Автореферат и диссертация по медицине (14.00.21) на тему:Разработка биокомпозиционного материала, содержащего L-аргинин, для замещения костных дефектов при хирургических стоматологических вмешательствах
Автореферат диссертации по медицине на тему Разработка биокомпозиционного материала, содержащего L-аргинин, для замещения костных дефектов при хирургических стоматологических вмешательствах
На правах рукописи УДК: 616.314-089.844:615.466
СМЕШКО НАТАЛИЯ ВИКТОРОВНА
□□3485484
РАЗРАБОТКА БИОКОМПОЗИЦИОННОГО МАТЕРИАЛА, СОДЕРЖАЩЕГО Ь-АРГИНИН, ДЛЯ ЗАМЕЩЕНИЯ КОСТНЫХ ДЕФЕКТОВ ПРИ ХИРУРГИЧЕСКИХ СТОМАТОЛОГИЧЕСКИХ ВМЕШАТЕЛЬСТВАХ
14.00.21 - «Стоматология» 14.00.25 - «Фармакология, клиническая фармакология»
АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук
- 3 ДЕК 2009
Москва - 2009
003485484
Работа выполнена в ГОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет Росздрава», ГОУ ВПО «Курский государственный медицинский университет Росздрава».
Научные руководители: доктор медицинских наук, профессор
Иванов Сергей Юрьевич
доктор медицинских наук, профессор Покровский Михаил Владимирович
Официальные оппоненты: доктор медицинских наук, профессор
Ломакин Михаил Васильевич
Ведущая организация: ГОУ «Институт повышения квалификации федерального медико-биологического агентства России»
заседании диссертационного совета Д208.041.07 ^ 1осковский
государственный медико-стоматологический университет Росздрава» (г. Москва, ул. Вучетича, д. 9а).
Почтовый адрес: 127205, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГОУ ВПО МГМСУ Росздрава (127206, г. Москва, ул. Вучетича, д. 10а).
Автореферат разослан «_»_2009 г.
Ученый секретарь диссертационного совета
доцент Дашкова О.П.
доктор медицинских наук, профессор Утешев Даниил Борисович
Защита состоится «/ ;:>> > !
1
часов на
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность проблемы. В практике хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии, для заполнения дефектов, возникающих после удаления зубов, опухолей и опухолеподобных образований, с целью предотвращения возможных осложнений, а также для ускорения регенерации костной ткани используется большое количество биогенных и синтетических материалов.
В последние годы предпочтение отдается отечественным биокомпозиционным материалам, так как они по своим свойствам не уступают зарубежным аналогам, кроме того, стоимость их значительно ниже. Препараты фирмы «Полистом» Гидрогсиопол и Колапол, КоллаАн-JI, фирмы «Интермедапатит» «Остим-ЮО», препараты фирмы «Коннектбиофарм» Биоматрикс, Алломатрикс-имплант, Остеоматрикс, хорошо изучены в эксперименте и клинической практике, широко используются (Белозеров М.Н., 2003, Панин A.M., 2004, Аснина С.А. и соавт., 2004).
ГОУ ВПО МГМСУ разработаны новые остеопластические материалы серии «ОСТЕОПЛАСТ», На основе костного деминерализованного и недеминерализованного коллагена с сульфатированными
гликозаминогликанами (сГАГ).
В настоящее время ведется поиск новых «наполнителей», добавление которых в имплантируемый остеопластический материал, будет способствовать улучшению микроциркуляции в области операции, тем самым оптимизировать процессы регенерации костной ткани в месте дефекта.
Одним из перспективных направлений научных разработок представляется использование препаратов оксида азота (NO), стимулирующих неоангиогенез. К таким препаратам относится L-аргинин, условно незаменимая аминокислота, являющаяся донором азота.
Основные исследования по использованию L-аргинина посвящены лечению гипертонической болезни (Е.Б. Манухина и соавт., 2002, Mitsuyata Н. et al, 1995).
По данным Степанова Ю.М. и соавт. (2005), Ь-аргинин укрепляет иммунную систему, увеличивая активность Т-клеточного иммунитета, улучшает микроциркуляцию в поврежденных тканях.
Учитывая, что любое хирургическое вмешательство приводит к расстройству микроциркуляции и снижению показателей резистентности организма, использование Ь-аргинина в качестве «наполнителя» к биокомпозиционному материалу, может способствовать восстановлению кровотока, следовательно, ускорению регенерации костной ткани в зоне имплантации, а так же нормализации показателей местного иммунитета полости рта.
Поиск препаратов, в качестве «наполнителя» к имеющимся биокомпозиционным материалам, способствующим восстановлению микроциркуляции и ускоряющих регенерацию костной ткани, как в эксперименте, так и в клинике, после операций на челюстных костях, является актуальной темой хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии. Цель исследования.
Разработка биокомпозиционного материала, содержащего Ь-аргинин. Внедрение его в клиническую практику для замещения костных дефектов, а также для профилактики осложнений и ускорения неоангиогенеза в зоне послеоперационного дефекта в челюстных костях. Задачи исследования.
1. Разработать новый биокомпозиционный материал, содержащий Ь-аргинин.
2. Экспериментально изучить влияние нового биокомпозиционного материала в сравнении с известными остеокондуктивными биоматериалами на регенерацию костной ткани.
3. Оценить влияние нового биокомпозиционного материала на послеоперационное заживление раны и регенерацию при заполнении дефектов челюстных костей при хирургических стоматологических вмешательствах.
4. Разработать рекомендации по использованию нового биокомпозиционного материала.
Научная новизна. Впервые в эксперименте и в клинической практике хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии для замещения послеоперационных дефектов челюстных костей, использован биокомпозиционный материал, насыщенный Ь-аргинином. Проведен математический анализ состояния костной ткани на этапах регенерации с использованием цифровой и компьютерной томографии. На основании данных экспериментального исследования разработана методика использования Ь-аргинина для насыщения биокомпозиционного материала.
Практическая значимость. Экспериментальными, лабораторными и клиническими исследованиями научно обоснована и подтверждена эффективность использования биокомпозиционного материала, содержащего Ь-аргинин в практике хирургической стоматологии.
Положения, выносимые на защиту.
1. Разработан новый биокомпозиционный материал на основе костного коллагена, содержащий Ь-аргинин.
2. Результаты экспериментальных исследований изучения биосовместимости, остеорепарации и микроциркуляции нового биокомпозиционного материала, содержащего Ь-аргинин.
3. Результаты внедрения разработанного биокомпозиционного материала, содержащего Ь-аргинин, в клинику для заполнения костных дефектов при хирургических стоматологических вмешательствах.
Внедрение результатов научных исследований. Результаты работы внедрены в учебный процесс кафедры госпитальной хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии МГМСУ, кафедры челюстно-лицевой хирургии и имплантологии ФПКВ Ниж. ГМА для преподавания студентам, интернам, ординаторам, аспирантам и слушателям курсов повышения квалификации. В хирургическое отделение поликлиник на базе Московского государственного медико-стоматологического университета и на базе Нижегородской государственной медицинской академии.
Апробация работы. Результаты работы доложены на научно-практической конференции стоматологов и челюстно-лицевых хирургов центрального федерального округа Российской Федерации с международным участием «Технологии XXI века в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии», Россия, г. Тверь, 30-31 октября 2008 г.; на IX Всероссийской научно-практической конференции «Новые технологии в стоматологии и имплантологии», г. Саратов, июнь 2008 г.; на IV восточно-европейской конференции по имплантологии, Украина, г. Львов, март 2009 г.; на международной конференции "Имплантация в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии", Белоруссия, г. Минск, июнь 2009 г. Апробация диссертации проведена на совместном заседании кафедр госпитальной хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии, хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии ФПДО МГМСУ, фармакологии МГМСУ, фармакологии КГМУ от 24.06.2009 г.
Личный вклад диссертанта в выполнение исследования. Автором лично проведены оперативные вмешательства в эксперименте на животных. Также были обследованы и пролечены 24 пациента с радикулярными кистами челюстей, 25 пациентов с ретенцией и дистопией третьих моляров, выполнено 15 синус-лифтингов и 15 зубосохраняющих операций. Статистически обработаны результаты исследований.
Публикации. По теме диссертации опубликовано 5 печатных работ, в том числе 4 в журналах, рекомендованных ВАК Минобрнауки РФ.
Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 127 страницах машинописного текста, состоит из введения и следующих глав: обзора литературы, материала и методов исследования, двух глав собственных исследований, обсуждения результатов, выводов и практических рекомендаций. Указатель литературы включает 168 источников, из них отечественных 83, зарубежных 85. Диссертация иллюстрирована 71 рисунком, микрофотографиями и рентгенограммами, содержит 8 таблиц.
СОДЕРЖАНИЕ
Материалы и методы исследования. В экспериментальной работе использовали L-аргинин производства Eurobiopharm (МЗ РФ. РУ № 77.99.02.916.Б.000485.08.03). Деминерализованный и недеминерализованный костный коллаген производства ООО « НПК ВИТАФОРМ» г. Москва (Per. Уд. .№ ФС 01262005/1950-05 от 20.07.2005, Сертификат соответствия: РОСС RU. ИМ 18.В 00029). Материал костного коллагена, в виде блоков и крошки, насыщали L-аргинин ом при концентрации 1000 мкг/см3 и высушивали методом лиофилизации. Затем стерилизовали потоком быстрых электронов дозой 1825,0 Мрад. Устойчивость L-аргинина к стерилизующей дозе радиации определяли следующим образом.
Используемые реактивы и посуда:
- натрий хлористый (ГОСТ 4233-77), изотонический раствор - 0,9%: 0,9 г натрия хлорида растворяют в мерной колбе на 100 мл в воде очищенной, доводят до метки водой очищенной, перемешивают;
- 0,1 М раствор натра едкого (ГФ XI, вып. 2, стр.66);
- конические колбы вместимостью 100 мл с притертой пробкой;
- мерные колбы вместимостью 50 мл, 25 мл;
- пипетки мерные на 5 мл, цилиндр мерный на 50 мл;
- сканирующий спектрофотометр «Сагу» Швеция.
Определение концентрации субстанции L-аргинина после стерилизации. Около 0,05 г (точная навеска) пробы субстанции после стерилизации, помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, прибавляют 30 мл 0,1 М раствора едкого натра, перемешивают в течение 5-10 минут до полного растворения образца, доводят объем раствора до метки 0,1 М раствором едкого натра, перемешивают (раствор А).
5 мл раствора А помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, доводят объем раствора до метки 0,1 М раствором едкого натра, перемешивают (раствор Б).
Измеряют оптическую плотность полученного раствора на спектрофотометре в кювете с толщиной слоя 10 мм при длине волны 216 нм, используя в качестве раствора сравнения 0,1 М раствор едкого натра.
Параллельно измеряют оптическую плотность раствора (В), приготовленного таким же образом с использованием исходной субстанции Ь-аргинина.
Количественное содержание Ь-аргишша (X, %) в пробе субстанции после стерилизации, в сравнении с исходной субстанцией вычисляют по формуле (1)
0,*а„»5*50*25*100 0,*а„*100
х=--------------------------=-----------------Где,
0п*50*25*а,*5 0„*а,
О] и Эо - оптическая плотность раствора пробы 4 и исходной субстанции соответственно;
а[ и а0 - навески пробы субстанции после стерилизации и исходной субстанции соответственно, г.
Количественное определение Ь-аргишша в костном коллагене после насыщения. 0,5 см3 материала, насыщенного Ь-аргинином, помещают в коническую колбу вместимостью 100 мл, прибавляют 50 мл изотонического раствора натрия хлорида (0,9% раствор), отмеренного мерной колбой. Колбу закрывают пробкой, содержимое перемешивают в течение 5 минут и оставляют в статическом состоянии при комнатной температуре. Через определенный промежуток времени пипеткой отбирают 5 мл раствора и помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, доводят объем раствора до метки 0,1 М раствором едкого натра, перемешивают (раствор Г).
В коническую колбу с губкой пипеткой добавляют 5 мл изотонического раствора натрия хлорида (0,9% раствор).
Измеряют оптическую плотность полученного раствора Г на спектрофотометре в кювете с толщиной слоя 10 мм при длине волны 214 нм, используя в качестве раствора сравнения: 5 мл изотонического раствора
натрия хлорида (0,9% раствор) помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, доводят до метки 0,1 М раствором едкого натра, перемешивают.
Параллельно измеряют оптическую плотность раствора В, приготовленного из исходной субстанции L-аргинина: 0,05 г (точная навеска) помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, прибавляют 30 мл изотонического раствора натрия хлорида, перемешивают в течение 5-10 минут до полного растворения образца, доводят объем раствора до метки изотоническим раствором натрия хлорида, перемешивают (раствор А).
5 мл раствора А помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, доводят объем раствора до метки 0,1 М раствором едкого натра, перемешивают (раствор Б).
Количество L-аргинина (X, г/мл), перешедшего в раствор из губки за определенный промежуток времени, вычисляют по формуле (2): D,*ai*5*50*25 D,*a*
Y = __________________________ = ________________
Do*50*25*l*5 Do
Где D| и D0 - оптическая плотность раствора Г пробы и раствора В исходной
субстанции соответственно;
а0- навеска исходной субстанции, г;
Экспериментальные и морфологические исследования по изучению биосовместимости костного деминерализованного коллагена, насыщенного L-аргинином, у крыс, а так же исследования микроциркуляции после экспериментальных имплантаций деминерализованного коллагена (контроль) и деминерализованного коллагена, насыщенного L-аргинином (опыт), методом лазерной доплеровской флоуметрии проводили на базе кафедры фармакологии Курского государственного медицинского университета (руководитель д.м.н. профессор Покровский В.М.).
Для получения данных микроциркуляции использовалось оборудование производства компании Biopac systems: полиграф MP 100 с модулем лазерной доплеровской флоуметрии (ЛДФ) LDF100C и инвазивным датчиком TSD144, регистрация и обработка данных производилась с помощью программы
AcqKnowiedge версии 3.8.1., показатели микроциркуляции имели вид ЛДФ-грамм и выражались в перфузионных единицах (ПЕ).
Морфологическое исследование полученных образцов производили путем оптической микроскопии срезов, окрашенных гематоксилин-эозином, по Ван-Гизон, по Маллори.
Статистический анализ полученных данных осуществлялся в программе Microsoft Excel 10.0 при помощи средств пакета анализа. Рассчитывались средние значения показателей микроциркуляции, стандартные ошибки. Для оценки достоверности различий в группах использовали двухвыборочный t-тест с различными дисперсиями; различия между группами считали достоверными при уровне надежности а=0,05.
Второй этап экспериментальных исследований был проведен на базе вивария МГМСУ на кроликах породы Шиншилла (искусственно формировался костный дефект на лучевой кости кролика с помощью физиодиспенсера, с последующей имплантацией костного недеминерализованного коллагена, насыщенного L-аргинином). Морфологические исследования проводили на базе кафедры патологической анатомии Российской медицинской академии последипломного образования под руководством профессора, доктора медицинских наук Г.Г. Автандилова.
Клиническая часть. В период с 2007 по 2009 год в хирургическом отделении стоматологического комплекса МГМСУ, а также на базе НижГМА проведено комплексное обследование и лечение 89 пациентов, с использованием биокомпозиционного материала «Остеопласт», насыщенного L-аргинином. Всеми пациентами была заполнена анкета по информированному согласию на оперативное вмешательство с использованием биоматериалов при заполнении послеоперационных дефектов. Пациенты распределены в группы по типу хирургических вмешательств.
Предоперационное обследование состояло из лабораторного (ОАК, б\х анализ крови, кровь на сахар, ВИЧ, RW, HbS, HCV) и рентгенологического исследований (компьютерная томография, ортопантомография). Перед
операцией больных информировали о характере и объеме хирургического вмешательства. В день оперативного вмешательства внутримышечно назначали препараты: дексаметазон 4 мг, дицинон 250 мг, линкомицин 30%-2,0 мл; обработка ротовой полости раствором хлоргексидина 0,05 %. После оперативного вмешательства назначалась антибактериальная и противовспалительная терапия: амоксиклав 625 мг 2 раза в день 7 дней, кетонал по 1 таблетке 2 раза в день при боли, кларитин по 1 таблетке 1 раз в день, антисептическая обработка ротовой полости.
На ортопантомографию пациент направлялся при первичном обращении, на 7-е сутки после операции, через 1, 3, 6 месяцев и через год после проведения операции.
Основные результаты собственных исследований.
Итак, в ходе экспериментальных исследований нам предстояло решить следующие вопросы:
- возможность насыщения L-аргинином биоматериала, разработанного ранее на основе костного коллагена;
- биосовместимость этого материала;
- его влияние на процессы регенерации костной ткани.
Опыты были проведены в 2 этапа. 1-й этап проводился на базе Курского Медицинского Университета. Для проведения эксперимента использовались 70 крыс линии Wistar обоего пола массой 150-250 г, которые в результате рандомизации по полу и весу были разделены на 7 групп (таблица №1)
Таблица №1. Распределение животных по группам
№ группы Ход эксперимента Количество крыс в группе
1 Интактные крысы с переломами бедра 10
2 Крысы с имплантированным подкожно ГАП 10
3 Крысы с имплантированным внутримышечно ГАП 10
4 Крысы с имплантированным параоссально ГАП на фоне перелома бедра 10
5 Крысы с имплантированным подкожно костным коллагеном, насыщенным Ь-аргинином 10
6 Крысы с имплантированным внутримышечно костным коллагеном, насыщенным Ь-аргинином 10
7 Крысы с имплантированным параоссально костным коллагеном, насыщенным Ь-аргинином, на фоне перелома бедра 10
Всего животных в эксперименте 70
• При этом группы №2, №3, №5, №6 использовались для исследования биосовместимости;
• Группы №1, №4, №7 использовались для изучения влияния материала на регенерацию костных дефектов.
Для более детального изучения процессов остеорепарации был проведен второй этап эксперимента на кроликах породы Шиншилла массой 2,5 - 3 кг в количестве 60 штук (Таблица №2)
Таблица №2. Распределение животных по группам
№ группы Ход эксперимента Количество кроликов в группе
1 Кролики с имплантированным материалом, насыщенным Ь-аргинином, под коньюктиву глаза 15
2 Кролики с имплантированным материалом, насыщенным Ь-аргинином подкожно 15
3 Кролики с имплантированным материалом, насыщенным Ь-аргинином, в дефект лучевой кости 15
4 Кролики с имплантированным ГАП в дефект лучевой кости (контрольная группа) 15
Всего животных в эксперименте 60
• При этом группы №1, №2 использовались для исследования биосовместимости;
• Группа №3, №4 - для изучения влияния материала на регенерацию костных дефектов.
Результаты насыщения Ь-аргинином биоматериала. После насыщения материала Ь-аргинином, его стерилизовали и исследовали количественное содержание Ь-аргинина.
Анализ проведен в двух параллельных определениях, получены результаты:
1) а! = 0,0500г;а0 = 0,0501 г;
Б, = 0,623 ; Эо = 0,644 Х1 = 96,93%
Хср. = 96,9%
2)а1 = 0,0502г;ао = 0,0501г;
Б, = 0,625; Б0= 0,644 Х2 = 96,86%
Где,
и Бо - оптическая плотность раствора пробы 4 и исходной субстанции соответственно;
а! и ао - навески пробы стерильной и исходной субстанции соответственно, г.
Таким образом, Ь- аргинин, входящий в состав материала не изменяет своего количественного состава. Ь- аргинин, входящий в состав костного коллагена, после стерилизации также не изменяет своего состава. Результаты этого исследования показаны в таблице №3.
Таблица №3. Результаты исследования после стерилизации.
1 час 3 часа 6 часов 24 часа
азца Оптич еск. плотно сть Результ ат, г/мл Оптичес к. плотност ь Результа т, г/мл Оптиче ск. плотно сть Результа т, г/мл Оптиче ск. плотно сть Результат, г/мл
>ба 1 0,055 0,0050 0,035 0,0032 0,030 0,0027 0,036 0,0032
>ба 2 0,069 0,0062 0,024 0,0022 0,045 0,0040 0,068 0,0061
>ба 3 0,062 0,0056 0,033 0,0030 0,038 0,0034 0,074 0,0067
Где масса материала пробы 1 = 0,1012г, пробы 2 = 0,0828г, пробы 3 = 0,1647 г.
При расчете по формуле (2) навеска исходной субстанции ао = 0,050 г; оптическая плотность D0 = 0,556.
При проведении анализа для определения количества, перешедшего из материала в раствор, аликвоты, из колбы отбирали через 1 час, 3 часа, 6 часов и 24 часа.
Анализ проб 2 и 3 проведен в двух параллельных определениях. Таким образом, стерилизующая доза не влияет на количественный состав L-аргинина как в стерильной субстанции, так и в материале после его насыщения.
Учитывая, что к материалам контактирующим с кровью пациента предъявляются определенные требования по биосовместимости, не токсичности, эффективности и устойчивости к действию биологических жидкостей, при имплантации в ткани организма нами была проведена серия экспериментов по биосовместимости материалов на основе костного коллагена, насыщенных L-аргинином.
В опытах на животных было изучено:
1. Течение послеоперационного периода под влиянием имплантированного материала;
2. Влияние биоматериала на развитие сосудов при имплантации под кожу и внутримышечно у крыс;
3. Влияние биоматериала на развитие сосудов при имплантации под кожу кроликов;
4. Воздействие биоматериала на окружающие имплантат ткани глаза кроликов.
В первой серии экспериментов изучали влияние костного деминерализованного коллагена, насыщенного L- аргинином на биосовместимость у крыс на базе Курского медицинского Университета.
Результаты этих экспериментов показали, что при имплантации материала в подкожную клетчатку на срок 1 месяц после операции, во всех исследованных препаратах отмечается заполнение межтрабекулярных
пространств имплантата рыхлой волокнистой соединительной тканыо, формирующей капсулу вокруг трабекул. На срок 1 месяц после операции очевидное большинство в популяции клеток составляют фибробласты.
Рис.№1.Участок гистологической картины в подкожной клетчатке крысы через 1 месяц после операции. Соединительнотканная капсула вокруг имплантата. Окраска по Крейбергу.
Таким образом, при имплантации костного деминерализованного коллагена, насыщенного Ь- аргинином в подкожную клетчатку и мышечную ткань крыс отмечается слабая воспалительная реакция вокруг материала,которая заканчивается на сроки 2-3 месяца после операции.
В настоящее время многие исследователи связывают эти реакции с повышением активности N0 синтетазы, фермента содержащегося в клетках, способного активировать неоангиогеиез. Донором клеточного N0, является I.-аргинин, который активирует макрофагальиую активность вокруг имплантата.
(Мопсас1а 5.. Иввэ Е.А. N0 - уазосШа1а1ог. ИдреПуешюп. Ыеи/ I Моё.
1993; 329: 2002-2012).
Импдантаты, на основе костного коллагена насыщенные Ь-аргинином,
региональной микроциркуляции, что способствует ускорению репаративных | процессов и увеличению количества положительных результатов консолидации экспериментальных переломов.
Ув. 200.
введенные внутримышечно и параоссально, увеличивают показатели
" | к: - ' Ж : л
Рис.№2.Гистологическая картина участка локализации имплантата в зоне экспериментального перелома через 1 месяц. Участок хрящевой ткани вокруг имплантата. Прослойка фибробластов между имплантатом и массивом остеоидной ткани. У в. 200. Окраска гематоксилин-эозином.
Рис.№3.Гистологическая картина участка локализации имплантата в зоне экспериментального перелома через 2 месяца. Формирование костной ткани вблизи имплантата. Переход коллагеновых волокон в участок остеоидной ткани. Ув.ЮО. Окраска
по Маллори.
Таким образом, все биоимплантаты, вне зависимости от насыщенности L-аргишшом и места введения, через 4 недели после начала эксперимента подвергались лизированию и, в той или иной степени, замещению соединительной тканью.
Увеличение количества положительных исходов консолидации экспериментальных переломов в группах №4 и №7 (до 100%) по сравнению с группой №1 (70%) можно объяснить с позиций благотворного влияния операции костной пластики на результат сращения экспериментальных
переломов. Однако в ходе эксперимента было обнаружено, что через 4 недели после экспериментального перелома костная мозоль более выражена у животных из группы №7 (крысы с биоимлантатом, насыщенным Ь-аргинином), что является свидетельством ускорения регенерации костной ткани в данной группе крыс.
Измерение уровня микроциркуляции было осуществлено у всех животных из групп №3 и №6 (при имплантации материала в мышцу), у опытных №4, №7 - по месту введения имплантата и в мышце рядом с ним, а в контрольной группе №1 - в мышце и в межфрагментарной зоне перелома.
Полученные данные ЛДФ в виде индивидуальных значений у каждого животного и средних по группам с учетом стандартных ошибок представлены в таблицах №4 и №5.
Таблица №4. Результаты ЛДФ у интактных крыс в группе № 1.
№ № Значение микроциркуляции Значение микроциркуляции
груп- кры- в мышце, 1Ш в зоне перелома, ПЕ
пы сы Индивидуальное Среднее Индивидуальное Среднее
1 508,4 95,8
2 305,8 67,1
3 328,9 66,5
4 241,7 65,3
1 5 665,8 542,6±65,9 135,5 99,6 ±9,4
6 428,4 75,7
7 687,8 120,8
8 653,6 101,3
9 824,5 134,2
10 781,2 133,6
Таблица №5. Результаты ЛДФ у крыс групп №3, №4, №6, №7
№ группы № крысы Значение ЛДФ в месте введения биоимплантата, ПЕ Значение ЛДФ в мышце около введения биоимплантата, ПЕ
Индивидуальное Среднее Индивидуальное Среднее
3 1 304,5 314,6±45,4* 626,2 617,4±47,5
2 156,2 430,9
3 239,8 547,4
4 134,3 520
5 435,1 653,6
6 494,9 807,4
7 501 897,7
8 151,4 424,2
9 432,1 647,6
10 297,2 618,8
1 55,5 184,3
2 108 1014,3
3 62,8 363,7
4 50,6 144
4 5 104,3 94,4±10,8 627,4 561,1±118,2
6 71,4 393,6
7 152,6 1340,2
8 89,1 521,2
9 123,9 670,7
10 126,3 352,1
1 185,7 824,5
2 174,5 791,6
3 441,2 1112,6
4 493,7 1722,2
6 5 328,3 327,8±38,9* 1054,6 1046,3±87*
6 362,5 1072,9
7 328,9 1057,3
8 299,6 994,2
9 173,9 730,5
10 489,4 1102,8
1 90,3 403,4
2 177 1431,1
3 73,2 217,3
4 112,3 484,6
7 5 97,6 117,1±9,7 506,5 728,2±112,5
6 117,2 766,5
7 131,2 846,5
8 134,9 972,2
9 143,4 1022,8
10 93,4 631,6
Примечание: * - р<0,05 в сравнении со значением микроциркуляции в мышце у
интактных крыс;
Анализ результатов лазерной допплеровской флоуметрии показал, что при внутримышечном введении биоимплантатов в группах №3 и №6 наблюдалось достоверное снижение уровня микроциркуляции непосредственно в месте имплантации (в результате замещения биоимплантата соединительной тканью) до 314,6±45,4 ПЕ и 327,8138,9 ПЕ соответственно по сравнению с 542,6+65,9 ПЕ у интактных крыс. Тем не менее в группе №3 происходило увеличение уровня региональной микроциркуляции до показателей 617,4±47,5 ПЕ, а в группе №6 - достоверное повышение микроциркуляции до значения 1046,3±87
ПЕ (р<0,05). В группе №4 не было выявлено статистически значимых отклонений от группы интактных животных. Результаты ЛДФ в группе №7 показали увеличение уровня микроциркуляции как в месте параоссального введения биоимплантата (117,1±9,7 ПЕ по сравнению с 99,6±9,4 ПЕ у интактных крыс), так и в непосредственной близости от места его введения (728,2+112,5 ПЕ по сравнению с 542,6±65,9 ПЕ у интактных крыс), однако достоверность в различиях между группами животных наблюдалась лишь при р<0,2.
Результаты оптической микроскопии гистологических препаратов подтвердили данные, полученные в ходе измерения микроциркуляции, о процессах лизирования биоимплантатов и их замещения соединительной тканью при подкожном и внутримышечном ведении, а также консолидации переломов с участием биоимплантатов при параоссальном их введении.
Подводя итоги эксперимента в целом, мы можем сказать:
1. Биоимплантаты на основе костного коллагена, насыщенные Ь-аргинином, через 4 недели после их подкожного, внутримышечного и параоссального введения подвергаются практически полному лизированию и замещению соединительной тканью, что свидетельствует о их биосовместимости.
2. Биоимплантаты на основе костного коллагена, насыщенные Ь-аргинином, введенные внутримышечно и параоссально, увеличивают показатели региональной микроциркуляции, что способствует ускорению репаративных процессов и увеличению количества положительных результатов консолидации экспериментальных переломов.
3. Разработанный новый биокомпозиционный материал, содержащий Ь-аргинин, обладает выраженными свойствами остеогенеза.
Клиническая часть работы, которая заключалась во внедрении биоматериала, насыщенного Ь-аргинином, в клиническую практику, проходила в хирургическом отделении стоматологического комплекса МГМСУ, а также НижГМА.
Проведено комплексное обследование и лечение 89 пациентов в возрасте от 19 до 64 лет, женщин 45, мужчин 44, с использованием биокомпозиционного материала «Остеопласт» насыщенного Ь-аргинином. Всеми пациентами была заполнена анкета по информированному согласию на оперативное вмешательство и использование биоматериалов при заполнении послеоперационнх дефектов.
По возрасту больные распределились следующим образом: 19 - 25 лет - 18 больных, 26 - 34 лет - 20 больных, 35 - 44 лет - 16 больных, 45 - 54 лет - 18 больных, 55-64 лет - 17 больных.
Также пациенты были распределены по типу хирургических вмешательств. Таблица №6.
Хирургическое вмешательство Количество пациентов Мужчины Женщины
1. Удаление 8-х зубов на нижней челюсти 25 15 10
2. Цистэктомия 24 11 13
3. Синус-лифтинг 15 5 10
4. «Сендвич»-пластика 10 5 5
5.3убосохраняющие операции 15 8 7
Обследование больных проводилось по стандартной схеме, включая жалобы, анамнез, развитие настоящего заболевания, наличие и или отсутствие сопутствующей патологии. Составлялся план лечения для каждого пациента. Особое внимание уделялось жалобам больного в послеоперационном периоде, так как одной из задач нашего исследования являлось определить влияние биокомпозиционного материала на послеоперационное течение.
Поскольку основной задачей нашего исследования являлось изучение регенерации костной ткани при использовании биокомпозиционного материала в определенные сроки, особое внимание уделялось качеству
20
рентгенограмм. Проводилась сравнительная оценка стандартных и цифровых рентгенограмм на этапах лечения.
Все пациенты в послеоперационном периоде чувствовали себя удовлетворительно. Отёк мягких тканей был слабо выражен. Повышенной температуры не наблюдалось. Противовоспалительная и антибактериальная терапия назначалась с целью профилактики возможных осложнений.
Таким образом, оценивая результаты клинического внедрения биокомпозиционного материала, содержащего Ь-аргинин, при хирургических стоматологических вмешательствах, можно сказать, что этот материал не вызывает воспалительных процессов в послеоперационном периоде. Хорошо переносится пациентами, ускоряет регенерацию костной ткани в зоне сформированных дефектов после хирургических вмешательств. А также следует отметить, что впервые в группе пациентов с операциями «сэндвич-пластика», а так же при проведении синус-лифтинга был использован биокомпозиционный материал, содержащий Ь-аргинин, без добавления аутокости, при этом получен планируемый прирост костной ткани.
Биоимплантаты на основе костного коллагена, насыщенные Ь-аргинином, при успешном их внедрении в клиническую практику, позволят уменьшить сроки реабилитации больных с послеоперационными дефектами челюстных костей, сократить общее время нетрудоспособности данной категории больных, а также предотвратить возможные осложнения в ближайшие и отдаленные сроки после оперативного вмешательства за счет оптимизации процессов регенерации костной ткани.
выводы
1. Разработан новый биокомпозиционный материал на основе деминерализованного и не деминерализованного костного коллагена, содержащий Ь-аргинин, с дозой насыщения 1000 мкг/см. куб..
2. Экспериментально доказано, что материал созданный на основе костного коллагена и Ь-аргинина является биосовместимым и хорошо интегрирует в окружающие ткани при имплантации.
3. Анализ гистологических препаратов позволяет сделать заключение о том, что новый биокомпозиционный материал, наряду с остеокондуктивными и остеоиндуктивными свойствами, способствует процессам васкуляризации и улучшает микроциркуляцию заживающей костной раны.
4. Биоматериал, содержащий Ь-аргинин, способствует оптимизации регенерации костной ткани при заполнении им костных дефектов при хирургических стоматологических вмешательствах.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. Для улучшения репаративных свойств биоматериалов рекомендовано добавлять в них компоненты, стимулирующие неоангиогенез, - Ь-аргинин.
2. При замещении дефектов костной ткани, исследуемый биоматериал насыщенный Ь-аргинином, при рыхлом укладывании хорошо пропитывается кровью, сохраняет форму и фиксацию в ране в течение всего срока регенерации костной ткани.
3. При использовании в хирургической стоматологии для замещения костных дефектов новый биоматериал, «Остеопласт-К», насыщенный Ь-аргинином, обеспечит заживление без воспалительных осложнений в послеоперационном периоде.
РАБОТЫ, ОПУБЛИКОВАННЫЕ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ
1. Артюшкова Е.Б., Пашков Д.В., Суковатых Б.С., Мясников А.Д., Смешко Н.В., Покровский В.М., Иванов С.Ю., Ахмедзянова И.Н., Дудка В.Т., Артюшкова Е.В. Возможности фармакологической коррекции хронической ишемии конечности в эксперименте. //Кубанский медицинский вестник. Краснодар, 2007 г., с 19 - 22.
2. Аснина С.А., Смешко Н.В. Использование биокомпозиционных материалах при хирургическом лечении периапикальных деструктивных изменений. // «Институт стоматологии», г. Санкт-Петербург, вып.2 (35), июнь 2007 г., с.46-48.
3. Иванов С.Ю., Ларионов Е.В., Смешко Н.В. Экспериментальное изучение влияния аминокислоты L-аргинина, фиксированного на недеменирализованном костном коллагене на заживление костных дефектов. //Материалы IX Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 20-летию стоматологического факультета Саратовского государственного медицинского университета "Новые технологии в стоматологии и имплантологии", - Саратов, 2008, с 49-52.
4. Иванов С.Ю., Ларионов Е.В., Мураев A.A., Смешко Н.В. Современные тенденции в разработке костнопластических биокомпозиционных материалов. //Нижегородский медицинский журнал, вып. 2, №2, 2008 г., с 244-247 (Бюллетень ВАК РФ №4, 2005 г).
5. Аснина С.А., Шишкова Н.В., Смешко Н.В. Использование цифровой рентгенографии для изучения процессов регенерации костной ткани после цистэктомии. //«Институт стоматологии», г. Санкт-Петербург, вып.4 (41), декабрь 2008 г., с. 44-46.
Заказ № 296. Объем 1 п.л. Тираж 100 экз. Отпечатано в ООО «Петроруш». г.Москва, ул.Палиха 2а.тел.250-92-06 www.postator.ru
Оглавление диссертации Смешко, Наталия Викторовна :: 2009 :: Москва
Глава 1. Обзор литературы
1.1. Современные направления в разработке костно-пластических биокомпозиционных материалов.
1.2. Характеристика материалов для направленной костной регенерации, применяемых в стоматологической практике.
1.3. Роль L-аргинина в организме человека.
Глава 2. Материалы и методы
2.1. Методика получения остеопластического материала, насыщенного L-аргинином.
2.2. Методика экспериментальных исследований материала, насыщенного L-аргинином на биосовместимость-у животных.
2.3. Методика исследования остеорепарации под действием костного не деминерализованного коллагена, насыщенного L-аргинином, у экспериментальных животных.
2.4. Исследования микроциркуляции у экспериментальных животных при изучении биосовместимости и переломах кости.
2.5. Клинические материалы и методы.
Глава 3. Результаты экспериментальных исследований
3.1. Результаты насыщения L-аргинином костного коллагена
3.2. Экспериментальные исследования биосовместимости материала на основе костного коллагена, насыщенного L-аргинином.
3.3. Экспериментальные исследования влияния материала на основе костного деминерализованного и недеминерализованиого коллагена, насыщенного L-аргинином на процесс заживления костных дефектов и переломов кости.
3.4. Экспериментальные исследования влияния материала на основе костного деминерализованного и недеминерализованного коллагена, насыщенного L-аргинином, на процесс микроциркуляции при заживлении костных дефектов и переломов кости.
Глава 4. Эффективность использования биокомпозиционного материала насыщенного L-аргинином при хирургических стоматологических вмешательствах.
Обсуждение результатов исследования Выводы
Введение диссертации по теме "Стоматология", Смешко, Наталия Викторовна, автореферат
Состояние вопроса.
В практике хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии, для заполнения дефектов, возникающих после удаления зубов, опухолей и опухолеподобных образований, с целью предотвращения возможных осложнений, а также для ускорения регенерации костной ткани используется большое количество биогенных и синтетических материалов.
В последние годы предпочтение отдается отечественным биокомпозиционным материалам, так как они по своим свойствам не уступают зарубежным аналогам, кроме того, стоимость их значительно ниже. Препараты фирмы «Полистом» Гидрогсиопол и Колапол, КоллаАн-JI, фирмы «Интермед апатит», «Остим-ЮО» препараты фирмы «Коннектбиофарм» Биоматрикс, Алломатрикс-имплант, Остеоматрикс, хорошо изучены в эксперименте и клинической практике, широко используются (Белозеров М.Н.,2003, Панин A.M., 2004, Ленина С.А. и соавт.,2004).
ГОУ ВПО МГМСУ разработаны новые остеопластические материалы серии «ОСТЕОПЛАСТ», На основе костного деминерализованного и недеминерализованного коллагена с сульфатированными гликозаминогликанами (сГАГ). Являясь модуляторами соединительной ткани вообще, и костной ткани в частности, сГАГ, при внесении в имплантаты биологического или искусственного происхождения, повышают их биосовместимость и одновременно активируют факторы роста.
В настоящее время ведется поиск новых фармакологических препаратов, добавление которых в имплантируемый остеопластический материал, будет способствовать улучшению микроциркуляции области операции, ускорению прорастания сосудов, а тем самым ускорять регенерацию костной ткани в месте дефекта.
Одним из перспективных направлений научных разработок представляется использование препаратов оксида азота (NO), стимулирующих неоангиогенез. К таким препаратам относится L-аргинин, условно незаменимая аминокислота, являющаяся донором азота.
Основные исследования по использованию L-аргинина посвящены лечению гипертонической болезни (Е.Б. Манухина и соавт., 2002, Mitsuyata H.Etal, 1995).
Экспериментальные исследования, проводимые на кафедре фармакологии Курского медицинского университета, показали, что использование L-аргинина в дозе 200мг/кг, внутрибрюшинно, с 7 по 28 день, улучшали показатели микроциркуляции конечности до уровня интактных животных. По данным Степанова Ю.М. и соавт., 2005г., L-аргинина укрепляет иммунную систему, увеличивая активность Т-клеточного иммунитета, улучшает микроциркуляцию в поврежденных тканях.
Учитывая, что любое хирургическое вмешательство приводит к расстройству микроциркуляции и снижению показателей резистентности организма, использование L-аргинина в качестве наполнителя к биокомпозитному материалу, может способствовать восстановлению кровотока, следовательно, ускорению регенерации костной ткани в зоне имплантации, а так же нормализации показателей местного иммунитета полости рта.
Поиск препаратов, в качестве «наполнителя» к имеющимся биокомпозиционным материалам, способствующим восстановлению микроциркуляции и ускоряющих регенерацию костной ткани, как в эксперименте, так и в клинике, после операций на челюстных костях, является актуальной темой хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии.
Цель исследования.
Разработка биокомпозиционного материала, содержащего L-аргинин. Внедрение его в клиническую практику для замещения костных дефектов, а также для профилактики осложнений и ускорения неоангиогенеза в зоне послеоперационного дефекта в челюстных костях.
Задачи исследования.
1. Разработать новый биокомпозиционный материал, содержащий L-аргинин.
2. Экспериментально изучить влияние нового биокомпозиционного материала в сравнении с известными остеокондуктивными биоматериалами на регенерацию костной ткани.
3. Оценить влияние нового биокомпозиционного материала на послеоперационное заживление раны и регенерацию при заполнении дефектов челюстных костей при хирургических стоматологических вмешательствах.
4. Разработать рекомендации по использованию нового биокомпозиционного материала.
Научная новизна.
Впервые в эксперименте и в клинической практике хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии для замещения послеоперационных дефектов челюстных костей, использован биокомпозиционный материал, насыщенный L-аргинином. Проведен математический анализ состояния костной ткани на этапах регенерации с использованием цифровой и компьютерной томографии. На основании данных экспериментального исследования разработана методика использования L-аргинина для насыщения биокомпозиционного материала
Практическая значимость.
Экспериментальными, лабораторными и клиническими исследованиями научно обоснована и подтверждена эффективность использования биокомпозиционного материала, содержащего L-аргинин в практике хирургической стоматологии.
Публикации.
Результаты работы опубликованы в 5 печатных работах, в том числе 4 в журналах, рекомеднованных ВАК Минобрнауки РФ.
Положения, выносимые на защиту
I. Разработан новый биокомпозиционный материал на основе деминерализованного коллагена, ГАП, содержащий L-аргинин.
II. Результаты экспериментальных исследований изучения биосовместимости, остеорепарации и микроциркуляции нового биокомпозиционного материала, содержащего L-аргинин.
III. Результаты внедрения разработанного биокомпозиционного материала, содержащего L-аргинин, в клинику для заполнения костных дефектов при хирургических стоматологических вмешательствах.
Апробация работы
Результаты работы доложены на:
1. Научно-практической конференции стоматологов и челюстно-лицевых хирургов Центрального федерального округа Российской Федерации с международным участием «Технологии XXI века в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии». Россия, г. Тверь, 30-31 октября 2008 года
2. IX Всероссийской научно-практической конференции «Новые технологии в стоматологии и имплантологии». Саратов июнь 2008 г
3. IV восточно-европейской конференции по имплантологии. Львов март 2009
4. Конференции «Имплантация в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии». Минск июнь 2009
Апробация диссертации проведена на совместном заседании кафедр госпитальной хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии, хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии ФПДО, фармакологии МГМСУ, фармакологии КГМУ от 24.06.2009 г.
Структура и объем диссертации
Диссертация изложена на 127 страницах машинописного текста, состоит из введения и следующих глав: обзора литературы, материала и методов исследования, двух глав собственных исследований, обсуждения результатов, выводов и практических рекомендаций. Указатель литературы включает 168 источников, из них отечественных 83, зарубежных 85. Диссертация иллюстрирована 71 рисунком, микрофотографиями и рентгенограммами, содержит 8 таблиц.
Заключение диссертационного исследования на тему "Разработка биокомпозиционного материала, содержащего L-аргинин, для замещения костных дефектов при хирургических стоматологических вмешательствах"
ВЫВОДЫ
1. Разработан новый биокомпозиционный материал на основе деминерализованного и не деминерализованного костного коллагена, содержащий L-аргинин, с дозой насыщения 1000 мкг/см. куб.
2. Экспериментально доказано, что материал созданный на основе костного коллагена и L-аргинина является биосовместимым и хорошо интегрирует в окружающие ткани при имплантации.
3. Анализ гистологических препаратов позволяет сделать заключение о том, что новый биокомпозиционный материал, наряду с остеокондуктивными и остеоиндуктивными свойствами, способствует процессам васкуляризации и улучшает микроциркуляцию заживающей костной раны.
4. Биоматериал, содержащий L-аргинин, способствует оптимизации регенерации костной ткани при заполнении им костных дефектов при хирургических стоматологических вмешательствах.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. Для улучшения репаративных свойств биоматериалов рекомендовано добавлять в них компоненты, стимулирующие неоангиогенез, - L-аргинин.
2. При замещении дефектов костной ткани, исследуемый биоматериал насыщенный L-аргинином, при рыхлом укладывании хорошо пропитывается кровью, сохраняет форму и фиксацию в ране в течение всего срока регенерации костной ткани.
3. При использовании в хирургической стоматологии для замещения костных дефектов новый биоматериал, «Остеопласт-К», насыщенный L-аргинином, обеспечит заживление без воспалительных осложнений в послеоперационном периоде.
Ill
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2009 года, Смешко, Наталия Викторовна
1. Абдуллаев Ш.Ю., Архипова М.Х. Использование новых биологически совместимых материалов при восстановлении дефектов челюсти // Стоматология. -1999. №3. - С. 37-38.
2. Абоянц Р.К., Истранов Л.П., Шехтер А.Б., Рубенко Т.Г., Истранова Е.В., Антипас Д.Б., Курдюмов С.Г. Гапкол новый остеопластический материал // Стоматология. -1996. - №5. - С. 23-25.
3. Агапов B.C., Аснина С.А. Воложин А.И., Малько Е.В., Аль Хинди Халед. Применение препаратов калапол и гидроксиапол для заполнения полостей после удаления радикулярных кист// Медицинская консультация. -1996. -№3, С. 44-45.
4. Аснина С.А., Агапов B.C., Воложин А.И., Белозеров М.Н. // Хирургическое лечение хронических очагов воспаления в тканях периодонта.// V Международная конференция челюстно-лицевых хирургов., Россия, Санкт-Петнрбург., -2000-, С., 22-23.
5. Бадалян В.А., Рабухина Н.А., Григорьянц Л.А. Динамика заживления периапикальных деструктивных поражений в рентгенологическом изображении // Стоматология 2000. - №2 - С. 12-16.
6. Безруков В.М., Григорьянц Л.А., Зуев В.П., Панкратов А.С. Оперативное лечение кист челюстей с использованием гидроксиаппатита ультравысокой дисперсности // Стоматология. -1998. -№1.-С.31-35.
7. Белозеров М.Н. Оценка остеопластических свойств различных биокомпозиционных материалов для заполнения дефектов челюстей. Дис.канд. мед. наук. -М., 2004., 146 с.
8. Белоус A.M., Малахов В.А. Клеточные механизмы сосудистой патологии (обзор литературы) // Журн. АМН Украины. 1998. - 4, №4. - С. 581-596.
9. Ю.Берлянд А.С. и др. Физико- химические и биологические свойства гидроксиапатита фирмы «Поликом». Новое в стоматологии. Специальный выпуск.- 1992.- N 3.- С.9-11.
10. П.Ботбаев Б.Д. Хирургическое лечение больных с кистами челюстей с использованием биогенных пластических материалов на основе брефокости и гидроксиапатита. Автореф. канд. мед. наук.- М.-1990.
11. Брошусь, В.В. Оксид азота как регулятор защитных и гомеостатичесих реакций организма / В.В. Брошусь // Укр. ревматол. журн. — 2003.— № 4,—С. 3—11.
12. Ванин А.Ф. Динитрозильные комплексы железа и S-нитрозотиолы две возможные формы стабилизации и транспорта оксида азота в биосистемах. // Биохимия. - 1998. - №7. - С. 924-930.
13. Н.Ванин А.Ф. Оксид азота в биологии: история, состояние и перспективы исследований. // Биохимия. 1998. - №7. - С. 867-869.
14. Ванин А.Ф. Оксид азота в биомедицинских исследованиях. // Вести. РАМН. 2000. - №4. - С. 3-5.
15. Воложин А.И., Дьякова С.В., Топольницкий 0.3. и др. Клиническая апробация препаратов на основе гидроксиапатита в стоматологии // Новое в стоматологии. -1993. № 3. - С. 29-31.
16. Воложин А.И., Попов В.К., Краснов А.П. и др. Физико- механические и морфологические характеристики новых композитов на основе сверхвысокомолекулярного полиэтилена и гидроксиапатита.- «Новое в стоматологии», 1999.- N 8.- С.35-43.
17. Ганонг В.Ф. Физиология человека: Учебник. Львов: БаК, 2002. - С. 784.
18. Гоженко А.И., Николаевская И.В., Котюжинская С.Т., Бабий В.П. Оксид азота и иммунная система организма. // Мед. химия. 2001. - С. 5-9.
19. Голиков П.П., Леменев В.Л., Ахметов В.В. и др. Динамика оксида азота (NOx) и других факторов окислительного стресса в прецеребральных сосудах до и после каротидной эндартерэктомии // Регионарное кровообращение и микроциркуляция. — 2000. №4. — С. 28-33.
20. Гончаров И.Ю., Базикян Э.А., Бычков А.И. Применение гидроксиапола при восполнении костных дефектов челюстей и стимуляции остеогенеза // Стоматология. -1996. -№5. -С. 54-56.
21. Григорьянц Л.А., Зуев Д.В., Бадалян В.А., Копецкий И.С. Хирургическое лечение околокорневых кист с использованием гидроксиапатита ультравысокой дисперсности без резекции верхушек корней // Ж. Клиническая стоматология. 1997. -№ 3 . -С. 54-58.
22. Григорьян А.С., Пулатова Н.А., Воложин А.И., Истранов JlXY.il Динамика заживления костных дефектов при имплантации в них комплексов коллагена и гидроксиапатита (эксперементально-морфологическое исследование., Стоматология , М., -1996.- №5, С. 13-16
23. Григорьян А.С., Воложин А.И., Агапов B.C., Белозёров М.Н., Дробышев A.IO. Остеопластическая эффективность различных форм гидроксиапатита по данным эксперементально-морфологического исследования // Стоматология. 2000. - № 3 - С. 4-8.
24. Григорьян А.С., А.И. Грудянов, Чупахин П.В. Использование нерезорбируемых мембран для направленной регенерации тканей.
25. Экспериментальное исследование. Материалы конференции, посвященной памяти проф. В.В. Паникаровского. М., 2002. с. 16-18.
26. Григорьянц JI.A., Безруков В.М., Зуев В.П., Панкратов А.С. Остеорепарация в полостных костных дефектах под воздействием гидроксиапатита ультравысокой дисперсности // 4 Российский национальный конгресс "Человек и лекарство"-М. -1997.- С. 36
27. Гришко О.П. Разработка и исследование составов лекарственных препаратов на основе гидроксиапатита // Автореф. дис. канд. фарм. наук. — М. 1994. -20с.
28. Данилова Е.Й., Графова В.Н., Кукушкин М.Л., Зинкевич В.А. Эффекты L-аргинина при церебрально-спинальном болевом синдроме. // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1999. - №2. - С. 160-163.
29. Джозеф Ней. Глутамин плода и у находящихся в критическом состоянии новорожденных с очень низким ЕЭСОМ при рождении: метаболизм и механизм действия. // Вести, интенсивн. терапии. — 2003. — №2. С. 81-86.
30. Дробышев А.Ю.Эксперементальное обоснование и практическое применение отечественных биокомпозиционных материалов при костно-восстановительных операциях на челюстях.// Дисс. на соис. уч. степ. док. мед. наук., М. -2001-, 237с.
31. Дубинин В.А., Федюшина С.С., Стрюков С.Н. и др. Эффекты L-аргинина и его функционального антагониста N-нитро-Е-аргинина на поведение. // бюл. эксперим. биол. и мед. 1995. - №11. - С. 465-468.
32. Зефиров А.Л., Халиуллина P.P., Анучин А.А. Эффекты экзогенного оксида азота на секрецию медиатора и ионные токи двигательного нервного окончания. // бюл. эксперим. биол. и мед. — 1999. №8. — С. 144147.
33. Зуев В.П., Кузьменко В.В., Алексеева А.Н., Панкратов А.С., Безверхий В.В. Остим-ЮО. Новый лекарственный препарат сепаративного остеогенеза // Методические рекомендации. М. -1996. -12 с.
34. Зуев В.П., Безруков В.М., Панкратов А.С., Григорьянц Л.А. Оперативное лечение кист челюстей с использованием гидроксиапатита ультравысокой дисперсности // Стоматология. 1998. - №4. С. 23-27.
35. Зуев В.П., Панкратов А.С. Остеорепарация посттравматических дефектов нижней челюсти под воздействием гидроксиапатита ультравысокой дисперсности // Стоматология. № 1. -1999. - С.37-41.
36. Иванов С.Ю., Бизяев А.Ф., Ломакин М.В., Панин A.M. Клинические результаты использования различных костнопластических материалов при синус-лифтинге // Ж. Новое в стоматологии. -1999. № 5. - С. 51-53.
37. Иванов С.Ю., Риллер Л.И., А.Ф.Бизяев и др. Новое поколение биокомпозиционных материалов для замещения дефектов костной ткани // Ж. Новое в стоматологии. -1999. № 5. - С. 47-50.
38. Иванов С.Ю., Панин A.M., Володина Д.Н., Разработка биоматериалов для остеопластики на основе коллагена костной ткани. // Клиническая стоматология.-2005 №4.- С. 21-23.
39. Ивашкин В.Т., Драпкина О.М. Оксид азота в регуляции функциональной активности физиологических систем. // росс. журн. гастроэнтерологии, гепатологии и колопроктологии. 2000. - №4. - С. 16-21.
40. Иорданишвили А.К., Ковалевский A.M., Гололобов В.Г. Современные оптимизаторы репаративного остеогенеза // В сб.: Новые технологии в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии. Ривьера. С-Пб. -1996. - С. 28-29.
41. Каменский А.А., Савельева К.В. Оксид азота и поведение. // М.: Изд-во НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН, 2002. С. 156.
42. Каширина О.А. Применение биогенного композиционного материала на хирургическом этапе дентальной имплантации: дисс. канд. мед. наук.-Москва, 1994, -127С.
43. Кащенко В.А. Новый взгляд на автогенез и эффект деартериализации печени в хирургии портальной гипертензии и онкопатологии. // Вестн. Хирургии. 2003. - №2. - С. 114-116.
44. Кураглюк Н.М., Ткаченко Г.М., Иккерт О.В. Функционирование митохондрий при условии ионизирующего облучения: эффект интервальной гипоксии и L-аргинина. // Мед. химия. 2003. - №1. - С. 1821.
45. Курдюмов В.Г., Воложин А.И., Истранов Л.П., Абоянц Р.К., Орловский В.П. Создание новых биосовместимых препаратов гидроксиапол и колапол.// 3 Российский национальный конгресс «Человек и лекарство»., Тезисы докл., М., -1996-, С.-31.
46. Курдюмов С.Г. Гидроксиапол и колапол: применение в стоматологической хирургической практике.//Военно-медицинский журнал., -1997-,№6, С. 48-49.
47. Кушнир Н.В., Тетерин Г.А., Комарова Н.М. и др. Синтез и применение в стоматологии материалов на основе гидрокси- и карбонатапатитов // Вестник стоматологии. -1995. -№2. -С. 89-93.
48. Лейдерман Н.Н. Иммунное питание (immunonutrition). // Вестн. интенсивной терапии. 2002. - №1. - С. 57-61.
49. Леонтьев В.К. Биологически активные синтетические кальцийфосфатсодержащие материалы для стоматологии // Стоматология. -1996. -№5. -С. 4-12.
50. Леонтьев В.К., Воложин А.И., Андреев Ю.Н., Курдюмов С.Г., Агапов
51. B.C., Воложина С.А., Пулатова Н.А, Алимирзоев Ф.А. Применение новых препаратов гидроксиапола и колапола - в клинике // Стоматология. -1995.-№5.-С. 69-71.
52. Лепилин А.В., Широков В.Ю., Ерокина Н.Л., Воложин А.И. Оптимизация репаративных процессов в костной ране нижней челюсти у больных хроническим алкоголизмом. Стоматология, 1998.- N 6.~ С.23-28.
53. Максимовский Ю.М., Чиркова Т.Д., Воложин А.И. Новый отечественный препарат гидроксиапол при хирургическом лечении пародонтита // Зубоврачебный вестник.- 1993.- N 3.- С. 19-22.
54. Малышев И.Ю., Манухина Е.Б. Стресс, адаптация и оксид азота. // Биохимия. 1998. - №7. - С. 992-1006.
55. Манухина Е.Б., Лямина Н.П., Долотовская П.В. и др. Роль оксида азота и свободных радикалов в патогенезе артериальной гипертензии // Кардиология. 2002. - Т.42, №11. - С. 73-84.
56. Муслимов С.А. Морфологические основы применения биоматериалов в регенеративной хирургии: Автореф. дисс. док. мед. наук.- Уфа, 2000,- 49С.
57. Никитин А.А., Басченко Ю.В. Коллапан для челюстно-лицевой хирургии и стоматологии. // Медицинская газета, 1996, №34-35.
58. Орловский В.П., Курдюмов С.Г., Сливка О.И. Синтез, свойства и применение гидроксиапатита кальция // Стоматология. -1996. №5. С.68-74.
59. Островский А.А. Остеопластические материалы в современной парадонтологии и имплантологии // Новое в стоматологии. -1999. №6.1. C. 39-52.
60. Орехова Л.Ю., Прохорова О.В., Кудрявцева Т.В. Новый оптимизатор репаративной регенерации при заболеваниях пародонта. // Стоматология.2001. -№ 1. С. 71-73.
61. Павлов Б.Л., Уразова И.В., Дудина А.Б. Динамика репаративного остеогенеза после первичной эмбриопластики внутрикостных дефектов // В кн.: Реконструктивная хирургия внутрикостных дефектов. Красноярск. -1989.-С. 82-86.
62. Панасюк А.Ф., Ларионов Е.В., Саващук Д.А., Кравец Д.М. Биоматериалы для тканевой инженерии и хирургической стоматологии // Стоматология. -2000 №6.-С. 12-18.
63. Панин И.А. Замещение дефектов нижней челюсти костными трансплантатами с использованием внутриротового оперативного доступа // В сб.: Новые методы диагностики, лечения заболеваний и менеджмента в здравоохранении. Новосибирск, т» 1994. С. 166-117.
64. Панкратов А.С. Лечение больных с переломами нижней челюсти с использованием ОСТИМ-ЮО (гидроксиапатита ультравысокой дисперсности) как стимулятора репаративного остеогенеза // Автореф. дис. канд. мед. наук. М. - 1995. - 26 с.
65. Плотников Н.А. Костная пластика нижней челюсти // М.: Медицина. -1979.- 205с.
66. Созыкин А.В., Ноева Е.А., Балахонова Т.В. и др. Влияние L-аргинина наагрегацию тромбоцитов, функцию эндотелия и толерантность к физической нагрузке у пациентов со стабильной стенокардией напряжения // Тер. арх. 2000. - №8. - С. 24-27.
67. Сумароков Д.Д., Гуткин Д.В., Швырков М.Б. Зависимость остеоиндуктивной активности костного матрикса от массы и площади трансплантата// Стоматология. -1991. -№2. С. 9-11.
68. Сысолятин П.Г. и др. Замещение дефектов лицевого скелета деминерализованными костными аллотрансплантатами // Стоматология.-1988.-N 1.- С.38-41.
69. Сысолятин П.Г. и др. Костно-хрящевая брефопластика в хирургической стоматологии: Метод, рекомен,- М.: М-во здравохр. РСФСР., 1986,- С.20.
70. Трофимов В.В., Клименов В.А., Казимировская В.Б., Мансурова JI.A. Исследование биологической совместимости гидроксиапатита // М. -1996. -№5. — С. 20-22.
71. Ушаков А.И., Иванов С.Ю., Применение композиционного препарата МК-9М при хирургических амбулаторных операциях на альвеолярных отростках челюстей, «Новое в стоматологии», 1997, №5-32.
72. Хамраев Т.К. Применение гранулята керамики гидроксиапатита для замещения дефектов костной ткани челюсти // Автореф. дис. канд. мед. наук.-М.-1995.-23 с.
73. Шамсудинов А.Х. Сравнительная биохимическая и морфологическая оценка свойств деминерализованного в различных растворах костного матрикса и его применение для костной пластики: Дисс. канд. мед. наук.-М., 1984,- 180С.
74. Ярошкевич А.В., Осипян З.М., Кражан С.М. и др. Особенности остеоиндуктивного процесса при его стимуляции посредством введения гидроксиапатита // В сб.: Актуальные вопросы медицины. Ставрополь. -1996.-С. 9-10.
75. Ярошкевич А.В., Осипян З.М., Иванов И.В. и др. Зависимость интенсивности остеогенеза от степени интеграции имплантируемогогидроксиапатита // В сб.: Актуальные вопросы медицины. Ставрополь. -1996.-С.11-12.
76. Ясенчук С.М. Изменение репаративной регенерации кости после имплантации депротеинизированной костной ткани и синтетического гидроксиапатита // Автореф. дис. канд. мед. наук. М. -1995. - 28 с.
77. Aspenberg P., Thorngren K.G., Lohmander L.S.( 1991) Dose dependent stimulation of bone induction by basic fibroblast growth factor in rats. Acta Orthop Scand 62: 481-484
78. Bode-Boger S.M., Muke J., Surdacki A. et al. Oral L-arginine improves endothelial function in healthy individuals older than 70 years. // Vase. Med. — 2003.-V. 8(2).-P. 77-81.
79. Bos G.D., Goldberg V.M., Zika J.M., Heiple IC.G., Powell A.E.(1983) Immune responses of rats to frozen bone allografts. J Bone Joint Surg 65A:239~246.
80. Boyne P.J.(1971) Transplantation, implantation and grafts. Dent Clin North Am 15:433-453.
81. Brown R. et al(1997) Strategies for cell engineering in tissue repair. Wound Rep Req., 5; 212.
82. Bruder S.( 1998) The effect Implants Loaded Auotologous Mesenchimal Stem Cells on the Healing of Canine Segmental Bone Defects. J. Bone Joint Surg. 80: 985-96.
83. Bruck, S.D., Mueller E.P. (1989) Reference standards for implantable materials: problems and needs. Med. Prog. Technol. 15: 5-20.
84. Chvapel M.( 1982) Considerations on manufacturing principles of a synthetic burn dressing. J Biomed Mat Res 16; 275.
85. Сoolc S.D., Baffes G.C., Wolfe M.W., Sampath Т.К., Rueger D.C.(1994) Recombinant human bone morphogenetic protein-7 induces healing in a canine long-bone segmental defect model. Clin Orthop 301:302—312.
86. Damien C.J., Parsons J.R.(1991) Bone graft and bone graft substitutes: A review of current technology and applications. J Appl Biomech 2:187—208.
87. Daly J.M., Lieberman M.D., Goldfine J. et al. Enleral nutrition withsupplemental arginine, RNA, and omega-3 fatty acids in patients after operation: immunologic, metabolic and clinical outcome. // Surgery/ 1992. — Vol. 112.-P. 56-67.
88. De Balso A.M.(1976) Collagen gel in osseous defects Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Nov;42(5):652-9.
89. Dhawan V., Handu S.S., Nain C.K., Ganguly N.K. Chronic L-arginine supplementation improves endotheial cell vasoactive functions in hypercholesterolemic and atherosclerotic monkeys. // Mol. Cell. Biochem. —2005.-V. 269(1-2).-P.l-11.
90. Drivdahl R.H., Howard G.A., Baylink D.J.(1982) Extracts of bone contain a potent regulator of bone formation. Biochim Biophys Acta 714:26-33.
91. Enneking W.F., Eady J.L., Burchardt H.(1980) Autogenous cortical bone grafts in the reconstruction of segmental defects. J Bone Joint Surg 62A:1039-1058.
92. Falk, E. Pathogenesis of atherosclerosis / E. Falk // J. Am. Coll. Cardiol.2006. V. 47 (8 Suppl). - P. 7-12.*
93. Feletou, M. Endothelial dysfunction: a multifaceted disorder / M. Feletou, P.M. Vanhoutte // Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 2006. - V. 21. -P.377-385.*
94. Fleming, I. Signal transduction of eNOS activation / I. Fleming, R. Busse // Cardiovasc. Res. 1999. - V. 43. - P. 532-541.
95. Forstermann, U. Endothelial nitric oxide synthase in vascular disease: from marvel to menace / U. Forstermann, T. Munzel // Circulation. 2006. - V. 113(13).-P. 1708-1714.
96. Friess W.(1998) Collagen-biomaterial for drug delivery. Eur.J. Pharm.Biopharm., Mar;45(2): 113-36
97. Gabbai, F.B. Effects of nitric oxide synthase blockers on renal function /
98. F.B. Gabbai //Nephrol. Dial Transplant. -2001. V. 16, № 1. - P. 10-13.
99. Gewaltig, M. T. Vasoprotection by nitric oxide: mechanisms and therapeutic potential / M.T. Gewaltig, G. Kojda // Cardiovasc. Res. 2002. - V. 55(2). - P. 250-260.
100. Gokce, N. L-arginine and hypertension / N. Gokce // J. Nutr. 2004. -V. 134(10 Suppl). - P. 2807S-281 IS; discussion 2818S-2819S.
101. Gornik, H.L. Arginine and endothelial and vascular health / H.L. Gomik, M.A. Creager // J. Nutr. 2004. - V. 134(10 Suppl). - P. 2880S-2887S; discussion 2895S.
102. Gorelick, P.B. Prevention of first stroke. A review of guidelines and a multidisciplinary consensus statement from the National Stroke Assotiation / P.B. Gorelick, R.L. Sacco, D.B. Smith//JAMA. 1999. -№31. P. 1112-1120.
103. Harrison, D.G. Endothelial control of vasomotion and nitric oxide production / D. G. Harrison, H. Cai // Cardiol Clin. 2003. - V. 21(3). - P. 289302.
104. Herman, A.G. Therapeutic potential of nitric oxide donors in the prevention and treatment of atherosclerosis / A.G. Herman, S. Moncada // Eur. Heart. J. -2005. -V. 26(19). P. 1945-1955. Epub 2005 May 23.
105. Hornig, B. Bradykinin in human endothelial dysfunction / B. Homig // Drugs. 1997. - V. 54(suppl. 5). - P. 42-47.
106. Glimcher M.J.(1987) The nature of the mineral component of bone and the mechanism of calcification. Instr Course Lect 36:49-69.
107. Goldberg V.M., Stevenson S., Shaffer J.W.(1991) Biology of Autografts and Allografts. In Friedlaender GE and Goldberg VM (eds): Bone and Cartilage Allografts. Park Ridge, IL, American Academy of Orthopaedic Surgeons, 3-11.
108. Gupta D.( 1982) Bridging large defects with a xenograft composited withautologous bone marrow. Int. Orthop. 6 (2) : 79-85.
109. Hofman S. Effect on formation of calcified bone matrix in calvariae cells culture. Biomaterials 1999 Jul: 20 ( 3) : 1155-66.
110. Horowitz M.C. The Immune Response to Bone Grafts. In Friedlaender GE and Goldberg VM (eds): Bone and Cartilage Allografts. Park Ridge, IL, American Academy of Orthopaedic Surgeons, 1991 85-102.
111. Jarcho M. Tissue cellular and subcellular events at a bone-ceramic hydroxilapatite interface.J.Bioeng. ( 1977) 1;79.
112. Kabat, A. L-arginine supplementation prevents the development of endothelial dysfunction in hyperglycaemia / A. Kabat, S. Dhein // Pharmacology.- 2006. V. 76(4). - P. 185-91. Epub 2006 Feb 17.
113. Kawashima, S. The two faces of endothelial nitric oxide synthase in the pathophysiology of atherosclerosis / S. Kawashima // Endothelium. 2004. -V. 11(2).-P. 99-107.
114. Kaye, D.M. Reduced myocardial and systemic L-arginine uptake in heart failure / D.M. Kaye, M.M. Parnell, B.A. Ahlers // Circ. Res. 2002. - V. 91(12).-P. 1198-1203.
115. Kelly, R.A. Nitric oxide and cardiac function / R.A. Kelly, J. L. Baffigand, T.W. Smith // Circulat. Res. 1996. - V. 79. - P. 363-380.
116. Kelm, M. The L-arginine-nitric oxide pathway in hypertension / M. Kelm // Curr. Hypertens. Rep. -2003.- V. 5(1).-P. 80-86.
117. Katthagen B.D., Mittelmeeir H.(1984) Experimental animal investigation of bone regeneration with collagen apatite. Arch.Ortop.Trauma Surg. 103(5) 291-302.
118. Klein A.A.1983.Biodegradation behavior of various calcium phosphates. J.
119. Biomaterials Res.l7(5)769-784).
120. Krekel G. The healing of Autologous Spongiosa and Heterologous Materials in the Periodontal Bone Pocket. Int. J. Oral Surg. 1981;10: 151-55.
121. Lekakis J.P., Papathanassiou S., Papaioannou T.G. et al. Oral L-arginine improves endothelial dysfunction in patients with essential hypertension. // Int. J. Cardiol. 202. - V. 86(2-3). - P. 317-323.
122. Langer, R., J.P. Vacanti (1993). "Tissue engineering". Science 260: 920-926.
123. Laursen, J.B. Role of superoxide in angiotensin II-induced but not catecholamine-induced hypertension / J.B.Laursen, S.Rajagopalan, Z.Galis // Circulation. 1997. - V. 95. - P. 588-593
124. Liauder, L. Biology of nitric oxide signaling / L. Liauder, F.G. Soriano, C. Szabo // Crit. Care. Med. 2000. - V. 28. - P. 37-52.
125. Lemons M. M., "Synthetic hydroxylapatite and collagen combinations for the surgical treatment of bone" Biomedical Engineering III (Nov. 1984) pp. 1316.
126. Levy S. A. "Healing potential of surgically-induced periodontal osseous defects in animals using mineralized collagen gel xenografts" J. Periodontal. (1981) pp. 303-306.
127. Loscalzo, J. L-arginine and atherothrombosis / J. Loscalzo // J. Nutr. — 2004. -V. 134(10 Suppl). P. 2798S-2800S; discussion 2818S-2819S.
128. Luscher, T.F. Endothelial dysfunction as an tnd-point in interventional trials: concepts, method, and current data / T.F. Luscher, G. Noll // J. Hypertens. -1996.-V. 14.(suppl. 2).'-P. 111-121.*
129. Luscher, T.F. Endothelial dysfunction as therapeutic target / T.F. Luscher // Eur. Heart. J. — 2000.— Supll D — P. 20—25.
130. Luscher, T.F. Vascular protection: current possibilities and future perspectives / T.F. Luscher // Int. J. Clin. Pract. 2001. - V. 117. - P. 3-6.
131. Lusher, Т.Е. Biology of the endothelium / Т.Е. Lusher, M. Barton // Clin. Cardiol. 1997. - V. 10 (suppl. II). - P. 3 - 10.
132. Madden M, Finkelstein J, et al: Skin substitutes: Current clinical status.
133. Contemp Surg 1994: 45; 23.
134. Marra PG., Campbell P.G., DiMilla P.A., ICumta P., Mooney M.P. (1998) J. Szem Materials Research Society Fall Meeting, December, Novel Three Dimensional Biodegradable Scaffolds for Bone Tissue Engineering.
135. Mehlisch D.R.( 1989) Oral Surg Oral Med Oral Pathol. 0ct;68(4);505-14.Collagen hydroxylapatite implant for augmenting deficient alveolar ridges
136. Miller E, Gay S, Collagen structure and function in wound healing: biochemical and clinical aspects. Cohen K, Editor, Saunders, Philadelphia 1992 ;p 130.
137. Miller, A.L. The effects of sustained-release-L-arginine formulation on blood pressure and vascular compliance in 29 healthy individuals / A.L. Miller // Altera. Med. Rev. 2006. - V. 11(1). - P. 23-29.
138. Nakamura K., Al-Ruzzeh S., Chester A.H. et al. Age-related changes in the protective effect of chornic administration of L-arginine on post-ischemic recovery of endothelial function.// Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2003. -V.23(4). - P. 626-632.
139. Patti, G. The role of endothelial dysfunction in the pathogenesis and in clinical practice of atherosclerosis. Current evidences / G. Patti, R. Melfi, G. Di Sciascio // Recenti Prog Med. 2005. - V. 96(10). - P. 499-507.
140. Parsons J.( 1988) Bioceramics: Materials Characteristics Versus. Ann. N Y Acad. Sciences v.523 Jun.10. p. 190.Osteoinductive Composite Grouts for Ortopedic Use.
141. Pieper J.S., van Wachem P.B., van Luyn M.J.A., Brouwer L.A., Hafmans Т., Veerkamp J.H., van Kuppevelt T.H.( 2000) Attachment of glycosaminoglycans to collagenous matrices modulates the tissue response in rats. Biomaterials Aug;21(16): 1689-99
142. Pruitt В., Levine N.( 1984) Characteristics and uses of biologic dressings as skin substitutes. Arch Surg 119; 312.
143. Reddi A.H.(1985) Implant-stimulated interface reactions during collageous bone matrix-induced bone formation. Biomed.Mater.Res. Mar; 19 (3) 233-9.
144. Reddi A.H., Weinlroub S., Muthukumaran N. (1987) Biological principles of bone induction. Orthop ClinN Amer 18:207-212.
145. Reddi A.H.( 1998) Role of morphogenetic proteins in skeletal tissue engineering and regeneration. Nat Biotechnol. Mar; 16 (3):247-52.
146. Pernow J., Bohm F., Beltran E., Gonon A. L-arginine protects from ischemia-reperfusion-induced endothelial dysfunction in humans in vivo. // J. Appl. Physiol. 2003. - V. 95(6). - 2218-2222. Epub 2003 Aug 22.
147. Ripamonti U., Reddi A.H.(1992) Growth and morphogenetic factors in bone induction: role of osteogenin and related bone morphogenetic proteins in craniofacial and periodontal bone repair. Crit Rev Oral Biol Med 3: 1-14.
148. Schwarz N., Schlag G., Thuenher M., Eschherger J., Zeng L.(1991) Decalcified and undecalcified cancellous bone block implants do not heal diaphyseal defects in dogs. Arch Orthop Trauma Surg 1: 47-50.
149. Summers B.N., Eisenstein S.M.(1989) Donor site pain from the ilium: A complication of lumbar spine fusion. J Bone Joint Surg 71B:677-680.
150. Spector M.(1999) Basis Principls of Tissue Engineering.in Tissue Engineering Application in Maxillofacial Surgery and Periodontics. Ed. S. Lynch. Quintessence Publising Co.Inc. p. 3-17.
151. Thomson R.C., Yaszemski M.J., Powers J.M., Mikos A.G. (1998). Hydroxyapatite fiber reinforced poly(a-hydroxy ester) foams for bone regeneration. Biomaterials 19:1935-1943.
152. Urist M.R.(1965) Bone formation by autoinduction. Science 150:893-899.
153. Urist M.R., DeLange R.J., Finerman G.A.M.(1983) Bone cell differentiation and growth factors. Science 220:680-686.
154. Urist M.R.(1989) Bone morphogenetic protein, bone regeneration, heterotopic ossification and the bone-bone marrow consortium. In: Peck WAed). Bone and Mineral Research/6, New York, Elsevier Science Publishers, 57111.
155. Vacanti C.A., Pins G.(1992) Cell growth on collagen: a review of tissue engineering using scaffolds containing extracellular matrix.J Long Term Eff Med Implants 2(1):67-80.
156. Vacanti C.A., Kim W., Upton J., Vacanti M.P., Mooney D., Schloo В., Vacanti J.P.(1993) Tissue engineering growth of bone and cartilage. Transplant. Proc. 25, 1019.
157. Wendel M., Sommarin Y.( 1998) Isolation and Characterization of a Novel Cell-binding Keratan Sulfate Proteoglycan ( Osteoadgerin) from Bovine Bone. J. Cell Biol. N.3 May 4 839-847.
158. Yannas I.V., Burke J., et al.(1980) Design of an artificial skin: basic design principles. J Biomed Matr Res 14; 65.
159. Yannas I.V., Hansbrough J., Ehrlich N.(1984) What criteria should be used for designing artificial skin replacements and how well do the current grafting materials meet these criteria? J. Trauma 24; 29.