Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.02) на тему:Микроструктура репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе

ДИССЕРТАЦИЯ
Микроструктура репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе - диссертация, тема по ветеринарии
АВТОРЕФЕРАТ
Микроструктура репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе - тема автореферата по ветеринарии
Савельева, Анна Юрьевна Красноярск 2009 г.
Ученая степень
кандидата ветеринарных наук
ВАК РФ
16.00.02
 
 

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Микроструктура репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе

На правах рукописи

Савельева Анна Юрьевна

МИКРОСТРУКТУРА РЕПРОДУКТИВНЫХ ОРГАНОВ ПЕРЕПЕЛОК В ПОСТНАТАЛЬНОМ ОНТОГЕНЕЗЕ

16.00.02 - патология, онкология и морфология животных

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

ии^4Б7Э58

Барнаул 2009

003467958

Работа выполнена в Институте прикладной биотехнологии и ветеринарной медицины ФГОУ ВПО «Красноярский государственный аграрный университет» на кафедре анатомии и гистологии животных

Научный руководитель: доктор ветеринарных наук, профессор

Донкова Наталья Владимировна

Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук, профессор

Малофеев Юрий Михайлович

доктор биологических наук, профессор Сиразиев Ромазаи Закарьянович

Ведущая организация: ФГОУ ВПО «Омский государственный

аграрный университет»

Защита состоится 29 мая 2009 г. в 10" часов на заседании диссертационного совета Д 220.002.02 в Институте ветеринарной медицины Алтайского государственного аграрного университета по адресу: 656922, г. Барнаул, ул. Попова, 276, тел/факс: 8 (3852) 31-06-36

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Института ветеринарной медицины Алтайского государственного аграрного университета

Автореферат разослан «_»_2009 г.

Ученый секретарь диссертационного совета

П.И. Барышников

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Необходимость расширения ассортимента сельскохозяйственной продукции обусловливает интерес к перепеловодству. Перепел является самым мелким и скороспелым представителем одомашненных куриных.

Продукция перепеловодства обладает отменными диетическими качествами, отличается гипоаллергенностью, экологической безопасностью и издавна ценится человеком: яйца диких перепелов употребляли еще египетские фараоны, зная об их целебных свойствах, на Руси перепелиные яйца считались царской едой, кремлевским деликатесом. У японских перепелов чрезвычайно полезные яйца, содержащие больше меди, кобальта, калия, фосфора, железа, витаминов Bi и В2, чем куриные, поэтому необходимы знания особенностей гистоструктуры и индивидуального развития органов яйцеобразования перепелок, что позволит повысить такие показатели, как яйценоскость, яйцемасса, оплодотворяемость яиц, продолжительность репродуктивного периода, и снизить эмбриональную смертность.

Морфология репродуктивной системы сельскохозяйственных птиц в научной литературе наиболее полно описана у кур (Bakst M.R., 1975, 1978, 1998; Жигалова Е.Е. с соавт., 1988; Вракин В.Ф., Сидорова М.В., 1991; Bruggeman N.O. et al, 1999; Сиразиев Р.З., Кушкина Ю.А., 2003-2005; Хохлов Р.Ю., Кузнецов С.И., 2007,2008); уток (Carlson J.L. et al., 1996; Freedman S.L. et al., 2001; King, L.M. et al., 2002); индеек (Житенко H.B., 2002-2006; Moraes С., 2007); гусынь (Стрижикова C.B., 1988-2008; Тегза А.А., 2000-2002) и страусов (Dzialowskil Е.М., Sotherland P.R., 2004; Madekurozwa М.-С., Kimaro W.H., 2006). Вопросы, касающиеся строения и развития органов яйцеобразования у перепелок, остаются нераскрытыми, а имеющиеся работы носят фрагментарный характер.

Цель и задачи исследований. Основной целью представленной работы являлось изучение особенностей микроструктуры репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе.

Были поставлены следующие задачи:

1. Изучить динамику роста живой массы перепелок и их репродуктивных органов в постнатальном онтогенезе.

2. Изучить морфогенез и особенности микроструктуры яичника перепелок в возрастном аспекте.

3. Установить особенности строения отделов яйцевода перепелок: воронки, белкового, безжелезистого, перешейка, скорлупового, выводкового с учетом периода яйцекладки.

Научная новизна. В работе впервые проведено комплексное морфофункциональное исследование репродуктивных органов у перепелок в возрастном аспекте от момента вылупления до угасания яйцекладки. Установлена динамика роста и развития яичника и яйцевода в постнатальном онтогенезе. Проведены микрометрические исследования толщины слоев стенки яйцевода, диаметра трубчатых желез собственной пластинки, высоты

покровного и железистого эпителия слизистой оболочки, диаметра фолликулов, толщины их текальной оболочки, выявлено ядерно-цитоплазматическое отношение в клетках перивителлиновой мембраны и гландулоцитах. Впервые установлены закономерности формирования слизистой оболочки яйцевода и определены этапы становления органов яйцеобразования перепелок в постнатальном периоде онтогенеза.

Теоретическая и практическая значимость. Данная работа является фрагментом темы «Морфофункциональные изменения органов и тканей животных и птиц на различных этапах онтогенеза и при воздействии ксенобиотиков» направления научно-исследовательской работы кафедры анатомии и гистологии животных Красноярского государственного аграрного университета. Результаты исследований дополняют и углубляют существующие данные по макро- и микроанатомии органов яйцеобразования у сельскохозяйственных птиц и могут быть использованы при написании соответствующих разделов учебных и справочных пособий и руководств по морфологии сельскохозяйственных птиц; в учебном процессе на ветеринарных, зооинженерных и биологических факультетах высших и средних учебных заведений; в научно-исследовательских институтах, занимающихся выяснением видовых и индивидуальных особенностей репродуктивной системы животных. Разработанные на основе проведенных исследований научно-методические рекомендации «Микроструктура репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе» могут послужить теоретической основой для повышения продуктивных качеств перепелок.

Внедрение результатов исследований. Результаты исследований используются в учебном процессе и научно-исследовательской работе на кафедрах: «Анатомия и гистология животных» Института прикладной биотехнологии и ветеринарной медицины Красноярского государственного аграрного университета; «Анатомия и физиология животных» Хакасского государственного университета им. Н.Ф. Катанова; «Анатомия, гистология и патологическая физиология» Вятской государственной сельскохозяйственной академии; «Гистология и общая биология» Санкт-Петербургской государственной академии ветеринарной медицины; «Анатомия и гистология», «Общая бюгагия, физиология и морфология животных» Института ветеринарной медицины Алтайского государственного аграрного университета; «Анатомия, патологическая анатомия и гистология» Оренбургского государственного аграрного университета; «Анатомия, гистология и патологическая анатомия» Института ветеринарной медицины Омского государственного аграрного университета; «Анатомия, физиология и патологическая физиология животных» Иркутской государственной сельскохозяйственной академии; в Забайкальском научно-образовательно-производственном центре (ГНУ НИИ ветеринарии Восточной Сибири СО Россельхозакадемии, Забайкальский аграрный институт - филиал ФГОУ ВПО «Иркутская государственная сельскохозяйственная академия»).

Апробация работы. Основные материалы исследований доложены на международной заочной научной конференции «Проблемы современной аграрной науки» (Красноярск, 2007); на международной научно-практической

конференции, посвященной 45-летию ГНУ НИИ ветеринарии Восточной Сибири СО Россельхозакадемии «Состояние и перспективы обеспечения ветеринарного благополучия Восточной Сибири» (Чита, 2008); на международной научно-практической конференции, посвященной 90-летию Института ветеринарной медицины ФГОУ ВПО «Омский ГАУ» «Перспективы развития аграрной науки и образования» (Омск, 2008); на ежегодных всероссийских очно-заочных научно-практических и научно-методических конференциях с международным участием «Инновации в науке и образовании: опыт, проблемы и перспективы развития» (Красноярск, 2008,2009).

Публикации. По результатам научных исследований опубликовано восемь печатных работ, в том числе одна - в ведущем научном издании, рекомендованном ВАК РФ.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

1. Основные периоды постнатального развития и динамика абсолютной, относительной массы и скорости роста репродуктивных органов у перепелок.

2. Постнатальный морфогенез и фолликулярная иерархия в яичнике перепелок,

3. Морфогенез и микроструктура различных отделов яйцевода с учетом периода яйцекладки.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 144 страницах печатного текста, состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения результатов, выводов и практических рекомендаций. Список использованной литературы включает 173 источника, в том числе 90 иностранных. Работа содержит 10 диаграмм, 5 таблиц, 3 макрофотографии, 56 микрофотографий, 5 схем.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материал и методы исследования. Объектом исследования являлись самки японского перепела разновозрастных групп постнатального онтогенеза, разводимые в парке флоры и фауны «Роев ручей» г. Красноярска. На территории парка птицы содержались в групповых многоярусных клетках по 20-25 голов. Кормление осуществлялось кормовыми смесями, выпускаемыми по рецептам ПК-5 и ПК-11. Условия содержания и кормления птицы соответствовали зоотехническим нормам, предъявляемым к данному виду птицы в условиях промышленного разведения. Возраст птицы определяли по племенным журналам. Возрастной и количественный состав птиц приведен в таблице 1.

Материалом для исследования послужили репродуктивные органы перепелок. Для взятия материала птицу декапитировали, обескровливали и производили отбор яичника и яйцевода. Живую массу перепелок определяли взвешиванием с точностью до 0,01 г, массу яичника и яйцевода определяли взвешиванием на аналитических весах с точностью до 0,001 г.

Таблица 1 - Количество исследованных яичников и яйцеводов перепелок по возрастным группам

Показатель Возраст птиц, сут.

1-е 7-е 14-е 21-е 28-е 35-е 45-е 150-е 240-е Итого

Всего исследовано яичников 10 8 9 10 10 12 И 10 10 90

Всего исследовано яйцеводов 10 8 9 10 10 12 11 10 10 90

Гистологические и гистохимические методы. Кусочки органов размером 0,5x0,5 см фиксировали в 10%-м растворе нейтрального формалина и жидкости Буэна, промывали под проточной водой, обезвоживали путем последовательного проведения через батарею спиртов возрастающей крепости и уплотняли в парафине согласно общепринятым методикам, описанным в руководствах по гистологии. Поперечные и продольные срезы толщиной 5-6 мкм изготавливали на санном микротоме МС-2.

Для получения обзорных препаратов гистологические срезы окрашивали гематоксилином Эрлиха и эозином. Коллагеновые волокна соединительной ткани выявляли по методу Ван Гизона и по методу Маллори; эластические волокна - резорцин-фуксином Вейгерта. При применении метода Ван Гизона коллагеновые волокна окрашивались в красный цвет, клеточные ядра -в темно-коричневый или фиолетово-черный, цитоплазма и мышечная ткань -в темно-желтый цвет. При использовании смеси Маллори коллагеновые волокна окрашивались в темно-синий цвет, слизь - в синий, мышечная ткань -в ярко-оранжевый цвет. Эластические волокна окрашивались резорцин-фуксином Вейгерта в темный синевато-фиолетовый или темно-синий цвет.

Углеводсодержащие биополимеры выявляли реактивом Шиффа при предварительном окислении препаратов периодатом калия по методу А.Л. Шабадаша, в сочетании с энзиматическим контролем - срезы выдерживали в растворе амилазы слюны при 1 +37°С в течение одного часа (Кононский А.И., 1976). За гликоген принимали ШИК-позитивные вещества, ферментирующиеся амилазой слюны. ШИК-позитивный материал, устойчивый к ферментированию амилазой, относили к нейтральным гликопротеидам. Гликоген окрашивался в интенсивный фиолетово-вишневый цвет, мукоиды и гликопротеиды - в красноватый.

Липидные соединения (фосфолипиды) выявляли Суданом черным В по Лизону, принимая во внимание, что при данном методе окрашивания происходит растворение нейтральных несвязанных липидов. За связанные липиды принимали структуры, окрашивающиеся от темно-синего до черного цвета (Ромейс Б., 1953; Кононский А.И., 1976).

Морфометрия. О скорости роста живой массы и репродуктивных органов перепелок судили по абсолютной и относительной величине прироста. Относительный прирост рассчитывали по формуле Броди:

v2-v,

R=-х100%,

0,5 ■ (V2 + Vd

где Vi - масса в начале периода, г; Vz - масса в конце периода, г.

Линейные размеры средних и крупных фолликулов и яйцевода измеряли с помощью линейки и штангенциркуля. Морфометрические исследования структур репродуктивных органов проводили на продольных и поперечных срезах, окрашенных гематоксилином Эрлиха-эозином. Изучение и микрофотографирование окрашенных препаратов проводили под световыми микроскопами марок МикМед-5, MS 100 (Austria), при увеличении в 100, 400, 1000 раз. Микрофотосъемку производили Digital Camera САМ V 200, совмещенной с компьютером посредством кабеля USB. Полученные изображения обработаны с использованием программного обеспечения Bio Vision 2005.

С помощью окуляр-микрометра измеряли толщину слоев стенки яйцевода, диаметр трубчатых желез собственной пластинки слизистой оболочки яйцевода, высоту покровного и железистого эпителия слизистой оболочки, диаметр мелких фолликулов, толщину текальной оболочки фолликулов, площадь сечения ооцита, площадь фолликулярных клеток, ядерно-цитоплазматичекие отношения в клетках. Измерения проводили не менее чем на 8-10 произвольно отобранных срезах с различных стекол.

Площадь эпителиоцитов, фолликулоцитов и их ядер, площадь сечения ооцита определяли по формуле вычисления площади эллипса:

л-хдхЬ

S =-,

4

где а - длина эллипса; b - ширина эллипса. Используя полученные данные, определяли ядерно-цитоплазменное отношение (ЯЦО).

Для измерения степени сопряженности между варьирующими признаками проводили корреляционный анализ с использованием коэффициента корреляции Пирсона (г). Связь между признаками считали слабой при г < 0,3; при 0,3< г < 0,5 умеренной; при 0,5 < г < 0,7 значительной; при 0,7 < г < 0,9 сильной и при г > 0,9 очень сильной, близкой к функциональной. При отрицательном значении г связь между признаками считали обратной.

Полученные данные обработаны с учетом учебных рекомендаций по биометрии (Глотов Н.В. с соавт., 1982; Лакин Г.Ф., 1990; Автандилов A.B., 1980, 1990; Математические методы в биологии, 2004). Оценку достоверности различий проводили методом вариационной статистики с использованием t-критерия Стъюдента. Различия считали значимыми, если вероятность

случайности не превышала 5% (Р<0,05). Статистическую обработку полученных данных проводили на ПК «Intel Centrino Duo processor T5250» с помощью прикладных программ Microsoft Office Excel 2003 XSTAT 2006.

Термины и обозначения, приводимые в тексте, даны в соответствии с Международной Ветеринарной Анатомической Номенклатурой (Nomina Anatómica Veterinaria, 1994).

2.2. Результаты исследований 2.2.1. Динамика роста живой массы перепелок и их репродуктивных органов на этапах постнатального онтогенеза. Репродуктивная система перепелок непарная левосторонняя и образована яичником и яйцеводом. Масса яичника к началу яйцекладки по сравнению с массой яичника суточной перепелки увеличивается в 231 раз и в 416 раз на пике яйцекладки; соответственно масса яйцевода возрастает в 910 и 1089 раз. На момент угасания яйцекладки абсолютная масса яичника снижается в 6,33 раза; соответственно масса яйцевода - в 12,81 раза.

Относительная масса яичника и яйцевода снижается в течение первых трех педель постнатальной жизни, что связано с более высокими темпами роста живой массы перепелят, значительно опережающими темпы прироста массы репродуктивных органов. В дальнейшем показатели относительной массы яичника возрастают и достигают на пике яйцекладки 3,97 %, относительная масса яйцевода составляет 4,78 %.

Относительный прирост органов яйцеобразования перепелок возрастает в течение первого месяца жизни, а к моменту угасания половой функции напряженность роста снижается (рисунок 1 ).

200

150

100

50

% 0

-50

-100

-150

-200

□ живая масса □ яйцевод Я яичник

Рисунок 1 - Динамика относительного прироста живой массы и репродуктивных органов перепелок

\

2.2.2. Особенности микроструктуры яичника перепелок в ностнатальном онтогенезе. Анатомически яичник перепелок изменяется на протяжении постнатального онтогенеза от ровной тонкой пластинки с гладкой блестящей поверхностью на момент вылупления до бугристого образования на пике яйцекладки. Ко времени угасания яйцеобразования форма яичника претерпевает обратные метаморфозы вследствие сокращения количества растущих и созревающих фолликулов.

Микроскопически яичник суточных перепелят покрыт однослойным эпителием кубической или призматической формы. Однако форма эпителиоцитов уплощается по мере увеличения размеров фолликулов.

Строма яичника образует сетчатый волокнистый каркас из рыхлой соединительной ткани с преобладанием коллагеновых волокон. Коллагеновые волокна формируют белочную оболочку, сохраняющую форму органа и придающую определенную упрзтость, и служат для поддержания развивающихся фолликулов, выступающих за пределы яичника.

Паренхима яичника представлена двумя зонами - корковой и мозговой. На разных этапах развития соотношение между обеими зонами неодинаково: в первую неделю развития границы между зонами неясные вследствие незаконченной дифференцировки тканей яичника. В этот период в яичнике встречаются очаги мезенхимы, иптерстициалыше клетки интенсивно делятся путем митоза. В двух-трехнедельном возрасте границы зон обозначены четко, однако происходит интенсивный рост фолликулов, и корковое вещество вклинивается в ткани мозговой зоны, образуя складки. В яичнике половозрелой перепелки границы между зонами слаборазличимы. Инволютивные процессы в 8-месячном возрасте ведут к четкому контурированию зон вследствие уменьшения складчатости коркового вещества и уплотнению мозговой зоны.

В корковом веществе суточных перепелят содержатся экстрафоллгосулярные ооциты, примордиальные и первичные фолликулы на стадии малого и медленного роста. Экстрафолликулярные ооциты диаметром 13,5±0,51 мкм образуют скопления от 3 до 30 клеток, не имеют собственного фолликула, но погружены в яйценосные мешки из плоских интерстициальных клеток.

Как только яйцеклетка обособляется, интерстициальные клетки концентрируются вокруг нее и образуют плоский фолликулярный эпителий. Яйцеклетка достигает 43,5± 1,43 мкм в диаметре и вступает в стадию роста, мы обозначаем ее как примордиальный фолликул. Количество экстрафолликулярных ооцитов в корковой зоне уменьшается на протяжении всей жизни перепелки.

В последующие периоды роста и развития до наступления половой зрелости увеличиваются размеры яйцеклетки, формируется текальная оболочка. Каждый этап завершается образованием новых структур в текальной оболочке и изменением параметров существующих слоев фолликула. Так, изменяется форма фолликулярных клеток от плоской до кубической, далее до призматической. По мере дальнейшего увеличения объема ооплазмы слой фолликулярных клеток растягивается и наблюдается обратное явление: клетки

постепенно уплощаются. Количество фолликулоцитов увеличивается благодаря митотическому делению. Однако на всем протяжении оогенеза фолликулярный эпителий однослойный одно- или многорядный.

Гладкие миоциты по мере роста фолликула формируют мышечный слой теки. В недельном возрасте толщина слоя задана не более чем двумя рядами клеток, в дальнейшем вокруг фолликулярного слоя ооцита развивается мощный гладкомышечный пласт, выполняющий функцию выталкивания ооцита из фолликула в момент овуляции.

Перепелки являются скороспелыми домашними птицами и, при сохранении общих закономерностей оогенеза с другими представителями отряда куриных, имеют существенные различия во временных рамках. Нами установлено, что в возрасте 35 суток яйцеклетку перепелки окружает морфологически полноценный гематофолликулярный барьер - комплекс опорных, защитных, трофических и эндокринных структур, образованный вителлиновой мембраной, фолликулярным эпителием, текальной оболочкой.

К ряду признаков того, что основная роль в обеспечении жизнедеятельности яйцеклетки по мере ее роста переходит от фолликулярного эпителия к текальной оболочке, мы относим следующие: уплощение формы фолликулоцитов и увеличение васкуляризации в теке.

Фолликулогенез характеризуется асинхронностыо на всех этапах постнатального развития, что проявляется в существовании фолликулярной иерархии. В возрасте 45 суток и во все последующие периоды фолликулярная иерархия в яичнике перепелок представлена примордиальными, первичными (растущими), созревающими (преовуляторными), постовуляторными, атретическими фолликулами (схема 1).

Толщина теки и диаметр яйцеклетки на протяжении развития фолликулов коррелируют друг с другом: в стадии малого и медленного роста корреляция очень сильная линейная положительная (г=0,98). В быстрорастущих и созревающих фолликулах функциональная отрицательная линейная корреляция (г =-1) (таблица 2).

Таблица 2 -

Диаметр яйцеклетки и толщина теки фолликулов, мкм

Период развития, сут. Диаметр яйцеклетки Толщина теки

1-е 43,5±1,43 Не сформирована

7-е 118,9±4,41*** 27,1 ±0,82

14-е 143,1±19,17 31,8±1,37*

21-е 398,4±32,47*** 36,4±2,19

35-е Мелкие (1,0-4,9 мм)*** 91,0±5,47***

Средние (5,0-14,9 мм)*** 68,7±1,б5**

45-е Крупные (более 15 мм)*** 53,4±0,98***

Примечание: достоверность различий каждой возрастной группы по сравнению с предыдущей - * Р < 0,05; ** Р < 0,01; *** Р < 0,001.

45-240 сут

Схема 1 - Фолликулогенез в яичнике перепелок в постнатальном онтогенезе

1 — примордиальный фолликул; 2-7 - растущие фолликулы (2 - малый рост; 3-6 — медленный рост; 7 — быстрый рост и созревание); 8 — атретический фолликул; 9 — постовуляторный фолликул; а — фолликулярный эпителий; б -гладкомышечная ткань; в — текальные интерстициальные клетки; г — кровеносные сосуды теки; д — покровный эпителий; е — вителлиновая мембрана

Фолликулы в яичнике перепелок подвергаются атрезии на разных стадиях оогенеза, начиная с момента наступления половой зрелости. Мы установили три типа атрезии: железистую, жировую и кистозную. При железистом перерождении, характерном для медленно растущих фолликулов, разрушается оолемма, яйцеклетка дефрагментируется и гибнет.

Жировая атрезия чаще встречается среди более крупных фолликулов и сопровождается интенсивным размножением жировых клеток в полоста гибнущей яйцеклетки, постепенным разрушением всех структур гематофолликулярного барьера. Кистозная атрезия поражает быстрорастущие фолликулы. Мы наблюдали гиалиновое перерождение вителлиновой мембраны, десквамацию погибающих фолликулоцитов от базальной мембраны и рассеивание их в массе желтка. Завершающей стадией всех типов атрезии являлось усиленное размножение текалыных и/или стромальных интерстициальных клеток в полости фолликула. С возрастом количество атретических фолликулов увеличивается, и к моменту затухания яйцеобразования основная масса коркового вещества в яичнике перепелок состоит из гибнущих яйцеклеток.

Межфолликулярная ткань коркового вещества гонады образована рыхлой соединительной тканью. В яичнике суточных перепелят мы обнаруживаем в структуре ткани: клетки мезенхимы, интенсивно митотически делящиеся бластные клетки (фибробласты, гистиоциты, малодифференцированные клетки), коллагеновые волокна. На следующих этапах развития очаги мезенхимы исчезают, бластные формы замещаются зрелыми, клетки дифференцируются.

На протяжении всего цикла развития яйцеклетки ооплазма представляет собой неоднородную массу и содержит вакуоли, 1ранулы и капли, гистохимически в которых выявлялись фосфолипиды и ИШК-позитивный материал.

2.2.3. Возрастные особенности микроструктуры отделов яйцевода перепелок: воронки, белкового, безжелезистого, перешейка, скорлупового, выводкового. Яйцевод перепелок до четырехнедельного возраста снаружи представляет собой лентовидный орган, мы выделяем в нем краниальный и каудальный (маточно-влагалищный) отделы, последний имеет больший диаметр, что также характерно для яйцевода кур. В 35-суточном возрасте яйцевод становится трубкообразным, наружная поверхность приобретает продольную складчатость и незначительную спиральную ориентацию. Заканчивается дифференцировка на отделы к моменту наступления половой зрелости образованием воронки, белкового, безжелезистого отделов, перешейка, скорлупового отдела (матки), выводкового отдела (влагалища). Длина яйцевода половозрелой перепелки возрастает в 28,8 раза от момента вылупления (рисунок 2), длина воронки составляет 6% от общей длины яйцевода; белкового отдела - 50%; безжелезистого - 0,04%; перешейка - 22%; матки - 15%; влагалища - 7%.

см

1 7 14 21 28 35 45 150 240

Рисунок 2 - Длина яйцевода перепелки на этапах постнатального развития

Гистологически стенка яйцевода образована тремя оболочками -; слизистой, мышечной, серозной, а во влагалище - адвентицией. Наиболее дифференцированной и функционально значимой оболочкой является слизистая, образующая в разных отделах яйцевода половозрелой перепелки неодинаковые по размерам складки. В воронке выросты слизистой | представлены тонкими длинными подвижными фимбриями; в белковом отделе - толстыми и короткими складками; в перешейке - бесформенными низкими ' складками; в перешейке - тонкими и длинными; в матке - узкими нежными ' сильно разветвленными; во влагалище - низкими разветвленными складками.

Развитие слизистой оболочки до начата яйцекладки подчинено I определенным закономерностям. На ранних этапах постнатального онтогенеза I отдельные продольные щелевидные пространства прорезают толщу слизистой I оболочки, образуя узкие ленты, которые вслед за тем поперечными бороздами делятся на две самостоятельные ворсины. В двухнедельном возрасте в краниальной части высота складок меньше, а ширина больше, чем в каудальной. Образуются вторичные складки, формируется подслизистая пластинка, складки растягиваются, и вторичные складки становятся первичными, диаметр трубки значительно увеличивается.

С четвертой недели жизни тяжи эпителиальной выстилки погружаются в глубь складок в виде эпителиальных «почек» и дают начало образованию | трубчатых желез.

Трубчатые железы в дефинитивном яйцеводе залегают в собственной пластинке слизистой оболочки белкового отдела, перешейка и матки. Размеры гландулоцитов половозрелых перепелок неодинаковы в разных отделах яйцевода, а также в пределах одного отдела в зависимости от секреторной ! активности клеток (таблица 3).

Таблица 3 - Диаметр трубчатых желез, площадь клеток покровного эпителия, гландулоцитов и их ядер, ядерно-цитоплазматическое отношение (ЯЦО)

Возраст, сут. Покровный эпителий Гландулоциты Диаметр трубчатых желез, мкм

Площадь клетки, мкм2 Площадь ядра, мкм2 ЯЦО Площадь клетки, мкм2 Площадь ядргц мкм ЯЦО

М±га М±т М±го М±т М±т

- 25,09*1,12 15,24±0,4б 1:1,65 - - - -

Г-. 25,98±1,46 12,31±0,8 1:2,11 - - - -

23,97±1,05 11,3±0,73 1:2,12 - - - -

CS 31,84±2,03 15,81±0,98 1:2,01 - - - -

00 fS 43,23±1,64 20,21±1,21 1:2,13 42,95±0,87 24,17±0,32 1:1,78 33,2±2,7

т ел 61,50±2,73 17,71±0,57 1:3,47 4б,91±1,14 25,03±0,6б 1:1,87 25,77±1,4

ш Tf « 62,5±2,39 24,68±1,00 1:2,53 ш 79,38±2,77 10,35±0,67 1:7,67 37,9±1,52

М 74,62±3,15 24,19±0,93 1:3,08

С 63,75±1,13 21,72±0,44 1:2,93 С 58,63±1,24 14,44±0,31 1:4,06 33,56±0,46

81,33±2,51 21,03±0,5 1:3,87

R и 87,14*3,01 22,67±0,82 1:3,84 й 34,37±0,82 12,81±0,27 1:2,68 19,02±1,62

О W» я 65,5±1,07 23,19±0,94 1:2,53 м 98,51±2,17 9,44±0,71 1:10,43 40,1±0,46

м 62,96±1,07 20,42±0,71 1:3,08

С 79,49±1,43 22,8±0,97 1:3,49 С 72,35±1,29 14,79±0,83 1:4,89 ' 38,5±0,57

S 83,12±2,17 21,98±0,63 1:3,79

и И 84,12±2,91 23,98±0,4б 1:3,51 S 51,46*1,13 14,11*0,80 1:3,64 22,42±0,71

о -«fr СЧ 38,26±1Д5 13,66±0,42 1:2,80 22,83±0,14 7,89±0,15 1:2,89 17,12±1,28

Примечание: В - воронка; Б - белковый отдел; П - перешеек; М - матка; Вл - влагалище.

На момент затухания яйцеобразования в секретирующих отделах яйцевода наблюдается значительное сокращение числа трубчатых желез или полное их исчезновение вследствие разрушения базальных мембран, слияния отдельных желез между собой и образования полостей, нарушения связей между гландулоцитами.

Эпителиальная выстилка слизистой оболочки яйцевода образована однослойным многорядным призматическим мерцательным эпителием. Клеточный состав представлен камбиальными, реснитчатыми и бокаловидными железистыми эпителиоцитами. Размеры, форма и соотношение клеток колеблются в зависимости от возраста перепелки и от отдела яйцевода. До двухнедельного возраста эпителий однослойный однорядный, затем становится многорядным.

Значительные морфологические преобразования эпителиальной выстилки нами зафиксированы в раннем постнатальном периоде онтогенеза: в возрасте 28 суток эпителиоциты на всем протяжении яйцевода из кубических становятся призматическими, на их апикальных полюсах появляются киноцилии. Впервые обнаруживаются узкие железистые клетки, соотношение их к реснитчатым и камбиальным составляет 1:8. Камбиальные клетки многочисленны, соотношение их к реснитчатым клеткам примерно 1:3, что свидетельствует об активном процессе формирования покровного эпителия и о его незначительной секреторной активности. Изменяется соотношение реснитчатых и железистых клеток в 35-суточном возрасте и составляет 1:1, количество камбиальных эпителиоцитов снижается.

К началу яйцекладки в 45-суточном возрасте железистые клетки приобретают характерную бокаловидную форму и сохраняют ее на протяжении всего репродуктивного периода. Реснитчатые и бокаловидные клетки располагаются упорядочению и формируют мозаичный узор. Цитоплазма бокаловидных клеток насыщена включениями и имеет зернистую структуру, дающую интенсивную ШИК-реакцию, что характерно и для гландулоцитов, но в меньшей степени. Плазмолеммы эпителиальных клеток - гландулоцитов и клеток покровного эпителия - содержат фосфолипиды.

Начало яйцекладки характеризуется увеличением площади клеток эпителиальной выстилки яйцевода, максимального значения показатель достигает в разгар яйцекладки (таблица 3). Мы установили, что между размерами клеток покровного эпителия и гландулоцитов существует обратная линейная корреляция.

В период угасания яйцекладки сокращается количество бокаловидных клеток, теряется их форма, из чего мы заключаем, что секреторная активность эпителиальной выстилки к этому времени значительно снижается. В покровном эпителии яйцевода появляются безреснитчатые эпигелиощпы.

В постэмбриональном периоде развития от момента вылупления до начала угасания репродуктивной функции мышечная оболочка яйцевода перепелок утолщается. В воронке, белковом и безжелезистом отделах она образована слоем циркулярно ориентированных гладкомышечных волокон, в перешейке, матке и влагалище добавляется продольный слой гладких

миоцитов. Серозная оболочка снаружи покрывает все отделы яйцевода за исключением влагалища, где она замещается адвентицией.

ВЫВОДЫ

1. Репродуктивные органы перепелок представлены непарными левосторонними яичником и яйцеводом. Постнатальное развитие яичника и яйцевода характеризуется постепенным увеличением темпов роста и достигает максимальных значений в возрасте 28-35 суток. В 150-суточном возрасте, соответствующем максимальной яичной продуктивности, относительная масса яичника составляет 4%, яйцевода - около 5%. В дальнейшем темпы роста снижаются и к 240-суточному возрасту наступает физиологическая инволюция репродуктивной системы, что сопровождается угасанием яйцекладки.

2. Постнатальное развитие органов яйцеобразования перепелок протекает последовательно в шесть периодов: 1) первый (1-21-е сутки) - относительный покой в росте и развитии; 2) второй (21-35-е сутки) - интенсивный морфогенез; 3) третий (35-45-е сутки) - подготовка и начало яйцекладки; 4) четвертый (45150-е сутки) - интенсивный фолликулогенез, сопровождающийся максимальной яичной продуктивностью, высокая секреторная активность яйцевода; 5) пятый (150-240-е сутки) - снижение темпов яйцеобразования; 6) шестой - (240-е сутки и старше) - инволюция репродуктивной системы, прекращение яйцекладки.

3. Постнатальный морфогенез яичника сопровождается усовершенствованием структурной организации тканей паренхимы, дифференциацией компонентов текальной оболочки, формированием гематофолликулярного барьера вокруг яйцеклетки и постепенным накоплением в ней фосфолипидов. На протяжении фолликулогенеза наблюдается корреляция между толщиной теки и диаметром ооцита: в медленно растущих фолликулах корреляция очень сильная линейная положительная, в быстрорастущих и созревающих - корреляция функциональная отрицательная линейная.

4. Фолликулярная иерархия в яичнике перепелок к началу яйцекладки представлена экстрафолликулярными ооцитами, примордиальными, первичными, преовуляторными, постовуляторными и атретическими фолликулами. Гибель яйцеклеток обусловлена тремя типами атрезии: в медленно растущих фолликулах - железистой, в быстрорастущих и созревающих - жировой и кистозной.

5. Яйцевод перепелок на ранних этапах постнатального развития состоит из краниального и каудального отделов. Интенсивный морфогенез яйцевода сопровождается изменением линейных размеров трубки, формированием складчатости слизистой оболочки и дифференциацией на воронку, белковый и безжелезистый отделы, перешеек, матку (скорлуповый отдел), влагалище (выводковый отдел).

6. Слизистая оболочка всех отделов яйцевода на ранних этапах развития выстлана однослойным однорядным кубическим эпителием без признаков секреторной активности. В процессе гистогенеза эпителий

трансформируется в однослойный многорядный столбчатый мерцательный. К началу яйцекладки эпителиальная выстилка в воронке представлена реснитчатыми клетками, а в нижележащих отделах - камбиальными, реснитчатыми и железистыми бокаловидными.

7. Секреторная активность бокаловидных экзокриноцитов эпителиальной выстилки яйцевода и гландулоцитов простых трубчатых желез, расположенных в собственной пластинке белкового отдела, перешейка и матки, обусловливает формирование белковой, подскорлуповой и скорлуповой оболочек перепелиного яйца.

8. Снижение темпов яйцеобразования сопровождается атрезией подавляющего большинства фолликулов в яичнике, сокращением числа реснитчатых клеток и бокаловидных экзокриноцитов, появлением безреснитчатых форм в эпителиальной выстилке, а также атрофией простых трубчатых желез, что приводит к инволюции репродуктивной системы и прекращению яйцекладки.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Результаты исследований микроструктуры репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе могут быть использованы:

- при написании соответствующих разделов учебных и справочных пособий и руководств по анатомии и гистологии сельскохозяйственных птиц;

- в учебном процессе на ветеринарных, зооинженерных и биологических факультетах высших и средних учебных заведений;

- в научно-исследовательских институтах, занимающихся выяснением видовых и индивидуальных особенностей репродуктивной системы животных;

- для формирования общей картины гистогенеза репродуктивных органов птиц на этапах постнатального развития.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Савельева, А.Ю. Морфология яичника японского перепела раннего постнатального периода онтогенеза / А.Ю. Савельева // Проблемы современной аграрной науки: мат-лы междунар. заоч. науч. конф. -Красноярск, 2007. - С. 53-55.

2. Донкова, Н.В. Морфофункциональная характеристика репродуктивных органов перепелов в период максимальной яичной продуктивности / Н.В. Донкова, А.Ю. Савельева // Актуальные проблемы интенсивного развития животноводства: сб. науч. тр. - Вып. 11(2) / под ред. М.В. Шалак. -Горки, 2008. - С. 230-236.

3. Савельева, А.Ю. Гистоструктура яичника и различных отделов яйцевода перепелов в период максимальной яичной продуктивности / А.Ю. Савельева // Инновации в науке и образовании: опыт, проблемы, перспективы разви-

тия: мат-лы Всерос. очно-заоч. науч.-практ. конф. с междунар. участием. -Красноярск, 2008. - С. 377-380.

4. Донкова, Н.В. Гистологические и гистохимические особенности яйцевода японского перепела до начала яйцекладки / Н.В. Донкова, А.Ю. Савельева // Состояние и перспективы обеспечения ветеринарного благополучия Восточной Сибири: мат-лы междунар. науч.-практ. конф., посвящ. 45-летию ГНУ НИИ ветеринарии Восточной Сибири СО Россельхозакадемии / под ред. В.Г. Черных.-Чита, 2008.-С. 96-101.

5. Донкова, Н.В. Особенности микроструктуры печени и репродуктивных органов у перепелов / Н.В. Донкова, H.A. Леонов, А.Ю. Савельева // Перспективы развития аграрной науки и образования: сб. науч. тр. к 90-летию Института ветеринарной медицины. - Омск, 2008. - С. 110-114.

6. Савельева, А.Ю. Морфологическая характеристика яичника и яйцевода перепелок на момент угасания яйцекладки / А.Ю. Савельева // Аграрный вестник Урала. - 2008. -№ 10(52). - С. 67-69.

7. Савельева, А.Ю. Микроструктура репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе: науч.-метод. рекомендации / А.Ю. Савельева; Краснояр. гос. аграр. ун-т. - Красноярск, 2009. - 14 с.

8. Савельева, А.Ю. Гистоструктура яичника перепелок в постнатальном онтогенезе / А.Ю. Савельева // Вестн. КрасГАУ. - 2009. - Вып. 4. - С. 173-176.

Санитарно-эпидемиологическое заключение № 24.49.04.953.П. 000381.09.03 от 25.09.2003 г. Подписано в печать 9.04.2009. Формат 60x84/16. Бумага тип. № 1. Печать - ризограф. Объем 1,0 п.л. Тираж 100 экз. Заказ № 2064 Издательство Красноярского государственного аграрного университета 660017, Красноярск, ул. Ленина, 117

 
 

Оглавление диссертации Савельева, Анна Юрьевна :: 2009 :: Красноярск

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Общая биология перепелов.

1.2. Морфофункциональные особенности репродуктивных органов у самок птиц.

1.3. Онтогенез органов репродуктивной системы у самок птиц в постнатальном периоде.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Материал и методы исследований.

2.2. Результаты собственных исследований.

2.2.1. Динамика роста живой массы перепелок и их репродуктивных органов в постнатальном онтогенезе.

2.2.2. Морфогенез и особенности микроструктуры яичника перепелок в возрастном аспекте.

2.2.2.1. Микроструктура яичника перепелок в раннем постнатальном онтогенезе.

2.2.2.2. Микроструктура яичника перепелок к началу и в разгар яйцекладки.

2.2.2.3. Микроструктура яичника перепелок на момент угасания яйцекладки.

2.2.3. Возрастные особенности микроструктуры отделов яйцевода перепелок: воронки, белкового, безжелезистого, перешейка, скорлупового, выводкового.

2.2.3.1. Строение различных отделов яйцевода перепелок в раннем постнатальном онтогенезе.

2.2.3.2. Строение различных отделов яйцевода перепелок к началу и в разгар яйцекладки.

2.2.3.3. Строение различных отделов яйцевода перепелок на момент угасания и прекращения яйцекладки.

 
 

Введение диссертации по теме "Патология, онкология и морфология животных", Савельева, Анна Юрьевна, автореферат

Актуальность темы. Необходимость расширения ассортимента сельскохозяйственной продукции обусловливает интерес к перепеловодству. Перепел является самым мелким и скороспелым представителем одомашненных куриных.

Продукция перепеловодства обладает отменными диетическими качествами, отличается гипоаллергенностью, экологической безопасностью и издавна ценится человеком: яйца диких перепелов употребляли еще египетские фараоны, зная об их целебных свойствах, на Руси перепелиные яйца считались царской едой, кремлевским деликатесом. У японских перепелов чрезвычайно полезные яйца, содержащие больше меди, кобальта, калия, фосфора, железа, витаминов Bi и В2, чем куриные, поэтому необходимы знания особенностей гистоструктуры и индивидуального развития органов яйцеобразования перепелок, что позволит повысить такие показатели, как яйценоскость, яйцемасса, оплодотворяемость яиц, продолжительность репродуктивного периода и снизить эмбриональную смертность.

Морфология репродуктивной системы сельскохозяйственных птиц в научной литературе наиболее полно описана у кур (Bakst M.R., 1975, 1978, 1998; Жиголова Е.Е. с соавт., 1988; Вракин В.Ф., Сидорова М.В., 1991; Bruggeman N.O. et al., 1999; Сиразиев Р.З., Кушкина Ю.А., 2003-2005; Хохлов Р.Ю., Кузнецов С.И., 2007, 2008); уток (Carlson J.L. et al., 1996; Freedman S.L. et al., 2001; King, L.M. et al., 2002); индеек (Житенко H.B., 2002-2006; Moraes С., 2007); гусынь (Стрижикова C.B., 1988-2008; Тегза А.А., 2000-2002) и страусов (Dzialowskil Е.М., Sotherland P.R., 2004; Madekurozwa М.-С., Kimaro W.H., 2006). Вопросы, касающиеся строения и развития органов яйцеобразования у перепелок, остаются нераскрытыми, а имеющиеся работы носят фрагментарный характер.

Цель и задачи исследований. Основной целью представленной работы являлось изучение особенностей микроструктуры репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе.

Были поставлены следующие задачи:

1. Изучить динамику роста живой массы перепелок и их репродуктивных органов в постнатальном онтогенезе.

2. Изучить морфогенез и особенности микроструктуры яичника перепелок в возрастном аспекте.

3. Установить особенности строения отделов яйцевода перепелок: воронки, белкового, безжелезистого, перешейка, скорлупового, выводкового с учетом периода яйцекладки.

Научная новизна. В работе впервые проведено комплексное морфофункциональное исследование репродуктивных органов у перепелок в возрастном аспекте от момента вылупления до угасания яйцекладки. Установлена динамика роста и развития яичника и яйцевода в постнатальном онтогенезе. Проведены микрометрические исследования толщины слоев стенки яйцевода, диаметра трубчатых желез собственной пластинки, высоты покровного и железистого эпителия слизистой оболочки, диаметра фолликулов, толщины их текальной оболочки, выявлено ядерно-цитоплазматическое отношение в клетках перивителлиновой мембраны и гландулоцитах. Впервые установлены закономерности формирования слизистой оболочки яйцевода и определены этапы становления органов яйцеобразования перепелок в постнатальном периоде онтогенеза.

Теоретическая и практическая значимость. Данная работа является фрагментом темы: «Морфофункциональные изменения органов и тканей животных и птиц на различных этапах онтогенеза и при воздействии ксенобиотиков» направления научно-исследовательской работы кафедры анатомии и гистологии животных Красноярского государственного аграрного университета. Результаты исследований дополняют и углубляют ч существующие данные по макро- и микроанатомии органов яйцеобразования у сельскохозяйственных птиц и могут быть использованы при написании соответствующих разделов учебных и справочных пособий и руководств по морфологии сельскохозяйственных птиц; в учебном процессе на ветеринарных, зооинженерных и биологических факультетах высших и средних учебных заведений; в научно-исследовательских институтах, занимающихся выяснением видовых и индивидуальных особенностей репродуктивной системы животных. Разработанные на основе проведенных исследований научно-методические рекомендации «Микроструктура репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе» могут послужить теоретической основой для повышения продуктивных качеств перепелок.

Внедрение результатов исследований. Результаты исследований используются в учебном процессе и научно-исследовательской работе на кафедрах: «Анатомии и гистологии животных» Института прикладной биотехнологии и ветеринарной медицины Красноярского государственного аграрного университета; «Анатомии и физиологии животных» Хакасского государственного университета им. Н.Ф. Катанова; «Анатомии, гистологии и патологической физиологии» Вятской государственной сельскохозяйственной академии; «Гистологии и общей биологии» Санкт-Петербургской государственной академии ветеринарной медицины; «Анатомии и гистологии», «Общей биологии, физиологии и морфологии животных» Института ветеринарной медицины Алтайского государственного аграрного университета; «Анатомии, патологической анатомии и гистологии» Оренбургского государственного аграрного университета; «Анатомии, гистологии и патологической анатомии» Института ветеринарной медицины Омского государственного аграрного университета; «Анатомии, физиологии и патологической физиологии животных» Иркутской государственной сельскохозяйственной академии; в Забайкальском научно-образовательнопроизводственном центре (ГНУ НИИ ветеринарии Восточной Сибири СО Россельхозакадемии, Забайкальский аграрный институт — филиал ФГОУ ВПО «Иркутская государственная сельскохозяйственная академия»).

Апробация работы. Основные материалы исследований доложены на Международной заочной научной конференции «Проблемы современной аграрной науки» (Красноярск, 2007); на Международной научно-практической конференции, посвященной 45-летию ГНУ НИИ ветеринарии Восточной Сибири СО Россельхозакадемии «Состояние и перспективы обеспечения ветеринарного благополучия Восточной Сибири» (Чита, 2008); на Международной научно-практической конференции, посвященной 90-летию Института ветеринарной медицины ФГОУ ВПО Омский ГАУ «Перспективы развития аграрной науки и образования» (Омск, 2008); на ежегодных Всероссийских очно-заочных научно-практических и научно-методических конференциях с международным участием «Инновации в науке и образовании: ^ опыт, проблемы и перспективы развития» (Красноярск, 2008, 2009).

Публикации. По результатам научных исследований опубликовано восемь печатных работ, в том числе одна в ведущем научном издании, рецензируемом ВАК РФ.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

1. Основные периоды постнатального развития и динамика абсолютной, относительной массы и скорости роста репродуктивных органов у перепелок.

2. Постнатальный морфогенез и фолликулярная иерархия в яичнике перепелок.

3. Морфогенез и микроструктура различных отделов яйцевода с учетом периода яйцекладки.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 144 страницах печатного текста, состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения результатов, выводов и практических

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Микроструктура репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе"

ВЫВОДЫ

1. Репродуктивные органы перепелок представлены непарными левосторонними яичником и яйцеводом. Постнатальное развитие яичника и яйцевода характеризуется постепенным увеличением темпов роста и достигает максимальных значений в возрасте 28-35 суток. В 150-суточном возрасте, соответствующем максимальной яичной продуктивности, относительная масса яичника составляет 4%, яйцевода — около 5%. В дальнейшем темпы роста снижаются и к 240-суточному возрасту наступает физиологическая инволюция репродуктивной системы, что сопровождается угасанием яйцекладки.

2. Постнатальное развитие органов яйцеобразования перепелок протекает последовательно в шесть периодов: 1) первый (1-21 сутки) — относительный покой в росте и развитии; 2) второй (21-35 сутки) - интенсивный морфогенез; 3) третий (35-45 сутки) — подготовка и начало яйцекладки; 4) четвертый (45-150 сутки) — интенсивный фолликулогенез, сопровождающийся максимальной яичной продуктивностью, высокая секреторная активность яйцевода; 5) пятый (150-240 сутки) - снижение темпов яйцеобразования; 6) шестой — (240 сутки и старше) — инволюция репродуктивной системы, прекращение яйцекладки.

3. Постнатальный морфогенез яичника сопровождается усовершенствованием структурной организации тканей паренхимы, дифференциацией компонентов текальной оболочки, формированием гематофолликулярного барьера вокруг яйцеклетки и постепенным накоплением в ней фосфолипидов. На протяжении фолликулогенеза наблюдается корреляция между толщиной теки и диаметром ооцита: в медленно растущих фолликулах корреляция очень сильная линейная положительная, в быстрорастущих и созревающих корреляция функциональная отрицательная линейная.

4. Фолликулярная иерархия в яичнике перепелок к началу яйцекладки представлена экстрафолликулярными ооцитами, примордиальными, первичными, преовуляторными, постовуляторными и атретическими фолликулами. Гибель яйцеклеток обусловлена тремя типами атрезии: в медленно растущих фолликулах — железистой, в быстрорастущих и созревающих — жировой и кистозной.

5. Яйцевод перепелок на ранних этапах постнатального развития состоит из краниального и каудального отделов. Интенсивный морфогенез яйцевода сопровождается изменением линейных размеров трубки, формированием складчатости слизистой оболочки и дифференциацией на воронку, белковый и безжелезистый отделы, перешеек, матку (скорлуповый отдел) влагалище (выводковый отдел).

6. Слизистая оболочка всех отделов яйцевода на ранних этапах развития выстлана однослойным однорядным кубическим эпителием без признаков секреторной активности. В процессе гистогенеза эпителий трансформируется в однослойный многорядный столбчатый мерцательный. К началу яйцекладки эпителиальная выстилка в воронке представлена реснитчатыми клетками, а в нижележащих отелах — камбиальными, реснитчатыми и железистыми бокаловидными.

7. Секреторная активность бокаловидных экзокриноцитов эпителиальной выстилки яйцевода и гландулоцитов простых трубчатых желез, расположенных в собственной пластинке белкового отдела, перешейка и матки, обусловливают формирование белковой, подскорлуповой и скорлуповой оболочек перепелиного яйца.

8. Снижение темпов яйцеобразования сопровождается атрезией подавляющего большинства фолликулов в яичнике, сокращением числа реснитчатых клеток и, бокаловидных экзокриноцитов, появлением безреснитчатых форм в эпителиальной выстилке, а также атрофией простых трубчатых желез, что приводит к инволюции репродуктивной системы и прекращению яйцекладки.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Результаты исследований микроструктуры репродуктивных органов перепелок в постнатальном онтогенезе могут быть использованы: при написании соответствующих разделов учебных и справочных пособий и руководств по анатомии и гистологии сельскохозяйственных птиц; в учебном процессе на ветеринарных, зооинженерных и биологических факультетах высших и средних учебных заведений; в научно-исследовательских институтах, занимающихся выяснением видовых и индивидуальных особенностей репродуктивной системы животных; для формирования общей картины гистогенеза репродуктивных органов птиц на этапах постнатального развития.

 
 

Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2009 года, Савельева, Анна Юрьевна

1. Александровская, О.В. Цитология, гистология и эмбриология: учеб. пособие для вузов / О.В. Александровская, Т.Н. Радостина, Н.А. Козлов. -М.: Агропромиздат, 1987. 448 с.

2. Автандилов, Г.Г. Введение в количественную патологическую морфометрию / Г.Г. Автандилов. М.: Медицина, 1980. - 216 с.

3. Автандилов, Г.Г. Медицинская морфометрия / Г.Г. Автандилов. — М.: Медицина, 1990. 384 с.

4. Белякова, JI. Технология содержания и выращивания перепелов / JI. Белякова, 3. Кочетова // Птицеводство, 2006. № 2. — С. 16-17.

5. Бессарабов, Б.Ф. Фазановые: содержание и разведение / А.И. Рахманов, Б.Ф. Бессарабов. -М.: Агропромиздат, 1991. 173 с.

6. Блохин, Г.И. Зоология: учеб. пособие для вузов / Г.И. Блохин, В.А. Александров. М.: КолосС, 2005. - С. 382-400.

7. Борцов, А. Капитал на перепелах? / А. Борцов // Приусадебное хозяйство, 1998.-№4.-С. 11.

8. Волкова, О.В. Методы количественного анализа в оценке морфофункционального состояния яичника / О.В. Волкова, Т.Г. Боровая // Архив анатомии гистологии и эмбриологии, 1990. № 99. - С. 81-83.

9. Вракин, В.Ф. Анатомия и гистология домашней птицы / В.Ф. Вракин, М.В. Сидорова. -М.: Колос, 1991.-С. 197-210.

10. Гистология: учеб. для вузов / Ю.И. Афанасьев, Н.А. Юрина, Б.В. Алешин, Е.Ф. Котовский. 4-е изд., перераб. и доп. - М.: Медицина, 1989. - 672 с.

11. Глотов, Н.В. Биометрия: учеб. пособие; под ред. М.М. Тихомировой / Н.В. Глотов, JI.A. Животинский, Н.В. Хованов, Н.Н. Хромов-Борисов. -Ленинград: Изд-во Ленинградского ун-та, 1982. 264 с.

12. Гущин, В.В. К 40-летию промышленного перепеловодства в России / В.В. Гущин, Кроик Л.И. // Птица и птицепродукты, 2004. — №6. Стр. 58.

13. Домашняя птица: куры, гуси, утки, индейки, цесарки, перепела и голуби / Сост.: О. Морозова. М.: ACT, 1999. - 411с.

14. Дыбан, П.А. Аномальные взаимоотношения между ростом ооцитов и пролиферативной активностью фолликулярного эпителия в яичниках у мышей линии LT/Sv. / П.А. Дыбан // Онтогенез, 1982. №6. - С. 650-655.

15. Елисеев, В.Г. Основы гистологии и гистологической техники / В.Г. Елисеев, М.Я. Субботина, Ю.И. Афанасьева и др. М.: Изд-во Медицина, 1967.- 199 с.

16. Жиголова, Е.Е. Морфофункциональные показатели яйцевода широкогрудой индейки в связи с возрастом и яйцекладкой / Е.Е. Жиголова, М.Е. Пилипенко, П.Ф. Сурай // Научно-техн. бюлл. / Украинский НИИ птицеводства. Киев, 1988. - Т. 24. - С. 41-44.

17. Житенко, Н.В. Морфологические особенности строения яичника индейки в период яйцекладки // Материалы Всероссийской научной конференции аспирантов и студентов. — Троицк, 2003. — С. 132-134.

18. Житенко, Н.В. Морфологическая и ультраструктурная характеристика яичника половозрелых птиц / Н.В. Житенко, А.А. Тегза, В.К. Стрижиков // Материалы Всероссийской науч.-практич. конф. патологоанатомов ветеринарной медицины. М., 2003. — С. 253-254.

19. Житенко, Н.В. Морфогенез гонадо-почечно-надпочечниковой зоны птиц / Н.В. Житенко, В.К. Стрижиков, С.В. Стрижикова // Морфологические ведомости.-2004.-№ 1-2.-С. 100.

20. Житенко, Н.В. Особенности морфологии и гистохимии ранних постовуляторных фолликулов в яичнике птиц / Н.В. Житенко, С.В. Стрижикова // Материалы Международной науч.-практич. конф., посвящ. 75-летию Вятской гос. с.-х. акад. — Киров, 2005. — С. 152.

21. Житенко, Н.В. Морфологическая дифференцировка яичника индейки в различные периоды онтогенеза: автореф. дис. . канд. биол. наук: 03.00.16 /Н.В. Житенко. Екатеринбург: Изд-во УГСХА, 2006. - 16 с.

22. Иоцюс, Г.П. Птицеводство: учеб. пособие / Г.П. Иоцюс, Н.В. Старчиков. М.: Агропромиздат, 1989. С. 26.

23. Киселева, А.Ф. Морфофункциональные методы исследования в норме и при патологии / А.Ф. Киселева, А .Я. Житников, JI.B. Кейсевич и др. // Киев, Здоров'я, 1983. — 163 с.

24. Кисели, Д. Практическая микротехника и гистохимия / Д. Кисели; под ред. Д. Рохманьи. — Будапешт: Изд-во Академии Наук Венгрии, 1962. — С. 122-123.

25. Коблик, Е.А. Список птиц Российской Федерации / Е.А. Коблик, Я.А. Редькин, В.Ю. Архипов. — М.: Товарищество научных изданий КМК, 2006.-256 с.

26. Козлов, Н.А. Общая гистология. Ткани домашних млекопитающих: учеб.пособие / Н.А. Козлов. СПб.: Изд-во Лань, 2004. - 224 с.

27. Козлов, Н.А. Частная гистология домашних животных: учеб. пособие / Н.А. Козлов, В.В. Яглов; под ред. В.В. Яглова. М.: Зоомедлит, 2007. -С. 268-270.

28. Кононский, А.И. Гистохимия / А.И. Кононский. — Киев, Вища школа, 1976.-280 с.

29. Константинов, В.М. Зоология позвоночных: учеб. для вузов / В.М. Константинов, С.П. Наумов, С.П. Шаталова; под ред. В.М. Константинова. М.: Академия, 2000. - С. 242-264.

30. Кочиш, И.И. Биология сельскохозяйственной птицы / И.И. Кочиш, Л.И. Сидоренко, В .И. Щербатов. М.: КолосС, 2005. - С. 102-104.

31. Кубанцев, В.И. Развитие промышленного перепеловодства на базе отечественного оборудования / В.И. Кубанцев // Элита животноводства. — 2005.-№3-4.-С. 62-63.

32. Кузнецов, C.JI. Атлас по гистологии, цитологии и эмбриологии / C.JI. Кузнецов, Н.Н. Мушкамбаров, B.JI. Горячкина. — М.: Медицинское информ. Агентство, 2002. 374 с.

33. Кушкина, Ю.А. Гистоструктура белкового отдела яйцевода кур / Ю.А. Кушкина, Р.З. Сиразиев // Актуальные аспекты экологической, сравнительно-видовой, возрастной и экспериментальной морфологии. -Улан-Удэ: Изд-во БГСХА, 2004. С. 112-115.

34. Кушкина, Ю.А. Гистологическая и гистохимическая характеристики влагалищной части яйцевода кур / Ю.А. Кушкина // Актуальные вопросыветеринарии: Материалы науч-практич конф. факультета ветеринарной медицины НГАУ. Новосибирск, 2004. - С. 408.

35. Кушкина, Ю.А. Гистологическая и гистохимическая характеристика яйцепровода кур: авторефер. дисс. . канд. биол. наук: 03.00.16 / Кушкина Юлия Алексеевна; Бурятская гос. с.-х. академия. — Улан-Удэ, 2005.-22 с.

36. Лакин, Г.Ф. Биометрия: учеб. пособие для биол. спец. вузов / Г.Ф. Лакин. — изд. 4-е перераб. и доп. — М.: Высш. Шк., 1990. — 352 с.

37. Ленц, Е. Мелкие, но крутые / Е. Ленц // Бизнес-журнал. 2006. — № 19. — С. 5-6.

38. Леонтюк, А.С. Гистология с техникой гистологических исследований /

39. А.С. Леонтюк, А.А. Артишевский, Б.А. Слука. — Минск: Вышейшая школа, 1999. 356 с.

40. Лили, Р. Патогистологическая техника и практическая гистохимия / Р. Лили. М.: Мир, 1969. - 645 с.

41. Литовченко, Л.Н. Морфофункциональная характеристика яичника и яйцевода кур в связи с возрастом и породой / Л.Н. Литовченко. -Харьков, 1971.- 189 с.

42. Литовченко, Л.Н. Влияние различных условий содержания на морфологию яичников кур / Л.Н. Литовченко // Межведомственный сборник научных трудов. — М.: 1987. — С. 44-45.

43. Лушников, Е.Ф. Гибель клетки (апоптоз) / Е.Ф. Лушников, А.Ю. Абросимов. М.: Медицина, 2001. - С. 7-18.

44. Макаров, Н. Какой прок от пятнистых яиц? / Н. Макаров // Пятница. -2005. № 33. - 19 августа.

45. Макеева, Т. Альтернатива курятине / Т. Макеева // Птицеводство, 2006. — №8.-С. 38-39.

46. Математические методы в биологии и экологии. Ч.З: учеб.-метод. пособ. / Сост.: С.В.Хижняк, Е.Я. Мучкина. — Краснояр. гос. аграр. ун-т.1. Красноярск, 2004. 53 с.

47. Меркулов, Г.А. Курс патологогистологической техники / Г.А. Меркулов.- Изд. 5-е испр. и доп. Л.: Медицина, Ленингр. отд-ние, 1969. - 424 с.

48. Нечаев, В.А. Птицы острова Сахалин / В.А. Нечаев. Владивосток, 1991.- 748 с.

49. Оганесян, М.В. Морфофункциональные особенности стромы яичника в связи с возрастом / М.В. Оганесян, Н.А. Ризаева // Морфология. 2008. -№2.-С. 98.

50. Пигарева, М.Д. Перепеловодство / М.Д Пигарева, Г.Д. Афанасьев. М.: Агропромиздат, 1989. - С. 3-8.

51. Пуликов, А.С. Атлас по гистологии: учеб. пособие / А.С. Пуликов, Т.Г. Брюховец. Красноярск: Изд-во КрасГМА, 2004. - 128 с.

52. Рогачева, Э.В. Птицы Средней Сибири / Э.В. Рогачева. — М.: Наука, 1988.-С. 65.

53. Ромейс, Б. Микроскопическая техника / Под ред. И.И. Соколова. М.: Изд-во иностранной литературы, 1953. — С. 167.

54. Ромер, А. Анатомия позвоночных: В 2-х тт. / А. Ромер, Т. Парсонс // Т.2: Пер. с англ. М.: Мир, 1992. - С. 122-128.

55. Савостьянов, Г.А. Основы структурной гистологии. Пространственная организация эпителиев / Г.А. Савостьянов. СПб.: Наука, 2005. - 375 с.

56. Самусев, Р.П. Атлас по цитологии, гистологии и эмбриологии / Р.П. Самусев, Г.И. Пупышева, А.В. Смирнов; под ред. Р.П. Самусева. — М.: ООО «Издательский дом Оникс 21 век»; ООО «Изд-во Мир и Образование», 2004. 400 с.

57. Селянский, В.М. Анатомия и физиология сельскохозяйственной птицы / В.М Селянский. М.: Колос, 1968. - С. 255-270.

58. Семченко, В.В. Гистологическая техника / В.В Семченко, С.А. Барашкова, В.Н. Артемьев. — Омск, 2003. — 152 с.

59. Сидорова, A.JI. Птицеводство и технология производства яиц и мяса птицы: учеб. пособие / А.Л. Сидорова; Краснояр. гос. аграр. ун-т. — Красноярск, 2002. С. 27-29.

60. Содержание перепелов / Сост.: С.П. Бондаренко. — М.: ACT, 2001. 95 с.

61. Стрижикова, С.В. Гистогенез соединительнотканной оболочки фолликула в разные периоды его развития в яичнике половозрелых птиц / С.В. Стрижикова, Н.В. Житенко // Материалы науч.-практич. конф. Троицк,2004.-С. 156-158.

62. Стрижикова, С.В. Особенности микроморфологии яйцевода птиц в разные периоды полового цикла / С.В. Стрижикова, В.К. Стрижиков //

63. Состояние и перспективы обеспечения ветеринарного благополучия Восточной Сибири: Материалы международной науч.-практич. конф., посвященной 45-летию ГНУ НИИ ветеринарии Восточной Сибири СО Россельхозакадемии. — Чита, 2008. — С. 227-231.

64. Сыроечковский, Е.Е. Животный мир Красноярского края / Е.Е. Сыроечковский, Э.В. Рогачева. Красноярск: Кн. изд-во, 1980. - 87 с.

65. Тегза, А.А. Макромикроморфология яичника и яйцевода гусынь в постнатальном онтогенезе // авторефер. дисс. . канд. вет. наук / А.А. Тегза; Уральская гос. с.-х. акад. — Екатеринбург, 2000. — 20 с.

66. Тегза, А.А. Ультрагистологическая структура покровного эпителия белкового отдела яйцевода индейки / А.А. Тегза // Актуальные проблемы вет. медицины. — Троицк, 2002. — С. 120-121.

67. Тегза, А.А. Морфологическая характеристика яйцевода индеек в постфетальный период развития / А.А. Тегза // Актуальные проблемы вет. медицины. Троицк, 2002. — С. 118-119.

68. Тегза, А.А. Динамика роста массы тела и половых органов индеек и гусынь / А.А. Тегза, Н.А. Малькова // Актуальные проблемы вет. медицины. Троицк, 2002. - С. 119-120.

69. Тринкаус, Д. От клеток к органам / Д. Тринкаус; под ред. Г.М. Игнатьевой М., 1972. - 245 с.

70. Фисинин, В.И. Эмбриональное развитие птицы: Синтез и формирование вторичных оболочек яйца / В.И. Фисинин, И.В. Журавлева, Т.Г. Айдинян // Научные труды ВАСХНИЛ. М.: Агропромиздат, 1990. - 240 с.

71. Хохлов, Р.Ю. Возрастная динамика массы отделов яйцевода кур / Р.Ю.I

72. Хохлов, С.И. Кузнецов // Современные проблемы патологической анатомии, патогенеза и диагностики болезней животных: сб. науч. тр. по мат.-лам 16-й Всероссийской науч.-метод. конф. Ставрополь, 2007. - С. 226-228.

73. Хохлов, Р.Ю. Морфологическая характеристика эпителиоцитов яйцевода кур / Р.Ю. Хохлов // Морфология. 2008. - № 2. - С. 147.

74. Шарандак, В.И. Морфология яйцеводов кур в возрастном, породном и функциональном аспектах / В.И. Шарандак // Межведомственный сборник научных трудов. — М.: 1987. — С. 40-42.

75. Шарандак, В.И. Морфология сосудов яйцевода кур / В.И. Шарандак // Эколого-экспериментальные аспекты функциональной и возрастной морфологии домашних птиц: сб. науч. тр. / ВСХИ; под ред. Я.И. Шнейберг. Воронеж, 1988. - С. 73-78.

76. Шубич, М.Г. Гликопротеины и протеогликаны. Принципы их гистохимического анализа / М.Г. Шубич, Г.М. Могильная // Арх. анат., 1979.-№77(8).-С. 92-99.

77. Amsterdam, A. Alternative pathways of ovarian apoptosis: death for life / A. Amsterdam, R. Sasson, D. Aharoni et al. // Biochem Pharmacol, 2003. Vol. 66(8).-P. 1355-1362.

78. Arias, J.L. The fabrication and collagenous substructure of the eggshell membrane in the isthmus of the hen oviduct / J.L. Arias, M.S. Fernandez, J.E. Dennis, A.I. Caplan //Matrix, 1991. Vol. 11(5). - P. 313-320.

79. Babaei, H. Virification of mouse ovaries using ethylene glycol and DMSO as cryoprotectans: histophatological evaluation / H. Babaei, A. Derakhshanfar, A. Kheradmand // Vet. Arhiv, 2007. Vol. 77(1). - P. 19-27.

80. Bagnell, C.A. Spontaneous contractions of the reproductive tract in laying and nonlaying hens / C.A. Bagnell, R.A. Peterson // Poult Sci., 1977. Vol. 56(6). -P. 2098-2100.

81. Bahr, J. M. Regulation of the follicular hierarchy and ovulation / J.M. Bahr, A.L. Johnson // J. of Exp. Zoology, 1984. Vol. 232, Issue 3. - P. 495-500.

82. Bakst, M.R. SEM preparation and observations of the hen's oviduct / M.R. Bakst, B.J. Howarth // Anat Rec.,1975. Vol. 181(2). - P. 211-225.

83. Bakst, M.R. Scanning electron microscopy of the oviductal mucosa apossing the hen ovum / M. R. Bakst // Poult. Sci., 1978. Vol. 57(4). - P. 1065-1069.

84. Bakst, M.R. Structure of the avian oviduct with emphasis on sperm storage in poultry / M.R. Bakst // Journal of Experimental Zoology Part A: Comparative Experimental Biology, 1998. Vol. 282(4-5). - P. 618-626.

85. Balachandran, A. Scanning and transmission electron microscopic studies on the oviducts of Pekin ducks fed methyl mercury containing diets / A. Balachandran, M.K. Bhatnagar, H.D. Geissinger // Scan Electron Microsc., 1985.-Pt. 1.-P. 311-322.

86. Barua, A. Localization of macrophages in the ovarian follicles during the follicular growth and postovulatory regression in chicken, Gallus domesticus / A. Barua, Y. Yoshimura, T. Tamura // Poultiy Science, 1998. Vol. 77(9). - P. 1417-1421.

87. Breque, C. Antioxidant status of the lower oviduct in the chicken varies with age and dietary vitamin E supplementation / C. Breque, P. Surai, J.-P. Brillard // Molecular Reprod. and Development, 2006. Vol. 73(8). - P. 1045 - 1051.

88. Brillard, J.P. Storage of spermatozoa in the oviduct of birds: a morphological, histological and functional approach / J.P. Brillard // Reprod. Nutr. Dev., 1990.-Vol. 30(2).-P. 161-174.

89. Bruce, L. Formation of primordial yolk granules in the avia oocyte / L. Bruce // Cell Tissue Res., 1977.-Vol. 178(1).-P. 103-109.

90. Bruggeman, N.O. Effects of timing and duration of feed restriction during rearing on reproductive characteristics in broiler breeder females / N.O. Bruggeman, O. Onagbesan, E. D'hondt, N. Buys, M. Safi et al. // Poult. Sci., 1999. № 78. - P. 1424-1434.

91. Carlson, J.L. Developmental stages of primary oocytes in turkeys / J.L. Carlson, M.R. Bakst, M.A. Ottinger // Poult Sci., 1996. Vol. 75(12). -P. 1569-1578.

92. Chousalkar, K.K Ultrastructural changes in the oviduct of the laying hen during the laying cycle / K.K. Chousalkar, J.R. Roberts // Cell Tissue Res., 2008. Vol. 332(2). - P. 349-358.

93. Das, S.K. Evidence for the Innervation of Sperm-host Glands (SHG) of Native Chicken's (Gallus domesticus) Oviduct / S.K. Das // International J. of Poul. Scien., 2003. Vol. 2(4). - P. 259-260.

94. Devine, P.J Ultrastructural Evaluation of Oocytes During Atresia in Rat Ovarian Follicles / P.J Devine, C.M. Payne, M.K. McCuskey, P.B. Hoyer // Biology of Reproduction, 2000. -№ 63. P. 1245-1252.

95. Diaz, H. Ageing-induced changes in the cortical granules of mouse eggs / H. Diaz, P. Esponda // Zygote, 2004. Vol. 12(2). - P. 95-103.

96. Dzialowskil, E.M. Maternal effects of egg size on emu Dromaius novaehollandiae egg composition and hatchling phenotype. / E.M. Dzialowskil, P.R. Sotherland // J. Exp. Biol., 2004. № 207. - P. 597-606.

97. Ericson, G.F. Oocyte maturation inhibitor / G.F. Ericson, V.G. Garzo, D.A. Magoffin //J. Clin. Endocrinol. Metab., 1986. -№ 15. P. 157-170.

98. Erpino, M.J. Histogenesis of atretic ovarian follicles in a seasonally breeding bird / M.J. Erpino // J. of Morphology, 1973. Vol. 139, Issue 2. - P. 239-249.

99. Etches, R.J. Reptilian and avian follicular hierarchies: Models for the study of ovarian development / R.J. Etches, J.N. Petitte // J. of Exp. Zoology, 1990. -Vol. 256, Issue S 4. P. 112-122.

100. Fernandez, M.S. Localization of osteopontin in oviduct tissue and eggshell during different stages of the avian egg laying cycle /M.S. Fernandez, C. Escobar, I. Lavelin, M. Pines, J.L. Arias // J. Struct. Biol., 2003. Vol. 143. (3).-P. 171-180.

101. Freedman, S.L. Blood vessels of the chicken's uterus (shell gland) / S.L. Freedman, P.D. Sturkie // American Journal of Anatomy, 1963. Vol. 113.(1). -P. 1-7.

102. Freedman, S.L. Evidence for the innervation of sperm storage tubules in the oviduct of the turkey (Meleagris gallopavo) / S.L. Freedman, V.G. Akuffo, M.R. Bakst // Reproduction, 2001. № 121. - P. 809-814.

103. Guraya, S.S. Correlative cytological and histochemical studies on the avian oogenesis / S.S. Guraya // Z Mikrosk Anat Forsch, 1976. Vol. 90(1). - P. 91150.

104. Jensen, T. Assessment of reproductive status and ovulation in female North Island brown kiwis Apteryx australis mantelli using fecal steroids and ovarian follicle size / T. Jensen, B. Durrant // Zoo Biology, 2006. № 25. - P. 25-34.

105. Johnson, A.L. The avian ovarian hierarchy: A balance between follicle differentiation and atresia / A.L. Johnson // Poultry and Avian Biology Reviews, 1996. Vol. 7 (2/3). - P. 99-110.

106. Johnson, A.L. Reproduction in the female / A.L. Johnson // Avian Physiology, ■ 5-th Ed., G.C. Whittow, Ed., New York: Academic Press, Chapter 22. 1999.-P. 569-596.

107. Johnson, A.L. Ovarian cycles and follicle development in birds / A.L. Johnson // Encyclopedia of Reproduction, E. Knobil and J.D. Neill, Eds., New York: Academic Press, 1999. Vol. 3. - P. 564-574.

108. Johnson, A.L. Ovarian dynamics and follicle development / A.L. Johnson, D.C. Woods // Reproductive Biology and Phylogeny of Aves. B.G.M. Jamieson, Ed., Science Publishers, Inc., Plymouth, U.K., 2007. — P. 243-277.

109. Johnson, K.A. The Standard of Perfection: Thoughts about the Laying Hen Model of Ovarian Cancer / K.A. Johnson // Cancer Prev. Res., 2009. № 2. -P. 97-99.

110. Yildiz, H. Effects of cage systems and feeding time on the morphological structure of female genital organs in pharaoh quails (Coturnix coturnix pharaoh) / H. Yildiz, B.Yilmaz, I. Arican, M. Petec // Vet. Arhiv, 2006. № 76.-P. 381-38.

111. Yoshimura, Y. Ultrastructural changes of oocyte and follicular wall during oocyte maturation in the Japanese quail (Coturnix coturnix japonica) / Y. Yoshimura, T. Okamoto , T. Tamura // J. Reprod. Fertil, 1993. Vol. 97 (1). -P. 189-196.

112. Yoshimura, Y. Identification of Immunoreactive Ghrelin and its mRNA in the Oviduct of Laying Japanese Quail, Coturnix japonica / Y. Yoshimura, K. Nagano, K. Subedi and H. Kaiya // The J. of Reprod. Science, 2005. Vol. 42 (4).-P. 291-300.

113. Yoshinaga, K. Selective lectin-binding sites of primordial germ cells in chick and quail embryos / K. Yoshinaga, M. Nakamura, H.Terakura // The Anatomical Record, 1992. Vol. 233, Issue 4. - P. 625-632.

114. Kagami, H. Sexual differentiation of chimeric chickens containing ZZ and ZW cells in the germline / H. Kagami, M.E. Clark, A.M. Verrinder Gibbins, R.J.

115. Etches // Molecular Reproduction and Development. 1995. - № 42. - P. 379387.

116. Kami, K. Immunoelectron microscopical demonstration of endogenous avidin in secretory granules of the hen oviduct mucosa: a preliminary study / K. Kami, K. Yasuda // Histochem J., 1984. Vol. 16(8). - P. 835-1842.

117. Kelany, A.M. Researches in the field of development oviduct with high and low egg manufacture of a bird. I-morphometric studies / A.M. Kelany // Vet. Med. Honey., 1992. Vol. 28(55). - P. 93-106.

118. Khan, M. Macrophages in the chicken oviduct: morphometrical studies by light and transmission electron microscopy and the possible influence of sex hormones / M. Khan, Y. Hashimoto, T. Iwanaga // J. Vet. Med., 1998. № 45. -P. 427-433.

119. Khan, M.Z.I. Distribution of different types of ovarian arteries in the domestic hen, Gallus domesticus. / M.Z.I. Khan, A.N.Md.A. Rahman, M. Asaduzzaman // Vet. Arhiv, 1998. № 68. - P. 149-153.

120. Khokhlov, Y.U. Morphogenesis of a Tunica Mucosa of Oviduct of the Hens / . Y.U. Khokhlov, S.I. Kuznetcov // Int. J. Morphol., 2007. № 25(2). - P. 329333.

121. Kimihisa, T. Effects of Ovarian Theca Cells on Apoptosis and Proliferation of Granulosa Cells: Changes During Bovine Follicular Maturation / T. Kimihisa, O. Makoto, K. Hosokawa, A. Amsterdam et al. // Biology of Reproduction, 2002.-№66.-P. 1635-1639.

122. King, A.S. Birds, their structure and function. 2-th Ed., Bailliere Tindall / A.S. King, J. McLelland. London, 1984. - P. 63-147.

123. King, L.M. Segregation of spermatozoa within sperm strogate tubules of fowl and turkey hens / L.M. King, J.P. Brillard, W.M. Garret, A.M. Donoghue // Reproduction, 2002. № 123. - P. 79-86.

124. Knobil, E. Encyclopedia of Reproduction / E. Knobil, I.D. Neill. New York: Academic Press, 2004. - Vol. 3. - P. 564-574.

125. Lilburn, M.S. The relationship between various indices of carcass growth and development and reproduction in turkey hens /M.S. Lilbum, K.E. Nestor // Poult. Sci., 1993. -№ 72. P. 2030-2037.

126. McManus, J.F. Histological dtmonstratijn of mucin after period acid / J.F. McManus //Nature, 1946. -№ 158. P. 202.

127. McManus, J.F. Carbohydrate histoshemistry studied by acetylation techniques /J.F. McManus, J.E. Cason//J. Exp. Med., 1950. -№ 91. -P. 651-654:

128. Manelli, H. Hypophyseal control of the regression of the right ovary in chick embryos / H. Manelli, E. Milano, M. Fanuelle // Acta embryol. Et morphol. Exp., 1987. Vol. 8(1). - P. 39-49.

129. Mann, K. Proteomic analysis of the chicken egg vitelline membrane / K. Mann // Proteomics, 2008. Vol. 8. - № 11. - P. 2322-2332.

130. Mao, K.M. The magnum-isthmus junction of the fowl oviduct participates in the formation of the avian-type shell membrane / K.M. Mao, F. Sultana, M.A. Howlider, A. Iwasawa, N. Yoshizaki // Zoolog Sci., 2006. Vol. 23(1). -P. 41-47.

131. Mao, K.M. The asymmetry of avian egg-shape: an adaptation for reproduction on dry land / K.M. Mao, Murakami A., Iwasawa, A., Yoshizaki N. // J. of Anatomy, 2007. Vol. 210. - № 6. - P. 741-748.

132. Moor, R.M. Cell interactions and oocyte regulation in mammals / R.M. Moor, J.C. Osborn J.M. Crosby //Follicular mutation and ovul. Proc. 4 th Reiner de graaf symp. Amsterdam, 1982. - P. 249-264.

133. Moore, B.C. Developmental morphology of the neonatal alligator (Alligator missisippienssis) ovaiy / B.C. Moore, M.C. Uribe-Aransabal, A.S.P. Boggs, L J. Guillette Jr. // J. of Morphology, 2008. Vol. 269, Issue 3. - P. 302-312.

134. Moraes, С. Morphology and morphometry of Nothura maculosa quail oviduct / C. Moraes, Baraldi-Artoni, S. Martinez et al. // Cienc. Rural, 2007. Vol. 3, № 1-P. 146-152.

135. Nassauw, L.V. Structural and immunohistochemical aspects of the postovulatory follicle in Japanese quail / L.V. Nassauw, M. Callebaut // The Anatomical Record, 1991. Vol. 229, Issue 1. - P. 27-30.

136. Nili, H. Form and function of lacunae in the ovary of the laying hen / H. Nili, W.R. Kelly// J. of Morphology, 1996. Vol. 244, Issue 3. - P. 165-174.

137. Nomina Anatomica Veterinaria // Zurich and Itaca, 4-th Ed., New York, 1994. -256 p.

138. Pan, J. Stimulation of ZPC Production by Follicle-Stimulating Hormone in the Granulosa Cells of Japanese Quail (Coturnix Japonica) / J. Pan, T. Sasanami and M. Mori // The J. of Poultry Science, 2003. Vol. 40(3). - P. 202-221.

139. Parizzi, R.C. Macroscopic and Microscopic Anatomy of the Oviduct in the Sexually Mature Rhea (Rhea americana) / R.C. Parizzi, J.M. Santos, M.F. ? Oliveira, M.O. Maja et al. // Anatomia, Histologia, Embryologia, 2007. Vol. 37(3).-P. 169-176.

140. Payne, R.B. The post-ovulatory follicles of blackbirds (Agelaius) / R.B. Payne //J. of Morphology, 1966. — Vol. 119, Issue3.-P. 331-351.

141. Perry, M.M. Yolk transport in the ovarian follicle of the hen (Gallus domesticus): lipoprotein-like particles at the periphery of the oocyte in the rapid growth phase / M.M. Perry, A.B. Gilbert // J. Cell Sci., 1979 № 39. - P. 257-272.

142. Rabbani, M.G. Characterization of the sperm-associated body and its role in the fertilization of the chicken Gallus domesticus / M.G. Rabbani, T. Sasanami, M. Mori, N. Yoshizaki // Development, Growth and Differentiation, 2007. -Vol. 49(1).-P. 39-48.

143. Rahman, A.N.Md.A. Morphometric studies of the ovary and oviduct of high and low egg producing chicken in Bangladesh. / A.N.Md.A. Rahman, M.

144. Asaduzzaman, N.Kh. Islam, M.Z.I. Khan // Vet. Arhiv, 1999. № 69. - P. 301-308.

145. Rahman, M.A. Mechanism of chalaza formation in quail eggs / M.A. Rahman, Baoyindeligeer, A. Iwasawa, N. Yoshizaki // Cell and Tissue Research, 2007. — Vol. 330. № 3. - P. 535-543.

146. Rao, I.M. Heterogeneity in granulosa cells of developing rat follicles / I.M. Rao, E. Anderson, V.B. Mahesh // The Anatomical Record, 1991. Vol. 229, Issue 2.-P. 177-185.

147. Renema, R.A. Effects of body weight and feed allocation during sexual maturation in broiler breeder hens / R.A. Renema, F.E. Robinson, M. Newcombe, R.I. Mckay // Poult. Sci., 1999. № 78. - P. 619-628.

148. Samour, J.H. The Reproductive Biology of the Budgerigar (Melopsittacus undulatus): Semen Preservation Techniques and Artificial Insemination Procedures / J.H. Samour // J. of Avian Medicine and Surgery, 2002. — № 16.-P. 39-49.

149. Sandoz, D. Ciliogenesis in the mucous cells of the quail oviduct. I. i Ultrastructural study in the laying quail / D. Sandoz, Biosvieux-Ulrich E. // J. Cell Biol., 1976.-Vol. 71(2). -P. 446-459.

150. Sharma, R.K. Histomorphological changes in the oviduct of the Mallard (Aves: Anatidae) / R.K. Sharma, P.L. Duda //Acta Morphol. N. Scand., 1989. -Vol. 27(3-4).-P. 183-192.

151. Shen, X. Chicken oocyte growth: receptor-mediated yolk deposition / X. Shen, E. Steyrer, H. Retzek, E.J. Sanders, W.J. Schneider // Cell Tissue Res., 1993. Vol. 272(3). - P. 459-471.

152. Shim, K.F. Reproductive performance of Japanese quails / K.F. Shim, V. Phang and K.W. Teoh // Sing. J. Pri. Ind., 1983. Vol. 11. - P. 52-60.

153. Silverin, B. Seasonal development of reproductive organs in female pied flycatcher, Ficedula hypoleuca and experimental studies on duration of her nestling ability / B. Silverin // J. Zool. London, 1980. №190. - P. 241-257.

154. Swartz, W.J. A study on division of primordial germ cells in the early chick embryo / W.J. Swartz, L.V. Domm // American Journal of Anatomy, 1972. -Vol. 135(1).-P. 51-69.

155. Thomas, J.B. Influence of sampling on the reproducibility of ovarian follicle counts in mouse, toxicity studies / J.B; Thomas, В. Brad, R.W. Alen, J.C. James // Reprod. Toxicol., 1997.- № 11. P. 689-696.

156. Wang, X. Collagen X expression in oviduct tissue during the different stages of the egg laying cycle / X. Wang, B.C: Ford, С .A. Praul, R.M Leach // Poult Sci., 2002. -Vol. 81(6). P. 805-808.

157. Welty, J.C. The life of birds, fourth ed. / J.C. Welty, L. Baptista. Saunders College Publishing, New York, NY, 1988. - 267 p.

158. Williams, T.D. Top-down regression of the avian oviduct during late oviposition in a small passerine bird / T.D. Williams, C.E. Ames // J. Exp Biol., 2004. Vol. 207(Pt 2). - P. 263-268. 4 ■

159. Wolfenson, D. Responses of the reproductive vascular system during the egg-formation cycle of unanaesthetised laying hens / D. Wolfenson, Y.F. Frei, A. Berman // Br. Poult. Sci , 1982. — Vol. 23(5). — P. 425-43 L

160. Woodard, A.E. Japanese quail husbandry in the laboratory (Coturnix coturnix japonica) / A.E. Woodard, IT. Abplanalp, W.O. Wilson and Vohra, P. // Department of Avian Sciences, University of California, Davis, 1973. — 22 pp.

161. Wood, A.W. Apoptosis and Ovarian Function: Novel Perspectives from the Teleosts / A.W. Wood, J. Glen Van Der Kraak // Biol, of Reproduction, 2001. -№64. P. 264-271.

162. Wu, H. An ultrastructural study of tubular gland cells in the oviduct of peking duck during laying phase / H. Wu, J. Ma // Acta Zool. Sin., 1986. № 32. - P. 117-121.

163. Zarnescu, 0. Ultrastructural observations of previtellogenic ovarian follicles of dove / O. Zarnescu // Zygote, 2004. № 12. - P. 285-292.