Автореферат и диссертация по медицине (14.00.21) на тему:Клинико-рентгенологическая и биохимическая характеристика результатов аутотрансплантации костного мозга в сочетании с препаратами гидроксиапатита для замещения дефектов и костных полостей челюстных ко

ДИССЕРТАЦИЯ
Клинико-рентгенологическая и биохимическая характеристика результатов аутотрансплантации костного мозга в сочетании с препаратами гидроксиапатита для замещения дефектов и костных полостей челюстных ко - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Клинико-рентгенологическая и биохимическая характеристика результатов аутотрансплантации костного мозга в сочетании с препаратами гидроксиапатита для замещения дефектов и костных полостей челюстных ко - тема автореферата по медицине
Бахтинов, Алексей Анатольевич Москва 2004 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.21
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Клинико-рентгенологическая и биохимическая характеристика результатов аутотрансплантации костного мозга в сочетании с препаратами гидроксиапатита для замещения дефектов и костных полостей челюстных ко

На правах рукописи

БАХТИНОВ АЛЕКСЕИ АНАТОЛЬЕВИЧ

КЛИНИКО-РЕНТГЕНОЛОГИЧЕСКАЯ И БИОХИМИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РЕЗУЛЬТАТОВ АУТОТРАНСПЛАНТАЦИИ КОСТНОГО МОЗГА В СОЧЕТАНИИ С ПРЕПАРАТАМИ ГИДРОКСИАПАТИТА ДЛЯ ЗАМЕЩЕНИЯ ДЕФЕКТОВ И КОСТНЫХ ПОЛОСТЕЙ ЧЕЛЮСТНЫХ

КОСТЕЙ

(Экспериментально - клиническое исследование)

1400.21 - Стоматология

Автореферат диссертации на соискание учёной степени кандидата медицинских наук

Москва-2004

Работа выполнена в Центральном научно -исследовательском институте стоматологии МЗ РФ.

Научные руководители:

доктор медицинских наук

Шамсудинов Александр Геннадиевич,

Заслуженный деятель науки РФ, доктор медицинских наук, профессор

Петрович

Юрий Александрович.

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор Рогинский

Виталий Владиславович,

Заслуженный деятель науки РФ,

доктор биологических наук, профессор Карелин

Артур Ананьевич.

Ведущая организация:

Институт повышения квалификации Федерального управления медико-биологических и экстремальных проблем при МЗ РФ.

Защита состоится «19» мая 2004 г. в 10 часов на заседании Диссертационного совета (Д. 208.111.01) в Центральном научно-исследовательском институте стоматологии МЗ РФ по адресу: 119992, Москва, ГСП - 2, ул. Тимура Фрунзе, д. 16 (конференц-зал).

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Центрального научно-исследовательского института стоматологии МЗ РФ (ул. Тимура Фрунзе, д. 16).

Автореферат разослан «19» апреля 2004 г.

Учёный секретарь Диссертационного совета

кандидат медицинских наук

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность исследования. Природные катаклизмы, технизация жизни и военные конфликты неуклонно повышают травматизм челюстно-лицевой области, нередко ведущий к утрате костных тканей. Высока частота заболеваний, приводящих к необходимости оперативного лечения (опухоли, кисты, воспалительные поражения), после которых остаются дефекты костей лицевого скелета. В среднем они составляют около 58 % от всех поражений костей лицевого скелета (Ю. И. Вернадский, 1999; М.Б. Швырков, 2001; В.М. Безруков, В.П. Ипполитов, Г.Л. Могильницкий, 2003).

При заполнении костной полости кровью с последующей фибринизацией сгустка и образованием костеподобной, а затем и костной ткани на его основе, процесс восстановления кости длится от 1,5-2 лет (А. В. Ярошкевич, 1996) до 5 лет (Г. П. Вернадская, 1995).

Накоплен большой опыт костнопластических операций, разработаны десятки путей и способов подготовки и консервации костного материала. Для замещения костных дефектов в последние десятилетия предложены различные небиологические материалы (металлы, керамика, полимеры).

Однако, в ряде случаев использования имплантатов структура восстанавливаемого органа резко отличается от нормальной. После пересадки имплантаты остаются чужеродными элементами и, в лучшем случае, не участвуют в метаболизме организма. Часто имплантаты не могут нести полноценную функциональную нагрузку. Нередко они не создают физиологические условия в функционирующем органе, так как биомеханически несовместимы с тканями реципиента. Из-за этого рано или поздно происходит их отторжение (В. В. Паникаровский, 1963).

При всех успехах трансплантации кости нельзя не указать, что далеко не всегда оперативное вмешательство, необходимое для взятия аутотрансплантата, бывает оправдано, так как при этом вызывается дополнительная травма донорского участка организма, а основным недостатком аллотрансплантации, до настоящего времени считавшейся более перспективной, является проблема иммунной совместимости материала донора и реципиента.

Существуют четыре различных механизма, которые позволяют осуществить восстановление костной ткани: остеокондукция (или "ползущая" замена), остсоиндукция, дистракционный остеогенез по Г. А. Илизарову и остеогенез путем трансплантации витальных костеобразующих клеток.

з

РОС НАЦИОНАЛЬНАЯ БИБЛИОТЕКА С.Пет»р«стг ОЭ

Костная ткань, как и все мезенхимальные ткани, имеет единую клетку-предшественника. В экспериментах с трансплантацией костного мозга обнаружена его остеогенная активность. При культивировании костного мозга была выделена чистая культура фибробластоподобных клеток, развившихся из клеток-предшественников, которые составляют около 4 % от костномозговых клеток (АЛ. Фриденштейн, К.С. Лалыкина, 1973; А.Я. Фриденштейн, Е.Х. Лурия, 1980; Н.В. Лациник, СЮ. Сидорович, и др., 1980). Существует два пула клеток-предшественников: детерминированный - находящийся в костном мозге и индуцибельный. Последний циркулирует в периферической крови и разносится в различные органы и ткани. Благодаря этому пулу, под действием определенных стимулирующих факторов возникает эктопический остеогенез.

Использование культуры стромальных клеток было бы идеальным вариантом при восстановлении утраченных костных структур. Однако, цена оборудования и расходных материалов при культивировании этих клеток пока настолько велика, что делает широкое клиническое применение данной технологии затруднительной.

Поэтому в клинической практике дефекты костной ткани замещают с помощью аутотрансплантации костного мозга (КМ) (О.М. Сирый, 1987 О.Т. Милиянчук, 1989; W. Besly, 1999).

В последние годы, для замещения дефектов костной ткани используют клетки КМ в сочетании с различными носителями и наполнителями (В. П. Пюрик, 1987; И et я1., 1996; Kinoshita et я1., 1997). Показаны преимущества, изучены морфологические особенности костных регенератов на разных сроках исследования. Известно, что изменения химического состава (минеральной и органической фаз регенерата) могут серьёзно влиять на характер формирующейся костной субстанции. Введение в состав аутотрансплантата КМ препаратов, содержащих различное количество Са, Р, микроэлементов, обработанные разным способом виды костного матрикса могут значительно изменять свойства заместительного материала и сроки замещения. В доступной литературе мы не обнаружили работ, посвященных биохимическим аспектам регенерации костной ткани при аутотрансплантации КМ в сочетании с различными видами и формами гидроксиапатита (ГА).

Цель исследования: Разработать и внедрить методику замещения дефектов и костных полостей челюстных костей аутотрансплантатами костного мозга в сочетании с препаратами резорбирующегося гидрокспапатита.

Задачи:

1. Изучить эффективность сочетанного применения аутокостного мозга с препаратами резорбирующегося ГА в эксперименте на животных.

2. Провести сравнительный биохимический и морфологический анализ костных регенератов, полученных в эксперименте в разные сроки после трансплантации КМ с ГА.

3. Установить биохимические и морфологические особенности регенерациии костной ткани при использовании ГА и его комбинации с КМ.

4. Провести сравнительный анаша использования КМ в комбинации с ГА с контрольной группой (без применения заместительных материалов).

5. Определить клинико-рентгенологичекие и биохимико-морфологические сроки созревания костных регенератов при трансплантации ГА и сочетания КМ с ГА.

Научная новизна:

1. Впервые проведено экспериментальное исследование возможности использования трансплантатов аутокостного мозга с препаратами ГА и изучены особенности репаративной регенерации после трансплантации КМ в сочетании с препаратами ГА. Установлено, что резорбируемыи ГА оптимально подходит в качестве носителя костномозговых клеток.

2. Впервые проведен анаше биохимического состава аутотрансплантатов КМ в сочетании с препаратами ГА и костных регенератов, полученных на их основе. Отмечено ускорение накопления органической и минеральной фаз костной ткани и более ранняя минерализация по сравнению с регенератами после трансплантации ГА без КМ.

3. Впервые проведен сравнительный анализ клинических, рентгенологических, биохимических и морфологических данных после аутотрансплантации КМ с препаратами ГА.

Практическая значимость.

Разработан новый трансплантат для замещения костных полостей в виде комбинации аутологичного КМ с резорбнруемым ГА. Показана эффективность клинического применения предложенной комбинации при замещении полостпых дефектов челюсти по сравнению с заполнением полости кровяным сгустком или ГА без КМ.

Показана целесообразность использования высокочувствительных методик капиллярного электрофореза и установки «Нанофор» для определения количественного состава минеральной фазы образцов костпых регеператов малых размеров.

Использование КМ в сочетании с препаратами ГА приводит к сокращению сроков реабилитации и формированию полноценного регенерата на месте дефекта.-

Апробация работы: Основные материалы диссертации доложены на общеинститутской конференции ЦНИИС, симпозиуме «Полимерные и аллогенные материалы в реконструктивной хиургии челюстно-лицевой области» в рамках VII съезда СтАР, 2002, Российско - Южно - Корейском семинаре-презентации инновационных научно-технических проектов в области биологии (Пущино, 2002).

Диссертация апробирована в ЦНИИС на совместном заседании сотрудников отделений реконструктивной и пластической хирургии с группой имплантологии и эктопротезирования, восстановительной хирургии и микрохирургии лица и шеи, реабилитационно-диспансерного отделения, отделения пародонтологии, клинико-биохимической лаборатории 27 февраля 2004 года.

Научные положения, выносимые на защиту:

1. Комбинация аутологичного костного мозга с ГА эффективнее, чем чистый ГА влияет на темпы образования костного регенерата. Заполнение костного дефекта препаратом ГА улучшает регенерацию костной ткани, однако, зависит от вида материала и размеров полости. Применение аутологичного КМ в комбинации с ГА влияет на образование костной ткани по всему объёму замещаемого дефекта за счёт присутствующих в КМ клеток-предшекственников.

2. Биохимические параметры после трансплантации КМ и ГА свидетельствуют о ещё не окончательно завершённом формировании костного регенерата, когда клинически и рентгенологически он представляется полноценным. Наиболее показательными биохимическими критериями после аутотрансплантации КМ с ГА могут служить определение Са/Р молярного коэффициента и содержание сульфата в костном регенерате.

Внедрение результатов исследования.

Результаты работы используются в практической деятельности отделения восстановительной и пластической хирургии ЦНИИС.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 6 научных работ.

Структура и объем диссертации.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, главы «Материалы и методы исследования», глав «Результаты собственных исследований», «Обсуждение полученных результатов», содержащих результаты собственных исследований, заключения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы. Диссертация изложена на 121 странице машинописного текста, содержит И таблиц, 34 рисунка. Указатель литературы включает 207 источников, из них отечественных — 97, зарубежных — 110.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материал и методы исследования

Экспериментальная часть Экспериментальное исследование выполнено на 100 белых лабораторных крысах линии Вистар-Киота. Проведено сравнительное изучение методов замещения дефектов нижней челюсти. При помощи биохимических и морфологических методов исследована способность КМ в сочетании с ГА к остеогенезу. Трансплантат представлял собой блок пористого ГА, насыщенного взвесью аутогенных костномозговых клеток. Блоки ГА получали путем обжига бычьей кости в муфельной печи при температуре 1100° С КМ забирали из бедренной кости крысы. Количество костномозговых клеток составляло 2,5х107 в трансплантате. В связи с необходимостью проведения биохимического и морфологического шучения костной ткани в динамике, что невозможно в клинике, был проведён эксперимент Экспериментальная часть работы имела целью сравнить особенности и сроки репаративной регенерации при замещении костного дефекта резорбируемым ГА и его комбинацией с аутологичным костным мозгом. Экспериментальная модель представляла собой создание фиссурным бором стандартных дефектов в области угла нижней челюсти у лабораторных крыс. Животные были разделены на 4 группы. В первой дефект замещали комбинацией пористого ГА с костномозговой взвесью.

Во второй группе указанную комбинацию трансплантировали в мышечный карман на задней поверхности бедра животного. В третьей группе челюстной дефект замещали чистым ГА и в четвёртой ГА подсаживали в мышечный карман. Забой дскапитацией проводили через 1, 3, 6, 9 месяцев от начала эксперимента. Скелетировали нижнюю челюсть и по данным аутопсии исключали из дальнейших исследований всех животных, у которых заживление проходило с осложнениями. У остальных

животных ткань регенерата подвергали биохимическим и морфологическим исследованиям.

Морфологические методы исследования

Для проведения микроскопического исследования после забоя животных вычленяли нижнюю челюсть с окружающими мягкими тканями, фиксировали её в 10% растворе нейтрального формалина, декалыщнировали в 10% растворе трихлоруксусной кислоты н проводили через спирты. Срезы толщиной 10-12 мкм окрашивали гематоксилин-эозином и исследовали с помощью светового микроскопа МРБ-1.

Биохимические методы исследования

Минеральный состав

Регенераты тщательно очищали от мягких тканей, образцы высушивали до постоянного веса, деминерализовали в 1н НС1 из расчета 250мкл 1н НС1 на 1 мг вещества в течение 24 часов при температуре 20 С. Минерализат разводили дистилированной водой в 150 раз (50мкл исходного раствора + 450мкл Н2О - десятикратное разведение - 1-й раствор; 50мкл 1-го раствора + 700мкл Н2О - пятнадцатикратное разбавление, в общей сложности - 150-кратное) и проводили анализ катионного и анионного состава на приборе

капиллярного электрофореза "Нанофор — Г' с люминесцентным детектором. Использовался кварцевый капилляр с диаметром 50 мкм. Длина волны детектирования составляла для катионов - 254 нм, для анионов-214 нм.

Органический состав

В деминерализованном костном матриксс определяли содержание гидроксипролина по методу Stagemann (1967)Лнализ проб проводился на спектрофотометре Shimadzu — 600.

Клиническая часть

В основу работы положен анализ результатов лечения 66 больных в возрасте от 14 до 63 лет с дефектами и костными полостями нижней челюсти, находившемся в клинике челюстно-лицевой хирургии ЦНИИС в период с 1979 по 2003 гг. Мужчин было 32, женщин 34 (табл. 1). Распределение больных по происхождению дефектов представлено в таблице 2. Из них в исследуемую группу вошли 45 пациентов. 18 пациентам замещение костной полости остеопластичсским материалом не

8

проводилось. 15 пациентам костные полости заполнялись препаратами ГА и 12 пациентам в возрасте от 15 до 51 года, б мужчин и 6 женщин, проводилось замещение полостей нижней челюсти аутологичным костным мозгом в сочетании с гидроксиапатитом.

Группу контроля составили пациенты с костными полостями челюстей, диаметром более 3 см, замещение которых не проводилось. Распределение костных полостей по величине представлено в таблице 3.

Основной целью клинического исследования было изучение эффективности хирургического лечения пациентов с костными полостями челюстей после замещения их комбинацией аутотрансплантата КМ с ГА.

Таблица 1

Пол/возраст До 20 20-29 30-39 40-49 50 лети

лет старше всего

Мужчины 10 11 4 3 4 32

Женщины 8 12 5 6 3 34

Таблица 2

Распределение пациентов по происхождению дефектов

Вид образования Количество наблюдений Е возраст больных лет)

ДО 20 2029 3039 4049 50 и старше

Кератокиста нижней челюсти 14 4 1 1 б 2

Радпкулярная киста нижней челюсти 21 7 3 5 2 4

Дефект после удаления ретенировапного зуба 3 1 1 1

Зубосодержащая киста нижней челюсти 19 7 4 3 3 2

Рсзидуальная киста нижней челюсти 3 2 1

Остеокластом а 1 1

Радикулярная киста верхней челюсти 5 1 1 1 2

Таблица 3

Распределение костных полостей по величине_

Диаметр, (см) от 3 до 5 от 5 до 7 от 7 до 10 более 10

Количество наблюдений 36 14 9 7

После обследования больных, которое состояло из сбора анамнеза, оценки состояния полости рта, лабораторного обследования и отсутствия противопоказаний (как для плановых операций), планировали оперативное вмешательство.

До операции и в процессе динамического наблюдения за больными проводился анализ рентгенологических данных, основанных на изучении серии рентгенограмм (ортопантомограммы, панорамные снимки с прямым увеличением изображения).

Методика хирургического вмешательства и предоперационная подготовка

В предоперационном периоде проводили обследование общего состояния, клиническое исследование крови и мочи, биохимическое исследование крови, определяли групповую принадлежность крови и резус — фактор, выполнялось электрокардиографическое обследование, проводились пункционная биопсия и цитологическое исследование в случаях кистозных образований, проводили курс общеукрепляющей и симптоматической терапии. При отсутствии противопоказаний для планового оперативного вмешательства и после полного обследования и подготовки больного, проводили оперативное лечение.

Замещение костного дефекта комбинацией аутокостного мозга в сочетании с препаратами гидроксиапатита и забор костного мозга из крыла подвздошной кости проводили в условиях стационара под эндотрахеальным наркозом.

Забор костного мозга из крыла подвздошной кости проводился через перфорационное отверстие в объеме, необходимом для замещения полости. Полученный костный мозг в стерильном лотке смешивали с препаратом гидроксиапатита. Полученной массой заполняли костную полость нижней челюсти.

Рентгенологические методы

До операции и в процессе динамического наблюдения за больными проводился анализ рентгенологических данных, основанных на изучении

серии рентгенограмм (ортопантомограммы, панорамные снимки с прямым увеличением изображения). Ортопантомограммы снимались на ортопантомографах «ПМ 2002 СС», «Пролайн 2002», «Проксан» (фирмы «Пламенка»), «Кранекс Д2» (фирмы «Соредскс») при условиях 60 - 65 кВ, 10 mА, время вращения 8-12 секунд.

Панорамные снимки выполнялись на аппарате «Статус — ИКС» при условиях 55 кВ, 7 m^ 0,1 - 0,2 секунды.

Рентгенологическое исследование пациентов проводилось при поступлении в клинику, после операции, в динамикс через 1-3 — 6 месяцев и более, в зависимости от результатов с интервалом в I год.

Длительность наблюдений за больными составила от 3 мес. до 4 лет.

После операции и в период динамического наблюдения, с целью изучения регенерации костной ткани по скиалогической плотности области регенератов, опосредованно отражающей истинную плотность и минеральную насыщенность костной ткани. Проводили исследование при помощи компьютерной программы Trophy - 96 для радиовизиографа.

Подобное исследование проводили в группе контроля.

Исследуемые рентгенологические снимки сканировали сканером для негативов, выводили на экран компьютера и проводили измерение плотности изображения. Вычисления проводили в относительных оптических единицах. При этом сравнивали значения плотности костной ткани, окружающей дефект и плотности ткани по периферии и в центре дефекта.

Статистические методы исследования Цифровые показатели подвергали статистической обработке. Вычисляли М - среднее арифметическое и га - ошибку среднего арифметического. На основании расчета t критерия Стьюдснта для двух вариационных рядов устанавливали р - вероятность их отличия. Достоверным считали различие при р < 0,05. Также рассматривались параметры парной линейной регрессии.

Результаты собственных исследований и их обсуждение

Результаты экспериментального исследования Экспериментальная часть работы имела целью определить особенности и сроки созревания костных регенератов при замещении дефектов резорбируемым ГА и его комбинацией с аутологичным костным мозгом.

В первой дефект замещали комбинацией пористого ГА с костномозговой взвесью. Во второй группе указанную комбинацию трансплантировали в мышечный карман на задней поверхности бедра животного. В третьей группе челюстной дефект замещали чистым ГА и в четвёртой ГА подсаживали в мышечный карман.

В регенератах, полученных на сроках 1, 3, 6 и 9 месяцев от начала эксперимента, изучали биохимические показатели и морфологические изменения. Значение в нашем исследовании придавалось диффузности процесса регенерации во всем объёме дефекта.

Морфологически в первой экспериментальной группе уже на третий месяц во всей толще регенерата отмечаются крупные костные балки, соединённые друг с другом в виде монолита. Они так же соединены с костью края дефекта. Определяются призпаки костномозгового кроветворения. Костная рана выполнена полноценным регенератом, преимущественно состоящим из остеонных структур. Через 6 месяцев процессы созревания регенерата в первой экспериментальной группе близки к завершению.

Во второй экспериментальной группе наблюдалась постепенная резорбция трансплантата с замещением тканевого дефекта волокнистой соединительной тканью с костными структурами, представленными губчатой костной тканью. Между петлями губчатой кости отмечается полноценный костный мозг. Указанные структуры расположены в центральной части регенерата.

В третьей экспериментальной группе отмечено два источника регенерации: первый - периостальный (заострённые участки в виде клиновидных треугольных выростов в зоне кортикальной пластинки). Второй источник регенерации - эцдостальный. Костные трабскулы локализовались преимущественно у внутреннего края дефекта и анастомозировали с костными балками, растущими от стенки. Через шесть месяцев центр регенерата представлен остатками ГА, окружёнными соединительной тканью.

В четвёртой группе, после подсадки ГА в мышечный карман наблюдалось постепенное рассасывание ГА с замещением дефекта соединительно-тканным рубцом и жировой клетчаткой, что согласуется с данными Нури Фарзин (2003), когда пористый ксеногенный ГА подсаживался под кожу крысам. Через 6 месяцев после подсадки происходило восстановление подкожно-жировой клетчатки, но в ней содержались крупные скопления продолжающего резорбироваться ГА.

С данными литературы также согласуются и изменения со стороны края костного дефекта, где зрелая остсонная костная ткань на некоторых участках, подвергается остеокластической резорбции (Григорьян А. С, 1996; Белозёров М. Н., 2004). Описываются также и участки лишённые клеточных элементов. Не исключено, что подобные изменения могут быть связаны с ожогом кости во время создания дефекта бором.

Биохимические исследования применяли с целью изучения процесса формирования регенератов на разных сроках эксперимента.

Содержание кальция преимущественно отражает его количество в минеральной фазе кости, так как вне минеральной фазы его уровень в тысячи раз ниже.

Фосфор также преимущественно связан с минеральной фазой кости. Однако, в составе органических соединений (белков, фосфолипидов, гексозофосфатов, АТФ и других эфиров фосфорной кислоты) содержится значительно больше фосфата, чем кальция в органических соединениях. Таким образом, изменение общего фосфата, хотя преимущественно отражает динамику в минеральной фазе кости, но частично отражает й изменения его содержания в органических компонентах.

О степени зрелости минеральной фазы кости можно судить по Са/Р молярному коэффициенту. Известно, что для модельного гидроксиапатита Саю(Р04)б(ОН)2 этот коэффициент равен 1,67, для карбонатного гидроксиапатита Саю(Р04)5С0з(0Н)2 он несколько выше - 2,0, для

аморфного трикальцийфосфата Саз(РС>4)2 - 1,50. Количество атомов Са в молекулах модельного апатита может быть меньше 10, но не ниже 8. При этом кальций может замещаться стронцием, протонами, гидроксоиием, другими катионами, в результате чего может снизиться Са/Р коэффициент до 1,2 Два остатка фосфата могут замещаться двумя остатками карбоната и Са/Р коэффициент может повыситься до 2,5.

По изменению содержания сульфата можно косвенно судить о количестве сульфатированньгх гликозаминогликанов, имеющих непосредственное отношение к процессу минерализации. Повышение соотношения сульфатированных гликозаминогликанов к

несульфатированным способствует активной минерализации ткани. Наоборот, превалирование уровня нссульфатированных

гликозаминогликанов над сульфатированными указывает на завершение минерализации либо на дефект созревания минерализованной ткани. В не минерализующихся тканях преимущественно представлены несульфатированные гликозаминогликаны.

В нашем исследовании содержание кальция в регенератах, как основного показателя минеральной фазы кости, претерпевает следующие изменения: Во всех группах происходит снижение до трёхмесячного срока наблюдения. Далее, в первых трёх группах происходит его накопление, достигающее интактного уровня к девяти месяцам, более выраженное в первой группе. В четвёртой группе снижение содержания кальция продолжается, составляя к девяти месяцам треть от месячного уровня. Разница в цифрах на первый и девятый месяц обусловлена уже имевшейся в течение первого месяца резорбции гидроксиапатита (Рис. 1).

Что касается содержания фосфата, то в первых трёх группах он имеет похожую зависимость - снижение до трёх месяцев с дальнейшим накоплением, однако. Интактный уровень достигается уже к шести месяцам наблюдения. Более выраженное увеличение наблюдали в первых двух группах. До девяти месяцев содержание фосфора остаётся стабильным. Уровень фосфора в четвёртой группе имеет склонность к постепенному снижению.

На основании приведённых данных можно сделать вывод о том, что в первых трёх группах одновременно протекают два процесса: резорбция присутствующего в трансплантате гпдроксиапатита, и минерализация регенерата. Начиная с третьего месяца, минерализация преобладает над резорбцией, что выражается в резком накоплении регенератами кальция и фосфора (Рис. 1, 2). Наиболее активно это происходит в первой и второй группах. Морфологически данный процесс подтверждается наличием в трехмесячных регенератах первой группы костных балок крупных размеров, во второй группе - примитивные костные балки, подвергающимися замене на остеонные структуры. На шестимесячном сроке в первой группе дефект полностью замещён костными балками. Во второй - костные балки подвергаются перестройке с заменой на более организованную пластинчатую кость. В обеих группах обнаруживаются функционирующий костный мозг. Формирование костных балок происходит во всей толще регенерата.

В регенератах третьей группы накопление кальция и фосфора происходит медленнее, чем в первой и второй, но к шести месяцам достигает нижних границ нормы. Морфологически это подтверждается наличием костных балок, больше выраженных к шести месяцам, располагающихся около краёв костного дефекта.

Зрелость регенератов первых трёх групп подтверждается Са/Р соотношением, которое, уменьшаясь до трёх месяцев, возрастает к шести месяцам до уровня, характерного для ГА (табл. 4).

Таблица 4

Молярное соотношение Са/Р в регенератах на разных сроках

наблюдения.

1 месяц 3 месяца бмесяцев 9 месяцев

КМ+ГА в дефекте нижней челюсти 1,88 1,24 1,32 2,02

КМ+ГА в мышечном кармане 1,83 1,26 1,53 2,01

ГА в дефекте нижней челюсти 2,28 0,9 1,51 1,83

ГА в мышечном кармане 2,03 1,02 0,91 0,74

К девяти месяцам в первых двух группах соотношение увеличивается на 30%, в третьей на 20%. Изменение минерального состава в трансплантате после подсадки ГА в мышечный карман говорит о процессе постепенной его резорбции. Причём, более интенсивно происходит снижение содержания кальция. Морфологически это подтверждается уменьшением размеров ячеек, возникших после деминерализации и замещением дефекта рубцовой тканью. Уровень гидроксипролина, отражающего степень накоплена регенератом коллагена в первых трёх группах повышается до трёх месяцев, достигая интактного уровня, в дальнейшем несколько увеличиваясь (рис. 5). Существенных различий в цифровом выражении содержания гидроксипролина в данных группах не выявлено и морфологически это подтверждается наличием в регенератах с третьего месяца наблюдения сформированного соединительно-тканного компонента.

Различия в содержании органических показателей в этих группах возникает при исследовании уровня сульфата. В первой и второй группах начиная с первого месяца, происходит постепенное его снижение, более

выраженное после шести месяцев, указывающее на постепенное завершение минерализации к шести месяцам. Цифровое выражение содержания сульфата в регенератах первых двух групп на один месяц изучения достаточно высоко, что, очевидно, связано с началом процесса минерализации ранее месячного срока исследования.

Уровень сульфата в третьей группе на первом месяце значительно превышает таковой в первой и второй группах. Это обстоятельство может свидетельствовать о более позднем начале процесса минерализации в третьей группе. Начиная с третьего месяца уровень сульфата снижается и идет параллельно его снижению в первых двух группах (Рис 3).

В четвёртой экспериментальной группе уровень гидроксипролина линейно возрастает, превышая на девятом месяце уровень в первых трёх группах (Рис. 5). Это может быть связано с формированием на месте резорбирующегося гидроксиапатита соединительно-тканного рубца, содержащего нетипичный для костной ткани коллаген III типа, более насыщенный гидроксипролином, чем коллаген I тапа костной ткани. Содержание сульфата в данной группе находится на низком уровне, в четыре раза меньше, чем в первых трёх (рис. 3) Это подтверждает отсутствие минерализации данных регенератов.

Содержание фторида характеризовалось наибольшими различиями в зависимости от времени наблюдения (рис. 4). Четких закономерностей не обнаружено, однако нельзя не отметить пиков увеличения показателя во второй и четвертой группах на трехмесячном сроке наблюдения. Данное накопление могло быть связано с процессом лигандного обмена в результате отщепления ионов кальция в кристаллической решётке гидроксиапатита.

Биохимические и морфологические изменения при созревании костной ткани после трансплантации КМ с пористым ГА в дефект нижнечелюстной кости регулируются большим количествам факторов роста, рядом полипептидов и ферментов. Можно предположить, что изменения в КМ происходят в определённой последовательности и взаимосвязаны.

В КМ крысы фактор некроза опухоли (TNF) - альфа через рецептор TNFR в кооперации с рецептором активатором ядерного фактора Каппа В лиганда (RANKL) исполняет ключевую роль в дифференцировке и активации остеокластов в присутствии колонийсгимулирующего фактора макрофагов (M-GSF). TNF— альфа индуцирует образование многоядерных остеокластоподобных клеток (MNC-s) го макрофагов (Quinn et al., 2000; Komineetal.,2001).

TNF - альфа человека (hTNF1- альфа) стимулирует образование одноядерных прсостеокластоподобных клеток (POCs). hTNF- альфа увеличивает число мРНК рецепторов кальцитонина (CTR) в POCs. Индуцированный hTNF- альфа формирует M-CSF. hTNF- альфа экспресенрует образование мРНК RANK. Совместное влияние клеток КМ с hTNF- альфа и с растворимой sRANKL увеличивает образование MNC-s. RANKL не только участвует в сигнальной транедукции преостеокластов и остеокластов, но и в резорбтивной функции и выживании зрелых остеокластов (Lee, Kim,2003). Сигнальный механизм RANK

распространяется п на активируемые митогенами протеинкиназы (Gabarin et al., 2001; Higuchi et al., 2002; Hu et al., 2003). Особое значение для остеогенеза имеет костная карбоанпщраза II (Lehenkari et al., 1998) т. к. большинство кристаллов апатитов в костях смешанные и содержат в своём составе карбонат, который очень быстро обменивается при регенерации (Petrovichetal. ,2002).

TNF- альфа, простагландин (PGE2), паратгармон (PNG), 1,25(ОН)2 витамин D3 индуцируют образование EL-11 и IL-11R остеобластами (Romas et al., 1996). Первичные остеобласты экспрсссируют мРНК для IL-11, IL-11R и гликопротеина (gp 130). Экспрессию мРНК остеобластами регулирует PNG, IL-1, 1,25(OH)2D3- Центральная роль сопряженных с gp 130IL, в частности IL-11 - это развитие остеокластов. Так как остеобласты и зрелые остеокласты экспрсссируют мРНК, IL-11R - альфа, резорбпрующая и формирующая клетки могут служить мишенями IL-11.

Основной фактор роста фибробластов (b FRF) увеличивает в КМ количество остеобластов и стимулирует образование белкового матрпкеа, ускоряя минерализацию и снижая уровень свободного фосфата (Nauman, 2003).

При повреждении кости в КМ экспрессируется мРНК фактора роста эндотелия сосудов (VEGF) с рецепторами. Ангиобласты способствуют окружению повреждённой зоны капиллярами (Uchida et al., 2003). VEGF не только участвует в ангиогенезе, но и в остеогенезе при заполнении костью полости у животного (Kkinheinz et al., 2002).

В соответствии с концепцией А А. Карелина (2000) о сигнальной роли АТФ, следует полагать, что АТФ также участвует в передаче сигналов фактора роста КМ при инициации образования кости и её созревании. Это подтверждается повышением активности протеннкиназ при остеогенезе.

Результаты клинического исследования

На основании изучения биохимических и морфологических данных на разных сроках эксперимента, комбинация аутологичного костного мозга с препаратами гидроксиапатита была использована в клинической практике. Проводилось замещение костных полостей нижней челюсти после удаления кератокист, радикулярных кист, ретенированных зубов и в одном случае остеокластомы.

В результате исследования было установлено, что в контрольной группе более активно регенераторные процессы протекают в возрастной группе до 29 лет. Восстановление около 50 % костной ткани происходит в

пределах I года. В возрастных группах 30-39 и 40-49 лет наблюдается замедление регенерации. Наиболее медленно протекает замещение костного дефекта в группе пациентов старше 50 лет. В данной группе через 9 лет после вмешательства размер полости рентгенологпчески уменьшился не более чем на 54 %. На верхней челюсти восстановление костных полостей протекает медленнее примерно в два раза.

Осложнений в ближайшем и отдалённом послеоперационном периодах при использовании КМ в сочетании с ГА мы не отметили. Заживление ран происходило первичным натяжением независимо от объёма полостных дефектов.

Через 1 месяц после операция без использования остеопластичсских материалов происходило уменьшение зоны деструкции за счёт восстановления костной ткани по периферии очага. При использовании препаратов ГА и после заполнения полости комбинацией КМ с ГА через 1 месяц рентгенологически определяется малопрозрачный

остеопластичсский материал.

Через 3 месяца после операции в группе без использования остеопластических материалов продолжалось уменьшение зоны деструкции за счёт восстановления периферических отделов дефекта. В группе с использованием ГА на фоне восстанавливающейся костной ткани по периферии, в центре замещенных полостей сохранялись бесструктурные очаги. В группе после заполнения полости КМ с ГА через 3-4 месяца происходило сё замещение образовавшейся костной тканью. В период с 4 до 6 месяцев результат достигал стабильности.

При дальнейшем наблюдении более активно протекали процессы восстановления костной ткани в группе с замещением полостей препаратами ГА. В зависимости от размера полости замещение завершалось к 12-18 месяцам.

В группе без использования костнопластических материалов срок восстановления костной ткани в области вмешательства затягивался на несколько лет.

Таким образом, использование для замещения костной полости КМ в сочетании с ГА позволяет получить положительный результат и полноценный регенерат. При этом рентгенологическая картина приближается к норме через 3-6 месяцев, а биохимические показатели достигают своих нормальных значений только к 6 месяцам. В группе с использованием отдельно взятого ГА биохимические показатели достигают нормы лишь к 9 месяцам.

выводы

1. Одним из оптимальных носителей для костного мозга следует считать рсзорбирующийся пористый или мелкодисперсный ГА, позволяющий провести его насыщение клеточной взвесью.

2. Эффективность применения костного мозга с резорбирующимся ГА при замещении костных дефектов челюстей по объёму и морфологическому строению образующегося регенерата превосходит использование ГА без костного мозга. При этом заполнение дефекта и замена молодой костной формации функционально обусловленными остеонными структурами происходит уже через 3 месяца.

3. Накопление макро- и микроэлементов до нормальных значений в составе костного регенерата, а также органических компонентов происходит при трансплантации костного мозга в сочетании с ГА через 6 месяцев, а чистого ГА на 2 - 3 месяца позднее.

4. Наиболее показательными биохимическими критериями зрелости костного регенерата после аутотрансплантации костного мозга с ГА могут служить Са/Р молярный коэффициент и содержание сульфата в регенерате.

5. Костный мозг создаёт дополнительные условия для регенерации костной ткани за счёт стромальных клеток-предшественников, влияя на созревание минерализующегося регенерата с помощью белковых и гликозаминовых матриц и ростовых факторов.

6. Клинически и рентгенологически регенерат при использовании костного мозга и ГА через 3 месяца оценивается как полноценный. Замещение костной полости проходит диффузно, по всему объёму дефекта, однако биохимические показатели достигают нормальных значений только через 6 месяцев.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Эффективность остсопластических материалов может быть оценена на экспериментальной модели искусственного дефекта нижней челюсти с последующим патоморфологическим и биохимическим изучением в динамике после заполнения дефекта одним из этих материалов.

2. Для определения количественного состава минеральной фазы образцов костных регенератов малых размеров целесообразно использовать высокочувствительные методики капиллярного электрофореза и установку «Нанофор».

3. Использование костного мозга с ГА для замещения полостных дефектов челюстей не приводит к послеоперационным осложнениям и позволяет в короткие сроки получить полноценный костный регенерат.

4. При планировании очередных этапов лечения после аутотрансплантации костного мозга с гидроксиапатигом следует учитывать разницу между рентгенологической оценкой и сроками достижения нормальныхзначений биохимических показателей.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Комбинация аутологичного костного мозга с препаратами гидроксиапатнта для замещения дефектов и костных полостей челюстных костей // Травмы челюстно-лицевой области и их последствия: Сб. науч. работ, посвящ. 100-летию со дня рождения Ф.М, Хитрова. - М, 2001. - С 87-93 (В соавт. с А.Г.Шамсудиновым, НА. Рабухиной, ЮЛ. Петровичем).

2. Аутотрансплантация костного мозга в сочетании с препаратами гидроксиапатита для замещения дефектов и костных полостей челюстных костей // Стоматология на пороге третьего тысячелетия: Сб. тез. Конф. - М, 2001. - С 509 (В соавт. с АХШамсудиновым).

3. Использование гидроксиапатита и аутокостного трансплантата при атрофии альвеолярного отростка и ограниченных дефектах челюстей // Материалы VIII и IX Всероссийской науч.-практ. конф. и труды VII съезда Стоматологической Ассоциации России. — М., 2002. - С 134 (В соавт. с А.Г.Шамсудиновым, Г,В, Дроботом).

4. Комбинация аутокостного мозга с препаратами гидпроксиапатита при реконструкции костных дефектов челюстей // Материалы VIII и IX Всероссийской науч.-практ. конф. и труды VII съезда Стоматологической Ассоциации России. - М., 2002. - С 199 (В соавт. с А.Г.Шамсудиновым, Г,В, Дроботом).

5. Разработка методов культивирования и тестирования стромальных стволовых клеток костного мозга для их аутотрансплантации в заместительной челюстно-лицевой хирургии // Российско - Южно -Корейский семинар-презентация инновационных научно-технических проектов в области биологии: Сб. тез. - Пущино, 2002. - С. 5-7 (В соавт. с А.Г. Шамсудиновым, Э.И. Лежневым, И.П. Белецким).

6. Сравнительная оценка применения препаратов на основе гидроксиапатита с их сочетанием с аутологичным костным мозгом // VII Международная конференция челюстно-лицевых хирургов и стоматологов. - Санкт-Петербург, 2002. - С26 (В соавт. с А.Г. Шамсудиновым, Л А. Григорьянцем, В.А. Бадалян).

Заказ № 171 Тираж 100 экз. 0 0 0 «Фирма Печатный двор» тел.: 202-31-45

""8 135

 
 

Оглавление диссертации Бахтинов, Алексей Анатольевич :: 2004 :: Москва

Введение.

Глава 1. Обзор литературы.

1.1. Основные сведения об обмене и регенерации костной ткани.

1.2. Методы замещения костных полостей челюстей.

1.3. Применение принципов остеоиндукции для замещения костных дефектов.

1.3.1. Использование костного морфогенетического протеина в качестве остеоиндуктора.

1.4. Использование аутотрансплантации костного мозга для замещения костных дефектов.

Глава 2. Материал и методы исследования.

2.1 .Экспериментальная часть.

2.1.1. Методика приготовления трансплантатов.

2.1.2. Методика хирургического вмешательства на животных.

2.1.3. Морфологические методы исследования.

2.1.4. Биохимические методы исследования.

2.1.5. Статистические методы.

2.2.0бщая характеристика клинических исследований.

2.2.1. Методика хирургического вмешательства и предоперационная подготовка.

2.2.2. Рентгенологические методы исследования.

Глава 3. Результаты собственных исследований.

3.1. Результаты экспериментальных исследований.

3.1. \ . Результаты биохимических исследований.

3.1.2. Результаты морфологического исследования.

3.2. Результаты клинических исследований.

Глава 4. Обсуждение результатов исследования.

Выводы.

 
 

Введение диссертации по теме "Стоматология", Бахтинов, Алексей Анатольевич, автореферат

Актуальность проблемы. Несмотря на достижения последних лет, проблема замещения дефектов костной ткани продолжает оставаться одной из важнейших для хирургов-стоматологов и челюстно-лицевых хирургов и ещё далека от окончательного решения. Природные катаклизмы, технизация жизни и военные конфликты неуклонно повышают травматизм челюстно-лицевой области, нередко ведущий к утрате костных тканей. Высока частота заболеваний, приводящих к необходимости оперативного лечения (опухоли, кисты, воспалительные поражения), после которых остаются дефекты костей лицевого скелета. Они составляют более половины поражений костей лицевого скелета (Ю.И. Вернадский, 1999; М.Б. Швырков, 2001; В.М. Безруков, В.П. Ипполитов, Г.Л. Могильницкий, 2003).

При амбулаторных хирургических вмешательствах значительное внимание уделяется сохранению зубов, что предполагает использование материалов, способствующих оптимизации процессов репаративной регенерации костной ткани в зоне оперативного вмешательства (В.И. Гунько, C.B. Джавахия, 1998). Известно, что костные полости, возникшие в результате лечения некоторых патологических процессов в области челюстей, снижают прочность последних. В случае заполнения костной полости кровью с последующей фибринизацией сгустка и образованием костеподобной, а затем и костной ткани на его основе, процесс восстановления кости весьма длителен и составляет от 1,5-2 лет (A.B. Ярошкевич, 1996) до 5 лет (Г.П. Вернадская, 1995).

В настоящее время накоплен большой опыт костнопластических операций, разработаны десятки путей и способов подготовки и консервации костного материала. Для замещения костных дефектов в последние десятилетия предложены различные небиологические материалы (металлы, керамика, полимеры).

Однако, в ряде случаев структура восстанавливаемого органа при использовании имплантатов резко отличается от исходной. После пересадки имплантаты остаются чужеродными элементами и, в лучшем случае, не участвуют в метаболизме организма. В других случаях, особенно при применении полимерных соединений, они обладают токсичным действием за счет примесей или не вступившего в реакцию мономера (В.В. Паникаровский и др., 1979). Кроме этого имплантаты не способны нести полноценную функциональную нагрузку. Например, они не создают физиологические условия в функционирующем органе, так как биомеханически несовместимы с тканями реципиента. Из-за этого рано или поздно происходит их отторжение (В.В. Паникаровский, 1963).

При всех успехах трансплантации кости нельзя не указать, что далеко не всегда оперативное вмешательство, необходимое для взятия аутотрансплантата, бывает оправдано, так как при этом вызывается дополнительная травма донорского участка организма, а основным недостатком аллотрансплантации, до настоящего времени считавшейся более перспективной, является проблема иммунной совместимости материала донора и реципиента.

Существуют четыре различных механизма, которые позволяют осуществить восстановление костной ткани: остеокондукция (или "ползущая" замена), остеоиндукция, дистракционный остеогенез по Илизарову и остеогенез путем трансплантации витальных костеобразующих клеток.

Костная ткань, как и все мезенхимальные ткани, имеет единую клетку-предшественника. В экспериментах с трансплантацией костного мозга обнаружена его остеогенная активность. При культивировании костного мозга была выделена чистая культура фибробластоподобных клеток, развившихся из клеток-предшественников, которые составляют около 4 % от костномозговых клеток. Показано, что существует два пула клеток-предшественников: детерминированный - находящийся в костном мозге и индуцибельный. Последний циркулирует в периферической крови и разносится в различные органы и ткани. Именно благодаря этому пулу, под действием определенных стимулирующих факторов возникает эктопический остеогенез.

Получить культуру стромальных клеток-предшественников, формирующих основание для костеобразования, можно путем культивирования костномозговых клеток. Использование такой клеточной культуры было бы идеальным вариантом при восстановлении утраченных костных структур. Однако, цена оборудования и расходных материалов при культивировании этих клеток пока настолько велика, что делает широкое клиническое применение данной технологии затруднительной.

В клинической практике для замещения дефектов костной ткани на данный момент нашел применение метод аутотрансплантации костного мозга.

В последние годы, для замещения дефектов костной ткани большое внимание уделяется использованию клеток костного мозга в сочетании с различными носителями и наполнителями (В .П. Пюрик, 1987,1л е1 а1., 1996, КиюзЬйа е1 а1., 1997). Авторами, использующими данный вид аутотрансплантации, довольно полно показаны его преимущества и изучены морфологические особенности костных регенератов на разных сроках исследования. В то же время известно, что изменения химического состава (минеральной и органической фаз регенерата) могут значительно влиять на характер формирующейся костной субстанции. Кроме того, введение в состав аутотрансплантата костного мозга препаратов, содержащих различное количество Са, Р, микроэлементов, обработанные разным способом виды костного матрикса могут значительно изменять как свойства заместительного материала, так и сроки замещения. В доступной нам литературе мы не обнаружили работ, посвященных биохимическим аспектам регенерации костной ткани при использовании аутологичного костного мозга в сочетании с различными видами и формами гидроксиапатита (ГА).

Цель исследования:

Разработать и внедрить методику замещения дефектов и костных полостей челюстных костей аутотрансплантатами костного мозга в сочетании с препаратами резорбирующегося гидроксиапатита.

Задачи:

1. Изучить эффективность сочетанного применения аутокостного мозга с препаратами резорбирующегося ГА в эксперименте на животных.

2. Провести сравнительный биохимический и морфологический анализ костных регенератов, полученных в эксперименте в разные сроки после трансплантации КМ с ГА.

3. Установить биохимические и морфологические особенности регенерациии костной ткани при использовании ГА и его комбинации с КМ.

4. Провести сравнительный анализ использования КМ в комбинации с ГА с контрольной группой (без применения заместительных материалов).

5. Определить клинико-рентгенологичекими и биохимико-морфологическими методами сроки созревания костных регенератов при трансплантации ГА и сочетания КМ с ГА.

Научная новизна:

1. Впервые проведено экспериментальное исследование возможности использования трансплантатов аутокостного мозга с препаратами ГА и изучены особенности репаративной регенерации после трансплантации КМ в сочетании с препаратами ГА. Установлено, что резорбируемый ГА оптимально подходит в качестве носителя костномозговых клеток.

2. Впервые проведён анализ биохимического состава аутотрансплантатов КМ в сочетании с препаратами ГА и костных регенератов, полученных на их основе. Отмечено ускорение накопления органической и минеральной фаз костной ткани и более ранняя минерализация по сравнению с регенератами после трансплантации ГА без КМ.

3. Впервые проведён сравнительный анализ клинических, рентгенологических, биохимических и морфологических данных после аутотрансплантации КМ с препаратами ГА.

Практическая значимость.

Разработан новый трансплантат для замещения костных полостей в виде комбинации аутологичного КМ с резорбируемым ГА. Показана эффективность клинического применения предложенной комбинации при замещении полостных дефектов челюсти по сравнению с заполнением полости кровяным сгустком или ГА без КМ.

Показана целесообразность использования высокочувствительных методик капиллярного электрофореза и установки «Нанофор» для определения количественного состава минеральной фазы образцов костных регенератов малых размеров.

Использование КМ в сочетании с препаратами ГА приводит к сокращению сроков реабилитации и формированию полноценного регенерата на месте дефекта.

Апробация работы: Основные материалы диссертации доложены на общеинститутской конференции ЦНИИС, симпозиуме «Полимерные и аллогенные материалы в реконструктивной хирургии челюстно-лицевой области» в рамках VII съезда СтАР, 2002, Российско - Южно - Корейском семинаре-презентации инновационных научно-технических проектов в области биологии (Пущино, 2002).

Диссертация апробирована в ЦНИИС на совместном заседании сотрудников отделений реконструктивной и пластической хирургии с группой имплантологии и эктопротезирования, восстановительной хирургии и микрохирургии лица и шеи, реабилитационно-диспансерного отделения, отделения пародонтологии, клинико-биохимической лаборатории 27 февраля 2004 года.

Научные положения, выносимые на защиту:

1. Комбинация аутологичного костного мозга с ГА эффективнее, чем чистый ГА влияет на темпы образования костного регенерата. Заполнение костного дефекта препаратом ГА улучшает регенерацию костной ткани, однако, зависит от вида материала и размеров полости. Применение аутологичного КМ в комбинации с ГА влияет на образование костной ткани по всему объёму замещаемого дефекта за счёт присутствующих в КМ клеток-предшественников.

2. Биохимические параметры после трансплантации КМ и ГА свидетельствуют о ещё не окончательно завершённом формировании костного регенерата, когда клинически и рентгенологически он представляется полноценным. Наиболее показательными биохимическими критериями после аутотрансплантации КМ с ГА могут служить определение Са/Р молярного коэффициента и содержание сульфата в костном регенерате.

Внедрение результатов исследования

Результаты работы используются в практической деятельности отделения восстановительной и пластической хирургии ЦНИИС.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 6 научных работ.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, главы «Материалы и методы исследования», глав «Результаты собственных исследований», «Обсуждение полученных результатов», содержащих результаты собственных исследований, заключения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Клинико-рентгенологическая и биохимическая характеристика результатов аутотрансплантации костного мозга в сочетании с препаратами гидроксиапатита для замещения дефектов и костных полостей челюстных ко"

выводы

1. Одним из оптимальных носителей для костного мозга следует считать резорбирующийся пористый или мелкодисперсный ГА, позволяющий провести его насыщение клеточной взвесью.

2. Эффективность применения костного мозга с резорбирующимся ГА при замещении костных дефектов челюстей по объёму и морфологическому строению образующегося регенерата превосходит использование ГА без костного мозга. При этом заполнение дефекта и замена молодой костной формации функционально обусловленными остеонными структурами происходит уже через 3 месяца.

3. Накопление макро- и микроэлементов до нормальных значений в составе костного регенерата, а также органических компонентов происходит при трансплантации костного мозга в сочетании с ГА через 6 месяцев, а чистого ГА на 2 - 3 месяца позднее.

4. Наиболее показательными биохимическими критериями зрелости костного регенерата после аутотрансплантации костного мозга с ГА могут служить Са/Р молярный коэффициент и содержание сульфата в регенерате.

5. Костный мозг создаёт дополнительные условия для регенерации костной ткани за счёт стромальных клеток-предшественников, влияя на созревание минерализующегося регенерата с помощью белковых и гликозаминовых матриц и ростовых факторов.

6. Клинически и рентгенологически регенерат при использовании костного мозга и ГА через 3 месяца оценивается как полноценный. Замещение костной полости проходит диффузно, по всему объёму дефекта, однако биохимические показатели достигают нормальных значений только через 6 месяцев.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Эффективность остеопластических материалов может быть оценена на экспериментальной модели искусственного дефекта нижней челюсти с последующим патоморфологическим и биохимическим изучением в динамике после заполнения дефекта одним из этих материалов.

2. Для определения количественного состава минеральной фазы образцов костных регенератов малых размеров целесообразно использовать высокочувствительные методики капиллярного электрофореза и установку «Нанофор».

3. Использование костного мозга с ГА для замещения полостных дефектов челюстей не приводит к послеоперационным осложнениям и позволяет в короткие сроки получить полноценный костный регенерат.

4. При планировании очередных этапов лечения после аутотрансплантации костного мозга с гидроксиапатитом следует учитывать разницу между рентгенологической оценкой и сроками достижения нормальных значений биохимических показателей.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2004 года, Бахтинов, Алексей Анатольевич

1. Абу Бакер Кефах Фагхи. Применение биорезорбируемой мембраны «Пародонкол» для оптимизации заживления дефекта челюсти после цистэктомии: Автореф. Дис. . канд. мед. наук. М., 2001. - 23 с.

2. Альперович Г.А. Стронций в зубах, костях и слюне в условиях физиологии и патологии: Автореф. дис. . канд. мед. наук. Пермь, 1971. -21с.

3. Анисеня И.И. Нагноения и переломы порисиых имплантатов // Имплантаты с памятью формы: Материалы конгресса международной ассоциации SME. Новосибирск, 1993.

4. Бадалян В.А., Рабухина H.A., Григорьянц JI.A. Динамика заживления периапикальных деструктивных поражений в рентгенологическом изображении // Стоматология. 2000. - № 2. - С. 12-16.

5. Балин В.Н., Черныш В.Ф., Ковалевский A.M., Иорданошвили А.К. Опыт клинической апробации материалов на основе биокерамики в стоматологии // Стоматология. 1996. - № 5. - С. 45-47.

6. Безруков В.М., Григорьянц JI.A., Зуев В.П., Панкратов A.C. Оперативное лечение кист челюстей с использованием гидроксиапатита ультравысокой дисперстности // Стоматология. 1998. - № 1. с. 31-35.

7. Безруков В.М., Ипполитов В.П., Могильницкий Г.Л. Огнестрельные ранения лица в условиях локальных и приграничных конфликтов // Стоматология. 2003. - № 3. - С. 38-40.

8. Безрукова А.П. Применение формалинизированного аллотрансплантата при хирургическом лечении пародонтоза: Дис. . канд. мед. наук. М., 1979.-150 стр.

9. Безрукова А.П. Хирургическое лечение заболеваний пародонта. М.: Медицина, 1987. - 160 с.

10. Ю.Белозёров М.Н. Оценка остеопластических свойств различных биокомпозиционных материалов для заполнения дефектов челюстей:

11. Дис. . канд. мед. наук. -М., 2004. 146 стр.

12. Белых С.И., Давыдова А.И. Штифты для остеосинтеза из биосовместиых полимерных марок ШП, ШЛА позвоночника // Совершенствование методов лечения травм позвоночника. Шауляй, 1986.-С. 48-49.

13. Берлянд A.C. и др. Физико химические и биологические свойства гидроксиапатита фирмы "Полистом". // Новое в стоматологии. — 1992. - Спец. выпуск. - № 3. - С. 9-11.

14. Вернадский Ю.И. Травматология и восстановительная хирургия челюстно-лицевой области. М., 1999. - 520 с.

15. Вернадская Г.П. Биоплант для заполнения костных дефектов челюстей // Вестник стоматологии. 1995. - № 2. - С.125-126.

16. Богоявленский И.Ф. Патологическая функциональная перестройка костей скелета. JL: Медицина. - 1976. - С. 9-10.

17. Боровский Е.В., Леонтьев В.К. Биология полости рта. М., 2000. - 153 с.

18. Ботмаев Б.Д. Хирургическое лечение больных с кистами челюстей с использованием биогенных пластических материалов на основе брефокости и гидроксиапатита. // Дис. . канд. мед. наук. М., 1990. -174 с.

19. Бояров Ю.С. Сравнительная оценка репаративной регенерации костной ткани при дефектах челюстей после удаления кистозных новообразований: Дис. . канд. мед. наук. -М., 1977. -21 с.

20. Брутг Ю.М., Тимашев В.В.Практикум по химической технологии вяжущих материалов. М.: Высшая школа, 1973.

21. Вагнер Е.А., Денисов A.C., Скрябин В Л. Углеродный материал новогопоколения в эндопротезировании костей и суставов. Пермь, 1993. - 64 с.

22. Винникова Н.И., Куролесова А.И. и др. Использование деминерализированного костного матрикса для стимуляция костеобразования после удаления одонгогенных кист. // Стоматология. -1981,- №4.-С. 30-31.

23. Виноградова М.П., Лаврищева Г.И. Регенерация и пересадка костной ткани. -М.: Медицина, 1974.

24. Водолацкий М.П. Способ костной аллопластики нижней челюсти. -Авт. свид. № 856444, заявка от 16.11.1979.

25. Воложин А.И., Дьякова С.В.,Топольницкий 0.3. и др. Клиническая апробация препаратов на основе гидроксиапатита в стоматологии // Новое в стоматологии. 1993. - № 3. - С. 29-31.

26. Глимчер М. Молекулярная биология минерализованных костей, в частности костной ткани. В кн.: Современные проблемы биофизики,-М,-1961.-Т. 2.-с. 94-127.

27. Григорьян A.C., Паникоровский В.В., Хамраев Т.К. Сравнительное изучение двух способов введения гранул гидроксиапатита. // Сб. Новое в техническо обеспечении в стоматологии: Материалы конференции стоматологов. Екатеринбург, 1992. - С. 118-121.

28. Григорьян A.C., Пулатова H.A., Воложин А.И., Истратов Л.П. Динамика заживления костных дефектов при имплантации в них комплексов коллагена и гидроксиапатита (экспериментально морфологическое исследование). // Стоматология. - 1996. - №5. - С. 13-16.

29. Григорьян A.C., Воложин А.И., Агапов B.C., Белозёров М.Н., Дробышев А.Ю. Остеопластическая эффективность различных форм гидроксиапатита по данным экспериментально морфологического исследования // Стоматология. - 2000. - Т. 79,- № 3. - С. 4-8.

30. Григорьянц Л.А., Бадалян В.А. и др. хирургическое лечение кист челюстей с использованием гидроксиапатита без резекции верхушек корней // Клин. Стоматология 1997, - № 3. - С. 54-58.

31. Григорьянц JI.А., Рабухина H.A., Бадалян В.А. Применение остеопластических материалов при хирургическом лечении больных с радикулярными кистами, проростаюшими в верхнечелюстной синус и полость носа // Клин. Стоматология 1998, - № 3. - С. 36-38.

32. Грунтовский Г.Х., Дегтярев Э.В., Сак H.H. Применение керамики в ортопедии и травматологии // Ортопед. Травматол. 1979. - N 11. - С. 73-74.

33. Гунько В.И., Джавахия C.B. Современные принципы лечения больных с костными дефектами после амбулаторных хирургических вмешательств // Стоматология: Материалы IV съезда Стоматол. Асс. России . М., 1998. - Спец. Выпуск. - С. 22-23.

34. Гюнтер В.Э., Итин В.И., Монасевич JI.A. и др. Эффекты памяти формы и их применение в медицине.- Новосибирск, 1992,- 740 с.

35. Давыдов Е.А., Шаболдо О.П. Протезирование межпозвонковых дисков металлоконструкциями из никелида титана // 1 съезд нейрохирургов Российской Федерации: Тез. докл. Екатеринбург, 1995.-С. 136.

36. Десятниченко К.С. Белки зубной эмали в физиологических условиях и при патологии: Автореф. дис. канд. мед. наук. -М., 1976. 18 с.

37. Десятниченко К.С., Леонтьев В.К. Характеристика белков зубной эмали. // Вопр. Мед. химии. 1977. - № 2. - С. 210-215.

38. Дробышев А.Ю. Экспериментальное обоснование и практическое применение отечественных биокомпозиционных материалов при костно-восстановительных операциях на челюстях: Дис. . док. мед. наук. М., 2001.-237 стр.

39. Задгенидзе Г.А. Рентгенодиагностика травматических и огнестрельных повреждений костей и суставов. Л., 1941.

40. Зуев В.П., Панкратов A.C. Остеорепарация постгравматических дефектов нижней челюсти под воздействием гидроксиапатита ультравысокой дисперстности // Стоматология. 1999. - № 1. - С. 37-41.

41. Иванов И.В., 1970 цит. по Ярошкевич А. В., 1996.

42. Ивасенко И.Н., Ивасенко Д.А., Алмазов В.А. Использование остеогенных клеток-предшественников костного мозга для репаративного остеогенеза в нижней челюсти экспериментальных животных // Бюл. эксп. биологии и медицины. 1995. - т. 119, №1. - С. 72-75.

43. Карелин A.A. Сигнальный АТФ. М., 2000 - 506 с.

44. Кац Ф.Г. Регенерация костной ткани после удаления кисты челюстей // Стоматология. 1965. - № 5. - С. 52 - 57.

45. Каширина O.A. Применение биогенного композиционного материала на хирургическом этапе дентальной имплантаци: Дисс. . канд. мед. наук. -М., 1994. 124 стр.

46. Киняпина И.Д., Чупрунова И.Н. и др. Анализ результатов зубосохраняющих операций, проведенных в поликлинических условиях. Материалы IV съезда СтАР. - М., 1998, С. 22.

47. Китгель Ч. Введение в физику твёрдого тела. М., 1963.

48. Коваль Н.С., 1965 цит. по Ярошкевич А. В., 1996.

49. Констандян Л.И., Иванилов В.Я., Боглов Д.Ф. Костная брефопластика при лечении бодрокачественных опухолей скелета. Кемерово, 1976.

50. Копецкий И.С. Применение композиции гидроксиапатитаультровысокой дисперсности с метронидазолом в комплексном лечении больных с воспалительными осложнениями переломов нижней челюсти: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. -М., 2001. 28 с.

51. Курдюмов С.Г. Гидроксиапол и колапол: применение в стоматологической практике. // Военно-медицинский журнал. 1997. -№ 6. - С. 48-49.

52. Кураскуа A.A., Анакидзе Т.Э. Клиническое сравнение применения имплантационных материалов. НСУ СПбИС. -webmaster@medi.sb.ru, 2000.

53. Леонтьев B.K., Воложин А.И., Андреев Ю.Н. и др. Применение новых препаратов гидроксиапола и коллапола - в клинике // Стоматология. -1995.-№ 5.-С. 69-71.

54. Лациник Н.В., Сидорович С.Ю., Лазаренко-Маневич Е.Р. Перенос кроветворного микроокружения при гетеротопной трансплантации взвеси клеток костного мозга // Бюлл. экспер. биол. 1980. - № 9. - С. 359-361.

55. Лесгафт П.Ф. Основы теоритической анатомии: Дисс. СПб., 1892.

56. Лукьяненко В.Т., Газенко В.А. Замещение полостей нижней челюсти мышечным лоскутом на питающей ножке. // Стоматология. 1988. № 4. -С. 75-77.

57. Мазуров В.И. Биохимия коллагеновых белков. М., 1974. - 248 с.

58. Мамедов Г.Г. Хейлопластика с одномоментной костной аллопластакой. В кн.: Экспериментальная и клиническая стоматология. Труды ЦНИИС. - М., 1978. - Т. 8, часть 2. - С. 113-114.

59. Медведев Е.Ф. Керамические и стеклокерамические материалы длякостных имплантатов // Стекло и керамика. 1993. - № 2.- 18-20.

60. Милиянчук О.Т. Комплексное лечение переломов нижней челюсти с трансплантацией аутологичного костного мозга в щель перелома: Дис. . канд. мед. наук. Львов, 1989. - 150 стр.

61. Мингазов Г.Г., Гизатулин А.Г. Способ замещения постостеомиелитических костных полостей челюстей. Авт. св. № 1050682, публ. 30.10.1983.

62. Модина Т.Н. Использование коллапана в хирургическом лечении пародонтитов // Клиническая стоматология. 1999. - № 1. - С. 44-47.

63. Нури Фарзин. Реакция тканей на коллаген- и гликозаминогликан-содержащие остеопластические материалы с костным гидроксиапатитом (экспериментальное исследование): Дисс. . канд. мед. наук. М., 2003. - 101 с.

64. Окулова А.П. Гомопластика консервированными тканями человеческих плодов. Тез. докл. 2 Всесоюзн. конф. по проблеме тканевой несовместимости. - Одесса, 1961. - С. 69-70.

65. Островский А. Остеопластические материалы в современной пародон-тологии и имплантологии // Новое в стоматологии. 1999. - № 6. - С. 39-52.

66. Островский A.B. Развитие и применения вмешательств с целью направленной тканевой регенерации. Чикагский центр совр.стоматологии. webmaster@medi.sb.ru. 2000.

67. Павлов Б.Л., Уразова И.В., Дудина А.Б. Динамика репаративного остеогенеза после первичной эмбриопластики внутрикостных дефектов. // В кн.: Реконструктивная хирургия внутрикостных дефектов. -Красноярск, 1989. С. 82-86.

68. Панасюк А.Ф., Герасимов Ю.В., Кулагина H.H. Культура фибробластноподобных клеток костного мозга // Всесоюзный симпозиум по вопросам консервирования, культивирования и типирования костного мозга. М., 1981. - С. 104-107.

69. Панкратов А. С. Лечение больных с переломами нижней челюсти с использованием ОСТИМ-ЮО (гидроксиапатита ультравысокой дисперстности) как стимулятора репаративного остеогенеза. // Автореф. дис. .канд. мед. наук. -М., 1995. -26 с.

70. Папикян А. В. Клинико экспериментальное обоснование применения костноматричных имплантатов при лечении воспалительных и деструктивных заболеваний челюстей. // Автореф. дис. канд. мед. наук. - Ереван. - 1999. - 20с.

71. Пелькис П. С. Синтетические ингибиторы фибринолиза. Киев, 1986. -С. 63-95.

72. Петрович Ю. А., Дмитриев И. М. Включение карбоната 14С в зубы и кости белых крыс разного возраста, содержащихся на обычной и сахарозной диете. // Стоматология. - 1968. - № 5. - С. 9-12.

73. Петрович Ю. А., Леонтьев В. К., Десятниченко К. С. Функционально -молекулярная модель эмали // Стоматология. 1979. - № 1. - С. 70-75.

74. Подорожная Р. П., Петрович Ю. А. Включение лимонной кислоты (3-14С) в зубы и челюсти крыс разного возраста, содержащихся на кариесогенной диете. // Стоматология. 1971. - № 5. - С. 21-24.

75. Пономарёв В. Д. Аналитическая химия, 2 часть. М.: Высшая школа, 1982.

76. Праведников С.Н. Лечение послеоперационных остеомиелитических полостей имплантированной измельчённой мышцей (эксперим. и клин, исследование): Автореф. дис. . канд. мед. наук. Калинин, 1972. -18 с.

77. Проценко А.И., Германов В.Г., Бережной С.Ю. и др. Применение коллапана при стабилизации позвоночника после расширенной резекции позвонков // Вестник травматологии и ортопедии им. H.H. Пирогова. -1999. № 3. - С. 49-52.

78. Пюрик В.П. Миелохондропластика костных полостей челюстей: Дис. . канд. мед. наук. Ивано-Франковск, 1987. - 125 стр.

79. Райх Г. Коллаген (проблемы, методы исследования, результаты). М., 1969.-215 с.

80. Рузин Г.П., Захаров Ю.С. и др. Костная брефопластика как метод стимуляции репаративного остеогенеэа челюстей. Труды МОНИКИ. -М., 1979, т. XXIV, С. 52-56.

81. Рузин Г.П., Захаров Ю. С. Использование гомокости плода, как стимулятора остеогенеза при лечении хронических остеомиелитов нижней челюсти. В кн.: Экспериментальная и клиническая стоматология. - М., 1975, т. 5, часть 2, С. 313-314.

82. Рунова Г.С. Использование культивированных аллофибробластов в комплексном лечении заболеваний пародонта: Автолреф. дисс. . канд. мед.наук. М., 2000. - 20 с.

83. Русаков А. В. Об основных закономерностях в процессах физиологической и патологической перестройки костей. В кн.: Вопросы патологии костной системы. - М., 1957. - С. 5-22.

84. Русаков А. В. Патологическая анатомия болезней костной системы. Введение в физиологию и патологию костной ткани. М., 1959.

85. Саргсян A.A. Восстановление костных дефектов с помощью культуральных штаммов костномозговых фибробластов в условиях эксперимента: Автореф. дисс. . канд. биол. Наук. М., 1990. -22 с.

86. Серов В.В., Шехтер А.Б. Соединительная ткань (функциональная морфология и общая патология). М., 1981. - 165 с.

87. Сиповский П.В. Морфологическая характеристика приспособительных (компенсаторных) и репаративных реакций костной ткани. Л., 1961.

88. Сирый О.М. Аутотрансплантация костного мозга при повреждениях костной ткани. Автореф. дис. . канд. мед. наук. М., 1987. — 21 с.

89. Слуцкий Л.И. Биохимия нормальной и патологически изменённой соединительной ткани. М., 1969.

90. Соловьёв М.М., Алехова Т.М., Владимирова Л.Г. и др. Изучение в эксперименте и клинике композиции гидроксиапатита с коллагеном -«Осскола» // Стоматология. 1994. - № 2. - С. 48-53.

91. Сунцова Т.В. Трансплантация эпифизарного брефохряща в челюстно-лицевой хирургии. Автореф. Дис. канд. мед. наук. Омск, 1994.

92. Сысолятин П.Г. Применение эмбриональных костныхгомотрансплантатов в восстановительной хирургии челюстно-лицевой области: Дисс. . канд. мед. наук. Новосибирск, 1971.

93. Сысолятин П.Г. Аллотрансплантация консервированной различными способами кости при лечении несросшихся переломов нижней челюсти, осложненных хроническим остеомиелитом. Труды МОНИКИ, - М., 1979, т. XXIV, С. 37-101.

94. Терещенко Л.И. Клиника и лечение гнойно-воспалительных осложнений переломов нижней челюсти с применением брефогубки. // Дисс. канд. мед. наук. Алма -Ата, 1989. - 196 с.

95. Торбенко В.П., Касавина Б.С. Функциональная биохимия костной ткани.-М.: Медицина, 1977.

96. Турнер Г.И. Биология и механика при трансплантации костей // Журн. совр. хирургии. 1927. - Т. 2. - № 3. - с. 369-383.

97. Турнер Г.И. Режим экономии во взаимодействии костей человека для целей аутотрансплантации. Труды 19 съезда Российских хирургов. -М., 1927.-С. 355-356.

98. Уразгельдеев З.И., Бушцев О.М., Берченко Г.Н. Применение коллапана для пластики остеомиелитических дефектов костей // Вестник травматологии и ортопедии им. H.H. Пирогова. 1998. - № 2. -С. 31-35.

99. Фриденштейн А.Я., Лалыкина К.С. Индукция костной ткани и остео-генные клетки-предшественники. -М., 1973.

100. Фриденштейн А.Я., Лурия Е.Х. Костные основы кроветворного микроокружения. М., 1980. - 215 с.

101. Халил Али Мухсен. Использование высокоэнергетического углекислотного лазера и брефопластики в комплексном лечениихронического травматического остеомиелита нижней челюсти: Автореф. дис. .канд. мед. наук. Тверь, 1996. - 18 с.

102. Хамраев Т.К. Применение гранулята керамики гидроксиапатита для замещения дефектов костной ткани челюсти: Автореф. дис. . канд. мед.наук. М., 1995.-23 с.

103. Хауваш А. Рентгенологическая оценка керамо-спондилодеза. // Ортопед, травматол. 1992. - N 3. - С. 19-21.

104. Шамсудинов А.Г. Сравнительная биохимическая и морфологическая оценка свойств деминерализованного в различных растворах костного мат-рикса и его применение для костной пластики. Дисс. . канд. мед. наук. М., 1984.- 180 стр.

105. Швырков М.Б. Первичная хирургическая обработка огнестрельныхран лицевого скелета // Стоматология. 2001. - № 3. - С. 38-40.

106. Юшкалов Ю.Г., 1972. цит. по Ярошкевич А.В., 1996.

107. Adam М., Vitasek R., Deyl Z. Collagen in reumotoid artrhritis. // Clin. Chim. Acta. 1976. - Vol. 70, P. 61-69.

108. Ailing C.C. Hydroxyapatite augmentation of edentulous ridges. // The J. of Prosth. Dent. 1984. - Vol. 52, № 6, - P. 828-831.

109. Anderson Oqan H., Karlsson Kaj H., Nieme Leif. Modelling of the biological behavior of silicate glasses // Kemia-Kemi. 1990. - Vol. 17, № 10. - P. 975.

110. Awad M., Al-Ashwal A.A., Sakati N. et al. Long-term follow up of carbonic anhydrase П deficiency syndrome // Studi. Med. J. 2002. - Vol. 23, № 1. - P. 2529.

111. Baek K.H., Lee W.Y., Oh K.W. et al. Chenges in the serum growth factors and osteoprotegerin after bone marrow transplantation: Impact on bone and mintral metabolism // J. Chlin. Endocrinol Metab. 2004. - Vol. 89, № 3. - P. 1246-1254.

112. Bahn S.L. Plaster a bone substitute // Oral Surg. 1966. - Vol. 21, -P. 672.

113. Basle M.F., Lesourd M., Grizon F. Et al. Tipe I collagen in xenogenic bone material regulates attachment and spreding of osteoblasts over the beta 1 integrin subunit // Orthopade. 1998. -Vol. 27, № 2. - P. 136-142.

114. Bazin S., Lelous M., Delanney A. Collagen in granulation tissue. // Agent and Act. 1976. - Vol. 6. - P. 29-38.

115. Bell W. H. Resorption characteristics of bone and plaster. // J. Dent. Res. -1960.-Vol. 39.-P. 727.

116. Besly W., Booth P. Ward. Technique for harvesting tibial cancellous bone modified for use in children. // Brit. J. Oral Surg. 1999. - № 37. - P. 129133.

117. Bessho K. Purification and characterization of bone morphogenetic protein. Mue Med J. 1990. - Vol. 40. - P. 61-71.

118. Billecocq A., Emanuel J.R., Ltvtnson R. et al. 1 alpha,25-dihydroxyvitamin D3 regulates the expression of carbonic anhydrase II in njnerythroid avian bone marrow cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. - Vol. 87, № 16. - P. 6470-6474.

119. Biskobing D.M., Fan D., Fan X. et al. Induktion of carbonic anhydrase II expression in osteoclast progenitors reguires physical contact with stromal cells // Endocrinology. 1997. - Vol. 138, № 11. - P. 4852-4857.

120. Blair H.C., Athanasou N.A. Recent advances in osteoclast byology and pathological bone resorption // Histol. Histopathol. 2004. - Vol. 19, № 1. -P. 189-199.

121. Blaver L., Delaisse J.M. Matrix metalloproteinases are obligatory for the migration of preosteoclasts to the developing marrow cavity of primitive long bones // J. Cell Sci. 1995. - Vol. 108. - Pt 12. - 3649-3659.

122. Brostrom C. et al. iiht. no Gregorie et al., 1990.

123. Byrd H.S, Hobar P.C., Shewmake K. Augmentation of the orofacial skeleton with porous hydroxyapatite granules.// Plast Rceonstr Surg. 1993. -Vol. 91.-P. 15-22.

124. Calhoun N.R., Green G. W., Blackledge G.T. Effects of plaster of Parisimplants on osteogenesis in the mandible of dogs // J. Dent. Res. 1963. -Vol. 42.-P. 1244.

125. Champagne C.M., Takebe J., OfFenbacher S. et al. Macrophage cell lines produse osteoinductive signals Gregorie that include bone morphogenetic protein-2 // ScienceDirect. 2002. - Vol. 30. - Issue 1. - P. 26-31.

126. Cho M. I. et al. Platelet derived growth factor - modulated guided tissue regenerative therapy // J. Periodontal. - 1995. - Vol. 66, № 6. - P. 522 - 530.

127. Chin K. et al. iîht. no Gregorie et al., 1990.

128. Cochat P., Loras-Duclaux I., Guibaud P. Carbonic anhydrase II deficiency: osteopetrosis, renal tubular acidosis and intracranial calcifications. Review of literature and 3 cases // Pediatric. 1987. - Vol. 42, №2.-P. 121-128.

129. Collins J.A. Use of collagen tubes contaning particulate hydroxyapatite for augmentatioin of the edentulous atrophic maxilla: a preliminary report // J. Maxillofac. Surg. 1989. - Vol. 47, № 2. - P. 137-141.

130. Cook S.D., Dalton J.E., Tan E.H. et. al. In vivo evaluation of anterior cervical fusions with hydroxylapatite graft material // Spine. 1994. - Vol. 19, № 16. -P. 1856-1866.

131. Crouse G.S. The effect of variation in the age of the donor on homologous crafts into the brain of the rat. Anat. Rec., 1959, Vol. 135. - P. 215-219.

132. Doile C., Nanner E.T., Bonfield W. In vitro in vivo evaluation of polyhydroxybutyrate and polyhydroxybutyrate reinforsed with hydroxyapatite // Biomaterials. 1991. Nov. - Vol. 12, № 9. - P. 841-847.

133. Firschein H.E., Urist M.R. Enzyme indication, accumulation of collagen and calcification in implants of bone matrix. // Clin. Orthop. 1972, № 2. -P. 163-275.

134. Frame J.W. Porous calcium sulfate dihydrate as a biodegradable implant in bone // J. Dent. 1975. - Vol. 3. - P. 177-187.

135. Gabbiani C., LE Loue M. et al. Collagen and miofibroblasts of granulation tissue. A chemical, ultrastructural and immunologic study. // Virchows Arch., Abt. B. Zellpath, 1976. Vol. 21, P. 133-145.

136. Gallop P., Paz M.Posttransplantational protein modification with special attention to collagen and elastin // Physiol. Rev., 1975. Vol. 55. - P. 418466.

137. Glimcher M. J. Recent studies of early mineral deposits in bone and enamel, and of the organic matrix of enamel // Proc. of the VI European symposium on calcif. tiss. Ed. J. F. Dymling, G. H. Bauer. 1968, P. 1.

138. Glimcher M. J., Krane S. M. The organization and structure of bone and the mechanism of calcification. 1967.

139. Gongloff R. K., Montgomery C. K. Experimental study of the use of collagen tubes for implantation of particulate hydroxyapatite // J. Oral Maxillofac. Surg. 1987. - Vol. 45. - № 9. - P. 771-777.

140. Gottlow J., Nyman S., Lindhe J., et al. New attachment formation in the human periodontium by guided tissue regeneration // J. Clin. Periodontol. -1986.-Vol. 13.-P. 604.

141. Greenberg A. M. Craniomaxillofacial Fractures. Springer Verlag. 1993. New York. P. 287.

142. Gregorie M., Orly I., Menanteau I. // J. Biomed. Mater. Res. 1990. -Vol. 24.-№2. P. 165-172.

143. Grezesik W.J., Kuznezov S.A., Uzawa K., Mancani M. Normal human cemetum-derived cells: isolation, clonal expansion, and in vivo characterization // J. Bone, Mineral Research.-1998. Vol.11, № 3.-P.547-553

144. Hamanishi C., Kitamoto K. et al. A self-setting TTCP DCPD apatite cement for release of vancomycin // J. Biomed. Mater. Res. - 1996. - Vol. 33, №3.- P. 139-143.

145. Higucho C., Myoui A., Hashimoto N. et al. Continuous inhibition if MAPK signalling promotes the early osteoblastic differenciation and mineralization of the extracellular matrix // J. Bone Miner. Res. 2002. -Vol. 17, № 10.-P. 1785-1794.

146. Hitchon P. W., Goel V., et al. Comparison of the biomechanics of hydroxyapatite and polymethylmethacrylate vertebroplasty in a cadaveric spinal compression fracture model // J. Neurosurg. 2001. - Vol. 5, № 10. - P. 215-220.

147. Hu Y., Chan E., Wang S.X. et al. Activation of p38 mitogen-activated protein kinase is required for osteoblast differentiation // Endocrinology. 2003. - Vol. 144, №5.-P. 2068-2074.

148. Imae S., Handa Y., Koyama T. Long-term evaluation of radiographic changes following cervical anterior fusion with hydroxyapatite ceramic spacer // No-Shinkei-Geka. -1996. Vol. 24, N 6. - P. 535-540.

149. Irving J. T. Theories of mineralization of bone. // Clin. Orthopedic related Res. 1973. - Vol. 95, P. 252-236.

150. Jarcho M. Calcium phosphate ceramics as hard tissue prosthetics // Clin. Orthop.-1981.-Vol. 157.-P. 259-278.

151. Kivirikko K., Rustelli L. Biosynthesis of collagen and its alteration inpathological states. // Med. Biol. 1976. - Vol. 54, P. 159-186.

152. Kleinheinz J., Wiesmann H.P., Stratmann U. Evaluating angiogenesis modified by vascular endothelial growth factor (VEGF) // Mund. Kiefer Gesichtschir. 2002. - Vol. 6, № 3. - P. 175-182.

153. Krebsbach P.H., Kuznetsov S.A., Banco P. Bone marrow stromal cells: characterization and clinical aplication // Cril. Rev., Oral Biol. Med.- 1999,-Vol.l0.-P.165-181.

154. Kretsinger R.H. Evolution and function of calcium binding proteins // Int. Rev. Cytol. 1976. - Vol. 46. - P. 323-393.

155. Kuznetsov S.A., Krebsbach P.H., Satomura Kasunito et al. Single-colony derived strains of human marrow stromal fibroblasts form bone after transplantation in vivo // J. Bone, Mineral Research.- 1997.-Vol. 12, №7,-P.335-347.

156. Lee Z.H., Kim H.H. Signal transduction by receptor activator of nuclear factor kappa B in osteoklasts // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2003. -Vol. 305, №2.-P. 211-214.

157. Levine J. P, Bradley J., Turk A. E., Ricci J. L., Benedict J. J, Sfreiner G.,et al. Bone morphogenetic protein promotes vascularization and osteoinduction in preformed hydroxyapatite in the rabbit // Ann Plast Surg. 1997.-Vol. 39.-P. 158-168.

158. Li Y., Yang Y., Yan L. Experimental study on repair of mandibular defect by allogenic decalcified bone compounded with autogenic bone marrow in rabbits // Chung Hua Kou Chiang Hsueh Tsa Chih.- 1996,- Vol. 31, № 4. -P.232-234.

159. Lomri A., Baron R. 1 alpha,25-dihydroxyvitamin D3 regulates the transcription of carbonic anhydrase II mRNA in avian myelomonocytes // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1992. - Vol. 89, № 10. - P. 4688-4692.

160. Mao T. et al. An experimental study on rhBMP-2 composite bone substitute for repairing craniomaxillary bone defects. Chin. J. Dent. Res.,1998.- Vol. 1, № 3. P. 21-25.

161. Mehlisch D.R., Taylor T.D. et al. Collagen-hydroxyapatite implant for augmeting deficient alveolar rides: Twellvee-month clinical data. // J. Oral Maxillofac. Surg. 1988. - V. 46, № 10. - P. 538-563.

162. McKenna, 1988 uht. no flpoimceBire A.B.

163. McMahon C., Will A., Hu P. et al. Bone marrow transplantation corrects osteopetrosis in the carbonic anhydrase II deficiency syndrome // Blood. -2001. Vol. 97, № 7. - P. 1947-1950.

164. Miller A. Molecular packing in collagen fibrils. in: Biochemistry of collagen. - New York, 1976. - P. 85-136.

165. Murray R.K., Ganner D.K., et al. Harpers Biochemistry. Starford. 2000. -927 p.

166. Nauman E.A., Sakata T., Keaveny T.M. bFGF administration lowers the phosphate threshold for mineralization in bone marrow stromal cells // Calcif. Tissue Int. 2003, May 21; (epub ahead of print).

167. Nyman S., Lindhe J., Karring T., et al. New attachment following surgical treatment of human periodontal disease // J. Clin. Periodontol. 1982. - Vol. 9,-P. 290.

168. Ohgushi H. et al., J. Orthop. Res. 1976. -Vol. 7. - P. 568 - 578.

169. Ono I., Gunji H., Sudd K., Kaneko F., Murata M., Saito T., et al. Bone induction of hydroxyapatite combined with bone morphogenetic protein and covered with periosteum. // Plast Reconstr. Surg. 1995. - Vol. 95. - P. 1265-1272.

170. Ono I., Ohura T., Murata M., Yamaguchi H., Ohnuma Y., Kuboki Y. A study on bone induction in hydroxyapatite combined with bone morphogeneric protein. // Plast. Reconstr. Surg. 1992. Vol. 90. - P. 870 -879.

171. Onur I. Qten, Omer Giinhan., et al. Effect of tricalcium phosphate on new bone formation: An. Experimental Study in Beagles. // J. Nihon Univ. Sch. Dent. 1989. - vol. 31, № 3. - p. 507-517.

172. Pedersen K. N., Heanes H. B., Fehn V/ Subperiostal transmucosal porou ceramic titanium implants. // Int. J. Oral Surg. 1979. - № 5 - P. 349-555.

173. Peltier L. F. The use of plaster of Paris to fill large defects in bone // Am. J. Surg. 1959. - Vol. 97, - P. 311.

174. Peltier L. F., Orn D. The effect of the addition of plaster of Paris to autogenous and homogenous bone grafts in dogs // Surg. Forum. 1958. -Vol. 8,-P. 571-574.

175. Penev, 1974 uht. no ilpoimceBira A.B.

176. Petrovich Yu.A., Podorozhnaya R.P., Kichenko S.M. et al. Study of labeled carbonate metabolism in healthy organisms during reparative osteogenesis and denervation by the bone/plasma index // Bull. Exp. Biol. Med. 2003. - № 2. - P. 135-138.

177. Pintar F. A., Maiman D. J., Hollowell J. P. et. al. Fusion rate and biomechanical stiffness of hydroxylapatite versus autogenous bone grafts for anterior discectomy// Spine. 1994. - Vol. 19, № 22. - P. 2524-2528.

178. Posner A. S. Significanse of calcium posphate cristallographic studies to orthopedics. // Bull. Hosp. It. Dis. 1970. - Vol. 31, № 1. - P. 14.

179. Quinn J.M., Horwood N.J., Elliott J. et al. Fibroblastic stromal cellsexpress recepnor activator of NF-kappa B ligandand support osteoclast differentiation // Bone Miner. Res. 2000. - Vol. 15, № 8. - P. 1459-1466.

180. Radentz W.H., Colligns C.K. The implantation of plaster of Paris in the alveolar process of the dog // J. Periodontal. 1965. - Vol. 36, - P. 357.

181. Rawlings C.E. Modern bone substitutes with emphasis on calcium phosphate ceramics and osteoinductors // Neurosurgery. 1993. - Vol. 33, № 5. - P. 935- 38.

182. Reddi A.H, Cunningham N.S. Initiation and promotion of bone differentiation by bone morphogenetic proteins. // Bone Miner Res. 1993. -Vol. 8.-P. 499-502.

183. Ricrard D.J., Sullivan T.A., Shtnker B.J. et al. Induction of rapid osteoblast differentiation in rat bone marrow stromal cell cultures by dexamethasone and BMP-2 // Dev. Biol. 1994. - Vol. 161, № 1. - P. 218228.

184. Rosen H.M. Porous, block hydroxyapatite as an interpositional bone graft substitute in orthognathic surgery. Plast. Reconstr. Surg. 1989. - Vol. 83. -P. 985-990.

185. Ryu K.S., Park C.K., et al. Dose-dependent epidural leakage of polymethylmethacrylate after percutaneous vertebroplasty in patients with osteoporotic vertebral compression fractures // J. Neurosurg. 2002. - Vol. 96, № l.-P. 56-61.

186. Saisei Fu, Yoshitaka Hibino, Yoichi Yamada et al. Experimental study of tissue engineered bone using biodegrable ceramic b TCP as scaffold //

187. Dentistry in Japan. 2002. - Vol. 38. - P. 67-72.

188. Shaffer C.D., App G.R. The use of plaster of Paris in treating infrabony periodontal defects in humans // J. Periodontol. 1971. - Vol. 42. - P. 685.

189. Shen K., Gongloff R.K. Collagen tube conteiners: An Effective means of controlling particulate hidroxyapatie implants. // J. Prosthet. Dent. 1986. -Vol. 56. -№1.- P. 67-70.

190. Sobel A. E. Local fraction in the mechanism of calcification. // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1955. - Vol. 60. - P. 713-717.

191. Sobel A. E. Mineralisation of bones and teeth. // In IV intern. Congr. Clin. Chemistry. Edinburg. - 1960. - P. 150-167.

192. Sobel A. E., Burger M., Nobel S. Mechanism of nuclei formation in the mineralizing tissues. // Clin. Orthop. 1960. - Vol. 17. - P. 103-123.

193. Spengos, 1974 mrr. no ^ponnceBnq A.B.

194. Stagemann.H., Sadler K. Determination of Hydroxyproline. // Clin. Chim. Acta. 1967. - Vol. 18. - P. 297-273.

195. Stahl S. S., Froum S. J. J. Periodontol. 1987. - Vol. 58, № 10. - P. 689695.

196. Takaoka K., Koezuka M., Nakazawa H. Telopeptidedepleted bovine skin collagen as a carrier for bone morphogenetic protein. // J. Orthop. Res. -1991.- №9.-P. 902-907.

197. Takaoka K., Nakamura H., Yoshikawa H., Masuhara K., Tsuda T., Ono K. Ectopic bone induction on and in porous hydroxyapatite combined with collagen and bone morphogenetic protein. Clin. Orthop. 1988. - Vol. 234. -P. 250-254.

198. Taylor T.D., Helfrick J.F. Techmical Consideration in mandibular ride reconstruction with collagen/HA implants. // J. Oral Maxillofac. Surg. -1988. V. 47, № 4. - P. 422-425.

199. Termine J.D., Posner A.S. Amorphous crystalline interrelationships in bone mineral. // Calc. Tiss. Res. 1967. - Vol. 1. - P. 8-23.

200. Tsuruga E., Takita H., Itoh H., Wakisaka Y., Kuboki Y. Pore size off.porous hydroxyapatite as the cell-substratum controls BMP-induced osteogenesis. J. Biochem. Tokyo. 1997. - Vol. 121. - P. 317-324.

201. Uchida S., Sakai A., Kudo H. et al. Vascular endothelial growth factor is expressed along with its reseptors during the healing process of bone and bone marrow after drill-hole injury in rats //Bone. 2003. - Vol. 32, № 5. -P. 491-501.

202. Urist M.R., Craven P.L. Bone cell differentation in avian species: with comments on multinucleation and morphogenesis // Fed. Proc. 1970. -Vol. 29.-P. 1680.

203. Urist M.R., Silvennan B.F., Buring K. The bone induction principle // Clin. Orthop. 1967. - Vol. 52. - P. 243.

204. Urist M.R., Strates B.S. Bone morphogenetic protein // J. Dent, Res. -1971.-Vol. 50.-P. 1392.

205. Urist, et al. Bone regeneration under the influences of bone morphogenetic (BMP) beta tricalcium phosphate (TCP) composite in skull trephine defects in dogs // Clin. Orthop. 1987. - Vol. 213. - P. 295.

206. Wangerin K., Eulers R. Et al. Hydroxyapatite-Kollegen versus Knochenapetit-collagen. // Dtsch. Zahn. Z. 1988. - Bd. 43. - № 1. - S. 4952.

207. Xia Z., Zhu T., Du J., Wang L. Tissue response and the cytoconduction ability to collagen/hydroxyapatite heterotopic implantation // J. Tongji. Med. Univ.-1997.-Vol. 17, №2.-P. 118-122.

208. Yoshida K., Bessho K. et al. Enhancement by recombinant human Bone Morphogenetic Protein-2 of bone formation by means of porous hydroxyapatite in mandibular bone defects // J. Dent. Res. 1999. - Vol. 78, №9.-P. 1505-1510.