Автореферат и диссертация по медицине (14.03.09) на тему:Комплексный анализ противомикробных пептидов в биологических средах организма

ДИССЕРТАЦИЯ
Комплексный анализ противомикробных пептидов в биологических средах организма - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Комплексный анализ противомикробных пептидов в биологических средах организма - тема автореферата по медицине
Карташов, Дмитрий Дмитриевич Москва 2010 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.03.09
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Комплексный анализ противомикробных пептидов в биологических средах организма

На правах рукописи

Карташов Дмитрий Дмитриевич

КОМПЛЕКСНЫЙ АНАЛИЗ ПРОТИВОМИКРОБНЫХ ПЕПТИДОВ В БИОЛОГИЧЕСКИХ СРЕДАХ ЧЕЛОВЕКА

14.03.09 - клиническая иммунология, аллергология

Автореферат

диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

1 Л ОКТ 2010

Моек в а-2010

004610440

Работа выполнена в Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Российский государственный медицинский университет Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию».

Научные руководитель:

доктор медицинских наук, профессор Ковальчук Леонид Васильевич Научный консультант:

доктор медицинских наук, профессор Ганковская Людмила Викторовна Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор Козлов Иван Генрихович доктор медицинских наук, профессор Краснопрошина Людмила Ивановна

Ведущая организация:

ФГБУ "ГНЦ "Институт иммунологии" ФМБА России

Защита состоится «2^» 2010 г. в /4" ¿У? на заседании

диссертационного совета Д 208.072.05 при ГОУ ВПО РГМУ Росздрава по адресу. 117997, Москва, ул. Островитянова, д. 1.

С диссертационной работой можно ознакомиться в библиотеке ГОУ ВПО РГМУ Росздрава адресу: 117997, Москва, ул. Островитянова, д. 1.

Автореферат разослан » 2010 г.

Ученый секретарь диссертационного совета:

кандидат медицинских наук, доцент Кузнецова Татьяна Евгеньевна

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность исследования:

Механизмы врожденного иммунитета представляют первую филогенетически наиболее древнюю линию защиты организма от различных патогенов. Врожденный иммунитет предотвращает развитие инфекции на ранних этапах, когда механизмы адаптивного иммунитета еще не задействованы.

В течение последнего десятилетия активно изучаются биология, структура и функции нового класса эффекторных молекул врожденного иммунитета - противомикробных пептидов (ПМП).

ПМП представляют собой обширную группу небольших катионных белков, способных поражать различные микроорганизмы, среди которых вирусы, бактерии, грибы и простейшие.

Противомикробные пептиды, являясь естественными эндогенными антибиотиками, осуществляют функцию так называемого мгновенного иммунитета - «instant immunity». С другой стороны они являются сигнальными молекулами, вовлеченными в процессы регуляции и активации клеток иммунной системы и репарации тканей. ПМП формируют молекулярную основу врожденного иммунитета и участвуют в реализации ряда защитно-приспособительных реакций.

Полифункциональность ПМП в значительной степени определяет эффективность иммунных процессов, протекающих при воспалении, урогенитальных инфекциях (УГИ), септическом шоке и др.

В настоящее время урогенитальная инфекция рассматривается как одна

из основных причин развития хронических простатитов, бесплодия,

патологии беременности, таких как внутриутробное инфицирование плода,

невынашивание, неразвивающаяся беременность и др. Однако остается

неясным, почему одни и те же инфекционные агенты в одних случаях

вызывают реализацию внутриутробной инфекции и преждевременные роды,

1

а в других - практически не влияют на течение беременности. Это вызывает необходимость поиска новых подходов к изучению роли механизмов врожденного иммунитета при урогенитальной инфекции, разработки новых диагностических критериев.

Исследование экспрессии р-дефенсинов клетками слизистой урогенитального тракта и а-дефенсинов в плазме и в культуре нейтрофилов периферической крови здоровых доноров, больных с патологиями инфекционного генеза (урогенитальные инфекции, внутриутробное инфицирование, хронический простатит и другие) представляется актуальным так, как дает возможность понять роль противомикробных пептидов в защите репродуктивной системы от воздействия различных патогенов, широко представленных в урогенитальном тракте. Анализ дефенсинов на уровне экспрессии генов и синтеза белка позволит понять механизм нарушений в системе противомикробной защиты при урогенитальной инфекции, сепсисе, а также определить возможные маркеры прогноза течения данных заболеваний и эффективности проводимого лечения.

Цель работы: комплексное исследование противомикробных пептидов (дефенсинов) в биологических средах организма в норме и при инфекциях.

Задачи исследования:

1. Разработать лабораторные варианты систем ПЦР в реальном времени для количественного определения экспрессии генов катионных противомикробных пептидов НВО-1 и НИР-1.

2. Определить уровень экспрессии гена НВО-1 в клетках слизистой урогенитального тракта мужчин и женщин в норме и при урогенитальной инфекции.

3. Оценить экспрессию НЕШ-1 в слизистой цервикального канала у женщин с физиологически протекающей беременностью и у беременных с урогенитальной инфекцией.

4. Определить уровень нейтрофильных пептидов Н№1-3 в плазме крови здоровых женщин и при патологии беременности инфекционного генеза.

5. Исследовать динамику экспрессии гена и выработки пептида (а-дефенсина НЫР-1) нейтрофилами периферической крови беременных с урогенитальной инфекцией и у больных сепсисом в сравнении с группой здоровых доноров.

Научная новизна работы

Разработан комплексный подход к оценке противомикробных пептидов у человека, основанный на изучении ПМП в различных средах организма. Анализ а-дефенсинов проведен на уровне экспрессии гена и синтеза молекулы пептида.

С помощью разработанных систем ПЦР в реальном времени исследован количественный уровень экспрессии генов р-дефенсина 1 (НВО-1) и а-дефенсина 1 (НЫР-1) у здоровых доноров и пациентов с урогенитальной инфекцией. Особую значимость представляют полученные данные об экспрессии генов ПМП в слизистой цервикального канала и в нейтрофилах крови при физиологически развивающейся беременности и при патологии беременности инфекционного генеза (внутриутробное инфицирование, неразвивающаяся беременность). При реализации внутриутробной инфекции наблюдается снижение экспрессии НВО-1 в клетках слизистой цервикального, что свидетельствует о нарушении противомикробной защиты слизистой репродуктивного тракта. Снижение концентрации нейтрофильных пептидов НИР 1-3 в плазме крови при неразвивающейся беременности может служить маркером для ранней диагностики данной патологии.

Определена роль противомикробных пептидов в развитии иммунодефицитного состояния при хроническом простатите на основе

3

данных о снижении уровня экспрессии гена (3-дефенсина - НЕШ-1 в эпителиальных клетках уретры и снижения концентрации нейтрофильных пептидов НЫР1-3 в секрете простаты.

Получены новые данные о нарушении экспрессии НЫР-1 в нейтрофилах больных сепсисом. Высокий уровень экспрессии гена НЫР-1 сопровождается резким снижением выработки этого пептида.

Практическая значимость работы

Выявленные изменения в экспрессии и продукции ПМП у больных УГИ помогают уточнить патогенез данной патологии, а при беременности могут служить прогностическими маркерами течения беременности.

Положения, выносимые на защиту:

1. Разработаны лабораторные варианты систем ПЦР в реальном времени для количественного определения экспрессии генов катионных противомикробных пептидов НВЭ-1 и НЫР-1 и гена «домашнего хозяйства» - р-актина.

2. С использованием разработанных систем были получены данные, свидетельствующие о том, что слизистая урогенитального тракта в норме защищена противомикробными пептидами. При урогенитальной инфекции происходит уменьшение экспрессии гена НВО-1 в клетках слизистой уретры и цервикального канала.

3. Физиологическое течение беременности сопровождается активацией системы противомикробных пептидов, что проявляется в увеличении экспрессии гена НВО-1 в слизистой цервикального канала и концентрации НЫР1-3 в периферической крови.

4. Разработанные тест-системы позволили выявить нарушения в системе противомикробных пептидов: на уровне экспрессии гена НЫР-1 и

выработки молекулы данного пептида при урогенитальной инфекции и сепсисе.

Внедрение результатов исследования

Разработаны и внедрены в клиническую практику системы на основе ПЦР-РВ для определения экспрессии генов противомикробных пептидов ( ß-дефенсина 1 (HBD-1) и а-дефенсина 1 (HNP-1).

С использованием разработанных систем определены маркеры развития преждевременных родов, внутриутробного инфицирования.

Получено положительное решение по заявке №2009108294/15 (011092) «Способ прогноза преждевременных родов»

Результаты исследования используются в практической работе родильного отделения ГКБ№8 и родильного дома №10 г. Москвы.

Результаты диссертационного исследования внедрены в учебный процесс студентов, ординаторов и аспирантов кафедр иммунологии и акушерства и гинекологии РГМУ.

Апробация.

Апробация диссертации состоялась на совместной научной конференции кафедры иммунологии, отдела иммунологии и кафедры эндокринологии лечебного факультета ГОУ ВПО «РГМУ Росздрава» от 24 июня 2010 года.

Материалы диссертации представлены на II Международной (XI Всероссийской) Пироговской студенческой научной медицинской конференции, 2007; Конференции молодых ученых по молекулярной биологии и генетике, Киев, Украина, 2007; XVI Российского национального конгресса «Человек и лекарство», Москва 6-10 апреля 2009 г.; III Международном конгрессе по репродуктивной медицине, 2009г.

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 11 печатных работ, в том числе 6 статей в центральной печати и патент №2009108294/15 (011092) «Способ прогноза преждевременных родов» Структура и объем диссертационной работы.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, результатов собственных исследований, обсуждения полученных данных, заключения, выводов, указателя литературы, содержащего 93 отечественных и 124 зарубежных источников. Работа выполнена на 104 страницах машинописного текста, иллюстрирована 7 таблицами и 37 рисунками.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Материал и методы

Исследование проводилось в 2007-2010 гг. на кафедре иммунологии РГМУ (заведующий кафедрой д.м.н., профессор, академик РАЕН Ковальчук J1.B.) и на клинических базах кафедры акушерства и гинекологии лечебного факультета РГМУ (заведующий кафедрой д.м.н., профессор, заслуженный врач РФ Макаров О.В.). Было проведено комплексное клинико-лабораторное обследование 40 беременных женщин с урогенитальной инфекцией, находящихся в родильном доме при 8-ой городской больнице. Диагностика УГИ осуществлялась с помощью ПЦР. У беременных была выявлена вирусная инфекция (цитомегаловирус, вирус герпеса простого, вирус папилломы человека), уреаплазма и микоплазма, так же С. albicans. Критериями отбора в основную группу являлись: срок беременности (29-32 недели), наличие урогенитальной инфекции, отсутствие хронических инфекционных и системных аутоиммунных заболеваний.

Все пациентки основной группы были разделены на две подгруппы: беременные с урогенитальной инфекцией, родившие здоровых детей (22

пациенток) и беременные с реализацией внутриутробной инфекции (18 пациенток).

Контрольную группу составили 32 женщин в возрасте 19-39 лет с физиологически протекающей беременностью (срок беременности 29-32 недели - 20 пациенток; срок беременности 5-13 недели гестации - 12 пациенток).

Были обследованы 29 беременных с неразвивающейся беременностью.

Также были обследованы 20 здоровых небеременных женщин, 23 женщины с УГИ, находящихся под наблюдением в женской консультации при 10-ом родильном доме г. Москвы.

У женщин производили забор крови и слизи цервикального канала.

Иммунологические исследования больных хроническим бактериальным простатитом (ХБП) проводились совместно с аспирантом кафедры урологии ГОУ ВПО РГМУ Росздрава Д.Н. Суренковым

Было обследовано 15 больных ХБП и 12 здоровых мужчин (средний возраст составил 20±2,1 года).

Всего у больных ХБП было выделено и идентифицировано 19 штаммов бактерий: 68,4% грамположительных и 31,6% грамотрицательных.

Исследование экспрессии и продукции нейтрофильных пептидов Н№ проведено у 5 больных сепсисом, проходивших лечение на кафедре медицины катастроф Московского государственного медико-стоматологического университета.

Иммунологические и молекулярно-генетические методы исследования.

Исследование включало определения уровня экспрессии гена ШШ-1 в клетках слизистой цервикального канала женщин и уретры мужчин, изучение экспрессии гена Н№М нейтрофилами периферической крови и концентрации а-дефенсинов НИР 1-3 в плазме крови, секрете простаты и амниотической жидкости.

Для изучения экспрессии генов клеточный материал (клетки слизистой цервикального канала, уретры, нейтрофилы периферической крови) подвергались лизису в специальном буфере. Затем из лизата выделяли общую РНК и в реакции обратной транскрипции на ее матрице синтезировали кДНК. Для количественного определения кДНК использовали полимеразную цепную реакцию в реальном времени. Олигонуклеотидные праймеры и зонды для ПЦР-РВ подбирали с помощью компьютерной программы VectorNTI 8.0.

Определение концентрации HNP1-3 в биологических жидкостях осуществляли при помощи иммуноферментного анализа согласно методикам, предлагаемым производителями тест-систем (HyCult Biotechnology, Нидерланды).

Изучение динамики экспрессии гена HNP-1 и продукции белкового продукта проводилось на культуре нейтрофилов, выделенных из периферической крови.

Статистический анализ изменений числовых результатов проведен с помощью программы Microsoft Excel 2003 с использованием непараметрического критерия Манна-Уитни.

Для критерия Манна-Уитни достоверным считали уровень значимости 5% (вероятность ошибочной оценки р<0,05).

Результаты и обсуждение

Первой задачей исследования была разработка лабораторных вариантов систем ПЦР в реальном времени для количественного определения экспрессии генов катионных противомикробных пептидов человека: HBD-1 и HNP-1.

Для постановки реакции использовались «наборы для проведения ПЦР-РВ в присутствии интеркалирующего красителя SYBR Green 1» фирмы Синтол.

С помощью программы Vector NTI были подобраны праймеры для HBD-1, HNP-1 и р-актина и затем синтезированы фирмой Синтол. Оптимальные условия протекания реакции отработаны на амплификаторе «Терцик» (ДНК-Технология, Россия). При этом была подобрана температура отжига праймеров, равная 60°С.

Для регистрации флуоресценции специфического продукта в реакционную смесь добавлялись зонды. Подбор зондов также осуществлялся с помощью программы анализа нуклеотидных последовательностей Vector NTI. Выбор последовательности зонда определялся следующими критериями: комплементарность участку определяемого гена между прямым и обратным праймером, так же зонды не должны образовывать шпилек, димеров и взаимодействовать с праймерами. Кроме того, было необходимо подобрать оптимальную концентрацию зонда. По стандартным протоколам рекомендованы концентрации 10 пМ (2,7 оптических единицы для HNP-1; 2,8 оптических единицы - HBD-1; 2,5 оптических единицы - Р-актин).

Рис. 1. Зависимость интенсивности флуоресценции зонда для ИЧР-1 при двух концентрациях зонда для двух исследуемых образцов (1 и 2). К- -отрицательный контроль.

Флуоресценцию в пробе 1 отражают бирюзовая (3 оптических единицы зонда) и фиолетовая (5,9 оптических единицы) кривые. Флуоресценция в

пробе 2 описывается синей (3 оптических единицы) и сиреневой (5,9 оптических единицы) кривыми. Из данного графика видно, что нет существенных различий в значении порогового цикла амплификации и скорости нарастания флуоресценции между различными концентрациями зона. Аналогичные данные были получены для концентрации зонда 1 оптическая единица и зондов для НЕШ-1 и Р-актина.

Так, для уменьшения расхода зондов в качестве рабочей концентрации была выбрана концентрация в 1 оптическую единицу/мл.

Для оптимизации условий ПЦР-РВ, связанной с недостаточным количеством выделяемой РНК из небольших объемов клинического материала, был использован метод, позволяющий объединить реакцию обратной транскрипции и ПЦР-РВ. Такая модификация позволяет использовать всю кДНК, получаемую в реакции обратной транскрипции, а также снижает риск контаминации образцов. На рисунке 2 представлены графики, демонстрирующие преимущество такой модификации.

Рис. 2. Зависимость флуоресценции зонда для НЫР-1 от количества циклов амплификации. А - при отдельном проведении обратной транскрипции, Б -при совмещении обратной транскрипции и ПЦР-РВ.

С помощью разработанной системы полимеразной цепной реакции в реальном времени был исследован количественный уровень экспрессии гена НЕЮ-1 в слизистой цервикального канала у женщин с УГИ по сравнению с группой здоровых женщин. У женщин с урогенитальной инфекцией было выявлено снижение в 3 раза уровня экспрессии гена Р-дефенсина 1, который

А

Б

выполняет важные защитные функции (Рис.3). Возможно, именно уменьшение экспрессии этого гена влечет за собой ослабление локальных защитных механизмов и развитие инфекционного процесса.

При беременности возрастает роль врожденного иммунитета в защите от патогенов. Происходящее при беременности снижение активности адаптивного иммунитета компенсируется за счет активации факторов врожденного иммунитета, осуществляющих противомикробную защиту матери и плода. При этом увеличивается экспрессия распознающих сигнальных рецепторов системы врожденного иммунитета, относящихся к семейству То11-подобных рецепторов, которые распознают консервативные элементы патогенных микроорганизмов и активируют выработку провоспалительных цитокинов, хемокинов, противомикробных пептидов и др. Так в работах, выполненных на кафедре иммунологии показано, что у женщин с физиологически протекающей беременностью статистически достоверно возрастает в слизистой цервикального канала экспрессия генов ТЫ11, ТЫ12 и ТЬЯб по сравнению со здоровыми небеременными женщинами (Ганковская Л.В., Ковальчук Л.В., 2006).

Исследование количественного уровня экспрессии гена НВЭ-1 в слизистой цервикального канала у женщин с физиологически протекающей беременностью в сравнении со здоровыми небеременными женщинами показало увеличение экспрессии этого гена при беременности в 3 раза (Рис. 3).

Следующим этапом работы было изучение экспрессии гена НВВ-1 в слизистой цервикального канала у беременных женщин с урогенитальной инфекцией. В результате выявлено снижение в 2,5 экспрессии гена НВО-1 по сравнению со здоровыми беременными (Рис.3).

Можно предположить, что развитие урогенитальной инфекции у беременных спровоцировано изначально сниженной выработкой противомикробных пептидов клетками слизистой. Одной из объяснений этого может быть полиморфизм генов молекул врожденного иммунитета

(ТЬЛ, цитокинов, противомикробных пептидов, ферментов и др.). Описан полиморфизм промоторной области гена ШШ-1, мутации в которой могут снижать экспрессию гена на 40-50%.

Этим, по-видимому, можно объяснить неполноценность механизмов противомикробной защиты на уровне слизистой цервикального канала, следствием чего и является распространение инфекции.

У 40% обследованных беременных с урогенитальной инфекцией по данным ретроспективного анализа имела место реализация внутриутробной инфекции. У женщин, родивших детей с признаками внутриутробного инфицирования, наблюдалось наиболее выраженное угнетение экспрессии гена ШШ-1 (в 10 раз и более) по сравнению с группой беременных с урогенитальной инфекцией без реализации ВУИ (Рис. 3).

здоровые здоровые беременные с беременные с

небеременные беременные урогенитальной реализацией ин{{екцией внутриутробной инфекции

Рис. 3. Экспрессия гена НВО-1 клетками цервикального канала в исследуемых группах. По оси абсцисс представлены исследуемые группы, по оси ординат - количество копий хЮ3 кДНК НВО-1 (относительно экспрессии гена актина).

Исследовался уровень экспрессии гена НВО-1 клетками слизистой цервикального канала у женщин с неразвивающейся беременностью, однако, статистически значимых отличий от здоровых беременных выявлено не было.

Следующей задачей нашего исследования было определение уровня

экспрессии гена НВО-1 в слизистой уретры мужчин в норме и при

12

бактериальном хроническом простатите. Средний уровень экспрессии гена НВО-1 в группе здоровых мужчин составил 288,4±25,3 х 103 копий кДНК (Рис.4).

g 300

^ I 250 « 200

ж *

I fe 150 § g. 100 í С 50 ^ 0

здоровые мужчины хоонический поостатмт

больные хроническим простатитом

Рис.4. Экспрессия гена HBD-1 клетками слизистой уретры здоровых мужчин и мужчин с хроническим простатитом. По оси ординат представлено количество копий х10" кДНК HBD-1 (относительно экспрессии гена актина).

Обращает на себя внимание тот факт, что в клетках слизистой уретры здоровых добровольцев экспрессируются паттерн-распознающие рецепторы -TLR2, TLR4, TLR9 (Ганковская и др. 2009). Можно заключить, что слизистая уретры защищена как рецепторными компонентами врожденного иммунитета, так и эффекторными молекулами.

У больных с ХБП наблюдалось снижение экспрессии гена HBD-1(60,25±6,4*103 копий кДНК) (Рис. 4).

Как было показано ранее, уровень TLR2 у этих пациентов был снижен в 13,5 раза относительно показателя в группе здоровых добровольцев. Выраженное снижение уровня экспрессии гена TLR2 наблюдалось у больных ХБП с инфекцией, вызванной энтерококком или гемолитическим стрептококком. Известно, что патогены имеют механизмы ускользания от иммунной системы.

Показана резистентность стафилококков и энтерококков в мочеиспускательном канале к противомикробным пептидам. Эта резистентность коррелирует с тяжестью течения ХБП (Ivanov IB., 2005). Наряду с этим был обнаружен внеклеточный стафилококковый продукт, названный secretory inhibitor of platelet microbicidal protein (SIPMP). Данный

фактор вызывает локальное ингибирование антимикробного действия ПМП. (1уапоу 1В., 2006).

Таким образом, по результатам проведенных исследований можно сказать, что при урогенитальной инфекции уровень экспрессии НЕШ-1 снижается как в слизистой цервикального канала женщин, так и в слизистой уретры мужчин, что может служить одной из причин перехода инфекционного процесса в хроническую форму.

В отличие от Р-дефенсинов, экспрессируемых эпителиальными клетками слизистой, а-дефенсины (НИР 1-3) выделяются из азурофильных гранул нейтрофилов при инфекции и определяют в основном развитие системного воспалительного ответа. Показано, что эти катионные пептиды активируют миграцию и фагоцитоз нейтрофилов и макрофагов, стимулируют в тучных клетках высвобождение гистамина, увеличивают проницаемость сосудов секрецию ИЛ-8 клетками эндотелия.

В наших исследованиях не выявлено статистически значимых различий в концентрации НЫР1-3 в плазме крови здоровых доноров и больных с УГИ.

При физиологически протекающей беременности концентрация дефенсинов в плазме была достоверно выше, чем в группе небеременных женщин и составила 6,7+2,4 нг/мл (рис.5). Полученный результат можно объяснить активацией нейтрофилов - основных клеток, высвобождающих ЬГЫР1-3. При беременности происходит увеличение количества нейтрофилов в периферической крови и их активация (Окага1а Т., 2007). Ганковская Л.В. с соавторами показали, что в нейтрофилах периферической крови беременных увеличивается экспрессия ТЫ14 на уровне гена и на уровне молекулы белка (Ганковская, 2007). Известно, что передача сигнала с этого рецептора активирует секрецию биологически активных факторов нейтрофилов. Таким образом, можно предположить, что уровень а-дефенсинов в плазме крови коррелирует с активацией нейтрофилов в большей степени, чем с их количеством.

Следующий этап исследований включал определение а-дефенсинов Ю4Р1-3 в плазме периферической крови беременных женщин с урогенитальной инфекцией. Это исследование представляется актуальным так, как дает возможность понять роль противомикробных пептидов, действующих на системном уровне в защите репродуктивной системы женщины от воздействия различных патогенов, широко представленных в урогенитальном тракте.

У беременных с УГИ и ВУИ было выявлено снижение концентрации НМЧ-З в плазме крови (Рис. 5). Это говорит о снижении гуморальных компонентов врожденного иммунитета на системном уровне при беременности, осложненной УГИ.

здоровые здоровые беременные с УГИ беременные с ВУИ

небеременные беременные

Рис. 5. Концентрация НЫРЬЗ в плазме крови. По оси абсцисс представлены исследуемые группы, по оси ординат - концентрации.

У женщин с неразвивающейся беременностью была определена концентрация ШЧРЬЗ в плазме крови. Средние показатели НЫР1-3 у пациенток с неразвивающейся беременностью были достоверно ниже и составили 0,018+0,012 нг/мл.

При анализе индивидуальных данных было выявлено следующее:

«нулевые» значения ГПЧР1-3 в плазме женщин с неразвивающейся

беременностью встречались у 40% пациенток, концентрация нейтрофильных

пептидов до 0,1 нг/ мл - у 30% и более 0,1 нг/мл - лишь у 30% пациенток. В

то время как у здоровых беременных НИР 1 -3 определялись всегда, причем у

15

70% пациенток концентрация нейтрофильных пептидов была в диапазоне от 0,1нг/мл до 1,0нг/мл, а у 25% пациенток - выше 1,0 нг/мл

Следует обратить внимание, что в амниотической жидкости здоровых беременных уровень нейтрофильных противомикробных пептидов в 300 раз превышает их концентрацию в плазме крови.

При УГИ и ВУИ происходит снижение этого показателя примерно в 3 раза (рис. 6), что свидетельствует о снижении защитных механизмов врожденного иммунитета в амниотической полости

•с 3500 г

1 3000

2 2500 о.

здоровые беременные с УГИ беременные с ВУИ беременные

Рис. 6. Концентрация Н1ч1Р1-3 в амниотической жидкости. По оси абсцисс представлены исследуемые группы, по оси ординат - концентрация ШР1-3, нг/мл.

В работе были изучены концентрации ИЧР1-3 в секрете простаты. По содержанию НЫР1-3 в секрете простаты как здоровых мужчин, так и мужчин с хроническим простатитом можно разделить на две группы: менее 300 пг/мл и более 1000 пг/мл. У 44% здоровых мужчин концентрация НМЧ-З в секрете простаты составляла 232,6±54,9 пк/мл и у 56% - 1044,4±157,6 пг/мл. У больных хроническим простатитом это соотношение отличалось: у 29% концентрация ИЫР1-3 определялась на уровне 290,2±123,9 пг/мл и у 71% -1024,6±196,2 пг/мл.

У больных с ХБП чаще определяются высокие уровни НЫР1-3 в секрете простаты (более 1000 пг/мл) по сравнению со здоровыми донорами.

Следующей задачей исследования явилось изучение динамики уровня экспрессии гена а-дефенсина Н1ЧР-1 в культуре нейтрофилов периферической крови здоровых беременных женщин и беременных с урогенитальной инфекцией. Параллельно с этим с помощью иммуноферментного анализа в культуре нейтрофилов определяли концентрацию секретируемых НЫР1 -3.

При изучении динамики уровня спонтанной экспрессии гена НЫР-1 в культуре нейтрофилов периферической крови здоровых беременных женщин и беременных с урогенитальной инфекцией показано, что уровень спонтанной экспрессии данного гена существенно не отличается у этих двух групп и поддерживается на одном уровне независимо от времени культивирования. Лишь через сутки культивирования наблюдается тенденция к снижению экспрессии дефенсина (Рис. 7).

А Б

Рис.7. Динамика спонтанной экспрессии гена (А) и выработки белка (Б) НЫР-1 нейтрофилами периферической крови здоровых беременных и беременных с урогенитальной инфекцией. По оси абсцисс - время (часы), по оси ординат - (А) ^ (число кДНК НЫР-1) относительно ^ (1000 копий кДНК (5-актина), (Б) концентрация НЫР-1 в нг/мл.

-- - беременные с физиологически протекающей беременностью

.««•, - беременные с урогенитальной инфекцией

Особый интерес представляют данные по экспрессии нейтрофильных пептидов при системной воспалительной реакции в результате полиорганной травмы. На рисунке 8 представлена динамика экспрессии гена НЫР-1 в культуре нейтрофилов больных сепсисом и здоровых доноров. Через 3 часа культивирования экспрессия гена НЫР-1 нейтрофилами здоровых доноров

резко снижалась (приблизительно в 100 раз) и сохранялась на таком уровне до окончания эксперимента.

*-здоровые

сепсис

Рис.8. Экспрессия гена НЧР-1 в культуре нейтрофилов больных сепсисом и здоровых доноров. По оси абсцисс - время культивирования, по оси ординат - десятичный логарифм числа копий кДНК НЫР-1

Уровень экспрессии гена НЫР-1 нейтрофилами при сепсисе на момент начала культивирования на 10 раз превышал таковой в группе здоровых доноров. В процессе 24-часового культивирования экспрессия гена уменьшалась в 10 раз, оставаясь выше аналогичного показателя в норме.

У больных сепсисом наблюдалось отличие в динамике выработки Н1МР1-3, которое заключалось в сниженной продукции (в 5-10 раз) ЬП\[Р1-3 нейтрофилами больных сепсисом на 3-6 час культивирования. Можно предположить, что происходит истощение резервных потенциалов нейтрофилах при сепсисе. Однако при дальнейшем культивировании происходит восполнение пула НИР за счет достаточно высокого уровня экспрессии гена НИР.

выводы

1. Разработаны лабораторные варианты систем ПЦР в реальном времени для количественного определения экспрессии генов катионных противомикробных пептидов HBD-1 и HNP-1.

2. По сравнению со здоровыми донорами при урогенитальной инфекции происходит снижение в 2-3 раза экспрессии гена HBD-1 в клетках слизистой цервикального канала и в клетках слизистой уретры мужчин.

3. Физиологическое течение беременности сопровождается увеличением экспрессии генов р-дефенсина HBD-1 в клетках слизистой цервикального канала и возрастанием концентрации нейтрофильных а-дефенсинов - HNP1-3 в периферической крови.

4. У беременных с урогенитальной инфекцией выявлено уменьшение экспрессии гена HBD-1 в эпителиальных клетках цервикального канала и снижение концентрации нейтрофильных пептидов HNP1-3 в плазме и амниотической жидкости.

5. При неразвивающейся беременности концентрация нейтрофильных пептидов HNP1-3 в плазме крови резко снижается, у 40% HNP1-3 не определяются.

6. В культуре in vitro изучена динамика экспрессии нейтрофилами дефенсина HNP-1 на уровне мРНК и белка. Спонтанная экспрессия гена не отличается у здоровых беременных и беременных женщин с урогенитальной инфекцией. Тогда как, секреция этого пептида у беременных с урогенитальной инфекцией происходит на 6 часов позднее, чем у здоровых беременных.

7. У беременных с урогенитальной инфекцией стимуляция нейтрофилов ЛПС в низкой дозе вызывала более выраженный рост экспрессии гена

НЫР-1, что может быть обусловлено праймингом клеток при урогенитальной инфекции.

8. Уровень экспрессии гена НИР-1 нейтрофилами при сепсисе в 10 раз превышал таковой в группе здоровых доноров, в то время, как выработка а-дефенсинов (НКР1-3) нейтрофилами в течение 6-ти часов культивирования была снижена более, чем в 15 раз по сравнению со здоровыми донорами.

Практические рекомендации

Предложенный способ оценки экспрессии гена Н1Ю-1 в клетках слизистой цервикального канала целесообразно включать при оценке показателей врожденного иммунитета для своевременного прогнозирования внутриутробной инфекции и преждевременных родов у беременных с урогенитальной инфекцией.

Снижение концентрации НЫР1 -3 в плазме крови ниже 30 пг/мл позволяет с высокой точностью отнести данных пациенток к группе высокого риска по развитию неразвивающейся беременности.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Фензелева В.А., Карташов Д.Д., Романовская В.В. Экспрессия мРНК ToII-подобного рецептора 2 и бета-дефенсина человека 1 при урогенитальной инфекции беременных // Материалы II Международной (XI Всероссийской) Пироговской студенческой научной медицинской конференции, 2007

2. Gankovskaya O.A., Pomanovskaya V.V.,Kusnecov P.A., Fenzeleva V.A., Kartashov D.D. TLR and antimicrobial peptide genes expression during prenatal infection // Abstract from Conference for Young Scientists, PhD Students and Students on Molecular Biology and Genetics 20 - 22 of September 2007, Kyiv, Ukraine, 20-22 September, 2007, P. 165

3. Ганковская Jl.B. Ковальчук JI.B. Ганковская O.A. Макаров O.B. Лавров В.Ф. Карташов Д.Д. Кузнецов А.П. Экспрессия противомикробных пептидов клетками слизистой оболочки цервикального канала и нейтрофилами периферической крови у беременных с урогенитальной инфекцией // Вестник РГМУ, №5, 2008, с. 26-29

4. Ганковская Л.В., Ковальчук Л.В., Фензелева В.А., Карташов Д.Д., Ганковская O.A. Активация экспрессии генов ТоИ-подобных рецепторов и дефензинов клетками слизистой цервикального канала при беременности // Российский иммунологический журнал, т. 2(11), №2-3, 2008, стр. 286 - 287

5. Ганковская O.A., Ковальчук Л. В., Ганковская Л.В., Лавров В.Ф., Романовская В.В., Карташов Д.Д., Фензелева В.А. Роль ТоИ-подобных рецепторов и дефенсинов в противомикробной защите урогенитального тракта женщин // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии, №1,2008, с. 46-50

6. Макаров О.В., Ганковская Л.В., Бахарева И.В., Кузнецов П.А., Карташов Д.Д. Современные методы лечения при преждевременных родах // Российский вестник акушера - гинеколога, №2,2009, с.29-34

7. Ганковская Л.В., Ковальчук Л.В., Бахарева И.В., Кузнецов П.А., Ганковская O.A., Романовская В.В., Карташов Д.Д., Макаров О.В.

Экспрессия генов То11-подобных рецепторов слизистой цервикального канала при нормальной и патологически протекающей беременности // Вестник РГМУ, №4,2009, с. 34-37

8. Макаров О.В., Бахарева И.В., Ганковская Л.В., Кузнецов П.А., Романовская В.В., Щукина A.B., Ганковская O.A., Карташов Д.Д. Изменение показателей врожденного иммунитета слизистой цервикального канала при беременности и воспалительных заболеваниях органов малого таза // Сборник материалов XVI Российского национального конгресса «Человек и лекарство», Москва 6-10 апреля 2009 г., с.395

9. Макаров О.В., Ганковская Л.В., Бахарева И.В., Кузнецов П.А., Ганковская O.A., Карташов Д.Д. Показатели врожденного иммунитета слизистой цервикального канала при беременности // Проблемы репродукции, специальный выпуск «Материалы III международного конгресса по репродуктивной медицине», с. 97

10. Карташов Д.Д., Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Ганковская О.А, Щукина A.B., Дворецкая Е.В. Анализ противомикробных пептидов человека в биологических жидкостях // Российский аллергологический журнал, №3, выпуск 1, 2009, с. 354

Патенты

Получено положительное решение по заявке №2009108294/15 (011092)

«Способ прогноза преждевременных родов» авторов Л.В. Ганковской, О.В.

Макарова, Л.В. Ковальчука, П.В. Кузнецова, Д.Д. Карташова

Список сокращений

ВУИ - внутриутробная инфекция ВПГ - вирус простого герпеса ИФА - иммуноферментный анализ ЛПС - липополисахарид ПМП - пртивомикробные пептиды

ПЦР-РВ - полимеразная цепная реакция в реальном времени

УГИ - урогенитальная инфекция

ХБП - хронический бактериальный простатит

ЦМВ - цитомегаловирус

HBD (human beta defensine) - Д-дефенсин человека

HNP (human neutrophil peptide) - нейтрофильный пептид человека (а-дефенсин)

TLR (Toll like receptor) - То11-подобный рецептор

Подписано в печать: 24.09.10

Объем: 1,5 усл.л. Тираж: 100 экз. Заказ № 766 Отпечатано в типографии «Реглет» 119526, г.Москва, пр-т Вернадского,39 (495)363-78-90; www.reglet.ru

 
 

Оглавление диссертации Карташов, Дмитрий Дмитриевич :: 2010 :: Москва

Список сокращений.

Введение.

Глава 1. Обзор литературы.

1.1. Противомикробные пептиды. Классификация и характеристика.

1.2. Продуценты противомикробных пептидов.

1.3. Регуляция экспрессии противомикробных пептидов и связь с Toll-подобными рецепторами.

1.4. Механизм действия противомикробных пептидов.

1.5. Механизмы клеточной гибели при взаимодействии с противомикробными пептидами.

1.6. Роль противомикробных пептидов во врожденном и приобретенном иммунитете.

1.7. Противомикробные пептиды в женской репродуктивной системе.

Глава 2. Материалы и методы.

2.1. Характеристика клинических групп пациентов.

2.2. Схема эксперимента.

2.3. Получение клеток слизи цервикального канала.

2.4. Выделение нейтрофилов периферической крови.

2.5. Культивирование нейтрофилов.

2.6. Выделение РНК из клеток слизистой цервикального канала и нейтрофилов крови.

2.7. Реакция обратной транскрипции.

2.8. Полимеразная цепная реакция в реальном времени.

2.9. Электрофорез в агарозном геле.

2.10. Подсчёт и стандартизация результатов полимеразной цепной реакции в реальном времени.

2.11. Иммуноферментный анализ.

2.12. Статистическая обработка результатов.

Глава 3. Результаты и обсуждение.

3.1. Разработка систем количественного определения уровня экспрессии генов Р-дефенсина 1 (HBD-1) и а-дефенсина 1 (HNP-1) с помощью полимеразной цепной реакции в реальном времени.

3.2. Оценка дефенсинов на локальном и системном уровне в норме и при урогенитальной инфекции.

3.2.1. Экспрессия гена HBD-1 в слизистой урогенитального тракта в норме и при урогенитальной инфекции.

3.2.2. Концентрация HNP1-3 в норме и при урогенитальной инфекции.

3.3. Изменение экспрессии HBD-1 у женщин с физиологически протекающей беременностью и патологией беременности инфекционного генеза.

3.3.1 Оценка уровня экспрессии HBD-1 при физиологически протекающей беременности.

3.3.2. Экспрессия гена HBD-1 клетками слизистой цервикального канала при патологии беременности инфекционного генеза.

3.4. Уровень а-дефенсинов (HNP1-3) при физиологически протекающей беременности и при патологии беременности.

3.5. Динамика экспрессии гена и выработки HNP-1 нейтрофилами периферической крови in vitro.

 
 

Введение диссертации по теме "Клиническая иммунология, аллергология", Карташов, Дмитрий Дмитриевич, автореферат

Актуальность темы

Механизмы врожденного иммунитета представляют первую филогенетически наиболее древнюю линию защиты организма от различных патогенов. Врожденный иммунитет предотвращает развитие инфекции на ранних этапах, когда механизмы адаптивного иммунитета еще не задействованы, так как для реализации механизмов врожденного иммунитета не требуется предварительного контакта с антигеном (58).

В течение последнего десятилетия активно изучают биологию, структуру и функции нового класса эффекторных молекул врожденного иммунитета — противомикробных пептидов (ПМП).

ПМП представляют собой обширную группу небольших катионных белков, способных поражать различные микроорганизмы, среди которых вирусы, бактерии, грибы и простейшие (135).

Противомикробные пептиды представляют собой естественные эндогенные антибиотики и осуществляют функцию так называемого мгновенного иммунитета — «instant immunity». С другой стороны они являются сигнальными молекулами, вовлеченными в процессы регуляции и активации клеток иммунной системы и репарации тканей (28, 122). ПМП формируют молекулярную основу врожденного иммунитета и участвуют в реализации ряда защитно-приспособительных реакций.

Полифункциональность ПМП в значительной степени определяет эффективность иммунных процессов, протекающих при воспалении, урогенитальных инфекциях, септическом шоке и др.

В настоящее время урогенитальная инфекция рассматривается как одна из основных причин развития хронических простатитов, бесплодия, патологии беременности, таких как внутриутробное инфицирование плода, невынашивание,, неразвивающаяся беременность и др. (35). Однако остается' неясным, почему одни и те же инфекционные агенты в одних случаях вызывают реализацию внутриутробной инфекции и преждевременные роды, а в других - практически не влияют на течение беременности. Это вызывает необходимость поиска новых подходов к изучению роли механизмов врожденного иммунитета при урогенитальной инфекции, разработки новых диагностических критериев.

Исследование экспрессиии (3-дефенсинов клетками слизистой оболочки урогенитального тракта и а-дефенсинов в плазме и в культуре нейтрофилов периферической крови здоровых доноров, больных с патологиями инфекционного генеза (УГИ, ВУИ, хронический простатит и другие) актуально, так как дает возможность понять роль противомикробных пептидов в защите репродуктивной системы от воздействия различных патогенов, широко представленных в урогенитальном тракте. Исследование экспрессии дефенсинов на уровне генов и синтеза белка у беременных с урогенитальной инфекцией может иметь диагностическую и прогностическую значимость при невынашивании беременности и подозрении на внутриутробное инфицирование плода.

В связи с этим целью работы явилось комплексное исследование противомикробных пептидов (дефенсинов) в биологических средах организма в норме и при инфекциях.

В соответствии с целью были поставлены следующие задачи:

1) Разработать лабораторные варианты систем ПЦР в реальном времени для количественного определения экспрессии генов катионных противомикробных пептидов HBD-1 и HNP-1.

2) Определить уровень экспрессии гена HBD-1 в клетках слизистой урогенитального тракта мужчин и женщин в норме и при урогенитальной инфекции.

3) Оценить экспрессию HBD-1 в слизистой цервикального канала у женщин с физиологически протекающей беременностью и у беременных с урогенитальной инфекцией.

4) Определить уровень нейтрофильных пептидов HNP1-3 в плазме крови здоровых женщин и при патологии беременности инфекционного генеза.

5) Исследовать динамику экспрессии гена и выработки пептида (а-дефенсина HNP-1) нейтрофилами периферической крови беременных с урогенитальной инфекцией и у больных сепсисом в сравнении с группой здоровых доноров.

Научная новизна

Разработан комплексный подход к оценке противомикробных пептидов у человека, основанный на изучении ПМП на системном и локальном уровнях. Анализ а-дефенсинов проведен на уровне экспрессии гена и синтеза молекулы пептида.

С помощью разработанного подхода и систем ПЦР-РВ для количественного определения уровня экспрессии генов исследована роль (3-дефенсина 1 (HBD-1) и а-дефенсина 1 (HNP-1) в защите от патогенов у здоровых доноров и у больных с урогенитальной инфекцией.

Особую значимость представляют полученные данные о экспрессии ПМП на уровне слизистой цервикального канала и в нейтрофилах крови при физиологически развивающейся беременности и при беременности, осложненной урогенитальной инфекцией (невынашивание, внутриутробное инфицирование, неразвивающаяся беременность). Показано, что при преждевременных родах и реализации ВУИ происходит снижение экспрессии HBD-1 в клетках слизистой цервикального канала и увеличение экспрессии TLR2. При неразвивающейся беременности существенное значение имеет снижение концентрации нейтрофильных пептидов HNP1-3 в плазме крови.

Обнаруженное снижение уровня экспрессии гена |3-дефенсина - HBD-1 в эпителиальных клетках уретры и снижения концентрации нейтрофильных пептидов HNP-1-3 в секрете простаты при хроническом простатите позволяет обозначить их роль в развитии иммунодефицитного состояния.

Положения, выносимые на защиту

1. Разработаны лабораторные варианты систем ПЦР в реальном времени для количественного определения экспрессии генов катионных противомикробных пептидов HBD-1 и HNP-1 и гена «домашнего хозяйства» - р-актина.

2. С использованием разработанных систем были получены данные, свидетельствующие о том, что слизистая урогенитального тракта в норме защищена противомикробными пептидами. При урогенитальной инфекции происходит уменьшение экспрессии гена HBD-1 в клетках слизистой уретры и цервикального канала.

3. Физиологическое течение беременности сопровождается активацией системы противомикробных пептидов, что проявляется в увеличении экспрессии гена HBD-1 в слизистой цервикального канала и концентрации HNP1-3 в периферической крови.

4. Разработанные тест-системы позволили выявить нарушения в системе противомикробных пептидов: на уровне экспрессии гена HNP-1 и выработки молекулы данного пептида при урогенитальной инфекции и сепсисе.

Практическая значимость работы

Выявленные изменения в экспрессии и продукции ПМП у больных УГИ помогают уточнить патогенез данной патологии, а при беременности могут служить прогностическими маркерами течения беременности.

Внедрение результатов работы в практику

Разработаны и внедрены в клиническую практику системы на основе ПЦР-РВ для определения экспрессии генов противомикробных пептидов (р-дефенсина 1 (HBD-1) и а-дефенсина 1 (HNP-1).

С использованием разработанных систем определены маркеры развития преждевременных родов, внутриутробного инфицирования. Создан комплекс маркеров на основе исследования экспрессии генов HBD-1 и TLR2 в цервикальном канале женщин, позволяющих с большей долей вероятности прогнозировать преждевременные роды и развитие внутриутробного инфицирования. Снижение концентрации HNP-1-3 в плазме крови менее 0,1 нг/мл ассоциировано с развитием неразвивающейся беременности. Публикации результатов исследования

По теме диссертации опубликовано 11 печатных работ, в том числе 6 статей в центральной печати, включая патент №2009108294 «Способ прогнозирования преждевременных родов инфекционного генеза» (положительное решение от 07.05.2010).

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, результатов собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, указателя литературы, содержащего 178 источников. Работа выполнена на 104 страницах машинописного текста иллюстрирована 7 таблицами и 37 рисунками.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Комплексный анализ противомикробных пептидов в биологических средах организма"

Выводы

1) Разработаны лабораторные варианты систем ПЦР в реальном времени для количественного определения экспрессии генов катионных противомикробных пептидов HBD-1 и HNP-1.

2) По сравнению со здоровыми донорами при урогенитальной инфекции происходит снижение bj 2-3 раза экспрессии гена HBD-Г в клетках слизистой цервикального канала и в клетках слизистой уретры мужчин.

3) Физиологическое течение беременности сопровождается увеличением экспрессии генов р-дефенсина HBD-1 в клетках слизистой цервикального канала и возрастанием концентрации нейтрофильных а-дефенсинов -HNP1-3 в периферической крови.

4) У беременных с урогенитальной инфекцией выявлено уменьшение экспрессии гена HBD-1 в эпителиальных клетках цервикального канала и снижение концентрации нейтрофильных пептидов HNP1-3 в плазме и амниотической жидкости.

5) При неразвивающейся беременности концентрация нейтрофильных пептидов HNP1-3 в плазме крови резко снижается, у 40% HNP1-3 не определяются.

6) В культуре in vitro изучена динамика экспрессии нейтрофилами дефенсина HNP-I на уровне мРНК и белка. Спонтанная экспрессия гена не отличается у здоровых беременных и беременных женщин с урогенитальной инфекцией. Тогда как, секреция этого пептида у беременных с урогенитальной инфекцией происходит на 6 часов позднее, чем у здоровых беременных.

7) У беременных с урогенитальной инфекцией стимуляция нейтрофилов ЛПС в низкой дозе вызывала более выраженный рост экспрессии гена HNP-1, что может быть обусловлено праймингом клеток при урогенитальной инфекции.

8) Уровень экспрессии гена HNP-1 нейтрофилами при сепсисе в 10 раз превышал таковой в группе здоровых доноров, в то время, как выработка а-дефенсинов (HNP1-3) нейтрофилами в течение 6-ти часов культивирования была снижена более, чем в 15 раз по сравнению со здоровыми донорами.

Практические рекомендации

Предложенный способ оценки экспрессии гена HBD-1 в клетках слизистой цервикального канала целесообразно включать при оценке показателей врожденного иммунитета для своевременного прогнозирования внутриутробной инфекции и преждевременных родов у беременных с урогенитальной инфекцией.

Снижение концентрации HNP1-3 в плазме крови ниже 30 пг/мл позволяет с высокой точностью отнести данных пациенток к группе высокого риска по развитию неразвивающейся беременности.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2010 года, Карташов, Дмитрий Дмитриевич

1. Абрамченко В. В., Костючек Д.Ф., Хаджиева Э.Д. Гнойно-септическая инфекция в акушерстве и гинекологии. Руководство — СПб, 2005, 464 с.

2. Абуд И.Ю., Прилепская В.Н. Хламидийная инфекция в акушерстве и гинекологии // РМЖ, 1998, том 6, № 5

3. Адаскевич В.П. Инфекции, передаваемые половым путём. Руководство для врачей. —Н. Новгород, Изд-во НГМА, 1999: 415.

4. Анохин В.А., Хаертынов Х.С., Хасанова Г.Р. Внутриутробная инфекция (Клиника, диагностика и профилактика) — М., Медицина,1999, 95 с.

5. Байрамова Г.Р., Прилепская В.М. Кандидозные инфекции в акушерстве и гинекологии // Cons Prov.-2001, Tl, №3, с. 20-21

6. Бахарева И.В., Таранец А.Н., Ковальчук JI.B, Ганковская JI.B., Долгина Е.Н. Функциональная активность нейтрофилов и система цитокинов у беременных с урогенитальной инфекцией // Вестник РГМУ, 2004; 5 (36), с. 41—45.

7. Башмакова Н.В., Моторнюк Ю.И. Особенности иммунного ответа в зависимости от характера течения урогенитальной хламидийной инфекции у беременных // Рос. вестн. акуш.-гинек., 2001, №2, с. 8-11

8. Бубнова Н.И., Младковская Т.Б., Гуртовой Б.Л., Пустотина О.А. Значение исследования околоплодной жидкости в диагностике врожденных инфекций // Материалы II всерос. Форума «Мать и дитя»,2000, с. 22-23

9. Будихина А. С., Пинегин Б. В. Альфа-дефензины антимикробные пептиды нейтрофилов: свойства и функции // Иммунология. - 2008. - Том 29,N5 .-С.317-320

10. Будихина А. С., Пинегин Б. В. Дефензины мультифункциональные катионные пептиды человека // Иммунопатология, Аллергология, Инфектология, 2008, №2

11. Ганковская Л.В., Романовская В .В., Фензелева В.А., Увеличение уровня экспрессии TLR2 у беременных женщин при урогенитальной инфекции//Аллергология и иммунология в педиатрии, 2006, №2-3(9): 66

12. Гланц Стентон, Медико-биологическая статистика, «Практика», Москва, 1999

13. Гриноу А., Осборн Д., Сазерленд Ш. Врождённые, перинатальные и неонатальные инфекции. — М., Медицина, 2000: 287.

14. Дж. Клаус и др., Лимфоциты и методы//М., изд. «Мир», 1990

15. Дмитриев Г.А. Лабораторная диагностика бактериальных урогенитальных инфекций.— М.,2003.—336с.

16. Долгушина Н.В., Макацария А.Д. Вирусные инфекции у беременных (руководство для врачей). Москва, «Триада-Х», 2004

17. Кан Н.Е. Диагностика внутриутробной инфекции в современных условиях (обзор литературы) Проблемы репродукции №5/2004

18. Кисина В.И., Урогенитальные инфекции у женщин. 2005.-276с.

19. Ковальчук Л.В., Антигенные маркеры клеток иммунной системы человека. CD (cluster differentiation) система//М., 2005

20. Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В, Баркевич О.А., Лавров В.Ф., Естественный иммунитет герпетическая инфекция, Вопросы вирусологии. 2006; 3; 4—9.

21. Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Макаров О.В., Бахарева И.В., Таранец А.Н. Клеточные и гуморальные компоненты амниотической жидкости в норме и при внутриутробной инфекции // Иммунология, 2003; 6: 350—352.

22. Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Мороз А.Ф., Аведова Т.А., Москвина С.Н. Противомикробные пептиды иммунной системы: клинические аспекты // Аллергология и иммунология. 2003; 4(2): 20—26.

23. Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Хорева М.В. и др., Система цитокинов, современные методы иммунного анализа// М., 2001

24. Ковальчук Л.В., Долгина Е.Н., Ганковская Л.В. Анализ цитокинов в биологических жидкостях организма. // Аллергология и иммунология, 2006.

25. Ковальчук Л.В., Хорева М.В, Варивода А.С. Врождённые компоненты иммунитета: То11-подобные рецепторы в норме и при патологии. ЖМЭИ 2005; 4: 96-104.

26. Козлова В.И., Пухнер А.Ф. Вирусные, хламидийные и микоплазменные заболевания гениталий: Руководство для врачей. Изд.б-е, обновл. и доп. М., Триада-Х, 2003: 440

27. Кокряков В.Н., Биология антибиотиков животного происхождения// Монография, Наука, С-П, 1999, с. 29-32

28. Кокряков В.Н. Очерки о врождённом иммунитете. СПб., «Наука», 2006: 261.

29. Кулаков В.И., Гуртовой Б.Л., Анкирская А.С., Антонов А.Г. Актуальные31. проблемы антимикробной терапии и профилактики инфекций в акушерстве, гинекологии и неонатологии. Акушерство и гинекология, 2004; 1:3-6

30. Макаров О.В., Ганковская Л.В., Бахарева И.В., Кузнецов П.А., Карташов Д.Д. Современные методы лечения при преждевременных родах//Российский вестник акушера-гинеколога №2, 2009

31. Макаров О.В., Бахарева И.В., Ганковская Л.В. Современные представления34. о диагностике ВУИ. Российский вестник акушера — гинеколога. 2006; 6:11—15

32. Макаров О.В., Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Бахарева И.В., Ганковская О.А., Невынашивание беременности, инфекция, врожденный иммунитет//М., изд. «ГЭОТАР-Медиа», 2007

33. Макаров О.В., Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В и др. Изменения цитокинов в периферической крови и слизи цервикального канала у женщин с невынашиваением беременности инфекционного генеза//Материалы VI российского форума «Мать и дитя». 2004.— с. 123

34. Маниатис Т. и др., Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование.// М., «Мир», 1984

35. Пинегин Б.В., Феденко Е.С., Цывкина Е.А. Антимикробные пептиды факторы противомикробной защиты при атопическом дерматите и пиодермии //Российский аллергологический журнал, 2010, №3

36. Симбирцев А.С. Цитокины — новая система регуляции защитных реакций организма. Цитокины и воспаление, 2002; 1(1): 9—16.

37. Симбирцев А.С. Громова А.Ю. Цитокины и воспаление, 2005, т. 4, № 1.2, с. 3-10

38. Сумеди Т.Н. Содержание цитокинов в периферической крови и слизи цервикального канала у женщин с невынашиванием беременности инфекционного генеза. Дис. канд.мед.наук, М., 2005

39. Сухих Г.Т., Ванько JLB., Кулаков В.И., Иммунитет и генитальный герпес//Н.Новгород-Москва, 1997

40. Сухих Г.Т., Ванько JI.B. Иммунология беременности, М., 2003, 40с.

41. Тетруашвили Н.К. Цитокины в диагностике ВУИ// Материалы II всероссийского форума «Мать и дитя», М., 2000: с. 18—22

42. Тетруашвили Н.К., Сухих Г.Т. Роль цитокинов в невынашивании беременности. Материалы V всероссийского форума «Мать и дитя», М., 2003: с. 231—232

43. Урогенитальные инфекции у женщин: Клиника, диагностика, лечение / под ред. В.И.Кисиной, К.И.Забирова М: ООО «Медицинское информационное агентство», 2005 - 280 с.

44. Федоров Н.А., Суханов Ю.С., Асади Мобахан А.Х. и др., Полимеразная цепная реакция (ПЦР) // Москва, 1996

45. Фрейдлин И.С., Цитокины и межклеточные контакты в противоинфекционной защите организма// Соросовский образовательный журнал, 1996, №7, 19-25

46. Фризе К., Кахель В. Инфекционные заболевания беременных и новорожденных//пер. с нем. -М.:Медицина, 2003, 424 с.

47. Хаитов P.M. Физиология иммунной системы//М., 2001, 188 с.

48. Хаитов P.M., Пинегин Б.В. Оценка иммунного статуса человека в норме и при патологии. Иммунология, 2001; 4: 4—6

49. Херрингтон С., Макги Дж., Молекулярная клиническая, диагностика. Методы// М. изд. «Мир», 1999

50. Черешнев В.А., Рыбина И.В., Бейкин Я.Б., Обоскалова Т.А. Иммунологические и генетические факторы нарушения репродуктивной функции. Екатеринбург, 2005, УрО РАН, 174 с.

51. Шмагель К.В., Черешнев В.А., Иммунитет беременной женщины, М., Медкнига, Н.Новгород, Изд. НГМА, 2003, 226 с.

52. Ярилин А.А. Интерфероны. Молекулярное многообразие и биологические свойства. Иммунология 2006; 1: 2-4

53. Ярилин А.А. Основы иммунологии//М., «Медицина», 1999

54. Aarbiou J, Ertmann М, van Wetering S, van Noort P, Rook D, Rabe KF, Litvinov SV, van Krieken JH, de Boer WI, Hiemstra PS. Human neutrophil defensins induce lung epithelial cell proliferation in vitro. J Leukoc Biol. 2002 Jul;72(l): 167-74.

55. Abrahams V.M., Мог G. Toll-like Receptors and their Role in the Trophoblast, Placenta 2005; 26: 540-547

56. Akira S., Takeda K. Toll-like receptor signalling. Nat.Rev.Immunol. 2004; 4:

57. Alvarez-de-la-Rosa M., Rebollo F J., Codoceo R., Gonzalez A. Maternal serum interleukin 1, 2, 6, 8 and interleukin-2 receptor levels in preterm labor and delivery//Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2000 Jan;88(l)::57-60

58. Becker MN, Diamond G, Verghese MW, Randell SH. CD14-dependent lipopolysaccharide-induced beta-defensin-2 expression in human tracheobronchial epithelium. J Biol Chem. 2000 Sep 22;275(38):29731-6.

59. BeigiRH, Yudin MH, Cosentino L, Meyn LA, Hillier SL. Cytokines, pregnancy, and bacterial vaginosis: comparison of levels of cervical cytokines in pregnant and nonpregnant women with bacterial vaginosis J Infect Dis. 2007 Nov 1; 196(9): 1355-60

60. Bensch KW, Raida M, Magert HJ, Schulz-Knappe P, Forssmann WG. hBD-1: a novel beta-defensin from human plasma. FEBS Lett. 1995 Jul 17;368(2):331-5.

61. Bhat S, Milner S. Antimicrobial peptides in burns and wounds. // Curr Protein Pept Sci. 2007 0ct;8(5):506-20.

62. Boman H.G. Antibacterial peptides: basic facts and emerging concepts. Journal of Internal Medicine 2003; 254: 197-215

63. Breukink E, de Kruijff B. The lantibiotic nisin, a special case or not? Biochim Biophys Acta. 1999 Dec 15;1462(l-2):223-34

64. Brown NL, Alvi SA, Elder MG, Bennett PR, Sullivan MH The regulation of prostaglandin output from term intact fetal membranes by anti-inflammatory cytokines. Immunology 2000, 99:124-133

65. Buhimschi CS, Dulay AT, Abdel-Razeq S, Zhao G, Lee S, Hodgson EJ, Bhandari V, Buhimschi IA. Fetal inflammatory response in women with proteomic biomarkers characteristic of intra-amniotic inflammation and preterm birth. // В JOG. 2009 Jan;116(2):257-67

66. Buhimschi IA, Zambrano E, Pettker CM, Bahtiyar MO, Paidas M, Rosenberg VA, Thung S, Salafia CM, Buhimschi CS. Using proteomic analysis of the human amniotic fluid to identify histologic chorioamnionitis.// Obstet Gynecol. 2008 Feb;l 11(2 Pt 1):403-12.

67. Byrne В., Morrison JJ. Preterm birth Clin Evid. 2003 Dec;(10):1700-15

68. Casey LC. Immunologic response to infection and its role in septic shock. // Crit Care Clin. 2000 Apr; 16(2): 193-213.

69. Challis J.R., Smith S.K. Fetal endocrine signals and preterm labor Biol Neonate. 2001;79(3-4): 163-7

70. Chrousos G.P. Organization and Integration of the Endocrine System SleepMed Clin. 2007 Jun;2(2): 125-145

71. Com E, Bourgeon F, Evrard B, Ganz T, Colleu D, J6gou B, Pineau C. Expression of antimicrobial defensins in the male reproductive tract of rats, mice, and humans. // Biol Reprod. 2003 Jan;68(l):95-104.

72. Darville T. O'Neill JM, Andrews CW Jr, Nagarajan UM, Stahl L, Ojcius DM. Toll-like receptor-2, but not Toll-like receptor-4 is essential for development of oviduct pathology in chlamydial genital tract infection. J. Immunol. 2003; 171:6187-6197

73. Dijkstra K., Kuszynski E., Lockwood C.J., Visser G.H.A. Matrix metalloproteinase-1 and -9 in cervicovaginal fluid from women during pregnancy and in labor//Prenat Neonat Med 2001; 6: 12228.

74. Ding L., Yang L., Weiss T.M. Interaction of antimicrobial peptides with lipopolysaccharides. Biochemistry, 2003; Oct 28, 42(42): 12251-9

75. Duerst R. Innate Immunity to Herpes Simplex Virus Type 2. Viral immunology, 2003; 16(4): 475-490

76. Dyson D.C, Danbe K.H., Bamber J.A., Crites Y.M., Field D.R., Maier J.A., Newman L.A., Ray D.A., Walton D.L., Armstrong M.A. Monitoring women at risk for preterm labor. N Engl J Med. 1998 Jan 1;338(1): 15-9.

77. Edwards Kirstin, Logan Julie, Saunders Nick, Real-Time PCR. An essential guide//horizon bioscience, 2004

78. Entrican G, Wheelhouse NM. Immunity in the female sheep reproductive tract. // Vet Res. 2006 May-Jun;37(3):295-309.

79. Fang ХМ, Shu Q, Chen QX, Book M, Sahl HG, Hoeft A, Stuber F. Differential expression of alpha- and beta-defensins in human peripheral blood. Eur J Clin Invest. 2003 Jan;33(l):82-7

80. Fazelil A., Bruce C, Anumba D.O. Characterization of Toll-like receptors ir the female reproductive tract in humans. Human Reprod. 2005; 20 (5): 1372-1378

81. Feng Y., Pan X., Huang N. et al. The human beta-defensins expression in female genital tract and pregnancy-related tissues. Sichuan Da Xue Bao Yi Xue Ban 2003; 34(2): 217-219

82. Froy, О. Седдгдфк Microbiology (2005) 7(10), 1387-1397

83. Giuliani A, Pirri G, Rinaldi AG. Antimicrobial peptides: the LPS connection.//Methods Mol Biol. 2010;618:137-54.

84. Goepfert A.R., Schwebke J., Andrews W. et al. Perinatal emphasis research center (PERC): Vaginal markers of preterm birth. Am.J.Obstet.Gynecol. 2002; 187: SI26

85. Goldenberg R.L. Andrews W.W., Mercer B.M., Moawad A.H., Meis

86. Goldenberg R.L., lams J.D., Mercer B.M., Meis P., Moawad A., Das A., Copper R., Johnson F. What we have learned about the predictors of preterm birth//Semin Perinatol. 2003 Jun;27(3): 185-93.

87. Goldenberg R.L., Thompson C. The infectious origins of stillbirth. Am.J.Obstet.Gynecol. 2003; 189: 861

88. Goncalves L.F., Chaiworapongsa Т., Romero R. Intrauterine infection and prematurity. Ment.Retard.Dev.Disabil.Res.Rev. 2002; 8: 3-13

89. Gustafsson A, Olin AI, Ljunggren L. LPS interactions with immobilized and soluble antimicrobial peptides. Scand J Clin Lab Invest. 2010 Apr 19;70(3):194-200.

90. Harder J, Bartels J, Christophers E, Schroder JM. A peptide antibiotic from human skin. Nature. 1997 Jun 26;387(6636):861

91. Harder J, Meyer-Hoffert U, Teran LM, Schwichtenberg L, Bartels J, Maune S, Schroder JM. Mucoid Pseudomonas aeruginosa, TNF-alpha, and IL-lbeta, but not IL-6, induce human beta-defensin-2 in respiratory epithelia.

92. Herbst-Kralovetzl M.M., Pyles R.B., Toll-like Receptors, Innate Immunity and HSV Pathogenesis 2006, HERPES, 13:2, 37-41

93. Herr C, Shaykhiev R, Bals R. The role of cathelicidin and defensins in pulmonary inflammatory diseases. // Expert Opin Biol Ther. 2007 Sep;7(9): 1449-61.

94. Home AW, Stock SJ, King AE. Innate immunity and disorders of the female reproductive tract. // Reproduction. 2008 Jun; 135(6):739-49.

95. Hultmark D. Drosophila immunity: paths and patterns. Curr Opin Immunol. 2003 Feb;15(l):12-9

96. Ivanov IB In vitro resistance to human platelet microbicidal protein among urethral staphylococcal and enterococcal isolates with its correlation with prostatitis // Indian J Med Microbiol. 2005 Oct;23(4):253-5.

97. Ivanov IB, Gritsenko VA, Kuzmin MD. Staphylococcal secretory inhibitor of platelet microbicidal protein is associated with prostatitis source// J Med Microbiol. 2006 Dec;55(Pt 12):1645-8.

98. Ivanov IB, Gritsenko VA, Kuzmin MD. Distribution of secretoryinhibitor of platelet microbicidal protein among urethral isolates with its correlation with prostatitis I I Asian J Androl. 2008 Mar; 10(2): 189-92.

99. Ivanov IB, Gritsenko VA. Distribution of secretory inhibitor of platelet microbicidal protein among anaerobic bacteria isolated from stool of children with diarrhea. World J Gastroenterol 2008; 14(35): 5428-5431

100. Ivanov IB, Kuzmin MD, Gritsenko VA. Microflora of the seminal fluid of healthy men and men suffering from chronic prostatitis syndrome // Int J Androl. 2009 Oct;32(5):462-7.

101. Janeway Jr C.A., Medzhitov R. Innate immune recognition. Annu Rev. Immunol. 2002; 20: 197-216.

102. Jeng L, Yamshchikov AV, Judd SE, Blumberg HM, Martin GS, Ziegler TR, Tangpricha V. Alterations in vitamin D status and anti-microbial peptide levels in patients in the intensive care unit with sepsis. // J Transl Med. 2009 Apr 23;7:28.

103. K.V.R. Reddy, R.D.Yedery, C. Aranha. Antimicrobial peptides: premisses and promisses

104. Kao, C.y., Chen, Y., Thay,P. et al., 2003, ORFeome-based search of airway epithelial cell-specific novel human beta-defensin genes. Am О Respir Cell Mol Biol 29л 71-80

105. Kawauchi K, Yagihashi A, Tsuji N, Uehara N, Furuya D, Kobayashi D, Watanabe N. Human beta-defensin-3 induction in H. pylori-infected gastric mucosal tissues.World J Gastroenterol. 2006 Sep 28;12(36):5793-7.

106. Kim HJ, Jung JR, Kim HJ, Lee SY, Chang IH, Lee TJ, Kim W, Myung SC. Expression of human beta-defensin-2 in the prostate. // BJU Int. 2010 Jun 23

107. King AE, Critchley HO, Kelly RW. Innate immune defences in the human endometrium. Reprod Biol Endocrinol. 2003 Nov 28;1:116

108. King AE, Fleming DC, Critchley HO, Kelly RW. Differential expression of the natural antimicrobials, beta-defensins 3 and 4, in human endometrium. J Reprod Immunol. 2003 Jun;59(l):l-16.о

109. King AE, Kelly RW, Sallenave JM, Bocking AD, Challis JR. Innate immune defences in the human uterus during pregnancy // Placenta. 2007 Nov-Dec;28(l 1-12): 1099-106.

110. KLUT M. E., WHALEN B. A., AND. HOGG J. С Dynamic Changes in Neutrophil Defensins during Endotoxemia, INFECTION AND IMMUNITY, 2001, Vol. 69, No. 12, p. 7793-7799

111. Lehrer RI, Barton A, Daher KA, Harwig SS, Ganz T, Selsted ME. Interaction of human defensins with Escherichia coli. Mechanism of bactericidal activity. J Clin Invest. 1989 Aug;84(2):553-61

112. Luders T, Birkemo GA, Fimland G, Nissen-Meyer J, Nes IF. Strong synergy between a eukaryotic antimicrobial peptide and bacteriocins from lactic acid bacteria. Appl Environ Microbiol. 2003 Mar;69(3): 1797-9

113. Michael F., Tosi M.D. Innate immune responses to infection. Current reviewsif allergy and clinical immunology, 2005; 9: 241-248

114. Milner SM, Bhat S, Buja M, Gulati S, Poindexter В J, Bick RJ. Expression of human beta defensin 2 in thermal injury. // Burns. 2004 Nov;30(7):649-54.

115. Moffett A., Loke Y.W. The immunological paradox of pregnancy: a reappraisal. Placenta, 2004; 25: 1-8

116. Munk C. et al., The q-defensin, Retrocyclin, inhibits HIV-1 entry, AIDS Res. Hum. Retroviruses, 2003, 19, 875-881

117. Oppenheim J.J., Biragyn A., Kwak L.W., Yang D. Roles of antimicrobial peptides such as defensins in innate and adaptive immunity. Ann. Rheum. Dis. 2003; 62: 17-21.

118. Peng, ОюРюб Schutte, B.C., Schudy, A, et al., 2001 Discovery of new beta-defensins using a genomic-based approach. Gene 263,211-218

119. Platz J, Beisswenger C, Dalpke A, Koczulla R, Pinkenburg O, Vogelmeier C, Bals R. Microbial DNA induces a host defense reaction of human respiratory epithelial cells. J Immunol. 2004 Jul 15;173(2):1219-23

120. Quinn K, Henriques M, Parker T, Slutsky AS, Zhang H. Human neutrophil peptides: a novel potential mediator of inflammatory cardiovascular diseases. // Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2008 Nov;295(5):H1817-24. Epub 2008 Sep 19.

121. Raj PA, Dentino AR. Current status of defensins and their role in innate and adaptive immunity. FEMS Microbiol Lett. 2002 Jan 2;206(1):9-18

122. Rocco H. van den Berg, Maria C. Faber-Krol, Sandra vanWetering, Pieter S. Hiemstra, and Mohamed R. Daha Inhibition of Activation of the Classical Pathway of Complement by Human Neutrophil Defensins // Blood, 2010, Vol 92„pp 3898-3903

123. Romero R., Espinoza J., Goncalves L.F., Kusanovic J.P., Friel L., Hassan S. The Role of Inflammation and Infection in Preterm Birth W Semin Reprod Med. 2007;25(l):21-39

124. Romero R, Erez O, Espinoza J Intrauterine Infection, Preterm Labor, and CytokinesWJ Soc Gynecol Investig. 2005 Oct;12(7):463-465

125. Sawada M, Otsuki K, Mitsukawa K, Yakuwa K, Nagatsuka M, Okai T. Cervical inflammatory cytokines and other markers in the cervical mucus of pregnant women with lower genital tract infection. // Int J Gynaecol Obstet. 2006 Feb;92(2):l 17-21.

126. Schaefer T.M., Desouza K., Fahey J.V. et al. Toll-like receptor (TLR) expression and TLR-mediated cytokine/chemokine production by human uterine epithelial cells. Immunology, 2004; 112: 428-436

127. Shai Y, Oren Z. From "carpet" mechanism to de-novo designed diastereomeric cell-selective antimicrobial peptides. Peptides. 2001 0ct;22(10): 1629-41

128. Shim SS, Romero R, Hong JS, Park CW, Jun JK, Kim BI, Yoon ВН. Clinical significance of intra-amniotic inflammation in patients with pretermpremature rupture of membranes. Am J Obstet Gynecol. 2004 Oct; 191(4): 1339-1145

129. Singh PK, Jia HP, Wiles K, Hesselberth J, Liu L, Conway В A, Greenberg EP, Valore EV, Welsh MJ, Ganz T, Tack BF, McCray PB. Production of beta-defensins by human airway epithelia. Proc Natl Acad Sci USA. 1998 Dec 8;95(25):14961-6

130. Stephen A. Bustin et all, A-Z of quantitative PCR//International university line, 2004

131. Stolzenberg ED, Anderson GM, Ackermann MR, Whitlock RH, Zasloff M. Epithelial antibiotic induced in states of disease. Proc Natl Acad Sci USA. 1997 Aug 5;94(16):8686-90.

132. Stiiber F. Effects of genomic polymorphisms on the course of sepsis: is there a concept for gene therapy? // J Am Soc Nephrol. 2001 Feb;12 Suppl 17:S60-4.

133. Szukiewicz D, Szewczyk G, Pyzlak M, Klimkiewicz J, Maslinska D. Increased production of beta-defensin 3 (hBD-3) by human amniotic epithelial cells (HAEC) after activation of toll-like receptor 4 in chorioamnionitis. Inflamm Res. 2008;57 Suppl l:S67-8.

134. Taylor D., Kenyon S., Tarnow-Mordi W. Infection and preterm birth //Br. J. Obstet. Gynecol. — Vol. 104. —P. 1338-1340

135. Tjabringa GS, Vos JB, Olthuis D, Ninaber DK, Rabe KF, Schalkwijk J, Hiemstra PS, Zeeuwen PL. Host defense effector molecules in mucosal secretions.//FEMS Immunol Med Microbiol. 2005 Aug l;45(2):151-8.

136. Thomas NJ, Carcillo JA, Doughty LA, Sasser H, Heine RP. Plasma concentrations of defensins and lactoferrin in children with severe sepsis // Pediatr Infect Dis J. 2002 Jan;21(l):34-8.

137. Torossian A, Gurschi E, Bals R, Vassiliou T, Wulf HF, Bauhofer A. Effects of the antimicrobial peptide LL-37 and hyperthermic preconditioning in septic rats. //Anesthesiology. 2007 Sep;107(3):437-41.

138. Tsutsumi-Ishii Y, Nagaoka I. NF-kappa B-mediated transcriptional regulation of human beta-defensin-2 gene following lipopolysaccharide stimulation. J Leukoc Biol. 2002 Jan;71(l):154-62.

139. Valore EV, Park CH, Quayle AJ, Wiles KR, McCray PB Jr, Ganz T. Human beta-defensin-1: an antimicrobial peptide of urogenital tissues. J Clin Invest. 1998 Apr 15;101(8):1633-42.

140. Vora P, Youdim A, Thomas LS, Fukata M, Tesfay SY, Lukasek K, Michelsen KS, Wada A, Hirayama T, Arditi M, Abreu MT. Beta-defensin-2 expression is regulated by TLR signaling in intestinal epithelial cells. J Immunol. 2004 Nov l;173(9):5398-405

141. Wuthrich K, editor. NMR of proteins and nucleic acids. New York: Wiley; 1986

142. XuJ, Holzman CB, Arvidson GG, Chung H, Goepfert AR. Midpregnancy vaginal fluid defensins, bacterial vaginosis, and risk of preterm delivery.// Obstet Gynecol. 2008 Sep;l 12(3):524-31.

143. Yang, L., Harroun ТА, Weiss TMi 2001 Barrel-stave model or toroidal model? A case study on melittin pores. Biophys О 81: 1475-1485

144. Yeaman MR, Yount NY. Mechanisms of antimicrobial peptide action and resistance. Pharmacol Rev. 2003 Mar;55(l):27-55

145. Zanetti, M. Cathelicidins, multifunctional peptides of the innate immunity. J. Leukoc. Biol.2004; 75 39-48175) Zasloff M. Antimicrobial peptides of multicellular organisms. Nature. 20021. Jan 24;415(6870):389-95

146. Zhao C, Wang I, Lehrer RI. Widespread expression of beta-defensin hBD-1 in human secretory glands and epithelial cells // FEBS Lett. 1996 Nov 4;396(2-3):319-22.

147. Deckers D, Masschalck B, Aertsen A, Callewaert L, Van Tiggelen CG, Atanassova M, Michiels CW. Periplasmic lysozyme inhibitor contributes to lysozyme resistance in Escherichia coli . // Cell Mol Life Sci. 2004 May;61 (10): 1229-37.