Автореферат и диссертация по медицине (14.00.46) на тему:Непрямая молекулярно-генетическая идентификация при массовом поступлении неопознанных тел
- Ученая степень
- доктора биологических наук
- ВАК РФ
- 14.00.46
Оглавление диссертации Корниенко, Игорь Валериевич :: 2005 :: Санкт-Петербург
ВВЕДЕНИЕ.
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
МИТОХОНДРИАЛЬНАЯ ДНК КАК ОБЪЕКТ МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКОЙ ИДЕНТИФИКАЦИИ ЛИЧНОСТИ.
1.1. Маркеры ДНК, используемые при молекулярно-генетической идентификации личности человека.
1.2. Структурная организация митохондриальной ДНК.
1.3. Феномен гетероплазмии.
1.4. Мутации структурных генов мтДНК при различных патологиях.
1.5. МтДНК - как объект судебно-медицинских исследований.
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.
2.1. Сбор образцов биологических тканей.
2.2. Антропологические методы исследования.
2.3. Молекулярно-биологические методы исследования.
2.4. Статистическая обработка результатов исследования.
ГЛАВА 3. ОЦЕНКА ДИСКРИМИНИРУЮЩЕЙ СПОСОБНОСТИ НЕКОДИРУЮЩЕЙ ОБЛАСТИ МИТОХОНДРИАЛЬНОЙ ДНК.
3.1. Использование центрального региона (СИ.) Б-петли мтДНК в качестве дополнительного маркера для молекулярно-генетической идентификации личности.
3.2. Полиморфизм нуклеотидных последовательностей гипервариабельных сегментов 1-го и 2-го типов.
3.3. Анализ закономерностей появления точечных замен в гипервариабельных участках контрольного региона митохондриальной ДНК.
ГЛАВА 4. УВЕЛИЧЕНИЕ ИДЕНТИФИКАЦИОННОЙ ЗНАЧИМОСТИ мтДНК-ТИПИРОВАНИЯ ПРИ ДОПОЛНИТЕЛЬНОМ АНАЛИЗЕ СТРУКТУРНЫХ ГЕНОВ МИТОХОНДРИАЛЬНОГО ГЕНОМА.
ГЛАВА 5. НЕПРЯМАЯ мтДНК-ИДЕНТИФИКАЦИЯ В СЛУЧАЯХ НЕПОЛНЫХ РОДСТВЕННЫХ ГРУПП.
5.1. Комплексный анализ ядерных и митохондриальных ДНК-маркеров при непрямой идентификации личности.
5.2. Оптимизация баз данных митотипов для решения задач ДНК-идентификации личности.
ГЛАВА 6. РАЗРАБОТКА КРИТЕРИЕВ НАДЕЖНОСТИ ПРИ
ИНТЕРПРЕТАЦИИ РЕЗУЛЬТАТОВ мтДНК-ИДЕНТИФИКАЦИИ.
ГЛАВА 7. НЕПРЯМАЯ ДНК-ИДЕНТИФИКАЦИЯ НЕОПОЗНАННЫХ ОСТАНКОВ ВОЕННОСЛУЖАЩИХ, ПОГИБШИХ В ХОДЕ БОЕВЫХ ОПЕРАЦИЙ НА СЕВЕРНОМ КАВКАЗЕ.
7.1 Непрямая ДНК-идентификация при массовом поступлении неопознанных тел.
7.2 Единая информационная программная система, как основа автоматизации процесса ДНК-типирования личности и сопутствующего документооборота.
7.3 Разработка автоматизированной системы мтДНК-анализа для решения задач непрямой молекулярно-генетической идентификации неопознанных тел в условиях массового поступления останков.
Введение диссертации по теме "Клиническая лабораторная диагностика", Корниенко, Игорь Валериевич, автореферат
Проведение боевых операций в Северо-Кавказском регионе в 1994-1996 гг. повлекло за собой поступление значительного числа тел погибших военнослужащих (ТПВ), не подлежащих визуальному опознанию. Уже в начале 1995 года в связи с массовыми поступлениями неопознанных погибших российских военнослужащих перед руководством министерства обороны Российской Федерации (МО РФ) встала острая социально-политическая задача идентификации личности погибших. Данная задача осложнялась тем, что ни в МО РФ, ни в других ведомствах РФ не имелось структур, обладающих достаточным потенциалом сил и средств для решения такой широкомасштабной проблемы в кратчайшие сроки [Колкутин и соавт., 2003].
Кроме того, было очевидно, что только традиционными судебно-медицинскими методами идентификации справиться с этой задачей практически невозможно. Классические методы идентификации личности, основанные на сравнительном анализе морфологических признаков, изучении минерального состава костей скелета и других специальных технологиях, имеют предел идентификационных возможностей [Абрамов и соавт., 2000]. Отсутствовала и нормативно-правовая база для организации подобной работы, так как официально на момент первой чеченской кампании в МО РФ не существовало каких-либо руководящих документов, регламентирующих стратегию и тактику командования и медицинской службы военного ведомства в подобных ситуациях. В том числе и по этой причине внезапно возникшая необходимость идентификации личности в условиях массового поступления неопознанных тел стимулировала использование современных молекулярно-генетических методов в судебно-криминалистической практике.
Первые судебно-генетические экспертизы по установлению личности военнослужащих, погибших на территории Чеченской Республики, были проведены в 1995-1996 годах. Однако отсутствие на тот момент времени базы сравнительного биологического материала с одной стороны и опыта работы такого масштаба с другой, не позволяло проводить сколь-нибудь эффективное аналитическое сравнение генотипов погибших со всем массивом кровных родственников.
В 1998 году при непосредственном участии Комиссии при Президенте Российской Федерации по интернированным, военнопленным и пропавшим без вести началось формирование базы данных сравнительного материала, для чего было проведено массовое взятие крови родственников военнослужащих, погибших и пропавших без вести на территории Чеченской Республики. В том же году на базе 124 судебно-медицинской лаборатории Северо-Кавказского военного округа была создана лаборатория молекулярно-генетических исследований, основной задачей которой явилась идентификация личности тел неопознанных российских военнослужащих, погибших на территории Чеченской Республики, с помощью методов молекулярной генетики. Эти исследования являлись частью мероприятий, осуществляемых Правительством РФ в рамках программы по идентификации военнослужащих, погибших во время вооруженного конфликта 1994-96 гг. в районе Чеченской Республики: в постановлении № 1052 от 20 августа 1997 года Правительства РФ были определены требования по отношению к идентификационным исследованиям останков погибших в ходе чеченской войны, и, в частности, в качестве обязательного элемента предусмотрен анализ на уровне ДНК.
Применительно к специфике поставленной задачи, ввиду отсутствия референтной базы молекулярно-генетических данных на ТПВ, использовались методы так называемой непрямой идентификации или идентификации на основании установления фактов кровного родства [Гаврилей Ю.К. и соавт., 2002]. Около 40% ТПВ поступали на идентификационные исследования в состоянии сильной деградации или сравнительный материал на них был представлен только родственниками по материнской линии. В связи с этим основным методом молекулярно-генетической идентификации в таких случаях становился анализ полиморфизма митохондриальной ДНК (мтДНК).
Типирование локусов митохондриальной ДНК (мтДНК) в целях молекулярно-генетической идентификации личности незаменимо в случаях ограниченного количества исследуемого материала или сильной деградации биологических образцов. В настоящее время идентификационная значимость мтДНК-типирования определяется полиморфной природой двух гипервариабельных регионов D-петли (HV1 (16024-16365) и HV2 (73-340) [Wilson M.R. et al., 1993; Miller K.W.P. et al., 1996]. Однако невысокий потенциал дискриминации традиционно используемых митохондриальных маркеров не позволяет эффективно применять этот метод в случаях больших или открытых групп потенциальных источников данного образца [Holland M.M. et al., 1993; Inman K., Rudin N., 1997; Holland M.M., Parsons T.J., 1999]. Так как нуклеотидные последовательности мтДНК практически идентичны у всех матроклинных родственников, в методе мтДНК-типирования заложена не идентификация личности как таковой, а выяснение принадлежности испытуемой пробы к определенному митотипу или матрилинейному ряду [Parsons T.J., Coble M.D., 2001].
Эффективность использования генетических маркеров мтДНК в целях идентификации личности может быть существенно повышена при условии оценок дискриминирующего потенциала настоящего метода. Однако это может произойти только при наличии Баз Данных полиморфизма мтДНК для данной этнической группы. С использованием методов расшифровки первичных нуклеотидных последовательностей к настоящему времени накоплены многочисленные данные о полиморфизме гипервариабельных сегментов контрольного региона мтДНК в различных этнических группах [Lutz S. et al., 1998; Parson W. et al., 1998; Rousselet F., Mangin P., 1998; Crespillo M. et al., 2000; Dimo-Simonin N. et al., 2000; Pereira L. et al., 2000; Gabriel M.N. et al., 2001; Tagliabracci A. et al., 2001; Monson K.L. et al., 2002; Malyarchuk B.A. et al., 2003]. В общем случае, отсутствие частот митотипов для данной этнической группы приводит только к качественной оценке мтДНК-идентификации кровного родства: "родство исключается полностью" и "родство не исключается" [Гаврилей Ю.К. и соавт., 2002].
До недавнего времени анализ первичной структуры мтДНК предоставлял возможность надежной идентификации лишь в пределах относительно небольшой замкнутой группы потенциальных претендентов. Однако в ряде случаев возникает необходимость идентификации двух и более индивидуумов с одинаковыми нуклеотидными последовательностями гипервариабельных регионов (HV1 и HV2). То есть одна из основных проблем мтДНК-идентификации заключается в наличии абсолютно идентичных митотипов у двух и более исследуемых проб, что является следствием низкого потенциала дискриминации традиционно используемых митохондриальных маркеров (HV1 и HV2). И если два и более индивидуумов имеют идентичные митотипы по локусам HV1 и HV2, их дальнейшая дифференцировка в пределах данного подхода невозможна. Для повышения эффективности мтДНК-идентификации необходимо исследование дополнительных полиморфных генетических маркеров мтДНК.
Полиморфизм нуклеотидных последовательностей за пределами гипервариабельных локусов контрольного региона (HV1 и HV2) не используется в рутинной практике судебно-медицинской идентификации личности и установления кровного родства. Имеются данные литературы, свидетельствующие о наличии полиморфных позиций за пределами локусов HV1 и HV2 [Johnson K.P., Sorenson M.D., 1998; Балмышева Н.П., Соловенчук Л.Л., 1999; Ingman М. et al., 2000; Lee S.D. et al., 2002; Brandstatter A. et al., 2003; Lutz-Bonengel S. et al., 2003; Mishmar D. et al., 2003]. Поэтому исследование полиморфных позиций за пределами контрольного региона позволит получить ценную информацию, которая могла бы увеличить потенциал индивидуализации ДНК-идентификации личности.
Несмотря на наличие принципиальной возможности решения экспертной задачи, непрямая мтДНК-идентификация неопознанных тел в условиях их массового поступления — например, в ходе боевых действий, - является чрезвычайно трудоемкой задачей при использовании методов и средств, рассчитанных на применение в стандартных судебно-медицинских идентификационных экспертизах. Эти методы не приспособлены для решения аналитических задач, возникающих в условиях идентификационной работы, характеризующейся большим объемом и поточным поступлением объектов.
В условиях массового поступления неопознанных тел проблема идентификации останков связана в первую очередь с применением новых автоматизированных медико-криминалистических систем, основное назначение которых заключается в автоматической обработке огромных массивов первичной информации с целью предоставления точных данных об исключенных объектах идентификации и набора рекомендательных списков с вероятностными оценками возможного кровного родства с объектами сравнения.
Целыо настоящей работы явилась разработка комплекса новых молекулярно-генетических маркеров митохондриальной ДНК для определения наиболее эффективной стратегии непрямой молекулярно-генетической идентификации личности в условиях поточного исследования биологических объектов при массовом поступлении неопознанных тел.
Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:
1. Провести сравнительный анализ полиморфизма различных областей некодирующей области мтДНК и исследовать зависимость частоты точечных замен в контрольном регионе от расположения функциональных элементов митохондриального генома.
2. Исследовать полиморфизм нуклеотидных последовательностей в области структурных генов митохондриального генома и сравнить их дискриминирующую способность в качестве дополнительных генетических маркеров для непрямой мтДНК-идентификации личности.
3. Разработать критерии повышения надежности при интерпретации результатов непрямой мтДНК-идентификации с учетом механизма и частоты возникновения точечных нуклеотидных замен в мтДНК.
4. Провести анализ степени надежности непрямой мтДНК-идентификации при комплексном анализе генетических маркеров ядерной и митохондриальной ДНК в зависимости от размера рабочей базы данных митотипов.
5. С учетом опыта ДНК-идентификации военнослужащих, погибших в ходе боевых операций на Северном Кавказе разработать стратегию непрямой молекулярно-генетической идентификации личности в условиях поточного исследования биологических объектов при массовом поступлении неопознанных тел.
6. Разработать алгоритмы для решения задач непрямой мтДНК-идентификации личности при массовом поступлении неопознанных тел с учетом специфики перекрестной обработки массивов данных, получаемых для родственных групп и для неопознанных тел.
Научная новизна и теоретическое значение работы
По сравнению с НУ1 и НУ2 центральный регион (СЯ) Б-петли обладает наименьшим полиморфизмом. Тем не менее, дискриминирующая способность этого региона достаточна для использования локуса СЯ в качестве дополнительного генетического маркера при мтДНК-идентификации.
Показана неоднородность распределения полиморфных сайтов в контрольном регионе митохондриального генома, что связано с наличием функционально-значимых областей. Будучи лишенными функциональной нагрузки и потенциально нейтральными для генетического отбора, некоторые участки контрольного региона мтДНК обладают значительным полиморфизмом. Функционально-значимые участки некодирующей области мтДНК имеют наименьшее число "горячих" точек.
Впервые описана расширенная терминационно-ассоциированная нуклеотидная последовательность 3-го типа (ETAS3) в области гипервариабельного сегмента HV1 D-петли митохондриального генома человека. В районе гипервариабельного сегмента 2-го типа, HV2, описан блок консервативных нуклеотидных последовательностей (аналогичный CSB).
Показан взаимосвязанный характер точечных нуклеотидных замен в консервативных участках расширенных терминационных областей ETAS1 и ETAS2. На примере терминационных последовательностей (TAS, ETAS1 и ETAS2) показано, что дублирование функционально значимых участков D-петли мтДНК связано с наличием полиморфных позиций внутри этих областей.
С учетом механизмов возникновения нуклеотидных замен в мтДНК разработаны критерии повышения надежности при интерпретации результатов непрямой мтДНК-идентификации.
Введено понятие «Динамической» (постоянно пополняемой) Базы Данных первичных нуклеотидных последовательностей гипервариабельных регионов мтДНК для оценки идентификационной значимости непрямой мтДНК-идентификации.
Выделено 6 структурных генов ND2, ND3, ND5, ND6, CytB и АТР6, наиболее подходящих на роль дополнительных генетических маркеров митохондриального генома. Два из них (ND3 и ND6), вследствие небольших размеров, могут с успехом применяться для типирования высоко деградированных биологических образцов. Четыре маркера (ND2, АТР6, ND5 и CytB) имеют наиболее высокий дискриминирующий потенциал.
Практическое значение работы
Разработана концепция динамической базы данных митотипов. Использование объединенной базы данных европеоидных митотипов позволяет повысить идентификационную значимость ДНК-типирования более чем в 10 раз в случае уникальных типов мтДНК.
Показано, что вследствие высокого полиморфизма участок центрального региона О-петли и структурные гены мтДНК, такие как АТР6, Су1В, N02, N03, N05 и N06, могут быть использованы в качестве дополнительных генетических маркеров при мтДНК-идентификации личности. Показано, что дискриминирующая способность отдельно взятых структурных генов мтДНК ниже, чем гипервариабельных сегментов контрольного региона. Однако комплексный анализ этих генетических маркеров существенно повышает надежность мтДНК-идентификации личности.
Разработаны экспертные схемы для анализа совпадающих НУ1/11У2-профилей, которые должны предусматривать получение дополнительных данных секвенс-анализа о нуклеотидных последовательностях, лежащих за пределами участков 16024-16365 и 73-340.
Впервые в практике российской судебно-медицинской генетики проведена широкомасштабная непрямая молекулярно-генетическая идентификация военнослужащих, погибших в ходе боевых операций на Северном Кавказе в период за 1994-2002 годы. Разработаны принципы и стратегии ДНК-идентификации личности в условиях массового поступления неопознанных тел. Показано, что типирование биологических образцов, подвергшихся сильным гнилостным и термическим повреждениям наиболее эффективно по локусам ДНК, размер которых не превышает 200 оснований.
Разработана новая автоматизированная медико-криминалистическая система, использующая результаты мтДНК-анализа для решения задач непрямой идентификации личности на основе данных полиморфизма нуклеотидных последовательностей мтДНК в условиях поточной обработки информации при массовом поступления неопознанных тел.
Показано, что интеграция методов анализа некодирующей области мтДНК и области структурных генов в рамках единой схемы мтДНК-идептификации позволяет существенным образом повысить надежность непрямой идентификации с учетом статистических оценок.
Настоящее исследование является частью мероприятий, осуществляемых Правительством РФ (постановление № 1052 от 20.08.1997) в рамках программы по идентификации военнослужащих, погибших во время вооруженного конфликта 1994-96 гг. в районе Чеченской Республики.
Результаты настоящего исследования используются в образовательном процессе Ростовского государственного университета при подготовке специалистов биологического профиля.
Основные положения, выносимые на защиту:
1. Научно-методические принципы и подходы к решению задач непрямой молекулярно-генетической идентификации личности при массовом поступлении неопознанных тел наиболее эффективно реализуются при интеграции рутинных и компьютерных методов в идентификационных исследованиях, позволяющих производить сравнительный анализ ДНК-маркеров в условиях поточной обработки информации при массовом поступлении неопознанных тел.
2. Комплексный анализ структурных генов и всей некодирующей области мтДНК позволит повысить индивидуализирующую способность мтДНК-идентификации по традиционным генетическим маркерам (Н\П и НУ2) за счет увеличения количества уникальных митотипов.
3. Типирование маркеров ядерной и митохондриальной ДНК в рамках единой схемы идентификации личности на 2-3 порядка повышает надежность непрямой ДНК-идентификации личности в случае неполных родственных групп
4. Разработанная модель динамической базы данных нуклеотидных последовательностей типов мтДНК существенно повышает идентификационную значимость мтДНК-типирования.
5. Критерии надежности интерпретации результатов мтДНК-идентификации включают в себя сведения о скорости химических реакций, лежащих в основе точечных нуклеотидных замен, и генетическую локализацию нуклеотидной замены.
Заключение диссертационного исследования на тему "Непрямая молекулярно-генетическая идентификация при массовом поступлении неопознанных тел"
выводы
1. Анализ полиморфизма нуклеотидных последовательностей центрального региона и структурных генов мтДНК (ND2, ND3, ND4L, ND5, ND6, СОХ1, СОХЗ, CytB, АТР6) в качестве дополнительных генетических маркеров позволил дифференцировать около 94% идентичных НУ1+НУ2-митотипов. Однако структурные гены мтДНК обладают меньшим по сравнению со стандартными генетическими маркерами мтДНК (HV1 и HV2) потенциалом дискриминации и в качестве самостоятельных генетических маркеров для мтДНК-идентификации личности не представляют большого интереса.
2. Изучение полиморфизма структурных генов мтДНК позволило выделить шесть маркеров, наиболее перспективных для мтДНК-идентификации -это локусы ND2, ND3, ND5, ND6, CytB и АТР6. Комплексное типирование этих маркеров в 2 раза повышает дискриминирующую способность мтДНК-идентификации.
3. Дополнительное * исследование полиморфизма нуклеотидных последовательностей центрального региона D-петли (16366-00072) на 40% повышает потенциал дискриминации ДНК-идентификации личности. Анализ всей некодирующей области мтДНК позволяет свести к минимуму неоднозначность в интерпретации результатов мтДНК-идентификации при получении идентичных митотипов по локусам HV1 и HV2.
4. Распределение полиморфных сайтов в локусах HV1, HV2 и CR мтДНК носит неслучайный характер. Нуклеотидные последовательности функционально нейтральных участков контрольного региона более вариабельны по сравнению с функционально значимыми: TAS, ETAS1, ETAS2, ETAS3, CSB1, CSB2, mtTFl.
5. Использование для расчета вероятности кровного родства объединенной базы данных европейских митотипов позволяет на порядок увеличить дискриминирующую способность непрямой мтДНК-идентификации молекулярно-генетической верификации кровного родства для неполных родственных групп, когда идентифицируемые субъекты имеют уникальные митотипы.
6. С учетом статистических оценок комплексный анализ хромосомной ДНК, некодирующей области и структурных генов мтДНК в рамках единой схемы идентификации личности в условиях массового поступления неопознанных тел позволил существенно (более чем на 2-3 порядка) повысить надежность непрямой ДНК-идентификации личности.
7. Для повышения надежности результатов интерпретации непрямой мтДНК-идентификации необходимо учитывать механизмы возникновения точечных нуклеотидных замен в мтДНК. При интерпретации результатов мтДНК-идентификации личности необходимо учитывать скорость химической реакций, приводящей к той или иной нуклеотидной замене, характер генетической локализации точечной замены, а также количество генераций, отделяющих идентифицируемые объекты от образцов сравнения в матрилинейном ряду.
8. Повышение эффективности ДНК-идентификации биологических образцов, подвергшихся сильным гнилостным и термическим повреждениям, достигается за счет анализа генетических маркеров, размер которых не превышает 200 пар нуклеотидов.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Решение проблемы идентификации тел погибших военнослужащих является актуальной задачей без срока давности для всех цивилизованных стран мира. В рамках Министерства Обороны Российской Федерации существует ряд организационных мер и подразделений, выполняющих эту задачу напрямую или косвенно [Колкутин В.В. и соавт., 2003]. При значительной деградации исследуемого материала наилучшим способом зарекомендовали себя методы идентификации личности по локусам митохондриальной ДНК, Профили мтДНК родственников по материнской линии идентичны друг другу (если не учитывать крайне редкие мутации или замены в пределах одного матрилинейного ряда). Анализ мтДНК не является уникальным идентификатором личности, но позволяет установить принадлежность исследуемого образца к определенному матрилинейному ряду.
При проведении мтДНК-идентификации используются, в основном, те же подходы в организации исследования, контроле качества используемых материалов и в интерпретации получаемых результатов, что и при анализе ядерной ДНК. Однако существуют и отличия, обусловленные присущими мтДНК особенностями:, матроклинным наследованием, гетероплазмией, высокой копийностыо.
Основные этапы мтДНК-анализа состоят из пробоподготовки, создания множества копий нужного участка исходной мтДНК и идентификации продуктов энзиматической амплификации методом секвенирования. В результате секвенс-анализа формируются фрагменты нуклеотидной последовательности мтДНК в регионах HV1 и HV2, которые сравнивают с референтной последовательностью [Anderson S. et al., 1981], для абсолютного позиционирования и выявления возможного полиморфизма.
Использование генетических маркеров митохондриального генома существенно расширяют возможности молекулярно-генетической идентификации, особенно в случаях, когда типирование ядерных локусных систем оказывается неэффективным. Тем не менее, вследствие низкого дискриминирующего потенциала митохондриальных маркеров не всегда представляется возможным однозначно трактовать полученные данные прямого определения нуклеотидных последовательностей. Эффективность мтДНК-идентификации личности может быть повышена при условии оценок дискриминирующей способности всей некодирующей области мтДНК.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2005 года, Корниенко, Игорь Валериевич
1. Абрамов С.С., Гедыгушев И.А., Звягин В.Н., Назаров Г.Н., Томилин В.В. Медико-криминалистическая идентификация.- М.: Издательская группа НОРМА-ИНФРАМ, 2000.- 472 с.
2. Алтухов Ю.П., Салменкова Е.А. Полиморфизм ДНК в популяционной генетике // Генетика.- 2002. Т. 38.- С. 1173-1195.
3. Ашмарин И.П. Молекулярная биология.- JL: Медицина, 1974.- С. 186191.
4. Балановская Е.В., Нурбаев С.Д. Пространственная изменчивость генофонда человека: геногеография и отбор. Исследования по генетике.- СПб.: изд. СПбУ, 1999. вып. 12.- С. 104-116.
5. Балмышева Н.П., Соловенчук Л.Л. Ассоциация мутаций в генах цитохрома b и NADH-дегидрогеназы 5/6 митохондриальной ДНК соболя СMartes zibellina L.) // Генетика.- 1999. Т. 35. № 12.- С. 16811686.
6. Барсегянц Л.О. Судебно-медицинское исследование вещественных доказательств (кровь, выделения, волосы): Руководство для судебных медиков.- М.: Медицина, 1999.- 272 с.
7. Бунак В.В. Фотопортреты как материал для определения вариаций строения головы и лица // Советская антропология.- 1959. № 2.- С. 326.
8. Вейр Б. Анализ генетических данных.- М.: Мир, 1995,- 400 с.
9. Ю.Войнова Н.В., Корниенко И.В., Водолажский Д.И. Способ подбора особей русского осетра Acipenser guldenstadti в аквакультуре // Роспатент. Изобретение № 2202178 от 20.04.2003.
10. П.Гаврилей Ю.К., Корниенко И.В., Щербаков В.В., Иванов П.Л. Применение компьютерных программных средств при решении задач непрямой молекулярно-генетической идентификации неопознанных тел // Судебно-медицинская экспертиза.- 2002. № 2.- С. 11-16.
11. Гаева Е.Б., Нарежная Е.В., Корниенко И.В. Определение мутагенной активности на примере взаимодействия оснований ДНК с азотистой кислотой // Клиническая молекулярная диагностика.- 2004. № 1.- С. 16-18.
12. М.Гаузе Г.Г. Митохондриальная ДНК.- М.: Наука, 1977.- 288 с.
13. Гвоздев В.А. Регуляция активности генов, обусловленная химической модификацией (метилированием) ДНК // Соросовский образовательный журнал.- 1999. № 3.- С. 11-17.
14. Георгиев Г.П. Гены высших организмов и их экспрессия.- М.: Наука, 1989.- 255 с.
15. Горбунова В.Н.,.Баранов B.C. Введение в молекулярную диагностику и генотерапию наследственных болезней.- СПб.: Специальная литература, 1997.- 287 с.
16. Гречко В.В. Молекулярные маркеры ДНК в изучении филогении и систематики // Генетика.- 2002. Т. 38.- С. 1013-1033.
17. Дурнев А.Д., Середенин С.Б. Мутагены (скрининг и фармакологическая профилактика воздействий).- М.: Медицина, 1998328 с.
18. Захаров Е.В., Челомина Г.Н., Журавлев Ю.Н. Выделение ДНК из музейных экспонатов бабочек (Lepidoptera, Papilionidae) и ПЦР-анализ со случайными и универсальными ген-специфичными праймерами // Генетика.- 2000. Т. 36.- С. 1221-1229.
19. Иванов П.Л. Геномная дактилоскопия: гипервариабельные локусы и генетическое маркирование // Молекулярная биология.- 1989. Т. 23.- С. 341-347.
20. Иванов П.Л., Гуртовая C.B., Плаксин В.О, Вербовая Л.В., Рысков А.П.,t
21. Болдеску Н.Г. Геномная «дактилоскопия» с использованием в качестве зонда ДНК бактериофага М13 (экспертиза вещественных доказательств и идентификация личности) // Судебно-медицинская экспертиза.- 1989. № 4.- С. 39-42.
22. Иванов П.Л., Гуртовая C.B., Вербовая Л.В., Болдеску Н.Г., Плаксин
23. B.О., Рысков А.П. Геномная "дактилоскопия" в экспертизе спорного отцовства и определения биологического родства // Судебно-медицинская экспертиза.- 1990. № 2.- С. 36-38.
24. Иванов П.Л. Экспертная идентификация останков императорской семьи посредством молекулярно-генетической верификации родословных связей // Судебно-медицинская экспертиза.- 1998. № 4.1. C. 30-48.
25. Кантор Ч., Шиммел П. Биофизическая химия. Т. 1.- М.: Мир, 1984.258 с.
26. Кимура М. Молекулярная эволюция: теория нейтральности,- М.: Мир, 1985.-394 с.
27. Колкутин В.В., Харламов С.Г., Толмачев И.А. и др. Молекулярно-генетические методы в практике военной судебно-медицинской экспертизы // Воен. Мед. Журн.- 2000. № 3.- С. 12-16.
28. Колкутин В.В., Абрамов С.С., Ляненко В.А. Идентификация фрагментированных тел погибших из групповых захоронений // Воен. Мед. Журн.- 2002. № 6.- С. 13-17.
29. Колкутин В.В., Диденко A.C., Попов В.А., Смирении С.А., Фетисов В.А. Организация работы в Северо-Кавказском регионе по приему, исследованию и отправке погибших военнослужащих // Воен. Мед. Жур.- 2003. №3.- С. 21-24.
30. Константинов Ю.М., Вербицкий Д.С., Колесников С.И. Уникальный вариант инсерционного полиморфизма митохондриальной ДНК у представителя популяции приольхонских бурят // Бюл. Экспер. Биол. Мед.- 1999. Т. 128. № 7.- С. 66-68.
31. Корниенко И.В., Водолажский Д.И., Вейко В.П., Щербаков В.В., Иванов П.Л. Подготовка биологического материала для молекулярно-генетических идентификационных исследований при массовом поступлении неопознанных тел.- Ростов-на-Дону: РостИздат, 2001.256 с.
32. Корниенко И.В., Афанасьева Г.В., Щербакова Е.В., Иванов П.Л. Распределение аллелей локусов HLADQA1, LDLR, GYPA, HBGG, D7S8, GC среди населения России // Судебно-медицинская экспертиза.- 2002. № 3.- С. 20-23.
33. Корниенко И.В., Щербакова Е.В., Земскова Е.Ю., Иванов П.Л. Распределение аллелей локуса D1S80 в случайной выборке населения Российской Федерации // Судебно-медицинская экспертиза.- 2002. № 6.- С. 27-31.
34. Корниенко И.В., Водолажский Д.И., Михалкович Л.С. Использование структурных генов митохондриальной (мт)ДНК в целях идентификации личности // Клиническая лабораторная диагностика.2002. № 9.- С. 20.
35. Корниенко И.В., Водолажский Д.И., Михалкович Л.С., Павличенко Г.Н., Иванов П.Л. Полиморфизм гена 6-ой субъединицы комплекса НАДН-дегидрогеназы в российской популяции // Молекулярная Биология.- 2003. Т. 37. № 4. с. 595-600. .
36. Корниенко И.В., Брень А.Б., Войнова Н.В., Гуськов Е.П. Структурная организация митохондриальной ДНК позвоночных животных // Усп. Совр. Биол.- 2004. Т. 124. № 1.- С. 17-27.
37. Кочетков Н.К., Будовский Э.И., Свердлов Е.Д., Симукова H.A., Турчинский М.Ф., Шибаев В.Н. Органическая химия нуклеиновых кислот,- М.: Химия, 1970.- 720 с.
38. Кулайчев А.П. Методы и средства анализа данных в среде Windows. Stadia 6.0.- М.: Информатика и компьютеры, 1996,- 257 с.
39. Кураева Т.Л., Петеркова В.А., Носиков В.В., Сергеев A.C., Дедов И.И. Возможности прогнозирования инсулинозависимого сахарного диабета в семьях больных на основе исследования генетических маркеров // Сахарный диабет.- 1998. № 1.- С. 6-11.
40. Ладик Я. Квантовая биохимия для химиков и биологов.- М.: Мир, 1975.- 256 с.
41. Льюин Б. Гены.- М.: Мир, 1987.- 544 с.
42. Малярчук Б.А., Деренко М.В., Соловенчук Л.Л. Типы контрольного региона митохондриальной ДНК у восточных славян // Генетика.1995. Т. 31. №. 6.- С. 846-851.
43. Малярчук Б.А., Деренко М.В., Лапинский А.Г., Соловенчук Л.Л. Использование полимеразной цепной реакции в анализе древних ДНК (на примере Энмынвеемского мамонта) // Известия РАН. Серия биол.1996. №. 6.- С. 681-686.
44. Малярчук Б.А. Изменчивость митохондриальной ДНК у восточных славян // Цитология и генетика.- 1998. Т. 32. №. 5.- С. 10-16.
45. Малярчук Б.А., Деренко М.В. Изменчивость митохондриальной ДНК человека: распределение «горячих точек» в гипервариабельном сегменте I главной некодирующей области // Генетика.- 2001. Т. 37. №. 7.- С. 991-1001.
46. Малярчук Б.А., Деренко М.В., Денисова Г.А., Нассири М.Р., Рогаев Е.И. Полиморфизм митохондриальной ДНК в популяциях Каспийского региона и южной части Восточной Европы // Генетика.-2002. Т. 38. №.4.- С. 534-538.
47. Минченко А.Г., Дударева H.A. Митохондриальный геном.-Новосибирск: Наука. Сиб. Отд, 1990.- 194 с.
48. Роберте Дж., Кассерио М. Основы органической химии. Т. 2.- М.: Мир, 1978.- 671 с.63 .Рысков А.П. Мультилокусный ДНК-фингерпринтинг в генетико-популяционных исследованиях биоразнообразия // Молекулярная биология.- 1999. Т. 33.- С. 997-1011.
49. Сингер М., Берг П. Гены и геномы: в 2-х т. Т. 2.- М.: Мир, 1998.- 391 с.
50. Сирота Н.П., Васильева Г.В., Ломаева М.Г., Сирота А.Н., Безлепкин В.Г. Компьютерный анализ вариабильности полос на ДНК -фингерпринтах // Генетика.- 2000. Т. 36.- С. 570-574.
51. Сойфер В.Н. Молекулярные механизмы мутагенеза.- М.: Наука, 1969.-512с.
52. Томилин В.В., Гладких А.С. Судебно-медицинское исследование крови в делах о спорном отцовстве, материнстве и замене детей.- М.: Медицина, 1981.- 240 с.
53. Туманов А.К., Томилин В.В. Наследственный полиморфизм изоантигенов и ферментов крови в норме и патологии человека.- М.: Медицина, 1969.- 436 с.
54. Уотсон Дж. Молекулярная биология гена.- М.: Мир, 1978.- 720 с.
55. Флейс Дж. Статистические методы для изучения таблиц долей и пропорций.- М.: Финансы и статистика, 1989.- 319 с.
56. Молекулярная клиническая диагностика. Методы. Под ред. Херрингтона С., Макги Дж.- М.: Мир, 1999.- 558 с.
57. Adam W., Kurz A., Saha-Moller C.R. Peroxidase-catalyzed oxidative damage of DNA and 2'-deoxyguanosine by model compounds of lipid hydroperoxides: involvement of peroxyl radicals // Chem. Res. Toxicol.-2000.-Vol.13.- P. 1199-1207.
58. Altschul S.F., Gish W., Miller W., Myers E.W., Lipman D.J. Basic local alignment search tool // J. Mol. Biol.- 1990.- Vol. 215.- P. 403-410.
59. Alves-Silva J., da Silva Santos M., Guimaraes P.E., Ferreira A.C., Bandelt H.J., Pena S.D., Prado V.F. The ancestry of Brazilian mtDNA lineages // Am. J. Hum. Genet.- 2000.- Vol. 67.- P. 444-461.
60. AmpFlSTR Identifier PCR Amplification Kit. User's Manual.- PE Applied Biosystems, 2001.- P. 4-44-4-52.
61. Angers B., Bernatchez L., Complex evolution of a salmonid microsatellite locus and its consequences in inferring allelic divergence from size information//Mol. Biol. Evol.- 1997.- Vol. 14.- P. 230-238.
62. Antoshechkin I., Bogenhagen D.F. Distinct roles for two purified factors in transcription of Xenopus mitochondrial DNA // Mol. Cell. Biol.- 1995.-Vol. 15,-P. 7032-7042.
63. Aquadro C.F., Greenberg B.D. Human mitochondrial DNA variation and evolution: analysis of nucleotide sequences from seven individuals // Genetics.- 1983.- Vol. 103.- P. 287-312.
64. Arnaiz-Villena A. MHC research: fast forward // Immunology Today.-1993.-Vol. 14.- P. 3-5.
65. Arnason E., Rand D.M. Heteroplasmy of short tandem repeats in mitochondrial DNA of Atlantic cod, Cadus morhua II Genetics.- 1992.-Vol. 132.-P. 211-220.
66. Arnason U., Johnston E. The complete mitochondrial DNA sequence of the harbor seal, Phoca vitulina II J. Mol. Evol.- 1992.- Vol. 34.- P.493-505.
67. Arnason U., Gullberg A., Xu X. A complete mitochondrial DNA molecule of the white-handed gibbon, Hylobates lar, and comparison among individual mitochondrial genes of all hominoid genera // Hereditas.- 1996.-Vol. 124.-P. 185-189.
68. Arnason U., Gullberg A., Janke A. Molecular timing of primate divergences as estimated by two nonprimate calibration points // J. Mol. Evol.- 1998.-Vol.47.- P. 718-727.
69. Arnheim N., Cortopassi G. Deleierious mitochondrial DNA mutations accumulate in aging human tissues // Mutat. Res.- 1992.- Vol. 275.- P. 157167.
70. Aruoma O.I., Hallivell B. DNA-damage and free radicals // Chem. Brit.-1991.-Vol.27.- P. 149-152.
71. Attardi G., Montoya J. Analysis of human mitochondrial RNA // Methods in Enzymology.- 1983.- Vol. 97,- P. 435-469.
72. Attardi G., Schatz G. Biogenesis of mitochondria // Annu. Rev. Cell Biol.-1988.- Vol.4.- P. 289-333.
73. Avise J.C. Ten unorthodox perspectives on evolution prompted by comparative population genetic findings on mitochondrial DNA // Annu. Rev. Genet.- 1991.- Vol. 25.- P. 45-69.
74. Bär W., Brinkmann B., Budowle B., Carracedo A., Gill P., Holland M.,1.ncoln P.J., Mayr W., Morling N., Olaisen B., Schneider P.M., Tully G.,i
75. Wilson M. DNA Commission of the International Society for Forensic Genetics: Guidelines for mitochondrial DNA typing // Int. J. Legal. Med.-2000.-Vol. 113.- P. 193-196.
76. Barrientos A., Casademont J., Crdellach F., Estivill X., Urbano-Marquez A., Nunes V. Reduced steady-state levels of mitochondrial RNA and increased mitochondrial DNA amount in human brain with aging // Mol. Brain Res.- 1997.- Vol. 52.- P. 284-289.
77. Bendall K.E., Sykes B.C. Length heteroplasmy in the first hypervariable segment of the human mitochondrial mtDNA control region // Am. J. Hum. Genet.- 1995.- Vol. 57.- P. 248-256.
78. Bendall K.E., Macaulay V.A., Baker J.R., Sykes B.C. Heteroplasmic point mutations in the human mtDNA control region // Am. J. Hum. Genet.1996.-Vol. 59.-P. 1276-1287.
79. Bendall K.E., Macaulay V.A., Sykes B.C. Variable levels of a heteroplasmic point mutation in individual hair roots // Am. J. Hum. Genet.1997.-Vol. 61.-P. 1303-1308.
80. Bentzen P., Leggett W.C., Brown G.G. Length and restriction site heteroplasmy in the mitochondrial DNA of American Shad (Alosa sapidissima) // Genetics.- 1988.- Vol. 118.- P. 509-518.
81. Bidwell J.L., Bignon J.D. DNA-RFLP methods and interpretation scheme for HLA-DR and DQ typing // Eur. J. Immunogenet.- 1991.- Vol. 18.- P. 522.
82. Bielawski J.P., Nöack K., Pumo D.E. Reproducible amplification of RAPD markers from vertebrate DNA // Biotechniques.- 1995.- Vol. 18.- P. 856860.
83. Bimboim H.C. A superoxide action induced DNA strand-break metabolic pathway in human leukocytes: effects of vanadose // Biochem. Cell. Biol.-1988,- Vol. 66.-P. 374-381.
84. Birky C.W. Uniparental inheritance of mitochondrial and chloroplast genes: mechanisms and evolution // Proc. Natl. Acad. Sei. USA.- 1995.-Vol. 92.-P. 11331-1 1338.
85. Blanquer-Maumont A., Crouau-Roy B., Polymorphism, monomorphism, and sequences in conserved microsatellites in primate species // J. Mol. Evol.- 1995.- Vol. 41.- P. 492-497.
86. Blok R.B., Gook D.A., Thombum D.R., Dahl H.-H.M. Skewed segregation of the mtDNA nt8993 (T—>G) mutation in human oocytes // Am. J. Hum. Genet.- 1997.- Vol. 60.- P. 1495-1501.
87. Bodenteich A., Mitchell L.G., Merril C.R. A lifetime of retinal light exposure does not appear to increase mitochondrial mutations // Gene.-1991.-Vol. 108.-P. 305-309.
88. Bodmer W.F., Bodmer J.G. Evolution and function of the HLA system // Brit Med. Bull.- 1978.- Vol. 34.- P .390-416.
89. Bogenhagen D., Clayton D.A. The number of mitochondrial deoxyribnucleic acid genomes in mouse L and HeLa cells: quantitative isolation of mitochondrial deoxyribonucleic acid // J. Biol. Chem.- 1974.-Vol. 249.- P. 7991-7995.
90. Bogenhagen D.F. Repair of mtDNA in vertebrates // Am. J. Hum. Genet.- 1999.-Vol. 64.-P. 1276-1281.
91. Boore J.L. Animal mitochondrial genomes //Nucl. Acids Res.- 1999.-Vol. 27.-P. 1767-1780.
92. Bowcock A.M., Ruiz-linared A., Tomfohrde J., Minch E., Kidd J.R. High resolution of human evolutionary trees with polymorphic microsatellites//Nature.- 1994.- Vol. 368.- P. 455-457.
93. Brandstatter A., Parsons T., Parson W. Rapid screening of mtDNA coding region SNPs for the identification of west European Caucasian haplogroups // Int J Legal Med.- 2003.- Vol. 117.- P. 291-298.
94. Brenner S., Elgar G., Sandfond R., Macrae A., Venkatesh B., Aparicio S. Characterization of the pufferfish (Fugu) genome as a compact vertebrate genome//Nature.- 1993.- Vol. 366.- P. 265-268.
95. Brenner Ch. DNA*VIEW: an integrated software package for DNA identification // http://www.dna-view.com/dnaview.htm
96. Brohede J., Ellegren H. Microsatellite evolution: polarity of substitutions within repeats and neutrality of flanking sequences // Proc. R. Soc. Lond. Ser.- 1999.- Vol. 266.- P. 825-833.
97. Brown W.M., George M., Wilson A.C. Rapid evolution of animal mitochondrial DNA // Proc. Natl. Acad. Sei. USA.- 1979.- Vol. 76.- P. 1967-1971.
98. Brown G.G., Gadaleta G., Pepe G., Saccone C., Sbisa E. Structural conservation and variation in the D-loop-containing region of vertebrate mitochondrial DNA // J. Mol. Biol.- 1986.- Vol. 192.- P. 503-511.
99. Brown M.D., Wallace D.C. Molecular basis of mitochondrial DNA disease// J. Bioenergetics Biomembranes.- 1994.- Vol. 26.- P. 273-289.
100. Brown T.A. DNA sequencing.- Oxford: IRL Press, 1994.- 101 p.
101. Budowle В., Chakraborty R., Guisti A.M., Eisenberg A.J., Alien R.C. Analysis of the VNTR locus D1S80 by the PCR followed by highresolution PAGE // Am. J. Hum. Genet.- 1991.- Vol. 48.- P. 137-144.
102. Budowle В., Moretti T.R., Keys K.M., Koons B.W., Smerick J.B. Validation studies of the CTT STR multiplex system // J. Forensic. Sci.-1997.- Vol. 42.-P. 701-707.
103. Budowle B. CODIS and PCR-based short tandem repeat loci: Law enforcement tools // In: Proceedings from the Second European Symposium on Human Identification.- Promega. Madison. Wis., 1998.- P. 73-88.
104. Budowle В., Allen R.C. Analysis of Amplified Fragment-Length Polymorphisms (VNTR/STR Loci) for Human Identity Testing // Forensic DNA Profiling Protocols. Eds. P.J. Lincoln, Thomson J.- Totowa, New Jersey, Humana Press, 1998.- P. 155-172.
105. Budowle B., DiZinno J.A., Wilson M. Interpretation guidelines for mitochondrial DNA sequencing // The 10th Intern. Symposium on Human Identification.- Promega, 1999.
106. Budowle B., Wilson M.R., DiZinno J.A., Stauffer C., Fasano M.A., Holland M.M., Monson K.L. Mitochondrial DNA regions HVI and HVII population data// Forensic Sei. Int.- 1999.- Vol. 103.- P. 23-35.
107. Bugawan T.L., Saki R.K., Levenson C.H., Watson R.M., Erlich H.A. The use of non-radioactive oligonucleotide probes to analyze enzymatically amplified DNA for prenatal diagnosis and forensic HLA typing // Biotechnology.- 1988.- Vol. 6.- P. 943-947.
108. Burgoyne L.A. Solid medium and method for DNA storage // US patent, 1996.- Serial number 5,496,562.
109. Buyse I., Decorte R., Baens M., Cuppens H., Semana G., Emonds M.-P., Marynen P., Cassiman J.-J. Rapid DNA typing of class II HLA antigensusing the polymerase chain reaction and reverse dot blot hybridization //i
110. Tissue Antigens.- 1993.- Vol. 41.- P. 1-14.
111. Calloway C.D., Reynolds R.L., Herrin G.L., Anderson W.W. The frequency of heteroplasmy in the HVII region of mtDNA differs across tissue types and increases with age // Am. J. Hum. Genet.- 2000.- Vol. 66.-P. 1384-1397.
112. Campbell R.D., Trowsdale J. Map of the human MHC // Immunology Today.- 1993.- Vol. 14.- P. 349-352.
113. Cann R.L., Stoneking M., Wilson A.C. Mitochondrial DNA and Human Evolution//Nature.- 1987.- Vol. 325.- P. 31-36.
114. Cecconi F., Giorgi M.I., Mariottini P. Unique features in the mitochondrial D-loop region of the European sea bass Dicentrarchus labrax //Gene.- 1995.- Vol. 160.-P. 149-155.
115. Cesarone C., Bolognesi C., Santi L. Improved microfluorometric DNA determination in biological material using 33258 Hoechst // Anal. Biochem.- 1979.-Vol. 100.-P. 188-197.
116. Chen X., Prossner R., Simonetti S., Sadlock J., Jagiello G., Schon E.A. Rearranged mitochondrial genomes are present in human oocytes // Am. J. Hum. Genet.- 1995.- Vol. 57.- P. 239-247.
117. Christiansen G, Christiansen C. Heterology of mitochondrial DNA from mammals detected by electron microscopic heteroduplex analyses // Nucleic Acids Res.- 1983.- Vol. 11.- P. 37-56.
118. Clary D.O., Wolstenholme D.R. The mitochondrial DNA molecule of Drosophila Yacuba: nucleotide sequence, gene organization and genetic code // J. Mol. Evol.- 1985.- Vol. 22.- P. 252-271.
119. Clayton D.A., Doda J.N., Friedberg E.C. The absence of a pyrimidine dimer repair mechanism in mammalian mitochondria // Proc. Natl. Acad. Sei.- 1974,- Vol.71.- P. 2777-2781.
120. Clayton D.A. Transcription of the mammalian mitochondrial genome // Annu. Rev. Biochem.- 1984.- Vol. 53.- P. 573-594.
121. Clayton D.A. Transcription and replication of mitochondrial DNA // Hum. Reprod.- 2000.- Vol. 15.- P. 11-17.
122. Colbourne J.K., Neff B. D., Wright J.M., Gross M.R. DNA fingerprinting of bluegill sunfish (Lepomis macrochiris) using (GT)n microsatellites and its potential for assessment of mating success // Can. J. Fish. Aquat. Sei.- 1996,- Vol. 53.- P. 342-349.
123. Crespillo M., Luque J.A., Paredes M.,-Fernandez R., Ramirez E., Valverde J.L. Mitochondrial DNA sequences for 118 individuals from northeastern Spain // Int. J. Legal Med.- 2000.- Vol. 114.- P. 130-132.
124. Christiansen G., Christiansen C. // Nucl. Acids Res.- 1983.- Vol. 11.- P. 37-56.
125. Comas D., Paabo S., Bertranpetit J. Heteroplasmy in the control region of human mitochondrial DNA // Genome Res.- 1995.- Vol. 5.- P. 89-90.
126. Cummins J.M. Fertilization and elimination of the paternal mitochondrial genome //Hum. Reprod.- 2000.- Vol. 15.- P. 92-101.
127. Daxhelet G.A., Coene M.M., Hoet P.P., Cocito C.G. Spectrofluorometry of dyes with DNAs of different base composition and conformation // Anal. Biochem.- 1989.-Vol. 179.- P. 401-403.
128. Derenko M., Malyarchuk B., Shields G.F. Mitochondrial cytochrome b sequence from a 33 000 year-old woolly mammoth (Mammuthus primigenius)//Ancient Biomolecules.- 1997.-Vol. 1.- P. 149-153.
129. Dib C., Faure S., Fizames C., Samson D., Drouot N. A comprehensive genetic map of the human genome based on 5264 microsatellites // Nature.-1996.-Vol. 380.-P. 152-154.
130. Dietrich W.F., Miller J., Steen R., Merchant M.A., Damaron-Boles D. A comprehensive genetic map of the mouse genome // Nature.- 1996.- Vol. 389.- P. 149-152.
131. Dimitri P., Junakovic N. Revising the selfish DNA hypothesis. New evidence on accumulation of transposable elements in heterochromatin // Trends Genet.- 1999.- Vol. 15.-P. 123-124.
132. Dimo-Simonin N., Grange F., Taroni F., Brandt-Casadevall C., Mangin P. Forensic evaluation of mtDNA in a population from south west Switzerland // Int. J. Legal Med.- 2000.- Vol. 113.- P. 89-97.
133. Di Rienzo A., Wilson A.C. Branching pattern in the evolutionary tree for human mitochondrial DNA // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1991,- Vol. 88.-P. 1597-1601.
134. Dizdaroglu M., Bergtold D.S. Characterization of free radical-induced base damage in DNA at biologically relevant levels // Ann. Biochem.-1986.-Vol. 156.-P. 182-188.
135. Doda J.N., Wright C.T., Clayton D.A. Elongation of displacement-loop strands in human mouse mitochondrial DNA is arrested near specific template sequences // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1981.- Vol. 78.- P. 6116-6120.
136. Doersen C.J., Guerrier-Takada C., Altman S., Attardi G. Characterization of an RNase P activity from HeLa cell mitochondria. Comparison with the cytosol RNase P activity // J. Biol. Chem.- 1985.- Vol. 260.- P. 5942-5949.
137. Dufresne C., Mignotte F., Gueride M. The presence of tandem repeats and the initiation of replication in rabbit mitochondrial DNA // European J. Biochem.- 1996.- Vol. 235.- P. 593-600.
138. Dunbar D.R., Moonie P.A., Jacobs H.T., Holt U. Different cellular backgrounds confer a marked advantage to either mutant or wild type mitochondrial genomes // Proc. Natl. Acad. Sei. USA.- 1995.- Vol. 92.- P. 6562-6566.
139. Dykes D.D. Detection of red cell enzyme and serum protein polymorphisms in bloodstains: In: Serological Methods in Forensic Science (Eds: Rolih S.D., Judd W.J.). American Association of Blood Banks: Arlington, 1985.- P 63.
140. Edwards A., Civitello A., Hammond H.A., Caskey C.T. DNA typing and genetic mapping with trimeric and tetrameric tandem repeats // Am. J. Hum. Genet.- 1991.- Vol. 49.- P. 746-756.
141. Ellegren H. Mutation rates at porcine microsatellite loci // Mammal. Genome.- 1995.- Vol. 6.- P. 376-377. ^
142. Elliot J.C., Bowen K.L., Walker T., Sauve V.M., Fourney R.M.
143. Extraction of DNA from FTA blood stain collection cards for constructionth of a large STR national DNA // 7 Annual International Symposium of
144. Human Identification Scottsdale, Arizona U.S.A. September, 1997.
145. Englund P.T., Najduk S.L., Marini J.C. The molecular biology of trypanosomes // Ann. Rev. Biochem.- 1982.- Vol. 51.- P. 695-726.
146. Erlich H.A., Scheldon E.L., Horn G. HLA typing using DNA probes // Biotechnology.- 1986.- Vol. 4.- P. 975-981.
147. Evett I.W., Werett DJ., Pinchin R., Gill P. Bayesian analisis of single locus DNA profiles // Proceedings for the International Symposium of Human Identification.- Promega Corporation. Madison, 1989.- P. 77-101.
148. Evett I.W., Scranage J., Pinchin R. An illustration of the advantages of efficient statistical methods for RFLP analysis in forensic science // Am. J. Hum. Genet.- 1993.- Vol. 52.- P. 498-505.
149. Evett I.W., Weir B.S. Interpreting DNA evidence: statistical genetics for forensic scientists. Sunderland: Sinauer Associates, Inc. 1998.- 278 p.
150. Farias I.P., Orti G., Sampaio I., Meyer A. The cytochrome b gene as a phylogenetic marker: the limits of resolution for analysing relationships among cichlid fishes //J. Mol. Evol.- 2001.- Vol. 53.- P. 89-103.
151. Ferris S.D., Prager E.M., Ritte U., Wilson A.C. Mitochondrial DNA evolution in mice // Genetics.- 1983.- Vol. 105.- P. 681-721.
152. Finnila S., Lehtonen M.S., Majamaa K. Phylogenetic network for European mtDNÄ // Am. J. Hum. Genet.- 2001.- Vol. 68.- P. 1475-1484.
153. Fisher D.L., Holland M.M., Mitchell L., Sledzic P., Wilcox A.W., Wadhams M., Weedn V.W. Extraction, evaluation, and amplification of DNA from decalcified and undecalcified United States Civil War bone // J. Forensic Sei.- 1993.- Vol. 38.- P. 60-68.
154. Foran D.R., Hixson J.E., Brown W.M. Comparisons of ape and human sequences that regulate mitochondrial DNA transcription and D-loop DNA synthesis//Nuc. Acid. Res.- 1988.-Vol. 16.- P. 5841-5861.
155. Freese E.B. Transitions and transversions induced by depurination agents//Proc. Nat. Acad. Sei. USA.- 1961.- Vol. 47.- P. 540-545.
156. Fregeau C.J., Foumey R.M. DNA typing with fluorescently tagged short tandem repeats: a sensitive and accurate approach to human identification // Biotechniques.- 1993.- Vol. 15.-P. 100-119.
157. Fujii H., Shimada T., Goto Y., Okazaki T. Cloning of the mitochondrial genome of Rana catesbeiana and the nucleotide sequences of the ND2 and five tRNA genes // J. Biochem. (Tokyo).- 1988.- Vol. 103.- P. 474-481.
158. Gentil A., Le Page F., Cadet J., Sarasin A. Mutation spectra induced by replication of two vicinal oxidative DNA lesions in mammalian cells // Mutat. Res.- 2000.- Vol. 452,- P. 51-56.
159. Giles R.E., Blanc H., Cann H.M., Wallace D.C. Maternal inheritance of human mitochondrial DNA // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1980.- Vol. 77.-P. 6715-6719.
160. Gill P., Ivanov P.L., Kimpton C., Piercy R., Benson N., Tully G., Evett I., Hagelberg E., Sullivan K. Identification of the remains of the Romanov family by DNA analysis //Nat. Genet.- 1994.- Vol. 6.- P. 130-135.
161. Gordenin D.A., Kunkel T.A., Resnick M.A. Repeat expansion—all in a flap?//Nature Genet.- 1997.- Vol. 16.- P. 116*118.
162. Gyllensten U., Allen M. PCR-based HLA class II typing // PCR Methods and Applications.- 1991.-Vol. 1.-P. 91-98.
163. Gyllensten U., Wharton D., Josefsson A., Wilson A.C. Paternal inheritance of mitochondrial DNA in mice // Nature.- 1991.- Vol. 352.- P. 255-257.
164. Haber J.E., Louis E.J. Minisatellite origins in yeast and humans // Genomics.- 1998.-Vol. 15.- P. 132-135.
165. Hagelberg E., Gray I.C., Jeffreys A. Identification of the skeletal remains of a murder victim by DNA analysis // Nature.- 1991.- Vol. 352.-P. 427-429.
166. Haglund W.D., Reay D.T., Tepper S.L. Identification of Decomposed Human Remains by Deoxyribonucleic Acid (DNA) Profiling // J. Forensic Sci.- 1990.- Vol. 35.- P. 724-729.
167. Hall R.M., Nagley P., Linane A.W. // Mol. Gen. Genet.- 1976.- Vol. 145.- P. 169-175.
168. Hamazaki S., Koshiba M., Sugiyama T. Organ distribution of mutant mitochondrial tRNAleu(UUR) gene in a MELAS patient // Acta Pathologica Japónica.- 1993.-Vol. 43.- P. 187-191.
169. Hammond H.A., Jin L., Zhong Y., Caskey C.T., Chakraborty R. Evaluation of 13 short tandem repeat loci for use in personal identification applications //Am. J. Hum. Genet.- 1994.- Vol. 55.- P. 175-189.
170. Handt O., Krings M., Ward R.H., Paabo S. The retrieval of ancient human DNA sequences // Am. J. Hum. Genet.- 1996.- Vol. 59.- P. 368-376.
171. Handt O., Meyer S., von Haessler A. Compilation of human mtDNA control region sequences // Nuc. Acid. Res.- 1998.- Vol. 26.- P. 126.
172. Hanekamp J.S., Thilly W.G., Chaudry M.A. Screening for human mitochondrial DNA polymorphisms with denaturing gradient gel electrophoresis //Hum. Genet.- 1996.- Vol. 98.- P. 243-245.
173. Hasegawa M., Di Rienzo A., Kocher T.D., Wilson A.C. Toward a more accurate estimate for the human mitochondrial DNA tree // J. Mol. Evol.-1993.-Vol. 37.-P. 347-354.
174. Hauswirth W.W., Laipis P.J. Mitochondrial DNA polymorphism in a maternal lineage öf Holstein Cows // Proc. Natl. Acad. Sei. USA.- 1982.-Vol. 79,- P. 4686-4690.
175. Hauswirth W.W., Van de Walle M.J., Laipis P.J., Olivo P.D. Heterogeneous mitochondrial DNA D-loop sequences in Bovine tissue // Cell.- 1984.- Vol. 37.- P. 1001-1007.
176. Hauswirth W.W., Clayton D.A. Length heterogeneity of a conserved displacement-loop sequence in human mitochondrial DNA // Nucl. Acids Res.- 1985.-Vol. 13.-P. 8093-8104.
177. Hedrick P.W. Highly variable loci and their interpretation in evolution and conservation//Evolution.- 1999.- Vol. 53.- P. 313-318.
178. Ancient DNA: recovery and analysis of genetic material from paleontological, archaeological, museum, medical, and forensic specimens. Eds. Herrmann B., Hummel S.- New York, Berlin: Springer, 1994.- 264 p.
179. Higuchi R., Beroldingen C.H., Sensabaugh G.F., Erlich H.A. DNA typing from single hairs // Nature.- 1988.- Vol. 332,- P. 543-546.
180. Hixson J.E., Brown,W.M. A comparison of the small ribosomal RNA genes from the mitochondrial DNA of the great apes and humans: sequence, structure, evolution, and phylogenetic implications // Mol. Biol. Evol.-1986.- Vol.3.- P. 1-18.
181. Hochmeister M.N., Budowle B., Borer U.V., Eggmann U., Comey C.T., Dirnhofer R. Typing of deoxyribonucleic acid (DNA) extracted fromcompact bone from human remains // J. Forensic Sei.- 1991.- Vol. 36.- P. 1649-1661.
182. Hoelzel A.R., Lopez J.V., Dover G.A., O'Brien S.J. Rapid evolution of a heteroplasmic repetitive sequence in the mitochondrial DNA control region of carnivores//J. Mol. Evol.- 1995.-Vol. 39,-P. 191-199.
183. Holland M.M., Parsons T.J. Validation and Use of Mitochondrial DNA Sequence Analysis for Forensic Casework // Forensic Science Reviews.-1999.-Vol. 11.-P. 21-50.
184. Holloszy J.O., Coyle E.F. Adaptations of skeletal muscle to endurance exercise and their metabolic consequences // J. Appl. Physiol.- 1984.- Vol. 56.- P. 831-838.
185. Holt U., Harding A.E., Petty R.K.H., Morgan-Hughes J.A. A new mitochondrial disease associated with mitochondrial DNA heteroplasmy // Am. J. Hum. Genet.- 1990.- Vol. 46.- P. 428-433.
186. Hood D.A., Balaban A., Connor M.K., Craig E.E., Nishio M.L., Rezvani M., Takahashi M. Mitochondrial biogenesis in striated muscle //Can. J. Appl. Physiol.- 1994.- Vol. 19.-P. 12-48.
187. Horai S., Hayasaka K. Intraspecific nucleotide sequence differences in the major noncoding region of human mitochondrial DNA // Am. J. Hum. Gen.- 1990.- Vol. 46.- P. 828-842.
188. Horai S., Satta Y., Hayasaka K., Kondo R., Inoue T., Ishida T., Hayashi S., Takahata N. Man's place in Hominoidea revealed by mitochondrial DNA genealogy // J. Mol. Evol.- 1992,- Vol. 35,- P. 32-43.
189. Horai S., Hayasaka K., Kondo R., Tsugane K., Takahata N. Recent African origin of modern humans revealed by complete sequences ofhominoid mitochondrial DNAs // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1995.- Vol. 92.- P. 532-536.
190. Horn G.T., Richards B., Merrill J.J., Klinger K.W. Characterization and rapid diagnostic analysis of DNA polymorphisms closely linked to the cystic fibrosis locus // Clinical Chemistiy.- 1980.- Vol. 36.- P. 1614-1619.
191. Hoss M., Jaruga P., Zastawny T. H., Dizdaroglu M., Paabo, S. DNA damage and DNA sequence retrieval from ancient tissues // Nucleic Acids Res.- 1996.-Vol. 24.-P. 1304-1307.
192. Howell N., Halvorson S., Kubacka I., McCullough D.A., Bindoff L.A., Tumbull D.M. Mitochondrial gene segregation in mammals: Is the bottleneck always narrow? // Hum. Genet.- 1992.- Vol. 90.- P. 117-120.
193. Howell N., Xu M., Haivorson S., Bodis-Wollner I., Sherman J. A heteroplasmic LHON family: Tissue distribution and transmission of the 11778 mutation // Am. J. Hum. Genet.- 1994.- Vol. 55.- P. 203-206.
194. Howell N., Kubacka I., Halvorson S., Howell B., McCullough D.A., Mackey D. Phylogenetic analysis of the mitochondrial genomes from Leber hereditary optic neuropathy pedigrees // Genetics.- 1995.- Vol. 140.- P. 285302.
195. Howell N., Kubacka I., Mackey D.A. How rapidly does the human mitochondrial genome evolve? // Am. J. Hum. Genet.- 1996.- Vol. 59.- P. 501-509.
196. Howell N. MtDNA Recombination: What do in vitro data mean? // Am. J. Hum. Genet.- 1997.- Vol. 61.- P. 19-22.
197. Howell N., Mackey D. MtDNA mutation rates No need to panic. Reply to Macauley et al. // Am. J. Hum. Genet.- 1997.- Vol. 61.- P. 983990.
198. Howell N., Bogolin C., Jamieson R., Marenda D.R., Mackey D.A. MtDNA mutations that cause optic neuropathy: how do we know? // Am. J. Hum. Gen.- 1998.- Vol. 62.- P. 196-202.
199. Hühne J., Pfeiffer H., Brinkmann B. Heteroplasmic substitutions in the mitochondrial DNA control region in mother and child samples // Int. J. Leg. Med.- 1998.- Vol. 112.- P. 31.
200. Hühne J., Pfeiffer H., Waterkamp K., Brinkmann B. Mitochondrial DNA in human hair shafts existence of intra-individual differences? // Int. J. Legal Med.- 1999.-Vol. 112,-P. 172-175.
201. Hutchison C.A., Newbold J.E., Potter S.S., Edgell M.H. Maternal inheritance of mammalian mitochondrial DNA // Nature.- 1974.- Vol. 251.-P. 536-538.
202. Ingman M., Kaessmann H., Paabo S., Gyllensten U. Mitochondrial genome variation and the origin of modern humans // Nature.- 2000.- Vol. 408.- P. 708-713.
203. Inman K., Rudin N. An Introduction to Forensic DNA Analysis. Boca Raton, New York: CRC Press, 1997.- 256 p.
204. Innis M.A., Gelfand D.H., Sninsky J.J. PCR strategies.- San Diego: Academic Press, 1995.- 374 p.
205. Ishida N., Hasegawa T., Takeda K., Sakagami M., Onishi A., Inumaru S., Komatsu M., Mikoyama H. Polymorphic sequence in the D-loop region of equine mitochondrial DNA // Anim. Genet.- 1994.- Vol. 26.- P. 215-221.
206. Jazin E., Cavelier L., Eriksson I., Oreland L., Cyllensten U. Human brain contains high levels of heteroplasmy in the noncoding regions of mitochondrial DNA // Proc. Nat. Acad. Sei. USA.- 1996.- Vol. 93.- P. 12382-12387.
207. Jazin E., Soodyall H., Jalonen P., Lindholm E., Stoneking M., Gyllensten U. Mitochondrial mutation rate revisited: hot spots for heteroplasmy and polymorphism // Nat. Genet.- 1998.- Vol. 18.- P. 109110.
208. Jeffreys A., Wilson V., Thein S.L. Hypervariable minisatellite regions in human DNA//Nature.- 1985.- Vol. 314.-P. 67-73.
209. Jeffreys A., Wilson V., Thein S. Individual specific fingerprints of human DNA // Nature.- 1985.- Vol. 361.- P. 75-79.
210. Jeffreys A.J., Royle N.J., Wilson V., Wong Z. Spontaneous mutation rates to new length alleles at tandem-repetitive hypervariable loci in human DNA//Nature.- 1988.-Vol. 332.- P. 278-281.
211. Jenuth J.P., Peterson A.C., Fu K., Shoubridge E.A. Random genetic drift in the female gennline explains the rapid segregation of mammalian mitochondrial DNA // Nat. Genet.- 1996.-Vol. 14.-P. 146-151.
212. Johansen S., Guddal P.H., Johansen. Organization of the mitochondrial genome of Atlantic cod, Gadus morhua II Nucleic Acids Res.- 1990.- Vol. 18.- P. 411-419.
213. Johansson A., Goransson I., Larsson P., Sjostedt A. Extensive allelic variation among Francisella lularensis strains in a short-sequence tandem repeat region // J. Clin. Microbiol.- 2001.- Vol. 39.- P. 3140-3146.
214. Johnson K.P., Sorenson M.D. Comparing Molecular Evolution in Two Mitochondrial Protein Coding Genes (Cytochrome b and ND2) in the Dabbling Ducks (Tribe: Anatini) // Mol. Phylogen. Evol.- 1998.- Vol. 10.-P. 82-94.
215. Jones D.A. Blood samples: Probability of discrimination // J. Forensic Sei. Soc.- 1972.- Vol. 12.- P. 355-359.
216. Kahloun A.E., Chauvel B., Mauvieux V., Dorval I., Jouanolle A., Gicquel I., Gall J., David V. Localization of seven genes around the HLA-A locus //Hum. Mol. Genetics.- 1993.- Vol. 2.- P. 55-60.
217. Kaneda H., Hayashi J.I., Takahama S., Taya C., Lindahl K.F., Yonekawa H. Elimination of paternal mitochondrial DNA in intraspecific crosses during early mouse embryogenesis // Proc. Natl. Acad. Sei. USA.-1995.- Vol. 92.- P. 4542-4546.
218. Kang D., Miyako K., Kai Y., Irie T., Takeshige K. In vivo determination of replication origins of human mitochondrial DNA by ligation-mediated polymerase chain reaction // J. Biol. Chem.- 1997.- Vol. 272.- P. 1527515279.
219. Kappes D., Strominger J.L. Human class II major histocompatibility complex genes and proteins // Ann. Rev. Biochem.- 1988.- Vol. 57.- P. 9911028.
220. Kendall E., Sargent C.A., Campbell R.D. Human major histocompatibility complex contains a new cluster of genes between the HLA-D and complement C4 loci // Nucleic Acids Research.- 1990.- Vol. 18.- P. 7251-7257.
221. King M.P., Attardi G. Injection of mitochondria into human cells leads to a rapid replacement of the endogenous mitochondrial DNA // Cell.-1988.-Vol. 52.-P. 811-819.
222. Kirby L.T. DNA Fingerprinting: an Introduction.- New York: Stockton Press, 1992.- 366 p.
223. Klevytska A.M., Price L.B., Schupp J.M., Worsham P.L., Wong J., Keim P. Identification and characterization of variable-number tandem repeats in the Yersinia pestis genome // J. Clin. Microbiol.- 2001,- Vol. 39.-P. 3179-3185.
224. Kobilinsky L. Recovery and stability of DNA in samples of forensic science significance // Forensic Science Review.- 1992.- Vol. 4.- P. 67-87.
225. Koehler C.M., Lindberg G.L., Brown D.R., Beitz D.C., Freeman A.E., Mayfield J.E., Myers A.M. Replacement of bovine mitochondrial DNA by a sequence variant within one generation // Genetics.- 1991,- Vol. 129.- P. 247-255.
226. Kogelnik A.M., Lott M.T., Brown M.D., Navathe S.B., Wallace D.C. MITOMAP: a human mitochondrial genome database // Nuc. Acids Res.-1996.-Vol. 24.-P. 177-179.
227. Kogelnik A.M., Lott M.T., Brown M.D., Navathe S.B., Wallace D.C. MITOMAP: a human mitochondrial genome database—1998 update // Nuc. Acids Res.- 1998.- Vol. 26.- P. 112-115 (http://www.gen.emory.edu/mitomap.html).
228. Kondo R., Satta Y., Matsuura E.T., Ishiwa H., Takahata N., Chigusa S.I. Incomplete maternal transmission of mitochondrial DNA in Drosophila // Genetics.- 1990.- Vol. 126.- P. 657-663.
229. Kornberg A., Baker T.A. DNA Replication.- New York: Freeman, 1992.- 288 p.
230. Kornienko I.V., Vodolazhsky, Ivanov P.L. Genetic variation of the nine Profiler Plus loci in Russians // Int. J. Legal Medicine.- 2002.- Vol. 116.- P. 309-311.
231. Kornienko I.V., Vodolazhsky D.I., Ivanov P.L. The polymorphism of ND3, ND4L and ND6 structural genes of mtDNA among Russians // 14th International Symposium on Human Identification.- USA. Promega, 2003.-P. 48.
232. Krasnow M.A., Cozzarelli N.R. Catenation of DNA rings by topoisomerases. Mechanism of control by spermidine // J. Biol. Chem.-1982.- Vol. 257.- P.2687-2693.
233. Krings M., Geisert H., Schmitz R.W., Krainitzki H., Paabo S. DNA sequence of the mitochondrial hypervariable region II from the Neandertal type specimen // Proc. Natl. Acad. Sei. USA.- 1999.- Vol. 96.- P. 55815585.
234. Kumar S. Patterns of nucleotide substitution in mitochondrial protein coding genes of vertebrates // Genetics.- 1996.- Vol. 143.- P. 537-548.
235. Lagerstrom-Fermer M., Olsson C., Forsgren L., Syvanen A.C. Heteroplasmy of the human mtDNA control region remains constant during life //Am. J. Hum. Genet.- 2001.- Vol. 68.- P. 1299-1301.
236. Lanave C., Attimonelli M., De Robertis M., Licciulli F., Liuni S., Sbisa E., Saccone C. Update of AmmtDB: a database of multi-aligned metazoa mitochondrial DNA sequences // Nucl. Acids Res.- 1999.- Vol. 27.- P. 134137.
237. Lander E.S., Budowle B. DNA fingerprinting dispute laid to rest // Nature.- 1994.- Vol. 371.- P. 735-738.
238. Larsson N.G., Hoime E., Kristiansson B., Oldfors A., Tulinius M. Progressive increase of the mutated mitochondrial DNA fraction in Kearns-Sayre syndrome // Pediatr. Res.- 1990.- Vol. 28.- P. 131-136.
239. Larsson N.G., Eiken H.G., Boman H., Hoime E., Oldfors A., Tulinius M.H. Lack of transmission of deleted mtDNA from a woman with Kearns-Sayre syndrome to her child // Am. J. Hum. Genet.- 1992.- Vol. 50.- P. 360363.
240. Larsson N.G., Oldfors A., Holme E., Clayton D.A. Low levels of mitochondrial transcription factor A in mitochondrial DNA depletion // Biochem. Biophys. Res. Com.- 1994.- Vol. 200.- P. 1374-1381.
241. Levinson G., Gutman G.A. Slipped-strand mispairing: a major mechanism for DNA sequence evolution // Mol. Biol. Evol.- 1987.- Vol. 4.-P. 203-221.
242. Lewin B. Gene Expression, 2 Eucariotic Chromosomes.- New York: Wiley, 1980.-P.531-569.
243. Lindahl T. Instability and decay of the primary structure of DNA // Nature.- 1993.- Vol. 362.- P. 709-715.
244. Lunt D.H., Whipple L.E., Hyman B.C. Mitochondrial DNA variable number tandem repeats (VNTRs): utility and problems in molecular ecology//Mol. Ecology.- 1998.-Vol. 7.-P. 1441-1455.
245. Lutz S., Weisser H.-J., Heizmann J., Pollak S. Location and frequency of polymorphic positions in the mtDNA control region of individuals from Germany // Int. J. Legal Med.- 1998.- Vol. 111.- P. 67-77.
246. Lutz-Bonengcl S., Schmidt U., Schmidt T., Pollak S. Sequence polymorphisms within the human mitochondrial genes MTATP6, MTATP8 and MTND4 // Int. J. Legal. Med.- 2003.- Vol. 117.- P. 133-142.
247. Maca-Meyer N., Gonzalez A.M., Larruga J.M., Flores C., Cabrera,V.M. Major genomic mitochondrial lineages delineate early human expansions // BMC Genet.- 200.1.- Vol. 2.- P. 13.
248. Macauley V.A., Richards M.B., Forster P., Bendall K.E., Watson E., Sykes B.C., Bandelt H.J. MtDNA mutation rates No need to panic // Am. J. Hum. Genet.- 1997.- Vol. 61,- P. 983-990.
249. Macmillan C., Lach B., Shoubridge E.A. Variable distribution of mutant mitochondrial DNAs (tRNALeu3243.) in tissues of symptomatic relatives with MELAS: the role of mitochondrial segregation // Neurology.- 1993.-Vol. 43.-P. 1586-1590.
250. Malyarchuk B.A., Grzybowski T., Derenko M.V., Czarny J., Wozniak M., Miscicka-Sliwka D. Mitochondrial DNA variability in Poles and Russians//Ann. Hum. Genet.- 2002.- Vol. 66.- P. 261-283.
251. Malyarchuk B.A., Grzybowski T., Derenko M.V., Czarny J., Wozniak M., Miscicka-Sliwka D. Mitochondrial DNA variability in Bosnians and Slovenians // Ann. Hum. Genet.- 2003.- Vol. 67.- P. 412-425.
252. Mandel J.-L. Breaking the rule of three // Nature.- 1997.- Vol. 386.- P. 767-769.
253. Manfredi G., Thyagarajan D., Papadopoulou L.C., Pallotti F., Schon E.A. The fate of human sperm-derived mtDNA in somatic cells // Am. J. Hum. Genet.- 1997.- Vol. 61.- P. 953-960.
254. Marchington D.R., Hartshorne G.M., Barlow D., Poulton J. Homopolymeric tract heteroplasmy in mtDNA from tissues and single oocytes: support for a genetic bottleneck // Am. J. Hum. Genet.- 1997.- Vol. 60.- P. 408-416.
255. Marchington D.R., Macauley V., Hartshorne G.M., Barlow D., Poulton J. Evidence from human oocytes for a genetic bottleneck in an mtDNA disease//Am. J. Hum. Genet.- 1998.- Vol. 63.- P. 769-775.
256. Marshall H.D., Baker A.J. Structural conservation and variation in the mitochondrial control region of fringilline finches (Fringilla spp.) and the greenfinch (Carduelis chloris) // Mol. Biol. Evol.- 1997.- Vol. 14.- P. 173184.
257. Marzuki S., Noer A.S., Letrit P., Thyagarajan D., Kapsa R., Utthanaphol P., Byrne E. Normal variants of human mitochondrial DNA and translation products: the building of a reference data base // Human Genetics.- 1991.-Vol. 88,- P. 139-145.
258. Matthews P.M., Hopkin J., Brown R.M., Stephenson J.B.P., Hilton-Jones D,, Brown G.K. Comparison of the relative levels of the 3243 (A—>G) mtDNA mutation in heteroplasmic adult and fetal tissues // J. Med. Genet.-1994,- Vol. 31.-P. 41-44.
259. Mazzochi G., Robba C., Neri G. et al. // Cell Tissue Res.- 1976.- Vol. 172.- P. 149-156.
260. Meirelles F.V., Smith L.C. Mitochondrial genotype segregation during preimplantation development in mouse heteroplasmic embryos // Genetics.-1998.- Vol. 148.-P. 877-883.
261. Merriwether D.A., Clark A.G., Ballinger S.W., Schurr T.G., Soodyall H., Jenkins T., Sherry S.T., Wallace D.C. The structure of human mitochondrial DNA variation//J. Mol. Evol.- 1991.-Vol. 33.-P. 543-555.
262. Messier W., Li S., Stewart C. The birth of microsatellites // Nature.-1996.- Vol. 381.-P. 483.
263. Michaels G.S., Hauswirth W.W., Laipis PJ: Mitochondrial DNA copy number in bovine oocyles and somatic cells // Dev. Biol.- 1982.- Vol. 94.-P. 246-251.
264. Miclos G. Localized highly repetitive DNA sequences in vertebrate and invertebrate genome \\ Mol. Evol. Genet. Ed. Mclntyre R.J. New York: Plenum Press, 1985.-P. 241-321.
265. Miller K.W.P., Dawson J.L., Hagelberg E. A concordance of nucleotide substitutions in the first and second hypervariabie segments of the human mtDNA control region // Jnt. J. Leg. Med.- 1996.- Vol. 109.- P. 107-113.
266. Miller K.W.P., Budowle B. A compendium of human mitochondrial DNA control region: Development of an international standard forensic database // Croatian Medical J.- 2001.- Vol. 42.- P. 315-327.
267. Monnat R.J., Loeb L.A. Nucleotide sequence preservation of human mitochondrial DNA // Proc. Natl. Acad. Sei. USA.- 1985.- Vol. 82.- P. 2895-2899.
268. Monnat R.J., Reay D.T. Nucleotide sequence identity of mitochondrial DNA from different human tissues // Gene.- 1986.- Vol. 43.- P. 205-211.
269. Monson K.L., Miller K.W.P., Wilson M.R., DiZinno J.A., Budowle B.The mtDNA Population Database: An Integrated Software and Database
270. Resource for Forensic Comparison // Forensic Sci. Commun.- 2002.- Vol. 4.- № 2. (http://www.fbi.gov/hq/lab/fsc/april2002/mtDNA. htm).
271. Montoya J., Gaines G., Attardi G. The pattern of transcription of the human mitochondrial rRNA genes reveals two overlapping transcriptional units//Cell.- 1983.- Vol. 34.-P. 151.
272. Moriyama Etsuko N., Powell Jeffrey R. Synonymous substitution rates in Drosophila: Mitohondrial versus nuclear genes // J. Mol. Evol.- 1997.-Vol. 45.-P. 378-391.
273. Morley J.M., Bark J.E., Evans C.E., Perry J.G., Hewitt C.A.,- Tully G. Validation of mitochondrial DNA minisequencing for forensic casework // Int. J. Legal Med.- 1999.- Vol. 112.- P. 241-248.
274. Morling N. Amplification of Short Tandem Repeat Loci Using PCR // Forensic DNA Profiling Protocols. Eds. P.J. Lincoln and J. Thomson.-Totowa, New Jersey: Humana Press, 1998.- P. 173-180.
275. Mountain J.L., Hebert J.M., Bhattacharyya S., Underhill P.A., Ottolenghi C., Gadgil M., Cavalli-Sforza L.L. Demographic history of India and mtDNA-sequence diversity // Am. J. Hum. Gen.- 1995.- Vol. 56,- P. 979-992.
276. Mullis K.B., Faloona F.A. In: Methods in Enzymology. Wu R. (ed.).-New York: Academic Press, 1987.- Vol. 155.- P. 335.
277. Mullis K.B., Ferre F., Gibbs R.A. PCR, The Polymerase Chain Reaction.- Boston: Birkhauser, 1994,- 458 p.
278. Muniz P., Saez P., Iradi A., Vina J., Oliva M.R., Saez G.T. Differences between cysteine and homocysteine in the induction of deoxyribose degradation and DNA damage // Free Radic. Biol. Med.- 2001.- Vol. 30,- P. 354-362.
279. Myers K.A., Saffhill R., O'Connor P.J. Repair of alkylated purines in the hepatic DNA of mitochondria and nuclei in the rat // Carcinogenesis.-1988,- Vol. 9.- P. 285-292.
280. The Evaluation of Forensic DNA Evidence. National Research Council.-Washington: National Academy Press, 1996.
281. Needleman S.B., Wunsch Ch.D. A general method applicable to the search for similarities in the amino acid sequence of two proteins // J. Mol. Biol.- 1970.- Vol. 48.- P. 443-453.
282. Orekhov V., Poltoraus A., Zhivotovsky L.A., Spitsyn V., Ivanov P., Yankovsky N. Mitochondrial DNA sequence diversity in Russians // FEBS Lett.- 1999.- Vol. 445.- P. 197-201.
283. Paabo S. Mutational hot spots in the mitochondrial microcosm // Am. J. Hum. Genet.- 1996.- Vol. 59.- P. 493-496.
284. Parson W., Parsons T. J., Scheithauer R., Holland M. M. Population data for 101 Austrian Caucasian mitochondrial DNA d-loop sequences: Application of mtDNA sequence analysis to a forensic case // Int. J. Legal Med.- 1998.- Vol. 111.- P. 124-132.
285. Parsons T.J., Coble M.D. Increasing the Forensic Discrimination of Mitochondrial DNA Testing through Analysis of the Entire Mitochondrial DNA Genome // Croatian Medical Journal.- 2001.- Vol. 42.- P. 304-309.
286. Pereira L., Prata M.J., Amorim A. Diversity of mtDNA lineages in Portugal: not a genetic edge of European variation // Ann. Hum. Genet.-2000.- Vol. 64.-P. 491-506.
287. Pesole G., Gissi C., De Chirico A., Saccone C. Nucleotide substitution rate of mammalian mitochondrial genomes // J. Mol. Evol.- 1999.- Vol. 48.-P. 427-434.
288. Pfanner N. Mitochondrial import: crossing the aqueous intermembrane space //Curr. Biol.- 1998.- Vol. 8.- P. 262-265.
289. Pfeiffer H., Steighner R., Fisher R., Mörnstad H., Yoon C.-L., Holland M. M. Mitochondrial DNA extraction and typing from isolated dentin-experimental evaluation in a Korean population // Int. J. Legal Med.- 1998.-Vol. 111.-P. 309-313.
290. Piccolo G., Focher F., Verri A., Spadari S., Banff P., Mazzarello P. Myoclonus epilepsy and ragged red fibers: Blood mitochondrial DNA heteroplasmy in affected and asymptomatic members of a family // Acta Neural. Scand.- 1993.- Vol. 88.- P. 406-409.
291. Piko L., Matsumoto L. Number of mitochondria and some properties of mitochondrial DNA in the mouse egg // Dev. Biol.- 1976.- Vol. 49.- P. 110.
292. Pinz K.G., Bogenhagen D.F. Efficient repair of abasic sites in DNA by mitochondrial enzymes //Mol. Cell. Biol.- 1998.- Vol. 18.- P. 1257-1265.
293. Polymeropoulos M.H., Xiao H., Rath D.S., Merril C.R. Tetranucleotide repeat polymorphism at the human tyrosine hydroxylase gene (TH) // Nucleic Acids Res.- 1991.-Vol. 19.- P. 3753.
294. Prager E.M., Tichyt H., Sage R.D. Mitochondrial DNA Sequence Variation in the Eastern House Mouse, Mus musculus: Comparison With Other House Mice and Report of a 75-bp Tandem Repeat // Genetics.-1996.-Vol. 143.-P. 427-446.
295. Pult I., Sajantila A., Simanainen J., Georgiev O., Schaffner W., Paabo S. Mitochondrial DNA sequences from Switzerland reveal striking homogeneity of European populations // Biol. Chem.- 1994,- Vol. 375.- P. 837-840.
296. Rand M., Harrison R.G. Molecular population genetics of mtDNA size variation in crickets//Genetics.- 1989.- Vol. 121.- P. 551-569.
297. Rand M. Endotherms, ectotherms, and mitochondrial genome-size variation//J. Mol. Evol.- 1993.- Vol. 37.- P. 281-295.
298. Randerath K., Yang P., Danna T.F. Bulky adducts detected by 32P-postlabeling in DNA modified by oxidative damage in vitro. Comparison with rat lung I-compounds // Mutat. Res.- 1991.- Vol. 250,- P. 135-144.
299. Rawson P.D., Secor C.L., Hilbish T.J. The effects of natural hybridization on the regulation of doubly uniparental mtDNA inheritance in blue mussels (Mytilus spp.) // Genetics.- 1996.- Vol. 144.- P. 241-248.
300. Robin E.D., Wong R. Mitochondrial DNA molecules and virtual number of mitochondria per cell in mammalian cells // J. Cell. Phys.- 1988.- Vol. 136.- P. 507-513.
301. Roberti M., Musicco C., Polosa P.L., Gadaleta M.N., Cantatore P. DNA-helicase activity from sea urchin mitochondria // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 1996.- Vol. 219.-P. 134-139.
302. Roberti M., Musicco C., Paola L.P., Milella F., Gadaleta M.N., Cantatore P. Multiple protein-binding sites in the TAS-region of human and rat mitochondrial DNA // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 1998.- Vol. 243.- P. 36-40.
303. Rodrick G.E., Corter C.E., Woodcock G.L.F., Fairbairn D. Ascaris suum: mitochondrial DNA in fertilized eggs and adult body muscle // Exp Parasitol.- 1977.- Vol. 42.-P. 150-156.
304. Roe B.A., Ma D.P., Wilson R.K., Wong J.F. The complete nucleotide sequence of the Xenopusl laevis mitochondrial genome // J. Biol. Chem.-1985.- Vol. 260.- P. 9759-9774. }
305. Rousselet F., Mangin P. Mitochondrial DNA polymorphisms: a study of 50 French Caucasian individuals and application to forensic casework // Int. J. Legal Med.- 1998,- Vol. 111.- P. 292-298.
306. Russo C., Takezaki N., Masatoshi N. Efficiencies of different genes and different tree-building methods in recovering a known vertebrate phylogeny // Mol. Biol. Evol.- 1996.- Vol. 13.- P. 525-536.
307. Saccone C., Attimonelli M., Sbisa E. Structural elements highly preserved during the evolution of the D-loop-containing region in vertebrate mitochondrial DNA // J. Mol. Evol.- 1987.- Vol. 26.- P. 205-211.
308. Saiki R.K., Scharf S., Faloona F., Mullis K. B.3 Horn O. T., Erlich H. Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia // Science.- 1985.- Vol. 230.- P. 1350-1354.
309. Sajantila A., Lahermo P., Anttinen T., Lukka M., Sistonen P., Savontaus M.L., Aula P., Beckman L., Tranebjaerg L., Gedde-Dahl T., Issel-Tarver L.,
310. DiRienzo A., Paabo S. Genes and languages in Europe: an analysis of mitochondrial lineages // Genome Res.- 1995.- Vol. 5.- P. 42-52.
311. Saki R., Bugawan T.L., Horn G.T., Mullis K.B., Erlich H.A. Analysis of enzymatically amplified P-globin and HLA-DQa DNA with allele-specific oligonucleotide probes //Nature.- 1986.- Vol. 324.- P. 163-166.
312. Salas A., Comas D., Lareu M.V., Bertranpetit J., Carracedo A. MtDNA analysis of the Galician population: a genetic edge of European variation // Eur. J. Hum. Genetic.- 1998.- Vol. 6.- P. 365-375.
313. Savolainen P., Arvestad L., Lundeberg J. MtDNA Tandem Repeats in Domestic Dogs and Wolves: Mutation Mechanism Studied by Analysis of the Sequence of Imperfect Repeats // Mol. Biol. Evol.- 2000.- Vol. 17.- P. 474-488.
314. Sawaguchi T., Brenner Ch., Sawaguchi A. Application of DNA*VIEW & PATER to a kinship paternity case // Journal Leg Med.-1998.- Vol. 6.- P. 66-70.
315. Sbisa E., Tanzariello F., Reyes A., Pesole G., Saccone C., Mammalian mitochondrial D-loop region structural analysis: identification of new conserved sequences and their functional and evolutionary implications // Gene.- 1997.- Vol. 205.- P. 125-140.
316. Schatz G. The doors to organelles // Nature.- 1998.- Vol. 395.- P. 439440.
317. Schwartz M., Vissing J. Paternal inheritance of mitochondrial DNA // N. Engl. J. Med.- 2002.- Vol. 347.- P. 576-580.
318. Shadel G.S., Clayton D.A. Mitochondrial DNA maintenance in vertebrates // Annu. Rev. Biochem.- 1997.- Vol. 66.- P. 409-435.
319. Shinichi K., Minoru F. Structural organization of glycophorin A and B genes: Glycophorin B gene evolved by homologous recombination at Alu repeat sequences // Proc. Nat. Acad. Sci. USA.- 1989.- Vol. 86.- P. 46194623.
320. Shmookler Reis R.J., Goldstein S., Mitochondrial DNA in mortal and immortal human cells. Genome number, integrity, and methylation // J. Biol. Chem.- 1983.- Vol. 258.- P. 9078-9085.
321. Schneider P.M. Recovery of high-molecular-weight DNA from Blood and Forensic Specimens. In: Methods in Molecular Biology, Vol. 98: Forensic DNA Profiling Protocols, Eds.: Lincoln P.J., Thomson J., Totowa, NJ.: Humana Press, Inc., 1998.- P. 1-7.
322. Singh G., Maniccia-Bozzo E. Evidence for lack of mitochondrial DNA repair following cis-dichlorodiammineplatinum treatment // Cancer Chemother. Pharmacol.- 1990.- Vol. 26.- P. 97-100.
323. Slightom J.L., Blechl A.E., Smithies O. Human fetal Gy- and Ay-globin genes: complete nucleotide sequences suggest that DNA can be exchanged between these duplicated genes // Cell.- 1980.- Vol. 21.- P. 627-638.
324. Smith T.F., Waterman M.S. Comparison of biosequences //Adv. in Appl. Math.- 1981.- Vol. 2.- P. 482-489.
325. Smith K.H., Johns D.R., Heher K.L., Miller N.R. Heteroplasmy in Leber's hereditary optic neuropathy // Arch. Ophthalmol.- 1993.- Vol. 111.-P. 1486-1490.
326. Soong Deok Lee, Yoon Seong Lee, Jung Bin Lee. Polymorphism in the mitochondrial cytochrome B gene in Koreans an additional marker for individual identification // Int. J. Legal Med.- 2002.- Vol. 116.- P. 74-78.
327. Soodyall H., Jenkins T., Mukherjee A., Du Toil E., Roberts D.F., Stoneking M. The founding mitochondrial DNA lineages of Tristan Da Cunha islanders // Am. J. Phys. Anthropol.- 1997.- Vol. 104,- P. 157-166.
328. Southern S.O., Southern P.J., Dizon A.E. Molecular characterization of a cloned dolphin mitochondrial genome // J. Mol. Evol.- 1989.- Vol. 28.- P. 32-42.
329. Stailings R.L., Ford A.F., Nelson D., Torney D.C., Hildebrand C.E., Moyzis R.K. Evolution and distribution of (GT)n repetitive sequences in mammalian genomes//Genomics.- 1991.-Vol. 10.- P.807-815.
330. Steighner R.J., Holland M. Amplification and sequencing of mitochondrial DNA in forensic casework // Methods Mol. Biol.- 1998.-Vol. 98.-P. 213-223.
331. Stoneking M., Sherry S.T., Redd A.J., Vigilant L. New approaches the dating suggest a recent age for the human mtDNA ancestor// Phil. Trans. R. Soc. Lond.- 1992.- B 337.- P. 167-175.
332. Stoneking M. Mitochondrial DNA and human evolution // J. Bionerg. Biomembr.- 1994.- Vol. 26.- P. 251-259.
333. Strack H.B., Freese E.B., Freese E. Comparison of mutation and inactivation rates induced in bacteriophage and transforming DNA by various mutagens//Mut. Res.- 1964.-Vol. 1.- P. 10-21.
334. Suomalainen Anu. Mitochondrial DNA and disease // Ann. Med.- 1997.-Vol. 29.- P. 235-246.
335. Sutovsky P., Navara C.S., Schatten G. Fate of the sperm mitochondria, and the incorporation, conversion, and disassembly of the sperm tail structures during bovine fertilization // Biol. Reprod.- 1996.- Vol. 55.- P. 1195-1205.
336. Tabor S., Richardson C.C. Selective oxidation of exonuclease domain of bacteriophage T7DNA polymerase // J. Biol. Chem.- 1987,- Vol. 262.- P. 15330.
337. Tagliabracci A., Turchi C., Buscemi L., Sassaroli C. Polymorphism of the mitochondrial DNA control region in Italians // Int. J. Legal Med.-2001.- Vol. 114.- P. 224-228.
338. Tagliavini J., Battisti C., Conterio F. Polymorphic Ddel restriction sites in mitochondrial D-loop DNA from Emilian blood donors // Gene Geography.- 1993.- Vol. 7.- P. 221-229.
339. Tajima F. Statistical method for testing the neutral mutation hypothesis by DNA polymorphism // Genetics.- 1989.- Vol. 123.- P. 585-595.
340. Takeuchi T., Nakajima M., Morimoto K. Relationship between the intracellular reactive oxygen species and the induction of oxidative DNA damage in human neutrophil-like cells // Carcinogenesis.- 1996.- Vol. 17.-P. 1543-1548.
341. Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general sourse for polymorphic DNA markers \\ Nucl. Acids Res.- 1989.- Vol. 17.- P. 64636471.
342. Taylor J.S., Durkin J.M.H., Breden F. The death of a microsatellite: a phylogenetic perspective on microsatellite interruptions // Mol. Biol. Evol.-1999.-Vol. 16.- P. 567-572.y
343. Technical Working Group on DNA Analysis Methods: Guidelines for a quality assurance program for DNA analysis // Crime Lab. Digest.- 1991.-Vol. 18.- P. 44.
344. Technical Working Group on DNA Analysis Methods: Guidelines for a quality assurance program for DNA analysis // Crime Lab. Digest.- 1995.-Vol. 22.- P. 21.
345. Tegelstrom H., Hoggeren M. Paternity determination in the adder (Vipera berus) DNA fingerprinting or Random amplified polymorphic DNA? //Biochemical Genetics.- 1994.- Vol. 32.- P. 249-256.
346. Trowsdale J. Genomic structure and function in the MHC // TIG.- 1993.-Vol. 9.-P. 117-122.
347. Tully L.A. Examination of the use of forensic DNA typing from two perspectives: 1. Mitochondrial DNA heteroplasmy; 2. The role of DNA typing in criminal investigations // Doctoral dissertation. University of Maryland: Baltimore. MD. 1998.
348. Van Amstel H.K.P., Reitsma P.H. Tetranucleotide repeat polymorphism in the vWF gene // Nucleic Acids Res.- 1990.- Vol. 18.- P. 4957.
349. Van Belkum A., Scherer S., van Leeuwen W., Willemse D., van Alphen Z., Verbrugh H. Variable number of tandem repeats in clinical strains of Haemophilus influenzae // Infect. Immunol.- 1997.- Vol. 65.- P. 5017-5025.
350. Vilkki J., Savontaus M.L., Nikoskelainen E.K. Segregation of mitochondrial genomes in a heteroplasmic lineage with Leber hereditary optic neuoretinopathy // Am. J. Hum. Genet.- 1990.- Vol. 47.- P. 95-100.
351. Vogel F., Kopun M., Rathenberg R. Mutation and molecular evolution. In.: Molecular anthropology, Goodman M., Tashian R.E. (eds.).- New York: Plenum, 1976.- P. 13-33.
352. Wada C., Shionoya S., Fujino Y., Tokuhiro H., Akahoshi T., Uchida T., Ohtani H. Genomic instability of microsatellite repeats and its association with the evolution of chronic myelogenous leukemia // Blood.- 1994.- Vol. 83.- P. 3449-3456,
353. Wakeley J. Substitution rate variation among sites in hypervariable region 1 of human mitochondrial DNA // J. Mol. Evol.- 1993.- Vol. 37.- P. 613-623.
354. Wallace D.C., Singh G., Lott M.T., Hodge J.A., Schurr T.G., Lezza A.M., Elsas L.J., Nikoskelainen E.K. Mitochondrial DNA mutation associated with Leber's hereditary optic neuropathy // Science.- 1988.- Vol. 242.-P. 1427-1430.
355. Wallace D.C. Diseases of the mitochondrial DNA // Annu. Rev. Biochem.- 1992.- Vol. 61.- P. 1175-1212.
356. Wallace D.C. Mitochondrial genetics: A paradigm for aging and degenerative diseases? // Science.- 1992.- Vol. 256.- P. 628-632.
357. Walsh S.P., Fildes N., Louie A.S., Higuchi R. Report the Blind Trial of the Cetus AmpliType HLA DQa Forensic Deoxyribonucleic Acid (DNA) Amplification and Typing Kit // J. Forensic Sei.- 1991.- Vol. 36.- P. 15511556.
358. Walsh S.P., Metzger D.A., Higuchi R. Chelex 100 as a medium for simple extraction of DNA for PCR-based typing from forensic material // BioTechniques.- 1991.-Vol. 10.- P. 506-513.
359. Walsh P.S., Fildes N.J., Reynolds R. Sequence analysis and characterization of stutter products at the tetranucleotide repeat locus vWA //Nucleic Acids Res.- 1996.- Vol. 24.- P. 2807-2812.
360. Weber J.L. Informativeness of human (dC-dA)n • (dG-dT)nNpolymorphisms // Genomics.- 1990.- Vol. 7.- P. 524-530.
361. Weedn V.W. Forensic DNA tests // Clinics in Laboratory Medicine.-1996.-Vol. 16.-P. 187-196.
362. White M.T., Wagner E.K., Tewari K.K. Physicochemical characterization of Novikoff hepatoma mitochondrial DNA // Cancer Res.-1975.- Vol.35.- P. 873-879.
363. Whitehead P.H. A historical review of the characterization of blood and secretion stains in the forensic laboratory. Part One: Bloodstains // Forensic Sei. Rev.- 1993.- Vol.5.- P. 35.
364. Williams J.G.K., Kubelik A.R., Livak K.J., Rafalski J.A., Tingey S.V. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers//Nucleic Acids Research.- 1990.- Vol. 18.- P. 6531-6535.
365. Williams G.M., Jeffrey A.M. Oxidative DNA Damage: Endogenous and Chemically Induced // Regul. Toxicol. Pharmacol.- 2000.- Vol. 32.- P. 283292.
366. Wilkinson G.S., Mayer F., Kerth G., Petri B. Evolution of repeated sequence arrays in the D-loop region of bat mitochondrial DNA // Genetics.- 1997.- Vol. 146.-P. 1035-1048.
367. Wilson J.D., Moore G.A., Easteal S. Transmitted atypical methylation of mitochondrial (mt) DNA in the DIDMOAD syndrome // Diabetes.- 1994.-Vol.43.- P. 192.
368. Wilson M.R., Holland M.M., Stoneking M., DiZinno J.A., Budowle B. Guidelines for the Use of Mitochondrial DNA Sequencing in Forensic Science// Crime Laboratory Digest.- 1993.- Vol. 20.- P. 68-77.
369. Wilson M.R., DiZinno J.A., Polanskey D., Replogle J.5 Budowle B. Validation of mitochondrial DNA sequencing for forensic casework analysis // Int. J. Leg. Med.- 1995.- Vol. 108.- P. 68-74.
370. Wilson M.R., Polanskey D., Butler J., DiZinno J.A., Replogle J., Budowle B. Extraction, PCR amplification and sequencing of mitochondrial DNA from human hair shafts // BioTechniques.- 1995.- Vol. 18.- P. 662669.
371. Wiseman K., Kaur H., Halliwell B. DNA damage and cancer: measurement and mechanism // Cancer Lett.- 1995.- Vol. 93.- P. 113-120.
372. Wright J.M. Mutation at VNTRs: Are minisatellites the evolutionary progeny of microsatellites? \\ Genome.- 1994.- Vol. 37.- P. 345-347.
373. Xu X., Arnason U. A complete sequence of the mitochondrial genome of the Western lowland gorilla // Mol. Biol. Evol.- 1996.- Vol. 3.- P. 691-698.
374. Xu X., Arnason U. The mitochondrial DNA molecule of Sumatran orangutan and a molecular proposal for two (Bornean and Sumatran) species of orangutan //J. Mol. Evol.- 1996.- Vol. 43.- P. 431-437.
375. Yamamoto T., Davis C.G., Brown M.S., Schneider M.J., Casey M.L., Goldstein J.L., Rassel D.W. The human LDL receptor: a cysteine-rich protein with multiple Alu sequences in its mRNA // Cell.- 1984.- Vol. 21.-P. 27-38.
376. Yang F., Brune J.L., Naylor S.L., Cupples R.L., Naberhaus K.H., Bowman B.H. Human group-specific component (Gc) is a member of the albumin family // Proc. Nat. Acad. Sci. USA.- 1985.- Vol. 82.- P. 79947998.
377. Yao Y.G., Lu X.M., Luo H.R., Li W.H., Zhang Y.P. Gene admixture in the silk road region of China: evidence from mtDNA and melanocortin 1 receptor polymorphism// Genes Genet. Syst.- 2000.- Vol. 75.- P. 173-178.
378. Yoneda M., Chomyn A., Martinuzzi A., Hurko O., Attardi G. Marked replicative advantage of human mtDNA carrying a point mutation that causes the MELAS encephalomyopathy // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1992.-Vol. 89,-P. 11164-11168.
379. Zouros E., Oberhauser B.A., Saavedra C., Freeman K.R. An unusual type of mitochondrial DNA inheritance in the blue mussel Mytilus // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1994.- Vol. 91.- P. 7463-7467.
380. Zuliani G., Hobbs H.H. Tetranucleotide repeat polymorphism in the LPL gene //Nucleic Acids Res.- 1990.- Vol. 18.- P. 4958.r