Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.04) на тему:Фармако-токсикологические свойства и терапевтическая эффективность антибактериального препарата на основе флорфеникола

ДИССЕРТАЦИЯ
Фармако-токсикологические свойства и терапевтическая эффективность антибактериального препарата на основе флорфеникола - диссертация, тема по ветеринарии
АВТОРЕФЕРАТ
Фармако-токсикологические свойства и терапевтическая эффективность антибактериального препарата на основе флорфеникола - тема автореферата по ветеринарии
Игнатова, Ирина Дмитриевна Москва 2007 г.
Ученая степень
кандидата биологических наук
ВАК РФ
16.00.04
 
 

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Фармако-токсикологические свойства и терапевтическая эффективность антибактериального препарата на основе флорфеникола

На правах рукописи

Игнатова Ирина Дмитриевна

ФАРМАКО-ТОКСИКОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА И ТЕРАПЕВТИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ АНТИБАКТЕРИАЛЬНОГО ПРЕПАРАТА НА ОСНОВЕ ФЛОРФЕНИКОЛА

16.00.04 - ветеринарная фармакология с токсикологией

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Москва-2007

003052782

Работа выполнена в отделе качества и стандартизации фармакологических лекарственных средств для животных Федерального государственного учреждения «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (ФГУ «ВГНКИ») Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору (Россельхознадзор) Министерства сельского хозяйства Российской Федерации.

Научный руководитель: Официальные оппоненты:

кандидат ветеринарных наук, доцент Виолин Б.В.

доктор ветеринарных наук, профессор Таланов Г.А.

кандидат биологических наук Савенкова Е.Е.

Ведущая организация - Федеральный государственное учреждение «Федеральный центр токсикологической и радиационной безопасности животных» Россельхознадзора МСХ РФ (г. Казань).

Защита состоится « /Л » ¿¿tâflioi** 2007 года в /Г часов на заседании диссертационного совета Д./220.011.01 в Федеральном государственном учреждении «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (ФГУ «ВГНКИ») по адресу: Россия, 123022, г. Москва, Звенигородское шоссе, д.5

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГУ «ВГНКИ».

Автореферат разослан «¿/ ff »

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат ветеринарных наук, доцент, Заслуженный ветеринарный врач РФ

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. Бактериальные инфекции птиц представляют серьезную проблему для современного птицеводства, как в Российской Федерации, так и во многих зарубежных странах. Среди них колибактериоз и саль-монеллез наносят значительный экономический ущерб, складывающийся из снижения яйценоскости и привесов, гибели эмбрионов, цыплят и взрослой птицы, затрат на оздоровление хозяйства (Н.Л.Андреева, М.Е. Дмитриева, 2004; А.Н. Борисенкова, 1999; Р.Н. Коровин, 1991).

Меры борьбы с бактериальными инфекциями включают в себя комплекс ветеринарно-санитарных мероприятий, среди которых немаловажную роль играет использование антибактериальных лекарственных средств (В.Г. Бурун, 2001; Н.В. Кожемяка, 2002; В.П. Федотов, 1983).

Широкое внедрение в практику птицеводческих хозяйств антибактериальных препаратов и часто их нерациональное применение привело к распространению резистентных микроорганизмов, особенно в семействе энтеробакте-рий (Т.В. Вершняк, А.Я. Самуйленко, 2003; В.А. Кузьмин, В.П.Урбан, 1989; J. Асаг, В. Rostel, 2003; S. Benredjeb, A. Hammami, 2003).

Развитие резистентности у микроорганизмов является основным фактором, ограничивающим эффективность антибактериальных препаратов. В связи с этим актуальным становится поиск новых путей предупреждения формирования устойчивости возбудителей бактериальных инфекций, одним из которых является химическая трансформация молекул антибиотиков, направленная на создание новых препаратов, активных в отношении резистентных микроорганизмов (JI.E. Бриан, 1984; В.Ф. Ковалев, И.Б. Волков, Б.В. Виолин, 1988; Г.А. Ноздрин, А.И. Леляк, 1999).

Хлорамфеникол (левомицетин) в течение многих лет считался одним из наиболее эффективных антибиотиков в медицинской и ветеринарной практике. Однако, установленное в последние годы токсическое влияние антибиотика на гемопоэз и иммунную систему, а также широкое распространение левомице-тинрезистентных микроорганизмов значительно ограничили его применение. В настоящее время из-за потенциального риска токсического воздействия на организм человека остаточных количеств хлорамфеникола, содержащихся в продукции животноводства, антибиотик запрещен к применению продуктивным животным в США и странах Евросоюза (М. Cannon et al., 1990; Y. Ueda et al., 1995; A.A. Yunis, 1988).

В связи с этим возникла необходимость в разработке и изучении аналогов хлорамфеникола, обладающих, наряду с высокой антибактериальной активностью, отсутствием побочных эффектов, характерных для данного антибиотика. Путем химической модификации молекулы хлорамфеникола был синтезирован ряд новых соединений группы амфениколов, одним из которых является антибиотик широкого спектра действия - флорфеникол (Е. Lavy, G. Ziv, 1991; D.J. Miller, 1991; H.C. Neu, 1980).

Некоторые особенности молекулярной структуры флорфеникола обуславливают снижение его токсичности и повышение антимикробной активности по сравнению с хлорамфениколом. Во-первых, замещение одной из гидро-ксильных групп на атом фтора делает флорфеникол нечувствительным к действию хлорамфениколацетилтрансферазы микроорганизмов, которая модифицирует структуру молекулы хлорамфеникола путем ацетилирования ОН-группы, вследствие чего антибиотик теряет противомикробные свойства. Поэтому микроорганизмы, устойчивые к хлорамфениколу, остаются чувствительными к флорфениколу (С. Kehrenberg, D. Meunier et al., 2006; К. Keyes, С. Hudson, 2000; S. Soback, M.J. Paape, 1995).

Во-вторых, в молекуле флорфеникола, в отличие от хлорамфеникола, отсутствует нитрогруппа, оказывающая токсическое влияние на систему кроветворения, что повышает безопасность его применения (R.A. Sams, 1994).

Учитывая, что флорфеникол не применялся ранее в ветеринарной практике на территории Российской Федерации, и в настоящее время к нему не должно существовать резистентных микроорганизмов, нам представляется целесообразным разработать на основе флорфеникола новую лекарственную форму препарата для лечения колибактериоза и сальмонеллеза птиц, изучить его фар-мако-токсикологические свойства и терапевтическую эффективность.

Цели и задачи исследования. Разработать на основе флорфеникола новый антибактериальный препарат для лечения колибактериоза и сальмонеллеза цыплят.

Для этого было необходимо:

- обосновать состав и разработать лекарственную форму антибактериального препарата на основе флорфеникола;

- разработать требования к качеству препарата и методы его контроля;

- определить стабильность препарата в процессе хранения;

- изучить острую и субхроническую токсичность антибактериального препарата в опытах на лабораторных животных и цыплятах;

- изучить фармакокинетику флорфеникола в организме птиц после однократного и курсового применения препарата;

- определить сроки выведения остаточных количеств флорфеникола из организма цыплят после применения препарата;

- определить терапевтическую эффективность антибактериального препарата на основе флорфеникола в производственных условиях и разработать схему его применения для лечения колибактериоза и сальмонеллеза цыплят.

Научная новизна. Впервые разработан антибактериальный препарат на основе флорфеникола в форме раствора для орального применения для лечения колибактериоза и сальмонеллеза цыплят.

Установлена чувствительность хлорамфениколрезистентных микроорганизмов к флорфениколу; изучены фармако-токсикологические свойства и определена терапевтическая эффективность антибактериального препарата на основе флорфеникола при лечении колибактериоза и сальмонеллеза цыплят.

Практическая значимость работы.

Разработан и предложен для ветеринарной практики новый антибактериальный препарат на основе флорфеникола в форме раствора для орального применения для лечения колибактериоза и сальмонеллеза цыплят.

Разработаны методы контроля качества антибактериального препарата и установлен срок его годности.

Определены сроки возможного убоя птиц на мясо после применения антибактериального препарата на основе флорфеникола.

Разработана схема применения антибактериального препарата на основе флорфеникола при колибактериозе и сальмонеллезе цыплят.

Разработана нормативная документация - технические условия и инструкция по применению антибактериального препарата на основе флорфеникола.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

- Научное обоснование состава антибактериального препарата на основе флорфеникола.

- Качественные и количественные методы контроля антибактериального препарата на основе флорфеникола.

- Результаты изучения стабильности антибактериального препарата на основе флорфеникола при хранении.

- Результаты изучения острой и субхронической токсичности антибактериального препарата на основе флорфеникола в опытах на лабораторных животных и цыплятах.

- Результаты изучения фармакокинетики флорфеникола и определения сроков выведения остаточных количеств антибиотика из организма птиц после применения препарата.

- Результаты определения терапевтической эффективности антибактериального препарата при колибактериозе и сальмонеллезе цыплят.

- Практические предложения по применению антибактериального препарата на основе флорфеникола в птицеводстве.

Публикации. По теме диссертации опубликованы 3 научные работы.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 155 листах машинописного текста и включает: введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение, выводы, практические предложения, список литературы. Работа иллюстрирована 38 таблицами, 5 графиками, 1 диаграммой и 1 рисунком. Список литературы содержит 238 источников, в том числе 105 иностранных. Приложение на 8 листах.

СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ Материалы и методы исследований

Работа выполнена в течение 2003-2007 гг. В опытах было использовано 156 беспородных белых мышей обоего пола массой 18-22 г и 205 цыплят разного возраста массой 450-900 г. Клиническое испытание препарата в производственных условиях проведено на 306480 цыплятах.

Определение чувствительности эшерихий, сальмонелл, стрептококков, стафилококков, пастерелл к флорфениколу проводили на мясопептонном агаре (МПА) методом серийных разведений в плотной питательной среде (С.М. На-вашин, И.П. Фомина, 1982). Для сравнения определяли чувствительность этих же микроорганизмов к другому антибиотику группы амфениколов — хлорамфе-николу.

В качестве тест-микроорганизмов использовали музейные культуры и выделенные от больных животных и птиц изоляты: Escherichia coli (серовари-анты О9:К30; О^ 02; 07s; 04; Ош; Oi30; 08; 0]8; О2о; Oi5; изоляты 1-4, 7, 27, 6/3, 4/1, 6/2, 1/5), Salmonella enteritidis (изоляты 1, 2, 4, 7, 11, 15, 27, G, 9/5, 2-23, 3/5), Salmonella gallinarum-pullorum (изоляты 24 КСТ, 10 Б, ЛБ, REV1), Salmonella thyphimurium (изолят 371), Pasterella multocida (изоляты 1-8), Staphylococcus aureus (изоляты 1-23), Streptococcus spp. (изоляты 1-3).

За минимальную подавляющую концентрацию (МПК) антибиотика для испытуемого тест-штамма принимали ту, при которой отсутствовали признаки роста микроорганизма.

При разработке лекарственной формы антибактериального препарата, учитывая, что флорфеникол практически не растворим в воде, необходимо было подобрать вспомогательный компонент с таким расчетом, чтобы он обеспечивал хорошую растворимость действующего вещества и его стабильность на протяжении всего срока хранения.

Принимая во внимание то, что современная технология применения лекарственных средств в птицеводстве предусматривает предварительное приготовление концентрированных водных растворов антибиотиков, которые постепенно добавляются в питьевую воду, были проведены опыты по изучению растворимости готовой лекарственной формы препарата в воде.

Для стандартизации и контроля качества антибактериального препарата, а также изучения его стабильности при хранении, в соответствии с требованиями, предъявляемыми к лекарственным формам для орального применения, были предложены методики качественного и количественного контроля препарата с использованием метода высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) для определения подлинности и массовой доли флорфеникола.

Стабильность антибактериального препарата изучали в соответствии с «Временной инструкцией по определению сроков годности лекарственных средств на основе метода «ускоренного старения» при повышенной температуре». Для этого три опытные серии антибактериального препарата, расфасован-

ные в стеклянные флаконы по 10 мл, для «старения» помещали на хранение в термостаты при температурах 37 и 50 °С и исследовали через промежутки времени, соответствующие 6, 12, 18 и 24 месяцам хранения. Параллельно изучали стабильность антибактериального препарата в условиях естественного хранения при комнатной температуре (23±2 °С) в течение 24 месяцев.

Оценку качества препарата в процессе хранения проводили по показателям: внешний вид, цвет, прозрачность, окраска, плотность, подлинность и массовая доля флорфеникола.

Острую токсичность антибактериального препарата изучали на 36 беспородных белых мышах обоего пола массой 18-20 г и 30 цыплятах массой 350 -400 г. Мышам препарат вводили в желудок при помощи шприца и иглы, на конце которой имелось булавовидное утолщение, однократно в дозах: 17255, 23006, 28758, 34509, 40260 и 46000 мг/кг. Цыплятам препарат вводили непосредственно в зоб через зонд, однократно в дозах: 14375, 21563, 25163, 28750 и 35947 мг/кг.

Наблюдение за клиническим состоянием подопытных животных проводили в течение 14 суток после введения препарата, учитывали количество погибших животных и рассчитывали основные токсикологические параметры (ЛД0, ЛД1б, ЛД50, ЛД34, ЛДюо) по методу Личфилда-Уилкоксона (М.Л. Беленький, 1969).

Субхроническую токсичность антибактериального препарата изучали на 120 беспородных белых мышах обоего пола с начальной массой 18-22 г. Подопытных животных по принципу аналогов разделили на 4 группы по 30 мышей в каждой.

Препарат мышам вводили в 2% растворе крахмала ежедневно в течение 20 суток, перорально при помощи шприца и иглы, на конце которой имелось булавовидное утолщение, в следующих дозах: 1 группе - 1/5 от ЛД50 (6926 мг/кг массы животного); 2 группе - 1/10 от ЛД50 (3463 мг/кг массы животного); 3 группе - 1/20 от ЛД5о(1731 мг/кг массы животного); 4 группе (контрольная) -ПЭГ-300.

Наблюдение за клиническим состоянием мышей вели на протяжении 31 суток от начала опыта. Определение массы тела животных проводили до начала введения препарата и на 7, 14, 21 и 31 сутки опыта. Павших животных подвергали патологоанатомическому вскрытию. В процессе опыта учитывали количество погибших животных в зависимости от дозы, рассчитывали ЛД50 при многократном введении и определяли коэффициент кумуляции, как отношение средних эффектов подострого и острого действий препарата (Lim и др., 1961).

Для выявления возможного гепатотоксического действия препарата на 21 и 31 сутки от начала введения на 10 мышах каждой группы проводили определение детоксицирующей функции печени с помощью гексеналовой пробы. Гек-сенал белым мышам вводили внутрибрюшинно в форме 0,2% раствора в дозе 60 мг/кг массы тела. Учет времени сна начинали с момента принятия мышами бокового положения и заканчивали при появлении координированных движений.

В эти же сроки на других 10 мышах каждой группы изучали компенсаторно-приспособительные способности организма с помощью функциональной пробы плаванием и определяли относительную массу (коэффициенты) внутренних органов: печени, почек, сердца, легких, селезенки, учитывая, что изменение массы органа, как правило, связано с изменением его функциональных способностей (В.Н. Гацура, 1976).

Субхроническую токсичность антибактериального препарата изучали на 60 цыплятах массой 450-500 г, разделенных по принципу аналогов на 4 группы по 15 птиц в каждой.

Антибактериальный препарат выпаивали разведенным в воде в течение

20 суток в следующих дозах: 1 группа - 100 мг/кг массы тела (пятикратная терапевтическая доза); 2 группа - 40 мг/кг массы тела (двукратная терапевтическая доза); 3 группа - 20 мг/кг массы тела (терапевтическая доза); 4 группа -вода без препарата (контроль). Вода с растворенным в ней антибактериальным препаратом являлась единственным источником питья для птиц опытных групп.

Наблюдение за клиническим состоянием цыплят вели на протяжении 31 суток от начала опыта. Определение массы тела цыплят проводили до начала применения препарата и на 7, 14, 21 и 31 сутки опыта. На 21 и 31 сутки от начала введения препарата проводили клиническое и биохимическое исследование крови цыплят и определяли относительную массу (весовые коэффициенты) внутренних органов птицы - печени, легких, почек, сердца, селезенки. О функциональном состоянии печени судили по результатам определения активности гепатоспецифических ферментов (аспартатаминотрансферазы (АСТ), аланина-минотрансферазы (АЛТ)), почек - по содержанию креатинина и мочевины в сыворотке крови.

Фармакокинетику флорфеникола после однократного перорального введения антибактериального препарата изучали на 65 цыплятах массой 800-900 г, которых по принципу аналогов разделили на 2 группы: контрольную (5 голов) и опытную (60 голов). Все цыплята находились в одинаковых условиях содержания. До и во время опыта цыплята не получали никаких лекарственных препаратов. За 2 ч до начала эксперимента птица не получала корм и воду. Сразу после введения препарата цыплята имели свободный доступ к воде и корму.

Антибактериальный препарат птице вводили разведенным в воде через зонд в зоб в дозе 20 мг/кг массы тела. Через 20; 40 минут, 1; 2; 3; 6; 9; 12; 15; 18;

21 и 24 часа после введения препарата убивали по 5 цыплят и брали у них кровь для исследования. У цыплят, убитых через 20 минут, 1; 3; 6; 12; 18 и 24 часа после введения, дополнительно отбирали образцы скелетной и сердечной мускулатуры, печени, почек, легких, содержимого мышечного желудка, тонкого и толстого кишечника.

Определение содержания флорфеникола в образцах сыворотки крови и органов цыплят проводили методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Предел количественного определения составил 0,1 мкг/мл (г).

Концентрацию флорфеникола в содержимом мышечного желудка, тонкого и толстого отделов кишечника определяли микробиологическим методом

диффузии в агар с тест-культурой Bacillus subtilis var. L2 (В.Ф. Ковалев и др., 1988). Предел количественного определения составил 2,5 мкг/мл (г).

Изучение фармакокинетики флорфеникола в сыворотке крови птиц при постоянном поступлении препарата с водой проводили на 25 цыплятах массой 800-900 г. В течение 5 дней в качестве единственного источника питья все цыплята получали воду, содержащую антибактериальный препарат в количестве 2 мл/л, что соответствовало суточной терапевтической дозе 20 мг/кг массы тела. Через 1, 2, 4 и 5 суток от начала применения препарата, после утреннего кормления отбирали кровь у 5 цыплят. В образцах сыворотки крови определяли содержание флорфеникола методом высокоэффективной жидкостной хроматографии.

Определение сроков выведения остаточных количеств флорфеникола из организма птиц после применения антибактериального препарата проводили на 25 цыплятах массой 700-800 г, которым ежедневно в течение 5 суток давали питьевую воду с разведенным в ней препаратом в концентрации 2 мл/л, что соответствовало суточной терапевтической дозе 20 мг/кг массы тела. Через 1,2, 3, 4 и 5 суток после окончания применения препарата убивали по 5 цыплят и определяли содержание флорфеникола в сыворотке крови, печени, почках, мышцах, сердце, легких, коже и жире методом ВЭЖХ. Предел количественного определения составил 0,1 мкг/г.

Терапевтическую эффективность антибактериального препарата на основе флорфеникола при сальмонеллезе, колибактериозе, в том числе, осложненных стрептококкозом и стафилококкозом, изучали на 306480 цыплятах-бройлерах в хозяйствах Тюменской, Нижегородской, Свердловской областей и Краснодарского края.

Диагноз заболевания ставили комплексно, с учетом эпизоотической ситуации в хозяйстве, клинической картины заболевания, результатов патолого-анатомического и бактериологического исследований.

Для определения наиболее эффективной дозы антибактериальный препарат применяли при колибактериозе цыплят-бройлеров, разделенных на три равные группы, состоящие из птиц одного возраста, массы тела, тяжести течения заболевания, с питьевой водой в суточных дозах: 1,5; 2,0 и 2,5 мл на 1 л, что составляло, соответственно, 15, 20 и 25 мг/кг массы тела по действующему веществу. Дальнейшие исследования продолжили с наиболее эффективной дозой.

Эффективность антибактериального препарата на основе флорфеникола при колибактериозе и сальмонеллезе цыплят изучали в сравнении с наиболее эффективными препаратами аналогичного назначения на основе доксициклина (доксивит 100 SP, польодоксин) и энрофлоксацина (энрофлон 10%, энрофлокс 10% и киноэкс), применяемыми в соответствии с инструкциями, утвержденными Россельхознадзором.

Для оценки эффективности антибактериального препарата учитывали: сохранность птиц, гибель цыплят, продолжительность курса лечения, кратность применения антибактериального препарата, среднесуточные привесы.

Статистическую обработку полученных результатов проводили методами вариационной статистики, используя руководство Ю.С.Малеты и В.В.Тарасова (1982).

Результаты исследований

В результате изучения антибактериальной активности флорфеникола и хлорамфеникола в опытах in vitro установлено (таблица 1), что большинство изученных микроорганизмов оказались более чувствительными к флорфенико-лу.

Табл. 1. Чувствительность микроорганизмов к флорфениколу и хлорамфениколу

Род микроорганизмов Флорфеникол Хлорамфеникол

МПК50 МПК90 МПК50 МПК90

Эшерихии (п=23) 1,55 6,25 12,5 > 100

Сальмонеллы (п=16) 1,55 3,12 3,12 6,25

Пастереллы (п=8) 1,55 1,55 6,25 12,5

Стафилококки (п=23) 1,55 3,12 3,12 6,25

Стрептококки (п=3) 1,55 1,55 6,25 12,5

Минимальная подавляющая концентрация, действующая на 50% микроорганизмов, для флорфеникола составила 1,55 мкг/мл, что в зависимости от вида в 2-8 раз ниже МПК5о хлорамфеникола (3,12-12,5 мкг/мл). Минимальная подавляющая концентрация флорфеникола, действующая на 90% микроорганизмов составила 1,55-6,25 мкг/мл, что также в 2-16 раз ниже, чем МПК90 хлорамфеникола (6,25-100 мкг/мл) в отношении большинства изученных бактерий.

Следует отметить, что 52% эшерихий и 12,5% сальмонелл, устойчивых к хлорамфениколу, сохраняли при этом чувствительность к флорфениколу.

Высокая антимикробная активность флорфеникола в отношении большинства возбудителей бактериальных инфекций птиц, в том числе резистентных к хлорамфениколу, позволила нам выбрать его в качестве действующего вещества при создании лекарственной формы.

При разработке лекарственной формы учитывали, что добавление лекарственных средств в воду дает возможность одновременного их применения большому поголовью птицы, повышает точность дозирования. В крови у птицы достигается необходимый уровень действующих веществ, который затем легко поддерживается постоянным потреблением воды с растворенным в ней препаратом в течение требуемого времени. Наконец, заболевшая птица часто отказывается от корма, но продолжает пить воду, обеспечивая поступление лекарственного средства в организм.

Поэтому препарат предложен в форме раствора для орального применения, который добавляют в воду и выпаивают птице, что облегчает введение лекарства большому поголовью в условиях птицефабрики.

и

Учитывая, что флорфеиикол практически не растворим в воде, при создании лекарственной формы вспомогательное вещество в препарате было подобрано с таким расчетом, чтобы оно, с одной стороны, обеспечивало хорошую растворимость действующего вещества, а с другой - стабильность лекарственного средства на протяжении всего срока хранения.

В качестве возможных вспомогательных компонентов препарата нами были выбраны три органических соединения: полиэтиленгликоль - 300, поли-этиленгликоль - 400 и пропиленгликоль, разрешенные к применению в качестве растворителей для изготовления лекарственных форм.

Опытным путем нами было установлено, что максимальная концентрация флорфеникола, полностью растворяющаяся в 100 мл полиэтиленгликолей - 300 и 400, составила 10 г. Флорфеникол практически не растворялся в пропиленг-ликоле, начиная выпадать в осадок уже после добавления его в концентрации 5%. В связи с этим дальнейшие исследования были продолжены с полиэтиленг-ликолями.

Установлено, что скорость растворения флорфеникола в полиэтиленгли-коле - 300 была в 1,5 раза выше, чем в полиэтиленгликоле - 400, что связано с различием молекулярного веса соединений, с повышением которого увеличивается вязкость, что замедляет растворение действующего вещества.

Учитывая, что современная технология применения водорастворимых препаратов в птицеводстве предусматривает предварительное приготовление их концентрированных водных растворов, в ходе дальнейших опытов с лекарственными формами флорфеникола, изготовленными с использованием полиэтиленгликолей с различным молекулярным весом, было установлено, что препарат на основе полиэтиленгликоля - 300 растворяется в воде в 5% концентрации, а полиэтиленгликоля - 400 - только в 1% концентрации.

На основании полученных результатов разработана лекарственная форма для орального применения, содержащая 10% флорфеникола в полиэтиленгликоле - 300, который, с одной стороны, обеспечивал быстрое растворение действующего вещества в процессе изготовления опытных серий, что имеет значение при промышленном производстве лекарственного средства, а с другой стороны, позволял приготовить концентрированные водные растворы препарата в соответствии с требованиями современной технологии применения лекарственных средств в птицеводстве.

Для стандартизации и контроля качества антибактериального препарата, а также изучения его стабильности при хранении нами предложены качественные и количественные методы исследований в соответствии с требованиями, предъявляемыми к растворам для орального применения, включающие: определение внешнего вида и цвета, прозрачности, окраски, относительной плотности, подлинности и массовой доли действующего вещества.

Определение окраски, прозрачности и плотности антибактериального препарата проводили по методикам, изложенным в Государственной фармакопее XI. При определении окраски для сравнения был выбран эталон № 36. В качестве эталонного раствора для определения прозрачности нами был предложен полиэтиленгликоль - 300, являющийся основой препарата.

Для характеристики качества препарата, особенно в процессе его хранения, предложен метод высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ), который позволяет определить не только содержание действующего вещества, но и обнаружить, в случае наличия, продукты его распада.

Для определения флорфеникола в препарате методом ВЭЖХ был подобран элюент: ацетонитрил /0,01 М раствор ацетата натрия, взятые в соотношении 50 к 100, а также оптимальные условия хроматографирования на колонке Waters Spherisorb S50DS2 4.6 х 250 mm №95/316: температура процесса -25±2°С, скорость протока - 700 |il/min, длина волны - 220 нм. Установлено, что в данных условиях время выхода пика флорфеникола составляет ~ 5 мин.

На основании проведенных исследований были установлены требования к качеству готовой лекарственной формы для орального применения на основе флорфеникола, которые вошли в проект технических условий (таблица 2)

Табл. 2. Требования к качеству антибактериального препарата

Наименование показателя Характеристики и нормы

Внешний вид Раствор от бесцветного до светло - желтого цвета

Прозрачность раствора Выдерживает сравнение с полиэтиленгли-колем - 300

Окраска раствора По интенсивности не превышает эталон №36

Плотность, г/см3 1,140-1,160

Подлинность флорфеникола Время выхода пика образца препарата должно соответствовать времени выхода пика стандартного образца флорфеникола

Массовая доля флорфеникола, % 9,0-11,0

Предложенные качественные и количественные методы контроля антибактериального препарата позволяют обеспечить оптимальный уровень качества лекарственного средства в процессе его производства, хранения и применения.

При определении стабильности трех опытных серий препарата в процессе хранения оценку качества проводили по основным показателям: внешний вид, прозрачность, окраска, плотность и содержание действующего вещества. Установлено, что в течение срока наблюдения качественных и количественных изменений в составе лекарственного средства не происходит.

Использование высокоэффективной жидкостной хроматографии в процессе изучения стабильности позволило определить, что продуктов распада флорфеникола в период установленного срока годности не образуется.

Таким образом, минимальный срок годности антибактериального препарата на основе флорфеникола составляет 2 года, в течение которых он характеризуется заданными качественными и количественными параметрами.

В результате изучения острой токсичности препарата (таблица 3) на лабораторных животных и птице, установлено, что в соответствии с ГОСТ 12.1.007-76 лекарственное средство может быть отнесено к IV классу опасности - вещества малоопасные (ЛД50 для белых мышей при введении в желудок > 5000 мг/кг). По классификации Медведя (1964 г.) препарат можно отнести к малотоксичным соединениям (ЛД50 >1000 мг/кг) как для мышей, так и для птиц.

Табл. 3. Параметры токсичности антибактериального препарата

Вид животных Показатель (мг/кг)

Максимально переносимая доза лд,6 ЛДзо ЛД84 Абсолютно-смертельная доза

Мыши 17255 27005 34628 (29851-4016) 42250 46000

Цыплята 14375 22000 25700 (22948-5-2878) 29500 35947

В процессе изучения субхронической токсичности препарата на лабораторных животных установлено, что длительное введение максимальной дозы препарата (1/5 от ЛД50) вызвало гибель части мышей в группе что, позволило рассчитать коэффициент кумуляции как отношение ЛД50 при многократном введении (81870 мг/кг) к ЛД50 при однократном введении (34628 мг/кг) препарата.

Коэффициент кумуляции составил 2,36 и был >1, что по классификации К. Лима (1961 г.) свидетельствует о развитии повышенной резистентности организма животных к препарату и отсутствии выраженных кумулятивных свойств. В остальных группах гибели мышей не было.

У мышей, длительно получавших препарат в дозе 1/5 от ЛД50, отмечали достоверное (р<0,05) снижение массы тела по сравнению с первоначальной и контролем, что, видимо, было связано, с одной стороны - с нарушением процессов всасывания из-за развития катарального воспаления желудочно-кишечного тракта, обнаруженного при вскрытии павших животных, а с другой стороны - с угнетением темпов анаболических процессов наивысшей дозой препарата.

Достоверное (р<0,05) увеличение прироста живой массы мышей, получавших дозы 1/10 и 1/20 от ЛД50 по сравнению с контролем, вероятно, связано с характерным, как и для других антибактериальных соединений, ростостиму-лирующим действием флорфеникола.

При оценке детоксицирующей функции печени на 21 сутки после начала введения препарата было установлено (таблица 4) достоверное (р<0,05) увеличение продолжительности гексеналового сна во всех опытных группах по сравнению с контрольной, что может свидетельствовать об ингибировании флорфе-

николом микросомальных ферментов гепатоцитов и замедлении метаболизма гексенала.

Результаты пробы плаванием свидетельствуют (таблица 4), что длительное применение лекарственного средства не влияет на компенсаторно-приспособительные способности организма. Продолжительность плавания мышей в опытных и контрольной группах достоверно не отличалась.

Табл. 4. Влияние антибактериального препарата на функциональное состояние __организма мышей_

Доза от ЛД50 Продолжительность сна (мин.) Время плавания (мин.)

21 день 31 день 21 день 31 день

1/5 52,49±2,96* - - -

1/10 44,51±3,46* 18,07+1,02 10,38±0,42 9,47±0,76

1/20 34,63±3,08* 18,77±1,88 10,06±0,59 9,31±0,38

Контроль 22,10±3,10 18,27±1,47 11,02±0,40 9,68±0,42

*р<0,05

Достоверное (р<0,05) увеличение весовых коэффициентов печени мышей после применения препарата в дозах 1/5 и 1/10 от ЛД50 и почек у животных, получавших дозу 1/5 от ЛД50, на 21 сутки опыта может свидетельствовать об участии данных органов в метаболизме и выведении флорфеникола из организма, что в дальнейшем было подтверждено при изучении фармакокинетики.

Следует отметить, что все функциональные изменения в организме мышей, установленные в процессе изучения субхронической токсичности, носили обратимый характер, восстанавливаясь через 10 суток после прекращения введения препарата.

В результате изучения субхронической токсичности антибактериального препарата в опытах на птице установлено, что его длительное применение не вызывало гибели и видимых клинических изменений в организме цыплят опытных групп.

Табл. 5. Динамика изменения массы цыплят в течение опыта

Доза препарата Привес по отношению к начальной массе цыплят (в граммах) через

7 суток 14 суток 21 сутки 31 сутки

5 х терапевтическая +59,8 + 110,5 + 197,3 + 290,4

2 х терапевтическая +55,3 + 103,7 + 196,6 + 283,8

Терапевтическая + 119,5* + 147,5* + 229,7* + 292,5

Контроль + 60,5 + 99,8 + 192,5 + 289,7

*р<0,05

Применение препарата в терапевтической дозе приводило к достоверному (р<0,05) увеличению интенсивности прироста массы цыплят по сравнению с остальными опытными и контрольной группой (таблица 5), что свидетельству-

ет о возможном стимулирующем действии флорфеникола, как и других антибиотиков, на течение анаболических процессов у птиц в данной дозе. Однако уже через 10 суток после отмены лекарственного средства привес в этой группе достоверно не отличался от контроля.

Табл. 6. Клинические показатели крови цыплят на 21 и 31 сутки опыта

Показатели/доза 5 х терапевтическая 2 х терапевтическая Терапевтическая Контроль

21 сутки

Лейкоциты (тыс/мкл) 11,45±1,31* 11,14±0,62* 14,78±1,11* 16,74±3,01

о4 га" 2 £ Базофилы 1,50±0,36 1,20±0,20 1,25±0,27 1,33±0,39

Эозинофилы 2,00±0,37 2,33±0,62 2,80±0,60 2,00±0,72

га о. и Псевдоэозинофилы 50,17±2,66* 45,55±1,59* 52,85±1,94* 42,96±3,57

X >5 Лимфоциты 45,00±2,13* 49,42±1,99* 41,43±2,44* 52,71±4,22

Моноциты 1,33±0,39 1,50±0,54 1,67±0,77 1,00±0,58

31 сутки

Лейкоциты (тыс/мкл) 10,10±0,72 10,80±1,02 11,52±0,70 11,34±0,73

се Базофилы 1 1 1 1

Эозинофилы 1,75±0,54 1,85±0,65 1,50±0,54 1,66±0,77

га а и Псевдоэозинофилы 45,98±1,47 45,37±1,89 43,12±0,74 44,33±2,61

о ¡4 >Я Лимфоциты 47,00±3,26 46,00±2,19 46,83±2,67 47,62±3,03

Моноциты 1,21±0,13 1,02±0,55 1,38±0,73 1,28±0,72

*р<0,05

Основные клинические показатели крови цыплят опытных групп (содержание эритроцитов, тромбоцитов, гемоглобина, гематокрит, цветной показатель и СОЭ) на 21 сутки после начала опыта достоверно (р>0,05) не отличались от показателей контрольной группы. Однако при анализе лейкограммы (таблица 6) после двадцатидневного применения препарата у цыплят опытных групп установлено возникновение относительного лейкоцитоза, сопровождающегося достоверным (р<0,05) уменьшением общего количества лейкоцитов, на фоне которого происходило достоверное увеличение содержания нейтрофилов (псевдоэозинофилов) и снижение числа лимфоцитов по сравнению с контролем.

Уменьшение общего числа лейкоцитов за счет снижения количества лимфоцитов (агранулоцитов) может свидетельствовать об угнетающем действии препарата при длительном двадцатидневном применении в большей степени на лимфопоэз, чем на костномозговое кроветворение.

Через 10 суток после отмены препарата (таблица 6) лейкограмма крови птиц опытных групп достоверно (р>0,05) не отличалась от контроля, что свидетельствует об обратимом влиянии препарата на систему кроветворения.

По результатам биохимического анализа крови после двадцатидневного применения препарата у цыплят опытных групп наблюдали достоверное (р<0,05) увеличение содержания АЛТ в сыворотке крови (таблица 7).

Табл. 7. Биохимические показатели крови цыплят на 21 сутки опыта

Доза препарата АЛТ (мкмоль/л) АСТ (мкмоль/л) Мочевина (ммоль/л) Креатинин (мкмоль/л)

5 х терапевтическая 28,50±2,07* 166,13±13,20 1,88±0,07* 42,12±3,14*

2 х терапевтическая 28,63±3,14* 164,38±8,54 1,75±0,10* 39,88±2,60*

Терапевтическая 30,37±1,59* 153,88±5,16 1,40±0,12 36,19±2,71

Контроль 26,63±1,44 149,88±11,07 1,21±0,11 32,50±2,60

*р<0,05

Учитывая, что при нарушении функции печени, как правило, активность аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы изменяется одновременно, то полученные данные свидетельствуют только о возможной тенденции развития гепатотоксического действия при длительном применении флорфе-никола.

Содержание креатинина и мочевины в сыворотке крови цыплят, получавших дозы, превышающие терапевтическую в 2 и 5 раз, после двадцатидневного введения препарата были достоверно (р<0,05) выше, чем в контроле (таблица 7), и возрастали с увеличением дозы, что может свидетельствовать о возможном развитии дозозависимого нефротоксического эффекта при длительном применении препарата. Очевидно, это связано с участием почек в процессе выведения флорфеникола из организма.

Через 10 суток после отмены препарата достоверных различий в функции печени и почек у цыплят опытных и контрольной групп не наблюдалось, что говорит об обратимости изменений, происходящих в организме птиц под воздействием флорфеникола.

Следует отметить, что изменения функции внутренних органов не сопровождались достоверными изменениями их весовых коэффициентов, что может свидетельствовать о начальной стадии развития токсического эффекта в организме цыплят.

Так как длительность применения препарата с лечебной целью не должна превышать 5 суток, то развитие вышеописанных побочных эффектов, возникающих при длительном применении, практически исключается. Тем не менее, выявленные токсикологические свойства были учтены при разработке инструкции по применению препарата.

Фармакокинетические исследования показали, что флорфеникол быстро всасывался из желудочно-кишечного тракта и попадал в кровь (график 1), где уже через 20 минут обнаруживался в концентрации, в 3-8 раз превышающей

МПК для большинства чувствительных микроорганизмов, и сохранялся на протяжении 9 часов, что может свидетельствовать о быстром поступлении антибиотика в экстраваскулярные ткани.

График 1. Фармакокинетика флорфеникола в сыворотке крови цыплят

15

0123456789 10 11 12

время после введения, ч

Полученные средние значения концентраций флорфеникола в сыворотке крови цыплят подвергались фармакокинетической оценке в рамках двухкамерной модели с учетом всасывания, описываемые уравнением:

С = Ае"' + Вер'-(А+В) е"к', где С - концентрация флорфеникола в сыворотке;

А и В - величина отрезка на оси ординат при экстраполяции прямой к моменту времени 1=0 в фазу распределения и элиминации, соответственно; а, Р, к, е - фармакокинетические константы.

Основные фармакокинетические параметры флорфеникола характеризовались: высоким значением максимальной концентрации (Стах=14,1 мкг/мл), быстрым временем ее достижения (1тах=40 мин), слабой степенью связывания с белками сыворотки, о чем свидетельствует высокое значение кажущегося объема распределения препарата в центральной камере (Ус1с=4930,3 мл/кг), высоким объемом стационарного распределения препарата (Ус155=18814,6 мл/кг), что является показателем хорошего проникновения антибиотика в органы и ткани.

В почках, легких и сердце цыплят максимальные концентрации флорфеникола отмечали уже через 20 минут (соответственно 10,99, 16,95 и 10,17 мкг/г), а в скелетной мускулатуре и печени через 1 час после введения препарата (соответственно 6,75 и 8,43 мкг/г).

По результатам изучения содержания флорфеникола в органах и тканях цыплят, для печени, почек, легких и скелетной мускулатуры были рассчитаны

коэффициенты распределения (Кр), как отношение концентрации флорфенмко-ла в органе к концентрации его в сыворотке крови (диаграмма I), что характеризует степень проникновения антибиотика в ткани организма и способность последних к избирательному захвату фармакологических веществ из кровяного русла.

Диаграмма I. Коэффициенты распределения флорфеникола в органах цыплят

п*ч*кь почки легкие мышцы

□ 20 минут □ 3 часа □ 6 часов

Анализ коэффициентов свидетельствует о хорошем распределении флорфеникола а органах с интенсивным кровоснабжением (Кр, для легких в среднем составил 1,42, для печени 1,87, для почек 0,90) и о более низкой степени проникновения антибиотика в умеренно васкуляризированную мышечную ткань (К,, в среднем составил 0,52). Высокие концентрации флорфеникола, обнаруженные в печени и почках цыплят, подтверждают участие этих органов в накоплении, метаболизме и выделении препарата.

Следует отметить, что концентрация флорфеникола в органах превышала сывороточную (Кр > 1) и поддерживалась на высоком уровне в течение 18-24 часов, что обеспечивает лучший терапевтический эффект препарата, так как колибактериоз и сальмонеллез цыплят, как правило, характеризуются локализацией возбудителя в паренхиматозных органах.

Результаты изучения распределения флорфеникола в желудочно-кишечном тракте свидетельствуют о способности антибиотика быстро создавать в нем концентрации (348 мкг/г в желудке, 89 мкг/мл в тонком кишечнике, 16 мкг/г в толстом кишечнике), в несколько раз превосходящие антибактериальные (1,55 - 6,25 мкг/мл) для большинства чувствительных микроорганизмов, которые поддерживаются на протяжении 18-24 часов, что является особенно актуальным при лечении кол и бактериоза и сальмонеллеза, когда возбудитель локализуется в кишечнике.

В процессе изучения фармакокинетики флорфеникола в организме птиц при постоянном поступлении препарата установлено, что его антибактериальные концентрации в сыворотке крови (1,3 мкг/мл) поддерживались с незначительными колебаниями на протяжении 5 дней, что обеспечит достижение терапевтического уровня препарата в организме цыплят в производственных условиях на протяжении всего курса лечения.

При определении сроков выведения остаточных количеств флорфеникола установлено, что антибиотик не аккумулируется в органах и тканях и быстро выводится из организма. Через сутки после окончания применения препарата флорфеникол обнаруживался только в коже, жировой ткани, печени и легких в концентрации 0,2 - 0,3 мкг/г. На вторые сутки после последнего ведения препарата антибиотик регистрировали в следовых количествах только в печени. На 3 сутки после окончания применения препарата содержание флорфеникола в органах было ниже предела количественного определения метода (0,1 мкг/г), что дает основание рекомендовать убой птиц на мясо по истечении этого срока.

Изучение терапевтической эффективности препарата в разных дозах показало (таблица 8), что при повышении дозы лекарственного средства с 2,0 до 2,5 мл/л воды (с 20 до 25 мг/кг массы тела) достоверных различий (р>0,05) в показателях сохранности (96,71% и 96,75%, соответственно) и среднесуточных привесов цыплят (48,9 г и 48,8 г, соответственно) не наблюдалось. Применение антибактериального препарата в дозе 1,5 мл/л воды (15 мг/кг массы тела) было менее эффективным, так как обеспечивало сохранность лишь 91,19% цыплят.

Табл. 8. Эффективность антибактериального препарата в разных дозах

Показатели Доза препа рата по группам, мл/л воды

1,5 2,0 2,5

Кол-во цыплят в группе (голов) 21000 21000 21000

Возраст цыплят (дней) 2-6 2-6 2-6

Курс лечения (дней) 5 5 5

Среднесуточный привес (г) 44,5 48,9 48,8

Масса в конце откорма (г) 1895 1994 1987

Кол-во павших цыплят (голов) 1850 690 681

Сохранность(%) 91,19 96,71 96,75

Так как эффективность препарата в дозах 2,0 и 2,5 мл/л воды практически одинакова, то с экономической точки зрения более целесообразно применять лекарственное средство в суточной дозе 2,0 мл/л воды.

При сравнении эффективности лекарственных средств на основе докси-циклина и энрофлоксацина и антибактериального препарата на основе флорфеникола при колибактериозе и сальмонеллезе цыплят установлено (таблица 9), что его применение обеспечило высокую сохранность птиц, которая на 2,5 -4,5%, в зависимости от заболевания, превышала эффективность препаратов

сравнения, позволило сократить гибель цыплят в 1,5 - 3,5 раза и повысить среднесуточные привесы на 3 г, по сравнению с лекарственными средствами на основе доксициклина и энрофлоксацина.

Табл. 9. Эффективность антибактериального препарата на основе флорфенико-

Показатели Препарат на основе флорфеникола Энрофлокс Препарат на основе флорфеникола Польодоксин, Киноэкс Препарат на основе флорфеникола Доксивит

Колибактериоз Колибактериоз, осложненный стрептококкозом и стафилококкозом Сальмонеллез

Количество цыплят (голов) 21600 28800 64180 62900 33000 33000

Пало цыплят (голов) 575 2071 3657 5815 1386 2211

Срок лечения (дней) 4 5 3 3 3 3

Количество курсов 1 2 2 3 3 3

Среднесуточный привес (г) 47,36 44,03 43,20 39,80 45,90 43,30

Сохранность(%) 97,13 92,52 94,45 91,24 95,80 93,30

Лекарственное средство хорошо переносилось птицей, в том числе и при назначении повторными курсами, не вызывало осложнений при применении в сочетании со средствами специфической профилактики.

Таким образом, результаты изучения эффективности в производственных условиях позволяют считать, что разработанный антибактериальный препарат на основе флорфеникола в суточной дозе 2 мл/л воды (20 мг/кг массы тела по действующему веществу) в течение 3-5 дней может быть использован в комплексе ветеринарных мероприятий при колибактериозе и сальмонеллезе цыплят.

Результаты проведенных исследований по разработке лекарственной формы, методов контроля качества, изучению фармако-токсикологических свойств и терапевтической эффективности были использованы при разработке технических условий и инструкции по применению антибактериального препарата на основе флорфеникола.

ВЫВОДЫ

1. Разработан новый антибактериальный, препарат на основе флорфени-кола в форме раствора для орального применения для лечения колибактериоза и сапьмонеллеза цыплят. Установлено, что флорфеникол по антибактериальной активности в отношении эшерихий, сальмонелл, пастерелл, стафилококков и стрептококков в 2-16 раз превосходит хлорамфеникол. Флорфеникол активен в отношении микроорганизмов, устойчивых к хлорамфениколу.

2. Антибактериальный препарат на основе флорфеникола отвечает стандартным требованиям, предъявляемым к лекарственным формам для орального применения и стабилен в течение 2 лет хранения.

3. Антибактериальный препарат на основе флорфеникола по параметрам острой токсичности согласно ГОСТ 12.1.007-76 относится к IV классу опасности - вещества малоопасные (ЛД50 для белых мышей составляет 34628 мг/кг), не обладает кумулятивными свойствами (КкуМ - 2,36) и имеет большую терапевтическую широту (терапевтический индекс равен 128,5).

4. Двадцатидневное применение антибактериального препарата белым мышам в дозах 1/5, 1/10 и 1/20 от ЛД50 не вызывает нарушения компенсаторно-приспособительных способностей, но приводит к обратимому нарушению де-токсицирующей функции печени, восстанавливающейся до физиологической нормы через 10 дней после отмены препарата.

5. Длительное применение антибактериального препарата в дозах 20, 40 и 100 мг/кг может вызывать временные функциональные изменения в организме птиц со стороны системы кроветворения (лейкопения), печени (повышение активности АЛТ), а в дозах 40 и 100 мг/кг - почек (увеличение содержания креа-тинина и мочевины в сыворотке крови), не сопровождающиеся достоверными изменениями весовых коэффициентов внутренних органов, и восстанавливающиеся до физиологической нормы через 10 дней после отмены препарата.

6. Фармакокинетика флорфеникола после однократного перорального введения птице в дозе 20 мг/кг массы тела характеризуется высоким значением максимальной концентрации антибиотика (Стах= 14,10 мкг/мл) и быстрым временем ее достижения (1 тах = 40 мин), большим объемом стационарного распределения препарата (Ус155= 18814,6 мл/кг) и антибактериальными концентрациями в органах, тканях и желудочно-кишечном тракте, сохраняющимися на протяжении 18-24 часов.

7. Применение антибактериального препарата цыплятам с питьевой водой в дозе 20 мг/кг массы тела в течение 5 суток позволяет на протяжении всего курса лечения поддерживать антибактериальные концентрации флорфеникола в организме птиц.

8. Остаточные количества флорфеникола после пятидневного применения антибактериального препарата с водой в суточной дозе 20 мг/кг массы тела полностью выводятся из организма птиц через 3 суток.

9. Применение антибактериального препарата при колибактериозе и сальмонеллезе цыплят, в том числе осложненных стафилококкозом и стрепто-

коккозом, в суточной дозе 20 мг/кг массы тела в течение 3-5 дней обеспечивает сохранность поголовья птиц на уровне 92,1-97,1%.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. В результате проведенных исследований разработано и предложено для использования в ветеринарной практике новое антибактериальное лекарственное средство на основе флорфеникола в форме раствора для орального применения для лечения колибактериоза и сальмонеллеза цыплят.

2. Результаты исследований нашли отражение в разработанной нормативной документации, которая передана для регистрации лекарственного средства в Российской Федерации в Россельхознадзор:

- технических условиях ТУ 9348-053-47611900-2007 «Флорикол раствор для орального применения»;

- инструкции по применению Флорикола раствора для орального применения в ветеринарии.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Виолин Б.В., Игнатова И.Д., Игнатова А.Д. Изучение токсичности лекарственной формы флорфеникола для перорального применения в опытах на лабораторных животных. // Сборник научных трудов ВГНКИ, 2006.-Т. 67. - С. 175-181.

2. Игнатова И.Д., Виолин Б.В. Изучение токсичности флорфеникола в опытах на цыплятах. // Аграрная наука. - 2006. - №5. - С.29-32.

3. Игнатова И.Д., Русаков C.B. Изучение фармакокинетики лекарственной формы флорфеникола в организме цыплят. // Аграрная наука. -2007 - №3. - С. 30-33.

Заказ № 97/02/07 Подписано в печать 19 02 2007 Тираж 100 экз Уел пл 1,25

000 "Цифровичок", тел (495) 797-75-76, (495) 778-22-20 )) www.cfr.ru; e-maihinfo@cfr.ru

 
 

Оглавление диссертации Игнатова, Ирина Дмитриевна :: 2007 :: Москва

ВВЕДЕНИЕ

1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР

1.1 .Бактериальные инфекции птиц

1.1.1. Колибактериоз

1.1.2. Сальмонеллез

1.1.3. Смешанные инфекции птиц

1.2. Химиотерапия бактериальных инфекций птиц

1.3. Антибиотикорезистентность микроорганизмов и пути ее преодоления

1.4. Антибиотики группы амфениколов

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.2.1. Изучение чувствительности микроорганизмов к флорфениколу и хлорамфениколу

2.2.2. Разработка лекарственной формы антибактериального препарата на основе флорфеникола

2.2.3. Химико-фармацевтические показатели антибактериального препарата

2.2.4. Изучение стабильности антибактериального препарата

2.2.5. Изучение острой токсичности препарата в опыте на белых мышах

2.2.6. Изучение острой токсичности антибактериального препарата в опыте на цыплятах

2.2.7. Изучение субхронической токсичности антибактериального препарата в опыте на белых мышах

2.2.8. Изучение субхронической токсичности антибактериального препарата в опыте на цыплятах

2.2.9. Изучение фармакокинетики флорфеникола в организме цыплят после однократного применения антибактериального препарата

2.2.10. Изучение фармакокинетики флорфеникола в организме цыплят при курсовом применении антибактериального препарата

2.2.11. Изучение сроков выведения остаточных количеств флорфеникола из организма цыплят

2.2.12. Изучение терапевтической эффективности антибактериального препарата при колибактериозе и сальмонеллезе птиц в производственных условиях

3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

ВЫВОДЫ

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

 
 

Введение диссертации по теме "Ветеринарная фармакология с токсикологией", Игнатова, Ирина Дмитриевна, автореферат

Актуальность темы Бактериальные инфекции птиц представляют серьезную проблему для современного птицеводства, как в Российской Федерации, так и во многих зарубежных странах, являясь одной из основных причин гибели птицы. Среди них наиболее распространены следующие заболевания: колибактериоз, сальмонеллез, стрептококкоз, стафилококкоз, респираторный микоплазмоз, пастереллез, которые наносят большой экономический ущерб, складывающийся из снижения яйценоскости и привесов, гибели эмбрионов, цыплят и взрослой птицы, затрат на проведение ветеринарно санитарных мероприятий [3, 16, 21, 26, 69, 151]. Неблагополучие хозяйств по бактериальным инфекциям в значительной мере связано со скрытым носительством птицей сальмонелл, стафилококков, стрептококков, псевдомоноса, эшерихий, микоплазм, часто имеющих множественную лекарственную резистентность. Эти же микроорганизмы обуславливают секундарные инфекции, осложняя течение большинства вирусных и протозойных заболеваний [17, 39, 45, 81, 100]. Циркуляция условно-патогенной микрофлоры среди поголовья птиц в хозяйстве, передача ее от взрослой птицы молодняку, а также другим видам животных (и наоборот) приводит к повышению ее вирулентных свойств и создает благоприятные условия для генетических мутаций микроорганизмов [20,29,61]. Распространение лекарственной резистентности среди микроорганизмов, обуславливает риск не только для здоровья животных, но и для человека, так как многие из них (сальмонеллы, эшерихий, стафилококки, стрептококки, кампилобактерии и др.), контаминируя продукты животноводства, являются причиной возникновения пищевых токсикоинфекций [195, 205].Таким образом, бактериальные инфекции нтиц представляют собой не только ветеринарную, но и медико-экологическую проблему. Поэтому их следует рассматривать как с позиции опасности для птиц, т.е. в аспекте противоэпизоотической защиты, так и в аспекте противоэпидемической защиты, т.е. охраны здоровья людей [84, 163]. Меры борьбы с бактериальными инфекциями сельскохозяйственных птиц включают в себя комплекс ветеринарно-санитарных мероприятий, среди которых немаловажную роль играет использование антибактериальных лекарственных средств [26, 50, 59, 62, 120]. Развитие резистентности у микроорганизмов является основным фактором, ограничивающим эффективность антибактериальных препаратов. В связи с этим актуальным становится поиск новых путей предупреждения формирования устойчивости возбудителей бактериальных инфекций, одним из которых является химическая трансформация молекул антибактериальных веществ, направленная на создание новых препаратов, активных в отношении устойчивых микроорганизмов [24, 58, 91, 129, 134]. Хлорамфеникол (левомицетин) в течение многих лет считался одним из самых эффективных антибиотиков в медицинской и ветеринарной практике из-за широкого спектра антимикробного действия и большого объема распределения в органах и тканях [5, 85, 99]. Однако, установленное в последние годы токсическое влияние антибиотика на гемопоэз и иммунную систему, а также широкое распространение левомицетинрезистентных микроорганизмов значительно ограничили его применение в ветеринарии и медицине. В настоящее время из-за потенциального риска токсического воздействия остаточных количеств хлорамфеникола, содержащихся в продукции животноводства, на организм человека антибиотик запрещен к применению продуктивным животным в США и странах Евросоюза [139, 146, 152, 238]. В связи с этим возникла необходимость в разработке и изучении аналогов хлорамфеникола, обладающих, наряду с высокой антибактериальной активностью, отсутствием побочных эффектов, характерных для данного антибиотика. Таким соединением оказался флорфеникол структурный аналог хлорамфеникола, полученный путем химического синтеза. Особенностью строения его молекулы является отсутствие нитрогруппы и замещение гидроксильной группы на атом фтора, что обуславливает снижение токсического влияния на гематопоэтическую систему, высокую антибактериальную активность и предотвращение развития к нему бактериальной резистентности [252, 161, 179]. Кроме того, в последние годы наметилась тенденция к разработке и использованию исключительно ветеринарных антибиотиков, не применяющихся в гуманной медицине, к которым, в том числе, относится флорфеникол. Это значительно снижает риск для здоровья человека за счет сокращения возможности развития перекрестной резистентности у микроорганизмов, потенциально опасных как для животных, так и для людей [116, 197]. На основании вышеизложенного, а также, учитывая, что флорфеникол не применялся ранее в ветеринарной практике на территории Российской Федерации, и в настоящее время к нему не должно существовать резистентных штаммов микроорганизмов, нам представляется целесообразным разработать препарат на основе флорфеникола в форме раствора для орального применения для лечения бактериальных инфекций птиц. Внедрению нового препарата в ветеринарную практику должно предшествовать всестороннее изучение его антибактериального спектра действия, фармако-токсикологических свойств и терапевтической эффективности.Цель работы: Разработать на основе флорфеникола новый антибактериальный препарат для лечения колибактериоза и сальмонеллеза цыплят. Задачи исследования: 1. Обосновать состав и разработать лекарственную форму антибактери- ального препарата на основе флорфеникола. 2. Разработать методы контроля качества антибактериального препарата на основе флорфеникола и изучить его стабильность в процессе хранения. 3. Изучить острую и субхроническую токсичность антибактериального препарата в опытах на лабораторных животных и цыплятах. 4. Изучить фармакокинетику флорфеникола в организме цыплят после однократного и многократного введения антибактериального препарата. 5. Определить сроки выведения остаточных количеств флорфеникола из организма цыплят и установить сроки возможного использования продукции птицеводства после применения антибактериального препарата на основе флорфеникола. 6. Определить терапевтическую эффективность антибактериального пре- парата на основе флорфеникола при колибактериозе и сальмонеллезе цыплят в производственных условиях. 7. Разработать проекты технических условий и инструкции по примене- нию антибактериального препарата на основе флорфеникола и представить их на утверждение в установленном порядке. Научная новизна: Впервые разработан антибактериальный препарат на основе флорфеникола в форме раствора для орального применения для лечения колибактериоза и сальмонеллеза цыплят. Установлена чувствительность хлорамфениколрезистентных микроорганизмов к флорфениколу. Изучены фармако-токсикологические свойства и определена терапевтическая эффективность антибактериального препарата на основе флорфеникола при лечении колибактериоза и сальмонеллеза цыплят Практическая значимость работы: 1. Разработан и предложен для ветеринарной практики новый антибакте- риальный препарат на основе флорфеникола в форме раствора для орального применения для лечения колибактериоза и сальмонеллеза цыплят. 2. Разработаны методы контроля качества антибактериального препарата и установлен срок его годности. 3. Определены сроки возможного убоя птиц на мясо после применения антибактериального препарата на основе флорфеникола. 4. Разработана схема применения антибактериального препарата на осно- ве флорфеникола при колибактериозе и сальмонеллезе цыплят. 5. Разработана нормативная документация технические условия и инст- рукция по применению антибактериального препарата на основе флорфеникола. Основные положения диссертации, выносимые на защиту: 1. Научное обоснование состава антибактериального препарата на основе флорфеникола. 2. Качественные и количественные методы контроля антибактериального препарата на основе флорфеникола. 3. Результаты изучения стабильности антибактериального препарата на основе флорфеникола. 4. Результаты изучения острой и субхронической токсичности антибакте- риального препарата на основе флорфеникола в опытах на лабораторных животных и цыплятах.Результаты изучения фармакокинетики флорфеникола и определения сроков выведения остаточных количеств антибиотика из организма цыплят после применения препарата. 6. Результаты изучения терапевтической эффективности антибактериаль- ного препарата при колибактериозе и сальмонеллезе цыплят. 7. Практические предложения по применению антибактериального пре- парата на основе флорфеникола в птицеводстве.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Фармако-токсикологические свойства и терапевтическая эффективность антибактериального препарата на основе флорфеникола"

выводы

1. Разработан новый антибактериальный препарат на основе флорфеникола в форме раствора для орального применения для лечения колибактериоза и сальмонеллеза цыплят. Установлено, что флорфеникол по антибактериальной активности в отношении эшерихий, сальмонелл, пастерелл, стафилококков и стрептококков в 2-16 раз превосходит хлорамфеникол. Флорфеникол активен в отношении микроорганизмов, устойчивых к хлорамфениколу.

2. Антибактериальный препарат на основе флорфеникола отвечает стандартным требованиям, предъявляемым к лекарственным формам для орального применения и стабилен в течение 2 лет хранения.

3. Антибактериальный препарат на основе флорфеникола по параметрам острой токсичности согласно ГОСТ 12.1.007-76 относится к IV классу опасности - вещества малоопасные (ЛД50 для белых мышей составляет 34628 мг/кг), не обладает кумулятивными свойствами (Ккум - 2,36) и имеет большую терапевтическую широту (терапевтический индекс равен 128,5).

4. Двадцатидневное применение антибактериального препарата белым мышам в дозах 1/5, 1/10 и 1/20 от ЛД50 не вызывает нарушения компенсаторно-приспособительных способностей, но приводит к обратимому нарушению детоксицирующей функции печени, восстанавливающейся до физиологической нормы через 10 дней после отмены препарата.

5. Длительное применение антибактериального препарата в дозах 20, 40 и 100 мг/кг может вызывать временные функциональные изменения в организме птиц со стороны системы кроветворения (лейкопения), печени (повышение активности АЛТ), а в дозах 40 и 100 мг/кг - почек (увеличение содержания креатинина и мочевины в сыворотке крови), не сопровождающиеся достоверными изменениями весовых коэффициентов внутренних органов, и восстанавливающиеся до физиологической нормы через 10 дней после отмены препарата.

6. Фармакокинетика флорфеникола после однократного перорального введения птице в дозе 20 мг/кг массы тела характеризуется высоким значением максимальной концентрации антибиотика (Стах= 14,10 мкг/мл) и быстрым временем ее достижения (t max = 40 мин), большим объемом стационарного распределения препарата (Vdss= 18814,6 мл/кг) и антибактериальными концентрациями в органах, тканях и желудочно-кишечном тракте, сохраняющимися на протяжении 18-24 часов.

7. Применение антибактериального препарата цыплятам с питьевой водой в дозе 20 мг/кг массы тела в течение 5 суток позволяет на протяжении всего курса лечения поддерживать антибактериальные концентрации флорфеникола в организме птиц.

8. Остаточные количества флорфеникола после пятидневного применения антибактериального препарата с водой в суточной дозе 20 мг/кг массы тела полностью выводятся из организма птиц через 3 суток.

9. Применение антибактериального препарата при колибактериозе и сальмонеллезе цыплят, в том числе осложненных стафилококкозом и стреп-тококкозом, в суточной дозе 20 мг/кг массы тела в течение 3-5 дней обеспечивает сохранность поголовья птиц на уровне 92,1-97,1%.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. В результате проведенных исследований разработано и предложено для ветеринарной практики новое антибактериальное лекарственное средство на основе флорфеникола в форме раствора для орального применения для лечения колибактериоза и сальмонеллеза цыплят.

2. Результаты исследований нашли отражение в разработанной нормативной документации (технические условия ТУ 9348-053-47611900-2007 «Фло-рикол раствор для орального применения» и инструкция по применению Флорикола раствора для орального применения в ветеринарии), которая передана для регистрации лекарственного средства в Российской Федерации в Россельхознадзор.

 
 

Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2007 года, Игнатова, Ирина Дмитриевна

1. Алиев А.Д. Профилактика колибактериоза бройлеров в условиях птицефабрик. // Материалы международной юбилейной научно-практической конференции СПбГАВМ. 2004. - С. 148-150.

2. Алиев А.Д., Ахаев Г.А. Некоторые вопросы эпизоотологии пуллороза-тифа птиц в Дагестанской АССР. // В кн.: Профилактика болезней птиц в условиях Дагестана. СКЗНИВИ. - Новочеркасск. - 1982. - С. 15-19.

3. Андреева Н.Л., Дмитриева М.Е., Климов А.А., Фогель Л.С. Изучение бактериальных инфекций птиц на птицефабриках. // Ветеринария. -2004.-№5.-С. 14-16.

4. Антибиотики и антибиоз в сельском хозяйстве. / Под ред. А.Н. Полина. М.: Колос. - 1981. - С. 29-103.

5. Апатенко В.М. Смешанные инфекции сельскохозяйственных животных. Киев.: Урожай. - 1990. - 172 с.

6. Артемьева С.А. Колибактериоз птиц. Л.: Колос. - 1977. - 86 с.

7. Артемьева Т.Н. Роль стрептококков и клостридий в этиопатогенезе желудочно-кишечных заболеваний бройлеров. // Актуальные проблемы ветеринарной медицины.: Сб. научн. тр. СПбГАВМ. 2002. - № 134. -С. 25-26.

8. Архангельский И.Н. Проблемы сальмонеллезов животных. // Тез. Докл. Всесоюзной межвед. Конф. Симферополь. - 1982. - С. 12-14.

9. Ахаев Г.А., Иммиев Я.И. Неспецифическая профилактика колибактериоза птиц аэрозолями антимикробных препаратов. // В кн.: Профилактика болезней птиц в условиях Дагестана. СКЗНИВИ. - Новочеркасск. -1982. - С. 10-15.

10. И.Ахмедов М.М., Аллахвердиев М.С., Салихова Н.И. Некоторые вопросы эпизоотологии сальмонеллеза птиц. // Вестник ветеринарии. 1996. -№2.-С. 15-17.

11. Ахмедов A.M., Бурханова Х.К. Колибактериоз цыплят и куринных эмбрионов.//Ветеринария. 1965.-№8.-С. 30-31.

12. Бабаева М.В., Виноходов О.В. Опыт серотипирования и изучения патогенных свойств возбудителя колибактериоза птиц. // Ветеринария. -1984.-№Ю.-С. 68-69.

13. Байдевлятов А.Б. Научные аспекты этиологии и патогенеза сальмо-неллезов птиц. // Интенсификация птицеводства: Сб. науч. тр./ Харьковский гос. аграр. ун-т. Харьков. - 1991. - С. 13-16.

14. Беленький M.J1. Элементы количественной оценки фармакологического эффекта. JL: Медгиз. - 1963. - С. 43-87.

15. Бессарабов Б.Ф. Болезни кур. -М.: Россельхозиздат. 1983. - 13 с.

16. Бессарабов Б.Ф. Болезни сельскохозяйственной птицы (инфекционные болезни). М.: Колос. - 1970. - 184 с.

17. Бессарабов Б.Ф., Сумкова Н.К. Сальмонеллез птиц. Лекция. М.: МГАВМиБ. - 1998. - 20 с.

18. Бовкун Г.Ф. Роль микрофлоры при заболевании органов пищеварения у цыплят. // Ветеринария. 2004. - №4. - С. 14-16.

19. Бондаренко В.М. Общий анализ представлений о патогенных и условно-патогенных бактериях. // Микробиология. 1997. - №4. - С. 20-25.

20. Борисенкова А.Н. Проблема бактериальных болезней в промышленном птицеводстве. // Сб. мат. научной сессии РАСХН. 1999. - Т.2. -С. 236-238.

21. Борисенкова А.Н. Особенности проблемы бактериальных болезней птиц в современных условиях промышленного птицеводства. // Материалы международной Юбилейной научно-практической конференции СПбГАВМ. 2004. - С. 108-117.

22. Борисенкова А.Н., Рождественская Т.Н. Токсигенные свойства кишечной палочки и их роль в патологии птиц. // Ветеринария. 1994. - №3.- С. 27-29.

23. Бриан JI.E. Бактериальная резистентность и чувствительность к хими-опрепаратам: Пер. с англ. М.: Медицина. - 1984. - 272 с.

24. Бурлаков В.А., Родионова В.Б., Интизаров М.М. Проблемы борьбы и профилактики желудочно-кишечных болезней молодняка животных. // Ветеринарная медицина. 2002. - №1. - С. 6-7.

25. Бурун В.Г. Опыт работы ветеринарной службы птицефабрики. // Ветеринария.-2001. №5.-С. 13-15.

26. Бурханова Х.К. Свойства Е. coli, выделенных от птиц. // Ветеринария.- 1980. -№ 10.-С. 66-68.

27. Валеев Ф.Н., Бутакова Е.П. Состояние иммунной системы кур при ассоциированной инфекции. // Материалы международной научно-практической конференции УГИВМ. 1999. - С. 16-17.

28. Веткорминфо. Лекарственные средства для животных, кормовые добавки, корма. // Справочник под ред. Б.В. Виолина. М.: Издательский дом Медол. - 2005. - С. 127 - 134.

29. Вильшанская Ф.Л. Микрофлора кишечника и методы выявления дис-бактериоза // Мед. сестра. 1987. - № 10. - С. 12-16.

30. Виолин Б.В., Ковалев В.Ф. Влияние ингибиторов микросомальных ферментов на фармакокинетику левомицетина. // Тезисы докладов всесоюзной научно-практической конференции. Сигулда. - 1990. - С. 217-218.

31. Виолин Б.В., Абрамов В.Е., Ковалев В.Ф. Химиотерапия при бактериальных и паразитарных болезнях. // Ветеринария. 2001. - № 1. - С. 17-18.

32. Временная инструкция по проведению работ с целью определения сроков годности лекарственных средств на основе метода «ускоренного старения» при повышенной температуре. И 42-2-82. Приказ Минздрава СССР и Минмедпрома № 430/224 от 18.04.83 г.

33. Гаджиев К.Ш., Халилов А.Г. Сальмонеллез у цыплят. // Ветеринария.1989.-С. 62-63.

34. Гацура В.Н. Методы первичного фармакологического исследования биологически активных веществ. // М.: Медицина. - 1976. - С. 5-16, 125, 128.

35. Головко А.Н. Фимбральные адгезины энтеротоксигенных эшерихий. // Ветеринария. 1993. - №9. - С. 31-32.

36. Голубева И.В., Килессо В.А., Киселева Б.С. Энтеробактерии: руководство для врачей. -М.: Медицина. 1985. - С. 98-115.

37. Горюнов Н.А. Выращивание цыплят-бройлеров. М.: Россельхозиздат. -1981.-С. 1-3.

38. Государственная Фармакопея. Издание XI. - М.: Медицина. - 1987,1990.

39. Грачева Н.М., Щетинина И.Н. Клиническая химиотерапия при инфекционных болезнях. М.: Медицина. - 1985. - С. 50-59.

40. Грошева Г.А., Серебряков А.С. Профилактика респираторных заболеваний птицы. М.: Россельхозиздат. - 1978. - 63 с.

41. Грошева Г.А., Малахова А.С., Савич Б.М. Колисептицемия птицы и методы ее диагностики. // Ветеринария. 1970. - №4. - С. 26-30.

42. Гусев В., Светоч Э., Глазков Н., Теймуразов М. Мониторинг возбудителей бактериальных инфекций. // Птицеводство. 2003. - №2. - С. 8-10.

43. Донкова Н.В. Особенности морфофункционального развития цыплят-бройлеров. // Ветеринария. 2004. - №10. - С. 48-50.

44. Евдокимов П.Д. Фармакология антибиотиков и их применение в клинической ветеринарии. JI. - 1981. - 87 с.

45. Жердев В.П., Колыванов Г.Б., Кравцова О.Ю., Левина М.Н., Литвин А.А. Влияние ладастена на фармакокинетику сиднокарба. // Химико-фармацевтический журнал. 2006. - № 11. - С. 8-10.

46. Жуленко В.Н., Рабинович М.И., Таланов Г.А. Ветеринарная токсикология. М.: Колос. - 2004. - С. 9-14.

47. Закомырдин А.А. Ветеринарно-санитарные мероприятия в промышленном птицеводстве. М.: Колос. - 1981. - 272 с.

48. Ибрагимов А.А. Патоморфология и дифференциальная диагностика респираторных болезней птиц. // Ветеринария. 1981. - №9. - С. 42-45.

49. Ибрагимов А.А., Осколов B.C., Голод Я.Р. Патогенез и диагностика смешанной инфекции у птиц. // Ветеринария. 1983. - №12. - С. 33-37.

50. Иммиев Я.И., Рахматулин А.Ф. Изучение эпизоотологии колибакте-риоза птиц. // В кн.: Профилактика болезней птиц в условиях Дагестана. СКЗНИВИ. - Новочеркасск. - 1982. - С. 19-23.

51. Кадымов Р.А., Агаева Э.М., Дунямалиев Г.Э. Значение ассоциации микроорганизмов в возникновении и течении стрептококкоза кур. // Ветеринария. 1989. - №2. - С. 30-32.

52. Капустин А.В. Этиологическая структура эшерихиоза кур. // Сб.науч.тр. ВГНКИ. М. - 2001. - Т. 62. - С.87-90.

53. Кивман Г.Я., Рудзит З.А., Яковлев В.П. Фармакокинетика химиотера-певтических препаратов. М.: Медицина. - 1982. - 256 с.

54. Ковалев В.Ф., Волков И.Б., Виолин Б.В. Антибиотики, сульфаниламиды и нитрофураны в ветеринарии. М.: Агропромиздат. - 1988. - 223 с.

55. Ковалев В.Ф., Волков И.Б., Нечаев JT.A., Убашев А.У., Аристов Б.М., Менгель И.В. Резистентность эшерихий и сальмонелл к применяемым антибиотикам. // Ветеринария. 1989. - №7. - С. 30-31.

56. Кожемяка Н.В. Профилактика болезней кур. // Птицеводство. 2002. -№5.-С. 10-12.

57. Кожемяка Н.В. Санитарные меры основа профилактики заразных болезней в птицеводческих хозяйствах. // Ветеринария. - 1990. - №4. - С. 3-5.

58. Кожемяка Н.В. Эпизоотическая обстановка в птицеводческих хозяйствах и перспективы ее улучшения. // Ветеринария. 1995. -№12. - С. 3-6.

59. Кожемяка Н.В., Самойлова Л.Ф. Ветеринарная защита при выращивании бройлеров. // Ветеринария. -2003. -№3. С. 10-13.

60. Козак С.С., Гусев А.А., Лищук А.П. Профилактика сальмонеллеза в птицеперерабатывающей промышленности. М. - 1992. - 52 с.

61. Колганов А., Перес Куэвас А. Рациональное использование антибиотиков в птицеводстве. // Ветеринария. 1998. - №7. - С. 8-10.

62. Кондрахин И.П., Курилов Н.В., Магахов А.Г. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии. М.: Агропромиздат. - 1985. - С. 55-68.

63. Кононенко Е.О., Малышева Л.А. Испытание эффективности новых лекарственных препаратов для профилактики и лечения колибактериоза птиц. // Вестник ветеринарии. 2002. - №23. - С. 34-36.

64. Кононенко Е.О., Малышева Л.А. Роль колибактериоза в формировании нозологического профиля инфекционной патологии кур. // Вестник ветеринарии. 2003. - №23. - С. 31-34.

65. Конопаткин А.А., Бакулов И.А., Нуйкин Я.В. Эпизоотология и инфекционные болезни сельскохозяйственных животных. М.: Колос. -1984.-С. 291-305,377.

66. Коровин Р.Н. Заразные болезни птиц и разработка мер профилактики. // Ветеринария. 1991. - №6. - С. 3-6.

67. Коровин Р.Н., Зеленский В.П., Грошева Г.А. Лабораторная диагностика болезней птиц. -М: Агропромиздат. 1989. - С. 194-197.

68. Костромитинов Н.А. Современные представления о возникновении резистентных штаммов микроорганизмов к химиотерапевтическим препаратам. // Вестник РАСХН. 2001. - №3. - С. 73-76.

69. Кудрявцев Ф.С., Зеленский В.П., Малыгин А.И. Профилактика болезней птиц. М.: Колос. - 1981. - 199 с.

70. Кузьмин В.А., Урбан В.П., Бойцов А.Г., Козлова Н.С. Антибиотикоре-зистентность энтеробактерий, выделенных от птиц. // Инфекционные болезни сельскохозяйственных животных: Сб. научн. тр. Ленинград. - 1989.-С. 95-100.

71. Куликов Л., Кожемяка Н. Колибактериоз птицы. // Животновод. -1998.-№8.-С. 26-27.

72. Куриленко А.Н., Пименов Н.В., Ленев С.В. Рекомендации по диагностике, профилактике и ликвидации сальмонеллеза кур. М.: МГАВ-МиБ. - 2002. - С. 14-15.

73. Лагунов В., Венгеренко Л. Эпизоотическая обстановка в промышленном птицеводстве. // Птицеводство. 1997. - №6. - С. 18-20.

74. Лагунов В.И. Птицеводческим хозяйствам эпизоотологическое благополучие. // Ветеринария. - 1998. - №2. - С.З.

75. Ленев С.В., Киселева И.В. Профилактика сальмонеллеза энтеритидис у цыплят-бройлеров. // Сб. научн. тр. ВГНКИ. М. - 1995. - Т. 55. - С. 71-75.

76. Ленев С.В., Малахов Ю.А., Светоч Э.А. Лечение и профилактика сальмонеллеза кур. // Девятый Московский международный ветеринарный конгресс: Материалы. М. - 2001. - С. 82-83.

77. Лепахин В.К. Клиническая фармакология и фармакотерапия. М.: Медицина. 1997.-С. 24-42.

78. Лимаренко А.А. Болезни сельскохозяйственных птиц. С-П.: Лань. -2005.-448 с.

79. Малета Ю.С., Тарасов В.В. Математические методы статистического анализа в биологии и медицине. М.: Московский университет - 1982 - 170с.

80. Малик Е.В., Панин А.Н., Малик Н.И., Сканчев А.И. Характеристика микробиотопа кишечника домашней и промышленной птицы. // Сб. научн. тр. ВГНКИ. М. - 2006. - Т. 67. - С. 9-21.

81. Мезенцев С.В. Обеспечение безопасности продукции птицеводства по сальмонеллезу. // Ветеринария. 2002. - №7. - С. 4-6.

82. Мозгов И.Е. Антибиотики в ветеринарии. М.: Колос. - 1971. - 288 с.

83. Навашин С.М. Некоторые аспекты химиотерапии бактериальных инфекций. // Микробиология, эпидемиология и иммунология. 1984. -№7.-С. 37-45.

84. Навашин С.М., Сазыкин Ю.О. Молекулярные основы современной ан-тибиотикотерапии. // Антибиотики и химиотерапия. -1988. -№1. С. 3-12.

85. Навашин С.М., Фомина И.П. Рациональная антибиотикотерапия. М.: Медицина. - 1982.-С. 201-215.

86. Навашин С.М., Фомина И.П. Справочник по антибиотикам. М.: Медицина. - 1974.-С. 79-138.

87. Никитин А.В. Иммунологические аспекты антибиотикотерапии. // Антибиотики и химиотерапия. 1985. - №11. - С. 869-873.

88. Ноздрин Г.А., Леляк А.И. Пути решения проблемы лекарственной устойчивости микрорганизмов к антибиотикам. // Ветеринария Сибири. -1999.-№2.-С. 23-25.

89. Отаров А.И. Бактерицидное действие антимикробных препаратов на патогенных эшерихий, выделенных от кур. // Ветеринария. 1980. -№1.-С. 66-67.

90. Пилипейко В.Г., Мындря А.Г., Татарчук О.П. Антибиотикочувстви-тельность возбудителей кишечных инфекций в птицехозяйствах. // Ветеринария. -2005. №2. - С. 10-12.

91. Пименов Н.В. Эффективность бивалентного сальмофага против сальмонеллеза энтеритидис и пуллороза-тифа кур: Дис.канд. Биол. Наук.- М. 2003. - С.28-34.

92. Прудников B.C., Зелутков Ю.Г. Болезни домашних птиц. Минск. -2000. - 80 с.

93. Радчук Н.А. Колибактериоз птиц. JL: ВО Агропромиздат. - 1990. - 78 с.

94. Радчук Н.А., Бикорбков А.А., Анущенко И.Н. Сальмонеллез кур в птицехозяйствах промышленного типа, обусловленный S. enteritidis. // Инфекционные болезни сельскохозяйственных животных и птиц. Сб. науч. тр.-Л.: 1987.-е. 82-84.

95. Рахманин П.П., Куликовский А.В. Эпизоотическое состояние и меры борьбы с сальмонеллезом. // Ветеринария. 1989. - №7. - С. 40-44.

96. Резвых А.Г. Лекарственные препараты при респираторных заболеваниях птицы. // Птицеводство. 1980. - №9. - С. 31-32.

97. Рождественская Т.Н., Борисенкова А.Н., Новикова О.Б., Чавгун В.А. Зоопатогенные и эпидемиологически опасные микроорганизмы, выделяемые от птицы в хозяйствах промышленного типа. // Российский ветеринарный журнал. 2005. - №4. - С. 37-38.

98. Руднева С.Н., Столярова Л.Г., Ершов А.А. Распространение и передача плазмидной резистентности у кишечных палочек. // Антибиотики.- 1980.-№6.-С. 429-432.

99. Салаутин В.В. Дифференциальная диагностика сальмонеллеза птиц. // Ветеринария. 2004. - №2. - С. 22-25.

100. Саноцкий И.В., Уланова И.П. Критерии вредности в гигиене и токсикологии при оценке опасности химических соединений. // М.: Медицина.- 1975.-С.68-69.

101. Сахацкий И.М. Чувствительность микроорганизмов к антимикробным препаратам. // Ветеринария. 1980. - №7. - С. 65-66.

102. Селянский В.М. Анатомия и физиология сельскохозяйственной птицы. М.: Колосс. - 1972. - 359 с.

103. Сидоренко С.В. Влияние особенностей патогенеза инфекции на эффективность химиотерапии. // Антибиотики и химиотерапия. 1992. -№9.-С. 47-51.

104. Сидоренко С.В. Теоретические и практические аспекты проблемы ан-тибиотикорезистентности. // Антибиотики и химиотерапия. 1992. -№9. - С. 44-47.

105. Сидоров И.В. Лекарственные вещества в птицеводстве. М.: Колос. -1976.-240 с.

106. Сидоров И.В. Комплексная антибиотикотерапия в птицеводстве. // Ветеринария. 1984. - №4. - С. 12-13.

107. ПО.Симонян Г.А., Хисамутдинов Ф.Ф. Ветеринарная гематология. М.: Колос.- 1995.-256 с.

108. Скутарь И.Г. Колибактериоз // Борьба с инфекциями в промышленном птицеводстве. Кишинев: Штиинца. - 1980. - С. 190-199.

109. Соколов В.Д. Антимикробные средства в птицеводстве. М.: Колос. - 1984.-467 с.

110. Соколов В.Д. Химиопрофилактика и терапия сальмонеллезов в птицеводстве. // Сб. тр. ВНИВИП. 1997. - С. 31-33.

111. Соколов В.Д., Рабинович М.И., Горшков Г.И. Фармакология / Под редакцией В.Д. Соколова. -М.: Колос. 1997. - С. 426-448.

112. Субботин В.М., Субботина С.Г., Александров И.Д. Современные лекарственные средства в ветеринарии. М.: Феникс. 2000. - С. 237-251.

113. Татарчук О.П. Новые тенденции антибиотикотерапии. // Ветеринария. -2004.-№12.-С. 12-14.

114. Тец В.В., Борисов Л.Б. Влияние антибиотиков на популяционную изменчивость бактерий. // Антибиотики и химиотерапия. 1988. - №4. -С. 299-303.

115. Урбан В.П., Кузьмин В.А. Проблема сальмонеллезов в современном мире. // Сб. тр. ВНИВИП. 1997. - С. 7-9.

116. Урбан В.П., Радчук Н.А. Изучение колибактериоза птиц в условиях птицефабрик. //Ветеринария. 1975. -№5. - С. 18-21.

117. Федотов В.П. Профилактика и меры борьбы с бактериальными болезнями цыплят. // Учебное пособие. Барнаул. - 1983. - 50 с.

118. Федотова З.П., Ещенко Е.Д., Погребняк JI.JL, Лучин А.И. Микрофлора воздуха в птичнике. // Ветеринария. 1984. - №1. - С. 24-25.

119. Фотина Т.И. Патогенные свойства кишечной палочки у цыплят. // Н-т бюллетень. Харьков. - 1982. - №13. - С. 36-39.

120. Фотина Т.И., Улько Л.Г., Миланко А.А., Фотина Н.В. Профилактические мероприятия в птицеводческих хозяйствах при смешанных бактериальных инфекциях. // В. сб.: Проблемы и перспективы паразитоце-нологии. Харьков - Луганск. - 1997. - С. 169-170.

121. Харкевич Д.А. Фармакология. М.: ГЭОТАР Медицина. - 2000. - С. 517-550.

122. Черномор дик А.Б. Применение антибиотиков и других химиотера-певтических препаратов. Справочник. 3-е изд., перераб. и допол. -Киев.- 1988.-С. 320-321.

123. Черных М.Н. Характеристика культур Е. coli, выделенных от больной и павшей от колибактериоза птицы. // Сб. науч. Тр. Ленинградского вет. института. 1990. - Т. 107. - С. 126-129.

124. Шендеров Б.А. Антимикробные препараты и нормальная микрофлора. Проблемы и возможные пути их решения. // Антибиотики и химиотерапия. 1988. -№12. - С. 921-926.

125. Шошиева Л.Н., Орлова Г.М., Макаровская Л.Н. Антибиотикочувстви-тельность и химические структуры бактериальной клетки. // Антибиотики. 1980. - №6. - С. 468-474.

126. Шчука Леон. Резистентность бактерий к противобактериальным активным субстанциям и их применение в ветеринарии. // Ветеринария и кормление. 2005. - №1. - С. 26-27.

127. Яковлев С.В. Микробиологические и фармакодинамические факторы, определяющие клинический эффект антибиотикотерапии. // Антибиотики и химиотерапия. 1999. - №5. - С. 3-5.

128. Яковлев С.С. Эпизоотическая ситуация в птицеводстве России. // Ветеринария. 2000. - №9. - С. 3-4.

129. Яременко Н.А., Яковлев С.С. Задачи по созданию эпизоотического благополучия птицеводства России. // Ветеринария. 1998. - №12. - С. 56-58.

130. Acar J., Rostel B. Antimicrobal resistance: an overview. // OIE International Standards on Antimicrobal Resistance. 2003. - P. 45-66.

131. Adams P.E., Varma K.J., Powers Т.Е., Lamendola J.F. Tissue concentrations and pharmacokinetics of florfenicol in male veal calves given repiated doses. // Am. J. Vet. Res. 1987. - Vol. 48. - № 12. - P. 1725-1732.

132. Afifi N.A., Abo El-Sooud K. Tissue concentrations and pharmacokinetics of florfenicol in broiler chickens. // British Poultry Science. 1997. - №38. -P.425-428.

133. Alcorne J., Dowling P., Killen R. Pharmacokinetics of florfenicol in North American elk (Cervus epaphus). // J. Vet. Pharmacol. Ther. 2004. - Vol. 27.-№5.-P. 289-292.

134. Al-Nazawi M. H., Homeida A. M. Pharmacokinetics and tolerance of chloramphenicol and florfenicol in camels. // Journal of Camel Practice and Research.-2005.-Vol. 12.- №11.-P. 7-12.

135. Asian V., Maden M., Erganis 0., Birdane F.M., Corlu M. Clinical efficacy of florfenicol in the treatment of calf respiratory tract infections. // Vet. Q. -2002.-Vol. 24.-№ 1.-P. 35-39.

136. Atef M., El-Gendi A.Y., Amer A.M., Abd El-Aty A.M. Disposition kinetics of florfenicol in goats by using two analytical metohods. // J. Vet. Med. -2001.-Vol. 48.-P. 129-136.

137. Benredjeb S., Hammami A. Resistance in salmonellae: the situation in developing countries. // OIE International Standards on Antimicrobal Resistance.-2003.-P. 71.

138. Berge A.C., Epperson W.B., Pritchard R.H. Assessing the effect of a single dose florfenicol treatment in feedlot cattle on the antimicrobial resistance patterns in faecal Escherichia coli. // Vet. Res. 2005. - Vol. 36. - P. 723734.

139. Booker C.W., Jim G.K., Guichon P.T. Evaluation of florfenicol for the treatment of undifferentiated fever in feedlot calves in western Canada. // Can. Vet. J. 1997. - Vol. 38. - P. 555-560.

140. Bretzlaff K.N., Neff-Davis C.A., Ott R.S., Koritz G.D. Florfenicol in non-lactating dairy cows: pharmacokinetics, binding to plasma proteins, and effects on phagocytosis by blood neutrophils. // J. Vet. Pharmacol. Therap. -1987.- № 10.- P. 233-240.

141. Burch D.G. Antimicrobal sensitivity patterns of UK chicken E.coli isolates. // Proceedings of the 8th International Congress of the European Association of Veter. Pharm. and Toxicol. Jerusalem. - 2000. - P. 73-75.

142. Butler D.G., Clarke R.C. Esherichia coli in domestic animals and humans. United Kingdom: CAB International Wallingford. - 1994. - P. 544-550.

143. Calnek B.W. Barnes H.J., Beard C.W. Diseases of poultry. Iowa, USA. -2003.-P. 359-397,412-448.

144. Cannon M., Harford S., Davies J. A comparative study on the inhibitory actions of chloramhpenicol, thiamphenicol and some fluoridated derivatives. //J. Antimicrob. Chemother. 1990. - Vol. 26. - P. 307-317.

145. Chen X., Yue Z., Ji C., Liang S. Analysis of chloramphenicol, thiamphenicol and florfenicol in chickens by high performance liquid chromatography with electrospray ionization mass spectrometry. // Se. Pu. 2005. - Vol. 23. -№ 5. - P. 92-95.

146. Cloud S.S., Rosenberger J.K., Fries P.A., Wilson R.A., Odor E.M. In vitro and in vivo characterization of avian Escherichia coli. // Avian Diseases. -1985. Vol. 29. - № 4. - P. 1084 - 1093.

147. Cook A., St Claire M., Sams R. Use of florfenicol in the non-human primates. // J. Med. Primatol. 2004. - Vol. 33. - № 3. - P. 127-133.

148. Craig W.A., Gudmundson S. Postantibiotic effect. In: Antibiotics in Laboratory Medicine. Lorian V. (Ed.). Baltimore etc. - 1996. - P. 403-431.

149. Davis M., Morishita T.Y. Relative ammonia concentrations, dust concentrations and presence of Salmonella species and Escherichia coli inside and outside commercial layer facilities. // Avian Diseases. 2004. - Vol. 49. -№1.-P. 30-35.

150. De Craene В.A., Deprez P., D'Haese E.D., Nelis H.J., De Leenheer A.P. Pharmacokinetics of florfenicol in cerebrospinal fluid and plasma of calves. // Antimicrobal Agents and Chemotherapy. 1997. - Vol. 41. - №9. - P. 1991-1995.

151. Dueger E.L., Angelos J.A., Cosgrove S., Johnson J., George L.W. // Effe-cacy of florfenicol in the treatment of experimentally induced infectious bovine keratoconuctivitis. // Am.J. Vet. Med. 1999. - Vol. 60. - P. 960-964.

152. El-Banna H.A. Pharmacokinetics of florfenicol in normal and Pasterella -infected Muscovy ducks. // British Poultry Science. 1998. - Vol.39. - P. 492-496.

153. Fukui H., Fujihara Y., Капо T. In vitro and in vivo antibacterial activities of florfenicol, a new fluorinated analog of thiamphenicol, against fish pathogens. // Fish Pathol. 1987. - Vol. 22. - №4. - P. 201-207.

154. Gairowski M.P., Wolf R.G, Gingerich W.H. Safety of Aquaflor (florfenicol, 50% type A medicated article), administrated in feed to Channel Catfish, Ictalurus Punctatus. // Toxicilogic Pathology. 2003. - Vol. 31. - № 6. -P. 689-697.

155. Gokce H., Citil M., Gene O., Erdogan M. A comparision of the efficacy of florfenicol and oxitetracycline in the treatment of naturally occurring infectious bovine keratoconjunctivitis. // Irish Veterinary Journal. 2002. - Vol. 55.-№ 11.-P. 573-576.

156. Gongzheng H. U., Li Y. Postantibiotic effect of florfenicol. // Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics. 2003. - Vol.26. - Suppl. 1. - P. 217.

157. Jiang H.X., Fung K.F., Zeng Z.L., Chen Z. L. Pharmacokinetics of flor-fenicol in pigs after different administration roads. // Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics. 2003. - Vol. 26. - Suppl. 1. - P. 96.

158. Jianzhong S., Xinbo L., Haiyang J., Walter H. H. Bioavailability and pharmacokinetics of florfenicol in healthy sheep. // Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics. 2004. - Vol. 27. - P. 163-168.

159. Hays V.W. Impact of antibiotics on animal production and human health. -In: Proceedings of Cornell Nutrition Conference for Feed Manufactures. -1988.-P. 14-22.

160. Hawkins L.L., Perino L.J., Kennedy G., Dikeman M., Cole D. Effects of florfenicol injection on the meat characteristics of the cervical muscles in cattle. // Am. J. Vet. Res. 2002. - Vol. 63. - №1. - P. 64-68.

161. Herradora L.M., Martinez-Gamba R. Effect of oral enrofloxacin and florfenicol on pigs experimentally infected with Actinobacillus pleuropneumoniae serotype 1. // J. Vet. Med. A Physiol. Pathol. Clin. Med. 2003. - Vol. 50.-№5.-P. 259-263.

162. Hillaert S., Van den Bossche W. Optimization of a micellar electrokinetic chromatographic method for the analysis of florfenicol. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2004. - Vol. 36. - № 3. - P. 437-440.

163. Ho Shu-Peng, Hsu Tain-Yao, Chen Ming-Hui, Wang Way-Shyan. Antibacterial effect of chloramphenicol, thiamphenicol and florfenicol against aquatic animal bacteria. // J. Vet. Med. Sci. 2000 - Vol. - 62. - №5. - P. 479-485.

164. Hormazabal V., Steffenak I., Yndestad M. Simultaneous determination of residues of florfenicol in fish tissues by high-performance liquid chromatography. //J. Chromatogr. Biomed. Appl. 1993. - Vol. 616. - P. 161-165.

165. Horsberg Т.Е., Hoff K.A., Nordmo R. Pharmacikinetics of florfenicol and its metabolite florfenicol amine in Atlantic salmon. // Journal of Aquatic Animal Health. 1996. - №8. - P. 292-301.

166. Kehrenberg C., Meunier D., Targant H., Schwarz S., Madec J. Y. Plasmid-mediated florfenicol resistance in Pasteurella trehalosi. // J. Antimicrob. Chemother.-2006.-Vol. 58.-№ l.-P. 13-17.

167. Kehrenberg C., Schwarz S. Plazmid-borne florfenicol resistance in Paus-terella multocida. // J. Antimicrob. Chemother. 2005. - Vol. 55. - №5. - P. 773-775.

168. Keyes K., Hudson C., Maurer J., Thayer S., White D., Lee M. Detection of florfenicol resistance gene in Escherichia coli isolated from sick Chickens. // Antimicrobal Agents and Chemotherapy. 2000. - Vol. 44. - №2. - P. 421424.

169. Lambie N., Ngeleka M., Brown G., Ryan J. Retrospective study on Escherichia coli infection in broilers subjected to Postmortem Examination andantibiotic resistance of isolates in Trinidad. // Avian Diseases. 2000. - Vol. 44. -№ l.-p. 155-160.

170. Lane V.M., Villarroel A., Wetzlich S.E., Clifford A., Taylor I., Craigmill A.L. Intravenous and subcutaneouse pharmacokinetics of florfenicol in sheep. // J. Vet. Pharmacol. Ther. 2004. - Vol. 27. - № 4. - P. 191 -196.

171. Lashev L., Haritova A. Comparative allometric analysis of pharmacokinetics of florfenicol and tiamphenicol. // Bulgarian Journal of Veterinary Medicine. 2006. - Vol.9. - № 2. - P. 115-122.

172. Lavy E., Ziv G., Soback S. Clinical pharmacology of florfenicol in lactat-ing goats. // Acta. Vet. Scand. 1991. - Vol. 87. - P. 133-136.

173. Lewbart G.A., Papich M.G., Whitt-Smith D. Pharmacokinetics of florfenicol in the red pacu (Piaractus brachypomus) after single dose intramuscular administration. // J. Vet. Pharmacol. Therap. 2005. - Vol. 28. - № 3. - P. 317-319.

174. Li P., Qiu Y., Cai H., Kong Y., Tang Y., Wang D., Xie M. Simultaneous determination of chloramphenicol, thiamphenicol and florfenicol residues in animal tissues by gas chromatography/mass spectrometry. // Se. Pu. 2006. -Vol. 24.-№ l.-P. 14-18.

175. Lobell R.D., Varma K.J., Johnson J.C., Sams R.A., Gerken D.F., Ashcraft S.M. Pharmacokinetics of florfenicol following intravenous and intramuscular doses to cattle. // J. Vet. Pharmacol. Therap. 1994. - Vol. 17. - P. 253258.

176. Martel J. In vitro activity of florfenicol on the primary pathogenic bacteria of the respiratory tract in european cattle. // In: Proceedings of the XVIII World Buiatrics Congress. Bologna. - Italy. - 1994. - P. 25-30.

177. McKeller Q.A., Varma K.J. Pharmacokinetics and tolerance of florfenicol in equidae. // Equine Vet. J. 1996. - Vol. 28. -№3. - P. 209-213.

178. Mcllroy S.G., McCracken R.M., Neilland S.D. Control, prevention and eradication of Salmonella enteritidis infection in broiler and broiler breeder flocks. // Vet. Rec. 1989. - Vol. 125. - P. 545-548.

179. Miller D.J. New drugs and medications. // Pig Veter. J. 1991. - Vol. 27. -P. 184-192.

180. Mishu В., Griffin P.M., Tauxe R.V. Salmonella enteritidis gastroenteritis transmitted by intact chiken eggs. // Annals Intern. Med. 1991. - Vol. 115. -P. 190-194.

181. Moulin G. Surveillance of antimicrobial consumption activities in France. // OIE International Standards on Antimicrobal Resistance. 2003. - P. 118 -121.

182. Mudd T. The global usage of antimicrobials for animal health. // OIE International Standards on Antimicrobal Resistance. 2003. - P. 128 - 130.

183. Nagata Т., Saeki M. Simultaneous determination of thiamphenicol, florfenicol and chloramphenicol residues in muscles of animals and cultured fish by liquid chromatography. // J. Liq. Chromatogr. 1992. - Vol. 15. - P. 2045-2056.

184. Neu H.C., Fu K.P. In vitro activity of chloramphenicol and thiamphenicol analogs. // Antimicrob. Agents. Chemother. 1980. - Vol.18. - P.311-316.

185. Paape M.J., Miller R.H. Effects of florfenicol, chloramphenicol and thiamphenicol on phagocytosis, chemiluminescence and morphology of bovine polymorphonuclear neutrophil leukocytes. // J. Dairy sci. 1990. - Vol. 73. -P. 1734-1744.

186. Papich M. G., Riviere J. E. Chloramphenicol and derivatives, macrolides, lincosamides, and miscellaneusanti microbials. // In: Veterinary Pharmacology and Therap.: Ed. H. R. Adams. The Iowa State University Press. -2001.- P. 868-897.

187. Park B.K., Lim J.H., Kim M.S., Yun H.J. Pharmacokinetics of florfenicol and its metabolite florfenicol amine in the Korean catfish (Silurus asotus). // Journal of Vet. Pharm. Therap. 2006. - Vol. 29. - № 1. - P. 37-40.

188. Pelzer K.D. Salmonellosis. // Journal of the American Vet. Med. Association. 1989.-Vol. 195.-№4.-P. 456-463.

189. Picco E.J., Diaz D.C., Valtorta S.E., Boggi J.C. Chronotoxicology of florfenicol. // Chronobiol. Int. 2001. - Vol. 18. - № 3. - P. 567-572.

190. Priebe S., Schwarz S. In vitro activities of florfenicol against bovine and porcine respiratory tract pathogens. // Antimicrob. Agents. Chemother. -2003. Vol. 47. - № 8. - P. 2703-2705.

191. Ravizzola A., Carenzi A., Manca N., Peretti P. In vitro Antibacterial activity of thiamphenicol. // Chemoterapia. 1984. - №3. - P. 163-166.

192. Rios A., Martinez-Larranaga M.R., Anadon A. Plasma disposition of florfenicol in broiler chickens following intravenous administration. // J. Vet. Pharmacol. Therap. 1997. - Vol. 20. - P. 181-218.

193. Rosenberger J.K., Cloud S.S., Fries P. Controlling Escerichia coli. // Poultry Digest. 1984. - Vol. 503. - №43. - P. 6-12.

194. Roy P., Dhillon A.S., Lauerman L.H., Schaberg D.M. Results of salmonella isolation from poultry products, poultry, poultry environment and other characteristics. // Avian Diseases. 2002. - Vol. 46. - P. 17-24.

195. Sams R.A. Florfenicol: chemistry and metabolism of novel broad-spectrum antibiotic. In: Proceedings of XVIII World Buiatrics Congress. - Bologna. -Italy. - 1994.-P. 13-7.

196. Schwarz S., Kehrenberg C., Doublet В., Cloeckaert A. Molecular basis of bacterial resistance to chloramphenicol and florfenicol. // FEMS Microbiol. Rev. 2004. - Vol. 28. - № 5. - P. 519-542.

197. Shen J., Hu D., Wu X., Coats J.R. Biovailability and pharmacokinetics of florfenicol in broiler chickens. // J. Vet. Pharmacol. Ther. 2003. - Vol. 26. -№ 5. - P. 337-341.

198. Shen J., Li X., Hsu W.H., Jianzhong S., Xiubo L., Haiyang J., Walter H.H. Bioavailability and pharmacokinetics of florfenicol in healthy sheep. // J. Vet. Pharmacol. Ther. -2004. Vol. 27. -№ 3. - P. 163-168.

199. Shen J., Wu X., Hu D., Jiang H. Pharmacokinetics of florfenicol in healthy and Escherichia coli infected broiler chickens. // Research in Veterinary Science. - 2002. - Vol. 73. - P. 137-140.

200. Sieroslawska A., Studnicka M., Siwicki A., Rymuszka A., Slonka J. Antibiotics and cell-mediated immunity in fish in vitro study. // Acta Vet. Brno. - 1998.-Vol. 67.-P. 329-334.

201. Singer R.S., Hofacre C.L. Potential impacts of antibiotic use in poultry production. // Avian deseases. 2006. - Vol. 50. - № 2. - P. 161-172.

202. Singer R.S., Patterson S.K., Meier A.E., Gibson J.K. Relationship between phenotypic and genotypic florfenicol resistance in Esherichia coli. // Antim-icrob. Agents. Chemother. 2004. - Vol. 48. - № 10. - P. 4047-4049.

203. Skolimowski I.M., Knight R.C., Edwards D.I. Molecular basis of chloramphenicol and thiamphenicol toxicity to DNA in vitro. // J. Antimicrob. Chemother. 1983. - № 12. - P. 53 5-42.

204. Soback S., Paape M.J., Filep R., Varma K.J. Florfenicol pharmacokinetics in lactating cows after intravenous, intramuscular and intramammary administration. // J. Vet. Pharmacol. Therap. 1995. - Vol. 18. - P. 413-417.

205. Syriopoulou V.P., Harding A.L., Goldmann D.A. In vitro antibacterial activity of fluorinated analogs of chloramphenicol and thiamphenicol. // Antimicrob. Agents. Chemother. 1981. - Vol. 19. - P. 249-297.

206. Therelfall E.J. Antimicrobal drug resistance from salmonellosis in humans and food animals: the current situation in relation to foodborne zoonoses in the United Kingdom. // OIE International Standards on Antimicrobal Resistance.-2003.-P. 69-70.

207. Tuttle A.D., Papich M. G., Wolfe B.A. Bone marrow hypoplasia secondary to florfenicol toxicity in a Thomson's gazelle (Gazella thomsonii). // J. Vet. Pharmacol. Therap. 2006. - Vol. 29. - № 4. - P. 317-319.

208. Ueda Y., Ohtsuki S., Narukawa N. Efficacy of florfenicol on experimental Actinibacillus pleuropneumonia in pigs. // Journal of Veterinary Medical Sciences. 1995. - Vol. 57. - P. 261-265.

209. Varma K.J. Microbiology, pharmacokinetic disposition and safety of florfenicol in cattle. In: Proceedings of the XVIII World Buiatrics Congress. -Bologna. - Italy. - 1994. - P. 18-24.

210. Varma K.J., Adams P.E., Powers Т.Е., Lamendola J.F. Pharmacokinetics of florfenicol in veal calves. // J. Vet. Pharmacol. Ther. 1986. - №9. - P. 412-425.

211. Varma K.J., Powers Т.Е., Lobell R.D., Lichtenwalner D.M. Pharmacology of a new broad spectrum antibiotic florfenicol in cattle and its antimicrobal spectrum. // Warld buiatrics congr. Leon. - 1998. - P. 814-819.

212. Varma K.J., Sams R.A., Lobell R.D., Lockwood P.W. Pharmacokinetics and efficacy of a new broad spectrum antibiotic florfenicol in cattle. // Acta

213. Veterinaria Scandinavica. 1994. - Vol. 87. - P. 102-104.

214. Vue C., Schmidt L.J., Stenly G.R., Gingerich W.H. Liquid chromatographic determination of florfenicol in the plazma of multiple species of fish. // Journal of chromatography. 2002. - Vol. 780. - № 1. - P. 111-117.

215. Wetzlich S. E., Lane V. M., Villarroel A., Craigmill D. L. The pharmacokinetics of florfenicol in sheep after intravenous and subcutaneous dosing. //Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics. 2003. - Vol. 26. - Suppl. 1.-P. 99-100.

216. Wilson D.J., Sears P.M., Gonzales R.N. Efficacy of treatment of clinical and subclinical bovine mastitis. // Am. J. Vet. Res. 1996. - Vol. 57. - №4. -P. 562-568.

217. Yanong R.P., Curtis E.W. Pharmacokinetic studies of florfenicol in Koi Karp and Threespot Gourami after oral and intramuscular treatment. // Journal of Aquatic Animal Health.-2005.-Vol. 17.-P. 129-137.

218. Yunis A.A. Chloramphenicol: relation of structure to activity and toxicity. // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1988. - Vol. 28. - P. 83-100.