Автореферат и диссертация по медицине (14.00.27) на тему:Экспериментальное изучение возможности использования большого сальника как реваскуляризирующей основы для префабрикации кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов

ДИССЕРТАЦИЯ
Экспериментальное изучение возможности использования большого сальника как реваскуляризирующей основы для префабрикации кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Экспериментальное изучение возможности использования большого сальника как реваскуляризирующей основы для префабрикации кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов - тема автореферата по медицине
Шимбирева, Ольга Юрьевна Москва 2005 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.27
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Экспериментальное изучение возможности использования большого сальника как реваскуляризирующей основы для префабрикации кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов

На правах

Шимбирбва Ольга Юрьевна

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИЗУЧЕНИЕ ВОЗМОЖНОСТИ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ БОЛЬШОГО САЛЬНИКА КАК РЕВАСКУЛЯРИЗИРУЮЩЕЙ ОСНОВЫ ДЛЯ ПРЕФАБРИКАЦИИ КОЖНО-ХРЯЩЕВОГО И КОЖНО-КОСТНОГО АУТОТРАНСПЛАНТАТОВ

(ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ)

14.00.27 - хирургия

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Москва - 2005

Работа выполнена в Российском научном центре хирургии Российской академии медицинских наук

Отдел восстановительной микрохирургии

НАУЧНЫЙ РУКОВОДИТЕЛЬ -

академик РАМН, доктор медицинских наук

профессор

Н.О. Миланов

НАУЧНЫЙ КОНСУЛЬТАНТ -Доктор медицинских наук, профессор

Г.Ф Шереметьева

ОФИЦИАЛЬНЫЕ ОППОНЕНТЫ:

член-корр. РАМН, доктор медицинских наук, профессор

И.В. Решетов.

Доктор медицинских наук, профессор

А А. Вишневский

ВЕДУЩЕЕ УЧРЕЖДЕНИЕ:

Научно-исследовательский институт трансплантологии и искусственных органов МЗ РФ.

Защита диссертации состоится" 21" июня 2005 года в 15 ч 00 мин на заседании Диссертационного совета К.001.27 01 Российского научного центра хирургии РАМН.

Адрес: 119992, Москва, Абрикосовский пер., д. 2

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Российского научного центра хирургии РАМН.

Автореферат разослан "/^2^-2005 года

Ученый секретарь диссертационного совета член.-корр. РАМН, доктор медицинских наук

профессор A.B. Гавриленко

ш

С появлением метода микрохирургической аутотрансплантации тканей значительно расширились возможности устранения дефектов покровных тканей различной локализации. Однако при довольно большом количестве видов ауто-трансплантатов (более 80) и донорских зон для их забора (более 20) невозможность обеспечения необходимого тканевого состава и отсутствие в ряде случаев потенциала традиционных свободных реваскуляризируемых комплексов тканей препятствует оптимальной реконструкции поврежденных покровов Обширные ожоговые, травматические и местные лучевые повреждения исключают возможность использования большинства традиционных донорских зон, сопровождаясь низкими репаративными способностями и кровоснабжением воспринимающего ложа. Инфицирование подобных, длительно существующих, дефектов, а также попытки предыдущих многостадийных реконструкций еще более ограничивают возможности хирурга в выборе подходящих тканей для воссоздания контуров и восстановления утраченных функций (Миланов Н.О., Шилов Б.Л., 1996; Трофимов Е.И., 2001; Harii К., Ohmori К., 1974; McGregor I.A., Morgan R.G. 1973; Pribaz J.J. et al., 1999).

Поиски оптимального решения проблемы закрытия многокомпонентных дефектов путем тканевой аутотрансплантации привели к развитию нового, перспективного и широко изучаемого в мире на сегодняшний день направления в пластической и реконструктивной хирургии - префабрикации тканей. Метод префабрикации включает в себя процесс предварительного формирования комплексов тканей требуемого состава в необходимой донорской зоне на основе механизма неоваскуляризации путем привнесения в выбранную область источника кровоснабжения, завершающийся объединением сосудистых сетей этих тканей (Abbase Е.А. et al., 1995; Colonna M R. et al., 2002; Khouri R.K et al, 1992; Tan B.K. et al., 2004). Префабрикованный аутотрансплантат, сохраняя все положительные качества аутотрансплантата с осевым типом кровоснабжения, максимально соответствует требованиям дефекта, существенно уменьшает травматизацию донорской зоны и преодолевает ограничения, связанные с сосудистой анатомией существующих донорских зон (Dilter J.G et al., 1966; Morrison WA, 2003; Orticochea M„ 1971; Pribaz J.J. et al., 1994, 2001; Washio H., 1971; YaoS.T., 1981).

По данным литературы, наиболее изученным сосудистым носителем для префабрикации является фасциальная сосудистая основа, особенностью которой является относительно медленный темп прорастания сосудов и относительная тонкость получаемых аутотрансплантатов Однако, ее «биологическая активность» в ус-

ловиях инфицированного дефекта 'Al^lMftWSW^ JKaHM и большого сальни

вИВЛИОТЕКА у \

СИ

О» WJ

ка. Большой сальник как пластический материал обладает высокой способностью реваскуляризировать окружающие ткани, способностью к адгезии и устойчивостью к инфекции, имеет наивысшую «биологическую активность» (Либерманн-Мефферт Д, Уайт X., 1989; Миланов Н.О, Шилов Б.Л., 1996; Jaquet Y. et al., 2004; Khouri R.K. et al., 1991) Будучи уникальной и удобной в техническом отношении для реконструкции тканью, большой сальник является недостаточно экспериментально и клинически изученной основой для префабрикации аутотрансплантатов. Анализ современного состояния префабрикации сложных составных аутотрансплантатов показывает, что метод перспективен в отношении закрытия инкурабельных дефектов. Однако, при довольно активно развивающейся методике префабрикации, свойства и надежность префабрикованных аутотрансплантов, особенно в условиях инфицирования, остаются неизученными и имеют большое значение для дальнейшего развития метода и его широкого применения в клинической практике.

Цель работы: определение в эксперименте возможности использования большого сальника как реваскуляризирующей основы при формировании кожно-хря-щевого и кожно-костного аутотрансплантатов для широкого применения метода префабрикации тканей в клинической практике.

Для достижения цели потребовалось решение следующих задач:

1. Разработать экспериментальную модель префабрикации сложных составных аутотрансплантатов на основе большого сальника, содержащих в своем составе костную или хрящевую ткани, на мелких лабораторных животных.

2. Изучить реваскуляризирующие свойства большого сальника как сосудистого носителя для префабрикации сложных составных аутотрансплантатов, содержащих в своем составе костную или хрящевую ткани в эксперименте на мелких лабораторных животных.

3. Определить сроки реваскуляризации костной и хрящевой тканей в составе сложных составных аутотрансплантатов, префабрикованных на основе двухслойного большого сальника, у мелких лабораторных животных.

4. Определить возможность и оптимальные сроки ротации префабрикованных, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, аутотрансплантатов, включающих в свой состав костную или хрящевую ткани в эксперименте на мелких лабораторных животных.

5. Разработать модель локализованного гнойного воспаления префабрикованных, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника ауто-

трансплантатов, содержащих в своем составе костную или хрящевую ткани, в эксперименте на мелких лабораторных животных, б. Изучить жизнеспособность префабрикованных, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника аутотрансплантатов, включающих в свой состав костную или хрящевую ткани, в условиях инфицирования на мелких лабораторных животных. Научная новизна. Разработана модель префабрикации реваскуляризируемых сложных составных аутотрансплантатов на основе двухслойного большого сальника, содержащих в своем составе костную или хрящевую ткани, и модель локапизовано-го гнойного воспаления в этих префабрикованных аутотрансплантатах в эксперименте на мелких лабораторных животных.

Впервые проведено изучение реваскуляризирующих свойств большого сальника в качестве сосудистой основы для префабрикации кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов в эксперименте на мелких лабораторных животных.

Впервые выполнена ротация префабрикованных кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, в эксперименте на мелких лабораторных животных.

Впервые исследована жизнеспособность префабрикованных кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, в условиях инфицирования в эксперименте на мелких лабораторных животных.

Практическая значимость. В эксперименте на мелких лабораторных животных показана возможность использования двухслойного большого сальника для префабрикации костной и хрящевой тканей.

Показана возможность закрытия дефектов путем ротации префабрикованных, реваскуляризируемых на основе большого сальника, кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов в эксперименте на мелких лабораторных животных.

Модель локализованного гнойного воспаления позволяет оценить потенциальную способность к выживанию префабрикованных реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника аутотрансплантатов, включающих в состав костную или хрящевую ткани, в условиях инфицирования Экспериментально показана возможность использования кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов, префабрикованных на основе большого сальника, в условиях инфицирования с сохранением их жизнеспособности на мелких лабораторных животных. Апробация работы. Основные материалы диссертации доложены:

б

• на III Конференции молодых ученых России с международным участием «Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины», посвященной 60-летию РАМН, Москва, 20-24 января 2004 г. (диплом за лучшую работу по секции «Хирургия»);

• на научной конференции молодых ученых «Новое в реконструктивной хирургии», посвященной Дню основания РНЦХ РАМН, Москва, 19 марта 2004 г. (диплом за лучшую научную работу в области восстановительной и пластической хирургии);

• на всероссийской конференции с международным участием «Современные аспекты экспериментальной и клинической хирургии», посвященной 100-летию со дня рождения заслуженного деятеля науки РСФСР, чл -корр. АМН СССР, проф. Г Е. Островерхова, Москва, 25 ноября 2004 г.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 8 работ в научной печати. Объем и структура работы. Диссертация изложена на 171 странице машинописного текста, состоит из введения, 4 глав, заключения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы, который содержит 60 отечественных и 175 зарубежных источников. Работа иллюстрирована 63 рисунками и схемами, содержит 21 таблицу.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ Экспериментальное исследование выполнено на 172 лабораторных крысах линии Вистар (WAG/GSto) мужского пола, весом от 200 до 350 г. Проведено 8 серий экспериментов. Распределение животных по сериям исследований представлено в таблице 1.

Таблица 1

Распределение животных по сериям исследований

№Серии Вид операции Количество животных

серии 1 и2 Префабрикация реваскуляризируемых на основе большого сальника кожно-хрящевого и кожно-костного ауто-трансплантатов 80

серии 3 и 4 Ротация префабрикованных реваскуляризируемых на основе большого сальника кожно-хрящевых и кожно-кост-ных аутотрансплантатов 40

Пробные серии 1 и2 Выбор бактериального агента и оптимальной микробной нагрузки для инокуляции префабрикованных реваскуляризируемых на основе большого сальника сложных составных аутотрансплантатов 12

серии 5 и 6. Инокуляция префабрикованных реваскуляризируемых на основе большого сальника кожно-хрящевых и кожно-костных аутотрансплантатов 40

Всего 172

Проводили макроскопическое и морфологическое исследования аутотранс-ппантатов, префабрикованных на основе большого сальника. Все аутотранспланта-ты после забора фиксировали в 10% нейтральном формалине, обезвоживали в се, рии этанола восходящей концентрации, заключали в парафин. Срезы депарафини-ровали, затем окрашивали гематоксилином и эозином по методу Ван-Гизон. Декальцинацию фрагментов префабрикованных аутотрансплантатов, содержащих в своем

I

I составе кость, перед обезвоживанием осуществляли в течение 24 ч. Морфологичес-

кие исследования проведены совместно с заведующим патологоанатомического отделения РНЦХ РАМН д.м.н., профессором Г.Ф.Шереметьевой.

В 5-й и 6-й сериях осуществляли бактериологическое исследование префабрикованных аутотрансплантатов. Бактериологические исследования проведены в Лаборатории профилактики и лечения инфекции в хирургии РНЦХ РАМН (зав. к.м.н. Н С. Богомолова) совместно с ведущим научным сотрудником лаборатории к.м.н. Л.В. Большаковым.

Распределение материала по видам исследований представлено в таблице 2.

Таблица 2

Распределение материала по видам исследований

Виды исследований Количество аутотрансплантатов

Макроскопическое 172

Морфологическое 172

Бактериологическое 52 + 10*

* - исследование мазков-отпечатков с кожи интакгных крыс

Анестезию у крыс осуществляли интраперитонеальным введением 1% раствора тиопентала натрия в дозе 0,8-1,0 мл из расчета 30-35 мг/кг веса животного.

В первой и второй сериях исследований осуществляли префабрикацию реваску-ляризируемого на основе большого сальника кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантов.

Методика состоит из двух этапов: предварительного формирования (префаб-рикации) аутотрансплантата и автономизации префабрикованного аутотранспланта-та. В первой серии исследования в качестве хрящевого компонента формируемого аутотрансплантата был выбран мечевидный отросток грудины крысы, размерами в среднем 1,0x0,8x0,2 см. Во второй серии экспериментов как дополнительный тканевой компонент использовали некровоснабжаемый, резецированный субпериосталь-но, аутотрансплантат из малоберцовой кости размерами в средней 1,8x0,3x0,2 см.

В обеих сериях экспериментов первым этапом осуществляли префабрикацию сложных составных аутотрансплантатов, реваскуляризируемых на основе большого

сальника. Выводили мобилизованный фрагмент большого сальника размерами 4x2 см, сложенный вдвое, с тканевым компонентом внутри (хрящ или кость), уложенным между слоями большого сальника, на правых желудочно-сальниковых артерии и вене под кожу в эпигастральной области справа и отделяли большой сальник от подлежащих тканей силиконовой пластинкой размерами 3,5x2,5 см. Оставляли дефект мышц передней брюшной стенки длиной 0,7 см для проведения сосудистой ножки аутотрансплантата. Тканевой компонент для формирования сложного составного аутотрансплантата всегда забирали после мобилизации сальникового лоскута и незамедлительно переносили в реваскуляризирующую основу.

Вторым этапом в сроки 7, 14, 21 и 30 суток после этапа префабрикации сложных составных кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантов производили их мобилизацию. Выполняли разрез кожи передней брюшной стенки, совпадающий с проекцией префабрикованного аутотрансплантата на кожу. При этом пересекали и лигировали проходящие в кожных мостиках верхние и нижние поверхностные эпи-гастральные сосудистые пучки, лишая кожу естественного кровоснабжения. Поднимали аутотрансплантат, затем после удаления силиконовой прослойки вновь фиксировали его на прежнее место. Таким образом, кровоснабжение аутотрансплантата становилось возможным только за счет сосудов большого сальника.

Через 4 суток после выполнения второго этапа методики производили оценку префабрикованных аутотрансплантатов путем макроскопического и морфологического исследований. Дефект кожного покрова в области передней брюшной стенки крысы после забора префабрикованного аутотрансплантата закрывали методом пластики местными ротированными кожными лоскутами.

В рамках макроскопического исследования осуществляли морфометрию методом наложения планиметрической линейки с площадью каждого гнездового квадрата в 1 см2 . При этом средняя площадь всех сложных составных аутотрансплантатов, префабрикованных на основе большого сальника, составляла 6 см2. Процентное выражение зоны жизнеспособной кожи аутотрансплантата вычисляли по формуле: С = А/В х 100, где С - зона жизнеспособной кожи аутотрансплантата (%); А - площадь жизнеспособной кожи аутотрансплантата (см2), В - общая площадь аутотрансплантата (см2).

В третьей и четвертой сериях исследований выполняли перемещение кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов, префабрикованных на основе большого сальника в шейно-грудинную область крысы на максимальную длину сосудистой ножки аутотрансплантата. Методика состоит из двух этапов: предварительного формирования (префабрикации) аутотрансплантата и ротации префабрикованного аутотрансплантата.

Первым этапом выполняли префабрикацию реваскуляризируемого сальнико-во-хрящевого или сальниково-костного аутотрансплантатов по представленной ранее методике с использованием дополнительного технического приема перед выведением заранее подготовленного аутотрансплантата под кожу правой эпигастраль-ной области. Длина сосудистой ножки сальникового аутотрансплантата у крыс после его мобилизации составляла 4-6 см. Для атравматичного выделения сосудистой ножки на этапе ротации аутотрансплантата, на этапе префабрикации погружали её на всем протяжении в'сосудистый протез «Экофлон» диаметром 0,8 см, контролируя отсутствие повреждения и сдавления питающих сосудов.

Вторым этапом выполняли ротацию префабрикованных, реваскуляризируе-мых на основе двухслойного большого сальника, кожно-хрящевого (через 14, 30 суток) или кожно-костного (через 21, 30 суток) аутотрансплантатов в шейно-грудинную область крысы. По описанной ранее методике мобилизовывали и поднимали пре-фабрикованные аутотрансплантаты на правой желудочно-сальниковой сосудистой ножке. Деликатно извлекали питающую ножку аутотрансплантата из сосудистого протеза. Затем иссекали кожный лоскут в шейно-грудинной области крысы размерами 3x2 см с учетом длины сосудистой ножки и параметров префабрикованного аутотрансплантата, моделируя дефект покровных тканей. Через сформированный под кожей туннель шириной 3,5 см ротировали префабрикованный аутотрансплантат на сосудистой ножке в область дефекта. При отсутствии натяжения, сдавления или деформации питающих сосудов фиксировали аутотрансплантат к коже. Таким образом, питание префабрикованных аутотрансплантатов после ротации осуществлялось только за счет сосудов большого сальника. Дефект в области передней брюшной стенки крысы закрывали методом пластики местными ротированными кожными лоскутами.

Сроки для второго этапа выбирали на основании результатов 1-й и 2-й серий исследований Срок префабрикации в 21 сутки в третьей серии экспериментов сочли возможным пропустить как промежуточный. Площадь ротированных префабрикованных аутотрансплантатов в обеих сериях также составила, в среднем, 6 смг. Оценку префабрикованных аутотрансплантатов проводили через 7 суток после выполнения второго этапа методики аналогично таковой в двух первых сериях исследований. Дефект кожного покрова в шейно-грудной области крысы после забора префабрикованного аутотрансплантата закрывали посредством местной кожной пластики.

В ходе экспериментального исследования животные в I - IV сериях исследований были разделены на группы в соответствии со сроком префабрикации аутотрансплантата В состав каждой группы входило по 10 крыс.

В пятой и шестой сериях исследований производили инокуляцию кожно-хря-щевого и кожно-костного префабрикованных аутотрансплантатов бактериальным агентом, моделируя процесс острого локализованного гнойного воспаления в тканях аутотрансплантата.

Методика состоит из трех этапов: предварительного формирования (префаб-рикации) аутотрансплантата, автономизации и инокуляции префабрикованного аутотрансплантата. \

Техника выполнения операций первых двух этапов эксперимента в пятой и '

шестой сериях идентична таковым в первой и во второй сериях исследования, соответственно. Срок префабрикации всех аутотрансплантатов составил 30 суток. Макроскопическую оценку кожи префабрикованных аутотрансплантатов проводили через 4 суток после выполнения второго этапа методики.

После чего животных разделили на группы в соответствии с уровнем инокуляции префабрикованного аутотрансплантата В I группе инокуляцию осуществляли под аутотрансплантат (под сосудистый носитель), во II группе бактериальный агент вводили в аутотрансплантат между сосудистым носителем и тканевым компонентом (хрящом или костью). В состав каждой группы входило по 10 крыс.

Третьим этапом через 7 суток после выполнения второго этапа методики производили инокуляцию аутотрансплантатов Для заражения всех аутотрансплантатов использовали суточную культуру эталонного лабораторного штамма Staphylococcus aureus АТСС 25923 в разведении 1x10е колониеобразующих единиц в 1 мл физиологического раствора (КОЕ/мл). Под нижней границей аутотрансплантата, отступив на 0,5 см, производили прокол кожи и проводили инъекционную иглу на требуемый уровень. После идентификации уровня-мишени вводили заражающую дозу в объеме 1 мл физиологического раствора.

Оценку префабрикованных аутотрансплантатов проводили через 4 суток после выполнения третьего этапа методики аналогично таковой в двух первых сериях исследований. Площадь префабрикованного аутотрансплантата в обеих сериях исследований также составила, в среднем, 6 см2. Кроме того, осуществляли бактериологическое исследование всех инокулированных сложных составных аутотрансплантатов, префабрикованных на основе двухслойного большого сальника. Дефект кожного покрова в области передней брюшной стенки крысы после забора префабрикованного аутотрансплантата закрывали методом пластики местными ротированными кожными лоскутами.

Предварительно с целью выбора оптимального бактериального агента, заражающей дозы для крысы и префабрикованного аутотрансплантата провели поиско-

вую работу. Объектами исследований in vitro явились 4 штамма аэробных бактерий, выделенных от 62 животных: Staphylococcus epidermidis - 3 штамма, выделенные с кожных покровов в области передней брюшной стенки лабораторных животных и Staphylococcus aureus -1 штамм (АТСС 25923).

Выполнили две пробные серии по инокуляции префабрикованных аутотранс-плантатов культурами S. epidermidis и культурами эталонного штамма S. auereus АТСС 25923 в дозе 1x10* и 1x10® КОЕ/мл в качестве микробной нагрузки. В каждой из 4-х групп было по 3 крысы

В группе по инокуляции префабрикованных аутотрансплантатов культурой S. auereus АТСС 25923 в дозе 1x10е КОЕ/мл в качестве микробной нагрузки согласно микробиологическим критериям был достигнут критический уровень обсемененности тканей лоскута (выше 105-10в КОЕ/г), при котором в ране возникает инфекционный процесс. В префабрикованных аутотрансплантатах этой группы наблюдали явления острого очагового гнойного воспаления различной степени выраженности. При гистологическом исследовании препаратов отмечены, отграниченные грануляционным валом, очаги гнойного воспаления.

На основании полученных результатов сочли оптимальным бактериальным агентом для инфицирования сложных составных аутотрансплантатов, префабрикованных на основе двухслойного большого сальника, у крыс культуру S. aureus АТСС 25923 в сублетальной заражающей дозе 1x10° КОЕ/мл.

При бактериологическом исследовании всех сложных составных аутотрансплантатов, префабрикованных на основе двухслойного большого сальника, выделена монокультура S. aureus АТСС 25923 с различной степенью микробной обсемененности биоптатов (1x10е - 1x10® КОЕ/г), превышающей критический уровень, необходимый для развития инфекционного процесса в ране. Результаты представлены в таблице 3 и 4.

Таблица 3

Результаты бактериологического исследования в пятой серии экспериментов по инокуляции кожно-хрящевых аутотрансплантатов, префабрикованных на основе двухслойного большого сальника

Количество Микробная обсемененность аутотрансплантата, КОЕ/г

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10

5 с е I группа (год лоскут) 10е 5х107 5x107 10е 5x10е 10е 5x107 5x1 107 10®

Р и я II группа (в лоскут) 10е 5x1 Cf 107 107 109 10е 5x107 10е 10е 10е

Таблица 4

Результаты бактериологического исследования в шестой серии экспериментов по инокуляции кожно-костных аутотрансплантатов, префабрикованных на основе двухслойного большого сальника

Количество животных Микробная обсемененность аутотрансллантата, КОЕ/г

1 2 3 4 5 в 7 8 9 10

6 с е Р и я 1 группа (под лоскут) 107 107 5x107 5x107 5x107 ю7 5x107 107 5x107 10'

II группа (влооут) 10е 5x107 107 107 107 ю7 5x1 ОР 5x10? 5x107 107

Следовательно, по микробиологическим критериям, в обеих сериях исследований была получена модель локализованной гнойной инфекции в сложных составных аутотрансплантатах, префабрикованных на основе большого сальника.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

В первой и во второй сериях экспериментов при макроскопическом анализе аутотрансплантатов 1-х групп, со сроком префабрикации 7 суток, зона жизнеспособной кожи аутотрансплантатов составила 86,2% и 89,4%, соответственно. Процентное соотношение площади жизнеспособной кожи к общей площади кожи префабрикованных аутотрансплантатов во II, III и IV группах обеих серий составило 100%. Макроскопическая картина всех префабрикованных аутотрансплантатов в этих группах обеих серий практически идентична. Однако в 111—ж и IV-x группах к 21 и 30 суткам префабрикации в обеих сериях отмечено истончение аутотрансплантатов за счет уменьшения толщины жировой ткани большого сальника.

При морфологическом исследовании аутотрансплантатов в 1-х группах обеих серий было выявлено нормальное строение кожи и её придатков, признаки реваску-ляризации кожи за счет сосудов большого сальника. На границе сальника и кожи, а также сальника и тканевого компонента (хряща или кости) отмечено большое количество сосудов, среди которых преобладают синусоидальные Выявлено сращение структур аутотрансллантата между собой. Обнаружена небольшая круглоклеточная инфильтрация преимущественно лимфоцитарного типа в большом сальнике, вокруг сосудов и в зонах сращения компонентов аутотрансллантата. Вокруг тканевых компонентов отмечено формирование фиброзной капсулы. В препаратах I группы, со сроком префабрикации 7 суток, в первой серии экспериментов хрящ в основном сохраняет нормальную структуру, покрыт надхрящницей. В препаратах I группы, со сроком префабрикации 7 суток, во второй серии экспериментов периостальная поверхность костного трансплантата гладкая, на всем протяжении не покрыта надкостни-

цей Некоторые ядра остеоцитов в лакунах остеона не окрашиваются. Другие окрашиваются интенсивно В жировом костном мозге видны тканевые кисты Отмечено небольшое расширение отдельных сосудистых каналов кортикального слоя диафиза вблизи костномозгого канала и со стороны периостальной поверхности трансплантата. Таким образом, структура кости достаточно сохранна При морфологическом исследовании префабрикованных аутотрансплантатов II, III и IV групп обеих серий со сроками префабрикации 14, 21 и 30 суток, соответственно, обнаружено нормальное строение кожи и наличие всех ее элементов с отчетливой реваскуляризацией кожи за счет сосудов большого сальника На границе сальника и кожи, а также сальника и тканевого компонента (хрящи или кости) выявлено преобладание зрелых сосудов с утолщенной стенкой за счет гипертрофии мышечного слоя. Встречаются также тонкостенные сосуды синусоидального типа, преимущественно во II группе В препаратах II, III и IV групп первой серии хрящевой компонент аутотрансплантата сохраняет нормальное строение, покрыт надхрящницей. Отмечено созревание соединительной ткани фиброзной капсулы вокруг хряща во II группе, к 14 суткам префабрикации, с последующим утолщением её при удлинении сроков префабрикации Очаги круг-локлеточной инфильтрации сохраняются в ткани аутотрансплантата во II группе В препаратах II, III и IV групп второй серии по периостальной поверхности костного трансплантата надкостница отсутствует на всем протяжении В лакунах кортикального слоя диафиза расположены остеоциты с хорошо окрашиваемыми ядрами. Жировой костный мозг нормального строения. Отмечено небольшое расширение части сосудистых каналов кортикального слоя диафизарной кортикальной пластинки Фиброзная капсула вокруг кости характеризуется неравномерной толщиной и степенью зрелости соединительной ткани, созревающей к 21 суткам префабрикации, в III группе. Результаты исследований в первой и второй серий исследований представлены в таблице 5.

Таблица 5

Жизнеспособность кожно-хрящевых и кожно-костных аутотрансплантатов, префабрикованных на основе двухслойного большого сальника, по группам в зависимости от срока префабрикации в первой и во второй сериях исследований

Распределение животных Количество наблюдений Структура Среднее значение зоны живой кожи, % (М ± т)

хряща кости

1 серия 2 серия 1 серия 2 серия

1и2 с е Р и и I (7 суток) 10 сохранна сохранна 86,2 ± 3,2 89,4 ±2,7

II (14 суток) 10 сохранна сохранна 100,0 ±0 100,0 ±0

III (21 сутки) 10 сохранна сохранна 100,0 ±0 100,0 ±0

IV (30 суток) 10 сохранна сохранна 100,0 ±0 100,0 ±0

На основании полученных результатов считаем, что формирование жизнеспособного кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов на основе двухслойного большого сальника, пригодного к использованию 8 реконструктивных целях, происходит к 14 и 21 суткам периода префабрикации у крыс, соответственно.

В третьей и четвертой сериях экспериментов при макроскопическом анализе в фуппах по ротации кожно-хрящевого или кожно-костного аутотрансплантатов, пре-фабрикованных на основе двухслойного большого сальника в течение 14 и 30 суток или 21 и 30 суток, соответственно, зона жизнеспособной кожи у всех ротированных аутотрансплантатов составила 100%.

При макроскопическом исследовании ротированных префабрикованных аутотрансплантатов в обеих группах в этих двух сериях также отмечено их истончение за счет резорбции жировой ткани большого сальника, больше выраженное во И-х группах со сроком префабрикации 30 суток.

При морфологическом исследовании префабрикованных аутотрансплантатов этих групп в обеих сериях была выявлена нормальная структура кожи и наличие веек ее придатков. Обнаружены отчетливые признаки реваскуляризации кожи за счет сосудов сальника, произошло сращение всех элементов аутотрансплантата между собой. Структура хряща в обеих группах третьей серии сохранна. В части наблюдений отметили небольшие дегенеративные изменения по периферии хряща с явлениями регенерации со стороны перихондрия. Отметили утолщение фиброзной капсупы вокруг хряща, представленной зрелой соединительной тканью, при удлинении сроков префабрикации. Явления регенерации хрящевого компонента после ротации аутотрансплантата выявлены в 4-х из 10-ти префабрикованных аутотрансплантатов I группы и в 3-х из 10-ти - II группы.

В I и во II группах четвертой серии со сроками префабрикации 21 и 30 суток, соот-ветственно, на фоне сохранной структуры кости и расширения части сосудистых ка-налов в большей части наблюдений, в некоторых наблюдениях выявлены не резко выраженные дегенеративные изменения в виде явлений резорбции по периостальной поверхности костного компонента аутотрансплантата или небольшого увеличения медуллярной полости за счет резорбции костной ткани со стороны эндостальной поверхности диафиза с частичным склерозом медуллярной ткани на фоне расширения части сосудистых каналов в обоих случаях Тонкая фиброзная капсула вокруг кости представляла собой зрелую соединительную ткань. Дегенеративные изменения кости отмечены в 2-х из 10-ти префабрикованных аутотрансплан-

татов I группы и в 2-х из 10-ти - II группы. Результаты экспериментов в четвертой серии представлены в таблице 6.

Таблица б

Жизнеспособность ротированных кожно-хрящевых и кожно-костных аутотрансплантатов, префабрикованных на основе двухслойного большого сальника, по группам в зависимости от срока префабрикации в третьей и в четвертой сериях исследований

Распределение животных Количество наблюдений/ из них с дегенеративными изменениями Структура Среднее значение зоны живой кожи, % (М±т)

хряща кости

хряща кости 3 серия 4 серия 3 серия 4 серия

Зи 4 с е (14 суток), 1 (21 сутки) 10/4 10/2 сохранна сохранна 100,0 ±0 100,0 ±0

Р и и II (30 суток) 10/3 10/2 сохранна сохранна 100,0 ±0 100,0 ±0

В результате экспериментов было показано, что ротация жизнеспособного кожно-хрящевого и кожно-костного префабрикованных на основе двухслойного большого сальника аутотрансплантатов с целью реконструкции тканей в области дефекта осуществима с периода префабрикации в 14 и 21 сутки у крыс.

В пятой и шестой сериях экспериментов при макроскопическом анализе кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов, префабрикованных на основе двухслойного большого сальника в течение 30 суток зона жизнеспособной кожи у всех инокулированных аутотрансплантов составила 100%. Все префабрикованные аутотрансплантаты в этих группах продемонстрировали явления гнойного воспаления. После иссечения аутотрансплантата выявлен очаг гнойного воспаления в первой группе под аутотрансплантатом или в его нижних слоях. Во второй группе - непосредственно в зоне тканевого компонента: вокруг или под ним, отделенный тонкой прослойкой ткани большого сальника (сосудистого носителя). В момент вскрытия очага воспаления получали сливкообразное гнойное отделяемое желтовато-зеленоватого цвета.

При гистологическом исследовании префабрикованных аутотрансплантатов этих групп структура кожи и ее придатков сохранна с реваскуляризацией последней за счет сосудов сальника. Все компоненты префабрикованного аутотрансплантата

сращены между собой В препаратах I и II групп обеих серий определяли умеренно выраженную диффузную и очаговую лейкоцитарную инфильтрацию ткани сальника. Выявлены, отграниченные фиброзной тканью, участки гнойного воспаления с образованием абсцессов В I группе обеих серий тканевые компоненты отделены широким слоем ткани сальника от очага гнойного воспаления и сохраняют нормальную структуру. В единичном препарате I группы пятой серии наблюдали явления регенерации хряща по периферии на фоне незначительных дегенеративных изменений хрящевого трансплантата. В I группе шестой серии в единичных препаратах отмечено незначительное склерозирование медуллярной ткани. В препаратах II группы обеих серий выявлена выраженная очаговая и диффузная лейкоцитарная инфильтрация. Под или вокруг тканевых компонентов аутотрансплантатов обнаружены очаги абсцедирующего гнойного воспаления. Во II группе пятой серии отмечены не резко выраженные дегенеративные изменения по периферии хрящевого компонента ауто-трансплантата с явлениями регенерации при расположении гнойного очага вокруг хряща. Фиброзная капсула, окружающая хрящевой трансплантат, значительно утолщена во всех отделах и лежит в грануляционной ткани. При наличии тонкой прослойки сальника между очагом гнойного воспаления и хрящом последний сохраняет нормальную структуру, фиброзная капсула значительно утолщена со стороны воспаления. При морфологическом исследовании префабрикованного аутотрансплантата после инокуляции выявлены дегенеративные изменения хрящевого компонента в 1-ом из 10-ти препаратов I группы и в 2-х из 10-ти препаратов II группы. В препаратах II группы шестой серии при наличии тонкой прослойки сальника между очагом воспаления и костью структура кости сохранна. Периостальная поверхность диафиза не покрыта надкостницей, неровная, окружена фиброзной капсулой. Ядра большинства остеоцитов интенсивно окрашены В сосудистых каналах определяются капилляры, часть сосудистых каналов расширена Костномозговой канал заполнен жировым костным мозгом с явлениями незначительного склерозирования медуллярной ткани. При расположении гнойного очага вокруг кости в аутотрансплантате встречаются небольшие зоны костной ткани, лакуны остеонов которой не содержат остеоцитов. Костномозговой канал заполнен фиброретикулярной тканью. Дегенеративные изменения костного компонента в префабрикованном аутотрансплантате после инокуляции выявлены при морфологическом исследовании в 4-х из 10-ти препаратов I группы и II группы При этом изменение структуры кости отмечено в 1-м из 10-ти препаратов во II группе вследствие расположения костного компонента непосредственно в центре зоны нагноения Результаты экспериментов в шестой серии представлены в таблице 7

Таблица 7

Жизнеспособность инокулированных кожно-хрящевых и кожно-костных ауто-трансплантатов, префабрикованных на основе двухслойного большого сальника, по группам в зависимости от уровня инфицирования в пятой и шестой сериях

исследований

Распределение животных Количество наблюдений/ из них с дегенеративными изменениями Структура Среднее значение зоны живой кожи,% (М ± т)

хряща кости

хряща кости 5 серия 6 серия 5 серия 6 серия

5и6 с е Р и и 1 (30 суток, под лоскут) 10/1 10/4 сохранна сохранна 100,0 ±0 100,0 ±0

II (30 суток, в лоскут) 10/2 10/4 сохранна 1 изменена 100,0 ±0 100,0 ±0

9 сохранна

В результате экспериментов было показано, что жизнеспособный кожно-хря-щевой и кожно-костный аутотрансплантаты, префабрикованные на основе двухслойного большого сальника в течение 30 суток, практически полностью нивелируют действие бактериального агента при инокуляции под сосудистый носитель, инкапсулируя гнойный очаг и препятствуя проникновению инфекции к хрящевому или костному компоненту лоскута, однако незначительные дегенеративные изменения костного компонента в части препаратов были выявлены. Таким образом, устойчивость префабрикованного кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов к бактериальному загрязнению довольно высока.

При инокуляции в лоскут (к хрящу или кости) жизнеспособный кожно-хрящевой или кожно-костный аутотрансплантаты, префабрикованные на основе двухслойного большого сальника в течение 30 суток, демонстрируют не резко выраженные или умеренные дегенеративные изменения костного или хрящевого компонента лоскута с явлениями регенерации хряща в условиях доступа бактериального агента непосредственно к мечевидному отростку грудины. Однако, как и при наличии прослойки сальника, отграничивающей хрящ от гнойного очага, структура мечевидного отростка сохранена Следовательно, жизнеспособность префабрикованного кожно-хрящевого аутотрансплантата в условиях инфицирования хрящевого компонента существенно не снижается. При гибели части хрящевых клеток структура и форма трансплантата восстанавливается за счет регенерации со стороны перихондрия В условиях доступа бактериального агента непосредственно к малоберцовой кости отмети-

ли изменение структуры костного компонента аутотрансплантата. Таким образом, жизнеспособность префабрикованного кожно-костного аутотрансплантата в условиях инфицирования костного компонента существенно ограничена.

На основании анализа полученных данных считаем, что использование жизнеспособного кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов, префабрикован-ных на основе двухслойного большого сальника, в реконструктивных целях предпочтительно при неинфицированных дефектах. Тем не менее, возможно их применение в случае инфицированных дефектов после снижения уровня микробной обсеменен-ности ниже 1х105 КОЕ/ г или их полной санации в сочетании с проведением адекватной антибактериальной терапии. Выживаемость префабрикованных, реваскуляризи-руемых на основе двухслойного большого сальника, кожно-костных аутотрансплантатов в условиях инфицирования ниже, чем кожно-хрящевых аутотрансплантатов.

ВЫВОДЫ

1 Метод префабрикации тканей открывает возможности для создания различных моделей сложных составных аутотрансплантатов на основе большого сальника, включающих в состав кожу, хрящ или кость в соответствии с требованиями планируемого исследования.

2. В эксперименте на крысах доказано, что большой сальник является адекватной реваскуляризирующей основой для префабрикации сложных составных ауто-трансплантов, содержащих в своем составе хрящ или кость.

3. Формирование жизнеспособных кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, происходит у крыс через 14 суток и 21 сутки после префабрикации соответственно.

4 Ротация полученных жизнеспособных, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, аутотрансплантатов, содержащих в своем составе хрящ или кость, для закрытия дефектов у крыс возможна после 14 или 21 суток префабрикации соответственно.

5. Количественный показатель содержания бактерий в 1 г тканей, являясь объективным тестом, отражает характер процесса гнойного воспаления и позволяет судить о его развитии в тканях префабрикованного аутотрансплантата.

6 В эксперименте на крысах показано, что префабрикованные, реваскуляриэируе-мые на основе двухслойного большого сальника, аутотрансплантаты, содержащие в своем составе хрящ или кость, способны сохранять жизнеспособность в условиях инфицирования

7 Выживаемость префабрикованных, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, кожно-костных аутотрансплантатов в условиях инфицирования ниже, чем кожно-хрящевых аутотрансплантатов

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

п

1. В процессе формирования сальникового аутотрансплантата у крыс рекомендуем деликатно обращаться с тканью большого сальника и бережно выделять сосу-

^ дистую ножку с пересечением желудочных ветвей на максимальном расстоянии

от желудочно-сальниковых сосудов, что предупреждает их повреждение Участок сальникового аутотрансплантата с необратимо нарушенным кровообращением рекомендуем удалить, предупреждая развитие процесса гнойного воспаления в аутотрансплантате.

2. При ушивании брюшной полости рекомендуем оставлять дефект мышц передней брюшной стенки длиной 0,7 см для выведения сосудистой ножки сальникового аутотрансплантата, что позволяет сохранить адекватность его кровоснабжения и не приводит к формированию грыжи или эвентрации у крыс.

3. В случае планируемой ротации или микрохирургической аутотрансплантации сформированного сложного составного комплекса тканей, на этапе префабрика-ции рекомендуем погружать его питающую ножку в сосудистый протез, предупреждая повреждение питающих сосудов аутотрансплантата при последующем выделении и подъеме префабрикованного аутотрансплантата у крыс.

4. Забор тканевых компонентов (кости и хряща) для формирования префабрикованного аутотрансплантата у крыс рекомендуем осуществлять после выделения сальникового аутотрансплантата и переносить их в реваскуляризирующую основу с минимальной отсрочкой, что позволяет сохранить репаративные способности аутотрансплантатов.

5 Фиксацию сформированного сальникового аутотрансплантата (с тканевым компонентом внутри) к коже рекомендуем производить, не полностью затягивая первый узел и оставляя петлю, а два последующих узла завязывая плотно поверх петли во избежание повреждения и смещения аутотрансплантата в послеоперационном периоде у крыс. Силиконовую пластинку рекомендуем фиксировать, отступив на 3 мм от края дефекта мышц передней брюшной стенки, предупреждая сдавление

* сосудистой ножки аутотрансплантата

6 При ротации у крыс префабрикованных реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника аутотрансплантатов, содержащих в своем составе хрящ или кость, особое внимание рекомендуем уделять максимально щадящему выделению сосудистой ножки аутотрансплантата из сосудистого протеза, от-

сутствию натяжения и сдавления питающей ножки аутотрансплантата на всем протяжении, последняя должна свободно располагаться в подкожном туннеле.

7. Префабрикованные реваскуляризируемые на основе большого сальника ауто-трансплантаты, содержащие в своем составе хрящ или кость, целесообразно применять при неинфицированных дефектах у крыс, однако возможно их использование в условиях бактериального загрязнения реципиентного ложа в составе комплексного лечения инфицированного дефекта

t

СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ НАУЧНЫХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1 Экспериментальное изучение возможности использования большого сальника как реваскуляризирующей основы для префабрикации кожно-хрящевого аутотрансплантата// Сборник научных трудов III Конференции молодых ученых России с международным участием «Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины», Москва, 2004, с.412.

2. Изучение возможности префабрикации кожно-хрящевого аутотрансплантата на основе большого сальника в эксперименте// Тезисы научной конференции молодых ученых «Новое в реконструктивной хирургии», Москва, 2004, с. 202-203.

3. Префабрикация микрохирургического реваскуляризируемого комплекса тканей на основе большого сальника в эксперименте// Материалы конференции «Восстановительные и органосберегающие технологии - главный путь развития хирургии XXI века», Москва, 2004, с.142.

4. Экспериментальное изучение возможности префабрикации кожно-хрящевого аутотрансплантата на основе большого сальника как микрохирургического реваскуляризируемого комплекса тканей// Тезисы докладов Третьего российского конгресса по патофизиологии с международным участием, Москва, 2004, с 241.

5 Модель префабрикации кожно-хрящевого аутотрансплантата на основе большого сальника в эксперименте// Тезисы докладов десятого всероссийского съезда сердечно-сосудистых хирургов, Москва, Бюл НЦССХ им А Н Бакулева РАМН. *

Сердечно-сосудистые заболевания.-2004 -т 5.-No 11.-с 131 1

6. Исследование возможностей большого сальника как сосудистого носителя для префабрикации кожно-хрящевого аутотрансплантата в эксперименте// Материа- «■ лы конференции «Современные аспекты экспериментальной и клинической хирургии», Москва, Вестн. РГМУ. -2004. -№ 8. -с. 233-236.

7. Префабрикация кожно-хрящевого микрохирургического аутотрансплантата на основе большого сальника в экспериментальном исследовании на крысах// Тезисы

докладов VII международного конгресса по пластической, реконструктивной хирургии и онкологии, Москва, с. 43.

8 Изучение возможности использования большого сальника в качестве сосудистой основы для префабрикации кожно-хрящевого аутотрансплантата в эксперименте// Тезисы докладов третьего съезда общества пластических, реконструктивных и эстетических хирургов, Москва, Анналы пластической, реконструктивной и эстетической хирургии. -2004. -№4. -с. 109-110. (соавт Н.О. Миланов, Г.Ф Шереметьева, Е.И. Трофимов, И.Л. Жидков).

I

»

к

г

Типография РНЦХ РАМН Заказ № 146 Тираж 100 экз.

*~9405

РНБ Русский фонд

2006-4 5326

 
 

Оглавление диссертации Шимбирева, Ольга Юрьевна :: 2005 :: Москва

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ПРЕФАБРИКАЦИЯ СЛОЖНЫХ СОСТАВНЫХ АУТОТРАНСПЛАНТАТОВ (АНАЛИЗ СОВРЕМЕННОГО СОСТОЯНИЯ ПРОБЛЕМЫ ПО ДАННЫМ ЛИТЕРАТУРЫ).

1.1 Патоморфологические аспекты репаративной регенерации костной и хрящевой тканей.

1.2 Большой сальник как «орган» и пластический материал.

1.3 Метод префабрикации тканей.

ГЛАВА 2. МЕТОДИКА ПРЕФАБРИКАЦИИ РЕВАСКУЛЯРИЗИРУЕМЫХ

НА ОСНОВЕ БОЛЬШОГО САЛЬНИКА СЛОЖНЫХ СОСТАВНЫХ АУТОТРАНСПЛАНТАТОВ

2.1. Материал и методы исследования.

2.2. Префабрикация реваскуляризируемых на основе большого сальника сложных составных аутотрансплантатов.

2.2.1 Префабрикация реваскуляризируемого на основе большого сальника кожно-хрящевого аутотрансплантата.

2.2.2. Префабрикация реваскуляризируемого на основе большого сальника кожно-костного аутотрансплантата

2.3. Ротация префабрикованных реваскуляризируемых на основе большого сальника сложных составных аутотрансплантатов.

2.3.1. Ротация префабрикованного реваскуляризируемого на основе большого сальника кожно-хрящевого аутотрансплантата

2.3.2. Ротация префабрикованного реваскуляризируемого на основе большого сальника кожно-костного аутотрансплантата.

2.4. Моделирование локализованной гнойной инфекции в префабрикованных реваскуляризируемых на основе большого сальника сложных составных аутотрансплантатах

2.4.1. Методика инокуляции префабрикованного реваскуляризируемого на основе большого сальника кожно-хрящевого аутотрансплантата.

2.4.2. Методика инокуляции префабрикованного реваскуляризируемого на основе большого сальника кожно-костного аутотрансплантата

ГЛАВА 3. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ОБСЛЕДОВАНИЯ И БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА МАТЕРИАЛА.

3.1. Микробиологические методы обследования материала.

3.2. Методика микробиологического обследования и бактериологическая характеристика материала.

ГЛАВА 4. РЕЗУЛЬТАТЫ ЭКСПЕРИМЕНТОВ.

4.1. Префабрикация реваскуляризируемых на основе большого сальника сложных составных аутотрансплантатов (серия 1 и 2).

4.2. Ротация префабрикованных реваскуляризируемых на основе большого сальника сложных составных аутотрансплантатов (серия 3 и 4).Юб

4.3. Моделирование локализованной острой гнойной инфекции в префабрикованных реваскуляризируемых на основе большого сальника сложных составных аутотрансплантатах (серия 5 и 6).

4.4. Обсуждение результатов.

 
 

Введение диссертации по теме "Хирургия", Шимбирева, Ольга Юрьевна, автореферат

Актуальность проблемы

Пластическая хирургия посвящена сложным проблемам заживления ран покровных тканей врожденного и приобретенного характера с конечной целью восстановления или воссоздания наилучшей формы и функции части тела с хорошим эстетическим результатом для улучшения качества жизни пациента. Происхождение пластической хирургии датируется VI веком до нашей эры, когда в Индии Shusruta разработал метод реконструкции носа. Другие методы были предложены в XVI в. итальянскими хирургами C.Tagliacozzi и Fioravanti. В 1597 г. C.Tagliacozzi выпустил первый трактат по пластической хирургии. В начале XIX в. немецкие врачи (Diffenbach, Graefe) и французские хирурги (Larrey, Nelaton) выполняли пластические операции в Западной Европе. В 1916 г. В.П.Филатов (публикация 1917 г.), а в 1917 г.

H.Gillies (публикация 1920 г.) независимо предложили метод пластики мигрирующим стебельчатым круглым кожным лоскутом.

Качественный скачок в развитии пластической хирургии произошел в начале 70-х годов XX в. с появлением микрохирургии, обеспечившей возможность свободной пересадки реваскуляризируемых лоскутов с осевым кровообращением. Предпосылками явились работы В.Seidenberg et al.(1959) по использованию изолированного реваскуляризируемого сегмента тощей кишки для реконструкции шейного отдела пищевода, I.A.McGregor,

I.T.Jackson (1972), разработавших технику забора пахового лоскута на ножке, и I.A.McGregor, R.G.Morgan (1973), предложивших концепцию аксиального кровоснабжения лоскутов. Первой была выполнена успешная микрохирургическая аутотрансплантация пахового лоскута (Daniel R.K., Taylor G.I. 1973; O'Brien B.M. et al., 1973), затем были описаны и другие аутотрансплантаты, основанные на известных питающих сосудах (Harii К., Ohmori К. 1974). Использование микрохирургических реваскуляризируемых тканей и их комплексов позволило закрывать значительные по размерам и многокомпонентные дефекты, отдаленные от донорской зоны, избегая многостадийных реконструктивных вмешательств. Несмотря на довольно большое количество видов аутотрансплантатов (более 80) и донорских зон (более 20) хирург не всегда может подобрать оптимальный лоскут для реконструкции поврежденных покровов. Нередко аутотрансплантаты плохо подходят по толщине, цвету, текстуре кожи и в состав лоскута невозможно включить весь спектр необходимых тканей. Кроме того, забор аутотрансплантата для реконструкции отсутствующих тканей может способствовать существенному ущербу донорской области. Помимо специфических требований дефекта, в случае обширных ожоговых, травматических и местных лучевых повреждений большинство традиционных донорских зон оказываются недоступными, а кровоснабжение и репаративные способности воспринимающего ложа низкими. Инфицирование подобных длительно' существующих дефектов, а также попытки предыдущих многостадийных реконструкций еще более ограничивают возможности хирурга в выборе подходящих тканей для воссоздания контуров и восстановления утраченных функций (Миланов Н.О., Шилов Б.Л., 1996; Трофимов Е.И., 2001; Pribaz J.J. et al., 1999).

В настоящее время сохраняет актуальность проблема устранения многокомпонентных дефектов различной локализации. Недостаточное количество, невозможность обеспечения необходимого тканевого состава и отсутствие в ряде случаев потенциала традиционных свободных реваскуляри-зируемых комплексов тканей способствовали развитию нового направления в пластической и реконструктивной микрохирургии - префабрикации. Метод префабрикации тканей включает в себя процесс предварительного формирования аутотрансплантатов с требуемыми свойствами, привнесенным источником кровоснабжения на основе различных сосудистых носителей за счет механизма неоваскуляризации (Pribaz J.J., Fine N.A., 1994, 2001; Morrison W.A., 2003). В течение подготовки аутотрансплантата до ротации или свободной пересадки за определенный период времени происходит прорастание сосудов в зоне соприкосновения хорошо кровоснабжаемых или хорошо крово-снабжаемых и аваскулярных, искусственно объединенных тканей с целью последующего закрытия дефекта сформированным аутотрансплантатом на основе одного (общего) естественного источника их реваскуляризации, имплантированного предварительно. Сосудистый носитель при этом является источником питающей ножки будущего префабрикованного аутотрансплан-тата, может быть тканью с хорошо развитой сосудистой сетью, что определяет ее способности к реваскуляризации всех компонентов аутотрансплантата. Бессосудистый компонент замещает недостающие ткани в области дефекта. Неоваскуляризация является следствием пролиферативного воспаления, возникающего в ответ на хирургическую травму (Khouri R.K. et al., 1992; Abbase E.A. et al., 1995; Colonna M.R. et al., 2002; Tan B.K. et al., 2004).

Одномоментное замещение нескольких анатомических тканей, максимальное соответствие требованиям дефекта (тканевому составу, размерам, толщине и текстуре кожи, локализации) и отсутствие ограничения сосудистой анатомией существующих донорских зон дают широкие возможности при использовании метода префабрикации тканей в клинической практике (Orticochea М., 1971; Yao S.T., 1981; Morrison W.A., 2003).

Префабрикованный аутотрансплантат, сохраняя все положительные качества аутотрансплантата с осевым кровоснабжением, полученного посредством объединения сосудистых сетей формирующих его тканей и носителя, существенно уменьшает травматизацию донорской зоны. Метод префабрикации тканей является перспективным направлением развития пластической и реконструктивной микрохирургии и значительно расширяет возможности для замещения дефектов, считавшихся ранее инкурабельными. По данным литературы, наиболее изученным сосудистым носителем для префабрикации является фасциальная сосудистая основа, для которой характерен относительно медленный темп прорастания сосудов и относительная тонкость получаемых аутотрансплантатов (Khouri R.K. et al., 1991). Однако, ее «биологическая активность» в условиях инфицированного дефекта ниже, чем у мышечной ткани и большого сальника. Большой сальник как пластический материал обладает высокой способностью реваскуляризировать окружающие ткани, способностью к адгезии и устойчивостью к инфекции, имеет наивысшую «биологическую активность» (Миланов Н.О., Шилов Б.Л., 1996; Liebermann-Mef-fert D., 1996). Будучи уникальной и удобной в техническом отношении для реконструкции тканью, большой сальник является недостаточно экспериментально и клинически изученной основой для префабрикации аутотранс-плантатов. При довольно активно развивающейся методике префабрикации, свойства и надежность префабрикованных аутотрансплантов, особенно в условиях инфицирования остаются неизученными и имеют большое значение при использовании метода в клинической практике.

Целью данного исследования является: определение в эксперименте возможности использования большого сальника как реваскуляризирующей основы при формировании кожно-хря-щевого и кожно-костного аутотрансплантатов для широкого применения метода префабрикации тканей в клинической практике.

Для достижения цели поставлены следующие задачи:

1. разработать экспериментальную модель префабрикации сложных составных аутотрансплантатов на основе большого сальника, содержащих в своем составе костную или хрящевую ткани, на мелких лабораторных животных;

2. изучить реваскуляризирующие свойства большого сальника как сосудистого носителя для префабрикации сложных составных аутотрансплантатов, содержащих в своем составе костную или хрящевую ткани в эксперименте на мелких лабораторных животных;

3. определить сроки реваскуляризации костной и хрящевой тканей в составе сложных составных аутотрансплантатов, префабрикованных на основе двухслойного большого сальника, у мелких лабораторных животных;

4. определить возможность и оптимальные сроки ротации префабрикованных, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, аутотрансплантатов, включающих в свой состав костную или хрящевую ткани в эксперименте на мелких лабораторных животных;

5. разработать модель локализованного гнойного воспаления префабрикованных, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника аутотрансплантатов, содержащих в своем составе костную или хрящевую ткани, в эксперименте на мелких лабораторных животных;

6. изучить жизнеспособность префабрикованных, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника аутотрансплантатов, включающих в свой состав костную или хрящевую ткани, в условиях инфицирования на мелких лабораторных животных. Научная новизна работы

Разработана модель префабрикации реваскуляризируемых сложных составных аутотрансплантатов на основе двухслойного большого сальника, содержащих в своем составе костную или хрящевую ткани, и модель локализованного гнойного воспаления в этих префабрикованных аутотранспланта-тах в эксперименте на мелких лабораторных животных; впервые проведено изучение реваскуляризирующих свойств большого сальника в качестве сосудистой основы для префабрикации кожно-хряще-вого и кожно-костного аутотрансплантатов в эксперименте на мелких лабораторных животных; впервые выполнена ротация префабрикованных кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, в эксперименте на мелких лабораторных животных; впервые исследована жизнеспособность префабрикованных кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, в условиях инфицирования в эксперименте на мелких лабораторных животных. Практическая значимость работы

В эксперименте на мелких лабораторных животных показана возможность использования двухслойного большого сальника для префабрикации костной и хрящевой тканей. Показана возможность закрытия дефектов путем ротации префабрикованных, реваскуляризируемых на основе большого сальника, кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов в эксперименте на мелких лабораторных животных. Модель локализованного гнойного воспаления позволяет оценить потенциальную способность к выживанию префабрикованных реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника аутотрансплантатов, включающих в состав костную или хрящевую ткани, в условиях инфицирования. Экспериментально показана возможность использования кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов, пре-фабрикованных на основе большого сальника, в условиях инфицирования с сохранением их жизнеспособности на мелких лабораторных животных. Апробация диссертации

Апробация работы проведена на научной конференции отдела восстановительной микрохирургии РНЦХ РАМН. Основные положения работы доложены:

• на III Конференции молодых ученых России с международным участием «Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины», посвященной 60-летию РАМН, Москва, 20-24 января 2004 г. (диплом за лучшую работу по секции «Хирургия»);

• на научной конференции молодых ученых «Новое в реконструктивной хирургии», посвященной Дню основания РНЦХ РАМН, Москва, 19 марта 2004 г. (диплом за лучшую научную работу в области восстановительной и пластической хирургии);

• на всероссийской конференции с международным участием «Современные аспекты экспериментальной и клинической хирургии», посвященной 100-летию со дня рождения заслуженного деятеля науки РСФСР, член.-корр. АМН СССР, проф. Г.Е. Островерхова, Москва, 25 ноября 2004 г.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 8 работ в научной печати.

Объем и структура работы. Диссертация изложена на 171 странице машинописного текста, состоит из введения, 4 глав, заключения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы, который содержит 60 отечественных и 175 зарубежных источников. Работа иллюстрирована 63 рисунками и схемами, содержит 21 таблицу.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Экспериментальное изучение возможности использования большого сальника как реваскуляризирующей основы для префабрикации кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов"

ВЫВОДЫ

1. Метод префабрикации тканей открывает возможности для создания различных моделей сложных составных аутотрансплантатов на основе большого сальника, включающих в состав кожу, хрящ или кость в соответствии с требованиями планируемого исследования.

2. В эксперименте на крысах доказано, что большой сальник является адекватной реваскуляризирующей основой для префабрикации сложных составных аутотрансплантов, содержащих в своем составе кость или хрящ.

3. Формирование жизнеспособных кожно-хрящевого и кожно-костного аутотрансплантатов, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, происходит у крыс через 14 и 21 сутки после префабрикации соответственно.

4. Ротация полученных жизнеспособных, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, аутотрансплантатов, содержащих в своем составе хрящ или кость, для закрытия дефектов у крыс возможна после 14 или 21 суток префабрикации соответственно.

5. Количественный показатель содержания бактерий в 1 г тканей, являясь объективным тестом, отражает характер процесса гнойного воспаления и позволяет судить о его развитии в тканях префабрикованного аутотрансплантата.

6. В эксперименте на крысах показано, что префабрикованные, реваскуляри-зируемые на основе двухслойного большого сальника, аутотрансплантаты, содержащие в своем составе хрящ или кость, способны сохранять жизнеспособность в условиях инфицирования.

7. Выживаемость префабрикованных, реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника, кожно-костных аутотрансплантатов в условиях инфицирования ниже, чем кожно-хрящевых аутотрансплантатов.

- 148

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. В процессе формирования сальникового аутотрансплантата у крыс рекомендуем деликатно обращаться с тканью большого сальника и бережно выделять сосудистую ножку с пересечением желудочных ветвей на максимальном расстоянии от желудочно-сальниковых сосудов, что предупреждает их повреждение. Участок сальникового аутотрансплантата с необратимо нарушенным кровообращением рекомендуем удалить, предупреждая развитие процесса гнойного воспаления в аутотрансплантате.

2. При ушивании брюшной полости рекомендуем оставлять дефект мышц передней брюшной стенки длиной 0,7 см для выведения сосудистой ножки сальникового аутотрансплантата, что позволяет сохранить адекватность его кровоснабжения и не приводит к формированию грыжи или эвентра-ции у крыс.

3. В случае планируемой ротации или микрохирургической аутотрансплан-тации сформированного сложного составного комплекса тканей, на этапе префабрикации рекомендуем погружать его питающую ножку в сосудистый протез, предупреждая повреждение питающих сосудов аутотрансплантата при последующем выделении и подъеме префабрикованного аутотрансплантата у крыс.

4. Забор тканевых компонентов (кости и хряща) для формирования префабрикованного аутотрансплантата у крыс рекомендуем осуществлять после выделения сальникового аутотрансплантата и переносить их в реваскуля-ризирующую основу с минимальной отсрочкой, что позволяет сохранить репаративные способности аутотрансплантатов.

5. Фиксацию сформированного сальникового аутотрансплантата (с тканевым компонентом внутри) к коже рекомендуем производить, не полностью затягивая первый узел и оставляя петлю, а два последующих узла завязывая плотно поверх петли во избежание повреждения и смещения аутотрансплантата в послеоперационном периоде у крыс. Силиконовую пластинку рекомендуем фиксировать, отступив на 3 мм от края дефекта мышц передней брюшной стенки, предупреждая сдавление сосудистой ножки аутотрансплантата.

6. При ротации у крыс префабрикованных реваскуляризируемых на основе двухслойного большого сальника аутотрансплантатов, содержащих в своем составе хрящ или кость, особое внимание рекомендуем уделять максимально щадящему выделению сосудистой ножки аутотрансплантата из сосудистого протеза, отсутствию натяжения и сдавления питающей ножки аутотрансплантата на всем протяжении, последняя должна свободно располагаться в подкожном туннеле.

7. Префабрикованные реваскуляризируемые на основе большого сальника аутотрансплантаты, содержащие в своем составе хрящ или кость, целесообразно применять при неинфицированных дефектах у крыс, однако возможно их использование в условиях бактериального загрязнения реци-пиентного ложа в составе комплексного лечения инфицированного дефекта.

- 150

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2005 года, Шимбирева, Ольга Юрьевна

1. Абалмасов К.Г., Малинин A.A., Морозов K.M. и соавт. Клиническая эффективность аутотрансплантации «лимфатического лоскута» при комплексном лечении limphedema praecox // Анналы хирургии. -2003. -№ 1. -С. 73-75.

2. Автандилов Г.Г., Яблучанский Н.И., Губенко В.Г. Системная стереометрия в изучении патологического процесса. -М: Медицина. -1981. -192 С.

3. Александер Дж. У., Гуд P.P. Иммунология для хирургов. -М.: Медицина, 1974.-191 С.

4. Богораз H.A. О костной пластике мелкими частями кости // Труды 17 съезда российских хирургов. -Л., 1925. -С. 231.

5. Бруско А.Т. Изменения в скелете при воздействии нагрузок // Траматоло-гия и ортопедия под ред. Шапошникова Ю.Г. М. Медицина, 1997. -Т.З. -С. 547-553.

6. Виноградова Т.П. Биологические особенности хрящевой ткани и их значение в клинической ортопедии и травматологии. -Актовая речь. М. (ЦИТО), 1964.-40 С.

7. Виноградова Т.П. Пересадка хряща у человека. -М. Изд-во АМН СССР, 1950. -68 С.

8. Виткус К., Олекас Ю., Туткус В. и соавт. Большой сальник как донорский орган // Сборник тезисов III Всесоюзного симпозиума по микрохирургии «Проблемы микрохирургии». Саратов, 1989. -С. 74.

9. Вреден P.P. О пригодности сальника для закрытия дефектов париетальной брюшины // Русский хирургический архив. -1904. -кн. 6. -С. 1012-1015.

10. З.Кирилова И.А. Влияние физических и химических факторов на индуктивный остеогенез при пересадке деминерализированного костного трансплантата. (Экспериментальное исследование) // Автореф. дисс. канд.мед. наук. -Новосибирск, 2003. -21 С.

11. Кислых Ф.И. Клинико-экспериментальное обоснование пластики дефектов нижней челюсти // Автореф. дисс.д-ра мед. наук (в форме научного доклада). -Москва, 1996. -48 С.

12. Ковалев Д.В. Органосохраняющие операции на современном этапе комбинированного лечения остеогенной саркомы длинных костей у детей // Вестник травматологии и ортопедии им. H.H. Приорова. -2000. -№ 2. -С.76-79.

13. Колкер И.И., Костюченок Б.М., Маршак A.M. и соавт. Стафилококковая инфекция ран и вопросы антибактериальной терапии // Вестн. хир. -1978. -№ 8. -С. 93-97.

14. Кузин М.И., Колкер И.И., Костюченок Б.М. и соавт. Количественный контроль микрофлоры гнойных ран // Хирургия. -1980. -№ 11. -С. 3-7.

15. Кузин М.И., Костюченок Б.М. Раны и раневая инфекция. -М: Медицина, 1990. -580 С. (второе издание)

16. Лаврищева Г.И., Оноприенко Г.А. Морфологические и клинические аспекты репаративной регенерации опорных органов и тканей // М.: Медицина, 1996. -208 С.

17. Лаврищева Г.И., Михайлова JI.H., Черкес-Заде Д.И., Оноприенко Г.А. Об оптимальных условиях регенерации опорных органов // Гений ортопедии. -2002.-№ 1.-С. 120-125.

18. Либерманн-Мефферт Д., Уайт X. Большой сальник. Анатомия, физиология, патология, хирургия, исторический очерк // New York: Springer-Verlag, 1989.-336 С.

19. Литвак В.А. Удлинение сальника для реваскуляризации органов // Урология. -1962. -№ 3. -С. 39-42.

20. Макурина О. Н. Закономерности морфофункциональной организации большого сальника млекопитающих // Диссертация . д-ра биол. наук. -Мордовский государственный университет (МордГУ), 2001. -270 С.

21. Маланин Д.А., Абу Махмуд Шауки, Черезов Л. Л., Шилов В.Г. Экспериментальное обоснование трансплантации полулунного хряща в коленном суставе // Вестник Волгоградской медицинской академии. -2000. -№6. -С. 170-177.

22. Миланов Н.О., Сандриков В.А., Шилов Б.Л., Буторин А.Г. Гемодинами-ческие особенности микрохирургической аутотрансплантации большого сальника // Вестник хирургии. 1990. -Т. 144. -№ 1. -С. 90-92.

23. Миланов Н.О., Шилов Б.Л. Пластическая хирургия лучевых повреждений. -М.: Аир-Арт, 1996. -78 С.

24. Миланов Н.О., Трофимов Е.И., Соловьева Н.В., Шилов Б.Л. Формирование лоскутов с заданными свойствами // Сб.: «Итоги». Результаты научных исследований по программной тематике РНЦХ РАМН. -Вып. №3. -1998. -С.241-244.

25. Михайлова Л.Н., Пальцын A.A. К вопросу об остеогенных клетках-предшественниках при репаративном остеогенезе // Бюлл. эксперимен. биол. мед. -1986. -№ 6. -С. 755-757.

26. Мовчан A.C. Костная пластика ложного сустава и деформации длинныхкостей кровоснабжаемыми трансплантатами. Дисс.д-ра. мед. наук. 1. Рига, 1991.-301 С.

27. Моррисон В.А. Современные достижения и перспективы развития микрохирургии в XXI веке // Вопросы реконструктивной и пластической хирургии. 2003. -44. -№ 7. -С. 11-14.

28. Ноздрачев А.Д., Поляков E.JI. Анатомия крысы. -Спб: Лань, 2001.-464 С.35.0быдённов С.А., Фраучи И.В. Основы реконструктивной пластическоймикрохирургии. -Спб.: Человек, 2000. 144 С.

29. Оноприенко Г.А. Васкуляризация костей при переломах и дефектах. -М.: Медицина, 1995.-224 С.

30. Павлова В.Н., Копьева Т.Н., Слуцкий Л.И., Павлов Г.Г. Хрящ. -М.: Медицина, 1988.-320 С.

31. Панкратов A.C., Копецкий И.С. Опыт применения трансплантационных и имплантационных материалов для замещения дефектов костной ткани нижней челюсти // Анналы хирургии. 2000. -№1. -С. 20-26.

32. Паршин В.Д. Хирургия рубцовых стенозов трахеи. -М: Издательство, 2003.- 152 С.

33. Першин Г.Н. Методы экспериментальной химиотерапии. -М: Медицина, 1971. 539 С. (второе издание)

34. Плотников H.A. Костная пластика нижней челюсти. -М., 1979. 270 С.

35. Полыиин И.В., Неробеев А.И. Сравнительный анализ результатов костнопластических операций аваскулярными трансплантатами и артериализи-рованными лоскутами // Проблемы микрохирургии: Тезисы IV Всесоюзного симпозиума-М., 1991. -С. 44-45.

36. Приказ МЗ СССР № 535 от 22 апреля 1985 г. «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений». -М., 1985 -126 С.

37. Русаков A.B. Введение в физиологию и патологию костной ткани // Многотомное руководство по патологической анатомии. -М.: Медгиз, 1959. Т. 5.

38. Сачков A.B. Реваскуляризированные фасциальные аутотрансплантаты в пластической и реконструктивной микрохирургии // Диссертация на соискание степени кандидата медицинских наук. -М., 1999. -103 С.

39. Старцева О.И. Изучение возможности префабрикации сложно-составных реваскуляризируемых комплексов тканей на основе большого сальника // Диссертация на соискание степени кандидата медицинских наук. -М., 2002.-139 С.

40. Стахеев И.А. Реваскуляризация крупных диафизарных костных ауто-, алло- и ксенотрансплантатов в условиях стабильного остеосинтеза (экспериментальное исследование) // Автореф.д-ра мед. наук. -Свердловск,1977.

41. Стецула В.И. Теоретические основы компрессионного остеосинтеза // Тр. I Всесоюзн. Съезда травматологов-ортопедов. -М., 1965. -С.350-354.

42. Стецула В.И. Становление капиллярно-тканевых систем в онтогенезе // О проблемах микроциркуляции. -М., 1977. -С.240-241.

43. Торская И.В. Экспериментальное исследование иннервации большого сальника млекопитающих животных // Вопросы физиологии. -Т. 3. -Киев, 1953.-С. 177-186.

44. Трофимов Е.И. Микрохирургическая аутотрансплантация тканей направление восстановительной микрохирургии // Диссертация на соискание степени доктора медицинских наук. -М., 2001. -69 С.

45. Филатов В.П. Пластика на круглом стебле // Вестн. офтальмол. -1917. -Т. 34. -№1. -С. 149-158.

46. Хэм А., Кормак Д. Гистология // Руководство по гистологии в 5-ти томах. М.: Мир, 1983. -Т.З. -293 С.

47. Черданцев А.И. Пути транспорта внутритканевой жидкости // Морфология. -1998. -Т. 113. -№ 2. -С. 70-75.

48. Шилов Б.Л. Применение большого сальника в пластической и реконструктивной микрохирургии // Диссертация . канд. мед. наук.-М., 1988.-123 С.

49. Шилов Б.Л. Современные методы реконструктивно-пластической хирургии в лечении местных лучевых повреждений тканей // Диссертация . докт. мед. наук. М., 1993. -269 С.

50. Шилов Б.Л., Миланов Н.О. Префабрикация свободного лоскута на основе фасции: первичный опыт и перспективы // Хирургия. -1994. -№ 12. -С. 6-8.

51. Abbase Е.А., Shenaq S.M., Spira M. et al. Prefabricated flaps: experimental and clinical review // Plast. & Reconstr. Surg. -1995. -V. 96. -№ 5. -P. 1218-1225.

52. Abbot L.C., Schottstaed E.R., Saunders J.B.D.M. et al. The evaluation of cortical and cancellous bone as grafting material // J. Bone Jt. Surg. -1947. -V. 29. -№ 2. -P. 381-414.

53. Adams W.P., Rohrich R.J., Gunter J.P. et al. The rate of warping in irradiated and nonirradiated homograft rib cartilage: a conrtolled comparison and clinical implications // Plast. & Reconstr. Surg. -1999. -V. 103. -№ 1. -P. 265 270.

54. Akoz T., Erdogan В., Gorgu M., Kapucu M.R., Kargi E. Penile reconstruction in children using a double vascular pedicle composite groin flap. Scand. J. Urol. Nephrol. -1998. -V. 32. -№3. -P. 225-230.

55. Akyurek M, Kayikcioglu A, Mavili ME, Safak T. Evaluation of skin flap survival in rats. Plast. & Reconstr. Surg. -1999. -V. 103. -№ 1. -P. 337 338.

56. Акуигек M., Ozkan О., Bozkurt M.F., Safak T. Preserving osseous viability in osteocutaneous flap préfabrication: experimental study in rabbits // J. Reconstr. Microsurg. -2003. -V. 19. -№ 8. -P. 571-576.

57. Ala-Kulji K., Virkkula L. Use of the omental peduncle for treatment of Buerger's disease affecting the upper extremity: A modified technique // Vasa. -1990.-V. 19.-P. 330.

58. Alam I., Asahina I., Seto I. et al. Prefabricated vascularized bone flap: a tissue transformation technique for bone reconstruction // Plast. & Reconstr. Surg. -2001. -V. 108. -№4. -P. 952 -958.

59. Alday E.S., Goldsmith H.S. Surgical technique for omentum lengthening based on arterial anatomy// Surg. Gynecol. Obstet. -1972. -V. 135. -P. 103-107.

60. Arnold P.G., Hartrampf C.R., Jurkiewicz M.J. One-stage reconstruction of the breast using the transposed greater omentum: Case report // Plast. & Reconstr. Surg. -1976. -Vol. 57. -P. 520-522.

61. Askar I., Sabuncuoglu B.T. Préfabrication of periosteal graft alone or with oxidised cellulose: an experimental study // Acta Chir. Plast. -2003. -V.45 -№1. -P. 3-7.

62. Atabey A., McCarthy E., Manson P., Vander Kollc C.A. Préfabrication of combined composite(chimeric) flaps in rats.// Ann. Plast. Surg. -2000. -V.45. -№ 6. -P. 581-587; Discussion P. 587-588.

63. Azuma H., Kondo T., Mikami M. et al. Treatment of chronic osteomielitis by transplantation of autogenous omentum with microvascular anastomoses // Acta Orthop. Scand. -1976. -V. 47. -P. 271.

64. Bakamjian V.Y., Holbrook L.A. Prefabrication techniques in cervical pharyn-go-oesophageal reconstruction // Br. J. Plast. Surg. -1973. -V. 26. -№3. -P. 214-222.

65. Balogh K., Dubley H.R., Cohlen R.B. Oxidative enzyme activity in sceletal cartilage and bone // Lab. Invest. -1961. -V. 10. -P.839.

66. Banis J.C. Jr., Churukian K., Kim M. et al. Prefabricated jejunal free-tissue transfer for tracheal reconstruction: an experimental study. // Plast. & Reconstr. Surg. -1996. -Vol. 98. -№ 6. -P. 1046-1051.

67. Barret J.P., Herndon D.N. Effects of burn wound excision on bacterial colonization and invasion // Plast. & Reconstr. Surg. -2003. -V. 111. -№ 2. -P. 744750. Discussion P.751-752.

68. Barthelemy I., Martin D., Sannajust J.P. et al.Prefabricated superficial temporal fascia combined with a submental flap in noma sugery // Plast. & Reconstr. Surg. -2002. -Vol. 109. -№3. -P. 936-940; Discussion P. 941-942.

69. Beelen R.H.J., Fluitsma D.M., Hoefsmit E.C.M. The cellular composition of omentum milky spots and the ultrastructure of milky spots macrophages and reticulum cells //J. Reticuloenthothel. Soc. -1980. -V. 28. -P. 585-599.

70. Beelen R.H.J., Krist L.F.G., Koenen J.F.M. et al. Current knowledge of the cell biology of milky spots in the greater omentum and their significance for immunological reactions // 6 th international meeting of the Omentum Club -1996.-P. 2.

71. Bennet W. A case of perforating gastric ulcer in wich the opening, being, otherwise intractable, was closed by means of an omental plug; recovery // The Lancet -1896. -№ 2. -P. 310-311.

72. Berggren A., Weiland A.J., Dorfman H. The effect of prolonged ischemia time on osteocyte and osteoblast survival in composite bone grafts revascularized by microvascular anastomosis // Plast. & Reconstr. Surg. -1982. -V. 69. -№ 2. -P. 290-298.

73. Berstein D.S., Leboeuf B., Cahill G.F. Studies on glucose metabolizm in cartilage in vitro // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. -1961. -V. 107. -P. 458.

74. Bieber E.J., Wood M.B. Bone reconstruction // Clin. Plast. Surg. -1986. -V. 13. -№ 4. -P. 645-655.

75. Braun H. Uber den Verschlugs eines perforierten Magengeschwürs durch Netz // Zentralblatt, f.chirurgie. -1897. -№ 24. -P. 739-742.

76. Breuing K., Kaplan S., Liu P. et al. Wound fluid bacterial levels exceed tissue bacterial counts in controlled porcine partial-thickness burn infections // Plast. & Reconstr. Surg. -2003 . -V. 111. -№ 2. -P. 781-788.

77. Bruneiii G. Neurolysis and free microvascular omentum transfer in treatment of postactinic palsies of the brachial plexus // Int. Surg. -1980. -Vol. 65. -P. 515.

78. Cannady J.E. Some uses of undetached omentum in surgery // Am. J. Surg. -1948.-V. 76. -P.502-505.

79. Carr I. The fine structure of the cells of the mouse peritoneum // Z. Zellforsch. -1967.-V. 80.-P. 543-555.

80. Casten D.F., Alday E.S. Omental transfer for reovascularisation of the extremities // Surg. Gynecol. Obstet. -1971. -V. 132. -P. 31-34.

81. Cavadas P.C., Bonanad E., Baena-Montilla P., Vera-Sempere F.J. Préfabrication of a free flap for tracheal reconstruction: an experimental study. Preliminary report. // Plast. Reconstr. Surg. -1996. -Vol. 98. -№ 6. -P. 1052-1062.

82. Chang C.H., Chen H.C, Tang Y.B. et al. Préfabrication of jejunum for challenging reconstruction of cervical esophagus // Plast. & Reconstr. Surg. -1999.-V. 104.-№7.-P. 2112-2115.

83. Chen H.C., Kuo Y.R., Hwang T.L. et al. Microvascular prefabricated free skin flaps for esophageal reconstruction in difficult patients // Ann. Thorac. Surg. -1999.-V. 67. -№4. -P. 911-916.

84. Cothier-Savey I., Tamtawi B., Dohnt F. et al. Immediate breast reconstruction using a laparoscopically harvested omental flap // Plast. & Reconstr. Surg. -2001.-Vol. 107. -№ 5. -P. 1156-1163. Discussion P. 1164-1166.

85. Daniel R.K., Taylor G.I. Distant transfer of an island flap by microvascular anastomosis // Plast. & Reconstr. Surg. -1973. -Vol. 52. -№ 2. -P. 111-117.

86. Das S.K. The size of the human omentum and methods of lengthening it for transplantation // Br.J. Plast. Surg. -1976. -V. 29. -P. 170-174.

87. De Zavaketa, Marino E. Hipoplasia mamaria unilateral relleno mamario con epiplon mayor transplantado // Pren. Med. Argent. -1963. -V.50. -P. 639-641.

88. Delaere P.R., Hardillo J., Hermans R., Van Den Hof B. Préfabrication of com-posite tissue for improved tracheal reconstruction.//Ann Otol. Rhinol. Laryngol. -2001. -Vol. 110. -№9. -P. 849-860.

89. Delaere P.R., Poorten V.V., Guelinckx P. et al. Progress in larinx-sparing surgery for glottic cancer through tracheal transplantation // Plast. & Reconstr. Surg.-1999.-Vol. 104.-№6.-P. 1635-1641.

90. DeRiu P.L., Rossa A., Falzoi A. et al. Physiological function after midlle cerebral artery occluzion in rabbits with neovascularization of the brain by transposed omentum // Neurosurgery -1980. -№ 7. -P. 57-60.

91. Diller J.G., Hartwell S.W.J., Anderson R. The mesenteric vascular pedicle // Cleveland Clin. Q. -1966. -Vol. 33. -P. 163-169.

92. Doncatto L.F. Breast reconstruction with prefabricated transverse rectus abdominis muscle flap in the postabdominoplasty patient // Plast. & Reconstr. Surg. -2003. -Vol. 111. -№1. -P. 306-313.

93. Dujovny M., Ding Y.H., Ding Y. et al. Current concepts on the expression of neurotrophins in the greater omentum // Neurol. Res. -2004. -V. 26. -№2. -P. 226-229.

94. Duynstee M.L.G., Verwoerd-Verhoef H.L., Verhoef C.D.A. et al. The dual role of perichondrium in cartilage wound healing // Plast. & Reconstr. Surg. -2002.-V. 110. -№ 4. -P. 1073-1079.

95. Eccles W. The greater omentum: notes on its development, anatomy, physiology and pathology // St. Bart. Hosp. Rep. -1984. -V. 30. -P. 81-110.

96. El-Khatib H.A. Prefabricated temporalis fascia pedicled flap for previously skin-grafted contracted eye socket // Plast. & Reconstr. Surg. -2000. -V. 106. -№ 3. -P. 571-575.

97. Erol O. Transformation of a free skin graft flap into a vascularized pedicled flap // Plast. & Reconstr. Surg. -1976. -Vol. 58. -P. 470-477.

98. Erol O., Spira M. Omentum island skin graft flap // Surg. Forum -1978. -Vol. 29. -P. 594-596.

99. Erol O.O., Spira M. Development and utilization of a composite island flap employing omentum: experimentalinvestigation // Plast. & Reconstr. Surg. -1980. -V. 65. -№4. -P. 405-418.

100. Erol O.O., Spira M. New capillary bed formation with a surgically constructed arteriovenous fistula // Plast. & Reconstr. Surg. -1980. -V. 66. -№1. -P. 109-115.

101. Erol O.O., Spira M. Secondary musculocutaneous flap: an experimental study// Plast. & Reconstr. Surg. -1980. -V. 65. -№ 3. -P. 277-282.

102. Erol O.O., Spira M. Utilization of a composite island flap emploing omentum in organ reconstruction: an experimental investigation // Plast. & Reconstr. Surg. -1981. -Vol. 68. -№ 4. -P. 561-570.

103. Erol O.O., Spira M. Reconstructing the breast mound employing a secondary island omental skin flap // Plast. & Reconstr. Surg. -1990. -V. 86. -№ 3. -P.510-518.

104. European convention for the protection of vertrbrate animals used for experimental and other scientific purposes, council of Europe. Strasbourg, 1985 -P. 53.

105. Fayad J., Kuriloff D.B. Prefabricated microvascular autograft in tracheal reconstruction // Otolaryngol. Head Neck Surg. -1994 -V. -111. -№ 4. -P. 396-406.

106. Gill D.R., Ireland D.C., Hurley J.V., Morrison W.A. The préfabrication of a bone graft in a rat model // J. Hand Surg. Am. -1998. -V. 23. -№ 2. -P.312-321.

107. Gillis H. Plastic Surgery of facial. Burns // Surg. Gynec. Obstet. 1920. -V. 30. -№ 2. -P. 672-636.

108. Giordano P.A., Griffet J., Argenson C.L. Pedicled greater omentum transferred to the spine in the case of postoperative infection // Plast. & Reconstr. Surg. -1994. -V. 93. -P. 1508.

109. Goitz R.J., Steichen J.B. Microvascular omental transfer for the treatment of severe recurrent median neuritis of the wrist: a long-term follow-up // Plast. & Reconstr. Surg. -2005. -Vol. 115. -№1. -P. 163-171.

110. Goldsmith H.S. Omental transposition for peripheral vascular insufficiency // Rev. Surg. -1967. -V. 24. -P. 379.

111. Goldsmith H.S. Salvage of end stage ishemic extremities by intact omentum // Surgery. -1980. -V. 88. -P. 732.

112. Goldsmith H.S. The evolution of omentum transposition: from lymphedema to spinal cord, stroke and Alzheimer's disease // Neurol. Res. -2004. -V. 26. -№5.-P. 586-593.

113. Goldsmith H.S., Saunders R.L., Reeves A.G. et al. Omental transposition to the brain of stroke payient // Stroke. -1979. -V. 10. -P. 471-472.

114. Gomez J.A., Germain P.S, Sirois M. et al. Free omental flap for skin-sparing breast reconstruction harvested laparoscopically // Plast. & Reconstr. Surg. -2002. -V. 110.-№2.-P. 545 -551.

115. Gosain A., Chang N., Mathes S. et al. A study of the relationship between blood flow and bacterial inoculation in musculocutaneous and fasciocutaneous flaps // Plast. & Reconstr. Surg. -1990. -Vol. 86. -№6. -P. 1152-1062.

116. Govila A. Reconstruction of penis by préfabrication on forearm // Acta Chir. Plast. -1993. -V. 35. -№ 3-4. -P. 125-130.

117. Greene E.C. Anatomy of the rat. -Philadelphia: Hafner., 1963.

118. Hallock G.G. Préfabrication of a secondary TRAM flap // Plast. & Reconstr. Surg. -1996. -V 97. -№6. -P.1303-1304.

119. Ham A.W. Some histophysiological problems peculiar to calcified tissues // J. Bone Joint Surg. -1952. -V. 34-A. -P. 701.

120. Harii K., Ohmori K., Ohmori S. Hair transplantation with free scalp flaps // Plast. & Reconstr. Surg. -1974. -V. 53. -P. 410.

121. Haws M.J., Erdman D., Bayati S. et al. Basic fibroblast growth factor induced angiogenesis and prefabricated flap survival // J. Reconstr. Microsurg. -2001. -V. 17. -№1. -P. 39-42. Discussion 43-44.

122. Hebel R., Stromberg M.W. Anatomy the Laboratory rat. -Baltimor: Waverly, 1976.

123. Hirase Y., Valauri F., Buncke H.J. Prefabricated sensate myocutaneous and osteomyocutaneous free flaps: An experimental model. Preliminary report // Plast. & Reconstr. Surg. -1988. -V. 82. -№3. -P. 440-443.

124. Hirase Y., Valauri F.A., Buncke H.J. Neovascularized free cutaneous cartilage flap transfer whith microsurgical anastomosis: An experimental model in the rabbit // Ann. Plast. Surg. -1988. -Vol. 21. -№ 4. -P. 343 347.

125. Hokugo A., Kubo Y., Takahashi Y. et al. Préfabrication of vascularized bone graft using guided bone regeneration // Tissue Eng. -2004. -V. 10. -№7-8. -P. 978-986.

126. Homma K., Sugihara T., Yoshida T., Ohura T. Fascia-vascularized vs. muscle-vascularized prefabricated flaps using tissue expanders: an experimental study in a rat model // J. Reconstr. Microsurg. -1995. -V.l 1. -№3. -P.221-229.

127. Homma K., Tetsuo H., Katsufumi H. et al. A prefabricated osteocutaneous flap for tracheal reconstruction // Plast. & Reconstr. Surg. -2003. -Vol. 111.-№5.-P. 1688-1692.

128. Homma K.H., Ohura T., Sugihara T. et al. Prefabricated flaps using tissue expanders: an experimental study in rats // Plast. & Reconstr. Surg. -1993. -Vol. 91.-№ 6.-P. 1098 -1107.

129. Hori Y., Tamai S., Okuda H. et al. Blood vessel transplantation to bone // J. Hand Surg. Am. -1979. -Vol. 4. -P. 23-33.

130. Hultman C.S., Carlson G.W., Losken A. et al. Utility of the omentum in the reconstruction of complex extraperitoneal wounds and defects: donor-site complications in 135 patients from 1975 to 2000 // Ann. Surg. -2002. -V. 235. -P. 782-795.

131. Iglesias M., P. Butron, E. Cortes et al. Preservation of a digital osteotendi-nous structure with an omental flap // Plast. & Reconstr. Surg. -2000. -V. 106. -№5.-P. 1062-1068.

132. Itoh Y. An experivental study of prefabricated skin flaps using silicone sheets, with reference to the vascular patternization process // Ann. Plast. Surg. -1992.-V.28.-P. 140-146.

133. Iwasawa M. Accelerated maturation in prefabricated flaps by transforming growth factor-ß: An experimental study in a rabbit // Ann. Plast. Surg. -1993. -Vol.73.-P.72.

134. Jaquet Y., Pilloud R., Lang F.J., Monnier P. Préfabrication of composite grafts for long-segment tracheal reconstruction // Arch. Otolaryngol. Head & Neck Surg. -2004. -V. 130. -№10. -P. 1185-1190.

135. Jurkiewicz M.J., Nahai F. The omentum. It's use as a free vascularized graft for reconstruction of the head and neck // Ann. Surg. -1982. -V. 195. -№ 6. -P. 756-765.

136. Kamei Y., Torii S., Nishizeki O. The use of omentum in reconstractive surgery// 6th international meeting of the Omentum Club, München -1996. -P. 14.

137. Keser A., Bozkurt M., Taner O.F. et al. Préfabrication of bone by vascular induction: an experimental study in rabbits // Scand. J. Plast & Reconstr. Surg. Hand. Surg. -2004. -V. 38. -№ 5. -P. 257-260.

138. Khouri R.K., Upton J., Shaw W.W. Préfabrication of composite free flaps throught staged microvascular transfer: an experimental and clinical stady // Plast. & Reconstr. Surg. -1991. -Vol. 87. -№ 1. -P. 108-115.

139. Khouri R.K., Upton J., Shaw W.W. Principles of flap préfabrication // Clin. Plast. Surg. -1992. -V. 19. -№ 4. -P. 763-771.

140. Kimura N., Hasumi T., Satoh K. Prefabricated thin flap using the transversalis fascia as a carrier // Plast. & Reconstr. Surg. -2001. -V.108. -№7. -P. 1972-1980. Discussion 1981.

141. Kiricuta I. L'emploi du grand epiploon dans la chirurgie du sein cancereux //Presse, Med.-1963.-V. 71.-P. 15-17.

142. Kiricuta I. Use of the greater omentum in plastic surgery. -Bucuresti: Ed. Medicala-1980.-290 P.

143. Kneze K.N. Die Knorpelbefäbe und Knochankern. Der metamorphosierende Knorpel: II Mutteilung // Gegenbaurs morphologisches Jahrbuch. -1980. -Bd 126.-S. 86-101.

144. Ko C.Y., Shaw W.W. Durability of prefabricated versus normal random flaps against a bacterial challenge // Plast. & Reconstr. Surg. -1997. -V. -99. -№ 2. -P. 372-377.

145. Krompecher S. Local tissus metabolism and the quality of the callus // Callus Formation. Symp. On the Biology of Fracture Healing. -Buharest, 1967 -P. 275 300.

146. Lantieri L.A., Tantaoui B., Rimareix F.A. Lower back coverage with endo-scopically harvested pedicled greater omental flap // Plast. & Reconstr. Surg. -1999. -V. 103. -№ 3. -P. 960 963.

147. Le Fourn B., Loirat Y., Sartre J.Y. et al. Couventure d'une perte de substance dorso-lombaire par epiploplastie // Ann. Chir. Plast. Esthet. -1997. -V. 42. -P. 70.

148. Lee J.H., Cornelius C. P., Schwenzer N. Neo-osseous flaps using deminera-lized allogeneic bone in a rat model // Ann. Plast. Surg. -2000. -V. 44 -№2. -P. 195-204.

149. Levander B., Zwetnov N.N. Bulk flow of cerbrospinal fluid through a lum-bo-omental pedicle graft in the dog // Acta Neurochir. (Wien) -1978. -V. 41. -P. 147-155.

150. Li QF, Reis ED, Zhang WX, Silver L, Fallon JT, Weinberg H. Accelerated flap préfabrication with vascular endothelial growth factor // J. Reconstr. Microsurg. -2000. -V. 16. -№1. -P. 45-49.

151. Liebermann D.M., Kaufmann M. Utilization of the greater omentum in surgery: a historical review // Neth. J. Surg. -1991. -V. 43. -№ 5. -P. 136-144.

152. Liebermann-Meffert D. Macroscopic and microscopic aspects of the anatomy of the greater omentum // 6th international meeting of the Omentum Club, Munchen. -1996. -P. 23.

153. Liebermann-Meffert D. Vascular pattern of the omentum as base for omentaljLsurgery // 6 international meeting of the Omentum Club, Munchen. 1996. -P. 24.

154. Liebermann-Meffert D. The omental plug good indications, bad indications // 6th international meeting of the Omentum Club, Munchen. -1996. -P. 26.

155. Liebermann-Meffert D. The greater omentum. Anatomy, embryology, and surgical applications // Surg. Clin. North. Am. -2000. -V. 80. -№1. -P. 275-293.

156. Loeble E.C., Marvin J.A., Heck E.L. et al. The metod of quantitative burn-wound biopsy cultures and its routine use in the care of burned patients // Amer. J. Clin. Path. -1974. -V. 61. -P. 20-24.

157. Ma Q., Mao T., Liu B. et al. Vascular osteomuscular autograft préfabrication using coral, type I collagen and recombinant human bone morphogenetic pro-tein-2 // Br. J. Oral. Maxillofac. Surg. -2000. -V. 38. -№ 5 -P. 561-564.

158. Maitz P.K., Pribaz J.J., Hergrueter C.A. Impact of tissue expansion on flap préfabrication: an experimental study in rabbits // Microsurgery. -1996. -V. 17. -№ 1. -P.35-40.

159. Maitz P.K., Pribaz J.J., Hergrueter C.A. Manipulating prefabricated flaps: an experimental study examining flap viability // Microsurgery. -1994. -V. 15. -№ 9. -P. 624-629.

160. Maloney C.T., Wages D., Upton J., Lee W.P.A. Free omental tissue transfer for extremity coverage and revascularization // Plast. & Reconstr. Surg. -2003. -V. 111. -№ 6. -P. 1899- 1904.

161. Maroudas A., Bayliss M., Venn M.F. Further studies on the composition of human femoral head cartilage // Ann. Rheum. Dis. -1980. -V. 39. -№ 5. P. 514-523.

162. Marschall M.A., Cohen M. The use of greater omentum in reconstructive surgery // Surg. Annu. -1994. -V. 26. -P. 251-268.

163. McColl I. Reconstruction of the breast with omentum after subcutaneous mastectomy // Lancet. -1979. -V. 1. -P. 134.

164. McGregor I.A., Jackson I.T. The groin flap // Br. J. Plast. Surg. -1972., -V. 25.-P. 3.

165. McGregor I.A., Morgan R.G. Axial and random pattern flaps // Br. J. Plast. Surg. -1973. -V. 26. -P. 202-212.

166. McLean D.H., Buncke H.J. Autotransplant of omentum to a large scalp defect, with microsurgical revascularization // Plast. & Reconstr. Surg. -1972. -V. 49. -№ 3.-P. 268-274.

167. Micheau P. The greater omentum. Its role in reconstructive plastic surgery // Ann. Chir. Plast. Esthet. -1995. -V. 40 -№2 -P. 192-207.

168. Misholy H., Jacobs G., Reinisch J.F. et al. A grid method for evaluading flap survival in rats // Plast. & Reconstr. Surg. -1982. -V. 69. -P. 881.

169. Morrison W.A., Penington A.J., Kumta S.K. et al. Clinical applications and technical limitations of prefabricated flaps // Plast. & Reconstr. Surg. -1997. -V. 99. -№2. -P. 378-385.

170. Morsi A.W., Kimble F., Quarmby C. et al. The Waist Coat Flap: a new technique for closure of infected median sternotomy wounds // Br. J. Plast. Surg. -2004. -V. 57. -№ 8. -P. 728-732.

171. Mutaf M., Tasaki Y., Fujii T. Is bed isolation necessary during flap préfabrication? An experimental study in rats // Ann. Plast. Surg. -1994. -V.33. -№4. -P. 392-400.

172. Nguyen T.H., Klöppel M., Staudenmaier R., Biemer E. Experimental investigation of neovascularisation in large prefabricated flaps after arteriovenous pedicle implantation // Handchir. Mikrochir. Plast. Chir. -2004. -V.36. -№4. -P. 212-217.

173. Nishimura T., Kanehira E. Soft tissue augmentation with laparoscopically harvested omentum // Br. J. Plast. Surg. -2004. -V. 57. -№4. -P. 369-370.

174. Nishimura T., Yamada K., Ito M. Head and neck reconstruction using laparoscopically harvested omentum // Nippon. Jibiinkoka Gakkai Kaiho. -2004. -V. 107. -№ 6. -P. 658-664.

175. O'Brien B.M., McLeod A.M., Hayhurst J.W. et al. Successful transfer of a large island flap from the groin to the foot by microvascular anastomosis // Plast. & Reconstr. Surg. -1973. -Vol. 52. -P. 271.

176. Oliveira D.N., Lenzi J.A., Lenzi H.L. Lymphoid subpopulations of coelom-associated limphomieloid tissue (CALT) // 6 th international meeting of the Omentum Club, München. -1996. -P. 38.

177. Orringer J.S., Shaw W.W., Borud L.J. et al. Total mandibular and lower lip reconstruction with a prefabricated osteocutaneous free flap // Plast. & Reconstr. Surg. -1999. -Vol. 104. -№ 3. -P. 793-797.

178. Ozgentas HE, Shenaq S, Spira M. Préfabrication of a secondary TRAM flap // Plast. & Reconstr. Surg. -1995. -V. 95. -№3. -P.441-449. Discussion 450-451.

179. Park C., Roh T.S., Chi H.S. Total ear reconstruction in the devascularized temporoparietal region: II. Use of the omental free flap // Plast. & Reconstr. Surg. -2003. -V. 111. -№4. -P. 1391 -1397. Discussion 1398-1399.

180. Peer L.A. Transplantation of tissues. -Baltimore: The Wiliam & Wilkins Co., 1955.-V.l.-421 P.

181. Pelissier P., Villars F., Mathoulin-Pelissier S. et al. Vascularization and osteogenic cell on heterotopic bone formation within a madreporic ceramic in rat // Plast. & Reconstr. Surg. -2003. -V. 111. -№6. -P. 1932-1941.

182. Prescott C.A., Laing D. Medium term fate of cartilage grafts from children after laringotracheoplasty // Int. J. pediat. otorhinolaryng. -1993. -V. 27. -№2. -P. 163-71.

183. Pribaz J.J., Fine N.A. Prelamination: defining the prefabricated flap a case report and review // Microsurgery -1994. -V.15. -№ 9. -P.618-623.

184. Pribaz J.J., Fine N., Orgill D.P. Flap préfabrication in the head and neck: a 10-year experience. // Plast. &Reconstr. Surg. -1999. -V. 103. -№ 3. -P. 808-820.

185. Pribaz J.J., Fine N.A. Prefabricated and prelaminated flaps for head and neck reconstruction // Clin. Plast. Surg. -2001. -V. 28. -№ 2. -P. 261-272.

186. Rohner D., Jaquiery C., Kunz C. et al. Maxillofacial reconstruction with prefabricated osseous free flaps: a 3-year experience with 24 patients // Plast. & Reconstr. Surg. -2003. -V. 112. -№3. -P. 748-757.

187. Safak T., Akyurek M., Ozcan G. et al. Osteocutaneous flap préfabrication based on the principle of vascular induction: an experimental and clinical study// Plast. & Reconstr. Surg. -2000. -V. 105. -№4. -P. 1304-1313.

188. Saltz R., Stowers R., Smith M., Gadacz Th.R. Laparoscopically harvested omental free flap to cover a large soft tissue defect // // Ann. Surg. -1993. -Vol. 217. -№ 5. -P. 542-547.

189. Scoog T., Ohlsen L., Sohn S.A. Perichondrial potencial for cartilaginous regeneration // Scand. J. Plast. &Reconstr. Surg. -1972. -V. 6. -P. 123.

190. Seidenberg B., Rosenak S.S., Hurwitt E.S., Som M.L. Immediate reconstruction of the cervical oesophagus by a revascularised isolated jejunal segment // Ann. Surg. -1959. -V. 149. -P. 162.

191. Seifert E. Studien am omentum majus des Menschen // Langenbecks Arch. Klin. Chir. -1923. -V. 123. -P. 608-683.

192. Senn N. Anastomose intestinale et greffe de Lambeaux epiploigues // Arch. Roum de Med. et de Chir. -1888. -P. 589-593.

193. Shilov B.L., Milanov N.O., Liebermann-Meffert D. // 6th international meeting of the Omentum Club, München. -1996. -P. 43.

194. Shintomi Y., Ohura T. The use of muscule vascularized pedicle flaps // Plast. & Reconstr. Surg. -1982. -V. 70. -P. 725-734.

195. Staudenmaier R., Hoang T.N., Kleinsasser N. et al. Flap préfabrication and prelamination with tissue-engineered cartilage // J. Reconstr. Microsurg. -2004. -V.20. -№7. -P. 555-564.

196. Stockwell R. A. Biology of cartilage cells. -Cambridge, New York: Univ. Press, 1979. -329 P.

197. Tagliacotius C. De curtotum chirurgia per insitionem Libri duo. -Venetium, 1597. -436S.

198. Talwar S., Jain S., Porwal R. et al. Free versus peduncled omental grafts for limb salvage in Buerger's disease // Aust. N.Z. J. Surg. -1998. -V. 68. -P. 38.

199. Tan B.K., Chen H.C., Wei F.C. et al. Formation of independently revascu-larized bowel segments using the rectus abdominis muscle flap: a rat model for jejunal préfabrication // Plast. & Reconstr. Surg. 2002. -V. 109. -№2 -P. 655-663.

200. Tan B.K., Chen H.C., He T.M., Song I.C. Flap préfabrication the bridge between conventional flaps and tissue-engineered flaps // Ann. Acad. Med. Singapore -2004. -V. 33. -№5. -P. 662-666.

201. Tark K.C., Khouri R.K., Shin K.S., Shaw W.W. The fasciovascular pedicle for revascularization of other tissues // Ann. Plast. Surg. -1991. -V. 26. -№ 2. -P. 149-155.

202. Tark K.C., Shaw W.W. The revascularization interface in flap préfabrication: a quantitative and morphologic study of the relationship between carrier size and surviving area // J. Reconstr. Microsurg. -1996. -V.12. №5. -P. 325-330.

203. Tark K.C., Tuchler R.E., Shaw W.W. Flap préfabrication: effectiveness of different vascular carriers // Ann. Plast. Surg. -1996. -V.37. -№3. -P.298-304.

204. Top H., Mavi A., Barutcu A., Yilmaz O. Osteocutaneous flap préfabrication in rats // Plast. & Reconstr. Surg. -2004. -V. 113. -№ 2. -P. 574-584.

205. Touho H. Strategy for omental transplantation in moyamoya disease // No Shinlcei Geka. -2004. -V. 32. -№ 5. -P. 451-455.

206. Tsai FC. A new method: perforator-based tissue expansion for a preexpanded free cutaneous perforator flap // Burns. -2003. -V. 29. -№ 8. -P.845-848.

207. Tsukagoshi T., Satoh K., Hosaka Y. Cranioplasty with neovascularized autogenous calvarial bone // Plast. & Reconstr. Surg. -1998. -V. 102. -№6. -P. 2114-2118.

208. Tsukagoshi T., Yenidunya M.O., Hosaka Y. Prefabricated osteomusculocutaneous flaps using calvarial bone: experimental study // J. Reconstr. Microsurg. -1998. -V.14. -№7. -P. 473-477. Discussion 478.

209. Upton J., Mulliken J.B., Hicks P.D., Murray J.E. Restoration of facial contour using free vascularized omental transfer // Plast. & Reconstr. Surg. -1980.-Vol. 66.-P. 560-567.

210. Urist M.R. Bone regeneration under influence of a bone morphogenetic protein (BMP) beta tricalcium phosphate (TCP) composite in scull the-phin defects in dogs // Clin. Orthop. -1987. -№214 -P. 295-304.

211. Vacanti F. PHEMA as a fibrous capsule resistant breast prosthesis // Plast. & Reconstr. Surg. -2004. -Vol. 113. -№3. -P. 949 - 952.

212. Vogelin M. D. E., Jones N.F.,^Heberman J.R. et al. Préfabrication of bone by use of a vascularized periosteal flap and bone morphogenetic protein // Plast. & Reconstr. Surg. -2002. -V. 109. -№1. -P. 190-198.

213. Washio H. An intestinal conduit for free transplantation of other tissues // Plast. & Reconstr. Surg. -1971. -Vol. 48. -P. 48-51.

214. Wolff K.D., Ervens J., Hoffmeister B. Raising a radial flap with primary wound closure by préfabrication of split skin fascia flaps // Mund. Kiefer. Gesichtschir. -1997. -V. 1. -№4 -P. 224-228.

215. Yao S.T. et al. Omental axial flap a new technique to from a vascularized free flap // Clin. J. Surg. -1979. -Vol. 17. -P. 151.

216. Yao S.T. Vascular implantation into skin flap: Experimental study and clinical application: a prelaminary report // Plast. & Reconstr. Surg. -1981. -V. 68. -№ 3. -P. 404-409.

217. Zhang F., Lineaweaver W.C., Kao S., Newlin L., Buncke H.J. The greater omentum transplantation model in the rat // Microsurgery -1994. -V. 15. -P. 269-273.

218. Zhang F., Waller W., Lineaweaver W.C. Growth factors and flap survival // Microsurgery. -2004. -V. 24. -№3. -P. 162-167.

219. Zhang L., Tuchler R.E., Chang B. et al. Préfabrication of free flaps using the omentum in rats // Microsurgery -1992. -V. 13. -№4. -P. 214-219.