Автореферат и диссертация по медицине (14.00.36) на тему:Регуляция экспрессии лиганда для CD4O на поверхности активированных Т-лимфоцитов

АВТОРЕФЕРАТ
Регуляция экспрессии лиганда для CD4O на поверхности активированных Т-лимфоцитов - тема автореферата по медицине
Цыцыкова, Алла Владимировна Москва 1997 г.
Ученая степень
кандидата биологических наук
ВАК РФ
14.00.36
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Регуляция экспрессии лиганда для CD4O на поверхности активированных Т-лимфоцитов

На правах рукописи ЦЫЦИКОВА Алла Владимировна

РЕГУЛЯЦИЯ ЭКСПРЕССИИ ЛИГАНДА ДЛЯ СБ40 НА ПОВЕРХНОСТИ АКТИВИРОВАННЫХ Т-ЛИМФОЦИТОВ

РГ5 ОД О 2 ИЮН 1997

14.00.36-аллергология и иммунология

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Москва-1997

Работа выполнена в Детском Госпитале Гарвардского Университета г.Бостона, США.

Научные Руководители: Профессор, доктор биологических наук В.А.Алешкин Профессор, доктор медицинских наук Р.С.Геха

Официальные оппоненты: профессор, доктор медицинских

наук И.С.Гущин

профессор, доктор биологических наук Л.В.Козлов

Ведущее учереждение: Российский Государственный Медицинский Университет им. Н.И.Пирогова

Защита состоится"_"_1997г. в_час. на заседании

диссертационного совета К176.01.02 при Московском научно-исследоЕ тельском институте эпидемиологии и микробиологии им.Г.Н.Габричевског Минздрава РФ по адресу. 125212, Москва, ул.адмирала Макарова,10.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Московского науч

исследовательского иститута эпидемиологии и микробиологии им.Г.Н.Га ричевского.

Автореферат разослан"^ (Р^ 1997 г.

Ученый секретарь диссертационного совета: кандидат медицинских н ук Л.И.Новикова.

Актуальность темы. Как было показано, экспрессия молекулы лиганда для CD40 (CD40L) на поверхности активированных Т-лимфоцитов является ключевым событием в процессе формирования вторичного гуморального иммунного ответа, так как взаимодействие молекул CD40 и CD40L абсолютно необходимо для переключения изотипов иммуноглобулинов в В-лимфоцитах. Нарушение экспрессии CD40L является причиной Х-зависимого гипер-IgM синдрома (HIGMX-1, X-linked hyper IgM syndrome), который является первичным иммунодефицитным заболеванием и характеризуется наличием очень низкого уровня, или вообще отсутствием IgG, Ig А и IgE в крови больных, наряду с нормальным или повышенным уровнем IgM. Такие пациенты подвержены аутоиммунным и лимфопролиферативным заболеваниям, а также рецидивным синусо-лёгочным инфекциям, включая пневмонию, вызываемую Pneumocystis carinii. В свою очередь, повьпиенпая экспресия CD40L, в результате неспецифической активации Т-лимфоцитов, может приводить к формированию аутоиммунных заболеваний, а, наряду с присутствием интерлейкина-4 (ИЛ-4), - к аллергии. Более полное понимание молекулярных механизмов регуляции экспрессии CD40L позволит значительно приблизить решение проблемы лечения гуморальных иммунодефицитных заболеваний, а также подсказать более рациональные подходы к лечению аллергических заболеваний.

Научная новизна и практическая значимость исследования. В данной работе впервые было показано, что экспрессия CD40L на поверхности активированных Т-лимфоцитов строго регулируется на уровне транскрипции гена. Была показана роль транскрипционных факторов активированных Т-лимфоцитов, NF-AT (Nuclear Factor of Activated T-cells), в инициации транскрипции гена CD40L, а

также важная роль ядерных белков семейства АР-1 (Activating Protein) в формировании функционально-активного транскрипционного комплекса с белками NF-AT в промоторе гена CD40L. Данная работа - это значительный вклад в область понимания молекулярных механизмов, лежащих в основе регуляции формирования тимус-зависимого гуморального иммунного ответа.

Цель панной работы:

1. Исследование регуляции экспрессии CD40 лиганда на поверхности Т-лимфоцитов, а также, участия и роли ядерных факторов NF-AT и АР-1 в регуляции транскрипции гена CD40L.

2. Исследование молекулярных механизмов влияния активирующих агентов: 4(3-форбол-12-миристат-13-ацетата (ФМА) и ионофора кальция (иономицина, 1о), а также иммуносупрессанта циклоспорина A (CsA), на экспрессию CD40L на поверхности активированных Т-лимфоцитов.

3. Определение возможных причин нарушений экспрессии молекулы CD40L на поверхности активированных Т-лимфоцитов, приводящих к нарушениям переключения изотипов антител и, в конечном итоге, к отсутствию гуморального иммунного ответа у человека.

Публикации результатов исслеповалий. Материалы диссертации были представлены и доложены на 9-ом Международном Конгрессе Иммунологии (23-29 июля 1995 г., г.Сан-Франциско, США). По материалам работы опубликовано 4 печатные работы.

Объём и структура диссертации. Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, результатов и их обсуждения, заключения, выводов и списка

литературы, включающего 95 работ. Работа изложена на 100 страницах машинописного текста, содержит 16 рисунков и 1 таблицу.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ СЭ40 является мембранным гликопротеином типа I, который постоянно экспрессирован па зрелых В-лимфоцитах и относится к семейству белков рецептора для фактора некроза опухоли (ФНО). В свою очередь, СБ40Ь - это мембранный гликопротеин типа II, который относится к семейству белков ФНО и экспрессируется па поверхности Т-лимфоцитов вследствие их активации через Т— клеточный антигеновый рецептор, который распознает антиген в контексте с белками главного комплекса гистосовместимости (ГКГС) на поверхности антиген-презептирующей клетки (Рис.1).

Активированные Т-лимфоциты, посредством контакта СБ40Ь и С040, передают сигнал активированным В-лимфоцитам к переключению изотипов иммуноглобулинов и формированию вторичных фолликулов в лимфатических узлах. В дальнейшем, В-лимфоциты покидают вторичные фолликулы и, благодаря последующим дифференцировке и пролиферации, превращаются или в плазматические клетки, продуцирующие антиген-специфические иммуноглобулины различных изотипов, или в клетки памяти. Активированные В-лимфоциты, которые не получили сигнал через СБ40, умирают в результате так называемой запрограммированной смерти, апоптоза.

Регуляция транскрипции генов является одним из наиболее важных путей регуляции их экспрессии, а транскрипционные факторы, узнающие специфические участки ДНК в промоторах генов, являются инициаторами, обеспечивающими специфичность и

f ÁEn¿;eH- . j

I гкгс (0 Л

оддтп В-клетха

Рис.1. Роль СБ40Ь в формировании вторичиого тимус-зависимого гуморального иммунного ответа. ГКГС - главный комплекс гистосовместимости, ТКР - Т-клеточный рецептор.

своевременность транскрипции. В настоящее время известно несколько различных семейств транскрипционных факторов, включая NF-кВ, NF-AT, АР-1, ETS, STAT и другие, которые принимают участие в экспрессии генов в активированных лимфоцитах. Белки одного семейства обладают значительной степенью гомологии, и, в то же время, являются продуктами различных генов или продуктами различно-сплайсированных информационных РНК. Семейство NF-AT включает в себя белки: NF-ATc, NF-ATp, NF-AT3 и NF-AT4. Из семейства АР-1 в настоящее время известны четыре Fos белка (c-Fos, FosB, Fra-1 и

Fra-2) и три Jun белка (c-Jun, JunB и JunD). В данной работе было показано, что транскрипционные факторы NF-AT связывались с элементами ДНК в регуляторной области мышиного гена CD40L и, вместе с белками семейства АР-1, формировали транскрипционно-активный комплекс.

Одним из основных методов, использованных в данной работе, был метод EMSA (Electrophoretic Mobility Shift Assay), позволяющий выявить наличие транскрипционных факторов в ядерных экстрактах клеток, которые специфически связываются с выбранными участками ДНК. Для этого экстракты, выделяемые из клеточных ядер Т-лимфоцитов, были инкубированы с радиоактивно-мечеными химически синтезированными олигонуклеотидами (Таблица 1), соответствующими участкам ДНК из промотора CD40L, которые обладали гомологией с NF-AT-связывающими участками из промоторов генов ИЛ-2 и ИЛ-4. Вновь образовавшиеся комплексы олигонуклеотидов с белками обладали меньшей подвижностью при гель-электрофорезе по сравнению со свободной пробой.

Анализ нуклеотидной последовательности ДНК длиной -1700 пар нуклеотидов (п.п.) непосредственно перед сайтом кэпирования гена CD40L мыши, выявил наличие четырёх участков (NM-1 -NM-4), содержащих общую консервативную последовательность -ТТТТСС-, найденную в промоторах мышиных и человеческих генов ИЛ-2 и ИЛ-4. А также были найдены две последовательности, отличающиеся от данной консервативной последовательности по одной паре оснований: -сТТТСС- и -ТТТаСС- (NLM-1 и NLM-2 соответственно).

Синтетические олигонуклеотиды длиной 18 п.н. (NM-1 - NM-4) (Таблица 1), соответствующие четырём последовательностям в

Таблица 1.

Положение и нуклеотидная последовательность №-АТ-связывающих участков в промоторах мышиных генов: С040Ь, ИЛ-2 и ИЛ-4.

Ген Название Расстояние от точки инициации транскрипции Нуклеотидная последовательность

С04 ОЬ Ш-1 -74 - 57 -ААССАСАТТТТССАССАА-

Ш-2 -283 -' 266 -ССАСГАТТТТТССТАТТС-

Ш-З -935 - 918 -АААСТСТТТТТССТТАвС-

ММ-4 -1016 - 999 -АААТСАСГТТТССАААТС-

-327 - 310 -ТТТСГСАсТТТССТТСАА-

ЫЬМ-2 -1169 - 1152 -ААССААТТТТаССАСТТТ-

ИЛ-2 ЫГ-АТ1 -290 - 273 -АААСАААТТТТССТСТТТ-

ИЛ-4 Р1 -81 - 64 -ААТААААТТТТССААТСТ-

промоторе гена С040Ь, специфически связывали два комплекса из ядерных экстрактов Т-клеточной линии ЕЬ-4. Комплексо-образование значительно увеличивалось после стимуляции клеток ФМА и иономицином. Более того, комплексы, полученные с каждым из четырёх ИМ олигонуклеотидов, ингибировались любым немеченым ИМ олигонуклеотидом, добавленным в избытке (Рис.2А). Поэтому NN1-1 олигонуклеотид, как наиболее близко расположенный к точке инициации транскрипции, был выбран для дальнейших экспериментов.

Предположение, что транскрипционный фактор ОТ-АТ принимает участие в образовании NN1-1 комплексов, определило серию наших дальнейших экспериментов. ОТ-АТ1 и Р1 олигонуклеотиды из промоторов мышиных генов ИЛ-2 и ИЛ-4 (Таблица 1) связывали комплексы, по миграционным характеристикам идентичные NN1-1 комплексам. Немеченые ОТ-АТ1 и Р1 олигонуклеотиды, добавленные в избытке, ингибировали оба ИМ комплекса. Как оказалось, последовательность -ТТТТСС-является критической для связывания ЫИ-АТ, потому что мутированный NN1-1 олигонуклеотид, в котором последовательность -ТТТТСС- была заменена на -ТТССтАТ- (3'-мутант), не образовывал специфических комплексов, и избыток этого олигонуклеотида не ингибировал образование комплексов NN1-1 (Рис.2В). Два других олигонуклеотида N1^1/1-1 и МЬМ-2, соответствующие двум последовательностям в промоторе СБ40Ь, в которых -ТТТТСС- последовательность отличается только по одной паре нуклеотидов (-сТТТСС- и-ТТТаСС-), также не были способны связывать белки из ядерных экстрактов Т-лимфоцитов или ипгибировать образование NN1-1 комплексов (Рис.2А).

Недавно были клонированы четыре различных белка из семейства транскрипционных факторов ОТ- АТ. К двум из них были получены специфические антитела: кроличьи поликлональные для №-АТр и мышиные моноклональные антитела 7А6 для №-АТс. Мы исследовали комплексы, полученные с олигонуклеотидами NN1-1, №-АТ1 и Р1 (каждый 18 п.н. длиной), и ядерными экстрактами из Т-лимфоцитов (Рис.3). Апти-№-АТр антитела вызывали замедление миграции нижней полосы на геле, потому что, по-видимому, происходило формирование крупных агрегатов молекул, в результате чего образовавшийся комплекс даже не входил в гель.

НУ

А. >3 5 2 Ингибиторы

О П с ---—————

& § а ь ь _

х о. § я я С т

Ингнбнторы а 3 & Т Ё, & < *

О Я <

Ё 2 - г

НИ У

ААОСАСАТТТТССАССАА NN1-1 в ААССАСАТСССАТАСОАА З'-мутаиг

ААСТСТАТТТТССАССАА 5'-мутант

Рис.2. Характеристика ядерных комплексов ЫМ-1. Результаты ЕМБА с использованием ядерных экстрактов из Т-клеточной линии ЕЬ-4 и радиоактивно-меченым олигонуклеотидом ЫМ-1. А. Ингибирование меченого ИМ-'! холодными ИМ и ИЬМ олигонуклеотидами из промотора С040Ь, а также холодным 1Ь2-кВ из промотора ИЛ-2. В. Ингибирование образования комплексов холодными мутантными олигонуклеотидами, добавленными в 100-кратном молярном избытке, было проведено с целью определения пар нуклеотидов, необходимых для связывания белка.

Рис.3. Анализ NM-1 комплексов методом EMS А с использованием ядерных экстрактов из мышиных тимоцитов и Т-лимфоцитов селезёнки (пеактивированиых и активированных ФМА+1о). Специфические антитела против NF-ATp и NF-ATc белков или неспецифическая кроличья сыворотка (НКС) и изотип контроль были добавлены к ядерным экстрактам за 30 минут до радиоактивной пробы.

Неспецифическая кроличья сыворотка (негативный контроль антител) никакого действия на NM-1 комплексы не оказывала. В свою очередь, моиоклональные антитела к NF-ATc смещали верхнюю полосу, в то время, как IgGl мыши (изотип контроль)

никакого эффекта не оказывал. Таким образом, нижний ЫМ-1 комплекс содержал транскрипционный фактор КР-АТр, а верхний -транскрипционный фактор №-АТс. Оба фактора являлись членами семейства ОТ-АТ и связывались с последовательностью ДНК -ТТТТСС-.

Для проверки транскрипционных комплексов на функциональную активность мы использовали систему временной экспрессии гена при трансфекции клеток. Были приготовлены несколько конструкций ДНК на основе вектора рСЬ-2-Промотор, содержащего ген фермента люциферазы под контролем минимального 5У-40 промотора. Конструкции, где непосредственно перед минимальным БУ-40 промотором были вставлены пентамеры олигонуклеотидов N14-1 или ОТ-АТ1 18 п.н. длиной, были трансфецированы в ЕЬ-4 или 68-41 Т-клеточные линии с помощью электрошока (метод электропорации) или методом с использованием ДЕАЕ-декстрана. Через 4 часа после трансфекции клетки были стимулированы ФМА и иономицином. Через 20 часов клетки были лизированы и измерен уровень экспрессии гена люциферазы, используя субстрат люциферип. Активность гена люциферазы в клетках, трансфецированных конструкциями рСЬ-2-Промотор с пентамерами олигоиуклеотидов ИМ-1 или №-АТ1 (18 п.н.), не возрастала после стимуляции клеток с ФМА и иономицином по сравнению с клетками, трансфецированными вектором рОЬ-2-Промотор без пентамера. Таким образом, не смотря на то, что олигоиуклеотиды 18 п.н. длиной связывали транскрипционные факторы №-АТ в ЕМБА экспериментах, было очевидно, что данные олигоиуклеотиды не были способны инициировать транкрипцшо после стимуляции клеток.

В качестве положительного контроля в данном эксперименте мы использовали вектор рСТ.-2-Контроль, который содержал ген люциферазы, Б У-40 минимальный промотор и 8"У-40 энхансер. Уровень экспрессии гена люциферазы в клетках был постояппо высоким после трансфекции этим вектором и не зависел от активации клеток.

Неспособность пентамеров олигонуклеотидов 18 п.н. длиной ишциировать транскрипцию гена люциферазы определила серию наших дальнейших экспериментов. Мы синтезировали более длинный ИМ-1 олигонуклебтид (30 п.н.), последовательность которого показана на рисунке 4. Методом ЕМБА, используя радиоактивный олигонуклеотид ИМ-1 (30 п.н.) и ядерные экстракты из ЕЬ-4 или 68-41 клеток, мы обнаружили образование трёх ядерных комплексов: доминирующий комплекс Ъ; немного медленнее мигрирующий, слабый комплекс а; и быстро мигрирующий, слабый комплекс с. Все три комплекса ингибировались 100-кратным избытком длинного немеченого олигонуклеотида и частично ингибировались коротким КМ-1 (18 п.н.) олигопуклеотидом, но не КР-кВ-связывающим олигонуклеотидом из ИЛ-2 промотора. Образование медленно мигрирующих комплексов, а и Ь, ингибировалось избытком немеченого АР-1 олигонуклеотида, а также эти комплексы смещались при добавлении антител к №-АТр и с-//от, ингибировались антителами к и, в меньшей степени, антителами к ИР-АТс, подтверждая, что комплексы а иЬ содержали белки из семейств №-АТ и АР-1. Нижний комплекс (комплекс с) по миграционным характеристикам совпадал с нижним комплексом, полученным с коротким (18 п.н.) КМ-1 олигонуклеотидом. Антитела к №-АТр при добавлении смещали комплекс с, в то время как анти-с-/г05 и анти-с-/ш? антитела

N¡4-1*08 п.н.) NN1-1 "(30 п.н.)

ЛМ-1 (18 п.н.) ААССАСАТПТССАССАА

ИМ-1 (30 п.н.) САСАСААСАСТАССААССАСАТТТТССАСС

Рис.4. Зависимость образования комплексов от длины олиго-нуклеотидов и наличие белков АР-1 (с-К^, с^'ип) в комплексе, образованном длинным N1*1-1 (30 п.н.). В эксперименте были использованы радиоактивно-мечепые N1/1-1 олигонуклеотиды длиной 18 и 30 п.н. и ядерные экстракты из Т-клеточной линии ЕЬ-4, нестимулированной и стимулированной ФМА+1о.

его не смещали, показывая, что комплекс с содержал только АТ, но не АР-1. Таким образом, длинный (30 п.н.) олигонуклеотид N1/1-1 связывал транскрипционные факторы из обоих семейств, семейства №-АТ и семейства АР-1, в отличие от короткого (18 п.н.) N14-1 олигонуклеотида, который связывал транскрипционные факторы только из семейства №-АТ.

В промоторе гена ИЛ-2 ОТ-АТ-зависимьгй транскрипционный комплекс содержал белки из семейства АР-1 и формировался благодаря тому, что участки ДНК, связывающие №-АТ и АР-1, расположены в непосредственной близости друг от друга. Таким образом, транскрипционные факторы связывались с ДНК и одновременно между собой, образуя транскрипционно-активный комплекс. В отличие от промотора гена ИЛ-2, в промоторе гена С040Ь участки, обладающие гомологией с АР-1-связывающей последовательностью, не были найдены в непосредственной близости с МР-АТ-связывающими последовательностями. Более того, мутации в №-АТ-связываюгцей последовательности, -ТТТТСС-, нарушали образование всех трёх КМ-1 комплексов (а, Ь, с). Это даёт возможность предположить, что связывание белков АР-1 с длинным ИМ-1 олигонуклеотидом полностью зависело от связывания белков М^-АТ за ДНК.

Конструкции на основе вектора рОЬ-2-Промотор, содержащие пентамеры длинных олигоиуклеотидов ИМ-1 или АТ1 (30 п.н.), были трансфецировапы в Т-клеточные линии ЕЬ-4 и 68-41. После активации трансфецированных клеток активность люциферазы возрастала в несколько десятков раз (Рис.5). Таким образом, пентамер длинного NN1-1 олигонуклеотида (30 п.н.) был способен индуцировать транскрипцию гена люциферазы. В свою очередь, пентамер мутантного олигонуклеотида NN1-1, в котором последовательность -ТТТТСС- изменили на -ТТСОАТ-, не увеличивал уровень транскрипции гена люциферазы. Обобщая результаты наших экспериментов, можно утверждать, что наряду со связыванием белков ОТ-АТ за ДНК, было необходимо дополнительное связывание транскрипционных факторов семейства АР-1 для формирования фунционалыю-активпого комплекса.

2000-

ч-t I

|| H

«ifS

1500

1000-

500-

-CsA

Ш +CsA

pGL2-Промотор

pGL2-Промотор 5x(NF-ATl)

"T

ФМА+Io

pGL2-IlpoMorop 5x(NM-l)

s 5

ФМА+Io

1 l........ I

ФМА Io ФМА+Io

+ <

s

©

г

i ©

Рнс.5. Уровень экспрессии гена люциферазы в неактивированных и активированных Т-клеточных линиях, трансфецированных векторами, содержащими пентамеры олигонуклеотидов NM-1 uNF-ATl. OEJI - относительная единица люминесценции.

После активации Т-лимфоцита через Т-клеточный рецептор, сигнал в цитоплазме передаётся двумя различными путями: первый, кальций-зависимый путь, - через появление свободных ионов [Са2+]; второй путь - через активацию протеин-киназы С (Рис.б). Эти два пути могут быть имитированы в результате обработки клеток с помощью химических реагентов: иономицина, который является ионофором и способствует проникновению ионов кальция внутрь клетки; и ФМА, который связывается с протеин-киназой С и тем самым активирует её. Поэтому оптимальная индукция экспрессии многих генов, свойственных Т-лимфоцитам в активированном состоянии, требует обработки клеток обоими ста-

Т-клеточный рецептор

Рис.б. Схема молекулярного механизма действия циклоспорина А на активацию ИР-АТ и последующую экспрессию СЭ40Ь на поверхности активированных 'Г-лимфоцитов.

муляторами одновременно, иономицином и ФМА, предполагая тем самым, что необходимы оба пути, кальций-зависимый и протеин-киназа С-зависимый.

Оба данных пути, проводящие сигнал, были необходимы и для формирования функционального N1/1-1 комплекса и последующей экспрессии С040Ь на Т-лимфоцитах. Активация протеин-киназы С и последующих внутриклеточных событий с помощью ФМА

приводит к активации белков семейства АР-1. Высвобождение ионов кальция приводит к серии внутриклеточных событий, одним из которых является активация кальцинурина. Кальципурин - это кальций- и кальмодулин-зависимая фосфатаза, состоящая из двух субъединиц. Регуляторная субъединица содержит кальций-связывающий и активирующий домены. Каталитическая субъединица кальцинурина, несущая фосфатазную активность, содержит кальмодулин-связывающий и аутоингибирующий домены. Активированный кальцинурин дефосфорилирует №-АТ, который присутствует з цитоплазме в неактивированном фссфорилированном состоянии, и после дефосфорилирования переносится в ядро, где принимает участие в связывании ДНК и инициации транскрипции.

На следующем этапе нашей работы мы проверяли действие иммуносупрессанта, циклоспорина А, на транскрипцию гена СБ40Ь в активированных Т-лимфоцитах (Рис.7). Циклоспорин А полностью ингибировал образование комплексов коротких (18 п.н.) NN1-1 и №-АТ'1 олигонуклеотидов с транскрипционными факторами из семейства №-АТ. Как и предполагалось, АР-1 комплекс чувствительности к действию циклоспорина А не проявлял.

В экспериментах с пентамером длинного NN1-1 олигонуклеотида экспрессия люциферазы была максимальной в результате стимуляции клеток ФМА и иономицином, хотя она была достаточно высокой и при стимуляции одним иономицином без ФМА (Рис.5). Обработка клеток циклоспорином А за несколько минут до стимуляции клеток почти полностью ингибировала экспрессию гена люциферазы (Рис.5) и образование NM-l комплекса (Рис.7). Непосредственной шпиеныо для циклоспорина А является кальцинурин. Циклоспорин А формирует комплексы с

ГШ-1* КР-АТ1* ;-1—

АР-1*

8.

5

а

< И

и +

з я

< | <

¡л У + 1 и +

в = 8. 5 я

1 & § § 1

2 о : о | 1 3 о

о 5 а 8 5

я К к 8 5

г < Г 1

и Ы'

Рис.7. Чувствительность различных комплексов к циклоспорину А (СзА). Результаты ЕМБА с использованием ядерных экстрактов из тимомы ЕЬ-4 (неактивированной или активированной иономиципом) и радиоактивно-мечеными олигонуклеотидами NN11 (С040Ь), NF-AT1 и АР-1 (ИЛ-2).

внутриклеточными белками - иммунофилинами. которые затем способны связываться с кальцинурипом, ингибируя его ферментативную активность и, тем самым, предотвращая транслокацию цитоплазматического компонента №-АТ в ядро, при этом не оказывая никакого действия на ядерный компонент АР-1. В результате, функционально-активный транскрипционный комплекс

в промоторе гена СБ40Ь не формируется, что, в свою очередь, приводит к отсутствию экспрессии гена СР40Ь.

Этот результат был подтверждён следующим экспериментом. Клеточная линия 68-41 была трансфецирована одновременно конструкцией на основе вектора рОЬ-2-Промотор, содержащей пентамер длинного олигонуклеотида NN1-1, и вектором рВ15-€N11111126.19, экспрессирующим постоянно активную каталитическую субъединицу кальцинурина. Трансфецированные нестимулировапные клетки имели повышенный уровень экспрессии гена люциферазы, а при обработке ФМА - уровень экспрессии достигал оптимального уровня (Рис.5).

Функциональность пентамера NN1-1 (30 п.н.) говорит о формировании транскрипционно-активиого комплекса в промо-торной части гена СБ40Ь в ответ на активацию Т-лимфоцитов. Это подтверждает, что экспрессия СБ40Ь на поверхности активированных Т-лимфоцитов зависит от транскрипционных факторов ОТ-АТ и АР-1, которые, в свою очередь, зависят от многоступенчатых процессов, приводящих к их активации. Нарушение процесса передачи сигнала с поверхности клетки в ядро (от Т-клеточного рецептора до промотора гена С040Ь), с помощью обработки циклоспорином А, приводит к нарушению экспрессии СЭ40Ь на поверхности активированных Т-лимфоцитов, и в последующем к нарушению взаимодействия между Т- и В-лимфоцитами через С040Ь - СЭ40, что, в свою очередь, отрицательно сказывается на процессе формирования вторичного гуморального иммушюго ответа.

ВЫВОДЫ

1. Получены доказательства критической роли транскрипционного фактора ОТ-АТ для оптимальной экспрессии молекулы СБ40Ь, абсолютно необходимой для формирования вторичного гуморального иммунного отаета в результате переключения изотопов иммувоглобулинов.

2. Получена последовательность ДНК промотора ¡ена СБ40Ь мыши, ц найдены участки, которые связывают ядерный фактор ОТ-АТ и играют критическую роль в транскрипции данного гена в активированных Т-лимфоцитах. Доказано, что необходимо связывание ядерного фактора АР-1 с комплексом ОТ-АТ/ДНК для инициации транскрипции гена С040Ь в ответ на активацию Т-лимфоцитов.

3.Разработан метод трансфекции Т-клеточных линий вектором, содержащим ген люциферазы под контролем различных участков промотора гена СБ40Ь, с целью определения транскрипционной активности данных участков.

4. Показан и охарактеризован молекулярный механизм ингабирования циклоспорином А ядерной транслокацип ОТ-АТ и последующей экспрессии гена СВ40Ь.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ:

1. Alia V. Tsytsykova, Erclyni N.Tsitsikov, and Raif S. Geha. 1996. THE CD40L PROMOTER CONTAINS NUCLEAR FACTOR OF ACTIVATED T CELLS-BINDING MOTIES WHICH REQUIRE AP-1 BINDING FOR ACTIVATION OF TRANSCRIPTION. The Journal of Biological Chemistry, v.271 (No. 7, February 16): p.3763-3770.

2. Castigli E„ Fuleihan R., Ramesh N., Tsitsikov E., Tsytsykova A., Geha R.S. 1995. CD40 LIGAND/CD40 DEFICIENCY. [Reviewi. International Archives of Allergy & Immunology, v.107 (1-3): p.37-39.

3. A.V.Tsytsykova, E.N.Tsitsikov, and R.S.Geha. DNA ELEMENTS IN THE CJHO LIGAND GENE BIND NF-AT AND TRANSCRIPTIONAL Y ACTIVE. 9th International Congress of Immunology. 23-29 July 1995, San Francisco, CA.

4. Цыцикова A.B. Лунев H.A., Геха P.C., Алешкин B.A. ТРАНСКРИПЦИОННАЯ РЕГУЛЯЦИЯ ЭКСПРЕССИИ ЛИГАНДА ДЛЯ CD40 НА ПОВЕРХНОСТИ АКТИВИРОВАННЫХ Т-ЛИМФОЦИТОВ. Бюллетень по экспериментальной биологии и медицины. 1997 (в печати)