Автореферат и диссертация по медицине (14.00.11) на тему:Ассоциация вирусов папилломы человека и стафилококков в формировании нарушений микрофлоры кожи при псориазе

ДИССЕРТАЦИЯ
Ассоциация вирусов папилломы человека и стафилококков в формировании нарушений микрофлоры кожи при псориазе - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Ассоциация вирусов папилломы человека и стафилококков в формировании нарушений микрофлоры кожи при псориазе - тема автореферата по медицине
Фомина, Екатерина Сергеевна Москва 2009 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.11
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Ассоциация вирусов папилломы человека и стафилококков в формировании нарушений микрофлоры кожи при псориазе

Фомина Екатерина Сергеевна

Ассоциация вирусов папилломы человека и стафилококков в формировании нарушений микрофлоры кожи при псориазе

14.00.11. - кожные и венерические болезни 03.00.07. - микробиология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Москва - 2009

Работа выполнена в ГОУ ВПО Московской медицинской академии имени И.М. Сеченова

Научные руководители: заслуженный деятель науки РФ,

доктор медицинских наук, профессор Молочков Владимир Алексеевич

доктор медицинских наук, профессор Быков Анатолий Сергеевич

Официальные оппоненты: доктор медицинских наук, профессор

Уджуху Владислав Юсуфович

доктор медицинских наук, профессор Митрохин Сергей Дмитриевич

Ведущая организация: ГОУВПО Московский государственный медико-стоматологический университет.

Защита диссертации состоится «» ¿^■¿/^^бс^г^ 200^г. в /~^часов на заседании диссертационного Совета Д.208.040.10 при Московской медицинской академии имени И.М.Сеченова по адресу: 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д.8, стр.2

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГОУ ВПО ММА имени И.М. Сеченова по адресу: 117998, г. Москва, Нахимовский проспект, д. 49.

Автореферат разослан « /¿¿^¿^ 2009 г.

Ученый секретарь диссертационного совета Эрдес Светлана Ильинична

доктор медицинских наук, профессор

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. Состояние нормальной микрофлоры (нормофлоры) человека является одним из важных показателей здоровья организма. Количественные и видовые изменения в составе нормофлоры могут сопровождаться как развитием угрожающих жизни заболеваний, так и манифестацией болезней, исходно протекавших субклинически [Шендеров Б.А., 1998; Митрохин С.Д.,1998; Finegold S.M. et al., 1983].

В настоящее время псориаз является одним из наиболее распространенных хронических заболеваний кожи, заболеваемость им продолжает непрерывно возрастать [Молочков В.А. и соавт., 2007; Топорова Н.П. и соавт., 1997; Чистяков И.А., 1997; Henseler Т., 1997; Schafer T. et al., 1996]. Имеются данные о том, что некоторые микробные агенты, в том числе S. aureus, S. pyogenes, Е. coli, могут играть триггерную роль в отношении псориаза [Abeck С., 1992; Aly R. et al., 1976; Leung D.Y. et al., 1993; Tefer N.R. et al., 1992], при этом большее значение придают не столько очагам фокальной инфекции, сколько массивной микробной контаминации кожи микробными агентами. Так, продемонстрировано, что у больных псориазом численность стафилококков в очагах в 20 раз превосходит таковую на участках непораженной кожи [Noble W.C., 1998].

Высказывается предположение о том, что наряду с бактериями, развитие псориаза может быть связано также с вирусом папилломы человека (ВПЧ) [Pfister H., 2003]. Среди почти 200 типов ВПЧ выделяют не только слизистые, но и кожные типы, которые также как и ВПЧ слизистого типа, подразделяют на группы низкого и высокого онкогенного риска. Непосредственное участие ВПЧ в кожном канцерогенезе было впервые установлено на примере ВПЧ-5 и ВПЧ-8, ассоциирующихся с верруциформной эпидермодисплазией Левандовского-Лютца с развивающимся в последующем на фоне этого заболевания плоскоклеточным раком кожи, формирование которого обусловливала интеграция в геном

клетки ВПЧ 9, 12, 15, 17, а также 19 - 25 типов [zur Hausen Н„ 1996]. ДНК ВПЧ может быть обнаружена и в образцах здоровой кожи, но частота ее выявления достоверно возрастает у лиц с иммуносупрессией [Boxman I.L. et al., 1999; Harwood С.А. et al., 2000; Stockfleth E. et al., 2004; Weissenborn S.J. et al., 1999].

Взаимосвязи репликации кожных ВПЧ с течением псориаза мало изучены. Тем не менее, установлено, что частота обнаружения ВПЧ-5 на коже псориатических бляшек более чем двукратно превосходит таковую в образцах видимо здоровой кожи [Prignano G. et al., 2003]. Показано, что ВПЧ 5, 36, 38 типов может выявляться почти в 90% псориатических очагов. Кроме того, отмеченное Н. Pfister et al. (2003) более чем пятикратное повышение сывороточного титра антител к ВПЧ-5 и ВПЧ-8 у больных псориазом в сопоставлении со здоровыми людьми косвенно свидетельствует в пользу участия ВПЧ в патогенезе местных иммунологических кожных нарушений при псориазе. Частота обнаружения ВПЧ-5 и ВПЧ-8 достигает максимума также после высокодозовой PUVA-терапии, сопровождающейся локальной иммуносупрессией [Wolf Р. et al., 2003].

Таким образом, повышенная репликация определенных типов кожных ВПЧ, отражая присущие псориазу нарушения локального кожного иммунитета, может также служить маркером интенсивности патологической пролиферации кератиноцитов в псориатических очагах. В связи с этим особую актуальность приобретает изучение взаимосвязи оцененной с помощью высокочувствительных методов кожной вирусной нагрузки кожными ВПЧ с другими показателями, отражающими расстройства кожного локального иммунитета, в частности, нарушениями аутомикрофлоры кожи, регистрируемыми исходя из количества персистирующих стафилококков. Результатом изучения кожных бактериально-вирусных ассоциаций при псориазе может стать углубление представлений о формировании и прогрессировании псориаза с возможным в

дальнейшем расширением возможностей его патогенетически обоснованного лечения.

Цель исследования: изучить связь кожных вирусов папилломы человека с нарушениями аутомикрофлоры кожи при псориазе.

Задачи исследования:

1. Оценить частоту обнаружения ДНК ВПЧ в псориатических очагах.

2. Определить вирусную нагрузку ВПЧ в очагах псориаза и на участках видимо здоровой кожи и изучить ее динамику в зависимости от клинического течения и формы псориаза.

3. Изучить обсемененность стафилококками пораженных и здоровых участков кожи больных псориазом с оценкой ее динамики в зависимости от клинического течения и формы псориаза, а также состояния врожденного иммунитета, оцениваемого с помощью реакции иммуноприлипания.

4. Сопоставить динамику микробной обсемененности и вирусной нагрузки ВПЧ в зависимости от клинического течения псориаза.

Научная новизна

Впервые проведено определение кожных типов ВПЧ рода Betapapillomavirus с использованием полимеразной цепной реакции (ПЦР) в режиме реального времени у больных псориазом. На основе количественного анализа впервые детально изучена ассоциация клинического течения псориаза с ВПЧ рода Betapapillomavirus. Также подробно описано изменение вирусной нагрузки ВПЧ в зависимости от динамики клинического течения псориаза.

Для оценки врожденного иммунитета организма у больных псориазом в сопоставлении со здоровыми лицами применен тест для определения уровня аутомикрофлоры кожи (АМФК) в отношении Staphylococcus aureus с помощью контактных слайдов Envirocheck® Contact YM (R). Впервые проанализирована взаимосвязь динамики величины вирусной нагрузки ВПЧ

рода Betapapillomavirus и степени микробной обсемененности в зависимости от морфофункционального состояния кожи больных псориазом, динамики клинического течения псориаза и клинической формы. Также впервые проведена оценка врожденного иммунитета больных псориазом с применением реакции иммуноприлипания в титрационном варианте.

Положения, выносимые на защиту:

1. У больных псориазом часто удается обнаружить наличие ВПЧ рода Betapapillomavirus в псориатических очагах, при этом концентрация ДНК ВПЧ рода Betapapillomavirus при псориазе достоверно превосходит таковую у бессимптомных носителей ВПЧ.

2. Существует взаимосвязь между динамикой вирусной нагрузки ВПЧ и стадией клинического течения псориаза.

3. Изменения показателей, характеризирующих состояние аутомикрофлоры кожи, коррелируют с динамикой вирусной нагрузки ВПЧ у больных псориазом.

4. Диагностическая значимость теста с применением контактных слайдов Envirocheck® Contact YM (R), описывающего аутомикрофлору кожи (АМФК), и диагностическая значимость теста «Бактотест» сопоставимы.

Внедрение в практику

Результаты работы используются в лечебном и учебном процессе на кафедре кожных и венерических болезней ФППОВ ММА им. И.М. Сеченова и кафедре дерматовенерологии и дерматоонкологии МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского, а также на кафедре микробиологии, вирусологии и иммунологии ММА им. И.М. Сеченова.

Апробация работы

Материалы диссертации доложены и обсуждены на заседании Московского областного общества дерматовенерологов, Москва, 2007г., 2008г.; на 14-ой международной специализированной выставке «Аптека» 23 -26 октября 2007г., Москва, СК «ОЛИМПИЙСКИЙ»; 23rd INTERNATIONAL

PAPILLOMAVIRUS CONFERENCE & CLINICAL WORKSHOP 2006 Prague, September 1-7 2006r.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 9 печатных работ. Структура диссертации

Диссертация изложена на 110 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, обзора литературы, описания материалов и методов, результатов, выводов и библиографического указателя. Указатель литературы включает 28 отечественных и 118 зарубежных работ. Работа иллюстрирована 9 рисунками и 15 таблицами.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материалы и методы исследования

В настоящее исследование включены 69 пациентов с установленным диагнозом псориаза, находившихся на стационарном лечении в отделении дерматовенерологии и дерматоонкологии МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского. Возраст обследованных составлял от 17 до 76 лет.

Таблица 1. Исходная характеристика больных (п=69)

Особенности распределения Число больных (п (%))

Распределение по полу:

мужчины 40 (58%)

женщины 29 (42%)

Клинические формы псориаза:

Вульгарный псориаз 51 (74%)

Псориатическая эритродермия 18(36%)

Больные псориазом получали десенсибилизирующую, дезинтоксикационную терапию, а также антигистаминные препараты, поливитамины, нестероидные противовоспалительные средства. Также применяли экстракорпоральные методы лечения (плазмаферез) и наружную терапию. Всем пациентам проводили комплексное обследование, включавшее общий анализ крови, мочи, биохимические анализы крови, ЭКГ, при необходимости — УЗИ внутренних органов. Критерием исключения из исследования были состояния, сопровождающиеся выраженной

иммуносупрессией: онкологические заболевания внутренних органов и крови, тяжелые системные заболевания, гепатиты В и С, ВИЧ-инфекция, состояния после трансплантации внутренних органов.

Контрольную группу составили 46 человек, из них 19 мужчин и 27 женщин в возрасте от 29 до 78 лет, у которых кожные заболевания, в том числе ассоциированные с кожными типами ВПЧ, отсутствовали. Пациентам и лицам контрольной группы предлагалось не принимать водных процедур за 24 часа до обследования, а также не использовать мази, кремы и прочие средства наружного применения. Непосредственно перед получением отпечатков кожу обследуемых лиц не подвергали обработке дезинфицирующими средствами.

Молекулярно-биологическое исследование. Материалом для исследования служили биоптаты кожи размером 0,2x0,2 см, полученные с помощью малоинвазивной модификации взятия биопсии бритвенным способом, или суспензия клеток, полученная методом соскоба. Соскоб использовался только для взятия материала из зон псориатических высыпаний, где имелись нарушения сцепления между клетками, и скарификация обеспечивала получение достаточного количества клеточной массы. Исследуемый материал помещали в отдельные пробирки, содержащие 1 мл транспортной среды (PBS буфер, ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора, Москва). Для максимального сохранения количества клеточной и вирусной ДНК пробирки замораживали сразу после взятия материала и хранили до проведения ПЦР-анализа при -70 °С.

Выявление и количественное определение ВПЧ рода р проводили методом ПЦР в режиме реального времени (А.Ю. Кладова и соавт., 2006) с использованием рекомбинантных плазмидных положительных контролен, содержащих последовательность полных геномов ВПЧ кожных типов рода alpha, gamma, mu, nu и beta-1,3,4,5,7,8,15,20,24,27,37,38,49,50,65 (M. Favre Instituí Pasteur, Unite Postulante Genetique, Papillomavirus et Cáncer Human, France; E.M. de Villers, Abteilung tumorvirus- Charakterisierung

Referenzzenturum für Humanpathogene Papillomviren, Germany), а также контрольные плазмиды фрагмента ß-глобинового гена человека (ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора).

Для выявления ДНК ВПЧ рода ß были использованы 4 независимые системы олигонуклеотидов (группоспецифических праймеров и зондов): первая - для выявления генотипов вида beta 1 (5,8,12,14,20,21,19,25,47,36); вторая - для выявления вида beta 2 (9,15,17,22,23,38,37,80); третья - для выявления вида beta 3 (49,75,76); четвертая - для выявления вида beta 4 (92), beta 5 (96), beta 1 (20,24 и 93 типы). Последовательности всех олигонуклеотидов ВПЧ рода beta были выбраны при анализе известных последовательностей ВПЧ, взятых из Интернет ресурса «NCBI Genebank» (http://www.ncbi.nlm.nih.gov) и обработаны при помощи программы AlignX пакета Vector NTI 6 (InforMax Inc., 2000). ПЦР проводили в мультиплексном формате. Аналитическая чувствительность методики позволяла выявлять генотипы вида beta 1-1250 копий ДНК ВПЧ/мл; вида beta 2-1000 копий ДНК ВПЧ/мл; вида beta 3-450 копий ДНК ВПЧ/мл; вида beta 4,5-300 копий ДНК ВПЧ/мл.

Метод ПЦР в «режиме реального времени», положенный в основу методики количественного выявления ВПЧ рода beta, позволял определять абсолютное количество геномов ВПЧ и ДНК человека в пробе. С учетом того, что при взятии клинического материала из очагов псориаза и нормальной кожи количество эпителиальных клеток (а соответственно и копий вируса), попадающих в образец, существенно варьировало, была использована методика нормирования количества вируса на количество клеток человека. Это позволяло получать надежные и достоверные данные о вирусной нагрузке ВПЧ в клетках кожи.

Расчет нормализованной вирусной нагрузки (ВН) производился по формуле: BH=lg ((кол-во ДНК ВПЧ/кол-во ДНК чел.)* 105). Изучение микробиоценоза кожи проводили методом агаровых отпечатков с использованием «Бактотестов» — стерильных пластиковых одноразовых

микрочашек площадью 10 см2. «Бактотесты» для работы были предоставлены Федеральным медицинским биофизическим центром (А.А. Иванов и др.).

В группах отобранных больных отпечатки брали с очагов псориаза на сгибательной поверхности предплечья. Также снимали отпечатки с участков видимо здоровой кожи. В контрольной группе отпечатки брали с того же биотопа. Посев отпечатков проводили на 10% кровяной агар и на среду Columbia фирмы BioMerieux. Время аппликации составляло 40 секунд. Посевы инкубировали в термостате при 37 °С в течение 48 часов. Выросшие колонии подсчитывали и окрашивали по Граму. Для идентификации чистой культуры стафилококков использовали тест на выявление плазмокоагулазы с учетом лецитовителазы, продуцируемой на желточно-солевом агаре.

По числу выросших колоний (степени обсемененности кожи) определяли уровень аутомикрофлоры кожи (АМФК) больных и доноров. Было выделено 4 группы: с нормальным уровнем (<20 КОЕ/отпечаток); с повышенным уровнем (21-100 КОЕ/отпечаток); с высоким (100 КОЕ/отпечаток) и с очень высоким уровнем АМФК (сплошной рост).

Микробную обсемененность кожи изучали также при помощи контактных слайдов Envirocheck® Contact YM (R), которые предназначены для обнаружения дрожжей и плесеней, а также допускающие рост некоторых бактерий — Escherichia coli, Staphylococcus aureus, S. cerevisiae и Pseudomonas aeruginosa. Отпечатки у больных брали с поверхности очагов псориаза и с видимо здоровой кожи, а также у лиц контрольной группы. В качестве биотопа было выбрано правое предплечье. С каждого биотопа отпечатки брали как на среду с агаром с хлорамфениколом, так и с бенгальским розовым. Время аппликации составляло 40 секунд. Посевы инкубировали в течении 48 часов при температуре 37 °С (условия, при которых культивируются только бактерии). По количеству выросших на слайде колоний было выделено 4 группы: менее 60 КОЕ/отпечаток — нормальный уровень(104); 60-100 КОЕ/отпечаток — повышенный

уровень(105); более 100 КОЕ/ отпечаток— высокий уровень(106); сплошной рост — очень высокий уровень(107) АМФК.

Оценку врожденного иммунитета больных псориазом проводили с применением реакции иммуноприлипания (Смирнова A.M., 1975; Пустовалова H.A., 1975; Быков A.C. 1986). Реакция основана на активации системы комплемента корпускулярными антигенами (бактериями, вирусами), обработанными сывороткой крови. В результате активированный компонент комплемента (СЗЬ) присоединяется к корпускулярному антигену в составе иммунного комплекса.

Обследовано 58 больных псориазом в возрасте от 20 до 63 лет, из них 11 — с эритродермической формой псориаза, 47 — с вульгарным псориазом, у 20 из которых имелся псориатический артрит, 27 — без псориатического артрита. У всех больных с эритродермической формой псориаза отмечался псориатический артрит. Контрольную группу составили 20 практически здоровых доноров. Исходная характеристика обследованных больных представлена в таблице 2.

Таблица 2. Исходная характеристика больных (п=58)

Особенности распределения Число больных - п (%)

Распределение по полу: мужчины женщины 34 (59%) 24 (41%)

Клинические формы псориаза: вульгарный псориаз: -наличие псориатического артрита -отсутствие псориатического артрита псориатическая эритродермия 47 (81%) 20 (43%) 27 (57%) 11 (19%)

Материалом для исследования были образцы цельной крови больных псориазом и лиц контрольной группы. РИП ставили в новой модификации с разведениями сыворотки крови больных (титрационный вариант), которая давала сходные результаты при использовании как стафилококков, так и эшерихий, что свидетельствовало о неспецифичности реакции. Постановка РИП заключалась в 10 мин. инкубации (при 37°С) золотистого стафилококка (Wood 46) с разведениями сыворотки крови больного и последующим

добавлением отмытых эритроцитов этого же больного. Учёт реакции проводили через 30-50 минут после добавления эритроцитов. К этому сроку в положительных пробах наблюдали склеивание эритроцитов в виде фестончатых зонтиков, как и в реакции пассивной гемагглютинации. Постановку реакции сопровождали контролем: 1) контроль из смеси эритроцитов и взвеси суточной культуры золотистого стафилококка; 2) контроль из смеси изотонического раствора хлорида натрия и взвеси эритроцитов; 3) контроль из смеси разведенной сыворотки крови и эритроцитов.

Электронномикроскопическое исследование. В работе использовали продукт реакции иммуноприлипания с использованием Staphylococcus aureus штамм Wood-46, полученного из ГИСК им. JI.A. Тарасевича. Для получения ультратонких срезов применяли глютаральдегид-осьмиевую фиксацию с использованием фосфатного или Na-кокадилатного буфера с учетом соответствующих рекомендаций (Быков А.С. и соавт., 1981), что позволило выявить как структуры бактерий, так и структуры тканей. Фиксированные и обезвоженные объекты заключали в эпоксидные смолы, или другие полимеры, с последующей полимеризацией. Полученные на ультрамикротоме LKB ультратонкие срезы объекта контрастировали и снимали в электронном микроскопе JEM-100В.

Статистическая обработка результатов исследования. Достоверность различия частот определяли при помощи критерия «хи-квадрат». Доверительные границы к частотам рассчитывали на основании биномиального распределения. Для анализа вирусных нагрузок рассчитывали десятичный логарифм количества вирусов, анализ его связи с другими переменными проводили с использованием метода параметрической статистики: достоверность различий средних по группам вычисляли с помощью дисперсионного анализа, а доверительные границы к среднему - на основе распределения Стьюдента.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ОБСУЖДЕНИЕ Выявление ДНК ВПЧ рода beta у больных псориазом

В исследование были включены 69 образцов псориаза (соскобы). В качестве контроля использовали 46 биоптатов нормальной кожи здоровых добровольцев, у которых кожные заболевания, в том числе, ассоциированные с кожными типами ВПЧ, отсутствовали. Обследование проводили в два этапа. Первоначально все образцы кожи больных псориазом и контрольной группы были протестированы на присутствие ДНК ВПЧ рода beta. В дальнейшем проводили количественный анализ ВПЧ-положительных образцов псориаза и нормальной кожи, заключавшийся в определении вирусной нагрузки ВПЧ и нормировании количества геномов ВПЧ на ДНК человека. В таблице 3 представлены результаты обследования больных псориазом и лиц контрольной группы (нормальная кожа) на наличие ДНК ВПЧ рода beta.

Таблица 3. Частота обнаружения ДНК ВПЧ рода beta в псориатических бляшках и нормальной коже

Кол-во Количество Количество

Объект исследования образцов ВПЧ- ВПЧ +

образцов образцов

Абс. % Абс. %

Псориатические бляшки 69 9 13,0 60 87,0*

Нормальная кожа 46 26 56,3 20 43,7

Всего 115 35 27,0 80 73,0

*р<0,001 по сравнению с образцами здоровой кожи

Как видно из таблицы 4, ДНК ВПЧ обнаруживалась в 2 раза чаще у больных псориазом по сравнению с контрольной группой (р<0,001). ДНК ВПЧ удавалось выявить независимо от возраста, пола больных, а также от длительности заболевания. Оценка частоты обнаружения ДНК ВПЧ рода beta в зависимости от клинической формы псориаза выявила, что ее наличие несколько чаще удавалось зарегистрировать у больных эритродермией по

сравнению с страдавшими вульгарным псориазом (94,7% и 84,0%, соответственно).

28 больным вульгарным псориазом проводили исследование, направленное на выявление ДНК ВПЧ рода beta как в псориатических бляшках, так и на участках видимо здоровой кожи. Более чем в половине исследованных образцов (54%) ДНК ВПЧ рода beta удавалось выявить как в псориатической бляшке, так и на видимо здоровой коже. Почти в 40% образцов наличие ДНК ВПЧ рода beta регистрировалось в псориатических бляшках, но отсутствовало в здоровой коже. Лишь в 2 (7%) образцах ДНК ВПЧ рода отсутствовала как в псориатических бляшках, так и в видимо здоровой коже.

С учетом того, что группоспецифический формат методики ПЦР позволял дифференцированно выявлять beta 1, beta 2, beta 3, beta 4-5 виды ВПЧ, мы проанализировали данные о частоте их обнаружения и ассоциации в образцах псориаза и нормальной кожи. Результаты приведены в таблице 4. Таблица 4. Сравнительная частота обнаружения различных видов ВПЧ рода beta при псориазе и нормальной коже

Диагноз Кол-во ВПЧ+ образцов Виды ВПЧ

beta-Г (%) beta-2* (%) beta-3* (%) beta-4,5* (%)

Псориаз (п=69) 60 34 (49,3) 39 (56,5) 31 (44,9) 31 (44,9)

Нормальная кожа (п=46) 20 5(10,9) 10 (47,0) 15(32,6) 11 (23,9)

*в том числе в ассоциации с другими видами ВПЧ

В результате проведенного анализа было установлено, что как в псориатических бляшках, так и нормальной коже выявлялся широкий спектр ВПЧ рода beta, представленный beta 1, beta 2, beta 3, beta 4-5 видами. В образцах псориаза папилломавирусы beta 1 и beta 2 видов встречались более чем в 4 раза чаще, (р<0,05), а представители beta 4, 5 видов- почти в 2 раза чаще, чем в нормальной коже. При анализе частоты выявления ассоциации

видов ВПЧ рода beta при псориазе и нормальной коже было установлено, что 85% образцов кожи больных псориазом демонстрировали сочетание 2-х и более видов ВПЧ рода beta. Один вид ВПЧ выявлялся лишь в 15% образцов. В здоровой коже представителей контрольной группы, напротив, 4/5 исследованных образцов показали присутствие ДНК только одного представителя ВПЧ рода beta; различие с частотой обнаружения ассоциации ДНК 2-х и более видов ВПЧ рода beta оказалось статистически достоверным

Око,01).

Вместе с тем, с учетом широкой распространенности ВПЧ как при псориазе, так и в нормальной коже, сам факт обнаружения ДНК отдельных представителей этого семейства, очевидно, не может быть интерпретирован однозначно. Помимо собственно выявления ДНК ВПЧ, необходимо учитывать количество вирусных частиц, приходящихся на одну эпителиальную клетку, описываемое показателем вирусной нагрузки. Определение количества ДНК ВПЧ в исследуемом материале (вирусной нагрузки в коже), очевидно, позволит в большей степени дифференцировать патогенетически обоснованные ассоциации от бессимптомной персистенции В связи с этим следующим этапом нашего исследования стал количественный анализ, включающий определение вирусной нагрузки вирусной нагрузки в ВПЧ-положительных образцах кожи больных псоризом в сопоставлении с образцами нормальной кожи и нормирование количества ДНК ВПЧ на количество клеток, позволяющее косвенно доказать связь динамики вирусной нагрузки с клеточной пролиферацией. Определение вирусной нагрузки ВПЧ рода beta при псориазе В данной части работы использовались 60 ВПЧ-положительных образцов кожи 69 больных псориазом. Контрольная группа была представлена 20 ВПЧ-положительными образцами кожи, взятыми от здоровых добровольцев. Данные, полученные в ходе определения вирусной нагрузки ВПЧ в очагах псориаза и нормальной коже представлены в табл. 5 в десятичных логарифмах. В отличие от группы больных псориазом, у здоровых

преобладали сравнительно низкие значения вирусной нагрузки, констатированные более чем в 80% образцов. Средние значения вирусной нагрузки (2-3 log ДНК ВПЧ на 105 клеток) были зарегистрированы лишь в 17,4% образцов кожи здоровых людей и в 44,7% образцах кожи пациентов, страдавших псориазом. Высокие (>3 log ДНК ВПЧ на 105 клеток) значения вирусной нагрузки в образцах здоровой кожи не определялись вообще, в то время как частота их обнаружения в образцах кожи больных псориазом достигала почти 15%.

Таблица 5. Результаты определения вирусной нагрузки (десятичный логарифм ДНК ВПЧ на 105 клеток человека) в образцах псориаза и нормальной кожи.

Материал Кол-во исследованных образцов Кол-во ВПЧ + образцов Вирусная нагрузка (log ДНК ВПЧ на 105 клеток)

<2 2-3 >3

Псориаз 69 60 (87%) 40,4 % 44,7% 14,9%

Нормальная кожа 46 20 (43%) 82,6 % 17,4% 0,0

Вирусная нагрузка в образцах кожи больных псориазом более чем в 2 раза превышала таковую в образцах здоровой кожи и это различие оказалось статистически достоверным. Кроме того, была проведена оценка динамики вирусной нагрузки в зависимости от стадии клинического течения псориаза. В прогрессирующую стадию псориаза не было зарегистрировано случаев, когда ДНК ВПЧ не определялось вообще, в то время как в период регресса высыпаний ее не удавалось обнаружить у % обследованных пациентов. Вирусная нагрузка, составлявшая > 2 log ДНК ВПЧ на 105 клеток, в прогрессирующую стадию псориаза отмечалась в 4,5 раза чаще, чем в ремиссию заболевания (р<0,01).

На рисунке 1 представлена динамика вирусной нагрузки ДНК ВПЧ в периоды прогрессирующей и регрессирущей стадий псориаза индивидуально у каждого из 16 обследованных больных. Ни у одного из них в период

регресса высыпаний вирусная нагрузка ДНК ВПЧ не возрастала по сравнению с прогрессирующей стадией псориаза. Более того, у 4 из 16 больных в стадии регресса высыпаний вирусная нагрузка ДНК ВПЧ снижалась до значений, находившихся ниже порогового уровня. Рис. 1. Динамика вирусной нагрузки ВПЧ у больных псориазом в прогрессирующую и регрессирующую стадии псориаза

вирусная нагрузка 3

2,5

щШшшШ

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16

число наблюдений

Прогрес.

С Регресс.

Таким образом, в результате количественный анализа вирусной нагрузки ДНК ВПЧ можно констатировать, что этот показатель у больных псориазом оказывается достоверно выше, чем у здоровых из группы контроля. Кроме того, вирусная нагрузка ДНК ВПЧ достоверно снижается в стадию регресса высыпаний по сравнению с показателем, оцененным в прогрессирующей стадии псориаза.

Показатели теста оценки аутомикрофлоры кожи (АМФК)

Результаты оценки АМФК у больных псориазом в сопоставлении со здоровыми лицами из группы контроля представлены в таблице 6. Сплошной рост коагуланозонегативных стафилококков был отмечен только в очагах и видимо здоровой коже больных псориазом, но не у здоровых представителей контрольной группы. Повышенный и высокий рост коагуланозонегативных стафилококков регистрировался преимущественно в псориатических очагах. Более чем у 70% здоровых людей показатель АМФК оставался в пределах

нормальных значений. В очагах псориаза частота регистрации нормальной АМФК не достигала 25%.

Таблица 6. Показатель АМФК (число коагулазонегативных стафилококков) в группе больных псориазом (п= 69) и лиц контрольной группы (п= 46)

Показатель АМФК Очаги псориаза Видимо здоровая кожа больных псориазом Контроль

Абс. % Абс. % Абс. %

Нормальный (до 20 КОЕ/отпечаток) 16 23 39 57 33 71,5

Повышенный (21-100 КОЕ/отпечаток) 41 60 20 30 10 22,5

Высокий (более 100 КОЕ/отпечаток) 7 10 7 10 3 6

Очень высокий (сплошной рост) 5 7 2 3 - -

Частота обнаружения повышенного уровня обсемененности Staphylococcus aureus в псориатических очагах более чем в 4,5 раза превосходила видимо здоровую кожу больных псориазом, высокого роста -более чем в 6 раз. Повышенный и высокий рост Staphylococcus aureus у здоровых из группы контроля не регистрировался вообще. Повышенный и высокий рост стафилококков преобладал как при вульгарном псориазе (58,7% и 7,8% соответственно), так и при псориатической эритродермии (61,1% и 22,2% соответственно). Сплошной рост стафилококков при вульгарном псориазе и при псориатической эритродермии обнаруживался в псориатических очагах и в 5,5% случаев на участках видимо здоровой кожи больных псориатической эритродермией.

У 16 больных псориазом была оценена динамика уровня Staphylococcus aureus в прогрессирующую и регрессирующую стадию псориаза. У 1/4 больных в прогрессирующую стадию уровень обсемененности Staphylococcus aureus оказался повышенным, у I больного - высоким. Частота обнаружения повышенного уровня обсемененности Staphylococcus aureus в псориатических очагах в период регресса высыпаний снижалась на

6,5%. Высокий уровень обсемененности Staphylococcus aureus в регрессирующую стадию в псориатических бляшках зарегистрировать не удавалось. Повышенный и высокий уровень микробной обсемененности Staphylococcus aureus в образцах видимо здоровой кожи больных псориазом не были отмечены ни в прогрессирующую, ни в регрессирующую стадии псориаза. По сравнению с прогрессирующей стадией псориаза, в период регресса высыпаний частота выявления нормального уровня АМФК, оцененного по росту Staphylococcus aureus, в видимо здоровой коже возрастала на 6,5%, в псориатическом очаге - увеличивалась в 2 раза (таблица 7).

Таблица 7. Уровень Staphylococcus aureus в прогрессирующую и регрессирующую стадии псориаза (п=16)*

Показатель АМФК прогрессирующая стадия регрессирующая стадия

очаг здоровая кожа очаг здоровая кожа

Нормальный 2 (12,5%) 4 (25%) 4 (25%) 5(31,5%)

Повышенный 4 (25%) - 3(18,5%) -

Высокий 1 (6,2%) - - -

* сплошного роста не выявляли

Вирусно-бактериальные ассоциации при псориазе

Для оценки вирусно-бактериальных ассоциаций было проведено сопоставление вирусной нагрузки ДНК ВПЧ в зависимости от величины показателя АМФК у больных псориазом в сравнении со здоровыми людьми из группы контроля (таблица 8). Оказалось, что при высоком и очень высоком показателе АМФК вирусная нагрузка в образцах кожи, полученных из псориатических бляшек, составляла 2-3 log ДНК ВПЧ на 105 клеток, в то время как при нормальном и повышенном - не превышала 2 log ДНК ВПЧ на 105 клеток.

В контрольной группе здоровых людей величины вирусной нагрузки, составлявшие более 2 log ДНК ВПЧ на 105 клеток, не регистрировались

вообще. Более чем у 85% представителей контрольной группы величина вирусной нагрузки не достигала 1 log ДНК ВПЧ на 105 клеток. Диапазон величин вирусной нагрузки от 1 до 2 log ДНК ВПЧ на 105 клеток был отмечен только у 6 из 46 здоровых лиц контрольной группы. Динамика АМФК и вирусной нагрузки в прогрессирующую и регрессирующую стадии псориаза носила, в целом, однонаправленный характер (таблица 9). Высокие вирусная нагрузка ДНК ВПЧ и показатель АМФК были в большей степени свойственны прогрессирующей стадии псориаза.

Таблица 8. Взаимосвязь вирусной нагрузки и уровня АМФК при псориазе

Вирусная нагрузка (log ДНК ВПЧ на 105 клеток)

Показатель АМФК Псориаз Контрольная группа

(п=69) (п=46)

нормальный 1-2 (п=34) < 1 (п=40)

повышенный 1-2 (п=10) 1-2 (п=6)

высокий 2-3 (п=19) -

очень высокий 2-3 (п=6) -

Таблица 9. Взаимосвязь динамики вирусной нагрузки ДНК ВПЧ и АМФК в прогрессирующую и регрессирующую стадии псориаза

Стадия псориаза Вирусная нагрузка (log ДНК ВПЧ на 105 клеток) Показатель АМФК*

не определяется 1-2 >2 нормальный повышенный высокий

Прогресс. - 7(43,7) 9 (56,3) 5(31,5%) 8 (50%) 3 (18,5%)

Регрересс. 4(25) 10 (62,5) 2 (12,5) 6 (37,5%) 8 (50%) 2 (12,5%)

* сплошного роста не выявляли

Оценка врожденного иммунитета больного с применением реакции иммуноприлипания

Реакция иммуноприлипания была выполнена у 58 больных с псориазом в первый день после поступления и на фоне лечения спустя 14 дней с момента поступления (рис.2).

Рис. 2. Реакция иммуноприлипания у больных псориазом (исходно, п=58) в сопоставлении со здоровым контролем (п=20)

50 45

I

40

!35 £ зо

л

5 25

□ контроль ■ псориаз

о 20 с

10 20 4 0 80 160 320 640 1280

РИП (тигры)

При постановке реакции в первый день после поступления у больных псориатической эритродермией гемагглютинация наблюдалась в пределах титров сывороток 1:10-1:20, а у больных вульгарным псориазом- 1:40 -1:320, из которых лиц с суставным синдромом гемагглютинация наблюдалась в пределах титров сывороток 1:40-1:80, у больных без суставного синдрома - 1:160 - 1:320. При повторной постановке реакции иммуноприлипания на фоне лечения через 14 дней у больных псориатической эритродермией гемагглютинация наблюдалась при прежнем титре сывороток. У больных вульгарным псориазом в целом отмечалось повышение показателей реакции иммуноприлипания. При вульгарном псориазе с псориатическим артритом данные показатели увеличивались до уровня 1:160 против значений, отмеченных у представителей контрольной группы, и у больных без псориартрического артрита. У здоровых людей гемагглютинация наблюдалась в пределах титров - 1:640-1:1280 (рис 2).

22

ВЫВОДЫ

1. ДНК вирусов папилломы человека кожных типов обнаруживается в 87,0% образцах кожи больных псориазом (в 94,7% — при псориатической эритродермии, в 84,0% — при вульгарном псориазе) и в 43,7% образцов кожи здоровых людей (р<0,001). В 85,0% образцов кожи больных псориазом выявляется ассоциация нескольких видов кожных вирусов папилломы человека; частота обнаружения вируса папилломы человека вида beta 1 достоверно превосходит таковую в нормальной коже (49,3% и 10,9%, соответственно, р<0,05).

2. Вирусная нагрузка кожными вирусами папилломы человека в псориатических бляшках достоверно выше, чем в образцах кожи здоровых людей (2,0±1,2 log ДНК на 105 клеток и 0,9±0,7 log ДНК на 105 клеток, соответственно, р<0,001). В прогрессирующую стадию псориаза вирусная нагрузка кожными вирусами папилломы человека возрастает, в регрессирующую — снижается (у 25% больных менее нижней границы определяемых значений).

3. Нарушения аутомикрофлоры кожи наиболее выражены в псориатических очагах по сравнению с видимо здоровой кожей больных псориазом и образцами кожи здоровых лиц. В прогрессирующую стадию псориаза наблюдается повышение числа колониеобразующих единиц Staphylococcus aureus, свидетельствующее об усугублении нарушений аутомикрофлоры. Регресс псориатических высыпаний сопровождается увеличением частоты обнаружения нормального количества колониеобразующих единиц Staphylococcus aureus, отражающего коррекцию кожной аутомикрофлоры, в псориатических очагах в 2 раза, в видимо здоровой коже больных псориазом — в 2,5 раза.

4. Увеличение вирусной нагрузки кожными вирусами папилломы человека в псориатических бляшках сопряжено с нарастанием нарушений аутомикрофлоры кожи, регистрируемым по увеличению числа колониеобразующих единиц стафилококков.

5. Титры сывороток, в которых отмечается гемагглютинация в реакции иммуноприлипания, различаются в зависимости от клинической формы псориаза, составляя при псориатической эритродермии 1:10 -1:20, при вульгарном псориазе - 1:40 - 1:320, в том числе при псориатическом артрите 1:40-1:80 и у больных без псориатического артрита- 1:160 - 1:320. У здоровых представителей контрольной группы гемагглютинация наблюдается в пределах титров 1:640 - 1:1280.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Определение вирусной нагрузки кожными вирусами папилломы человека у больных псориазом целесообразно проводить с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени с исследованием как образцов кожи, полученных из псориатических очагов, так и из образцов видимо здоровой кожи.

2. Выявление нарушений аутомикрофлоры кожи при псориазе следует осуществлять, исходя из выявленного числа колониеобразующих единиц коагулазонегативных стафилококков и Staphylococcus aureus.

3. При резистентном к стандартным схемам лечения псориазе обосновано повторное определение степени обсемененности стафилококкоми пораженных и здоровых участков кожи.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Кладова А.Ю., Куевда Д.А., Молочков В.А., Шипулина О.Ю., Козлова (Фомина) Е.С., Прокофьев А.А. Количественное определение вируса папилломы человека (ВПЧ) в эпителиальных образованиях и других пролиферативных заболеваниях кожи. II VI научно-практическая конференция «Социально значимые заболевания в дерматовенерологии. Диагностика, терапия, профилактика». — М.- 2006.- С. 74-75;

2. Кладова А.Ю., Куевда Д.А., Молочков В.А., Шипулина О.Ю., Киселев В.И., Хлебникова А.Н., Козлова (Фомина) Е.С. Встречаемость кожных типов вируса папиллом человека в патологиях кожи. // Альманах клинической медицины. - 2006. - Том IX. - С. 44-50;

3. Kladova A., Kuevda D., Molochkov V., Pokrovskii V., Shipulina O., Kozlova (Fomina) E. Human papillomavirus -DNA loads in skin pathologies and normal skin. // Abstract in 23-d international papillomavirus conference and clinical workshop. - Prague, 2006. - P. 185;

4. Козлова (Фомина) E.C., Быков A.C., Кладова А.Ю., Куевда Д.А. Изучение некоторых вирусо-бактериальных ассоциаций при псориазе. // Альманах клинической медицины. - 2007. - Том XV. - С. 191-194;

5. Кладова А.Ю., Куевда Д.А., Молочков В.А., Шипулина О.Ю., Козлова (Фомина) Е.С., Прокофьев A.A. Определение вирусов папилломы человека (ВПЧ) рода beta в патологиях и нормальной коже. // Материалы IX съезда всероссийского научно-практического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов. - М. - 2007. - С.47;

6. Атлас по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии.// Под ред. A.C. Быкова, А. А. Воробьева, В.В. Зверева. -М.: МИА, 2008. - 122123 с.

7. Козлова (Фомина) Е.С., Быков A.C., Молочков В.А., Кладова А.Ю., Николаева С.А. Изучение некоторых вирусо-бактериальных ассоциаций при псориазе. // Материалы научно-практической конференции «Актуальные проблемы дерматологии», посвященной 75-летию кафедры дерматовенерологии Самарского университета и 115-летию со дня рождения A.C. Зенина. -Самара.-2008,- С. 61-62;

8. Быков A.C., Козлова (Фомина) Е.С., Кладова А.Ю., Молочков В.А. Нарушение местного иммунитета и бактериально-вирусных ассоциаций при псориазе. // Материалы конференции «Актуальные вопросы дерматовенерологии и дерматоонкологии». - 2008. - М. - С. 79-83;

9. Быков A.C., Козлова (Фомина) Е.С., Кладова А.Ю., Молочков В.А. Бактериально-вирусные ассоциации при местных нарушениях иммунитета при псориазе. // Российский журнал кожных и венерических болезней. -2008. - № 6. - С. 24-28.

Подписано в печать 26.02.2009 г. Печать лазерная цифровая Тираж 100 экз.

Типография Aegis-Print 115230, Москва, Варшавское шоссе, д. 42 Тел.: (495) 7В5-00-38 www.autoref.webstolica.ru

 
 

Оглавление диссертации Фомина, Екатерина Сергеевна :: 2009 :: Москва

Список сокращений

Введение

Глава 1. Обзор данных литературы

1.1 Этиология псориаза

1.2 Иммунопатогенез псориаза

1.3 Микрофлора кожи и её изменение при псориазе

1.4 Классификация, клиника псориаза

Глава 2.Материалы и методы

2.1 Общая характеристика больных

2.2 Детекция вирусов папилломы человека

2.3 Исследование микрофлоры кожи

2.4 РИЛ в оценке врожденного иммунитета больных псориазом

2.5 Статистическая обработка результатов исследования

Глава 3. Результаты

3.1.Выявление ДНК ВПЧ рода beta у больных псориазом

3.2 Определение вирусной нагрузки ВПЧ рода beta при псориазе

3.3 Особенности микрофлоры кожи и её взаимодействие с гуморальными факторами организма

3.3.1 Показатели теста оценки аутомикрофлоры кожи

3.3.2 Вирусно-бактериальные ассоциации при псориазе

3.4 Оценка врожденного иммунитета больного с применением реакции иммуноприлипания

Глава 4. Обсуждение результатов исследования

Выводы

 
 

Введение диссертации по теме "Кожные и венерические болезни", Фомина, Екатерина Сергеевна, автореферат

Актуальность проблемы

Состояние нормальной микрофлоры человека является одним из важных показателей здоровья организма. Количественные и видовые изменения в составе нормофлоры могут сопровождаться как развитием угрожающих жизни заболеваний, так и манифестацией болезней, исходно протекавших субклинически [Митрохин С.Д.,1998; Шендеров Б.А., 1998; Finegold S.M. et al., 1983].

В настоящее время псориаз является одним из наиболее распространенных хронических заболеваний кожи; заболеваемость им продолжает непрерывно возрастать [Молочков В.А. и соавт., 2007; Топорова Н.П. и соавт., 1997; Чистяков И.А., 1997; Henseler Т., 1997; Schafer Т. et al., 1996). Имеются данные о том, что некоторые микробные агенты, в том числе S. aureus, S. pyogenes, Е. coli, могут играть триггерную роль в отношении псориаза [Abeck С., 1992; Aly R. et al., 1976; Leung D.Y. et al., 1993; Tefer N.R. et al., 1992]; при этом большее значение придают не столько очагам фокальной инфекции, сколько массивной микробной контаминации кожи микробными агентами. Так, продемонстрировано, что у больных псориазом численность стафилококков в очагах в 20 раз превосходит таковую на участках непораженной кожи [Noble W.C., 1998].

Высказывается предположение о том, что наряду с бактериями, развитие псориаза может быть связано также с вирусом папилломы человека (ВПЧ) [Pfister Н., 2003]. Среди почти 200 типов ВПЧ выделяют не только слизистые, но и кожные типы, которые также как и ВПЧ слизистого типа, подразделяют на группы низкого и высокого онкогенного риска. Непосредственное участие ВПЧ в кожном канцерогенезе было впервые установлено на примере ВПЧ-5 и ВПЧ-8, ассоциирующихся с верруциформной эпидермодисплазией Левандовского-Лютца с развивающимся в последующем на фоне этого заболевания плоскоклеточным раком кожи, формирование которого обусловливала интеграция в геном клетки ВПЧ 9, 12, 15, 17, а также 19 — 25 типов [zur Hausen Н., 1996]. ДНК ВПЧ может быть обнаружена и в образцах здоровой кожи, но частота ее выявления достоверно возрастает у лиц с иммуносупрессией [Boxman I.L. et al., 1999; Harwood С.A. et al., 2000; Stockfleth E. et al., 2004; Weissenborn S.J. et al., 1999].

Взаимосвязи репликации кожных ВПЧ с течением псориаза изучены менее подробно. Тем не менее, установлено, что частота обнаружения ВПЧ-5 на коже псориатических бляшек более чем двукратно превосходит таковую в образцах видимо здоровой кожи [Prignano G. et al., 2003]. Показано, что частота обнаружения ВПЧ 5, 36, 38 типов в псориатических очагах может достигать 90%. Кроме того, отмеченное Н. Pfister et al. (2003) более чем пятикратное повышение сывороточного титра антител к ВПЧ-5 и ВПЧ-8 у больных псориазом в сопоставлении со здоровыми людьми косвенно свидетельствует в пользу участия ВПЧ в патогенезе местных иммунологических кожных нарушений при псориазе. Частота обнаружения ВПЧ-5 и ВПЧ-8 достигает максимума также после высокодозовой PUVA-терапии, сопровождающейся локальной иммуносупрессией [Wolf P. et al., 2003].

Таким образом, повышенная репликация определенных типов кожных ВПЧ, отражая присущие псориазу нарушения локального кожного иммунитета, может также служить маркером интенсивности патологической пролиферации кератиноцитов в псориатических очагах. В связи с этим особую актуальность приобретает изучение взаимосвязи оцененной с помощью высокочувствительных методов кожной вирусной нагрузки кожными ВПЧ с другими показателями, отражающими расстройства кожного локального иммунитета, в частности, нарушениями аутомикрофлоры кожи, регистрируемыми исходя из количества персистирующих стафилококков. Результатом изучения кожных бактериально-вирусных ассоциаций при псориазе может стать углубление представлений о формировании и прогрессировании псориаза с возможным в дальнейшем расширением возможностей его патогенетически обоснованного лечения.

Цель исследования: изучить связь кожных вирусов папилломы человека с нарушениями аутомикрофлоры кожи при псориазе. Задачи исследования:

1. Оценить частоту обнаружения ДНК ВПЧ в псориатических очагах.

2. Определить вирусную нагрузку ВПЧ в очагах псориаза и на участках видимо здоровой кожи и изучить ее динамику в зависимости от клинического течения и формы псориаза.

3. Изучить обсемененность стафилококками пораженных и здоровых участков кожи больных псориазом с оценкой ее динамики в зависимости от клинического течения и формы псориаза, а также состояния врожденного иммунитета, оцениваемого с помощью реакции иммуноприлипания.

4. Сопоставить динамику микробной обсеменениости и вирусной нагрузки ВПЧ в зависимости от клинического течения псориаза.

Научная новизна

Впервые проведено определение кожных типов ВПЧ рода Betapapillomavirns с использованием полимеразной цепной реакции (ПЦР) в режиме реального времени у больных псориазом. На основе количественного анализа впервые детально изучена ассоциация клинического течения псориаза с ВПЧ рода Betapapillomavirus. Также подробно описано изменение вирусной нагрузки ВПЧ в зависимости от динамики клинического течения псориаза.

Для оценки врожденного иммунитета организма у больных псориазом в сопоставлении со здоровыми лицами применен тест для определения уровня аутомикрофлоры кожи (АМФК) в отношении Staphylococcus aureus с помощью контактных слайдов Envirocheck® Contact YM (R). Впервые проанализирована взаимосвязь динамики величины вирусной нагрузки ВПЧ рода

Betapapillomavirus и степени микробной обсемененности в зависимости от морфофункционального состояния кожи больных псориазом, динамики клинического течения псориаза и клинической формы. Также впервые проведена оценка врожденного иммунитета больных псориазом с применением реакции иммуноприлипания в титрационном варианте.

Практическая значимость

Результаты настоящего исследования свидетельствуют о том, что расстройства локального кожного иммунитета, наблюдающиеся при псориазе и достигающие максимальной выраженности в период его обострения, могут быть диагностированы по увеличению вирусной нагрузки ВПЧ в псориатических очагах и усугублению нарушений аутомикрофлоры кожи, регистрируемому по нарастанию обсемененности кожи стафилококками. Данные показатели могут быть использованы для выявления нарушений локального кожного иммунитета у пациентов, страдающих псориазом, а также мониторирования течения этого заболевания, в том числе в качестве доклинических маркеров его обострений. Определение их обосновано, в первую очередь, у больных псориазом, резистентным к стандартным терапевтическим схемам, а также при решении вопроса о включении в программу ведения антибактериальных и противовирусных препаратов. Детекция нарушений аутомикрофлоры кожи как неинвазивный метод выявления расстройств локального кожного иммунитета может применяться при динамическом наблюдении больных псориазом.

Положения, выносимые на защиту

1. У больных псориазом часто удается обнаружить наличие ВПЧ рода Betapapillomavirus в псориатических очагах, при этом концентрация ДНК ВПЧ рода Betapapillomavirus при псориазе достоверно превосходит таковую у бессимптомных носителей ВПЧ.

2. Существует взаимосвязь между динамикой вирусной нагрузки ВПЧ и стадией клинического течения псориаза.

3. Изменения показателей, характеризирующих состояние аутомикрофлоры кожи, коррелируют с динамикой вирусной нагрузки ВПЧ у больных псориазом.

4. Диагностическая значимость теста с применением контактных слайдов Envirocheck® Contact YM (R), описывающего аутомикрофлору кожи (АМФК), и диагностическая значимость теста «Бактотест» сопоставимы.

Апробация работы

Материалы диссертации доложены и обсуждены на заседании Московского областного общества дерматовенерологов, Москва, 2007г., 2008г.; на 14-ой международной специализированной выставке «Аптека» 23 - 26 октября 2007г., Москва, СК «ОЛИМПИЙСКИЙ»; 23rd INTERNATIONAL PAPILLOMAVIRUS CONFERENCE & CLINICAL WORKSHOP 2006 Prague, September 1-7 2006r.

Структура диссертации

Диссертация изложена на 111 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов, результатов, выводов и библиографического указателя. Указатель литературы включает 37 отечественных и 123 зарубежных работ. Работа иллюстрирована 13 рисунками и 18 таблицами.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Ассоциация вирусов папилломы человека и стафилококков в формировании нарушений микрофлоры кожи при псориазе"

выводы

1. ДНК вирусов папилломы человека кожных типов обнаруживается в 87,0% образцах кожи больных псориазом (в 94,7% — при псориатической эритродермии, в 84,0% — при вульгарном псориазе) и в 43,7% образцов кожи здоровых людей (р<0,001). В 85,0% образцов кожи больных псориазом выявляется ассоциация нескольких видов кожных вирусов папилломы человека; частота обнаружения вируса папилломы человека вида beta 1 достоверно превосходит таковую в нормальной коже (49,3% и 10,9%, соответственно, р<0,05).

2. Вирусная нагрузка кожными вирусами папилломы человека в псориатических бляшках достоверно выше, чем в образцах кожи здоровых людей (2,0±1,2 log ДНК на 105 клеток и 0,9±0,7 log ДНК на 105 клеток, соответственно, р<0,001). В прогрессирующую стадию псориаза вирусная нагрузка кожными вирусами папилломы человека возрастает, в регрессирующую — снижается (у 25% больных менее нижней границы определяемых значений).

3. Нарушения аутомикрофлоры кожи наиболее выражены в псориатических очагах по сравнению с видимо здоровой кожей больных псориазом и образцами кожи здоровых лиц. В прогрессирующую стадию псориаза наблюдается повышение числа колониеобразующих единиц Staphylococcus aureus, свидетельствующее об усугублении нарушений аутомикрофлоры. Регресс псориатических высыпаний сопровождается увеличением частоты обнаружения нормального количества колониеобразующих единиц Staphylococcus aureus, отражающего коррекцию кожной аутомикрофлоры, в псориатических очагах в 2 раза, в видимо здоровой коже больных псориазом — в 2,5 раза.

4. Увеличение вирусной нагрузки кожными вирусами папилломы человека в псориатических бляшках сопряжено с нарастанием нарушений аутомикрофлоры кожи, регистрируемым по возрастанию числа колониеобразующих единиц стафилококков.

5. Титры сывороток, в которых отмечается гемагглютинация в реакции иммуноприлипания, различаются в зависимости от клинической формы псориаза, составляя при псориатической эритродермии при вульгарном псориазе - 1:40 - 1:320, в том числе при псориатическом артрите 1:40-1:80 и у больных без псориатического артрита — 1:160 - 1:320. У здоровых представителей контрольной группы гемагглютинация наблюдается в пределах титров 1:640- 1:1280.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Определение вирусной нагрузки кожными вирусами папилломы человека у больных псориазом целесообразно проводить с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени с исследованием как образцов кожи, полученных из псориатических очагов, так и из образцов видимо здоровой кожи.

2. Выявление нарушений аутомикрофлоры кожи при псориазе следует осуществлять, исходя из выявленного числа колониеобразующих единиц коагулазонегативных стафилококков и Staphylococcus aureus.

3. При резистентном к стандартным схемам лечения псориазе обосновано повторное определение степени обсемененности стафилококкоми пораженных и здоровых участков кожи.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2009 года, Фомина, Екатерина Сергеевна

1. Атлас по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии // А. С. Быков и др.: под ред. А.С. Быкова, А. А. Воробьева, В.В. Зверева. М.: МИА, 2008.-271 с

2. Быков А.С. Структурные и функциональные особенности бактерий при гнойной инфекции и антибактериальной терапии: автореф. дисс. докт. мед. наук. -М., 1985-30 с

3. Воробьев А.А., Быков А.С., Караулов А.В. и др. Иммунология и аллергология. // М.: Практическая медицина, 2006. 288 с

4. Дерябин Д.Г. Стафилококки: экология и патогенность. // Екатеринбург: УрОРАН, 2000.-238 с

5. Дисбактериозы у детей: Учебное пособие для врачей и студентов. М.: «КМК Лтд», 1998.-64 с.

6. Дмитриев Г.А., Биткина О.А. Папилломавирусная инфекция. М.: Мед.1. Книга, 2006. 80 с.

7. Довжанский С.И., Утц С.Р. Псориаз, или псориатическая болезнь. 1992. - Ч. 1, 2, Саратов

8. Довжанский С.И., Пинсон И. Я. Генетические и иммунные факторы в патогенезе псориаза. // Российский журнал кожных и венерических болезней. 2006. - № 1.-С 14-18

9. Екимов А.Н., Шипулин Г.А. Бочкарев Е.Г. Новейшие технологии в генодиагностике: полимеразно-цепная реакция в реальном времени (Realtime PCR). // Вестник последипломного медицинского образования. -2001-№3 С. 38-41

10. Ю.Знаменский В.А., Дегтяр Н.В. Микробиологическая диагностика кишечного и кожного дисбактериозов: Учебное пособие.// Центральный институт усовершенствования врачей. Киев, 1898. - 60 с.

11. П.Иванов А.А. Микроэкология кожи человека и её взаимосвязь с иммунным статусом человека: Материалы науч.-практич. Конф. «Микрофлора кожи человека- клинико-диагностическое значение». // М., 1988.- С. 3-11

12. Климнюк С. И. Аэробная микрофлора кожи живота в проекции основных хирургических разрезов. // Всесоюзный семинар: Колонизационная резистентность и химиотерапевтические антибактериальные препараты. — М., 1988.- С. 46-47.

13. Ленцер А.А., Ленцер Х.П. Актуальные проблемы микроэкологии человека в норме и патологии и её коррекция: Республиканский сборник научных трудов. // Под ред И.П. Блохиной, К. Я. Соколовой Горький, 1988.-С. 10-14

14. Молекулярная клиническая диагностика. // Под ред. С. Херингтона и Дж. Макги — М.: Мир, 1999

15. Молочков В.А., Бадокин В.В., Альбанова В.И. и др. Псориаз и псориатический артрит.- М.- 2007.- 300 с.

16. Молочков В.А., Киселев В.И., Рудых И.В., Щербо С.Н. Папилломавирусная инфекция: клиника, диагностика, лечение. М., 2004.- 25 с.

17. Мордовцев В. Н. , Мушет Г. В., Альбанова В. И. Псориаз. // Кишинев, 1991

18. Нейчев С. Клиническая микробиология. София: «Медицина и физкультура», 1977. - 316 с.

19. Нобл У.К. Микробиология кожи человека. Пер. с англ. М.: «Медицина», 1986.-496 с.

20. Нормейн P. X., Асгар С.С. Иммунология и болезни кожи: Пер. с англ./ М.: Медицина, 1983. 216 с.

21. Пальцев М.А., Потекаев Н.Н., Казанцева И.А. и др. Клинико-морфологическая диагностика заболеваний кожи. — М.: Медицина, 2004. -432 с.

22. Принцип метода полимеразной цепной реакции//информация с сайта http://www.medigen.ru/9.1.1 .php

23. Пустовалова Н.А. Новый метод определения неспецифической резистентности организма реакция иммуноприлипания стафилококков. // Вопросы иммунологии и микробиологии стафилококковых и стрептококковых инфекций. - Л., 1975. - С. 6-8

24. Рассказов Н.И. Динамика бактерицидной функции кожи при псориазе в зависимости от состояния естественной резистентности организма. // Вестник дерматол. и венерол. -1980. № 10 - С. 9-12

25. Романовская Л.М. Микробиологические методы контроля эффективности антибиотикотерапии тяжелых форм гнойной инфекции. // Автореф. дисс. канд. мед. наук. М., 1992. - 23 с.

26. Скрипкин Ю.К. Кожные и венерические болезни. // Учебник для врачей и студентов медвузов. М.:Триада-фарм. - 2001.

27. Солнцева В.К. Микробиоценозы человека при распространенных хронических дерматозах: автореф. дисс. .канд. мед. наук. М., 2002. -21с.

28. Сомов Б.А., Перламутров Ю.Н., Матвеев Н.В., Яцина И. В. Клиническая иммунология. // Под ред. Е.И. Соколова. М.: «Медицина», 1998. -С. 209-258

29. Сытник С.И., Знаменский В. А. Экологическая характеристика кожного микробиоценоза молочных желех у небеременевших, беременных и родильниц. // М.: «Антибиотики и колонизационная резистентность» -Труды НИИ антибиотиков. 1990. -Вып. 19.- С. 35- 41

30. Федоров С.М. Псориаз. // Консилиум. -2001. № 4 (З).Л.Г.

31. Хаитов P.M., Игнатьева Г. А., Сидорович И.Г. Иммунология: Учебник для студентов медицинских вузов. -М.: Медицина, 2002. 536 с.

32. Шилов В.Н., Сергиенко В. И. Окислительный стресс кератиноцитов -этиопатогенетический фактор псориаза. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины (БЭБиМ). 2000. - Т. 129. № 4. - С. 364 - 369

33. Шендеров Б.А. Медицинская микробная экология и функциональное питание. // Том 1: Микрофлора животных и человека и её функции. М.: «Грантъ», 1998.-412 с.

34. Шендеров Б.А. Медицинская микробная экология и функциональное питание. // Том 2: Социально-экономические и клинические последствия дисбаланса микробной экологии человека и животных. М.: «Грантъ», 1998.-412 с.

35. Шендеров Б.А. Нормальная микрофлора человека и некоторые вопросы микроэкологической токсикологии. // Антибиолтики и мед. Биотехнология. -1987. № 3. - С. 164-170

36. Antonsson A., Forslund О., Ekberg Н., et al. The ubiquity and impressive genomic diversity of human skin papillomaviruses suggest a commensalic nature of these viruses. // J Virol. 2000. - V.74. - P. 11636-11641

37. Astori G., Lavergne D., Benton C. et al. Human papillomaviruses are commonly found in normal skin of immunocompetent hosts. // J Invest Dermatol. 1998.-V. 110.-P. 752-755

38. Baker B.S. Fly L. The immunology of psoriasis. // Br. Dermatol. 1992.- Vol. 126.-P. 1-9

39. Baker B.S, Ovigne JM, Powles AV et al. Normal keratinocytes express tolllike receptors (TLRs) 1, 2 and 5: modulation of TLR expression in chronic plaque psoriasis. // Br J Dermatol. 2003. Vol. 148. - P. 670-679

40. Baker BS, Swain AD, Fry L, Valdimarsson H. Epidermal T lymphocytes and HLA-DR expression in psoriasis. // Br J Dermatol 1984. Vol. 110. - P. 555564

41. Barker J. N. The pathophysiology of psoriasis. // Lancet. 1991. - Vol. 338 -P. 227- 230

42. Bavinck J., Stark S., Petridis A., et al. The presence of antibodies against viruslike particles of epidermodysplasia verruciformis-associated human papillomavirus type 8 in patients with actinic keratoses. // Br. J Dermatol. -2000.-V. 142.-P. 103-109

43. Bell E. Dendritic cells: Plasmacytoid dendritic cells in psoriasis. // Nature Reviews Immunology. 2007. - Vol. 7. - P. 838-839

44. Beissert S., Schwarz A., Schwarz T. Regulatory T Cells. // J. Invest. Derm. -2006.-Vol. 126.-P. 15-24

45. Bereket-Yucel S. Risk of hepatitis В infections in Olympic wrestling. // Br. J. of Sports Med. 2007. - Vol. 41. - P. 310.

46. Berkhout R., Bavinck В., ter Schegget J. Persistence of human papillomavirus DNA in benign and (pre)malignant skin lesions from renal transplant recipients. // J Clin Microbiol. 2000. - V. 38. - P. 2087-2096

47. Bernard BA, Asselineau D, Schaftar D, Darmon MY. Abnormal sequence ofexpression of differentiation markers in psoriatic epidermis: inversion of two steps in the differentiation program. // J Invest Dermatol 1988. Vol. 90. - P. 801-805

48. Bibel D. J., Aly R., Lanti L. et al. Microbial adherence to vulvar epithelial cells. // J. Med. Microbial. 1987. - Vol. 23. - P. 75-82

49. Bonish B, Jullien D, Dutronc Y. Overexpression of CDld by keratinocytes in psoriasis and CDld-dependent IFN-y production by NK-T-cells. // J Immunol 2000. Vol. 165. -P. 4076-4085

50. Bos JD, Hagenaars C, Das PK et al. Predominance of'memory' T cells (CD4+, CDw29+) over 'naive' T cells (CD4+, CD45R+) in both normal and diseased human skin. // Arch Dermatol Res 1989.- Vol. 281. P. 24-30

51. Bos JD, de Rie MA, Teunissen MBM, Piskin G. Psoriasis: dysregulation of innate immunity. // Br J Dermatol 2005.- Vol. 152. P. 1098-1107

52. Bovenschen HJ, Seyger MMB, van de Kerkhof PCM. Plaque psoriasis vs. atopic dermatitis and lichen planus: a comparison for lesional T-cell subsets, epidermal proliferation and differentiation. // Br J Dermatol. 2005. Vol.153. -P. 72-78

53. Bovenschen HJ, van Vlijmen-Willems IMJJ, van de Kerkhof PCM, van Erp PEJ. Identification of lesional CD4+ CD25+ Foxp3+ regulatory T cells in psoriasis. // Dermatology 2006.- Vol. 213. - P. 111-117

54. Boxman I., Berkhout P., Mulder L., et al. Detection of human papillomavirus DNA in plucked hairs from renal transplant recipients and healthy volunteers. //J Invest Dermatol. 1997.-Vol.108.-P. 712-715ч

55. Braun-Falco O., Plewig G., Wolff H.H, et al. Dermatology. Ed. 2-nd. // Berlin: Springer-Verlag. 2000

56. Cameron AL, Kirby В, Frei W, Griffiths СЕМ. Natural killer and natural killer T-cells in psoriasis. //Arch Dermatol Res 2002. -Vol. 294. P. 363-369

57. Chang EY, Hammerberg C, Fisher G et al. T-cell activation is potentiated by cytokines released by lesional psoriatic but not normal epidermis. // Arch Dermatol 1992.-Vol. 128.-P. 1479-1485

58. Christofers E., Mrowietz U. Psoriasis. // Fitzpatrick's dermatology in General Medicine. 5-th . ed. I. M. Freedberg et al. (eds.). 1999. -Vol. 2 New York: Mc Graw- Hill. P. 723-728

59. Cook PW, Pittelkow MR, Keeble WW et al. Amphiregulin messenger RNA is elevated in psoriatic epidermis and gastrointestinal carcinomas. // Cancer Res 1992. -Vol. 52.- P. 3224-3227

60. Cooke J., Proby C., Storey A. HPV interference with the DNA damage response identifies viral types that may predispose to skin cancer development. // 23rd interanatioal papillomaviruses conference & clinical workshop 2006 Prague, September 1-7. P. 77

61. Cooper KD, Baadsbaard O, Ellis CN et al. Mechanisms of cyclosporine A inhibition of antigen-presenting activity in uninvolved and lesional psoriatic epidermis. // J Invest Dermatol. 1990. - Vol. 94. P. 649-656

62. Cronin JG, Mesher D, Purdie К et al. Beta-Papillomaviruses and psoriasis: an intra-patient comparison of human papillomavirus carriage in skin and hair. // Br J Dermatol. 2008. -Vol. 57. P. 14-16

63. Curry JL, Quin JZ, Bonish В et al. Innate immune-related receptors in normal and psoriatic skin. // Arch Pathol Lab Med. 2003. - Vol. 127. P. 178-186

64. Dai D., Walker W. A. Protective nutrients and bacterial colonization in the immature gut. // Adv. Pediatr. -1999. Vol. 46. - P. 353 -382

65. DePita О, Ruffelli M, Cadoni S et al. Psoriasis: comparison of immunological markers in patients with acute and remission phase. // J Dermatol Sci. 1996. -Vol. 13.-P. 118-124

66. Elder JT, Fisher GJ, Lindquist PB et al. Overexpression of transforming growth factor alpha in psoriatic epidermis. Science 1989. Vol. 243 - P. 811814

67. Evans C.A., Mattern K.L. Individual differences in the bacterial flora of the skin of the forhead: Peptococcus saccharolyticus. // J. Investig. Dermatol. — 1978.-Vol. 71. -P. 273-275

68. Favre M., Majewski S., Noszczyk В., Maienfisch F., Рига A., Orth G., Jablonska S. Antibodies to Human Papillomavirus Type 5 are Generated in Epidermal Repair Processes. // J Invest Dermatol. 2000. - V. 114. - P. 403407

69. Favre M., Orth G., Majewski S., et al. Psoriasis, a possible reservoir for human papillomavirus type 5, the virus associated with skin carcinomas of Epidermodysplasia verruciformis. // J Invest Dermatol. 1998. - V. 110. - P. 311-317

70. Forslund O., Ly H., Higgins G. Improved detection of cutaneous human papillomavirus DNA by single tube nested 'hanging droplet' PCR. // J Virol Methods. 2003. - V. 110(2). - P. 129-36

71. Favre M., Majewski S., Noszczyk В., et al. Antibodies to human papillomavirus type 5 are generated in epidermal repair processes. // J Invest Dermatol. 2000. - V. 114. - P. 403-407

72. Favre M, Orth G, Majewski S et al. Psoriasis: A possible reservoir for human papillomavirus type 5, the virus associated with skin carcinomas of epidermodysplasia verruciformis. // J Invest Dermatol. 1998. Vol. 111. — P. 912-913

73. Fenzi A. F. , Gibelli B.E. Psoriatic arthritis. // Int. J. Dermatol. 1991. -Vol. 30. P. 1-7

74. Gaspari A.A. Innate and adaptive immunity and the pathophysiology of psoriasis. // J. Am. Academy of Dermatol. 2006. - Vol. 54. - P. 67-80

75. Heid C. Real-time quantitative PCR. // Genome Res. 1996. - Vol.6. - P.986-994

76. Jablonska S., Majewski S. On the immunopathogenesis of psoriasis. // Arch Dermatol. 2001. - Vol.137. - P. 229-230

77. Kauffman CL, Aria N, Toichi E, et al. A phase I study evaluating the safety, pharmacokinetics, and clinical response of a human IL-12 p40 antibody in subjects with plaque psoriasis. // J Invest Dermatol 2004. Vol. 123 - P. 10371044

78. Kemeny L, Csato M, Nyiradi J et al. Decreased capillary resistance of the uninvolved skin in psoriasis. // Acta Derm Venereol (Stockh) 1988. -Vol. 68.-P.459-460

79. Kloos W.E. Ecology of human skin. In: Coagulase-negative staphylococci. //

80. Eds. Mardh P.A., Shleifer К.Н,- Stockholm, 1986. P.37-50

81. Koreck A, Suranyi A, Szony BJ et al. CD3(+) CD56(+) NK T cells are significantly decreased in the peripheral blood of patients with psoriasis. // Clin Exp Immunol 2002. -Vol. 127. P. 176-182

82. Krueger GG, Langley RG, Leonardi C, et al. A human interleukin-12/23 monoclonal antibody for the treatment of psoriasis. // N Engl J Med 2007. -Vol. 356.- P. 580-592

83. Krueger JG. The immunologic basis for the treatment of psoriasis with new biologic agents. // J Am Acad Dermatol 2002. Vol. 46: - P. 1-23

84. Lecewicz-Torun B, Pietrzak A, Rolinski J, Brzozowski W. The peripheral blood lymphocyte pattern in psoriasis preceded by an infection. // Med Sci Monit 2001 Vol. 7 - P. 889-893

85. Leung D.Y. , Walsh P., Giorno R. et al. A potential role for superantigenes in the pathogenesis of psoriasis. // J. Invest. Dermatol. 1993. -Vol. 100. №3. P. 225-228

86. Lew W, Bowcock A, Krueger J. Psoriasis vulgaris: cutaneous lymphoid tissue supports T-cell activation and 'type Г inflammatory gene expression. // Trends Immunol 2004-Vol. 25 P. 295-305

87. Liang SC, Tan XY, Luxenberg DP, et al. Interleukin (IL)-22 and IL-17 are coexpressed by Thl7 cells and cooperatively enhance expression of antimicrobial peptides. J Exp Med 2006. V. 203.-P. 2271-2279

88. Liu Y., Krueger J.G., Bowcock A.M. Psoriasis: genetic associations and immune system changes // Genes and Immunity. 2007. - Vol. 8. - P. 112

89. Mahe E, Bodemer С et al. High frequency of detection of human papillomaviruses associated with epidermodysplasia verruciformis in children with psoriasis. // Br J Dermatol. 2003. Vol. 4 P. - 819-825

90. MacKie EJ, Halfter W, Liverani D. Induction of tenascin in healing wounds. J Cell Biol 1988. -Vol. 107. -P. 2757-2767

91. Madsen P, Rasmussen HH, Leffers H et al. Molecular cloning,occurrence, and expression of a novel partially secreted protein 'psoriasin' that is highly upregulated in psoriatic skin. // J Invest Dermatol 1991. -Vol. 97. -P. 701-712

92. Munoz N., Bosch X. et al. Epidemiologic classification of Human Papillomavirus types associated with cervical cancer. // New England J. of medicine. 2003. - Vol48. - P. 518-527

93. Nanney LB, Yates RA, King LE Jr. Modulation of epidermal growth factor receptors in psoriatic lesions during treatment with topical EGF. // J Invest Dermatol 1992. Vol98 - P. 296-301

94. Nickoloff B.J. Cracking the cytokine code in psoriasis. // J. Nat. Med. -2007. Vol. 13. - P. 242 - 244

95. Nickoloff BJ, Bonish B, Huang BB, Porcelli SA. Characterization of a T cell line bearing natural killer receptors and capable of creating psoriasis in a SCID mouse model. // J Dermatol Sci 2000. Vol24 -P. 212-225

96. Nickoloff В J, Karabin GD, Barker JN et al. Cellular localization of interleukin-8 and its inducer, tumor necrosis factor-alpha in psoriasis. // Am J Pathol 1991 -Voll38-P. 129-140

97. Pasch M, Bos J, Asghar S. Activation of complement in psoriasis. // Clin Exp Dermatol 1998. Vol23:-P. 189-190

98. Pasch M, Timar K, van Meurs M et al. In situ demonstration of CD40-and CD154-positive cells in psoriatic lesions and keratinocyte production of chemokines by CD40 ligation in vitro. // J Pathol 2004 -V. 203 P. 839-848

99. Placek W, Haftek M, Thivolet J. Sequence of changes in psoriatic epidermis. Immunocompetent cell redistribution precedes altered expression of keratinocyte differentiation markers. // Acta Derm Venereol (Stockh) 1988.1. Vol. 68.- P. 369-377

100. Piskin G, Sylva-Steenland RMR, Bos JD, Teunissen MBM. In vitro and in situ expression of IL-23 by keratinocytes in healthy skin and psoriasis lesions: enhanced expression in psoriatic skin. // J Immunol 2006.- Vol. 176.-P. 1908-1915

101. Prens EP, Benne K, van Joost T, Benner R. The autologous mixed epidermal cell-T lymphocyte reaction is elevated in psoriasis: a crucial role for epidermal HLA-DR+/CDla- antigen-presenting cells. // J Invest Dermatol 1991.- Vol. 96.- P. 880-887

102. Priestley GC. The fibroblast in psoriasis: master or slave. // Eur J Dermatol 1991.- Vol. l.-P. 185-191

103. Priestly GC, Adams LW. Hyperactivity of fibroblasts cultured from psoriatic skin. I. Faster proliferation and effect of serum withdrawal. // Br J Dermatol 1983. Vol. 109.- P. 149-156

104. Prinz JC. Disease mimicry a pathogenetic concept for T cell-mediated autoimmune disorders triggered by molecular mimicry. // Autoimmun Rev 2004.-Vol. 3.-P. 10-15

105. Roberts S. О. В., Highet A.S. Bacterial Infections. // In: Textbook of Dermatology. Eds.: Rook A., Wilkinson D. 4-th Ed. - Oxford, 1986. -Vol. 1. -P. 725- 734

106. Rocha-Pereira P, Santos-Silva A, Rebelo I et al. The inflammatory response in mild and in severe psoriasis. // Br J Dermatol 2004.- Vol. 150.- P. 917-928

107. Rogalski C, Meyer-Hoffert E, Proksch E, Wiedow O. Human leukocyte elastase induces keratinocyte proliferation in vitro and in vivo. // J Invest

108. Dermatol 2002. Vol. 118.- P. 49-54

109. Rulo HF, Westphal JR, van de Kerkhof PCM et al. Expression of endoglin in psoriatic involved and uninvolved skin. // J Dermatol Sci 1995.-Vol. 10.-P. 103-109

110. Rust A, McGovem R M; Gostout BS; Persing DH; Pittelkow MR Human papillomavirus in cutaneous squamous cell carcinoma and cervix of a patient with psoriasis and extensive ultraviolet radiation exposure. // J Am Acad Dermatol- 2001. Vol. 44.- P. 681-686

111. Sabat R., Philipp S., Hoflich C. et al. Immunopathogenesis of psoriasis. // Exp. Dermatol. 2007 - Vol6. - P.779-798

112. Schalkwijk J, Chang A, Janssen P et al. Skin-derived antileucoproteases (SKALPs): characterization of two new elastase inhibitors from psoriatic epidermis. Br J Dermatol 1990.- Voll22.- P. 631-641

113. Schmid P, Cox D, McMaster GK, Itin P. In situ hybridization analysis of cytokine, proto-oncogene and tumor suppressor gene expression in psoriasis. Arch Dermatol 1993. Vol.285.- P. 334-340

114. Shamanin V., Glover M., Rausch C., et al. Specific types of human papillomavirus found in benign proliferations and carcinomas of the skin in immunosuppressed patients. // Cancer Res. 1994. — Vol54 - P.4610-4613

115. Siegenthaler G, Hotz R, Chatellard-Gruaz D et al. Characterization and expression of a novel human fatty acid-binding protein: the epidermal type (E-FABP). Biochem Biophys Res Commun 1993.- Vol 190.- P. 482-487

116. Simeone P, Teson M, Latini A et al. Human papillomavirus type 5 in primary keratinocytes from psoriatic skin. // Experimental dermatology 2005.-Voll4.- P.824-829

117. Smith CH, Barker JN. Pathogenic aspects of psoriasis: cell trafficking and role of adhesion molecules in psoriasis. // Pathogenic Aspects of Psoriasis (de Kerkhof PCM, Bos JD, eds). New York: Elsevier. 1995. -P. 151-160

118. Somervill D. A., Noble W. C. Resident and transient bacteria of the skin.

119. J. of Cutaneus Pathol. -1974. -Vol. 1. P. 260-265

120. Stark S., Petridis A., Ghim S., et al. Prevalence of antibodies against viruslike particles of Epidermodysplasia verruciformis-associated HPV8 in patients at risk of skin cancer. // J Invest Dermatol. 1998. - V.l 11 - P. 696701

121. Steinert PM. The complexity and redundancy of epithelial barrier function. // J Cell Biol. 2000. Vol. 151. P. 5-8

122. Stern R.S. Psoriasis. // Lancet. -1997. Vol. 350(9074).- P. 349-353

123. Sugiyama H, Gyulai R, Toichi E et al. Dysfunctional blood and target tissue CD4+ CD25high regulatory T cells in psoriasis: mechanism underlying unrestrained pathogenic effector T cell proliferation. // J Immunol 2005. Vol. 174. P. 164-173

124. Telfer N.R., Chalmers R. J., Whale K. et al. The role of streptococcal infection in the initiation of guttate psoriasis. // Arch. Dermatol 1992. -Vol.128. P.39-42

125. Terasaki R., Park M., Bernaco D. et al. Histocompatibiliti Testing. // Los Angeles. 1980.-P.l-35

126. Tettlebach W, Nanney L, Ellis D et al. Localization of MGSA. //GRO protein in cutaneous lesions. J Cutan Pathol 1993. -Vol. 20. P. 259-266

127. Teunissen MBM. Langerhans cells and other skin dendritic cells. In: Skin Immune System. // Cutaneous Immunology and Clinical Immunodermatology (Bos JD, ed.), 3rd edn. Boca Raton, FL: CRC Press, 2005.-P. 123-182

128. Teunissen M. В. M, Koomen C. W, Malefyt R. D, et al. Interleukin-17and interferon-gamma synergize in the enhancement of proinflammatory cytokine production by human keratinocytes. // J Invest Dermatol 1998. Vol. 111.-P. 645-649

129. The Papillomaviruses. // Ed. Garcea R.L., DiMaio D. Springer Science+Business Media, 2007 - 419 p.

130. Toichi E, Torres G, McCormick TS, et al. An anti-IL-12p40 antibody down-regulates type 1 cytokines, chemokines, and IL-12/IL-23 in psoriasis. // J Immunol. 2006. - Vol. 177.-P. 4917-4926

131. Tomfohrde J., Silverman A., Barnes R. Gene for familial psoriasis susceptibility mapped to the distal end of human chromosome 17q. // Science. -1994.-Vol. 264.-P. 1141- 1145

132. Wieland U., Ritzkowksy A., Stoltidis M., et al. Papillomavirus DNA in basal cell carcinomas of immunocompetent patients: an accidental association. // J Invest Dermatol. 2000. - V.l 15 - P. 124-128

133. Weinberg A.N., Swartz M.N. General considerations of bacterial diseases. In: Dermatology in general medicine / Eds.: Fitzpatrick T.V. et al. -3-rd Ed. N.Y., McGraw Hill. - 1987. - Chapt. 175. - P. 2089-2099

134. Weissenbom S., Funke A., Helmich M., et al. DNA loads of oncogenic human papillomaviruses are strongly elevated in HIV-positive women with high grade cervical lesions. // J. Clin. Microbiol. 2003. - Vol. 41. - P. 27632767

135. Weissenbom S., Nidi I., Purdie K., et al. Human papillomavirus-DNA-loads in actinic keratoses exceeded those in non-melanoma skin cancer. // J. Invest. Dermatol. 2005. - Vol. 125. - P. 93-97

136. Wolf P, Seidl H, Back В Increased prevalence of human papillomavirus in hairs plucked from patients with psoriasis treated with psoralen-UV-A. // Arch Dermatol. 2004. - Vol.3. - P. 317-324

137. Zargari A. Identification and characterization of allergen components of the opportunistic yeast Malassezia furfur. // Repro Print AB, Stockgolm.1998.-P. 50-56

138. Zheng Y, Danilenko DM, Valdez P, et al. Interleukin-22, a T(H)17 cytokine, mediates IL-23-induced dermal inflammation and acanthosis. // Nature. 2007. - P. 648-651