Автореферат и диссертация по медицине (14.00.25) на тему:Кортиколибериновые механизмы подкрепления и их модуляция нейропептидами и наркогенами

ДИССЕРТАЦИЯ
Кортиколибериновые механизмы подкрепления и их модуляция нейропептидами и наркогенами - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Кортиколибериновые механизмы подкрепления и их модуляция нейропептидами и наркогенами - тема автореферата по медицине
Воеводин, Евгений Евгеньевич 0 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.25
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Кортиколибериновые механизмы подкрепления и их модуляция нейропептидами и наркогенами

На Правах рукописи

ВОЕВОДИН Евгений Евгеньевич

КОРТИКОЛИБЕРИНОВЫЕ МЕХАНИЗМЫ ПОДКРЕПЛЕНИЯ И ИХ МОДУЛЯЦИЯ НЕЙРОПЕПТИДАМИ И НАРКОГЕНАМИ

14.00.25 - фармакология, клиническая фармакология 03.00.13 - физиология

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Санкт-Петербург 2007

003057657

Работа выполнена в Военно-медицинской академии имени С.М.Кирова

Научные руководители: доктор медицинских наук профессор Петр Дмитриевич Шабанов доктор биологических наук Андрей Андреевич Лебедев

Официальные оппоненты: доктор медицинских наук Олег Дмитриевич Барнаулов доктор медицинских наук профессор Андрей Федорович Якимовсмй

Ведущее учреждение: Санкт-Петербургская государственная медицинская академия имени И.И.Мечникова

Защита состоится « 22 » мая 2007 года в 13.00 часов на заседании диссертационного совета Д 215.002.07 при Военно-медицинской академии им. С.М.Кирок> (194044, г.Санкт-Петербург, ул. акад. Лебедева, д.6).

С диссертацией можно ознакомиться в фундаментальной библиотеке Воен и медицинской академии им. С.М.Кирова.

Автореферат разослан «_» марта 2007 года

Ученый секретарь диссертационного совета доктор медицинских наук профессор

Борис Николаевич Богомолов

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность исследования. До сих пор остаются нерешенными вопросы, связанные с базисными механизмами формирования зависимости, от психоактивных средств [Koob, 2003; Шабанов П.Д. и др., 2004,2006]. Используемые в эксперименте методы (самостимуляция структур головного мозга, самовведение, условная реакция предпочтения места и др.) во многом приближают выяснение физиологических и нейрохимических механизмов, лежащих в основе зависимости. Все это определяет актуальность исследования, связанного с изучением подкрепляющих (наркогенных) свойств психоактивных веществ пептидной и синтетической природы в эксперименте.

В последние годы акцент в исследовании механизмов зависимости сделан на изучении аномального функционирования эмоциогенных структур мозга, прежде всего, структур медиального переднемозгового пучка [Koob, 2003; Brui-jzeel. Gold, 2005], включая гипоталамус и миндалину. Центральное ядро миндалины входит в систему так называемой расширенной миндалины (extended amygdala), которая локализуется в пределах базального переднего мозга и включает центральное и медиальное ядра миндалины, ядро ложа конечной полоски, медиальную часть прилежащего ядра (shell) и сублентикулярный отдел безымянной субстанции [Davis, 1992; Alheid, Heimer, 1996; Swanson, Petrowich, 1998; Waraczynski, 2005]. Система расширенной миндалины была выделена анатомически согласно единому строению клеток и содержанию веществ, им-муноцитохимическим характеристикам и внутримозговым связям. Эта система состоит из стриатоподобных ГАМК-ергических клеток и имеет большое содержание кортиколиберина [Swanson, Petrowich 1998; Bruijzeel, Gold, 2005]. Являясь звеном экстрашпоталамической системы кортиколиберина, система расширенной миндалины влияет на стресс-зависимое поведение, играет роль в инициации эмоционально-мотивированного ответа и опосредует анксиогенные эффекты кортиколиберина [Sarnyai et al-, 2001; Waraczynski, 2005].

Система расширенной миндалины имеет тесные связи, прямые и обратные, с вентральной областью покрышки и латеральным отделом гипоталамуса, электрическая стимуляция которых вызывает наиболее интенсивную реакцию самораздражения с низкими порогами значений электрического тока [Шаляпина В.Г., Ракицкая В.В., 2003; Шабанов П.Д. и др., 2004, 2006]. Исследования структурно-функциональной организации эмоциональной функции мозга, согласно данным современной литературы, сосредоточены главным образом на анализе внутренней организации вентрального стриатума и в меньшей степени кортиколибериновой системы расширенной миндалины. Особенно неясным и противоречивым является вопрос о роли нейропептидов расширенной миндалины в' регуляции подкрепляющих систем мозга, локализацию которых традиционно связывают с гипоталамусом и передним мозговым пучком. Нейрохими-

чески последние представлены в основном дофампнергическими терминалами [Шабанов П.Д. и др., 2002,2004; Shabanov et al., 2004,2005].

Известно, что кортиколиберин выполняет роль кортикотропинрилизинг фактора (КРФ), или гормона (КРГ). В мозгу рецепторы к кортиколиберину (Ri и кг) локализованы во всех областях, хотя и с разной плотностью [Rybnikova et al., 2003]. КРГ-Ri рецепторы локализованы преимущественно в неокортексе, особенно в префронтальной и энторинальной коре, в структурах обонятельного мозга, миндалевидном комплексе, гиппокампе, мозжечке и сенсорных релейных ядрах. В то же время КРГ-R? практически отсутствуют в коре, а концентрируются преимущественно в субфорникальных структурах, а именно в вен-тромедиальном ядре гипоталамуса, латеральном септуме, ядрах конечной полоски и некоторых ядрах миндалины. Функциональное значение КРГ-R| рецепторов связывают с управлением секреции АКТГ и контролем тревожности, в то время как КРГ—R2 участвуют в регуляции пищевого и сексуального поведения, а также деятельности сердечно-сосудистой и репродуктивной систем [Bruijzeel, Gold, 2005]. Вместе с тем, в механизмах подкрепления и зависимости участие рецепторов кортиколиберина изучено недостаточно. Наибольшее скопление рецепторов кортиколиберина зарегистрировано в гипоталамусе и миндалевидном комплексе. Это определило цель настоящей работы.

Цель исследования: изучить значение рецепторов кортиколиберина, локализованных в миндалине и паравентрикулярной области гипоталамуса, для действия некоторых нейропептидов и наркогенов на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс.

Задачи исследования:

1. Исследовать действие наркогенов на гипоталамические механизмы подкрепления у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции.

2. Провести фармакологический анализ действия лей-энкефалина, субстанции Р, синтетического аналога меланостатина алаптида, кортиколиберина и белков теплового шока 70 кДа на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса при их локальном введении в центральное ядро миндалины или пара-вентрикулярное ядро гипоталамуса у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции.

3. Провести фармакологический анализ действия лей-энкефалина, субстанции Р, синтетического аналога меланостатина алаптида, кортиколиберина и белков теплового шока 70 кДа на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса при их локальном введении в центральное ядро миндалины или пара-вентрикулярное ядро гипоталамуса у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции и подвергнутых хронической алкоголизации.

Научная новизна. В результате проведенных исследований получены новые данные об общих механизмах формирования зависимости от психоактивных средств в эксперименте на основе изучения и сравнения наркогенных свойств нейропептидов (лен-энкефалин), препаратов опийной группы (морфин), гипноседатнвных средств (этаминал-натрий) и психостимуляторов (фенамин, алаптид). Показано, что наркогенный потенциал изученных соединений различен и возрастает при выращивании животных в условиях стресса социальной изоляции. Доказано, что введение потенциальных наркогенных пептидов в эмоциогенные структуры мозга крыс, где локализовано наибольшее количество рецепторов кортиколиберина (центральное ядро миндалины и паравен-трикулярное ядро гипоталамуса) не всегда повышает их подкрепляющие свойства, а помещение животных в условия социальной изоляции приводит к инверсии подкрепляющих- эффектов пептидов и белков. Блокада рецепторов кортиколиберина астрессином в миндалине устраняет подкрепляющее действие морфина и лей-энкефалина, но не фенамина и этаминала-натрия. Блокада гипо-таламических (в паравентрикулярной области) рецепторов кортиколиберина астрессином в меньшей степени меняет действие наркогенов на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса. При этом фенамин, этаминал-натрий и морфин проявляют свой активирующий эффект, а лей-энкефалин не влияет на реакцию самостимуляцни. Потенцирование астрессином угнетающего действия лей-энкефалина на самостимуляцию мозга, по-видимому, связано с временным выключением активирующего влияния центрального ядра миндалины на гипоталамус.

Научно-практнческая значимость. Полученные результаты позволяют методически обосновать и адекватно оценить подкрепляющие (наркогенные) свойства нейропептидов и синтетических наркогенов в экспериментальных условиях с помощью относительно простых поведенческих тестов, основанных на изучении безусловного подкрепления (самостимуляция латерального гипоталамуса) у крыс. Доказано, что подкрепляющие эффекты разных наркогенов (нейропептидов, препаратов опийной группы, гипноседатнвных средств и психостимуляторов) опосредуются центральными механизмами стресса, а именно, участием рецепторов кортиколиберина системы расширенной миндалины. Эти эффекты можно снизить путем блокады рецепторов кортиколиберина его антагонистами (астрессин). Полученные данные открывают перспективу поиска средств, обладающих антагонистической активностью в отношении рецепторов кортиколиберина, для коррекции алкогольной и наркотической зависимости.

Основные положения, выносимые на зашиту:

1. У экспериментальных животных (крыс) большинство нейропеп гидов и синтетических наркогенов обладают подкрепляющими свойствами в тесте самостимуляции латерального гипоталамуса. Подкрепляющий (наркогенный) по-

тенциал изученных соединений различен и возрастает при выращивании животных в условиях стресса социальной изоляции.

2. При внутриструктурном введении в центральное ядро миндалины или паравентрикулярное ядро гипоталамуса подкрепляющие свойства выявляются у некоторых эндогенных пептидов и белков (лей-энкефалин, белки теплового шока 70 кДано не кортиколиберина и субстанции Р. Социальная изоляция крыс от сородичей меняет подкрепляющие свойства пептидов вплоть до инверсии.

3. Блокада рецепторов кортиколиберина астрессином в миндалине устраняет подкрепляющее действие морфина и лей-энкефалина, но не фенамина и этаминала-натрия. Блокада гипоталамических (в паравентрикулярной области) рецепторов кортиколиберина астрессином в меньшей степени меняет действие наркогенов на реакцию*самостимуляцин латерального гипоталамуса. При этом фенамин, этаминал-натрий и морфин проявляют свой активирующий эффект, а лей-энкефалин не влияет на реакцию самостимуляции Следовательно, эффект блокады рецепторов в миндалике более выражен, чем эффект блокады данных рецепторов в гипоталамусе.

4. В условиях хронической алкоголизации крыс, выращенных в сообществе, нейропептиды (лей-энкефалин, кортиколиберин, субстанция Р) при внутриструктурном введении в миндалину значительно повышают свои подкрепляющие свойства в тесте самостимуляции гипоталамуса У хронически алкого-лизированных крыс-изолянтов реакция на внутриструктурное введение неиро-пептидов в миндалину снижается или меняется на противоположи) ю. Следовательно, в условиях искусственной активации подкрепляющих систем, вызванной длительной алкоголизацией, животные реагируют на естественные нейропептиды особым (измененным) образом.

Реализация результатов работы. Материалы исследования используются в лекционном курсе кафедры фармакологии и кафедры нормальной физиологии Военно-медицинской академии имени С.М.Кирова, кафедры наркологии Санкт-Петербургской медицинской академии последипломного образования, кафедры нервных болезней и психиатрии и кафедры специализированной терапии Института медицинского образования Новгородского государственного университета имени Ярослава Мудрого. Работа выполнена в соответствии с плановыми научно-исследовательскими разработками Военно-медицинской академии им. С.М.Кирова. Материал диссертации вошел в грантовые разработки Российского фонда фундаментальных исследований при РАН (РФФИ Л»04-04-49672)

Апробация н публикация материалов исследования. Материалы, вошедшие в диссертацию, доложены на международной конференции «Нейрочи-мия. Фундаментальные и прикладные аспекты» (Москва, 2005), международном конгрессе Европейского общества нейропенхофармакологии (Москва,

2005), VII Всероссийской научной конференции «Нсйроэндокрннология-2005» (Санкт-Петербург, 2005), IV Всероссийской научной конференции «Механизмы функционирования висцеральных систем» (Санкт-Петербург, 2005), XIV съезде психиатров России (Москва, 2005), IV международной конференции «Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам» (Москва, 2006). По теме диссертации опубликованы 4 статьи и 10 тезисов. Апробация диссертации прошла на совместном заседании кафедр фармакологии и нормальной физиологии Военно-медицииской академии им. С М.Киреьа.

Структура и объем диссертации. Диссертация состоит из введения, главы обзора литературы, материалов и методов исследования, главы результатов собственных исследований (включающей 4 раздела), обсуждения результатов, выводов, практических рекомендаций, списка литературы. Работа изложена на 124 страницах машинописного текста, иллюстрирована 4 рисунками и 15 таблицами. Библиографический указатель содержит 340 наименовании, в том числе 50 отечественных и 290 иностранных.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Выбор животных. Опыты выполнены на 617 крысах самцах Внсгар массой 200-250 г, выращенных в группе по 5 особен или е условиях социальной изоляции от сородичей с 17-го дня жизни в стандартных пластмассовых клетках в условиях вивария. Животных содержали при свободном доступе к воде и пище в условиях инвертированного света 8.00-20.00 при температуре 22±2°С. Все опыты проведены в осенне-зимний период.

Выращивание животных в }словия\ частичной сенсорной и полней внутривидовой изоляции. Животных помещали б индивидуальные клетки с 17-го дня после рождения, когда они становились способными к самообеспечению. В изоляции крысы находились до 90-100 дней. Именно такой период по-сгнатального развития считается наиболее значимым для влияния различных воздействий внешней среды на формирование адаптивного поведения у крыс [Пошивалов В.П., 1986; Михеев В.В., Шабанов П.Д., 2007]. Индивидуальные клетки размерами 40x30x25 см были сконструированы таким обра-юг чтобы свести контакт животного с экспериментатором или служителем вивария до минимума при уборке клетки. К началу опыта возраст животных-изолчнгов н сгруппированных крыс был одинаков (90-100 дней). После каждого опыта кры-сы-изолянты помещались в свои индивидуальные клетки.

Вживление электродов и канюль в структуры мозга. Вживление электродов в мозг крысам проводили под нембуталовым наркозом (50 мг/кг) с использованием стереотаксического прибора фирмы «МесПсог», Венгрия Билатерально в латеральное гипоталамическое ядро вживляли ниг.ромовые монополярные электроды в стеклянной изоляции (диаметр электрода 0,25 мм, длина оголенного кончика 0,25-0,30 мм, его толщина 0,12 мм) по следующим коорди-

s

натам: AP = 2,5 мм назад от брегмы, SD = 2,0 мм латерально от сагитального шва, Н = 8,4 мм от поверхности черепа [König K.P., Klippel A.A., 1963]. Индифферентный электрод из нихромовон проволоки закрепляли на черепе животного. Все электроды коммутировались на микроразъеме, который фиксировался на черепе самотвердеющей пластмассой.

Металлические направляющие канюли из нержавеющей стали диаметром 0,2 мм вживляли униполярно в правое центральное ядро миндалины одновременно с гипоталамическими электродами по следующим координатам: АР = 2,8 мм назад от брегмы, SD = 3,9 мм латерально от сагитального шва, Н = 8,2 мм от поверхности черепа, либо в правую паравентрикулярную область гипоталамуса по координатам: АР = 2,0 мм назад от брегмы, SD = 1,5 мм латерально от сагитального шва, Н = 8,4 мм от поверхности черепа [König K.P., Klippel A.A., 1963]. При внутрнструктурном введении веществ в направляющие вставляли металлические микроканюли диаметром 100 мкм, кончик которых был на 0,2 мм длиннее направляющей. Канюли фиксировали на черепе животного самотвердеющей пластмассой и после операции закрывали специальным колпачком, который временно снимали для введения веществ в структуру мозга.

Поведенческие эксперименты начинали не ранее 10 дней после операции. По окончании всех опытов производили морфологический контроль локализации кончиков электродов на серии фронтальных срезов мозга, которые окрашивали по методу Ниссля, предварительно производили коагуляцию через вживленные электроды током силой I мА в течение 30 с.

Методы самораздражения мозга у крыс. Через 10 дней после вживления электродов в мозг крыс обучали нажимать на педаль в камере Скицнера для получения электрического раздражения мозга (прямоугольные импульсы отрицательной полярности, 1 мс, 100 Гц, в течение 0,4 с, пороговые значения тока в режиме «фиксированных пачек»). Частота и длительность нажатий регистрировались автоматически. Анализировали частоту и время каждого нажатия на педаль. На основании этих результатов вычисляли коэффициент «рассогласования» [Лебедев A.A., Шабанов П.Д., 1992], который является удобным дополнительным показателем для оценки действия фармакологических препаратов.

Процедура алкоголизации. Часть крыс (174 крысы) подвергали полунасильственной алкоголизации, когда раствор этанола являлся единственным источником жидкости. Алкоголизацию крыс из сообщества и крыс-изолчнтов начинали проводить с 17-го дня жизни, времени отсадки последних в индивидуальные клетки. Проводили ступенчатую алкоголизацию: в 1-й месяц жизни -5%-ным раствором этанола, во 2-й месяц - 10%-ным и с 3-го месяца - 15%-ным раствором этанола в качестве единственного источника жидкости при свободном доступе к брикетированному сухому корму. Поведенческие опыты начинали у крыс в возрасте не менее 90-100 дней. На период поведенческих экспериментов алкоголь не отменяли.

Фармакологические вещества, используемые для анализа двигательных и эмоциональных форм поведения. Для фармакологического анали-

за использовали психостимулятор фенамин (1-5 мг/кг), наркотический аналге-тик морфин (1 мг/кг), барбитурат этаминал-натрий (5 мг/кг), эндогенный пен-тапептид лей-энкефалин (0,1 мг/кг), аналог меланостатнна алаптид (1 мг/кг), антагонист опиоидных рецепторов налоксон (0,3 мг/кг), которые вводили внут-рнбрюшинно за 30-40 мин до опыта. .

Белки и полипептиды вводили е центральное ядро миндалины или пара-вентрикулярное ядро гипоталамуса через вживленные в эти мозговые сгрукту-ры канюли. Для анализа использовали лей-энкефалин (Sigma, США; 0,1-10 мкг), субстанцию Р (Sigma, США; 0,01-1 мкг), кортиколиберин (Sigma, США; 0,01-1 мкг), алаптид (Институт физиологии и фармакологии Чешской Республики, Прага; 0,1-1 мкг), астрессин (Sigma, США; 1 мкг), белки теплового шока 70 кДа (Институт цитологии РАН, Санкт-Петербург; 1-3 мкл, что соответствовало 0,3-1 мкг массы сухого белка). Все соединения вводили в помощью мнк-роинъектора за 10-15 мин до тестирования после определения исходных значений самораздражения латерального гипоталамуса со скоростью 1 мкл/мин.

Статистическая обработка полученных материалов. Выборка для каждой группы животных составила не менее 10-12 крыс. Полученные результаты обрабатывали статистически с использованием t-критерия Стьюдента, непараметрического критерия U Вилкоксона-Манна-Уитни, таблиц В. С. Генеса (1967), дисперсионного анализа по методу ANOVA. Данные обрабатывали на персональном компьютере Pentium III 1700 мГц.

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Оценка подкрепляющих свойств пептидов и синтетических наркогенов при их системном введении у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции

При оценке подкрепляющих свойств пептидов и синтетических наркогенов в Тесте самостимуляции латерального гипоталамуса (безусловных подкрепляющих свойств) у крыс наблюдали следующие закономерности (табл. 1).

Во-первых, не все исследованные вещества проявляют способность повышать подкрепление. Так, выраженными подкрепляющими свойствами в данном тесте обладают фенамин в дозе 1 мг/кг (+37%), этаминал-натрий (+27%), морфин (+18%) и фенамин в дозе 5 мг/кг (+14%). Следует отметить, что увеличение дозы фенамина в 5 раз не приводила к увеличению подкрепляющих свойств препарата. Во-вторых, алаптид и лей-энкефалин вовсе угнеталн подкрепление, снижая его показатели соответственно на -29% и -11%. Антагонист опиоидных рецепторов налоксон не влиял на реакцию самостимуляции

Несколько иные результаты были получены при изучении действия пептидов и синтетических наркогенов у крыс, выращенных в условиях социальной изоляции.

Таблица I

Влияние пептидов и синтетических наркогеиов при системном введении на показатели самостимуляцн» латерального гипоталамуса у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции

Препараты Число нажатий на педаль за 10 мин

Крысы, выращенные в сообществе Крысы, выращенные в изоляции

До введения (%) После введения (%) До введения (%) После введения (%)

0,9% раствор №С1 (контроль) 402,4+28,2 (100+7) 408,4+40,8 (101+10) 299,2+25,1 (100+8) 304,4+23,5 (101+8)

Фенамин 1 мг/кг 392,0+55,8 (100+9) 537,1+45,7* (137+11) 306,0+39,4 (100+13) 521,1+27,3'-"Ч (170+5)

Фенамин 5 мг/кг 348,6+15,4 (100+5) 397,5+21,6* (114+5) 321,3+42,1 (100=113") 395,5+36,1* (123+9)

Этаминал-натрий 5 мг/кг 384,9+45,3 (100+11) 503,4+70,4 (127+14) 319,6+29,2 (100+11) 444,2+38,6* (139+9)

Морфин 1 мг/кг 414,6+82,2 (100+20) 489,7+53,9 (118+11) 401,9+41,6 (100+10) 526,5+49,6* (131+10)

Лей-энкефалин 0,1 мг/кг , 363,6±70,6 | (100±19) 323,1+29,1 (89+9) 382,6+34,6 (100+9) 459,1+44,9 (120+9)

Алаптид 1 мг/кг ! 273,4±28,1 ' (100+10) 193,7+15,0* (71+7) 382,4+79,1 (100+20) 458,7+98,0"-(119+25)

Налоксон 0,3 мг/кг ! 422,1+58,5 \ 432,3+64,0 ! (100+14) | (102+15) 432,4+37,9 | 395,1+37,4 (100+8) 1 (9Ь9)

Примечание. ^<0,05; *р<0,01 в сравнении с соответствующем контролем

Сопоставление эффектов фенамина на реакцию самостимуляции в камере Скиннера у крыс, выращенных в сообществе и в условиях изоляции, показывает, что они однонаправлены. Однако обращает внимание тот факт, что у крыс-изолянтов фенамин в большей степени стимулирует реакцию самораздражения в дозе 1 мг/кг (на +70% против +37% у сгруппированных), а в дозе 5 мг/кт проявляет сходный умеренно выраженный облегчающий эффект (на +23% у нзо-лянтов и +14% у сгруппипрованных крыс). Эта однонаправленность сохраняется и при анализе значений коэффициента «рассогласования», хотя он снижается в большей степени при введении фенамина изолянтам. В то же Еремя сами исходные значения коэффициента «рассогласования» у крыс-изолянтоЕ значительно ниже, чем у животных, выращенных в сообществе (соотве1сгвенно 0,12+0,04 и 0,18±0,02), что указывает на более высокую активацию сис1емы «награды» у и-юлянтов в сравнении со сгруппированными животными.

Циклический аналог меланостатнна алаптид у крыс, выращенных в условиях социальной изоляции, на 19% активировал реакцию самостимуляции. Этот умеренный пспхопктивирующий эффект препарата может быть связан с активацией 02 рецепторов дофамина в мозгу. Однако следует отметить, что полученные в приведенной серии опытов данные противоположны тем, которые были продемонстрированы у сгруппированных животных, где алаптид на 29% подавлял реакцию самостимуляции.

Блокада опноидных рецепторов налоксоном, как и у сгруппированных животных, существенно не влияла на реакцию самостимуляции. У крыс-изолянтов налоксон лишь незначительно (на +9%, р>0,05) подавлял самостнму-ляцню гипоталамуса.

Полученные результаты в части умеренной активирующей активности наркогенов и пептидову крыс, выращенных в сообществе, вполне ожидаемы, поскольку реакция самораздражения мозга является одной из наиболее жестко детерминированных реакций, и ее активировать у интактных здоровых особей крыс нелегко. Социальная изоляция животных приводит к повышению чувст-вшельности крыс к действию пептидов и синтетических наркогенов. Это особенно ярко проявляется в случае введения фенамина, который в дозе 1 мг/кг на 70% повышал самостимуляцию мозга. Другие наркогены были менее активны, 4 например, этаминал-натрин повышал реакцию самостимуляции у крыс-изолянтов на 39% (р<0,05), морфин - на 31% (р<0,05), лей-энкефалин - на 20% (р>0,05) Видно, что общая тенденция действия всех исследованных наркогенов на реакцию самостимуляции сходна - все они активируют самостимуляцию мозга у крыс-изолянтов в большей степени, чем у животных, выращенных в сообществе.

В дальнейшем мы видоизменили исследования и оценили подкрепляющие свойства некоторых пептидов, которые вводили непосредственно в центральное ядро миндалины, в котором найдено максимальное скопление экстра-гипоталамических коргиколиберинсодержащих нейронов

Оценка подкрепляющих свойств пептидов и синтетических нэркогенов

при их центральном введении в миндалину у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции

В данном разделе исследований оценили подкрепляющие свойства некоторых пептидов и синтетических наркогенов при их введении в центральное ядро миндалины через имплантированные в мозг канюли В этой серии экспериментов было найдено, чго наибольшими подкрепляющими свойствами у крыс, выращенных в сообществе (естественной среде лабораторных животных), обладают белки теплового шока 70 кДа (БТШ-70), которые зависимо от дозы (0,1-1 мкг) повышали самосшмуляцню на 18-48%, алаптид 0,1 мкг (+26%) и лсй-энкефалин 0,1 мкг (- 16%) В других дозах эти соединения не аггивьрозагш самостимуляции, а алаптид 0,5 мкг далее ее подавлял (-24%) Стабильно \гне-

тающий эффект на самоетимуляцшо оказывал кортиколнбсрин в дозах I и 10 мкг (-28-31%), неизбирательный антагонист его рецепторов астрессин (-55%) и субстанция Р 0,1 мкг (-22%). Остальные вещества существенно не меняли реакции самостимуляции (табл. 2 и 3).

Таблица 2

Влияние лей-энкефалина, субстанции Р и алаптида при введении в центральное ядро миндалины на показатели самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции

Препараты Число нажатий на педаль за 10 мин

Крысы, выращенные в сообществе Крысы,выращенные в изоляции

До введения (%) После введения (%) До введения (%) После введения (%)

Контроль (0,9% раствор N301) 332,6±46,6 (100±14) 351,4+42,1 (106+12) 233,6+21,6 (100+9) 242.4+22,1 (104+9)

Лей-энкефалин 0,1 мкг 305,3±18,1 (100±6) 355,0+20,4* (116+6) 154,0+10,2 (100+7) 240,5+29,1** (156+12)

Лей-энкефалин 0,5 мкг 418,7±28,1 (100±7) 456,7+29,6 (109+7) 177,5+11,8 (100+7) 117,0+14,8* (66+13)

Лей-энкефалин 1 мкг 334.7+26,7 (100+8) 353,0+26,4 (106+7) 179,5+14,8 (100+8) 176,0+18.5 (98+11)

Субстанция Р 0,001 мкг 397,3±15,9 1 383,7+25,1 (100±4) | (97+7) 288,3+19,0 (100+7) 314,3+19,8 (109+6)

Субстанция Р 0,01 мкг 403,3±18,8 (100+5) 386,0+22,2 (96+6) 283,8+18,2 (100+6) 309,3+17,8 (109+6)

Субстанция Р 0,1 мкг 427,3+22,9 (100+5) 333,0+26,2* (78+8) 230,0+ Ь5,7 (100+7) 334,3x27,8-' (145+8)

Алаптид 0,1 мкг 298,7+16,2 (100+5) 376,0+19,1* (126+5) 218,5+26,7 (100+12) 193,5+17,6 (89+9)

Алаптид 0,5 мкг 366,7+25,0 (100+7) 277,0+16,Р (76+6) 180,5+28,1 (100+16) 167 5+18,3 (93+11)

Алаптид 1 мкг 1 227,7+13,0 (100+6) 234,7+17,7 ¡177,0+13,9 (103+8) | (100+8) 160,5+8,1 (91+5)

Примечание. *р<0,05; **р<0,01 в сравнении с контролем.

В дальнейшем мы расширили эксперименты и выполнили сходные исследования на крысах, выращенных с 17-го дня жизни в условиях полной внутривидовой и частичной сенсорной июляции Опыты выполняли на полово фелых особях в возрасте 90-100 дней. У крыс, выращенных в условиях социальной июляции от сородиче!!, )ффекп>1 действия пептидов несколько видоизмени-

лись. Так, сохранил свое подкрепляющее действие лей-энкефашш 0,1 мкг (+56%). В то же время в дозе 0,5 мкг лейонкефалнн существенно подавлял самостимуляцию гипоталамуса (-34%). Сходным образом БТШ-70, проявлявший активирующий эффект на самостимуляцию крыс из сообщества, подавлял ее у крыс-изолянтов (-12-27%).

Таблица 3

Влияние кортиколиберина и белков теплового шока 70 кДа при введении в центральное ядро миндалины на показатели самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции

Препараты Число нажагнй на педаль за 10 мин

Крысы, выращенные в сообществе Крысы,выращенные в изоляции

До введения (%) После введения (%) До введения (%) После введения (%)

Контроль (0,9% раствор NaCl) 332,6±46,6 (100+14) 351,4+42,1 (106+12) 233,6+21,6 (100+9) 242,4+22,1 (104+9)

Кортиколиберин 0,1 мкт 388,7+26,7 (100+7) 384,0+21,5 (99+6) 145,0+12,1 (100+7) 208,7±11.8+ (119+6)

Кортиколиберин 1 мкт ¡ 396,0±21,2 ! (100±5) 274,7+14,2" ¡237,5+12,2 (69+5) I (100+7) 264,5+25,0 (111+9)

Кортиколиберин 10 мкг ; 306,3+15,6 ! 220,7+19,3''' Í254,0+14,0 1 : (100±5) , (72+°) ! (100+5) 283,5+22,2 (112+8)

! БТШ-70 0,1 мк-г 290,7+23,7 (100+8) 343,0+25,3 314,0+33,1 (118+7) |{100±11) 253,0+25,! -(81+10)

БТШ-70 0,5 мкг 294,1+22,5 (100+7) 431,3+24,3"' '225,3+2-3,9 (148+6) : (100+10) 198,3+25.8 (88+13)

БТШ-70 1 мкг 288,6+25,3 (100+9) 422.3+26,6°: * ¡242,5+23,5 (145+6) ¡(100+10) 177,5+26.4" (73+15)

Примечание. *р<0,05; v*p<0,01 в сравнении с контролем

Напротив, кортиколиберин умеренно активировал реакцию самостимулч-ции (+11-19%), а субстанция Р 0,1 мкг выражено ее повышала (+45%). Оба по следних пептида оказывали противоположный эффект у крыс, выращенныч сообществе. Другие соединения существенно не влияла и,' реакцию самоет-муляции латерального гипоталамуса у крыс-изолянтов.

Таким образом, выращивание животных в условиях социальной изоляции меняет реактивность животных на введение пептидных препаратов. При этом реакции многих из них извращаются и даже меняются на противоположные. В целом, бе условное подкрепление, оцененное в гес!е самостимуляции

рального гипоталамуса, существенно отличается от других подкрепляющих реакции (например, от реакции предпочтения места, которую рассматривают как условнорефлекторное подкрепление), где практически все наркогены синтетической и пептидной природы оказывали однонаправленное действие [Ли Ю.А., 2005].

Оценка подкрепляющих свойств пептидов и синтетических наркогенов

при блокаде рецепторов кортиколнберина в миндалине и гипоталамусе

астресснном

Как известно из литературы, наибольшее скопление рецепторов кортиколнберина зарегистрировано в гипоталамусе и миндалевидном комплексе. Это определило цель настоящего раздела работы - изучить значение рецепторов кортиколнберина, локализованных в миндалине и паравентрикулярноп области гипоталамуса, для действия некоторых пептидов и синтетических наркогенов на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса. Для блокады рецепторов кортиколнберина использовали неселективный антагонист астрессин (Sigma, СШ А), который вводили в дозе 1 мкг локально в структуры мозга (центральное ядро миндалины или паравентрикулярную область гипоталамуса), в объеме 1 мкл, растворяя его в 0,9%-ном растворе хлорида натрия. Скорость подачи раствора, содержащего астрессин, составила 1 мкл/мин Выбор дозы аст-рессина и других соединений основывался на предпочтительном использовании указанных доз в поведенческих экспериментах. В качестве контроля использовали введение 0,9%-ного раствора хлорида натрия.

Астрессин, вводимый локально в центральное ядро миндалины, снижал число нажатий на педаль более чем в 2 раза (-55%), а при введении в паравентрикулярную область гипоталамуса - лишь на 17%. На фоне микроинъекции астрессина в миндалину или паравентрикулярную область i ипоталамуса системно вводимый фенамин сохранял свой психоактивирующий эффект, при этом прирост числа нажатий на педаль относительно действия самого астрессина составил +68% и +24% соответственно (табл. 4). Сходный эффект регистрировали и для этаминал-натрия, где прирост числа нажатий на педаль относительно действия самого астрессина в указанных группах составил +94% и +50% соответственно, т. е. проявлялся в полной мере (был выше исходных значений в контроле на 33-39%). В то же время, активирующее действие морфина на реакцию самостимуляции гипоталамуса полностью блокировалось внутриамигда-лярным (-57% против +18% в контроле), но не внутри1 ипоталамическим (+27%) введением астрессина (табл. 5). Лей-энкефалин еще более драматически угнетал реакцию самостимуляции (-89% против -11% в контроле) на фоне внутриамигдапярной блокады рецепторов кортиколнберина астресснном. И, сходно с действием морфина, лей-энкефалин не проявлял своего психоактиви-рующего действия на фоне внутригипоталамического ведения астрессина.

Таблица 4

Влияние фенамина и этаминал-натрия на показатели самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс, выращенных в сообществе, после внутриструктурного введения астрессина

Препараты Число нажатий на педаль за 10 мин Коэффициент «рассогласования»

До введения (%) После введения (%) До введения После введения

Фенамин

0,9% раствор №€1 (контроль) 402,4±28,2 (100±7) 408,4±40,8 (101±10) 0,18±0,02 0,16±0,02

Фенамин 1 мг/кг 392,0±55,8 (100±9) 537,1±45,7* (137±11) 0,20±0,03 0,08±0,02*

Астрессин 1 мкг внутриамигдалярно 407,9±44,8 (100±11) 183,6±25,7':1* (45±14) 0,21 ±0,03 0,25±0,04

Астрессин 1 мкг внутригипоталамическн 386,4±42,5 (100±11) 320,7±28,9 (83±9) 0,24±0,03 0,26±0,03

Астрессин внутриамигдалярно + фенамин 183,6±25,7 (45±14) 461,0±69,2* (113±15) 0,25±0,04 0,24±0,04

Астрессин внутригипоталамическн + фенамин 320,7±28,9 (83±9) 413,5±45,5='" (107±11) 0,29±0,03 0,41±0,03*

Этаминал-на грий

| 0,9% раствор №С1 (контроль) 388,3±42,8 (100±Н) 396 4±ЗЧ 7 | (102±10) ! 0',б*°'02 1 0Л8±0'03

Этаминал-натрнй 5 мг/кг 384,9±45,3 (100±11) 503,4±70,4 (127±14) 0,18±0,02 0,13±0,02-1

Астрессин 1 мкг внутриамигдалярно 377,2±52,9 (100±14) 169,9±23,8*+ (45±14) 0,20±0,03 0,24±0,04

Астрессин 1 мкг внутригипоталамическн 401,3±40,2 (100±10) 333,1 ±30,0 (83±9) 0,26±0,03 0,28±0,04

Астрессин внутриамигдалярно + этаминал-натрий 169,9±23,8 (45±14) 550,9±77,1** (139±14) 0,24±0,04 | 0,12±0,02*

Астрессин внутригипоталамическн + этаминал-натрий 333,1±30,0 (83±9) 533,7±69,4* (133±13) Г 0,21 ±0,03 ! 0,19±0,02

Примечание. *р<0,05; *лр<0,01 в сравнении с соответствующим контролем.

Таким образом, блокада экстрагипоталамических (локализованных преимущественно в центральном ядре миндалины) рецепторов кортиколиберина астрессином меняет действие разных наркогенов на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса.

Таблица 5

Влияние морфина и лей-энкефалина на показатели самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс, выращенных в сообществе, после внутриструктурного введения астрессина

Препараты Число нажатий на педаль за 10 мин Коэффициент «рассогласования»

До введения (%) После введения (%) До введения После введения

Морфин |

0,9% раствор ЫаС1 (контроль) 411,2±63,4 (100±15) 418,6±41,6 (102±10) 0,23±0,04 0,20±0,04 |

Морфин 1 мг/кт 414,6±82,2 (100±20) 489,7±53,9 (118±11) 0,20±0,02 0,13±0,02!,1

1 Астрессин 1 мкг внутриамигдалярно 413,3±53,7 (100±13) 186,8±26,1'!-? (45±14) 0,21 ±0,03 0,25±0,04 :

Астрессин 1 мкг внутригипоталамически 381,9±42,0 (100±11) 317,0±28,5 (83±9) 0,26±0,03 0,28±0,04

Астрессин внутриамигдалярно + морфин 186,8±26,1 (45±14) 178,5±23,2 (43±13) 0,25±0,04 0,37±0,04*

Астрессин внутригипоталамически + морфин 317,0±28,5 (83±9) 348,7±27,9* (110±8) 0,21 ±0,03 0,22±0,03

| Лей-энке< >алин

| 0,9% раствор №С1 (кон-| троль) 332,6±46,6 | 351,4+42,1 (100±14) | (106±12) 0,20±0,03 ! 0,18±0,03

Лей-энкефалин 0,1 мг/кг 363,6±70,6 (100±19) 323,1±29,1 (89±9) 0,23±0,02 ! 0,17±0,02 I

Астрессин 1 мкг внутриамигдалярно 419,2±94,4 (100±22) 188,6±26,4"'1-(45±14) 0,21 ±0,03 0,25±0,04

Астрессин 1 мкг внутригипоталамически 346,5±34,7 (100±10) 287,6±25,9 (83±9) 0,25±0,03 0,28±0,04

Астрессин внутриамигдалярно + лей-энкефалин 188,6±26,4 (45±14) 46,1±1,4'1 ** (11±3) 0,25±0,04 0,39±0,05*

Астрессин внутригипоталамически + лей-энкефалин 287,6±25,9 (83±9) 263,3±23,7 (76±9) 0,22±0,02 0,25±0,03

Примечание. *р<0,05; **р<0,01; ***р<0,001 в сравнении с соответствующим контролем.

На этом фоне этаминал-натрий и в меньшей степени фенамин сохраняют выраженный психоактивирующий эффект, а у морфина умеренный стимулирующий эффект меняется на депрессантный. Лей-энкефалин при этом выбывает стойкий депрессантный эффект, потенцируя действие асфессина

Блокада гипоталамических (в ларавснтрикупярноП области) рецепторов кортиколиберииа астрессином оказывает менее выраженное действие на реакцию самостимуляции гипоталамуса. На этом фоне пенхоактивирующее действие сохраняют фенамин, этаминал-натрия и морфин. Лей-энкефалин не влияет на (не потенцирует) депрессантные эффекты астрессина. Данные наблюдения сделаны на основе анализа абсолютных величин числа нажатий на педаль, времени нажатия и «коэффициента рассогласования».

Следует отметить, что показатели «коэффициента рассогласования« в целом совпадали с величинами числа нажатий на педаль. Это подтверждает важность комплексной оценки подкрепляющих эффектов фармакологических препаратов не только с позиции абсолютного увеличения (или уменьшения) числа нажатий на педаль при пороговых значениях тока, но и с помощью специальных расчетных коэффициентов, каким является «коэффициент рассогласования».

Оценка подкрепляющих свойств пептидов и синтетических наркогенов при их центральном введении в миндалину у крыс, выращенных в сообществе или социальной изоляции н подвергшихся длительной алкоголизации

Как отмечалось выше, система расширенной миндалины имеет тесные связи, прямые и обратные с вентральной областью покрышки и латеральным отделом гипоталамуса, электрическая стимуляция которых вызывает наиболее интенсивную реакцию самораздражения с низкими порогами значений электрического тока. Исследования организации эмоциональной функции мчзга, согласно данным современной литературы, сосредоточены главным образом на анализе внутренней организации вентрального стриатума и е меньшей степени кортиколибериновой системы расширенной миндалины. Особенно неясным и противоречивым является вопрос о роли нейропептидов расширенной миндалины в регуляции подкрепляющих систем мозга в процессе формирования алкогольной зависимости.

Поэтому мы исследовали подкрепляющие свойства нейропептидов и белков при их введении в центральное ядро миндалины у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции и подвергнутых алкоголизации. Процедура алкоголизации в наших экспериментах состояла в следующем. Часть крыс (174 крысы) подвергали полунасильственной алкоголизации, когда раствор этанола являлся единственным источником жидкости. Алкоголизацию крыс из сообщества и крыс-изолянтов начинали проводить с 17-го дня жизни, времени отсадки последних в индивидуальные клетки. Проводили ступенчатую алкоголизацию: в 1-й месяц жизни - 5%-ным раствором этанола, во 2-й месяц -10%-ным и с 3-го месяца - 15%-ным раствором этанола в качеиве едпчсть'сн-ного источника жидкости при свободном доступе к брикетированному су.пму

корму. Поведенческие опыты начинали у крыс в возрасте не менее 90-100 дней. На период поведенческих экспериментов алкоголь не отменяли.

Таблица 6

Влияние лей-энкефалина, субстанции Р и алаптида при введении в центральное ядро миндалины на показатели самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс, выращенных в сообществе или изоляции и алкоголизированных в течение 3 месяцев

Препараты Число нажатий на педаль за 10 мин

Крысы, выращенные в сообществе Крысы, выращенные в изоляции

До введения (%) После введения (%) До введения (%) После введения (%)

Контроль (0,9% раствор ЫаС1) 156,5±13,2 (100+8) 162,6+12,4 (104+7) 233,6t21,6 (100+9) 242,4+22,1 (104+9)

Лей-энкефалин 0,1 мкг 144,5±12,3 (100±8) 269,5+21,5* (186+8) 154,0+10,2 (100+7) 240,5+29,1** (156+12)

Лей-энкефалин 0,5 мкг 142,7±13,1 (100±7) 263,5+26,2й (182+10) 177,5+11,8 (100+7) 117,0+14,8* (66+13)

Лей-энкефалин 1 мкг 147,6±12,7 (100±8) 311,5+29, Г*-* (216+9) 179,5+14,8 (100+8) 176,0+18,5 (98+11)

Субстанция Р 0,001 мкг 167,3+12,0 (100+7) 155,0+14,3 (93±9) 288,3+19,0 (100+7) 314,3+19,8 (109+6)

Субстанция Р 0,01 мкг 165,3+12,8 (100+7) 179,0+14.5 (107+8) 283,8+18,2 ! 309,3+17,8 (100+6) | (109+6)

Субстанция Р 0,1 мкг 169,1 + 12,4 (100+7) 243,0+16,2* (145+7) 230,0+15,7 1334,3+27,8 (100±7) ; (145+8)

Алаптид0,1 мкг 258,2+18,9 (100+7) 320,1+18,2 (85+8) 218,5+26,7 (100+12) 193,5+17,6 (89+9)

Алаптид 0,5 мкг 251,7+17,4 (100+7) 179,9+16,3' (70+9) 180,5+28,1 (100+16) 167,5+18,3 (93+11)

Алаптид 1 мкг 261,8+18,0 (100+7) 325,8+29,5 (126+9) 177,0+13,9 | 160,5+8,1 (100+8) ; (91+5)

Примечание. *р<0,05; Ätp<0,01 в сравнении с контролем.

При оценке безусловных подкрепляющих свойств пептидов и белков в тесте самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс был выявлен ряд закономерностей.

Во-первых, не все исследованные вещества проявляют способность повышать подкрепление у алкоголизированных животных (таби. 6). Наибольшими подкрепляющими свойствами у крыс, выращенных в сообществе (естест-

венной среде лабораторных животных), обладали лей-энкефапин, который зависимо от дозы повышал самостимуляцию на 82-116%, кортиколиберин (+61147%) и субстанция Р в дозе ф,1 мкг (+45%). Угнетали реакцию самостимуляции алаптид 0,5 мкг (-30%) и неизбирательный антагонист рецепторов кортико-либерпна астрессин (-53%). Остальные вещества существенно не меняли реакции самостимуляции (табл. 7).

Таблица 7

Влияние кортиколиберина и белков теплового шока 70 кДа при введении в центральное ядро миндалины на показатели самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс, выращенных в сообществе или изоляции и алкоголизированных в течение 3 месяцев

Препараты Число нажатий на педаль за 10 мин Коэффициент «рассогласования»

Крысы, выращенные в сообществе Крысы, выращенные в изоляции

До введе-_ния(%) После введения (%) До введения (%) После введения (%)

Контроль (0,9% раствор №;С1) 156,5+13,2 (100+8) 162,6+12,4 (104+7) 233,6+21,6 (100+9) 242,4+22,1 (104+9)

Кортиколиберин 0,1 мкг 98,0+9,0 (100+9) 158,0+12,8* (161+8) 145,0+12,1 (100+7) 208,7+11,8* (119+6)

Кортиколиберин 1 мкг ! 96,8+8,9 (100+9) 171,3-мз 2" (175+8) 237,5+12,2 (100+7) 264,5+25,0 (111+9)

| Кортиколиберин 10 мкг 1 100,3+9,6 (100+9) 242,2+14.2-(247+6) 254,0+14,0 ! 283,5+22,2 (100+5) | (112+8)

1 БТШ-70 1 мкл 285,4+26,4 (100+9) 312,5+29,3 (110+9) 3\4,0+33,1 ¡253,0+25,1' (Ю0+11) | (81+10)

БТШ-70 2 мкл 290,1+23,4 (100+9) 230,2+22,1 (81+10) 225,3+23,9 | 198,3+25,8 (100+10) 1 (88+13)

БТШ-70 3 мкл 1 288,1+25,8 (100+9) 214,3+18,6 (75+9) 242,5+23,5 1177,5^6,4* (100+10) | (73+15)

Примечание. *р<0,05; **р<0,01 в сравнении с контролем.

У крыс, выращенных в условиях социальной изоляции от сородичей с 17-го дня жизни и также подвергшихся длительной (в течение 3 мес) алкоголизации с момента помещения в индивидуальные клетки, эффекты действия пептидов несколько видоизменились (табл. 6 и 7). Гак, сохранил свое подкрепляющее действие лей-энкефалин 0,1 мкг (+56%). В то же время в дозе 0,5 мкг лей-энкефалин существенно подавлял самостимуляцию гипоталамуса (-34%).

Сходный с лей-энкефапином активирующий эффект сохранила и субстанция Р 0,1 мкг (+55%). Кортиколиберин лишь умеренно активировал реакцию самостимуляции (+11-19%). Другие исследованные соединения существенно не влияли на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс-изолянтов.

Таким образом, выращивание животных в условиях социальной изоляции меняет реактивность животных на введение пептидных препаратов, хотя направленность действия пептидов сохраняется. Если крысы, выращенные в сообществе и подвергшиеся алкоголизации, реагируют на введение пептидов достаточно выраженно, часто в 1,5-2 раза превышая исходные значения самостимуляции, то реактивность крыс-изолянтов умеренная или низкая. Однако важно отметить, что социальная изоляция не извращала эффектов пептидных соединений, как это было отмечено у животных, не подвергавшихся стрессовому воздействию социальной изоляции без алкоголизации [Шабанов П.Д. и др., 2006].

ВЫВОДЫ

1. У экспериментальных животных (крыс) большинство исследованных нейропептндов (лей-энкефалин) и синтетических наркогенов (фенамин, морфин, этаминал-натрий), обладают подкрепляющими свойствами в тесте самостимуляции латерального гипоталамуса. Подкрепляющий (наркогенный) потенциал изученных соединений различен и возрастает при выращивании животных в условиях стресса социальной изоляции.

2. Блокада рецепторов кортиколиберина в мозгу неселективным антагонистом астрессином угнетает реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса, что указывает на важное значение системы мозгового кортиколиберина в механизмах подкрепления.

3. При внутриструктурном введении в центральное ядро миндалины или паравентрикулярное ядро гипоталамуса подкрепляющие свойства выявляются у некоторых эндогенных пептидов и белков (лей-энкефалин, белки теплового шока 70 кДа), но не кортиколиберина и субстанции Р. Социальная изоляция крыс от сородичей меняет подкрепляющие свойства пептидов вплоть до инверсии.

4. Блокада экстрагипоталамических (в центральном ядре миндалины) рецепторов кортиколиберина астрессином меняет действие разных наркогенов на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса. На этом фоне фенамин не проявляет своего активирующего действия на реакцию самостимуляции, этаминал-натрий сохраняет выраженный психоактивирующий эффект, а у морфина умеренный стимулирующий эффект меняется на депрессантный Лей-энкефалин при этом вызывает стойкий депрессантный эффект, потенцируя действие астрессина. Потенцирование астрессином угнетающего действия лей-энкефалина на самостимуляцпю мозга, по-видимому, связано с временным вы-

ключением активирующего влияния центрального ядра миндалины на гипоталамус.

5. Блокада гипоталамических (в паравентрикулярной области) рецепторов кортиколиберина астрессином в меньшей степени меняет действие наркогенов на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса. При этом фенамин, этаминал-натрий и морфин проявляют свой активирующий эффект, а лей-энкефалин не влияет на реакцию самостимуляции.

6. В условиях хронической алкоголизации крыс, выращенных в сообществе, нейропептиды (лей-энкефалин, кортиколиберин, субстанция Р) при внут-риструктурном введении в миндалину значительно повышают свои подкрепляющие свойства в тесте самостимуляции гипоталамуса. У хронически алкого-лизированных крыс-изолянтов реакция на внутриструктурное введение нейро-пептидов в миндалину снижается (кортиколиберин, лей-энкефалин 0,1 и 1 мкг), не меняется (субстанция Р) или меняется на противоположную (лей-энкефалин 0,5 мкг). Таким образом, в условиях искусственной активации подкрепляющих систем, вызванной длительной алкоголизацией, животные реагируют на естественные нейропептиды особым (измененным) образом.

7. Гипоталамическая и экстрагипоталамическая кортиколибернновые системы мозга принимают непосредственное участие в механизмах внутримозго-вого подкрепления, причем система расширенной миндалины играет в этом процессе ведущую роль в сравнении с паравентрикулярными механизмами ги-порталамуса.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Синдром социальной изоляции у крыс следует рассматривать как модель для изучения многих психопатологических расстройств, в генезе которых ведущую роль отводят двигательным и эмоциональным нарушениям поведения Характерные поведенческие и нейрохимические последствия длительной социальной изоляции создают предпосылки для изучения предрасположенности к формированию зависимости от психоактивных средств, включая психостимуляторы, опиаты, гипноседативные средства и нейропептиды.

Нарушения функционирования подкрепляющих систем мозга, являющиеся ведущим признаком длительной социальной изоляции, обратимы и могут устраняться рядом фармакологических веществ, перспективными из которых могут рассматриваться нейропептиды, модулирующие систему кортиколиберина (кортиколиберин, астрессин), тахикинины (субстанция Р) и опиоиды (лей-энкефалин).

Полученные в настоящей работе результаты доказывают необходимость учета кортиколибериновых механизмов подкрепления и возможности использования антагонистов рецепторов кортиколиберина для управления центральными механизмами стресса.

( ■ i ■ 22?

Нарушения функционирования подкрепляющих систем мозга при длительной алкоголизации необходимо учитывать при лечении эмоциональных и

когнитивных расстройств лекарственными средствами пептидной природы (се-

макс, селанк, ноопепт, дельтаран и др.) у наркологических пациентов.

Список основных работ по теме диссертации

1. Лебедев А.А., Воеводин Е.Е., Андреева Л.И., Русановский В.В., Павленко В.П., Стрельцов В.Ф., Шабанов П.Д. Подкрепляющие свойства нейропепти-дов при локальном введении в центральное ядро миндалины крыс-изолянтов // Нейрохимия. Фундаментальные и прикладные аспекты. Научн. конф. Тез. докл. и научн. сообщ. М.: ИБХ, 2005. С. 106.

2. Lebedev A.A., Voevadin Е.Е., Andreeva L.I., Russanovsky V.V., Pavlenko V.P., Streltsov V.F., Shabanov P.D. Reinforcing properties of neuropeptides administered into the extended amygdala of chronically alcoholized rats // Eur. Neuropsy-chopharmacol. 2005. V.15, Suppl.2. P.S294.

3. Лебедев A.A., Воеводин E.E., Андреева Л.И., Русановский В.В., Павленко В.П., Стрельцов В.Ф., Шабанов П.Д. Подкрепляющие свойства CRF и других нейропептидов при интраструктурном введении в центральное ядро миндалины крыс-изолянтов // Нейроэндокринология-2005. Тез. докл. VII Всерос. конф. СПб., 2005. С. 105.

4. Shabanov P.D., Lebedev А.А., Voevodin Е.Е., Streltsov V.F.The blockade of amygdaloid coiticoliberin receptors by astressin diminishes the reinforcing effects of amphetamine, morphine and leu-enkephaline but not ethaminal-natrium on self-stimulation in rats // Психофармакол. и биол. наркол. 2005. Т.5, №2. С.890-891.

5. Andreeva L.I., Guzhova I.V., Margulis В.A., Nikiforova D.V., Lebedev A.A., Voevodin E.E., Shabanov P.D. Simulation of stress response in animals by the delivery of heat shock protein 70 kDa // Психофармакол. и биол. наркол. 2005. Т.5, №2. С.908-909.

6. Шабанов П.Д., Лебедев А.А., Воеводин Е.Е., Андреева Л.И., Русановский В.В., Павленко В.П., Стрельцов В.Ф. Действие CRF, HSP-70, субстанции Р, лей-энкефалина и алаптида на подкрепляющие системы мозга крыс-изолянтов при введении веществ в центральное ядро миндалины // Нейро-иммунология. 2005. Т.З, №2. С. 170.

7. Шабанов П.Д., Воеводин Е.Е., Лебедев А.А., Павленко В.П., Стрельцов В.Ф. Кортиколибериновые и пептидные механизмы подкрепления // Механизмы функционирования висцеральных систем. IV Всерос. конф., поев. 80-летию Ин-та физиол. им. И.П.Павлова РАН. Тез. докл. СПб., 2005. С.268.

8. Шабанов П.Д., Воеводин Е.Е., Лебедев А.А., Павленко В.П., Стрельцов В.Ф Кортиколиберин и система подкрепления // XIV съезд психиатров России. Матер, съезда / Под ред. В.Н.Краснова. М., 2005. С.501.

9. Шабанов П.Д., Лебедев А.А., Воеводин Е.Е., Стрельцов В.Ф. Блокада рецепторов кортиколиберина в миндалине астрессином устраняет подкрепляющие эффекты фенамина, морфина и лей-энкефапина на самостимуляцию мозга // Эксперим. и клин, фармакол. 2006. Т.69, №3. С.14-18.

Ю.Шабанов П.Д., Лебедев А.А., Русановский В.В., Воеводин Е.Е., Павленко В.П., Яковлева О.А. Модуляция пептидами самостимуляции латеральною гипоталамуса у крыс при хронической алкоголизации // Наркология. 2006. №3. С.36-41.

П.Лебедев А.А., Воеводин Е.Е., Стрельцов В.Ф., Павленко В.П., Русановский В.В., Саблина Г.В., Яковлева О.А., Шабанов П.Д. Блокада рецепторов кортиколиберина в миндалине астрессйном устраняет подкрепляющие эффекты фенамина, морфина и лей-энкефалина на самостимуляцию мозга крыс // Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам. Матер. 4-й междунар. конф. М., 2006. С.47.

12.Шабанов П.Д., Лебедев А.А., Воеводин Е.Е., Павленко В.П., Русановский В.В., Саблина Г.В., Яковлева О.А., Кортиколиберин и мозговая система подкрепления // Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам. Матер. 4-й междунар. конф. М., 2006 С.80.

13.Lebedev А.А., Voevodin Е.Е., Streltsov V.F., Pavlenko V.P., Russanovsky V.V.. Sablina G.S., Yakovleva O.A., Shabanov P.D. The blockade of amigdaloid corti-coliberin receptors by means of astressin diminishes the reinforcing effects of amphetamine, morphine and leu-enkephalin on self-stimulation of the rat brain // Biological basis of individual sensitivity to psychotropic drugs. Abstracts of 4'1, Int. Conf. Moscow, 2006. P. 120.

14. Shabanov P.D., Lebedev A.A., Voevodin E.E., Pavlenko V.P., Russanovsky V.V., Sablina G.S., Yakovleva O.A. Corticolicoliberin and the reinforcing system of the brain // Biological basis of individual sensitivity to psychotropic drugs Abstracts of 4th Int. Conf. Moscow, 2006. P. 136.

Тираж 100 экз. Подписано в печать 20.03.2007 г. Формат 60x84 '/щ Объем 1.25 п.л. Заказ № ÇL Л

Отпечатано в типографии ЦСИ (190020. Санкт-Петербург, ул. Циолковского. 11;

 
 

Оглавление диссертации Воеводин, Евгений Евгеньевич :: 0 ::

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. СИСТЕМА РАСШИРЕННОЙ МИНДАЛИНА И МЕХАНИЗМЫ

ПОДКРЕПЛЕНИЯ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ).

1.1. Структурно-функциональная организация системы расширенной миндалины и ее роль в подкреплении

1.2. Кортиколибериновая система мозга.

 
 

Введение диссертации по теме "Фармакология, клиническая фармакология", Воеводин, Евгений Евгеньевич, автореферат

До сих пор остаются нерешенными вопросы, связанные с базисными механизмами формирования зависимости от психоактивных средств [Koob, 2003; Шабанов П.Д. и др., 2004, 2006]. Используемые в эксперименте методы (самостимуляция структур головного мозга, самовведение, условная реакция предпочтения места и др.) во многом приближают выяснение физиологических и нейрохимических механизмов, лежащих в основе зависимости. Все это определяет актуальность исследования, связанного с изучением подкрепляющих (наркогенных) свойств психоактивных веществ пептидной и синтетической природы в эксперименте.

В последние годы акцент в исследовании механизмов зависимости сделан на изучении аномального функционирования эмоциогенных структур мозга, прежде всего, структур медиального переднемозгового пучка [Koob, 2003; Brui-jzeel, Gold, 2005], включая гипоталамус и миндалину. Центральное ядро миндалины входит в систему так называемой расширенной миндалины (extended amygdala), которая локализуется в пределах базального переднего мозга и включает центральное и медиальное ядра миндалины, ядро ложа конечной полоски, медиальную часть прилежащего ядра (shell) и сублентикулярный отдел безымянной субстанции [Davis, 1992; Alheid, Heimer, 1996; Swanson, Petrowich, 1998; Waraczynski, 2005]. Система расширенной миндалины была выделена анатомически согласно единому строению клеток и содержанию веществ, им-муноцитохимическим характеристикам и внутримозговым связям. Эта система состоит из стриатоподобных ГАМК-ергических клеток и имеет большое содержание кортиколиберина [Swanson, Petrowich 1998; Bruijzeel, Gold, 2005]. Являясь звеном экстрагипоталамической системы кортиколиберина, система расширенной миндалины влияет на стресс-зависимое поведение, играет роль в инициации эмоционально-мотивированного ответа и опосредует анксиогенные эффекты кортиколиберина [8агпуа1 е1 а1., 2001; \^агас2упз1а, 2005].

Система расширенной миндалины имеет тесные связи, прямые и обратные, с вентральной областью покрышки и латеральным отделом гипоталамуса, электрическая стимуляция которых вызывает наиболее интенсивную реакцию самораздражения с низкими порогами значений электрического тока [Шаляпина В.Г., Ракицкая В.В., 2003; Шабанов П.Д. и др., 2004, 2006]. Исследования структурно-функциональной организации эмоциональной функции мозга, согласно данным современной литературы, сосредоточены главным образом на анализе внутренней организации вентрального стриатума и в меньшей степени кортиколибериновой системы расширенной миндалины. Особенно неясным и противоречивым является вопрос о роли нейропептидов расширенной миндалины в регуляции подкрепляющих систем мозга, локализацию которых традиционно связывают с гипоталамусом и передним мозговым пучком. Нейрохимически последние представлены в основном дофаминергическими терминалями [Шабанов П.Д. и др., 2002, 2004; ЗЬаЬапоу еЬ а1., 2004, 2005].

Известно, что кортиколиберин выполняет роль кортикотропинрилизинг фактора (КРФ), или гормона (КРГ). В мозгу рецепторы к кортиколиберину и Я2) локализованы во всех областях, хотя и с разной плотностью [ЯуЬшкоуа et а1., 2003]. КРГ—Б^ рецепторы локализованы преимущественно в неокортексе, особенно в префронтальной и энторинальной коре, в структурах обонятельного мозга, миндалевидном комплексе, гиппокампе, мозжечке и сенсорных релейных ядрах. В то же время КРГ—Яо практически отсутствуют в коре, а концентрируются преимущественно в субфорникальных структурах, а именно в вен-тромедиальном ядре гипоталамуса, латеральном септуме, ядрах конечной полоски и некоторых ядрах миндалины. Функциональное значение КРГ-Я! рецепторов связывают с управлением секреции АКТГ и контролем тревожности, в то время как КРГ-Я2 участвуют в регуляции пищевого и сексуального поведения, а также деятельности сердечно-сосудистой и репродуктивной систем

Bruijzeel, Gold, 2005]. Вместе с тем, в механизмах подкрепления и зависимости участие рецепторов кортиколиберина изучено недостаточно. Наибольшее скопление рецепторов кортиколиберина зарегистрировано в гипоталамусе и миндалевидном комплексе. Это определило цель настоящей работы.

Цель исследования

Изучить значение рецепторов кортиколиберина, локализованных в миндалине и паравентрикулярной области гипоталамуса, для действия некоторых нейропептидов и наркогенов на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс.

Задачи исследования:

1. Исследовать действие наркогенов на гипоталамические механизмы подкрепления у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции;

2. Провести фармакологический анализ действия лей-энкефалина, субстанции Р, синтетического аналога меланостатина алаптида, кортиколиберина и белков теплового шока 70 кДа на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса при их локальном введении в центральное ядро миндалины или пара-вентрикулярное ядро гипоталамуса у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции;

3. Провести фармакологический анализ действия лей-энкефалина, субстанции Р, синтетического аналога меланостатина алаптида, кортиколиберина и белков теплового шока 70 кДа на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса при их локальном введении в центральное ядро миндалины или пара-вентрикулярное ядро гипоталамуса у крыс, выращенных в сообществе или в условиях социальной изоляции и подвергнутых хронической алкоголизации.

Научная новизна

В результате проведенных исследований получены новые данные об общих механизмах формирования зависимости от психоактивных средств в эксперименте на основе изучения и сравнения наркогенных свойств нейропепти-дов (лей-энкефалин), препаратов опийной группы (морфин), гипноседативных средств (этаминал-натрий) и психостимуляторов (фенамин, алаптид). Показано, что наркогенный потенциал изученных соединений различен и возрастает при выращивании животных в условиях стресса социальной изоляции. Доказано, что введение потенциальных наркогенных пептидов в эмоциогенные структуры мозга крыс, где локализовано наибольшее количество рецепторов кортиколибе-рина (центральное ядро миндалины и паравентрикулярное ядро гипоталамуса) не всегда повышает их подкрепляющие свойства, а помещение животных в условия социальной изоляции приводит к инверсии подкрепляющих эффектов пептидов и белков. Блокада рецепторов кортиколиберина астрессином в миндалине устраняет подкрепляющее действие морфина и лей-энкефалина, но не фенамина и этаминала-натрия. Блокада гипоталамических (в паравентрикуляр-ной области) рецепторов кортиколиберина астрессином в меньшей степени меняет действие наркогенов на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса. При этом фенамин, этаминал-натрий и морфин проявляют свой активирующий эффект, а лей-энкефалин не влияет на реакцию самостимуляции. Потенцирование астрессином угнетающего действия лей-энкефалина на самостимуляцию мозга, по-видимому, связано с временным выключением активирующего влияния центрального ядра миндалины на гипоталамус.

Научно-практическая значимость

Полученные результаты позволяют методически обосновать и адекватно оценить подкрепляющие (наркогенные) свойства нейропептидов и синтетических наркогенов в экспериментальных условиях с помощью относительно простых поведенческих тестов, основанных на изучении безусловного подкрепления (самостимуляция латерального гипоталамуса) у крыс. Доказано, что подкрепляющие эффекты разных наркогенов (нейропептидов, препаратов опийной группы, гипноседативных средств и психостимуляторов) опосредуются центральными механизмами стресса, а именно, участием рецепторов кортиколибе-рина системы расширенной миндалины. Эти эффекты можно снизить путем блокады рецепторов кортиколиберина его антагонистами (астрессин). Полученные данные открывают перспективу поиска средств, обладающих антагонистической активностью в отношении рецепторов кортиколиберина, для коррекции алкогольной и наркотической зависимости.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. У экспериментальных животных (крыс) большинство нейропептидов и синтетических наркогенов обладают подкрепляющими свойствами в тесте самостимуляции латерального гипоталамуса. Подкрепляющий (наркогенный) потенциал изученных соединений различен и возрастает при выращивании животных в условиях стресса социальной изоляции.

2. При внутриструктурном введении в центральное ядро миндалины или паравентрикулярное ядро гипоталамуса подкрепляющие свойства выявляются у некоторых эндогенных пептидов и белков (лей-энкефалин, белки теплового шока 70 кДа), но не кортиколиберина и субстанции Р. Социальная изоляция крыс от сородичей меняет подкрепляющие свойства пептидов вплоть до инверсии.

3. Блокада рецепторов кортиколиберина астрессином в миндалине устраняет подкрепляющее действие морфина и лей-энкефалина, но не фенамина и этаминала-натрия. Блокада гипоталамических (в паравентрикулярной области) рецепторов кортиколиберина астрессином в меньшей степени меняет действие наркогенов на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса. При этом фенамин, этаминал-натрий и морфин проявляют свой активирующий эффект, а лей-энкефалин не влияет на реакцию самостимуляции. Следовательно, эффект блокады рецепторов в миндалине более выражен, чем эффект блокады данных рецепторов в гипоталамусе.

4. В условиях хронической алкоголизации крыс, выращенных в сообществе, нейропептиды (лей-энкефалин, кортиколиберин, субстанция Р) при внут-риструктурном введении в миндалину значительно повышают свои подкрепляющие свойства в тесте самостимуляции гипоталамуса. У хронически алкого-лизированных крыс-изолянтов реакция на внутриструктурное введение нейро-пептидов в миндалину снижается или меняется на противоположную. Следовательно, в условиях искусственной активации подкрепляющих систем, вызванной длительной алкоголизацией, животные реагируют на естественные нейропептиды особым (измененным) образом.

Реализация результатов работы Материалы исследования используются в лекционном курсе кафедры фармакологии и кафедры нормальной физиологии Военно-медицинской академии имени С.М.Кирова, кафедры наркологии Санкт-Петербургской медицинской академии последипломного образования, кафедры нервных болезней и психиатрии и кафедры специализированной терапии Института медицинского образования Новгородского государственного университета имени Ярослава Мудрого. Работа выполнена в соответствии с плановыми научно-исследовательскими разработками Военно-медицинской академии им. С.М.Кирова. Материал диссертации вошел в грантовые разработки Российского фонда фундаментальных исследований РАН (РФФИ №04-04-49672).

Апробация и публикация материалов исследования Материалы, вошедшие в диссертацию, доложены на международной конференции «Нейрохимия. Фундаментальные и прикладные аспекты» (Москва, 2005), международном конгрессе Европейского общества нейропсихофар-макологии (Москва, 2005), VII Всероссийской научной конференции «Нейроэндокринология-2005» (Санкт-Петербург, 2005), IV Всероссийской научной конференции «Механизмы функционирования висцеральных систем» (Санкт-Петербург, 2005), XIV съезде психиатров России (Москва, 2005), IV международной конференции «Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам» (Москва, 2006). По теме диссертации опубликованы 4 статьи и 10 тезисов. Апробация диссертации прошла на совместном заседании кафедр фармакологии и нормальной физиологии Военно-медицинской академии им. С.М.Кирова.

Структура и объем диссертации Диссертация состоит из введения, главы обзора литературы, материалов и методов исследования, главы результатов собственных исследований (включающей 4 раздела), обсуждения результатов, выводов, практических рекомендаций, списка литературы. Работа изложена на 124 страницах машинописного текста, иллюстрирована 4 рисунками и 15 таблицами. Библиографический указатель содержит 340 наименований, в том числе 50 отечественных и 290 иностранных.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Кортиколибериновые механизмы подкрепления и их модуляция нейропептидами и наркогенами"

ВЫВОДЫ

1. У экспериментальных животных (крыс) большинство исследованных нейропептидов (лей-энкефалин) и синтетических наркогенов (фенамин, морфин, этаминал-натрий), обладают подкрепляющими свойствами в тесте самостимуляции латерального гипоталамуса. Подкрепляющий (наркогенный) потенциал изученных соединений различен и возрастает при выращивании животных в условиях стресса социальной изоляции.

2. Блокада рецепторов кортиколиберина в мозгу неселективным антагонистом астрессином угнетает реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса, что указывает на важное значение системы мозгового кортиколиберина в механизмах подкрепления.

2. При внутриструктурном введении в центральное ядро миндалины или паравентрикулярное ядро гипоталамуса подкрепляющие свойства выявляются у некоторых эндогенных пептидов и белков (лей-энкефалин, белки теплового шока 70 кДа), но не кортиколиберина и субстанции Р. Социальная изоляция крыс от сородичей меняет подкрепляющие свойства пептидов вплоть до инверсии.

3. Блокада экстрагипоталамических (в центральном ядре миндалины) рецепторов кортиколиберина астрессином меняет действие разных наркогенов на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса. На этом фоне фенамин не проявляет своего активирующего действия на реакцию самостимуляции, этаминал-натрий сохраняет выраженный психоактивирующий эффект, а у морфина умеренный стимулирующий эффект меняется на депрессантный. Лей-энкефалин при этом вызывает стойкий депрессантный эффект, потенцируя действие астрессина. Потенцирование астрессином угнетающего действия лей-энкефалина на самостимуляцию мозга, по-видимому, связано с временным выключением активирующего влияния центрального ядра миндалины на гипоталамус.

4. Блокада гипоталамических (в паравентрикулярной области) рецепторов кортиколиберииа астрессином в меньшей степени меняет действие наркогенов на реакцию самостимуляции латерального гипоталамуса. При этом фенамин, этаминал-натрий и морфин проявляют свой активирующий эффект, а лей-энкефалин не влияет на реакцию самостимуляции.

5. В условиях хронической алкоголизации крыс, выращенных в сообществе, нейропептиды (лей-энкефалин, кортиколиберин, субстанция Р) при внут-риструктурном введении в миндалину значительно повышают свои подкрепляющие свойства в тесте самостимуляции гипоталамуса. У хронически алкого-лизированных крыс-изолянтов реакция на внутриструктурное введение нейро-пептидов в миндалину снижается (кортиколиберин, лей-энкефалин 0,1 и 1 мкг), не меняется (субстанция Р) или меняется на противоположную (лей-энкефалин 0,5 мкг). Таким образом, в условиях искусственной активации подкрепляющих систем, вызванной длительной алкоголизацией, животные реагируют на естественные нейропептиды особым (измененным) образом.

6. Гипоталамическая и экстрагипоталамическая кортиколибериновые системы мозга принимают непосредственное участие в механизмах внутримоз-гового подкрепления, причем система расширенной миндалины играет в этом процессе ведущую роль в сравнении с паравентрикулярными механизмами ги-порталамуса.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Синдром социальной изоляции у крыс следует рассматривать как модель для изучения многих психопатологических расстройств, в генезе которых ведущую роль отводят двигательным и эмоциональным нарушениям поведения. Характерные поведенческие и нейрохимические последствия длительной социальной изоляции создают предпосылки для изучения предрасположенности к формированию зависимости от психоактивных средств, включая психостимуляторы, опиаты, гипноседативные средства и нейропептиды.

Нарушения функционирования подкрепляющих систем мозга, являющиеся ведущим признаком длительной социальной изоляции, обратимы и могут устраняться рядом фармакологических веществ, перспективными из которых могут рассматриваться нейропептиды, модулирующие систему кортиколибери-на (кортиколиберин, астрессин), тахикинины (субстанция Р) и опиоиды (лей-энкефалин).

Полученные в настоящей работе результаты доказывают необходимость учета кортиколибериновых механизмов подкрепления и возможности использования антагонистов рецепторов кортиколиберина для управления центральными механизмами стресса.

Нарушения функционирования подкрепляющих систем мозга при длительной алкоголизации необходимо учитывать при лечении эмоциональных и когнитивных расстройств лекарственными средствами пептидной природы (се-макс, селанк, ноопепт, дельтаран и др.) у наркологических пациентов.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 0 года, Воеводин, Евгений Евгеньевич

1. Андреева Л.И., Маргулис Б.А., Гужова И.В., Никифорова Д.В., Шабанов П.Д. Центральные эффекты белка теплового шока с молекулярной массой 70 кДа // Психофармакол. и биол. наркол. 2005. Т.5, №1. С.794-803.

2. Бородкин Ю.С., Шабанов П.Д. Нейрохимические механизмы извлечения следов памяти. Л.: Наука, 1986. 150 с.

3. Вальдман A.B., Бабаян Э.А., Звартау Э.Э. Психофармакологические и медико-правовые аспекты наркоманий. М.: Медицина, 1988. 288 с.

4. Вальдман A.B., Пошивалов В.П. Фармакологическая регуляция внутривидового поведения. Л.: Медицина, 1984. 208 с.

5. Вартанян Г.А., Петров Е.С. Эмоции и поведение. Л.: Наука, 1989. 147 с.

6. Вартанян Г.А., Петров Е.С. Подкрепляющая функция эмоций // Журн. высш. нервн. деят. 1992. Т. 42. № 5. С. 843-853.

7. Глущенко В.В. Клинико-фармакологическая оптимизация школьной адаптации детей с нарушениями когнитивной сферы при минимальной мозговой дисфункции: Автореф. дис. . канд. мед. наук. СПб., 2002. 26 с.

8. Григорьян Г.А. Исследование механизмов избегания при самостимуляции у крыс // Журн. высш. нервн. деят. 1976. Т. 26. Вып. 6. С. 1180-1187.

9. Звартау Э.Э. Методология изучения наркотоксикоманий // Итоги науки и техники. Сер. Наркология. М.: ВИНИТИ, 1988. Т. 1. С. 1-166.

10. Лебедев A.A. Влияние индивидуального опыта в раннем онтогенезе на формировамние подкрепляющих систем мозга крыс: Автореф. дисс. . канд. биол. наук. Л., 1986. 20 с.

11. Лебедев A.A. Нейробиология и фармакология подкрепляющих систем мозга: Автореф. дисс. . д-ра биол. наук. СПб., 2002. 48 с.

12. Лебедев A.A. Подкрепляющие системы мозга // Наркомании: патопсихология, клиника, реабилитация / П.Д. Шабанов, О.Ю.Шталькенберг. СПб.: Лань, 2001.С. 143-176.

13. Лебедев A.A., Бычков Е.Р., Николаев C.B. и др. Влияние фенамина на содержание дофамина, норадреналина, серотонина и их метаболитов в до-фаминергических структурах мозга крыс с различным индивидуальным опытом // Наркология. 2002. Т. 1. № 12. С. 2-6.

14. Лебедев A.A., Гурковская О.В., Ноздрачев А.Д., Шабанов П.Д. Участие дофаминергической системы мозга в эффектах глюкокортикоидных гормонов // Физиол. журн. им. И.М. Сеченова 2001. Т. 87. № 7. С. 911-917.

15. Лебедев A.A., Петров Е.С. Поведенческие реакции при раздражении эмо-циогенных зон мозга у крыс с различным индивидуальным опытом // Журн. высш. нервн. деят. 1986. Т. 36. Вып. 3. С. 496-501.

16. Лебедев A.A., Петров Е.С., Вартанян Г.А. Роль индивидуального опыта в раннем онтогенезе в формировании подкрепляющих систем мозга крыс // Журн. высш. нервн. деят. 1983. Т. 33. Вып. 2. С. 363-365.

17. Лебедев A.A., Шабанов П.Д. Сопоставление реакции самостимуляции и условного предпочтения места при введении фенамина у крыс // Журн. высш. нервн. деят. 1992. Т. 42. Вып. 4. С. 692-698.

18. Лебедев A.A., Шабанов П.Д., Чепурнова Н.Е. и др. Латерализованные эффекты аналога меланостатина алаптида у крыс, выращенных в изоляции и сообществе // Физиол. журн. им. И.М.Сеченова. 1994. Т. 80. № 10. С. 24-31.

19. Мещеров Ш.К. Значение формирования дофаминергических систем мозга в онтогенезе для реализации эффектов психостимуляторов: Автореф. дис. . канд. мед. наук. СПб., 2001. 24 с.

20. Мещеров Ш.К. Фармакологическая коррекция последствий социальной изоляции: Автореф. дис. . д-ра мед. наук. СПб., 2004. 48 с.

21. Михеев В.В., Шабанов П.Д. Фармакологическая асимметрия мозга. СПб.: Элби-СПб, 2006.384 с.

22. Могилевский Д.А. Фармакологическая коррекция поведенческих и биохимических нарушений при синдроме социальной изоляции у крыс: Ав-тореф. дис. . канд. мед. наук. СПб., 2003. 24 с.

23. Петров Е.С. Изучение нейробиологических основ сложных безусловных рефлексов в Физиологическом отделе им. И.П.Павлова. Итоги последних лет // Физиол. журн. СССР. 1990. Т. 76. № 12. С. 1669-1680.

24. Пошивалов В.П. Патологические последствия социальной изоляции у людей и животных: обзор литературы и собственные экспериментальные наблюдения. М., 1977. 34 с. Деп. в ВИНИТИ, № 2357-77.

25. Пошивалов В.П. Этологический атлас для фармакологических исследований на лабораторных грызунах. М., 1978. 43 с. Деп. в ВИНИТИ, №3164-78.

26. Пошивалов В.П. Экспериментальная психофармакология агрессивного поведения. JL: Наука, 1986. 173 с.

27. Пошивалов В.П. Последствия зоосоциальной изоляции в зависимости от индивидуальных особенностей животных // Журн. высш. нервн. деят. 1978. Т. 28. С. 438-455.

28. Сапронов Н.С. Гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковая система и мозг. СПб.: Элби-СПб, 2005. 512 с.

29. Слоним А.Д. Среда и поведение. Формирование адаптивного поведения. Л.: Наука, 1976. 211 с.

30. Стрельцов В.Ф. Значение гормональных механизмов в действии психостимуляторов на подкрепляющие системы мозга: Автореф. дис. . канд. мед. наук. СПб., 2003. 24 с.

31. Шабанов П.Д. Гормоны гипофизарно-надпочечниковой системы в механизмах мозгового подкрепления и зависимости // Основы нейроэндокри-нологии / Под ред. В.Г.Шаляпиной и П.Д.Шабанова. СПб.: Элби-СПб, 2005. С. 147-203.

32. Хананашвили М.М. Экспериментальная патология высшей нервной деятельности. М.: Медицина, 1978. 357 с.

33. Хананашвили М. М. Патология высшей нервной деятельности. М.: Медицина, 1983. 287 с.

34. Шабанов П.Д. Основы наркологии. СПб.: Лань, 2002. 560 с.

35. Шабанов П.Д., Бородкин Ю.С. Нарушения памяти и их коррекция. Л.: Наука, 1989. 127 с.

36. Шабанов П.Д., Лебедев A.A., Мещеров Ш.К. Дофамин и подкрепляющие системы мозга. СПб.: Лань, 2002. 208 с.

37. Шабанов П.Д., Лебедев A.A., Мещеров Ш.К. Нейробиологические механизмы подкрепления, активируемые психостимуляторами и глюкокорти-коидами // Наркология. 2002. Т. 1. № 1. С. 19-26.

38. Шабанов П. Д., Лебедев А. А., Ноздрачев А. Д. Функциональное маркирование состояния социальной изолированности с помощью аналога ме-ланостатина алаптида у крыс // ДАН. 1999. Т. 368. № 2. С. 283-285.

39. Шабанов П.Д., Лебедев A.A., Ноздрачев А.Д. Критические периоды формирования дофаминергической системы // ДАН. 2002. Т.386. №4. С.565-570.

40. Шабанов П.Д., Лебедев A.A., Ноздрачев А.Д. Экстрагипоталамические рецепторы кортиколиберина регулируют подкрепляющие эффекты самостимуляции // ДАН. 2006. Т.406. №2. С.47-52.

41. Шабанов П.Д., Лебедев A.A., Русановский В.В., Воеводин Е.Е. и др. Модуляция пептидами самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс при хронической алкоголизации // Наркология. 2006. №3. С.36-41.

42. Шабанов П.Д., Лебедев A.A., Русановский В.В., Стрельцов В.Ф. Поведенческие эффекты кортиколиберина и его аналогов, вводимых в желудочки мозга крыс // Мед. акад. журн. 2005. Т.5. №3. С.59-67.

43. Шабанов П.Д., Лебедев A.A., Стеценко В.П. и др. Влияние кортиколиберина и белков теплового шока 70 кДа, вводимых в раннем постнатальномпериоде, на поведенческие эффекты ноопепта и дилепта у половозрелых крыс // Нейронауки. 2006. Т.2. №5(7). С.4-9.

44. Шабанов П.Д., Мещеров Ш.К., Лебедев А.А. Синдром социальной изоляции. СПб.: Элби-СПб, 2004. 208 с.

45. Шабанов П.Д., Ноздрачев А.Д., Лебедев А.А., Лебедев В.В. Нейрохимическая организация подкрепляющих систем мозга // Рос. Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 2000. Т. 86. № 8. С. 935-945.

46. Шабанов П.Д., Русановский В.В., Лебедев А.А. Зоосоциальное поведение млекопитающих. СПб.: Элби-СПб, 2006. 160 с.

47. Шабанов П.Д., Русановский В.В., Лебедев А.А. Различия в эффектах наркогенов при блокаде рецепторов кортиколиберина астрессином в гипоталамусе и миндалине крыс // Наркология. 2006. №4(52). С. 17-22.

48. Шабанов П.Д., Сапронов Н.С. Влияние избытка и дефицита гормонов ги-пофизарно-адреналовой системы на питьевое поведение крыс // Физиол. журн. СССР им. И.М.Сеченова. 1986. Т. 72. № 2. С. 170-175.

49. Шаляпина В.Г., Ракицкая В.В. Реактивность гипофизарно-адренокортикальной системы на стресс у крыс с активной и пассивной стратегиями поведения // Рос. физиол. журн. им. И.М.Сеченова. 2003. Т.89. №5. С.585-590.

50. Шаляпина В.Г., Шабанов П.Д. Основы нейроэндокринологии. СПб.: Элби-СПб, 2005. 464 с.

51. Abou-Hamed H., Schmitt P., Karli P. Caractéristiques de l'autostimulation au niveau du tegmentum pontin dorsal et du cervelet // Physiol. Behav. 1997. V.19. P.753-759.

52. Adamec R. Transmitter systems involved in neural plasticity underlying increased anxiety and defense — Implications for understanding anxiety following traumatic stress //Neurosci. Biobehav. Rev. 1997. V.21. P.755-765.

53. Albeck D.S., McKittrick C.R., Blanchard D.C. et al. Chronic social stress alters levels of corticotropin-releasing factor and arginine vasopressin mRNA in rat brain // J. Neurosci. 1997. V.17. P.4895^1903.

54. Alheid G.F. Extended amygdala and basal forebrain // Ann. N.Y. Acad. Sci. 2003. V.985. P.185-205.

55. Alheid G.F., Heimer L. New perspectives in basal forebrain organization of special relevance for neuropsychiatric disorders: the striatopallidal, amygdaloid, and corticopetal components of substantia innominata // Neuroscience. 1988. V.27. P.l-39.

56. Alheid G.F., Heimer L. Theories of basal forebrain organization and the 'emotional motor system' //Prog. Brain Res. 1996. V.107. P.461^184.

57. Andreeva L.I., Shabanov P.D., Margulis B.A. Exogenous heat shock protein with a molecular weight of 70 kDa changes behavior in white rats // Dokl. Biol. Sci. 2004. Vol.394. P.34-37.

58. Arvanitogiannis A., Flores C., Pfaus J.G., Shizgal P. Increased ipsilateral expression of Fos following lateral hypothalamic self-stimulation // Brain Res. 1996a. V.720. P.148-154.

59. Arvanitogiannis A., Waraczynski M., Shizgal P. Effects of excitotoxic lesions of the basal forebrain on MFB self-stimulation // Physiol. Behav. 1996b. V.59. №4-5. P.795-806.

60. Arvanitogiannis A., Flores C., Shizgal P. Fos-like immunoreactivity in the caudal diencephalon and brainstem following lateral hypothalamic selfstimulation//Behav. Brain Res. 1997. V.88. P.275-279.

61. Arvanitogiannis A., Riscaldino L., Shizgal P. Effects of NMD A lesions of the medial basal forebrain on LH and VTA self-stimulation // Physiol. Behav. 1999. V.65. P.805-810.

62. Bale T.L., Vale W.W. CRF and CRF receptors: role in stress responsivity and other behaviors // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2004. V.44. P.525-557.

63. Bale T.L., Contarino A., Smith G.W. et al. Mice deficient for corticotropin-releasing hormone receptor-2 display anxiety-like behaviour and are hypersensitive to stress //Nat. Genet. 2000. V.24. P.410-414.

64. Becerra L., Breiter H.C., Wise R., Gonzalez R.G., Borsook D. Reward circuitry activation by noxious thermal stimuli // Neuron. 2001. V.32. P.927-946.

65. Behan D.P., Linton E.A., Lowry P.J. Isolation of the human plasma corticotro-phin-releasing factor-binding protein // J. Endocrinol. 1989. V.122. P.23—31.

66. Behan D.P., De Souza E.B., Lowry P.J. et al. Corticotropin releasing factor (CRF) binding protein: a novel regulator of CRF and related peptides // Front. Neuroendocrinol. 1995. V. 16. P.362-382.

67. Behan D.P., Heinrichs S.C., Troncoso J.C. et al. Displacement of corticotropin releasing factor from its binding protein as a possible treatment for Alzheimer's disease // Nature. 1995. V. 378. P.284-287.

68. Berridge K.C., Robinson T.E. What is the role of dopamine in reward: hedonic impact, reward learning, or incentive salience? // Brain Res. Rev. 1998. V.28. P.309-369.

69. Bielajew C. Distribution of cytochrome oxidase in response to rewarding brain stimulation: effect of different pulse durations // Brain Res. Bull. 1991. V.26. P.379-384.

70. Bielajew C., Shizgal P. Evidence implicating descending fibers in selfstimula-tion of the medial forebrain bundle // J. Neurosci. 1986. V.6. №4. P.919-929.

71. Bielajew C., Jordan C., Ferme-Enright J., Shizgal P. Refractory periods and anatomical linkage of the substrates for lateral hypothalamic and periaqueductal gray self-stimulation // Physiol. Behav. 1981. V.27. P.95-104.

72. Bielajew C., Miguelez M., Shiao R. Electrolytic lesions of the cortical and adjacent nuclei in the amygdala differentially influence thresholds for rewarding medial forebrain bundle stimulation // Behav. Neurosci. 2002. V.116. P.660-671.

73. Bittencourt J.C., Vaughan J., Arias C. et al. Urocortin expression in rat brain: evidence against a pervasive relationship of urocortin-containing projections with targets bearing type 2 CRF receptors // J. Comp. Neurol. 1999. V.415. P.285-312.

74. Boye S.M., Rompre P.P. Mesencephalic substrate of reward: axonal connections //J. Neurosci. 1996. V.16. №10. P.3511-3520.

75. Boye S.M., Contant C., Rompre P.P. Mesencephalic substrate of reward: possible role for lateral pontine tegmental cells // Brain Res. 2002. V.949. №1— 2. P.188-196.

76. Breiter H.C., Rosen B.R. Functional magnetic resonance imaging of brain reward circuitry in the human // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1999. V.877. P.523-547.

77. Breiter H.C., Aharon I., Kahneman D., Dale A., Shizgal P. Functional imaging of neural responses to expectancy and experience of monetary gains and loses // Neuron. 2001. V.30. P.619-639.

78. Bruijnzeel A.W., Gold M.S. The role of corticotrophin-releasing factor-like peptide4s in cannabis, nicotine, and alcohol dependence // Brain Res. Rev. 2005. V.49. P.505-528.

79. Bruijnzeel A.W., Stam R., Compaan J.C., Wiegant V.M. Stressinduced sensitization of CRH-ir but not P-CREB-ir responsivity in the rat central nervous system // Brain Res. 2001. V. 908. P. 187-196.

80. Bushnik T., Bielajew C., Konkle A.T. The substrate for brainstimulation reward in the lateral preoptic area. I. Anatomical mapping of its boundaries // Brain Res. 2000. V.881. №2. P. 103-111.

81. Caan B., Coates A., Schaefer C. et al. Women gain weight 1 year after smoking cessation while dietary intake temporarily increases // J. Amer. Diet. Assoc. 1996. V. 96. P.l 150-1155.

82. Cai B., Matsumoto K., Ohta H., Watanabe H. Biphasic effects of typical antidepressants and mianserin, an atypical antidepressant, on aggressive behavior in socially isolated mice // Pharmacol. Biochem. Behav. 1993. Vol. 44. № 3. P. 519-525.

83. Cador M., Cole B.J., Koob G.F. et al. Central administration of corticotropin releasing factor induces long-term sensitization to d-amphetamine // Brain Res. 1993. V. 606. P.181-186.

84. Calbresi P., de Murtas M., Bernardi G. The neostriatum beyond the motor function: experimental and clinical evidence // Neuroscience. 1997. V.78. P.39-60.

85. Cassell M.D., Freedman L.J., Shi C. The intrinsic organization of the central extended amygdale // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1999. V.877. P.217-241.

86. Chalmers D.T., Lovenberg T.W., Grigoriadis D.E. et al. Corticotrophin-releasing factor receptors: from molecular biology to drug design // Trends Pharmacol. Sci. 1996. V. 17. P.166-172.

87. Chen R, Lewis K.A., Perrin M.H., Vale W.W. Expression cloning of a human corticotropin-releasing-factor receptor // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. V. 90. P.8967-8971.

88. Chevrette J., Stellar J.R., Hesse G.W., Markou A. Both the shell of the nucleus accumbens and the central nucleus of the amygdala support amphetamine self-administration in rats // Pharmacol. Biochem. Behav. 2002. V.71. P.501-507.

89. Coffey P.J., Perry V.H., Rawlins J.N.P. An investigation into the early stages of the inflammatory response following ibotenic acid-induced neuronal degeneration//Neuroscience. 1990. V.35. P.121-132.

90. Cole B.J., Koob G.F. Propranolol antagonizes the enhanced conditioned fear produced by corticotropin releasing factor // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1988. V. 247. P.902-910.

91. Cole B.J., Cador M., Stinus L. et al. Central administration of a CRF antagonist blocks the development of stress-induced behavioral sensitization // Brain Res. 1990. V. 512. P.343-346.

92. Colle L.M., Wise R.A. Opposite effects of unilateral forebrain ablations on ip-silateral and contralateral hypothalamic self-stimulation // Brain Res. 1987. V.407. P.285-293.

93. Conover K., Shizgal P. Competition and summation between rewarding effects of sucrose and lateral hypothalamic stimulation in the rat // Behav. Neurosci. 1994. V. 108. P.537-548.

94. Conover K.L., Fulton S., Shizgal P. Operant tempo varies with reinforcement rate: implications for measurement of reward efficacy // Behav. Processes. 2001 .V.56. №2. P.85-101.

95. Cook C J. Stress induces CRF release in the paraventricular nucleus, and both CRF and GABA release in the amygdala // Physiol. Behav. 2004. V. 82. P.751-762.

96. Cook J.W., Spring B., McChargue D., Hedeker D. Hedonic capacity, cigarette craving, and diminished positive mood // Nicotine Tob. Res. 2004. V. 6. P.39-47.

97. Cooper S.J., Rolls E.T. Relation of activation of neurones in the pons and medulla to brain-stimulation reward // Exp. Brain Res. 1974. V.20. P.207-222.

98. Contarino A., Heirichs S.C., Gold L.H. Understanding corticotropin-releasing factor neurobiology: contribution from mutant mice // Neuropeptides. 1999. Vol.33, №4. P. 1-12.

99. Corbit L.H., Balleine B.W. Double dissociation of basolateral and central amygdala lesions on the general and outcome-specific forms of Pavlovian-instrumental transfer // J. Neurosci. 2005. V.25. P.962-970.

100. Cryan J.F., Markou A., Lucki I. Assessing antidepressant activity in rodents: recent developments and future needs // Trends Pharmacol. Sci. 2002. V. 23. P.23 8-245.

101. Davis M. The role of the amygdala in conditioned fear // The amygdala / Ed. by J.P.Aggleton. New York: Wiley-Liss, 1992. P.255-306.

102. De Olmos J., Heimer L. The concepts of the ventral striatopallidal system and extended amygdala // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1999. V.877. P. 1-32.

103. De Olmos J., Beltramino C.A., Alheid G. Amygdala and extended amygdala of the rat: a cytoarchitectonical, fibroarchitectonical, and chemoarchitectonical survey // The Rat Nervous System, third ed. / Ed. by G.Paxinos. Amsterdam: Elsevier, 2004.

104. De Souza E.B., Perrin M.H., Rivier J. et al. Corticotropin-releasing factor receptors in rat pituitary gland: autoradiographic localization // Brain Res. 1984. V. 296. P.202-207.

105. De Souza E.B., Insel T.R., Perrin M.H. et al. Corticotropin-releasing factor receptors are widely distributed within the rat central nervous system: an autoradiographic study // J. Neurosci. 1985. V. 5. P.3189-3203.

106. Deutsch J.A. Behavioral measurement of the neural refractory period and its application to intracranial self-stimulation // J. Comp. Physiol. Psychol. 1964. V.58.P.1-9.

107. Dunn A.J., Berridge C.W. Physiological and behavioral responses to corticotropin-releasing factor administration: is CRF a mediator of anxiety or stress responses? // Brain Res. Brain Res. Rev. 1990. V. 15. P.71-100.

108. Dunn A.J., File S.E. Corticotropin-releasing factor has an anxiogenic action in the social interaction test // Horm. Behav. 1987. V. 21. P. 193-202.

109. Eck L.H., Klesges R.C., Meyers A.W., Slawson D.L., Winders S.A. Changes in food consumption and body weight associated with smoking cessation across menstrual cycle phase // Addict. Behav. 1997. V. 22. P.775-782.

110. Edmonds D.E., Gallistel C.R. Parametric analysis of brain stimulation reward in the rat. III. Effect of performance variables on the reward summation function // J. Comp. Physiol. Psychol. 1974. V.87. P.876-884.

111. Einon D.F., Morgan M.J. Habituation of object contact in socially-reared and isolated rats (Rattus norvegicus) // Develop. Psychobiol. 1975. Vol. 8. № 6. P. 553-559.

112. Epping-Jordan M.P., Watkins S.S., Koob G.F., Markou A. Dramatic decreases in brain reward function during nicotine withdrawal // Nature. 1998. V. 393. P.76-79.

113. Esposito R.U., Porrino L.J., Seeger T.F., Crane A.M., Everist H.D., Pert A. Changes in local cerebral glucose utilization during rewarding brain stimulation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1984. V.81. №2. P.635-639.

114. Fletcher P.J., Tampakeras M., Yeomans J.S. Median raphe injections of 8-OH-DPAT lower frequency thresholds for lateral hypothalamic selfstimulation // Pharmacol. Biochem. Behav. 1995. V.52. №1. P.65-71.

115. Flores C., Arvanitogiannis A., Shizgal P. Fos-like immunoreactivity in forebrain regions following self-stimulation of the lateral hypothalamus and the ventral tegmental area // Behav. Brain Res. 1997. V.87. P.239-251.

116. Floresco S.B., Yang C.R., Phillips A.G., Blaha C.D. Basolateral amygdala stimulation evokes glutamate receptor-dependent dopamine efflux in the nucleus accumbens of the anaesthetized rat // Eur. J. Neurosci. 1998. V.10. №4. P.1241-1251.

117. Forgie M.L., Shizgal P. Mapping the substrate for brain stimulation reward by means of current-number trade-off functions // Behav. Neurosci. 1993. V.107. №3. P.506-524.

118. Fouriezos G., Walker S., Rick J., Bielajew C. Refractoriness of neurons mediating intracranial self-stimulatoin in the anterior basal forebrain // Behav. Brain Res. 1987. V.24. P.73-80.

119. Frankova S., Blatnikova N. Effect of early psychological stress and protein caloric deprivation on long-term behavioral patterns in rats // Activ. Nerv. Super. 1979. Vol. 21. № 3. P. 192-202.

120. Fulford A.J., Butler S., Heal DJ. et al. Evidence for altered a2-adrenoreceptor function following isolation-rearing in the rat // Psychopharmacology. 1994. Vol. 116. P. 183-190.

121. Fulford A.J., Marsden C.A. Conditioned release of 5-hydroxytryptamine in vivo in the nucleus accumbens following isolation-rearing in the rat // Neuroscience. 1998. Vol. 83. P. 481-487.

122. Fulford A.J., Marsden C.A. Effect of isolation-rearing on conditioned dopamine release in vivo in the nucleus accumbens of the rat // J. Neurochem. 1998. Vol. 70. № 1. P. 384-390.

123. Gallegos G., Salazar L., Ortiz M. Simple disturbance of the dam in the neonatal period can alter haloperidol-induced catalepsy in the adult offspring // Behav. Neural. Biol. 1990. Vol. 53. № 2. P. 172-188.

124. Gallistel C.R. Foraging for brain stimulation: toward a neurobiology of computation// Cognition. 1994. V.50. №1-3. P.151-170.

125. Gallistel C.R., Leon M. Measuring the subjective magnitude of brain stimulation reward by titration with rate of reward // Behav. Neurosci. 1991. V.105. №6. P.913-925.

126. Gallistel C.R;, Stellar J.R., Bubis E. Parametric analysis of brain stimulation reward in the rat. I. The transient process and the memorycontaining process // J. Comp. Physiol. Psychol. 1974. V.87. P.848-859.

127. Gallistel C.R., Shizgal P., Yeomans J.S. A portrait of the substrate for self-stimulation // Psychol. Rev. 1981. V.88. №3. P.228-273.

128. Gallistel C.R., Gomita Y., Yadin E., Campbell K.A. Forebrain origins and terminations of the medial forebrain bundle metabolically activated by rewarding stimulation or by reward-blocking doses of pimozide // J. Neurosci. 1985. V.5. №5. p. 1246-1261.

129. Gallistel C.R., Leon M., Waraczynski M., Hanau M.S. Effect of current on the maximum possible reward//Behav. Neurosci. 1991. V.105. №6. P.901-912.

130. Gallistel C.R., Leon M., Lim B.T., Sim J.C., Waraczynski M. Destruction of the medial forebrain bundle caudal to the site of stimulation reduces rewarding efficacy but destruction rostrally does not // Behav. Neurosci. 1996. V.110. №4. P.766-790.

131. Garris P.A., Kilpatrick M., Bunin M.A., Michael D., Walker Q.D. Wightman R.M. Dissociation of dopamine release in the nucleus accumbens from intracranial self-stimulation //Nature. 1999. V.398. P.67-69.

132. Goeders N.E. The impact of stress on addiction // Eur. Neuropsychopharmacol. 2003. V. 13. P.435-441.

133. Characterization in rodent models of stress-related disorders // J. Pharmacol. Exp. Ther. 2002. V. 301. P.333-345.

134. Gupta B.S. Environment, brain and cognitive behavior. A review // Nat. Geogr. J. India. 1984. Vol. 30. P. 269-280.

135. Guthrie K.M., Pullara J.M., Marshall J.F., Leon M. Olfactory deprivation increases dopamine D-2 receptor density in the rat // Synapse. 1991. Vol. 8. № l.P. 61-70.

136. Hammack S.E., Schmid M.J., LoPresti M.L. et al. Corticotropin releasing hormone type 2 receptors in the dorsal raphe nucleus mediate the behavioral consequences of uncontrollable stress // J. Neurosci. 2003. V. 23. P.1019—1025.

137. Hand G.A., Hewitt C.B., Fulk L.J. et al. Differential release of corticotropin-releasing hormone (CRH) in the amygdala during different types of stressors // Brain Res. 2002. V. 949. P. 122-130.

138. Hasue R.H., Shammah-Lagnado S.J. Origin of the dopaminergic innervation of the central extended amygdala and accumbens shell: a combined retrograde tracing and immunohistochemical study in the rat // J. Comp. Neurol. 2002. V.454.№ l.P. 15-33.

139. Hatch A.M., Wilberg C.S., Zawidska Z., Cann M., Grice H.C. Isolation syndrome in the rats // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1965. Vol. 7. P. 737-745.

140. Hauger R.L., Grigoriadis D.E., Dallman M.F. et al. International Union of Pharmacology: XXXVI. Current status of the nomenclature for receptors for corticotropin-releasing factor and their ligands // Pharmacol. Rev. 2003. V. 55. P.21-26.

141. Heidbreder C.A., Weiss I.C., Domeney A.M. et al. Behavioral, neurochemical and endocrinological characterization of the early social isolation syndrome // Neurosci. 2000. Vol. 100. № 4. p. 749-768.

142. Heimer L., Harlan R.E., Alheid G.F., Garcia M.M., de Olmos J. Substantia in-nominata: a notion which impedes clinical-anatomical correlations in neuro-psychiatric disorders // Neuroscience. 1997. V.76. №4. P.957-1006.

143. Heinrichs S.C., Lapsansky J., Lovenberg T.W. et al. Corticotropin-releasing factor CRF1, but not CRF2, receptors mediate anxiogenic-like behavior // Regul. Pept. 1997. V. 71. P. 15-21.

144. Hernandez-Lopez S., Bargas J., Surmeier D.J., Reyes A., Galarraga E. D1 receptor activation enhances evoked discharge in neostriatal medium spiny neurons by modulating an L-type CaC2 conductance // J. Neurosci. 1997. V.17. P.3334-3342.

145. Higelin J., Py-Lang G., Paternoster C. et al. 125I-Antisauvagine-30: a novel and specific highaffinity radioligand for the characterization of corticotropinre-leasing factor type 2 receptors // Neuropharmacology. 2001. V. 40. P. 114-122.

146. Hillhouse E.W., Grammatopoulos D., Milton N.G., Quartero H.W. The identification of a human myometrial corticotropin-releasing hormone receptor that increases in affinity during pregnancy // J. Clin. Endocrinol. Metab. 1993. V. 76. P.736-741.

147. Ho S.P., Takahashi L.K., Livanov V. et al. Attenuation of fear conditioning by antisense inhibition of brain corticotropin releasing factor-2 receptor // Brain Res. Mol. Brain Res. 2001. V. 89. P.29^0.

148. Holsboer F. The rationale for corticotropin-releasing hormone receptor (CRH-R) antagonist to treat depression and anxiety // J. Psychiatric Res. 1999. Vol.33. №3. P.181-214.

149. Howland J.G., Taepavarapruk P., Phillips A.G. Glutamate receptordependent modulation of dopamine efflux in the nucleus accumbens by basolateral, but not central, nucleus of the amygdala in rats // J. Neurosci. 2002. V.22. №3. P.l 127-1145.

150. Hsu S.Y., Hsueh A.J. Human stresscopin and stresscopin-related peptide are selective ligands for the type 2 corticotropin-releasing hormone receptor // Nat. Med. 2001. V. 7. P.605-611.

151. Huang Y.H., Routtenberg A. Lateral hypothalamic self-stimulation pathways in Rattus norvegicus // Physiol. Behav. 1971. V.7. P.419-432.

152. Hughes J.R., Hatsukami D. Signs and symptoms of tobacco withdrawal // Arch. Gen. Psychiatry. 1986. V. 43. P.289-294.

153. Hunt G.E., McGregor I.S. Rewarding brain stimulation induces only sparse Fos-like immunoreactivity in dopaminergic neurons // Neuroscience. 1998. V.83. №2. P.501-515.

154. Huston J.P., Grimm C., Ornstein K. Self-stimulation in the brain stem after ipsilateral precollicular decerebration // Exp. Neurol. 1984. V.83. №3. P.568-576.

155. Hyman S.E., Malenka R.C. Addiction and the brain: the neurobiology of compulsion and its persistence // Nat. Rev., Neurosci. 2001. V. 2. P.695-703.

156. Ikemoto S., Panksepp J. Dissociations between appetitive and consummatory responses by pharmacological manipulations of rewardrelevant brain regions // Behav. Neurosci. 1996. V.l 10. №2. P.331-345.

157. Inglis W.L., Winn P. The pedunculopontine tegmental nucleus: where the striatum meets the reticular formation // Prog. Neurobiol. 1995. V.47. P. 1-29.

158. Ito M. Excitability of medial forebrain bundle neurons during selfstimulation behavior// J. Neurophys. 1972. V.35. P.652-664.

159. Ito M., Olds J. Unit activity during self-stimulation behavior // J. Neurophys. 1971. V.34. P.263-273.

160. Jackson M.E., Moghaddam B. Amygdala regulation of nucleus accumbens dopamine output is governed by the prefrontal cortex // J. Neurosci. 2001. V.21. №2. P.676-681.

161. Janas J.D., Stellar J.R. Effects of knife-cut lesions of the medial forebrain bundle on self-stimulating rats // Behav. Neurosci. 1987. V.101. №6. P.832-845.

162. Jones G.A., Norris S.K., Henderson Z. Conduction velocities and membrane properties of different classes of rat septohippocampal neurons recorded in vitro // J. Physiol. 1999. V.517. P.867-877.

163. Jorenby D.E., Hatsukami D.K., Smith S.S. et al. Characterization of tobacco withdrawal symptoms: transdermal nicotine reduces hunger and weight gain // Psychopharmacology (Berl.). 1996. V. 128. P.130-138.

164. Kalivas P.W., Nakamura M. Neural systems for behavioral activation and reward H'Curr. Opin. Neurobiol. 1999. V.9. P.223-227.

165. Kane F., Coulombe D., Miliaressis E. Amygdaloid self-stimulation: a moveable electrode mapping study // Behav. Neurosci. 1991. V.105. №6. P.926-932.

166. Keck M.E., Welt T., Wigger A. et al. The anxiolytic effect of the CRH(l) receptor antagonist R121919 depends on innate emotionality in rats // Eur. J. Neurosci. 2001. V. 13. P.373-380.

167. Kelley A.E. Ventral striatal control of appetitive motivation: role in ingestive behavior and reward-related learning // Neurosci. Biobehav. Rev. 2004. V.27. P.765-776.

168. Kelley A.E., Berridge K.C. The neuroscience of natural rewards: relevance to addictive drugs // J. Neurosci. 2002. V.22. №9. P.3306-3311.

169. Kishimoto T., Radulovic J., Radulovic M. et al. Deletion of crhr2 reveals an anxiolytic role for corticotropin-releasing hormone receptor-2 // Nat. Genet. 2000. V. 24. P.415-419.

170. Kofman O., Yeomans J.S. Cholinergic antagonists in ventral tegmentum elevate thresholds for lateral hypothalamic and brainstem self-stimulation // Pharmacol. Biochem. Behav. 1988. V.31. P.547-559.

171. Koob G.F. The role of the striatopallidal and extended amygdala systems in drug addiction // Ann. N.Y. Acad. Sei. 1999. V.877. P.445-460.

172. Koob G.F. Neuroadaptive mechanisms of addiction: studies on the extended amygdala // Eur. Neuropsychopharmacol. 2003. V.13. P.442-452.

173. Koob G.F. Stress, corticotropin-releasing factor, and drug addiction // Ann. N.Y. Acad. Sei. 1999. V. 897. P.27-45.

174. Koob G.F. Alcoholism: allostasis and beyond // Alcohol Clin. Exp. Res. 2003. V. 27. P.232-243.

175. Koob G.F., Heinrichs S.C. A role for corticotropin-releasing factor and uro-cortin in behavioral responses to stressors // Brain Res. 1999. Vol.848. P. 141152.

176. Kornetsky C., Huston-Lyons D., Porrino L.J. The role of the olfactory tubercle in the effects of cocaine, morphine, and brain-stimulation reward // Brain Res. 1991. V.541.P.75-81.

177. Kostich W.A., Chen A., Sperle K., Largent B.L. Molecular identification and analysis of a novel human corticotropin-releasing factor (CRF) receptor: the CRF2gamma receptor//Mol. Endocrinol. 1998. V. 12. P.1077-1085.

178. König K.P., Klippel A.A. A stereotaxic atlas of the forebrain and lower parts of the brain stem. Baltimore, 1963. - 214 p.

179. Kraemer G.W., Ebert M.H., Schmidt D.E., McKinney W.T. Strangers in a strange land: a psychobiological study of infant monkeys before and after separation from real and inanimate mothers // Child. Dev. 1991. Vol. 62. №3. P. 548-566.

180. Kretschmer B.D. Functional aspects of the ventral pallidum // Amino Acids. 2000. V.19.P.201-210.

181. Laviolette S.R., van der Kooy D. GABAa receptors in the ventral tegmental area control bidirectional reward signalling between dopaminergic and non-dopamingeric neural motivational systems // Eur. J. Neurosci. 2001. V.13. P.1009-1015.

182. Lebedev A.A., Voevodin E.E., Andreeva L.I. et al. Reinforcing properties of neuropeptides administered into the extended amygdala of chronically alcoholized rats // Eur. Neuropsychopharmacol. 2005. Vol.15. Suppl.2. P.S294.

183. Lederis K., Letter A., McMaster D. et al. Complete amino acid sequence of urotensin I, a hypotensive and corticotropin-releasing neuropeptide from Ca-tostomus // Science. 1982. V. 218. P.162-165.

184. Leonard B.E. Fundamentals of psychopharmacology. 2nd ed. Chichester-New York: John Wiley & sons, 1998. 480 p.

185. Lepore M., Franklin K.B.J. N-methyl-D-aspartate lesions of the pedunculopontine nucleus block acquisition and impair maintenance of responding reinforced with brain stimulation // Neuroscience. 1996. V.71. №1. P.147-155.

186. Lestang I., Cardo B., Roy M.T., Velley L. Electrical self-stimulation deficits in the anterior and posterior parts of the medial forebrain bundle after ibotenic acid lesion of the middle lateral hypothalamus // Neuroscience. 1985. V.15. №2. P.379-388.

187. Lewis K., Li C., Perrin M.H. et al. Identification of urocortin III, an additional member of the corticotropin-releasing factor (CRF) family with high affinity for the CRF2 receptor // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. V. 98. P.7570-7575.

188. Lewis M.H., Gluck J.P., Beauchamp A.J., Keresztury M.F. Long-term effects of early social isolation in Macaca mulatta: changes in dopamine receptor function following apomorphine challenge // Brain Res. 1990. Vol.513. № 1. P. 67-73.

189. Li Y.W., Hill G., Wong H. et al. Receptor occupancy of nonpeptide corticotro-pinreleasing factor 1 antagonist DMP696: correlation with drug exposure and anxiolytic efficacy // J. Pharmacol. Exp. Ther. 2003. V. 305. P.86-96.

190. Liaw C.W., Lovenberg T.W., Barry G. et al. Cloning and characterization of the human corticotropin-releasing factor-2 receptor complementary deoxyribonucleic acid//Endocrinology. 1996. V. 137. P.72-77.

191. Liebman J.M., Mayer D.J., Liebeskind J.C. Self-stimulation loci in the midbrain central gray matter of the rat // Behav. Biol. 1973. V.9. P.299-306.

192. Liebsch G., Landgraf R., Engelmann M. et al. Differential behavioural effects of chronic infusion of CRH 1 and CRH 2 receptor antisense oligonucleotides into the rat brain // J. Psychiatr. Res. 1999. V. 33. P. 153-163.

193. Linton E.A., Wolfe C.D., Behan D.P., Lowry P.J. A specific carrier substance for human corticotrophin releasing factor in late gestational maternal plasma which could mask the ACTH-releasing activity // Clin. Endocrinol. (Oxf.) 1988. V. 28.P.315-324.

194. Linton E.A., Perkins A.V., Woods R.J. et al. Corticotropin releasing hormone-binding protein (CRH-BP): plasma levels decrease during the third trimester of normal human pregnancy // J. Clin. Endocrinol. Metab. 1993. V. 76. P.260-262.

195. Lore R.K., Stipo-Tlaherty A. Postweaning social experiance and adult aggression in rats // Physiol. Behav. 1984. Vol. 33. № 4. P. 571-574.

196. Lovenberg T.W., Chalmers D.T., Liu C., De Souza E.B. CRF2 alpha and CRF2 beta receptor mRNAs are differentially distributed between the rat central nervous system and peripheral tissues // Endocrinology. 1995. V. 136. P.4139-4142.

197. Lovenberg T.W., Liaw C.W., Grigoriadis D.E. et al. Cloning and characterization of a functionally distinct corticotropin-releasing factor receptor subtype from rat brain // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P.836-840.

198. Lowejoy D.A., Balment R.S. Evolution and physiology of the corticotropin-releasing factor (CRF) family of neuropeptides in vertebrates // Gen. Comp. Endocrinol. 1999. Vol.115. №1. P. 1-22.

199. MacMillan C.J., Simantirakis P., Shizgal P. Self-stimulation of the lateral hypothalamus and ventrolateral tegmentum: excitability characteristics of the directly stimulated substrates // Physiol. Behav. 1985. V.35. P.711-723.

200. Maj M., Turchan J., Smialowska M., Przewlocka B. Morphine and cocaine influence on CRF biosynthesis in the rat central nucleus of amygdala // Neuropeptides. 2003. V. 37. P.105-110.

201. Martin L.J., Spicer D.M., Lewis M.H. et al. Social deprivation of infant rhesus monkeys alters the chemoarchitecture of the brain: I. Subcortical regions // J. Neurosci. 1991. Vol. ll.№ 11. P. 3344-3358.

202. Matsumoto K., Ojima K., Ohta H., Watanabe H. Beta 2- but not beta 1-adrenoceptors are involved in desipramine enhancement of aggressive behavior in long-term isolated mice // Pharmacol. Biochem. Behav. 1994. Vol. 49. № 1. P. 13-18.

203. McLellan A.T., Lewis D.C., O'Brien C.P., Kleber H.D. Drug dependence, a chronic medical illness: implications for treatment, insurance, and outcomes evaluation // JAMA. 2000. V. 284. P. 1689-1695.

204. Menzaghi F., Howard R.L., Heinrichs S.C. et al. Characterization of a novel and potent corticotropinreleasing factor antagonist in rats // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1994. V. 269. P.564-572.

205. Merali Z., Mcintosh J., Kent P. et al. Aversive and appetitive events evoke the release of corticotropin-releasing hormone and bombesin-like peptides at the central nucleus of the amygdala // J. Neurosci. 1998. V. 18. P.4758-4766.

206. Merlo Pich E., Koob G.F., Heilig M. et al. Corticotropin-releasing factor release from the mediobasal hypothalamus of the rat as measured by microdialy-sis // Neuroscience. 1993. V. 55. P.695-707.

207. Merker B., Schlag J. Role of intralaminar thalamus in gaze mechanisms: evidence from electrical stimulation and fiber-sparing lesions in the cat // Exp. Brain Res. 1985. V.59. P.388-394.

208. Miguelez M., Bielajew C. Mapping the neural substrate underlying brain stimulation reward with the behavioral adaptation of double-pulse methods // Rev. Neurosci. 2004. V.15. №1. P.47-74.

209. Milani H., Schwarting R.K., Kumpf S. et al. Interaction between recovery from behavioral asymmetries induced by hemivibrissotomy in the rat and the effects of apomorphine and amphetamine // Behav. Neurosci. 1990. Vol. 104. №3. P. 470-476.

210. Mirenowicz J., Schultz W. Preferential activation of midbrain dopamine neurons by appetitive rather than aversive stimuli // Nature. 1996. V.379. P.449-451.

211. Moreau J.L., Kilpatrick G., Jenck F. Urocortin, a novel neuropeptide with anx-iogenic-like properties //NeuroReport. 1997. V. 8. P.1697-1701.

212. Murray B., Shizgal P. Anterolateral lesions of the medial forebrain bundle increase the frequency threshold for self-stimulation of the lateral hypothalamus and ventral tegmental area in the rat // Psychobiology. 1991. V.19. P.135-146.

213. Murray B., Shizgal P. Attenuation of medial forebrain bundle reward by anterior lateral hypothalamic lesions // Behav. Brain Res. 1996. V.75. P.33-47.

214. Murray B., Shizgal P. Physiological measures of conduction velocity and refractory period for putative reward-relevant MFB axons arising in the rostral MFB // Physiol. Behav. 1996. V.59. №3. P.427-437.

215. Napier T.C., Mitrovic I. Opiod modulation of ventral pallidal inputs // Ann. NY. Acad. Sci. 1999. V.87. P. 176-201.

216. Nassif S., Cardo B., Libersat F., Velley L. Comparison of deficits in electrical self-stimulation after ibotenic acid lesions of the lateral hypothalamus and the medial prefrontal cortex // Brain Res. 1985. V.332. P.247-257.

217. Nemeroff C.B. New vistas in neuropeptide research in neuropsychiatry: focus on corticotropin-releasing factor // Neuropsychopharmacology. 1992. V. 6. P.69-75.

218. Nicola S.M., Surmeier J., Malenka R.C. Dopaminergic modulation of neuronal excitability in the striatum and nucleus accumbens // Annu. Rev. Neurosci. 2000. V.23. P.185-215.

219. Nielsen D.M., Carey G.J., Gold L.H. Antidepressant-like activity of corticotro-pin-releasing factor type-1 receptor antagonists in mice // Eur. J. Pharmacol. 2004. V. 499. P.135-146.

220. Nijsen M.J., Croiset G., Stam R. et al. The role of the CRH type 1 receptor in autonomic responses to corticotropin-releasing hormone in the rat // Neuropsychopharmacology. 2000. V. 22. P.388-399.

221. O'Brien C.P. Research advances in the understanding and treatment of addiction // Amer. J. Addict. 2003. V. 12. Suppl. 2. P.S36-S47.

222. O'Donnell P. Dopamine gating of forebrain neural ensembles // Eur. J. Neurosci. 2003. V.17. P.429^135.

223. Ogden J. Effects of smoking cessation, restrained eating, and motivational states on food intake in the laboratory // Health Psychol. 1994. V. 13. P.114-121.

224. Ogren S.O., Holm A.C., Renyi A.L., Ross S.B. Antiaggressive effect of zimelidine in isolated mice // Acta pharmac. toxicol. 1980. Vol. 47. P. 71-74.

225. Oki Y., Iwabuchi M., Masuzawa M. et al. Distribution and concentration of urocortin, and effect of adrenalectomy on its content in rat hypothalamus // Life Sci. 1998. V. 62. P.807-812.

226. Olds J., Milner P. Positive reinforcement produced by electrical stimulation of septal area and other regions of rat brain // J. Comp. Physiol. Psychol. 1954. V.47.P.419^127.

227. Orth D.N., Mount C.D. Specific high-affinity binding protein for human corticotropin-releasing hormone in normal human plasma // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1987. V. 143. P.411-417.

228. Overstreet D.H., Griebel G. Antidepressant-like effects of CRF1 receptor antagonist SSR125543 in an animal model of depression // Eur. J. Pharmacol. 2004. V. 497. P.49-53.

229. Overstreet D.H., Keeney A., Hogg S. Antidepressant effects of citalopram and CRF receptor antagonist CP-154,526 in a rat model of depression // Eur. J. Pharmacol. 2004. V. 492. P. 195-201.

230. Paulus M.P., Bakshi V.P., Geyer M.A. Isolation rearing affects sequential organization of motor behavior in post-pubertal but not pre-pubertal Lister and Sprague-Dawley rats // Behav. Brain. Res. 1998. Vol. 94. № 2. P. 271-280.

231. Pelleymounter M.A., Joppa M., Ling N., Foster A.C. Behavioral and neuroendocrine effects of the selective CRF2 receptor agonists urocortin II and uro-cortin III // Peptides. 2004. V. 25. P.659-666.

232. Perrin M.H., Donaldson C.J., Chen R. et al. Cloning and functional expression of a rat brain corticotrophin releasing factor (CRF) receptor // Endocrinology. 1993. V. 133. P.3058-3061.

233. Piazza P.V., Le Moal M. The role of stress in drug self-administration // Trends Pharmacol. Sci. 1998. V. 19. P.67-74.

234. Phillips A.G., Ahn S., Howland J.G. Amygdalar control of the mesocorti-colimbic dopamine system: parallel pathways to motivated behavior // Neuro-sci. Biobehav. Rev. 2003. V.27. P.543-554.

235. Porrino L.J., Esposito R.U., Seeger T.F., Crane A.M., Pert A., Sokoloff L. Metabolic mapping of the brain during rewarding self-stimulation //. Science. 1984. V.224. P.306-309.

236. Porrino L.J., Huston-Lyons D., Bain G., Sokoloff L., Kometsky C. The distribution of changes in local cerebral energy metabolism associated with brain stimulation reward to the medial forebrain bundle of the rat // Brain Res. 1990. V.511. P.l-6.

237. Potter E., Behan D.P., Fischer W.H. et al. Cloning and characterization of the cDNAs for human and rat corticotropin releasing factor-binding proteins // Nature. 1991. V. 349. P.423-426.

238. Potter E., Behan D.P., Linton E.A. et al. The central distribution of a cortico-tropin-releasing factor (CRF)-binding protein predicts multiple sites and modes of interaction with CRF // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. V. 89. P.4192-4196.

239. Potter E., Sutton S., Donaldson C. et al. Distribution of corticotropin-releasing factor receptor mRNA expression in the rat brain and pituitary // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V. 91. P.8777-8781.

240. Prado-Alcala R., Wise R.A. Brain stimulation reward and dopamine terminal fields. I. Caudate-putamen, nucleus accumbens, and amygdala // Brain Res. 1984. V.297. P.265-273.

241. Prado-Alcala R., Streather A., Wise R.A. Brain stimulation reward and dopamine terminal fields. II. Septal and cortical projections // Brain Res. 1984. V.301. P.209-219.

242. Radulovic J., Ruhmann A., Liepold T., Spiess J. Modulation of learning and anxiety by corticotropin-releasing factor (CRF) and stress: differential roles of CRF receptors 1 and 2 // J. Neurosci. 1999. V. 19. P.5016-5025.

243. Ravel S., Legallet E., Apicella P. Responses of tonically active neurons in the monkey striatum discriminate between motivationally opposing stimuli // J. Neurosci. 2003. V.23. №24. P.8489-8497.

244. Redgrave P., Dean P., Andrews J. Rewarding effects of hypothalamic self-stimulation altered by unilateral lesions of superior colliculus in rats // Brain Res. 1981. V.215. №1-2. P.352-358.

245. Rees L.H., Burke C.W., Chard T. et al. Possible placental origin of ACTH in normal human pregnancy //Nature. 1975. V. 254. P.620-622.

246. Resnick R.B., Resnick E.B. Cocaine abuse and its treatment // Psychiatr. Clin. North Amer. 1984. V. 7. P.713-728.

247. Reyes T.M., Lewis K., Perrin M.H. et al. Urocortin II: a member of the cortico-tropin-releasing factor (CRF) neuropeptide family that is selectively bound by type 2 CRF receptors // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. V. 98. P.2843-2848.

248. Richter R.M., Weiss F. In vivo CRF release in rat amygdala is increased during cocaine withdrawal in self-administering rats // Synapse. 1999. V. 32. P.254-261.

249. Risbrough V.B., Hauger R.L., Pelleymounter M.A., Geyer M.A. Role of corticotropin releasing factor (CRF) receptors 1 and 2 in CRF-potentiated acoustic startle in mice // Psychopharmacology (Berl.). 2003. V. 170. P. 178-187.

250. Ritter S., Stein L. Self-stimulation in the mesencephalic trajectory of the ventral noradrenergic bundle // Brain Res. 1974. V.81. P. 145-157.

251. Rompre P.P., Boye S. Localization of reward-relevant neurons in the pontine tegmentum: a moveable electrode mapping study // Brain Res. 1989. V.496. P.295-302.

252. Rompre P.P., Miliaressis E. Pontine and mesencephalic substrates of self-stimulation // Brain Res. 1985. V.359. P.246-259.

253. Rompre P.P., Miliaressis E. Behavioral determination of refractory periods of the brainstem substrates of self-stimulation // Behav. Brain Res. 1987. V.23. P.205-219.

254. Routtenberg A., Malsbury C. Brainstem pathways of reward // J. Comp. Physiol. Psychol. 1969. V.68. №1. P.22-30.

255. Rybnikova E.A., Pelto-Huikko M., Rakitstaya V.V., Shalyapina V.G. Localization of corticoliberin receptors in the rat brain // Neurosci. Behav. Physiol. 2003. Vol.33. №1. P.81-84.

256. Sapronov N.S., Lebedev A.A., Djulakidze I.D., Shabanov P.D. Imbalance of hypophyseal hormones and the influence of amphetamine on self-stimulation and place preference test in rats // CEPNESP Bull. (Brazil). 1993. Vol. 1. № 2. P. 14-18.

257. Sarnyai Z., Shaham Y., Heinrichs S.C. The role of corticotropinreleasing factor in drug addiction // Pharmacol. Rev. 2001. V. 53. P.209-243.

258. Sasaki A., Liotta A.S., Luckey M.M. et al. Immunoreactive corticotropinreleasing factor is present in human maternal plasma during the third trimester of pregnancy // J. Clin. Endocrinol. Metab. 1984. V. 59. P.812-814.

259. Schulz W. Multiple reward signals in the brain // Nat. Rev. Neurosci. 2000. V. l.P. 199-207.

260. Sekino A., Ohata H., Mano-Otagiri A. et al. Both corticotropin-releasing factor receptor type 1 and type 2 are involved in stress-induced inhibition of food intake in rats // Psychopharmacology (Berl.). 2004. V. 176. P.30-38.

261. Setlow B., Schoenbaum G., Gallagher M. Neural encoding in ventral striatum during olfactory discrimination learning // Neuron. 2003. V.38. №4. P.6225-6636.

262. Seyler L.E., Fertig J., Pomerleau O. et al. The effects of smoking on ACTH and Cortisol secretion // Life Sci. 1984. V. 34. P.57-65.

263. Shabanov P.D., Lebedev A.A., Nozdrachev A.D. Social isolation syndrome in rats // Dokl. Biol. Sci. 2004. Vol.395. P.99-102.

264. Shabanov P.D., Lebedev A.A., Nozdrachev A.D. Hormones of the pituitary-adrenal system in the mechanisms of unconditioned and conditioned reflex reinforcement//Dokl. Biol. Sci. 2005. Vol.404. P.329-332.

265. Shizgal P. Toward a cellular analysis of intracranial self-stimulation: contributions of collision studies // Neurosci. Biobehav. Rev. 1989. V.13. P.81-90.

266. Shizgal P. Neural basis of utility estimation // Curr. Opin. Neurobiol. 1997. V.7. P. 198-208.

267. Shizgal P., Conover K. On the neural computation of utility // Curr. Dir. Psychol. Sci. 1996. V.5. P.37-43.

268. Simon H., LeMoal M., Cardo B. Self-stimulation in the dorsal pontine tegmentum in the rat//Behav. Biol. 1975. V.13. P.339-347.

269. Smagin G.N., Heinrichs S.C., Dunn A. J. The role of CRH in behavioral: responses to stress //Peptides. 2001. Vol.22. P.713-724.

270. Smith G.W., Aubry J.M., Dellu F. et al. Corticotropin releasing factor receptor 1 -deficient mice display decreased anxiety, impaired stress response, and aberrant neuroendocrine development //Neuron. 1998. V. 20. P. 1093-1102.

271. Spina M.G., Merlo Pich E., Akwa Y. et al. Timedependent induction of anxio-genic-like effects after central infusion of urocortin or corticotropin-releasing factor in the rat // Psychopharmacology (Berl.). 2002. V. 160. P. 113-121.

272. Sprick U., Munoz C., Huston J.P. Lateral hypothalamic selfstimulation persists in rats after destruction of lateral hypothalamic neurons by kainic acid or ibo-tenic acid // Neurosci. Lett. 1985. V.56. P.211-216.

273. Stam R., Bruijnzeel A.W., Wiegant V.M. Long-lasting stress sensitization // Eur. J. Pharmacol. 2000. V. 405. P.217-224.

274. Stamford B.A., Matter S., Fell R.D., Papanek P. Effects of smoking cessation on weight gain, metabolic rate, caloric consumption, and blood lipids // Amer. J. Clin. Nutr. 1986. V. 43. P.486-494.

275. Steiner S.S., Bodnar R.J., Nelson W.T., Ackerman R.F., Ellman S.J. Intracranial self-stimulation site specificity: the myth of current spread // Brain Res. Bull. 1978. V.3. P.349-356.

276. Stellar J.R., Illes J., Mills L.E. Role of ipsilateral forebrain in lateral hypothalamic reward in rats // Physiol. Behav. 1982. V.29. P. 1089-1097.

277. Stellar J.R., Hall F.S., Waraczynski M. The effects of excitotoxin lesions of the lateral hypothalamus on self-stimulation reward // Brain Res. 1991. V.541. P.29-40.

278. Suda T., Iwashita M., Tozawa F. et al. Characterization of corticotropin-releasing hormone binding protein in human plasma by chemical cross-linking and its binding during pregnancy // J. Clin. Endocrinol. Metab. 1988. V. 67. P.1278-1283.

279. Sutherland R.J., Nakajima S. Self-stimulation of the habenular complex in the rat//J. Comp. Physiol. Psychol. 1981. V.95. №5. P.781-791.

280. Sutton R.E., Koob G.F., Le Moal M. et al. Corticotropin releasing factor produces behavioural activation in rats //Nature. 1982. V. 297. P.331-333.

281. Swanson L.W., Sawchenko P.E., Rivier J., Vale W.W. Organization of ovine corticotropin-releasing factor immunoreactive cells and fibers in the rat brain: an immunohistochemical study II Neuroendocrinology. 1983. V. 36. P.165— 186.

282. Swanson L.W. Brain Architecture: Understanding the Basic Plan. New York: Oxford University Press, 2003.

283. Swanson L.W. The amygdala and its place in the cerebral hemisphere // Ann. N.Y. Acad. Sci. 2003. V.985. P. 174-184.

284. Swanson L.W., Petrovich G.D. What is the amygdala? // Trends Neurosci. 1998. V.21.№8. P.323-331.

285. Swerdlow N.R., Geyer M.A., Vale W.W., Koob G.F. Corticotropin-releasing factor potentiates acoustic startle in rats: blockade by chlordiazepoxide // Psy-chopharmacology (Berl.). 1986. V.88. P. 147-152.

286. Takahashi L.K. Role of CRF(l) and CRF(2) receptors in fear and anxiety // Neurosci. Biobehav. Rev. 2001. V. 25. P.627-636.

287. Takahashi L.K., Kalin N.H., Vanden Burgt J.A., Sherman J.E. Corticotropin-releasing factor modulates defensive-withdrawal and exploratory behavior in rats // Behav. Neurosci. 1989. V. 103. P.648-654.

288. Takahashi L.K., Ho S.P., Livanov V. et al. Antagonism of CRF(2) receptors produces anxiolytic behavior in animal models of anxiety // Brain Res. 2001. V. 902. P.135-142.

289. Tamborski A., Lucot J.B., Hennessy M.B. Central dopamine turnover in guinea-pig pups during separation from their mothers in a novel environment // Behav. Neurosci. 1990. Vol. 104. № 4. P. 607-611.

290. Timpl P., Spanagel R., Sillaber I. et al. Impaired stress response and reduced anxiety in mice lacking a functional corticotropinreleasing hormone receptor 1 // Nat. Genet. 1998. V. 19. P. 162-166.

291. Tindell A.J., Berridge K.C., Aldridge J.W. Ventral pallidal representation of Pavlovian cues and reward: population and rate codes // J. Neurosci. 2004. V.24. №5. P. 1058-1069.

292. Valdez G.R., Inoue K., Koob G.F. et al. Human urocortin II: mild locomotor suppressive and delayed anxiolytic-like effects of a novel corticotropin-releasing factor related peptide // Brain Res. 2002. V. 943. P. 142-150.

293. Valdez G.R., Zorrilla E.P., Roberts A.J., Koob G.F. Antagonism of corticotro-pin-releasing factor attenuates the enhanced responsiveness to stress observed during protracted ethanol abstinence // Alcohol. 2003. V. 29. P.55-60.

294. Vale W., Spiess J., Rivier C., Rivier J. Characterization of a 41-residue ovine hypothalamic peptide that stimulates secretion of corticotropin and beta-endorphin // Science. 1981. V. 213. P.1394-1397.

295. Valenstein E.S. Problems of measurement and interpretation with reinforcing brain stimulation // Psychol. Rev. 1964. V.71. P.415-437.

296. Van Gaalen M.M., Stenzel-Poore M., Holsboer F., Steckler T. Reduced attention in mice overproducing corticotropin-releasing hormone // Behav. Brain Res. 2003. V. 142. P.69-79.

297. Vaughan J., Donaldson C., Bittencourt J. et al. Urocortin, a mammalian neuropeptide related to fish urotensin I and to corticotropin-releasing factor // Nature. 1995. V. 378. P.287-292.

298. Velley L. The role of intrinsic neurons in lateral hypothalamic selfstimulation // Behav. Brain Res. 1986. V.22. №2. P. 141-152.

299. Velley L., Chaminade C., Roy M.T., Kempf E., Cardo B. Instrinsic neurons are involved in lateral hypothalamic self-stimulation // Brain Res. 1983. V.268. P.79-86.

300. Venihaki M., Sakihara S., Subramanian S. et al. Urocortin III, a brain neuropeptide of the corticotropin-releasing hormone family: modulation by stress and attenuation of some anxiety-like behaviours // J. Neuroendocrinol. 2004. V. 16. P.411-422.

301. Waraczynski M. Basal forebrain knife cuts and medial forebrain bundle self-stimulation I I Brain Res. 1988. V.438. P.8-22.

302. Waraczynski M. Lidocaine inactivation demonstrates a stronger role for central versus medial extended amygdala in medial forebrain bundle selfstimulation // Brain Res. 2003. V.962. P.180-198.

303. Waraczynski M.A. The central extended amygdale network as a proposed circuit underlying reward valuation // Neurosci. Biobehav. Rev. 2005. V.28. P. 1-25.

304. Waraczynski M., Perkins M. Lesions of pontomesencephalic cholinergic nuclei do not substantially disrupt the reward value of medial forebrain bundle stimulation // Brain Res. 1998. V.800. P. 154-169.

305. Waraczynski M., Perkins M. Temporary inactivation of the retrorubral fields decreases the rewarding effect of medial forebrain bundle stimulation // Brain Res. 2000. V.885. P.154—165.

306. Waraczynski M., Shizgal P. Self-stimulation of the MFB following parabrachial lesions // Physiol: Behav. 1995. V.58. №3. P.559-566.

307. Waraczynski M., Stellar J.R., Gallistel C.R. Reward saturation in medial forebrain bundle self-stimulation // Physiol. Behav. 1987. V.41. P.585-593.

308. Waraczynski M., Cheong Ton M.N., Shizgal P. Failure of amygdaloid lesions to increase the thresold for self-stimulation of the lateral hypothalamus and ventral tegmental area // Behav. Brain Res. 1990. V.40. P.159-168.

309. Waraczynski M., Carlton E., Perkins M. Midbrain periaqueductal lesions do not degrade medial forebrain bundle stimulation reward // Behav. Brain Res. 1998. V.95. P.167-177.

310. Weiss F., Ciccocioppo R., Parsons L.H. et al. Compulsive drug-seeking behavior and relapse. Neuroadaptation, stress, and conditioning factors // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2001. V. 937. P.l-26.

311. Wilkins J.N., Carlson H.E., Van Vunakis H. et al. Nicotine from cigarette smoking increases circulating levels of Cortisol, growth hormone, and prolactinin male chronic smokers // Psychopharmacology (Berl.). 1982. V. 78. P.SOS-SOS.

312. Willner P. Validity, reliability and utility of the chronic mild stress model of depression: a 10-year review and evaluation // Psychopharmacology (Berl.). 1997. V. 134. P.319-329.

313. Wong-Riley M.T.T. Cytochrome oxidase: an endogenous metabolic marker for neuronal activity // Trends Neurosci. 1989. V.12. P.94-101.

314. Yadin E., Guarini V., Gallistel C.R. Unilaterally activated systems in rats self-stimulating at sites in the medial forebrain bundle, medial prefrontal cortex, or locus coeruleus // Brain Res. 1983. V.266. P.39-50.

315. Yeomans J.S. Quantitative measurement of neural post-stimulation excitability with behavioral methods //Physiol. Behav. 1975. V.15. P.593-602.

316. Yeomans J.S. Absolute refractory periods of self-stimulation neurons // Physiol. Behav. 1979. V.22. P.911-919.

317. Yeomans J.S., Kofrnan O., McFarlane V. Cholinergic involvement in latearl hypothalamic rewarding brain stimulation // Brain Res. 1985. V.329. P. 19-26.

318. Yeomans J.S., Maidment N.T., Bunney B.S. Excitability properties of medial forebrain bundle axons of A9 and A10 dopamine cells // Brain Res. 1988. V.450. P.86-93.

319. Yeomans J.S., Mathur M., Tampakeras M. Rewarding brain stimulation: the role of tegmental cholinergic neurons that activate dopamine neurons // Behav. Neurosci. 1993. V.107. P. 1077-1087.

320. Zaborszky L., Pang K., Somogyi J., Nadasdy Z., Kallo I. The basal forebrain corticopetal system revisited // Arm. N.Y. Acad. Sci. 1999. V.877. P.339-367.

321. Zahm D.S. Is the caudomedial shell of the nucleus accumbens part of the extended amygdala? A consideration of connections // Crit. Rev. Neurobiol. 1998. V.12. №3. P.245-265.

322. Zahm D.S. An integrative neuroanatomical perspective on some subcortical substrates of adaptive responding with emphasis on the nucleus accumbens // Neurosci. Biobehav. Rev. 2000. V.24. P.85-105.

323. Zahm D.S., Jensen S., Williams E.A., Martin III. J.R. Direct comparison of projections from the central nucleus of the amygdala and nucleus accumbens shell // Eur. J. Neurosci. 1999. V. 11. P. 119-1126.

324. Zhdanova I.V., Piotrovskaya V.R. Melatonin treatment attenuates symptoms of acute nicotine withdrawal in humans // Pharmacol. Biochem. Behav. 2000/ V. 67. P.131- 135.

325. Zorrilla E.P., Schulteis G., Ling N. et al. Performance-enhancing effects of CRF-BP ligand inhibitors //Neuroreport. 2001. V. 12. P.1231-1234.

326. Zorrilla E.P., Tache Y., Koob G.F. Nibbling at CRF receptor control of feeding and gastrocolonic motility // Trends Pharmacol. Sci. 2003. V. 24. P.421-427.