Автореферат диссертации по медицине на тему Морфофункциональная организация лимфатического региона подвздошной кишки после введения противоопухолевого препарата
На правах рукописи
СИДЕНКО НАДЕЖДА ИВАНОВНА
МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ ЛИМФАТИЧЕСКОГО РЕГИОНА ПОДВЗДОШНОЙ КИШКИ ПОСЛЕ ВВЕДЕНИЯ ПРОТИВООПУХОЛЕВОГО ПРЕПАРАТА
14.03.01 - анатомия человека
АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук
-6 ОКТ 2011
Тюмень -2011
4855468
Работа выполнена в Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Омская государственная медицинская академия» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации
Научный руководитель:
доктор медицинских наук, Путалова Ирина Николаевна профессор
Официальные оппоненты:
доктор медицинских наук, профессор, заслуженный деятель науки РФ
Бычков Виталий Григорьевич
ГОУ ВПО Тюменская государственная медицинская академия Минздравсоцразвития России
доктор медицинских профессор
наук, Обухова Лидия Александровна
ГОУ ВПО Новосибирский государственный университет Министерства образования и науки РФ
Ведущая организация: ГОУ ВПО Новосибирский государственный
медицинский университет Минздравсоцразвития России
Защита состоится «_»_2011 г. в_час. на заседании
диссертационного совета Д 208.101.02 при ГОУ ВПО ТюмГМА Минздравсоцразвития России по адресу: 625023, г. Тюмень, ул. Одесская, 54.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГОУ ВПО ТюмГМА Минздравсоцразвития России.
Автореферат разослан «_»__2011 г.
Ученый секретарь
диссертационного совета С.А. Орлов
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность исследования. В настоящее время хорошо известно, что лимфатическая система, осуществляя непрерывный дренаж тканей и удаляя из интерстициального пространства продукты распада клеток, токсины и метаболиты, параллельно обеспечивает в организме водный гомеостаз, белковый, липидный и электролитный баланс в разных средах - тканях, лимфе, крови, ликворе (Бородин Ю.И., 2005, 2007, 2010; Коненков В.И., 2008). С помощью отдельных лимфоидных клеток, находящихся в органах и тканях, одиночных и групповых лимфоидных узелков, паренхимы регионарных лимфатических узлов осуществляется биофизическая, биохимическая, иммунобиологическая детоксикация тканевой жидкости и лимфы (Бородин Ю.И., Асташов В.В., 2003; Обухова Л.А., 2008). Поэтому от состояния дренажно-детоксикационной функции лимфатической системы во многом зависит прогноз и исход патологических процессов (Бородин Ю.И., 2002; Левин Ю.М, 2002).
В современной онкологической практике широкое распространение получили различные методы химиотерапии с использованием противоопухолевых препаратов избирательной направленности. Среди таких препаратов особого внимания заслуживает бортезомиб, который является обратимым высокоселективным ингибитором активности протеосом и широко используется при лечении больных с множественной миеломой (Myung J. et al., 2001; Glickman M.H., Ciechanover A., 2002). Вместе с тем, отмечено, что бортезомиб обладает побочными действиями, вызывая нарушения со стороны пищеварительной системы, которые по частоте уступают лишь изменениям системы кроветворения. Морфологические основы таких изменений остаются пока недостаточно изучены.
Несмотря на большой объем исследований, посвященных структурным преобразованиям лимфатической системы и лимфоидных органов при онкологических заболеваниях и после химиотерапии, имеющиеся сведения по этому вопросу достаточно противоречивы и отрывочны (Bodenheimer H.Jr. et al., 1988; Майбородин И.В. и соавт., 2005, 2007; Майбородина В.И. и соавт., 2006). Более того, для изучения механизма действия того или иного противоопухолевого препарата или их комплекса необходимы достаточно полные представления о влиянии их на органы и ткани интактного организма, данные и другие вопросы этой проблемы остаются нерешёнными.
Выбор лимфатического региона подвздошной кишки в качестве объекта исследования обусловлен, с одной стороны, тем, что после применения бортезомиба наиболее частые осложнения встречаются в пищеварительной системе а, с другой, тем, что в стенке подвздошной кишки хорошо представлена лимфоидная ткань. Для оценки дренажно-детоксикационных процессов в зоне лимфосбора необходимо иметь представления о морфологических преобразованиях основных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки и особенностях их адаптации в условиях химиотерапии.
Цель исследования. Выявить в эксперименте морфофункциональные преобразования различных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки после внутрибрюшинного введения противоопухолевого препарата (бортезомиб).
Задачи исследования:
1. Определить особенности структурной организации стенки подвздошной кишки, групповых лимфоидных узелков, брыжеечных лимфатических узлов у интактных животных и в различные сроки после внутрибрюшинного введения физиологического раствора (на 12, 21 и 90 сут).
2. Провести сравнительный анализ изменений морфометрических показателей различных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки на 12,21 и 90 сут после введения противоопухолевого препарата.
3. Посредством лабораторных и биохимических методов исследования оценить адекватность дренажно-детоксикационных процессов в регионе лимфосбора и в организме в целом в различные сроки после введения бортезомиба.
Научная новизна исследования. Впервые проведено экспериментальное комплексное исследование структурно-функциональных преобразований основных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки (интерстициальных пространств, центральных лимфатических сосудов кишечных ворсинок и групповых лимфоидных узелков подвздошной кишки, регионарных брыжеечных лимфатических узлов) после внутрибрюшинного введения противоопухолевого препарата (бортезомиба).
Получены новые данные о структурных преобразованиях стенки подвздошной кишки, групповых лимфоидных узелков, брыжеечных лимфатических узлов в разные сроки после курсового введения бортезомиба. Установлено, что внутрибрюшинное введение бортезомиба вызывает на 12 сут увеличение площадей всех звеньев лимфатического региона подвздошной кишки. Однако дренажно-детоксикационная функция лимфатического региона оказывается недостаточной, о чём свидетельствует повышение в плазме крови концентрации ВНиСММ, преимущественно катаболического пула, а в стенке подвздошной кишки - развитие деструктивных процессов. Наиболее выраженные структурные изменения на 12 сут происходят в регионарном лимфатическом узле, а на 21 сут - в пейеровой бляшке. Это является морфологическим маркером локализации максимального токсического воздействия. В отдаленном периоде (на 90 сут) все показатели структурных компонентов стенки подвздошной кишки восстанавливаются и соответствуют значениям контрольной группы, что указывает на адекватность функций её лимфатического региона и обратимый характер изменений, вызванных введением одного курса бортезомиба.
Теоретическая и практическая значимости работы. Полученные данные о характере морфофункциональных преобразований различных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки в разные сроки после внутрибрюшинного введения противоопухолевого препарата (бортезомиба)
расширяют и дополняют современные представления об участии лимфатической системы (лимфатического региона) в поддержании гомеостаза после воздействия химиопрепаратов, в частности, ингибитора протеасом.
Представленные результаты позволили выявить, что на 21 сут полного восстановления структурной организации и морфометрических показателей всех звеньев лимфатического региона подвздошной кишки не происходит, это может послужить морфологической основой возникновения осложнений в пищеварительной системе при дальнейшем введении химиопрепарата. В отдалённый период (на 90 сут) показатели различных звеньев лимфатического региона восстанавливаются, и обеспечивается обратимый характер изменений в стенке подвздошной кишки.
Полученные данные вносят дополнительные сведения о механизмах влияния химиопрепаратов на лимфатический регион подвздошной кишки, лимфоидную и лимфатическую системы в целом, и являются научным основанием для необходимости проведения специалистами профилактических мероприятий в критические сроки химиотерапии.
Полученные результаты могут быть рекомендованы анатомам, лимфологам, гистологам, гематологам, онкологам для использования их в учебном процессе, в практике научных исследований и при разработке методов лечения пациентов.
На защиту выносятся следующие положения:
1. Один курс внутрибрюшинного введения противоопухолевого препарата (бортезомиб) вызывает (на 12 сут) у интактных животных выраженные структурные преобразования всех звеньев лимфатического региона подвздошной кишки, направленные на усиление его дренажно-детоксикационной функции в регионе лимфосбора, но в этот период она оказывается недостаточной.
2. На 21 сут эксперимента восстановления морфометрических показателей всех звеньев лимфатического региона подвздошной кишки не происходит, максимальные структурные изменения характерны для групповых лимфоидных узелков, что свидетельствует о сохранении антигенного и токсического прессинга в этот период преимущественно в стенке кишки.
3. Структурные преобразования всех звеньев лимфатического региона подвздошной кишки, вызванные внутрибрюшинным введением бортезомиба, носят обратимый характер: на 90 сут эксперимента происходит полное восстановление всех показателей.
Апробация работы.
Основные материалы исследования доложены на международной конференции «Фундаментальные проблемы лимфологии и клеточной биологии» (Новосибирск, 2008), X конгрессе Международной Ассоциации морфологов (Ярославль, 2010), III научной конференции молодых ученых ОмГМА (Омск, 2011), заседании проблемной комиссии «Морфогенез клетки, тканей и органов организма человека» (Тюмень, 2011).
Внедрение результатов в практику.
Новые данные об особенностях структурных преобразований различных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки после внутрибрюшинного введения противоопухолевого препарата бортезомиба внедрены в учебный процесс на кафедрах анатомии человека и гистологии, цитологии и эмбриологии Омской государственной медицинской академии; кафедре анатомии, гистологии и патологической анатомии Омского государственного аграрного университета; кафедре ботаники, цитологии и генетики Омского государственного педагогического университета.
Публикации. По теме диссертации опубликовано 10 научных работ, из них 4 - в изданиях, рекомендованных ВАК.
Объём и структура диссертации.
Диссертация изложена на 177 страницах компьютерного текста и состоит из введения, обзора литературы, 4 глав собственных исследований, включая главу материал и методы исследования, обсуждения полученных результатов, выводов и списка использованной литературы. Указатель литературы содержит 188 отечественных и 149 иностранных источника. Работа иллюстрирована 18 таблицами и 45 рисунками.
Материал, представленный в диссертации, в полном объёме получен, обработан и проанализирован лично автором.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
В эксперименте использовали 70 белых крыс-самцов \Vistar, массой тела 300-330 г, 6-месячного возраста. Животных включали в эксперимент после двух недель адаптации к условиям вивария. Содержание, кормление, уход и выведение из эксперимента крыс осуществляли в соответствии с требованиями санитарных правил № 1045 - 73 от 06.04.73., приказа №755 от 12.08.1977 МЗ СССР, правил проведения качественных клинических испытаний в РФ (утвержденными МЗ РФ 29.12.98), положений Хельсинкской декларации 2000г.
Животные были разделены на три группы. Первая группа (контрольная) состояла из 10 интактных животных. Животным второй группы (30 крыс) в брюшинную полость вводили изотонический раствор хлорида натрия (0,9 % - 0,5 мл) на 1, 4, 8 и 11 сут. Животным третьей группы (30 крыс) - в брюшинную полость вводили противоопухолевый препарат бортезомиб из расчета 1 мг/кг массы животного. Крысы первой группы служили контролем, второй - группой сравнения для третьей (опытной) группы животных. Забой проводили под эфирным наркозом на 12,21 и 90 сут эксперимента.
В соответствии с поставленными задачами объектами исследования служили стенка и брыжейка подвздошной кишки, групповые лимфоидные узелки, брыжеечные лимфатические узлы. Для светооптических исследований органы фиксировали в жидкости Теллесницкого в течение 24 часов, обезвоживали в серии спиртов возрастающей концентрации, просветляли в ксилолах, заключали в парафин-воск. Срезы толщиной 5 мкм и
10 мкм изготовляли на ротационном микротоме, окрашивали гематоксилином Майера и эозином, азур II - эозином по Нохт - Максимову (Лилли Р., 1969; Меркулов Г.А., 1969).
Морфометрический анализ исследуемых органов проводили на световом микроскопе МБС-10 с помощью окулярной сетки при увеличении в 32 раза. Во всех органах определяли общую площадь среза. В стенке подвздошной кишки вычисляли абсолютную и относительную площади слизистой оболочки, подслизистой основы, мышечной и серозной оболочек, долю центральных лимфатических сосудов и кровеносных капилляров в собственной пластинке слизистой оболочки, площадь и долю интерстициальных пространств в подслизистой основе и мышечной оболочке. В пейеровой бляшке подсчитывали число, площадь и долю первичных и вторичных лимфоидных узелков, площади центров размножения и мантийной зоны в составе последних, площадь межузелковой зоны. В брыжеечных лимфатических узлах определяли площади капсулы, краевого синуса, первичных и вторичных лимфоидных узелков, число их, площадь центров размножения, коркового плато, паракортикальной зоны, мозговых синусов, мозговых тяжей. Рассчитывали удельные площади коркового и мозгового вещества, Т- и B-зависимых зон, вычисляли корково-мозговой (К/М) индекс.
Клеточный состав изучали в структурах стенки подвздошной кишки (в эпителии, в собственной пластинке слизистой и мышечной оболочках, подслизистой основе), в групповых лимфоидных узелках (в центрах размножения, мантийной и межузелковой зонах), в брыжеечных лимфатических узлах (в центрах размножения, маргинальной и паракортикальной зонах, мозговых тяжах и мозговых синусах) на гистологических срезах толщиной 5 мкм, окрашенных азур II - эозином.
Клеточный состав структурно-функциональных зон стенки подвздошной кишки, групповых лимфоидных узелков, брыжеечного лимфатического узла подсчитывали на микроскопе ЛОМО МИКМЕД-2 при помощи морфометрической сетки Г.Г. Автандилова (1984), вмонтированной в окуляр 10. Под объективом 100 (иммерсия) подсчитывали клетки, на которые попадают точки в 10 полях зрения. Митотический индекс определяли как процент клеток находящихся на разных этапах деления от общего числа проанализированных клеток.
Лабораторные методы исследования. Общеклиническое исследование крови производилось на автоматическом гематологическом анализаторе ADVIA 70 BAYER в клинической лаборатории Омской областной клинической больницы. Использовался интегрированный реагентный блок (TIMEPAC box) - исследовали эритроциты, тромбоциты, гемоглобин, лейкоциты: лимфоциты, моноциты, эозинофилы, палочкоядерные и сегментоядерные нейтрофилы, базофилы.
Для оценки степени выраженности эндогенной интоксикации рассчитывали лейкоцитарный индекс интоксикации по формуле Кальф-Калифа (Белевитин А.Б., Щербак С.Г., 2006).
Регистрацию содержания веществ низкой и средней молекулярной массы осуществляли по методу М.Я. Малаховой (1995) на спектрофотометре ЛОМО СФ - 26 в зоне длин волн от 238 нм до 298 нм с интервалом 4 нм.
Полученные количественные данные подвергали статистической обработке с использованием пакета прикладных программ STATISTICA 6,0 и возможностей Microsoft Excel 2007. На первом этапе статистического анализа проводили тест на нормальность распределения признаков (критерии Колмогорова-Смирнова, Шапиро-Уилка). Статистическую обработку проводили по методике, применяемой для нормального распределения признаков. Полученные данные представлены в тексте в виде M±s, где M -средняя величина, a s - стандартное отклонение средней. Различия между выборками определяли с использованием t-теста. Критическая величина значимости различий принята на уровне р<0,05. Для выявления статистических связей использовали корреляционный анализ с вычислением коэффициента Пирсона (г) и определением его статистической значимости (Гланц С., 1998; Боровиков В., 2003; Реброва О.Ю., 2006).
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
На протяжении всего эксперимента животные, как после внутрибрюшинного введения физиологического раствора, так и после внутрибрюшинного введения противоопухолевого препарата бортезомиба были активными, охотно принимали пищу, масса тела существенно не изменилась (300-330 г). Летальных исходов животных в этих группах не было.
На 12 сут эксперимента после внутрибрюшинного введения бортезомиба в стенке подвздошной кишки отмечали выраженные структурные преобразования: увеличение общей площади её поперечного среза в сопоставлении с контролем и группой сравнения (в 1,7 и 1,5 раза соответственно), за счет увеличения площадей всех оболочек (рис. 1). Увеличение площади слизистой оболочки кишки связываем с увеличением площади просвета центральных лимфатических сосудов ворсинок в 2,4 раза. Доля кровеносных капилляров в структуре ворсинки оставалась на уровне контрольных значений. Площади подслизистой основы и мышечной оболочки в стенке кишки превышали значения групп контроля и сравнения в среднем в 2,1 раза за счет увеличения (в среднем в 2,5 раза) площади интерстициальных пространств (первое звено лимфатического региона) (рис. 2). Увеличение площади регионарных лимфоносных путей может быть связано, как с активацией лимфопродукции, так и с блокадой транспорта лимфы на уровне лимфатических узлов (Бородин Ю.И., 2000; Майбородина В.И., 2003).
В этот период эксперимента (12 сут) в стенке подвздошной кишки отмечали самую максимальную численность клеток - 94,28±4,15 (в контроле 71,00±5,14; в группе сравнения 76,35±6,44). При этом в эпителиальном пласте слизистой оболочки общая плотность клеток превышала значения групп
контроля и сравнения за счет нарастания (в среднем в 2,3 раза) числа межэпителиальных лимфоцитов, что отражает ответную реакцию лимфатического региона тонкой кишки на антигенное воздействие.
14,00 12,00 10,00 8,00 6,00 4,00 2,00 0,00
_К Ф12 Б12 Ф21 Б21 Ф90 Б90
Рис. 1. Динамика изменений общей площади среза стенки подвздошной кишки интактных крыс (К), после внутрибрюшинного введения физиологического раствора (Ф) и бортезомиба (Б).
Примечание (здесь и ниже в гистограммах): * - отличие достоверно при сравнении с показателями контроля; # - с показателями на 12 сутки в своей группе; @ - с показателями на 21 сутки в своей группе; & - с показателями группы Ф12; $ - с показателями группы Ф21; § - с показателями на 12 сутки в своей группе, (р<0,05).
К Ф12Ф21Ф90 Б12Б21Б90 К Ф12Ф21Ф90 Б12Б21Б90
Интерстициальные пространства Интерстициальные пространства _подслизистой основы_мышечной оболочки_
Рис. 2. Изменение площади интерстициальных пространств в стенке подвздошной кишки интактных крыс, после внутрибрюшинного введения физиологического раствора и бортезомиба.
Увеличение числа дегенерирующих форм клеток, макрофагов в собственной пластинке слизистой оболочки и в подслизистой основе, снижение процентного содержания эпителиоцитов в эпителиальной выстштке
свидетельствуют о развитии деструктивных процессов в стенке подвздошной кишки. Однако регенераторные процессы сохранены, что подтверждается повышением митотического индекса в эпителиальном пласте слизистой оболочки. В стенке подвздошной кишки возрастает число тучных клеток. Известно, что они принимают участие в обеспечении неспецифической резистентности и в переносе антигенов иммунокомпетентным клеткам, то есть в индукции защитных реакций. Увеличение числа эозинофильных лейкоцитов в собственной пластинке слизистой оболочки, которое мы определяли, закономерно при антигенной нагрузке и связано с их миграцией из сосудистого русла в ткани, где они инактивируют токсический субстрат (Фревдлин И.С., Тотолян A.A., 2001).
Способность эпителия тонкой кишки к быстрому обновлению, с одной стороны, делает его чувствительным к действию химиопрепаратов, а, с другой стороны, обеспечивает быструю, как физиологическую, так и репаративную регенерацию (Аруин Л.И. и соавт., 1998). Выявленные изменения в стенке подвздошной кишки можно расценивать как ответную компенсаторную реакцию её на возросшую антигенную нагрузку для активации и усиления защитных механизмов в регионе лимфосбора. В обеспечении неспецифической резистентности принимают участие функционально активные формы тучных клеток, увеличение числа которых мы наблюдали и в брыжейке тонкой кишки.
На 12 сут эксперимента отмечали увеличение общей площади среза пейеровой бляшки (на 7,0%) по сравнению с контролем, главным образом, за счет увеличения площади вторичных лимфоидных узелков (на 14,3%), а в их составе - центров размножения (на 19,2%) с повышением в них числа макрофагов и бластных форм клеток (в среднем в 1,8 раза) (рис. 3). Параллельно снижалось процентное содержание малых лимфоцитов (на 10,3%). Число вторичных лимфоидных узелков в этот период уменьшилось на 11,6%. Следует отметить, что светлые центры в лимфоидных узелках закономерно возникают при антигенном воздействии, являясь одним из ярких проявлений иммунного ответа (Сапин М.Р., 1987, 2001). В увеличенной на 12,5% по площади мантийной зоне возрастает общая плотность клеток до 71,67±5,14 (в контроле - 60,17±5,14; в группе сравнения - 62,00±6,72), преимущественно за счет малых лимфоцитов.
Степень изменений мантийной зоны лимфоидных узелков пейеровых бляшек была значительно меньше, чем центров размножения. Мы связываем это с тем, что в мантии не так выражены процессы размножения и созревания клеток, как в центрах размножения. Такая перестройка структуры пейеровой бляшки является признаком антигенной стимуляции и свидетельствует об активации её детоксикационной функции.
Показатели первичных лимфоидных узелков в составе лимфоидной бляшки на протяжении всего эксперимента существенно не менялись. Доля межузелковой зоны снижалась (на 12,7%) на 12 сут, что можно расценивать как ослабление дренажной функции регионарных скоплений лимфоидной ткани в этот период (Васильева О.В., 2005).
;
Рис. 3. Динамика изменений общей площади групповых лимфоидных узелков подвздошной кишки интактных крыс, после внутрибрюшинного введения физиологического раствора и бортезомиба.
Существенные изменения определяли и в структурной организации брыжеечного лимфатического узла на 12 сут после внутрибрюшинного введения бортезомиба. Общая площадь среза последнего увеличилась по сравнению с группами контроля и сравнения в среднем на 15,1%. Морфотип узла изменился с промежуточного (в контроле) на компактный. Корково-мозговой индекс в этот период имел максимальное значение для эксперимента - 1,63±0,08 (в контроле - 1,38±0,08; в группе сравнения -1,36±0,06) (рис. 4). Площадь коркового вещества превышала площадь мозгового в 1,6 раза, в результате - площадь Т-зависимой зоны доминировала в структуре узла. Это указывает на то, что в процессах местного иммунитета преобладают реакции по клеточному типу (Белянин В.Л., Цыплаков Д.Э., 1999), а ток лимфы осуществляется через паренхиму узла - по непрямому пути. То есть ситуация в регионе лимфосбора требует активации прежде всего детоксикационной функции (рис. 5).
Небольшое повышение плотности клеток лимфоидного ряда в паракортикальной зоне приводит к увеличению её площади в среднем на 32,7% по сравнению с группами контроля и сравнения, что подтверждает факт депонирования лимфы в промежуточных синусах и в паренхиме для более качественной обработки лимфы, поступившей из стенки кишки, содержащей большое количество токсикантов.
При незначительном преобладании площади Т-зависимой зоны над площадью В-зависимой зоны можно предположить о том, что в иммунных реакциях клеточное и гуморальное звенья участвуют в равной степени. Об этом свидетельствует увеличение (в 1,9 раза) площади вторичных лимфоидных узелков в сопоставлении с группами контроля и сравнения за счет центров размножения. В их клеточном составе определяли возрастание числа бластных клеток и митотического индекса (в 3,0 раза), тогда как количество средних и малых лимфоцитов снижалось.
Рис. 4. Динамика изменений корково-мозгового индекса брыжеечного лимфатического узла интактных крыс, после внутрибрюшинного введения физиологического раствора и бортезомиба.
Рис. 5. Соотношение площадей Т- и B-зависимых зон брыжеечного лимфатического узла интактных крыс, после внутрибрюшинного введения физиологического раствора и бортезомиба.
В маргинальной зоне отмечали повышение митотического индекса по сравнению с контролем и увеличение числа малых лимфоцитов (в среднем на 21,0%) по отношению к обеим сравниваемым группам. Известно, что герминативные центры формируются в результате антигензависимых процессов и являются местом размножения клонов клеток, реагирующих на антиген, зоной, где идет образование предшественников лимфоцитов памяти и плазмоцитов (Белянин В.Л., Цыплаков Д.Э., 1999; Фрейдлин И.С., Тотолян A.A., 2001).
В брыжеечном лимфатическом узле в этот период эксперимента определяли увеличение площади синусной системы на 14,6% по сравнению с контролем, главным образом, за счет мозговых синусов (на 18,9%). Не
исключено, что лимфа депонируется в лимфатических узлах, так как необходимо более длительное время для инактивации токсинов и антигенов, поступивших в лимфатические узлы, тем самым затрудняется отток лимфы от стенки подвздошной кишки. Застой лимфы в узлах может приводить к расширению компонентов лимфатического русла в дренируемых тканях, нарушая условия их функционирования и создавая питательную среду для микроорганизмов (Майбородина В.И., 2003; Partsch Н., 1988).
Увеличение общего числа клеток в просвете мозговых синусов на 12,0% по сравнению с контролем, преимущественно за счет средних лимфоцитов, связано с недостаточностью процессов транспорта их из лимфатического узла. Численная плотность клеток в мозговых тяжах после внутрибрюшинного введения химиопрепарата существенно не отличалась в сравниваемых группах животных, что, вероятнее связано с преобладанием в этих структурах высокодифференцированных плазматических клеток.
Таким образом, на 12 сут эксперимента структурно-функциональные преобразования во всех звеньях лимфатического региона подвздошной кишки носят компенсаторный характер и направлены на освобождение организма от чужеродного субстрата, поступившего извне (Долгих В.Т., 2003).
Однако отмеченные перестройки не ограничиваются пределами региона тонкой кишки, что подтверждается лабораторными данными: в плазме крови уровень веществ низкой и средней молекулярной массы превышает контрольный, особенно в спектре длин волн, где регистрируются вещества катаболического происхождения, ксенобиотики, продукты распада клеток и тканей (Малахова М.Я., 2000). Следовательно, уже после одного курса введения бортезомиба в организме подопытных животных отмечается эндогенная интоксикация. В крови обнаружено снижение содержания эритроцитов и гемоглобина, что свидетельствует о развитии гипохромной анемии и указывает на подавление эритроидного ростка кроветворения после введения химиопрепарата.
На 21 сут эксперимента восстановления морфометрических показателей основных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки не происходит, более того изменения носят разнонаправленный характер.
Несмотря на то, что общая площадь поперечного сечения стенки подвздошной кишки снизилась на 19,6% по сравнению с 12 сут, она осталась выше значений групп контроля и сравнения - 9,60±0,15 мм (в контроле -7,18±0,69 мм2; в группе сравнения - 7,26±0,21 мм2). Это связано с тем, что значения площади интерстициальных пространств и центральных лимфатических сосудов, хоть и уменьшаются в сравнении со значениями таковых в предыдущий период наблюдения (в среднем на 25,1% и 27,4%, соответственно), однако значений контроля не достигают, что может свидетельствовать, с одной стороны, о снижении продукции тканевой жидкости, а, с другой, о сохранении недостаточности дренажной функции лимфатического региона.
Несмотря на то, что в слизистой оболочке стенки подвздошной кишки отмечалась тенденция к уменьшению числа лимфоцитов и митотического
индекса, значения их в этот период остались повышенными. Наряду с этим, доля эпителиоцитов сохранялась сниженной на 9,2% по сравнению с контролем. В собственной пластинке слизистой оболочки и подслизистой основе численность тучных клеток снижалась до контрольных значений, что можно расценить как показатель нормализации неспецифической защиты организма. Уменьшение числа моноцитов в собственной пластинке слизистой оболочки, вероятно, связано с их дифференцировкой в макрофаги, число которых оставалось повышенным.
Можно предположить, что вышеперечисленные структурные преобразования в стенке подвздошной кишки возникают в результате снижения антигенного воздействия на 21 сут эксперимента, но не исключено и иммунодепрессивное действие бортезомиба.
Несмотря на восстановление общего числа тучных клеток в брыжейке тонкой кишки, количество их функционально активных форм еще превышает значения клеток сравниваемых групп животных, что является проявлением адекватной неспецифической защиты организма на 21 сут эксперимента в ответ на антигенное воздействие.
В групповых лимфоидных узелках на 21 сут эксперимента обнаружены наибольшие структурные преобразования по сравнению со значениями в предыдущие сроки эксперимента. Они проявились в дальнейшем увеличении общей площади среза пейеровой бляшки (на 20,9%), площади вторичных лимфоидных узелков (на 31,9%), как за счет центров размножения (на 34,6%), так и за счет мантийной зоны (на 31,0%) (рис. 6). В центрах размножения вторичных лимфоидных узелков увеличилось число средних лимфоцитов (на 34,5%) и эозинофилов (на 33,0%), ещё больше возросло количество бластных форм клеток (в 2,9 раза). На фоне этого количество малых лимфоцитов уменьшилось (в среднем в 1,6 раза) в сопоставлении с контролем и группой сравнения. Данные изменения можно объяснить тем, что пейеровы бляшки, являясь первой линией иммунной защиты, находятся в зоне высокой антигенной стимуляции (Сапин М.Р. и соавт., 2000), в то же время обнаруженные преобразования можно рассматривать в качестве морфологического показателя необходимости детоксикационных процессов именно в стенке кишки.
В мантийной зоне увеличилось количество малых лимфоцитов (на 36,4%), как следствие, доля ретикулярных клеток снизилась (в среднем на 35,0%) в сопоставлении с обеими сравниваемыми группами. Параллельно наблюдали снижение площади и доли первичных лимфоидных узелков в среднем в 2,2 раза по сравнению с показателями групп контроля и сравнения. Доля межузелковой зоны оставалась сниженной и на 21 сут, вероятно, дренажная функция регионарных скоплений лимфоидной ткани по-прежнему была ослаблена.
Вышеперечисленные преобразования в групповых лимфоидных узелках подтверждают факт сохранения антигенного воздействия на стенку тонкой кишки в этот период, что вызывает необходимость повышения интенсивности детоксикационных процессов в лимфоидных образованиях.
К площадь вторичного лимфоидного узелка
И площадь центров размножения
площадь
мантийной
зоны
Ф12
Ф21 Б12 Б21
Рис. 6. Соотношение площадей вторичных лимфоидных узелков пейеровой бляшки, их центров размножения и мантийной зоны интактных крыс, после внутрибрюшинного введения физиологического раствора и бортезомиба.
В отличие от пейеровой бляшки в брыжеечном лимфатическом узле на 21 сут эксперимента наблюдали позитивные сдвиги, указывающие на постепенную адаптацию его к новым условиям функционирования. Возможно, это связано с уменьшением токсичности афферентной лимфы, поступающей из региона кишки, то есть детоксикационная функция регионарных скоплений лимфоидной ткани тонкой кишки оказалась адекватной. В результате общая площадь среза, площадь мозгового вещества и мозговых синусов брыжеечного лимфатического узла восстанавливаются до контрольных значений.
Как и в контроле, доля Т-зависимой зоны преобладает в 1,8 раза над долей B-зависимой зоны, что свидетельствует о преобладании клеточного типа иммунного ответа, как и в предыдущие сроки эксперимента (Белянин В.Л., Цыплаков Д.Э., 1999). Однако уменьшение площади коркового вещества не приводит к нормализации этого показателя, так как остается увеличенной площадь паракортикальной зоны (на 16,8%). Вместе с тем, в её составе снижается количество средних лимфоцитов до значений контроля, а митотический индекс становится меньше, чем в контроле. Результатом снижения митотического индекса в паракортикальной зоне, наряду с уменьшением численности лимфоцитов, может явиться супрессия Т-звена клеточного иммунитета. На фоне этого численность макрофагов возрастает (на 33,4%) по сравнению с предыдущими сутками до значений контроля. В увеличенной по площади паракортикальной зоне общая численность клеток не отличается от контрольной. Несмотря на то, что значение К/М индекса уменьшается до 1,45±0,05, морфотип лимфатического узла остается компактным, что косвенно указывает на потребность региона лимфосбора в детоксикационных процессах.
Установлено, что в центрах размножения вторичных лимфоидных узелков мигогаческий индекс снижается до контроля, численность бластных
клеток уменьшается по сравнению с 12 сут, но остается выше аналогичного показателя групп контроля и сравнения в 1,7 раза, сохраняется сниженным число малых лимфоцитов. Число ретикулярных клеток также уменьшено в сравнении с контролем. При этом число высокодифференцированных макрофагов не меняется, оно соответствует кошролю. Наряду с этим, число и площадь первичных лимфоидных узелков остаются сниженными по сравнению с показателями сравниваемых групп животных. В маргинальной зоне еще больше нарастает митотический индекс, что косвенно свидетельствует о сохранении в регионе лимфосбора в этот период антигенной стимуляции.
Ошеченное нами снижение общего числа клеток в просвете мозговых синусов до значений контроля, преимущественно за счет клеток лимфоидного ряда, указывает на восстановление процессов транспорта в лимфатическом узле.
Преобразования в структуре брыжеечного лимфатического узла могут свидетельствовать о начале восстановительных процессов в нем в результате снижения антигенной нагрузки на узел спустя 10 сут после введения препарата. Это подтверждается отсутствием в организме эндогенной интоксикации, о чем свидетельствуют показатели веществ низкой и средней молекулярной массы, которые в этот период были меньше, либо соответствовали значениям контрольной группы, что говорит об адекватной детоксикационной функции печени, почек и регионарных лимфоидных органов (Малахова М.Я., 1995, 2000). Динамика изменений концентрации гемоглобина в виде первоначального её снижения с дальнейшим увеличением (на 21 сут) до контрольных значений указывает на преходящий характер анемии.
Для выявления адаптивных возможностей организма изучали морфофункциональные преобразования различных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки через 90 сут после внутрибрюшинного введения бортезомиба. Восстановительный период демонстрирует положительную динамику, так как измененные показатели всех звеньев лимфатического региона подвздошной кишки восстановились, это и обеспечило обратимый характер преобразований структурных компонентов стенки подвздошной кишки, вызванных введением бортезомиба.
выводы
1. После внутрибрюшинного введения бортезомиба (на 12 сут) происходит увеличение площади лимфоносных путей лимфатического региона подвздошной кишки (интерстициальных пространств во всех оболочках стенки подвздошной кишки, центральных лимфатических сосудов кишечных ворсинок, синусной системы брыжеечного лимфатического узла), что свидетельствует об активации процессов образования и транспорта лимфы.
2. Внутрибрюшинное введение животным химиопрепарата вызывает на 12 сут выраженные структурные преобразования в стенке подвздошной кишки (увеличение площади среза стенки, возрастание числа дегенерирующих форм клеток, снижение доли эпителиоцитов), которые носят деструктивный характер и способствуют накоплению в плазме крови веществ низкой и средней молекулярной массы (катаболического пула).
3. В структуре групповых лимфоидных скоплений в норме и после введения физиологического раствора доминируют вторичные лимфоидные узелки, после применения бортезомиба возрастают их число, площадь и площадь герминативных центров (максимальные значения на 21 сут), что указывает на существенную роль этих структур в обеспечении детоксикационных процессов.
4. У интактных животных регионарный лимфатический узел имеет промежуточный морфотип, отражающий морфологические критерии оптимального сочетания транспортной и детоксикационной функций; после введения бортезомиба происходит увеличение площади лимфатического узла, изменение его морфотипа на компактный, указывающие на повышение антигенной нагрузки в зоне лимфосбора и усиление детоксикационной функции лимфатического региона.
5. На 21 сут эксперимента нормализации морфометрических показателей основных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки не происходит, их изменения носят разнонаправленный характер: площади интерстициальных пространств и центральных лимфатических сосудов уменьшаются, но не достигают значений контроля; площадь пейеровых бляшек увеличивается за счет вторичных лимфоидных узелков; площадь брыжеечного лимфатического узла восстанавливается, но сохраняется его компактный морфотип.
6. В отдаленный период эксперимента (90 сут) после введения бортезомиба показатели всех звеньев лимфатического региона соответствуют контролю, реализуется обратимый характер изменений в стенке подвздошной кишки, что определяется пластичностью тканей и адекватной экспериментальной моделью (доза препарата, объект исследования и сроки наблюдения).
СПИСОК РАБОТ ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ
1. Путалова И.Н. Динамика изменений клеточного состава костного мозга и периферической крови крыс при воздействии бортезомиба / И.Н. Путалова, Н.И. Еремеев, Н.И. Харчикова // Морфология. - 2008. - Том. 133, № 4. -С.90.
2. Харчикова Н.И. Оценка воздействия ингибитора протеасом бортезомиба на лимфоидную и кроветворную ткани / Н.И. Харчикова, И.Н. Путалова, Н.И. Еремеев // Фундаментальные проблемы лимфологии и клеточной биологии. - Новосибирск, 2008. - Том 2 (М-Я). - С. 173 - 174.
3. Путалова И.Н. Структурные преобразования брыжеечных лимфатических узлов крыс при воздействии противоопухолевого препарата бортезомиба / И.Н. Путалова, Н.И. Харчикова, Н.И. Еремеев // Морфология. - 2008. -Том 134, № 5. - С.89.
4. Харчикова Н.И. Морфологическая оценка реакции лимфоидных органов здорового организма на воздействие бортезомиба (ингибитора протеасом) / Харчикова Н.И., Путалова И.Н., Еремеев Н.И. // Материалы Евразийского симпозиума. - Чолпон-Ата, 2009. - С. 342 - 344.
5. * Харчикова Н.И. Структура брыжеечного лимфатического узла после курсового введения бортезомиба (ингибитора протеасом) / Н.И. Харчикова, И.Н. Путалова, Н.И. Еремеев // Морфологические ведомости. -2009. №3.-С. 144-146.
6. Харчикова Н.И. Реакция брыжеечного лимфатического узла интактного животного на введение химиопрепарата бортезомиба / Н.И. Харчикова // Вестник молодых ученых Республики Башкортостан. -2010. № 1.-С. 115120.
7. Харчикова Н.И. Структурные преобразования вторичных лимфоидных органов при воздействии химиопрепарата бортезомиба / Н.И. Харчикова // Морфология. -2010. - Том 137, № 4. - С.203-204.
8. * Сиденко Н.И. Структурные преобразования пейеровой бляшки крыс при воздействии химиопрепарата бортезомиба / Н.И. Сиденко, И.Н. Путалова // Вестник новых медицинских технологий. - 2010. - Т. XVII, № 2. - С.41-42.
9. * Сиденко Н.И. Влияние противоопухолевого препарата бортезомиба на структуру стенки подвздошной кишки и её лимфатического региона интактного организма / Н.И. Сиденко, И.Н. Путалова // Омский научный вестник,- 2010. №1 (94). - С.141-145.
10. * Сиденко Н.И. Структурно-функциональные преобразования стенки подвздошной кишки и её лимфатического региона, вызванные введением противоопухолевого препарата «бортезомиб» / Н.И. Сиденко, И.Н. Путалова Н Вестник новых медицинских технологий. — 2011. - Т. XVIII, № 2. - С.162-166.
*- научные статьи в изданиях, рекомендованных ВАК
СИДЕНКО НАДЕЖДА ИВАНОВНА
МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ ЛИМФАТИЧЕСКОГО РЕГИОНА ПОДВЗДОШНОЙ КИШКИ ПОСЛЕ ВВЕДЕНИЯ ПРОТИВООПУХОЛЕВОГО
ПРЕПАРАТА
14.03.01 - анатомия человека
АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук
Подписано в печать 27.05.2011 Формат 60x84/16 Бумага офсетная Печ. л. 1,0 Способ печати - оперативный Тираж 100
Издательско-полиграфический центр ОмГМА 644050, пр. Мира, 30; тел. 60-59-08
Оглавление диссертации Сиденко, Надежда Ивановна :: 2011 :: Тюмень
ВВЕДЕНИЕ.
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
1.1. Современное представление о лимфатической системе и лимфатическом регионе.
1.2. Структурная организация лимфатического региона тонкой кишки.
1.3. Структурные изменения лимфоидных органов при использовании отдельных компонентов полихимиотерапии.
1.4. Бортезомиб в лечении множественной миеломы.
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.
2.1. Объект исследования.
2.2. Морфологические методы исследования.
2.2.1. Количественная оценка тучных клеток брыжейки тонкой кишки.
2.2.2. Цитологические методы исследования.
2.3. Лабораторные методы исследований.
2.3.1. Общеклиническое исследование крови.
2.3.2. Биохимическая регистрация эндогенной интоксикации.
2.4. Методы статистической обработки.
ГЛАВА 3. СТРУКТУРНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ ЛИМФАТИЧЕСКОГО РЕГИОНА ПОДВЗДОШНОЙ КИШКИ, ИНТАКТНЫХ КРЫС И ПОСЛЕ ВНУТРИБРЮШИННОГО ВВЕДЕНИЯ ИЗОТОНИЧЕСКОГО РАСТВОРА
ХЛОРИДА НАТРИЯ.
3.1. Структурная организация и клеточный состав лимфатического региона подвздошной кишки интактных крыс. '
3.1.1. Структурная организация, стенки подвздошной- кишки интактных крыс.:.
3.1.2. Клеточный состав стенки подвздошной кишки интактных крыс
3.1.3. Структурная организация групповых лимфоидных узелков интактных крыс.
3.1.4. Клеточный состав групповых лимфоидных узелков интактных крыс.
3.1.5. Количественный и качественный состав тучных клеток брыжейки тонкой кишки интактных крыс.
3.1.6. Структурная организация брыжеечного лимфатического узла интактных крыс.
3.1.7. Клеточный состав брыжеечного лимфатического узла интактных крыс.
3.2. Структурная организация и клеточный состав лимфатического региона подвздошной кишки крыс после внутрибрюшинного введения изотонического раствора хлорида натрия. 58»
3.2.1. Структурная организация стенки подвздошной кишки крыс на
12, 21 и 90 сутки эксперимента.
3.2.2. Клеточный состав стенки подвздошной кишки крыс на 12, 21 и
90 сутки эксперимента.
3.2.3. Структурная организация групповых^лимфоидных узелков крыс на 12,21 и 90 сутки эксперимента.
3.2.4. Клеточный состав групповых лимфоидных узелков крыс на 12,
21 и 90 сутки эксперимента.
3.2.5. Количественный и качественный состав тучных клеток брыжейки тонкой кишки на 12, 21 и 90 сутки эксперимента.
3.2.6. Структурная организация брыжеечного лимфатического1 узла крыс на 12, 21 и 90 сутки эксперимента.
3.2.7. Клеточный состав брыжеечного лимфатического узла крыс на
12, 21 и 90 сутки эксперимента.
ГЛАВА 4. СТРУКТУРНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ И КЛЕТОЧНЫЙ СОСТАВ ЛИМФАТИЧЕСКОГО РЕГИОНА ПОДВЗДОШНОЙ КИШКИ КРЫС
ПОСЛЕ ВНУТРИБРЮШИННОГО ВВЕДЕНИЯ БОРТЕЗОМИБА.
4.1. Структурная организация стенки подвздошной кишки крыс на 12, 21 и 90 сутки эксперимента.
4.2. Клеточный состав стенки подвздошной кишки крыс на 12, 21 и 90 сутки эксперимента.
4.3. Структурная организация групповых лимфоидных узелков крыс на 12,
21 и 90 сутки эксперимента.
4.4. Клеточный состав групповых лимфоидных узелков крыс на 12, 21 и 90 сутки эксперимента.
4.5. Количественный и качественный состав тучных клеток брыжейки тонкой кишки на 12, 21 и 90 сутки эксперимента. 95»
4.6. Структурная1 организация-брыжеечного лимфатического узла крыс на
12, 21 и 90 сутки эксперимента.
4.7. Клеточный'состав брыжеечного лимфатического узла крыс на 12, 21 и
90 сутки эксперимента.
ГЛАВА 5. СРАВНИТЕЛЬНАЯ ОЦЕНКА ПОКАЗАТЕЛЕЙ КЛИНИКО-ЛАБОРАТОРНЫХ МЕТОДОВ ИССЛЕДОВАНИЯ ИНТАКТНЫХ КРЫС, ПОСЛЕ ВНУТРИБРЮШИННОГО ВВЕДЕНИЯ ИЗОТОНИЧЕСКОГО РАСТВОРА ХЛОРИДА НАТРИЯ И БОРТЕЗОМИБА.
5.1. Внешний осмотр животных.
5.2. Общеклиническое исследование крови.
5.31 Содержание веществ низкой и средней молекулярной массы в плазме крови.
Введение диссертации по теме "Анатомия человека", Сиденко, Надежда Ивановна, автореферат
В настоящее время хорошо известно, что лимфатическая система, осуществляя непрерывный дренаж тканей и удаляя из интерстициального пространства продукты распада клеток, токсины и метаболиты, параллельно обеспечивает в организме водный гомеостаз, белковый, липидный и электролитный баланс в разных средах — тканях, лимфе, крови, ликворе (Бородин Ю.И., 2005, 2007, 2010; Коненков В.И., 2008). С помощью отдельных I лимфоидных клеток, находящихся в органах и тканях, одиночных и групповых лимфоидных узелков, паренхимы-, регионарных лимфатических узлов осуществляется биофизическая; биохимическая, иммунобиологическая детоксикация тканевой жидкости и лимфы (Бородин Ю.И., Асташов-В.В., 2003; Обухова Л.А., 2008). Поэтому от состояния дренажно-детоксикационной функции лимфатической системы во многом зависит прогноз и исход патологических процессов (Бородин Ю.И., 2002; Левин Ю.М., 2002).
В современной онкологической практике широкое распространение получили различные методы химиотерапии с использованием противоопухолевых препаратов избирательной- направленности. Среди таких препаратов особого внимания заслуживает бортезомиб, который является обратимым, высокоселективным ингибитором активности протеосом и широко используется при лечении больных с множественной миеломой (Муиг^ Дг е! а1., 2001; ОНскшап М1Н., С1ёсЬапоуег А., 2002). Вместе с тем, отмечено, что бортезомиб обладает побочными действиями, вызывая'нарушения со стороны пищеварительной системы, которые по частоте уступают лишь изменениям системы кроветворения. Морфологические основы таких изменений остаются пока недостаточно изучены.
Несмотря на большой объем исследований, посвященных структурным преобразованиям лимфатической системы и лимфоидных органов при онкологических заболеваниях и после химиотерапии, имеющиеся сведения по этому вопросу достаточно противоречивы и отрывочны (ВоёепЪетег НЛг. а1., 1988; Майбородин И.В. и соавт., 2005, 2007; Майбородина В.И. и соавт., 2006). Более того, для изучения механизма действия того или иного противоопухолевого препарата или их комплекса необходимы достаточно полные представления о влиянии их на органы и ткани интактного организма, данные и другие вопросы этой проблемы остаются нерешёнными.
Выбор лимфатического региона подвздошной кишки в качестве объекта исследования обусловлен, с одной стороны, тем, что после применения бортезомиба наиболее частые осложнения встречаются в пищеварительной системе а, с другой, тем, что в стенке подвздошной кишки хорошо-представлена лимфоидная ткань. Для,оценки дренажно-детоксикационных процессов в зоне лимфосбора' необходимо иметь представления о морфологических преобразованиях основных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки и особенностях их адаптации в условиях химиотерапии:
Цель исследования: выявить в эксперименте морфофункциональные преобразования различных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки после внутрибрюшинного введения противоопухолевого препарата (бортезомиб).
Задачи исследования: 1. Определить особенности структурной организации стенки, подвздошной кишки, групповых лимфоидных узелков; брыжеечных лимфатических узлов у интактных животных и в различные сроки после внутрибрюшинного введения-физиологического раствора (на 12, 21 и 90 сутки).
2\ Провести сравнительный анализ изменений морфометрических показателей различных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки» на 12, 21 и 90 сутки после введения-противоопухолевого препарата. 3. Посредством лабораторных и, биохимических» методов исследования' оценить адекватность дренажно-детоксикационных процессов« в-' регионе лимфосбора и в» организме в целом в различные сроки после введения., бортезомиба.
Научная новизна исследования.
Впервые проведено экспериментальное комплексное исследование структурно-функциональных преобразований основных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки (интерстициальных пространств, центральных лимфатических сосудов кишечных ворсинок и групповых лимфоидных узелков подвздошной кишки, регионарных брыжеечных лимфатических узлов) после внутрибрюшинного введения противоопухолевого препарата (бортезомиба).
Получены новые данные о структурных преобразованиях стенки подвздошной кишки, групповых лимфоидных узелков, брыжеечных лимфатических узлов в-разные сроки после курсового введения» бортезомиба. Установлено, что внутрибрюшинное введение бортезомиба* вызывает на 12 сутки увеличение площадей всех звеньев лимфатического региона подвздошной кишки. Однако дренажно-детоксикационная функция лимфатического; региона оказывается недостаточной, о чём свидетельствует повышение в плазме крови концентрации ВНиСММ, преимущественно катаболического пула, а в стенке подвздошной кишки — развитие деструктивных процессов. Наиболее выраженные структурные изменения на 12 сутки-происходят в регионарном лимфатическом-узле, а на 21 сутки — в пейеровой бляшке. Это является, морфологическим маркером локализации максимального токсического- воздействия. В« отдаленном периоде (на 90 сутки) все показатели структурных компонентов стенки подвздошной кишки восстанавливаются и соответствуют значениям контрольной группы, что указывает на адекватность функций её лимфатического'региона и обратимый характер изменений, вызванных введением одного курса бортезомиба.
Теоретическая и практическая»значимости работы.
Полученные-данные о характере морфофункциональных преобразований различных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки в разные сроки после внутрибрюшинного введения противоопухолевого препарата (бортезомиба) расширяют и дополняют современные представления" об участии лимфатической системы (лимфатического региона) в поддержании гомеостаза после воздействия химиопрепаратов, в частности, ингибитора протеасом.
Представленные результаты позволили выявить, что на 21 сутки полного восстановления структурной организации и морфометрических показателей всех звеньев лимфатического региона подвздошной кишки не происходит, это может послужить морфологической основой возникновения осложнений в пищеварительной системе при дальнейшем введении химиопрепарата. В отдалённый период (на 90 сутки) показатели различных звеньев лимфатического региона восстанавливаются, и обеспечивается обратимый характер изменений в стенке подвздошной кишки.
Полученные данные вносят дополнительные сведения о механизмах влияния химиопрепаратов на лимфатический регион подвздошной кишки, лимфоидную и. лимфатическую- системы в целом, и* являются научным основанием для необходимости' проведения специалистами профилактических мероприятий,в критические сроки-химиотерапии.
Полученные результаты могут быть рекомендованы анатомам, лимфологам, гистологам, гематологам, онкологам для использования- их в учебном процессе, в практике научных исследований'и при разработке методов лечения пациентов1:
На защиту выносятся следующие положения:
1. Один курс внутрибрюшинного-введения противоопухолевого препарата (бортезомиб) вызывает (на 12 сутки)- у интактных животных выраженные структурные ' преобразования всех звеньев лимфатического региона-подвздошной кишки, направленные на усиление его дренажно-детоксикационной функции в регионе лимфосбора, но в этот период она оказывается недостаточной.
2." На. 21' сутки« эксперимента восстановления морфометрических показателей всех звеньев лимфатического региона подвздошной кишки не происходит, максимальные структурные изменения характерны для групповых лимфоидных узелков, что свидетельствует о сохранении антигенного и токсического прессинга в этот период преимущественно в стенке кишки.
3. Структурные преобразования- всех звеньев лимфатического региона подвздошной, кишки, вызванные внутрибрюшинным введением бортезомиба, носят обратимый характер: на 90 сутки эксперимента происходит полное восстановление всех показателей.
Заключение диссертационного исследования на тему "Морфофункциональная организация лимфатического региона подвздошной кишки после введения противоопухолевого препарата"
ВЫВОДЫ
1. После внутрибрюшинного введения бортезомиба (на 12 сутки) происходит увеличение площади лимфоносных путей лимфатического региона подвздошной кишки (интерстициальных пространств во всех оболочках стенки подвздошной кишки, центральных лимфатических сосудов кишечных ворсинок, синусной системы брыжеечного лимфатического узла), что свидетельствует об активации процессов образования и транспорта лимфы.
2. Внутрибрюшинное введение животным химиопрепарата вызывает на 12 сутки выраженные структурные преобразования в стенке подвздошной кишки (увеличение площади среза стенки, возрастание числа дегенерирующих форм клеток, снижение доли эпителиоцитов), которые носят деструктивный характер и способствуют накоплению в. плазме крови веществ низкой и средней молекулярной массы (катаболического пула).
3. В структуре групповых лимфоидных скоплений в норме и после введения? физиологического раствора доминируют вторичные лимфоидные узелки, после применения, бортезомиба возрастают их число, площадь и площадь герминативных центров (максимальные значения'на 21 сутки), что указывает на существенную роль этих структур в.обеспечениидетоксикационных процессов.
4. У интактных животных регионарный лимфатический узел имеет промежуточный морфотип, отражающий морфологические критерии оптимального сочетания транспортной и детоксикационной" функций; после введения бортезомиба происходит увеличение площади лимфатического узла, изменение его морфотипа на компактный, указывающие на повышение антигенной нагрузки в зоне лимфосбора и усиление детоксикационной функции лимфатического региона.
5. На 21 сутки эксперимента нормализации морфометрических показателей основных звеньев лимфатического региона подвздошной кишки не происходит, их изменения носят разнонаправленный характер: площади интерстициальных пространств и центральных лимфатических сосудов уменьшаются, но не достигают значений контроля; площадь пейеровых бляшек увеличивается за счет вторичных лимфоидных узелков; площадь брыжеечного лимфатического узла восстанавливается, но сохраняется его компактный морфотип. 6. В отдаленный период эксперимента (90 сутки) после введения бортезомиба показатели всех звеньев лимфатического региона соответствуют контролю, реализуется обратимый характер изменений в стенке подвздошной кишки, что определяется пластичностью тканей и адекватной экспериментальной моделью (доза препарата, объект исследования и сроки наблюдения).
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2011 года, Сиденко, Надежда Ивановна
1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия: руководство / г.г. Автандилов. М.: Медицина, 1990. - 384 с.
2. Автандилов Г.Г. Проблемы патогенеза и патологической диагностики болезней,в аспектах.морфометрии / Г.Г. Автандилов. М.: Медицина, 1984. -288 с.
3. Автандилов; Г.Г. Системная стереометрия в изучении;; патологического процесса / Г.Г. Автандилов, Н.И. Яблучанский, Н.И. Губенко. М.: Медицина, 1981.- 192 с. . .'■■■
4. Андреева Н.Е. Парапротеинемические гемобластозы: множественная» миелома; макроглобулинемия-Вальденстрема,, болезни тяжелых. цепей; / Н.Е. Андреева // Руководство; по гематологии / под ред. А.И. Воробьева. — Тверь, 2003.- С. 125-133.
5. Аруин Л.И. Морфологическая диагностика болезней желудка И-кишечника: монгр. / Л.И. Аруин, Л.Л. Капуллер, В.А. Исаков; М!:'Триада-Х, 1998. - 483 с.
6. Афанасьева А.Н. Синдромы эндогенной интоксикации и системного воспалительного ответа: общность и различия / А.Н: Афанасьева, H.H. Одинцова^ В В. Удут // Анестезиология и-реаниматология. -2007. -№4.-С. 67-7Г.
7. Банул Н.В. Структура стенки тонкой- кишки и ее лимфатического региона в условиях применения химиотерапевтических средств с последующей коррекцией?экстрактом;курильского5чая в эксперименте: дис. . канд. мед. наук / Н.В. Банул. Новосибирск, 2005. - 257 с.
8. Батуев K.M. К вопросу о; возрастной? морфологии пейеровык бляшек тонкого кишечника человека / K.M. Батуев // Вопросы, морфологии. Пермь, 1967; - С. 30-38.
9. Башмакова Т.В. Лимфатический регион матки крыс после введенсил хими отерапевтических средств с коррекцией экстрактом Pentaphylloides fruticosa. : дис. . канд. мед. наук / Т.В. Башмакова. Новосибирск, 2005. - 201 с.
10. Бгатова Н.П. Лимфатический узел в процессе метастазигрованияопухоли / Н.П. Бгатова // Функциональные свойства лимфоидных клеток: сб. ст. / ред. В.И. Коненков. Новосибирск, 2008. - С. 224-240.
11. Белевитин А.Б. Клиническая интерпретация лабораторных исследований / А.Б. Белевитин, С.Г. Щербак. СПб.: ЭЛБИ-СПб., 2006. - 397с.
12. Беляков H.A. Эндогенные интоксикации и лимфатическая система / H.A. Беляков // Эфферент. терапия. 1998. - № 2. - С. 11-16.
13. Белянин В.Л. Диагностика реактивных гиперплазий- лимфатических узлов / В.Л. Белянин, Д.Э. Цыплаков. СПб.; Казань, 1999. - 328 с.
14. Боровиков В.П. STATISTICA. Искусство анализа данных на компьютере / В.П. Боровиков. СПб.: Питер, 2003. - 688 с.
15. Бородин Ю.И. Анатомо-функциональное исследование лимфатических путей и вен в нормальных условиях гемодинамики и при венозном застое: автореф. дис. . д-ра мед. наук / Ю.И. Бородин. -Новосибирск, 1969. 39 с.
16. Бородин Ю.И. Внутренняя среда организма и регионарный лимфатический дренаж / Ю.И.' Бородин // Хирургия, морфология, лимфология. -2009:-Т. 6, № 11.-С. 8-11.
17. Бородин Ю.И. Гемато-лимфатические взаимоотношения в лимфатических узлах в физиологических условиях гемо- и лимфодинамики и при различных экспериментально-патологических состояниях / Ю.И. Бородин, В.Н. Григорьев. Новосибирск: Б. и., 1985. - 20 с.
18. Бородин Ю.И. Естественная интракорпоральная лимфодетоксикация. Возможности коррекции / Ю.И. Бородин // Эндоэкологическая медицина: материалы II междунар. конгр. М.; Афины; Халкидики, 2002. - С. 55-60.
19. Бородин Ю.И. Интегративная оценка лимфатического региона / Ю.И. Бородин, В.Н. Горчаков, Т.К. Гаскина // Морфология. 2006. - Т. 129, № 4. - С. 140.
20. Бородин Ю.И. Концепция лимфатического региона / 2-й съезд; лимфологов России: тез. докл. СПб., 2005. - С. 34-35.
21. Бородин Ю.И: Лимфатическая система: и водный гомеостаз / Ю:И. Бородин // Проблемы саногенного и патогенного эффектов экологического? воздействия на внутреннюю среду, организма: : материалы^ междунар: симп. -Бишкек, 1999. С. 333-336.
22. Бородин, Ю.И. Лимфатический регион печени как маркер экологического прессинга на организм / Ю.И. Бородин, С.В. Мичурина // Морфология. 1998. - Т; 113, № 3. - С. 27.
23. Бородин Ю.И. Лимфатический узел как маркер средового прессинга на биосистему / Ю.И. Бородин // Бюл. СО РАМН. - 1993.-№2.-С. 5-9.
24. Бородин Ю.И. Лимфатический узел при; циркуляторных повреждениях /Ю.И. Бородин, В.Н. Григорьев. Новосибирск: Наука; 1986: -267 с. . :/ • . : : ■ ' ;
25. Бородин; Ю.И. Лимфодренажный фактор эндоэкологического равновесия / Ю.И. Бородин // Проблемы лимфологии и эндоэкологии: сб. ст. -Новосибирск, 1998. С. 50-53.
26. Бородин Ю.И. Лимфология как интегральная: медико-биологическая наука / Ю.И. Бородин // Хирургия, морфология, лимфология. 2007. - Т. 4, № 7. -С. 13-14.
27. Бородин Ю.И. Лимфология . как наука: некоторые итоги? и перспективы./ Ю.И. Бородин // Проблемы экспериментальной и- клинической лимфологии: материалы междунар. конф. Новосибирск, 1996. - С. 31-42.
28. Бородин Ю.И. О функциональном взаимодействии сорбирующих веществ с лимфатическими структурами / Ю.И: Бородин // Проблемы сорбционной детоксикации внутренней среды организма: сб. ст. Новосибирск, 1995.-С. 3-7.
29. Бородин Ю.И. О функциональном синергизме лимфатической, лимфоидной систем и системы рыхлой соединительной ткани / Ю.И. Бородин // Морфол. ведомости. 2010. - № 3. - С. 7-10.
30. Бородин Ю.И. Особенности структурного реагирования тимуса при экстремальных охлаждениях организма и фитокоррекции / Ю.И;. Бородин, Л.А. Обухова,//Морфология. 2000. - Т. 117, № 3. - С. 25-26.
31. Бородин Ю.И. Проблемы лимфодетоксикации и лимфосанации / Ю.И. Бородин // Проблемы экспериментальной; клинической- и профилактической: лимфологии:. сб. ст.,- Новосибирск, 2000. С. 5-9:
32. Бородин Ю.И; Регионарный- лимфатический: дренаж и : лимфодетоксикация / Ю.И. Бородин // Морфология. 2005. - № 4. - С. 25-281
33. Бородин Ю:И. Теоретические предпосылки, профилактической лимфологии и здоровье человека в Сибири / Ю.И: Бородин;// Фундаментальные проблемы лимфологии и клеточной биологии: материалы междунар. конф. -Новосибирск, 2008. С. 54-56. :
34. Бородин Ю.И. Экспериментальное исследование- лимфатического русла / Ю.И. Бородин, Л.В. Пупышев, П.М; Трясучев. Новосибирск: Наука, 1975.- 138 с.36: Бородин Ю.И. Эндоэкология, лимфология и здоровье / Ю.И. Бородин //Бюл.-СО РАМН. 1999. - № 2. - С. 5-7.
35. Буянов, ВМ. Лимфология^ эндотоксикоза. 7 В1М. Буянов,. А.А.,; Алексеев. М.: Медицина, 1990. - 272 с. '
36. Быков В.Л. Нарушение защитных механизмов слизистых оболочек при цитостатической терапии / В.Л. Быков // Морфология. 2008. - Т. 133, № 2.- с. 22. ■■ '.'.;. '"'.; ;.'•:.;■.'.V-: : .' ; ■■ •. .■; .• '
37. Ватин А.Е. Действие противоопухолевых антибиотиков, рубомицина и карминомицина, на изменение Т- и В- клеточной популяции в лимфоидных органах мышей / А.Е. Ватин // Антибиотики. 1980. - Т. 25, № 11. - С. 860-864.
38. Влияние лимфотропного введения антибиотиков на клетки лимфоидного ряда регионарных лимфатических узлов,/ В.К. Шишло* и др. // Морфология*. 2007. - Т. 131, № 3. - С. 102.
39. Внутрибрюшинное введение химиотерапевтических средств и тактика в комбинированном лечении рака желудка / И.Б. Щепотин и др. // Врачеб. дело. 1988.-№9.-С. 3-6.
40. Возможный показатель регенерации лимфатических узлов после полихимиотерапии: дистопия лимфоидных фолликулов / И.В. Майбородин и др. // Хирургия, морфология, лимфология. 2004. - Т. 1, № 2. - С. 83-86.
41. Газетов Б.М. Дивертикулез толстой кишки / Б.М. Газетов, И.Д. Жерихова // Хирургия. 1972: - № 5. - С. 84-87.
42. Гарстукова, Л.Г. Наглядная гистология (общая и частная): учеб. пособие для студентов мед. вузов / Л.Г. Гарстукова, С.Л. Кузнецов, В.Г. Деревянко. М.: МИА, 2008. - 200 с.
43. Глаголев A.A. Геометрические методы количественного анализа агрегатов под микроскопом / A.A. Глаголев. -Львов: Госгеолитиздат, 1941.-82с.
44. Гланц С. Медико-биологическая статистика: пер. с англ. / С. Гланц; ред. Н.Е. Бузикашвили, Д.В. Самойлов. М.: Практика, 1999. - 459 с.
45. Головацкий A.C. Особенности рециркуляции лимфоцитов через посткапиллярные венулы паракортикальной зоны лимфатических узлов1- при антигенной стимуляции / A.C. Головацкий, М.Р. Сапин // Морфология. 2001. -Т. 119, № 1.- С. 40-45.
46. Головнев В.А. Структурная характеристика. регионарной гемолимфоциркуляции в> условиях воздействия биофлавоноидов* и бальнеопроцедур-при экспериментальном инфаркте миокарда: автореф. дис. . д-ра мед. наук / В.А. Головнев. Новосибирск, 1994. - 41 с:
47. Гребнева O.JI. Способ подсчета показателя ВНиСММ* плазмы крови / O.JI. Гребнева, Е.А\ Ткачук, В.О: Чубейко // Клин. лаб. диагностика. 2006. - № 2.-С. 17.
48. Григоренко' Д.Е. Брыжеечные лимфатические узлы крыс после воздействия гидрокортизона / Д.Е. Григоренко, Е.Е. Будушкина //" Арх. анатомии, гистологии и эмбриологии. 1985. - Т. 89,' № 7. - С. 58-62.
49. Гриневич В.В. Основы взаимодействия нервной, эндокринной и иммунной систем : учеб. пособие / В.В. Гриневич, И.Г. Акмаев, О.В. Волкова. -СПб. : Symposium, 2004. 158 с.
50. Гусейнов Т.С. Морфология лимфоидных узелков тонкой кишки при дегидротации / Т.С. Гусейнов, G.T. Гусейнова // Морфол. ведомости. 2007. - № 3-4.- С. 96-98.
51. Дистопия лимфоидных фолликулов в лимфатических узлах после полихимиотерапии как возможный показатель их регенерации / И.В. Майбородин и др. // Клин, онкология. 2004. - № 2. - С. 4-7.
52. Долгих В.Т. Основы иммунопатологии: учеб. пособие для* студентов мед. вузов¡/ В';Т. Долгих. Ростов н/Д: Феникс; Омск: Изд-во ОмГМА, 2007. -319 с.
53. Дрозд М.В. Анемия- у. пациентов . с лимфопролиферативными-заболеваниями: патогенетические особенности и возможности терапии: автореф. дис. . канд. мед. наук / М.В. Дрозд. М., 2007. - 22 с.
54. Ефремов A.B. Лимфология экстремальных состояний / A.B. Ефремов,
55. A.Р. Антонов, Ю.'В. Начаров." М.: Триада-Х, 2005: - 248 с.
56. Ефремов А'.В: Морфофункциональные особенности^ лимфатического' русла^ при синдроме длительного» сдавления и его фармакологическая коррекция: автореф. . д-ра мед. наук/A.Bt Ефремов.-Новосибирск, 1992.-46 с.
57. Жданов В:А. Общая анатомия и физиология лимфатической системы /
58. B.А. Жданов. Л.: Медгиз, 1952. - 336 с.66: Западнюк И.П. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте / И:П. Западнюк. Киев: Висшая-школа, 1974. -303с.
59. Запускалова О.Б. Функциональная- активность клеток селезенки в поздний период после введения противоопухолевых препаратов с различным механизмом действия / О.Б. Запускалова и др. // Фармакология и токсикология. 1989. - Т. 52, № 1. - С. 67-70.
60. Запускалова О.Б. Экспериментальное изучение отдаленных эффектов повреждающего действия доксорубицина на лимфоидную ткань / О.Б. Запускалова, В.В. Новицкий, Е.Д. Гольдберг // Антибиотики и химиотерапия. -1989.-Т. 34, № 11.-С. 855-859.
61. Иванова В.Ф. Структурные изменения в стенке кишки крыс при голодании / В.Ф. Иванова и др. // Морфология. -2009. -Т. 136, № 6. С. 62-68.
62. Изменения групповых лимфоидных узелков и брыжеечных лимфатических узлов крыс после введения комплекса химиотерапевтических препаратов: сходство/ и различия реакции / И1В. Майбородин и др. // Морфология. 2007. - Т. 132, № 5. - С. 68-73.
63. Карелина Н.Р. Транспортные свойства кровеносных и лимфатических капилляров ворсинки1, тонкош кишки, крыс в онтогенезе / Н.Р. карелина // Морфология. 2010. - Т. 137, № 4. - С. 88.
64. Карпищенко А.И. Медицинские и лабораторные технологии / А.И. Карпищенко. СПб.: Интермедина, 1999. - 653 с.
65. Катаев С.И. Морфология лимфатических узлов брюшной полости крыс в норме и эксперименте / С.И. Катаев // 2-й съезд лимфологов. России: тез. докл. СПб., 2005. - С. 137-139.
66. Каххаров З.А. Структуры, обеспечивающие барьерно-защитную функцию тонкой кишки / З.А. Каххаров // Морфология.-2008.-Т.133, № 4.-С. 73.
67. Козлов В.И. Анатомия лимфоидной системы и путей оттока лимфы: учеб. пособие / В.И. Козлов, И.Л. Кривицкий. М.: Изд-во РУДН, 2003. - 53 с.
68. Колесников А.П. Кооперативные взаимоотношения клеток лимфатического узла / А.П: Колесников // Функциональные свойства лимфоидных клеток: сб. ст. / ред. В.И. Коненков:-Новосибирск,2008:-С. 134-165.
69. Комбинация таксотера и- доксорубицина в химиотерапии диссеминированного рака молочной' железы / И. В; Поддубная/ и др. // Вопр. онкологии. 2001. - Т. 47, № 6. - С. 728-730.
70. Комбинированная реакция лимфоидных- органов и надпочечников на стресс у взрослых животных, адаптированных к холоду в ранний период постнатального развития / Ю.И. Бородин и др. // Арх. анатомии, гистологии и эмбиологии. 1989: - Т. 96, № 1. - С. 73-78.
71. Коненков В.И. Защитные функции лимфатической системы- / В.И. Коненков // Хирургия, морфология, лимфология. 2007. - Т. 4, № 7. - С. 15-17.
72. Коненков В.И. Интегральные функции лимфатической системы в поддержании биологической безопасности организма / В.И. Коненков // Функциональные свойства лимфоидных клеток: сб. ст. / ред. В.И. Коненков. -Новосибирск, 2008. С. 5-11.
73. Коненков В :И: Протективные1 функции лимфатической- системы' / В .И. Коненков //Бюл. СО РАМН. 2007. - № 2. - С. 60-64.
74. Коненков В.И. Функции лимфатической системы в поддержании состояния здоровья / В.И. Коненков // Фундаментальные проблемы лимфологии и клеточ. биологии: материалы междунар. конф. Новосибирск, 2008.-С. 190-192.
75. Кононов A.B. Местный иммунитет и регенерация слизистых оболочек при хроническом воспалении: (биопсийное исследование) / A.B. Кононов. -Омск: Омская обл. тип., 1993. 320 с.
76. Коплик Е.В. Метод определения критерия устойчивости крыс к эмоциональному стрессу / Е.В. Коплик // Вестн. новых мед. технологий. 2002. -Т. 9, № 1. - С. 16-18.
77. Лабораторная оценка тяжести интоксикационного синдрома, при бактериальных инфекциях у детей / Л.А. Алексеева и др:. // Клин. лаб. диагностика. 2006. - № 6. - С. 35-40.
78. Левин Ю.М. Лечение, оздоровление, профилактика в условиях кризиса экологии организма / Ю.М. Левин. М.: Медицина, 1998. - 231 с.
79. Левин Ю.М. Основы.общеклинической'лимфологии и эндоэкологии / Ю.М. Левин. М., 2003. - 464 с.
80. Левин Ю.М. Эндоэкологическая медицина: наука и практика лечения-и оздоровления в условиях экологического неблагополучия: для» врачей и студентов'старших курсов?/ Ю.М. Левин. М., 2002. - 135 с.
81. Летягин А.Ю. Экспериментальная« перестройка синхронизирующими факторами суточных биоритмов органов лимфоидной системы: автореф. дис. . канд. мед. наук / А.Ю. Летягин. Новосибирск, 1984. - 15 с.
82. Лилли Р. Патогистологическая техника и практическая гистохимия: пер. с англ. / Р: Лилли; ред. В\ В. Португалов. М.: Мир, 1969: - 645 с.
83. Лимфоузел как маркер экологического воздействия / Ю.И. Бородин и др. / 2-й съезд лимфологов России: тез. докл. СПб., 2005. - С. 39-40.
84. Лобзин B.C. Синдром истощения (синдром утраты) у пациентов с миастенией / B.C. Лобзин, В.И. Головкин, Л.В. Лихачев // Арх. патологии. -1981.-Т. 43, № 11.-С. 65-67.
85. Лужников Е.А. Эндотоксикозы / Е.А. Лужников // Малая медицинская энциклопедия: в 6 т. / ред. В.И. Покровский. М., 1996. - Т. 6. Токсины - ящур. -С. 379.
86. Ляшко О.Г. Биологическиеь ритмы клеток лимфоидного ряда вiтимусзависимой зоне лимфатических* узлов / О.Г. Ляшко // Арх. анатомии,tгистологии и эмбриологии. 1986. - № 6. - С. 27-32.
87. Майбородин И.В. Действие препаратов антрациклинового ряда на кишечник и его лимфоидные органы: (обзор литературы) / И.В. Майбородин, В.И. Майбородина // Антибиотики и химиотерапия. -2005.-Т.50, №5-6. -CI59i63.
88. Майбородин И.В. Морфофункциональное обоснование сорбционно-лимфатического дренажа тканей при остром и хроническом, воспалении (экспериментально-клиническое исследование): автореф. дис. . д-ра мед. наук /И.В. Майбородин. Новосибирск, 1998. - 41 с.
89. Майбородина-В.И. Лимфатический регион тонкой и толстой кишки крыс после полихимиотерапии: дис. . канд. мед. наук / В.И. Майбородин. -Новосибирск, 2003. 224 с.
90. Малахова М.Я. Метод регистрации' эндогенной интоксикации: пособие для врачей / М.Я. Малахова. СПб:: СПбМАПО, 1995. - 33 с.
91. Малахова М.Я. , Методы биохимической регистрации эндогенной интоксикации (первое сообщ.) / М.Я. Малахова // Эфферент. терапия. 1995. -Т. 1, № 1.-С. 61-64.
92. Малахова М.Я. Эндогенная интоксикация. как отражение компенсаторной перестройки обменных процессов в организме / М.Я. Малахова // Эфферент. терапия. 2000. - Т. 6, № 4. - С. 3-14.
93. Мамедов Я.Д. Инфаркт миокарда. Лимфатическая система сердца. Патофизиология и патогенетические основы лечения / Я.Д. Мамедов. М.: Медицина, 1989.-224 с.
94. Маркеры и протекторы радио- и токсикологического прессинга на организм / В.Н. Горчаков и др. // Проблемы сорбционной детоксикации внутренней среды организма: материалы междунар. симп. Новосибирск, 1995. - С. 78-83.
95. Матусевич С.Л. Синдром эндогенной интоксикации у больных псориазом: взаимосвязь с нарушением» микробиоценоза толстой кишки и возможности медикаментозной коррекции / С.Л. Матусевич // Мед. наука и образование Урала. -'2009. № 1. - С. 29-32.
96. Машак , А-.Н. Структурно-функциональная характеристика лимфатического региона толстой кишки крыс в нормальных условиях, при остром венозном застое и в условиях коррекции' разными по составу водами /
97. A. Н.Машак, Г.В. Томчик // Проблемы саногенного и патогенного эффектов экологического воздействия на внутреннюю среду организма: материалы III междунар. симп*. Чолпон-Ата, 1997. - С. 96-101.
98. Международная анатомическая, терминология (с официальным списком русских эквивалентов) / ред. Л.Л. Колесников. М.: Медицина, 2003. -409 с.
99. Международные' термины по цитологии и* гистологии, человека с официальным списком русских эквивалентов: справоч. пособие / В. В. Банин и др.; ред. В.В! Банин, В.Л. Быков. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. - 272 с.
100. Меркулов Г.А. Курс патогистологической техники / Г.А. Меркулов. -Л-.: Медгиз, 196к 340 с.
101. Морозова В.Т. Лимфатические узлы. Цитологическая диагностика /
102. B.Т. Морозова, С.А. Луговская. М.; Тверь: Триада, 2003. - 70 с.
103. Морфологические особенности органов иммунной и эндокриынхой систем после применения циклофосфана / С.А. Кащенко и др. // Морфологтвв-Я--2008. Т. 133, №2. - С. 61.
104. Морфофункциональная характеристика сосудистого руслта. лимфатических узлов / A.B. Азнаурян и др.// Морфология. 1992. - Т. 102,5. С. 84-90.
105. Морфофункдиональные изменения органов иммунной системы rrjputi экспериментальном зиммунодефеците / В.Б. Хобракова и др. // Морфология:— -2007.-Т. 131, №3.- С. 98.
106. Некоторые аспекты анатомии лимфатической системы / A.IHI-Шведавченко и др. // Морфология. 2009. - Т. 136, № 4. - С. 155.
107. Опухоли лимфатической системы: атлас / JI.C. Аль-Ради и др.; ред-А'.И. Воробьев, А. М. Кременецкаяницкая. М.: Ньюдиамед, 2007. - 292 с.
108. Организация: микрорайона слизистых оболочек органов пшцевареыигясв условиях патологии и коррекции энтеросорбентами / Ю.И! Бородин и др. /f Морфология. 2002. - Т. 121, № 2-3. - С. 24.
109. Пальцев М.А. Руководство по нейроиммуноэндокринохгогИЯ:для студентов мед. вузов / М.А. Пальцев, И.М. Кветной. М.: МедшЕхин^-? 2006. -382 с.
110. Панфилов А.Б. Синтопия лимфоидной ткани кишечника б>е5опс,РОДНЬ1Х крыс / А.Б. Панфилов, Е.А. Перфилова // Морфол. ведомости. 200S-1. С. 196-197.
111. Петренко В.М. Лимфатический узел как сложный, колч<тЛеКСНЫИ лимфангион / В.М. Петренко // 2-й съезд лимфологов России: тез- ДоКЛ-СПб., 2005. С. 229-230.
112. Петренко В.М. Миоархитектоника капсулы лимфатического Узла как комплексного (лимфоидного) лимфангиона / В.М. Петренко // Морфо^101113' 2008. Том 133, №4.-С. 87.
113. Петренко В.М. Сопряжение лимфатической и лимфоидной: oi^cTeM в эволюции / В.М. Петренко // Морфология. 2010.' - Т. 137, № 4. - С. 152-1 ^3 '
114. Петренко В.М. Функциональная морфология лимфатических; В.М. Петренко. СПб.: Деан, 2003. - 248 с.
115. Петри А. Наглядная статистика в медицине: пер. с англ-- учеб. пособие / А. Петри, К. Сэбин. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2003. - 143 с.
116. Петров Р.В. Иммунология / Р.В. Петров. М., Медицина, 2000134. Петров C.B. Руководство по иммуногистохимической стикеопухолей человека / C.B. Петров, Н.Т. Райхлин. Казань, 2000. - 288 с.
117. Показатели крови и лейкоцитарного индекса интоксикации: jb тяжести и определении прогноза при воспалительных, гнойных и: деструктивных заболеваниях / В.К. Островский и др. // Клгр-и^^- лаб. диагностика. 2006. - № 6. - С. 50-53.
118. Поликар А. Физиология и патология лимфатической систeavts^^ ^ Поликар. М.: Медицина, 1965. - 210 с.
119. Программа оздоровительных мероприятий по лимфосанах^00 И детоксикации организма НИИ клинической и экспериментальной
120. СО РАМН / Ю.И. Бородин и др.- Новосибирск, 2003. 30 с.
121. Путалова И.Н: Клинические аспекты морфологических исследований лимфатической системы И.Н. Путалова // Новое в медицине и медицинском образовании: материалы науч. конф., посвящ. 80-летию лечеб. фак. ОмГМА. -Омск, 2001.-С. 142-143.
122. Путалова И.Н. Регионарный лимфатический аппарат сердца при инфаркте миокарда и асептическом эндоперикардите: автореф. дис. . д-ра мед. наук / И.Н. Путалова. Новосибирск, 1995. - 41 с.
123. Райт Д.Х. Морфологическая диагностика патологии лимфатических узлов: пер. с англ. / Д.Х. Райт, Б. Дж. Эддис, Э.С. Леонг. М.: Мед. лит., 2008. -176 с.
124. Сапин М.Р: Внеорганные пути транспорта лимфы / М.Р. Сапин, Э.И. Борзяк. М.: Медицина, 1982. - 263 с. "
125. Сапин М.Р. Д.А. Жданов и учение-о лимфатической системе / М.Р. Сапин, В.Я. Бочаров // Морфология. 2008. - Т. 133; № 4. - С. 50-52:
126. Сапин М.Р. Иммунная система, стресс и иммунодефицит / М.Р. Сапин, Д. Б. Никитюк. М.: Джангар, 2000. - 184 с.
127. Сапин М.Р. Иммунные структуры пищеварительной! системы: функциональная анатомия / М.Р. Сапин. М.: Медицина, 1987. - 226 с.
128. Сапин М.Р. Лимфатическая система и ее роль в иммунных процессах / М.Р. Сапин//Морфология. 2007. - Т. 131, № 1. -С. 18-22.
129. Сапин М.Р. Лимфатический узел (структура и функции) / М.Р. Сапин, H.A. Юрина, Л.Е. Этинген. М.: Медицина, 1978. - 271 с.
130. Серов; В В. СоединительнаЯл. ткань, (функциональнаяt морфология и общая патология) / В В. Серов, А.Б. Шехтер. М.: Медицина, 1981. - 312с.
131. Симбирцев С!А. Патофизиологические аспекты эндогенной интоксикации / С.А. Симбирцев, Н.А: Беляков // Эндогенные интоксикации: тез. междунар: симп. -СПб., 1994. С. 5-9.
132. Смирнова Т.С. Временная организация сложного узелка лимфатического узла / Т.С. Смирнова, JI.B. Ермолина // Арх. анатомии, гистологии и эмбриологии. 1988. - № 9. - С. 58-64.
133. Смирнова Т.С. Современные концепции строения и функции коры лимфатического узла / Т.С. Смирнова // Арх. анатомии, гистологии ' и эмбриологии. 1987. - № 10. - С. 96-108.
134. Сходство и различие реакции пейеровых бляшек и брыжеечных лимфатических узлов-крыс на-полихимиотерапию / И.В. Майбородин и др. // Антибиотики и химиотерапия: 2005. - Т. 50, № 2-3. - С. 8-13.
135. Фомина Т.И. Некоторые параметры скорости пролиферации эпителия тонкого4 кишечника после введения карминомицина / Т.И. Фомина // Антибиотики. 1982. - Т. 27, № 3. - С. 183-186.
136. Фрейдлин И.С. Клетки иммунной системы: в 2 кн. Т. 3-5. Т. 3. Лимфоциты. Т. 4. Базофилы и тучные клетки. Т. 5. Эозинофилы / И.С. Фрейдлин, A.A. Тотолян. СПб.: Наука, 2001. - 390 с.
137. Функциональная морфология иммунной системы / Ю.-И. Бородин и др.- Новосибирск: Наука; 1987. 238 с.
138. Хаитов P.M. Иммунология: учеб. для студентов мед. вузов / P.M. Хаитов, Г.А. Игнатова, И.Г. Сидорович. M.: Медицина, 2000. - 430 с.
139. Хэм А. Гистология: пер. с англ.: в 5 т. Т. 2 / А. Хэм, Д. Кормак; под ред. Ю. И. Афанасьева, Ю: С. Ченцова. М.: Мир, 1983. - С. 244-254.
140. Цыплаков Д.Э. Гиперпластическая фолликулярная8 реакция регионарных лимфатических узлов при. раке (иммуногистохимия, ультраструктура, прогностическое значение) / Д.Э. Цыплаков, C.B. Петров // Арх. патологии. 1997. - Т. 59, № 4. - С. 55-60.
141. Чава C.B. Некоторые аспекты морфологии пейеровой бляшки мышей1. V «в эксперименте / C.B. Чава»// Морфология. 2006. - Т. 129, №'4. - С. 134.
142. Чава C.B. Цитоархитектоника пейеровой бляшки в эксперименте / C.B. Чава // Морфология. 2006. - Т. 129, № 4. - С. 134.
143. Четвертакова Л.В. О' тканевой природе выстилки синусов лимфатических узлов / Л.В. Четвертакова // Арх. анатомии. 1976. - Т. 70, № 2. - С. 41-46.
144. Шахламов В.А. Иммуноморфология групповых лимфатических фолликулов (пейеровых бляшек)./ В.А. Шахламов // Арх. анатомии. 1984. - Т. 87, вып. 12. - С. 87-97.
145. Шведавченко А.И. О лимфатическом посткапилляре / А.И. Шведавченко; В .Я. Бочаров // Морфология. 2007. - Т. 131, № 2. - С. 81-83.
146. Шведавченко А.И! Особенности анатомии- и топографии лимфатических узлов / А.И. Шведавченко, Т.Л. Русских // Морфология. 2008. -Т. 133, №3.-С. 120.
147. Эндокринные клетки эпителия прямой кишки в норме, при неспецифическом язвенном колите и синдроме раздраженной кишки без лечения и при лечении преднизолоном и салофальком/ C.B. Костюкевич: и др. // Арх. патологии. 2004. - Т. 66, № 4. - С. 23-27.
148. Эффект многократного перорального введения карминомицина на животных / JI.E. Гольдберг и др. // Антибиотики. -1978.-Т.23, №7. -С. 611-617.
149. A phase I trial of the novel proteasome inhibitor PS341 in advanced solid tumour malignancies / C. Aghajanian et al. // Clin. Cancer Res. 2002. - Vol. 8, № 8.-P." 2505-2511.
150. A phase II study of epirubicin, cisplatin and raltitrexed combination chemotherapy (ЕСТ)5 in patients with advanced oesophageal and gastric adenocarcinoma / H.J. Mackay et al. // Ann. Oncol. 2001. - Vol. 12, № 10. - P. 1407-1410.
151. A rapid and simple method for measuring thymocyte apoptosis by propidium iodide staining'and flow cytometry / I. Nicoletti et al. // J. Immunol. Methods. 1991. - Vol. 139, № 2. -P: 271-279.
152. A transmembrane chemokine, CXC chemokine ligand 16, expressed by lymph node fibroblastic reticular cells has the potential to regulate T cell migration and adhesion / Т. Hara et al. // Int. Immunol. 2006. - Vol. 18, № 2. - P. 301-311.
153. Adams J. Proteasome inhibition: a new strategy in cancer treatment / J. Adams, V. Palombella, P. Elliott // Invest. New Drugs.-2000.-Vol. 18, №2.-P. 109-121.
154. Angiomyolipoma with lymph node involvement / T.E. Ackerman et al. // Can. Assoc. Radiol. J. 1994. - Vol. 45. - P. 52-55.
155. Anthracyclines trigger apoptosis of both G0-G1 and cycling peripheral blood lymphocytes and induce massive deletion of mature T and B cells / C. Ferraro et al. // Cancer Res. 2000. - Vol. 60, № 7. - P. 1901-1907.
156. Antitumor activity of (2R)-4-0-tetrahydropyranyl adriamycin on human gastric cancer celli lines in vitro and in vivo / Y. Saikawa et al. // Anticancer Res. — 1994. Vol. 14, № 2. - P. 469-473.
157. Apoptosis of intestinal intraepithelial lymphocytes induced by exogenous and endogenous glucocorticoids / S. Murosaki et al. // Microbiol. Immunol- 1997. -Vol. 41, №2.-P. 139-148.
158. Belisle C. Tridimensional study of the rat lymph node: Topograplay of the deep cortex / C. Belisle, G. Sainte-MarieV/Anat. Rec.-1981.-Vol.l99.-P.213-226.
159. Bodenheimer H.J. Alteration of rat Kupffer cell function following mitomycin-C administration / H.J. Bodenheimer, C. Charland, J. Leith // J. I^eukoc. Biol. 1988. - Vol. 43, № 3. - P. 265-270.
160. Cancer statistics, 2001 /R.T. Greenlee et al. // C.A. Cancer J. Clin, — 2001. -Vol. 51, № i.p. 1536.
161. CD4 + CD25 bright T cells in human intestinal lamina propria as regulatory cells / S. Makita et al. // J. Immunol.-2004.-Vol. 173, №5. -P.3119-3130.
162. Chemotherapy for operable gastric cancer: results of the Dutch randomized FAMTX trial. The Dutch Gastric Cancer Group (DGCG) / I. Songun et al. // Eur. J. Cancer. 1999. - Vol. 35, № 4. - P. 558-562. . :
163. Corticosteroids impair intestinal- epithelial , wound repair mechanisms in vitro / Si Jung;et'al'.:// Scandi J^Gastroenterol;- 2001. VoK 36; № 9/- P: 963-970.
164. Current drug therapy for MMV Y.W: Huang et al.|// Drugs. 1999;- Vol; 57, № 4.-P. 485-506.
165. Cyclophosphamide augments inflammation^ . by , reducing immunosuppression in a;mouse models of allergic, airway disease / Y.C. Su et al. // Ji Allergy Clim Immunol; — 2006: Vol. 117, № 3: — P. 635-6411
166. Cyclophosphamide decreases^ the number, percentage and- the functiont of CD 25+ CD 4+ regulatoiy T cells, which suppress induction of contact hypersensitivity / Y. Ikezawa et al. // J. Dermatol. Sci. 2005. - Vol. 39, № 2. - P. 105-112.
167. De novo germinal center formation / P. Nieuwenhuis et al. // Immunol. Rev. 1992. - Vol. 126. - P. 77-98.
168. DeMartino G.N. The proteasome, a novel protease regulated by multiple mechanisms / G.N. DeMartino, C.A. Slaughter // J. Biol. Chem. 1999. - Vol. 274, № 32.-P. 22123-22126.
169. Doganci A.Mucosal immunoregulation: transcription factors as possible therapeutic targets / A. Doganci, M. F. Neurath, S. Finotto // Curr. Drug Targets Inflamm. Allergy. -.2005. Vol! 4, № 5. - P. 565-575.
170. Dose related effects of ifosfamide on enterocyte apoptosis in different sites of the rabbit intestine /.P. Ypsilantis et all. // Toxicology.- 2004. Vol. 200, № 2-3. -P. 135-143. .
171. Effect of apoptogenic stimuli, on colon carcinoma cell lines with a different c-myc expression level / C. Gorrini et- al. // Int. J. Mol. Med. 2003. - Vol. 11, № 6.-P. 737-742. •
172. Effects of granulocyte-colony stimulating factor on peritoneal defense mechanisms and bacterial translocation affer administration of systemic chemotherapy in rats / C. Cerci et al. // World J. Gastroenterol. — 2007. Vol. 13, № 18.-P. 2596-2599.
173. Effects of lymph diversion versus corticosteroids on blood and lymphocyte pools / H. Buerki et al. // Beitr. Pathol. 1976. - Vol. 159, № 4. - P. 343-350.
174. Effects of probiotic on intestinal mucosa of patients with ulcerative colitis / H. H. Cui et al.//World J. Gastroenterol. 2004. - Vol. 10,№ 10.-P. 1521-1525.
175. Eight-hour infusion versus bolus injection of doxorubicin in the EAP regimen in patients with advanced gastric cancer: a prospective randomized trial / I. Popov et al. //Ann. Oncol. 2000. - Vol. 11, № 3. - P. 343-348.
176. Epirubicin, cisplatin* and continuous infusion 5-fluorouracil (ECF) in locally advanced or metastatic gastric cancer: a single institution experience / E. Aitini et al. // Tumori. 2001. - Vol. 87, №1 - P. 20^24.
177. Estimates of worldwide burden of cancer in 2008: GLOBOCAN 2008 / J. ; Ferlay et al. // Int. J. Cancer. 2010. - Vol. 127, № 12*. - P. 2893-2917.
178. Evaluation of various cytostatic drugs as local immunotherapeutic agents / R.J. Scheper et al. // Invest. New Drugs. 1984. - Vol.' 2, №2. - P. 221-225.
179. Falkmer S. The value of cytometric DNA analysis as a prognostic tool in neuroendocrine neoplastic diseases / S'. Falkmer, E. Wilander // Pathol. Res. Pract. -1995. Vol. 191, № 4. - P. 281-303.
180. Fatal hemorrhagic pneumonia caused by infection due to Kytococcus i sedentarius-a pathogen or passenger / H. Levenga et al. // Ann. Hematol. — 2004. —1. Vol. 83, №7.-P. 447-449.
181. Foldi M. Missteps when mice with lymphatically insufficient tails leap from molecular biology to human clinical lymphology / M. Foldi, L. Clodius // Lymphology. 2007. - Vol. 40, № 4. - 188-190.
182. Glickman M.H. The ubiquitin-proteasome proteolytic pathway: destructionfor the sake of construction / M.H. Glickman, A. Ciechanover // Physiol. Rev. — 2002. Vol. 82, №-2. - P: 373-428.
183. Glucocorticoid and Fas ligand induced mucosal lymphocyte apoptosis after burn injury / K. Fukuzuka et al. // J. Trauma.-2000.-Vol. 49, №4.-P. 710-716.
184. Goldberg A. L. The cellular chamber of doom / A. L. Goldberg, S. J. Elledge J. W. Harper // Sci. Am. 2001. - Vol. 284, № 1. - P. 68-73.
185. Greenwood J.H. In vitro characterization of human intestinal intraepithelial lymphocytes / J.H. Greenwood, L.L. Austin, W.O. Dobbins // Gastroenterology. — 1983.-Vol. 85, №5. -P. 1023-1036.
186. Gretz J.E. Cords, cannels, corridors and conduits: critical architectural elements facilitating cell interactions in the lymph node cortex / J.E. Gretz et al. // Immunol. Rev. 1997. - Vol.156. - P. 11-24.
187. Gunin A.G. Two-month; glucocorticoid treatment increases proliferation in the stomach and large intestine of rats / A.G. Gunin, D.V. Nikolaev // Digestion. -2000:-Vol. 61, №3.-P. 151-156.
188. Gutman G.A. Lymphoid tissue architecture experimental analysis of the origin and distribution of T-cells and B-cells / G.A.Gutman, J.L.Weissman // Immunology. 1972. - Vol. 23, № 4. - P. 465-479.
189. Hellig H.R. A histological study of the effect of Cortisol and some six steroids on the immune response to sheep erythrocytes by the mouse / H.R. Hellig, W.H. Gerneke // Onderstepoort J. Vet. Res. -1975. Vol. 42, № 1. - P. 53-62.
190. Hideshima T. Molecular mechanisms of novel therapeutic approaches for multiple myeloma / T. Hideshima, K.C. Anderson // Nat. Rev. Cancer. 2002. — Vol. 2, № 12.-P. 927-937.
191. High doses of 5- fluorouracil and epirubicin with or without cisplatin in advanced gastric cancer: a randomized study / A. Roth et al. // Tumori. 1999. — Vol. 85, №4.-P. 234-238.
192. Histofluorometric studies of nervous lesions induced with daunomycin in the ileum and colon of the rat and guinea pig / L. Mazzanti et al. // Farmaco Prat. — 1972. Vol. 27, №1. - P. 54-59.
193. Histological changes in the cervical lymph nodes after radiotherapy / J. Shvero et al. //Oncol. Rep. -2001. Vol. 8, № 4. -P. 909-911.
194. Hsu S.M. Phenotypic expression of B-lymphocytes. Identification with monoclonal, antibodies in normal lymphoid tissues / S.M. Hsu, E.S. Jaffe // Am. J. Pathol. 1984. - Vol.114, № 3. - P.387-395.
195. Immature sinus histiocytosis. Light- and electron-micriscopic features, immunologic phenotype and relationship with marginal zone lymphocytes / J.J. Van den Oord et al. // Am. J. Pathol. 1985. - Vol. 118, № 2. - P. 266-277.
196. Immunosuppressive effect of budesonide on human lamina propria lymphocytes / Y. Elitsur et al. // Immunopharmacology. — 1998. — Vol. 38, № 3. — P. 279-285.
197. Inhibition of apoptosis and augmentation of lymphoproliferation in bcl-2 transgenic Fas/Fas ligand-defective mice / A. Tamura et al. // Cell Immunol. -1996. Vol. 168, № 2. - P. 220-228.
198. Intestinal epithelial cells synthesize glucocorticoids and regulate T cell activation /1. Cima et al. // J. Exp. Med. 2004. - Vol. 200, № 12. - P. 1635-1646.
199. Intraarterial chemotherapy combined with radiation therapy for advancedicancer of the uterine cervix / M. Noguchi et al. // Gan To Kagaku Ryoho. 1998. — Vol. 25, №9.-P. 1314-1317.
200. Intraepithelial but not lamina propria lymphocytes in the porcine gut are affected by dexamethasone treatment / E. Schwarz et al. // Vet. Immunol. Immunopathol. 2005. -Vol. 105, № 1-2.-P. 125-139.
201. Intratumor immunochemotherapy with 5-fluorouracil emulsion and BCG in C3H/HE mice transplanted with MH 134 / M. Kasuga et al. // Gann. 1982. - Vol. 73, №6.-P. 931-937.
202. In-vivo induction of apoptosis in murine lymphocytes by bacterial lipopolysaccharides / M. Norimatsu et al. // J. Med. Microbiol. 1995. - Vol. 43, №4.-P. 251-257.
203. Jodbout J.P. Stress-inducedimmunedysregulation: implications for wound healing, infectious disease and cancer / J.P. Jodbout, R. Glaser // J. Neuroimmune Pharmacol. -2006. Vol. 1, № 4. - P. 421-427.
204. Kraehenbuhl J.P. Epithelial M cell: differentiator! and functional / J.P. Kraehenbuhl, M.R. Neutra // Annu. Res. Cell Dev. 2000. - Vol. 16. - P. 301-332.
205. Kumar S. Immunophenotyping in multiple myeloma and related plasma cell disorders / S. Kumar, T. Kimlinger, W. Morice // Best Pract. Res. Clin. Haematol: -2010. Vol. 23, № 3. -P: 433-451.
206. Long term (five-year) survival following radical surgical treatment plus adjuvant chemotherapy (FAM) in advanced gastric cancer: a controlled study; / C. Bresciani et al. // Rev Hosp. Clin. Fac. Medi .Sao Paulo. — 20001 — Vol: 55, № 4. -P.129-136.
207. Lymph node histology in head:'and neck cancer: impact of immunotherapy with IRX-2 / A. Meneses etal. // Int. Immunopharmacol. 2003. - Vol. 3, № 8. - P. 1083-1091.
208. Macdonald J.S. Chemotherapy of advanced gastric cancer: present status, future prospects / J.S. Macdonald, J.J. Gohmann // Semin. Oncol. 1988: — Vol. 15, № 3 . - P. 42-49. , J
209. MacLennan I.C. Germinal centers / I.C. MacLennan // Annu. Rev. Immunol.- 1994;-Vol. 12.-P. 117-139.
210. Mesna ameliorates intestinal mucosa damage after ifosfamide administration? int the. rabbit at adoserrelatedmanner:./ P. Ypsilantis et al. // J: Surg. Res.-2004.-Vol. 121, № 1. — P. 84-91.
211. Monoclonal antibodies to a zinc-binding protein of rat Paneth cells. / M. Sawadavet all.!// J; Histochem: Cytochem:,- 1994; 42; № 4.-P:467-472: •
212. Moore J.V. The «gastrointestinal syndrome» after chemotherapy: inferences from mouse survival time, and from histologically- and clonogenically-defined cell death in intestinal crypts / J.V. Moore // Br.J: Cancer Suppl. — 1986. — Vol. 7.-P. 16-19.
213. Mor F. IL-2 rescues antigen-specific T cells from radiation or dexamethasone-induced apoptosis. Correlation with induction of Bcl-2 / F. Mor, I.R. Cohen // J. Immunol. 1996. - Vol. 156, № 2. - P. 515-522.
214. Morales A. Effects, of inhibition of steroid biosynthesis on the lymphoid system / A. Morales, A. W. Bruce // Invest. Urol. 1974. - Vol. 12, № 1. -P: 54-56.
215. Multicellular computer simulation of morphogenesis: blastocoel roof thinning and matrix assembly in Xenopus laevis / D. Longo. et al.j // Dev. Biol. — 2004. Vol. 271 ,.№1. - - P. 210-222.
216. Myung J: The? ubiquitin-proteasome pathway and proteasome inhibitors / J. Myung, K.B. Kim,.C.M. Crews // Med. Res. Rev. 2001. - Vol. 21, № 4. - P. 245-273.
217. Neutropenic enterocolitis in adults with acute leukemia /'Y. Uzuka et al. // Rinsho Ketsueki. 1989. - Vol. 30, № 7. - P. 980-987.
218. Oken M.M. Management of myeloma: Current and future approaches / M.M. Oken-// Cancer Control. 1998. - Vol. 5, № 3. - P. 218-225.
219. Oken M.M. Standard treatment of MM / M.M. Oken // Mayo Clin. Proc. -1994;-Vol. 69, №8.-P. 781-786.
220. Olson H.M. Subacute cardiotoxicity of adriamycin in the rat: biochemical and ultrastructural investigations / I LM. Olson, C. C. Capen // Lab. Invest: 1.977. — Vol. 37, jYü 4.-P. 386-394. . .
221. Phase II trial of epirubicin, cisplatin^'orahuracil and tegafur, and Leucovorin in patients with- advanced gastric carcinomaî/ Y.T. Jeen et al. // Cancer. 2001. — Vol. 91, № 12.-P. 2288-2293., .
222. Proteasome inhibitors: a novel class of potent and effective antitumor agents / Adams etal. // Cancer Res. -1999:- Vol. 59, №■ 11. P. 2615-2622. '.
223. Pushin la R.W. A study of glucocorticosteroid-induced pyknosis im the: thymus;and lymph node of the adrenalectomized rat / R. W. la Pushin, E. de Harven //J. Cell Biol. 1971. - Vol. 50, №3. - P. 583-597.
224. Pyogenic spondylitis by methicillinresistant Staphylococcus aureus (MRSA) during M-VAC therapy: a case report / S. Danno et al. // Hinyokika Kiyo. 2005. - Vol. 51, № 6. - P. 389-392.
225. Randomised controlled trial of azathioprine and 5-aminosalicylic acid for treatment of steroid dependent ulcerative colitis / S. Ardizzone et al. // Gut. — 2006. -Vol. 55, № l.-P. 47-53.
226. Redistribution of lymphocytes after major surgical stress / P. Toft et al. // Acta Anaesthesiol. Scand. 1993. - Vol. 37, № 3. - P. 245-249.
227. Redistribution of lymphocytes-following E. coli sepsis / P. Toft et al. // Scand. J. Immunol. 1993. - Vol. 38, № 6. - P. 541-545.
228. Regulation of cell death and survival in intestinal« intraepithelial lymphocytes / T. Brunner et al. // Cell Death Differ.-2001.-Vol. 8, №7.-P. 706-714.
229. Review article: problematic proctitis and distal colitis / P. Gionchetti et al. // Aliment. Pharmacol. Ther. 2004. - Vol. 20, № 4. - P. 93-96.
230. Review of 1027 patients with newly diagnosed multiple myeloma / R.A. Kyle et al. // Mayo Clin. Proc. 2003. - Vol. 78, № 1. - P. 21-33.
231. Roitt I.M. The role of autoantigens in the driving of autoimmune diseases / LM.Roitt//Immunol. Ser. 1993.-Vol. 59.-P. 119-129.
232. Ross A.S. Medical therapy for ulcerative colitis: the state of the art and. beyond / A.S. Ross, R.D. Cohen // Curr. Gastroenterol. Rep. 2004. - Vol. 6, № 6. -P. 488-495.
233. Sabbele N. R The effect of corticosteroids upon the number and organ distribution of «background» immunoglobulin-secreting cells in mice / N. R. Sabbele, A. van Oudenaren, R. Benner// Cell Immunol. -1983. Vol. 77, № 2 -P. 308-317.
234. Sackstein R. Physiologic basis of steroid-induced immunosuppression. Effects on lymphocyte migration to lymph nodes / R. Sackstein // J. Fla. Med. Assoc. 1995. - Vol. 82, № 9. - P. 613-615.
235. Sainte-Marie: G: Evidence, for the existence of a subsinus layer of the peripheral cortex in the: lymph node of the rat / G; Sainte-Marié; F.S. Peng // Cell. Tissue Res. 1985. - Vol. 239, № 1. - P. 37-42.
236. Sainte-Marie G. The lymph node, revisited:; development, morphology, functioning, and role in triggering primary immune responses / G. Sainte-Marie // Anat. Rec. (Hoboken): 2010: — VoU 293, № 2. — P: 320-337.
237. Simultaneous onset of acute1 inflammatory response, sepsis-like: symptoms and ■ intestinal mucosal injury after cancer, chemotherapy / E. Tsuji et al. // Int. J. Cancer.- 2003". — Volt. 107, № 2. — Pi 303-308; ; v
238. Sustained local application of low-dose epidermal growth factor on steroid-inhibited; colonic wound healing / A.E. Sakallioglu et al. // J. Pediatr. Surg: 2004. - Vol. 39, № 4. - P. 591-595.
239. The feasibility of FEC (75) as adjuvant chemotherapy for Japanese breast cancer patients-/ S. J. Kim et al. // Can To Kagaku Ryolio. 2005. - Vol. 32^ №42. -P. 1919-1923. • .;.■'■'. ; '
240. The follicular dendritic cell long-term antigen retention during, immunity / T.E. Mandell et al. // Immunol. Rev. 1980. - Vol. 53. - P. 29-59.
241. The influence of afferent lymphatic vessel interruption on vascularadressin expression / R E. Mebius et al. // J. Cell. Biol. 1991. - Vol. 115. - P.85-95:
242. The influence of apoptosis on intestinal barrier integrity in.rats / Z. Sun et al.-// Scand: J:,Gastroenterok 1998: - Voli33i № 4.-P. 415-422.
243. The nature of cytotoxic druginduccd cell death in murine intestinal crypts / T.V. Anilkumar et al. // Br.J. Cancer. -1992. -Vol. 65, № 4. -P. 552-558.
244. The proteasome: paradigm of a self-compartmentalizing protease ./ W. Baumeister et al. // Cell; — 1998: — Voli92,.№ 3 — Pr367-380:, ,
245. Thorbecke G.J. Biology of germinal centers; in lymphoid1 tissue / G.J. Thorbecke, A.R. Amin, V.K. Tsiagbe // FASEB J.-1994. -Vol. 8, № 11. -P.832-840.
246. Thymic regression and apoptosis in the rat after treatment with the Leydig cell cytotoxin, ethylene dimethanesulphonate (EDS) / I. D. Morris et al. // Toxicology. 1997. - Vol. 120, № 1. - P. 19-27.
247. Ultrastructural alterations, of the: rat intestinal epithelium fed with polymeric, oligopeptidic or. elementary full diet,, following starvation / D. Botsion et al':.'// Histol: Histopatol: 1993. - Vol: 8- №31- P; 527-535: ;
248. Viklicky V. Effect of some steroid hormones on the homing affinity of lymph'node cells andimonocytes / V. Vildicl^,.MLPolackova5//;Folia"Bioli(Praha); — 1980. Vol. 26, № 6. - P. 396-407.
249. Zhou B. Investigation of the intraabdominal oesophagus and hiatus in fetal rats with oesophageal atresia and trachea- oesophageal fistula / B. Zhou, J.M. Hutson, N.A. Myers // Pediatr. Surg. Int -2001. -17, № 2-3. -P. 97-100.
250. Zweegman S. Treatment of myeloma: recent developments / S. Zweegman, P. C. Huijgens Anticancer Dmgs. 2002. - Vol. 13, № 4. - P. 339-351. .