Автореферат и диссертация по медицине (14.00.14) на тему:Экспериментальное исследование бактериохлорофиллид-серина и фенилтиопроизводных фталоцианинов как потенциальных фотосенсибилизаторов для фотодинамической терапии и флуоресцентного обнаружения новообразований
Автореферат диссертации по медицине на тему Экспериментальное исследование бактериохлорофиллид-серина и фенилтиопроизводных фталоцианинов как потенциальных фотосенсибилизаторов для фотодинамической терапии и флуоресцентного обнаружения новообразований
На правах рукописи
Меерович Игорь Геннадьевич
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ БАКТЕРИОХЛОРОФИЛЛИД-СЕРИНА И ФЕНИЛТИОПРОИЗВОДНЫХ ФТАЛОЦИАНИНОВ КАК ПОТЕНЦИАЛЬНЫХ ФОТОСЕНСИБИЛИЗАТОРОВ ДЛЯ ФОТОДИНАМИЧЕСКОЙ ТЕРАПИИ И ФЛУОРЕСЦЕНТНОГО ОБНАРУЖЕНИЯ НОВООБРАЗОВАНИЙ
АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук (14.00.14 - онкология)
Москва, 2005 г.
Работа выполнена в Государственном учреждении
Российский онкологический научный центр им. Н.Н. Блохина РАМН.
Научные руководители:
Доктор фармацевтических наук, профессор Оборотова Н.А Доктор медицинских наук Смирнова З.С.
Официальные оппоненты:
Доктор биологических наук, профессор А.А. Красновский Доктор медицинских наук, профессор Ю.П. Кувшинов
Ведущая организация:
Московская медицинская академия им. И.М. Сеченова
Защита диссертации состоится «24» марта 2005 г. в 14 часов на заседании диссертационного совета (К.001.17.01) при ГУ Российский онкологический научный центр им. Н.Н. Блохина РАМН по адресу: 115478, Москва, Каширское шоссе, 24, конференц-зал.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Российского онкологического научного центра им. Н.Н.Блохина РАМН.
Автореферат разослан «_» февраля 2005 г.
Ученый секретарь диссертационного совета, доктор медицинских наук, профессор
Ю.А. Барсуков
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность темы
Фотохимиотерапия новообразований - направление
противоопухолевой терапии, в котором воздействие на ткань введенного химиотерапевтического агента инициируется облучением
сенсибилизированных патологических тканей световым излучением, поглощаемым этим агентом.
Фотодинамическая терапия (ФДТ) является наиболее активно развивающимся направлением фотохимиотерапии. При проведении ФДТ в организм пациента вводят препарат - фотосенсибилизатор (ФС), а затем облучают патологический участок оптическим излучением, поглощаемым фотосенсибилизатором. Свет выполняет функции адресации воздействия и является источником энергии для фотобиохимической реакции, приводящей к образованию в опухолевой ткани и/или сосудах опухоли цитотоксических агентов (активных форм кислорода).
Методы, основанные на использовании ФС, избирательно накапливающихся в патологических тканях и флуоресцирующих при фотовозбуждении, получили в последнее время широкое распространение и в онкологической диагностике.
Несомненные достоинства метода флуоресцентной диагностики (ФД): простота, неинвазивность, возможность совмещения процедуры с терапевтическим лазерным воздействием для проведения ФДТ - делают этот метод перспективным для обнаружения и определения границ новообразований преимущественно поверхностной и внутриполостных локализаций.
Однако созданные к настоящему времени ФС обладают недостаточно высокой селективностью накопления в опухоли по сравнению с нормальной тканью. Их возбуждение осуществляется светом в диапазоне 600-700 нм, сильно поглощаемым самой биологической тканью, что ограничивает глубину воздействия и снижает эффективность ФДТ и ФД. Многие ФС в
течение длительного времени (от недель до месяцев) сохраняют высокую концентрацию в коже, что приводит к длительной кожной фототоксичности и необходимости соблюдения пациентом "темнового" режима, снижая тем самим качество его жизни.
Необходимость совершенствования методов ФДТ и ФД опухолей делает актуальной задачу создания новых ФС с высокой фотодинамической активностью, хорошими флуоресцентными свойствами, высокой селективностью накопления в опухоли по отношению к нормальной ткани и коже и быстрым снижением концентрации в коже до значений, обеспечивающих отсутствие или минимизацию остаточных последствий их применения.
Актуальным является поиск ФС с поглощением в спектральном диапазоне 700-800 нм, в котором собственное поглощение биологических тканей минимально. Использование таких ФС позволяет минимизировать потери на собственное поглощение ткани, увеличить глубину проникновения возбуждающего света и, за счет оптимального выбора их концентрации в тканях, обеспечить преимущественное воздействие на патологический очаг, расположенный на определенной глубине под облучаемой поверхностью.
Цель исследования
Исследование бактериохлорофиллид-серина и фенилтиопроизводных фталоцианинов в качестве потенциальных фотосенсибилизаторов для фотодинамической терапии и флуоресцентного обнаружения новообразований.
Задачи исследования
1. Исследование in vivo поглощения и флуоресценции бактерио-хлорофиллид-серина, изучение динамики и селективности его накопления в опухоли по сравнению с нормальной тканью.
2. Исследование фотодинамической активности бактериохлорофиллид-серина.
3. Получение липосомальных дисперсий фенилтиопроизводных фталоцианинов.
4. Исследование in vivo поглощения и флуоресценции фотосенсибилизаторов на основе липосомальных дисперсий фенилтиопроизводных фталоцианинов, изучение динамики и селективности их накопления в опухоли по сравнению с нормальной тканью.
5. Исследование фотодинамической активности фотосенсибилизаторов на основе липосомальных дисперсий фенилтиопроизводных фталоцианинов.
Научная новизна
Впервые спектрально-флуоресцентным методом изучена фармакокинетика бактериохлорофиллид-серина в ранний период после его введения и показано, что максимум концентрации этого ФС в тканях и органах достигается через 15-20 минут после введения. Селективность накопления препарата в опухоли по сравнению с нормальной тканью в этом временном промежутке составляет примерно 4:1, а через 4 часа после введения достигает значения 9:1. Обнаружены особенности спектров флуоресценции в опухоли и нормальных тканях, обусловленные различиями в них процессов биодеградации бактериохлорофиллид-серина и позволяющие совершенствовать флуоресцентный метод обнаружения опухолей и определения их границ. Показано, что терапевтическое действие при ФДТ с использованием бактерихлорофиллид-серина осуществляется, в основном, за счет нарушения кровотока в сосудистой системе опухоли, а также некроза и апоптоза клеток опухоли.
Впервые получены ФС на основе липосомальных дисперсий фенилтиопроизводных фталоцианина с поглощением в, спектральном диапазоне 710-750 нм. Проведены экспериментальные исследования динамики и селективности накопления этих ФС в опухоли по сравнению с нормальной тканью и их фотодинамической эффективности. Показана перспективность исследования этого класса ФС для флуоресцентной диагностики и фотодинамической терапии новообразований.
Практическая значимость работы
Получены и исследованы новые высокоэффективные фотосенсибилизаторы для фотодинамической терапии и флуоресцентной диагностики на основе липосомальных дисперсий ряда фенилтиопроизводных фталоцианинов с поглощением в спектральном диапазоне максимальной прозрачности биологической ткани.
Уточнена фармакокинетика фотосенсибилизатора бактерио-хлорофиллид-серин, что позволило оптимизировать время проведения ФДТ и обеспечить ее высокую эффективность.
Предложен новый подход для флуоресцентного обнаружения и определения границ опухолей, основанный на различиях в форме спектров флуоресценции сенсибилизированных бактериохлорофиллид-серином опухолей и нормальных тканей. Апробация работы
Материалы приведенных в диссертационной работе исследований были представлены на следующих научных сообществах:
- Congress ILLA'2003, VIII International Conference on laser and laserinformation technologies: fundamental problems and applications (Plovdiv, September 27 - October 1,2003),
-Всероссийской научно-практической конференции "Отечественные противоопухолевые препараты" (Москва, 17-19 марта 2004 г.),
- III съезде онкологов и радиологов СНГ (Минск, 25-28 мая 2004 г.),
- 16th International Congress of Anti-Cancer Treatment (Paris, February 1-4,2005)
Публикации
По материалам диссертации опубликовано 16 научных работ. Объем и структура диссертации
Диссертация содержит 153 страницы машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, описания объектов и методов исследования, трех глав, отражающих результаты собственных экспериментальных исследований и их обсуждение, общих выводов и списка литературы,
включающего 25 отечественных и 207 зарубежных источников. Работа иллюстрирована 64 рисунками и 1 таблицей.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Животные и опухолевые модели
Работа выполнена на мышах-гибридах Ft и BDFt массой 22-24 грамм, полученных из разведения отделения лабораторных животных ГУ РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН. Исследования выполнялись на моделях внутримышечно перевиваемой опухоли Эрлиха (штамм ELD) и подкожно перевиваемого лимфоцитарного лейкоза Р-388. Штаммы перевиваемых опухолей были получены из банка опухолевых штаммов ГУ РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН.
Опухоли перевивали мышам в область бедра асцитной жидкостью по 0,1 мл, содержащей 500 тыс. опухолевых клеток. Фотосенсибилизаторы вводили мышам однократно внутривенно на 5 день после перевивки. При
этом объем опухолевого узла, определяемый по формуле
где а, Ь, с - линейные размеры опухоли, составлял для опухоли Эрлиха и лимфолейкоза Р-388 соответственно 0,8-0,9 см3 и 0,35-0,40 см3. Это было обусловлено необходимостью изучения эффективности фотодинамического воздействия на опухоли больших размеров, для лечения которых и предназначались изучаемые фотосенсибилизаторы.
Фотосенсибилизаторы
- бактериохлорофиллид-серин (субстанция синтезирована в Институте Науки им. Вейцмана, Израиль);
— фенилтиопроизводные фталоцианинов: тетра-3-фенилтиофталоцианин гидроксиалюминия; безметальный тетра-3-фенилтио-тетра-5-трет-бутилфталоцианин гидроксиалюминия; тетра-3-фенилтиофталоцианин цинка (субстанции синтезированы во ФГУП «ГНЦ «НИОПИК»).
Получение липосомальных дисперсий фенилтиопроизводных фталоцианинов
Для солюбилизации и внутривенного введения гидрофобных фенилтиопроизводных фталоцианинов были разработаны липосомальные композиции на основе лецитина (Lee), холестерина (Choi) и кардиолипина (CL). Липосомы получали по методу Бенгема смыванием водной фазой однородной пленки, полученной упариванием хлороформного раствора смеси липидов и ФС, с применением ультразвуковой соникации для уменьшения размеров везикул. Распределение липосом по размерам контролировали прибором Submicron Particle Sizer NICOMP-380 (Particle Sizing Systems, США).
Молярные отношения индивидуальных липидов и соотношения «суммарный липид: фталоцианин» подбирались экспериментально таким образом, чтобы повысить долю молекул фталоцианинов, включающихся в липидный бислой в мономерной (фотодинамически активной) форме, что оценивалось по интенсивности и форме спектра флуоресценции.
Выбранные в данной работе составы липосомальных композиций приведены в табл. 1.
Таблица 1. Молярные соотношения липидных композиций для создания липосом на основе фенилтиопроизводных фталоцианинов.
Фотосенсибилизатор Молярные соотношения липидов (Lee : Chol: CL) Соотношение "суммарный липид: фталоцианин"
Тетра-3 -фенилтиофталоцианин гидроксиалюминия 10:4:0,2 236:1
Безметальный тетра-3-фенилтио-тетра-5-трет-бутилфталоцианин 13:4:0,2 208:1
Тетра-3 -фенилтиофталоцианин цинка 12:4:0,2 313:1
Бактериохлорофиллид-серин растворяли в физиологическом растворе до концентрации 2 мг/мл непосредственно перед введением и вводили в хвостовую вену в дозе 20 мг/кг массы тела животного. Липосомальные дисперсии фенилтиопроизводных фталоцианинов готовили за сутки до
введения и вводили в хвостовую вену мышей из расчета 4 мг субстанции на килограмм массы тела.
Методы исследований
Исследования накопления фотосенсибилизаторов в биологических тканях проводились по интенсивности основных полос спектров их флуоресценции и поглощения, в приближении, что эти величины пропорциональны концентрации фотосенсибилизатора в ткани.
Для исследования флуоресценции применялся спектрально-флуоресцентный метод с использованием спектроанализатора «ЛЭСА-01-Биоспек» («Биоспек», Москва), при этом в качестве источников света применялись гелий-неоновый лазер с длиной волны 633 нм и полупроводниковый лазер с длиной волны 775 нм.
Для исследования поглощения сенсибилизированных тканей in vivo применялся метод спектроскопии диффузного отражения, с использованием того же спектроанализатора. В этом случае в качестве источника света применялась галогеновая лампа непрерывного спектра. Этот же метод в диапазоне длин волн 520-590 нм использовался для исследования и мониторинга степени оксигенации крови в микроциркуляторном русле опухоли (отношения локальных содержания оксигенированной формы гемоглобина и суммарного гемоглобина).
Измерения производились на нескольких (3-5) участках поверхности опухоли, затем эти данные усреднялись. Для оценки селективности накопления дополнительно оценивался тем же методом уровень накопления препарата в зоне нормальной ткани, контралатеральной опухоли; эти данные также усреднялись. После этого вычислялся индекс селективности как соотношение интенсивности флуоресценции в опухоли и нормальной ткани.
Были проведены также исследования биораспределения бактериохлорофиллид-серина по тканям и органам животных и построена зависимость интенсивности флуоресценции препарата в них от времени. Для этого забивали по 3 животных через различные промежутки времени после
введения препарата и исследовали флуоресценцию их опухолевых и мышечных тканей, а также печени, почек, селезенки и кожи.
Для проведения ФДТ был разработан источник света на основе дуговой ксеноновой лампы с перестраиваемым фильтром, что обеспечило возможность облучать патологический участок узкополосным квазимонохроматическим излучением с регулируемой длиной волны спектрального максимума и спектральной полушириной 30-40 нм. Разработанный источник обеспечивал мощность терапевтического облучения до 800 мВт при диаметре светового пучка в зоне облучения 16 мм. Мощность излучения в облучаемой зоне контролировалась измерителем световой мощности "Optometer S370" (UDT Instruments, США).
Эффективность ФДТ оценивалась по критерию торможения роста опухолей, вычисляемому по формуле:
ТРО(%) = ^-^хЮО,
где: ТРО - торможение роста опухолей;
IVk - средний объем опухолей в контрольной группе (см3);
V0 - средний объем опухолей в опытной группе (см3).
Опытные группы формировали из 5-6, а контрольные - из 8-10 мышей.
Статистическую обработку полученных результатов проводили по методу Фишера-Стьюдента. Разницу считали достоверной при р < 0,05.
В некоторых экспериментах после фотодинамического воздействия были проведены патоморфологические исследования опухолей. Животные забивались на 9 день после облучения, опухоли фиксировались в 10%-ном нейтральном формалине с последующей заливкой в парафин. Парафиновые срезы окрашивались гематоксилином и эозином по стандартной методике, после чего проводилось макро- и микроскопическое исследование. Патоморфологические исследования проводились на кафедре патологической анатомии Московской медицинской академии им. И.М. Сеченова.
РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ Глава 1. Исследование флуоресцентных и фотодинамических свойств бактериохлорофиллид-серина.
В спектрах сенсибилизированных BcЫ-Ser тканей наблюдается выраженная полоса поглощения в области 770 нм.
Спектры флуоресценции, регистрируемые спектроанализатором "ЛЭСА-01-Биоспек" в сенсибилизированных Bchl-Ser тканях при возбуждении излучением полупроводникового лазера с длиной волны 775 нм, имеют один пик с максимумом на длине волны 840 нм. В опухолевой и нормальной ткани спектры флуоресценции имеют только амплитудные отличия. При возбуждении №-№ лазером (длина волны излучения 633 нм) спектры сенсибилизированных Bchl-Ser опухолевых и нормальных тканей существенно отличаются по форме (рис.1). Спектр флуоресценции опухолевой ткани имеет два пика с максимумами около 700 и 790 нм, с четко выраженным провалом между ними в спектральном диапазоне 730-750 нм.
600 650 700 750 800 850 900 Длине волны, им
Рис. 1. Спектры флуоресценции тканей мыши F1 с опухолью Эрлиха, сенсибилизированных Bchl-Ser, при возбуждении излучением лазера с
длиной волны 633 нм: 1 — опухоль, 2 - нормальная ткань. Препарат введен за 17 минут до исследования в дозе 20 мг/кг.
При спектрально-флуоресцентных исследованиях Bchl-Ser было обнаружено, что концентрация препарата в опухоли достигает максимальных значений через 15-20 минут после его внутривенного введения, а затем
снижается более чем вдвое в течение 4 часов в результате его метаболизма и выведения из организма. Интенсивность флуоресценции в опухоли через 15 минут оказалась примерно в 4 раза выше по сравнению с ее значениями в коже. Наиболее высокая интенсивность флуоресценции на начальном этапе наблюдается в печени, почках и селезенке. Спад интенсивности флуоресценции в коже, мышечной ткани и внутренних органах в течение первых 4 часов происходит заметно быстрее по сравнению с опухолью (в коже и мышечной ткани в 4-6 раз, в селезенке в 3-4 раза, в почках в 4-5 раз, в печени - более чем в 20 раз).
Индекс селективности накопления BcЫ-Ser в опухоли по отношению к нормальной ткани, оцениваемый по интенсивности полосы флуоресценции с длиной волны 840 нм при возбуждении лазером с длиной волны 775 нм, достигает 4 уже через 15-20 минут после введения. Максимальное значение индекса селективности достигается примерно через 4 часа после введения и составляет 9-10. При оценке селективности накопления по интенсивности флуоресценции в спектральном диапазоне 770-790 нм, возбуждаемой лазером с длиной волны 633 нм, получаются близкие значения (около 4 на начальном этапе и 8-10 через 4 часа) (рис.2).
Рис. 2. Индекс селективности накопления BcЫ-Ser в опухоли Эрлиха по отношению к нормальной ткани мышей, оцениваемый по интенсивности флуоресценции при возбуждении лазерным излучением с различными длинами волн: -- • -- 775 нм, -А- 633 нм. Bchl-Ser введен в дозе 20 мг/кг.
Один из механизмов селективности BcЫ-Ser реализуется благодаря характерному для производных бактериохлорофилла повышенному сродству к липопротеинам низкой плотности (ЛПНП) плазмы, поскольку активно пролиферирующие опухолевые клетки продуцируют повышенное количество рецепторов к ЛПНП.
Дополнительное повышение селективности накопления Bchl-Ser в опухоли по сравнению с нормальной тканью связано с процессами его биодеградации в биологической ткани, при которых образуются продукты его окисления (хлорин) и деметаллизации (бактериофеофитин). Изучение спектров флуоресценции сенсибилизированных Bchl-Ser тканей животных показывает, что скорость накопления хлорина и бактериофеофитина в нормальных тканях заметно выше, чем в опухолях. Это можно объяснить меньшим содержанием кислорода в сосудах и тканях опухолей по сравнению с нормальными тканями. Отличия в процессах биодеградации приводят к дополнительному понижению концентрации Bchl-Ser в нормальной ткани по сравнению с опухолью. С другой стороны, они объясняют различия в форме спектров флуоресценции. Спектр флуоресценции сенсибилизированных тканей при возбуждении на длине волны 633 нм складывается из нескольких основных компонент: полосы собственно Bchl-Ser (с максимумом около 790 нм), хлоринов (интенсивная полоса с максимумом около 700 нм) и бактериофеофитина (с максимумом флуоресценции около 760 нм). В нормальной ткани флуоресценция бактериофеофитина дает больший вклад в суммарный спектр, что и приводит к сдвигу максимума длинноволновой полосы и сглаживанию "провала" между ней и полосой хлорина. Эти различия в спектрах флуоресценции опухолей и нормальных тканей, сенсибилизированных Bchl-Ser, могут быть использованы для создания нового подхода к флуоресцентной диагностике, дополняющего ранее разработанные методы. Действительно, анализ спектров флуоресценции, полученных в течение нескольких часов после введения, показывает, что,
несмотря на существенное снижение интенсивности, соотношение между ее значениями в диапазонах 780-800 нм и 730-750 нм в течение длительного времени остается примерно постоянным, но существенно разным для опухолевых и нормальных тканей. Введя для оценки этого соотношения параметр нормированной флуоресценции:
(где I - параметр нормированной флуоресценции, ^ - интенсивность флуоресценции в спектральном диапазоне 780-800 нм, !У - интенсивность флуоресценции в спектральном диапазоне 730-750 нм), которым можно охарактеризовать в каждой точке изучаемого участка эту особенность флуоресценции Bchl-Ser мы обнаружили, что значение этого параметра в нормальной ткани составляет не более 0,04, в то время как в патологической ткани оно превышает 0,08 (рис.3).
Рис. 3. Изменение во времени параметра нормированной флуоресценции сенсибилизированных Bchl-Ser опухоли Эрлиха (1) и нормальной ткани (2) мышей при возбуждении лазерным излучением с длиной волны 633 нм.
Численные значения этого параметра не зависят от интенсивности возбуждающего излучения. Это позволяет более адекватно связать разницу в его значениях с отличиями биохимических свойств в опухолях и нормальных тканях и повысить достоверность обнаружения опухолей и определения их границ.
Полученные данные о динамике концентрации БеЫ-8ег в опухоли позволили выбрать для фотодинамического облучения временной интервал 15-35 минут после введения, когда концентрация ФС в опухоли была близка к максимальной. При проведении ФДТ опухоли облучались в течение 20 минут излучением лампового источника света с длиной волны 770 нм и плотностью мощности около 250 мВт/см2. ФДТ вызывала значительное торможение роста опухоли Эрлиха, достигающее 76%. Облучение опухоли дозой света 150-200 Дж/см2 приводило к полной необратимой деоксигенации крови в ее микроциркуляторном русле (рис.3), что позволяет предположить сосудистый характер фотодинамического поражения опухоли при использовании БеЫ-8ег. Это было подтверждено патоморфологическим исследованием, которое выявило сильные поражения сосудов в виде геморрагии и тромбозов на фоне выраженного некроза и апоптоза клеток опухоли (рис.4).
Рис. 3. Изменение уровня оксигенации крови в микроциркуляторном русле опухоли Эрлиха в процессе ФДТ с БеЫ-8ег. Плотность мощности 250 мВт/см2. Стрелка показывает момент прекращения облучения. БеЫ-8ег введен за 15 минут до облучения в дозе 20 мг/кг.
Рис. 4. Результаты патоморфологических исследований опухоли Эрлиха после ФДТ с БсЫ-8ег.
Глава 2. Исследование фенилтиопроизводных фталоцианинов в липосомальной форме в качестве потенциальных агентов для фотодинамической терапии и флуоресцентной диагностики
Тетра-3-фенилтиофталоцианин гидроксиалюминия ГЗ-(РЬ5УРсАЮН].
Спектр поглощения сенсибилизированной [3-(РЬ5)4-РсА10Н] опухоли имеет интенсивную полосу в области 710-740 нм, значительно (более чем в 5 раз) превышающую как собственное поглощение несенсибилизированной ткани, так и поглощение сенсибилизированной нормальной ткани (рис.5). Это обеспечивает высокую эффективность фотовозбуждения ФС при облучении опухоли излучением с длиной волны, соответствующей спектральному максимуму его поглощения, поскольку его молекулы поглощают около 80% света в указанном диапазоне.
625 650 675 700 725 750 775 800 825 Длина волны, им
Рис. 5. Спектры поглощения опухоли (1) и нормальной ткани (2) мыши, сенсибилизированной [3-(PhS)4-PcA10H], через 20 часов после введения в дозе 4 мг/кг в липосомальной форме. 3 - спектр поглощения до введения фотосенсибилизатора.
Обращает на себя внимание динамика формы спектра поглощения [3-(PhS)4-PcAIOH] в опухоли (рис.6). В течение первых нескольких часов после введения положение основного спектрального максимума и отношение интенсивностей основной и коротковолновой полос поглощения примерно такие же, как у липосомальной дисперсии [3-(PhS)4-PcA10H]. В дальнейшем
(примерно через 1 сутки после введения) интенсивность поглощения становится заметно больше, спектральный максимум основной полосы поглощения сдвигается в коротковолновую сторону до 714-716 нм, а соотношение интенсивностей коротковолновой и основной полос уменьшается примерно до 0,25. В течение последующих 2-3 суток положение спектрального максимума основной полосы остается приблизительно в том же положении, что и через 1 сутки, интенсивность основной полосы поглощения остается примерно постоянной или немного падает, но существенно возрастает поглощение в коротковолновой полосе.
0.20 т
g
g 0.10-I
о
|
с 0 05 ■
0 00-1—.—,—.—.—.——,—.—I—.—,—.—,
625 650 675 700 725 750 775 800 Длина волны, нм
Рис. 6. Спектр поглощения [3-(PhS)4-PcA10H] в опухолевой ткани мыши в разные моменты времени после введения в дозе 4 мг/кг в липосомальной форме: 1 - 3 часа, 2-24 часа, 3-72 часа.
Можно предположить, что наблюдаемые спектральные изменения связаны с изменением взаимодействия молекул тетра-3-фенилтио-фталоцианина гидроксиалюминия с окружением. На начальном этапе после введения большинство его молекул находится в липидном бислое липосом. Часть из них, предположительно, находится в агрегированном состоянии, что проявляется в виде коротковолнового крыла (650-670 нм) полосы поглощения. В дальнейшем липосомы взаимодействуют с эндотелием новообразованных сосудов и клетками опухоли, молекулы попадают внутрь клеток, предположительно, за счет слияния липосом с
клеточной мембраной либо их эндоцитоза. При этом молекулы ФС высвобождаются от липосомального липидного окружения и взаимодействуют с органеллами клеток. Изменение окружения молекул приводит к спектральному сдвигу поглощения. На начальном этапе этого процесса ФС накапливается в клетках преимущественно в мономерной форме, что приводит к росту основной полосы поглощения. Последующее накопление молекул ФС в клетках также приводит к их взаимодействию между собой и агрегации, вследствие чего растет поглощение в полосе 650-670 нм.
Концентрация фотосенсибилизатора в опухоли, оцениваемая по интенсивности флуоресценции препарата, возрастает за первые сутки в 2 раза, достигает максимальных значений (примерно в 2,5-3 раза превышающих начальный уровень) между 2 и 4 сутками после введения, а затем начинает медленно снижаться (рис.7). Таким образом, в течение двух суток наблюдается накопление препарата в опухоли.
1.2
0 -I-,-,-,-,
0.1 1 10 100 1000 Время, часы
Рис. 7. Зависимость интенсивности флуоресценции [3-(РИ8)4-РсЛ10Ы] от времени после введения в дозе 4 мг/кг мышам с опухолью Эрлиха: 1 - опухоль, 2 — нормальная ткань. Пунктиром обозначен уровень аутофлуоресценции несенсибилизированной ткани.
Концентрация фотосенсибилизатора в нормальной ткани заметно меньше, чем в опухоли и монотонно снижается в течение всего времени
наблюдения, начиная с 30 минут (первая точка наблюдения) до 7 суток после введения. Через 1 час после введения оно спадает примерно в 1,5 раза, а через 1 сутки - в 2-2,5 раза, и достаточно быстро спадает до уровня, когда интенсивность его флуоресценции становится соизмеримой с аутофлуоресценцией тканей.
Индекс селективности накопления [3-(РЬ5)4-РсА10Н] в опухоли по сравнению с нормальной тканью через 1 час после введения доходит до значения 3, через 5-6 часов превышает 6, а на 2-4 сутках (при максимуме накопления в опухоли) достигает 8.
Высокая селективность накопления этого фотосенсибилизатора в опухоли при введении его в липосомальной форме может быть связана с эффективным участием в транспорте фосфолипидных липосом липопротеинов крови, в частности, ЛПНП, поскольку активно пролиферирующие неопластические клетки продуцируют повышенное количество рецепторов к липопротеинам. Важными факторами, обеспечивающими опухолетропность в липосомальной
форме, являются, с учетом особенностей ангиогенеза опухолей, размер липосом (100-200 нм) и их липидный состав, сходный с составом плазматической мембраны клеток, что облегчает проникновение содержимого липосомы в клетку (за счет слияния липосом с клеточной мембраной либо их эндоцитоза). Эти предположения корреллируют с наблюдавшейся динамикой спектров поглощения в
опухоли (см. рис. 6). Можно также предположить, что рассмотренные механизмы накопления характерны и для других фенилтиопроизводных фталоцианинов в липосомальной форме.
ФДТ с [3-(РЬ5)4-РсА10Н] в липосомальной лекарственной форме проводилась через 20-24 часа после введения ФС. Доза препарата составляла 4 мг/кг. Облучение осуществлялось излучением с длиной волны 730 нм и плотностью мощности 250-300 мВт/см2 в течение 20 мин. Доза облучения достигала 360Дж/см2. В течение 1 суток после облучения на поверхности
облученной опухоли в центральной части зоны облучения формировался некротический струп. ФДТ вызывала заметное торможение роста опухолей, достигающее 80% для опухоли Эрлиха и 84% для лимфолейкоза Р-388, а в ряде случаев - полное разрушение опухоли. Безметальный тетра-фенилтио-тетра-5-т/гет-бутилфталоцианин [3-(PhS)1-5-(t-Bu)1-PcH2].
Спектр поглощения [3-(PhS)4-5-(f-Bu)4-PcH2] в биологической ткани представляет собой выраженную полосу со спектральной шириной около 40 нм из двух частично структурированных пиков с длинами волн 718 и 747 нм на фоне широких менее интенсивных крыльев с коротковолновой (600-700 нм) и длинноволновой (760-840 нм) сторон, которые связаны, по-видимому, с агрегатами молекул [3-(PhS)4-5-(í-Bu)4-PcHi] (рис. 8).
0.20 i
Э 0.15 -
Í
«г
£ 0.10 •
i
0
1 005 -0.00 •
625 650 675 700 725 750 775 800 825 Длина волны, нм
Рис. 8. Спектр поглощения в опухоли (1) и
нормальной ткани (2) ткани мыши через 7 часов после внутривенного введения в дозе 4 мг/кг.
Концентрация ФС в опухоли, оцениваемая по интенсивности его флуоресценции, за первые 5-7 часов после введения возрастает примерно в 1,5 раза, после чего медленно снижается. Таким образом, и для этого ФС в течение длительного времени после введения наблюдается накопление в опухоли, механизмы которого, предположительно, такие же, как и ранее рассмотренные для
Концентрация ФС в нормальной ткани монотонно снижается в течение времени наблюдения. Через 2 часа после введения его концентрация уменьшается примерно в 1,5 раза, через 1 сутки - в 2-2,5 раза, а за двое суток (48 часов) спадает до уровня, когда интенсивность его флуоресценции становится соизмеримой с аутофлуоресценцией тканей (рис. 9).
1 о
01 1 10 100 Время, часы
Рис. 9. Зависимость интенсивности флуоресценции [3-(РЬ8)4-5-(/-Би)4-РсИ2] от времени после введения фотосенсибилизатора в дозе 4 мг/кг: 1 - опухоль; 2 - кожа
Индекс селективности накопления в опухоли по отношению к норме за
первые 2 часа после введения достигал значения 1,8, а к 1 суткам - 2,6, после
чего медленно снижался. У некоторых особей индекс селективности
превышал значение 4.
При ФДТ с [3-(РЬ5)4-5-(<-Ви)4-РсН2] в дозе 4 мг/кг торможение роста
опухоли Эрлиха достигало 83%.
Тетра-3-фенилтио-фталоцианин цинка [3-(РЬ8УРс2п]
Спектр поглощения тканей, сенсибилизированных [3-(РЬ8)4-Рс7п], имеет интенсивную полосу в области 700-725 нм с максимумом около 710 нм (рис.10).
Концентрация ФС в опухоли, оцениваемая по интенсивности его флуоресценции, за первые несколько часов после введения возрастает в 1,5 раза, после чего начинает снижаться. Концентрация ФС в нормальной
ткани монотонно снижается в течение времени наблюдения: через 3 часа после введения интенсивность флуоресценции спадает примерно в 2 раза, через 1 сутки - в 10 раз, а за четверо суток спадает до уровня аутофлуоресценции тканей (рис. 11). Индекс селективности накопления в интервале времени, соответствующем максимальному накоплению в опухоли (6-20 часов), достигает значений 4,5-5.
Длина волны, нм
Рис. Спектр поглощения [3-(PhS)4-PcZn] ш vivo в опухоли Эра через
Время, часы
Рис. 11. Зависимость интенсивности флуоресценции тетра-3-фенилтио-фталоцианина цинка [3-(РИ8)4-Рс2п] от времени после введения ФС в дозе 4 мг/кг: 1 - опухоль, 2 - нормальная ткань.
ФДТ с использованием [3-(РЬ5)4-Рс7п] вызывала торможение роста опухоли Эрлиха, достигающее 60%.
Выводы.
1. Установлено, что бактериохлорофиллид-серин является эффективным фотосенсибилизатором ближнего инфракрасного диапазона для фотодинамической терапии новообразований. При облучении через 15-30 минут после внутривенного введения, когда концентрация бактериохлорофиллид-серина в опухоли максимальна, наблюдается высокая эффективность терапевтического воздействия (ТРО до 76%).
2. Выявлена полная и необратимая деоксигенация крови в микроциркуляторном русле опухоли, сенсибилизированной бактериохлорофиллид-серином, при терапевтическом облучении с длиной волны 770 нм дозой 150-200 Дж/см2. Это позволяет предположить сосудистый характер фотодинамического поражения опухоли при ФДТ, что и подтверждается результатами патоморфологических исследований.
3. Высокий уровень селективности накопления бактериохлорофиллид-серина и наличие спектральных особенностей флуоресценции в опухоли по сравнению с нормальной тканью, обусловленных разной биодеградацией в них фотосенсибилизатора, позволяют рекомендовать его для флуоресцентной диагностики новообразований.
4. Получены и исследованы новые фотосенсибилизаторы на основе липосомальных дисперсий фенилтиопроизводных фталоцианинов, поглощающих в спектральном диапазоне 700-750 нм: тетра-3-фенилтио-фталоцианина гидроксиалюминия, безметального тетра-З-фенилтио-тетра-5-трет-бутилфталоцианина и тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка.
5. Установлено, что полученные фотосенсибилизаторы обладают достаточно высокой скоростью выведения из нормальной ткани. Время снижения интенсивности флуоресценции фотосенсибилизатора до предела обнаружения для тетра-3-фенилтиофталоцианина гидроксиалюминия не превышает 7 суток, для тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка - 4 суток, для безметального тетра-3-фенилтио-тетра-5-трет-бутилфталоцианина - 2 суток.
6. Выявлено, что полученные липосомальные фотосенсибилизаторы в течение длительного времени накапливаются в опухоли.
Максимальной селективностью накопления в опухоли по отношению к нормальной ткани обладает тетра-3-фенилтиофталоцианин
гидроксиалюминия. Его индекс селективности достигает значений 6-8 в интервале 1-3 суток после введения, когда уровень накопления в опухоли максимален.
Индекс селективности безметального тетра-3-фенилтио-тетра-5-трет-бутилфталоцианина достигает 2-3 в интервале времени 6-20 часов после введения, соответствующем максимальному накоплению.
Индекс селективности тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка достигает значений 3-5 в интервале времени 6-20 часов после введения, соответствующем максимальному накоплению.
7. Установлено, что ФДТ с использованием тетра-3-фенилтиофталоцианина гидроксиалюминия и безметального тетра-3-фенилтио-тетра-5-трет-бутилфталоцианина вызывает высокий терапевтический эффект (ТРО достигает значений 80-84%). При использовании для ФДТ тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка получен умеренный терапевтический эффект (ТРО = 60 %).
8. Показана перспективность применения для флуоресцентной диагностики и фотодинамической терапии бактериохлорофиллид-серина. Из трех фенилтиопроизводных фталоцианинов для углубленного исследования и предклинического изучения на основании ряда характеристик: технологичности синтеза субстанции и получения липосомальной дисперсии, спектрального диапазона, высокой селективности накопления в опухоли, и высокой фотодинамической активности - отобран тетра-3-фенилтиофталоцианин гидроксиалюминия.
Список опубликованных работ по теме диссертации
1. Меерович И.Г, Кубасова И.Ю., Меерович Г.А., Брандис А.С., Демура С.А., Шерц А. Флуоресцентные и фотодинамические свойства бактериохлорин-серина. (2003) Естественные и Технические Науки, т.З, №6, с.26-40.
2. Меерович И. Г., Оборотова Н.А. Применение липосом в фотохимиотерапии: 1. Липосомы в ФДТ. (2003) Российский Биотерапевтический Журнал, т. 2, №4, с.3-8.
3. Меерович И.Г., Кубасова И.Ю., Меерович Г.А., Брандис А., Оборотова Н.А., Барышников А.Ю., Шерц А. О возможности использования бактерихлорофиллид-серина в качестве фотосенсибилизатора для флюоресцентного определения новообразований. (2003) Российский БиотерапевтическийЖурнал, т. 2, №4, с.9-13.
4. Меерович И.Г., Кубасова И.Ю., Меерович Г.А., Демура С.А., Брандис А., Оборотова Н.А., Барышников А.Ю., Шерц А. Изучение возможности применения бактериохлорофиллид-серина в качестве фотосенсибилизатора для фотодинамической терапии. (2003) Российский Биотерапевтический Журнал, т.2, №4, с. 14-18.
5. Меерович И.Г., Оборотова Н.А. Применение липосом в фотохимиотерапии. 2. Липосомальные формы для создания фотоактивируемых липосомальных препаратов и фотобиологических исследований. (2004) Российский Биотерапевтический Журнал, т.З, №1, с.7-13.
6. Смирнова З.С., Меерович И.Г., Лукьянец Е.А., Меерович Г.А., Деркачева В.М., Оборотова НА, Стратонников А.А., Кубасова И.Ю., Борисова Л.М., Полозкова А.П., Орлова О.Л., Герасимова Г.К., Лощенов В.Б., Ворожцов Г.Н., Барышников А.Ю. Фенилтиозамещенные фталоцианины -новые фотосенсибилизаторы ближнего инфракрасного диапазона. (2004) Российский Биотерапевтический Журнал, т.З, № 1, с.54-60.
7. Меерович И.Г., Меерович Г.А. "Устройство для люминесцентной диагностики и фотодинамической терапии". Патент РФ №2221605 от 20 января 2004 г. с приоритетом от 24 декабря 2001 г.
8. Меерович И.Г., Меерович Г.А. "Мощный регулируемый лазерный прибор". Патент РФ №2233519 от 27 июля 2004 г. с приоритетом от 18 ноября 2002 г.
9. Меерович И.Г., Меерович Г.А. "Способ флуоресцентного контроля топологии новообразований". Патент РФ № 2220753 от 10 января 2004 г. с приоритетом от 10 декабря 2002 г.
10. G.A. Meerovich, I.Yu. Kubasova, I.G Meerovich, A. Brandis, A. Scherz. Fluorescent and photodynamic properties of infrared photosensitizer bacteriochlorin-serine. Technical Digest of ILIA '2003. VIII International Conference, Laser and laser-information technologies: fundamentalproblems and applications, September 27-Octoberl, 2003, p.121.
11. Меерович И.Г., Кубасова И.Ю., Демура С.А., Брандис А., Шерц А. Изучение в эксперименте бактериохлорофиллид-серина в качестве препарата для флуоресцентной диагностики и фотодинамической терапии новообразований. Материалы VII Российского онкологического конгресса. Москва, 25-27 ноября 2003 г., с.254
12. Меерович И.Г., Стратонников А.А., Рябова А.В., Меерович Г.А., Оборотова Н.А., Смирнова З.С., Кубасова И.Ю., Лукьянец Е.А., Брандис А., Бендель П., Лощенов В.Б., Шерц А., Барышников А.Ю. Исследование оптического поглощения сенсибилизаторов в биологических тканях in vivo. Материалы Всероссийской научно-практической конференции "Отечественный противоопухолевые препараты", Москва, 17-19 марта 2004 г., Российский Биотерапевтический Журнал, т.З, №2, с.54-55.
13. Смирнова З.С., Меерович И.Г., Лукьянец Е.А., Меерович Г.А., Деркачева В.М., Оборотова Н.А., Стратонников А.А., Кубасова И.Ю., Борисова Л.М., Полозкова А.П., Орлова О.Л., Герасимова Г.К., Лощенов В.Б., Ворожцов Г.Н., Барышников А.Ю. Новые инфракрасные
фотосенсибилизаторы на основе фенилтиозамещенных фталоцианинов. МатериалыШсъезда онкологов ирадиологов СНГ. Минск, 25-28 мая 2004 г., Часть l.с.173-177.
14. Меерович И.Г., Стратонников А.А., Оборотова НА, Смирнова З.С., Барышников А.Ю. Изучение оптического поглощения сенсибилизаторов, применяемых в новых методах онкологической терапии и диагностики. Современное состояние и перспективы развития экспериментальной и клинической онкологии. Материалы Российской научно-практической конференции, посвященной 25-летию НИИонкологии ТНЦСОРАМН. Томск, 24-25 июня 2004 г., Часть II, с. 132-133.
15. Меерович И.Г., Стратонников А.А., Рябова А.В., Меерович ГА, Оборотова НА, Смирнова З.С., Кубасова И.Ю., Брандис А., Лукьянец Е.А., Бендель П., Лощенов В.Б., Шерц А., Барышников А.Ю. Исследование оптического поглощения сенсибилизаторов в биологических тканях. (2004) Российский Биотерапевтический Журнал, т.З, №3, с.37-42.
16. Meerovich I.G., Kubasova I.Y., Meerovich G.A., Stratonnikov A.A., Demura S.A., Brandis A.S., Rosenbach-Belkin V., Scherz A. Fluorescent and photodynamic properties of infrared photosensitizer bacteriochlorophyllide-serine. (2004) Proceedings ofSPIE, v.5449, p.247-256.
Служба множительной техники ГУ РОНЦ им И.Н.Блохима РАМН Подписано в печать 2 5 .0 1 . 05 Заказ Л» 69 Тираж 100 экз
/ г- > j
f г ; :;
' 1773
2 2'.!;?2Cj5' "
Оглавление диссертации Меерович, Игорь Геннадьевич :: 2005 :: Москва
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.
ВВЕДЕНИЕ.
ЧАСТЫ. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
Глава 1. Фотодинамическая терапия и флуоресцентная диагностика.
1.1. Механизмы фотодинамического эффекта и поражения новообразований
1.2. Использование флуоресцентных свойств фотосенсибилизаторов для флуоресцентной диагностики.
Глава 2. Фотосенсибилизаторы.
2.1. Требования к фотосенсибилизаторам.
2.2. Фотосенсибилизаторы первого поколения - порфирины.
2.3. Фотосенсибилизаторы второго поколения.
2.3.1. Тетраазапорфирины.
2.3.2. Фотосенсибилизаторы на основе гидрированных форм порфиринов.
2.3.3. Производные бактериохлорофилла и бактериохлорофиллид-серин.
Глава 3. Липосомы в фотохимиотерапии.
3.1. Липосомы как средство для введения и адресной доставки фотосенсибилизаторов.
3.2. Липосомы в ФДТ.
3.3. Катионные лекарственные формы для доставки лекарств к патологическим неоваскуляризациям.
3.4. Фотоактивируемые липосомальные препараты.
3.5. Липосомы в качестве моделей и средств для исследования и совершенствования механизмов фотосенсибилизации и ФДТ.
ЧАСТЫ1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.
2.1. Бактериохлорофиллид-серин.
2.2. Фенилтиопроизводные фталоцианинов.
2.3. Получение липосомальных форм препаратов фенилтиопроизводных фталоцианинов.
2.4. Аппаратура и методики для исследования фотосенсибилизаторов in vivo и проведения ФДТ.
2.5. Экспериментальные животные и опухолевые модели.
ЧАСТЬ III. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.
Глава I. Исследование спектральных, фармакокинетических и фотодинамических свойств бактериохлорофиллид-серина.
1.1. Исследования бактериохлорофиллид-серина в растворах.
1.2. Исследование поглощения бактериохлорофиллид-серина in vivo.
1.3. Исследования особенностей флуоресценции бактериохлорофиллид-серина, динамики и селективности его накопления в тканях экспериментальных животных.
1.4. Изучение фотодинамического действия бактериохлорофиллид-серина in vivo.
Глава 2. Исследование фенилтиопроизводных фталоцианинов в липосомальной форме в качестве потенциальных агентов для фотодинамической терапии и флуоресцентной диагностики.
2.1. Исследование тетра-3-фенилтиофталоцианина гидроксиалюминия.
2.1.1. Исследование внутритканевого поглощения и флуоресцентных свойств тетра-3-фенилтиофталоцианина гидроксиалюминия.
2.1.2. Исследование динамики и селективности накопления тетра-3-фенилтиофталоцианина гидроксиалюминия.
2.1.3. Исследование эффективности фотодинамического действия тетра-3-фенилтиофталоцианина гидроксиалюминия.
2.2. Исследование безметального тетра-З-фенилтио-тетра-5-wpewбутилфталоцианина.
2.2.1. Исследование внутритканевого поглощения и флуоресцентных свойств безметального тетра-З-фенилтио-тетра-5-трет-бутилфталоцианина.
2.2.2. Исследование динамики и селективности накопления безметального тетра-фенилтио-тетра-5-тре/я-бутилфталоцианина.
2.2.3. Исследование эффективности фотодинамического действия безметального тетра-3-фенилтио-тетра-5-т/?ет-бутилфталоцианина.
2.3. Исследование тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка.
2.3.1. Исследование внутритканевого поглощения и флуоресцентных свойств тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка.
2.3.2. Исследование динамики и селективности накопления тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка.
2.3.3. Исследование эффективности фотодинамического действия тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка.
ЧАСТЫУ. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.
4.1. Возможные механизмы селективности бактериохлорофиллид-серина в опухолевой ткани.
4.2. Некоторые возможности использования особенностей флуоресценции бактериохлорофиллид-серина для флуоресцентной диагностики.
4.3. Эффективность ФДТ с бактериохлорофиллид-серином и пути ее повышения.
4.4. Особенности накопления фенилтиозамещенных фталоцианинов в опухоли.
4.5. Анализ результатов ФДТ с фотосенсибилизаторами на основе липосомальных форм фенилтиозамещенных фталоцианинов и некоторые возможности повышения ее эффективности.
ВЫВОДЫ.
Введение диссертации по теме "Онкология", Меерович, Игорь Геннадьевич, автореферат
Актуальность темы
Одной из актуальных задач современной онкологии является разработка новых противоопухолевых препаратов, обеспечивающих максимальное разрушение опухоли при минимальном повреждении нормальных клеток и тканей организма. Сложность этой задачи обусловлена тем, что цитотоксическая активность препарата проявляется прежде всего по отношению к наиболее чувствительным клеткам организма (ретикулоэндотелиальной и иммунной систем, кроветворных органов и т.д.). Одним из перспективных путей совершенствования химиотерапии является повышение избирательности действия препарата на опухоль за счет адресации его воздействия дополнительными факторами.
Фотохимиотерапия новообразований - направление противоопухолевой терапии, в котором воздействие на ткань введенного химиотерапевтического агента инициируется облучением сенсибилизированных патологических тканей световым излучением, поглощаемым этим агентом.
Фотодинамическая терапия (ФДТ) является наиболее активно развивающимся направлением фотохимиотерапии. При проведении ФДТ в организм пациента вводят препарат-фотосенсибилизатор, а затем облучают патологический участок оптическим излучением, поглощаемым фотосенсибилизатором (ФС). Свет выполняет функции адресации воздействия и является источником энергии для фотобиохимической реакции, приводящей к образованию в опухолевой ткани и/или сосудах опухоли цитотоксических агентов (активных форм кислорода).
ФДТ обладает рядом преимуществ по сравнению с химио-и радиотерапией, в частности:
- избирательность фотодинамического воздействия определяется как селективностью накопления фотосенсибилизатора, так и локальностью светового облучения;
-фотодинамическое воздействие ослабляет иммунную систему пациента в меньшей степени, чем химио- и радиотерапия.
В последнее время в онкологической диагностике • широкое распространение получили методы, основанные на использовании флуоресцирующих ФС, которые избирательно накапливаются в патологических тканях. Это позволяет, обнаружив участок с повышенной интенсивностью флуоресценции, предположить наличие в нем патологического процесса. Несомненные достоинства метода флуоресцентной диагностики (ФД): неинвазивность, быстродействие, возможность совмещения процедуры с терапевтическим лазерным воздействием для проведения ФДТ -делают этот метод перспективным для обнаружения очагов ряда заболеваний преимущественно поверхностной и внутриполостных локализаций.
Однако созданные к настоящему времени ФС на основе производных гематопрофирина ("Photofrin-2", "Фотогем"), сульфофталоцианинов ("Фотосенс"), хлоринов ("Foscan") обладают недостаточно высокой селективностью накопления в опухоли по сравнению с нормальной тканью (индекс селективности лежит обычно в диапазоне 1,5-3). Возбуждение этих ФС осуществляется светом в диапазоне 600-700 нм, сильно поглощаемым самой биологической тканью, что ограничивает глубину воздействия и снижает эффективность ФДТ и ФД. Многие ФС в течение длительного времени (от недель до месяцев) сохраняют высокую концентрацию в коже, что приводит к длительной кожной фототоксичности и необходимости соблюдения пациентом "темнового" режима, снижая тем самим качество его жизни.
Необходимость совершенствования методов фотодинамической терапии и флуоресцентной диагностики опухолей делает актуальной задачу создания
ФС с высокой фотодинамической активностью и селективностью накопления в опухолях по отношению к нормальным тканям.
Не менее важными и актуальными являются задачи оптимизации фармакокинетики ФС. Их биораспределение и динамика изменения концентрации в тканях и органах должны обеспечить:
- достижение высокой селективности накопления ФС в опухоли по отношению к нормальной ткани и коже;
- сохранение высокой концентрации ФС в опухоли в течение времени, небходимого для проведения терапевтических и/или диагностических процедур;
- достаточно большую скорость снижения концентрации ФС после завершения процедур за счет выведения из организма и/или метаболизма до значений, обеспечивающих отсутствие или минимизацию остаточных последствий их применения.
Одним из важных и актуальных направлений повышения эффективности фотодинамической терапии и флуоресцентной диагностики является поиск ФС с поглощением в спектральном диапазоне 700-800 нм, в котором собственное поглощение биологических тканей минимально. Использование таких ФС позволяет минимизировать потери на собственное поглощение ткани, увеличить глубину проникновения возбуждающего света и, за счет оптимального выбора их концентрации в тканях, обеспечить преимущественное воздействие на патологический очаг, расположенный на определенной глубине под облучаемой поверхностью.
Цель исследования
Исследование бактериохлорофиллид-серина и фенилтиопроизводных фталоцианинов в качестве потенциальных фотосенсибилизаторов для фотодинамической терапии и флуоресцентной диагностики новообразований.
Задачи исследования
1. Исследование in vivo поглощения и флуоресценции бактериохлорофиллид-серина, изучение динамики и селективности его накопления в опухоли по сравнению с нормальной тканью.
2. Исследование фотодинамической активности бактериохлорофиллид-серина.
3. Получение липосомальных дисперсий фенилтиопроизводных фталоцианинов.
4. Исследование in vivo поглощения и флуоресценции фотосенсибилизаторов на основе липосомальных дисперсий фенилтиопроизводных фталоцианинов, изучение динамики и селективности их накопления в опухоли по сравнению с нормальной тканью.
5. Исследование фотодинамической активности фотосенсибилизаторов на основе липосомальных дисперсий фенилтиопроизводных фталоцианинов.
Научная новизна
Впервые спектрально-флуоресцентным методом изучена фармакокинетика бактериохлорофиллид-серина в ранний период после его введения и показано, что максимум концентрации этого ФС в тканях и органах достигается через 15-20 минут после введения. Селективность накопления препарата в опухоли по сравнению с нормальной тканью в этом временном промежутке составляет примерно 4:1, а через 4 часа после введения достигает значения 9:1. Обнаружены особенности спектров флуоресценции в опухоли и нормальных тканях, обусловленные различиями в них метаболизма бактериохлорофиллид-серина и позволяющие совершенствовать флуоресцентный метод обнаружения опухолей и определения их границ. Показано, что терапевтическое действие ФДТ с использованием бактерихлорофиллид-серина осуществляется, в основном, за счет нарушения кровотока в сосудистой системе опухоли, а также некроза и апоптоза опухолевых клеток.
Впервые получены фотосенсибилизаторы на основе липосомальных дисперсий фенилтиопроизводных фталоцианина с поглощением в спектральном диапазоне 710-750 нм. Проведены экспериментальные исследования их фармакокинетики и фотодинамической эффективности. Показана перспективность исследования этого класса ФС для флуоресцентной диагностики и фото динамической терапии новообразований.
Практическая значимость работы
Получены и исследованы новые высокоэффективные фотосенсибилизаторы для фотодинамической терапии и флуоресцентной диагностики на основе липосомальных дисперсий ряда фенилтиопроизводных фталоцианинов с поглощением в спектральном диапазоне максимальной прозрачности биологической ткани.
Уточнена фармакокинетика фотосенсибилизатора бактериохлорофиллид-серин, что позволило оптимизировать время проведения ФДТ и обеспечить ее высокую эффективность.
Предложен новый подход для флуоресцентного обнаружения и определения границ опухолей, основанный на различиях в форме спектра флуоресценции бактериохлорофиллид-серина в опухоли и нормальных тканях.
Апробация работы
Материалы приведенных в диссертационной работе исследований были представлены на следующих научных сообществах:
- Congress ILLA'2003, VIII International Conference on Laser and laser-information technologies: fundamental problems and applications (Plovdiv, September 27 - October 1,2003);
- Всероссийской научно-практической конференции "Отечественные противоопухолевые препараты" (Москва, 17-19 марта 2004 г);
- III съезде онкологов и радиологов СНГ (Минск, 25-28 мая 2004 г);
- 16th International Congress of Anti-Cancer Treatment (Paris, February 1-4, 2005).
Публикации
По материалам диссертации опубликовано 16 научных работ.
Объем и структура диссертации
Диссертация содержит 153 страницы машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, описания объектов и методов исследования, трех глав, отражающих результаты собственных экспериментальных исследований и их обсуждение, общих выводов и списка литературы, включающего 26 отечественных и 206 зарубежных источников. Работа иллюстрирована 64 рисунками и 1 таблицей.
Заключение диссертационного исследования на тему "Экспериментальное исследование бактериохлорофиллид-серина и фенилтиопроизводных фталоцианинов как потенциальных фотосенсибилизаторов для фотодинамической терапии и флуоресцентного обнаружения новообразований"
выводы
1. Установлено, что бактериохлорофиллид-серин является эффективным фотосенсибилизатором ближнего инфракрасного диапазона для фотодинамической терапии новообразований. При облучении через 15-30 минут после внутривенного введения, когда концентрация бактериохлорофиллид-серина в опухоли максимальна, наблюдается высокая эффективность терапевтического воздействия (ТРО до 76%).
2. Выявлена полная и необратимая деоксигенация крови в микроциркуляторном русле опухоли, сенсибилизированной бактериохлорофиллид-серином, при терапевтическом облучении с длиной волны 770 нм дозой 150-200 Дж/см2. Это позволяет предположить сосудистый характер фотодинамического поражения опухоли при ФДТ, что и подтверждается результатами патоморфологических исследований.
3. Высокий уровень селективности накопления бактериохлорофиллид-серина и наличие спектральных особенностей флуоресценции в опухоли по сравнению с нормальной тканью, обусловленных разной биодеградацией в них фотосенсибилизатора, позволяют рекомендовать его для флуоресцентной диагностики новообразований.
4. Получены и исследованы новые фотосенсибилизаторы на основе липосомальных дисперсий фенилтиопроизводных фталоцианинов, поглощающих в спектральном диапазоне 700-750 нм, где собственное поглощение биологической ткани минимально: тетра-3 -фенилтиофталоцианина гидроксиалюминия, безметального тетра-3-фенилтио-тетра-5-от/7ети-бутилфталоцианина и тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка.
5. Установлено, что полученные фотосенсибилизаторы обладают достаточно высокой скоростью выведения из нормальной ткани. Время снижения интенсивности флуоресценции фотосенсибилизатора до уровня аутофлуоресценции биоткани для тетра-3-фенилтиофталоцианина гидроксиалюминия не превышает 7 суток, для тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка - 4 суток, для безметального тетра-3-фенилтио-тетра-5-т/?е/и-бутилфталоцианина - 2 суток.
6. Выявлено, что максимальной селективностью накопления в опухоли по отношению к нормальной ткани обладает тетра-3 -фенилтиофталоцианин гидроксиалюминия. Его индекс селективности достигает значений 6-8 в интервале 1-3 суток после введения, когда уровень накопления в опухоли максимален.
Индекс селективности тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка достигает значений 3-5 в интервале времени 6-20 часов после введения, соответствующем максимальному накоплению.
Индекс селективности безметального тетра-3-фенилтио-тетра-5-ти/?еи1-бутилфталоцианина достигает 2-4 в интервале времени 6-20 часов после введения, соответствующем максимальному накоплению.
7. Установлено, что ФДТ с использованием тетра-3 -фенилтиофталоцианина гидроксиалюминия и безметального тетра-З-фенилтио-тетра-5-тирети-бутилфталоцианина вызывает высокий терапевтический эффект (ТРО = 80-84 %). Эти фотосенсибилизаторы наиболее перспективны для углубленных предклинических исследований.
При использовании для ФДТ тетра-3-фенилтиофталоцианина цинка получен умеренный терапевтический эффект (ТРО = 60 %).
8. Показана перспективность применения для флуоресцентной диагностики и фотодинамической терапии бактериохлорофиллид-серина. Из трех фенилтиопроизводных фталоцианинов для углубленного исследования и предклинического изучения на основании ряда характеристик: технологичности синтеза субстанции и получения липосомальной дисперсии, спектрального диапазона, высокой селективности накопления в опухоли и высокой фото динамической активности - отобран тетра-3-фенилтиофталоцианин гидроксиалюминия.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2005 года, Меерович, Игорь Геннадьевич
1. Вакуловская Е.Г., Решетников А. В., Залевский ИД. и др. Фотодинамическая терапия и флуоресцентная диагностика с фотосенсибилизатором радахлорин у больных раком кожи. //Российский Биотерапевтический Журнал. 2004. - Т.З. - №1. - С.77-82.
2. Деркачева В.М., Лукъянец Е.А. Фталоцианины и родственные соединения. XVIII. Фенокси- и фенилтиозамещенные фталоцианины. //Журнал общей химии. 1980. - Т.50. -№10. - С.2313-2318.
3. Долотова О.В., Бундина Н.И., Деркачева В.М. и др. Фталоцианины и родственные соединения. XXXV. Синтез и координационная химия замещенных фталоцианинов марганца. //Журнал общей химии. 1992. - Т.62. - №9. - С.2064-2075.
4. Красновский А.А. (мл.). Фотолюминесценция синглетного кислорода в растворах хлорофиллов и бактериофеофитинов. //Биофизика. 1977. - Т.22. -С.927-928.
5. Красновский А.А. (мл.). Синглетный молекулярный кислород и первичные механизмы фотодинамического действия оптического излучения. //Итоги науки и техники. 1990. - №3. - С.63-135.
6. Красновский А.А. (мл.). Фотодинамическое действие и синглетный кислород. //Биофизика. 2004. - Т.49. - №2. - С.305-321.
7. Красновский А.А. (мл.), Вычегжанина И.В., Дроздова Н.Н. и др. Генерация и тушение синглетного молекулярного кислорода бактериохлорофиллом и бактериофеофитином а и Ь. //Доклады Академии наук СССР. 1985. - Т.283. -№2. - С.474-477.
8. Кузнецова Н.А., Калия O.JI. Фотокаталитическая генерация активных форм кислорода в биологических средах в методе фотодинамической терапии. //Российский химический журнал. 1998. - T.XLII. - №5. - С.36-49.
9. Лукьянец Е.А. Новые фотосенсибилизаторы для фотодинамической терапии. //Российский химический журнал. 1998. - T.XLII. - №5. - С.9-17.
10. Марголис Л.Б., Бергельсон Л.Д. Липосомы и их взаимодействие с клетками. Москва, "Наука". 1986.
11. Меерович И.Г., Меерович Г. А. Мощный регулируемый лазерный прибор. //Патент РФ № 2233519 от 27 июля 2004 г. с приоритетом от 18 ноября 2002 г.
12. Меерович И.Г., Меерович Г.А. Способ флуоресцентного контроля топологии новообразований. //Патент РФ №2220753 от 10 января 2004 г. с приоритетом от 10 декабря 2002 г.
13. Меерович И.Г., Меерович Г. А. Устройство для люминесцентной диагностики и фотодинамической терапии. //Патент РФ №2221605 от 20 января 2004 г, с приоритетом от 24 декабря 2001 г.
14. Миронов А.Ф. Фотосенсибилизаторы на основе порфиринов и родственных соединений для фотодинамической терапии рака. //Итоги науки и техники. 1990. - №3. - С.5-62.
15. Нечаева И.С., Митина В.Х., Пономарев Г.В. и др. Фотоиммунотоксины -новые сенсибилизаторы направленного действия для фотодинамической терапии опухолей. //Химико-фармацевтический журнал. 1993. - Т. 10. -С.7-16.
16. Оборотов А.В. Биофармацевтические аспекты разработки лекарственных форм гормоноцитостатиков кортифена и цитэстрол ацетата. //Дис. канд. фарм. наук. - Москва, 2000.
17. Оборотова Н.А. Липосомальные лекарственные формы противоопухолевых препаратов (обзор). //Химико-фармацевтический журнал. 2001. - Т.35. - №4. - С.32-38.
18. Полутов А.Г., Карменян А.В., Иванов А.В. Устройство для спектральной диагностики и избирательной фототерапии. //Патент РФ №2138306 с приоритетом от 27 сентября 1999 г.
19. Полутов А.Г., Карменян А.В., Иванов А.В. и др. Способ и эндоскоп для избирательной фототерапии. //Патент РФ №2116745 с приоритетом от 10 августа 1998 г.
20. Савицкий А.П., Меерович И.Г., Жердева В.В. Авидин-биотиновая система как средство адресной доставки противоопухолевых препаратов. //Российский химический журнал. 1998. - Т.ХЬП. - №5. - С.77-83.
21. Смирнова З.С., Кубасова И.Ю., Макарова О.А. и др. Доклиническое изучение эффективности липосомальной лекарственной формы фотосенса для фотодинамической терапии. //Российский Биотерапевтический Журнал. -2003. Т.2. - №4. - С.40-44.
22. Тяглиев Г.С., Олюшин В.Е., Чеснокова Е.А. и др. Фотодинамическая терапия в нейроонкологии: первый опыт проведения и краткий обзор литературы. //Российский Биотерапевтический Журнал. 2004. - Т.З. - №1. -С.83-89.
23. Фомина Г.И. Изучение новых фотосенсибилизаторов, предназначенных для флюоресцентныой диагностики и фотодинамической терапии опухолей. //Дис. канд. биол. наук. Москва, 2001.
24. Фут X. Свободные радикалы в биологии, /под ред. Х.А. Прайер. /М.: "Мир". 1979. -С.96-150.
25. Чиссов В.И., Соколов В.В., Булгакова (Жаркова) Н.Н. и др. Флюоресцентная эндоскопия, дермаскопия и спектрофотометрия в диагностике злокачественных опухолей основных локализаций. //Российский Биотерапевтический Журнал. 2003. - Т.2. - №4. - С.45-56.
26. Шерц А., Саломон Й., Шер Г. и др. Способ получения металлсодержащих производных бактериохлорофилла, новые металлированные производные бактериохлорофилла, фармацевтическая композиция. //Патент РФ №2193038 с приоритетом от 24 ноября 1995 г.
27. Liposomes: a practical approach. //Rickwood D. and Hames B.D. (eds.) Practical Approach Series. Oxford, Oil Press at Oxford University Press. - 1990.
28. АН Н., van Lier J.E. Metal complexes as photo- and radiosensitizers. //Chem. Rev. 1999. - V.99. - N.9. - P.2379-2450.
29. Allen Г.М., Hansen C. Pharmacokinetics of stealth versus conventional liposomes: effect of dose. //Biochim. Biophys. Acta. 1991. - V.1068. - N.2. -P.133-141.
30. Allen T.M., Hansen C., Martin F. et al. Liposomes containing synthetic lipid derivatives of poIy(ethylene glycol) show prolonged circulation half-lives in vivo. //Biochim. Biophys. Acta. 1991. - V.1066. - P.29-36.
31. Amir-Shapira D., Goldschmidt E.E., Altman A. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1987. V.84. - P.1901-1905.
32. Anderson V.C., Thompson D.H. Triggered release of hydrophilic agents from plasmalogen liposomes using visible light or acid //Biochim. Biophys. Acta. 1992.- V.1109.-N.1.-P.33-42.
33. Andreoni A., Cubeddu R., Jori G. et al. Time-resolved fluorescence studies of hematoporphyrin in different solvent systems. //Z. Naturforsch. 1983. - V.38. -P.83-89.
34. Barbet J., Machy P., Leserman L.D. Monoclonal antibody covalently coupled to liposomes: specific targeting to cells. //J. Supramol. Struct. 1981. - V.16. -P.237-240.
35. Ben-Hur E., Rosenthal I. Photosensitization of Chinese hamster cells by water-soluble phthalocyanines. //Photochem. Photobiol. 1986. - V.43. - P.691-699.
36. Biolo R., Jori G., Soncin M. et al. Effect of photosensitizer delivery system and irradiation parameters on the efficiency of photodynamic therapy of B16 pigmented melanoma in mice. //Photochem. Photobiol. 1996. - V.63. - N.2. -P.224-228.
37. Bisby R.H., Mead С., Morgan C.G. Photosensitive liposomes as "cages" for laser-triggered solute delivery: the effect of bilayer cholesterol on kinetics of solute release. //FEBS Lett. 1999. - V.463. -N.l-2. - P.165-168.
38. Bisby R.H., Mead C., Morgan C.G. Active uptake of drugs into photosensitive liposomes and rapid release on UV photolysis. //Photochem. Photobiol. 2000. -V.72. — N.l. -P.57-61.
39. Blan Q., Grossweiner L. Singlet oxygen generation by furocoumarins: effect of DNA and liposomes. //Photochem. Photobiol. 1987. - V.45. - P. 117-183.
40. Blume G., Cevc G. Liposomes for the sustained drug release in vivo. //Biochim. Biophys. Acta. 1990. - V.1029. - N.l. - P.91-97.
41. Bonnett R , Martinez G. Photobleaching of sensitizers used in photodynamic therapy. //Tetrahedron Lett. 2001. - V.57. - P.9513-9547.
42. Bonnett R., Ridge R.J., Scourides P.A. et al. On the nature of Haematoporphyrin Derivative. //J. Chem. Soc., Perkin Trans. 1981. - V.l. -P.31-35.
43. Chen Q., Huang Z, Luck D. et al. Preclinical studies in normal canine prostate of a novel palladium-bacteriopheophorbide (WST09) photosensitizer for photodynamic therapy of prostate cancers. //Photochem Photobiol. 2002. - V.76. -N.4. - P.438-445.
44. Chowdhary R.K., Green C.A., Morgan C.G. Dye-sensitized destabilization of liposomes bearing photooxidizable lipid head groups. //Photochem. Photobiol. -1993. V.903. - N.3. - P.362-366.
45. Copeland E., Alving C., Grenan M. Light-induced leakage of spin-label marker from liposomes in the presence of phototoxic phenothiazines. //Photochem. Photobiol. 1976. - V.24. - P.41-48.
46. Cozzani /., Jori G., Bertoloni G. et al. Efficient photosensitization of malignant human cells in vitro by liposome-bound porphyrins. //Chem Biol Interact.- 1985. V.53. -N.l-2. - P. 131-143.
47. Cullis P., Hope M., Bally M. et al. Liposomes as pharmaceuticals. //In: Ostro M. (ed.) Liposomes from biophysics to therapeutics. New York, NY, Marcel Dekker. - 1987. - P. 39-73.
48. Cuomo V., Jori G., Rihter B. et al. Tumour-localising and photosensitizing properties of liposome-delivered Ge(IV)-octabutoxyphthalocyanine. //Br. J. Cancer.- 1991. V.64. -N.l. -P.93-95.
49. Darvent J.R., Douglas P., Harriman A. et al. Metal phthalocyanines and porphyrins as photosensitizers for reduction of water to hydrogen. //Coord. Chem. Rev. 1982. - V.44. -P.83-126.
50. Dearden S. Kinetics of l02 (1Ag) photooxydation reactions in egg-yolk lecithin vesicles. //J. Chem. Soc., Faraday Trans. I. 1986. - V.82. - P.1627-1635.
51. Derycke A.S.L., de Witte P.A.M. Liposomes for photodynamic therapy. //Adv. Drug Deliv. Rev. 2004. - V.56. - P. 17-30.
52. Dougherty T. J. Photosensitizers: therapy and detection of malignant tumors. //Photochem. Photobiol. 1987. - V.45. - N.6. - P.879-889.
53. Dougherty T.J. Photodynamic therapy of malignant tumors. //CRC Crit. Rev. Oncol./Hematol. 1984. - V.2. -N.2. - P.83-116.
54. Dougherty T.J. Photosensitization of malignant tumors. //Semin. Surg. Oncol. 1986. - V.2. - N.l. - P.24-37.
55. Dougherty T.J. Photodynamic therapy. //Photochem. Photobiol. 1993. -V.58. - N.6. - P.895-900.
56. Dougherty T.J. Photodynamic sensitizer. //In: DeVita V.J., Hellman S. and Rosenberg S. (eds.) Principles and Practice of Oncology. Philadelphia, J.B. Lippincott. - 1981. - P. 2272-2279.
57. Dougherty T.J., Gomer C.J., Henderson B.W. et al. Photodynamic therapy. //J. Natl. Cancer Inst. 1998. - V;90. - N.12. - P.889-905.
58. Duncan R., Connors ТА., Meada H. Drug targeting in cancer therapy: the magic bullet, what next? //J. Drug Target. 1996. - V.3. - N.5. - P.317-340.
59. Edinak N.E., Chental V.V., Komov D.V. et al. Fluorescent-spectroscopic and imaging methods of investigations for diagnostics of head and neck tumors and control of PDT. //Proc. SPEE. 1996. - V.2628. - P.334-337.
60. Ehrenberg В., Gross E. The effect of liposomes' membrane composition on the binding of the photosensitizers HpD abd photofrin П. //Photochem. Photobiol. -1988. V.48. - P.461-466.
61. Ehrenberg В., Malik Z, Nitzan Y. Fluorescence spectral changes of hematoporphyrin derivative upon binding to the lipid vesicles, Staphylococcus aureus and Escherichia coli. //Photochem. Photobiol. 1985. - V.41. - N.4. -P.429-435.
62. Emiliani C., Delmelle M. The lipid solubility of porphyrins modulates their phototoxicity in membrane models. //Photochem. Photobiol. 1993. - V.37. -P.487-490.
63. Emiliani C, Delmelle M, Cannistrato S. et al. Solubility of hematoporphyrin and photodynamic damages in liposomal systems: optical and electron spin resonance studies. //Photochem. Photobiol. 1983. - V.5. - P.l 19-128.
64. Feix J. В., Kalyanaraman В., Chignell C.F. et al. Direct observation of singlet oxygen production by Merocyanine 540 associated with phosphatidylcholine liposomes. //J. Biol. Chem. 1988. - V.263. -N.33. - P. 17247-17250.
65. Feix J.В., Kalyanaraman B. An electron spin resonance study of Merocyanine 540-mediated Type I reactions in liposomes. //Photochem. Photobiol. 1991. -V.53. -N.l. - P.39-45.
66. Fiedor L. Modified Chlorophylls as models for primary photosynthesis and photosensitizers for photodynamic therapy of cancer. //Ph.D. thesis. Rehovot, 1996.
67. Foote C.S. Light activated pesticides. //ACS Symposium Series. 1987. -V.l. -P.22-38.
68. Foote C.S. Chemical mechanisms of photodynamic action. //SPEE Optical Engineering Press. 1990. - N.6. - P.l 15-126.
69. Foote C.S. Definition if type I and type П photosensitized oxydation. //Photochem. Photobiol. 1991. - V.54. - N.5. - P.659.
70. Gabison A., Martin F. Polyethylene Glycol-coated pegylated liposomal Doxorubicin. Racionale for use in solid tumors. //Drugs. 1997. - V.54. - Suppl.4. -P.15-21.
71. Gabizon A. Liposome circulation time and tumor targeting: implications for cancer chemotherapy. //Adv. Drug Deliv. Rev. 1995. - V.16. - P.285-294.
72. Gibson S., Cohen H., HilfR. Evidence against the production of superoxide by photoirradiation of hematoporphyrin derivative. //Photochem. Photobiol. 1984. -V.40. -P.441-448.
73. Gibson S., Hilf R. Interdependence of fluence, drug dose and oxygen on hematoporphyrin derivative induced photosensitization of tumor mitochondria //Photochem. Photobiol. 1985. - V.42. - P.367-373.
74. Girotti A. W. Photosensitized oxidation of membrane lipids: reaction pathways, cytotoxic effects and cytoprotective mechanisms. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. -2001. V.63. -N.l-3. -P.103-113.
75. Gomer C.J., Doiron D.R., Rucker N. et al. Action spectrum (620-640 nm) for hematoporphyrin derivative induced cell killing. //Photochem. Photobiol. 1984. -V.39. -P.365-369.
76. Gomer C.J., Rucker N., Ferrario A. et al. Properties and applications of photodynamic therapy. //Radiat. Res. 1989. - V.120. -P.l-18.
77. Gottfried V., Peled D., Winkelman J. et al. Photosensitizers in organic media: singlet oxygen production and spectral properties. //Photochem. Photobiol. 1988. -V.48. -P.157-163.
78. Gregoriadis G. Liposome technology. Liposome technology. 1984, Boca Raton, FL: CRC Press.
79. Gross E., Ehrenberg B. The partition and distribution of porphyrins in liposomal membranes. A spectroscopic study. //Biochim. Biophys. Acta. 1989. -V.983. -P.118-122.
80. Gross E., Ehrenberg В., Johnson F. M. Singlet oxygen generation by porphyrins and the kinetics of 9,10-dimethylanthracene photosensitization in liposomes. //Photochem Photobiol. 1993. - V.57. - N.5. - P.808-813.
81. Gross E., Malik Z, Ehrenberg B. Effects of membrane physical parameters on hematoporphyrin-derivative binding to liposomes: a spectroscopic study. //J. Membr. Biol. 1987. - V.97. -N.3. -P.215-221.
82. Gross S., Brandis A., Chen L. et al. Protein-A-mediated targeting of bacteriochlorophyll-IgG to Staphylococcus aureus: a model for enhanced site-specific photocytotoxicity. //Photochem. Photobiol. 1997. - V.66. - N.6. -P.872-878.
83. Grossweiner L., Goyal G. Photosensitized lysis of liposomes by hematoporphyrin derivative. //Photochem. Photobiol. 1983. - V.37. - N.5. -P.529-532.
84. Grossweiner L., Grossweiner J. Hydrodynamic effects in the photosensitized lysis of liposomes by hematoporphyrin derivative. //Photochem. Photobiol. 1982.- V.35. P.583-586.
85. Grossweiner L., Patel A., Grossweiner J. Type I and Type П mechanisms in the photosensitized lysis of phosphatidylcholine liposomes by hematoporphyrin. //Photochem. Photobiol. 1982. - V.36. -P.159-167.
86. Gruner S. Material properties of liposomal bilayers. //In: Ostro M. (ed.) Liposomes from biophysics to therapeutics. New York, NY, Marcel Dekker. -1987.-P. 1-39.
87. GulatiM., GroverM., Singh S. et al. Lipophilic drug derivatives in liposomes. //Int. J. Phann. 1998. - V.165. -N.2. -P. 129-132.
88. Hagiwara A., Takahashi Т., Oku N. Cancer chemotherapy administered by activated carbon particles and liposomes. //CRC Crit. Rev. Oncol./Hematol. 1989.- V.9. -P.319-350.
89. Hasrington K.J., Lewanski C.R., Stewart J.S.W. Liposomes as vehicles for targeted therapy of cancer. Part 1: Preclinical development //Clin. Oncol. 2000. -V.12. -N.2, Part 5. -P.2-15.
90. Henderson B.W., Dougherty T.J. How does photodynamic therapy work? //Photochem. Photobiol. 1992. - V.55. -N.l. -P.145-157.
91. Henderson B.W., Sumlin A.B., Owczarczak B.L. et al. Bacteriochlorophyll-or as photosensitizer for photodynamic treatment of transplantable murine tumors. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. 1991. - V.10. -N.3. -P.303-313.
92. Hoebeke M. The importance of liposomes as models and tools in the understanding of photosensitization mechamisms. //J. Photochem. Photobiol., B: BioL- 1995. V.28. -P.189-196.
93. Hoebeke M, Enescu M, Lindqvist L. Quenching of Merocyanine 540 triplet state by nitroxyl radicals in liposomal systems: a laser flash photolysis study. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. 1994. - V.22. - P.229-233.
94. Hoebeke M., Piette J., Van de Vorst A. Photosensitized production of singlet oxygen by Merocyanine 540 bound to liposomes. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. 1991. - V.9. - P.281-284.
95. Hoebeke M., Seret A., Piette J. et al. Destruction of stearic acid nitroxyl radicals mediated by photoexcited Merocyanine 540 in liposomal and micellar systems. //Biochemistry. 1993. - V.32. -N.10. - P.2730-2736.
96. Huang C.K., Lee K.-D., Papahadjopoulos D. et al. Light microscopic localization of silver-enhanced liposome-entrapped colloidal gold in mouse tissues. //Biochim. Biophys. Acta. 1991. - V.1069. -P.l 17-121.
97. Huang S.K., Lee K.-D., Hong K. et al. Microscopic localization of sterically stabilized liposomes in colon carcinoma-bearing mice. //Cancer Res. 1992. - V.52. -P.5135-5143.
98. Ichino Т., Yotsuyanagi 71, Mizuno I. Antitumor effect of liposome entrapped Adriamycin administered via the Portal vein. //Jpn. J. Cancer Res. 1990. - V.81. -P.1052-1056.
99. Iinuma S., Farshi S.S., Ortel B. et al. A mechanistic study of cellular photodestruction with 5-aminolaevulinic acid-induced porphyrin //Br. J. Cancer. -V.70. -P.21-28.
100. Jezowka L, Wolak A., Gruszecki W. et al. Effect of p-carotene on structural and dynamic properties of model phosphatidylcholine membrane. П.- A 31P-NMR and 13C-NMR study. //Biochim. Biophys. Acta. 1994. - V.1194. -P.143-148.
101. Jori G. Photosensitized processes in vivo: proposed phototherapeutic applications. //Photochem. Photobiol. 1990. - V.52. - N.2. - P.439-443.
102. Jori G. Far-red-absorbing photosensitizers their use in the photodynamic therapy of tumors. //J. Photochem. Photobiol., A: Chem. - 1992. - V.62. - N.3. -P.371-378.
103. Jori G. Tumour photosensitizers: approaches to enhance the selectivity and efficiency of photodynamic therapy. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. 1996. -V.36. - N.2. - P.87-93.
104. Jori G., Reddi E., Cozzani I. et al. Controlled targeting of different subcellular sites by porphyrins in tumor-bearing mice. //Br. J. Cancer. 1986. - V.53. -P.615-623.
105. Jori G., Schindl L., Schindl A. et al. Novel approaches towards a detailed control of the mechanism and efficiency of photosensitized processes in vivo. //J. Photochem. Photobiol., A: Chem. 1996. - V.102. - N.l. - P.101-107.
106. Jori G., Spikes J.D. Photothermal sensitizers possible use in tumor therapy. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. - 1990. - V.6. -N.l-2. - P.93-101.
107. Jori G., Tomio L., Reddi E. Preferential delivery of liposome incorporated porphyrins to neoplastic cells in tumor-bearing rats. //Br. J. Cancer. 1983. - V.48. -N.2. -P.307-309.
108. Kalija O.L., Meerovich G.A., Torshina N.L. et al. Experimental study of cancer photodynamic therapy using sulphophthalocyanine and sodium ascorbate. //Acta Bio-optica and Informatica Medica. 1997. - V.3. - N.l. - P.27.
109. Kaye S.t Richardson V.J. Potential of liposomes as drug-carriers in cancer chemotherapy: a review. //Cancer Chemotherapy and Pharmacology. 1979. - V.3. -P.81-85.
110. Keene J., Kessel D., Land E. et al. Direct detection of singlet oxygen sensitized by haematoporphyrin and related compounds. //Photochem. Photobiol. -1986.-V.43.-P.117-120.
111. Kessel D. Effects of photoactivated porphyrins at the cell surface of leukemia L1210 cells. //Biochemistry. 1977. - V.16. - P.3443-3449.
112. Kessel D. The role of low density lipoprotein in the biodistrubution of photosensitizing agents. //J. Photochem. Photobiol., B:Biol. 1992. - V.14. -P.261-262.
113. Kessel D. Enhanced responsiveness to photodynamic therapy induced apoptosis after mitochondrial DNA depletion. //Photochem. Photobiol. - 1999. -V.70. - N.6. - P.937-940.
114. Kessel D., Chou T. Tumor-localizing components of the porphyrin preparation hematoporphyrin derivative. //Cancer Res. 1983. - V.43. - P. 1994-1999.
115. Kessel D., Dougherty T.J. Agents used in photodynamic therapy. //Rev. Contemp. Pharmacother. 1999. - V.10. -N.l. - P. 19-24.
116. Kessel D., Garbo G., Hampton J. The role of lipoproteins in the distribution of Tin etiopurpurin (Sn ET2) in the tumor-bearing rat //Photochem. Photobiol. -1993. V. 57. - P.298-301.
117. Kessel D., Smith KM., Pandey R.K. et al. Photosensitization with bacteriochlorins. //Photochem. Photobiol. 1993. - V.58. -N.2. - P.200-203.
118. Kim C. S., Jung J. Iron-sulfur centers as endogenous blue light sensitizers in cells: a study with an artificial non-heme iron protein. //Photochem. Photobiol. -1992. -V.56.- N.l. -P.63-68.
119. Klibanov A.L., Maruyama R.t Torchilin V.P. et al. Amphipathic polyethyleneglycols effectively prolong the circulation time of liposomes. //FEBS Lett. 1990. - V.268. - N.l. - P.235-237.
120. Kogan E.A., Meerovich G.A., Torshina N.L. et al. The morphological criteria of the effect of photodynamic therapy of cancer. //Acta Bio-optica and Informatica Medica. 1997. - V.3. -N.l. -P.27.
121. Kogan E.A., Meerovich G.A., Torshina N.L. et al. The systemic estimation of the effect of photodynamic therapy of cancer. //Proc. SPIE. 1997. - V.3181. -P. 187-192.
122. Korbelik M. Low density lipoprotein receptor pathway in the delivery of Photofrin: how much is relevant for selective accumulation of the photosensitizer in tumors? //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. 1992. - V.12. - P.107-109.
123. Koudinova N. V., Pinthus J. H., Brandis A. et al. Photodynamic therapy with Pd-bacteriopheophorbide (TOOKAD): Successful in vivo treatment of human prostatic small cell carcinoma xenografts. //Int. J. Cancer. 2003. - V.104. - N.6. -P.782-789.
124. Kreuter J. Liposomes and nanoparticles as vehicles for antibiotic. //Infection. 1991. - V.19. - N.4. - P.224-228.
125. KriegM. Determination of .02 quantum yield with 1,3-diphenylisobenzofuran in model membrane systems. //J. Biochem. Biophys. Meth. 1993. - V.27. -P.143-149.133. basic D.D. Liposomes in Gene Delivery. //CRC Press, Boca Raton, FL. -1997.-295 pp.
126. Lee R.J., Low P.S. Delivery of liposomes into cultured KB cells via folate receptor-mediated endocytosis. //J. Biol. Chem. 1994. - V.269. -P.3198-3204.
127. Lindig В., Rodgers M. Rate parameters of the quenching of singlet oxygen by water soluble and lipid soluble substrates in aqueous and micellar systems. //Photochem. Photobiol. 1981. - V.33. -P.627-634.
128. Lipson R., Baldes E.t Obsen A. The use of a derivative of hematoporphyrin in tumor detection. //J. Natl. Cancer Inst. 1961. - V.26. - P. 1-8.
129. Lopez-Berenstein G., Bodey G.P., Frankel L.S. et al. Treatment of hepatosplenic fungal infections with liposomal amphotericin. //Br. J. Clin. Oncol. -1987. V.5. - P.310-317.
130. Loschenov V.B., Steiner R. Working on early diagnostic and control for the cancer treatment method with the use of photosensitizer for modelling action. //Proc. SPEE. 1994. - V.2325, "Photodynamic Therapy of Cancer". -P.144-148.
131. Lukyanets E.A., Derkacheva V.M., Chissov V.I. et al. "The study of metal-free phthalocyanines in vitro and in vivo." Materials of 9th World Congress of the International Photodynamic Association, May 20-23,2003.
132. MacDonald I.J., Dougherty T.J. Basic principles of photodynamic therapy. //J. Porphyr. Phthalocyanines. 2001. - V.5. - N.2. - P.105-129.
133. Mantareva V., Shopova M, Spassova G. et al. Si(IV)-methoxyethylene-glycol-naphthalocyanine: synthesis and pharmacokinetic and photosensitizing properties in different tumour models. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. 1997. -V.40. - N.3. - P.258-262.
134. Maruyama K., Yuda Т., Okamoto A. et al. Effect of molecular weight in amphipathic polyethyleneglycol on prolonging the circulation time of large unilamellar liposomes. //Chem. Pharm. Bull. (Tokyo). 1991. - V.39. - N.6. -P. 1620-1622.
135. Mayhew E., Vaughan L., Panus A. et al. Lipid-associated methylpheophorbide-a (hexyl-ether) as a photodynamic agent in tumor-bearing mice. //Photochem. Photobiol. 1993. - V.58. -N.6. -P.845-851.
136. McCubbin I., Phillips D. The photophysics and photostability of zinc(II) and aluminium sulphonated naphthalocyanines. //Journal of Photochemistry. 1986. -V.34. - P. 187-195.
137. McRae D.G., Yamamoto E., Neil Towers G.H. The mode of action of polyacetylene and thiophene photosensitizers on liposome permeability to glucose. //Biochim. Biophys. Acta. 1985. - V.821. - N.3. -P.488-496.
138. Meerovich G.A., Loschenov V.B., Stratonnikov A.A. et al. Laser fluorescent system for endoscopic tumor diagnostic and irradiation control in the photodynamic therapy. //Proc. SPIE. 1996. - V.2728, "Laser Use in Oncology". - P.35-38.
139. Meerovich G.A., Lukyanets E.A., Yuzhakova O.A. et al. Photosensitizer for PDT based on phosphonated phthalocyanine derivatives. //Proc. SPIE. 1997. -V.2924. - P.86-90.
140. Meerovich G.A., Lukyanets E.A., Yuzhakova O.A. et al. Phosphosubstituted phthalocyanine derivatives as effective photosensitizers for PDT. //Proc. SPIE. -1997. V.3181. - P.90-93.
141. Meerovich G.A., Stratonnikov A.A., Loschenov V.B. et al. Influence of parameters of laser irradiation on the mechamisms of tumour damage due to PDT. //Proc. SPIE. 2001. - V.4248. - P.97-106.
142. Meerovich G.A., Torshina N.L., Loschenov V.B. et al. The experimental study of PDT with aluminium sulphophthalocyanine using sodium ascorbate and hyperbaric oxygenation. //Proc. SPIE. 1998. - V.3563. -P.68-76.
143. Milanesi C. Benzoporphyrin derivatives for photodynamic therapy. //US Patent 5214036, May 25,1993.
144. Milanesi C., Biolo R, Reddi E. et al. Ultrastructural studies on the mechanism of the photodynamic therapy of tumors. //Photochem. Photobiol. 1987. - V.46. -N.5. -P.675-681.
145. Miller C.R., Clapp P.J., O'Brien D.F. Visible light-induced destabilization of endocytosed liposomes. //FEBS Lett. 2000. - V.467. - N.l. - P.52-56.
146. Mironov A.F., Kozyrev A.N., Brcmdis A.S. Sensitizers of second generation for photodynamic therapy of cancer based on chlorophyll and bacteriochlorophyll derivatives. //Proc. SPIE. 1993. - V.1922. - P.204-208.
147. Moan J., Peng Q., Evensen J.F. et al. Photo-sensitizing efficiency, tumor- and cellular uptake of different photosensitizing drugs relevant for photodynamic therapy of cancer. //Photochem. Photobiol. 1987. - V.46. - P.713-721.
148. Monfrecola G., Martellotta D., Bruno J. et al An approach to the treatment of psoriasis with porphyrin analogue. //In: Jori G. and Perria C. (eds.) Photodynamic Therapy of Tumor and Other Diseases. Padova, Libreria Progetto. - 1985. -P.345-348.
149. Morgan A.R., Garbo G.M., Keck R.W. et al New photosensitizers for photodynamic therapy: combined effect of metallopurpurin derivatives and light on transplantable bladder tumor. //Cancer Res. 1988. - V.48. -P.194-198.
150. Morgan A.R., Kreimer-Birnbaum M., Garbo G.M. et al Purpurins: improved photosensitizers for photodynamic therapy. //Proc. Soc. Photo-Ort. Instrum. Eng. -1988. V.847. - P.29-35.
151. Morgan C., Thomas E., Sandhy S. et al Light-induced fusion of liposomes with release of trapped marker dye is sensitised by photochromic phospholipid. //Biochim. Biophys. Acta. 1987. - V.903. - P.504-509.
152. Morgan J., Gray A.G., Huehns E.R. Specific targeting and toxicity of sulphonated aluminium phthalocyanine photosensitised liposomes directed to cells by monoclonal antibody in vitro. //Br. J. Cancer. 1989. - V.59. - N.3. - P.366-370.
153. Morgan J., Lottman H., Abbou С. C. et al A comparison of direct and liposomal antibody conjugates of sulfonated aluminum phthalocyanines for selective photoimmunotherapy of human bladder carcinoma. //Photochem Photobiol. 1994. - V.60.-N.5.-P.486-496.
154. Muller-Runkel R., Blais J., Grossweiner L. Photodynamic damage to egg lecithin liposomes. //Photochem. Photobiol. 1984. - V.33. -P.683-687.
155. Nonell S., Braslavsky S., Schaffiier K. Quantum yield of productin of singlet molecular oxygen in aqueous dispersions of small unilamellar lipid vesicles. //Photochem. Photobiol. 1990. - V.51. - P.551-556.
156. Оки N. Liposomes. //In: Dunn R. and Ottenbrite R. (eds.) Polymeric drugs and drug delivery systems. ACS Symposium Series. - 1991. - Vol. 469. - P.24-33.
157. Oku N., Namba Y., Okada S. Tumor accumulation of novel RES-avoiding liposomes. //Biochim. Biophys. Acta. 1992. - V.l 126. - P.255-260.
158. Omata Т., Murata N. Preparation of chlorophyll a, chlorophyll b, and bacteriochlorophyll a by column chromatography with DEAE-Sepharose CL-6B and Sepharose CL-6B. //Plant Cell Physiology. 1983. - V.24. - P. 1093-1100.
159. Oserojf A.R., Henderson B.W., Dougherty T.J. Clinical applications and basic mechanisms for PDT in cutaneous malignancies. //Photochem. Photobiol. 1999. -V.69. -P.50S-51S.
160. Pandey R.K., Shiau F.-Y., Sumlin A.B. et al. Syntheses of new bacteriochlorins and their antitumor activity. //Bioorg. Med. Chem. Lett. 1994. -V.4. -N.10. - P. 1263-1267.
161. Peterson C., Masquelier M., Rudling M. et al. Lipoproteins, malignancy and anticancer agents. //In: Shaw J.M. (ed.) Lipoproteins as Carriers of Pharmacological Agents. New York, NY, Marcel Dekker. - 1991. - P. 175-200.
162. Phillips D. Chemical mechanisms in photodynamic therapy with phthalocyanines. //Progress in Reaction Kinetics. 1997. - V.22. - N.3-4. -P.175-300.
163. Plant A. Mechanism of concentration quenching of xantene dye encapsulated in phospholipid vesicle. //Photochem. Photobiol. 1986. - V.44. - P.453-459.
164. Reddi E., Lo Castro G., Biolo R. et al. Pharmacokinetic studies with Zinc(II) phthalocyanine in tumor-bearing mice. IIBr. J. Cancer. 1987. - V.56. - P.597-600.
165. Rensen P.C.N., Love IV.G., Tailor P.W. In vitro interaction of Zinc(II)-phthalocyanine-containing liposomes and plasma lipoproteins. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. 1994. - V.26. - N.l. -P.29-35.
166. Ricchelli F., Gobbo S., Jori G. et al. Photosensitization of mitochondria by liposome-bound porphyrins. //Photochem. Photobiol. 1993. - V.58. - P.53-58.
167. Ricchelli F., Jori G. Distribution of porphyrins in the various compartments of unilamellar liposomes of dipalmitoylphosphatidylcholine as probed by fluorescence spectroscopy. //Photochem. Photobiol. 1986. - V.44. - P.151-157.
168. Ricchelli F., Jori G. Spectroscopic studies on the intra-liposomal distribution of porphyrins. //In: Jori G. and Perria C. (eds.) Photodynamic Therapy of Tumors and Other Diseases. Padova, Libreria Progetto. - 1985. - P.85-87.
169. Ricchelli F., Jori G., Gobbo S. et al. Liposomes as models to study the distribution of porphyrins in cell membranes. //Biochim. Biophys. Acta. 1991. -V. 1065.-N.l.-P.42-48.
170. Ricchelli F., Jori G., Moreno G. et al Factors influencing the distribution pattern of porphyrins in cell membranes. //J Photochem Photobiol B. 1990. - V.6. -N.l-2. -P.69-77.
171. Richter A.M., Wateifield E., Jain A.K. et al Liposomal delivery of a photosensitizer, Benzoporphyrin derivative monoacid ring A (BPD), to tumor tissue in a mouse tumor model. //Photochem Photobiol. 1993. - V.57. - N.6. -P.1000-1006.
172. Rodgers M. Time resolved studies of the 1.27 pM luminescence from singlet oxygen generated in homogeneous and in microheterogeneous fluids. //Photochem. Photobiol. 1983. - V.37. - P.99-103.
173. Rodgers M, Bates A. A laser flash kinetic spectrophotometric examination of the dynamics of singlet oxygen in unilamellar vesicles. //Photochem. Photobiol. -1982. V.35. - P.473-478.
174. Rosenbach-Belkin V. The primary reactants in bacterial photosynthesis modeling by in vitro preparations. //Ph.D. thesis. Rehovot, Israel, 1988.
175. Rosenbach-Belkin V., Chen L., Fiedor L. et al. Serine conjugates of Chlorophyll and Bacteriochlorophyll: Photocytotoxicity in vitro and tissue distribution in mice bearing melanoma tumors. //Photochem. Photobiol. 1996. -V.64. -N.l. - P. 174-181.
176. Rywkin S., Lenny L., Goldstein J. et al. Importance of type I and type II mechanisms in the photodynamic inactivation of viruses in blood with aluminum phthalocyanine derivatives. //Photochem. Photobiol. 1992. - V.56. - N.4. -P.463-469.
177. Scherz A., Fiedor L., Salomon Y. Chlorophyll and bacteriochlorophyll derivatives, their preparation and pharmaceutical compositions comprising them. //US Patent 5,726,169,1998.
178. Schmidt W. Further photophysical and photochemical characterization of flavins asociated with single-shelled vesicles. //J. Membr. Biol. 1983. - V.76. -P.73-82.
179. Seeman P., Roth S., Schneider H. The membrane concentrations of alcohol anesthetics. //Biochim. Biophys. Acta. 1971. - V.225. -P.171-184.
180. Sekher P., Garbo G.M. Spectroscopic studies of tin ethyl etiopurpurin in homogeneous and heterogeneous systems. //J Photochem Photobiol B. 1993. -V.20. -N.2-3. -P.l 17-125.
181. Sentil V., Jones L.R., Senthil K. et al. Hypericin photosensitization in aqueous model systems. //Photochem. Photobiol. 1994. - V.59. - N.l. - P.40-47.
182. Shopova M., Peeva M., Stoichkova N. et al. Light intensity effect on the mechanisms of tumor damage photosensitized by a substituted Zn(II)-naphthalocyanine. //J. Porphyr. Phthalocyanines. 2001. - V.5. - N.ll. -P.798-802.
183. Shopova M., Wohrle D., Stoichkova N. et al. Hydrophobic Zn(II)-naphthalocyanines as photodynamic therapy agents for Lewis lung carcinoma. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. 1994. - V.23. -N.l. -P.35-42.
184. Sokolov VV., Chissov V.I., Smimov V.V. et al. Real-time fluorescence imaging system for cancer diagnostics. //Proc. SPffi. 1995. - V.2626, "Optical Optoelectronics in Clinical Chemistry and Biotechnology". - P.385-390.
185. Spikes J.D. Phthalocyanines as photosensitizers in biological systems and for the photodynamic therapy of tumors. //Photochem. Photobiol. 1986. - V.43. - N.6. -P.691-699.
186. Spikes J.D. Chlorins as photosensitizers in biology and medicine. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. 1990. - V.6. - N.3. - P.259-274.
187. Steinbach P., Weingandt H., Baumgartner R. et al. Cellular fluorescence of the endogenous photosensitizer Protoporphyrin IX following exposure to 5-aminolevulinic acid. //Photochem. Photobiol. 1995. - V.62. -N.5. - P.887-895.
188. Stratonnikov A.A., Douplik A.J., Klimov D.V. et al The absorption spectroscopy as a tool to control blood oxygen saturation during photodynamic therapy. //Proc. SPIE. 1997. - V.3181. -P.58-65.
189. Stratonnikov A.A., Edinac N.E., Klimov D.V. et al. The control of photosensitizer in tissue during photodynamic therapy by means of absorption spectroscopy. //Proc. SPIE. 1996. - V.2924. - P.49-60.
190. Stratonnikov A.A., Loschenov V.B. Evaluation of blood oxygen saturation in vivo from diffuse reflectance specta. //J. Biomed. Opt. 2001. - V.6. - N.4. -P.457-467.
191. Stratonnikov A.A., Meerovich G.A., Loschenov V.B. Photobleaching of photosensitizers applied for photodynamic therapy. //Proc. SPIE. 2000. - V.3909. -P.81-91.
192. Strzalka K., Gruszecki W. Effect of p-carotene on structural and dynamic properties of model phosphatidylcholine membrane. I. An ESR spin label study. //Biochim. Biophys. Acta. 1994. - V.1194. -P.138-142.
193. Svaasand L.O. Thermal and optical dosimetry for photoradiation therapy of malignant tumors. //In: Andreoni A. and Cubeddu R. (eds.) Porphyrins in Tumour Phototherapy. New York, Plenum Press. - 1984. - P. 261-279.
194. Thompson D.H., Gerasimov O.V., Wheeler I.J. et al. Triggerable plasmalogen liposomes: improvement of system efficiency. //Biochim. Biophys. Acta: Biomembr. 1996. - V.1279. - N.l. - P.25-34.
195. Thurston G., McLean J.W., Rizen M. et al. Cationic liposomes target angiogenic endothelial cells in tumors and chronic inflammation in mice. //J. Clin. Invest. 1998. - V.101. -N.7. -P.1401-1413.
196. Torchilin V.P. Drug targeting. //Eur. J. Pharm. Sci. 2000. - V.ll. - Suppl.2. -P.81-91.
197. Torchilin V.P., Omelyanenko V.G., Papisov M.I. et al. Polyethylene glycol on the liposome surface: on the mechanism of polymer-coated liposome longevity. //Biochim. Biophys. Acta. 1994. - V.l 195. - P.l 1-20.
198. Unezaki S., Maruyama K., Hosoda J. et al. Direct measurement of the extravasation of polyethyleneglycol-coated liposomes into solid tumor tissue by in vivo fluorescence microscopy. //Int. J. Pharm. 1996. - V.144. - P.l 1-17.
199. Valduga G., Bianco G., Csik G. et al Interaction, of hydro- or lipophilic phthalocyanines with cells of different metastatic potential. //Biochemical Pharmacology. 1996. - V.51. - N.5. - P.585-590.
200. Versluis A. J., Rensen P.C.N., Kuipers M.E. et al. Interaction between zinc(II)-pht^ocyanine-containing liposomes and human low density lipoproteins. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. 1994. - V.23. - N.2-3. - P.141-148.
201. Williamson P., Mattocks K., Schlegel Я Merocyanine 540, a fluorescent probe sensitive to lipid packing. //Biochim. Biophys. Acta. 1983. - V.732. - P.387-393.
202. Wohrle D., Shopova M., Muller S. et al. Experimental photodynamic therapy with Zn(II)-naphthalocyanine compounds. //In: Spinelli P. (ed.) Photodynamic Therapy and Biomedical Lasers. 1992. - P. 545-548.
203. Wong J., Kuhl T.L., Israelashvili J.N. et al. Direct measurement of tethered ligand-receptor interaction potential. //Science. 1997. - V.275. - P.820-822.
204. Woodbum K., Chang C., Lee S. et al. Biodistribution and PDT efficacy of a ketochlorin photosensitizer as a function of the delivery vehicle. //Photochem. Photobiol. 1994. - V.60. -P.154-159.
205. Woodburn K.W., Fan Q., Miles D.R. et al. Localization and efficacy analysis of the phototherapeutic luletium texaphyrin (PCI-0123) in the murine EMT6 sarcoma model. //Photochem. Photobiol. 1997. - V.65. - N.3. - P.397-402.
206. Yuan F., Leunig M., Huang C.K. et al. Microvascular permeability and interstitial penetration of sterically stabilized (stealth) liposomes in a human tumor xenograft //Cancer Res. 1994. - V.54. - P.3352-3356.
207. Zalipsky S. Chemistry of polyethylene glycol conjugates with biologically active molecules. //Adv. Drug Deliv. Rev. 1995. - V.16. - P.157-182.
208. Zalipsky S., Hansen C.B., Lopes de Menezes D.E. et al. Long-circulating, polyethylene glycolgrafted immunoliposomes. //J. Control. Release. 1996. - V.39. -P.153-161.
209. Zalipsky S., Puntambekar В., Boulikas P. et al. Peptide attachment to extremities of liposomal surface grafted PEG chains: preparation of the long-circulating form of laminin pentapeptide, YIGSR. //Bioconjug. Chem. 1995. -V.6. - N.6. - P.705-708.
210. Zhou C. Mechanisms of tumor necrosis induced by photodynamic therapy. //J. Photochem. Photobiol., B: Biol. 1989. - V.3. - N.3. - P.299-318.
211. Zhou C.N., Milanesi C., Jori G. An ultrastructural comparative evaluation of tumors photosensitized by porphyrins administered in aqueous solution, bound to liposomes or to lipoproteins. //Photochem. Photobiol. 1988. - V.48. - N.4. -P.487-492.
212. Zilberstein. J., Schreiber S., Bloemers M.C. et al. Antivascular treatment of solid melanoma tumors with bacteriochlorophyll-serine-based photodynamic therapy. //Photochem. Photobiol. 2001. - V.73. - N.3. - P.257-266.