Автореферат и диссертация по медицине (14.00.46) на тему:Патогенетическое и диагностическое значение системы глутатиона в оценке цитотоксического действия противоопухолевых препаратов
Автореферат диссертации по медицине на тему Патогенетическое и диагностическое значение системы глутатиона в оценке цитотоксического действия противоопухолевых препаратов
0034804Б4
На 1фавах рукописи
КАШУРО Вадим Анатольевич
ПАТОГЕНЕТИЧЕСКОЕ И ДИАГНОСТИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ СИСТЕМЫ ГЛУТАТИОНА В ОЦЕНКЕ ЦИТОТОКСИЧЕСКОГО ДЕЙСТВИЯ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ПРЕПАРАТОВ
14.00.46 - клиническая лабораторная диагностика 14.00.16 - патологическая физиология
2 2 ОКТ
АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук
Санкт-Петербург 2009
003480464
Работа выполнена в ФГОУ ВПО «Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова» МО РФ
Научные консультанты:
доктор медицинских наук профессор Карпищенко Анатолий Иванович доктор медицинских наук профессор Белевитин Александр Борисович
Официальные оппоненты:
доктор медицинских наук профессор Кузнецов Валерий Валентинович доктор медицинских наук профессор Васильев Андрей Глебович доктор медицинских наук профессор Ивницкий Юрий Юрьевич
Ведущая организация:
ГОУ ВПО «Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. И.П.Павлова» МЗСР РФ
Защита диссертации состоитсяД^Декабря 2009 года в 13 часов на заседании диссертационного совета Д 215.002.08 в Военно-медицинской академии имени С.М. Кирова (194044, г. Санкт-Петербург, ул. Академика Лебедева, дом 6)
С диссертацией можно ознакомиться в фундаментальной библиотеке Военно-медицинской академии имени С.М. Кирова
Автореферат разослан 2009 года
Ученый секретарь диссертационного совета доктор медицинских наук профессор Ю.А Митин
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность. Химиотерапия является одним из перспективных направлений в онкологии, значение которой с каждым годом возрастает. Решающую роль в эффективности противоопухолевого действия химиопрепарата играет его доза. Однако, увеличение дозы в большинстве случаев приводит к развитию побочных реакций, обусловленных токсическим повреждением нормальных органов и тканей (Ганцев Ш.Х., 2004). Побочное действие цитостатиков - «ахиллесова пята» химиотерапии опухолевых заболеваний. По данным некоторых авторов, почти в 25% случаев лечение цитостатиками приходится прекращать из-за развития выраженных побочных эффектов (Блохин H.H., 1998; Корман Д.В., 2006). В связи с этим поиск адекватной противоопухолевой терапии заслуживает пристального внимания и требует решения ряда проблем, связанных, прежде всего, с ранней диагностикой и коррекцией побочных токсических эффектов химиотерапевтических препаратов (Гершанович M.JL, 2004).
Основной причиной развития токсических эффектов противоопухолевой терапии является общность мишеней цитостатической терапии в опухоли и в нормальных органах и тканях (Катцунг Б.Г., 1998; Жуков Н.В., Тюляндин С.А., 2008). Развивающаяся при применении цитостатиков токсичность является фактически продолжением их терапевтической активности и характеризует их низкий терапевтический индекс. В этой связи, побочное действие цитостатиков подобно токсическому поражению, реализация которого происходит через различные механизмы повреждения клетки (Grant R.L., et al., 1997). К этим механизмам относятся повреждения генетического аппарата клетки; активация процессов свободнорадикального окисления; повреждения клеточных мембран; нарушения процессов синтеза белка и клеточного деления; повреждающее действие избытка ионов Са2+ в клетке; нарушения энергетического обмена (Барабой В.А. и др., 1998; Глушков С.И., 2006).
г
Тем не менее, патогенез побочного действия противоопухолевых препаратов, несмотря на кажущуюся полноту, изучен фрагментарно. Успехи последних десятилетий, достигнутые в изучении патогенеза опухолевых заболеваний и их лечения, открыли новые грани токсичности, обусловленные дизрегуляторными изменениями в клетке, а не прямым поражением цитостатиком биологически значимых структур. В частности, дизрегулягорные расстройства связаны с нарушением регуляции тиол-дисульфидного статуса, потерей чувствительности рецепторов к специфичным лигандам, развитием общей и метаболической иммунодепрессии (Антонов В.Г., Козлов В.К., 2004).
Важнейшим условием нормальной жизнедеятельности клеток является поддержание определенного редокс-состояния в цитоплазме, поскольку оно играет существенную роль в таких процессах, как синтез ДНК, экспрессия генов, ферментативная активность и др. (Дмитриев Л.Ф., 2000; Смирнова Г.В., Октябрьский О.Н., 2005). Изменения редокс-состояния внутриклеточного содержимого и отдельных молекул, являющиеся следствием стрессовых воздействий или результатом активности самих клеток, вовлечены в регуляцию многих клеточных процессов, в том числе и устойчивости к токсичности. Физиологически неадекватная редокс-регуляция способна инициировать комплекс изменений аналогичных прямому действию токсиканта на различные клеточные структуры.
Экспериментально и клинически доказано, что в токсическом действии противоопухолевых средств одна из ведущих ролей принадлежит повышенной наработке АФК и реающям СРО, приводящим к оксидативной модификации нуклеиновых кислот, белков и лилидов (Стручков В. А., 1980; Блохин H.H., Переводчикова Н.И., 1984; Альберт А., 1989; Минаева JI.B., 2007). Регуляцию изменяющейся при этом в окислительную сторону внутриклеточной среды осуществляют различные редокс-буферы, важнейшим из которых является система глутатиона, участвующая в утилизации АФК и перекисных
соединений (Кулинский В.И., 1990; Mannervik В., 1989; Meister А., 1983). Таким образом, внутриклеточный уровень восстановленного глутатиона и ферментов его обмена являются маркерами активности процессов СРО и, следовательно, устойчивости клетки к токсическим повреждениям. В целостном организме количество опухолевых клеток не превышает 1% (Антонов В.Г., Козлов В.К., 2004). Их вклад в системные показатели редокс-обмена невелик. Поэтому системные показатели отражают состояние редокс-обмена прежде всего в нормальных клетках. Учитывая способность цитостатиков изменять интенсивность СРО в сторону окислительного стресса в нормальных клетках, изменения системных показателей редокс-баланса в крови отражает его состояние именно в нормоцитах.
Редокс-изменения предшествуют морфологическим и структурным нарушениям в нормальных клетках (гепатоцитах, миокардиоцитах, энтероцитах и др.). В этой связи, отклонения системных маркеров редокс-обмена от нормальных значений отражают текущее состояние и направление возможного изменения редокс-обмена. Эритроциты являются частью нормального пула клеток, и закономерности нарушения редокс-баланса в эритроцитах идут параллельно аналогичным изменениям во всех других нормальных клетках. Эритроциты играют ключевую роль в межорганном и межтканевом обмене глутатиона -и, выполняя, таким образом, роль интегративной системы, отражают состояние общего редокс-статуса организма, в том числе и состояние редокс-статуса при действии цитостатиков (Колесниченко JI.C. и др., 2007; Кулинский В.И. и др., 2007). В этой связи, изменения редокс-обмена в эритроцитах отражают в той или иной степени его изменения в других клетках. Однако диагностические возможности определения показателей системы глутатиона в эритроцитах для оценки побочного действия противоопухолевых препаратов практически не изучены.
В развитии системы диагностики токсических поражений основной упор делается на маркеры цитолитического синдрома внутренних органов,
определяемых в сыворотке крови. Однако повышение активности креатинкиназы отмечается не только при поражении сердечной мышцы, но и при опухолях предстательной железы, мочевого пузыря, желудочно-кишечного тракта (Тиц Н., 1997). И хотя среди пациентов кардиологического профиля этот тест имеет чувствительность 97% и специфичность 67% для поражения сердечной мышцы, повышение активности креатинкиназы свидетельствует об остром повреждении и гибели кардиомиоцитов. Цитостатики даже в высоких кумулятивных дозах не вызывают острого повреждения структуры кардиомиоцитов, поэтому уровень сердечного тропонина Т и активность креатинкиназы МВ не изменяются при развитии токсической кардиомиопатии (Гершанович М.Л., 2004). Трансаминазы распределены во всех тканях тела. Повышение активности аланинаминотрансферазы наблюдается при поражениях печени, а аспартатаминотрансферазы - сердца. Тем не менее, при токсических поражениях печени так же, как и при заболеваниях сердца преобладает повышение активности аспартатаминотрансферазы (Тиц Н., 1997).
Таким образом, изучение показателей обмена глутатиона, играющего важную роль в поддержании нормальной жизнедеятельности клетки и организма в целом и обеспечивающего многоуровневую и эффективную защиту тканей от повреждающего действия противоопухолевых препаратов, представляется актуальным для создания новых подходов ранней диагностики токсического действия средств химиотерапии и возможности их коррекции.
Целью исследования явилось определение возможности использования показателей обмена глутатиона в эритроцитах в качестве лабораторных тестов для прогнозирования и диагностики развития побочных эффектов при токсическом действии средств химиотерапии и эффективности их коррекции средствами фармакотерапии.
Для достижения поставленной цели предстояло решить следующие задачи исследования:
- определить особенности изменений показателей обмена глутатиона и перекисного окисления липидов в различных органах и в эритроцитах белых беспородных крыс при однократном и повторном введении циклофосфана (ЦФ) в различных дозах;
- определить особенности изменений показателей обмена глутатиона и перекисного окисления липидов в различных органах и в эритроцитах белых беспородных крыс при однократном и повторном введении доксорубицина (ДР) в различных дозах;
-определить особенности изменений показателей обмена глутатиона и перекисного окисления липидов в различных органах и в эритроцитах белых беспородных крыс с лимфосаркомой Плисса при повторном введении ЦФ;
- исследовать влияние на показатели обмена глутатиона и перекисного окисления липидов в различных органах и в эритроцитах лабораторных животных лекарственных средств различных фармакологических групп (антиоксиданты, антигипоксанты, производные глутатиона и предшественники его синтеза), используемых для защиты клеток от повреждающего действия цитостатиков;
- определить особенности изменений показателей системы глутатиона и перекисного окисления липидов в эритроцитах пациентов, получающих средства химиотерапии (включая ЦФ и ДР);
- оценить информативность показателей системы глутатиона в эритроцитах для диагностики тяжести цитотоксического повреждения внутренних органов при применении средств химиотерапии (ЦФ, ДР) и эффективности средств фармакологической коррекции.
Научная новизна. Патогенетически обоснована возможность использования ряда показателей обмена глутатиона и процессов ПОЛ в эритроцитах пациентов, получающих полихимиотерапию, для оценки тяжести побочного действия ДР и ЦФ. Впервые проведена комплексная оценка показателей системы глутатиона и процессов перекисного окисления липидов
в тканях печени, почек, сердца, головного мозга и в эритроцитах лабораторных животных (здоровых и с лимфосаркомой Плисса) при однократном и повторном введении ЦФ и ДР в различных дозах. Наряду с определением содержания восстановленного глутатиона, свободных сульфгидрильных групп белков, продуктов перекисного окисления липидов и оценки динамики их сдвигов, исследованы патобиохимические изменения, связанные с нарушением активности ферментов обмена глутатиона. Проведен анализ причин, вызывающих нарушения обмена глутатиона и активацию процессов перекисного окисления липидов в исследуемых тканях и органах. Установлено, что в условиях курсового применения исследуемых цитостатиков динамика изменений ряда показателей системы глутатиона в эритроцитах (концентрация ВГ, СГ, МДА и активность Г-6-ФДГ, ГР, ГП) отражает состояние его обмена в повреждаемых тканях внутренних органов (печень, сердце, почки) и эффективность проводимой цитопротекторной терапии. Для оценки риска развития и тяжести цитотоксического поражения тканей внутренних органов, эффективности применяемых препаратов цитопротекции в клинической практике предложено проведение динамического исследования показателей системы глутатиона в эритроцитах пациентов перед каждым новым циклом полихимиотерапий и на 7-е сутки после введения ДР и ЦФ.
Практическое значение работы заключается в том, что полученные в ходе диссертационного исследования данные о динамике изменений показателей системы глутатиона в органах и тканях лабораторных животных и в эритроцитах человека при применении ЦФ и ДР позволяют сформулировать представление о патогенетических механизмах цитотоксического действия исследуемых цитостатиков, связанных с повреждениями указанной биохимической системы. Полученные в . ходе экспериментального исследования данные о динамике состояния показателей системы глутатиона и процессов ПОЛ в эритроцитах могут быть использованы в качестве
лабораторных тестов оценки тяжести поражения и прогноза исхода интоксикации. Выявленное патогенетическое значение нарушений системы глутатиона может служить основанием для поиска новых эффективных лекарственных средств, обладающих цитопротекторными свойствами, для профилактики и лечения побочных эффектов применения исследуемых препаратов.
Положения, выносимые на защиту:
- патогенетическая роль системы глутатиона в реализации цитотоксических эффектов противоопухолевых средств подтверждается экспериментальными данными о нарушениях обмена глутатиона в органах мишенях (ДР - сердечная мышца, ЦФ - печень), их усилении в результате кумуляции цитостатиков и частичной коррекции при использовании цитопротекторных препаратов;
- исследование обмена глутатиона в эритроцитах и органах мишенях позволяет оценить выраженность цитопротекторных эффектов фармакологических препаратов, а поиск новых средств, действие которых связано с нормализацией обмена глутатиона, является современным направлением фармакологической защиты тканей от побочных эффектов кумулятивного действия ЦФ и ДР;
- определение показателей обмена глутатиона в эритроцитах пациентов, получающих полихимиотерапию, является патогенетически обоснованным для их применения в клинической практике при решении вопросов оценки риска развития побочных эффектов действия ДР и ЦФ и их тяжести, а также для скрининговой оценки цитопротекторных свойств препаратов фармакологической коррекции.
Реализация результатов исследования. Рекомендации, разработанные на основании полученных в ходе диссертационного исследования данных, используются в научной работе и учебном процессе на кафедрах клинической биохимии и лабораторной диагностики, патологической физиологии, военной
токсикологии и медицинской защиты Военно-медицинской академии. Диссертационное исследование выполнено в рамках плановых НИР шифр «Циклофосфан», «Цитотоксичность».
Апробация работы. Результаты работы доложены на Всеармейской научно-практической конференции «Терапевтическая помошь в экстремальных ситуациях» (Санкт-Петербург, 2003), X Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (Москва, 2003), Международном симпозиуме «Медицинские и биологические проблемы, связанные с уничтожением химического оружия» (Волгоград, 2003), XXXVI World-Congress on Military Medicine (Санкт-Петербург, 2005), Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 40-летию НИО обитаемости и профессионального отбора ВМедА (Санкт-Петербург, 2007), Всероссийской научно-практической конференции, посвященной, 45-летию ФГУП «НИИГПЭЧ» ФМБА России (Санкт-Петербург, 2007), 3-й Международной научной конференции «Донозология-2007» (Санкт-Петербург, 2007), Всероссийской научно-пракшческой конференции «Актуальные проблемы лабораторной диагностики» (Санкт-Петербург, 2008), Российской научной конференции «Медико-биологические проблемы токсикологии и радиологии» (Санкт-Петербург, 2008), Российской и Всеармейской научно-практической конференции «Вопросы нефрологии в практике терапевта и эндокринолога» (Санкт-Петербург, 2008).
Публикации. По теме научно-исследовательской работы опубликовано 40 печатных работ, из них в рекомендуемых ВАК изданиях - 7.
Объём и структура диссертации. Диссертация изложена на 371 странице машинописного текста и состоит из введения, 6 глав, включающих обзор литературы, общую характеристику материалов и методов исследования, полученных результатов исследований и их обсуждения, заключения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы. В диссертации приведены 33 рисунка и 119 таблиц (46 в тексте и 73 в
приложении). Список литературы содержит 261 библиографический источник, из них 99 отечественных и 162 иностранных публикации.
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материалы и методы исследования
Экспериментальные исследования выполнены на 980 белых беспородных крысах-самцах массой 190-210 г из питомника РАМН «Рагаголово», общая схема проведения которого представлена в табл. 1.
Таблица I
Схема проведения экспериментального исследования
Токсиканты Дозы, режим Сроки исследования Фармакологические препараты Кол-во | особей 1 |
1 Циклофосфан 400 мг/кг, 200 мг/кг, 60 мг/кг однократно 3,6,12, 24 ч Изопропиловый эфир глутатиона, мексидол, ремахсол 400
2 Циклофосфан 20 мг/кг, 40 мг/кг Ежедневно 10 сут 1, 3, 5, 7, 10 сут ацетилцистеин, трисан, цитофлавин, мексидол, глутоксим 220*
3 Цоксорубицин 7,47 мг/кг, 2,24 мг/кг однократно 3,6,12,24 ч; 3,5,7 суг, - 180
4 Цоксорубицин 2,24 мг/кг четырехкратно через 7 сут 7, 14,21,28 сут Ацетилцистеин, шопроггал-глутатион, кардиоксан, мексидол, цитофлавин 180
* - в том числе 50 особей с перевитой лимфосаркомой Плисса
Для коррекции цитотоксического действия через 30 мин после введения ЦФ или ДР животным внутрибрюшинно вводили один из следующих препаратов: ацетилцистеин - в виде 3 % официнального раствора, 150 мг/кг, глутоксим - в виде 1% водного раствора, 100 мг/кг, изопропиловый эфир глутатиона - в виде 5% водного раствора, 500 мг/кг, кардиоксан - в виде 0,8% раствора (на растворе Хартмана), 48 мг/кг, мексидол - в виде. 1 % водного раствора, 50 мг/кг, ремаксол - в виде 10% водного раствора (по янтарной кислоте), 118 мг/кг, трисан - виде 1% официнального раствора, 15 мг/кг, цитофлавин - в виде 10% официнального раствора, 118 мг/кг.
Контрольным животным (отравленным или интактным) в те же сроки виутрибрюшинно вводили физиологический раствор в дозе 10 мл/кг массы тела.
В процессе клинического исследования проводили оценку влияния противоопухолевой терапии с использованием циклофосфана и доксорубицина на состояние системы глутатиона и динамику интенсивности процессов перекисного окисления липидов в эритроцитах пациентов в различные сроки нахождения в стационаре. Исследование проводили на базе хирургического отделения Ленинградского областного онкологического диспансера (г.п. Кузьмолово, Ленинградская обл.) в процессе лечения 35 пациенток, поступивших для курсовой полихимиотерапии рака молочной железы. Всем больным, включенным в исследование, проводилось лечение по схеме FAC: циклофосфан 500 мг/м2, внутривенно капельно; доксорубицин 50 мг/м2, внутривенно капельно по методике, рекомендованной производителем; 5-фторурацил 500 мг/м2, внутривенно капельно. Продолжительность цикла составляла 21 день. Полный курс лечения включал пять циклов иолихимиотерапии. Профилактическое назначение антиэметиков осуществлялось в соответствии с общепринятыми методиками, принятыми в онкологических центрах.
Наряду с группой больных, получавших полихимиотератпо по выбранной схеме, была выделена группа пациенток, лечение которых дополнялось применением токсикомодифицирующим препаратом глутоксимом. 1,5 % раствор глутоксима вводили в день начала очередного цикла полихимиотерапии однократно подкожно через сутки в течение 14 дней. Назначение препарата осуществляли методом случайной выборки.
Оценку состояния системы глутатиона и интенсивности процессов перекисного окисления липидов проводили в эритроцитах пациентов перед каждым циклом химиотерапии и на 7-й день после введения препаратов. Оценка безопасности лечения осуществлялась на основании регистрации нежелательных явлений. Побочные эффекты регистрировали соответственно критериям шкалы Карновского, при этом путем целенаправленного опроса больных выявляли и отмечали наличие или отсутствие ожидаемых реакций. На протяжении всего периода терапии осуществлялся контроль показателей функции костного мозга, печени и почек, при этом полный анализ крови и биохимическое исследование крови выполнялись перед каждым циклом химиотерапии и на 7-й день после введения препаратов.
При выполнении клинического раздела работы также анализировали анамнез заболевания, медицинскую документацию догоспитального этапа, данные объективного исследования при поступлении в лечебное учреждение и в динамике, результаты других дополнительных методов обследования (ЭКГ, данные рентгенологического исследования).
Контрольную группу составили здоровые доноры (40 женщин) в возрасте от 43 до 61 года.
У экспериментальных животных в тканях печени, почек, сердца, головного мозга и эритроцитах, а также в эритроцитах пациентов, определяли содержание восстановленного глутатиона (ВГ), уровень свободных сульфгидрильных групп белков (СГ) и активность ферментов системы глутатиона и сопряженных систем - глутатионредуктазы (ГР), глюкозо-6-
фосфатдегидрогеназы (Г-6-ФДГ), глутатионпероксидазы (ГП), глутатион-S-трансферазы (ГТ) и каталазы. Для оценки интенсивности процессов перекисного окисления липидов (ПОЛ) в тканях животных определяли концентрацию диеновых конъюгатов (ДК) и малонового диальдегида (МДА).
Концентрацию ВГ определяли методом G.L. Ellman (1959) в модификации, заключавшейся в осаждении белка 20% раствором сульфосалициловой кислоты (Глушков С.И., 2006). Содержание СГ определяли согласно методике G. Bellomo et al. (1990). Определение концентрации ДК проводили по методике И. Д. Стальной (1977). Концентрацию МДА определяли по методу М. Uchiyama (1978). Определение активности ферментов системы глутатиона проводили в гемолизате эритроцитов или в цитозольной фракции, полученной после центрифугирования гомогенатов тканей в течение часа при 150000 g на ультрацентрифуге L8-M («Вескшап», США). Активность глутатионредуктазы определяли по методу I. Carlberg, В. Mannervik (1985), глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы - по А. Komberg et al. (1955), глутатионпероксидазы -по методу А.Н. Гавриловой и Н.Ф. Хмары (1986) с использованием в качестве субстрата гидроперекиси трет-бутила, каталазы - по М.А. Королюку (1988), глутатио n-S-трансферазы - методом W.H. Habig, W.B. Jakoby (1981). Расчет активности ферментов производили на грамм белка или гемоглобина (в гемолизате эритроцитов). Концентрацию белка определяли методом Лоури в модификации G.L. Peterson (1977), гемоглобина - гемиглобинцианидным методом.
Биохимические показатели токсичности (активность
аланинаминотрансферазы, аспартатаминотрансферазы, содержание мочевины, креатинина, общего билирубина) в сыворотке крови экспериментальных животньг х и больных определяли на автоматическом биохимическом анализаторе «Synchron» («Beckman Coulter», США), активность щелочной
фосфатазы и концентрацию мочевины на автоматическом биохимическом анализаторе Hitachi - 902 Automatik («Hitachi», Япония).
Статистическую обработку полученных результатов проводили на персональном компьютере с помощью пакета прикладных программ «SPSS 16.0». В каждой группе рассчитывали средние значения и ошибку среднего. Проводился корреляционный анализ изменений показателей системы глутатиона в эритроцитах и ткани печени отравленных животных. Достоверность различий с соответствующей контрольной группой оценивали по t-критерию Стьюдента. Приведенные в тексте и таблицах значения представляли в виде Хср ± шх. Для установления различий между несколькими группами по нескольким вариантам значений различных переменных одновременно применялся дискриминантный анализ.
Результаты исследований и их обсуждение
Проведенное клинико-экспериментальное исследование, посвященное изучению состояния системы глутатиона и сопряженных биохимических процессов в различных тканях лабораторных животных и в эритроцитах человека при применении циклофосфана и доксорубицина, подтвердило, что указанной биохимической системе принадлежит одно из ведущих мест в механизмах естественной цитопротекции, а нарушения ее функционирования имеют существенное значение в патогенезе развития нежелательных побочных эффектов противоопухолевых препаратов. Изучение состояния системы глутатиона в условиях воздействия цитостатиков является важным для поиска новых подходов к профилактике и лечению цитотоксических поражений тканей ряда органов, которые могут быть основаны на использовании препаратов, нормализующих состояние изучаемой системы цитопротекции - системы глутатиона.
Анализ полученных данных показал, что для полноценной реализации основных функций системы глутатиона, таких как поддержание тиол-
дисульфидного равновесия, антиоксидантная защита и конъюгация при применении циклофосфана и доксорубицина необходимо три фактора: 1) достаточный уровень восстановленного глутатиона; 2) адекватная активность ферментов антиоксидантной защиты; 3) наличие энергетических ресурсов для осуществления рециклирования восстановленного глутатиона и процессов конъюгации.
На направленность изменений показателей системы глутатиона существенно влияли условия применения цитостатика (дозовая нагрузка, временной фактор, токсикокинетические и токсикодинамические особенности его метаболизма), характер исследуемой ткани и тканевые особенности обмена глутатиона.
Ярко выраженный дозозависимый характер снижения показателей системы глутатиона наблюдался во всех исследуемых органах. Межтканевые отличия характеризовались тем, что наиболее существенные нарушения обмена глутатиона отмечались в тканях, в которых происходило развитие побочного гепато-, нефро- или кардиотоксического эффекта. Так, при применении кардиотоксического цитостатика доксорубицина максимальное по степени снижение концентрации ВГ отмечалось в тканях сердца (более, чем 10-кратное), циклофосфана - в тканях печени (более, чем 3-кратное) (Рис. 1).
Более умеренные сдвиги были обнаружены в эритроцитах, а снижение содержания глугатиона в тканях головного мозга было наименее значимым.
Центральное место в патогенезе цитотоксического действия ЦФ при однократном введении в больших дозах (200 и 400 мг/кг) принадлежало снижению внутриклеточного уровня ВГ, который необратимо расходовался на процессы конъюгации с различными метаболитами ксенобиотика, а также превращался в окисленную форму в процессах детоксикации АФК и органических перекисей. Истощение резервов системы глутатиона сопровождалось также выраженным повышением концентрации продуктов ПОЛ, снижением активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы,
глутатионредуктазы, глутатионпероксидазы, глутатионтрансферазы и каталазы (Рис.2). Данные изменения лежат в основе нарушений ряда функций системы глутатиона, что приводит к выраженным сдвигам тиол-дисульфидного статуса и активации процессов перекисного окисления липидов.
Рис. 1. Изменения концентрации ВГ в тканях сердца и в эритроцитах крыс при однократном введении доксорубицина в дозе 7,47 мг/кг
В отличие от интоксикации высокими дозами, повторное введение ЦФ сопровождалось развитием длительного «токсического стресса», характеризующегося постепенной мобилизацией, а затем расходованием резервов системы глутатиона. За периодом напряжения адаптивных процессов следовал период компенсации, направленный на временное возмещение поврежденных функций системы глутатиона в процессе интоксикации. Если действие цитостатика продолжалось, наступая срыв компенсации.
Подтверждением этого может служить двухфазный характер изменений, который отмечался и при исследовании активности ряда ферментов системы глутатиона в наиболее повреждаемой ткани - печени.
ВП ОГП В Г-6-ФДГ
Рис. 2. Изменения концентрации ВГ, активности ГП и Г-6-ФДГ в тканях печени крыс при однократном введении циклофоефана в дозе 200 мг/кг
Например, введение ЦФ в дозе 20 мг/кг приводило к повышению активности ГР в течение 3 суток с последующим достоверным ее снижением. При исследовании ГП и каталазы компенсаторная активация (р<0,05) этих ферментов в ткани печени наблюдалась на 5-е сутки эксперимента при использовании дозы токсиканта 20 мг/кг (в 1,37 и 1,30 раза, соответственно). Однако при исследовании активности Г-6-ФДГ в ткани печени периода компенсаторных изменений выявлено не было. Напротив, в течение всего эксперимента наблюдапось достоверное выраженное дозозависимое ее
снижение, которое можно объяснить наличием в активном цетре фермента сульфгидрильной группы (Рис. 3).
Снижение активности Г-6-ФДГ при повторном введении ЦФ может быть связано с необратимым алкилированием тиоловых групп энзима активными метаболитами ЦФ и повреждающим действием на молекулы фермента АФК и свободных радикалов (Голиков С.Н., 1986). В свою очередь, усиленное расходование НАДФ-Н в глугатионредуктазной и цитохром Р-450-редуктазной реакциях усугубляет процессы истощения резервов компенсаторного ответа системы глутатиона (Тиунов Л.А., 1995; Еропкин М.Ю., 2003). Подтверждением роли активации СРО и алкшшрования вН-групп в снижении активности Г-6-ФДГ может служить выраженное снижение концентрации сульфгидрильных групп и повышение уровня ДК, МДА в ткани печени.
Рис. 3. Изменения активности Г-6-ФДГ и ГП в тканях печени крыс при повторном введении циклофосфана в дозе 20 мг/кг
н Г-6-ФДГ
□ ГР
Угнетение активности ферментов редокс-циклирования глутатиона, происходившее при введении доксорубицина, также подтверждает важную роль нарушений обмена глутатиона в патогенезе развития доксорубидиновой кардиомиопатии. Динамика снижения уровня ВГ в тканях сердечной мышны экспериментальных животных имела прямую положительную корреляционную связь с динамикой уменьшения активности Г-6-ФДГ и ГР, Снижение уровня ВГ в сердечной мышце, существенно превосходящее по времени сроки интенсификации процессов ПОЛ, подтверждает, что истощение концентрации ВГ в кардиомиоцитах объясняется не столько его расходованием на осуществление антиоксидантной защиты кардиомиоцигов, сколько нарушением ферментативного звена восстановления глутатиона (Рис.
4).
®ВГ ПМДА
Рис. 4. Изменения концентрации ВГ и МДА в тканях сердца крыс при однократном введении доксорубицина в дозе 7,47 мг/кг
Угнетением активности ферментов редокс-циклирования глутатиона объясняется мощное снижение концентрации ВГ в тканях печени, почек и в
эритроцитах крыс с перевитой лимфосаркомой Плисса. На первый взгляд, обратимое расходование ВГ на обезвреживание АФК, активно образующихся в результате характерного для различных форм онкологической патологии нарушения общего метаболизма, становится фатальным в результате снижения активности Г-6-ФДГ вследствие недостатка глюкозо-6-фосфата из-за преобладания процессов гликолиза. Длительная прооксидантная нагрузка приводит к истощению запасов ВГ и уменьшению активности ферментов антиперекисной защиты ГП и ГТ. Все это служит основой для перехода оксидативного стресса в декомпенсированную фазу (табл. 2).
Таблица 2
Изменения некоторых показателей системы глутатиона в тканях различных органов при однократном введении циклофосфана в дозе 20 мг/кг экспериментальным животным с лимфосаркомой Плисса
Показате ль Группы животных Исследуемый орган (ткань)
Печень Почки Опухоль Эритроциты
ВГ ммоль/г ткани Контроль 10,12 ±0,37 3,75 ± 0,47 9,12 ±0,17
опухоль Плисса без лечения 4,12 ±0,05* 2,13±0,12* 1,02 ±0,06 7,37+0,39*
опухоль Плисса + циклофосфан 4,89 ±0,36* 2,74 ± 0,32 0,61 ± 0,04* 7,03 ± 0,28*
МДА ммоль/г ткани Контроль 143,14 ±4,75 358,89 ±5,90 14,92 ±0,69
опухоль Плисса без лечения 484,03± 42,54* 443,33±23Д7* 165,64±5,48 20,27±1,51*
опухоль Плисса + циклофосфан 403,71±20,36 * 411,62±1£,79* 178,88±5,08 18,71±1,37*
Г-6-ФДГ мкмоль/( мин г белка) Контроль 209,77 ±13,04 20,41 ± 1,66 4,63 ± 0,38
опухоль Плисса без лечения 100,04 ±5,23* 18,80±4,11 27,20 ± 1,50 2,77+0,24*
опухоль Плисса + циклофосфан 96,23 ± 6,60 * 19,60 ±1,77 23,72+ 1,37 3,67+0,24*"
ГП мкмоль/( мин г белка) Контроль 15,43+0,27 7,00 ±0,18 5,33 ±0,17
опухоль Плисса без лечения 13,36 ±0,46* б,55± 0,60 0,16 ±0,007 4,11±0,18*
опухоль Плисса + циклофосфан 12,11 ±0,35 * 5,85 ±0,39* 0,17 ±0,006 5,65 ±0,23*
* - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой контроля.
* - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с нелеченой опухолью Плисса
Проведенный анализ полученных данных указывает на взаимосвязь механизмов повреждений системы глутатиона и реализации цитотоксических эффектов исследуемых противоопухолевых препаратов. Исследование динамики изменений активности ферментов обмена глутатиона (ГР, Г-6-ФДГ, ГП, ГТ) и сопряженных биохимических процессов (интенсивности протекания процессов ПОЛ, состояния тиол-дисульфидного равновесия, активности каталазы) позволило представить участие системы глутатиона в патогенезе побочного цитотоксического действия исследуемых цитостатиков в следующем виде:
1. Метаболизм циклофосфана и доксорубицина с участием цитохрома Р450 приводит к образованию их активных метаболитов (гидроксифосфамида и доксорубицинола), свободнорадикальных промежуточных метаболитов (циклофосфана - карбониевого иона, доксорубицина - семихиноновых радикалов) и активных форм кислорода.
2. В результате глутатионовой конъюгации активных метаболитов доксорубицина и циклофосфана происходит необратимое потребление ВГ, восполняемое за счет синтеза глутатиона de novo, возможное™ которого весьма ограничены.
3. Увеличение наработки АФК приводит к более интенсивному, хотя и обратимому, расходованию восстановленного глутатиона в глутатионпероксидазной реакции и переходу его в окисленную форму.
4. Обезвреживание свободнорадикальных промежуточных продуктов метаболизма карбониевого иона и семихиноновых радикалов также может привести к снижению уровня восстановленного глутатиона. В условиях нарастающего потребления ВГ на процессы конъюгации и обезвреживания АФК уровень концентрации трипептида сохраняется за счет активации как процессов непосредственного синтеза ВГ, так и процессов его рециклирования. В то же время увеличение наработки продуктов СРО приводит к индукции актавности ферментов АОЗ. Данные изменения
характеризуют компенсаторный период при применении исследуемых цитостатиков.
5. Последующая возрастающая прооксидантиая нагрузка, нарушение тиол-дисульфидного статуса приводят к истощению резервов системы гей-ох-циклирования глутатиона (относительный дефицит, а затем и снижение активности глутатионредуктазы и глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы вследствие потребления глюкозо-6-фосфата и снижения уровня ПАДФН), а затем и к уменьшению глутатионпероксидазной активности. Все это служит основой для перехода оксидативного стресса в декомпенсированную фазу в связи с невозможностью поддержания необходимого тканевого уровня восстановленного глутатиона.
6. Снижение активности ряда ферментов обмена глутатиона может быть вызвано в результате прямого их повреждения цитостатиками или их метаболитами, свободными радикалами или грубыми расстройствами процессов биосинтеза энзимов этой биохимической системы. Высокая алкилирующая способность метаболитов ЦФ, образующихся в процессе активации системой цитохрома Р450, лежит в основе их взаимодействия не только с ВГ, но и с функциональными (в том числе и с сульфгидрильными) группами различных биомолекул (Голиков С.Н., 1986). Процессы обратимого Э-тиолирования функциональных групп белков окисленным глутатионом и образование смешанных дисульфидов также может приводить к снижению содержания СГ (Кулинский В.И., 1990). Последнее изменение имеет неоднозначное значение: во-первых, сохранение в клетке пула глутатиона; во-вторых, защита БН-групп белков от необратимой их модификации как продуктами метаболизма ЦФ, так и свободными радикалами и продуктами ПОЛ. Таким образом, система глугатиона принимает участие в защите тиольных групп различных белков и сохранении активности ряда ферментов. Однако в условиях дефицита
ресурса глутатиона, в значительном количестве расходуемого в процессах конъюгации, закономерным является нарушение тиолового статуса. 7. Нарастание активности перекисного окисления липидов, снижение концентрации SH-групп косвенно указывают и на нарушения энергетического метаболизма клетки, возникающего в результате повреждения митохондриальных мембран, алкилирования SH-зависимых ферментов цикла Кребса и нарушений в клетке равновесия между белковыми тиолами и дисульфидами. Как известно, обмен глутатиона в тканях (как за счет биосинтеза de novo, так и за счет его восстановления из окисленной формы) является энергоемким процессом и требует, по крайней мере, затрат 3-х молекул АТФ на одну молекулу субстрата. Кроме того, развитие различных форм гипоксии закономерно приводит к повышенной наработке АФК и активации свободнорадикальных процессов. Гиперактивация свободнорадикального окисления и ПОЛ митохондриальных мембран приводят к усугублению угнетения клеточного дыхания, развитию энергодефицитных состояний и может способствовать формированию патогенетического порочного круга.
Таким образом, нарушения системы глутатиона при применении циклофосфана и доксорубицина, несмотря на специфические особенности их действия, протекают по единому патогенетическому механизму.
Расширение представлений об особенностях функционирования системы глутатиона в условиях применения противоопухолевых препаратов в различных дозах и режимах введения имеет не только теоретическое значение, связанное с уточнением роли изучаемой системы цитопротекции в патогенезе побочного действия цитостатиков, но и существенное практическое значение. Они позволяют не только определить роль нарушений системы глутатиона в реализации циготоксических эффектов исследуемых цитостатиков, но и показать возможные маркеры цитотоксичности. Перспективным направлением практического использования показателей системы глутатиона является
возможность оценки с их помощью тяжести цитотоксических поражений паренхиматозных органов при развитии побочных эффектов противоопухолевых средств.
Полученные биохимические данные изменений показателей системы глутатиона подтверждаются одновременно проведенным морфологическим исследованием тканей печени в различные сроки повторного введения ЦФ, которое выявило сопряжение нарастающих морфологических признаков повторной интоксикации (выраженность жировой дистрофии, гиперхромия ядер, расширение синусоидов) с увеличением кумулятивного эффекта ксенобиотика.
Проведенное экспериментальное исследование подтвердило предположение о возможности использования определения показателей системы глутатиона в эритроцитах для диагностической оценки степени тяжести цитотоксических эффектов при повторном воздействии исследуемых цитостатиков. Это подтверждается одинаковым характером изменений показателей данной системы во внутренних органах и в эритроцитах.
%
1;
11
7 еут
¡3 эритроциты
□ печень
Рис. 5. Изменение активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы в ткани печени и эритроцитах при повторном введении ЦФ в суточной дозе 20 мг/кг
Например, динамика изменений активности Г-6-ФДГ в клетках красной крови коррелировала с таковыми в ткани печени. Была установлена прямая положительная корреляционная связь, коэффициент корреляции составил при введении ЦФ в дозе 20 мг/кг - 0,65 (Рис. 5), при дозе 40 мг/кг - 0,53. При применении доксорубицина между содержанием восстановленного глутатиона в тканях сердца и в эритроцитах через сутки после повторных воздействий щггостатика выявлена прямая положительная корреляционная связь (коэффициент корреляции - 0,95).
Кроме того, в ходе экспериментального исследования проведена сравнительная оценка между сроками появления и выраженностью изменений маркеров гепато- и нефротоксичности ВОЗ (AJIT, ACT, ЩФ, содержания общего билирубина, креатинина, мочевины) и показателей системы глутатиона при повторном введении ЦФ в суточной дозе 20 мг/кг в течение 10 суток (табл. 3).
Таблица 3
Сроки появления и выраженность изменений маркеров гепатотоксичности, показателей системы глутатиона и морфологических признаков поражения печени при повторном введении ЦФ в суточной дозе 20 мг/кг
Показатели Сроки исследования
1-3 сут 5-7 сут 10 сут
Активность Г-6-ФДГ, ГР снижение на 10-20% снижение на 25-50% снижение более, чем на 50%
Концентрация МДА повышение на 3040% повышение на 5070% повышение более, чем на 75%
Морфологические признаки поражения печени слабо выраженные умеренно выраженные сильно выраженные
Активность АЛТ, ACT, концентрация билирубина норма норма повышение на 2550%
Установлено, что изменения таких показателей обмена глутатиона, как активность Г-б-ФДГ, ГР, содержание ДК, МДА происходили в более ранние сроки и выявлялись при отсутствии достоверных изменений со стороны большинства общеизвестных биохимических показателей, а к окончанию эксперимента носили более выраженный характер.
Правильность предположения о возможности использования показателей системы глутатиона для оценки побочных цитотоксических поражений паренхиматозных органов при применении противоопухолевых средств подтвердили результаты дискриминантного анализа, с помощью которого удалось по показателям системы глутатиона в эритроцитах экспериментальных животных с максимальной четкостью провести разделение животных на три группы: с выраженными и незначительными морфологическими признаками поражения печени и их отсутствием (Рис. 6). Применение результатов дискриминантного анализа в алгоритме обследования животных дало возможность правильно прогнозировать выраженные токсические поражения печени: чувствительность метода составила 97%, специфичность - 93%.
Уточнение механизмов повреждения изучаемой системы цитопротекции, основанное на данных динамического исследования не только уровня ВГ, но и активности ферментов обмена глутатиона, а также показателей ПОЛ позволяет в дальнейшем сформулировать подходы к использованию цитопротекторной терапии побочного действия противоопухолевых препаратов. При этом, основываясь на преобладании тех или иных патогенетических механизмов воздействия противоопухолевых средств на состояние системы глутатиона, поиск и применение препаратов цитопротекции может быть построен с учетом их специфичности воздействия на естественную систему защиты клетки. Такйм образом, открывается перспектива использования таких препаратов, патогенетическое действие
которых будет направлено на коррекцию определенных звеньев системы глутатиона.
Канонические дискриминантные функции
1 группа - морфологические признаки поражения печени отсутствуют
2 группа - морфологические признаки поражения печени незначительны
3 группа - морфологические признаки поражения печени значительны
-15 . -10 4 О 5 10 15
Функиия 1
Рис. 6. Распределение значений канонических функций дискриминации в 1,2 и 3 группах животных при введении ЦФ в дозе 40 мг/кг.
Выявленные механизмы цитотоксического действия циклофосфана и доксорубицина, связанные с нарушениями системы глутатиона, позволили обосновать направления цитопротекторной терапии:
1. Применение препаратов экзогенного глутатиона (изопропшговый эфир глутатиона), предшественников его синтеза (ацётилцистеин) и производных окисленного глутатиона (глутоксим) было направлено на увеличение пула восстановленного глутатяона, расходующегося на процессы конъюгации с ксенобиотиками и их метаболитами, репарации поврежденных биомолекул.
2. Применение антиоксидантов (мексидол, ремаксол) и комплексообразователей (кардиоксан) было направлено на снижение
образования активных форм кислорода и свободнорадикалышх промежуточных продуктов метаболизма цитостатиков.
3. Применение антигипоксантов (цитофлавин, трисан) было направлено на устранение нарушений энергетического обмена.
Проведенное исследование показало, что реализация цитопротекторных свойств этих препаратов, несмотря на разный механизм их действия, патогенетически связана с восстановлением повреждений системы глутатиона и нарушений ее функций. Причем воздействие разных препаратов на состояние системы глутатиона и процессы ПОЛ сопровождалось принципиально одинаковыми эффектами: положительным влиянием на динамику концентрации ВГ и СГ; снижением интенсивности протекания процессов ПОЛ; увеличением активности ферментов восстановления глутатиона; стимулирующим влиянием на активность антиоксидантных ферментов.
Выраженность воздействия препаратов фармакологической коррекции на показатели системы глутатиона была различной. Так, при однократном введении ЦФ наибольшее влияние на показатели системы глугатиона отмечалось при использовании изопропилового эфира глутатиона. Препарат позволял добиться не только наиболее длительного по времени предупреждения снижения уровня ВГ в тканях печени (тогда как действие антигипоксантов и антиоксидантов было обратимо), но и максимально предупреждал накопление продуктов ПОЛ в тканях, а также оказывал индуцирующее действие на активность глутатион-Б-трансферазы и глутатионпероксидазы. Все эти данные не только подтвердили лидирующую роль срыва механизмов глутатионовой конъюгации при реализации цитотоксических эффектов действия ЦФ, но и указывают на то, что дальнейшим направлением поиска наиболее эффективных средств питопротекции в условиях цитотоксического воздействия ЦФ может явиться применение препаратов, повышающих уровень глугатиона в тканях.
Неслучайно наиболее выраженное положительное влияние на систему глутатиона при повторном введении ЦФ оказывало использование метаболического предшественника синтеза глутатиона — ацетилцистеина. Его применение приводило к повышению уровня восстановленного глутатиона в тканях паренхиматозных органов и в эритроцитах экспериментальных животных. Повышение концентрации ВГ закономерно приводило и к восстановлению показателей тиол-дисульфидного обмена, повышению активности ферментативного звена системы глутатиона и снижению интенсивности процессов СРО. У животных с лимфосаркомой Плисса наиболее эффективное влияние на показатели системы глутатиона оказал глутоксим (Рис. 7).
Рис. 7. Влияние глутоксима на изменения показателей системы глутатиона в эритроцитах крыс с лимфосаркомой Плисса при повторном введении ЦФ в суточной дозе 20 мг/кг в течение 10 суток
При его введении в тканях печени и в эритроцитах концентрация ВГ и СГ восстанавливалась до уровня здоровых животных, отмечалось снижение
интенсивности протекания процессов ПОЛ, увеличение активности ферментов восстановления глутатиона. Причем механизм действия данного препарата, учитывая невозможность его проникновения внутрь клетки, связан, вероятнее всего, с сенситизацией клеточных рецепторов к различным лигандам.
Система глутатиона по многим параметрам соответствует понятиям скрининговой системы при выборе средств цитоиротекции. Так, результаты проведенного исследования показали, что при повторном введении доксорубицина АЦЦ, цитофлавин, изопропиловый эфир глутатиона и мекоидол по выраженности кардиопротекторных свойств, по крайней мере, не уступают и даже превосходят кардиоксан (Рис. 8). Более того, в отличие от последнего они защищали от повреждения клетки красной крови.
0 без коррекции □ кардиоксан ЕЗ цитофлавин
Ш изопропилглутатион § мексидол ® АЦЦ
Рис. 8. Динамика изменений активности Г-6-ФДГ в тканях сердца и в эритроцитах крыс при фармакологической коррекции повторного введения доксорубицина в дозе 2,27 мг/кг
Эти же препараты, в отличие от кардиоксана, использование которого не позволяло предотвратить снижение активности ключевого фермента пентозофосфатного шунта и глутатионредукгазы, оказали положительное влияние на интенсивность свободнорадикальных процессов и, что особенно важно, на активность ферментов редокс-циклирования глутатиона, так как нарушения именно в этом звене системы глутатиона при применении ДР, видимо, детерминируют дальнейшую цепь патологических событий.
Данные о наличии положительных корреляций между изменениями состояния системы глутатиона в эритроцитах и тканях внутренних органов лабораторных животных при применении фармакологических средств указывают и на возможность использования показателей системы глутатиона для оценки эффективности назначения ряда цитопротекторов. Применение цитоиротекторных препаратов приводило не только к существенному снижению выраженности нарушений обмена глутатиона в ткани печени, но и к уменьшению выраженности гистологических признаков поражения в гепатоцитах, где определялась мелкокапельная жировая и зернистая дистрофия, пространства Диссе были несколько расширены. Исследование маркеров гепато- и нефротоксичности в сыворотке крови крыс с лимфосаркомой Плисса, не леченых и леченных циклофосфаном, не в полной мере отражало тяжесть морфологических изменений, наблюдавшихся в этих тканях, и поэтому может использоваться для оценки эффективности цитопротекторной терапии лишь в качестве дополнительного теста к показателям системы глутатиона.
Подтверждение возможности использования показателей системы глутатиона в эритроцитах в качестве лабораторных диагностических тестов для оценки эффективности фармакологической коррекции побочного действия циклофосфана было получено с помощью дискриминантного анализа, применив который, удалось по показателям системы глутатиона с максимальной четкостью провести разделение животных на группы, не
получавшие цитопротекторы (с выраженными морфологическими признаками поражения печени), получавшие цитопротекторы (с незначительными морфологическими признаками поражения печени) и здоровые (без признаков поражения печени). Кроме того, результаты дискриминантного анализа позволили выявить более выраженный цитопротекторный эффект у препаратов-предшественников глутатиона, что указывает на возможность использования показателей системы глутатиона в качестве скрининговой системы оценки цитопротекторных свойств различных средств патогенетической терапии (Рис 9).
Канонические дискриминантные функции
00
в
.о
1 группа (контрольные животные) - поражений печени нет;
2 группа (леченные ЦФ) -морфологические признаки поражения печени значительны;
3 группа (леченные ЦФ и препаратами фармкоррекции) -морфологические признаки поражения печени незначительны
Функция 1
Рис. 9. Распределение значений канонических функций дискриминации в 1-й, 2-й и 3-й группах животных при введении ЦФ в дозе 40 мт/кг и препаратов фармакологической коррекции
Клиническое исследование подтвердило патогенетическую значимость изменений активности Г-6-ФДГ и ГР и показало высокую диагностическую
информативность определения их активности в эритроцитах пациентов при полихимиотерапии циклофосфаном и доксорубицином.
Выраженность угнетения активности Г-6-ФДГ и ГР в эритроцитах пациентов с цитотоксическими осложнениями на 7-е сутки после введения цитостатиков и дальнейшее отсутствие восстановления их активности к началу очередного курса полихимиотерапии явились наиболее информативными данными, свидетельствующими об истощении возможностей восстановления глутатиона. Определение содержания МДА в эритроцитах также может использоваться с диагностическими и прогностическими целями при развитии побочных эффектов полихимиотерапии.
Обследование пациентов показало, что цитостатическая терапия сопровождается накоплением продуктов ПОЛ в эритроцитах, выраженность которого соответствует тяжести токсического действия препаратов. Обращает на себя внимание, что в группе больных с выраженными осложнениями нарастание концентрации МДА в эритроцитах было более интенсивным и происходило в более ранние сроки, что свидетельствует о низких резервах антиоксидантной защиты.
Глутоксим, применявшийся в качестве токсикомодифицирующего препарата при полихимиотерапии РМЖ, также оказал положительное действие на систему глутатиона, достоверно повышая в эритроцитах пациентов концентрацию ВГ, активность Г-6-ФДГ, глутатионредуктазы и каталазы. Таким образом, выраженная цитопротекторная активность глутоксима достоверно отражала эффективность проводимой им коррекционной терапии.
Исследование лабораторных показателей гепато- и нефротоксичности у больных раком молочной железы в процессе курсового лечения циклофосфаном и доксорубицином показало незначительные колебания маркеров цитолиза печени (активности АЛТ и ACT, концентрации
билирубина) на протяжении всего исследования у больных с отсутствием существенных осложнений со стороны паренхиматозных органов. Выраженные признаки гепатотоксичности были отмечены в 2-х случаях после 3-го и 4-го цикла полихимиотерапии, что проявилось повышением активности АЛТ в 2,1 раза и увеличением концентрации билирубина в 1,8 раза (р<0,05) по сравнению со значениями перед началом химиотерапии. Следует отметить, что на 7-й день после второго курса ПХТ и перед началом третьего курса концентрация билирубина и активность трансаминаз в сыворотке крови в этой группе больных были в пределах нормы. В то же время такие показатели системы глутатиона в эритроцитах этих пациентов, как концентрация сульфгидрильных групп белков, активность Г-6-ФДГ и каталазы были достоверно ниже, чем показатели доноров не только после второго курса ПХТ, но и перед началом третьего. Таким образом, изменения показателей системы глутатиона в эритроцитах больных происходили в более ранние сроки по сравнению с лабораторными показателями цитолиза печени в сыворотке крови.
Дискриминантный анализ показателей системы глутатиона в эритроцитах больных перед третьим циклом ПХТ позволил правильно спрогнозировать по исходным данным вероятность развития выраженных осложнений с точностью 97,1 %, а по результатам кросс-проверки - 91,4%.
Таким образом, полученные данные экспериментального и клинического исследований существенно расширяют наши представления о механизмах цитотоксичности и естественной цитопротекции, подгверждают участие системы глутатиона в патогенезе побочного действия ЦФ и ДР и перспективность практического использования показателей обмена глутатиона для оценки и прогноза тяжести цитотоксических поражений паренхиматозных органов, определяют направления поиска новых средств цитопротекции и оценки их эффективности в условиях эксперимента и клиники.
ВЫВОДЫ
1. Изучение системы глутатиона в условиях эксперимента позволило установить, что применение доксорубицина приводит к наиболее выраженным ее нарушениям в тканях сердца, а циклофосфана - в тканях печени. Данные изменения указывают на наличие взаимосвязи между нарушениями обмена глутатиона и реализацией цитотоксических эффектов исследуемых противоопухолевых препаратов.
2. Нарастание выраженных морфологических признаков токсического повреждения ткани печени при повторном введении ЦФ и миокарда - при повторном введении ДР совпадает с динамикой изменений показателей системы глутатиона в результате кумулятивных эффектов цитостатиков.
3. Изменения активности Г-6-ФДГ, ГР, содержания ДК, МДА при повторном введении ЦФ происходили в более ранние сроки (3 - 5-е сутки) и предшествовали появлению морфологических признаков повреждения печени (5 - 7-е сутки), а также биохимических показателей цитолиза печени - AJIT, ACT, билирубин (7 -10-е сутки).
4. Цитопротекторные препараты, действие которых связано с нормализацией обмена глутатиона (повышение пула ВГ за счет введения экзогенного глутатиона или предшественников его синтеза (АЦЦ, изопропиловый эфир глутатиона); уменьшением процессов СРО за счет антиоксидантов (мексидол, ремаксол) и комплексообразователей (кардиоксан); стимуляцией энергетических процессов антигипоксантами (цитофлавин, трисан); усилением регуляторных процессов (глутоксим)), могут быть использованы в качестве средств фармакологической защиты тканей паренхиматозных органов от побочных эффектов кумулятивного действия ЦФ и ДР.
5. В условиях курсового применения ЦФ И ДР динамика изменений показателей системы глутатиона в эритроцитах (концентрация ВГ, СГ, МДА и
активность Г-б-ФДГ, ГР, ГП) отражает состояние его обмена в повреждаемых тканях внутренних органов (печень, сердце, почки) и эффективность проводимой цитопротекторной терапии.
6. Определение концентрации ВГ, СГ, МДА и активности Г-б-ФДГ, ГР, ГП в эритроцитах пациентов, получающих полихимиотерапию, является патогенетически обоснованным для их применения в качестве лабораторных тестов оценки тяжести побочного действия ДР и ЦФ.
7. Для оценки риска развития и тяжести цитотоксического поражения тканей внутренних органов, эффективности применяемых препаратов цигопротекции в клинической практике необходимо проведение динамического исследования показателей системы глутатаона в эритроцитах пациентов перед каждым новым циклом полихимиотерапии и на 7-е сутки после введения ДР и ЦФ.
8. Совпадение данных клинико-инструментального исследования больных раком молочной железы, пролеченных по схеме САБ + глутоксим, улучшение их состояния по шкале Карновского с нормализацией показателей обмена глутатаона в эритроцитах позволяет использовать их для скрининговой оценки цитопротекторных свойств как общеизвестных, так и новых перспективных препаратов фармакологической коррекции.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. В схему комплексного клинико-инструментального обследования больных РМЖ, проходящих курс полихимиотерапии, для оценки степени тяжести цитотоксического поражения паренхиматозных органов и сердечной мышцы рекомендуется включить определение в эритроцитах таких показателей системы глутатиона, как активность Г-б-ФДГ, ГР, ГП, концентрации ВГ, МДА.
2. В схему комплексной терапии больных РМЖ с целью предотвращения побочных цитотоксических эффектов действия цитостатиков целесообразно включение фармакологических препаратов, обладающих антиоксидантными и антигипоксантными свойствами (например, мексидол), а также препаратов-предшественников синтеза глутатиона - ацетилцистеина и препаратов окисленного глутатиона - глутоксима.
3. В протокол скринйнговой оценки цитопротекторных свойств как общеизвестных, так и новых перспективных препаратов фармакологической коррекции рекомендуется включение динамического определения показателей обмена глутатиона в эритроцитах (активность Г-6-ФДГ, ГР, ГП, концентрация ВГ,МДА).
4. Полученные данные о патогенетическом и диагностическом значении системы глутатиона для оценки цитотоксического действия противоопухолевых препаратов рекомендуется использовать в процессе дополнительного образования врачей-специалистов в области клинической лабораторной диагностики, токсикологии, онкологии и др.
СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ
1. Глушков С.И. Состояние системы глутатиона в тканях различных органов при остром отравлении циклофосфаном / С.И. Глушков, Кашуро В.А., Т.М. Новикова // Медицинские аспекты радиационной и химической безопасности: Материалы Российской научной конференции, г. Санкт-Петербург, 11-12 октября 2001 г. - СПб: ВМА, 2001. - С. 296-298.
2. Кашуро В.А. Динамика активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы в эритроцитах и тканях печени лабораторных животных при отравлениях циклофосфаном I В.А. Кашуро, А.И. Карпищенко, С.А. Куценко и др. // Тезисы докладов Всероссийской научной конференции, посвященной 110-летию кафедры клинической биохимии и лабораторной диагностики Военно-
медицинской академии и 100-летию со дня рождения академика АМН СССР Г.Е. Владимирова, 31 января - 1 февраля 2002 г. - СПб. - 2002. - С. 35.
3. Кашуро В.А. Динамика изменений концентраций сульфгвдрильных групп тканевых белков в эритроцитах и тканях печени лабораторных животных при отравлениях циклофосфаном / В.А. Кашуро, С.А. Куценко, С.И. Глушков и др. // Тезисы докладов Всероссийской научной конференции, посвященной 110-летию кафедры клинической биохимии и лабораторной диагностики Военно-медицинской академии и 100-летию со дня рождения академика АМН СССР Г.Е. Владимирова, 31 января - 1 февраля 2002 г. - СПб. - 2002. - С. 36.
4. Кашуро В.А. Динамика концентрации восстановленного глутатиона в эритроцитах и тканях печени лабораторных животных при отравлениях циклофосфаном / В.А. Кашуро, А.И. Карпищенко, С.А. Куценко и др. // Тезисы докладов Всероссийской научной конференции, посвященной 110-летию кафедры клинической биохимии и лабораторной диагностики Военно-медицинской академии и 100-летию со дня рождения академика АМН СССР Г.Е. Владимирова, 31 января -1 февраля 2002 г. - СПб. - 2002. - С. 34-35.
5. Смирнов В.В. Процессы перекисного окисления липидов в тканях щитовидной железы при узловом эутиреоидном зобе и раке щитовидной железы /В.В. Смирнов, А.И. Карпищенко, Н.Е. Кушлинский и др. // Тезисы докладов Всероссийской научной конференции, посвященной 110-летию кафедры клинической биохимии и лабораторной диагностики Военно-медицинской академии и 100-летию со дня рождения академика АМН СССР Г.Е. Владимирова, 31 января - 1 февраля 2002 г. - СПб. - 2002. - С. 81.
6. Смирнов В.В. Глутатион-зависимая антиоксидантная система в тканях щитовидной железы при узловом эутиреоидном зобе и раке щитовидной железы СПб / В.В. Смирнов, А.И. Карпищенко, Н.Е. Кушлинский и др. // Тезисы докладов Всероссийской научной конференции, посвященной 110-летито кафедры клинической биохимии и лабораторной диагностики Военно-
медицинской академии и 100-летию со дня рождения академика АМН СССР Г.Е. Владимирова, 31 января - 1 февраля 2002 г. - СПб. - 2002. - С. 81-82.
7. Аксенов В.В. Состояние системы глутатиона в тканях сердца при острых отравлениях доксорубицином / В.В. Аксенов, A.A. Новик, С.И. Глушков и др. // Тезисы научных докладов П1 съезда биохимического общества, 26 июня - 1 июля 2002 г. - СПб. - 2002. - С. 132.
8. Кашуро В.А. Состояние системы глутагтиона в тканях лабораторных животных при острых отравлениях циклофосфаном / В.А Кашуро, А.И. Карпшценко, С.А.Куценко и др. // Тезисы научных докладов III съезда биохимического общества, 26 июня - 1 июля 2002 г. - СПб. - 2002. - С. 171172.
9. Смирнов В.В. Определение показателей глутатион-зависимой антиоксидантной системы в тканях щитовидной железы при узловом эутиреоидном зобе и раке щитовидной железы / В.В. Смирнов, В.В. А.И. Карпшценко, Н.Е. Кушлинский и др. // Клиническая лабораторная диагностика. - 2002. - № 10. - С. 8-9.
10. Глушков С.И. Нарушения состояния системы глутатиона как основа реализации цитотоксических эффектов действия ксенобиотиков / С.И. Глушков, . С.А. Куценко, А.И. Карпшценко и др. // Медико-гигиенические аспекты обеспечения работ с особо опасными химическими веществами /Труды научно-практической конференции, посвященной 40-летию НИИГПЭЧ. - СПб. - 2002. - С. 228-229.
11 . Кашуро В.А. Экспериментальная оценка возможности использования показателей системы глутатиона в лабораторной диагностике отравлений ипри-тами / В.А. Кашуро, С.И. Глушков, В.В. Аксенов и др. // Медико-гигиенические аспекты обеспечения работ с особо опасными химическими веществами /Труды научно-практической конференции, посвященной 40-летгао НИИГПЭЧ. - СПб. - 2002. - С. 229-230.
12. Кашуро В.А. Изучение влияния препарата «Трисан» на систему глутатиона при остром отравлении циклофосфаном / В.А. Кашуро, В.В. Пастушенков, А.И. Карпищенко и др. // Материалы Всеармейской Научно-практической конференции «Терапевтическая помощь в экстремальных ситуациях». - СПб.-2003.-С. 227-228.
13. Глушков С.И. Влияние сукцинатсодержащего препарата Ремаксол на состояние цитопротекторной системы глутатиона в тканях печени при острых отравлениях циклофосфаном / С.И. Глушков, В.А. Кашуро, С.А.Куценко и др. // Тезисы докладов X Российского национального конгресса «Человек и лекарство», 7-11 апреля 2003 г. - М. - 2003. - С. 613.
14. Глушков С.И. Влияние сукцинатсо держащего препарата Ремаксол на состояние цитопротекторной системы глутатиона в тканях почек при острых отравлениях циклофосфаном / С.И. Глушков, В.А. Кашуро, С.А. Куценко и др. // Тезисы докладов X Российского национального конгресса «Человек и лекарство», 7-11 апреля 2003 г. -М. -2003. - С. 613-614.
15. Глушков С.И.. Состояние системы глутатиона в тканях печени крыс при острых отравлениях циклофосфаном / С.И. Глушков, С.А. Куценко, В.А Кашуро и др. // Токсикологический вестник. - 2003. - №.4. - С. 25-30.
16. Глушков С.И. Изучение системы глутатиона при острых отравлениях циклофосфаном и диалкил-производным фосфорилтиохолина - перспективный метод оценки состояния здоровья персонала объектов уничтожения химического оружия / С.И. Глушков, С.А. Куценко, В.А. Кашуро и др. // «Медицинские и биологические проблемы, связанные с уничтожением химического оружия». Тезисы докладов международного симпозиума. Волгоград 26-28 августа 2003 года. - Волгоград. - 2003. - С. 205-206.
17. Глушков С.И. Фармакологическая коррекция системы глутатиона -перспективное направление профилактики и терапии острых и повторных отравлений нейро- и цитотоксикантами / С.И. Глушков, В.А. Кашуро, С.А. Куценко и др. II «Медицинские и биологические проблемы, связанные с
уничтожением химического оружия». Тезисы докладов международного симпозиума. Волгоград 26-28 августа 2003 года. - Волгоград. - 2003. - С. 215.
18. Глушков С.И. Система глутатиона как перспективное направление изучения цитотоксических эффектов действия ксенобиотиков / С.И. Глушков, С.А. Куценко, Т.М. Новикова и др. // Тезисы докладов 2-го съезда токсикологов России. - М: Российский регистр потенциально опасных химических и биологических веществ Минздрава России, 2003. - С. 77-78.
19. Glushkov S.I. Research into glutathione system at acute intoxications by cyclophosphane and phosphorylthiocholine derivatives. A promising method for health state evaluathion of personnel of chemical weapon destruction facilities / S. A. Kutsenko, S.I. Glushkov, V.A. Kashuro et al. II Medical and Biological Aspects of Chemical Weapons Stockpile Demilitarization. Internatonal Symposium Proceedings. Volgograd, August 26-28,2003. - Volgograd. - P. 58-59.
20. Glushkov S.I. Pharmacological correction of glutathione system as a promising aim of prophylaxis and therapy of acute and repeated poisonings by neuro- and cytotoxicants I S.I. Glushkov, V.A. Kashuro, S.A. Kutsenko et al. // Medical and Biological Aspects of Chemical Weapons Stockpile Demilitarization. Internatonal Symposium Proceedings. Volgograd, August 26-28,2003. - Volgograd. - P. 67.
21. Кашуро В.А. Показатели перекисного окисления липидов при острых отравлениях циклофосфаном / В.А. Кашуро, С.И. Глушков, В.В. Смирнов // Медико-биологические проблемы противолучевой и противохимической защиты. - СПб., 2004. - С. 100-101.
22. Глушков С.И.. Исследование эффективности антиоксидантных препаратов в качестве средств медицинской защиты при отравлениях апкилирующими агентами / С.И. Глушков, В.А Кашуро, В.В.Смирнов // Медико-биологические проблемы противолучевой и противохимической защиты. - СПб., 2004. - С. 351-352.
23. Глушков С.И.. Синтетические производные глутатиона - новый подход к поиску антидотов резорбтивного действия ипритов/ С.И. Глушков, В.А
Кашуро, Т.М. Новикова и др. // Медико-биологические проблемы противолучевой и противохимической защиты. - СПб., 2004. - С. 350-351.
24. Глушков С.И. Влия1ше препарата «Мексидол» на содержание в тканях сердца лабораторных животных малонового диальдегида и глутатиона при повторной интоксикации доксорубицином в дозе 0,3 LD5o/ С.И. Глушков, С.А. Куценко, В.В. Аксенов и др. // Медико-биологические проблемы противолучевой и противохимической защиты. - СПб., 2004. - С. 358-359.
25. Глушков С.И. Коррекция цитотоксических эффектов действия циклофосфана и состояния системы глутатиона / С.И. Глушков, В.А. Кашуро, С.А. Куценко и др. // Вестник СПГМА им. И.И. Мечникова. - 2004. - №3. - С. 62- 67.
26. Glushkov S.I. The alteration in the glutathione system by the influence of cyclophosphamide and the drugs of pharmacological correction / A.I. Karpischenko, S.I. Glushkov, V.A. Kashuro et al. // XXXVI World Congress on Military Medicine. - St. Petersburg, 2005. - P. 224.
27. Кашуро B.A. Состояние системы глутатиона и перекисного окисления липидов в тканях печени и почек при острых отравлениях циклофосфаном / В.А. Кашуро, Карпшценко А.И., Глушков С.И. и др. // Нефрология,- 2006-№2,-С. 81-85.
28. Кашуро В.А. Состояние системы глутатиона в тканях паренхиматозных органов лабораторных животных при повторном введении циклофосфана / В.А. Кашуро, С.й. Глушков, А.И. Карпшценко, Т.М. Новикова // Нефрология,-2006-№4,-С. 82-86.
29. Кашуро В.А. Гепаторпротекторная активность мексидола при острых интоксикациях циклофосфаном / В.А. Кашуро, С.И. Глушков, А.И. Карпшценко и др.' // Вестник СПГМА им. И.И. Мечникова. - 2007. - №1 (8). - С. 136- 139.
30. Кашуро В.А. Активность глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы в тканях экспериментальных животных при повторном введении циклофосфана / В.А. Кашуро, JI.B. Минаева, С.И. Глушков // Актуальные вопросы повышения
работоспособности и восстановления здоровья военнослужащих и гражданского населения в условиях чрезвычайных ситуаций: Материалы Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 40-летию НИО обитаемости и профессионального отбора ВМедА. - СПб, 2007. - С. 205206.
31. Кашуро В.А. Активность глутатионпероксидазы в тканях экспериментальных животных при повторном введении цшслофосфана / В.А. Кашуро, JI.B. Минаева, С.И. Глушков И Актуальные вопросы повышения работоспособности и восстановления здоровья военнослужащих и гражданского населения в условиях чрезвычайных ситуаций: Материалы Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 40-летию НИО обитаемости и профессионального отбора ВМедА. - СПб, 2007. - С. 205206.
32. Кашуро В.А. Активность глутатионредуктазы в тканях экспериментальных животных при повторных введениях цикйофосфана / В.А. Кашуро, JI.B. Минаева, С.И. Глушков и др. // Актуальные проблемы химической безопасности в Российской Федерации. - СПб, 2007. - С. 246.
33. Кашуро В.А. Изменения концентрации малонового диальдегида в тканях экспериментальных животных при повторных введениях цшслофосфана / В.А. Кашуро, JI.B. Минаева, С.И. Глушков и др. // Актуальные проблемы химической безопасности в Российской Федерации. - СПб, 2007. - С. 247.
34. Кашуро В.А. Изучение влияния препарата трисан на систему глугатиона при повторных введениях цшслофосфана / В.А. Кашуро, B.JI. Пастушенков, JI.B. Минаева и др. II Проблемы диагностики и коррекции эндоэкологического статуса в современных условиях: 3-я международная научная конференция Донозология - 2007. - СПб,2007. - С. 97.
35. Кашуро В.А. Изменение концентрации восстановленного глутатиона в эритроцитах при химиотерапии / В.А.Кашуро, К.А. Федоров, С.И. Глушков, и др. // Сборник трудов совместного заседания секции №4 «Токсикология,
гигиена, профпатология, индикация, дегазация при работе с высокотокстшши веществами» Проблемной комиссии ФМБА России, Санкт-Петербургского отделения Всероссийского общества токсикологов и Ученого Совета ФГУП «НИИГПЭЧ» ФМБА России. 16 ноября 2007 г. - СПб. -2007. -С.252- 253.
36. Шилов Ю.В. Токсические эффекты циклофосфана и подходы к их фармакологической коррекции / Ю.В. Шилов, В.А. Кашуро, JI.B. Минаева и др. // Вестник Российской Военно-медицинской академии. - 2008. - №3 (23). - С. 68- 72.
37. Кашуро В.А Токсикомодифицирующее действие глутоксима при применении циклофосфана / В.А. Кашуро, В.Г. Антонов, Л.В. Минаева, С.И. Глушков // Актуальные проблемы лабораторной диагностики: Всероссийская научно-практическая конференция, посвященная 115-летию кафедры клинической биохимии и лабораторной диагностики Военно-медицинской академии, Санкт-Петербург, 27-28 марта 2008 г. - СПб. - 2008. - С. 29.
38. Лютов В.В. Хемоггротективный эффект N-ацетилцистеина против циклофосфан-индуцированного повреждения тканей почек экспериментальных животных / В.В. Лютов, В.А. Кашуро, В.В. Аксенов II Вопросы нефрологии в практике терапевта и эндокринолога. - СПб., 2008. - С. 52.
39. Гранин P.A. Активность про- и аптиоксидантных процессов в культурах кератиноцитов больных псориазом / P.A. Грашин, В.В. Барбинов, В.Г. Антонов и др. // Вестник Российской Военно-медицинской академии. - 2008. -№4(24).-С. 115-125.
40. Кашуро В.А. Изменение концентрации малонового диальдегида в тканях экспериментальных животных с перевитой лимфосаркомой Плиса в условиях повторного введения циклофосфана / В.А. Кашуро // Вестник Российской Военно-медицинской академии. - 2009. - №1 (25). - С. 481- 482.
Подписано в печать 29,09.09 Формат 60x84/16
Объем 2 п.л. Тираж 100 экз. Заказ № 755
Типография BMA им. С.М. Кирова 194044, СПб., ул. Академика Лебедева, 6
Оглавление диссертации Кашуро, Вадим Анатольевич :: 2009 :: Санкт-Петербург
СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ.
ВВЕДЕНИЕ.
Глава 1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
1.1 Особенности метаболизма циклофосфана.
1.2 Особенности метаболизма доксорубицина.
1.3 Побочное действие ЦФ и ДР.
1.4 Биологическое значение системы глутатиона.
1.5 Роль системы глутатиона при применении ЦФ и ДР.
Глава 2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.
2.1 Выбор и содержание животных.
2.2. Моделирование однократной и повторной интоксикации циклофосфаном и её экспериментальная терапия у здоровых лабораторных животных.
2.3 Моделирование повторной интоксикации циклофосфаном и её экспериментальная терапия у лабораторных животных с лимфосаркомой Плисса.
2.4 Моделирование однократной и повторной интоксикации доксорубицином и её экспериментальная терапия у здоровых лабораторных животных.
2.5 Методика проведения клинических исследований.
2.6 Характеристика использованных фармакологических препаратов.
2.7 Получение образцов тканей для исследований.
2.8 Определение показателей системы глутатиона и перекисного окисления липидов в тканях лабораторных животных и в эритроцитах человека.
2.9 Определение маркеров гепато- и нефротоксичности в сыворотке крови экспериментальных животных и человека.
2.10 Гистологическое исследование тканей печени и почек экспериментальных животных.
2.11 Статистическая обработка результатов.
Глава 3 СОСТОЯНИЕ СИСТЕМЫ ГЛУТАТИОНА В ТКАНЯХ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ ПРИ ОДНОКРАТНЫХ И ПОВТОРНЫХ ВВЕДЕНИЯХ ЦИКЛОФОСФАНА И ДОКСОРУБИЦИНА.
3.1 Состояние системы глутатиона при однократном введении ЦФ
3.2 Состояние системы глутатиона при повторном введении ЦФ.
3.3 Состояние системы глутатиона при однократном введении ДР.
3.4 Состояние системы глутатиона повторном введении ДР.
Глава 4 ВЛИЯНИЕ ФАРМАКОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ НА СОСТОЯНИЕ СИСТЕМЫ ГЛУТАТИОНА В ТКАНЯХ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ.
4.1 Влияние средств фармакологической коррекции на состояние системы глутатиона при однократном введении циклофосфана.
4.2 Влияние средств фармакологической коррекции на состояние системы глутатиона при повторном введении циклофосфана.
4.3 Влияние средств фармакологической коррекции на состояние системы глутатиона при однократном введении доксорубицина.
4.4 Влияние препаратов фармакологической коррекции на состояние системы глутатиона при повторном введении доксорубицина.
Глава 5 СОСТОЯНИЕ СИСТЕМЫ ГЛУТАТИОНА В ТКАНЯХ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ С ЛИМФОСАРКОМОЙ ПЛИССА ПРИ ПОВТОРНОМ ВВЕДЕНИИ ЦИКЛОФОСФАНА И СРЕДСТВ ФАРМАКОЛОГИЧЕСКОЙ КОРРЕКЦИИ.
5.1 Концентрация восстановленного глутатиона в тканях экспериментальных животных с лимфосаркомой Плисса.
5.2 Концентрация сульфгидрильных групп белков в тканях экспериментальных животных с лимфосаркомой Плисса.
5.3 Активность глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы в тканях экспериментальных животных с лимфосаркомой Плисса.
5.4 Активность глутатионредуктазы в тканях экспериментальных животных с лимфосаркомой Плисса.
5.5 Активность глутатионпероксидазы в тканях экспериментальных животных с лимфосаркомой Плисса.
5.6 Активность глутатион-8-трансферазы в тканях экспериментальных животных с лимфосаркомой Плисса.
5.7 Активность каталазы в тканях экспериментальных животных с лимфосаркомой Плисса.
5.8 Концентрация продуктов перекисного окисления липидов в тканях экспериментальных животных с лимфосаркомой Плисса.
5.9 Изменение лабораторных показателей гепато- и нефротоксичности экспериментальных животных с лимфосаркомой Плисса.
5.10 Морфологические изменения в тканях экспериментальных животных с лимфосаркомой Плисса.
5.11 Использование показателей системы глутатиона в эритроцитах животных с лимфосаркомой Плисса при повторном введении циклофосфана с диагностическими целями.
Глава 6 СОСТОЯНИЕ СИСТЕМЫ ГЛУТАТИОНА В ЭРИТРОЦИТАХ ПАЦИЕНТОВ ПРИ ПОЛИХИМИОТЕРАПИИ РАКА МОЛОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ.
6.1 Токсические проявления полихимиотерапии.
6.2 Показатели системы глутатиона в эритроцитах больных раком молочной железы при полихимиотерапии.
6.3 Изменение лабораторных показателей гепато- и нефротоксичности в эритроцитах больных РМЖ при полихимиотерапии.
6.4 Использование показателей системы глутатиона в эритроцитах больных РМЖ при полихимиотерапии с диагностическими целями.
Введение диссертации по теме "Клиническая лабораторная диагностика", Кашуро, Вадим Анатольевич, автореферат
Актуальность. Химиотерапия является одним из перспективных направлений в онкологии, значение которой с каждым годом возрастает. Решающую роль в эффективности противоопухолевого действия химиопрепа-рата играет его доза. Однако, увеличение дозы в большинстве случаев приводит к развитию побочных реакций, обусловленных токсическим повреждением нормальных органов и тканей [2, 25]. Побочное действие цитостати-ков - ахиллесова пята химиотерапии опухолевых заболеваний. По данным некоторых авторов, почти в 25% случаев лечение цитостатиками приходится прекращать из-за развития выраженных побочных эффектов [27, 57, 165]. В связи с этим поиск адекватной противоопухолевой терапии заслуживает пристального внимания и требует решения ряда проблем, связанных, прежде всего, с ранней диагностикой и коррекцией побочных токсических эффектов химиотерапевтических препаратов [8].
Основной причиной развития токсических эффектов противоопухолевой терапии является общность мишеней цитостатической терапии в опухоли и в нормальных органах и тканях [42, 49]. Развивающаяся при применении цито-статиков токсичность является фактически продолжением их терапевтической активности и характеризует их низкий терапевтический индекс. В этой связи, побочное действие цитостатиков подобно токсическому поражению, реализация которого происходит через различные механизмы повреждения клетки [162]. К этим механизмам относятся повреждения генетического аппарата клетки; активация процессов свободнорадикального окисления; повреждения клеточных мембран; нарушения процессов синтеза белка и клеточного деления; повреждающее действие избытка ионов Са в клетке; нарушения энергетического обмена [9, 12, 30, 47, 93].
Тем не менее, патогенез побочного действия противоопухолевых препаратов, несмотря на кажущуюся полноту, изучен фрагментарно. Успехи последних десятилетий, достигнутые в изучении патогенеза опухолевых заболеваний и их лечения, открыли новые грани токсичности, обусловленные дизрегуляторными изменениями в клетке, а не прямым поражением цито-статиком биологически значимых структур. В частности, дизрегуляторные расстройства связаны с нарушением регуляции тиол-дисульфидного статуса, потерей чувствительности рецепторов к специфичным лигандам, развитием общей и метаболической иммунодепрессии [5,6].
Важнейшим условием нормальной жизнедеятельности клеток является поддержание определенного редокс-состояния в цитоплазме, поскольку оно играет существенную роль в таких процессах, как синтез ДНК, экспрессия генов, ферментативная активность и др. [36, 85]. Изменения редокс-состояния внутриклеточного содержимого и отдельных молекул, являющиеся следствием стрессовых воздействий или результатом активности самих клеток, вовлечены в регуляцию многих клеточных процессов, в том числе и устойчивости к токсичности. Физиологически неадекватная редокс-регуляция способна инициировать комплекс изменений аналогичных прямому действию токсиканта на различные клеточные структуры.
Условия жизнедеятельности малигнизированных клеток первичного опухолевого узла сопряжены со сдерживающим воздействием ближайшего клеточного микроокружения, негативным действием эффекторных механизмов и факторов иммунной системы и ограниченным поступлением питательных веществ. Поэтому высокая митотическая активность одних раковых клеток находится в равновесии со скоростью апоптотической гибели других раковых клеток [5, 6]. Сочетание этих условий приводит к формированию клона малигнизированных клеток, обладающих такими биологическими характеристиками, которые способствуют преодолению воздействия эффекторов врождённого противоопухолевого иммунитета, инициируют молекулярные механизмы такого противодействия, а в последующем вырабатывают многогранную систему устойчивости, известную как множественная лекарственная резистентность (МЛР).
МЛР тесно связана с редокс-статусом малигнизированных клеток. Обмен опухолевых клеток характеризуется преобладанием реакций восстановления над реакциями окисления [5,6]. Это особенно наглядно проявляется, если сопоставлять процессы обмена в опухолевых и нормальных клетках. Опухолевые клетки имеют более высокие уровни восстановленного глута-тиона, повышенную активность ферментов его образования, а также более активно используют данное химическое соединение для восстановительных реакций в сравнении с нормоцитами. Нормальные клетки не обладают такими возможностями противостоять различным негативным воздействиям.
Экспериментально и клинически доказано, что в токсическом действии противоопухолевых средств одна из ведущих ролей принадлежит повышенной наработке АФК и реакциям СРО, приводящим к оксидативной модификации нуклеиновых кислот, белков и липидов [4, 10, 68, 89, 234]. Регуляцию изменяющейся при этом в окислительную сторону внутриклеточной среды осуществляют различные редокс-буферы, важнейшим из которых является система глутатиона, участвующая в утилизации АФК и перекисных соединений. Таким образом, внутриклеточный уровень восстановленного глутатиона и ферментов его обмена являются маркерами активности процессов СРО и, следовательно, устойчивости клетки к токсическим повреждениям. В целостном организме количество опухолевых клеток не превышает 1% [5,6]. Их вклад в системные показатели редокс-обмена невелик. Поэтому системные показатели отражают состояние редокс-обмена прежде всего в нормальных клетках. Учитывая способность цитостатиков изменять интенсивность СРО в сторону окислительного стресса в нормальных клетках, изменения системных показателей редокс-баланса в крови отражает его состояние именно в нормоцитах.
Редокс-изменения предшествуют морфологическим и структурным нарушениям в нормальных клетках (гепатоцитах, кардиомиоцитах, энтеро-цитах и др.) В этой связи, отклонения системных маркеров редокс-обмена от нормальных значений отражают текущее состояние и направление возможного изменения редокс-обмена. Эритроциты являются частью нормального пула клеток, и закономерности нарушения редокс-баланса в эритроцитах идут параллельно аналогичным изменениям во всех других нормальных клетках. Эритроциты играют ключевую роль в межорганном и межтканевом обмене глутатиона и, выполняя, таким образом, роль интегративной системы, отражают состояние общего редокс-статуса организма, в том числе и состояние редокс-статуса при действии цитостатиков [55, 63]. В этой связи, изменения редокс-обмена в эритроцитах отражают в той или иной степени его изменения в других клетках. Однако диагностические возможности определения показателей системы глутатиона в эритроцитах для оценки побочного действия противоопухолевых препаратов практически не изучены.
В развитии системы диагностики токсических поражений основной упор делается на маркеры цитолитического синдрома внутренних органов, определяемых в сыворотке крови. Однако повышение активности креатин-киназы отмечается не только при поражении сердечной мышцы, но и при опухолях предстательной железы, мочевого пузыря, желудочно-кишечного тракта [92]. И хотя среди пациентов кардиологического профиля этот тест имеет чувствительность 97% и специфичность 67% для поражения сердечной мышцы, повышение активности креатинкиназы свидетельствует об остром повреждении и гибели кардиомиоцитов. Цитостатики даже в высоких кумулятивных дозах не вызывают острого повреждения структуры кардиомиоцитов, поэтому уровень сердечного тропонина Т и активность креатинкиназы МВ не изменяются при развитии токсической кардиомиопатии [28]. Трансаминазы распределены во всех тканях тела. Повышение активности аланинаминотрансферазы наблюдается при поражениях печени, а аспарта-таминотрансферазы - сердца. Тем не менее, при токсических поражениях печени так же, как и при заболеваниях сердца преобладает повышение активности аспартатаминотрансферазы [92].
Таким образом, изучение показателей обмена глутатиона, играющего важную роль в поддержании нормальной жизнедеятельности клетки и организма в целом и обеспечивающего многоуровневую и эффективную защиту тканей от повреждающего действия противоопухолевых препаратов, представляется актуальным для создания новых подходов ранней диагностики токсического действия средств химиотерапии и возможности их коррекции.
Целью исследования явилось определение возможности использования показателей обмена глутатиона в эритроцитах в качестве лабораторных тестов для прогнозирования и диагностики развития побочных эффектов при токсическом действии средств химиотерапии и эффективности их коррекции средствами фармакотерапии.
Для достижения поставленной цели предстояло решить следующие задачи исследования:
- определить особенности изменений показателей обмена глутатиона и перекисного окисления липидов в различных органах и в эритроцитах белых беспородных крыс при однократном и повторном введении ЦФ в различных дозах;
- определить особенности изменений показателей обмена глутатиона и перекисного окисления липидов в различных органах и в эритроцитах белых беспородных крыс при однократном и повторном введении ДР в различных дозах;
-определить особенности изменений показателей обмена глутатиона и перекисного окисления липидов в различных органах и в эритроцитах белых беспородных крыс с лимфосаркомой Плисса при повторном введении ЦФ;
- исследовать влияние на показатели обмена глутатиона и перекисного окисления липидов в различных органах и в эритроцитах лабораторных животных лекарственных средств различных фармакологических групп (анти-оксиданты, антигипоксанты, производные глутатиона и предшественники его синтеза), используемых для защиты клеток от повреждающего действия цитостатиков;
- определить особенности изменений показателей системы глутатиона и перекисного окисления липидов в эритроцитах пациентов, получающих средства химиотерапии (включая ЦФ и ДР);
- оценить информативность показателей системы глутатиона в эритроцитах для диагностики тяжести цитотоксического повреждения внутренних органов при применении средств химиотерапии (ЦФ, ДР) и эффективности средств фармакологической коррекции.
Положения, выносимые на защиту:
- патогенетическая роль системы глутатиона в реализации цитотокси-ческих эффектов противоопухолевых средств подтверждается экспериментальными данными о нарушениях обмена глутатиона в органах мишенях (ДР - сердечная мышца, ЦФ — печень), их усилении в результате кумуляции ци-тостатиков и частичной коррекции при использовании цитопротекторных препаратов;
- исследование обмена глутатиона в эритроцитах и органах мишенях позволяет оценить выраженность цитопротекторных эффектов фармакологических препаратов, а поиск новых средств, действие которых связано с нормализацией обмена глутатиона, является современным направлением фармакологической защиты тканей от побочных эффектов кумулятивного действия ЦФ и ДР;
- определение показателей обмена глутатиона в эритроцитах пациентов, получающих полихимиотерапию, является патогенетически обоснованным для их применения в клинической практике при решении вопросов оценки риска развития побочных эффектов действия ДР и ЦФ и их тяжести, а также для скрининговой оценки цитопротекторных свойств препаратов фармакологической коррекции.
Научная новизна. Патогенетически обоснована возможность использования ряда показателей обмена глутатиона и процессов ПОЛ в эритроцитах пациентов, получающих полихимиотерапию, для оценки тяжести побочного действия ДР и ЦФ. Впервые проведена комплексная оценка показателей системы глутатиона и процессов перекисного окисления липидов в тканях печени, почек, сердца, головного мозга и в эритроцитах лабораторных животных (здоровых и с лимфосаркомой Плисса) при однократном и повторном введении ЦФ и ДР в различных дозах. Наряду с определением содержания восстановленного глутатиона, свободных сульфгидрильных групп белков, продуктов перекисного окисления липидов и оценки динамики их сдвигов, исследованы патобиохимические изменения, связанные с нарушением активности ферментов обмена глутатиона. Проведен анализ причин, вызывающих нарушения обмена глутатиона и активацию процессов перекисного окисления липидов в исследуемых тканях и органах. Установлено, что в условиях курсового применения исследуемых цитостатиков динамика изменений ряда показателей системы глутатиона в эритроцитах (концентрация ВГ, СГ, МДА и активность Г-6-ФДГ, ГР, ГП) отражает состояние его обмена в повреждаемых тканях внутренних органов (печень, сердце, почки) и эффективность проводимой цитопротекторной терапии. Для оценки риска развития и тяжести цитотоксического поражения тканей внутренних органов, эффективности применяемых препаратов цитопротекции в клинической практике предложено проведение динамического исследования показателей системы глутатиона в эритроцитах пациентов перед каждым новым циклом полихимиотерапии и на 7-е сутки после введения ДР и ЦФ.
Практическое значение работы заключается в том, что полученные в ходе диссертационного исследования данные о динамике изменений показателей системы глутатиона в органах и тканях лабораторных животных и в эритроцитах человека при применении ЦФ и ДР позволяют сформулировать представление о патогенетических механизмах цитотоксического действия исследуемых цитостатиков, связанных с повреждениями указанной биохимической системы. Полученные в ходе экспериментального исследования данные о динамике состояния показателей системы глутатиона и процессов ПОЛ в эритроцитах могут быть использованы в качестве лабораторных тестов оценки тяжести поражения и прогноза исхода интоксикации. Выявленное патогенетическое значение нарушений системы глутатиона может служить основанием для поиска новых эффективных лекарственных средств, обладающих дитопротекторными свойствами, для профилактики и лечения побочных эффектов применения исследуемых препаратов.
Реализация результатов исследования. Рекомендации, разработанные на основании полученных в ходе диссертационного исследования данных, используются в научной работе и учебном процессе на кафедрах клинической биохимии и лабораторной диагностики, патологической физиологии, военной токсикологии и медицинской защиты Военно-медицинской академии. Диссертационное исследование выполнено в рамках плановых НИР шифр «Циклофосфан», «Цитотоксичность».
Апробация работы. Результаты работы доложены на Всеармейской научно-практической конференции «Терапевтическая помощь в экстремальных ситуациях» (Санкт-Петербург, 2003), X Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (Москва, 2003), Международном симпозиуме «Медицинские и биологические проблемы, связанные с уничтожением химического оружия» (Волгоград, 2003), на XXXVI World Congress on Military Medicine (Санкт-Петербург, 2005), Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 40-летию НИО обитаемости и профессионального отбора ВМедА (Санкт-Петербург, 2007), на Всероссийской научно-практической конференции, посвященной, 45-летию ФГУП «НИИГПЭЧ» ФМБА России (Санкт-Петербург, 2007), на 3-й Международной научной конференции «Донозология-2007» (Санкт-Петербург, 2007), на Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные проблемы лабораторной диагностики» (Санкт-Петербург, 2008), на Российской научной конференции «Медико-биологические проблемы токсикологии и радиологии» (Санкт-Петербург, 2008), на Российской и Всеармейской научно-практической конференции «Вопросы нефрологии в практике терапевта и эндокринолога» (Санкт-Петербург, 2008).
Публикации. По теме научно-исследовательской работы опубликовано 40 печатных работ, из них в рекомендуемых ВАК изданиях - 7.
Заключение диссертационного исследования на тему "Патогенетическое и диагностическое значение системы глутатиона в оценке цитотоксического действия противоопухолевых препаратов"
271 ВЫВОДЫ
1. Изучение системы глутатиона в условиях эксперимента позволило установить, что применение доксорубицина приводит к наиболее выраженным ее нарушениям в тканях сердца, циклофосфана - в тканях печени. Данные изменения указывают на наличие взаимосвязи между нарушениями обмена глутатиона и реализацией цитотоксических эффектов исследуемых противоопухолевых препаратов.
2. Нарастание выраженных морфологических признаков токсического повреждения ткани печени при повторном введении ЦФ и миокарда — при повторном введении ДР совпадает с динамикой изменений показателей системы глутатиона в результате кумулятивных эффектов цитостатиков.
3. Изменения таких показателей обмена глутатиона при повторном введении ЦФ, как активность. Г-6-ФДГ, ГР, содержание ДК, МДА происходили в более ранние сроки (3 - 5-е сутки) и предшествовали появлению морфологических признаков повреждения печени1 (5 - 7-е сутки), а также биохимических показателей цитолиза печени - АЛТ, АСТ, билирубин (7 -10-е сутки).
4. Цитопротекторные препараты, действие которых связано с нормализацией обмена глутатиона (повышение пула ВГ за счет введения экзогенного глутатиона или предшественников его синтеза (АЦЦ, изопропиловый эфир глутатиона); уменьшением процессов СРО за счет антиоксидантов (мексидол, ремаксол) и комплексообразователей (кардиоксан); стимуляцией энергетических процессов антигипоксантами (цитофлавин, трисан); усилением регуляторных процессов (глутоксим)), могут быть использованы в качестве средств фармакологической защиты тканей паренхиматозных органов от побочных эффектов кумулятивного действия ЦФ и ДР.
5. В условиях курсового применения ЦФ и ДР динамика изменений ряда показателей системы, глутатиона в эритроцитах (концентрация ВГ, СГ,
МДА и активность Г-6-ФДГ, ГР, ГП) отражает состояние его обмена в повреждаемых тканях внутренних органов (печень, сердце, почки) и эффективность проводимой цитопротекторной терапии.
6. Определение концентрации ВГ, СГ, МДА и активности Г-6-ФДГ, ГР, ГП в эритроцитах пациентов, получающих полихимиотерапию, является патогенетически обоснованным для их применения в качестве лабораторных тестов оценки тяжести побочного действия ДР и ЦФ.
7. Для оценки риска развития и тяжести цитотоксического поражения тканей внутренних органов, эффективности применяемых препаратов цитопротекции в клинической практике необходимо проведение динамического исследования показателей системы глутатиона в эритроцитах пациентов перед каждым новым циклом полихимиотерапии и на 7-е сутки после введения ДР и ЦФ.
8. Совпадение данных клинико-инструментального исследования больных раком молочной железы, пролеченных по схеме CAF + глутоксим, улучшение их состояния по шкале Карновского с нормализацией показателей обмена глутатиона в эритроцитах позволяет использовать их для скрининговой оценки цитопротекторных свойств как общеизвестных, так и новых перспективных препаратов фармакологической коррекции.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. В схему комплексного клинико-инструментального обследования больных РМЖ, проходящих курс полихимиотерапии, для оценки степени тяжести цитотоксического поражения паренхиматозных органов и сердечной мышцы рекомендуется включить определение в эритроцитах таких показателей системы глутатиона, как активность Г-6-ФДГ, ГР, ГП, концентрации ВГ, МДА.
2. В схему комплексной терапии больных РМЖ с целью предотвращения побочных цитотоксических эффектов действия цитостатиков целесообразно включение фармакологических препаратов, обладающих антиоксидантными и антигипоксантными свойствами (например, мексидол), а также препаратов-предшественников синтеза глутатиона - ацетилцистеина и препаратов окисленного глутатиона -глутоксима.
3. В протокол скрининговой оценки цитопротекторных свойств как общеизвестных, так и новых перспективных препаратов фармакологической коррекции рекомендуется включение динамического определения показателей обмена глутатиона в эритроцитах (активность Г-6-ФДГ, ГР, ГП, концентрация ВГ, МДА).
4. Полученные данные о патогенетическом и диагностическом значении системы глутатиона для оценки цитотоксического действия противоопухолевых препаратов рекомендуется использовать в процессе дополнительного образования врачей-специалистов в области клинической лабораторной диагностики, токсикологии, онкологии и др.
IIA
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2009 года, Кашуро, Вадим Анатольевич
1. Ажунова Т.А. Фитофармкоррекция лекарственных гепатопатий // Практическая фитотерапия 2004. - №3. - С. 17—20.
2. Аксенов В.В. Значение изменений состояния системы глутатиона в патогенезе кардиотоксического действия доксорубицина: Автореф. дис. . канд. мед. наук. СПб., 2004. - 22 с.
3. Алмазов В.А. и др. Роль гиперпероксидации липидов в нарушении структурной организации тромбоцитарных мембран // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1992. - Т. 116, №9. - С.265-267.
4. Альберт А. Избирательная токсичность. Пер. с англ. В 2 томах. — М.: Медицина, 1989.-432 с.
5. Антонов В.Г., Козлов В.К. Патогенез онкологических заболеваний: иммунные и биохимические феномены и механизмы. Внеклеточные и клеточные механизмы общей иммунодепрессии и иммунной резистентности //Цитокины и воспаление. -2004. -Т.З, №1. С.8-19. ä
6. Антонов В.Г., Козлов В.К. Патогенез онкологических заболеваний: иммунные и биохимические феномены и механизмы. Цитоплазматические и молекулярно-генетические механизмы иммунной толерантности // Цитокины и воспаление. -2004. Т.З, №2. - С.23-33.
7. Арчаков А.И., И.И.Карузина. Окисление чужеродных соединений и проблемы токсикологии // Вестн. АМН СССР. 1988. - №1. - С. 14-23.
8. Арчаков А.И. Постгеномные технологии и молекулярная медицина. // Вестн. РАН. 2004. - Т.74, № 5. - С.423 - 428.
9. Барабой В.А., Брехман И.И., Голотин В.Г. Перекисное окисление и стресс. СПб.: Наука, 1992. - 148 с.
10. Ю.Белоусова А.К. Молекулярные механизмы действия алкилирующих агентов и антибиотиков// Химиотерапия злокачественных опухолей. — М., 1977.-С. 61-117.
11. Блохин H.H., Переводчикова Н.И. Химиотерапия опухолевых заболеваний. М.: Медицина, 1984. - 304 с.
12. Блюгер А.Ф., Майоре А.Я. Исследование основных патогенетических линий поражения клеток печени в условиях клинической и экспериментальной патологии и подходы к регуляции и купированию этих процессов // Успехи гепатологии. Рига, 1982. - С. 12-34.
13. Боровская Т.Г. Гонадотропические эффекты противоопухолевых препаратов: Автореф. дис. доктора биол. Наук / НИИ фармакологии. Томск, 1999.-38 с.
14. Бредер В.В., Горбунова В.А., Бесова Н.С. Анемия при злокачественных опухолях // Современная онкология. -2003. -Т.4, №3. С. 134-136
15. Бурова Е.Б., Василенко К.П., Антонов В.Г., и др. Трансактивация рецептора эпидермального фактора роста окисленным глутатионом и его фармакологическим аналогом Глутоксим в клетках А431 // Докл. Акад. Наук. -2005. -Т.404, №1. С. 1-3.
16. Василенко A.M., Захарова JI.A. Цитокины в сочетанной регуляции боли и иммунитета // Усп. совр. биол. -2000. -Т. 120, №2. С. 174-189.
17. Ватутин Н.Т., Кетинг Е.В., Калинкина Н.В. и др. Гистопатологические изменения миокарда крыс при хроническом воздействии антрациклино-вых антибиотиков // Укр. ревматол. журн. 2001. - Прил. - С. 54.
18. Вебер Дж. Упорядоченная биохимическая программа экспрессии гена в раковых клетках. // Биохимия. -2001. Т.66, вып.8 - с.1438-1449.
19. Виноградов В.М., Урюпов Ю.Ю. Гипоксия как фармакологическая проблема //Фармакология и токсикология — 1985. — №4. — С.9—20.
20. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. - 252 с.
21. Владимиров Ю.А. Свободнорадикальное окисление липидов и физические свойства липидного слоя биологических мембран // Биофизика. -1987. Т.32, вып.5. - С.830-844.
22. Воронина Т.А., Смирнов Л.Д., Горяйнова И.И. Механизм действия и обоснование применения препарата мексидол в неврологии М.: Ин-т биохим. физики, 2002. — 15 с.
23. Гаврилова А.Р., Хмара Н.Ф. Определение активности глутатионперокси-дазы эритроцитов при насыщающих концентрациях субстратов // Лаб. дело. 1986.-№.12. - С.21-24.
24. Гаджиева С.Ш., Полосухина Е.Р., Николаева Т.Г. и др. Цитодифферен-цирующие агенты в онкологии // Вопросы онкологии. 2006. - Т.52, №3 -С.264-274.
25. Гаузе Г. Ф., Дудник Ю. В. Противоопухолевые антибиотики. — М.: Медицина, 1987.-175 с.
26. Ганцев Ш.Х. Онкология. М.: Мед. информ. агенство, 2004 - 487 с.
27. Гершанович М.Л. Осложнения при химио- и гормонотерапии злокачественных опухолей. М.: Медицина, 1982. - 223 с.
28. Гершанович М.Л. Кардиоксан: профилактика кардиотоксичности антра-циклинов. СПб., 2004. - 24 с.
29. Гипоксия. Адаптация, патогенез, клиника; Под. ред. Ю.Л.Шевченко. -СПб., 2000.-384 с.
30. Глушков С.И. Нарушения системы глутатиона и их роль в патогенезе острых интоксикаций ксенобиотиками с различными механизмами токсического действия: Автореф. дис. . доктора мед. наук. — СПб., 2006. — 41 с.
31. Голиков С.Н., Саноцкий И.В., Тиунов Л.А. Общие механизмы токсического действия. — Л.: Медицина, 1986. 279 с.
32. Гольдберг Е.Д., Дыгай A.M., Жданов В.В. Механизмы цитостатического повреждения и регенерации кроветворной системы // Вестн. РАМН. -1998. -№ 10.-С. 6.
33. Горбунов Н.В. Влияние структурной модификации мембранных белков на липид-белковое взаимодействие в мембранах эритроцитов человека // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1993. - Т. 117, №11. - С.488-491.
34. Гусев В.А., Панченко Л.Ф. Супероксидный радикал и супероксиддисму-таза в свободнорадикальной теории старения (обзор) // Вопр. мед. химии. 1982. - Т.28, №4. - С.8-25.
35. Дмитриев Л.Ф. Активность ключевых ферментов в мембранах микросом и митохондрий зависит от редокс реакций с участием липидных радикалов // Биол. мембраны. 2000. - Т. 17. - С. 519-529.
36. Довганский А.П., Курцер Б.М., Зорькина Т.А. Печень при экстремальных состояниях. Кишинев: Штиинца, 1989. - 134 с.
37. Дорошкевич H.A., Анцулевич С.Н., Виноградов В.В. Активация пере-кисного окисления липидов в коре надпочечников ионами металлов // Укр. биохим. журн. 1998. - №5. - С. 87-90.
38. Дубинина Е.Е., Шугалей И.В. Окислительная модификация белков // Успехи соврем, биологии. 1993. - Т. 113, вып.1. - С.71-81.
39. Еропкин М.Ю. Культуры клеток как модельная система исследования токсичности и скрининга цитопротекторных препаратов СПб., 2003. -239 с.
40. Жуков A.A., Жиронов Г.Ф. Механизм оксигеназных реакций: основные, промежуточные и побочные продукты оксигеназного цикла // Вестн. АМН СССР. 1988. -№.1. - С.33-43.
41. Жуков Н.В., Тюляндин С.А. Целевая терапия в лечении солидных опухолей: практика противоречит теории (обзор) // Биохимия. 2008. - Т. 73, №5.-С. 751-770
42. Западнюк И.П., Западнюк В.И., Захария Е.А., Западнюк Б.В. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте. Киев: Вища школа, 1983. - 385 с.
43. Зозуля Ю.А., Барабой В.А., Сутковой Д.А. Свободнорадикальное окисление и антиоксидантная защита при патологии головного мозга. М.: Знание-М, 2000. - 344 с.
44. Ивницкий Ю.Ю., Головко А.И., Софронов Г.А. Янтарная кислота в системе средств метаболической коррекции функционального состояния и резистентности организма. СПб.: Воен.-мед. акад., 1998. — 82 с.
45. Калинкина Н.В., Жданюк Ю.И., Кетинг Е.В. и др. Состояние перекисного окисления липидов и антиоксидантной системы у больных, получающих антрациклины // Укр. мед. альманах. 1999. - № 3. - С. 47-49.
46. Карпищенко А.И., Куценко С.А., Глушков С.И. Система белков теплового шока БТШ70 у крыс при отравлении дихлорэтаном // Токсикол. вестник. 1999. - №6. - С.8-12.
47. Карпищенко А.И., Смирнов В.В., Глушков С.И. Методика определения показателей системы глутатиона в лимфоцитах человека // Клин. лаб. диагностика. 1997. -№12. - С.41-42.
48. Катцунг Б.Г. Базисная и клиническая фармакология. Пер. с англ. — СПб.: Бином, 1998. Т.2. - С. 89-225.
49. Кивман Г. Я., Рудзит Э. А., Яковлев В. П. Фармакокинетика химиотера-певтических препаратов. М.: Медицина, 1982. - 255 с.
50. Кожевников Ю.Н. О перекисном окислении липидов в норме и патологии (обзор) // Вопр. мед. химии. 1985. - Т.31, №5. - С.2-7.
51. Козлов В.И., Мельман Е.П., Нейко Е.М. и др. Гистофизиология капилляров. СПб.: Наука, 1994. - 234 с.
52. Колесниченко JI.C., Кулинский В.И. Глутатионтрасферазы // Успехи соврем. биологии. 1989. - Т. 107, вып.2. - С. 179-194.
53. Колесниченко JI.C., Кулинский В.И., Шпрах В.В., и др. Система глутатиона эритроцитов и плазмы крови при инсультах и дисциткуляторной энцефалопатиии.// Биомедицинская химия. 2007. - Т. 53, № 4. — С. 454460.1 \
54. Колесниченко Л.С., Манторова Н.С., Шапиро Л.А. Исследование регуляции катехоламинами и сАМР ферментов обмена тиолов и дисульфидов // Биохимия. 1987. -Т.52, вып.5. - С.743-749.
55. Корман Д.В. Основы противоопухолевой химиотерапии. М., 2006. — 503 с.
56. Корнеев A.A., Комиссарова И.А., Нарциссов И.Р. Использование глута-тиона в качестве протекторного средства при гипоксическом воздействии// Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1993. — Т. 117, вып.9. -С.261-263.
57. Королюк М.А. Метод определения активности каталазы // Лаб. дело.-1988. -№1. -С.16-19.
58. Кулинский В.И., Колесниченко Л.С. Биологическая роль глутатиона // Успехи соврем, биологии. 1990. - Т.110, вып.1 (4). - С.20-37.
59. Кулинский В.И., Колесниченко Л.С. Обмен глутатиона //Успеха биол. химии. 1990.-Т.31.-С. 157-179.
60. Кулинский В.И., Колесниченко Л.С. Структура, свойства, биологическая роль и регуляция глутатионпероксидазы //Успехи совр. биол. — 1993. -Т.113, вып.1.-С.107-122.
61. Кулинский В.И., Леонова З.А., Колесниченко Л.С., и др. Система глутатиона в эритроцитах и плазме крови при вирусных гепатитах // Биомедицинская химия. 2007. - Т. 53, № 1. - С. 91-98.
62. Кунц Э., Гундерманн К.-Й., Шнайдер Э. "Эссенциальные" фосфолипиды в гепатологии (экспериментальный и клинический опыт) // Терапевт.арх. 1994. - Т.66, №2. - С.66-72.
63. Малюк В.И., Коржов В.И. Окислительное фосфорилирование, обмен протонов и объемные изменения митохондрий гепатоцитов при воздействии экзогенного сукцината //Укр. биохим. журн. 1979. - Т.50, №6. -С.639-643.
64. Машковский М.Д. Лекарственные средства. 13-е изд., Т.2.- Харьков: Торсинг, 1997.- с.408-409
65. Меерзон З.Ф. Антиоксидантные факторы организма как система естественной профилактики стрессорных повреждений // Физиология адаптационных процессов. — М., 1986. — С.607-619.
66. Минаева JI.B. Экспериментальная оценка роли изменений системы глутатиона в реализации побочных цитотоксических эффектов повторного введения циклофосфана: Автореф. дис. . канд. мед. наук. СПб., 2007. -20 с.
67. Нагорнев С.Н., Сытник С.И., Бобровницкий И.П. Фармакологическая коррекция липопероксидации при гипоксии и возможность повышения высотной устойчивости человека с помощью препаратов метаболического типа действия // Вестн. РАМН. 1996. - №7. - С.53-60.
68. Новиков B.C., Горанчук В.В., Шустов Е.Б. Физиология экстремальных состояний. СПб.: Наука, 1998. - 247 с.
69. Новикова Т. М. Система глутатиона и перекисное окисление липидов в патогенезе острых тяжелых интоксикаций препаратами седативно-гипно-тического действия: Автореф. дис. канд. мед. наук. — СПб., 2002. 21 с.
70. Носов A.B. Метаболическая коррекция клеточного дыхания при поражениях организма ионизирующими излучениями и алкилирующими веществами: Автореферат дис. . канд. мед. наук. СПб, 1998. - 29 с.
71. Окороков А.Н. Диагностика болезней внутренних органов.- М.: Медицинская литература, 2001. Т.4. - с.128-129.
72. Октябрьский О.Н., Смирнова Г.В. Редокс-регуляция клеточных функций (обзор) // Биохимия. 2007. - Т. 72, № 2. - С. 158-175
73. Орлов B.C., Лушков В.Б., Богданов Г.Н. Электронное строение и свободно-радикальные механизмы противоопухолевого действия антрациклиновых антибиотиков// Актуальные проблемы химиотерапии опухолей. — Черноголовка, 1982.- с. 30-32.
74. Петрович Ю.А., Гуткин Д.В. Свободно-радикальное окисление и роль в патогенезе воспаления, ишемии и стресса // Патол. физиология и экспе-рим. терапия. 1986. - №5. - С.85-92.
75. Попова А.Д., Морщакова Е.Ф., Румянцев Ф.Г. Анемия при злокачественных новообразованиях; патогенез и лечение рекомбинантным человеческим эритропоэтином // Современная онкология. -2003. Т.4, №2. — с.50-54.
76. Прайер У. Свободные радикалы в биологии (под ред. У.Прайера), в 2-х томах. М.: Мир, 1979. - Т. 1. - 318 е.; Т.2. - 328с.
77. Прозоровский В;Б: Методическое пособие по ускоренному определению эффективных доз и концентраций биологически активных веществ. — Байкальск, 1994. 46 с.
78. Проценко JI. Д., Булкина 3. П. Химия: и фармакология синтетических противоопухолевых препаратов. — Киев: Наук, думка, 1985. —286 с.
79. Самарцев В.Н. Жирные кислоты как разобщители окислительного фос-форилирования // Биохимия. 2000. -'Г.65, вып.9. - с.1173-1189:
80. Сафонова С.А. Рецидивы лимфогранулематоза, у детей: Автореф. дис. . канд. мед. наук / НИИ онкологии им. Н-Н; Петрова. — СПб:, 1999. 24 с.
81. Сейланов A.C.Изменение дыхания' и окислительного фосфорилирования изолированных митохондрий и клеток . в процессе гамма-индуцированного перекисного окисления липидов // Тез. докл. I Всесоюз. радиобиологического съезда. Пущино, 1989; - С.84-85.
82. Сёмиглазов В.Ф., Семиглазов В.В., Клетсель A.E. Неоадъювантное и адъювантное лечение рака молочной железы. М.,2008. - 288 с.
83. Смирнова Г.В., Октябрьский О.II. Глутатион у бактерий (обзор) // Биохимия. 2005. - Т. 70, № :11. -С. 1459-1473.
84. Соколовский В.В. Тиолдисульфидное соотношение крови как показатель состояния неспецифической резистентности организма. Учебное пособие. -СПб., 1996.-30 с.
85. Соколовский В.В.; Тиоловые антиоксиданты в молекулярных механизмах неспецифической реакции организма на экстремальное воздействие // Вопр. мед. химии. 1988.- Т.34, №6. - С.2-11.
86. Стальная И.Д. Метод определения диеновой конъюгации ненасыщенных высших жирных кислот //Современные методы в биохимии. М., 1977. — С.63-64.
87. Стручков В. А. Природа первичных повреждений хроматина опухолевых клеток алкилирующими агентами,и их роль в цитотоксическом эффекте.// Актуальные проблемы экспериментальной химиотерапии опухолей. -Черноголовка, 1980, вып. I; С. 122-126.
88. Тиунов Л.А. Механизмы естественной детоксикации и антиоксидантной защиты // Вестник РАМН. 1995. - №3. - С.9-13.
89. Тиунов Л.А., Иванова В.А. Роль глутатиона в процессах детоксикации // Вестн: АМН СССР. 1988.-№1. - С.62-69.
90. Тиц Н. Энциклопедия клинических лабораторных тестов. М.: Лабин-форм, 1997.-960 с.
91. Трахтенберг И.М., Иванова Л.А. Современные представления о воздействии ртути на клеточные мембраны // Гигиена, и санитария. 1984. -№5. - С.59-63.
92. Гурпаев К.Т. Роль фактора транскрипции АР-1 в интеграции внутриклеточных сигнальных систем // Молекулярная биология. 2006.- Т.40, №6. - С.945-961.
93. Циклофосфан. Сборник статей (под ред. С. А. Гиллера). Рига: Зинатне, 1965.-270 с.
94. Шанин ВТО; Клиническая патофизиология. СПб: Спец. лит., 1998. -569 с.
95. Ширшев C.B. Клеточные и молекулярные механизмы иммуномодули-рующего действия хорионического гонадотропина// Успехи современной биологии.- 1998. -Т. 118, вып. 1, С. 69-85.
96. Шпаков А.О; Роль сульфгидрильных групп в функционировании адени-латциклазной системы // Журнал эволюц. биохим. и физиол. 2002. -Т.38, №1. - С.97—107.
97. Янковский О.Ю. Токсичность кислорода и биологические системы. -СПб., 2000. - 295 с.
98. Agapito М.Т., Antolin Y., del Brio M.T. et al. Protective effect of melatonin against adriamycin toxicity in the rat // J. Pineal. Res. 2001. - Vol.31, №.1. -P.23—30.
99. Ajit S. Ultrastructural changesof sarcoma-180 cells after treatment with cis-dichlorodiamine pestium (II) in vivo and in vitro // Ind. J. Exper. Biol. -1976 -Vol. 14, №4. P. 383-390
100. Amstad P.A., Liu H., Ichimiya M. et al. BCL-2 is involved in preventing oxi-dant-induced cell death and in decreasing oxygen radical production // Redox. Rep. 2001. - Vol.6, №.6. - P.351-362.
101. Anderson B.B., Clements J.E., Perry G.M. Glutathione reductase activity and its relationship to pyri-doxinephosphate activity in G6PD deficiency // Europ. J. Haematol. 1987. - Vol.38, №1. - P. 12-20.
102. Arai M., Imai H. Koumura T. Mitochondrial phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase plays a major role in preventing oxidative injury to cells // J. Biol. Chem. 1999. - Vol.274, №8. - P.4924-4933.
103. Arcamone F. Doxorubicin. Anticancer antibiotics. New-York Acad. Press, 1981.-P. 369.
104. Asakura Т., Hashizume Y., Tashiro K. Suppression of GST-P by treatment with glutathione-doxorubicin conjugate induces potent apoptosis in rat hepatoma cells // Int. J. Cancer. 2001. - Vol.15, №.94(2). - P. 171-177.
105. Awasthi Y.C., Bhatnagar A., Singh S.V. Evidence for the involvement of his-tidine at the active site of glutathione S-transferase cp from human liver // Bio-chem. Biophys. Res. Commun. 1987. - Vol.143, №.3. -P.965-970.
106. Awasthi S., Sharma R., Singhal S.S. et al. RLIP76, a Novel Transporter Catalyzing ATP-Dependent Efflux of Xenobiotics // Drug Metab. Dispos. 2002. -Vol.30, №.12.-P.1300-1310.
107. Bagley C. M., Bortick F. W., De Vita V. T. Clinical pharmacology of cyclophosphamide // Cancer Res. 1973. - Vol. 33 - P. 226-233.
108. Batist G., Norton J., Katki A.G. et al. Cardiac and red blood cell glutathione peroxidase: results of a prospective randomized trial in patients on total parenteral nutrition // Cancer Res. 1985. - Vol.45, №.11.- P.5900-5903.
109. Beckman R.P., Lovett M., Welch W.J. Examining the function and regulation of hsp in cells subjected to metabolic stress // J. Cell. Biol. 1992. - Vol.117, №.6.-P.l 137-1150.
110. Bellomo G., Thor H., Orrenius S. Modulation of cellular glutathione and protein thiol status during quinone metabolism // Meth. Enzymol. 1990. -Vol.186.-P.627-63 5.
111. Biswal S., Acquaah-Mensah G., Datta K. et al. Inhibition of cell proliferation and AP-1 activity by acrolein in human A549 lung adenocarcinoma cells due to thiol imbalance and covalent modifications // Chem. Res. Toxicol. 2002. -Vol.15, №2.-P.180-186.
112. Boveris A., Cadenas E. Superoxyde dismutase Boca Rraton, 1983. - P. 1530.
113. Boyd N. Biochemical mechanisms in chemical-induced injury: Role of metabolic activation// CRC Crit. Rev. Toxicol. 1980. - Vol.7, №2. - P. 103-176.
114. Brock N., Honorst H. J. Uber die Aktivierung von Cyclophosphamide in vivo und in vitro. // Arzneimit. Forschung. 1963. -Bd. 13, - S. 1026-1031.
115. Bunting K.D., Townsend A.J. Dependence of aldehyde-dehydrogenase-mediated oxazaphosphorine resistance on soluble thiols: importance of thiol interactions with the secondary metabolite acrolein '// Biochem. Pharmacol. -1998 Vol;56, №1. -P.31-39.
116. Bounias M., Kladny J., Kruk I. et al. Effects of catechols on free radical formation by chemotherapeutic agents (adriamycin, .farmorubicin, and mitomycin) // Cancer. Detect. Prev. 1997. - Vol.21, №.6.,- P.553-562.
117. Buonocore G., Perrone S., Bracci R. Free radicals and brain damage in the newborn // Biol. Neonate. 2001. - Vol.79, №3-4. - P. 180-186.
118. Buschini A., Poli P., Rossi 0. Saccharomyces cerevisiae as an eukaryotic cell model to assess " cytotoxicity and genotoxicity of three anticancer an' thraquinones // Mutagenesis.- 2003. Vol.18, №. 1. - P.25-36.
119. Carlberg I., Mannervik B. Glutathione reductase // Meth. Enzymol. 1985. -Vol.113.-P.484-490. \
120. Chang L.S., Chang C.C. Biochemical« regulation; of the activity of gamma-glutamyl-cysteine synthetase from rat liver and kidney by glutathione // Biochem. Mol. Biol. Intern. 1994. - Vol.32, №4. - P.697-703.
121. Chang S.W., Stelzner T.J., Weil J.V. Hypoxia increases plasma, glutathione disulfide in rats//Lung. 1989^-Volil67, №5; — P:269-276.
122. Connors T. A. Antitumors drugs with latent activity // Biochimie 1978 -. Vol. 60. - P.979. .
123. D'Agostini F., Bagnasco M., Giunciuglio D. Inhibition by oral N-acetylcysteine of doxorubicin-induced clastogenicity and alopecia, and prevention of primary tumors and lung micrometastases in mice // Inttrn J. Oncol. -1998. Vol. 13, №2. - P.217-224.
124. D' Alessandro N., Rausa L., Crescimanno M. In vivo effects of doxorubicin and isoproterenol on reduced glutathione and H2O2 production in mouse heart // Res. Commun. Chem. Pathol. Pharmacol. 1988. - Vol.62, №.1. - P.19-30.
125. Davies K.J.A. Protein damage and degradation by oxygen radicals. l.General aspects // J. Biol. Chem. 1987. - Vol.262, №17.-P:9865-9901.
126. De Almeida A.F., Curi R., Newsholme P. Maximal activities of key enzymes of glutaminolysis, glycolysis, Krebs cycle and pentose-phosphate pathway of several tissues in mature and aged rats // Intern. J. Biochem. 1989. - Vol.21, №8. - P.937-940.
127. Dean R.T., Gebiki J., Gieseg S. Hypothesis: A damaging role in aging for reactive- protein oxidative products // Mutat: Res; — 1992. Vol.275. - P.387-393.
128. De Leve L.D. Cellular target of cyclophosphamide toxicity in the murine liver: Role of glutathione and site of metabolic activation // Hepatology. -1996. Vol. 24, №4.-P:830-837:
129. Deneke S.M., Fanburg: B.L. Regulation of cellular glutathione // Am. J. • Physiol. 1989. - Vol .257, № 1. - P. 163-173.
130. Dirven H.A., Megens L., Oudshoorn M.J. et al. Glutathione-conjugation of the cytostatic drug ifosfamide and the role of human glutathione S-transferases //Chem. Res;.Toxicol. 1995.- Vol.8, №7. -P.979-986.
131. Dirven H.A., van Ommen B., van Bladeren P.J. Involvement of human glutathione S-transferase isoenzymes in the conjugation of cyclophosphamide metabolites with glutathione // Cancer Res. 1994. - Vol.54, №23. - P.6215-6220.
132. Dirven H.A., Venekamp J.C., van Ommen B. et al. The interaction of glutathione with 4-hydroxycyclophosphamide and phosphoramide mustard, studied by 31P nuclear magnetic resonance spectroscopy // Chem. Biol. Interact. -1994. Vol.93, №3. - P. 185-196.
133. Doroshow J.H. Effect of anthracycline antibiotics on oxygen radical formation in rat heart. Cancer Res. - 1983. - Vol.43, №2. - P.460-472.
134. Doroshow J.H., Synold T.W., Somlo G. et al. Oxidative DNA base modifications in peripheral blood mononuclear cells of patients treated with high-dose infusion doxorubicin. // Blood. 2001 - Vol.97. -P. 2839-2845.
135. Dorr R.T. Cytoprotective agents for anthracyclines // Semin. Oncol. 1996. -Vol.23, №4 (Suppl.8). - P.23-34.
136. Eliot H., Gianni L., Myers C. Oxydative destruction of DNA by the adriamycin-iron complex // Biochemistry 1984. - Vol.23, №.5. - P.928-936.
137. Elsayed N., Omaye S., Klain G., et al. Response of mouse drain to a single subcutaneous injection of the monofunctional sulfur mustard, butyl 2-chloroethyl sulfide (BCS) // Toxicology. 1989. - Vol. 58, №1. - P. 11-20.
138. Erden M., Bor N.M. Changes in reduced glutathione, glutathione reductase, and glutathione peroxidase after radiation // Biochem. Med. 1984. - Vol.31, №2.-P.217-227.
139. Fadillioglu E., Erdogan H. Effects of erdosteine treatment against doxorubicin-induced toxicity through erythrocyte and plasma oxidant/antioxidant status in rats // Pharmacol Res. 2003. - Vol.47, №4. - P.317-322.
140. Ferretti A., Chen L.L., Di Vito M. et al. Pentose phosphate pathway alterations in multi-drug resistant leukemic T-cells: 31P NMR and enzymatic studies // Anticancer Res. 1993. - Vol.13, №4. - P.867-872.
141. Filomeni G., Rotilio G., Ciriolo M.R. Cell signaling and the glutathione redox system // Biochem. Pharmacol. 2002. - Vol.64. - P. 1057-1064.
142. Filomeni G., Aquilano K., Civitareale P. et al. Activation of c-Jun-N-terminal kinase is required for apoptosis triggered by glutathione disulfide in neuroblastoma cells // Free Radic. Biol. Med. 2005.- Vol.39. - P.345 - 354.
143. Flohe L. Glutathione peroxidase brought into focus // Free Rad. Biol. 1982. - Vol.5.-P.223-254.
144. Freeman M.L., Borrelli M.J., Syed K. Characterization of signal generated by oxidation of protein thiols that activates the heat shoe transcription factor // J. Cell Physiol. 1995. - Vol.164, №2. - P.336-366.
145. Forman H.J., Torres M., Fukuto J. Redox signaling. // Mol. Cell. Biochem. -2002. Vol.234- 235. - P. 49- 62.
146. Friedman J.M., Myles O. M., Colvin M. Cyclophosphamide and related phosphoramide mustards. // Advants in cancer chemotherapy. New York, Basel, 1979.-P. 143-204.
147. Gauduel Y., Duvelleroy M.A. Role of oxygen radicals in cardiac injury due to reoxygenation // J. Mol. Cell. Cardiol. 1984. - Vol.16, №5. - P.459-470.
148. Gessner T., Vaughan L.A., Beehler B.C. et al. Elevated pentose cycle and glu-curonyltransferase in daunorubicin-resistant P388 cells // Cancer Res. 1990. -Vol.50, №13.-P.3921-3927.
149. Gewirtz D.A. A critical evaluation of the mechanisms of action proposed forthe antitumor effects of the anthracycline antibiotics adriamycin and daun-orubicin // Biochem. Pharmacol. 1999. - Vol.57, №7. - P.727-741.
150. Grant R.L., Acosta J.D., Smith M.A. Experimental models and general mechanisms of toxicity. // Comprehensive Toxicology on CD-ROM. Elsevier Sci. 1997. - Vol. 1 - P. 567-568
151. Grune T., Muller K., Zollner S. Evaluation of purine nucleotide loss, lipid peroxidation and ultra-structural alterations in post-hypoxic hepatocytes //J. Physiol. 1997. - Vol.498, Pt. 2. - P.511-522.
152. Gustafson D.L., Swanson J.D., Pritsos C.A. Modulation of glutathione and glutathione dependent antioxidant enzymes in mouse heart following doxorubicin therapy // Free Radic. Res. Commun. 1993. - Vol.19, №2. - P.l 11-120.
153. Habig W.H., Jakoby W.B. Assay for differentiation of glutathione S-transferases // Meth. Enzymol. 1981. - Vol.77. - P.398-405.
154. Halliwell B. Biochemical mechanisms accounting for toxic action of oxigen on living organisms key role of superoxide dismutase // Cell. Biol. 1978. -Vol.2, №2.-P.l 13-128.
155. Harman D. Free-radical theory of aging: Inversing the functional life span // Ann. NY Acad. Sci. 1994. - Vol.717. - P. 1-15.
156. Hassan H.M. Superoxide dismutase: An antioxidant defence enzyme // Free radicals in molecular biology. Aging and desease. — New York, 1984. P.47-96.
157. Hatakeyama M., Lee C., Chon C. Purification and some properties of rabbit liver cytosol thioltransferase //J. Biochem. 1985. - Vol.97, №3. - P.893-897.
158. Hayes J.D., McLellan L.I., Stockmann P.K. Glutathione S-transferases in man the relationship between rat and human enzymes // Biochem. Soc. Transact. - 1987. - Vol. 15, №4. - P.721-725.
159. Holmgren A. Thioredoxin // Ann. Rev. Biochem. 1985. - Vol.54. - P.237-271.
160. Ji-Xin L., Jun-Zhong F., Zhi-Feng L. Studies on of copper-zinc superoxide dismutase II. Effect of irradiation on reconstitution //Biochem. Biophys. Acta. 1984. - Vol.16, №5. - P.480-485.
161. Juma F. D., Rogers H. J. First pass hepatic metabolism of cyclophosphamide. // Brit. J. Clin. Pharmacol. 1979. -Vol. 7. - P. 422.
162. Kanekal S., Kehrer J.P. Metabolism of cyclophosphamide by lipoxygenases // Drug Metab. Dispos. 1994. - Vol 22, №1. - P.74-78.
163. Kappus H., Sies H. Toxic drug effect associated with oxigen metabolism re-' dox cycling and lipid peroxidation // Experientia. 1981. — Vol.37, №12. -P.1233-1241.
164. Khan S., Ramwani J.J., O'Brien P.J. Hepatocyte toxicity of mechlorethamine and other alkylating anticancer drugs. Role of lipid peroxidation // Biochem. Pharmacol. 1992. - Vol.43, №9. -P.1963-1967.
165. Kehrer J.P., Biswal S.S. The molecular effects of acrolein // Toxicol. Sci. -2000. Vol.57, №1. - P.6-15.
166. Kehrer J. R, Lund L.G. Cellular reducing equivalents and oxidative stress. // Free Radical. Biol. Med. 1994. - Vol.17, № 1. - P. 65-75.
167. Ketterer B., Beale P., Meyer D.J. The structure and maltiple function of glutathione transferases // Biochem. Soc. Transact. 1982. - Vol.10, №2. - P.82-83.
168. Kinscherf R., Fischbach T., Mihm S. Effect of glutathione depletion and oral N-acetyl-cysteine treatment on CD4+ and CD8+ cells // FASEB J. 1994. -Vol.8.-P.448-451.
169. Kisara S., Furusawa S., Takayanagi Y. et al. Effect of glutathione depletion by buthionine sulfoximine on doxorubicin toxicity in mice // Res. Commun. Mol. Pathol. Pharmacol. 1995. - Vol.89, №3. - P.401-410.
170. Kornberg A., Horecker B.L., Smyrniot P.Z. Glucose-6-phosphate dehydrogenase 6-phosphogluconic dehydrogenase // Meth. Enzymol. — 1955. - Vol.1. -P.323-327.
171. Larsson K., Eriksson V., Mannervik B. Thioltransferase from human placenta // Meth. Enzymol. 1985. - Vol.113. -P.520-521.
172. Latta K., Augustein R.C. The purification and properties of human lens glutathione reductase // Exper. Europ. Res. 1984. - Vol.39, №3. - P.343-354.
173. Lee F.Y. Glutathione diminishes the anti-tumour activity of 4-hydroperoxy-cyclophosphamide by stabilising its spontaneous breakdown to alkylating metabolites // Brit. J. Cancer. 1991. - Vol.63, №1. - P.45-50.
174. Li T., Singal P.K. Adriamycin-induced early changes in myocardial antioxidant enzymes and their modulation by probucol // Circulation. 2000. -Vol.102, №17. - P.2105-2110.
175. Liu Q.Y., Tan B.K. Relationship between antioxidant activities and doxorubi-cin-induced lipid peroxidation in P388 tumour cells and heart and liver in mice // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. -2003. Vol.30, №3. - P. 185-188.
176. Lawrence R.A., Burk R.F. Species, tissue and subcellular distribution of non Se-dependent glutathione peroxidase activity // J. Nutr. 1978. - Vol.108, №2. -P.211-215.
177. Lown J.W. The chemistry of DNA damage by antitumor drugs.//In. Molecular aspects of anti-cancer drug action. London, 1983. - P.283-314.
178. Maehara Y., Takeuchi H., Baba H. Experimental and clinical study in vitro chemosensitivity test for succinate dehydrogenase inhibition test // Gan-To-Kagaku-Ryoho. 1993. - Vol. 20, №4. - P. 455- 460.
179. Maestro L., McDonald W. Subcellular localization superoxide dismutase, glutathione peroxidase and catalase in developing rat cerebral cortex // Mech. Ageing Develop. 1989. - № 1. - P. 15-31.
180. Maiorino M;, Gregolin C., Ursini F. Phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase // Meth. Enzymol. 1990. - Vol.186. - P.448-457. .
181. Mannervick B., Axelsson K. Role of cytoplasmic thioltransferase in cellular regulation by thyol-disulfide interchange // Biochem. J. 1980. - Vol. 190, №1. — P. 125-130.
182. Mannervik B. The enzymes of glutathione metabolism: an overview // Biochem. Soc. Transact. 1987.-Vol. 15, №4.-P.717-718.
183. Mannervik B. Thioltransferases. Enzymatic basis of detoxication. — Orlanto, 1980.-Vol.2. P.229-244.
184. Mannervik B., Awasthi Y.C., Board P.G. Nomenclature for human glutathione transferases // Biochem. J. Lett. 1992. - Vol.282. - P.305^308.
185. Mannervik B., Garlberg J., Larson K. Glutathione: chemical, biochemical and medical aspects// Pt. A: Coenzymes and cofactors. — NewYork: Wiley, 1989. — V.3.-693 p.
186. Meister A. Glutathione deficiency produced by inhibition of its synthesis, and: its reversal; applications in research and therapy // Pharmacol'. Ther. — 1991. — Vol.51, №2. P. 155-194.
187. Meister A. Methods for the selective modification of glutathione metabolism and study of glutathione transport // Meth. Enzymol. 1985. - Vol.113. -" P.571-589. '
188. Meister A., Anderson M.E. Glutathione // Ann. Rev. Biochem. 1983. -Vol.52.-P.711-760.
189. Meister A., Tate S.S; Glutathione and related?glutamyl compounds: biosynthesis and utilization //Ann. Rev. Biochem. 1976. - Vol.45, №3. - P.559-564.
190. Meyer T., Wierse G., Weinrebe W. et al. Effects of cyclophosphamide and ifosfamide on neuroblastoma cells before and after activation by microsomes // Anticancer Res. 1997. - №17. - P.981-986.
191. Mohamed H.E., El-Swefy S.E., Hagar H.H. The protective effect of glutathione administration on adriamycin-induced acute cardiac toxicity in rats // Pharmacol. Res. 2000. - Vol.42, №2. - P. 115-121.
192. Morin J.E., Dixon J.E. Thiol: Protein disulfide exchange enzymes // Meth. Enzymol. 1985. - Vol.113. - P.541-547.
193. Pacifici R.E., Davies K.J.A. Protein, lipid and DNA repair system in oxidative stress: Free radical theory of aging revisited // Gerontology. 1991. — Vol.37.-P.166-180.
194. Paller M.S., Patten M. Protective effects of glutathione, glycine, or alanine in an in vit-ro model of renal anoxia // J. Am. Soc. Nephrol. 1992. - Vol.2, .№8. -P.1338-1344.
195. Palmen N.G., Evelo C.T. Glutathione depletion in human erythrocytes as an indicator for microsomal activation of cyclophosphamide and 3-hydroxy-acetanilide // Toxicology. 1993. - Vol.84, №1-3. - P. 157-170.
196. Paolicchi, A., Dominici, S., Pieri, L., et al. Glutathione catabolism as a signaling mechanism. // Biochem. Pharmacol. -2002. Vol.64. - P. 1027-1035.
197. Papa S., Skulachev V.P. Reactive oxygen species, mitochondria, apoptosis and aging // Mol. Cell. Biochem. 1997.-Vol.174.-P.305-319.
198. Papirmeister B., Gross C.L., Meier H. L., et al. Molecular basis for mustard-induced vesication // Fund. Appl. Toxicol. 1985. - №5. - P. 134-149.
199. Pasha K.V., Sadasivudu B. Intracellular content of thiol compounds, thiobar-bituric acid reactive substances and gamma-glutamyl transpeptidase in rat brain during anoxia //Neurol. Lett. 1984. - Vol.46, №2. - P.209-214.
200. Paranka N.S., Dorr R.T. Effect of doxorubicin on glutathione and glutathione-dependent enzymes in cultured rat heart cells // Anticancer Res. 1994. -Vol.14, №5A. - P.2047-2052.
201. Peterson G.L. Simplification of protein assay method of Lowry et al which is more generally applicable //Anal. Biochem. - 1977. - Vol.83, №2. - P.346-356.
202. Pohl L., Branchflow R.V., Highet R.J. The formation of diglutathionyl-dithiocarbonate as metabolite of chloroform, bromtrichloromethane and carbon tetrachoride // Drug Metabol. 1981. - Vol.9, №4. - P.334-339.
203. Pompella A., Corti A., Paolicchi A., et al. Gamma-glutamyltransferase, redox regulation and cancer drug resistance. //Curr. Opin. Pharmacol. — 2007. — Vol.7, №4. P.360-366.
204. Premkumar K., Abraham S.K., Santhiya S.T. et al. Inhibition of genotoxicity by saffron (Crocus sativus L.) in mice. // Drug Chem. Toxicol. 2001. -Vol.24, №4.-P.421-428.
205. Ramu K., Perry C.S., Ahmed T. et al. Studies on the basis for the toxicity of acrolein mercapturates. // Toxicol. Appl. Pharmacol. — 1996. — Vol. 140, №2. -P.487-498.
206. Ramu K., Fraiser L.H., Mamiya B., Ahmed T., Kehrer J.P. Acrolein mercapturates: synthesis, characterization, and assessment of their role in the bladder toxicity of cyclophosphamide \\ Chem. Res. Toxicol. 1995. - Vol.8, №4. -P.515-524.
207. Rekha P.S., Kuttan G., Kuttan R. Effect of Brahma Rasayana on antioxidant systems and cytokine levels in mice during cyclophosphamide administration // J Exper. Clin. Cancer Res. 2001. - Vol.20, №2. - P.219-223.
208. Richardson M.E., Siemann D.W. DNA damage in cyclophosphamide-resistant tumor cells: the role of glutathione // Cancer Res. 1995. - Vol.55, №8. — P.691-695.
209. Richman P.G., Meister A. Regulation of y-glutamylcysteine sinthetase by nonallosteric feedback inhibition by glutathione // J. Biol. Chem. 1975. -Vol.250, №4. - P. 1422-1426.
210. Sando T., Konno K., Takei M. Purification and characterisation of rat liver cytosol catalase // Cell structura and function. 1986. - Vol.9, №2. - P. 125133.
211. Serafino A., Sinibaldi-Vallebona P., Lazzarino G. et al. Modifications of mitochondria in human tumor cells during anthracycline-induced apoptosis // Anticancer Res. 2000. - Vol.20, №5B. - P.3383-3394.
212. Simmons Th.W., Jamall J.S. Significance of alterations in hepatic antioxidant enzymes primacy of glutathione-peroxidase //Biochem. J. - 1988. - Vol.251, №3. - P.913-917.
213. Singh S.N., Vats P., Kumria M.M. Effect of high altitude (7,620 m) exposure on glutathione and related metabolism in rats // Europ. J. Appl. Physiol. -2001. Vol.84, №3. - P.233-237.
214. Soderstrom M., Hammarstrom S., Mannervik B. Leukotriene C synthase in mouse mastocytoma cells. An en-zyme distinct from cytosolic and microsomal glutathione transferases // Biochem. J. 1988. - Vol.250, №3. - P.713-718.
215. Sulkowska M., Sulkowski S., Skrzydlewska E. The effect of pentoxifylline on ultrastructure and antioxidant potential during cyclophosphamide-inducedliver injury // J. Submicroscop. Cytol. Pathol. 1999. - Vol.31, №3. - P.413-422.
216. Sullivan D.M., Wehr N.B., Fergusson M.M, et al. Identification of oxidant-sensitive proteins: TNF-alfa induces protein glutathoilation // Biochem. 2000.- Vol.39.-P.l 1121-11128.
217. Tacka K.A, Dabrowiak J.C., Goodisman J. et al. Kinetic analysis of the reactions of 4-hydroperoxycyclophosphamide and acrolein with gltathione, mesna, and WR-1065 // Drug Metab. Dispos. 2002. - Vol.30, №8. - P.875-882
218. Takahashi K., Avissar N., Whitin J. Purification and characterization of human plasma glutathione peroxidase //Arch. Biochem. Biophys. 1987. -Vol.256, №2. - P.677-686.
219. Tate S.S., Meister A. y-Glutamyltranspeptidase from kidney // Meth. Enzy-mol. 1985. - Vol.113. - P.400-419.
220. Thayer W.S. Evaluation of tissue indicators of oxidative stress in rats treated chronically with adriamycin // Biochem. Pharmacol. 1988. - Vol.37, №11. -P.2189-2194
221. Townsend, D. M. S-glutathionylation: indicator of cell stress and regulator of the unfolded protein response. // Mol Interv. 2007. - Vol.7, №6. - P.313-24.
222. Townsend D.M., Lin He, Hutchens S. NOV-002, a glutathione disulfide mimetic, as a modulator of cellular redox balance // Cancer Res. 2008. - Vol.68, №8.-P. 2870-2877.
223. Tribble D.L., Jones D.P. Oxygen dependence of oxidative stress. Rate of NADPH supp-ly for maintaining the GSH pool during hypoxia // Biochem. Pharmacol. 1990. -Vol.39, №4. - P.729-736.
224. Tu V.C., Bahl J.J., Chen Q.M. Signals of oxidant-induced cardiomyocyte hypertrophy: key activation of p70 S6 kinase-1 and phosphoinositide 3-kinase // J. Pharmacol. Exper. Ther. 2002. - Vol.300, №3. - P. 1101-1110.
225. Uchiyama M., Michara M. Determination of malonaldehyde precursor in tissues by thio-barbituric acid test //Anal. Biochem. 1978. - Vol.86, №1. -P.271—278.
226. Van den Branden C., Ceyssens B., De Craemer D. et al. Renal antioxidant enzymes and fibrosis-related markers in the rat adriamycin model // Nephron. -2000. Vol.86, №2. - P. 167-175.
227. Venkatesan N., Chandrakasan G. Modulation of cyclophosphamide-induced early lung injury by curcumin, an anti-inflammatory antioxidant // Mol. Cell Biochem. 1995. - Vol.142, №1. -P.79-87.
228. Wallin C., Puka-Sundvall M., Hagberg H. Alterations in glutathione and amino acid concentrations after hy-poxia-ischemia in the immature rat brain // Brain Res. Dev. 2000. - Vol.125, №1-2. -P.51-60.
229. Wang S., Kotamraju S., Konorev E. et al. Activation of nuclear factor-kappaB during doxorubicin-induced apoptosis in endothelial cells and myocytes is pro-apoptotic: the role of hydrogen peroxide // Biochem. J. 2002. - Vol.367(Pt.3). - P.729-740.
230. Weisigen R.A., Fridowich J.J. Superoxide dismutase: organelle specificity // Biol. Chem. 1973. - Vol.248. -P.3582-3591.
231. WHO Handbook for reporting results of cancer treatment // WHO Offset Publication NO. Geneva, 1985 - 48 p.
232. Yamauchi M., Kondo T. Multi-institutional feasibility of SDI test for its application to the adjuvant chemotherapyof gastric cancer // Gan-To-Kagaku-Ryoho. 1993 . - Vol. N 20, №4. - P. 432-439.
233. Yamanaka S., Tatsumi T., Shiraishi J. et al. Amlodipine inhibits doxorubicin-induced apoptosis in neonatal rat cardiac myocytes // J. Am. Coll. Cardiol. -2003. Vol.41, №5. - P.870 -878.
234. Yeh G.C., Daschner P.J., Lopaczynska J. et al. Modulation of glucoses-phosphate dehydrogenase activity and expression is associated with aryl hydrocarbon resistance in vitro // J. Biol. Chem. 2001. - Vol.276, №37. - P.34708-34713.
235. Yoshimura S., Banno Y., Nakashima S. Inhibition of neutral sphingomyelinase activation and ceramide formation by glutathione in hypoxic PC 12 cell death // J. Neurochem. 1999. - Vol.73, №2. - P.675-683.
236. Yoshitake S., Nanri H., Fernando M.R. Possible differences in the regenerative roles played by thioltransferase and thioredoxin for oxidatively damaged proteins//J. Biochem. 1994. - Vol.116, №1. -P.42-46.
237. Yuan Z.M., Smith P.B., Brundrett R.B. et al. Glutathione conjugation with phosphoramide mustard and cyclophosphamide. A mechanistic study using tandem mass spectrometry // Drug Metab! Dispos. 1991. - Vol.19, №3. -P.625-629.
238. Zhang K., Yang E.B., Wong K.P., Mack P. GSH, GSH-related enzymes and GS-X pump in relation to sensitivity of human tumor cell lines to chlorambucil and adriamycin // Int. J. Oncol.- 1999.- Vol.14, N.5.- P.861-867.
239. Zhang L.P., Maiorino M., Roveri A. Phospholipid hydroperoxyde glutathione peroxidase: Specific activity in tissues of rats of different age and comparison with other glutathione peroxidases // Biochem. Biophys. Acta. 1989. - Vol. 106, №1. - P.140-143.
240. Ziegler D.M. Role of reversible oxidation-reduction of enzyme thiols-disulfides in metabolic regulation / D.M.Ziegler // Ann. Rev. Biochem. 1985. - Vol.54.-P.305-329.
241. Динамика изменений концентрации восстановленного глутатиона в тканях различных органов белых беспородных крыс при однократном введении циклофосфана в дозах 2 Ь05о, ЬО50 и 0,3 ЬВ50 (ммоль/г ткани или мкмоль/г гемоглобина)
242. Группа исследования Сроки исследования Исследуемый орган
243. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
244. Контроль 10,34 ±0,81 7,03 ± 0,34 3,63 ± 0,38 8,61 ±0,51
245. Цф, 400 мг/кг Зч 2,51 ± 0,36* 3,67 ±0,28* 3,37 ±0,53 3,29 ± 0,43*6ч 2,83 ± 0,39* 3,51 ±0,42* 3,21 ±0,39 3,37 ± 0,27*12 ч 3,22 ± 0,49* 3,44 ± 0,39* 2,28 ±0,19* 3,09 ±0,21*24 ч 3,31 ±0,31* 3,59 ±0,41* 2,15 ±0,16* 4,72 ± 0,38*
246. ЦФ, 200 мг/кг 3 ч 3,42 ±0,41* 4,05 ± 0,39* 3,09 ± 0,42 4,09 ±0,31*6ч 4,19 ±0,29* 4,23 ±0,41* 3,14 + 0,21 5,13 ±0,41*12 ч 4,72 ± 0,42* 3,98 ± 0,34* 2,41 ±0,21* 4,42 ± 0,52*24 ч 5,29 ± 0,67* 4,89 ± 0,52* 2,39 ±0,13* 4,88 ±0,33*
247. Цф, 60 мг/кг Зч 5,28 ± 0,37* 4,96 ± 0,29* 3,62 ± 0,27 4,22 ± 0,46*6ч 5,02 ±0,41* 5,13 ±0,46* 3,18 ±0,14 5,81 ±0,29*12 ч 5,85 ± 0,39* 5,46 ±0,51* 3,51 ±0,31 6,86 ±1,0224 ч 6,87 ±0,51* 5,61 ±0,42* 3,02 ± 0,48 8,29 ± 0,821. NJ ЧО Ю
248. Динамика изменений концентрации сульфгидрильных групп тканевых белков в тканях различных органов белых беспородных крыс при однократном введении циклофосфана в дозах 2 ЬВ5о, ЬВ5о и 0,3 1ЛЭ50мкмоль/г ткани или мкмоль/г гемоглобина)
249. Группа исследования Сроки исследования Исследуемый орган
250. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
251. Контроль 15,27 ±0,59 12,21 ±0,53 9,32 ± 0,64 26,57 ±2,34
252. ЦФ, 400 мг/кг Зч 8,24 ±1,21* 8,16 ±0,63* 8,87 ± 0,57 14,27 ±3,12*6ч 9,57 ± 1,48* 7,93 ± 0,48* 9,01 ±0,39 13,86 ±2,74*12 ч 9,18 ± 0,62* 7,23 ± 0,65* 8,14 ±0,27* 12,78 ±4,06*24 ч 8,91 ±0,47* 7,08 ± 0,84* 7,76 ± 0,47* 14,25 ±2,93*
253. ЦФ, 200 мг/кг Зч 13,92 ±1,12 8,67 ± 0,52* 8,58 ± 0,43 23,62 ±3,416ч 13,68 ±0,99 9,12 ±0,89* 9,20 ± 0,58 18,75 ±2,24*12ч 12,06 ±0,85* 8,81 ±0,55* 8,12 ±0,21* 15,97 ±3,56*24 ч 11,12 ± 0,66* 8,11 ±0,42* 8,82 ± 0,46 14,83 ±2,97*
254. ЦФ, 60 мг/кг Зч 14,85 ±0,73 11,68 ±0,47 8,38 ±0,72 26,43 ±2,656ч 14,31 ±0,86 10,92 ±1,16 9,82 ± 0,35 29,21 ±4,5712ч 13,96 ± 1,11 11,82 ± 0,81 8,26 ± 0,77 27,74 ±3,6824 ч 15,59 ±0,79 11,48 ±0,51 8,69 ± 0,62 21,27 ±4,21О
255. Группа исследования Сроки исследования Исследуемый орган
256. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
257. Контроль 169,8 ±9,2 139,7 ±7,1 317,5 ±18,2 6,39 ± 0,83
258. ЦФ, 400 мг/кг Зч 263,6 ±21,5* 186,1 ± 11,6* 461,7 ±22,8* 10,87 ±0,95*6ч 246,8 ±14,7* 210,1 ± 16,5* 491,9 ±32,3* 12,18 ±0,66*12ч 295,2 ± 12,7* 162,7 ±8,4 578,1 ±27,7* 15,52 ±1,16*24 ч 388,3 ± 14,8* 157,5 ±5,9 582,2 ±31,7* 14,39 ±0,83*
259. ЦФ, 200 мг/кг Зч 233,7+ 12,1* 176,4 ±5,5* 364,4 ±31,6 9,84 ± 1,23*6ч 228,7 ± 14,9* 202,3 ±11,9* 461,8 ±28,4* 11,65 ±0,91*12 ч 254,2 ± 11,3* 162,5 ±12,7 440,4 ±21,3* 12,37 ±0,85*24 ч 318,4 ± 12,5* 151,7 ±6,5 452,5 ±27,6* 11,94 ±0,78*
260. ЦФ, 60 мг/кг Зч 203,2 ± 14,3 169,3 ±6,4* 342,6 ±26,1 9,43 ± 0,68*6ч 221,5 ±8,8* 182,8 ±9,3* 369,7 ±24,2 10,88 ±0,74*12ч 192,8 ±15,5 155,2 ±8,9 329,8 ± 27,3 11,15 ±0,68*24 ч 173,1 ±10,4 140,3 ±7,8 321,3 ±29,7 10,32 ±1,03*о
261. Динамика изменений концентрации диеновых конъюгат в тканях различных органов белых беспородных крыс при однократном введении циклофосфана в дозах 2 Ы)5о, 1Ю50 и 0,3 1Л)50 (нмоль/г ткани или нмоль/г гемоглобина)
262. Группа исследования Сроки исследования Исследуемый орган
263. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
264. Конт золь 53,42 ±6,47 126,6 ± 8,4 96,2 ± 6,8 0,91 ±0,08
265. Цф, 400 мг/кг Зч 84,47 ± 7,83* 184,1 ±11,3* 132,5 ±7,4* 0,90 ±0,126ч 94,57 ± 8,23* 206,7 ± 13,9* 146,3 ± 6,2* 1,18 ± 0,1512 ч 85,64 ±8,58* 152,7 ±8,9 138,2 ±9,4* 0,84 ±0,0524 ч 131,43 ±11,75* 159,2 ±9,6 92,9 ±11,7 0,83 ± 0,07
266. ЦФ, 200 мг/кг Зч 81,76± 10,56 149,8 ± 15,2 128,5 ±9,1* 1,09 ±0,116ч 123,62 ± 13,38* 194,7 ± 11,5* 138,4 ± 13,3* 1,12 ± 0,1312 ч 89,87 ± 9,69 188,3 ±16,3* 101,7 ±8,4 0,79 ± 0,0624 ч 79,52 ± 6,83 148,3 ±7,4 78,2 ± 9,7 0,88 ± 0,06
267. Цф, 60 мг/кг Зч 63,54 ±12,72 155,4 ±12,4 98,4 ± 7,8 1,07 ±0,126ч 73,29 ±9,96 161,2± 11,9 79,5 ± 6,3 0,84± 0,0912ч 83,16 ±15,38 147,7 ± 14,8 72,3 ± 6,7* 0,98 ± 0,0624 ч 107,89 ±11,43* 139,3 ±9,5 66,3 ± 7,4* 0,87 ± 0,07и> оО
268. Динамика изменений активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы в тканях различных органов белых беспородных крыспри однократном введении циклофосфана в дозах 2 1Ю50,1Л}50 и 0,3 1ЛЭ5о (мкмоль/(мин-г белка) или мкмоль/(минт гемоглобина))
269. Группа исследования Сроки исследования Исследуемый орган
270. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
271. Контроль 146,1 ±22,6 56,63 ± 5,23 50,63 ±5,67 5,693 ± 0,447
272. ЦФ, 400 мг/кг Зч 162,6 ± 17,7 38,72 ±4,69* 55,52 ± 8,06 3,331 ±0,419*6ч 74,1 ±9,2* 34,66 ± 5,82* 23,68 ± 4,72* 2,776 ±0,581*12 ч 82,3 ± 10,1* 38,49 ±5,91* 19,41 ±4,32* 3,297 ±0,466*24 ч 79,7 ± 7,8* 39,23 ± 6,37* 38,58 ±7,83 2,318 ±0,537*
273. ЦФ, 200 мг/кг Зч 139,9 ±11,9 39,85 ±6,12* 51,24 ±6,81 5,158 ±0,6396ч 95,3 ±10,4* 43,21 ±4,77* 26,34 ±3,65* 5,573 ±0,81612 ч 119,8 ±21,6 41,47 ±4,14* 36,79 ±4,76 4,081 ±0,428*24 ч 96,4 ± 9,4* 44,37 ±5,61* 49,13 ±3,34 3,474 ±0,568*
274. ЦФ, 60 мг/кг Зч 166,7 ± 13,2 48,98 ± 7,54 52,21 ±5,47 4,884 ±0,3846ч 150,6 ±6,8 41,73 ±5,07* 53,78 ±6,61 6,751 ±0,45912ч 129,6 ±11,3 48,37 ±4,84 56,51 ±7,43 7,935 ±0,963*24 ч 106,4 ±15,7 51,35 ±5,49 76,84 ± 5,44* 5,891 ±0,745
275. Динамика изменения активности глутатионредуктазы в тканях различных органов белых беспородных крыс при однократном введении циклофосфана в дозах 2 ЬБ50,1Л)50 и 0,3 1Х)5о (мкмоль/(мин-г белка) или ммоль/(мин-ггемоглобина))
276. Группа исследования Сроки исследования Исследуемый орган
277. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
278. Контроль 359,4 ±32,7 262,7 ± 23,8 64,83 ± 7,56 382,8 ±45,2
279. ЦФ, 400 мг/кг Зч 213,7 ± 17,9* 243,6 ±31,8 87,71 ±11,25* 251,6 ±28,3*6ч 204,3 ±25,3* 251,6 ±27,5 91,62 ±9,47* 239,4 ±26,9*12 ч 417,7 ±38,2 294,4 ±36,3 75,47 ±9,57 251,5 ±17,7*24 ч 431,4 ±25,4 288,5 ±32,7 89,75 ±5,13* 281,5 ±32,6*
280. ЦФ, 200 мг/кг Зч 484,9 ±36,1* 320,7 ±37,7 76,15 ±.7,62 266,2 ±32,8*6ч 399,6 ±32,5 268,2 ±33,1 73,58 ±6,21 290,4 ±22,6*12 ч 478,1 ±31,8* 271,1 ±42,6 75,67 ± 8,27 302,4 ±26,1*24 ч 411,7 ±34,4 358,2 ±43,8* 63,62 ±6,18 345,1 ±22,9
281. ЦФ, 60 мг/кг Зч 406,6 ±33,7 285,6 ±44,7 139,64 ± 11,21* 398,3 ±42,16ч 495,8 ±42,6* 324,1 ±30,5 75,62 ±4,52 339,8 ±38,512 ч 343,8 ±36,2 271,5 ±32,6 71,82 ±8,34 469,2 ±41,824 ч 402,3 ± 37,3 289,4 ±31,8 76,84 ± 7,82 539,2 ±25,8*
282. Динамика изменений активности глутатионпероксидазы в тканях различных органов белых беспородных крыс приоднократном введении циклофосфана в дозах 2 ЬВ5о, 1^50 и 0,3 ЬО50 (ммоль/(мин-г белка) или мкмоль/(мин-г гемоглобина))
283. Группа исследования Сроки исследования Исследуемый орган
284. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
285. Контроль 22,87 ±2,03 3,621 ±0,247 0,962 ± 0,039 2,108 ±0,069
286. ЦФ, 400 мг/кг Зч 16,32 ± 1,48* 2,472 ±0,173* 0,874 ± 0,052 1,859 ± 0,1286ч 11,72 ±1,06* 2,306 ±0,197* 0,761 ±0,074* 1,576 ±0,184*12ч 10,43 ±0,83* 2,412 ±0,157* 0,717 ±0,069* 1,521 ±0,098*24 ч 13,25 ±1,39* 2,846 ± 0,225* 0,734 ±0,083* 1,818 ±0,093*
287. ЦФ, 200 мг/кг 3 ч 17,94 ±1,12* 2,526 ±0,171* 0,802 ± 0,069* 2,462 ± 0,086*6ч 13,47 ±0,94* 2,407 ±0,192* 0,822 ±0,051* 2,877 ±0,124*12ч 15,63 ±1,41* 2,446 ±0,173* 0,846 ± 0,062 1,785 ±0,094*24 ч 17,21 ± 1,27* 2,781 ±0,231* 0,829 ± 0,068* 2,073 ±0,121
288. ЦФ, 60 мг/кг Зч 24,52 ±1,47 2,582 ±0,283* 0,971 ±0,045 1,927 ±0,0686ч 15,82 ±1,89* 2,522 ±0,328* 0,958 ±0,052 2,484 ±0,127*12ч 17,12 ±0,79* 2,615 ±0,186* 0,924 ± 0,078 2,769 ±0,146*24 ч 20,48 ± 1,39 2,794 ±0,139* 0,876 ±0,61 2,123 ±0,074
289. Динамика изменений активности глутатион-Б трансферазы в тканях различных органов белых беспородных крыс приоднократном введении циклофосфана в дозах 2 ЬБ5о, 1ЛЭ50 и 0,3 иО50 (мкмоль/(мин-г белка) или мкмоль/(мин-г гемоглобина))
290. Группа исследования Сроки исследования Исследуемый орган
291. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
292. Контроль 423,1 ± 14,5 323,5 ±23,8 65,43 ±3,87 92,78 ± 17,15
293. ЦФ, 400 мг/кг Зч 437,6 ±15,8 362,7 ±24,1 67,63 ±2,74 63,54 ±7,68*6ч 468,8 ±34,2 334,6 ±23,5 62,58 ±3,49 44,83 ± 6,45*12 ч 347,4 ± 24,8* 287,9 ±29,2 58,12 ±3,07 47,26 ±9,63*24 ч 323,4 ±47,2* 254,5 ±24,1* 54,38 ±2,82* 43,24 ± 6,52*
294. ЦФ, 200 мг/кг Зч 428,6 ± 22,6 376,4 ±26,5 78,72 ±3,35* 66,81 ±12,376ч 534,7 ± 17,6* 397,8 ±18,1* 81,76 ±2,34* 59,23 ±10,02*12ч 362,4 ±25,3* 287,8 ± 26,7 60,48 ± 5,32 56,45 ± 8,26*24 ч 339,6 ± 16,1* 279,8 ±38,9 " 57,79 ± 5,27 57,58 ±6,38*
295. ЦФ, 60 мг/кг Зч 558,3 ±31,5* 345,8 ±21,6 76,48 ± 4,46* 68,54 ±13,796ч 536,7 ± 21,1* 392,6 ± 26,3 75,73 ±3,53* 62,41 ±5,89*12 ч 537,6 ±35,6* 305,6 ±19,8 70,65 ±4,58 71,83 ±6,5524 ч 389,2± 28,4 361,6 ±27,5 66,49 ± 4,72 68,74 ±11,18
296. Динамика изменений активности каталазы в тканях различных органов белых беспородных крыс при однократном введении циклофосфана в дозах 2 1Л}5о51Т)50 и 0,3 ЬО50 (мкмоль/(мин-г белка) или мкмоль/(мин-г гемоглобина))
297. Группа исследования Сроки исследования Исследуемый орган
298. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
299. Контроль 951,8 ±79,3 554,8 ± 63,7 17,45 ±2,34 45,89 ±2,42
300. ЦФ, 400 мг/кг Зч 734,8 ±51,9* 287,6 ±41,9* 15,52 ±2,89 34,38 ±1,27*6ч 614,6 ±34,1* 318,9 ±32,4* 8,78 ±3,52* 25,21 ±2,86*12ч 563,5 ±74,3* 322,4 ±41,4* 12,56 ±2,62 31,69 ±2,28*24 ч 585,1 ±31,4* 346,3 ±37,5* 11,28 ± 1,67* 28,56 ±3,41*
301. ЦФ, 200 мг/кг Зч 1043,3 ±92,8 339,3 ±41,6* 14,62 ±2,74 40,37 ±3,626ч 721,4 ±53,2* 347,6 ±59,8* 15,68 ±2,35 26,74 ±2,85*12 ч 681,6 ±63,1* 318,3 ±49,8* 16,17 ±1,96 38,62 ± 1,18*24 ч 626,7 ± 62,2* 381,6 ±31,1* 12,26 ±2,12* 36,48 ±3,06*
302. ЦФ, 60 мг/кг Зч 959,8 ± 67,3 421,6 ±45,8 19,73 ±3,85 35,63 ±2,32*6ч 678,2 ± 56,7* 378,5 ±42,7* 19,24 ±3,72 39,75 ±3,6212ч 812,7 ±55,9 361,7 ±52,3* 18,83 ±2,24 38,17 ±4,8924 ч 746,8 ± 42,8* 369,9 ±47,2* 17,89 ±4,05 42,16 ±3,46о
303. Динамика изменений концентрации восстановленного глутатиона в тканях различных органов белых беспородных крыс при повторном введении циклофосфана в суточных дозах 20 и 40 мг/кг (ммоль/г ткани или мкмоль/г гемоглобина)
304. Группа исследования Сроки исследования, сутки Исследуемый орган
305. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
306. Контроль 8,37 ± 0,42 2,20 ± 0,24 2,00 ± 0,06 3,00 ±0,26
307. Циклофосфан, 20 мг/кг 1 7,73 ± 0,32 1,93 ±0,05 2,04 ±0,04 3,01 ±0,363 9,50 ± 0,69 2,11 ±0,09 2,07 ±0,11 2,93 ± 0,305 10,31 ±0,45* 2,32 ±0,15 2,01 ±0,16 3,66 ±0,357 9,79 ± 0,66 2,31 ±0,16 1,93 ±0,14 3,1 ±0,2710 8,17 ±0,50 2,17 ±0,27 1,86 ±0,02 3,56 ±0,23
308. Циклофосфан, 40 мг/кг 1 9,75 ± 0,83 1,94 ±0,14 2,07 ±0,14 3,07 ±0,283 10,30 ±0,77* 2,37 ± 0,25 2,03 ± 0,09 3,39 ±0,295 8,9 ± 0,47 2,06 ±0,12 1,88 ±0,06 3,30 ±0,237 8,55 ±0,18 1,96 ±0,45 1,85 ±0,04 3,75 ± 0,45
309. Динамика изменений концентрации сульфгидрильных групп тканевых белков в тканях различных органов белых беспородных крыс при повторном введении циклофосфана в суточных дозах 20 и 40 мг/кг (мкмоль/г ткани или мкмоль/ггемоглобина)
310. Группа исследования Сроки исследования, сутки Исследуемый орган
311. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
312. Контроль 18,61 ±0,43 11,40 ±0,94 5,05 ± 0,25 22,66 ± 1,28
313. Циклофосфан, 40 мг/кг 1 17,30 ±0,50* 12,80 ±0,67 4,81 ±0,31 27,71 ±0,84*3 17,15 ±0,34 10,94 ± 1,53 5,24 ±0,32 27,03 ± 0,57*5 15,84 ±0,49* 10,31 ±0,67 5,60 ±0,28 34,90 ± 1,76*7 15,57 ±0,31* 9,81 ± 1,12 5,10 ±0,28 41,40 ±3,55*
314. Группа исследования Сроки исследования, сутки Исследуемый орган
315. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
316. Контроль 166,3 ±8,7 377,7 ±10,1 136,8 ±4,0 4,49 ± 0,32
317. Циклофосфан, 40 мг/кг 1 199,9 ±10,7* 459,3 ± 5,3* 178,2 ±8,2* 5,61 ±0,27*3 218,9 ±17,6* 496,7 ± 12,9* 198,2 ±8,3* 5,91 ±0,21*5 339,1 ±7,1* 517,0 ±17,9* 202,6 ± 7,0* 6,06 ±0,23*7 353,4 ±8,5* 614,4 ±55,6* 222,8 ± 9,8* 6,19 ±0,15*
318. Группа исследования Сроки исследования, сутки Исследуемый орган
319. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
320. Контроль 32,82 ±2,27 118,8 ±3,3 105,0 ±1,0 0,52 ± 0,03
321. Группа исследования Сроки исследования, сутки Исследуемый орган
322. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
323. Контроль 56,71 ±5,40 12,56 ±1,03 54,34 ± 2,62 4,27 ±0,18
324. Циклофосфан, 40 мг/кг 1 34,34 ±3,80* 11,48 ±0,99 55,31 ±3,25 1,65 ±0,25*3 34,23 ±3,91* 15,01 ± 1,54 53,87 ±4,82 1,23 ±0,15*5 32,90 ±3,75* 10,61 ±0,82 53,20 ±2,75 0,94 ±0,04*7 21,92 ±2,57* 9,59 ± 1,04* 46,77 ± 2 ,47* 0,85 ±0,12*
325. Группа исследования Сроки исследования, сутки Исследуемый орган
326. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
327. Контроль 216,3 ±16,9 123,4 ±8,1 41,28 ±2,28 454,1 ±16,1
328. Циклофосфан, 40 мг/кг 1 247,3 ±24,1 111,0 ±11,7 36,14 ±1,31* 296,2 ± 25,7*3 192,3 ±21,3 126,4 ± 2,6 34,57 ±2,10* 288,0 ±22,1*5 146,7 ± 15,7* 93,4 ±5,8* 31,65 ±2,59* 258,2 ± 14,3*7 118,5 ±4,7* 85,5 ±11,4* 31,46 ±2,54* 253, 5 ± 17,4*
329. Группа исследования Сроки исследования, сутки Исследуемый орган
330. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
331. Контроль 7,78 ± 0,28 3,78 ± 0,20 0,59 ±0,03 1,25 ±0,05
332. Циклофосфан, 40 мг/кг 1 9,80 ± 1,31 * 4,51 ±0,20* 0,58 ± 0,02 1,62 ±0,04*3 8,19 ±0,87 4,08 ± 0,47 0,57 ±0,03 1,68 ±0,05*5 6,97 ±0,73 3,69 ±0,22 0,55 ± 0,04 1,62 ±0,09*7 6,41 ±0,69 3,36 ±0,39 0,47 ±0,01* 1,36 ±0,09
333. Группа исследования Сроки исследования, сутки Исследуемый орган
334. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
335. Контроль 894,8 ± 60,2 609,34 ±17,0 178,0 ± 12,5 207,2 ±15,0
336. Циклофосфан, 40 мг/кг 1 1295,8 ± 114,7* 624,0 ±49,50 196,9 ±5,2 404,4 ±12,8*3 1055,3 ±60,1 827,5 ±69,7* 196,9 ±20,6 412,2 ±31,3*5 673,6 ±51,6* 722,2 ± 55,6 185,0 ±10,2 306,4 ±12,7*7 642,8 ±70,3* 675,3 ±33,9 180,1 ±3,3 215,0 ± 15,3
337. Группа исследования Сроки исследования Исследуемый орган
338. Печень Почки Головной мозг Эритроциты
339. Контроль 482,1 ±24,2 477,6 ±47,8 22,23 ± 2,65 4,54 ±0,36
340. Циклофосфан, 40 мг/кг 1 день 523,1 ±56,8 520,6 ±61,0 13,7 ±0,80* 6,32 ±0,31*3 дня 551,3 ±61,8 479,6 ±37,4 15,43 ± 1,15* 4,55 ±0,415 дней 226,0 ± 40,8* 476,5 ± 44,9 12,40 ±1,32* 6,94 ± 0,40*7 дней 157,6 ±25,4* 447,9 ±24,0 11,46 ± 1,45* 8,25 ± 0,59*