Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.04) на тему:Фармакокоррекция иммуннобиохимического статуса у телят при диспепсии

На правах рукописи

ИСАБАЕВ АЗАМАТ ЖАКСИБЕКОВИЧ

ФАРМАКОКОРРЕКЦИЯ ИММУННОБИОХИМИЧЕСКОГО СТАТУСА У ТЕЛЯТ ПРИ ДИСПЕПСИИ

16 00 04- ветеринарная фармакология с токсикологией

Автореферат диссертации на соискание учёной степени кандидата ветеринарных наук

Троицк, 2004

Работа выполнена в ФГОУ ВПО «Уральская государственная академия ветеринарной медицины» и в РГКП «Костанайский государственный университет им. АБайтурсынова».

Научный руководитель: доктор ветеринарных наук, профессор Молоканов Владимир Алексеевич

Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук, профессор

Ермолин Александр Васильевич кандидат ветеринарных наук, доцент Валова Людмила Владимировна

Ведущая организация: ФГОУ ВПО «Оренбургский государственный аграрный университет».

Защита состоится «^Ь »2004 г. в <%2у> часов на заседании диссертационного совета Д.220.066.01. в ФГОУ ВПО «Уральская государственная академия ветеринарной медицины». Адрес: 457100, г. Троицк, Челябинская область, ул. Гагарина 13, тел. 2-19-89.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Уральской государственной академии ветеринарной медицины.

Автореферат разослан

Учёный секретарь диссертационного совета ■

Прокофьева Т.В.

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы: Доля телят, заболевших диспепсией в течение первых дней жизни, достигает на животноводческих фермах до 80%.

Изучению особенностей этиопатогенеза, диагностики, профилактики и лечения диспепсии посвящены работы многих отечественных и зарубежных ученых (С. С. Абрамов, 1990, В. А. Аликаев, 1982, Н. Н. Талонов, 1972; И. М. Кар-путь, 1983; В. В. Митюшин, 1979, 1989; М. И. Немченко, 1984; А. Г. Ульянов, 1987; В. П. Урбан, 1984; Т. А. Шепелева, 1995, 1998, В. М. Щеглов, 1998; Т. И. Лапина, Ю. А. Турский, 1995, A. Durrer, 1994; Т. G. Kelly, D. S. Ruane 1982 и многие другие). По их мнению, основными причинами диспепсии телят являются нарушение технологических принципов содержания, уровня кормления и обмена веществ, состояние здоровья организма коровы-матери; воздействие неспецифических микроорганизмов скотного двора, реактивность теленка и состояние защитных сил, биологическая полноценность молозива, влияние факторов окружающей среды, действие факторов аутоиммунитета (сенсибилизированных лимфоцитов, аутоиммуноглобулинов, микро- и макрофагов, поступающих новорожденным телятам коллостральным путем).

Одним из общих звеньев данной цепочки является избыточное накопление гистамина в организме коров-матерей в период беременности.

По литературным данным в последнюю треть нормально протекающей беременности содержание гистамина в организме матери возрастает во много раз (В. С. Камышников, 2003), а при воздействии экзо - и эндогенных факторов (отсутствие моциона, несбалансированное кормление, иммобилизационный стресс, болезни матери и др.) его количество возрастает в больших пропорциях (В. А Молоканов, 1992)

Новорожденные телята в таких случаях рождаются с повышенным содержанием гистамина в организме, что отрицательно влияет на работу желудочно-кишечного тракта.

В настоящее время существует большое количество способов лечения и профилактики, желудочно-кишечных заболеваний и иммунодефицитов телят в ранний период постнатального развития.

Наиболее часто встречающиеся в литературе схемы лечения и профилактики сводятся к применению комплексной терапии (В А. Антипов, AT. Шахов, 1979). Она включает в себя меры, направленные на устранение нарушений технологии содержания и кормления, повышения защитных сил организма, использования антибактериальных препаратов, средств патогенетической и симптоматической терапии, применение антибиотиков, желудочного сока, настоев и отваров лекарственных трав.

Недостаточная эффективность общепринятых мер профилактики и терапии при желудочно-кишечных заболеваниях обуславливает необходимость изыскания новых патогенетических способов лечения и профилактики, с использованием эффективных лекарственных препаратов с иммунокоррегирующими свойствами в ранний период постнатального развития животных.

Целью исследований явилось изучение причин возникновения диспепсии новорожденных телят в условиях РГКП «Заречное», их иммуннобиохимическо-

3 j РОС НАЦИОНАЛЬНАЯ

j БИБЛИОТЕКА

го статуса, влияние антигистаминной сыворотки на иммунобиохимический статус коров и телят, рожденный от неж, повышение эффективности способа лечения и профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта новорожденных телят.

Для достижения этих целей были поставлены следующие задачи:

1. Проанализировать причины возникновения диспепсии телят.

2. Провести анализ иммунобиохимического статуса телят больных диспепсией.

3. Изучить динамику некоторых иммунологических и биохимических показателей у коров и телят, рожденных от mix на фоне применения антигиста-минной сыворотки.

4. Выяснить, взаимосвязь между уровнем антителообразования у коров против энтеробактерий и заболеваемостью телят диспепсией, а также влияние антигистаминной сыворотки на эти процессы.

5. Испытать действие антигистаминной сыворотки с профилактической и лечебной целью при заболеваниях желудочно-кишечного тракта новорождённых телят.

Научная новизна. Проведено комплексное исследование иммунобиохими-ческого статуса телят больных диспепсией. Изучен механизм влияния антигис-таминной сыворотки на иммунобиохимический статус коров и телят рожденных от них. Установлена взаимосвязь между уровнем антителообразования у коров против энтеробактерий и заболеваемостью телят диспепсией, а также стимулирующее влияние антигистаминной сыворотки на эти процессы.

Испытано действие антигистаминной сыворотки с лечебной и профилакти ческой целью при желудочно-кишечных заболеваниях телят.

Теоретическая и практическая значимость работы. В производственных условиях успешно испытано действие антигистаминной сыворотки с целью коррекции иммуннобиохимического статуса глубокостельных коров и телят рожденных от них. Проведенные исследования позволяют корректировать иммуно-дефициты новорожденных телят и проводить лечебно-профилактическую работу при заболеваниях желудочно-кишечного тракта новорождённых телят.

По итогам работы разработаны: «Способ лечения диспепсии телят» (Патент РФ на изобретение №2213595 от 10 октября 2003 года) и «Способ коррекции иммунной недостаточности и профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта новорожденных телят» (Патент РФ на изобретение №2223786 от 20 февраля 2004 года).

Материалы диссертаций используются в учебном процессе ряда Вузов Российской Федераций и Республики Казахстан.

Апробация работы. Материалы диссертации докладывались на ежегодных научно-практических конференциях по итогам НИР Уральской государственной академии ветеринарной медицины (г. Троицк, 2000-2003 гг.). Кроме того, материалы диссертации доложены и обсуждены на VII межрегиональной научно-практической конференции «Перспективные направления исследований молодых учёных и специалистов Урала и Сибири», Троицк- 2003г, «Международной научно-практической конференции посвященной 50-летию освоения целинных и

залежных земель: История и современность». Астана, 4-6 декабря 2003 года; Международной научно-практической конференции посвященной 150-летию ветслужбы Оренбуржья. «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и биологии», Оренбург, 2003г, «Международной научно-практической конференции, Актуальные проблемы ветеринарной хирургии, посвященной 75-летию УГАВМ», Троицк, 13-14 мая, 2004 года.

На защиту выносятся следующие основные положения:

1. Анализ причин возникновения, и иммунобиохимический статус телят больных диспепсией.

2. Влияния антигистаминной сыворотки на иммунно-биохимический статус коров-матерей и новорожденных телят.

3. Комплекс лечебно-профилактических мероприятий при заболеваниях желудочно-кишечного тракта телят.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 7 работ. Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, выводов, практических предложений, списка использованной литературы, который включает 227 источников, в том числе 38 на иностранном языке, приложения. Работа изложена на 155 страницах машинописного текста, иллюстрирована 21 таблицей.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материал и методы исследований Научно — исследовательская работа выполнена в период с 2000 по 2003 годы в РГКП «Заречное», Костанайского района, Костанайской области, Республики Казахстан. В соответствии с поставленными задачами материалом для исследования при выполнении данной работы служили стельные коровы (второй половины стельности) здоровые и больные новорожденные телята в возрасте от 3 до 15 дней.

Динамику иммуннобиохимических показателей телят больных диспепсией изучали на группах животных, подббранных по принципу аналогов (живая масса, возраст, клинические признаки болезни). С этой целью было сформировано 2 группы телят (здоровых и больных) по 10 голов в каждой в возрасте 3-5 дней живой массы 25-30 кг. Кровь для исследования у больных телят брали на 5-й день жизни.

Изучение влияния антигистаминной сыворотки на иммунно-биохимический статус коров и телят (рожденных от них) проводили в двух сериях опытов.

В первой серии производственных опытов были сформированы 2 группы коров по 10 голов в каждой (контрольная и опытная). Коровам опытной группы за 35 дней до отела вводили антигистаминную сыворотку по 50 мл подкожно 2 раза с интервалом 5 дней.

Спустя 5 дней после повторного введения антигистаминной сыворотки животных обеих групп вакцинировали вакциной против паратифа и колибактерио-за. Через 14-15 дней после вакцинации (10 дней до отёла) брали кровь и определяли у коров иммунно-биохимические показатели, а также напряжённость им-

мунитета против паратифа и колибактериоза. В качестве фона были использованы показатели крови взятой у этих коров за 35-40 дней до отёла.

Во второй серии опытов было сформировано 2 группы телят.

Первая группа контрольная, которая формировалась из телят родившихся от коров, которые не подвергались никаким обработкам, кроме вакцинации перед отёлом против паратифа и колибактериоза.

Вторая группа телят - опытная, была сформирована из телят родившихся от коров, которым вводили антигистаминную сыворотку и вакцину по приведенной выше схеме. Кроме того, этим новорождённым телятам вводили антигистаминную сыворотку по 10-15 мл подкожно в средней трети шеи в 1-й, 3-й, 6-е, сутки после рождения.

Исследование крови у телят проводили в 1-й день жизни до введения антигис-таминной сыворотки, затем на 5-й, 10-й и 15-е сутки

Эксперименты по лечению телят больных диспепсией проводили на телятах в ранний молочный период выращивания.

Первая группа телят служила контролем, ей вводили:

1. 50-60 мл смеси, состоящей из 100 мл сыворотки крови коров, 200 мл физиологического раствора, 40 мл - 40%-ной глюкозы и 1,0 мл экстракта элеутерококка, подкожно, с одновременной выпойкой 15 мл желудочного сока.

Данную смесь вводили дважды с интервалом 3 дня.

2. Неомицина сульфат-10,0 тыс. ЕД внутрь ежедневно 3-4 дня.

Вторая опытная группа, получала:

1. Антигистаминную сыворотку-подкожно в дозе 15,0 мл. на голову, один раз в сутки, трехкратно с интервалом 3 дня.

2. Неомицина сульфат-10,0 тыс. ЕД внутрь ежедневно 3-4 дня.

Для выяснения профилактической эффективности антигистаминной сыворотки, при диспепсии телят был проведен производственный опыт.

Опыты по изучению профилактической эффективности антигистаминной сыворотки проводили на 36-ти новорожденных телятах, живой массой 25-30 кг, разделенных на 2 группы по 18 голов в каждой.

Первая группа телят служила контролем, ей вводили обычную цитратную кровь лошади в дозе 2 мл на кг веса, подкожно, один раз в сутки, в 1-й, 3-й и 6-ой дни жизни, в дозе 50-60,0 мл.

Вторая группа опытная - телятам этой группы вводили антигистаминную сыворотку подкожно в дозе 15,0 мл на голову, один раз в сутки, трехкратно в 1-й, 3-й и 6-ой дни жизни.

В течение 2-х недель за телятами вели наблюдение и проводили учет заболеваемости диспепсией.

При проведении иммуннобиохимических исследований на всех этапах использовались методики, принятые в ветеринарии и медицине.

Из числа биохимических показателей в сыворотке и крови определяли: 1. Общий белок определяли методом рефрактометрии с помощью рефрактометра типа РЛ-2 (Польша).

2. Содержание средне-молекулярных пептидов (СМП) определяли по методу Н.

И. Габриэлян и соавт. (1983), гистамин спектрофотометрическим методом по В. Н. Соминскому с соавторами в модификации Э.Н. Коробейниковой (1989).

3. Для определения глюкозы крови использовали анализатор «Эксан-Т», пи-

ровиноградную кислоту (ПВК) определяли по методу Умбрайта в модификации П.М. Бабаскина (1976), молочную кислоту (лактат) определяли по Баркеру и Саммерсону по цветной реакции с пара-оксиде фенилом.

4. Малоновый диальдегид (МДА) - конечный продукт перекисного окисления

липидов (ПОЛ) определяли модифицированным методом Э.Н. Коробейни-ковой (1989).

5. Церулоплазмин определяли модифицированным СВ. Бестужевой и В.Г.

Колб (1976) методом Ревина.

6. Гемоглобин — гемиглобинцианидным методом Л.М. Пименовой и Г.В. Дер-

виза.

Лабораторное иммунологическое исследование проводилось у всех животным по общей схеме. Кровь забирали из яремной вены в утренние часы и доставляли в лабораторию в течение 2-х часов после забора. Изучение иммунного статуса проводилось по тестам I и II уровня. Общее количество эритроцитов, лейкоцитов и их дифференциальный подсчет (лейкограмму) определяли общепринятым классическим методом. Иммунологические тесты I уровня включали:

1. Количественное определение отдельных популяций основных иммуно-компетентных клеток - лимфоцитов - методом Е-, ЕАС-розеткообразования по А.Н. Чередееву.

2. Фагоцитарная активность нейтрофилов определялась по методу Ю.Н. Одинцова и соавт. путем инкубации нейтрофилов периферической крови с культурой Staphiloc. aurehs (штамм 75).

3. Активность лизоцима сыворотки крови определяли методом нефелометрии методом, описанным В.Г. Дорофейчуком.

4. Определение бактерицидной активности сыворотки проводили в отношении грамнегативных бактерий - Е. coli фотонефелометрическим методом О.В. Смирновой и Т.В. Кузьминой.

Из числа иммунологических тестов II уровня проводили:

1. Определение активности комплемента в сыворотке крови проводили классическим методом гемолитического титрования комплемента по 100% гемолизу (Л С. Резникова; Е. Кэбот, М. Майер).

2. Определение концентрации циркулирующих иммунных комплексов по методу В. Гаппсовой и соавт.

3. Определение титра антител против паратифа и колибактериоза проводили методом прямой гемагглютинации (РА) с использованием в качестве антигена инактвд1ированной культуры паратифа и колибактериоза.

4. Количественный анализ классов иммуноглобулинов (М и G) определяли по методу Манчини, с использованием моноспецифических сывороток портив иммуноглобулинов крупного рогатого скота.

Статистическая обработка полученных результатов проводилась общепринятыми методами вариационной статистики по И.Т. Шевченко и соавт. и Е.В. Гублер. Расчет производили на персональном компьютере с использованием специальных программ.

2.2. Заболеваемость телят диспепсией в условиях РГКП «Заречное»

В РГКП "Заречное" в 2000-2003 годах заболеваемость телят диспепсией была в пределах 15-20% по отношению к общему числу рожденных телят.

Наблюдения, проведенные нами показали, что от 70,3-75,6% больных телят заболевают диспепсией сразу же после рождения или в первые 2-3 дня жизни.

Проведенным обследованием было установлено, что около 20-25% новорожденных телят переносят желудочно-кишечные заболевания в острой форме в 2-5 суточном возрасте, отход при этом составляет 10-15%.

При бактериологическом исследовании проб фекалий, взятых из прямой кишки возбудителей инфекционных, желудочно-кишечных заболеваний телят обнаружено не было.

У новорожденных телят, при клиническом исследовании на первый план выступает недоразвитость животных, то есть телята рождаются с низким живым весом, вялые, малоподвижные. Видимые слизистые оболочки анемичны, с синюшным оттенком. Каловые массы кашецообразной или жидкой консистенции серо-желтого цвета с зеленоватым оттенком, с большим количеством слизи или пузырьков газа, что имеет связь с изменениями печени, толстого и тонкого отделов кишечника. В дальнейшем быстро развиваются явления интоксикации (угнетения, мышечная дрожь, понижение кожной чувствительности), появляются признаки обезвоживания организма, глаза западают, отмечается резкое исхудание. Температура тела в начале болезни держится в пределах нормы, с нарастанием явлений токсикоза она понижается, носовое зеркальце, уши, конечности становятся холодными.

2.3. Иммунобиохимический статус телят больных диспепсией

Важную роль в механизме развития воспалительных процессов происходящих в желудочно-кишечном тракте принадлежит биогенным аминам. Избыток гистамина изменяет трофику стенки желудочно-кишечного тракта, повышает проницаемость, снижает барьерную и избирательную функцию, вызывает внезапные спастические сокращения кишечной стенки, что ещё больше расстраивает процессы пищеварения.

При сравнении иммунобиохимического статуса здоровых и больных диспепсией телят установлено (табл.1), что в группе больных диспепсией телят достоверно снижается уровень общего белка на 18,2%, церулоплазмина на 26,2% и глюкозы на 15,5% (Р<0,05). Снижение уровня церулоплазмина говорит о снижении антиоксидантных свойств, накоплению большого количества свободных радикалов, что способствует развитию интоксикации. Данное положение подтверждается повышением уровня СМП (среднемолекулярных пептидов) у больных в 5 раз по сравнению со здоровыми и МДА (малонового диальдегида) в 2,5 раза.

1. Некоторые иммунобиохимические показатели телят больных диспепсией

Показатели Здоровые телята 5-е сутки после рождения Больные телята 5-е сутки после рождения

Общий белок, г/л 64311,8 52,6123*

С МП, мг/мл 0,13Ю,01 0,6410,02**

МДА, ммоль/л 2ДШ),03 5,6010,04**

Гистамин, мкмоль/л 0,5410,01 1,0910,06*

Глюкоза, ммоль/л 3,1210,02 2,6410,04*

Церулоплазмин, мкмоль/л 0,42±0,01 03110,02*

Гемоглобин, г/л 118,313,28 148312,14**

Лейкоциты, тыс.х10!"л 7,41+0,32 8,211,10*

% нейтрофилов 32,4612,12 44,5111,67**

% лимфоцитов1 34,5011,18 313±и4*'

% моноцитов 231:Ю,21 4,21Ю,67*

% Т-лимфоцитов -г . .• 363411,13 31,2511,82*

% В'-лимфоцитов 21,4811,46 16,6111,12*

% фагоцитоза 32,4211,14 46,2812,13*

*, ** - различия достоверны при Р <0,05; Р <0,01

Уровень гистамина у больных в 2 раза (Р<0,01) выше, по сравнению со здоровыми , что приводит к расширению капиллярной сети, обезвоживанию организма, за счет этого увеличивается уровень гемоглобина на 25,3% (Р<0,05).

Известно, что высокий уровень гистамина стимулирует супрессорную функцию Т- лимфоцитов, что в свою очередь подавляет синтез В-лимфоцитами иммуноглобулинов, способствуя развитию дефицита гуморального звена иммунной системы.

В таблице 2 приведены данные, характеризующие состояние гуморального звена иммунной системы. Анализируя показатели, характеризующие состояние гуморальных факторов защиты, необходимо отметить, что на фоне существенного снижения числа В-лимфоцитов понизилась и их функциональная активность, что проявилось снижением у больных телят титра антител к энтеробакте-риям по сравнению со здоровыми в 2 раза.

2. Гуморальные факторы защиты здоровых и больных диспепсией телят (X ±Ях,

п=10)

Показатели Здоровые телята 5-е сутки после рождения Больные телята 5-е сутки после рождения

БАСК, % 48,4712,18 423411,58*

Активность лизоцима, мкг/мл 16,421130 12,5010,96*

Титр антител к кишечной палочке 1:640 1:320

Титр антител к энтерококу 1:320 1:160

Титр антител к паратифу 1:640 1:320

• - различия достоверны при Р не менее <0,05

• Отмечено существенное снижение у больных телят уровня лизоцима на 24,0%(Р<0,01).

Таким образом, изучение отдельных биохимических показателей характеризующих состояние метаболических процессов в организме больных телят говорит о том, что заболевание телят диспепсией протекает не только на фоне сильной интоксикации организма, но и на фоне иммунодефицита, клеточного и гуморального звеньев иммунной системы, что, по-видимому, является причиной большого отхода заболевших телят (до 15%).

2.4. Влияние антигистаминной сыворотки на клеточное звено иммунной системы коров и телят

Применение поливалентной вакцины против паратифа и колибактериоза в сочетании с антигистаминной сывороткой коровам активизирует у них лейкоцитарное звено. На этом фоне идёт стимуляция лимфопоэза. В крови коров опытной группы достоверно увеличивается содержание лимфоцитов до 57,30+2,35% против 52,43+2,28 % у коров контрольной группы, или на 9,3% (Р<0,1). Отмечается увеличение моноцитарного звена у коров опытной группы по отношению к контрольной на 10,0% (Р<0,05), содержание гемоглобина до 124,86+2,92 г/л (на 6,5 %), против 117,20+2,71 г/л у коров контрольной группы.

Введение вакцины против паратифа и колибактериоза коровам опытной на фоне предварительного применения антигистаминной сыворотки оказало стимулирующее влияние и на клеточное звено иммунной системы.

Количество В- лимфоцитов в опытной группе по сравнению с контрольной за 10 дней до отёла было выше на 14,43 % (Р< 0,05). Более существенное влияние, комбинированное введение вакцины с АТС оказало на уровень Т- лимфоцитов. У коров опытной группы их содержание по сравнению с фоном осталось практически на одном уровне, а за счёт снижения этого показателя у коров контрольной группы, этот показатель превысил контроль на 32,2 % (Р<0,01).

В опытной группе коров на фоне применения АТС и вакцинации отмечено усиление фагоцитарной реакции нейтрофилов на 35,8 % (Р<0,01).

Таким образом, двукратное введение АТС перед вакцинацией оказывает стимулирующее действие на клеточное звено иммунной системы коров".

При анализе морфологического состава крови телят, родившихся от коров опытной и контрольной групп, отмечены изменения в лейкоформуле, которые характеризовались незначительным повышением числа юных нейтрофилов на 2,96% (Р>0,5), палочкоядерных на 4,3 % (Р<0,05), а количество сегментоядерных уменьшилось на 2,27 % (?>0,5), при этом отмечается увеличением количества лимфоцитов на 6,62% (Р>0,5), количество моноцитов в крови телят опытной группы не отличается от таковых в контрольной. Данные изменения указывают на активизацию лимфопоэза и повышение активности клеточного звена иммунной системы, у, телят родившихся от коров, которым вводили вакцину на фоне применения антигистаминной сыворотки.

Дальнейшее применение АТС в 1-й, 3-й и 6-й дни жизни телятам опытной группы способствует повышению концентрации в крови гемоглобина и эритроцитов. Так на фоне 2-х кратного подкожного введения антигистамгашой сыво-

ю

ротки содержание гемоглобина повысилось на 10,3 % (Р<0,05), концентрация эритроцитов на 21,15 % (Р<0,05) соответственно.

Отмечается устойчивое снижение количества юных нейтрофилов в крови телят опытной группы па 22,6 % (Р0,05) на 3-й сутки; и на 40,14% (Р0,01) -на 6-е сутки жизни.

После 3-х кратного введения АТС отмечается относительная стабилизация основных морфологических показателей крови телят, на 15-е сутки жизни у телят опытной группы отмечается повышение концентрации лимфоцитов и моноцитов на 18,4 % (Р<0,05) и 38,5 % (Р<0,001)

Анализ показателей клеточного звена иммунной системы у телят опытной группы, в 1-е сутки жизни, показал повышение функциональной активности им-муннокомпетентных клеток, в виде повышения фагоцитарной активности, среднего фагоцитарного и максимального фагоцитарного индекса на 3,62 % (Р>0,5), 11,59 % (Р0,05) и на 13,0 % (Р0,05) соответственно по сравнению с телятами контрольной группой. Данный факт говорит о том, что применение АТС коровам перед отёлом в определённой степени отражается и на новорождённых телятах.

В дальнейшем, уже после 1-кратного введения АТС на 3-й сутки жизни отмечается повышение количества у телят опытной группы Т и В-лимфоцитов -на 21,33 % (Р<0,001) и 10,73 % (Р>0,5) соответственно.

Фагоцитарная активность полиморфноядерных лейкоцитов у телят опытной группы уже после однократного введения АТС повышается на 14,57 % (Р<0,001), а средний и максимальный фагоцитарный индексы на 19,0 и 9,87%. (Р<0,05) по сравнению с контрольной группой.

К 15-ому дню жизни разница в показателях увеличивается еще больше. Так уровень Т и В-лимфоцитов у телят опытной группы превысил показатели контроля на 25,7 и 30,14% (Р<0,001),

Аналогичная тенденция сохраняется и по уровню фагоцитарной активности микрофагов и их функциональной активности.

Таким образом, трёх кратное введение АТС телятам опьнной группы в 1 -й, 3-й и 6-е дни жизни оказывает стимулирующее влияние на клеточное звено иммунной системы организма, что в прогностическом отношении имеет большое благоприятное значение.

2.5. Влияние антнгистаминиой сыворотки на показатели гуморального звена иммунной системы коров и телят Применение в последнюю треть беременности схемы вакцинации коров в сочетании с предварительной обработкой коров гипериммунной антигистамин-ной сывороткой, в какой-то степени стабилизирует снижение иммунной реактивности организма животных, ло-видимому, за счет активизации метаболических процессов, как в целом организме, так и в иммуннокомпетентных клетках.

Данный факт подтверждается тем, что на фоне довольно стабильного уровня В-лимфоцитов у коров опытной группы на протяжении всего периода наблюдений, повысилась их функциональная активность, что проявилось нараста-

нием синтеза иммуноглобулинов как первичного (^ М), так и вторичного (^ в) ответов (табл.3).

При этом следует отметить, что уровень иммуноглобулинов первичного ответа (]£ М) на фоне применения АТС в сочетании с вакциной превысил исходный на 45,0%, а в контроле - только на 28,18% (Р0.001).

В динамике иммуноглобулинов вторичного ответа (^ 01+в2) прослеживается аналогичная тенденция нарастания уровня иммуноглобулинов как в опытной, так и в контрольной группе. При этом достоверные изменения отмечены только в опытной группе коров, у которых уровень в превысил исходный - на 13,87 % (Р<0,05), а у коров контрольной группы только на 10,84% (Р<0,1).

У коров опытной группы по сравнению с контролем уровень комплемента и ЦИК был выше на 29,0 и 12,84% (Р<0,05).

3. Показатели гуморального звена иммунной системы

Показатели Фон Контрольная группа Опытная группа Р1 Р2

ЦИК, усл.ед 122,34±3,64 146,87±5,64 168,5±64,78 Р<0,001 Р<0,001

Комплемент, % 44,85±2,24 38,65±1,96 54,43±2,34 Р<0,05 Р<0,01

Лизоцим, мкг/мл 22,68±1,14 18,53±1,34 20,48±1,36 Р>0,5 Р>0,5

Иммуноглобу ЛИНЫ г/л 34,66±2,54 38,87±1,43 40,24±2,34 Р<0,1 Р<0,05

Иммуноглобулин М, г/л 5,43±0,64 7,5б±0,67 9,86±0,48 ... Р<0,001 Р<0,001

Титры антител: Е. соИДск^ ' 4,34±0,26 6,14±0,23 7,87±0,14 Р<0£01 Р<0,01

паратиф, 1о22 3,29±0,20 5,29±0,20 6,43±0,20 Р<0,001 Р<0,01

Р1 - Достоверность различий между опытной группой и фоном

Р2 - Достоверность различий между опытной и контрольной группами.

Установлено, что у коров опытной группы на фоне сочетанного применения вакцины и АТС, титр антител против специфических антигенов (кишечная и паратифозные палочки) был выше по сравнению с контрольной группой на 22,0 и 18,73% (Р0,01).

Уровень лизоцима у коров опытной и контрольной группы перед отёлом снизился по сравнению с исходным на 9,71 и 18,30% (Р<0,01). Причём в

контроле снижение было практически в два раза больше, чем в опыте.

Уровень показателей характеризующих состояние гуморального звена иммунной системы коров-матерей непосредственным образом отражается и на состоянии этих показателей у телят, рождённых от них.

Анализ показателей гуморального звена иммунной системы сыворотки крови телят опытной группы (табл.4) показал, что уже после рождения уровень лизоцима и комплемента был на 9,84 и 21,89 % (Р0,05) у них выше по сравнению с контрольной группой.

4. Показатели гуморального звена иммунной системы новорождённых телят ___(Х±&с,п=10)___

Группы Лизопим, мкг/мл Комплемент, % ЦИК, усл.ед БАСК, % Jg М, г/л в, г/л

1-е сутки жизни

Опытная 1б,88±0,56 36,84±1,14 54,32±1,74 59,64±1,74 3,28±0,24 38,43±1,54

Контрольн. 15,22±0,44 32,46±1,24 48,56±1,47 60,47±2,43 3,41 ±0,12 35,38±1,22

Р<0,05 Р<0,05 Р<0,05 Р<0,5 Р<0,5 РО,1

3-й супси жизни

Опытная 18,76±0,68 35,24±1,36 68,47±1,68 61,88±2,35 4,89±0,22 39,82±1,24

Контрольн. 16,25±0,24 32,86±1,44 50,64±1,43 62,46±1,86 4,22±0,18 36,23±1,45

Р0.01 Р<0,05 Р<0,01 Р>0,5 Р<0,05 Р<0,1

6-е сутки жизни

Опытная 20,64*0,98 39,54±1,24 66,35*1,68 60,74±2,32 5,12±0,16 38,64±1,47

Контрольн 17,53±0.45 33,42±1,54 52,63±1,53 61,22±1,58 4,58±0,23 36,68±1,23

' Р<0,05 Р<0,01 Р<0,001 Р>0,5 Р<0,05 Р>0,5

15-е сутки жизни

Опытная 19,47±0,44 36,42±1,17 70,45± 2,13 59,42± 2,43 6,48± 0,24 42,35± 1,52

Контрольн. 15,45 ±0,23 30,88±0,96 53,78± 2,48 61,47± 1,54 5,38± 0,34 34,17± 1,36

Р<0,05 Р>0.5 Р <0,001 Р>0,5 Р<0,05 Р<0,001

Бактерицидная активность сыворотки крови (БАСК) в 1-е сутки жизни у телят опытной группы снижена на 1,4 % (Р>0,5) по сравнению с контрольной группой. Данный результат, по всей видимости, объясняется тем, что у новорожденных телят естественная неспецифическая зашита осуществляется, в основном за счет клеточных факторов, гуморальные выражены весьма слабо Вместе с тем в 1-е сутки жизни в сыворотке крови телят опытной группы отмечается незначительное снижение содержание иммуноглобулинов М на 3,82% (Р>0,5), по сравнению с телятами контрольной группы, хотя следует подчеркнуть наличие тенденции к увеличению иммуноглобулинов О на 8,6%

Отмечен более высокий уровень ЦИК у телят опытной группы, превосходящий уровень контрольных телят на 22,05% (Р<0,01)

Совокупность этих данных указывает на то, что телята, рожденные от коров - матерей подвергнутых обработке АТС перед вакцинацией, после рождения имели более высокие показатели, характеризующие состояние гуморального звена иммунной системы

После 2-х кратного введения антигистаминной сыворотки на 6-е сутки жизни в сыворотке крови телят опытной группы обнаружено существенное увеличение концентраций лизоцима и комплемента на 15,07 и 15,42% (Р<0,01), по сравнению с контролем

Отмечено повышение уровня ЦИК после второй инъекции АТС к 6-у дню жизни на 20,68 % (Р<0,001) На этом фоне в сыворотке крови телят опытной группы повышается содержание иммуноглобулинов М и О на 10,55% и 5,08% по сравнению с контрольной

На 15-сутки жизни после 3-х кратного введения антигистаминной сыворотки уровень лизоцима и комплемента в сыворотке крови телят опытной группы превышал контроль на 20,65 и 15,22 % (Р<0,05).

Наиболее важным моментом повышения иммунной реактивности после 3-

х кратного введения АТС на 15-е сутки жизни является увеличение ЦИК на 23,67 %; и иммуноглобулинов М и G в сыворотке крови опытной группы телят по сравнению с контрольной на 17,08 и 19,32 % (P0.001) соответственно.

У новорожденных телят естественная неспецифическая защита осуществляется, в основном, за счет клеточных факторов, гуморальные выражены весьма слабо. В ранний постнатальный период, особенно низкими величинами характеризуются лизоцимная, агглютинирующая и бактерицидная активность сыворотки крови.

В сыворотке крови новорожденных телят отсутствуют антитела, способные самостоятельно отвечать на антигенные раздражители, они появляются с приемом первых порций молозива.

После рождения в 1-е сутки жизни перед введением АТС, средний титр антител к E.coli (Iog2) и к паратифу (Iog2) у телят опытной группы превышал показатели телят контрольной группы на 6,69 % (Р>0,5) и на 17,37 % (Р<0,05), соответственно (табл.5).

После 1-кратного введения АТС на 3-й сутки жизни средний титр антител к Е. coli (Iog2) и к паратифу (Iog2) у телят опытной группы достоверно превышал показатель телят контрольной группы на 14,73 и на 14,26 %(Р<0,01) соответственно.

Средний титр антител (Log2) к E.coli и к паратифу в опытной группе телят достиг своего максимального значения на 6-е сутки жизни и превышал показатель телят контрольной группы соответственно на 31,0 и 34,83 % (Р<0,001).

К 15-ому дню жизни у телят опытной группы отмечено достоверное снижение среднего титра антител к E.coli и к паратифу на 20,0 и 11,85 % (Р<0,01) соответственно, по сравнению с предыдущим исследованием (6-е сутки жизни).

У телят контрольной группы аналогичное снижение составило по антителам к Е coli (bg2) и к паратифу (Iog2) 10,5 и 5,03 % (Р<0,1).

5 Напряженность коллострального иммунитета у телят (X±Sx. п=10)

Группы Титры антител к E.coli, Log2 Титры антител к паратифу, Log2

1-е сутки жизни

Опытная 6,43±0Д4 7,43±0,13 г

Контрольная 6,02±ОД1 6,14±0,18

РХ),5 Р<0,05

3-й сутки жизни

Опытная 7,20±0,12 7,4910,16 ... ,

Контрольная 6,14*0,16 6,43±0,14

Р<0,01 Р<0,01

б-е сутки жизни

Опытная 7,86±0,13 10,06±039

Контрольная 5,43 ±0,20 6,57±0,14

Р<0,001 Р<0,001

15-е сутки жизни

Опытная 6,29±0,14 8,86*0,23

Контрольная 4,86±0,21 6,24±0,13

Р0,01 Р<0,001

Более низкая степень снижения данных показателей у телят контрольной группы на наш взгляд отражает истинное состояние коллострального иммунитета, который у этих животных был и так не на высоком уровне.

Таким образом, анализ полученных результатов по изучению влияния соче-танного применения АТС и поливалентной вакцины против паратифа и колибак-териоза на гуморальное звено организма коров и родившихся от них телят убедительно доказывают иммуностимулирующее действие антигистаминной сыворотки.

2.6. Влияние антигистаминной сыворотки на биохимический статус

коров и телят

Анализируя полученные данные можно отметить, что введение АТС в сочетании с вакциной против паратифа и колибактериоза, коровам опытной группы перед отелом способствует повышению общего белка на 8,7 % и церулоплазми-на на 36,8 % (Р<0,01), по сравнению с кошрольной группой

При этом уровень МДА и СМП в сыворотке крови коров опытной группы по сравнению с коровами контрольной группы снижается на 15,3-20,2 % (Р<0,05), а гистамина на 20,7% (Р<0,01).

Результаты проведенного исследования углеводного обмена показали увеличение концентрации глюкозы в сыворотки крови коров опытной группы на 7,4% (Р<0,05) по сравнению с контрольной.

Достоверных изменений в содержании ПВК у коров обеих групп в течение, опыта нами не установлено.

Количество - молочной кислоты (лактата) в сыворотке крови коров контрольной было на 23,3% (Р<0,01) выше, по сравнению с опытной группой.

Несомненно, что от уровня обменных процессов в организме матери зависит и состояние метаболических процессов, как в организме плода, так и новорождённого телёнка.

Результаты исследования отдельных показателей белкового обмена у телят показали, что количество общего белка в течение всего периода наблюдения у телят опытной группы сохранялось выше показателей контрольной группы.

В обмене гистамина отмечена чёткая тенденция повышения его уровня у телят контрольной группы в течение всех 15-и дней наблюдений.

Другой метаболит белкового обмена - СМП, имел тенденцию к повышению в первые шесть дней у телят обеих групп. Однако у телят опытной группы на 6-е сутки исследований уровень СМП был достоверно ниже, чем у телят контрольной группы на 13,52% (Р<0,05). К концу опыта уровень средних молекулярных пептидов (СМП) был в обеих группах приблизительно одинаковым.

Ещё один метаболит, характеризующий состояние перекисного окисления липидов - МДА имел такую же динамику, как и СМП. Максимальный подъём в первые шесть дней, затем снижение на 15-е сутки жизни. Причем следует отметить, что и на 3-й и на 6-е сутки уровень МДА у телят контрольной группы превышал показатели телят опытной группы соответственно на 10,1 и 10,6% (Р<0,05).

Уровень церулоплазмина в сыворотки крови телят опытной группы, полученных от коров, которым применяли АТС с вакциной при рождении был выше на 5,4%, чем у телят контрольной группы.

Уже после 1-кратного применения АТС телятам опытной группы на 3-й сутки отмечается повышение содержания церулоплазмина на 16,3% (Р<0,05).

После 2-х кратного применения АТС телятам опытной группы на 6-е сутки жизни на фоне снижения содержания в сыворотке крови телят опытной группы гистамина, МДА и СМП, наблюдается максимальное повышение содержания церулоплазмина до 0,48+0,01 мкмоль/л (на 39,3% Р<0,05), против 0,32+0,03 в контрольной группе.

К концу опыта уровень церулоплазмина хотя и снизился в обеих группах, тем не менее он был выше у телят опытной группы по сравнению с контрольной та 12,18 %(Р<0,05).

После 3-х кратного введения АТС телятам опытной группы на 6-е и 15-е сутки жизни отмечено повышение уровня глюкозы соответственно на 16,2 и 16,5 % (Р0,001), ПВК на 31,6 и 42,8 % (Р0,001), по сравнению с контролем.

Таким образом, применение АТС как коровам, так и телятам благоприятно влияет на показатели белкового и углеводного обменов: повышается содержание общего белка, церулоплазмина, глюкозы, снижается уровень СМП, МДА, гиста-мина и лактата, что связано с нормализацией окислительно--востановительных процессов, преобладании аэробного окисления углеводов, снижении гипоксии и нормализации функции печени.

2.7. Лечение и профилактика диспепсии телят

Широкое распространение диспепсии обуславливает необходимость изыскания новых патогенетических способов лечения и эффективных лекарственных препаратов.

Выбор в качестве средства лечения АГС с высоким титром антител против гистамина позволяет нейтрализовать избыток одного из основных медиаторов воспаления — гистамина, у животных с желудочно-кишечными заболеваниями.

Неомицина сульфат, телятам обеих групп применяли в качестве антибактериального средства с учетов чувствительности микрофлоры данного' хозяйства к антибиотикам.

Результаты опыта показали, что на фоне применения "смеси" с целью лечения диспепсии новорожденных телят (см. материал и методику) в контрольной группе количество дней лечения составило в среднем 8,67 суток, в опытной -5,12.

К концу опыта, при клиническом исследовании у животных опытной группы отметили, что шерстный покров стал гладкий, ровлый, блестящий. Видимые слизистые оболочки носа, ротовой полости бледнорозового цвета. Болезненность со стороны печени отсутствует. Каловые массы кашицеобразной консистенции.

В дальнейшем был проведен производственный опыт по изучению профилактической эффективности ангигистаминной сыворотки, который проводили

на 36-ти новорожденных телятах, живой массы 25-30 кг, разделенных на 2 группы по 18 голов в каждой

Первая группа телят служила контролем, ей вводили обычную цитратную кровь лошади (2 мл/ кг веса), подкожно, один раз в сутки, в 1-й , 3-й и 6-й дни жизни, в дозе 50-60 мл

Вторая, опытная группа, телятам этой группы вводили АТС- подкожно в дозе 15,0 мл. на голову, один раз в сутки, трехкратно в 1 -й,3-и и 6-й дни жизни.

Результаты опыта показали, что на фоне применения цитратной крови лошади с целью профилактики диспепсии новорожденных телят в первой контрольной группе заболело 6 голов (33,3%), причем следует отметить, что у всех заболевших телят отмечался профузный понос, учащение пульса и дыхания, отказ от корма. Больным телятам прекращали выпойку молозива, назначали голодную диету и приступали к лечению с использованием схемы включающей применение антибиотиков, иммуностимуляторов, витаминов и выпойку соответствующих растворов и настоев трав Дальнейшие наблюдения показали, что из 6 заболевших телят один теленок пал

Во второй опытной группе на фоне применения антигистаминной сыворотки (АТС), после рождения на 3-й сутки заболело только 2 теленка (11,1%), причем болезнь протекала в легкой форме, и после второй и третьей инъекции АТС расстройство функций желудочно-кишечного тракта прекратилось и телята были клинически здоровы.

Применение антигистаминной сыворотки по сравнению с обычной цитратной кровью лошадей обладает более выраженной профилактической эффективностью при желудочно-кишечных заболеваниях новорожденных телят, снижая заболеваемость в 3 раза

Обобщая полученные результаты, можно сделать вывод о том, что применение антигистаминной сыворотки способствует более активной стимуляции иммунобиологической реактивности, повышении общей резистентности организма телят и нормализации функции пищеварительного тракта АТС не вызывает каких-либо токсических и аллергизирующих эффектов, за счёт наличия антител против гистамина.

Таким образом, полученные результаты позволяют рекомендовать к. использованию и широкому применению в ветеринарной практике антигистамин-ную сыворотку, с целью профилактики и лечения иммунодефицитных состояний и желудочно-кишечных заболеваний телят, путём подкожных инъекций в дозе 10,0-15,0 мл, 3-х кратно в 1-й, 3-й и 6-й дни жизни

Выводы .

1. Заболеваемость телят диспепсией в РГКП «Заречное», Костанайского района, Костанайской области, Республики Казахстан в 2000-2003 гг. была в пределах 15-20 %, по отношению к общему числу рожденных телят. Из них от 33 до 61% животных заболевает в зимне-весенний период, а 70,3 до 75,6 % - заболевают сразу же после рождения или в первые 2-3 дня жизни

2. У больных диспепсией телят выявлены сдвиги в иммуннобиохимическом статусе.

2.1. Нарушения белкового обмена характеризуются снижением уровня общего белка по сравнению со здоровыми на 18,2 %, повышением уровня гиста-мина в 2 раза; СМП в 5 раз и МДА- в 2,5 раза; снижением активности антиок-сидантных систем (снижение церулоплазмина на 26,2%).

2.2. В углеводном обмене установлено снижение уровня глюкозы на 15,5 % и ПВК, повышение лактата, что говорит о развитии пшоксического профиля углеводного обмена.

2.3. Иммунологический статус характеризуется: лейко и моноцитозом; на фоне снижения Т- и В- лимфоцитов на 14 % и 22,7 %, активности лизоцима на 23,9 %.

3. Анализ влияния АТС на иммуннобиохимический статус коров и телят (рожденных от них) показал, что в крови коров опытной группы и телят, рожденных от них, повышено содержание гемоглобина, эритроцитов, лейкоцитов соответственно на 3,1 - 6,5 % ,3,5-26 %, 1,9-2,0 %.

4. Введение коровам АТС и вакцины против паратифа и колибактериоза характеризуется повышением количества В и Т - лимфоцитов - на 6,3% и 32,2%; увеличением уровня ЦИК на 14,7%, комплемента на 40,8%, лизоцима на 10,5%.'

5. На фоне 3-х кратного применение АТС у телят опытной группы в крови повышается содержание Т- и В- лимфоцитов, ЦИК, иммунноглобулинов; фагоцитарной, лизоцимной, бактерицидной и комплементарной активности сыворотки крови.

6. Применение АТС и поливалентной вакцины против паратифа и колибактерио-за коровам опытной группы способствуют повышению уровня глюкозы, ПВК, общего белка при одновременном снижении гистамина, МДА, СМП, лактата. Введение АТС способствует повышению уровня церулоплазмина в сыворотке крови коров и телят, рожденных от них, на 50-58,3%, снижению лактата, гиста-мина и МДА.

7. У телят опытной группы на фоне применения АТС к титры антител к паратифу и Е.соК (Ьс^2) с повышаются на 18,2 и 26,07 5 (Р<0,01).

8. Применение антигистаминной сыворотки с неомицина сульфатом при лечении диспепсии телят сокращает сроки лечения на 3,5 дня, при одновременном упрощении способа лечения.

9. Применение антигистаминной сыворотки по сравнению с обычной цитратной кровью-лошадей обладает более выраженной профилактической эффективностью при желудочно-кишечных заболеваниях новорожденных телят, снижая заболеваемость в 3 раза.

Практические предложения. С целью нормализации иммуннобиохимического статуса организма коров -матерей и новорожденного молодняка рекомендуется вводить антигистаминную сыворотку по следующей схеме:

1. Коровам за 7-10 дней до вакцинации АТС по 40-50 мл 2 раза с интервалом 5-7 дней подкожно в средней трети шеи.

2. Для лечения диспепсии телят следует вводить антигистаминную сыворотку подкожно один раз в сутки, трехкратно с интервалом 3 дня в дозе 15,0 мл

на голову в сочетании с антибиотиками «Способ лечения диспепсии телят» (Патент РФ на изобретение №2213595 от 10 октября 2003 года)

3. С целью профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта новорожденный телят (диспепсии) следует вводить АТС телятам подкожно в дозе 1015,0 мл на голову, один раз в сутки, трехкратно в 1-й, 3-й и 6-й дни жизни, «Способ коррекции иммунной недостаточности и профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта новорожденных телят» (Патент РФ на изобретение №2223786 от 20 февраля 2004 года).

СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Молоканов В.А., Исабаев АЖ. Профилактика диспепсии телят. Информ. Листок №83-143-02, Челябинский ЦНТИ.

2. Молоканов В.А, Исабаев АЖ. Лечение диспепсии телят. Информ. Листок №83-144-02, Челябинский ЦНТИ.

3. Исабаев АЖ. Влияние антигистаминной сыворотки на показатели клеточного звена иммунной системы у новорожденных телят. Материалы Международной научно-практической конференции посвященной 150-летию Оренбуржья. «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и биологии», Оренбург, 2003, с. 234-236.

4. Исабаев АЖ. Влияние антигистаминной сыворотки на иммунобиохимиче-ский статус больных диспепсией телят. Вестник науки. Костанайского государственного университета имени А. Байтурсынова. Серия сельскохозяйственные науки. Костанай, 2003, с. 56-58.

5. Исабаев АЖ. Стимуляция коллострального иммунитета у телят. Материалы VII Межрегиональной научно-практической конференции «Перспективные направления/ исследований молодых ученых и специалистов Урала и Сибири», Троицк, 2003, с. 12-13.

6. Молоканов В.А, Исабаев АЖ. Способ лечения диспепсии телят. (Патент РФ на изобретение №2213595 от 10 октября 2003 года).

7. Молоканов В А, Исабаев АЖ Способ коррекции иммунной недостаточности и профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта новорожденных телят. (Патент РФ на изобретение №2223786 от 20 февраля 2004 года).

* - 7 3 4 2

На правах рукописи

ИСАБАЕВ АЗАМАТ ЖАКСИБЕКОВИЧ

ФАРМАКОКОРРЕКЦИЯ ИММУННОБИОХИМИЧЕСКОГО СТАТУСА У ТЕЛЯТ ПРИ ДИСПЕПСИИ

16.00.04- ветеринарная фармакология с токсикологией Автореферат диссертации на соискание учёной степени кандидата ветеринарных наук

Сдано в набор 29.03.2004. Подписано в печать 01.04.2004. Формат 60 х 84 1/16. Усл. печ. л. 1.0 Печать оперативная. Бумага офсетная. Гарнитура «Times». Заказ X» 415. Тираж 100 экз. Издательский центр УГАВМ, лицензия ЛР №021252 от 31 октября 1997г. 457100, г. Троицк, Челябинская обл. ул. Гагарина, 13. Тел. (35163) 2-64-75 Отпечатано в издательском Центре УГАВМ

Актуальность темы: В последние годы своего развития животноводство стран СНГ сталкивается с множеством проблем, одной из которых является диспепсия телят. Доля телят, заболевших диспепсией в течение первых дней жизни, достигает на отечественных животноводческих фермах до 80%.

Диспепсия новорожденных телят по этиологии является одним из самых сложных заболеваний. Возникновению заболевания, как правило, предшествует взаимодействие многих причин.

Полиэтиологизм и широкая распространенность данного заболевания во многих странах обуславливает высокий процент гибели телят, причем летальность может достигать до 40-75% (И.М.Беляков, 1979; И.М. Карпуть, 1984; Л.С. Сланина и др., 1982; А.Я. Шурыгина и др.,1989).

Изучению особенностей этиологии, патогенеза, диагностики, профилактики и лечения посвящены работы многих отечественных и зарубежных ученых (С.С.Абрамов, 1990, В.А.Аликаев, 1982, Н.Н.Гапонов, 1972; И.М.Карпуть, 1983; В.В.Митюшин, 1979, 1989, В.А.Молоканов, 1998; М.И.Немченко, 1984; А.Г.Ульянов, 1987; В.П.Урбан, 1984; Т.А.Шепелева, 1995, 1998, В.М.Щеглов, 1998; Т.И.Лапина, Ю.А.Турский, 1995, А.Д1ггег, 1994; T.G. Kelly, D.S.Ruane 1982 и многие другие). По мнению ученых основными причинами диспепсии телят являются нарушение технологических принципов содержания, уровень кормления и обмена веществ; состояние здоровья организма коровы-матери; воздействие неспецифических микроорганизмов скотного двора, состояние защитных сил организма, биологическая полноценность молозива, влияние факторов окружающей среды, действие факторов аутоиммунитета (сенсибилизированных лимфоцитов, аутоиммуноглобулинов, микро и макрофагов, поступающих новорожденным телятам коллостральным путем).

Одним из общих звеньев данной цепочки является избыточное накопление гистамина в организме коров-матерей в период беременности.

По литературным данным в последнюю треть нормально протекающей беременности содержание гистамина в организме матери возрастает во много раз (B.C. Камышников,2003), а при воздействии экзо - и эндогенных факторов (отсутствие моциона, несбалансированное кормление, иммобилизационный стресс, болезни матери и др.) его количество возрастает в больших пропорциях (В.А. Молоканов, 1992).

Новорожденные телята в таких случаях рождаются с повышенным содержанием гистамина в организме, что отрицательно влияет на работу желудочно-кишечного тракта.

В настоящее время существует большое количество способов лечения и профилактики, желудочно-кишечных заболеваний и иммунодефицитов телят в ранний период постнатального развития.

Наиболее часто встречающиеся в литературе схемы лечения и профилактики сводятся к применению комплексной терапии (В.А. Антипов, А.Г. Шахов, 1979). Она включает в себя меры, направленные на устранение нарушений технологии содержания и кормления, повышения реактивности организма, использования антибактериальных препаратов, средств патогенетической и симптоматической терапии, применение антибиотиков, желудочного сока, настоев и отваров лекарственных трав.

При всех видах диспепсии под воздействием продуктов неполного распада корма и развивающегося дисбактериоза происходит интоксикация организма, наступают дистрофические изменения в паренхиматозных органах. В связи с усилением перистальтики кишечника вместе с токсичными продуктами из организма животных удаляются большое количество не переваренного корма, лейкоцитов, иммуноглобулинов и воды. Все это приводит к нарушению всех видов обмена веществ у новорожденных телят, обезвоживанию организма, развитию приобретенного иммунодефицита.

Отрицательные стороны общепринятых мер профилактики и терапии при желудочно-кишечных заболеваниях обуславливает необходимость изыскания новых патогенетических способов лечения, профилактики и эффективных лекарственных препаратов с иммунокоррегиругощими свойствами в ранний период постнатального развития животных.

Несмотря на обширные и глубокие исследования, касающиеся этиопатогенеза диспепсии телят, вопросы, касающиеся иммуно-биохимического статуса телят больных диспепсией, изучены не достаточно.

Выше изложенное послужило основанием для определения цели исследований и решения, связанных с нею задач.

Целью исследований явилось изучение причин возникновения диспепсии новорожденных телят в условиях РГКП «Заречное», их иммуннобиохимического статуса, влияние антигистаминной сыворотки на иммунобиохимический статус коров и телят, рожденных от них, повышение эффективности способа лечения и профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта новорожденных телят.

Для достижения этих целей были поставлены следующие задачи.

1. Проанализировать причины возникновения диспепсии телят.

2. Провести анализ иммунобиохимического статуса телят больных диспепсией.

3. Изучить динамику некоторых иммунологических и биохимических показателей у коров и телят, рожденных от них на фоне применения антигистаминной сыворотки.

4. Выяснить взаимосвязь между уровнем антителообразования у коров против энтеробактерий и заболеваемостью телят диспепсией, а также влияние антигистаминной сыворотки на эти процессы.

5. Испытать действие антигистаминной сыворотки с профилактической и лечебной целью при заболеваниях желудочно-кишечного тракта новорождённых телят.

Научная новизна. Проведено комплексное исследование иммунобиохимического статуса телят больных диспепсией. Изучен механизм влияния антигистаминной сыворотки на иммунобиохимический статус коров и телят рожденных от них. Установлена взаимосвязь между уровнем антителообразования у коров против энтеробактерий и заболеваемостью телят диспепсией, а также стимулирующее влияние антигистаминной сыворотки на эти процессы.

Испытано действие антигистаминной сыворотки с лечебной и профилактической целью при желудочно-кишечных заболеваниях телят.

Теоретическая и практическая значимость работы. В производственных условиях успешно испытано действие антигистаминной сыворотки с целыо коррекции иммуннобиохимического статуса глубокостельных коров и телят рожденных от них. Проведенные исследования позволяют корректировать иммунодефициты новорожденных телят и проводить лечебно-профилактическую работу при заболеваниях желудочно-кишечного тракта новорождённых телят.

По итогам работы разработаны: «Способ лечения диспепсии телят» (Патент РФ на изобретение №2213595 от 10 октября 2003 года) и «Способ коррекции иммунной недостаточности и профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта новорожденных телят» (Патент РФ на изобретение №2223786 от 20 февраля 2004 года).

Материалы диссертаций используются в учебном процессе ряда Вузов Российской Федераций и Республики Казахстан.

Апробация работы. Материалы диссертации докладывались на ежегодных научно-практических конференциях по итогам НИР Уральской государственной академии ветеринарной медицины (г. Троицк, 2000-2003 гг.). Кроме того, материалы диссертации доложены и обсуждены на VII межрегиональной научно-практической конференции «Перспективные направления исследований молодых учёных и специалистов Урала и Сибири», Троицк - 2003г; «Международной научно-практической конференции посвященной 50-летию освоения целинных и залежных земель: История и современность». Астана, 4-6 декабря 2003 года; Международной научно-практической конференции посвященной 150-летию ветслужбы Оренбуржья. «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и биологии», Оренбург, 2003г; «Международной научно-практической конференции, Актуальные проблемы ветеринарной хирургии, посвященной 75-летию УГАВМ», Троицк, 13-14 мая, 2004 года.

На защиту выносятся следующие основные положения.

1. Анализ причин возникновения, и иммунобиохимический статус телят больных диспепсией.

2. Влияния антигистаминной сыворотки на иммунно-биохимический статус коров-матерей и новорожденных телят.

3. Комплекс лечебно-профилактических мероприятий при заболеваниях желудочно-кишечного тракта телят.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 7 работ.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, выводов, практических предложений, списка использованной литературы, который включает 227 источников отечественной и 38 иностранной литературы, приложения. Работа изложена на 155 страницах машинописного текста, иллюстрирована 21 таблицей.

Выводы

1. Заболеваемость телят диспепсией в РГКП «Заречное», Костанайского района, Костанайской области, Республики Казахстан в 2000-2003 гг. была в пределах 15-20 %, по отношению к общему числу рожденных телят. Из них от 33 до 61% животных заболевает в зимне-весенний период, а 70,3 до 75,6 % - заболевают сразу же после рождения или в первые 2-3 дня жизни.

2. У больных диспепсией телят выявлены сдвиги в иммуннобиохимическом статусе.

2.1. Нарушения белкового обмена характеризуются снижением уровня общего белка по сравнению со здоровыми на 18,2 %, повышением уровня гистамина в 2 раза; СМП в 5 раз и МДА- в 2,5 раза; снижением активности антиоксидантных систем (снижение церулоплазмина на 26,2%).

2.2. В углеводном обмене установлено снижение уровня глюкозы на 15,5 % и ПВК, повышение лактата, что говорит о развитии гипоксического профиля углеводного обмена.

2.3. Иммунологический статус характеризуется: лейко и моноцитозом; на фоне снижения Т- и В- лимфоцитов на 14 % и 22,7 %, активности лизоцима на 23,9 %.

3. Анализ влияния АГС на иммуннобиохимический статус коров и телят (рожденных от них) показал, что в крови коров опытной группы и телят, рожденных от них, повышено содержание гемоглобина, эритроцитов, лейкоцитов соответственно на 3,1 - 6,5 % , 3,5 - 26 %, 1,9-2,0 %.

4. Введение коровам АГС и вакцины против паратифа и колибактериоза характеризуется повышением количества В и Т — лимфоцитов - на 6,3% и 32,2%; увеличением уровня ЦИК на 14,7%, комплемента на 40,8%, лизоцима на 10,5%.

5. На фоне 3-х кратного применение АГС у телят опытной группы в крови повышается содержание Т- и В- лимфоцитов, ЦИК, иммунноглобулинов; фагоцитарной, лизоцимной, бактерицидной и комплементарной активности сыворотки крови.

6. Применение АГС и поливалентной вакцины против паратифа и колибактериоза коровам опытной группы способствуют повышению уровня глюкозы, ПВК, общего белка при одновременном снижении гистамина, МДА, СМП, лактата. Введение АГС способствует повышению уровня церулоплазмина в сыворотке крови коров и телят, рожденных от них, на 5058,3%, снижению лактата, гистамина и МДА.

7. У телят опытной группы на фоне применения АГС к титры антител к паратифу и E.coli (Log2) с повышаются на 18,2 и 26,07 5 (Р<0,01).

8. Применение антигистаминной сыворотки с неомицина сульфатом при лечении диспепсии телят сокращает сроки лечения на 3,5 дня, при одновременном упрощении способа лечения.

9. Применение антигистаминной сыворотки по сравнению с обычной цитратной кровью лошадей обладает более выраженной профилактической эффективностью при желудочно-кишечных заболеваниях новорожденных телят, снижая заболеваемость в 3 раза.

Практические предложения

С целью нормализации иммуннобиохимического статуса организма коров -матерей и новорожденного молодняка рекомендуется вводить антигистаминную сыворотку по следующей схеме:

1. Коровам за 7-10 дней до вакцинации АГС по 40-50 мл 2 раза с интервалом 5-7 дней подкожно в средней трети шеи.

2. Для лечения диспепсии телят следует вводить антигистаминную сыворотку подкожно один раз в сутки, трехкратно с интервалом 3 дня в дозе 15,0 мл на голову в сочетании с антибиотиками «Способ лечения диспепсии телят» (Патент РФ на изобретение №2213595 от 10 октября 2003 года).

3. С целью профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта новорожденных телят (диспепсии) следует вводить АГС телятам подкожно в дозе 10-15,0 мл на голову, один раз в сутки, трехкратно в 1-й, 3-й и 6-й дни жизни, «Способ коррекции иммунной недостаточности и профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта новорожденных телят» (Патент РФ на изобретение №2223786 от 20 февраля 2004 года).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Анализ литературных данных показал, что диспепсия встречается во всех географических зонах, во все времена года, а существующие методы и способы лечения также разнообразны, как формы и клиническое проявления болезни. Изучению диспепсии посвящено большое количество работ Р.А.Цион (1957), В.М.Подкопаев, В.П.Шишков (1967), В.П.Урбан, И.А. Найманов (1974), И.Д.Бурлуцкий (1979), С.Н.Чевский, А.С.Горбунов (1985), В.А.Аликаев (1985), В.В. Митюшин (1989), Б.М. Анохин (1991), Т.А.Шепелева (1995,1998), В.М.Щеглов (1998), В.А. Молоканов (1998), несмотря на это точного определения болезни, эффективных способов и методов лечения и профилактики данного заболевания не разработано. На основании изучения литературы по вопросам этиологии диспепсии новорожденных телят можно выделить две основные группы факторов:

- действующие через организм матери;

- действующие непосредственно на организм новорожденного.

Одним из общих звеньев данной цепочки является избыточное накопление гистамина в организме коров-матерей в период беременности.

По литературным данным при нормально протекающей беременности содержание гистамина в организме матери возрастает в 20-25 раз (B.C. Камышников,2003), а при воздействии экзо - и эндогенных факторов (отсутствие моциона , несбалансированное кормление, иммобилизационный стресс, болезни матери и др.) его количество возрастает в больших пропорциях (В.А. Молоканов, 1992). Новорожденные телята в таких случаях рождаются с повышенным содержанием гистамина в организме.

Воздействие неблагоприятных факторов на организм новорождённых телят связанных с нарушениями условий содержания и кормления, микроклимата и болевых ощущений (Н.М.Носков,1956;Н.Ф.Хорошилов, В.И.Родин 1976), адаптационный синдром (Б.М.Морчевская,1968; С.С.Абрамов, 1990; И.М.Карпуть,1990), условно-патогенной микрофлоры (В.П.Урбан,1974, 1981 ;Ф.Ф.Прохоров, 1974; В.В. Митюшин ,1974,1989) увеличивают содержание гистамина в желудочно-кишечном тракте, печени, и легких (И.А.Вайсфельд, Г.Н. Кассиль, 1981; Д.С.Гордон, В.Е.Сергеева, И.Г. Зеленова ,1981; В.А.Лоза, 1984; Т.Г. Панкова, Т.М. Игощина, Р.И. Салганин, 1985), тем самым вызывая патологические сдвиги в организме, приводя к нарушению ряда функций: повышая проницаемость кровеносных сосудов, способствуя внедрению патогенной микрофлоры и токсинов, нарушая секреторную деятельность желез желудочно-кишечного тракта, регенеративные процессы и способствуя развитию воспалительных реакций, ослабляя пролиферацию Т- и В-лимфоцитов, подавляя образование Е-розеток (Л.А.Любовцева,1977; Т.Л.Гречишкин и др.1979;А.Л.Гребнев, Л.П. Мягков, 1991;Г.Ю. Стручко,1977; С.Д. Гольберт, A.M. Дыгай, 1993), нарушая иммунный ответ (Э.В.Гюллинг, Л.А.Дюговская, 1979,1982; Л.Д Зубайрова, Н.М.Рахматуллин, Р.С. Фассахов, 1983; Ю.В. Шарпань,1984; Б.И. Падегимас, А.А. Кондротас, 1989).

Таким образом, образование повышенного количества гистамина в организме коров-матерей и новорожденных телят является обще связующим звеном, приводящим к нарушению морфологических, биохимических и иммунологических реакций.

Исходя из сказанного, применение антигистаминных препаратов, в том числе и антигистаминной сыворотки для лечения и профилактики диспепсии телят является весьма перспективным.

Проведенная работа в РГКП «Заречное» Костанайского района, Костанайской области Республики Казахстан показала, что среди незаразных болезней молодняка широко распространена диспепсия новорожденных телят, которая развивается с первых дней жизни и составляет 70,3-75,6% от числа родившихся. Заболевание развивается преимущественно в зимне-весенний период, не поддается лечению методами, применяемыми в других регионах, и наносит значительный экономический ущерб.

Анализируя состояние животноводства в хозяйстве нами сделаны выводы, что основными причинами диспепсии являются:

- физиологически необоснованная структура рациона стельных коров (однотипное силосно-концентратное кормление, при исследовании качества кормов установлено, что величина рН силоса выше 4.5, содержание масляной кислоты в концентрации более 0.3%, при исследовании сена отмечали наличие заплесневелых участков);

- нарушение режима кормления и содержания молодняка (несвоевременная выпойка молозива и дача большого его количества).

До постановки научно-производственных опытов в условиях хозяйства нами изучена клиническая картина диспепсии.

Р.М.Гольцман.Н.П. Рухлядев (1930), А.Р. Евграфов (1956), А.В. Синёв, Г.В. Домрачев, П.С.Ионов (1975) и др. придавали большое значение описанию симптомов, по которым можно установить заболевание, воссоздать ее полную картину и получить представление об изменениях происходящих в организме.

Изучение клинико-физиологических показателей у здоровых и больных животных является одним из эффективных методов контроля за состоянием их здоровья, выявления ранних стадий заболевания.

При клиническом исследовании, больных диспепсией телят, отмечали: анемию видимых слизистых оболочек, пульс учащен — 120-150. При аускультации легких хрипы характерные для отека легких, несмотря на обезвоживание организма. При перкуссии печеночного поля выявляли сильную болевую реакцию. Каловые массы жидкой консистенции серо-желтого цвета, с большим количеством слизи или пузырьков газа, что связано с изменениями печени и патологией желудочно-кишечного тракта.

При исследовании центральной нервной системы установили отклонения различной формы: в одном случае угнетение, отсутствие реакции на раздражители, развитие шокового состояния, закончившееся гибелью теленка. В другом - внезапные тонико-клонические судороги, возбуждение, нарушение координации движения, также закончившиеся смертью животного.

При вскрытии трупов телят, павших от диспепсии обнаружены следующие изменения: печень уменьшена в объеме, с поверхности гладкая, блестящая, бледно-коричневого цвета, дряблой консистенции. Желчный пузырь увеличен, заполнен желчью кашицеобразной консистенции. Слизистая оболочка сычуга диффузно, реже пятнисто покрасневшая, иногда с довольно многочисленными геморрагиями. В сычуге у телят, павших в одно, двух дневном возрасте небольшое количество мутной жидкости, а в 5-16 дневном возрасте - плотные творожистые сгустки. Слизистые оболочки двенадцатиперстной, тощей, подвздошной кишок и толстого отдела кишечника набухшая, гиперемирована, покрыта слизью.

Морфологические, биохимические и иммунологические показатели крови имеют связь с симптоматикой у больных животных. Биохимические исследования подтвердили тяжесть патологических процессов протекающих в организме новорожденных.

Полученные данные показали, что у группе больных диспепсией телят достоверно снижается уровень общего белка на 18,2% (Р<0,05) и церулоплазмина на 26,2% (Р<0,05). Снижение уровня церулоплазмина говорит о снижении антиоксидантных свойств, накоплению большого количества t свободных радикалов, что способствует развитию интоксикации. Данное положение подтверждается повышением уровня СМП (среднемолекулярных пептидов) у больных в 5 раз по сравнению со здоровыми и МДА (малонового диальдегида) в 2,5 раза. Эти метаболиты белкового и липидного обменов, являются очень токсичными для организма животных и способны разрушать клеточные мембраны.

На этом фоне отмечены сдвиги в энергетическом обмене больных диспепсией телят.

Снижение уровня глюкозы на 15,5% (Р<0,05), несомненно является отрицательным фактором, так как интенсивность углеводного обмена напрямую зависит от уровня глюкозы, а это в конечном счете энергетический потенциал организма.

На фоне повышения уровня гистамина у больных в 2 раза по сравнению со здоровыми, что приводит к расширению капиллярной сети и способствует обезвоживанию организма, соответственно увеличивается уровень гемоглобина на 25,3% (Р<0,05) , за счет сгущения крови.

Известно, что высокий уровень гистамина стимулирует супрессорную функцию Т- лимфоцитов, что в свою очередь подавляет синтез В-лимфоцитами иммуноглобулинов, способствуя развитию дефицита гуморального звена иммунной системы.

На этом фоне происходит снижение как клеточных, так и гуморальных факторов защитных сил организма.

Исследованиями установлено, что у больных на 10,6% (Р<0,05) повышено содержание лейкоцитов и на 37,4% (Р<0,01) нейтрофилов. Резко увеличено моноцитарное звено, почти в 2 раза, и процент фагоцитоза нейтрофилов, что говорит о большом напряжении защитных сил организма и включении в работу компенсаторных механизмов направленных на борьбу с патологией развивающейся в желудочно-кишечном тракте больных телят.

Уровень же иммуннокомпетентных клеток (лимфоцитов) снизился на 10,1%, за счет снижения числа Т-лимфоцитов на 14,1%, и особенно В-лимфоцитов на 22,7% (Р<0,05). Как известно, класс В-лимфоцитов ответственен за синтез антител, против чужеродных белков, микроорганизмов и их токсинов.

Анализируя показатели, характеризующие состояние гуморальных факторов защиты, необходимо отметить, что на фоне существенного снижения числа В-лимфоцитов понизилась и их функциональная активность, что проявилось снижением у больных телят титра антител к энтеробактериям по сравнению со здоровыми в 2 раза.

Одним из важных факторов, определяющих резистентность организма в целом, является лизоцим, уровень которого у больных телят снизился на 24,0% (Р<0,01).

Кроме того, лизоцим является самым сильным естественным антигистаминным препаратом, который превосходит по своей активности все имеющиеся фармакологические препараты в 300 раз (I. Parrot et all, 1962), поэтому его снижение у больных телят является плохим прогностическим фактором.

При исследовании молозива коров, от которых родившиеся телята заболели диспепсией, установлен в нём высокий уровень гистамина, который на протяжении 3-х дней после отела был в пределах 0,94-1,15 мкмоль/л.

По данным В.А. Молоканова (1992), средний показатель гистамина в крови коров после отела составляет 0,59 - 0,66 мкмоль/л, примерно такое же содержание должно быть в молозиве. Следовательно, высокий уровень гистамина и в молозиве, которое потребляют телята и в крови больных диспепсией телят играет существенную роль в патогенезе диспепсии.

При обследовании 40 коров за 20 - 30 дней до отела были выделены 2 группы по 20 голов. Первая группа животных имела титры антител против кишечной палочки, энтерококков и сальмонелл в пределах 1:320, вторая в два раза выше (1:640), соответственно, уровень лизоцима у первой группы животных был в пределах 6,4 мкг/мл, а у второй 10,2 мкг/мл.

Дальнейшее наблюдения показали, что после отела заболеваемость телят диспепсией, родившихся от первой группы коров, составила 60%, а от второй

28,5%, причем титр антител в обеих группах телят на 3-5-й дни жизни соответствовал уровню антител у матерей.

Таким образом, изучение отдельных биохимических показателей характеризующих состояние метаболических процессов в организме больных телят говорит о том, что заболевание телят диспепсией протекает не только на фоне сильной интоксикации организма, но и на фоне иммунодефицита, клеточного и гуморального звеньев иммунной системы, что, по-видимому, является причиной большого отхода заболевших телят (до 15%).

Клиническая картина болезни, описанная выше, подтвердила биохимические изменения и послужила основанием считать такую форму диспепсии - токсической, что согласуется с исследованиями Р.А.Циона (1963), Н.М.Сарайкина (1958), В.А.Алиева, В.М. Подкопаева (1966), В.М.Подкопаева, В.П. Шишкова (1967), В.П. Урбана, И.Л. Найманова (1974), Б.М. Анохина (1991).

Заболевание телят протекало, как правило, тяжело и лечение телят по схеме, принятой в хозяйстве, далеко не всегда давало положительный результат, вследствие чего часть животных погибала.

Учитывая выше изложенное в условиях РГКП «Заречное», Костанайского района, Костанайской области Республики Казахстан нами проведены научно-производственные опыты по изучению иммунобиохимического статуса коров и телят, рождённых от них, на фоне применения антигистаминной сыворотки (АГС), а также разработка способов лечения и профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта новорожденных телят.

Применение антигистаминной сыворотки (АГС) обусловлено содержанием в ней антител против гистамина и ряда биологических компонентов: гаммаглобулина, церулоплазмина, лизоцима и высоким титром антител против гистамина.

Изменения в лейкоформуле у телят рождённых от коров вводили АГС и поливалентную вакцину характеризовались незначительным повышением числа молодых нейтрофилов (юных на 2,96% (Р>0,5) , палочкоядерных на 4,3 % (Р<0,05), а количество сегментоядерных уменьшилось на 2,27 %, при этом отмечается увеличением количества лимфоцитов на 6,62% , количество моноцитов в крови телят опытной группы не отличается от таковых в контрольной. Данные изменения указывают на активизацию лимфопоэза и повышение активности клеточного звена иммунной системы, при этом отмечается незначительное увеличение числа нейтрофилов за счет молодых незрелых форм, обладающих слабой функциональной активностью.

В последующие дни применение антигистаминной сыворотки телятам опытной группы способствует повышению концентрации в крови гемоглобина и эритроцитов. Так на 3-й и 6-е дни жизни содержание гемоглобина в крови животных на фоне 2-х кратного подкожного введения антигистаминной сыворотки повысилось на 10,3 % (Р<0,05) и 7,3% (Р<0,1), концентрация эритроцитов на 21,15 % (Р<0,05) и 13,07% (Р>0,5) соответственно.

На 15-е сутки жизни у телят опытной группы после 3-х кратного подкожного введения антигистаминной сыворотки отмечается повышение концентрации лимфоцитов и моноцитов на 18,4 % и 38,5 % (Р<0,001), содержание эритроцитов и лейкоцитов имеет тенденцию к снижению на 0,94% и 19,6 % (Р<0,1) соответственно, что говорит о стабилизации состава крови, снижении интоксикации, нормализации эритропоэза и снижении дегидратации организма.

Введение вакцины против паратифа и колибактериоза коровам опытной на фоне предварительного применения антигистаминной сыворотки оказало стимулирующее влияние на клеточное звено иммунной системы, что стимулировало перераспределение количества иммуннокомпетентных клеток в сторону увеличения Т и В-лимфоцитов на 32,2 % и 14,43 % (Р<0,01), при одновременном снижении О-лимфоцитов в крови коров опытной группы по сравнению с контрольной на 25,8 % (Р<0,05).

Данные изменения указывают на снижение напряженности лимфопоэза и стимуляцию более быстрой дифференцировки иммуннокомпетентных клеток.

В опытной группе коров на фоне применения АГС и вакцинации отмечено усиление фагоцитарной реакции нейтрофилов на 35,8 % (Р<0,01), среднего фагоцитарного индекса на 34,1 % (Р<0,05) и максимального фагоцитарного индекса на 25,5 % (Р<0,01) по сравнению с контрольной группой.

Таким образом, двукратное введение АГС перед вакцинацией оказывает стимулирующее действие на клеточное звено иммунной системы коров.

В дальнейшем после отёла были проведены аналогичные исследования у телят родившихся от коров опытной и контрольной групп.

Анализ функциональной активности некоторых иммуннокомпетентных клеток показал, что уже при рождении в крови телят опытной группы отмечается некоторое повышение фагоцитарной активности, среднего фагоцитарного и максимального фагоцитарного индекса на 3,62 % , 11,59 % (Р<0,05) и на 13,0 % (Р<0,05) соответственно по сравнению с контрольной группой.

В дальнейшем, На 6-е сутки жизни после 2-го введения антигистаминной сыворотки в крови телят опытной группы показатели, характеризующие состояние клеточного звена иммунной системы сохраняются на более высоком уровне. Так, количество Т и В- лимфоцитов превышает показатели телят контрольной группы на 20, 6 % (Р<0,01) и на 22,57% (Р<0,05). Более высоким остаётся уровень фагоцитарной активности, превышающий показатели телят контрольной группы на 17,88 % (Р<0,001).

К 15-ому дню жизни разница в показателях увеличивается ещё больше.

При анализе показателей характеризующих состояние гуморального звена иммунной системы у коров и телят, рожденных от них, так же отмечено стимулирующее влияние сочетанного применения вакцины и сыворотки.

Результаты изучения динамики иммуноглобулинов показали, что уровень иммуноглобулинов первичного ответа (Ig М) сыворотке крови коров на фоне применения АГС в сочетании с вакциной превысил исходный уровень на 45,0%, а контроль-на 23,33% (Р<0,001).

У коров контрольной группы на фоне вакцинации также отмечено повышение уровня иммуноглобулинов первичного ответа, по сравнению с исходным уровнем, но только на 28,18% (Р<0,001).

В динамике иммуноглобулинов вторичного ответа (IgG) прослеживается аналогичная тенденция нарастания иммуноглобулинов как в опытной, так и в контрольной группе. При этом достоверные изменения отмечены только в опытной группе коров, у которых уровень Ig G превысил исходный - на 13,87 % (Р<0,05).

Что касается других гуморальных показателей иммунной системы, динамика, то тут следует отметить наиболее характерные сдвиги в активизации комплемента и повышении уровня ЦИК у коров опытной группы был выше на 29,0 и 12,84% (Р<0,05).

Оценивая показатели гуморального звена иммунной системы у коров на фоне введения АГС, можно отметить её стабилизирующее значение в отношении лизоцима, об этом говорит незначительное снижение его, уровня в сыворотке крови коров опытной группы.

Самым главным критерием, характеризующим реактивность иммунной системы на введение специфических антигенов, является синтез антител против них. Нами установлено, что у коров опытной группы на фоне сочетанного применения вакцины и АГС, титр антител против специфических антигенов (кишечная и паратифозные палочки) был выше по сравнению с контрольной группой на 22,0 и 18,73% (Р<0,01).

Уровень показателей характеризующих состояние гуморального звена иммунной системы коров-матерей непосредственным образом отражается и на состоянии этих показателей у телят, рождённых от них.

Анализ показателей гуморального звена иммунной системы сыворотки крови телят опытной группы, показал, что уже после рождения уровень лизоцима и комплемента был на 9,84 и 21,89 % (Р<0,05) у них выше по сравнению с контрольной группой. Отмечено наличие тенденции к увеличению иммуноглобулинов G на 8,6% (Р<0,1) и более высокий уровень ЦИК у телят опытной группы, превосходящий уровень контрольных телят на 22,05% (Р<0,01).

Совокупность этих данных указывает на то, что телята, рождённые от коров - матерей подвергнутых обработке АГС перед вакцинацией, после рождения имели более высокие показатели, характеризующие состояние гуморального звена иммунной системы.

После однократного введения АГС на 3-й сутки жизни существенных сдвигов в сыворотке крови телят опытной группы не наблюдалась, разница в показателях характеризующих лизоцимную, комплементарную и бактерицидную активность была прежней в пользу телят опытной группы.

Следует только отметить нарастание уровня Ig М, у телят опытной группы превысивших контроль на 13,71 % (Р<0,05).

После 2-х кратного введения антигистаминной сыворотки на 6-е сутки жизни в сыворотке крови опытной группы телят обнаружено существенное увеличение концентраций лизоцима и комплемента на 15,07 % и 15,42% (Р<0,01) соответственно, что указывает на активизацию защитных сил организма группы опытных телят.

Отмечено повышение уровня ЦИК после второй инъекции АГС к 6-ому дню жизни на 20,68 % (Р<0,001) . На этом фоне закономерным процессом является увеличение содержания в сыворотке крови у телят опытной группы иммуноглобулинов М и G на 10,55% (Р<0,05), и 5,08% (Р>0,5) по сравнению с контрольной группой.

При этом устойчивым показателем сыворотки крови обеих групп телят остается активность БАСК (бактерицидная активность сыворотки крови). Так на 6-е и на 15-е сутки жизни активность БАСК у телят опытной группы и контрольной группы колеблется в пределах 59,42-61,47 %.

На 15-сутки жизни после 3-х кратного введения антигистаминной сыворотки уровень лизоцима и комплемента в сыворотке крови телят опытной группы повысился по сравнению с контрольной на 20,65 и 15,22 % (Р<0,05) в данном случае сохранение положительной динамики в увеличении содержания лизоцима в сыворотке крови опытной группы телят, подтверждает природу лизоцима, как антигистаминного фактора, который в меньшей степени расходуется на элиминацию гистамина образующегося в организме растущих телят, так как он (организм) постоянно пополнялся антителами против гистамина содержащимися в АГС.

Наиболее важным моментом повышения иммунной реактивности после 3-х кратного введения АГС на 15-е сутки жизни является увеличение ЦИК на 23,67 %; и иммуноглобулинов М и G в сыворотке крови в опытной группы телят по сравнению с контрольной на 17,08 и 19,32 % (Р<0,001) соответственно.

В сыворотке крови новорожденных телят отсутствуют антитела, способные самостоятельно отвечать на антигенные раздражители, они появляются с приемом первых порций молозива. Молозиво содержит антитела, способные защищать организм новорожденного от наиболее вероятных чужеродных агентов (токсинов), с которыми сталкивается материнский организм. Длительность коллострального иммунитета у телят не превышает 5-6 суток.

При выполнении данной работы, одной из целей явилось определение влияние сочетанного применения АГС и вакцины коровам на напряженность специфического коллострального иммунитета у телят полученных от таких коров.

После рождения в 1-е сутки жизни перед введением АГС, средний титр антител к E.coli (log2) и к паратифу (log2) у телят опытной группы превышал показатели телят контрольной группы на 6,69 % (Р>0,5) и на 17,37 % (Р<0,05), соответственно.

После 1-кратного введения АГС на третий сутки жизни средний титр антител к Е. coli (log2) и к паратифу (log2) у телят опытной группы достоверно превышал показатель телят контрольной группы на 14,73 и на 14,26 %(Р<0,01) соответственно.

Тенденция повышения напряженности специфического коллострального иммунитета в опытной группе телят сохранилось и на 6-е сутки жизни после повторного введения АГС.

Средний титр антител (Log2) к E.coli и к паратифу в опытной группе телят достиг своего максимального значения на 6-е сутки жизни и превышал показатель телят контрольной группы соответственно на 31,0 и на 34,83 % (Р<0,001).

Несомненно, активизация синтеза иммунноголобулинов невозможна без активизации пластической функции печени и в целом белкового обмена организма растущих телят.

Учитывая выше изложенное, мы провели изучение влияния антигистаминной сыворотки на некоторые показатели белкового обмена коров-матерей и рожденных от них телят.

Анализируя динамику отдельных показателей характеризующих состояние белкового обмена у коров-матерей и телят рождённых от них можно отметить, что введение вакцины против паратифа и колибактериоза в сочетании с АГС, коровам опытной группы перед отелом способствует повышению уровня общего белка на 8,7 % (Р<0,05), повышение церулоплазмина на 36,8 % (Р<0,01), по сравнению с контрольной группой.

Повышение уровня церулоплазмина говорит о повышении антиоксидантных свойств организма коров, препятствует накоплению большого количества свободных радикалов и развитие интоксикации. При более детальном изучении состояния белкового обмена было выявлено достоверное увеличение у коров контрольной группы - метаболитов белкового обмена - средне молекулярных пептидных соединений (СМП) по сравнению с коровами опытной группы на 29,1 (Р<0,01).

Преимущественно анаэробный процесс окисления углеводов, катаболический характер белкового обмена приводит к стимуляции липолиза, активизации перекисного окисления липидов.

Данное положение находит свое подтверждение повышением содержания малонового диальдегида (МДА) в сыворотке крови коров контрольной группы на 20,2 % (Р<0,05) по сравнению с коровами опытной группы, и повышением относительно исходного содержания на 25,7 % (Р<0,01).

Учитывая то, что высокий уровень СМП и МДА (метаболитов белкового и липидного обменов) оказывает, токсическое действие, способствует разрушению клеточных мембран, что является показателем эндогенной интоксикации, применение АГС снижает уровень эндогенной интоксикации в организме коров-матерей перед отёлом.

Комплексное применение АГС и вакцины против паратифа и колибактериоза коровам опытной группы способствуют снижению содержания гистамина в сыворотке крови, по сравнению с контрольной группой на 20,7 % (Р<0,01), что согласуется с исследованиями В. А. Молоканова (1997), указывающим, что антигистаминная сыворотка с высоким титром антител против гистамина позволяет нейтрализовать избыток гистамина.