Автореферат и диссертация по медицине (14.00.16) на тему:Мембраностабилизирующий эффект растворимых цитоплазматических факторов в миокарде и скелетных мышцах при стрессе и адаптации к нему
Автореферат диссертации по медицине на тему Мембраностабилизирующий эффект растворимых цитоплазматических факторов в миокарде и скелетных мышцах при стрессе и адаптации к нему
РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ МЕДИЦИНСКИХ НАУК НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ОБЩЕЙ ПАТОЛОГИИ И ПАТОФИЗИОЛОГИИ
г» и
/ / КОП 1939
ОД
На правах рукописи
МАЦКЕВИЧ Алексей Анатольевич
МЕМБРАНОСТАБИЛИЗИРУЮЩИЙ ЭФФЕКТ РАСТВОРИМЫХ ЦИТОПЛАЗМАТИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ В МИОКАРДЕ И СКЕЛЕТНЫХ МЫШЦАХ ПРИ СТРЕССЕ И АДАПТАЦИИ К НЕМУ.
14.00.16- патологическая физиология 03.00.04 - биохимия
АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук
Москва-1999
Работа выполнена в Научно-исследовательском институте общей патологу патофизиологии Российской академии медицинских наук
Научные руководители:
доктор биологических наук Сазонтова Татьяна Геннадьевна доктор биологических наук, профессор Архипенко Юрий Владимиров!
Официальные оппоненты:
доктор медицинских наук, профессор Глебов Рудольф Николаевич доктор биологических наук Полина Ольга Дмитриевна
Ведущее учреждение:
Российский Университет дружбы народов
Автореферат разослан-^^ентября 1999 года
Защита диссератции состоится «21» октября 1999 года в ^ ч на заседа! Диссертационного совета Д 001.03.01 при Научно-исследовательском инстит общей патологии и патофизиологии РАМН по адресу: 125315 Москва, Балтийская ;
Д.8.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Института
Ученый секретарь Диссертационного совета, кандидат медицинских наук
Л.Н. Скуратовская
Общая характеристика работы.
Актуальность проблемы
Поиск немедикаментозных методов защиты организма приобретает все большее ачение, являясь важной проблемой теоретической и практической медицины. В следние годы экспериментально показано, что а результате адаптации организма к рессорным и другим повреждающим воздействиям происходят изменения не лько на уровне целого организма [Меерсон, Пшенникова, 1988], изолированных танов и тканей, но и на уровне внутриклеточных мембранных структур [Сазонтова, '98]. Одновременно интенсивно развивается изучение отдельных ¡зкомолекулярных компонентов цитоплазмы клеток и их роли в повреждении и щите клетки. Однако, до сих пор практически отсутствуют данные о механизме 'йствия растворимых цитоплазматических факторов (РЦФ) в мембрано-абилизирующем эффекте адаптации. До настоящего времени не известны способы даже сама возможность репарации нарушенных функций на уровне утрикпеточных структур при стрессорных повреждениях.
Известно, что острое стрессорное воздействие различной природы приводит к рушениям функционирования сердечно-сосудистой системы, снижению ектрической стабильности сердца, нарушению метаболизма в кардиомиоцитах, и в нечном итоге к развитию ишемической болезни, кардиопатий, аритмий и т.д. еерсон, 1986]. В последнее десятилетие показано, что стресс-индуцированное вреждение на внутриклеточном уровне проявляется в значительном снижении эфективности функционирования мембранных ион-транспортирующих систем -),К-АТФазы плазматической мембраны, Са-АТФазы саркоплазматического тикулума (CP), Са-АТФазы плазматической мембраны и митохондрий [Arkhipenko а!.. 1985; Сазонтова Т.Г. и др., 1989; Parnham, Lunec, 1986; Zaidi et al., 1995]. При ом наряду со снижением устойчивости ферментов к действию эндогенных вреждающих факторов, значительно уменьшается также и скорость акционирования этих важнейших систем ферментов поддержания клеточного иного баланса. Степень ингибирования достигает 30-50%, что в отсутствии мпенсации приводит к снижению порога выживаемости. Такое существенное дение активности ферментов, наблюдаемое in vitro в изолированных мембранных эакциях, вызывает закономерный вопрос о совместимости этого явления с ¡наруженным поддержанием некоторых физиологических функций после стресса, от вопрос особенно актуален при изучении Са-транспортирующей системы CP юкарда, ответственной за поддержание Са-гомеостаза в клетке и реализацию кпа сокращение-расслабление. Действительно, показано, что даже длительный юционально-болевой стресс в течение 4-х или 6 часов [Белкина и др., 1983] не бывает достоверного изменения сократительной функции сердца - развиваемое вление и частота сердечных сокращений остаются на контрольном уровне.
Следовательно, е стрессированном сердце резкое падение активности зрментов ионного транспорта должно быть хотя бы частично скомпенсировано, обы поддерживать физиологические функции на прежнем уровне. Поскольку при трых воздействиях компенсация не может быть осуществлена за счет быстрого юсированного синтеза новых молекул ферментов ионного транспорта, можно лагать, что восстановление функции поврежденных при стрессе мембранно-язанных ферментов происходит за счет различных РЦФ, которые, как показано в
последнее время, быстро накапливаются в клетке при стрессе, ишемии, теплово шоке, индукции перекисного окисления липидов (ПОЛ) [Mulvagh et al. 1987; Graven i al., 1993; Melia et al., 1994; Nanji et al., 1995; Plumier et al., 1996; Bhattacharyya, Sei 1998]. Однако, данные о влиянии на мембранные системы клетки различнь низкомолекулярных соединений разрозненны и зачастую противоречивы, что связан с тем, что роль РЦФ практически не рассматривается в целом, а выделяются изучаются лишь отдельные цитоплазматические компоненты. Поэтому оцет суммарного эффекта РЦФ может являться актуальным информативным тестом.
Еще меньше данных о роли РЦФ при адаптации к различным факторам сред! При этом нужно учитывать, что адаптационные изменения в значительной степей реализуются на уровне самих мембран и связанных с ними ферментов - происход! смена изозимного состава, изменяется чувствительность к субстратам и регулятора и т.д. Однако, так же, как и в ситуации со стрессорными повреждениями, вопрос соотношении вклада в адаптационное изменение работы фермента процессо происходящих на уровне самого мембранно-связанного белка и участия мембранной адаптационной защите других факторов клетки, в частности, РЦ< остается открытым. Кроме того, не ясна возможность существования не толы прямого, но и перекрестного адаптационного защитного эффекта на внутрикпеточнс уровне, и его модулирования с помощью экзогенно добавленнь мембранопротекторов.
В связи с этим цель работы заключалась в том, чтобы оценить прямой перекрестный эффекты цитоплазматических факторов, накопленных в миокарде скелетных мышцах при остром стрессе и адаптации к нему, а также протекторнс действие природного термостабилизатора (а-кристаллина), на активность резистентность Са-транспортирующей системы СР.
В рамках этой цели решались следующие экспериментальные задачи:
1. Оценить повреждающий эффект острого стресса и протекторное действ! адаптации к стрессу на активность Са-насоса CP миокарда и скелетных мышц и е резистентность к повреждающим факторам - термоденатурации, автолизу, индукщ ПОЛ и др.
2. Провести моделирование стрессорного повреждения Са-насоса С скелетных мышц in vitro с помощью частичного окисления мембран и автолиза присутствии и отсутствии высоких концентраций Са2\
3L Исследовать действие РЦФ на стресс-индуцированные и адаптационнь изменения активности и конформационной стабильности Са-насоса CP, выяви тканеспецифичность проявления эффектов РЦФ в сердце и скелетных мыш Сравнить эффекты стресса и адаптации к нему на Са-насос CP, при определении е активности в гомогенатах сердца и скелетных мышц или в мембранных препарат CP из этих тканей.
4, Оценить перекрестные эффекты РЦФ, а именно: стрессорных РЦФ i мембраны CP миокарда и скелетных мышц от контрольных и адаптированж животных, а также адаптационных РЦФ на контрольные и стресс-поврежденж мембраны CP этих тканей.
5. Исследовать протекторное действие а-кристаллина на мембранную систе! Са-транспорта CP миокарда и скелетных мышц (в гомогенатах и мембранж препаратах) при стрессе и адаптации к нему. Оценить возможность усилен! протекторного действия а-кристаллина с помощью РЦФ. Выяснить возможное
/ществования репарационного эффекта а-кристаллина в отношении Са-насоса Р, поврежденного в результате стрессорного воздействия.
Научная новизна исследования. В настоящей работе впервые на нутриклеточном уровне продемонстрировано участие комплекса цитозольных эмпонентов в защитном эффекте на систему транспорта Са2* в CP миокарда энтрольных, стрессорных и адаптированных животных. Этот протекторный эффект азличается по степени выраженности в зависимости от состояния организма in vivo: эм значительнее исходно поврежден транспорт Са2<", тем больше защитный эффект итозольных факторов. Максимален он при стрессе, т.е. в ситуации, при которой эрмоустойчивость Са-насоса CP минимальна и наименее выражен этот эффект при цаптации к стрессу (т.е. при максимальной термоустойчивости). Сопоставление |ункционирования Са-транспортирующей системы CP, активность которой змерялась в гомогенате и в микросомальных препаратах CP в присутствии итоплазматических компонентов, показало аналогичные результаты.
Впервые продемонстрирована тканеспецифичность эффектов РЦФ в скелетных ышцах и миокарде. Показано, что РЦФ в сердце прежде всего увеличивают зрморезистентность мембранно-связанных ферментов, в то время как в скелетных ышцах не изменяя термостабильность Са-насоса CP, РЦФ значительно повышают эрвоначальную активность фермента. Несмотря на выраженную санеспецифичность проявления протекторного эффекта растворимых компонентов в эрдце, и в скелетной мышце стресс-индуцированные нарушения работы ембранных ферментов компенсируются в обеих тканях и поддерживается высокая £фективность их функционирования.
Впервые продемонстрирована возможность наличия перекрестных защитных £>фектов адаптации на внутриклеточном уровне в отличие от существования только эямых эффектов стрессорных цитоплазматических компонентов, которые (азывают защитное действие строго специфично только в отношении стресс-эврежденных Са-насоса миокарда и скелетных мышц и не имеют выраженного эйствия в контроле и при адаптации к стрессу. Цитозольные компоненты от каптированных животных как в сердце, так и скелетных мышцах, напротив, Зладают ярко выраженным перекрестным протекторным эффектом во всех группах, гзависимо от состояния организма.
Впервые показан защитный эффект а-кристаллина, повышающего активность и )нформационную стабильность Са-транспортирующей системы CP как скелетных ышц, так и миокарда, при этом его эффект проявляется только при наличии острых звреждающих воздействий, а именно при стрессе у контрольных или у оптированных животных. Обнаружена тканеспецифичность действия а->исталлина. В мембранных препаратах скелетных мышц а-кристаллин повышает шько начальную активность Са-насоса CP, причем для проявления своего действия i не требует присутствия дополнительных активаторов. В сердце защитный эффект ■кристаллина релизуется только при наличии РЦФ, накопленных при стрессе.
Теоретическое значение работы определяется тем, что в ней впервые изучен )ямой и перекрестный эффект цитозольных компонентов сердца и скелетных мышц ' стрессированных и адаптированных животных на функционирование мембранно-шзанного Са-насоса СР. Показана универсальность действия РЦФ, защищающих эмбраны CP от свободно-радикальных, автолитических и тепловых повреждений.
ч
Обнаружен репарационный эффект а- кристаллина, восстанавливающе
активность Са-насоса СР после повреждающего стрессорного воздействия.
Практическое значение работы состоит в том, что в ней на основе изучен; мембранопротекторного действия РЦФ сердца и скелетных мышц показа] возможность использования цитоплазматических компонентов для повышен! эффективности защитного действия адаптации к факторам среды. Применен! одного из РЦФ - неспецифического термостабилизатора а-кристаллина может бы эффективно при комплексной профилактике стрессорных повреждений, включающ* адаптационные воздействия различной природы для снижения «цены» адаптации для проявления максимального защитного эффекта от последующих повреждений.
Положения, выносимые на защиту.
1. Цитоплазматические компоненты оказывают протекторный эффект ( активность Са-насоса СР скелетных мышц и терморезистентность этого фермента миокарде, причем степень выраженности защиты тем больше, чем значительн( повреждена система транспорта Са2+ в СР.
2. Стрессорные цитоплазматические компоненты оказывают защитное действ1 строго специфично только в отношении стресс-поврежденных мембранно-связаннь ферментов, а цитозольные компоненты от адаптированных животных имеют яр( выраженный перекрестный протекторный эффект, независимо от состояв организма.
3. а-кристаллин в сердце и скелетной мышце оказывает протекторное репарационное действие на систему транспорта Са2* в СР при острых повреждающ! воздействиях, при этом в миокарде его эффекты проявляются только при наличу дополнительных цитоплазматических активаторов, т.е в гомогенатах или пр совместном действии РЦФ и а-кристаллина.
Апробация работы. Основные положения работы были доложены и обсужден на Первом региональном совещании по медицинским наукам «Роль свободнь радикалов в здоровом состоянии и при болезнях» (Иерусалим, Израиль, 1998 Всероссийской научной конференции, посвященной 150-летию со дня рождени И.П.Павлова (С.-Петербург, 1999), Всероссийской научной конференции «Свободны радикалы и болезни человека» (Смоленск, 1999), Международной конференции п гипоксии (Москва, 1999).
Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 147 страницах состоит из введения, обзора литературы, описания использованных материалов методов, 3 глав собственных исследований с обсуждением полученных результатов выводов. Список литературы содержит 229 источников. Диссертация иллюстрирован 25 рисунками.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Работа была проведена на 92 крысах-самцах Вистар массой 200-250 г. Кажда экспериментальная группа содержала 7-12 животных. Исследовани предусматривало несколько основных направлений. На первом этапе оценивал повреждающий эффект стрессорного воздействия (иммобилизация 3 часа) протекторное действие адаптации к стрессу (15 сеансов по 1 часу в день) н. эффективность функционирования Са-насоса СР миокарда и скелетных мышц.
Гомогенаты сердца и четырехглавой мышцы бедра получали путем измельчени: тканей этих органов гомогенизатором Шга-Тиггах ТР-18/10 ножом 25Ы-10 при 6501 об/мин в течение 60 сек (2 раза по 30 с интервалом 15 сек) в среде, содержащей 11
b
1 гистидина (pH 7,2 при 4°С) и 100 мМ NaCI при соотношении ткань:среда, вном 1:4.
Для проведения модельных экспериментов в целях изучения вклада РЦФ в цуцированные стрессом или адаптацией изменения активности и резистентности •насоса CP, а также с цепью сравнения двух видов измерения активности Са-:оса - в гомогенате и в микросомальной фракции, выделяли CP миокарда и ¡летных мышц, для чего полученные гомогенаты центрифугировали при 11000 'мин (10000 д) 20 минут на центрифуге "К-24". Осадок отбрасывали, а супернатант льтровали через 4 слоя марли, после чего центрифугировали 60 минут при 27000 мин (105000д) на центрифуге "Beket". Супернатант сохраняли и в дальнейших периментах использовали в качестве фракции, содержащей РЦФ, а осадок :пендировали в растворе, содержащем 0.6 М KCI, 5мМ гистидина (рН 7.0) с лощью гомогенизатора тефлон-стекло. После этого суспензию центрифугировали i 105000д 60 мин. Супернатант отбрасывали, а осадок ресуспендировали в 2,5 мл ¡ды хранения, содержащей 50 мМ NaCI, 5 мМ имидазола рН 7,0 при 4°С) и 20% церина. Концентрация белка в полученных микросомальных препаратах CP летных мышц составляла 5,6 мг/мл, а в миокарде - 6,3 мг/мл.
Определение скорости транспорта Са2* в CP осуществлялось с помощью Са-1ективного электрода с нелинейной характеристикой Са-ответа (иономер Orion ЕА-I) на основе более ранних разработок [Madeira, 1975; Ритов, Мурзахметова, 1985] методу [Meerson et al., 1990]. Для этого использовали оксалат №*(15мМ), который зывает поступающий в везикулы CP Са2\ что позволяло в течение длительного мени (5 мин и более) регистрировать максимальную скорость транспорта Са2* без ыщения им СР. Скорость транспорта Са2* в CP измеряли в микросомальной акции или в гомогенатах миокарда и скелетной мышцы при 37°С с непрерывной пьютерной обработкой on line. Образцы (30-50 мкл суспензии микросомальной зкции или приготовленного гомогената) помещали в 7 мл среды, содержащей 100 KCI, 20 мМ HEPES (рН 7,0 при 37°С), 4 мМ MgCl2, 5 мМ №N3, 15 мМ оксалат Na. У контрольных, стрессированных и адаптированных животных изучали явность Са-насоса и его резистентность к повреждающим воздействиям -моденатурации, автолизу в присутствии и отсутствии высоких концентраций Са2+, укции ПОЛ.
Для оценки устойчивости Са-транспортирующей системы к свободно-икальному повреждению при наличии и в отсутствии РЦФ в микросомальных паратах CP скелетной мышцы индуцировали ПОЛ in vitro системой, содержащей зрбат (0,25 мМ). Остановку свободно-радикальных процессов осуществляли с сщью ионола в концентрации 10 нмоль на 1 мг белка. При моделировании гссорных повреждений in vitro проводили частичное окисление микросомальной |кции CP при 37°С до потери 30% активности Са-транспорта СР. Для определения резистентности Са-насоса CP к автолизу в отсутствии и :утствии высоких концентраций Са2* и термоденатурации пробы по 50 мкг белка згената или 25 мкг белка микросомальной фракции CP инкубировали в течение 0 мин в термостатируемых ячейках с постоянным перемешиванием при 37°С и 2, соответственно, в среде, содержащей 100 мМ NaCI, 10 мМ гистидина (рН 7,5) концентрации белка - 2-5 мг в 1 мл. Затем через фиксированные временные /ежутки отбирались аликвоты на определение Са-транспорта в стандартных шиях.
На втором этапе было исследовано соотношение вклада в модулящ состояния Са-насоса СР миокарда и скелетных мышц при острых стрессорн! воздействиях и адаптации к ним, изменений на уровне мембран и опосредованнс действия РЦФ. Для этого у контрольных, стрессорных и адаптированных животн! изучали активность и термоустойчивость Са-насоса СР в присутствии РЦ полученных от тех же животных, что позволило оценить прямой эффект РЦФ соответствующие мембранные препараты. Параллельно были оцене! перекрестные эффекты РЦФ, а именно: стрессорных РЦФ на мембраны СР миокар, и скелетных мышц от контрольных и адаптированных животных, а так адаптационных РЦФ на стресс-поврежденные и контрольные мембраны СР эт тканей.
Для изучения влияния РЦФ на Са-транспортирующую систему СР в сре,! содержащую 100 мМ №С1, 10 мМ гистидина (рН 7,5 при 37°С) к микросомальн фракции СР добавляли РЦФ в соотношении, равном 1:3 мг белка микросомальн фракции к мг белка РЦФ для скелетной мышцы и 1:9 для миокарда. Затем в течен 2 мин при 37°С проводилась преинкубация и стандартные пробы отбирались д определения скорости транспорта Са2* в СР. В контроле вместо РЦФ добавля среду, содержащую 100 мМ №С1, 10 мМ гистидина (рН 7,5) в том же объеме. П изучении прямых эффектов РЦФ проводили инкубацию контрольнь стрессированных и адаптированных мембранных препаратов с соответствующи! РЦФ. При изучении перекрестных эффектов РЦФ к каждому из контрольнь стрессированных и адаптированных мембранных препаратов сначала добавля контрольные РЦФ, в другой серии экспериментов - стрессорные РЦФ и в третьей адаптационные РЦФ.
На третьем этапе исследовали возможность существования репарационнс действия одного из важных защитных РЦФ - неспецифического термостабилизато а-кристаллина на мембранную систему Са-транспорта СР миокарда и скелетн! мышц, поврежденных в результате острого стрессорного воздействия и сравнива защитный эффект а-кристаллина на Са-транспортирующую функцию СР п различных состояниях организма. Для этого изучали активность и резистентность С насоса СР контрольных, стрессорных и адаптированных животных в присутств оптимально подобранной концентрации а-кристаллина.
Для оценки действия а-кристаллина к суспензии, содержащей 80 мкг белка С до начала термоинактивации добавляли 0,4 мг а-кристаллина с последующ инкубацией в течение 1 мин. В дальнейшем пробы инкубировались в течение 10-мин в термостатируемых ячейках с постоянным перемешиванием либо при 41°С экспериментах по устойчивости фермента к термоденатурации), либо при 37°С экспериментах по устойчивости к автолизу), откуда через фиксированные времени! промежутки отбирались аликвоты на определение Са-транспорта в стандарта! условиях. Для определения возможности модулирования действия а-кристаллина Са-транспортирующую систему СР с помощью РЦФ, препараты СР миокар, инкубировали в присутствии одновременно добавленных РЦФ и а-кристаллина п описанных ранее соотношениях по белку. В качестве контроля на неспецифическ влияние белка вместо а-кристаллина использовали бычий сывороточный альбумь взятый в тех же, что и и-кристаллин весовых и объемных соотношениях.
Полученные данные выражены в форме М+Б.Е. Статистическая оцен достоверности отличий проведена по критерию I Стьюдента, а для серии влияния кристаллина на Са-транспортирующую систему СР миокарда использова
эпараметрический критерий статистики и (Вилкинсона-Манна-Уитни). Различия ежду группами считались достоверными при Р<0,05.
ЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ОБСУЖДЕНИЕ
Повреждающий эффект острых стрессорных воздействий на Са-эанспортирующую систему клетки и защитное действие адаптации к стрессу
Учитывая, что ранее при адаптации к стрессу изменение состояния ^триклеточных процессов в скелетной мышце практически не изучалось, на первом гапе определяли повреждающее действие стресса и эффективность защиты цаптации к нему на уровне мембранных структур в гомогенатах скелетных мышц.
Тест на термоинактивацию позволяет оценить конформационную стабильность олекулы. Как видно из рис. 1а, иммобилизационный стресс приводит к уменьшению зрмостабипьности (при температуре 41 °С) Са-насоса саркоплазматического этикулума (СР) скелетных мышц в 2 раза, по сравнению с контролем. После цаптации к стрессу термоустойчивость фермента значительно выше и через 10 мин зрмоинактивации скорость транспорта Са2* в 4 раза больше, чем в контроле. У ивотных, перенесших стресс на фоне предварительной адаптации не только элностью предупреждено стресс-индуцированное снижение термоустойчивости Са-эсоса скелетной мышцы, но она остается выше, чем в контроле.
Из полученных данных видно, что выбранная модель и длительность курса цаптации к стрессу увеличивает резистентность мембран СР к термоинактивации. В з же время примененная модель острого стресса снижает устойчивость мембранных груктур столь значительно, что даже на фоне курса адаптации он несколько снижает ггойчивость к термоинактивации Са-насоса, хотя и сохраняется на уровне более ысоком, чем в контроле. Таким образом, несмотря на отсутствие прямой нагрузки на селетную мышцу при стрессе, связанном с ограничением подвижности животных, ^триклеточные структуры скелетной мышцы повреждаются не меньше, а по ряду зраметров даже в большей степени, чем в миокарде.
Подобные закономерности были выявлены также при изучении устойчивости Са-эсоса сердца и скелетных мышц к другому повреждающему фактору - автолизу, эзволяющему оценить устойчивость молекулы к действию протеолитических |ерментов. На рис. 16 видно, что после адаптации значительно увеличена эзистентность Са-АТФазы к автолитическому повреждению - активность Са-насоса зеле адаптации в 2-3 раза выше, чем в контроле и при стрессе при всех временах зздействия. Это подтверждается данными по автолитическому повреждению в эисутствии высокой концентрации Са2+ при нейтральных рН, т.е в условиях, эобходимых для дополнительной активации протеолитической кальпаиновой «темы. На рис. 2 видно, что добавление 1мМ Са2* (1мМ) модулирует динамику нактивации Са-насоса СР в различных экспериментальных группах: при стрессе входная активность фермента практически не изменяется, но через 10 мин автолиза эдает на 34%. Можно предполагать, что это связано с активацией рН-нейтральной а-активируемой системой протеаз - кальпаиновой системы, которая реализует свое ействие при увеличении времени автолитического воздействия. У адаптированных ивотных добавление Са2* вызывает небольшое первоначальное снижение ктивности транспорта Са2*" в СР, которое в процессе автолиза нивелируется и ктивность Са-насоса СР восстанавливается практически до контрольного уровня. В эзультате по абсолютному значению скорость транспорта Са2* в СР скелетных ышц адаптированных животных даже после 10 мин автолитического воздействия в
„а
присутствии высокого уровня Са намного выше, чем в контроле и п| стрессе - в 1,5 и 2,7 раза, соответственно. Таким образом, высокая адаптационн; информационная устойчивость Са-насоса СР скелетных мышц, выявленная экспериментах по термоденатурации, сопровождается значительн( резистентностью фермента к действию протеаз. При изучении действия автолиза 1 мембранные структуры сердца зарегистрирована значительно более высок; резистентность Са-насоса СР миокарда по сравнению со скелетными мышцам Действительно, скорость автолитического повреждения Са-насоса СР миокарда и контрольных, и у стрессорных животных оказалась в 2 раза ниже, чем в скелетнс мышце. Скорость транспорта Са2* в СР миокарда стрессированных животных к \ глин составляет 19% от исходного уровня, что в 1,6 раза ниже аналогично! показателя в контроле, а в скелетных мышцах после стресса уже к 10 мин автопи; активность фермента в 2,1 раза ниже, чем в контроле. Таким образом, анал! полученных данных выявил повреждающий эффект стрессорного воздействия протекторный эффект адаптации на эффективность функционирования Са-насос СР и миокарда, и скелетных мышц при действии повреждающих факторов термоденатурации и автолиза в гомогенатах этих тканей.
Стресс-индуцированное снижение исходной скорости транспорта Са2* в СР н зарегистрировано как в цельных гомогенатах, так и микросомальных препаратах С миокарда (т.е. в отсутствии РЦФ). Однако, несмотря на то, что в гомогенатг скелетных мышц отсутствует стрессорное снижение скорости транспорта Са2* в СР, микросомальных препаратах СР скелетных мышц (рис. 4а,б) начальная активное! Са-насоса СР при стрессе уменьшается более, чем в 1,7 раза по сравнению контролем. Следовательно, в мышечных клетках должны содержатьс дополнительные протекторные механизмы, позволяющие поддерживат эффективность функционирования Са-транслортирующей системы СР. Поэтому дл оценки вклада РЦФ в изменение состояния мембранных ферментов при стрессе адаптации мы изучили их действие на Са-насос в выделенных мембранны препаратах СР.
Влияние РЦФ на активность и резистентность Са-транспортирующей систем! СР миокарда
Начальная скорость транспорта Са2* в СР в выделенных микросомальны грепаратах миокарда во всех группах в присутствии и в отсутствии РЦФ н вменяется, однако, термоустойчивость Са-насоса значительно различается.
Как видно из рис. 3 в контроле добавление РЦФ не изменило достоверн! начальную скорость транспорта Са2* в СР, однако термоустойчивость это! мембранно-связанной системы увеличилась на 15-20%. При стрессе, гд< термоустойчивость самой мембраны значительно снижена, добавление растворимы: компонентов приводит к настолько значительному повышению термостабильносп Са-насоса, что исходная активность полностью сохраняется в течение первых 1( мин, и даже к 20 мин термоинактивации активность транспорта Са2* составляет 42% что в 1,2 раза выше, чем в соответствующей точке контрольной группы и в 2 раз; Еыше, чем при стрессе без РЦФ. При адаптации к стрессу, где устойчивость самоь мембраны уже значительно повышена, добавление растворимых компонента! значительно меньше активирует Са-насос: скорость транспорта Са2* в СР увеличивается к первым 5 мин, сохраняется практически на исходном уровне к 1С мин
100 90
2яо
о
§70
X
Х60
н
о
5" 50 а
¿40
га
О
¿30 и
■¡20 н
10
А
й
-В
П контроль Пстресс
□ адаптация
□ стресс+адатация
**
**
а
5
5 10 15
время инкубации, мин
Рис. 1 Резистентность Са-насоса СР скелетных мышц, измеренного в гомогенатах к термоденатурации (41°С) (А) и автолизу (Б) в контроле, при стрессе, адаптации к стрессу и при стрессе на фоне предварительной адаптации. Указана достоверность отличий от контрольных значений: '-р<0,05, " - р<0,02.
70
60
х
с о 2
: 50
40
, 30
о
Й20
10
контроль
ы,
□ без Са Ос Са
А
0 10 время, мин
О 10
время, мин
70
60
и
1бо
2
^
о 40 г
Л зо
та О
| 20 та
10
адаптация
й
□ без Са Пс Са
В
о
ю
время, мин
Рис. 2 Влияние высокого уровня Са2+ на активность и резистентность транспорта Са к авпюлитическому повреждению в гомогенатах скелетных мышц в контроле (А), при стрессе (Б) и адаптации к нему (В).
\
О
Рис. 3 Влияние РЦФ на активность и терморезистентность Са-насоса выделенной фракции СР миокарда в контроле (А), при стрессе (Б), адаптации к стрессу (В) и при стрессе на фоне предварительной адаптации (Г). Указана достоверность отличий от контрольных значений: ' - р<0,05, " - р<0,02.
5 10 15 время инкубации, мин
5 10 15
время инкубации, мин
адаптация
—•—без РЦФ -О—с РЦФ
5 10 15 время инкубации, мин
Рис. 4 Влияние РЦФ на активность и тврморозистентность Са-насоса выделенной фракции СР скелетных мышц в контроле (А), при стрессе (Б), адаптации к стрессу (В) и при стрессе на фоне предварительной адаптации (Г). Указана достоверность отличий от контрольных значений: ' - р<0,05, " - р<0,02.
700
600
¡200
100
700
600
«N300
100
в
—беэРЦФ -в—РЦФ(С) -РЦФ(А) -РЦФ(К)
5 10 15 время инкубации, мин
20
адаптация
—♦—без РЦФ
—«3—РЦФ(С)
—Л—РЦФ(А) .............'I'1'.............
5 10 15 время инкубации, мин
700
Рис. 5 Перекрестный эффект РЦа при действии на активность и тер морезистентность Са-насоса выдв ленной фракции СР миокарда в кон тропе, при стрессе и адаптации I нему. Указана достоверность отли чий от контрольных значений: • -р<0,05, ** -р<0,02.
Рис. 6 Перекрестный эффект РЦ при действии на активность и те, морезистентность Са-насоса выд ленной фракции СР скелетных мыи. в контроле, при стрессе и адапт. ции к нему. Указана достоверносп отличий от контрольных значений: * - р<0,05, ** - р<0,02.
2,5
2 2 х х 2
§1.5 *
5
Я 1
с и
I4
с; о 2
*3 +
сч л О
52
X га
в
контроль
------ Я V,
щ
А л
И без крист И с крист
гЬ
м
О 10 20
время инкубации, мин
стресс
□ без крист В с крист
□ с бса
а
О 10 20
время инкубации, мин
2.5
О с
¡0,5
2
"2
1«
с о
13
адаптация
ЕЭ без крист В с крист
т
>
<
;
>?
гМ
0 10 20 время инкубации, мин
I
■"Зг:
стресс+адаптация
И без крист В с крист
Ос бса
Л
йЬ
П
и
N
п.
О 10 20
время инкубации, мин
2
51.5
Рис. 7 Влияние а-кристаллина на скорость и термоустойчивость Са-насоса в выделенных мембранных препаратах СР скелетных мышц в контроле (А), при стрессе (В), адаптации к стрессу (Б) и после стресса на фоне адаптации (Г). Указана достоверность отличий от значений без а-кристаллина: * - р<0,05.
Рис. В. Зависимость степв/м активации Са-насоса СР (мкмопь/мин/мг белка) скелетных мышц от увеличения дозы а-кристаллина (мг на 0,1 из белка) .
16
14
12
£ 10 о 2
= 8 +"
сч
™ о
О 6 С
< А
адаит+стресс
гВ
^ СЗ без крист ^ 0 с крист
XI
О 10
время инкубации, мин
О 10
время инкубации, мин
Рис. 9 Влияние а-кристаллина на скорость и термоустойчивость Са-насоса в микросомалыюй фракции СР в гомогенатах скелетных мышц (А) и миокарда (Б) в группе стресса на фоне адаптации.
600
,.500
1 г
2 400
л с; о
|зоо +
м
(П
О
с 200 и X та
е-ь 100
контроль
й
«
И
Р Ш
$ К*
О.
¥ $
□ контроль Ирцф
□ рцф+крист
3*1
О 10 20
время инкубации, мии
600
^.500 х
I400
с о 2
1300 +"
N
га О
с 200
и
г
Ь100
адаптация
яЬ
□ адаптация Прцф
□ рцф+крист
лъ
ж
О 10 20
время инкубации, мин
600
!_500 |
х
2400
л С О 2
= 300 +"
м
то О
¿200
100
В
1?
£
стресс
г!
т
0 стресс Ирцф □ рцф+крист
5
** й
&
ш
О 10 20
время инкубации, мин
600
О 10 20
время инкубации, мин
у
>
Рис. 10 Сопоставление прямого действия РЦФ и совместного добавления а-кристаллина и собственных РЦФ на активность и термоустойчивость Са-насоса СР скелетных мышц в контроле (А), при стрессе (В), адаптации к стрессу (Б) и после стресса на фоне адаптации (Г). Указана достоверность отличий от значений без РЦФ и а-кристаллина: * - р<0,05. " - р<0,02.
(93%) и в дальнейшем снижается к 20 мин до уровня, в 1,5 раза более ысокого, чем в контроле. Важно, что при стрессе на фоне адаптации ермоустойчивость как в присутствии, так и в отсутствии РЦФ остается на уровне даптированных мембран, т.е. полностью предупреждаются стресс-индуцированные овреждения Са-насоса, в то же время активирующий эффект РЦФ не оказывает начительного протекторного действия.
В результате, во всех группах цитоплазматические компоненты оказывают эщитный эффект на систему транспорта Са2* в CP миокарда, который различается о степени выраженности в зависимости от состояния организма in vivo: чем начительнее исходно поврежден транспорт Са2*" в CP, тем больше защитный ффект РЦФ. Максимален он при стрессе, т.е. в ситуации, при которой зрмоустойчивость Са-насоса была минимальной и наименее выражен этот эффект эи адаптации к стрессу (т.е. при максимальной термоустойчивости), а контроль знимает промежуточное положение. Такой значительный защитный эффект при грессе может быть связан с накоплением в цитозоле белков срочного ответа, синтез ггорых характерен для острых воздействий, например, продуктов протоонкогенов с-s, c-myc [Das et al., 1993], специфических белков-стабилизаторов [Bhattacharyya, эп, 1998], неспецифических белков семейства Hsp, антиоксидантов [Graven et al., 593; Plumier et al., 1996], различных шаперонинов группы GroL [Hook, Harding, 1997] термостабилизаторсв, в частности, а-кристаллина [Longoni et al., 1990].
Влияние РЦФ на активность и резистентность Са-транспортирующей системы Р скелетных мышц.
Мембранные препараты саркоплазматического ретикулума скелетных мышц леют значительно меньшую термоустойчивость, чем в миокарде, что аналогично юнице в терморезистентности этих ферментов в гомогенатах при измерении их в могенатах. По-видимому, это может быть связано с большей защитой миокарда от ислительных повреждений [Архипенко и др., 1997; Голанцова, Сазонтова, 1998]. >бавление РЦФ к мембранным препаратам CP скелетных мышц имеет отекторный эффект, однако, в отличие от сердца он реализуется не в отношении рмоустойчивости, а лишь исходной скорости транспорта Ca2t в СР. На рис. 4 видно, э в контроле, при стрессе и адаптации к нему, добавление РЦФ активирует анспорт Са2* в 1,5, 2,6 и 1,35 раза, соответственно. В скелетных мышцах также ализуется закономерность, обнаруженная нами в отношении сердца, а именно: ксимальный восстанавливающий эффект реализуется при стрессе, который иводит и к наибольшему (1,7-х кратному) снижению исходной активности ;рмента, минимален защитный эффект при адаптации, а контроль занимает эмежуточное положение. В результате, в присутствии РЦФ исходная активность -насоса CP при самых различных состояниях организма - в контроле, при стрессе и аптации - поддерживается на одном и том же уровне, что в отсутствии полнительных повреждающих воздействий позволяет мембранным структурам глетных мышц и после стресса функционировать на контрольном уровне, однако, змоустойчивость системы транспорта Са2* в CP ни в контроле, ни после стресса и зптации к стрессу в присутствии РЦФ не увеличивается.
Таким образом, завершая все выше сказанное, можно констатировать, что мбраннопротекторное действие адаптации на Са-насос CP формируется не только уровне самого мембранно-связанного фермента, но и может модулироваться с ющью РЦФ клетки. При этом РЦФ в значительной степени восстанавливают ивность и резистентность Са-транспортирующей системы CP мышечных клеток.
1В
Несмотря на выраженную тканеспецифичность проявления это;
эффекта, и в сердце, и в скелетной мышце стресс-индуцированные нарушеж работы мембранных ферментов компенсируются и поддерживается необходим; эффективность их функционирования.
Перекрестный эффект РЦФ на мембранно-связанный Са-насос С скелетных мышц и миокарда
Выше были описаны прямые эффекты РЦФ на транспорт Са2* в СР миокарда скелетных мышц контрольных, перенесших стресс и адаптированных к нег животных. Эксперименты с растворенными компонентами цитоплазмы разноименнь экспериментальных групп показали, что РЦФ могут иметь значительнь перекрестный эффект и модулировать транспортную активность Са-насоса С миокарда и скелетных мышц.
Перекрестные эффекты РЦФ на Са-насос СР миокарда
На рис. 5 показан перекрестный эффект стрессорных (РЦФс) и адаптационнь (РЦФА) компонентов цитоплазмы на мембраны СР сердец контрольнь стрессированных и адаптированных животных. Видно, что РЦФС oблaдa^ Еыраженным термостабилизирующим эффектом строго специфично только отношение стресс-поврежденных мембранно-связанных ферментов, при действии > на контрольные препараты СР не проявляют протекторного действия, а адаптированных даже снижают исходную активность Са-насоса СР (на 25%). другой стороны, РЦФд показали максимальный активирующий эффект и в контроле при стрессе, и при адаптации к нему, вызывая нехарактерное для прямых эффект собственных РЦФ увеличение исходной активности Са-насоса СР. Кроме Т01 наблюдается максимальное повышение конформационной стабильности Са-насо С.Р, который в контроле в наибольшей степени выражен на начальных этап термовоздействия, а при стрессе - на поздних (10-20 мин) этапах термовоздейств!* При этом у стрессированных животных речь идет не просто о восстановлен термоустойчивости Са-насоса до контрольного уровня, но и о дополнительн стабилизации этой ферментативной системы в результате действия РЦФд.
Таким образом, адаптация к иммобилизационному стрессу приводит, преж, всего, к повышению резистентности самого мембранно-связанного Са-насоса С Присутствие же РЦФ от адаптированных животных еще больше повыша термоустойчивость Са-насоса в СР миокарда животных всех экспериментальн! групп, увеличивая также исходную скорость транспорта. При этом исследован перекрестного эффекта РЦФА также показало зависимость действия РЦФ разн экспериментальных групп от состояния мембран СР. Так, максимальн выраженность эффекта РЦФА зарегистрирована при стрессе на поздних сроках ( мин) термовоздействия. Аналогично, влияние стресса сказывается в значительн степени на уровне мембранных структур СР, причем не столько на начальн скорости транспорта Са2* в СР, сколько на снижении его устойчивости термоинактивации, и на РЦФс, которые имеют повреждающее действие; и толькс препаратах СР стрессорной группы добавление РЦФС оказывает ярко-выраженн защитный эффект на Са-насос.
Аналогичные закономерности наблюдаются при перекрестном действ цитозольных факторов в скелетной мышце (рис.6). Так, РЦФс обладают выраженж активирующим эффектом только при действии на микросомальные мембраны свс же стрессорной группы, при действии же на контрольные и адаптированн
ipenapaTbi CP не проявляют протекторного действия. Добавление >ЦФ от адаптированных животных приводят к значительному повышению начальной скорости транспорта Са2* (в 1,5 - 2,5 раза) в контроле, при стрессе и адаптации к 1ему, в результате чего активность Са-насоса CP во всех группах не отличаются друг it друга в РЦФд. Кроме того, РЦФд увеличивают термостабильность мембран CP и от онтрольных (на 20%), и от стрессорных (на 70%) животных по сравнению с ¡ктивирующим эффектом их собственных РЦФ.
На наш взгляд, механизм действия РЦФд для контрольных и стрессированных сивотных может реализоваться через несколько возможных направлений. Во-первых, даптация повышает эффективность антиоксидантной системы, многие компоненты оторой являются растворимыми и участвуют в поддержании устойчивости от .ействия повреждающих, в частности, окислительных факторов [Сазонтова, 1987; iuckman et al, 1993; Lopez-Torres et al., 1993], что косвенно может стимулировать Са-асос СР. Во-вторых, показано, что различные виды адаптации сопряжены с интезом низкомолекулярных шаперонных структур, которые имеют как пецифические, так и неспецифические эффекты. К первым относятся белки, пособные специфически модулировать активность Са-насоса CP [Bhattacharyya, en, 1998], ко вторым - Hsp 23, 25, 27 и другие низкомолекулярные белки-эрмостабилизаторы и мембранопротекторы как, например, недавно обнаруженный в келетных мышцах «-кристаллин [Longoni et al., 1990; Hook, Harding, 1997].
Таким образом, активирующее действие РЦФд на мембранные клеточные /ютемы является универсальным свойством цитоплазмы клеток как миокарда, так и <елетных мышц, при этом эффект РЦФд распространяется на мембранные эепараты всех экспериментальных групп. Важно отметить, что в скелетных мышцах элее заметна «цена адаптации», выражающаяся в увеличении чувствительности ембранных препаратов CP скелетных мышц адаптированных животных к нгибирующему действию РЦФ повреждающей природы. Возможно, это связано с :м, что сердце как один из самых жизненноважных органов обладает механизмами, Зеспечивающими его максимальную защиту как при физиологических, так и при атофизиологических условиях [Архипенко и др., 1987; Каган, 1989; >ланцова.Сазонтова, 1998]. Кроме того, длительная адаптация приводит к переходу г синтеза белков срочного ответа на синтез белков «долгосрочного» ответа, которые леют преимущественный эффект на повышение стабильности мембранно-¡язанных ферментов, как это ярко видно на примере сердца.
Цитоплазматические факторы от стрессированных животных, в отличие от РЦФд : оказывают дополнительного активирующего действия на Са-насос CP в контроле при адаптации к стрессу, что совпадает с ситуацией в миокарде. При зделирование стрессорного повреждения Са-насоса CP скелетных мышц с >мощью частичного окисления контрольных мембранных препаратов при индукции ЭЛ in vitro мы не обнаружили защитный эффект РЦФС. что подтверждает 1ецифичность их действия, проявляющегося только при наличии комплекса >вреждений, реализующихся в стрессорных ситуациях in vivo.
Итак, РЦФс обладают специфическим защитным эффектом только на Са-насос D стрессорных животных, при этом следует отметить, что РЦФС скелетных мышц )ладают меньшей эффективностью поддержания термоустойчивости Са-насоса CP, i сравнению с РЦФс сердца. Отсутствие ярко выраженных защитных перекрестных эфектов РЦФс, по-видимому, связано с тем, что, во-первых, при остром
стрессорном воздействии не только накапливаются протекторные белк срочного ответа, но и меняется восприимчивость к ним мембранно-связанны ферментов (возможно, изменяется их конформационное и олигомерное состояние, также регуляция с помощью фосфоламбана, кальмодуллина и др.) [Pengarkul et al 1977; Cory et al., 1994] Во-вторых, наряду с синтезом протекторных соединение стресс неизбежно сопровождается накоплением в цитоплазме клеток фактороЕ снижающих устойчивость Са-насоса к повреждающим воздействиям. Возможно, эт связано с тем, что стресс приводит к увеличению содержания свободного Са2 которое ведет к прямому ингибиторному действию на Са-насос CP, а также може способствовать процессу олигомеризации молекул Са-АТФазы и таким образо! создавать новые пути истечения Са2* из везикул CP [Geimonen et al., 1994]. Кром того, повышенный уровень Са2* приводит к активации Са-зависимых нейтральны протеаз (кальпаинов). Кальпаины могут участвовать в протеолитической деградаци молекул Са-АТФазы (как в оптимальных, так и большей степени, в условия) сопровождающихся перегрузкой внутриклеточного Са2*), а также разобщат синхронизацию процессов гидролиза АТФ и транслокации Са2* [Falchetto, Vorher 1992].
Таким образом, эндогенные цитозольные факторы обладают как прямым, так перекрестным действием на мембранно-связанные ферменты при различно состоянии мембран. В третьей части работы была изучена возможность реализаци защитного действия одного из цитозольных компонентов - а-кристаллина.
Проявление шапероновой активности а-кристалпина на Са-насос CP пр стрессе и адаптации к нему.
Действие а-кристаллина на Са-насос CP скелетных мышц при стрессе адаптации к нему.
а-Кристаллин, составляющий до 30 % всех растворимых белков хрусталик глаза и до 5% всех растворимых цитоплазматических белков миокарда [Longoni et.al 1990], имеет ярко выраженную шапероновую активность по отношению к широком спектру белковых структур (антиоксидантные ферменты, структурные белю ферменты энергетического обмена и т.д.) [Hook, Harding, 1997; van der Klundertet. al 1998; Lee et al., 1998]. Важно, что защитное действие а-кристаллина реализуете только в отношении белков с нарушенной структурой в результате термовоздействи! снижения рН, окислительных модификаций и др. [Conconi et.al., 1998; Lee et.al., 199! Rajaraman et.al., 1998].
Перед оценкой действия а-кристаллина на мембранную систему транспорта Са' в CP скелетных мышц контрольных, стрессированных и адаптированных животнь была проведена калибровка доза-эффект. Оказалось (рис. 8), что достижени максимального эффекта а-кристаллина при увеличении его количества происходит узком концентрационном интервале 4,4 - 5,6 мг а-кристаллина на 1 мг белка | среднем 5:1) и не увеличивается при дальнейшем повышении соотношения с кристаллин/белок до 7-10 к 1. Эти данные вполне согласуются с оптимальны соотношением а-кристаллин/белок, при котором проявляется максимальны защитный эффект на растворимые и цитоскелетные белки [Hook, Harding, 199' Longoni et al., 1990].
Как видно из рис. 7 в скелетной мышце ни в контроле, ни после адаптации < кристаллин (при добавлении в соотношении 5 мг на 1 мг белка) не оказывае дополнительного активирующего действия, что связано либо с отсутствие
цогенных активаторов а-кристаллина (в контроле), либо уже достаточно вышенной термоустойчивостью мембран CP (при адаптации). В то же время, йствие а-кристаллина на фоне острого стресса показывает совершенно другую зтину. Во-первых, в присутствии а-кристаллина полностью предупреждается )есс-индуцированное падение активности Са-насоса CP и восстанавливается тгрольный уровень этого параметра, хотя восстановления термоустойчивости рмента при этом не происходит. Во-вторых, в группе стресс на фоне адаптации а-1сталлин проявляет ярко выраженный (3-х кратный) активирующий эффект на содную активность Са-насоса CP, не изменяя термоустойчивость фермента, жно предположить, что острое стрессорное воздействие приводит к накоплению 5Комолекулярных шапероновых белков различной природы, часть из которых жет являться активаторами а-кристаллина [Ito et al., 1997; Mehlen et al., 1995]. При мелировании стресса (автолиз контрольных мембран in vitro) а-кристаплин теряет >ю активирующую способность в отличие от активирующего действия а-юталлина на начальную скорость транспорта Са2+ в CP в экспериментальных ппах, подвергавшихся повреждающему воздействию (стрессу) in vivo. ^ствительно, после 20 мин автолиза при 37°С скорость транспорта Ca2* в CP 1жена в 2 раза т.е. в той же степени, что и при стрессе. Однако, и в ситуации in vitro цитный эффект а-кристаллина также может проявляться, если его добавлять честно с РЦФ, как например, в контрольной группе, где значительно (в 1,4 раза) ¡ышается устойчивость Са-насоса CP к автолитическому воздействию.
Таким образом, из полученных результатов видно, что шаперонная активность эисталлина в отношении Са-транспортирующей системы CP скелетных мышц бенно ярко проявляется при наличии острого стресса у контрольных и штированных животных, т.е. в тех случаях, которые могут сопровождаться реждениями структуры этого ферментативного комплекса и его мембранных /ляторов (при стрессе у контрольных животных) или же накоплением активаторов эисталлина (при стрессе у адаптированных животных). Возможность активации а-сталлина с помощью РЦФ подтверждается в экспериментах с гомогенатами ппа стресс на фоне адаптации), т.е в условиях когда а-кристаллин может. имодействозать с эндогенными цитозольными факторами, при котором также аружен выраженный защитный эффект а-кристаппина (рис. 9а). Хотя активация насоса в гомогенате в присутствии а-кристаллина слабее, чем в мембранной жции, но она сопровождается повышением терморезистентности фермента {на >), чего не наблюдается в мембранных препаратах, т.е., по-видимому, действие а-зталлина в гомогенатах наиболее приближено к нативному состоянию, чего не пюдается в изолированных мембранных препаратах.
Протекторный эффект а-кристаллина на Са-транспортирующую систему CP карда
Защитное действие а-кристаллина обнаружено и в гомогенатах миокарда, где лоустойчивость Са-насоса CP (группа стресс на фоне адаптации) в присутствии а-:таллина повышена в 2 раза (рис. 76). Однако, на мембранные препараты карда а-кристаллин не оказывает защитного действия, что может объясняться птацией мембранных структур к а-кристаллину в связи с высоким содержанием аналога в сердце [Zhang, 1999]. При комплексном действии а-кристаллина и згенных цитозольных факторов проявляется стабилизирующий эффект на .юустойчивость Са-насос микросомальных препаратов CP миокарда в группах :сса и стресса на фоне адаптации (рис.10). Действительно, при стрессе в
присутствии только РЦФ и а-кристаллина к 20 мин термовоздействия активное транспорта Ca2* составляет 75% от исходной, что в 1,7 раза выше, чем при стреса присутствии РЦФ и в 3,3 раза выше, чем при стрессе без РЦФ. Сходный резулы зарегистрирован и в группе стресса на фоне предварительной адаптации, одна выраженность стабилизирующего эффекта с/.-кристаллина в присутствии РЦФ зде несколько ниже, возможно, в связи с уже увеличенной в результате адапта:-термоустойчивостью Са-насоса: к 20 мин термоинактивации сохраняется 64% первоначальной скорости транспорта Ca2* в CP, что на 27% выше, чем без РЦФ i 1,7 раза выше, чем в присутствии только РЦФ.
Таким образом, в миокарде защитное действие а-кристаллина реализует только при наличии ряда условий. Во-первых, протекторный эффект а-кристаллу регистрируется только в отношении стресс-поврежденных мембран CP, при этом э-эффект тем выше, чем сильнее нарушена Са-транспортирующая система СР. С подтверждается и тем, что максимальный защитное действие а-кристалг проявляет на самых поздних стадиях термоинактивации, когда конформационь устойчивость Са-АТФазы значительно нарушается. Во-вторых, для активации кристаллина необходимо наличие РЦФ, причем в их состав должны входить только те компоненты, которые характерны для контрольных животных, но дополнительные низкомолекулярные соединения, синтез которых активируется г острых повреждающих воздействиях. По-видимому, это связано с тем, что РЦФ стрессированных животных содержат защитные белки срочного ответа, обладают активирующим действием на молекулы а-кристаллина. Например, это недас показано в отношении'молекул семейства hsp (25, 27) [van de Klundert et al., 19 Hermes-Lima, Storey, 1993; Siems et al., 1993; Spasic et al., 1993], а так шаперонинов группы GroEl [Hook, Harding, 1997). Эти белки могут способствов; фосфорилированию а-кристаллина, либо переводу его в мембранно-связанн форму, что в обоих случаях приводит к его активации. Кроме того, вполне вероят участие высокого уровня восстановленных SH-rpynn в повышении защити! действия а-кристаллина [Pal et al., 1998].
В группе адаптации отсутствие дополнительного активирующего эффекта кристаллина можно объяснить несколькими факторами. Во-первых, адаптация у приводит к значительному увеличению терморезистентности Са-насоса CP, при эт скорость транспорта Ca2* в CP сохраняется на очень высоком уровне, что позвол! говорить о достаточно малом «резерве» увеличения эффективт функционирования этой системы. Во-вторых, в экспериментах по прямому влиян РЦФ показано, что адаптация реализуется скорее на мембранном уровне, нежели уровне РЦФ, в частности, при адаптации не нарабатываются прямые активаторы кристаллина. В-третьих, следует отметить, что РЦФ адаптированных животн обладает перекрестным защитным действием на препараты CP контрольных стрессированных животных. Мы полагаем, что этот эффект связан с накоплени белков «долгосрочного» ответа, которые, по-видимому, не обладают активируюш дйствием на молекулы а-кристаллина, а реализуют свое действие на мембранн уровне.
Таким образом, применение а-кристаллина может быть особенно эффектиЕ при комппексной профилактике стрессорных повреждений, включаюи адаптационные воздействия различной природы для снижения «цены» адаптации проявления максимального защитного эффекта от последующих повреждений
Выводы
1. Острый стресс приводит к уменьшению резистентности Са-насоса CP в логенатах и в мембранных препаратах из миокарда и скелетных мышц к вреждающим воздействиям: автолизу, термоденатурации, высокому уровню Са2*. рессорные повреждения на мембранном уровне более выражены в скелетных |шцах по сравнению с миокардом. Адаптация к стрессу значительно повышает гивность и резистентность Са-насоса CP в обеих тканях и предупреждает стресс-цуцированное нарушение работы этого фермента.
2. Цитоплазматические компоненты оказывают протекторное действие на фективность функционирования Са-насоса мембранных препаратов CP миокарда скелетных мышц в контроле, при стрессе и адаптации к нему. Степень раженности защиты тем больше, чем значительнее повреждена система жспорта Са2+ в CP - максимальное увеличение активности фермента (в скелетных шцах - в 2,6 раза) и максимальное повышение термостабильности (в миокарде - в
раза) зарегистрировано при стрессе.
3. РЦФ обладают не только прямым, но и перекрестным защитным эффектом, i этом стрессорные цитоплазматические компоненты оказывают защитное 1ствие строго специфично только в отношении стресс-поврежденных мембранно-1занных ферментов, а цитозольные компоненты от адаптированных животных эют ярко выраженный протекторный эффект в контроле, при стрессе и адаптации к лу. В миокарде он проявляется в значительном увеличении информационной ойчивости Са-насоса, а в скелетной мышце - в повышении исходной скорости [нспорта Ca2t в CP (в1,5 - 2,5 раза) во всех группах.
4. а-Кристаллин оказывает протекторное действие на эффективность нкционирования системы транспорта Са2* в CP миокарда и скелетных f/ышц. В ¿бранных препаратах CP скелетных мышц в группе стресс на фоне адаптации а-стаппин повышает исходную активность Са-насоса CP, а в гомогенатах, кроме э, увеличивает терморезистентность этого фермента. В миокарде эффекты а-сталлина проявляются только при наличии дополнительных цитоплазматических иваторов (синтез которых наблюдается при стрессе), т.е. реализуются в огенатах или при совместном действии РЦФ и а-кристаллина, повышая (в 2 - 3 а) в обоих случаях терморезистентность Са-насоса СР.
5. Обнаружен репарационный эффект а-кристаллина на Са-насос CP в петной мышцы, который выражается в восстановлении активности и истентности этого фермента, сниженных в результате окислительной (ификации in vitro или стрессорного воздействия in vivo.
Список раЬот, опубликованных по теме диссертации
1. Vitamin Е as a modifier of Са2+ transport in sarcoplasmic reticulum of the heart ar skeletal muscles: effect on purified microsomal fraction and homogenates. // Abstr. Tt F-'irst regional meeting of medical sciences: The roles of free radicals in health ar disease.-Jerusalem, Israel, 1998.-P.15. (соавт. Сазонтова Т.Г., Голанцова H.E Архипенко Ю.В.)
2.Роль цитоплазматических факторов в стабилизации Са2*-транспортирующЕ функции саркоплазматического ретикулума миокарда крысы при адаптации к стресс I! Бюл. эксперим. биол. мед.-1999.-Т.127.-Ы2.-С.155-159. (соавт. Сазонтова Т.Г.)
3.Шаперонная активность а-кристаллина в отношении Са-насо< саркоплазматического ретикулума скелетных мышц при стрессе и адаптации. II Бю оксперим. биол. Mefl.-1999.-T.120.-N5.-C.156-159. (соавт. Сазонтова Т.Г., Архипен! Ю.В., Бабижаев М.А.)
4.Calpains: physiological and pathophysiological significance. II Pathophysiology 1999.-N3.-P.91-102. (соавт. Сазонтова Т.Г., Архипенко Ю.В.)
5.Перекрестные эффекты защитных цитоплазматических факторов клетки п[ адаптации животных к стрессорным воздействиям. II Всероссийская научн; конференция, посвященная 150-летию со дня рождения И.П.Павлова. Тез.-С Петербург, 1999.-С.82. (соавт. Сазонтова Т.Г., Архипенко Ю.В.)
6.Мембранная адаптация при действии факторов внешней среды. Е!сероссийская научная конференция, посвященная 150-летию со дня рожден! И.П.Павлова. Тез.-С.-Петербург, 1999.-С.57. (соавт. Сазонтова Т.Г., Архипенко Ю.В.;
7.Тканеспецифичность шапероновых эффектов а-кристаллина на стрес поврежденный Са-насос саркоплазматического ретикулума миокарда и скелетнь мышц. И Свободные радикалы и болезни человека. Тез. конф.-Смоленск, 1999.-С.6 (соавт. Сазонтова Т.Г., Архипенко Ю.В.)
8.Эндогенная защита мембранно-связанных ферментов от свободн радикальных повреждений, индуцированных стрессом. II Свободные радикалы болезни человека. Тез. конф.-Смоленск, 1999.-С.41. (соавт. Сазонтова T.I Архипенко Ю.В.)
Э.Мембранопротекторное действие адаптации к гипоксии и стрессу. II Втор; всероссийская конференция «Гипоксия: механизмы, адаптация, коррекция». Те юнф.-Москва, 1999.-С.64. (соавт. Сазонтова Т.Г., Архипенко Ю.В.)
Оглавление диссертации Мацкевич, Алексей Анатольевич :: 1999 :: Москва
Список сокращений
Введение
Обзор литературы
Глава 1.
1.1 Са-транспортирующая система в мышечных тканях.
1.2 Структура и регуляция Са-каналов
1.3 Функционирование Са-АТФазы в норме и при патологии 15 2. Стресс и адаптация к нему: основные механизмы модулирования функционирования клеток.
2.3 Характеристика стресс-индуцированных повреждений
2.4 Стресс-индуцируемые повреждения Са-АТФазы СР
2.5 Структура и функции кальпаиновой системы
2.6 Активаторы кальпаина
2.7 Роль кальпаиновой системы в развитии патологических процессов 35 3 Адаптация, как немедикаментозный способ повышения резистентности к стрессорным повреждениям
3.1 Антиокислительная система защиты клетки
3.2 Другие защитные компоненты клетки
3.3 Адаптивный ответ клеток на стресс-индуцированые повреждения
3.4 Роль а-кристаллина во внутриклеточных протективных эффектах
3.5 Участие а-кристаллина в патологических процессах
Глава 2. Методы и материалы исследования.
2.6 Физиологические модели
2.7 Биохимические модели
2.8 Представление данных 68 Результаты и обсуждение.
Глава 3. Повреждающий эффект острых стрессорных воздействий на Са-транспортирующую систему клетки и защитное действие адаптации к стрессу.
3.1 Активность и терморезистентность Са-транспортирующей системы СР в гомогенатах миокарда и скелетных мышц
3.2 Влияние РЦФ на активность и резистентность Са-транспортирующей системы СР миокарда
3.3 Влияние РЦФ на активность и резистентность Са-транспортирующей системы СР скелетных мышц. Сравнение с действием РЦФ в сердце
Глава 4. Перекрестный эффект РЦФ на мембранно-связанный Са-насос СР скелетных мышц и миокарда
4.1 Перекрестный эффект РЦФ на Са-насос СР миокарда
4.2 Перекрестный эффект РЦФ на Са-насос СР скелетных мышц
Глава 5. Проявление шапероновой активности а-кристаллина на Са-насос СР при стрессе и адаптации к нему.
5.1 Проявление шапероновой активности а-кристаллина на Са-насос СР скелетных мышц при стрессе и адаптации к нему.
5.2 Тканеспецифичность протекторного эффекта а-кристаллина на Са-транспортирующую систему СР миокарда
Выводы.
Введение диссертации по теме "Патологическая физиология", Мацкевич, Алексей Анатольевич, автореферат
Актуальность проблемы
Поиск немедикаментозных методов защиты организма приобретает все большее значение, являясь важной проблемой теоретической и практической медицины. В последние годы экспериментально показано, что в результате адаптации организма к стрессорным и другим повреждающим воздействиям происходят изменения не только на уровне целого организма [Меерсон, Пшенникова, 1988], изолированных органов и тканей, но и на уровне внутриклеточных мембранных структур [Сазонтова, 1998]. Одновременно интенсивно развивается изучение отдельных низкомолекулярных компонентов цитоплазмы клеток и их роли в повреждении и защите клетки. Однако, до сих пор практически отсутствуют данные о механизме действия растворимых цитоплазматических факторов (РЦФ) в мембрано-стабилизирующем эффекте адаптации. До настоящего времени не известны способы и даже сама возможность репарации нарушенных функций на уровне внутриклеточных структур при стрессорных повреждениях.
Известно, что острое стрессорное воздействие различной природы приводит к нарушениям функционирования сердечно-сосудистой системы, снижению электрической стабильности сердца, нарушению метаболизма в кардиомиоцитах, и в конечном итоге к развитию ишемической болезни, кардиопатий, аритмий и т.д. [Меерсон, 1986]. В последнее десятилетие показано, что стресс-индуцированное повреждение на внутриклеточном уровне проявляется в значительном снижении эффективности функционирования мембранных ион-транспортирующих систем - Ма,К-АТФазы плазматической мембраны, Са-АТФазы саркоплазматического ретикулума (СР), Са-АТФазы плазматической мембраны и митохондрий [АгкЫрепко et а1., 1985; Сазонтова Т.Г. и др., 1989; РатИат, 1ипес, 1986; а1., 1995]. При этом наряду со снижением устойчивости ферментов к действию 6 эндогенных повреждающих факторов, значительно уменьшается также и скорость функционирования этих важнейших систем ферментов поддержания клеточного ионного баланса. Степень ингибирования достигает 30-50%, что в отсутствии компенсации приводит к снижению порога выживаемости. Такое существенное падение активности ферментов, наблюдаемое in vitro в изолированных мембранных фракциях, вызывает закономерный вопрос о совместимости этого явления с обнаруженным поддержанием некоторых физиологических функций после стресса. Этот вопрос особенно актуален при изучении Са-транспортирующей системы CP миокарда, ответственной за поддержание Са-гомеостаза в клетке и реализацию цикла сокращение-расслабление. Действительно, показано, что даже длительный эмоционально-болевой стресс в течение 4-х или 6 часов [Белкина и др., 1983] не вызывает достоверного изменения сократительной функции сердца - развиваемое давление и частота сердечных сокращений остаются на контрольном уровне.
Следовательно, в стрессированном сердце резкое падение активности ферментов ионного транспорта должно быть хотя бы частично скомпенсировано, чтобы поддерживать физиологические функции на прежнем уровне. Поскольку при острых воздействиях компенсация не может быть осуществлена за счет быстрого массированного синтеза новых молекул ферментов ионного транспорта, можно полагать, что восстановление функции поврежденных при стрессе мембрано-связанных ферментов происходит за счет различных РЦФ, которые, как показано в последнее время, быстро накапливаются в клетке при стрессе, ишемии, тепловом шоке, индукции перекисного окисления липидов (ПОЛ) [Mulvagh et al. 1987; Graven et al., 1993; Melia et al., 1994; Nanji et al., 1995; Plumier et al., 1996; Bhattacharyya, Sen, 1998]. Однако, данные о влиянии на мембранные системы клетки различных низкомолекулярных соединений разрозненны и зачастую противоречивы, что связано с тем, что роль РЦФ практически не 7 рассматривается в целом, а выделяются и изучаются лишь отдельные цитоплазматические компоненты. Поэтому оценка суммарного эффекта РЦФ может являться актуальным информативным тестом.
Еще меньше данных о роли РЦФ при адаптации к различным факторам среды. При этом нужно учитывать, что адаптационные изменения в значительной степени реализуются на уровне самих мембран и связанных с ними ферментов - происходит смена изозимного состава, изменяется чувствительность к субстратам и регуляторам и т.д. Однако, так же, как и в ситуации со стрессорными повреждениями, вопрос о соотношении вклада в адаптационное изменение работы фермента процессов, происходящих на уровне самого мембранно-связанного белка и участия в мембранной адаптационной защите других факторов клетки, в частности, РЦФ, остается открытым. Кроме того, не ясна возможность существования не только прямого, но и перекрестного адаптационного защитного эффекта на внутриклеточном уровне, и его модулирования с помощью экзогенно добавленных мембранопротекторов.
В связи с этим цель работы заключалась в том, чтобы оценить прямой и перекрестный эффекты цитоплазматических факторов, накопленных в миокарде и скелетных мышцах при остром стрессе и адаптации к нему, а также протекторное действие природного термостабилизатора (а-кристаллина), на активность и резистентность Са-транспортирующей системы СР.
В рамках этой цели решались следующие экспериментальные задачи:
1. Оценить повреждающий эффект острого стресса и протекторное действие адаптации к стрессу на активность Са-насоса СР миокарда и скелетных мышц и его резистентность к повреждающим факторам -термоденатурации, автолизу, индукции ПОЛ и др. 8
2. Провести моделирование стрессорного повреждения Са-насоса
CP скелетных мышц in vitro с помощью частичного окисления мембран и
0+ автолиза в присутствии и отсутствии высоких концентраций Са .
3. Исследовать действие РЦФ на стресс-индуцированные и адаптационные изменения активности и конформационной стабильности Са-насоса CP, выявить тканеспецифичность проявления эффектов РЦФ в сердце и скелетных мышц. Сравнить эффекты стресса и адаптации к нему на Са-насос CP, при определении его активности в гомогенатах сердца и скелетных мышц или в мембранных препаратах CP из этих тканей.
4. Оценить перекрестные эффекты РЦФ, а именно: стрессорных РЦФ на мембраны CP миокарда и скелетных мышц от контрольных и адаптированных животных, а также адаптационных РЦФ на контрольные и стресс-поврежденные мембраны CP этих тканей.
5. Исследовать протекторное действие а-кристаллина на мембранную систему Са-транспорта CP миокарда и скелетных мышц (в гомогенатах и мембранных препаратах) при стрессе и адаптации к нему. Оценить возможность усиления протекторного действия а-кристаллина с помощью РЦФ. Выяснить возможность существования репарационного эффекта а-кристаллина в отношении Са-насоса CP, поврежденного в результате стрессорного воздействия.
Научная новизна исследования. В настоящей работе впервые на внутриклеточном уровне продемонстрировано участие комплекса цитозольных компонентов в защитном эффекте на систему транспорта Са2+ в CP миокарда контрольных, стрессорных и адаптированных животных. Этот протекторный эффект различается по степени выраженности в зависимости от состояния организма in vivo: чем значительнее исходно поврежден транспорт Са2+, тем больше защитный эффект цитозольных факторов. Максимален он при стрессе, т.е. в ситуации, при которой термоустойчивость Са-насоса CP минимальна и наименее выражен этот эффект при адаптации к стрессу (т.е. при 9 максимальной термоустойчивости). Сопоставление функционирования Са-транспортирующей системы СР, активность которой измерялась в гомогенате и в микросомальных препаратах СР в присутствии цитоплазматических компонентов, показало аналогичные результаты.
Впервые продемонстрирована тканеспецифичность эффектов РЦФ в скелетных мышцах и миокарде. Показано, что РЦФ в сердце прежде всего увеличивают терморезистентность мембранно-связанных ферментов, в то время как в скелетных мышцах не изменяя термостабильность Са-насоса СР, РЦФ значительно повышают первоначальную активность фермента. Несмотря на выраженную тканеспецифичность проявления протекторного эффекта растворимых компонентов в сердце, и в скелетной мышце стресс-индуцированные нарушения работы мембранных ферментов компенсируются в обеих тканях и поддерживается высокая эффективность их функционирования.
Впервые продемонстрирована возможность наличия перекрестных защитных эффектов адаптации на внутриклеточном уровне в отличие от существования только прямых эффектов стрессорных цитоплазматических компонентов, которые оказывают защитное действие строго специфично только в отношении стресс-поврежденных Са-насоса миокарда и скелетных мышц и не имеют выраженного действия в контроле и при адаптации к стрессу. Цитозольные компоненты от адаптированных животных как в сердце, так и скелетных мышцах, напротив, обладают ярко выраженным перекрестным протекторным эффектом во всех группах, независимо от состояния организма.
Впервые показан защитный эффект а-кристаллина, повышающего активность и конформационную стабильность Са-транспортирующей системы СР как скелетных мышц, так и миокарда, при этом его эффект проявляется только при наличии острых повреждающих воздействий, а именно при стрессе у контрольных или у адаптированных животных.
10
Обнаружена тканеспецифичность действия а-кристаллина. В мембранных препаратах скелетных мышц а-кристаллин повышает только начальную активность Са-насоса СР, причем для проявления своего действия он не требует присутствия дополнительных активаторов. В сердце защитный эффект а-кристаллина релизуется только при наличии РЦФ, накопленных при стрессе.
Теоретическое значение работы определяется тем, что в ней впервые изучен прямой и перекрестный эффект цитозольных компонентов сердца и скелетных мышц от стрессированных и адаптированных животных на функционирование мембранно-связанного Са-насоса СР. Показана универсальность действия РЦФ, защищающих мембраны СР от свободно-радикальных, автолитических и тепловых повреждений. Обнаружен репарационный эффект а-кристаллина, восстанавливающего активность Са-насоса СР после повреждающего стрессорного воздействия.
Практическое значение работы состоит в том, что в ней на основе изучения мембранопротекторного действия РЦФ сердца и скелетных мышц показана возможность использования цитоплазматических компонентов для повышения эффективности защитного действия адаптации к факторам среды. Применение одного из РЦФ -неспецифического термостабилизатора а-кристаллина может быть эффективно при комплексной профилактике стрессорных повреждений, включающей адаптационные воздействия различной природы для снижения «цены» адаптации и для проявления максимального защитного эффекта от последующих повреждений.
Положения, выносимые на защиту.
V Цитоплазматические компоненты оказывают протекторный эффект на активность Са-насоса СР скелетных мышц и терморезистентность этого фермента в миокарде, причем степень
11 выраженности защиты тем больше, чем значительнее повреждена система транспорта Са2+ в СР.
2. Стрессорные цитоплазматические компоненты оказывают защитное действие строго специфично только в отношении стресс-поврежденных мембранно-связанных ферментов, а цитозольные компоненты от адаптированных животных имеют ярко выраженный перекрестный протекторный эффект, независимо от состояния организма.
3. а-кристаллин в сердце и скелетной мышце оказывает протекторное и репарационное действие на систему транспорта Са2+ в СР при острых повреждающих воздействиях, при этом в миокарде его эффекты проявляются только при наличии дополнительных цитоплазматических активаторов, т.е в гомогенатах или при совместном действии РЦФ и а-кристаллина.
Апробация работы. Основные положения работы были доложены и обсуждены на Первом региональном совещании по медицинским наукам «Роль свободных радикалов в здоровом состоянии и при болезнях» (Иерусалим, Израиль, 1998), Всероссийской научной конференции, посвященной 150-летию со дня рождения И.П.Павлова (С.-Петербург, 1999), Всероссийской научной конференции «Свободные радикалы и болезни человека» (Смоленск, 1999), Международной конференции по гипоксии (Москва, 1999).
Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 147 страницах и состоит из введения, обзора литературы, описания использованных материалов и методов, 3 глав собственных исследований с обсуждением полученных результатов и выводов. Список литературы содержит 229 источников. Диссертация иллюстрирована 25 рисунками.
Заключение диссертационного исследования на тему "Мембраностабилизирующий эффект растворимых цитоплазматических факторов в миокарде и скелетных мышцах при стрессе и адаптации к нему"
выводы
1. Острый стресс приводит к уменьшению резистентности Са-насоса СР в гомогенатах и в мембранных препаратах из миокарда и скелетных мышц к повреждающим воздействиям: автолизу, термоденатурации, высокому уровню Са2+. Стрессорные повреждения на мембранном уровне более выражены в скелетных мышцах по сравнению с миокардом. Адаптация к стрессу значительно повышает активность и резистентность Са-насоса СР в обеих тканях и предупреждает стресс-индуцированное нарушение работы этого фермента.
2. Цитоплазматические компоненты оказывают протекторное действие на эффективность функционирования Са-насоса мембранных препаратов СР миокарда и скелетных мышц в контроле, при стрессе и адаптации к нему. Степень выраженности защиты тем больше, чем значительнее повреждена система транспорта Са2+ в СР - максимальное увеличение активности фермента (в скелетных мышцах - в 2,6 раза) и максимальное повышение термостабильности (в миокарде - в 1,9 раза) зарегистрировано при стрессе.
3. РЦФ обладают не только прямым, но и перекрестным защитным эффектом, при этом стрессорные цитоплазматические компоненты оказывают защитное действие строго специфично только в отношении стресс-поврежденных мембранно-связанных ферментов, а цитозольные компоненты от адаптированных животных имеют ярко выраженный протекторный эффект в контроле, при стрессе и адаптации к нему. В миокарде он проявляется в значительном увеличении конформационной устойчивости Са-насоса, а в скелетной мышце - в повышении исходной скорости транспорта Са2+ в СР (в1,5 - 2,5 раза) во всех группах.
4. а-Кристаллин оказывает протекторное действие на эффективность функционирования системы транспорта Са2+ в СР миокарда и скелетных мышц. В мембранных препаратах СР скелетных мышц в группе стресс на
132 фоне адаптации а-кристаллин повышает исходную активность Са-насоса CP, а в гомогенатах, кроме того, увеличивает терморезистентность этого фермента. В миокарде эффекты а-кристаллина проявляются только при наличии дополнительных цитоплазматических активаторов (синтез которых наблюдается при стрессе), т.е. реализуются в гомогенатах или при совместном действии РЦФ и а-кристаллина, повышая (в 2 - 3 раза) в обоих случаях терморезистентность Са-насоса СР.
5. Обнаружен репарационный эффект а-кристаллина на Са-насос CP в скелетной мышцы, который выражается в восстановлении активности и резистентности этого фермента, сниженных в результате окислительной модификации in vitro или стрессорного воздействия in vivo.
133
Список использованной литературы по медицине, диссертация 1999 года, Мацкевич, Алексей Анатольевич
1. Алматов К.Т., Мирталипов Д.Т., Мусаев Х.Н., Джамалова О.Т., Азимов Д.А. Влияние перекисного окисления липидов на липидный и фосфолипидный состав мембран митохондрий при тепловой инкубации // Вопр.мед.химии.-1994.-Т.40,N5.-0.30-33
2. Архипенко Ю.В., Газдаров А.К., Каган В.Е., Козлов Ю.П., Спиричев В.Б.
3. Перекисное окисление липидов и нарушение транспорта Са2+ через мембраны саркоплазматического ретикулума при Е-авитаминозе // Биохимия.-1976.-T.41.N10.-С. 1898-1902.
4. Архипенко Ю.В., Каган В.Е., Козлов Ю.П. Модификация ферментной системы транспорта Са2+ в саркоплазматическом ретикулуме при перекисном окислении липидов. Молекулярные механизмы изменения активности Са-АТФазы // Биохимия.-1983.-Т.48,N3.-0.433-441
5. Архипенко Ю.В., Каган В.Е., Козлов Ю.П. Модификация ферментной системы транспорта Са2+ в саркоплазматическом ретикулуме при перекисном окислении липидов. Молекулярные механизмы изменения активности Са-АТФазы // Биохимия.-1983.-Т.48,N3.-0.433-441
6. Архипенко Ю.В., Сазонтова Т.Г., Рожицкая И.И. Меерсон Ф.З. Влияние адаптации к периодической гипоксии на Са-насос саркоплазматического ретикулума сердца и его устойчивость к эндогенным повреждающим факторам // Кардиология.-1992.-Т.32,N6.-0.57-61.
7. Белкина Л.М., Мациевский Д.Д., Меерсон Ф.З. Влияние перенесенного эмоционально-болевого стресса на резистентность сердца к ишемии // Бюлл. Экспер. Биол. Мед.-1983.^6.-С.36-38.
8. Ю.Бершова Т.В., Симутенко Л.В., Баканов М.И., Барсегян Г.Г., Серебрякова Т.М., Сербии В.И. Нарушения мембранных механизмов при стрессорных повреждениях сердца у крыс различных линий // Бюлл.экспер.биол.мед.-1993.^3.-С.247-249
9. И.Бровкович В.М. Влияние тотальной ишемии на Са2+-транспортирующую активность саркоплазматического ретикулума миокарда крысы // Укр. биохим. журн.-1990.-Т.62,N4.-0.72-76
10. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах // М.: Наука, 1972.-С.252134
11. Голанцова Н.Е., Сазонтова Т.Г. Измерение резистентности Са-транспортирующей системы саркоплазматического ретикулума миокарда при «срочной» и «долговременной» адаптации к физической нагрузке // Бюлл. экспер. биол. мед.-1998.-Т. 125,N1 .-С.40-44
12. Каган В.Е., Савов В.М., Диденко В.В., Архипенко Ю.В., Меерсон Ф.З. Кальций и перекисное окисление липидов в мембранах митохондрий и микросом сердца // Бюлл. эксперим. биол. мед.-1983.-T.95,N4.-C.46-48.
13. Козлов Ю.П., Каган В.Е., Архипенко Ю.В. Молекулярные механизмы повреждения кислородом системы транспорта кальция в саркоплазматическом ретикулуме мышц // Иркутск, ИГУ, 1983.-136с
14. Лукьянова Л.Д. Биоэнергетическая гипоксия: понятие, механизмы и способы коррекции // Бюлл.эксперим.биол.мед.-1997.-Т.124,М9.-С.244-254
15. Малышев В.В., Белкина Л.М., Екимов E.H., Меерсон Ф.З. Изменение сократительной функции сердца в динакмике эмоционально-болевого стресса //Бюлл.Экспер. Биол. Мед.-1984.-8.-С.148-150
16. Меерсон Ф., Каган И., Прилипко Л. Активация перекисного окисления липидов при эмоционально-болевом стрессе // Бюлл. экспер. биол. и мед,-1979а.-Т.88,N10.-С.404-406
17. Меерсон Ф., Павлова В., Камилов Ф. Применение гамма гидроксибутирата натрия для профилактики повреждений, индуцированных эмоционально-болевым стрессом // Патол. Физиол. Экспериментал. Терапия // 19796-Т.З.-26-31.
18. Меерсон Ф.З. Физиология адаптационных процессов: Руководство по физиологии // М.: Наука, 1986.-С.521-631
19. Меерсон Ф.З., Архипенко Ю.В., Рожицкая И.И., Диденко В.В., Сазонтова Т.Г. Противоположное влияние адаптации к непрерывной и периодической гипоксии на антиоксидантные ферменты // Бюлл.эксп.биол.мед.-1992.-Т. 114, N77.-С. 14-15.
20. Меерсон Ф.З., Диденко В.В., Архипенко Ю.В., Салтыкова В.А. Динамика экспрессии генов с-тус и Са-АТФазы в сердечной мышце при адаптации к повторным стрессам // Бюлл.экспер.биол.мед.-1994.^2.-С.124-126
21. Меерсон Ф.З., Малышев И.Ю., Замотринский A.B. Генерализованнное накопление стресс-белков при адаптации к стрессорным воздействиям // Бюлл. экспер. биол. мед.-1993.-Т.9.-С.231-233
22. Меерсон Ф.З., Пшенникова М.Г. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим нагрузкам // М., Медицина, 1988.-253 С.
23. Меерсон Ф.З., Сазонтова Т.Г., Архипенко Ю.В., Каган В.Е. Анализ термоденатурации Na.K-АТФазы сарколеммы миокарда крыс при стрессе и135возможная роль повреждения этого фермента в патогенезе аритмий // Вопр. Мед. химии.-1986.-Т.32.-С.67-71
24. Пшенникова М.Г. Сходство и различия адаптации к гипоксии и адаптации к физическим нагрузкам и их защитных эффектов // Hypoxia Médical J.-1994.-N3.-C.3-11
25. Ритов В.Б., Мурзахметова М.К. Влияние кофеина на активный транспорт Са2+ в гомогенатах скелетной мышцы и миокарда // Бюлл.экспер.биол.мед.-1985.-Т.100,N7.-C.176-179
26. Рубцов А.М. АТФ как субстрат и регулятор Са-АТФазы саркоплазматического ретикулума // Кандид. дисс.М.-1982.-115с
27. Сазонтова Т.Г. Мембранная адаптация при развитии резистентности к факторам окружающей среды //Доктор. Дисс. М.-1998.-376с
28. Сазонтова Т.Г. Стресс-индуцированные изменения функционирования Са-транспортирующей системы саркоплазматического ретикулума сердца и ее устойчивость к эндогенным повреждающим факторам // Бюлл. эксперим. биол. мед.-1989.-1\1.9.-С.271-273.
29. Сазонтова Т.Г., Архипенко Ю.В. Механизмы кардиопротекторного действия полиненасыщенных жирных кислот класса н-3 // Патол. физиол. экспер. тер.-1997.-№2.-С.41 -46
30. Сазонтова Т.Г., Архипенко Ю.В., Меерсон Ф.З. Увеличение активности 1Ма,К-АТФазы мозга крыс при стрессе // Бюлл. экспер. биол. и мед.-1984.- N.5-С.556-558
31. Сазонтова Т.Г., Архипенко Ю.В., Меерсон Ф.З. Увеличение активности ферментов антиоксидантной защиты сердца при адаптации к коротким стрессорным воздействиям // Бюлл. экспер. биол. и мед.-1987.-Т.103.-С.411-413
32. СазонтоваТ.Г., Голанцова Н.Е., Архипенко Ю.В. Формирование повышенной резистентности Са-насоса саркоплазматического ретикулума миокарда в динамике адаптации к стрессорным воздействиям // Бюлл. эксперим. биол. мед.-1997.-Т.123,1МЗ.-С.272-276
33. Хочачка П., Сомеро Дж. Биохимическая адаптация // М.: Мир, 1988.555 с41 .Aleksandrov V. The formation and development of the denaturation theory of injuries and irritation //Tsitologiia.-1995.-Vol.37,N12.-P.1101-1122.136
34. Andersen J.P. Monomer-oligomer equilibriu of sarcoplasmic reticulum Ca-ATPase and the role of subunit interaction in the Ca2+-pump mechanism // Biochim.Biophys.Acta.-1989.-Vol.258.-P.14276-14278
35. Andreeva L., Motterlini R., Green C. Cyclophilins are induced by hypoxia and heat stress in myogenic cells // Biochem. Biophys. Res. Commun.-1997.-Vol.237,N1 .-P.6-9.
36. Antipenko A., Kirchberger M. Membrane phosphorylation protects the cardiac sarcoplasmic reticulum Ca(2+)-ATPase against chlorinated oxidants in vitro // Cardiovasc. Res.-1997.-Vol.36,N1.-P.67-77.
37. Ariyoshi H., Shiba E., Kambayashi J., Sakon M., Kawasaki T., Yoshida K., Mori T. Stimulation of human platelet Ca2+-ATPase and Ca2+ restoration by calpain // Cell Calcium.-1993.-Vol. 14,N6.-P.455-463.
38. Arkhipenko Yu.V., Sazontova T.G., Rice-Evans C. Hyperttophy and regression of rat heart: free radical related metabolic systems // Pathophysiology.-1997.-Vol.4,N4-P.241 -248
39. Azizova O.A., Maksina A.G., Klaan N.K., Sukhanov V.A., Arkhipenko Yu.V. Modification of an enzymic system for Ca2+ transport in sarcoplasmic reticulum in lipid peroxidation // Biokhimiia.-1983.-Vol.48,N5.-P.861-869.
40. Azuma M., Fukiage C., David L., Shearer T. Activation of calpain in lens a review and proposed mechanism H Exp. Eye Res-1997.-64,N4.-P.529-538.
41. Baker K.J., East J.M., Lee A.G. Mechanism of inhibition of Ca2+-ATPase by myotoxin a // Biochem. J.-1995.-Vol.307,Pt2.-P.571-579
42. Baki A., Tompa P., Alexa A., Molnar O., Friedrich P. Autolysis parallels activation of mu-calpain // Biochem. J.-1996. 318,Pt 3.-P.897-901.
43. Banik N., Chakrabarti A., Konat G., Gantt-Wilford G., Hogan E. Calcium-activated neutral proteinase (calpain) activity in C6 cell line compartmentation of mu and m calpain //J. Neurosci. Res.-1992. 31,N4.-P.708-714.
44. Belcastro A., Shewchuk L., Raj D. Exercise-indused muscle injury a calpain hypothesis // Mol Cell Biochem.-1998.-Vol.179,N1-2.-P.135-145.
45. Bhattacharyya D., Sen P. Purification and functional characterization of a low-molecular-mass Ca2+,Mg2+- and Ca2+-ATPase modulator protein from rat brain cytosol // Biochem.J.-1998.-Vol.330.-P.95-101
46. Brandt N., Caswell A., Brandt T., Brew K., Mellgren R. Mapping of the calpain proteolysis products of the junctional foot protein of the skeletal muscle triad junction //J. Membr. Biol.-1992.-Vol.127,N1.-P.35-47.
47. Brorson J., Zhang H. Disrupted Ca2+ homeostasis contributes to the toxicity of nitric oxide in cultured hippocampal neurons // J. Neurochem.-1997.-Vol.69,N5.-P.1882-1889.
48. Brustis J., E lamani N., Sofware A. Rat myoblast fusion requires exteriorized m-calpain activity // Eur. J. Cell Biol.-1994.-Vol.64,N2.-P.320-327.
49. Buckman T.D., Sutphin M.S., Mitrovic B. Oxidative stress in a clonal cell line of neuronal origin: effects of antioxidant enzyme modulation // J.Neurochem.-1993.-Vol.60,N6.-P.2046-2058137
50. Bush K., Goldberg A., Nigam S. Proteasome inhibition leads to a heat-shock response, induction of endoplasmic reticulum chaperones, and thermotolerance //J. Biol. Chem.-1997.-Vol.272,N14.-P.9086-9092.
51. Cheng K., Hui S., Lepock J. Protection of the membrane calcium adenosine triphosphatase by cholesterol from thermal inactivation // Cancer Res.-1987.-Vol.47,N5.-P.1255-1262.
52. Cheng Y. Oxidative mechanisms involved in kainate-indused cytoxicity in cortical neurons // Neurochem. Res.-1994.-Vol.19,N12.-P.1557-1564.
53. Chiesi M., Longoni S., Limbruno U. Cardiac alfa-crystallin. Involment during heart ischemia // Mol. Cell. Biochem.-1990.-Vol.97,N2.-P.129-137.
54. Choi A., Tucker R., Carlson S., Wiegand G., Holbrook N. Calcium mediates expression of stress-response genes in prostaglandin A2-induced growth arrest// FASEB J.-1994.-Vol.8,N13.-P.1048-1054
55. Conconi M., Petropoulos I., Emod I., Turlin E., Biville F., Friguet B. Protection from oxidative inactivation of the 20S proteasome by heat-shock protein 90 // Biochem. J.-1998.-Vol.333,Pt2.-P.407-415.
56. Cory C.R., Grange R.W., Houston M.E. Role of sarcoplasmic reticulum in loss of load-sensitive relaxation in pressure overload cardiac hypertrophy // Am.J.Physiol.-1994.-Vol.266,N1 Pt 2.-P.H68-H78
57. Dai J., Meij J., Dhalla V., Panagia V. Involvement of thiol groups in the impairment of cardiac sarcoplasmic reticular phospholipase D activity by oxidants // J. Lipid Mediators Cell Signalling.-1995.-Vol.11,N2.-P.107-118.
58. Das D., Engelman R., Kimura Y. Molecular adaptation of cellular defences following preconditioning of the heart by repeated ischaemia // Cardiovasc.Res.-1993.-Vol.27, N4.-P.578-584
59. Das K., Surewicz W. On the substrate specificity of alpha-crystallin as a molecular chaperone // Biochem. J.-1995,-Vol.311,Pt2.-P.367-370.
60. Davidson G., Berman M. Mechanism of thermal uncoupling of Ca2+-ATPase of sarcoplasmic reticulum as revealed by thapsigargin stabilization // Biochim. Biophys. Acta.-1996.-Vol.1289,N2.-P. 187-194.
61. Davies J., Qintanilla A., Brooks G., Packer L. Free radicals and tissue damage produced by exercise // Biochem.Biophys.Res.Comm.-1982.-Vol. 107,-P.1198-1205
62. DeForge L., Preston A., Takeuchi E., Kenney J., Boxer L., Remick D. Regulation of interleukin 8 gene expression by oxidant stress // J.Biol.Chem.-1993.-Vol.268, N34.-P.25568-25576
63. Dhaunsi G., Singh I., Hanevold C. Peroxisomal participation in the cellular response to the oxidative stress of endotoxin // Mol.Cell.Biochem.-1993.-Vol.126,N1.-P.25-35
64. Doctor R., Bennett V., Mandel L. Degradation of spectrin and ankyrin in the ischemic rat kidney//Am. J. Physiol.-1993.-Vol. 264,N4,Pt1.-P.C1003-1013.138
65. Domanska-Janik K., Zablocka B., Zalewska T., Zajac H. Phosphorylation of protein kinase C substrate proteins in rat hippocampal slices-effect of calpain inhibition //Acta Neurobiol. Exp.-1998.-Vol.58,N4.-P.247-252.
66. Donoso P., Beltran M., Hidalgo C. Luminal pH regulated calcium release kinetics in sarcoplasmic reticulum vesicles // Biochemistry.-1996.-Vol.35,N41.-P.13419-13425.
67. Dourdin N., Balcerzak D., Brustis J., Poussard S., Cottin P., Ducastaing A. Potential m-calpain substrates during myoblast fusion // Exp. Cell. Res.-1999.-Vol.246,N2.-P.433-442.
68. Dulhunty A., Junankar P., Eager K.R., Ahern G., Laver D. Ion channels in the sarcoplasmic reticulum of striated muscle // Acta Physiol.Scand.-1996,-Vol.156,N3.-P.375-385
69. Dwyer-Nield L., Miller A., Neighbors B., Dinsdale D., Malkinson A. Cytoskeletal architecture in mouse lung epithelial cells is regulated by protein-kinase C-alpha and calpain II //Am. J. Physiol.-1996.-Vol.270,N4,Pt1.-P.L526-534.
70. Echabe I., Dornberger U., Prado A., Goni F., Arrondo J. Topology of sarcoplasmic reticulum Ca2+-ATPase: an infrared study of thermal denaturation and limited proteolysis // Protein Sci.-1998.-Vol.7,N5.-P.1172-1179.
71. Falchetto, R. Vorherr T. The calmodulin-binding site of the plasma membrane Ca pump interacts with the transduction domain of the enzyme // Protein Res.-1992.-Vol.1 ,Pt 12.-P. 1613-1621.
72. Feher J., Briggs F., Hess M. Characterization of cardiac sarcoplasmic reticulum from ischemic myocardium: comparison of isolated sarcoplasmic reticulum with unfractionated homogenates //J.Mol.Cell.Cardiol.-1980.-Vol.12.-P.427-432
73. Flattery O'Brien J., Collinson L.P., Dawes I.W. Saccharomyces cerevisiae has an inducible response to menadione which differs from that to hydrogen peroxide //J.Gen.Microbiol.-1993.-Vol.139, Pt 3.-P.501-507
74. Frangioni J., Oda A., Smith M., Salzman E., Neel B. Calpain-catalyzed cleavage and subcellular relocation of protein phosphotyrosine phosphatase 1B (PTP-1B) in human platelets // EMBO J.-1993.-Vol.12,N12.-P.4843-4856.
75. Gardner T. Oxygen radicals and myocardial stunning // J.Card.Surg.-1994.-Vol.9,N3 Suppl.-P.422-424
76. Geimonen E., Batrukova M., Rubtsov A. Thermal uncoupling of the Ca-transportived ATPase in SR. Shanges in surface properties of light vesicles // Eur. J. Biochem.-1994.-Vol.225,N1 .-P.347-354.
77. Goldberg A. Correlation between rates of degradation of bacterial protein in vivo and their sensivity to proteases // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1972.-Vol.69, N9.-P.2640-2644
78. Golenhofen N., Ness W., Koob R., Htun P., Schaper W., Drenckhahn D. Ischemia-induced phosphorylation and translocation of stress protein alpha B-crystallin to Z lines of myocardium // Am. J. Physiol.-1998.-Vol.274,N5,Pt2.-P.H1457-H1464.
79. Goll D., Thompson V., Taylor R., Zalewska T. Is calpain activity regulated by membranes and autolysis or by calcium and calpastatin? // Bioessays.-1992.-Vol. 14, N8.-P.549-556.
80. Graven K.K., Zimmerman L.H., Dickson E.W., Weinhouse G.L., Farber H.W. Endothelial cell hypoxia associated proteins are cell and stress specific // J.Cell. Physiol.-1993.-Vol.157,N3.-P.544-554139
81. Greenwood J., Troncoso J., Costello A., Johnson G. Phosphorylation odulates calpain-mediated proteolysis and calmodulin binding of the 200-kDa and 160-kDa neurofilament proteins // J. Neurochem.-1993.-Vol.61 ,N1 .-P.191 -199.
82. Grover A., Samson S. Coronary artery acidosis: pH and calcium pump stability//Am. J. Physiol.-1993.-Vol.265,N5,Pt2.-P.H1486-H1492.
83. Guski H., Meerson F., Wassilew G. Comparative study of ultrastructure and function of the rat heart hypertrophied by exercise or hypoxia // Exp. Path.-1981.-Vol.20.-P.108-120
84. Guttmann R., Johnson G. Oxidative stress inhibits calpain activity in situ // J. Biol. Chem.-1998.-Vol.273,N21 .-P. 13331 -13338.
85. Hara A., Abiko Y. Protective effect of hypoxia on mechanical and metabolic changes induced by hydrogen peroxide in rat hearts // Am.J.Physiol. Heart Circ.Physiol.-1995.-Vol.37,N2.-P.H614-H620
86. Hermes-Lima M., Storey K. Antioxidant defenses in the tolerance of freezing and anoxia by garter snakes // Am. J. Physiol.-1993.-Vol.265,N3,Pt2.-P.R646-R652
87. Hidalgo C., Donoso P., Rodriguez P. Protons induce calsequestrin conformational changes // Biophys. J.-1996.-Vol.71,N4.-P.2130-2137.
88. Hook D., Harding J. Molecular chaperones protect catalase against thermal stress // Eur. J. Biochem.-1997.-Vol.247,Pt1.-P.380-385
89. Jabr R., Cole W. Alterations in electrical activity and membrane currents induced by intracellular oxygen-derived free radical stress in guinea pig ventricular myocytes // Circ.Res.-1993.-Vol.72,N6.-P.1229-1244
90. O.Johnson G., Guttmann R. Calpains intact and active? // Bioessays.-1997.-Vol.11.-P.1011-1018.
91. Kalabokis V., Bozzole J., Castellani J., Hardwicke P. A possible role for the dimer ribbon state of scallop sarcoplasmic reticulum. Dimer ribbons are assosiated with stabilization of the Ca2+-free Ca-ATPase // J.Biol.Chem.-1991.-Vol.266.-P.22044-22050
92. Kamp F., Donoso P., Hidalgo C. Changes in luminal pH caused by calcium release in sarcoplasmic reticulum vesicles // Biophys. J.-1998.-Vol.74,N1 .-P.290-296.
93. Kandarian S., Peters D., Taylor J., Williams J. Skeletal muscle overload upregulates the sarcoplasmic reticulum slow calcium pump gene // Am.J.Physiol.-1994.-Vol.266,N5,Pt1.-P.C1190-C1197
94. Kaneko M., Matsumoto Y., Hayashi H., Kobayashi A., Yamazaki M. Oxygen free radicals and calcium homeostasis in the heart // Mol.Cell.Biochem.-1994.-Vol.139,N1 .-P.91-100
95. Kantorow M., Piatigorsky J. Phosphorylations of alpha A- and alpha B-crystallin // Int. J. Biol. Macromolecules.-1998.-Vol.22,N3-4.-P.307-314.
96. Katz A., Messineo F. Lipid-membrane interactions and the pathogenesis of ischemic damage in the myocardium //Circul. Res.-1981.-Vol.48,N1.-P.1-16
97. Kawakami M., Okabe E. Superoxide anion radical-triggered Ca2+ release from cardiac sarcoplasmic reticulum through ryanodine receptor Ca2+ channel // Mol. Pharmacol.-1998.-Vol.53,N3.-P.497-503.
98. Khan Y., East J., Lee A. Effects of pH on phosphorylation of the Ca2+-ATPase of sarcoplasmic reticulum by inorganic phosphate // Biochem. J.-1997.-Vol.321 ,Pt3.-P.671 -676.
99. Khatter J., Agbanyo M., Bose D., Hoeschen R. An endogenous positive inotropic factor (EPIF) from porcine heart: its effects on sarcoplasmic reticular (SR) Ca2+ metabolism // Mol. Cell. Biochem.-1997.-Vol.176,N1-2.-P.163-168.
100. Kirchberger, M Borchman D. Phospholamban is regulator of calpains // Biochemistry.-1986.-Vol.25.-P.5484-5492.
101. Kirino Y., Osakabe M., Shimuzi H. Ca2+-induced Ca2+ release from fragmented sarcoplasmic reticulum: Ca2+-dependent passive Ca2+ efflux // J.Biochem.-1983.-Vol.94.-P.111-1118
102. Kohli V., Madden J., Bentley R., Clavien P. Calpain mediates ischemic injury of the liver through modulation of apoptosis and necrosis // Gastroenterology.-1999.-Vol.116,N1 .-P.168-178.
103. Koretz J., Doss E., LaButti J. Environmental factors influencing the chaperone-like activity of alpha-crystallin // Int. J. Biol. Macromolecules.-1998.-Vol.22,N3-4.-P.283-2.
104. Kuo W., Ganesan U., Davis D. Regulation of the phosphorylation of calpain 2 and its inhibitors // Mol. Cell. Biochem.-1994.-Vol.136,N2.-P.157-161.141
105. Le C„ Hollaar L., Van der Valk E„ Franken N„ Van Ravels F„ Wondergem J., Van der Laarse A. Protection of myocytes against free radical-induced damage by accelerated turnover of the glutathione redox cycle // Eur. Heart J.-1995.-Vol.16.N4.-P.553-562.
106. Lee J., Samejima T., Liao J., Wu S., Chiou S. Physiological role of the association complexes of alpha-crystallin and its substrates on the chaperone activity//Biochem. Biophys. Res. Commun.-1998.-Vol.244,Pt2.-P.379-383
107. Lee J., Satoh T„ Shinoda H„ Samejima T., Wu S., Chiou S. Effect of heat-induced structural perturbation of secondary and tertiary structures on the chaperone activity of alpha-crystallin // Biochem. Biophys. Res. Commun.-1997.-Vol.237,Pt2.-P.277-282
108. Leeuwenburgh C., Fiebig R., Chandwaney R., Ji L.L. Aging and exercise training in skeletal muscle: Responses of glutathione and antioxidant enzyme systems. 1994.-Vol.267,N2 Pt 2.-P.R439-R445
109. Lin S., Ho C., Li M. Thermal stability and reversibility of secondary conformation of alpha-crystallin membrane during repeated heating processes // Biophys. Chem.-1998.-Vol.74,N1 .-P. 1-10.
110. Longoni S., Lattonen S., Bullock G., Chiesi M. Cardiac alfa-crystallin. Intracellular localization // Moll. Cell. Biochem.-1990.-Vol.97.-P.121-128
111. Lopez-Torres M., Perez Campo R., Cadenas S., Rojas C., Barja G. A comparative study of free radicals in vertebrates. II. Non-enzymatic antioxidants and oxidative stress //Comp.Biochem.Physiol. B.-1993.-Vol.105,N3-4.-P.757-763
112. LowryO., Rosebrough N., FarrA., Randall R. Protein measurement with thefolin phenol reagent// J.Biol.Chem.-1951.-Vol.193.-P.265-275
113. Lytton J., Westin M., Burk S., Sheel G., MacLennah D. Functional comparisons between isoforms of the sarcoplasmic or endoplasmic reticulum family of calcium pump //J. Biol. Chem.-1992.-Vol.267,N20.-P.14483-14489.
114. MacLennan D.H., Ostwald T.J., Steward P.S. Structural components of sarcoplasmic reticulum membrane //Ann.N.Y.Acad.Sci.-1974.-Vol.227.-P.527-536.
115. Madeira V.M.C. A rapid and ultrasensitive method to measure Ca2+ movements across biological membranes II Biochem.Biophys.Res.Communs.-1975.-Vol.64.-P.870-876
116. Marks A. Intracellular calcium-release channels: regulators of cell life and death //Am. J. Physiol.-1997.-Vol.272,N2, Pt 2.-P.H597-H605.
117. Martin I., Aguirre F., Grosman G., Sarchi M.I., Koch O. Glucocorticoid response and adrenal lipid peroxidation in rats submitted to chronic hypobaric hypoxia//Arch. Internat. Physiol. Biochim. Biophys.-1993.-Vol.101,N3.-P.173-177
118. Martonosi A. Mechanism of Ca2+ release from sarcoplasmic reticulum of skeletal muscle // Physiol.Rev.-1984.-Vol.64.-P.1240-1320
119. Maulik N., Tosaki A., Engelman R.M., Cordis G.A., Das D.K. Myocardial salvage by 1-O-hexadecyl-Sn-glycerol: possible role of peroxisomal dysfunction in ischemia reperfusion injury //J.Cardiovasc.Pharmacol.-1994.-Vol.24,N3.-P.486-492
120. Meerson F.Z., Sazontova T.G., Arkhipenko Yu.V. Increased resistance of cardiac sarcoplasmic reticulum Ca-pump to autolysis after adaptation of rats to stress // Biomed. Sci.-1990.-Vol.1,N4.-P.373-378
121. Meissner G. Evidence for a role of calmodulin in the regulation of calcium release from skeletal muscle sarcoplasmic reticulum // Biochem.-1986.-Vol.25.-P.244-251
122. Meissner G. Ryanodine receptor/Ca2+ release channel and their regulation by endogenous effectors //Ann.Rev.Physiol.-1994.-Vol.56.-P.485-508
123. Melloni E., Michetti M., Salamino F., Minafra R., Pontremoli S. Modulation of the calpain autoproteolysis by calpastatin and phospholipids // Biochem. Biophys. Res. Commun.-1996. 229,N1.-P.193-197.
124. Melloni E., Salamino F., Sparatore B. The calpain-calpastatin system in mammalian cells properties and possible functions // Biochimie.-1992.-Vol.74,N3.-P.217-223.
125. Merino J., Henao F., Gutierrez-Merino C. Structural changes of the sarcoplasmic reticulum Ca(ll)-ATPase nucleotide binding domain by pH and La(lll) // Arch. Biochem. Biophys.-1997.-Vol.348,N1.-P.152-156.
126. Michell R. Profusion and confusion. Nature. 1986-319. p.176-177.
127. Miller D., MacFarlane N. Intracellular effects of free radicals and reactive oxygen species in cardiac muscle //J. Human Hypertension.-1995.-Vol.9,N6.-P.465-473.
128. Nagai R., Yamazaki T., Shiojima I., Yazaki Y. Molecular basis for cardiac functions // Rinsho Byori.-1993.-Vol.41,N4.-P.409-414
129. Nakamura T.Y., Yamamoto I., Kanno Y., Shiba Y., Goshima K. Metabolic coupling of glutathione between mouse and quail cardiac myocytes and its protective role against oxidative stress // Circ.Res.-1994.-Vol.74,N5.-P.806-816
130. Nishi M., Komazaki S., lino M., Kangawa K., Takeshima H. Mitsugumin23, a novel transmembrane protein on endoplasmic reticulum and nuclear membranes // FEBS Letters.-1998.-Vol.432,N3.-P.191-196.
131. Pal J., Bera S., Ghosh S. The effect of glutathione upon chaperone activity of alpha-crystallin is probably mediated through target modulation // Ophthal. Res.-1998.-Vol.30,N5.-P.271 -279.
132. Palmeira C.M., Santos M.S., Carvalho A.P., Oliveira C.R. Membrane lipid peroxidation induces changes in gamma-3H.aminobutyric acid transport and calcium uptake by synaptosomes // Brain.Res.-1993.-Vol.609,N1-2.-P.117-123
133. Penpargkul S., Repke D.I., Katz A.M., Scheuer J. Effect of physical training on calcium transport by rat cardiac sarcoplasmic reticulum // Circ.Res.-1977.-Vol.40,N2.-P.134-148
134. Peters D., Mitchell H„ McCune S., Park S., Williams J., Kandarian S. Skeletal muscle sarcoplasmic reticulum Ca(2+)-ATPase gene expression in congestive heart failure // Circ. Res.-1997.-Vol.81 ,N5.-P.703-710.
135. Plumier J.C., Robertson H.A., Currie R.W. Differential accumulation of mRNA for immediate early genes and heat shock genes in heart after ischemic injury // J.Mol.Cell.Cardiol.-1996.-Vol.28,N6.-P.1251-1260
136. Pontremoli S., Melloni E. Extrolysosomal protein degradation // Annu. Rev. Biochem.-1986.-Vol.55.-P.455-481.144
137. Pontremoli S., Viotti P., Michetti R., Salamino F., Sparatore B., Melloni E. Modulation of inhibitory efficiency of rat skeletal muscle calpastatin by phosphorylation // Biochem. Biophys. Res. Commun.-1992.-Vol.187,N2.-P.751-759.
138. Presotto C., Agnolucci L., Biral D., Dainese P., Bernardi P., Salviati G. A novel muscle protein located inside the terminal cisternae of the sarcoplasmic reticulum//J. Biol. Chem.-1997.-Vol.272,N10.-P.6534-6538.
139. Pronzato M., Domenicotti C., Rosso E., Bellocchio A. Modulation of rat liver protein kinase C during in vivo CC 14-induced oxidative stress // Biochem. Biophys. Res. Commun.-1993.-Vol.194,N2.-P.635-641.
140. Rajaraman K., Raman B., Ramakrishna T., Rao C. The chaperone-like alpha-crystallin forms a complex only with the aggregation-prone molten globule state of alpha-lactalbumin // Biochem. Biophys. Res. Commun.-1998.-Vol.249,Pt3.-P.917-921
141. Rao C., Raman B., Ramakrishna T., Rajaraman K., Ghosh D., Datta S., Trivedi V., Sukhaswami M. Structural perturbation of alpha-crystallin and its chaperone-like activity II Int. J. Biol. Macromolecules.-1998.-Vol.22,N3-4.-P.271-281.
142. Robinson A. Inhibiting calpain, rescuing cells // CMAJ.-1996.-Vol.154,Pt2.-P. 193-195.
143. Rojas C., Cadenas S., Herrero A., Mendez J., Barja G. Endotoxin depletes ascorbate in the guinea pig heart. Protective effects of vitamins C and E against oxidative stress // Life Sci.-1996.-Vol.59,N8.-P.649-657.
144. Rokutan K., Hirakawa T., Teshima S., Nakano Y., Miyoshi M., Kawai T., Konda E., Morinaga H., Nikawa T., Kishi K. Implications of heat shock/stress proteins for medicine and disease // J. Med. Invest.-1998.-Vol.44,N3-4.-P.137-147.
145. Roman L., Hruska U. Effects of pH, temperature and inhibitors on autolysis and catalitic activity of bovine sceletal muscle mu-calpain // J. Animal Sci.-1992.-70,N10.-P.3071 -3080.
146. Rosser B., Powers S., Gores G. Calpain activity increases in hepatocytes following addition of ATP. Demonstration by a novel fluorescent approach // J. Biol. Chem.-1993.-Vol.268,N31.-P.23593-23600.
147. Ruell P.A., Booth J., Mckenna M.J., Sutton J.R. Measurement of sarcoplasmic reticulum function in mammalian skeletal muscle: Technical aspects // Analyt.Biochem.-1995.-Vol.228,N2.-P.194-201
148. Schaart G., Moens L., Endert J., Ramaekers F. Biochemical characterization of cardiotin, a sarcoplasmic reticulum associated protein // FEBS Letters.-1997.-Vol.403,N2.-P. 168-172.
149. Schluter J., Fitts R. Shortening velocity and ATPase activity of rat skeletal muscle fibers: effects of endurance exercise training // Am.J.Physiol.-1994.-Vol.266,N6,Pt1 .-P.C1699-C1673
150. Schwartz K., Chassagne C., Boheler K. The molecular biology of heart failure // J.Am.Coll.Cardiol.-1993.-Vol.22,N4,SupplA.-P.30A-33A
151. Sen C.K., Marin E., Kretzschmar M., Hannien O. Skeletal muscle and liver glutatione homeostasis in response to training exercise and immobilization // J. Appl. Physiol.-1992.-Vol.73,N4.-P. 1265-1272.
152. Shcherbakova N., Ritov V., Tarakhovskii S., Kozlov Yu. Dependence of thermal stability of Ca-ATPase from sarcoplasmic reticulum on its concentration in the membrane // Biokhimiia.-1980.-Vol.45,N8.-P.1503-1509.
153. Shoshan-barmatz V., Weil S., Meuer M. Endogenous calpain cleaves specifically the rianodine receptor Ca2+ channel in skeletal muscle // J. Membr. Biol.-1994.142, N3.-P.281-288.
154. Siems W., van Kuijk F., Maass R., Brenke R. Uric acid and glutatione levels during short-term whole body cold exposure // Free Radic. Biol. Med.-1994.-Vol. 16.-P.299-305
155. Sluis-Cremer N., Naidoo N., Dirr H. Class-pi glutathione S-transferase is unable to regain its native conformation after oxidative inactivation by hydrogen peroxide // Eur. J. Biochem.-1996.-Vol.242,N2.-P.301-307.
156. Sordahl L.A., McCollum W.B., Wood W.G., Schwartz A. Mitochondria and sarcoplasmic reticulum function in cardiac hypertrophy and failure // Am.J.Physiol.-1973.-Vol.224.-P.497-502
157. Spasic M., Saicic Z., Buzadzic B., Korac B., Blagoevic D., Petrovich V. Effect of long term exposure to cold on antioxidant defense system in the rat // Free Radic. Biol. Med.-1993.-Vol.15.-P.291 -299
158. Spencer M., Lu B., Tidball J. Calpain II expression is increased by changes in mechanical loading of muscle in vivo // J. Cell Biochem.-1997.-Vol.64,N1 .-P.55-66.
159. Studer R., Reinecke H., Bilger J., Eschenhagen T., Bohm M., Hasenfuss G., Just H., Holtz J., Drexler H. Gene expression of the cardiac Na+-Ca2+ exchanger in end-stage human heart failure // Circ.Res.-1994.-Vol.75,N3.-P.443-453
160. Surewicz W., Olesen P. On the thermal stability of alpha-crystallin: a new insight from infrared spectroscopy // Biochemistry.-1995.-Vol.34,N30.-P.9655-9660.
161. Tang D., Borchman D., Yappert M., Cenedella R. Influence of cholesterol on the interaction of alpha-crystallin with phospholipids // Exper. Eye Res.-1998.-Vol.66, N5.-P.559-567.
162. Thorley-Lawson D.A., Green N.M. Studies on the location and orientation of protein in the sarcoplasmic reticulum // Eur.J.Biochem.-1973.-Vol.40.-P.403-413146
163. Timerman A., Onoue H., Xin H., Barg S., Copello J., Wiederrecht G., Fleischer S. Selective binding of FKBP12.6 by the cardiac ryanodine receptor // J. Biol. Chem.-1996.-Vol.271 ,N34.-P.20385-20391.
164. Toda G. Calpain inhibitor E64c decreased injured zone of ischemia heart // Japan Heart J.-1989.-Vol.30.-P.357-386.
165. Tompa P., Baki A., Schad E., Friedrich P. The calpain cascade. Mu-calpain activates m-calpain //J. Biol. Chem.-1996.-Vol.271,N52.-P.33161-4.
166. Ungemach F.R. Plasma membrane damage of hepatocytes following lipid peroxidation: involvement of phospholipase A2 II Free radicals liver injury. Proc. Int.Meet., Turin, June 27-29, 1985. Oxford, Washington DC.-1985.-P.127-134
167. Venditti P., Di Meo S. Effect of training on antioxidant capacity, tissue damage, and endurance of adult male rats // Inter. J. Sports Med.-1997.-Vol.18,N7.-P.497-502.
168. Walowitz J., Bradley M., Chen S., Lee T. Proteolitic regulation of the zinc finger transcription factor YY1, a repressor of muscle-restricted gene expression II J. Biol. Chem.-1998.-Vol.273,N12.-P.6656-6661.
169. Wang C., Gomer R., Lazarides E. Heat shock proteins are methylated in avian and mammalian cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1981.-Vol.78,N6.-P.3531-3535.
170. Wang K., Spector A. Alpha-crystallin can act as a chaperone under conditions of oxidative stress II Invest. Ophthalmol. Visual Sci.-1995.-Vol.36,Pt2.-P.311-321
171. Wang K., Yuen P. Calpain inhidition an overview of its therapeutic potential //Trends Pharm. Sci.-1994.-Vol.15,N11.-P.412-419.
172. Watt F., Molloy P. Specific cleavage of transcription factors by thiol protease, m-calpain // Nuclear Acids Res.-1993.-Vol.21,N22.-P.5092-5100.
173. Welsh M., Gaestel M. Small heat-shock protein family: function in health and disease //Annals NY. Acad. Sci.-1998.-Vol.851.-P.28-35.
174. Wiese A., Pacifici R., Davies K. Transient adaptation to oxidative stress in mammalian cells //Arch. Biochem. Biophys.-1995.-Vol.318,N1.-P.231-240
175. Xu A., Hawkins C., Narayanan N. Ontogeny of sarcoplasmic reticulum protein phosphorylation by Ca2+-calmodulin-dependent protein kinase // J.Mol.Cell.Cardiol.-1997.-Vol.29,N1.-P.405-418147
176. Xu K., Becker L. Ultrastructural localization of glycolytic enzymes on sarcoplasmic reticulum vesticles // J. Histochem. Cytochem.-1998.-Vol.46,N4.-P.419-427.
177. Xu K., Zweier L., Becker L. Hydroxyl radical inhibits sarcoplasmic reticulum Ca(2+)-ATPase function by direct attack on the ATP binding site // Circul. Res.-1997a.-Vol.80,N1 .-P.76-81.
178. Yoshida K., Harada K. Proteolysis of erythrocyte-type and brain-type ankyrins in rat heart after postischemic reperfusion // J. Biochem.-1997.-Vol.122,Pt 2.-P.279-285.
179. Yoshida K., Yamasaki Y., Kawashima S. Calpain activity alters in rat myocardial subtractions after ischemia or reperfusion II Biochim. Biophys. Acta.-1993,-Vol.l 182,N2.-P.215-220.
180. Zaloga G., Roberts P., Nelson T. Carnosine: a novel peptide regulator of intracellular calcium and contractility in cardiac muscle // New Horizons.-1996.-Vol.4,N1.-P.26-35.
181. Zhang H., Johnson P. Differential effects of aluminum ion on smooth muscle calpain I and calpain II activities // International J. Biochem.-1992.-Vol.24,Pt11 .-P.1773-1778.
182. Zietara M., Skorkowski E. Thermostability of lactate dehydrogenase LDH-A4 isoenzyme: effect of heat shock protein DnaK on the enzyme activity // Int. J. Biochem. Cell Biol.-1995.-Vol.27,N11.-P.1169-1174.
183. Zolotarjova N., Ho C., Mellgren R., Askari A., Huang W. Different sensitivities of native and oxidized forms of Na+/K+-ATPase to intracellular proteinases // Biochim. Biophys. Acta.-1994.-Vol.1192.-P.125-131.