Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.03) на тему:Биотехнологические подходы к разработке препаратов дсРНК как потенциальных противоинфекционных средств

ДИССЕРТАЦИЯ
Биотехнологические подходы к разработке препаратов дсРНК как потенциальных противоинфекционных средств - диссертация, тема по ветеринарии
АВТОРЕФЕРАТ
Биотехнологические подходы к разработке препаратов дсРНК как потенциальных противоинфекционных средств - тема автореферата по ветеринарии
Левагина, Галина Михайловна Новосибирск 2006 г.
Ученая степень
кандидата биологических наук
ВАК РФ
16.00.03
 
 

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Биотехнологические подходы к разработке препаратов дсРНК как потенциальных противоинфекционных средств

На правах рукописи

ч

ЛЕВАГИНА Галина Михайловна

БИОТЕХНОЛОГИЧЕСКИЕ ПОДХОДЫ К РАЗРАБОТКЕ ПРЕПАРАТОВ дсРНК КАК ПОТЕНЦИАЛЬНЫХ ПРОТИВОИНФЕКЦИОННЫХ СРЕДСТВ

16.00.03 -ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологаей и иммунология 03.00.23 - биотехнология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Новосибирск - 2006

Работа выполнена в Федеральном Государственном учреждении науки

Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Роспотребнадзора,

ГНУ Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока СО РЛСХН РФ

Научный руководитель:

доктор биологических наук, профессор Масычева Валентина Ивановна

Научный консультант:

доктор ветеринарных наук, старшин научный сотрудник Прудников Степан Ильич

Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук, профессор

Димов Сергей Константинович

доктор биологических наук, старший научный сотрудник

Белявская Валентина Александровна

Ведущая организация: ФГОУ ВПО Новосибирский

государственный аграрный университет

Зашита состоится « 2 » марта_2006 г. в 9 часов на заседании

диссертационного совета Д.006 045.01. в ГНУ Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока СО РАСХН РФ по адресу: 630501, Новосибирская обл., Новосибирский р-н, п. Краснообск, ГНУ ИЭВС и ДВ СО РАСХН

С диссертацией можно ознакомиться в ЦНСХБ СО РАСХН

Автореферат разослан « 27 » января 2006г.

Ученый секретарь

диссертационного совета

С.И. Л01 инов

2.0Р£А

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

1.1. Актуальность проблемы. Возрастающая потребность в профилактике и лечении инфекций человека и животных делает весьма актуальной разработку, изучение и производство видонеспецифичных средств защиты, обладающих широким спектром противоинфекционного и лечебно - профилактического действия.

Все большую значимость приобретают способы профилактики и экстренного лечения с помощью стимуляторов системы неспецифической резистентности. К которым относятся, интерфероны и индукторы интерферона синтетического и природного происхождения на основе двуспиральных полирибонуклеотидов, в том числе и дсРНК киллерных штаммов дрожжей ЯассЬаготусея сегеу!к1ае. Двуспиральные РНК стимулируют выработку эндогенного интерферона и являются перспективными средствами для профилактики и лечения инфекционных заболеваний.

Рядом авторов были показаны свойства препаратов, содержащих дсРНК, стимулировать интерфероногенез и противоинфекционную устойчивость у человека и животных различных видов и классов (мыши, кролики, телята, рыбы, птицы). Выявлено выраженное противовирусное действие препарата дсРНК бактериофага И в отношении вируса болезни Ауэски, введенного с профилактической целью поросятам, а дсРНК киллерных штаммов дрожжей ЗассИаготусея сегеу151ае способна стимулировать систему неспецифической устойчивости и образование интерферона у свиней. (Бояринцев Л.Е.,1992; Прудников С.И.,1996; Аликин Ю.С., 1996,1998; Духовский А.А., 2001).

Учитывая остроту проблемы, связанной с ассоциативными инфекционными заболеваниями у свиней и поросят, представляется перспективным продолжить поиск и исследования эффективных средств на основе дсРНК.

В последние годы разработан ряд технологических приемов получения композиционных препаратов различных биологически активных веществ (БАВ), позволяющих снизить содержание основного биологически активного вещества в составе лекарственного препарата, обеспечить пролонгированное действие, уменьшить токсическое действие БАВ, обеспечить сохранение структуры действующего начала. Одним из приемов получения эффективных препаратов является использование полимеров с биологически активными веществами. Для этих целей широко используются поливинилпирролидоны и полисахариды.

Исследователи неоднократно пытались повысить эффективность индукторов интерферона, продлить период повышенной активности системы неспецифической резистентности организма путем использования различных полимеров: ДЭАЭ-декстраном, альбумином, протамином, сефарозой, поли-Ь-лизином совместно с интерфероногенами (Соколова Т.М., 1991; Кольцов В.Д. 1993; ТазалуховаЭ.Б.,1993;). Однако эти работы не получили дальнейшего развития из-за незавершенности исследований по поиску высокопродуктивных экологически безопасных продуцентов дсРНК, разработки высокорентабельных технологий получения, позволяющих получать препарат в достаточно больших

количествах.

Лимитирующими факторами для масштабного производства препаратов дсРНК Saccharomyces cerevisiae и их широкого использования являются: сложность технологии выделения, низкая продуктивность дсРНК биомассы дрожжей, высокая стоимость используемого сырья для культивирования дрожжей, высокая энергоемкость, громоздкая система разрушения дрожжей.

Ранее предпринятые попытки повысить эффективность индукторов интерферона путем использования различных полимеров совместно с интерфероногенами, в том числе и с дсРНК, показали перспективность подхода.

В доступной литературе не найдено данных по созданию различных модифицированных форм дсРНК Saccharomyces cerevisiae с перспективными полимерами поливинилпирролидоном (ПВП) и полиглюкином (ПГ). Это предопределило дальнейшие исследования. В качестве препарата сравнения использовали ридостин, содержащий дсРНК пекарских дрожжей (Per. удостоверение 95/03/06)

1.2. Цель исследования: Оптимизация технологии получения дсРНК Saccharomyces cerevisiae и разработка новых композиционных препаратов с улучшенными свойствами на основе дсРНК и полимеров.

1.3. Задачи исследования:

усовершенствовать состав среды для культивирования дрожжей Saccharomyces cerevisiae киллерных штаммов в промышленных масштабах;

изучить возможность использования газодинамического метода дезинтеграции для разрушения клеток дрожжей;

- разработать составы новых лекарственных препаратов, содержащих дсРНК и полимеры, как средств борьбы с инфекционными заболеваниями;

- оценить влияние полимеров на физико-химические и биологические свойства действующего начала дсРНК в препаратах;

- оценить профилактическую и терапевтическую эффективность вновь разработанных препаратов при инфекционных болезнях поросят.

1.4. Научная новизна.

Экспериментально доказана возможность замены источника аминного азота - пептона и углеводного питания - мелассы на автолизат пекарских дрожжей и сахар для производства биомассы киллерных дрожжей Saccharomyces cerevisiae в производственном масштабе. Применение разработанного нового состава среды позволило повысить содержание дсРНК в 1 кг более, чем в 3 раза.

Впервые экспериментально продемонстрирована эффективность

использования модифицированной газодинамической вихревой мельницы для дезинтеграции микроорганизмов дрожжей в жидком потоке, что выразилось в увеличении выхода целевого продукта на 20-30 % и уменьшении энергозатрат в 2 раза.

Впервые экспериментально показана возможность использования приемов физической иммобилизации дсРНК дрожжей Saccharomyces cerevisiae с полисахаридами (ПГ) и с синтетическими полимерами (ПВП).

Разработан состав и технология получения препаратов дсРНК-ПГ и дсРНК-ПВП. Содержание дсРНК - 2,4% , ПВП - 30% являются оптимальными для композиции дсРНК-ПВП. Для препарата дсРНК-ПГ оптимально содержание дсРНК - 4,2%, ПГ - 70%.

В исследованиях установлено влияние поливинилпирролидона и полиглюкина на физико-химические, структурные свойства дсРНК:

- повышается устойчивость дсРНК композиционных препаратов с полиглюкином и поливинилпирролидоном к действию нуклеаз крови человека на 10-30 %;

- использованные полимеры повышают уровень растворимости дсРНК препарата, причем скорость растворения препарата зависит от вида полимера;

- не изменяется первичная, вторичная и конформационная структура двойной спирали дсРНК при получении композиционных препаратов дсРНК с полимерами ПВП и ПГ

Выявлено, что комплексы дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ обладают различными уровнями биологических эффектов:

- комплекс дсРНК-ПВП приводит к пролонгации активности перитонеальных макрофагов мышей до 5 суток, стимулирует синтез интерферона до 2 суток, при меньшем в 3-4 раза содержании дсРНК, чем в выбранном для сравнения референс препарате - ридосгин.

- комплекс дсРНК с полиглюкином при меньшем в 2 раза содержании дсРНК, чем в ридостине, имеет сопоставимые показатели по фагоцитозстимулирующей и интерферониндуцирующей активности.

Новые препараты на основе дсРНК обладают выраженными профилактическими свойствами при инфекционных болезнях поросят.

Комплекс дсРНК-ПВП способствует повышению терапевтической и лечебно-профилактической эффективности антибактериальных препаратов.

Получены два патента на изобретения: Патент № 2172631 «Индукторы интерферона пролонгированного действия»; Патент № 2215781 «Питательная среда для культивирования киллерных дрожжей БассЬагошусеБ сегеу1з1ае»; Положительное решение о выдаче патента на изобретение «Способ лечения и профилактики желудочно-кишечных инфекционных болезней поросят в условиях промышленного свиноводства» по заявке № 2004111 060/14 (011839) от 30 03 2004.

1.5. Практическая значимость работы

1. Разработанный состав среды позволил усовершенствовать технологию производства биомассы киллерных дрожжей ЗассИаготусев сегеу1я)ае и был внедрен в производство в ООО «Диафарм» (г. Бердск Новосибирской области).

2. Разработанный способ дезинтеграции дрожжей внедрен в промышленное производство получения дсРНК из киллерных штаммов дрожжей Saccharomyces cerevisiae в ООО «Диафарм» и позволил более полно извлекать целевую фракцию нуклеотидного материала при меньших энергозатратах.

3. Композиции дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ могут быть рекомендованы для создания на их основе новых форм индукторов дсРНК киллерных дрожжей Saccharomyces cerevisiae для применения в ветеринарии, обладающих пролонгированным действием.

4. Разработан способ лечения и профилактики желудочно-кишечных болезней поросят в условиях промышленного свиноводства и рекомендован для использования в хозяйствах. Методические рекомендации «Применение иммуномодуляторов нуклеиновой природы в свиноводстве» утверждены Ученым советом ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН (протокол № 1 от 17 января 2006г.).

1.6. На защиту выносится:

- Состав среды для культивирования дрожжей Saccharomyces cerevisiae в промышленных масштабах.

- Способ разрушения дрожжей Saccharomyces cerevisiae газодинамическим методом дезинтеграции в модернизированной вихревой мельнице.

- Состав новых препаратов дсРНК и различных полимеров, данные о физико-химических, структурных и биологических свойствах препаратов.

- Результаты профилактической и терапевтической эффективности новых форм индукторов интерферонов при инфекционных болезнях поросят.

1.7. Апробация работы

Основные положения, выводы и практические предложения, изложенные в диссертации, одобрены на межвузовском совещании ученых советов и ИМБ ГНЦ ВБ «Вектор» и ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН 2 декабря 2005г.

Материалы были доложены:

ШУ Международная конференция и дискуссионный научный клуб Новые информационные технологии в медицине и экологии - Украина. Крым. Гурзуф.2000 - с. 105-106.

IX Международная конференция и дискуссионный научный клуб Новые информационные технологии в медицине и экологии - Украина. Крым. Ялта-Гурзуф.2001- с. 173.

Российско-Канадский коллоквиум ISTC (МНТЦ) Canadian biological sciences colloquium. Moscow, 15-17 September 2004, p. 268-273.

1.8. Публикации результатов исследования.

По теме диссертации опубликовано 9 научных работ. Получено 2 патента на изобретения. Патент № 2172631 «Индукторы интерферона пролонгированного действия»; Патент № 2215781 «Питательная среда для культивирования киллерных дрожжей Saccharomyces cerevisiae»; Положительное решение о выдаче патента на изобретение «Способ лечения и профилактики желудочно-кишечных инфекционных болезней поросят в условиях промышленного свиноводства» по заявке № 2004111 060/14(011839) от 30 03 2004(приложение)

1.9. Структура и объем работы

Диссертация изложена на 135 страницах и включает: введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение результатов исследований, выводы, практические предложения, список литературы и приложения. Работа иллюстрирована 22 таблицами и 9 рисунками. Список литературы содержит 173 источника, из них 41 - зарубежных авторов.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 2.1 Материалы и методы исследования. Работа выполнена в 1999-2005гг. в ИМБ ФГУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора, совместно с лабораторией болезней свиней ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН, на свинокомплексе "Кудряшовский" Новосибирской области и ЗАО «Сибирская аграрная группа» Томской области.

Для выбора наиболее продуктивного штамма при культивировании биомассы использовали культуру БассЬагошусез сегеу181ае 10 киллерных штаммов, которые были получены из ВНИИ Гидролиза (г. Санкт-Петербург). Каждый штамм выращивали в стандартных условиях на средах, содержащих в качестве источников питания - пептон и мелассу, и проверяли содержание дсРНК в биомассе.

Для культивирования биомассы дрожжей в качестве источников питания использовали глюкозу, сахар, пептон, диаммоний фосфат, калий хлористый, сульфат аммония, автолизаты и гидролизаты дрожжей. Время роста культуры -20 ч, при температуре - плюс 30° С и скорости вращения мешалки - 180-220 об/мин. Аэрацию осуществляли из расчета 1,5-2 объема воздуха на 1 объем питательной среды. Содержание глюкозы в питательной среде определяли по методу Бертрана-Шорля, а аминного азота по методу формального титрования киллерных дрожжей, разработанною в институте медицинской биотехнологии (ИМБ).

Дезинтеграцию биомассы микроорганизмов проводили в модернизированной вихревой мельнице, сконструированной ООО "Диафарм" и Институтом теплофизики СО РАН (г.Новосибирск) и изготовленную в ЗАО «Вихревые технологии-ВТ» (г.Новосибирск).

В помольную камеру мельницы подавали 4-5 кг суспензии биомассы. Воздух в рабочую камеру мельницы подавали в виде узкой тангенциальной струи под давлением от 0.05 до 0.6 МПа. Степень разрушения клеток оценивали визуально под микроскопом. Качественно наличие дсРНК определяли электрофорезом и характеризовали по молекулярной массе.

Количественный анализ белка, определение молекулярной массы, содержание ДНК, содержание нуклеотидного материала в %, удельную экстинкцию Еол%, определение температуры плавления проводили по ФСП 420197076901.

Для получения композиций дсРНК с полимерами использовали препарат, содержащий 19-22 % дсРНК. В качестве полимерных носителей использовали ПВП с молекулярными массами 10000 и 35000 Да (ФС 42-2238-84) и полиглюкина(ФС42-876-74) с молекулярной массой 40000 Да.

Содержание дсРНК в комплексах определяли гель-хроматографией раствора препарата дсРНК на колонке с сефарозой CL2B ("Pharmacia", Швеция), регистрируя оптическую плотность элюата при длине волны 258 нм в высокополимерной фракции.

Оценку первичной структуры дсРНК в композициях проводили методом термической денатурации. Дифференциальные кривые плавления (ДКЩ регистрировали на установке, созданной на базе спектрофотометрического УФ-детектора жидкостного хроматографа «Миллихром» в институте Биоорганической химии (г.Новосибирск). Каждая кривая плавления состояла из набора не менее чем 600 значений оптической плотности в зависимости от температуры с частотой 10 точек/°С. Регистрацию кривых термической денатурации проводили одновременно на длинах волн 260, 170, 280 и 300 нм. Время интегрирования сигнала на каждой длине волны не превышало 1,2 сек. Температуру в кювете контролировали медь-константовой термопарой с точностью ±0,05 °С. Концентрация препаратов дсРНК в образцах составляла 0,14г/мл; скорость нагрева образцов составляла 0,5-0,7 °С/мин.

Оценку пространственной структуры дсРНК в композициях проводили методом кругового дихроизма (КД). Спектры кругового дихроизма записывали на приборе JASCO 600 (Япония) в кювете с длиной оптического пути 1см. Степень разрешения спектров- 0,2 нм/точку, диапазон измерения от 200 до 350нм (диапазон измерения кругового дихроизма для нуклеиновых кислот). Спектры представлены в размерности mdeg (милиградус поворота поляризованного света). Концентрация препаратов дсРНК в образцах составляла 0,07мг/мл;

Определение характера связи молекул дсРНК с полимерами проводили методом ИК-спектрометрии на ИК-Фурье спектрометре "Vector-22" фирмы "Brucker" (ФРГ) в НИОХ СО РАН. Для этого 1-1,5 мг препарата дсРНК растирали со 150 мг КВг и из этой смеси формировали таблетку, ИК-спектры снимали в диапазоне длин волн 400-4000 см"1. Полученные спектры сравнивали со спектрами исходных компонентов.

Исследование устойчивости дсРНК композиций к действию нуклеаз проводили, инкубируя растворы препаратов дсРНК при 37 °С с нуклеазами. Отбирали пробы по 0,5 мл и добавляли к ним равный объем 4% хлорной кислоты. Чувствительность препаратов к нуклеазам определяли по накоплению низкомолекулярных продуктов гидролиза в кислоторастворимой фракции.

Определение показателей растворимости препаратов проводили в ' соответствии с требованием Гос. Фармакопеи ГФХ1, вып. 1.

Определение фагоцитозстимулирующей активности (ФСА) проводили на монослойной культуре клеток L-929 по методу Rowley. Процент стимуляции макрофагов определяли как отношение показателей, установленных для опытных групп животных, к контрольным значениям по формуле: (ФАо„ыт /ФАцонтрол,, )х 100% и фагоцитарный индекс считали по количеству поглощенных эритроцитов на один фагоцитирующий макрофаг. Достоверность различий оценивали по критерию Стьюдента. Доза вводимых препаратов равнялась 5мг/кг и была эквивалентной при проведенных ранее исследованиях препаратов дсРНК- ридостина.

Средне - смертельные дозы определяли экспресс-методом по Прозоровскому при внутрибрюшинном введении препаратов беспородным половозрелым мышам массой 18-22г. Препараты дсРНК растворяли в физиологическом растворе и вводили из расчета 0,2 мл на 20 г массы тела.

Метод изучения профилактической активности препаратов у поросят в производственных условиях. Работа выполнялась в течение 2000-2004 г.г. совместно с лабораторией по изучению болезней свиней ГНУ ИЭВС и ДВ СО РАСХН, в ОАО "Кудряшовское" Новосибирской области и ЗАО «Сибирская аграрная группа» Томской области.

Объектом исследования служили поросята породы крупная белая 10-106-дневного возраста. При изучении лечебно-профилактической эффективности исследуемых препаратов в опытах было использовано более 3000 поросят.

При постановке всех экспериментов животные находились в одинаковых условиях кормления и содержания.

Изучение профилактической эффективности применения препаратов дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ при инфекционных болезнях поросят отьемышей проводили в условиях интенсивного промышленного выращивания свиней

В первой серии опытов определяли эффективность применения изучаемых препаратов для профилактики инфекционных болезней поросят-отьёмышей (отёчная болезнь, сальмонеллёз и др.) в производственных условиях.

Во второй серии опытов изучали эффективность лечения поросят при инфекционных болезнях с одновременным использованием индукторов интерферона и антибиотиков. Предварительно у поросят-отьемышей участка доращивания определяли микробный и вирусный фон.

Эффективность различных схем профилактики оценивали по приросту живой массы и уровню сохранности поросят.

Цифровой материал был обработан на ПЭВМ с использованием стандартных программ и критерия Стьюдента.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 3.1. Выбор перспективных штаммов киллерных дрожжей Saccharomyces cerevisiae и среды для культивирования дрожжей при промышленном производстве дсРНК

Для выбора перспективных штаммов проведен скрининг 10 киллерных штаммов дрожжей Saccharomyces cerevisiae.

Установлено, что 3 штамма (5БК674, Y-448, 6АБ) имеют наибольшую продуктивность по выходу биомассы и по содержанию дсРНК в ней. Из 3 штаммов наибольшую продуктивность по дсРНК (до 150 мг/кг биомассы) при выращивании в стандартных условиях имел штамм 5БК 674 . Для культивирования штаммов 5 БК 674 и У-448 подбирали питательную среду для получения максимального содержания дсРНК (мг/в 1 кг биомассы).

В дальнейшей работе использовали штаммы 5БК 674 и Y-448. Выращивание биомассы в заводских условиях проводили в ферментерах со стандартной регламентной средой (с пептоном и мелассой) V=4m.

Культивирование штаммов в заводских условиях на регламентной среде (пептон и меласса) показало, что штаммам 5БК674 (выход 80кг биомассы)

более чем в 1,6 раза продуктивнее штамма Y-448(50kt) по выходу биомассы, и в 2- 3 раза - по содержанию дсРНК в 1 кг биомассы. Штамм 5БК674 накапливал 163мг дсРНК в 1 кг дрожжей, а штамм Y-448 - 48- 80 мг дсРНК в 1 кг дрожжей

Далее для наиболее продуктивных по дсРНК штаммов 5 БК 674 и У-448 подбирали питательную среду для получения максимального содержания мг дсРНК в 1 кг биомассы.

Известно, что для выращивания киллерных дрожжей Saccharomyces cerevisiae, полученных генетически путем скрещивания ауксотрофных и прототрофных штаммов дрожжей, необходимо присутствие органического источника азотного питания (Г.Ф. Нестерова, 1991 г). В микробиологической промышленности для приготовления таких питательных сред широко используются гидролизаты и автолизаты биомасс различных микроорганизмов.

Для исследований готовили автолизаты и гидролизаты пекарских, кормовых дрожжей и отходов биомассы киллерных дрожжей (после извлечения из нее дсРНК). Гидролизаты дрожжей готовили из расчета содержания аминного азота не менее 150 -180 мг % единиц на мл питательной среды.

Выращивание биомассы на среде, полученной из отходов биомассы, показало, что содержание дсРНК в биомассе, выше (90-100мг/кг биомассы), чем на среде с пептоном (48-60 мг/кг биомассы).

Эксперименты по влиянию источников азотного питания на содержание дсРНК в биомассе при масштабировании процесса культивирования штаммов 5 БК 674 и У-448 показали, что использование питательной среды, содержащей автолизаты и гидролизаты пекарских дрожжей, являются оптимальными для промышленного культивирования в сравнении с ранее используемой среды с пептоном (табл.1).

Таблица 1 - Влияние источника азотного питания на выход дсРНК при

......__Л_____________ ___Я------.с_____V- л ..3

Состав среды Шифр штамма Выход биомассы, кг Выход дсРНК, мг/кг биомассы

Регламентная среда: Пептон Меласса Y-448 39-43 56-86

5БК674 80 163

Среда с гидролизатом пекарских дрожжей Меласса У-448 27-32 63-120

5БК674 25-44 100-186

Среда с автолизатом пекарских дрожжей Меласса Y-448 20-28 90-280

Из данных табл.1 видно, что продуктивность штаммаУ-448 на среде с гидролизатом сопоставима с таковой, полученной на среде, содержащей пептон, и составляет 63-120 мг дсРНК/кг биомассы. Выход дсРНК при выращивании дрожжей ЗассЬаготусев сегеу1я1ае на среде с автолизатом выше в 1,4-2,3 раза и составляет 90-280 мг дсРНК/кг биомассы. Продуктивность штамма 5БК674 выше продуктивности штаммаУ-448 на всех средах в 1,55 -1,9 раза.

Источником углеродного питания в технологии служит меласса - отход свеклосахарного производства. Содержащиеся в мелассе меланоидины и карамели, как известно, являются ингибиторами роста дрожжей. Иногда в результате сахароаминной реакции, сахар в мелассе полностью исчезает, что делает ее абсолютно непригодной для культивирования микроорганизмов.

Это объясняет необходимость поиска стандартизуемого источника углеводного питания для промышленного культивирования биомассы киллерных дрожжей ЗассЬаготусев cerevisiae

Использование сахара известно для выращивания хлебопекарских дрожжей в различных сочетаниях с мелассой и без нее.

Эксперименты по подбору состава углеводного питания среды для культивирования биомассы дрожжей ЗассЬагошусез сегеу1$1ае штамма У-448 проводились в ферментерах с рабочим объемом питательной среды У=1,8м3 (табл.2).

Таблица 2 - Влияние состава источника углеводного питания среды на выход биомассы и дсРНК_

Состав источника углеводного питания Выход биомассы, кг Выход дсРНК, мг/кг

Среда: автолизат пекарских дрожжей Сахар : меласса- 50% : 50% 15-19 253-388

Среда: автолизат пекарских дрожжей Сахар: меласса- 70% : 30 % 17,6 452

Среда: автолизат пекарских дрожжей Сахар - 100 % сахар 14 413

Среда: автолизат пекарских дрожжей Меласса 16-19 90-150

Видно, что при использовании среды с содержанием мелассы в питательной среде, в количестве равно и меньше, чем 50 %, содержание дсРНК в биомассе увеличивается более, чем в 3-5 раза раз при сравнительно одинаковом выходе биомассы.

Экономическая эффективность замены пептона на автолизат пекарских дрожжей и мелассы на сахар составила 600-1500 руб. на 1 кг. биомассы при выращивания биомассы киллерных дрожжей БассЬаготусев сегеу1з1ае в промышленных масштабах.

3.2. Результаты использования газодинамического метода для дезинтеграции дрожжей 8асс1шготусе$ сегеушае

Разрушение клеток биомассы, осуществляют, как правило, в жидкой среде. Для этих целей наиболее распространены роторные, баллистические дезинтеграторы и центробежно-барботажные аппараты, в которых прерывание потока жидкости происходит при проходе через узкие канюли между ротором и статором и при обтекании мелющих тел.

Недостатками таких устройств являются сильные локальные разогревы при кавитации в местах контакта мелющих тел, приводящие к потере нативных свойств внутриклеточных структур. Для устранения влияния разогревов на

выход конечного продукта требуется управление тепловыми потоками жидкой среды.

При изучении пригодности использования газодинамического метода для дезинтеграции микроорганизмов привлекает простота конструкции газодинамического измельчителя твердых тел - вихревой мельницы, в которой отсутствуют локальные разогревы при разрушении материалов и возможность ее модификации под центробежно-барботажные аппараты разрушения микроорганизмов.

Использование вихревой мельницы для дезинтеграции микроорганизмов неизвестно.

В работе модифицировали вихревую мельницу с диаметром помольной камеры 150 мм. На боковой поверхности помольной камеры выполнили 4 ступени, расположенные последовательно через 90° друг от друга, при угле наклона ступеней - 5°. Расход подаваемого воздуха составил 150 м3 /ч. при избыточном давлении от 0.1 доО.бМПа. Суспензия клеток в камеру поступала самотеком.

При анализе степени разрушения клеток под микроскопом обнаружено повреждение от 60% клеток при однократном проходе суспензии клеток через камеру мельницы и при двукратном - до 90 % клеток. По-видимому, большую ответственность за разрушение клеток несет импактное взаимодействие дисперсных частиц несущей жидкости со стенкой вихревой камеры.

Ниже приведены данные сравнения результатов дезинтеграции дрожжей в вихревой мельнице на оптимальном режиме при 0,1 МПа в сравнении с разрушением в баллистическом дезинтеграторе ФУГ-1, используемом ранее в технологии выделения дсРНК (табл.3) при одно- и двукратном проходе дезинтегрируемой биомассы через помольную камеру. Из приведенных данных следует, что при двукратном проходе суспензии клеток через камеру увеличивается выход суммарной фракции нуклеотидного материала в 1,25 раза и дсРНК в 2,2 раза, в сравнении с дезинтеграцией дрожжей в ФУГ-1. Преимущество газодинамического метода разрушения дрожжей в вихревой мельнице проявилось в уменьшении удельных затрат энергии в 2 раза и увеличении производительности в 4 раза.

Таблица 3 - Сравнительные данные по разрушению дрожжей в вихревой мельнице и

Дезинтегратор Вихревая мельница ФУГ-1

1 проход 2 прохода

Производительность, кг/ч 4-5 2-4 1

Содержание нуклеотидного материала, %. 78,11 85,5 60,5

Содержание дсРНК, % 26 60 27

Удельные затраты энергии, кВт-ч/кг 1-1,5 2 2,5

Охлаждение Не требуется Не требуется Водяное

Итак, проведенные модификации вихревой мельницы позволили впервые использовать ее по новому назначению - для дезинтеграции микроорганизмов в

жидкой среде. В данной работе удалось разработать эффективные условия дезинтеграции биомассы дрожжей в жидкой среде и выбрать режимные параметры для максимального сохранения нативных свойств дсРНК.

Успешное решение задач поиска продуктивных штаммов киллерных дрожжей ЗассЬагошусек сегеу1$1ае, разработки сред для промышленного культивирования дрожжей и нового высокопроизводительного способа дезинтеграции дрожжей создает базу для рентабельного масштабного производства высокоэффективного противовирусного препарата на основе дсРНК, а также открывает новый этап для широких исследований и разработки новых лекарственных препаратов индуктора интерферона.

3.3. Данные о влиянии полимеров на физико-химические и биологические свойства дсРНК

В работе проведены исследования получения более эффективных препаратов индукторов интерферона дсРНК БассЬаготусев сегеУ151ае с водорастворимыми полимерами природного и синтетического происхождения -ПГ и ПВП.

Получение композиций дсРНК с полимерами проводили методом физической иммобилизации. Для получения комплексных препаратов использовали ПВП молекулярной массы 10 ООО и 35 ОООДа и ПГ - 40 ОООДа.

Для исследования получили препараты дсРНК-ПВП с содержанием: дсРНК 0,3; 2,4;5,0 и 9,3%; ПВП молекулярной массы 10 ООО и 35 ОООДа -10,20, и 30%.

Препараты дсРНК-ПГ содержали дсРНК в количестве 0,66; 1,2; 2,4;, 4,2%; полимера ПГ - 20, 30, 70%.

Для выяснения влияния полимеров на физико-химические свойства дсРНК полученные нами препараты были охарактеризованы с помощью физико-химических методов УФ -, ИК- и КД-спектроскопии, гель-электрофорезом и др.

3.3.1. Определение характера связи молекул дсРНК с полимерами

В ИК-спектрах сложных молекул и их смесей наблюдают полосы, складывающиеся из валентных колебаний С-И или С=0 и других групп. По изменению максимума поглощения каждой группы, меняющейся в той или иной степени в зависимости от конформации и типов возникающих связей, судят о взаимодействиях между веществами.

Об образовании валентных взаимодействий в композициях судили по разности, определенной при вычитании из величин спектра дсРНК величин спектра ПВП (ПГ). Установлено, что ИК-спектр композиции дсРНК-ПВП не является простым сложением величин спектров дсРНК и ПВП (рис.1). Разность величин спектров между дсРНК и ПВП и исчезновение величин поглощения в спектре разности полос (наиболее интенсивных для поглощения азотистых оснований) на уровне 859 см"1- 950 см"1 и 1074 см"' говорит об образовании валентных связей между дсРНК и ПВП.

Рисунок 1 ИК-спектр дсРНК, Рисунок 2. ИК-спектр дсРНК,

поливинилпирролидона и полиглюкина и

композиции дсРНК-ПВП композиции дсРНК-ПГ

Кроме того, сопоставление спектров до 4000 см"1 показало, что при вычитании из спектра препарата дсРНК-ПВП значений спектра дсРНК, полученное значение не совпадало с ИК-спектром ПВП в области валентных колебаний карбонильной группы (С=0) (1750-1658 см"1) ПВП. Дополнительно, в области валентных колебаний ПВП в ИК-спекграх образование комплекса характеризовали по уменьшению, или исчезновению, полосы внутримолекулярной водородной связи ПВП при 2930 см"1 и смещению полосы межмолекулярной водородной связи полимера из области 3430 см"1 к 3390 см"1, что дополнительно подтверждает образование межмолекулярной связи между дсРНК и ПВП.

В то же время, ИК-спектр препарата дсРНК-ПГ (рис.2) представляет собой сумму ИК-спектров обоих компонентов, из чего можно сделать вывод, что валентных взаимодействий между ними не происходит

Данные ИК-спектров препаратов дсРНК-ПГ и дсРНК-ПВП после двух лет хранения при температуре 4-8°С и 16-25°С показали, что максимумы поглощения остались на том же уровне и с той же интенсивностью поглощения.

3.3.2. Данные о пространственной структуре дсРНК в композиционных препаратах. Сопоставление профилей КД спектров субстанции дсРНК с ее композициями показали, что они имеют профиль, характерный для рибонуклеиновых кислот, и практически совпадают с профилем КД спектра субстанции дсРНК. Это выражено в существенном превосходстве величины положительного сигнала КД вблизи 260 нм над интенсивностью отрицательного сигнала в области 230-240 нм. На основании этого сделан вывод, что изменения пространственной структуры дсРНК в присутствии ПВП или ПГ не происходит.

Это также свидетельствует об отсутствии прочных взаимодействий между дсРНК и полимером, так как появление прочных межмолекулярных связей (ковалентной), как правило, вызывает перестройку пространственной структуры взаимодействующих компонентов. По отсутствию существенных перестроек структуры дсРНК в комплексных препаратах можно прогнозировать сохранение специфической активности новых препаратов дсРНК.

3.3.3. Данные о растворимости препаратов

Определение растворимости препаратов проводили в соответствии с требованием Гос. фармакопейной статьей ГФХ1, вып. 1. Композиционные препараты дсРНК с полимерами содержали равное (по '3,64 мг) количество нуклеотидного материала каждый.

Установили, что препарат с поливинилпирролидоном растворяется медленнее (за 1мин.), чем препарат с полиглюкином (за 2мин.), но оба препарата с полимерами растворяются быстрее, чем субстанция препарата ридостин (5 мин.).

3.3.4. Данные об устойчивости дсРНК в композициях к действию нуклеаз

Изучение устойчивости композиций дсРНК с ПВП и ПГ к нуклеазам крови

и эндонуклеазе Ser. marcecens проводили в зависимости от молекулярной массы ПВП и содержания полимеров в композициях. Чувствительность препаратов к нуклеазам определяли по накоплению низкомолекулярных продуктов гидролиза в кислоторастворимой фракции (КРФ).

На рис. 3 приведены кривые накопления КРФ препаратов дсРНК-ПВП в зависимости от содержания высокополимерного ПВП в препарате. Содержание ПВП м.М. 35000Да в препаратах дсРНК-ПВП составляло 10 и 30%. Дмо

0,3 птч

ПО?"»

ридостин 10% ПВП

/ /

-- // //' . ;// 1/

/

30%ПВП

/

т

10'

15

Рисунок.З Кинетика накопления кислоторастворимой фракции при инкубировании препаратов дсРНК-ПВП с эндонуклеазой Ser. marcecens зависимости от содержания полив инилттирролидона Мм35000 Да.

Исследование устойчивости дсРНК к действию нуклеаз ы в зависимости от содержания высокополимерного носителя ПВП в комплексном препарате указывает на то, что при большем содержании высокомолекулярного полимера

устойчивость дсРНК к действию нуклеазы повышается в сравнении с ридостином.

Такая же закономерность наблюдается и для препарата дсРНК-ПГ (природного полисахарида - полиглюкина) Содержание ПГ в препарате дсРНК-ПГ составляло - 20, 30 и 70%. Было показано что, чем выше содержание ПГ в препарате, тем выше, соответственно содержанию полиглюкина, устойчивость дсРНК.

На рис.4 представлены кривые накопления кислоторастворимой фракции дсРНК при инкубировании препаратов дсРНК-ПГ и дсРНК-ПВП с сывороткой крови человека.

—— дсРНК-ПГ —■ - дсРНК-ПВП Мм 10 ООО - А - дсРНК-ПВП Мм 35 ООО Ридостин

рис.4 Кинетика накопления кислоторастворимой фракции при инкубировании препарата дсРНК-ПГ с сывороткой крови человека, (по оси абсцисс - длительность инкубации, час. по оси ординат - отношение оптической плотности кислоторастворимой фракции при 260 нм к начальной оптической плотности)

Видно, что устойчивость дсРНК к нуклеазам крови человека в комплексном препарате дсРНК - ПВП выше, что выражалось в уменьшении содержания КРФ на 20-30 %, чем ридостина, и зависит от молекулярного веса полимера. Показано также, что содержание КРФ при инкубировании препарата дсРНК-ПГ ниже на 10-15%, в сравнении с ридостином. Содержание ПГ в препарате дсРНК-ПГ - 70%.

Таким образом, проведенные исследования позволили установить, что на устойчивость индуктора интерферона дсРНК к нуклеазам влияют природа полимера, его процентное содержание в препарате и молекулярный вес полимера.

3.3.5. Данные о первичной структуре дсРНК.

Определение параметров термической денатурации препаратов дсРНК проводили в Институте биоорганической химии СО РАН (г. Новосибирск).

Для оценки влияния полимеров на тонкие особенности первичной структуры дсРНК провели изучение препаратов методом термической денатурации высокого разрешения, позволяющим получать данные, отражающие характер распределения пар оснований аденин-урацил (АУ) и гуанин-цитозин(ГЦ) в молекулах природных двуспиральных нуклеотидов. Во

избежание влияния солей на термическую денатурацию плавление всех композиционных препаратов дсРНК проводили в условиях эксперимента с низкой ионной силой, предусмотренной для комплекса дсРНК-ПГ(0,041МКа(Х).

Термические денатурации препаратов воспроизводимо дают близкие по степени разрешенности и идентичные по локализации температурных переходов профили дифференциальных кривых плавления (ДКП) дсРНК. Типичный профиль ДКП композиционных препаратов дсРНК имеет два суперпозиционных максимума: низкотемпературный (40-50°С) и высокотемпературный (80-90°С). Низкотемпературный переход в диапазоне температур состоит их трех локальных переходов при температурах 45°, 47°, 49°С, обусловленных обогащенными АУ парами М формы дсРНК. Высокотемпературный переход имеет три отдельных четко выраженных максимума 78.5°, 80.5°, 84.5 °С и обусловлен АУ парами Ь формы дсРНК. В области 89°С выделяется переход отражающий температурную денатурацию незначительной фракции доменов с повышенным содержанием (ГЦ)-пар оснований.

Значения суперпозиционных максимумов первых производных кривых термической денатурации показали одинаковые величины температур плавления исследованных образцов препаратов дсРНК в сопоставлении с Иа-солью дсРНК. ДсРНК имеет Тпл. - 87,5 °С, препарат дсРНК-ПВП - 86,5°С, дсРНК-ПГ - 86,5°С.

Итак, термические денатурации препаратов воспроизводимо дают, близкие по степени разрешенности и идентичные по локализации температурных переходов, профили ДКП дсРНК, что говорит об отсутствии изменений первичной структуры молекулы дсРНК композиционных препаратов

Таким образом, изменения, выявленные физико-химическими методами и методами ИК-спектроскопии, дают основание полагать, что композиционные препараты после выбора оптимальных концентраций дсРНК будут иметь другую динамику основных биологических свойств дсРНК и обладать иной эффективностью по сравнению с ридостином.

3.4. Выбор оптимального содержания дсРНК и природного полисахарида в композиционном препарате дсРНК-ПГ

Для выбора оптимального содержания дсРНК и природного полисахарида в композиционном препарате дсРНК-ПГ использовали показатели определения фагоцитозстимулирующей активности перетониальных макрофагов мышей при введении.препарата внутрибрюшинно.

Метод определения фагоцитозстимулирующей активности (ФСА) прост и информативен и впервые предложен Масычевой В.И. с соавт. (1985) для первичной оценки природной дсРНК как индуктора интерферона.

Для выбора оптимального соотношения дсРНК и ПГ использовали результаты фагоцитарной активности перитонеальных макрофагов мышей, которым вводили исследуемые препараты. Исследование функциональной активности макрофагов проводили через 5, 24,48 часов после введения (табл.4).

Как показали эксперименты, все исследованные препараты дсРНК-ПГ стимулировали фагоцитарную активность. Повышение функциональной

активности перитонеальных макрофагов мышей наблюдали уже через 5 часов после введения препаратов. Этот эффект сохранялся и через 24 часа.

Для изучения зависимости стимулирующего эффекта комплекса дсРНК-ПГ от содержания дсРНК в препарате было проведено исследование образцов препаратов с содержанием дсРНК в препарате 0,66; 1,2; 2,4 и 4,2 %.

Таблица 4 - Показатели фагоцитозстимулирующей активности препаратов дсРНК-ПГ дсРНК

Препарат, дозы Показатели фагоцитарной активности через:

5ч 24ч 48ч

ФА % кК ФА % кК ФА % кК

ШМИ 6,-5. № ШШв » жте т

Полиглюкин, 4,2+0,4 64,6 18,9+2,0* 210* 4,4+0,5 54,3

0,66% дсРНК +ПОЛИГЛЮКИН 13,0+1,0* 200* 20,8+3,2* 231* 3,9+0,6 48,1

1,2 % дсРНК +ПОЛИГЛЮКИН 11,7+0,6* 180* 23,6+2,6* 262* 4,8+0,2 59,2

2,4 % дсРНК +ПОЛИГЛЮКИН 12,1+1,1* 186* 36,2+7,2* 402,2* 7,3+2,9 90,1

4,2 % дсРНК +ПОЛИГЛЮКИН 13,5+0,7* 208* 41,5+3,4 * 461,1* 6,25+1,0 77,2

субстанция дсРНК, (18%) 12,4+2,4* 191' 49,2+6,5* 546,6* 7,1+1,2 87,6

Р< 0,05- различия с контролем (физиологический раствор) достоверны.

По приведенным в таблице данным, можно выделить две фазы ответа фагоцитов на введение дсРНК в свободной и композиционных формах. В ранние сроки (5 часов) все препараты в равной степени стимулировали фагоцитарную активность макрофагов, при этом эффект препаратов не зависел от содержания дсРНК. Через сугки после введения наблюдались изменения показателей фагоцитоза. ФСА композиций, содержащих низкие количества дсРНК (0,66 и 1,22 %), мало отличались по активности от полимера. Повышение содержания дсРНК до 4,2 % в препарате дсРНК-ПГ приводило к резкому усилению эффекта до уровня, индуцированного свободной формой нуклеиновой кислоты (461,1% и 546,6 % соответственно). Комплекс дсРНК с полиглюкином вызывал эффект модуляции, но не приводил к пролонгации действия индуктора интерферона.

Таким образом, определено, что наиболее оптимальной по составу является композиция дсРНК-ПГ с содержанием дсРНК 4,2 %, которую и выбрали для дальнейшего биологического тестирования. Следует отметить, что По сравнению с субстанцией дсРНК содержание дсРНК в препарате дсРНК-ПГ в 4,5 раза ниже. При этом биологические реакции были сходными.

3.5. Выбор оптимального соотношения дсРНК и полимерного носителя поливинилпирролидона в зависимости от его молекулярного веса и процентного содержания в комплексе

В первой серии опытов содержание в препарате дсРНК-ПВП высокомолекулярного (в/м) полимера ПВП с молекулярным весом 35000Да составляло 30%. Содержание дсРНК в комплексе варьировали от 0,3% до 9,3%. (табл.5).

Таблица 5 - Фагоцитарная активность макрофагов мышей при действии препаратов дсРНК -ПВП_________

Препарат Содерж ание дсРНК, % Показатели фагоцитарной активности

24 часа 5 суток

ФА % ККк контролю ФА % ККк контролю

ДсРНК-ПВП 0,3 28,0±2,3 116,6 - -

JJcPHKJIBn 2,4 29,7±3,7 124,7 48,б±2,9* 188,7

ДсРНК-ПВП 5,5 41,2±5,0 171,6 38,7±4,3* 150,3

ДсРНК-ПВП 9,3 48,7±3,45 203,1 41,8±2,9* 162,3

Ридостин 9,3 50,5+0,7 208,0 25,7±2,9* 100,0

Физ.раствор - 24,0±3,9 100,0 25,7±2,9* 100,0

*Р < 0,05 различия с контролем (физиологический раствор) достоверны.

Результаты показали, что препарат с содержанием дсРНК в комплексе 0,3 % не вызывает фагоцитозстимулирующего эффекта. Препараты с содержанием дсРНК от 2,4 % до 9,3 % достоверно повышают ФСА. Этот'эффект наблюдался в течение 5 дней. В группе животных, получавших ридостин (9,3% дсРНК), такого эффекта не выявлено.

Для дальнейшего изучения комплексов дсРНК-ПВП в качестве оптимального был выбран комплекс с содержанием дсРНК 2,4 %.

Изучение влияния молекулярного веса ПВП на проявление фагоцитозстимулирующей активности перитонеальных макрофагов мышей при введении композиционных препаратов дсРНК-ПВП с содержанием низко- и -высокомолекулярного ПВП показало, что через сутки после введения животным комплекса дсРНК-ПВП фагоцитарная активность макрофагов наблюдается после введения, как у ридостина, так и комплекса дсРНК-ПВП с ПВП мМ 35000Да. Но, через 2 суток фагоцитозстимулирующее действие комплексных препаратов с низко- и -высокомолекулярным ПВП не только сохраняется, но и усиливается до 128 % и 184 % соответственно. Через 3 суток фагоцитозстимулирующей активностью обладает лишь комплекс дсРНК с высокомолекулярным ПВП, (процент стимуляции - 150%). Данный комплекс приводил к пролонгации активности перитонеальных макрофагов до 5 суток.

Таким образом, для дальнейшего изучения были отобраны комплексы дсРНК-ПГ с содержанием дсРНК 4,2%, и дсРНК-ПВП с содержанием-2,4% дсРНК.

3.6. Данные о биологических свойствах композиционных препаратов

3.6.1. В экспериментах определяли интерферониндуцирующую активность композиционных препаратов дсРНК с ПВП разной молекулярной массой и дсРНК-ПГ в сравнении с ридостином. Исследование проводили на белых беспородных мышах линии ICR, самцах. Титр интерферона в сыворотках крови мышей, полученные в разные сроки после введения препаратов (5 мг/кг, внутрибрюшинно) показали, что препараты дсРНК-ПГ и дсРНК-ПВП сохраняют выраженную интерферониндуцирующую активность. В отличие от ридостина и дсРНК-ПГ, препарат дсРНК-ПВП индуцирует интерферонообразование в течение 2 суток при меньшем в 4 раза содержании дсРНК. Титр интерферона после введения препарата дсРНК-ПВП мышам через 24 часа был равен 128

ИЕ50/о,2мл, через 48 часов - 45 ИЕ/0,2>и , а после введения ридостина - 64 и 18 ИЕ50/0,2мл соответственно.

3.6.2. Определение среднесмертельных доз комплексных препаратов дсРНК с полиглюкином и ПВП в сравнении с препаратом-прототипом «Ридостин» проводили экспресс-методом по Прозоровскому на белых беспородных мышах при внутрибрюшинпом введении. Значение средне-смертельных доз показали, что введение полимеров (поливинилпирролидона или полиглюкина) в состав препарата индуктора интерферона дсРНК вызывает явное снижение токсичности препарата по сравнению с ридостином. Препарат дсРНК-ПГ имеет значение средне-смертельных доз в интервале 260-360 мг/кг, а дсРНК ПВП М.м.35000 -340-590 мг/кг. Это соответствует показателям для класса малотоксичных препаратов, в то время как ридостин относится к классу среднетоксичных препаратов (ЛД50- 89-100 мг/кг).

3.7. Результаты изучения профилактической эффективности препаратов

Целью эксперимента стала оценка профилактической и терапевтической эффективности новых лекарственных форм дсРНК при факторных инфекционных болезнях поросят в условиях широкого производственного эксперимента. Опыты in vivo по изучению действия комплексов на поросятах проводили совместно с Лабораторией болезней свиней ИЭВСиДВ СО РАСХН на свинокомплексе "Кудряшовский".

Исследовали дозовую зависимость однократного в/м введения комплексов (0,1; 0,3 и 0,5 мг/кг) в сравнении с инъекциями вестина (0,5 мг/кг) и интактными животными на 8 группах поросят-аналогов 17-18- дневного возраста. Естественную резистентность поросят оценивали по показателям ОФР и уровня у - глобулинов.

Как показали результаты исследований, введение всех препаратов не оказывает влияния на показатели белкового обмена (альбумины, а- и р -глобулины). Все эти показатели были в пределах физиологической нормы, как у опытных, так и у интакщых животных. Препарат комплекса дсРНК-ПВП в дозах 0,1-0,5 мг/кг повышал уровень гемоглобина у поросят в опытной группы на 1018%.

Препараты комплекса дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ в дозах 0,3 мг/кг достоверно стимулировали фагоцитоз (ОФР) нейтрофилов крови поросят на 3 сутки после введения (136,5% и 120,6% соответственно), также как и вестин в дозе 0,5 мг/кг (129,1%), в то время, как у интактных поросят наблюдали снижение ОФР до 90,4%. Уровень у- глобулинов достоверно (Р<0,05) увеличивался на 3 сутки при введении комплекса дсРНК-ПВП в дозе 0,3 мг/кг до 157,4% и комплекса дсРНК-ПГ в дозах 0,1 - 0,3 мг/кг до 123,2-107,6% соответственно

Таким образом, опыты показали, что препараты комплекса дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ хорошо переносятся поросятами. При этом их эффективные дозы по оценкам показателей резистентности составляют 0,3 мг/кг.

3.6.2. Результаты изучения эффективности препаратов дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ для профилактики факторных инфекционных болезней поросят в производственных условиях

В первом опыте испытывали препараты дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ в целях профилактики при сочетанных инфекционных болезнях на 152 поросятах 21-дневного возраста, живой массой 5,0 кг каждый. Поросят разделили по принципу аналогов на 3 группы по 37 - 40 голов в каждой. За поросятами в течение 40 дней вели клинические наблюдения. Данные эффективности применения различных форм индукторов интерферона для профилактики инфекционных болезней поросят приведены в таблице 6.

Таблица 6 - Эффективность применения различных форм индукторов интерферона для профилактики инфекционных болезней поросят

Группа .до начала опыта Через 40 дней

Количество голов Сред-ний вес 1головы Колич ество голов Средний вес 1 головы пало, гол. в/убшо, % Среднесу точный привес, г Сохранность, %

контроль 40 4,7 32 12,2 8 20 189± 7,1 80

дсРНК-ПГ 37 5,3 32 15 5 13,5 242± 6,9* 86,5

дсРНК-ПВП, однократно 37 5,4 33 14 4 10,8 217± 8,3 89,2

Вестин двукратно 38 5 33 12,9 4 10,5 198±9,4 89,5

*Примечание - Р<0,05 по сравнению с контрольной группой Проведенные эксперименты показали, что изучаемые препараты

индукторов интерферона обладают положительным защитным действием на организм поросят 21-дневного возраста, что выражается в снижении падежа и увеличении среднесуточных привесов. При этом существенных различий между их эффектами не обнаруживается, при однократном введении.

Во втором опыте с профилактической целью 342 поросятам 15-дневного возраста вводили внутримышечно дсРНК-ПВП в дозе 0,3 мг/кг ж.м. однократно. Контролем служили 338 поросят аналогичного возраста (им никаких препаратов не вводили). В результате через 30 дней в опытной группе уровень сохранности животных составил 80,7% , а в контрольной - 74,6%. Среднесуточный привес составил в первой группе - 190± 10 г, во второй - 170±9 г или на 11,8% больше, чем в контроле.

В третьем опыте 682 поросятам 45-дневного возраста (в день их передачи на участок доращивания) ввели внутримышечно дсРНК-ПВП в дозе 0,3 мг/кг ж.м. однократно. Контролем служили 670 поросят аналогичного возраста (им никаких препаратов не вводили). В результате через 24 дня в опытной группе уровень сохранности животных составил 90,5%, а в контрольной - 69,5%. Среднесуточный привес в опытной группе составил - 210±11 г, а в контрольной - 160±8г.

В аналогичном опыте по изучению профилактической эффективности препарата дсРНК-ПВП при факторных инфекционных заболеваниях поросят в производственных условиях использовали 529 поросят на свинокомплексе

«Томский» ЗАО «Сибирская аграрная группа» Томской области. Свинокомплекс в течение ряда лет стационарно неблагополучен по дизентерии, полисерозиту, колиэнтеротоксемии, трансмиссивному гастроэнтериту, колибактериозу, сальмонелезу, микоплазмозу, гриппу, РРСС, цирковирусной инфекции.

Поросятам в возрасте 30 и 38 дней были введены комплекс дсРНК-ПВП (200голов) и препарат дсРНК-ГГГ (200голов) по 0,3 мг/кг массы тела и 129 поросят - контроль, которым в эти же сроки вводили в/м по 5 мл алогеннрй иммунной сыворотки свиней (АИСС).

За всеми поросятами в течение 70 дней (до перевода на откорм) вели клинические наблюдения.

Из 200 поросят первой группы за 8 дней после первого введения комплекса дсРНК-ПВП заболели с признаками гастроэнтерита 21 поросенок (10,5%) из которых пало 5. Сохранность при передаче на доращивание составила 97,5%.

Из поросят второй группы заболело 26 голов (13%), из которых погибло 8. Сохранность составила 95,8%. В контрольной группе сохранность - 92,2%.

При передаче на доращивание часть слабых поросят из всех групп была передана в сектор Пиг-Балья: из первой группы 61 головы (31,3%) с массой тела 4,4 кг, из второй - 70 голов (36,4%) и из контрольной - 56 голов (44,5%) с массой тела 4,3 кг.

При передаче на доращивание поросятам опытных групп были повторно введены препараты в тех же дозах. За 70 дней на участке доращивания из первой опытной группы пал 1 поросенок, сохранность составила 99,2%, среднесуточный привес массы тела 388г.

Во второй группе сохранность поросят составила 95,9%, среднесуточный привес массы тела 357г.

В контрольной группе поросят за период доращивания из 66 поросят погибло 12 голов, сохранность составила 81,8% при среднесуточном приросте массы тела 308 г.

Таким образом, к концу опыта в группе поросят после двукратного введения комплекса дсРНК-ПВП сохранность поросят была на 17,4%, а среднесуточный прирост массы тела на 26% выше, чем в контрольной.

В группе поросят, которым аналогично вводили комплекс дсРНК-ПГ, сохранность была на 14,1%, а среднесуточный прирост массы тела на 15,9 % выше, чем у поросят контрольной группы.

Таким образом, препараты комплексов дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ также как и вестин, обладают выраженными профилактическими свойствами при факторных болезнях поросят, повышая их резистентность и уменьшая падеж. После введения композиционных препаратов поросята лучше растут и развиваются, давая достоверно более. высокий среднесуточный прирост массы тела. Характерно, что положительное действие препаратов отмечается при их применении в критические для поросенка сроки (отъем, передача на участок доращивания).

3.6.3. Результаты изучения эффективности одновременного использования дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ и антибиотиков у поросят при факторных инфекционных болезнях

Предварительно у поросят-отьемышей участка доращивания был определен микробный и вирусный фон. При бактериологических и серологических исследованиях установлено носительство у поросят эшерихий, сальмонелл, пастерелл, синегнойной палочки, рота-, парво- и коронавирусов, микоплазм, бордетелл и др.

Для проведения опыта отобрали 42 поросенка в возрасте 50 дней с признаками диареи отставших в росте, живой массой тела 4,5^4,9 кг каждый.

Поросят по принципу аналогов разделили на три группы по 14 голов.

Животным первой группы вводили 10%-ный раствор тиамутина в дозе 10мг/кг ежедневно 3 дня подряд и однократно - комплекс дсРНК-ПВП в дозе 0,3 мг/кг.

Животным второй группы вводили 10%-ный раствор тиамутина и препарат дсРНК-ПГ в дозе 0,3 мг/кг трехкратно с интервалом 3 дня, а поросятам 3 группы - только 10%-ный раствор тиамутина. Ежедневно, в течение 14 дней, вели наблюдение за клиническим состоянием поросят (табл.7).

Эффективность разных схем применения препаратов оценивали по приросту живой массы и уровню сохранности поросят.

Из приведенных ниже данных табл. 7 видно, что наилучший лечебный эффект от сочетанного применения тиамутина и комплекса дсРНК-ПВП получен в первой группе, в которой пал один поросенок из 14, остальные все выздоровели. Среднесуточный прирост живой массы в этой группе был в 1,7 раза выше, чем в контрольной группе.

Менее выраженный эффект был при применении препарата дсРНК-ПГ. Таблица 7 • Терапевтическая эффективность применения дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ с одновременным использованием тиамутина при факторных болезнях поросят

Группа На начало опыта Через 14 дней

Кол -во голов Средн. вес 1 головы Кол -во голов Средн. вес 1 головы Падеж Среднесуг привес, г Сохран ность, %

гол. , %

Тиамутин ДсРНК-ПВП 14 4,7 13 62 1 7,1 107±7,7* 92 ,9

Тиамутин ДсРНК-ПГ 14 4,9 11 6,2 3 21,4 93±7,3* 78,6

Тиамутин (контроль) 14 4,5 10 5,4 4 28,6 64± 8,0 71,4

Примечание - Р<0,05 по сравнению с контрольной группой.

В связи с этим в следующем производственном опыте для профилактики инфекционных болезней изучили эффективность применения только комплекса дсРНК-ПВП в сравнении с препаратом левотетрасульфином. В опыт взяли 308 поросят-аналогов в возрасте 18 дней, живой массой 4,3 кг каждый. Данные представлены в табл. 8.

Таблица 8 - Лечебно-профилактическая эффективность препарата комплекс дсРНК-ПВП с одновременным использованием левотетрасульфина_

Группа до начала опыта Через 24 дня

Количество голов средний вес 1 головы Количество голов средний вес 1 головы пало Среднесуточный привес, г Сохранность, %

гол. в/ убито, %

ДсРНК-ПВП 73 4,3 67 7,2 6 8,2 122± 10 91,8

ЦсРНК-ПВП и певотетросульфин 53 4,5 48 7,9 5 9,4 145+ 10,5 * 90,6 •

ГТевотетрасульфин 85 4,2 74 6,6 11 12,9 102± 10,1 87,1

Контроль (АИСС) 97 4,3 80 7,1 17 17,5 117± 10,4 82,5

* Примечание - Р<0,05 по сравнению с контрольной группой.

Таким образом, у животных второй группы, которым одновременно вводили комплекс дсРНК-ГТВП и левотетрасульфин, среднесуточный прирост массы тела оказался выше на 20%, чем у животных остальных групп. Лучшая сохранность была среди поросят первой группы, где применяли только комплекс дсРНК-ПВП - 91,8 %. Из этого следует, что комплекс дсРНК-ПВП способствует повышению терапевтической эффективности антибактериального препарата тиамутин и лечебно—профилактической эффективности левотетрасульфина в сравнении с алогенной иммунной сывороткой свшгей

4. ВЫВОДЫ

1. Усовершенствована технология производства биомассы киллерных дрожжей БассИаготусез сегеушае путем замены источника аминного азота из дорогостоящего пептона на автолизат пекарских дрожжей и источника углерода из нестандартизуемого источника - мелассы - на сахар. Это позволило повысить содержание дсРНК в 1 кг дрожжей более, чем в 3 раза, по сравнению с содержанием дсРНК в биомассе, выращенной на среде с мелассой и пептоном в промышленном масштабе. Себестоимость производимой биомассы снижается-более, чем в 10 раз

2. Использований модифицированной газодинамической вихревой мельницы для дезинтеграции микроорганизмов дрожжей в жидком потоке привело увеличению выхода целевого продукта на 20-30 % и уменьшению энергозатрат в 2 раза.

3. Установлено влияние ПВП и ПГ на физико-химические, структурные свойства дсРНК, что выразилось в следующем:

- повышалась устойчивость дсРНК к действию нуклеаз крови человека композиционных препаратов дсРНК с полиглюкином и поливинилпирролидоном на 10-15% и 20-30%, соответственно

- использованные полимеры повышали уровень растворимости препаратов, причем скорость растворения препарата зависела от вида полимера

ПВП и ПГ в составе композиционных препаратов не изменяет первичную, вторичную и конформационную структуру дсРНК.

4. Исследуемые композиционные препараты оказывали различные эффекты на биологические реакции организмов животных.

Препарат дсРНК-ПВП, характеризующийся наличием слабых водородных

связей между дсРНК и ПВП, приводил к более длительной активации фагоцитоза (до 5 суток) и индукции интерферона (до 2 суток), чем референс препарат ридостин. Содержание дсРНК при этом в 3-4 раза ниже, чем в ридостине.

Эффекты препаратов дсРНК-ПГ и ридостина по показателю фогоцитоза и уровня интерферона были сходными. Содержание дсРНК в композиционном препарате в 2 раза ниже, чем в ридостине.

5. Проведенное исследование показало, что использование приемов физической иммобилизации дсРНК дрожжей ЗассЬаготусеБ сегеушае киллерных штаммов с полисахаридами (ПГ) и с синтетическими высокомолекулярными полимерами (ПВП) позволило создать новые индукторы интерферона с улучшенными свойствами и является перспективным подходом для создания новых препаратов дсРНК.

6. Препарат дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ обладают выраженными профилактическими свойствами при факторных болезнях гЮросят, повышая их резистентность, продуктивность и уменьшая падеж. Комплекс дсРНК-ПВП способствует повышению терапевтической эффективности антибактериального препарата тиамутин и лечебно-профилактической эффективности левотетрасульфина в условиях широкого производственного эксперимента.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Результаты, полученные при усовершенствовании биотехнологических стадий процесса культивирования биомассы киллерных штаммов дрожжей ЗассЬаготусев сегеУ1з1ае и стадии дезинтеграции дрожжей, внедрены в ООО «Диафарм» и вошли в Промышленные регламенты производства ПР № 103.0063.03.

Результаты научных исследований разработки состава композиций дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ рекомендуется использовать для разработки схем применения препаратов и составления проектов Фармакопейных статей предприятия на лекарственные формы.

Разработанные и апробированные схемы применения препаратов используются на свинокомплексах ОАО «Кудряшовское» Новосибирской области и ЗАО «Сибирская аграрная группа» Томской области, и могут быть использованы для разработки «Наставления по применению».

Для профилактики факторных инфекционных болезней поросят рекомендуется применять препараты дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ в критические периоды жизни (в зависимости от сроков отъема) на 15, 25, 45 или 30, 38 дни в дозе 0,3 мг/кг.

Для терапии факторных инфекционных болезней поросят рекомендуется сочетанное применение препарата дсРНК-ПВП в дозе 0,3 мг/кг однократно и антибиотиков (10 %-ный раствор тиамутина в дозе 10 мг/кг или левотетросульфин в дозе 0,5 мг/кг) или дсРНК-ПГ в дозе 0,3 мг/кг трехкратно.

Основные результаты, полученные автором в процессе работы, вошли в методические рекомендации «Применение иммуностимуляторов дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ в свиноводстве», рассмотрены и утвержденные учеными советом ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН (протокол № 1 от «17» января 2006 г) и подсекцией

«Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока» отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии (протокол № 1 от «17_» января 2006 г).

6. СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Двуспиральные (дс)РНК индукторы интерферона для профилактики и лечения инфекционной патологии позвоночных /Соавт. Аликин Ю.С., Масычева В.И., Даниленко Е.Д7/ Российско-Канадский коллоквиум ISTC (МНТЦ) Canadian biological sciences colloquium. Moscow, 15-17 September 2004, p. 268273.

2. Положительное решение о выдаче патента на изобретение «Способ лечения и профилактики желудочно-кишечных инфекционных болезней поросят в условиях промышленного свиноводства»/ Соавт. Прудников С.И., Духовский A.A., Аликин Ю.С //по заявке № 2004111 060/14(011839) от 30 03 2004.

3. Патент № 2172631 МКИ С 12N 15/00 Индукторы интерферона пролонгированного действия, /Соавт. Масычева В.И., Аликин Ю. С.// НИКТИ БАВ ГНЦ ВБ «Вектор» РФ. опубл. БИ 24. 01

4. Патент № 2215781 МКИ C12N1/18 и 12R1:865 Питательная среда для культивирования киллерных дрожжей Saccharomyces cerevisiae./CoaBT. Терещенко Т.А., Беспятых Э.В. ООО «Диафарм»-№2000111086; заявл.03.05.2000

5. Влияние вида носителя, технологических приемов создания новых лекарственных форм на биологическую активность дсРНК дрожжей Saccharomyces cerevisiae./CoaBT. Масычева В.И., Карпова С.Ф., Даниленко Е.Д., Фадина В.А., Аликин Ю.С., Малахова Т.В.//IX Международная конференция и дискуссионный научный клуб Новые информационные технологии в медицине и экологии.- Украина. Крым.Ялта-Гурзуф.2001.

6. Изучение безвредности и определение оптимальных иммуностимулирующих доз препаратов комплекс А и комплекс В на поросятах/Соавт. Прудников С.И., Духовский A.A., Аликин Ю.С, Кропачева Т.В.//Актуальные вопросы-ветеринарии: Материалы науч. практ.конф. фак .вет. мед. НГАУ/ Новосиб. гос. аграр. ун-т. - Новосибирск, 2001.-C.72-73.

7. Биологические эффекты пролонгированных форм индукторов интерферона у высших и низших позвоночных./Соавт. Аликин Ю.С., ДаниленкоЕ.Д., Масычева В.И., Духовский A.A., Прудников С.И., Щелкунов И.С./ЛХ Международная конференция и дискуссионный научный клуб Новые информационные технологии в медицине и экологии,- Украина. Крым. Ялта-Гурзуф.2001- с.173.

8.Поиск рациональных схем использования препаратов комплекс А и комплекс В на поросятах в целях повышения уровня неспецифической резистентносш/Соавт. Духовский A.A., Прудников С.И., Аликин Ю.С.//Актуальные вопросы ветеринарии: Материалы науч.-практ. конф. фак. вет. мед. НГАУ/Новосиб. гос. аграр.ун-т.-Новосибирск,2001.-с.70-71.10.

9. Технологические аспекты получения индукторов интерферона пролонгированного действия./Соавт. Масычева В.И., Карпова С.Ф., Даниленко Е.Д., ФадинаВ.А., Аликин Ю.С.// ПТУ Международная конференция и

дискуссионный научный клуб Новые информационные технологии в медицине и экологии,- Украина. Крым. Гурзуф.2000 - с.93-94.

10. Индукторы интерферона в лечении и профилактике инфекциооных заболеваний./Соавт. Масычева В.И., Аликин Ю.С., Лосева М.И., Даниленко Е.Д// IIIV Международная конференция и дискуссионный научный клуб Новые информационные технологии в медицине и экологии - Украина. Крым. Гурзуф.2000 - с. 105-106.

11. Дезинтеграция микроорганизмов в вихревой мельнице/Соавт. Касаткина Н.С., Лебедев A.B., Правдина М.Х// Обработка дисперсионных материалов Периодический сборник научных трудов, вып. 9, НПО «Вотум» ИБКХ НАНУ Укр. ХО, 1999,- с. 66-64.

Откопировано И П Сердкжова

Тираж 100 зкз подписано в печать 25 01 2006

633010i Бердск НСО у [ Химзоводская, 9

251Г

 
 

Оглавление диссертации Левагина, Галина Михайловна :: 2006 :: Новосибирск

1. ВВЕДЕНИЕ.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

2.1 Синтетические индукторы интерферона - двунитевые РНК

2.2 Природные индукторы интерферона на основе дсРНК.

2.3 Методы модификации индукторов интерферонов дсРНК. 26 Ф 2.4 Лекарственные формы индукторов интерферонов.

 
 

Введение диссертации по теме "Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология", Левагина, Галина Михайловна, автореферат

Биотехнология является одним из основных направлений современного научно-технического прогресса. Уровень внедрения продуктов, созданных с помощью биотехнологии, очень высок. Так, институт экономических исследований ФРГ (г. Мюнхен) показывает, что примерно 40 процентов выпущенной продукции получают на основе различных биологически активных веществ. Около половины современных биотехнологических продуктов и методов приходится на фармацевтическое производство. По прогнозу, рынок продуктов биотехнологии, основанный на новых методах генной инженерии и клеточной генетики будет приближаться к 90 - 200 млрд. долларов. Поэтому, все актуальней становится решение задач, связанных с разработкой современных высокотехнологичных процессов получения препаратов нового поколения для ветеринарии и медицины.

В настоящее время достаточно остро стоит проблема борьбы с инфекционными заболеваниями в животноводстве. Интенсивные технологии, на которых базируется современное животноводство, обуславливают снижение общей неспецифической и специфической резистентности организма животных. На этом фоне у животных, и особенно у молодняка, в массовых масштабах проявляются инфекционные болезни, вызванные как патогенной, так и в большей степени условно-патогенной микрофлорой. Такие болезни принято называть факторными [1].

Факторные инфекционные болезни довольно широко распространены в промышленном свиноводстве, и, прежде всего, среди поросят-сосунов и отъемышей, и сопровождаются большими потерями в виде низкого уровня сохранности поголовья и прироста живой массы, резким ухудшением качества продукции [2].

К сожалению, универсальных средств, обладающих широким спектром противоинфекционного действия и высокой эффективностью для лечения и профилактики этих заболеваний, нет. Используемые антибиотики не позволяют достичь желаемых результатов, так как их применение приводит к появлению лекарственно устойчивых форм бактерий и вирусов. Поэтому, все большую актуальность приобретают способы профилактики и экстренного лечения инфекционных заболеваний с помощью стимуляторов системы неспецифической резистентности. К которым относятся интерфероны и индукторы интерферона, в том числе синтетического и природного происхождения на основе двуспиральных полирибонуклеотидов. Индукторы интерферона стимулируют выработку эндогенного интерферона и являются перспективными средствами для профилактики и лечения инфекционных заболеваний.

Развернутое изучение полинуклеотидов, как индукторов интерферона, началось после открытия Лампсоном и Хеллеманом (1967) того, что именно двунитевые структуры обладают способностью индуцировать интерферон. Исследования индукторов интерферонов 80 — 90-х годов можно разделить на направления: фундаментальные и прикладные. Фундаментальные исследования определили физико-химические, биологические свойства и их взаимосвязи. Прикладные аспекты изучения индукторов интерферона в конечной цели привели к созданию группы медицинских противовирусных препаратов - индукторов интерферона. В основном, эти исследования проводились в СССР. В последние 10 лет работы были направлены на изучение молекулярных механизмов и ознаменовались открытием рецепторов к дсРНК. Также ведется поиск способов повышения эффективности индукторов интерферона, в том числе и путей пролонгации эффекта их действия.

В результате проведенных исследований 80 - 90-х годов, было отобрано около 10 клинически пригодных индукторов интерферона на основе двуспиральных полирибонуклеотидов: ридостин, ларифан, амиксин, полудан, полигуацил, мегасин, рифастин. И только ридостин, мазевая форма ридостина и полудан официально были разрешены для применения в медицинской практике. Препараты Вестин для ветеринарии и Ридостин для медицины [3] разработаны в НИКТИ БАВ ФГУП ГНЦ ВБ «Вектор» на основе дсРНК из киллерного штамма У-438 дрожжей ЗассИаготусеБ сегеу1з1ае.

Созданный на основе дсРНК ЗассЬаготусез сегеУ1з1ае, препарат ридостин (вестин) является стимулятором интерфероногенеза различных звеньев иммунной системы, не вызывает побочных эффектов и выделяется из экологически безопасного продуцента, что отвечает современным требованиям, предъявляемым к фармакологическим препаратам.

Положительными свойствами индукторов интерферона, содержащих дсРНК, является их видонеспецифичность, т.е. они обладают способностью стимулировать интерфероногенез и противоинфекционную устойчивость у животных различных видов и классов (рыбы, птицы, телята, свиньи и т.д.) и широкий спектр противоинфекционной активности. Показан положительный эффект от применения препарата дсРНК бактериофага £2 для профилактики и лечения острых вирусных заболеваний у телят, ягнят[4,] показано, что препарат дсРНК бактериофага £2, введенный с профилактической целью поросятам, обладает выраженным противовирусным действием в отношении вируса болезни Ауэски [5]. Прудниковым С.И. (1996) и Аликиным Ю.С. (1996,1998) экспериментально была подтверждена способность ридостина стимулировать систему неспецифической устойчивости и образование интерферона у свиней. Учитывая остроту проблемы, связанную с ассоциативными инфекционными заболеваниями у свиней и поросят, представляется перспективным продолжить поиск и исследования эффективных средств на основе дсРНК.

Из-за ряда нерешенных технологических проблем и высокой цены, препарат, несмотря на высокую эффективность, не нашел широкого применения в практике.

Лимитирующими факторами для масштабного получения препарата дсРНК ЗассЬаготусеБ сегеу1з1ае и его широкого использования является: низкая продуктивность источника получения дсРНК, высокая энергоемкость, громоздкая система разрушения дрожжей, высокая стоимость используемого сырья.

Работы, по получению природных дсРНК в опытно-промышленных масштабах немногочисленны и проводились они лишь в 80-90 годах.

Так, технология культивирования зараженных РНК-геномными бактериофагами биомассы бактерий Escherichia coli штамма Q13, высокие выходы дсРНК (237-495 мг/л) позволили нарабатывать продукт в препаративных количествах, достаточных для его всестороннего клинического изучения и опытно-промышленного получения [6]. Из биомассы E.coli амбермутанта бактериофага f2 susn получили первый препарат дсРНК, который был разрешен для проведения клинических испытаний, а из биомассы E.coli бактериофага f6 - для доклинических испытаний. Однако оба эти источника являются экологически небезопасными. Кроме того, дсРНК из биомассы бактериофага f6 обладает ярко выраженным мутагенным эффектом [7].

Другими перспективными источниками природных дсРНК являются непатогенные дрожжи Saccharomyces cerevisiae киллерных штаммов.

Продуктивность дрожжей Saccharomyces cerevisiae киллерных штаммов биомассы дрожжей по дсРНК при культивировании в ферментерах объемом 4м3, составляла 70-90 мг дсРНК на 1кг биомассы [8]. Для обеспечения промышленного выпуска дсРНК и препарата ридостин, это является явно недостаточным. Решение данной проблемы, на наш взгляд, можно решить двумя способами. Первое — повысить продуктивность дрожжей Saccharomyces cerevisiae киллерных штаммов, как по накоплению дсРНК в клетке, так и по увеличению съема биомассы дрожжей с 1 литра питательной среды. Второе - разработать новые лекарственные формы дсРНК, которые позволили бы снизить содержание дсРНК в лечебной дозе препарата при сохранении биологических свойств и эффективности, или пролонгировали действие активного начала, обеспечивали полную или частичную защиту дсРНК от деградирующих систем организма.

В последние годы разработан ряд технологических приемов создания новых лекарственных форм биологически активных веществ путем создания композиционных препаратов с различными носителями и полимерами.

Это позволяет решить вопросы снижения содержания основного биологически активного вещества, обеспечивает, зачастую, пролонгированное действие препарата, уменьшает токсическое действие БАВ, обеспечивает сохранение структуры действующего начала. К физическим носителям лекарств относят гидрогели, гидрофобные и биодеградируемые полимеры (поливиниловый спирт, поливинилпирролидон, полиэлектролитные комплексы, ионообменные смолы, полигидроксиалкил-метакрилаты, а также природные полисахариды). Одним из приемов получения эффективных препаратов является использование методов физической иммобилизации полимеров с биологически активными веществами. Для этих целей широко используются поливинилпирролидоны и полисахариды.

Исследователи неоднократно пытались повысить эффективность и индукторов интерферона, продлить период повышенной активности системы неспецифической резистентности организма путем использования различных полимеров: ДЭАЭ-декстрана, альбумина, протамина, сефарозу, поли-Ь-лизин совместно с интерфероногенами [9,10.11].

Для пролонгирования действия индукторов интерферона в ряде работ была использована способность поливинилпирролидона (ПВП) к комплексо-образованию. Описаны методы получения комплексов природного госсипола (низкомолекулярный индуктор ИФ) с водорастворимым малотоксичным полимером - поливинилпирролидоном [12]. Данные по сравнительному изучению токсичности и противовирусной активности госсипола и его комплексов с ПВП в культурах фибробластов эмбрионов кур показывают, что такие лекарственные формы обладают низкой токсичностью, проявляя при этом выраженную противовирусную активность, причем активность комплексов зависит, как от молекулярной массы (М), так и от процентного содержания низкомолекулярного компонента.

Было показано, что комплексообразование полинуклеотидов ДЭАЭ-декстраном, альбумином, протамином или неомицином [12,11,13,14], гистонами [1510], поли-Ь-лизином [16], повышают стабильность и активность препаратов как интерфероногенов.

Предпринятые попытки повысить эффективность индукторов интерферона путем использования различных полимеров совместно с интерферо-ногенами, в том числе и с дсРНК, показали перспективность таких подходов для создания новых препаратов индукторов интерферона.

В доступной литературе не найдено данных по созданию различных модифицированных форм дсРНК ЗассИаготусеБ сегеу1з1ае с перспективными полимерами поливинилпирролидоном (ПВП) и полиглюкином (ПГ). Это предопределило дальнейшие исследования.

Представлялось обоснованным оптимизировать основные стадии технологического процесса получения дсРНК дрожжей ЗассЬаготусез сегеу1з1ае в промышленных масштабах. Оценить возможность создания более эффективных лекарственных форм индукторов интерферона дсРНК БассИаготусез сегеу1з1ае с использованием водорастворимых полимеров, провести экспериментальное исследование физико-химических свойств и логических эффектов, разработать схему применения препаратов, оценить профилактическую и терапевтическую эффективность препаратов при инфекционных болезнях поросят в условиях широкого производственного эксперимента.

Цель исследования: Оптимизация технологии получения дсРНК БассИаготусез сегеу!з1ае и разработка новых композиционных препаратов с улучшенными свойствами на основе дсРНК и полимеров.

Задачи исследования: усовершенствовать состав среды для культивирования дрожжей ЗассИаготусеБ сегеу1з1ае киллерных штаммов в промышленных масштабах;

- изучить возможность использования газодинамического метода дезинтеграции для разрушения клеток дрожжей;

- разработать составы новых лекарственных препаратов, содержащих дсРНК и полимеры, как средств борьбы с инфекционными заболеваниями;

- оценить влияние полимеров на физико-химические и биологические свойства действующего начала (дсРНК) в препаратах;

- оценить профилактическую и терапевтическую эффективность вновь разработанных препаратов при инфекционных болезнях поросят.

Научная новизна

Экспериментально доказана возможность замены источника аминного азота - пептона и углеводного питания - мелассы на автолизат пекарских дрожжей и сахар для производства биомассы киллерных дрожжей БассИаготусез сегеу1з1ае в производственном масштабе. Применение разработанного нового состава среды позволило повысить содержание дсРНК в 1 кг более чем в 3 раза.

Впервые экспериментально продемонстрирована эффективность использования модифицированной газодинамической вихревой мельницы для дезинтеграции микроорганизмов дрожжей в жидком потоке, что выразилось в увеличении выхода целевого продукта на 20-30 % и уменьшении энергозатрат в 2 раза.

Впервые экспериментально показана возможность использования приемов физической иммобилизации дсРНК дрожжей БассИаготусез сегеу1Б1ае с полисахаридами (ПГ) и с синтетическими полимерами (ПВП).

Разработан состав и технология получения препаратов дсРНК-ПГ и дсРНК-ПВП. Содержание дсРНК - 2,4% , ПВП - 30% являются оптимальными для композиции дсРНК-ПВП. Для препарата дсРНК-ПГ оптимально содержание дсРНК - 4,2%, ПГ - 70%.

В исследованиях установлено влияние поливинилпирролидона и полиглюкина на физико-химические, структурные свойства дсРНК:

- повышается устойчивость дсРНК композиционных препаратов с полиглюкином и поливинилпирролидоном к действию нуклеаз крови человека на 10-30 %;

- использованные полимеры повышают уровень растворимости дсРНК препарата, причем скорость растворения препарата зависит от вида полимера;

- не изменяется первичная, вторичная и конформационная структура двойной спирали дсРНК при получении композиционных препаратов дсРНК с полимерами ГГВП и ПГ

Выявлено, что комплексы дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ обладают различными уровнями биологических эффектов:

- комплекс дсРНК-ПВП приводит к пролонгации активности перитонеальных макрофагов мышей до 5 суток. Стимулирует синтез интерферона до 2 суток при меньшем в 3-4 раза содержании дсРНК, чем в выбранном для сравнения референс препарате - ридостине;

- комплекс дсРНК с полиглюкином при меньшем в 2 раза содержании дсРНК, чем в ридостине имеет сопоставимые показатели фагоцитоз-стимулирующей и интерферониндуцирующей активности.

Новые препараты на основе дсРНК обладают выраженными профилактическими свойствами при инфекционных болезнях поросят.

Комплекс дсРНК-ПВП способствует повышению терапевтической и лечебно-профилактической эффективности антибактериальных препаратов.

Получены два патента на изобретения: Патент № 2172631 «Индукторы интерферона пролонгированного действия»; Патент № 2215781 «Питательная среда для культивирования киллерных дрожжей БассИаготусез сегеу181ае»; и

Положительное решение о выдаче патента на изобретение «Способ лечения и профилактики желудочно-кишечных инфекционных болезней поросят в условиях промышленного свиноводства» по заявке № 2004111 060/14 (011839) от 30 03 2004.

Практическая значимость работы

1. Разработанный состав среды, позволил усовершенствовать технологию производства биомассы киллерных дрожжей 8ассЬаготусез сегеУ181ае и внедрен в производство в ООО «Диафарм» (г. Бердск, Новосибирской области).

2. Разработанный способ дезинтеграции дрожжей внедрен в промышленное производство получения дсРНК из киллерных штаммов дрожжей 8ассЬаготусез сегеу1з1ае в ООО «Диафарм» и позволил более полно извлекать целевую фракцию нуклеотидного материала при меньших энергозатратах.

3. Композиции дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ могут быть рекомендованы для создания на их основе новых форм индукторов дсРНК киллерных дрожжей ЗассИаготусеБ сегеу1з1ае для применения в ветеринарии, обладающих пролонгированным действием.

4. Разработан способ лечения и профилактики желудочно-кишечных болезней поросят в условиях промышленного свиноводства и рекомендован для использования в хозяйствах. Методические рекомендации «Иммуномодуляторы нуклеиновой природы в профилактике болезней поросят» утверждены Ученым советом ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН (протокол № 1 от 17января 2006г) и подсекцией «Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока» отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии (протокол № 1 от «17» января 2006г.). На защиту выносится:

- Состав среды для культивирования дрожжей ЗассИаготусеБ сегеу!з5ае в промышленных масштабах.

- Способ разрушения дрожжей ЗассЬагошусез сегеУ1з1ае газодинамическим методом дезинтеграции в модернизированной вихревой мельнице.

- Состав новых препаратов дсРНК и различных полимеров, данные о физико-химических, структурных и биологических свойствах препаратов.

- Результаты профилактической и терапевтической эффективности новых форм индукторов интерферонов при инфекционных болезнях поросят.

Апробация работы

Основные положения, выводы и практические предложения, изложенные в диссертации, одобрены на межвузовском совещании ученых Института медицинской биотехнологии ГНЦ ВБ «Вектор» и ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН 2 декабря 2005г.

Материалы были доложены:

IIIV Международная конференция и дискуссионный научный клуб Новые информационные технологии в медицине и экологии - Украина. Крым. Гурзуф.2000 - с. 105-106.

IX Международная конференция и дискуссионный научный клуб Новые информационные технологии в медицине и экологии - Украина. Крым. Ялта-Гурзуф.2001-с.173.

Российско-Канадский коллоквиум ISTC (МНТЦ) Canadian biological sciences colloquium. Moscow, 15-17 September 2004, p. 268-273.

Публикации результатов исследования

По теме диссертации опубликовано 11 научных работ. Получено 2 патента на изобретения. Патент № 2172631 «Индукторы интерферона пролонгированного действия»; Патент № 2215781 «Питательная среда для культивирования киллерных дрожжей Saccharomyces cerevisiae»; и

Положительное решение о выдаче патента на изобретение «Способ лечения и профилактики желудочно-кишечных инфекционных болезней поросят в условиях промышленного свиноводства» по заявке № 2004111 060/14(011839) от 30 03 2004.

Структура и объем работы

Диссертация изложена на 135 страницах и включает: введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение результатов исследований, выводы, практические предложения, список литературы и приложения. Работа иллюстрирована 22 таблицами и 9 рисунками. Список литературы содержит 173 источника, из них 51 - зарубежных авторов.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Биотехнологические подходы к разработке препаратов дсРНК как потенциальных противоинфекционных средств"

5. ВЫВОДЫ

1. Усовершенствована технология производства биомассы киллерных дрожжей ЗассИаготусеБ сегеу1Б1ае путем замены источника аминного азота из дорогостоящего пептона на автолизат пекарских дрожжей и источника углерода из нестандартизуемого источника - мелассы - на сахар. Это позволило повысить содержание дсРНК в 1 кг дрожжей более, чем в 3 раза, по сравнению с содержанием дсРНК в биомассе, выращенной на среде с мелассой и пептоном в промышленном масштабе. Себестоимость производимой биомассы снижается более, чем в 10 раз

2. Использование модифицированной газодинамической вихревой мельницы для дезинтеграции микроорганизмов дрожжей в жидком потоке привело увеличению выхода целевого продукта на 20-30 % и уменьшению энергозатрат в 2 раза.

3. Использование приемов физической иммобилизации дсРНК из дрожжей ЗассИаготусеБ сегеу1з1ае с полисахаридами (ГТГ) и с синтетическими высокомолекулярными полимерами (ПВП) позволило создать новые препараты пролонгированного, противоинфекционного и иммуномодулирующего действия.

4. Установлено влияние ПВП и ПГ на физико-химические, структурные и биологические свойства дсРНК, что выразилось в следующем:

- повышалась устойчивость дсРНК к действию нуклеаз крови человека композиционных препаратов дсРНК с поливинилпирролидоном и полиглюкином на 20-30%, 10-15% соответственно

- использованные полимеры повышали уровень растворимости препаратов, причем скорость растворения препарата зависела от вида полимера.

5. ПВП и ПГ в составе композиционных препаратов не изменяет первичную, вторичную и конформационную структуру дсРНК.

6. Комплекс дсРНК-ПВП до 5 суток сохраняет высокую( 150,1%) фагоцитозстимулирующую активность.

Высокомолекулярный ПВП, введенный в композиции с дсРНК, приводит к усилению интерферониндуцирующей активности комплексного препарата через 24 ч после введения опытным животным в 2,0 раза выше по сравнению с препаратом ридостин и в 2,5 раза через 48 ч при меньшем в 3-4 раза содержании дсРНК, чем в ридостине.

Комплекс дсРНК-ПГ сохраняет высокую интерферониндуцирующую и фагоцитозстимулирующую активность при меньшем (в 2 раза) содержании дсРНК, чем в ридостине.

7. Препарат дсРНК-ПВП обладает выраженными профилактическими свойствами при факторных болезнях поросят, повышая их резистентность, продуктивность и уменьшая падеж. Комплекс дсРНК-ПВП способствует повышению терапевтической эффективности антибактериального препарата тиамутин и лечебно-профилактической эффективности левотетрасульфина в условиях широкого производственного эксперимента.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Результаты, полученные при усовершенствовании биотехнологических стадий процесса культивирования биомассы киллерных штаммов дрожжей БассЬаготусез сегеу1з1ае и стадии дезинтеграции дрожжей, внедрены в ООО «Диафарм» и вошли в Промышленные регламенты производства ПР №103.0063.03

Результата научных исследований разработки состава композиций дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ рекомендуется использовать для разработки схем применения препаратов и составления проектов Фармакопейных статей предприятия на лекарственные формы препаратов.

Разработанные и апробированные схемы применения препаратов используются на свинокомплексах ОАО «Кудряшовское» Новосибирской области и ЗАО «Сибирская аграрная группа» Томской области и могут быть использованы для разработки «Наставления по применению».

Для профилактики факторных инфекционных болезней поросят рекомендуется применять препараты дсРНК-ПВП и дсРНК-ПГ поросятам в критические периоды жизни (в зависимости от сроков отъема) на 15, 25, 45 или 30, 38 дни в дозе 0,3 мг/кг.

Для терапии факторных инфекционных болезней поросят рекомендуется сочетанное применение препарата дсРНК-ПВП в дозе 0,3 мг/кг однократно и антибиотиков (10 %-ный раствор тиамутина в дозе 10 мг/кг или левотетросульфин в дозе 0,5 мг/кг) или дсРНК-ПГ в дозе 0,3 мг/кг трехкратно.

Основные положения, полученные автором в процессе работы, вошли в методические рекомендации « Иммуномодуляторы нуклеиновой природы в профилактике болезней поросят», рассмотрены и утвержденны ученым советом ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН (протокол № 1 от «17» января 2006 г) и подсекцией «Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока» отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии (протокол № 1 от «17» января 2006 г).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ у

Как показывает анализ литературных данных, в фармацевтической науке продолжает развиваться направление на создание новых препаратов содержащих различные компоненты, причем компоненты подбираются таким образом, чтобы повысилась биодоступность действующего начала, его специфическая активность, снизилась токсичность. В ряде случаев, этот подход позволяет снизить дозу активного в фармакологическом отношении компонента. Все это может быть отнесено и к индукторам интерферона различной структуры и происхождения, которые в настоящее время уже находят применение как видонеспецифичные препараты, обладающие противоинфекционным и иммуномодулирующим действием. В связи с этим были получены препараты, содержащие индуктор интерферона дсРНК Saccharomyces cerevisiae и полимеры - полиглюкин и поливинилпирролидон. Разработанный способ получения позволил получить стандартные образцы и исследовать их физико-химические свойства. Показано, что при хранении и течение 2 лет основные характеристики препарата не изменяются. При анализе межмолекулярных взаимодействий между полимером и дсРНК было обнаружено, что в композиции дсРНК - ПВП образуются межмолекулярные валентные взаимодействия. С помощью биологического тестирования подобраны концентрации дсРНК и полимеров в композиционных препаратах, обеспечивающих противовирусную, фагоцитозстимулирующую и интерферониндуцирующую активность.

Следует отметить, что такие эффекты, как интерферониндукция, фагоцитоз имели более длительный характер у препарата с синтетическим

115 полимером ПВП, чем при действии индуктора интерферона ридостина и зависели от вида, молекулярного веса используемого полимера.

Дозы дсРНК в препаратах с полимерными носителями были существенно меньше, чем при использовании референс препарата -ридостина.

Таким образом, оптимизация технологического процесса получения дсРНК позволили разработать экономически рентабельную технологию получения дсРНК в промышленных масштабах. Использование метода физической иммобилизации дсРНК с полимерами привело к созданию усовершенствованных препаратов индукторов интерферона дсРНК. Исследования подтверждают, что выбранные подходы к получению композиционных препаратов дсРНК с выбранными полимерами обеспечивают сохранение физико-химических, биологических свойств дсРНК, выявленных проведенными исследованиями индуктора интерферона.

Показано, что композиции обладают таким же спектром биологической активности, как и ридостин, но при меньшем содержании дсРНК. Препараты отнесены к группе малотоксичных препаратов. Они проявляют выраженную профилактическую и лечебно-профилактическую эффективность при инфекционных заболеваниях у поросят в условиях широкого производственного опыта.

Однако механизмы действия препаратов требуют дальнейших исследований, что поможет уточнить дозы, схемы применения и выбрать наиболее эффективную лекарственную форму индукторов интерферона на основе природной дсРНК, как противоинфекционного препарата.

 
 

Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2006 года, Левагина, Галина Михайловна

1. Джупина С.И. Факторные инфекционные болезни животных. Ветеринария. -2001.-№3.- С. 6-9.

2. Пустовар А.Я., Скобельцина Е.С., Гайдамака A.B. Показатели Т-системы иммунитета у поросят при раннем отъеме // Ветеринария.-1985.-№8. -С.-35-6.

3. Патент РФ № 2083221. Индуктор интерферона ридостин.

4. Мозгис В.Я., Андерсон З.Э. и др. Применение индуктора интерферона для профилактики и лечения острых вирусных заболеваний телят// Изв. АН ЛатвССР. -1986. № 11.- С. 108-110.

5. Бояринцев JI.E. Защитное действие дсРНК при болезни Ауэски.//Изучение индуктора интерферона двуспиральной РНК в различных биологических системах - Рига, Зинатне ,1989 - С.59-67.

6. Буйкис А.Х. Опыт получения биомассы бактерий Escherichia coli, содержащей дсРНК//в кн. Изучение индуктора интерферона- двуспиральной РНК в различных биологических системах. Рига «Зинатне», 1989, С 22-29.

7. Дубатолова Т.Д.,. Дужак А. Б, Костомаха А.Н., Масычева В.И. и др Целесообразность оценки мутагенной активности природных индукторов интерферона на основе дсРНК// Биотехнология.-1989.-Т.5, № 3.- С. 381-383.

8. Опытно-промышленный регламент на производство натриевой соли двуспиральной рибонуклеиновой кислоты. /ОПР 1172-2-98.

9. Соколова Т.М., Антонов А.И. Фосфорилирование белков в цитоплазматической и ядерной фракциях человеческих клеток, обработанных двуспиральной РНК и человеческими рекомбинантными интерферонами типа I. //Мол.Ген.Микробиол. Вирусол. 1991. № 13.-С.8-13;

10. Заявка 2476488 Франция заявл.25.02. 80, № 8004040. Levy В.

11. Амитина H.H., Тазулахова Э Б., Ершов Ф.И. Эффект сочетанного применения декстран-сульфата с двунитчатыми РНК в отношении продукции интерферона//Антибиотики и медицинская биотехнология, 1985.-№1.С.16-19.

12. Карпович Л.Г., Блоха B.B., Калашникова T.B. и др. Показатели функциональной активности лимфоцитов больных рецидивирующим кожно-генитальным герпесом в процессе лечения герпетической вакциной.// Вопросы Вирусологии.-1986-№ 2-С. 200-204.

13. Кольцов В. Д., Краснова JI.B., Баландин И.Г. и др. Интерферониндуцирующая активность полиИ-полиЦ и его комплексов с поликатионами и их устойчивость к ферментативному разрушению//Бюл. Экспериментальной биологии и медицины. -1983 -№9-С.74-77

14. Фомина А.Н., Николаева О.В, Мощик К.В., Мясненко A.M. Сравнительное изучение биологической активности индукторов интнрферона различной природы при экспериментальных вирусных инфекциях // Индукторы Интерферона -М.-, 1982-С. 116-121.

15. Осидзе Д.В., Селиванов А.В., Груздев К.Н. Перспективы применения индукторов интерферона в ветеринарии //Тез. Докл. 10 Регион. Симпозиум соц. Стран по интерферону. Юрмала, 5-10 сент.М.; Рига, 1988.-С. 94-95

16. Фельдмане Г.Я.,. Дук А.Э, Буйкис А.Х и др. Изучение некоторых биологических свойств природного индуктора интерферона- двуспиральной РНК // Индукторы Интерферона. Рига, Зинатне, 1981 -С.36-42.

17. Ершов Ф. И., Новохатский А. С., Интерферон и его индукторы. М.: Медицина, 1980-С. 6.

18. Lampson GP, Tytell АА, Field АК, Nemes MM, Hilleman MR. Influence of polyamines on induction of interferon and resistance to viruses by synthetic polynucleotides. Proc Soc Exp Biol Med. 1969 Oct; 132(l):212-8. 21. Field AK,

19. Lampson GP, Tytell AA, Nemes MM, Hilleman MR. Inducers of interferon and host resistance, IV. Double-stranded replicative form RNA (MS2-Ff-RNA) from E. coli infected with MS2 coliphage. Proc Natl Acad Sci USA. 1967 Nov;58(5): 2102-8

20. Turner W, Chan SP, Chirigos MA. Stimulation of humoral and cellular antibody formation in mice by poly Ir:Cr. Proc Soc Exp Biol Med. 1970 Jan;133(l):334-8.

21. Фадина В.А., Разворотнкв В. А. Изучение иммуностимулирующего действия препарата дрожжевой дсРНК на клеточный иммунитет у мышей // Антибиотики и химиотерапия.-1988.-Т. 38.-С. 527-529

22. Прудников С.И. Оптимизация системы противоэпизоотических мероприятий в промышленном свиноводстве. Автореф. На соискан. ст. доктора веет, наук., Новосибирск, 1996 44 с.

23. WarnerRC. Studies on polynucleotides synthesized by polynucleotide phosphorylase. III. Interaction and ultraviolet absorption. J Biol Chem. 1957 Dec;229 (2):711-24.

24. Steiner RF, Beers RF /Jr. Polynucleotides. VII. Interaction of polyriboadenylic and polyribouridylic acids. Biochim Biophys Acta. 1959 Jun;33 (2):470-81.

25. Rich A. Formation of two- and three-stranded helical molecules by polyinosinic acid and polyadenylic acid. Nature. 1958 Feb 22;181(4608):521-5.

26. FRESCO JR, ALBERTS BM, DOTY P. Some molecular details of the secondary structure of ribonucleic acid. Nature. 1960 Oct 8;188:98-101.

27. RichA. The molecular structure of polyinosinic acid. Biochim Biophys Acta. 1958 Sep;29(3):502-9.

28. Davies DR, CrickFH, Watson JD. The molecular structure of polyadenylic acid. JMol Biol. 1961 Feb;3:71-86.

29. Miles HT. Infrared spectra of the three-stranded helices formed by polyurdylic acid with polyadenylic acid and with tetraadenylic acid. Biochim Biophys Acta. 1960 Dec 4; 45:196-8.

30. DotyP, Boetker H, Fresco JR, HallBD, Haselkorn R. Configurational studies of polynucleotides and ribonucleic acid. Ann N Y Acad Sci. 1959 Sep 4;81:693-708. Doty P., Reviews of Modern Physics, 31, p. 107, 1959.

31. MILES HT. Quantitative infrared spectra in D20 of some nucleosides, nucleotides, and polynucleotides; a new measure of polynucleotide interaction. Biochim Biophys Acta. 1958 Nov;30(2):324-8.

32. De Clercq E, Merigan TC. Current concepts of interferon and interferon induction. Annu Rev Med. 1970;21:17-46

33. De Clerk E., Tckstein F., Merigan T.C «Ann N Y Acad.Sci», 1970,173, 444.

34. De Clercq E, Wells RD, Grant RC, Merigan TC. Thermal activation of the antiviral activity of synthetic double-stranded polyribonucleotides. J Mol Biol. 1971 Feb 28;56(1):83-100.

35. De Clercq E, Hattori M, Ikehara M. Antiviral activity of polynucleotides: copolymers of inosinic acid and N2-dimethylguanylic of 2-methylthioinosinic. Nucleic Acids Res. 1975 Jan;2(l):121-9.

36. De Clercq E. Synthetic interferon inducers. Top Curr Chem. 1974;52:173-208.

37. Johnston MI, Stollar BD, Torrence PF, Witkop B. Structural features of double-stranded polyribonucleotides required for immunological specificity and interferon induction. Proc Natl Acad Sci USA. 1975 Nov;72(l l):4564-8.

38. Цитотоксичность Интерферониндуцирующая активность модифицированных Pt (11) комплексов поли И • поли (Ц) Н.Н. Носик, А.И. Закабунин, С.А. Козлов и др./ Индукторы интерферона. М. - 1982. - С. 56-59.

39. Ершов Ф.И., Жданов В.М., Клинически перспективные индукторы интерферона// Индукторы интерферона. М., 1982. - С. 7-12

40. Inglot AD. A rich source of replicative ribonucleic acid of Sindbis virus—a potent interferon inducer. Arch Immunol Ther Exp (Warsz). 1970;18(4):401-8.

41. Lago BD, Birnbaum J, Demain AL. Fermentation process for double-stranded ribonucleic acid, an interferon inducer. Appl Microbiol. 1972 Sep;24(3):430-6.

42. Doskocil J, Fuchsberger N, Vetrak J, Lackovic V, Borecky L. Double-stranded f 2 phage RNA as interferon inducer. Acta Virol. 1971 Nov;15(6):523.

43. Ложа В.П., Мелдрайс JI.A., Винкело P.A., Фелдмане Г.Я. «Выделение и фракционирование РНК бактерий Escherichia coli, инфицированных РНК-геномными бактериофагами в кн. Индукция и действие интерферона. Рига., 1975, с. 44-58;

44. Ложа В.П., Умбрашко Ю.Б., Муциниеце З.А. Методологические аспекты получения двуспиральной РНК в кн. Индукторы интерферона,1. Рига, 1981, с.30-35.

45. De Clercq Е, De Somer P. Mechanism of the antiviral activity resulting from sequential administration of complementary homopolyribonucleotides to cell cultures. J Virol. 1972 May;9(5):721-31.

46. Gajdosova E, Doskocil J, Mayer V. Dependence of antiviral activity on molecular weight in an interferon stimulator of the natural double-stranded RNA type. Acta Virol. 1973 May; 17(3): 196-202.

47. Nordlund JJ, Wolff SM, Levy HB. Inhibition of biologic activity of poly I: poly С by human plasma. Proc Soc Exp Biol Med. 1970 Feb;133(2):439-44.49

48. Fuchsberger N, Vetrak J, Lackovic V, Borecky L, Doskocil J. Evaluationof the Czechoslovak double-stranded RNA preparation as inducer of interferon in model experiments. Acta Virol. 1972 Nov;16(6):466-76.

49. Умбрашко Ю.Б. Зависимость функциональных свойств природной двуспиральной РНК от ее структурной организации//Вирусы человека и животных: Тез. Докл. Конф. Мол. Ученых. Рига: Зинайне, 1984. - С. 105.

50. Milch Н, Fornosi F. Bacteriophage contamination in live poliovirus vaccine. J Biol Stand. 1975;3(3):307-10

51. AC № 1197462 СССР «Способ получения двуспиральных РНК из микроорганизмов», Дужак А.Б., Лобова Н.Н., Подгорный В.Ф./Специальное конструкторско-технологическое бюро биологически активных веществ. № 3493453; Заяв от 24.09.1982.

52. Натриевая соль двуспиральной рибонуклеиновой кислотф ВФС 42-264395. Регистрационное удостоверение 96/50/3/

53. Дужак А.Б., Лохов С.Г., Закабунин А.И. и др.Изучение труктурной организации двуспиральной РНК киллерных дрожжей Saccharomyces cerevisiaeметодом термической денатурации.//Молекулярная биология. 1985. - Т. 19, вып. 6.-С. 1579-1584.

54. ФелдманеГ.Я.,. Умбрашко Ю.Б., Буйкис Ф.А.Х. и др. Физико-химические и биологические свойства двуспиральной РНК индуктора интнрферонаУ/Вопросы вирусологии,-1984 -Т.29 вып. №4-С.463-467

55. Фадина В.А., Разворотнев В.А. Изучение иммуностимулирующего действия препарата дсРНК на клеточный иммунитет у мышей// Антибиотики и химиотерапия.-1988.-Т.ЗЗ, № 7.-С. 527-529.

56. Веревкина К.Н., Даниленко Е.Д., Костомаха А.Н и др. Изменение показателей неспецифической защиты организма мышей при введении двуспиральной РНК из дрожжей Saccharomyces cerevisiae // Вопросы вирусологии.-1989.-Т. 34,№ 1.- С. 69-72.

57. Дужак А.Б., Костомаха А.Н., Лобова H.H., Подгорный В.Ф., Носик H.H., Ершов Ф.И. Антибиотики и медицина// Биотехнология. 1985. - Т. 30, № 1. - С. 19-21

58. Умбрашко Ю. Б. ,Муцениеце 3. А. Выделение и очиска индуктора интерферона- двуцепочечной РНК// Вирусы человека и животных: Тез. докл. конф. мол. ученых Рига: Зинатне,1981.- С. 63.

59. Носик H. Н., Ершов Ф. И. Свойства двуспиральной РНК как индуктора интерферона // Вопросы вирусологии.-1984.-Т. 29, № 5.- С. 599-603

60. Interferon Inducers: Applications in Fish Disease Control. Yuriy S Alikin, Valentina I. Mfsycheva., And Igor S. Shelkunov// Recent Advtnces in Marine Biotechnology.-2001 V.5.- P. 357-3777

61. Носик H.H., Ершов Ф.И., Николаева О.В. и др. Интерферониндуцирующая и противовирусная активность дсРНК дрожжевого происхождения.// Вопросы вирусологии.-l984.-Т. 29, № 6.- С. 718-720.

62. Кнороз М.Ю., Попова О.М., Давыдова A.A. и др. Сравнительное изучение противовирусной активности природных двуспиральных РНК при экспериментальном клещевом энцефалите.// Вопросы вирусологии.-1985.-Т. 30 №6.- С. 697-700.

63. Игнатьев Г. М., Грибенча C.B., Тазулахова Э. Б.и др. Противовирусная активность дрожжевой дсРНК при экспериментальной инфекции, обусловленной острым энцефаломиелитом человека.//Вопр. Вирусологии.-1988.-Т.ЗЗ, № 2.-С. 251-253.

64. Донченко A.C., Аликин Ю.С., Донченко B.C., НаймановД.Н. Индукторы интерферона и перспективы их применения в медицине и ветеринарии: Обзор лит./ВАСХНИЛ. Сиб. отделение ИЭВС и ДВ,НПО «Вектор».НИКТИ БАВ. Новосибирск, 1990- 35-50

65. Hart G., Zamtcnick P.C.,Jin-Yung Tang et al// Proc. Natl.Acad. Sci. USA.2000.vol.97., Nl.p.p.418-423

66. Disney Vd, Haidaris CG, TumerDH// Proc. Natl. Acad. Sci. USA.2003.vol. 100., N4-.p.p.1530-1534

67. Сидельковская Ф.П. Химия N- винилпирролидона и его полимеров. М., 1970. С.- 47-50

68. Платэ Н.А., Васильев А.Е. Физиологически активные полимеры. Изд-во «Химия», М, 1986.- С. 12-15.

69. Кирш Ю.Э, Соколова JI.B. Поливинилпирролидон и лекарственные композиции на его основе, способы их получения//Химико- фармацевтический Ж. 1983. - Т. 17, № 6. - С. 711-721.

70. Molyneux P., Ahmed /G-Kolloid-Z. 1973. - Bd 251, S 310-328

71. Жорев И.С., Жорев В.И., Сов. Медицина. 1974. - № 10. - С. 4952, 1975, №7.-С. 62-65.

72. Burkhanov SA, Shertaev MM, Saatov TS. Lipid composition of immunocompetent organs of tumor-bearing rats. Biokhimia. 1986 Jun;51(6):970-3.

73. Boni LT, Stewart TP, Alderfer JL, Hui SW. Lipid-polyethylene glycol interactions: I. Induction of fusion between liposomes. J Membr Biol. 1981 ;62(1-2):65-70.

74. Садыков A.C., Ершов Ф. И., Новохатский А.С. и др./в кн. Индукторы Интерферона. Ташкент.- 1978: изд-во Фан. С.212.

75. Мухамедиев М., Ауелбеков С.А., Шарипова З.Т. и др.Полимерные комплексы госсипола и их противовирусная активность.// Хим.-фармац. Ж. -1986.-№4.-С. 450.

76. Кирш Ю.Э., Соколова JI.B., Поливинилпирролидон и лекарственные композиции на его основе, способы из получения(Обзор)//Хим.-фармац. Ж.-1983.-№6.-С. 711-21.

77. Лекарственные средства, применяемые в медицинской практике в СССР/Под ред. М.А. Клюева//М.: Медицина. - 1989. - С. 512.

78. Соколова Т.М., Антонов А.И. Фосфорилирование белков в цитоплазматической и ядерной фракциях человеческих клеток, обработанных двуспиральной РНК и человеческими рекомбинантными интерферонами типа I. //Мол.Ген.Микробиол. Вирусол. 1991. - № 13. - С.8-13;

79. Chang RS, Tabba HD, Не YS, Smith KM. Dextran sulfate as an inhibitor against the human immunodeficiency virus. Proc Soc Exp Biol Med. 1988 Dec;189(3):304-9.

80. Ершов Ф.И., Носик H.H., Тазулахова Э.Б. Продукция интерферона при использовании индукторов разной природы// Индукторы интерферона,-М., 1982.-С 19-24.

81. Ершов Ф.И., Мощик КВ., Поверенный A.M., и др. Индукция выработки ИФН декстрансульфатом.//Бюл. Эксперим. Биол. Мед.-1982 №8 - С.76-77, .

82. Полиглюкин для инъекций ФС 42-3621-98.

83. Березин И.В., Клячко Н.Л., Левашов А.В. и др., Иммобилизованные ферменты//Биотехнология. Уч. Пособие. Кн.7. М.: Высшая школа.-1987.- С.159.

84. Н.Н. Носик, Э.Б. Тазулахова, A.M. Саийткулов Закономерности продукции интерферона при использовании индукторов разной природы и разных схем их применения./ Индукторы интерферона. М. 1982.-СЛ 9-24.

85. RflterZ, Klein S., Taylor M. Encapsulation of interferons in liposonmes//8 th lnt.Congr. Immunolologov. Budapest, Fug,23-28,1992: Fpstr.- Budapest, 1992 P. 189.

86. Milhaund P.G., Machy P., tt ak/ Fre and liposome encapsulated double stranded RNASs inducts of interferon. J.Interferon Rg. 1991-vol. 1 l,N5-P.261-5.

87. Григорьян C.C., Симонов A.H., Иванова A.M., Ершов Ф.И. Противовирусная активность амиксина, заключенного в липосомы//Вопр. Вирусологии 1988. Т. 33. С.302-5.

88. Препараты на основе конъюгатов полимеров и интерлейкин2: Пат.4902502 США, МКИ4 А 61 К.

89. Будкер В.Г., Вахрушева Т.Е., Киселева Е.В. и др.Получение липосом с лекарственными препаратами.//Хим. Фарм. Журнал-1987-№ 3- С. 347- 52

90. Ершов Ф.И., Мощик КВ., Поверенный A.M., и др. Индукция выработки ИФН декстрансульфатом.//Бюл. Эксперим. Биол. Мед.-1982 №8 - С.76-77.

91. Соколова Т.М., Фатхутдинова Н.Г., Носик P.P. Эффект двуспиральной РНК и интерферонов типа I на репродукцию цитомегаловируса в фибробластах человека. //Бюл. эксперим. биол. мед.- 1991-№ 7 С. 80-88.

92. Rosztoczy I, Siroki О. Priming of interferon production in human embryo fibroblasts by alpha, beta and gamma interferons. Acta Microbiol Hung. 1985;32(4):351-6.

93. Тимофеев И.В., Чаплыгина С. P., Зорин B.B и др. Сравнительное изучение индукторов интерферона, полученных из природных источников// Антибиотики и мед. биотехнол.- 1987 -Т.32, № 2 -С. 144- 7.

94. Нодзима Сигэо, Кимура Тэцуо, Матида Харухико и др. // Заявка 1186818 Япония// Кокай токке кохо. 1989 Сер. 3- 63 С. 92-97

95. Levy В. // Заявка 2476488 Франция Заявл. 25.02.80, № 8004040.

96. Granados EN, Dawidzik J, O'Malley J, McGarry M, Bello J. Poly ICL-CM dextran: an interferon inducer of reduced toxicity. J Interferon Res. 1984 Spring;4(2): 155-60.

97. Hyden H, Holmberg K. A new procedure to immobilize polyriboinosinic-polyribocytidylic acid (poly I:C) on the surface of polymethylmethacrylate and the use of poly I:C in clinical hemoperfusion. Arzneimittelforschung. 1986;36(1):120

98. Ю.Тазулахова Э.Б. Клинически перспективные индукторы интерферона//Бюл. для врачей и медиков.-М. Изд. Фармарус:№ 2 (10).-1996.-С. 45-55.

99. Опытно-Промышленный Регламент па производство биомассы дрожжей Saccharomyces cerevisiae Y-448. ОГТР 89

100. Типовая Технологическая Инструкция по определению глюкозы методом Бертрана-Шоорля. ТТИ 10.10.12-89

101. Типовая Технологическая Инструкция по определению аминного азота методом формольного титрования. ТТИ 10.10.16-94.

102. А.С.1197462 СССР. Дужак А.Б., Лобова Н.Н., Подгорный В.Ф. Способ получения двуспиральных РНК из микроорганизмов.// СКТББАВ,- № 3493453. Заявл.24.09.83.

103. ФСП-42-0197076901 Натриевая соль двуспиральной рибонуклеиновой кислоты

104. Спирин А.С. Спектрофотометрическое определение суммарного количества нуклеиновых кислот. / /Биохимия.-1958, т.23, №5.-С.656 662.

105. Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии Молекулярное клонирование. М.: Мир, 1984.-С. 146.

106. Lowry ОН, Roserbrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951 Nov;193(l):265

107. ВФС 42-1920-89 Кислота рибонуклеиновая -стандартный образец.

108. Гос.Фармакопея 11 изд. вып.1.

109. ФС 42-344 ВС-90. Фармакопейная статья. Физико-химические, химические, физические и иммунохимические методы контроля медицинских иммунобиологических препаратов. Минздрав СССР.-64 с.

110. Rjweley The role of opsonins in non-specific immunity. J Exp Med. 1960 Jan 1 ;111:137-44.

111. Прозоровский K.B., Прозоровская М.П., Демченко B.M. и др. //Фармакол. токсикол.-1978, №4.-С.497 502.

112. Лакин Г.Ф. Биометрия.-М: высшая школа, 1973-434с.

113. Нестерова Г.Ф. Фундаментальные и прикладные аспекты изучения вирусоподобных плазмид дрожжей Saccharomyces // Генетика.- 1993. -Т.29, №4. -С.581-60.

114. Амосов O.A., Черный Д.И., Любченко Ю.Л., Дужак А.Б., Лобова H.H. Сравнительный анализ строения двуспиральной РНК киллерных штаммов Sacchar. cereviseae. //Молекулярная биология.- 1988.- Т.22. вып.1. - С.224-229.

115. Авторское свидетельство СССЗ № 1730425, кл. C12N1/18,1990

116. Производство хлебопекарских дрожжей» -Справочник. М.-Агропромиздат. - 1990. - С. 45-57.

117. Фихте Б.А., Ушаков И.М., Гуревич Г.А., Полпудников B.C. Дезинтегратор для микроорганизмов ФУГ-1// АС СССР № 514627.

118. Аман С.О., Гольдштик М.А., Лебедев A.B., Правдина М.Х. Низкоскоростное ударное измельчение.//Изв. СО АН СССР. 1989. -Сер.Техн.Наук. - Вып.6. - С.51-57;

119. Фадина В. А. , Масычева В.И., Дубатолова Т.Д //Изучение активности макрофагов в процессе интерферонообразования // в ст. Современные аспектыприменения интерферонов и других иммуномодуляторов //М.,1990 г. //стр. 130.

120. Тимковский A.JI. Структурная организация полинуклнотидных индукторов интенрферона-В кн.: Индукторы интерферона. Рига: Зинатне, 1981, с.52-62.

121. Итоги науки и техники, сер. Вирусология т. 6 с 126-149; Индукторы интерферона. Рига. «Зинатне», 1981, с52-65

122. Воейков B.JI., Решетов П.Д., Набиев И.Р.и др. Физико-химические методы исследования биополимеров и низкомолекулярных биорегуляторов. М.изд. Наука. 1992.-С.188-198.137. Там же С.168-175

123. Елизарова С.М., Преображенский A.A. Выделение РНК-связывающих белков из экстрактов животных клеток с помощью аффинной хроматографии. / Биохимические методы//М.: Наука. 1980. - С. 43-47.

124. Smith I, Smith Н, Pifko S. Preparation and use of RNA-cellulose columns. Anal Biochem. 1972 Jul; 48(l):27-32.

125. Авторское свидетельство СССР № 1730140, кл. С 12 N 1/18, 1990.

126. Авторское свидетельство СССР № 95295, кл. С 12 N 1/16, 1980.

127. Захаров А.И., Кожин С.А., Кожина Т.Н., Федорова И.В. Сборник методик по генетике дрожжей сахаромицетов. Л.: Наука, 1984.

128. Авторское свидетельство СССР № 1310425, кл. С 12 N 1/16, 1983.

129. Семенов С.М., Лабораторные среды для актиномицетов и грибов. -Справочник. М.,1990.

130. Захаров А.И., Кожин С.А., Кожина Т.Н., Федорова И.В. Сборник методик по генегике дрожжей сахаромицетов. Л.: Наука, 1984.

131. Новиковская С.С., Шишацкий Ю.И. Производство хлебопекарных дрожжей Справочник. М.: Агропромиздат, 1990.

132. Новаковская С.С. «Справочник технология дрожжевого производства». -М. Пищевая промышленность. - 1993.

133. Семихатова Н.М. «Хлебопекарные дрожжи». М. - Пищевая промышленность. -1980.

134. Дезинтеграция микроорганизмов. Материалы всесоюзной конференции. Сборник. Пущино-на-Оке. - 1972. - С 324.

135. ФихтеБ.А., Материалы всесоюзной конф. «Дезинтеграция микроорганизмов», Пущино на Оке.1972.-С.5-15

136. Kydryvtsev A.A., Nikitin V.A., FikhteD.F. «Eur. J. Appl.Microbiol». 1976. v.2.N 4.- P285-96.

137. РоузЭ., Химическая микробиология, Мир, М. 1989г.-С.13

138. Hughes D.E., Wimpennyv W. «Methods in micrjbiology». 1971, v58.-P. 1-54

139. Аман C.O., Гольдштик M.A., ЛебедевА.В., Правдина М.Х. Способ вихревого измельчения и устройство для его осуществления// Патент РФ №2057588. 1996.

140. Патент РФ № 2084269, кл В 01 Д47/06,1997. 157 Патент РФ № 2057588, кл В02 С 19/06,1996.

141. Авторское свидетельство СССР А. С. СССР № 1310425, кл. С 12 N 1/16,89

142. Marshall JJ. Preparation and characterization of a dextran-amylase conjugate. Carbohydr Res. 1976 Jul; 49:389-98.

143. Ringsdorf H.- J. Polimer Sci. Polimer Symp., 1975, N51, p. 135-153.

144. Abuchowski A, van Es T, Palczuk NC, Davis FF. Alteration of immunological properties of bovine serum albumin by covalent attachment of polyethylene glycol. J Biol Chem. 1977 Jun 10; 252(11):3578-81.

145. Abuchowski A, van Es T, Palczuk NC, Davis FF. Alteration of immunological properties of bovine serum albumin by covalent attachment of polyethylene glycol. J Biol Chem. 1977 Jun 10; 252(11):3578-81.

146. Масычева В.И., Даниленко Е.Д., Шкиль H.H., Костина Г.А. и др. Влияние композиций двуспиральных РНК и гиалуроновой кислоты на показатели неспецифической устойчивости мышей//Вопр. Вирусологии.- 3-2003. № 5.-С.26-9.

147. Масычева В.И., Даниленко Е.Д., Волкова И.П.и др. Разработка мазевой формы индуктора интерферона из дрожжей Saccharomyces cerevisiae: Сб.научн.тр. сотр. НИКТИ БАВ.- Бердск.

148. Вирник А.Д.,Хомяков К.П., Скокова И.Ф.-Успехи химии, 1995, т. 44.-С.1280-1307.

149. Reske-Nielsen Е. Bojsen-Moller., et.al .- Acta paph. Microbial. Scand., 1996, v 84A. P- 297-05.

150. Тимковский А.Л. Сруктурная организация полинуклнотидных индукторов интенрферона-В кн.: Индукторы интерферона. Рига.: Зинатне, 1981, с.52-62.

151. AmstrongW.W. Пат.З 2047097,1990 (Великобритания).

152. Rarpov JV, Antonenko S V, et.al. Effect of interferonogenic molecular complex of yeast RNA- tilorone on DNA, RNA and protein synthesis in vitro//Bul. Exp. Biol Med. 2001 ahr; 131(4): 382-4

153. Bulechev KE, Poryvaev VD, Ryznirov AB et. a.l An intensificaitions antivi: iid intenferon effects of ridostine (an ntenferon inducter) by cationic liposomes in vitro a l intranasal administration// Vopr. Virusol. 2003 Yul-Aug; 48(4): 45-7.