Автореферат и диссертация по фармакологии (15.00.02) на тему:Изучение токсичности и фармакологической активности препаратов на основе лекарственного растительного сырья и новых экстрагентов
Автореферат диссертации по фармакологии на тему Изучение токсичности и фармакологической активности препаратов на основе лекарственного растительного сырья и новых экстрагентов
На правах рукописи
\ ' РГВ од
i I и ¿up inn* Стреляева Ангелина Вадимовна
ИЗУЧЕНИЕ ТОКСИЧНОСТИ И ФАРМАКОЛОГИЧЕСКОЙ
АКТИВНОСТИ ПРЕПАРАТОВ НА ОСНОВЕ ЛЕКАРСТВЕННОГО РАСТИТЕЛЬНОГО СЫРЬЯ И НОВЫХ
ЭКСТРАГЕНТОВ
Специальности: 15.00.02 - фармацевтическая химия, фармакогнозия; 14.00.25 - фармакология, клиническая фармакология
Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора фармацевтических наук
Москва - 2003
Работа выполнена в Московской медицинской академии им. И.М. Сеченова, Самаркандском государственном медицинском институте им. акад. ИЛ.Павлова.
Научные консультанты:
академик РАО, доктор медицинских наук, профессор Н.В. Чебышев, доктор фармацевтических наук, профессор И.А. Самылина.
Официальные оппоненты:
доктор фармацевтических наук, профессор Д.А. Муравьева, доктор медицинских наук, профессор Р.Д. Сейфулла, доктор медицинских, профессор H.A. Романенко.
Ведущая организация: Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений РАСХН.
Защита диссертации состоится 17 марта 2003 года в 15 часов на заседании Диссертационного совета Д.208.040.09 в Московской медицинской академии им. I-LM. Сеченова по адресу: 121019.. Москва. Никитский бульвар, д. 13.
С диссертацией можно ознакомиться в Центральной научной медицинской библиотеке ГОУ ВПО Московской медицинской академии им. И.М. Сеченова (117998, Москва, Нахимовский проспект, 49).
Автореферат разослан " Т " января 2003 г.
Ученый секретарь Диссертационного совета Д.208.040.09 доктор фармацевтических наук
Н.П. Садчикова
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
-------Актуальность-проблемы. Тысячелетиями человечество использует лекарственные растения для лечения различных заболеваний. Обилие синтетических лекарственных препаратов, ставших причиной аллергических и хронических заболеваний, привели в настоящее время к возрастанию интереса к лекарственным растениям. Препараты лекарственных растений занимают значительный удельный вес в общем объеме лекарственных средств.
Перспективные лекарственные растения, на основе которых созданы препараты широкого спектра действия, заслуживают особого внимания исследователей.
Грецкий орех (Juglans regia L.) - лекарственное растение, которому по-свяшсно более 10 тыс. литературных источников, отражающих использование его в народной медицине и ветеринарии. Применяется гомеопатический препарат югланс, изготовленный из листьев грецкого ореха (Кент Л.Т., 1997).
По данным E.Barbas et al. (1993), D.Chenevard et al. (1994), Р.Э.Лойко и Т.С.Ширко (1994), З.А. Троян и соавт. (1999), плоды, листья грецкого ореха содержат большое количество биологически активных веществ, в том числе витамины, жирные кислоты, макро- и микроэлементы. Фармацевтическая наука еще недостаточно использовала лекарственные возможности этого растения.
Л.Г.Маленков и соавт. (1995) запатентовали препарат тодикамп, полученный из плодов грецкого ореха молочно-восковой спелости с помощью нефтяной фракции лепефр, представляющей собой часть нефти, выкипающей при температуре до 150"С. Еще до этого более 30 лет керосиновый экстракт зеленых плодов грецкого ореха успешно применялся в народной медицине для лечения радикулита, простатита, цирроза печени, иммунодефицита, опухолей (Кашницкий С., 1990).
В настоящее время используются лекарственные препараты, полученные из нефтепродуктов. Так, например, вазелиновое масло - продукт очищенной нефти, применяется внутрь детям и взрослым при запорах (Машков-ский М.Д., 1989, 1999; Харкевич Д.А., 1993, 1999). В России и других странах применяется препарат петролеум, изготовленный из нефти (Шаретт Ж., 1997, Глаз В.Г., 1998), обладающий широким спектром фармакологического действия. Петролеум используется с 1913 г. (Френкель Л.Д., 1913, 1993) без побочного и токсического действия, а в настоящее время свободно реализуется в аптеках России.
По данным Г.Г.Онищенко (2000), в России ежегодно страдают паразитарными болезнями более одного млп людей. Такое заболевание как эхнно-коккоз сопровождается вторичным иммунодефицитом и функциональной недостаточностью печени (Гостищев В.К. и др., 1999, 2000, Бирюков Ю.В. и др., 1999-2002, Чебышев Н.В. и др., 1998-2002). Отсутствие достаточного количества отечественных препаратов на основе лекарственного раститель-
ного сырья, обладающих противоэхинококкозным, гепатопротекторным, им-мунотропным свойствами, делают проблему актуальной.
В Таджикистане в 90-х годах был изготовлен тодикамп, который поступил в реализацию в Узбекистане. Тодикамп и чеблин-СК-1 (ЧСК-1), полученный нами и представляющий собой керосиновый экстракт из зеленых плодов грецкого ореха молочно-восковой спелости, также стали использовать при лечении людей и животных. Ситуация не контролировалась медицинской и ветеринарной практикой и наукой. В связи с этим представляется целесообразным изучение токсичности и фармакологической активности препаратов на основе лекарственного растительного сырья и экстрагентов из нефтепродуктов. Требует анализа клиническое испытание тодикампа и ЧСК-1.
Цель исследования. Целью исследования явилось изучение фармакологической активности и токсичности препаратов тодикампа и ЧСК-1, а также других лекарственных средств, изготавливаемых экстрагированием растительного сырья с помощью очищенных нефтепродуктов.
Задачи исследования
1. Изучить химический состав плодов грецкого ореха в процессе созревания для определения оптимальных сроков заготовки сырья.
2. Провести экспериментальное исследование состава углеводородного экстракта зеленых плодов грецкого ореха.
3. Изучить, острую токсичность при внутрижелудочном введении препаратов, полученных из лекарственного растительного сырья с использованием новых экстрагентов.
4. Изучить хроническую токсичность при длительных внутрижелудоч-ных введениях и аппликаций кожи животным тодикампа и ЧСК-1.
5. Определить иммунотоксичность, аллергизирующую способность, эм-бриотоксичность, тератогенность, мутагенность, ДНК-повреждающее действие тодикампа и ЧСК-1.
6. Изучить фармакологическое действие препаратов, полученных из растительного лекарственного сырья с использованием новых экстрагентов:
а) противопаразитарную активность изучаемых препаратов;
б) гепатопротекторное, иммуномодулирующее, противомикробное свойства изучаемых препаратов.
7. Разработать лабораторную модель для коррекции остаточной полости при эхинококкэктомии и применения противопаразитарных средств.
8. Разработать новый метод иммунодиагностики эхинококкозов.
9. Оценить клинические испытания тодикампа и ЧСК-1 в Республике Узбекистан.
10.Разработать рекомендации по использованию результатов исследований.
Научная новизна. Из плодов грецкого ореха в молочно-восковой зрелости на научной основе нами созданы препараты ЧСК—1, чеблин (Чебышев Н.В,, Стреляева А.Вг, Самылина Й.А., Коваленко Ф.П. Способ получения средства для лечения ларвального и стробилярного эхинококкозов чеблин— СК-1 // Пат. РФ № 2136303. Бюл. - 1999. - №25; Чебышев Н.В., Стреляева A.B., Самылина И.А., Коваленко Т.Ф. Способ получения препарата чеблин, обладающего противоаскаридным действием // Пат. РФ № 2136304. Бк>л. — 1999. - №25; Гостищев В.К., Стреляева A.B., Чебышев Н.В. Способ коррекции остаточной полости при эхннококкэктомии у взрослых. - Патент РФ №2177443. - Бюл. - 2002. -- № 1.) и показано, что по выраженности токсических свойств тодикамп и ЧСК-1 классифицировали по К.К.Сидорову (1973) как чалотоксичные и практически нетоксичные (IV и V класс токсичности).
Изучена динамика накопления действующих веществ в плодах грецкого ореха и обоснованы сроки заготовки сырья.
Впервые раскрыты гепатопротекторные, иммуномодулирующие, проти-вомикробные свойства тодикампа и ЧСК—1.
Установлена противогельминтозная, противочесоточная активность тодикампа и ЧСК-1.
Разработан новый метод иммунодиагностики эхинококкоза животных на принципе реакции антигенсвязывания лимфоцитов. В производственных условиях в животноводческих комплексах ветеринарными специалистами апробирована лечебная эффективность препаратов тодикамп и ЧСК-1.
Создана лабораторная модель гидатидозного эхинококкоза животных для разработки способа коррекции остаточной полости при эхшюкоккэкто-мни и использования противопаразитарных средств.
В теоретическом плане создана предпосылка для развития нового направления в фармации по изысканию препаратов растительного сырья с использованием экстрагентов, полученных из нефтепродуктов, подвергнутых тщательной очистке от токсических веществ.
Практическая значимость. Фармакогностическими исследованиями нами установлено, что наибольшее количество биологически активных веществ содержится в зеленых плодах растения в середине мая. На примере препарата ЧСК-1 открывается возможность изготовления ряда лекарственных средств с использованием очищенного авиационного керосина и ленеф-ра. Препараты тодикамп и ЧСК-1 перспективны для использования в медицине и ветеринарии.
Результаты внедрения. Препараты тодикамп и ЧСК-1 использованы в хирургической практике Республики Узбекистан для лечения больных эхи-нококкозом различной локализации, а также для обработки остаточной полости при эхннококкэктомии. В хирургических клиниках СамГосМи разработанный иммунологический метод диагностики эхинококкоза широко при-
меняется для выявления заболевания. Иммунотропные свойства препарате» тодикамп и ЧСК-1 использованы для иммунореабилитации больных.
Результаты исследований внедрены в учебный процесс кафедр обще? биологии, генетики и паразитологии, фармакогнозии, фармакологии с курсов технологии лекарств ММА им. И.М. Сеченова.
Препараты тодикамп и ЧСК-1 апробированы специалистами ветеринарии и животноводства Республики Узбекистан для лечения больных животных.
Положения, выносимые на защиту
1. Изучение состава липофильной и гидрофильной фракций плодое грецкого ореха в динамике накопления биологически активных веществ в процессе созревания.
2. Результаты исследования токсичности тодикампа и ЧСК-1.
3. Фармакологическая активность тодикампа и ЧСК-1 (противогель-минтозная, противочесоточная, гепатопротекторная, иммунотропная, противомикробная).
4. Результаты доклинических экспериментальных исследований тодикампа и ЧСК-1.
Апробация работы. Материалы диссертационной работы доложены на: Республиканской научно-практической конференции с международным участием «Нагноительные заболевания легких и плевры» (Самарканд, 1998); научной конференции, посвященной 80-летию Института медицинской паразитологии и тропической медицины им. Е.И.Марциновского ММА им. И.М.Сеченова (Москва, 2000); VII, VIII и IX Российских национальных конгрессах «Человек и лекарство» (Москва, 2000, 2001, 2002); международной научно-практической конференции «Проблемы эхинококкоза» (Махачкала, 2000); научной конференции «Проблемы эхинококкоза» (Джизак, 2001); научной конференции Научно-исследовательского института медицинской паразитологии им. Л.М.Исаева (Самарканд, 2002); научной конференции Самаркандского государственного медицинского института им. акад. И.П.Павлова (Самарканд, 2002); научных конференциях ММА им. И.М.Сеченова (2000, 2001, 2002).
Связь задач исследования с проблемным планом фармацевтических наук
Диссертационная работа выполнена согласно плану научно-исследовательских работ кафедры фармакогнозии ММА им. И.М.Сеченова по теме «Фармакопгостическое изучение лекарственного растительного сырья, лекарственных сборов, лекарственных форм из сырья и разработка методов их стандартизации с учетом антропогенных факторов» (код темы 0407093) соответствует проблеме № 1006 АМН РФ (номер Государственной регистрации 01-93-000-69-76).
Публикации
По теме диссертации опубликовано 66 работ, в том числе 3 монографии, 3 натента на изобретение; 10 тезисов, 50 статей.
Объем и структура диссертации Диссертационная работа представляет собой рукопись объемом 325 страниц. Состоят из введения, семи глав собственных исследований, обсуждения результатов, выводов и списка литературы. Работа иллюстрирована 25 рисунками. Список литературы включает 320 источников на русском языке и 122 - на иностранных языках.
Приношу глубокую благодарность академику Н.В.Чебышеву, профессору И.А.Самылпной за консультативную помощь в рпботе над диссертацией. Очень признательна акад. РАН и РАМН, профессору, ректору ММА им. И.М.Сеченова М.А.Пальцеву и ректору РГМУ, акад. РАМН, профессору В.Н.Ярыгииу, акад. РАМН, профессору А.П.Арзамасцеву за возможность представить диссертацию к защите в ММА им. И.М.Сеченова, фармакологам: члену-корреспонденту РАМН, проф. В.П.Фисенко, проф. Н.Д.Бунятян, Т.И.Муравьевой за совместные публикации работ и их редакцию.
Выражаю благодарность ученым: А.Г. Маленкову, Л.Ф. Шашкиной, М.И. Голубевой, А.К.Габченко, Л.А.Радкевич, Г.Н.Золотаревой, Г.П.Кудриной, Г.В.Танановой, Л.В.Нечушкиной зз оказанную помощь в проведении исследований, а также хирургам: акад. В.К.Гостищеву, профессорам Ю.В.Бирюкову, С.А.Дадвани, А.С.Саламову, Б.У.Сабирову, А.М.Шамсиеву за совместные работы в области эхинококкоза и проф. В.П.Кротову, В.И.Королькову за совместную работу по клинико-физиологическому состоянию обезьян под воздействием препаратов. За оказанную помощь в экспериментах выражаю благодарность химику Л.Г.Нехамкиной, иммунологам Г.П.Кудриной, С.К.Абилеву.
Мы особо признательны акад. А.Г.Маленкову и соавторам за клиническое испытание тодикампа при лечении больных спортсменов и акад. Б.С.Турсунову, возглавившему комиссию по клиническому испытанию препаратов при лечении эхинококкоза и других паразитарных заболеваний.
ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материалы и методы исследований
Обследовано 11 серий зеленых плодов, а также семян грецкого ореха (Juglans regia L.) по методикам, изложенным в Государственной фармакопеи (ГФ X, XI). По рекомендациям и методикам, приводимыми А.И.Ермаковой (1972), проводили подготовку проб, сухое о золение, определение содержания сухого вещества, жирного масла (метод обезжиренного остатка), белкового азота (по Кьелдалю), фосфора и калия, Сахаров. На приборе "Kjeltec" после
мокрого озоления определяли общий азот. С помощью спектрофотометра "Плазма-100" атомноэмиссионным методом выявлялся минеральный состав. С целью количественного определения свободных и связанных аминокислот выполняли гидролиз сухой обезжиренной навески 6н HCl (1:100) в течение 24 ч при температуре 105°С, затем выводили аминокислотный спектр с использованием анализатора ААА-39.
Из плодов грецкого ореха в стадии молочной зрелости нами были получены препараты тодикамп, ЧСК-1 и чеблин (Стреляева A.B., Маленков А.Г., Чебышев Н.В., Самылина И.А., 1995, 1999).
Тодикамп изготавливали следующим способом. Плоды грецких орехов в стадии молочно-восковой зрелости измельчали до размера частиц в 1 мм и экстрагировали фракцией из нефтяного сырья с низким содержанием углеводородов при соотношении сырье - экстрагент (1:3) и интенсивном перемешивании.
Тодикамп представляет собой прозрачную жидкость от светло-желтого до насыщенного желтого цвета с характерным запахом. Кислотность от 0,1 до 0,3, не раствор™ в воде и спирте, без особого вкуса. Плотность от 0,720 до 0,750 г/см3. Стоек при хранении. Срок хранения 3 года.
Методика получения препарата ЧСК-1 отличается от способа получения препарата тодикамп тем, что в качестве экстрагента используется авиационный керосин, прошедший предварительную двухступенчатую очистку.
Методика получения препарата чеблин отличается от предыдущей тем, что добавляется подсолнечное масло в конечный продукт до общего содержания жирных масел -11%. Чеблин представляет собой прозрачную желтую жидкость с резким специфическим запахом, практически не растворим в воде, этиловом спирте, растворим в толуоле, хлороформе, гексане, с равным объемом ацетона образует осадок, растворимый в избытке ацетона. Физико-химические показатели: сухой остаток 0,63-0,85; вязкость 1,60-1,92; кислотное число 0,37-0,52; йодное число 1,64-1,86; эфирное число 72,62-78,49; число омыления 73,0-78,49; содержание каротиноидов (в мг%) 0,47-0,62 в пересчете на бета-каротин, содержание хлорофилла (мг%) 0,12-0,19; плотность от 0,750 до 0,770 г/см3. Стоек при хранении, не портится в течение 3 лет.
Методика получения препарата садлин-СК-3 отличается от способа приготовления препарата ЧСК-1 тем, что лекарственным сырьем служат корни аконита (Akonitum napellus L.) в соотношении 1:10(1 часть аконита, 10 -экстрагента). Как при получении препаратов ЧСК-1 и чеблин, так и при изготовлении препарата садлин-СК-3 (СК-3) в качестве экстрагента использован керосин TC-I ГОСТ 10227 (1986 г). Была изучена с использованием современных методов токсичность этой марки авиационного керосина, что дало возможность считать его малотоксичным веществом.
Препарат СК-4 получают таким же способом, как и ЧСК-1, но в качестве сырья используют плоды горького миндаля Amygdalus amara L. в стадии молочной зрелости.
Препарат СК-5 получают таким же способом, как и ЧСК-1, но в качестве лекарственного сырья используются плоды сладкого миндаля Amygdalus . dulcis L. в стадии молочной зрелости.
Препарат СК-6 получают таким же способом, как и ЧСК-l, но в качестве лекарственного сырья используются свежие листья и зонтик с семенами в стадии молочной зрелости ферулы вонючей (Ferula assa-foetida L.).
По методикам Т.В.Пастушенко и соавт. (1985), М.Д.Беленького (1963), J.T.Litchfield, F.J.Wilcoxon (1943), Б.М.Штабского и соавт. (1980) изучена, подсчитана токсичность препаратов группы СК. При изучении различных свойств препаратов мы придерживались статей "Руководства по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ" (М„ 2000).
Коэффициент кумуляции (1СШТ1) рассчитывали по формуле:
= ад5С
где ЬД,ос - значение летальной дозы, установленной в эксперименте по изучению хронической токсичности;
ЬДбоас- значение летальной дозы, установленной в эксперименте по изучению острой токсичности.
Химический состав зеленых плодов грецкого ореха Нами по общепринятым методикам было исследовано 12 образцов зеленых плодов грецкого ореха на разных стадиях молочной зрелости. Использовано 12 деревьев 40-летнего возраста сорта, созданного учеными Института виноградарства и садоводства им. Шредера, с которых плоды срывались с 4 по 9 мая (первый сбор), с 16 - 19 мая (второй сбор), с 25 по 28 мая (третий сбор), с 1 по 7 июля (четвертый сбор), с 1 по 5 октября (пятый сбор).
Данные, представленные в табл.1, показывают, что наименьшее количество липофильных и гидрофильных биологически активных веществ содержится в плодах грецкого ореха в первой декаде мая. По мере созревания плодов идет увеличение количества этих веществ.
Содержание золы и некоторых веществ может несколько отличаться в зависимости от года сбора. Так, химический состав зеленых плодов ореха, собранных в первой декаде мая 1998 года (табл.1), несколько отличается по содержанию золы урожая 1999 года (табл.2). Количество минеральных веществ в плодах грецкого ореха в зависимости от времени года также подвергалось изменениям (табл. 2 и рис.1). Наибольшее количество золы, общего азота, фосфора и калия содержалось в семенах зрелого ореха в первых числах октября, наименьшее - в первой декаде мая. Микроэлементы в плодах ореха накапливаются по мере их созревания (рис. 2). Нами установлено, что в плодах грецкого ореха накапливаются в достаточном количестве как липо-
фильные, так и гидрофильные биологически активные вещества, что может служить основой для создания различных лекарственных средств.
Таблица 1
Результаты исследования химического состава плодов грецкого ореха _(в % от массы)_
Показатели Исследования проведены
первая декада мая вторая декада мая третья декада мая первая декада июля первая декада октября
Сухой остаток 11,80+0,09 16,70+0,44 23,7+0,8 57,65+0,78 92,70+0.35
Зола 0,21+0,01 0,41+0,02 1,0+0,05 1,90+0,11 1,90+0,08
Сахара 0,22+0,01 0,44+0,01 0,9+0,04 1,78+0,08 4.04+0.11
Моносахариды 0,15+0,013 0,18+0,01 0,40+0,03 0,72+0,05 1,39+0,09
Сахароза 0,072+0,08 0,26+0,01 0,50+0,09 1,06+0,06 2.61+0,19
Дубильные вещества 0,26+0,02 0,52+0,03 1,10+0,22 1,40+0,07 1,60+0,08
Белок 0,38+0,022 0,76+0,05 1,60+0,08 3.20+0.16 11,34+0,24
Клетчатка 0,64+0,02 1,30+0,04 1,50+0,05 2,19+0,06 2,30+0,10
Жирные масла 1,10+0,05 2.30+0,1 4,70+0,22 9,50+0,41 65.91+0.23
Примечание. Разница между колонками цифр статистически достоверна: Р<0,05 при 12,06 - 2,14
Показано, что наибольшее количество витаминов накапливается в зеленых плодах грецкого ореха в третьей декаде мая, затем резко снижается, а в зрелых плодах (ядре) остаются следы некоторых витаминов (табл.3). Например, содержание аскорбиновой кислоты в первой декаде мая достигает 701 мг % на сырую массу, максимум регистрируется в третьей декаде мая -2775,5 мг % на сырую массу, в зрелых плодах обнаруживаются её следы. Витамины: Bi, В2, РР, каротин в максимальном количестве обнаруживается в третьей декаде мая, а к сентябрю - октябрю их содержание снижается в несколько раз (рис. 3).
Выделенное нами из плодов грецкого ореха жирное масло светло-желтого цвета, приятного вкуса, со специфичным ароматным запахом.
Константы масла: d204 0,87; n20D 1,1470, число омыления (мг КОН/г) 161,71; кислотное число 0,54; эфирное число 161,17, йодное число 127,5; число Рейхерта-Мейсселя 2,15; число Поленского 0,21; неомыляемые вещества 0,92%.
Таблица 2
Минеральный состав плодов грецкого ореха (в % от массы)
Минералы Исследования проведены
первая декада мая вторая декада мая третья декада мая первая декада июля первая декада октября
Зола, % 0,32+0,01 0,61+0,09 1,22+0,01 1,67+0,03 2,17+0,01
Р,% 0,06+0,01 0,13+0,01 0,25+0,01 0,35+0,01 0,41+0,024
К, % 0,106+0,005 0,20+0,04 0,40+0,14 0,60+0,02 0,65+0,03
м& мг/ 0,1 кг 23,02+0,53 45,98+1,05 91,10+2,10 101,66+2,15 176,50+19,40
Са, мг/0,1 кг 12,91+0,70 25,15+1,38 49,60+2,80 60,52+2,73 111,50+0,64
Ре, мг/кг 13,53+0,68 26,99+1,35 54,10+2,68 64,08+2,68 105,10+0,32
Мп, мг/кг 10,79+0,51 21,59+1,31 43,13+2,64 53,13+2,64 59,40+1,05
мг/кг 0,97+0,10 1,96+0,20 3,90+0,41 5,94+0,39 13,03+0,06
гп, мг/кг 6,14+0,23 12,38+0,43 24,75+0,27 25,75+0,86 32,93+0,09
в, мг/кг 0,91+0,09 1,98+0,25 3,90+0,29 5,98+0,29 10,35+0,10
Си, мг/кг 1,02+0,07 2,02+0,12 4,10+0,23 5,06+0,23 8,38+0,06
А1, мг/кг 11,23+0,73 22,42+1,5 41,60+1,21 61,53+1,21 58,30+0,18
Бг, мг/кг 0,83+0,09 1,68+0,19 3,30+0,32 5,29+0,32 5,63+0,01
Сг, мг/кг 0,34+0,01 0,68+0,03 1,40+0,07 2,41+0,06 2,93+0,02
Примечание. Разница между колонками цифр статистически достоверна: Р<0,05 при I 2,06 - 2,14
Содержащиеся в масле органические соединения и их принадлежность к определенным классам соединений определяли методом ТСХ, сравнивая со свидетелями.
% 3,0
2,5 2,0 1,5 1.0
-г
л:
х
— Зола
— N обший ... р
-К
Рис. 1. Изменение количества отдельных минералов в процессе созревания плодов грецкого ореха (1,2, 3 - соответствующие декады мая, 4 - июль, 5 - октябрь).
Мг/0,1 к 0.6
0,4 0,3
0.2
0.1
Мг/кг -100
90 80 70 60 • 50 40 30
12 3 4 5
Рис. 2. Изменение содержания микроэлементов в процессе созревания плодов грецкого ореха (1, 2, 3-соответствуюшие декады мая, 4 -июль, 5 - октябрь).
Жирные кислоты ^-лмнолевая
^-олеиновая
Щ-линоленовая
Ш-пальмктиновая
Рис.3. Изменение содержания витаминов В | В:, РР в процессе созревания плодов грецкого ореха(1,2,3 - соответствующие декады мая, 4 - июль, 5 - октябрь).
28,4
Зеленые плоды (май)
Зрелые плоды (октябрь)
Рис. 4. Соотношение отдельных жирных кислот в плодах зеленого и зрелого грецкого ореха (в %').
0.5
2 3
5
71.5
0.5
Проведенное фракционирование дало возможность выделить углеводо-
____роды (1-5-я фракции), соединения не иде1ггифицир0ван1и.те7представляющие
собой сложную смесь минорных компонентов (6-10-я фракции), триацилг-лицеролы (11-20-я фракции), свободные жирные кислоты (21-23-я фракции), свободные стиролы (24-30-я фракции).
Из масла плодов грецкого ореха нами были выделены следующие жирные кислоты: каприоловая (0,1-0,2%), лауриновая (0,1-0,2%), миристановая (0,1-0,3%), пальмитиновая (0,7-6,4%), стеариновая (0,3- 0,7%), пальмито-леиновая (0,1-0,3%), олеиновая (11,0-28,4%), линолевая (56,1-71,5%), лино-леновая (10,3-13,1%).
Соотношение жирных кислот в масле грецкого ореха по мере созревания плодов и образования семян изменяется. Так, в зеленых плодах грецкого ореха линолевой кислоты 71,5%, в зрелых плодах - 56,1%, в зеленых плодах содержание олеиновой кислоты 11,0%, в зрюлых - 0,71% (рис. 4).
Нами изучен аминокислотный состав плодов грецкого ореха. Выделено 17 аминокислот: моноаминодикарбоновые (аспарагиновая и глутаминовая кислоты), диаминомонокарбоновые (лизин), ароматические (фенилаланин, тирозин), серосодержащие (цистин, метионин), циклические (пролин) и другие - глицин, серии, треонин, аланин, валин, лейцин, изолейдин, гистидип, аргинин, что полностью согласуется с данными Р.Э.Лойко и соавт. (1999). По мере созревания плодов грецкого ореха идет количественное накопление всех выявленных нами аминокислот (рис. 5 - 7).
Таблица 3
Содержание витаминов в плодах грецкого ореха _(в на сырую массу)_
Витамины Исследования проведены
первая декада мая вторая декада мая третья декада мая первая декада июля первая декада октября
В, 0,136+0,004 0,267+0,003 0,530+0,006 0,436+0,003 0,300+0,011
в2 0,142+0,001 0,280+0,005 0,571+0,004 0,427+0,003 0,200+0,016
РР 0,152+0,003 0,306+0,003 0,60+0,001 0,489±0,009 0,40+0,0230
С 701,0+7,25 1401,0+14,3 2775,5+133,1 1295,0+8,44 0.177+0.027
Каротин 2.28+0,0 3 4,57+0,025 8,41+0,075 4,10+0,04 1,92+0,103
Примечание. Разница между колонками цифр статистически достоверна: Р<0,05 при 1 2,06 - 2,14.
Высокое содержание в плодах грецкого ореха различных аминокислот дает основание считать их ценным диетическим продуктом питания, а также источником создания многих лекарственных форм.
Мг/0,1кг 500 - —
Мг/0,1кг
300 -
200 -
100 -
Аминокислота
-Валин
------Метионин
-------Лейцин
------Лизин
зоо
Аминокислота
- Аспарагиновая
----Треонин
----- Серин
----Пролин
Рис. 5. Количественное изменение содержания валина, метионина, лейцина и лизина в процессе созревания плодов грецкого ореха (1, 2, 3 - соответствующие декады мая, 4 - июль, 5 -октябрь).
Мг/0,1 кг
500 ^
13 3 4 5
Рис. 6. Изменение количественного содержания треонина, серина, пролина и аспарагиновой кислоты в процессе созревания плодов грецкого ореха (1, 2, 3 - соответствующие декады мая, 4- июль, 5-октябрь).
400
зоо
100
Аминокислота - Глицин
_____Тирозин
______Фенилаланин
______ Гистидин
. / *
Т"
Рнс. 7. Изменение количественного содержания глицина, тирозина, фенилаланина
и гистидина в процессе созревания плодов грецкого ореха (1, 2, 3 - соответствующие декады мая, 4 - июль, 5 - октябрь).
400 -
Кроме того, из плодов зеленого грецкого ореха в стадии молочной зрелости нами выделены и идентифицированы: гоглон (2,5%), эфирное'масло (0,04%), галловая кислота (0,03%), эллаговая кислота (0,]%), бета-гидроюглон (0,4%), глюкозид альфа-гидроюглона С^^Ов (0,7%), 3-арабинозпд кверцетина СгоН^О« (0,2 %), 3-арабинозид кемпферола С20Н20О12 (0,5%).
Определен состав эфирного масла (в %): альфа-пинен 10,95, бета-пинен 4,08, хлороформ 2,65, капроновый альдегид 5,29, А3-карен 4,75, кариофиллен 21,54, лонгифолен 15,12, гумулен 7,78, альфа-терпинеол 8,56, гамма-кадинен 7,34, сигма-кадинен 6;35, хамазулен 1,52.
Из масла зеленых плодов ¡редкого ореха были выделены токоферолы, которые идентифициропапы с помощью стандартов токоферолов хлопкового и соевого масел. Соотношение токоферолов оказалось следующим: альфа-токоферолов - 37%, бета-токоферолов — 33%, гамма-токоферолов - 30%.
Изучение состава углеводородного экстракта зеленых плодов грецкого ореха
Исследованы три образца экстрактов, полученных по одинаковой технологии - обработкой измельченной массы плодов зеленого грецкого ореха фракцией, выделенной из керосина, выкипающей в диапазоне температур 100-150°С. Углеводородный экстрагент - фракция 100-150°С - содержит преимущественно парафиновые углеводороды — 80%, незначительное 6 — 8% количество ароматических углеводородов, остальное - углеводороды нафтенового ряда. Ароматические углеводороды представлены моноциклическими структурами, бензолами. Би-, три- и полициклические углеводороды находятся в следовых количествах. Сернистые соединения составляют сотые доли процента (0,01 %). Состав образцов № 2 и №3 изучался в сравнении с образцом № 1.
Изучение состава указанных экстрактов проводилось в сравнении с чистым экстрагентом - углеводородной фракцией 100 - 150°С.
При исследовании образцов использовались методы тонкослойной хроматографии и хроматоспектрофотометрии, масс-спектрометрии с химической ионизацией и электронного удара с использованием прямого ввода образца в зону ионного источника масс-спектрометра (рис.8,9). Образец вводился после предварительного удаления нефтяной фракции - экстрагента. Экстракт в жидком виде вводился через баллон напуска в ионный источник масс-спектрометра. Для уточнения идентификации компонентов экстракта при разделении их методом тонкослойной хроматографии исходный образец подвергали предварительно адсорбционному разделению на активированном силикагеле в созданных нами условиях.
50 40 30 20 О
321 255
273 303 —{-1—
329
414 381 396,
—f-Н
225 250 275 300 325 350 375 400
100 - 28 43
Мг
80 -
60 - 55
40 18 59 91
20 - I I I I 95107
п I II Ii Iii! III III
25 50 75 100 125 150 175 200 Рис. 8. Масс-спектр образца 2 (пик №2 на термограмме).
262 280
Рис.
40 60 80 100 120 140 9. Масс-спектр образца 2 (пик №1 на термограмме).
Образцы экстрактов орехов подвергались комплексному изучению с применением инструментальных методов анализа, указанных на схеме 1.
Схема исследования образцов включала:------------------------
1.Прямой анализ экстрактов методами хроматографии и масс-спектрометрии электронного удара с использованием напуска вещества через баллон и непосредственно в зону ионного источника масс-спектрометра с помощью прямого ввода после предварительного удаления экстрагента -нефтяной фракции.
2.Анализ экстрактов, подвергнутых предварительному адсорбционному разделению на активированном скликагеле.
Условия проявления выбирали таким образом, чтобы показатели хрома-тографической подвижности компонентов находились в широком диапазоне: 1^=0,1-0,7.
Необходимая эффективность разделения была достигнута при двухступенчатом проявлении пластины элементом указанного выше состава. Путем варьирования пути проявления (расстояния старт - финиш) обеспечивали высокую эффективность разделения с выделением нескольких групп соединений, общее число которых достигало 7.
Масс-спектры исходных экстрактов образцов 2 и 3, полученные на приборе ЬСВ 2091 при температуре баллона напуска 200°С, были идентичны и совпадали с масс-спектром экстрагента (образец 1) нефтяной фракции 100-150°С.
В масс-спектрах фракций адсорбционного разделешм (образец 2ГФ, 2ХФ, 2СХФ) зарегистрированы лишь пики соответствующих элементов -растворителей - гексана, хлороформа и этилового спирта.
Отсутствие в масс-спектрах каких-либо характерных пиков ионов, соединений, отличающихся от растворителей, можно объяснить или низкой концентрацией экстрагированного вещества, или его чрезвычайно низкой летучестью.
В хроматограммах исходного экстракта (образец 2) и фракций адсорбционного разделения (хлороформенной - образец 2ХФ и спирто-хлороформенной - образец 2СХФ), как и в масс-спектрах, отсутствуют пики компонентов, отличающихся от растворителей, несмотря на повышение температуры колонки до 280°С.
При съемке масс-спектров исходного экстракта, особенно хлороформенной и спиртохлороформенной фракций, было отмечено, что при испарении растворителя образуется тонкий слой вещества. Для концентрирования вещества в специальную ампулу помещали 200 мкл экстракта и проводили испарение растворителя при комнатной температуре. На стенках ампулы образовывался налет вещества. Ампулу вводили непосредственно в область ионного источника масс-спектрометра. Программирование температуры нагрева ампулы с анализируемым веществом осуществляли от 80 до 450°С (рис. 8, 9).
Схема 1. Методы исследований экстрагентов и препаратов.
Рис. 10. Термограмма образца 2.
На рис. 10 приведена термограмма продуктов испарения анализируемого образца 2. На кривой наблюдаются два максимума испарения- первый при температуре 240 - 260°С, второй - при 390 - 430°С.
Исследование термограмм позволяет судить о наличии, по крайней мере, двух типов или групп соединений с избранными молекулярными массами 414 и 337.
Несмотря на жесткие условия испарения, полностью испарить вещество из ампулы не удалось. Большая его часть осталась на стенке ампулы.
Исследование масс-термограммы по всей кривой испарения с целью обнаружения 5-окси-1,4-нафтохинона (юглона) свидетельствовало об отсутствии соединения в сухом остатке экстракта (рис. 10).
На рис. 11, 12 представлены ТС-хромаюграммы исходного экстракта (образец 2), его хлороформенной (образец 2ХФ) и спиртохлороформенной (образец 2СХФ) фракций, полученные по 1 способу разделения. Параллельно с ними в тех же условиях хроматографировали пробу экстрагента - нефтяной фракции 100 - 150°С (образец 1).
Как видно из хроматограммы, при 1 способе разделения обнаружено 5 групп соединений различной полярности и хроматографической подвижности. Показатели хроматографической подвижности компонентов имеют следующие значения: Ш-= 0,02; 0,07; 0,14; 0,34; 0,50.
При хроматографии образца 1 проба полностью уходит на линию финиша. Примеси высших углеводородов, какие-либо гетероатомные соединения в образце не обнаружены.
Из сопоставления хроматограмм исходного экстракта (образец 2) и фракций его адсорбционного разделения (образцы 2ХФ, 2СХФ) видно, что они имеют близкий групповой состав. В каждом образце присутствует по 5 групп соединений с идентичными показателями хроматографической подвижности. По-видимому, в условиях здсорбционного разделения на силика-геле не удается обеспечить требуемой эффективности разделения.
Согласно данным литературы, в стандартных и направленно измененных условиях хроматографирования показатель КГ позволяет оценить принципиальные различия в составе разделенных продуктов. Так, порядок величины М дает возможность идентифицировать в составе образца 2 две группы соединений: 1 группу - слабополярные соединения (компоненты IV и V с КГ = 0,34 и 0,50), которые могут быть представлены углеводородными структурами со слабополярными заместителями, преимущественно в боковой цепи и с низким содержанием гетероатомов; II группу - полярные высокомолекулярные соединения (компоненты I, II, III, с низким показателем КГ - 0,02; 0,07; 0,14). Удлиненная форма хроматографических пятен последних, низкая величина КГ позволяют предположить, что они неоднородны или представлены соединениями широкого фракционного состава.
Финиш-
"1
III 0 II 0 1 о 2 Старт -
Финиш-
IV
'"0 О и
«0 0 0 0
1 0 о
2ХФ 2СХФ №2 №1
Старт -
V
Рнс.11. Тонкослойная хроматограмма Рис.12. Тонкослойная хромато-исходного экстракта. грамма различных фракций тоди-
кампа.
VI
Старт Расстояние проявления, мм Финиш
Рис. 13. УФ-спектры образцов 2 и 3 тоднкампа.
^Увеличением расстояния проявления на первой и второй ступенях были-----
созданы условия для более эффективного разделения соединения II группы. Общий вид хроматограмм образцов 2, 2ХФ, 2СХФ, полученных отмеченными способами, представленных на рис. 12, 13, показывает, что в новых условиях разделения малополярные соединения - компоненты IV и V - сливаются в одно пятно (Rf = 0,60), а высокополярные обнаруживают 5 групп соединений (вместо трех по 1 способу). По И способу проявления обнаруживается некоторая селективность адсорбционного разделения экстракта (образец 2) на силикагеле АСМ. Компонент III концентрируется с Rf = 0,08 преимущественно в спиртохлороформенной фракции 2СХФ, а компонент IV (Rf = 0,19) - в хлороформенной фракции (образец 2ХФ).
На рис. 13 представлены интенсивность отражаемого излучения образцов 2 и 3, полученная на спектрофотометре КМ-3 в УФ-области излучения (lambda = 370 нм).
На сканограмме образца 2 четко регистрируются основные компоненты 1-IV, ранее обнаруженные методом ТСХ.
Наибольшую интенсивность имеет пик VI, что можно объяснить наличием ароматического кольца в структуре сопряженных связей, а также высокой концентрацией компонента.
Незначительно уступают ему по интенсивности пики IV и V (Rf = 0,19 и 0,21). Пики полярных компонентов I, II, П1 (Rf = 0,02, 0,09) носят характер низкой интенсивности.
Обращает на себя внимание появление на сканограмме пика I1, который в отличие от остальных может принадлежать соединению, не поглощающему. а отражающему УФ-излучение.
Аналогичные «аномальные» пики с более широким основанием присутствуют и на сканограммах образца 3. Количественное определение компонентов экстракта, их идентификация потребуют разработки специальной методики разделения и наличия индивидуальных веществ-свидетелей.
Использованная нефтяная фракция для изготовления препарата тоди-камп получила название ленефр. Она получена из нефти со следующими физико-химическими показателями, установленными нами: плотность при 20°С кг/м3- 807, температура начала кипения - 51°С, отгоняется при температуре 75°С - 3%, при 100°С - 10%, при 150°С - 28%, при 175°С - 36%, при 200°С -42%, при 250°С - 53%, при 300°С - 65%, при 350°С - 76%, содержание хлористых солей - 2,5 мг/л, содержание механических примесей - 0,0064%, содержание серы - 0,12%.
Ленефр является однородной жидкостью, прозрачной, бесцветной, подвижной, с характерным бензиновым запахом, растворима в нефтепродуктах, ацетоне и других органических растворителях, не растворима в воде и спирте. С серной кислотой фракция не смешивается во всех концентрациях.
Нами определены физико-химические свойства ленефра: плотность от 740 до 760 кг/м3 (при 20°С), показатель преломления - от 1,410 до 1,420 (при 20°С), вязкость - от 0,7 до 0,9 мм2/с (при 20°С), кислотность - от 0,06 до 0,3 мг КОН на 100 см3 образца, предельные углеводороды - от 50 до 53%, нафтеновые углеводороды от 33 до 39%, в том числе моноциклические - от 31 до 36%, бициклические ~ от 2,0 до 5%, ароматические углеводороды - не более 11%, в том числе моноциклические (алкилбензолы) - не более 10,8%, инда-лы, тетралины - не более 0,2%, полициклические - отсутствие, массовая доля непредельных углеводородов - 1,4%, механические примеси - отсутствие, вода — отсутствие, серы - от 0,02 до 0,03%, содержание свища - отсутствие доЮ"5.
В исследованиях для приготовления 1 кг тодикампа нами использовано зеленых плодов грецкого ореха 1,7 кг, ленефра — 0,75 кг. В процентном отношении грецких орехов - 70%, ленефра — 30% (использован в этом исследовании один из вариантов изготовления тодикампа). При этом способе получения: тодикамп - прозрачная, подвижная жидкость, ярко желтого цвета с характерным запахом. Растворим в нефтепродуктах, ацетоне и других органических растворителях. Не растворим в воде, спирте и не смешивается с кислотами различных концентраций. Нами разработан способ определения подлинности тодикампа. С этой целью 3 мл тодикампа заливают водой до объема 50 мл. К 10 мл полученной смеси прибавляют 2 капли раствора хлорида окисного железа. Смесь окрасилась в зеленый цвет и выпал осадок. Затем 2 мл смеси заливают водой до объема 10 мл, в содержимое добавляют 2 капли раствора хлорида окисного железа. Зеленое окрашивание сохраняется.
• Подлинность тодикампа также определяется спектральным методом в инфракрасном спектре. Сняты ИК-спектры ленефра, тодикампа, ЧСК-1. Спектры сняты в области от 400 до 6000 см"'.
В ИК-спектрах всех образцов наблюдаются интенсивные полосы поглощения при 2800-3000 см"1 и 1460 и 1375 см"1, соответствующие колебаниям СНг — и СНз- групп. Полосы поглощения при 1600 см"1 относятся к колебаниям скелета С = С ароматического кольца. Для ИК-спектра экстракта грецких орехов присутствует интенсивная полоса поглощения при 1740 см"1, что соответствует валентным колебаниям С = 0 и полосе поглощения при 1170 см"1, относящейся к колебаниям карбонильной группы (- С = 0) характерной для сложных эфиров карбоновых кислот.
Результаты наших исследований физико-химических свойств тодикампа: плотность при 20°С - от 760 до 770 кг/м3, показатель преломления при 20°С от 1,424 до 1,426, вязкость при 20°С - от 0,70 до 0,90 мм2/с, кислотность -от 1,5 до 3,0 мг КОН на 100 мл препарата, предельные углеводороды - от 47 до 52%, нафтеновые углеводороды, в том числе моно - от 27 до 37%, би-, три от 3 до 9%, ароматические углеводороды - не более 12%, массовая доля непредельных углеводородов - не более 1,4%, механические примеси - отсутствие, вода - отсутствие, содержание серы - от 0,02 до 0,03%, содержание
тяжелых металлов (ванадия, кобальта, молибдена) - отсутствие (до 10'5 %), — сухой остаток - не более 1,5%; содержание свинца - отсутствие - до 10"5 %. В тодикампе относительное содержание жирных кислот общих липидов в процентах от суммы метиловых эфиров жирных кислот составило: линоленовой 10,3, линолевой 71,3, олеиновой 10,5, стеариновой 1,0, пальмитиновой 7,0, пальмитолеиновой, пентадеценовой и миристиновой - следы.
В препаратах тодикамп и ЧСК-1 сохранены биологически активные вещества зеленых плодов грецкого ореха.
Изучение токсичности препаратов группы СК
Тодикамп в различных дозах вводили внутрижелудочно 50-ти самкам и 50-ти самцам аутбредным белым мышам живой массой 20 - 22 г и такому же количеству белым аутбредным крысам живой массой 190 - 210 г. Мыши и крысы были распределены на 10 групп, каждая из которых состояла из двух подгрупп по 5 самцов и 5 самок. Самцы и самки содержались раздельно. До введения препаратов было проведено взвешивание животных, а также исследование крови, которые показали, что группы по массе тела и показателям крови не имели статистически достоверной разницы.
Первая группа мышей составила контрольную группу, животным этой группы вводили внутрижелудочно физиологический раствор от 0,3 до 0,5 мл. Животным остальных групп однократно ввели от 2,0 до 18 г/кг массы тоди-кампа. После введения препарата на 2-3-и сутки в седьмой группе пало две мыши (один самец и одна самка), в 8-й группе - 5 мышей (2 самца и 3 самки), в 9-й группе - 8 мышей (3 самца, 5 самок), в ] 0-й группе - 10 мышей (5 самцов и 5 самок)
По Литчфильду и Уилкоксону были высчитаны летальные дозы тоди-кампа для белых мышей: составила 14666±584,9 мг/кг, ЬД1(5=1 1733,3 МГ/КГ, ЬД84= 16266,7 мг/кг.
Было проведено патологоанатомическое вскрытие павших мышей. Гистологическим исследованием установлены изменения дисциркуляторного характера с очагами некроза клеток и ткапп в мозгу, сердце, печени.
Аналогичные результаты были получены при внутрижелудочном введении тодикампа белым аутбредным крысам. Крысы первой группы служили контролем, им внутрижелудочно вводили от 3,0 до 4,0 мл физиологического раствора. Дозы тодикампа, введенного внутрижелудочно крысам, колебались от 2,0 до 18,0 г/кг. Крысы 2-5-й групп внутргокелудочное введение тодикампа перенесли хорошо, как и животные первой труппы, которым вводился физиологический раствор.
На основании проведенных экспериментальных исследований высчитаны летальные дозы тодикампа при внугрижелудочном введений белым крысам: ЬД5о= 14760,0±501,42 мг/кг, ЬД,6=11674 мг/кг, ЬД(и= 15560 Мг/кг.
На 15 поросятах 4-месячного возраста проведен эксперимент с использованием широкого спектра физиологических, гельминтологических, гематологических, биохимических методов исследований. Из числа этих поросят 5
оказались носителями аскарид и составили 3-ю группу. Первой группе 5-ти поросятам (контрольной) внутрижелудочно вводили по 10 г/кг физиологического раствора, второй группе (5 поросят) агельминтозным, клинически здоровым - по 10 г/кг тодикампа, а третьей группе - по 12 г/кг тодикампа. Комплексные исследования крови были проведены через 7,14,21,30 суток после введения тодикампа. После введения препарата у третьей группы поросят в течение суток было собрано в фекалиях от 1 до 4-х экземпляров аскарид длиной от 11 до 14 см. Затем был проведен убой поросят с последующим исследованием их кишечников на наличие гельминтов. Все поросята освободились от аскарид.
На 10 щенятах породы бигл 4-месячного возраста, распределенных на две группы: 5 щенят (агельмиятозные), 5 щенят (носители токсокар), было проведено испытание высокой дозы тодикампа. До введения препарата было проведено взвешивание животных и применен широкий спектр физиологических, гематологических и биохимических исследований. Первой группе щенят (контрольной) внутрижелудочно введен физиологический раствор в дозе 10 г/кг, второй группе - 10 г/кг тодикампа. В течение суток щенята освободились от токсокар. Их количество колебалось от 1 до 7 экземпляров длиной от 5 до 9 см. Освобождение щенят от гельминтов подтверждено вскрытием кишечников.
Изучение острой токсичности тодикампа на белых мышах и крысах, на обезьянах, поросятах, щенятах показало, что разовое введение внутрижелудочно тодикампа в дозах, превышающих в 100 раз терапевтическую анти-гельминтную (100 мг/кг), не обладает токсическим эффектом.
Хроническая токсичность тодикампа при внутрижелудочном введении изучена на 100 белых мышах и 60-ти белых крысах, при суммарной дозе до 50-77 г/кг. Для белых мышей ЬДзд составила 63667,7±1754,8 мг/кг, ЬД|б -58860 мг/кг, ЬДяд — 72460 мг/кг. Самки белых мьнней оказались более чувствительными к хроническому отравлению тодикампом, чем самцы: для самок ЬД50 = 61875±980,3 мг/кг, для самцов - ЬД^ = 64980±995,4 мг/кг (Р<0,05, 1=2,06).
На основании проведенных исследований установлена для крыс ЬДзо = 75833,312924,7 мг/кг, ЬД,6 = 61166,7 мг/кг, ЬДл4= 83833,3 мг/кг. Самки крыс оказались более чувствительными к тодикампу в хроническом опыте, чем самцы: для самок ЬДда = 74157,4±1575,7 мг/кг, для самцов ЬД^о = 76978,3±1489,3 мг/кг. При суммарной дозе тодикампа более 60,0 г/кг, введенного внутрижелудочно крысам, начинается гибель животных.
Подкожное введение тодикампа в область бедра изучено на 6-ти обезьянах, которым препарат вводили в утренние часы (10-12 часов) двукратно с интервалом в 13 дней в дозах 0,02 и 0,1 мл подкожно. Независимо от дозы препарата обезьяны бурно реагировали на его инъекцию. Для уменьшения возможности развития инфильтрата область бедра в месте введения препарата массировали в течение 3-5 мин. Лишь спустя 10—12 мин после инъекции
обезьяны успокаивались- (обычно реакц?и~обезьян на~п/к или в/м инъекцию антибиотиков, витаминов и других препаратов не превышает 2—5 мин).
При частотном и амплитудном анализе ЭКГ, зарегистрированной в стандартных отведениях, не обнаружено нарушений возбудимости и проводимости в миокарде; ритм во время эксперимента оставался синусовым. Суточные колебания хронотропной деятельности сердца соответствовали изменениям, характерным для обезьян, находящимся в фиксированном состоянии в приматологическом кресле (рис. 14,15). Результаты комплексных исследований позволили нам сделать заключение, что препарат не проявил токсического воздействия на организм обезьян.
На 25-ти беспородных собаках и на 15-ти беспородных свиньях, зараженных экспериментально стробилярным и ларвальным эхинококкозом по общепринятым методикам, нами была установлена противоэхинококкозная активность тодикампа. При этом при лечении стробилярного эхинококкоза собак ЕДзо оказалась равной 10 мг/кг, при лечении эхинококкоза легких и печени свиней ЕД50 - 20 мг/кг.
Опыты по изучению хронической токсичности тодикампа проведены на 15-ти щенятах, полученных от двух самок-собак породы бигл, и 15-ти поросятах, полученных от одной беспородной свиноматки. Животные содержались в стандартных вивариях, обслуживаемых учеными зооинженерами и ветеринарными врачами.
Каждый вид животных был распределен на 3 группы: контрольной ежедневно однократно в течение 6 месяцев вводили внутрь дистиллированную воду, второй группе щенят - 10 мг/кг (ЕД50) тодикампа, второй группе поросят - 20 мг/кг (ЕД50) тодикампа, третьей группе щенят - 100 мг/кт (ЮЕД50), третьей группе поросят - 200 мг/кг (10ЕД50) тодикампа. Обследование животных контрольных и экспериментальных групп проведено в соответствии со стандартным протоколом, рекомендованным МЗРФ (2000). Испытуемые агенты животным вводили ежедневно в течение 6-ти месяцев, после отмены препаратов наблюдения и исследования проведены в течение последующих 6-ти месяцев.
В течение всего эксперимента животные чувствовали себя хорошо, шерсть была блестящая, видимые слизистые бледно-розового цвета, мочеиспускание и дефекация нормальные, аппетит хороший, активность высокая, развитие и рост соответствовали нормативным показателям собак и свиней. Со стороны сердечно-сосудистой системы отклонении не было.
Статистическая обработка результатов исследований крови собак показала, что в количестве эритроцитов, ретикулоцитов, тромбоцитов, лейкоцитов, гемоглобине, в лейкоцитарной формуле, гематокрите, скорости свертывания крови, резистентности эритроцитов между контрольной и группами, получавшими тодикамп, статистически существенной разницы нет.
— V-
.1... ли 25-ту; С ,а Д уб 5( да (С) 5 Я-" - 3 -).3 о,: т- '3. 0. р- 25 }-1м О.С - 5, ЮЛ 0, -5 34. Зш
ЛЛ (м нт ))Г ер( - )ЗП ирь дм, V 1 СМ л/с 1 ).1Ь-| " — -
I
1 •
1— Г>/ > \ и-
I'
ь. Ь 1
4 и
ч
1 1
Рис. 14. ЭКГ обезьяны №2556 до введения тодикампа.
1 I
I
1 к 1 1 1 и- —.
Г" к. у Л —**(" с - А- Г- г
1 I,
ли
* ■К — Г1'1 ч1 —
т7^
Ч А сс МП в чд а з -190 Интервал(с) - 0,33, з-а - о,о7, ЗРЭ - 0,05, а-Т 0,22.
питуд "1 убца(мв ....... )Р-0 ,2 Я - 0.£ ~гг т -0 2 1 мв "Г - 0* м, V 5С МК 1/С гп \ 1
+ __1--- + Г \ -н
Рис. 15. ЭКГ обезьяны №2556 через 24 часа после подкожного введения 0,02 мл тодикампа.
Через месяц после впутр ¡¡желудочных введений тодикампа собакам в до--------------
"зах~10"ЕД?о наблюдалось статистически достоверное увеличение лейкоцитарного индекса интоксикации (ЛИИ), количества холестерина, триглицеридов, ЛсАТ, АлАТ, ДДГ (Р<0,05).
Если у контрольных собак ЛИИ составил 1,09+0,13, то у собак третьей группы он поднялся до 1,44±0,02, содержание холестерина в крови у контрольных собак 4,47+0,13 ммоль/л, а у собак третьей фуппы - 5,88+0,047 ммоль/л, триглицеридов соответственно - 1,32±0,5 и 1,75x0,06 ммоль/л. По-видимому, отмеченные изменения некоторых показателей крови у собак под воздействием месячного'введення тодикампа в дозе 10 ЕД50 не связаны с токсическим действием испытуемого агента, а являются реакцией организма на введение биологически высокоактивного вещества, так как через 6 месяцев после ежедневных введений тодикампа произошла нормализация отмеченных биохимических показателей, и не было статистически достоверной разницы в изученных биохимических показателях между животными трех групп. Кроме того, наиболее высокой была живая масса животных, получавших тодикамп, по сравнению с контрольными.
У поросят под влиянием длительного внутрижелудочного введения тодикампа в таких же дозах, что и у собак, в изученных биохимических показателях крови, не произошло статистически достоверных отклонений в течение всего эксперимента по сравнению с контролем. Но в данных общего анализа крови у всех подопытных животных через 6 месяцев от начала эксперимента изменилось содержание количества эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов и СОЭ. Если у поросят первой группы (контрольной) до введения тодикампа количество эритроцитов составляло 7,5±0,1б-1012/л, гемоглобина 109,0+3,85 г/л, лейкоцитов 7,4±0,36-Ю'/л, СОЭ 24,1±1,4 мм/час, то через 6 месяцев от начала эксперимента эти показатели соответственно изменились: количество эритроцитов и гемоглобина снизилось соответственно до 6,9 ±0,17- 10|2/л и 97,0 ± 3,74г/л, произошло повышение уровня лейкоцитов до 9,60+0,13-10'/л и СОЭ до 32,2±1,16 мм/час. Такие же изменения произошли и у поросят второй и третьей групп. Подобные отклонения не связаны с побочным или токсическим действием тодикампа, а являлось отражением возрастной физиологии свиней, когда у молодых животных в крови увеличено количество эритроцитов и гемоглобина, снижено количество лейкоцитов и замедлена СОЭ, а к более старшему возрасту, например, шестимесячному увеличивается количество лейкоцитов и СОЭ к снижается количество эритроцитов и гемоглобина.
При патологоанатомическом исследовании собак и свиней не обнаружено разницы между контрольными и подопытными животными. Гистологические исследования головного мозга, сердца, печени, почек, легких, селезенки, тимуса, надпочечников, желудка, кишечника, мочевого пузыря, поджелудочной железы, костного мозга, щитовидной железы, лимфатических узлов, се-
менников у самцов, матки и яичников у самок не выявили разницы между контрольными и опытными собаками и свиньями.
Таким образом, длительное, ежедневное шестимесячное введение внутрь собакам и свиньям тодикампа в дозах ЕД50 и 10 ЕД50 не вызывает функциональных и морфологических изменений в жизненно важных органах.
Проведено две серии экспериментов по длительной аппликации (от 1 -го до 6-ти месяцев) тодикампа и ленефра на кожу белых крыс и кроликов шиншилла . В каждой серии экспериментов использовано по 50 белых крыс и 30 кроликов, разделенных на 5 групп: группа крыс - 10 особей, группа кроликов - 6 особей. Все животные первой группы получали аппликацию на кожу дистиллированной воды, животные второй и третьей групп - ленефра, четвертой и пятой групп - тодикампа. Четные группы животных апплицированы ле-нефром и тодикампом в дозе ЕД50, нечетные - в дозе 10 ЕД50. Применены методики, предусмотренные Фармкомитетом РФ (2000). Проведенные исследования показали, что тодикамп и ленефр при накожном длительном нанесении животным в дозе ЕД50 и 10 ЕД50 не вызывают нарушений функций и морфологии жизненно важных органов. Отмечены незначительные отклонения биохимических показателей (увеличение содержания мочевины в сыворотке). После отмены препаратов наблюдали слабые изменения со стороны гематологических показателей (снижение количества ретикулоцитов, ускорение свертывания крови), но они носили обратимый характер.
При изучении иммунотоксического и аллерпизирующего действия учитывались реакции: клеточного и гуморального иммунитета, гиперчувстви-тельносга «немедленного» н «замедленного» типов.
Двукратное введение тодикампа в дозах 0,002 и 0,01 мл/мышь не вызывает изменений количества антиэрнтроцитарных антител (гемагтлютининов) в сыворотке крови. Сенсибилизация морских свинок тодикампом и растворителем в дозах 0,1 и 0,5 мг/кг не влияла на развитие реакции гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ) и не оказывала влияния на реакцию активной кожной анафилаксии (АКА). Сенсибилизация морских свинок тодикампом и растворителем (0,1 и 0,02 мл/кг) при разрешающей внутрисердеч-ной инъекции соответствующим тест-препаратом в дозе 0,04 мл/кг не вызывала анафилактической реакции у животных. У цитатных морских свинок внутрисердечная инъекция исследуемыми тест-препаратами в дозе, превышающей сенсибилизирующую в 3 раза, вызывает 20% -ную гибель животных. Сенсибилизация морских свинок тодикампом (0,1 мл/кг) в комплексе с белковым антигеном (лош. IgG) не оказывает влияния на развитие анафилаксии, индуцированной IgG.
Установлено, что в терапевтических дозах тодикамп не обладает иммунной токсичностью и аллергизирующимн свойствами.
Изучение эмбриотоксичности тодикампа в основном провели А.Г. Маленков и A.M. Торчинский (1995, 2002) на кроликах породы шиншилла и белых крысах. Использовано 75 кроликов и 75 белых крыс. Исследования были
проведенысогласно методическим указаниям по изучению репродуктивной токсичности фармакологических веществ (Любимов Б.И. и соавт., 2000). Установлено, что препарат не обладает эмбриотоксичностью и тератогенными свойствами.
В соответствии с указаниями А.Д.Дурнева и соавт. (2000) изучена способность тодикампа индуцировать генные мутации у бактерий в условиях метаболической активации in vitro и in vivo, аберрации хромосом в клетках костного мозга мышей и доминантные летальные мутации в зародышевых клетках мышей. Мутагенный эффект препарата не обнаружен ни в одном из использованных методоч.
Теми же методами, которыми изучалась токсичность тодикампа, изучен ЧСК-1. В экспериментах использованы различные виды животных: белые мыши и крысы, кролики, морские свинки, щенята, поросята, цыплята, обезьяны.
Эксперименты, выполненные по изучению острой и хронической токсичности ЧСК-1, показали, что токсичность ЧСК—1 по сравнению с таковой тодикампа оказалась несколько ниже.
В экспериментах на кроликах и крысах была доказана безвредность накожных аппликаций ЧСК-1 и его экстрагеита в течение 30 дней. В экспериментах также было установлено, чго ЧСК-1 не обладает иммунотсксично-cTi.io и аллергизирующим действием, отсутствует также эмбриотоксичность и терагогенность препарата. В терапевтических дозах ЧСК—1 лишен мутагенной и ДНК-повреждаюшей активности.
На 50 морских свинках и 40 белых крысах изучена токсичность проти-вочесогочных средств, содержащих бензилбензоат, с включением в их состав до 10% тодикампа или ЧСК-1. Под воздействием тодикампа и ЧСК-1 снижается токсичность бензилбензоата.
Проведены исследования по изучению острой токсичности препаратов СК-3 и СК-6.
Токсические дозы препарата СК-3 для белых мышей составили: ТД|6= 0,85 г/кг, ТДм-2,2 г/кг, T,2b=l,53±0,17 г/кг при Р<0,05 1=2,06. Максимальная нелетальная доза равна 3,0 г/кг. Препарат в дозах 0,05—0,80 г/кг не вызывал отрицательных сдвигов в показателях общего анализа крови.
Для белых крыс ТД,6= 0,96 г/кг, ТД,4= 3,48 г/кг, ТДз0= 2,22±0,42 г/кг при Р<0,05 t = 2,06. Под воздействием дозы препарата СК-3 более 1 г/кг у крыс проявлялось отравление, которое носило обратимый характер, было кратковременным, животные быстро самовыздоравливали.
Для 3-месячных цыплят породы ала-тау ЬД16 = 0,6г/кг, ЬД84=1,17г/кг, ЬД5„=0,88±0,07 г/кг при Р<0,05 t=2,06. По сравнению с мышами и крысами цыплята оказались более чувствительными к токсическому действию препарата СК-3.
Для щенят породы бигл токсические дозы СК-3: ТД,6 = 1,1 г/кг, ТДм = 2,8 г/кг, ТД5о= 1,95±0,28 г/кг при Р<0,05 t=2,06. При токсических дозах на-
ступало отравление собак, которое носило обратимый характер, через 3-5 дней наблюдали их самовыздоровление.
На основании проведенных экспериментальных исследований подсчитана острая токсичность препарата СК—6: для белых мышей - ТД)(, = 427 мг/кг, ТД84 = 1107 мг/кг, ТД50 = 767±87,7 гиг/кг, для белых крыс - ТД|6 = 560 мг/кг, ТДм = 1240 мг/кг, ТД50 = 900±85,7 мг/кг, для щенят - ТД,6 = 478,3 мг/кг, ТДв4= 1611 мг/кг, ТДЬо» 1045± 146,2 мг/кг, для цыплят - ТД16 = 261,85 мг/кг, Т&о = 457,14±50,14 мг/кг, ТД^ = 651,4±14б,2 мг/кг.
Приведенные материалы показывают, что СК-3 и СК-6 по сравнению с тодикампом и ЧСК-1 обладают более высокой токсичностью, углубленные исследования по изучению этих препаратов были прекращены.
ФАРМАКОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ ПРЕПАРАТОВ НА ОСНОВЕ ЛЕКАРСТВЕННОГО РАСТИТЕЛЬНОГО СЫРЬЯ И НОВЫХ ЭКС-
ТРАГЕНТОВ
Гепатопротекторные свойства тодикампа и ЧСК-1
Эксперименты проведены на 60 белых аутбредных мышах (масса 17-19 г), 40 белых крысах (180-200 г), 47 собаках (5-7 кг) и 34 поросятах (11-14 кг). У поросят острый гепатит возник вследствие отравления ядохимикатами. У мышей острую печеночную недостаточность получали путем подкожного введения четыреххлористого углерода, предварительно разведенного в стерильном подсолнечном масле в соотношении 1:1, в дозе 0,6 мл/кг в течение трех дней. У собак использовали дополнительную методику: вводили внутрь керосиновое извлечение из зеленой массы аконита в дозе 2,8 г/кг. Токсический гепатит у собак вызывали введением только одного агента. Свободные аминокислоты в сыворотке крови определяли по ранее описанным методикам.
Препаратом сравнения служил эссснциале, который вводили внутрь в течение 10 дней подряд в дозе 25 мг/кг/суг. Препараты ЧСК-1 и тодикамп вводили по 0,1 мг/кг внутрь в течение 10 дней (использован гомеопатический принцип). На мышах, крысах и собаках нами был получен токсический гепатит, особенно выраженный у собак.
В контрольной группе мышей, где не применялись лечебные препараты, летальность достигла 50%. В группе мышей, которым вводили эссенциале, она снизилась до 20%. Под воздействием препарата ЧСК-1 летальность мышей не отмечалась, а на 6-й день после лечения проявилась тенденция нормализации показателей общего анализа крови. Это соответствует данным литературы о терапевтическом эффекте препарата ЧСК-1 и его аналога тодикампа при циррозах печени.
У подопытных нелеченых поросят летальность достигла 40%; в группе, леченной препаратом ЧСК—1, летальность не отмечалась.
У подопытных собак с токсическим гепатитом наблюдались диарея, снижение аппетита, повышение температуры тела, учащение пульса, частоты дыхания, изменение цвета видимых слизистых оболочек (истеричность, циа-нотичность, анемичность).
Тяжелая степень поражения печени подопытных собак сопровождалась статистически достоверным снижением в крови количества гемоглобина, эритроцитов и лейкоцитов по сравнению с контрольными животными. Кроме того, в сыворотке крови собак с печеночной недостаточностью уменьшилось количество общего белка, альбуминов, глобулинов, снизился также лейкоцитарный индекс интоксикации (ЛИИ), но увеличилось количество мочевины, аммиака, триглицеридов, глюкозы, общего билирубина, креатишша, алани-новой аминотрансферазы (АлАТ), аспарагиновой аминотрансферазы (АсАТ), глутаминтрансферазы (ГТТП), щелочной фосфатазы (ЩФ), лактатдегидроге-назы (ЛДГ), калия, кальция; резко повысилась тимоловая проба; увеличилось в сыворотке крови количество лейцина, серина, уменьшилось содержание аланина, аргинина, аспарагиновой кислоты, валина, гистидина, лизина, ме-тионина, тирозина, триптофана, треонина, фенилаланина, что статистически достоверно (Р<0,05).
В группе нелеченых собак летальность достигла 60%, в группе животных, леченных эссенциале, она снизилась до 20%. В группе собак, леченных препаратом ЧСК— 1, гибель животных не наблюдалась.
Через 10 дней после начала лечения собак препаратом ЧСК-1 отмечена тенденция нормализации гематологических и биохимических показателей крови, оцениваемых Л.В. Гладских (1997), как объективные тесты детокси-кационной терапии при функциональной недостаточности печени. Одновременно проявилась нормализация содержания свободных аминокислот в сыворотке крови, что также, по-нашему мнению, следует считать объективным тестом определения функциональной недостаточности печени и проявления токсичности испытуемого агента.
При проведении детоксикационной терапии подопытных животных, на ряду с улучшением лабораторных показателей, отмечалось улучшение их общего состояния.
Избежать летальности отравленных животных с выраженной функциональной недостаточностью печени способствовали гепатозащитные свойства препарата ЧСК-!, обусловившие улучшение иммунного статуса при наличии вторичного иммунодефицита у подопытных животных.
Таким образом, выраженная функциональная недостаточность печени у животных сопровождается диареей, снижением аппетита, повышением температуры тела, учащением пульса, частоты дыхания, изменением цвета видимых слизистых оболочек, изменениями биохимических, гематологических показателей, глубоким нарушением белково-аминокислотного обмена, что указывает на поражение печени.
Препарат ЧСК-1 обладает выраженным гепатопротекторным действием, предотвращая летальность животных, нормализует гематологические и биохимические показатели. Высокая детоксикационная эффективность препарата, возможно, связана с его иммуномодулирующими свойствами.
Гепатопротекторные свойства тодикампа и ЧСК-1 были установлены в экспериментах на обезьянах при изучении токсичности данных препаратов.
Изучая острую токсичность тодикампа на обезьянах (макаки-резус) живой массой от 4,4 до 5,2 кг пятимесячного возраста, уход и содержание их проводили согласно разработкам Государственного научного центра РФ Института медико-биологических проблем РАН с использованием методов физиологических, гематологических, биохимических исследований ГНЦ РФ ИМБП РАН. Одна группа из 5-ти обезьян была контрольной. Им вводили физиологический раствор в дозе 10 г/кг, 5-ти обезьянам внутрижелудочно вводили по 10 г/кг тодикампа. До введения препарата через 7, 14, 21,40 дней после введения испытуемого агента проводились комплексные исследования.
Обезьяны контрольной группы клинически здоровые. У обезьян опытной группы, в фекалиях методами гельминтологических исследований были выделены яйца сифачий. В живой массе они несколько отличались от обезьян контрольной группы, а в крови отмечено увеличение количества лейкоцитов, эозинофилов, сегментоядерных нейтрофилов, СОЭ, повышение активности аланиновой (АлАТ) и аспарагиновой (АсАТ) аминотрансфераз, снижение количества лимфоцитов и живой массы.
Через 14 суток после введения обезьянам испытуемого агента в крови животных проявилась тенденция к нормализации изучаемых показателей. Если у гельминтозной группы обезьян до введения тодикампа СОЭ была 7,1±0,8б мм/час, то через 14 суток после введения препарата она уменьшилась до 4,5±0,6 мм/час, если процент эозинофилов был 7,6±0,5, то через 14 суток после введения тодикампа уменьшился до 6,8±0,9, лимфоцитов увеличился с 52,812,4% до 57,0±1,6%. Через 21 сут. после введения тодикампа у инвазированных обезьян произошла нормализация СОЭ и процента содержания лимфоцитов и активности АлАТ и АсАТ.
При изучении токсичности 3-недельного курса лечения эхинококкоза препаратом ЧСК-1 в опытах на 9-ти обезьянах нами было установлено улучшение функционального состояния печени. После комплексных исследований первую неделю ежедневно обезьяны получали внутрь натощак по 150 мг/кг ЧСК-1, вторую неделю - 300 мг/кг, третью неделю - 450 мг/кг ЧСК-1. Препарат животные переносили легсо, без побочного действия. До введения ЧСК-1 в фекалиях всех 9-ти обезьян обнаружены яйца сифачий (видовая принадлежность установлена заражением мышей).
В течение трёхнедельного курса введения обезьянам ЧСК—1 в возрастающих дозах не отмечено токсичности и побочного действия препарата.
Произошла также нормализация биохимических показателей крови обезьян под воздействием трёхнедельного лечения ЧСК-1 в возрастающих
дозах. Если до введения обезьянам ЧСК-1 активность АсАТ составила 156,0 "±3",5~нм/с.л, "то через 98 сут. от начала введения она снизилась до !26,0^9,7нм/с.л, что статистически достоверно (Р<0,05). Снизилась также активность АлАТ. Таким образом, под воздействием ЧСК-1 произошла нормализация функционального состояния печени.
Иммуиотропные и противомпкробиые свойства ЧСК-1 и тодикампа
Опыты проводили на белых беспородных аутбредных мышах-самцах массой 18-19 г. Мышей заражали зародышевыми элементами эхинококков от оперированных больных. Полиоксидоний применен как препарат сравнения с широким спектром иммунотропного действия.
Ампициллин вводили в дозе 50 мг/кг внутримышечно в течение 4 дней, циклофосфан - внутрибрюшинно в дозе 50 мг/кг 5 раз, полиоксидоний - по 1 мг внутримышечно в течение 2-10 дней, левамизол - внутрижелудочно по 30 мг/кг в течение 5-6 дней, тодикамп и ЧСК-1 - внутрижелудочно в дозе 50 мг/кг в течение 2-10 дней. Миелопид вводили под кожу в дозе 1 мг/кг через день, всего 5 инъекций.
Влияние испытуемых препаратов на гуморальный иммунитет при эхи-нококкозе оценивали по количеству антителообразующих клеток (АОК) в селезенке мышей к эритроцитам барана по методу N.K.Jerne.
По реакции гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ) к динитро-хлорбензолу (ДНХБ) оценивали состояние Т-клеточного иммунитета. Тестом восстановления нитротетразолиевого синего (НСТ-тест) определяли способность к активации кислородзависимого метаболизма, а функциональную активность фагоцитов оценивали по способности поглощать частицы латекса.
Исход в отношении инфекции оценивали в!1утрнбрюшинным заражением мышей Proteus mirabilis - 4641 в дозе 140 — 200 млн. микробных тел суточной культуры, что соответствует 1,25 - 2 ЛДм). ЛД50 возбудителя оценивали по Литчфильду - Уилкоксону. Выживаемость животных устанавливали наблюдением за ними до летального исхода после заражения.
В результате проведенных экспериментов установлено, что циклофосфан у подопытных мышей вызывает иммуносупрессшо. По сравнению с контролем в группе мышей, зараженных эхинококкозом, статистически значимо (Р<0,05) уменьшилось количество АОК и спленоцитов в селезенке, что свидетельствует об иммуносупрессии.
Ампициллин на фоне циклофосфана и эхинококкозз не изменил антите-логенез. На фоне циклофосфана и эхинококкоза ампициллин, левамизол, так-тивин не изменяют выраженность реакции ГЗТ к ДНХБ. Эти препараты на фоне циклофосфана или эхинококкоза не изменили числа АОК и количества спленоцитов.
Полиоксидоний на фоне циклофосфана или экспериментального эхинококкоза увеличил количество АОК и спленоцитов в селезенке подопытных животных, что можно оценивать как выраженную иммунокоррекцию.
Ампициллин, тактивин, левамизол на фоне циклофосфана или эхино-коккоза не изменил фагоцитарную активность нейтрофилов и макрофагов мышей. Напротив, полиоксидоний на фоне циклофосфана или эхинокок-коза проявил тенденцию к нормализации фагоцитарной активности нейтрофилов и макрофагов.
Мыши контрольной группы, зараженные эхинококкозом, и группы, которой вводили циклофосфан, под воздействием инфекции погибли в течение суток.
Тактивин на фоне эхинококкоза или циклофосфана продлил жизнь инфицированных мышей по сравнению с контролем на 5,53±0,55 суток. Во всех группах ампициллин продлевал жизнь инфицированных мышей от 2,29±0,76 до 5,74±0,85 суток. Полиоксидоний на фоне циклофосфана после введения инфекции продлил жизнь мышей почти до трех суток. Самая высокая продолжительность жизни мышей под воздействием протейной культуры микроорганизмов оказалась в 1руппах, зараженных эхинококкозом и леченных полиоксидонием, тодикампом и ЧСК-1.
Таким образом, эхинококкоз мышей, вызванный человеческими штаммами паразита, сопровождается иммуносупрессией, при которой иммуномоду-ляторы способствуют нормализации нарушенных звеньев клеточного и гуморального иммунитета. Из рассматриваемых в работе препаратов наиболее эффективными оказались полиоксидоний, тодикамп и ЧСК-1.
При иммуносупрессии, вызванной циклофосфаном или эхинококкозом, полиоксидоний, тодикамп и ЧСК-1 проявляют тенденцию к нормализации клеточного и гуморального звена иммунитета, а также фагоцитоза нейтрофилов и макрофагов.
Изучение иммунного статуса 28 хлопковых крыс (7 интактных, 21 зараженная альвеолярным эхинококкозом) дало возможность судить о препарате ЧСК-1 как о современном иммунокорректоре.
Как показали наши исследования, у хлопковых крыс, зараженных альвеолярным эхинококкозом, статистически достоверно увеличивается в крови количество Т-супрессоров, иммуноглобулинов А, М, в и циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК), но снижается количество Т-лимфоцитов, Т-хелперов.
Семь хлопковых крыс, зараженных альвеолярным эхинококкозом, в течение трех недель получали внутрь препарат ЧСК-1 в возрастающих дозах (первая неделя - ежедневно внутрь 0,1 г/кг, вторая неделя - 0,26 г/кг, третья неделя - 0,34 г/кг), другая группа таких же крыс была пролечена в течение трех недель тактивином, который вводился парентерально ежедневно в дозе 0,2 мл на одно животное.
Под воздействием препарата ЧСК-1 в крови хлопковых крыс статистически достоверно по сравнению с зараженными контрольными животными увеличилось количество Т-лимфоцитов, Т-хелперов, уменьшилось количество иммуноглобулинов А, М, в и ЦИК. Под воздействием тактивина прояви-
лась тенденция к нормализации иммунного статуса у зараженных животных,-----------------
"ноНиммунокорригирующие его свойства оказались значительно слабее по сравнению с ЧСК-1. Например, под воздействием тактивина в крови зараженных альвеолярным эхинококкозом крыс увеличилось количество Т-лимфоцитов и эта разница статистически достоверна по сравнению с зараженными нелечеными контрольными животными, но в то же время количество Т-лимфоцитов оказалось статистически достоверно меньшим по сравнению с показателями крыс, леченных ЧСК-1. Показатели гуморального иммунитета крыс, леченных тактивином, оказались неизмененными. Вскрытиями установлено, что тйктивин не вызвал торможения роста паразитарных ларвоцист. Протпвозхинококкозное действие препарата ЧСК-1 неразрывно связано с его иммунокорригирующими свойствами, он резко замедлил рост паразитарных ларвоцист. Результаты исследований на крысах были нами подтверждены на поросятах, зараженных в эксперименте эхинококкозом и пролеченных по указанной методике ЧСК-1, причем препаратом сравнения служил полиоксидоний. В эксперименте с поросятами по иммунокор-ригирующиим свойствам ЧСК-1 не уступил полиоксидонию.
Противомикробная активность тодикампа и ЧСК-1 подтверждена нами определением чувствительности патогенной микрофлоры, выделенной из жидкости эхинококков, паразитировавших у овец (28 голов) и свиней (22 головы). Установлена резистентность общей микрофлоры к кефадиму у 2-х животных (4%), гентамицину - 28-ми (56%), эпоцелииу - 14-ти (28%), кеф-золу- 8-ми (16%), клафорану- 10-ти (20%), тодикампу - 8-ми (16%), ЧСК-1 - 10-ти (20%), пенициллину - 40 (80%), эритромицину - 44-х (88%). В клинических условиях А.Х.Рахимов и соавт. (2002) другим путем подтвердили противомикробную активность тодикампа и ЧСК-1 на уровне кефадима при лечении температурящих больных эхинококкозом, которых прооперировали, а в ларвоцистах выявили патогенную микрофлору, определив чувствительность ее к антибиотикам. Б.У.Сабиров и соавт. (2002) таким же путем установили противостафилококковую активность ЧСК-1 и тодикампа.
Противопаразитарная активность изучаемых препаратов Антигельминтная эффективность препаратов группы СК изучена на лабораторных моделях гельминтозов (сифачиоз, гименолепидоз и трихоцефа-лез белых мышей, аскаридиоз и гетеракидоз кур, эхинококкозы крыс и свиней), а также на животных, спонтанно заразившихся гельминтозами. Строго соблюдались рекомендации Б.А.Астафьева и соавт. (1989, 2002). Мы считаем, что большинство наших материалов по противопаразитарной активности носит предварительный характер, даже по той причине, что клинические испытания тодикампа и ЧСК—1 проведены крупными учеными Республики Узбекистан. Нам переданы акты, протоколы, выписки из историй болезней, подлинники историй болезней по клиническому испытанию препаратов. Мы строго соблюдали решение экспертного совета по медицине ВАК РФ «О по-
рядке проведения биомедицинских исследований у человека» (Бюл. ВАК РФ, М., 2002. - №3. - С. 73-76).
Сначала в эксперименте противоэхинококкозная эффективность ЧСК-1 была установлена на поросятах и хлопковых крысах, зараженных эхино-коккозами. Затем был выполнен эксперимент на 12 группах хлопковых крыс, в каждой группе по 7 животных. Крысы первой группы не заражались альвеолярным эхинококкозом. Животные 2-12 групп были заражены альвеолярным эхинококкозом по вышеописанным методикам. (Б.А.Астафьев и соавт., 2000). На животных второй группы была установлена 10-дневная длительность экспериментальной инвазии (ДЭИ) с определением массы паразитарных ларвоцист (ПЛ). Третья группа - контрольная, антигельминтики не вводились.
После определения ДЭИ хлопковым крысам четвёртой группы в течение первой недели внутрижелудочно вводился ЧСК-1 в дозе 100 мг/кг, вторую неделю - 260 мг/кг и третью неделю - 340 мг/кг, крысам пятой группы в таких же дозах — тодикамп, шестой - СК-3, седьмой - СК-4, восьмой - СК-5, девятой - СК-6, десятой и одиннадцатой группам крыс вводились препараты сравнения: мебендазол - 10-й, албендазол — 11 -й в течение трёх недель в возрастающих дозах (первую неделю 20 мг/кг, вторую неделю - 40 мг/кг, третью - 60 мг/кг). Крысам 12-й группы вводился очищенный керосин в дозах ЧСК-1 и тодикамп а. Животные были усыплены через 40 дней после заражения.
В этом же эксперименте индексы торможения роста паразитарных ларвоцист (ИТРПЛ) для ЧСК-1 оказались следующими: ИТРПЛ-1 - 87,88%, ИТРПЛ-2 - 91,13%, ИТРПЛ-3 - 92,81%, для тодикампа соответственно 86,96; 90,56; 91,56%; для СК-3 - 83,27; 87,70; 86,25%; для СК-4 - 49,27; 66,66; 65,52%; для СК-5 - 67,06; 80,61; 67,50%; для СК-6 - 82,35; 79,21; 71,56%; для албендазола-47,3; 74,33; 60,0%; для мебендазола-65,35; 79,21; 71,56%; для экстрагента - 40,05; 47,33; 50,94%. Самая высокая противоэхинококкозная активность из числа испытуемых агентов установлена у ЧСК-1, тодикампа и СК-3.
На 45-ти овцах, спонтанно заразившихся эхинококкозом, был апробирован трёхнедельный курс лечения эхинококкоза тодикампом или ЧСК-1. 15 овец составили контрольную группу, им препараты не вводились, 15 овцам в течение трёх недель внутрижелудочно вводился тодикамп в возрастающих дозах, 15 больным эхинококкозом овцам - ЧСК-1. Первую неделю ежедневно вводилось по 100мг/кг, вторую неделю - 260мг/кг, третью неделю - 340 мг/кг испытуемого агента. Через 15 дней курс лечения повторили. Через три месяца после окончания эксперимента животные были убиты и проведены гельминтологические исследования. Эхинококки локализовались в лёгких и печени, величина кист от 0,5 до 3,5 см у леченых и контрольных животных. У леченых животных кисты потеряли упругость, были дряблыми, спавшимися, сморщенными, у контрольных с выраженным внутрипузырным давлени-
ем (упругие, плотные). Под воздействием тодикампаи^СК произошла ги--------------
бель зародышевых элементов" на 70 - 80%.
15 обезьян пятимесячного возраста были заражены внутрижелудочным введением яиц эхинококков от собаки-донора, заражённой эхинококком от прооперированного больного. Доза на одно животное 3000 яиц. Через 15 дней после заражения у всех 15-ти обезьян была положительная реакция ско-лексопреципитации и антигенсвязывания лимфоцитов на эхинококкоз. Через 30 дней после заражения 8-ми обезьянам проведён трёхнедельный курс лечения в возрастающих дозах ЧСК-1 и 7-ми обезьянам — в возрастающих дозах тодикампом. Дозы аналогичны, вводимым крысам и овцам при эхинококхо-зах. Через месяц после проведённого лечения произошло угасание иммунологических реакций, а через 90 дней после заражения они были отрицательными. Животные в здоровом состоянии выведены из эксперимента. Используя известные методы, мы произвели заражение 30 белых аутбредных крыс гидатидозным эхинококкозом (ГЭ) и 30 белых мышей - альвеолярным эхи-нококкозом (АЭ).
Через 10 дней после заражения у 5-ти белых крыс и 5-ти белых мышей была определена исходная масса развившихся паразитарных ларвоцист (ТТЛ). В течение трех недель в возрастающих дозах 10-ти зараженным ГЭ крысам вводили пнутрнжелудочно тодикамп, 10 — ЧСК—I. Дозы препаратов одинаковые. Первую неделю ежедневно по 0,2 г/кг, вторую неделю - 0,52 г/кг, третью неделю - 0,64 г/кг. Суммарная доза по каждому препарату составила 9,8 г/кг.
В таких же дозах 10-ти зараженным АЭ мышам внутр!окелудочно вводили тодикамп, 10 - ЧСК-1. 5 зараженных ГЭ крыс и 5 зараженных АЭ мышей составили контрольные группы. Им антигельминтики не вводили. По дозе препаратов вводилась дистиллированная вода. Токсического действия препаратов не проявилось, ИТРПЛ оказались выше 90 % для испытуемых агентов.
Результаты наших исследований на животных перепроверены руками других ученых (Лось Д.П., 1998; Погосов А.Г., 1998; Турсунов Б.С. и др., 2000; Габченко А.К. и др., 2000; Сабиров Б.У. и др., 2000; Мамутов С. и др., 2002) и получено подтверждение противоэхинококкозного эффекта тодикампа и ЧСК-1.
При экспериментальном сифачиозе и гименолепидозе белых мышей препараты тодикамп и ЧСК-1 в дозе 100мг/кг полностью, как показало вскрытие, освободили животных от инвазии. Однако, при трихоцефалезе мышей дозы препаратов в 300 мг/кг оказались неэффективными. Даже дозы 500мг/кг не освободили всех животных от инвазии.
На 6-ти группах кроликов по 7 животных в каждой, спонтанно заразившихся чесоткой, проведено протипопаразнтарное испытание 20%-ной эмульсии бензилбензоата, тодикампа и ЧСК-1. Первая группа кроликов была контрольной и апплицировалась дистиллированной водой. Вторая группа животных обрабатывалась 20%-ной эмульсией бензилбензоата, третья - тоди-
кампом, четвертая - смесью 20%-ной эмульсией бензилбеизоата и тодикампа (эмульсии 90%, тодикампа 10% по массе), пятая - ЧСК-1, шестая - 20%-ной эмульсией бензипбензоата и ЧСК-1 (эмульсии 90%, ЧСК-1 - 10% по массе) три раза с интервалом в сутки. После лечения в контрольной группе все семь кроликов остались больными, во второй - выздоровели 4 кролика, в третьей - 5, в четвертой - 7, в пятой - 4, в шестой - 7. Таким образом, тодикамп и ЧСК-1 обладают противочесоточными свойствами на уровне 20%-ной эмульсии бензипбензоата. Под воздействием 10% тодикампа или ЧСК-1 усиливается противочесоточная активность бензилбеизоата.
Б.С.Турсунов и соавт. (2002) несмотря на то, что возбудитель чесотки специфичен для вида хозяина, провели клиническое испытание тодикампа и ЧСК-1 в сочетаниях препаратов, примененных нами в эксперименте, на 67-ми больных чесоткой в клинических условиях, подтвердив наш результат.
Тодикамп и ЧСК-1, превратившись в средства народной медицины, стали самостоятельно изготавливаться населением и применяться самовольно. В нашей работе приведены материалы по лечению эхинококкоза людей и других паразитарных заболеваний тодикампом и ЧСК-1, принадлежащие профессорам Республики Узбекистан: Б.У.Сабирову, Б.С.Турсунову, А.Р.Саламову, С.А.Абдуллаеву, А.К.Габченко, доцентам: О.М.Мамышеву, Э.Э.Кабилову, З.И.Муртазаеву, Э.Мамараджабову, О.Х.Одилову, С.И.Нарзуллаеву и другим. По поводу этих материалов мы делаем заключение, что протнвопаразитарная и иммунокорригирующая способность тодикампа и ЧСК-1 должна быть обязательно проверена в клиниках России с разрешения Фармкомитета РФ, а приводимые нами в диссертации материалы следует учитывать как доклинические исследования.
В задачу наших исследований входило также применить биологический подход и осуществить совместно с хирургами В.К.Гостищевым, Ю.В.Бирюковым, С.А. Дадвани создание способа коррекции остаточной полости при эхинококкэктомии печени у взрослых, позволяющего снизить травматичность операции, исключить повреждение желчных и кровеносных сосудов, предупредить образование вторичных непаразитарных и паразитарных кист в послеоперационном периоде и применить для обработки остаточной полости препараты, обладающие противоэхинококкозным и ранозажив-ляющим свойствами.
Поставленная задача решена путем иссечения фиброзной капсулы по всему периметру, включая здоровую паренхиму печени толщиной 1-Змм, удаления хитиновой оболочки и эхинококковой жидкости с зародышевыми элементами, обеззараживания полости препаратом ЧСК—1 или тодикампом, ушивания кровоточащих сосудов резецированных краев печеночной ткани тонкими отдельными узловыми кетгутовыми швами.
Практически способ осуществляют следующим образом. Под эндотра-хеальным наркозом больному животному проводят лапаротомто и обнажают выступающую над поверхностью печени эхинококковую кисту с белесоватой
фиброзной капсулой. С помощью_троакар-дренажа - производят пункцию и--------
аспирацию содержимого ларвоцисты. Соединительнотканная оболочка паразита, непокрытая печёночной тканью, белесоватого цвета рассекается в продольном направлении по всему диаметру. Удаляется остаточная эхинококковая жидкость, а полость обеззараживается ЧСК—1, тодикампом или глицерином. В дальнейшем иссекается выступающая белесоватая часть фиброзной капсулы вместе с паренхимой печени толщиной 1-3 мм.
Из резецированных краев печёночной ткани кровоточащие сосуды ушиваются отдельными тонкими узловыми кетгутовыми швами. Краевая резекция печени выполняется с цельто стимуляции регенераторных процессов в резецированной области. Кроме того, ввёрнутые внутрь резецированные края и свободные участки паренхимы печени не подшиваются ко дну полости, поскольку такая фиксация может вызвать торможение процесса регенерации печени, и не исключает повреждение желчных протоков и кровеносных сосудов. В послеоперационном периоде применяются противоэхинококкоз-ные препараты: ЧСК-1 или тодикамп.
Клиническому применению предшествовали эксперименты по созданию лабораторной модели эхинококкоза, удобной для хирургов. Применена разработанная нами методика заражения поросят эхинококкозом. С этой целью 24 белым нелинейным мышам обоего пола вводили внутрибрюшинно по 2000 протосколексов из эхинококка от оперированного больного. На 260-й день после заражения мыши вскрыты и из развившихся кист добыты живые зрелые протосколексы и ацефалоцнеты, которыми 18 поросят 15-дневного возраста заражены внутрибрюшинно путем введения им по 1000 протосколексов и по 100 ацефалоцист, а также внутрь по 100 яиц эхинококков от собак-доноров. Через 6 мес. после заражения провели УЗИ органов брюшной полости поросят. У ] 5-ти животных выявлены эхинококки в печени диаметром до 7-11см. Животные оперированы по нашей методике. Использованы для обработки остаточной полости ЧСК-1 или тодикамп.
Хирурги Узбекистана: А.М.Шамсиев и соавт. (1995), Н.С.Баймурадов (1997), М.С.Мелиева (1997), Б.У.Сабиров и соавт. (1999), А.А.Рафиков, (1999), Г.А.Хайдаров (1999) прооперировали предложенным способом более 300 больных в возрасте от 3-х до 60-ти лет без осложнений и побочного действия препаратов тодикамп и ЧСК-1.
Нами впервые разработана и применена для диагностики эхинококкоза у животных реакция антигенсвязывания лимфоцитов (АСЛ).
Принцип метода заключается в образовании комплекса антигенсвязы-ваюгцих лимфоцитов с эритроцитами, нагруженными антигенами эхинококка. Для проверки чувствительности АСЛ была исследована кровь животных с подтвержденным диагнозом - эхинококкоз. В качестве антигена использовали отцетрифугированную свежую эхинококковую жидкость, которую нагружали на эритроциты. После контакта сенсибилизированных лимфоцитов с указанными эритроцитами возникает характерная фигура розетки, которую
легко идентифицировать под микроскопом, что отражает количество АСЛ, способных специфически реагировать на данный антиген. В параллельных тестах изучали контрольный антиген (альбумин), и по разности между опытной и контрольными пробами вычисляли число АСЛ, реагирующих с данным антигеном. Следует иметь в виду, что обнаружение АСЛ в реакции с различными антигенами в крови у здоровых животных не должно удивлять, так как в организме имеются антигенраспознающие клетки, генетически запрограммированные на реакцию против любого антигена. Эти клетки способны циркулировать через крово- и лимфоток. Для каждого вида животных выводят разность АСЛ между больными и здоровыми животными и на основании её ставится точный диагноз. Специфичность реакции для диагностики эхино-коккоза у животных не менее 98%, у людей - 99% (Шамсиев А.М. и др., 1997-2000; Гостищев В.К. и др., 1999, 2000).
Противовоспалительное, анальгсзпрующее, местнораздражающее
свойства тодикампа и ЧСК—1
А.Г.Маленков и соавт. (1995) сообщили о проведенном клиническом испытании тодикампа на спортсменах, страдавших обострением пояснично-крестцового радикулита.
Клинические испытания тодикампа (на добровольцах) проводили в сравнении с мазью апизартрон (Германия) с целью выявления противовоспалительного и местнораздражающего действия у спортсменов с обострением пояснично-крестцового радикулита.
Все обследуемые спортсмены проходили диспансеризацию.
До лечения спортсмены прошли широкий спектр физиологических, биохимических, инструментальных исследований. Эти исследования проведены в процессе и после окончания лечения. Из наблюдений исключались спортсмены, у которых выявлены аллергические заболевания.
Больным спортсменам проводилась аппликация тодикампом области болевой зоны в поясничном отделе с предварительной экспозицией в 5 минут с целью подбора индивидуальной пороговой чувствительности для каждого спортсмена. Положительной считалась экспозиция с появлением гиперемии и ощущением жжения, тепла и покалывания. Время экспозиции составляло от 5 до 60 минут. Продолжительность лечения в течение 10 сут.
В результате был установлен выраженный положительный эффект, что выражалось в уменьшении болевых симптомов у 14-ти больных, удовлетворительный результат у 6-ти спортсменов, у одного больного эффект отсутствовал в связи с толерантностью к препарату, у двух спортсменов в начале лечения - ожог 1-й и 2-й степени.
Б.У.Сабиров и соавт. (2000), Б.С.Турсунов и соавт. (2000) испытали препарат ЧСК-1 в виде компрессов при лечении 117 больных эхинококкозом. Возраст больных от 18 до 50 лет. У этих больных, по данным авторов, наружное применение препарата ЧСК-1 при лечении артральгии, миальгии, ра-
-------дикулита, люмбаго, ушибов и растяжений, острого бурсита и тевдовапшита
не уступило традиционному лечению с использованием препарата сравнения финалгоновой мази.
Оценивая результаты вышеотмеченных авторов, можно сделать заключение, что тодикамп обладает хорошей терапевтической активностью при обострении пояснично-крестцовых радикулитов различной этиологии. Препарат является достаточно эффективным противовоспалительным, анальге-зирующим и местнораздражающим средством. Обладает хорошим согревающим и миорелаксирующим эффектом, что позволяет его применять также в качестве средства для профилактики перенапряжения нервно-мышечного аппарата после интенсивных физических нагрузок. ЧСК~1 обладает противовоспалительным, анальгезирующим, местнораздражающим и иммуно-модулирующим свойствами. При лечении артральгии, миальгии, радикулита, люмбаго, ушибов и растяжений, острых бурситов, тендовагинитов ЧСК-1 не уступил финалгоновой мази.
Примеиение препаратов тодпкампа и ЧСК-1 в ветеринарии
Не осталась в стороне в испытании тодикампа и ЧСК-1 и ветеринарная наука. По просьбе руководителей животноводства и ветеринарии Республики Узбекистан нами были переданы для производственного испытания препараты тодикамп и ЧСК— 1. Была создана авторитетная комиссия, в состав которой вошли доктора ветерштрных наук, а также представители медицинской науки. Был составлен акт о результатах испытания препаратов тодикамп и ЧСК-1 для лечения различных заболеваний животных. Приводим содержание этого документа.
Препараты тодикамп и ЧСК-1 испытали при лечении 97 голов истощенного молодняка крупного рогатого скота, не поддающегося лечению антибиотиками и другими препаратами. Это были ослабленные животные, которые отставали в росте и развитии. Обычно такие животные погибают. Препарат вводился в течение 5-ти дней ежедневно внутрижелудочно в дозе по 0,1 мл/кг. Все животные выздоровели.
Тодикамп и ЧСК-1 испытаны на 500 цыплятах, пораженных аскари-диозом и гетеракидозом. 250 цыплят лечили тодикампом, 250 цыплят лечили ЧСК-1. Доза 0,5 мл/кг внутрижелудочно. Все цыплята выздоровели.
1250 голов овец, пибракотзаиных из стада, ио как показали специальные исследования, больные эхинококкозом, были поставлены на откорм. 620 пролечены тодикампом, 630 - ЧСК—1. Применен 3-недельный курс лечения в возрастающих дозах: первую неделю 0,1 мл/кг, вторую неделю 0,2 мл/кг, третью неделю 0,3 мл/кг. У животных наступило выздоровление, на вскрытии большинство эхинококков и зародышевых элементов погибло. Получен высокий экономический эффект.
На 28-ми овцах, больных эхинококкозом, успешно использован тоди-камп и ЧСК-1 для коррекции остаточной полости, что внедрено в медицинскую хирургию при лечении эхинококкоза.
Трехнедельным курсом тодикампом и ЧСК-1 успешно пролечены 30 овец с поражением саркоцистозом сердца, на вскрытии установлена гибель паразитов.
75 поросят-заморышей со вторичным иммунодефицитом получили в течение недели по 0,5 мг/кг препаратов (41 - тодикамп, 34 - ЧСК-1). Животные выздоровели - получен хороший экономический эффект. Препараты также оказались эффективными при лечении аппликациями пораженных копыт (75 телят, 150 ягнят, 35 жеребят).
Очень эффективными испытуемые лекарства оказались при лечении болезней суставов телят неизвестной этиологии (87 телят), у них был выражен вторичный иммунодефицит.
На 37 собаках, больных токсокарозом, токсаскаридозом, проверен тодикамп в дозе 0,3 мл/кг. Все животные освободились от паразитов с последующим выздоровлением. 57 коров вылечены от тимпании такой же дозой.
На 39 свиньях, пораженных аскаридозом, испытан тодикамп в дозах 0,2 мл внутрь, все животные выздоровели.
При любых иммунодефицитных состояниях, гастритах, гепатитах и функциональной недостаточности печени животных в малых дозах эффективны тодикамп и ЧСК (0,05 мг/кг), а при паразитарных заболеваниях дозу препаратов надо увеличивать до 0,1 - 0,3 мл/кг. Препараты нетоксичны, не обладают побочным действием.
ВЫВОДЫ
1.Обнаружены в плодах грецкого ореха биологически активные вещества: белок, аминокислоты, дубильные вещества, сахара, клетчатка, жирные масла, витамины. Из плодов грецкого ореха в стадии молочно-восковой зрелости выделено жирное масло светло-желтого цвета, приятного вкуса, со специфичным ароматным запахом. Константы масла: di04 0,87; n20n 1,1470; число омыления (мг КОН/г) 161,71; кислотное число 0,54; эфирное число 161,17; йодное число 127,5; число Рейхерта-Мейсселя 2,15; число Поленско-го 0,21; неомыляемые вещества 0,92%. В масле плодов грецкого ореха идентифицированы следующие жирные кислоты: каприоловая (0,1-0,2%), лаури-новая (0,1-0,2%), миристиновая (0,1-0,3%), пальмитиновая (0,7-6,4%), стеариновая (0,3-0,7%), пальмитолеиновая (0,1-0,3%), олеиновая (11,0-28,4%), линолевая (56,1-71,5%), линоленовая (10,3-13,1%). Зеленые плоды грецкого ореха богаты витаминами: С, РР, Вь В2, каротином.
2.Из плодов зеленого грецкого ореха в стадии молочной зрелости нами выделены: юглон (2,5%), эфирное масло (0,04%), галловая кислота (0,03%), эллаговая кислота (0,1%), бета-гидроюглон (0,4%), глюкозид альфа-гидроюглона С^НиОз (0,7%), 3-арабинозид кверцетина C2oHi808 (0,2 %), 3-арабинозид кемпферола С20Н20О12 (0,5%). Состав эфирного масла (в %): аль-
фа-пинен 10,95, бета-пинен 4,08, хлороформ 2,65, капроновый альдегид 5,29, Д3-карен 4,75, кариофиллен 21,54, лонгифолен 15,12, гумулен 7,78, альфа-терпинеол 8,56, гамма-кадинен 7,34, сигма-кадинен 6,35, хамазулен 1,52. Масло зеленых плодов грецкого ореха содержало альфа-токоферолов - 37%, бета-токоферолов - 33%, гамма-токоферолов - 30%.
3.С использованием комплекса методов адсорбционной, тонкослойной хроматографии, масс-спектрометрни в составе экстрактов из зеленых плодов грецкого ореха в стадии молочно-восковой зрелости выявлено 7 групп соединений с различной полярностью, относящихся к липофильной фракции.
4.Летальные дозы тодикампа при внутрижелудочном введении белым мышам: ЦЬо составила 14б6б±584,9 мг/кг, ЬД,6=11733,3 мг/кг, ЬД,<=16266,7 мг/кг, а при введении белым крысам: ЬД5о=14760,0±501,42 мг/кг, ЬД,6=11674 мг/кг, ЬД84= 15560 мг/кг. Тодикамп обладает низкой кумулятивной способностью. Тодикамп не обладает иммунотоксичностыо, эмбриотоксичностью, мутагенной и ДНК-повреждающей активностью, аллергизирующими свойствами. Длительная аппликация кожи животных тодикампом не приводит к функциональным и морфологическим изменениям жизненно важных органов. Еще более низкой токсичностью обладает ЧСК—1. По выраженности токсических свойств тодикамп и ЧСК—1 классифицировали по К.К.Сидорову (1973) как малотоксичные и практически нетоксичные (IV и V класс токсичности).
5. На лабораторных моделях сифачиоза и гименолепидоза белых мышей тодикамп или ЧСК-1 в дозе 100 мг/кг при разовом внутрижелудочном введении освобождает всех животных от инвазии. Такая же доза тодикампа или ЧСК-1 оказалась совершенно не эффективной при лечении экспериментального трихоиефалеза белых мышей. При экспериментальном альвеолярном эхинококкозе хлопковых крыс индексы торможения роста паразитарных лар-воцист достигали 90%. При спонтанной чесотке животных тодикамп и ЧСК— 1 проявили противопаразитарную активность на уровне 20%-ной эмульсии бензилбензоата. Включение 10% тодикампа или ЧСК-1 в состав 20%-ной эмульсии бензилбензоата усиливает противочесоточную активность эмульсии, снижая ее токсичность.
6.При экспериментальном токсическом гепатите белых мышей под воздействием внутрижелудочного введения тодикампа или ЧСК—1 летальность снижалась на 20-40% . При экспериментальном токсическом гепатите собак под воздействием внутрижелудочного введения терапевтических доз ЧСК-1 наступала нормализация биохимических показателей крови, характеризующих функциональное состояние печени животных. В эксперименте с обезьянами с функциональной недостаточностью печени под воздействием изучаемых препаратов происходила в крови нормализация уровня аминотрансфе-раз.
7.Эхинококкоз мышей, вызванный человеческими штаммами паразита, сопровождался иммуносупрессией, при которой иммуномодуляторы способ-
ствовали нормализации нарушенных звеньев клеточного и гуморального иммунитета. При этом наиболее эффективными оказались полиоксидоний, то-дикамп и ЧСК-1. При иммуносупрессии, вызванной циклофосфаном или эхинококкозом, полиоксидоний, тодикамп и ЧСК-1 проявляют тенденцию к нормализации клеточного и гуморального звена иммунитета, а также фагоцитоза нейтрофилов и макрофагов. Экспериментальный альвеолярный эхи-нококкоз хлопковых крыс сопровождается вторичным иммунодефицитом. Трехнедельное внутрижелудочное введение терапевтических доз ЧСК-1 приводит к нормализации показателей иммунитета.
8.Тодикамп и ЧСК-1 обладают противомикробными свойствами при внутрибрюшинном заражении мышей Proteus miriabilis - 4641, так как продлевают продолжительность жизни мышей. Патогенная микрофлора, выделенная из жидкости ларвоцист эхинококка, оказалось чувствительной к тоди-кампу и ЧСК-1 на уровне кефзола, клафорана, кефадима.
9.Тодикамп является достаточно эффективным противовоспалительным, анальгезирующим и местнораздражающим средством. Препарат тодикамп рекомендуется для применения в практике спортивной медицины. ЧСК-1 обладает противовоспалительным, анальгезирующим, местнораздражающим и иммуномодулирующим свойствами. При лечении артральгии, миальгии, радикулита, люмбаго, ушибов и растяжений, острых бурситов, тен-довагинитов ЧСК—1 не уступил финалгоновой мази. Благодаря своей высокой проницаемости ЧСК-1 при наружном применении сохранил иммуномо-дулирующие свойства.
Ю.Тодикамп и ЧСК-1 успешно применены в ветеринарии при лечении гельминтозных заболеваний, а также при токсическом гепатите и заболеваниях дорогостоящего молодняка крупного рогатого скота неизвестной этиологии, сопровождающихся вторичными иммунодефицитами.
Практические рекомендации
1. При изготовлении новых лекарственных форм из зеленых плодов грецкого ореха молочно-восковой зрелости рекомендуем использовать плоды во второй половине мая, когда накапливается наибольшее количество биологически активных веществ. Перспективно изучение новых экстрагентов, полученных из очищенной, нетоксичной фракции нефти, с использованием их при экстрагировании лекарственных растений.
2. Предлагаем использовать созданную новую лабораторную модель эхинококкоза поросят, пригодную для хирургов при разработке новых оперативных вмешательств. Заражение поросят одновременно внутрибрюшинной имплантацией живыми протосколексами и per os яйцами эхинококков приводит к интенсивному росту ларвоцист в жизненно важных органах.
3. Для диагностики эхинококкоза в хирургических клиниках рекомендуем применять реакцию антигенсвязывания лимфоцитов (ACJI), точность показаний достигает 99%.
_______4. При эхииококкэктомии печени предлагаем использовать новый способ коррекции остаточной полости с обработкой последней препаратами то-дикампом и чеблин-СК-1, что обеспечивает профилактику осложнений рецидивов.
5. Результаты исследований внедрить в учебный процесс кафедр обшей биологии, генетики, паразитологии, фармакогнозии медицинских академий и
BJ^OB России.
Основные результаты работы представлены в следующих публикациях:
1.Бирюков Ю.В., Стреляева A.B., Чебышев Н.В., Коваленко Ф.П., Расу-лов С.М., Погосов А.Г., Лось Д.П., Эшанкулов У. Биологический подход к хирургическому лечению эхинококкоза легких // Грудная и сердечнососудистая хирургия. - 1998 - №5. - С.49 - 52.
2.Гостищев В.К., Стреляева A.B., Чебышев Н.В., Лось Д.П., Погосов А.Г., Эшанкулов У.С. Биологический подход к хирургическому лечению эхинококкоза печени // Анналы хирургии - 1998. - №6. - С. 45 - 50.
З.Чебышев Н.В., Стреляева A.B., Коваленко Ф.П., Самылина И.А., Раз-аков Ш.А., Ганизода Х.Г., Сабиров Б.У. Экспериментальный эхинококкоз и альвеококкоз и испытание препарата CK—1 // Медицин, паразитол. и парази-тар. болезни. - 1998. - №2. - С. 38-41.
Д.Стреляева A.B., Чебышев Н.В., Садыков В.М., Погосов А.Г. Экспериментальный имплантированный поросятам эхинококкоз от человека и испытание лечебного препарата CK—1 // Медицин, паразитол. и паразитар. болезни. - 1998.-№ 4. - С. 42 - 44.
5.Tursunov B.S., Strelyaeva A.V., Sadikov V.M. Modem approach to lung festering echinococcosis treatment // Suppurative diseases in lungs and pleura. -Samarkand, 1998.-P. 152.
6.Бирюков Ю.В., Стреляева A.B., Садыков Р.В., Сабиров Б.У., Турсунов Б.С., Расулов С.М. Современный подход к диагностике и хирургическому лечению эхинококкоза легких // Грудная и сердечно-сосудистая хирургия. -1999.-№ 4.-С. 46-50.
7.Ганизода Х.Г., Чебышев Н.В., Стреляева A.B., Садыков В.М. Свободные аминокислоты при алкогольных и паразитарных поражениях печени. -М„ 1999.-420 с.
8.Гостищев В.К., Стреляева A.B., Шамсиев A.M., Баймурадов Н.С., Сабиров Б.У., Садыков Р.В., Эшанкулов У.С. Иммунный статус, иммунодиагностика и иммунокоррекция при хирургическом лечении эхинококкоза печени // Анналы хирургии. - 1999. - №4. - С. 39 - 47.
9.Самылина И.А., Стреляева A.B., Чебышев Н.В., Садыков В.М. Изучение острой токсичности препарата чеблин-СК-1 // Фармация. - 1999. - № 2 -С. 34-37.
Ю.Стреляева A.B., Самылина И.А. Изучение острой токсичности очищенного авиационного керосина - нового экстрагента лекарственного растительного сырья //Фармация.- 1999.- № 1.- С. 18-21.
П.Стреляева A.B. Изучение применения препарата чеблин-СК-1 при лечении болезней собак и его токсичности // Проблемы экологии здоровья, паразитологии и фармации. -М., 1999. - С. 16 — 23.
12.Стреляева A.B. Изучение острой токсичности неочищенного авиационного керосина // Там же. - С. 23 - 27.
П.Стреляева A.B. Изучение эффективности препаратов группы CK при сифачиозе и энтеробиозе // Там же. - С. 27 - 31.
14.Стреляева A.B. Испытание препаратов группы CK при гименолепидо-зе // Там же. - С. 31 - 36.
15.Стреляева A.B. Испытание препаратов группы CK при аскаридиозе и гетеракидозе кур // Там же. - С. 36 - 39.
16.Стреляева A.B. Испытание препаратов группы CK при экспериментальном трихоцефалезе белых мышей // Там же. — С. 39 - 43.
П.Стреляева A.B. Содержание свободных аминокислот при поражении печени у лабораторных животных и испытании препаратов СК-1 // Там же. -С. 73-80.
18.Стреляева A.B., Самылина И.А. Физико-химические свойства препарата СК-1 // Там же. - С. 172 - 183.
19.Стреляева A.B. Влияние препарата чеблин-СК-1 на иммунный статус молодняка крупного рогатого скота // Там же, — С. 207 - 208.
20.Чебышев Н.В., Стреляева A.B., Бунятян Н.Д. Наиболее распространенные и опасные заболевания, вызываемые плоскими червями. Издание ММА.-М., 1999.-27 с.
21.Чебышев Н.В., Стреляева A.B., Самылина И.А., Коваленко Ф.П. Способ получения средства для лечения ларвального и стробилярного эхинокок-козов чеблин-СК-1 // Пат. РФ № 2136303. Бюл. - 1999. - №25.
22.Чебышев Н.В., Стреляева A.B., Самылина И.А., Садыков В.М., Коваленко Т.Ф., Логосов А.Г. Способ получения препарата чеблин, обладающего прогивоаскаридным действием // Пат. РФ № 2136304. Бюл. - 1999. - №25.
24.Бирюков Ю.В., Стреляева A.B., Шамсиев A.M. Иммунокоррекция при хирургическом лечении эхинококкоза легких И Грудная и сердечнососудистая хирургия. - 2000. - № 1. - С. 53 - 62.
25.Бирюков Ю.В., Стреляева A.B., Ильхамов Ф.А., Исламбеков Э.С., Мусаев Г.Х., Кабилов Э.Э. Опьгт хирургического лечения эхинококкоза легких и применение препарата чеблин-СК-1 // Там же. - № 2. - С. 48 - 57.
26.Бирюков Ю.В., Стреляева A.B., Садыков В.М., Коваленко Ф.П., Тур-сунов Б.С., Расулов С.М. Обработка полости кист при гидатидном эхино-коккозе (экспериментально-клиническое исследование) // Хирургия. - 2000. — №5. -С. 27-29.
—- - 27.Гостшцев В .К., Стреляева A.B., Бунятян Н.Д., Чебышев Н.В;;Ильха-мов Ф.А., Исламбеков Э.С., Сабиров Б.У. Иммунокоррекция при хирургическом лечении эхинококкоза печени с использованием препарата чеблин-СК— 1 // Анналы хирургии. - 2000. - № 5. - С. 41 - 46.
28.Дадвани С.А., Стреляева A.B., Гостищев В.К., Муртазаев З.И., Сабиров Б.У. Малоинвазивные оперативные вмешательства и химиотерапия при эхинококкозе // Анналы хирурпш. - 2000. - №4. - С. 38 - 46.
29.Садыков В.М., Стреляева A.B., Чебышев Н.В., Бирюков Ю.В., Коваленко Ф.П., Расулов С.М., Эшанкулов У.С. Совершенствование нового способа хирургического лечения эхинококкоза // Мед. паразитол. и паразитар. болезни. - 2000. -№3.-С. 40-43.
30.Садыков В.М., Стреляева A.B., Гостищев В.К., Ильхамов Ф.А., Кабилов Э.Э., Буриева Н. Коррекция с помощью препарата чеблин-СК-1 аминокислотного обмена при хирургическом лечении эхинококкоза печени // Проблемы биологии и медицины. - 2000. - № 1. - С. 68 - 73.
31.Садыков В.М., Стреляева A.B., Саламов A.C., Кабилов Э.Э., Мамы-шева И.О. Экспериментально-клиническое исследование эхинококкоза // Журнал теоретической и клинической медицины. - 2000. - № 6. - С. 16 - 18.
32.Саламов A.C., Стреляева A.B., Бирюков Ю.В., Юсупов Ш.А, Мамы-шева И.О., Садыков Р.В., Кабилов Э.Э., Садыков В.М., Эшанкулов У.С. Иммунокоррекция при хирурпгческом лечении эхинококкоза легких с помощью препарата чеблин-СК-1 // Журнал теоретической и клинической медицины. -2000. -№ 5. - С. 94- 100
33.Самылина И.А., Стреляева A.B. Изучение острой токсичности бытового керосшм на белых крысах // Эхинококкоз с позиций хирургии, паразитологии и фармации. - М„ 2000. - С. 86 - 89.
34.Самылина И. А., Стреляева А. В., Фисенко В.П., Бунятян Н.Д., Садыков В.М. Использование препарата чеблин-СК-1 в лечении эхинококкоза. // Человек и лекарство. VII Российский национальный конгресс. - М., 2000. -С. 542.
35.Стреляева A.B. Коррекция аминокислотного обмена и иммунного статуса при вторичных иммунодефицитах с применением препарата чеблин-СК-1 // Фармация. - 2000. - № 4. - С. 46-48.
36.Стреляева A.B., Садыков В.М., Бирюков Ю.В. Иммунитет при введении препарата чеблин—СК—1 на фоне эхинококковой иммунодепрессии // Вестник врача общей практики. - 2000. - № 2. - С. 82 - 85.
37.Стреляева A.B. Эхинококкоз с позиций хирургии, биологии и фармации. - М„ 2000.-220 с.
38.Чебышев Н.В., Стреляева A.B., Бирюков Ю.В., Садыков В.М., Коваленко Ф.П., Турсунов Б.С. Использование гомеопатического препарата чеб-лин-СК-1 в патогенетической терапии эхинококкоза // Мед. паразитол. и паразитар. болезни. - 2000. - № 4. - С. 29-33.
39.Шамсиев A.M., Стреляева A.B., Расулов С.М., Садыков В.М. Применение реакции антигенсвязывания лимфоцитов (АСЛ) для диагностики эхи-нококкоза // Проблемы эхинококкоза. - Махачкала, - 2000. - С. 137 - 138.
40.Бунятян Н.Д., Чебышев Н.В., Стреляева A.B., Маленков А.Г., Каци-тадзе Н.Ш., Муравьева Т.И. Иммуностимулирующие свойства препарата чеблин-СК-I при остром токсическом гепатите белых мышей // Матер. VIII Росс. нац. конгресса "Человек и лекарство".- М.,2001. - С. 550.
41.Гостищев В.К., Стреляева A.B., Чебышев Н.В., Садыков В.М., Пого-сов А.Г., Лось Д.П. Способ коррекции остаточной полости при эхинококкэк-томии печени у взрослых.-Патент РФ №2177743.-Бюл. 2001. -№17.
42.Дадвани С.А., Стреляева A.B., Мусаев Г.Х., Сабиров Б.У. Иммуно-реабилитация больных с эхинококкозом легких // International Journal on Imm unorehabilitation. - 2001- Vol.3.- № 3 - С. 40-49.
43.Самылина И.А., Стреляева A.B., Чебышев Н.В., Садыков В.М., Пого-сов А.Г. Изучение острой токсичности препарата садлин-СК-3 // Фармация -
2001. -№3.- С. 26-28.
44.Стреляева A.B., Муртазаев З.И, Садыков Р.В. Использование препарата чеблин-СК—1 при хирургическом лечении одиночного эхинококкоза печени II Хирургия Узбекистана. - 2001. - № 3. - С. 79.
45.Стреляева A.B. Иммунотропные свойства препарата чеблин-СК-1 // Фармация. - 2001.- №1,-С. 29-30.
46.Стреляева A.B. Коррекция функции печени с помощью препарата чеблин-СК-1 // Фармация. - 2001. - № 2. - С. 26 - 27.
47.Стреляева A.B. Иммунокоррекция при лечении сочетанно-множественного эхинококкоза с помощью препарата чеблин-СК-1 // Фармация,-2001-№ 6.-С. 19-23.
48.Стреляева A.B., Бунятян Н.Д., Самылина И.А., Бирюков Ю.В., Иба-дова Д.Н. Иммунитет при введении иммуномодуляторов на фоне эхинококковой иммуносупрессии // Экспериментальная и клиническая фармакология. - 2001. - Т. 64. - № 5. - С. 43 - 45.
49.Стреляева A.B., Муртазаев З.И., Садыков Р.В. Использование препарата чеблин-СК—1 при хирургическом лечении одиночного эхинококкоза печени//Хирургия Узбекистана. - 2001. -№3.- С. 79.
50.Бирюков Ю.В., Исламбеков Э.С.,Стреляева A.B., Сагиева А.Т. Эхи-нококкоз средостения // Хирургия. - 2002. - № 1. - С. 32 - 33.
51.Бирюков Ю.В., Маленков А.Г., Сабиров Б.У., Стреляева A.B., Садыков P.A., Сагиева А.Т., Нарзуллаев С.И. Экспериментально-клиническое изучение эхинококкоза сердца и попытка его моделирования // Грудная и сердечно-сосудистая хирургия. - 2002. - №4. - С. 40 - 46.
52.Бунятян Н.Д., Маленков А.Г., Стреляева A.B., Шашкина Л.Ф., Голу-бева М.И., Чебышев Н.В., Самылина И.А. Хроническая и острая токсичность тодикампа // Матер. IX Росс. нац. конгресса "Человек и лекарство",- М.,
2002. - С. 589.
_______53.Бунятян Н.Д., Маленков А.Г., Самылина И.А.7 Радкевич ЛГА.7 Стре-
ляева A.B., Чебышев Н.В. Коррекция аминокислотного обмена при эхино-коккозе с помощью препарата чеблин-СК-1 // Там же. - С. 589.
54.Дадвани С.А., Маленков А.Г., Стреляева A.B., Гостищев В.К., Муса-ев Г.Х., Ильхамов Ф.А., Турсунов Б.С., Мамадалиев A.M. Иммунореабилита-ция больных эхинококкозом в зависимости от методов хирургического вмешательства и примененных иммуномодуляторов // International Journal on Immunorehabilitation. - 2002. - Voi.4. - N 1. - С. 12 - 19.
55.Маленков А.Г., Стреляева A.B., Чебышев Н.В. Самылина И.А., Кудрина Г.П., Бунятян IL Д. Иммунокорригирующие свойсгва тодикампа при эхинококкозе // Матер. IX Росс. нац. конгресса "Человек и лекарство". - М., 2002. - С. 589.
56.Маленков А.Г., Стреляева A.B., Кротов В.П., Корольков В.И., Чебышев Н.В., Самылина И.А., Бунятян Н.Д., Радкевич Л.А. Клинико-физиологическое состояние обезьян после введения препаратов тодикампа и чеблина-СК-1 // Там же. - С. 655.
57.Маленков А.Г., Маленков Д.А., Стреляева A.B., Золотарева Г.Н., Кудрина Г.П., Бунятян Н.Д., Абилев С.К. Изучение потенциальной мутагенной активности препаратов тодикампа и чеблин-СК-1 // Там же. - С. 654.
58.Маленков А.Г., Маленков Д.А., Кудрина Г.П., Золотарева Г.Н., Абилев С.К., Бунятян Н.Д. Изучение цитогенетической и ДНК-повреждающей активности препаратов тодикампа и чеблин~СК—1 // Там же. - С. 654.
59.Маленков А.Г., Стреляева A.B., Чебышев Н.В., Садыков В.М. Изучение местнораздражающего действия препарата тодикамп и его влияние на функции жизненно важных органов // Фармация. - 2002. -N2. С. 27 - 30.
60.Самылина И.А., Стреляева A.B.,Маленков А.Г. Химический состав зеленых плодов грецкого ореха // Проблемы экологии, здоровья, паразитологии и фармации. - М., 2002. - С. 124 - 129.
61.Стреляева A.B., Маленков А.Г., Самылина И.А., Чебышев Н.В., Тор-чинский A.M., Бунятян Н.Д. Эмбриотоксичность препарата тодикампа // Матер. IX Росс. нац. конгресса "Человек и лекарство". -М., 2002. - С. 704.
62.Стреляева A.B., Маленков А.Г., Радкевич Л.А., Самылина И.А., Чебышев Н.В., Бунятян Н.Д. Коррекция функции печени с помощью препарата тодикамп // Там же. - С. 705.
63.Стреляева A.B., Маленков А.Г., Шашкина Л.Ф., Голубева М.И., Чи-жова Е.Т. Изучение токсичности тодикампа при аппликациях на кожу животных // Проблемы экологии, здоровья, паразитологии и фармации. - М., 2002.-С.З -32
64.Чебышев Н.В., Стреляева A.B., Садыков В.М., Бунятян Н.Д., Самылина И.А., Сабиров Б.У. Противомикробные, противоэхинококхозные и иммуностимулирующие свойства препарата чеблин-СК-1 // Мед. паразитол. и паразитар. болезни. - 2002. - №1. - С. 33 — 35.
65.Чебышев Н.В., Стреляева A.B., Маленков А.Г., Садыков В.М., Исламбеков Э.С. Эхинококкоз органов грудной полости // Медицина. - М., 2002. - 420 с.
бб.Чебышев Н.В., Стреляева A.B., Маленков А.Г., Шашкпна Л.Ф., Голубева М.И., Чижова Е.Т. Изучение острой токсичности тодикампа -нового противоэхинококкозного препарата // Проблемы экологии, здоровья, паразитологии и фармации. - М., 2002. - С. 47 - 71
Подписано в печать 4.01.2003 г. Формат 60x90, 1/32. Объем 2,0 п.л. Тираж 100 экз. Отпечатано в Московской медицинской академии им. И.М. Сеченова, 119992, Москва, Б. Пироговская, д. 2-6.
Оглавление диссертации Стреляева, Ангелина Вадимовна :: 2003 :: Москва
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ.
Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
1.1. Из систематики грецкого ореха.
1.2. Морфология.
1.3. Химический состав грецкого ореха.
1.4. Применение грецкого ореха и препаратов на его основе в народной и научной медицине.
1.5. Применение керосина в медицине.
1.6. Народнохозяйственная и медицинская значимость эхинококкоза для России и стран СНГ.
Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.
Глава 3. ХИМИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ЗЕЛЕНЫХ ПЛОДОВ ГРЕЦКОГО ОРЕХА И ПОЛУЧЕННЫХ ПРЕПАРАТОВ.
3.1. Химический состав зеленых плодов грецкого ореха.
3.2. Экспериментальное исследование состава углеводородного экстракта зеленых плодов грецкого ореха.
Глава 4. ИЗУЧЕНИЕ ТОКСИЧНОСТИ ТОДИКАМПА.
4.1. Изучение острой токсичности тодикампа.
4.2. Изучение хронической токсичности тодикампа.
4.3. Изучение длительного воздействия тодикампа на организм животных.
4.3.1. Изучение токсичности тодикампа при аппликациях на кожу животных.
4.3.2. Длительное внутрижелудочное введение тодикампа собакам и свиньям.
4.4. Клинико-физиологическое состояние обезьян под воздействием тодикампа.
4.5. Иммунотоксическое и аллергизирующее действие тодикампа.
4.6. Токсичность тодикампа в противочесоточных средствах, содержащих бензилбензоат.
4.7. Изучение мутагенной и ДНК-повреждающей активности тодикампа.
4.8. Исследование действия тодикампа на механическую интеграцию клеток в ткани.
Глава 5. ИЗУЧЕНИЕ ТОКСИЧНОСТИ ПРЕПАРАТА
ЧЕБЛИН-СК
5.1. Острая токсичность ЧСК-1.
5.2. Хроническая токсичность ЧСК-1.
5.3. Клинико-физиологическое состояние обезьян под воздействием ЧСК-1.
5.4. Накожное воздействие ЧСК-1 на организм животных.
5.5. Иммунотоксичность и аллергизирующее действие ЧСК-1.
5.6. Эмбриотоксичность и тератогенность ЧСК-1.
5.7. Изучение мутагенной и ДНК- повреждающей активности ЧСК-1.
Глава 6. ОСТРАЯ ТОКСИЧНОСТЬ ПРЕПАРАТОВ СК-3 И
СК-6.
6.1. Изучение острой токсичности препарата СК-3.
6.2. Острая токсичность СК-6.
Глава 7. ФАРМАКОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ
ПРЕПАРАТОВ НА ОСНОВЕ ЛЕКАРСТВЕННОГО РАСТИТЕЛЬНОГО СЫРЬЯ И НОВЫХ ЭКСТРАГЕНТОВ 263 Противопаразитарная активность изучаемых препаратов . . . 263 7.1. Эффективность препаратов группы СК при сифачиозе, аскаридиозе, гетеракидозе, трихоцефалёзе и гименолепидозе животных. 263 7.2. Испытание препаратов группы СК при эхинококкозах и чесотке
7.3. Оценка клинического испытания тодикампа и ЧСК-1 при лечении эхинококкоза в хирургических клиниках Узбекистана.
7.4. Иммунотропные и противомикробные свойства ЧСК-1 и тодикампа.
7.5. Гепатопротекторные свойства тодикампа и ЧСК-1.
7.6. Противовоспалительное, анальгезирующее, местнораздражающее свойства тодикампа и ЧСК-1.
7.7. Использование препаратов тодикампа и ЧСК-1 в ветеринарии . . 306 ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
ВЫВОДЫ.
Введение диссертации по теме "Фармацевтическая химия и фармакогнозия", Стреляева, Ангелина Вадимовна, автореферат
Актуальность проблемы. Тысячелетиями человечество использует лекарственные растения для лечения различных заболеваний. Обилие синтетических лекарственных препаратов, ставших причиной аллергических и хронических заболеваний, привели в настоящее время к возрастанию игтереса к лекарственным растениям. Препараты лекарственных растений занимают значительный удельный вес в общем объеме лекарственных средств.
Перспективные лекарственные растения, на основе которых созданы препараты широкого спектра действия, заслуживают особого внимания исследователей.
Грецкий орех (Juglans regia L.) - лекарственное растение, которому посвящено более 10 тыс. литературных источников, отражающих использование его в народной медицине и ветеринарии. Применяется гомеопатический препарат югланс, изготовленный из листьев грецкого ореха (Кент Л.Т., 1997).
По данным E.Barbas et al. (1993), D.Chenevard et al. (1994), Р.Э.Лойко и Т.С.Ширко (1994), З.А. Троян и соавт. (1999), плоды, листья грецкого ореха содержат большое количество биологически активных веществ, в том числе витамины, жирные кислоты, макро- и микроэлементы. Фармацевтическая наука еще недостаточно использовала лекарственные возможности этого растения.
А.Г.Маленков и соавт. (1995) запатентовали препарат тодикамп, полученный из плодов грецкого ореха молочно-восковой спелости с помощью нефтяной фракции ленефр, представляющей собой часть нефти, выкипающей при температуре до 150°С. Еще до этого более 30 лет керосиновый экстракт зеленых плодов грецкого ореха успешно применялся в народной медицине для лечения радикулита, простатита, цирроза печени, иммунодефицита, опухолей (Кашницкий С., 1990).
В настоящее время используются лекарственные препараты, полученные из нефтепродуктов. Так, например, вазелиновое масло - продукт очищенной нефти, применяется внутрь детям и взрослым при запорах (Машковский М.Д.,
1989, 1999; Харкевич Д.А., 1993, 1999). В России и других странах применяется препарат петролеум, изготовленный из нефти (Шаретт Ж., 1997, Глаз В.Г., 1998), обладающий широким спектром фармакологического действия. Петролеум используется с 1913 г. (Френкель Л.Д., 1913, 1993) без побочного и токсического действия, а в настоящее время свободно реализуется в аптеках России. *
По данным Г.Г.Онищенко (2000), в России ежегодно страдают паразитарными болезнями более одного млн людей. Такое заболевание как эхинококкоз сопровождается вторичным иммунодефицитом и функциональной недостаточностью печени (Гостищев В.К. и др., 1999, 2000, Бирюков Ю.В. и др., 1999-2002, Чебышев Н.В. и др., 1998-2002). Отсутствие достаточного количества отечественных препаратов на основе лекарственного растительного сырья, обладающих противоэхинококкозным, гепатопротекторным, иммунотропным свойствами, делают проблему актуальной.
В Таджикистане в 90-х годах был изготовлен тодикамп, который поступил в реализацию в Узбекистане. Тодикамп и чеблин-СК-1 (ЧСК-1), полученный нами и представляющий собой керосиновый экстракт из зеленых плодов грецкого ореха молочно-восковой спелости, также стали использовать при лечении людей и животных. Ситуация не контролировалась медицинской и ветеринарной практикой и наукой. В связи с этим представляется целесообразным изучение токсичности и фармакологической активности препаратов на основе лекарственного растительного сырья и экстрагентов из нефтепродуктов. Требует анализа клиническое испытание тодикампа и ЧСК-1.
Цель исследования. Целью исследования явилось изучение фармакологической активности и токсичности препаратов тодикампа и ЧСК-1, а также других лекарственных средств, изготавливаемых экстрагированием растительного сырья с помощью очищенных нефтепродуктов.
Задачи исследования
1. Изучить химический состав плодов грецкого ореха в процессе созревания для определения оптимальных сроков заготовки сырья.
2. Провести экспериментальное исследование состава углеводородного экстракта зеленых плодов грецкого ореха.
3. Изучить острую токсичность при внутрижелудочном введении препаратов, полученных из лекарственного растительного сырья с использованием новых экстрагентов.
4. Изучить хроническую токсичность при длительных внутрижелудочных введениях и аппликаций кожи животным тодикампа и ЧСК-1.
5. Определить иммунотоксичность, аллергизирующую способность, эмбриотоксичность, тератогенность, мутагенность, ДНК-повреждающее действие тодикампа и ЧСК-1.
6. Изучить фармакологическое действие препаратов, полученных из растительного лекарственного сырья с использованием новых экстрагентов: а) противопаразитарную активность изучаемых препаратов; б) гепатопротекторное, иммуномодулирующее, противомикробное свойства изучаемых препаратов.
7. Разработать лабораторную модель для коррекции остаточной полости при эхинококкэктомии и применения противопаразитарных средств.
8. Разработать новый метод иммунодиагностики эхинококкозов.
9. Оценить клинические испытания тодикампа и ЧСК-1 в Республике Узбекистан.
10. Разработать рекомендации по использованию результатов исследований.
Научная новизна. Из плодов грецкого ореха в молочно-восковой зрелости на научной основе нами созданы препараты ЧСК-1, чеблин (Чебышев Н.В., Стреляева А.В., Самылина И.А., Коваленко Ф.П. Способ получения средства для лечения ларвального и стробилярного эхинококкозов чеблин-СК-1 // Пат. РФ № 2136303. Бюл. - 1999. - №25; Чебышев Н.В., Стреляева А.В., Самылина И.А., Коваленко Т.Ф. Способ получения препарата чеблин, обладающего противоаскаридным действием // Пат. РФ № 2136304. Бюл. - 1999. - №25; Гостищев В.К., Стреляева А.В., Чебышев Н.В. Способ коррекции остаточной полости при эхинококкэктомии у взрослых. - Патент РФ №2177443. - Бюл-2002. - № 1.) и показано, что по выраженности токсических свойств тодикамп и ЧСК-1 классифицировали по К.К.Сидорову (1973) как малотоксичные и практически нетоксичные (IV и V класс токсичности).
Изучена динамика накопления действующих веществ в плодах грецкого ореха и обоснованы сроки заготовки сырья.
Впервые раскрыты гепатопротекторные, иммуномодулирующие, противомикробные свойства тодикампа и ЧСК-1.
Установлена противогельминтозная, противочесоточная активность тодикампа и ЧСК-1.
Разработан новый метод иммунодиагностики эхинококкоза животных на принципе реакции антигенсвязывания лимфоцитов. В производственных условиях в животноводческих комплексах ветеринарными специалистами апробирована лечебная эффективность препаратов тодикамп и ЧСК-1.
Создана лабораторная модель гидатидозного эхинококкоза животных для разработки способа коррекции остаточной полости при эхинококкэктомии и использования противопаразитарных средств.
В теоретическом плане создана предпосылка для развития нового направления в фармации по изысканию препаратов растительного сырья с использованием экстрагентов, полученных из нефтепродуктов, подвергнутых тщательной очистке от токсических веществ.
Практическая значимость. Фармакогностическими исследованиями нами установлено, что наибольшее количество биологически активных веществ содержится в зеленых плодах растения в середине мая. На примере препарата ЧСК-1 открывается возможность изготовления ряда лекарственных средств с использованием очищенного авиационного керосина и ленефра. Препараты тодикамп и ЧСК-1 перспективны для использования в медицине и ветеринарии.
Результаты внедрения. Препараты тодикамп и ЧСК-1 использованы в хирургической практике Республики Узбекистан для лечения больных эхинококкозом различной локализации, а также для обработки остаточной полости при эхинококкэктомии. В хирургических клиниках СамГосМи разработанный иммунологический метод диагностики эхинококкоза широко применяется для выявления заболевания. Иммунотропные свойства препаратов тодикамп и ЧСК-1 использованы для иммунореабилитации больных.
Результаты исследований внедрены в учебный процесс кафедр общей биологии, генетики и паразитологии, фармакогнозии, фармакологии с курсом технологии лекарств ММА им. И.М. Сеченова.
Препараты тодикамп и ЧСК-1 апробированы специалистами ветеринарии и животноводства Республики Узбекистан для лечения больных животных.
Положения, выносимые на защиту
1. Изучение состава липофильной и гидрофильной фракций плодов грецкого ореха в динамике накопления биологических активных веществ в процессе созревания.
2. Результаты исследования токсичности тодикампа и ЧСК-1.
3. Фармакологическая активность тодикампа и ЧСК-1 (противогель-минтозная, противочесоточная, гепатопротекторная, иммунотропная, противомикробная).
4. Результаты доклинических экспериментальных исследований тодикампа и ЧСК-1.
Апробация работы. Материалы диссертационной работы доложены на: Республиканской научно-практической конференции с международным участием «Нагноительные заболевания легких и плевры» (Самарканд, 1998); научной конференции, посвященной 80-летию Института медицинской паразитологии и тропической медицины им. Е.И.Марциновского ММА им. И.М.Сеченова (Москва, 2000); VII, VIII и IX Российских национальных конгрессах «Человек и лекарство» (Москва, 2000, 2001, 2002); международной научно-практической конференции «Проблемы эхинококкоза» (Махачкала, 2000); научной конференции «Проблемы эхинококкоза» (Джизак, 2001); научной конференции Научно-исследовательского института медицинской паразитологии им. JI.M.Исаева (Самарканд, 2002); научной конференции Самаркандского государственного медицинского института им. акад. И.П.Павлова (Самарканд, 2002); научных конференциях ММА им. И.М.Сеченова (2000, 2001, 2002).
Связь задач исследования с проблемным планом фармацевтических наук
Диссертационная работа выполнена согласно плану научно-исследовательских работ кафедры фармакогнозии ММА им. И.М.Сеченова по теме «Фармакогностическое изучение лекарственного растительного сырья, лекарственных сборов, лекарственных форм из сырья и разработка методов их стандартизации с учетом антропогенных факторов» (код темы 0407093) соответствует проблеме № 1006 АМН РФ (номер Государственной регистрации 01-93-000-69-76).
10
Публикации
По теме диссертации опубликовано 66 работ, в том числе 3 монографии, 3 патента на изобретение, 10 тезисов, 50 статей.
Объем и структура диссертации Диссертационная работа представляет собой рукопись объемом 325 страниц. Состоит из введения, семи глав собственных исследований, обсуждения результатов, выводов и списка литературы. Работа иллюстрирована 25 рисунками. Список литературы включает 320 источников на русском языке и 122 - на иностранных языках.
Заключение диссертационного исследования на тему "Изучение токсичности и фармакологической активности препаратов на основе лекарственного растительного сырья и новых экстрагентов"
ВЫВОДЫ
1 .Обнаружены в плодах грецкого ореха биологически активные вещества: белок, аминокислоты, дубильные вещества, сахара, клетчатка, жирные масла, витамины. Из плодов грецкого ореха в стадии мол очно-восковой зрелости выделено жирное масло светло-желтого цвета, приятного вкуса, со специфичным ароматным запахом. Константы масла: d2°4 0,87; п20о 1,1470; число омыления (мг КОН/г) 161,71; кислотное число 0,54; эфирное число 161,17; йодное число 127,5; число Рейхерта-Мейсселя 2,15; число Поленского 0,21; неомыляемые вещества 0,92%. В масле плодов грецкого ореха идентифицированы следующие жирные кислоты: каприоловая (0,1 — 0,2%), лауриновая (0,1-0,2%), миристиновая (0,1-0,3%), пальмитиновая (0,76,4%), стеариновая (0,3-0,7%), пальмитолеиновая (0,1-0,3%), олеиновая (11,0- 28,4%), линолевая (56,1-71,5%), линоленовая (10,3-13,1%). Зеленые плоды грецкого ореха богаты витаминами: С, РР, В], В2, каротином.
2.Из плодов зеленого грецкого ореха в стадии молочной зрелости нами выделены: юглон (2,5%), эфирное масло (0,04%), галловая кислота (0,03%), эллаговая кислота (0,1%), бета-гидроюглон (0,4%), глюкозид альфа-гидроюглона С^Н^Оа (0,7%), 3-арабинозид кверцетина СгоН^Оя (0,2 %), 3-арабинозид кемпферола С2оН2о012 (0,5%). Состав эфирного масла (в %): апьфа-пинен 10,95, бета-пинен 4,08, хлороформ 2,65, капроновый альдегид 5,29, Д3-кареи 4,75, кариофиллен 21,54, лонгифолен 15,12, гумулен 7,78, апьфа-терпинеол 8,56, гамма-кадинен 7,34, сигма-кадинен 6,35, хамазулен 1,52. Масло зеленых плодов грецкого ореха содержало альфа-токоферолов -37%, бета-токоферолов - 33%, гамма-токоферолов - 30%.
3.С использованием комплекса методов адсорбционной, тонкослойной хроматографии, масс-спектрометрии в составе экстрактов из зеленых плодов грецкого ореха в стадии молочно-восковой зрелости выявлено 7 групп соединений с различной полярностью, относящихся к липофильной фракции.
4.Летальные дозы тодикампа при внутрижелудочном введении белым мышам: ЬДбо составила 14666±584,9 мг/кг, ЬД]6=11733,3 мг/кг, ЬДв4-16266,7 мг/кг, а при введении белым крысам: LДбо= 14760,0±501,42 мг/кг, ЬД16=11674 мг/кг, ЬД84=15560 мг/кг. Тодикамп обладает низкой кумулятивной способностью. Тодикамп не обладает иммунотоксичностью, эмбриотоксичностью, мутагенной и ДНК-повреждающей активностью, аллергизирующими свойствами. Длительная аппликация кожи животных тодикампом не приводит к функциональным и морфологическим изменениям жизненно важных органов. Еще более низкой токсичностью обладает ЧСК-1. По выраженности токсических свойств тодикамп и ЧСК-1 классифицировали по К.К.Сидорову (1973) как малотоксичные и практически нетоксичные (IV и V класс токсичности).
5. На лабораторных моделях сифачиоза и гименолепидоза белых мышей тодикамп или ЧСК-1 в дозе 100 мг/кг при разовом внутрижелудочном введении освобождает всех животных от инвазии. Такая же доза тодикампа или ЧСК-1 оказалась совершенно не эффективной при лечении экспериментального трихоцефалеза белых мышей. При экспериментальном альвеолярном эхинококкозе хлопковых крыс индексы торможения роста паразитарных ларвоцист достигали 90%. При спонтанной чесотке животных тодикамп и ЧСК-1 проявили противопаразитарную активность на уровне 20%-ной эмульсии бензилбензоата. Включение 10% тодикампа или ЧСК-1 в состав 20%-ной эмульсии бензилбензоата усиливает противочесоточную активность эмульсии, снижая ее токсичность.
6.При экспериментальном токсическом гепатите белых мышей под воздействием внутрижелудочного введения тодикампа или ЧСК-1 летальность снижалась на 20-40%. При экспериментальном токсическом гепатите собак под воздействием внутрижелудочного введения терапевтических доз ЧСК-1 наступала нормализация биохимических показателей крови, характеризующих функциональное состояние печени животных. В эксперименте с обезьянами с функциональной недостаточностью печени под воздействием изучаемых препаратов происходила в крови нормализация уровня аминотрансфераз.
7.Эхинококкоз мышей, вызванный человеческими штаммами паразита, сопровождался иммуносупрессией, при которой иммуномодуляторы способствовали нормализации нарушенных звеньев клеточного и гуморального иммунитета. При этом наиболее эффективными оказались полиоксидоний, тодикамп и ЧСК-1. При иммуносупрессии, вызванной циклофосфаном или эхинококкозом, полиоксидоний, тодикамп и ЧСК-1 проявляют тенденцию к нормализации клеточного и гуморального звена иммунитета, а также фагоцитоза нейтрофилов и макрофагов. Экспериментальный альвеолярный эхинококкоз хлопковых крыс сопровождается вторичным иммунодефицитом. Трехнедельное внутрижелудочное введение терапевтических доз ЧСК-1 приводит к нормализации показателей иммунитета.
8.Тодикамп и ЧСК-1 обладают противомикробными свойствами при внутрибрюшинном заражении мышей Proteus miriabilis - 4641, так как продлевают продолжительность жизни мышей. Патогенная микрофлора, выделенная из жидкости ларвоцист эхинококка, оказалось чувствительной к тодикампу и ЧСК-1 на уровне кефзола, клафорана, кефадима.
9.Тодикамп является достаточно эффективным противовоспалительным, анальгезирующим и местнораздражающим средством. Обладает хорошим согревающим и миорелаксирующим эффектом. Препарат тодикамп рекомендуется для применения в практике спортивной медицины. ЧСК-1 обладает противовоспалительным, анальгезирующим, местнораздражающим и иммуномодулирующим свойствами. При лечении артральгии, миальгии, радикулита, люмбаго, ушибов и растяжений, острых бурситов, тендовагинитов ЧСК-1 не уступил финалгоновой мази. Благодаря своей высокой проницаемости ЧСК-1 при наружном применении сохранил иммуномодулирующие свойства.
10.Тодикамп и ЧСК-1 успешно применены в ветеринарии при лечении гельминтозных заболеваний, а также при токсическом гепатите и заболеваниях дорогостоящего молодняка крупного рогатого скота неизвестной этиологии, сопровождающихся вторичными иммуно-дефицитами.
Практические рекомендации
1. При изготовлении новых лекарственных форм из зеленых плодов грецкого ореха молочно-восковой зрелости рекомендуем использовать плоды во второй половине мая, когда накапливается наибольшее количество биологически активных веществ. Перспективно изучение новых экстрагентов, полученных из очищенной, нетоксичной фракции нефти, с использованием их при экстрагировании лекарственных растений.
2. Предлагаем использовать созданную новую лабораторную модель эхинококкоза поросят, пригодную для хирургов при разработке новых оперативных вмешательств. Заражение поросят одновременно внутрибрюшинной имплантацией живыми протосколексами и per os яйцами эхинококков приводит к интенсивному росту ларвоцист в жизненно важных органах.
3. Для диагностики эхинококкоза в хирургических клиниках рекомендуем применять реакцию антигенсвязывания лимфоцитов (ACJ1), точность показаний достигает 99%.
4. При эхинококкэктомии печени предлагаем использовать новый способ коррекции остаточной полости с обработкой последней препаратами тодикампом и чеблин-СК-1, что обеспечивает профилактику осложнений рецидивов.
5. Результаты исследований внедрить в учебный процесс кафедр общей биологии, генетики, паразитологии, фармакогнозии медицинских академий и вузов России.
Список использованной литературы по фармакологии, диссертация 2003 года, Стреляева, Ангелина Вадимовна
1.Аделынина Г.А. Конструирование тест-системы для выявления альвео-коккоза с помощью антигенных магнитных сорбентов // Проблемы эхинококкоза. - Махачкала, 2000. - С. 4-5.
2. Адельшин Ф.К. Оценка токсичности жидкости и очищенных фракций альвеококкового антигена на тканевой культуре перевиваемого L 41 // Там же.-С. 5-6.
3. Азизов И.К. Анализ и оценка качества лекарственных веществ с использованием спектральных методов анализа в видимой области спектра // Авто-реф. диссер. док. фарм. наук. М., 1993. - 43 с.
4. Айдемиров А.Н., Байрамкулов М.Д. Плазменные технологии в хирургии эхинококкоза печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. -С. 7 - 8.
5. Айзенберг JI.H., Леонов Г.Б. К вопросу о синтезе 1,4-нафтохинона. -Кишинев, 1971. С. 64-72.
6. Айзенберг Р.С., Коптенко Е.П., Айзенберг Л.Н. Некоторые итоги исследования по химии юглона. Кишинев, 1971. - С. 3-10.
7. Акилов Х.А., Сайдазимов Е.М., Атаджанов Ш.К. Лапароскопическая эхинококкэктомия из печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. -С. 6-7.
8. Акопов Н.Э. Кровоостанавливающие растения // Ташкент, 1981. 296с.
9. Алиев М.М. Особенности хирургического лечения множественного эхинококкоза легких у детей // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. -С. 8-9.
10. Ю.Алкадарский А.С., Омаров М.М., Гаджимирзаев Р.Г. Морфология печени при различных формах эхинококкоза//Там же. -С. 12-13.
11. Аллабергенов А.Т., Алиев М.М., Икрамов А.И. и др. Хирургическое лечение множественного эхинококкоза печени у детей // Там же. С. 10-11.
12. Аннаев А.А., Левашов Ю.Н., Комеков Н.Х. и др. Послеоперационные осложнения у больных сочетанным эхинококкозом печени и легких // Там же.-С. 11-12.
13. Арбулиев М.Г., Гамзатов А.Г., Гусниео Н.М. и др. Эхинококкоз почки под маской опухоли или кисты // Там же. С. 20-21.
14. Асадулаев С.Х., Корчевский Э.М., Раджабова З.М. и др. Использование отвара листьев ореха и околоплодника для ингаляций // Здравоохранение Таджикистана. -1985 №4. - С. 95-96.
15. Аскерханов Г.Р., Мурачуев A.M., Тупчиев С.Б. Хирургия эхинококкоза легких // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 15-17.
16. Астафьев Б.А., Яроцкий JI.C., Лебедева М.Н. Экспериментальные модели паразитов в биологии и медицине. М., 1989. - 279 с.
17. Атаев A.M., Шамхалов В.М. Современное состояние эхинококкоза животных в Дагестане // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 17-19.
18. Атлас лекарственных растений СССР. М., 1962. -750 с.
19. Атмурзаев М.М., Байчоров Б.И., Межгихов Т.Н. Видео лапароскопическая эхинококкэктомия печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000.- С. 19-20.
20. Ахмадудинов М.Г., Киблаев И.Г., Рагимов Г.С. Топографоанатомичс-ские аспекты хирургии эхинококкоза печени // Там же. С. 21-22.
21. Ахмедов И.Г., Хамидов А.И., Меджидов Р.Т. и др. Современные аспекты химиотерапии эхинококкоза // Там же. С. 22-23.
22. Бабаскин B.C. Клевера европейской части России и их лекарственное применение // Автореф. диссер. док. фарм. наук. М., 1993. - 50 с.
23. Бабахаян Р.В. и соавт. Отравления безрецептурными ненаркотическими анальгетиками // Ремедиум 1999. - № 7-8. - С. 49-51.
24. Багирова В.Л. Государственная экспертиза нормативных документов как основа совершенствования системы стандартизации лекарственных средств // Автореф. диссер. док. фарм. наук. М., 1997. - 51 с.
25. Байбекова С.Ж., Верменичев С.М., Колычева Н.И. и др. Влияние элла-готанина на кровь и паренхиматозные органы животных. Таллин, 1987. - С. 9-10.
26. Баймурадов Н.С. Хирургическое лечение эхинококкоза печени у детей (клинико-экспериментальное исследование) // Автор, диссер. канд. мед. наук. -Ташкент, 1996.-20 с.
27. Балицкий К.П., Воронцова А.Л. Лекарственные растения и рак. Киев, 1982.-76 с.
28. Барабай В.А. Растительные фенолы и здоровье человека. М., 1984. -160 с.
29. Барская М.А., Мунин Ю.А., Мунин А.Г. и др. Особенности эхинококкоза у детей // Проблемы эхинококкоза. Маха ^кала, 2000. - С. 26-27.
30. Баратова С.М., Яковлев Г.П., Николаев С.М. и др. Растения тибетской медицины. Новосибирск, 1989. - 159 с.
31. Беленький М.Л. Элементы количественной оценки фармакологического эффекта. Л., 1963. - 145 с.
32. Белоконев В.И., Замятин В.В., Катков С.А. и др. Проблемы хирургического лечения больных с эхинококкозом // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 28-29.
33. Белоконев В.И., Иванов А.Р. Динамика заболеваемости эхинококкозом среди сельскохозяйственных животных и населения Самарской области // Там же. С. 27-28.
34. Белуха У.К., Лукьянова А.С., Шимонов З.Ю. К вопросу лечения эпидермофитии стоп юглоном // Мед. журн. Узбекистана. -1972. № 2. - С. 7879.
35. Бикбулатова Т.Н., Ержанова М.С., Рахмадиева С.Б. и др. Эллаговые дубильные вещества некоторых растений Казахстана. Алма-Ата, 1984. - С. 118-123.
36. Бирюков Ю.В., Стреляева А.В., Садыков Р.В., Садыков В.М. Современный подход к диагностике и хирургическому лечению эхинококкоза легких // Там же. № 4. - С. Л6-50.
37. Бирюков Ю.В., Стреляева А.В., Шамсиев A.M., Садыков В.М. и др. Иммунокоррекция при хирургическом лечении эхинококкоза легких // Там же.-2000.-№ 1.-С. 53-62.
38. Бирюков Ю.В., Стреляева А.В., Ильхамов Ф.А. и др. Опыт хирургического лечения эхинококкоза легких и применение препарата чеблин-СК-1 // Там же. № 2. - С. 48-57.
39. Бирюков Ю.В., Стреляева А.В., Коваленко Ф.П. и др. Обработка полости кист при гидатидном эхинококкозе (экспериментально-клиническое исследование) // Хирургия. 2000. - № 5. - С. 27-29.
40. Благитко Е.М., Толстых Г.Н., Добров С.Д. Объём оперативных вмешательств при эхинококкозе // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. -С. 29-30.
41. Блинова К.Ф. Исследование дз'бильных растений. Л., 1959. - С. 6072.
42. Бойко Н.Л., Опольский А.Ф., Ингре В.Г. Изучение возможных мутагенных свойств консерванта юглона для безалкогольных напитков // Рациональное питание. 1983. - В. 18. - С. 65-66.
43. Борисов А.Е., Земляной В.П., Кубачев К.Г. Алгоритм диагностики при очаговых заболеваниях печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000.-С. 30-31.
44. Борисова A.M., Лактионова Л.В., Сетдикова Н.Х. Опыт клинического применения полиоксидония при вторичных иммунодефицитах взрослых // International Journal on Immunorehab. 1998. - № 10. - С. 100-109.
45. Борисова A.M. Проблемы иммунотерапии общей вариабельной иммунной недостаточности у взрослых // International Journal on Immunorehab. -1998.-№10.-С. 127-137.
46. Бунятян Н.Д. Экспериментальное обоснование клинического применения новых растительных антиоксидантов полифенольной природы // Авто-реф. диссер. докт. фармац. наук. Купавна, 1999. - 45 с.
47. Бунятян Н.Д., Герасимова О.А., Чикиткина В.В. и др. Изучение безвредности растительного гепатопротектора пифламина // Фармация. 1998. -№6.-С. 27-28.
48. Бунятян Н.Д. Гепатозащитные свойства растительных антиоксидантов // Человек и лекарство: Тез. докл. 5-Российского национал, конгресса. М., 1998.-С. 353.
49. Бунятян Н.Д. Гепатозащитная активность субстанций альтан // Там же.-С. 353.
50. Бунятян Н.Д. Гепатопротекторное действие растительных антиоксидантов//М., 1999.- 116 с.
51. Бунятян Н.Д., Чебышев Н.В., Стреляева А.В., Маленков А.Г., Кацитад-зе Н.Ш., Муравьева Т.И. Иммуностимулирующие свойства препарата чеб-лин-СК-1 при остром токсическом гепатите белых мышей // Человек и лекарство. -VIII. -М., 2001. С. 550.
52. Быков В.И., Кудрявцев В.А., Леонтьев В.Я. Эхинококкоз легких у жителей европейского севера России // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. -С. 31-32.
53. Варшавский В.И. Практическая гомеопатия. М., 1989. - 173 с.
54. Вафин А.З., Байчоров Э.Х., Айдемиров А.Н. Социально-экономическая оценка эхинококкоза // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000.-С. 38-40.
55. Вафин А.З., Байчоров Э.Х., Айдемиров А.Н. Эхинококкоз как социальная проблема Ставрополья // Там же. С. 37-38.
56. Вафин А.З. Общие принципы апаразитарности и антипаразитарности хирургии эхинококкоза // Там же. С. 35-37.
57. Вафин А.З. Некоторые результаты 10-летнего применения принципов апаразитарности хирургии эхинококкоза // Там же. С. 34-35.
58. Вафин А.З. Современная классификация методов хирургического лечения эхинококкоза // Там же. С. 33-34.
59. Вафин А.З., Левченко Е.В., Айдемиров А.Н. Прогнозирование и профилактика инфекционно-воспалительных послеоперационных осложнений в хирургии эхинококкоза печени // Там же. С. 32-33.
60. Витулькас Джордж. Гомеопатия медицина нового человека. - М., 1992. -221с.
61. Волынский Б.Г., Бендер К.И., Фрейдман С.Л. и др. Лекарственные растения в научной и народной медицине. Саратов, 1978. - 359 с.
62. Волынский Б.Г., Бендер К.И., Фрейдман С.Л. и др. Растения в медицине.-Саратов, 1983.-440 с.
63. Вострикова Г.Г., Востриков П.А. Медицина народа Дерсу. Хабаровск, 1974.-60 с.
64. Вязиков Ф.С. Клиника, течение и лечение бытовых отравлений керосином у детей // Автореф. диссер. канд. мед. наук. Самарканд, 1969. - 19 с.
65. Гаджимирзаев Г.А., Магомедов А.Д., Шарипов Н.А. и др. Сочетанный эхинококкоз у детей // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. — С. 41— 42.
66. Гаммерман А.Ф., Семенова М.Н. Литературные сведения о противораковых растительных лекарственных средствах // Материалы исследований лекарственных средств и сырья.-Л., 1959. С. 3-27.
67. Гаммерман А.Ф. Курс фармакогнозии. Л., 1967. - 704 с.
68. Ганизода Х.Г., Стреляева А.В., Асланов A.M. Лечение эпилепсии гомеопатическими средствами // Там же. С. 142-143.
69. Ганизода Х.Г., Стреляева А.В., Садыков В.М. Патогенетическое лечение больных при алкогольных и эхинококковых поражениях печени с помощью лизина и высоколизинсодержащих пищевых продуктов // Там же. С. 146-151.
70. Ганизода Х.Г., Стреляева А.В., Маматкулов Х.М. Применение гомеопатии в педиатрической практике // Там же. С. 157-160.
71. Ганизода Х.Г., Чебышев Н.В., Стреляева А.В., Садыков В.М. Свободные аминокислоты при алкогольных и паразитарных поражениях печени. -М., 1999.-420 с.
72. Гариб Ф.Ю., Гурарий Н.И. Нормативные материалы по оценке иммунного статуса человека в возрастном аспекте // Методические рекомендации. -Ташкент, 1988.-23с.
73. Гилевич М.Ю., Хоронько Ю.В., Осипов В.К. Эхинококкоз печени и его хирургическое лечение // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С.46.47.
74. Горяев М.И., Шарипова Ф.С. Растения, обладающие противоопухолевой активностью. Алма-Ата, 1983. - 174 с.
75. Гостищев В.К., Стреляева А.В., Чебышев Н.В. и др. Биологический подход к хирургическому лечению эхинококкоза печени // Анналы хирургии.-1998.-№6.-С. 45-50.
76. Гостищев В.К., Стреляева А.В., Шамсиев A.M. и др. Иммунный статус, иммунодиагностика и иммунокоррекция при хирургическом лечении эхинококкоза печени // Там же. 1999. - №4. - С. 39-47.
77. Гостищев В.К., Стреляева А.В., Бунятян Н.Д. и др. Иммунокоррекция при хирургическом лечении эхинококкоза печени с использованием препарата чеблин-СК-1 // Там же. 2000 - № 5.- С. 41-46.
78. Государственная фармакопея СССР. X. - М., 1968. - 1980 с.
79. Государственная фармакопея СССР. XI. -М., 1987. - 333 с.
80. Гриневич М.А., Брахман Н.И., Ким Бен Кю. Исследование сложных рецептов восточной медицины и их компонентов с помощью ЭВМ // Растительные ресурсы. 1977. - Т. 13. - №2. - С. 261-267.
81. Груздев К.Д., Спиченков М.П. Автоматический стимулятор оптимальной частоты как исходная модель для разработки автоматической биоуправ-ляемой лечебно-диагностической аппаратуры. М., 1962. - 238 с.
82. Гулямов Д.С., Махмудов М.М., Бабаджанов К.Б. и др. Хирургическое лечение эхинококкоза сердца // Хирургия Узбекистана. -2001. №3. - С. 8284.
83. Гуськова Т.А., Фисенко В.П. Методические указания по оценке безопасности применения лекарственных средств в клинике на основании результатов доклинических токсикологических экспериментов // Там же. С. 105— 106.
84. Гуськова Т.А., Крылова Л.Ю., Пушкина Т.В. Методические указания по изучению антипротозойной активности фармакологических веществ // Там же. С. 297-308.
85. Дадвани С.А., Мусаев Г.Х., Коваленко Ф.П. и др. Некоторые из причин рецидивов эхинококкоза // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С.47.49.
86. Дадвани С.А., Стреляева А.В., Гостищев В.К. и др. Малоинвазивные оперативные вмешательства и химиотерапия при эхинококкозе // Анналы хирургии. 2000. - №4. - С. 38-46.
87. Дадвани С.А., Стреляева А.В., Мусаев Г.Х. и др. Иммунореабилитация больных с эхинококкозом легких // International Journal on Immunorehabilitation. -2001. Vol. 3. - № 3. - С. 40-49.
88. Дамиров И.А. Некоторые итоги изучения лекарственных растений народной медицины Азербайджана. Тбилиси, 1971. - С. 60-63.
89. Данилевский Н.Ф., Тушенко А.Н., Айзенберг JI.H. Применение юглона и его производных для лечения симптоматических гингивитов при пародонтозе. Кишинев, 1971.-С. 11-16.
90. Джалалов Ю.В., Тимошин А.Д., Курбанисмаилова М.Г. Ультразвуковой мониторинг состояния остаточной полости после эхинококкэктомии печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 51-52.
91. Джалалов Ю.В., Багаудинов Г.М., Курбанова З.В. и др. Минилапаро-томия в хирургии эхинококкоза печени//Там же. -С. 50-51.
92. ЮО.Джалалов Ю.В., Тимошин А.Д., Курбанисмоилова М.Г. Лечебно-диагностическая сонография после эхинококкэктомии печени // Там же. С. 49-50.
93. Ю1.Джафаров Ч.М., Исмайлов А.Дж., Джафарова У.Ч. и др. Хирургическая тактика при сочетанном эхинококкозе легких и печени // Там же. С. 52-53.
94. Ю2.Джафаров Ч.М., Эфендиев Ю.Т., Исмайлов А.Дж. и др. Современная диагностика и лечение эхинококкоза печени. // Там же. С. 53-54.
95. ЮЗ.Дильман В.М. Большие биологические часы. М., 1982. - 207 с.
96. Ю4.Дмитренко Е. Сильнее боли надежда // Сельское хозяйство Молдавии. - 1988.-№ 12.-С. 52-55.
97. Ю5.Доля B.C. Исследование липидного комплекса семян некоторых растений // Автореф. доктор, диссер. фарм. наук. М., 1991. - 40 с.
98. Юб.Доскалиев Ж.А., Кононенко А.Ф., Джаркенов Т.А. К вопросу лечения эхинококкоза // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 54-55.
99. Дурнев А.Д., Ревазова Ю.А., Верстакова О.Л. и др. Методические указания по оценке мутагенных свойств фармакологических веществ // Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М., 2000. - С. 47-60.
100. Ермакова А.И., Арасимович Б.В., Смирнова-Иконникова М.И. и др. Методы биохимических исследований растений. Л., 1972. - 456 с.
101. Ю9.Ерусалимский А.Л., Казьмин С.Д. Биологическое и химическое обоснование возможности применения дубящих веществ для лечения больных со злокачественными опухолями // Врачебное дело. -1965. -№ 9. С. 58-61.
102. Ю.Загидов М.З., Загидова Д.М., Джабер Т.А. и др. Особенности клиники внепеченочной портальной гипертензии при эхинококке печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 55-56.
103. Ш.Зелепуха С.И. Антимикробные свойства растений, употребляемых в пищу. Киев, 1973. - 192 с.112.3емлинский С.Е. Лекарственные растения СССР // М., 1958 603 с.
104. Ибрагимов А.Я. Изучение ресурсов лекарственных растений Узбекистана, рационального использования их и культивирования некоторых видов // Автореф. диссер. док. фарм. наук. М., 1992. - 78 с.
105. Н.Ивашкин В.Т., Фисенко В.П., Шептулин А.А. и др. Актуальные вопросы безопасности ненаркотических анальгетиков // Клиническая фармакология и терапия. 1999. - №5. - С. 51-55.
106. Икрамов Р.З., Вишневский В.А., Гаврилин А.В. и др. Значение современных технологий в предупреждении осложнений хирургического лечения эхинококкоза // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 56-57.
107. Ильхамов Ф.А. Иммунный статус у больных эхинококкозом печени // Там же. С. 61-62.
108. Ильхамов Ф.А. Осложненный эхинококкоз печени // Там же. С. 5758.
109. Ильхамов Ф.А., Атаджанов Ш.К. Лапароскопическая эхинококкэкто-мия из печени // Там же. С. 58-59.
110. Исламбеков Э.С., Исмаилов Д.А., Максумов Д.Т. и др. Результаты одномоментных и поэтапных операций при двустороннем эхинококкозе легких // Там же. С. 62-63.
111. Кабиев O.K., Верменичев С.М., Чумбалов Т.К. О противоопухолевой активности лейкоантоцианидов и катехинов с антиоксидантным действием // Тр. Казах, н.-и. ин-та онкологии и радиологии. Алма-Ата, 1965. - T.I. - С. 236-240.
112. Кабиев O.K., Верменичев С.М., Бокаева С.С. и др. Особенности противоопухолевого действия растительных эллаготанинов и полифлавонов на различных экспериментальных системах. Таллин, 1987. - С. 50-51.
113. Канчавели Г.И. Грецкий орех в Грузии. М., 1968 - 145 с.
114. Каплун С.С., Волик Н.Г., Баженова Т.Ф. Многообразие рентгенологической картины эхинококкоза легких // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 67-68.
115. Каримов Ш.И., Кротов Н.Ф., Ким В.Л. и др. К выбору этапности и доступа при сочетанном множественном эхинококкозе печени и легких // Проблемы эхинококкоза.- Махачкала, 2000. С. 66-67.
116. Касумова М.М. Исследование листьев и зеленого околоплодника грецкого ореха (Juglans regia L.) на фитонцидные свойства. Баку, 1956. - С. 170-175.
117. Касумова М.М. Фунгицидные действия фитонцидов зеленых листьев и незрелого околоплодника грецкого ореха (Juglans regia L.) // Ученые записки Азерб. мед. ин-та. Баку, 1971. - Т. 33. - С. 74-85.
118. Касумова Н.Н. Активность фитонцидов листьев и околоплодника незрелого грецкого ореха по отношению к Trichomonas vaginalis. -Киев, 1979. -41 с.
119. Кент Д.Т. Реперторий гомеопатических лекарств. Новосибирск, 1997.-637 с.
120. Кильдияров Ф.Х. Использование мазевой основы «ЭО-I» в разработке состава, технологии и методов анализа мазей с витамином «и» и этонием для профилактики и лечения маститов животных // Автореф. диссер. канд. фарм. наук. М., 1995. - 21 с.
121. Ким В.Л., Кротов Н.Ф., Бабаханов О.А. и др. Видеолапароскопическая эхинококкэктомия печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000.-С. 71-72.
122. Кит С.М. Растительные средства народной медицины для борьбы с опухолями. Л., 1959. - С. 124-129.
123. Кнунянц И.Л. Химический энциклопедический словарь. М., 1983. -792 с.
124. Коваленко Ф.П. Экспериментальные модели эхинококкозов: оптимизация и применение в разработке новых методов диагностики, профилактики и лечения эхинококкозов человека и животных // Автореф. диссер. док. мед. наук. М., 1998.-59 с.
125. Коваленко Ф.П., Новик Т.С., Черникова Е.А. и др. Эффективность препарата МКБ-1 при экспериментальных ларвальных эхинококкозах // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 70-71.
126. Коваленко Ф.П., Дадвани С.А., Мусаев Г.Х. и др. Экзогенное почкование ларвоцист гидатидозного эхинококка у человека // Там же. С. 68-70.
127. Кольбаева Х.Б. Разработка составов и технологии вагинальных лекарственных форм противовоспалительного и ранозаживляющего действия // Автореф. диссер. канд. фарм. наук. М., 1993. - 21 с.
128. МО.Комаров Ф.И., Коровкин Б.Ф., Меньшиков В.В. Биохимические исследования в клинике М., 1981 - 406 с.
129. Корчковская Д. Керосин. Радо, Варшава, 1986.- 57 с.
130. Кост Е.А. Справочник по клиническим лабораторным методам исследования-М., 1975.-356 с.
131. Кротов Н.Ф., Исмаилов А.С., Шоумаров З.Ф. и др. Видеоторакоско-пические вмешательства при эхинококкозе легких // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 88-89.
132. Кротов Н.Ф., Исмаилов А.С., Шоумаров З.Ф. и др. Показания к применению и эффективность медикаментозной терапии при эхинококковой болезни // Там же. С. 87-88.
133. Крылов А.А., Песонина С.П., Крылова Г.С. Гомеопатия для врачей общей практики. С.П., 1997. - 402 с.
134. Кудина Г. Фитонцидная активность листьев ореха грецкого и её изменчивость под влиянием гамма излучений Со60. Киев, 1979. - 40 с.
135. Кулакеев O.K. Эхинококкэктомия легкого вертикальными полукисетными швами // Хирургия Узбекистана. 2001. - №3. - С. 46.
136. Кулиев Ч.Б., Полухов Р.Ш., Мухтаров Э.Г. и др. Пути улучшения результатов хирургического лечения эхинококкоза у детей // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 72-73.
137. Кулиев А.А., Гигиенова Э.И., Исмаилов Н.М. и др. Жирнокислотный состав масла семян juglans regia, культивируемого в Нахичеванской АССР // Растительные ресурсы. 1987. - Т. 23. - С. 250-253.
138. Кунпан И.А. Классификация методов антисептической и антипаразитарной обработки остаточной полости при эхинококкэктомии // Проблемы эхинококкоза Махачкала, 2000 - С. 86-87.
139. Курбанбердыев К.К., Петелина С.Е., Гулмухамедова Б.Х. и др. Эхинококкоз селезенки // Там же. С. 85-86.
140. Курбанбердыев К.К. Способ оперативного лечения эхинококкоза пятого сегмента печени, с близко расположенным желчным пузырем // Там же. -С. 76-77.
141. Кучер В.И. Влияние настойки незрелых грецких орехов на выделение почками воды и электролитов. Харьков, 1986. - С. 252-253.
142. Лагерь А.А. Фитотерапия некоторых заболеваний. Красноярск, 1986.- 112 с.
143. Литвинов С.Д. Синтез апатит коллагеновых имплантатов и исследование их медикофармацевтических свойств // Автореф. диссер. док. фарм. наук. -М., 1996.-41 с.
144. Лойко Р.Э., Ширко Т.С. Минеральный состав ядра плодов некоторых видов рода орех в Беларуси и Украине // Физиология и биология культ, растений. 1994.-Т. 26.-№ 2. -С. 165-169.
145. Лось Д.П. Биологический подход к хирургическому лечению эхинококкоза легких (экспериментально-клиническое исследование) // Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 1998. - 20 с.
146. Лотов А.Н., Дадвани С.А., Мусаев Г.Х. Малоинвазивные технологии в лечении гидатидных кист печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 89-90.
147. Лужников Е.А., Суходолова Г.Н. Обеспечение безопасности парацетамола в клинической практике. Эффективность и безопасность парацетамола как безрецептурного лекарственного средства // Материалы симпозиума. -М., 1998.-С. 9-10.
148. Любимов Б.И., Коваленко Л.П., Федосеева В.Н. и др. Методические указания по оценке аллергизирующих свойств фармакологических веществ // Там же. С. 25-32.
149. Любимов Б.И., Смольникова Н.М., Голованова И.В. и др. Методические указания по изучению репродуктивной токсичности фармакологических веществ. // Там же. С. 39-46.
150. Любимов Б.И., Яворский А.Н., Стародубцев А.К. и др. Методические рекомендации по подготовке проекта инструкции по применению препарата, предлагаемого для проведения клинических исследований // Там же. 2000. -С. 356-358.
151. Магара Ацуси. Препарат для лечения дерматофитоза // Пат. 58176786.- 17.04.85.
152. Магомедов С.З., Омаров М.М., Мамедбеков Ш.К. Диагностические ошибки при эхинококкозе легких // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000.-С. 91-92.
153. Мазулин А.В. Изучение перспективных видов растений юго-востока Украины для создания лекарственных средств // Автореф. диссер. докт. фарм. наук.-М., 1994.-50 с.
154. Макарьянц М.Л. Применение безрецептурных анальгетиков-антипиретиков в Российской Федерации в аспекте их безопасности // Ведомости научного центра экспертизы и государственного контроля лекарственных средств. 2001. - № 1. - С. 57-60.
155. Максютина Н.П., Комиссаренко Н.Ф., Прокопенко А.П. Растительные лекарственные средства. Киев, 1985. - 280 с.
156. Маленков А.Г., Дейнеко П.С., Колотыгина И.М. и др. Способ получения биологически активного препарата «Тодикамп» // Пат. 2033803. 19958 с.
157. Малышев А.Ф., Соболевская О.А. Хирургическое лечение эхинококковой болезни печени с использованием лазерного скальпеля «Ласка» // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 93-94.
158. Маркова И.В. Отравление бензином, керосином и скипидаром. -Л., 1977.- 150 с.
159. Маслов В.И., Ратанов Ю.Ф., Макаровская Е.С. и др. Множественный эхинококкоз легких и сердца // Грудная и сердечно-сосудистая хирургия. -1995.-№5.-С. 51-54.
160. Матчанов Н.М., Сагиева А.Т., Садыков В.М. Ларвальные тениидозы человека и каракульских овец. Ташкент, 1997. - 512 с.
161. Махлаюк В.П. Лекарственные растения в народной медицине // Саратов, 1991.-276 с.
162. Машковский М.Д. Лекарственные средства. Т., 1998. T.I. - 543 с. Т.2. - 590 с.
163. Меджидов Р.Т., Хамидов А.И., Ахмедов И.Г. и др. Холангит как осложнение эхинококкоза печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000.-С. 97-99.
164. Мелиева М.С. Иммунодиагностика и иммунокоррекция при хирургическом лечение эхинококкоза у детей // Автореф. диссер. канд. мед. наук. -Ташкент, 1997.-22 с.
165. Михалёв В.Ю. Разработка и стандартизация лекарственных препаратов тыквеол и тыквит, изготавливаемых из семян тыквы по безотходной технологии // Автореф. диссер. канд. фарм. наук. М., 1997. - 25 с.
166. Мовсумов И.С. Фармако-химическое исследование некоторых про-мышленно-полезных растений Азербайджана и отходов их переработки, получение лекарственных средств и их стандартизация // Автореф. диссер. док. фарм. наук. М., 1992. - 49 с.
167. Мудасигана М.Л. Оценка качества лекарственных средств группы фенотиазина методами атомно-абсорбционной спектроскопии и тонкослойной хроматографии // Автореф. диссер. канд. фарм. наук. М., 1993. - 21 с.
168. Муравьева Д.А. Фармакогнозия. М., 1978. - 657 с.
169. Муравьева Д.А. Тропические и субтропические лекарственные растения.-М., 1983.-336 с.
170. Мусаев Г.Х. Гидатидозный эхинококкоз: диагностика и комплексное лечение // Автореф. диссер. докт. мед. наук. М., 2000. - 41с.
171. Назыров Ф.Г., Исламбеков Э.С., Гафуров З.К. Хирургия осложненных форм эхинококкоза легких // Республ. научно-практ. конф. с международным участием. Самарканд, 1998. - 67 с.
172. Назыров Ф.Г., Исмаилов Д.А., Леонов Ф.В., Байбаков И.М. Эхинококкоз. Ташкент, 1999. - 208 с.
173. Назыров Ф.Г. Опыт хирургического лечения эхинококкоза легких // Хирургия Узбекистана. 2001. - №3. - С. 50.
174. Назыров Ф.Г., Акилов Х.А., Девятов А.В. и др. Химиотерапевтиче-ская профилактика рецидивных и резидуальных форм эхинококкоза брюшной полости // Там же. С. 78.
175. Найдакова И.А. О лекарственных средствах тибетской медицины регулирующих состояние системы (РЛУНГ). -Улан-Удэ. -1987. С. 106-107.
176. Нартайлаков М.А., Мустафин А.Х., Сафин И.А. и др. Виды оперативного лечения эхинококкоза // Проблемы эхинококкоза. -Махачкала, 2000. -С.100- 101.
177. Николайчук Л.В. Сахароснижающие растения. Минск, 1988. -191с.
178. Никольская Э. Хотите исправить ошибку природы? Уберечь вашего малыша от рака? В принципе это возможно // Семья. -1988. -№ 3. С. 24 -27.
179. Носаль М.А., Носаль И.М. Лекарственные растения и способы их применения в народе. Киев, 1958 . - 256 с.
180. Нуров А.У., Гасанов Г.Д., Кадиров A.M. и др. Эхинококкоз в онкологической клинике // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 101 -102.
181. Омаров М.М. Клиника осложненного эхинококкоза легких // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 104-105.202.0сманов А.О. Диагностика осложненного эхинококкоза печени // Там же.-С. 106- 109.
182. Пастушенко Т.В., Маруший Л.Б., Жуков А.А. Экспресс-метод определения среднесмертельных доз химических веществ // Гигиена и санитария. 1985.-№6.-С. 46-49.
183. Переплеткин С.В. Применение юглона (ЛНАС) в ветеринарной и медицинской практике. Кишинев, 1958. - 29 с.
184. Петровский Б.В., Милонов О.Б., Дееничин П.Г. Хирургия эхинококкоза.-М., Медицина, 1985.-216 с.
185. Пименов М.Г. Перечень растений источников кумариновых соединений.-Л., 1971.-201 с.
186. Пинегин Б.В., Андронова Т.М., Юдина Т.И. Иммунодиагностика и иммунотерапия хирургических инфекций // International Journal on Immunorehab. 1998. - № 10. - С. 86 - 99.
187. Попов А.В., Айдемиров А.Н. Результат хирургического лечения эхинококкоза легких с применением плазменных технологий // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 109 -110.
188. Полянцев А.А., Растригин С.А. Опыт хирургического лечения эхинококкоза печени // Там же. С. 110-111.
189. Пучкова Н.Г. Товарные нефтепродукты, их свойства и применениеМ., 1971.-415 с.
190. З.Пятницкая И.Н., Сточик A.M. Алкоголизм // БМЭ. М., 1974. - С. 244-253.2Н.Рахимов Б.М., Лескин А.С. Хирургическое лечение эхинококкоза печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 113 - 114.
191. Рахимов С.Р., Касимов К.Л. Хирургическая тактика при двустороннем эхинококкозе легких у детей//Там же.-С. 112-113.
192. Розанов В.Е., Магомедов З.М. Хирургическая тактика при эхинококковых кистах печени//Там же.-С. 114-115.
193. Роуз Баррих. Гомеопатия для всей семьи. М., 1998. - 556 с.
194. Рубин В.М. Отравление керосином со смертельным исходом. Алма-Ата, 1963.-С. 98- 100.
195. Руководство по методам исследования, техническому контролю и учёту производства в масло-жировой промышленности. Л., 1969. - Т.5. -230 с.
196. Руководство по методам исследования, технохимическому контролю и учету производства в масло-жировой промышленности. Л., 1867. - T.I, кн.2.-С. 817-822.
197. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М., 2000. - 398 с.
198. Рыбак В.И. Гомеопатические лекарственные средства. М., 1967374 с.
199. Садыков В.М., Стреляева А.В., Чебышев Н.В. и др. Совершенствование нового способа хирургического лечения эхинококкоза // Медицинская паразитология. 2000- № 3. - С. 40 - 43.
200. Садыков В.М., Стреляева А.В., Гостищев В.К. и др. Коррекция с помощью препарата чеблин-СК-1 аминокислотного обмена при хирургическом лечении эхинококкоза печени // Проблемы биологии и медицины. 2000. -№ 1.-С. 68-73.
201. Садыков В.М., Стреляева А.В., Саламов А.С. и др. Экспериментально-клиническое исследование эхинококкоза // Журнал теоретической и клинической медицины. 2000. - № 6. - С. 16-18.
202. Садыков В.М. Эхинококкоз и борьба с ним. М., 1973. - 416 с.
203. Сайманов М.З., Чепуштанова Э.П., Дьякова Г.М. Дерматиты рук у рабочих автоматчиков, работающих с керосином. Пермь, 1967. - С. 27 -28.
204. Сакаева Д.Д., Лазарева Д.Н. Экспериментальная и клиническая фармакология. 1998. - № 6. - С. 39 - 41.
205. Салимов P.M. Основные методы статистической обработки результатов фармакологических экспериментов // Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М.,2000.-С. 349-357.
206. Самылина И.А., Стреляева А.В., Чебышев Н.В., Садыков В.М. Изучение острой токсичности препарата чеблин-СК-1 // Фармация. -№ 2. 1999. -С. 34-37.
207. Самылина И.А., Стреляева А.В. Изучение острой токсичности бытового керосина на белых крысах // Эхинококкоз с позиций хирургии, паразитологии и фармации. М., 2000. - С. 86 - 89.
208. Самылина И. А., Стреляева А. В., Фисенко В.П., Бунятян Н.Д., Садыков В.М. Использование препарата чеблин-СК-1 в лечении эхинококкоза. // Человек и лекарство. VII Российский национальный конгресс. М., 2000. -С. 542.
209. Самылина И.А., Стреляева А.В., Чебышев Н.В., Садыков В.М., Пого-сов А.Г. Изучение острой токсичности препарата садлин-СК-3 // Фармация.2001.-№3.-С. 26-28.
210. Сексенбаев Д.С., Баймаханов Б.Д., Сексенбаев Б.Д. и др. Диагностика и хирургическое лечение осложненного эхинококкоза печени // Хирургия Узбекистана. 2001. -№ 3. - С. 63.
211. Селенина Л.В. Антибактериальные свойства некоторых дубильных растений. -Л., 1959. С. 87 - 96.
212. Семенов А.А. Природные противоопухолевые соединения (структура и механизм действия). Новосибирск, 1979. - 222 с.
213. Середин P.M. Лекарственные растения Дагестана Махачкала, 1961-199с.
214. Скляревский Л.Я. Целебные свойства пищевых растений // М., 1972. -272 с.
215. Скляревский Л.Я., Губанов И.А. Лекарственные растения в быту // М., 1986.-272 с.
216. Смирнов В.А. Синтез и изучение диуретической активности производных 3-сульфамоилбензойной кислоты // Автореф. диссер. док. фарм. наук. -М, 1997.-48 с.
217. Степанова Т.А. Фармакогностическое изучение викарных видов лекарственных растений Дальнего Востока // Автореф. диссер. док. фарм. наук. -М., 1998.-49 с.
218. Стреляева А.В. Изучение острой токсичности, физико-химических и антигельминтных свойств препарата СК-1 // Автореф. дисс. канд. фармац. наук. М., 1997.-22 с.
219. Стреляева А.В. Изучение острой токсичности, физико-химических и антигельминтных свойств препарата СК-1 // Дисс. канд. фармац. наук. М., 1997.-261 с.
220. Стреляева А.В., Чебышев Н.В., Садыков В.М., Погосов А.Г. Экспериментальный имплантированный поросятам эхинококкоз от человека и испытание лечебного препарата СК-1 // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. № 4. - 1998. - С. 42 - 44.
221. Стреляева А.В., Самылина И.А. Изучение острой токсичности очищенного авиационного керосина-нового экстрагента лекарственного растительного сырья // Фармация. № 1. 1999. - С. 18-21.
222. Стреляева А.В., Муртазаев З.И., Садыков Р.В. и др. Использование препарата чеблин-СК-1 при хирургическом лечении одиночного эхинококкоза печени // Хирургия Узбекистана. 2001. - № 3. - С. 79.
223. Стреляева А.В. Изучение применения препарата чеблин-СК-1 при лечении болезней собак и его токсичности // Проблемы экологии, здоровья, паразитологии и фармации. М., 1999. - С. 16-23.
224. Стреляева А.В. Изучение острой токсичности неочищенного авиационного керосина // Там же. С. 23 - 27.
225. Стреляева А.В. Изучение эффективности препаратов группы СК при сифачиозе и энтеробиозе // Там же. С. 27 - 31.
226. Стреляева А.В. Испытание препаратов группы СК при гименолепидо-зе//Там же.-С. 3? -36.
227. Стреляева А.В. Испытание препаратов группы СК при аскаридиозе и гетерокидозе кур // Там же. С. 36 - 39.
228. Стреляева А.В. Испытание препаратов группы СК при экспериментальном трихоцефалезе белых мышей // Там же. С. 39 - 43.
229. Стреляева А.В. Изучение токсических и антитоксических свойств препаратов группы СК // Там же. С. 43 - 48.
230. Стреляева А.В. Изучение эмбриотоксичности и тератогенности препарата СК-3 // Там же. С. 48 - 50.
231. Стреляева А.В. Свободные аминокислоты сыворотки крови поросят под воздействием эхинококкоза и препарата СК-1 // Научные труды ММА имени И.М. Сеченова. Проблемы экологии, здоровья, паразитологии и фармации. М., 2000. - С. 50-73.
232. Стреляева А.В. Содержание свободных аминокислот при поражении печени у лабораторных животных и испытании препаратов CK-I // Там же. -С. 73-80.
233. Стреляева А.В., Самылина И.А. Физико-химические свойства препарата СК-1 // Там же. С. 172 - 183.
234. Стреляева А.В. Влияние препарата СК-1-чеблин на иммунный статус молодняка крупного рогатого скота // Там же. С. 207 - 208.
235. Стреляева А.В. Влияние препарата чеблин-СК-1 на иммунный пус больных эхинококкозом // Там же. С. 215 - 217.
236. Стреляева А.В., Маленков А.Г., Шашкина Л.Ф., Голубева М.И., Чи-жова Е.Т. и др. Изучение токсичности тодикампа при аппликациях на кожу животных// Там же. -М., 2002. С.З - 32
237. Стреляева А.В. Коррекция аминокислотного обмена и иммунного статуса при вторичных иммунодефицитах с применением препарата чеблин-СК-1 // Фармация. -2000. №4. - С. 46 - 48.
238. Стреляева А.В. Иммунотропные свойства препарата чеблин-СК-1 // Фармация. 2001. - № 1. - С. 29 - 30.
239. Стреляева А.В. Коррекция функции печени с помощью препарата чеблин-СК-1 // Фармация. 2001. - №2. - С. 26 - 27.
240. Стреляева А.В., Садыков В.М., Бирюков Ю.В. Иммунитет при введении препарата чеблин-СК-1 на фоне эхинококковой иммунодепрессии // Вестник врача общей практики. 2000. -№2. - С. 82 - 85.
241. Стреляева А.В., Бунятян Н.Д., Самылина И.А. и др. Иммунитет при введении иммуномодуляторов на фоне эхинококковой иммуносупрессии // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2001. - Т. 64. - № 5. - С. 43-45.
242. Стреляева А.В. Эхинококкоз с позиций хирургии, биологии и фармации.-М., 2000.-220 с.
243. Сударев A.M., Малюга В.В., Котлубаев Р.С. и др. Послеоперационная инволюция остаточных полостей в печени после закрытой эхинококкэктомии // Проблемы эхинококкоза, Махачкала, 2000. - С. 116-117.
244. Таджиев М.А. Химико-токсикологическое изучение алкалоидов спорыньи // Автореф. диссер. док. фарм. наук. М., 1992. - 36 с.
245. Такато Масамото, Сотояма Macao. Способ улучшения качества растворителя из нефти, например, керосина//Пат. 59-193592.- 10.04.86.
246. Таточенко В.К. Рациональное применение жаропонижающих средств у детей // Русский медицинский журнал. 2000. - № 1. - С. 40 - 42.
247. Тимошин А.Д., Нечипоренко И.Н. Хирургическое лечение множественных эхинококковых кист печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000.-С. 118-119.
248. Торсуев Н.А., Гольдштейн JI.M. Токсидермия от керосина // Вестник дерматологии и венерологии. 1965. - №6. - С. 77 - 78.
249. Третьяк С.И., Чудакова Т.Н., Ращинская Н.Т. и др. Диагностика и хирургическая тактика при эхинококкозе // Хирургия Узбекистана. 2001. -№3. - С. 65-66.
250. Троян З.А., Лычкина Л.В., Михайлюта Л.В. и др. Жирнокислотный состав и бактерицидные свойства СОг-экстрактов из орехоплодных // Хранение и переработка сельхозсырья. -1999. №7. - С. 24.
251. Туйчиев М.Т. Грецкий орех в Средней Азии // Ташкент, 1959. 330 с.
252. Тюлии С.Я., Шаварда А.Л., Бакина Л.А. и др. Цветковые растения, их химический состав, использование: семейства Magnoliaceae Limoniaceae // Растительные ресурсы СССР. Л., 1984. - T.I. - 460 с.
253. Ураскулов Р.Х. Особенности хирургического лечения множественного абдоминального эхинококкоза // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000.-С 119-120.
254. Флоря В.Н. Источники биологически активных веществ в растениях местной флоры. Кишинев, 1973. - С. 38 - 56.
255. Френкель Л.Д. Гомеопатическое лекарствоведение. С.-Петербург, 1913.- 580 с.
256. Хаитов P.M., Гущин И.С., Пинегин Б.В. и др. Методические указания по изучению иммунотропной активности фармакологических веществ // Там же.-С. 257-263.
257. Халматов Х.Х., Харламов И.А., Алимбаева П.К. Основные лекарственные растения Средней Азии. Ташкент, 1984. - 195 с.
258. Хамидов А.И., Гаджиабакаров Г.М., Ахмедов И.Г. и др. Классификация методов воздействия на зародышевые элементы эхинококка при эхино-коккэктомии // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 122 - 123.
259. Хамидов А.И., Гаджиабакаров Г.М., Хамидов М.А. и др. Способ ин-траоперационной экспересс-диагностики эффективности антипаразитарной обработки при эхинококкэктомии // Там же. С. 125- 126.
260. Хлебников Е.П., Елагина JI.B., Вишневский В.А. и др. Изменение иммунологического статуса у хирургических больных с эхинококкозом печени при периоперационном применении фторхинолинов // Там же. С. 132 - 133.
261. Чебышев Н.В., Стреляева А.В., Самылина И.А., Садыков В.М. Способ получения средства для лечения ларвального и стробилярного эхинокок-козов чеблин- СК-1 // Пат. РФ № 2136303. Открытия. 1999. - № 9. - С. 3 -11.
262. Чебышев Н.В., Стреляева А.В., Садыков В.М., Самылина И.А., Коваленко Ф.П. Способ получения препарата чеблин, обладающего противоаска-ридным действием // Пат. РФ № 2136304. Там же. С. 12-15.
263. Чебышев Н.В., Стреляева А.В., Бирюков Ю.В. и др. Использование гомеопатического препарата чеблин-СК-1 в патогенетической терапии эхинококкоза // Медицинская паразитология. 2000. - №3. - С. 29 - 33.
264. Чебышев Н.В., Стреляева А.В., Садыков В.М., Бунятян Н.Д. и др. Противомикробные, противоэхинококкозные и иммуностимулирующие свойства препарата чеблин-СК-1 // Мед. паразитол. и паразитар. болезни. -2002.-№1.-С. 32-34.
265. Чебышев Н.В., Стреляева А.В., Маленков А.Г. и др. Эхинококкоз органов грудной полости // Медицина. М., 2002. - 420 с.
266. Черкасова О.Г. Физико-химические основы применения мелкодисперсных магнитных материалов и фармации // Автореф. диссер. док. фарм. наук. М., 1993 .-36 с.
267. Черкасов М.Ф., Татьянченко В.К., Кузам А.С. Видеоэндохирургиче-ское лечение эхинококковых кист печени труднодоступных локализаций // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 133 - 134.
268. ЗОО.Чобанов Р.Э., Агаев И.А. Социально-экономическая значимость гида-тидозного эхинококкоза в условиях интенсивных миграционных процессов // Там же.-С. 134- 135.
269. Чобанов Р.Э., Агаев И.А., Мамедова Г.М. Эффективность комбинированного диагностирования гидатидозного эхинококкоза ультразвуковым и иммунологическими методами // Там же.-С. 135-136.
270. Чукалина Н.В., Гриезжева В.Н., Никитин Д.Б. и др. Современная диагностика сочетанного эхинококкоза // Там же. С. 136 - 137.
271. ЗОЗ.Чхве Тхэсоп. Лекарственные растения. М., 1987. - 608 с.
272. Шамсиев A.M., Стреляева А.В., Расулов С.М. и др. Применение реакции антигенсвязывания лимфоцитов (АСЛ) для диагностики эхинококкоза // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 137 - 138.
273. Шамсиев A.M. Лечение острой деструктивной пневмонии у детей // Автореф. диссер. доктор, мед. наук. М., 1983. - 32 с.
274. Шамсиев A.M., Одилов А.Х., Гаффаров У.Б. и др. Новый способ моделирования эхинококкоза в эксперименте // Хирургия Узбекистана. 2001. -№3. - С. 93.
275. Шаретт Ж. Практическое гомеопатическое лекарствоведение. С.Петербург, 1992.-270 с.
276. Шахназаров A.M., Ахмадудинов М.Г., Гаджиабакаров Г.М. и др. Моделирование эхинококкоза печени // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000.-С. 127-128.
277. Шевченко Ю.Л., Шихвердиев Н.Н. Сепсис и иммунная система // Иммунодефицитные состояния. С.-Петербург, 2000. - С. 393-446.
278. ЗЮ.Шретер Г.К. Лекарственные растения и растительное сырье, включенные в отечественные фармакопеи. М., 1972. - 120 с.
279. ЗП.Штабский Б.М., Гжегоцкий М.Р., Гжегоцкий М.И. и др. К методике определения среднесмертельных доз и концентраций химических веществ // Гигиена и санитария. -1980. -№ 10. С. 40-51.
280. Шугаев А.И., Андреев А.Л., Паизов И.Н. Малоинвазивные методы лечения эхинококкоза // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 144- 145.
281. Шукюров Д. Лекарственные растения Азербайджана, применяемые при сахарном диабете. Баку. 1981. - 124 с.
282. Шульц Р.С., Исмагилова Р.Г. Реакция сколексопреципитации для диагностики эхинококоза // Мед. паразитол. и паразитар. болезни. 1963. - №6. -С. 678-682.
283. Шухов B.C., Харпер Дж. Метамизол и метамизолсодержащие препараты // Клиническая фармакология и терапия. 2000. - №1. - С. 92-96.
284. Шекочихин С.А., Кодяков А.В., Гаврилов Э.Н. и др. Опыт лечения эхинококкового поражения органов брюшной полости // Проблемы эхинококкоза. Махачкала, 2000. - С. 142-143.
285. ЗП.Эзиэкьу Н.С. Эндовидеохирургия при эхинококкозе печени // Там же. -С. 145-146.
286. Эристави Л.И. О растениях народной медицины Грузии, перспективных для изучения // О расширении использования природных ресурсов лекарственных растений с учетом изучения опыта народной медицины. Тбилиси, 1971.-С. 56-60.
287. Юркевич И.Д. и др. Лекарственные растения и их применение // Минск, 1976.-590 с.
288. Яременко К.В., Шмалько Ю.П., Придатко О.Е. и др. Влияние экстракта ореха маньчжурского на стрессорную стимуляцию метастазирования злокачественных опухолей. Киев, 1984. - С. 145-146.
289. Aguilar X., Fornandez-Muixi J., Magarolas R., Sauri A., Vidal F., Richart C. // Eur.Respir. J. - 1998, 11 (1): 243-5 (Internet, 677-й из 705-ти источников).
290. Ahmad М., Malik M.N. Chemical extractives from walnut bark (Juglans regia) and their effects on the cleansing of tartar denosits // Pakistan J.Forest., 1971. -Vol. 21. -N3. -P. 325-327.
291. Anadol D., Gocmen A., Kiper N., Ozcelik U. // Pediatr. Pulmonol. 1998, 26 (3): 190-6(Internet, 14-й из 705-ти источников).
292. Athanassiadi К., Kalavrouziotis G., Loutsidis A., Bellenis I., Exarchos N. // Eur. J. Cardiothorac. Surg. - 1998, 14(2): 134-40 (Internet, 33-й из 705-ти источников).
293. Bain К. Death due to accidental poisoning in young children // J.pediatr. -1954.-N44.-P. 616.
294. Baldachin B.J., Melmed R.N. Clinical therapeutic aspects of kerosene poisoning. S.series of 200 cases // Brit.Med.J. 1864. - P. 28 - 30.
295. Barbero-Delgado M.J., Cascon-Perez-Teijon E., Gordillo-Gutierrez I., La-fuente-Martinez J. // Rev-Clin-Esp. 1998, 198 (1): 43-4 (Internet, 678-й из 705-ти источников).
296. Bate-Smith Е.С. The phenolic constituents of plants and their taxonomic significance // J.Linn.Soc.Bot.-London, 1962. -Vol. 58. -№371. P. 95 - 173.
297. Bate-Smith E.C. Review article number 1. Age and distribution of galloul esters, iridoids, and certain other repellents in plants // Phytochemistry 1984. -V. 23.-N5.-P. 245 -250.
298. Ben-M'Rad S., Mathlouthi A., Merai S., Mestiri I., Ben-Miled-Mrad K., Djenayah F. // Presse.Med. 1998, 27 (5): 205-7 (Internet, 44-й из 705-ти источников).
299. Bhandari K.S., Gupta I.N. Isolation and identification of the alkaloid from the stem bark of Juglans regia (Linn) // Nat. Appl. Sci. Bull. (India), 1974. -Vol. 26.-N2.-P. 31-32.
300. Bhargava U.C., Westfall В.A. Antitumor activity of Juglans nigra (Black walnut) extractives // J.Pharm.Sci. -1968. -V. 57. -N10. -P. 1674 1677.
301. Bianchi Porro G et al.Endoscopic assessment of the effects of metamizole in comparison to paracetamol and placebo on the gastric and duodenal mucosa of healthy adult volunteers // Degestion. 1996. -V. 57 - №3. - P. 186 - 190.
302. Blanton R.E., Wachira T.M., Zeyhle E.E., Njoroge E.M., Magambo J.K. // Antimicrob-Agents-Chemother. 1998, 42 (3): 601-5 (Internet, 675-й из 705-ти источников).
303. Воок review: Proceeding of the International Symposium on Natural Antioxidants. Molecular Mechanisms and Health Effects, Beijing, June 20-24, 1995 // Free Radic. Biol, and Med. -1997. -22, N4. -P. 744.
304. Bonifacino R., Dogliani E., Craig P.S // Int-Orthop. 1997, 21 (2): 127-32 (Internet, 462-й из 705-ти источников).
305. Boyum A. Laclation of mononuclear cells and granulocytos from humer blood // Scanel.J. Clin. lab. Invest. -1968. -Vol. 21. -Suppl. 97. -P. 71 81.
306. Brooks P.M. Treatment of rheumatoid arthritis: from symptomatic relief to potential cure // Br.J.Rheumatol. -1998. -V. -37. P. 1265 - 1271.
307. Bulakbasi N., Tayfun C., Somuntu I. // Eur-Radiol. 1998, 8 (6): 933-5 (Internet, 609-й из 705-ти источников).
308. Bussaca G., Puzzo A., Fiamma G. // Minerva-Cardioangiol. 1998, 46 (12): 35-8 (Internet, 48-й из 705-ти источников).
309. Buttery R.G., Flath R.A., Mon T.R., Ling L.C. Identification of germac-rene D in walnut and fig leaf volatiles // J.Agr. and Food Chem., 1986. -V. 34. -№5.-P. 820-822.
310. Carpintero P., Kindelan J., Montero R., Carpintero A. // Clin-Infect-Dis. -1997, 24 (1): 85-6 (Internet, 549-й из 705-ти источников).
311. Charfi A., Skhiri I., Tliba С, Kaffel N, Sahtout S., El-Khedim A, Ha-chicha S. // Med.- 1998, 76(8-9): 239-43 (Internet, 6-й из 705 источников).
312. Chenevard D., Frossard JS., Lacointe A. Lipid utilization and carbohydrate partitioning during of English walnut (Juglans regia) // Annales des sciences fores-tieres. -1994. -№51. -P. 373-379.
313. Chopra R.N., Chopra I.C., Varma B.S. Supplement to glossary of Indian medicinal plants // New Delhi, 1969. 119 p.
314. Cobo F., Yarnos C., Sesma В., Fraile P., Trujillo R., Diaz-de-Liano-A., Ciga M.A. // Trop-Med-Int-Health. 1998, 3(6): 462-6 (Internet, 638-й из 705-ти источников).
315. Costantini R., Napolitano L., Ucchino S. // G-Chir. 1997, 18 (3): 143-9 (Internet, 480-й из 705-ти источников).
316. Csedo С., Echim I., Fulop L., Nuszl L. Medicament de us dermatologic si procedeu de obtinere // Institutul de Medicina si Farmacia, Tirgu-Mures. -N 114075. Pat. 89936, CPP,A 61K 35/76. 30.08.86.
317. Dadvani S.A., Kuzin N.M., Musaev G.CH., Skrob O.S., Avakian V.N., Kulesneva J.V., Monir A. minimally invasive surgical management of nonparasitccysts // Cardiovascular and Interventional Radiology. 1997. - Vol. 20, Suppl.l. -S. 82.
318. Daglish C. The isolation and identification of a hydrojuglone glycoside oc-curing in the walnut // Biochem. J., 1950. -Vol. 47. - P. - №4. -P. 452—457.
319. Daglish C. The determination and occurence of a hydrojuglone glucoside in the walnut // Biochem. J., 1950, Vol. 47. -№4. -P. 458-462.
320. Deichman W.B., Kitzmiller K.V., Witherup S. and Johannsmann R. Kerosene intoxication // Ann.int.med. -1944. №21. P. 803-823.
321. Delaveau P., Vidal-Tessier A.M. Proprietes Biologigues et pharma-cologigues des guinones // In:Journees int. etude Groupe Polyphenols et Assem. Gen:JIEP 86, Montpellier, 9-11 juill, 1986. C.r.integr. -Montpellier, 1986.-P. 299-308.
322. Deplazes P., Guscetti F., Sardinas J.C., Reichler I., Eckert J. // J-Am-Anim-Hosp-Assoc. -1998, 34 (4): 309-14 (Internet, 625-й из 705-ти источников).
323. Diaz-Recasens J., Garcia-Enguidanos A., Munoz I., Sainz-de-la-Cuesta R. // Obstet-Gynecol. 1998, 91 (5, 2): 841-2 (Internet, 676-й из 705-ти источников).
324. Dragendorf G. Die Heilpflanzen der verschiedenen Volker und Zeiten // Stuttgart, 1898. 884 S.
325. Eldar M., Gadzijev, Mimica Z. Radical surgical treatment of the hydatid disease of the liver // Проблемы эхинококкоза Махачкала, 2000. С. 147-148.
326. Етегу I., Leclerc С., Sengphommachanh К., Vuitton D.A. // Immunol. -1998, 20 (2): 81-91 (Internet, 679-й из 705-ти источников).
327. Erenturk S., Kocazeybek В., Oner A., Sonmez B. // Acta-Chir-Belg. -1998, 98 (4): 164-5 (Internet, 5-й из 705-ти источников).
328. Ergun R., Okten A.I., Gul В., Evliyaoglu C., Ergungor F., Taskin Y. // Neurosurg-Rev. 1997, 20 (1): 33-7 (Internet, 479-й из 705-ти источников).
329. Erzurumlu К., Selcuk М.В., Yildiz С. // Eur-Surg-Res. 1996, 28 (6): 46670 (Internet, 140-й из 705-ти источников).
330. Foley J.С., Dreyer N.B., Soule А.В. Jr., Woll E. Kerosene poisoning in young children // 1954. P. 817-829.
331. Franzke CI., Kroll I., Gobel R. Studien zur Glycerid struktur von Fetten // Nahrung, 1978. -Jahrg. -22. -H. 3.-S. 351-354.
332. Garcia J.L., Alvarez-de-Felipe-A.I., Redondo-Gardena-P. // Voces-Alonso-Res. 1997, 83 (2): 105-8 (Internet, 528-й из 705-ти источников).
333. Garcia J.L., Alvarez-de-Felipe-A.I., Redondo-Cardena-P.A., Prieto-Fernandez-J.G. // Parasitol-Res. 1998, 84(5): 417-20 (Internet, 636-й из 705-ти источников).
334. Geissman T.A. The chemistry of flavonoid compounds // Oxford. -London. New York. -Paris, 1962. -P. 666.
335. Gomoglio A., Tomasi A., Malandrino S., Poli G., Albano E. Scavenging effects of silipecle, a new selybin-phospholipid complex on ethanol-derived free radicals//Biochem. Pharmacol. 1995. 50.-N8.-P. 1313-1316.
336. Gonlubol O., Musset D., Chahal В., Chafig A. // J-Radiol. -1998, 79 (8): 771-3 (Internet, 53-й из 705-ти источников).
337. Heacock С.Н. Pneumona in children following ingestion of petroleum products // Radiology. 1949. - Des, 53. - P. 793-797.
338. Hegnauer R. Chemotaxonomie der Pflanzen // Basel. Stuttgart, 1966. Bd 4. 551 S.
339. Hekimoglu B. // AJR-Am-J-Roentgenol. 1998, 171 (6): 1497-500 (Internet, 4-й из 705-ти источников).
340. Hernandez-Hernandez-J.M. // Gastroenterol.Hepatol. 1997, 20 (1): 2730 (Internet, 553-й из 705-ти источников).
341. Horton R.J. // Acta.Trop. 1997, 64 (1-2): 79-93 (Internet, 507-й из 705-ти источников).376.1sbister С. Poisoning in childhood, with particular referenze to kerosene poisoning // Med. J.Austr. 1963. - № 2. - P. 652-656.
342. Jondal G., Holm G. Surface marhors onhuman T and В lymphocytes //J. exp. Med. -1972. -Vol. -136. -№ 2. -P. 207-215.
343. Jurd L. The stenol and carbohydrate constituents of the walnut (Juglans regia) // J.Org.Chem., 1956. Vol. 21. -№ 7. -P. 759-760.
344. Jurd L. Plant polyphenols. The polyphenolic constituents of the pellicle of the walnut (Juglans regia) // J. Amer. Chem. Soc., 1956. Vol. 78. -N14. -P. 3445 3448.
345. Karimov Sh.I. Problem of echinococcosis in Uzbekistan achievements and Perspectives // International Symposium. Surgery of echinococcosis. - Khiva, 1994.-P. 1-3.
346. Karrer W. Konstitution und Vorkommen der organischen Pflanzenstoffe Basel. Stuttgart, 1958. -1207 S.
347. Keller T.M., Schweitzer J.S., Helfend L.K., Chappel T. // 1997, 22 (8): 915-9 (Internet, 477-й из 705-ти источников).
348. Klan Z. Drogy vsech lekopisu v prehledu. // Praha, 1948. -78 S.
349. Korkmaz A., Besim H., Karayalcin K., Hamamci O. // Br-J-Surg. 1998 Sep, 85 (9): 1277 (Internet, 595-й из 705-ти источников).
350. Kratzer W., Kurz S., Wellinghausen N. // Med.Klin. 1998, 15- 93(8): 463-7 (Internet, 22-й из 705-ти источников).
351. Kusin N.M., Dadvani S.A., Musaev G.Ch., Lotov A.N., Andrianov V.N., Avakian V.N. Ultrasound and X-ray guided percutaneous interventions for tretment of hepatic cysts. // Surgery 1996; 9 (2) -P. 97.
352. Kusin N.M., Lotov A.N., Musaev G.Ch., Dadvani S.A., Scrob O.S., Egorov A.V., Ju.V.Kulesneva, Bruslik S.V., Avakian V.N., Legonidov Ju.A.,
353. Broshtane A.M., Kondrashin S.A., Filimonov G.P.Complex treatment of hydatic liver disease // Hepato-Gastroenterology. 1998. - Vol. 45, Suppl. 11.
354. Lenner V. // Chirurg. 1998, 69 (2): 208-11 (Internet, 647-й из 705-ти источников).
355. Lesser Leonard I., Weens Stephen, McKey John D. Pulmonard manifestations followwing ingestion of kerosene// Pediatrics. 1943. - P. 352364.
356. Litchfield J.T., Wilcoxon F.J. Pharm. exp. Ther. -1949. -V. 96. -P. 99108.
357. Lotti G. Goloppini C. La natura dei lipidi presenti negli organi germinativi enei tessuti di riserva dei semi // Riv. ital. sostanze grasse, 1965. -Vol. 42 N6. -P. 289-297.
358. Lotov A.N., Dadvani S.A., Kusin N.M., Musaev G.Ch., Skrob O.S., Monir A. Transcutaneous drainage of liver hydatide cysts // Cardiovascular and Interventional Radiology. 1997. - Vol. 20, Suppl. 1. - S. 83.
359. Lotov A.N.,Kusin N.M., Dadvani S.A., Musaev G.Ch., Skrob O.S., Egorov F.V., Kuleshneva Ju.V., Bruslik S.V., Avakian V.N. Operative ultrasound in the surgery of hydatid liver disease // Hepato-Gastroenterology. 1998. - Vol. 45, Suppl. 11.- CDLXXXV.
360. Luchi S., Vincenti A., Messina F., Scasso A., Campatelli A. // Scand-J-Infect-Dis. 1997, 29 (2): 165-7 (Internet, 466-й из 705-ти источников).
361. Mancini V., Carbonera A.O., Haremand T.F. Immunochemical quantitation of antigens by single radial immunodiffusion // Immunochemistry. -1965. Vol. № 2. - P. 235-254.
362. Mayock R.L., Bozorgnia N. and Linsser H.F. Kerosene pneumonitis treated with adrenal steroids // Ann. Internal Med. -1961. -P. 559-566.
363. McCarthy D.M. Nonsteroidal anti-inflammatori drugs: reducing the rises to the gastrointestinal tract // Clin. Persp. Gastroenterol. -1999. -V. 2. -№ 4. -P. 219-226.
364. McDonald. Accidental poisoning in children in Cape Town. Special reference to kerosene and salicylates // South African Medical Journal. 1961. № 2.-P. 21-15.
365. Mihele D., Cristea E., Tamosdan S., Repta M. Preparat farmaceutic pentru tratarea dermatozelor // Centrala Ind. de medicamente, Cosmetice, Col. Laeuri. Pat. 86650, CPP, A 61K 35/78, A 61 К 9/06. 28.02.85.
366. Miric M.O., Damanski A.F. Composition of the lipids of the walnut during development and ripening of the fruit of the tree (Juglans regia) // Fruits, 1965. Vol. 20. № 1. -P.3- 8.
367. Mozziconacci P.et Attal CI. Intoxication par le petrole a symptomatologie neurologigue // Arch.Frans.ped. 1955. - P. 197-201.
368. Nassau E. Uber die Behandlung der Aspiration von Petroleum mit Kortison // annales paediatrici. 1952. - P. 181-184.
369. Nicolini A.,Vassena E. Gliavvelenamenti accidentali acuti nell'infanzia // Aggiorn.pediatr. 1960. - P. 417-422.
370. Nunn I.A. and Martin F.M. Gasoline and kerosene poisoning in children // JAMA. 1934. - P. 472-474.407.01stad R.B., Lord R.M. Kerosene intoxication // American Medical Association. American Journal of Diseases of children. 1952. - P. 446 -453.
371. Pardhasaradhi M., Hari Babu M. A new bisjuglone from Junlans regia root bark // Phytochemistry, 1978. -Vol. 17. -№ 11. -P. 2042-2043.
372. Parija S.C., Rao K.S. // J.Clin.Microbiol. 1997, 35 (6): 1571-4 (Internet, 475-й из 705-ти источников).
373. Prasad R., Kant S., Ojha V.K, Kohli N., Tandon V.K., Jamal N, Wakhlu A. // Indian.J.Chest.Dis.Allied.Sci. 1998, 40 (2): 141-5 (Internet, 584-й из 705-ти источников).
374. Price J.P. Kerosene poisoning in children // JAMA. 1932. - № 99. - P. 214-215.
375. Prisadov G., Murdzev K., Utchikov A., Tchepileva K. Video-assisted thoracic surgery of hydatid cysts of the lung // Проблемы эхинококкоза. -Махачкала, 2000.-С. 146-147.
376. Rannee Pascal. Composition capillaire utilisee dans le traitement des matieres Keratinigues en particulier pour la repouse des cheveux // Pat. 8607456. 27.11.87.
377. Read B.E. Chinese medicinal plants from the Pen Ts ao Kang Mu A.D. Ed. 3//Peking, 1936.390 P.
378. Reed E.S., Leikin S. and Kerman H.D. Kerosene intoxication // Am.J.Dis.Child. -1950.-P. 623.
379. Rodak Jadwiga, Marcinkiewez Ewa. Seaveging of reactive oxygen species as the mechanism of drug action // Pol. J. Pharmacol. -1995. -47. -N2. -P. 89-98.
380. Rovira E., Castera E. // Med.Clin.Barc. 1998, 110 (12): 477 (Internet, 651-й из 705-ти источников).421 .Rozeau G. // Presse.Med. 1998, 31-27 (33): 1707 (Internet, 296-й из 705-ти источников).
381. Scarbek A. Pulmonari cysts, following ingestion on household paraffin // Arch.dis.child. 1955. - P. 30, 155, 457-459.
382. Seitz I.M., Kruis Т. // Эндоскопия. 1998, 30 (5): 504-5 (Internet, 585-й из 705-ти источников).
383. Senturk Н., Mert A., Ersavasti G., Tabak F., Ulualp K. // Am.J.Gastroenterol. 1998, 93 (11): 2248-53 (Internet, 3-й из 705-ти источников).
384. Sidhu G.S., Pardhasaradhi M., Babu M.H. Isolation of tris-juglone from Juglans regia root bark // Indian J. Chem, 1975. -Vol. 13. -№ 7. -P. 749.
385. Singh G. Gastrointestinal complications of prescription and over-the-counter nonsteroidal anti-inflammatory drugs: a view from the ARAMIS database // Am. J. Ther. 2000. -V. 7. -P. 115-121.
386. Singh Y., Winick A.B. // Radiographics. 1997, 17 (1): 219-24 (Internet, 541-й из 705-ти источников).
387. Smith A.E., Secoy D.M. Plants used for agricaltural pest control in western Europe before 1850 // Chem. and. Ind. -1981. -№ 1. P. 12-17.
388. Steiner M.Syndrom of kerosene poisoning in children // Am.J.Dis.child. -1947.-№74.-P. 32-44.
389. Stiel D. Exploring the link between gastrointestinal complications and over-the-counter analgesics: current issues and considerations // Am.J.Ther.-2000. -V. 7.-P. 91-98.
390. Stransky K., Streibl M., Kubelka V. On natural waxes; Hydrocarbon constituents of the leaf wax from the walnut tree (Juglans regia L.) // Collect. Crech. Chem. Communs, 1970. -Vol. 35. -N3. -P. 882-891.
391. Strzelecka H., Kaminska J., Lenk K., Sadowska U. Badanie lisci orzecha wtoskiego // Folium Juglandis. Farm, pol., 1979. -V.35. -№ 1. -P. 23-25.
392. Thibaudeau. Intoxication algues accidentelles chez 1' ehfant // Laval med. -1956.-P. 316-323.
393. Turvil J.L., Burroughs A.K., Moore K.P. Change in occurrence of paracetamol overdose in UK after introduction of blister packs // Lancet. -2000. -V. 355.-P. 2048-2049.
394. Uysalel A., Yazicioglu L., Aral A., Akalin H. // Eur.J.Cardiothorac.Surg. -1998, 14 (3): 335-7 (Internet, 32-й из 705-ти источников).
395. Veraalvarez J. et al. Echinococcus hookjets in sputum sinus trast extension of a lider hydatid cyst to lung // Acta Cytalogica. 1995. - № 6. - P. 39.
396. Waring J.I. Pneumonia in kerosene poisoning // Amer.J.Med.Sci. 1933. -P. 185,325-330.
397. Wehmer C. Die Pflanzenstoffe // Jena, 1929. -Bd 1. -640 S.
398. Weil J. et al. Prophylactic aspirin and risk of peptic ulcer bleeding // BMJ. -1995. -V. 310. -№ 1. -p. 827-830.
399. Wojcik E. Folium Juglandis. Spektrofotometryczne oznaczanie zawartosci juglonu w Folium Juglandis // Farm, pol., 1984. -V. -40. -№ 9. -P. 523-525.
400. Yildiz B.O., Coplu L. // Pharmacother. -1998, 32 (7-8): 842 (Internet, 601-й из 705-ти источников).
401. Zaiman H. // Trop-Doct. 1997. 27(1): 56, 63 (Internet, 539-й из 705-ти источников).