Автореферат и диссертация по медицине (14.00.13) на тему:Клинико-генетические аспекты дифференцированной терапии эпилепсии

ДИССЕРТАЦИЯ
Клинико-генетические аспекты дифференцированной терапии эпилепсии - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Клинико-генетические аспекты дифференцированной терапии эпилепсии - тема автореферата по медицине
Бурд, Сергей Георгиевич Москва 2007 г.
Ученая степень
доктора медицинских наук
ВАК РФ
14.00.13
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Клинико-генетические аспекты дифференцированной терапии эпилепсии

На правах рукописи

БУРД Сергей Георгиевич

Клинико-генетические аспекты дифференцированной терапии эпилепсии

(14.00.13 - нервные болезни) Автореферат

Диссертация на соискание ученой степени доктора медицинских наук

Москва 2007

003052964

Работа выполнена на кафедре неврологии и нейрохирургии в Государственном образовательном учреждении высшего профессионального обучения «Российский государственный медицинский университет Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию»

Научные консультанты:

академик РАМН, профессор Евгений Иванович Гусев доктор медицинских наук, профессор Гагик Норайрович Авакян

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор Асанов Алий Юрьевич доктор медицинских наук, профессор Калинина Лариса Васильевна доктор медицинских наук, профессор Лобов Михаил Александрович

Ведущая организация - Санкт-Петербурский Государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова

Защита диссертации состоится_2007 года в_часов

На заседании диссертационного совета Д208.072.01 при Российском государственном медицинском университете по адресу: 117997, Москва, ул. Островитянова, д.1,тел.434-84-64

С диссертацией можно ознакомится в библиотеке Российского Государственного медицинского университета, по адресу: Москва, ул. Островитянова, 1

Автореферат разослан_2007 г.

Ученый Секретарь диссертационного совета доктор медицинских наук,

профессор Джанашия Платон Харитонович

Общая характеристика работы

Актуальность темы. Эпилепсия является распространённым неврологическим заболеванием, которым страдают от 1 до 2% людей во всей популяции (Гусев Е.И., Бурд Г.С., 1994; Browne, Holmes, 2001). В мире насчитывается 50 миллионов больных эпилепсией (Карлов В.А., 1993). Частота возникновения заболевания 50-122 на 100000 населения в год. Распространенность активной эпилепсии 5-8 на 1000 населения, 3-5 % в общей популяции испытывают один или более приступов в течение жизни (Sander J., Shorvon S., 1987). В 29% случаев эпилепсия дебютирует в возрасте до 3 лет (Петрухин A.C. с соавт., 2000), а в целом, в детском и подростковом возрасте - в 70-75% случаев (К.Ю. Мухин, 2000).

Эпилепсия - заболевание, требующее многолетней (не менее 2 лет после прекращения приступов) терапии, которая имеет принципиальное значение для здоровья больного и качества его жизни (Авакян Г.Н. и др., 2005). У 20-30% больных заболевание является пожизненным (Гусев Е.И., 1999; Hauser W., 1997; Kwan P., Brodi M„ 2001; Bell G., 2001; Jallon P.. 2002).

Несмотря на выраженный прогресс в изучении заболевания, патофизиологические механизмы многих форм эпилепсии недостаточно освещены в литературе (Lothman Е., 1996; Loscher W., 2002). При отсутствии определённой этиологической причины, основным критерием, по которому оценивают эффективность препарата, является уменьшение количества приступов. Это зависит от типа приступов и формы эпилепсии у пациента. Наилучшим результатом при применении противоэпилептических препаратов (ПЭП) является полное освобождение от приступов; для большинства пациентов данная цель достижима. Но, несмотря на это, у 30% пациентов при использовании адекватного лечения и тщательного мониторинга приёма ПЭП приступы сохраняются. Фармакорезистентная эпилепсия представляет собой огромную проблему, связанную со смертностью и травматизмом (Juul-Jensen Р., 1986). Актуальность проблемы эта не решена даже после появлении новых ПЭП, которые оказались высоко эффективными у многих пациентов (Regesta G., Tanganelli P., 1999).

Дальнейшая оптимизация лечения эпилепсии требует понимания механизмов фармакорезистентности, с которой коррелируют некоторые клинические данные, например: начало приступов в возрасте до 1 года, высокая частота приступов при отсутствии лечения, фебрильные судороги в анамнезе, парциальные приступы, структурные изменения и врожденные мальформации головного мозга. Одной из причин фармакорезистентности эпилепсии являются так же генетические факторы, влияющие на биодоступность препаратов, в частности нарушение проникновения препарата через ГЭБ, приводящее к потере эффективности ПЭП. Важной характеристикой фармакорезистентных эпилепсий является невосприимчивость ко всем ПЭП, даже если механизм их действия различен. Данный факт говорит против эпилептического повреждения рецепторов

лекарственных препаратов как основного механизма фармакорезистентности и указывает на неспецифические адаптивные механизмы, такие как уменьшенный лекарственный захват при гиперэкспресии или повышенной активности транспортёров лекарств в ГЭБ, почках, кишечнике (Loscher W., Potschka Н., 2001).

Индивидуальные различия клинического ответа на противоэпилептические препараты обусловлены сложным взаимодействием между факторами окружающей среды и генетическими характеристиками (Stoughton R., Friend S., 2005; Shastiy В., 2006). Хотя интерес к применению достижений молекулярной генетики для улучшения медикаментозной терапии эпилепсии и многих других заболеваний достаточно велик, однако практическое применение фармакогенетики оказалось трудным для реализации. В настоящее время попытки выделить варианты генов, ассоциированные с терапевтическими или побочными эффектами противоэпилептических препаратов, основываются на предварительной идентификации генов-кандидатов и последующей оценке распределения вариантов аллелей у лиц с хорошим или неудовлетворительным клиническим ответом на лечение (Ferraro Т., Buono R., 2005). Изучение этих эффектов в ближайшие годы позволит добиться лучших результатов в лечении эпилепсии.

Цель исследования:

Клинико-генетическое изучение возможностей выделения вариантов генов, ассоциированных с терапевтическими эффектами противоэпилептических препаратов, на основании предварительной идентификации генов-кандидатов и последующей оценке распределения вариантов аллелей у лиц с хорошим клиническим ответом на лечение.

Задачи исследования:

1. Определить гены-кандидаты ответственные за фармакогенетические процессы противоэпилептических препаратов.

2. Изучить влияние генетического полиморфизма на фармакокинетическиие процессы противоэпилептических препаратов.

3. Выявить зависимость фармакодинамических эффектов противоэпилептических препаратов от полиморфизма генов.

4. Провести анализ зависимости действия противоэпилептических препаратов от полиморфизма генов кодирующих фармакологические процессы противоэпилептических препаратов.

5. Определить роль фармакогенетического исследования в различии индивидуальных ответов при использовании противоэпилептических препаратов и развитии фармакорезистентности у больных с эпилепсией на фоне лечения.

Научная новизна:

В результате проведенного исследования впервые у больных эпилепсией была выявлена зависимость действия противоэпилептического препарата от генетического полиморфизма, генов кодирующих фармакокинетические и фармакодинамические процессы. Для фармакокинетических процессов определяющим являются: всасывание, распределение, транспорт и выведение лекарственного средства. Определены гены, кодирующие данные структуры и ферментативные реакции, полиморфизм которых влияет на течение этих реакций, связывание с белками - транспортерами, что в свою очередь сказывается на средней, эффективной дозе препарата, а так же его концентрации в крови. Для фармакодинамических процессов впервые определена роль генетического полиморфизма в эффектах противоэпилептических препаратов и влияние генетического полиморфизма генов, кодирующих данные структуры на дозу препарата, что сказывается на эффективности лечения пациентов. Полученные данные позволяют прогнозировать эффективную среднюю дозу препарата для данного конкретного больного, предотвратить возможность возникновение жизнеугрожающих побочных эффектов, спрогнозировать один из возможных механизмов фармакорезистентности.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Фармакогенетическое исследование может быть использовано в качестве метода анализа при подборе и коррекции противоэпилептической терапии у больных эпилепсией, что позволит объективизировать выбор и своевременно назначить лекарственное средство необходимое для данного конкретного пациента, избежать побочных эффектов, вплоть до жизнеугрожающих.

2. Полиморфизм генов кодирующих фармакокинетические процессы (всасывание, распределение, транспорт, метаболизм) оказывает существенное влияние на эффективную среднюю дозу препарата и его концентрацию в крови.

3. Фармакодинамический эффект противоэпилептических препаратов зависит от аллельного варианта генов, осуществляющих кодирование структур-мишений через которые осуществляется действие лекарственных средств.

4. Одной из причин фармакорезистентности при эпилепсии является полиморфизм генов кодирующих транспортные белковые системы, ферментативные реакции и пр., посредством которых осуществляется фармакологический процесс.

Практическая значимость работы

Практическая значимость работы заключается в возможности выявить пациентов с высоким риском развития токсического эффекта, а также больных, для которых необходимы более низкие терапевтические дозы лекарственных препаратов; с высокой степенью вероятности выявить пациентов с максимальной реализацией терапевтического эффекта от того или иного препарата. В данной ситуации избежать побочных эффектов можно будет путем уменьшения дозы лекарственного препарата. Пациентам, у которых подбор терапии осуществляется методом проб и ошибок, этот подход принесет дополнительные преимущества: более короткий период, в течение которого заболевание не поддается или плохо поддается контролю со стороны врача; уменьшение риска негативных результатов терапии, которые могут наблюдаться в случае неконтролируемого состояния; снижение количества визитов к врачу, так как эффективность терапии будет проявляться раньше. Совокупности этих факторов могут иметь экономическую эффективность.

Полученные данные позволят изменить общепринятую основу назначения лекарственной терапии у больных эпилепсией и реализовать принцип индивидуального назначения препаратов, учитывая метаболизм конкретного пациента.

Внедрение результатов работы

Результаты диссертационной работы внедрены в работу неврологических отделений ГКБ №1 им. Н.И.Пирогова г. Москвы, НИИ нейрохирургии им. Бурденко, используются в лекциях и практических занятиях со студентами лечебного факультета РГМУ, слушателями ФУВа, ординаторами и аспирантами кафедры неврологии и нейрохирургии лечебного факультета ГОУ ВПО РГМУ Росздрава.

Апробация работы

Основные положения диссертации представлены и обсуждены на: совместной научно-практической конференции сотрудников кафедры неврологии и нейрохирургии с курсом ФУВ, в лаборатории по изучению нарушений мозгового кровообращения ГОУ ВПО РГМУ Росздрава, Международном форуме неврологов (2004), П Международной конференции «Молекулярная медицина и биобезопасность» (2005), II Международном конгрессе «Восстановительная медицина и реабилитация» (2005), ХП Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (2006), 4-й Международной конференции "Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам" (2006), IX Всероссийский съезд неврологов (2006).

Публикации

По теме диссертации опубликовано 43 научные работы.

Объем и структура диссертации

Диссертация изложена на 197 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов, 6 глав, отражающих результаты собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов и библиографического указателя содержащего 14 отечественных и 287 зарубежных авторов; содержит 74 рисунка, 17 таблиц.

Содержание работы

Материалы и методы исследования

Обследован 271 больной с различными формами эпилепсии. Симптоматическая фокальная эпилепсия (СФЭ) была диагностирована у 128 пациентов, криптогенная фокальная эпилепсия (КФЭ) (вероятно симптоматическая) - у 91 больного, идиопатическая генерализованная эпилепсия (ИГЭ) - у 52 больных (рис. 1).

СФЭ 128 {+7%}

Рис.1. Распределение больных по формам эпилепсии

В исследование включались только пациенты принимающие противоэ п ил епти ч ее к и е препараты - карбамазепины, препараты вальпроевой кислоты, топирамат в режиме монотерапии с адекватным ответом на принимаемую терапию, то есть урежением приступов не меньше, чем на 50%.

Всем больным для верификации диагноза проводилось клиническое неврологическое обследование, электроэнцефалографическое исследование, КТ или МР томография.

Исследование неврологического статуса проводилось по схеме принятой на кафедре неврологии и нейрохирургии с курсом ФУВ (Е.И. Гусев с соавт., 1985). Регистрация ЭЭГ проводилась в стандартных условиях. Применялся монополярный способ отведения потенциалов с размещением индифферентных электродов на мочках ушей. Биоэлектрическая активность головного мозга исследовалась на универсальном компьютерном энцефалографе «МБН-Нейрокартограф» (Россия). ЭЭГ записывали на 19-канальном безбумажном электроэнцефалографе, 16 активных электродов располагались в соответствии с международной системой 10-20. Сопротивление электродов контролировалось и не превышало 20 кОм. Частотная полоса записываемых биопотенциалов мозга - от 0.5 Гц (постоянная времени 0,3 с) до 35 Гц.

Исследование концентрации противоэпилептических препаратов в крови проводили методом ВЭЖХ (высокоэффективной жидкостной хроматографии). Анализ концентрации карбамазепинов проводят с использованием метода высаливания препарата, с предварительной депротеинизацией на обращенно-фазной хроматографической колонке на оптимальной длине волны спекгрофотометрического детектора. Анализ концентрации вальпроатов проводят методом ВЭЖХ с использованием однократной экстракции препарата эфиром с последующей дериватизацией и анализом на обращенно-фазной хроматографической колонке на оптимальной длине волны спектрофотометрического детектора.

Для получения ДНК необходимой степени чистоты использовали фенол-хлороформный метод выделения ДНК из крови. Генотипирование проводили на амплификаторе амплификаторе «Терцик» («ДНК-технология», Россия) по методике, описанной Pengfei Song et al., 2002.

Результаты исследования

Клинико-нейрофизиологический анализ больных эпилепсией.

Основные представленные формы эпилепсии различались по этиологии, клиническим проявлением и течению заболевания, изменениям на ЭЭГ и МРТ, а так же эффективностью препаратов. Данные различия являлись одним из основных факторов отбора пациентов в группу исследования: урежение приступов минимум на 50 %, расценивалось нами, как адекватный ответ на принимаемую терапию.

Этиологический фактор включения больных в исследование основывался на тщательном сборе анамнеза, клинических проявлениях приступов и изменениях на ЭЭГ.

Для пациентов с ИГЭ - 52 больных (19,2 %), преобладающих в детском и подростковом возрасте ЭЭГ до лечения препаратами характеризовалось сохранной основной активностью, с взависимостью от синдрома появлением генерализованной эпилептиформной активности (спайк-волна, острая волна и т.д.), регистрируемой билатерально (рис. 2).

'Vy^iTrV

a^vjuifV

r^jvW ✓WyvAV l\J l/i/KA 'V

A/Vw

(Лш»1

A/jjY^IV

-vWS^*

I ' I

ЛАЛрл/Ы!/4-

AwMv лЯ^Ыд^ /"у A/J^ /Vuvv*;^^

-Nvivv^v- -Uv^vw"«

^L-^-rvw

ТГр

Рис. 2. Фрагмент ЭЭГ пациента с ИГЭ до лечения

" ff^-^V^jEU1 Vj WW "j "

Пациенты с КФЭ составили вторую по численности группу - 91 больной (33,6 %). В этой группе характерным было отсутствие структурных изменений на МРТ при наличии фокальных приступов с вторичной генерализацией или без нее и преобладали пациенты молодого и среднего возраста. Изменения на ЭЭГ характеризовались умеренно выраженными общемозговыми изменениями с нарушением регулярности альфа-ритма и усилением представленности диффузной медленной активности в диапазоне тета- и дельта-волн, наличием (в некоторых случаях) региональной эпилептиформной активности в виде вспышек острых волн, комплексов пик - волна, спайков с или без вторично-билатеральной синхронизацией (рис. 3).

аДЛ^гм^^м^

Рис. 3. Фрагмент ЭЭГ пациента с КФЭ до лечения

Группу с СФЭ составили 128 пациентов (47,2 %), в основном среднего и старшего возраста. У этих больных регистрировались структурные изменения на МРТ и фокальные приступы с и/или без вторичной генерализации. ЭЭГ больных характеризовалась умеренными изменениями биоэлектрической активности головного мозга дезорганизованного типа с замедлением основной активности в области структурного дефекта с периодическими вспышками эпилептиформной активности, в виде острых волн, спайков с тенденцией к вторично-билатеральной синхронизации (рис. 4).

Рис. 4. Фрагмент ЭЭГ пациента с СФЭ до лечения

Электроэнцефалографическими коррелятами эффективности лечения, по - мимо клинического проявления заболевания - урежения приступов, явилось уменьшение представленности и спектра мощности эпилептиформной активности на ЭЭГ с нарастанием нормальной организации корковой ритмики.

В группе пациентов с ИГЭ на фоне проводимой терапии изменения в биоэлектрической активности проявлялись в виде снижения представленности эпилептиформной активности с уменьшением общего амплитудного спектра мощности (рис. 5).

«км-« Т

Л/ «лкуДчЛ!**' гч^Ч/ *

V* гч^аУ V /у /""р"4 ^ л/ Л ^-/уО^ ^д

-V -л/И\л V

/V »ЛЛ/л-чЛ- V/ г-

А^л/ л ^ у(- -лг ГЦА/ ^ / /ОлДл_лГ\Л\ V

"Л/

. V

! !

У чл^уу V-- Г*- 1/\, ^

Л \Л ^л^Чл+Л/ А» Л" Д

ч ^ллл-г-

-чЛ -Л ^А^/1

Г Д^л^лУ \ ЧАД/1 Л^Ц-^

-л-ру^ /ЦагуЛ

•л^хЛ. /"^УЧ -А

^ -Л -чЛ ---М«!^ -Ал^Л

! . I I

Рис. 5. Фрагмент ЭЭГ пациента с ИГЭ на фоне лечения

• ' ' ! ' '—

I ! ' ' 1 ' Л^лАлЬлл /л/Л/Цл^я?

У пациентов с КФЭ на фоне приема противоэпилептических препаратов отмечались изменения характеризовавшиеся снижением количества вспышек пароксизмальной и эпилептиформной активности с тенденцией к нормализации основных ритмов и зональных распределений (рис. 6).

/••л^'дАДД^^ДД/члЛ/^

гДЛлклли^

лг^^^-Лл —^

Рис. 6. Фрагмент ЭЭГ пациента с КФЭ на фоне лечения

В группе пациентов с СФЭ электроэнцефалографические изменения под влиянием принимаемой терапии выглядели следующим образом уменьшением регистрации эпилептиформной и пароксизмальной активности и возникновением вторично-билатеральной синхронизации с модуляцией основных ритмов (рис. 7).

Рис. 7. Фрагмент ЭЭГ пациента с СФЭ на фоне лечения

Таким образом, изменения ЭЭГ на фоне лечения противоэпилептическими препаратами является одним из критериев оценки эффективности лечения больных эпилепсией.

Клинико-генетическое исследование

Анализ полиморфизма Ala54Thr гена FAPB2.

Анализ отобранных пациентов выявил частоты аллелей полиморфного маркера Ala54Thr гена FAPB2: Ala(G) - 0,66; Thr(A) - 0,34. Частоты генотипов составили: Ala/Ala - 0,42; Thr/Thr - 0,09; Ala/Thr - 0,49. Распределение частот генотипов подчинялось закону Харди-Вайнберга (%2 ~ 1,94<3,84).

По результатам исследования на выборке из 127 пациентов, принимающих препараты вальпроевой кислоты средние эффективные дозы, для носителей гомозиготных генотипов АА и GG составили 846±144 и 1131 ± 56 мг/сут. соответственно (указано среднее значение ± стандартная ошибка). Для носителей гетерозиготного генотипа AG средняя эффективная доза составила 924+61мг/сут. (рис. 8).

аа ад дд

Рис. 8. Зависимость средней эффективной дозы вальпроевой кислоты от генотипа РАРВ2

Вертикальными линиями показаны доверительные интервалы, снизу указано количество образцов, попадающих в эту группу

Статистически достоверного различия средних эффективных доз между гомозиготным генотипом АА и гетерозиготным Ав не было выявлено (р-0,75). Достоверные различия по средним эффективным дозам отмечались между генотипами Ав и вО (р=0,02). Отсутствие достоверных различий между генотипами АА и Ав, позволили объединить их в одну группу (А+), средняя доза которой составила 910+56 мг/сут., а, гомозиготный генотип вв - (А-). Средние эффективные дозы вальпроевой кислоты для носителей генотипов (А+) и (А-) статистически достоверно различались (р=0,02) (рис.

9).

Рис. 9. Зависимость средней эффективной дозы вальпроевой кислоты от генотипов (А+) и (А-) ЕАРВ2 (р=0,02)

У 77 больных была определена пиковая концентрация несвязанной (свободной) вальпроевой кислоты в крови (С^). Для пациентов с генотипом АА средняя максимальная концентрация составила 81±2,8 мкг/мл, для генотипа Ав - 82±7,5 мкг/мл, а для генотипа вй - 88±6,9 мкг/мл. При исследовании зависимости средней максимальной концентрации от генотипов РАРВ2 достоверных различий выявлено не было (р=0,25).

Группа пациентов, принимающих карбамазепины составила 68 человек. Средние эффективные дозы карбамазепинов: для носителей генотипов АА, Ай и вв составили 667±61мг/сут., 549±56мг/сут. и 675±66,7мг/сут. соответственно. Достоверных различий в показателях зависимости дозы карбамазепинов от генетического полиморфизма БАВ2 получено не бьшо (р>0,05) (рис. 10).

Рис. 10. Зависимость средних эффективных доз карбамазепинов от генотипов РАРВ2 (р>0,05)

У 40 пациентов была определена пиковая концентрация карбамазепина в крови (Стой). Для пациентов с генотипом АА концентрация составила 8,3 мкг/мл, для генотипа Ав средняя равнялась - 7,5±0,6мкг/мл, а для генотипа вв - 9,2±1мкг/мл. В связи с единично-представленным генотипом АА статистического сравнения с данным, генотипом не проводилось, однако статистическое сравнение генотипов Ав и вО, выявило достоверные различия по (Ст1И) (р=0,04). . > и.'

В группу пациентов, принимающих .топирамат, был включен 41 человек. В этой группе средние эффективные дозы топирамата составили 142±35 мг/сут., 204+34 мг/сут. и 177±27 мг/сут. для носителей генотипов АА, Ав и Ов, соответственно. Между каждой из групп статистически достоверного различия уровня средних значений выявлено не было (р>0,05) (рис И).

Генотип РАВР2

Рис. 11. Зависимость средних эффективных доз топирамата от генотипов РАРВ2 (р>0,05)

Таким образом, результаты проведенной работы показывают, что полиморфизм гена РАРВ2 значимо влияет на эффективную дозу вальпроевой кислоты, но не влияет на дозу топирамата и карбамазепина.

Анализ полиморфизма С3435Т гена 1УШШ.

Частоты аллелей полиморфного маркера С3435Т гена МОЯ! составили: С (№) - 0,43; Т(М) - 0,57. Частоты генотипов составили: СС - 0,21; СТ -0,44; ТТ - 0,35. Распределение частот генотипов подчинялось закону Харди-Вайнберга (у? =0,63<3,84)

Группу пациентов принимающих препараты вальпроевой кислоты составили 128 человек. При сопоставлении средних доз вальпроатов в зависимости от генетического полиморфизма МОЮ, были получены следующие данные, для генотипа ММ средняя доза составила 1000±71 мг/сут., для WM - 1016±60 мг/сут. и для - 951±96 мг/сут. Статистически достоверных различий по показателям зависимости дозы вальпроатов от генотипа МОЯ1 получено не было (р>0,05) (рис. 12).

Генотип

Рис. 12. Зависимость средней эффективной дозы вальпроевой кислоты от генотипов МОШ (р>0,05)

Исследование влияния генетического полиморфизма МОШ на уровень концентрации препаратов вальпроевой кислоты у 77 пациентов, показало, что средние пики концентрации для генотипа WW составили 81±9,4 мкг/мл, ММ - 82±8,1 мкг/мл, для \УМ- 88±7,6 мкг/мл. Статистически достоверных различий в зависимости между показателями .концентрации вальпроатов в крови и генетическим полиморфизмом МОШ получено не было (р>0;05).

Карбамазепины принимали 68 пациентов. Данные зависимости средней эффективной дозы карбамазепина от генетического полиморфизма показали, что для генотипа ММ средняя доза составила 583±65 мг/сут., для >УМ -662± 64 мг/сут. и для - 436±64 мг/сут. (рис. 13).

мм

ш

Генотип МОЯ1

Рис. 13. Зависимость средней эффективной дозы карбамазепина от генотипов МОЮ (р=0,06)

Статистически достоверных различий между средними эффективными дозами гомозиготных генотипов ММ, ^^ и гетерозиготного АОТЛ получено не было (р=0,06). Так же как и при исследовании полиморфизма гена РАРВ2, генотипы ММ и \УМ были объеденены в одну группу (М+), средняя доза которой составила 630±46 мг/сут., а гомозиготный генотип соответственно как (М-). Средние эффективные дозы карбамазепинов для носителей генотипов (М+) и (М-) статистически приближались к достоверньш (р=0,07) (рис. 14).

MMиWlvt

Генотип 1мТОР1

Рис. 14. Зависимость средней эффективной дозы генотипов (М+) и (М -) МОЯ1 (р=0,07)

карбамазепинов от

Исследование концентрации у 40 пациентов принимающих карбамазепины показало, что для генотипа ММ средняя максимальная концентрация карбамазепина в крови составила 9,6±1 мкг/мл, для \УМ -7,6± 0,8 мкг/мл и для - 5,6± 0,7 мкг/мл. Статистически достоверных различий по показателям средних максимальных концентраций между гетерозиготными генотипами выявлено не было (р>0,05). Выявленные различия средних значений для гомозиготных генотипов и ММ

статистически достоверны (р<0,01).

Группу пациентов, принимающую топирамат составили 56 больных. При сопоставлении средних эффективных доз топирамата и генетического полиморфизма МОЮ, было показано, что для генотипа ММ эта доза составила 147±31 мг/сут., для \УМ - 180±23 мг/сут. и для - 149±29 мг/сут. Статистически достоверных различий между дозой препарата и генотипом выявлено не было (р >0,05) (рис. 15).

Генотип МОЯ"!

Рис. 15. Зависимость средней эффективной дозы топирамата от генотиов ЖШ(р >0,05)

Таким образом, результаты проведенной работы показывают, что полиморфизм гена МОШ оказывает влияние на эффективную дозу карбамазепина и не влияет на дозу топирамата и вальпроевой кислоты.

Анализ полиморфизма Н268У гена иСГ2В7.

Частоты аллелей полиморфного маркера Н268У гена 1ЮТ2В7 составили: *1 - 0,46; *2 - 0,54. Частоты генотипов составили: *1/*1 - 0,25; *1/*2 - 0,41; *2/*2 - 0,33. Отклонения от равновесия Харди-Вайнберга обнаружено не было (%2 = 0,92<3,84).

Группа пациентов принимающих вальпроаты состояла из 91 человека. Исследование зависимости средней эффективной дозы вальпроата от генетического полиморфизма 1ЮТ2В7 показало, что для генотипа *1/*1

средняя доза составила 858±80 мг/сут., для * 1/*2 - 951±86,7 мг/сут. и *2/*2 -945± 78 мг/сут. (рис. 16). : , .

_П5 23 _п= 36_л» 32_

Г 1

*1Л1 ЧЛ2 *2Г2

Генотип исТ2В7

Рис. 16. Зависимость средней эффективной дозы вальпроевой кислоты от генотипов \JGT2B7 (р>0,05)

Статистически достоверных различий по показателям дозы вальпроатов от генотипа 1ЮТ2В7 получено не было (р>0,05).

При исследовании зависимости концентрации препаратов вальпроевой кислоты от генентического полиморфизма 1ЮТ2В7 у 57 пациентов, средние максимальные концентрации препарата составили 84 мкг/мл для всех аллельных вариантов.

Пациенты, принимающие карбамазепины составили группу из 49 человек. Выявление зависимости средней эффективной дозы карбамазепинов от генетического полиморфизма 1ЮТ2В7 показало, что для генотипа *1/*1 средняя доза составила 600±92,6 мг/сут., для * 1/*2 - 570±64 мг/сут.и *2/*2 -633±88 мг/сут. (рис. 17).

*1/*1 "1Г2 "2Г2

Генотип иеТ2В7

Рис. 17. Зависимость эффективной средней дозы карбамазепинов от генотипов 1ЮТ2В7 (р>0,05)

Достоверных различий между зависимостью дозы препарата от генетического полиморфизма \JGT2B7 получено не, было (р>0,05).

Исследование зависимости концентрации . карбамазепинов от генетического полиморфизма 1ЮТ2В7 у 29. пациентов показало, что средняя максимальная концентрация препарата в крови для генотипа *1/*1 составила 8±0,8 мкг/мл, для *1/*2 - 7±0,8 мкг/мл и *2/*2 - 9±1,4 мкг/мл. Статистически достоверных различий между зависимостью концентрации карбамазепинов в крови и генетическим полиморфизмом \JGT2B7 получено не было (р>0,05).

Группа пациентов принимающих топирамат состояла из 49 человек. По результатам исследования было установлено, что средние эффективные дозы топирамата для носителей гомозиготных генотипов *1/*1 и *2/*2 составили 219±43 мг/сут. и 105±14 мг/сут. соответственно. Для носителей гетерозиготного генотипа *1/*2 средняя эффективная доза составила 176±23 мг/сут. Статистически достоверного различия по показателям средних эффективных доз между гомозиготным генотипом *1/*1 и гетерозиготным *1/*2 не выявлено (р>0,05). Получены статистически достоверные различия по средним эффективным дозам между гомозиготными генотипами * 1/* 1 и *2/*2 (р=0,01) и гетерозиготным генотипом *1/*2 и генотипом *2/*2 (р=0,02) (рис. 18).

Поскольку достоверного различия по средним эффективным дозам между генотипами *1/*1 и *1/*2 выявлено не были, но данные генотипы достоверно отличались по изучаемому показателю от генотипа *2/*2, данные генотипы были объединены в одну группу (1+), средняя доза которой составила 192±21 мг/сут. Средние эффективные дозы топирамата для двух групп носителей генотипов *1/*1 и *1/*2 (1+) и *2/*2 (1-) статистически достоверно различались (р<0,01) (рис. 19).

•2Г2

Генотип ивТ2В7

Рис. 19. Зависимость средней эффективной дозы топирамата от генотипов ивТ2В7{объединенные генотипы (1+) и (1-)(р<0,01)

Таким образом, результаты проведенной работы показывают, что полиморфизм гена 1ЮТ2В7 влияет на эффективную дозу топирамата и не влияет на дозу карбамазепина и вальпроевой кислоты.

Анализ связи полиморфизма -243 А>в гена СА02.

Группу пациентов принимающих вальпроаты составили 110 человек. Средние эффективные дозы вальпроатов в зависимости от генетического полиморфизма -243 А>в САЛ2, показали, что для варианта АА доза соответствовала 1035±57 мг/сут., Ав - 978±73 мг/сут. и вв - 1075±175 мг/сут. Достоверных различий в зависимости средней эффективной дозы от генетического полиморфизма 6/Ш2 выявлено не было (р>0,05) (рис. 20).

•е-■е-

ag QS

Генотип GAD2

Рис. 20. Зависимость средней эффективной дозы вальпроевой кислоты от генотипов GAD2

Исследование концентрации вальпроевой кислоты в крови у 69 пациентов, показало, что для генотипа АА средняя максимальная концентрация была равна 85±6,4 мкг/мл, для вО - 71±8,6 мкг/мл и Ав -92±10,3 мкг/мл. Достоверных различий между показателями зависимости концентрации вальпроатов в крови и генетическим полиморфизмом С/Ш2 получено не было (р>0,05).

Группу пациентов, принимающих карбамазепины, составили 59 больных. Средние эффективные дозы препарата в зависимости от генетического полиморфизма ОАВ2 составили: для АА - 570±51,1 мг/сут., АО 631±67,4 мг/сут. и бй ■ 1000±400 мг/сут. Достоверных данных зависимости эффективной дозы от генетического полиморфизма вА02 выявлено не было (р>0,05)(рис. 21).

■е-

sg gg

Генотип GAD2

Рис. 21. Зависимость средней эффективной дозы карбамазепинов от генотипов GAD2 (р>0,05)

При исследовании концентрации карбамазепинов в крови 34 пациентов зависимости от генетического полиморфизма С/Ш2, (Стах) препарата составили: для генотипов АА -8,1±0,66 мкг/мл, Ав - 7,8±1,4 мкг/мл и вй - 10,3 мкг/мл, который был выявлен только у одного пациента. Достоверных различий между концентрации карбамазепинов в крови и генетическим полиморфизмом вА02 выявлено не было (р>0,05).

В группе пациентов, принимающих топирамат, было 35 человек. Средние эффективные дозы препарата для каждого генотипа составили: АА -162±20 мг/сут., Ав - 149±36 мг/сут. и Ов - 300±100 мг/сут. При изучении зависимости средней эффективной дозы топирамата от генетического полиморфизма ОАВ2 не было выявлено достоверных различий (р>0,05), разница средней эффективной дозы гомозиготных генотипов составляет 1,8 раза, но редкость встречаемости гомозиготного генотипа по аллелю в в изучаемой популяции не позволяет сделать достоверных выводов, хотя при увеличении выборки возможно получить более точные данные (рис. 22).

■е-fl-

ag

Генотип GAD2

Рис. 22. Зависимость средней эффективной дозы топирамата от генотипов GAD2 (р>0,05)

Таким образом, результаты проведенной работы показывают, что полиморфизм гена GAD2 не оказывает достоверного влияния на эффективную дозу топирамата, карбамазепина и вальпроевой кислоты.

Анализ связи полиморфизма A(-290)G гена CYP3A4.

В группу пациентов, принимающих препараты вальпроевой кислоты было, включено 126 человек. Средние эффективные дозы для вальпроатов в зависимости от генетического полиморфизма A(-290)G составили, для генотипа Wt/Wt - 1008±43.4 мг/сут., для генотипа Wt/V - 808±97мг/сут. При статистической обработке полученных данных, не было выявлено достоверных различий по показателю средней эффективной дозы (р=0,13) (рис. 23).

Рис. 23. Зависимость средней эффективной дозы вальпроевой кислоты от генотипов СУРЗА4 (р=0,13)

Концентрацию вальпроатов в крови исследовали у 77 пациентов. Средние максимальные концентрации генотипов составили для - 85±5

мкг/мл, для ^Х/Ч- 83±20 мкг/мл. Достоверных зависимостей между концентрациями препарата в крови от генетического полиморфизма СУРЗА4 выявлено не было (р>0,05).

Группа пациентов принимающих препараты карбамазепинового ряда, состояла из 63 пациентов. Средние эффективные дозы для гомозиготного генотипа составили 578±41,2 мг/сут., для гетерозиготного 1133,3±176,4 мг/сут. При исследовании зависимости средней эффективной дозы препарата от генетического полиморфизма СУРЗА4, были выявлены достоверные различия (р<0,05) по изучаемым показателям, для гомозиготного генотипа Wt/Wt доза препарата была в 1,5 раза меньше, по сравнению с гетерозиготным генотипом (рис. 24).

Генотип СУРЗА4

Рис. 24. Зависимость средней эффективной дозы карбамазепинов от генотипов СУРЗА4 (р<0,05)

Группу пациентов, которым было проведено исследование концентрации карбамазепина в крови составили 37 человек. Средняя концентрация препарата в крови для генотипа составила 8 мкг/мл, а для \Vt7Wt - 8,1 мкг/мл. В связи с редкой представленностью генотипа трудно судить о влиянии генетического полиморфизма гена СУРЗА4 на среднюю концентрацию препарата.

В исследуемой группе топирамат принимало 53 человека. Средние эффективные дозы для гомозиготного генотипа составили -163±16,3 мг/сут. для гетерозиготного - 275±125 мг/сут. Как видно из рисунка, достоверные данные (р>0,05) о влиянии генетического полиморфизма СУРЗА4 на среднюю эффективную дозу топирамата отсутствуют (рис. 25).

& 8

Генотип СУРЗА4

Рис. 25. Зависимость эффективной средней дозы топирамата от генотипов СУРЗА4 (р>0,05)

Таким образом, результаты проведенной работы выявили достоверные различия в средней эффективной дозе у пациентов, принимающих карбамазепин в зависимости от полиморфизма гена СУРЗА4. Редкая встречаемость гетерозиготного генотипа не позволяет полученные в отношении вальпроевой кислоты и топирамата данные считать достоверными.

Выводы

1. Комплексное клинико-нейрофизиологическое исследование 271 больного с различными формами эпилепсии позволило оценить функциональное состояния биоэлектрической активности головного мозга, является объективным при диагностике и выявлении прогностических критериев эффективности проводимой противоэпилептической терапии у больных эпилепсией.

2.Генетический полиморфизм А1а54ТЬг гена РАРВ2 оказывает достоверное влияние на эффективные средние дозы и среднемаксимальные концентрации в крови препаратов вальпроевой кислоты. Это выражается в том, что для генотипов (АА и Ав (А+)) эффективными являются как меньшие дозы вальпроата, так и меньшие концентрации его в крови. Для носителей генотипа (вв (А-)) эффективны более высокие дозы препарата и большие концентрации в крови. Достоверных данных о влиянии генетического полиморфизма А1а54ТЬг гена РАРВ2 на эффективную дозу карбамазепинов и топирамата не выявлено.

3.Выявлена значительная зависимость между полиморфизмом С3435Т гена МОЯ! и эффективными средними дозами и концентрациями в крови

карбамазепина. У гомозиготных по аллелю Т пациентов выявлена в среднем в 1,8 раза более высокая пиковая концентрация карбамазепина в крови, чем у гомозиготных по аллелю С. Определяется также разница по эффективной средней дозе карбамазепина между носителями аллеля С и Т, для носителей аллельного варианта Т необходима в 1,5 раза большая доза препарата. Статистически достоверных различий в зависимости между средней эффективной дозой и концентрацией в крови вальпроатов, а так же топирамата и генетическим полиморфизмом С3435Т MDRI получено не было.

4.Получены статистически достоверные данные о влиянии генетического полиморфизма H268Y гена UGT2B7 на среднюю эффективную дозу топирамата. Эффективная средняя доза топирамата: для пациентов группы (*1/*1 и *1/*2 (1+)) в 1,8 раза выше чем, в группе (*2/*2 (I-)). Достоверных данных о влиянии генетического полиморфизма H268Y гена UGT2B7 на эффективную дозу карбамазепинов и вальпроатов не выявлено.

5. Данных зависисмости средней эффективной дозы препаратов вальпроевой кислоты, карбамазепина и топирамата от генетического полиморфизма -243 A>G гена GAD2 не выявлено.

6. Показано влияние генетического полиморфизма A(-290)G гена CYP3A4 на эффективную среднюю дозу карбамазепинов: для генотипа Wt/V средняя эффективная доза препарата в 2 раза выше, чем для генотипа Wt/Wt. Достоверные данные между средней эффективной дозой препаратов и средней максимальной концентрации в крови вальпроевой кислоты, а также топирамата, в зависимости от генетического полиморфизма A(-290)G гена CYP3A4 отсутствуют.

7. В результате проведенного анализа показана роль фармакогенетического исследования в сравнительной оценке эффективности лечения больных противоэпилептическими препаратами и влияние полиморфизма генов, кодирующих фармакокинетические и фармакодинамические процессы на средне эффективные дозы и концентрации лекарственных средств. Результаты фармакогенетических исследований могут объяснять причины фармакорезистентности эпилепсии.

Практические рекомендации

1. Предложенное комплексное клинико-генетическое обследование пациентов с различными формами эпилепсии следует использовать в работе неврологов специализированных клинико-диагностических центрах, лечебно-профилактических учреждений для диагностики и лечения, больных эпилепсией.

2. Выявленные в работе гены и их полиморфизм, оказывающий влияние на эффективную дозу принимаемого препарата, являются достоверным и прогностическим критерием эффективности и обоснованности проводимой противоэпилептической терапии.

3. Использование генетического анализа для назначения дифференцированной терапии у больных эпилепсией позволит индивидуализировать лечение пациентов, то есть подобрать наиболее адекватный по показаниям у данного конкретного человека препарат с учетом его индивидуального генотипа.

4. Внедрение в работу полученных данных позволит избежать побочных эффектов от действия противоэпилептических препаратов, вплоть до жизнеугрожающих.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Clinical, biochemical, neurophysiological aspects of epilepsy in patients with celebrovaslulal disordes (CVP)// 1 Baltic sea conference in epilepsy, Germany, Kiel, 1997. Burd G.S., Guekut A., Danibinova S., Shpan A., Lebedeva., BurdS.

2. Epilepsy after stroke: the influence of age, focus location and carotid artery pathology. //Congress of European Federation of Neurological societies. SeviJia. Sept. 19-25 1998 S141. G.S.Burd, A.B.Guekht, A.V.Lebedeva, O.B.Lokshina, I.J.Kurkina, S.GJBurd, N.A.Pavlov, O.J.Kurash.

3. Epilepsy after stroke: the influence af age, focus location carotid artery pathology.// Europian Journal of Neurology, 1998. V5 (Suppl 3), S141. Burd G.S., Guekht A.B., Lebedeva A.V., Lokshina J.B., Kurkina I.V., Burd S.G., Pavlov N.A., Kurash О J.

4. Физическая активность и параксизмальные состояния//Сборник тезисов " Медицина и физическая культура на рубеже тысячелетий". Москва 2000, 14-1 б и ю н я стр. 51 -52 (Г.Н. Авакян, О.Л. Бадалян, С.Г. Бурд, Стойко М.И.).

5. Электрогенез головного мозга при семейных случаях эпилепсии.// Актуальные проблемы современной клинической генетики. Сборник научных трудов РГМУ, Москва, 2001 (Т.Н. Авакян, Л.Н. Неробкова, С.Г. Бурд, О.М. Олейникова).

6. Nooglutil action on learning and memory impaired by secondary generalized seizures in juvenile rats.// Журнал психофармакология и биологическая наркология 2/01 Garibova Taissiya L., Burd Sergey G., Voronina Tatjana A., Krajneva Valentina A., Nerobkova Lubov N., Avakyn Gagik N.

7. Пространственная организация ЭЭГ по данным когерентного анализа при эпилепсии у женщин.// Материалы 8 Всероссийского съезда неврологов, Казань, 2001. (Г.Н. Авакян, Т.А. Воронина, Л.Н. Неробкова, Э.Р. Довлетханова, О.Л. Бадалян, С.Г. Бурд, О. М. Олейникова).

8. Механизм действия и особенности клинического применения мексидола в качестве нейропротектора.// 4 Международная конференция "Биоантиоксидант". Москва, 2002, стр. 91-92. (Т.А. Воронина, Л.Д. Смирнов, Л.Д. Лукянова, В.В. Любшина, В.В. Бобахо, С.Г. Бурд, И.Г. Капица).

9. Влияние нооглютила на бензодиазепиновый синдром отмены и связывания [3 Н]- спиперонас D2- рецепторами в стриатуме крыс.//Ж. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. Москва, № 11,2002, Том 134, 522-525. (Т.А. Воронина, Г. Г. Борликова, Т. В. Проскурякова, О.Б. Петриченко, Г.Н.Авакян, С.Г. Бурд).

Ю.Влияние карбамазепина на структурно-функциональные связи в развитии эпилептической системы.// Клиническая и экспериментальная фармакология. Москва, 2/02, стр. 7-9. (OJI. Бадалян, JI.H. Неробкова, Т.А. Воронина, Г.Н. Авакян, И.В. Маркина, М.И. Стойко, С.Г. Бурд, О.М.Олейникова, A.A. Митрофанов).

11.Когерентный анализ альфа-ритма ЭЭГ у подростков.// 10 Российский национальный конгресс «Человек и лекарство». Москва, 2003, стр.432. (Бурд С.Г., Бадалян O.JL, Воронина Т.А., Гарибова Т.Л., Неробкова JI.H., Авакян Г.Н.).

12.0собенности когнитивных функций у подростков с идиопатической генерализованной эпилепсией.// «Современные научные направления в неврологии». Юбилейный альманах научных трудов. Под. ред. В.А. Карлова, Москва, 2003, С.140-141(Бурд С.Г., Бадалян О.Л., Авакян Г.Н., Олейникова О.М., Соломатин Ю.В.).

13.Применение топамакса в режиме монотерапии при различных формах эпилепсии.// Международный форум неврологов, Ереван 27 — 28 сентября 2004 г., стр. 202 (Авакян Г.Н., Бадалян О.Л., Бурд С.Г., Ридер Ф.К., Тертышник О.Ю., Бойко А.Н.).

14.Систематика больных эпилепсией.// Международный форум неврологов, Ереван 27 — 28 сентября 2004 г., стр. 153 (Авакян Г.Н., Бадалян O.JL, Бурд С.Г., Юцкова Е.В., Тертышник О.Ю.).

15. Опыт применения топамакса в режиме монотерапии при эпилепсии в поликлинических учреждениях.// Журнал неврологии и психиатрии имени С.С. Корсакова, Т 105, 2/2005 стр. 65-66 (Авакян Г.Н., Бадалян О.Л., Бурд С.Г., Бойко А.Н.).

16. Применение антиоксиданта группы 3-оксипиридина в комбинированной патогенетической терапии больных парциальными эпилепсиями.// Журнал неврологии и психиатрии имени С.С. Корсакова, Т 105, 6/2005 стр.21-25 (Авакян Г.Н., Рыжова М.В., Бадалян О.Л., Бурд С.Г., Стойко М.И.).

17. Effect of lamictal on EEG paroxysmal activity of the female rat brain in different stages of the oestrous cycle.// Abstracts of the 8th ECNP Regional Meeting Moscow, Russia, April 4-16, 2005, S256 (F.K. Rider, T.A. Voronina, G.N. Avakian, S.G. Burd, L.N. Nerobkova, Yu.V. Solomatin, T.S. Kalinina, A.V. Volkova).

18. Анализ ассоциации полиморфизмов генов FAPB2, MDR1 в связи с эффективностью действия антиконвульсантов.// II Международная конференция молекулярная медицина и биобезопасность, сборник тезисов, 20 - 21 октября 2005 г. Москва, Россия, стр. 149 (Авакян Г.Н., Бадалян О.Л., Бурд С.Г., Качалин Е.Ю., Аксенова М.Г.).

19. Peculiarities of lamotrigine effect on electroencephalogram paroxysmal activity of male and female raps brain with cobalt-induced epileptogenic sensorimotor cortex.// Abstract book 3 young medics' international conference, September 19-21, 2005, Yerevan, Armenia, S. 153 (Rider F.K., Voronina T.A., Avakian G.N., Nerobkova L.N., Burd S.G.).

20. Sex differences of rat's brain with cobalt-induced epileptogenic sensorimotor cortex electroencephalogram paroxysmal activity.// Abstract book 3 young medics' international conference, September 19-21, 2005, Yerevan, Armenia, S. 154 (Rider F.K., Voronina T.A., Avakian G.N., Nerobkova L.N., Burd S.G.).

21. Применение мексидола в комплексной противоэпилептической терапии.//Сборник тезисов второй международный конгресс «Восстановительная медицина и реабилитация», Москва, 2005, стр. 7 (Бадалян O.JL, Стойко М.И., Бурд С.Г., Авакян Г.Н.).

22. Применение топирамата в лечении эпилепсии и профилактике эпилептического статуса^/ Журнал медицина критических состояний, №4 (Июль-Август) 2005, стр. 7-11 (Авакян Г.Н., Бадалян O.JI., Бурд С.Г., Бойко А.Н., Гусев Е.И.).

23. Различная эффективность ламиктала у самок на протяжении астрального цикла.// ХП Российский национальный конгресс «Человек и лекарство», Москва, 2005, С.529-530 (Ридер Ф.К., Воронина Т.А., Авакян Г.Н., Бурд С.Г., Неробкова JI.H., Соломатин Ю.В., Калинина Т.С., Волкова А.В.).

24. Effect of lamictal on EEG paroxysmal activity of the female rat brain in different stages of the oestrus cycle.// The Journal of the ECNP, 2005, №15(28), S256. (Rider F.K., Voronina T.A., Avakian G.N., Burd S.G., Nerobkova L.N., Solomatin Yu.V., Kalinina T.S.).

25. Ультраструктурные изменения каппиляров вторичного стволового синдрома при инфарктах в больших полушариях головного мозга.// Новые методы диагностики и лечения в клинической приктике, Сборник тезисов, Москва, 2005, стр. 91-92 (Шелякина J1.A., Бурд С.Г., Боголепов Н.Н., Мартынов М.Ю., Гусев Е.И.).

26. Особенности применения ламотриджина у мужчин и женщин с эпилепсией.// «Неврология длиною в жизнь». Сборник научных работ к 80-летию члена-корреспондента РАМН, профессора В.А. Карлова. Под. ред. И.Д. Стулина, Москва, 2006, стр. 35 (Авакян Г.Н., Бадалян O.JL, Бурд С.Г., Ридер Ф.К., Воронина Т.А., Неробкова JI.H.)

27. Простые ВЭЖХ-методики в лекарственном мониторинге финлепсина, фенобарбитала, дифенина, препаратов вальпроевой кислоты при эпилепсии и в практике химико-токсикологических лабораторий наркодиспансеров.// 4-я Международная конференция "Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам". Материалы конференции, МО, 13— 16 марта 2006, Сан. "Подмосковье", стр. 15 (Р.Р. Биктимеров, П.Б. Глаговский, А.А. Дутов, И.С. Мамедов, С.Г. Бурд).

28. С равнительная оценка применения ламиктала у мужчин и женщин с эпилепсией.// 4-я Международная конференция "Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам". Материалы конференции, МО, 13—16 марта 2006, Сан. "Подмосковье", стр. 62 (С.Г. Бурд, Ф.К. Ридер, Т.А. Воронина, Г.Н. Авакян, O.JI. Бадалян, JI.H. Неробкова).

29. Анализ ассоциации полиморфизмов гена FAPB2 в связи с эффективностью действия препаратов вальпроевой кислоты.// 4-я Международная конференция "Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам". Материалы конференции,МО, 13— 16 марта 2006, Сан. "Подмосковье", стр. 5 (Аксенова М.Г., Качалин Е.Ю., Авакян Г.Н., Бадалян O.JL, Бурд С.Г., Ф.К. Ридер).

30. С пектральный и когерентный анализ пространственной организации биоэлектрической активности головного мозга у больных эпилепсией до и после лечения.//Журнал нейродиагностика и высокие биомедицинские технологии, №2,2006, стр. 91-96.(Авакян Г.Н., Бадалян O.JL, Бурд С.Г., Ридер Ф.К., Воронина Т. А., Неробкова Л.Н.).

31. Нейропсихолоптческие нарушения у больных с симптоматической локально-обусловленной эпилепсией.// 9 Всероссийский съезд неврологов, материалы съезда, Ярославль, 30.05-2.06.2006, стр. 510 (Т.Н. Авакян, А.Н. Боголепова, С.Г. Бурд, О.Ю. Ворошкевич).

32. Оптимизация помощи пациентам страдающим эпилепсией на модели работы эпилептологического кабинета ЦАО г. Москвы.// 9 Всероссийский съезд неврологов, материалы съезда, Ярославль, 30.05-2.06.2006, стр. 511 (С.Г. Бурд, И.Ю. Артемова, O.JI. Бадалян, Г.Н. Авакян, А.Н. Бойко).

33. Анализ ассоциации полиморфизмов гена MDR1 в связи с эффективностью действия карбамазепина.// 9 Всероссийский съезд неврологов, материалы съезда, Ярославль, 30.05-2.06.2006, стр. 531 (С.Г. Бурд, Е. Ю. Качалин, Г. Н. Авакян JI.A. Шелякина, М. Г. Аксёнова).

34. Ультраструктурные изменения в стволе головного мозга при инфарктах в больших полушариях.// 9 Всероссийский съезд неврологов, материалы съезда, Ярославль, 30.05-2.06.2006, стр. 501 (JI.A. Шелякина, С.Г. Бурд, H.H. Боголепов, А.Н. Боголепова, М.Ю. Мартынов, Е.И. Гусев).

35. Оптимизация фармакотерапии эпилепсии. Возможности применения габапентина. // Русский медицинский журнал, Т. 14, №9, 2006, стр. 710-712 (O.JI. Бадалян, С.Г. Бурд, A.A. Савенков, О.Ю. Тертышник, Е.В. Юцкова).

36. Применение Фенотропила в лечении неврологических заболеваний.// Русский медицинский журнал, Т. 14, №16, 2006, стр. 12221228 (O.JI. Бадалян, С.Г. Бурд, A.A. Савенков, О.Ю. Тертышник, Е.В. Юцкова, ДА. Тарарина).

37. Новые антиконвульсанты - преимущества и недостатки.// Медицинский вестник, №25, 9.08.06, стр.12-14 (Г. Н. Авакян, O.JI. Бадалян, С.Г. Бурд, Ф.К. Ридер, О.Ю. Тертышник).

38. Новые антиконвульсанты: преимущества и недостатки.// Вертеброневрология, том 13,№ 1-2,2006, стр.47-53 (Бурд С.Г).

39. Тендерные особенности применения ламотриджина.// Журнал неврологии и психиатрии имени С.С. Корсакова, приложение «Эпилепсия», 2006, стр. 31-35. (Г. Н. Авакян, O.JI. Бадалян, С.Г. Бурд, Ф.К. Ридер, Т.А. Воронина, JI.H. Неробкова).

40. Особенности эпилепсии у беременных.// Журнал "Неврологический вестник им В.М.Бехтерева" выпуск 2, 2006 стр. 25-36 (Ридер Ф.К., Бадалян O.JL, Ковалева Е.И., Бурд С.Г., Авакян Г.Н.).

41. Клинико-нейрофизиологический анализ эффективности ламотриджина у больных эпилепсией.// Журнал «Врач», №3,2007, стр. 19-26 (Ридер Ф.К., Бадалян O.JL, Ковалева Е.И., Бурд С.Г., Авакян Г.Н.).

42. Анализ ассоциации полиморфизма С802Т гена UGT2B7 в связи с эффективностью действия топирамата.// Журнал неврологии и психиатрии имени С.С. Корсакова, Т 107, 5/2007 стр. 42-51 (Аксенова М.Г., Бурд С.Г., Качалин Е.Ю., Авакян Г.Н., Бадалян O.JL, Савенков A.A., Тертьплник О.Ю., Дорофеева М.Ю., Белоусова Е.Д., Гусев Е.И.).

43. Анализ ассоциации полиморфизма гена FAPB2 в связи с эффективностью действия препаратов вальпроевой кислоты.// Журнал неврологии и психиатрии имени С.С. Корсакова, Т 107, 1/2007 стр. 42-46 (Аксенова М.Г., Бурд С.Г., Авакян Г.Н., Качалин Е.Ю., Бадалян O.JL, Ридер Ф.К., Дорофеева М.Ю., Белоусова Е.Д., Гусев Е.И.).

Заказ №571. Объем 2 п.л. Тираж 100 экз.

Отпечатано в ООО «Петроруш». г. Москва, ул. Палиха-2а, тел. 250-92-06 www.postator.ru

 
 

Оглавление диссертации Бурд, Сергей Георгиевич :: 2007 :: Москва

страницы

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1 Роль фармакогенетики в изучении эпилепсии

1.2 Фармакокинетика и эпилепсия.

1.2.1 Транспорт лекарственных средств и связывание с белками плазмы.

1.2.2 Метаболизм лекарственных средств

1.3 Фармакодинамика и эпилепсия.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Общая характеристика больных.

2.2. Методы исследования.

2.2.1. Клинические методы исследования.

2.2.2. ЭЭГ-исследование.

2.2.3. Метод ВЭЖХ (высокоэффективной жидкостной хроматографии).

2.2.3.1. Определение концентрации карбамазепина в сыворотке крови методом ВЭЖХ.

2.2.3.2. Определение концентрации вальпроевой кислоты в сыворотке крови методом ВЭЖХ.

2.2.4. Метод выделения ДНК.

2.2.4.1. Выделение ДНК из эпителиальных клеток ротовой полости человека.

2.2.4.2. Экстракция суммарной геномной ДНК из периферической крови.

2.2.5. Полимеразная цепная реакция. страницы

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,

ГЛАВА 3. КЛИНИКО-НЕЙРОФИЗИОЛОГИЧЕСкИЙ

АНАЛИЗ.

Г Л ABA 4, АНАЛИЗ ПОЛ И МОРФИЗМА ГЕНА FABP2. ВЗ

4.1. Анализ связи полиморфизма гена FABP с эффективной дозой препаратов валиироеной кислоты.

4.2. Анализ связи полиморфизма гена FABP с эффективной дозой кзрбамаэепннов

4.3. Анализ связн полиморфизма гена FABP с эффекта вной дозой топ нрамата.

ГЛАВА 5. АНАЛИЗ ПОЛИМОРФИЗМА ГЕНА MDR.

5.1. Анализ связи полиморфизма гена MDR с эффективной дозой препаратов вальпроевой кислоты.

5.2. Анализ связи полиморфизма гена NfDR с эффективной дозой карбамазспннов,

5.3. Анализ связи полиморфизма гена MDR с эффективной дозой топнрамата.

ГЛАВА 6. АНАЛИЗ ПОЛИМОРФИЗМА ГЕНА UGT2B7.

6.1. Анализ связи полиморфизма гена UGT2B с эффективной дозой препаратов вальпроевой кислоты

6.2. Анализ связи полиморфизма гена UGT2B с эффективной дозой карбамизепинов

6.3. Анализ связи полиморфизма гена UGT2B с эффективной дозой топнрамата,

ГЛАВА 7, АНАЛИЗ ПОЛИМОРФИЗМА ГЕНА GAD2. t

7.1, Анализ связи полиморфизма reiiaGAD с эффективной лозой препаратов вальпроевой кислоты.

7.2, Анализ связи полиморфизма renaGAD с -эффективной дозой карбамазспинов,

7.3, Анализ связи полиморфизма гена GAD с эффективной дозой топнрамата.

ГЛАВА 8. АНАЛИЗ ПОЛИМОРФИЗМА ГГ.НА CYP3A4.

В. t. Анализ связи полиморфизма гена CYP3 А4 с эффективной лозой препаратов вальпроевой кислоты, 136 в,2, Анализ связи полиморфизма гена CYP3A с эффективной дозой карбамазепннов. 140 В.З. Анализ связи полиморфизма (сна CYP3A с эффективной дозой толирамата.

ОБСУЖДЕНИЕ

ВЫВОДЫ

УКАЗАТЕЛЬ СОКР АШ ГНИЙ

СПИСОК Л ИТЕРАТУРЫ

 
 

Введение диссертации по теме "Нервные болезни", Бурд, Сергей Георгиевич, автореферат

Эпилепсия является распространённым неврологическим заболеванием, которым болеют or i до 2% людей во всей популяции. (Гусев ЕЛ., Бурд ПС, 1994; Browne, Holmes, 2001). В мире насчитывается 50 миллионов больных эпилепсией (Карлов В.А., 1993). Частота возникновения 50-122 на 100000 населения в год. Распространенность активной эпилепсии 5-8 на 1000 населения, 3-5 % в обшей популяции испытывают один иди более приступов когда-либо в течение жизни {Sander J. Shorvon S. 1987). В 29% случаев эпилепсия дебютирует в возрасте до 3 лет (Петрухнн А-С, с соавт., 2000), а в делом, в детском и подростковом возрасте, в 70-75% случаев (К.Ю. Мухин, 2000),

Эпилепсия - заболевание, требующее многолетней (не менее 2 лет после прекращения приступов) терапии, которая имеет принципиальное значение дня здоровья больного и качества его жизни (Авакян Г.Н. и др. 2005), У 20-30% больных заболевание является пожизненным (Гусев Е.И., 1999; Hauser W., 1997- Kwan P., Brodi М. 2001; Betl G, el all., 200Ц Jallon P., 2002).

Несмотря на достигнутый, прогресс в понимании заболевания, для многих форм эпилепсии имеется очень мало информации о патофизиологических механизмах (Lothman EW., 1996; Loscher W., 2002). При отсутствии определённой этнологической причины основным критерием, по которому оценивают эффективность препарата, является уменьшение количества приступов. Это зависит or тина приступов и формы эпилепсии у пациента. Наилучшим результатом при применении противоэпнлегтгнческнх препаратов (ПЭГ1) является полное освобождение от приступов, и для большинства пациентов данная цель достижима. Но* несмотря на это, у 30% пациентов при использовании адекватного лечения и тщательного мониторинга приёма ПЭП приступы сохраняются. Фармакорезистентная эпилепсия представляет собой огромную проблему, связанную со смертностью и травматизмом (Juul-Jcnsen Р-. 19&б), Проблема значительно не уменьшилась даже после появлении новых ПЭП, которые оказались высоко эффективными у многих пациентов (Rcgesla G,, Tanganelli Р„ 1999).

Дальнейшие развитие в лечении эпилепсии требует понимания механизмов фармакорезистентностит с которой коррелируют некоторые клинические данные, например, начало приступов в возрасте до 1 года, высокая частота приступов при отсутствии лечения, фебрилъные судороги в анамнезе, парциальные приступы, структурные изменения и врожденные мальформацин головного мозга. Также одной из причин фармакорезнстентностн эпнлепенн являются генетические факторы, влияющие на биодостуттностъ препаратов, в частности нарушение проникновения препарата через ГЭБ, приводящее к потере эффективности ПЭП. Важной характеристикой фармакорезистеитных форм эпилепсии является невосприимчивость ко всем ПЭП, даже сслн механизм их действия различен. Данный факт говорит против эпилептического повреждения рецепторов лекарственных препаратов как основного механизма фармакорезнстентностн н указывает на неспецнфнческие адаптивные механизмы, такие как уменьшенный лекарственный захват при гнперэкспрееин или повышенной активности транспортёров лекарств в ГЭБ, почках, кишечнике (Loscher W-, Fotschka П., 2001).

Индивидуальные различия клинического ответа на противоэпилептичеекис препараты обусловлены сложным взаимодействием между факторами окружающей среды к генетическими характеристиками {Stoughton R-, Friend S., 2005; Shastry В., 2006). Интерес к применению достижений молекулярной генетики для улучшения медикаментозной терапии эпилепсии и многих других заболеваний велик; однако, практическое применение фармакогенетнки оказалось трудным для реализации. В настоящее время попытки выделить варианты геиои. ассоциированные с терапевтическими или побочными эффектами противоэпилептнческих препаратов, основываются на предварительной идентификации генов-кандидатов и последующей оценке распределения вариантов аллелей улице хорошим или неудовлетворительным клиническим ответом на лечение (Ferraro Т., Buono R., 2005}- Изучение этих эффектов в ближайшие годы позволит добиться большего успеха в лечении эпилепсии

Цель исследования:

Клннико-гснстичсское изучение возможностей выделения вариантов генов, ассоциированных с терапевтическими эффектами противоэпилептнческих препаратов, на основании предварительной идентификаций генов-кандидатов м последующей оценке распределения вариантов аллелей у лиц с хорошим клиническим ответом на лечение

Задачи исследования?

1. Определить гены-кандидаты ответственные за фармакогенетические процессы противоэпнлептнчсских препаратов.

2. Изучить влияние генетического полиморфизма на фармакокннетнческиие процессы противоэпилептнческих препаратов,

3. Выявить зависимость фармакодннамических эффектов противоэпилептнческих препаратов от полиморфизма генов.

4. Провести анализ зависимости действия протнвоэпнлептических препаратов от полиморфизма генов кодирующих фармакологические процессы противоэпилсптнческнх препаратов.

5. Определить роль фармакогенетнческого исследования в различии индивидуальных ответов при использовании прогивоэпнлептическнх препаратов и развитии фармакорезнстенткостн у больных с эпилепсией на фоне лечения.

Научная новизна;

В результате проведенного исследования впервые у больных эпилепсией была выявлена зависимость действия протнвоэпнлептичсского препарата от генетического полиморфизма, генов кодирующих фармакокикетнчсскис и фарм акодн намнчсс к ие процессы. Для фармакокинетических процессов: всасывание, распределение, транспорт и выведение лекарственного средства, определены гены, колирующие данные структуры и ферментативные реакции, полиморфизм которых влияет на течение этих реакций, связывание с белкамн - транспортерами, что в свою очередь сказывается на средней, эффективной дозе препарата, л так же его концентрации а крови. Для фармакодинамнческих процессов впервые определена роль генетического полиморфизма в эффектах протнвоэпнлептнческнх препаратов н влияние генетического полиморфизма генов, кодирующих данные структуры на дозу препарата, что так же сказывается на эффективности лечения пациентов, Полученные данные позволяют спрогнозировать эффективную среднюю дозу препарата для данного конкретного больного, предотвратить возможность возникновение жизнсугрожаюших побочных эффектов, спрогнозировать один из возможных механизмов фармакорсзнстектности,

ПраЕ™Чесуая иначнмосп, работы

Практическая значимость работы заключается в возможности вычислить пациентов с высоким риском развития токсического эффекта, а также тех, для кого необходимы более низкие терапевтические дозы лекарственных препаратов, определить пациентов, которые с высокой степенью вероятности получат желаемый терапевтический эффект от того или иного препарата. В данной ситуации побочные аффекты можно будет избежать через уменьшение дозы лекарственного препарата. Другим перспективным направлением может быть определение группы пациентов, у которых с высокой долен вероятности будет наблюдаться эффективный ответ на терапию- Пациентам, у которых подбор терапии осуществляется методом проб и ошибок, фармакогенетическое исследование принесет дополнительные преимущества, включая: более короткий период, в течение которого их заболевание не поддается или плохо поддается контролю, уменьшение риска негативных результатов терапии, которые могут наблюдаться в случае неконтролируемого состояния» снижение количества визитов к врачу, так как эффективность терапии будет проявляться раньше, Совокупности этих факторов могут иметь экономическую эффективность.

Полученные данные позволят изменить сегодняшнюю основу назначения лекарственной терапии у больных эпилепсией и реализовать принцип индивидуального назначения препаратов, учитывая метаболизм конкретного пациента.

Основные положения, выносимые на защиту*

1. Фармакогенетическое исследование может быть использовано в качестве метода анализа при подборе и коррекции протнвоэпилептнческой терапии у больных эпилепсией, что позволит объективизировать выбор и своевременно назначить лекарственное средство необходимое для данного пациента, избежать побочных эффектов, вплоть до жизнеугрожающих,

2, Полиморфизм генов кодирующих фармакокинетическне процессы (всасывание, распределение1 транспорт, метаболизм) оказывает существенное влияние на -эффективную среднюю дозу препарата и его концентрацию в крови.

3. Фармакодннамнчсскнн эффект протнвоэпнлептнческич препаратов зависит от аллельного варианта генов, осуществляющих кодирование структур-ми шеннй, через которые происходит действие лекарственных средств,

4. Одной in прнчнн фармакорезистеетности при эпилепсии является полиморфизм генов кодирующих транспортные белковые системы, ферментативные реакции и пр., посредством которых осуществляется фармакологический процесс.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Клинико-генетические аспекты дифференцированной терапии эпилепсии"

Выводы.

1,Комплексное клннико-нейрофнзиологическое исследование 271 больного с различными формами эпилепсии позволило оценить функциональное состояния биоэлектрической активности головного мозга, является объективным при диагностике и выявлении прогностических критериев эффективности проводимой противоэпидемической терапии у больных эпилепсией.

2,Гснстнческнй полиморфизм Ala54Thr гена FAPB2 оказывает достоверное влияние на эффективные средние лозы и срелнемакснмальные концентрации в крови препаратов вальпроевой кислоты. Это выражается в том, что для генотипов (АА и AG (А+)> эффективными являвэтея как меньшие дозы вальпроата, так и меньшие концентрации его в крови. Для носителей генотипа (GG (А-)) эффективны более высокие дозы препарата и большие концентрации в крови- Достоверных данных о влиянии генетического полиморфизма Ala54Thr гена FAPB2 на эффективную дозу карбамазепннов и топнрамата не выявлено.

3,Выявлена значительная зависимость между полиморфизмом С3435Т гена MDRI и эффективными средними дозами и концентрациями в крови карбамазепина. У гомозиготных по аллсдю Т пациентов выявлена в среднем в 1,8 раза более высокая пиковая концентрация карбамазепина в крови, чем у гомозиготных по аллелю С- Определяется также разница по эффективной средней дозе карбамазепина между носителями аллеля С н Т, для носителей аллелыюго варианта Т необходима в 1,5 раза большая доза препарата, Статистически достоверных различий в зависимости между средней эффективной дозой и концентрацией в крови вадьпроатов, а так же топнрамата и генетическим полиморфизмом С3435Т MDRI получено не было.

4 Получены статистически достоверные данные о влиянии генетического полиморфизма H268Y гена UGT2B7 на среднюю эффективную дозу топнрамата. Эффективная средняя доза топнрамата: для пациентов группы <*1/*1 и '1/*2 (1+)) в 1.8 раза выше чем, в группе (*2/*2 (I-)) Достоверных данных о влиянии генетического полиморфизма H268Y гена UGT2B7 на эффективную дозу карбамазепинов и вальпроатов не выявлено.

5-Данных завнснсмостн средней эффективной дозы препаратов вальпроевой кислоты, карбамазепнна и топнрамата от генетического полиморфизма -243 A>G гена GAD2 не выявлено.

6.Показано влияние генетического полиморфизма A(~290)G гена CYP3A4 на эффективную среднюю дозу карбамазепинов: для генотипа Wi/V средняя эффективная доза препарата в 2 раза выше, чем для генотипа Wt/Wt Достоверные данные между средней эффективной дозой препаратов и средней максимальной концентрации в крови вальпроевой кислоты, а также топнрамата, в зависимости от генетического полиморфизма A(-29Q)G гена CYP3A4 отсутствуют,

7. В результате проведенного анализа показана роль фармакогенетического исследования в сравнительной оценке эффективности лечения больных протнвоэпилегггнческими препаратами и влияние полиморфизма генов, кодирующих фармакокннетнческне и фармакодннамнческис процессы на средне эффективные дозы и концентрации лекарственных средств. Результаты фармакогенетнческнх исследований могут объяснять причины фармакорезистснгностн эпилепсии.

УКАЗАТЕЛЬ СОКРАЩЕНИЙ

ПЭП - протнвоэп клсптнчсскис препараты

ГЭБ - гсматоэнцефали ческий барьер

ГЛБ - гематоликворный барьер

ГАМК - гамма - амнномаслепная кислота

ОАТР - органический полнпептндный аннон транспортер

ОАТ - органический анионный транспортер

РОТ - транспортер простагландина riTTI(P-gp) - П-глнкопротенн

ФД - фармакодннамика

ФК * фармакокинетика

MDR - ген лекарственной полнрезистентностн

FABP2 - белок, связывающий жирные кислоты

VP А - вал Mi роевая кнелота/вальпроаты

LMT - ламотриджнн

GBZ - карбамазепнн

CYP - цитохром Р450

РБГ1 - растворимый белок-переносчик

ABC - АТФ-с вязывзюше белки

SLC02A - переносчик монокарбоксильных производных

GAD ■ глутамат декарбоксилаза

СФЭ - симптоматическая фокальная эпилепсия

КФЭ - крнптоген ная фокальная эпилепсия

ИГЭ - ндиопатнчсская генерализованная эпилепсия

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2007 года, Бурд, Сергей Георгиевич

1., Бадалян ОЛ-, Бурд С.Г. Бойко АН., Гусев Е.Ш/ Применение топнрамата а лечении эпилепсии и профилактике эпнлатгнчссного статуса// Журнал медицина критических состояний. Кч4 (Июль-Август) 2005, стр, 7-1!

2. Бурд Г.С. Международная классификация эпилепсии и основные направления ее лечения. //Журнал невропатологии и психиатрии. '1995. -№3. -С. 4-12

3. Гусев Е.И., Авакян Г.Н., Бадалян О.Л. и соавт. Тактика ведения н дополнительные возможности тсрапнни больных эпилепсией, Пособие для врачей. Москва, 2005,

4. Гусев Е. И., Бурд Г.С, Эпилепсия М„ 1994 - стр.3

5. Гусев Е.И., Гехт А.Б. Куркина И.В., Лакшина О.Б., Лаврова Д.И., Шпак А.А., Гагаева Т.Ю., Тлапшокова Л.Д. Пьяных С.Е., Лебедева А.В Эпидемиологическое исследование эпилепсии в Москве. Журнал неврол и психиатр; 1999, Т.99, №10,51 55,

6. Зенков Л.Р., Ронкнн МА, Электроэнцефалография.// В кн. Функциональная диагностика нервных болезней. 2-е изд.- М. Медицина, 199t.-C.7-146.61.

7. Зенков Л.Р. Клиническая электроэнцефалография с элементами эпилептологии .//Таганрог: Изд-во ТРТУ, 1996,358 с.

8. Карлов В.А. Эпилепсия, -М„ 1990. -336 с.

9. Карлов В.А., Овтанатов Б.С., Власов П,Н. Клинические и лектроэнцефалографические аспекты катаменнальной эпнлепенн.// Ж. Невр, и псих. 1993, т 93-1 -стр. 8-12,

10. Середеннн С.Б, Фармакогенетическое изучение новых психотропныхсредств, док. дне., 1983,18 стр.

11. Ambrosio A., Soares-Da-Sitva P., Carvalho C-, Carvalho A. Mechanisms of action of carbamazepinc and its derivatives, oxcarbazepine. B(A 2-093, and BlA 2-024. Neurochem Res 2002;27:121-30,

12. Agren J., Valve R„ Vidgren H,, Laakso M„ Uusitupa M- (1998) Arteriosclcr Thromb. Vase. Biol. 18,1606-1610,

13. Bailey D., Briggs J. The binding of selected therapeutic drugs to human serum alpha-1 acid glycoprotein and to human serum albumin in vitro. Ther Drug Monil 2004;26:40-3.

14. Baier L„ Sacchettini J., Knottier W, Eads J., Paolisso G„ Tataranni P. Hisayoshi M., Bennett P., Bogardus С . Prochazka M. (1995) J, Clin, Invest 95,1281-1287,

15. Baier L„ Bogardus C., Sacchdtini J. (1996) J. Biol. Chcia 271, 1089210896.

16. Baicr L. Bogardus C., Sacehcuini J. A polymorphism in the human intestinal fatty acid binding protein alters fatty acid transport across Caco-2 cells. J Biol Chem 271:10892-10896,1996.

17. Banh H-, Burton M., Sperling M. Interpatient and intrapa~tient variability in phenytoin protein binding, Ther Drug Monit 2002;24:379-85.

18. Battino D., Croci D„ Granata Т. Estienne M., Pisani, F. Avanzini G. (1997). Lamotfigine plasma concentrations in children and adults: influence of age and associated therapy. Ther Drug Monit 19,620- 627.

19. Beck-Nielsen H,, Groop L Metabolic and genetic characterization of prediabetic states, Sequence of events leading to non insulin dependem diabetes meSlitus. J Clin Invest 94: 1714-1721, 1994.

20. Bell G-, Sander J. The epidemiology of epilepsy; the size of the problem //Seizure, 2001♦- Vol, 10 (4), - P. 306 - 314 (quiz 315-316).

21. Benedetti M., Coupez R„ Whomsley R. Nicolas J.t Collart P., Baltes E. Comparative pharmacokinetics and metabolism of levetiracetam, a new anticpilcptic agent, in mouse, rat, rabbit and dog. Xenobiotica 2004;34:281-300,

22. Berg К (1990) Acta Genet, Med, Gemeltol 39, 15-24.

23. Berg A,. Levy S., Novotny E., et al. Predictors of intractable epilepsy in childhood: a case*controI study. Epilepsia 1996; 37: 24-30,

24. Bernus I., Dickinson R., Hooper W-, Eadic M. (1997). The mechanism of the carbamazepine-valproate interaction in humans. Br j Ctin Pharmacol 44, 2127.

25. Black D. (1995) J. Pediatr Gastroenterol, Nutr. 20, 125-147.

26. Borden L., Murali Dhar T„ Smith K., Weinshank R., Branchek T„ Gluchowski С Tiagabinc, SK&F 89976-A, CI-966, and NNC-7II are selective for the cSoned GABA transporter GAT-1. Eur J Pharmacol 1994;269:219-24,

27. Borst P., Evers R, Kool M., Wijnholds J. (2000) A family of drug transporters: the multidrug resistance-associated proteins. J. Nat. Cancer InsL 92:1295-1302.

28. Bosma P. (2003). Inherited disorders of bilirubin metabolism. J Hepatol 38, 107-117.

29. Bourgeois B. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of topiramate .J Child Neurol. 2000; 15 Suppl l:S27-30,

30. Brandolcse R., Scordo M,, Spina E., Gusella M., Padrini R. Severe phenytoin intoxication in a subject homozygous for CYP2C9*3- Clin Pharmacol Ther 2001 ;70:391 -4.

31. Borst P., Evers R., Kool M-, Wijnholds J. A family of drug transporters: the multidrug resistance-associated proteins. J Nail Cancer Irtsi 20Q0; 92:12951302.

32. Brinkmann U., Roots L, Eichelbaum M. Pharmacogenetics of the human drug-transporter gene MDRI: impact of polymorphisms on pharmacotherapy -Drug Discov Today 2001; 6:835-839.

33. Brodic M, Tiagabine pharmacology in profile. Epilepsia. 1995; 36 (Suppl. 6):S7-9.

34. Browne T\ Pharmacokinetics of antiepileptic drugs. Neurology 1998; 51(5, SuppJ. 4):S2-7.

35. Burchell B. (2003) Genetic variation of human UDP-glueuronosyltransfera.se: implications in disease and drug glucuronidation. Am J Pharmacogenomics 3, 37-52.

36. Catteral! W. Molecular properties of brain sodium channels: an important target for anticonvulsant drugs, Adv Neuro! 1999;79:441-56.

37. Cecilia Aibala, Jose I,., Santos Mariana Cifuentes et at. Obesity Research, Intestinal FABP2 A54T Polymorphism: Association with Insulin Resistance and Obesity in Women. 2004; 12: 2: 340-345.

38. Chen Y.-D,, Reaven G. (1995) Arterioscler, Thromb, Vase Biol. 15, 320324.

39. Cheng Z., Radominska-Pandya A., Tephly T. (1999) Studies on the substrate specificity of human intestinal UDP-glucuronosyltransfcrascs 1A8 and 1A10. Drug Metab Dispos 27, 1165- 1170.

40. Chiu K., Chuang L , Yoon C. The A54T polymorphism at the intestinal fatty acid binding protein 2 is associated with insulin resistance in glucose tolerant Caucasians, BMC GcneL 2001;2:7-13,

41. Choo E., Leake B„ Wandct C, et al- Pharmacological inhibition of P-glycoprotcin transport enhances ihc distribution of HIV-1 protease inhibitors into brain and testes. Drug Metab Dispos 2000;28:655-660.

42. Christrup L, (1997) Morphine metabolites. Acta Anasthesiol Scan 41: 116122.

43. Clark J., Amara S. Stable expression of a neuronal gamma-aminobutyric acid transporter, GAT-3, in mammalian cells demonstrates uniquepharmacological properties and ion dependence. Mot Pharmacol 1994; 46:550-7,

44. Clark D. Genetically determined variability in acetylalion and oxidation. Therapeutic implications- Drugs 1985;29:342-75.56, Coffinan B„ Rios G„ King C. Tephly T (1997). Human UGT2B7 catalyses morphine glucuronidation. Drug Metab Dispos 25, 1-4.

45. Cohn S., Simon Т., Roth K. (1992) J, Cell Biol. 119,27-44.

46. Collier A., Keetan J. Van Zijl P., Paxton J., Mitchell M., Tingle M. (2004). Human placental glucuronidation and transport of 3V-azido-3V-deoxythymidineand uridine diphosphate glucuronic acid. Drug Metab Dispos 32,813- 820.

47. Colucci R., Glue P., Holt В., Banlield C., Reidenberg P., Mcchan J,, el al, (1996). Effect of felbamate on the pharmacokinetics of lamotrigine, J Clin Pharmacol 36,634-638

48. Cordon-Cardo C, O'Brien JP, Casals D, et al. Mu resistance gene (P-glycoprotein) is expressed by endothel at blood-brain barrier sites.Proc Natl Acad Sci 1989;86:695-8.

49. Coulter D., Huguenard J., Prince D. Characterization of ethosuximidc reduction of low-threshold calcium current in thalamic neurons. Ann Neurol 1989; 25:582-93,

50. Dallas S,, Pallapothu M., Bendayan R. (2001) Functional expression of the multidrug resistance protein (MRP) in brain parenchyma: relevance to H1V-in recti on in the brain (Abstract). Can J Infect Dis 12:)6B.

51. Darimont C., Gradoux N, Persohn E. Cumin F., De Pover A. (2000) J. Lipid Res. 41. 84-92,

52. Davidson N„ Magun A. (1993) in Textbook of Gastroenterology pp. 428-455, Lippincott, Philadelphia

53. Decleves X., Regina A., Laplanche J., Roux F., Boval В., Launay J„ Scheirmann J. (2000) Functional expression of P-glycoprotein and multidrug resistance-associated protein (MrpI) in primary cultures of rat astrocytes. J Neurosci Res 60:594-601.

54. De Morais S., Wilkinson G„ Btaisdell J„ Nakamura K., Meyer U., Goldstein J A. The major genetic defect responsible for the polymorphism of 5-mephenytoin metabolism in humans. J Biol Chern 1994;269:15419-22.

55. De Wildt S., Kearns G-, Feeder J., van den Anker J. (1999), Glucuronidation in humans. Pharmacogcnctic and developmental aspects. Clin Pharmacol;met 36» 439- 452.

56. Dildy- May field J., Eger E. Harris R. Anesthetics produce subunit-selective actions on glutamate receptors. J Pharmacol Exp Ther 1996; 276:1058-65.

57. Duncan R., Todd N. (1991) Epilepsy and the blood-brain barrier. Br J. Hosp. Med 45:32-34,

58. Eadie M, Formation of active metabolites of anticonvulsant drugs a review of their pharmacokinetic and therapeutic significance. Clin Pharmacokinet 1991; 21:27—41.

59. Ebert U-, Thong N, Oertel R.r Kirch W. (2000). Effects of rifampicin and cimetidine on pharmacokinetics and pharmacodynamics of lamotrigine in healthy subjects. Eur J Clin Pharmacol 56, 299- 304.

60. Edward P., Michael D., Brown A-„ ShuJdiner et al. Physiol Genomics. Fatty acid binding proiein-2 gene variants and insulin resistance; gene and gene-environment interaction effects. 2002; 10; 145-157.

61. Erdo S., WolfTJ. (1990)Aminobutyric acid outside the mammalian brain J Neurochem 54:363-372»

62. Eriksson A., Hoppu K., Ncrgardh A., Borcus L. (1996). Pharmacokinetic interactions between lamotriginc and other antiepileptic drugs in children with intractable epilepsy. Epilepsia 37» 769- 773.

63. Errante L„ Williamson A., Spencer D., Pctroff O, Gabapentin and vigabatrin increase GAB A in the human neocortical slice. Epilepsy Res 2002; 49:203-10.

64. Evans W., McLeod H. (2003) Pharmacogenomics-drug disposition, drug targets, and side effects. New Engl. J. Med. 348, 538-549

65. Evans W„ Johnson J. (2001) Pharmacogenomics; the inherited basis for interindividual differences in drug response, Annu. Rev. Genomics Hum. Genet 2,9-39

66. Evans W,, Rclling M. (1999), Pharmacogenomics; translating functional genomics into rational therapeutics, Science 286,487- 491,

67. Fellay J., Marzolini C.t Meaden £,. et al, Response to antiretroviral treatment m HIV-1-infected individuals with allelic variants of the multidrug resistance transporter 1: a pharmacogenetics study. Lancet 2002; 359:30-36.

68. Ferguson R,, De Morais S. Benhamou S,, ct al, A new genetic defect in human CYP2C19: mutation of the initiation codon is responsible for poor metabolism of 5-mephenytoin. J Pharmacol ExpTher 1998; 284:356-61.

69. FerTaro N. Buono J. The relationship between the pharmacology of antiepileptic drugs and human gene variation: An overview Epilepsy and Behavior, 2005. in press.

70. Field F„ Mathus S. (1995) Prog. Lipid Res 34.185-198

71. Fisher M., Paine M,, Strelevitz Г. Wrighton S. (2001). The role of hepatic and extrahepatic UDP-glucuronosy I transferases in human drug metabolism. Drug Metab Rev 33,273-297.

72. Fttos L, Visy J., Zsila F., Bikadi Z.t Mady G. Simonyi M. Specific ligand binding on genetic variants of human alpha I-acid glycoprotein studied by circular dichroism spectroscopy. Biochem Pharmacol 2004; 67:679-88.

73. Fitton A,, Goa K, (1995), Lamotrigine, An update of its pharmacology and therapeutic use in epilepsy. Drugs 50,691- 713,

74. Formelli F-. Ваша A., Olson J. (1996). Bioactivities of N-(4- hydroxyphenyl) retinamide and relinoyl beta-glucuronide. FASH В J 10. 1014- 1024.

75. Frey H-H, Loscher W. (1978) Distribution of valproate across the interface between blood and cerebrospinal fluid. Neuropharmacology 17:637-642.

76. Fromm M- (2000) P-glycoprotein a defense mechanism limiting oral bioavailability and CNS accumulation of drugs. Int J Clin Pharmacol Ther 38:69-74.

77. Gaedigk A., Spielberg S,, Grant D. Characterization of the microsomal epoxide hydrolase gene in patients with anticonvulsant adverse drug reactions. Pharmacogenetics 1994;4:142-53.

78. George Jr A. Molecular basis of inherited epilepsy. Arch Neurol 2004; 61:473-8.

79. Gertoff T. Impact of genctic polymorphisms in transmembrane carrier-systems on drug and xenobiotic distribution. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol 2004; 369:69-77.

80. Ghersi-Egea J., Leininger-Muller B„ Suleman G„ Siest G. Minn A. (1994) Localization of drug-metabolizing enzyme activities to blood-brain interfaces and circumventricular organs J Ncurochem 62:1089-1096

81. Ghersi-Egea J., Minn A. Siest G. (1988) A new aspect of the protective fitnetions of the blood-brain barrier: activities of four drug-metabolizing enzymes in isolated brain microvessels. Life Set 42:251S—2523

82. Ghera-Egea J., Leininger-Muller В., Cecchclti R., Fcnstcrmachcr L (1995) Blood-brain interfaces: relevance to cerebral drug metabolism, Toxicol Lett «2-83:645-653

83. Ghersi-Egea J., Strazielle N. Choroid plexus transporters for drugs and other xenobioiics. J Drug Target 2002; 10:353-7.

84. Gidal B-, Anderson G., Rutecki P„ Shaw R., Laming A. (2000), Lack of an cffcct of valproate concentration on lamotriginc pharmacokinetics in developmentalty disabled patients with epilepsy, Epilepsy Res 42.23-31

85. Ginsburg G„ McCarthy J. (2001) Personalized medicine: revolutionizing dnjg discovery and patient care. Trends Biotcchnol. 19, 491-496.

86. Glue P. Ban field C. Perhath J., Mather G„ Racha J., Levy R Pharmacokinetic interactions with felbamate: in vitro^in vivo correlation. Clin Pharmacokinet 1997;33:214-24.

87. Goldstein J.T Faletto M., Romkes-Sparks M., et al. Evidence that CYP2CI9 is the major (5bmepbenytoin 4'-hydroxylase in humans, Biochemistry 1994;33:1743-52.

88. Groothuis D,, Levy R. (1997) The entry of antiviral and antiretroviral drugs into the central nervous system. I Neurovirol 3:387-4(Ю.

89. Guan X., Fisher M,, Lang D., Zheng Y., Koop D,, Rettie A, Cytochrome P450-depender»t desaturation of lauric acid: isoform selectivity and mechanism of formation of I l-dodece noic acid. Chem Biol Interact J998; 110:101-21.

90. Guillcmcttc С (2003) Pharmacogenomics of human UDP-glucuronosyltransferase enzymes. Pharmacogenomics J 3. 136 158.

91. Guo-fang Lin.* Wei-chao Guo et al, An Association of UDP-Glucuronosyltransferase 2B7 C802T (His268Tyr) Polymorphism with Bladder Cancer in Bcnzidine-Exposed Workers in China. Toxicological Sciences 2005 85( I ):502-506.

92. Guttendorf R., Wedlund P. Genetic aspects of drug disposition and therapeutics. J Clin Pharmacol 1992; 32107-17,

93. ПО, Hachad H„ Ragueneau-Majlessi L, Levy R. (2002), New antiepileptie drug: review on drug interactions. Ther Drug Monit 24,91- 103.

94. UI.Hadama A., ieiri I., Morita Т., et al. p-Hydroxylation of phenobarbital: relationship to (5)-mephenytoin hydroxylation (CYP2CI9) polymorphism. Ther Drug Monit 2001 ;23:115-8.

95. Hashimoto Y., Otsuki Y,, Odani A.( et al. Effect of CYP2C polymorphisms on the pharmacokinetics of phenytoin in Japanese patients with epilepsy, Biol Pharm Bull 1996; 19:1103-5,

96. Hauser W. Recent developments in the epidemiology of epilepsy. Acta Neurol. Scand„ l997;Suppl„ 162, 17-21.

97. Hegele R.r Connelly P. Hanley A., Sun F., Harris S.t Zinman B, (1997) Arterioscler, Thromb. Vase. Biol. 17r 1060-1066.

98. Hong M., Schlichter L., Bendayan R. (2001) A novel zidovudine uptake system in microglia. J Pharmacol Exp Ther 296:141-149.

99. Hooijberg J., Broxterman H., Kool M., Assaraf Y., Peters G.r Noordhuis P. Schcper R., Borst P. , Pinedo R, Jansen G. (1999) Ami folate resistance mediated by the multidrug resistance proteins MRPI and MRP2. Cancer Res. 59:2532-2535.

100. Horai Y. Nakano M., Ishizaki T.t et al. Metoprolol and mephenytoin oxidation polymorphisms in Far Eastern Oriental subjects: Japanese versus mainland Chinese. Clin Pharmacol Ther 1989;46:198-207.

101. Huai-Yun H., Secrest D„ Mark K„ Carney D., Brandquist C. Elmquist W. Miller D. (1998) Expression of multidrug resistance-associated protein (MRP) in brain mtcrovessel endothelial cells. Biochem Biophys Res Commun 243:816-820.

102. Huang W., Lin Y.( McConn D., ei al. Evidence of significant contribution from CYP3A5 to hepatic drug metabolism. Drug Metab Dispos 2004;32:1434-45.

103. Inaba Т., Jurtma M., Mahon W., Kalow W, In vitro inhibition studies of two isozymes of human liver cytochrome P-450:mephenytoin p-hydroxylase and sparteine monooxygenase. Drug Metab Dispos 1985; 13:4438.

104. Ishii Y-, Takeda S., Yamada H-, Oguri K. Functional protein-protein interaction of drug metabolizing enzymes. Front Biosci 2005:10:88795,

105. Ishikawa Т., Tsuji A., Inui K,, et at. The genetic polymorphism of drug transporters: functional analysis approaches. Pharmacog-enomics 2004; 5:6799,

106. Ishikawa T,, Hirano H„ Onishi Y,, Sakurai A„ Tarui S. Functional evaluation of ABCB1 (P-glycoprotein) polymorphisms; highspeed screening and structure-activity relationship analyses. Drug Metab Pharmacokinet 2004;19:1-14,

107. Jallon P. Epilepsy and epileptic disorders, an epidemiological marker? Contribution of descriptive epidemiology // Epileptic Disorders. 2002. -Vol. 4 (1).-P. 1 -13.

108. James A. Hamilton, Fatty acid interactions with proteins, what X-Ray crystal and NMR solution structures tell us, progress in Lipid Research 43 (2004) 177-199,

109. Jasper К The ten-twenty electrode sy stem of the international federation //EEC Clin. Neurophysiol. -1958. -V. 10. -P. 371.

110. Jedlitschky GCassiday A., Sales M-, Pratt N. Burchcll B. (1999), Cloning and characterization of a novel human olfactory UDP-glucuronosy Itrarisferase. Biochem J 340,837-843.

111. Jeon S., Bahn J., Jang J., ct al. Human brain GABA transaminase tissue distribution and molecular expression. Eur J Biochem 2000; 267:5601-7.

112. Jeppesen J., Holleebeck C., Zhou M.-Y., Coulston A,, Jones C. Johnson J. Pharmacogenetics; potential for individualized drug therapy through genetics. TRENDS in Genetics Vol. 19 No. 11 November 2003; 660-666.

113. Johnson У (2001) Drug target pharmacogenomics: an overview. Am. J. Pharmacogenomics 1, 271-281

114. Juul-Jensen P. Epidemiology of intractable epilepsy. In: Schmidt D., Morselli P.L., editors, Intractable epilepsy, experimental and clinical aspects. New York: Raven Press, 1986; 5-11.

115. Jyrki J., Helvi M., Raisa S., et al. Am J Clin Nutr. Postprandial responses of individual fatly acids in subjects homozygous for the threonine- or alanine-encoding allele in codon 54 of the intestinal fatty acid binding protein 2 gene 2001;73:31-35.

116. Jyrki J., Raisa V., Helvi V., et al. Gene. Arterioscler Thromb Vase Biol. Postprandial Lipemic Response Is Modified by the Polymorphism at Codon 54 of the Fatty Acid-Binding Protein 2, t998; 18; I606-16M,

117. Kanner A., Frey M. (2000). Adding valproate to lamotrigine; a study of their pharmacokinetic interaction. Neurology 55,588- 591.

118. Kearns G., Bocchini Jr., Brown R., Cotter D., Wilson J. (1985), Absence of a pharmacokinetic interaction between chloramphenicol and acetaminophen in children, J Pediatr 107, 134- 139,

119. Kim R„ Leake В., Choo E„ et al. Identification of functionally variant MDRI alleles among European Americans and African Americans. Clin, Pharmacol Ther. 2001; 70: 189-199»

120. King C„ Rios G-, Assouline J. Tephly T, Expression of UDP-glucuronosy I transferases (UGTs) 2B7 and IA6 In the human brain and identification of 5-hydroxytiyptamine as a substrate. Arch Biochem Biophys. 1999 May I; 365(1): 156-62,

121. King C-, Rios G., Green M., Tephly T, (2000). UDP-glucuronosyltransferases, Curr Drug Metab 1, 143- 16Lt50. Kito M,» Maehara M., Watanabe K. Mechanisms of T-type calcium channel blockade by zonisamide. Seizure 1996; 5:115-9.

122. Kuo С, Chen R., Lu L., Chen R. Carbamazepine inhibition of neuronal NV currents: quantitative distinction from phenytoin and possible therapeutic implications. Mol Pharmacol 1997;51:1077-83,

123. Lampe J., Bigler J., Horner N-, Potter J. (1999). UDP-glucuronosyltransferase (UGT1A1*28 and UGT3A6*2) polymorphisms in Caucasians and Asians; relationships to serum bilirubin concentrations, Pharmacogenetics 9, 341349.

124. Lazarowski A,, Sevlever G. Taratuto A., Massaro M., Rabinowicz A. (1999) Tuberous sclerosis associated with MDRI gene expression and drug-resistant epilepsy. Pediatr. Neurol. 21:731-734,

125. Lee G., Schlichter L., Bendayan M., Bendayan R. (2001> Functional expression of P-glycoprotein in rat brain microglia, J Pharmacol Exp Ther 299:204-212.

126. Levesque E„ Turgeon D., Carrier J„ Montminy V,, Beaulieu M.r Belangcr A, (2001). Isolation and characterization of the UGT2B28 cDNA encoding a novel human steroid conjugating UDP-glucuronosyltransferase. Biochemistry 40,3869-3881.

127. Levy R. Cytochrome P450 isozymes and antiepileptic drug interactions. Epilepsia 1995; 36(Suppl- 5):S8-SI3

128. Levy E.(1996) Clin. Invest. Med. 19, 317-324.

129. Levy E., Mehran M, Seidman E. (1995) FASEB J. 9, 626-635.

130. Liu 0., Yarov-Yarovoy V,, Nobbs M., Clare I., Scheuer Т., Cattcrall W. Differential interactions of lamotrigine and related drugs with transmembrane segment IVS6 of voltagegated sodium channels. Neuropharmacology 2003; 44:413-22.

131. Lin Y., McDonough S„ Lipscombe D. Alternative splicing in the voltage-sensing region of N-typc CaV2.2 channels modulates channel kinetics, 3 Neurophysiol 2004; 92:2820-30.

132. Lin M. Aquilame C.t Johnson J., Wu R. Sequencing drug response withHapMap- Pharrnacogenomies J 2005; 5: 149-156.

133. Lin J„ Wong B. (2002), Complexities of glucuronidation affecting in vitro-in vivo extrapolation. Curr Drug Metab 3,623-646.

134. Lloyd P.t Flesch G,, Dieterle W. Clinical pharmacology and pharmacokinetics of oxcarbazepine. Epilepsia l994;35(Supp1):SlO-3.

135. Loscher W.t Frey H-H. (1984) Kinetics of penetration of common anticpileptics drugs into cerebrospinal fluid. Epilepsia 25:346-352.

136. Lothman E. (1996) Basic mechanisms of seizure spread. Epilepsy Res Suppl 11:9-16.

137. Loscher W., Honack D, Taylor C. Gabapentin increases aminooxyacetic acid-induced GABA accumulation in several regions of rat brain, Neurosci Lett 1991; 128:150-4.

138. Loscher W- (2002) Current status and future directions in the pharmacotherapy of epilepsy, Trends Pharmacol Sci, in press.

139. Loscher W-, Potschka H. Role of Multidrug Transporters in Pharmacoresistance to Antiepiieptic Drugs. THE JOURNAL OF PHARMACOLOGY AND EXPERIMENTAL THERAPEUTICS. 3017-14, 2002.

140. Loscher W., Potschka II. Blood-brain barrier active e transporters: ЛТР-binding cassette gene family. Ncnr. 2005; 2:86-98,

141. Lowe J., Sacchettini J., Laposata M., McQuillam J. Gordon J. (1987) J. Biol. Chem, 262,5931-5937.

142. Lukyand2 E,, Shkiyl V., Kostyuk P. Selective blockade of N-type calcium channels by tevetiracetam. Epilepsia 2002; 43:9-18,

143. Lynch В., Lambeng N. Nocka K-, et al. The synaptic vesicle protein SV2A is the binding site for the antiepileptic drug levetiracetam. Proc Natl Acad Sci USA 2004; 101:9861-6.

144. Mackenzie P. Owens I., Burchell В., Bock K. Bairoch A., Belanger A , et at. <1997). The UDP glycosyltransfcrase gene super-family: recommended nomenclature update based on evolutionary divergence. Pharmacogenetics 7, 255-269.

145. Mackenzie P., Gregory P., Gardner-Stephen D., Lewinsky R, Jorgensen В., Nishiyama Т., et al- (2003). Regulation of UDP glucuronosy I transferase genes. Curr Drug Metab 4,249- 257.

146. Makita N. ct a!. (2002) Drug-induced long-QT syndrome associated with a subclinical SCN5A mutation. Circulation 106,1269-1274

147. Mansbach C. Do well, R. F. (1993) Am. J. Physiol. 264, Gl 082-G1089,

148. May T-, Ram beck B.Jurgens U. (1996). Serum concentrations of lamotrigine in epileptic patients: influence of dose and comedication. Ther DrugMonil 18, 523-531.

149. May Т., Rambeck B„ Jurgens U- (1999). Influence of oxcarbazepineand methosuximide on lamotrigine concentrations in epileptic patients with and without valproic acid «mediation: results of a retrospective study. Ther Drug Monit, 21,175- 181.

150. Marais E-, Klugbauer N. Hofmann F. Calcium channel alpha(2)delta subunits: structure and gabapentin binding, Mol Pharmacol 2001;59:1243-8.

151. Maric-Therese Bcrthicr, Charles Couillard, Denis Prudhomme et al. Obesity Research. Effects of the FABP2 A54T Mutation on Triglyceride Metabolism of ViscerallyObcse Men. 2001; 9:11:668-675.

152. McCarver D., Hines R. (2002). The ontogeny of human drugmetabolizing enzymes; phase II conjugation enzymes and regulatory mechanisms. J Pharmacol Exp Ther 300, 361- 366,

153. McCormick K„ Isom L„ Ragsdale D,, Smith D., Scheuer Т., Catterall W. Molecular determinants of Na+ channel function in the extracellular domain of the betal subunit, J Biol Chem 1998;273:3954-62.

154. McLean A., Driver H., McDanell R., Tacchi-Bedford A. The influence of diet on activation and inactivalion of chemicals: evidence from animals and man. Dev. Toxicol Environ Sci., 1986;12:79-89.

155. Meacham Jr., Sisenwine S. Liu A., Kick C, Barinov I., Ruelius H. (1986), Inhibition of ciramadol glucuronidation by benzodiazepines. Drug Metab Dispos 14, 430-436.

156. Meyer U., Zanger U. Molecular mechanisms of genetic polymorphisms of drug metabolism. Annu Rev Pharmacol Toxicol 1997; 37:269-96.

157. Mitchell В., Kammerer C., O'Connell P,, et al, Americans, Diabetes, Evidence for linkage of posichallenge insulin levels with intestinal fatty acid-binding protein (FABP-2) in Mexican. 1995; 44:1046-53.

158. Mooradian A. (1994) Potential mechanisms of the age-related changes in the blood-brain barrier. Ncurobiol Aging 15:751-755,

159. Mula M., Monaco F. (2002). Antiepileptic-antipsychotic drug inter-actions: a critical review of the evidence. Clin Neuropharmacol 25, 280- 289.

160. Napolitano C. et al- (2000) Evidence for a cardiac ion channel mutation underlying drug-induced QT prolongation and life-threatening arrhythmias, J. Cardiovasc, Electrophysiol- 11, 691-6%

161. Ordovas J„ Schaefer E. (2000) Br, J. Nutr 83, SI27-S136,

162. Osborne R, Joel R„ Trew D„ Slevin M. (1990) Morphine and metabolite behavior aAer different routes of morphine administration: Demonstration of the importance of the active metabolite morphine-6-glucuronide. Clin Pharmacol Ther 47:12-19,

163. Oscarson M., McLellan R,, Gullsten H,, et al. Characterisation and PCR-based detection of a CYP2A6 gene deletion found at a high frequency in a Chinese population. FEBS, Lett 1999;448:105-10.

164. Ouzzine M„ Barre L , teller P., Magdalou L, Foumei-Gigleux S. (2003). The human UDP-glucuronosyltransferases: structural aspects and drug glucuronidation. Drug Metab Rev 35, 287- 303.

165. Owen A., Pirmohamed M., Tettoy J., Morgan P.Xhadwick D„ Park B, (2001) Carbamazepine is not a substrate for P-glycoprotein, Br. J, Clin. Pharmacol. 51:345-349.

166. Owens M-, Nemeroff С. Pharmacology of valproate. Psychopharmacol Bull 2003; 37(Suppl. 2): 17-24.

167. Patsalos P. Clinical pharmacokinetics of levetiracetam. Clin. Pharmacokinct 2004;43:707-24.

168. Pardridge W (1997) Dnig delivery to the brain. J Ccreb Blood Flow Metab 17:713- 731.

169. Paula Dworatzek, Robert Hegcle, Thomas Wolevcr. Am J Clin Nutr, Postprandial lipemia in subjects with the threonine 54 variant of the fatty acid-binding protein 2 gene is dependent on the type of fat, 2004; 79:1110— 1117.

170. Pole P Electrophysiology of benzodiazepine reccptor ligands: multiple mechanisms and sites of action. Prog Neurobiol 1988;31:349-423.

171. Potschka H„ Fedrowitz M„ Loscher W. (2001) P-Glycoprotein and multidrug resistance-associated protein are involved in the regulation of extracellular levels of the major antiepifeptic drug carbamazepine in the brain. Neuroreport, 12:3557-3560.

172. Potschka H., Loscher W. (2001a) Multidrug resistance-associated protein is in-voived in the regulation of extracellulai levels of phcnytoin in the brain. Neuroreport, 12:2387-2389.

173. Potschka H,, Loscher W. (2001b) In vivo evidence for P-glycoprolein-mediaied transport оГ phenytoin at the blood-brain barrier of rats. Epilepsia. 42:1231-1240.

174. Prickett K., Baillie T, Metabolism of valproic acid by hepatic microsomal cytochrome P-450. Biochem Biophys ResCommun 1984; 122:1166-73.

175. Ragsdale D. McPhee J. Scheuer Т., Catterall W. Common molecular determinants of local anesthetic, antiarrhythmic, and anticonvulsant block of voltage-gated Na4 channels. Proc Natl Acad Set USA 1996; 93:9270-5.

176. Regesta G., Tanganelti P. (1999) Clinical aspects and biological bases of drug-resistant epilepsies, Epilepsy Res 34:109-122.

177. Rettie A., Wienkers L„ Gonzalez F., Trager W., Kor/ekwa K, Impaired (5)-warfarin metabolism catalysed by the R144C allelic variant of CYP2C9, Pharmacogenetics 1994;4:39-42.

178. Rho J. Donevan 5., Rogawski M Barbiturate-like actions of the propanediol dicarbamates felbamate and meprobamate. J Pharmacol Exp Ther 1997; 280:1383-91.

179. Richards M., Butcher A., Dolphin A. Ca1* channel beta subunits: structural insights AID our understanding. Trends Pharmacol Sci 2004; 25:626-32,

180. Rigo J„ Hans G-, Nguyen L,, et al. The anti-epileptic drug levetiracetam reverses the inhibition by negative allosteric modulators of neuronal GABA- and glycine-gated currents. Br J Pharmacol 2002; 136:659-72.

181. Ritter J. (2000). Roles of glucuronidation and UDP- Glueuronosytransferases in xenobiotic bioactivation reactions. Chem Biol Interact 129, 171-193.

182. Rogawski M-, Loscher W. The neurobiology of anticpileplic drugs. Nat Rev Ncurosci 2004; 5:553-64,

183. Roses A. (2001) Pharmacogenetics, Hum Mol Genetics 10.2261-2267,

184. Pirmohamed M., Park B. (2001) Genetic susceptibility1 to adverse drug reactions. Trends Pharmacol Sci. 22, 298-305

185. Sadeque A„ Fisher M., Korzckwa K„ Gonzalez F., Reuie A. Human CYP2C9 and CYP2A6 mediate formation of the hepatotoxin 4-enevalproic acid. J Pharmacol Exp Ther 1997; 283:698-703.

186. Sander JWAS, Shorvon S. Incidcncc and prevalence studies in epilepsy and their methodological problems: a review. J Neural Neurosurg Psychiatry 1987; 50:829-39.

187. Schinkel A. (1999) P-Glycoprotein, a gatekeeper in the blood-brain barrier. Adv. Drug Deliv. Rev 36:179-194.

188. Schrezenmcicr J„ Kcppler I., Fenselau S., Weber P., Biesalski H. K„ Probst R., Laue C., Zuchhold H. D., Prcllwitz W-, Beyer J. (1993) Ann N. Y. Acad. Sci. 683.302-314.

189. Shastry B. Pliarmacogenetics and the concept of individualized medicine. The Pharrnacogenomies Journal 2006,6(1): 16-21

190. Siddiqui A,, Kerb R., Weale M., el at. Association of multid resistance in epilepsy with a polymorphism in the dn transporter gene ABCBI. N Engl J Med 2003; 348:1442-8.

191. Sills G. Kwan P, (2001) P-Glycoprotem-mediated amiepileptic drug transport: a role in refractory epilepsy? Epilepsia, 42, Suppl 7:83

192. Soga Y., Nishimura F. Ohtsuka Y., et al. CYP2C polymorphisms, phenytoin metabolism and gingival overgrowth in epileptic subjects. Life Sci.2004; 74:827-34,

193. Soranzo N. Cavalleri G., Weale M,, et a), Identifying Candida causal variants responsible for altered activity of the ABQ multidrug resistance gene. Genome Res 2004; 14:1333-44.

194. Spcctor R (2000) Drug transport in the mammalian central nervous system: multiple complex systems. A critical analysis and commentary. Pharmacology 60:58-73.

195. Splawski I. et al- (2002) Variant of SCN5A sodium channel implicated in risk of cardiac arrhythmia. Science 297, 1333-1336

196. Steinlein O. Genes and mutations in human idiopathic epilepsy. Brain Dev 2004; 26 213-8.

197. Staines A., Coughtrie MW. Burchell B, JV-GIucuronidation of carbamazepine in human tissues is mediated by UGT2B7. J Pharmacol Exp Ther 004; 311:1131-7.

198. Stoughton R,. Friend S, How molecular profiling could rcvolutioni2edrug discovery. Nat Rev Drug Discov 2005; 4: 345-350.

199. Suassburg C. Oldhafer K, Manns M., Tukey R. (1997), Differential expression of the UGT1A locus in human liver, biliary, and gastric tissue: identification of UGT1A7 and UGTIA10 transcripts in extrahepatic tissues, Mol Pharmacol 52t 212- 220,

200. Sundqvist, Anders, Tomson, Torbjorn, Lundkvist, Birgitta. Pharmacokinetics of Valproic Acid in Patients With Juvenile Myoclonic Epilepsy on Monotherapy. Therapeutic Drug Monitoring. 19(2):153-159, April 1997,

201. Survey on Neurologists. GfK Market Research* 2000.

202. Tan N., Heron S,, Scheffer I., et at. Failure to conflrn association of a polymorphism in ABCB1 with multidrug-resistant epilepsy. Neurology 2004;63:1090-2.

203. Tan N., Mulley J,» Berkovic S. Genetic association studies in epilepsy: "the truth is out there", Epilepsia 2004;45:1429-42,

204. Tang С., Lin Y., Rodrigues A., Lin J Effect of albumin on phenytoin and tolbutamide metabolism in human liver microsomes: an impact more than protein binding. Drug Metab Dispos 2002; 30:648-54.

205. Tate S», Depondt C., Sisodiya S., et al. Genetic predictors of the maximum doses patients receive during clinical use of the anti-epileptic drugs carbamazepine and phenytoin. Proc Natl Acad Sci USA 2005;102:5507-12,

206. Taverna S. Mantegazza M., Franceschetti S.T Avanzlni G Valproate selectively reduces the persistent fraction of Na* current in neocortical neurons. Epilepsy Res 1998; 32:304-8.

207. Thibaudeau J., Lepine J., et al, Characterization of common UGTIA8, UGT1A9, and UGT2B7 variants with different capacities to inactivatc mutagenic 4-hydroxylatcd metabolites of estradiol and estrone. Cancer Res, 2006Jan I;66(1):125-33.

208. Todorovic SM, Lingle CJ, Pharmacological properties of T-type Ca3* current in adult rat sensory neurons: effects of anticonvulsant and anesthetic agents, J Neurophysiol 1998; 79:240-52.

209. Tso P„ Balint J. (1986) Am. J. Physiol. 250, G715-G726.280, Tukey R-, Strassburg С, (2000). Human UDP-glucuronosy Itransferascs: metabolism, expression, and disease. Annu Rev Pharmacol Toxicol 40, 581616,

210. Turgeon D-, Carrier J.» Levesque E., Hum D., Bclangcr A. (2001), Relative enzymatic activity, protein stability, and tissue distribution of human steroid-metabolizing UGT2B subfamily members. Endocrinology 142, 778-787.

211. Twyman R., Rogers C-, Macdonald R. Differential regulation of gamma-aminobutyric acid receptor channels by diazepam and phenobarbital, Ann Neurol 1989; 25:213-20.

212. Van den Berg R., Кок P., Voskuyl R. Valproate and sodium currents in cultured hippocampal neurons. Exp Brain Res 1993; 93:279-87.

213. Van der Weide J-, Steijns L., van Weeldcn M,, dc Нзап К, The effect of genetic polymorphism of cytochrome P450 CYP2C9 on phcnytoin dose requirement Pharmacogenetics 2001 ;l 1:287—91.

214. Vassi leva G., Huwyler L., Poirier K., Agellon L. Toth M. (2000) FASEB J. 14,2040-2046.

215. Veerkamp J. Peeters R„ Maatman R. Structural and functional features of different types of cytoplasmic fatty acid-binding proteins, Biochim Biophys Acta. 1991 Jan 4; 1081(1): 1-24

216. Velkov Т., Chuang S., Wielens J. Sakellaris R, Charman W,, Porter C„ Scanlon M. J Biol Chem. The interaction of lipophilic drugs with intestinal fatty acid-binding protein. 2005; 6; 280:18:17769-17776.

217. Vidgren H„ Sipilainen R., Keikkinen S., Laakso M-. Uusitupa M. (1997) Eur I Clin. Invest 27,405-408.

218. Wedlund P., Aslanian W. McAllister C. Wilkinson G„ Branch R. Mephenytoin hydroxylation deficiency in Caucasians: frequency of a newoxidative drag metabolism polymorphism. Clin Pharmacol Ther 1984; 36:773-80,

219. Weiss E., Brown M., Shuldiner A., Hagberg J. Physiol Genomics. Fatty acid binding protein 2 gene variants and insulin resistance: gene and gene-environmental interaction effects. 2002; 10:145-157,

220. White H. Mechanism of action of newer anticonvulsants. J Clin Psychiatry 2003; 64(Suppl, 8)5-8.

221. Wrighton S„ Stevens J,, Becker G-, VandenBranden M, Isolation and characterization of human liver cytochrome P450 2C19: correlation between 2CI9 and S-mephenytoin 4'-hydroxylation. Arch Biochem Biophys 1993 .306:240-5.

222. Xie H-G„ Kim R., Wood A-, Stein C. Molecular basis of ethnicdifferences in drug disposition and response. Ann Rev Pharmacol Toxicol, 2001; 41: 815— 850.

223. Xie X-. Dale T„ John V„ Cater H„ Peakman Т., Clare J. Electrophysiological and pharmacological properties of the human brain type IIA Na' channel expressed in a stable mammalian celt line. Pflugers Arch 200S; 441:425-33.

224. Yarnano S., Tatsuno J,, Gonzalez F. The CYP2A3 gene product catalyzes coumarin 7-hydroxylation in human liver microsomes. Biochemistry' 1990; 29:1322-9.

225. Yang P. et al. (2002) Allelic variants in long-QT disease genes in patients with drug- associated torsades depointes. Circulation S05t 1943-1948.

226. Yuen A., Land G-, Weatherley B, Peck A, (1992). Sodium valproate acutely inhibits lamotrigine metabolism. Br J Clin Pharmacol 33,511 -513.vfy