Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.03) на тему:Диагностика инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации и особенности эпизоотического процесса заболевания в современных условиях
- Ученая степень
- доктора ветеринарных наук
- ВАК РФ
- 16.00.03
Оглавление диссертации Глотов, Александр Гаврилович :: 1999 :: Новосибирск
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.
ВВЕДЕНИЕ.
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
1.1. Характеристика инфекционного ринотрахеита -пустулезного вульвовагинита крупного рогатого скота.
1.2. Латентная форма инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота, ее влияние на диагностику, специфическую профилактику заболевания и эпизоотологическое значение.
1.3. Роль быков-производителей в эпизоотологии инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота
1.4. Свойства генома вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота и перекрестные связи с родственными вирусами.
1.4.1. Изучение перекрёстных связей с родственными вирусами.
1.5. Конструирование молекулярных зондов для выявления нуклеотидных последовательностей вируса инфекционного ринотрахеита и их применение для диагностики заболевания.
1.6. Меры профилактики и борьбы с инфекционным ринотрахеитом крупного рогатого скота.
Введение диссертации по теме "Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология", Глотов, Александр Гаврилович, автореферат
Вирусные инфекции широко распространены на территории нашей страны и причиняют значительный экономический ущерб животноводству. Среди них инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота (ИРТ КРС) занимает особое место в связи с многообразием клинических проявлений и тяжестью течения болезни (H.H. Крюков, 1980; О.И. Сухарев, 1988).
Стратегия борьбы с заболеванием в нашей стране многие годы основывалась на разработке методов, применимых к условиям промышленного животноводства.
Происходящая в обществе перестройка, сопровождающаяся экономическими реформами, не может не оказывать влияния на эпизоотическую ситуацию в стране. С ликвидацией крупных промышленных комплексов по откорму молодняка крупного рогатого скота, где на ограниченных территориях сосредоточивали огромные количества животных с различным иммунным и вирусно-бактериальным фоном, практически исчезли респираторные болезни, типичные для них. Постепенно теряют значение парагрипп-3, вирусная диарея - болезнь слизистых (И. А. Бакулов, 1998) и другие болезни.
Однако ИРТ КРС продолжает регистрироваться на территории РФ и стран СНГ (H.H. Коннов, 1980, 1985; Е.В. Андреев, 1984; В.В. Гуненков и со-авт., 1987; П.А. Красочко, 1991; О.Г. Петрова, 1995). По данным Н.И. Закут-ского и соавт. (1998), на протяжении последних десяти лет вспышки заболевания были зарегистрированы во многих регионах России, что свидетельствует о напряженной эпизоотической ситуации.
Заболевание характеризуется разнообразием клинического проявления и причиняет значительный экономический ущерб животноводству, который складывается из снижения мясной и молочной продуктивности, нарушением воспроизводительной функции у коров и быков-производителей, гибели, вынужденного убоя и выбраковки больных животных, а также затрат на проведение ветеринарно-санитарных мероприятий. Борьба с ним представляет значительные трудности и во многом зависит от наличия эффективных средств специфической профилактики (Н.Н. Крюков, 1980).
Эффективность противоэпизоотических мероприятий во многом зависит от наличия своевременной и быстрой диагностики заболевания. Известно, что общепринятые методы диагностики ИРТ КРС (выделение вируса в чувствительной культуре клеток, реакция нейтрализации в культуре клеток и другие) не всегда оказываются достаточно оперативными при острых вспышках заболевания, к тому же латентный вирус выявить этими методами практически невозможно. Существуют также трудности технического плана при выделении вируса из биоматериала от животных на ранней стадии инфекции, когда нет (или мало) инфекционных частиц вируса, при осложненных формах болезни, и особенно, при выделении вируса из спермы быков-производителей.
Одной из наименее изученных форм ИРТ КРС является латентная. Jla-тенцию можно определить как замаскированную персистенцию вируса в организме хозяина, которую невозможно выявить общепринятыми вирусологическими методами (P.P. Pastoret et al., 1982; B.L. Barron et al., 1991). По определению В.А. Зуева (1979) при латентной форме инфекции нет полного цикла репродукции вируса в организме. Размножение его прерывается после репликации вирусной ДНК или на уровне синтеза отдельных белков и инфекционные частицы не образуются (O.R. Kaaden, 1992). Вирус представлен в данном случае ДНК-копиями, интегрированными с ДНК клетки-хозяина (Е. Dahme, 1984; B.W.J. Mahy, 1985; D.L. Rock et al., 1986; W. Hammerschmidt et al., 1990; G. Delhon et al., 1997).
Латентная форма заболевания обычно устанавливается у животных после первичного острого переболевания ИРТ КРС. Вирус при этом персисти-рует в нервных ганглиях вблизи места своего первичного размножения: тройничном - при респираторной и сакральном - при половой форме (М. Narita et al., 1978; F. Tolari et al., 1990). Однако некоторые респираторные штаммы могут персистировать и в тех и других ганглиях, тогда как гени-тальные - только в сакральных (О.С. Stroub, 1981; Е. Thiry, 1984). Длительность такого вирусоносительства не ограничивается во времени и может длиться пожизненно (V. Bitsch, 1984), находясь под постоянным контролем иммунной системы (L.A. Babiuk et al., 1979). Определенные эндо- и экзогенные факторы, подавляя иммунный контроль латенции, могут демаскировать вирус, что приводит к его реактивации и выделению во внешнюю среду (P.P. Pastoret et al., 1982, 1985). Кроме того, вирус может реактивироваться спонтанно (P.P. Pastoret et al., 1982) не теряя своей патогенности (G. Castrucci et al., 1984; Е. Dahme, 1984).
Феномен латенции при ИРТ КРС приводит к неконтролируемому распространению возбудителя инфекции. Особенно опасны в этом плане быки-производители, у которых болезнь чаще всего протекает именно в латентной форме. (О.С. Stroub, 1981).
Характер течения латентной формы инфекции у животных в нашей стране практически не изучен.
В настоящее время нет однозначной оценки методов контроля продаваемых племенных животных и спермы быков-производителей. Недостаточно отработаны методы применения специфических препаратов в зависимости от эпизоотической обстановки, системы ведения скотоводства и наличия латентной формы инфекции у животных.
Недостаточно изучены особенности проявления эпизоотического процесса ИРТ КРС на племпредприятиях и в репродукторных хозяйствах.
Ранняя диагностика, а также своевременное выявление скрытых виру-соносителей являются важным фактором в оздоровлении хозяйств от ИРТ КРС и недопущении распространения инфекции.
В связи с этим разработка новых высокочувствительных, специфичных и быстрых методов диагностики, способных не только оперативно поставить диагноз на ИРТ КРС, но и выявить латентных вирусоносителей, является весьма актуальной (М.А. Dormán et al., 1985; А.Т. Haase, 1986; М. Guenounou et al., 1990).
О необходимости разработки высокочувствительных методов диагностики вирусных инфекций, основанных на конструировании молекулярных зондов и полимеразной цепной реакции, сообщали В.М. Чекишев (1992), Г.Ф. Коромыслов (1998), И.Ф. Вишняков (1998), Е.С. Воронин (1998).
Одним из перспективных методов является метод молекулярной гибридизации, основанный на получении генно-инженерным путем молекулярных зондов, которые представлены фрагментом вирусного генома, клонированным в плазмидный или какой-либо другой вектор. Использование нерадиоактивных зондов при этом предпочтительнее (R. Neumann et al, 1986; А.Т. Бектемиров, 1988).
Метод молекулярной гибридизации обладает высокой разрешающей способностью при выявлении нуклеотидных последовательностей вируса и может быть использован в тех случаях, когда выделение вируса в чувствительных культурах клеток по каким-либо причинам затруднено (А.Т. Бектемиров, 1988).
Из доступной нам литературы известны сообщения о клонировании последовательностей вируса ИРТ КРС в плазмидный вектор с целью создания радиоактивных ДНК-зондов (И.А. Морозов, 1991; Б.М. Гаджиев, 1991) и испытания их на пробах биоматериала от больных телят (Л.П. Русанова и соавт., 1992). Однако на момент начала наших исследований в России законченных разработок в этом направлении не было.
Цель и задачи исследований. Целью исследований являлись: разработка высокочувствительного и специфичного метода диагностики ИРТ КРС, основанного на конструировании нерадиоактивных (биотинили-рованных) ДНК-зондов, изучение его диагностической эффективности и выявление некоторых особенностей эпизоотического процесса заболевания в современных условиях.
На разрешение были поставлены задачи:
- изучить роль вируса ИРТ КРС в этиологии массовых респираторных и гинекологических заболеваний животных на Урале в Сибири;
-провести молекулярное клонирование фрагментов генома вируса в плазмидном векторе Е. Coli pUC18 для конструирования радиоактивных ДНК-зондов и создания банка нуклеотидных последовательностей вируса. Отобрать наиболее специфичный и чувствительный и переклонировать его в однонитиевую ДНК бактериофага М13тр8 с последующим нерадиоактивным мечением (биотинилированием);
- на основе биотинилированного ДНК-зонда сконструировать «Тест-систему для диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации» и испытать ее диагностическую эффективность;
- при помощи разработанной «Тест-системы.» изучить: распространение ИРТ КРС на головных племпредприятиях Урала и Сибири, характер проявления латентной формы инфекции у быков-производителей, а также выявить некоторые другие особенности эпизоотического процесса ИРТ КРС в современных условиях;
-на основе разработанной «Тест-системы.» усовершенствовать и внедрить комплекс профилактических и противоэпизоотических мероприятий при ИРТ КРС на территории Сибири.
Научная новизна. В результате проведенных исследований:
- установлена роль вируса ИРТ КРС в этиологии массовых респираторных и гинекологических заболеваний животных в Сибири;
- проведено молекулярное клонирование фрагментов ДНК вируса ИРТ КРС (шт. «ТК-А») в плазмидном векторе Е. Coli pUC18 и на основе этого создан банк нуклеотидных последовательностей его генома;
- впервые в РФ на основе однонитиевой ДНК бактериофага М13шр8 получен нерадиоактивный (биотинилированный) ДНК-зонд, пригодный для выявления нуклеотидной последовательности вируса, определена его чувствительность и специфичность (патент РФ № 2054487 от 20 февраля 1996 г.); На его основе сконструирована «Тест-система для диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации» и определена ее диагностическая эффективность при различных формах проявления заболевания;
- впервые в РФ с помощью «Тест-системы.» установлено наличие ИРТ КРС на головных племпредприятиях Урала и Сибири, изучен характер течения латентной формы инфекции у быков-производителей, дана оценка эффективности применения «Инактивированной вакцины» для их иммунизации, определена степень контаминации вирусом банка спермы, полученного от выбракованных в различные годы инфицированных быков. Выявлены некоторые другие особенности эпизоотического процесса ИРТ КРС в современных условиях.
Теоретическая и практическая значимость. В результате проведенных исследований разработаны и утверждены Департаментом ветеринарии при МСХ и П РФ:
- «Временное наставление по диагностике инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации» (06.04.99 г. №13-7-2/1551);
- «Технические условия на «Тест-систему для диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации» (№ 9388-009-00008064-99);
Разработанные положения включены в «Инструкцию по диагностике, мерам профилактики и борьбы с инфекционным ринотрахеитом крупного рогатого скота», представленную на утверждение в Департамент ветеринарии при МСХ и П РФ.
Тест-система.» удостоена малой золотой медали на конкурсе Сибирской ярмарки «АГРОСИБ - 98».
Полученные результаты создают перспективы использования молекулярных зондов в диагностике ИРТ КРС, а также новые возможности изучения патогенеза инфекции. Кроме того, пополняют новыми данными современные представления о природе латентной инфекции у животных, вызванной вирусом ИРТ КРС, открывают новые взгляды на стратегию борьбы с заболеванием на племпредприятиях.
Апробация работы. Материалы диссертационной работы доложены и обсуждены: на заседаниях Ученого совета Института экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока СО РАСХН (Новосибирск, 19861998), 111 Всесоюзной конференции по эпизоотологии (Новосибирск, 1991), 2 конференции по ветеринарной вирусологии (Покров, 1992), конференциям по болезням молодняка в ИЭВСиДВ (1991-1999), 10 международном конгрессе по вирусологии (Иерусалим, Израиль, 1996), 18 международном симпозиуме по ветеринарной эпидемиологии и экономике (Париж, 1997), 1 научно-практической конференции факультета ветеринарной медицины НГАУ (Новосибирск, 1997), Международной научно-практической конференции (Гродно, 1997), научной конференции, посвященной 50-летию Алтайской НИВС (Барнаул, 1997), научно-практической конференции, посвященной 65-летию Иркутской НИВС (Иркутск, 1997), научно-практической конференции «Сибирский стандарт жизни: Экология питания» (Новосибирск, 1998), научной конференции, посвященной 100-летию ВИЭВ (Москва, 1998), Международной научно-практической конференции (Новосибирск, 1999).
Основные положения, выводы и практические предложения, изложенные в диссертации, обсуждены и одобрены Подсекцией инфекционной патологии при ИЭВСиДВ (протокол № 3 от 10 июня 1998 г.) и
Ученым Советом ИЭВСиДВ (протокол № 5 от 22 июня 1998 г. и протокол № 7 от 16 августа 1999 г.).
Публикация результатов исследований. По теме диссертации опубликованы 44 научные работы в сборниках научных трудов, журналах «Ветеринария», «Вопросы вирусологии» и материалах научных конференций.
Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 351 странице машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, заключения, выводов, практических предложений и приложения. Работа иллюстрирована 26 таблицами и 7 рисунками. Список литературы включает 439 источников, из них 338 - иностранных авторов.
Заключение диссертационного исследования на тему "Диагностика инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации и особенности эпизоотического процесса заболевания в современных условиях"
4.ВЫВОДЫ
1. Установлена этиологическая роль вируса ИРТ КРС в возникновении массовых гинекологических и респираторных болезней животных и широкое распространение заболевания на территории Сибири. Отсутствие высокочувствительных и специфичных экспресс методов диагностики не позволяло оперативно оценивать эпизоотическую ситуацию и своевременно проводить мероприятия по его специфической профилактике.
2. Молекулярное клонирование ДНК вируса ИРТ КРС в плазмидный вектор Е. Coli pUC18 позволило создать банк из 82 клонов и получить набор ДНК-зондов, в радиоактивнбм варианте обладающих чувствительностью 10100 пгр. Переклонирование фрагмента генома вируса размером 1400 пар оснований в однонитиевую ДНК бактериофага М13тР8 с последующим его биотинилированием дало возможность получить нерадиоактивный ДНК-зонд M13mp8BHV34EP, специфичный ДНК вируса ИРТ КРС с чувствительностью 1-10 пгр вирусной нуклеотидной последовательности, что соответствовало 4-5 lg ТЦД50/МЛ инфекционной активности вируса.
3. На основе полученного ДНК-зонда сконструирована высокоэффективная «Тест-система для диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации». По чувствительности выявления ДНК вируса она превосходила стандартные вирусологические методики в среднем на 28,3%.
3. Метод, лежащий в основе «Тест-системы.», прост по технике исполнения, информативен, экономичен и выявляет ДНК вируса у животных независимо от сроков начала заболевания, формы его течения и из любого биологического материала, в том числе непригодного для вирусологических исследований. Время анализа 50 проб составляет 30 часов, что по срокам постановки диагноза превосходит метод выделения вируса в культуре клеток в 36, а ретроспективный серологический диагноз в 16,8 раз.
4. С помощью «Тест-системы.» ИРТ КРС установлен на всех обследованных головных племпредприятиях Урала и Сибири. Показатели инфицированное™ животных варьируют от 11 до 66%, что вызвано неконтролируемым завозом больных быков из-за рубежа, длительным нахождением их в стаде, низкой эффективнгостью диагностических, профилактических и оздоровительных мероприятий.
5. «Тест-система.» выявляла латентных вирусоносителей, опасных в эпизоотическом плане. Установлено, что у инфицированных быков-производителей вирус периодически реактивировался и выделялся со спермой. Частота выделения вируса методом молекулярной гибридизации не имела выраженных закономерностей, носила перемежающий характер и отмечалась у серопозитивных и серонегативных животных (реакция нейтрализации в культуре клеток).
6. Не установлено достоверной разницы между показателями частоты выявления ДНК эпизоотического вируса у вакцинированных и невакциниро-ванных быков (Р>0,05). Доказано, что вакцинация латентно инфицированных быков-производителей не предотвращает скрытое носительство полевого штамма и не решает проблему оздоровления племпредприятии от ИРТ КРС, т.к. привитые животные продолжают оставаться источником возбудителя инфекции.
7. Установлено, что контаминация хранящейся на головных племпредприятиях в условиях глубокой заморозки спермы, полученной от выбракованных в различное время быков-вирусоносителей, может достигать 30-35%. С помощью «Тест-системы.» можно давать оценку такой спермы на наличие в ней ДНК вируса ИРТ КРС и решать вопрос о ее пригодности к использованию.
8. Использование «Тест-системы.» позволило выявить ряд особенностей эпизоотического процесса ИРТ КРС в современных условиях:
• основным источником возбудителя инфекции являются быки-производители, у которых заболевание протекает в латентной форме без проявления клинических признаков;
• опасными в эпизоотическом отношении являются коровы, осемененные инфицированной вирусом спермой, а также телята, зараженные от инфицированных коров. Симптомы «классического» ИРТ КРС у коров встречаются редко, заболевание часто протекает субклинически и переходит в латентную форму, сопровождаясь периодическими обострениями. У телят наблюдаются все описанные в литературе формы, в том числе, латентная. Такие хозяйства становятся стационарно неблагополучными о ИРТ КРС;
• ИРТ КРС у телят протекает в ассоциации как с вирусными (пара-грипп-3, аденовирозы, вирусная диарея-болезнь слизистых), так и бактериальными инфекциями. В качестве осложняющего этиологического агента часто выделяли сальмонеллы (до 60%) и пастереллы с пониженной вирулентностью (до 30%). При хронических формах бронхопневмоний из легких больных животных изолировали стрептококки и стафилококки, а диплокок-ковую инфекцию наблюдали редко. В таких случаях выделение вируса ИРТ КРС обычными методами было затруднено и его этиологическая роль оставалась не установленной вследствие постановки ошибочного диагноза на бактериальные инфекции;
• заболевание встречалось среди животных, принадлежащих частным владельцам во время массовых вспышек респираторных болезней на фермах общественного стада. Характер течения инфекционного процесса у них был сходным.
9. Комплекс профилактических и противоэпизоотических мероприятий, включающий «Тест-систему для диагностики инфекционного ринотра-хеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации», по
257
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
На основании проведенных исследований разработаны и предлагаются для практики:
1. «Временное наставление по применению «Тест-системы для диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации» (в порядке широких производственных испытаний, 1998-2000), утвержденное Департаментом ветеринарии при МСХиП РФ 06.04.99 г. № 13-7-2/1551;
2. «Технические условия на «Тест-систему для диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации», утвержденные 06.04.99 г. (ТУ № 9388-00900008064-99);
3. Полученные результаты включены в проект «Инструкции по диагностике, мерам профилактики и борьбы с инфекционным ринотра-хеитом крупного рогатого скота», представленную на утверждение в Департамент Ветеринарии при МСХиП РФ (1999 г.)
Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 1999 года, Глотов, Александр Гаврилович
1. Аавер Э., Фомин Ю.В., Кумар Ю. К. К эпизоотологии инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в Эстонской ССР// Тезисы докл. Всесоюзн. межвуз. научной конф. по ветер, вирусологии, Тарту. -1973.-4.1.-41с.
2. Аавер Э., Кумар Ю. О наличии вирусных заболеваний у крупного рогатого скота в Эстонии// Теоретические и практические вопросы ветеринарии, Тарту. 1974. - С. 93-95.
3. Адаричев В.А., Дымшиц Г.М., Калачиков С.М. Получение нерадиоактивных ДНК-зондов//Биоорганическая химия. 1987.- Т. 13.- № 38.- С. 1066-1069.
4. Андреев Е.В. Вирусные инфекции слизистых оболочек крупного рогатого скота// Сб. Ветеринария К. 1974. - №38. - С. 37 - 38.
5. Андреев Е.В. 1нфикцшний ринотрахеи'-пустулозний вульвовагинит// Урожай, Киев 1975.- с.
6. Андреев Е.В., Чечеткина Н.П., Дудник О.Л., Фурсова И.А., Семернина И.А., Костенок A.A. Вирусные заболевания телят// Владимир. -1976.-ч. 1.-С. 244-245.
7. Андреев Е.В., Чечеткина Н.П., Дудник О.В., Добролюбова Н.И., Фурсова А.И., Костенко A.A. Герпетическая инфекция быков-производителей//Ветеринария. 1977. - №9. - С. 56-57.
8. Андреев Е.В., Драгомир A.B. Инфекционный ринотрахеит-пустулёзный вульвовагинит// В кн. Острые респираторные заболевания крупного рогатого скота, Кишинёв 1979. - С. 6 - 83.
9. Андреев Е.В. Ассоциированное воздействие на организм вируса и условно-патогенных бактерий//Ветеринария. 1984. - № .- С. - 25 - 27.
10. Балашов Н.Г., Фарботко Г.Э., Кондрахина К.Н. Способ обработки спермы быков для вирусологического контроля// Авторское свидетельство СССР № 1309359
11. Баринский И.Ф., Шубладзе А.К., Каспаров A.A., Гребенюк В.Н. Герпес. Этиология, диагностика, лечение- М: Медицина. 1986. - 269с.
12. Бектемиров А.Т. Гибридизация нуклеиновых кислот как средство быстрой вирусологической диагностики. Отчёт о рабочей консультации ВОЗ, Москва, 23 25 января. - 1985// Вопросы вирусологии. - 1988. - №1. - С. 110 -117.
13. Бучнев К.Н. К этиологии вирусных заболеваний крупного рогатого скота с поражением слизистых в Казахстане// Вестник с. х. науки. - 1969. -№3. - С. 34-41.
14. Вишняков И.Ф. Диагностика вирозов в эпизоотологическом мониторинге// Актуальные проблемы ветеринарной медицины в России: Сб. науч. тр., посвящ. 100-летию науки в России и 30-летию СО РАСХН / РАСХН. Сиб. Отд-ние. Новосибирск, 1998. - С. 121-131.
15. Гаджиев Б.М. Методы ускоренного выявления вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в культуре клеток почки теленка// Доклады ВАСХНИЛ. 1990. - №7. - С. 59 - 61.
16. Гаджиев Б.М., Стогул Н.К., Аваков А.Э. Сравнительная оценка методов выявления вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в культуре клеток почки телёнка// Доклады ВАСХНИЛ. 1990. - №12. -С. 41-44.
17. Гаджиев Б.М. Ускоренная индикация вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в культуре клеток: Автореф. дисс. . канд. вет. наук. 1991.
18. Герасимов В.Н., Худяков Г.А., Герасимова Н.И., Федорова Е.Е. Хранение вирусов животных в жидком азоте// Пробл. инфекц. патол. с. -х. ж-ных: Тез. докл. конф. ВНИИЖЗ. Владимир, 1997. -С. 120-121.
19. Горский В.В. Методика подсчёта клеток в однослойной культуре ткани// Вопросы вирусологии. 1967. -№1. - С. 107 - 110.
20. Гришенкова A.C. Идентификация вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом иммунофлуоресценции// Ветеринария- 1976.-№3.-С. 112-113.
21. Грязин В.Н. Вирусные респираторные заболевания телят и меры борьбы с ними:Автореф. дисс. канд.вет.наук.- Новосибирск, 1983.
22. Гуненков В.В., Сухарев О.И. Болезни, вызываемые герпесвирусами// Инфекционные болезни животных. Справочник. М. Агропромиздат. 1987. - С. 97.
23. Гуненков В.В., Сухарев О.И. Инфекционный ринотрахеит-пустулезный вульвовагинит/Мнфекционные болезни животных. Справочник. М. Агропромиздат. -1987. С. 98.
24. Джупина С.И., Иванов Ю.А. Опыт эпизоотического анализа заболеваемости телят в Вороновском комплексе// Бюлл. ВИЭВ. 1975. -Вып.22. - С. 22-26.
25. Дьяконов Л.П, Глухов В.Ф, Поздняков А.А, Денисенко Г.Ф, Калмыкова Т.П. Культивирование клеток и тканей животных//Учебно-методическое пособие (часть 1).- Ставрополь, 1986. С. 96.
26. Дьяконов Л.П, Глухов В.Ф, Поздняков A.A., Денисенко Г.Ф, Калмыкова Т.П. Культивирование клеток и тканей животных/УУчебно-методческое пособие (часть 2). Ставрополь, 1988. - С. 91
27. Изотова Н.В, Балашов Н.Г, Фарботко Г.Э. Выделение вируса ИРТ-ИПВ из спермы племенных быков// Биологические препараты против инфекционных болезней животных.- М, 1981. С. 98 - 101.
28. Закутский H.H. Технология выращивания вакцинного штамма "ТК-А" вируса ИРТ-КРС в перевиваемой культуре клеток MDBK// Ветеринария. -1997. -№ 12.-С.
29. Зудилина З.Ф. Изучение биологических свойств парамиксовируса и вирусов группы герпес крупного рогатого скота:Автореф. дисс. канд. вет. наук.-М, 1970.
30. Зудилина З.Ф., Крюков H.H., Надточей Г.А. Выделение и идентификация двух штаммов вируса инфекционого ринотрахеита крупного рогатого скота//Бюлл. ВИЭВ. Вьш.Х!. - М.,1971. - С. 29 - 31.
31. Зуев В.А. Лабораторная диагностика латентных и медленных инфекций// М.: Медицина.-1979. С. 184.
32. Кашкинбаев К.А. Патоморфология и вопросы патогенезаинфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота: Автореф дисс .канд вет наук. М. 1978.
33. Клименко С.М., Бикбулатов P.M. Методы исследования в молекулярной, общей и медицинской вирусологии// РАМН. Ин-т вирусол. -1992.-279 с.
34. Кондрахина К.Н., Фарботко Г.Э. Ингибирующее действие спермы быков на вирус инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота// Методы и средства диагност., профилакт. и лечения инфекц. болезней животных: Сб. науч. тр. ВГНКИ. М, 1985. - С. 114 - 118.
35. Коннов Н. М. Инфекционный ринотрахеит-баланопостит у откормочных бычков// Научные труды КВИ. 1980. - 133. -С. 9-12.
36. Коннов Н.М., Нигматулин M.K. Проявление абортов и дерматита у крупного рогатого скота, вызванных вирусом инфекционного ринотрахеита// Диагн., проф. и мет. борьбы с туберкулёзом животных.- Казань, 1985. С. 53 -56.
37. Краев A.C. Использование бактериофагов в молекулярной биологии//Молекулярная биология. 1988. -22, 5. - С. 1164-1196.
38. Крупный рогатый скот. Методы лабораторной диагностики инфекционного ринотрахеита. ГОСТ. М, 1992. - С. 20.
39. Крюков H.H. Некоторые вопросы методики исследования малоизученных вирусных болезней// Бюлл. ВИЭВ. 1970. -Вып.8. - С. 42 -47. .
40. Крюков H.H. Герпесвнрусы и их роль в инфекционной патологии//Бюлл. ВИЭВ. 1971. - Вып.11. - С. 7-10.
41. Крюков H.H. Инфекционный ринотрахеит (пустулёзный вульвовагинит) крупного рогатого скога// Бюлл. ВИЭВ. 1972. - Вып.37. -С. 146-149.
42. Крюков H.H. Некоторые итоги изучения вирусных болезней сельскохозяйственных животн// Труды ВИЭВ. 1972. - 40. - С. 27 - 52.
43. Крюков H.H., Белкина Н.М., Семенихин A.JI. Получение модифицированного вируса ИРТ и испытание его иммуногенных свойств //Бюлл. ВИЭВ. 1972. - Вып. 14. - С. 5 - 8.
44. Крюков H.H. Инфекционный ринотрахеит-пустулезный вульвовагинит крупного рогатого скота// В кн.: Инфекционные болезни крупного рогатого скота.- М.: Колос. 1974. - С. 83 - 94.
45. Крюков H.H., Зудил и иа З.Ф., Евдокимов С.И. Вирусные респираторные болезни крупного рогатого скота//Ветеринария. -1976. -№6. -С. 111-113.
46. Крюков H.H. Инфекционный ринотрахеит- пустулёзный вульвовагинит крупного рогатою скота// Итоги науки и техники/ Животноводство и ветеринария,- М.: 1980. С. 32-113.
47. Крюков H.H., Зудилина З.Ф., Шуляк А.Ф., Вечеркин A.C. Сухая ассоциированная вирусвакцина против парагриппа-3 и инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота//Бюлл. ВИЭВ. 1982.- Вып. 14. -С.15-21.
48. Крюков H.H., Сологуб В.К., Шуляк А.Ф. Гемагглютинирующие свойства вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота// Ветеринария. 1982. - №1. - С. 26 - 28.
49. Крюков H.H., Шуляк А.Ф., Сологуб В.К. Методические рекомендации по приготовлению гемагглютинирующего антигена вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота и постановке реакции торможения гемагглюгинации. -М., 1983.-С. 16.
50. Крюков Н.Н., Семенюта А.Т., Шегидевич Э.А. Микробный пейзаж и иммунологическая реактивность у телят, выращиваемых в условиях промышленной технологии//Труды ВИЭВ. 1984. - 60. - С. 15 23.
51. Лакин Г.Ф. Биометрия,- М.: Высшая школа. 1968.- 343с.
52. Майборода Ф.Д., Крюков Н.Н. Выделение штамма вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота// Вторая Всесоюзная конференция молодых ученых по ветеринарии. /Тез. докл. М.,1971.- С.43-45.
53. Майборода А.Д., Крюков Н.Н., Семенихин А.Л. Изготовление и проверка опытной инактивированной вакцины против ИРТ КРС// Бюлл. ВИЭВ,-М., 1974.-Вып. 11.-С. 117-119.
54. Майборода А.Д., Кашкинбаев К.А. Выделение вируса и клинико-морфологические особенности ИРТ у телят раннего возраста // Ветеринария. 1977. -№3. - С. 54-55
55. Мак Керчер Д.Г. Вирусы и проблема воспроизводства крупного рогатого скота// Сельское хозяйство за рубежом. 1970. - №7. - С. 31 - 32.
56. Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Д. Молекулярное клонирование. -М.: Мир, 1984.-С.
57. Морозов И.А. Клонирование ДНК вируса инфекционного ринотрахеита, штамм М29// Ветеринарная иммунология и биотехнология: Сб. научн. Тр. ВИЭВ.-1988. С. 23 - 25.
58. Морозов И.А., Артюшин С.К., Шуляк А.Ф. Разработка гибри-дизационного зонда для идентификации вируса инфекционного ринотрахеита.// Тез. докл.науч.конф. "Биохимия сельскохозяйственных животных и продовольственная программа".- Киев, 1989. С. 56 - 57.
59. Морозов И.А., Шуляк А.Ф., Артюшин С.К., Коромыслов Г.Ф. Дифференциация штаммов вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота с помощью рестрикционного анализа// Мол. генет., микробиол. и вирус. 1991. - №4. - С. 64 - 67.
60. Морозов И.А. Рестрикционный анализ и молекулярной клонирование ДНК вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота:Автореф. дисс. канд.ветер.наук. М. - 1991.
61. Науменков В.И. Вопросы этиологии и динамики эпизоотического процесса при вирусных пневмоэнтеритах телят//Ветеринария. 1994. - №2. -С. 23-24.
62. Петров Р.В. Иммунология.- М.:Медицина. 1983.- 234с.
63. Петрова О.Г. Острые респираторные заболевания крупного рогатого скота. Диагностика, профилактика, лечение.- Екатеринбург, 1995. -41с.
64. Пономаренко Ф.М. Инфекционный катар верхних дыхательных путей крупного рогатого скота// Советская ветеринария. 1940. - №12. - С. 1 -4.
65. Пономаренко Ф.М. Инфекционный катар верхних дыхательных путей// Тр. Киевского ветер, ин-та. 1950. - 10. - С. 19-25.
66. Русанова Л.П., Баранов В.И., Лысухо A.C., Федорова H.A., Аваков А.Э., Денисенко В.Н. Лабораторная диагностика респираторных болезней телят ДНК-зондами// Ветеринария. 1992. -№ 3. - С. 24 - 25.
67. Радченков В. П., Стоянов В.К. Возможность передачи инфекций со спермой быков// Зоотехния. 1992. - №5 - 6. - 35 - 37.
68. Сергеев В.А. Профилактика ИРТ КРС сывороткой крови реконвалесцентов// Информационный листок № 150.- Тамбов, 1972.
69. Сергеев В.А. Орлянкин Б.Г. Структура и биология вирусов//М.: Колос, 1983.-336с.
70. Симонова Э.Г, Закутский Н.И, Середа А.Д, Жестерев В.И, Вишняков И.Ф. Ультраструктура и морфогенез вакцинного штамма "ТК-А" вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота// Ветеринария. -1997.-№10.-С. 15-18.
71. Соловьев Б.В, Фомин Ю.В, Иванова Г.А. Изучение антигенной активности инактивированной вакцины против ИРТ КРС: Сб.тр. ВГНКИ ветпрепаратов. 1975. -22. - С. 60-66.
72. Сухарев О.И, Гладченко Н.Р. Диссеминация и персистирование вирусов ИРТ, ПГ-3, ВД-БС в организме телят при экспериментальном заражении// Биол. препараты против инфекц. бол. жив-х.- М, 1981. С. 87 -92.
73. Сухарев О.И, Гуненков В.В, Сюрин В.В. Особенности проявления инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота// Вест. с.-х. науки. -М, 1981.-6.-С. 110-114.
74. Сухарев О.И. Особенности эпизоотического процесса в хозяйствах стационарно неблагополучных по инфекционному ринотрахеита// Актуальные вопросы эпизоотологии. //Тез.докл. Всес. науч. конф. по проблемам эпизоотологии.- Казань, 1983. С. 42 - 43.
75. Сюрин В.Н, Петрова И.А, Сухарев О.И. Применение роллерной культуры клеток для выращивания вируса инфекционного ринотрахеита: Сб. науч. тр. МВА// Проблемы молекулярной биологии и патологии сельскохозяйственных животных. -1980. Т. 113 - С. 75-77.
76. Третьяков А.Д, Крюков Н.Н, Картушин С.И. Эпизоотическая ситуация в мире по ИРТ-ИПВ КРС// Ветеринария. 1975. - № .- С. 103-110
77. Трефилов В.Н. Диагностика генитальной формы инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота: Сб. тр. Свердловского и Кировского с.-х. институтов. 1979. -56. - 24 - 27.
78. Усова Н.Ф. Клиническая картина патологоанатомические изменения при инфекционном ринотрахеите крупного рогатого скота: Межвуз. Сб. науч. статей.- КишиневД 980. С. 24 - 26.
79. Фарботко Г.Э. Разработка метода контроля спермы быков на контаминацию вирусом инфекционного ринотрахеита: Автореф. дисс. канд. ветер.наук.-М., 1989.-С. 19
80. Фарботко Г.Э., Кондрахина К.Н., Павлова Л.Д. Эпизоотическая обстановка по инфекционному ринотрахеиту крупного рогатого скота на племпредприятии// Ветеринария. 1994. - № .- С. 27 - 30
81. Фельдман И.И. Теория и практика эффективной профилактики диареи и энзоотической бронхопневмонии телят разрывом эпизоотической цепи// Болезни телят и меры борьбы с ними: Сб. нач. трудов/ВАСХНИЛ, Сиб. Отд-ние. Новосибирск, 1983. - С. 17-24.
82. Чекишев В.М., Кабанцев А.И. Профилактика респираторных заболеваний телят на крупных фермах//Профилактика болезней молодняка на животноводческих комплексах.- Воронеж, 1981. С. 35.
83. Чекишев В.М., Кабанцев А.И. Профилактика респираторных заболеваний на крупных фермах//Ветеринария. -1983 №4. - С. 14 - 16.
84. Чекишев В.М. Перспективы использования достижений биотехнологии в диагностике инфекционных болезней животных (теоретический и практический аспекты): Сб. науч. тр./ РАСХН. Сиб. Отд-ние. ИЭВСиДВ. Новосибирск, 1992. - С. 53-56.
85. Чечеткина Н.П., Лиховидов Г.Д., Хвостова Л.В. Серотерапия вирусных респираторных болезней телят// Ветеринария. 1980. - №12. - 35 -36.
86. Штрауб О.Х. Инфекции крупного рогатого скота, вызываемые герпесвирусами. -М.: Колос. 1981. -С. 43-112
87. Юров К.П., Шуляк А.Ф. Герпесвирусы крупного рогатого скота//Ветеринария. 1999. -№4 . - С. 34-38.
88. Abshangen H, KoklesR. Untersuchungen zur Infektion mit dem Virus des Blaschenausschlages des Rindes (IBR-IPV-Virus)// Mh. Vet. Med., 1973. -Vol.35.-P. 579-582
89. Ackerman M., Peterhans E., Wyler R. DNA of bovine herpesvirus type 1 in trigeminal ganglia of latently infected calves// Am.J.VetRes. 1982.-Jan. Vol.43 (№1).-P. 36-40.
90. Ackerman M., Wyler R. The DNA of an IPV strain of bovid herpesvirus 1 in sacral ganglia during latency after intravaginal infection// Vet. Microbiol. 1984.- Feb. Vol. 9 (№1).- P. 53 - 63.
91. Ackerman M., Muller H.K., Bruckner L., Riggenbach C., Kihm U. The control of infectious bovine rhinotracheitis (IBR) in Switzerland from 1978 to 1988//Schweiz Arch Tierheilkd. 1990. - Vol. 13(№7). - P. 397-407.
92. Achour H.A., Moussa A. Serological and virological studies on the infectious bovine rhinotracheitis in Algeria// Zentralbl Veterinarmed. 1996.- Jun. Vol.43 (№4).-P. 251-256
93. Andino R.N., Torres H.N., Polacino P.S., Schudel A., Palma E.L. Detection of bovine herpesvirus-1 nucleic acid sequences, using a dot-blot hybridization procedure// Am. J. Vet. Res. 1987.- June.- Vol.48(№6).- P. 984 - 987.
94. Allan P. J., Dennet D.P., Johnson R.H. Studies on the effect of infectious bovine rhinotracheitis virus on reproduction in heifers.// Aust. Vet. J. 1975. - Aug.- Vol.51(№8). - P. 370 - 373.
95. Babiuk L.A., Rouse B.T. Immune control of herpesvirus latency.// Can. J. Microbiol. 1979. - Vol. 25. - P. 267 - 274.
96. Bandyopadhyay S.K., Mittal S.K., Field H.J. Identification of the gene homologous to HSV major DNA binding protein in the BHV-1 genome// Vet. Microbiol.- 1990,- Apr. Vol.22 (№2-3).- P. 203- 212.
97. Barany G., Harrach B., Benko M., Bartha A. Molecular cloning of DNA from a bovine herpesvirus 1 strain isolated in Hungary// Acta Vet. Hung.-1989.- Vol.37 (№4).- P. 353 360.
98. Bartha A. Immunization of cattle with an attenuated IBR vaccine// Develop biol Standart. 1973. - Vol.26. - P.5-7.
99. Bartha A. Respiratory disease of cattle// Bull. Off. Internat. Epizoot. -1977,-Vol. 88.-P. 105-113.
100. Bartha A. KomplexeBekampfimgsmabnahmen gegen virusbedingte Erkrankungen der Atmungs und Verdauungsorgane der Rinder in der VR Ungarn// Mh. Vet-med. 1977. - Vol.32. - P. 28-32.
101. Barron B.L., Vales N. Biologia molecular de la pathogenesis por herpesvirus// Rev. Latinoamer. Microbiol. 1990. - Vol. 33 (№1). - P. 77 - 85.
102. Batza H.J. IBR control with the European Union// Tijdschr. Diergen-eeskd. 1995. - Sep. 1. - Vol. 120 (№17). - P. 501 - 502.
103. Bauer K. Serologische Untersuchungen über den Verbreitungsgrad der IBR/IPV Virusinfection bei Rindern in Bayern.- Tierartzl. Umsch. - 1980.-Vol.35 (№9). -P. 594- 600.
104. Belak S., Linne t., Magyar G., Harrach B., Benko M., Klingeborn B., Klinteval K., Bartha A. Bovine Herpesvirus 1: Rapid diagnosis of infection by direct filter hybridization//Mol. Cell. Probes. 1988.- Jun. - Vol. 2 (№2). - P. 147 -156.
105. Belknap E.B., Collins J.K., Ayers V.K., Schultheiss. Experimental infection of neonatal calves with neurovirulent bovine herpesvirus type 1.3.// Vet. Pathol. 1994. - May. - Vol.31 (№3). - P. 358 - 365.
106. Ben-Porat T., Veach R.A., Ihara S. Localization of the regions of homology between the genomes of HSV-1 and pseudorabies virus.// Virology. -1983.-Vol.127.-P. 194-204.
107. Bitsch V. Infectious bovine rhinotracheitis virus infection in bulls, with special reference to preputial infection// Appl. Microbiol. 1973. - Vol. 26.-P. 337-343.
108. Bitsch V. Persistence of infection with infectious bovine rhinotracheitis virus in Danish cattle herds// Nord. Veter. Med. 1978. - Vol.30 (№4/5).-P. 178- 185.
109. Birnboim H.C., Doly J. A rapid alkaline extraction procedure for screening: recombinant plasmid DNA// Nucleic acids Res. 1979. - Vol.7. -P.1513.
110. Bommeli W., Kihm U. The IBR control programme in Switzerland// Proceedings /12 World congress on deseases of cattle. (Amsterdam. 07-10.09). -1982.-Vol.L-P. 153-155.
111. Brock K.V, Potgieter L.N. Rapid fluorescence detection of in situ hybridization with biotinylated bovine herpesvirus-1 DNA probes.// J. Vet. Diagn. Invest.-1989.-Jan. Vol. 1 (№1).-P. 34-38.
112. Bronson D.L, Graham B.J, Ludwig H, Benyesh-Melnick M, Biswal N. Studies on the relatedness of herpesviruses through DNARNA hybridization.// Biochim. Biophis. Acta. 1972. - Vol.259. - P. 2 - 34.
113. Brown G. A„ Field H.J. Experimental reactivation of bovine herpesvirus 1 by means of corticosteroids in an intranasal rabbit model// Arch. Virol. -1990,-Vol.l-2.-P. 81-101.
114. Brunner D, Engels M, Schwyzer M, Wyler R. A comparison of three Techniques for detecting Bovine Herpesvirus type 1 (BHV-1) in naturally and experimentally contaminated bovine semen// Zuchthyg. 1988.- Vol.23. -P. 1 -9.
115. Bublot M, Van Bressem M- F, Thiry E, Dubuisson J, Pastoret P.P. Bovine herpesvirus 4 genome: Cloning, mapping and strain variation analyses//J. Of Gen. Virol.- 1989. - Vol.70. -P. 1 - 10.
116. Bublot M, Wellemans G, Van Bressem M.F, Dubuisson J, Pastoret P.- P, Thiry E. Genomic diversity among bovine herpesvirus 4 field isolates// Arch. Virol.- 1990.-Vol.l 16.-P. 1 18.
117. Bush C.E, Pritchett R.F. A comparison of the genomes of bovine herpesvirus type 1 and pseudorabies virus.// J. Gen. Virol.- 1985a.- Aug. Vol.66 (№8).-P. 1811-1817.
118. Bush C.E, Pritchett R.F. A comparison of the genomes of bovine herpesvirus 1 and suid herpesvirus 1 P.2.// J. Gen. Virol. 1985b. -Nov. Vol.69 (№11).-P. 1134-1139.
119. Buczek J., Deptula W. Przebieg infekcji i odpowiedzi immunologic-znej plodu bydla zakazonego wirusem IBR IPV (Bovid herpesvirus 1)// Med. Vet.- 1983. - Vol.39 (№6). - P. 363-366.
120. Bryson D. Respiratory disease of cattle in England// Veter. Rec.-1978. Vol.103 (№22). - P. 485-489.
121. Castrucci G., Frigeri F., Cilli V., Donneli G., Ferrari M., Chicchini U., Bordoni E. A study of a herpesvirus isolated from dairy cattle with a history of reproductive disorders// Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis.- 1986. Vol.9 (№1). - P. 13-21.
122. Chapman M. Survival of infectious bovine rhinotracheitis virus in stored bovine semen.// Veter. Sc. Communic. 1979. - Vol.3. - P. 137 - 139.
123. Christensen L.S., Madsen K.G., Nylin B., Ronsholt L. A contribution to the systematization of bovine herpesvirus 1 based on genomic mapping by restriction fragment pattern analysis// Virus. Res. 1996. - Dec. Vol.46 (№1-2). - P. 177- 182.
124. Choudhury S.I., Kubin G., Ludwig H. Equine herpesvirus type 1 (EHV-1) induced abortions and paralysis in a Lippizaner stud: a contribution to the classification of equine herpesviruses.// Arch. Virol. 1990. - Vol.16.- P. 273 -288.
125. Chow T.L., Davies R.W. The susceptibility of mule deer to EBR.// Am. J. Vet. Res. 1964. - Vol.25, №10. - P. - 518 - 519.
126. Chung Y.T., Hsu W. Functional expression of the bovine herpesvirus 1 alkaline deoxiribonuclease (UL12) in Escherichia coli.// Arch. Virol. 1996. -Vol.141 (№12). - P. 2457-2464.
127. Chung Y.T., Hsu W. Purification of the infectious bovine rhinotracheitis virus alkaline deoxiribonuclease expressed in Escherichia coli.// J. Vet. Med. Sci. 1997. - Jan. Vol.59 (№1). - P. 35 - 38.
128. Cummins J., Rosenquist B. Effect of hydrocortisone on the interferon response of calves infected with infectious bovine rhinotracheitis virus.// Ann. J. Veter. Res. 1977. - Vol.38 (№8). - P. 1163 - 1166.
129. Dahme E. IBR IPV Infektionen des ZNS.// Tierarztl. Umsch. -1984. - Vol.39 (№5). - P. 375 - 376.
130. Dannacher G. La rhinotracheite bovine infectiieuse. Sa place dans la pathologie respiratoire.//Rev. Med. Veter. 1980. - Vol.131, №5,- P. 359 - 368.
131. Darcel Le Q., Dorward W. Recovery of infectious bovine virus following corticosteroid treatment of vaccinated animals.// Canad. Veter.- 1975. -Vol. 16 (№3).-P. 87-88.
132. Davies D., Duncan J. The pathogenesis of recurrent infecnions with infectious bovine rhinotracheitis virus induced in calves by treatment with corticosteroids.// Cornell. Veter. 1974. - Vol.64 (№3). - P. 340 - 366.
133. Davison A. J., Wilkie N.M. Location and orientation of homologous sequences in the genomes of five herpesviruses.// J. Gen. Virol. 1983. - Vol.64. - P.1927 -1941.
134. Delton G., Jones C. Identification of DNA sequences in the latency related promoter of bovine herpesvirus 1 which are bound by neuronal specific factors.//Virus Res. 1997. -Sep .Vol.51 (№1). -P. 93 - 103.
135. Deptula W. Nieswoistai swoista odpornosc komorkowa u buhajow zakazonich naturalnie wirusem IBR/IPV (Bovid herpes virus 1).// Med. Vet. -1992. - Vol.48, №6. - P. 276-279.
136. Dialo A. Veterinärmedizin und Molecularbiologie: Moglikheiten und Grenzen der Virusdetektion.// Schweiz. Arch. Tierheikl. 1991.- Vol.133, № 1.-P. 48-59.
137. Dorman M.A., Blair C.D., Collins J.K., Beaty B.I. Detection of Bovid herpesvirus 1 DNA immobilized on nitrocellulose by hybridization with bi-otinylated DNA probes.// J. Of Clinical Microb. 1985. - Vol. 22. - P. 990 - 995.
138. Dunn D. C., Blair C.D., Ward D.C., Beaty B.I.Detection of bovine herpesvirus specific nucleic acids by in situ hybridization with biotinylated DNA probes// Am. J. Vet. Res. - 1986. -Apr. Vol. 47 (№4). - P. 740 - 746.
139. Drew T.W., Hewitt Taylor C., Watson L., Edwards S. Effect of storage conditions and culture technique on the isolation of infectious bovine rhi-notracheitis virus from bovine semen.// Vet. Ree. - 1987. - Dec. Vol.5 (№121). -P. 547-548.
140. Edwards S. Infectious bovine rhinotracheitis.// British Friesian Journal. 1982. - Vol.64 (№3). -P. 222.
141. Edwards S., Roeder P.L. A tempted reactivation of latent bovine herpes virus 1 infection in calves by infection with ruminant pestiviruses.// Vet. Microbiol. 1983. - Vol. 8, № 6. - P. 563 - 569.
142. Edwards S. On the IBR-IPV control in England// Br. Vet. J.- 1988. -Vol.112.-P. 111-114.
143. Edwards S., Newman R.H., White H. The virulence of British isolates of bovid herpesvirus 1 in relationship to viral genotype.// Br. Vet. J. 1991. -May - June, Vol. 147 (№3). - P. 216 - 231.
144. Egelhof S.W. Significance of bovine herpesvirus 4 and its detection.// Tierarztl. Prax. 1991. - Apr. Vol.19 (№2). -P.127- 129.
145. Elashary M.A., Silima A., Frechtette J.L. Prevalence of antibodies to some bovine viruses in the caribow (Rangifer tarandus caribow) in Quebec, Canada.// Acta. Zool. Fenn. 1983. - Vol.117, №3. - P. 107-108.
146. Euguster A. Isolation of IBR virus from stillborn and neonatal piglets.// Am. Ass. Vet. Labor. Diagn. Ann. Proceed. 1978. - Vol. 21,№1. - P. 1 - 4.
147. Engels M., Steck F., Wyler R. Comparison of the genomes of Infectious Bovine Herpesvirus and Infectious Bovine Vulvovaginitis virus strains by restriction endonuclease analysis// Archives of Virology. 1981. - Vol.67. - P. 169 -174.
148. Engels M., Loepfe E., Wild P., Schraner E., Wyler R. The genome of caprine herpesvirus 1: genome structure and relatedness to bovine herpesvirus 1.// J. Gen. Virol. 1987. - Jul. Vol.68(№7). - P. 2019 - 2023.
149. Espinasse J. Reflexions et commentaires sur le role des virus dans les maladies respiratoires des bovins, a travers un sondage serologique effectue dans le cheptel marocain. //Rec. Med. Veter. 1978. - Vol.154 (№12). - P. 1009 - 1013.
150. Farley J.E., Skare I.B., Skare J. Inverted repeat sequences in infectious bovine rhinotracheitis virus DNA.// Internat. Conference on Human Herpesviruses. Atlanta, USA. 1980.- P.340-342.
151. Fastier L.B., Smith B.P. IBR-IPV: virus isolation and vaccination studies// The New Zealand Vet. Journal. 1962. - Vol. 10 (№1). - P. 11-17.
152. Fastier L.B., Hansen N.F. The occurence of antibodies to bovine virus diarrhorea, infectious bovine rhinotracheitis and parainfluenza 3 viruses in sera from New Zealand cattle//New Zealand Vet J. 1969. - Vol. 14. - P.27-32
153. Fedida M., Dannacher G., Perrin M., Coudert M., Martel J.L. La rhinotracheite bovine infecteuse en France: situation, epidemiologique et vaccination a l'aide de vaccins inactives.// Dull. Office. Int. Epizoot. 1977. - Vol.88. - P.41 -46.
154. Foulton T. Herpesviridae: Classification et structure en 1991.// Com-par. Immunol., Microbiol and Infect Diseases. 1992. - Vol. 15, №1. - P. 13-29.
155. Frey H.R. Die IBR/IPV Infektionen und ihre Problematic// Rinderproduktion. - 1983. - Vol.6. - P. 24- 25.
156. Friend M., Halterman L.G. Serological survey of two deer herds in New-York State.// Bull. Wildlife Dis. Assoc. 1967. - Vol.3, №1. - P. 32 - 38.
157. Galik P.K, van Santen V.L, Stringfellow D.A, Bird R.C., Wright J.C, Smith P.C. Development of a DNA probe for identification of bovine herpesvirus 4.//Am. J. Vet. Res. 1993. -May. Vol.54 (№5). - P. 653 - 659.
158. Gibbs E.P.J, and Rweyemamu M.M. Bovine Herpesviruses. Part 1. Bovine Herpesvirus 1.// Veterinary Bulletin, Weybridge. 1977,- Vol.47. - P. 317 -343.
159. Gillespie J.H, McEntee K, Kendrick J.W, Wagner W.C. Comparison of infectious pustular vulvovaginitis virus with infectious rhinotracheitis virus.// Cornell. Vet. 1959. - Vol.49, №3. - P. 288 - 297.
160. Gimeno E.J, Ibargoyen G, Belak K, Sanguinetti H.R. Immunohis-tokemikst pavisande av bovint herpesvirus typ 1 i snitt fran nerwavnad// Sven. Veterinartidn. 1990. - Vol. 42, №15. - P. 653 - 655.
161. Goffaux M, Harlay T, Allietta M. Studies on the IBR IPV virus in the semen of insemination bulls// DTW Dtsch Tierarztl Wochenschr. - 1976. -Dec. 5, Vol.83 (№12). - P. 544 - 547.
162. Graham B.J, Ludwig H, Bronson D.L, Benyesh-Melnick M, Biswal N. Physiochemical properties of the DNA of herpesviruses.// Biochim. Biophis. Acta. 1972. - Vol.259. - P. 13-23.
163. Guenounou M, Guesdon J.- L, Penon J.-P, Pulcini F. Compte rendu de la premiere table ronde de l'Association des Anciens Eleves de l'Institut Pasteur (Paris), du 30 Jan., 1990 «Hybridization moleculaire: Actualité et perspectives»//
164. Publ. Frim. Assoc. Anciens Eleves Inst. Pasteur. 1990. - Vol.32, №24. - P. 27 -36.
165. Gupta P.K., Rai A. Restriction enzyme analysis of bovine herpesvirus 1 DNA from an Indian isolate// Biochem. Mol. Biol. Int. - 1993. - Apr. Vol. 29 (№5).-P. 889-898.
166. Gupta P.K., Rai A. Molecular cloning and characterization of PST1 fragments of bovine herpesvirus 1 DNA//Biochem. Mol. Biol. Int. - 1993. - Jul. Vol.30 (№3).-P. 443 -452.
167. Gupta P.K., Chaudhuri P., Sharma B., Singh V.P, Balain D.S. Cloning of Hindi 11 digested bovine herpesvirus 1 DNA fragments from an Indian respiratory isolate// Biochem. Mol. Biol. Int. - 1995. - Jan. Vol.35(№l). -P. 167-175.
168. Gupta P.K., Chaudhuri P., Sharma B., Singh V.P., Balain D.S. Cloning of 2.4 kb bovine herpesvirus 1 DNA fragment containing glycoprotein 111 gene into pUC18 plasmid vector// Indian J. Exp. Biol. - 1995. - Jun. Vol.33 (№6). -P. 459-461.
169. Gupta P.K., Saini M., Gupta L.K., Bandyopadhyay S.K., Garg S.K. Cloning and expression of bovine herpesvirus 1 glycoprotein C.// Biochem. Mol. Biol. Int. - 1999. - Feb. Vol.47 (№2). - P. 275 - 282.
170. Haanes E.J., Chen C.C., Lowery D.E. Nucleotide sequence and transcriptional analysis of a portion of the bovine herpesvirus genome encoding genes homologous to HSV-1, UL25, UL26 and UL26.5// Virus Rec. 1997. -Apr. Vol.48 (№1). - P. 19 - 26.
171. Haase A.T. Analysis of infections and pathological conditions by in situ hybridization.// «DNA probes: Appl. Genet. And Inf. Diseases and Cancer: Conf., Cold Spring Harbor, Apr. 20 23,1986», Cold Spring Harbor, N.Y. - 1986. -P. 113-118.
172. Hage J.J., Schukken Y.H., Barkema H.W., Benedictus G., Rijsewijk F.A., Wentink G.H. Population dynamics of bovine herpesvirus 1 infection in a dairy herd.// Yet. Microbiol. 1996.- Nov. Vol. 53(№l-2). - P. 1690 - 180.
173. Hamelin C., Jacques C., Assaf R. Differentiation of vaccine and field strains of bovine herpesvirus type 1 by restriction endonuclease analysis.// Nippon Juigaku Zasshi. 1990. - June. Vol.52 (№3). - P. 461 - 467.
174. Hammerschmidt W., Ludwig H., Buhk H.J. Short repeats cause heterogeniti at genomic terminus of bovine herpesvirus 1.// J. Virol.- 1986. -Vol.58.-P. 43-49.
175. Hammerschmidt W., Ludwig H., Buhk H.J. Specifity of cleavage in replicative-form DNA of bovine herpesvirus 1.// Journal of Virology. 1988. - P. 1355- 1363.
176. Hammerschmidt W., Ludwig H., Buhk H.J. Recombination of genomic terminus of bovine herpesvirus type 1 with cellular DNA.// J. Gen. Virol.- 1990. -Sep. Vol.71 (№9). -P.2043 -2051.
177. Харламбиев X. Ринотрахеитни ензоотии при импортирани крави и телета, съпроводени с конюнктивити аборти и енцефалити.// Ветер. Сбирка.- 1974.- Т.72, №10. С.17 - 20.
178. Харламбиев X. Иммунитет и иммунопрофилактика вирусных респираторных болезней телт в условиях промышленного содержания. София, 1977,-С. 1-62.
179. Harrach В., Benko M. The conserved open reading frame overlapping the thymidine kinase gene of different herpesviruses exist also in bovine herpesvirus 1. // Acta Vet. Hung. 1989. - Vol.37 (№4). - P. 361 - 364.
180. Holman H. Value of the IBR- free certificate.// Tijschr Diergeneeskd.- 1995. Sep. 1, Vol.120 (№17). - P. 505.
181. Homan E., Easterday B. Futher studies of naturelly occurring latent bovine herpesvirus infection// Am. J. Vet. Res. 1981. - Vol.42, №10. - P. 1811 -1813.
182. Honda E., Katsu Y., Okasaki K., Kumagai T. A comparison of polypeptides and restriction endonuclease sites of BHV-1 isolates and identification of IPV virus in Japan.// Nippon Juigaku Zasshi. -1989. Vol.34 (№1). - P. 45-51.
183. Hossain A., Schang L.M., Jones C. Identification of gene products encoded by the latency-related gene of bovine herpesvirus 1.// J. Virol. 1995. -Sep. Vol.69 (№9). - P. 5345 - 5352.
184. Howelling C.D. Susceptibility of goats to IBR.// Cornell. Vet. 1967. - Vol.56,№1. - P. 38-41.
185. Huck R.A., Millar P.G., Stables J.W., Ross A. Penopostitis associated with infectious bovine rhinotracheitis infectious pustular vulvovaginitis ( IBR-IPV) virus in a stud of bulls.// Am. J. Vet. Res. - 1971. - Vol. 30 (№2). - P. 34 -41.
186. Huck R.A., Roberts D.H. IBR/IPV of cattle: An application of inac-nivated vaccine// 43 ses. General, O.i.E., Paris. -1975. -rappor 115 bis.
187. Huigelen C., Thienport D., Dekeyser P.J., Vandervelden M. Allerton virus, a cytopathogenic agent associated with lumpy skin disease. 11. Inoculation of animals with tissue culture passages virus.// Zbl. Vet. Med. 1960a. - Vol.7. -P. 754.
188. Huigelen C., Thienport D., Vandervelden M. Isolation of a cytopathogenic agent from skin lesions of cattle.// Nature. 1960b. - Vol. 186. - P. 979.
189. Ibrahim A., Saw S.P., Fatimah I., Saharee A. A. Isolation of IBR virus from buffalo in Malasia.// Vet. Rec. 1983. - Vol.112, №13. - P. 303 - 304.
190. Jericho K.W.T., Lejeune A., TiffinG.B. Bovineherpesvirus 1 and Pasteurella haemolitica: aerobiology in experimentally infected calves.// Am. J. Of Vet. Res. - 1986. - Vol.47 (№2). - P. 205 -210.
191. Jorna T. Prevention and control of IBR in the Netherlnds// Reports and summaries. 11 International congress on diseases of cattle.( Tel-Aviv. 20-23. 1980).-1980.-P.274-280.
192. Kaaden O.R. Persistierende virusinfectionen mechanismen und konsequenzen.// Biol. Tiermed. - 1992. - Vol.9, №4. - P. 135 - 136.
193. Kahrs R.F. Infectious bovine rhinotracheitis. A review and update.// J. Am. Vet. Med. Assoc. 1977,-Vol. 171. -P. 1055 - 1064.
194. Kaminiolo J.S., Nyaga P.N., Omuse J.K., Mutiga E.R. Infectious bovine rhinotracheitis-infectious pustular vulvovaginitis viral isolates from cattle with epididymitis and vaginitis.// Am. J. Vet. Res.- 1975. Jan. Vol.36 (№1). - P. 123 - 125.
195. Kawaguchi Y., Matsumura T., Roizman B., Hirai K.// Cellular elongation factor 1 delta is modified in cells infected with representative alpha-, beta-, or gammaherpesviruses.// J. Virol. 1999. - May. Vol. 73 (№5). - P. 4456 -4460.
196. Kendrick J.W. Infectious pustular vulvovaginitis of cattle.// Cornell. Vet. 1958. - Vol.48, №3. - P. 458 - 495.
197. Kendrick J.W., Osburn B.I. Immunologic response of bovine fetus to inactivated infectious bovine rhinotracheitis infectious pustular vulvovaginitis virus.//Am. J. Vet. Res. - 1973. - Dec. Vol.34 (№12). - P. 1567- 1571.
198. Kenichi U. Tanpakushitsu kakusan koso.// Protein. Nucl. Acid and Enzime. 1992. - Vol.37, № 4. - P. 2374-2378.
199. Kennedy T.R., Evermann J.F., Cheevers W.P. Restriction endonuclease patterns of bovine herpesvirus type 1 isolated from bovine mammary glands.//Am. J. Vet. Res. 1986. - Dec. Vol.47 (№12). - P. 2525-2529.
200. Keil G.M., Engelhar T., Karger A., Enz M. Bovine herpesvirus 1 U(s) open reading frame 4 encoded a glycoproteoglycan.// J Virol. 1996. - May. Vol.70 (№5). - P. 3032 - 3038.
201. Khadr A., Tikoo S.K., Babiuk L.A., van Drunen Littel-van den Hurk S.//Gene.-1996.-Feb. 12,-Vol.168 (№2).-P. 189- 193.
202. Kharlambiev Kh., Dilovski M., Gaytandzieva R., ZagorskiD. Virus-neutralizing activity of semen from bulls that have been affected with infectious rhinotracheitis- balanoposthitis.// C.R. Acad. Agric. G. Dimitrov. 1974. - Vol.7. -P. 75-77.
203. Kit S., Qavi H., Gaines J.D., Billingsley P., McConnell S. Thymidine kinase-negative bovine herpesvirus type 1 mutant is stable and highly attenuated in calves.// Arcy. Virol. 1985. - Vol.86 (№1-2). - P. 63 - 83.
204. Kohler H., Kubin C. Zur Virologie und Pathomorphologie des Mannlichen Genitale Nach Naturlicher und Experimenteller Infektion Mit Dem IBR/IPV Virus.// Dtch. Tieraztl. Wochenschr. 1972. - Bd. 79. - S. 209 - 214.
205. Kokles R. Die Infektiöse Rhinotracheitis und das Goitalexantem des Rinds.// H. Rohrer Handbuch der Virusinfektion bei Tieren. 1967. - Bd. 2. - S. -901-960.
206. Kokles R. Handbuch der Virusifektionen bei Tieren. 1967. -Vol.2(№2). - P.901-960.
207. Kokles R. Virologische Untersuchungen zur Infektionen des Rindes mit dem Virus des Blaschenausschlages (IBR-IPV-Virus).// Mh. Vet.-Med. 1971. -Vol. 21.-P. 641-643.
208. Kriukov N.N. IBR-IPV of cattle// Bull. Off. Int. Epizoot. 1975. -Vol.84.-P. 141-148.
209. Kubin G. Intermittierender Nachweis des Blaschenausschlagvirus bei einen naturlich infizierten Stier.//Wien. Tierarztl. Msch. 1969. - Vol. 56. -P.336-337.
210. Kubin G. Reflexions sur l'infection par le virus IBR-IPV du boeuf en Autriche// Bull. Off. Inst. Epiz. -1975. Vol.84. -P. 111-118.
211. Kubin G. Fectstellung der infektiösen Rhinotracheitis (IBR) des Rindes in Osterreich.// Wien. Tieraztl. Mschr. 1982. - Vol.69 (№5). - P. 145 -148.
212. Kucera C.J, White R.G, Beckenhauer W.H. Elevation on the safety and efficacy of an intranasal vaccine containing a teperature-sensitive strain of IBR virus// Am.J. Vet. Res. 1978. - Vol. 39 (№4). - 607-610.
213. Kupferschmidt H.U. Isolation of infectious bovine rhinotracheitis virus from seronegative bulls.// Mh. Vet. Med. 1986. - Vol.10, №4 . - P. 1123 -1126.
214. Kutish G, Mainprize T, Rock D. Characterization of the latency-related transcriptionally active region of the bovine herpesvirus 1 genome.// J. Virol. 1990. - Dec. Vol. 64 (№12). - P. 5730-5037.
215. Langer P.A., Waldrop A, Ward D.C. Enzymatic synthesis of biotinlabeled polynucleotides: novel nucleic acids affinity.// Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1981. - Vol.78. - P. 6633 - 6637.
216. Leary J.J, Brigati D.J, Waed D.C. Rapid and sensitive colorimetric method for visualizing biotin-labeled DNA probes hybridized to DNA or RNA immobilized on nitrocellulose: bio-blots// Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1983. -Vol.80.-P. 4045-4049.
217. Leung-Tack P., Audonnet J.S., Riviere M. The complite DNA sequence and genetic organization of the short unique region (US) of the bovine herpesvirus type 1 (ST strain).//Virology. 1994. - Mar. Vol. 199 (№2). - P.409 -421.
218. Liang X., Tang M., Manns B., Babiuk L.A., Zamb T.J. Identification and deltion mutagenesis of the bovine herpesvirus 1 dUTP gene and a gene homologous to herpes simplex virus UL49.5.// Virology. 1993. - Jul. Vol.195 (№1). - P. 42-50.
219. Linon P. Suites contentieuse de la vente de genusses importees et reconnuees infectees de rhino-tracheite.// Rev. Med. Veter.- 1979. Vol. 130, №8 -9.-P. 1179-1192.
220. Lomba F., Bienfet V., Wellemans G. IBR virus and occurence of metritis at partiturition in the bovine Belgian Blue White breed// Brit. Vet.J.-1976a.-Vol.132.-P. 178-181.
221. Loretu K., Marinov P., Genov I., Bohnen H. Virus isolations from cases of infectious bovine pusto-vulvovaginitis and posthitis (IBR-IPV) in cattle in Tanzania.//Bull. Epizoot. Dis. Afr. 1974. - Dec. Vol.22 (№4). - P.303 - 310.
222. Ludovic B. Utjecaj Nacina Vakcinacije protiv zaraznoy Rinotraheitisa goveda na serloski adsovor// Praxis. Veter. 1979. - Vol. 27 (№1/2).-P. 1329-1332.
223. Ludwig H. Bovine herpes mammilitis (BHM) virus and its relationship to other herpesviruses.// Proc. XX Wld. Congr. (Thessaloniki.1976, July 6-12).- 1975.-P. 1318-1319.
224. Ludwig H. Bovine herpesviruses. In the Herpesviruses (Edited by B. Roizman) // Plenum Press, New York. 1983. - P. 135 - 214.
225. Ludwig H., Gregersen J.P. Infectious bovine rhinotracheitis -infectious pustular vulvovaginitis: BHV-1 infection.// Rev. Sei. et Techn. Off. Int. Epizoot. 1986. - Vol.5, №4. -P. 869 - 878.
226. Luttig J., Dedek J., Ludwig E., Deja O. Erfahrungen beim Auftreten einer Infektion mit dem Virus des Blaschenausschlages des Rindes (IBR-IPV-Virus) bei Bullen einer Bessamungsstation.// Mh. Vet.-Med. 1976. - Vol. 312. -P. 201-205.
227. Madin S.H., York C.J., Mc Kercher D G. Isolation of IBR virus.// Science. 1956. - Vol. 126, №6. - P. 721 - 722.
228. Magiar G., Benko M., Harrach B., Kucsera L., Bartha A. DNA restriction enzime analysis of a bovine herpesvirus 1 strain isolated from encephalitis in Hungary.// Acta Vet. Hung. 1989. - Vol.37, № 4. - P. 319 - 352.
229. Magyar G., Tanyi J., Hornyak A., Bartha A. Restriction endonuclease analysis of Hungarian bovine herpesvirus isolates from different clinical forms of IBR, IPV and encephalitis.// Acta Vet. Hung. 1993.- Vol.41 (№1-2). - P. 159 -170.
230. Mahy B.W.J. Strategies of virus persistence.// Brit. Vet. Bull. -1985.-Vol.41 (№1).-P. 50-55.
231. Mandel M., Higa H. Calcium deendent bacteriophage DNA infection//J. Mol. Biol.- 1970. Vol.53. - P. 154.
232. Matsuoka T., Folkerts T.M., Gale C. Evaluation in calves of an inactivated bovine rhinotracheitis and parainfluenza-3 vaccine cjmbined with pasteurella bacterin//J. Amer. Vet. Med. Ass. 1972. - Vol.160. - P. 333-337.
233. Marinov P., Genov I., Bonel Kh,, Loretu K. Isolation of viruses from semen of cattle bulls and their effect on fertility of cows.// Vet. Med. Nauki. -1974.- Vol. 11 (№7). P. 26 - 33.
234. Martel J.-l. Frequence de l'infection par le virus de la rhinotracheite infectiuse bovine (IBR-IPV) en France.// Rev. Med. Veter. —1976. Vol.152, №12.-P. 829-834.
235. Masri S.A., Olson W., Nguyen P.T., Prins S., Deregt D.// Rapid detection of bovine herpesvirus 1 in the semen of infected bulls by a nested polymerase chain reaction assay.// Can. J. Vet. Res. -1996. Apr. Vol.60 (№2). -P. 100-107.
236. Mayfield J.E., Good P.J., Vanoort H.J., Campbell A.R., Reed D. Cloning and cleavage site mapping of DNA from bovine herpesvirus 1 (Cooper strain).// J. Virol., 1983. Vol.-10. P. 259 - 264.
237. Mayr A. Viruskrankheiten der Kalber.// Reports and summaries -Rapports et resumes./11 International congress on diseases of cattle.( Tel Aviv, 20-23.10. 1980).- 1980. -P.233- 260.
238. McGeoch D.J. Evolutionary relationship of virion glycoprotein genes in the S regions of alphaherpesvirus genomes.// J. Gen. Virol. 1990. - Vol.71, №10.-P. 2361-2367.
239. McKercher D.J., Stroub O.C., Saito J.K., Wada H.M. Isolation of the infectious bovine rhinotracheitis virus.// Can. J. Comp. Med. 1959. - Vol.23. -P. 2320-2328.
240. McKercher D.J., Wada E.M. The virus of infectious bovine rhinotracheitis as a cause of abortion in cattle// J. Amer. Vet. Med. Ass. 1964. -Vol.114.-P. 136-142.
241. Metzler A.E., Shudel A.A., Engels M. Bovine herpesvirus 1: Molecular and antigenic characteristics of variant viruses isolates from calves with neurological disease// Arcy. Of Virol. 1986. - Vol. 87. - P. 205 - 217.
242. Metzler A.E., Wyler R. Praevalenz des Bovinen Herpesvirus 4 in der schweizerischen Rinderpopulation und moeglische Kreuzreaktion mit dem Bovinen Herpesvirus 1.// Schweiz. Arch. Tierheilk. 1986.- Vol.128. - P. 459 -467.
243. Miedema P. Presentation from the symposium of June 22, 1995 «The Netherlands on the road to IBR free status». IBR, an underestimated problem.// Tijschr. Diergeneeskd. - 1995. - Sep. 1, Vol.120 (№17).- P. 496 - 497.
244. Miller N.J. Infectious necrotic rhinotracheitis of cattle.// J. Am. Vet. Med. Assoc. 1955. - Vol.126. -P. 463-467.
245. Miller J.M., Van Der Maaten M.J. Effect of primary and recurrent bovine herpesvirus infection on the bovine ovary.// Amer. J. Vet. Res. 1985. -Vol.46, №7.-P. 1434-1437.
246. Miller J.M., Van Der Maaten M.J. Experimentally induced infectious bovine rhinotracheitis virus infection during early pregnancy: Effect on the bovine corpus luteum and conceptus.// Am. J. Vet. Res. 1986. - Vol.47, №2. - P. 223 -228.
247. Misra V., Babiuk L.A., Darcel C. Le. Q. Analysis of bovine herpes virus type 1 isolates by restriction endonuclease fingerpritting.// Arch. Of Virol. -1983.-Vol. 76.-P. 341-354.
248. Mitchel D. A studies of inactivated IBR/IPV vaccine//Can. Vet. J. -1974. Vol.l5(№5). - P. 148-151.
249. Mohanty S., Lillie S.M.G., Corcelling N.A., Beck J.E. Natural infectious bovine rhinotracheitis virus in goats.// J. A. V. M. A. 1972. - Vol.160, №6.-P. 879-880.
250. Monky D. The control of IBR-IPV virus in bovine semen//J. A. V. M. A. 1984.- Vol.5. P. 635-639.
251. Moril M.R., Bottone E.J., Janda M. Diagnosis of herpesvirus infections: correlation of Tzansk preparations with viral isolation// Diagn. Microbiol. And Infect. Disease. 1984. - Vol.2 (№2). - P. 157 - 160.
252. Morozov I.A., Shuliak A.F., Artiushin S.K., Koromyslov G.F. Differentiation of strains of bovine infectious rhinotracheitis virus using restriction analysis.// Mol. Gen. Microbiol. Virusol. 1991. - Apr. (№4).- P. 29 - 32.
253. Msolla P.H., Allan E.M., Selmon A.E., Wiseman A. Reactivation and shedding of bovine herpesvirus 1 following Dictiocaulus viviparus infection// J. Comp. Pathol. 1983. - Vol.93. - P. 271 - 274.
254. Narita M., Inui S., Mukarami Y. Neural changes in reccurent infection of infectious bovine rhinotracheitis virus in calves treated with dexamethasone// Am. J. Vet. Res. 1978. - Vol.39, №9. - P. 1399 - 1403.
255. Narita M., Inui S., Mukarami Y. Recrudescence of infectious bovine rhinotracheitis virus and associated neural changes in calves treated with dexamethasone// Am. J. Vet. Res. 1981. - Vol. 42, №7. - P. 1192 -1197.
256. Narita M, Inui S, Mukarami Y. Pathological changes in young and adult cattle after intranasal inoculation with infectious bovine rhinotracheitis virus// J. Comp. Pathol. 1982. - Vol.9, №1. -P. 41-49.
257. Neil J.D, Kelling C.L, Rhodes M.B. Specificity of pseudorabies virus serotest// Am. J. Vet. Res. 1984. - Vol.45.- P. 2675 - 2676.
258. Nelson D.R, Mare C. I, Clock R.D. IBR (herpesvirus bovis) infection in swine.// Am. J. Vet. Res. 1972. - Vol.33, №6. - P. 1209 - 1215.
259. Neumann R, Rudolf P, Eggers H.J. Biotinylated DNA Probes: Sensitivity and applications.// Naturwissensohaften. 1986. - Vol.73. - P. 553 -556.
260. Niedobitek G, Finn T, Herbst H, Bornhoft G, Gerdes J, Stein H. Detection of viral DNA by in situ hybridization using bromodesoxyuridine-labeled DNA probes//Amer. J. Pathol. 1989. - Vol.131, №1. -P. 1-4.
261. Nylin B, Madsen K.J, Ronsholt L. Reintroduction of bovine herpes virus type 1 into Danish cattle herds during the period 1991 1995: a review of the investigations in the infected herds// Acta Vet. Scand. - 1998. - Vol. 39 (№4). - P. 401-413.
262. Onstad O, Saxegaard F. Vaginitis and balanitis with IRR infection in swine// Nord. Vet. Med. 1967. - Vol.19, №1. - P. 43 - 57.
263. Osorio F.A, Reed D.E, Van der Maaten M.J, Metz C.A. Comparison of the herpesvirus of cattle by DNA restriction endonuclease analysis and serologic analysis// Am. J. Vet. Res. 1985. - Oct. 10. - P. 2104 - 2109.
264. Ovejero J. Aportation al estudio de la incidencia serologica del virus de la rinotraqueitis infecciosa bovina en Espania// An. Inst. Nac. Investig. Agr. Ser.: Hyg. Sanid. Anim. 1974. - Vol. 1. - P. 35 - 47.
265. Pacciarini M., Agresit A., Desinome F., Poli G., Torretta E., Siccardi A.G., Meneveri R., Ginelli E. Detection of bovine herpes virus 1 (BHV-1) semen infection by a dot-blot hybridization assay// Br. Vet. J. 1988. - Vol. 144 (№1). -P. 55-63.
266. Pappous G., Dimitriadis J., Poilas S., Karajas G. .HejibraoH 3jijihhh-khc kthhiwtphkhc 3TepHacK>. 1982. P.336 - 341.
267. Passeleque P., Prunaux O., Guignard A. La rhinotracheite infectieuise des bovins: enquete serologique a Hie de Reunion.// Rev. Med. Vet. 1991. -Vol.142, №7.-P. 575-577.
268. Pastoret P.-P, Jetteur A., Aguilar-Setien A., Leroy P., Schwers A., Godart M., Schoenaers T. Mesure de la reexcretion du virus de la rhinotracheite infectieuse bovine après injection de dexamethasone.// Ann. Med. Vet. 1978. -Vol. 122, №5.-P. 449-456.
269. Pastoret P.- P., Babiuk L.A., Misra V., Griebel P. Reactivation of temperature sensitive and non - temperature - sensitive infectious bovine rhinotracheitis vaccine with dexamethasone.// Infect. Immun. - 1980b. - Vol. 29, №2. - P. 483 - 489.
270. Pastoret P.-P., Thiry E., Vindevogel H. Problems lies a la latence lors de vaccination contre le virus de la rhinotracheite infectieuse bovine (Bovid Herpesvirus).//Develop. Biol. Standart. 1982. - Vol.52. - P. 455-461.
271. Pastoret P.- P., Thiry E., Brochier B., Derboven G. Bovid herpesvirus 1 infection in cattle: pathogenesis, consequences of latency.// Ann. Rech. Vet. -1982. - Vol.13, №3. - P. 221- 236.
272. Pastoret P.- P., Thiry E. Diagnosis and prophilaxis of infectious bovine rhinotracheitis: The role of virus latency.// Comp. Immunol. Micribiol. Infect. Dis. 1985. - Vol.8, №1. - P. 35 - 42.
273. Parsonson I.M., Snowdon W.A. The effect of natural and artificial breeding using bulls infected with, or semen contaminated with, infectious bovine rhinotracheitis virus// Aust. Vet. J. 1975. - Vol.5 (№18). - P. 365 - 369.
274. Pauli U., Zanoni R., Hertig C., Peterhans E. Veterinärmedizin und molecularbiologie: Möglichkeiten und Grenzen der Virusdetektion// Schweiz. Arch. Tierheilk. 1991. - Vol.133, №1. -P. 35-42.
275. Peshev R., Christensen L., Christova L. Comparative molecular epidemiological investigation on different bovine herpes viruses// Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 1998. - Vol.21 (№4). - P. 247 - 255.
276. Peters A.R., Perry C.T. Serological survey on the prevalence of bovine herpesvirus 1 antibodies in pedigree beef bulls// Vet. Ree.- 1983. -Vol.113, №11.-P. 685-687.
277. Pirak M., Thiry E., Brochier B., Pastoret P.- P. Infection experimentale de la rhinotracheite infectieuse bovine (Bovine Herpes Virus 1) et tentative de reactivation virale.// Ree. Med. Veter. 1983.- Vol.159,№12. - P. 1103-1106.
278. Plummer G. Serological comparison of the herpesviruses.// Br. J. Exp. Pathol. 1963. - Vol.45. -P. 134-141.
279. Probst U., Wyler R., Kihm U., Ackerman m., Bruckner L., Muller H.K., Ehren-Sperger F. Zur. IBR-virus-Ausscheidung experimentell infizierter Kühl Insbesonderl in der Milch// Schzoliz. Arch. Tierheilik. 1985. - Vol.127, №11.-P. 723-733.
280. Raggo C., Fitzpatrick D.R., Babiuk L.A., Liang X. Expression of bovine interleukin-1 beta in a bovine herpesvirus -1 vector: in vitro analysis// Virology. -1996. Vol.1 (№22). - P. 78 - 86.
281. Raggo C. Infectious bovine rhinotracheitis, parainfluenza-3, and respiratory Coronavirus// Vet. Clin. North. Am. Food Anim. Pract. 1997.- Vol. 13 (№3). - P. 455-469.
282. Renukaradya G.J. Prevalence of infectious bovine rhinotracheitis in Southern India//Rev. Sci. Tech. 1996. - Vol.15 (№3). - P. 1021 - 1028.
283. Riggenbach C. Bekampfung von IBR/IPV in der Schweiz// Tierzuchter. 1985. - Vol.37, №7. - P. 297-298.
284. Rhim J.S. Glucocorticoids enchance viral transformation of mammalian cells// Proc. Soc. Exp. Biol and Med. 1983.- Vol. 174,№ 2. - P. 217 -223.
285. Rigby P.W., Dieckmann M., Rhodes C., Berg P. Labeling deoxiribonucleic acid to high specific activity in vitro by nick-translation with DNA polymerase 1// J. Mol. Biol. 1977. - Vol.3.- P. 113. - 237.
286. Rocha M.A., Barbosa E.F., Guimaraes S.E., Neto E.D., Gouveia A.M. A high sensitivity-nested PCR assay for BHV-1 detection in semen of naturally infected bulls.// Vet. Microbiol. 1998. - Vol.28 (№1). - P. 1 - 11.
287. Rock D.L., Beam S.L., Mayfield J.E. Mapping bovine herpesvirus type 1 latency-related RNA in trigeminal ganglia of latently infected rabbits// J. Virol. 1987. - Vol.61 (№12). - P. 3827-3831.
288. Roizman B. Herpesviruses. In. The Molecular Biology of Tumor Viruses, edited by J. Tooze. Plenum Press, New-York. 1973. - P. 1 - 23.
289. Roizman B., Charmichael L.E., Deinhardt F., de The G., Nahmias A.J., Plowright W., Rapp F., Sheldrick P., Takahashi M., Wolf K. Herpesviridae. Defenition, provisional nomenclature and taxonomy// Intervirology. 1981. -Vol.16.-P. 201-223.
290. Roizman B., Tognon M. Restriction enzyme analysis of herpesvirus DNA: Stability of restriction endonuclease patterns// Lancet. 1982. - Vol.1. - P. 167-217.
291. Roizman B. The Herpesviruses. New-York; London: Plenum Press. Vol. 2. ,- 1983.-439p.
292. Roizman B., Batterson W. Herpesviruses and Their Replication// Virology.- 1985,- Vol.4.- P. 497 525.
293. Rock D.L., Hagemoser W.A., Osorio F.A., Reed D.E. Detection of bovine herpesvirus type 1 RNA in trigeminal ganglia of latently infected rabbits by in situ hybridization// J. Gen. Virol. 1986. - Vol.67 (№11). - P. 2515 - 2520.
294. Rojahm A. Deckinfektionen insbesondere IBR/IPV ein Problem der staatlichen Tierseuchenbekampfung?//Berl. Munch. Tierarztl. Wschr. - 1976.-Vol.89. -P. 269-272.
295. Romanowski W.Seuchenhygienische Mabnahmen zur IBR/IPV -Sanierung des Bullenbestandes.Festschrift der Rinderproduktion Niedersachen GmbH Bremen-Hannover anlablich des 20.// Todestages von Prof. Dr. Dr. H. C. Gotse.- 1975,-213p.
296. Romanowski W., Liess B., Rath G., Frey H.R., Boehnke H.J. Die Kombination eines modernen Besamungszuchtprogrammes mit der IBR/IPV-Sanierung// VI 11 Inter. Congress on Animal Reproduction and Artificial Insemination. Krakov, 1976,- 136p.
297. Ros C., Belak S. Studies of genetic relationships between bovine, caprine, cervine, and rangiferine alphaherpesviruses and improved molecular methods for virus detection and identification// J. Clin. Microbiol.- 1999. Vol.37 (№5).-P. 1247- 1253.
298. Rossi C. Progr. Immunobiol. Standartisat. 1972. - Vol. 5. -P. 319323.
299. Rossi C.R., Kiesel G.K., Rumph P.F. Association between route inoculation with infectious bovine rhinotracheitis virus and site of recrudescence after dexamethasone treatment// Am. J. Vet. Res. 1982a. - Vol.43, №8. - P. 1440 -1442.
300. Rossi C.R., Kiesel G.K. Effect of infectious bovine rhinotracheitis virus immunization on viral shedding in challenge-exposed calves treated with dexamethasone// Am. J. Vet. Res. 1982. - Vol.43, №9. - P. 1576 - 1579.
301. Rowe R. Causes of abortion in dairy cattle: A diagnosis survey// American Association of Bovine Practitioner. Annual conference 11 (Proceeding). 1978. - Vol.11. -P. 102-103.
302. Saunders J.R, Olson S.M, Radositis O.M. Efficacy of an intramuscular infectious bovine rhinotracheitis vaccine against abortion due to the virus//Canad. Vet. J. 1972. - Vol.13. - P. 273-278.
303. Santurde G, Da Silva N, Villres R, Tabares E, Solana A, Bautista J.M, Castro J.M. Rapid and high sensitivity test for direct detection of bovine herpesvirus 1 genome in clinical samples.// Vet. Microbiol. 1996. - Vol.49 (№1-2).-P. 81-92.
304. Schang L.M, Jones C. Analysis of bovine herpesvirus 1 transcripts during a primary infection of trigeminal ganglia of cattle.// J. Virol. 1997. Sep. Vol.71 (№9). - P. 6786 - 6795.
305. Schikora B, Lu Z, Kutish G.F, Rock D, Magyar G, Letchworth G.J. The bovine herpesvirus type 1 UL3.5 open reading frame encodes a virion structural protein.// Virology. 1998. - Jan. 5, Vol.240 (№1). - P. 76 - 82.
306. Schmitt J, Keil G.M. Characterization of the bovine herpesvirus 1 UL8 gene and gene products.//J. Gen. Virol. 1998. - Jan. 79 (1). - P. 133 - 141.
307. Schroeder R.J, Moys D.M. An acute respiratory infection of dairy cattle.// Am. J. Vet. Med. Assoc. 1954. - Vol. 125, №3. - P. 471 - 472.
308. Schroder C, Keil G.M. Bovine herpesvirus 1 requires glycoprotein H for infectivity and direct spreading and glycoproteins gH (W450) and gB for glycoprotein D-independent cell-to-cell spread. // J. Gen. Virol/ 199. - Jan. Vol. 80 (№1).-P. 57-61.
309. Schwyzer M, Ackermann M. Molecular biology of ruminant viruses.//Vet. Microbiol. 1996. - Nov. Vol.53 (№1-2). - P. 17-29.
310. Schwyzer M, Styger D, Vogt B, Lowery D.E, Simard C, La Bossiere S, Misra V, Vlcek C, Paces V. Gene contens in a 31-kb segment at theleft genome end of bovine herpesvirus-1.// Vet. Microbiol. 1996. - Nov. Vol.53 (№1-2).-P. 67-77.
311. Seal B.S., Jeor S.C., Taylor R.E. Restriction endonuclease analysis of bovine herpesvirus DNA and nucleic acid homology between isolates// J. Gen. Virol. 1985. - Vol.66 (№12). - P. 2787 - 2782.
312. Simard C., Nadon F., Seguin C., La Bossiere S., Trudel M. Gene mapping of infectious bovine rhinotracheitis viral DNA genome.// Arch. Virol. -1990. Vol. 110 (№1-2). - P. 63 - 75.
313. Simard C., La Bossiere S., Segiun C., Trudel M. Genomic heterogenities in bovine herpesvirus type 1 viral isolates: a major variant selected from a field isolate.// Intervirology. 1991. - Vol. 32 (№3). - P. 117 - 126.
314. Smith G.A., Young P.L., Mattick J.S. The location and nucleotide sequence of the thymidine kinase gene of bovine herpesvirus type 1.2. 1990. -Vol.71, №10. - P. 2417 - 2424.
315. Smith G.P. Filamentous phage assembly: Morphogenetically defective mutants that do not hill the host//Virology. 1988. - Vol. 167. - P. 156 — 165.
316. Steck F., Huggler C. Incidence, diagnosis and prevention of infectious rhinotracheitis and pustulous vulvovaginitis in Switzerland// Schweiz. Arch. Tierheilkd. 1975. - Vol.117 (№8). - P. 439 - 451.
317. Steck F., Huggler C. Auftreten, Diagnostik und Bekämpfung der Infektiösen Rhinotracheitis und Pustulosen Vulvovaginitis in der Schweiz// 1975a. -Vol.117.-P. 439-451.
318. Steck F., Huggler C. Apparation et diagnostic de la rhinotracheite infectiuse bovine et de la vulvovaginite pustuleuse et lutte contre ces maladies en Suisse//Bull. Off. Int. Epiz. 1975b. - Vol. 84. -P. 71-82.
319. Stroub O.C. Infectious bovine rhinotracheitis virus. History and recent development// Dev. Biol. Stand. 1975. - Vol.28. - P. 530 - 533.
320. Stroub O.C. Vaccination programms for cattle. In: Report Sec. Int. Symp. Inf. Diseases, (Varna 1973); publ in Veterinary Science, Sofia, №12.- P.67-69.
321. Stroub O.C. Die abwechselungsweise Verwendung von inaktiviertem und attenuirtem Impstoff zur Bekämpfung der infektiösen Balaoposthitis (IBR) bei Besamungshullen// Berl. Munch. Tierarzt!. Wschr. 1977b. Vol. 90. - P. 273276.
322. Stroub O.C. Vorkommen der duren IBR-IPV-viren hervorgerufenen Krankheiten und Moglishe Differential Diagnostische Probleme in den Verschiedenen Kontinenten und Deren Landern.// Dt. Tierarztl. Wschr. - 1978. -Vol.85, №3. - P. 84-90.
323. Sreenisava B.P., Natarjan C\, Rasoon T.J. Restriction endonuclease analysis of DNA from Indian isolates of bovine herpesvirus 1//Acta Virol. 1996. - Vol. 40 (№5-6). - P. 315 - 318.
324. Suares H. A., Metzler A.E., Weiblen R., Berrios P., Schudel A.A., Rodrigues M.// J. Vet. Med. 1993. - Vol;40, №2. - P. 125 - 130.
325. Tanyi J., Varga J. Guidelines for the eradication of infectious bovine rhinotracheitis in Hungary//Acta Vet. Hung. 1992. - Vol.3. - 165-169.
326. Thein P. Herpesvirusinfektion bei Mensch und Tier. Jhre Problematik und Bekämpfung.// Berlin und München Tierarztl. Wochenschr. 1980. - Vol.93, №11.-P. 201 -205.
327. Theodoridis A. Preliminary characterization of viruses isolated from cases of epididymitis and vaginitis in cattle.// Onderstepoort Journal Veterinary Research. 1978. - Vol. 45. - P. 187- 195.
328. Theodoridis A. Studies herpesviruses. Part 1. Isolation on bovine and characterization of viruses isolated from the genital tract of cattle.// Onderstepoort Journal of Veterinary Research. 1985. - Vol.52, №4. - P. 239 - 254.
329. Thiry E., Brochier B., Salike J. Excretion and reexcretion of thermosensitive and wild-type strains of infectious bovine rhinotracheitis virus after co-infection of two successive infections.// Veter. Microbiol. 1985. - Vol.4. -P. 371 -380.
330. Thiry E., Bublot M., Dubuisson J., Van Bressem M.F., Lequarre A.S., Lomonte P., Vanderplasschen A., Pastoret P.-P. Molecular biology of bovine herpesvirus type A.11 Vet. Microbiol. 1992. - Vol.33 (№1-4). - P. 79 - 92.
331. Tikoo S.K., Campos M., Babiuk L.A. Bovine herpesvirus 1 (BHV-1): biology, pathogenesis, and control.//Adv. Virus. Res. 1995. - Vol.45. - P. 191 -223.
332. Todd J.D., Volenec F.G., Paton J.M. Intranasal vaccination against IBR: Studies of an early onset of protection and use the vaccine in pregnant cows// Am. J. Vet. Med. Ass. -1971. Vol.151 (№11). - P. 1370-1374.
333. Tolari F., White H., Nixon P.Isolation and reactivation of bovid herpesvirus 1 in goats. 1990. - Vol.13, №1. - P. 67-71.
334. Ulbrich F., Haase H. Zur Latenten Infektion mit dem Virus der Infektiösen Bovinen Rhinotracheitis/Infektiosen Pustulosen Vulvovaginitis (IBR-IPV) bei Bullen.// Mh. Vet. Med. 1974. - Vol.23. - P. 459 - 462.
335. Ulbrich F., Haase H. Zur Latenten Infektion mit dem Virus der Infektiösen Bovinen Rhinotracheitis/Infektiosen Pustulosen Vulvovaginitis (IBR-IPV) bei Bullen.//Mh. Vet. Med. 1975. - Vol.30. - P. 887 - 890.
336. Van Der Maaten M.J., Miller J.M. Ovarion lessions in heifers exposed to infectious bovine rhinotrcheitis virus by non-genital routes on the day after breeding// Vet. Microbiol.- 1984/1985. Vol. 10.-P.- 155 - 163.
337. Van Der Maaten M.J., Miller J.M. Ovarion lessions induced in heifers by intravenous inoculation with modified-live IBR virus on the day after breeding// AM. J. Vet. Res. 1985. - Vol.46, №9. - P. 1996 - 1999.
338. Van Engelenburg F.A., Maes R.K., Van Oirschot J.T., Rijsewijk F.A. Development of a rabit and sensitive polymerase chain reaction assay for detection of bovine herpesvirus type 1 in bovine semen.// J. Clin. Microbiol. 1993. -Vol.12 (№3).-P. 3129-3135.
339. Van Engelenburg F.A., Van Schie F.W., Rijsewijk F.A., an Oirschot J.T. Excretion of bovine herpesvirus 1 in semen is detected much longer y PCR than by virus isolation// J. Clin. Microbiol. 1995. - Vol.33 (№2). - P. 308 - 312.
340. Van Malderen G.E., Vanopdenbosch G., Wellemans G. Bovine herpes virus 1 en 4: een seroepidemiologisch onderzoek van de belgische rundveestapel// VI Dierg. Tijschr. 1987. - Vol.56. - P. 364 - 371.
341. Van Schaik G. Introduction of BHV -1 on dairy farms. Risk assessment by cattle farmers and veterinarias// Tijdschr. Diergeneeskd. 1998. -Vol.15, №123 (6).-P. 180- 183.
342. Vanderplasschen A., Bublot M., Pastoret P.- P., Thiry E. Restriction maps of the DNA of cervid herpesvirus 1 and cervid herpesvirus 2, two viruses related to bovine herpesvirus 1.// Arch. Virol. 1992. - Vol.128 (№3-4). - P. 379 -388.
343. Van Oirschot J.T., Straver P.J., Van Lieshout J.A., Quak J., Westenbrink F., Excel A.C. A subclinical infection of bulls with bovine herpesvirus type 1 at an artificial insemination centre.// Vet. Rec. 1993. -Vol.132 (№2).-P. 32-35.
344. Van Oirschot J.T. Bovine herpesvirus in semen of bulls and the risk of transmission: a brief review// Vet. Q. 1995a. Mar. 17 (№1). - P.29 - 33.
345. Van Santen V.L., Chang L.Y. Cloning and mapping of EcoRl, Hindi 11, and Pstl fragments of bovine herpesvirus 4 (DN599) genome// Intervirology. 1992. - Vol. 34 (№1). - P. 44 - 52.
346. Vergeron P. Les virus herpetiques.// Tempo. Med. 1983.- Vol. 143, №13-14.-P. 21-23.
347. Varady E., Tuboly T., Derbyshire J.V. Restriction endonuclease analysis of a porcine isolate of bovine herpesvirus type 1.// Can J. Vet. Res. -1994. -Jan Vol.58 (№1). P. 65 - 66.
348. Vlcek S., Deliova I., Strojny L., Forgac P., Harvan M. The effect of the mode of sampling on BHV-1 detection in infected cattle by dot-blot hybridization.// Vet. Micribiol. 1993a. - Sep. Vol.36 (№3-4). - P. 355 - 358.
349. Vlcek S, Deliova I, Forgac O, Strojny L, Harvan M, Benko G. Detection of the bovine herpesvirus-1 using the dot-blot hybridization method// Vet Med. 1993b. - Vol.38 (№4). - P. 193-202.
350. Vlcek S, Deliova I, Forgac O, Strojny L, Tacascova I, Harvan M, Benco G. Detection of bovine herpesvirus 1 with various types of DNA probes// Acta. Vet. Hung. 1993. - Vol.43 (№1-2). - P. 179- 190.
351. Vonk Noorgraaf A. An epidemiological and economical simulation model to evaluate the spread and control of infectious bovine rhinotracheitis in the Netherlands Prev. Vet. Med.- 1998. Sep. 1, Vol.36 (№3). - P. 219 - 238.
352. Wagne K, Becker W, Zettl K. Infektiose Bovine Rhinotracheitis -Infectiose Pustulose Vulvovaginitis (IBR-IPV)// Tierarztl. Praxis. 1982. -Vol.10, №3.-P. 329-338.
353. Watrach A.M. The structure of infectious bovine rhinotracheitis virus// Arch. Gesame Virusforsch.- 1966. Vol.18 (№1). - P. 1 -7.
354. Weiblen R„ Kreutz L.C, Canabarro T. F„ Schuch L.F, Rebellato M.C. Isolation of bovine herpesvirus 1 from preputial swabs and semen of bulls with balanopostitis// J. Vet. Diagn. Invest. 1992. - Vol.4 (№3). - P. 341 - 343.
355. Wellemans G, Antoine H, Broes A, Charlier G, Van Opdenbosch E. Isolement d'un virus herpes chez des bovins attients de metrite poct-partum.// Ann. Med. Vet. 1983. - Vol.127. - P. 481 -482.
356. Wellemans G., Van Opdenbosch E. Transmission horisontale du virus BHV-4 a des genusses// Ann. Med. Vet. 1987. - Vol.131. - P. 487 - 491.
357. Wellemans G., Vanopdenbosch E. Association entre l infection par le BHV-4 et ravortement chez la vache// Ann. Med. Vet. 1989. - Vol.133. - P. 347 -350.
358. Whetstone C.A., Miller J.M. Two different strains of an alphaherpesvirus can establish latency in the same tissue of the host animal: evidence from bovine herpesvirus 1// Arch. Virol. 1989. - Vol. 107. - P. 27 - 34.
359. Wiedmann M., Brandon R., Wagner P., Dubovi E.J., Batt C.A. Detection of bovine herpesvirus-1 in bovine semen by a nested PCR assay// Am. J. Vet. Res. 1994. - Vol.55 (№9). - P. 1206- 1212.
360. Wiseman A. The financial burden of infection rhinotracheitis// Vet. Rec. 1979. - Vol.105, №20. - P. 469.
361. Wiseman A. Infectious bovine rhinotracheitis// Veter. Ann. Bristol. -1980.-Vol.20.-P. 204-208.
362. Wiseman A., Allan E.M., Selman I.E. A study of the respiratory diseases of adult cattle in Britain. 4. Infectious bovine rhinotracheitis// Irish. Veter.- 1984.-Vol.38, №9.-P. 145-151.
363. Wolburg G., De Witt C. The evidence of the IBR-IPV// J. Bacteriol.- 1969.-Vol.3.-P. 730-732.
364. Wuijckhuise L., Bosch J., Franken P. Epidemiological characteristics of BHV-1 infections determined by bulk milk testing of all Dutch dairy herds// Veter. Rec.- 1998. Vol.142 (№8). -P. 181-184.
365. Yates W.D.G. A review of IBR, shipping fiver pneumonia and viral-bacterial in respiratory disease of cattle// Can. J. Comp. Med. 1982. - Vol.46, №3. - P. 225-263.
366. Yates W.D.G. Interaction between viruses and bacteria in bovine respiratory disease// Canad. Veter. J. -1984. № 25. - P. 37 - 41.
367. Young P.L., Sweeny J.L., Smith G.A., Rodwell B.J. Failure to detect infection of the bovine foetus after inoculation of a prototype Australian strain of bovine herpesvirus III Aust. Vet. J. 1994. - Mar. 71 (№3). - P. 92 - 93.
368. Цветков П. Върху иммунопрофилактикатата на заразния ринот-рахеит по говедата.Вет. Мед. Наукию 1977. - Т.14(№8). - С. 8-13.
369. Zuffa A., Branuik A., Cernik К., Salaj J. Protection againct exprimental infection on calves vaccinated intranasally by three attenuated strains of IBR virus// Zbl. Vet. 1982. - Vol.29 (№6). - P. 413-425.307
370. Zuschek F., Chow T.L. Immunogeniciny of two IBR vaccines//Am. J. Yet. Med. Assoc. 1962. - Vol.139 (№2). -P. 236-237.
371. Zygraich N., Lobman B. "In vivo" and "n vitro" properties of a temperture sensitive mutant of IBR virus// Res. Vet. Sci. 1974. - Vol.l6(№3). -P. 328-335.
372. МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ (Минсельхозпрод России)1. ДЕПАРТАМЕНТ ВЕТЕРИНАРЕ107139, Москва, Орликов пер.,1/1 1 Телефон: (095) 207 86 55 Телетайп: 417738 ЛЕН06.04,99Г,№ 13-7-2/15511. На №
373. Набор рассчитан на анализ 50 проб от животных (проведение не менее 5 гибридизаций).
374. Срок годности набора -1 год со дня выпуска (хранение при 4°С).
375. Внимание! Био-ДНК-зонд, раствор протеиназы, ДНК вируса ВНУ-1 и
376. ДНК аденовируса крупного рогатого скота хранят при температуре к и ну с ¿0° С
377. Молекулярная гибридизация может быть использована наряду с другими вирусологическими или серологическими реакциями при исследовании животных на инфекционный ринотрахеит.
378. Метод рассчитан на выявление ДНК вируса ИРТ КРС в пробах биологического материала от крупного рогатого скота, Н& и^в-^ее. 2- См.
379. В случае падежа или вынужденного убоя с диагностической целью не позднее 2х часов с момента гибели отбирают пробы слизистых оболочек носа и трахеи, кусочков лёгких, легочных лимфоузлов, а от абортгплодов головного мозга, лёгких, печени и почек.
380. Для исследования направляют пробы патологического материала в объёме не менее 2 см :
381. В благополучных хозяйствах мясного и молочного направления тест-систему применяют при подозрении на заболевание крупного рогатого скота инфекционным ринотрахеитом.
382. Подготовка тест-системы к постановке анализа
383. Для приготовления всех растворов используют только дистиллированную воду.
384. Приготовление фенола, насыщенного буфером рН 8,0.
385. Фенол является едкой жидкостью и вызывает тяжелые ожоги. Работать с ним необходимо в защитных очках и перчатках, при попадании на кожу нужно смыть его большим объемом воды и промыть место поражения водой с мылом.
386. Приготовление смеси хлороформ : изоамиловый спирт (24:1).
387. Во флаконе смешивают 24 мл хлороформа (фармакопейный, Г.64.228.267, в наборе не поставляется) и 1 мл изоамилового спирта (ГОСТ 5830-79, в наборе не поставляется).
388. Приготовление отмывающих растворов 1х88С, 0,1% БОБ и 0,1х88С, 0,1% ШХ
389. Приготовление раствора 1х88С, 0,1% БИБ: В мерной колбе вместимостью 0,1 л сливают 5 мл раствора 20х88С, 80 мл воды и 1 мл 10%-го БЭБ, доводят объем водой до метки и перемешивают.
390. Приготовление раствора 0,1х8БС, 0,1% БОБ: В мерной колбе вместимостью 0,1 л сливают 0,5 мл раствора 20х88С, 80 мл воды и 1 мл 10%-го БОБ, доводят объем водой до метки и перемешивают. 3.4. Подготовка буферных растворов.
391. Блокирующий буфер Б: 0,1 М ТРИС-НС1 рН 7,5 , 0,1 М ЫаС1, 3 мМ М£С12, 0,5%-ный твин-20.
392. Реакционный буфер Р: 0,1 М ТРИС-НС1 рН 7,5 , 0,1 М ЫаС1, 3 мМ М£С12, 0,05%-ный твин-20.
393. АР-буфер: ОД М ТРИС-НС1 рН 9,5 , ОД М NaCl, 5 мМ MgCl2.
394. Для его приготовления смесь для АР-буфера растворяют в мерном стакане в 150 мл воды, доводят рН до 9,5 с помощью соляной кислоты, приливают воду до 200 мл и перемешивают.4.Проведение анализа41 .Выделение ДНК из проб от животных.
395. Осадки вирусных ДНК можно хранить до нанесения на фильтр в морозильной KaMepefw^/r 20'cJ в течение недели.
396. Нанесение образцов ДНК на фильтры для гибридизации.
397. Гибридизация образцов ДНК с биотинилированным ДНК- зондом.43.1. Предгибридизация.
398. Выявление биотиновых групп на фильтре с помощью конъюгата стрептавидина со щелочной фосфатазой и красителей44.1. Отмывка от биотиншированного зонда.
399. Накрывают фильтр вторым листом лавсана, с помощью глазного пинцета осторожно «выгоняют» пузырьки воздуха между листами и оставляют при комнатной температуре на 20 минут.44.4. Отмывка от конъюгата
400. При получении положительного результата гибридизации с пробами, полученными от животных с клиническими признаками заболевания, их считают больными острой формой инфекционного ринотрахеита.
401. Порядок представления рекламаций
402. Одобрено Советом по ветеринарным препаратам 15 октября 1998 г. (протокол №4).316
403. РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК1. ОКП
404. СОГЛАСОВАНО Зам&еяШЯв^уководителя ^теринариищйшШшверстов*/л£ » 1999 г.1. Группа Р 31
405. УТВЕРЖДАЮ Директор Института экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока СО РАСХН, чл.-корр.РАСХН1. ЙН ^А.С.ДОНЧННКО1990 г.
406. ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ ИНФЕКЦИОННОГО РИЙОТРАХЕИТА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА МЕТОДОМ МОЛЕКУЛЯРНОЙ ГИБРИДИЗАЦИИ
407. ТЕХНИЧЕСКИЕ УСЛОВИЯ ТУ 95 -- 009 -СМ0Ш4-&
408. На опытную партию в количестве1. Срок введения с «»1. Срок действия до «»тыс. наборов 1999 г. 2000 г.1. СОГЛАСОВАНО
409. Директор Всероссийского государственного научно-исследовательского инсти-стандарти-икации ве-ратов, т РАСХН1. ПАНИН1999 г.
410. Продолжение на следующем листе
411. Продолжение титульного листа ТУ
412. РАЗРАБОТЧИКИ: Завлабораторией биотехнологии ИЭВСиДВ,кандидат ветеринарных наукхТТ&^Х А.Г.ГЛОТОВ « 1998 г.
413. Завлабораторией генной диагностики НИИ биоинженерии ГНЦ ВБ «Вектор», кандидат химических наук
414. С. Ф. ОРЕШКОВ А « 1998 г.
415. Старший научный сотрудник НИИ биоинженерии ГНЦ ВБ «Вектор», кандидат биологических наук1. А.Т.ПУЗЫРЕВ1998 г.
416. Старший научный сотрудник НИИ биоинженерии ГНЦ ВБ «Вектор», кандидат биологических наук1. Н.В.ТИКУНОВА1998 г.
417. Зав. отделом фундаментальных исследований ИЭВСиДВ СО РАСХН, доктор ветеринарных наук, профессор
418. В.М.ЧЕКИШЕВ ¿Г' ^^ ^1998 г.
419. Зав. отделом теоретической и прикладной инфектологии ИЭВСиДВ СО РАСХН, член-корреспондент РАСХН, доктор ветеринарных наук, профессор1. МЧ---А.С.ДОНЧЕНКО1998 г.-318
420. Набор при выполнении требований ТУ обеспечивает проведение 50 диагностических исследований биоматериала от животных (носовая слизь, сперма, вагинальные и маточные выделения, кусочки внутренних органов).
421. Настоящие ТУ могут быть использованы с целью сертификации данной продукции.1. ТЕХНИЧЕСКИЕ ТРЕБОВАНИЯ
422. ДНК вируса ВНУ-1, положительный контроль 7 мкл;
423. ДНК аденовируса КРС первого типа, отрицательный контроль 7 мкл1. ТУ
424. Компоненты, входящие в тест-систему, по своим физическим, биохимическим свойствам должны соответствовать требованиям и нормам, указанным в табл. 1,2 и 3.