Автореферат и диссертация по медицине (14.00.25) на тему:Центральные холинергические механизмы регуляции половой функции (экспериментальное исследование)

ДИССЕРТАЦИЯ
Центральные холинергические механизмы регуляции половой функции (экспериментальное исследование) - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Центральные холинергические механизмы регуляции половой функции (экспериментальное исследование) - тема автореферата по медицине
Байрамов, Алекбер Азизович Санкт-Петербург 2009 г.
Ученая степень
доктора медицинских наук
ВАК РФ
14.00.25
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Центральные холинергические механизмы регуляции половой функции (экспериментальное исследование)

На правах рукописи

БАЙРАМОВ Алекбер Азизович

ЦЕНТРАЛЬНЫЕ ХОЛИНЕРГИЧЕСКИЕ МЕХАНИЗМЫ РЕГУЛЯЦИИ ПОЛОВОЙ ФУНКЦИИ

(экспериментальное исследование)

14.00.25 - фармакология, клиническая фармакология 14.00.40 - урология

Автореферат

диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук

1 5 712008

Санкт-Петербург 2008

003457838

Работа выполнена в Научно-исследовательском институте акушерства и гинекологии им. Д.О. Отта РАМН (академическая группа академика РАМН

Ф.Г.Углова)

Научные консультанты: З.д.н. РФ, член-корреспондент РАМН

доктор медицинских наук профессор Сапронов Николай Сергеевич

доктор медицинских наук профессор Комяков Борис Кириллович

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук профессор Дьячук Георгий Иванович

доктор медицинских наук профессор Крауз Владислав Алексеевич

доктор медицинских наук Новиков Андрей Иванович

Ведущая организация: ГОУ ВПО «Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени акад. И.П.Павлова»

Защита состоится 13 января 2009 года в 13.00 часов на заседании совета по защите докторских и кандидатских диссертаций Д 215.002.07 при Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова по адресу: 194044, Санкт-Петербург, ул. Академика Лебедева, д. 6.

С диссертацией можно ознакомиться в фундаментальной библиотеке Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова

Автореферат разослан « » ноября 2008 года.

Ученый секретарь совета доктор медицинских наук профессор Богомолов Борис Николаевич

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. Половая функция является важнейшим компонентом репродуктивной системы организма. В развитых странах мира частота половых расстройств у мужчин неуклонно повышается, что определяет актуальность изучения механизмов нормальной и измененной половой функции (ВОЗ, 2004). Половая функция является сложным интегративным процессом, состоящим из центральных мотивационных и периферических копуляторных механизмов, которые координируются на разных уровнях с вовлечением нейрональных структур, нейромедиаторных и нейроэндокринных систем. Большинство исследований механизмов регуляции мужской половой функции сосредоточено на его завершающей фазе (коитус), тогда как начальная, мотивационпая фаза (либидо), регулируемая центральными механизмами, остается малоизученной (Pfaus et al., 2001; Agmo et al., 2004, Амстиславская Т.Г., 2002, 2006). Поскольку именпо с активации лимбических структур мозга и гипоталамуса запускается половая функция самцов, исследование мотивационного обеспечения адекватного полового поведения является актуальной современной задачей.

Механизмы, регулирующие половую функцию, в значительной степени обеспечиваются нейрональными процессами преоптической зоны гипоталамуса, которые активируются различными нейромедиаторными системами (Bitran, 1987; Dorner, 1989; Gladkova, 2000). Холинергическая активация преоптической области, по мнению многих исследователей, является критической для осуществления нормального коитуса, а введение М-холиноблокатора скополамина в эту область задерживает инициирование копуляции (Hull, 1988; Retana, 1993). Несмотря на большое число исследований, посвященных роли нейромедиаторных систем в обеспечении репродуктивной функции, в литературе очень мало сведений об участии холинергической системы мозга в центральных механизмах регуляции мужской половой функции во взаимосвязи с функциональным состоянием нейроэндокринных систем. Также не исследована роль холинергических механизмов в реализации полового поведения при различных видах стресса. Известно, что репродуктивная функция организма подвержена модификации различными факторами, в частности, стрессорным воздействием. В основе таких модификаций лежат нарушения центральных регуляторных механизмов, играющих ключевую роль в возникновении половой мотивации, от которой зависит реализация половой функции.

Нормальная экспрессия мужской половой функции во взрослом состоянии зависит от функциональной целостности нейрональных цепей и нейромедиаторных систем, вовлеченных в этот процесс в течение раннего развития мозга в пренатальном периоде. Особое значение приобретают неблагоприятные воздействия в период раннего онтогенеза, когда развитие функциональных систем протекает наиболее быстрыми темпами и может быть легко изменено или модифицировано внешними воздействиями (Cabrera et al., 1999; Gerardin et al., 2005). Неблагоприятное воздействие многих химических факторов (никотин, барбитураты и др.) на развивающийся мозг плода в пренатальном периоде опосредовано изменением активности холинергической системы и с последующим проявлением

когнитивно-поведенческих дефицитов у взрослых потомств (Slotkin, 1992, 2004; Avital Beer, 2005). Несмотря на эти факты, в литературе отсутствуют сведения о нейрохимических и поведенческих эффектах пренатального воздействия селективных агонистов и антагонистов М- и Н-холинорецепторов, а также их влияние на динамику развития нейромедиаторных систем мозга на этапах онтогенеза и на половую функцию у взрослого потомства. Изменение активности холинергических механизмов головного мозга в критические сроки пренатального развития может оказать воздействие на целостность формирования медиаторных систем мозга, дифференцирующего эффекта гонадных гормонов на развивающийся мозг, и тем самым, на проявления половой активности и адекватного полу сексуального поведения у взрослого потомства. Актуальность исследования пренатальных эффектов холинергических факторов на центральные механизмы половой функции и гормональный статус в процессе развития обусловлена необходимостью профилактики и лечения последующих половых дисфункций и аномального полового поведения.

Важную роль в механизмах формирования половой поведения, в особенности ее аппетентных или мотивационных аспектов играет взаимодействие нейромедиаторных систем мозга, интегрирующее моторные, вегетативные и эндокринные компоненты половой функции. Ацетилхолин является медиатором, опосредующим передачу неспецифической информации к неокортексу из подкорковых структур (ретикулярная формация, гипоталамус) и участвует в функционировании корковой активирующей системы (Krnjevic, 1967; Кожечкин С.Н., 1982). Несмотря на важную роль холинергической системы в различных аспектах деятельности ЦНС (Аничков С.В., 1958, 1962; Голиков С.Н., 1956, 1965; Денисенко П.П., 1965; Сапронов Н.С. 1968; Лосев H.A., 1968), очень мало исследовано её значение в формировании нейрофизиологических коррелятов биоэлектрической активности мозга в зависимости от эндокринного статуса организма, в изменении возбудимости и подвижности нервных процессов в структурах мозга при дисбалансе гонадных гормонов.

Таким образом, предпосылкой для проведения настоящего исследования явилась недостаточная изученность роли холинергической системы в регуляции половой функции самцов. Для понимания механизмов холинергической регуляции необходимо исследование способности самцов реализовать половую функцию в условиях фармакологической модуляции активности центральных М- и Н-холинорецепторов и других нейрохимических регулирующих механизмов в зависимости от эндокринного статуса и факторов внешней среды, действующих в разные периоды онтогенеза.

Цель исследования состояла в экспериментальном изучении роли холинергической системы в нейромедиаторных, эндокринных и нейрофизиологических механизмах регуляции половой функции самцов в разные периоды онтогенеза.

Задачи исследования:

1. Изучить половое поведение самцов крыс и закономерности поведенческих изменений, обусловленных введением М- и Н-холинергических средств в зависимости от гормонального статуса животных.

2. Исследовать нейрохимические и нейроэндокринные механизмы регуляции

половой функции в условиях модуляции активности центральной холинергиче-ской системы.

3. Изучить особенности полового поведения гипогонадных самцов крыс после введения холинергических, дофаминергичсских средств и андрогенов.

4. Оценить влияние неблагоприятных факторов (стрессовое воздействие, введение холинергических веществ), действующих в разные периоды онтогенеза, на половую функцию и нейроэндокринный статус самцов крыс.

5. Исследовать нейрональные механизмы центральной холинергической регуляции в интегративной деятельности мозга по данным спонтанной и вызванной электрической активности некоторых структур головного мозга кроликов в условиях дефицита и избытка стероидных гонадных гормонов в организме.

6. Выявить роль М- и Н-холинергических механизмов в становлении полового поведения в пубертатном периоде онтогенетического развития потомства и в метаболизме основных нейромедиаторов в структурах мозга самцов крыс.

7. Изучить отдаленные поведенческие, нейрохимические и гормональные эффекты у потомства крыс, подвергнутых пренатальному воздействию М- и Н-холинолитиков.

Научная новизна. В работе впервые исследована роль холинергической системы в становлении половой функции самцов крыс в онтогенезе в зависимости от их нейроэндокринного статуса. Доказано, что действие М- и Н-холинергических средств на половое поведение самцов зависит от гормонального статуса организма. В условиях экспериментально индуцированного гормонального дефицита активация М-холинергической системы полностью восстанавливает нарушенную половую функцию самцов. Кроме того, показано, что в нейрохимических эффектах холинергических средств на половую функцию помимо прямой активации М-холинергической системы мозга важную роль играет активация дофами-нергических механизмов лимбических образований мозга.

Несомненно важным результатом работы является выявление высокой чувствительности медиаторных систем головного мозга эмбрионов к воздействию селективных антагонистов М- и Н-холинергической системы в пренатальном периоде, особенно в ранние сроки гестации. Вызванные ими нарушения сохраняются в ходе постнаталыюго онтогенеза и проявляются при реализации поведенческих реакций, в частности, полового поведения у взрослых самцов. Пренатальное воздействие Н-холинолитиком ганглероном и в меньшей степени М-холинолитиком метамизилом приводит к отдаленным поведенческим нарушениям, характеризуемым низкой половой активностью и нарушениями полового поведения у половозрелых потомств самцов.

Важным является доказательство того, что механизм нарушения половой функции у половозрелых потомств связан с дисбалансом содержания нейромедиаторов дофамина и серотонина в мозге плодов. Так, отдаленным последствием пренатального воздействия холинолитиков на организм беременной самки является снижение дофаминергической активности в лимбических структурах мозга плода в постнатальном периоде. Блокада Н-холинорецепторов ганглероном ингибирует выброс дофамина, норадреналина и серотонина. Медиаторная дисфункция у половозрелых самцов, как отдаленный эффект

нренатального воздействия холинолигиков, предопределяет, поведенческие нарушения и половую дисфункцию у потомства.

Выявлено разное участие М- и Н-холинергических механизмов в эффектах холинергических средств на половую функцию самцов на этапах онтогенеза. Оно состоит в том, что половая активность взрослых самцов в пределах холинергичес-кой системы регулируется М-холинергическими механизмами, а в период прена-тального развития в большей степени зависит от активности Н-холинергической системы.

Впервые выявлена высокая значимость активности холинергической медиаторной системы для стрессреактивности организма в тестах изучения полового поведения. Стресспротекторное свойство антихолинэстеразного препарата галантамина зависит от вида стресса; при этом наиболее значительный потеЕщирующий эффект от применения холинергических средств наблюдается при эмоциональным стрессе в сравнении со стрессом, обусловленным воздействием физического фактора. Показано, что механизм действия галантамина при стрессе, помимо прямой М-холипергической активации нейрональных структур мозга, включает также нейроэндокринную и дофаминершческую системы, участвующие в реализации половой функции.

В работе показана, что влияние холинергических средств на половую активность самцов связано с изменением возбудимости нейрональных структур лимбической системы мозга, что наиболее ярко проявляется в условиях дефицита андрогенов. При этом активность М-холинорецепторов играет важную роль для реализации эффектов половых стероидов, их взаимодействия со стероидочувствительными ядрами головного мозга. Показано, что нарушение рецепции андрогенов при гонадэктомии вызывает изменение характера действия холинергических средств на биоэлектрическую активность нейронных популяций центральных нервных структур и, тем самым, обусловливает дальнейшее изменение поведенческого ответа на внешний сексуальный стимул.

Научно-практическая значимость. Теоретическая значимость работы заключается в обосновании положения, что половая функция самцов в значительной степени определяется состоянием холинергической медиаторной системы мозга и уровнем андрогенов. При гормональном дефиците фармакологическая активация М-холинергической системы полностью восстанавливает нарушенную половую функцию самцов. Нейрофизиологические механизмы реализации половой функции у гипогонадных самцов связаны с активацией М-холинорецепторов, которые обусловливают высокоамплитудную возбудимость нейрональных структур и более длительную потенциацию этого возбуждения по сравнению с нормальным гормональным фоном. В процессе холинергической регуляции половой функции решающая роль принадлежит непосредственной активации М-холинергических механизмов мозга и опосредованной активации дофаминергической системы лимбических структур. В пренатальном периоде, особенно в ранние сроки геста-ции, отмечена высокая чувствительность основных медиаторных систем мозга эмбрионов к воздействию селективных антагонистов М- и Н-холинергической системы, приводящих к отдаленным нарушениям половой функции у половозрелых потомств самцов. Важным практическим выводом работы является доказа-

тельство, что дефицит половой активности взрослого потомства может быть компенсирован с помощью агонистов дофамина и ацетилхолина. Полученные в работе данные могут способствовать разработке новых методов лечения половых расстройств, в том числе и наследственно обусловленных и решению проблемы коррекции половых расстройств с целью гармонизации межполовых отношений.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. М-холинергическая система мозга, являющаяся важным звеном в центральной регуляции полового поведения самцов крыс, регулирует количественные и качественные параметры полового поведения. Действие холинотропных средств на половую активность зависит от гормонального статуса организма, в частности, от уровня андрогенов.

2. Холинергические механизмы активации половой функции самцов связаны с активностью дофаминергических механизмов лимбических структур мозга. При этом агописты М-холинергической и дофаминергической медиаторных систем мозга активируют половую функцию посредством разных механизмов и усиливают эффекты друг друга. Усиление половой функции зависит от баланса нейроме-диаторов дофамина, норадреналина, серотонина и уровня стероидов в мозге.

3. Холинергическая система головного мозга эмбрионов крыс уязвима для действия селективных М- и Н-холинолитиков. Их введение в пренагальном периоде вызывает дисбаланс в функционировании нейромедиаторных систем (преимущественно дофаминергической) лимбической системы мозга и подавление продукции тестостерона.

4. Нарушения нейромедиаторного обмена в пренатальном мозге самцов сохраняются в ходе постнатального онтогенеза и проявляются стойкими изменениями половой функции. Основной причиной пониженной половой активности у потомств самцов является низкая дофаминергическая активность и низкий уровень продукции гормона тестостерон в организме.

5. Устойчивость к стрессу в тестах изучения полового поведения у самцов зависит от состояния холинергической и дофаминергической активности структур лимбической. системы мозга и уровня тестостерона в крови. Действие холинергических средств на половую активность самцов крыс более выражено в условиях дефицита андрогенов (в гипогонадном состоянии).

Апробация и публикация материалов исследования. Материалы, вошедшие в диссертацию, доложены на 22-м ежегодном конгрессе по нейропсихофар-макологии (Брюссель, Бельгия, 2000), на VII Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (Москва, 2000), в 21-м региональном конгрессе по психо-нейроэндокринологии (С.-Петербург, 2001), на 23-м конгрессе международного общества психонейроэндокринологии (Пиза, Италия, 2003),, на международной конференции «Нейрохимия. Фундаментальные и прикладные аспекты» (Москва, 2005), на 8-м конгрессе Европейского общества нейропсихофармакологии (Москва, 2005), 4-й международной конференции «Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам» (Москва, 2006), на 4-м региональном конгрессе по психонейроэндокринологии «Стресс и психоэндокринные изменения в жизненном цикле» (Вильнюс, Литва, 2006), на международной конференции «Нейроспецифические метаболиты и энзимологические основы дея-

тельности ЦНС» (Пенза, 2006), VII международном симпозиуме «Биологические механизмы старения» (Харьков, Украина, 2006), 1-й конференции Российской ассоциации психонейроэндокринологов (С-Петербург, 2008), 3-м Китайско-Российском международном симпозиуме по фармакологии (Китай, Харбин, 2008).

Апробация диссертации состоялась в мае 2008 г. на совместном заседаний академической группы академика РАМН Ф.Г.Углова при НИИ акушерства и гинекологии имени Д.О.Отга, кафедры фармакологии Военно-медицинской академии им. С.М.Кирова и кафедры урологии Санкт-Петербургской государственной медицинской академии им. И.И.Мечникова.

По теме диссертации опубликована 31 работа, из них 19 статей (10 статей в рецензируемых журналах, рекомендованных ВАК).

Структура и объем диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, главы результатов собственных исследований (включающей 3 подраздела), обсуждения результатов, выводов, практических рекомендаций, списка цитируемой литературы. Работа изложена на 304 страницах машинописного текста, иллюстрирована 34 рисунками и 13 таблицами. Библиографический указатель содержит 603 наименований, в том числе 74 отечественных и 539 иностранных.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Опыты выполнены на 1609 половозрелых беспородных крысах и крысах линии Вистар массой 200-250 г и 47 кроликах породы Шиншилла массой 3,5-4 кг, полученных из питомника Рапполово РАМН, Ленинградская область. Животных содержали при свободном доступе к воде и пище.

Экспериментальные модели. Использовали гипогонадных самцов крыс и кроликов с пониженным уровнем тестостерона. С этой целью проводили одно- и двухстороннюю гонадэктомию под эфирным наркозом. Тестирование оперированных самцов крыс на половую активность осуществляли через 3 недели, изучение нейрофизиологических параметров мозговой активности у гонадэктомиро-ванных кроликов проводили через 1 месяц после операции. В тесте полового поведения использовали самок, у которых последовательным введением эстрадиола и прогестерона индуцировали эструс (De Jonge et al., 1986; Albonetti et al., 1993).

Стрессорные воздействия, примененные к взрослым животным. В качестве стрессора у крыс использовали рестрикцию (ограничение подвижности) животного разной продолжительности (1,3 и 6 ч) в пластиковых отсеках с ограниченным объемом при ярком освещении. Рестрикцию осуществляли либо непосредственно перед тестом полового поведения при остром опыте, либо за 4 ч до тестирования при 7-дневном хроническом стрессировании.

Холинергические воздействия в пренатальном периоде. Самкам на 9-11, 1214 и 17-19 сутки беременности производились троекратное внутримышечные инъекции (1 раз в день) Н-холиноблокатора ганглерона в дозе 10 мг/кг или М-холиноблокатора метамизила в дозе 2 мг/кг. Опытные группы формировались по срокам пренатального воздействия и по фармакологическим препаратам. Беременные самки интактных крыс являлись группой контроля, которым вводили в эти же сроки 0,9% NaCl. Помёты родившихся крысят самцов редуцировали до 6-8

детенышей, которые впоследствии смешивали и случайным образом делили на 3 части для нейрохимических, эндокринных исследований в 2-х месячном возрасте и поведенческих исследований в 3,5-4 месячном возрасте.

Тест «половое поведение». В экспериментах использовали половозрелых самцов крыс с приобретенным половым опытом, содержавшихся в комнате с реверсивным светом. Для определения компонентов полового поведения тестируемый самец помещался в камеру (размером 40x40x30 см) из прозрачного плексигласа за 5 мин до предъявления сексуально восприимчивой самки в темную фазу суточного цикла при тусклом красном освещении. Компоненты половой активности у самцов регистрировали визуально в течение 15 минут. Измеряли латентные периоды и число садок (ЛПС и САД соответственно) интромиссий (ЛИИ и ИМС) и эякуляций (ЛПЭ и ЭЯК), а также рассчитывали два вторичных параметра: период восстановления (ПВ) - время от первой эякуляции до следующей интромиссии и межэякуляторный интервал (МЭИ) - время между первой и второй эякуляторной сессиями (Agmo, 1997).

Нейрохимические методы. Исследование метаболизма нейромедиаторов и их метаболитов в мозге выполняли па 20-суточных зародышах крыс и 2-месячных потомствах. В криостате (- 20°С) мозг зародыша отделялся от черепной коробки и мозжечка. У 2-месячных крыс (также в криостате), используя координаты по атласу König (1967), выделяли структуры гипоталамуса, гиппокампа, амигдалы, которые хранились в жидком азоте до хроматографического анализа.

Концентрацию дофамина (ДА), норадреналина (НА), серотонина (5-ГТ) и их метаболитов в структурах мозга определяли методом ВЭЖХ в системе Beckman System Gold с электрохимическим детектором LC-4C. Для хроматографического анализа использовали ткани целого мозга зародыша и структуры мозга у 2-месячных потомств, которые гомогенизировали в охлажденной 0,1Н хлорной кислоте, центрифугировали при 14000 g в течение 7 мин при 4°С. Полученный су-пернатант фильтровали и вводили в систему ВЭЖХ-ЭД. Разделение пиков проходило в хроматографической колонке SphereClone 5(х ODS 2 (250x4,60 mm) с пред-колонкой. Аналитическое время пробега пробы в колонке составляло 18 мин при изократической скорости 1,0 мл/мин. Подвижная фаза состояла из цитрат-фосфатного буфера (рН=3,5), ацетонитрила (88 мл/т) и октансульфоновой кислоты (0,18 ммоль/л). Идентификацию и чистоту хроматографических пиков, а также их количественную оценку осуществляли по отношению к пикам, полученным от внешних стандартов. Для оценки оборота ДА, НА и 5-ГТ в структурах мозга были рассчитаны отношения 3,4-дигидроксифенилуксусной кислоты (ДОФУК) к дофамину (ДОФУК/ДА), З-метокси-4-гидроксифенилгликоля (МГФГ) к норадренали-ну (МГФГ/НА) и 5-гидроксииндолуксусной кислоты к серотонину (5-ГИУК/5-ГГ) от их измеренных концентраций.

Иммуноферментный метод определения гормонов. Уровень тестостерона, лютеинизирующего и фолликулостимулирующего гормонов определяли в сыворотке крови с помощью гормональных тест-наборов для иммуноферментного анализа (Хема-Медика, Access) согласно прилагаемой инструкции, с предварительным подбором оптимального разведения сывороток крови, выполнением теста на удвоение и теста внутреннего стандарта для каждого набора.

Нейрофизиологические методы исследования. Для регистрации частотных ритмов ЭЭГ и вызванных потенциалов (ВП) с помощью стереотаксической установки в ядра головного мозга кроликов (n.basalis amygdalaris, hippocampus p.dorsalis, substantia nigra, n.preopticus hypothalami, n.caudatus) имплантировали MOHO- и биполярные золотые и нихромовые электроды в силиконовой оболочке и поверхностный хлорсеребряный электрод в area opticus против индифферента от лобной кости (координаты A, H, Р рассчитывали по атласу König (1967). Все электроды были присоединены к мультиканальному разъему, закрепленному на черепе кролика акрилоксидом. Регистрацию ЭЭГ и ВП проводили в экранированной камере. Для вызова зрительных ВП использовали электрический фотостимулятор с яркостью вспышки 600 люкс. Амплитуда и латентность ВП при каждой регистрации представляли собой усредненную величину 50 потенциалов от монополярных отведений. Для регистрации и записи ЭЭГ использовали биполярные электроды от каждой структуры головного мозга, частотный анализ ЭЭГ осуществляли в нормированных и абсолютных величинах. Сбор и обработка информации проводили в программной среде «LabView 6.0».

Регистрацию спонтанных и вызванных импульсов осуществляли спустя 4 недели после имплантации электродов. В течение 10 дней записывали фоновые уровни спонтанной биоэлектрической активности и ВП исследуемых структур мозга. Оценивали динамику изменения латентного периода, амплитуды компонентов первичного ответа ВП, нормированные величины и мощности частотных спектров спонтанного потенциала (СП). При двусторонней гонадэктомии СП и ВП мозга регистрировали на 5, 10, 15, и 30 сутки после гонадэктомии.

Фармакологические препараты. Холинотропные средства: ганглерон (эфир у-диэтиламино-1,2-диметилпропил пара-изобутоксибензойной кислоты гидрохлорид), селективный Н-холиноблокатор; никотин (пиридинметилпирролидон), Н-холиномиметик; метамизил (хлоргидрат 1,2-диэтиламиноизопропилового эфира бензоловой кислоты), селективный М-холиноблокатор; галантамин, обратимый ингибитор холинэстеразы, М- и Н-холиномиметик; ареколин (эфир 1,2,5,6-тетрагидро-1-метилникотиновой кислоты метиловый), М-холиномиметик.

Дофаминергические средства: галоперидол, блокатор Д1/Д2-дофаминовых рецепторов; апоморфин, полусинтетический алкалоид морфина, селективный дофаминомим етик.

Стероидные гормоны: тестостерон (17Р-гидрокси-4-андростен-3-он), эндогенный адрогенный гормон; дегидроэпиандростерон (Зр-гидрокси-5-андрост-17-он), надпочечниковый авдроген, нейростероид.

Статистическую обработку результатов проводили методом дисперсионного анализа ANOVA с использованием t-критерия Стьюдента с помощью пакета программ 0rigin®7,0 и Microsoft Excel 97®.

Автор выражает признательность сотрудникам отдела нейрофармакологии НИИ экспериментальной медицины РАМН профессору Лосеву H.A., Кузнецовой H.H., Ефремову О.М., Полетаевой А.О. и Зайченко И.Н. (Институт военной медицины МО РФ) за техническую помощь в выполнении части исследований.

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Роль М- и Н-холннергнческнх систем в регуляции половой функции самиов. Влияние холинотропных препаратов на показатели полового поведения ин-

тактных самцов крыс

У самцов крыс, выращенных в однополых и одновозрастных сообществах, содержавшихся в полной внутривидовой изоляции с 15-18 дня жизни, определяли показатели полового поведения в 2-х последовательных тестах после воздействия холинотропными соединениями. Результаты поведенческих исследований выявили, что холинотропные препараты вызывают достоверное изменение показателей ГШ. Отмечается изменение копуляторных, в том числе эякуляторных компонентов и их временных характеристик (табл.1 и 2).

Таблица 1

Влияние М- и Н-холинотропных препаратов на параметры полового поведения у

интактных самцов крыс (М±т)

Параметры

половой N. фунции Холинотропныеч Садки (п) Латентный период садо: (с) Интромиссш (П) Латентный период интрс миссий (с) Эякуляции (П) Латентный период эякуляций (с Межэякуля- торный интервал (с)

препараты \

Контроль 14,9 14,6 10,9 35,3 2,22 301,9 441,3

±2,14 ±3,38 ±1,82 ±5,9 ±0,28 ±65,3 ±36,8

Ганглерон 12,7 12,1 9,21 26,7 2,42 305,1 400,4

се 5 мг/кг ±1,22 ±2,9 ±1,55 ±6,7 ±0,27 ±66,2 ±55,9

К ¡3 Ганглерон 9,92 18,7 8,34 42,8 1,83 386,0 497,8

Я 20 мг/кг ±1,44* ±5,9 ±1,58 ±10,8 ±0,17* ±51,5 ±71,8

Никотин 16,6 13,1 9,6 26,8 2,39 ' 218,3* 423,2

0,01 мг/кг ±2,12 ±2,6 ±1,16 ±6,4 ±0,33 ±32,3 +67,2

Метамизил 7,6 124,6 3,4 177,5 0,91 468,6 534,9

СЗ 3 мг/кг ±1,12* ±27,4* ±1,31* ±32,9* ±0,27* ±71,3* ±69,1*

с К н £ Метамизил 7 мг/кг 0 0 0 0 0 0 0

Ареколин 2 мг/кг 26,6 ±2,1* 8,15 ±1,6* 16,8 ±1,5* 36,8 ±7,16 2,75 ±0,14* 188,1 ±21,9* 306,0 +22,4*

Примечание. *р<0,05 по отношению к контрольной группе.

Активация Н-холинергической системы никотином (табл. 1) и комбинацией препаратов галантамина с метамизилом (табл. 2) приводила к небольшому усилению эякуляторного компонента полового поведения, о чем свидетельствует сокращение латентного периода эякуляции. Блокада Н-холинергических рецепторов ганглероном в 20 мг/кг вызывала некоторую активацию эякуляторной функции, что можно объяснить растормаживанием М-холинергических механизмов в ответ

на блокаду Н-холинергической системы. Согласно принципу реципрокности функционирования М- и Н холинергических систем мозга (Лосев H.A., 2001), снижение активности одной холинреактивной системы инициирует увеличение активности другой холинореактивной системы, и наоборот. Незначительность модификации половой функции при активации и блокаде Н-холинергической системы свидетельствует, что никотиночувствительные механизмы мало причастны к центральной регуляции половой функции.

У самцов крыс активация М-холинергической системы ареколином достоверно увеличивала как мотивационные, так и копулятивные компоненты полового поведения: садки, интромиссии, эякуляции и время МЭИ и ЛПС по сравнению с контролем, что свидетельствует об усилении у самцов половой функции. Активация М-холинергических механизмов мозга комбинацией препаратов галантамин и ганглерон (табл. 2) приводила к умеренному усилению половой активности, а именно к изменению мотивационного компонента полового поведения при стабильном уровне эякуляторных показателей.

Таблица 2

Влияние галантамина и его комбинаций с М- и Н-холиноблокаторами на параметры полового поведения у интактных самцов крыс (М±т)

N. Параметры половой фунции ХолинотропныеХ препараты \ Садки (п) Латентный период садок (с) 1 1 Интромиссии (П) Латентный период интро-миссий (с) Эякуляции (п) Латентный период эякуляций (с) Межэякуля- торный интервал (с)

Контроль 13,5 ±2,4 11,7 ±2,9 9,92 ±1,34 32,6 ±6,1 2,26 ±0,24 310,4 ±48,5 396,7 ±51,3

Галантамин 0,5 мг/кг 15,5 ±1,5 13,3 ±2,1 11,4 ±2,4 34,2 ±4,3 2,35 ±0,31 304,0 ±41,4 412,3 ±48,7

Галантамин 2 мг/кг 23,2 +1,3* 8,6 ±1,7* 14,6 ±2,7* 23,2 ±4,0* 2,69 ' ±0,17* 223,5 ±31,9* 322,9 ±41,2*

Галантамин 2 мг/кг +Метамизил 1 мг/кг 16,5 +2,9 16,3 ±4,7 12,8 ±2,2 23,7 ±7,6 2,29 ±0,18 283,6 ±47,2 397,0 ±24,1

Галантамин 2 мг/кг +Ганглерон 5 мг/кг 19,2 ±3,2* 9,1 ±1,6* 12,7 ±2,6* 30,5 ±5,7 2,47 ±0,26 314,7 ±63,1 380,3 ±59,3

Примечание. *р<0,05 по отношению к контрольной группе.

Блокада М-холинорецепторов метамизилом вызывала дозозависимое угнетение половой функции самцов. Метамизил в дозе 1 и 3 мг/кг оказывал угнетающее влияние как на центральные, так и на периферические параметры полового поведения. У 7 животных из 15, тестированных на ПП после премедикации метамизилом 3 мг/кг, полностью отсутствовала половая активность (рис. 1). При увеличении дозы до 7 мг/кг препарат полностью угнетал половую функцию интактных самцов крыс.

Рис. 1. Дозозависимое влияние ме-тамизила и ганглерона на половую активность у интактных крыс (п=15).

Исходная активность принята за 100%. В эксперименте использовали самцов с приобретенным половым опытом.

Премедикация антихолинэсте-разиым препаратом галантамином в дозе 0,5 мг/кг достоверных изменений в структуре половой функции не вызывала, увеличение дозы препарата до 2 мг/кг способствовало усилению половой функции. Комбинация галантамина с Н-холиноблокатором ганглероном показывала более выраженный стимулирующий эффект, чем введение только галантамина. Нейтрализация Н-холиномиметичес-кого эффекта галантамина ганглероном усиливала его периферический эффект -отмечалось повышение показателя ЭЯК.

Таким образом, полученные данные свидетельствуют, что центральная холи-нергическая система мозга посредством М-холинергических механизмов участвует в регуляции половой функции на различных уровнях - модифицируются как центральные мотивационные, так и периферические копулятивные компоненты половой функции.

Влияние М- и Н-холинолитиков на половую активность в зависимости от гормонального статуса самцов

Таблица 3

Параметры полового поведения у половозрелых потомств крыс после односторонней (ГГЭ) и двусторонней гонадэктомии (ДГЭ) (М±т) .

Группы Садки (п) Латентный период садок (с) Интромиссии (П) Латентный период интро-миссий (с) Эякуляции (п) Латентный период эякуляций (с) Межэяку ля- торный интервал (с)

Интактная 14,9 14,6 10,9 35,3 2,22 301,9 441,3

±2,14 ±3,38 ±1,82 ±5,9 ±0,28 ±65,3 ±16,8

ГТЭ 12,6 71,5 4,92 213,5 0,50 395,4 427,7

±1,93* ±8,2* ±2,04* ±106,1* ±0,25* ±94, Г ±71,3

ДГЭ 1,63 118,6 0,34 309,0

±0,63* ±69, Г ±0,17* ±135,Г

Примечание. *р<0,05 по отношению к интактнойгруппе.

После гемигонадэктомии (ГГЭ) отмечали снижение количественных параметров полового поведения у самцов с сохраненной половой активностью и увеличение временных показателей. Двусторонняя гонадэктомия (ДГЭ) вызывала полное угнетение половой функции у 65% самцов, у остальных 35% сохранялись компоненты копулятивной активности (табл. 3), наличие которых объясняется выработкой андрогенов надпочечниками и влиянием нейрональных механизмов. Однократная инъекция галантамина и тестостерона ГТЭ животным вызывала достоверное изменение структуры их полового поведения, динамика которого напоминала восстановление исходной половой активности (табл. 4). Кроме того, отмечался достаточно длительный отсроченный эффект введения этих препаратов, который может объясняться запуском медленных геномных механизмов действия этого стероида в пределах ЦНС с последующим синтезом рецепторов андрогенов (McEwen, 1981).

Таблица 4

Половая функция ГГЭ самцов после однократной инъекции галантамина

(2 мг/кг), тестостерона (3 мг/кг), их комбинаций (по 0,5 мг/кг) (М±т)

Садки (п) Латентный период садок (с) Интромиссии (П) Латентный период интро-миссий (с) Эякуляции (П) Латентный период эякуляций (сек) Межэякуля- торный интервал (с)

Контроль ГТЭ 9,6 ±1,93 16,5 ±2,5 4,9 ±2,04 213 ±106,1 0,5 ±0,25 395,7 ±94,1 427,7 ±71,3

Галантамин ! через 1 ч 19,6 ±1,53' 11,3 ±2,2* 17,1 ±1,3* 19,5 ±3,2* 2,43 ±0,36* 166,4 ±65,7* 341,5 ±24,3*

7 сут 13,1 ±3,1* 12,2 ±2,7 10,1 ±2,9 12,8 ±2,9* 1,14 ±0,42' 207,2 ±90,5 390,0 ±73,0

12 сут 11,3 ±2,0 10,2 ±1,2* 11,2 ±2,8* 52,8 ±2,1' 0,85 ±0,12* 240,2 ±52,5* 430,0 ±55,8

Тестостерон через 1 ч 22,5 ±3,1* 9,4 ±3,2 16,3 ±3,1* 23,7 ±6,3* 1,77 ±0,21* 211,3 ±30,2* 357,0 ±38,4*

7 сут 14,3 ±2,1* 16,7 ±4,4 10,3 ±2,2* 25,5 ±4,2* 1,22 ±0,2* • 243,1 ±40,9* 398,8 ±54,5

12 сут 10,7 ±2,6 19,8 ±2,7 7,25 ±1,1* 37,4 ±4,9* 0,61 ±0,13 249,2 ±51,3* 417,6 ±68,2

Галантамин + 1 Тестостерон через 1 ч 24,6 ±2,9* 11,4 ±3,2 19,7 ±4,2* 18,4 ±5,2* 2,3 ±0,23* 189,2 ±35,3* 332,5 ±28,1*

7 сут 19,2 ±3,0* 10,8 ±2,7 12,8 ±2,9* 15,3 ±2,5* 1,01 ±0,2* 221,3 ±30,8* 372,0 ±51,0

12 сут 12,9 ±2,2 14,2 ±2,5 10,2 ±1,2* 32,8 ±4,6* 0,69 ±0,1 239,2 ±43,1' 425,0 ±64,1

Примечание. *р<0,05 по отношению к контрольной группе.

13

Галантамин демонстрировал высокие активирующие свойства в отношении половой функции у гипогонадных самцов (табл. 4). Усиление половой активности после инъекции галантамина прослеживалось также при введении значительно меньшей дозы галантамина (0,5 мг/кг) и тестостерона (0,5 мг/кг). Результаты исследования свидетельствует, что тестостерон потенцирует действие галантамин на половую активность гипогонадных самцов в достаточно низкой терапевтической дозе.

Длительный активирующий эффект галантамина при его комбинированном применении с тестостероном можно объяснить активацией нейрональных механизмов в структурах мозга, в том числе в лимбической системе и гипоталамусе. Ведущую роль в данном процессе, вероятно, играет активация нейромедиаторных систем этих структур, что подтверждается нашими дальнейшими исследованиями. Показано, что для реализации эффекта галантамина на половую активность необходимо наличие тестостерона: инъекция галантамина самцам крыс с ДГЭ не оказывала существенного влияния на параметры половой функции, в то время как у самцов с ГГЭ эффект галантамина был ярко выражен (рис. 2)

Рис. 2. Влияние однократной инъекции галантамина (2 мг/кг), тестостерона (3 мг/кг) и их комбинаций (по 0,5 мг/кг) на проявление половой активности у геми-гонадэктомированных (ГГЭ) и гонадэктомирован-ных (ДГЭ) самцов крыс. Контролем (фон) являются исходные данные до пре-медикации.

В эксперименте с использованием тестостерона в качестве заместительной терапии у ГГЭ самцов показано полное восстановление половой активности. У самцов с ДГЭ однократная инъекция тестостерона (3 мг/кг) восстанавливала только компоненты копулятор-ной активности без проявления эякуляторной составляющей половой функции. Комбинированная инъекция значительно меньшей дозы галантамина (0,5 мг/кг) и тестостерона (0,5 мг/кг) оказывала такой же эффект (рис. 2). Таким образом, у гипогонадных ГТЭ самцов применение галантамина, так же как и тестостерона, восстанавливало половую функцию до уровня, сопоставимого с активностью интакт-ных самцов, что свидетельствует о взаимной потенциации эффекта стероидного гормона и холиномиметика в реализации нарушенной половой функции.

Взаимодействие препаратов холинергической и дофаминергической систем в реализации половой функции самцов

Гипогонадным самцам с низкой половой активностью перед тестированием вводили комбинацию галантамина в дозе 2 мг/кг веса и блокатора Д1/Д2 рецепторов галоперидола в дозе, вызывающей 100% подавление половой функции - 1,5 мг/кг за 30 мин до опыта (рис. ЗА). Во втором эксперименте гипогонадным самцам вводили агонист Д1/Д2 дофаминергических рецепторов апоморфин (0,1 мг/кг) и М-холинолитик метамизил в дозе, вызывающей 100% подавление полового поведения - 7 мг/кг за 45 мин до тестирования на ГШ (рис. ЗБ).

□ Контроль □Апоморфин ШШетамизил +Апоморфин

Рис 3. Влияние холинергических и дофаминергических средств на половую активность гипогонадных самцов крыс А - Влияние однократной инъекции галантамина и галоперидола на половую активность ТТЭ крыс. Б - Влияние однократной инъекции апоморфина и метами-зила (7 мг/кг) на половую активность ГГЭ крыс. Контролем являются показатели половой активности до премедикации.

Результаты исследования, представленные на рис. 3 показали, что галанта-мин, как и апоморфин стимулировали половую активность самцов. При этом антагонист дофаминергической системы галоперидол ингибировал активирующий эффект агониста холинергической медиаторной системы галантамина, но не блокировал полностью половую функцию. И наоборот, антагонист М-холинергичес-кой системы метамизил блокировал активирующий эффект агониста дофаминергической системы апоморфина. Это означает, что центральные регуляторные механизмы этих медиаторных систем на половую функцию самцов мало зависимы

друг от друга. При этом, холинореактивная система по степени стимулирующего действия на половую функцию у гипогонадных самцов была сопоставимо с эффектом дофаминергической системы.

Вышеизложенные данные не исключают возможность реализации эффекта холинергической системы на половую активность через активацию дофаминергической системы структур мозга, участвующих в регуляции половой функции, поскольку известно, что холинергические механизмы мозга посредством М-холинорецепторов модулируют метаболизм многих нейромедиаторов, включая и дофамин, которые непосредственно регулируют процессы мотивации и компоненты коитуса (Marshall, 1977; McGehee, 1997; Grady, 2001).

Взаимодействие галантамина с дегидроэниандростсроном в усилении половой функции у гипогонадных самцов

Нейростероиды обладают способностью воздействовать на активность различных нейромедиаторных систем мозга и вызывают значительное разнообразие биологических эффектов (Flood, 1988; Baulieu, 1996).

Таблица 5

Количественные показатели полового поведения у гемигонадэктомированных самцов после инъекций галантамина, ДГЭА и их комбинации (М±т)

Показатели половой функции Контроль ГГЭ Галантамин 0,5 мг/кг 1-кратная инъекция ДГЭА 5 мг/кг 7-кратная инъекция Галантамин 0,5 мг/кг + ДГЕА 5 мг/кг

1 -кратная инъекция 7-кратная инъекция

Садки (п) 9,6±1,93 15,6±1,1* 12,1±2,Г 17,5±1,4* 19,2±3,3*

Латентный период садок (с) 16,5±2,5 14,3±1,2 13,2±1,2* П,3±2,Г 9,7±1,7*

Интромиссии (п) 4,9±2,04 7,1±1,01* 7,2±2,12 16,4±1,4* 12,2 ±2,3*

Латентный период интромиссий (с) 213,5±96,1 69,5±5,Г 62,8±8,7* 44,5±3,5* 32,1±5,2*

Эякуляции (п) 0,54±0,25 1,43±0,2* 0,85±0,12* 1,65±0,21* 2,15 ±0,22*

Латентный период эякуляций (с) 295,4±94,1 236,4±42,7 260,2±52,5 205,0±42,5* 18 7,1 ±24,3*

Межэякуляторный интервал (с) 427,7±71,3 381,5±23,4 430,0±51,3 356,3±42,5 307,2±63,Г

Период восстановления (с) 297,3±37,7 300,3±19,5 301,4±42,7 310,1±22,6 245,8±38,6

Примечание. *р<0,05 по отношению к контрольной группе.

В хроническом эксперименте исследовали влияние ДГЭА на половую функцию ГГЭ самцов (табл. 5). Комбинированное применение галантамина с нейро-

стероидом ДГЭА значительно модифицировало структуру полового поведения самцов. Инъекция только ДГЭА в течение 7 дней усиливала половое поведение гипогонадных самцов по сравнению с контролем. После 7-кратного введения ДГЭА и однократной инъекции галантамина перед тестированием половая функция самцов усиливалась до степени, сравнимой с интактными самцами. Комбинированное введение препаратов усиливало как связанные с мотивацией центральные компоненты, так и периферические копуляторные характеристики половой функции.

С целью изучения механизма действия ДГЭА на половую функцию самцов была проведена оценка его влияния на нейромедиаторный статус в лимбической системе и на концентрацию рецепторов к андрогенам (РА) в гипоталамусе в условиях дефицита половых гормонов в хроническом опыте.

Влияние ДГЭА на нейромедиаторный статус гипогонадных самцов крыс. Двусторонняя гонадэктомия у крыс приводила к значительному изменению содержания всех определяемых нейромедиаторов и их метаболитов в структурах лимбической системы и гипоталамуса по сравнению с интактной группой. Инъекции ДГЭА в дозе 0,7 мг/кг, способствовали восстановлению исходного уровня моноаминов - 5-ГТ, ДА, НА и их основных метаболитов 3,4-МГФГ, 5-ГИУК и ГВК (а также коэффициентов метаболит/медиатор), сопоставимому с аналогичными данными у интактной группы животных (рис. 4).

ДГЭ самцов до и после введения дегидроэпиандростерона По оси ординат: концентрация моноаминов в пмоль/г сырой ткани. По оси абсцисс: 1 - НА, 2 - МГФГ, 3 - МГФГ/НА, 4 - 5-ГТ, 5 - 5-ГИУК, 6 - 5-ГИУК/5-ГТ, 7 - ДА, 8 - ДОФУК, 9 - ДОФУК/ ДА. Штриховки: темная - интактная группа, точечная - гонадэктомированная группа, горизонтальная - ДГЭ + дегидроэпианд-ростерон 0,1 мг/кг, вертикальная - ДГЭ + дегидроэпиандростерон 0,7 мг/кг. *р<0,05 по отношению к контрольной гонадэктомированной группе.

Результаты исследования свидетельствуют, что ДГЭА, оптимизируя уровень биогенных моноаминов в структурах лимбической системы мозга и гипоталамуса, оказывает существенное влияние на гормонозависимые поведенческие процессы у самцов крыс после гонадэктомии.

Влияние ДГЭА на концентрацию рецепторов андрогенов в гипоталамусе. У ДГЭ самцов в преоптической области гипоталамусе (ПОГ) с помощью радиолигандного связывания (3Н)-тестостерона определяли концентрацию РА. Отмечали снижение уровня цитозольной фракции РА и значительное падение количества ядерной фракции РА в ПОГ области через 3 недели после удаления гонад по сравнению с контрольной группой (рис. 5). Такие же изменения были характерны и для ГТЭ крыс, хотя у них снижение количество рецепторов было менее выраженным. Наиболее четкие изменения в содержании РА отмечались после 10-дневного введения нейростероида в дозе 0,7 мг/кг ДГЭ самцам, что приводило к достоверному повышению уровня как цитозольной, так и ядерной фракции РА в гипоталамусе (р<0,05). При введении низкой дозы нейростероида (0,1 мг/кг) как у ДГЭ, так и у ГГЭ самцов крыс концентрация РА менялись незначительно.

нов в ПОГ головного мозга у гонадэктомированных самцов крыс после 10-

дневного курса введения дегидроэпиандростерона По оси ординат - уровень рецепторов в % по отношению к интактным (100%), По оси абсцисс: Инт - интактная группа; Конт - контрольная ГГЭ и ДГЭ группа; грЗ - группа, получившая 0,1 мг/кг ДГЭА; гр4 - группа, получившая 0,7 мг/кг ДГЭА. *р<0,05 по сравнению с контрольной группой.

Можно предположить, что повышение количества РА в ПОГ под влиянием ДГЭА связано с изменением гормонального статуса в организме после введения нейростероида посредством 5а-редуктазного превращения ДГЭА в 5а-дигидро-тестостерон (El Attar, 1965), который, в свою очередь, может инициировать синтез РА, необходимых для реализации половой функции. В геномном механизме рецепторы ДГЭА действуют как факторы транскрипции, участвуя в регулировании

гена с последующим изменением скорости биосинтеза белка, что обеспечивает молекулярную основу широкого спектра их действия на функции нейронов (Evans, 1988; McEwen, 1991).

Таким образом, влияние ДГЭА на усиление половой функции гипогонадных самцов обусловлено как его геномным действием на синтез РА на уровне ПОГ области гипоталамуса, так и негеномным модулирующим влиянием на уровень нейромедиаторов как в самом гипоталамусе, так и в других структурах головного мозга, которые функционально взаимосвязаны с гормон-продуцирующими ядрами гипоталамуса. Эти свойства ДГЭА могут быть использованы для восстановления адекватного полового поведения и половой функции при различных состояниях, ассоциированных с дефицитом андрогенов.

Роль М- и Н-холинергических систем в реализации половой функции в условиях стресса

Некоторые факторы внешней среды, в их числе стрессорные, оказывают повреждающий эффект на баланс нейромедиаторов в структурах мозга, которые, в свою очередь, инициируют нарушение поведенческих состояний организма и полового поведения в том числе.

Острый иммобилизационный стресс (ОС). В эксперименте одна из двух испытуемых групп животных за 30 мин до ОС с целью активирования М-холинергических механизмов подвергалась комбинированной премедикации галантамином (1 мг/кг) и ганглеронам (5 мг/кг). Животным контрольной группы вводили изотонический раствор хлорида натрия.

Рис. 6. Влияние 6-часового иммобилизационного стресса на структуру половой функции у контрольных крыс, после ОС и животных, предварительно получавших холинотропные препараты, - галантамин 1 мг/кг и ганглерон в дозе 5 мг/кг (ОС+Пр). Показатели контрольной группы приняты за 100%.

Результаты поведенческих исследований показали, что ОС продолжительностью 6 ч вызывало угнетение половой активности - происходило достоверное снижение САД, ИМС и ЭЯК (соответственно на 18,7%, 19,4% и 24,1%, р<0,05) и

увеличение временных компонентов в значительных пределах (рис. 6). Премеди-кация препаратами галантамина и ганглерона перед стрессом вызывала изменение показателей половой активности в противоположном направлении: наблюдалось увеличение САД, ИМС и ЭЯК (соответственно на 43,3%, 67,5% и 39,6%, р<0,01) и снижение временных параметров ПП - сокращения времени МЭИ на 36,1% (р<0,01) и ПВ на 29,0% (р<0,01) по сравнению с ОС группой, что свидетельствовало о повышении у них половой активности.

Рис. 7. Влияние 6-часовой иммобилизации на

содержание медиаторов в дорсальном гиппокампе у контрольной (К) и стресссированных (ОС) групп, а также у самцов, получавших галантамин 1 мг/кг и ганглерон в дозе 5 мг/кг (ОС+Пр). *р<0,01 по сравнению с ОС группой.

Результаты нейрохимических исследований медиаторного статуса головного мозга у испытуемых групп животных показали, что 6-часовой ОС вызывает резкий дисбаланс в содержании нейромедиаторов и их метаболитов в исследуемых структурах мозга (рис. 7). Премедикация холинотропными препаратами значительно изменяла баланс медиаторов в головном мозге у испытуемых крыс в период стрессорного воздействия, приближая их статус к значениям интактной группы. Более выраженные изменения наблюдались в содержании ДА в гиппокампе.

Таким образом, результаты нейрохимических исследований свидетельствуют, что влияние холинотропных препаратов на половую активность при стрессе, помимо прямого действия на М-холинергические нейрональные механизмы, обусловлена также модуляцией активности основных нейромедиаторных систем, которые непосредственно регулируют процессы мотивации и компоненты коитуса (Marshall, 1977; McGehee, 1997; Gladkova, 2000), в большей степени в результате дофаминпротекторного эффекта.

Одним из механизмов стрессорного воздействия на половую активность может быть гормональный фактор. Полученные нами данные свидетельствуют о том, что после 6-часового ОС содержание тестостерона в крови значительно снижалось (рис. 8А). Премедикация холинотропными препаратами достоверно предотвращала падение уровня тестостерона во время ОС. В хроническом опыте хо-линотропные препараты не оказывали заметного влияния на уровень тестостерона в крови (рис. 8А). Защитный эффект холинотропных препаратов, по нашему мнению, основан на блокировании выброса кортикоидных гормонов надпочечниками в результате ганглиоблокирующего действия ганглерона, который прерывал развитие физиологических эффектов стресса на уровне эндокринной системы.

Рис. 8. Влияние холинотропных препаратов на содержание гормонов в крови у

стрессированных крыс А - Уровень гормонов в крови у контрольных (К), остро стрессированных групп (ОС) и крыс, получавших галантамин (1 мг/кг) и ганглерон (5 мг/кг) перед острым стрессом (ОС+Пр), а также после 6-часового иммобилизационного стресса. Шкала по оси ординат - МЕ/л для ЛГ и ФСГ. *р <0,05 по отношению к ОС группе. Б -Уровень Тс в крови у контрольных (К), остро стрессированных (ОС) крыс и после хронического 7-дневного (ХС) шумового стресса, а также у крыс, получавших галантамин (1 мг/кг) и ганглерон (5 мг/кг) при остром (ОС+Пр) и хроническом стрессе (ХС+Пр).

Таким образом, стресспротекторноое свойство галантамина проявляется только при остром стрессе и механизм действия холинотропных препаратов на реализацию половой функции самцов в условиях ОС, помимо прямой активации М-холинергической системы мозга, обусловлен также модуляцией активности основных нейромедиаторных систем, которые непосредственно регулируют процессы мотивации и компоненты коитуса.

Влияние холинотропных препаратов на онтогенетическое развитие половой функции

Эмбриональный период онтогенеза играет исключительно важную роль в развитии головного мозга. Большинство факторов внешней среды, воздействующих на развивающийся мозг в этот период, способны нарушить нормальный онтогенез нейромедиаторных систем мозга, изменения активности которых могут коррелироваться поведенческими дефицитами во взрослом состоянии (\ViUiams, 1992; 81оИст, 2004).

Влияние М- и Н-холинолитиков на пренатальное развитие моноаминер-гической системы головного мозга у 20-дневных плодов крыс. Беременным самкам на 9-11, 12-14 и 17-19 сутки гестации производились троекратные внутримышечные инъекции (1 раз в день) Н-холиноблокатора ганглерона 10 мг/кг или М-холиноблокатора метамизила 2 мг/кг. Анализ медиаторного статуса головного

мозга 20-дневных эмбрионов крыс различного генетического пола показал, что пренатальное воздействие центральных холинолитиков на 9-19 дни гестации вызывает дисбаланс в содержании нейромедиаторов и их метаболитов в головном мозге эмбрионов к 20-му дню пренатального развития по сравнению с контролем.

Рис. 9. Метаболизм дофамина и серотонина в головном мозге 20-дневных

эмбрионов крыс

По оси ординат: А - содержание медиатора в головном мозге (нг/г сырой ткани); Б - индексы оборота метаболит/медиатор. *р<0,05 по сравнению с контрольной группой.

У эмбрионов самцов при пренатальной экспозиции ганглерона на 9-11 сут пренатального развития (группа Г10) отмечено достоверное снижение концентрации ДА (рис. 9). В группе Г10 снижение содержания ДА сопровождалось увеличением его оборота. При введение ганглерона на 12-14 сут гестации отмечали значительное увеличение уровня ДА (на 29,9%, р<0,01). Концентрация 5-ГТ в мозге эмбрионов была достоверно снижена во всех периодах пренатального воздействия метамизила. В группах с иренатальным воздействием ганлерона достоверное снижение уровня 5-ГТ в мозге эмбрионов отмечалось при введение препарата на 9-11 и 17-19 сут пренатального развития. В отличие от ДА, оборот 5-ГТ у эмбрионов самцов оставался стабильным во всех исследуемых группах.

Таким образом, результаты исследований свидетельствуют, что модуляция М- и Н-холинергической системы развивающегося мозга плода на 9-19 сут гестации приводит к значительным нарушениям активности основных медиагор-ных систем в головном мозге эмбрионов к 20-му дню пренатального развития. Соответственно, механизмы пренатального воздействия различных химических факторов с холинолитическими свойствами могут быть опосредованы как М-холинергической, так и Н-холинергической системой. При этом серотонинерги-ческая медиаторная система чувствительна к воздействию как метамизила, так и ганглерона, тогда как дофаминергическая система головного мозга эмбрионов была более чувствительна к воздействию Н-холинолитика ганглерона.

Отдаленные нейрохимические последствия пренатального воздействия селективных М- и Н-холинолитиков у 2-месячных потометв крыс. Прена-

тальное воздействие некоторых нейротропных средств вызывает не только нарушение развития головного мозга эмбрионов, но и способствует отдаленным нарушениям синаптической функции нейронов мозга, поведенческой деятельности потометв (Levin, 1998; Slotkin, 2004).

В наших экспериментах воздействие холинотропными препаратами центрального действия с избирательной М- и Н-холинергической активностью (ме-тамизил и ганглерон) на плод беременных самок в процессе пренатального развития приводило к отдаленным изменениям активности моноаминергической системы мозга у 2-месячных потометв крыс (рис. 10).

Гиппокамп. Нейрохимический статус в гиппокампе потометв крыс, подвергнутых пренатальному воздействию холинолитиков, характеризовался значительным снижением концентрации ДА, НА и 5-ГТ, в большей степени ДА (рис. 10). У крыс, подвергнутых пренатальному воздействию ганглероном, уровень ДА был снижен в значительных пределах (1,5-2,5 раза, р<0,001). Наибольшее падение уровня ДА отмечали в группе с введением ганглерона на 9-11 сут гестации, хотя в группах с пренатальным воздействием метамизила содержание ДА в гиппокампе не было изменено. Снижение концентрации НА в гиппокампе наблюдалось только в группах Г10 и Г13 (соответственно 67% и 70%, р<0,001). В отличие от других медиаторов уровень 5-ГТ в гиппокампе был снижен у всех групп обоих полов по сравнению с контрольным потомством.

5,0 -;--

р<0,05

т ш m

й№

№ W: т Л

|-Ь|

I I О'' 2: со il- СО/ т- ' Of 1 И

ДА

т * p<0,05

* rf-j 1*1 Й

*T

¡XT.

щ.

щ Ш.

т ■iL Ей щ

5-ГТ

pcO.OS |-)р

--т

ш

1

J

Рис.10. Содержание нейромедиаторов ДА, НА и 5-ГТ (нг/г сырой ткани) в гиппокампе 2-месячных потомств-самцов крыс, подвергнутых воздействию ганглерона и метамизила в разные сроки пренатального развития

Данные, приведенные в табл. 6, свидетельствуют об увеличении оборота ДА и 5-ГТ в гиппокампе у потомства, пренатально подвергнутому воздействию как метамизилом, так и ганглероном.

Таблица 6

Оборот нейромедиаторов ДА и 5-ГТ в пиппокампе и гипоталамусе у 2-месячных потомств крыс, подвергнутых пренатальному воздействию М- или Н-холинолитика в разные сроки пренатального развития (М±т)

Группы Гиппокамп Гипоталамус

Дофамин Серотонин Дофамин Серотонин

Контроль 0,244±0,018 0,976±0,068 0,637±0,037 0,608±0,035

Г-10 0,228±0,026 1,120±0,061 0,470±0,023* 0,578±0,041

Г-13 0,194±0,022 1,192±0,078* 0,461±0,030* 0,636±0,028

Г-18 0,340±0,020* 1,134±0,062* 0,540±0,026 0,587±0,032

М-10 0,344±0,022* 1,240±0,059* 0,378±0,033* 0,53 8±0,039

М-18 0,402±0,031 * 1,188±0,069* 0,490±0,041' 0,550±0,039

Примечание. *р<0,05 по отношению к контрольной группе.

Гипоталамус. Нейрохимический статус в гипоталамусе 2-месячных потомств крыс, подвергнутых пренатальному воздействию холинолитиками, характеризовался значительным снижением дофаминергической активности по отношению к контролю (табл. 7). По сравнению с метамизилом пренатальное воздействие ганглерона вызывало более значительные изменения уровня ДА, НА и 5-ГТ в гипоталамусе самцов. Обмен НА в гипоталамусе характеризовался снижением уровня медиатора у потомств Г18, и в большей степени Г10 (снижение на 26,2%, р<0,001), по сравнению с контролем и с группой М10-М18.

Таблица 7

Содержание нейромедиаторов ДА, НА и 5-ГТ (нг/г сырой ткани) в гипоталамусе у 2-месячных самцов крыс, подвергнутых пренатальному воздействию ганглерона или метамизила в разные сроки пренатального развития

Группы Дофамин Норадреналин Серотонин

Контроль 0,312±0,018 1,826±0,085 1,178±0,041

Г-10 0,213±0,008* 1,276±0,041* 0,892±0,022

Г-13 0,197±0,019* 1,591±0,112* 0,866±0,019*

Г-18 0,202±0,026* 1,340±0,090* 0,761±0,030*

М-10 0,288±0,011 1,923±0,051 1,345±0,041

М-18 0,257±0,020* 1,618±0,052 1,217±0,038

Примечание. *р<0,05 по отношению к контрольной группе.

Наибольшие изменения оборота нейромедиаторов в гипоталамусе были выявлены в отношении ДА (табл. 6). Индексы отношения 5-ГИУК/5-ГТ были более стабильными, тогда как оборот НА был повышенным, что свидетельствовало об увеличении НА-ергической синапти ческой активности в гипоталамусе.

Миндалина. Динамика уровня нейромедиаторов в миндалине была аналогична таковой в гиппокампе, что еще раз подтверждает их морфофункцио-нальную общность в пределах лимбической системы.

i

НА

*- р<0.05

ÍI

гЬ

Í1

ДА

i №

g Ф ¿I -ь

ш

• Г3!

с ЕЙ

| о. п ев №

§ l¿: ti: 5

5-ГТ

[Ьх

Рис.11. Содержание нейромедиаторов ДА, НА и 5-ГТ в миндалине 2-месячного потомства самцов крыс, подвергнутых воздействию ганглерона или метамизила в различные сроки пренатального развития

Полученные данные свидетельствуют о значительном снижении содержания медиаторов ДА, 5-ГТ и НА б миндалине самцов, пренатально подвергнутых воздействию ганглероном, особенно при его введении на 10-13 дни гестации (рис. 11). Изменение медиаторного статуса в миндалине может оказать влияние на функционирование других структур мозга, участвующих в регуляции половой функции, посредством нейрональной связи этой структуры с гиппокампом и гипоталамусом. Показано, что разрушение гипоталамо-амигдалярных связей, повреждение или раздражение самой миндалины приводит к нейрогуморальным сдвигам и нарушениям сексуального поведения (Акмаев И.Г., 1993; Swanson, 1998; Domínguez, 2001). Вполне вероятно, что в эффектах холинолитиков на половое и адаптивное поведение большое значение может иметь именно оптимизация интегративных связей в пределах лимбической системы и гипоталамуса.

Половой диморфизм. В отдаленных эффектах пренатального воздействия холинолитиков на дофаминергическую систему был выявлен половой диморфизм (рис. 12). Так, у самцов снижение концентрации ДА в структурах мозга наблюдалось у потомства, которое подвергалось пренатальному введению Н-холинолитика ганглерона, а у самок - преимущественно пренатальному воздействию М-холинолитика метамизила.

Рис. 12. Половой диморфизм по содержанию ДА (нг/г сырой ткани) в гиппокампе 2-месячного потомства крыс, подвергнутых воздействию ганглероном или метамизилом в разные сроки пренатального развития.

Обозначения: б1, $ - знаки генетического пола потомства, соответственно самцы и самки.

Таким образом, результаты исследования свидетельствуют, что воздействие М- и Н-холиноблокаторов в период пренатального развития плода вызывает отдаленные изменения нейромедиаторной активности в гиппокампе, гипоталамусе и миндалине, участвующих в регуляции поведенческих и нейроэндокринных функций у 2-месячного потомства. Проявляется половой диморфизм в отношении содержания ДА в структурах мозга.

Половая функция половозрелого потомства самцов, подвергнутых прена-тальному воздействию М- и Н-холинолитиков

Различные нейрохимические изменения в эмбриональном мозге, вызванные воздействием нейротропных соединений в пренатальном периоде, обусловливают развитие функциональных нарушений и поведенческих расстройств у взрослого потомства (Everitt et al., 1997; Levin et al., 1998). Исследование исходной половой активности и динамики приобретения полового опыта у 3,5-4-месячных самцов крыс показали, что введение метамизила и ганглерона беременным самкам в различные сроки гестации вызывает отдаленные нарушения половой функции у половозрелых потомств (рис. 13). В первом тесте на проявление первичной половой активности отмечали значительное снижение половой функции у потомства, подвергнутого пренатальному воздействию ганглерона (группы Г10-Г18). Среди самцов этой группы было выявлено наибольшее число особей, у которых полностью отсутствовали какие-либо элементы половой активности (далее «неактивные» самцы). У потомства, подвергнутого воздействию метамизила в пренатальном периоде (группы Ml 0-М 18), количество «неактивных» самцов было значительно меньше, а после приобретения полового опыта сокращалось до 1 -2 особей как по копулятивной (рис. 13Б), так и по эякуляторной активности (рис. 13А). Данный факт можно объяснить тем, что воздействие метамизила в пренатальном периоде по сравнению с ганглероном вызывало менее значимые отдаленные нарушения в нейромедиаторной активности в структурах мозга и эндокринных изменений (рис. 14) у 2-месячного потомства.

р<0,05

"É"

á

•'nil

; 2,5

2.0 f— I 1.5

¡'■ОН

0,5 0,0

ДА

rfi--

р<0,05

¿P

ДА -$

ЮЗА -1 □ ЗА -4

¡ЬлО,

Рис. 13. Динамика половой активности у потомств по данным проявления эякуля-торного и копуляторного (садки + интромиссии) поведения в 4 последовательных тестах на ГТП (приведены данные 1-го и 4-го тестов) А - число «неактивных» самцов по проявлению эякуляторной активности (ЭА), по сравнению с контрольным потомством (К). Б - число «неактивных» самцов по проявлению копуляторной активности (КА) у самцов этих же групп. Темные столбики - число «неактивных» самцов в 1-ом тесте на ПП, светлые столбики -число «неактивных» самцов в 4-ом тесте на ПП.

Согласно исследованиям А.И. Гладковой (2000), интенсивность полового поведения самцов зависит от наличия соответствующего опыта и она нарастает от теста к тесту и количественные значения сексуальности крыс-самцов практически не меняются после третьего контакта с самками. Анализ элементов полового поведения в динамике (от 1-го к 4-му тесту) показывал, что наиболее выраженные различия в интенсивности приобретения полового опыта между потомством, в пренатальном периоде развития получившим ганглерон или метамизил, наблюдались в завершающем элементе половой функции - в эякуляторной активности.

У потомства Г10-Г18 позитивная динамика проявлялась только по копуляторной активности, а по количеству эякуляторной активности динамика роста полового опыта отсутствовала. Количество «неактивных» самцов по этому показателю в группах П0-Г18 составляло приблизительно половину от их общего числа (от 4 до 7 особей), участвующих в тестировании на половое поведение (рис. 13). Характерной особенностью полового поведения самцов этих групп являлось отсутствие выраженной динамики приобретения полового опыта к 4-му тесту.

Структура половой функции самцов группы Г10-П8 с приобретенным половым опытом характеризовалась очень низкими значениями копуляторных компо-

нентов и их высокой латентностыо. Уровень эякуляторной активности был крайне низким (0,50±0,16 эякуляций у потомства Г10 против 1,90±0,18 у контрольного потомства). Высокая латентность садок у самцов группы Г10 и в меньшей степени Г13 свидетельствовала о значительной повреждении мотивационного компонента половой функции (табл. 8).

Таблица 8

Динамика полового поведения у половозрелых потомств крыс, подвергнутых воздействию ганглерона (Г) или метамизила (М) в пренаталыюм периоде, в процессе

приобретения полового опыта: 1-е и 4-е тестирование(М±т)

Группы Садки (п) Латентный период садок (с) 1 Интромиссии (П) Латентный период интро-миссий (с) Эякуляции (п) Латентный период эякуляций (с) Межэяку ля- торный интервал (ск) Период восстановления (с)

К-1 9,70 ±1,93 123,2 ±42,8 6,10 ±1,08 166,2 ±42,6 1,20 ±0,20 369,8 ±65,0 504,0 ±49,5 328,0 ±26,7

К-4 15,8 ±2,15 23,6 ±28,3 9,50 ±1,65 73,8 ±35,8 1,90 ±0,18 297,4 ±48,9 362,6 ±39,5 270,3 ±15,6

Г-10-1 6,8 ±2,70 255,6 ±149,3 3,90 ±1,80 320,8 ±139,3 0,30 ±0,15 449,0 ±44,2 - 288 ±39,7

Г-10-4 9,80 ±3,22* 89,1 ±33,6* 6,10 ±2,09* 50,7 ±25,5 0,50 ±0,27* 312,7 ±49,8 457,5 ±56,5 325,3 ±29,0

Г-13-1 17,6 ±3,11 188,8 ±60,4 9,40 ±1,36 237,9 ±54,7 0,70 ±0,21 521,3 ±85,6 509,0 ±0,00 282,5 ±11,8

Г-13-4 17,1 ±3,1 26,0 ±9,0 11,4 ±2,1 53,9 ±16,0 0,90 ±0,17* 278,8 ±53,0 403,5 ±29,1 307,7 ±23,2

Г-18-1 12,5 ±2,54 117,5 ±34,1 5,20 ±1,17 201,5 ±43,7 0,60 ±0,22 288,4 ±30,4 562,0 ±34,5 327,2 ±17,8

Г-18-4 28,9 ±3,76* 16,9 ±3,30* 15,2 ±2,19* 69,1 ±15,3 1,07 ±0,16* 525,8 ±22,2* - 348,8 ±26,9

М-10-1 18,3 ±3,57 27,8 ±3,44 11,0 ±2,0 58,5 ±10,2 0,89 ±0,26 512,7 ±88,1 509,5 ±49,5 328,2 ±44,4

М-10-4 17,8 ±3,90 13,4 ±4,97* 10,0 ±2,31 46,1 ±9,72 1ДЗ ±0,23* 571,6 ±88,4* 479,5 ±36,5* 296,3 ±36,2

М-13-1 13,6 ±3,54 64,7 ±17,5 7,50 ±1,95 91,3 ±16,9 1,13 ±0,30 310,5 ±44,4 461,0 ±55,2 336,3 ±38,4

М-13-4 12,3 ±2,16 19,3 ±3,98 5,00 ±0,96* 69,7 ±5,66 1,50 ±0,27* 227,7 ±36,4 453,8 ±21,4* 345,6 ±20,8

М-18-1 6,70 ±1,84 123,0 ±26.6 4,00 ±1.23 165,2 ±33,2 1,00 ±0,30 223,3 ±29,5 428,0 ±45,8 318,7 ±33,6

М-18-4 13,9 ±4,2 18,4 ±3,62 6,8 ±1,83* 53,8 ±5,48 1,8 ±0,25 252,4 ±56,5 436,5 ±30,2 278,2 ±19,6

Примечание. *р<0,05 по отношению к контрольной К-4 группе.

У самцов М10-М18 с приобретенным половым опытом различие в половой активности по сравнению с контрольным потомством были менее выражены, за исключением группы М10, у которых отмечали достоверно низкое значение эякуляторной активности без изменения времени латентности садки.

Половая дисфункция у взрослого потомства, вызванная пренатальным воздействием холинолитиков, по нашему мнению, обусловлена нарушением нейрональ-ных и эндокринных механизмов. Результаты нейрохимических исследований, приведенные выше, подверждают участие Н-холинергических механизмов в поведенческих половых нарушениях у потомства самцов. Механизм реализации этих нарушений связан со свойствами Н-холинорецепторов, которые участвуют в регуляции катехоламинергической системы в ЦНС и высвобождении медиаторов ДА, НА или 5-ГТ, непосредственно вовлеченных в регуляцию мотивации и компонентов коитуса у половозрелых потомств. Н-холинорецепторы особенно изобилуют в подкорковой области мозга в течение раннего развития плода. Можно предположить, что ганглерон посредством блокады Н-холинергических рецепторов вызывал нарушение формирования и становления нейромедиаторных систем развивающегося мозга эмбриона, что может способствовать стойкому снижению синаптической активности исследуемых медиаторных систем в гиппо-кампе и гипоталамусе 2-месячных потомств крыс по сравнению с контролем. Выявленный дисбаланс в нейромедиаторной активности в свою очередь, может предопределить возникновение половой дисфункции у фертильных самцов.

В пренатальных эффектах холинолитиков на половую функцию потомств прослеживается определённый парадокс, который заключается в том, что в пределах холинергической системы половая активность зрелых самцов регулируется в основном М-холинергическими механизмами, а в пренатальном периоде она более зависима от активности Н-холинергической системы.

Таким образом, результаты исследований показывают, что введение беременным самкам ганглерона, и в меньшей степени метамизила, в различные сроки гес-тации приводит к нарушениям сексуальной активности у потомства: отмечается значительное снижение половой функции, отдельных показателей полового поведения и интенсивности приобретения полового опыта.

Эндокрннные изменения у потомств самцов, подвергнутых пренаталь-ному воздействию М- и Н-холинолитиков

Другим механизмом, опосредующим отдаленное воздействие холинолитиков на половую функцию потомств, вероятно, является вовлеченность эндокринных факторов. Результаты проведенных исследований подтвердили наличие гормональных нарушений у половозрелых потомств (рис. 14). Отмечали значительное снижение тестостерона у потомств, подвергнутых пренатальному введению ганглерона в различные сроки гестации с максимально низким значением у потомства группы Г13 (снижение в 2,4 раз). Обнаружено также достоверное снижение уровня тестостерона у потомства с пренатальным воздействием метамизила - в группе М18. Повышенная динамика ФСГ у всех опытных групп была недостоверной по отношению к контролю, тогда как уровень ЛГ у потомств с пренатальным воздействием ганглерона был достоверно повышен.

-h

rh

гп

Hh

Тестостерон

1,2

Ш

0,8

4i

i

i

Рис. 14. крови у 2-

Содержание тестостерона и гонадотропных гормонов в сыворотке месячных потомств крыс (*р<0,05 по отношению к контрольной группе).

Низкий уровень тестостерона у потомства Г10-13 может способствовать альтерации как мотивационного, так и эякуляторного компонентов полового поведения. Сниженный уровень тестостерона у потомства Г10-18 коррелировал с низкой половой активностью и, наоборот, у более сексуально активных самцов группы М10-18 определялся более высокий уровень тестостерона. Результаты исследования свидетельствуют, что изменение гормонального фона наряду с нейрональными факторами, вероятно, также может быть причиной нарушения половой функции у потомств, подвергнутых пренатальному воздействию центральных холинолитиков.

Результаты перинатальных исследований позволяют заключить, что эффекты пренатального введения холинотропных препаратов на половую активность потомства самцов обусловлены нарушением центральных нейрональных механизмов регуляции половой функции вследствие стойких изменений активности основных медиаторных систем мозга, в большей степени дофаминергической системы, а также значительным снижением уровня основного андрогена тестостерона.

Влияние стресса на половое поведение потомств самцов, подвергнутых пренатальному воздействию М- и Н-холинолитиков

Устойчивость организма к факторам стресса была исследована по проявлению половой функции у потомств самцов, которые были наиболее чувствительны к инъекциям Н-холинолитика ганглерона на 9-11 или 12-14 сут гестации (соответсвтенно группы Г10 и Г13) и М-холинолитика мегамизила на 9-11 сут гестации (группа М10).

Результаты поведенческих исследований показали, что стрессовое влияние может модифицировать компоненты полового поведения интактных самцов контрольной группы в зависимости от длительности воздействия стрессорного фактора (рис. 15).

на латентный период садки (ЛПС) и количество эякуляций (ЭЯК) у потомств крыс, пренатально подвергнутых воздействию холинотропными препаратами (*р<0,05 по отношению к дострессовым значениям)

В отличие от контрольной группы, у которых 3-часовой ОС не вызывал достоверных изменений половой активности, у потомств Г10, Г13 и М10 как кратковременный, так и длительный ОС вызывал значительное нарушение половой функции. Полученные данные свидетельствуют о низкой устойчивости к факторам стресса у потомств самцов, подвергнутых пренатальиому воздействию М- и Н-холинолитиками, при реализации половой функции.

Коррекция половой дисфункции самцов, подвергнутых нренатальному воздействию М- и Н-холинолитиков

Самцы крыс, подвергнутые пренатальному воздействию Н-холинолитика ганглерона, характеризующиеся низкой половой активностью, оказались чувствительными к эффектам препаратов холинергической и дофаминергической систем (табл. 9). Холинотропные препараты ареколин (2 мг/кг), галантамин с ганглеро-ном (1 мг/кг + 5 мг/кг) и агонист дофаминергических рецепторов апоморфин (1 мг/кг) значительно усиливали половое поведение.

Полученные данные свидетельствуют, что коррекция половой активности происходил лишь в течение периода действия препаратов в течение 1 суток. На 7 день после введения стимулирующих препаратов количественные и качественные характеристики полового поведения самцов крыс возвращаются к исходному уровню.

Пренатальное воздействие холинолитиков также способствовало появлению высокой чувствительности половой функции потомств к эффектам антагонистов холинергичесих и дофаминергических систем. Метамизил (3 мг/кг) и галоперидол (0,6 мг/кг) в дозах, подавляющих половую активность интактных крыс только на 45-55%, полностью блокировали проявление половой функции у потомств ПО, Г13 и М10 групп.

Таблица 9

Половое поведение у группы Г13 после воздействия холинергических и дофами-__ нергических препаратов (М±т) _

Группа Г13 Садки (п) Латентный период садок (с) Интромиссии (П) Латентный период интро-миссий (с) Эякуляции (п) Латентный период эякуляций (с) 1 Межэяку ля- торный интервал (с)

Контроль 17,1 ±3,1 26,0 ±9,0 11,4 ±2,1 53,9 ±16,0 0,90 ±0,17 278,8 • ±53,0 403,5 ±29,1

Ареколин - 7 сутки 29,6 ±1,3' 13,3 ±2,0* 17,1 ±2,9* 29,5 ±3,2* 1,83 ±0,22* 184,4 ±36,4* 313,4 ±41,2*

14,1 ±2,1 21,9 ±3,8 10,1 ±2,9 42,3 ±7,8 1,04 ±0,18 267,0 ±41,5 394,1 ±54,3

Галантамин + ганглерон - 7 сутки 24,6 ±2,8* 12,4 ±2,5* 18,8 ±3,1' 28,7 ±4,7* 1,55 ±0,19* 198,3 ±36,0* 329,1 ±39,5*

16,6 ±2,1 30,5 ±4,1 12,0 ±2,4 55,8 ±7,2 1Д ±0,17 288,2 ±41,5 386,0 ±50,6

Апоморфин - 7 сутки 31,6 ±4,4* 8,3 ±2,3* 21,2 ±3,8* 23,3 ±5,9* 1,97 ±0,30* 166,2 ±32,1* 320,5 ±52,6*

19,9 ±3,0 24,2 ±3,6 12,2 ±1,2 45,4 ±6,7 1,09 ±0,18 237,3 ±38,2 425,0 ±57,9

Примечание. *р<0,05 по отношению к контрольной группе.

Гормонозависимая модификация биоэлектрической активности головного мозга препаратами М- и Н-холинергнческой системы

Эффективность функционирования холинергических механизмов головного мозга и их участие в таких интегративных процессах как половая функция, определяется холиночувствителыюстью тех нейронных популяций, которые вовлекаются в осуществление соответствующей функции. Поэтому исследование перестроек холинореактивных свойств церебральных нейронов у гонадэктомирован-ных животных при различных формах нервной деятельности (половое и когнитивное поведение) представляет собой одну из важных задач.

Андрогенозависимое влияние холинотропных препаратов на биоэлектрическую активность головного мозга Метамизил. У интактных и гонадэктомированных (ГЭ) кроликов (соответственно с нормальным и гипогонадным эндокринным статусом) проводили сравнительный анализ влияния метамизила на биоэлектрическую активность головного мозга. В хроническом эксперименте с помощью имплантированных электродов в ядра мозга оценивали динамику изменения компонентов первичного ответа вызванных потенциалов (ВП), нормированные величины и мощности частотных спектров спонтанных потенциалов (СП). Наблюдение в течение 1 мес показало,

что после гонадэктомии происходит стойкие изменение частотного спектра СП, мощности амплитуды и максимальной амплитуды спектров ритма интегрально-временных параметров ВП. К 30 дню происходило неполное восстановление параметров СП, что отражало развитие в мозге адаптивных процессов к низкому уровню андрогенов в организме.

teta alpha beta gamma

delta

teta alpha beta gamma

Рис. 16. Изменение нормированных амплитуд спектров ЭЭГ в area opticus у интактных (ИНТ) и гонадэктомированных (ГЭ) кроликов до и после однократной инъекции метамизила (1 мг/кг) По оси ординат - нормированная амплитуда ритмов ЭЭГ в диапазоне от 0 до 1, по оси абсцисс - частотный спектр ЭЭГ исходный и через 60, 120 и 180 мин после инъекции метамизила.

Изменения амплитуды спектров ЭЭГ у интактных и ГЭ (рис. 16) самцов через 3 ч после инъекции метамизила характеризовались более значительным снижением мощности а-, (5- и у-волн и увеличением амплитуды медленных волн ЭЭГ по сравнению с интактными крысами. В ядрах n.basalis amigdalaris и hypothalamus у ГЭ группы под действием метамизила происходило увеличение максимальной амплитуды -и- и а-волн.

На рис. 17 приведен пример действия метамизила на одном и том же кролике до и после кастрации (соответственно, нормо- и гипогонадное состояние). Изменение амплитуды Р1 компонента ВП различалось у интактных и ГЭ животных. У последних отмечается более значительное уменьшение амплитуды Р1 - снижение на 53,8% против 24,3% у интактных кроликов.

Изменения амплитуды Р1 пика первичного ответа под влиянием метамизила в отдельности, в комбинации тестостероном и прогестероном отличалась у интактных и гонадэктомированных кроликов в hippocampus p.dorsalis, хотя вектор этих изменений оставался неизменным (рис. 18). В гипоталамусе и n.caudatus отмечали изменение направленности вектора действия метамизила на Р1 компонент первичного ответа как у интактных, так и у ГЭ групп. Комбинация метамизила с тестостероном и прогестероном также в значительной степени модифицировала его действие на показатели СП и ВП.

Рис.17. Изменение амплитуды позитивного пика PI первичного ответа зрительных ВП в area opticus у кролика №7 в ответ на в/м инъекцию метамизила, в ин-тактном состоянии (А) и после гонадэктомии (Б) По оси ординат - амплитуда в мкВ, по оси абсцисс - время в мс.

Структуры лимбической системы содержат высокую плотность рецепторов андрогенов, посредством которых стероидные гормоны влияют на биоэлектрическую активность многих нейронов и эффекторов, регулируя транскрипцию белков ионных каналов и рецепторов нейромедиаторов (Arnold et al., 1985; McEwen, 1996). Поэтому снижение уровня андрогенов в крови и количество к ним рецепторов в структурах мозга после гонадэктомии приводило к изменению чувствительности нейронных структур лимбической системы и к воздействию холинотропных препаратов при инъекции этих веществ в отдельности и в комбинации со стероидами (рис. 18).

Рис. 18. Динамика Р1 компонента ВП в hippocampus p.dorsalis у инта'ктных и гонадэктомированных кроликов до и после пнъекции метамизила в отдельности и в комбинации с гормонами По оси ординат - амплитуда Р1 в мкВ; по оси абсцисс - фоновая (фон) регистрация ВП, то же после инъекции метамизила у интактных (Инт) и гонадэктомированных (ГЭ) кроликов в отдельности и в комбинации тестостероном (Тс) 3 мг/кг и прогестероном (Рс) 5 мг/кг.

Премедикация стероидами подавляла десинхронизацию ЭЭГ, вызванную введением метамизила и замедляла волновую активность. При этом, динамика изменения спектров ритмов и их мощностей в структурах мозга после инъекции

Фон Метамизил

исследуемых веществ была идентична таковой у ВП. Активность спектров ритма ЭЭГ смещалась в сторону медленных волн. Инъекция тестостерона частично блокировала действие метамизила, вызывая увеличение мощности а- и ß-волн СП.

Снижение уровня андрогенов в крови при гонадэктомии оказывает сильное влияние на нейрофизиологические параметры. Исследования модуляции клеточной возбудимости стероидами имеет важное значение в установлении взаимосвязи между измененной нейрональной возбудимостью и поведенческими функциями. Стероидчувствительное поведение включает репродуктивные и родительские поведение, зависящие от уровня гормонов (McEwen, 1981). Изменение возбудимости стероидчувствительных нейронов головного мозга, чувствительных к стероидам, после гонадэктомии значительно изменяла поведенческий эффект метамизила (в одной и той же дозе) на половое поведение ТТЭ самцов крыс (рис. 19). Метамизил в дозе 2,0 мг/кг, подавляющий половую активность у самцов интактной группы (с приобретенным половым опытом) только на 45%, полностью ингибировал половую функцию у ГГЭ самцов. У интактных крыс для достижения аналогичного эффекта потребовалась более высокая доза - 6,0 мг/кг массы тела.

120

гг

100 80 60 40 20 -0

фон

фон

-(с-

го 1-I

ГГЭ

♦.Ягота

ГГЭ

Мет 2мг/кг

Мет бмг/кг

Taui

фон

- /-: Пал

фон

ГГЭ

ДГЭ

Рис.19. Влияние метамизила и галантамина (0,5мг/кг) на проявление половой активности у интактных, ГТЭ и ГЭ самцов крыс Исходная активность принята за 100%.

Дальнейшее снижение гормонального фона у ДГЭ крыс подавляло возбудимость нейрональных центров, регулирующих половую функцию. Введение галантамина ДГЭ самцам вызывало половую активность лишь у 16% крыс.

Результаты эксперимента показывали, что ГГЭ приводит к повышению холи-ночувствительности структур мозга к воздействию М-холинотропного препарата. Эти изменения, вероятно, связаны с нарушением баланса процессов торможения и возбуждения в стероидчувствительных популяциях нейронов исследуемых структур и с задержкой прохождения афферентного импульса.

Таким образом, нарушение рецепции андрогенов в ядрах, головного мозга после гонадэктомии вызывает модуляцию действия препаратов холинергической медиаторной системы на биоэлектрическую активность нейронных популяций

центральных нервных структур и, тем самым, обусловливает дальнейшее изменение поведенческих состояний организма в условиях дефицита андрогенов.

Галантамин. Для оценки гормонального влияния на возбудимость ядер головного мозга у интактных и ДГЭ кроликов осуществляли регистрацию спонтанной и вызванной биоэлектрической активности после однократной инъекции га-лантамина (1 мг/кг) через каждые 30 мин в течение 3 ч и в комбинации с инъекцией тестостерона (3 мг/кг), метамизила (1 мг/кг) и ганглеропа (5 мг/кг). Оценивали амплитуды компонентов первичного ответа ВП, динамику изменения латентного периода, нормированные величины частотных спектров СП и их мощности.

ТаблицаЮ

Влияние галантамина, его комбинации с ганглероном и метамизилом на амплитуды PI и N1 компонентов первичного ответа ВП в area opticus у интактных и ДГЭ самцов, а также после введения тестостерона (Тс) ДГЭ самцам кроликов (М±т)

группы Амплитуда N1 компонента Амплитуда PI компонента

фон После галаи-тамина фон После галантамина

Интактная 2,78±0,15 2,76±0,14 3,13±0,17 4,45±0,21*

Гонадэктомия 2,46±0,11 2,09±0,09* 3,54±0,11 4,55±0,13*

Гонадэктомия + Тс 2,32±0,15 2,11±0,14 3,03±0,27 6,15±0,37*

группы Амплитуда PI компонентов ВП

фон После галантамина и метамизила фон После галантамина и ганглерона

Интактная 4,74±0,22 4,04±0,29 5,53±0,85 10,04±1,05*

Гонадэктомия 3,15±0,13 3,92±0,12* 4,15±0,31 7,92±0,48*

Примечание. * р<0,05 по сравнению с фоновой регистрацией.

Установлено, что галантамин вызывает снижение амплитуды Р1 компонента ВП в исследуемых структурах и увеличение амплитуды данного компонента в area opticus (табл. 10). У гонадэктомированных животных, наоборот, имеет место увеличение амплитуды пика Р1 в тех же структурах. В случае комбинированного применения галантамина с тестостероном у интактных кроликов происходила редукция эффекта галантамина. Величина пика N1 у интактных животных, в отличие от гонадэктомированных, после иньекции галантамина не менялась. У гонадэктомированных кроликов в большинстве исследуемых структур эффект галантамина на параметры СП и ВП при его комбинировании с тестостероном, менялся незначительно. У гонадэктомированных кроликов комбинация галантамина с тестостероном вызывала значительное увеличение биоэлектрической активности в area opticus (табл.10). Достоверных изменений латентного периода появления амплитуды первичного ответа не было обнаружено.

В отличие от интактных животных у ГЭ кроликов наблюдали значительное изменение в действии галантамина на характеристики вызванных потенциалов в area opticus при его комбинации с холинолитиками (табл.10). Премедикация ган-глероном усиливала эффект галантамина на компоненты ВП у всех групп. Комбинация метамизила блокировала активирующий эффект галантамина у интактных кроликов, тогда как у гонадэктомированной группы данный эффект отсутствовал. Сходные изменения отмечались и в динамике суммарной мощности ритмов ЭЭГ в area opticus головного мозга (рис.20).

Рис. 20. Динамика суммарной мощности ритмов ЭЭГ в area opticus corticalis у интактных (Инт) и гонадэктомированных (ГЭ) кроликов после однократной инъекции галантамина (1 мг/кг)

У гонадэктомированных кроликов наблюдается более длительная потен-циация холинергической активации, вызванной галантамином, по сравнению с интактными животными. В структуре частотных характеристик СП более выраженные изменения происходили в диапазонах 5- и а-волн. При комбинации галантамина с тестостероном увеличение мощности а-волн и уменьшение 5-волн было менее значительным, чем при одиночном введении. Динамика суммарной мощности ритмов ЭЭГ на рис. 20 показывает, что изменение уровня андрогенов у интактных и гонадэктомированных кроликов модулирует эффект галантамина на спонтанную биоэлектрическую активность нейронных популяций структур мозга.

Таким образом, дефицит андрогенов в ядрах головного мозга после гонадэк-томии вызывает модуляцию действия холинотропных препаратов на биоэлектрическую активность нейронных популяций центральных нервных структур и тем самым обусловливает дальнейшее отмеченное нами ранее изменение поведенческих реакций индивида в условиях дефицита андрогенов. Полученные данные о зависимости функционального состояния исследуемых структур от уровня андрогенов дают возможность предположить, что М- и Н-холинорецепторы играют

важную роль в реализации эффекта половых стероидов в структурах головного мозга. В свою очередь, действие М- и Н-холинергических агентов модулируется андрогенами и степень активации холинергической системы, кроме других факторов, находится в зависимости от уровня андрогенов в организме.

ВЫВОДЫ

1. Активация М-холинергической системы дозозависимо усиливает количественные параметры половой функции самцов и снижает латентность проявления этих параметров. Действие М-холинергических средств на половую активность самцов зависит от гормонального статуса организма, при этом у гипогонадных самцов выявляется достаточно более высокая чувствительность к действию М-холиномиметиков, которые способны полностью восстановить их нарушенную половую функцию.

2. Активация М-холинергических механизмов усиливает гормональный эффект тестостерона на половую активность, но не повышает его продукцию. Блокада холинергических механизмов М-холинолитиками, нарушающее половую функцию связана как с действием этих препаратов на холинорецепторы, так и с нарушением эндокринного статуса самцов.

3. Усиление половой функции М-холиномиметиками, связан не только с прямой активацией М-холинергической системы, но и с усилением активности дофаминергических механизмов в структурах мозга. Механизмы, посредством которого осуществляется регуляция половой функции препаратами холинергической и дофаминергичесой систем различны и не исключают взаимное потенцирование одной системы другой.

4. Активация М-холинергической системы усиливает влияние андрогенов и нейростероидов на половую активность у гипогонадных самцов, что связано с увеличением числа внутриклеточных рецепторов андрогенов и модуляцией активности нейромедиаторов дофамина, норадреналина и серотонина в структурах лимбической системы и гипоталамуса, участвующих в реализации половой функции самцов.

5. Активность холинергической медиаторной системы определяет устойчивость к стрессу самцов в отношении полового поведения. Стресспротекторное свойство холиномиметиков более выражено при стрессе с преобладанием эмоционального компонента и связано с усилением холинергической активации структур лимбической системы, стабилизации продукции тестостерона и оптимизации активности основных нейромедиаторных систем мозга, участвующих в реализации половой функции.

6. Действие холинергических веществ на половую активность самцов при дефиците андрогенов сопряжено изменением возбудимости нейрональных структур лимбической системы. У гипогонадных самцов механизмы восстановления половой функции холиномиметиками связаны с высокой чувствительностью М-холинорецепторов, активация которых вызывает высокоамплитудную возбудимость нейрональных структур и более длительную потенциацию этого возбуждения по сравнению с нормальным гормональным фоном.

7. У гипогонадных самцов нарушение рецепции андрогенов в структурах мозга модулирует действие холинергических средств на биоэлектрическую активность нейронных популяций мозга, и тем самым поведенческий ответ на внешний сексуальный стимул и проявления мотивационного компонента половой функции.

8. Головной мозг эмбрионов обладает высокой чувствительностью к воздействию селективных М- и Н-холинолитиков, особенно в ранние периоды гестации. Воздействие холинолитиков, в большей степени Н-холинодитика ганглерона, в пренатальном периоде вызывает резкий дисбаланс в работе нейромедиаторных систем в мозге 20-дневных эмбрионов и 2-месячных фертильных потомств, снижая дофаминергическую активность лимбических структур мозга, а также подавляя продукцию тестостерона у самцов.

9. Вызванные холинолитиками нарушения нейромедиаторного обмена в пренатальном мозге сохраняются в процессе постнатального онтогенеза и проявляются стойким нарушением полового поведения самцов ввиде низкой половой активности и изменения количественных и качественных характеристик половой функции у половозрелых потомств самцов. Одной из причин этого феномена является снижение функционирования дофаминергической системы мозга и сниженный уровень продукции тестостерона гонадами.

10. Потомства самцов, подвергнутых прснатальному воздействию М- и Н-холинолитиками обладают низкой устойчивостью к стрессу, оцененной по половому поведению. Активация холинергической системы мозга введением антихолинэстеразного препарата галантамина усиливает половую активность самцов, но не приводит к полной нормализации половой фунвдии.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. При лечении половых расстройств, связанных с патологией развития, предпочтение следует отдавать в первую очередь антихолинергнческим препаратам (прозерин, галантамин), устраняющим или уменьшающим половую дисфункцию у мужчин.

2. В период беременности не следует принимать лекарственные средства, обладающие холинолитическим действием, поскольку они могут приводить к расстройствам половой функции у потомства. В случае их необходимости назначения по медицинским показаниям, следует параллельно назначать агонисты дофамина, уменьшающие половые нарушения.

3. При половой дисфункции у мужчин, связанной с невысокой стрессо-устойчивостыо, целесообразно в схему лечения указанных расстройств вводить антихолинэстеразные препараты, повышающие половую функцию у мужчин при стрессе.

4. При лечении половых расстройств у мужчин гормональными препаратами (андрогенами) целесообразно параллельно назначать антихолинэстеразные средства, позволяющие снизить дозу тестостерона и уменьшить его нежелательные явления.

Список основных публикаций по теме диссертации

1. Fedotova, J.О. Effects of estrogen fluctuations on learning and memory in female rats / J.O. Fedotova, A.A. Bairamov, N.S. Sapronov // Int. J. Neuropsychopharm. - 2000. - V.3, Suppl.l. - P.302.

2. Bairamov, A.A. Binding of [3H]-testosterone with the brain androgenic receptors of rat: influence of dehydroepiandrosterone / A.A. Bairamov, N.S. Sapronov // XXI ISPNE regional Congress. Psychopharmacol. Biol. Narcol. - 2001. - №2. - C.134.

3. Bairamov, A.A. Influence of DHEA on brain biogenic monoamines in ovariectomized rats / A.A. Bairamov, N.P. Goncharov, J.O. Fedotova, N.S. Sapronov // XXI ISPNE regional Congress. Psychopharmacol. Biol. Narcol. - 2001. -№2. - P. 133.

4. Байрамов, A.A. Интегрально-временной анализ спонтанных и вызванных потенциалов мозга при дефиците андрогенов / A.A. Байрамов, H.H. Кузнецова, H.A. Лосев, Н.С. Сапронов // Психофармакол. и биол. наркология. - 2002. - Т.2, № 3-4.-С.452.

5. Байрамов, A.A. Влияние ДГЭА на условнорефлекторную деятельность и моноаминергический статус у овариэктомированных крыс / A.A. Байрамов, Н.С. Сапронов, Ю.О. Федотова // Мед. акад. журнал. - 2003. - Т.З, № 1. - С.41-47.

6. Bairamov, A.A. Influence of М- and N-cholinolitics on integral-time parameters of the spontaneous and evoked potentials of the brain with the deficiency of androgens / A.A. Bairamov, N.N. Kuznetsova, N.A.Losev, N.S. Sapronov // ХХШ ISPNE Congr. - Italy, 2003. - FC6.

7. Bairamov, A.A. The action of cholinesterase-inhibiting drug galanthamine on bioelectric activity of the brain at gonadectomized rabbits / A.A. Bairamov, N.N. Kuznetsova, N.A. Losev, N.S. Sapronov, N.N. Petrova // XXIV ISPNE Congress. -Philadelphia, USA, 2003. - P.223.

8. Байрамов, A.A. Влияние дегидроэпиандростерона на на радиолигандное связывание [3Н]-тестостерона рецепторами андрогенов в гипоталамусе мозга крыс / A.A. Байрамов, Н.С, Сапронов // Бюл. эксперим. биол. и мед. - 2004. -Т. 138, № 10. - С.435-438.

9. Байрамов, A.A. Активация центральной М-Холинергической системы оказывает дофаминпротекторный эффект в лимбической системе мозга при остром иммобилизационном стрессе / A.A. Байрамов, H.A. Лосев, Н.С. Сапронов //Нейрохимия: фундаментальные и прикладные аспекты. - М., 2005. — С.5.

10. Bairamov, A.A. Cholinergic modulation of sexual activity during acute and chronic stresses / A.A. Bairamov, I.N. Zaichenko, N.A. Borovskikh, N.A. Losev, N.S. Sapronov // Вести HAH Белоруссии / News of Biomedical Science. - 2005. -№1. -P.78-84.

11. Bairamov, A.A. Cholinergic modulation of sexual behavior after stress: Behavioral correlations / A.A. Bairamov, O.M. Efremov, N.A. Borovskikh, N.A. Losev, N.S. Sapronov // Eur. J. Neuropsychopharmacol. - 2005. - V.15, Suppl.2. - P.175-176.

12. Bairamov, A.A. Cholinergic modulation of sexual behavior after stress: Neurochemical correlations / A.A. Bairamov, O.M. Efremov, K.J. Senchik, N.A. Losev, N.S. Sapronov // Eur. J. Neuropsychopharmacol. - 2005. - V.15, Suppl.2. - P.176-177.

13. Bairamov, A.A. Effect of dehydroepiandrosterone on radioligand binding of [3H]-testosterone by androgen receptors in rat hypothalamus / A.A. Bairamov, N.S.

Sapronov // Bull. Exp. Biol. Med. - 2004. - V.138, №4. - P.387-389 (DOI: 10.1007/ s 10517-005-0107-7). Springer New York. 2005. ISSN: 0007-4888'.

14. Байрамов, A.A. Нейрохимические аспекты холинергической модуляции полового поведения при иммобилизационном стрессе / A.A. Байрамов, Т.А. Кудрявцева, О.В. Торкунова // Психофармакол. и биол. наркология. - 2006. - Т.6, №1-2.-С.1183-1190.

15. Байрамов, A.A. Роль холинергических механизмов в регуляции половой активности при остром и хроническом стрессе / A.A. Байрамов, И.Н. Зайченко, JI.A. Богданова, Н.С. Сапронов // Рос. биомед. журн. - 2006. - Т.7. - С.18-28.

16. Байрамов, A.A. Андроген-зависимое злияние М-холинолитика метамизила на биоэлектрическую активность головного мозга / A.A. Байрамов, H.H. Кузнецова // Психофармакол. и биол. наркология. - 2006. - Т.6, №1-2. -С.1197-2003.

17. Кудрявцева, Т.А. Действие вилона на нейроэндокринный статус и половое поведение старых самцов крыс / Т.А. Кудрявцева, A.A. Байрамов, И.Н. Зайчепко, О.М. Ефремов, Е.И. Григорьев // Успехи геронтологии. - 2006. -Вып.19.-С.97-101.

18. Байрамов, A.A. Характер изменений полового поведения у потомства самцов крыс под влиянием М- и Н-холиноблокаторов, введенных самкам в «критические» сроки беременности / A.A. Байрамов, А.О. Полетаева, Т.А. Кудрявцева, H.A. Лосев, Н.С. Сапронов // 4 межд. конф. «Биол. основы индив. чувсти к психотропным средствам». - М., 2006. - С.213.

19. Bairamov, A.A. Influence of prenatal stress on contents of dopamine and serotonin in the rat brain of fetus / A.A. Bairamov, A.O. Poletaeva, J.C. Novikova, O.V. Torkunova, N.S. Sapronov // 4th Reg. Congr. ISPNE. - Vilnius, 2006. - P. 175-176.

20. Bairamov, A.A. Effects of immobilized stress on sexual behavior of male rats exposed prenatally to cholinolitics / A.A. Bairamov, O.M. Efremov, T.A. Kudriavcheva, N.A. Losev, N.S. Sapronov // 4th Reg. Congr. ISPNE - Vilnius, 2006. -P.176-177.

21. Кудрявцева, Т.А. Старение репродуктивной системы крыс и возможности ее коррекции корткими пептидами / Т.А. Кудрявцева, A.A. Байрамов, И.Н. Зайченко, Г.А. Рыжак, Е.И. Григорьев // Перспективы фундаментальной геронтологии. - СПб., 2006. - С.70-71.

22. Байрамов, A.A. Активность ацетилхолинэстеразы и обмен нейромедиаторов в головном мозге эмбрионов в условиях стресса / A.A. Байрамов, Г.Ю. Юкина // Нейроспецифические метаболиты и энзиматические основы деятельности ЦНС. - Пенза, 2006. - С. 142-143.

23. Кудрявцева, Т.А. Изучение действие вилона на половое поведение молодых и старых крыс / Т.А. Кудрявцева, И.Н. Зайченко, О.М. Ефремов, A.A. Байрамов, Г.А. Рыжак, Е.И. Григорьев // Актуальные вопросы внутренных болезней. - СПб., 2006. - С.16-18.

24. Байрамов, A.A. Влияние холинотропных препаратов на пренатальное развитие моноаминергической системы головного мозга / A.A. Байрамов, Н.С. Сапронов // Мед. акад. журнал. - 2007. - Т.7, № 4. - С.52-58.

25. Байрамов, A.A. Отдаленные нейрохимические эффекты пренатального воздействия селективных М- и Н-холинотропных препаратов/ A.A. Байрамов, Ш.К. Мещеров // Психофармакол. и биол. наркология. - 2008. - Т.8, № 1. -С. 2286-2293.

26. Прошин, С.Н. Спонтанная и индуцированная активность сиалидазы, ассоциированной с плазматической мембраной, в нейронах человека in vitro / С.Н. Прошин, A.A. Лебедев, A.A. Байрамов, П.Д. Шабанов // Мед. акад. журнал. -2008. - Т.8, №2. - С.40-44.

27. Bairamov, A.A. The action of cholinesterase-inhibiting drug galanthamine on bioelectric activity of the brain at gonadectomized rabbits / A.A. Bairamov, N.M. Kuznetsova, N.A. Loscv, E.B. Petrova // III Int. Congr. of Farmacol. - Harbin, China, 2008.-P.15.

28. Байрамов, A.A. Половая функция зрелых самцов после пренатальной модификации холинергической системы / А.А.Байрамов, С.Н.Прошин, А.О.Полетаева, О.М. Ефремов, Н.С.Сапронов // Рос. физиол. журнал, им. И.М.Сеченова. -2008. -Т.94, №5. - С.581-591.

29. Байрамов, A.A. Отдаленные нейрохимические эффекты пренатального воздействия селективных М- и Н-холинолитиков / A.A. Байрамов, А.О. Полетаева, Г.Ю. Юкина, Л.А. Богданова // Рос. биомед. журн. - 2008. - Т.9. -С.90-100.

30. Байрамов, A.A. Влияние пренатального стресса на половое поведение / A.A. Байрамов, E.H. Новикова, С.Н. Прошин, Б.К. Комяков // Мед.-биол. и соц.-психол. проблемы безопасности в чрезвыч. ситуациях. - 2008. - №2. — С.53-61.

31. Байрамов, A.A. Коррекция половой дисфункции самцов, подвергнутых воздействию селективных холинолитиков в пренатальном периоде / A.A. Байрамов, О.М. Ефремов, Б.К. Комяков // Психофармакол. и биол. наркология. -2008. - Т.8, №1-2 (4.2). - С.2353.

Подписано в печать 20J 1.08

Объем 2 пл.__Тираж 1 он экз.

Формат 60x84 '/16-Заказ № 9 'М

Типография ВМедА, 194044, СПб., ул. Академика Лебедева, 6

 
 

Оглавление диссертации Байрамов, Алекбер Азизович :: 2009 :: Санкт-Петербург

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. МЕХАНИЗМЫ ЦЕНТРАЛЬНОЙ

РЕГУЛЯЦИИ ПОЛОВОЙ ФУНКЦИИ

1.1. Гормональная регуляция половой функции.

1.2. Роль различных структур мозга в регуляции половой функции.

1.3. Значение нейромедиаторных систем мозга в регуляции половой функции.

1.4. Влияние стрессорных воздействий на половое поведение самцов.

1.5. Половой диморфизм развивающегося мозга в раннем онтогенезе

1.6. Влияние химических соединений холинотопными свойствами на онтогенетическое развитие медиаторных систем мозга.

1.7. Взаимодействие холинергических механизмов с нейромедиатор ными системами дофамина и серотонина.

1.8. Нейрональные механизмы действия андрогенов и холинергическая регуляция

Глава 2. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Выбор животных.

2.2. Экспериментальные модели.

2.3. Стереотаксические и нейрохирургические методы.

2.4. Тест «половое поведение».

2.5. Стрессорные воздействия, применяемые к взрослым животным.

2.6. Холинергические воздействия в пренатальном периоде.

2.7. Биохимические методы исследования.

2.8. Определение гормонов методом иммуноферментного анализа.

2.9. Нейрофизиологический метод исследования.

2.10. Фармакологические препараты.

2.10. Статистический анализ.

Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Роль М- и Н-холинергических систем в регуляции половой функции самцов.

3.1.1. Влияние М- и Н-холинолитиков на структуру полового поведения.

3.1.2. Влияние препаратов М- и Н-холинолитиков на половую актив ность самцов в зависимости от гормонального статуса.

3.1.3. Взаимодействие препаратов холинергической и дофаминергической систем в реализации половой функции самцов.

3.1.4. Холинергическая модуляция активности основных медиаторных систем и гонадных гормонов у интактных и гипогонадных самцов.

3.1.5. Взаимодействие галантамина с дегидроэпиандростероном в усиление половой функции у гипогонадных самцов.

3.1.6. Исследование роли М- и Н-холинергических систем в стресс-реактивности организма в тесте полового поведения.

 
 

Введение диссертации по теме "Фармакология, клиническая фармакология", Байрамов, Алекбер Азизович, автореферат

Половая функция является важнейшим компонентом репродуктивной системы организма. В развитых странах мира частота половых расстройств у мужчин неуклонно повышается, что определяет актуальность изучения механизмов нормальной и измененной половой функции (ВОЗ, 2004). Половая функция является сложным интегративным процессом, состоящим из центральных мотивационных и периферических копуляторных механизмов, которые координируются на разных уровнях с вовлечением нейро-нальных структур, нейромедиаторных и нейроэндокринных систем. Большинство исследований механизмов регуляции мужской половой функции сосредоточено на его завершающей фазе (коитус), тогда как начальная, мо-тивационная фаза (либидо), регулируемая центральными механизмами, остается малоизученной (Pfaus et al., 2001; Agmo et al., 2004, Амстиславская Т.Г., 2002, 2006). Поскольку именно с активации лимбических структур мозга и гипоталамуса запускается половая функция самцов, исследование мотивационного обеспечения адекватного полового поведения является актуальной современной задачей.

Механизмы, регулирующие половую функцию, в значительной степени обеспечиваются нейрональными процессами преоптической зоны гипоталамуса, которые активируются различными нейромедиаториыми системами (Bitran, 1987; Dorner, 1989; Gladkova, 2000). Холинергическая активация преоптической области, по мнению многих исследователей, является критической для осуществления нормального коитуса, а введение М-холиноблокатора скополамина в эту область задерживает инициирование копуляции (Hull, 1988; Retana, 1993). Несмотря на большое число исследований, посвященных роли нейромедиаторных систем в обеспечении репродуктивной функции, в литературе очень мало сведений об участии холи-нергической системы мозга в центральных механизмах регуляции мужской половой функции во взаимосвязи с функциональным состоянием нейро-эндокринных систем. Также не исследована роль холинергических механизмов в реализации полового поведения при различных видах стресса. Известно, что репродуктивная функция организма подвержена модификации различными факторами, в частности, стрессорным воздействием. В основе таких модификаций лежат нарушения центральных регуляторных механизмов, играющих ключевую роль в возникновении половой мотивации, от которой зависит реализация половой функции.

Нормальная экспрессия мужской половой функции во взрослом состоянии зависит от функциональной целостности нейрональных цепей и нейромедиаторных систем, вовлеченных в этот процесс в течение раннего развития мозга в пренатальном периоде. Особое значение приобретают неблагоприятные воздействия в период раннего онтогенеза, когда развитие функциональных систем протекает наиболее быстрыми темпами и может быть легко изменено или модифицировано внешними воздействиями (Cabrera et al., 1999; Gerardin et al., 2005). Неблагоприятное воздействие многих химических факторов (никотин, барбитураты и др.) на развивающийся мозг плода в пренатальном периоде опосредовано изменением активности холинергической системы и с последующим проявлением когнитивно-поведенческих дефицитов у взрослых потомств (Slotkin, 1992, 2004; AvitalBeer, 2005). Несмотря на эти факты, в литературе отсутствуют сведения о нейрохимических и поведенческих эффектах пренатального воздействия селективных агонистов и антагонистов М- и Н-холинорецепторов, а также их влияние на динамику развития нейромедиаторных систем мозга на этапах онтогенеза и на половую функцию у взрослого потомства. Изменение активности холинергических механизмов головного мозга в критические сроки пренатального развития может оказать воздействие на целостность формирования медиаторных систем мозга, дифференцирующего эффекта гонадных гормонов на развивающийся мозг, и тем самым, на проявления половой активности и адекватного полу сексуального поведения у взрослого потомства. Актуальность исследования пренатальных эффектов холинергических факторов на центральные механизмы половой функции и гормональный статус в процессе развития обусловлена необходимостью профилактики и лечения последующих половых дисфункций и аномального полового поведения.

Важную роль в механизмах формирования половой поведения, в особенности ее аппетентных или мотивационных аспектов играет взаимодействие нейромедиаторных систем мозга, интегрирующее моторные, вегетативные и эндокринные компоненты половой функции. Ацетилхолин (АХ) является медиатором, опосредующим передачу неспецифической информации к неокортексу из подкорковых структур (ретикулярная формация, гипоталамус) и участвует в функционировании корковой активирующей системы (Krnjevic, 1967; Кожечкин С.Н., 1982). Несмотря на важную роль холинергической системы в различных аспектах деятельности ЦНС (Аничков C.B., 1958, 1962; Голиков С.Н., 1956, 1965; Денисенко П.П., 1963, 1965; Сапронов Н.С. 1968; Лосев H.A., 1968), очень мало исследовано её значение в формировании нейрофизиологических коррелятов биоэлектрической активности мозга в зависимости от эндокринного статуса организма, в изменении возбудимости и подвижности нервных процессов в структурах мозга при дисбалансе гонадных гормонов.

Таким образом, предпосылкой для проведения настоящего исследования явилась недостаточная изученность роли холинергической системы в регуляции половой функции самцов. Для понимания механизмов холинергической регуляции необходимо исследование способности самцов реализовать половую функцию в условиях фармакологической модуляции активности центральных М- и Н-холинорецепторов и других нейрохимических регулирующих механизмов в зависимости от эндокринного статуса и факторов внешней среды, действующих в разные периоды онтогенеза.

Цель исследования

Цель исследования состояла в экспериментальном изучении роли хо-линергической системы в нейромедиаторных, эндокринных и нейрофизиологических механизмах регуляции половой функции самцов в разные периоды онтогенеза.

Задачи исследования:

1. Изучить половое поведение самцов крыс и закономерности поведенческих изменений, обусловленных введением М- и Н-холинергических средств в зависимости от гормонального статуса животных.

2. Исследовать нейрохимические и нейроэндокринные механизмы регуляции половой функции в условиях модуляции активности центральной холинергической системы.

3. Изучить особенности полового поведения гипогонадных самцов крыс после введения холинергических, дофаминергических средств и андроге-нов.

4. Оценить влияние неблагоприятных факторов (стрессовое воздействие, введение холинергических веществ), действующих в разные периоды онтогенеза, на половую функцию и нейроэндокринный статус самцов крыс.

5. Исследовать нейрональные механизмы центральной холинергической регуляции в интегративной деятельности мозга по данным спонтанной и вызванной электрической активности некоторых структур головного мозга кроликов в условиях дефицита и избытка стероидных гонадных гормонов в организме.

6. Выявить роль М- и Н-холинергических механизмов в становлении полового поведения в пубертатном периоде онтогенетического развития потомства и в метаболизме основных нейромедиаторов в структурах мозга самцов крыс.

7. Изучить отдаленные поведенческие, нейрохимические и гормональные эффекты у потомства крыс, подвергнутых пренатальному воздействию Ми Н-холинолитиков.

Научная новизна

В работе впервые исследована роль холинергической системы в становлении половой функции самцов крыс в онтогенезе в зависимости от их нейроэндокринного статуса. Доказано, что действие М- и Н-холинергических средств на половое поведение самцов зависит от гормонального статуса организма. В условиях экспериментально индуцированного гормонального дефицита активация М-холинергической системы полностью восстанавливает нарушенную половую функцию самцов. Кроме того, показано, что в нейрохимических эффектах холинергических средств на половую функцию помимо прямой активации М-холинергической системы мозга важную роль играет активация дофаминергических механизмов лимбических образований мозга.

Несомненно важным результатом работы является выявление высокой чувствительности медиаторных систем головного мозга эмбрионов к воздействию селективных антагонистов М- и Н-холинергической системы в пренатальном периоде, особенно в ранние сроки гестации. Вызванные ими нарушения сохраняются в ходе постнатального онтогенеза и проявляются при реализации поведенческих реакций, в частности, полового поведения у взрослых самцов. Пренатальное воздействие Н-холинолитиком ганглероном и в меньшей степени М-холинолитиком метамизилом приводит к отдаленным поведенческим нарушениям, характеризуемым низкой половой активностью и нарушениями полового поведения у половозрелых потомств самцов.

Важным является доказательство того, что механизм нарушения половой функции у половозрелых потомств связан с дисбалансом содержания нейромедиаторов дофамина (ДА) и серотонина (5-ГТ) в мозге плодов. Так, отдаленным последствием пренатального воздействия холинолитиков на организм беременной самки является снижение дофаминергической активности в лимбических структурах мозга плода в постнатальном периоде. Блокада Н-холинорецепторов ганглероном ингибирует выброс ДА, НА и 5-ГТ. Медиаторная дисфункция у половозрелых самцов, как отдаленный эффект пренатального воздействия холинолитиков, предопределяет поведенческие нарушения и половую дисфункцию у потомства.

Выявлено разное участие М- и Н-холинергических механизмов в эффектах холинергических средств на половую функцию самцов на этапах онтогенеза. Оно состоит в том, что половая активность цзрослых самцов в пределах холинергической системы регулируется М-холинергическими механизмами, а в период пренатального развития в большей степени зависит от активности Н-холинергической системы.

Впервые выявлена высокая значимость активности холинергической медиаторной системы для стрессреактивности организма в тестах изучения полового поведения. Стресспротекторное свойство антихолинэстеразного препарата галантамина зависит от вида стресса; при этом наиболее значительный потенцирующий эффект от применения холинергических средств наблюдается при эмоциональным стрессе в сравнении со стрессом, обусловленным воздействием физического фактора. Показано, что механизм действия галантамина при стрессе, помимо прямой М-холинергической активации нейрональных структур мозга, включает также нейроэндокринную и дофаминергическую системы, участвующие в реализации половой функции.

В работе показана, что влияние холинергических средств на половую активность самцов связано с изменением возбудимости нейрональных структур лимбической системы мозга, что наиболее ярко проявляется в условиях дефицита андрогенов. При этом активность М-холинорецепторов играет важную роль для реализации эффектов половых стероидов, их взаимодействия со стероидочувствительными ядрами головного мозга. Показано, что нарушение рецепции андрогенов при гонадэктомии вызывает изменение характера действия холинергических средств на биоэлектрическую активность нейронных популяций центральных нервных структур и, тем самым, обусловливает дальнейшее изменение поведенческого ответа на внешний сексуальный стимул.

Научно-практическая значимость. Теоретическая значимость работы заключается в обосновании положения, что половая функция самцов в значительной степени определяется состоянием холинергической медиа-торной системы мозга и уровнем андрогенов. При гормональном дефиците фармакологическая активация М-холинергической системы полностью восстанавливает нарушенную половую функцию самцов. Нейрофизиологические механизмы реализации половой функции у гипогонадных самцов связаны с активацией М-холинорецепторов, которые обусловливают высокоамплитудную возбудимость нейрональных структур и более длительную потенциацию этого возбуждения по сравнению с нормальным гормональным фоном. В процессе холинергической регуляции половой функции решающая роль принадлежит непосредственной активации М-холинер-гических механизмов мозга и опосредованной активации дофаминергиче-ской системы лимбических структур. В пренатальном периоде, особенно в ранние сроки гестации, отмечена высокая чувствительность основных ме-диаторных систем мозга эмбрионов к воздействию селективных антагонистов М- и Н-холинергической системы, приводящих к отдаленным нарушениям половой функции у половозрелых потомств самцов. Важным практическим выводом работы является доказательство, что дефицит половой активности взрослого потомства может быть компенсирован с помощью агонистов ДА и АХ. Полученные в работе данные могут способствовать разработке новых методов лечения половых расстройств, в том числе и наследственно обусловленных и решению проблемы коррекции половых расстройств с целью гармонизации межполовых отношений.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. М-холинергическая система мозга, являющаяся важным звеном в центральной регуляции полового поведения самцов крыс, регулирует количественные и качественные параметры полового поведения. Действие холинотропных средств на половую активность зависит от гормонального статуса организма, в частности, от уровня андрогенов.

2. Холинергические механизмы активации половой функции самцов связаны с активностью дофаминергических механизмов лимбических структур мозга. При этом агонисты М-холинергической и дофаминергиче-ской медиаторных систем мозга активируют половую функцию посредством разных механизмов и усиливают эффекты друг друщ. Усиление половой функции зависит от баланса нейромедиаторов ДА, НА, 5-ГТ и уровня стероидов в мозге.

3. Холинергическая система головного мозга эмбрионов крыс уязвима для действия селективных М- и Н-холинолитиков. Их введение в пренатальном периоде вызывает дисбаланс в функционировании нейромедиаторных систем (преимущественно дофаминергической) лимбической системы мозга и подавление продукции тестостерона.

4. Нарушения нейромедиаторного обмена в пренатальном мозге самцов сохраняются в ходе постнатального онтогенеза и проявляются стойкими изменениями половой функции. Основной причиной пониженной половой активности у потомств самцов является низкая дофаминергическая активность и низкий уровень продукции гормона тестостерон в организме.

5. Устойчивость к стрессу в тестах изучения полового поведения у самцов зависит от состояния холинергической и дофаминергической активности структур лимбической системы мозга и уровня тестостерона в крови. Действие холинергических средств на половую активность самцов крыс более выражено в условиях дефицита андрогенов (в гипогонадном состоянии).

Научно-практическая ценность работы

Теоретическая значимость работы заключается в обосновании положения, что половая функция самцов в значительной степени определяется состоянием холинергической медиаторной системы мозга и уровнем андрогенов, регулирующих возбудимость нейрональных структур лимбической системы мозга. При индуцированном гормональном дефиците активация М-холинергической системы полностью восстанавливает нарушенную половую функцию самцов. Нейрофизиологические механизмы реализации половой функции у гипогонадных самцов связаны с активацией М-холинорецепторов, которые обусловливают высокоамплитудную возбудимость нейрональных структур и более длительную потенциацию этого возбуждения по сравнению с нормальным гормональным фоном. В процессе холинергической регуляции половой функции решающая роль принадлежит непосредственной активации М-холинергических механизмов мозга и опосредованная активация дофаминергической системы лимбических структур. Эти механизмы регулируют устойчивость к стрессу и поддержание половой функции в условиях стресса. Большой интерес представляет высокая чувствительность медиаторных систем головного мозга эмбрионов к воздействию селективных антагонистов М- и Н-холинергической системы в пренатальном периоде, особенно в ранние сроки гестации, которые приводят к отдаленным нарушениям половой функции у половозрелых по-томств самцов. При этом нарушается баланс содержания нейромедиаторов (ДА, НА, 5-ГТ) в лимбических структурах мозга. Важным практическим выводом работы является доказательство, что дефицит половой активности половозрелых потомств самцов может быть компенсирован с помощью агонистов ДА и АХ. Полученные данные будут способствовать разработке новых методов лечения половых расстройств. Работа относится к фундаментальным исследования половой дисфункции, в том числе и наследственно обусловленной, и вносит крупный вклад в решение проблемы коррекции половых расстройств с целью гармонизации межполовых отношений.

Апробация и публикация материалов исследования

Материалы, вошедшие в диссертацию, доложены на 22-м ежегодном конгрессе по нейропсихофармакологии (Брюссель, Бельгия, 2000), на VII Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (Москва, 2000), в 21-м региональном конгрессе по психонейроэндокринологии (С.Петербург, 2001), на 23-м конгрессе международного общества психонейроэндокринологии (Пиза, Италия, 2003), на международной конференции «Нейрохимия. Фундаментальные и прикладные аспекты» (Москва, 2005), на 8-м конгрессе Европейского общества нейропсихофармакологии (Москва, 2005), 4-й международной конференции «Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам» (Москва, 2006), на 4-м региональном конгрессе по психонейроэндокринологии «Стресс и психоэндокринные изменения в жизненном цикле» (Вильнюс, Литва, 2006), на международной конференции «Нейроспецифические метаболиты и энзимологические основы деятельности ЦНС» (Пенза, 2006), VII международном симпозиуме «Биологические механизмы старения» (Харьков, Украина, 2006), 1-й конференции Российской ассоциации психонейроэн-докринологов (С-Петербург, 2008), 3-м Китайско-Российском международном симпозиуме по фармакологии (Китай, Харбин, 2008).

Апробация диссертации состоялась в мае 2008 г. на совместном заседании академической группы академика РАМН Ф.Г.Углова при НИИ акушерства и гинекологии имени Д.О.Отта, кафедры фармакологии Военно-медицинской академии им. С.М.Кирова и кафедры урологии Санкт-Петербургской государственной медицинской академии им. И.И.Мечникова.

По теме диссертации опубликована 31 работа, из них 19 статей (10 статей в рецензируемых журналах, рекомендованных ВАК).

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, главы результатов собственных исследований (включающей 3 подраздела), обсуждения результатов, выводов, практических рекомендаций, списка цитируемой литературы. Работа изложена на 304 страницах машинописного текста, иллюстрирована 34 рисунками и 13 таблицами. Библиографический указатель содержит 603 наименований, в том числе 74 отечественных и 539 иностранных.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Центральные холинергические механизмы регуляции половой функции (экспериментальное исследование)"

232 ВЫВОДЫ

1. Активация М-холинергической системы дозозависимо усиливает количественные параметры половой функции самцов и снижает латент-ность проявления этих параметров. Действие М-холинергических средств на половую активность самцов зависит от гормонального статуса организма, при этом у гипогонадных самцов выявляется достаточно более высокая чувствительность к действию М-холиномиметиков, которые способны полностью восстановить их нарушенную половую функцию.

2. Активация М-холинергических механизмов усиливает гормональный эффект Тс на половую активность, но не повышает его продукцию. Блокада холинергических механизмов М-холинолитиками, нарушающая половую функцию связана как с действием этих препаратов на холиноре-цепторы, так и с нарушением эндокринного статуса самцов.

3. Усиление половой функции М-холиномиметиками связано не только с прямой активацией М-холинергической системы, но и с усилением активности дофаминергических механизмов в структурах мозга. Механизмы, посредством которых осуществляется регуляция половой функции препаратами холинергической и дофаминергичесой систем, различны и не исключают взаимное потенцирование одной системы другой.

4. Активация М-холинергической системы усиливает влияние андрогенов и нейростероидов на половую активность у гипогонадных самцов, что связано с увеличением числа внутриклеточных рецепторов андрогенов и модуляцией активности нейромедиаторов ДА, НА и 5-ГТ в структурах лимбической системы и гипоталамуса, участвующих в реализации половой функции самцов.

5. Активность холинергической медиаторной системы определяет устойчи-вость к стрессу самцов в отношении ПЛ. Стресспротекториое свойство холиномиметиков более выражено при стрессе с преобладанием эмоционального компонента и связано с усилением холинергической активации структур лимбической системы, стабилизации продукции Тс и оптимизации активности основных нейромедиаторных систем мозга, участвующих в реализации половой функции.

6. Действие холинергических веществ на половую активность самцов при дефиците андрогенов сопряжено с изменением возбудимости нейрональных структур лимбической системы. У гипогонадных самцов механизмы восстановления половой функции холиномиметиками связаны с высокой чувствительностью М-холинорецепторов, активация которых вызывает высокоамплитудную возбудимость нейрональных структур и более длительную потенциацию этого возбуждения по сравнению с нормальным гормональным фоном.

7. У гипогонадных самцов нарушение рецепции андрогенов в структурах мозга модулирует действие холинергических средств на биоэлектрическую активность нейронных популяций мозга, и тем самым поведенческий ответ на внешний сексуальный стимул и проявление мотивационного компонента половой функции.

8. Головной мозг эмбрионов обладает высокой чувствительностью к воздействию селективных М- и Н-холинолитиков, особенно в ранние периоды гестации. Воздействие холинолитиков, в большей степени Н-холинолитика ганглерона, в пренатальном периоде вызывает резкий дисбаланс в работе нейромедиаторных систем в мозге 20-дневных эмбрионов и 2-месячных фертильных потомств, снижая дофаминергическую активность лимбических структур мозга, а также подавляя продукцию Тс у самцов.

9. Вызванные холинолитиками нарушения нейромедиаторного обмена в пренатальном мозге сохраняются в процессе постнатального онтогенеза и проявляются стойким нарушением ПП самцов в виде низкой половой активности и изменений количественных и качественных характеристик половой функции у половозрелых потомств самцов. Одной из причин этого феномена является снижение функционирования дофаминергической системы мозга и сниженный уровень продукции Тс гонадами.

10. Потомства самцов, подвергнутые пренатальному воздействию М- и Н-холинолитиками, обладают низкой устойчивостью к стрессу, оцененной по половому поведению. Активация холинергической системы мозга введением антихолинэстеразного препарата галантамина усиливает половую активность самцов, но не приводит к полной нормализации половой функции.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. При лечении половых расстройств, связанных с патологией развития, предпочтение следует отдавать в первую очередь антихолинергиче-ским препаратам (прозерин, галантамин), устраняющим или уменьшающим половую дисфункцию у мужчин.

2. В период беременности не следует принимать лекарственные средства, обладающие холинолитическим действием, поскольку они могут приводить к расстройствам половой функции у потомства. В случае их необходимости назначения по медицинским показаниям, следует параллельно назначать агонисты дофамина, уменьшающие половые нарушения.

3. При половой дисфункции у мужчин, связанной с невысокой стрессоустойчивостью, целесообразно в схему лечения указанных расстройств вводить антихолинэстеразные препараты, повышающие половую функцию у мужчин при стрессе.

4. При лечении половых расстройств у мужчин гормональными препаратами (андрогенами) целесообразно параллельно назначать антихолинэстеразные средства, позволяющие снизить дозу тестостерона и уменьшить его нежелательные явления.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2009 года, Байрамов, Алекбер Азизович

1. Акмаев И.Г., Калимулина А.Б. Миндалевидный комплекс мозга // Функциональная морфология и нейроэндокринология. -М., 1993.

2. Аничков C.B. Проблема избирательного действия лекарственных веществ на центральную нервную систему. В кн.: Избирательное действие лекарственных веществ на центральную нервную систему. Л., 1958, с.5-16.

3. Аничков C.B. Фармакологические воздействие на эндокринные железы через нервную систему. Физиол. Ж., СССР, 1957, т.43, №7, с.685-690.

4. Аничков C.B., Гребенкина М.А. Фармакологическая характеристика холинорецепторов центральной нервной системы// Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1946. N3. С.28-31.

5. Аничков C.B., Денисенко П.П. Холинолитики центрального действия и возможности их клинического применения. В кн.: Фармакология новых лекарственных средств и их клиническое применение. Л., 1962, 516.

6. Бабичев В.Н. Нейроэндокринология пола. — М.: Наука, 1981. 150 с.

7. Батуев A.C. Начальные этапы биосоциальной адаптации ребенка // Психофизиологические основы социальной адаптации ребенка. СПб., 1999.-С. 8-13.

8. Батуев A.C., Соколова Л.В. Учение о доминанте как теоретическая основа формирования системы "мать-дитя" // Вестник СПбГУ. 1994. -Т.2, № 10.-С. 85-102.

9. Безрукова О.Н. Родительский статус будущей матери и факторы, влияющие на позицию в воспитании ребенка // Психофизиологические основы социальной адаптации ребенка. СПб., 1999. - С. 28-36.

10. Беледа Р.В., Фотина JI.A. Медико-психологическиб аспекты брака и семьи. Харьков, 1985. — 81 с.

11. Бехтерева Э.П. Сравнительное влияние центральных М- и Н-холинолитиков на гонадотропную функцию гипофиза. Автореф. дисс. канд. Л., 1967.

12. Бешкемпиров Е. Судебно-психиатрическая оценка при вариантах ги-поталамических поражений органического происхождения // Клинические и биологические проблемы общей и судебной психиатрии. М., 1988.

13. Вагнер Г., Грин Р. М.: Медицина, 1985. - 240 с. '

14. Вейн A.M., Соловьева А.Д. Лимбико-ретикулярный комплекс и вегетативная регуляция. М., 1973.

15. Голиков С.Н. О соотношении центрального и периферического действия атропина в подавлении симптомов ареколиновой интоксикации у мышей. Фармакология и токсикология, 1956, 19, 2, с.38.

16. Голиков С.Н., Разумова М.А., Саливанова А.Г. Об Н-холинолитиках преимущественно центрального действия. Фармакология и токсикология, 1965, 1, с.20.

17. Горнинченко И.И. Медико-психологические аспекты брака и семьи. -Харьков, 1985.- 129 с.

18. Демченко А.Н., Бондаренко В.А., Берковская Т.Н. Половое воспитание, сексуальное здоровье и гармония брачно-семейных отношений: Тез. докл. респ. науч. практич. конф. Киев, 1990. - С. 148-149.

19. Денисенко П.П. Центральные холинолитики. Л., Изд. Медицина, 1965.

20. Денисенко П.П. Экспериментальное и клиническое изучение центральных холинолитиков. В кн.: Фармакология нейротропных средств. Л., 1963. с.67-86.

21. Доброхотова Т.А. Эмоциональная патология при очаговом поражении головного мозга. — М., 1974.

22. Доброхотова Т.А., Брагина H.H. Асимметрия мозга и асимметрия сознания человека // Вопр. философии. 1993. - № 4. - С.123-134.

23. Доброхотова Т.А., Брагина H.H. Функциональная асимметрия и психопатология очаговых поражений. М., 1977.

24. Дудкин А.О., Сбитнев В.И. Спонтанные синхронные разряды в срезах гиппокампа. Биофизика, 2000, 45(1): —4.

25. Имелинский К. Сексология и сексопатология. М., 1986.

26. Коган JI.A. Медико-психологические аспекты брака и семьи. Харьков, 1985. - 84 с.

27. Коган М.И., Терентьев Ю.В. Современные проблемы сексопатологии. Киев, 1986. - С. 19-20.

28. Кожечкин С.Н. Холинэргическая природа гипоталамо-корковых возбуждающих эффектов // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1982. - Т.93, №5.-С. 10-12.

29. Кратохвил С. Терапия функциональных сексуальных расстройств. -М., 1985.- 159 с.

30. Лебедев A.A. Подкрепляющие системы мозга // Наркомании: патопсихология, клиника, реабилитация / П.Д. Шабанов, О.Ю.Штаксльберг. — СПб.: Лань, 2001.-С. 143-176.

31. Лебедев A.A., Шабанов П.Д. Сопоставление реакции самостимуляции и условного предпочтения места при введении фенамина у крыс // Журн. высш. нервн. деят. 1992. Т. 42, Вып. 4. - С. 692-698.

32. Лейбович Ф.А., Кожушко Л.Ф. О связанных с полом особенностях электроактивности головного мозга // Журн. невропатол. и психиатрии. 1974. -Т.74, № 6. - С.801.

33. Логинов A.A. Гомеостаз. Философские и общебиологические аспекты. Минск, 1979.

34. Лосев H.A. (Losev N.A.) Interaction between m- and n-cholinoreactive systems: a further development of S.V.Anichkov's ideas // Вести HAH Белоруссии. Сер. мед.-биол. наук. 2001. - № 1. - С. 61-64.

35. Лосев H.A. Нейрофармакологический анализ центрального действия нового Н-холинолитика препарата ИЭМ-506. Фармакол. и токсикол., 1972, №5, с.544-549.

36. Лосев H.A. Фармакологический анализ а- и ß-производных амизила и спазмолитина. Автореф. дисс. канд. Л., 1968.

37. Лурия А.Р. Нейропсихология памяти. М., 1974.

38. Лурия А.Р. Об отношении нейропсихологии к проблеме личности // Нейропсихология. Тексты. -М., 1984.

39. Лурия А.Р. Основы нейропсихологии. М., 1973. ,

40. Мошкин М.П., Плюснин Ю.М., Герлинская Л.А. и др., Эндокринная функция гонад и агрессивность самцов полёвки на спаде численности // Экология, 1984. №4. С.51-58.

41. Мошкин М.П., Литвинова К., Колосова И., Мак В. Запаховая привле-кательость самцов лабораторных мышей при развитии гуморального иммунного ответа на нереплицируемые антигены // ДАН, 2000. Т.374. С.277-279.

42. Науменко Е.В. Об участии холинореактивных структур в регуляции функции гипофизарно-надпочечниковой системы. Проблемы эндокринологии, 1965, №4, с.99-104.

43. Науменко Е.В. Участие адрено-, холино- и серотонинореактивных структур в регуляции деятельности гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системы. В кн.: Физиология и патология гипоталамуса. М. Наука, 1966. с. 150-152

44. Науменко Е.В. Центральная регуляция гипофизарно-надпочечникового комплекса. Л., Наука, 1971.

45. Нохуров А. Нарушения сексуального поведения: судебно-психиатрический аспект. М., 1988.

46. Осадчук A.B., Науменко Е.В. Роль генотипа и некоторых видов зоосоциального поведения в регуляции эндокринной функции семенников у мышей // Докл. АН СССР, 1981. Т.258. №3. С.746-749.

47. Полыпин В.В., Мхитаров В.А. Мардалеишвили Г.Б. Зависимость электрической активнсоти коры головного мозга белых крыс от половых гормонов // Журн. высш. нервн. деят. 1986. — Т.36, №5. -С.981-984.

48. Поскаленко А.Н. Влияние веществ, действующих на функцию коры надпочечников в области центральных холинэргических синапсов. Проблемы эндокринологии, 1960, №4, с. 14-17.

49. Поскаленко А.Н. Характер и механизмы действия холинэргических веществ на гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковую систему. Автореф. дисс. докт. JI., 1965.

50. Резников А.Г. Половые гормоны и дифференциация мозга. Киев: Наукова думка, 1982.-251 с.

51. Рыженков В.Б. Угнетающее действие метамизила на гонадотропную функцию гипофиза. Проб. Эндокринологии и гормонотерапии. 1964. 3. с.102.

52. Сапронов Н.С. Активность гипофизарно-надпочечниковой системы под влиянием веществ медиаторного типа действия. Проблемы эндокринологии, 1975, №4, с.47-51.

53. Сапронов Н.С. Влияние некоторых нейротропных средств на диурез и экскрецию электролитов. Фармакол. и токсикол., 1967, №4, с.445-449.

54. Сапронов Н.С. Влияние холинэргических веществ на антидиуретичесую функцию гипофиза. Автореф. дисс. канд. JL, 1968.

55. Сапронов Н.С. Механизмы центральной регуляции гипофизарно-надпочечниковой функции. Автореф. дисс. докт. Л., 1979.

56. Сапронов Н.С., Федотова Ю.О., Байрамов A.A. Влияние ДГЭА на условно-рефлекторную деятельность и моноаминергический статус у овариэктоми-рованных крыс// Мед. акад. журнал. — 2003. Т.З, №1. — С.41-47.

57. Сельянов A.B., Годухин О.В. Клеточно-молекуляр-ные механизмы фо-каль-ного эпилептогенеза. Успехи физиологических наук, 2001, 32(1): 60—7.

58. Симонов В.П. Эмоциональный мозг. М., 1981.

59. Симонов П.В. Мотивированный мозг. М.: Наука, 1987. - 237 с.

60. Симонов П.В. О нервных центрах эмоций // Журн. высш. нервн. деят. им. И.П. Павлова. 1993. - Т.43, №3. С. 19-23.

61. Симонов П.В. Светлое пятно сознания // Журн. высш. нервн. деят. им. И.П. Павлова. 1990. -Т.40, № 6. - С. 1040-1043.

62. Судаков К.В. Биологические мотивации. — М., 1971.

63. Темин П.А., Мухин К.Ю. Сексуальные нарушения при эпилепсии // Журн. невропатол. и психиатр. — 1989. — № 6. С. 126-131.

64. Темин П.А., Мухин К.Ю., Новиков A.A., Маковецкий M.JI. Гипосек-суальность у мужчин с эпилепсией // Журн. невропатол. и психиатр. -1988. № 6. - С.46-48.

65. Угрюмов M.B. Механизмы нейроэндокринной регуляции. М.: Наука, 1999.-247 с.

66. Угрюмов М.В. Нейроэндокринная регуляция в онтогенезе (структурно-функциональные основы). М.: Наука. — 1989. — 247 с.

67. Хаит Н.З. Половые расстройства у мужчин при поражении гипоталамуса.-Обнинск, 1993.

68. Хаит Н.З. Психоэндокринологические аспекты полового поведения при нарушении некоторых структур лимбической системы // Гормоны и мозг. -М., 1979.-С. 91-102.

69. Хомская Е.Д., Батова Н.Я. Мозг и эмоции. — М., 1992.

70. Чемыртан H.A., Шаляпина В.Г. Значение сенсорной стимуляции в постиатальном развитии гипофизарно-адренокортикальной системы крыс // Вопросы эволюционной физиологии. — JL: Наука, 1986. — С. 308.

71. Чепурнов С.А., Чепурнова Н.Е. Миндалевидный комплекс мозга. -М., 1981.

72. Шабанов П.Д., Ноздрачев А.Д., Лебедев A.A., Лебедев В.В. Нейрохимическая организация подкрепляющих систем мозга // Рос. Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 2000. - Т. 86, № 8. - С. 935-945.

73. Шаляпина В.Г., Гарина H.A., Жуков Д.А., Ракицкая В.В. Трансрецепторные механизмы в действии кортикостероидных гормонов // Физиология гормональной регуляции. Л.: Наука, 1996. - С.34-63.

74. Шаляпина В.Г., Ракицкая В.В., Абраменко В.В. Адренергическая иннервация матки. Л.: Наука, 1988. - 143 с.

75. Шефер Д.Г. Гипоталамические (диэнцефальные) синдромы. М., 1971.

76. Шостакович Б.В., Маркова М.Н., Смирнова Л.К., Ткаченко A.A. Уровень половых гормонов у мужчин с нарушением сексуального поведения в виде эксгибиционизма // Журн. невропатол. и психиатр. 1990. — Т.90, №5. -С.112-116.

77. Эндерци Э. Центральная нервная регуляция системы гипоталамус-кора надпочечников // Современные вопросы эндокринологии. М., 1969. -С.55-66.

78. Abe-Dohmae S., Tanaka R., Harada N. Cell type- and region-specific expression of aromatase mRNA in cultured brain cells // Brain Res. 1994. -Vol. 24, № l.-P. 153-158.

79. Agmo A., Picker Z. Catecholamines and the initiation of sexual behavior in male rats without sexual experience // Pharmacol. Biochem. Behav. -1990. Vol.35. - P.327-334.

80. Ahlenius S., Carlsson A., Hillegaart V., Hjorth S. Larsson K. Regionselec-tive activation of brain monoamine synthesis by sexual activity in the male rat // Eur. J. Pharmacol. 1987. - Vol.144. - P.77-82.

81. Ajarem J.S., Ahmad M. Prenatal nicotine exposure modifies behavior of mice through early development // Pharmacol. Biochem. Behav. 1998. -Vol.59.-P.313-318.

82. Akinbami M.A., Taylor M.F., Collins D.C., Mann D.R. Effect of a peripheral and a central acting opioid antagonist on the testicular response to stress in rats //Neuroendocrinology, 1994. V.59. P.343-348.

83. Albinsson A., Andersson G., Andersson K., Vega-Matuszczyk J., Larsson K. The effects of lesions in the mesencephalic raphe systems on male rat sexual behavior and locomotor activity // Behav. Brain. Res. 1996. - Vol.80. — P.57-63.

84. Albuquerque E., Alkondon M. et al. Properties of Neuronal Nicotinic Acetylcholine Receptors: Pharmacological Characterization and Modulation of Synaptic Function // J. Pharmacol. Exp. Therapeutics. 1997. - Vol.280, №1-3. - P. 1117-1136.

85. Albuquerque E., Pereira E. et al. Nicotinic Acetylcholine Receptors on Hippocampal Neurons: Distribution on the Neuronal Surface and Modulationof Receptor Activity // J. Receptor and Signal Transduct. Res. 1997. -Vol.17, № 1-3. - P.243-266.

86. Aldridge JE, Seidler FJ, Meyer A, Thillai I, Slotkin TA. Serotonergic systems targeted by developmental exposure to chlorpyrifos: effects during different critical periods // Environ Health Perspect. 2003. Vol.111. P.1736-1743.

87. Alfano DP, Petit TL. Neonatal lead exposure alters the dendritic development of hippocampal dentate granule cells// Exp. Neurol. 1982. Vol. 75. P. 275-288.

88. Almeida S.A., Kempinas W.G., Lamano Carvalho T.L. Sexual behavior and fertility of male rats submitted to prolonged immobilization-induced stress // Braz. J. Med. Bio.l Res., 2000b. V.33. P. 1105-1109.

89. Almeida S.A., Petenusci S.O., Franci J.A., Rosa e Silva A.A., Carvalho T.L. Chronic immobilization-induced stress increases plasma testosterone and delays testicular maturation in pubertal rats // Andrologia, 2000a. V.32. P.7-11.

90. Anisman, H. Neurochemical changes elicited by stress: behavioral correlates., in Anisman, H., and Bignami, G. (eds.), Psychopharmacology of aver-sively motivated behavior. Plenum press, New York: 1978. P. 119-171

91. Anisman, H., Kokkinidis, 1., and Sklar, L. S. Contribution of neurochemical change to stress-induced behavioral deficits, in Cooper, S. J. (ed.), Theory in psychopharmacology, Academic press, London: 1981. P.65-102.

92. Arevalo R, Afonso D, Castro R, Rodriguez M. Fetal brain serotonin synthesis and catabolism is under control by mother intake of tryptophan // Life Sci. 1991. Vol. 49. № 1. P. 53-66.

93. Arevalo R., Castro R., Palarea M.D. & Rodriguez M. Tyrosine administration to pregnant rats induces persistent behavioral modifications in the male offspring // Physiol. Behav. 1987. Vol.39. P.477-481.

94. Armario A., Castellanos J.M. A comparison of corticoadrenal and gonadal responses to acute immobilization stress in rats and mice // Physiol. Behav., 1984. V.32. P.517-519.

95. Armario A., Castellanos J.M., Balasch J. Effect of acute and chronic psychogenic stress on corticoadrenal and pituitary-thyroid hormones in male rats // Horm. Res., 1984. V.20. P.241-245.

96. Armario A., Lopez-Calderon A., Jolin T., Balasch J. Response of anterior pituitary hormones to chronic stress. The specificity of adaptation // Neurosci. Biobehav. Rev., 1986. V.10. P.245-250.

97. Armario A., Marti O., Gavalda A., Lopez-Calderon A. Evidence for the involvement of serotonin in acute stress-induced release of luteinizing hormone in the male rat // Brain Res. Bull., 1993. V.31. P.29-31.

98. Arnold A.P., Breedlove S.M. Organizational and activational effects of sex steroids on brain and behavior // Horm. Behav. 1985. №19. P.469-498.

99. Aston-Jones G., Shipley, M.T., Grzanna R. The locus coeruleus, A5 and A7 noradrenergic cell groups. In: The Rat Nervous System. Eds:W, P. G., Academic Press, San Diego, CA: 1995. P. 183-237.

100. Audesirk T., Cabell L. Nanomolar concentrations of nicotine and cotinine alter the development of cultured hippocampal neurons via non-acetylcholine receptor-mediated mechanisms// Neurotoxicology. 1999. Vol.20. P. 639646.

101. Avital B. Prenatal Exposure to Phenobarbital // J. Neuropsychopharma-cology. 2005. Vol. 30. P. 156-165.

102. Ayoub D., Greenough W., Juraska J. Sex differences in dendritic structure in the preoptic area of the juvenile Macaque monkey brain // Science. 1983. -Vol. 219. - P. 197-198.

103. Azam L., Winzer-Serhan U.H., Chen Y., Leslie F.M. Expression of neuronal nicotinic acetylcholine receptor subunit mRNAs within midbrain dopamine neurons // J. Comp. Neurol. 2002. Vol.444. P.260-274.

104. Bagchi D., Bagchi M., Hassoun E.A., Stohs SJ. In vitro and in vivo generation of reactive oxygen species, DNA damage and lactate dehydrogenase leakage by selected pesticides // Toxicology. 1995. Vol.104. P. 129-140.

105. Bain G, Gottlieb DI. Neural cells derived by in vitro differentiation of P19 and embryonic stem cells// Perspect. Dev. Neurobiol. 1998. Vol. 5. P. 175178.

106. Balthazart J., Ball G.F. New insights into the regulation and function of brain estrogen synthetase (aromatase) // Tins. 1998. - Vol. 21, № 6. - P. 243250.

107. Balthazart J., Schumacher M. Organization and activation of behavior in quail: role of testosterone metabolism // J. Steroid Biochem. 1984. Vol.20. №6. P.1528.

108. Bancila M., Verge D., Rampin O., Backstrom J.R. et al. 5-Hydroxytryptamine2C receptors on spinal neurons controlling penile erection in the rat//Neuroscience 1999. Vol.92. P. 1523-1537.

109. Bancroft J. Central inhibition of sexual response in the male: a theoretical perspective //Neurosci. Biobehav. Rev., 1999. V.23 P.763-784.

110. Bardin C.W., Paulsen C.A. The testes (Textbook of endocrinology) R. H.Williams. Philadelphia: Sounders, 1981. P.313.

111. Barfield R.J., Sachs B.D. Sexual behavior: stimulation by painful electrical shock to skin in male rats // Science, 1968. V.161. P.392-393.

112. Barone S., Das K.P., Lassiter T.L., White L.D. Vulnerable processes of nervous system development: a review of markers and methods // Neurotoxi-cology. 2000. Vol.21. P. 15-36.

113. Baulieu E.E., Robel P. Dehydroepiandrosterone and dehydroepiandroster-one sulphate as neuroactive neurosteroids // J. Endocrinol 1996. Vol.150. P. S221-S239.

114. Bayer S.A., Altman J. Neocortical Development. New York:Raven Press, 1991.

115. Bazhan N.M., Yakovleva T.V., Makarova E.N. Agouti locus may influence reproduction under food deprivation in the water vole (Arvicola terrestris) // J. Exp. Zool., 1999. V.283. P.573-579.

116. Bazzett T.J., Eaton R.C., Thompson J.T., Markowski V.P., Lumley L.A., Hull E.M. Dose dependent D2 effects on genital reflexes after MPOA injections of quinelorane and apomorphine // Life Sci. 1991. Vol.48. P.2309-2315.

117. Beck C.A., Wolfe M., Murphy L.D., Wiebe J.P. Acute, nongenomic actions of the neuroactive gonadal steroid, 3 alpha- hydroxy- 4-pregnen-20-one, on FSH release in perifused rat anterior pituitary cells // Endocr. Res. 1997. Vol.6. P.221-229.

118. Berger-Sweeney J, Hohmann CF. Behavioral consequences of abnormal cortical development: insights into developmental disabilities // Behav. Brain Res. 1997. Vol. 86. № 2. P. 121- 142.

119. Bitran D., Hull E. Pharmacological analysis of male rat sexual behavior // Neurosci. Biobehav. Rev. 1987. Vol.11. P.365-89.

120. Bitran D/, Hilvers R.J., Frye C.A., Erskine M.S. Chronic anabolicandro-genic steroid treatment affects brain GABA(A) receptor-gated chloride ion transport//Life Sci. 1996. Vol.58. P.573-583.

121. Bjorklund A., Nobin A. Fluorescence histochemical and micro-spectrofluometric mapping of dopamine and noradrenaline cell groups in the rat diencephalon//Ibid. 1973. -Vol. 51.-P. 193-205.

122. Blaha C.D., Winn P. Modulation of dopamine efflux in the striatum following cholinergic stimulation of the substantia nigra in intact and pedunculopontine tegmental nucleuslesioned rats// J. Neurosci. 1993. Vol. 13. P. 1035-1044.

123. Blaschke AJ., Staley K., Chun J. Widespread programmed cell death in proliferative and postmitotic regions of the fetal cerebral cortex // Development 1996. Vol. 122. P. 1165-1174.

124. Blaschke A.J., Weiner J.A., Chun J. Programmed cell death is a universal feature of embryonic and postnatal neuroproliferative regions throughout the central nervous system // J. Comp. Neurol. 1998. Vol. 396. P. 39-50.

125. Blumer D., Benson D.F. Psychiatric Manifestations of Epilepsy // D.F. Benson, D. Blumer (Eds.) Psychiatric aspects of Neurological Disease. N.Y.: 1982.

126. Blumer D., Walker A.E. Sexual Behavior in Temporal Lobe Epilepsy // Arch. Neurol. 1975. Vol.16. №1. P.37-43.

127. Bonilla-Jaime H., Retana-Marquez S., Vazquez-Palacios G. et.al. Corticosterone and testosterone levels after chronic stress in an animal model of depression //Neuropsychobiology. 2003. Vol.48. №2. P.55-58.

128. Bonilla-Jaime H., Retana-Marquez S., Velazquez-Moctezuma J. Pharmacological features of masculine sexual behavior in an animal model of depression // Pharmacol. Biochem. Behav. 1998. Vol.60. №1. P.39-45.

129. Bourgeois J.P., Goldman-Rakic P.S., Rakic P. Synaptogenesis in the prefrontal cortex of rhesus monkeys // Cereb. Cortex. 1994. Vol. 4. P. 78-96.

130. Boyson S.J., Adams C.E. D1 and D2 dopamine receptors in perinatal and adult basal ganglia // Pediatr. Res. 1997. Vol. 41. № 6. P. 822-31.

131. Bradshaw W.G., Baum M.J., Awh C.C. Attenuation by a 5alpha-reductase inhibitor of the activational effects of testosterone propionate on penile erections in castrated male rats // Endocrinology. 1981. Vol.109. P. 10471051.

132. Brazell M.P., Mitchell S.N., Gray J.A. Effect of acute administration of nicotine on in vivo release of noradrenaline in the hippocampus of freely moving rats: a dose-response and antagonist study // Neuropharmacology . 1991. Vol.30. P.823-833.

133. Bronson F.H., Desjardins C. Endocrine responses to sexual arousal in male mice//Endocrinology, 1982. V.l 11. P.1286-1291.

134. Brown T.J., Sharma M., Karsan N., Walters M.J. et al. In vitro autoradiographic measurement of gonadal steroid receptors in brain tissue sections // Steroids. 1995. Vol.60. P.726-737.

135. Bruning G., Liangos O., Baumgarten H.G. Prenatal development of the serotonin transporter in mouse brain // Cell Tissue Res. 1997. Vol. 289. № 2. P. 211-221.

136. Busciglio J., Yankner B.A. Apoptosis and increased generation of reactive oxygen species in Down's syndrome neurons in vitro 11 Nature. 1995. Vol. 378. P. 776-779.

137. Butler N.R., Goldstein H. Smoking in pregnancy and subsequent child development // Br. Med. J. 1973. Vol. 4. P. 573-575.

138. Buznikov G.A., Shmukler Y., Lauder J.M. Changes in the physiological roles of neurotransmitters during individual development // Neurosci. Behav. Physiol. 1999. Vol. 29. P. 11-21.

139. Buzsaki G. Twostage model of memory trace formation: a role for "noisy" brain states //Neuroscience. 1989. Vol. 31. P. 551-570.

140. Cameron H.A., Hazel T.G., McKay R.D. Regulation of neurogenesis by growth factors and neurotransmitters// J. Neurobiol. 1998. Vol.36. P. 287306.

141. Cantor J.M., Yitzchak M., Binik J, Pfaus G. Chronic fluoxetine inhibits sexual behavior in the male rat:reversal with oxytocin // Psychopharmacol-ogy. 1999. Vol.144. P.355-362.

142. Carani C., Scuteri A., Marrama P., Bancroft J. The effects of testosterone administration and visual erotic stimuli on nocturnal penile tumescence in normal men // Horm. Behav. 1990. Vol.24. №3. P.435-41.

143. Carey, R.J. & R. Schwarting: Spontaneous and drug-induced locomotor activity after partial dopamine denervation of the ventral striatum // Neuropsychobiol .1986. Vol. 16. P. 121-125.

144. Carlson J.N., Fitzgerald L.W., Keller R.Jr., Glick S.D. Lateralized changes in prefrontal cortical dopamine activity induced by controllable and uncontrollable stress in the rat // Brain Res. 1993. Vol.630. P. 178-187.

145. Carpenter MB, Sutin J. Human Neuroanatomy. Baltimore:Williams & Wilkins, 1983;71-74.

146. Can- L.A., Walters D.E., Meyer D.C. Postnatal development in the rat following pre- or postnatal exposure to nicotine // Res. Commun. Subst. Abuse. 1985. Vol. 6. P. 151-164.

147. Carr R.L., Chambers H.W., Guarisco J.A. et al. Effects of repeated oral postnatal exposure to chlorpyrifos on open-field behavior in juvenile rats // Toxicol Sci. 2001. Vol.59. P.260-267.

148. Casida J.E., Quistad G.B. Organophosphate toxicology: safety aspects of nonacetylcholinesterase secondary targets // Chem. Res. Toxicol. 2004. Vol.17. P.983-998.

149. Chanda S.M., Harp P., Liu J., Pope C.N. Comparative developmental and maternal neurotoxicity following acute gestational exposure to chlorpyrifos in rats //J. Toxicol. Environ. Health. 1995. Vol. 44. P. 189-202.

150. Chanda S.M., Pope C.N. Neurochemical and neurobehavioral effects of repeated gestational exposure to chlorpyrifos in maternal and developing rats //Pharmacol. Biochem. Behav. 1996. Vol.53. P.771-776.

151. Charpenet G., Tache Y., Bernier M., Ducharme J.R., Collu R. Stressin-duced testicular hyposensitivity to gonadotropin in rats. Role of the pituitary gland//Biol. Reprod., 1982. V.27. P.616-623.

152. Charpenet G., Tache Y., Forest M.G., Haour F., Saez J.M., Bernier M., Ducharme J.R., Collu R. Effects of chronic intermittent immobilization stress on rat testicular androgenic function // Endocrinology, 1981. V.109. P. 12541258.

153. Choi B.H. Methylmercury poisoning of the developing nervous system. I: Pattern of neuronal migration in the cerebral cortex // Neurotoxicology. 1986. Vol. 7. P. 591-600.

154. Choi B.H. The effects of methylmercury on the developing brain // Prog. Neurobiol. 1989. Vol. 32. P. 447-470.

155. Cicardo V.H., Carbone S.E., DeRondina D.C., Mastronardi I.O. Stress by forced swimming in the rat: effects of mienserin and moclobemide on GABAergic-monoaminergic systems in the brain // Comp. Biochem. Physiol. 1986. Vol.83. P.133-135.

156. Clancy A.N., Bonsai R.W., Michael R.P. Immunohistochemical labeling of androgen receptors in the brain of rat and monkey // Life Sci. 1992. Vol.50. P.409-417.

157. Clarke P.B., Reuben M. Release of (3H)-noradrenaline from rat hippo-campal synaptosomes by nicotine: mediation by different nicotinic receptor subtypes from striatal (3H)-dopamine release // Br. J. Pharmacol. 1996. Vol.117. P.595-606.

158. Clemente C.D., Chase M.H. Neurological substrates of aggressive behavior// Ann. Rev. Physiol. 1973. Vol.35. P.329-356.

159. Cochard P., Coltey P. //Develop. Biol. 1983. vol.98, p. 221-238.

160. Cole, P.V., Hawkins L.H., Roberts D. Smoking during pregnancy and its effects on the fetus // J. Obstet Gynaecol. Br. Commonw. 1972. Vol.79. №782-787

161. Collu R., Gibb W., Ducharme J.R. Effects of stress on the gonadal function // J. Endocrinol. Invest., 1984a. V.7. P.529-537.

162. Collu R., Gibb W., Ducharme J.R. Role of catecholamines in the inhibitory effect of immobilization stress on testosterone secretion in rats // Biol. Reprod., 1984b. V.30. P.416-422.

163. Cordoba Montoya D.A., Carrer H.F. Estrogen facilitates induction of long term potentiation in the hippocampus of awake rats // Brain Res. 1997. Vol.778. P.43CM38.

164. Corrigall W.A., Coen K.M. Nicotine maintains robust self-administration in rats on a limited-access schedule // Psychopharmacology. 1989. Vol.99. P.473^478.

165. Corrigall W.A., Coen K.M. Selective dopamine antagonists reduce nicotine self-administration // Psychopharmacol. 1991. Vol.104. P.171-176.

166. Corrigall W.A., Coen K.M., Adamson K.L, Self-administered nicotine activates the mesolimbic dopamine system through the ventral tegmental area // Brain Res 1994. Vol.653. P.278-284.

167. Corrigall W.A., Franklin K.B., Coen K.M., Clarke P.B. The mesolimbic dopaminergic system is implicated in the reinforcing effects of nicotine // Psychopharmacology. 1992. Vol.107. P. 285-289

168. Corrodi H., Fuxe K., Lidbrink P., Olson L. Minor trasquilizers, stress, and catecholamine neurons // Brain Res. 1971. Vol. 29. P. 1-16.

169. Costa L.G., Schwab B.W., Murphy S.D. Tolerance to anticholinesterase compounds in mammals // Toxicology. 1982. Vol. 25. P. 79-97.

170. Crumpton T.L., Seidler F.J., Slotkin T.A. Is oxidative stress involved in the developmental neurotoxicity of chlorpyrifos? // Dev. Brain Res. 2000. Vol. 121. P. 189-195.

171. Cunningham G.R., Hirshkowitz M., Korenman S.G. et al. Testosterone replacement therapy and sleep-related erections in hypogonadal men // J. Clin. Endocr. 1990. 70. 3. 792-797.

172. Curzon G., Dickinson S.L., Kennett G.A. Chronic corticosterone decreases 5-HT dependent responses in the rat // Br. J. Pharmacol. 1984. Vol. 82. P. 207-211.

173. Dahlstrom A., Lundell B. Nicotine and cotinine concentrations in the nursing mother and her infant // Acta Paediatrica Scandinavica. 1990. Vol. 79. P. 142-147.

174. Dam K., Garcia S.J., Seidler F.J., Slotkin T.A. Neonatal chlorpyrifos exposure alters synaptic development and neuronal activity in cholinergic and catecholaminergic pathways // Dev. Brain Res. 1999. Vol. 116 P. 9-20.

175. Dam K., Seidler F.J., Slotkin T.A. Chlorpyrifos exposure during a critical neonatal period elicits gender-selective deficits in the development of coordination skills and locomotor activity // Dev. Brain Res. 2000. Vol. 121. P. 179-187.

176. Damassa D.A., Smith E.R., Tennet B. Davidson J.M. The relationship between circulating testosterone levels and male sexual behavior in rats // Horm. Behav. 1977. Vol. 8. № 3. P. 275-286.

177. Dantzer R., Koob G.F., Bluthe R.M., Le Moal M. Septal vasopressin modulates social memory in male rats // Brain Res. 1988. - Vol. 457. - P. 143-147.

178. Davidson J.M. Effects of estrogen on the sexual behavior, of male rats // Endocrinology. 1969. Vol. 84. P. 1365-1372.

179. De'Souza E.B., Van Loon G.R. Brain serotonin and catecholamine responses to repeated stress in rats // Brain Res. 1986. Vol. 367. P. 77-86.

180. Diamond M., Dowling G., Johnson R. Morphologic cerebral cortical asymmetry in male and female rats // Experimental Neurology. 1981. - Vol. 71.-P. 261-268.

181. Diamond M.C. Hormonal effects on the development or cerebral lateralization // Psychoneuroendocrinology. 1991. - Vol. 16, № 1-3. - P. 121-129.

182. Diamond, M.C. Age, sex and environmental influences // In: Cerebral Dominance The Biological Foundations, eds. N. Geschwind and A.M. Galaburda. Harvard University Press. - 1984. - P. 134-146.

183. Dodson R.E., Gorslci R.A. Testosterone propionate administration prevents the loss of neurons within the central part of the medial preoptic nucleus // Journal of Neurobiology. 1993. - Vol. 24. - P. 80-88.

184. Dorner G. Hormones and brain differentiation. Amsterdam: Elsevier, 1976.-272 c.

185. Dorner G. Hormones, brain development and fundamental processes of life. Hormones and brain development. Amsterdam: Elsevier, 1978. P. 1325.

186. Dorner G. Hormone-dependent brain development and neuroendocrine prophylaxis // Exp. Clin. Endocrinol. 1989. Vol. 94, № 1/2. P. 4-22.

187. Dorner G., Docke F., Hinz G. Paradoxical Effects of Estrogen on Brain Differentiation//Neuroendocrinology. 1971. Vol. 7. P. 146-155.

188. Doty R.W. Some Anatomical Substrates of Emotions, and their Bichemi-spheric Coordination // Exp. Brain Res. 1989. Vol. 18. P. 56-81.

189. Dragunow M., MacGibbon G.A., Lawlor P. et al. Apoptosis, neurotrophic factors and neurodegeneration // Rev. Neurosci. 1997. Vol. 8. P. 223-265.

190. Drews U. //Progr. Histochem. And Cytochem. 1975. vol. 7. p. 1-52.

191. Dunn A.J. Changes in plasma and brain tryptophan, and brain serotonin and 5-hydroxyindoleacetic acid after foot shock stress // Life Sci. 1988. Vol. 42. P. 1847-1853.

192. Eagleson K.L., Lillien L., Chan A.V., Levitt P. Mechanisms specifying area fate in cortex include cell-cycle-dependent decisions and the capacity of progenitors to express phenotype memory // Development. 1997. Vol. 124. P. 1623-1630.

193. El Attar T., Dirscherd W. The metabolism of a dehydroepiandrosterone in varios organs of the rat // Acta endocr. 1965. Vol. 50. № I. P. 123.

194. Ellison J.M. . Alteration of Sexual Behavior in Temporal-Lobe Epilepsy //Psychosomatics. 1982.Vol.23. P.499-509.

195. I.Eriksson M., Larsson G., Zetterstrom R. Abuse of alcohol, drugs and tobacco during pregnancy consequences for the child // Paediatrician. 1979. Vol. 8. P. 228-242.

196. Evans R.M. The steroid and thyroid hormone receptor superfamily // Science. 1988.Vol.240. P.889-895.

197. Everitt B.J. Sexual motivation: a neural and behavioural analysis of the mechanisms underlying appetitive and copulatory responses of male rats // Neurosci. Biobehav. Rev. 1990.Vol.14. P.217-232

198. Everitt BJ, Robbins TW. Central cholinergic systems and cognition. (Review) // Annu. Rev. Psychol. 1997. Vol. 48. P. 649-684.

199. Fallon J.H., Loughlin S.E. Substantia Nigra. In: The Rat Nervous System. Eds:Paxinos, G., Academic Press, San Diego, 1995. CA 215-237.

200. Fernandez-Guasti A., Escalante A.L., Ahlenius S. et al. Stimulation of 5-HT1A and 5-HT1B receptors in brain regions and its effects on male rat sexual behaviour //Eur. J. Pharmacol. 1992.Vol.210. P. 121- 129.

201. Ferrari M., McAnelly ML, Zakon H.H. Individual variation in and androgen-modulation of the sodium current in the electric organ // J. Neurosci. 1995. Vol. 15. P.4023-4032.

202. Finley J.C.W., Lindsrom P., Petrusz P. Immunocytochemical localization of (3- endorphin containing neurons in the brain // Neuroendocrinology . -1981.-Vol. 33.-P. 28-42.

203. Fishell, G. & D. van der Kooy: Pattern formation in the striatum: developmental changes in the distribution of striatonigral neurons // J. Neurosci. 1987. Vol.7. P.1969-1978

204. Flood J. F., Roberts E. Dehydroepiandrosterone sulfate improves memory in aging mice // Brain Res. 1988. Vol.448. P. 178-181.

205. Foreman M.M., Hall J.L., Love R.L. The role of the 5-HT2 receptor in the regulation of sexual performance of male rats // Life Sci. 1989.Vol.45. P.1263-1270.

206. Frankel A.I., Ryan E.L. Testicular innervation is -necessary for the response of plasma testosterone levels to acute stress // Biol. Reprod., 1981.1. V.24.P.491-495.

207. Frye C.A., Reed T.A. Androgenic neurosteroids: anti-seizure effects in an animal model of epilepsy // Psychoneuroendocrinology. 1998. Vol.23. P.385-399.

208. Fung Y.K. Postnatal behavioural effects of maternal nicotine exposure in rats // J. Pharm. Pharmacol. 1988.Vol.40. P.870-872

209. Fung Y.K., Lau Y.S. Effects of prenatal nicotine exposure on rat striatal dopaminergic and nicotinic systems // Pharmacol. Biochem. Behav. 1989. Vol. 33. P. 1-6.

210. Galea L.A., Perrot-Sinal T.S., Kavaliers M., Ossenkopp K.P. Relations ofhippocampal volume and dentate gyrus width to gonadal hormone levels in male and female meadow voles // Brain Res. 1999. Vol.821. P.383-391.

211. Gallardo K.A., Leslie F.M. Nicotine-stimulated release of (3H)norepinephrine from fetal rat locus coeruleus cells in culture // J. Neuro-chem. 1998.Vol.70. P.663-670.

212. Ganis P.A., Ben-Jonathan N. Estradiol rapidly stimulates dopamine release from the posterior pituitary in vitro // Neuroendocrinology. 1991. -Vol. 53.-P. 601-607.

213. Garcia S.J., Seidler F.J., Slotkin T.A. Developmental neuro-toxicity elicited by prenatal or postnatal chlorpyrifos exposure: effects on neurospecific proteins indicate changing vulnerabilities // Environ. Health Perspect. 2003.Vol.111. P.297-303.I

214. Geschwind N., Galaburda A.M. Cerebral lateralization. Biological mechanisms, associations, and pathology. I: A hypothesis and a program for research // Arch. Neurol. 1985. Vol. 42. P. 428-459.

215. Gilad G.M., Mohan B.D., Finkelstein Y. et al. Stress-induced activation of the hippocampal cholinergic system and the pituitary-adrenocortical axis // Brain Res. 1985.Vol.347. P.404-^108.

216. Gladkova A.I. Role of neurotransmitters in coordination of male sexual behavior//Neirofiziologiya/Neurophysiology. 2000. Vol.32. №1. P.69-74.

217. Gleason E.L., Spitzer N.C. AMPA and NMDA receptors expressed by differentiating Xenopus spinal neurons // J. Neurophysiol. 1998. Vol. 79. P. 2986-2998.

218. Gloor P., Olivier A., Quesney L.F. et al. The role of the limbic system in experiential phenomena of temporal lobe epilepsy // Ann. Neurol. 1982.Vol.12. P.129-144.

219. Goldberg S.R., Spealman R.D., Risner M.E., Henningfield J.E. Control of behavior by intravenous nicotine injections in laboratory animalsPharmacol. Biochem. Behav. 1983.Vol.19. P. 1011-1020.

220. Goldberg, S.R. , Henningfield J.E. Reinforcing effects of nicotine in humans and experimental animals responding under intermittent schedules of i.v. drug injection //Pharmacol. Biochem. Behav. 1988.Vol.30. P.227-234

221. Goldfoot D.A., Baum M.J. Initiation of mating behavior in developing male rats following peripheral electric shock // Physiol. Behav., 1972. V.8. P.857-863.

222. Goldstein M., Sauter A., Ueta K., Fuxe K. Effect of stress on central catecholamine levels. Pages 47-52, in Usdin, E., Kvetnansky, R., and Kopin, I. J.eds.), Catecholamines and stress: Recent advances, Elsevier/North-Holland, New York. 1980.

223. Gonzalez M.I., Farabollini F., Albonetti E., Wilson C.A. Interactions between 5-hydroxytryptamine (5-HT) and testosterone in the control of sexual and nonsexual behaviour in male and female rats // Pharmacol. Biochem. Behav. 1994.Vol.47. P.591- 601.

224. Gorski R.A., Gordon J.H., Shryne J.E., Southam A.M. Evidence for a morphological sex difference within the medial preoptic area of the brain // Brain Research. 1978. - Vol. 148. -P. 333-346.

225. Gould E., Woolley C.S., Frankfurt M., McEwen B.S. Gonadal steroids regulate spine synapse density in hippocampal pyramidal cells in adulthood // J. Neurosci. 1990. Vol.10. P. 1286-1291.

226. Grady S.R., Meinerz N.M., Cao J. et al. Nicotinic agonists stimulate acetylcholine release from mouse interpeduncular nucleus: a function mediated by a different nAChR than dopamine release from striatum // J. Neurochem. 2001.Vol.76. P.258-268

227. Grahnstedt S., Ellertsen B. Brain state and kindled seizures. Exp. Neurol., 1984, 84(3): 596-605.

228. Gray R., Rajan A.S., Radcliffe K.A. et al. Hippocampal synaptic transmission enhanced by low concentrations of nicotine (see comments) // Nature 1996.Vol.383. P.713-716 .

229. Greenough W.T., Carter C.S., Steerman C. Sex differences in dendritic patterns in hamster preoptic area // Brain Research. 1977. - Vol. 126. - P. 63-72.

230. Grifman M., Galyam N., Seidman S., Soreq H. Functional redundancy of acetylcholinesterase and neuroligin in mammalian neuritogenesis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. Vol. 95. P. 13935-13940.

231. Grunberg N.E., Winders S.E., Popp K.A. Sex differences in nicotine's effects on consummatory behavior and body weight in rats // Psychopharma-col. 1987.Vol.91. P.221-225.

232. Guerri C. Neuroanatomical and neurophysiological mechanisms involved in central nervous system dysfunctions induced by prenatal alcohol exposure //Alcohol Clin. Exp. Res. 1998. Vol. 22. P. 304-312.

233. Guivarc'h D., Vernier P., Vincent J.D. Sex steroid hormones change the differential distribution of the isoforms of the D2 dopamine receptor messenger RNA in the rat brain // Neuroscience. 1995. Vol. 69. P. 159-166.

234. Gupta R.C. Brain regional heterogeneity and toxicological mechanisms of organophosphates and carbamates // Toxicol. Mech. Meth. 2004.Vol.14. P.103-143.

235. Halgren E., Walter R.D., Cherlow D.G., Grandall P.H. Mental phenomena evoked by electrical stimulation of the human hippocampal formation and amygdala //Brain. 1978. Vol.101. P.83-117.

236. Harley C.W., Malsbury C.W., Squires A., Brown R.M. Testosterone decreases CA1 plasticity in vivo in gonadectomized male rats // Hippocampus. 2000. Vol.10. P.693-697.

237. Harry G.J., Toews A.D., Krigman M.R., Morell P. The effect of lead toxicity and milk deprivation of myelination in the rat, // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1985. Vol. 77. P. 458-464.

238. Heath R.G. Pleasure response of human subjects to direct stimulation of the brain: Physiologic and psychodynamic considerations. In: Heath R.G. (Ed.), The Role of Pleasure in Behavior. New York, Harper & Row: 1964. P.219-243.

239. Hebert T.J., Cashion M.F., Dohanich G.P. Effects of hormonal treatment and history on scopolamine inhibition of lordosis // Physiol. Behav. 1994. Vol.56. №5. P. 835-839.

240. Hedou G., Homberg J., Martin S. et al. Effect of amphetamine on extracellular acetylcholine and monoamin. levels in subterritories of the rat medial prefrontal cortex // Eur. J. Pharmacol. 2000.Vol.390. P. 127-136.

241. Hendry L.B. Stereochemical complementary of DNA and steroid agonists and antagonists // J. Steroid. Biochem. 1988. Vol.31. P.493-523.

242. Henningfield J.E., Miyasato K., Jasinski D.R. Cigarette smokers self-administer intravenous nicotine // Pharmacol. Biochem. Behav. 1983.Vol. 19. P.887-890.

243. Herschkowitz N., Kagan J., Zilles K. Neurobiological bases of behavioral development in the first year //Neuropediatrics. 1997. Vol. 28. P. 296-306.

244. Hery F.S. Burgoin, et al. Control of the Release of Newly Synthesized 3H-5-Hydroxytryptamine by Nicotinic and Muscarinic Receptors in Rat Hypo-thalmic Slices // Naunyn-Schmiedeberg's Archives of Pharmacol. 1977. Vol.296. №2. P.91-97.

245. Hery M, Francois-Bellan AM, Hery F, Deprez P, Becquet D Serotonin directly stimulates luteinizing hormone-releasing hormone release from GT1 cells via 5-HT7 receptors. Endocrine 1997, 7:261-265

246. Higuchi T., Honda K., Negoro H. Influence of oestrogen and noradrenergic afferent neurones on the response of LH and oxytocin to immobilization stress // J. Endocrinol., 1986. V.l 10. P.245-250.

247. Hines M., Allen L.S., Gorski R.A. Sex differences in subregions of the medial nucleus of the amygdala and the bed nucleus of the stria terminalis of the rat // Brain Research. 1992. - Vol. 579. - P. 321-326.

248. Hoff S.F. Synaptogenesis in the hippocampal dentate gyrus: effects of in utero ethanol exposure // Brain Res. Bull. 1988. Vol. 21. P. 47-54.

249. Hooshmand H., Brawley B.W. Temporal lobe seizures and exhibitionism //Neurology. 1969. Vol.19. №11. P. 1119-1124.

250. Hull E.M. Dopaminergic influences on male rat sexual behavior. In:Micevych PE, Hammer RPJ, editors. Neurobiological effects of sex steroid hormones. Cambridge (UK)7 Cambridge University Press; 1995. P.234-53.

251. Hull E.M., Bitran D., Pehek E.A. et al. // Pharmacol. Biochem. Behav. 1988b. Vol. 31. N l.P. 169-174.

252. LIull E.M., Bitran D., Pehek E.A. et al. Dopaminergic control of male sex behavior in rats: effects of an intracerebrally-infused agonist // Brain Res. 1986.Vol.370. P.73-81.

253. Hull E.M., Eaton R.C., Markowski V.P. et al. Opposite influence of medial preoptic D1 and D2 receptors on genital reflexes: implications for copulation //LifeSci. 1992. Vol.5 l.P. 1705- 1713.

254. LIull E.M., Meisel R.L., Sachs B.D. Male sexual behavior. In: Pfaff DW, Arnold AP, Etgen AM, Fahrbach SE, Rubin RT, editors. Hormones, brain, and behavior. New York. Academic Press: 2002. P. 133-137.

255. Hull E.M., Pehek E.A., Bitran D. et al. // Pharmacol Biochem Behav. 1988a. Vol. 31. N l.P. 175-178.

256. Hull E.M., Warner R.K., Bazzett T.J. et al. D2/D1 ratio in the medial preoptic area affects copulation of male rats // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1989.Vol.251. P.422- 427.

257. Icenogle L.M., Christopher C., Blackwelder W.P. et al. Behavioral alterations in adolescent and adult rats caused by a brief subtoxic exposure tochlorpyrifos during neurulation // Neurotoxicol. Teratol. 2004.Vol.26. P.95-101.

258. Ishikawa M., Нага C., Ohdo S., Ogawa N. Plasma corticosterone response of rats with sociopsychological stress in the communication box // 212 Physiol. Behav., 1992. V.52. P.475-480.

259. Joels M., de Kloet E.R. Long-term exposure to high corticosterone levels attenuates serotonin responses in rat hippocampal CA1 neurons // Neuroendocrinology. 1992 . Vol. 55. P.344-350.

260. Jones E.G. The thalamus // Plenum, New York.: 1985. P.744-757.

261. Jones I,W„ Bolam J,P„ Wonnacott S, Presynaptic localisation of the nicotinic acetylcholine receptor beta2 subunit immunoreactivity in rat nigrostri-atal dopaminergic neurones // J, Comp, Neurol, 2001. Vol.439. P.235-247.

262. Jones S., Kauer J.A. Amphetamine depresses excitatory synaptic transmission via serotonin receptors in the ventral tegmental area // J. Neurosci.1999. Vol.19. P.9780-9787.

263. Juraska J. Sex differences in cognitive regions of the rat brain // Psychoneuroendocrinology. 1991. - Vol. 16. - P. 105-119.

264. Kalivas P.W., Churchill L., Klitenick M.A. The circuitry mediating the translation of motivational stimuli into adaptive motor responses. In: Kalivas PW, Barnes CD (eds) Limbic motor circuits and neuropsychiatry. CRC Press, Boca Raton. 1993. P.237-287

265. Karen D.J., Li W., Harp P.R. et al. Striatal dopaminergic pathways as a target for the insecticides permethrin and chlorpyrifos // Neurotoxicology. 2001. Vol.22. P.811-817.

266. Katz E.J., Cortes V.I., Eldefrawi M.E., Eldefrawi A.T. Chlorpyrifos, parathion, and their oxons bind to and desensitize a nicotinic acetylcholine receptor: relevance to their toxicities // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1997. Vol. 146. P. 227-236.

267. Kawashima S, Takagi K. Role of sex steroids on the survival, neuritic outgrowth of neurons, and dopamine neurons in cultured preoptic area and hypothalamus // Horm Behav. 1994. - Vol. 28, № 4. - P. 305-312.

268. Kendall D.A., Stancel G.M., Enna S.J. Imipramine. Effect of ovarian steroids on modifications in serotonin receptor binding // Science. 1981. №21 l.P. 1183-1185.

269. Kendrick K.M., Baldwin B.A. Cells in temporal cortex of conscious sheep can respond preferentially to the sight of faces // Science. 1987. Vol.236. P.448-450.

270. Kendrick K.M., Drewett R.F. Testosterone reduces refractory period of stria terminalis neurons in the rat brain // Science. 1979. Vol.204. №4395. P.877-9.

271. Kennett G.A., Dickinson S.L., Curzon G. Enhancement of some 5-HT dependent behavioral responses following repeated immobilization in rats // Brain Res. 1985. Vol.330. P.253-263.

272. Kerr J.E., Allore R.J., Beck S.G., Handa R.J. Distribution and hormonal regulation of androgen receptor (AR) and AR messenger ribonucleic acid in the rat hippocampus //Endocrinology. 1995. Vol.136. P.3213-3221.

273. Keverne E.B. Sexual and aggressive behaviour in social groups of tala-poin monkeys // Ciba Found Symp., 1978. V.62. P.271-297.

274. Kita T., Okamoto M., Nakashima T. Nicotine-induced sensitization to ambulatory stimulant effect produced by daily administration into the ventral tegmental area and the nucleus accumbens in rats // Life Sci. 1992. Vol.50. P.583-590.

275. Kitai S., Shepard P., Callaway J. et al. Afferent modulation of dopamine neuron firing pattern // Curr Opin Neurobiol. 1999. Vol. 9. P. 690-697.

276. Kleinrok Z., Jagiello-Wojtowicz E., Sieklucka M. Influence of Fluorostig-mine on Some Parameters of the Catecholaminergic and Serotoninergic Systems in the Mouse Brain // Archivum Immunologiae et Therapiae Experimentalis. 1975. Vol.23. №6. P.769-776.

277. Klink R., d'Exaerde A., Zoli M., Changeux J.P. Molecular and physiological diversity of nicotinic acetylcholine receptors in the midbrain dopaminergic nuclei // J. Neurosci. 2001. Vol.21. P. 1452-1463.

278. Klint T., Larsson K. Clozapine acts as a 5-HT2 antagonist by attenuating DOI-induced inhibition of male rat sexual behaviour // Psychopharmacology (Berl). 1995. Vol.119. P.291^1.

279. Kolarsky A., Freund K., Machek J., Polak O. Male Sexual Deviation: Association with Early Temporal Lobe Damage // Arch, of Gen. Psychiatry. 1967. Vol.17. P.735-743.

280. Kolb B., Stewart J. Sex differences in dendritic branching of cells in the prefrontal cortex of rats // Journal of Neuroendocrinology. 1991. - Vol. 3. -P. 95-99.

281. Kondo Y., Yamanouchi K. Potentiation of ejaculatory activity by median raphe nucleus lesions in male rats: effect of p-chlorophenylalanine // Endocr. J. 1997. Vol.44. P.873-879.

282. Koob G.F., Stinus L., Le Moal M. Hyperactivity and hypoactivity produced by lesions to the mesolimbic dopamine system // Behav. Brain Res. 1981. Vol. 3. P. 341-359.

283. Kordon C., Enjalbert A., Hery M. et al. Role of neurotransmitters in the control of adenohypophyseal secretion // Physiology of the hypothalamus. Handbook of the hypothalamus. N.Y.; Basel: Dekker, Inc. 1980. - Vol. 2. -P. 253-306.

284. Krnjevic K., Schwartz S. The action of gamma-aminobutyric acid on cortical neurones // Exp. Brain Res. 1967. Vol.3. №4. P.320-36.

285. Kula K. Changes in gonadotropin regulation in both behavioral and phe-notypic disturbances of sexual differentiation in men. Psychoneuroendocri-nology. 1986. Vol.11.№1.P.61-67.

286. Labrie F., Ferland L., Denizeau F., Beaulieu M. Sex steroids interact with dopamine at the hypothalamic and pituitary levels to modulate prolactin secretion // J. Steroid Biochem. 1980. Vol.12. P.323-30.

287. Laev H., Karpiak S.E., Gokhale V.S., Hungund B.L. In utero ethanol exposure retards growth and alters morphology of cortical cultures: GM1 reverses effects //Alcohol Clin. Exp. Res. 1995. Vol. 19. P. 1226-1233.

288. Langevin R. et al. Sexual sadism: Brain, Blood, and Behavior. In: Human Sexual aggression. An.New York Ac. Sci. - N.Y.: 1988. P. 172-182.

289. Lassiter T.L., Padilla S., Mortensen S.R. et al. Gestational exposure to chlorpyrifos: apparent protection of the fetus? // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1998. Vol. 152. P. 56-65.

290. Lauder J.M. Ontogeny of the serotonergic system in the rat: serotonin as a developmental signal // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1990. Vol. 600. P. 297-313.

291. Lauder J.M., Moiseiwitsch J., Liu J., Wilkie MB. Serotonin in development and pathophysiology. In: Lou HC, Greisen G, Falck-Larsen J, editors. Brain Lesions in the Newborn. Alfred Benzon Symposium, vol. 37. Copenhagen: Munksgaard; 1994. p. 60- 72.

292. Lauder J.M., Schambra U.B. Morphogenetic roles of acetylcholine // Environ. Health Perspect. 1999. Vol.107. №1. P.65-69.

293. Lebedev A.A., Voevodin E.E., Andreeva L.I., et al. Reinforcing properties of neuropeptides administered into the extended amygdala of chronically alcoholized rats // Eur. Neuropsychopharmacol. 2005. V.15. Supl.2. P.S294.

294. Lennox R.H., Kant G.J., Session G.R., Oennington L.L., Mougey E.H., Meyerhoff J.L. Specific hormonal and neurochemical responses to different stressors // Neuroendocrinology, 1980. V.30. P.300-308.

295. Leonard C.M., Rolls E.T., Wilson F.A.W., Baylis G.C. Neurons in the amygdala of the monkey with responses selective for faces // Behav. Brain Res. 1985. Vol.15. P.159-176.

296. Leranth C. et al. Gonadal Hormonal Effect on the Male Hippocampus // J. Neurosci. 2003. Vol.23. №5. P. 1588 -1592

297. Leranth C., Shanabrough M., Horvath T.L. Hormonal regulation of hip-pocampal spine synapse density involves subcortical mediation // Neuroscience. 2000. Vol.101. P.349-356.

298. Leranth C., Shanabrough M., Redmond D.E. Gonadal hormones are responsible for maintaining the integrity of spine synapses in the CA1 hippo-campal subfield of female non-human primates // J. Comp. Neurol. 2002. Vol.447. P.34^12.

299. Leslie F.M. Neurotransmitters as Neurotrophic Factors. In: Neurotrophic Factors. Fallon, J. H. & Loughlin, S. E., Academic Press, San Diego. 1993. P.565-598.

300. Levin E.D., Addy N., Baruah A. et al. Prenatal chlorpyrifos exposure in rats causes persistent behavioral alterations // Neurotoxicol. Teratol. 2002. Vol.24. P.733-741.

301. Levin E.D., Addy N., Christopher N.C. et al. Persistent behavioral consequences of neonatal chlorpyrifos exposure in rats // Dev. Brain Res. 2001. Vol.130. P.83-89.

302. Levin E.D., Simon B.B. Nicotinic acetylcholine involvement in cognitive function in animals // Psychopharmacology. 1998. Vol. 138. P. 217-230.

303. Levin E.D., Wilkerson A., Jones J.P. et al. Prenatal nicotine effects on memory in rats: pharmacological and behavioral challenges // Brain Res. Dev. Brain Res. 1996. Vol.97. P.207-215.

304. Levitan E.S., Hemmick L.M., Birnberg N.C., . Kaczmarek L.K. Dexamethasone increases potassium channel messenger RNA and activity in clonal pituitary cells // Mol. Endocrinol. 1991. №5. P.1903-1908.

305. Levitt P. Prenatal effects of drugs of abuse on brain development // Drug Alcohol Depend. 1998. Vol. 51. P. 109-125.

306. Lewis C., McEwen B.S., Frankfurt M. Estrogen-induction of dendritic spines in ventromedial hypothalamus and hippocampus: effects of neonatal blockade and adult GDX // Devi. Brain Res. 1995. Vol.87. P.91-95.

307. Lichtensteiger W., Ribary U., Schlumpf M. et al. Prenatal adverse effects of nicotine on the developing brain // Prog. Brain Res. 1988. Vol.73. P.137-157.

308. Lidov FI.G., Molliver M.E. Immunohistochemical study of the development of serotonergic neurons in the rat CNS // Brain Res. Bull. 1982. Vol. 9. № 1-6. P. 559-604.

309. Lieberburg I., McEwen B.S. Brain cell nuclear retention of testosterone metabolites, 5a-dihydrotestosterone and estradiol-17 in adult rats // Endocrinology. 1977. Vol.100. P.588-597.

310. Lisle R. Increased sexual behavior in the male rat following lesion in the mamillary region // J. Exp. Zool. 1966. Vol.161. P.129-136.

311. Lisk R. Neural localization for androgen activation of copulatory behavior in the male rat // Endocrinology. 1967. Vol.80. P.754-761.

312. Lisk R., Greenwald D. Method for treating male sexual dysfunction // Neuroendocrinology. 1983. Vol.36. №3. P.211-217.

313. Litvinova E.A., Kudaeva O.T., Mershieva L.V., Moshkin M.P. High level of circulating testosterone abolishes decline in scent attractiveness in antigen-treated male mice // Animal behav., 2004. V.69. P.511-517.

314. Lokwan S., Overton P., Berry M. et al. Stimulation of the pedunculopontine tegmental nucleus in the rat produces burst firing in A9 dopaminergic neurons //Neuroscience. 1999. Vol. 92. P. 245-254.

315. Lopez-Calderon A., Ariznavarreta C., Calderon M.D., Tresguerres J.A. Gonadotropin inhibition during chronic stress: role of the adrenal gland // J. Steroid Biochem., 1987. V.27. P.609-614.

316. Lopez-Calderon A., Ariznavarreta C., Gonzalez-Quijano M.I., Tresguerres J.A., Calderon M.D. Stress induced changes in testis function // J. Steroid Biochem. Mol. Biol., 1991. V.40. P.473-47

317. Lopez-Calderon A., Gonzalez-Quijano M.I., Tresguerres J.A., Ariznavarreta C. Role of LHRH in the gonadotrophin response to restraint stress in intact male rats // J. Endocrinol., 1990. V.124. P.241-246.

318. Lorrain D.S., Matuszewich L., Friedman R.D., Hull E.M. Extracellular serotonin in the lateral hypothalamic area is increased during the postejacula-tory interval and impairs copulation in male rats // J. Neurosci. 1997. Vol.17. P.9361-9366.

319. Lorrain D.S., Riolo J.V., Matuszewich L., Hull E.M. Lateral hypothalamic serotonin inhibits nucleus accumbens dopamine: implications for sexual satiety // J. Neurosci. 1999. Vol.19. P.7648-7652.

320. Lowry O.H., Rosenbrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measura-mant with the folin phenol reagents // J.Biol. Chem. 1951. Vol. 193. P.265-275.

321. Luck W., Nau H., Hansen R., Steldinger R. Extent of nicotine and cotinine transfer to the human fetus, placenta and amniotic fluid of smoking mothers // Dev. Pharmacol. Ther. 1985. Vol. 8. P. 384-395.

322. Luine V.N. Steroid hormone modulation of hippocampal dependent spatial memory // Stress. 1997. Vol.2. P.21-36.

323. Luine V.N. Estradiol increases choline acetyltransferase activity in specific basal forebrain nuclei and projection areas of female rats // Exp. Neurol. 1985. №89. P.484^190.

324. Mack C.M., Fitch R.H., Cowell P.E. et al. Ovarian estrogen acts to feminize the female rat's corpus callosum // Brain Res. 1993. Vol. 71. № 1. P. 115-119.

325. MacLean P.D. Chemical and electrical stimulation of hippocampus in unrestrained animals. Part II. Behavioral findings // Arch. Neurol. Psychiatr. 1957. Vol.78. P.128-142.

326. MacLusky N.J., Naftolin F. Sexual differentiation of the central nervous system // Science. 1981. Vol.211. P.1294-1302.

327. MacLusky N.J., Walters M.J., Clark A.S., Toran-Allerand C.D. Aroma-tase in the cerebral cortex, hippocampus, and mid-brain: ontogeny and developmental implications // Mol. Cell Neurosci. 1994. Vol.5. P.691-698.

328. Markowski V.P., Eaton R.C., Lumley L.A. et al. A D1 agonist in the MPOA facilitates copulation in male rats // Pharmacol. Biochem. Behav. 1994. Vol.47. P.483-486.

329. Marson L., List M.S., McKenna K.E. Lesions of the nucleus paragiganto-cellularis alter ex copula penile reflexes // Brain Res. 1992. Vol.592. P. 187192.

330. Marson L., McKenna K.E. Serotonergic neurotoxic lesions facilitate male sexual reflexes // Pharmacol. Biochem. Behav. 1994. Vol.47. P.883-888.

331. Marson L., McKenna K.E. The identification of a brainstem site controlling spinal sexual reflexes in male rats // Brain Res. 1990. Vol.515. P.SOS-SOS.

332. Marti O., Armario A. Anterior pituitary response to stress: time-related changes and adaptation //Neurosci., 1998. V.16. P.701-708.

333. Martin A.I., Fernandez-Ruiz J., Lopez-Calderon A. Effects of catecholamine synthesis inhibitors and adrenergic receptor antagonists on restraint-induced LH release//J. Endocrinol., 1995. V.144. P.511-515.

334. Martin, J.C., Becker R.F. The effects of nicotine administration in utero upon activity in the rat // Psychoneuron .1970. Vol.19. P.59-60.

335. Martinez-Morales J.R., Lopez-Coviella I., Hernandez-Jimenez J.G. et al. Sex steroids modulate luteinizing hormone-releasing hormone secretion in a cholinergic cell line from the basal forebrain // Neuroscience. 2001. Vol.103. №.4. P.1025-1031.

336. Mas M. Neurobiological correlates of masculine sexual behavior // Neurosci. Biobehav. Rev. 1995. Vol. 19:261-277.

337. Mas M., Rodriguez D.C., Guerra M. et al. Neurochemical correlates of male sexual behavior // Physiol. Behav. 1987. Vol.41. P.341- 3.45.

338. Matsumoto A. Synaptogenetic action of sex steroids in developing and adult neuroendocrine brain // Psychoneuroendocrinology. 1991. - Vol. 16. -P. 25-40.

339. Matthies H. The biochemical bases of learning and memory // Life Sci. 1974. Vol.15. P.2017-2031.

340. Mattsson J.L., Maurissen J.J., Nolan R.J., Brzak K.A. Lack of differential sensitivity to cholinesterase inhibition in fetuses and neonates compared to dams treated perinatally with chlorpyrifos // Toxicol. Sci. 2000. Vol. 53. P. 438-446.

341. McCarthy M.M. Molecular aspects of sexual differentiation of the rodent brain //Psychoneuroendocrinology. 1994. Vol.19. P.415-427.

342. McConnell S.K. The specification of neuronal identity in the mammalian cerebral cortex // Experientia. 1990. Vol. 46. P. 922-929.

343. McCormick C.M., Linkroum W., Sallinen B.J., Miller N.W. Peripheral and central sex steroids have differential effects on the ITPA axis of male and female rats // Stress, 2002. V.5. P.235-247.

344. McDermott J.L., Lui B., DIuzen D.E. Sex differences and effects of estrogen on dopamine and DOPAC release from the striatum of male and female CD-I mice // Exp. Neurol. 1994. - Vol. 125, № 2. - P. 306-311.

345. McEwen B. Estrogen actions throughout the brain. Recent. Prog. Horm. Res., 2002, 57: 357-384.

346. McEwen B. Gonadal and adrenal steroids regulate neurochemical and structural plasticity of the hippocampus via cellular mechanisms involving NMDA receptors//Cell.Mol. Neurobiol. 1996. Vol. 16. P. 103 116.

347. McEwen B. Neural gonadal steroid actions // Science. 1981. №211. P.1303-1311.

348. McEwen B.S,. Coirini H., Westlind-Danielsson A. et al. Steroid hormones as mediators of neural plasticity // J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 1991. №39. P. 223-232.

349. McEwen B.S. Genomic regulation of sexual behavior // J. Steroid. Biochem. 1988. Vol.30. №1-6. P. 179-183.

350. McEwen B.S. Non-genomic and genomic effects of steroids on neural activity//Trends Pharmacol. Sci. 1991. Vol.12. P.141-147.

351. McGehee D.S., Heath M.J., Gelber S. et al. Nicotine enhancement of fast excitatory synaptic transmission in CNS by presynaptic receptors // Science. 1995. Vol.269. № 5231. P. 1692-1696.

352. Mcginty J.F. Regulation of neurotransmitter interactions in the ventral striatum //Ann.N.Y.Acad.Sci. 1999. Vol.877. P.129-139.

353. McKenna T.M., Ashe J.H., Hui G.K., Weinberger N.M. Muscarinic agonists modulate spontaneous and evoked unit discharge in auditory cortex of cat // Synapse. 1988. Vol.2. № 1. P.54-68.

354. Meredith G.E. The synaptic framework for chemical signaling in nucleus accumbens //Ann.N.Y.Acad.Sci. 1999. Vol.877. P.140-156.

355. Meyer G., Ferres-Torres R., Mas M. The effects of puberty and castration on hippocampal dendritic spines of mice // Brain Res. 1978. Vol.155. P.108-112.

356. Michael R.P. The selective accumulation of estrogens in the neural and genital tissues of the cat. In: Proceeding of the First International Congresss on Hormonal Steroids, 1962. Vol. 2. New York, Acad. Press. P.469-581.

357. Millan M.J., Peglion J.L., Lavielle G., Perrin-Monneyron S. 5-HT2C receptors mediate penile erections in rats: actions of novel and selective agonists and antagonists // Eur. J. Pharmacol. 1997. Vol.325. P.9-12.

358. Miller D.B., Ali S.F., O' Callaghan J.P., Lews S.C. The impact of gender and estrogen on striatal dopaminergic neurotoxicity // Ann. New York Acad. Sci. 1998. - Vol. 844. - P. 153-165.

359. Miller M.W. Migration of cortical neurons is altered by gestational exposure to ethanol // Alcohol Clin. Exp. Res. 1993. Vol. 17. P. 304-314.

360. Mitchell S.N. Role of the locus coeruleus in the noradrenergic response to a systemic administration of nicotine // Neuropharmacology. 1993. Vol.32. P.937-949.

361. Mitchell W., Falconer M.A., Hill D. Epilepsy with fetishism relieved by temporal lobectomy // Lancet. 1954. N2.

362. Miura H., Naoi M., Nakamura D. et al. Changes in monoamine levels in mouse brain elicited by forced swimming stress and the protective effect of a new monoamine oxidase inhibitor // J. Neural Trans. 1993. Vol.94. P. 175189.

363. Mode A., Gustafsson J.A., Sodersten P., Eneroth P. Sex differences in behavioural androgen sensitivity: possible role of androgen metabolism // J. Endocrinol. 1984. Vol. 100. № 2. P.245-248.

364. Moguilevsky JA, Wuttke W Changes in the control of gonadotrophin secretion by neurotransmitters during sexual development in rats. Exp Clin Endocrinol Diabetes 2001 109:188-195

365. Monaghan E.P., Arjomand J., Breedlove S.M. Brain lesions affect penile reflexes //Horm. Behav. 1993. Vol.27. P.122-131.

366. Mormede P., Lemaire V., Castanon N., Dulluc J., Laval M., Le Moal M. Multiple neuroendocrine responses to chronic social stress: interaction between individual characteristics and situational factors // Physiol. Behav., 1990. V.47. P.1099-1105.

367. Mortensen S.R., Chanda S.M., Hooper M.J., Padilla S. Maturational differences in chlorpyrifos-oxonase activity may contribute to age-related sensitivity to chlorpyrifos // J. Biochem. Toxicol. 1996. Vol. 11. P. 279-287.

368. Mota A., Bento A. et al. Role of the Serotonin Receptor Subtype 5-HT1D on Basal and Stimulated Growth Hormone Secretion // J. Clin. Endocrinol, and Metabol. 1995. Vol.80. №6. P.1973-1977.

369. Mulle C., Vidal C., Benoit P., Changeux J.P. Existence of different subtypes of nicotinic acetylcholine receptors in the rat habenulo-interpeduncular system //J. Neurosci. 1991. Vol. 11. P. 2588-2597.

370. Murphy D.D., Cole N.B., Greenberger V., Segal M. Estradiol increases dendritic spine density by reducing GABA neurotransmission in hippocampal neurons. J. Neurosci., 1998, 18(7): 2550-2559.

371. Nadler L.S., Rosoff M.L., Hamilton SE. et al. Molecular analysis of the regulation of muscarinic receptor expression and function // Life Sci. 1999. Vol. 64. P. 375-379.

372. Naeff B., Schlumpf M., Lichtensteiger W. Pre- and postnatal development of high-affinity (3H)nicotine binding sites in rat brain regions: an autoradiographic study //Brain Res. Dev. Brain Res. 1992. Vol.68. P.163-174.

373. Nakamura S., Sakaguchi T. Development and plasticity of the locus coe-ruleus: a review of recent physiological and pharmacological experimentation //Prog. Neurobiol. 1990. Vol.34. P.505-526.

374. Namba H., Sokoloff L. Acute administration of high doses of estrogen increases glucose utilization throughout brain // Brain Res. 1984. №291. P.391-394.

375. Nankin H.R, Calkins J.H. Decreased bioavailable testosterone in aging normal and impotent men // J. Clin. Endocrinol. Metab. 1986. Vol.63. №6. P.1418-1420.

376. Naqui S.Z.H., Harris B.S., Thomaidou D., Parnavelas JG. The noradrenergic system influences in fate of Cajal-Retzius cells in the developing cerebral cortex // Dev. Brain Res. 1999 Vol. 113. P. 75- 82.

377. Naumenko E.V., Amstislavskaya T.G., Osadchuk A.V. Role of adrenore-ceptors in activation of the hypothalamohypophyseal testicular complex of mice evoked by presentation of a female // Probl. endokrinol. 1989. Vol.35. N3. P.64-67 .

378. Navarro H.A., Seidler F.J., Whitmore W.L., Slotkin T.A. Prenatal exposure to nicotine via maternal infusions: effects on development of catecholamine systems // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1988. Vol.244. P.940-944.

379. Nehlig A., Porrino L.J., Crane A.M., Sokoloff L. Local cerebral glucose utilization in normal female rats, variations during the estrous cycle and comparison with males // J. Cereb. Blood Flow Metab. 1985. №5. P.393-400.

380. Niedermeyer E. Metabolic central nervous system disoders // In. Electroencephalography. Basic principles, clinical applications, and related fields. Baltimore- Munich. 1982. P.305.

381. Nisell M., Nomikos G.G., Hertel P. et al. Condition-independent sensitization of locomotor stimulation and mesocortical dopamine release following chronic nicotine treatment in the rat // Synapse 1996. Vol.22. P.369-381.

382. Orr T.E., Mann D.R. Effects of restraint stress on plasma LH and testosterone concentrations, Leydig cell LH/hCG receptors, and in vitro testicular steroidogenesis in adult rats // Horm. Behav., 1990. V.24. P.324-341.

383. Owen A., Bird M. Acetylcholine as a regulator of neurite outgrowth and motility in cultured embryonic mouse spinal cord // Neuroreport. 1995. Vol. 6. P. 2269-2272.

384. Pandya D.N., Seltzer B. The topographe of comissural fibers. In: Lepore F., Ptito M., Jasper H.H. (Eds.), Two hemispheres one brain, functions of the corpus callosum. Alan R. Liss. New York, 1986. P.47-73.

385. Parrott R.F. Aromatizable and 5alpha-reduced androgens: differentiation between central and peripheral effects on male rat sexual behavior // Horm. Behav. 1975. Vol.6. №2. P.99-108.

386. Patel A.J., Barochovsky O., Lewis P.D. Psychotropic drugs and brain development: effects on cell replication in vivo and in vitro // Neuropharmacology. 1981. Vol. 20. P. 1243-1249.

387. Paus T., Zijdenbos A., Worsley K. et al. Structural maturation of neural pathways in children and adolescents: in vivo study // Science. 1999. Vol. 283. P. 1908-1911.

388. Pednekar J.R., Mulgaonker V.K., Mascarenhas J.F. Effect of intensity and duration of stress on male sexual behaviour // Indian J. Exp. Biol., 1993. V.31. P.638-640.

389. Perez-Palacios G., Larsson K., Beyer C. Biological significance of the metabolism of androgens in the central nervous system // J. Steroid Biochem. 1975. Vol.6. №6. P.999-1006.

390. Perry E., Walker M., Grace J., Perry R. Acetylcholine in mind: a neurotransmitter correlate of consciousness? // Trends Neurosci, 1999. Vol.22. №6. P.273-280.

391. Pfaus J.G. Frank A. Beach award homologies of animal and human sexual behaviors // Horm. Behav., 1996. V.30. P. 187-200.

392. Pfaus J.G. Revisiting the concept of sexual motivation // Annu. Rev. Sex Res., 1999. V.10. P.120-156.

393. Pfaus J.G., Kippin T.E., Centeno S. Conditioning and sexual behavior: a review // Horm. Behav., 2001. V.40. P.291-321.

394. Pfaus J.G., Kippin T.E., Coria-Avila G. What can animal models tell us about human sexual response? //Annu. Rev. Sex Res., 2003. V.14. P. 1-63.

395. Pfaus J.G., Phillips A.G. Role of dopamine in anticipatory and consum-matory aspects of sexual behavior in the male rat // Behav. Neurosci. 1991. Vol.105. P.727-743.

396. Pfaus J.G., Smith W.J., Coopersmith C.B. Appetitive and consummatory sexual behaviors of female rats in bilevel chambers. I. A correlational and factor analysis and the effects of ovarian hormones // Horm. Behav., 1999.V.35. P.224-240.

397. Pfaus, J.G., Mendelson, S.D. and Phillips, A.G., A correlational and factor analysis of anticipatory and consummatory aspects of sexual behavior in the male rat, Psychoneuroendocrinology, 15 (1990) 329-340.

398. Phillips A.G., Pfaus J.G., Blaha C.D. Dopamine and motivated behavior: insights provided by in vivo analysis. In: Willner P, Scheel-Kruger J (eds) The mesocorticolimbic dopamine system: from motivation to action. Wiley, London, 1991. P. 199-224

399. Picciotto M., Caldarone B.J., King S.L. et al. Nicotinic receptors in the brain: links between molecular biology and behavior // Neuropsychopharmacology. 2000. Vol. 22. P. 451-465.

400. Picciotto M.R., Zoli M., Lena C. et al. Abnormal avoidance learning in mice lacking functional high-affinity nicotine receptor in the brain // Nature. 1995. Vol. 374. P. 65-67.

401. Pijnenburg A.J., Rossum J.M. Letter: Stimulation of locomotor activity following injection of dopamine into the nucleus accumbens // J. Pharm. Pharmacol. 1973. Vol.25. P.1003-1005.

402. Pike C.J. Testosterone attenuates beta-amyloid toxicity in cultured hippo-campal neurons // Brain Res. 2001. Vol.919. P. 160-165.

403. Pilleri G. The Kluver-Busy syndrome in man. A clinico-anatomical con-tribwution to the function of the medial temporal lobe structures // Psychiat. Neurol. (Basel.) 1966. Vol.152. №2. P.65-103.

404. Poeck K., Pilleri G. Release of hypersexual behavior due to lesion in limbic sistem // Acta Neurol. 1965. Vol.41. P.233-244.

405. Poggioli R., Vergoni A.V., Santi R., Carani C., Baraghini G.F., Zini D., Marrama P., Bertolini A. Sexual behavior of male rats: influence of short-and long-term adrenalectomy // Horm. Behav., 1984. V.l 8; P.79-85.

406. Pomerantz S.M., Hepner B.C., Wertz J.M. 5-HT1A and 5-HT1C/1D receptor agonists produce reciprocal effects on male sexual behavior of rhesus monkeys // Eur. J. Pharmacol. 1993. Vol.243. P.227- 234.

407. Ponce R.A., Kavanagh T.J., Mottet N.K. et al. Effects of methyl mercury on the cell cycle of primary rat CNS cells in vitro // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1994. Vol. 127. P. 83-90.

408. Pontieri F.E., Tanda G., Orzi F., Di Chiara G. Effects of nicotine on the nucleus accumbens and similarity to those of addictive drugs // Nature. 1996. Vol.382. P.255-257.

409. Pope C.N. Organophosphorous pesticides: do they all have the same mechanism of toxicity? // J. Toxicol. Environ. Health. 1999. Vol.2. P. 161181.

410. Pouliot W.A., Handa R.J., Beck S.G. Androgen modulates N-methyl-D-aspartate-mediated depolarization in CA1 hippocampal pyramidal cells // Synapse. 1996. Vol.23. №1. P.10-19.

411. Praag H.M., Asnis G.M., Kahn R.S. et al. Monoamines and abnormal behaviour. A multi-aminergic perspective // Br. J. Psychiatry. 1990. Vol. 157 P. 723-734.

412. Price J.L. Subcortical projections from the amygdaloid complex. In: Schwarcz R., Ben-Ari Y. (Eds.). Excitatory amino acids and epilepsy. Plenum, New York. Advances Exp. Med. Biol. 1986. Vol. 203. P. 19-33.

413. Qiao D., Seidler F.J., Abreu-Villa3a Y. et al. Chlorpyrifos exposure during neurulation: cholinergic synaptic dysfunction and cellular alterations in brain regions at adolescence and adulthood // Dev. Brain Res. 2004. Vol.148. P.43-52.

414. Qiao D., Seidler F.J., Padilla S., Slotkin T.A. Developmental neurotoxicity of chlorpyrifos: what is the vulnerable period? // Environ. Health Perspect. 2002. Vol.110. P.1097-1103.

415. Qiao D., Seidler F.J., Slotkin T.A. Oxidative mechanisms contributing to the developmental neurotoxicity of nicotine and chlorpyrifos // Toxicol. Appl. Pharmacol. 2005. Vol.206. P. 17-26.

416. Raines K.W., Seidler F.J., Slotkin T.A. Alterations in serotonin transporter expression in brain regions of rats exposed neonatally to chlorpyrifos // Dev. Brain Res. 2001. Vol.130. P.65-72.

417. Raisman G., Field P.M. Sexual dimorphism in the neuropil of the preoptic area of the rat and its dependence on neonatal androgen // Brain Research. -1973.-Vol. 54.-P. 1-29.

418. Rakic P., Caviness V.S.J. Cortical development: view from neurological mutants two decades later //Neuron. 1995. Vol. 14 P. 1101-1104.

419. Rapier C., Lunt G.G., Wonnacott S. Nicotinic modulation of (3H)dopamine release from striatal synaptosomes: pharmacological characterisation // J. Neurochem. 1990. Vol.54. P.937-945.

420. Rausch J.L., Janowsky D.S. et al. Physostigmine Effects on Serotonin Uptake in Human Blood Platelets // Eur. J. Pharmacol. 1985. Vol.109. №1. P.91-96.

421. Rausch J.L., Shah N.S. et al. Platelet Serotonin Uptake in Depressed Patients: Circadian Effect // Biol. Psychiatry. 1982. Vol.17. №1. P. 121-123.

422. Reddy D.S., Kulkarni S.K. Differential anxiolytic effects of neuroster-oids in the mirrored chamber behavior test in mice // Brain Research. 1997. Vol.752. P.61-71.

423. Reid S.N., Juraska J.M. Sex differences in neuron number in the binocular area of the rat visual cortex // Journal of Comparative Neurology. 1992. -Vol. 321. - P. 448-455.

424. Reid S.N., Juraska J.M. Sex differences in the number of synaptic junctions in the binocular area of the rat visual cortex // Journal of Comparative Neurology. 1995. - Vol. 352. - P. 560-566.

425. Repcekova D., Mikulaj L. Plasma testosterone of rats subjected to immobilization stress and/or HCG administration // Horm. Res., 1977. V.8. P.51-57.

426. Retana-Marquez S., Salazar E.D., Velazquez-Moctezuma J. Muscarinic and nicotinic influences on masculine sexual behavior in rats: effects of oxot-remorine, scopolamine, and nicotine // Pharmacol. Biochem. Behav. 1993. Vol.44. №4. P.913-917.

427. Retana-Marquez S., Salazar E.D., Velazquez-Moctezuma J. Effect of acute and chronic stress on masculine sexual behavior in the rat // Psychoneuroendocrinology. 1996 . Vol.21. №1. P.39-50.

428. Reznik B.Y., Minkov I.P. The epidemiology of congenital abnormalities of the central nervous system in children // Neurosci. Behav. Physiol. 1993. Vol. 23. P. 94-96.

429. Ribary U., Lichtensteiger W. Effects of acute and chronic prenatal nicotine treatment on central catecholamine systems of male and female rat fetuses and offspring //J. Pharmacol. Exp. Ther. 1989. Vol.248. P.786-792.

430. Ricceri L., Markina N., Valanzano A. et al. Developmental exposure to chlorpyrifos alters reactivity to environmental and social cues in adolescent mice // Toxicol. Appl. Pharmacol. 2003. Vol.191. P. 189-201.

431. Rice D., Barone S. Critical periods of vulnerability for the developing nervous system: evidence from humans and animal models // Environ. Health Perspect. 2000. Vol. 108. № 3. P. 511-533.

432. Richardson J.R., Chambers J.E. Effects of gestational exposure to chlor-pyrifos on postnatal central and peripheral cholinergic neurochemistry // J. Toxicol. Environ. Health. 2003. Vol.66. P.275-289.

433. Richardson J.R., Chambers J.E. Neurochemical Effects of Repeated Gestational Exposure to Chlorpyrifos in Developing Rats // Toxicological Sciences. 2004. Vol. 77. P. 83-90.

434. Riolo J.V., Friedman R.D., Hull E.M. Microinjection of selective 5-HT2 and 5-HTla agonists and antagonists: effects on male rat copulatory behavior. 29lh Annual Meeting, Society for Neuroscience, Miami Beach, FL. 1999.

435. Rivest S., Rivier C. Influence of the paraventricular nucleus of the hypothalamus in the alteration of neuroendocrine functions induced by intermittent footshock or interleukin // Endocrinology, 1991. V.129. P.2049-2057.

436. Robbins T.W., Everitt B.J. Neurobehavioural mechanisms of reward and motivation // Curr. Opin. Neurobiol. 1996. Vol.6. P.228-236.

437. Robinson T.E., Berridge K.C. The neural basis of drug craving: an incen-tive-sensitization theory of addiction // Brain Res. Rev. 2000. Vol.18. P.247-291.

438. Rodier P.M., Aschner M., Sager P.R. Mitotic arrest in the developing CNS after prenatal exposure to methylmercury // Neurobehav. Toxicol. Teratol. 1984. Vol. 6. P. 379-385.

439. Rodriguez-Manzo G., Femandez-Guasti A. Reversal of sexual exhaustion by serotonergic and noradrenergic agents // Behav. Brain Res. 1994. Vol.62. P.127-134.

440. Roeleveld N., Zielhuis G.A., Gabreels F. The prevalence of mental retardation: a critical review of recent literature // Dev. Med. Child Neurol. 1997. Vol. 39. P. 125-132.

441. Roof R.L., Havens M.D. Testosterone improves maze performance and induces development of a male hippocampus in females // Brain Res. 1992. Vol.572. P.310-313.

442. Roof RL. Neonatal exogenous testosterone modifies sex difference in radial arm and Morris water maze performance in prepubescent and adult rats //Behavioral Brain Research. 1993a. - Vol. 53. - P. 1-10.

443. Roof RL. The dentate gyrus is sexually dimorphic in prepubescent rats: testosterone plays a significant role // Brain Research. 1993b. - Vol. 610. -P. 148-151.

444. Roselli C.E., Klosterman S.A., Fasasi T.A. Sex differences in androgen responsiviness in the rat brain: regional differences in the induction of aromatase activity // Neuroendocrinology. 1996. - Vol. 64. - P. 139-145.

445. Roselli C.E., Resko J.A. Androgen regulate brain aromatase activity in adult male rats through a receptor mechanism // Endocrinology. — 1984. — Vol. 114.-P. 2183-2189.

446. Rosen R.C., Lane R.M., Menza M. Effects of SSRIs on sexual function: a critical review // J. Clin. Psychopharmacol. 1999. Vol.19. P.67- 85.

447. Rosene D.L., Van Hoesen G.W. The hippocampal formation of the primate brain: a review of some comparative aspects of cytoarchitecture and connections. In: Jones E.G., Peters A. (Eds.), Cerebral cortex, Vol. 6. Plenum, New York, 1987. P.345-456.

448. Rosie R., Wilson H., Fink G. Testosterone induced an all-or none expotential increase in arginin-vasopressin mRNA in the bed nucleus stria terminalis of the hypogonadal mouse // Mol. Cell. Neurosci. 1993. - Vol. 4. -P. 121-126.

449. Roth K.A., Mefford I.M., Barchas J.D. Epinephrine, norepinephrine, dopamine and serotonin: differential effects of acute and chronic stress on regional brain amines // Brain Res. 1982. Vol.239. P.417-424.

450. Rothenberg S.J., Poblano A., Garza-Morales S. Prenatal and perinatal low level lead exposure alters brainstem auditory evoked responses in infants // Neurotoxicology. 1994. Vol. 15. P. 695-699.

451. Rowell P.P. Nanomolar concentrations of nicotine increase the release of (3H)dopamine from rat striatal synaptosomes // Neurosci. Lett. 1995. Vol.189. P.171-175.

452. Roy E.J., Buyer D.R., Licar V.A. Estradiol in the striatum. Effects on behavior and dopamine receptors but no evidence for membrane steroid receptors // Brain Res. Bull. 1990. №25. P.221-227.

453. Roy T.S., Andrews J.E., Seidler F.J., Slotkin T.A. Chlorpyrifos elicits mitotic abnormalities and apoptosis in neuroepithelium of cultured rat embryos // Teratology. 1998. Vol. 58. P. 62-68.

454. Russchen F.T. Cortical and subcortical afferents of the amygdaloid complex. In: Schwarcz R., Ben-Ari Y. (Eds.), Excitatory amino acids and epilepsy. Advances Exp. Med. Biol., Vol. 203. Plenum, New York, 1986. P.35-52.

455. Russell R.W., Overstreet D.H. Mechanisms underlying sensitivity to or-ganophosphorus anticholinesterase compounds // Prog.' Neurobiol. 1987. Vol.28. P.161-166.

456. Sakata K., Tokue A., Kawai N. Altered synaptic transmission in the hippocampus of the castrated male mouse is reversed by testosterone replacement // J. Urol. 2000. Vol.163. P.1333-1338.

457. Salamone J.D. The behavioral neurochemistry of motivation: methodological and conceptual issues in studies of the dynamic activity of nucleus accumbens dopamine //J. Neurosci. Methods. 1996. Vol.64. P.137-149.

458. Salis PJ., Dewsbury D.A. p-Chlorophenylalanine facilitates copulatory behaviour in male rats //Nature. 1971. Vol.232. P.400-411.

459. Salmimies P., Kockott G., Pirke K.M. et al. Effects of testosterone replacement on sexual behavior in hypogonadal men // Arch. Sex. Behav. 1982. Vol.11. №4. P.345-53.

460. Sapolsky R.M., Krey L.C. Stress-induced suppression of luteinizing hormone concentrations in wild baboons: role of opiates // J. Clin. Endocrinol. Metab., 1988. V.66. P.722-726

461. Sapolsky R.M., Krey L.C., McEwen B.S. The neuroendocrinology of stress and aging: the glucocorticoid cascade hypothesis // Endocr. Rev., 1986. V.7. P.284-301.

462. Sar M., Stumpf W.E. Central noradrenergic neurons concentrate 3H-oestradiol // Nature. 1981. №289. P.500-502.

463. Sawin S., Brodish P., Carter C.S. et al. Development of cholinergic neurons in rat brain regions: Dose-dependent effects of propylthiouracil-induced hypothyroidism //Neurotox. Teratol. 1998. Vol.20. P.627-635.

464. Schedlowski M., Fluge T., Richter S., Tewes U., Schmidt R.E., Wagner T.O. Beta-endorphin, but not substance-P, is increased by acute stress in humans // Psychoneuroendocrinology, 1995. V.20. P. 103-110.

465. Schilstrom B., Nomikos G.G., Nisell M. et al. N-methyl-D-aspartate receptor antagonism in the ventral tegmental area diminishes the systemic nicotine-induced dopamine release in the nucleus accumbens // Neuroscience. 1998. Vol.82. P.781-789.

466. Schlumpf M., Gahwiler M., Ribary U., Lichtensteiger W. A new device for monitoring early motor development: prenatal nicotine-induced changes //Pharmacol. Biochem. Behav. 1988. Vol.30. P. 199-203.

467. Seidler F.J., Levin E.D., Lappi S.E., Slotkin T.A. Fetal nicotine exposure1 ablates the ability of postnatal nicotine challenge to release norepinephrinefrom rat brain regions // Brain Res. Dev. Brain Res. 1992. Vol.69. P.288-291.

468. Selye H. Stress without distress. Philadelphia: Lippincott, 1974. 171p.

469. Semba K. Development of central cholinergic neurons. In: Bjo.rklund A, Ho.kfelt T, Tohyama M, editors. Ontogeny of Transmitters and Petides in the CNS. Amsterdam: Elsevier; 1992. p. 33- 62.

470. Seymoure P., Juraska J.M. Sex differences in cortical thickness and the dendritic tree in the monocular and binocular subfields of the rat visual cortexI1 at weaning age // Developmental Brain Research. 1992. - Vol. 23. - P. 185189.

471. Shabanov P.D., Lebedev A.A., Meshcherov S.K. et al. CRH and emotiogenic reinforcing system of the brain in social isolation and alcoholization // 5th Int. Congr. of Pathophysiology. Abstracts. Beijing, China, 2006. P.176.

472. Shabanov P.D., Lebedev A.A., Roik R.O. et al. Social isolation as a model of depression // ricnxo^apMaKOJi. h 6hojt. HapKOJi. 2004. T. 4. № 2-3. C. 704705.

473. Shacka J.J., Fennell O.B., Robinson S.E. Prenatal nicotine sex-dependently alters agonist-induced locomotion and stereotypy // Neurotoxi-col. Teratol. 1997. Vol.19. P.467-476.

474. Sherman K.A., Friedman E. Pre- and post-synaptic cholinergic dysfunction in aged rodent brain regions: new findings and an interpretive review // Int. J. Dev. Neurosci. 1990. Vol.8. P.689-708.

475. Sherman K.A., Kuster J.E., Dean R.L. et al. Presynaptic cholinergic mechanisms in brain of aged rats with cognitive impairment // Neurobiol. Aging. 1981. Vol.2. P.99-104.

476. Shors TJ., Chua C., Falduto J. Sex differences and opposite effects of stress on dendritic spine density in the male versus female hippocampus // J. Neurosci. 2001. Vol.21. P.6292-6297.

477. Siddigue A., Gilmore D.P. Regional diffenes in the catecholamine content of the rat brain: effects of neonatal castration and androgenization // Acta endocrinol. 1988. - Vol. 118. - P. 483-494.

478. Siegel R.A., Weidenfeld J., Feldman S., Conforti N., Chowers I. Neural pathways mediating basal and stress-induced secretion of luteinizing hormone, follicle-stimulating hormone, and testosterone in the rat // Endocrinology, 1981.V.108. P.2302-2307.

479. Silberstein S.D.,Lipton R.B.,Dalessio D.J. (Eds.) Wolffs headache and other head pain. Oxford University Press, 2001, 648 p.

480. Sillito A.M., Kemp J.A. Cholinergic modulation of the functional organization of the cat visual cortex// Brain Res. 1983 . Vol.289. №1-2. P. 143-155.

481. Simerly R.B., Chang C., Muramatsu M., Swanson L.W. Distribution of androgen and estrogen receptor mRNA-containing cells in the rat brain: and in situ hybridization study // J. Comp. Neurol. 1990. Vol.294. P.76-95.

482. Simon H., Taghzouti K., Le Moal M. Deficits in spatial-memory tasks following lesions of septal dopaminergic terminals in the rat // Behav. Brain Res. 1986. Vol. 19. P. 7-16.

483. Simpson K.L., Altman D.W., Wang L. et al. Lateralization and functional organization of the locus coeruleus projection to the trigeminalsomatosensory pathway in rat // J. Comp. Neurol. 1997. Vol. 385. P. 135147.

484. Skakkebaek N.E., Bancroft J., Davidson D.W., Warner P. Androgen replacement with oral testosterone undecanoate in hypogonadal men: a double blind controlled study // Clin. Endocrinol. (Oxl). 1981 . Vol.14. №1. P.49-61.

485. Slotkin T.A. Cholinergic systems in brain development and disruption by neurotoxicants: nicotine, environmental tobacco smoke, organophosphates // Toxicol. Appl. Pharmacol. 2004. Vol.198. P.132-151.

486. Slotkin T.A. Developmental cholinotoxicants: nicotine and chlorpyrifos // Environ. Health Perspect. 1999. Vol.107. №1. P.71-80.

487. Slotkin T.A., Cho H., Whitmore W.L. Effects of prenatal nicotine exposure on neuronal development: selective actions on central and peripheral catecholaminergic pathways // Brain Res. Bull. 1987. Vol.18. P.601-611.

488. Slotkin T.A., Cousins M.M., Tate C.A., Seidler F.J. Persistent cholinergic presynaptic deficits after neonatal chlorpyrifos exposure // Brain Res. 2001. Vol.902. P.229-243.

489. Slotkin T.A., Greer N., Faust J. et al. Effects of maternal nicotine injections on brain development in the rat: ornithine decarboxylase activity, nucleic acids and proteins in discrete brain regions // Brain Res. Bull. 1986. Vol.17. P.41-50

490. Slotkin T.A., Lappi S.E., Seidler F.J. Impact of fetal nicotine exposure on development of rat brain regions: critical sensitive periods or effects of withdrawal? // Brain Res. Bull. 1993. Vol. 31. P. 319-328.

491. Slotkin T.A., Lappi S.E., Tayyeb M.I., Seidler F.J. Chronic prenatal nicotine exposure sensitizes rat brain to acute postnatal nicotine challenge as assessed with ornithine decarboxylase // Life Sci. 1991. Vol.49. P.665-670.

492. Slotkin T.A., Seidler F.J., Ali S.F. Cellular determinants of reduced adaptability of the aging brain: neurotransmitter utilization and cell signaling responses after MDMA lesions // Brain Res. 2000. Vol.879. P. 163-173.

493. Slotkin T.A., Tate C.A., Cousins M.M., Seidler F.J. Functional alterations in CNS catecholamine systems in adolescence and adulthood after neonatal chlorpyrifos exposure // Dev. Brain Res. 2002. Vol.133. P'. 163-173.

494. Slotkin TA. If nicotine is a developmental neurotoxicant in animal studies, dare we recommend nicotine replacement therapy in pregnant women and adolescents? Neurotoxicol Teratol. 2008; 30(1):1-19.

495. Smith D.B., Goldstein S.G., Roomet A. A comparison of the toxicity effects of the anticonvulsant eterobarb (antilon, DMMP) and phenobarbital in normal human volunteers // Epilepsia. 1986. Vol. 27. P. 149-155.

496. Smith J. Dale's principle and communication between neurones. Oxford etc.: Univ. press, 1983. p.143-159.

497. Smith M.D., Jones L.S., Wilson M.A. Sex differences in hippocampal slice excitability, role of testosterone // Neuroscience. 2002. Vol.109. №3. P.517-530.

498. Sotelo C., Beaudet A. Influence of experimentally induced agranularity on the synaptogenesis of serotonin nerve terminals in rat cerebellar cortex // Proc. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 1979. Vol. 206. P. 133-138.

499. Spoont M.R. Modulatory role of serotonin in neural information processing: Implication for human psychopathology // Psychol.Bull. 1992. V.l 12. № 2. P.330-350.

500. Steffensen S.C. Dehydroepiandrosterone sulfate supresses hippocampal recurrent ingibition and synchronizes neuronal activity to theta rhythm // Hippocampus. 1995.Vol.5. P.320-328.

501. Stewart J., Kolb B. Asymmetry in the cerebral cortex of the rat: an analysis of the effects of neonatal gonadectomy on cortical thickness in three strains of rats // Behavioral and Neural Biology. 1988. - Vol. 49. - P. 344360.

502. Stewart J., Kuhnemann S., Rajabi H. Neonatal exposure to gonadal hormones affects the development of monoamine systems in rat cortex // Journal of Neuroendocrinology. 1991. - Vol. 3. - P. 85-93.

503. Stewart J., Rajabi H. Estradiol derived from testosterone in prenatal life affects the development of catecholamine systems in the frontal cortex of the male rat // Brain Research. 1994. - Vol. 646. - P. 157-160.

504. Suemaru K., Gomita Y., Furuno K., Aralci Y. Chronic nicotine treatment potentiates behavioral responses to dopaminergic drugs in rats // Pharmacol. Biochem. Behav. 1993. Vol.46. P.135-139.

505. Sunanda, Rao B.S., Raju T.R. Restraint stress-induced alterations in the levels of biogenic amines, amino acids, and AChE activity in the hippocampus // Neurochem. Res. 2000. Vol.25. №12. P. 1547-52.

506. Sundstrom E., Kolare S., Souverbie F. et al. Neurochemical differentiation of human bulbospinal monoaminergic neurons during the first trimester // Brain Res. Dev. Brain Res. 1993. Vol. 75. № 1. P. 1-12.

507. Sundstrom R., Karlsson B. Myelin basic protein in brains of rats with low dose lead encephalopathy // Arch. Toxicol. 1987. Vol. 59. P. 341-345.

508. Svensson T.H., Engberg G. Effect of nicotine on single cell activity in the noradrenergic nucleus locus coemleus // Acta Physiol. Scand. Suppl. 1980. Vol.479. P.31-34.

509. Swann A.C., Hewitt L.O. Hemicholinium-3 binding: Correlation with high-affinity choline uptake during changes in cholinergic activity // Neuropharmacology. 1988. Vol. 27. P. 611-615.

510. Swanson L.W. Cerebral hemisphere regulation of motivated behavior // Brain Res. 2000. Vol.886. P. 113-64.

511. Swedo S.E., Schapiro M.B., Grady C.L. et al. Cerebral glucose metabolism in childhood-onset obsessive-compulsive disorder // Arch. Gen. Psychiatry. 1989. Vol. 46. P. 518-523.

512. Sziraki I., Sershen H., Bnuck M. et al. Differences in receptor system participation between mcotine- and cocaine-induced dopamine overflow m nucleus accumbens //Ann.N.Y.Acad.Sci. 1999. Vol. 877. P.800-802.

513. Tabibnia G., Cooke B.M., Breedlove S.M. Sex difference and laterality in the volume of mouse dentate gyrus granule cell layer // Brain Res. 1999. Vol.827. P.41-45.

514. Takahashi T., Nowakowski R.S., Caviness V.S.J. Early ontogeny of the secondaiy proliferative population of the embryonic murine cerebral wall // J. Neurosci. 1995. Vol. 15. P. 6058-6068.

515. Tan M., Tan U. Effects of testosterone and clomiphene on spectral EEG and visual evoked response in a young man with posttraumatic epilepsy // Int. J. Neurosci. 2001. Vol.106. №12. P.87-94.

516. Tan U. Association of serum testosterone levels with latencies of somatosensory evoked potentials from right and left posterior tibial nerves in right-handed young male and female subjects // Int. J. Neurosci. 1991. Vol.60. №34. P.249-277.

517. Teyler T.J., Vandaris R.M., Lewis D.L., Rawitch A.B. Gonadal steroids. Effects on excitability of hippocampal pyramidal cells // Science. 1980. №209. P.1017-1019.

518. Tizabi Y., Popke E.J., Rahman M.A. et al. Hyperactivity induced by prenatal nicotine exposure is associated with an increase in cortical nicotinic receptors //Pharmacol. Biochem. Behav. 1997. Vol.58. P.141-146.

519. Torrellas A., Guaza C., Borrell J., Borrell S. Adrenal hormones and brain catecholamines responses to morning and afternoon immobilization stress in rats//Physiol. Behav., 1981. V.26. P.129-133.

520. Toth E., Sershen H., Hashim A. et al. Effect of nicotine on extracellular levels of neurotransmitters assessed by microdialysis in various brain regions: role of glutamic acid //Neurochem. Res. 1992. Vol.17. P.265-271.

521. Tucker D.M., Dawson S.L. Asymmetric EEG changes as method actors generated emotions // Biol. Psychol. 1984. Vol.19. №1. P.63-75.

522. Uylings H.B., van Eden C.G. Qualitative and quantitative comparison of the prefrontal cortex in rat and in primates, including humans // Prog. Brain Res. 1990. Vol. 85. P. 31-62.

523. Valles S., Pitarch J., Renau-Piqueras J., Guerri C. Ethanol exposure affects glial fibrillary acidic protein gene expression and transcription during rat brain development // J. Neurochem. 1997. Vol. 69. P. 2484-2493.

524. Van Luijtelaar E.L., Dirksen R., Vree T.B., van Haaren F. Effects of acute and chronic cocaine administration on EEG and behaviour in intact and castrated male and intact and ovariectomized female rats // Brain Res. Bull. 1996. Vol.40. №l.P.43-50.

525. Velazquez-Moctezuma J., Dominguez Salazar E., Cruz Rueda M.L. The effect of prenatal stress on adult sexual behavior in rats depends on the nature of the stressor // Physiol. Behav. 1993. Vol.53. №3. p.443-448.

526. Verma S., Chhina G.S., Mohan Kumar V., Singh B. Inhibition of male sexual behavior by serotonin application in the medial preoptic area // Physiol. Behav. 1989. Vol.46. P.327-330.

527. Viau V. Functional cross-talk between the hypothalamic-pituitarygonadal and -adrenal axes // J. Neuroendocrinol., 2002. V.14. P.506-513.

528. Viau V., Meaney M.J. The inhibitory effect of testosterone on hypotha-lamic-pituitary-adrenal responses to stress is mediated by the medial preoptic area // J. Neurosci., 1996. V. 16. P. 1866-1876.

529. Vizi E.S., Harsing L.G., Zsilla G, Evidence of the Modulatory Role of Serotonin in Acetylcholine Release from Striatal Interneurons // Brain Res. 1981. Vol.212. №l.P.89-99.

530. Volk B. Cerebellar histogenesis and synaptic maturation following pre-and postnatal alcohol administration. An electron-microscopic investigation of the rat cerebellar cortex // Acta Neuropathol. (Berl). 1984. Vol. 63. P. 5765.

531. Vorhees C.V. Principles of behavioral teratology. In: Handbook of Behavioral Teratology (Riley EP, Vorhees CV, eds). New York:Plenum Press,1986;23-48.

532. Wainer B.H., Mesulam M.M. Ascending cholinergic pathways in the rat brain. In: Brain cholinergic systems, edited by Steriade M and Biesold D. Oxford: Oxford Science Publications, 1990, p. 65-119.

533. Waldinger M.D., Berendsen H.H., Blok B.F. et al. Premature ejaculation and serotonergic antidepressants-induced delayed ejaculation: the involvement of the serotonergic system // Behav. Brain Res. 1998. Vol.92. P.lll -118.

534. Warner R.K., Thompson J.T., Markowski V.P. et al. Microinjection of the dopamine antagonist cisflupenthixol into the MPOA impairs copulation, penile reflexes and sexual motivation in male rats // Brain Res. 1991. Vol.540. P. 177- 182.

535. Watanabe T., Morimoto A., Sakata Y., Wada M., Murakami N. The effect of chronic exercise on the pituitary-adrenocortical response in conscious rats //J. Physiol., 1991. V.439. P.691-699.

536. Weiland N.G. Estradiol selectively regulates agonist binding sites on the N-methyl-D-aspartate receptor complex in the CA1 region of the hippocampus. Endocrinology, 1992, 131: 662—668.

537. Weiss B„ Amler S„ Amler R,W. Pesticides // Pediatrics. 2004. Vol.113. P. 103 0-103 6.

538. Weiss J.M., Goodman P.A., Losito B.G. et al. Behavioral depression produced by an uncontrollable stressors: relationships to norepinephrine, dopamine and serotonin levels in various regions in the rat brain // Brain Res. Rev. 1981. Vol.3. P.43-49.

539. Westfall T.C., Grant I-L, Perry H. Release of Dopamine and 5-Hydroxytryptamine from Rat Striatal Slices Following Activation of Nicotinic Cholinergic Receptors // General Pharmacol. 1983. Vol.14. №3. P.321-325.

540. Whitney K.D., Seidler F.J., Slotkin T.A. Developmental neurotoxicity of chlorpyrifos: cellular mechanisms // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1995. Vol. 134. P. 53-62.

541. Wiggins R.C. Myelin development and nutritional insufficiency // Brain Res. 1982. Vol. 257. P. 151-175.

542. Wiggins R.C. Myelination: a critical stage in development // Neurotoxicol. 1999. Vol. 7. P. 103-120.

543. Wilson C.L., Isokawa M., Babb T.L. et al. Functional connections in the human temporal lobe. II. Evidence for a loss of functional linkage between contralateral limbic structures // Exp. Brain Res. 1991. Vol.85. P. 174-187.

544. Wilson C.L., Isokawa M., Babb T.L., Crandall P.H. Functional connections in the human temporal lobe. I. Analysis of limbic system pathways using neuronal responses evoked by electrical stimulation // Exp. Brain Res. 1990. Vol.82. P.279-292.

545. Winzer-Serhan U.H., Leslie F.M. Codistribution of nicotinic acetylcholine receptor subunit a3 and b4 mRNAs during rat brain development // J. Comp. Neurol. 1997. Vol.386. P.540-554.

546. Wong M., Moss R.L. Long-term and short-term electrophysiological effects of estrogen on the synaptic properties of hippocampal CA1 neurons // J. Neurosci. 1992. Vol.12. P.3217-3225.

547. Wonnacott S., Kaiser S., Mogg A. et al. Presynaptic nicotinic acetylcholine receptors modulating dopamine release in the rat striatum // Eur. J. Pharmacol. 2000. Vol.393. P.51-58.

548. Woolley C.S., Gould E., Frankfurt M., McEwen B.S. Naturally occurring fluctuation in dendritic spine density on adult hippocampal pyramidal neurons // J. Neurosci. 1990. Vol.10. P.4035-4039.

549. Yanai J. An animal model for the effects of barbiturate on the development of the central nervous system // Neurobehav. Terarol. 1984. Vol. 52. P. 111-132.

550. Yanai J., Vatury O., Slotkin T.A. Cell signaling as a target and underlying mechanism for neurobehavioral teratogenesis // Ann NY Acad Sci. 2002. Vol.965. P.473-478.

551. Yells D.P., Hendricks S.E., Prendergast M.A. Lesions of the nucleus par-agigantocellularis: effects on mating behavior in male rats // Brain Res. 1992. Vol.596. P.73-79.

552. Yoshida K., Kato Y., Imura H. Nicotine-induced release of noradrenaline from hypothalamic synaptosomes // Brain Res. 1980. Vol. 182. P.361-368.

553. Yu Z.J., Wecker L. Chronic nicotine administration differentially affects neurotransmitter release from rat striatal slices // J. Neurochem. 1994. Vol. 63. P. 186-194.

554. Zanoli P., Truzzi C., Veneri C. et al. Methyl mercury during late gestation affects temporarily the development of cortical muscarinic receptors in rat offspring // Pharmacol. Toxicol. 1994. Vol. 75. P. 261-264.

555. Zhou F.M., Liang Y., Dani J.A. Endogenous nicotinic cholinergic activity regulates dopamine release in the striatum // Nat. Neurosci. 2001. Vol.4. P. 1224-1229.

556. Zoli M., Picciotto M.R., Ferrari R. et al. Increased neurodegeneration during ageing in mice lacking high-affinity nicotine receptors // EMBO J. 1999. Vol. 18. P. 1235-1244.