Возрастные изменения энергетического обмена в печени крыс при иммобилизационном стрессе

Захарченко, Ирина Владимировна

Диссертации по медицине → Восстановительная медицина, спортивная медицина, курортология и физиотерапия

Автореферат и диссертация по медицине (14.00.51) на тему:Возрастные изменения энергетического обмена в печени крыс при иммобилизационном стрессе

ДИССЕРТАЦИЯ

АВТОРЕФЕРАТ

Захарченко, Ирина Владимировна Санкт-Петербург 2007 г.

Ученая степень: кандидата медицинских наук

ВАК РФ: 14.00.51

Автореферат диссертации по медицине на тему Возрастные изменения энергетического обмена в печени крыс при иммобилизационном стрессе

111111111111111

□0305ТТ82

------------£ ¿1 (у| I «иг '

На правах рукописи

ЗАХАРЧЕНКО Ирина Владимировна

ВОЗРАСТНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ ЭНЕРГЕТИЧЕСКОГО ОБМЕНА В ПЕЧЕНИ КРЫС ПРИ ИММОБИЛИЗАЦИОННОМ СТРЕССЕ

14.00.53 - геронтология и гериатрия 03.00.04- биохимия

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Санкт-Петербург - 2007

Работа выполнена на кафедре анатомии и физиологии человека ГОУ ВПО «Ростовский государственный педагогический университет» ФАО

Научные руководители:

доктор биологических наук, профессор Менджерицкий Александр Маркович кандидат биологических наук, доцент Козина Людмила Семеновна

Официальные оппоненты:

доктор биологических наук Чалисова Наталия Иосифовна

доктор биологических наук Зыбина Наталия Николаевна

Ведущее учреждение: |

ГОУ ВПО «Санкт-Петербургский государственный университет» ФАО

Защита состоится_2007 г. в_часов

на заседании Диссертационного Совета Д 601.001.01 в Санкт-Петербургском Институте биорегурщии и геронтологии СЗО РАМН по адресу: 197110, Санкт-Петербург, проспект Динамо, дом 3.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Санкт-Петербургского Института биорегуляции и геронтологии СЗО РАМН (197110, Санкт-Петербург, проспект Динамо, дом 3.)

Автореферат разослан ! _2007 г.

Ученый секретарь Диссертационного Совета

кандидат биологических наук, доцент

Козина Л.С.

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. Многочисленные данные экспериментальных и клинических исследований свидетельствуют о том, что при старении происходит снижение устойчивости организма к повреждающему действию стресса [Фролькис В.В., 1988,1999; Аяисимов В.Н., 2003; Хавинсон В.Х., Анисимов В.Н., 2003; Лапин И.П., 2005; Лысенко A.B. и соавт, 2005; ; E.G. Lakkata, 1980; R.E. Pacifici, K.I.A Pavies, 1991; M. Ando et al., 1997; M. Konstandi et al., 2000]. Важное значение среди прочих причин в этом приобретают возрастные сдвиги со стороны функционирования печени [Косицкий Г.И. и соавт., 1987; Гичев Ю.П., 1990; Филиппов C.B., 2003; Рыжак Г.А. и соавт., 2004].

Известно, что в организме в позднем онтогенезе происходит изменение метаболизма ксенобиотиков. [Парамонова Г.И., 1994; Schmucker D.L. et al., 1990; Hayashi T., Miyazawa T, 1998. Le Couteur D.G, McLean A.J., 1998; Sukhodub A.L., Padalko V.l., 1999; Haouzi D.et al., 2000; Palomero J. et al., 2001]. Возникновение подобного нарушения представляет собой частное проявление возрастного снижения антитоксической функции печени. Ввиду того, что при стрессе стимулируются процессы катаболизма, сопровождающиеся усилением распада макромолекул и накоплением эндогенных токсинов в организме, это приобретает существенное значение в возрастном снижении резистентности организма к стрессу.

В онтогенезе наблюдается изменение уровня энергетического обеспечения тканей внутренних органов. Причиной этого является возрастное ограничение синтеза АТФ, обусловленное уменьшением интенсивности тканевого дыхания и разобщением окислительного фосфорилирования [Фролькис В.В., Мурадян Х.К., 1992; Sharma P. et al., 1998;. Davies S.M.K et al., 2001; Moghaddas S.et aL 2002].

Это создает предпосылки для нарушения в энергетическом обеспечении клеток при стрессе, что определяется увеличением функциональной нагрузки на внутренние органы в условиях стимуляции симпатоадреналовой системы, что в свою очередь, способствует возрастанию потребности клеток в источниках энергии. Состояние энергетического обеспечения осложняется ограничением синтеза АТФ в тканях [Ф.З.Меерсон, 1981,1984], возникающим вследствие разных причин. Особое место среди них занимает стрессорная стимуляция свободно-радикальных процессов [Меерсон Ф.З., 1981, 1984; Дубинина Е.Е., 2006; Kovacs P.et al., 1996; Seckin S. et al., 1997; Davydov V.V.,.Shvets V.N, 2001], сопровождающихся накоплением в клетках активных форм кислорода и индуцированных ими продуктов перекисных процессов, ингибированием

переносчиков дыхательной цепи митохондрий, а также разобщением окислительного фосфорилирования [№>Ы Н.,1997; Сауакош М. е1 а1., 1999; KowaItowski А.1., . Уегсез! А.Е, 1999].

В условиях снижения уровня энергетического обеспечения тканей при стрессе, адаптационные свойства клеток определяются мощностью метаболических систем, компенсирующих потери АТФ. Особое значение среди них имеет анаэробный гликолиз, роль которого резко возрастает в условиях патологических состояний, сопровождающихся тканевой гипоксией.

К настоящему времени достаточно хорошо изучены молекулярные механизмы формирования стрессорного повреждения внутренних органов, что позволило сформулировать основные принципы антистрессорной терапии. Однако все еще нет четкого представления о возрастных особенностях энергетического обеспечения печени при стрессе. Отсутствуют также данные о роли гликолиза как наиболее древнего пути образования энергии в поддержании энергетического обеспечения гепатоцитов и особенностях регуляции этого процесса на поздних этапах онтогенеза. Решение этих вопросов позволит расширить существующие представления о механизмах формирования возрастных сдвигов функционирования печени при стрессе и разработать новые подходы их фармакологической коррекции.

Цель и задачи исследования

Цель работы: изучение состояния энергетического обмена в печени у взрослых

и старых крыс при иммобилизационном стрессе.

Задачи исследования:

1. Определить содержание компонентов адениловой системы и оценить величину показателей энергетического заряда и потенциала фосфорилирования печени у взрослых и старых крыс, подвергнутых 30-минутной иммобилизации.

2. Оценить состояние гликолиза в ткани печени у взрослых и старых крыс, подвергнутых 30-минутной иммобилизации.

3. Изучить состояние свободно-радикальных процессов в печени и оценить их взаимосвязь с изменением энергетического обмена и уровнем гликолитических реакций у взрослых и старых крыс, подвергнутых 30-минутной иммобилизации.

4. Выявить характер изменений антитоксической функции печени у взрослых и старых крыс, подвергнутых 30-минутной иммобилизации.

Научная новизна работы

Впервые в работе были охарактеризованы особенности нарушения энергетического обеспечения печени взрослых и старых крыс при иммобилизации. Показано, что метаболические изменения в печени взрослых стрессированных животных имеют адаптивное значение. Особая роль при этом принадлежит стимуляции гликолиза, развивающейся параллельно увеличению интенсивности процессов перекисного окисления липидов в печени. У старых животных изменения в энергетическом обмене печени при 30-минутной иммобилизации сопровождаются преимущественно накоплением в субклеточных фракциях гепатоцитов переокисленных бежов.

Установлено, что различия механизмов компенсации снижения энергозависимых процессов в клетках печени взрослых и старых крыс при 30-минутной иммобилизации связаны с возрастными особенностями состояния антаоксидантной системы и кислород-зависимых процессов в гепатоцитах старых животных.

Научно-практическое значение работы

Результаты исследований расширяют современные представления о механизмах компенсации энергетической несостоятельности клеток печени разного возраста при стрессе.

Полученные данные об изменении роли свободно-радикальных процессов в регуляции обмена веществ при старении указывают на необходимость дифференцированного, в зависимости от возраста, подхода к фармакологической коррекции нарушений в работе антиоксидантной системы печени в условиях воздействия на организм повреждающих факторов внешней среды. Апробация работы. Основные результаты исследований и положения диссертационной работы, выносимые на защиту, были представлены и доложены на следующих научных конференциях, симпозиумах, съездах: конференция с международным участием "От современной фундаментальной биологии к новым наукоемким технологиям" (Пущино,

2002); П-й Межвузовской международной научно-практической биохимической конференции молодых ученых " Обмен веществ при адаптации и повреждении" (Ростов-на-Дону, 2003); «Конференция молодых ученых, посвященных памяти академика В.В. Фролькиса» (Киев, 2003); 11-ом 2 съезде геронтологов и гериатров России (Москва,

2003); Международный конгресс «Социальная адаптация, поддержка и здоровье пожилых людей в современном обществе» (Санкт-Петербург, 2007); 9th Annual Meeting of The Oxygen Society (San Antonio,2002) и 2nd Annual & IUBMB XIX Joint World Congress (Montreal, 2003).

Основные положения, выносимые на защиту:

1. При иммобилизадионном стрессе у взрослых и старых крыс происходит снижение уровня энергетического обеспечения гепатодитов, связанное с увеличением интенсивности энергозависимых процессов в печени.

2. Важным звеном механизма компенсации пониженного уровня энергетического обеспечения клеток печени при стрессе является стимуляция анаэробного гликолиза. У старых животных это сопровождается возникновением метаболических изменений, которые приводят к нарушению баланса между активностью про- и антиоксидантных систем в гепатоцитах.

3. Низкий уровень базального про- и антиоксидантного статуса клеток печени старых крыс является причиной развития окислительного стресса при иммобилизации. В отличие от взрослых животных у старых крыс интенсификация свободнорадикальных процессов направлена, в первую очередь, на активацию переокисления белков и аскорбат-зйвисимого перекисного окисления липидов.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 8 научных работ, среди них статья в журнале по перечню Высшей аттестационной комиссии Министерства образования и науки Российской Федерации.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 156 страницах машинописного текста, иллюстрирована 18 таблицами и 30 рисунками. Работа состоит из введения; обзора литературы, материалов и методов исследований, трех глав собственных исследований, обсуждения результатов, выводов и списка цитируемой литературы, включающего 74 отечественных и 214 зарубежных источников.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

В исследованиях были использовали 225 крыс- самцов линии Wistar. Животные были разделены на две возрастные группы: взрослые - 10-12 месяцев (масса 250 - 350 г) и старые - 22-25 месяцев (масса 450-510 г). Каждая группа, в свою очередь, состояла из трех подгрупп: 1 - контрольные (взрослые - 42; старые - 41), 2 - крысы, подвергнутые иммобшшзационному стрессу (взрослые - 37; старые - 38), 3 - животные, которым за 15 минут до иммобилизации внухрибрюшинно вводили диметилсульфоксид в дозе 175 мг на 100 г массы (взрослые - 36; старые - 31).

Для моделирования иммобилизадионного стресса крыс подвергали обездвиживанию, привязывая за конечности спиной к неподвижной опоре (доске). Время иммобилизации -30 минут. Эффективность воспроизведения стресса контролировали по уровню адреналина и 11-ОКС, а также по содержанию продуктов перекисного окисления липидов (диеновых конъюгатов) и карбонилированных белков в крови.

Энергетическое обеспечение печени оценивали по уровню концентрации АТФ [Lampercht W, Trautshold J., 1962] и продуктов его гидролиза - АДФ, АМФ [Jaworek D et al., 1974], а также по содержанию неорганического фосфора [Гончар Н.В.,

Монастырский В.А., 1982], которые определяли в нейтрализованных хлорно-кислотных экстрактах замороженной в жидком азоте печени. На основании полученных данных производили расчет величины потенциала фосфорилирования ( АТФ / АДФ ' Рн ) и энергетического заряда ( АТФ + 14 АДФ / АТФ + АДФ + АМФ)[ D.E.Atkinson, 1968].

Для изучения состояния гликолиза в нейтрализованных хлорно-кислотных экстрактах определяли содержание глюкозы, ппокозо-6-фосфата, фосфоенолпирувата,

пировиноградной и молочной кислот [Мильман Л.С. и соавт., 1974], а также окисленного [Klingenberg М., 1962] и восстановленного НАД [Прохорова М.И., 1982] Экстракцию восстановленного НАД из ткани печени проводили при помощи смеси, содержащей 0,ЗМ К2СОз в 25% этаноле с добавлением 0,7% цистеина [Прохорова М.И., 1982]. В специальных экспериментах в нейтрализованных хлорно-кислотных экстрактах проводили определение содержания яблочной кислоты [Hohorst H.J., 1970]. ,

В субклеточных фракциях печени определяли активность ферментов метаболизма глюкозо-6-фосфата: гексокиназы [Мильман Л.С. и соавт., 1974], глюкозо-6-фосфатазы [Асатиани B.C., 1969] и глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы [Мильман Л.С. и соавт., 1974]. Субклеточное фракционирование печени проводили при помощи дифференциального центрифугирования в 1,15% КС1 на ультрацентрифуге МОМ-3180 (Венгрия).

Состояние процессов свободнорадикального окисления (СРО) в печени оценивали по интенсивности перекисного окисления липидов (ПОЛ) и белков (ПОБ), а также по скорости индуцированного ПОЛ. Интенсивность ПОЛ определяли по содержанию в печени диеновых конъюгатов (ДК) [Стальная И.Д., 1977], а также метаболитов, дающих положительную реакцию с 2-тиобарбитуровой кислотой (ТБК - реактивных веществ) [Muller G. et al., 1986] и флюоресцирующих соединений, типа шиффовых оснований (ШО) [Rice-Evans С.А. et al., 1991]. Уровень флюоресценции измеряли на спектрофлюориметре Hitachi (Япония) при длине волны возбуждения - 360 нм, длине волны эмиссии - 430 нм.

Интенсивность СРО белков оценивали по уровню содержания карбонилированных белков в гомогенатах печени и ее субклеточных фракциях (митохондриальной, микросомальной и цитозольной). В основу их количественного определения был положен метод Е.Е. Дубининой [2000]. Концентрацию карбонилированных белков выражали в единицах оптической плотности (356 или 370 нм) в расчете на г ткани или на мг белка субклеточной фракции. В гомогенатах

печени интенсивность индуцированного аскорбат-зависимого ПОЛ определяли по методу Е.М.Микаелян и соавт. [1983].

Содержание белка в пробах определяли по методу О. Lowry et al. [1955] Для расчетов использовали калибровочную кривую, построенную с бычьим сывороточным альбумином.

Состояние антитоксической функции печени определяли по продолжительности барбитурового сна, возникающего при введении крысам тиопентала. Препарат, разведенный в изотоническом растворе хлористого натрия, вводили внутрибрюшинно в дозе 2,5 мг / 100 г массы. После этого у животных регистрировали длительность сна.

Результаты экспериментальных исследований подвергали статистической обработке с применением параметрических и непараметрических статистических методов: t-критерия Стьюдента, U-критерия Вилкоксона-Манна-Уитни. Обработку результатов исследования выполняли с использованием стандартных пакетов прикладного статистического анализа (Statistics for Windows Release 4.3 Copyright Stat Soft, Inc., 1993).

" РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Проведенные исследования показали, что при старении происходит снижение уровня энергетического обеспечения гепатоцитов. Проявлением этого служит уменьшение содержания АТФ (табл. 1), а также величины потенциала фосфорилирования и энергетического заряда печени (табл. 2).

Обнаруженные изменения согласуются с существующими представлениями о характере изменения метаболизма в тканях внутренних органов на поздних этапах онтогенеза [Фролькис В.В., Мурадян Х.К., 1992; Pastoris О. et al., 1998]. Нарушение энергетического обеспечения гепатоцитов при старении формирует условия для повышения их чувствительности к действию повреждающих факторов стресса.

Таблица 1.

Содержание компонентов адениловой системы у взрослых и старых крыс _ при иммобилизационном стрессе (М± т)_

Показатель (мкмоль/ г Взрослые Старые

ткани) Контроль (п=10) \ Стресс (п=11) Контроль (п=12) Стресс (п=10)

АТФ 3,28+ 0,06 2,42 + 0,09* 2,16+ 0,07** 1,72 + 0,08*

АДФ 0,74+0,10 0,55+ 0,04 0,80+ 0,05 0,55+ 0,02*

АМФ 0,39+ 0,03 0,13± 0,02* 0,25+0,03** 0,07+ 0,01*

Неорганический фосфор 3,28+0,21 3,97+ 0,47 ' 3,76+ 0,15 5,40+0,57*

Примечание: * р< 0,05 - изменение показателей при стрессе по сравнению с их уровнем в контроле; **р< 0,05 - изменения показателей у старых животных по сравнению с их уровнем в контроле у взрослых животных.

Таблица 2.

Величина потенциала фосфорилирования, энергетического заряда и суммарное содержание адениловых нуклеотидов в печени

Показатель Взрослые Старые

Контроль (пИО) Стресс (п=10) Контроль (п=10) Стресс 0=11)

Потенциал фосфорилирования 1,56 ± 0,27 1,22 ±0,20* 0,74 ±0,06** 0,60 +0,11

Энергетический заряд 0,83 + 0,01 0,87 +0,01* 0,80 +0,01** 0,85 ±0,01*

Суммарное содержание адениловых нуклеотидов 4,46 ±0,12 3,10 + 0,09* 3,21 ±0,10** 2,33 ±0,09*

Примечание: * р< 0,05 - изменение показателей при стрессе по сравнению с га уровнем в контроле: **р< 0,05 - изменения показателей у старых животных по сравнению с их уровнем в контроле у взрослых животных.

Для проверки этого предположения было проведено изучение состояния адениловой системы в печени крыс, подвергнутых иммобилизации. Проведенные исследования показали, что иммобшшзационный стресс приводит к уменьшению суммарного содержания адениловых нуклеотидов (АТФ + АДФ + АМФ) и концентрации АТФ в печени крыс обеих возрастных групп. У взрослых крыс эти изменения дополняются также снижением величины потенциала фосфорилирования, а у старых - повышением уровня неорганического фосфата. Причем у старых крыс, подвергнутых 30-минутной иммобилизации, сдвиги со стороны суммарной концентрации адениловых нуклеотидов и АТФ были выражены в такой же мере, как и у взрослых животных. Уменьшение содержания АТФ в печени при иммобилизации помимо прочих причин, может быть связано с увеличением интенсивности энергозависимых процессов в гепатоцитах или ограничением скорости окислительного фосфорилирования в митохондриях. В литературе встречаются сведения об ограничении синтеза АТФ в процессе окислительного фосфорилирования в тканях внутренних органов при стрессе. Механизм этого сдвига объясняется разобщением тканевого дыхания и окислительного фосфорилирования за счет накопления во внутренней митохондриальной мембране продуктов ПОЛ [Меерсон Ф.З., 1984, Лысенко A.B. и соавт, 2005].

Предпринятое в работе исследование интенсивности свободно-радикальных процессов не позволило выявить факта накопления продуктов перекисного окисления липидов в печени крыс при стрессе (табл. 3). В тоже время у взрослых и старых животных, подвергнутых 30-минутной иммобилизации, обнаруживалось увеличение содержания карбонилированных белков в митохондриях и микросомах печеночных клеток (рис. 1). Существование факта отставания во времени стимуляции процесса перекисного окисления липидов от свободно-радикального окисления белков, уже отмечалось в литературе [Reinheckel Т. et al., 1998, Дубинина Е.Е., 2006]. Полученные данные позволяют констатировать наличие оксидативного стресса в печени крыс обеих возрастных групп при иммобилизационном воздействии. Количественная оценка уровня накопления карбонилированных белков в субклеточных фракциях печени указывает на то, что интенсивность свободно-радикальных процессов в печени старых крыс, подвергнутых иммобилизации, выше чем у взрослых животных. Важную роль в возникновении этого изменения может играть снижение мощности антиоксидантной системы печени при старении [Дубинина Е.Е., 2006; F.Cand, J.Verdetti, 1989; L.Tian et al.,1998 и др.].

Таблица 3.

Содержание продуктов перекисного окисления липидов в печени крыс при иммобилизационном стрессе ( М + ш )

Показатель Единица измерения Взрослые Старые

Контроль (п=11) Стресс (п=Ю) Контроль (п=12) Стресс (п=11)

Диеновые конъюгаты нмоль / г ткани 23,80+ 0,52 22,71 +1,44 22,50 ± 0,32 18,02 ±0,61

ТБК-реактяв ные вещества мкмоль МДА/г 1,41+0,13 1,35+0,12 1,61+0,15 1,24 ±0,15*

Примечание: * р< 0,05 - изменение показателей при стрессе по сравнению с ш уровнем в контроле.

Это подтверждают полученные нами данные, согласно которым в печени старых иммобилизированных крыс отмечается стимуляция аскорбат-зависимого ПОЛ, в отличие от взрослых животных (рис. 2).

Развитие оксидативного стресса способствует угнетению энергозависимых функций митохондрий и, как следствие того, уменьшению продукции АТФ в гепатоцитах при иммобилизации у животных обеих возрастных групп. Это связано с негативным воздействием свободных радикалов и продуктов их метаболизма на процесс транспорта электронов по дыхательной цепи, состояние протонной проницаемости внутренней митохондриальной мембраны и сопряжение процессов тканевого дыхания и окислительного фосфорилирования [Меерсон Ф.З., 1981,1984; Melov S. et al., 1999; Cadenas E., Davies K.J., 2000; Nulton-Persson A.C.,.Szweda I.L, 2001]. Последующие исследования, выполненные на животных, которым перед иммобилизацией вводился антиоксидант диметилсульфоксид, показали, что ингибирование свободнорадикальных процессов, не оказывает существенного влияния на содержание АТФ в печени. Выявленный феномен дает основания для предположения о том, что стимуляция свободнорадикальных процессов в гепатоцитах при стрессе не приводит к ограничению скорости образования АТФ в митохондриях в процессе окислительного фосфорилирования.

Действительно, в последнее время появились сведения о том, что ограничение интенсивности тканевого дыхания при гипоксических состояниях сопровождается компенсаторным увеличением сопряжения процессов тканевого дыхания и окислительного фосфорилирования [Опа1£ег Е. е1 а1., 2000]. На это также указывают результаты нашего исследования, согласно которым стимуляции ПОЛ в печени у взрослых и старых крыс при стрессе не происходит, т.к. при интенсификации ПОЛ возникают промежуточные продукты переокисления, вызывающие усиление протонной проницаемости внутренней митохондриальной мембраны и деэнергизацию митохондрий. В данной ситуации основную роль в уменьшении содержания АТФ при иммобилизации у животных обеих возрастных групп может играть увеличение интенсивности энергозависимых процессов в печени. Кроме того, в условиях стрессорного воздействия стимуляция интенсивности СРО в печени приводит к ограничению синтеза АТФ в процессе окислительного фосфорилирования в митохондриях, но возникающие нарушения компенсируются увеличением скорости АТФ - генерирующих путей метаболизма в гепатоцитах. О формировании подобных компенсаторных изменений метаболизма свидетельствуют данные о повышении величины энергетического заряда печени при стрессе. На то же указывают и незначительные возрастные различия в снижении концентрации АТФ в печени крыс, подвергнутых 30-минутной иммобилизации.

Компенсаторные механизмы, развивающиеся в ответ на снижение содержания АТФ в печени взрослых и старых крыс при иммобилизации, по всей вероятности, имеют сходный характер у животных разного возраста. Важное значение при этом, судя по результатам изучения состояния адениловой системы, приобретает увеличение скорости аденилаткиназной реакции и повышение использования АМФ в 5'-нуклеотидазной реакции сопряженной с образованием аденозина. Однако особая роль в стабилизации уровня АТФ в клетках в условиях ограничения интенсивности тканевого дыхания при стрессе, по всей вероятности, принадлежит гликолизу. Поэтому нами было проведено изучение состояния гликолитических процессов в печени путем определения активности отдельных ферментов и содержания промежуточных продуктов гликолиза.

Проведенные исследования показали, что в печени крыс при старении возникает ряд нарушений углеводного обмена, связаных со снижением скорости утилизации пировиноградной кислоты в процессе окислительного декарбоксшшрования. Ограничение метаболического потока через

11 и руватде гидрогеназный комплекс дополняется частичным ингибированием гексокиназы и параллельным снижением величины индекса соотношения активности гексокиназы и п но кода-6-фосфат дегидрогепаэы.

Митохондрии

1в и 12 10

50 1 40

и 20 10 о

20 15

10 -5 0

Ч-:

Взрослые

Старые М икр О СОМЫ

Взрослые

Старые

Цитозоль

ЩЧ

Взрослые

Г~1 Контроль а Стресс

□ Контроль

□ Стресс

□ Контроль О Стресс

Старые

Рис.1. Содержание карбонилированных белков в субклеточных фракциях печени взрослых и старых крыс при иммобилизационном стрессе.

Примечание: по оси ординат - концентрация карбонилироваиных белков (нмоль / мг белка); * р< 0,05 - изменение показателей при стрессе по сравнению с их уровнем в контроле; р< 0,05 - изменения показателей у старых животных по сравнению с их уровнем в контроле у взрослых животных.

ДК/белок

— Контроль ■»- Стресс

ДК/белок

Рис. 2. Динамика накопления диеновых конъюгатов при стимуляции аскорбат-зависимого ПОЛ в гомогенатах печени взрослых (а) и старых (б) крыс при иммобилизационном стрессе.

Принимая во внимание роль гексокиназы в регуляции метаболического потока через гликолиз, можно предположить, что при уменьшении ее активности формируются предпосылки для ограничения скорости процесса дихотомического окисления глюкозы. Возникновение этого сдвига в условиях торможения окислительного декарбоксилирования пировиноградной кислоты, приобретает характер адаптивной реакции, направленной на ограничение накопления пирувата в печени. Это приводит к снижению энергетического значения гликолиза, что может вносить определенный вклад в возрастное уменьшение уровня энергетического обеспечения печени.

При стрессе в клетках печени взрослых животных возникает комплекс изменений со стороны углеводного обмена, который отражает усиление в них анаэробного гликолиза (табл. 4). Это проявляется в увеличении концентраций промежуточных продуктов гликолиза в печени (глюкозо-6-фосфата, фосфоенолпирувата, пировиноградной и молочной кислот) по сравнению с их величиной у интактных животных. У старых крыс, также как и у взрослых, при иммобилизации возникают изменения, которые указывают на стимуляцию процесса анаэробного гликолиза в печени. Однако, в отличие от взрослых животных, они проявляются только в увеличении концентрации молочной кислоты (рис. 3) и снижении индекса соотношения концентраций глюкоза / лактат и глюкоза / пируват, тогда как уровень других промежуточных продуктов гликолиза у них не изменяется. Возникающие у старых крыс при стрессе сдвиги дополняются активацией гексокиназы и глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы.

Оценка результатов проведенных исследований позволяет сделать заключение о том, что при иммобилизационном стрессе происходит стимуляция анаэробного окисления глюкозы в печени. Однако у взрослых и старых крыс это проявляется по-разному. Так у взрослых животных накопление молочной кислоты в печени при стрессе сопровождается одновременным увеличением в ней концентрации других промежуточных продуктов гликолиза. Подобная ситуация может возникать в условиях частичного ингибирования пируватдегидрогеназного комплекса митохондрий. Вероятно, наблюдаемое при этом ограничение скорости окислительного декарбоксилирования пировиноградной кислоты, имеет адаптивное значение при сопутствующей стрессу тканевой гипоксии.

Это связано с тем, что уменьшение использования пирувата в данном метаболическом пути приводит:

обеспечении клеток печени кислородом. Согласно данным литературы об уменьшении кровоснабжения печени при старении [LeCouteur D.G., McLean A.J., 1998; LeCouteur D.G. et al., 1999; Zoli M. et al., 1999], это представляется мало вероятным.

Переключение метаболизма глюкозы в печени старых крыс при стрессе на путь ее аэробного окисления сопровождается активацией глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы. Повышение активности этого фермента способствует возрастанию доли пентозофосфатного пути в катаболизме глюкозы, это играет важную роль в компенсаторном увеличении синтеза восстановленного НАДФ в клетках печени при стрессе, потребность в котором резко возрастает в условиях стимуляции свободно-радикальных процессов.

Различные механизмы компенсации снижения уровня энергетического обеспечения гепатоцитов у взрослых и старых крыс могут отражать существование возрастных особенностей в проявлении адаптационных свойств печени. Однако, судя по одинаковой величине стрессорного понижения содержания АТФ в печени у взрослых и старых животных, при 30-минутной иммобилизации оба механизма адаптации оказываются не достаточно эффективными.

Возникновение компенсаторных изменений углеводного и энергетического обмена в печени при стрессе может быть обусловлено различными причинами. Особое значение из них, по всей вероятности, приобретает стимуляция свободно -радикальных процессов в гепатоцитах.

Подобное предположение основано на данных литературы об участии свободных радикалов и продуктов их метаболизма в формировании реакций адаптации. Это связано с их регуляторным воздействием на ферментативные процессы, мембранную проницаемость, скорость экспрессии генов белков, обладающих цитопротекторной активностью, а также состоянием определенных внутриклеточных сигнальных путей [Squier Т.С., 2001; Yoon S.O.et al., 2002; Droge W., 2002].

Важным доводом в пользу этого служат результаты экспериментов, связанные с изучением эффекта превентивного введения диметилсульфоксида перед иммобилизацией на содержание продуктов гликолиза в печени. Введение антиоксиданта ограничивает накопление глюкозо-6-фосфата в печени взрослых крыс, подвергнутых иммобилизации. Причиной этого может быть предотвращение стрессорной активации гексокиназы диметилсульфоксидом. Учитывая, что данный фдзмент катализирует необратимую начальную реакцию гликолиза, можно

предположить, что изменение его активности вносит существенный вклад в изменение скорости гликолиза в целом [Stryer L., 1995]. О том же свидетельствуют и данные об уменьшении величины накопления молочной кислоты в печени взрослых крыс при стрессе, если перед иммобилизацией им вводили диметилсульфоксид.

У старых крыс, как и у взрослых животных, под влиянием антиоксиданта возникало ограничение накопления молочной кислоты в печени при иммобилизационном стрессе. Однако параллельно с этим у них происходило увеличение концентрации глюкозо-6-фосфата и пировиноградной кислоты.

Обнаруженные особенности в эффекте диметилсульфоксида на содержание продуктов гликолиза в печени взрослых и старых крыс, по всей вероятности, отражают возрастные изменения в проявлении регуляторного действия свободнорадикальных процессов на гликолиз в гепатоцитах при стрессе в позднем онтогенезе.

Умеренное увеличение интенсивности свободнорадикальных процессов (мягкий оксидативный стресс), вероятно, выступает в роли неспецифического сдвига, направленного на повышение устойчивости организма к существованию в условиях иммобилизационного стресса [Allen R.G., Tresini М., 2000]. За счет накапливающихся в условиях оксидативного стресса активных форм кислорода, происходит модуляция активности ключевых ферментов углеводного обмена и, по всей видимости, увеличение скорости их биосинтеза, что приводит к соответствующему изменению метаболических потоков в гепатоцитах.

Вместе с тем накапливающиеся в процессе оксидативного стресса цитотоксические продукты свободно-радикальных превращений, существенно ограничивают его позитивное действие. В этой связи , важную роль в адаптации тканей внутренних органов к стрессу может иметь компенсаторное увеличение функционирования в них ферментативных систем, обеспечивающих утилизацию продуктов свободнорадикального окисления липидов и белков [Esterbauer Н. et al., 1985; Chen J.J., Yu B.P., 1996; Siems W.G. et al., 1998].

Результаты изучения базальной концентрации продуктов ПОЛ и карбонилированных белков, позволяют предполагать эффективное функционирование ферментативных систем, катализирующих реакции превращения продуктов свободнорадикального окисления липидов и белков в печени преимущественно взрослых животных.

Вместе с тем, результаты сравнительного анализа данных о содержании карбонизированных белков в субклеточных фракциях и сведений о состоянии аскорбат-зависимого ПОЛ, позволяют сделать предположение о том, что увеличение интенсивности свободнорадикальных процессов в печени старых крыс при иммобилизации происходит в условиях снижения мощности антиоксидантной системы гепатоцитов. Это повышает риск проявления негативных последствий воздействия оксидативного стресса на клетки печени. Следствием этого становится возникновение функционального напряжения в механизмах адаптации печени к действию повреждающих факторов внешней среды, что вносит определенный вклад в возрастное изменение устойчивости организма к стрессу при старении.

Анализируя результаты проведенных исследований, можно сделать заключение о том, что в печени взрослых и старых крыс при 30-минутной иммобилизации возникают метаболические нарушения, которые в условиях стресса приобретают адаптивное значение. Кроме того, в позднем онтогенезе в гепатоцитах снижается эффективность работы системы регуляции обменных процессов, что понижает устойчивость печени к действию повреждающих факторов.

Однако, при изучении влияния иммобилизационного стресса на продолжительность наркотического сна у взрослых и старых крыс было обнаружено, что стрессирование животных обеих возрастных групп приводит к сокращению продолжительности сна, вызванного введением тиопентала. Причем величина снижения продолжительности наркотического сна у крыс обеих возрастных групп одинакова. Ввиду того, что интенсивность метаболизма барбитуратов отражает состояние процессов микросомального окисления, с которыми связан один из основных путей детоксикации в организме [Парамонова Г.И., 1994], полученные данные указывают на отсутствие возрастных различий в величине стрессорного изменения антитоксической функции печени.

Тем не менее, эти данные не противоречат ранее высказанному предположению о разных адаптивных свойствах гепатоцитов взрослых и старых крыс в отношении повреждающих факторов иммобилизационного стресса. Они в полной мере соответствуют современным представлениям об уникальном свойстве печени сохранять высокую функциональную активность вплоть до позднего онтогенеза [Schmucker D.L., 1998], что не характерно для других внутренних органов [Фролькис В.В., 1981, 1984, 1985 и др.].

Мнение о мобилизации адаптивных механизмов при старении ранее уже высказывалось в литературе [Фролькис В.В., Мурадян Ф.Х.,1992] и полученные данные являются еще одним его подтверждением. Вместе с тем, необходимо иметь в виду, что одинаковая эффективность компенсаторных механизмов в печени при действии повреждающих факторов иммобилизационного стресса у взрослых и старых животных достигается проявлением разных метаболических сдвигов. У взрослых животных эти сдвиги более эффективны и формируются с меньшими функциональными затратами. При иммобилизационном стрессе у старых животных возникает своеобразное " напряжение " в функционировании антиоксидантной системы и состоянии кислород - зависимых процессов в гепатоцитах.

выводы

1. При старении происходит снижение уровня энергетического обеспечения печени, которое проявляется в уменьшении содержания АТФ и суммарной концентрации адениловых нуклеотидов, а также в снижении величины энергетического заряда и потенциала фосфорилирования. Одновременно с изменениями в адениловой системе у старых крыс в печени происходит уменьшение активности гексокиназы, повышение соотношения активности гексокиназа/глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы, а также увеличение концентрации глюкозо-6-фосфата.

2. Иммобилизационный стресс сопровождается уменьшением суммарного содержания адениловых нуклеотидов, уровня АТФ и АМФ, а также повышением величины энергетического заряда печени у крыс разного возраста. При этом у старых животных происходит снижение содержания АДФ и накопление неорганических фосфатов в печени, что связано с усилением интенсивности энергозависимых процессов в гепатоцитах и сопряжено со стимуляцией свободнорадикальных процессов.

3. Иммобилизация взрослых животных сопровождается увеличением интенсивности гликолиза в печени, что сопровождается повышением концентрации конечных (молочная и пировиноградная кислоты) и промежуточных (глюкозо-6-фосфат) продуктов этого метаболического пути. Установлено снижение индекса соотношения концентраций лактата и пирувата (лактат/пируват) и повышение содержания окисленного НАД при исходной величине уровня восстановленности пула НАД (НАД/НАДН). Накопление продуктов гликолиза в печени взрослых крыс при стрессе не происходит при введении антиоксиданта диметилсульфоксида.

4. У старых крыс при иммобилизации не происходит изменения содержания промежуточных продуктов гликолиза и восстановленного НАД, а наблюдается увеличение концентрации молочной кислоты в печени. Вместе с тем у них выявляется активация гексокиназы и глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы. Введение диметилсульфоксида животным этой группы не приводит к изменению уровня накопления молочной кислоты и способствует увеличению содержания глюкозо-6-фосфата и пировиноградной кислоты в печени при стрессе.

5. Содержание продуктов свободнорадикального окисления липидов в печени старых крыс соответствует их уровню у взрослых животных. В то же время концентрация карбонилированных белков в гомогенате и субклеточных фракциях (митохондрии, микросомы и цитозоль), а также интенсивность индуцированного перекисного окисления липидов у них меньше, чем в печени взрослых животных.

6. Иммобилизация крыс обеих возрастных груш не сопровождается изменением содержания продуктов перекисного окисления липидов и уровня карбонилированных белков в ткани печени. Однако при иммобилизационном стрессе происходит накопление карбонилированных белков в митохондриальной и микросомальной фракциях печени, более выраженное у старых животных.

При стрессе происходит стимуляция индуцированного перекисного окисления липидов в гомогенатах печени крыс обеих возрастных групп. Интенсивность этого сдвига у старых животных выше, чем у взрослых крыс.

7. При старении в печени сохраняется эффективная система регуляции обменных процессов, обеспечивающая поддержание ее антитоксической функции в условиях иммобилизационного стресса. Механизмы адаптации клеток печени к действию повреждающих факторов стресса у взрослых и старых крыс связаны с различными метаболическими сдвигами, которые у старых животных формируют предпосылки для возникновения "напряжения" в состоянии антиоксидантной системы и кислород -зависимых процессов в гепатоцитах.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Захарченко КВ. Адаптивное значение возрастных изменений углеводного обмена в печени при иммобилизационном стрессе/ И.В. Захарченко, Л.С. Козина//Матер. Международного конгресса «Социальная адаптация, поддержка и здоровье пожилых людей в современном обществе». Санкт-Петербург, 2007 - С. 114.

2. Захарченко И.В. Влияние диметилсульфоксида на состояние адениловой системы печени взрослых и старых крыс при иммобилизационном стрессе/ И.В. Захарченко// Матер. 2-й межвузовской международной биохимической научно-практической конференции молодых ученых «Обмен веществ при адаптации и повреждении», Ростов-на-Дону, 2003. - С. 77-78.

3. Захарченко КВ. -Возрастные особенности влияния иммобилизационного стресса на состояние детоксикационной функции печени у крыс/ И.В. Захарченко, В.Г. Овсянников, В.В. Давыдов // Клиническая геронтология. - 2003. -Т. 9, №9. - С.164.

4. Захарченко КВ. Возрастные особенности изменения состояния адениловой системы печени крыс при иммобилизационном стрессе / И.В. Захарченко, В.В. Давыдов//Труды конф. «От современной фундаментальной биологии к новым наукоемким технологиям. Научные исследования в наукоградах Московской области (Пущино), 2002. - С. 72.

5. Захарченко КВ. Возрастные особенности изменения состояния гликогена в печени крыс при иммобилизационном стрессе/ И.В. Захарченко// Научная мысль Кавказа. Северо-Кавказский Научный Центр Высшей Школы, Ростов-на-Дону, 2003. - С. 125127.

6. Захарченко И.В. Роль свободнорадикальных процессов в возрастном изменении энергетического обеспечения печени крыс при стрессе/ И.В. Захарченко, В.Г. Овсянников, В.В. Давыдов// Успехи геронтологии. - 2003. - Т.12. - С. 99-102.

7. Захарченко И.В. Роль гликолиза в энергетическом обеспечении печени крыс при иммобилизационном стрессе при старении/ И.В. Захарченко// Матер. 4-й украинской конференции молодых ученых, посвященной памяти академика В.В. Фролькиса, Киев, 2003. - С. 35-36.

8. Козина Л.С. Возрастные особенности процессов свободнорадикального окисления в печени при иммобилизационном стрессе/ Л.С. Козина, И.В. Захарченко//Матер. Международного конгресса «Социальная адаптация, поддержка и здоровье пожилых людей в современном обществе». Санкт-Петербург, 2007,- С. 136.

Захарченко И.В. Возрастные изменения энергетического обмена в печени крыс при иммобилизаиионномстрессе//Автореф. дис. ... канд. биол. наук: 14.00.53; 03.00.04. -

СПб., 2007.-24 с. __

Подписано в печать «27» февраля 2007. Формат 60*84 1/16.

Бумага офсетная. Печать офсетная. Печ. л. 1,0. Тираж 100 экз. Заказ 32. . Отпечатано с готового оригинал-макета в типографии Издательства СПбГЭТУ «ЛЭТИ» Издательство СПбГЭТУ «ЛЭТИ» 197376, С.-Петербург, ул. Проф. Попова, 5

Оглавление диссертации Захарченко, Ирина Владимировна :: 2007 :: Санкт-Петербург

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. Роль возрастных изменений в энергетическом обеспечении печени в нарушении ее функции при старении и стрессе (обзор литературы)

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Общая характеристика экспериментальной модели

2.2. Методика фракционирования гомогенатов печени

2.3. Биохимические методы исследований ^

2.3.1. Определение содержания компонентов адениловой системы в печени

2.3.2. Определение содержания продуктов гликолиза

2.3.3. Определение содержания окисленного и восстановленного НАД

2.3.4. Определение активности гликолитических ферментов

2.3.5. Определение содержания продуктов свободно-радикального окисления в печени

2.3.5.1. Определение концентрации промежуточных продук- 47 тов перекисного окисления липидов

2.3.5.2. Определение содержания карбонилированных бел- 47 ков

2.3.6. Определение интенсивности индуцированного ПОЛ но

2.3.7. Определение активности маркерных ферментов субклеточных фракций печени

2.3.8. Определение концентрации маркеров стресса в крови

2.3.9. Определение концентрации белка

2.4. Определение антитоксической функции печени

2.5. Статистическая обработка результатов

2.6. Использованные реактивы ^

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

ГЛАВА 3. ЭНЕРГЕТИЧЕСКОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ ПЕЧЕНИ

ВЗРОСЛЫХ И СТАРЫХ КРЫС ПРИ ИММОБИ

ЛИЗАЦИОННОМ СТРЕССЕ

3.1. Возрастные особенности изменения состояния адениловой системы печени крыс при иммобилизационном стрессе

3.2. Влияние диметилсульфоксида на состояние показателей адениловой системы в печени взрослых и старых крыс при иммобилизационном стрессе на состояние гликолиза в печени взрослых и старых крыс при стрессе

ГЛАВА 4. ВОЗРАСТНЫЕ ОСОБЕННОСТИ ГЛИКОЛИТИ

ЧЕСКИХ ПРОЦЕССОВ В ПЕЧЕНИ КРЫС ПРИ ИММОБИЛИЗАЦИОННОМ СТРЕССЕ

4.1. Влияние иммобилизационного стресса на содержание продуктов гликолиза в печени взрослых и старых крыс

4.2. Активность ферментов метаболизма глюкозо-6-фосфата в печени взрослых и старых крыс при стрессе

4.3. Особенности влияния диметилсульфоксида

ГЛАВА 5. СОСТОЯНИЕ СВОБОДНОРАДИКАЛЪНЫХ ПРОЦЕССОВ В ПЕЧЕНИ ВЗРОСЛЫХ И СТАРЫХ КРЫС ПРИ ИММОБИЛИЗАЦИОННОМ СТРЕССЕ ! 0!

5.1. Содержание продуктов свободнорадикального окисления липидов в печени взрослых и старых крыс при стрессе

5.2. Особенности накопления карбонилированных белков 102 в печени взрослых и старых крыс при стрессе ^

Введение диссертации по теме "Восстановительная медицина, спортивная медицина, курортология и физиотерапия", Захарченко, Ирина Владимировна, автореферат

Актуальность проблемы. Многочисленные данные экспериментальных и клинических исследований свидетельствуют о том, что при старении происходит снижение устойчивости организма к повреждающему действию стресса [Фролькис В.В., 1988, 1999; Анисимов В.Н., 2003; Хавинсон В.Х., Анисимов В.Н., 2003; Лапин И.П., 2005; Лысенко A.B. и соавт, 2005; E.G. Lakkata, 1980; R.E. Pacifici, K.I.A Pavies, 1991; M. Ando et al., 1997; M. Konstandi et al., 2000]. Важное значение среди прочих причин в этом приобретают возрастные сдвиги со стороны функционирования печени [Ко-сицкий Г.И. и соавт., 1987; Гичев Ю.П., 1990; Филиппов C.B., 2003; Рыжак Г.А. и соавт., 2004].

Известно, что в организме в позднем онтогенезе происходит изменение метаболизма ксенобиотиков. [Парамонова Г.И., 1994; Schmucker D.L. et al, 1990; Hayashi T., Miyazawa T, 1998. Le Couteur D.G, McLean A.J., 1998; Sukhodub A.L., Padalko V.l., 1999; Haouzi D.et al., 2000; Palomero J. et al., 2001]. Возникновение подобного нарушения представляет собой частное проявление возрастного снижения антитоксической функции печени. Ввиду того, что при стрессе стимулируются процессы катаболизма, сопровождающиеся усилением распада макромолекул и накоплением эндогенных токсинов в организме, это приобретает существенное значение в возрастном снижении резистентности организма к стрессу.

Это создает предпосылки для нарушения в энергетическом обеспечении клеток при стрессе, что определяется увеличением функциональной нагрузки на внутренние органы в условиях стимуляции симпатоадре-наловой системы, что в свою очередь, способствует возрастанию потребности клеток В'источниках энергии. Состояние энергетического обеспечения осложняется ограничением синтеза АТФ в тканях [Ф.З.Меерсон, 1981, 1984], возникающим вследствие разных причин. Особое место среди них занимает стрессорная стимуляция свободно-радикальных процессов [Ме-ерсон Ф.З., 1981, 1984; Дубинина Е.Е., 2006; КоуасБ Р.е1 а1., 1996; ЭеЫап Э. а1., 1997; Баууёоу У.У.,811Уе1з У.Ы, 2001; Лысенко и соавт.,2005], сопровождающихся накоплением в клетках активных форм кислорода и индуцированных ими продуктов перекисных процессов, ингибированием переносчиков дыхательной цепи митохондрий, а также разобщением окислительного фосфорилирования [КоЫ Н.,1997; Сауаггош М. е1 а1., 1999; Кохуакоууэк! АЛ.,. Уегсеэ! А.Е, 1999].

В условиях снижения уровня энергетического обеспечения тканей при стрессе, адаптационные свойства' клеток определяются мощностью метаболических систем, компенсирующих потери АТФ. Особое значение среди них имеет анаэробный гликолиз, роль которого резко возрастает в условиях патологических состояний, сопровождающихся тканевой гипоксией.

Цель и задачи исследования

Цель работы: изучение состояния энергетического обмена в печени у взрослых и старых крыс при иммобилизационном стрессе. Задачи исследования:

Научная новизна работы

Впервые в работе были охарактеризованы особенности нарушения энергетического обеспечения печени взрослых и старых крыс при иммобилизации. Показано, что метаболические сдвиги в печени взрослых стрессированных животных имеют адаптивное значение. Особая роль при этом принадлежит стимуляции гликолиза, развивающейся параллельно изменению интенсивности процессов пере-кисного окисления липидов в печени. У старых животных изменения в энергетическом обеспечении печени при 30-минутной иммобилизации сопровождаются более выраженным по сравнению со взрослыми особями образованием продуктов аскорбат-зависимого

ПОЛ в печени и накоплением в субклеточных фракциях гепатоцитов переокисленных белков.

Различия механизмов компенсации снижения энергозависимых процессов в клетках печени взрослых и старых крыс при 30-минутной иммобилизации связаны с возрастными особенностями состояния антиоксидантной системы и кислород-зависимых процессов в гепатоцитах старых животных.

Научно-практическое значение работы

Результаты исследований расширяют современные представления о механизмах компенсации энергетической несостоятельности клеток печени разного возраста при стрессе. Полученные данные об изменении роли свободно-радикальных процессов в регуляции обмена веществ при старении указывают на необходимость дифференцированного, в зависимости от возраста, подхода к фармакологической коррекции нарушений в работе антиоксидантной системы печени в условиях воздействия на организм повреждающих факторов внешней среды.

Апробация работы. Основные результаты исследований и положения диссертационной работы, выносимые на защиту, были представлены и доложены на следующих научных конференциях, симпозиумах, съездах: конференция с международным участием "От современной фундаментальной биологии к новым наукоемким технологиям" (Пущино, 2002); Н-й Межвузовской международной научно-практической биохимической конференции молодых ученых " Обмен веществ при адаптации и повреждении" (Ростов-на-Дону, 2003); «Конференция молодых ученых, посвященных памяти академика В.В. Фролькиса» (Киев, 2003); 11-ом 2 съезде геронтологов и гериатров России (Москва, 2003); Международный конгресс «Социальная адаптация, поддержка и здоровье пожилых людей в современном обществе» (Санкт-Петербург, 2007); 9th Annual Meeting of The

Oxygen Society (San Antonio,2002) и 2nd Annual & IUBMB XIX Joint World Congress (Montreal, 2003).

Основные положения, выносимые на защиту:

1. При иммобилизационном стрессе у взрослых и старых крыс происходит снижение уровня энергетического обеспечения ге-патоцитов, связанное с увеличением интенсивности энергозависимых процессов в печени.

3. Низкий уровень базального про- и антиоксидантного статуса клеток печени старых крыс является причиной развития окислительного стресса при иммобилизации. В отличие от взрослых животных у старых крыс интенсификация свободноради-кальных процессов направлена, в первую очередь, на активацию переокисления белков и аскорбат-зависимого перекисного окисления липидов.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 160 страницах машинописного текста, иллюстрирована 15 таблицами и 25 рисунками. Работа состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследований, трех глав собственных исследований, обсуждения результатов, выводов и списка цитируемой литературы, включающего 119 отечественных и 215 зарубежных источников.

Заключение диссертационного исследования на тему "Возрастные изменения энергетического обмена в печени крыс при иммобилизационном стрессе"

выводы

1. При старении происходит снижение уровня энергетического обеспечения печени, которое проявляется в уменьшении содержания АТФ и суммарной концентрации адениловых нуклеотидов, а также в снижении величины энергетического заряда и потенциала фосфорилирова-ния. Одновременно с изменениями в адениловой системе у старых крыс в печени происходит уменьшение активности гексокиназы, повышение соотношения активности гексокиназа/глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы, а также увеличение концентрации глюкозо-6-фосфата.

2. Иммобилизационный стресс сопровождается уменьшением суммарного содержания адениловых нуклеотидов, уровня АТФ и АМФ, а также повышением величины энергетического заряда печени у крыс разного возраста. При этом у старых животных происходит снижение содержания АДФ и накопление неорганических фосфатов в печени, что связано с усилением интенсивности энергозависимых процессов в гепа-тоцитах и сопряжено со стимуляцией свободнорадикальных процессов.

3. Иммобилизация взрослых животных сопровождается увеличением интенсивности гликолиза в печени, что приводит к повышению концентрации конечных (молочная и пировиноградная кислоты) и промежуточных (глюкозо-6-фосфат) продуктов этого метаболического пути. Установлено снижение индекса соотношения концентраций лактата и пиру вата (лактат/пируват) и повышение содержания окисленного НАД при исходной величине уровня восстановленности пула НАД (НАД/НАДН). Накопление продуктов гликолиза в печени взрослых крыс при стрессе не происходит при введении антиоксиданта диме-тилсульфоксида.

4. У старых крыс при иммобилизации не происходит изменения содержания промежуточных продуктов гликолиза и восстановленного НАД, а наблюдается увеличение концентрации молочной кислоты в печени. Вместе с тем у них выявляется активация гексокиназы и глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы. Введение диметилсульфоксида животным этой группы не приводит к изменению уровня накопления молочной кислоты и способствует увеличению содержания глюкозо-6-фосфата и пиро-виноградной кислоты в печени при стрессе.

6. Иммобилизация крыс обеих возрастных групп не сопровождается изменением содержания продуктов перекисного окисления липидов и уровня карбонилированных белков в ткани печени. Однако при иммо-билизационном стрессе происходит накопление карбонилированных белков в митохондриальной и микросомальной фракциях печени, более выраженное у старых животных. При стрессе происходит стимуляция индуцированного перекисного окисления липидов в гомогенатах печени крыс обеих возрастных групп. Интенсивность этого сдвига у старых животных выше, чем у взрослых крыс.

7. При старении в печени сохраняется эффективная система регуляции обменных процессов, обеспечивающая поддержание ее антитоксической функции в условиях иммобилизационного стресса. Механизмы адаптации клеток печени к действию повреждающих факторов стресса у взрослых и старых крыс связаны с различными метаболическими сдвигами, которые у старых животных формируют предпосылки для возникновения "напряжения" в состоянии антиоксидантной системы и кислород - зависимых процессов в гепатоцитах.

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2007 года, Захарченко, Ирина Владимировна

1. Алексеева H.H., Брызгина Т.М., Павлович С.И., Илъчевич Н.Р. Печень и иммунологическая реактивность. Киев: Наук, думка, 1991. 168 с.

2. Анисимов В.Н. Современные представления о природе старения // Успехи совр биол.-2000-Т. 120.- С. 146-164.

3. Анисимов В.Н. Молекулярные и физиологические механизмы старения. СПб.: Наука, 2003.- 468 с.

4. Анисимов В.Н., Арутюнян A.B., Опарина Т.Н. Возрастные изменения активности свободнорадикальных процессов в тканях и сыворотке крови крыс// Рос. Физиол. журн. им. И.М. Сеченова — 1999.— Т.84.- С. 502-507.

5. Артамонова В.Г., Шабалов H.H. Профессиональные болезни: Учебник. 3-е изд. Дполнен, перераб, М.: Медицина.- 1996.- 432с.

6. Арутюнян A.B., Дубинина Е.Е., Зыбина H.H. Методы оценки сво-боднорадикального окисления и антиоксидантной системы организма.- Сб.: Фолиант, 2000.- 104 с.

7. Арутюнян A.B., Прокопенко В.М., Бурмистров С. О. Свободноради-кальные процессы в сыворотке крови, печени и толстой кишке при канцерогенезе, индуцируемом 1,2-диметилгидразином у крыс // Вопр. онкол. 1997. - Т. 26. - С. 618-622.

8. М.Арчаков А.И. Оксигеназы биологических мембран. М.: Наука, 1983.-54 с.

9. Acamuauu В.С.Ферментные методы анализа.-М.:Наука, 1969.-740с.

10. ХЪ.Бажанова Е.Д., Жуков Д.А., Данилова O.A. Различие в реакции старых и молодых крыс на иммобилизационный стресс // Журнал эво-люц. биохим. и физиол.- 1994.- № 4.- С. 541-545.

11. Белоусов Ю.Б., Моисеев B.C., Лепахин В.К. Клиническая фармакология и фармакотерапия. М.: Универсум, 1993. - 398 с.

12. Блюгер А.Ф., Новицкий H.H. Практическая гепатология. Рига: Звайгзне, 1984. 405 с.

13. Богацкая JT.H., Кульчицкий O.K. Энергетическая обеспеченность функций при старении/ЛЗопросы геронтологии. — Киев, 1986. т.8. — С. 23 56.

14. Богацкая JI.H., Кульчицкий O.K., Поташенко Р.И. Липидный состав и свойства плазматических мембран при старении и некоторых видах экспериментальной патологии //Вестник АМН СССР -1985.-N1.-С. 31-34.

15. Виру A.A. Динамика реакции гипоталамо-гипофизарно-надпо-чечниковой системы при стрессе //Успехи современной биологии.-1979.-87,N2.-C.271-278.

16. Гаврилов Л.А., Гаврилова М.С. Биология продолжительности жизни. М.: Наука, 1991. - 280 с.

17. Гичев Ю.П. К вопросу о роли печени в межорганных взаимодействиях // Проблемы общей патологии хронических процессов в клинике и эксперименте. Новосибирск : РИО.СФ АМН СССР. - 1977. - С. 18-34.

18. Голове! 1ко Н.Я., Карасева T.JI. Сравнительная биохимия чужеродных соединений. К.: Наукова думка, 1983. - 200 с.

19. Голубев А.Г. Катехоламины, стероиды и старение нервной и эндокринной систем //Успехи современной биологии.-1989. -т. 108, N3.-С.414-429.

20. Гончар М.В., Монастырский М.В. Микрометод определения содержания неорганического фосфата в крови // Лаб. дело.- 1982.-N1.- С.29-41.

21. Дубинина Е.Е. окислительная модификация белков плазмы крови больных с психиатрическими расстройствами// Вопросы медицинской химии. 2000. - N4. - С. 36 - 47.

22. ЪЪ Дубинина Е.Е. Продукты метаболизма кислорода в функциональной активности клеток (жизнь и смерть, созидание и разрушение). Физиологические и клинико-биохимические аспекты. СПб.: Издательство Медицинская пресса, 2006.- 400с.

23. ЪА.Жежа В.В., Якушев B.C., Давыдов В.В. Состояние гликолиза при некрозе миокарда, воспроизведённом после предварительного воздействия стресса//Вопр. Мед.химии. 1982. - t.28,N 6. - С. 9496.

24. ЪЬЗенков Н.К., Панкин В.З., Менъщикова £.2>.Окислительный стресс. Биохимические и патофизиологический аспекты. М.: МАИК. Наука /Интерпериодика. 2001.-343 с.

25. Ъв.Калиман П.А., Мищенко В.И., Нечипоренко И.П. Возрастные особенности функционирования системы цитрат-пируват в печени крыс// Укр. Биохим. журн. 1980 - т. 52,N3. - С. 285 - 288.

26. Ъ9.Карузина И.И., Арчаков А.И. Выделение микросомной фракции печени и характеристика ее окислительных систем // В кн.: Современные методы в биохимии. М.: Медицина, 1977. С.49-62.

27. Клингер В. Возрастная зависимость индукции энзимов лекарственными средствами // Фармакология и токсикология. 1971. - № 2. -С. 199-209.41 .Конопля Е.Ф., Гацко Г.Г., Мимотин A.A. Гормоны и старение.-Минск: Наука и техника, 1991. 208с.

28. Коркушко О.В., Чеботарев Д. Ф., Калиновская Е.Г. Гериатрия в терапевтической практике. Киев: Здоров'я, 1993. - 840 с.

29. A3.Коркушко О.В., Хавинсон В.Х., Бутенко Г.М., Шатило В.Б. Пептидные препараты тимуса и эпифиза в профилактике ускоренного старения.- СПб: «Наука».- 2002- 202 с.

30. Коркушко О.В., Хавинсон В. X, Шатило В.Б. Пинеальная железа: пути коррекции при старении СПб: «Наука»,- 2006 - 204 с.

31. Крылов A.A., Карпинчик Н.Ф. Нейро- и психосоматические вспекты гепатологии//Успехи гепатологии. 1988.- Вып. 14.- С. 169-175.

32. Кудрявцев Б.Н., Кудрявцева М.В., Сакута Г.А., Штейн Г.И. Кинетика клеточной популяции паренхимы печени человека в разные периоды его жизни // Цитология. 1991. - Т. 33, № 8. - С. 96-109.

33. Лакин K.M., Крылов Ю.Ф. Биотрансформация лекарственных веществ. М.: Медицина, 1981. - 342 с.53 .Ланкин В. 3. Метаболизм липоперекисей в тканях млекопитающих // Биохимия липидов и их роль в обмене веществ. М., 1981. С. 7595.

34. Лемешко В.В., Никитченко Ю.В., Калиман H.A. Ферменты анти-оксидантной системы печени крыс при старении// Украинский биохимический журнал.-1983.-т.55,К5.- С.523-528.

35. Меерсон Ф.З. Адаптация, стресс и профилактика. М.: Медицина, 1981.-278 с.

36. Ю.Меерсон Ф.З. Патогенез и предупреждение стрессорных и ишеми-ческих повреждений сердца. М.:Медицина, 1984. - 270 с.

37. Меерсон. Ф.З., Каган В.А., Прилипко Л.Л. и др. Активация перекис-ного окисления липидов при эмоциональном и болевом стрессе // Бюллетень эксперим. биологии и медицины. 1979. - Т.88, № 10. -С. 404-406.

38. Мелконян M. М., Араратян З.А., Микаэлян Э.М. и др. Интенсивность липидной пероксидации и уровень витамина Е в тканях после иммобилизационного стресса. // Журнал эксперим. и клин, медицины. 1978. - №4 -. С. 25-30.

39. Мечников И.И. Этюды оптимизма. М.:Наука, 1964. 339 с.

40. Микаелян Э.М., Мкртчан С.Л. Перекисное окисление липидов и активность сукцинатдегидрогеназы при стрессе // Журнал экспериментальной и клинической медицины 1987.- Т.27, N 2.- С. 119 -124.

41. Панин Л.Е. Биохимические механизмы стресса.-М.:Наука, 1983.-232с.

42. Парамонова Г.И. Микросомальное окисление лекарственных веществ в печени при старении // Проблемы старения и долголетия.-1991.- Т.1, №2.- С.192-203.

43. Парамонова Г.И. Влияние стресса на систему микросомального окисления печени взрослых и старых крыс // Докл. АН Украины.-1994.-№6.- С.174-177.

44. Парамонова Г.И. Регуляция микросомального окисления в печени при старении: Автореф.дис.д-ра биол.наук:03.00.04 / Инст.геронтологии АМН Украины. К., 1994. - 46 с.

45. Ы.Паранич А.Б., Чайкина Л.А., Ионов И.А. Особенности состава флюоресцирующих пигментов печени и мозга крыс разного возраста //Физиологический журнал.-1989.-т.35,К5.-С.37-42.

46. Посохова Е.А. Микросомальная ферментная система и патология печени //Экспер. и клин.фармакол. 1996.-Т.59, № 4. - С.73-80.

47. Прохорова М.И. Методы биохимических исследований. Л.:"Издат.ЛГУ",1982.-329 с.

48. Резников А.Г. Методы определения гормонов. К. : Наукова думка, 1980.- 536 с.

49. Рот Дж. Изменение действия гормонов и нейромедиаторов при старении //Физиологический журнал-1990.-т.36,N5.-С.82-89.

50. Руководство по геронтологии и гериатрии. (под ред. В.Н. Ярыги-на, A.A. Мелентьева) М.: ГЭОТАР-МЕД, 2003.-T. IV. Клиническая гериатрия .-520 с.

51. Рыжак Г.А., Коновалов С.С. Геропротекторы и профилактика возрастной патологии.- СПб.: Издательство "прайм-ЕВРОЗНАК", 2004.-160 с.91 .Самойлов H. О. Реакция нейронов мозга на гипоксиюю Л.гНаука, 1985.-190 с.

52. СелъеГ. Очерки об адаптационном синдроме. М.: Медгиз, 1960.-254с.

53. Селъе Г. Новое о гормонах и механизмах действия. Киев: Наукова Думка, 1977.- 121 с.

54. СелъеГ. Стресс без дистресса. М., 1979. 123 с.

55. Стальная ИД. Метод определения диеновой конъюгации ненасыщенных жирных кислот //Современные методы в биохимии. -М.Медицина, 1977. -С.66-68.

56. Судаков КВ. Эмоционально-болевой стресс и артериальная гипер-тензия. -М. Медицина, 1976.-240с.

57. Фролькис В.В. Старение и биологические возможности организма. -М.: Наука, 1975.-272 с.

58. Фролькис В.В. Старение. Нейрогуморальные механизмы. -К.:Наукова думка, 1981. 320 с.

59. Фролькис В.В. Нейрогуморальные механизмы старения // Общие проблемы биологии. -Т.4.- Биологические проблемы старения. М.: ВИНИТИ, 1984. - С. 172-216.

60. Фролькис В.В. Старение и увеличение продолжительность жизни. Ленинград: Наука, 1988. - 240 с.

61. Фролькис В.В. Стресс-возраст-синдром //Физиологический журнал. 1991. Т.37, № 3. - С.3-11.

62. Фролькис В.В., Безруков В.В., Кульчицкий O.K. Старение и экспериментальная патология сердечно-сосудистой системы. — Киев: Наукова Думка, 1994. 215 с.

63. Фролькис В.В., Мурадян Х.К Экспериментальные пути продления жизни. Л.: Наука, 1988. - 245 с.

64. Фролькис В.В., Мурадян Х.К. Старение, эволюция и продление жизни. К.:Наукова думка, 1992. - 236 с.

65. Фролькис В.В. Геронтология: прогнозы и гипотезы // Вестн. HAH Украины. 1999. - № 7. С. 28-40.

66. Хавинсон В.Х., Анисимов В.Н. Пептидные биорегуляторы и старение.- СПб.: Наука, 2003. 223 с.

67. Хавинсон В.Х., Анисимов C.B., Малинин В.В., Анисимов В.Н. Пептидная регуляция генома и старение. М.: Издательство РАМН, 2005.-208 с.

68. Хавинсон В.Х., Баринов В.А., Арутюнян А.В., Малинин В.В. Свободнорадикальное окисление и старение. СПб.: Наука, 2003. -327 с.

69. Хавинсон В.Х., Горбунов А.А., Рыжак Г.А. Влияние пептидных биорегуляторов на морфологию паренхиматозных органов. СПб.: ИКФ «Фолиант», 2000. 79 с.

70. Хейфлик Л. Как и почему мы стареем? М.: Вече, 1999.- 432 с.

71. Чеботарев Д. Ф, Коркушко О.В. Стресс и возраст: клинико-фармакологическое исследование И Проблемы старения и долголетия.- 1977.-Т.2,N2.- С.121-126.

72. Чекман И.С. Осложнения фармакотерапии. К.: Здоров'я, 1980.- 235 с.

73. Чекман И. С., Посохова Е.А., Береговая Е.Г. Микросомальная ферментная система организма.- Киев.: 1996. — 80с.

74. Южаков В.В. Ультраструктурный анализ развития гепатоцитов в постнатальном онтогенезе // Автореф. дисс.канд. мед. наук.-Москва. 1976.-19 с.

75. Яковлев Г.М., Новиков B.C., Хавинсон В.Х. Резистентность, стресс, регуляция. Л.: Наука, 1990. 238 с.

76. Adelman R.S. Age-dependent effect in enzyme induction -a biochemical expression of aging // Exp.Gerontol. 1971. - Vol.6, № 1.- P.75-87.

77. Adelman R.S. Age-dependent control of enzyme adaptation // Edv.Gerontol.Res.- 1972. Vol.4, № 1. - P. 1-23.

78. Allen R.G., Tresini M. Oxidative stress and gene regulation // Free Radical. Biol. Med.- 2000.- 28,N3. P. 463-499.

79. Amehta F., Ferrante F., Lucreziotti R., at al. Reduction lipofuscin accumulation in senescent rat brain by long-term acetyl-L-carnitine treatment // Arch. Gerontol, Geriatr.-1989.-vol.9,N2. P. 147-153.

80. Ames B.N., Shigenaga M.K., Hagen T.M. Mitochondrial decay in aging//Biochim. Biophys. Acta. 1995.- vol.1271,N 1. -P.165-170.

81. Amici D., Moraldi N., Marsili G. Regulatory activity of DNA-binding peptides of some metabolic pathways altered in aging// Nech.Age. Dev. 1983. - vol.23,N3-4. - P.215 - 234.

82. Anantharaju A., Feller A., Chedid A. Aging Liver. A review // Gerontology.- 2002.- 48,N 6.- P.343-353.

83. Ando M., Katagiri K., Yamamoto S. et al. Age-related effect of heat stress on protective enzymes for peroxides and microsomal monooxi-genase in rat liver // Environ. Health. Perspect.- 1997. — Vol.105, N7.- P. 726-733.

84. Anson R.M., Senturker S., Dizdaroglu M., Bohr V.A. Measurement of oxidatively induced base lesions in liver from Wistar rats of different ages// Free Radical Biol. Med. 1999. - 27,N3-4. - P. 456 - 462.

85. Armbrecht H.J., Birnbaum L.S., Zenser T.V., Davis B.B. Changes in hepatic microsomal membrane fluidity with age //Exp. Gerontol. -1982.-Vol.17, № l.-P. 41-48.

86. Arora S., Kassarjian Z, Krasinski S.D., Croffey B., Kaplan M.M., Russel R.M. Effect of age on test of intestinal and hepatic function in healthy humans // Gastroenterology. 1989.- Vol.96, N6.- P. 1560 -1565.

87. Atkinson D.E. The energy charge of the adenylate pool as regulatory parameter. Interaction with feed-back modifiers// Biochemistry. 1968. - vol. 7. - P. 4030 - 4034.

88. Barbieri M., Rizzo M.R., Manzella D. et al. Glucose regulation and oxidative stress in healthy centenarians// Exp. Gerontol.- 2003.- vol.38, N 1-2.-P. 137-143.

89. Beal M.F. Oxidatively modified proteins in aging and disease // Free Radical Biol. Med. 2002. - Vol. 32,N9. - P. 797-803.

90. Bejma J., Ramires Ji L.L. Free radical generation and oxidative stress with aging and exercise: differential effects in the myocardium and liver// Acta Physiol. Scand. 2000.- vol.169, N 4.- P. 343 - 351.

91. Benzi G., Ginffrida A.M. Changes of synaptosomal energy metabolism induced by hypoxia during aging// Neurochem.Res. 1987. -vol. 12,N2. - P. 149- 157.

92. Bergendi L, Benes L, Durackova Z, Ferencik M. Chemistry, physiology and pathology of free radicals// Life Sci.- 1999. vol. 65, N 18-19.-P. 1865-1874.

93. Betteridge DJ. What is oxidative stress?// Metabolism. 2000. -vol. 49,N2 Suppl 1. -P.3-8.

94. Bindoli A. Lipid peroxydation in mitochondria //Free Radical. Biol. Med.-1988.-5.-P.247-261.

95. Birnbaum L.S. Altered hepatic drug metabolism in senescent mice // Exp.Geront. 1980. - Vol.14. -P. 259-267.

96. Birnbaum L. S., Baird M. B. Induction of hepatic mixed function oxidases in senescent rodents// Exp.Gerontol. 1978a, Vol.13, № 5.-P.299-303.

97. Bjorksten I., Tenku H. The crosslinking theory of ageing // Exp. Gerontol.-1990.-vol.25,N2.-P.91-95.

98. Blanco P., Machado A., Satrustegui J. Variation due to hyperoxia and ageing in the activities of glutatione-S-transferase and NADPH-cytochrome c-reductase // Mech.Ageing.Dev. 1987.- Vol.39, № 1. - P. 11-19.

99. Brody J.A., Grant M.D. Age-associated diseases and conditions: implications for decreasing late life morbidity // Aging. 2001.- 13,N 2.-P. 64-67.

100. Cadenas E., Davies K.J. Mitochondrial free radical generation, oxidative stress, and aging// Free Radical Biol. Med.- 2000. vol.29, N3-4. -P. 222-230.

101. Calderini G. Bonetti G. Battistella A. Biochemical changes of rat brain membranes with ageing //Neurochem. Res.-1983.-vol.8,N4.-P.438-492.

102. CandF., Verdetti J. Superoxide dismutase, glutathione peroxidase, catalase, and lipid peroxidation in the major organs of the aging rats// Free Radical Biol. Med. 1989. - vol.7,N1. - P. 59-63.

103. Chatham J.C., Gilbert H.F., Radda G.K. The metabolic consequences of hydroperoxide perfusion on the isolated rat heart//Eur.J.Biochem. 1989. - vol.184. - P. 657 - 662.

104. Chen J. J., Bertrand H., Yu B.P. Inhibition of adenine nucleotide translocator by lipid peroxidation products// Free Radical. Biol. Med. -1995. vol. 19,N5. - P. 583-590.

105. Chen J., Schenker S., Frosto T.A., Henderson G.L Inhibition of cytochrome c oxidase activity by 4-hydroxynonenal (HNE). Role of HNE adduct formation with the enzyme subunits // Biochim. Biophys. Acta -1998. vol.1380, N 3. - P. 336-344.

106. Chen J. J., Yu B.P. Detoxication of reactive aldehydes in mitochondria: effect of age and dietary restriction // Aging. 1996. - 8. - P. 334 -340.

107. Cladinin M.T., Junis S.M. Does mitochondrial ATP synthesis decline as a function of change in the membrane environment with ag-ing//Mech. Age Dev. 1983 . - vol.22,N3-4. - P. 205 - 208.

108. Cutler R.G. Antioxydants and longitivity of mammalian spe-cies//Mol. Biol. Aging. Proc. -N.Y., London, 1985.- P. 15-201.

109. Davies M.J., Fu S., Wang H., Dean R.T. Stable markers of oxidant damage to proteins and their application in the study of human dis-ease//Free Radical Biology and Medicine. 1999.- vol.27, N11-12.-P.1151 - 1163.

110. Devasagayam T.P.A., Pashpendraiv C.K. Kinetics of NADPH-induced lipid peroxidation in rat liver microsomal fractions as a function of age //Biochem.J.-1989.-vol.l 1,N6.- P.833-839.

111. Davydov V.V., Shvets V.N. Lipid peroxidation in the heart of adult and old rats during immobilization stress // Exp.Geront.- 2001.-Vol.36.- P.l 155-1160.

112. Davydov V.V., Shvets V.N. Adenine nucleotide and creatine phosphate pool in adult and old rat heart during immobilization stress // Gerontology. 2002.- vol.48, N2.-P. 81-83.

113. Davydov V. V, Shvets V.N. Age-dependent differences in the stimulation of lipid peroxidation in the heart of rats during immobilization stress// Exp.Gerontol. 2003. - vol.38,N4. - P. 693 - 998.

114. Docherty I.R. Cardiovascular responses in aging // Pharmacol. Rev. -1990.-Vol.42.- P. 103- 126.

115. DrouetM., Lauthier F., Charmes J.P. et al. Age-associated changes in mitochondrial parameters on peripheral human lympho-cytes//Exp.Gerontol. 1999. - vol.34,N7. - P. 843 - 852.

116. Droge W. Free radicals in the physiological control of cell func-tion//Physiol.Rev. 2002. - vol.82,N1. - P. 47 - 95.

117. Dunaway G.A., Kasten T.P., Crabtree S., Mhaskar Y. Age-related changes in subunit composition and regulation of hepatic 6-phosphofructo-1-kinase// Biochem. J.- 1990. vol.266,N3. - P. 823827.

118. Dumas C., Loi C.M., Cusack B.J. Hepatic drug metabolism and aging // Clin. Pharmacokinet. -1990.-Vol.19, № 5. P.359-389.

119. El-Hassan A., Zubairu S., Hothersall J.S., Greenbaum A.L. Age-related changes in enzymes of rat brain. 1. Enzymes of glycolysis, the pentose phosphate pathway and lipogenesis//Enzyme.-1981.- vol.26,N2. -P. 107-112.

120. Esterbauer H., Zollner H. Metabolism of the lipid peroxidation product 4-HNE by isolated hepatocyfes and by liver cytosolic fractions // Biochem. J. 1985 .-28, N 2 . - P. 363-373.

121. Faff J., Frankiewich-Jozko A. Effect of ubiquinone on exercise-induced lipid peroxidation in rat tissues // Eur. J. Appl. Physiol. Occup. Physiol. 1997.- vol.75, N5.- P. 413 - 417.

122. Faroogni M., Day W. W., Zamorano D.N. Glutathione and lipid peroxidation in the ageing rat//Comp. Biochem and Physiol. -1987.-vol.l388,Nl.- P.177-180.

123. Fu L.S., Peng R.X. Effect of ageing on hepatic biotransformation function and microsomal membrane fluidity in rats // Yao.Hsueh.Hsueh.Pao. 1992. - Vol.27, № 9. -P.645- 650.

124. Fukuda H., Iritani N. Effect of aging on changes in substrate and effector levels of rat-liver glycolytic and lipogenic enzymes during induction// Biochimio Biophys Acta.- 1984. vol.795,N1. - P.79-84.

125. Gasbarrini A., Pasini P., Nardo B. et al. Chemiluminescent real time imaging of post-ischemic oxygen free radicals formation in livers isolated iron young and old rats// Free Radical Biol. Med . 1998. - vol. 24,N2. - P. 211 - 216.

126. Gerber E., Bredy A., Kahl R. Enhancement of glycolysis and C02 formation from glycerol by hydroxyl radical scavengers in rat hepato-cytes// Res. Commun. Mol. Pathol. Pharmacol.- 1996. vol. 94,N1. - P. 63-71.

127. Gil P., Faricas F., Casado A. et al. Malondialdehyde: A Possible Marker of Ageing // Gerontology. 2002. - vol. 48,N4. - P. 209-214.

128. Gille LLP. Vrije radicalen en veroudering IIPharm Urekbl.-1990.-vol.125.- P.523-528.

129. Gillis M.K., Chylack L.T. Jr., Cheng H.M. Age and the control of glycolysis in the rat lens// Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. -1981. -vol.20,N4. P.457-466.

130. Gnaiger E., Méndez G., HandS.C. High phosphorylation efficiency and depression of uncoupled respiration in mitochondria under hypoxia// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. - vol. 97,N1. - P. 11080-11085.

131. Gonca A.K., Gonu L.B., Akbulut H. Differential effect of pharmacological doses of melatonin on malondialdehyde and glutathione levels in young and old rats // Gerontology. 1999. - vol. 45,N2. - P. 67 - 71.

132. Gonzales F.J., Gelboin H.V. Role of human cytochrome P-450s in risk assessment and susceptibility to environmentally based disease// J.Toxicol.environ.Health. 1993. - Vol.40, № 2-3. - P.289-308.

133. Gretler R.G. Peroxide producing potential of tissue; universal correlation with longitivity of mammalian species //Proc. Nat. Acad. Sci. USA.-1985.-vol.82,N14.- P.4798-4802.

134. Groussard C., Morel /., Chevanne M. et al. Free radical scavenging and antioxidant effects of lactate ion: an in vitro study// J. Appl. Physiol.- 2000. vol.89,N1. - P. 169-175.

135. Hagopian K., Ramsey J. J., Weindruch R. Influence of age and caloric restriction on liver glycolytic enzyme activities and metabolite concentrations in mice// Exp. Gerontol. 2003. - vol.38, N3. - P.253-266

136. HansfordR.G. Bioenergetics in ageing //Biochem. Biophys. Acta. Rev. Bioenergetics. 1983. -vol. 726, N 1. -P.42-76.

137. Harman D. Aging: A theory based on free radical and radiation chemistry // J.Gerontol. 1956.- 11.- P. 298 - 300.

138. Harman D. The ageing process //Proc.Natl.Acad. Sci USA. 1981. -78,N11, -P. 7124-7128.

139. Harman D. Role of free radicals in ageing and diseases Relat. between Nors Aging and Desease Symp. Amer. Ageing. Assoc.(N.Y, Sept. 1982.)-N.Y,1985.-N4.- P.45-84.

140. Hayashi T., Miyazawa T. Age-associated oxidative damage in microsomal and plasma membrane lipids of rat hepatocytes // Mech.Age Dev. 1998. - vol.100,N 3. - P. 231 - 242.

141. Henderson G.I., Speeg P.V.Ir., Roberts R.K. et al. Effect of ageing on hepatic elimination of cimetidine and subsuquent interaction of ageing and cimetidine on aminopyrine metabolism // Biochem.Pharmacol. -1988. Vol.37, № 13. - P.2667-2673.

142. Hosokawa M. A higher oxidative status accelerates senescence and aggravates age-dependent disorders in SAMP strains of mice// Mech. Ageing Dev.- 2002.- vol. 123,N12. P. 1553-1561.

143. Hoyer S. The effect of age on glucose and energy metabolism in brain cortex of rats//Arch.Gerontol. and Geriatr. 1985. - vol.4, N3. -P. 193-203.

144. Hsin-Chen Lee, Yau-Huei Wei. Mitochondrial Role in life and death of the ceMJournal of Biomedical Sci. 2000. - vol.7,N1. - P.2 - 15.

145. Huynh H.t., Teel R. W. Effect of pycnogenol on the microsomal metabolism of the tobacco-specific nitrosamine NNK as a function of age // Cancer Lett. 1998.-Vol.132, № 1-2. - P. 135-139.

146. Iber H., Li-Masters T., Chen O. et al. Regulation of hepatic cytochrome P450 2C11 via camp: implications for down-regulation in diabetes, fasting, and inflammation // J.Pharmacol. Exp. Ther. 2001.-vol.297,N 1.- P. 174- 180.

147. Imre S., Firbas J.H., Noble R.C. Reduced lipid peroxidation capacity and desaturation as biochemical markers of aging// Arch. Gerontol. Geriatr.- 2000.-vol.31, N1. -P.5-12.

148. Iossa S., Lionetti L., Mollica M.P. et al. Oxidative activity in mitochondria isolated from rat liver at different stages of development//Cell Biochem. Funct. 1998. - vol. 16,N4. - P. 261 -268.

149. Irwin W.A., Gaspers L.D., Thomas J.A. Inhibition of the mitochondrial permeability transition by aldehydes// Biochem. Biophys. Res. Commun. 2002. - vol.291, N2. - P.215-219.

150. Janero D.R., Hreniuk D., Sharif H.M. Hydroperoxide-induced oxidative stress impairs heart muscle cell carbohydrate metabolism// Am. J.Physiol. Cell Physiol. 1994.-vol.266, N1.-P. C179-C188.

151. Jansen P.L. Liver disease in the elderly// Best. Pract. Res. Clin.Gastroenterol.- 2002 . vol.16,N1. -P.149-158.

152. Jaworek D., Gruber W., Bergmeyer H.U. Adenosine-5'- diphosphate and adenosine 5' - monophosphate. In Bergmeyer H.U. (ed): Methods of enzymatic analysis. New York; London, Academic Press Inc., 1974.-P. 2127-2131.

153. Jayaraj A., Diller T.W. The influence of age on the activation and metabolism of aflatoxin Bi by liver from male and female rats // Fed.Proc. 1981. - Vol.40. - P. 1577.

154. Joseph J.A., Denisova N.A., Bielinski D. et al. Oxidative stress protection and vulnerability in aging: putative nutritional implications for intervention//Mech. Ageing Dev.- 2000. vol. 116,N2-3. - P. 141-153.

155. Joshina Kyoji. Serum and liver lipid peroxide levels in the senescence-accelerated mouse//Memb.Namarn.Cell.Thechn. -1989. -vol.24.-P107-110.

156. Kantrow S.P., Tarto L.G., Piantadosi C.A. Oxidative stress and adenine nucleotide control of mitochondrail permeability transition// Free Radical Biol. Med. 2000. - vol.28,N2. - P. 251- 260.

157. Kao J., Hudson P. Induction of the hepatic cytochrome P-450 dependent monooxygenase system in young and geriatric rats // Biochem. Pharmacol. 1980.-Vol.29.-P. 1191-1194.

158. Kapahi P., Boulton M.E., Kirkwood T.B.L. Positive correlation between mammalian life span and cellular resistance to stress// Free Radical Biol. Med. 1999. - vol.26,N 5-6. - P. 495 - 500.

159. Kasapoglu M., Ozben T. Alterations of antioxidant enzymes and oxidative stress markers in aging// Exp. Gerontol.- 2001. vol.36,N2. -P. 209-220.

160. Kawase M., Kondoh C., Matsumoto S. et al. Contents of D-lactate and its related metabolites as well as enzyme activities in the liver, muscle and blood plasma of aging rats// Mech. Ageing Dev.- 1995. -vol.84,N1. -P.55-63.

161. Keca H., Tauchi H., Sato T. Fine structural analysis of lipofuscin in various tissues of rats of different ages// Mech. Ageing and Dev.-1985.-vol.33,Nl.-P.77-93.

162. Kim J.H., Woldgiorgis G., Elson C.E., Shrago E. Age-related changes in respiration coupled to phosphorylation hepatic mitochondria //Mech.Age.Dev. 1988. - vol.46,N1-3. -P.263 -277.

163. Kitani K. The role of the liver in pharmacokinetic and pharmacodynamic alterations in the elderly // In: Theraeutics in the Elderly/Ed. K.O'Mally and J.L.Waddington. Amsterdam: Elsevier Sci. Publ. B.V. -1985. - P.19-34.

164. Kitani K. Drug and aging liver // Life Chemistry Reports. 1988. -Vol.6,№2.-P. 143-230.

165. Koie M., Tanaka M., Hayase K et al. Effect of dietary protein quality on the brain protein synthesis rate in aged rats// J.Nutr.Sci.Vitaminol. 1999. - vol.45,N4. - P. 481 -489.

166. Konstandi M., Marselos M., Radon-Camus A.M., Johnson E., Lang M.A. The role of stress in the regulation of drug metabolizing enzymes in mice // Eur.J.Drug Metab.Pharmacokinet.- 2000. Vol.23, №4,-P.483-490.

167. Kostanidi M., Johnson E., Lang M.A. et al. Stress modulates the enzymatic inducibility by benzoalpha.pyrene in the rat liver // Pharmacol. Res.- 2000.- vol. 42,N3.- P. 205 211.

168. Kovacs P., JuranekL., Stankovicova T., Svec P. Lipid peroxidation during acute stress // Pharmazie. 1996. - vol. 51, N1. - P. 51 - 53.

169. Kristal B.S., Park B.K., Yu B.P. 4-Hydroxyhexenal Is a Potent Inducer of the Mitochondrial Permeability Transition // JBC. 1996. -vol.271,N11.-P. 6033-6038.

170. Kuo C.L., Vaz A.D., Coon M.L. Metabolic activation of trans-4-hydroxy-2-nonenal, a toxic product of membrane lipid peroxidation and inhibitor of P450 cytochromes // J.Biol.Chem. 1997.- vol. 272,N 36.-P. 22611 -22616.

171. Kwong L.K., Sohal R.S. Age-related changes in activities of mitochondrial electron transport complexes in various tissues of the mouse// Arch.Biochem.Biophys. 2000. - vol.373,N1. - P. 16 - 22.

172. Label C.P.,Bondy S.C. Persistent protein damage despite reduced oxygen formation in the aging brain //Int.J.Dev. Neurosci.-1991.-vol.9,N2.-P. 136-146.

173. Laganiere S., Yu B.P. Modulation of membrane phospholipid fatty acid composition by age and food restriction// Gerontology. 1993. -vol.39,N1.-P. 7-18.

174. Lakkata E.G. Age-related alteration in the cardiovascular response to adrenergic mediated stress // Fed.Proc. 1980. - Vol.39. - P.3173-3177.

175. Lamy P.P. Drug interactions and the elderly a new perspective // Drug Intel. Clin. Pharmacol. - 1980. - Vol.14, № 7-8. - P.513-515.

176. Lamy P.P. Physiological changes due to age.Pharmacodynamik changes of drug action and implications for therapy // Drugs Aging. 1991. -Vol.l,№ 5.-P.385-404.

177. Laurent A., Perdu-Durand E., Alary J. et al. Metabolism of 4-hydroxynonenal, a cytotoxic product of lipid peroxidation, in rat precision-cut liver slices // Toxicol. Lett.- 2000. vol. 114, N3. - P. 203-214.

178. Le Couteur D.G., McLean A.J. The aging liver. Drug clearance and an oxygen diffusion barrier hypothesis // Clin.Pharmacokinet. -1998. -Vol.34, № 5. -P. 359- 373.

179. Le Counter D.G., Hichley H.M., Harvey P.J., McLean A.J. Oxidative injury reproduced age-related impairment of oxygen-dependentdrug metabolism/ZPharmacol. Toxicol. 1999. - vol.85,N5. - P. 230 -232.

180. Leeuwenburgh C., Hansen P., Shaish A. et al. Markers of protein oxidation by hydroxyl radical and reactive nitrogen species in tissues of aging rats// Am. J. Physiol. 1998. - vol. 274,N2. - P.453-461.

181. Lehninger A. Principles of biochemistry. -Worth Publishers Inc.:N.Y.,London, 1983. 1056p.

182. Lenaz G., Bovina C., D'Aurelio M. et al. Role of mitochondria in oxidative stress and aging// Ann. N Y Acad. Sci.- 2002. vol.959. - P. 199-213.

183. Leslie S.W., Chandler L.J., Barr E.M., Farrar R.P. Reduced calcium uptake by rat brain mitochondria and synaptosomes in response to aging//Brain Res. 1985. - vol.329, N1-2. - P. 177 - 183.

184. Lesnefsky E.J., Gudz T.I., Moghaddas S. et al. Aging Decreases Electron Transport Complex III Activity in Heart Interfibrillar Mitochondria by Alteration of the Cytochrome c Binding Site// J. Mol. Cell. Cardiol.- 2001.-vol.33,N l.-P. 37-47.

185. Levine R.L. Carbonyl modified proteins in cellular regulation, aging, and disease// Free Radical Biol. Med. 2002. - Vol. 32,N9. - P. 790-796.

186. Levine R.L. , Stadtman E.R. Oxidative modification of proteins during aging// Exp. Gerontol. 2001. - vol. 36,N9. - P. 1495-1502.

187. Linnane A.W.,Kovalenko S.,Gingold E.B. The universality of bio-energetic disease. Age-associated cellular bioenergetic degradation and amelioration therapy//Ann N Y Acad Sci . 1998. - vol. 854.- P.202-213.

188. Linton S., Davies M.J., Dean R.T. Protein oxidation and ageing// Exp. Gerontol. -2001. vol. 36,N9.-P. 1503-1518.

189. Liu J., Mori A. Stress, aging, and brain oxidative damage// Neurochem. Res. 1999. - N11. - P. 1479-1497.

190. Locke M., Tangiiay R.M. Diminished heat shock response in the aged myocardium// Cell Stress Chaperones. 1996. - vol. l.-P. 251 — 260.

191. Loi C.M., Vestal R.E. Drug metabolism in the elderly // Pharmacol. Ther. 1990. - Vol.36, № 1. - P. 131-149.

192. Lowry O.H., Rosenbrough, A.L.Farr, Rendall R.I. Protein measurement with the Pholin phenol reagent // J.Biol.Chem. 1955. -Vol.193, № 1. - P.265-267.

193. Lunec J., Holloway K.A., Cooke M.S. et al. Urinary 8-oxo-2'-deoxyguanosine: redox regulation of DNA repair in vivo?// Free Radical. Biol.Med. 2002. - vol. 33,N 7. - P. 875-885.

194. Mahdi H. Neuronal lipofuscinogenesis following restraint stress: correlation with lipid peroxydation //Arch.Bicohem.-1985.-vol.96,N3.-P.354-355.

195. Mahon M.M., James O.F. Liver disease in the elderly// J. Clin. Gastroenterol.- 1994. vol. 18,N4. - P. 330-334.

196. Mallet R.T., Squires J.E., Bhatia S., Sun J. Pyruvate restores contractile function and antioxidant defenses of hydrogen peroxide-challenged myocardium // J. Mol. Cell Cardiol. 2002. - vol.34, N9. -P.l 173-1184.

197. McMartin D.N., O'Connor J.A., Fasco M.J., Kaminsky L.S. Influence of aging and induction on rat liver and kidney microsomal mixed function oxidase systems I I Toxicol. Appl. Pharmacol. 1980. - Vol.54. -P. 411-419.

198. Meagher E.A., Fitzgerald G.A. Indices of lipid peroxidation in vivo: strengths and limitation // Free Radical Biol. Med. — 2000. — 28,N12. P. 1745-1750.

199. Melov S., Coskun P.E., Wallace D.C. Mouse models of mitochondrial disease, oxidative stress, and senescence// Mutat. Res.- 1999. vol. 434.-P. 233-242.

200. Mikami T., Yoshino Y., Ito A. Does a relationship exist between the urate pool in the body and lipid peroxidation during exercise?// Free Radic. Res. 2000: - vol.32, N1. - P. 31 -39.

201. Miyazava T., Suruki T., Fujmoto K. Phosphatidylholine hydroperoxide accumulation in the liver and brain of ageing rats //Free Radical Biol, and Med.-l 990.-suppl. 1P. 122.

202. Miyazawa T., Suzuki T., Fujimoto K. Age-dependent accumulation of phosphatidylcholine hydroperoxide in the brain and liver of the rat // Lipids 1993. - vol.28,N9. - P. 789 - 793.

203. Moghaddas S., Stoll M.S.K., Minkler P.E. et al. Preservation of Cardiolipin Content During Aging in Rat Heart Interfibrillar Mitochondria // J.Gerontol. 2002. - vol.57. - P. B22-B28.

204. Mubagwa K., Flameng W. Adenosine, adenosine receptors and myocardial protection// CardioRes. 2001. - vol. 52 ,N1. - P. 25-39.

205. Muller G., Fruhant A., Mathias B. Thiobarbiturasure-positive substanzen als indikatoren der lipid peroxidation. // Z.gzamte. um. Med.und grenzgeb.-1986.-41 ,N24.-S .673-676.

206. Muller-Hocker J., Aust D., Rohrbach H. et al. Defects of the respiratory chain in the normal human liver and in cirrhosis during aging// Hepatology 1997. vol.26,N3. - P. 709-719.

207. Muravchick S. The effect of aging on anesthetic pharmacol-ogy//Acta Anaesthesiol. Belg. 1998. - vol. 49,N2. - P. 79 - 84.

208. Murrel W., Crane D., Masters C. Developmental variations in the interactions of pyruvate kinase and glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase with subcellular structure in cavian tissues// Mech. Ageing Dev.- 1994. vol. 74, N3. - P. 177-201.

209. Musatov A., Carroll C.A., Liu Y.C. et al. Identification of bovine heart cytochrome c oxidase subunits modified by the lipid peroxidation product 4-hydroxy-2-nonenal // Biochemistry 2002. - vol. 41, N25. -P. 8212-8220.

210. Myamoto A., Araiso T., Koyama T., Ohshika M. Membrane viscosity correlates withadrenergic signal transduction of the aged rat cerebral cortex // J. Neurochem.-1990,-vol.55.- P.70-75.

211. Nagui A., Chause B. Reactive oxygen intermediates biochemistry // Ann. Rev. Biochem.- 1986. .-55.- P. 137-166.

212. Nakahara H., Kann T„ Tinai Y. Mitochondrial dysfunction in the senescence accelerated mouse// Free radical. Biol. Med. - 1998. -vol.24,N l.-P. 85-92.

213. Nandy K., Mostofsky P., Nandy L.K. Lipofuscin pigment as a marker of neuronal aging //Age.-1989.-vol.l 1,N4.- P. 183.

214. Navarro-Arevalo A., Sanchez-del-Pino M.J. Age and exercises- related changes in lipid peroxidation and Superoxide dismutase activity in liver and soleus muscle tissies of rat // Mech. Ageing. Dev.- 1998.-vol.l04,Nl.- P.91-102.

215. Nohl H. How is the increase in age dependent oxygen activation triggered //Proc. Wiener Symp. Exp. Gerontol. (Wien,Apr. 9.1986.) -Wien, 1986.-P.259-268.

216. Nohl H. Deviation of linear electron flow in mitochondria as ultimate cause of age-dependent axidative stress //Age.- 1990.-vol.l3,N4.-P.104.

217. Nohl H., Staniek K., Gille L. Imbalance of oxygen activation and energy metabolism as a consequence or mediator of aging // Exp. Gerontol.- 1997.- 32,N4-5. P. 485 - 500.

218. Noy N., Schwartz H., Gafni A. Age-related changes in the redox status of rat muscle cells and their role in enzyme aging//Mech. Ageing Dev. 1985. - vol.29. - P. 63- 69.

219. Nulton-Persson A. C., Szweda L.I. Modulation of Mitochondrial Function by Hydrogen Peroxide// J.Biol.Chem. 2001. - Vol. 276,N 26. -P. 23357-23361.

220. Oesterheld J.R. A review of developmental aspects of cytochrome P450 // J.Child.Adolesc.Psychopharmacol.- 1998.- Vol.8, № 3.- P.161-174.

221. Olgun A, AkmanS., Serdar M.A., Kutluay T. Oxidative phosphorylation enzyme complexes in caloric restriction// Exp. Gerontol. 2002. -vol. 37, N5.-P. 639-645.

222. Pacifici R.E., Pavies K.I.A. Protein, lipid and DNA repair systems in oxidative stress; the free radical theory of ageing revisied //Gerontology.-1991 .-vol.3 7,N1 .-P. 166-180.

223. Pantke U., Volk T., Schmutzler M. et al. Oxidized proteins as a marker of oxidative stress during coronary heart surgery // Free Radical Biology and Medicine. 1999.- vol.27, N9-10.- P. 1080 - 1086.

224. Parrado J., Bougria M., Ayala A et al. Effect of aging on the various steps of protein synthesis: fragmentation of elongation factor 2.//Free Radical Biol. Med. 1999. - vol.26,N3-4.- P. 362 - 370.

225. Pastoris O., Boshi F., Verri M. et al The effect of aging on enzyme activities and metabolite concentrations in skeletal muscle from sedentary male and female subjects// Exp.Gerontol. 2000. - vol.35,N 1.- P. 95 - 104.

226. Pastoris O., Foppa P., Catapano M., Dossena M. Metabolite concentrations in the skeletal muscle of different aged rats submitted to hypoxia and pharmacological treatment with nicergoline // Exp.Gerontol. -1998.-vol.33,N4.- P. 303 -318.

227. Pepen G., Vannucchi M.G., Giovanneli L. Effect of phosphatidyl-serine on brain cholinergic //Phospholipids Nervous syst.-Padova: Berlin, 1989.-P.233-240.

228. Pesce V., Cormio A., Fracasso F. et al. Age-related mitochondrial genotypic and phenotypic alterations in human skeletal muscle// Free Radical Biol. Med.-2001.- vol. 30, N11.-P. 1223-1233.

229. Podrazik P.M., Schwartz J.B. Cardiovascular pharmacology of ag-ing//Cardiol. Clin. 1999. - vol. 17,N1. - P. 17-34.

230. Pryor W. Free radicals in biology. -N.Y., San. Francisco, London: Acad Press, 1976. -318 p.

231. Rattan S.I.S. Synthesis, modifications, and turnover of proteins during aging//Exp.gerontol. 1996. - vol.31,N 1-2. - P. 33-47.

232. Rawkins M.D., James F. W., Williams F.M. et al. Age and metabolism of drugs // Quart.J.Med. 1987. - Vol.63, № 243. - P.545-547.

233. Regev A., Schiff E.R. Liver disease in the elderly // Gastroenterol. Clin. North. Am.- 2001. vol. 30, N2. - P. 547-563.

234. Reinheckel T., NoackH., LorenzS., Wiswedel I., Augustin W. Comparison of protein oxidation and aldehyde formation during oxidative stress in isolated mitochondria// Free Radic. Res. 1998. - vol.29, N4. -P.297-305.

235. Rice-Evans C.A., Diplock A.T., Symons M.C.R. Laboratory techniques in biochemistry and molecular biology: techniques in free radical research. Elsevier Inc., Amsterdam, 1991.- 352 p.

236. Rikans L.E., Cai Y. Age-associated enhancement of diquat-induced lipid peroxidation and cytotoxicity in isolated rat hepatocytes // J.Pharmacol. Exp.Ther. 1992. - vol. 262, N1. - P. 271 -278.

237. Rikans L.E., Notley B.A. Differential effects of aging on hepatic microsomal monooxygenase induction by phenobarbital and betanaphto-flavone // Biochem. Pharmacol. -1982. -Vol.31, № 14. -P. 2339- 2343.

238. Rosen G.H., Burber H.T., Rauckman E.I. Disruption of erythrocyte membranal organization by superoxide //J.Biol. Chem.- 1983.-vol.258,N4.-P.2225-2228.

239. Roth G.S. Changes in tissue responsiveness to hormones and neurotransmitters during aing// Exp.Gerontol. 1995. - vol. 30,N 3-4. - P. 361 -368.

240. Rothstein M. The alteration of enzymes in aging animals//Mol.Biol. Aging. Proc. Symp. ( N.Y., sept. 30 Oct.3., 1984) - N.Y., London, 1985.-P. 193-204.

241. Rustin P., von Kleist-Retzow J.C., Vajo Z, Rotig A., Munnich A. For debate: defective mitochondria, free radicals, cell death, aging-reality or myth-ochondria?// Mech .Ageing Dev. 2000. - vol.114, N3. - P.201-206.

242. Sastre J., Pallardo F. V., Pla R. et al. Aging of the liver: age-associated mitochondrial damage in intact hepatocytes//Hepatology. -1996. -vol.24,N5.-P.l 199-1205.

243. Satrustegni I., Richter G. The role of hydroperoxides as calcium release agents in rat brain mitochondria // Arch.Biochem. and Biophys.-1984.-vol.233, N2.-P.736-740.

244. Sawada M., Carison J.C. Changes in superoxide radical and peroxide formation in the brain, heart, and liver during the lifetime of the rat // Mech. Ageing Dev. 1987. - vol.41, N1-2. - P. 125 - 137.

245. Schefer V., Talan M.I. Oxigen consumption in adult and aged C57BL/6J mice during acute treadmill exercise of different intensity// Exp.Gerontol. 1996.-vol. 31, N3.-P. 387 - 392.

246. Schmucker D.L. Age-related changes in drug disposition: an update // Pharmacol.Rev. 1985. - Vol.37. - P.133-148.

247. Schmucker D.L. Aging and the liver: an update //J. Gerontol. A. Biol. Sci. -1998. -Vol.53, № 5. -P. 15- 20.

248. Schmucker D.L., Vessey D.A., Wang R.K., James J.L., Maloney A. Age-dependent alterations in the physicochemical properties of rat liver microsomes //Mech. Ageing. Dev. -1984. -Vol.27, № 2. -P. 207- 217.

249. Schmucker D.L., Woodhouse K.W., Wang R.K., Wynne H., James O.F., McManus M., Kremers P. Effects of age and gender on in vitro properties of human liver microsomal monooxygenases //Clin Pharmacol. Ther. -1990. -Vol.48, № 4. -P. 365- 374.

250. Seskin S., Alptekin N., Dorgu-Abbasoglu S. et al. The effect of chronic stress on hepatic and gastric lipid peroxidation in long-term depletion of glutathione in rats // Pharmacol. Res. 1997. - vol.36, N1. -P. 55-57.

251. Sevanian A. Peroxidative alteration of membrane structure and increased phospholipase A hydrolysis //J.Amer. Oil. Chem. Soc.-1986.-vol. 63,N4.-P.419.

252. Sharma P., Rupar C.A., Rip J. W. Consequences of Aging on Mitochondrial Respiratory Chain Enzymes in Cultured Human Fibroblasts Treated with Ascorbate//Gerontology. 1998. - vol.44,N2. - P. 78-84.

253. Shinitzky M. Patteien of lipid changes in membranes of the aged brain//Gerontology. 1987.-vol.33 .-P. 149-154.

254. Shiotahi A., Watanabe T., Matsnoka L, Nakamura T. Comparative studies on the effects of linoleate and methyl linoleate and reactivities of rat heart mitochondria. // J. Biochem.-1980.-vol. 88,N3.-P.677-683.

255. Siems IV. G., Pimenov A.M., Esterbauer H., Grune T. Metabolism of 4-HNE, a cytotoxic lipid peroxidation product, in thymocytes as an effective secondary antioxidative defense mechanism // J. Biochem.-1998.- 123, N 3 . P. 534-539.

256. Sitte N., Merker K., Grune T., von Zglinicki T. Lipofuscin accumulation in proliferating fibroblasts in vitro: an indicator of oxidative stress//Exp. Gerontol. 2001. - vol. 36,N3. - P. 475-486

257. Soderberg M., Edlund G., Kristensson K., Ballner G. Lipid compositions of different regions of the human brain during ageing //J.Neurochem.-1990.-vol.54,N2.- P.415-423.

258. Sohal R.S. Effect of hydrogen peroxide administration of life spen, superoxid dismutase,catalase and glutathion peroxidese in the adult housefly Musca domestica //Exp.Gerontol.-1988.-vol.23,N 2. -P.211-216.

259. Sohal R.S. Role of oxidative stress and protein oxidation in the aging process// Free Radical Biol. Med. 2002.- vol.33,N1. - P.37-44.

260. Sohal R.S., Weindruch R. Oxidative stress, caloric restriction, and aging//Science. 1996. - vol. 273. - P. 59 - 63.

261. Sotaniemi E.A., Arranto A. J., Pelkonen O., Pasanen M. Age and cytochrome P450-linked drug metabolism in humans: an analysis of 226 subjects with equal histopathologic conditions // Clin. Pharmacol. Ther. -1997. -Vol.61, № 3. -P. 331- 339.

262. Spiteller G. Lipid peroxidation in aging and age-dependent diseases //Exp.Gerontol. -2001. vol. 36,N9. -P.1425-1457.

263. Squier T.C. Oxidative stress and protein aggregation during biological aging// Exp. Gerontol. 2001. - vol. 36,N9. - P. 1539-1550.

264. Stryer L. Biochemistry. N.Y.: W.H.Freeman and Company, 1995. - 1064 p.

265. Tian L., Cai O., Wei H. Alterations of antioxidant enzymes and o-xidative damage to macromolecules in different organs of rats during aging // Free Radic.Biol.Med.- 1998.- Vol.24, № 9.- P.1477-1484.

266. Tokunaga K., Kanno K., Ochi M., Nishimiya 71, Shishino K., Murase M., Makino H., Tokui S. Lipid peroxide and antioxidants in the elderly // Rinsho.Byori. 1998.- Vol.46, № 8.- P.7883-789.

267. Torres-Mendoza C.E., Albert A., de la Cruz Arriaga M.J. Molecular study of the rat liver NADHxytochrome c oxidoreductase complex during development and aging// Mol.Cell.Biochem. 1999. - vol. 195,N1-2.-P. 133-142.

268. Toussaint O., Michiels C., Raes M., Remacle J. Cellular aging and the impoetance of energetic factors//Exp.Gerontol. 1995. - vol.30,N1. -P. 1-22.

269. Uchida K, Stadtman E.R. Selective cleavage of thioether linkage in proteins modified with 4-hydroxynonenal// Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 1992.-vol. 89, N12.-P.5611-5615.

270. Ugsal M, Seckin S., Kocak-Toker N. et al. Increased hepatic lipid peroxidation in aged mice //Mech.Aging Dev.-1989. -vol.48, N1.-P.85-89.

271. Van Remmen H., Richardson A. Oxidative damage to mitochondria and aging//Exp. Gerontol. 2001. vol. 36,N7. - P. 957-968.

272. Vawadaca M., Carlson I.C. Changes in superoxide radical and lipid peroxide formation in the brain, heart, and liver during lifetime of the rat. The production of myocardial necrosis //Meeb.-1987.- vol.41,N. 1-2.-P.128-137.

273. Viani P., Cervato G., Fiorilli A., Cestaro B. Age-related differences in synaptosomal peroxidative damage and membrane "properties //J.Neurochem.-1991.-vol.56.-P.53-258.

274. Vitorica J., Satrustegui J., Machado A. Metabolic implications of ageing: changes in activities of key lipogenic and gluconeogenic enzymes in the aged rat liver//Enzyme 1981. - vol.26,N3. - P.144-152.

275. Wahnon R., Mokody S., Codan U. Age and membrane fluidity //Mech.Ageing. Dev. -1989. -vol.50, N3. -P.249-255.

276. Walsh J.L., Keith T.J., Knull H.R. Glycolytic enzyme interactions with tubulin and microtubules// Biochim. Biophys Acta.- 1989. -vol.999, N1.-P. 64-70.

277. Wang Z.O., Todani T., Watanabe Y, Tola, A. The effects of adenosine on the energy metabolism of the reperfiised intestine in rats// Surg. Today.- 1998.-28,N2.-P. 178-183.

278. Watanabe T., Nakamura T. The effects of linoleate hydroperoxide on respiration and oxidative phosphorylation of rat liver mitochon-dria//J.Biochem.-1979.-vol.86,N4.-P. 1041-1047.

279. Weiss B. Modulation of adrenergic receptors during ageing //Neurobiol. Res. 1987. - vol.9, N1. - P. 61-62.

280. Woodhouse K., Wynne H.A. Age-related changes in hepatic function. Implication for drug therapy //Drugs. Aging. -1992. -Vol.2, № 3. -P. 243- 255.

281. Yamada K, Sigiyama S., Kosaka K. et al. Early appearance of age-associated deterioration in mitochondrial function of diaphragm and heart in rats treated with doxorubicin// Exp.Gerontol. 1995. - vol.30, N6.-P. 581 -593.

282. Yoon S.O., Yun C.H., Chung A.S. Dose effect of oxidative stress on signal transduction in aging// Mech. Ageing Dev.- 2002. vol. 123, N12. -P.1597-1604.

283. Young R.G., Robinson E. Age and oxygen toxicity related fluorus-cence in the honey bethorax //Exp.Gerontol.- 1983.-vol.18,N3. P.471-475.

284. Young A. Ageing and physiological functions// Philos. Trans. R.Soc. Lond. B. Biol. Sei. 1997. - vol. 352,N 1363. - P. 1837-1843.

285. Zoli M., Magalotti D., Bianchi G. et al. Total and functional hepatic blood flow decrease in parallel with ageing // Age Ageing — 1999. — vol.28, Nl.P.29-33.

286. Zwart L.L., Meerman J.H.N., Commandeur J.N.M., Vermeulen N.P.E. Biomarkers of free radical damage// Free Radical Biol. Med. -1999. 26,N 1-2. - P. 202 - 226.

Автореферат и диссертация по медицине (14.00.51) на тему:Возрастные изменения энергетического обмена в печени крыс при иммобилизационном стрессе

Автореферат диссертации по медицине на тему Возрастные изменения энергетического обмена в печени крыс при иммобилизационном стрессе

Оглавление диссертации Захарченко, Ирина Владимировна :: 2007 :: Санкт-Петербург

Введение диссертации по теме "Восстановительная медицина, спортивная медицина, курортология и физиотерапия", Захарченко, Ирина Владимировна, автореферат

Заключение диссертационного исследования на тему "Возрастные изменения энергетического обмена в печени крыс при иммобилизационном стрессе"

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2007 года, Захарченко, Ирина Владимировна

Похожие научные работы

Каталог диссертаций