной модификации белков при введении 3-оксипиридина адипината в условиях иммобилизационного стресса
4.1.5. Исследование интенсивности окислительной модификации белков при введении 3-оксипиридина малеата в условиях иммобилизационного стресса
4.1.6. Исследование интенсивности окислительной модификации .белков при введении 3-оксипиридина гемисукцината в условиях иммобилизационного стресса
4.2. Исследование метаболических показателей
4.2.1. Исследование метаболических показателей в условиях иммоби- 96 лизационного стресса
4.2.2. Исследование метаболических показателей при введении 3оксипиридина оксалата в условиях иммобилизационного стресса
4.2.3. Исследование метаболических показателей при введении 3-оксипиридина малоната в условиях иммобилизационного стресса
4.2.4. Исследование метаболических показателей при введении 3-оксипиридина адипината в условиях иммобилизационного стресса
4.2.5. Исследование метаболических показателей при введении 3-оксипиридина малеата в условиях иммобилизационного стресса
4.2.6. Исследование метаболических показателей при введении 3-оксипиридина гемисукцината в условиях иммобилизационного стресса
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ.
ВЫВОДЫ.
Введение диссертации по теме "Фармакология, клиническая фармакология", Чечет, Олег Юрьевич, автореферат
Организм существует в аэробных условиях, и кислород является одним из активных соединений в тканях. Основной путь метаболизма кислорода сопряжен с его восстановлением по 4-х электронному пути с образованием воды и генерацией энергии. Также в клетках протекают окислительные реакции, в процессе которых атомы кислорода включаются в органические молекулы с образованием реакционно-способных соединений (Дубинина Е.Е., 2006).
Свободные радикалы образуются в организме в результате метаболизма растворенного в тканях кислорода, и образующиеся при этом его активные формы вызывают окисление мембранных липидов, белков, полисахаридов, нуклеиновых кислот (Зайчик А.Ш., Чурилов Л.П., 2005; Чеснокова Н.П. с со-авт., 2007).
Процесс свободнорадикального окисления белков, также как и процесс окисления липидов носит цепной характер. В реакциях переходных металлов с гемсодержащими белками продуцируются активные кислородные метаболиты (АКМ): О2-, Н02, Н2О2, -ОН, инициирующие цепной процесс с участием гемо-вого фрагмента белка. Воздействие активных форм кислорода (АФК) на белки приводит к нарушению их структуры, сшивке или дефрагментации, что инак-тивирует рецепторы и ферменты (Барабой В.А., Брехман И.И., 1992; Чеснокова Н.П. с соавт., 2007). Окислительная модификация под действием АФК затрагивает около 240 различных ферментов (Карли Ф., 1997; Ляхович В.В., Вавилин В.А., Зенков В.К., 2005; Чеснокова Н.П. с соавт., 2007). Таким образом, выраженные процессы перекисного окисления белков могут сопровождаться дестабилизацией как структурных, так и функциональных свойств организма в целом.
При окислительном стрессе патогенетически обоснованным является применение средств фармакологической коррекции процессов свободнорадикального окисления - экзогенных антиоксидантов. В последние годы в медицинской практике широкое использование для профилактики и Лечения различных патологических состояний получили препараты-антиоксиданты мекси-дол и эмоксипин (Дюмаев К.М. с соавт., 1995; Машковский М.Д., 2000). Эмок-сипин (3-окси-6-метил-2-этилпиридина хлорид) и мексидол (3-окси-6-метил-2-этилпиридина сукцинат) являются производными одного вещества - 3-гидроксипиридина (3-ОП), различающимися только кислотой в составе соли. Однако кислоты обусловливают различия в фармакологических свойствах данных препаратов, например, различия в антигипоксической активности (Лукьянова Л.Д., 1999). Представляется логичным поиск новых лекарственных средств среди других солей 3-гидроксипиридина.
Для оценки специфической антиоксидантной активности потенциальных лекарственных средств важным и необходимым является использование моделей окислительного стресса. Наиболее часто применяют модель иммобилизации животных, так как даже кратковременная иммобилизация (экспозиция, начиная с 30 минут) способна вызвать снижение ресурсов организма и возникновение выраженного окислительного стресса (Рудько Н.П., Давыдов В.В., 2001; Агаева Р.К., Фастова И.А., 2003; Кравцов В.И. с соавт., 2006; Герасимова Н.Г., Балашов В.П., Кругляков П.П., 2007).
В работе были использованы новые соединения 3-гидроксипиридина (3-ОП оксалат, 3-ОП малонат, 3-ОП адипинат, 3-ОП малеат, 3-ОП гемисукцинат), синтезированные в Институте биохимической физики имени Н. М. Эмануэля РАН и ГУ НИИ Фармакологии РАМН.
Цель исследования. Изучение общетоксического и антиокси-дантного действия на процесс свободнорадикального окисления белков, а также влияния на некоторые метаболические показатели новых производных 3-гидроксипиридина (3-ОП оксалата, 3-ОП малоната, 3-ОП адипината, 3-ОП ма-леата, 3-ОП гемисукцината) в эксперименте.
В соответствии с поставленной целью решались следующие задачи:
1. Исследовать общетоксическое действие (летальность, поведение, масса крыс и их внутренних органов) и определить условные эффективные дозы (1% и 10% от LD50) при иммобилизации и введении 3-ОП оксалата, 3-ОП малоната, 3-ОП адипината, 3-ОП малеата, 3-ОП гемисукцината.
2. Изучить показатели свободнорадикального окисления белков и некоторые метаболические показатели в сыворотке крови экспериментальных животных в условиях иммобилизационного стресса.
3. Исследовать показатели перекисного окисления белков в сыворотке крови экспериментальных животных при введении 3-ОП оксалата, 3-ОП малоната, 3-ОП адипината, 3-ОП малеата, 3-ОП гемисукцината на фоне иммобилизационного стресса.
4. Изучить некоторые метаболические показатели при введении 3-ОП оксалата, 3-ОП малоната, 3-ОП адипината, 3-ОП малеата, 3-ОП гемисукцината на фоне иммобилизационного стресса.
Научная новизна работы. Впервые проведено комплексное исследование показателей перекисного окисления белков в условиях иммобилизационного стресса. Установлено, что через 12 часов иммобилизации увеличивается интенсивность окислительной модификации белков в сыворотке крови экспериментальных животных.
Изучено содержание различных продуктов свободнорадикального окисления белков (алифатических альдегид- и кетон-динитрофенилгидразонов нейтрального и основного характера) в сыворотке крови экспериментальных животных при введении 3-ОП оксалата, 3-ОП малоната, 3-ОП адипината, 3-ОП малеата и 3-ОП гемисукцината в дозах 1% и 10% от LD50 на фоне иммобилизационного стресса. Выявлено, что наиболее выраженное антиоксидантное действие в отношении процесса перекисного окисления белков оказывают 3-ОП оксалат и 3-ОП адипинат в дозах 1% от LD50, а также 3-ОП гемисукцинат в дозе 10% от LD™.
Исследованы различные метаболические показатели в сыворотке крови экспериментальных животных при введении новых производных 3-ОП в дозах 1 % и 10% от LD50 на фоне иммобилизационного стресса. Доказано, что для каждого соединения характерен определенный спектр метаболических показателей, изменяющихся под его влиянием, который различается при введении изучаемых производных 3-ОП в условной минимальной и максимальной эффективной дозах.
Практическая ценность работы состоит в том, что полученные данные расширяют представления о спектре фармакологического действия производных 3-гидроксипиридина (3-ОП оксалата, 3-ОП малоната, 3-ОП адипината, 3-ОП малеата, 3-ОП гемисукцината) и являются экспериментальным обоснованием для дальнейшего изучения их в качестве перспективной группы для создания лекарственных средств с антиоксидантной активностью.
Основные положения, выносимые на защиту:
1. 12-часовая иммобилизация экспериментальных животных приводит к повышению в сыворотке крови экспериментальных животных интенсивности окислительной модификации белков, а также уровней общего и непрямого билирубина.
2. Большинство из изученных производных 3-ОП проявляет различной степени выраженности антиоксидантную активность. Наиболее выраженное антиоксидантное действие в отношении процесса перекисного окисления белков оказывают 3-ОП оксалат и 3-ОП адипинат в дозах 1% от LD50, а также 3-ОП гемисукцинат в дозе 10% от LD50.
3. Спектр изменяемых метаболических показателей и выраженность этих изменений зависят от особенностей химического строения, а также дозы исследуемых соединений.
Апробация работы. Основные результаты диссертации докладывались на XX съезде физиологического общества имени И.П. Павлова «Нейрофизиология», Москва, 2007 год; V Всемирном конгрессе по иммунопатологии и аллергии, V Европейском конгрессе по астме «Аллергология и иммунология», Москва, 2007 год; III съезде фармакологов России «Фармакология практическому здравоохранению», Санкт-Петербург, 2007 год.
Публикации. По теме диссертации имеется 6 публикаций, в том числе 4 - в изданиях, рекомендованных ВАК РФ.
Структура и объем диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследований, двух глав собственных исследований, обсуждения результатов исследований, выводов, практических рекомендаций, библиографического списка. Работа изложена на 171 страницах текста компьютерного набора, иллюстрирована 18 рисунками, 29 таблицами, 1 фотографией. Библиографический список содержит 307 названий работ, из них 163 отечественных и 144 зарубежных автора.
Заключение диссертационного исследования на тему "Влияние новых производных 3-гидроксипиридина на процесс свободнорадикального окисления белков"
выводы
1. Средняя летальная доза для мышей при однократном внутрибрюшин-ном введении 3-ОП оксалата, 3-ОП малеата и 3-ОП гемисукцината равна, соответственно, 410,53±11,55 мг/кг, 614,69±24,91 мг/кг и 420,64±16,75 мг/кг. Токсическое поражение внутренних органов демонстрируют в большей степени 3-ОП оксалат и 3-ОП гемисукцинат, наименьшее влияние на массу животных и их внутренних органов оказывает 3-ОП адипинат.
2. Иммобилизация экспериментальных животных в течение 12 часов приводит к увеличению интенсивности окислительной модификации белков, а также уровней общего и непрямого билирубина в сыворотке крови экспериментальных животных.
3. 3-оксипиридина оксалат в дозе 1% от LD50 снижает интенсивность окислительной модификации белков, уровень холестерина липопротеинов низкой плотности и активность аспартат аминотрансферазы, а также повышает уровни общего белка и холестерина липопротеинов высокой плотности в условиях иммобилизации. В дозе 10% от LD50 не оказывает существенного влияния на процесс перекисного окисления белков и исследованные метаболические показатели.
4. 3-оксипиридина малонат в дозе 1% от LD50 оказывает незначительное влияние на процесс свободнорадикального окисления белков и изученные метаболические показатели. В дозе 10% от LD50 снижает интенсивность окислительной модификации белков, в частности, содержание алифатических кетон-динитрофенилгидразонов основного характера, а также уровень прямого билирубина и активность аспартат аминотрансферазы в сыворотке крови экспериментальных животных в условиях иммобилизации.
5. 3-оксипиридина адипинат в дозе 1% от LD50 уменьшает интенсивность окислительной модификации белков, а также уровни глюкозы, прямого билирубина и активность аспартат аминотрансферазы; повышает уровень холестерина липопротеинов высокой плотности. В дозе 10% от LD50 вызывает несущественное изменение показателей перекисного окисления белков, снижая при этом уровень глюкозы и повышая содержание холестерина липопротеинов высокой плотности в сыворотке крови экспериментальных животных в условиях иммобилизации.
6. 3-оксипиридина малеат в обеих исследованных дозах не оказывает существенного влияния на процесс свободнорадикального окисления белков в условиях иммобилизации. В дозе 1% от LD50 снижает содержание прямого билирубина; в дозе 10% от LD50 - уменьшает уровни глюкозы, холестерина липопротеинов высокой плотности и непрямого билирубина.
7. 3-оксипиридина гемисукцинат в дозе 1% от LD50 обусловливает незначительное изменение показателей перекисного окисления белков, уменьшая при этом уровни общего холестерина, холестерина липопротеинов высокой плотности, общего, прямого и непрямого билирубина. В дозе 10% от LD50 снижает интенсивность окислительной модификации белков, а также уровни общего холестерина и непрямого билирубина в условиях иммобилизации.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
Из исследуемых соединений:
- 3-ОП оксалат и 3-ОП адипинат в дозах 1% от LD50, а также 3-ОП гемисукцинат в дозе 10% от LD5o могут быть рекомендованы для дальнейшего изучения их антиоксидантного действия;
- 3-ОП оксалат в дозе 1% от LD50 и 3-ОП гемисукцинат в обеих исследованных дозах - для исследования их гиполипидемического действия;
- 3-ОП адипинат в обеих исследованных дозах, а также 3-ОП малеат в дозе 10% от LD50 - для изучения их гипогликемического действия;
- 3-ОП оксалат и 3-ОП адипинат в дозах 1% от LD50, а также 3-ОП малонат в дозе 10% от LD50 - для исследования их цитопротекторного действия.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2010 года, Чечет, Олег Юрьевич
1. Абелев, Г.И. Основы иммунитета / Г.И. Абелев // Соросовский Образовательный журнал. 1996. - № 5 - С. 4-10.
2. Адо, А.Д. Патологическая физиология / Под ред. А.Д. Адо, М.А. Адо, В.И. Пыцкого и др. М.: Триада-Х, 2000. - 574 с.
3. Александровский, Ю.А. Применение мексидола при тревожных расстройствах / Ю.А. Александровский, А.С. Аведисова, Т.В. Серебрякова и др. // Конгресс «Человек и лекарство». М., 1997. - С. 242.
4. Альберте, Б. Молекулярная биология клетки / Б. Альберте, Д. Брей, Дж. Льюис и др. 2-е изд., пер.и доп. Т.1.- М.: Мир, 1994. - 517 с.
5. Арцукевич, А.Н. Биохимические аспекты жизнедеятельности биологических систем / А.Н. Арцукевич, А.Н. Мальцев, В.В. Зинчук. Сбор. науч. трудов съезда биохимиков Беларуссии. - Гродно. —2000. —С. 19—23.
6. Барабой, В.А. Перекисное окисление и радиация / В.А. Барабой, В.Э. Орёл, И.Н. Карнаух. К.: Наукова думка, 1991. - 256 с.
7. Барабой, В.А. Перекисное окисление и стресс / В.А. Барабой, И.И. Брехман, В.Г. Голотин, Ю.Б. Кудряшов. СПб.: Наука,1992. - 148 с.
8. Барышников, А.Ю. Программированная клеточная смерть (апоптоз) / А.Ю. Барышников, Ю.В. Шишкин // Российский онкологический журнал. -1996. -№ 1.-С. 58.
9. Бодров, В.А. Информационный стресс / В.А. Бодров. — М.: ПЕР СЭ, 2000.-352 с.
10. Болдырев, А.А. Введение в биохимию мембран / А.А. Болдырев. -М.: Высшая школа, 1986. 112 с.
11. Болдырев, А.А. Окислительный стресс и мозг / А.А. Болдырев // Со-росовский образовательный журнал. 2001 - Т. 7, № 4. - С. 21-28.
12. Бояринов, Г.А. Корригирующее влияние гутимина при гипоксии / Г.А. Бояринов, А.С. Гордецов // Фармакология и токсикология. 1986. - Т. 49, №2.-С. 14-17.
13. Бурлакова, Е.Б. Биоантиоксиданты вчера, сегодня, завтра / Е.Ю. Бур-лакова Сборник трудов V Международной конференции "Биоантиоксидант". -М., 1998. - С. 26-29.
14. Бурлакова, Е.Б. Влияние мембранотропных веществ на состав, структуру и функциональную активность мембран синаптического комплекса / Е.Б. Бурлакова, А.П. Хохлов // Биологические мембраны. 1984. - Т. 1, № 2. - С. 117-123.
15. Быстрова, Н.А. Иммуномодулирующее действие витаминов А и Е / Н.А. Быстрова // VII Российский национальный конгресс "Человек и лекарство": Тез. докладов, Москва, 10-14 апреля 2000. -М., 2000. С. 394. ■
16. Виноградов, В.В. Стресс и патология / В.В. Виноградов. — Минск: Белорусская наука, 2007. 351 с.
17. Виноградов, В.М. Антигипоксанты важный шаг на пути разработки фармакологии энергетического обмена / В.М. Виноградов, А.В. Смирнов // Антигипоксанты и актопротекторы: итоги и перспективы. СПб, 1994; "Вып. I. - С. 23.
18. Витриченко, Е.Е. Гемодинамические и гематологические корреляты экспериментально эмоционального стресса: автореф. дис. . канд. биол. наук / Е.Е. Витриченко. Харьков, 1987. - 16с.
19. Владимиров, Ю.А. Свободные радикалы в живых системах / Ю.А. Владимиров, О.А. Азизова, А.И. Деев и др. // Итоги науки и техники (ВИНИТИ) АН СССР. М., 1992. Т. 29. - С. 3-250.
20. Владимиров, Ю.А. Свободные радикалы и антиоксиданты / Ю.А. Владимиров // Вестник РАМН 1998. - № 7. - С. 43-51.
21. Волков, И.К. Антиоксидантная терапия при хронических заболеваниях легких у детей / И.К. Волков // Consilium medicum. 2007. - Т. 9; № 1. - С. 15-19.
22. Волкова, Ю.В. Влияние иммобилизационного стресса на индуцированное свободно-радикальное окисление в субклеточных фракциях мозга крыс разного возраста / Ю.В.Волкова, В.В. Давыдов // Проблемы старения и долголетия 2008 - Т. 17, № 3 - С. 278-286.
23. Вольский, Н.Н. Антиоксидантный эффект дегидроэпиандростерона сульфата и его влияние на ТЫ/Т112-баланс в опытах in vivo / Н.Н. Вольский, О.Т. Кудаева, О.М. Перминова и др. // Иммунология. — 2007. № 3. — С. 134.
24. Вонг, Ф. Влияние перекиси водорода на активность и структуру ша-перона Gro EL. Escherichia coli / Ф.Вонг, В.Б. Оу, Ш. Ли, Х.М. Жиу // Биохимия.- 2002. Т. 67, № 5. - С. 656-662.
25. Воробьёва, О.В. Стресс и депрессия / О.В. Воробьёва // Психиатрия и психофармакология. 2007. - Т. 9, № 4. - С. 4-7.
26. Воробьёва, О.В. Стресс и расстройство адаптации / О.В. Воробьёва // РМЖ. 2009. - Т. 17, № 11. — С. 789-793.
27. Воронина, Т.А. Антиоксидант мексидол. Основные нейропсихотроп-ные эффекты и механизм действия / Т.А. Воронина // Психофармакология и биологическая наркология. 2001. - № 1. - С. 2-11.
28. Воронина, Т.А. Гипоксия и память. Особенность эффектов и применения ноотропных препаратов / Т.А. Воронина // Вестник РАМН. 2000. - № 9.- С. 27-34.
29. Вьюшина, А.В. Перекисное окисление белков в сыворотке крови у пренатально стрессированных крыс / А.В. Вьюшина, И.А Герасимова, М.А. Флёров //БЭБиМ. -2004. Т. 138, № 7. - С. 41-44.
30. Гамалей, И.А. Механизм гиперполяразации плазматической мембраны макрофагов и астроцитов при активации / И.А. Гамалей, К.М. Кирпичников, A.M. Ищенко и др. // Цитология. 1998. - Т. 40, № 8-9. - С. 773-778.
31. Гамалей, И.А. Перекись водорода как сигнальная молекула / И.А. Гамалей, И.В. Клюбин // Цитология. 1996. - Т. 38, № 12. - С. 1233-1247.
32. Гацура, В.В. Кардиопротекторные свойства некоторых синтетических антиоксидантов / В.В. Гацура, Л.Д. Смирнов // Химико-фармацевтический журнал. 1992. - № 11-12. - С. 10-15.
33. Гацура, В.В. Противоишемический кардиопротекторный эффект мексидола /В.В. Гацура, В.В. Пичугин, Л.Н, Сернов и др. // Кардиология. -1996.-№ 11.-С. 59-62.
34. Герасимова, Н.Г. Исследование влияния стресса и метаболических средств на ультраструктуру миокарда мышей / Н.Г. Герасимова, В.П. Балашов, П.П. Кругляков // Морфологические ведомости. Москва-Берлин. - 2007. - № 12. - С.44-47.
35. Германова, Э.Л. Нарушения энергетического обмена при гипоксии и их коррекция с помощью сукцинатсодержащего соединения проксипин : авто-реф. дис. . канд. биол. наук : / Э.Л. Германова. М., 2008. - 17 с.
36. Голиков, А.П. Мексикор в комплексном лечении и профилактике кризов у больных гипертонической болезнью / А.П. Голиков // Клиническое исследование лекарственных средств в России. 2003 - № 3-4. - С. 6-8.
37. Гончарова, Н.Д. Стресс, старение и надежность антиоксидантной ферментной защиты / Н.Д. Гончарова, В.Ю. Маренин // Вестник Российской военно-медицинской академии. 2008. - № 3 (23). - Прил. 2, Ч. II. - С. 480-481.
38. Государственный реестр лекарственных средств. Официальное издание по состоянию на 1 сентября 2004 г. в 2-х т. - М., 2004. - 1791 с.
39. Давыдова, И.А. Результаты клинического исследования ноотропного компонента действия Мексидола / И.А. Давыдова, Е.С. Телешова, С.А. Сюня-ков. Материалы симпозиума «Медицина и охрана здоровья. Медтехника и аптека». - Тюмень, 1997. - С. 166-167.
40. Девяткина, Т.А. Влияние мексидола на развитие экспериментального перекисного атероартериосклероза / Т.А. Девяткина, Э.Г. Коваленко, Л.Д. Смирнов // Экспериментальная и клиническая фармакология. — 1993. № 1. - С. 33-35.
41. Джоуль, Дж. Основы химии гетероциклических соединений / Дж. Джоуль, Г. Смит. пер. с англ., М., 1975. - 80 с.
42. Дубинина, Е.Е. Окислительная модификация белков / Е.Е. Дубинина, И.В. Шугалей // Успехи современной биологии. 1993. - Т. 113, № 1. - С. 71-81.
43. Дубинина, Е.Е. Окислительная модификация белков сыворотки крови человека. Методы ее определения / Е.Е. Дубинина, С.О. Бурмистров, Д.А. Ходов, И.Е. Поротов // Вопросы медицинской химии. 1995. - Т. 41, № 1. - С. 24-26.
44. Дубинина, Е.Е. Окислительная модификация белков: окисление триптофана и образование битирозина в очищенных белках с использованием системы Фентона / Е.Е. Дубинина, С.В. Гавровская, Е.В. Кузьмин и др. // Биохимия. 2002. - Т. 67. - С. 413- 421.
45. Дубинина, Е.Е. Продукты метаболизма кислорода в функциональной активности клеток (жизнь и смерть, созидание и разрушение). Физиологические и клинико-биохимические аспекты / Е.Е. Дубинина. СПб.: Медицинская Пресса, 2006. - 400 с.
46. Дюмаев, К.М. Антиоксиданты в профилактике и терапии патологий ЦНС / К.М. Дюмаев, Т.А. Воронина, Л.Д. Смирнов. М.; 1995. - С. 272.
47. Зайцев, В.Г. Связь между химическим строением и мишенью действия как основа классификации антиоксидантов прямого действия / В.Г. Зайцев, О.В. Островский, В.И. Закревский // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2003. - № 4. - С. 66-70.
48. Зайчик, А.Ш. Общая патофизиология (с основами иммунопатологии) / А.Ш. Зайчик, Л.П. Чурилов. СПб: ЭЛБИ-СПб, 2005. - 656 с.
49. Зайчик, А.Ш. Основы общей патологии. Часть 2. Основы патохимии / А.Ш. Зайчик, Л.П. Чурилов. СПб: ЭЛБИ-СПб, 2000. - С. 176-177.
50. Зарубина, И.В. Принципы фармакотерапии гипоксических состояний антигипоксантами быстродействующими корректорами метаболизма / И.В. Зарубина // Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. -2002.-Т. 1, № 1. - С. 19-28.
51. Зенков, Н.К. Окислительный стресс: биохимические и патофизиологические аспекты / Н.К. Зенков, В.З. Ланкин, Е.Б. Меныцикова. М.: МАИК «Наука/Интерпериодика». - 2001. - 343 с.
52. Зенсков, Н.К. Внутриклеточный окислительный стресс и апоптоз / Н.К. Зенсков, Е.Б. Меныцикова, Н.Н. Вольский и др. // Успехи современной биологии. 1999. - №5. - С. 440.
53. Зиновьев, Ю.В. Резистентность к гипоксии / Ю.В. Зиновьев, С.А. Козлов, О.А. Савельев. Красноярск: Издательство Красноярского университета, 1988,- 176 с.
54. Зорькина, А.В. Антиокислительные и гиполипидемические свойства мексидола и эмоксипина при длительном иммобилизационном стрессе / А.В.
55. Зорькина, Я.В. Костина, В.И. Инчина // Химико-фармацевтический журнал. -1998.-№5.-С. 3-5.
56. Иваницкий, Ю.Ю. Янтарная кислота в системе средств метаболической коррекции функционального состояния и резистентности организма / Ю.Ю. Иваницкий, А.И. Головко, Г.А. Софронов //. Санкт-Петербург, 1998. -173 с.
57. Иванов, Ю.В. Антиоксиданты в лечении острого панкреатита / Ю.В.Иванов // Вестник новых медицинских технологий. 1999. - № 3-4. — С. 9597.
58. Игонин, А.А. Опыт применения мексидола при лечении больных алкоголизмом / А.А. Игонин, А.И. Кривенков. IV Российский национальный конгресс "Человек и лекарство", Тез. докладов, Москва, 12-16 апреля. - М., 1997.-С. 263.
59. Ингрэм, Д. Электронный парамагнитный резонанс в биологии / Д. Ингрэм. М: Мир, 1972. - 296 с.
60. Капелько, В.И. Активные формы кислорода антиоксиданты и профилактика заболеваний сердца / В.И. Капелько // РМЖ. 2003. - Т. 11, № 21. - С. 1185-1188.
61. Карли, Ф. Метаболический ответ на острый стресс / Ф Карли // Актуальные проблемы анестезиологии-реаниматологии. Под ред. проф. Э.В. Недаш-ковского. Архангельск, 1997. - С. 31-34.
62. Карпикова, Н.И. Применение препарата «Мексидол» для лечения больных с заболеваниями сосудов головного мозга / Н.И. Карпикова, А.А. Пе-терюхина. Мексидол в клинике и эксперименте (Приложение 1 к журналу
63. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины» за 2006 год). М.: Издательство РАМН, 2006. - С. 32-33.
64. Карцев, В.Г. Первая международная конференция «Химия и биологическая активность азотистых гетероциклов и алкалоидов» / В.Г. Карцев // Химико-фармацевтический журнал. 2002. - № 4. - С. 54-55.
65. Кашичкина, О.В. Терапевтическая эффективность Мексидола при купировании алкогольного абстинентного синдрома / О.В. Кашичкина, Н.А. Кригер // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2006. - Прил. 1.-С. 167-171.
66. Кишкун А.А. Руководство по лабораторным методам диагностики /А.А. Кишкун. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. - 800 с.
67. Клебанов, Г.И. Антиоксидантная активность сыворотки крови / Г.И. Клебанов, Ю.О. Теселкин, И.В. Бабенкова // Вестник РАМН. 1999. - № 2. - С. 15-22.
68. Кожевников, Ю.Н. О перекисном окислении липидов в норме и патологии (обзор) / Ю.Н. Кожевников // Вопросы мед. химии. 1985. - № 5. - С. 2-7.
69. Козлова, Н.М. Окисление мембранных белков и изменение поверхностных свойств эритроцитов / Н.М. Козлова, Е.И. Слобожанина, Е.А. Черниц-кий // Биофизика. 1998. - Т. 43, вып. 3. - С. 480-483.
70. Кондрашова, М.Н. Выясненные и наметившиеся вопросы на пути исследования регуляции физиологического состояния янтарной кислоты / М.Н. Кондрашова // Терапевтическое действие янтарной кислоты. Пущино, 1976. -С. 8-30.
71. Конторщикова, К.Н. Перекисное окисление липидов в норме и патологии / К.Н. Конторщиков. Н.Новгород, 2000. - 24 с.
72. Костюченко, А.П. Применение современных антигипоксантов в практике неотложной кардиологии / А.П. Костюченко // Aqua vitae. 1998. - № l.-C. 42-43.
73. Кравцов, В.И. Моделирование травматической болезни в эксперименте на животных / В.И. Кравцов, В.А. Рыков, Б.Л. Доровский, И.В. Загород-ников // Медицина в Кузбассе. 2006 - Спецвыпуск № 5. - С. 62-65.
74. Кротенко, Н.В. Нарушения биохимических показателей перефериче-ской крови у пациентов с рассеянным склерозом / Н.В. Кротенко, Н.М. Алифи-рова, С.А. Иванова // Бюллетень сибирской медицины. — 2008. Прил. 1. - С. 238-244.
75. Кулагин, К.Н. Сравнительная оценка антиоксидантной активности некоторых производных 3-ОП на модели черепно-мозговой травмы / К.Н. Кулагин, В.Е. Новикова, Л.Д. Смирнов // Сбор. тез. 2-го Съезда Росс. науч. общ. фармакологов. М., 2003. - С. 285.
76. Курбанов, А.И. Антигипоксическая активность новых производных 3-оксипиридина / А.И. Курбанов, Н.Н. Самойлова, Е.Н. Станиенко // Психофармакология и биологическая наркология. 2006. - Т. 6, № 1. - С. 1164-1170.
77. Кучеряну, В.Г. Мексидол усиливает противопаркинсоническое действие L-дофа на модели МФТП-индуцированного паркинсонизма / В.Г. Кучеряну // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2001. - Т. 64, № 1. — С. 22-25.
78. Лазебник, П.Е. Место эмоксипина в комплексной терапии острого осложненного инфаркта миокарда / П.Е. Лазебник, А.И. Фришберг, В.Н. Дроздов // Кардиология. 1994. - № 2. - С. 122-126.
79. Ленинджер, А.Л. Основы биохимии / А.Л. Ленинджер. М.: Мир, 1985.- 1057 с.
80. Лукьянова, Л.Д. Новые подходы к созданию антигипоксантов метаболического действия / Л.Д. Лукьянова // Вестник Росс. Аккад. Мед. Наук. -1999. -№3. С. 18-25.
81. Лукьянчук, В.Д. Антигипоксанты: состояние и перспективы / В.Д. Лукьянчук, Л.В. Савченкова // Экспериментальная и клиническая фармакология. 1998. - № 4. - С. 72-79.
82. Ляхович, В.В. Активированные кислородные метаболиты в моноок-сидазных реакциях / В.В. Ляхович, В.А. Вавилин, В.К. Зенков // Бюллетень СО РАМН. -2005. -№4(118). -С. 7-12
83. Маевский, Е.И. Фармакологическая коррекция гипоксических состояний / Е.И. Маевский, Е.В. Гришина, М.С. Окон, и др. М.: НИИ фармакологии АМН СССР, 1989. - С. 80-82.
84. Мамонтова, Е.В. Влияние иммобилизационного стресса и а- токоферола на процесс перекисного окисления липидов у молодых самцов белых мышей / Е.В. Мамонтова, Д.Л. Тёплый // Современные наукоемкие технологии. -2006.-№2.-С. 38.
85. Машковский, М.Д. Лекарственные средства / М.Д. Машковский. -М.: ООО «Издательство Новая Волна», 2000. 608 с.
86. Маянский, А.Н. Клинические аспекты фагоцитоза / А.Н. Маянский, О.Н. Пикуза. Казань: Магариф, 1993.- 192 с.
87. Маянский, А.Н. Лекции по иммунологии / А.Н. Маянский. -Н.Новгород, Издательство НГМА, 2003. 272 с.
88. Меерсон, Ф.З. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим нагрузкам / Ф.З. Меерсон, М.Г. Пщенникова. М.: Медицина, 1988. - 256 с.
89. Метелица, Д.И. Активация кислорода ферментными системами / Д.И. Метелица. М.: Наука, 1982. - 254 с.
90. Миронов, Н.В. Применение препарата Мексидол в комплексном лечении больных с ишемическим инсультом в восстановительном периоде / Н.В. Миронов, В.В. Суднева, И.И. Горяйнова // Кремлевская медицина. 2001. -№ 2. - С. 27-29.
91. Незнамов, Г.Г. Клинико-фармакологическое обоснование комбинированной психофармакологии больных с невротическими и неврозоподобными расстройствами: Автореф. дис.докт. мед. наук /Г.Г. Незнамов. М., 1990. -36 с.
92. Оковитый, С.В. Антигипоксанты / С.В. Оковитый, А.В. Смирнов // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2001. - № 3. - С. 76-80.
93. Осипов, А.Н. Активные формы кислорода и их роль в организме / А.Н. Осипова, О.А. Азизова, Ю.В. Владимиров // Успехи.биол.химии. 1990. -Т. 31.-С. 180-208.
94. Парфенов, Э.А. Успехи и перспективы создания лекарственных препаратов на основе аскорбиновой кислоты / Э.А. Парфёнов, Л.Д. Смирнов // Химико-фармацевтический журнал. — 1992. №9-10. — С. 4-17.
95. Пат. №2091388 РФ. Способ получения стероидных эфиров / В.А. Андрюшина, Т.С. Савинова, К.Г. Скрябин; Заявлено 28.06.1996; Опубликовано 27.09.1997, (Бюлл.изобр. № 27).
96. Пескин А.В. Взаимодействие активного кислорода с ДНК / А.В. Пескин // Биохимия. 1997.- Т. 62. - С. 1571-1578.
97. Пескин, А.В. Взаимодействие активного кислорода с ДНК / А.В. Пескин // Биохимия,- 1997. №62. - С1571-1578.
98. Погорелый, В.Е. Изучение действия эмоксипина, лития оксибути-рата и пикамилона на кровообращение ишемизированного мозга / В.Е. Погорелый, М.Д. Гаевый // Экспериментальная и клиническая фармакология. — 1999. -№6. С. 26-28.
99. Погорелый, В.Е. Противоишемические эффекты производных 3-оксипиридина при цереброваскулярной патологии / Е.В. Погорелый, А.В. Арльт, М.Д. Гаевый и др. // Экспериментальная и клиническая фармакология. — 1999. №5.-С. 15-17
100. Полумисков, В.Ю. Кардиопротекторы мексикор и эмоксипин при лечении ИБС и гипертонического криза / В.Ю. Полумисков, А.П. Голиков, В.П. Михин и др. // Рязанский медицинский вестник. 2004. - №11 (161). - С. 14-18.
101. Пошивалов, В.П. Этологический атлас для фармакологических исследований на грызунах (мыши, крысы) / В.П. Пошивалов: Рукопись, деп. в ВИНИТИ, 26.07.78. N& 3164-78 деп.
102. Рудько, Н.П. Активность редуктаз микросом печении взрослых и старых крыс при иммобилизационном стрессе / Н. П. Рудько, В. В. Давыдов // Вопросы медицинской химии. 2001. - Том 47,№ 5. - С. 506-510.
103. Рудько, Н.П. Редуктазная активность микросом печени'при стрессе у взрослых и старых крыс: Автореф. дис. к-та биол. наук: 03.00.04 / Н.П. Рудько. Харьков, 2002. - 19 с.
104. Рябов, Г.А. Активированные формы кислорода и их роль в некоторых патологических состояниях / Г.А. Рябов, И.Н. Палечник, Ю.М. Азизов // Анестезиология и реанимация. 1991. - № 1. - С. 63-69.
105. Саенко, Ю. В. Изучение органоспецифичных механизмов оксида-тивного стресса: Автореф. дис. к-та биол. наук: 03.00.13, 14.00.25 / Ю.В. Саенко. Ульяновск, 2005. - 20 с. ^
106. Саприн, А.Н. Окислительный стресс и его роль в процессах апопто-за и развития патологических процессов / А.Н. Саприн, Е.В. Калинина // Успехи биол. химии. 1999. - Т. 39, № 2. - С. 289-326.
107. Сариев, А.К. Взаимосвязь глюкуроноконъюгации мексидола и особенностей его терапевтического действия у больных с органическим поражением ЦНС / А.К. Сариев, И.А. Давыдов, Г.Г. Незнамов и др. // Эксп. и клин, фармакология. 2001.- № 3.- С. 17-21.
108. Селье, Г. На уровне целого организма / Г. Селье. М: Наука, 1972.122 с.
109. Селье, Г. Очерки об адаптационном синдроме / Г. Селье. М.: Мед-гиз, 1960.-275 с.
110. Селье, Г. Стресс без дистресса / Г. Селье. М.: Прогресс, 1979.123 с.
111. Семиголовский, Н.Ю. Применение антигипоксантов в острый период инфаркта миокарда / Н.Ю. Семиголовский // Анестезиология и реаниматология. 1998. - № 2. - С. 56-59.
112. Семиголовский, Н.Ю. Сравнительная оценка эффективности 10 ан-тигипоксических средств в остром периоде инфаркта миокарда / Н.Ю. Семиголовский, С.В. Оболенский, М.П. Рыбкин и др. // Международные медицинские обзоры. 1994. - Т. 2, № 5. - С. 334-338.
113. Сергеева, Т.В. Модификация химиолучевого лечения злокачественных новообразований препаратами антиоксидантного действия: автореф. дис. . канд. биол. Наук / Т.В. Сергеева. Н.Новгород - 1999. - 24 с.
114. Сернов, JI.H. Элементы экспериментальной фармакологии / JI.H. Сернов, В.В. Гацура. М.: Всерос. научн. центр по безопасности биологически активных веществ, 2000. - 552с.
115. Сизаева, В.Э. Зависимость актопротекторной активности некоторых производных 3-оксипиридина от их химической структуры / В.Э. Сизаева. -Сборник тезисов 2-ого съезда Российского научного общества фармакологов. М.: 2003. -. 167 с.
116. Сипров, А.В. Изучение влияния мексидола на гематотоксичность, противоопухолевую и антиметастатическую эффективность циклофосфана /
117. А.В. Сипров, В.И. Инчина, А.С. Кинзирский, Ю.А. Кинзирская // Вопросы онкологии. 2007. - Т. 53, № 6. - С. 711-714.
118. Скулачев, В.П. Кислород в живой клетке: добро и зло / В.П. Скула-чёв // Природа. 1997. - № 11. - С. 26—35.
119. Скулачев, В.П. Явления запрограммированной смерти. Митохондрии, клетки и органы: роль активных форм кислорода / В.П. Скулачёв // Соро-совский Образовательный журнал. — 2001. Т. 7, № 6. — С. 4-10.
120. Смирнов, А.В. Антигипоксанты в неотложной медицине / А.В. Смирнов, Б.И. Криворучко // Анестезиология и реаниматология. 1998. - № 2. -С. 50-55.
121. Смирнов, Л.Д. Антиоксиданты гетероароматического ряда. Структура, активность, медицинское применение / Л.Д. Смирнов. Сб. тез. 2-ого Съезда Всероссийского научного общества фармакологов. - М.: 2003. - С. 171.
122. Смирнов, Л.Д. Модуляция иммунного ответа антиоксидантами / И.Н. Смирнова, B.C. Сускова // Химико-фармацевтический журнал 1989. № 7. -С. 773-784.
123. Смирнова, И.Н. Хронические церебро-васкулярные заболевания: нарушение перекисного окисления липидов и возможности их фармакологической коррекции: Автореф. дис. канд. мед. наук / И.Н. Смирнова. — М.: 2003.I19 с.
124. Соколовский, В.В. Тиолдисульфидное соотношение крови как показатель состояния неспецифической резистентности организма /. В.В. Соколовский. — Санкт-Петербург, 1996. 31 с.
125. Стратиенко, Е.Н. Изучение антигипоксической активности новых производных 3-оксипиридина на модели острой гипоксии с гиперкапнией / Е.Н. Стратиенко, Н.Н. Самойлов, Н.П. Катунина // Вюник ВНМУ. 2007. - Т. 11; № 2/2. - С. 807-808.
126. Судаков, К.В. Индивидуальная устойчивость к эмоциональному стрессу / К.В. Судаков. М.: Горизонт, 1998. - 267 с.
127. Судаков, К.В. Психоэмоциональный стресс: профилактика и реабилитация / К.В. Судаков // Терапевтический архив. 1997.- № 1. - С. 70.
128. Суслина, З.А. Оценка фармакологических эффектов антиоксиданта мексидола у больных с сосудистыми заболеваниями головного мозга / З.А. Суслина, И.Н. Смирнова, Т.Н. Фёдорова и др. Сб. тез. 2-го Съезда Рос. науч. общ. фармакологов. - М., 2003. - С. 209.
129. Утешев, Б.С. Иммуномодулирующее действие препаратов витаминов А и Е при глубоком локальном охлаждении / Б.С. Утешев, И.Л. Бровкина, Н.А. Быстрова и др. // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2001. -№3.-С. 56-60.
130. Федин, А.И. Оксидантный стресс и применение антиоксидантов в неврологии / А.И. Федин // Атмосфера. Нервные болезни. 2002. - № 1. - С. 1518.
131. Федорова, Т.Н. Применение хемилюминесцентного анализа для сравнительной оценки антиоксидантной активности некоторых фармакологических веществ / Т.Н. Фёдорова // Эксперим. и клин, фармакология. 2003. - Т. 66, №5.-С. 56-58.
132. Фрейдлин, Т.Н. Алифатические дикарбоновые кислоты / Т.Н. Фрейдлин. М., Химия, 1978. - 264 с.
133. Цыпин, А.Б. Влияние производных 3-оксипиридина на резистентность клеток крови к механической травме / А.Б. Цыпин, Л.Д. Смирнов, P.M. Кургинян // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 1978. -Т. 5.-С. 22-24.
134. Чеснокова, Н.П. Возможности эффективного использования антиоксидантов а антигипоксантов в экспериментальной и клинической медицине /
135. Н.П. Чеснокова, Е.В. Понукалина, М.Н. Бизенкова и др. // Успехи современного естествознания. 2006. - № 8. - С. 18-25.
136. Чеснокова, Н.П. Механизмы структурной и функциональной дезорганизации биосистем под влиянием свободных радикалов / Н.П. Чеснокова, Е.В. Понукалина, М.Н. Бизенкова // Фундаментальные исследования. 2007. -№4.-С. 21-31.
137. Чечет, И.В. Исследование антиоксидантного действия новых производных 3-гидроксипиридина: Автореф. дис. . канд. биол. наук / И.В. Чечет.- Н.Новгород, 2009. 20 с.
138. Юматов, Е.А. Информационные системы оценки эмоционального стресса / Е.А. Юматов, М.Н. Крамов, А.Б. Набродов // Технология живых сис- i тем. 2007. - Т. 4, № 4. - С. 22.
139. Яснецов, В.В. Влияние ноотропов на импульсную активность нейронов коры большого мозга / В.В. Яснецов, В.А. Правдивцева, И.Н. Крылова // Экспериментальная и клиническая фармакология. — 2001. № 6. — С. 3-6.
140. Ager, A. Differential effects of hydrogen peroxide on induces of endothelial cell function / A. Ager, G.L. Gordon // J. Exp. Med. 1984. - Vol. 159, № 2. -P. 592-603.
141. Aikens, J. Perhydroxyl radical (HOO.) initiated lipid peroxidation. The role of fatty acid hydroperoxides / J. Aikens, T.A. Dix // J Biol Chem. 1991 - № 266(23) - P. 15091-15098.
142. Aller, M.A. Plasma redox status is impaired in the portacaval shunted rat- the risk of the reduced antioxidant ability / M.F. Aller, M.I. Garsia-Fernandes, A. Sanchez-Patan // Comp Hepatol. 2008. - Vol. 5, № 7. - P. 1.
143. Altamura, S. Iron toxicity in diseases of aging: Alzheimer's disease, Parkinson's disease and atherosclerosis / S. Altamura, M.U. Muckenthaler // J Alzhei-mers Dis. 2009. - № 16(4). - P. 879-895.
144. Armentero, M.T. Dopamine receptor agonists mediate neuroprotection in malonate-induced striatal lesion in the rat / M.T. Armentero, R. Fancellu, G. Nap-pi, F. Blandini // Exp Neurol. 2002. - № 178(2). - P. 301-305.
145. Aust, S.D. Free radicals in toxicology / S. D. Aust, C. F. Chignell, Т. M. Bray et al. // Toxycol. Appl. Pharmacol. 1993. - Vol. 120. - P. 168-178.
146. Azizova, O.A. Oxidative modification of fibrinogen inhibits its transformation into fibrin under the effect of thrombin / O.A. Azizova, A.P. Piryazev, A.V. Aseychev, A.G. Shvachko // Bull Exp Biol Med. 2009. - № 147(2). - P. 201203.
147. Basini, G. Reactive oxygen species and anti-oxidant defences in swine follicular fluids /G. Basini, B. Simona, S.E. Santini, F. Grasselli // Reprod Fertil Dev. 2008. - Vol. 20(2). - P. 269-274.
148. Bast, A. Oxidants and antioxidants: state of the art / A. Bast, G.R. Hae-nen, C.J. Doelman // Am О Med. 1991. - Vol. 91(3C). - P. 2S-13S.
149. Bauer, V. Reactive oxygen species as mediators of tissue protection and injury / V. Bauer, F. Bauer // Gen. Physiol. Biophys. 1999. - Vol. 18. - P. 7-14.
150. Ben-Shachar, D. Dopamine neurotoxicity: inhibition of mitochondrial respiration / D. Ben-Shachar, R. Zuk, Y. Glinka // J Neurochem. 1995. - Vol. 64(2).-P. 718-723.
151. Benzi, G. Are reactive oxygen species involved in Alzheimer's disease? / G. Benzi, N. Morreti //Neurobiol. Aging. 1995. - Vol. 16. - P. 661-674.
152. Bhuyan, K.C. Regulation of hydrogen peroxide in eye humors. Effect of 3-amino-lH-l,2,4-triazole on catalase and glutathione peroxidase of rabbit eye / K.C. Bhuyan, D.K. Bhuyan // Biochim Biophys Acta. 1977. - № 497(3) - P. 641-651.
153. Bielski, B.H. Reactivity of hypervalent iron with biological compounds / B.H. Bielski // Ann Neurol. 1992. - № 32 (Suppl.). - S. 28-32.
154. Blumberg, J.B. An update: vitamin E supplementation and heart disease / J.B. Blumberg // Nutr Clin Care. 2002 - № 5(2). - P. 50-55.
155. Bogdanets, L.I. Acerbin for treatment of indurative cellulite in patients with venous trophic ulcers / L.I. Bogdanets, S.S. Berezina, A.I. Kirienko // Angiol Sosud Khir. 2007. - № 13(4). - P. 93-96.
156. Brewer, G.J. A brand new mechanism for copper toxicity / G.J. Brewer // J Hepatol. 2007. - № 47(4). - P. 621-622.
157. Brewer, G.J. Iron and copper toxicity in diseases of aging, particularly atherosclerosis and Alzheimer's disease / G.J. Brewer // Exp Biol Med (Maywood). -2007. № 232(2). - P. 323-335.
158. Burke, T.M. Hydrogen peroxide elicits pulmonary arterial relaxation and guanylate cyclase activation / T.M. Burke, M.S. Wolin // Am. J. Physiol. 1987. -Vol. 252, № 4 (Pt 2). - P. H721-H732.
159. Burkitt, M.J. Hydroxyl radical formation from Cu(II)-trolbx mixtures: insights into the pro-oxidant properties of alpha-tocopherol / M.J. Burkitt, L. Milne // FEBS Lett. 1996.-№379(1).-P. 51-54.
160. Ceron, J.J. The effects of different anticoagulants on routine canine plasma biochemistry / J.J. Ceron, S. Martinez-Subiela, C. Hennemann, F. Tecles // Vet J. 2004. - № 167(3).-P. 294-301.
161. Chandel, N.S. Cellular oxygen sensing by mitochondria: old questions, new insight / N.S. Chandel, P.T. Schumacker // Appl Physiol. 2000. - № 88(5). - P. 1880-1889.
162. Chebotar' N.A. Effect of stress (immobilization) on embryo'toxic and teratogenic effect of 2,4,5-trichlorophenoxyacetic acid and its derivatives / N.A. Chebotar', L.A. Grebenik, A.I. Kirilenko // Arkh Anat Gistol Embriol. - 1978. - № 75(8).-P. 30-36.
163. Choi, J.H. Brain synaptosomal aging: free radicals and membrane fluidity / J.H. Choi, B.P. Yu // Free Radical Biol Med. 1995. - Vol. 18. - P. 193-200.
164. Commoner, B. Light-induced free radicals in fmn and flavoprotein enzymes / B. Commoner, B.B. Lippincott // Proc Natl Acad Sci USA.- 1958. № 44(11).-P. 1110-1116.
165. Dagenais, G.R. Beta-carotene, vitamin C, and vitamin E and cardiovascular diseases / G.R. Dagenais, R. Marchioli, S. Yusuf et al. // Curr Cardiol Rep. -2000. Vol. 2 (4). - P. 293-299.
166. D'Apolito, M. Urea-induced ROS generation causes insulin resistance in mice with chronic renal failure / M. D'Apolito, X. Du, H. Zong et al // J Clin Invest. -2010. № 120(1). - P. 203-213.
167. Davies, M.J. Stable markers of oxidant damage to proteins and their application in the study of human disease / M.J. Davies, S. Fu, H. Wang, R.T. Dean // FreeRadic. Biol. Med. 1999.-Vol. 27, № 11/12.-P. 1151-1163.
168. Dean, R.T. Biochemistry and pathology of radical-mediated protein oxidation / R.T. Dean, S. Fu, R. Stocker, M.J. Davies // Biochem J. 1997. - № 324 ( Pt 1).-P. 1-18.
169. Droge, W. Free radicals in the physiological control of cell function / W. Droge // Physiol. Rev. 2002. - Vol. 82, № 1. - P. 47-95.
170. Evans, P. Measurement of protein carbonyls in human brain tissue / P. Evans, L. Lyras, B. Halliwell // Methods Enzymol. 1999. - Vol. 300. - P. 145-156.
171. Exner, M. Thiocyanate catalyzes myeloperoxidase-initiated lipid oxidation in LDL / M. Exner, M. Hermann, R. Hofbauer et al. // Free Radic Biol Med. -2004.-№37(2).-P. 146-155.
172. Fahn, S. The oxidant stress hypothesus in Parkinson's disease: evidence supporting it / S. Fahn, G. Cohen // Ann Neurol. 1992. - Vol. 32. - P. 804-812.
173. Finkelstein, E. Spin trapping of superoxide and hydroxyl radical: practical aspects / E. Finkelstein, G.M. Rosen, E.J. Rauckman // Arch Biochem Biophys. 1980. -№200(1).-P. 1-16.
174. Frei, B. Antioxidant defenses and lipid peroxidation in human blood plasma / B. Frei, R. Stacker, B.N. Ames // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. - № 85.-P. 9748-9752
175. Frei, B. Content of antioxidants, preformed lipid hydroperoxides and cholesterol as predictors of the susceptibility of human LDL to metal ion-dependent and independent oxidation / B. Frei, J.M. Gaziano // J. Lipid. Res. 1993. - № 34. -P.2135-2145.
176. Frey, P.A. Radical mechanisms of enzymatic catalysis / P.A. Frey // An-nu. Rev. Biochem. 2001. - Vol. 70. - P. 121-148.
177. G. Lupidi, M. Angeletti, A.M. Eleuteri et al // FEBS Lett. 1999. - № 462(3).-P. 236-240.
178. Gamaley, I.A. Roles of reactive oxygen species: signaling and regulation of cellular functions / I.A Gamaley, I.V. Klyubin // Int. Rev. Cytol. 1999. - Vol. 188. - P. 203-255.
179. Gaziano, J.M. Antioxidants in cardiovascular disease: randomized trials / J.M. Gaziano // Nutrition. 1996. - № 12(9). - P. 583-588.
180. Geley, L. Verwendung e ner Mischung organischer Sauren mit Propy-lenglykol als Losung und Salbe in der Kinderchirurgie (Acerbine) / L. Geley // Wiener Klinische WochenschrifL 1978. - Jg. 90. - S. 506-509.
181. Gong, G. The role of oxygen-free radical in the apoptosis of enterocytes and bacterial translocation in abdominal compartment syndrome / G. Gong, P. Wang, W. Ding et al. // Free Radic Res. 2009. - № 43(5). - P. 470-477.
182. Gonzalez Deniselle, M.C. Cellular basis of steroid neuroprotection in the wobbler mouse, a genetic model of motoneuron disease / M.C. Gonzalez Deniselle, S.L. Gonzalez, A.F. De Nicola // Cell Mol Neurobiol. 2001. - № 21(3). - P. 237254.
183. Grattagliano, I. Effect of oral glutathione monoethyl ester and glutathione on circulating and hepatic sulfhydrils in the rat /1. Grattagliano, P. Wieland, C. Schranz, B.H. Lauterburg // J Pharmacol Exp Ther. 1994. - № 75(6). - P. 343-347.
184. Guo, C. Calcium oxalate, and not other metabolites, is responsible for the renal toxicity of ethylene glycol / C. Guo, T.A. Cenac, Y. Li, K.E. McMartin // Toxicol Lett. 2007 - № 173(1). - P. 8-16.
185. Haber, F. On the catalysis of hydroperoxide / F. Haber, J. Weiss // Na-turwissenschaften. 1932. - № 20. - P. 948-950.
186. Halliwell B. The chemistry of free radicals / В Halliwell // Toxicol Ind Health.-1993.-№9(1-2).-P. 1-21.
187. Halliwell, B. DNA damage by oxygen-derived species. Its mechanism and measurement in mammalian systems / B. Halliwell, O.I. Aruoma // FEBS Lett. -2001.-Vol. 281.-P. 9-19.
188. Halliwell, B. Lipid peroxidation, oxygen radicals, cell damage, and antioxidant therapy / B. Halliwell, J.M. Gutteridge // Lancet. 1984. - № 1(8391). -P.1396-1398.
189. Halliwell, B. Reactive oxygen species in living systems: source, biochemistry, and role in human disease / В Halliwell // Am J Med. 1991. - № 91(3C). - 14S-22S.
190. Heinecke, J.W. Biochemical evidence for a link between elevated levels of homocysteine and lipid peroxidation in vivo / J.W. Heinecke // Curr Atheroscler Rep. 1999. - № 1(2). - P. 87-89.
191. Hill, B.G. Role of glutathiolation in preservation, restoration and regulation of protein function / B.G. Hill, A. Bhatnagar // IUBMB Life. 2007. - № 59(1). -P. 21-26.
192. Hininger, I. Acute prooxidant effects of vitamin С in EDTA chelation therapy and long-term antioxidant benefits of therapy / I. Hininger, R. Waters, M. Osman et al. / Free Radic Biol Med. 2005. - № 38(12). - P. 1565-1570.
193. Hollman, P.C. Health effects and bioavailability of dietary flavonols / P.C. Hollman, M.B. Katan // Free Radic Res. 1999. - № 31. - P. 75-80.
194. Hsu, D.Z. Epinephrine protects against severe acute gastric bleeding in rats: role of nitric oxide and glutathione / D.Z. Hsu, S.T. Wang, J.F. Deng, M.Y. Liu // Shock. 2005. - № 23(3) - P. 253-257.
195. Kamano, S. Are steroids really ineffective for severely head injured patients? / S. Kamano // Neurosurg Focus. 2000. - № 8(1). - e7.
196. King, R.H. The role of glycation in the pathogenesis of diabetic polyneuropathy / R.H. King // Mol Pathol. 2001. - № 54(6). - P. 400-408.
197. Kitajima, H. Upregulation of heme oxygenase gene expression in rat lung epithelial cells following exposure to cadmium / H. Kitajima, S. Hirano, K.T. Suzuki // Arch Toxicol. 1999. - № 73(7). - P. 410-412.
198. Kitajima, H. Upregulation of heme oxygenase gene expression in rat lung epithelial cells following exposure to cadmium / H. Kitajima, S. Hirano, K.T. Suzuki // Arch Toxicol. 1999. - № 73(7). - P. 410-412.
199. Kocic, R. New aspects about the impact of oxidative stress on development of chronic diabetic complications / R. Kocic, V. Ciric // Med Pregl. 2009. - № 62, Suppl. 3.-P. 70-74.
200. Koop, D.R. Inhibition of ethanol-inducible cytochrome P450IIE1 by 3-amino-1,2,4-triazole / D.R. Koop Chem Res Toxicol. 1990. - № 3(4). - P. 377-383.
201. Koppenol, W.H. The Haber-Weiss cycle~70 years later / W.H. Koppe-nol // Redox Rep. 2001. - № 6(4). - P. 229-234.
202. Korzeniewski, B. Theoretical studies on the regulation of oxidative phosphorylation in intact tissues / B. Korzeniewski // Biochim Biophys Acta. 2001. -№ 1504(1). -P. 31-45.
203. Krinsky, N.L. Membrane antioxidants / N.L. Krinsky // Ann. NY. Acad. Sci.- 1988.-№551.-P. 17-33.
204. Kritharides, L. The use of antioxidant supplements in coronary heart disease / L. Kritharides, R. Stocker // Atherosclerosis. 2002. - № 164(2). - P. 211-219.
205. Kromhout, D. Diet and cardiovascular diseases / D. Kromhout // J Nutr Health Aging. -2001. № 5(3). - P. 144-149.
206. Lankin, V.Z. Mechanisms of oxidative modification of low density lipoproteins under conditions of oxidative and carbonyl stress / V.Z. Lankin, A.K. Tik-haze, V.I. Kapel'ko et al. // Biochemistry (Mosc). 2007. - № 72(10). - P. 10811090.
207. Laursen, J.B. Role of superoxide in angiotensin II-induced but not cate-cholamine-induced hypertension / J.B. Laursen, S. Rajagopalan, Z. Galis // Circulation. 1997. - Vol. 95. - №3. P. 588-593.
208. Leeuwenburgh, С. Glutathone and glutathione ethyl ester supplementation of mice alter glutathione homeostasis during exercise / C. Leeuwenburgh, L.L. Ji // J Nutr. 1998. - № 128(12). - P. 2420-2426.
209. Leibovitz, B. Dietary supplements of vitamin E, beta-carotene, coenzyme Q10 and selenium protect tissues against lipid peroxidation in rat tissue slices / B. Leibovitz, M.L. Hu, A.L. Tappel // J Nutr. 1990. - № 120. - P. 97-104.
210. Lenaz, G. Mitochondria? Oxidative stress, and antioxidant defences / G. Lenaz, C.Bovina, G. Formigguni, P.G. Castelli // Acta Biochim. Pol. 1999. - Vol. 46, № l.-P. 1-21.
211. Levine, R.L. Determination of carbonyl content in oxidatively modified proteins / R.L. Levine, D. Carland, C.N. Oliver et al. // Methods Enzymol. 1990. -Vol. 186.-P. 464-478.
212. Levine, R.L. Determination of carbonyl content in oxidatively modified proteins / R.L. Levine, D. Carland, C.N.Oliver et al. // Methods Enzymol. 1990. -Vol. 186. - P. 464-478.
213. Levine, RL. Carbonyl assays for determination of oxidatively modified proteins / R.L. Levine, J.A. Williams, E.R. Stadtman, E.Shacter // Methods Enzymol. 1994. - № 233. - P. 346-357.
214. Lloyd, D.A. Topical treatment of burns, using Aserbine / D.A. Lloyd, R.E. Mickel, N.A. Kritzinger // Burns 1989. - № 15. - P. 125-128.
215. Lo, Y.Y. Inter.eukin-1(3 induction of c-fos and collagenase expression in articular chondrocytes: involvement of reactive oxygen species / Y.Y. Lo, J.A. Conquer, S. Grinstein, T.F. Cruz // J. Cell. Biochem. 1998. - Vol. 69, № 1. - P. 19-29.
216. Lu, N. Nitrite-glucose-glucose oxidase system directly induces rat heart homogenate oxidation and tyrosine nitration: effects of some flavonoids / N. Lu, Y. Zhang, Z. Gao // Toxicol In Vitro. 2009. - № 23(4). - P. 627-633.
217. Lupidi, G. Peroxynitrite-mediated oxidation of fibrinogen inhibits clot formation / G. Lupidi, M. Angeletti, A.M. Eleuteri et al. // FEBS Lett. 1999. - № 462(3).-P. 236-240.
218. Macho, A. Glutathione depletion is en early and calcium elevation is a late event of thymocyte apoptosis / A. Macho, T. Hirsch, I. Marzo et al. // J. Immunol. 1997. - Vol. 158, № 10. - P. 4612-4619.
219. MacManus-Spencer, L.A. Singlet oxygen production in the reaction of superoxide with organic peroxides / L.A. MacManus-Spencer, B.L. Edhlund, K. McNeill // J Org Chem. 2006. - № 71(2). - P. 796-799.
220. Manson, J.E. A secondary prevention trial of antioxidant vitamins and cardiovascular disease in women / J.E. Manson, J.M. Gaziano, A. Spelsberg // Methods. Ann Epidemiol. 1995. - Vol. 5. - P. 261-268.
221. Marchioli, R. Antioxidant vitamins and prevention of cardiovascular disease: epidemiological and clinical trial data / Marchioli R., Schweiger C., Levante-si G. et al. //Lipids. -2001. -(Suppl. 36). P. 53-63.
222. May J.M. The insulin-like effect of hydrogen peroxide on pathways of lipid synthesis in rat adipocytes / J.M. May, C. J. de Haen // Biol. Chem. 1979. -Vol. 254, № 18. - P. 9017-9021.
223. McMartin, K.E. Calcium oxalate monohydrate, a metabolite of ethylene glycol, is toxic for rat renal mitochondrial function / K.E. McMartin, K.B. Wallace // Toxicol Sci. 2005. - № 84(1). - P. 195-200.
224. Meydani, M. The effect of long-term dietary supplementation with antioxidants / M. Meydani, R.D. Lipman, S.N. Han et al. // Ann NY Acad Sci. 1998. -№854.-P. 352-360.
225. Miki, S. Myocardial dysfunction and ultrastructural alterations mediated by oxygen metabolites / S. Miki, M. Ashraf, S. Salka, N. Sperelakis // J Mol Cell Cardiol. 1988 - № 20(11). - P. 1009-1924.
226. Mirjana, D. New aspects of normolipidemic dyslipoproteinemias / D. Mirjana // Med Pregl. 2004. - № 57(11-12). - P. 605-609.
227. Moy, L.Y. Mitochondrial stress-induced dopamine efflux and neuronal damage by malonate involves the dopamine transporter / L.Y. Moy, S.P. Wang, P.K. Sonsalla // J Pharmacol Exp Ther. 2007. - № 320(2). - P. 747-56.
228. Nagano, M. Method for the isolation of human glomerular basement membrane / M. Nagano, M. Kawamura, M. Kawanishi, A. Suzuki // Res Exp Med (Berl). 1975. - № 165(3). - P. 191-197.
229. Neri, M. Correlation between cardiac oxidative stress and myocardial pathology due to acute and chronic norepinephrine administration in rats / M. Neri, D. Cerretani, A.I. Fiaschi et al. // J Cell Mol Med. 2007. - № 11(1). - P. 156-170.
230. Oettl, K. Physiological and pathological changes in the redox state of human serum albumin critically influence its binding properties / K. Oettl, R.E. Stauber//Br J Pharmacol. 2007. - № 151(5).-P. 580-590.
231. Ozturk, H. Effects of dexamethasone on small bowel and kidney oxidative stress and histological alterations in bile duct-ligated rats / H. Ozturk, H. Eken, H. Ozturk, H. Buyukbayram // Pediatr Surg Int. 2006. - № 22(9). - P. 709-718.
232. Pearl, P.L. Clinical aspects of the disorders of GABA metabolism in children / P.L. Pearl, K.M. Gibson // Curr Opin Neurol. 2004. - № 17(2). - P. 107113.
233. Pearl, P.L. Pediatric neurotransmitter diseases / P.L. Pearl, D.D. Wallis, K.M. Gibson // Curr Neurol Neurosci Rep. 2004. - № 4(2). - P. 147-152.
234. Price, H.C. Primary prevention of cardiovascular events in diabetes: is there a role for aspirin? / H.C. Price, R.R. Holman // Nat Clin Pract Cardiovasc Med. -2009.-№6(3).-P. 168-169.
235. Pryor, W.A. Vitamin E and heart disease: basic science to clinical intervention trials / W.A. Pryor // Free Radic Biol Med. 2000. - № 28(1). - P. 141-164.
236. Rao A.V. Lycopene, tomatoes and the prevention of coronary heart disease / A.V. Rao // Exp Biol Med (Maywood). 2002. - № 227(10). - P. 908-913.
237. Rizvi, N.H. A critique of model to study stress II / N.H. Rizvi // Journal Social Science and Human. 1985. - Vol. 1(2). - P.103-123.
238. Roots, R. Estimation of the life times and diffusion distances of radicals involved in X-ray induced DNA strand breaks or killing of mammalian cells / R. Roots, S. Okada // Radiat. Res. 1975. - Vol. 64, № 2. - P. 306-320.
239. Rosen, G.M. Free radicals and phagocytic cells / G.M. Rosen, S. Pou, C.L. Ramos // FASEB J. 1995. - Vol. 9, № 2. - P. 200-209.
240. Rosen, G.M. Role of iron end ethylenediaminetetraacetic acid in the bactericidal activity of a superoxide anion-generating system / G.M. Rosen, S.J. Kleba-noff// Arch. Biochem. Biophys. 1981. - Vol. 208, № 2 - P. 512-519.
241. Rutault, K. Reactive oxygen species activate human peripheral blood dendritic cells / K. Rutault, C. Alderman, B.M. Chain, D.R. Katz // Free Radic. Biol. Med. 1999. - Vol. 26, № 1-2. - P. 232-238.
242. Ryzhavskii, Bla. Change in the adrenal cortex of rats in stress after hy-pophysectomy, thyroidectomy and castration / Bla. Ryzhavskii // Arkh An at Gistol Embriol. 1978. - № 74(4). - P. 40-46.
243. Saini, H.K. Role of cholesterol in cardiovascular dysfunction / H.K. Sai-ni, A.S. Arneja, N.S. Dhalla // Can J Cardiol. 2004. - № 20(3). - P. 333-346.
244. Sarkar, S. Lipid peroxidative damage on cadmium exposure and alterations in antioxidant system in rat erythrocytes: a study with relation to time / S. Sarkar, P. Yadav, D. Bhatnagar // Biometals. 1998. - № 11(2). - P. 153-157.
245. Schraml, E. Norepinephrine treatment and aging lead to systemic and intracellular oxidative stress in rats / E. Schraml, P. Quan, I. Stelzer et al. // Exp Gerontol. 2007-№ 42(11).-P. 1072-1078.
246. Schweitzer, C. Physical mechanisms of generation and deactivation of singlet oxygen / C. Schweitzer, R. Schmidt // Chem Rev. 2003. - № 103(5). - P. 1685-1757.
247. Seifried H.E. Oxidative stress and antioxidants: a link to disease and prevention? / H.E. Seifried // J Nutr Biochem. 2007. - № 18(3). - P. 168-171.
248. Seifried, H.E. Free radicals: the pros and cons of antioxidants. Executive summary report / H.E. Seifried, D.E. Anderson, B.C. Sorkin, R.B. Costello // J Nutr. -2004. -№ 134(11).-S. 3143-3163.
249. Selye, H. A Syndrome Produced by Diverse Nocuous Agents / H. Selye // Nature. 1936 - Vol. 138. - P. 32.
250. Selye, H. Stress / H. Selye. Montreal, Acta Inc., Med. Publ. - 1950. -№ 1(4667).-P. 1383-1392.
251. Shringarpure, R. Protein oxidation and 20S proteasome-dependent proteolysis in mammalian cells / R. Shringarpure, T. Grune, К.J. Davies // Cell Mol Life Sci. 2001. - № 58(10). - P. 1442-1450.
252. Sies, H. Oxidative stress: damage to intact cells and organs / H. Sies, E. Cadenas // Philos Trans R Soc Lond В Biol Sci. 1985. - № 311(1152). - P. 617631.
253. Siu, L. Hepatitis С virus and alcohol / L. Siu L., J. Foont, J.R. Wands // Semin Liver Dis. 2009. - № 29(2). - P. 188-199.
254. Sohal, R.S. Hydrogen peroxide production by liver mitochondria in different species / R.S. Sohal, I. Svensson, U.T. Brunk // Mech. Ageing Dev. 1990. -Vol. 53. №3.-P. 209-215.
255. Spitznagel, J.K. Bactericidal mechanisms of the granulocyte / J.K. Spitznagel // Prog Clin Biol Res. 1977. - № 13. - P. 103-131.
256. Stadtman, E.R. Protein oxidation / E.R. Stadtman, R.L. Levine // Ann N Y Acad Sci. 2000. - № 899. - P. 191-208.
257. Stocker, R. Endogenous antioxidant defences in human blood plasma / R. Stocker, B. Frei. In: Sies H. ed. Oxidative stress: oxidants and antioxidants. London: Academic Press, 1991. - P. 213-243.
258. Stocks, J. Assay using brain homogenate for measuring the antioxidant activity in biological fluids / J. Stocks, J.H. Gutteridje, R. Sharp, T. Dormandy // Clin. Sci. Mol. Med. 1974. - Vol. 47(3). P.215-222.
259. Suzuki, K. Anti-oxidants for therapeutic use: why are only a few drugs in clinical use? / K. Suzuki // Adv Drug Deliv Rev. 2009. - № 61(4). - P. 287-289.
260. Suzuki, Y.J. Differential regulation of MAP kinase signaling by pro-and antioxidant biothiols / Y.J. Suzuki, S.S. Shi, R.M. Day, J.B. Blumberg // Ann. N.Y. Acad. Sci. 2000. - Vol. 899. - P. 159-167.
261. Tajima, T. Immobilization stress-induced increase of hippocampal acetylcholine and of plasma epinephrine, norepinephrine and glucose in rats / T. Tajima, H. Endo, Y. Suzuki et. al. // Brain Res. 1996. - № 720(1-2). - P. 155-158.
262. Touyz, R.M. Ang II-stimulated superoxide production in mediated via phospholipase D in human vascular smooth muscle cells / R.M. Touyz, E.L. Schiffrin // Hypertension. 1999. - Vol. 34, № 4(Pt 2). - P. 976-982.
263. Tracy, C.R. Update on the medical management of stone disease / C.R. Tracy, M.S. Pearle // Curr Opin Urol. -.2009. № 19(2). - P. 200-204.
264. Tsujikawa, K. Elucidation of the mechanism of crystal-cell interaction using fibronectin-overexpressing Madin-Darby canine kidney cells / K. Tsujikawa, M. Tsujihata, N Tei et al. // Urol Int. 2007. - № 79(2). - P. 157-163.
265. Tunca, R. Pyridine induction of cytochrome P450 1A1, iNOS and metal-lothionein in Syrian hamsters and protective effects of silymarin / R. Tunca, M. Soz-men, M. Citil et al. / Exp Toxicol Pathol. 2009. - № 61(3). - P. 243-255.
266. Ujhelyi L, Balla G, Jeney V, Hemodialysis reduces inhibitory effect of plasma ultrafiltrate on LDL oxidation and subsequent endothelial reactions / L. Ujhelyi, G. Balla, V. Jeney et al. // Kidney Int. 2006. - № 69(1). - P. 144-151.
267. Van der Steen, J. 4-hydroperoxidatin in the Fenton oxidation of the antitumor agent cyclophosphamide / J. Van der Steen, E.C. Timmer, J.G. Westra, C. Benckhuysen / J Am Chem Soc. 1973. - №;95(22). - P. 7535-7536.
268. Wainer, D.D.M. Radical-trapping antioxidants in vitro and in vivo / D.D.M. Wainer // Bioelectrochem. Bioenerg. 1987. - Vol. 18(1-3). - P. 219-229.
269. Walke, M. Interaction of UV light-induced alpha-tocopherol radicals with lipids detected by an electron spin resonance prooxidation effect / M. Walke, D. Beckert, J. Lasch // Photochem Photobiol. 1998. - № 68(4). - P. 502-510.
270. Wasserman, H.H. Singlet oxygen reactions from photoperoxides / H.H Wasserman., J.R. Scheffer //J Am Chem Soc. 1967. - № 89(12). - P. 3073-3075.
271. White, C.R. Nitric oxide donor generation from reactions of peroxyni-trite / C.R. White, R.P. Patel, V. Darley-Usmar // Methods Enzymol. 1999. - № 301 -P. 288-298.
272. Winterbourn, C.C. Radical-radical reactions of superoxide: a potential route to toxicity / C.C. Winterbourn, A.J. Kettle // Biochem Biophys Res Commun. -2003. № 305(3). - P. 729-736.
273. Yildirim, A. The role of prednisolone and epinephrine on gastric tissue and erythrocyte antioxidant status in adrenalectomized rats / A. Yildirim, Y.N. Sahin, H. Suleyman et al. // J Physiol Pharmacol. 2007. - № 58(1). - №105-116.
274. Zhou, L. Role of cellular compartmentation in the metabolic response to stress: mechanistic insights from computational models / L. Zhou, X. Yu, M.E. Cabrera, W.C. Stanley // Ann N Y Acad Sci. 2006. - № 1080. - P. 120-139.