Автореферат и диссертация по медицине (14.01.12) на тему:Механизмы гибели опухолевых клеток при действии новых катионных глицеролипидов

На правах рукописи МАРКОВА АЛИНА АЛЕКСАНДРОВНА

МЕХАНИЗМЫ ГИБЕЛИ ОПУХОЛЕВЫХ КЛЕТОК ПРИ ДЕЙСТВИИ НОВЫХ КАТИОННЫХ ГЛИЦЕРОЛИПИДОВ

14.01.12 - онкология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Москва - 2014

005560983

Работа выполнена в Федеральном государственном бюджетном научном учреждении «Российский онкологический научный центр имени Н.Н.Блохина»

(директор - академик РАН, д.м.н., профессор Давыдов Михаил Иванович) Научный руководитель:

доктор медицинских наук Штиль Александр Альбертович

Официальные оппоненты:

Сергеева Наталья Сергеевна

Логунов Денис Юрьевич

доктор биологических наук, профессор, руководитель лаборатории прогноза эффективности консервативного лечения Московского научно-исследовательского онкологического института имени П.А.Герцена — филиала ФГБУ «Федеральный медицинский исследовательский центр им. П.А.Герцена» Минздрава РФ

доктор биологических наук, заведующий лабораторией клеточной микробиологии ФГБУ «Федеральный научно-

исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф.Гамалеи» Минздрава РФ

Ведущее учреждение: ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет имени А.И.Евдокимова» Минздрава РФ

Защита диссертации состоится «26» уе&РСША' 2015 года в -М-СРСкасов на заседании диссертационного совета Д()(Й.017.01 на базе ФГБНУ «РОНЦ им. Н.Н.Блохина» (115478, г. Москва, Каширское шоссе, д. 23)

С диссертацией можно ознакомиться в Научной библиотеке ФГБНУ «РОНЦ им. Н.Н.Блохина» (115478, г. Москва, Каширское шоссе, д. 24) и на сайте http://www.ronc.ru

Автореферат разослан « 22» ЗМ^ОьюЭ^ 2015 года

Ученый секретарь А

Диссертационного Совета у ' .¿Г

д. м. н., профессор /'IШишкин Юрий Владимирович

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы

Поиск новых соединений-кандидатов в лекарственные препараты предусматривает комплекс исследований в органической и физической химии, биохимии, молекулярной онкобиологии, фармакологии, компьютерном моделировании. Создание новых соединений необходимо для установления механизмов их действия и выявления связей химической структуры с противоопухолевой активностью.

Катионные глицеролипиды как новый класс низкомолекулярных соединений возникли на основе алкильных аналогов фактора активации тромбоцитов — эдельфозина, илмофозина, милтефозина, эрицилфосфохолина и эруфозина. Эти фосфатсодержащие алкильные липиды проявляют противоопухолевую, антибактериальную и противовирусную активность. В настоящее время они активно исследуются и находятся на разных стадиях предклинических и клинических испытаний. Недостатки фосфатсодержащих липидов (прототип — эдельфозин) — гемолитический эффект, невысокая селективность противоопухолевого действия и метаболическая нестабильность — обусловили попытки исключить фосфатную группу из их структуры и синтезировать положительно заряженные глицеролипиды. Катионные глицеролипиды с различными полярными доменами могут стать перспективными для создания противоопухолевых препаратов, если будут вызывать преимущественную гибель опухолевых клеток при минимальном повреждении неопухолевых. Структура катионных глицеролипидов позволяет проводить многообразные изменения для получения соединений с оптимизированными противоопухолевыми характеристиками.

Актуальность проблемы определяется важностью установления молекулярных механизмов гибели опухолевых клеток при действии новых катионных глицеролипидов — прототипов нового класса противоопухолевых препаратов.

Цель исследования — изучение молекулярных механизмов действия

новых химических соединений класса катионных глицеролипидов — кандидатов

в противоопухолевые препараты.

Задачи:

1. Установить антинеопластическое действие модификационного ряда новых катионных глицеролипидов с полярными доменами различной структуры и выявить соединение-лидер, обладающее наибольшей активностью.

2. Исследовать влияние новых катионных глицеролипидов на неопухолевые клетки.

3. Выявить молекулярные механизмы нарушений клеточного цикла и гибели опухолевых клеток в ответ на действие катионных глицеролипидов, сопоставить полученные данные с известными аспектами действия соединения-прототипа эдельфозина.

4. Изучить механизм взаимодействия с потенциальными внутриклеточными мишенями (ДНК, топоизомераза I) новых катионных глицеролипидов с различными структурными доменами.

Научная новизна

В литературе отсутствуют систематические исследования молекулярных событий, сопровождающих смерть неопластических клеток в ответ на действие катионных глицеролипидов. Недостаточны знания о внутриклеточных мишенях, взаимодействие с которыми обуславливает противоопухолевый эффект изучаемого класса соединений. В рамках данной работы впервые проведены следующие исследования:

• выявлена способность новых катионных глицеролипидов вызывать гибель опухолевых клеток человека: аденокарциномы молочной железы МСР7, толстой кишки НСТ116, яичника ЯСОУЗ; лейкозов К562 и НЬбО при минимальном повреждении неопухолевых клеток;

• идентифицирован тип клеточной гибели, вызываемой указанным классом

соединений;

• установлены внутриклеточные мишени, взаимодействие с которыми существенно для цитотоксичности катионных глицеролипидов;

• установлена цитоплазматическая локализация и динамика накопления в опухолевых клетках катионного глицеролипида с флуоресцентной меткой;

• исследована избирательность действия новых противоопухолевых агентов изучаемого класса на неопухолевых лимфоцитах и фибробластах человека;

• показана низкая гемолитическая активность исследуемых соединений;

• исследована способность новых катионных глицеролипидов модулировать активность топоизомеразы I и определены параметры связывания с потенциальной мишенью - ДНК, что обусловливает перспективность модификации соединений этого класса при доставке в ядро.

Практическая значимость исследования

Выявление молекулярных механизмов цитотоксичности катионных глицеролипидов позволило обосновать эффективность нового химического класса для создания противоопухолевых лекарств. Установление параметров связывания с ДНК и топоизомеразой I обосновывает оптимизацию катионных глицеролипидов для взаимодействия с ранее неизвестными для этих соединений мишенями противоопухолевой терапии.

Личный вклад автора

Автором самостоятельно проведен анализ отечественной и зарубежной литературы по теме диссертации, лично выполнены биологические исследования, осуществлен анализ и интерпретация результатов работы, статистическая обработка полученных данных, написана и оформлена диссертационная работа.

Соответствие диссертации паспорту научной специальности

Научные положения диссертации соответствуют паспорту специальности 14.01.12. — «онкология», конкретно пункту 6.

Апробация работы

Диссертация апробирована и рекомендована к защите 13 октября 2014 г. на совместной конференции лабораторий механизмов гибели опухолевых клеток, регуляции клеточных и вирусных онкогенов, механизмов регуляции иммунитета, вирусного канцерогенеза и медицинской химии Российского онкологического научного центра имени Н.Н.Блохина.

Публикации по теме диссертации

По материалам диссертации опубликованы 4 статьи в журналах, рекомендованных ВАК РФ, и тезисы 6 международных и российских конференций.

Объем и структура диссертации

Диссертация изложена на 149 страницах машинописи и состоит из введения, глав «Обзор литературы», «Материалы и методы исследования», «Результаты исследования и обсуждение», заключения и выводов. Работа содержит 27 рисунков и 13 таблиц. Библиографический материал включает ссылки на 287 источников литературы.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Линии клеток. Использованы линии клеток человека: К562 (миелоидный лейкоз), НСТ116 (рак толстой кишки), НСТ116р53КО (рак толстой кишки с делецией обоих аллелей гена р53), HL60 (промиелоцитарный лейкоз), MCF7 (аденокарцинома молочной железы), SCOV3 (аденокарцинома яичника), эритроциты и лимфоциты периферической крови здоровых доноров; линии клеток грызунов: В16 (меланома мыши) и С6 (глиома крысы). Клетки НСТ116, НСТ116р53КО, MCF7, SCOV3, В16, С6 и неопухолевые фибробласты культивировали в среде DMEM, клетки К562 и HL60 - в среде RPMI-1640 с добавлением 5% эмбриональной телячьей сыворотки, 2 мМ Z-глутамина, 100 ЕД/мл пенициллина и 100 мкг/мл стрептомицина при 37°С, 5% СОг-

Химические соединения. Катионные глицеролипиды (рацематы), синтезированные в МИТХТ им. М.В.Ломоносова, хранили в виде 10 мМ растворов в диметилсульфоксиде (ПанЭко, Россия), эдельфозин (81§та-А1<1псЬ, США) — 10 мМ раствор в этаноле. В качестве препаратов' сравнения использовали эдельфозин (81|*та-А1(1псЬ, США), доксорубицин (Ebewe, Австрия) и митоксантрон (Лэнс-Фарм, Россия).

Методы исследования. В работе применялись следующие методы: МТТ-тест для исследования цитотоксичности; световая и флуоресцентная микроскопия, спектрофотометрия для исследования способности катионных глицеролипидов повреждать эритроциты и модельную мембрану; проточная цитофлуориметрия для исследования клеточного цикла и гибели клеток; обратная транскрипция и полимеразная цепная реакция (ПЦР); иммуноблотгинг; определение межнуклеосомной деградации ДНК; скрининг протеинкиназ как мишеней действия катионных глицеролипидов; исследование влияния липидов на активность топоизомеразы I; сканирующая калориметрия для определения параметров связывания липид-ДНК; компьютерное моделирование взаимодействия липидов с ДНК и топоизомеразой I. Все эксперименты проведены не менее 3 раз. Для статистической обработки результатов использовали методы параметрической статистики.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Один из перспективных противоопухолевых агентов липидной природы -эдельфозин, алкильный фосфатсодержащий глицеролипид, вызывающий гибель опухолевых клеток различного тканевого происхождения. Эдельфозин прошел клинические испытания при немелкоклеточном раке легкого и опухолях мозга. Показана перспективность эдельфозина для аутологичной трансплантации костного мозга при терапии острого лейкоза. Однако эдельфозин вызывает гемолиз, недостаточно селективен и нестабилен в клетках из-за наличия фосфодиэфирной связи. Эти недостатки обусловливают интерес к

бесфосфорным катионным липндам. Синтез этих уникальных соединений выполнен в МИТХТ им. М.В.Ломоносова. Требования к структуре для проявления противоопухолевой активности [Plyavnik N. V., Kramareva T. V., Serebrennikova G. A. Rus. J. Bioorg. Chem. 2011, 37, 492-498] следующие:

• длинноцепочечный алкильный заместитель в С(1) положении глицеринового остова (14-19 метиленовых групп);

• короткоцепочечный алкильный заместитель в С(2) положении (1-2 метиленовые группы);

• аммониевая группа с небольшими заместителями алкильного типа или гетероциклическая катионная «головка» с положительно заряженным атомом азота.

В работе исследованы новые катионные глицеролипиды 1-5, 7 с различными катионными доменами гетероциклической природы (рис.1). Наиболее активное (по итогам предыдущих испытаний) соединение с алифатической «головкой» 6 использовано для сравнения. Результаты исследований катионных глицеролипидов 1-7 сопоставлены с известными аспектами действия эдельфозина (8).

-ОС18Нз7

-ОС2Н5

-OC(CH2)4_SÍ о Cl 1

-ОС„Н37

OC2Hs Вг

OC(CH2)4-N

о

4

—ос„н37

—ОС2Н5 I*

» Ui

-ОС,„Н37 в —ОС2Н5 1 -OClCH^-ff \—о

I

ОС18Н37 —OC2H¡ í ОС(СН2)4. о

<зг

—ос18н„

-ОС2Н5

-OC(CH2)4.ff о

A ¿W

3

—ОС„Н37 —ОС2Н5 СН3

I

-ОС(СН2)4_|£_(СН2)2ОН

О сн.

5 6

ОС18Н37

Н3СО- о сн3

II —О—Р—ОСН2СН2- Iв I • —N— I

О сн3

8 (эдельфозин)

Рис 1. Формулы исследованных катионных глицеролипидов

Исследование цитотоксичности на панели линий опухолевых и неопухолевых клеток (табл.1) позволило выбрать наиболее активные соединения с пиридиниевым (4), этилимидазолиевым (5) и метилимидазолиевым (7) катионными доменами для дальнейших исследований. Липиды с метилпиперидиниевой (1), метил-4-гидроксипиперидиниевой (2) и метилморфолиниевой (3) катионными «головками» оказались слаботоксичными для опухолевых клеток. На неопухолевых фибробластах наилучший результат показало соединение 7, при его действии выживаемость лучше, чем при действии эдельфозина в эквитоксических (для опухолевых клеток) концентрациях. Также липиды тестированы на донорских лимфоцитах; цитотоксичности (до 50 мкМ) не выявлено. Таким образом, исследованные катионные глицеролипиды малотоксичны для неопухолевых клеток, что выгодно отличает новый химичекий класс от эдельфозина. Лидерным соединением признано 7 (табл.1).

Таблица 1. Цитотоксичность соединений 1-8

Соеди- Линии опухолевых клеток

нение НСТ116 ЭСОУЗ НЬ60 МСР7 В1б К562 Фиброблаеты

1 14,3±0,3* 40,0±1,8 17,2±1,3 >50 36,2±1,7 42±1,5 -

2 14,5±0,4 35,2±0,9 17,3±0,9 >50 41,0±2,1 40±1,3 -

3 15,0±0,8 42,5±1,9 28,0±1,2 >50 >50 >50 -

4 12,8±0,2 12,8±0,8 4,8±0,4 10.9±1,3 16,1±0,7 17,5±0,5 39±1,3

5 11,5±0,4 8,9±0,7 4,9±0,6 30,0±1,0 14,8±0,4 18±0,5 33±1,1

6 14,7±0,5 9,9±0,4 4,9±0,3 14,8±0,7 16,2±0,5 14±0,9 35±1,4

7 10.8±0.3 8,0±0.5 3,8±0,6 20,4±0,6 14,1±0,5 17±0,6 48±0,8

8 (Эд) 1,0±0,5 3,4±0,2 2,0±0,2 6,5±0,5 6,0±0,7 32±2,0 43±1,5

*1С5о, мкМ; подчеркнуты значения, соответствующие наибольшей цитотоксичности катионных глицеролшшдов для опухолевых клеток и наименьшей - для неопухолевых; Эд - эдельфозин.

Основной недостаток соединения-прототипа эдельфозина (8) - высокий гемолитический эффект. В экспериментах с донорскими эритроцитами и на модельных мембранах (рис.2) мы установили, что, по отношению к гемолизу, вызванному дистиллированной водой (100%), эффект эдельфозина 8 (2-8 мкМ) весьма выражен (10%). Напротив, в эквитоксических концентрациях (12-25 мкМ) катионные глицеролипиды практически не повреждали эритроциты и модельные липосомы с заключенным в них флуоресцентным красителем карбоксифлуоресцеином. Действительно, 8 вызывает существенно более выраженное вытекание карбоксифлуоресцеина из липосом, чем бесфосфорные глицеролипиды 1-7. При возрастании соотношения "исследуемое соединение: липосомальный липид" до 1 соединение 4 вызвало наибольшее вытекание красителя, сравнимое с эффектом 8. Для 5 и 7 мембранолитический эффект существенно не увеличился. Низкий гемолитический эффект - важное преимущество катионных глицеролипидов перед эдельфозином.

о о

X

н о го

VI ^

с; о

Гемолиз эритроцитов

100 90 80 70 60 50 40 30 20 10 0-

3 4 5 6

Соединение

Способность липидов повреждать липосомы

0,008 ......

0,2

Исследуемое соединение:липосомальный липид

Рис.2. Мембранолитическое действие катионных глицеролипидов и

эдельфозина

Для установления механизмов цитотоксичности катионных глицеролипидов требуется выявить их внутриклеточные мишени. Распределение катионных глицеролипидов в клетках исследовали на примере флуоресцентного производного несущего данзильную группу (рис.3).

Цитотоксичность этого соединения не изменилась по сравнению с таковой исходного липида 6, что подтверждает применимость данзилирования для исследований свойств катионных глицеролипидов. Накопление 6ГЬ в клетках глиомы увеличивается на протяжении 24 ч (рис. 3). Относительно небыстрое накопление означает, что для гибели опухолевых клеток необходима продолжительная инкубация с соединениями исследуемого класса. Глицеролипид накапливается в гидрофобных компартментах цитоплазмы и не проникает в ядро. Эти результаты обусловили поиск внеядерных мишеней, потенциально важных для противоопухолевого действия глицеролипидов.

ос18н37

—ОС2Н5 СН3 I —ОС(СН2)—№- (СН2)2МН

Липид 6Р1_

Проточная цитофлуори м етрия С6, 6РЦ12 мкМ

Контроль

О СН3

О

Рис.3. Внутриклеточное распределение и накопление 6РЬ

Такими мишенями могут быть протеинкиназы. Ингибирующее действие катионного глицеролипида 7 и эдельфозина 8 исследовано в бесклеточной системе на панели из 16 протеинкиназ: Aktl, Ark5, Aurora-B, AXL, BRAF V600E, CK2-alpha 1, IGF1-R, Ins-R, FAK, MET, PLK1, PRK1, Src, TRK-B, EGF-R2, Pim-1. Глицеролипид 7, в отличие от эдельфозина 8, ингибирует протеинкиназы Ins-R, МЕТ и Src в концентрациях 10 мкМ на 40%, а также Pirn- ' 1 (1 мкМ) на 9%. Ингибирования протеинкиназ PI4K2A, PI4KB, PDC3C2A, PIK3C2B, PIK3C2G, PIK3C3, PIK3CA/PIK3R1, PIK3CB/PIK3R1, PIK3 CD/PIK3R1, PIK3CG соединением 7 (10 мкМ) не выявлено. Таким образом, протеинкиназы Ins-R, MET, Src и Pim-1 могут служить мишенями цитотоксичности 7. Эти ферменты играют роль в пролиферации и выживании опухолевых клеток [Kurokawa М., Kornbluth S. Cell. 2009, 138(5), 838-854; Bachmann М., Moroy Т. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2005, 37, 726-730].

Мы сравнивали механизмы гибели клеток при действии катионных глицеролипидов с таковыми эдельфозина. За счет аффинности к холестерину гидрофобный эдельфозин встраивается в подмембранные липидные рафты, вызывает тримеризацию "рецепторов смерти" и инициирует апоптотический сигналинг. Повреждение внешней мембраны митохондрий приводит к активации каспазы-9. Кроме этого, эдельфозин накапливается в эндоплазматическом ретикулуме (ЭПР); ЭПР-стресс сопровождается активацией каспазы-12. В поздние стадии апоптоза активация каспазы-3, расщепление поли(АДФ-рибозо)полимеразы (PARP) и фрагментация ДНК завершают гибель клеток. Апоптоз, вызываемый эдельфозином, не зависит от статуса р53. Гибели предшествует р21-зависимая задержка клеточного цикла в G2/M.

При исследовании нарушений клеточного цикла при действии 4, 6, 7 выявлена задержка в фазе Gl и появление ядер с фрагментированной ДНК (область суб-Gl, рис.4). Нарушение клеточного цикла зависит от концентрации

липидов' (12 мкМ и 25 мкМ). Для 6 задержка носит временный характер; с увеличением времени инкубации с 24 ч до 48 ч количество клеток в С2/М увеличивается. Эффект 7 длителен; задержка клеточного цикла при действии этого соединения наиболее выражена.

12 мкМ

24ч 48ч

25 мкМ

24ч 48ч

К

61 S G2/M

G1 S G2/M

G1 S G2/M

G1 S G2/M

G1 S G2/M

G1 S G2/M

I G1 S G2/M

G1 S G2/M

LL

G1 S G2/M

G1 S G2/M

^¡ШЬ,

G1 S G2/M

G1 S G2/M

G1 S G2/M

G1 S G2/M

G1 S G2/M

tJL Ц-

G1 S G2/M

Рис.4. Распределение фаз клеточного цикла при действии 4, 6, 7

К (контроль) - необработанные клетки.

Возможный механизм задержки клеточного цикла в G1/S - активация ингибитора циклинзависимых протеинкиназ p21wafl/cipl. Фосфатсодержащие противоопухолевые липиды вызывают р53-независимую активацию p21wafl/c,pl и торможение клеточного цикла [Gajate С., Mollinedo F. Anti-Cancer Agents Med. Chem. 2014, 14, 509-527]. Мы исследовали количество мРНК и белка p21wafl/c,pl в клетках линии НСТ116 (интактный р53) и сублинии НСТ116р53КО с нефункционирующим р53. Противоопухолевое соединение митоксантрон (эквитоксическая концентрация 2 мкМ) использовано в качестве индуктора р53 (рис.5).

ОТ-ПЦР НСТ116 24ч.

ю

Кеа!-Пте ПЦР НСТ116 24ч.

12 12 12 12 4 5 6 7

Иммуноблоттинг

НСТ116р53КО 24ч.

12 25 12_25_ 2 8

Кб 7 Мит 8

4 6 7 8

12мкМ а 25 мкМ 4 мкМ я8мкМ

Липид

Иммуноблоттинг

НСТ116 24ч.

р21

(В-актин мкМ

- * ~ г.

р21

(З-актин

12

2 8 мкМ

Мит 8

Рис.5. Активация р21жаП/сф1 при действии катионных глицеролипидов

По результатам ОТ-ПЦР в линии НСТ116 экспрессия р21"аП/сф1 возрастает при действии 4, 6 и 7. Количественная ПЦР в реальном времени показала большее увеличение экспрессии р21шаП/Сф1 для глицеролипидов (25 мкМ) после 24 ч инкубации. Соединение 7 вызывало наибольшую активацию р21^/с1р1, действие эдельфозина 8 менее выражено. По результатам иммуноблоттинга повышение р21№аП/сф1 наблюдается в клетках НСТ116 только при действии 7 и 8. На сублинии НСТ116р53КО эта тенденция

\уаЛ/с1р1

- это

воспроизводится; в отличие от 7, соединение 6 не индуцирует р21 может быть опосредовано различной эффективностью задержки клеточного цикла (рис.4). Полученные результаты позволяют считать, что нарушение клеточного цикла вызвано активацией р21™п/с,р1 в ответ на действие 7. Активация р21"аШс1р1 в сублинии НСТ116р53КО поставила вопрос о роли р53 в гибели опухолевых клеток при действии катионных глицеролипидов.

Изучены цитотоксичность 7 на клетках НСТ116 и НСТ116р53КО после 72 ч инкубации и количество фосфорилированного р53 в клетках НСТ116 после 24 ч инкубации с 7 и 6 (рис. 6). Контролем служили эдельфозин 8 и противоопухолевый препарат доксорубицин (Доке) в эквитоксических концентрациях. По результатам МТТ-теста 7 одинаково токсично для клеток с интактным и нефункционирующим р53. Иммуноблоттинг выявил отсутствие фосфо-р53 в ответ на катионные глицеролипиды 6, 7 и на эдельфозин 8. Следовательно, гибель клеток происходит без активации р53.

Иммуноблоттинг

НСТ116 48ч. --р53

------ ■ -(3-актин

2 12 25 12 25 8 мкМ К Доке 6 7 8

Рис.6. р53-независимые эффекты катионных глицеролипидов и

эдельфозина

Изучение связывания клеток с аннексином V и электрофоретический анализ целостности ДНК (рис.7) показали смещение пика аннексина V (исключены клетки, включившие пропидия иодид, Р1) вправо относительно контроля - ранний признак апоптоза. Наибольший сдвиг происходит при действии глицеролипида 7 и эдельфозина 8. После 48 ч инкубации клеток с 6-8 межнуклеосомная фрагментация ДНК не наблюдалась. После 72-часовой инкубации такие фрагменты выявлены при действии трех липидов. Электрофоретическая «лестница» деградировавшей ДНК является поздним событием апоптотической гибели клеток НСТ116 в ответ на действие 6 и 7.

МТТ-тест

липид 7 48ч.

О 10 20 30 40 50 Концентрация 7, мкМ

Двойное окрашивание аннексии \/-Р1, НСТ116, 48ч Фрагментация ДНК

(популяция Апп\/+ Р1-)

НСТ116, 12 мкМ

Контроль

6, 12 мкМ

8, 8мкМ

А 4

10* 10' 10 10' 10' ,ц- 10-

6, 25 мкМ

48ч

72ч

К б 7 8

Рис.7. Апоптоз при действии катионных глицеролипидов и эдельфозина

Детальное установление механизма апоптоза требует исследования активации каспаз 3, 9 и 12 и РАКР при действии 6-8. Контролем служил митоксантрон (Мит).

_ ---- Каспаза-12

Каспаза-9 48ч.

Р-актин Каспаза-3 РАЮ5 72ч.

Р-актин

12_25

12

25

мкМ

Контроль Мит 6 7 8

Рис.8. Активация каспаз и процессинг РАЯР при действии 6-8

На рис.8 показано, что при действии 6 и 7 каспаза-12 не активируется, однако возрастает количество каспазы-9, что свидетельствует об участии

митохондрий в реализации апоптоза при действии катионных глицеролипидов. Активация каспазы-3 и процессинг PARP выявлены в ответ на митоксантрон и эдельфозин 8, глицеролипиды 6 и 7 таких эффектов не вызвали — апоптоз не зависит от каспаз. Межнуклеосомная деградация ДНК в результате каспазонезависимого апоптоза может быть опосредована выходом из межмембранного пространстава митохондрий в цитозоль фактора индукции апоптоза AIF и эндонуклеазы G, которые перемещаются в ядро и способствуют фрагментации ДНК без участия эффекторных каспаз.

Митохондриальный путь апоптоза предполагает снижение трансмембранного потенциала митохондрий. После инкубации клеток НСТ116 с катионными глицеролипидами образцы окрашивали потенциал-зависимым соединением Mitotracker Red и анализировали в проточной цитофлуориметрии (рис.9).

Контроль

8, 8 мкМ"

6 12 мкМ

25 mkIVL

Рис.9. Снижение трансмембранного потенциала митохондрий клеток НСТ116 (48 ч инкубации с 6-8)

Смещение пика влево на гистограммах по сравнению с контрольными необработанными клетками свидетельствует об уменьшении трансмембранного потенциала митохондрий. Этот эффект нарастает с повышением концентрации. Соединение 7 более активно, чем 6; активность сопоставима с действием эдельфозина 8. Эти результаты подтверждают гипотезу о митохондриальном пути апоптоза, индуцированного действием исследуемых соединений.

Поскольку исследуемые соединения - катионные амфифилы, правомерно предположить возможность их взаимодействия с ДНК. Мы исследовали влияние липидов на функционирование топоизомеразы I (рис.10).

ОС18Н37 —ОС2Н5 —ОС(СНг)4-^

ос18н37 -ОС2Н5 I* / —ОС(СН2)4—N4+;*

о

.С2Н„

ос,вн37 _ОС2Н5

—ос(сн2)4— о

7

ос18н37 о

СНз

I в

—О—р—ОСН2СН2—м—СНз о" СНз

ОС18Н37

|—ос18н37 Г

-0С(СН2)Л;

о

ОС18Н37 -ОС2Н5

-ос(сн2)Л; о

10

-- — _ __—¡шцрва

^Суперскруч. ^^ ^^ ^^

ТI ДНКсс 1 5 20 1 5 20 1 5 20 1 5 20 1 5 20 1 5 20 Концентрация липида, мкМ

Рис.10. Влияние глицеролипидов на активность топоизомеразы I

Нами был выбран модификационный ряд глицеролипидов, отличающихся разными структурными единицами: наиболее активный 7 с метилимидазолиевой «головкой», 5 с этильным заместителем в имидазолиевой части, 3 с метилморфолиниевой «головкой», 9 с длинноцепочечным заместителем при 2-м атоме углерода в глицериновом остове, незаряженный глицеролипид 10 с имидазолиевой «головкой» и эдельфозин как соединение

сравнения. Изучали влияние глицеролипидов на способность топоизомеразы I переводить суперскрученную ДНК (ДНКсс) в релаксированную форму.

Механизм ингибирования топоизомеразы I — связывание липидов с ДНК и/или с ферментом. Исследование связывания катионных глицеролипидов с ДНК методами высокочувствительной сканирующей калориметрии и компьютерного моделирования (рис.11) установило, что температуры плавления комплексов липид-ДНК составили 94-99,9°С: связывание достаточно сильное. Компьютерная модель показала предпочтительные сайты связывания: имидазолиевые кольца 5, 7, 9 стремятся расположиться в узкой бороздке, а метилморфолиниевый цикл 3 - в ложбине между фосфатными группами одного из гребней, формирующих узкую бороздку двойной спирали.

Липид Температура

плавления

комплекса

ДНК+липид, °С

3 99,9

5 94,0

7 96,2

9 97,7

10 64,8

Компьютерное моделирование

Высокочувствительная сканирующая калориметрия

глицеролипидов с ДНК

Водородная связь 7 с ДНК

Рис.11. Модели взаимодействия катионных

Также проведен расчет значений свободных энергий связывания липидов с ДНК и топоизомеразой I (табл.2).

Таблица 2. Свободные энергии связывания катионных глицеролипидов с ДНК и топоизомеразой I, ккал/моль

Липид -AG Липид + ДНК связыв. -AG Липид + топо1 СВЯЗЬ! В.

3 5,26 1,36

5 6,48 1,73

7 6,26 3,34

9 2,16 0,6

10 3,51 1,81

Полученные модули значений свободных энергий связывания липидов с ферментом меньше, чем для взаимодействия глицеролипид-ДНК, что означает предпочтительность связывания этих соединений с ДНК. ДНК может быть мишенью для катионных глицеролипидов, если появится возможность доставить такие соединения в ядро.

Таким образом, бесфосфорные катионные глицеролипиды представляют перспективный класс противоопухолевых соединений. В диссертационной работе исследовано цитотоксическое действие модификацонного ряда алкильных катионных глицеролипидов на панели опухолевых клеток и на неопухолевых фибробластах, выявлено лидерное соединение, действие которого изучено подробно. Установлены различия в механизме противоопухолевого действия катионных бесфосфорных глицеролипидов с гетероциклической и алифатической полярными «головками» по сравнению с их фосфатсодержащим предшественником эдельфозином. Исследованные соединения показали важное преимущество над эдельфозином - ослабление гемолиза эритроцитов, что важно для испытаний in vivo. Обнаружены новые мишени действия катионных липидов среди протеинкиназ, на которые эдельфозин не оказывает влияния. Потенциальной мишенью катионных липидов при условии их модификации с целью доставки в ядро является ДНК,

и возможность связывания с дуплексом и ДНК-зависимыми ферментами

открывает новые перспективы противоопухолевого действия соединений

данного класса.

Выводы

1. Новые алкильные катионные глицеролипиды с гетероциклическими полярными доменами вызывают гибель опухолевых клеток в субмикромолярных концентрациях без значительного повреждения неопухолевых клеток. Выявлены наиболее цитотоксические и выбран rac-N-{4-[(2-этокси-3-октадецилокси)пропил]оксикарбонилбутил}-Лг-метилимидазолинийиодид (7) как лидерное соединение.

2. Алкильные катионные глицеролипиды вызывают минимальный гемолитический эффект и слабое повреждение модельной мембраны, что является их преимуществом перед фосфатсодержащим предшественником эдельфозином.

3. Соединение 7 в бесклеточной системе селективно ингибирует протеинкиназы Src, Met, Ins-R, Pim-1 - возможные мишени действия катионных глицеролипидов.

4. Механизмы гибели опухолевых клеток при действии соединения 7 включают задержку клеточного цикла в G1/S, опосредованную активацией p2jwan/ciPi независимо от статуса р53, и последующий апоптоз.

5. Апоптотическая гибель опухолевых клеток при действии липида 7 происходит по митохондриальному пути без активации эффекторных каспаз и расщепления PARP.

6. Алкильные катионные глицеролипиды ингибируют активность топоизомеразы I. Моделирование и калориметрическое исследование выявили возможный механизм этого процесса - связывание липидов с ДНК - с их потенциальной мишенью при условии направленной доставки глицеролипидов в ядро.

Автор выражает благодарность сотрудникам МИТХТ им.М.В.Ломоносова д.х.н.: Г.А.Серебренниковой и М.А.Маслову, к.х.н.:

H.В.Пляв1шк и Н.Г.Морозовой за синтез и предоставление соединений для исследований; к.х.н. Л.Г.Деженковой (НИИИНА им.Г.Ф.Гаузе) за обучение методике исследования топоизомеразы; д.х.н. В.Я.Гринбергу (ИНЭОС им.А.Н.Несмеянова РАН) за помощь в калориметрии; к.х.н. В.Б.Цветкову (ИНХС им.А.В.Топчиева РАН) за создание компьютерных моделей; сотрудникам РОНЦ им.Н.Н.Блохина М.С.Вагида и А.А.Калининой за помощь в проточной цитофлуориметрии, к.б.н. В.А.Глазуновой и В.В.Татарскому за обсуждение результатов исследования.

Публикации по теме диссертации

I. Маркова, A.A. Новые алкильные катионные глицеролипиды с гетероциклическим полярным доменом вызывают нарушения клеточного цикла и гибель клеток лейкоза человека./ A.A. Маркова, Н.В. Плявник, В.В. Татарский мл., A.A. Штиль, Г.А. Серебренникова.// Биоорганическая химия. - 2010. - Т. 36. -№ 4. - С. 574-576.

2. Маркова, A.A. Противоопухолевые бесфосфорные алкильные катионные глицеролипиды с гетероциклическими полярными доменами вызывают значительно меньший гемолиз, чем препарат-прототип эдельфозин./ A.A. Маркова, Н.В. Плявник, М.В. Плетнева, Г.А. Серебренникова, A.A. Штиль.// Клиническая онкогематология. — 2012. - Т. 5. - № 2. - С. 141-143.

3. Маркова, A.A. Противоопухолевые фосфатсодержащие липиды и бесфосфорные алкильные катионные глицеролипиды: особенности химической структуры и клинические перспективы./ A.A. Маркова, Н.В. Плявник, Н.Г. Морозова, М.А. Маслов, A.A. Штиль.// Известия РАН. — 2014. — № 5. — С.1081-1087.

4. Маркова, A.A. Механизм пониженной гемолитической активности бесфосфорных алкильных катионных глицеролипидов: исследование на

модельных мембранах./ А.А. Маркова, С.А. Окороченков, Н.В. Плявник, А.А. Штиль.// Клиническая онкогематология. - 2014. - № 3. — С. 278-281.

5. Маркова, А.А. Исследование новых перспективных противоопухолевых агентов класса алкильных катионных глицеролипидов./ А.А. Маркова, Н.В. Плявник, А.А. Штиль.// Российский биотерапевтический журнал. - 2011. -№ 1.-Т. 10.-С. 39.

6. Tsvetkov, V.B. The DNA minor groove as a new target for antitumor non-phosphorous glycerolipids: biophysical and molecular modeling insights./ V.B. Tsvetkov, V.Y. Grinberg, A.A. Markova, A.A. Shtil.// 20-th EuroQSAR Understanding Chemical-Biological Interactions. - St.Petersburg. - 2014. - P. 214.

7. Маркова, А.А. Бесфосфорные глицеролипиды — класс эффективных противоопухолевых соединений./ А.А. Маркова, JI.JI. Тютюнник, Т.С. Кубасова, В.В. Татарский мл., М.С. Вагида, Г.А. Тимофеев, Н.Г. Морозова, М.А. Маслов, Н.В. Плявник, А.А. Штиль.// Первая конференция по медицинской химии (MedChem Russia-2013). - Москва. - 2013. - С. 91.

8. Маркова, А.А. Новые алкильные катионные глицеролипиды — перспективные противоопухолевые агенты./ А.А. Маркова, Н.В. Плявник, А.А. Штиль.// VI Московский международный конгресс «Биотехнология: состояние и перспективы развития». — Москва. — 2011. — С. 82.

9. Маркова, А.А. Создание противоопухолевых лекарственных агентов класса алкильных катионных глицеролипидов./ А.А. Маркова, Н.В. Плявник, А.А. Штиль, Г.А. Серебренникова.// XIII Международная научно-техническая конференция «Наукоемкие химические технологии». - Иваново, Суздаль. -2010.-С. 219.

Ю.Маркова, А.А. Изучение цитотоксичности катионных алкильных глицеролипидов с различными спейсерными группами./ А.А. Маркова, Н.В. Плявник, Е.В. Шмендель, Н.Г. Морозова, М.А. Маслов, В.В. Чуиин, А.А. Штиль.// Международная научно-практическая конференция «Фармацевтические и медицинские технологии». - Москва. - 2012. - С. 187.

Подписано в печать 22.12.14 Формат 60x84/16. Бумага офисная «БуеЮСору». Тираж 100 экз. Заказ № 4.6 Отпечатано на участке множительной техники ФГБНУ «РОЩ им. Н.Н.Блохнна» 115478, г. Москва, Каширское шоссе, 24