Автореферат и диссертация по медицине (14.03.09) на тему:Адренергическая регуляция иммунной системы при стрессе и взаимодействие агонистов адренорецепторов с глюкокортикоидами in vitro
Автореферат диссертации по медицине на тему Адренергическая регуляция иммунной системы при стрессе и взаимодействие агонистов адренорецепторов с глюкокортикоидами in vitro
005001737
ШИЛОВ Дмитрий Юрьевич
АДРЕНЕРГИЧЕСКАЯ РЕГУЛЯЦИЯ ИММУННОЙ СИСТЕМЫ ПРИ СТРЕССЕ И ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ АГОНИСТОВ АДРЕНОРЕЦЕПТОРОВ С ГЛЮКОКОРТИКОИДАМИ IN VITRO
14.03.09 Клиническая иммунология, аллергология
1 О НОЯ 2011
Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук
Пермь-2011
005001737
Работа выполнена в лаборатории экологической иммунологии и лаборатории биохимии микроорганизмов Учреждения Российской академии наук Института экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения РАН, Пермь
Научный руководитель:
доктор медицинских наук, профессор,
академик РАН и РАМН Черешнев Валерий Александрович Официальные оппоненты:
доктор медицинских наук, профессор Фурман Евгений Григорьевич доктор медицинских наук Гусев Евгений Юрьевич
Ведущая организация: Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Челябинская государственная медицинская академия» Министерства здравоохранения и социального развития РФ
Защита состоится 2011 г. в часов на заседании
диссертационного совета ДМ ОО^.019.01 в Учреждении Российской академии наук Институте экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения РАН по адресу: 614081, г. Пермь, ул. Голева, 13. Факс (342) 244 67 11.
Автореферат диссертации размещен на официальном сайте Министерства образования и науки РФ (http://vak.ed.gov.ru) и сайте Института экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН (http://www.iegm.ru)
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Института экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН.
Автореферат разослан "¿У"
2011 г.
Ученый секретарь диссертационного совета кандидат биологических наук , Ма
Максимова Юлия Геннадьевна
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность проблемы. Адренергические соединения и глюкокорти-коиды, обладая выраженной иммуномодулирующей активностью, определяют уникальные иммунные сдвиги на местном и системном уровне, связанные с процессами адаптации [Козлов В.А. и др., 1982; Корнева Е.А. и др., 1988, 1998; Абрамов В.В.,1988, 1991, 1996; Рыбакина Е.Г., 2001; Хаитов P.M., 2001; Sanders V.M., 2006; Elenkov I.J., Chrousos G.P., 2006; Besedovsky И.О., del Rey A., 2007; Riether С. et al., 2011]. В условиях целостного организма катехоламины и глю-кокортикоиды проявляют выраженный синергизм, в основе которого могут лежать, с одной стороны, индуцированные глюкокортикоидами изменения экспрессии адренорецепторов и трансдукции с них сигнала в различных клетках-мишенях [Hancox R.J., 2006; Johnson M., 2004; Black J.L. et al., 2009], а с другой - модуляция катехоламинами экспрессии глюкокортикоидных рецепторов [Warner A. et al., 2010]. Тем не менее, описано и ингибирование агонистами ß-адренорецепторов передачи сигнала через глюкокортикоидные рецепторы [Nielson С.Р., Hadjokas N.E., 1998; Anderson G.P., 2000; Tse R. et al, 2003].
Функциональные последствия реализации взаимодействия глюкокорти-коидов и катехоламинов на уровне иммунной системы изучены недостаточно. Показано, что при введении крысам антагониста ß-адренорецепторов пропрано-лола гидрохлорида отменяется супрессивное действие 6-часового иммобилиза-ционного стресса на реакцию гиперчувствительности замедленного типа [Shilov Ju.I. et al., 2001], развивается выраженная активация функций циркулирующего пула фагоцитирующих клеток [Shilov Ju.I., Orlova E.G., 2003]. Введение крысам или мышам ß-адренергических блокаторов значительно нивелирует послеоперационную депрессию цитотоксической активности NK-клеток и снижает усиление метастазирования перевиваемых опухолей после экспериментальных оперативных вмешательств [Melamed R. et al., 2005; Glasner A. et al., 2010], отменяет супрессию пролиферативного ответа лимфоцитов при хирургическом стрессе [Nelson С.]., Lysle D.T., 1998]. Введение пропранолола гидрохлорида значительно снижает степень выраженности иммуносупрессивного действия гидрокортизона в периоде индукции и эффекторную фазу локального иммунного ответа на антителообразование в регионарном лимфатическом узле и развитие реакции гиперчувствительности замедленного типа, нивелирует индуцированные введением гидрокортизона в эффекторную фазу иммунного ответа изменения функций фагоцитирующих клеток [Шилов С.Ю. и др., 2004, 2006; Shilov Ju.I. et al., 2005]. Показано участие адренергической регуляции во взаимосвязи с глюкокортикоидами в развитии стрессорной супрессии пролиферативного ответа лимфоцитов на фитогемагглютшшн в раннем травматическом периоде у пациентов с проникающим ранением глаза [Черешнев В.А. и др., 2010а, 20106].
В связи с тем что пропранолола гидрохлорид может частично проникать через гематоэнцефалический барьер [Pardridge W.M. et al., 1984; Johnson J.D. et al., 2008], представлялось целесообразным оценить иммуномодулирующее действие при стрессе антагониста ß-адренорецепторов периферического действия -соталола гидрохлорида. Ввиду комплексности нейроэндокринноиммунной регуляции в условиях целостного организма являлось необходимым сопоставление данных, полученных in vivo, с результатами моделирования взаимодействия адренергических соединений и глюкокортикоидов в иммуномодуляции в системе in vitro в культурах клеток практически здоровых людей.
Цель работы - исследование адренергической регуляции иммунной системы при стрессе и взаимодействия агонистов адренорецепторов с глюкокорти-коидами в системе in vitro.
Задачи исследования
1. Изучить иммуномодулирующее действие антагониста ß-адренорецепторов сатолола гидрохлорида при остром стрессе у крыс (24-часовая иммобилизация в сочетании с дозированной кровопотерей) в условиях развития локальной и системной форм иммунного ответа.
2. Оценить in vitro эффекты тербуталина сульфата на фагоцитарную активность нейтрофилов, моноцитов, эозинофилов интактных крыс и влияние адреналина гидрохолорида и гексопреналина сульфата на фагоцитарную активность нейтрофилов крыс в ранний период острого стресса и при блокаде ß-адренорецепторов.
3. Исследовать взаимодействие глюкокортикоидов и агонистов ß-, щ- и сь-адренорецепторов в системе in vitro в регуляции пролиферативного ответа лимфоцитов в культурах с Т- и B-клеточными митогенами и продукции иммуноглобулинов в культурах клеток практически здоровых людей-добровольцев с мито-геном лаконоса.
Научная новизна. На основании комплексного иммунологического исследования с экспериментальным моделированием общего адаптационного синдрома в условиях блокады периферических ß-адренорецепторов in vivo и анализом взаимодействия агонистов адренорецепторов и глюкокортикоидов в системе in vitro обоснована роль адренергической регуляции в изменении функций клеток иммунной системы при стрессе. Показано, что введение антагониста ß-адренорецепторов периферического действия соталола гидрохлорида при остром стрессе, развивающемся при 24-часовой иммобилизации в сочетании с дозированной кровопотерей, отменяет супрессию антителогенеза в селезенке при системном иммунном ответе и депрессию реакции гиперчувствительности замедленного типа при развитии локальной и системной форм иммунного ответа. Острый стресс и соталола гидрохлорид не влияют на антителообразование в регионарном лимфатическом узле при локальном иммунном ответе. Установлено,
что блокада периферических Р-адренорецепторов соталолом гидрохлоридом in vivo отменяет угнетающий эффект в системе in vitro адреналина гидрохлорида и гексопреналина сульфата на фагоцитарную активность нейтрофилов в ранний период общего адаптационного синдрома. Показано, что выраженность супрессивного эффекта адреналина гидрохлорида и селективных агонистов Р-, аг и а2-адренорецепторов и направленность их взаимодействия с глюкокортикоидами (усиление эффекта или антагонизм) в культурах с конканавапином А зависят от концентрации митогена, типа вовлекаемых в регуляцию стероидных адренало-вых и адренергических рецепторов. Установлено, что гидрокортизон, дексаме-тазона фосфат и адренергические агонисты статистически значимо не влияют на пролиферативный ответ лимфоцитов и продукцию иммуноглобулинов М и G в культурах с тимусзависимым поликлональным активатором В-лимфоцитов ми-тогеном лаконоса.
Теоретическое и практическое значение работы. Результаты работы расширяют представление о роли адренергической регуляции в изменении функций клеток иммунной системы при стрессе, взаимодействии агонистов ад-ренорецепторов и глюкокортикоидов в регуляции реакций неоиммунитета. Полученные данные необходимы для прогнозирования иммуномодулирующих эффектов адренергических соединений и глюкокортикоидов при их совместном применении в терапии, в том числе экстремальных состояний.
Результаты исследований используются в лекционных курсах «Иммунология», «Экспериментальные модели в патологии», «Иммунопатология», «Ней-роэндокринная регуляция иммуногенеза» кафедры микробиологии и иммунологии ФГБОУ ВПО «Пермский государственный национальный исследовательский университет» (614600, г. Пермь, ул. Букирева, 15), при чтении лекций и на практических занятиях на кафедре иммунологии ГБОУ ВПО «Пермская государственная медицинская академия им. академика Е.А. Вагнера» Минздравсоц-развития РФ (614000, г. Пермь, ул. Петропавловская, 26).
Основные положения, выносимые на защиту
1. Введение антагониста p-адренорецепторов периферического действия соталола гидрохлорида при остром стрессе, вызванном 24-часовой иммобилизацией в сочетании с дозированной кровопотерей, приводит к отмене супрессии антителогенеза в селезенке при системном иммунном ответе и угнетения реакции гиперчувствительности замедленного типа при моделировании локальной и системной форм иммунного ответа. Острый стресс и соталола гидрохлорид не влияют на антителообразование в регионарном лимфатическом узле при локальном иммунном ответе.
2. Селективный агонист p-адренорецепторов тербуталина сульфат оказывает зависящий от концентрации агониста супрессивный эффект на фагоцитарную активность лейкоцитов крыс, наиболее выраженный по отношению к ней-
трофилам и моноцитам. Блокада периферических p-адренорецепторов сотало-лом гидрохлоридом in vivo отменяет угнетающий эффект в системе in vitro адреналина гидрохлорида и гексопреналина сульфата на фагоцитарную активность нейтрофилов в ранний период общего адаптационного синдрома.
3. Выраженность супрессивного эффекта адреналина гидрохлорида и селективных агонистов р-, а,- и а2-адренорецепторов в культурах с конканавали-ном А и направленность их взаимодействия с глюкокортикоидами в виде усиления эффекта или антагонизма зависят от концентрации митогена, типа вовлекаемых в регуляцию стероидных адреналовых и адренергических рецепторов. Гидрокортизон, дексаметазона фосфат и адренергические агонисты статистически значимо не влияют на пролиферативный ответ лимфоцитов и продукцию иммуноглобулинов М и G в культурах с тимусзависимым поликлональным активатором В-лимфоцитов митогеном лаконоса.
Апробация работы и основные публикации. Основные положения работы были представленны на конференции молодых ученых «Современные проблемы экологии, микробиологии и иммунологии» Пермь, 1999; Объединенном иммунологическом форуме (IV Съезд иммунологов России, IX Конгресс РААКИ, IV Конференция РЦО, III Конференция по иммунологии репродукции, XII Всероссийский форум «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге»), Санкт-Петербург, 2008; VII Международной конференции «Загрязнение окружающей среды, адаптация, иммунитет 1СЕР 2008», Пермь - Н. Новгород - Пермь, 2008.
По материалам диссертации опубликовано 16 печатных работ, из них 4 статьи в рецензируемых научных журналах, рекомендуемых ВАК РФ.
Диссертационная работа апробирована на расширенном заседании научной проблемной комиссии по клинической иммунологии, аллергологии Института экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН (Пермь, 2011).
Объем и структура диссертации. Работа изложена на 191 стр. машинописного текста, содержит 48 таблиц и 10 рисунков. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов, 3 глав собственных исследований, обсуждения, выводов и списка цитируемой литературы, включающего 301 источник, из них 91 отечественный и 210 зарубежных.
Связь работы с научными программами. Диссертационная работа выполнена в соответствии с планом НИР Института экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН и является частью исследований по теме «Исследование механизмов регуляции иммунитета, создание и усовершенствование методов его контроля» (номер госрегистрации 01200807513). Исследования поддержаны грантами РФФИ 08-04-00424-а, 08-04-00517-а и 10-04-96092-р-Урал-а, Программы Президиума РАН «Молекулярная и клеточная биология».
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ
Материалы и методы. Экспериментальные исследования в системе in
vivo выполнены на 136 половозрелых нелинейных белых крысах-самцах. Исследования в системе in vitro проведены на мононуклеарных лейкоцитах периферической крови, полученной от 19 практически здоровых мужчин-добровольцев в возрасте от 19 до 27 лет (средний возраст - 21 год). В результате исследования вегетативного тонуса по методу A.M. Вейна с соавт. [1991] лиц с резко выраженным преобладанием симпатических или парасимпатических реакций в обследуемой группе обнаружено не было.
Для оценки иммуномодулирующего действия стресса и фармакологической блокады ß-адренорецепторов при развитии локального и системного иммунного ответа использовали следующую схему эксперимента. У животных 1-й группы моделировали острый стресс 24-часовой иммобилизацией в положении на спине в пластиковых фиксаторах в сочетании с дозированной кровопотерей (забор по 1,5 мл крови из сосудов хвоста до иммобилизации, через 6 и 24 ч от ее начала). Крысам 2-й группы трехкратно с интервалом 12 ч вводили внутрибрю-шинно антагонист ß-адренорецепторов периферического действия соталола гидрохлорид («Sotalex», Bristol-Myers Squibb, Франция) по 5 мг/кг массы тела. Животным 3-й группы на фоне стресса (24-часовая иммобилизация и дозированная кровопотеря) по той же схеме вводили соталола гидрохлорид (1-я инъекция за 30 мин до начала иммобилизации). Крысам 4-й группы (контроль) вводили по той же схеме изотонический раствор NaCl. Сенсибилизацию для индукции локального иммунного ответа, развивающегося преимущественно на территории регионарного лимфатического узла, осуществляли введением 1x10 эритроцитов барана (ЭБ) подкожно в подошвенную поверхность правой стопы, а для индукции системного иммунного ответа с вовлечением в антителообразо-вание преимущественно селезенки - внутрибрюшинным введением 1x10' ЭБ. Антиген в обоих случаях вводили крысам 1-й и 3-й групп сразу после повторного забора крови через б ч от начала иммобилизации, а животным 2-й и 4-й групп - через 6,5 ч после первой инъекции соталола гидрохлорида или изотонического раствора NaCl. На 4-е сутки после сенсибилизации всем животным вводили разрешающую дозу антигена (1х109 ЭБ подкожно в подошвенную поверхность правой стопы, 0,1 мл изотонического раствора NaCl - левой). При выборе схемы иммунизации учитывали результаты исследования зависимости выраженности гуморального ответа и реакции гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ) от дозы и способа введения ЭБ мышам [Гусев Е.Ю., 1996] и крысам [Кеворков H.H. и др., 1993; Shilov Ju.I. et al., 2001, 2005]. Для выбора дозы антигена, использовавшейся для сенсибилизации на модели системного иммунного ответа, проведено дополнительное исследование зависимости выраженности гуморального ответа и реакции ГЗТ от дозы антигена при его внутрибрюшинном введении. Животным 1 -й группы для сенсибилизации при индукции системного иммунного ответа вводили 106 ЭБ, а 2-й, 3-й, 4-й и 5-й групп - соответственно 107,
10s, 109,Ю,0ЭБ внутрибрюшинно.
Через 24 ч после введения разрешающей дозы антигена (5-е сутки эксперимента) животных выводили из эксперимента под эфирным наркозом. Оценивали выраженность воспаления при реакции ГЗТ путем регистрации толщины (инженерным микрометром) опытной и контрольной стопы [Toichi Е. et al., 1997; Shilov Ju.I. et al., 2001,2005], гуморальный ответ - по числу антителообра-зующих клеток (АОК) в регионарном (правом подколенном) и отдаленном (левом подколенном) лимфатических узлах, а также селезенке методом локального гемолиза в геле агарозы [Jerne N.K., Nordin A.A., 1963; White K.L. et al., 2010] в модификации [Shilov Ju.I. et al., 2005] и по уровню антител в плазме крови в реакции активной гемагглютинации [Silberman D.M. et al., 2004; Guan H. et al., 2009], число ядросодержащих клеток (ЯСК) в органах лимфомиелоидного комплекса общепринятым методом. Образцы крови, полученные в динамике эксперимента из сосудов хвоста, использовали для определения числа эритроцитов, лейкоцитов, показателей лейкоформулы общепринятыми методами, уровня гемоглобина гемиглобинцианидным методом, фагоцитарной активности лейкоцитов [Каплин В.Н., 1996; Shilov Ju.I., Orlova E.G., 2003], оценки в плазме крови иммуноферментным методом уровней кортикостерона («Correlate-EIA Corticosterone», США), кортизола (ООО «Хема-Медика», Россия) и дегидроэпи-андростерона сульфата (ООО «Хема-Медика», Россия). Для оценки влияния агонистов адренорецепторов in vitro на фагоцитарную активность лейкоцитов крови крыс смешивали 25 мкл крови с 12,5 мкл адреналина гидрохлорида (10"6 М, ФГУП «Московский эндокринный завод», Россия), гексопреналина сульфата (10~6М, «гинипрал®», Nycomed, Австрия) или тербуталина сульфата (Ю 6, Ю'10 М «бриканил», ASTRA, Венгрия) на забуференной среде (ЗС, среда 199 с добавлением 10 мМ HEPES и 2 мМ L-глутамина) или с 12,5 мкл ЗС (контроль). После инкубации при 37°С в течение 60 мин вносили по 12,5 мкл формалинизирован-ных эритроцитов барана (200x106 клеток/мл на ЗС) и через 20 мин инкубации при 37°С готовили препараты для микроскопии.
Мононуклеарные лейкоциты для исследования в системе in vitro выделяли в градиенте плотности фиколл-верографина (d=l,077 г/см3). Пролиферацию лимфоцитов оценивали в 72-часовых культурах с Т-клеточным митогеном -конканавалином А (Кон A, Boehringer Mannheim GmbH, No.1296779, Германия) в концентрациях 2,5, 10, 20 и 40 мкг/мл и без него, а также в 72- и 120-часовых культурах с тимусзависимым B-клеточным активатором - митогеном лаконоса (PWM, Sigma, L8777, США) в концентрации 2,5 мкг/мл и без него. Каждая культура содержала 2*105 мононукларных клеток в 0,2 мл среды 199 с добавлением 2 мМ L-глутамина, 10 мМ HEPES, 100 мкт/мл гентамицина сульфата и 10% аутоплазмы на лунку круглодонного 96-луночного планшета. Метил-3Н-тимидин (Радиевый институт им. В.Г. Хлопина, Санкт-Петербург) вносили по 1
мкКи за 24 ч до окончания культивирования. Уровень радиоактивности оценивали на жидкостном сцинтилляционном счетчике «Guardian» WinSpectral DSA 1414-03 («Wallac», Финляндия). Продукцию иммуноглобулинов М и G (IgM и IgG) исследовали в 288-часовых культурах мононуклеарных клеток с 2,5 мкг/мл PWM. Культивирование проводили по вышеописанному методу, но вместо ау-топлазмы использовали 10% сыворотку крови плодов коровы (SUS-B10L, Био-лот, Россия). В супернатантах определяли концентрацию IgM и IgG иммуно-ферментным методом (тест-системы ЗАО «Вектор-Бест», Россия). Для оценки взаимодействия агонистов стероидных адреналовых и адренергических рецепторов в регуляции пролифератнвного ответа лимфоцитов и продукции IgM и IgG in vitro в культуры вносили одномоментно с митогеном в разных комбинациях следующие соединения: агонист стероидных адреналовых рецепторов II типа дексаметазона фосфат (KRKA, Словения) и агонист стероидных адреналовых рецепторов I и И типов гидрокортизон (Sigma, Н-0888, США) в концентрациях 10~6 и 10"7 М для культур с PWM и I0"6 М для культур с Кон А; агонист всех типов адренорецепторов адреналина гидрохлорид (1(Гб М, ФГУП «Московский эндокринный завод», Россия), агонист ß-адренорецепторов гексопреналина сульфат (106 М, «гинипрал®», Nycomed, Австрия), агонист осг адренорецепторов фенилэфрина гидрохлорид (10~6М, «мезатон», Опытный завод ГНЦЛС, Харьков, Украина), агонист а2-адренорецепторов клонидина гидрохлорид (10" М, «клофелин», ОАО «Дальхимфарм», Россия). Контролем служили культуры без препаратов. Использованные концентрации глюкокортикои-дов сопоставимы с их уровнем при сильном стрессе [McGhee J.R. et al., 1999; Djordjevic J. et al. 2010], а адренергических соединений - с концентрацией кате-холаминов в органах лимфомпелоидного комплекса [del Rey А. et al., 1981; Ro-gausch H., etal. 2004].
Статистический анализ результатов проводили с использованием методов описательной статистики, одно- и двухфакторного дисперсионного анализа и апостериорного критерия Дункана для множественного сравнения между группами. Результаты в большинстве таблиц и рисунков представлены в виде средней арифметической и ее стандартной ошибки (М±гп). Данные по числу АОК, пролиферации лимфоцитов, продукции IgM и IgG с учетом их log-нормального распределения предварительно преобразовывали в значения logio соответствующих показателей, а уровня антител - в log2 обратных титров. Для оценки связи между показателями использовали методы параметрического (по Пирсону) и непараметрического корреляционного анализа (по Спирмену и Кендаллу). Для оценки различий связанных попарно данных использовали при множественных сравнениях критерий Дункана для парных данных, а для двух попарно связанных выборок - парный ¿-критерий Стьюдента. Двухфакторный дисперсионный анализ для парных данных проведен совместно с доцентом кафедры при-
кладной математики Пермского национального исследовательского политехнического университета А.Р. Дывыдовым по разработанному им алгоритму. Различия или показатели связи считались статистически значимыми при р<0,05.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ Влияние соталола гидрохлорида при остром стрессе на антителообразование и реакцию гиперчувствительностн замедленного типа при локальной и системной формах иммунного ответа
Экспериментальная модель фармакологической блокады (1-адренорецепторов при остром 24-часовом шшобтизациониом стрессе в сочетании с дозированной кровопотерей при локальном иммунном ответе
Установлено, что дозированная кровопотеря, использованная для усиления стрессорного воздействия 24-часовой иммобилизации, приводит к снижению количества эритроцитов и уровня гемоглобина в крови. У животных 1-й группы число эритроцитов в исходном фоне составляет 6976000±325027, через 24 ч - 5632000±141082, на 5-е сутки - 5688000±300329 клеток/мкл, а концентрация гемоглобина в исходном фоне - 127,10±8,65, через 24 ч - 89,21±3,52, на 5-е сутки - 96,46±3,13 г/л (р<0,05 к исходному фону в оба срока для обоих показателей по парному критерию Дункана). У крыс 3-й группы число эритроцитов в исходном фоне составляет 7196000±214617, через 24 ч - 5440000±276100, на 5-е сутки - 5872000±396464 клеток/мкл, а концентрация гемоглобина в исходном фоне - 132,46±8,04, через 24 ч - 86,93±5,97, на 5-е сутки - 99,87±5,16 г/л (¿><0,05 к исходному фону в оба срока для обоих показателей по тому же критерию). Статистически значимых различий между показателями животных 1-й и 3-й групп не выявлено, что указывает на развитие у них умеренно выраженной постгеморрагической анемии одинаковой степени выраженности, которую можно рассматривать как фактор, усиливающий острое стрессорное воздействие.
Установлено, что уровень кортикостерона значительно увеличивается через 6 и 24 ч от начала иммобилизации у крыс 1 -й и 3-й групп, степень выраженности повышения этого гормона у крыс обеих групп статистически значимо не отличается между собой (рис. 1). Особенности экспрессии гена СУР17А1 определяют различия уровней кортикостерона и кортизола у взрослых грызунов и людей: у первых выше концентрация кортикостерона, у вторых - кортизола рЧ^еШ Б.е/ я/.,2006, ОЫг V. е1 а1, 2007, Missaghiatl Е. е1 а1., 2009]. Мутации гена СУР17А1 у людей Кавказского региона приводят к значительному повышению продукции кортикостерона [ОЫг V. е/ а1„ 2007]. Хотя изменение уровня кортизола у крыс в классических моделях острого стресса ранее не оценивалось, показано увеличение концентрации этого гормона у крыс при травме спинного мозга [Сегк1 А.К. е/ а!., 2009]. Значительное повышение концентрации кортизола у крыс (до 200 нг/мл), совпадающее с увеличением уровня мРНК 17-гид-
Уровень кортикостерона, нг/мл Уровень кортизола, нг/мл
Рис. 1. Изменение концентрации кортикостерона и кортизола в плазме крови крыс при остром стрессе (сплошная линия) и остром стрессе на фоне введения соталола гидрохлорида (пунктирная линия) в периоде индукции локального иммунного ответа.
По оси абсцисс: К - объединенный исходный фон; 6, 24 и 120 - время от начала иммобилизации, ч.; * — <0,05 по критерию Дункана к объединенному исходному фону.
роксилазы и размеров ретикулярной зоны коры надпочечников, а также концентрации андростендиона и 17-ОН-прогестерона отмечается и на 16-20-й дни по-стнатального периода и расценивается [Pignatelli D. et al., 2006] как проявление адренархе. В связи с тем что по степени выраженности действия на клетки крыс in vitro кортизол намного более активен, чем кортикостерон [McMaster A. et al., 2008], нами проведена оценка изменения концентрации и этого гормона. Установлено, что статистически значимое увеличение концентрации кортизола в условиях острого стресса регистрируется только через 24 ч, на фоне блокады р-адренорецепторов при остром стрессе происходит более быстрое увеличение уровня гормона, а на 5-е сутки концентрация кортизола уменьшается до показателей, близких к исходному фону (см. рис. 1). При изучении острого стресса необходимо учитывать действие дегидроэпиандростерона как антагониста глюко-кортикоидных гормонов, оказывающего защитное действие в условиях угнетения иммунной системы [Robinzon В., Cutolo М., 1999; Hazeldine J. et al., 2010]. Установлено, что уровень его метаболита - дегидроэпиандростерона сульфата -в плазме крови всех групп экспериментальных животных существенно не меняется (/»0,05 к контролю по критерию Дункана; данные не приводятся).
Развитие иммунного ответа при подкожной иммунизации сопровождается значительным увеличением клеточности регионарного лимфатического узла в сравнении с отдаленным (р<0,05 внутри каждой из групп при оценке по парному /-критерию Стьюдента), по-видимому, за счет рекрутирования иммуноком-петентных клеток и их пролиферации in situ [Drayson М.Т. et al., 1981; Martin-Fontecha A. et al., 2003]. Уровень антителообразования в регионарном лимфатическом узле на фоне всех экспериментальных воздействий при развитии иммунного ответа в условиях подкожной сенсибилизации существенно не изменя-
ется (табл. 1). Острый стресс приводит к значительной супрессии развития реакции ГЗТ. Введение соталола гидрохлорида животным 3-й группы полностью отменяет стрессорное угнетение реакции ГЗТ, в то время как у нестрессирован-ных крыс 2-й группы препарат не влияет на выраженность воспаления.
Таблица 1
Влияние острого стресса и блокады р-адренорецепторов соталола гидрохлоридом в периоде индукции локального иммунного ответа на число АОК в регионарном лимфатическом узле и выраженность реакции ГЗТ
Груп- Эксперимен- Число АОК в регионарном Выраженность реакции
па тальное лимфатическом узле ГЗТ
воздействие на 106 ЯСК, на орган, разность, индекс реак-
log 10 log 10 мм ции, %
1 Стресс 2,2229±0,1328 3,5492±0,1454 0,11±0,04" 2,60±1,0Г
(167,09) (3541,42)
2 Соталол 2,0534±0,1009 3,2841±0,1239 0,32±0,05а 7,47±1,24а
(113,09) (1923,67) 0,37±0,06*а 8,62±1,51*а
3 Стресс+ 2,0192±0,1316 3,2457±0,1307
соталол (104,51) (1760,87)
4 Введение рас- 2,3300±0,0674 3,6373±0,1399 0,36±0,04 8Д4±0,86
творителя (213,78) (4338,22)
Примечание. Число животных в каждой группе равно 10; в скобках - средняя геометрическая числа АОК; * - р<0,05 по критерию Дункана к 4-й группе; то же к 1 -й группе.
Выявленные закономерности подтверждаются при двухфакторном дисперсионном анализе (рис. 2). В сравнении с ранее опубликованными данными по отмене супрессии реакции ГЗТ пропраналолом гидрохлоридом в условиях 6-часового иммобилизационного стресса [Shilov Ju.I. et al., 2001], полученные нами результаты, с одной стороны, указывают на то, что блокада ß-адренорецепторов способна отменять супрессию реакции ГЗТ и при более тяжелой форме стресса, а с другой - на то, что этот эффект реализуется через периферические ß-адренорецепторы, т.к. соталола гидрохлорид не проникает через гематоэнцефалический барьер [Schneider A.M. et al., 2000]. Поскольку введение только ß-адреноблокатора не влияет на реакцию ГЗТ, этот эффект может быть связан с ранее описанным [Taylor D.R., Hancox R.J., 2000; Anderson G.P., 2000] повышением под действием глюкокортикоидов экспрессии ß-адренорецепторов и/или трансдукции с них регуляторного сигнала. С учетом данных литературы [Takahashi H.K. et al., 2003] о способности ß-адренергиче-ских агонистов в системе in vitro угнетать продукцию IL-18 и зависимых от него цитокинов (IL-12, TNF-a, IFN-7), играющих ключевую роль в развитии реакций ГЗТ, полученные в настоящей работе результаты подтверждают важное значение в условиях in vivo повышения чувствительности иммуноцитов к супрессив-
й 0,4
0,6
0,5
Рис. 2. Результаты двухфак-торного дисперсионного анализа для показателя разности при реакции ГЗТ.
ЗЕ Соталол 0 0 ЗЕ Соталол 1 Стресс
о
0,0
По оси абсцисс - градации фактора «стресс». Сплошная линяя — градация фактора «соталол»=0; прерывистая линия - градация фактора «соталол»=1. Представлены средние арифметические и доверительный интервал при />=0,05. Д1,36)=4,571; ¿>=0,0394 для фактора «стресс»; /\1,36)=5,531; р=0,0243 для фактора «соталол»; /г(1,36)=9,611; /з=0,0037 для взаимодействия двух факторов.
ному действию эндогенных катехоламинов через (З-адренорецепторы при остром стрессе в угнетении реакции ГЗТ.
Изменения числа АОК в селезенке и отдаленном лимфатическом узле, а также уровня антител при всех экспериментальных воздействиях отсутствуют (р>0,05; данные не приводятся). Стресс и введение нестрессированным животным соталола гидрохлорида не влияют на число ЯСК в костном мозге и тимусе на 5-е сутки от начала стрессорного воздействия (р>0,05; данные не приводятся), что связано со сроком исследования, т.к. максимальная стресс-индуцированная гипоплазия тимуса развивается на стадии тревоги общего адаптационного синдрома, т.е. через 6-24 ч.
Экспериментальная модель блокады /5-адренорецепторов при остром 24-часовом тшобттационном стрессе в сочетании с дозированной кровопотерей при системном иммунном ответе
Перед проведением основного эксперимента исследована зависимость доза-эффект развития при системном иммунном ответе реакции ГЗТ и антитело-продукции при внутрибрюшинной сенсибилизации крыс разными дозами эритроцитов барана (ЭБ). Хотя этот аспект детально изучен для разных линий мышей [Гусев Е.Ю., 1996], у крыс подобная зависимость исследована недостаточно. Установлено, что увеличение дозы антигена приводит к увеличению числа АОК в селезенке и уровня антител в плазме крови (рис. 3). При сопоставлении с локальным иммунным ответом обращает на себя внимание более высокий уровень абсолютного числа АОК в селезенке при внутрибрюшинной сенсибилизации даже самой низкой из исследованных доз антигена - 10б ЭБ (при системном ответе средняя геометрическая числа АОК: 1191,47; 1о§10 числа АОК: 3,0761 ±0,0887, а при локальной форме у животных контрольной группы - средняя геометрическая числа АОК: 209,47; 1о§]0 числа АОК: 2,3211±0,2240;
Рис. 3. Зависимость антите-лообразования и реакции ГЗТ от дозы антигена при сенсибилизации у крыс.
По оси абсцисс - доза эритроцитов барана для сенсибилизации (log(0 числа эритроцитов на животное); по левой оси ординат — выраженность воспаления при реакции ГЗТ по показателю индекса реакции (%) и уровень антител в плазме крови (log2 обратного титра антител); по правой оси ординат -
^гот . V/ „ средняя геометрическая числа АОК на
-♦-ГЗТ -к- Уровень антител АОК в селезенке ^
селезенку.
р=0,00574 между группами по /-критерию Стьюдента). Тем не менее, за счет ан-тителопродукции в регионарном лимфатическом узле уровень антител при внутрибрюшинной сенсибилизации животных 106 ЭБ (см. рис. 3) сопоставим с регистрируемым у крыс контрольной группы при локальном ответе (log2 обратного титра антител: 3,200±0,249; /»0,05 по отношению к системному ответу по ¿-критерию Стьюдента).
Максимальный и одинаковый по степени выраженности уровень реакции ГЗТ отмечен в диапазоне доз антигена: 106-107-108 ЭБ. Статистически значимая супрессия реакции ГЗТ регистрируется при сенсибилизации крыс в дозе 10 ЭБ. Развитие супрессии реакции ГЗТ может быть связано с формированием в селезенке клонов Т-лимфоцитов, способных к антигенспецифичной супрессии ГЗТ на территории регионарного лимфатического узла [Гусев Е.Ю., 1996], а также со взаимным антагонизмом дифференцировки наивных предшественников Т-хелперов в зрелые Thl- и ТЬ2-клетки [Ismail N., Bretscher P.A., 1999; Liew F.Y., 2002]. Важную роль может играть образование индуцибельных Treg-клеток и их взаимодействие с наивными Т-хелперами и с образующимися из них Th9-, Thl7-, TfH-клетками [Mills K.H.G., 2004; Corthay A., 2009; Wan Y.Y., Flavell R.A., 2009; Locksley R.M., 2009; Zotos D. et ai, 2010], но конкретные механизмы нуждаются в дальнейшем исследовании. Для дополнительной характеристики взаимоотношения между выраженностью антителообразования и реакции ГЗТ нами проведен корреляционный анализ. В результате выявлены статистически значимые отрицательные корреляционные связи между показателями выраженности реакции ГЗТ и антителообразования (данные не приводятся). Корреляционные связи между показателями уровня антител в крови и количества АОК в селезенке положительные (/?<0,05; данные не приводятся), что указывает на ведущую роль антителообразования в селезенке для повышения уровня антител
12
♦— —♦-- / -
--я— —в-Я-—
800000 700000 600000 500000 400000 300000 200000 100000 о
10
при системном иммунном ответе. С учетом необходимости исследования влияния стресса и соталола гидрохлорида на реакцию ГЗТ выбрана доза антигена для сенсибилизации - 107 эритроцитов, при которой, с одной стороны, индуцируется выраженная реакция ГЗТ, а с другой - антителообразование в селезенке со слабой, но постоянной степенью выраженности.
Установлено, что, как и в предшествующей серии экспериментов, дозированная кровопотеря приводит к развитию у животных 1-й и 3-й групп умеренно выраженной постгеморрагической анемии одинаковой степени выраженности (данные не приводятся). Уровни кортикостерона и кортизола в плазме у крыс в условиях острого стресса и при остром стрессе на фоне введения соталола гидрохлорида повышаются через 6 ч и через 24 ч (рис. 4). На 5-е сутки эксперимента уровень кортизола приближается к объединенному исходному фону. При сопоставлении с результатами предшествующей серии экспериментов (см. рис. I) статистически значимых различий в уровне как кортикостерона, так и кортизола в соответствующие сроки между показателями двух серий эксперимента не выявлено, хотя обращает на себя внимание более раннее (статистически значимое в сравнении с контролем уже через 6 ч) повышение уровня кортизола у крыс 1 -й группы (см. рис. 4). Уровень дегидроэпиандростерона сульфата в плазме крови у животных 1-й и 3-й групп не меняется (р>0,05; данные не приводятся).
Уровень кортикостерона, нг/мл 1000
Уровень кортизола, нг/мл
■Стресс
' Стресс+ соталол
Рис. 4. Изменение концентрации кортикостерона и кортизола в плазме крови крыс при остром стрессе (сплошная линия) и остром стрессе на фоне введения соталола гндрохлорнда (пунктирная линия) в периоде индукции системного иммунного ответа.
По оси абсцисс: К - объединенный исходный фон; 6, 24 и 120 - время от начала иммобилизации, ч.; * -<0,05 по критерию Дункана к объединенному исходному фону.
Установлено, что острый стресс в периоде индукции системного иммунного ответа приводит к выраженной супрессии антителообразования в селезенке (табл. 2). Блокада р-адренорецепторов соталолом гидрохлоридом отменяет этот эффект стресса. Выявленные закономерности подтверждаются при двух-факторном дисперсионном анализе, при котором выявлен эффект взаимодейст-
Влияние острого стресса и блокады Р-адренорецепторов в перподе индукции системного иммунного ответа на число АОК в селезенке и выраженность реакции ГЗТ
Груп- Эксперимен- Число АОК в селезенке Выраженность реакции
па тальное ГЗТ
воздействие на 106 ЯСК, на орган, разность, индекс реак-
1оёю мм ции, %
1 Стресс -0,4402±0,0931 2,4458±0,1077 0,17±0,03* 3,66±0,69*
(0,36)* (279,16)*
2 Соталол 0,0594±0,1435 2,9521 ±0,1499 0,32±0,04*а 6,76±0,92*а
(1,15)а (895,60)а
3 Стресс+ 0,2988±0,0954 3,2110±0,0786 0,40±0,06а 8,90±1,36а
соталол (1,99)" (1625,62)а
4 Введение рас- 0,0255±0,1377 2,9412±0,1303 0,53±0,04 11,81±1,02
творителя (1,06) (873,40)
(контроль)
Примечание. Число животных в каждой группе равно 10; в скобках - средняя геометрическая числа АОК; - р<0,05 по критерию Дункана к 4-й группе;а - то же к 1-й группе.
вия двух факторов - «стресс» и «соталол» (/-"(1,36)^8,671; р=0,0056 для показателя числа АОК на 10б ЯСК и /г(1,36)=9,944; р=0,0033 для показателя АОК на селезенку). Острый стресс приводит к значительной супрессии развития реакции ГЗТ у крыс 1-й группы (см. табл. 2). При введении только соталола гидрохлорида крысам 2-й группы отмечено менее выраженное, но статистически значимое угнетение реакции ГЗТ. Введение соталола гидрохлорида животным 3-й группы приводит к повышению степени выраженности реакции ГЗТ до уровня контроля, т.е. при совместном действии двух экспериментальных факторов -стресса и блокатора Р-адренорецепторов — отмечается их выраженный антагонизм, подтверждаемый и двухфакторным дисперсионным анализом, при котором выявлен статистически значимый эффект взаимодействия двух факторов -«стресс» и «соталол» (/г(1,36)=23,337; />=0,0000 для показателя разности; /г(1,36)=24,675; />=0,0000 для показателя индекса реакции).
Установлено, что острый стресс приводит к снижению уровня антител на 5-е сутки иммунного ответа (рис. 5). Введение соталола гидрохлорида полностью отменяет указанные изменения у стрессированных крыс.
Таким образом, острый стресс в периоде индукции иммунного ответа приводит к угнетению выраженности реакции ГЗТ как при локальной, так и при системной его формах, не влияет на антителогенез в регионарном лимфатическом узле при локальном ответе и угнетает антителообразование в селезенке при системном ответе. Введение антагониста Р-адренорецепторов периферичес-
Рис. 5. Влияние острого стресса н блокады (3-адренорецепторов в периоде индукции системного иммунного ответа на уровень антител в плазме крови.
По оси абцисс: log2 обратных титров антител на 5-е сутки иммунного ответа; * -р<0,05 по критерию Дункана по отношению к контролю; а - то же к стрессу, кого действия соталола гидрохлорида отменяет эти изменения, что указывает на участие в их реализации иммуносупрессивных сигналов с периферических р-адренорецепторов в условиях стресса.
Влияние агонистов p-адренорецепторов на фагоцитарную активность лейкоцитов периферической крови крыс в системе in vitro
При сравнительной оценке влияния агониста Р-адренорецепторов тербу-талина сульфата в концентрациях 1(У6 и Ю~10 М на фагоцитарную активность нейтрофилов, моноцитов и эозинофилов периферической крови интактных крыс in vitro выявлен статистически значимый и зависящий от концентрации агониста супрессивный эффект, наиболее выраженный по отношению к нейтрофилам и моноцитам (данные не приводятся).
Исследование влияния адреналина гидрохолорида и агониста Р-адренорецепторов гексопреналина сульфата на фагоцитарную активность нейтрофилов периферической крови крыс (модель локального иммунного ответа) проведено in vitro в ранний период острого стресса, совпадающий по временным параметрам со стадией тревоги общего адаптационного синдрома по классификации Н. Selye [1936]. Установлено, что преинкубация клеток крови с гек-сопреналином сульфатом у интактных животных (объединенный исходный фон) приводит к выраженному статистически значимому снижению интегральных относительных показателей нейтрофильного фагоцитоза (табл. 3). В отличие от p-адренергического агониста адреналина гидрохлорид in vitro в концентрации 1(Гб М не влияет на фагоцитарную активность нейтрофилов интактных животных, что, по-видимому, связано с взаимной уравновешенностью ингиби-рующих (реализующихся через p-адренорецепторы) и стимулирующих (реализующихся через а-адренорецепторы) эффектов [Шилов Ю.И. и др., 2004а, 20046, 2005]. При исследовании влияния гексопреналина сульфата на клетки крови, полученной от крыс через 6 ч от начала иммобилизации, супрессивный эффект Р-адренергического агониста на нейтрофильный фагоцитоз сохраняется, а у адреналина гидрохлорида в этот срок появляется угнетающий эффект. При исследовании эффектов агонистов через 24 ч от начала иммобилизации снижение фагоцитарной активности нейтрофилов под действием гексопреналина
Влияние адреналина гидрохлорида (106 М) и гексопреиалина сульфата (10 б М) in vitro на показатели фагоцитарной активности нейтрофилов периферической крови крыс при остром стрессе и стрессе на фоне блокады р-адренорецепторов соталолом гидрохлорида
Показатели Контроль Адреналина Гексопреналина
гидрохлорид сульфат
Объединенный исходный фон
Ош. число объектов фагоцшоза/нешрофил Отн. число фагоцитирующих клеток, %
035Я),05 24,40±2,80
Стресс, 6 ч
Ош. число объектов фагоцигоза/нейтрофил Отн. число фагоцитирующих клеток, %
0,51±0,11 333*6,07
Стресс, 24ч
От число объектов фагоцитоза/нейтрофил Отн. число фагоцитирующих клеток, %
0,40±0,11 26,09¿6,59
032±0,06 22,55±3,74
0Д9±0,06 21,65±4,40*
0,41±0,12 25,39=6,56
Стресс на фоне блокады p-адренорецепторов, 6 ч
Ош. число объектов фагоцшюзакейтрофил Отн. число фагоцитирующих клеток, %
0,54±0,11 33,88±5,75
0,55±0,07 34,31 ±3,87
Стресс на фоне блокады p-адренорецепторов, 24 ч Отн. число объектов фагоцттэза'нейтрофил 0,42±0,13 0,55±0,08 Отн. число фагоцитирующих клеток, % 27,80^7,18 34,52±4,96
ОД I ±0,04 15,95±3,01 *
0,23=0,05 * 17,90±3,73 *
025±0,08 18,8(ЬЬ5,67*
0,43±0,07 28,0üt3,49
0,40tí),l2 25,97^6,93
Примечание. - р<0,05 по критерию Дункана для парных данных к контролю с 60-минутной преинкубацией при 37°С с забуференной средой.
сульфата in vitro сохраняется, но отменяется супрессивный р-адренергический эффект адреналина гидрохлорида, что, возможно, связано с повышением сигнализации с а-адренорецепторов.
При введении крысам на фоне стресса соталола гидрохлорида отмечается отмена угнетающих эффектов гексопреналина сульфата и адреналина гидрохлорида in vitro на нейтрофильный фагоцитоз через 6 и 24 ч от начала иммобилизации (см. табл. 3).
Таким образом, полученные результаты указывают на наличие фазных изменений чувствительности нейтрофилов к адренергической регуляции, что может быть связано с изменениями экспрессии соответствующих рецепторов и/или трансдукции с них регуляторных сигналов на внутриклеточном уровне.
Взаимодействие глюкокортикоидов и адренергических соединений в системе in vitro при оценке пролнферативного ответа лимфоцитов и продукции иммуноглобулинов
Для исследования взаимодействия глюкокортикоидов и агонистов (3-, аг и аг-адренергических рецепторов в регуляции активации, пролиферации и диффе-
ренцировки Т- и В-лимфоцитов представлялось целесообразным провести изучение изменения пролиферативного ответа лимфоцитов периферической крови практически здоровых людей в культурах с Т-клеточным митогеном конканава-лином А и тимусзависимым поликлональным активатором В-лимфоцитов митогеном лаконоса, а также продукции IgM и IgG в культурах с митогеном лаконо-са в условиях внесения соответствующих соединений в культуры. Для выяснения особенностей реализации взаимодействия с агонистами адренорецепторов глюкокортикоидов при вовлечении разных типов стероидных адреналовых рецепторов проведено сравнительное исследование эффектов селективного агони-ста стероидных адреналовых рецепторов II типа дексаметазона фосфата и неселективного агониста стероидных адреналовых рецепторов I и II типов гидрокортизона (синоним: кортизол).
Результаты исследования взаимодействия глюкокортикоидов и неселективного агониста всех типов адренорецепторов адреналина гидрохлорида в регуляции Кон А-индуцированной пролиферации лимфоцитов in vitro представлены в табл. 5. Установлено, что внесение в культуры адреналина гидрохлорида в концентрации 10"6 М приводит к статистически значимому угнетению пролиферативного ответа лимфоцитов только в культурах с концентрацией Кон А 10 и 40 мкг/мл. Гидрокортизон и дексаметазона фосфат (10"6 М) статистически значимо угнетают пролиферацию лимфоцитов в культурах со всеми концентрациями Кон А. При совместном внесении в культуры адреналина гидрохлорида и гидрокортизона выявляется выраженное усиление иммуносупрессивного действия препаратов, проявляющееся в появлении выраженного снижения уровня пролиферативного ответа лимфоцитов в культурах с Кон А в концентрации 40 мкг/мл. В культурах с субоптимальными концентрациями Кон А (2,5 и 5 мкг/мл) адреналина гидрохлорид снижает выраженность супрессивного действия гидрокортизона. При совместном внесении в культуры адреналина гидрохлорида и селективного агониста стероидных адреналовых рецепторов II типа дексаметазона фосфата выявляется снижение супрессивного действия дексаметазона фосфата в культурах с субоптимальной концентрацией Кон А 2,5 мкг/мл.
Таким образом, направленность взаимодействия неселективного агониста всех типов адренорецепторов адреналина гидрохлорида и глюкортикоидов в регуляции пролиферативного ответа лимфоцитов in vitro зависит от концентрации митогена. При низких концентрациях митогена адреналина гидрохлорид уменьшает или отменяет супрессию пролиферативного ответа лимфоцитов, индуцируемую гидрокортизоном, а при высоких усиливает ее. Подобная зависимость, возможно, связана с особенностями изменения гидрокортизоном функциональной экспрессии аг, а2- и p-адренорецепторов в условиях разной степени выраженности активационного митогенного сигнала [Cosentino М., et al. 2003]. С другой стороны, направленность взаимодействия глюкокортикоидов и
Влияние адреналина гидрохлорида, гидрокортизона и дексаметазона фосфата на пролиферативный ответ лимфоцитов периферической крови практически здоровых людей в культурах с Кон А
Гормон, Адренер- Безмитоге- Кон А, мят/мл
концен- гический на 2,5 5,0 10,0 20,0 40,0
трация агонисг
Гидро- сашни- 3,3461± 3,6603± 3,7296± 3,6008± 3,6467± 3,6788±
кортизон, сгом 0,1113 0,1196 0,1056 0,1089 0,1421 0,2042
10*М (2218,6) (4574,6)ь (5365,7)ь (3988,3)*" (4432,6)*а (4772,8)*аЬ
без агони- 3,2773± 3,3303± 3,3425± 3,6167± 3,8129± 4,0040±
ста 0,1430 0,1497 0,2345 0,1680 0,0667 0,1250
(1893,7) (2139,6)*" (2200,4)*а (4136,7)*а (6499,1)*а (10091,7)*
Дексамета- сашни- 3,3355± 3,5420± 3,5458± 3,5301± 3,6361± 3,5428±
зона фос- сгом 0,1781 0,1011 0,1054 0,1565 0,1640 0,2281
фат, 10*М (2165,4) (3483,4),аЬ (3513,7)*а (3389,3)*" (4326,0)*а (3490,0)*а
без агони- 3,1756± 3,3474± 3,5007± 3,5541± 3,5975± 3,6739±
ста 0,2228 0,1223 0,1367 0,1226 0,1386 0,1501
(1498,4) (2225,2)*" (3167,1)*а (3582,1)*" (3958,4)*а (4719,1)*а
Безглюко- сагони- ЗД968± 3,8335± 3,8312± 3,962&t 4,2289± 4Д637±
коршкои- сгом 0,2057 0,1150 0,1198 0,0821 0,0864 0,0634
дов (1980,5) (68163) (6779,9) (91783)* (16939,1) (18351,2)*
без аго- 3,4776± 3,9111± 3,9781± 4,1960± 4,2180± 4,4970±
ниста 0,1011 0,0839 0,0718 0,0932 0,0776 0,0718
(контроль) (3003,3) (8149,0) (9507,2) (15704,6)а (16520,5) (31401,8)а
Примечание. Здесь и в табл. 6-9: число обследованных людей равно 7; приведены значения М±т для показателей logio имп/мин, а в скобках - средние геометрические ими/мин; —р<0,05 по отношению к контролю по парному критерию Дункана; а - то же по отношению к культурам с внесением только адренергического агониста; ь - то же по отношению к культурам с внесением только глюкокортикоида.
адреналина зависит от типа вовлекаемого стероидного адреналового рецептора. Так, при совместном внесении в культуры с высокой концентрацией Кон А адреналина гидрохлорида и неселективного агониста стероидных адреналовых рецепторов I и II типа регистрируются усиление иммуносупрессивного эффекта, которое отсутствует в отношении агониста II типа.
Однофакторный дисперсионный анализ для парных данных выявил статистически значимое влияние всех градаций экспериментального воздействия во всех вариантах культур с митогеком. При проведении двухфакторного дисперсионного анализа для парных данных (фактор А - адренергическое соединение с градациями: 0 — отсутствие соединения и 1 - его наличие в культуре; фактор В - глюкокортикоид с теми же градациями) выявлен статистически значимый вклад в общую девиацию фактора В «глюкокортикоид» при всех вариантах.
Вклад фактора А «адреналин» статистически значим лишь для культур с гидрокортизоном при концентрации Кон А 40 мкг/мл (F(l,24)=4,69, /?=0,04). Статистически значимое взаимодействие факторов А и В отсутствует (/;>0,05).
Установлено, что внесение в культуры селективного агониста Р-адренорецепторов гексопреналина сульфата без глюкокортикоидов статистически значимо угнетает пролиферацию лимфоцитов только в культурах с концентрацией Кон А 10 мкг/мл (табл. 6). В культурах с самой низкой из субоптимальных концентраций Кон А (2,5 мкг/мл) гексопреналина сульфат нивелирует выраженность супрессивного действия гидрокортизона. В культурах с совместным внесением с дексаметазоном фосфатом гексопреналина сульфат снижает выраженность супрессии при концентрации Кон А 5 мкг/мл. В отличие от адреналина гидрохлорида усиление иммуносупрессии при взаимодействии с глюкокор-тикодами в исследованной экспериментальной системе in vitro отсутствует.
Таблица б
Влияние гексопреналина сульфата, гидрокортизона и дексаметазона фосфата на иролнферативный ответ лимфоцитов периферической крови практически здоровых люден в культурах с Кон А
Гормон, Адренер- Безмито- Кон А, мкг/мл
концен- гический гена 2,5 5,0 10,0 20,0 40,0
трация агонист
Гидро- сашни- 3,1766± 3,6407± 3,4385± 3,7090± 3,8580+ 3,9397±
кортизон, сгом 0,1756 0,0961 0,1790 0,0963 0,0882 0,1049
Ю^М (1501,7)*а (4372,3)ь (2744,6)* (5116,5)* (7211,6)*а (8704,6)*
без агони- 3,2773± 3,3303± 3,3425± 3,6167± 3,8129± 4,0040±
ста 0,1430 0,1497 0,2345 0,1680 0,0667 0,1250
(1893,7)*а (2139,6)*а (2200,4f (4136,7)*® (6499, if (10091,7)*
Дексамета- сагони- 3,4981± 3,4109± 3,6643± 3,5529± 3,8703± 3,9605±
зона фос- сгом 0,1136 0,1505 0,0738 0,1840 0,1457 0,1013
фат, Ю''М (3148,1) (2575,4)*а (4616,6)*аЬ (3572,1)*а (7418,If (9130,4)*
безагони- 3,1756± 3,3474± 3,5007± 3,5541± 3,5975± 3,6739±
ста 0,2228 0,1223 0,1367 0,1226 0,1386 0,1501
(1498,4) (2225,2)*а (3167, if (3582,1)*" (3958,4)*а (4719,1)*
Без глюко- сагони- 3,4626± 3,8534± 3,8537± 3,9555± 4,2283± 4,0987±
кортикои- стом 0,1332 0,0753 0,0485 0,0680 0,0596 0,2760
дов (2901,1) (7134,4) (7139,9) (9025,9)* (16915,6) (12551,8)
без аго- 3,4776± 3,9111± 3,9781± 4,1960± 4,2180± 4,4970±
ниста 0,1011 0,0839 0,0718 0,0932 0,0776 0,0718
(контроль) (3003,3) (8149,0) (9507,2) (15704,6)а (16520,5) (31401,8)
Установлено, что внесение одного агониста агадренорецепторов фени-лэфрина гидрохлорида статистически значимо угнетает пролиферативный ответ только в культурах с внесением 2,5 мкг/мл Кон А (табл. 7). В культурах с со-
вместным внесением гидрокортизона и фенилэфрина гидрохлорида агонист аг адренорецепторов не влияет на степень выраженности иммуносупрессивного эффекта глюкокортикоида. При совместном внесении в культуры агониста аг адренорецепторов и дексаметазона фосфата выявляется значительное усиление выраженности иммуносупрессии при концентрации Кон А 5 мкг/мл.
Таблица 7
Влияние фенилэфрина гидрохлорида, гидрокортизона и дексаметазона фосфата на пролиферативный ответ лимфоцитов периферической крови
практически здоровых людей в культурах с Кон А
Гормон, Адренер- Безмиго- Кон А мкг/мл
концен- гический гена 2,5 5,0 10,0 20,0 40,0
трация ашнисг
Гидро- сагони- 3,4097± 3,5522± 3,5658± 3,6904± 3,7301± 3,8662±
кортизон, сгом 0,1632 0,1111 0,1161 0,1382 0,0893 0,0509
10% (2568,5) (3566,5)* (3679,7)** (4902,1)*3 (5371,8)*а (7348,2)*а
без агони- 3,2773± 3,3303± 3,3425± 3,6167± 3,8129± 4,0040±
ста 0,1430 0,1497 0,2345 0,1680 0,0667 0,1250
(1893,7) (2139,6)*а (2200,4)*а (4136,7)*" (6499,1)*3 (10091,7)*а
Дексамета- сагоюь 3,3257± 3,4005± 3,0045± 3,5745± 3,6281± 3,2385±
зона фос- сгом 0,1409 0,0981 0,2725 0,1494 0,1785 0,3320
фат, 10% (2117,1) (2515,0)*а (1010,4)*аЬ (3753,8)*а (4247,2)*" (1731,6)*а
без агони- 3,1756± 3,3474± 3,5007± 3,5541± 3,5975± 3,6739±
ста 0,2228 0,1223 0,1367 0,1226 0,1386 0,1501
(1498,4)* (2225,2)*3 (3167,1)*а (3582,1)*а (3958,4)*3 (4719,1)*а
Безглюко- сагони- 3,3996± 3,7754± 3,9604± 4,0870± 4,2153± 4,4104±
корткои- сгом 0,0829 0,0938 0,0639 0,0747 0,0971 0,0896
дов (2509,4) (5961,4)* (9127,7) (12216,9) (16415,4) (25726,6)
без аго- 3,4776± 3,9111± 3,9781± 4,1960± 4,2180± 4,4970±
ниста 0,1011 0,0839 0,0718 0,0932 0,0776 0,0718
(контроль] (3003,3) (8149,0)а (9507,2) (15704,6) (16520,5) (31401,8)
При исследовании взаимодействия глюкокортикоидов и селективного агониста а2-адренорецепторов клонидина гидрохлорида установлено, что внесение одного клонидина гидрохлорида приводит к угнетению пролиферации лимфоцитов в культурах с Кон А в концентрации 20 мкг/мл (р<0,05; данные не приводятся). При совместном внесении в культуры клонидина гидрохлорида и гидрокортизона так же, как и в случае с адреналином гидрохлоридом, отмечается статистически значимая отмена угнетения пролиферативного ответа лимфоцитов в культурах с Кон А в концентраций 2,5 мкг/мл. В культурах с дексаметазо-ном фосфатом клонидина гидрохлорид статистически значимо не влияет на степень выраженности иммуносупрессии (р>0,05; данные не приводятся).
Таким образом, направленность эффекта взаимодействия агонистов адре-
норецепторов с глюкокортикоидами зависит от концентрации митогена, типа вовлекаемых стероидных адреналовых и адренергических рецепторов.
При оценке пролиферативного ответа лимфоцитов на тимусзависимый В-клеточный активатор митоген лаконоса (Р\УМ) установлено, что глюкокорти-коиды и все исследованные агонисты адренорецепторов не оказывают влияния на пролиферацию лимфоцитов при культивировании клеток в течение 72 ч и 120 ч (табл. 8). По нашим данным, приведенным выше, в условиях 24-часового
Таблица 8
Влияние гндрокортнзона, дексаметазона фосфата и адренергических соединений на пролифератнвный ответ лимфоцитов периферической крови
практически здоровых людей в культурах с PWM
Препарат, концен- 72-часовые культуры 120-часовые культуры
трация без митогена PWM,2,5 мкг/мл без митогена PWM, 2,5 мкт/мл
Гидрокортизон, 2,8845±02524 3,8502±02654 33520±0,1252 43538±0Д770
10"6М (766,5) (7083,1) (2248,8) (22581,9)
Гидрокортизон, 2,9342±Д2138 3,9241±0Д240 3,334710,1179 4,4450±0,1164
10"7М (859,5) (8397,4) (2161,4) (27858,1)
Дексаметазона 2,8375±0ДЮ7 3,9180±0^291 32996±0,1346 43454±02309
фосфат, 10"6М (687,9) (8278,6) (1993,6) (22149,9)
Дексаметазона 2,9633±0,2182 3,9017102259 32127+0,1788 43593±0,1972
фосфат, 10"7М (919,0) (79742) (1632,0) (22869,9)
Адреналина гид- 3,3741±0,1641 4,14021-02357 33290±03202 43139±02766
рохлорид, 10"6М (23662) (13809,6) (2133,1) (20603,7)
Гексопреналина 3,2571±0,1886 3,9983±02598 33139±029Ю 4,1996±02750
сульфат, 106М (1807,6) (99603) (2060,0) (15833,0)
Фенилэфрина 3,3174^2233 3^678±02181 33746±0,3505 3,8956±03233
гидрохлорид, 106М (2076,9) (9285,6) (23692) (7863,9)
Клонидина гид- 3,0049±0,1749 3,8775±02841 3215(Ш)3220 4,1668±02782
рохлорид, 10"бМ (10113) (75422) (1640,5) (14682,1)
Без препаратов 3,0330±0,1674 4,0713±0,1433 3,4259±0,1710 43344±02257
(контроль) (1109,5) (117832) (2666,5) (21598,7)
Примечание. Число обследованных людей равно 8; остальные обозначения те
же что и в табл. 5.
иммобилизационного стресса в сочетании с дозированной кровопотерей антите-лообразование в регионарном лимфатическом узле, несмотря на выраженную супрессию реакции ГЗТ, существенно не изменяется. При развитии системного иммунного ответа in vivo в той же модели острого стресса выявлено статистически значимое снижение количества антителообразующих клеток в селезенке и титра антител в плазме крови у крыс. По данным литературы, в культурах с PWM глюкокортикоиды могут стимулировать продукцию иммуноглобулинов [Cooper D.A. et al., 1979, 1981а, 1981b; Orson F.M. et al., 1983; Pryjma J. et al,
1989; Shannon E.J, Sandoval F., 2010], не влиять на пролиферацию лимфоцитов [Rupprecht R. et al., 1990-1991; Rupprecht M. et al., 1991] или угнетать продукцию иммуноглобулинов [Pryjma J. et al., 1989] и пролиферацию лимфоцитов [Gordon D., Nouri A.M.E., 1981; Pryjma J. et al., 1989; Rupprecht R. et al., 19901991]. Направленность эффекта глюкокортикоидов in vitro на пролиферацию лимфоцитов и продукцию иммуноглобулинов зависит от целого ряда факторов, в том числе от особенностей экспрессии глюкокортикоидных рецепторов при тех или иных заболеваниях, межклеточных взаимодействий Т- и В-клеток [Orson F.M. et al., 1983; Pryjma J. et al., 1989; Rupprecht R. et al., 1990-1991; Rupprecht M. et al., 1991].
Глюкокортикоиды и агонисты адренорецепторов не влияют на продукцию IgM и IgG в 288-часовых культурах мононуклеарных клеток с PWM (табл. 9). Не выявлено и их взаимодействия в этой системе (данные не приводятся).
Таблица 9
Влияние гидрокортизона и дексаметазопа фосфата на концентрацию иммуноглобулинов клетками периферической крови практически здоровых людей в супернатантах 288-часовых культурах с РХУМ
Препарат, концентрация Концентрация иммуноглобулинов
IgM IgG
Гидрокортизон, 2,6762±0,1244 2,7850±0,2197
10"6М (474,4) (609,5)
Гидрокортизон, 2,6568±0,1442 2,7236±0,1888
10"7М (453,8) (529,2)
Дексаметазона фосфат, 2,6621±0,1414 2,7516±0,1788
10"6М (459,3) (564,4)
Дексаметазона фосфат, 2,6769±0,1313 2,8239±0,2022
10"7М (475,3) (666,6)
Адреналина гид- 2,6260±0,1649 2,6822±0Д633
рохлорид, 10"6М (422,7) (481,1)
Гексопреналина 2,4325±0,2119 2,9226+0,1913
сульфат, 10"6М (270,7) (836,8)
Фенилэфрина 2,7271±0,1650 2,7579±0,1997
гидрохлорид, 10~&М (533,4) (572,7)
Клонидина гид- 2,726б±0,1329 2,8341±0,1719
. рохлорид, 10"6М (532,9) (682,5)
Без препарата 2,6087±0,1417 2,7350±0,2037
(контроль) (406,2) (543,2)
Примечание. Число обследованных людей равно 7; остальные обозначения те же что и в табл. 5.
В целом полученные результаты расширяют представление о роли адре-нергических соединений во взаимосвязи с глюкокортикоидами в регуляции функций клеток иммунной системы при процессах адаптации.
ВЫВОДЫ
1. В условиях экспериментального моделирования общего адаптационного синдрома и блокады периферических p-адренорецепторов in vivo, а также в результате исследования взаимодействия агонистов адренорецепторов и глкжо-кортикоидов в системе in vitro обоснована роль адренергической регуляции в изменении функций клеток иммунной системы при стрессе.
2. Установлено, что введение антагониста p-адренорецепторов периферического действия соталола гидрохлорида при остром стрессе (24-часовая иммобилизация в сочетании с дозированной кровопотерей) приводит к отмене супрессии антителогенеза в селезенке при системном иммунном ответе и угнетения реакции гиперчувствительности замедленного типа при моделировании локальной и системной форм иммунного ответа. Острый стресс и соталола гидрохлорид не влияют на антителообразование в регионарном лимфатическом узле при локальном иммунном ответе.
3. Показано, что селективный агонист p-адренорецепторов тербуталина сульфат оказывает зависящий от концентрации агониста супрессивный эффект на фагоцитарную активность лейкоцитов крыс, более выраженный по отношению к нейтрофилам и моноцитам. Блокада периферических p-адренорецепторов соталолом гидрохлоридом in vivo отменяет угнетающий эффект в системе in vitro адреналина гидрохлорида и гексопреналина сульфата на фагоцитарную активность нейтрофилов в ранний период общего адаптационного синдрома.
4. Установлено, что выраженность супрессивного эффекта адреналина гидрохлорида и агонистов р-, а,- и а2-адренорецепторов в культурах с конкана-валином А и направленность их взаимодействия с глюкокортикоидами в виде усиления эффекта или антагонизма зависят от концентрации митогена, типа вовлекаемых в регуляцию стероидных адреналовых и адренергических рецепторов.
5. Показано, что глюкокортикоиды и адренергические агонисты статистически значимо не влияют на пролиферативный ответ лимфоцитов и продукцию иммуноглобулинов М и G в культурах с тимусзависимым поликлональным активатором В-лимфоцитов митогеном лаконоса.
Список работ, опубликованных по теме диссертации
Статьи в рецензируемых журналах, рекомендуемых ВАК РФ
1. Шилов Д.Ю., Шилов Ю.И., Черешнев В.А. Влияние соталола гидрохлорида на иммунный ответ при остром стрессе // Вести. Уральской медицинской академической науки. - 2009. - № 2/1 (24). - С. 63-64.
2. Шилов С.Ю., Шилов Ю.И., Шилов Д.Ю., Куделькина В.Г. Половые различия стрессорных изменений иммунного ответа и влияние на них овариэктомии и эстра-диола // Вестн. Уральской медицинской академической науки. - 2010. - № 2/1 (29). -С. 235-236.
3. Шилов Д.Ю., Годовалое А.П., Шилов Ю.И., Юркова Е.В. Влияние агониста бета-адренорецепторов гексопреналина сульфата на пролиферативный ответ лимфоцитов и продукцию иммуноглобулинов в присутствии тироксина и дексаметазона фосфата in vitro // Фундаментальные исследования. - 2011. — № 6. - С. 192-196.
4. Шилов Д.Ю., Черешнев В.А. Влияние агонистов адренорецепторов in vitro на фагоцитарную активность нейтрофилов периферической крови крыс при остром стрессе и блокаде Р-адренорецепторов // Вестн. Уральской медицинской академической науки. - 2011. - № 2/1 (35). - С. 77-78.
Материалы международных и всероссийских конференций
5. Шилов Ю.И., Орлова Е.Г., Атнагузина А.Т., Шилов Д.Ю. Влияние адренер-гических соединений и модуляторов цАМФ-зависимого и фосфатидилинозитолового пути на функции фагоцитирующих клеток in vitro // Рецепция и внутриклеточная сигнализация: тез. докл. Междунар. конф. - Пущино, 1998. - С. 63-65.
6. Шилов Д.Ю. Влияние стимуляции бета-адренергических рецепторов тербута-лином сульфатом на фагоцитарную активность лейкоцитов периферической крови крыс в эксперименте in vitro II Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины: Материалы II Российской конф. молодых ученых России с международным участием, 24-28 аир. 2001 г., Москва. - М.: ГЭОТАР-МЕД, 2001. - С. 197-198.
7. Шилов С.Ю., Шилов Ю.И., Шилов Д.Ю., Юркова Е.В. Адренергическая регуляция функций иммунной системы при стрессе // VII Междунар. конф. «Загрязнение окружающей среды, адаптация, иммунитет ICEP 2008», 28 сентября - 4 октября 2008. - Пермь-Нижний Новгород, 2008. - С. 76-76.
8. Shilov Ju.I., Shilov D. Ju., Shilov S.Ju., Yurkova E.V. Beta-adrenergic regulation of Amotions of immune system under stress // II International Symposium « Interaction of the Nervous and Immune Systems in Health and Diseases» . June 16 - June 19 2009 Saint Petersburg, Russia: Abstracts. - Petersburg, 2009. - P. 67-67.
9. Шилов Д.Ю., Шилов Ю.И., Шилов С.Ю., Юркова Е.В. Бета-адренергические механизмы регуляции функций иммунной системы при стрессе // Медицинская иммунология. - 2009. - Т. 11, № 4-5. - С. 342-342.
10. Шилов Д.Ю., Шилов Ю.И., Черешнев В.А. Иммуномодулирующие эффекты соталола гидрохлорида при остром стрессе // Дни иммунологии в Сибири: Материалы Всеросс. науч.-практ. конф. с междунар. участием, посвященной 20-летнему юбилею Краснояр. краевого центра по профилактике и борьбе со СПИД и инфекционными заболеваниями. 1—3 марта 2010 г. — Красноярск: Изд-во КрасГМУ, 2010. — С. 271—273.
11. Шилов Д.Ю., Шилов Ю.И., Черешнев В.А. Иммуномодулирующее действие соталола гидрохлорида при остром стрессе в условиях развития локальной формы иммунного ответа // Вопр. патогенеза типовых патологических процессов: тр. II Всеросс. науч.-практ. конф. с междунар. участием. — Новосибирск, 2010. — С. 427-432.
12. Shilov J.I., Shilov D.J., Shilov S.J., Yurkova E.V. Beta-adrenergic modulation of immune system functions under stress // International Immunology. - 2010. - Vol.22, Sup-pi., Number 1. -PP-012-44.-P. i89-i89.
13. Шилов Ю.И., Шилов С.Ю., Шилов Д.Ю., Куделькина В.Г., Ибрагимова JI.P. Половые стероиды в модуляции иммунного ответа при стрессе // Российский иммунологический журнал. - 2010. - Т. 4(13), № 4. - С. 391-391.
14. Shilov Ju.I, Godovalov А.Р., Shilov D.Ju., Yurkova E.V. Effect of beta-adrenoceptor agonist hexoprenaline sulphate on the proliferative lymphocyte response and immunoglobulin production in the presence of thyroxine and dexamethasone phosphate in
vitro // III International Symposium «Interaction of the Nervous and Immune Systems in Health and Diseases» June 7 - June 10 2011 Saint Petersburg Russia Abstracts. - Petersburg, 2011.-P. 63-63.
Публикации в других изданиях
15. Шилов Ю.И., Шилов Д.Ю. Влияние стимуляции бета-адренергических рецепторов iu vitro тербуталином сульфатом на фагоцитарную активность нейтрофилов, моноцитов и эозинофилов крыс // Вестн. Перм. ун-та. - 2001. - Вып. 4. - С. 220-226.
16. Шилов Д.Ю. Влияние бета-адренергического агониста тербуталина сульфата на фагоцитарную активность лейкоцитов периферической крови крыс в эксперименте in vitro II Современные проблемы экологии, микробиологии и иммунологии: тез. докл. региональной конф. молодых ученых (1S—20 января 1999 г. Пермь, Россия). -Пермь, 1999.-С. 156-156.
Список основных сокращений
АОК - антителообразующие клетки
ГЗТ - гиперчувствительность замедленного типа
Кон А - конканавалин А
ЭБ - эритроциты барана
ЯСК - ядросодержащие клетки
lFN-y - интерферон-у (англ. interferon-gamma)
is - иммуноглобулины (англ. immunoglobulins)
IL - интерлейкин (англ. interleukin)
PWM - митоген лаконоса (англ. pokeweed mitogen или lectin from Phytolacca
americana)
TNF-a - фактор некроза опухоли-a (англ. tumor necrosis factor)
Шилов Дмитрий Юрьевич
АДРЕНЕРГИЧЕСКАЯ РЕГУЛЯЦИЯ ИММУННОЙ СИСТЕМЫ ПРИ СТРЕССЕ И ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ АГОНИСТОВ АДРЕНОРЕЦЕПТО-РОВ С ГЛЮКОКОРТИКОИДАМИI1V VITRO
АВТОРЕФЕРАТ Лицензия
Подписано в печать 21.10.2011. Тираж 120 экз. Уч. изд. л. 1,0 Формат 60x84/16. Набор компьютерный. Заказ № 694
Отпечатано на ризографе. ООО «Полиграф Сити» 614990, Пермский край, г. Пермь, ул. Ленина, 66 - 222
Оглавление диссертации Шилов, Дмитрий Юрьевич :: 2011 :: Пермь
Список основных сокращений
ВВЕДЕНИЕ
Глава 1. АДРЕНЕРГИЧЕСКИЕ СОЕДИНЕНИЯ И ГЛЮКО-КОРТИКОИДЫ В РЕГУЛЯЦИИ ФУНКЦИЙ ИММУННОЙ СИСТЕМЫ ПРИ СТРЕССЕ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
1.1. Общие аспекты нейроиммунных взаимодействий при стрессе
1.2. Адренергические механизмы регуляции функций иммунной системы 19 J.3. Молекулярные механизмы противовоспалительного и имму-номодулирующего действия глюкокортикоидов 27 1.4. Проблемы взаимодействия иммуномодулирующих эффектов глюкокортикоидов и катехоламинов
Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
2.1. Экспериментальные животные и объект исследования in vitro
2.2. Основные экспериментальные подходы при исследованиях in vivo, общая схема эксперимента, группы животных, иммунизация
2.3. Оценка нейроэндокринных сдвигов в плазме периферической крови иммуноферментным методом
2.4. Методы оценки функций иммунной системы
2.5. Пролиферативный ответ лимфоцитов здоровых людей в культурах с митогенами и анализ влияния на него гидрокортизона, дексаметазона и адренергических соединений
2.6. Статистический анализ результатов
Глава 3. ВЛИЯНИЕ СОТАЛОЛА ГИДРОХЛОРИДА ПРИ ОСТРОМ СТРЕССЕ НА АНТИТЕЛООБРАЗОВАНИЕ И РЕАКЦИЮ ГИПЕРЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ ЗАМЕДЛЕННОГО ТИПА ПРИ ЛОКАЛЬНОЙ И СИСТЕМНОЙ ФОРМЕ ИММУННОГО ОТВЕТА
3.1. Экспериментальная модель фармакологической блокады Радренорецепторов при остром 24-часовом иммобилизационном стрессе в сочетании с дозированной кровопотерей при локальном иммунном ответе
3.2. Экспериментальная модель фармакологической блокады |3-адренорецепторов при остром 24-часовом иммобилизационном стрессе в сочетании с дозированной кровопотерей при системном иммунном ответе
Глава 4 ВЛИЯНИЕ АГОНИСТОВ АДРЕНОРЕЦЕПТОРОВ НА ФАГОЦИТАРНУЮ АКТИВНОСТЬ ЛЕЙКОЦИТОВ
ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ КРЫС В СИСТЕМЕ IN VITRO
4.1. Влияние Р-адренергического агониста тербуталина сульфата в з'словиях in vitro на фагоцитарную активность лейкоцитов периферической крови интактных крыс
4.2. Влияние адреналина гидрохлорида и гексопреналина сульфата in vitro на фагоцитарную активность нейтрофилов периферической крови крыс при остром стрессе (модель локального иммунного ответа)
Глава 5 ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ ГЛЮКОКОРТИКОИДОВ И АДРЕНЕРГИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ В СИСТЕМЕ IN VITRO ПРИ ОЦЕНКЕ ПРОЛИФЕРАТИВНОГО ОТВЕТА ЛИМФОЦИТОВ И ПРОДУКЦИИ ИММУНОГЛОБУЛИНОВ
5.1. Влияние глюкокортикоидов и агонистов адренорецепторов на пролиферативный ответ лимфоцитов в культурах с конканава-лином А
5.2. Влияние глюкокортикоидов и агонистов адренорецепторов на пролиферативный ответ лимфоцитов в культурах с митогеном лаконоса •
5.3. Влияние глюкокортикоидов и агонистов адренорецепторов на продукцию иммуноглобулинов в культурах с митогеном лаконоса
ОБСУЖДЕНИЕ
ВЫВОДЫ
Введение диссертации по теме "Клиническая иммунология, аллергология", Шилов, Дмитрий Юрьевич, автореферат
Актуальность проблемы. Адренергические соединения и глюко-кортикоиды, обладая выраженной иммуномодулирующей активностью, определяют уникальные иммунные сдвиги на местном и системном уровне, связанные с процессами адаптации [1, 2, 4, 36, 42, 44, 61, 68, 105, 148, 250, 256]. В условиях целостного организма катехоламины и глюкокорти-коиды проявляют выраженный синергизм, в основе которого могут лежать, с одной стороны, индуцированные глюкокортикоидами изменения экспрессии адренорецепторов и трансдукции с них сигнала в различных клетках-мишенях [110, 160, 175], а с другой - модуляция катехоламинами экспрессии глюкокортикоидных рецепторов [291]. Тем не менее, описано и ингибирование агонистами (3-адренорецепторов передачи сигнала через глюкокортикоидные рецепторы [94, 228, 285].
Функциональные последствия реализации взаимодействия глюко-кортикоидов и катехоламинов на уровне иммунной системы изучены недостаточно. Показано, что при введении крысам антагониста р-адренорецепторов пропранолола гидрохлорида отменяется супрессивное действие 6-часового иммобилизационного стресса на реакцию гиперчувствительности замедленного типа [267], развивается выраженная активация функций циркулирующего пула фагоцитирующих клеток [269]. Введение крысам или мышам р-адренергических блокаторов значительно нивелирует послеоперационную депрессию цитотоксической активности №С-клеток и снижает усиление метастазирования перевиваемых опухолей после экспериментальных оперативных вмешательств [154, 209], отменяет супрессию пролиферативного ответа лимфоцитов при хирургическом стрессе [227]. Введение пропранолола гидрохлорида значительно снижает степень выраженности иммуносупрессивного действия гидрокортизона в периоде индукции и эффекторную фазу локального иммунного ответа на антителообразование в регионарном лимфатическом узле и развитие реакции гиперчувствительности замедленного типа, нивелирует индуцированные введением гидрокортизона в эффекторную фазу иммунного ответа изменения функций фагоцитирующих клеток [77, 78, 268]. Показано участие адренергической регуляции во взаимосвязи с глюкокортикоидами в развитии стрессорной супрессии пролиферативного ответа лимфоцитов на фитогемагглютинин в раннем травматическом периоде у пациентов с проникающим ранением глаза [74, 75].
В связи с тем что пропранолола гидрохлорид может частично проникать через гематоэнцефалический барьер [176, 235], представлялось целесообразным оценить иммуномодулирующее действие при стрессе антагониста ¡3-адренорецепторов периферического действия — соталола гидрохлорида. Ввиду комплексности нейроэндокринноиммунной регуляции в условиях целостного организма являлось необходимым сопоставление данных, полученных in vivo, с результатами моделирования взаимодействия адренергических соединений и глюкокортикоидов в иммуномодуля-ции в системе in vitro в культурах клеток практически здоровых людей.
Цель работы — исследование адренергической регуляции иммунной системы при стрессе и взаимодействия агонистов адренорецепторов с глюкокортикоидами в системе in vitro.
Задачи исследования
1. Изучить иммуномодулирующее действие антагониста (З-адрено-рецепторов соталола гидрохлорида при остром стрессе у крыс (24-часовая иммобилизация в сочетании с дозированной кровопотерей) в условиях развития локальной и системной форм иммунного ответа.
2. Оценить in vitro эффекты тербуталина сульфата на фагоцитарную активность нейтрофилов, моноцитов, эозинофилов интактных крыс и влияние адреналина гидрохлорида и гексопреналина сульфата на фагоцитарную активность нейтрофилов крыс в ранний период острого стресса и при блокаде p-адренорецепторов.
3. Исследовать взаимодействие глюкокортикоидов и агонистов (3-, аг и а2-адренорецепторов в системе in vitro в регуляции пролиферативного ответа лимфоцитов в культурах с Т- и В-клеточными митогенами и продукции иммуноглобулинов в культурах клеток практически здоровых людей-добровольцев с митогеном лаконоса.
Научная новизна. На основании комплексного иммунологического исследования с экспериментальным моделированием общего адаптационного синдрома в условиях блокады периферических Р-адренорецепторов in vivo и анализом взаимодействия агонистов адренорецепторов и глюко-кортикоидов в системе in vitro обоснована роль адренергической регуляции в изменении функций клеток иммунной системы при стрессе. Показано, что введение антагониста p-адренорецепторов периферического действия соталола гидрохлорида при остром стрессе, развивающемся при 24-часовой иммобилизации в сочетании с дозированной кровопотерей, отменяет супрессию антителогенеза в селезенке при системном иммунном ответе и депрессию реакции гиперчувствительности замедленного типа при развитии локальной и системной форм иммунного ответа. Острый стресс и соталола гидрохлорид не влияют на антителообразование в регионарном лимфатическом узле при локальном иммунном ответе. Установлено, что блокада периферических Р-адренорецепторов соталола гидрохлоридом in vivo отменяет угнетающий эффект в системе in vitro адреналина гидрохлорида и гексопреналина сульфата на фагоцитарную активность нейтрофилов в ранний период общего адаптационного синдрома. Показано, что выраженность супрессивного эффекта адреналина гидрохлорида и селективных агонистов р-, аг и сь-адренорецепторов и направленность их взаимодействия с глюкокортикоидами (усиление эффекта или антагонизм) в культурах с конканавалином А зависят от концентрации митогена, типа вовлекаемых в регуляцию стероидных адренало-вых и адренергических рецепторов. Установлено, что гидрокортизон, дексаметазона фосфат и адренергические агонисты статистически значимо не влияют на пролиферативный ответ лимфоцитов и продукцию иммуноглобулинов М и в в культурах с тимусзависимым поликлональным активатором В-лимфоцитов митогеном лаконоса.
Теоретическое и практическое значение работы. Результаты работы расширяют представление о роли адренергической регуляции в изменении функций клеток иммунной системы при стрессе, взаимодействии агонистов адренорецепторов и глюкокортикоидов в регуляции реакций неоиммунитета. Полученные данные необходимы для прогнозирования иммуномодулирующих эффектов адренергических соединений и глюкокортикоидов при их совместном применении в терапии, в том числе экстремальных состояний.
Результаты исследований используются в лекционных курсах «Иммунология», «Экспериментальные модели в патологии», «Иммунопатология», «Нейроэндокринная регуляция иммуногенеза» кафедры микробиологии и иммунологии ФГБОУ ВПО «Пермский государственный национальный исследовательский университет» (614600, г. Пермь, ул. Букире-ва, 15), при чтении лекций и на практических занятиях на кафедре иммунологии ГБОУ ВПО «Пермская государственная медицинская академия им. академика Е.А. Вагнера» Минздравсоцразвития РФ (614000, г. Пермь, ул. Петропавловская, 26).
Основные положения, выносимые на защиту
1. Введение антагониста р-адренорецепторов периферического действия соталола гидрохлорида при остром стрессе, вызванном 24-часовой иммобилизацией в сочетании с дозированной кровопотерей, приводит к отмене супрессии антителогенеза в селезенке при системном иммунном ответе и угнетения реакции гиперчувствительности замедленного типа при моделировании локальной и системной форм иммунного ответа. Острый стресс и соталола гидрохлорид не влияют на антителообразование в регионарном лимфатическом узле при локальном иммунном ответе.
2. Селективный агонист Р-адренорецепторов тербуталина сульфат оказывает зависящий от концентрации агониста супрессивный эффект на
СПИСОК ОСНОВНЫХ СОКРАЩЕНИЙ
АКТГ - адренокортикотропный гормон
АОК — антителообразующие клетки
ГЗТ - гиперчувствительность замедленного типа
ЗС - забуференная среда
Кон А - конканавалин А
ЛПС - липополисахарид
ФГА - фитогемаглютинин
ФМА — форболмеристатацетат цАМФ - циклический 3', 5'-аденозинмонофосфат
ЯСК — ядросодержащие клетки
AF - активатор транскрипции (transcriptional activation function)
СВР - CREB связывающий белок (англ. CREB-binding protein)
CD - кластер дифференцировки (англ. cluster of differentiation) cPLA2 - цитоплазматическая фосфолипаза А2 (англ. cytoplasmic phospholi-pase А2)
CREB - связывающий цАМФ-отвечающий элемент (англ. cAMP-responseelement-binding protein) GILZ - глюкокортикоид-индуцированный протеин с лейциновой застежкой англ. glucocorticoid-induced leucine zipper protein) GM-CSF - гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор англ. granulocyte-macrophage colony-stimulating factor) GPCR семейство рецепторов, сцепленных с G белками (англ. G proteincoupled receptors)
GRE - глкжокортикоид-отвечающий элемент (англ. glucocorticoid response elements)
GRIP 1 - глюкокортикоид-рецептор взаимодействующий белок 1 (англ. glucocorticoid receptor-interacting protein-1) HAT - ацетилтрансфераза гистонов (англ. histone acetyltransferase) HEPES - 1^-2-гидроксиэтилпиперазин-М'-2-этансульфоновая кислота (англ. N-2~hydroxyethylpiperazine-N'-2-ethansulfonic acid) фагоцитарную активность лейкоцитов крыс, наиболее выраженный по отношению к нейтрофилам и моноцитам. Блокада периферических (3-адренорецепторов соталола гидрохлоридом in vivo отменяет угнетающий эффект в системе in vitro адреналина гидрохлорида и гексопреналина сульфата на фагоцитарную активность нейтрофилов в ранний период общего адаптационного синдрома.
3. Выраженность супрессивного эффекта адреналина гидрохлорида и селективных агонистов p-, ai- и а2-адренорецепторов в культурах с кон-канавалином А и направленность их взаимодействия с глюкокортикоида-ми в виде усиления эффекта или антагонизма зависят от концентрации митогена, типа вовлекаемых в регуляцию стероидных адреналовых и ад-ренергических рецепторов. Гидрокортизон, дексаметазона фосфат и адре-нергические агонисты статистически значимо не влияют на пролифера-тивный ответ лимфоцитов и продукцию иммуноглобулинов М и G в культурах с тимусзависимым поликлональным активатором В-лимфоцитов митогеном лаконоса.
Апробация работы и основные публикации. Основные положения работы были представлены на конференции молодых ученых «Современные проблемы экологии, микробиологии и иммунологии» Пермь, 1999; Объединенном иммунологическом форуме (IV Съезд иммунологов России, IX Конгресс РААКИ, IV Конференция РЦО, III Конференция rio иммунологии репродукции, XII Всероссийский форум «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге»), Санкт-Петербург, 2008; VII Международной конференции «Загрязнение окружающей среды, адаптация, иммунитет ICEP 2008», Пермь - Н. Новгород - Пермь, 2008.
По материалам диссертации опубликовано 16 печатных работ, из них 4 статьи в рецензируемых научных журналах, рекомендуемых ВАК РФ.
Диссертационная работа апробирована на расширенном заседании научной проблемной комиссии по клинической иммунологии, аллергологии Института экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН (Пермь, 2011).
Объем и структура диссертации. Работа изложена на 191 стр. машинописного текста, содержит 48 таблиц и 10 рисунков. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов, 3 глав собственных исследований, обсуждения, выводов и списка цитируемой литературы, включающего 301 источник, из них 91 отечественный и 210 зарубежных.
Заключение диссертационного исследования на тему "Адренергическая регуляция иммунной системы при стрессе и взаимодействие агонистов адренорецепторов с глюкокортикоидами in vitro"
ВЫВОДЫ
1. В условиях экспериментального моделирования общего адаптационного синдрома и блокады периферических Р-адренорецепторов in vivo, а также в результате исследования взаимодействия агонистов адре-норецепторов и глюкокортикоидов в системе in vitro обоснована роль ад-ренергической регуляции в изменении функций клеток иммунной системы при стрессе.
2. Установлено, что введение антагониста Р-адренорецепторов периферического действия соталола гидрохлорида при остром стрессе (24-часовая иммобилизация в сочетании с дозированной кровопотерей) приводит к отмене супрессии антителогенеза в селезенке при системном иммунном ответе и угнетения реакции гиперчувствительности замедленного типа при моделировании локальной и системной форм иммунного ответа. Острый стресс и соталола гидрохлорид не влияют на антителообра-зование в регионарном лимфатическом узле при локальном иммунном ответе.
3. Показано, что селективный агонист Р-адренорецепторов тербута-лина сульфат оказывает зависящий от концентрации агониста супрессивный эффект на фагоцитарную активность лейкоцитов крыс, более выраженный по отношению к нейтрофилам и моноцитам. Блокада периферических p-адренорецепторов соталола гидрохлоридом in vivo отменяет угнетающий эффект в системе in vitro адреналина гидрохлорида и гексо-преналина сульфата на фагоцитарную активность нейтрофилов в ранний период общего адаптационного синдрома.
4. Установлено, что выраженность супрессивного эффекта адреналина гидрохлорида и агонистов Р-, ар и аг-адренорецепторов в культурах с конканавалином А и направленность их взаимодействия с глюкокорти-коидами в виде усиления эффекта или антагонизма зависят от концентрации митогена, типа вовлекаемых в регуляцию стероидных адренало-вых и адренергических рецепторов.
5. Показано, что глюкокортикоиды и адренергические агонисты статистически значимо не влияют на пролиферативный ответ лимфоцитов и продукцию иммуноглобулинов М и О в культурах с тимусзависи-мым поликлональным активатором В-лимфоцитов митогеном лаконоса.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2011 года, Шилов, Дмитрий Юрьевич
1. Абрамов В.В. Взаимодействие иммунной и нервной систем. -Новосибирск: Наука. Сибирское отделение, 1988. — 163 с.
2. Абрамов В.В. Интеграция иммунной и нервной систем. Новосибирск: Наука. Сибирское отделение, 1991. - 166 с.
3. Абрамов В.В. Возможные принципы интеграции иммунной и нейроэндокринной систем // Иммунология. — 1996. — № 1. — С.60-61.
4. Абрамов В.В., Абрамова Т.Я. Асимметрия нервной, эндокринной и иммунной систем. — Новосибирск: Наука. Сибирская изд. фирма РАН, 1996.-97 с.
5. Адо А.Д. Патофизиология фагоцитов (краткий очерк истории и современного состояния учения о фагоцитозе). М.: Медгиз, 1961. -295 с.
6. Адо А.Д. Физиологические механизмы регуляции реакций иммунитета // Многотомное руководство по микробиологии, клинике и эпидемиологии инфекционных болезней. Т. 3. Основы иммунологии. -М.: Медицина, 1964. С. 36-50.
7. Акмаев И.Г., Гриневич В.В. От нейроэндокринологии к нейро-иммуноэндокринологии // Бюл. эксперим. биол. и мед.— 2001. — Т. 131, № 1. — С. 22-32.
8. Балицкий К.П., Векслер И.Г., Винницкий В.Б. и др. Нервная система и противоопухолевая защита. — Киев: Наук, думка, 1983. 256 с.
9. Васильев Н.В. Роль нервной системы в процессах инфекции и иммунитета. — Томск: Изд-во Томск, ун-та, 1963. — 142 с.
10. Вейн A.M., Вознесенская Т.Г., Голубев В.Л. и др. Заболевания вегетативной нервной системы / Под ред. А. М. Вейна. — М.: Медицина, 1991.-624 с.
11. Волчегорский И.А., Долгушин И.И., Колесников О.Л., Цейлик-ман В.Э. Роль иммунной системы в выборе адаптационной стратегии организма. — Челябинск. — 1998. 67 с.
12. Волчегорский И.А., Долгушин И.И., Колесников О.Л., Цейликман В.Э. Экспериментальное моделирование и лабораторная оценка адаптивных реакций организма. — Челябинск, 2000. — 168 с.
13. Газенко О.Г., Меерсон Ф.З. Физиология адаптационных процессов. М.: Наука, 1986. - 637 с.
14. Гейн C.B. Анализ иммуномодулирующих эффектов адренергиче-ских соединений в системах in vivo и in vitro: Дис. . канд. мед. наук. — Пермь, 1999.- 184 с.
15. Гейн C.B. Роль p-эндорфина в нейроэндокринной регуляции функций иммуной системы: Автореф. дис. . доктора мед. наук. — Пермь: 2007. 48 с.
16. Гейн C.B. Опиоидергическая регуляция иммунных реакций // Молекулярная медицина. 2010. - №4. - С. 17-22.
17. Гордон Д.С., Сергеева В.Е., Зеленова И.Г. Нейромедиаторы лимфоидных органов. Л.: Наука, 1982. — 128 с.
18. Горизонтов П.Д., Белоусова О.И., Федотова М.И. Стресс и система крови. М.: Медицина, 1983. — 240 с.
19. Гусев Е.Ю. Взаимоотношения клеточноопосредованного и гуморального иммунного ответа на уровне целостного организма: Автореф. дис. . д-ра мед. наук. М., 1996. — 36 с.
20. Девойно Л.В., Ильюченок Р.Ю. Моноаминергические системы в регуляции иммунных реакций (серотонин, дофамин). — Новосибирск: Изд-во "Наука". Сибирское отделение, 1983. — 234.
21. Долгушин И.И. Иммунный ответ и пути его коррекции при экспериментальных травмах: Дис. д-ра мед.наук. Челябинск, 1980. -417 с.
22. Долгушин И.И., Андреева Ю.С., Савочкина А.Ю. Нейтрофиль-ные ловушки и методы оценки функционального статуса нейтрофи-лов. М.: Издательство РАМН, 2009. - 208 с.
23. Долгушин И.И., Бухарин О.В. Нейтрофилы и гомеостаз. Екатеринбург: УрО РАН, 2001. - 283 с.
24. Долгушин И.И., Эберт Л.Я., Лившиц Р.И. Иммунология травмы.- Свердловск: Изд-во Урал, ун-та, 1989. — 188 с.
25. Дыгало H.H., Калинина Т.С., Носова A.B. и др. Регуляция экспрессии адренергических рецепторов стероидными гормонами // Рос. Физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 1998. - Т. 84, № 10. - С. 1115-1120.
26. Здродовский П.Ф. Проблемы инфекции, иммунитета и аллергии. М.: Госмедиздат. - 1963. - 467 с.
27. Здродовский П.Ф., Гурвич Г.А. Физиологические основы иммуногенеза и его регуляция. М., 1972. - 88 с.
28. Зимин Ю.И. Иммунитет и стресс // Итоги науки и техн. ВИНИТИ. Сер. Иммунология. Т. 8. М.: ВИНИТИ, 1979. - С. 173198.
29. Зимин Ю.И. Иммунокомпетентные клетки при стрессе (экспериментальное и клиническое исследование). Дис. . докт. мед. наук. -М., 1980.-200 с.
30. Зимин Ю.И. Стресс: иммунологические аспекты // Итоги науки и техн. ВИНИТИ. Сер. Иммунология. Т. 12. М.: ВИНИТИ, 1983. - С. 41-62.
31. Зозуля A.A., Пшеничкин С.Ф. Опиоиды и иммунитет // Итоги науки и техники. ВИНИТИ. Сер. Иммунология. Т. 25. - М.: ВИНИТИ, 1990. - С. 48-120.
32. Каплин В.Н. Нетрадиционная иммунология инфекций. Пермь: Изд-во Пермск. гос. мед. академии, 1996. — 163 с.
33. Каплин В.Н., Кузнецов В.Ф., Обернебесова Т.П. Методические аспекты изучения фагоцитоза // I съезд иммунологов России: Тез. докл. (23-25 июня 1992 г.). Новосибирск, 1992. - С. 200-201.
34. Кеворков H.H., Шилов Ю.И., Ширшев C.B., Черешнев В.А. Гормоны репродукции в регуляции процессов иммунитета. — Екатеринбург: Наука, 1993.- 172 с.
35. Козлов В.А. Гуморально-клеточные уровни регуляции основных этапов антителогенеза: Дис. . д-ра мед. наук. - М., 1980. - 361 с.
36. Козлов В.А., Журавкин И.Н., Цырлова И.Г. Стволовая кроветворная клетка и иммунный ответ. Новосибирск: Наука, 1982. - 222 с.
37. Кокряков В.Н. Очерки о врожденном иммунитете. Санкт-Петербург.: Наука, 2006. — 261 с.
38. Колесников O.JI. Влияние неспецифической иммуностимуляции на стресс-реактивность и выбор адаптивной стратегии организма: Ав-тореф. дис. . д-ра мед. наук. Челябинск, 1998. — 39 с.
39. Коляда Т.И., Волянский Ю.Л., Васильев Н.В., Мальцев В.И. Адаптационный синдром и иммунитет. — Харьков: Основа, 1995. 368 с.
40. Корнева Е.А. Иммунофизиология истоки и современные аспекты развития // Аллергия, астма и клиническая иммунология. — 2000. — № 8. - С. 36-44.
41. Корнева Е.А., Клименко В.М., Шхинек Э.К. Нейрогуморальное обеспечение иммунного гомеостаза.- Л.: Наука, 1978. 176 с.
42. Корнева Е.А., Рыбакина Е.Г., Фомичева Е.Е. и др. Имуномоду-лирующие эффекты ИЛ-1 и глюкокортикоидных гормонов как взаимодействующих звеньев в нейроиммунорегуляторной цепи // Int. J. Immunorehabilitation. 1998. - № 10. - С. 38-48.
43. Корнева Е.А., Шекоян В.А. Регуляция защитных функций организма. Л.: Наука, 1982. — 139 с.
44. Корнева Е.А., Шхинек Э.К. Гормоны и иммунная система. Л.: Наука, 1988.-251 с.
45. Крыжановский Г.Н., Магаева C.B., Макаров C.B. Нейроиммуно-патология. М., 1997. - 283 с.
46. Кулинский В.И., Ольховский И.А. Две адаптационные стратегии в неблагоприятных условиях — резистентная и толерантная. Роль гормонов и рецепторов // Усп. совр. биол. 1992. - Т. 112, вып. 5 (6). - С. 697-714.
47. Линг Н.Р., Кэтти Д. Гемагглютинация и реакции антителозависимого гемолиза // Антитела. Методы: Кн. 1: Пер. с англ. / Под ред. Д. Кэтти. -М.: Мир, 1991. С. 238-270.
48. Лозовой В.П., Губарев В.В., Наумова E.H., Елисеева Т.В. О зонах распределения иммунологических показателей // Иммунология. — 1989.-№2.-С. 50-53.
49. Лондон Е.С. О влиянии удаления различных частей головного мозга на иммунитет голубей в отношении сибирской язвы // Арх. биол. наук. 1899. - Т. 7. - С. 177-187.
50. Меерсон Ф.З. Физиология адаптационных процессов: Руководство по физиологии. М.: Наука, 1986. — 10 с.
51. Меерсон Ф.З., Малышев И.Ю. Феномен адаптационной стабилизации структур и защита сердца. — М.: Наука, 1993. — 159 с.
52. Меерсон Ф.З., Пшеничникова М.Г. Адаптация к стрессорным ситуациям и физической нагрузке. — М.: Медицина, 1988. — 254 с.
53. Михайлова A.A. Участие медиаторов иммунитета в нейроим-мунном взаимодействии // Иммунология. — 1992. № 4. - С. 4-8.
54. Орлова Е.Г. Адренергическая регуляция функций фагоцитирующих клеток при остром стрессе: Дис. . канд. биол. наук. — Пермь, 2000.- 195 с.
55. Осипов Ю.Г. Генетический контроль чувствительности к имму-ногенной стимуляции эритроцитами барана у мышей: Автореф. дис. . канд. мед. наук. Новосибирск, 1984. — 20 с.
56. Панин А.Е. Биохимические механизмы стресса. — Новосибирск: Наука, 1983.-233 с.
57. Поляк А.И., Лебедев К.А., Ганина В.Я. и др. Об особенностях иммуноморфологического субстрата при вторичной иммунизации в зависимости от функционального состояния ядер гипоталамуса // Ж. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1975. - № 10. - С. 107-110.
58. Поппер Г. Об окончании нервов в брызжеечных лимфатических железах: Автореф. дис. . д-ра. Петербург, 1869. - 30 с.
59. Потапова A.A., Чередеев А.Н., Стенина М.А., Мельников Н.В.
60. Способы оценки результатов реакции бласттрансформации лимфоцитов // Лабор. дело. 1985. - № 10. - С. 625-628.
61. Пьяцца А. Анализ иммунологических данных // Методы исследований в иммунологии/ Под ред. И. Лефковитса, Б. Перниса. — М.: Мир, 1981.-С. 128-467.
62. Рыбакина Е.Г. Интерлейкин-1 в молекулярных механизмах ней-роиммунных взаимодействий: Автореф. дис. . д-ра биол. наук. -СПб, 2001.-44 с.
63. Савченко И.Г. К вопросу о невосприимчивости к сибирской язве /Врач. 1891.-№ 5.-С. 132-134.
64. Селье Г. Концепция стресса как мы ее представляем в 1976 году// Новое о гормонах и механизмах их действия. Киев: Наук, думка, 1977.-С. 27-51.
65. Сперанский А.Д. Элементы построения теории медицины. М.-Л., 1935.-344 с.
66. Тепперман Дж., Тепперман X. Физиология обмена веществ и эндокринной системы. -. М.: Мир, 1989. — 653 с.
67. Учитель И.Я., Хасман Э.Л. Центральные и гомеостатические механизмы регуляции иммунитета // Нейрогуморальная и фармакологическая коррекция иммунологических реакций в эксперименте и клинике. Л., 1975. - С. 65-66.
68. Фролов Е.П. Нейрогуморальные механизмы регуляции иммунных процессов. М: Медицина, 1974. - 264 с.
69. Хаитов P.M. Физиология иммунной системы. М.: ВИНИТИ РАН, 2001.-224 с.
70. Цырлова И.Г. Влияние стероидных гормонов на отдельные этапы иммуногенеза: Дис. . канд. биол. наук. Новосибирск, 1977. - 144 с.
71. Чеботарев В.Ф. Эндокринная регуляция иммуногенеза. Киев: Здоров'я, 1979. - 160 с.
72. Черешнев В.А. Воспаление и иммунитет: научный доклад.
73. Екатеринбург-Москва, 2001. — 37 с.
74. Черешнев В.А., Гусев Е.Ю. Иммунология воспаления: эндоте-лиоциты 2-го типа как вспомогательные клетки иммунной системы // Современные проблемы аллергологии, иммунологии и иммунофарма-кологии: Сб. Тр. 4-й конгресс РААКИ. Москва. - 2001. - с. 42-53.
75. Черешнев В.А., Кеворков H.H., Шмагель К.В., Ярилин A.A. Иммунология комбинированных радиационных поражений. — Екатеринбург: УрО РАН, 1997. 164 с.
76. Черешнев В.А., Шилов Ю.И., Черешнева М.В. и др. Изменения функций иммунной системы и их коррекция миелопептидами при проникающем ранении глаза // Российский иммунологический журнал. 20106. - Т. 4(13), № 3. - С. 225-236.
77. Шилов С.Ю. Адренергические механизмы в реализации имму-номодулирующих эффектов глюкокортикоидов: Дис. . канд. мед. наук. Пермь, 2006. - 187 с.
78. Шилов С.Ю., Шилов Ю.И., Черешнев В.А. Модификация имму-номодулирующего действия гидрокортизона в условиях блокады ß-адренорецепторов // Докл. Академии наук. 2004. - Т. 396, № 5. - С. 707-709.
79. Шилов Ю.И., Зотин A.B. Влияние пилокарпина и теофиллина на фагоцитарную активность лейкоцитов периферической крови здоровых людей in vitro II Пермский мед. журнал. 2000. - Т. 17, № 3. - С. 17-23.
80. Шилов Ю.И., Ланин Д.В. Влияние гидрокортизона на функции фагоцитирующих клеток брюшной полости крыс в условиях блокады ß-адренорецепторов // Бюл. эксперим. биол. и мед. 2001. - Т. 131, № 10.-С. 439-442.
81. Шилов Ю.И., Ланин Д.В., Орлова Е.Г. Влияние адреналина на функции фагоцитирующих клеток периферической крови крыс при стрессе и введении гидрокортизона // Докл. Академии наук. 2005. -Т. 400, № 6. - С. 844-846.
82. Шилов Ю.И., Ланин Д.В., Ширшев C.B. Влияние гидрокортизона на функции фагоцитирующих клеток периферической крови в условиях блокады ß-адренорецепторов // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 2003. - Т. 89, № 5. - С. 543-550.
83. Шилов Ю.И., Ланин Д.В., Ширшев C.B. Влияние гидрокортизона на функции циркулирующего пула фагоцитирующих клеток в условиях блокады Р-адренорецепторов // Докл. Академии наук. 2001. — Т. 379, № 6. - С. 824-826.
84. Шилов Ю.И., Орлова Е.Г. Адренергическая регуляция функций циркулирующего пула фагоцитирующих клеток при остром стрессе // Докл. Академии наук. 2000. - Т. 373, № 2. - С. 267-269.
85. Шилов Ю.И., Орлова Е.Г., Ланин Д.В. Адренергические механизмы регуляции фагоцитарной активности нейтрофилов периферической крови крыс при стрессе и введении гидрокортизона // Иммунопатология, аллергология, инфектология. — 2004. — № 3. — С. 8-13.
86. Шилов Ю.И., Орлова Е.Г., Ланин Д.В., Шилов С.Ю. Роль адре-нергических механизмов в реализации иммуномодулирующих эффектов глюкокортикоидов при стрессе // Вестн. Уральской медицинской академической науки. 2004. - № 4. - С. 87-93.
87. Юшков Б.Г., Климин В.Г., Северин М.В. Система крови и экстремальные воздействия на организм. — Екатеринбург: УрО РАН, 1999.-202 с.
88. Ярилин А. А. Гомеостатические процессы в иммунной системе. Контроль численности лимфоцитов // Иммунология. — 2004. Т. 25, № 5. - С. 312-320.
89. Amenta F., El-Assouad D., Mignini F. et al. Neurotransmitter receptor expression by peripheral mononuclear cells: possible marker of neuronal damage by exposure to radiations // Cell. Mol. Biol. (Noisy-le-grand). -2002. Vol. 48(4). -P. 415-421.
90. Anderson G.P. Interactions between corticosteroids and beta-adrenergic agonists in asthma disease induction, progression, and exacerbation // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2000. - Vol. 161 (3). - P. SI 88-S196.
91. Arriza J.L., Simerly R.B., Swanson L.W., Evans R.M. The neuronal mineralocorticoid receptor as a mediator of glucocorticoid response // Neuron. 1988. - Vol. 1 (9). - P. 887-900.
92. Barnes P.J. Corticosteroid effects on cell signaling // Eur. Respir. J. -2006. Vol. 27. - P. 413-426
93. Barnes P.J., Adcock I.M. Transcription factors and asthma // Eur. Respir. J. 1998. - Vol. 12. - P. 221-234.
94. Barnes P.J., Adcock I.M., Ito K. Histone acetylation and deacetyla-tion: importance in inflammatory lung diseases // Eur. Respir. J. 2005. — Vol. 25.-P. 552-563.
95. Barnes P.J., Chung K.F., Page C.P. Inflammatory mediators of asthma: an update // Pharmacol. Rev. 1998. - Vol. 50. - P. 515-596.
96. Barnes P.J., Karin M. Nuclear factor-kB: a pivotal transcription factor in chronic inflammatory diseases // N. Engl. J. Med. 1997. - Vol. 336.-P. 1066-1071.
97. Beaumont K., Fanestil D.D. Characterization of rat brain aldosterone receptors reveals high affinity for corticosterone // Endocrinology. — 1983. Vol. 113 (6). -P.2043-2051.
98. Bellinger D.L., Millar B.A., Perez S. et al. Sympathetic modulation of immunity: relevance to disease // Cell. Immunol. — 2008. Vol. 252(1-2).-P. 27-56.
99. Besedovsky H.O., del Rey A. Immune-neuroendocrine interactions: facts and hypotheses // Endocrine Rev. 1996. - Vol. 17 (1). - P. 64-102.
100. Besedovsky H.O., del Rey A. The cytokine-HPA axis feed-back circuit // Z. Rheumatol. 2000. - Vol. 59 (Suppl. 2). - P. 26-30.
101. Besedovsky H.O., del Rey A. Physiology of psychoneuroimmunol-ogy: a personal view // Brain Behav. Immun. 2007. - Vol. 21 (1). - P. 34-44.
102. Besedovsky H.O., del Rey A., Sorkin E. Antigenic competition between horse and sheep red blood cells as a hormone-dependent phenomenon // Clin. Exp. Immunol. 1979. - Vol. 37 (1). - P. 106-113.
103. Besedovsky H.O., del Rey A., Sorkin E. Neuroendocrine immunoregulation // Immunoregul. Proc. Workshop, Urbino, 8-10 July, 1981. -New York & London, 1.983. P. 315-339.
104. Besedovsky H.O., del Rey A., Sorkin E., Dinarello C.A. Immu-noregulatory feed-back between interleukin-1 and glucocorticoid hormones // Science. 1986. - Vol. 233 (4764). - P. 652-654.
105. Besedovsky H., Sorkin E. Network of immune-neuroendocrine interactions // Clin. exp. Immunol. 1977. - Vol. 27 (1). - P. 1-12.
106. Black J.L., Oliver B.G., Roth M. Molecular mechanisms of combination therapy with inhaled corticosteroids and long-acting beta-agonists // Chest.-2009.-Vol. 136(4).-P. 1095-1100.
107. Black J.W. A life in new drug research // Br. J. Pharmacol. 2010. -Vol. 160(1).-P. S15-S25.
108. Bodner G., Ho A., and Kreek M. J. Effect of endogenous Cortisol levels on natural killer cell activityin healthy humans // Brain Behav. Immun. 1998. - Vol. 12 (4). - P. 285-296.
109. Bornstein S.R., Chrousos G.P. Cortex: neural and immune inputs adrenocorticotropin (ACTH)- and non-ACTH-mediated regulation of the adrenal // Endocrinol. Metab. 1999. - Vol. 84. - P. 1729-1736.
110. Cannon W.B. The emegency function of the adrenal medulla in pain and major emotions // Am. J. Physiol. 1914. - Vol. 33. - P. 356-372.
111. Cannon W.B. The wisdom of the body. — Norton and Co.: New York, 1932.-312 pp.
112. Cannon W.B. Stress and strains of homeostasis // Am. J. Med. Sci. -1935.-Vol. 89.-P. 1-14.
113. Chong L.K., Drury D.E., Dummer J.F. et ah Protection by dexa-methasone of the functional desensitization to beta 2-adrenoceptor-mediated responses in human lung mast cells // Br. J. Pharmacol. 1997. -Vol. 121 (4).-P. 717-722.
114. Chrousos G.P., Kino T. Glucocorticoid signaling in the cell. Expanding clinical implications to complex human behavioral and somatic disorders // Ann. N.Y. Acad. Sci. 2009. - Vol. 1179. - P. 153-166.
115. Congreve M., Marshall F. The impact of GPCR structures on pharmacology and structure-based drug design // Br. J. Pharmacol. 2010. -Vol. 159 (5).-P. 986-996.
116. Cooper D.A., Duckett M., Petts V., Penny R. Corticosteroid enhancement of immunoglobulin synthesis by pokeweed mitogen-stimulated human lymphocytes //'Clin. Exp. Immunol. — 1979. — Vol. 37 (1). P. 145-151.
117. Cooper D.A., Duckett M., Hansen P. et al. Glucocorticosteroid enhancement of immunoglobulin synthesis by pokeweed mitogen-stimulated human lymphocytes // Clin. Exp. Immunol. 1981. - Vol. 44 (1). P. 129136.
118. Cooper D.A., Hansen P., Duckett M. et ah Glucocorticosteroid enhancement of immunoglobulin synthesis by pokeweed mitogen-stimulated human lymphocytes. III. Common variable immunodeficiency // Clin. Exp. Immunol. 1981. - Vol. 45 (2). - P. 399-408.
119. Corthay A. How do regulatory T cells work? // Scand. J. Immunol. -2009. Vol. 70 (4). - P. 326-336.
120. Cosentino M., Marino F., Bombelli R. et ah Unravelling dopamine (and catecholamine) physiopharmacology in lymphocytes: open questions // Trends Immunol. 2003. - V. 24 (11). - P. 581-583.
121. Costanzi S., Siegel J., Tikhonova I.G., Jacobson K.A. Rhodopsin andthe others: a historical perspective on structural studies of G proteincoupled receptors // Curr. Pharm. Des. 2009. - Vol. 15 (35). - P. 39944002.
122. Cotecchia S. The aradrenergic receptors: diversity of signaling networks and regulation // J. Recept. Signal Transduct. Res. — 2010. Vol. 30 (6).-P. 410-419.
123. Dantzer R. Cytokine-induced sickness behaviour: a neuroimmune response to activation of innate immunity // Eur. J. Pharmacol. — 2004. — Vol. 500.-P. 399-411.
124. Davies A.O., Lefkowitz R.J. Agonist-promoted high affinity state of the beta-adrenergic receptor in human neutrophils: modulation by corticosteroids //J. Clin. Endocrinol. Metab. 1981. - Vol. 53 (4). - P. 703-708.
125. De Giorgi V., Grazzini M., Gandini S. et al. Treatment with blockers and reduced disease progression in patients with thick melanoma // Arch. Intern. Med. 2011. - Vol. 171 (8). - P. 779-781.
126. Del Rey A., Besedovsky H.O. The cytokine-HPA axis circuit contributes to prevent or moderate autoimmune processes // Z. Rheumatol. — 2000. Vol. 59 (2). - P. 31-35.
127. Del Rey A., Besedovsky H., Sorkin E. et al. Immunoregulation mediated by sympathetic nervous system, II // Cell. Immunol. — 1981. — Vol. 63 (2).-P. 329-334.
128. Del Rey A., Kabiersch A., Petzoldt S., Besedovsky H.O. Involvement of noradrenergic nerves in the activation and clonal deletion of T cells stimulated by superantigen in vivo II J. Neuroimmunol. 2002. — Vol. 127(1-2).-P. 44-53.
129. Delves P.J., Roitt I.M. The immune system. First of Two Parts // New Engl. J. Med. 2000. - Vol. 343 (1). - P. 37-49.
130. Delves P.J., Roitt I.M. The immune system. Second of Two Parts // New Engl. J. Med. 2000. - Vol. 343 (2). - P. 108-117.
131. De Ruijter A.J., van Gennip A.H., Caron H.N., Kemp S., van Kuilen-burg A.B. Histone deacetylases (HDACs): characterization of the classical
132. HDAC family II Biochem. J. 2003. - Vol. 370. - P. 737-749.
133. Deupi X., Kobilka B.K. Energy landscapes as a tool to integrate GPCR structure, dynamics and function // Physiology (Bethesda). — 2010. -Vol. 25 (5).-P. 293-303.
134. Devery J.M., King M.J., Geczy C.L. Acute inflammatory activity of the S100 protein CP-10. Activation of neutrophils in vivo and in vitro II J. Immunol.- 1994.-Vol. 152 (4).-P. 1888-1897.
135. Dhir V., Ivison H.E., Krone N. et al. Differential inhibition of CYP17A1 and CYP21A2 activities by the P450 oxidoreductase mutant A287P // Mol. Endocrinol. 2007. - Vol. 21 (8). - P. 1958-1968.
136. Di Stefano A., Caramori G., Capelli A. et al. Increased expression of NF-kB in bronchial biopsies from smokers and patients with COPD // Eur. Respir. J. 2002. -Vol! 20. - P. 556-563.
137. Djordjevic J., Djordjevic A., Adzic M. et al. Chronic stress differentially affects antioxidant enzymes and modifi es the acute stress response in liver of Wistar rats // Physiol. Res. 2010. - Vol. 59 (5). - P. 729-736.
138. Duncan D. B. Multiple range and multiple F tests // Biometrics. -1955. Vol. 11.-P. 1-42.
139. Dunser M.W. Sympathetic overstimulation during critical illness: adverse effects of adrenergic stress // J. Intensive Care Med. 2009. - Vol. 24 (5).-P. 293-316.
140. Edwards A.V., Jones C.T. Autonomic control of adrenal function // J. Anat. 1993. - Vol. 183 (2). - P. 291-307.
141. Elenkov I.J. Systemic stress-induced Th2 shift and its clinical implications // Neurobiology of the Immune System. 2002. - Vol. 52. - P. 163-186.
142. Elenkov I.J., Chrousos G.P. Stress hormones, Thl/Th2 patterns, pro/antiinflammatory cytokines and susceptibility to disease // Trends Endocrinol. Metabol. 1999. - V. 10 (9). - P. 359-368.
143. Elenkov I.J., Chrousos G.P. Stress system organization, physiology and immunoregulation // Neuroimmunomodulation. - 2006. - Vol. 13. - P.257.267.
144. Elenkov I.J., Wilder R.L., Chrousos G.P., Vizi E.S. The sympathetic nerve — an integrative interface between two supersystems: the brain and the immune system // Pharmacol. Rev. 2000. - Vol. 52 (4). - P. 595-638.
145. Engeland W.C. Functional innervation of the adrenal cortex by the splanchnic nerve // Horm. Metab. Res. 1998. - Vol. 30 (6-7). - P. 311314.
146. Friedman E.M., Lawrence D.A. Environmental stress mediates changes in neuroimmunological interactions // Toxicol. Sci. — 2002. Vol. 67(1).-P 4-10.
147. Gein S.V., Gorshkova K.G., Tendryakova S.P. Regulation of inter-leukin-lbeta and interleukin-8 production by agonists of mu and delta opiate receptors in vitro II Neuroscience and Behavioral Physiology — 2009. -Vol. 39 (6).-P. 591-595.
148. Gezici A.R., Karakas A., Ergiin R., Giindiiz B. Serum Cortisol levels following acute experimental spinal cord injury // Neurol. Neurochir. Pol. 2009. - Vol. 43 (4). - P. 352-357.
149. Goldschmidt L., Goldbaum M., Walker S., Weigle W. The immune response to homologous lens crystallin. I. Antibody production after lens injury // J. Immunol. 1992. - Vol. 129. - P. 1652-1657.
150. Gordon D., Nouri A.M. Comparison of the inhibition by glucocorti-costeroids and cyclosporin A of mitogen-stimulated human lymphocyte proliferation // Clin. Exp. Immunol. 1981. - Vol. 44(2). - P. 287-294.
151. Hall S.E., Lim S., Witherden I.R., et al. Lung type II cell and macrophage annexin I release: differential effects of two glucocorticoids // Am. J. Physiol. 1999.-Vol. 276. - P. LI 14-L121.
152. Hancox R.J., Stevens D.A., Adcock I.M. et al. Effects of inhaled beta agonist and corticosteroid treatment on nuclear transcription factors in bronchial mucosa in asthma // Thorax. 1999. - Vol. 54 (6). - P. 488-492.
153. Hart L.A., Krishnan V.L., Adcock I.M., Barnes P.J., Chung K.F. Activation and localization of transcription factor, nuclear factor-KB, in asthma // Am. J. Respir. Crit. Care. Med. 1998. - Vol. 158. - P. 15851592.
154. Hart L., Lim S., Adcock I. et al. Effects of inhaled corticosteroid therapy on expression and DNA-binding activity of nuclear factor-KB in asthma // Am. J. Respir. Crit. Care. Med. 2000. - Vol. 161. - P. 224231.
155. Hazeldine J, Arlt W, Lord JM. Dehydroepiandrosterone as a regulator of immune cell function // J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. 2010. -Vol. 120 (2-3).-P. 127-136.
156. Hoizwarth M.A., Cunningham L.A., Kleitman N. The role of adrenal nerves in the regulation of adrenocortical functions // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1987.-Vol. 512.-P. 449-464.
157. Ignatowski T.A., Gallant S., Spengler R.N. Temporal regulation by adrenergic receptor stimulation of macrophage (M phi)-derived tumor necrosis factor (TNF) production post-LPS challenge. // J. Neuroimmunol. -1996. Vol. 65. - P. 107-117.
158. Imhof A., Wolffe A.P. Transcription: gene control by targeted his-tone acetylation // Curr. Biol. 1998. - Vol. 8. - P. 422-424.
159. Irusen E.M. Glucocorticosteroids and the glucocorticosteroid receptor in asthma: answer for today and tomorrow // Current Allergy & Clin. Immunol. 2003. - Vol.16 (1). - P. 3-5.
160. Ismail N., Bretscher P.A. The Thl/Th2 nature of concurrent immune responses to unrelated antigens can be independent // J. Immunol. 1999. -Vol. 163 (9). - P. 4842-4850.
161. Ismaili N., Garabedian M.J. Modulation of glucocorticoid receptor function via phosphorylation // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2004. - Vol. 1024. -P. 86-101.
162. Ito K., Barnes P.J., Adcock I.M. Glucocorticoid receptor recruitment of his-tone deacetylase 2 inhibits IL-ip-induced histone H4 acetylation on lysines 8 and 12 // Mol. Cell. Biol. 2000. - Vol. 20. - P. 6891-6903.
163. Ito K., Jazrawi E., Cosio B. et al. p65-activated histone acetyltrans-ferase activity is repressed by glucocorticoids: mifepristone fails to recruit HDAC2 to the p65/HAT complex // J. Biol. Chem. 2001. - Vol. 276. - P. 30208-30215.
164. Janknecht R., Hunter T. Transcription. A growing coactivator network//Nature. 1996. - Vol. 383 (6595). - P. 22-23.
165. Jerne N.K., Nordin A.A. Plaque formation in agar by single antibody-producing cells // Science. 1963. - Vol. 140 (3365). - P. 405-405.
166. Johnson M. Interactions between corticosteroids and beta2-agonists in asthma and chronic obstructive pulmonary disease // Proc. Am. Thorac. Soc. 2004. - Vol. 1(3). - P. 200-206.
167. Johnson J.D., Cortez V., Kennedy S.L. et al. Role of central beta-adrenergic receptors in regulating proinflammatory cytokine responses to a peripheral bacterial challenge // Brain Behav. Immun. 2008. - Vol. -22(7). - P. 1078-1086.
168. Kaczmarczyk-Sedlak I., Cegie U., Nowinska B., Folwarczna J. Effects of catecholamines on the intramedullary pressure in the femur in rats with prednisoloneinduced osteoporosis // Brain Behav. Immun. — 2006 -Vol. 58. P. 240-250.
169. Kavelaars A. Regulated expression of alpha-1 adrenergic receptors in the immune system // Brain Behav. Immun. 2002. - Vol. 16. - P. 799807.
170. Keeney D.S., Jenkins C.M., Waterman M.R. Developmentally regulated expression of adrenal 17 alpha-hydroxylase cytochrome P450 in the mouse embryo // Endocrinology. 1995. - Vol. 136 (11). - P. 4872-4879.
171. Kendall E.C. Nobel Lecture, December 11, 1950: The development of cortisone as a therapeutic agent // Nobel Lectures, Physiology or Medicine 1942-1962. Elsevier Publishing Company, Amsterdam, 1964. - P. 270-288.
172. Kent S., Bluthe R.M., Dantzer R. et al. Different receptor mechanisms mediate the pyrogenic and behavioral effects of interleukin 1 // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. - Vol. 89. - P. 9117-9120.
173. Kleitman N., Holzwarth M.A. Catecholaminergic innervation of the rat adrenal cortex // Cell. Tissue Res. 1985. - Vol. 241 (1). - P. 139-147.
174. Kobilka B.K. G Protein Coupled Receptor Structure and Activation // Biochim. Biophys. Acta. 2007. - Vol. 1768 (4). - P. 794-807.
175. Kohm A.P., Sanders V.M. Norepinephrine and P2~adrenergic receptor stimulation regulate CD4+ T and B lymphocyte function in vitro and in vivo II Pharmacol. Rev. 2001. - Vol. 53 (4). - P. 487-525.
176. Kruit J.P., van der Gaag R., Broersma L., Kijlstra. Autoimmunity against corneal antigens. I. Isolation of a soluble 54 kD corneal epithelium antigen // Curr. Eye Res. 1986. - Vol. 5. - P. 313-320.
177. Kurihara I., Shibata H., Suzuki T., et al. Expression and regulation of nuclear receptor coactivators in glucocorticoid action // Mol. Cell. Endocrinol. 2002. - Vol. 189.-P. 181-189.
178. Lasa M., Abraham S.M., Boucheron C., Saklatvala J., Clark A.R.
179. Dexamethasone causes sustained expression of mitogen-activated protein kinase (MAPK) phosphatase 1 and phosphatase-mediated inhibition of MAPK p38 // Mol. Cell. Biol. 2002. - Vol. 22. - P. 7802-7811.
180. Li X., Wong J., Tsai S.Y. et al. Progesterone and glucocorticoid receptors recruit distinct coactivator complexes and promote distinct patterns of local chromatin modification // Mol. Cell. Biol. 2003. - Vol. 23. - P. 3763-3773.
181. Liew F.Y. Regulation of delayed type hypersensitivity 1. T suppressor cells for delayed type hypersensitivity to sheep erythrocytes in mice // Eur. J. Immunol. 1977. - Vol. 7 (10). - P. 714-718.
182. Liew F.Y. TH1 and Th2 cells: a historical perspective // Nat. Rev. Immunol. 2002. - Vol. 2(1).- P. 55-60.
183. Liew F.Y., Howard J.G. Regulation of delayed-type hypersensitivity V. Suppressor cell memory in antigen-specific suppression of delayed-type hypersensitivity to sheep erythrocytes // Eur. J. Immunol. — 1980. Vol. 10 (12). - P. 937-943.
184. Lloyd-MacGilp S.A., Nelson S.M., Florin M. et al. 110-Hydroxysteroid dehydrogenase and corticosteroid action in lyon hypertensive rats// Hypertension. 1999. - Vol. 34. - P. 1123-1128.
185. Locksley R.M. Nine lives: plasticity among T helper cell subsets // J. Exp. Med. 2009. - Vol. 206 (8). - P. 1643-1646.
186. Long F., Wang Y.X., Liu L. et al. Rapid nongenomic inhibitory effects of glucocorticoids on phagocytosis and superoxide anion production by macrophages // Steroids. 2005. - Vol. 70 (1). - P. 55-61.
187. Macho L., Rovensky J., Kvetnansky R. et al. Hormone response to stress in rat strains of different susceptibility to immunologic challenge // Endocrine Regulations. 2008. - Vol. 42. - P. 23-28.
188. Madden K.S. Catecholamines, sympathetic innervation, and immunity // Brain Behav. Immun. 2003. - Vol. 17 (1). - P. 5-10.
189. Madden, K.S., Felten D.L. Experimental basis for neural-immune interactions // Physiological Rev. 1995. - Vol. 75 (1). - P. 77-106.
190. Maier S.F. Bidirectional immune-brain communication: implications for understanding, stress pain and cognitions // Brain Behav. Immun. — 2003. Vol. 17 (2). - P. 69-85.
191. Maier S.F., Goehler L.E., Fleshner M. et al. The role of the vagus nerve in cytokine-to-brain communication // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1998. -Vol. 840.-P. 289-300.
192. Marone G., Condorelli M. Modulation of beta-adrenergic receptor by hydrocortisone in human polymorphonuclear leukocytes // Ric. Clin. Lab. 1982. - Vol. 12 (3). - P. 469-477.
193. Marone G., Lichtenstein L.M., Plaut M. Hydrocortisone and human lymphocytes: increases in cyclic adenosine 3', 5'-monophosphate and potentiation of adenylate cyclase-activating agents // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1980. - Vol. 215 (2). - P. 469-478.
194. Martin-Fontecha A., Sebastiani S., Hopken U.E. et al. Regulation of dendritic cell migration to the draining lymph node: impact on T lymphocyte traffic and priming // J. Exp. Med. 2003. - Vol. 198(4). - P. 615621.
195. McEwen B.S., Biron C.A., Brunson K.W. et al. The role of adreno-corticoids as modulators of immune function in health and disease: neural, endocrine and immune interactions // Brain Res. Brain Res. Rev. 1997. -Vol. 23(1-2).-P. 79-133.
196. McGhee J.R., Lamm M.E., Strober W. Mucosal immune responses //
197. Anoverview. In Handbook of Mucosal Immunology. — San Diego: Academic Press. 1999. - P. 485-506.
198. McMaster A., Chambers T., Meng Q.J. et al. Real-time analysis of gene regulation by glucocorticoid hormones // J. Endocrinol. — 2008. -Vol. 197 (2).-P. 205-211.
199. Medzhitov R. Origin and physiological roles of inflammation // Nature. 2008. - Vol. 454 (7203). - P. 428-435.
200. Meltzer J.C., MacNeil B.J., Sanders V. et al. Stress-induced suppression of in vivo splenic cytokine production in the rat by neural and hormonal mechanisms // Brain Behav. Immun. — 2004. — Vol. 18 — P. 262-273.
201. Michel M.C., Knapp J., Ratjen H. Sensitization by dexamethasone of lymphocyte cyclic AMP formation: evidence for increased function of the adenylyl cyclase catalyst // Br. J. Pharmacol. 1994. - Vol. 113 (1). - P. 240-246.
202. Mignini F., Streccioni V., Amenta F. Autonomic innervation of immune organs and neuroimmune modulation // Auton. Autacoid. Pharmacol. 2003. - Vol. 23(1). - P. 1-25.
203. Millar R.P., Newton C.L. The year in G protein-coupled receptor research // Mol. Endocrinol. -2010. Vol. 24 (1). - P. 261-274.
204. Miller A.H., Spencer R.L., Stein M., McEwen B.S. Adrenal steroid receptor binding in spleen and thymus after stress or dexamethasone // Am. J. Physiol. 1990. - Vol. 259 (3). - P. 405-412.
205. Miller A.H., Spencer R.L., Trestman R.L. et al. Adrenal steroid receptor activation in vivo and immune function // Am. J. Physiol. — 1991. -Vol. 261 (1).-P.126-131.
206. Mills K.H.G. Regulatory T cells: friend or foe in immunity to infection? // Nat. Rev. Immunol. 2004. - Vol. 4 (11). - P. 841-855.
207. Missaghian E., Kempna P., Dick B. et al. Role of DNA methylation in the tissue-specific expression of the CYP17A1 gene for steroidogenesis in rodents // J. Endocrinol. 2009. - Vol. 202 (1). - P. 99-109.
208. Mittelstadt P.R., Ashwell J.D. Inhibition of AP-1 by the glucocorticoid-inducible protein GILZ // J. Biol. Chem. 2001. - Vol. 276. -P.29603-29610.
209. Moens A.L., Yang R., Watts V.L., Barouch L.A. Beta 3-adrenoreceptor regulation of nitric oxide in the cardiovascular system // J. Mol. Cell. Cardiol. 2010. - Vol. 48 (6). - P. 1088-1095.
210. Moynihan J., Kruszewska B., Madden K., Callahan T. Sympathetic nervous system regulation of immunity // J. Neuroimmunol. 2004. - Vol. 147 (1-2). -P. 87-90.
211. Munck A., Foley R. Activated and non-activated glucocorticoid-receptor complexes in rat thymus cells: kinetics of formation and relation to steroid structure // J. Steroid Biochem. 1980. - Vol. 12. - P. 225-230.
212. Munck A., Guyre P.M., Holbrook N.J. Physiological functions of glucocorticoids in stress and their relation to pharmacological actions // Endocr. Rev. 1984. - Vol. 5(1).- P. 25-44.
213. Munck A., Naray-Fejes-Tyth A. Glucocorticoids and stress: permissive and suppressive actions // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1994. - Vol. 746. -P. 115-130; discussion P. 131-133.
214. Nance D.M., Hopkins D.A., Bieger D. Reinvestigation of the innervation of the thymus gland in mice and rats // Brain Behav. Immun. -1987.-Vol. l.-P. 134-147.
215. Nance D., Sanders V. Autonomic innervation and regulation of the immune system // Brain Behav. Immun. 2007. - Vol. 21 (6). - P. 736
216. Nelson C.J., Lysle D.T. Severity, time, and beta-adrenergic receptor involvement in surgery-induced immune alterations // J. Surg. Res. 1998. -Vol. 80 (2). -P.l 15-122.
217. Nielson C.P., Hadjokas N.E. Beta-adrenoceptor agonists block corticosteroid inhibition in eosinophils // Am. J. Respir. Crit. Care Med. -1998.-Vol. 157(1).-P. 184-191.
218. O'Connor T.M., O'Halloran D.J., Shanahan F. The stress response and the hypothalamic-pituitary-adrenal axis: from molecule to melancholia // Q. J. Med. 2000. - Vol. 93. - P. 323-333.
219. Ogryzko V.V., Schiltz R.L., Russanova V. et al. The transcriptional coactivators p300 and CBP are histone acetyltransferases // Cell. 1996. -Vol. 87.-P. 953-959.
220. Orson F.M., Grayson J., Pike S. et al. T cell-replacing factor for glu-cocorticosteroid-induced immunoglobulin production. A unique steroid-dependent cytokine //J. Exp. Med. 1983. - Vol. 158 (5). - P. 1473-1482.
221. Pardridge W.M., Sakiyama R., Fierer G. Blood-brain barrier transport and brain sequestration of propranolol and lidocaine // Am. J. Physiol. 1984. - Vol. 247(3 Pt 2). - P. R582-588.
222. Pavlov V.A. Cholinergic modulation of inflammation // Int. J. Clin. Exp. Med. 2008. - Vol. 1 (3). - P. 203-212.
223. Pavlov V.A., Parrish W.R., Rosas-Ballina M. et al. Brain acetylcholinesterase activity controls systemic cytokine levels through the cholinergic anti-inflammatory pathway // Brain Behav. Immun. — 2009. — Vol. 23 (1).-P. 41-45.
224. Pavlov V.A., Tracey K.J. The cholinergic anti-inflammatory pathway // Brain Behav. Immun. 2005. - Vol. 19 (6). - P. 493-499.
225. Pavlov V.A., Wang H., Czura C.J. et al. The cholinergic antiinflammatory pathway: a missing link in neuroimmunomodulation // Molecular Medicine. 2003. - Vol. 9 (5-8). - P. 125-134.
226. Pedersen B.K., Hoffman-Goetz L. Exercise and the immune system: regulation, integration, and adaptation // Physiol. Rev. — 2000. — Vol. 80 (3).-P. 1055-1081.
227. Peterson C.L. HDAC's at work: everyone doing their part // Mol. Cell. 2002. - Vol. 9. - P. 921-922.
228. Pignatelli D., Xiao F., Gouveia A.M. et al. Adrenarche in the rat //J. Endocrinol. 2006. - Vol. 191 (1). - P. 301-308.
229. Privalsky ML. The role of corepressors in transcriptional regulation by nuclear hormone receptors // Annu. Rev. Physiol. — 2004. Vol. 66. — P. 315-360.
230. Pruett S.B. Stress and the immune-brain communication // Patho-physiol.-2003.-Vol. 9.-P. 133-153.
231. Pryjma J., Flad H.D., Mytar B. et al. Effect of dexamethasone on mechanisms responsible for regulation of polyclonal B-cell response // Int. J. Immunopharmacol. 1989. - Vol. 11 (8). - P. 871-877.
232. Rao A., Luo C., Hogan P.G. Transcription factors of the NFAT family: regulation and function // Annu. Rev. Immunol. 1997. - Vol. 15. - P. 707-747.
233. Reichardt H.M., Tuckermann J.P., Gottlicher M., et al. Repression of inflammatory responses in the absence of DNA binding by the glucocorticoid receptor//EMBO J.-2001.-Vol. 20.-P. 7168-7173.
234. Reichstein T. Nobel Lecture, December 11, 1950: Chemistry of the adrenal cortex hormones // Nobel Lectures, Physiology or Medicine 19421962. Elsevier Publishing Company, Amsterdam, 1964. - P. 291-308.
235. Reul J.M., DeKloet E.R. Two receptor systems for corticosterone in rat brain: microdistribution and differential occupation // Endocrinology. -1985.-Vol. 117(6).-P. 2505-2511.
236. Riether C., Kavelaars A., Wirth T. et al. Stimulation of p 2-adrenergic receptors inhibits calcineurin activity in CD4(+) T cells via PKA-AKAP interaction // Brain Behav. Immun. 2011. - Vol. 25(1). - P. 59-66.
237. Robinzon B., Cutolo M. Should dehydroepiandrosterone replacement therapy be provided with glucocorticoids? // Rheumatology (Oxford). -1999. Vol. 38 (6). - P. 488-495.
238. Rogausch H., Bock T., Voigt K.H., Besedovsky H. The sympathetic control of blood supply is different in the spleen and lymph nodes // Neuroimmunomodulation. 2004. - Vol. 11 (1). - P. 58-64.
239. Roth S.Y., Denu J.M., Allis C.D. Histone acetyltransferases // Annu. Rev. Biochem.- 2001. -Vol. 70.-P. 81-120.
240. Rupprecht M., Rupprecht R., Wodarz N. et al. In vivo and in vitro effects of glucocorticoids on lectin-induced blastogenesis in atopic dermatitis. // Arch. Dermatol. Res. 1991. -Vol. 283 (5). - P. 292-296.
241. Rupprecht R., Wodarz N., Kornhuber J. et al. In vivo and in vitro effects of glucocorticoids on lymphocyte proliferation in man: relationship to glucocorticoid receptors. // Neuropsychobiology. 1990-1991. - Vol. 24 (2).-P. 61-66.
242. Sanders V.M. Interdisciplinary research: Noradrenergic regulation of adaptive immunity // Brain Behav. Immun. 2006. - Vol. 20 (1). - P. 1-8.
243. Sanders V.M., Straub R.H. Norepinephrine, the p-adrenergic receptor, and immunity // Brain Behav. Immun. 2002. - V. 16 (4). - P. 290332.
244. Sapolsky R.M., Romero L.M., Munck A.U. How do glucocorticoids influence stress responses? Integrating permissive, suppressive, stimulatory, and preparative actions // Endocr. Rev. — 2000. — Vol. 21 (1). P. 55-89.
245. Scarceriaux V., .Pelaprat D., Forgez P. et al. Effects of dexa-methasone and forskolin on neurotensin production in rat hypothalamic cultures // Endocrinology. 1995. - Vol. 136 (6). - P. 2554-2560.
246. Schmidt P., Holsboer F., Spengler D. p2-Adrenergic receptors potentiate glucocorticoid receptor transactivation via G protein Py-subunits and the phosphoinositide 3-kinase pathway // Mol. Endocrinol. — 2001. Vol. 15 (4).-P. 553-564.
247. Schneider A.M., Koven N.S., Lombardo K.A. et al. Beta-adrenergic receptor blockade by propranolol enhances retention in a multitrial passive-avoidance procedure // Behav. Neurosci. — 2000. Vol. 114 (6). — P. 1256-1260.
248. Selye H. A syndrome produced by diverse nocuous agents // Nature. 1936. - Vol. 138. - P. 32-32.
249. Selye H. Studies on adaptation // Endocrinology. 1937. - Vol. 21 (2).-P. 169-188.
250. Selye H. Forty years of stress research: principal remaining problems and misconceptions // Can. Med. Assoc. J. 1976. - Vol. 115. - P. 53-56.
251. Shakhar G., Ben-Eliyahu S. In vivo P-adrenergic stimulation suppresses natural killer activity and compromises resistance to tumor metastasis in rats // J. Immunol. 1998. - Vol. 160 (7). - P. 3251-3258.
252. Smith E.M. Neuropeptides as signal molecules in common with leukocytes and the hypothalamic-pituitary-adrenal axis // Brain Behav. Imj mun. 2008. - Vol. 22 (1). - P. 3-14.
253. Spencer R.L., Miller A.H., Stein M., McEwen B.S. Corticosterone regulation of type I and type II adrenal steroid receptors in brain, pituitary, and immune tissue // Brain Res. 1991. - Vol. 549 (2). - P. 236-246.
254. Spencer R.L., Young E.A., Choo P.H., McEwen B.S. Adrenal steroid type I and II receptor binding: estimates of in vivo receptor number, occupancy, and activation with varying level of steroid // Brain Res. 1990.1. Vol. 514(1).-P. 37-48.
255. Spengler R.N., Chensue S.W., Giacherio D.A. et al. Endogenous norepinephrine regulates tumor necrosis factor-a production from macrophages in vitro II J. Immunol. 1994. - Vol 152 (6). - P.3024-3031.
256. Straub R.H., Westermann J., Scholmerich J., Falk W. Dialogue between the CNS and the immune system in lymphoid organs // Immunol. Today. 1998. - Vol. 19 (9). - P. 409-413.
257. Tata J.R. Signalling through nuclear receptors // Nature Rev. Mol. Cell. Biol.-2002.-Vol. 3 (9).-P. 702-710.
258. Taylor D.R., Hancox R.J. Interactions between corticosteroids and beta agonists // Thorax. 2000. - Vol. 55 (7). - P. 595-602.
259. Thiagalingam S, Cheng KH, Lee HJ, et al. Histone deacetylases: unique players in shaping the epigenetic histone code // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2003. -Vol. 983. - P. 84-100.
260. Tolone G., Bonasera L., Sajeva R. Hydrocortisone increases the responsiveness of mast cells to beta-adrenergic agonists by an action distal to the beta-adrenoreceptors // Br. J. Exp. Pathol. 1979. - Vol. 60 (3). - P. 269-275.
261. Tomei A.A. Siegert S., Britschgi M.R. et al, Fluid flow regulates stromal cell organization and CCL21 expression in a tissue-engineeredlymph node microenvironment // J. Immunol. 2009. — Vol. 183 (7). - P. 4273-4283.
262. Tonkoff W. Zur Kenntniss der Nerven der Lymphadrusen // Anat. Anz. 1899. - Vol. 16 (17-18). - P. 456-459.
263. Tracey K.J. The inflammatory reflex // Nature. 2002. - Vol. 420 (6917).-P. 853-859.
264. Tse R., Marroquin B.A., Dorscheid D.R., White S.R. Beta-adrenergic agonists inhibit corticosteroid-induced apoptosis of airway epithelial cells // Am. J. Physiol. Lung Cell. Mol. Physiol. 2003. - Vol. 285 (2). - P. 393-404.
265. Tseng R.J., Padgett D.A., Dhabhar F.S., Engler H., Sheridan J.F. Stress-induced modulation of NK activity during influenza viral infection: role of glucocorticoids and opioids // Brain Behav. Immun. — 2005. Vol. 19(2).-P. 153-164.
266. Turnbull A.V., Rivier C.L. Regulation of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis by cytokines: actions and mechanisms of action // Physiol. Rev. 1999. - Vol. 79 (1). - P. 1-71.
267. Van der Burg B., van der Saag P.T. Nuclear factor-kappa-B/steroid hormone receptor interactions as a functional basis of anti-inflammatory action of steroids in reproductive organs // Mol. Hum. Reprod. 1996. -Vol. 2(6).-P. 433-438.
268. Van der Saag P.T., Caldenhoven E., van de Stolpe A. Molecular mechanisms of steroid action: a novel type of cross-talk between glucocorticoids and NF-kappa B transcription factors // Eur. Respir. J. 1996. -Vol. 22.-P. 146-153.
269. Wan Y.Y., Flavell R.A. How diverse CD4 effector T cells and their functions // J. Mol. Cell Biology. - 2009. - Advance Access published online on May 28, 2009. - P. 1-16.
270. Warner A, Ovadia H, Tarcic N., Weidenfeld J. The effect of restraintstress on glucocorticoid receptors in mouse spleen lymphocytes: involvement of the sympathetic nervous system // Neuroimmunomodulation. — 2010. Vol. 17 (5). - P. 298-304.
271. Wen A.Y., Sakamoto K.M., Miller L.S.The role of the transcription factor CREB in immune function // J. Immunol. 2010. - Vol. 185 (11). -P. 6413-6419.
272. Whisler R.L., Stobo J.D. Heterogeneity of murine regulatory T cells. 1. Subpopulations of amplifier and suppressor T cells // J. Exp. Med. -1976. Vol. 144 (2). - P. 398-413.
273. Whisler R.L., Stobo J.D. Suppression of humoral and delayed hypersensitivity responses by distinct T cell subpopulations // J. Immunol: — 1978.-Vol. 121 (2).-P: 539-542.
274. Zhou M., Ouyang W. The function role of GATA-3 in Thl and Th2 differentiation // Immunol. Res. 2003. - Vol. 28. - P.25-37.
275. Zimecki M., Kapp J.A., Wieczorek Z. GD4+ T cells from mice primed for humoral immunity to sheep erythrocytes (SRBC) specifically inhibit cell-mediated immunity and vice versa // Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz). 1995. - Vol. 43 (5-6). - P. 259-264.
276. Zotos D., Coquet J.M., Zhang Y. et al. IL-21 regulates germinal center B cell differentiation and proliferation through a B cell-intrinsic mechanism // J. Exp. Med. 2010. - Vol. 207(2). - P. 365-378.