Автореферат и диссертация по медицине (14.00.07) на тему:Сравнительная гигиеническая оценка фотосенсибилизаторов и продуктов их фототрансформации на примере метиленового голубого и холиниометилзамещенного фталоцианина цинка
Автореферат диссертации по медицине на тему Сравнительная гигиеническая оценка фотосенсибилизаторов и продуктов их фототрансформации на примере метиленового голубого и холиниометилзамещенного фталоцианина цинка
На правах рукописи
ГОЛОВАЧ ЕЛЕНА НИКОЛАЕВНА
СРАВНИТЕЛЬНАЯ ГИГИЕНИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ФОТОСЕНСИБИЛИЗАТОРОВ И ПРОДУКТОВ ИХ ФОТОТРАНСФОРМАЦИИ НА ПРИМЕРЕ МЕТИЛЕНОВОГО ГОЛУБОГО И ХОЛИНИОМЕТИЛЗАМЕЩЕННОГО ФТАЛОЦИАНИНА ЦИНКА
14.00.07-Гигиена
АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук
1 Л ' " ' "
' ■ ■ • .., , .. V
Москва - 2009
003468990
Работа выполнена в Учреждении Российской академии медицинских наук Научно-исследовательском институте экологии человека и гигиены окружающей среды им. А.Н.Сысина РАМН
Научный руководитель: доктор медицинских наук
Синицына Оксана Олеговна
Официальные оппоненты: доктор биологических наук, профессор
Ревазова Юлия Анатольевна НИИ экологии человека и гигиены окружающей среды им. А.Н. Сысина РАМН
доктор медицинских наук Хамидулина Халидя Хизбулаевна ФГУЗ «Российский регистр потенциально опасных химических и биологических веществ» Роспотребнадзора
Ведущая организация: Государственное образовательное
учреждение высшего профессионального образования Московская медицинская академия им. И.М. Сеченова РОСЗДРАВА
Защита диссертации состоится «28» мая 2009 г. в Д часов на заседании диссертационного совета Д 001.009.01 в НИИ экологии человека и гигиены окружающей среды им. А.Н.Сысина РАМН по адресу: 119992, г. Москва, ул. Погодинская, д. 10/15, строение I.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке НИИ экологии человека и гигиены окружающей среды им. А.Н.Сысина РАМН
Автореферат разослан «_»_2009 года
Ученый секретарь диссертационного Совета, доктор биологических наук, профессор 'Х&Г)^С^СЛ Беляева Наталья Николаевна
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность проблемы. Обеспечение населения питьевой водой, безопасной в эпидемическом отношении, определяет необходимость совершенствования методов обеззараживания (Г.Г.Онищенко, 2003; WHO, 2003; Рахманин Ю.А. и соает., 2004). Применяемые в настоящее время физические и химические методы обеззараживания воды сопряжены с рядом общеизвестных недостатков. В частности, наиболее распространённые во всём мире реагенты на основе активного хлора не только высокотоксичны, вызывают аллергические реакции при перехлорировании, раздражают слизистые оболочки, но и приводят к образованию в воде хлорорганических соединений, многие из которых обладают мутагенной и/или канцерогенной активностью (Красовский Г.Н. и соавт., 1987; Жолдакова З.И. и соавт., ¡999).
Альтернативные способы обеззараживания - озонирование и ультрафиолетовое облучение, также не универсальны. Несмотря на то, что ультрафиолетовое облучение оказывает на большинство химических веществ гораздо более слабое трансформирующее действие, чем активный хлор (Жолдакова З.И., Полякова Е.Е. и соавт., 2000), в дальнейшем возможна реактивация микроорганизмов. При озонировании также отсутствует остаточное действие обеззараживания и существует опасность образования канцерогенных броматов. В связи с этим, продолжается поиск новых эффективных и безопасных методов обеззараживания воды.
В последние годы предложена новая физико-химическая технология обеззараживания воды фотодннамическим методом. Принцип метода (патент №2235688 от 10.09.2004 г.) основан на тропности к клеткам фотодинамически активных красителей (химических сенсибилизаторов), которые под действием света в присутствии кислорода генерируют синглетный кислород и другие его активные формы, окисляющие биомолекулы и вызывающие гибель микроорганизмов по месту локализации (Atherton S. et al, 1993; Lee Y.el al, 1995; Buchko G.M. et al, 1995; Wainwright M. Et al, 1997; Кузнецова H.A., Катя О.Л., 1998). Обеззараживание является результатом физико-химических реакций, протекающих в растворе.
Одними из наиболее эффективных дезинфектантов для фотодинамического обеззараживания воды являются красители из тиазинового и тетраазопорфиринового рядов - метиленовый голубой (МГ) и холиниометилзамещенный фталоцианин цинка (ХМ-ФЦ) (Kuznetsova N„ Artemova Т. et. al 2003; Артемова Т.З. и др. 2004).
Согласно международной директиве REACH (регистрация, оценка и авторизация химических веществ) все химические вещества, применяемые в промышленности, должны проходить процедуру оценки их опасности (Хамидулина Х.Х., 2008), включая способность вызывать отдаленные эффекты (Ревазова Ю.А. и соавт., 2008).
Вместе с тем, несмотря на широкое применение красителей в фармакологии, их опасность при длительном поступлении в организм не изучена. Кроме того, в процессе фотохимических реакций происходит трансформация красителей, степень фотолиза которых и спектр образующихся продуктов может зависеть от длительности облучения. При этом наиболее важный с гигиенических позиций аспект этих процессов - сравнительная опасность исходных веществ и продуктов их трансформации (Жолдакова З.И., Синицына О.О. и соавт., 2002), также является не изученным.
Важным критерием допустимости применения средств обеззараживания воды, является соотношение «эффективная/безопасная концентрация» (Синицына О.О. и соавт., 2006).
В связи с вышеизложенным, целью данной работы является сравнительная гигиеническая оценка фотосенсибилизаторов и продуктов их трансформации, образующихся под действием видимого света, на примере метиленового голубого и холиниометилзамещенного фталоцианина цинка.
Для достижения поставленной цели решались следующие задачи:
1. На примере МГ установить зависимость изменения пороговых концентраций по органолептическому и общесанитарному показателям вредности от времени облучения видимым светом.
2. Изучить токсичность и способность к кумуляции МГ и ХМ-ФЦ при однократном действии.
3. Дать сравнительную оценку токсичности сенсибилизаторов и продуктов их фототрансформации при длительном энтеральном поступлении в организм.
4. На основании сопоставления эффективных в отношении микроорганизмов и безопасных концентраций обосновать рекомендации о возможности применения МГ и ХМ-ФЦ для обеззараживания воды.
Научная повита работы. Впервые показано, что при облучении видимым светом веществ из тиазинового и тетраазопорфиринового ряда образуются более опасные продукты их трансформации.
Установлены закономерности изменения их опасности в зависимости от времени воздействия видимого света.
Впервые показано, что одним из механизмов токсического действия МГ, ХМ-ФЦ и продуктов их фототрансформации на лабораторных животных является увеличение генерации активных форм кислорода.
Впервые выявлены мутагенные эффекты продуктов 25% фототрансформации МГ в опытах in
vivo.
Впервые выявлено эритроцитотоксическое действие продуктов фототрансформации ХМ-ФЦ.
Впервые показано, что ХМ-ФЦ и продукты его частичной фототрансформации обладают иммунотоксическим действием.
Обосновано, что при установлении ПДК и определении допустимости использования в практике хозяйственно-питьевого водоснабжения реагентов, способных к фототрансформации, следует учитывать время появления наиболее опасных компонентов в реальных условиях применения.
Практическая значимость. Доказана недопустимость обоснования ПДК МГ и ХМ-ФЦ в воде водных объектов.
Материалы диссертационной работы использованы при подготовке проектов Методических указаний «Санитарно-эпидемиологические испытания (исследования) продукции, используемой в системах водоснабжения» и «Санитарно-эпидемиологическая экспертиза средств дезинфекции воды».
Работа выполнена в лаборатории эколого-гигиенической оценки и прогнозирования токсичности веществ НИИ ЭЧ и ГОС им. А.Н.Сысина РАМН в рамках плановой научной темы № г/р 02200900946, а также при финансовой под держке Правительства Москвы.
Апробация материалов диссертации. Результаты исследований по теме диссертации доложены и обсуждены на Форуме по гигиене и санитарии «ДЦД-2006» (Москва, 2006), Пленуме Научного совета по экологии человека и гигиене окружающей среды РАМН и Минздравсоцразвития РФ «Современные проблемы гигиены города, методология и пути решения» (Москва, 2006), II Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых и специалистов «Окружающая среда и здоровье» (Рязань, 2007), V Специализированной конференции по оценке и контролю микрозагрязнений/опасных веществ в воде Международной водной ассоциации «MICROPOL & ECOHAZARD 2007» (Франкфурт-на-Майне, 2007), Втором Санкт-Петербургском международном экологическом форуме «ЭкоФорум-2008» (Санкт-Петербург, 2008).
Основные положения, выносимые на защиту:
1. Увеличение опасности МГ при частичной фототрансформации и снижение - при полном фотолизе.
2. Усиление токсичности ХМ-ФЦ с увеличением степени фототрансформации.
3. Механизм интоксикации МГ и ХМ-ФЦ, заключающийся в прооксидантном действии и влиянии на антиоксидантную систему, и сопровождающийся появлением специфических эффектов (МГ - мутагенный, ХМ-ФЦ - эритроцитотоксический и иммунотоксический).
4. Недопустимость применения МГ и ХМ-ФЦ для обеззараживания воды.
Публикации. По теме диссертации опубликовано 7 печатных работ, из них 2 в центральной
печати, 3 тезисов и 1 за рубежом.
Структура работы. Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, 2 глав собственных исследований, обсуждения результатов, выводов, списка литературы, приложений.
Текст изложен на 196 страницах, содержит 39 рисунков, 59 таблиц, 33 приложения. Библиография включает 203 источника, в том числе 99 иностранных авторов.
ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Объектами изучения служили красители тиазинового и тетраазопорфиринового рядов: метиленовый голубой (МГ) и холиниометилзамещенный фталоцианин цинка (ХМ-ФЦ), а также продукты их 25% и 100% фототрансформации (ПФТ25 и ПФТюо).
Для решения поставленных задач было проведено 3 серии острых опытов и 3 серии хронических экспериментов по изучению влияния красителей на организм теплокровных животных, а также 14 серий экспериментов по изучению влияния МГ, ХМ-ФЦ и продуктов их фототрансформации на органолептические свойства воды и процессы самоочищения водных объектов.
Количественная характеристика объектов, материалов и объема исследований представлены в таблице 1.
О процессах фототрансформации красителей судили по изменению электронных спектров поглощения их растворов в процессе облучения. Исследования проводили на спектрофотометре «5ресог6> на базе МГУ им. М.В.Ломоносова совместно с к.б.н. Е.Е.Поляковой.
Эксперименты по изучению влияния МГ и продуктов его фототрансформации на органолептические свойства воды и процессы самоочищения водных объектов проводили в соответствии с МУ2.1.5.720-98.
Объектами токсикологических исследований являлись три вида лабораторных животных (свыше 1020 животных): белые нелинейные крысы, белые нелинейные мыши, морские свинки. Всего было использовано 580 белых крыс с массой тела 200+20 г., 400 мышей с массой тела 20-25 г., 60 морских свинок с массой тела 320-350 г.
Токсичность МГ и ХМ-ФЦ при энтеральном поступлении изучалась в острых и хронических экспериментах, ПФТ25 и ПФТюо - в хронических экспериментах. В острых опытах оценивалось, также кожно-резорбтивное действие МГ по смертельным эффектам и накоплению в организме.
Дозы веществ и продуктов их фототрансформации, исследованные в хронических экспериментах, выбирались с учетом эффективных бактерицидных концентраций (ХМ-ФЦ - 3 мг/л (Ки:пе1зоуа N. е/. а1„ 2003; Артемова Т.З. и др., 2004), МГ - 5 мг/л (патент №2235688 от 10.09.2004 г.)) и составили: МГ - 0,25; 0,05; 0,01 мг/кг, ПФТ25 МГ - 0,05; 0,01 мг/кг (1 серия); ПФТ25 МГ - 0,05; 0,01; 0,002 мг/кг, ПФТюо МГ - 0,05 мг/кг (2 серия); ХМ-ФЦ - 0,05; 0,01; 0,002 мг/кг, его ПФТ25 - 0,05; 0,01; 0,002 мг/кг, его ПФТюо - 0,05; 0,01 мг/кг (3 серия). Дозы продуктов фототрансформации сенсибилизаторов приведены в расчете на исходный краситель.
При выборе показателей, позволяющих оценить действие красителей и продуктов их трансформации на организм животных, руководствовались стремлением отразить, по возможности, состояние целостного организма, функций отдельных органов и систем, процессы интоксикации и детоксикации. Учитывая, что в результате сенсибилизации МГ и ХМ-ФЦ квантами видимого света происходит образование активных форм кислорода (АФК), особое внимание уделялось изучению возможных последствий их действия, а также состоянию антиоксидантной системы защиты организма.
Оценка функционального состояния организма животных осуществлялась по ключевым системам гомеостаза с использованием физиологических (вес, СПП, вертикальная активность), биохимических (интенсивность люминолзависимой хемилюминесценции, уровень ЭН-групп, активность каталазы, холинэстеразы, лактатдегидрогеназы, щелочной фосфатазы, глутатионредуктазы, ацетилэстеразы, Ы-ацетил-р-О-глюкозаминидазы), гематологических (концентрация гемоглобина в крови, количество эритроцитов, лейкоцитов) и морфологических (печень, почки, тонкий кишечник (12-перстная и подвздошная кишка), толстая (ободочная) кишка, легкие, семенники) показателей. Гонадотоксическое действие сенсибилизаторов оценивалось по таким показателям, как относительная масса семенников, осмотическая резистентность и время подвижности сперматозоидов. В полиорганном микроядерном тесте (костный мозг, толстая кишка, мочевой пузырь), проведенном по окончании хронических экспериментов, изучали
Таблица I. Методы, объекты и объем исследований.
3N
Методы исследования .Объекты исследования Показатели Объем исследований
Спектрофотометрические МГ и ХМ-ФЦ Оптическая плотность, % трансформации 2 серии
Органолептические Опытные одораторы, дегустаторы; МГ и продукты фототрансформации Цветность, привкус, запах, прозрачность, образование пены на поверхности воды; пороговые концентрации 4 серии
Санитары о-химические Модельные водоемы, МГ и продукты фототрансформации БПК, концентрация ионов аммиака, нитритов, нитратов; пороговые концентрации 10 серий
Острый опыт Белые крысы-самцы, МГ (энтеральное и перкутанное поступление) и ХМ-ФЦ (энтеральное поступление) Смертельные эффекты, клиническая картина отравления, накопления в органах; ЛД50, I«« 60 крыс
Длительный токсикологический опыт (150 и 180 суток) Белые крысы-самцы, МГ, ХМ-ФЦ и продукты 25% и 100% фототрансформации Физиологические, гематологические, биохимические, морфологические, гонадотоксическое действие 580 крыс, 15 показателей
Морфологические Печень, почки, тонкий кишечник (12-перстная и подвздошная кишка), толстая (ободочная) кишка, семенники, легкие 114 крыс, 49 показателей
Цитотоксические (полиорганный микроядерный тест) В костном мозге - доля ПХЭ от всех эритроцитов, ПХЭ патологической формы; в толстом кишечнике - доля клеток с кариопикнозом, двуядерных клеток; в мочевом пузыре - доля двуядерных клеток, клеток с атипичной формой ядра и с перетяжкой ядра 80 крыс, 6 показателей
Цитогенентические (полиорганный микроядерный тест) Частота клеток с микроядрами и протрузиями в костном мозге, мочевом пузыре, толстой кишке 80 крыс, 2 показателя
Аллергенное, иммунотоксическое и раздражающее действие Морские свинки, белые мыши, МГ, ХМ-ФЦ и продукты 25% и 100% трансформ ации Наличие эффекта; показатель иммунотоксического действия (уровни содержания специфических - антител в сыворотке крови) 60 морских свинок, 400 мышей, 3 показателя
мутагенное и цитотокеическое действие веществ. В отдельной серии экспериментов оценивалось иммунотоксическое действие продуктов фототрансформации МГ, ХМ-ФЦ и продуктов его фотолиза по влиянию на гуморальное звено иммунитета (изменению способности к синтезу специфических IgO-антител), а также их аллергенное действие.
Результаты, полученные в токсикологических экспериментах, обрабатывались с помощью компьютерных программ "Statistica for Windows". Достоверность различий определяли по t критерию Стьюдента и непараметрическому критерию Манна-Уитни. Количественный критерий значимости отклонений от контроля определялся с учетом степени пластичности (коэффициента вариации, С») показателей (И.М.Трахтенберг и др., 1991).
В ходе обработки полученных данных построены графические изображения с использованием различных видов диаграмм с применением стандартной программы Microsoft Excel-XP.
Личный вклад автора составляет более 80%. Часть исследований проводили совместно с сотрудниками лабораторий НИИ экологии человека и гигиены окружающей среды им. А.Н. Сысина РАМН под руководством д.б.н., проф. Н.Н.Беляевой, д.б.н. Л.П.Сычевой, д.б.н. Л.В.Хрипач, а также к.б.н. Е.Е.Поляковой.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
В настоящее время доказано, что в процессе трансформации веществ в окружающей среде под влиянием естественных факторов (солнечная радиация, окисление молекулярным кислородом, микрофлора и т.п.), что в классической гигиене принято называть естественным самоочищением, могут образовываться не только менее (Towill L.E. et al, 1978; Красовский Г.Н. и др., 1985; Бочаров В.В. и др., 1988; Бочаров В.В., 1991), но и более опасные соединения (Костовецкий Я.И. и др., 1985; Синицына О.О., 1994; Жолдакова З.И. и др., 1998; Малышева А.Г., 1998).
Основываясь на этих данных, была высказана гипотеза, что в процессе фотохимических реакций, лежащих в основе фотодинамического метода обеззараживания воды, происходит изменение структуры не только биомолекул микробных клеток, но и трансформация самих красителей, степень фотолиза которых и спектр образующихся продуктов может определять опасность фотосенсибилизаторов. Поэтому исследования были направлены на изучение сравнительной опасности МГ и ХМ-ФЦ с различной степенью фототрансформации.
О процессах фототрансформации красителей свидетельствовали изменения электронных спектров поглощения их растворов в процессе облучения. Необлученные растворы красителей имеют по 2 основных максимума поглощения: МГ - при 293 и 664 нм, ХМ-ФЦ - при 342 и 683 нм. С увеличением длительности освечивания уменьшалась интенсивность поглощения на этих длинах волн, что свидетельствует о трансформации молекул сенсибилизаторов. Таким образом, в процессе облучения видимым светом происходит не только сенсибилизация, но и трансформация красителей.
Анализ кривых электронных спектров поглощения позволил установить скорость трансформации МГ и ХМ-ФЦ. Длительность облучения растворов МГ и ХМ-ФЦ, необходимая для близкой к 100% трансформации красителей, составляла 10 часов. Учитывая, что в реальных условиях длительность освечивания воды для ее дезинфекции может варьироваться, представляло интерес сравнить токсичность не только красителей и продуктов их полной трансформации, но и оценить опасность смеси сенсибилизатора и продуктов его частичной (25%) трансформации. Время, необходимое для такого превращения красителей, оказалось равным 3 часам для МГ и 30 минутам для ХМ-ФЦ. Эти данные послужили основанием для определения оптимального времени облучения растворов сенсибилизаторов при исследовании их опасности.
Изучение токсичности и опасности метиленового голубого и продуктов его фототрансформации.
Лимитирующим показателем влияния МГ на органолептические свойства воды являлось изменение окраски. Пороговая концентрация МГ составляет 0,012 мг/л. По мере увеличения длительности освечивания интенсивность окрашивания растворов снижалась. При этом 25%
фототрансформация МГ способствовала 2-кратному снижению опасности - пороговая концентрация продуктов фотолиза МГ составляет 0,025 мг/л.
Иная зависимость изменения пороговых концентраций МГ от времени облучения видимым светом наблюдалась по влиянию на процессы самоочищения водных объектов. Продукты фототрансформации МГ вызывали в 5 раз более выраженное торможение процессов биохимического потребления кислорода: пороговая концентрация МГ составила 0,05 мг/л, продуктов его фотолиза - 0,01 мг/л. На этих и более низких уровнях ни МГ, ни продукты его фототрансформации не оказывали влияния на процессы минерализации азотсодержащих соединений.
При однократном внутрижелудочном поступлении в высоких дозах (1500-6000 мг/кг) МГ обладал высокой скоростью и степенью всасывания в желудке, быстрой диссиминацией в организме животных. Окрашивание кожных покровов наблюдалось через 30 минут после введения максимальной дозы. Вскрытие павшей через 6 часов крысы показало, что органы брюшной полости, а также мышечная и подкожно-соединительная ткани окрашены в синий цвет. Окрашивание внутренних органов сохранялось в течение 14 суток, что свидетельствует о проявлении материальной кумуляции МГ. В течение первых четырех суток происходило постепенное выведение красителя. ЛД50 сенсибилизатора составила 2500 (986,5 + 4013,5) мг/кг. Индекс кумуляции (1кум) равен 0,49 (сильная кумуляция).
Таким образом, по смертельным эффектам МГ относится к 3 классу токсичности (умеренно опасное вещество), а по способности к кумуляции - ко 2 классу (сильная кумуляция) (МУ 2.1.5.720-98).
При однократном перкутанном воздействии в дозах 4500 и 6000 мг/кг смертельных эффектов и накопления красителя во внутренних органах и подкожно-соеденительной ткани не наблюдалось, что свидетельствует об отсутствии кожно-резорбтивного действия МГ. Местного раздражающего действия также не выявлено. ЛД50 МГ при нанесении на кожу » 6000 мг/кг.
У животных при длительном поступлении МГ в неизмененном виде в дозах 0,25, 0,05 и 0,01 мг/кг снижалась способность ЦНС суммировать подпороговые импульсы, нарушалась долговременная память, о которой судили по изменению вертикальной активности. Кроме того, МГ и его ПФТ25 в дозах 0,05 и 0,01 мг/кг вызывали достоверное увеличение активности антиоксидантного фермента каталазы в крови животных, что свидетельствует об усилении скорости генерации АФК в тканях организма и позволяет сохранить положение оксидантного равновесия (рис. 1 А, Б).
0,05 мг/кг. каталаза '" 0,01 мг/кг, каталаза
Рис. 1. Изменения активности каталазы в крови и интенсивности люминолзависимой хемилюминесценции в сыворотке крови при пероралыюм поступлении МГ (А) и продуктов его 25% трансформации (Б) в дозах 0,05 и 0,01 мг/кг в условиях хронического эксперимента (в % отклонений от контроля).
Изменения активности каталазы крови и интенсивности JI3XJ1 сыворотки крови животных, получавших ПФТ25, были более выраженными (рис. 1 Б). Способность МГ усиливать перекисное окисление липидов за счет генерации АФК выявлено также в ряде исследований, проведенных in vitro (Gupta Р.К. et. al., ¡996; Zhang G.J. et. al., 1997; Brunk U.T. et. al., J997; Ball D.J. et. al„ 1998). ПФТюо в дозе 0,05 мг/кг оказывали сходное по характеру, но менее выраженное токсическое действие по сравнению с продуктами неполного фотолиза красителя.
В таблице 2 представлена результирующая оценка степени выраженности токсического действия МГ и продуктов его фототрансформации по морфологическим критериям. Судя по структурно-функциональным показателям, исходный краситель в дозах 0,25 и 0,05 мг/кг вызывал повышение индекса альтерации гепатоцитов, балочной дискомплексации, увеличение доли клеточных инфильтратов, гемодинамических сдвигов, числа некрозов, снижение доли паренхимы, усиление полиплоидизации гепатоцитов, что свидетельствует о выраженном токсическом действии на печень. Обнаруженные в 12-перстной кишке изменения (увеличение нарушения целостности каймы ворсин кишки, их деструктурированности, усиление гемодинамических сдвигов) характеризуют эти дозы МГ как действующие.
Таблица 2. Оценка степени выраженности токсического действия метилеиового голубого и
Орган МГ, мг/кг ПФТ25, мг/кг ПФТюо, мг/кг
0,25 0,05 0,01 0,05 0,01 0,05
Печень +++ +++ - ++ + +
12-перстная кишка +++ +++ - ++ + -
Почки ++ ++ - - - -
Толстая кишка - - - - - -
Примечание: «-t-н-, -и-, +.» - выраженность токсического действия, «-» - отсутствие действия.
В почке при воздействии МГ в дозе 0,25 мг/кг отмечено увеличение доли атрофичных клубочков, увеличение индекса альтерации эпителия почечных канальцев, увеличение клеточной инфильтрации в строме. Доза 0,05 мг/кг вызывала изменения тех же показателей, за исключением последнего. Изменения в толстой кишке не выявлены. Хроническое воздействие МГ в дозе 0,01 мг/кг не приводило к повреждению внутренних органов.
Дозы 0,05 и 0,01 мг/кг ПФТ25, по сравнению с исходным красителем, вызывали менее выраженный токсический эффект, который может быть оценен как минимальный в печени и 12-перстной кишке, не оказывая неблагоприятного влияния на почки и толстую кишку. Воздействие ПФТюо в дозе 0,05 мг/кг приводило к изменениям только в печени.
Сравнение выраженности токсических эффектов МГ с разной степенью трансформации в дозе 0,05 мг/кг по структурно-функциональным показателям печени, 12-перстной кишки, почек и толстой кишки показало (таблица 2), что она изменяется от отсутствия действия (МНД) до порогового (ПД) и токсического (Токе.). Наиболее выраженное повреждающее действие на изученные органы оказывал МГ. С увеличением степени трансформации красителя выраженность изменений морфологических показателей снижалась.
В полиорганном микроядерном тесте выявлено мутагенное действие ПФТ25 МГ в дозе 0,05 мг/кг (увеличение доли эпителиальных клеток с протрузиями в толстой кишке), чего не наблюдалось при действии необлученного красителя в дозах 0,25, 0,05 и 0,01 мг/кг и ПФТюо в дозе 0,05 мг/кг (таблица 3).
Полученные данные согласуются с установленной рядом авторов в опытах in vivo интеркалирующей способностью МГ (Chung К.-Т. et. al., 1981; Webb R.B. et. al., 1984; Kier L.D. et. al., 1986; Ishidate Jr M. et. Al., 1988; Ере B. et. al., 1990; Tucker J.D. et. al., 1993; Wagner S.J. et. al., 1995; Smijs T.G. et. al., 2004). Однако мутагенные эффекты продуктов 25% фототрансформации МГ в эксперименте на животных выявлены впервые.
Кроме того, обнаружено цитотоксическое действие ПФТ25 в дозах 0,05 и 0,01 мг/кг (увеличение доли клеток с кариопикнозом в толстой кишке). Согласно мнению McLearie J. et al (1992) и Pecc L. et al (2000), цитотоксичность МГ обусловлена фотогенерацией радикалов ОН'.
Цитотоксическое действие ПФТюо МГ в дозе 0,05 мг/кг не выявлено.
В иммунологических экспериментах установлено, что независимо от степени трансформации МГ в концентрациях 1 и 0,2 мг/л не обладает иммунотоксическим, сенсибилизирующим и местным раздражающим действием.
Таблица 3. Мутагенный и цитотоксический эффект метиленового голубого и продуктов его _ фототрансформации_
Показатели % к контролю
МГ, мг/кг ПФТ25, мг/кг ПФТШ, мг/кг
0,25 | 0,05 | 0,01 0,05 | 0,01 0,05
Полихроматофильные эритроциты в костном мозге
Микроядра 177,3 131 31 77,3 61,6 38,2
ПХЭ/все эритроциты 108,6 100 94,3 102,9 105,7 105,4
Эпителиальные клетки в толстой кишке
Микроядра 100 100 194,1 294,1 0 34
Протрузии 94,6 100 82,3 315,5 \ 105 23,6
Кариопикноз 126,1 45,8 104,2 187,5 Т 195,8 Т 106,4
Эпителиальные клетки в мочевом пузыре
Микроядра 138,2 161,3 123 69,1 100 71,6
Протрузии 139,1 154,2 100,8 128,2 100 118,6
Двуядерные клетки 44,3 39,3 78,4 48 51,9 100,3
Клетки с перетяжкой ядра 94,6 87,5 100,3 71,2 76,6 100
Клетки с атипичной формой ядра 99,6 104,8 94,3 137,7 89 100
«t |» - направленность отклонений от контроля, р<0,05 по критерию Манн-Уитни.
Пороговые дозы, установленные по комплексу физиологических, биохимических, структурно-функциональных, цитотоксических и цитогенетических показателей, представлены в таблице 4. Сравнительная гигиеническая оценка опасности исходного сенсибилизатора и продуктов его фототрансформации показала, что под влиянием видимого света частичная трансформация красителя сопровождается усилением токсичности, о чем свидетельствует снижение пороговой дозы в 5 раз.
Таблица 4. Пороговые дозы метиленового голубого при разной степени фототрансфомации
Критерии Пороговые дозы, мг/кг
МГ ПФТ25 ПФТюо
Биохимические, физиологические 0,01 0,002 0,05
Морфологические (печень, почки, 12-перстн. кишка, толстая кишка) 0,01<ПД< 0,05 0,01 0,05
Цитотоксические (мочевой пузырь, толстый кишечник) 0,05 0,01 Эффект не выявлен
Цитогенетические (костный мозг, мочевой пузырь, толстый кишечник) Эффект не выявлен 0,05
Кроме того, у продуктов частичной трансформации МГ появились новые эффекты токсического действия - мутагенные. Дальнейшее облучение светом до 100% трансформации приводит к снижению токсичности в 25 раз. По-видимому, это связано с трансформацией не только самого сенсибилизатора, но и опасных продуктов его фотолиза.
Аналогичное снижение токсичности в процессе фотолиза за счет превращения промежуточных продуктов фототрансформации, подтвержденное результатами химического анализа, установлено и для другого красителя - профлавина ацетата (Синщына О.О., Лебедев Т.А. и др., 2008).
Учитывая высокую критериальную значимость мутагенного действия в оценке опасности веществ (Журков B.C., 1981; Сычева Л.П., 1983; Г.Н.Красовский и др., 1992), низкую скорость полного фотолиза МГ (>10 часов), а также реальную длительность освечивания воды при ее
обеззараживании фотодинамическим методом (3 часа), обоснование его допустимых доз проводилось по результатам изучения цитогенетической активности ПФТ25. С использованием рекомендаций, изложенных в МУ№ 4110-86, была рассчитана допустимая доза мутагена - 0,00025 мг/кг, которая в пересчете на концентрацию составляет 0,005 мг/л, что в 1000 раз ниже эффективной обеззараживающей концентрации МГ.
Сопоставление пороговых концентраций МГ по органолептическому и общесанитарному показателям вредности с максимальной недействующей концентрацией (таблица 5), позволяет отнести этот сенсибилизатор к 1 классу опасности, что в совокупности не позволяет рекомендовать его в качестве дезинфицирующего средства всех видов вод (питьевые, сточные, вода плавательных бассейнов и т.д.) и делает нецелесообразным утверждение его ПДК в воде.
Таблица 5. Сопоставление пороговых и максимальной недействующей концентраций _метиленового голубого с различной степенью фототрансформацнн_
Показатель МГ ПФТ
ПК по органолептическому показателю вредности, мг/л 0,01 0,025
ПК по общесанитарному показателю вредности, мг/л 0,05 0,01
МНК (на основе ДЦму,), мг/л 0,005
Класс опасности 1
Изучение токсичности и опасности холиниометилзамещенного фталоциапина цинка и продуктов его фототрансформации.
В остром опыте установлено, что ХМ-ФЦ обладает высокой скоростью и степенью всасывания в желудке, быстрой диссиминацией в организме животных, большей чем МГ. Через 10-15 минут после введения отмечалось окрашивание кожных покровов. Несколько часов спустя на вскрытии наблюдалось окрашивание не только желудка, кишечника, почек, но и брыжейки, мышечной и подкожно-соединительной ткани. Подобная тропность к рыхлой волокнистой ткани отмечена для производных фталоцианина меди (Ротенберг Ю.С. и др., 1977). В течение первых четырех суток происходило постепенное выведение красителя, но некоторая его часть достаточно прочно связалась с тканями и сохранялась до конца эксперимента. Через 14 суток окрашенными оставались не только внутренние органы, но и костная ткань, что свидетельствует о выраженной материальной кумуляции ХМ-ФЦ. ЛД50 сенсибилизатора составила 3977 (3185 +■ 4770) мг/кг. Индекс кумуляции (1кум) равен 0,17 (сильная кумуляция).
Таким образом, по смертельным эффектам ХМ-ФЦ относится к 3 классу токсичности (умеренно опасное вещество), обладает выраженной материальной кумуляцией при поступлении в субсмертельных дозах.
Как показано на рисунке 2, ХМ-ФЦ и продукты его частичной фототрансформации при однократном и повторном воздействии в дозе 400 мг/кг и при повторном поступлении в дозах 0,05 и 0, 01 мг/кг обладают выраженным иммунотоксическим действием, о чем свидетельствует достоверное снижение содержания специфических иммуноглобулинов 1§Сг в сыворотке крови соответствующих групп мышей по сравнению с контрольной группой, которой был введен только БСА. Отсутствие достоверных отклонений от иммунизированного контроля при однократном и повторном воздействии ХМ-ФЦ в дозе 40 мг/кг позволяет также предположить, что ХМ-ФЦ обладает не только иммунотоксическим, но и адъювактным действием. Наложением этих двух противоположных эффектов можно объяснить сложную куполообразную зависимость "доза-эффект" при повторном введении ХМ-ФЦ, с наличием участка обратно-пропорциональной связи в диапазоне доз 40 - 0,05 - 0,01 мг/кг.
8 день
В Контрольная(интактная) группа
□ ХМ-ФЦ, 40 мг/кг, однократно S ХМ-ФЦ 0,05 мг/кг
□ ПФТ25, 0,01 мг/кг
□ Контрольная группа БСА 0 ХМ-ФЦ, 400 мг/кг
□ ХМ-ФЦ, 0,0] мг/кг
□ ПФТ100, 0,05 мг/кг
21 день
Ш ХМ-ФЦ, 400 мг/кг, однократно □ ХМ-ФЦ, 40 мг/кг ■ ПФТ25, 0,05 мг/кг ИПФТ100,0,01 мг/кг
(*р<0,01 **р<0,001 ***р<0,0001 по отношению к контрольной группе БСА)
Рис. 2. Уровни специфического IgG в сыворотке крови мышей под влиянием сенсибилизатора ХМ-ФЦ и продуктов его фототрансформации на 8 и 21 день после введения
стандартного антигена.
ПФТ25 в дозах 0,05 и 0,01 мг/кг и ПФТюо в дозе 0,05 мг/кг также угнетали гуморальное звено иммунитета. Максимальная недействующая доза иммунотоксического действия ПФТ25 в настоящем эксперименте не установлена, для ПФТмо она составила 0,01 мг/кг.
Таким образом, уменьшение степени выраженности подавления иммунной системы при действии ПФТюо по сравнению с теми же дозами нативного вещества и ПФТ25 свидетельствует, что по мере увеличения длительности облучения фотосенсибилизатора происходит деструкция опасных продуктов фотолиза, подавляющих специфическую резистентность иммунной системы.
Иная закономерность в изменении токсичности ХМ-ФЦ в результате облучения видимым светом установлена по комплексу физиологических, биохимических, морфологических, цитотоксических и цитогенетических показателей в хроническом эксперименте.
Воздействие ХМ-ФЦ и ПФТ25 в дозах 0,05, 0,01 и 0,002 мг/кг, ПФТюо в дозах 0,05 и 0,01 мг/кг вызывало снижение уровня эритроцитов в крови экспериментальных животных. Выявленные изменения, по-видимому, являются следствием тропности фталодианинов к липопротеинам низкой плотности (ЛПНП) в плазме крови и фосфолипидам наружных мембран клеток (Hadjur С., et. al., 1997; Martins J. et. al., 2004). В опытах in vitro окисление ЛПНП, а также местный оксидативный стресс приводили к разрушению мембран эритроцитов, выходу из них ионов калия и последующему гемолизу (Martins J. et. al, 2002).
Выраженность и характер изменений показателей оксидантного статуса, активности антиоксидантной системы и показателей повреждения органов и тканей организма зависела от степени фототрансформации ХМ-ФЦ. Это может быть продемонстрировано на примере изменения ряда показателей при поступлении красителя и продуктов его фототрансформации в дозе 0,05 мг/кг.
Так, эффективное функционирование антиоксидантной системы, о чем свидетельствует активация каталазы на 150 и 180 сутки, а также повышение уровня общих SH-групп на 15, 60, 90 и 120 сутки у животных, получавших ХМ-ФЦ, способствовало тому, что уровень АФК
(интенсивность ЛЗХЛ в сыворотке крови) достоверно не отличался от контрольных значений (рис.3 А).
р<0,001
Рис. 3. Динамика интенсивности ЛЗХЛ сыворотки крови, активности каталазы и уровня общих $11-гругш в крови крыс при пероральном поступлении ХМ-ФЦ (А), ПФТ25 (Б) и ПФТюо (В) в дозе 0,05 мг/кг в условиях хронического эксперимента (в % отклонений от контроля).
Недостаточность антиоксидантной системы при действии ПФТ25 (рис. 3 Б) и, в особенности, ПФТюо (рис. 3 В), которые вызывали ее срыв (достоверное снижение активности каталазы на 90 и 120 сутки и уровня SH-rpynn на 60 и 90 сутки), привела к достоверному увеличению интенсивности ЛЗХЛ сыворотки крови - показателя оксидантного равновесия тканей организма (Владимиров Ю.А., 1972). О недостаточности антиоксидантной системы свидетельствует и уменьшение активности глутатионредуктазы (Кулинский В.И., 1990; Зборовская И.А., 1995; Янковский О.Ю., 2000; Зентов Н.К., 2001) при поступлении ПФТюо: на 90 сутки у половины животных ее активность выходила за нижнюю доверительную границу контроля, на 150 сутки у двух третей животных.
Усиление перекисного окисления липидов, произошедшее в результате образования АФК и недостаточности антиоксидантной системы, реализовалось в развитии процессов повреждения органов и тканей (рис. 4).
При этом частота и степень выраженности отклонений показателей, характеризующих эти процессы, увеличивалась с возрастанием длительности освечивания ХМ-ФЦ. В частности, отмечалась активация ацетилэстеразы в сыворотке крови - маркера повреждения микросомальных мембран, существенно более выраженная при воздействии ПФТюо.
Увеличение активности М-ацетил-р-О-глюкозаминидазы в сыворотке крови животных при интоксикации продуктами фототрансформации, обнаруженное на протяжении всего эксперимента, свидетельствует, с одной стороны, об их мембранотоксическом действии, приводящем к высвобождению кислых гидролаз, нарушению нормальных физиологических функций лизосом, дезорганизации внутриклеточного метаболизма и развитию воспаления (Dance N et. al„ 1969; Ding! J. Т. et. а!., 1982; Powells. С. et. а!., 1983; Голиков С.Н. и др., 1986).
С другой стороны, нельзя исключить и увеличения пула фагоцитов для элиминации поврежденных клеток. Правомерность последнего механизма активации косвенно подтверждают и результаты иммуноферментного анализа, свидетельствующие о стимуляции образования макрофагов.
40 20-
-20 -60
Eb—tS" ""
■ " ' TI ' -L!„—P*
15 30 60 ¡Ш 120 150 ISO
-ХЭ —В— АЭ АГА
el, * ***
"fr-;.
* р<0,05 ** р<0,02 *** р<0,01 р<0,001
Рис. 4. Динамика активности холинэстеразы,
ацетилэстеразы и 1Ч-ацетнл-р-0-глюкозамннидазы в сыворотке крови крыс при пероралыюм поступлении ХМ-ФЦ (А), ПФТ25 (Б) и ПФТюо (В) в дозе 0,05 мг/кг в условиях хронического эксперимента (в % отклонений от контроля).
Снижение активности холинэстеразы, как маркера угнетения протеосинтетической функции печени (Покровский A.A., 1969; Silver А., 1974; Jensen F.S. et. al., 1991; Löchrige О. et. а!., 1991; Камышников B.C., 2000), при действии ПФТ25 и, в особенности, ПФТюо позволяет предположить, что деструктивные процессы под влиянием красителя и продуктов его фотолиза развиваются преимущественно в печени.
Предположение о преимущественной локализации процессов повреждения в печени при воздействии ХМ-ФЦ с различной степенью трансформации подтверждают результаты морфологических исследований (таблица 6).
Таблица 6. Оценка степени выраженности токсического воздействия ХМ-ФЦ с разной степенью фототрансформации на печень, почки, 12-перстную кишку и семенники крыс
Орган ХМ-ФЦ, мг/кг ПФТ25, мг/кг ПФТюо, мг/кг
0,05 0,01 0,002 0,05 0,01 0,002 0,05 0,01
Печень +++ +++ - +++ - +++ +++ +
Почки +++ + - - - - - -
12-перстная кишка ++ - - +++ - - +++ -
Семенники ++ - - - - - - -
Примечание: «+++, ++, +.»- выраженность токсического действия,«-»- отсутствие действия.
Так, изменение комплекса структурно-функциональных показателей печени в результате хронического воздействия ХМ-ФЦ в дозах 0,05 и 0,01 мг/кг, ПФТ25 в дозах 0,05 и 0,002 мг/кг, а также ПФТюо в дозе 0,05 мг/кг свидетельствовало о выраженном токсическом эффекте (Токе.). При этом изменения заключались не только в возрастании индекса альтерации гепатоцитов и их полиплоидизации, но и в уменьшении доли паренхимы печени за счет разрастания соединительной ткани и увеличения доли инфильтратов.
Морфофункциональные изменения в почках были зарегистрированы только при поступлении исходного ХМ-ФЦ, при этом воздействие красителя в дозах 0,05 и 0,01 мг/кг приводило, в том числе, и к усилению процессов фиброзирования.
Выявленная в эксперименте стимуляция фиброзирования внутренних органов при действии ХМ-ФЦ и продуктов его фототрансформации свидетельствует об угнетении процессов регенерации паренхиматозных клеток и преобладании роста стромального компонента печени и почек. Аналогичное разрастание соединительной ткани в слизистой, подслизистой и мышечной оболочке желудка было обнаружено в другом эксперименте (Loh C.S. et. al., 1992) при введении бисульфата фталоцианина цинка в качестве фармакологического препарата для лечения дисплазии верхних отделов желудочно-кишечного тракта.
Изменения в 12-перстной кишке при действии максимальных доз ХМ-ФЦ с различной степенью фототрансформации свидетельствовали о нарушении процессов пищеварения.
Изменения структурно-функциональных показателей семенников наблюдались только при воздействии исходного красителя в максимальной дозе.
Цитогенетическое действие ХМ-ФЦ, его ПФТ25 и ПФТюо не выявлено при анализе полихроматофильных эритроцитов с микроядрами в костном мозге и эпителиальных клеток с микроядрами и ядерными протрузиями в эпителиальных клетках толстого кишечника крыс. Соотношение полихроматофильных и нормохромных эритроцитов в костном мозге крыс и доля клеток с атипичной формой ядра в эпителиоцитах толстого кишечника крыс свидетельствовала об отсутствии цитотоксического эффекта исследованных веществ.
Единственным показателем неблагоприятного действия ХМ-ФЦ с разной степенью фототрансформации было появление полихроматофильных эритроцитов неизвестной атипичной формы (с разным количеством «лопастей») (рис. 5А), частота которых и наибольшие изменения формы возрастали с увеличением длительности облучения красителя (рис. 5Б). Такие эритроциты не встречались ранее при изучении других веществ, они не представлены в гематологических атласах.
Рис.5. Полихроматофильные эритроциты атипичной формы (А) и частота их встречаемости (Б) в костном мозге крыс после хронического воздействия ХМ-ФЦ с различной степенью фототрансформации (стрелочкой отмечен полихроматофильный эритроцит в норме).
Вместе с тем, учитывая данные литературы (Hadjur С. et. al., 1997; Martins J.. et. al, 2002, 2004) о тропности фталоцианинов к эритроцитам, приводящем к их разрушению, а также эритроцитопению у экспериментальных животных, обнаруженное впервые образование полихроматофильных эритроцитов атипичной формы в костном мозге можно расценить как
эритроцитотоксическое действие ХМ-ФЦ, которое возрастает с увеличением степени его фототрансформации.
Таким образом, комплексная оценка результатов экспериментов показала, чт фотосенсибилизатор ХМ-ФЦ при энтеральном поступлении в организм в дозах 0,05, 0,01 и 0,0С мг/кг обладает эритроцито-, гепато-, мембрано- и ренотоксическим действием, в дозах 0,05, 0,С мг/кг - иммунотоксическим действием. Кроме того, доза 0,05 мг/кг вызывает нарушения структурно-функционального состояния 12-перстной кишки и семенников. Воздействие красите: во всех дозах приводило к образованию АФК в организме. Недостаточность антиоксидантно системы реализовалась в эритроцитопении и нарушении протеосинтетической функции печени. Пороговая и максимальная недействующая дозы исходного сенсибилизатора не установлены.
Поступление ПФТ25 ХМ-ФЦ в дозах 0,05, 0,01 и 0,002 мг/кг также приводило к образованы в организме опытных животных АФК, повреждающее действие которых реализовалось в развита эритроцито-, гемато-, нейро- и иммуногоксических эффектов. Воздействие ПФТ25 стимулировал процессы фиброзирования печени и почек на фоне угнетения регенерации паренхиматозны клеток, в результате чего снижалась протеосинтетическая функция печени. Выявленные изменения изученных биохимических и морфологических показателей свидетельствуют, что все изученнь: дозы ПФТ25 являлись действующими при длительном поступлении в организм.
В процессе длительного облучения сенсибилизатора, способствующего близкой к 100% его трансформации, происходит образование более токсичных продуктов, которые при поступлении организм в дозах 0,05 и 0,01 мг/кг вызывали изменения практически всех изученных показателе) за исключением иммунологических, в те же сроки эксперимента, что и ПФТ25, но с больше степенью выраженности.
Анализ зависимостей «доза-время-эффект» по комплексу физиологических, гематологических, биохимических, структурно-функциональных, цитотоксических, цитогенетических и иммунологических показателей (таблица 7) не позволил установить пороговые и максимальные недействующие дозы ХМ-ФЦ с различной степенью фототрансформации.
Таблица 7. Выраженность токсического действия различных доз ХМ-ФЦ в зависимости от _степени фототрансформации__
Критерии ХМ-ФЦ ПФТ25 ПФТюо
0,05 мг/кг 0,01 мг/кг 0,002 мг/кг 0,05 мг/кг 0,01 мг/кг 0,002 мг/кг 0,05 мг/кг 0,01 мг/кг
Биохимические, физиологические +++ ++ ++ +++ ++ + +++ +++
Морфологические (печень, почки, 12-пер. кишка, семенники) +++ ++ - +++ + - +++ +
Цитотоксические (костный мозг, эритроциты, толстый кишечник) н/о + - н/о ++ + +++ +++
Цитогенетические (костный мозг, толстый кишечник) н/о - - н/о - - - -
Иммунотоксические +++ ++ н/о +++ + н/о + -
Примечание:«+++»- выраженность эффектов,«-»- отсутствие эффектов, «н/о» - не определяли.
Токсическое действие красителя проявлялось во всех испытанных дозах, минимальная из которых (0,002 мг/кг) в пересчете на концентрацию (0,04 мг/л) в 75 раз ниже его бактерицидной концентрации (3 мг/л). Кроме того, с увеличением времени облучения ХМ-ФЦ происходит образование продуктов, более токсичных и опасных, чем исходный сенсибилизатор. Поэтому фотодинамический метод с использованием этого сенсибилизатора не может быть разрешен для обеззараживания воды водных объектов хозяйственно-питьевого, рекреационного и оздоровительного назначения. Дальнейшие исследования по обоснованию ПДК ХМ-ФЦ в воде представляются нецелесообразными.
Таким образом, на основании результатов гигиенической оценки новых средств обеззараживания воды - химических фотосенсибилизаторов МГ и ХМ-ФЦ впервые показано, что при облучении видимым светом веществ из тиазинового и тетраазопорфиринового рядов
16
образуются более опасные продукты их трансформации.
Установлены закономерности изменения опасности в зависимости от времени воздействия видимого света. Частичная фототрансформация МГ сопровождается усилением его токсичности, а полный фотолиз исходного красителя приводит к уменьшению его опасности. Опасность и токсичность ХМ-ФЦ возрастает с увеличением степени его фототрансформации.
Показано, что одним из ведущих механизмов интоксикации МГ, ХМ-ФЦ и продуктов их фотолиза является их прооксидантное действие и влияние на антиоксидантную систему. Увеличение перекисного окисления липидов, о чем свидетельствовало возрастание интенсивности люминолзависимой хемилюминесценциит реализовалось в развитии реакций повреждения органов и тканей, а также в возникновении специфических эффектов (МГ - мутагенный, ХМ-ФЦ -эритроцитотоксический и иммунотоксический).
В связи с этим при установлении ПДК и определении допустимости использования в практике хозяйственно-питьевого водоснабжения реагентов, способных к фототрансформации, следует учитывать время появления наиболее опасных компонентов в реальных условиях применения.
выводы
1. При однократном поступлении в желудок в высоких дозах химические фототсенсибилизаторы МГ и ХМ-ФЦ способны к длительному (до 14 дней) сохранению во внутренних органах и тканях, что свидетельствует о выраженной материальной кумуляции; по смертельным эффектам относятся к 3 классу токсичности (ЛД50 МГ - 2500 мг/кг, ХМ-ФЦ составляет 4000 мг/кг).
2. Критическим эффектом воздействия красителей на организм белых крыс в хронических экспериментах является образование активных форм кислорода и влияние на антиоксидантную систему защиты организма. Недостаточность каталазной активности сочеталась с возрастанием интенсивности люминолзависимой хемилюминесценции, что свидетельствует об увеличении перекисного окисления липидов, реализовавшемся в развитии реакций повреждения органов и тканей. Это свойственно в большей мере продуктам 25% трансформации МГ и 100% трансформации ХМ-ФЦ в дозах 0,05 и 0,01 мг/кг.
3. На основании сравнения пороговых доз МГ по комплексу физиологических, биохимических, морфологических, цитотоксических и цитогенетических показателей установлено, что частичная (25%) фототрансформация МГ сопровождается усилением его токсичности, о чем свидетельствует снижение пороговой дозы в 5 раз (с 0,01 мг/кг до 0,002 мг/кг), а также мутагенный эффект в эпителиальных клетках толстой кишки ПФТу МГ в дозе 0,05 мг/кг. Дальнейшее облучение светом приводит к снижению токсичности в 25 раз (ПД = 0,05 мг/кг) и исчезновению мутагенных эффектов.
4. Комплекс гигиенических исследований МГ и продуктов его фототрансформации, включающих обоснование пороговых концентраций по органолептическому (0,01 и 0,025 мг/л, соответственно) и общесанитарному (0,05 и 0,01 мг/л) показателям вредности, а также максимальной недействующей концентрации по санитарно-токсикологическому показателю (0,005 мг/л) служит основанием для отнесения МГ к 1 классу опасности. Сопоставление минимальной эффективной в отношении микроорганизмов концентрации (5 мг/л) с токсико-гигиеническими параметрами служит основанием для запрещения использования МГ в качестве дезинфицирующего средства всех видов вод и не позволяет рекомендовать обоснование его ПДК в воде.
5. Воздействие ХМ-ФЦ и продуктов фотолиза в дозах 0,05, 0,01 и 0,002 мг/кг приводит к образованию в костном мозге полихроматофильных эритроцитов неизвестной атипичной формы, частота которых и наибольшие изменения формы возрастают с увеличением степени фототрансформации, что в совокупности с выявленной эритроцитопенией свидетельствует о эритроцитотоксическом действии продуктов фототрансформации красителя.
6. Фотосенсибилизатор ХМ-ФЦ и продукты его 25% трансформации при длительном поступлении в организм в дозах 0,05, 0,01 и 0,002 мг/кг обладают гемато-, гепато-, рено-, нейро- и иммунотоксическим действием с усилением токсичности по мере увеличения времени облучения. Пороговые и максимальные недействующие дозы ХМ-ФЦ с различной степенью фототрансформации не установлены. В связи с тем, что минимальная из изученных доз (0,002 мг/кг, или 0,04 мг/л) в 75 раз ниже бактерицидной концентрации ХМ-ФЦ (3 мг/л), фотодинамический метод с использованием этого сенсибилизатора не может быть разрешен для обеззараживания воды, и обоснование ПДК ХМ-ФЦ нецелесообразно.
7. Сравнительная оценка новых средств обеззараживания воды - химических фотосенсибилизаторов МГ, ХМ-ФЦ и продуктов их фототрансформации показала, что при облучении красителей видимым светом образуются более опасные продукты. Поэтому при установлении ПДК и определении допустимости использования в практике хозяйственно-питьевого водоснабжения реагентов, способных к фототрансформации, следует учитывать время появления наиболее опасных компонентов в реальных условиях применения.
Список работ, опубликованных по теме диссертации В изданиях, рекомендованных ВАК:
1. Сычева Л.П., Шереметьева С.М., Кривцова Е.К., Журков B.C., Головач Е.Н.. Полякова Е.Е., Синицына О.О. Оценка цитогенетической активности метиленового голубого и продуктов его фотодеструкции в полиорганном микроядерном тесте на крысах // Токсикологический вестник. - 2007. - №1. - С. 18-21.
2. Синицына О.О., Жолдакова З.И., Полякова Е.Е., Головач Е.Н.. Сычева Л.П., Беляева Н.Н., Кузнецова Н.А. Сравнительная токсичность фотосенсибилизаторов при разной степени деструкции // Гигиена и санитария. - 2007. - №5. - С.57-60.
3. Головач Е.Н... Беляева Н.Н., Юрченко В.В. Зависимость токсичности холиниометилзамещенного фталоцианина цинка от степени его фототрансформации // Вестник Российской Военно-медицинской академии. - 2008. - Т.23. - №3. - Приложение 2 (часть II). -С.459-460.
В других изданиях:
4. Zholdakova Z.I., Sinitsyna О.О., Polyakova Е.Е., Golovach E.N.. Toxicological evaluation of methylene blue-based photodynamic water disinfection technique // 5th IWA Specialized Conference on Assessment and Control of Micropollutants / Hazardous Substances in Water. International Water Association «MICROPOL & ECOHAZARD 2007». Frankfurt/Main, 2007. - P.564-565.
5. Синицына O.O., Ворожцов Г.Н., Кузнецова H.A., Полякова Е.Е., Калия О.Л., Головач Е.Н.. Беляева Н.Н., Хрипач Л.В., Шереметьева С.М., Жолдакова З.И. Гигиеническая оценка фотодинамического метода обеззараживания воды с использованием метиленового голубого и профлавин ацетата // Тезисы докладов научно-практической конференции по гигиене, эпидемиолигии и дезинфектологии «ДДЦ-2006». М., 2006. - С.62-63.
6. Синицына О.О., Полякова Е.Е., Жолдакова З.И., Головач Е.Н.. Сычева Л.П., Беляева Н.Н., Кузнецова Н.А. Обоснование безопасных условий применения фотодинамического метода обеззараживания воды // Материалы Пленума Научного совета по экологии человека и гигиене окружающей среды РАМН и Минздрава и соцразвития РФ «Современные проблемы гигиены города, методология и пути решения». М., 2006. - С.315-317.
7. Головач Е.Н.. Сравнительная токсичность холиниометилзамещенного фталоцианина цинка и продуктов его фотодеструкции // Материалы II Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых и специалистов «Окружающая среда и здоровье». Рязань, 2007. -С.20-21.
Обозначения и сокращения.
1Кум - индекс кумуляции;
- иммуноглобулин; АГА - Ы-ацетил-Р-О-глюкозаминидаза; АФК - активные формы кислорода; АЭ - ацетилэстераза; БСА - бычий сывороточный альбумин; ДДмуг - допустимая доза мутагена; ЛД50 - средне смертельная доза; ЛЗХЛ - люминол-зависимая хемилюминесценция; ЛПНП - липопротеины низкой плотности; МГ - метиленовый голубой; МНД- максимальная недействующая доза; ПД - пороговая доза;
ПДК - предельно допустимая концентрация;
ПФТ25 - продукты 25% фототрансформации;
ПФТюо - продукты 100% фототрансформации;
ПФТ - продукты фототрансформации;
ПХЭ - полихроматофильные эритроциты;
Токе. - выраженное токсическое действие;
ХМ-ФЦ - холиниометилзамещенный фталоцианин цинка;
ХЭ - холинэстераза;
ЦНС - центральная нервная система.
Заказ № 134/04/09 Подписано в печать 22.04.2009 Тираж 50 экз. Усл. п.л. 1,25
ООО "Цифровичок", тел. (495) 797-75-76; (495) 649-83-30 mvw.cfr.ru; е-таИ:ю/о@с/г.ги
Оглавление диссертации Головач, Елена Николаевна :: 2009 :: Москва
ВВЕДЕНИЕ.
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
1.1. Принцип фотодинамического метода обеззараживания воды. Механизмы фотосенсебилизации и генерации активных форм кислорода.
1.2.Метиленовый голубой и холиниометилзамещенный фталоцианин цинка. Физико-химические свойства, применение.
1.3. Антиоксидантная система организма.
ГЛАВА 2. ОБЪЕМ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.
ГЛАВА 3. ИЗУЧЕНИЕ ТОКСИЧНОСТИ И ОПАСНОСТИ МЕТИЛЕНОВОГО ГОЛУБОГО И ПРОДУКТОВ ЕГО ФОТОТРАНСФОРМАЦИИ.
3.1. Изучение влияния метиленового голубого с разной степенью фототрансформации на органолептические свойства воды.
3.2. Изучение влияния метиленового голубого и продуктов его фототрансформации на процессы самоочищения водных объектов.
3.2.1. Изучение влияния метиленового голубого и продуктов его фототрансформации на динамику биохимического потребления кислорода.
3.2.2. Изучение влияния метиленового голубого и продуктов его фототрансформации на процессы минерализации азотсодержащих соединений.
3.3. Исследование острой токсичности и клинической картины отравления метиленовым голубым.
3.4. Изучение местного раздражающего и кожно-резорбтивного действия метиленового голубого при однократном воздействии.
3.5. Сравнительная оценка токсического действия метиленового голубого и продуктов его фототрансформации на организм теплокровных животных в условиях хронических экспериментов.
3.5.1. Сравнительная оценка токсичности метиленового голубого и продуктов его 25% фототрансформации.
3.5.2. Изучение токсичности продуктов 25% и 100% фототрансформации метиленового голубого.
3.6. Изучение мутагенной и цитотоксической активности метиленового голубого и продуктов его фототрансформации в полиорганном микроядерном тесте.
3.6.1. Изучение цитогенетического и цитотоксического действия метиленового голубого и продуктов его 25% фототрансформации
1 серия).
3.6.2. Изучение цитогенетических и цитотоксических эффектов продуктов 100% фототрансформации метиленового голубого ( серия).
3.7. Изучение иммунотоксического действия продуктов фототрансформации метиленового голубого на теплокровных животных.
3.8. Изучение сенсибилизирующих свойств продуктов фототрансформации метиленового голубого.
ГЛАВА 4. ИЗУЧЕНИЕ ТОКСИЧНОСТИ И ОПАСНОСТИ ХОЛИНИОМЕТИЛЗАМЕЩЕННОГО ФТАЛОЦИАНИНА ЦИНКА И ПРОДУКТОВ ETG ФОТОТРАНСФОРМАЦИИ.
4.1. Исследование острой токсичности и клинической картины отравления холиниометилзамещенным фталоцианином цинка.
4.2. Изучение токсического действия холиниометилзамещенного фталоциаиина цинка и продуктов его фототрансформации на организм теплокровных животных в условиях хронического эксперимента.
4.3. Изучение мутагенной и цитотоксической активности холиниометилзамещенного фталоцианина цинка и продуктов его фототрансформации в микроядерном тесте.
4.4. Изучение иммунотоксического действия холиниометилзамещенного фталоцианина цинка и продуктов его фототрансформации на теплокровных животных.
4.5 Изучение сенсибилизирующих свойств холиниометилзамещенного фталоцианина цинка и продуктов его фототрансформации на лабораторных животных.
ГЛАВА 5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.
ВЫВОДЫ.
Введение диссертации по теме "Гигиена", Головач, Елена Николаевна, автореферат
Обеспечение населения питьевой водой, безопасной в эпидемическом отношении, определяет необходимость совершенствования методов обеззараживания [78, 164]. Применяемые в настоящее время физические и химические методы обеззараживания воды сопряжены с рядом общеизвестных недостатков. В частности, наиболее распространённые во всём мире реагенты на основе активного хлора не только высокотоксичны, вызывают аллергические реакции при перехлорировании, раздражают слизистые оболочки, но и приводят к образованию в воде хлорорганических соединений, многие из которых обладают мутагенной и/или канцерогенной активностью [30, 45].
Альтернативные способы обеззараживания - озонирование и ультрафиолетовое облучение, также не универсальны. Несмотря на то, что ультрафиолетовое облучение оказывает на большинство химических веществ гораздо более слабое трансформирующее действие, чем активный хлор [29], в дальнейшем возможна реактивация микроорганизмов. При озонировании также отсутствует остаточное действие обеззараживания и существует опасность образования канцерогенных броматов. В связи с этим, продолжается поиск новых эффективных и безопасных методов обеззараживания воды.
В последние годы предложена новая физико-химическая технология обеззараживания воды фотодинамическим методом. Принцип метода [70] основан на тропности к клеткам фотодинамически активных красителей (химических сенсибилизаторов), которые под действием света в присутствии кислорода генерируют синглетный кислород и другие его активные формы, окисляющие биомолекулы и вызывающие гибель микроорганизмов по месту локализации [47, 115, 127, 191, 268]. Обеззараживание является результатом физико-химических реакций, протекающих в растворе.
Одними из наиболее эффективных дезинфектантов для фотодинамического обеззараживания воды являются красители из тиазинового и тетраазопорфиринового рядов - метиленовый голубой (МГ) и холиниометилзамещенный фталоцианин цинка (ХМ-ФЦ) [3, 188].
Согласно Международной директиве REACH (регистрация, оценка и авторизация химических веществ) все химические вещества, применяемые в промышленности, должны проходить процедуру оценки их опасности [105] включая способность вызывать отдаленные эффекты [79].
Вместе с тем, несмотря на широкое применение красителей в фармакологии, их опасность при длительном поступлении в организм не изучена. Кроме того, в процессе фотохимических реакций происходит трансформация красителей, степень фотолиза которых и спектр образующихся продуктов может зависеть от длительности облучения. При этом наиболее важный с гигиенических позиций аспект этих процессов — сравнительная опасность исходных веществ и продуктов их трансформации [32], также является не изученным.
Важным критерием допустимости применения средств обеззараживания воды, является соотношение «эффективная/безопасная концентрация» [86].
В связи с вышеизложенным, целью данной работы является сравнительная гигиеническая оценка фотосенсибилизаторов и продуктов их трансформации, образующихся под действием видимого света, на примере метиленового голубого и холиниометилзамещенного фталоцианина цинка.
Для достижения поставленной цели решались следующие задачи:
1. На примере МГ установить зависимость изменения пороговых концентраций по органолептическому и общесанитарному показателям вредности от времени облучения видимым светом.
2. Изучить токсичность и способность к кумуляции МГ и ХМ-ФЦ при однократном действии.
3. Дать сравнительную оценку токсичности сенсибилизаторов и продуктов их фототрансформации при длительном энтеральном поступлении в организм.
4. На основании сопоставления эффективных в отношении микроорганизмов и безопасных концентраций обосновать рекомендации о возможности применения МГ и ХМ-ФЦ для обеззараживания воды.
Научная новизна работы. Впервые показано, что при облучении видимым светом веществ из тиазинового и тетраазопорфиринового ряда образуются более опасные продукты их трансформации.
Установлены закономерности изменения их опасности в зависимости от времени воздействия видимого света.
Впервые показано, что одним из механизмов токсического действия МГ, ХМ-ФЦ и продуктов их фототрансформации на лабораторных животных является увеличение генерации активных форм кислорода.
Впервые выявлены мутагенные эффекты продуктов 25% фототрансформации МГ в опытах in vivo.
Впервые выявлено эритроцитотоксическое действие продуктов фототрансформации ХМ-ФЦ.
Впервые показано, что ХМ-ФЦ и продукты его частичной фототрансформации обладают иммунотоксичеким действием.
Обосновано, что при установлении ПДК и определении допустимости использования в практике хозяйственно-питьевого водоснабжения реагентов, способных к фототрансформации, следует учитывать время появления наиболее опасных компонентов в реальных условиях применения.
Практическая значимость. Доказана недопустимость обоснования ПДК МГ и ХМ-ФЦ в воде водных объектов.
Материалы диссертационной работы использованы при подготовке проектов Методических указаний «Санитарно-эпидемиологические испытания (исследования) продукции, используемой в системах водоснабжения» и «Санитарно-эпидемиологическая экспертиза средств дезинфекции воды».
Работа выполнена в лаборатории эколого-гигиенической оценки и прогнозирования токсичности веществ НИИ ЭЧ и ГОС им. А.Н.Сысина
РАМН в рамках плановой научной темы № г/р 02200900946, а также при финансовой поддержке Правительства Москвы.
Апробация материалов диссертации. Результаты исследований по теме диссертации доложены и обсуждены на Форуме по гигиене и санитарии «ДДД-2006» (Москва, 2006), Пленуме Научного совета по экологии человека и гигиене окружающей среды РАМН и Минздравсоцразвития РФ «Современные проблемы гигиены города, методология и пути решения» (Москва, 2006), II Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых и специалистов «Окружающая среда и здоровье» (Рязань, 2007), V Специализированной конференции по оценке и контролю микрозагрязнений опасных веществ в воде Международной водной ассоциации «МКЖОРОЬ & ЕСОНАгАКО 2007» (Франкфурт-на-Майне, 2007), Втором Санкт-Петербургском международном экологическом форуме «ЭкоФорум-2008» (Санкт-Петербург, 2008).
Основные положения, выносимые на защиту:
1. Увеличение опасности МГ при частичной фототрансформации и снижение - при полном фотолизе.
2. Усиление токсичности ХМ-ФЦ с увеличением степени фототрансформации.
3. Механизм интоксикации МГ и ХМ-ФЦ, заключающийся в прооксидантном действии и влиянии на антиоксидантную систему, и сопровождающийся появлением специфических эффектов (МГ — мутагенный, ХМ-ФЦ - эритроцитотоксический и иммунотоксический).
4. Недопустимость применения МГ и ХМ-ФЦ для обеззараживания воды.
Публикации. По теме диссертации опубликовано 7 печатных работ, из них 2 в центральной печати, 3 тезисов и 1 за рубежом. ю
Заключение диссертационного исследования на тему "Сравнительная гигиеническая оценка фотосенсибилизаторов и продуктов их фототрансформации на примере метиленового голубого и холиниометилзамещенного фталоцианина цинка"
выводы
1. При однократном поступлении в желудок в высоких дозах химические фототсенсибилизаторы МГ и ХМ-ФЦ способны к длительному (до 14 дней) сохранению во внутренних органах и тканях, что свидетельствует о выраженной материальной кумуляции; по смертельным эффектам относятся к 3 классу токсичности (ЛД50 МГ - 2500 мг/кг, ХМ-ФЦ составляет 4000 мг/кг).
2. Критическим эффектом воздействия красителей на организм белых крыс в хронических экспериментах является образование активных форм кислорода и влияние на антиоксидантную систему защиты организма. Недостаточность каталазной активности сочеталась с возрастанием интенсивности люминолзависимой хемилюминесценции, что свидетельствует об увеличении перекисного окисления липидов, реализовавшемся в развитии реакций повреждения органов и тканей. Это свойственно в большей мере продуктам 25% трансформации МГ и 100% трансформации ХМ-ФЦ в дозах 0,05 и 0,01 мг/кг.
3. На основании сравнения пороговых доз МГ по комплексу физиологических, биохимических, морфологических, цитотоксических и цитогенетических эффектов установлено, что частичная (25%) фототрансформация МГ сопровождается усилением его токсичности, о чем свидетельствует снижение пороговой дозы в 5 раз (с 0,01 мг/кг до 0,002 мг/кг), а также мутагенный эффект в эпителиальных клетках толстой кишки ПФТ25 МГ в дозе 0,05 мг/кг. Дальнейшее облучение светом приводит к снижению токсичности в 25 раз (ПД = 0,05 мг/кг) и исчезновению мутагенных эффектов.
4. Комплекс гигиенических исследований МГ и продуктов его фототрансформации, включающих обоснование пороговых концентраций по органолептическому (0,01 и 0,025 мг/л, соответственно) и общесанитарному (0,05 и 0,01 мг/л) показателям вредности, а также максимальной недействующей концентрации по санитарно-токсикологическому показателю
0,005 мг/л) служит основанием для отнесения МГ к 1 классу опасности.
176
Сопоставление минимальной эффективной в отношении микроорганизмов концентрации (5 мг/л) с токсико-гигиеническими параметрами служит основанием для запрещения использования МГ в качестве дезинфицирующего средства всех видов вод и не позволяет рекомендовать обоснование его ГТДК в воде.
5. Воздействие ХМ-ФЦ и продуктов фотолиза в дозах 0,05, 0,01 и 0,002 мг/кг приводит к образованию в костном мозге полихроматофильных эритроцитов неизвестной атипичной формы, частота которых и наибольшие изменения формы возрастают с увеличением степени фототрансформации, что в совокупности с выявленной эритроцитопенией свидетельствует о эритроцитотоксическом действии продуктов фототрансформации красителя.
6. Фотосенсибилизатор ХМ-ФЦ и продукты его 25% трансформации при длительном поступлении в организм в дозах 0,05, 0,01 и 0,002 мг/кг обладают гемато-, гепато-, рено-, нейро- и иммунотоксическим действием с усилением токсичности по мере увеличения времени облучения. Пороговые и максимальные недействующие дозы ХМ-ФЦ с различной степенью фототрансформации не установлены. В связи с тем, что минимальная из изученных доз (0,002 мг/кг, или 0,04 мг/л) в 75 раз ниже бактерицидной концентрации ХМ-ФЦ (3 мг/л), фотодинамический метод с использованием этого сенсибилизатора не может быть разрешен для обеззараживания воды, и обоснование ПДК ХМ-ФЦ нецелесообразно.
7. Сравнительная оценка новых средств обеззараживания воды — химических фотосенсибилизаторов МГ, ХМ-ФЦ и продуктов их фототрансформации показала, что при облучении красителей видимым светом образуются более опасные продукты. Поэтому при установлении ПДК и определении допустимости использования в практике хозяйственно-питьевого водоснабжения реагентов, способных к фототрансформации, следует учитывать время появления наиболее опасных компонентов в реальных условиях применения.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2009 года, Головач, Елена Николаевна
1. Абрамов Н.Г. Гематологический атлас. Изд. 2 переработанное. — М: Медицина, 1985.-С. 116-156.
2. Адо А.Д. Общая аллергология. М., 1978. С. 464.
3. Асатиани B.C. Ферментные методы анализа. — М., 1969. С.596.
4. База данных о токсичности и опасности химических веществ «SARETbase». НИИ ЭЧ и ГОС им. А.Н. Сысина РАМН.
5. Балабанова Э.Л., Курляндский Б.А., Торшина Н.Л., Вишневецкий Ю.Н. Связь токсичности некоторых фталоцианинов меди с их распределением на белках сыворотки крови // Гигиена труда и профессиональные заболевания -1989. №10. - С.54-56.
6. Беляева H.H. Клеточная восстановительная регенерация как биомаркер вредного действия при гигиенической оценке факторов окружающей среды. //Автореф. дисс.докт. биол. наук. М., 1997. - С. 47.
7. Березин Б.Д. Координационные соединения порфиринов и фталоцианинов. — М. 1978.
8. Биохимические методы исследования в клинике./ Под ред. А.А.Покровского. -М.: Медицина, 1969. С.111-180.
9. Бобырев В.Н., Воскресенский О. Н. Изменение активности антиоксидантных ферментов при экспериментальном синдроме пероксидации у кроликов.// Вопр. Мед. Химии. — 1982. № 2. - С.75-78.
10. Бонашевская Т.И., Беляева H.H., Кумпан Н.Б., Панасюк JI.B. Морфофункциональные исследования в гигиене. М.: Медицина, 1984. -С. 100.
11. Борисюк М.В., Корнейчик В.Н., Рожко A.B., Янке-левич Ю.Д. Гемический компонент системы транспорта кислорода в регуляции процессов перекис-ного окисления липидов // Система транспорта кислорода. Гродно, 1989. С. 6-13.
12. Бочаров В.В. Физико-химические закономерности биоразлагаемости ПАВ в проблеме санитарной охраны водных объектов. Автореф. дисс. . докт.биол.наук. М., 1991. - С. 44 .
13. Бочаров В.В., Перегудин Ю.Ф., Маркина Л.С., Рабинович H.JI. Применение новой классификации в оценке биоразлагаемости некоторых ПАВ // Сб. тезисов докл. Конф. «Проблемы санитарной охраны водоемов», Пермь, 1988. С. 126.
14. Варле Д., Вендт А., Вайтемеер А. и др. // Изв. АН. Сер. Хим., 1994. С. 312.
15. Введение в фотохимию органических соединений. /Под ред. Г.О.Бейкера. Л.: Химия, 1976. С. 326.
16. Владимиров Ю.А., Азизова O.A., Деев А.И. и др. Свободные радикалы в живых системах // Итоги науки и техники. Сер. Биофизика. 1991. - Т. 29.-С. 252.
17. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах // М.: Наука. 1972. - С. 282.
18. Галактионов В.Г. Иммунология: Учебник. М.: Нива России, 2000. - С. 488.
19. Герасимов A.M., Деленян Н.В. Пространственный фактор в регуляции свободнорадикальных процессов // Мат. Междунар. симп. «Кислород и свободные радикалы». Гродно, 1996. С. 40-41.
20. Гигиеническая оценка материалов, реагентов, оборудования, технологий, используемых в системах водоснабжения: Методические указания МУ 2.1.4.783-99. М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора МЗ РФ, 1999.-С. 35.
21. Гигиенические требования к охране поверхностных вод: Санитарные правила и нормы СанПиН 2.1.5.890-00. — М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России, 2000. С. 24.
22. Голиков С.Н., Саноцкий И.В., Тиунов JI.A. Общие механизмы токсического действия/ АМН СССР. Д.: Медицина, 1986. - С. 280.
23. Жолдакова З.И., Беляева H.H., Синицына О.О., Зайцев H.A., Тульская Е.А., Авсеевич Н.И. Роль морфофункциональных критериев в оценке различий токсического действия веществ на пути их поступления в организм.// Гигиена и санитария, 2002. №4. - С.47-49.
24. Жолдакова З.И., Бердина Р.Б., Кустова Е.В. Сравнительная гигиеническая оценка неионогенных поверхностно-активных веществ с учетом стабильности и трансформации // Гигиена и санитария. — 1998. -№3. С.7-10.
25. Жолдакова З.И., Полякова Е.Е., Синицына О.О. Стабильность и трансформация химических веществ при гигиенической оценке их опасности. // Материалы IX Всероссийского съезда гигиенистов и санитарных врачей. Т. 1. -М., 2001. - С. 236-239.
26. Журков B.C. Подходы к регламентации химических загрязнителей окружающей среды, обладающих мутагенной активностью.// Медицинские проблемы охраны окружающей среды: Сб. научных трудов. / Под ред. Г.И.Сидоренко. М., 1981. - С.88-95.
27. Заявка на патент РФ на изобретение №2008114162 от 15.04.2008 г. «Способ фотообеззараживания воды», заявитель — ФГУП «ГНЦ «НИОПИК», решение о выдаче патента от 14.01.2009 г.
28. Заявка на патент РФ на изобретение №2008139527 от 07.10.2008 г. «Сенсибилизатор и способ обеззараживания воды», заявитель — ФГУП «ГНЦ «НИОПИК».
29. Зборовская И.А. Антиоксидантная система организма, ее значение в метаболизме. Клинические аспекты / И.А. Зборовская, М.В. Банникова// Вестн. Рос АМН. -1995. -№6. С.53 - 60.
30. Зентов Н.К. Окислительный стресс. Биохимические и патофизиологические аспекты/ Н.К. Зентов, В.З. Ланкин, Е.Б. Меныцикова //М: Наука. -2001. -С. 340.
31. Камышников B.C. Справочник по клинико-биохимической лабораторной диагностике. Минск, 2000. Т. 2. - С. 258-260.
32. Каримов Х.Я., Дадажанов Ш.Н., Гильдиева М.С. Репродуктивные клетки крыс как биологические индикаторы влияния факторов окружающей среды.// Морфология, 2003ю Т. 123. - № 1,- С.69-7.
33. Кнорре Д.Г., Федорова О.С., Флорова Е.И. Успехи химии. 1993. - Т. 62. - №1. - С. 70.
34. Ковальская Н.Е. Сравнительный анализ различных сенсибилизаторов для фотоокислительных технологий очистки воды. Информационная система «Наука и инновации». 12/15/2000.
35. Костовецкий Я.И., Жолдакова З.И. К вопросу о гигиеническом нормировании фенола в воде водоёмов.// Гигиена и санитария. — 1971. -№7. С.7-10.
36. Красновский A.A. (мл.) Итоги науки и техники. Современные проблемы лазерной физики. М., ВИНИТИ. 1990. - Т. 3. - С. 63.
37. Красовский Г.Н. и др. Методические указания к экспериментальному изучению процессов трансформации химических веществ при их гигиеническом регламентировании в воде // Львовский мед. ин-т и др. -М. 1985.-С.16.
38. Красовский Г.Н., Авалиани С.Л., Жолдакова З.И. и соавт. Система критериев комплексной оценки опасности химических веществ, загрязняющих окружающую среду // Гигиена и санитария. 1992. - N9-10.-С.15-17.
39. Красовский Г.Н., Вайсман Я.И., Зайцева H.A. и др. Схема установления пороговых концентраций веществ по их влиянию на процессы самоочищения водных объектов.// Гигиена и санитария. — 1992. С.ЗЗ-37.
40. Красовский Г.Н., Журков B.C. и др. Методические указания по изучению гонадотоксического действия химических веществ при гигиеническом нормировании в воде водоемов // НИИОКГ им. А.Н.Сысина АМН СССР. М., 1986. - С. 23.
41. Кузнецова H.A., Калия О.Л. Фотокаталитическая генерация активных форм кислорода в биологических средах в методе фотодинамической терапии.// Российский химический журнал.- 1998.- №5. С. 36-49.
42. Кузнецова H.A., Южакова O.A. Сравнительная оценка эффективности фотообезараживающего действия катионовых сенсибилизаторов182фталоцианина цинка в отношении Pseudomonas aeruginosa. ФГУП «ГИД «НИОПИК», Россия.
43. Кулеш Т.А. Гигиеническое регламентирование загрязнения атмосферного воздуха в производстве спиртов методом оксосинтеза с учетом трансформации выбросов. Дисс. . канд. мед. наук. - М. - 1985. - С. 209.
44. Кулинский В.И. Активные формы кислорода и оксидативная модификация макромолекул: польза, вред и защита // Соросовский образовательный журнал. 1999. - №1. - С. 1-7.
45. Кулинский В.И. Лекционные таблицы по биохимии./ Иркутск: Иркут. мед. ин-т, 1994. Вып. 4: Биохимия регуляций. — С. 94.
46. Кулинский В.И., Колесниченко Л.С. // Успехи соврем, биологии. 1993. -Т.113. —№1.-С. 107-122.
47. Кулинский В.И., Колесниченко Л.С. Биологическая роль глутатиона // Успехи соврем, биологии. 1990. -Т. 110, № 1(4) . - С. 20-33.
48. Курляндский Б.А., Брауде Е.В., Клячкина А.М., Торшина Н.Л., Хохлова С.Б., Засорина Е.В. Изучение токсичности фталоцианина меди // Гигиена и санитария М.: Медицина. - 1985. - №1. - С.92-93.
49. Ланкин В.З., Ракита Д.Р., Вихерт А.М. Влияние а-токоферола на супероксиддисмутазную и глутатионпероксидазную активность цитозоля и митохондрий печени мышей.// Биохимия. 1983. - Вып. 9. — С. 1555-1559.
50. Лурье Ю.Ю. Унифицированные методы анализа качества вод. — М.: Химия. 1971. - С.85-90.
51. Любимов Б.И., Коваленко Л.П., В.Н. Федосеева В.Н. Методические указания по оценке аллергизирующих свойств фармакологических веществ. В кн.: Руководство по экспериментальному (доклиническому)183
52. Макаров Д.А., Кузнецова H.A., Калия O.JI. // Журнал физической химии. 2006. - Т. 80. - №2. - С. 336-343.
53. Машковский М.Д. Лекарственные средства. Часть II. — 12-ое изд. Перераб. и доп. // М.: Медицина. 1993. - С. 473-474.
54. Машковский М.Д. Лекарственные средства: В 2 т. Т.2. 14-е изд., перераб., испр. И доп. - М.: ООО «Издательство Новая Волна». - 2002. -С.388-389.
55. Метиленовый синий. Материал из Википедии — свободной энциклопедии. http://en.wikipedia.org/wiki/Methyleneblue (дата обращения 23.11.2006).
56. Методы определения вредных веществ в воде водоемов. / Под ред. А.П.Шицковой. М.: Медицина. - 1981. - С.61-72.
57. Миронов А.Ф. Фотодинамическая терапия рака — новый эффективный метод диагностики и лечения злокачественных опухолей // Соросовский образовательный журнал. 1996. - №8. - С. 32-40.
58. Миронов А.Ф. Фотосенсибилизаторы на основе порфиринов и родственных соединений // Итоги науки и техники. Совр. пробл. лаз. физ. М.: ВИНИТИ. 1990. - Т. 3. - С. 224.
59. Обоснование гигиенических нормативов химических веществ в воде водных объектов хозяйственно-питьевого и культурно-бытового водопользования: Методические указания. МУ 2.1.5.720-98. М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава РФ, 1999. - С. 55.
60. Общая токсикология /Под ред. Б.А. Курляндского, В.А. Филова. — М.: Медицина. 2002. - С. 608.
61. Остренок Л.И. Разработка аллерговакцины на основе аллергенов пыльцы полыни и полиионного иммуностимулятора полиоксидония // Дисс. канд. мед. наук. М. - 1998 - С. 112.
62. Оценка мутагенной активности факторов окружающей среды в клетках разных органов млекопитающих микроядерным методом. Методические рекомендации. М. 2001. - С. 21.
63. Патент РФ на изобретение №2235688 от 10.09.2004 г. «Способ фотообеззараживания воды», патентообладатель — ФГУП «ГНЦ «НИОПИК».
64. Патент РФ на изобретение №2281953 от 20.08.2006 г. «Кватернизованные фталоцианины и способ фотообеззараживания воды», патентообладатель ФГУП «ГНЦ «НИОПИК».
65. Пахрова O.A., Томилова И.К., Алексахина E.JL, Иванова A.C., Горбунов
66. B.А., Назаров С.Б. Исследование свойств синтетических кобальтовых комплексов порфирина и фталоцианина при острой нитритной интоксикации и эндотоксическом шоке в эксперименте // Гигиена и санитария 2008. - №4. - С.75-78.
67. Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества. СанПиН 2.1.4.1074-01. М. - 2002.
68. Порфирины: спектроскопия, электрохимия, применение. /Под ред. Н.С. Ениколопяна. М. - 1987.
69. Порфирины: структура, свойства, синтез. / Под ред. Н.С. Ениколопяна. М.: Наука.- 1985.-С. 333.
70. Пушкина H.H. Биохимические методы исследования // Медгиз. 1963.1. C. 394.
71. Ракитский В.Н., Юдина Т.В. Методические подходы к оценкепоказателей окислительного стресса при воздействии антропогенных1факторов среды. // Гигиена и санитария. 2006. - №5. — С.28-30.
72. Рахманин Ю.А., Ревазова Ю.А. Донозологическая диагностика в проблеме окружающая среда здоровье населения. // Гигиена и санитария. - 2004. - №6. - С.3-5.
73. Ротенберг Ю.С., Сербиновская H.A. Экспрессное определение параметров токсикометрии новых химических агентов на изолированных митохондриях печени: Метод. Рекомендации.- М., 1977.
74. Рубина Х.М., Романчук JI.A. Количественное определение SH- групп в цельной и депротеинизированной крови спектрофотометрическим методом.// Вопросы медицинской химии. 1961. — Т. 7. - № 6. — С. 652655.
75. Румянцев Г.И., Новиков С.М. Прогнозирование кожно-резорбтивных свойств новых химических соединений.// Гигиена и санитария. — 1975. -№4. С.91-95.
76. Сидоренко Г.И., Малышева А.Г., Кутепов E.H. Проблемы трансформации органических соединений в гигиене окружающей среды. -М. 1999.-С. 131.
77. Синицына О.О. Гигиеническая оценка опасности аварийного загрязнения воды нестабильными соединениями на примере ацетонциангидрина и продуктов его трансформации. Автореф. дисс. . канд.мед.наук. М. - 1994. - С. 24.
78. Синицына О.О., Красовский Г.Н., Жолдакова З.И. Критерии порогового действия химических веществ, загрязняющих различные объекты окружающей среды. // Вестник РАМН. 2003. - №3. - С. 17-23.
79. Скулачев . В.П. Нефосфорилирующее дыхание как механизм, предотвращающий образование активных форм кислорода // Молекулярная биология. 1995. - Т. 29. - №6. - С. 1199-1209.
80. Скурлатов Ю.И., Дука Г.Г., Мизити А. Введение в экологическую химию: Учеб.пособие для хим. и хим.-технолог.спец. вузов. — М.: Высш.шк., 1994. С. 400.
81. Современные методы в биохимии. / Под ред. Ореховича В.Н. М. - 1977. - С.132-136.
82. Соколовский В.В. Окислительно-восстановительные процессы в биохимическом механизме действия экстремальных факторов внешней среды./ В кн.: Антиоксиданты и адаптация: Сборник научных трудов ЛСГМИ.-Л., 1984.-С.5-19.
83. Соколовский В.В. Тиолдисульфидное соотношение крови как показатель состояния неспецифической резистентности организма.// Учебное пособие. СПб., 1996.
84. Сперанский C.B. О преимуществах использования нарастающего тока при исследовании способности белых мышей к суммации подпороговых импульсов//Фармакология и токсикология. 1965. - № 1 - С. 123-124.
85. Степанов Б.И. Введение в химию и технологию органических красителей, 3 изд. -М. 1984.
86. Судаков K.B. Основные принципы общей теории функциональных систем / Под ред. Судакова К.В. Функциональные системы организма. M.: Медицина. 1987. - С. 26-48.
87. Сычева Л.П. Научное обоснование и разработка системы оценки мутагенного эффекта химических загрязнений окружающей среды у млекопитающих in vivo с учетом органной специфичности. //Автореф. дис.докт.биол.наук. М.- 2002. - С. 46.
88. Сычева Л.П., Журков B.C., Рахманин Ю.А. Новый подход к диагностике мутагенных и канцерогенных факторов окружающей среды. // Гигиена и санитария. 2003. - № 6. - С. 87-91.
89. Тиунов Л. А., Кустов В.В. Токсикология окиси углерода. М.: Медицина, 1980.
90. Токсикометрия химических веществ, загрязняющих окружающую среду. Под редакцией Каспарова А.П., Саноцкого И.В. Центр международных проектов ГКНТ СССР, - М. - 1986. - С. 426.
91. Трахтенберг И.М., Сова P.E., Шефтель В.О. и др. Проблема нормы в токсикологии (современные представления и методические основы, основные параметры и константы)/ Под ред. И.М.Трахтенберга. М.: Медицина. - 1991. - С. 205-208.
92. Федосеева В.Н., Порядин Г.В., Ковальчук Л.В. и др. Руководство по иммунологическим и аллергологическим методам в гигиенических исследованиях. М. 1992. - С. 320.
93. Федосеева В.Н., Шарецкий А.Н., Аристовская Л.В., Чередеев А.Н., Иванов В.В. и другие. Экспериментальное изучение иммунотоксических свойств химических факторов окружающей среды // Методические рекомендации. М. - 1989. - С. 47.
94. Фотодинамическая очистка воды в системах городского и локального водоснабжения, бассейнах и замкнутых водоемах, e-mail: niopik@km.ru.
95. Хамидулина Х.Х. Согласованная на глобальном уровне система классификации и маркировки химических веществ (СГС) и проблемы ее внедрения в России // 3-й съезд токсикологов России 2-5 декабря 2008 г.188
96. Москва. Тезисы докладов / М-во здравоохранения и соц. Развития Российской Федерации и др.. -М., 2008. С.316-318.
97. Химический энциклопедический словарь. Под ред. Кнунянц И.Л. М.: Советская энциклопедия. - 1983. - С. 331-332.
98. Хэм А., Кормак Д. Гистология 1983. - Т.4. - С. 137-152.
99. Эвери Г. Основы кинетики и механизмы химических реакций. М.: Мир.- 1978.-С. 214.
100. Янковский О.Ю. Токсичность кислорода и биологические системы (эволюционные, экологические и медико-биологические аспекты). -Санкт-Петербург.: Игра. 2000. - С.294.
101. Abe Н., Ikebuchi К., Wagner S. et al. Potential Involvement of Both Type I and Type II Mechanisms in M13 Virus Inactivation by Methylene Blue Photosensitization. // Photochem. and photobiol. 1997. -Vol. 66. - N 2. - P. 204.
102. Adams J.D., Lauterburg B.H., Mitchell J.R. // J. Pharmacol. Exp. Ther. -1983.- Vol.227. P.749-754.
103. Aebi H. // Katalose Ju "Methoden der enzimatischen analysen". 1970. - № 2.- P. 14-640.
104. Allen C.M., Weber J.M., van Lier J.E. Sulfophthalocyanines for photodynamic inactivation of viruses in blood products: effect of structural modifications.// Photochem Photobiol. 1995. - Vol.62. -N 1. - P. 184-189.
105. Ando Т., Yoshikawa Т., Tanigawa T. et al. Quantification of singlet oxygen from hematoporphyrin derivative by electron spin resonance. //Life Sciences.- 1997. Vol. 61. - №19. - P. 1953.
106. Atherton S., Harriman A. Photochemistry of intercalated methylene blue: photoinduced hydrogen atom abstraction from guanine and adenine. //J.Am.Chem.Soc. 1993. - Vol. 115. - № 5. - P. 1816.
107. Ball D.J., Luo Y. et al. //J. of Photochemistry and Photobiology B-Biology. -1998. Vol. 42. - N 2. - P. 159-163.
108. Bannister J., Allen H., Hill O. Chemical reactivity of oxygen-derived radicals with reference to biological systems.// Biochem. Soc. Transact. 1982. — Vol.10.-N2.-P. 68-69.
109. Barge J., Decreau R., Julliard M. et al. Killing efficacy of a new silicon phthalocyanine in human melanoma cells treated with photodynamic therapy by early activation of mitochondrion-mediated apoptosis.// Exp Dermatol. — 2004.-Vol.13.-N 1. P.33-44.
110. Bartlett J.A., Indigo G.L. // Photochem. and photobiol. 1999. - Vol. 70. - № 4.-P. 490-498.
111. Ben-Hur E., Carmichael A., Riesz P., Rosenthal I. Photochemical generation of superoxide radical and the cytotoxicity of phthalocyanines. //Int. J. Radiat. Biol. 1985. - Vol. 48. - №5. - P. 837.
112. Bonnett R. //Chem. Soc. Rev. 1995. - Vol. 24. - №1. - P. 19.
113. Borgatti-Jeffreys A., Hooser S.B., Miller M.A., Lucroy M.D. Phase I clinical trial of the use of zinc phthalocyanine tetrasulfonate as a photosensitizer for photodynamic therapy in dogs. // Am J Vet Res. 2007. - Vol.68. - N 4. -P.399-404.
114. Brunk U.T., Dalen H. et al. Photo-oxidative disruption of lysosomal membranes causes apoptosis of cultured human fibroblasts. // Free Radical Biology and Medicine. 1997. - Vol. 23. - N 4. - P. 616-626.
115. Buchko G.M., Wagner J.R., Cadet J. et al. // Biochem. et Biophys. Acta -1 Gene Str. and Expression. 1995. - Vol. 1263. - № 1. - P. 17.190
116. Ceriotti G. // Giorn. Chim. Clin. 1984. - N 9. - P. 167.
117. Chacon J.N., Gaggini P. et al. // Chemistry & Physics of Lipids. 2000. - Vol. 107. -N 1. - P. 107-120.
118. Chatlani P.T., Bedwell J., MacRobert A.J., Barr H. et al. Comparison of distribution and photodynamic effects of di- and tetra-sulphonated aluminium phthalocyanines in normal rat colon.// Photochem Photobiol. 1991. — Vol.53.-N 6.-P.745-751.
119. Chatlani P.T., Nuutinen P.J., Toda N. Selective necrosis in hamster pancreatic tumours using photodynamic therapy with phthalocyanine photosensitization. // Br J Surg. 1992. - Vol.79. - P.786-790.
120. Chromy V., Kulhanek V., Fischer J. // Clin. Chem. 1978 - Vol.24. - P.279.
121. Chromy V., Zahradnicek L., Voznicek J. // Clin. Chem. 1981. - N 27. -P. 1729.
122. Chromy V., Zahradnicek L., Voznicek. // J Biochem. Clin. Bohemoslov. -1989.-N 18.-P.57.
123. Chung K.-T., Fulk G.F., Andrews A.W. Mutagenicity testing of some commonly used dyes. // Appl. Environ. Microbiol. 1981. - Vol. 42. - N 4. -P. 641-648.
124. Clin //J. Chem. Biochem. 1970. - Vol. 8. - P. 658.
125. Cowett R.M., Hakanson D.O., Kocon R.W., Oh W. Untoward neonatal effect of intra-amniotic administration of methylene blue.// Obstet Gynecol. 1976. - Vol. 48(suppl). - P.74s-75s.
126. Crestini C., D^Auria M. //J. Photochem. and Photobiol A. 1996. - Vol. 101. -№1. - P. 69.
127. Dance N, Price R.G., Robinson D., Stirling J.L. Beta-galactosidase, beta-glucosidase and N-acetyl-beta-glucosaminidase in human kidney. // Clin, chim. Acta. 1969. - Vol. 24. - P. 189 - 197.
128. Daraio M., Aramendia P., San Roman E. //J. Photochem. And Photobiol. A. -1994.-Vol. 77.-№1.-P. 41.
129. Daraio M., Aramendia P., San Roman E. //Langmuir. 1996. - Vol. 12. - P. 2932.
130. Daraio M., Aramendia P., San Roman E., Braslavsky S. //Ibid. 1991. - Vol. 54. -№3. - P. 367.
131. Daziano J., Steenken S., Chabannon C. et. al. //Ibid. 1996. - Vol. 64. - №4. -P. 712.
132. Decreau R., Richard M.J., Verrando P. et al. Photodynamic activities of silicon phthalocyanines against achromic M6 melanoma cells and healthy human melanocytes and keratinocytes.// J Photochem Photobiol B. — 1999. -Vol.48. -N 1.-P.48-56.
133. Dingl J. Т., Fell Н. В, et al. Lysosomes in Biology and Pathology. — Amsterdam. 1973. - P. 421 - 436.
134. Dix T.A., Aikens J. //Chem. Res. Toxicol. 1993. - Vol. 6. - №1. - p. 2.
135. Dobler-Girdziunaite D., Burkard W., Haller U., Larsson В., Walt H.The combined use of photodynamic therapy with ionizing radiation on breast carcinoma cells in vitro.// Strahlenther Onkol. — 1995. Vol.171. - N 11. — P.622-629.
136. Ере В., Hegler J., Wild D. Identification of ultimate DNA damaging oxygen species. // Environ. Health Perspect. 1990. - V. 88. - P. 111-115.
137. Evans H.H., Horng M.F., Ricanati M. et al. Mutagenicity of photodynamic therapy as compared to UVC and ionizing radiation in human and murine lymphoblast cell lines.// Photochem Photobiol.- 1997. Vol.66. N 5. — P.690-696.
138. Ferro S., Coppellotti O., Roncucci G. et al. Photosensitized inactivation of Acanthamoeba palestinensis in the cystic stage.// J Appl Microbiol. 2006. — Vol.101.-N 1. — P.206-212.
139. Floyd R.A., Schneider J.E. Jr, Dittmer D.P. Methylene blue photoinactivation of RNA viruses. // Antiviral Res. 2004. - Vol. 61.-N3. -P. 141-151.
140. Fridovich I. Fundamental aspects of reactive oxygen species, or what's the matter with oxygen?// Ann N Y Acad Sci. 1999. - Vol.893. - P. 13-18.
141. Fridovich I. Superoxide dismutases.// Annu Rev Biochem. 1975. - Vol.44. -P.147-159.
142. Gantchev T., Van Lier // J.Photochem. and Photobiol. 1995. - Vol. 62. - №1. -P. 123.
143. Gilbert H.E. Glutathione Centennial Molecular Perspectives and Clinical Implications // Ed. A. Meister. San Diego: Acad. Press, 1989. - P.73-87.
144. Gillman P.K. Methylene Blue implicated in potentially fatal serotonin toxicity.//Anaesthesia. 2006. - Vol. 61. - P. 1013-1014.
145. Gillman P.K. Methylene blue is a potent monoamine oxidase inhibitor. // Can J Anaesth. 2008. - Vol. 55. - N 5. - P.311-312.
146. Girotti A.W. // Photochem. and Photobiol. 1990. - Vol. 51.- №4. - P. 497.
147. Goldstein B.D. Exacerbation of dapsone induced Heinz body hemolytic anemia following treatment with methylene blue. // Am J Med Sci. 1974. -Vol. 267.-P.291-297.
148. Gosselin R.E., Smith R.P., Hodge H.C. Clinical Toxicology of Commercial Products. 5th ed. Baltimore: Williams and Wilkins, 1984. -P.385.
149. Guibault G. et al. //Anal.Bioch. 1967. - N18. - P.241.
150. Guidelines for drinking-water quality. Third edition. Vol.1. Recommendations WHO: Geneva. - 2003.
151. Gupta P.K., Dahmiwal N.R. et al. // Indian J. of Chemistry Section A-Inirganic Bioinorganic Physical Theoretical & Analitical Chemistry. — 1996. -Vol. 35.-N10.-P. 852-855.
152. Hadjur C-, Wagnieres G., Ihringer F., Monnier P., Van den Bergh H. Production of the free radicals O2" and OH by irradiation of the photosensitizer zinc(II) phthalocyanine. // J. Photochem. Photobiol. B. 1997. -Vol.38. -N2-3.-P.196-202.
153. Hadjur C., Warnieres G., Monnier P., Van den Berg H. //Photochem. Photobiol. 1997. - Vol. 65. - №5. - P. 818.
154. Halliwell B. And Cross C.E. // Nutr. Rev. 1994. - Vol. 52. - N 8 (1). - P. 253-265.
155. Halliwell B. Biochemical mechanisms accounting for the toxic action of oxygen on living organisms: the key role of superoxide dismutase.// Cell Biol Int Rep. 1978. - Vol.2. - N 2. - P. 113-128.
156. Hanbook of Fluorescent Probes and Research Chemicals. Sixth Edition. /By Richard P., Haugland Ph. // Molecular Probes. Inc. 1996.
157. Harvey J.W., Keitt A.S. Studies of the Efficacy and Potential Hazards of Methylene Blue Therapy in Aniline-Induced Methaemoglobinaemia.// Br J Haematol. 1983.-Vol. 54.-N 1.-P.29-41.
158. Hassan M., Fridovich I. Superoxide dismutases: detoxication of a free radical. In: Enzymatis Basis of Detoxication / Ed. W. Jakoby N. Y. - London, Toronto, Sydney, San Francisco, 1980. - V.l. - P. 311-332.
159. Haylett A.K., Menair F.I. et. al. //Cancer Lett. 1997. - Vol. 112. - №2. - P. 233.
160. He J., Horng M.F., Deahl J.T., Oleinick N.L., Evans H.H. Variation in photodynamic efficacy during the cellular uptake of two phthalocyanine photosensitizes.// Photochem Photobiol. 1998. - Vol.67. - N 6. - P.720-728.
161. He J., Larkin H., Li Y., Rihter B. et. al. //Photochem. and Photobiol. 1997. -Vol. 65.-№3. -P. 581.
162. Heidelberg. Berufsgenossenschaft der chemischen Industrie, Postfach. Germany. 1995. - N 22. - P. 15.
163. Hoebeke M., Schuitmaker H., Jannink L. et al. //Photochem. and Photobiol. -1997.- Vol. 66. №4. - P. 502.
164. Hu Y., Jiang L. //J. Ibid. 1996. - Vol. 33. - №1. - P. 51.
165. Imlay J. A., Fridovich I. Suppression of oxidative envelope damage by pseudoreversion of a superoxide dismutase-deficient mutant of Escherichia coli. // J Bacteriol. 1992. - Vol.174. -N 3. - P.953-961.
166. Ishidate Jr M., Harnois M.C., Sofuni T. A cjmporative analysis of data on the clastogenicity of 951 chemical substances tested in mammalian cell cultures. //Mutation Research.- 1988.-V. 195-P. 151-213.
167. Janeula D., Drabkovä M., Cerny J. et al. Algicidal activity of phthalocyanines--screening of 31 compounds.//Environ Toxicol. — 2008. Vol.23. - N 2. — P.218-223.
168. Jensen F.S., Vibi-Mogensen J. // Cholinesterases. Structure, Function, Mechanism, Genetics and Cell Biology. Washington. D.C.: American Chemical Society. 1991. - P. 336-337.
169. Kappus H., Sies H. Toxic drug effect associated with oxygen metabolism redox cycling and lipid peroxydation.// Experientia. 1981. - Vol.37. - N 12. -P. 1233-1241.
170. Kier L.D., Brusick D.J., Auletta A.E. et. al. The Salmonella typhimurium/mammalian microsomal assy; A report of the U.S. Environmental Protection Agency Gene-Tox Programe. // Mutation Research. 1986.-V. 168-P. 69-240.
171. Komatsu K. Photodynamic cell killing effects and acute skin photosensitivity of aluminum-chloro-tetrasulfonated phthalocyanine and hematoporphyrin derivative.// Jpn J Cancer Res. 1991. - Vol.82. - N 5. - P.599-606.
172. Kress M., Petersen M. et al. // Naunyn Schmiedebergs Archives of Pharmacology. - 1997. - Vol. 356. - N 5. - P. 619-625.
173. Kuznetsova N., Slivka L., Kaliya O., Artemova T., Ivanova L. et. al. Phthalocyanines as sensitizers for photodynamic water. CUTEC Serial Publication 2003. - №57. - P. 401-405.
174. Lavelle F., McAdam M E, Fielden E M., Roberts P B. A pulse-radiolysis study of the catalytic mechanism of the iron-containing superoxide dismutase from Photobacterium leiognathi.// Biochem. J. — 1977. Vol. 161. - P. 3—11.
175. Leach M.W., Khoshyomn S., Bringus J., Autry S.A., Boggan J.E. Normal brain tissue response to photodynamic therapy using aluminum phthalocyanine tetrasulfonate in the rat. // Photochem Photobiol. — 1993. — Vol.57.-N 5.-P.842-845.
176. Lee Y., Wurster R. // Cancer Lett. 1995. - Vol. 88. - № 2. - P. 141.
177. Leist K.H. // Ecotoxicol. Environm. Safety. 1982. - Vol. 6. - P. 457-463.
178. Leung S.C., Lo P.C., Ng D.K., Liu W.K., Fung K.P., Fong W.P. Photodynamic activity of BAM-SiPc, an unsymmetrical bisamino silicon(IV) phthalocyanine, in tumour-bearing nude mice.// Br J Pharmacol. 2008. — Vol.154.-N 1. - P.4-12.
179. Liu J.P., Baker J., Perkins A.S. et al. Mice carrying null mutations of the genes encoding insulin-like growth factor I (Igf-1) and type 1 IGF receptor (Igflr).// Cell. 1993. - Vol. 75. -P.59-72.
180. Loh C.S., Bedwell J., MacRobert A.J. et al. Photodinamic therapy of the normal rat stomach: a comparative study between di-sulphonated aluminium phthalocyanine and 5-aminolaevulinic acid. // Br.J.Cancer. 1992. - Vol.66. -N.3. - P.452-462.
181. Lockrige O., Bert N. // Cholinesterases. Structure, Function, Mechanism, Genetics and Cell Biology. Washington. D.C.: American Chemical Society. -1991.-P. 169-171.
182. McCord J.M. Superoxide radical: controversies, contradictions, and paradoxes // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1995. - Vol. 209. - №2. - P. 112-117.
183. McEvoy G.K. (ed.). American Hospital Formulary Service Drug Information 95. - Bethesda, MD: American Society of Hospital Pharmacists, Inc., 1995 (Plus Supplements 1995). - P. 2605.
184. Mclearie J, Sinclair R.S., Chacon J.N., Smith F J. // Chemistry and physics of lipids.- 1992.- Vol. 62.- N 2. P. 165-176.
185. Medina W.S., dos Santos N.A., Curti C. et al. Effects of zinc phthalocyanine tetrasulfonate-based photodynamic therapy on rat brain isolated mitochondria.// Chem Biol Interact. 2009. - Vol.179. - N 2-3. - P.402-406.
186. Mellish K.J., Cox R.D., Vemon D.I. et al. //Photochemistry and photobiology. 2002. - Vol. 75. - № 4. - P. 392-397.
187. Milla L.N., Yslas E.I., Cabral A., Durantini E.N. et al. Pharmacokinetic, toxicological and phototherapeutic studies of phthalocyanine ZnPcCF3.//' Biomed Pharmacother. 2009. - Vol.63. - N 3. - P.209-215.
188. Moan J.J. //Photochem. and Photobiol. B. 1990. - Vol. 6. - №3. - P. 343.
189. Moldenhauer Brooks M. Methylene Blue as an Antidote for Cyanide and Carbon Monoxide Poisoning.// The Scientific Monthly. 1936. - Vol.43. — N 6.-P. 585-586.
190. Moore R.B., Xiao Z., Owen R.J. et al. Photodynamic therapy of the canine prostate: intra-arterial drug delivery.// Cardiovasc Intervent Radiol. 2008. — Vol.31.-N 1.-P.164-176.
191. Morgan J., Gray A.G., Huehns E.R. Specific targeting and toxicity of sulphonated aluminium phthalocyanine photosensitised liposomes directed to cells by monoclonal antibody in vitro. // Br J Cancer. 1989. - Vol.59. - N 3.v -P.366-370.
192. Moser F.H., Thomas A.L. The phthalocyanines. Vol. 1-2. - Boca Raton (Fla.), 1983.
193. Mosinger J., Micka L. //J. Photochem. And Photobiol. A. 1997. - Vol. 107. -№1/3.-P. 77.
194. Miiller-Breitkreutz K., Mohr H. Hepatitis C and human immunodeficiency virus RNA degradation by methylene blue/light treatment of human plasma. // J Med Virol. 1998. - Vol. 56-N 3. - P. 239-45.
195. Moser F.H., Thomas A.L. Phthalocyanine compounds. N.Y. - 1963.
196. NodaH., Ohua-Nishiguchi H., KamadaH. //Bull. Chem. Soc. Japan. 1997. -Vol. 70. - №2. - P. 405.
197. Paardekooper M., De Bruijne A.W., Van Gompel A.E. Single strand breaks and mutagenesis in yeast induced by photodynamic treatment with chloroaluminum phthalocyanine.// J Photochem Photobiol B. 1997. -Vol.40.-N 2.-P.132-140.
198. Papin JF, Floyd R.A., Dittmer D.P. Methylene blue photoinactivation abolishes West Nile virus infectivity in vivo. // Antiviral Res. 2005. - Vol. 68.-N2.-P. 84-87.
199. Paquette B., Ali H., Langlois R., van Lier J.E. Biological activities of phthalocyanines~XI.// Phototoxicity of sulfonated aluminum naphthalocyanines towards V-79 Chinese hamster cells.// Photochem Photobiol. 1990. - Vol.51. -N 3. -P.313-317.
200. Patterson M.S., Wilson B.C., Graff R. In vivo tests of the concept of photodynamic threshold dose in normal rat liver photosensitized by aluminum chlorosulphonated phthalocyanine.// Photochem Photobiol. 1990. - Vol.51. -N 3. - P.343-349.
201. Pecc L., Costa M. et al. //Biochemical and biophysical research communications. 2000. - Vol. 270. -N 3. - P. 782-786.
202. Phillips D. //Pure Appl. Chrm. 1995. - Vol. 67. - №1. - p. 117.
203. Phthalocyanines: properties and applications. Ed. by C.C. Leznoff, A.B.P. Lever.-N.Y., 1989.
204. Piersma A.H., Attenon P., Bechter R., Govers M.J., Krafft N., Schmid B.P. et al. Interlaboratory evaluation of embryotoxicity in the postimplantation rat embryo culture.// Reprod Toxicol. 1995. - Vol.9. -N 3. - P.275-280.
205. Piette J. //J. Photochem. and Photobiol. B. 1991. - Vol. 11.- №3/4. - P. 241.
206. Poulos T.L. Soluble guanylate cuclase. // Current Opinion in Structural Biology. 2006. - Vol. 16. - N 6. - P. 736-743.
207. Powell S. C., Scaroo I., Wilson F, et al. Assay of urinary N-acetyl-beta-glucosaminidase in a centrifugal analyzer. //Clin. Chem. 1983. - Vol. 29. - P. 1717-1719.
208. Price R. G. Urinary enzymes, nephrotoxicity and renal disease // Toxicology. -1982.-Vol. 23.-P. 99-134.
209. Radunskaya S.Ph., Lavrenchik E.I., Lodinova L.M. Development of Standard Preparation (SP) of noninfection Allergen Specific Activity. //International Journal of Immunorehabilitation. 1994. - № 1. - P. 287.
210. Reddi E., Jory G. //Rev. Chem. Intermed. 1988. - Vol. 10. - P. 241.
211. Reddi T., Jori G., Rodgers M., Spikes // J. Photochem. Photobiol. 1983. -Vol. 38. - №6.-P. 639.
212. Rerko R.M., Clay M.E., Antunez A.R., Oleinick N.L., Evans H.H. Photofrin II photosensitization- is mutagenic at the tk locus in mouse L5178Y cells.// Photochem Photobiol. 1992. - Vol.55. -N 1. -P.75-80.
213. Rosenthal I., Ben-Hur E. Role of oxygen in the phototoxicity of phthalocyanines.// Int J Radiat Biol. 1995. - Vol.67. -N 1. -P.85-91.
214. Salah M, Samy N, Fadel M. Methylene blue mediated photodynamic therapy for resistant plaque psoriasis. //J Drugs Dermatol. — 2009. Vol.8. — N 1. — P.42-49.
215. Sawyer D. T., Valentine J. S. //Acc. CHem. Res. 1981. - Vol. 14. - P. 393.
216. Seen H., Spikes J., Kopecek P. //J. Photochem. and Photobiol. B. 1996. -Vol. 34.-№2/3.-P. 203.
217. Schmidt, E.: Fresenius J.// Anal. Chem. 1990. - Vol. 337. - P. 145.
218. Schuettauf F., Haritoglou C., May C.A. et al. Administration of novel dyes for intraocular surgery: an in vivo toxicity animal study.// Invest Ophthalmol Vis Sci. 2006. - Vol.47. - N 8. - P.3573-3578.200
219. Severin S.E., Posypanova G.A., Katukov V.Yu. et al. Antitumor activity of conjugates of the oncofetal protein alpha-fetoprotein and phthalocyanines in vitro.// Biochem Mol Biol Int. 1997. - Vol.43. -N 5. - P.1081-1089.
220. Silver A. //The Biology of Cholinesterases, Amsterdam. 1974. - P. 576.
221. Smetana Z., Mendelson E., Manor J., van Lier J.E., Ben-Hur E., Salzberg S., Malik Z. Photodynamic inactivation of herpes viruses with phthalocyanine derivatives.// J Photochem Photobiol B. 1994. - Vol.22. - N 1. - P.37-43.
222. Smijs T.G., Nivard M.J., Schuitmarker H.J. Development of a test system for mutagenicity of photosensitizers using Drosophila melanogaster. // Photochem. Photobiol. 2004. - V. 79. - N 4. - P. 332-338.
223. Spikes J., Lier J., Bommer J. /J. Photochem. and Photobiol. A. 1995. - Vol. 91. - №3. - P. 193.
224. Sturmey R.G., Wild C.P., Hardie L.J. Removal of red light minimizes methylene blue-stimulated DNA damage in oesophageal cells: implications for chromoendoscopy. // Mutagenesis. 2009. - Vol. 24 - N 3. - P. 253-258.
225. Sullivan J.B. Jr., Krieger G.R. (eds.). Hazardous Materials Toxicology-Clinical Principles of Environmental Health. Baltimore, MD: Williams and Wilkins, 1992.-P. 408.
226. Tanielian C., Heinrich G. //Ibid. 1995. - Vol. 61. - №2. - P. 131.
227. Tanis P.J., Nieweg O.E., Valdes Olmos R.A, Th Rutgers E.J., Kroon BB (b). History of sentinel node and validation of the technique.// Breast Cancer Res. -2001.-Vol.3.-P.109-112.
228. Tardivo J.P., Del Giglio A., Paschoal L.H., Baptista M.S. New photodynamic therapy protocol to treat AIDS-related Kaposi's sarcoma. // Photomed Laser Surg. 2006. - Vol. 24. - N 4. -P. 528-531.
229. Towill L.E., Drury J.S., Whitfield B.C. et al. Reviews of Environmental Effects of Pollutants. Vol. Cyanide. Oak Ridge National Laboratory, Oak Ridge<Tennessee> ORNL/EIS-81 (EPA-600/1-78-027). - 1978. - P. 190.
230. Tucker J.D., Auletta A.E., Cimino M.S. et. al. Sister-chromatid exchange: Second report of the Gene-Tpx Programe. // Mutation Research. 1993. - V. 297.-N2.-P. 101-186.
231. USP Convention. USPDI Drug Information for the Health Care Professional. 15-th ed. Volume 1. - Rockville M.D.: United States Pharmacopeial Convention, Inc. - 1995. - P. 1839.
232. Villanueva A., Domínguez V., Polo S. et al. Photokilling mechanisms induced by zinc (Il)-phthalocyanine on cultured tumor cells.// Oncol Res. -1999. Vol. 11. - N 10. - P.447-453.
233. Vincer M.J., Allen A.C., Evans J.R. et al. Methylene-blue-induced hemolytic anemia in a neonate.// CMAJ. 1987. - Vol.136. - P.503-504.
234. Viola A., Hadjur C., Jeunet A., Julliard M. //J. Photochem. And Photobiol. B.- 1996. Vol. 32. - № 1/2. - P. 49.
235. Vittar N.B., Prucca C.G., Strassert C. et al. Cellular inactivation and antitumor efficacy of a new zinc phthalocyanine with potential use in photodynamic therapy.// Int J Biochem Cell Biol. 2008. - Vol.40. - N 10. -P.2192-2205.
236. Vol'pin M.E., Novodarova G.N., Krainova N.Yu., Lapikova V.P., Aver'yanov AA. Redox and fungicidal properties of phthalocyanine metal complexes as related to active oxygen.// J Inorg Biochem. 2000. - Vol.81. - N 4. - P.285-292.
237. Wagner S.J., Cifone M.A., Murli Y. et al. Genotoxicity assessment of methylene blue in plasma: Implications for virus inactivation. // Transfusion.- 1995. V. 35. -N 5. - P. 407-413.
238. Wagner S.J., Skripchenko A., Pugh J.C., Suchmann D.B., Ijaz M.K. Duck hepatitis B photoinactivation bydimethylmethylene blue in RBC suspensions. // Transfusion. -2001. Vol. 41. - N 9. - P. 1154-1158.
239. Wagner S.J., Skripchenko A., Robinette D., Mallory D.A., Hirayama J., Cincotta L., Foley J. The use of dimethylmethylene blue for virus photoinactivation of red cell suspensions. // Dev Biol (Basel). 2000. - Vol. 102.-P. 125-129.
240. Wainwright M. et al. Arachidonic Acid Offsets the Effects on Mouse Brain and Behavior of a Diet with a Low (n-6):(n-3) Ratio and Very High Levels of Docasahexanoic Acid. // J of Nutrition. 1997. - Vol. - 127. - P. 184-193.
241. Wan F.Y., Zhang G.H. //Archives of biochemistry and biophysics. 2002,-Vol. 402 - N 2, pp 268-274.
242. Webb R.B., Hass B.S. Biological effects of dyes on bacteria. IV. Mutation induction by acridine orange and methylene blue in the dark with the special reference to Esherichia coli WP6 (polAl). // Mutation Research. 1984. - V. 137-N1.-P. 1-6.
243. Weigle W.O., Cochrane G., Dixon F.L. // J. Immune. 1960. - Vol. 95. - P. 5.
244. Weisshaar H.D., et al. //Med. Welt. 1975. -Vol. 26. P. 387.
245. Wiseman H., Halliwell B. // Biochem. J. 1996. - Vol.313. -N 1. - P. 17-29.
246. Xue L.Y., He J., OleinickN.L. Rapid tyrosine phosphorylation of HS1 in the response of mouse lymphoma L5178Y-R cells to photodynamic treatment sensitized by the phthalocyanine Pc 4.// Photochem Photobiol. 1997. -Vol.66.-N 1.-P.105-113.
247. Yao J.L., Zhang G.J. // Biochemica et Biophysica Acta-Biomembranes. — 1997. Vol. 1323. - N 2. - P. 334-342.
248. Zakrzewski J., Giannotti C. // Inorg. Chim. Acta. 1996. - Vol. 249. - №1. -P. 111.
249. Zhang G.J., Yao J.L. // Biochemica et Biophysica Acta- Biomembranes. -1997. Vol. 1326. - N 1. - P. 75-82.
250. Zhang X., Xu H., Chen D. //J. Photochem. and Photobiol. B. 1994. - Vol. 22. -№3. - P. 235.
251. Zhang Z., Jin H., Bao J., Fang F., Wei J., Wang A. Intravenous repeated-dose toxicity study of ZnPcS2P2-based-photodynamic therapy in Wistar rats.// Photochem Photobiol Sei. 2006. - Vol.5. - N 11. - P. 1006-1017.
252. Zhong Y.G., Zhang G.J.et al //Photochemistry and Photobiology. 2000. -Vol. 71. -N5. - P. 627-633.
253. Ziegler D.M. // Annu. Rev. Biochem. 1985. - Vol. 54. - P.305-329.