Автореферат диссертации по медицине на тему Клинико-экспериментальное обоснование применения перфторана в челюстно-лицевой хирургии
На правах рукописи
Орлов Андрей Алексеевич
КЛИНИКО- ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ОБОСНОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ ПЕРФТОРАНА В ЧЕЛЮСТНО-ЛИЦЕВОЙ ХИРУРГИИ
14.00.21 - Стоматология
Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук
МОСКВА 2005
Работа выполнена в Центральном НИИ стоматологии МЗ РФ и институте экспериментальной и теоретической биофизики РАН (г. Пущино)
Научные консультанты:
доктор медицинских наук, профессор Ипполитов Владимир Петрович доктор медицинских наук, профессор Григорян Алексей Суренович
Оффициальные оппоненты:
доктор медицинских наук, профессор доктор медицинских наук, профессор доктор медицинских наук, профессор
Балин Виктор Николаевич Никитин Александр Александрович Шехтер Анатолий Борисович
Ведущая организация:
Московский государственный медико-стоматологический университет.
Защита состоится « 18 » мая 2005 г. в 10.00 час. на заседании Диссертационного совета Д. 208.111.01. в Центральном научно-исследовательском институте стоматологии МЗ РФ и СР по адресу: 119992, Москва, ГСП-2, ул. Тимура Фрунзе, 16.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Центрального научно-исследовательского института стоматологии МЗ РФ (119992, Москва, ГСП-2, ул. Тимура Фрунзе, 16).
Автореферат разослан « 18 » марта 2005 г.
Ученый секретарь Диссертационного Совета, кандидат медицинских наук ¿РлЬ*^**
Е.Л.Стрекалова
МФО
Общая характеристика работы
Актуальность темы. Одной из наиболее сложных проблем восстановительной челюстно-лицевой хирургии является обеспечение полноценного безрубцового заживления ран. С патогенетической точки зрения это возможно за счет уменьшения выраженности ряда стадий процесса воспаления, изменения спектра воспалительных цитокинов, снижения активности процессов перекисного окисления липидов (ПОЛ) и избыточного протеолиза (А.Е.Белоусов, 1998; В.Н. Соколов, 2001). Используемые для этих целей фармакологические препараты существенным образом модифицируют состояние иммунной системы, что сопровождается снижением резистентности и изменениями условий для асептического заживления ран (АБШехтер, В.В.Серов, 1991; Ва1сЪе1ог е1 а1., 1994; Вепу е1 а1., 1995). Улучшение трофики тканей, повышение энергетического статуса клеток в области раны для уменьшения зоны некроза и замены некротической гибели клеток и межклеточного матрикса апоптозом может обеспечить смену одних популяций клеток другими, более специфическими для данной ткани. При этом есть основания ожидать ингибирования контрактильных элементов, что необходимо для предотвращения рубцовой деформации (Сопласк е1 а1,1984; Воппе! е1 а1., 1985).
До настоящего времени в распоряжении хирургов не было столь полифункциональных средств. В 1996 году в аптечной сети нашей страны появился кислородопереносящий кровезаменитель «Перфторан» (ПФ), представляющий собой тонкодисперсную эмульсию полностью фторированных органических соединений (ПФОС) (Г.Р.Иваницкий, 2001) Отличительной их особенностью является способность физически растворять в 20 раз больше кислорода, чем водные среды (Р^езэ, 2001). Показана принципиальная возможность замены ПФ более 75% ОЦК с сохранением удовлетворительного обеспечения тканей кислородом (Е.И. Маевский, 1998) Размер частиц ПФ в среднем в 100 раз меньше размера эритроцитов, благодаря чему перфторан может переносить кислород к тканям через суженые, спазмированные (в том числе и вследствие отека окружающих тканей) сосуды (Давыдова Е В. и соавт., 1997; 1999; Е Н. Кпигуненко и соавт., 1999; и др.).
Результаты экспериментальных и клинических исследований позволили нам предположить, что с помощью ПФ можно преодолеть гипоксию и достигнуть второй, «трофической», цели в раневой области Однако, будучи высокоэффективным препаратом ургентной медицины, хорошо зарекомендовавшим себя в качестве
РОГ НА!!ИС)Н\ ;Ч! VI Ь И ( I И О I' Г \
С Г! г ир "у^н
РК
средства терапии критических состояний (Сафонов Г.А. и соавт, 1999; Вилков С А и соавт, 2001; Голубев А М , Мороз В.В., 2001; П.И.Катунян и соавт., 2003 и др ), ПФ обладает некоторыми свойствами, которые могли бы ограничить более широкое его использование. В частности известно, что внутрисосудистое введение ПФ в 2 % случаев может приводить к развитию побочных реакций (Е.И.Маевский и др., 2001) В связи с этим представляет несомненный интерес использование его при внутритканевом введении, при котором этих осложнений не бывает.
Эффективность такого рода использования ПФ с точки зрения его воздействия на кислородный режим ткани и местный кровоток ранее никем не исследовалась, в том числе и его эффекты на динамику воспалительного процесса и заживление тканей В эксперименте выяснено, что некоторые фракции эмульсии могут существенно модифицировать функцию активированных полиморфноядерных лейкоцитов (Гапеев А.Б. и соавт, 1995; Д.Г.Шехман и соавт, 1999). Подобного рода клинические исследования еще не проводилось.
Цель исследования. В эксперименте на адекватных клинической патологии патофизиологических моделях, и в процессе клинических исследований определить целесообразность внутривенного и местного использования малых доз ПФ с целью модификации течения послеоперационного и реабилитационного процессов в челюстно-лицевой хирургии.
Задачи исследования:
1. Экспериментально изучить влияние местного и внутривенного введения ПФ на течение морфологического процесса при заживлении мягких и костных ран для определения возможности модификации процесса воспаления и репарации ран.
2. Оценить возможные эффекты ПФ на развитие патологических изменений в кожном лоскуте в период его сохранения до трансплантации и в различные сроки после аутотрансплантации, в частности, оценить основные параметры энергетического обмена, ПОЛ, выраженность отека и механические свойства переживающего лоскута.
3 Экспериментально выяснить, влияние внутривенного и внутримышечного введения малых доз ПФ на системный и местный кровоток.
4 Установить целесообразность использования малых доз ПФ с целью изменения уровня активности процессов ПОЛ в плазме и эритроцитах периферической крови; оценить влияние малых доз ПФ на параметры системы гемостаза в эксперименте у гипертензивных животных и у больных, имеющих в анамнезе ишемические заболевания.
5 Провести исследование влияния ПФ на течение раневого процесса в клинике челюстно-лицевой хирургии.
Научная новизна. 1. Впервые обнаружено, что местное введение ПФ в костную рану и поврежденные мягкие ткани наряду с внутривенной инфузией препарата способствует лучшему заживлению костной и мягких тканей Согласно морфологическое картине ПФ способствует уменьшению нейтрофильной инфильтрации, более раннему появлению лимфоидной инфильтрации в области раны и признаков регенерации мягкотканных и костных структур за счет уменьшения интенсивности и укорочения периода вторичной деструктивной альтерации
2. Впервые показано, что местное и внутривенное введение ПФ сопровождается усилением остеогенеза активацией дифференцировки фиброзного костного вещества.
3 Обнаружено, что под местным воздействием ПФ замедляется деструкция и увеличивается время сохранности структур кожи и подкожно-жировой ткани при образовании струпа после аутотрансплантации полнослойного кожного лоскута. Показано, что в трансплантированном лоскуте, погружаемом в ПФ в период после забора и непосредственно перед трансплантацией, также происходит сокращения периода вторичной альтерации и ускорение регенерации.
4. Анализ результатов местного воздействия ПФ на полнослойные кожные лоскуты, погруженные в препарат перед трансплантацией, позволил выявить меньшую выраженность отека лоскута, уменьшение в его ткани явлений энергетического дефицита, активацию гликолиза и накопление МДА. Акустические исследования кожи выявили неизвестную ранее динамику изменения скорости проведения звука, обусловленную уменьшением натяжения при изоляции лоскута от окружающих тканей и более быстрым, чем в контроле (без перфторана) восстановлением тургора трансплантата.
5. Впервые показано, что однократное внутривенное введение малых доз ПФ (1,5-2 мл/кг массы тела) приводит к стабилизации уровня активности процессов ПОЛ в плазме крови, умеренному повышению активности ПОЛ в мембранах эритроцитов, повышению стабильности и оптимизации структурного состояния мембран эритроцитов.
6. Впервые показано, что однократное введение малых доз ПФ не оказывало существенного влияния на параметры системы гемостаза у гипертензивных животных. У больных, имеющих в анамнезе ишемические заболевания, однократное внутривенное введение ПФ способствовало позитивным сдвигам в гемостазе в виде
снижения вероятности развития гиперкоагуляционной фазы ДВС-синдрома и нормализации параметров свертывающй и фибринолитической систем крови
7 Впервые обнаружено изменение системного и местного кровотока на фоне снижения общего периферического сопротивления после внутривенного введения ПФ в малой дозе 1-2 мл/кг, при отсутствии влияния на кислородную емкость крови и реологию, и улучшение микроциркуляции после местного внутритканевого введения
8 Предложена гипотеза противовоспалительного и ранозаживляющего влиянии ПФ на течение раневого процесса за счет не только как кислородтранспортных эффектов (улучшение масообмена кислорода и субстратов, реологии, микроциркуляции, но и за счет воздействия на тонус сосудов, активность клеточных элементов и тканевых регуляторов, контролирующих течение воспалительный реакции и заживление
Научно-практическая значимость работы. 1 В результате проведенного экспериментально-клинического исследования показана целесообразность использования ПФ в малых дозах (1,5-2 мл/кг) при предоперационной подготовке, во время оперативного вмешательства и после реконструктивных операций
2 Показана возможность использования ПФ не только в качестве кислородтранспортного кровезаменителя, но так же и как средства для уменьшения вторичной альтерации, ускорения репарации тканей и улучшения регионального кровотока тканей челюстно-лицевой области.
3 Выполненное исследование открывает новые возможности для использования ПФ в качестве среды для бесперфузионного сохранения пересаживаемых тканей.
4 Получены первые клинические данные о целесообразности включения ПФ в сочетании с препаратом «Дельтаран» в предоперационную подготовку больных, имеющих скрытую внутриклеточную вирусную инфекцию, для улучшения репарации при реконструктивных и пластических операциях в челюстно-лицевой хирургии
Научные положения выносимые на защиту. 1 С целью снижения остроты и длительности заживления послеоперационных ран посредством уменьшения степени ишемических и гипоксических изменений, улучшения трофики и поддержания активности антиоксидантных систем костных и мягких тканей было выполнено исследование, позволившее получить экспериментальное и клиническое обоснование для использования кислородтранспортного кровезаменителя «Перфторан» в челюстно-лицевой хирургии.
2 В эксперименте на адекватных патофизиологических моделях клинической патологии, и в процессе клинических исследований показана целесообразность внутривенного и местного использования малых доз ПФ для обеспечения модификации процесса заживления и реабилитации послеоперационных ран в челюстно-лицевой хирургии
3 В основе процесса модификации заживления ран под влиянием ПФ лежат два комплексных фактора' 1) улучшение реологии, микроциркуляции и газообмена в тканях; 2) противовоспалительное действие ПФ, обусловленное, очевидно, специфическим физическим воздействием на праймированные лейкоциты и другие макрофагальные элементы в области раны
4 Показано, что улучшение реологии, микроциркуляции и газообмена в тканях достигается не только при внутривенном, но и при местном внутритканевом введении ПФ.
5. Противовоспалительное действие ПФ обусловлено как улучшением массообмена, так и специфическим воздействием на праймированные лейкоциты и другие макрофагальные элементы и клетки регенирирующей ткани. Об этом свидетельствуют в частности эксперименты с аутотрансплантами На уровне целостного организма впервые показана целесообразность использования малых доз ПФ (1 -2 мл/кг), не оказывающих существенных вляиния на морфологию и биохимию периферической крови и систему гемостаза
Апробация диссертации. Основные результаты исследования были доложены на:
1 XI международной конференции «Перфторуглеродные соединения в биологии и медицине (Пущино, 2002 г.);
2. XII международной конференции «Перфторуглеродные соединения в медицине и биологии (Пущино, 2002 г);
3 Межинститутская конференция ЦНИИС, Влияние местного и внутривенного введения перфторана на динамику раневого процесса при костнопластических операциях челюстно-лицевой области (Москва 2003)
4. Заседании Ученого Совета Центрального НИИ стоматологии (2002,2003);
5 Научно-практической конференции «Новое в гематологии и клинической трансфузиологии» (Москва, 2004);
6. Семинаре Российской ассоциации трансфузиологов «Современные препараты крови и кровезаменители» (Москва, 2004);
7. Ill окружной научно-практической конференции «Современные методы обеспечения безопасности трансфузий» (Ханты-Манссийск, 2004);
8 Научно-практической конференции «Новое в гематологии и клинической трансфузиологии» (Москва, 2004)
9 Межинститутская конференция ЦНИИС, Презентация программы -применение перфторана при стоматологических заболеваниях ( Москва, 2004)
10 XIII Российской конференции «Перфторуглеродные соединения в медицине и биологии (СПб, 2004 г);
Внедрение результатов исследования в практику. Методика лечения больных внедрена в практику работы ЦНИИС, используется в работе отделения анестезиологии и реанимации ОВКГ № 1602 Северо-Кавказского Военного Округа Основные положения диссертации включены в лекционные разделы ординаторов, аспирантов и докторантов ЦНИИС.
Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 207 страницах, состоит из введения, обзора литературы, 8 глав собственных исследований, заключения, выводов, практических рекомендаций, указателя литературы Работа иллюстрирована таблицами, фотографиями, графиками Указатель литературы содержит 333 источника литературы, их них 194 отечественных.
Лабораторные исследования выполнены в лаборатории термодинамики и энергетики сложных биологических систем ИТЭБ РАН (Пущино), клинической лаборатории ЦНИИС, гемостазиологической лаборатории, лаборатории УЗИ больницы Научного Центра РАН (Пущино), лаборатории физико-химической и молекулярной биологии НИИ биохимии при Государственном университете (Ростов-на-Дону).
По материалам диссертации опубликовано 20 научных работ, в том числе 9 научных работ в центральной печати
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материалы и методы экспериментальных и клинических исследований 1. Экспериментальные исследования
1.1. Экспериментально-морфологическое исследование эффектов воздействия ПФ на процесс заживления костных дефектов и мягких тканей
Эксперимент выполнен на 120 половозрелых крысах-самцах линии «У^аг» весом 200-250 г. Животные распределены на 4 группы (п=30): 1 - контрольная -оперированы по предложенной методике с орошением операционной раны 0,9% раствором натрия хлорида в дозе 1 мл; 2 - контрольная - то же с внутривенным введением 0,9% раствором натрия хлорида в дозе 5 мл/кг веса; 3 - основная - то же с орошением раны перфтораном в дозе 1 мл; 4 - основная - то же с внутривенным введением перфторана в дозе 5 мл/кг веса
Методика операции* под наркозом произведен разрез кожи и подкожной клетчатки по передней поверхности левого бедра длиной 1,5 см. Тупым путем выделена бедренная кость в области метафиза, где создано трепанационное отверстие бором № 2 Костный дефект затампонирован коллагеновой гемостатической губкой «Бропд^ап» Рана орошена солевым раствором или ПФ до разбухания губки. Рана послойно ушита
Забор органов и тканей для гистологического исследования производили на 1, 3, 5, 10 и 30 сутки после оперативного вмешательства Забой животных проводили под наркозом. Материал помещали в 10% формалин и заливали в парафин Срезы окрашивали гематоксилин-эозином Во всех экспериментах использовался ПФ АОА НПФ «Перфторан» (гПущино) серии 55101, ВФС 42-2576-99, срок годности до октября 2004 г.
1.2. Экспериментальное исследование морфологического состояния полнослойных кожных лоскутов, экспонированных в ПФ при их аутотрансплантации
Эксперимент выполнен на 24 крысах-самцах линии «М^аг» массой тела 220250 г. После удаление шерстного покрова под наркозом произведен забор полнослойных лоскутов со спины животного размером 15x30 мм. Края раны ушиты тремя направляющими швами шелком № 3 Лоскуты выдерживались 24 часа в 0,9% в раствор натрия хлорида (контрольная группа; п=12) и ПФ (основная группа; п=12) при температуре +22-+24°С Через 24 часа под наркозом произведены снятие швов с операционной раны, удаление струпа, деэпителизация краев раны. Рана обработана раствором фурациллина. Дополнительно произведено орошение операционной раны 0,9% раствор натрия хлорида или ПФ в дозе 1 мл. Аутолоскут уложен в материнское ложе, фиксирован швами (шелк № 3) Забор лоскутов для гистологического исследования производили на 1, 3, 10 и 45 сутки после
оперативного вмешательства Забой животных проводили под наркозом Подготовка и морфологическое исследование материала аналогична 1 1.
1.3. Исследование влияния ПФ на состояние изолированного кожного лоскута
Эксперимент выполнен на 20 крысах-самцах линии «Wistar» массой тела 280300 г. Под наркозом произведен забор полнослойных лоскутов со спины размером 30x30 мм. Лоскуты помещали в 0,9% раствор натрия хлорида (контрольная группа; п=10) или в ПФ (основная группа; п=10) Время инкубации составило 1, 3, 5, 24 часа. От лоскутов отбирали пробы весом 1 г сразу после забора материала (до экспозиции) и после контрольного времени инкубации Пробу растирали в ступке с кварцевым песком в среде для гомогенизации. Гомогенат центрифугировали 10 мин при 3000 д. Определяли содержание общего белка биуретовым способом («Диакон-Синтеко», РФ), глюкозы - глюкозооксидантным методом («Диаком Диасис», РФ), лактата (Л) и пирувата (П) -наборами Boehringer Manheim GmbH (Германия), активность лактатдегидрогеназы (ЛДГ) - набором Olve [Diagnosticum, РФ), изоцитратдегидрогеназы (ИЦДГ), малонатдегидрогеназы (МДГ) - наборами Boehringer Manheim GmbH (Германия), сукцинатдегидрогеназы (СДГ) - по восстановлению феррицианида калия.
1.4. Влияние ПФ на активность процессов ПОЛ, ферментативной антиоксидантной системы крови
Эксперимент выполнен на 28 крысах-самцах линии «Wistar», весом 200-250 г, распределенных на 4 группы (п=7)' I - контрольная - интактная, II - с введением ПФ за сутки до забора крови на исследование, III - с введением ПФ за 3 суток до забора крови на исследование; IV - с введением ПФ за 7 суток до забора крови на исследование.
Малоновый диальдегид (МДА) в мембране эритроцитов и сыворотке крови определяли по методу ИД Стальной и Т.Д Горишвили (1977), диеновых конъюгатов (ДК) - по методу ИД Стальной (1997), шиффовых оснований (ШО)- по методу Bidlack et Dyel (1959) Содержание внеэритроцитарного гемоглобина (ВЭГ) определяли с помощью наборов «Реанал» (Венгрия) Микровязкость мембран определяли методом Bligh et Dyel (1959) Мембраны выделяли по методу Л И Колчинской и соавт (1976) Микровязкость липидного слоя эритроцитарных мембран (Fm/F3 334) оценивали при длине волны возбуждения 334 нм, а микровязкость зон аннулярных липидов (Fm/F3 282) - при 282 нм Степень
погружения белков в липидный бислой (AF) определяли по тушению флюоресценции белков пиреном при 282 нм (Ю.А.Владимиров, Г.Е.Добрецов, 1980). Полярность окружения зонда пирена в мембране (F372/F393), определяли при длинах волн 372 и 393 нм. Спектры флюоресценции регистрировали флюоресцентным спектрофотометром «Hitachi - 650-60» (Япония) Определение активности супероксиддисмутазы (СОД) в субстратах проводили по методу Fried (1975), каталазы - по методу Luck (1963) Удаление гемоглобина производили по методу Minami et Yoshikawa (1979). Суммарную пероксидазную активность (СПА) в плазме крови определяли модифицированным методом (В.В. Внуков, 1979).
1.5 Влияние внутривенного введения малых доз ПФ на параметры системы гемостаза в эксперименте
Эксперимент выполнен на 24 крысах-самцах линии «SHR-SP» Животные были разделены на 4 группы. Первой (П1) вводился ПФ, второй (П2) - проксанол (ПС), третьей (Пз) - солевой раствор (CP), и четвертая (П») - интактные животные (И). Концентарции растворов идентичны составу ПФ. Животным под наркозом вживляли полиэтиленовые катетеры в сонную артерию для регистрации АД и в яремную вену для введения препаратов. В течение 5 минут регистрировали базовый уровень АД. Затем, в течение 3 минут, инфузионно вводили соответствующие групповой принадлежности вещества в объеме 10% от объема циркулирующей крови (ОЦК) Продолжали регистрацию АД в течение 60 минут, затем производили забор 2 мл крови для анализов. Затем производили забор 5 мл крови для моделирования гиповолемического шока. При этом регистрировали АД и ЧСС в течение 37 минут Изучали следующие показатели гемостаза: АПТВ-тест; протромбиновое время, определение концентрации фибриногена (Квик-Фг-тест); фибринолиз-тест; определение антикоагулянта волчаночного типа (АВТ) (Люпус-тест); тромбин-гепариновое время свертывания - определение чувствительности тромбинового времени плазмы к гепарину (Гепарин-тест).
1.6. Влияние ПФ на состояние системного кровотока
Эксперимент выполнен на 40 крысах-самцах линии «Wistar» весом 250-300 г. ПФ вводился внутримышечно (1 группа, п=10) и внутривенно (2 группа, п=10) в дозе 5 мл/кг массы В контроле вводился 0,9% раствор натрия хлорида внутримышечно (3 группа, п=10) и внутривенно (4 группа, п=10) Доплерографическое исследование
проводили на ультразвуковом диагностическом аппарате «Biomedical AU-5» (Италия) с помощью линейного датчика частотой 10-13 мГц. Произведено исследование местного и системного кровотока и цветное доплеровское картирование на основании анализа направления (ЦДК) и энергии потока (ЦДКЭ) в бедренных артериях (В.А.Козлов и соавт., 2000).
1.7. Изучение влияния ПФ на параметры гемодинамики
Эксперимент выполнен на 31 самце спонтанно гипертензивных крыс линии «SHR-SP» в возрасте 17 месяцев и старше Животных распределяли по группам рандомизацией, используя в качестве критериев вес тела, возраст и уровень артериального давления, так, чтобы они были одинаковыми в каждой группе (таблица 1.).
Таблица 1.
Распределение экспериментальных животных по группам_
№ фуппы Число животных Номера животных Объем введения, (мл/кг) Характер группы
1 7 1/01 -1/06 0 интактные
2 8 2/01 - 2/06 7,5 солевой раствор
3 7 3/01 - 3/06 7,5 проксанол
4 9 4/01 - 4/06 7,5 перфторан
Для измерения АД животных оперировали под наркозом выделяли бедренную артерию и бедренную вену и брали их на дистальную и проксимальную лигатуры Проксимальной лигатурой сосуд перевязывали и натягивали с помощью зажима Свободным узлом дистальной лигатуры временно прекращали доступ крови в выделенный участок сосуда Между лигатурами вставляли полиэтиленовый катетер (РЕ-10), (длиной 5 см для артерии и 2 см для вены), который проводился в аорту или в полую вену. Исследование выполняли через 24 часа после вживления катетеров Регистрировали гемодинамические параметры в исходном состоянии в течение 5 мин, затем вводили исследуемые растворы в объеме 10% от ОЦК, не прекращая регистрации параметров на протяжении 60 мин Затем у животного забирали порцию крови (2 мл) для исследования параметров гемостаза Объемы введения растворов рассчитывали для каждого животного в соответствии с его весом тела и вводили внутривенно через катетер в течение 3 минут Артериальное давление (АД) измеряли электроманометром, аналоговые сигналы оцифровывались с частотой 512 Гц.
2. Клинические исследования
Всего было обследовано 23 больных нестоматологического профиля и 52 больных - в клинике челюстно-лицевой хирургии, 42 из них получали ПФ по различным показаниям (таблицы 2,3,4).
Таблица 2.
Распределение больных основной группы по возрасту_
ДО 20 20-30 30-40 40-50 50-60 Всего
лет лет лет лет лет
6 10 13 8 5 42
Таблица 3.
Распределение больных основной группы по нозологическим формам
Нозологические формы п
Дефекты и деформации 4/10, устраняемые реваскуляризированными аутотрансллантатами. 15
Воспалительные процессы, сопровождающиеся снижением репаративных процессов, включая остеомиелит, гайморит, состояние после вскрытия флегмоны 8
Сочетанная врождённая деформация верхней и нижней челюстей. 3
Дефекты и деформации ЧЛО, устраняемые пластикой силиконовыми имплантатами 3
Дефекты и деформации костей лицевого черепа 9
Дефекты мягких тканей ЧЛО, устраняемые пластикой местными тканями 2
Прочие: Невропатия Варикозное расширение вен лица 1 1
Всего 42
Таблица 4.
Контингент обследованных пац иентов
Группы пациентов и вид патологии п
Практически здоровые доноры 27
Контрольная группа: больные с патологией костных и мягких тканей 10
Основная группа: больные с патологией костных и мягких тканей, получавшие ПФ 42
Больные с заболеваниями периферических сосудов, леченные ПФ 23
Общее количество обследованных 102
РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
1.1. Экспериментально-морфологическое исследование эффектов воздействия ПФ на процесс заживления костных дефектов и мягких тканей
Результаты представлены в виде таблицы.
Таблица 5
КОНТРОЛЬНЫЕ ГРУППЫ
I
ОСНОВНЫЕ ГРУППЫ
1 сутки
Костный дефект
Полость заполнена оксифильным экссудатом, обширный некроз тканей, клеточный детрит, обильные отложения фибрина скопления свободно лежащих эритроцитов. В костномозговых пространствах элиминация кроветворных элементов Полнокровение и лейкоцитарная инфильтрация оставшаейся соединительной ткани. В межграбекулярных пространствах массы некротического бесструктурного базофильного, материала
Мягкие ткани
Деструкция соединительной и мышечной ткани Резко выраженный отек, геморрагии, выпадение фибрина Признаки острой воспалительной инфильтрации:
диффузные и фокальные, очень плотные лейкоцитарные инфильтраты, интенсивный отек и образование полей фибринозного выпота.
3 СУТКИ
Костный дефект
Деструкция соединительной и мышечной ткани Выраженный отек ткани Кое-где отмечалось выпадение нитей фибрина Лейкоцитарная инфильтрация была довольно умеренной, и уступала по интенсивности таковой в контроле.
Обширный дефект кортикальной пластины и спонгиозы. Некроз костного края дефекта Замещение костной ткани молодой клеточно-волокнистой, частично
инфильтрированной лейкомакофагальными элементами соединительной ткани, в которой обнаруживалось большое число, гигантских многоядерных остеокластов
Мягкие ткани
Дефект кости с выраженным
повреждением Вновь образованная
соединительная ткань, заполнившая
костный дефект, обладает
остеногенетической потенцияей Формирование отложений остеоидного вещества
Некробиотические изменения в мышечных волокнах Разлитой воспалительный инфильтрат преимущественно из лейкоцитов с примесью
лимфомакрофагальных элементов,
сопровождающийся экссудацией с выпадением нитей фибрина, явления отека и ангиоматоза.
5 сутки
Костный
Поля грануляционной ткани иногда с фокусами лейкоцитарной инфильтрации в центральных отделах и очагами гнойного распада. Костные структуры в краях дефекта разрушены и замещены грануляционной тканью, проникающей между скоплениями безостеоцитных микрофрагментов костеподобного
На фоне образования участков некроза мышечной ткани, отека и лейкоцитарной инфильтрация в межмышечных пространствах наблюдается образование молодой богатой клеточными элементами и сосудами капиллярного типа
соединительной ткани, располагающейся между мышечными пучками.
дефект
Тканевые элементы имели остеогенный характер, однако степень дифференциации менялась, возрастая от центральных отделов дефекта к его периферии В центральной зоне обнаружена мезенхимоподобная рыхлая соединительная ткань. В
центростремительном_направлении
вещества
Мягкие
Некроз мышечной ткани. На фоне этих изменений и воспалительных реакций наблюдались продуктивные процессы' интенсивное развитие грануляционной ткани, а так же пролиферация эндотелия и клеток фибробластического ряда Плотная лимфомакрофагальная инфильтрация с примесью полинуклеаров
10 сутки
Костный
Дефект заполнен клеточноволокнистой соединительной тканью, причем в ней превалируют грубоволокнистые структуры, местами наблюдалось формирование мощных пучков коллагеновых фибрилл и напластования трабекул из остеоида и новообразованных фиброзных костных трабекул
Мягкие
Остатки деструктурированных мышц, с признаками глубоких дистрофических изменений, а кое-где и некробиоза. Накапление клеток полиморфноклеточного инфильтрата. Мышцы замещены молодой богатой сосудами тканью с преобладанием фибробластов и полибластических элементов, макрофагов и лейкоцитов, преимущественно эозинофильных
располагается более зрелая клеточно-волокнистая ткань и напластования новообразованных костных структур, остеоидных и фиброзных трабекул, костно-хрящевых структур, что расценено как предстадия формирования остеоидного матрикса ткани
Острые воспалительные реакции практически нивелированы. Мышечные структуры на обширных территориях замещены клеточно-волокнистой тканью с хорошо развитой коллагенизацией ее фибриллярной компоненты, отдельные очаговые лимфомакрофагальные
инфильтраты В этой молодой соединительной ткани имеются многоядерные мышечные почки
дефект
Дефект заполнен костным регенератом в виде клеточноволокнистой ткани, отмечено формирование остеоидных а по их созревании - фиброзных трабекулы. Межтрабекулярные пространства новой кости сокращаются в площади, уплотняются, компактизируются (костная мозоль).
ткани
Почти полное элиминирование некротически измененных тканей, затухание острых перифокальных воспалительных реакций Мышцы полностью замещены соединительной тканью Превалирующей характеристикой была продвинутость процессов организации, практическое исчезновение воспалительно-инфильтративных проявлений.
30 сутки
Костный
Костный дефект заполнен рыхлой соединительной тканью с большим числом гигантских клеток типа остеокластов Ткань дефекта грубоволокн истая, костные структурыпред ставлены плотными
трабекулами из фиброзного костного вещества, причем рыхлой и лишенной кроветворных элементов Активного отложения нового костного вещества здесь не наблюдается.
Мягкие
Мышечные волокна с остаточными дегенеративными изменениями: гомогенизированной_саркоплазмой,
дефект
Признаки остеогенной формации с небольшим количеством клеточных элементов, признаки отложения остеоида Местами отмечены напластования бесформенной оксифильной субстанции остеоида, местами - типичных остеоидных балочек. Воспалительных проявлений не отмечено.
ткани
Практически полное восстановление мышечной ткани, лишь местами можно было видеть группы мышечных волокон с
выраженной стертостью ее поперечнополосатой исчерченности, зернистостью, стертостью клеточных границ. Тенденция к замещению клеточноволокнистой
соединительной тканью, в которой обнаруживались очаговые, в том числе перивазальные, лимфомакрофагальные инфильтраты.
явными признаками остаточных дистрофических изменений. Последствия интенсивных продуктивных реакций соединительно-тканных элементов,
наблюдавшиеся в более ранние сроки в виде развития фиброзной соединительной ткани в области травмы между костью и мышечной тканью.
В процессе изучения динамики посттравматического процесса мы выявили довольно выраженную индивидуальную вариабельность реакций, а так же предполагаемых эффектов применения ПФ. С целью объективизации оценок результатов гистоморфологического исследования по группам наблюдений, в частности, в динамике процесса заживления костных ран в зависимости от условий эксперимента, были разработаны критерии, по которым можно провести оценку различий в состоянии тканевых структур.
Принципы отбора морфологических критериев.
В качестве морфологических критериев использовали определенные характеристики исследуемого тканевого материала, являющиеся структурным субстратом процессов, происходящих в области экспериментального воздействия и возникающих как прямое либо опосредованное его следствие
• признаки должны быть интерпретируемыми по отношению к типу реакций (негативной или позитивной, по принципу «хорошо-плохо»).
• признаки должны обязательно присутствовать в тканях в области экспериментального воздействия
• признаки должны оцениваться количественно от полного отсутствия («О» баллов) и до максимальной интенсивности («5» баллов).
Отбор критериев по максимально «выразительным» различиям величины балльных оценок в группах эксперимента (таблицы 6,7) показал, что наиболее весомые расхождения между контролем и основными группами (опыт 3, опыт 4) относились именно к тем критериям, которые характеризовали ключевые элементы раневого процесса- тканевая деструкция, воспалительные реакции, регенерация и дифференцировка вновь образованных мягкотканых и костных структур.
Сопоставление значений оценки воспалительных реакций мягких тканей на травму свидетельствует о снижении в динамике интенсивности и распространенности повреждения (деструкция, некроз), уменьшения интенсивности воспалительных реакций мягких тканей на травму Повреждение костной ткани (некроз остеоцитов) до 3 суток было идентичным во всех группах, а затем в основных группах прослеживалась отчетливая тенденция к уменьшению степени
повреждения по сравнению с контролем Резорбция костного вещества с его замещением соединительной тканью во всех группах характеризуется аналогичными показателями, однако, гигантоклеточная реакция (как показатель резорбции) в контроле проявляла тенденцию к повышению на 3-5 сутки, по сравнению с основными группами Интенсивность образования рыхлой соединительной ткани в костном дефекте на 5 сутки эксперимента в основных группах также была выше Та же картина наблюдается и в отношении новообразования в костном дефекте клеточно-волокнистой соединительной ткани Во всех группах эксперимента пик интенсивности репарационного остеогенеза приходится на 5 сутки опыта, но интенсивность костеобразовательных процессов в основных группах была выше К 10 суткам в основных группах намечается более интенсивное созревание новообразованных костных структур При этом не удалось выявить сколько-нибудь значимых различий в морфологической картине основных групп (опыт 3, опьгг 4), что служит основанием для вывода об идентичности эффектов местного и парентерального применения препарата
Таблица 6.
Состояние тканевых структур в области травмы по негативным реакциям
Тканевые структуры Контроль | ОпытЗ | Опыт 4
Сроки исследования (сутки)
1 | 3 | 5 | 10 | 1 | 3 | 5 | Ю | 1 3 5 | 10
А. МЯГКИЕ ТКАНИ
1. ПОВРЕЖДЕНИЕ
1. Деструкция, некрозы
1. Интенсивность 5 5 5 4 5 5 4 0 5 5 5 3
2 Распространенность 5 5 5 5 5 5 5 0 5 5 4 0
2. Воспалительные реакции
1 Отек, ангиоматоз, выпадение фибрина 5 5 5 0 3 5 5 0 5 5 5 0
Лейкоцитарный инфильтрат 5 5 5 0 3 5 5 0 5 5 0 0
2 Распространение воспалительного инфильтрата в окружающую кость 0 4 4 4 0 0 0 0 0 4 3 0
Б. КОСТЬ
Некроз остеоцитов
Распространение в крае дефекта 5 5 5 0 5 5 1 0 5 5 3 0
Распространение вне костного дефекта. 4 3 4 0 4 4 1 1 4 4 1 0
3) Резорбтивные проявления
1. Количество гигантских остеокластов
1 у костного края 0 5 5 0 0 4 5 0 0 4 5 0
2 вне костного края 0 3 5 5 0 0 1 1 0 5 5 0
2. Резорбция костного вещества
1 в костном крае дефекта 0 5 5 0 0 5 5 0 0 5 5 0
2 за пределами костного края 0 3 5 1 0 5 1 0 0 5 5 0
3. замещение костного вещества соединительной тканью 0 5 5 4 2 3 4 2 0 5 4 2
Таблица 7.
Состояние тканевых структур в области травмы по позитивным реакциям
№ Тканевые структуры Сроки (сутки) Конт роль Опыт 1 Опыт 2
1 | 3 5 | 10 1 | 3 | 5 | 10 1 |3 | 5 |10
Образование остеогенной ткани 1). В костном дефекте
1 Рыхлая соединительная ткань 2 Клеточно-волокнистая соединительная ткань 0 0 4 4 0 0 5 0 0 0 4 0
0 0 2 4 0 0 5 3 0 0 5 4
2). На уровне периоста
1 Рыхлая соединительная ткань 2 Клеточно-волокнистая соединительная ткань 0 2 2 0 0 0 3 0 0 3 3 0
0 0 4 5 0 0 5 3 0 4 5 3
2. Новообразование костного вещества
1 периостальное 2 эндостальное 3 созревание новообразованных, костных структур 4 соединительная ткань в межграбе кулярных пространствах 3. Образование хряща и костно-хрящевых структур 0 0 2 5 0 0 4 5 0 0 4 5
0 0 2 4 0 0 3 4 0 0 4 5
0 0 0 3 0 0 2 4 0 0 2 4
3 3 4 0 3 2 2 1 4 4 5 2
0 0 0 4 0 0 0 5 0 0 0 4
На материале 2-й фазы исследований (30 сутки) вывод о снижении интенсивности деструктивных изменении в мягких (мышечной) тканях в области костного дефекта, у животных, получавших ПФ, был подтвержден. Результаты гистоморфологического исследования и полуколичественного анализа показали, что к 30 суткам в области костных дефектов развиваются активные регенерационные процессы, в результате которых происходит частичное восстановление мягкотканных структур формируется костная мозоль, характеризующаяся более интенсивным созреванием новообразованного костного вещества, более выраженное в основных группах
1.2. Экспериментальное исследование морфологического состояния полнослойных кожных лоскутов, экспонированных в ПФ при их аутотрансплантации
При исследовании лоскутов, экспонированных в ПФ, получены данные, показывающие положительный эффект его действия (таблица 8)
Гистологические характеристики аутотрансппантатов
Таблица 8.
Физиологический раствор |
Перфторан
1-е сутки
интерстициальная инфильтрация
единичными моноядерными клетками воспаления
В верхних отделах дермы
заметные
отсутствуют,
клетки.
патологические разрозненные
изменения моноядерные
В глубоких отделах дермы и подкожно-жировой ткани
выраженный отек, распространяющийся вверх вдоль волосяных фолликулов, диффузная инфильтрация ПЯЛ, гистиоцитами, моноцитами, тканевыми базофилами.
более выраженная интерстициальная инфильтрация клетками воспаления, преимущественно, лолиморфноядерными лейкоцитами, а также моноцитами, гистиоцитами Мышечные волокна
фрагментированы, с исчезновением I не изменены, с сохранной исчерченностью. поперечной исчерченности |
Сосуды
полнокровие целостность нарушена. 3 сутки
и стаз, сосудистой
местами
стенки
полнокровие, стаз, начинающееся тромбообразование, умеренный отек.
субэпидермальные некротическими прилежащей ткани.
В верхних отделах дермы
пузыри с изменениями
выраженные признаки гиперплазии неравномерного характера; дермо-эпидермальная граница сглажена
В глубоких отделах дермы и подкожно-жировой ткани
выраженный отек, разволокнение коллагеновых волокон, разрыв септ с потерей нормальной структуры; клетки реактивного воспаления практически отсутствуют за исключением единичных макрофагов.
Мышечные волокна
умеренно выраженный диффузный стромальный полиморфноклеточный
инфильтрат с преобладанием лимфоцитов и гистиоцитов, местами выявляется экзоцитоз клеточных элементов в эпидермис
часть волокон дефрагментирована, потеряла поперечную исчерченность; выражена инфильрация межмышечных пространств лейкоцитами
слой мышечной ткани сохранен, но часть волокон фрагментирована с потерей исчерченности, между мышечными волокнами скопления лейкоцитов.
Сосуды явления отека и инфильтрации
выраженный отек жировои ткани с нарастанием диффузной лейкоцитарной инфильтрации в нижележащих слоях В фасциях также отмечается высокая концентрация клеток воспалительного инфильтрата
5 сутки
в подкожно-жировои ткани резко выраженный отек с нарушением септ и потерей нормальной структуры умеренно выраженный диффузный стромальный полиморфноклеточный инфильтрат с преобладанием лимфоцитов и гистиоцитов Местами выявляется экзоцитоз клеточных элементов в эпидермис
В верхних отделах дермы
состояние коагуляционного некроза.
дистрофические изменения, структура «стерта», местами отслоен субэпидермальными пузырями. В глубоких отделах дермы и подкожно-жировой ткани_
состояние коагуляционного некроза
интерстициальный отек, особенно по ходу волосяных фолликулов. Часть волосяных стержней с дистрофическими изменениями. В нижних отделах дермы и подкожно-жировой ткани крупноочаговые, лейкоцитарные инфильтраты с распространением в межмышечные пространства Мышечные волокна состоянии коагуляционного некроза. частично фрагментированы, со стертой
исчерченностъю, в очагах максимальной инфильтрации разрушены Сосуды, явления отека и инфильтрации в субфасциальной жировой ткани
и
явления отека лейкоцитарной отдельные очаги грануляционной ткани
диффузной, густой инфильтрации, формирования
10 СУТКИ
Струп кожи и подкожно-жировой без подлежащих тканей
30 сутки
выраженный отек, диффузная
инфильтрация лейкоцитами, моноцитами и макрофагами, местами субфасциальная жировая ткань полностью замещена грануляционной тканью с большим количеством фибробластов и сосудов
Препарат кожи с полностью некротизированным эпидермисом и дермой и отслойкой струпа по ходу подкожно-жирового слоя, ниже которого происходит активное формирование грануляционной ткани
В верхних отделах дермы
' с единичными комплексами отслаивающихся некротических масс, с участками некоторой гиперплазии
с признаками гиперплазии со сглаженными межсосочковыми выростами и с микрофокусами некротических тканей на поврехности
В глубоких отделах дермы и подкожно-жировой ткани
диффузная лерифолликулярная
инфильтрация дермы, септ подкожно-жировой ткани, интерстициальных пространств мышечной ткани, преимущественно ПЯЛ с признаками гиперплазии и с микрофокусами некротических тканей на поверхности
Мышечные волокна
неоформившейся молодой коллаген, не содержащий придатков кожи, местами множество молодых пило-себацейных комплексов, часть из которых содержит волосяные стержни
Диффузная лерифолликулярная
инфильтрация интерстициальных
пространств мышечной ткани, преимущественно ПЯЛ.
слои мышечной ткани несколько утолщен и состоит из молодых мышечных волокон без поперечной исчерченности, с
многочисленными веретеновидными ядрами
отек субфасциальной жировой ткани, которая содержит грануляционную ткань в виде полосовидной зоны_
Сосуды
субфасциальная жировая ткань с многочисленными полнокровными сосудами
45 сутки
В верхних отделах дермы
эпидермис с признаками гиперплазии, без межсосочковых выростов, придатки кожи в этих участках отсутствуют Местами приобретает ундулирующий вид и появляются единичные незрелые придатки кожи. эпидермис утолщен, без межсосочковых выростов. Придатки кожи отсутствуют. В переходной зоне соединительно-тканные волокна оформлены в параллельные пучки, пролиферативная активность фибробластов ниже, в эпидермисе появляются межсосочковые выросты и формируются молодые производные эпидермиса.
В глубоких отделах дермы и подкожно-жировой ткани
дерма в большей части препарата представлена пучками незрелого коллагена, расположенного параллельно поверхности эпидермиса. В крае препарата строение дермы имеет более зрелый характер в дерме определяются два типа структурной организации соединительнотканной стромы: во локона располагающимися параллельно поверхности эпидермиса с выраженной фибробластической пролиферацией и коллагеновые волокна со зрелой структурой в виде переплетающихся пучков, характерных для нормальной дермы.
Мышечные волокна
слой мышечной ткани выражен слабо слой мышечной ткани выражен достаточно, однако пучки волокон разволокнены, исчерченность выражена слабо
Таким образом, анализ материала позволяет сделать следующее заключение.
1 Воздействие ПФ замедляет развитие патологических изменений в трансплантируемом кожном лоскуте, что выражается в более продолжительной сохранности структур кожи и подкожно-жировой ткани, прежде чем наступают их некротические изменения и образование струпа.
2 Воздействие ПФ способствует ускорению процессов регенерации и дифференциации структур кожи и подкожно-жировой ткани за счет сокращения периода вторичной альтерации. В сроки 45 суток эксперимента процесс вторичной перестройки и дифференциации структур остается не полностью завершенным в обеих группах но он был значительно более продвинут основной группе
1.3. Исследование влияния ПФ на состояние изолированного кожного лоскута
Проведенные исследования показали более выраженное нарастание массы лоскутов при экспозиции в 0,9% растворе натрия хлорида по сравнению с ПФ (рис. 1). Если в течение первых 3 часов экспозиции масса лоскутов в обеих группах между собой достоверно не различались, то через 24 часа она достоверно превышала исходную на 44,3% в контроле и на 19,6 % массу лоскута, сохраняемого вперфторане (р<0,01).
Рис. 1. Динамика нарастания массы лоскутов.
Для лоскутов в контроле характерно 2-кратное снижение концентрации глюкозы в ткани, а лоскуты, экспонированные в ПФ, сохраняли существенно больший ее уровень Это сопровождалось активацией процессов гликолиза и накоплением Л с увеличением соотношения Л/П (рис. 2).
25 20 15 10 5 0
Рис. 2. Динамика соотношения лактат/пируват в лоскутах.
25
20 15 10 5 О
«и ' , ___"—1 ^
„ м - - -
■ (.
■ - -
- МДА ФЗ
- МДА ПФ —Л/П ФЗ
Л/П ПФ
Рис. 3. Динамика изменений отношения Л/П и уровня МДА в лоскутах.
I ,
-КМДА •ПФМДА -КЕ -ПФЕ
Рис. 4. Соотношение активности МДГ и концентрации МДА в лоскутах.
Несмотря на разную интенсивность гликолиза, активность ЛДГ резко снижалась в обеих группах, примерно в 3 раза. Практически параллельно приросту отношения Л/П возрастал уровень МДА, что отражает увеличение интенсивности генерации свободных радикалов, обычно сопровождающих интенсификацию гликолиза. Динамика активности МДГ практически противоположна динамике изменений уровня МДА (рис 4). Не исключено, что снижение активности МДГ связано с повреждающим действием МДА. Возможно, что меньшее снижение уровня СДГ в контрольной группе отражает более высокий уровень восстановления дыхательных переносчиков. Динамика активности ИЗДГ в обеих группах примерно одинакова.
Т о , лоскуты, погруженные в ПФ, в меньшей мере переживают энергетический дефицит и имеют более интенсивный гликолиз, сопровождающийся более высоким уровнем продукции МДА. Собственно по биохимическим параметрам сложно оценить, имеют ли данные сдвиги позитивный или негативный характер. Более четким показателем является уменьшение степени отека лоскута при хранении в ПФ.
Исследование механических свойств лоскутов с помощью акустического датчика ASA показало следующее Сразу после изъятия лоскута привело к резкому уменьшению скорости проведения звука, обусловленного уменьшением натяжения изолированного от окружающих тканей участка кожного покрова, особенно выраженному при продольном измерении, вдоль линий напряжения, (рис. 5 6). Судя по восстановлению тургора ткани (восстановление показателей прибора к концу экспозиции лоскута), ПФ способствовал лучшему сохранению ткани Об этом же свидетельствует, по-видимому, меньший прирост значения акустического параметра, так как это отражает меньшую отечность пересаженного лоскута, что подтверждается данными гистологического исследования.
Рис. 5. Отклонение акустического параметра при продольном замере
Рис. 6. Отклонение акустического параметра при поперечном замере
1.4. Влияние ПФ на активность процессов ПОЛ, ферментативной АОС крови
Исследование влияния однократного введения ПФ на интенсивность процессов ПОЛ и ферментов антиоксидантной системы (АОС) плазмы показало, что однократное введение ПФ не вызывает изменение интенсивности ПОЛ в плазме крови крыс, о чем свидетельствует содержание продуктов ПОЛ, уровень которых остается в пределах контрольных значений во все сроки исследования (таблица 9) СПА - интегральный показатель, отражающий помимо прооксидантной активности также и стабильность мембран клеток, был достоверно ниже значений в контроле во все сроки исследования. Концентрация ВЭГ в плазме- основного маркера стабильности мембран эритроцитов - также была достоверно ниже значений в контроле примерно в 2 раза во все сроки исследования (р<0,05)
Таблица 9.
Динамика активности процессов ПОЛ и ферментов АОС плазмы крови
Показатели Контроль Сроки после введения перфторана (сутки)
1 3 7
ДК 28,73±2,66 29,47±1,44 28,52±2,57 23,82+3,85
нмоль/мг липида р>0,05 р>0,05 р>0,05
МДА нмоль/мг липида 42,13±3,09 47,30±4,30 р>0,05 41,47±3,94 р>0,05 49,79±3,79 р>0,05
ШО отн.ед/мг липида 0,592+0,054 0,481 ±0,050 р<0,05 0,583±0,041 р>0,05 0,477±0,098 р>0,05
ВЭГ мкмоль/мг липида 2,06+0,30 1,16±0,22 р<0,05 1,19+0,17 р<0,05 1,06±0,24 р<0,05
СПА нмоль/Н202/мл/ми н/мг 5,10±0,65 3,07±0,35 р<0,05 2,74±0,20 р<0,02 2,65±0,29 р<0,02
Использование определения активности ПОЛ в эритроцитах показали, что однократное внутривенное введение ПФ приводит к умеренному повышению активности процессов ПОЛ в мембране эритроцитов (таблица 10). Концентрация продуктов ПОЛ во все сроки исследования достоверно превышала таковые в контроле Обращает внимание факт меньшего накопления конечных продуктов ПОЛ в мембранах эритроцитов, что имеет положительное значение (Зенков и соавт, 2001) Умеренное повышение активности ПОЛ в мембранах эритроцитов отмечено на фоне некоторого увеличения активности каталазы, которая достоверно превышала значения в контроле (р<0,01) Активность СОД во все сроки исследования достоверно от значения в контроле не отличалась.
Исследования структурно-функциональных свойств мембран дают основания считать, что ПФ повышает стабильность мембран эритроцитов (таблица11)
Таблица 10.
Динамика активности процессов ПОЛ и ферментов АОС мембран эритроцитов
Показатели Контроль Сроки после введения перфторана (сутки)
1 3 7
ДК нмоль/мг липида 2,23±0,53 2,30±0,23 3,56±0,41 р<0,05 3,86+0,35 р<0,001
МДА нмоль/мг липида 3,53±0,25 4,01±0,27 р>0,05 4,57±0,28 р<0,01 4,26±0,39 р>0,05
ШО отн ед/мг липида 0,563+0,057 0,413±0,045 р<0,05 0,605±0,081 р>0,05 0,684+0,040 р<0,001
сод мкмоль/мг пипида 2,92±0,16 2,49+0,13 р<0,05 2,61±0,19 р>0,05 3,31±0,55 р>0,05
Каталаза нмоль/Н2Ог/мл/мин/мг 19,68±1,17 32,95±4,18 р<0,01 25,14±2,35 р<0,05 32,49±5,48 р<0,02
Таблица 11.
Структурно-функ1 иональные свойства мембран эритроцитов
Показатели Контроль Сроки после введения перфторана (сутки)
1 3 7
ГЛ (334), ед опт плотности 0,53±0,03 0,47±0,06 0,47±0,06 р>0,05 0,64±0,03 р<0,05
(282), 0,91±0,09 0,71±0,03 0,53±0,04 0,56±0,06
ед опт плотности р<0,05 р<0,02 р<0,02
АР ед опт плотности 0,111+0,011 0,122±0,036 р>0,05 0,121±0,008 р>0,05 0,065±0,003 р<0,01
Гзт^зэз (334) ед опт плотности 1,21 ±0,05 0,99±0,04 р<0,01 0,96±0,08 р<0,01 1,17±0,05
Рзт^зк, (282) ед.опт плотности 1,79±0,06 1,77±0,07 1,77±0,08 1,76±0,06
Об этом свидетельствует динамика текучести липидного слоя мембран -(334), который во все сроки исследования достоверно по сравнению с контролем не изменялся Однако, Рэ/Рм (282), оставался в течение всех сроков исследования достоверно ниже контроля, что может оказывать влияние на функционирование мембранных ферментов, рецепторов, ионных каналов. Введение ПФ приводит и к снижению Рз72/Рзэз (334), что свидетельствует о нормализации полярности липидного слоя мембран эритроцитов, а, следовательно уменьшению так называемой «водной коррозии» мембран (Ю.В.Владимиров и соавт., 1991) и ее проницаемости. Аналогичная динамика прослежена и в отношении Р^г/^ш (282), характеризующего полярность в зоне белок-липидных взаимодействий.
1.5 Влияние внутривенного введения малых доз ПФ на параметры системы гемостаза
В таблице 12 представлены параметры гемостаза через час после внутривенного введения ПФ и его компонентов, а также параметры гемостаза интактных животных ПФ и его компоненты через 1 час после введения не влияли на
исследованные параметры гемостаза.
Таблица 12.
_Влияние перфторана и его компонентов на параметры гемостаза
Показатели гемодинамики Группы животных
4 (И) 2 (ПС) 3(СР) 1 (ПФ)
Протромбиновое время сек 26,1 ± 1,1 25,3 ± 2,0 24,6 ± 1,2 25,6 ± 1,3
Концентрация фибриногена, мг/мл АПТВ, сек 22,7 ±4,3 25,6 ±2,4 30,8 ±6,5 33,0 ±4,1
32,0 ± 2,9 34,1 ±4,2 27,6 ± 2,8 27,7 ± 2,8
Тромбин-гепарино-вое время, сек 33,1 ±2,4 41,4 ±4,4 35,3 ±4,2 32,7 ±3,3
ТВРТ, сек 44,9 ± 1,8 46,5 ± 4,0 49,2 ±4,1 52,8 ±4,3
Лебетоксовое время, сек 44,8 ± 5,9 57,8 ± 6,2 55,1 ± 8,8 51,5 ±3,1
(Фибринолиз-тест), сек 1273,7 ± 168,9 1159,3 ± 157,1 1034,8 ± 47,2 922,5 ± 67,1
1.6. Влияние ПФ на состояние системного кровотока
Проведенные исследования выявили изменение линейных параметров кровотока в контроле Достоверных различий скоростей кровотока и индексов
резистентности (И) и пульсового (Р1) при внутримышечном введении 0,9% раствора натрия хлорида по сравнению с исходным фоном не выявлено, хотя и отмечена тенденция к некоторому увеличению их значений При внутривенном введении 0,9% раствора натрия хлорида отмечено достоверное увеличение линейных скоростей кровотока по сравнению с исходными значениями на фоне практически неизменном ГО, что свидетельствует о сохранении высокого тонуса сосудов микроциркуляции Р1 достоверно превышал фоновое значение. При картировании отмечено некоторое увеличение артериального кровотока по сравнению с исходным как в бедренной артерии, так и в тканях бедра Энергетическое доплеровское картирование показало незначительное увеличение массы эритроцитов как в зоне инфильтрации тканей 0,9% раствором натрия хлорида, так и при его внутривенном введении При внутримышечном введении ПФ отмечено более значительное, чем в контроле возрастание скоростей кровотока, хотя эти показатели не различались достоверно ни с аналогичными показателями исходного фона и в контроле. Однако при картировании отмечено значительное увеличение артериального и венозного кровотока по сравнению с исходным как в бедренной артерии, так и в тканях бедра ГО и Р1 также достоверно не различались с таковыми в контроле При внутривенном введении ПФ линейные скорости кровотока превышали контроль в 2,5-4,5 раза, что сопровождались достоверным снижением ГО. Р1 достоверно превышал фоновое значение в 2 раза.
\Лпах \Лп1п Утеап
Рис. 7. Сравнительная динамика скоростей кровотока в бедренной артерии при введении 0,9% раствора натрия хлорида и ПФ.
При картировании визуально отмечено значительное увеличение артериального и венозного кровотока по сравнению с исходным, как в зоне
проекции бедренной артерии, так и в тканях бедра Энергетическое доплеровское картирование показало увеличение массы эритроцитов как в зоне инфильтрации тканей ПФ, так и при внутривенном введении.
1.7. Влияния ПФ на параметры гемодинамики при плеторическом введении
В таблице 13 приведены средние значения АД и ЧСС по каждой группе экспериментальных животных через час после введения ПФ
Таблица 13.
Влияние различных препаратов на АД и ЧСС у самцов крыс вНЯ-вР.
Показатели гемодинамики 1 -И Через час после введения исследуемых препаратов
2-СР з-пс 4 - ПФ
АД. мм.рт.ст 164,7±8,5 164,2+7,8 170,0 ± 10,3 179,4 ±8,1
ЧСС, уд/мин 341,5 ± 14,8 332,4 ± 16,2 369,7 ± 16,9 330,6 ± 12,4
Как следует из таблицы 13, после плеторического введения проксанола (3 группа) и ПФ (4 группа) у животных отмечена тенденция к небольшому повышению АД через 60 минут. Так в 3 группе АД составило 103,3%, а в 4 - 108,9% от значений у интактных животных (величина р во всех случаях >0,05) В то же время ЧСС имела разнонаправленную динамику' в 3 группе животных на фоне введения проксанола отмечена некоторая тенденция к увеличению ЧСС по сравнению с 1 группой (интактных животных) - 108,3% (р>0,05), а в 4 группе на фоне введения ПФ - 96,8% (р>0,05).
Клинические исследования
1.1. Влияние малых доз ПФ на лейкоцитарную формулу, биохимические параметры периферической крови и суммарную хемолюминесценцию плазмы крови
Определение показателей «белой» крови и биохимические параметры определяли стандартными методами, используемыми клинико-диагностическим лабораториями (Н.Н.Карпищенко, 1999). Регистрировались сдвиги в параметрах периферической крови после введение малых доз ПФ - порядка 1,5-2 мл на кг массы тела. Некоторые показатели клеточного состава крови, базальные биохимические показатели крови и состояние ПОЛ исследовалось у 14 больных
(возраст 28 - 52 лет, 6 мужчин, 8 женщин) стоматологической клиники, которым ПФ вводился в дозе 1,5-2 мл на кг массы тела однократно в предоперационный период, за 3 дня до запланированной операции Для сравнения в качестве «нормы» использована кровь 15 практически здоровых доноров.
Как показано в таблице 14, малые дозы ПФ вызывали некоторое увеличение содержания эозинофилов и лимфоцитов на фоне снижения содержания сегментоядерных лейкоцитов в периферической крови Все сдвиги наблюдались в пределах физиологической нормы Однако с точки зрения прецизионной оценки функционального состояния пациентов в пределах физиологической нормы (ЛХ Гаркави и соавт, 1990), можно констатировать, что вслед за инфузией ПФ состояние «острого стресса», наблюдаемое до введения препарата, сменялось реакцией «активации» через 1 час и «повышенной активации» - через 24 часа Такие сдвиги свидетельствуют об отсутствии патологического и наличии некоего нормализующего - активирующего влияния малых доз ПФ на функциональное состояние пациентов.
Таблица 14.
Динамика показателей белой крови пациентов в предоперационный
период после однократного введения ПФ в дозе 1,5-2 мл на кг массы тела.
■ Показатели Норма (пв15) Сроки исследования (п=14)
I - до ПФ II - через 1 час III - через 24 часа
Кол-во лейкоцитов, х109/л 5,1±0,2 4,6±0,5 5,7±0,4 6,8±0,7 Pi<0,02
Кол-во эозинофилов, % 1,0 ±0,1 1,1±0,2 2,4±0,3 Р1<0,001 3,1±0,2 pi<0,001
Кол-во палочкоядерных нейтрофилов, % 1,2±0,1 2,4±0,3 Pk<0,02 2,7±0,2 рк <0,01 2,3±0,1 Рк<0,01
Кол-во сегментоядерных нейтрофилов, % 60,4 ±1,7 71,6±3,2 рк <0,001 52,4±1,5 Р1<0,001 50,1±1,8 р,<0,001
Кол-во лимфоцитов, % 24,7 ± 2,8 20,4±2,2 30,3±3,1 Р1<0,05 42,9±4,3 pi<0,01
Кол-во моноцитов, % 4,3 ± 0,5 4,4±0,3 4,9±0,6 5,6±0,4 pi<0,05
Биохимические параметры периферической крови после введения малых доз ПФ не претерпевали сколько-нибудь существенных изменений (таблица 15)
Таблица 15.
Биохимические показатели периферической крови пациентов в предоперационный период после однократного введения ПФ
Параметры Норма (п=10) Перфторан (п=10)
До введения через 1 час через 24 часа
Глюкоза, ммоль/л 4,5±0,6 5,1 ±0,7 4,8±0,5 4,2±0,4
АЛАТ, ммоль/л 0,7±0,1 0,8±0,1 0,6±0,07 0,6±0,05
АСАТ, ммоль/л 0,5+0,06 0,7±0,09 0,6±0,04 0,7+0,05
Билирубин общ. ммоль/л 18,1±1,7 21,6+2,1 17,8±2,6 19,3±1,9
Билирубин пр. ммоль/л 3,8±0,8 4,1±0,5 3,6±0,7 3,5±0,4
Креатинин, ммоль/л 87,9±6,1 84,8±3,7 69,3±6,8 77,4±5,0
Мочевина, ммоль/л 8,2±0,9 8,5±1,4 7,3±1,6 7,9±1,5
Общий белок, г/л 71,4±5,6 75,6±4,2 74,8±3,7 75,4±3,9
Исходно у обследованной группы пациентов наблюдалось несколько сниженная хемолюминесценция плазмы (таблица 16). Такое явление наблюдается при наличии симптомов эндотоксикоза вследствие того, что высоко- и среднемолекулярные вещества, циркулирующие в плазме крови при эндотоксикозе, являются гасителями спонтанной люминесценции люминола При этом отмечается существенно повышенная скорость снижения уровня люминесценции - возросла величина 1д-ь что может отражать активацию систем быстрой элиминации свободных радикалов - активацию одного из начальных звеньев антиоксидантной системы Введение малых доз ПФ незначительно повышало уровень хемолюминесценции (возможно, снижалась несколько концентрация эндотоксинов) и не влияло на повышенную исходно активность антиоксидантных систем плазмы
Таблица 16.
Интенсивность хемолюминесценции плазмы периферической крови пациентов в предоперационный период после однократного введения ПФ
Параметры Норма (n=10) Перфторан (n=10)
До введения через 1 час через 24 часа
Smax 30,6±2,7 21,9±2,1 23,9±2,8 25,1±3,1
Pk <0,01 pk<0,01 Pk <0,01
'max 2,8±0,3 2,8±0,4 3,9±0,5 3,8±0,6
ST max 1,6+0,2 1,7±0,3 1,9±0,4 1,7±0,2
tgi 2,5±0,2 5,1±0,7 4,7±0,6 6,7±0,8
pk<0,01 pk<0,01 Pk <0,01
tg2 3,8±0,4 -1,0+0,1 -1,58+0,3 -1,7±0,5
pk<0,01 Pk <0,01 pk<0,01
Smax, Imax, STmax - характеристики вспышки люминесценции плазмы крови при добавлениии люминола, соответственно площадь под кривой, амлитуда максимума вспышки и площадь пика вспышки - характеризуют стационарный уровень свободнорадикальных соединений в плазме крови, способных возбуждать люминесценции люминола; tgi, tg2 - тангенс угла наклона двух прямых, апроксимирующих быструю и медленную кинетику нисходящего колена кривой, характеризующий антиоксидантные свойства исследуемого объекта.
1.2. Влияние малых доз ПФ на параметры гемостаза.
Влияние внутривенного введения малых доз ПФ на систему гемостаза оценивали у больных, имеющих в анамнезе ишемический инсульт, инфаркт миокарда или выраженное (вне стадии острой ишемии) поражение сосудов
конечностей (исследование выполнено совместно с Н Б Кармен и Е И Маевским). Всего было обследовано 11 больных (3 женщины и 8 мужчин), в том числе 10 - в возрасте от 46 до 77 лет и один больной 28 лет В качестве контрольной группы была использована кровь 15 практически здоровых доноров в возрасте 35-50 лет Оценивали состояние первой и второй стадий свертывания крови и фибринолитическую активность.
О состоянии активности факторов внутреннего пути свертывания (VII, IX, XI, XII, прокалликреина и высокомолекулярного кининогена) судили по динамике активированного частичного тромбопластинового времени (АЧТВ) с помощью фосфолипидного реагента НПО «Ренам» (Москва). Для оценки состояния внешнего механизма образования тромбокиназы и дефицита факторов тротромбинового комплекса (вторая фаза свертывания крови) определяли содержание фибриногена в плазме гравиметрическим методом по Р.А.Рутберг (1961) и содержание фибриногена «В» в плазме по Gummine et Lyons (1948) (В.П Балуда и соавт, 1980) О вероятности развития ДВС-синдрома судили по маркерам внутрисосудистой активации системы гемостаза' определяли растворимые фибрин-мономерные комплексы (РФМК) фенантролиновым методом (А.И Карпищенко, 1999). Состояние фибринолитической системы крови оценивали по фибринолитической активности крови (ФАК) методом Kowarzic et Buluck (В П Балуда и соавт, 1980).
Величины полученных нами данных по параметрам системы гемостаза контрольной группы хорошо согласуются с базой данных Ростовского-на-Дону областного кардиологического центра (табл. 17)
Таблица 17.
Влияние внутривенного введения малых доз ПФ на параметры системы __гемостаза _
Параметры Норма Перфторан (п=11)
(п=15) До введения через 1 час Через 24 часа
АЧТВ 47,3±2,9 31,7±3,3 36,4±4,1 49,2±5,4
сек р„<0,001 р„<0,05
РФМК 93,5±7,4 69,6±5,3 99,2±8,5 90,1 ±7,9
Сек р«<0,001 р„<0,05 р„<0,05
Фибриноген 2,6±0,3 4,5±0,6 3,1±0,4 2,7±0,5
г/л р«<0,05 р>0,05
Фибриноген «В», 0 ± 0,06 1,1±0,2 0,2±0,06 0 ± 0,08
г/л р,<0,001 р„<0,05 ри<0,01
ФАК, 225,7 ± 12,3 321,5±22,8 279,4±30,5 238,6±27,9
Сек р«<0,01 Ри<0,05
В группе больных с «ишемическим анамнезом» до введения перфторана в крови определялось большое количество растворимых фибрин-мономерных
комплексов, о чем свидетельствует укорочение времени их выявления в крови на 25,6% (р<0,001), что характерно для развития I фазы ДВС-синдрома О ее наличии свидетельствует и значительное укорочение АЧТВ до 67,0% от нормы. Концентрация фибриногена и фибриногена «В» также была достоверно выше нормы Такие сдвиги отражают активацию прокоагулянтного пула плазмы, которая сопровождается также активацией противосвертывающей системы и фибринолиза, на что указывает усиление фибринолитической активности крови
Генез констатированных нами сдвигов достаточно сложен Нарушения циркуляторных и метаболических процессов и, как следствие, гипоксия и ишемия «запускают» каскадный процесс свертывания крови Ишемические сдвиги в структуре клеточных мембран приводят к нарушению свойств тромбоцитов и способствует усилению спонтанной агрегации (ЮАЧурляев и соавт., 1996 в) Нельзя исключить, что довольно существенную роль в этом играет и нарушение структурно-функциональных свойств мембран эндотелиоцитов, что ведет к утрате антитромбогенных свойств этой «выстилки» (М И.Чхеидзе и соав., 1992). Немаловажное значение имеет и повышенный протеолиз, стимулирующий агрегацию тромбоцитов и «запускающий» каскадный механизм свертывания Весомую «лепту» вносит и массивный выброс тканевого тромбопластина, источником которого являются поврежденные ткани (С А Калиничева, H.A. Винкина, 1998).
Однократное введение малых ПФ способствовало увеличению сниженного исходно АЧТВ вплоть до его нормализации через 24 часа. Уже через час после введения ПФ возрастало до нормального уровня время появления растворимых фибрин-мономерных комплексов и снижалась концентрация фибриногена «В» Через 24 часа снижалось и суммарное содержание фибриногена, соответственно уменьшалась фибринолитическая активность крови. Таким образом, у больных, имеющих в анамнезе ишемические заболевания, однократное внутривенное введение ПФ способствовало позитивным сдвигам в гемостазе, в частности снижению вероятности развития гиперкоагуляции и нормализации других параметров
1.3. Влияние ПФ на гемодинамические параметры у больных
Обследовано 24 пациента, в том числе 12 практически здоровых доноров в возрасте 25-43 лет, которым никакие препараты внутривенно не водились Во второй фуппе исследования проведены на 12 больных (38-62 лет), имеющих
облитерирующие заболевания сосудов нижних конечностей, которым ПФ вводился в дозе 1,5-2 мл/кг массы тела с лечебной целью в качестве средства, улучшающего . доставку кислорода и реологию крови (исследование проведено совместно с Н.Б
Кармен) Артериальное давление и частоту пульса определяли с помощью полуавтоматического тонометра «Omron MX» (Япония), предварительно убедившись, что у обследованных больных нет «дефицита пульса» Среднее артериальное давление рассчитывали по формуле Вецлера и Богера (В Б.Брин, Б.Я.Зонис, 1984):
АДср = АДдиаст. + (АДсист - АДда.ст )х0,42
Пульсовое давление определяли по формуле(В.Б.Брин, Б.Я.Зонис, 1984).
АДпуЛЬС. = АДсист - АДдиаст
Потребность миокарда в кислороде определяли расчетным путем по индексу Rodhe (В.Б.Брин, Б.Я.Зонис, 1984).
АДср.ЧСС 100
ПФ вводили внутривенно, биологическую пробу выполняли трехкратно согласно инструкции Скорость введения составляла 15-20 капель в минуту Побочных реакций в обследованной группе пациентов отмечено не было Измеренные и рассчитанные параметры приведены в таблице 17. Первоначальная тенденция к повышению АДсист и АДпупьс свидетельствует о возрастании динамической составляющей прессорного воздействия на миокард левого желудочка (Benetos et al., 1998; Domanski et al., 1999), и едва ли связано с повышением ригидности артериального сосудистого русла (Е.В.Ощепкова и соавт, 2002, Darme et al, 1999), поскольку одновременно наблюдается снижение АДдиаст-, особенно выраженное через 36 часов после введения ПФ. Ряд исследователей обнаружили корреляцию между повышением АДпуЛЬс и увеличением частоты ишемического повреждения миокарда (Mitchell et al., 1997; Benetos, 1999), если одновременно стабилизируется на высоких цифрах или еще более возрастает ЧСС В таких случаях прирост АДпульс считают независимым предиктором сердечно г сосудистой недостаточности. (Franklin et al., 1998, Vedecchia et al., 1998)
Таблица 18.
Влияние однократного внутривенного введения ПФ на АД и ЧСС._
Показатели I Норма I Сроки исследования (n=12) I
| ("=12) | до введения | через 1 час | через 36 час. |
ЧСС, 65,9±3,4 90,3±5,2 84,6±4,8 74,5±3,8
уд/мин р„<0,02 рпо <0,05
АДсисТч 127,7±5,8 170,1±8,4 185,3±9,0 153,6±6,4
мм рт.ст. Рн <0,02 Рас <0,1
АДдиасГ", 78,3±4,0 100,4+5,1 86,7±4,7 77,8±4,2
мм рт.ст. Рн <0,02 р„„ <0,02
АДср., 99,0±3,2 129,7±7,3 128,1±6,6 109,6±7,3
мм рт.ст. р„ <0,001
АДлулье 49,4±2,3 69,7+2,5 98,6±5,8 75,8±4,2
мм рт.ст. Рн <0,05 Рло <0,02
ПОг м. 65,2±2,8 117,1±6,8 108,4±5,1 56,4±4,7
усл.ед. Рн <0,05 Рло <0,001
Однако, в случае введения ПФ ЧСС стабильно снижается, что позволяет расценивать такой сдвиг как позитивный Более того, величина изменения ПОг свидетельствует об уменьшении потребности миокарда в кислороде, что является одним из наиболее ранних признаков уменьшения напряжения симпато-адреналовой системы и коррелирует со снижением концентрации адреналина в крови (Дядюрко A.M. и соавт, 1987).Таким образом, внутривенное введение малых доз ПФ не только не приводит в негативным сдвигам в измеренных параметрах центральной гемодинамики, но повышает прессорную составляющую при одновременном уменьшении сосудистого сопротивления и повышении АДпульс (косвенное свидетельство увеличения сердечного выброса) Самое удивительное, что при росте эффективности работы сердца происходило снижение расчетного потребления кислорода миокардом, связанное с урежением ЧСС и уменьшением напряжения миокарда во время диастолы (Б И Исламов, 1987)
1.5. Влияние ПФ на кровоток у здоровых людей и больных с патологией челюстно-лицевой области
Отобрана подгруппа из 10 больных, которым проведение реконструктивных пластических операциях на мягких и костных тканях челюстно-лицевой области в связи с деформациями различного генеза. Как правило, у таких больных наблюдается существенное ухудшение регионального кровотока и трофики тканей, в частности нарушение кислородного режима Именно поэтому этим больным было показано введение ПФ в качестве противогипоксического и противоишемического <■
средства.
Кровоток исследовали методом ультразвуковой допплерографии с помощью прибора «Минимакс-Допплер-К» (СП «Минимакс», СПб) (В.А.Козлов и соавт., 2000) Регистрировали параметры линейной и объемной скорости кровотока в области
проекции лицевых артерий. Наиболее информативным параметром линейной скорости кровотока (см/сек) является величина максимальной систолической скорости Х/э, определяемая по кривой максимальной скорости вовремя систолы Среди параметров объемной скорости кровотока (мл/сек) информативными являются следующие: средняя скорость объемного кровотока - О, рассчитываемая по кривой средней скорости, индекс пульсации (Гослинга) - Р1, отражающий упруго-эластические свойства артерий, и индекс (Пурсело) дистального (относительно места измерения) сопротивления кровотоку - ГО.
Основная группа включала 11 больных (7 мужчин и 4 женщины в возрасте 37-62 лет) с повреждением мягких и костных тканей, которым планировалось выполнение пластических реконструктивных операций через несколько дней после введения ПФ, который вводили внутривенно в дозе 1,5-2,5 мл/кг массы тела больного. В контрольную фуппу для регистрации параметров «нормы» были включены 10 практически здоровых людей: 6 мужчин и 4 женщины в возрасте 44-59 лет.
Для примера приведем данные обследования больного К Больной К-н А.В., 27 лет, (история болезни № 668), поступил 01 09 02 г с диагнозом «Дефект и деформация пластически восстановленной приротовой области, дна ротовой полости и нижнего преддверия» Оперирован 27 12 02 г (запись в операционном журнале № 375, 376, 377): Формирование дефекта подъязычной области, взятие аутотрансплантата с внутренней поверхности правого предплечья, наложение микроанастомозов ПФ вводился однократно в дозе 2 мл/кг массы тела после операции.
Первые сутки. Общее состояние удовлетворительное Жалобы на боли в области послеоперационной раны, в области воспринимающего и материнского ложа. В области лоскута отмечается незначительный цианоз, лоскут отечный, теплый на ощупь По данным допплерометрии до введения ПФ было отмечено снижение кровотока в лоскуте и по краю воспринимающего ложа ПФ введен в дозе 2,0 мл на кг массы тела, проведено исследование кровотока через час и 24 часа после введения препарата Отмечено увеличение объемной и линейной скорости потока в 3,5-4,0 раза как в лоскуте, так и в воспринимающем ложе на фоне снижения индекса резистентности сосудов на 55,7% (рис 8 3 ) После введения ПФ больному назначена стандартная противовоспалительная терапия
Вторые сутки. Состояние лоскута удовлетворительное, лоскут на ощупь теплый, обычного цвета тургор сохранен, умеренно выраженная отечность
Третьи - пятые сутки. Состояние лоскута удовлетворительное, лоскут не отечен.
Седьмые сутки. Общее состояние удовлетворительное. Жалоб нет Состояние лоскута удовлетворительное, лоскут теплый на ощупь,не отечен, обычного цвета. Швы несостоятельны, отмечена полная эпителизация лоскута к воспринимающему ложу. Швы сняты через один.
Десятые сутки. Данных за патологию лоскута и послеоперационных ран нет, сняты остаточные швы Больной выписан на амбулаторное наблюдение.
Наиболее информативные количественные характеристики наблюдаемых сдвигов в параметрах кровотока по обеим группам обследованных суммированы в таблице 19 Проведенный анализ свидетельствует о том, что у больных, имеющих дефекты мягких и костных тканей челюстно-лицевой области, по сравнению с практически здоровыми людьми наблюдается почти двукратное падение и О. При этом несколько снижалась эластичность артерий (Р1), но значительно возрастало сосудистое сопротивление в дистальной части сосудистого русла (И) Через час после введения ПФ в малых дозах (менее 1/50 объема циркулирующей крови) зарегистрированы четырехкратное увеличение максимальной величины линейного кровотока и средней скорости объемного кровотока, а также нормализация индекса дистального сопротивления сосудов Несмотря на малую дозу позитивный эффект наблюдался и через 24 часа после инфузии ПФ, когда в кровотоке сохраняется менее 50% от введенной дозы препарата. Можно предположить, что реологический эффект препарата связан со спазмолитическим и реологическим действием проксанола - неионогенного поверхностно-активного соединения, являющегося компонентом ПФ.
Таблица 19.
Динамика показателей кровотока, регистрируемого методом ультразвуковой
допплерометрии у здоровых людей и больных (до и после введения ПФ)
Параметры Норма (п=10) Перфторан (п=11)
до введения через 1 час через 24 часа
Уз, см/сек - максимальная величина линейного кровотока в систолу 5,3+0,8 2,9±0,4 Р< 0.02 12,9±2,8 Р< 0.01 8,9±1,5 Р< 0.002
О, мл/сек - средняя скорость объемного кровотока 0,17±0,02 0,09±0,02 Р< 0.02 0,36±0,10 Р< 0.02 0,28±0,05 Р< 0.01
Р1, мл/сек, индекс пульсации артерии 2,7±0,4 1,7±0,3 Р> 0 05 1,9±0,2 2,3±0,6
мл/сек индекс дистального 0,7±0,1 1,1±0,1 0,6+0,1 0,8±0,2
| сопротивления_|_| Р< 0.02 | Р<0.01 | Р>0 05 I
В основе механизма спазмолитического влияния препарата может лежать также взаимодействие препарата на рецепторном уровне, в частности торможение протеинкиназы С в клетках эндотелия В пользу такого механизма говорят данные Д Г. Шехтман (1997) о способности ПФ тормозить респираторный взрыв в гиперактивированных лейкоцитах.
Таким образом, полученные данные дают основание рекомендовать использование ПФ в малых дозах - порядка 1-2 мл на кг массы тела в качестве лекарственного препарата, улучшающего кровоток у больных с дефектами различного генеза в челюстно-лицевой области
Далее у трех больных с разной патологией ЧЛО области было проведено исследование поверхностного кровотока с помощью лазерного допплерометрического датчика Средние значения амплитуда ЛДФ-граммы до и после введения перфторана представлены в таблице 20. Неожиданно различным оказалось влияние инфузии малых доз ПФ на величину кровотока, измеряемую с помощью лазерной допплерофлуориметрии В относительно интактных, не вовлеченных непосредственно в патологический процесс областях, после внутривенного введения ПФ, как правило, не происходило значимого изменения амплитуды ЛДФ-граммы, более того, наблюдалась даже некоторая тенденция к уменьшению величины кровотока. Напротив, в вовлеченной в патологический процесс зоне практически всегда возрастала величина амплитуды ЛДФ-граммы Не исключено, что такие сдвиги отражают участие пертфоруглеродной эмульсии в перераспределении внутрисосудистой концентрации оксида азота, когда в области с нормальным его воспроизведением ПФ захватывает часть оксида азота и может вызывать некоторое снижение его концентрации тогда, как в области вазоконстрикции (дефицитной по оксиду азота) ПФ выполняет роль донора-резервуара этого медиатора. Такого рода перенос оксида азота, как и любого другого газа, может осуществляться просто по концентрационному градиенту Не исключено, что в качестве первоначального источника оксида азота может выступать очаг воспаления, инфильтрированный активированными нейтрофилами с повышенной активностью МО-синтазы В такой ситуации ПФ может захватывать избыток оксида азота непосредственно из очага воспаления (где его концентрация всегда повышена и где оксид азота принимает участие в образование нитроксильных радикалов)
Таблица 20.
Изменение средней амплитуды ЛДФ-граммы кожи и слизистой после
однократной инфузии ПФ в озе 1,5- 2.0 мл на кг массы тела
ФИО Область измерения Средняя величина амплитуды сигнала ЛДФ-граммы (М±а) Изменение амплитуды после введения ПФ
Исходное значение После введения ПФ
И-ва, Операция реконструкции скулоорбитального комплекса справа Лоб,1 8.07±1,43 9.6810,91 1.61
Лоб,2 6.40±0,87 5.310.26 -1.1
Лоб,3 7.98±0.68 5.7910.45 -2.19
Л. щека,1 11.56±0,79 10.0610,51 -1,50
Л. щека,2 5.2611.20 6.13Ю.73 0.87
Пр. щека,1 6.22±0.65 10.2610.81 4.04*
Пр. щека,2 9.44±0,34 10.7810,66 1 34
Пр. носогуб. складка 5.94±0.53 9.4710 38 3.53*
С-ва, Состояние после пластики дна орбиты и скулоорбитального комплекса справа, невралгия 2-й ветви тройничного нерва Пр Верх губа 2.44+0.38 4.0610.26 1.62*
Л. Верх губа 6.14±0.34 5.77100.32 -0.37
Пр. щека 3.84±0.23 5.25+00.48 1.41*
Л. щека 6.5811.69 6.1010.28 -0.48
Пр носогубная складка 2 6710 27 3 3110.47 0 64
Л. носогубная складка Л. 3.4310.52 4 2910 48 0.86
Пр подглазничная 4.7И0.19 6.36+0.47 1.75*
Л подглазничная 7.7510 35 6.3010.37 -1.45*
Е-ва, Хронический одонтогенный гайморит со свищем Пр слизистая альвеол, отростка 7 7110 76 10 81+1 41 3 10*
Пр слизистая неба 8 2510.33 9.2711.97 1.02
* р < 0,05, различия достоверны.
Следовательно в результате циркуляции ПФ в кровотоке появляется возможность снижения избыточной концентрации оксида азота (что проявляется в уменьшении вторичной воспалительной альтерации) и, напротив, ПФ обеспечивает приток медиатора в места его дефицита (что проявляется вазодилятационном эффектом и увеличении числа перфузируемых артериол и капилляров). В целом полученные результаты исследования свидетельствуют о вазоактивности ПФ в клинических условиях применяя его у больных оперированных в челюстно-лицевой области.
ВЫВОДЫ
1 Результаты исследования патоморфологической картины заживления мягких и костных ран в период с первых по 30 сутки свидетельствуют о том, что использование ПФ способствовало лучшему заживлению костной раны и
поврежденных мягких тканей При этом наблюдалось более быстрое прекращение вторичного повреждения мягких тканей, прилежащих к кости, и уменьшение выраженности реакций на воспалительные повреждения, а также ускорение восстановления разрушенных мягкотканных и костных структур. В основе заживляющего действия ПФ лежат его противовоспалительные свойства, проявляющиеся в снижении лейкоцитарной инфильтрации вне зависимости от способа введения ПФ и уменьшении вторичной деструктивной альтерации. Использование ПФ способствует усилению остеогенеза, обеспечивает уже в ранние сроки более высокий, чем в контроле, уровень дифференцировки фиброзного костного вещества.
2. Воздействие ПФ замедляет развитие патологических изменений в трансплантируемом кожном лоскуте, что выражается в более продолжительной по времени сохранности структур кожи и подкожно-жировой ткани прежде, чем наступают их некротические изменения и образование струпа, о чем наглядно свидетельствовали сопоставления морфологических картин, наблюдаемых в контроле и в основной группе, в сроки 3 - 5 суток опыта В процессе приживления лоскута ускорение процессов регенерации и дифференциации структур кожи и подкожно-жировой ткани так же, как и при заживлении ран происходит в основном за счет сокращения периода вторичной альтерации, вызываемой активированными лейкоцитами, инфильтрирующими раневую зону Об ускорении регенерации убедительно свидетельствует сопоставление морфологических картин, наблюдаемых в контроле и основной группе опытов в отдаленные сроки эксперимента (30 - 45 суток)' процесс вторичной перестройки и дифференциации структур, будучи не полностью завершенным в обеих группах, значительно более продвинут в группе, получавших ПФ наблюдений
3 Полнослойные кожные лоскуты, погруженные в ПФ, в меньшей мере переживают энергетический дефицит и имеют более интенсивный гликолиз, сопровождающийся более высоким уровнем продукции МДА и меньшей выраженностью отека лоскута Механические свойства лоскутов, оцененные с помощью акустического датчика ASA, свидетельствуют о резком уменьшению скорости проведения звука, обусловленного уменьшением натяжения изолированного от окружающих тканей участка кожного покрова и более быстром восстановлением тургора ткани >. 4 Однократное введение малых доз (1,5-2 мл на кг массы тела) ПФ приводит к
стабилизации уровня активности процессов ПОЛ в плазме крови, умеренному
повышению активности ПОЛ в мембранах эритроцитов; повышению стабильности мембран эритроцитов, оптимизации структурного состояния мембран эритроцитов, что проявляется в повышении структурированности зоны аннулярных липидов и снижении полярности липидного бислоя.
5. Однократное введение малых доз ПФ не оказывало существенного влияния на измеренные параметры системы гемостаза у гипертензивных животных тогда, как у больных, имеющих в анамнезе ишемические заболевания, однократное внутривенное введение ПФ способствовало позитивным сдвигам в гемостазе в виде снижения вероятности развития гиперкоагуляционной фазы ДВС-синдрома и нормализации других параметров свертывания и фибринолитической систем крови
6. Экспериментально показано, что ПФ, введенный внутримышечно, не оказывает влияния на системный кровоток, но в зоне введения вызывает значительное увеличение как артериального, так и венозного кровотока. Внутривенное введение ПФ значительно увеличивает и системный и местный кровоток на фоне снижения общего периферического сопротивления Экспериментальные и клинические данные дают основание рекомендовать использование ПФ в малых дозах (порядка 2 мл на кг массы тела) в качестве лекарственного препарата, улучшающего кровоток у больных с дефектами различного генеза в челюстно-лицевой области
7 При внутривенном введении самцам спонтанно гипертензивных крыс линии «вНР-ЗР» в объеме 10 % от объема циркулирующей крови ПФ и его компоненты практически не оказывали влияния на артериальное давление и частоту сердечных сокращений, тогда как у больных с гипертонической болезнью (Иб степень) способствовало кратковременному повышению прессорной составляющей при одновременном уменьшении сосудистого сопротивления и повышении АДпульс, что является косвенным свидетельством увеличения сердечного выброса. При этом рост эффективности работы сердца происходил на фоне снижения потребления кислорода миокардом и снижения ЧСС.
8. На адекватных клинической патологии патофизиологических моделях и в результате целенаправленных клинических исследований выявлено противовоспалительное, ранозаживляющие, реологическое и метаболическое действие малых доз ПФ, вводимого внутривенно и местно, путем внутритканевой инъекции, что позволило рекомендовать использование ПФ как лечебного средства для улучшения течения послеоперационного и реабилитационного процессов в челюстно-лицевой хирургии.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1 Показана целесообразность использования препарата ПФ в малых дозах порядка 1,5-2 мл на кг массы тела больного при предоперационной подготовке, во время оперативного вмешательства и после реконструктивных операций
2. Для уменьшения явлений вторичной альтерации в процессе развития воспаления, ускорения репарации тканей и улучшения регионального кровотока после оперативного и раневого повреждения тканей челюстно-лицевой области рекомендуется использовать препарат ПФ внутривенно и местно, путем внутритканевой инфильтрации.
3 С целью улучшения состояния переживающего полнослойного кожного лоскута и результатов пластики при аутотрансплантации рекомендуется помещать изолированный лоскут сразу после изъятия его с донорского участка ткани в ПФ, а также использовать малые дозы вводимого внутривенного ПФ в качестве противовоспалительного и противоотечного средства, повышающего интенсивность регионарного кровотока в ранний послеоперационнй период
4 При наличии внутриклеточной ретровирусной инфекции, осложняющей течение репаративного процесса при реконструктивных операциях в области челюстно-лицевой хирургии, рекомендуется перед оперативным вмешательством проведение сочетанного курса, включающего 2-х - 3-х кратное внутривенное введение 100-200 мл ПФ и прием иммуномодуляторов типа циклоферон, полиоксидоний или дельтаран
СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ
1 Влияние кровезаменителей различных фармакологических групп на состояние системного кровотока у крыс при различных способах введения//Стоматология -2004 - № 3. - С 4-5 (в соавт. с Кармен Н Б, Лежневой И.Э., Маевским Е И., Мариничевой И.Г., Ипполитовым В.П., Григоряном А С , Безруковым В.М.)
2 Изучение протекторного действия перфторана на кожный лоскут//Российский стоматологический журнал - 2004. - № 3. - С 11-14. (в соавт. сЖитковым М.Ю., Григоряном А С , Ипполитовым В П , Чупахиным П В )
3 Влияние перфторана на заживление мягких и костных ран у крыс//Российский стоматологический журнал - 2004 - № 3 - С 6-9 (в соавт. с Григоряном А С , Мариничевой И Г, Ипполитовым В П , Кармен Н Б , Маевским Е И.)
4 Улучшение регионарного кровотока с помощью перфторана у больных с деформациями челюстно-лицевой области// Российский стоматологический журнал - 2004 - № 3 - С 14-16 (в соавт. с Кармен Н Б , Мариничевой И.Г., И Н.Петровой, Ипполитовым В П., Маевским Е И ).
5. Влияние плеторического введения перфторана на параметры структурно-функционального состояния мембран эритроцитов//Перфторуглеродные соединения в медицине и биологииСборник материалов XII международной конференции Пущино, 2003 .- С 122-126 (в соавт с Кармен НБ , Милютиной Н П., Асиряном Э И., Мариничевой И Г, Маевским Е И )
6. Клиническое исследование воздействия перфторана на кровоток// Перфторуглеродные соединения в медицине и биологии' Сборник материалов XIII международной конференции. Пущино, 2004 - С 122-126 (в соавт с Кармен Н Б , Мариничевой И Г, Петровой И.Н., Маевским Е И., Ипполитовым В П )
7. Изучение эффектов перфторана и его компонентов на гемодинамику и гемостаз у гипертензивных крыс// Перфторуглеродные соединения в медицине и биологииСборник материалов XIII международной конференции Пущино, 2004 - С 159163. (в соавт с:Туховской Е А Мурашовым А Н , Маевским Е.И , Иваницким Г.Р., Масленниковым И А., Пушкиным С.Ю.).
8. Экспериментальное исследование воздействия перфторана на кровоток// Перфторуглеродные соединения в медицине и биологии- Сборник материалов XIII международной конференции. Пущино, 2004 .- С. 219-222. (в соавт. с Кармен Н Б., Лежневой И Э , Мариничевой И Г , Маевским Е И , Ипполитовым В П )
9 Экспериментальное исследование воздействия перфторана на кровоток// Перфторуглеродные соединения в медицине и биологии: Сборник материалов XIII международной конференции Пущино, 2004 - С 227-234 (в соавт. с Григоряном A.C., Мариничевой И Г, Ипполитовым В П , Кармен Н.Б , Маевским Е.И.)
10 Влияние перфторана на состояние системного кровотока в эксперименте //Перфторуглеродные соединения в экспериментальной и клинической медицине-Сборник материалов Российской научной конференции Санкт-Петербург, 2004 С 48-50. (в соавт с Кармен Н.Б , Лежневой И Э., Маевским Е И )
11 К мембранотропным эффектам перфторана//Перфторуглеродные соединения в экспериментальной и клинической медицине' Сборник материалов Российской научной конференции Санкт-Петербург, 2004 С 50-51 (в соавт с Кармен Н Б , Милютиной Н П , Маевским Е И )
12 О кислородзависимых и кислороднезависимых эффектах перфторана// Перфторуглеродные соединения в экспериментальной и клинической медицине' Сборник материалов Российской научной конференции Санкт-Петербург, 2004 С 77-78 (в соавт с Маевским Е И , Иваницким Г Р , Кузнецовой И Н , Исламовым Б И , Войтенковым Б О , Богдановой Л А., Кармен Н Б , Пушкиным С Ю)
13 Опыт применения перфторана в челюстно-лицевой хирургии// Перфторуглеродные соединения в экспериментальной и клинической медицине Сборник материалов Российской научной конференции. Санкт-Петербург, 2004 С 77-78 (в соавт Петровой И Н , Ипполитовым В П , Кармен Н Б , Маевским ЕИ)
14 Исследование структурно-функциональных свойств мембран, прооксидантов и антиоксидантов в мембране эритроцита на седьмые сутки после введения перфторана// ЦНИИ стоматологии - 40 лет: история развития и перспективы. М , 2002- С 109-111 (в соавт с Кармен НБ, Милютиной НП, Маевским ЕИ, Ипполитовым А П , Григоряном А С , Айсиряном И И )
15 Экспериментально- клиническое исследование применения перфторана в реконструктивной челюстно-лицевой хирургии II Вопросы реконструктивной и пластической хирургии Специальный выпуск Материалы научной конференции с международным участием « Новые оперативные технологии - анатомические , клинические, экспериментальные аспекты» Томск; N 3-4, 2004г. , с 79-81 Петрова И Н , Орлов А А, Грицук С Ф , Ипполитов В.П
16 Влияние внутривенного введения перфторана на кровоток у здоровых людей и больных с патологией челюстно-лицевой области и акустические характеристики кожи// Российский стоматологический журнал -2005 - N2 -с 8-10. (в соавт с с Григоряном А С , Мариничевой И Г , Ипполитовым В П , Кармен Н Б , Маевским Е И , Петрова И.Н.).
17 Применение малых доз перфторана в клинике // Российский стоматологический журнал - 2005 - N 2 - с 10-12 (Кармен НБ , Орлов АА, Петрова ИН , Мариничева И Г, Ипполитов В П ,, Маевский Е И , Григорян А С)
18 Влияние перфторана на гемодинамические параметры у больных с нарушением периферического кровотока и патологии челюстно-лицевой области
// Российский стоматологический журнал - 2005 - N 3 - с. 3-4 (в соавт с Кармен Н.Б,, Маевским Е И , Петровой И.Н , Мариничевой И Г, Ипполитовым В.П.,. Григоряном А.С).
19 Влияние малых доз перфторана на лейкоцитарную формулу, некоторые биохимические параметры периферической крови и суммарную хемилюсценцию плазмы крови, у больных в предоперационный период с патологией челюстно лицевой области // Российский стоматологический журнал - 2005 - N 3 - с 4-6. ( в соавт с Кармен Н.Б,, Маевским Е И., Петровой И Н, Мариничевой И.Г, Ипполитовым В П , Григоряном А С , Милютиной М П , Серебряковой Л.Е.)
20. Влияние малых доз перфторана на параметры гемостаза у больных с нарушением кровоообращения при проведении местно-пластических операций челюстно-лицевой области // Российский стоматологический журнал . - 2005. - N 3 .- с 7-8 ( Маевский Е И , Орлов А А , Кармен Н Б, Мариничева И Г., Петрова И Н.,, Ипполитов В.П.,. Григорян АС. )
Научное издание Автореферат А. А. Орлова
Налоговая льгота - общероссийский классификатор продукции ОК-005-93, том 2, 953000 • книги и брошюры
Подписано к печати 10.03 05
Формат бумаги 60x84 1/16 Бумага офсетная. Печать офсетная Усл. пен. листов -2,8
Заказ- 104о8 тираж 100 ОНТИ РАН, Пущино
142290, г. Пущино, Московской области, пр Науки, 3 ОНТИ РАН
РНБ Русский фонд
2005-4 41170
-. _ %
\ , í
г % ¿
■ы? п h
1 к s
2 2 АПР 2005
Оглавление диссертации Орлов, Андрей Алексеевич :: 2005 :: Москва
ВВЕДЕНИЕ.
Основные положения диссертации, выносимые на защиту.
Научно-практическая значимость работы
ГЛАВА 1. Обзор литературы.
Биологические свойства перфторана.
Краткий обзор применения перфторана в клинике.
Противопоказания.
Преимущества ПФ перед донорской кровью и ее компонентами.
Клиническая эффективность действия перфторана при его использовании.
Применение перфторана у больных с геморрагическим шоком.
Применение перфторана у больных с тяжелой политравмой
Применение ПФ у больных с тяжелой термической травмой
Применение перфторана у больных с тяжелой ЧМТ.
Использование ПФ при травматическом повреждении спинного мозга
Использование ПФ в трансплантологии
Применение перфторана в комплексном лечении хронических гастродуоденальных язв.
Применение ПФ в кардиохирургии.
Перфторан в терапии острого инфаркта миокарда
Использование ПФ для лечения инфекций, вызванных ретровирусами
Применение ПФ в комплексной интенсивной терапии больных тяжелыми формами гепатита В и микст-гепатитов.
Механизм клеточной гибели.
Раневой процесс.
ГЛАВА 2. Экспериментально-морфологическое исследование эффектов воздействия перфторана на процесс заживления костных дефектов и мягких тканей.
2.1. Материал и методы исследования.
2.2. Полученные данные и обсуждение.
2.2.1. Группы сравнения (контрольные группы 1 и 2)
2.2.2. Основные группы опыта.
2.2.2.1. Основная группа 3.
2.2.2.2. Основная группа 2.
2.3. Сопоставление и полу количественный анализ процессов повреждения и регенерации в точках наблюдений в основных группах и группах сравнения.
2.3.1. Анализ данных в группах экспериментов по результатам полуколичественной оценки негативных реакций на травму.
2.3.2. Результаты полуколичественного анализа состояния тканевых структур в области экспериментально воспроизведенной травмы на 1 - 10 сутки опыта.
2.4. Результаты полу количественного анализа состояния тканевых структур в области экспериментально воспроизведенной травмы на 30 сутки опыта.
ГЛАВА 3. Экспериментальное исследование морфологического состояния полнослойных кожных лоскутов, экспонированных в перфторане при их аутотрансплантации.
Влияние перфторана на приживление лоскутов.
3.1. Материал и методы исследования.
3.2. Полученные данные и обсуждение.
3.2.1. Контрольная группа.
3.2.2. Основная группа.
ГЛАВА 4. Исследования влияния перфторана на состояние изолированного кожного лоскута.
4.1. Материал и методы исследования.
4.2. Результаты и обсуждение.
ГЛАВА 5. Влияние перфторана на активность процессов ПОЛ, ферментативной антиоксидантной системы крови в эксперименте и в клинике.
5.1.1. Материал и методы исследования.
5.1.2. Резульаты и обсуждение.
ГЛАВА 6. Экспериментальное исследование влияния внутривенного введения малых доз перфторана на параметры системы гемостаза.
Влияние внутривенного введения перфторана на параметры системы гемостаза у спонтанно гипертензивных крыс линии SHR-SP.
6.1. Матери алы и методы.
6.2. Результаты и обсуждение.
ГЛАВА 7. Экспериментальное исследование влияния перфторана на состояние системного кровотока в эксперименте.
7.1. Материал и методы.
7.2. Результаты исследования и их обсуждение.
ГЛАВА 8. Экспериментальное изучение влияния перфторана на некоторые параметры центральной гемодинамики при плеторическом введении перфторана ^
8.1. Материалы и методы.
8.2. Полученные данные и обсуждение.
ГЛАВА 9. Результаты клинической апробации применения малых доз перфторана в клинике челюстно- лицевой хирургии.
Побочные эффекты перфторана при внутривенном введении.
9.1. Влияние малых доз перфторана на систему нейтрофильных лейкоцитов, некоторые биохимические параметры периферической крови и суммарную хемолюминесценцию плазмы крови.
9.2. Влияние малых доз перфторана на параметры системы гемостаза.
9.3. Влияние перфторана на гемодинамические параметры у больных.
9.3.1. Влияние перфторана на артериальное давление и частоту сердечных сокращений у здоровых людей и больных с нарушениями кровотока.
9.3.2. Влияние внутривенного введения перфторана на кровоток у здоровых людей и больных с патологией ЧЛО.
9.3.3. Влияние внутритканевого введения перфторана на кровоток и акустические характеристики кожи у оперированных больных.
Введение диссертации по теме "Стоматология", Орлов, Андрей Алексеевич, автореферат
Актуальность исследования. Одной из наиболее сложных проблем восстановительной челюстно-лицевой хирургии является обеспечение полноценного безрубцо-вого заживления ран. Достижение такого результата возможно с современной патогенетической точки зрения за счет уменьшения выраженности ряда стадий процесса воспаления: раннего уменьшения экссудации и отека, интенсивности лейкоцитарной инфильтрации, подавления вторичной альтерации, гиперпродукции свободных радикалов, изменения спектра воспалительных цитокинов, в частности интерлейкинов, прекращения перекисно-го окисления липидов и избыточного протеолиза [7, 150]. Предпринимаемые для этого фармакологические противовоспалительные меры сводятся в значительной степени к использованию гормональных и нестероидных противовоспалительных средств, комбинаций различных видов интерлейкинов, которые одновременно существенным образом модифицируют состояние иммунной системы, что чревато в свою очередь уменьшением местной и общей сопротивляемости со всеми вытекающими отсюда затруднениями для асептического заживления ран [186, 195, 201, 203, 208, 209]. Вторым подходом являются попытки улучшения трофики тканей: обеспечение полноценного кровотока, увеличение доставки кислорода и " уборки" отработанных метаболитов и продуктов распада, повышение энергетического статуса клеток в области раны, для того чтобы минимизировать развитие некроза и по возможности заменить некротическую гибель клеток и межклеточного матрикса апоптозной, обеспечивающей смену одних популяций клеток другими, более специфическими для данной ткани. В благоприятных по трофике условиях есть основания ожидать ингибирования контрактильных элементов, что необходимо для предотвращения рубцовой деформации [211,217].
До настоящего времени в распоряжении хирургов не было столь полифункциональных средств. В 1997 году в аптечной сети нашей страны появился кислородперено-сящий кровезаменитель перфторан, представляющий собой тонкодиспсрсную эмульсию полностью фторированных органических соединений [54]. Отличительной особенностью ПФОС является способность физически растворять в 20 раз больше кислорода, чем водные среды [295]. Показана принципиальная возможность замены перфтораном более 75% объема циркулирующей крови с сохранением удовлетворительного обеспечения тканей кислородом [101]. В перфторане размер частиц ПФОС в среднем в 100 раз меньше размера эритроцитов, благодаря чему эмульгированные ПФОС переносят кислород к тканям через суженые, спазмированные и сжатые вследствие отека окружающих тканей сосуды, через которые не могут проходить эритроциты [31, 37, 51-53, 67, 162, 164,165]. Ознакомление с результатами экспериментальных и клинических исследований перфторана позволило нам предположить, что с помощью этого препарата, по крайней мере, можно попытаться достигнуть второй «трофической» цели: улучшить реологию, микроциркуляцию, доставку кислорода и уборку углекислого газа в раневой области. Однако, будучи высокоэффективным препаратом ургентной медицины, хорошо зарекомендовавшим себя в качестве средства для возмещения кровопотерь и лечения шоковых состояний и осуществления реанимационных мероприятий [16, 33, 44, 62, 114, 138, 160, 168], перфторан обладает некоторыми свойствами, которые могли ограничить более широкое его использование. В частности известно, что внутрисосудистое введение перфторана в 2 % случаев может приводить к развитию побочных реакций [102]. В связи с этим представляет несомненный интерес наряду с внутривенным введением использовать перфторан при местном внутритканевом введении, которое свободного от развития указанных реакций. Эффективность такого рода использования перфторана с точки зрения его воздействия на кислородный режим ткани и местный кровоток ранее никем не исследовалась. Неясно , каким образом скажется введение перфторана на течение воспалительного процесса и заживление тканей, поскольку появились сообщения, что in vitro некоторые фракции тонкодисперсной эмульсии перфторорганических соединений могут существенно модифицировать функцию активированных полиморфноядерных лейкоцитов [27, 187]. И совершенно неизвестно в каких дозах и в какое время необходимо использовать этот препарат, для того, чтобы достигнуть желаемого положительного эффекта при послеоперационном заживлении ран. Исходя из изложенного и были сформулированный цели и задачи настоящего исследования.
Цель исследования: в эксперименте на адекватных клинической патологии патофизиологических моделях, и в процессе клинических исследований определить целесообразность внутривенного и местного использования малых доз перфторана с целью оптимизация течения послеоперационного периода в челюстно-лицевой хирургии.
В соответствии с поставленной целью были сформулированы следующие задачи исследования:
1. Экспериментально изучить влияние местного и внутривенного введения перфторана на течение патоморфологического процесса при заживлении мягких и костных ран для определения возможности модификации процесса воспаления и репарации тканей под действием перфторана
2. Оценить возможные эффекты перфторана на развитие патологических изменений в трансплантируемом кожном лоскуте в период его сохранения до трансплантации и в различные сроки после аутотрансплантации, в частности, оценить основные параметры энергетического обмена, перекисного окисления, степень отека и механические свойства переживающего лоскута при использовании перфторана
3. Экспериментально выяснить, оказывают ли влияние малые дозы перфторана, введенного внутривенно или внутримышечно, на системный и местный кровоток ?
4. Установить целесообразность использования малых доз перфторана с целью изменения уровня активности процессов ПОЛ в плазме и эритроцитах периферической крови; оценить влияние малых доз перфторана на параметры системы гемостаза в эксперименте у гипертензивных животных и у больных, имеющих в анамнезе ишемические заболевания.
5. Провести исследование влияния перфторана на течение раневого процесса в клинике челюстно-лицевой хирургии.
Основные положения диссертации, выносимые на защиту
1. С целью снижения остроты воспалительной реакции и длительности заживления послеоперационных ран посредством уменьшения степени ишемических и гипоксиче-ских изменений, улучшения трофики и поддержания активности антиоксидантных систем костных и мягких тканей было выполнено исследование, позволившее получить экспериментальное и клиническое обоснование для использования кислород транспортного кровезаменителя перфторана в челюстно-лицевой хирургии.
2. В эксперименте на моделях адекватных патофизиологической и клинической патологии, и в процессе клинических исследований показана целесообразность внутривенного и местного использования малых доз перфторана, обеспечивающего модификацию процесса заживления и реабилитацию послеоперационных ран в челюстно-лицевой хирургии.
3. В основе процесса оптимизация заживления ран под влиянием перфторана лежат два комплексных фактора: 1) улучшение реологии, микроциркуляции и газообмена в тканях; 2) противовоспалительное действие перфторана. обусловленное, очевидно, специфическим физическим воздействием на праймированные лейкоциты и другие мак-рофагальные элементы в области раны.
4. Улучшение реологии, микроциркуляции и газообмена в тканях достигается не только при внутривенном, но и при местном внутритканевом введении перфторана.
5. Противовоспалительное действие перфторана. обусловлено не только улучшением массообмена, специфическим физическим воздействием на праймированные лейкоциты и другие макрофагальные элементы и клетки регенерирующей ткани в области раны. А так же и рядом других физических явлений: связанных со стабильностью мембран поддерживающими осмотическое давление и уровень глюкозы. Об этом свидетельствуют в частности эксперименты с аутотрансплантатами - лоскутами, переживающими в перфторане непосредственно перед трансплантацией.
6. На уровне целостного организма при реконструктивных и пластических операциях впервые показана целесообразность использования малых доз перфторана порядка 1 -2 мл на кг массы тела, не вызывающих существенных изменений в морфологическом и биохимическом составе периферической крови и в системе гемостаза.
Научная новизна. Впервые обнаружено, что введение кислород транспортного кровезаменителя на основе эмульсии перфторуглеродов перфторана в костную рану и поврежденные мягкие ткани наряду с внутривенной инфузией препарата способствует лучшему заживлению костной и мягких тканей. Согласно патоморфологической картине перфторан способствует уменьшению нейтрофильной инфильтрации, более раннему появлению лимфоидной инфильтрации в области раны и раннему появлению признаков регенерации мягкотканных и костных структур за счет уменьшения интенсивности и укорочения периода вторичной деструктивной альтерации.
Впервые показано, что местное ( 0,5- 1 мл.) и внутривенное (1-2 мл. на кг массы тела) введение перфторана сопровождается улучшением остеогенеза активацией дифферен-цировки фиброзного костного вещества.
Обнаружено, что под местным воздействием перфторана замедляется деструкция и увеличивается временной период сохранности структур кожи и подкожно-жировой ткани при образовании струпа после аутотрансплантации полнослойного кожного лоскута. Показано, что в трансплантированном лоскуте, погружаемом в перфторан в период после забора и непосредственно перед трансплантацией, также происходит сокращения периода вторичной альтерации и начала регенерации.
Анализ результатов местного воздействия перфторана на полнослойные кожные лоскуты, погруженные в препарат перед трансплантацией, позволил выявить меньшую выраженность отека переживающего лоскута, уменьшение в его ткани явлений энергетического дефицита, активацию гликолиза и накопление МДА. Акустические исследования кожи выявили неизвестную ранее динамику изменения скорости проведения звука, обусловленную уменьшением натяжения при изоляции лоскута от окружающих тканей и более быстрым, чем в контроле без перфторана восстановлением тургора трансплантата.
Впервые показано, что однократное внутривенное введение малых доз перфторана порядка 1,5-2 мл на кг массы тела приводит к стабилизации стационарного уровня активности процессов ПОЛ в плазме крови; умеренному повышению активности ПОЛ в мембранах эритроцитов; повышению стабильности мембран эритроцитов, оптимизации структурного состояния мембран эритроцитов.
Впервые показано, что однократное введение малых доз перфторана не оказывало существенного влияния на измеренные параметры системы гемостаза у гипертензивных животных. У больных, имеющих в анамнезе ишемические заболевания, однократное внутривенное введение перфторана способствовало позитивным сдвигам в гемостазе в виде снижения вероятности развития гиперкоагуляционной фазы ДВС-синдрома и нормализации других параметров свертывания и фибринолитической систем крови.
Впервые обнаружено изменение системного и местного кровотока на фоне снижения общего периферического сопротивления сосудов после внутривенного введения перфторана в малой дозе 1-2 мл на кг массы тела, которая не способна существенно изменить кислородную емкость крови и реологические параметры плазмы. Получены свидетельства облегчения доступности местного циркуляторного русла для эритроцитов после местного внутритканевого введения перфторана.
Полученный материал позволил выдвинуть гипотезу о том, что перфторан влияет на течение раневого процесса не только как кислородтранспортный кровезаменитель, улучшающий массообмен (реологию, микроциркуляцию, доставку кислорода и «уборку» углекислого газа, а также приток субстратов и отток метаболитов), но может оказывать дополнительное, независящее от массобмена, воздействие на тонус и просвет сосудов и на активность клеточных элементов и тканевых регуляторов, контролирующих течение воспалительный реакции и заживление.
Научно-практическая значимость работы
1. В результате проведенного экспериментально-клинического исследования показана целесообразность использования препарата перфторан в малых дозах порядка 1,5-2 мл на кг массы тела при предоперационной подготовке, во время оперативного вмешательства и в после операционном периоде.
2. Показано, что перфторан может быть использован не только в качестве кислород-транспортного кровезаменителя, но так же и как средство для уменьшения явлений вторичной альтерации в процессе развития воспаления, ускорения репарации тканей и улучшения регионального кровотока после оперативного и раневого повреждения тканей челюстно-лицевой области.
3. Выполненное исследование открывает новые возможности для использования перфто-рана в качестве среды для бесперфузионного (путем погружения в препарат) сохранения тканей, предназначенных для трансплантации.
4. Получены первые клинические данные о целесообразности включения перфторан в сочетании с препаратом дельторан в предоперационную подготовку больных, имеющих скрытую внутриклеточную вирусную инфекцию, для повышения эффективности течения репаративного процесса в послеоперационном периоде.
Апробация материала, представленная в диссертационной работе, доложена на собраниях и форумах:
1. XI международной конференции «Перфторуглеродные соединения в биологии и медицине (Пущипо, 2002 г.);
2. XII международной конференции «Перфторуглеродные соединения в медицине и биологии (Пущино, 2002 г.);
3. Заседании Ученого Совета Центрального НИИ стоматологии (2002, 2003);
4. Научно-практической конференции «Новое в гематологии и клинической трансфузиологии» (Москва, 2004);
5. Семинаре Российской ассоциации трансфузиологов «Современные препараты крови и кровезаменители» (Москва, 2004);
6. III окружной научно-практической конференции «Современные методы обеспечения безопасности трансфузий» (Ханты-Манссийск, 2004);
7. XIII международной конференции «Перфторуглеродные соединения в экспериментальной и клинической медицине» (СПб, 2002 г.)
Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 207 страницах, состоит из введения, обзора литературы, 9 глав собственных исследований, заключения, выводов, практических рекомендаций, указателя литературы. Работа иллюстрирована таблицами, фотографиями, графиками. Указатель литературы содержит 333 источника литературы, их них 194 отечественных.
Заключение диссертационного исследования на тему "Клинико-экспериментальное обоснование применения перфторана в челюстно-лицевой хирургии"
1. Результаты исследования патоморфологической картины заживления мягких и костных ран в период с первых по 30 сутки свидетельствуют о том, что использование перфторана способствовало лучшему заживлению костной раны и поврежденных мягких тканей. Причем наблюдалось более быстрое прекращение вторичного повреждения мягких тканей, прилежащих к кости, и уменьшение выраженности реакций на воспалительные повреждения, а также ускорение восстановления разрушенных мягкотканных и костных структур.
В основе заживляющего действия перфторана лежат его противовоспалительные свойства, проявляющиеся в снижении лейкоцитарной инфильтрации вне зависимости от способа введения перфторана и уменьшении вторичной деструктивной альтерации. Использование перфторана способствует усилению остеогенеза, обеспечивает уже в ранние сроки более высокий, чем в контроле, уровень дифференцировки фиброзного костного вещества.
2. Воздействие перфторана замедляет развитие патологических изменений в трансплантируемом кожном лоскуте, что выражается в более продолжительной по времени сохранности структур кожи и подкожно-жировой ткани прежде, чем наступают их некротические изменения и образование струпа, о чем наглядно свидетельствовали сопоставления морфологических картин, наблюдаемых в контроле и в основной группе, в сроки 3 - 5 суток опыта. В процессе приживления лоскута ускорение процессов регенерации и дифференциации структур кожи и подкожно-жировой ткани так же, как и при заживлении ран происходит в основном за счет сокращения периода вторичной альтерации, вызываемой активированными лейкоцитами, инфильтрирующими раневую зону. Об ускорении регенерации убедительно свидетельствует сопоставление морфологических картин, наблюдаемых в контроле и основной группе опытов в отдаленные сроки эксперимента (30-45 суток): процесс вторичной перестройки и дифференциации структур, будучи не полностью завершенным в обеих группах, значительно более продвинут в группе, получавших перфторан наблюдений.
3. Полнослойные кожные лоскуты, погруженные в перфторан, в меньшей мере переживают энергетический дефицит и имеют более интенсивный гликолиз, сопровождающийся более высоким уровнем продукции МДА и меньшей выраженностью отека лоскута. Механические свойства лоскутов, оцененные с помощью акустического датчика АБА, свидетельствуют о резком уменьшении скорости проведения звука, обусловленного уменьшением натяжения изолированного от окружающих тканей участка кожного покрова и более быстрому восстановлению тургора ткани
4. Однократное введение малых доз (1,5-2 мл на кг массы тела) перфторана приводит к стабилизации стационарного уровня активности процессов ПОЛ в плазме крови; умеренному повышению активности ПОЛ в мембранах эритроцитов; повышению стабильности мембран эритроцитов, оптимизации структурного состояния мембран эритроцитов, что проявляется в повышении структурированности зоны аннулярных липидов и снижению полярности липидного бислоя.
5. Однократное введение малых доз перфторана не оказывало существенного влияния на измеренные параметры системы гемостаза у гипертензивных животных тогда, как у больных, имеющих в анамнезе ишемические заболевания, однократное внутривенное введение перфторана способствовало позитивным сдвигам в гемостазе в виде снижения вероятности развития гиперкоагуляционной фазы ДВС-синдрома и нормализации других параметров свертывания и фибринолитической систем крови.
6. Экспериментально показано, что перфторан, введенный внутримышечно, не оказывает влияния на системный кровоток, но в зоне введения вызывает значительное увеличение как артериального, так и венозного кровотока. Внутривенное введение перфторана значительно увеличивает и системный и местный кровоток на фоне снижения общего периферического сопротивления. Экспериментальные и клинические данные дают основание рекомендовать использование перфторана в малых дозах (порядка 2 мл на кг массы тела) в качестве лекарственного препарата, улучшающего кровоток у больных с дефектами различного генеза в челюстно-лицевой области.
7. При внутривенном введении самцам спонтанно гипертензивных крыс линии «БНЫ-ЭР» в объеме 10 % от объема циркулирующей крови перфторан и его компоненты практически не оказывали влияния на артериальное давление и частоту сердечных сокращений, тогда как у больных с гипертонической болезнью (Нб степень) способствовало кратковременному повышению прессорной составляющей при одновременном уменьшении сосудистого сопротивления и повышении АДпульс.5 что является косвенным свидетельством увеличения сердечного выброса. При этом рост эффективности работы сердца происходил на фоне снижения потребления кислорода миокардом и урежении ЧСС.
8. На адекватных клинической патологии патофизиологических моделях и в результате целенаправленных клинических исследований выявлено противовоспалительное, ранозаживляющие, реологические и метаболическое действие малых доз перфторана, вводимого внутривенно и местно путем внутритканевой инъекции, что позволило рекомендовать использование перфторана как лечебного средства для улучшения течения послеоперационного и реабилитационного процессов в челюстно-лицевой хирургии.
9. Клиническое исследование полностью подтвердило результаты экспериментального исследования. При том, что малые дозы перфторана не оказывают выраженного влияния на морфологическую картину, биохимические параметры и свертывающую систему крови, его внутривенное и местное введение способствует улучшению трофики тканей в первую очередь за счет улучшения кровотока в области воспаления и послеоперационной раны. Внутривенное и местное введение перфторана хирургическим больным с челюстно-лицевой патологией и при выполнении реконструктивных операций оказывает благотворное влияние на течение процесса реабилитации.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. Показана целесообразность использования препарата перфторан в малых дозах порядка 1,5-2 мл на кг массы тела больного при предоперационной подготовке, во время оперативного вмешательства и после реконструктивных операций.
2. Для уменьшения явлений вторичной альтерации в процессе развития воспаления, ускорения репарации тканей и улучшения регионального кровотока после оперативного и раневого повреждения тканей челюстно-лицевой области рекомендуется использовать препарат перфторан внутривенно и местно, путем внутритканевой инфильтрации.
3. С целью улучшения состояния переживающего полнослойного кожного лоскута и результатов пластики при аутотрансплантации рекомендуется помещать изолированный лоскут сразу после изъятия его с донорского участка ткани в перфторан, а также использовать малые дозы вводимого внутривенного перфторана в качестве противовоспалительного и противоотечного средства, повышающего интенсивность регионарного кровотока в ранний послеоперационный период.
4. При наличии внутриклеточной ретровирусной инфекции, осложняющей течение репа-ративного процесса при реконструктивных операциях в области челюстно-лицевой хирургии, рекомендуется перед оперативным вмешательством проведение сочетанно-го курса, включающего 2-х - 3-х кратное внутривенное введение 100-200 мл перфторана и прием иммуномодуляторов типа циклоферон, полиокисдоний или дельтаран.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2005 года, Орлов, Андрей Алексеевич
1. Алиев О.М., Голубев A.M., Магомедов М.А., Абусуев A.A. Перфторан в терапии острого инфаркта миокарда. //Физиологически активные вещества на основе перфторуг-леродов в военной медицине. СПб, 1997. - С. 3-4.
2. Багненко С.Ф., Королев И.Г, Джусоев А.Ю. Влияние перфторана на регенерацию межкишечных анастомозов, выполненных при геморрагическом шо-ке//Перфторорганические соединения в медицине и биологии. Пущино, 2003. -С. 151-154.
3. Багненко С.Ф., Мойсюк Г.А., Резник О.Н., Шилов в.В. Перспективы применения перфторана при изъятии почек от асистолических доноров// Перфторорганические соединения в медицине и биологии. Пущино, 2003. С. 145-148.
4. Балуда В.П., Баркаган З.С., Гольберг Е.Д., Кузник Б.И., Лакин K.M. Лабораторные методы исследования системы гемостаза. М.: Медицина, 1980. -357 с.
5. Басараб Д.А., Тимкина М.И., Кожура В.Л., Голубев A.M., Мороз В.В. Влияние перфторана на постишемические расстройства микроциркуляции// Перфторорганические соединения в медицине и биологии. Пущино, 2003. С. 118-122.
6. Баркаган З.С. Болезни системы крови. М.: «Медицина», 1989. 637 с.
7. Белоусов А.Е. Пластическая, реконструктивная и эстетическая хирургия. СПб., «Гиппократ», 1998. 671 с.
8. Бирюков Д.Л., Петрова М.В. Возможность оптимизации транспорта кислорода применением эмульсии перфторан у больных при хирургическом лечении рака легкого// Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 2001. С. 128-129.
9. Болховитова Л А. Павлова М.И. Келоидные рубцы. М.: Медицина, 1977.- 131 с.
10. Брин В.Б., Зонис Б.Я. Физиология системного кровообращения. Ростов-на-Дону, 1984.- 88 с.
11. Будко A.A., Шанин В.Ю. Влияние перфторана на систему транспорта газов в остром периоде тяжелых сочетанных повреждений. //Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в военной медицине. СПб, 1997. С. 9-10.
12. Буянов В.М., Егиев В.Н., Удотов OA. Хирургический шов.— М., 1993.- 100 с.
13. Васильев А.Э., Голубев A.M. Эволюция макрофагальных гранулем кумулирующих ПФОС. //Фторуглеродные газопереносящие среды. Пущино, 1984. С. 130-134.
14. Владимиров Ю.А., Добрецова Г.В. Флуоресцентные зонды в исследовании биологических мембран. М., Наука, 1980. 320 с.
15. Владимиров Ю.А., Азизов O.A., Деев А.И. Свободные радикалы в живых систе-мах//Биофизика. (Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР). 1991. -Вып. 29. -252 с.
16. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы и антиоксиданты//Вестник Российской АМН, 1998. -№7.-С.43-51.
17. Внуков В.В., Кричевская A.A., Лукаш А.И. Содержание гемоглобина, трансферинов и общего железа в сыворотке крови при гипероксии и защитном действии мочеви-ны//Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1979. - № 6. - С.528-530.
18. Войтенков Б.О., Маевский Е.И.,Богданова Л.А. Душкин С.Ю. Shawn Steward О возможном механизме действия перфторана при лечеии приобретенного иммунодефицита. //Перфтороорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 2001. С. 48-55
19. Воробьев С.И., Иваницкий Г.Р., Макаров К.Н., Мороз В.В. Перфторуглеродные эмульсии, стабилизированные неионогенными блок-сополимерами// Перфторуглеродные активные среды для медицины и биологии (новые аспекты исследований). Пущино, 1993.-С. 33-46.
20. Газимагомедова М.М. Структурно-функциональные изменения мембран эритроцитов при остром отравлении метафосом и их коррекция перфтораном. Автореферат дисс. . к.м.н. Махачкала, 1999. -21 с.
21. Гапеев А.Б., Шехтман Д.Г., Склифас А.Н., Сафронова В.Г., Образцов В.В., Черемис Н.К. Пефторуглеродные эмульсии модифицируют активность нейтрофилов// Физиологическая активность фторсодержащих соединений (эксперимент и клиника). Пущино, 1995. С. 50-54.
22. Гаркави JI.X., Квакина Е.Б., Уколова М.А. Адаптационные реакции и резистентность организма. Ростов-на-Дону, издательство РГУ, 1990- 224 с.
23. Голубев A.M., Маджидов М.Г. Фторуглеродная противоишемическая защита миокарда. //Перфторуглеродные активные среды для медицины и биологии (новые аспекты исследований). Пущино, 1993.-С. 180-186.
24. Голубев A.M., Басараб Д.А., Кожура B.JL, Мороз В.В. Перфторан минимизирует повреждающий эффект ишемии тонкой кишки Перфторорганические соединения в медицине и биологии. Пущино, 2003. С. 129-134.
25. Голубев A.M., Мороз B.B. Применение перфторана в профилактике постреанимационных осложнений//Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пу-щино, 2001. -С. 96-100.
26. Далгатов Г.Д., Меджидов Р.Т., Алкадарский А.И. Перфторофагальный гранулематоз против фиброза?// Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в экспериментальной и клинической медицине. СПб, 1999. С.23-28.
27. Долгушин И.И. Эберт Л.Я. Лифшиц Р.И. Иммунология травмы.— Свердловск: Изд-во Уральского Университета, 1989- 187 с.
28. Дядюрко A.M., Пантелеев С.М. Общее потребление кислорода как критерий адекватности премедикации//Анестезиология и реаниматология. 1987. № 3. - С. 11-13.
29. Епинетов М.А. Применение перфторана для реоксигенации ишемии миокарда в эксперименте. //Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в военной медицине. СПб, 1997. С. 40-41.
30. Жибурт Е.Б. Трансфузиология. СПб, «Питер» 736 с.
31. Захаров А.Е., Гридчик И.Е., Золотокрылина Е.С. Опыт применения перфторана у больных с геморрагическим шоком// Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 2001. С. 141-146.
32. Зенков Н.К., Панкин В.З., Меньшикова Е.Б. Окислительный стресс. Биохимический и патофизиологический аспекты. М: МАИК «Наука/Интерпериодика», 2001. 343 с.
33. Зильбер А.П. Этюды критических состояний. М., «Наука», 1995. 335 с.
34. Золтан Я. Cicatrix optima // Будапешт Академия наук Венгрии, 1974.—4175 с.
35. Зубарев А.Р., Григорян P.A. Ультразвуковое ангиосканирование. М.: «Медицина», 1991.
36. Иваницкий Г.Р. Кто убил профессора Белоярцева, (история «голубой крови» в калейдоскопе прессы). М., «Вивасват», 1994. 205 с.
37. Иваницкий Г.Р., Воробьев С.И. Организация подвижных структур в кровотоке основа функционирования перфторуглеродной «искусственной крови»// Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в военной медицине. СПб, 1997. -С. 48-49.
38. Иваницкий Г.Р. Донорская кровь и ее альтернативы// Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1999. С. 5-21.
39. Иваницкий Г.Р. Как перфторан обеспечивает газотранспорт// Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1999. С. 229-243.
40. Иваницкий Г.Р. Биофизические основы создания перфторуглеродных газотранспортных кровезаменителей//Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 2001.-С. 5-48.
41. Исламов Б.И. Противоишемическая защита миокарда эмульсией перфторуглеродов. Автореф. дисс. . д.м.н. М., 1987.-48 с.
42. Караськов A.M., Литасова Е.Е., Нароушвили Т.И. Перфторорганические соединения в клинической и экспериментальной кардиохирургии и кардиологии. //Перфтороорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 2001. — С. 152155.
43. Кармен Н.Б., Н.П.Милютина, А.А.Орлов и др. Влияние плеторического введения перфторана на параметры структурно-функционального состояния мембран эритроцитов// Перфторорганические соединения в медицине, и биологии Пущино, 2003. С. 122-126.
44. Катунян П.И., Клюшник Т.П., Кримакова С.А., Меренков Л.И., Пейкер А.Н., Козлов
45. Катунян П.И. Порказатели активности сывороточной эластазы при лечении перфто-раном больных с травматическими повреждениями спинного мозга// Перфтороорганические соединения в медицине и биологии. Пущино, 2003. С. 91-93.
46. Кинтрая П.Я., Бибилейшвили З.В., Зиракадзе А.Н., Гомелаури Н.Л. Применение эмульсий перфторуглеродов на беременных животных. //Перфторуглеродные активные среды для медицины и биологии (новые аспекты исследований). Пущино, 1993. —1. C. 222-225.
47. Клигуненко E.H. Перфторан и эффективность защиты головного мозга от гипоксии. //Физиологическая активность фторсодержащих соединений (эксперимент и клиника). Пущино, 1995. С. 176-183.
48. Клигуненко E.H., Бижко И.П., Слинченков В.В., Лещев Д.П. О некоторых механизмах действия перфторана в остром периоде термической травмы. //Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1997. С. 187-196.
49. Клигуненко E.H., Сличенков В.В. Обмен биогенных аминов и гемодинамика при применении перфторана у больных с ожоговым шоком. //Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1999. С. 112-123.
50. Клигуненко E.H., Компанией Н.Г. Возможности использования пеерфторана в комплексе антипаретической терапии при операциях на органах брюшной полости.
51. Перфтороорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 2001. С. 133136.
52. Клигуненко E.H., Скирда И.И., Лещев Д.П. Кислородный статус организма при использовании перфторана в лечении различных видов гиповолемического шока. //Перфтороорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 2001. С. 129133.
53. Козлов A.A., Берковский А.Л., Качалова Н.Д., Простакова Д.М. Пособие для врачей-лаборантов по методам исследования гемостаза. М., 2002. — 93 с.
54. Козлов В.А., Артюшенко Н.К., Шалак О.В. и др. Ультразвуковая допплерография в оценке состояния гемодинамики в тканях шеи, лица, полости рта в норме и при некоторых патологических состояниях. СПБ, 2000. 31 с.
55. Королюк М.А., Иванова Л.И., Майрова И.Г., Токарев В.Е. Метод определения активности каталазы.//Лабораторное дело. 1988. - № 1. - С. 16-19.
56. Крылов Н.Л., Мороз В.В., Иваницкий Г.Р., Голубев A.M. О путях и сроках выведения перфторорганических соединений из организма животных и человека// Перфторорга-нические соединения в биологии и медицине. Пущино, 2001. С. 100-112.
57. Кудрявцев Б.К., Розанов В.Е., Гавловский В.В. Применение перфторана в интенсивной терапии пострадавших с сочетанной травмой. //Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в военной медицине. СПб, 1997. С. 61-63.
58. Кузин М.И., Костюченок Б.М. Раны и раневая инфекция. М.: Медицина, 1990.- 592 с.
59. Кузнецова И.Н. Дозозависимое влияние эмульсий перфторуглеродов на различные системы. //Перфторуглеродные активные среды для медицины и биологии (новые аспекты исследований). Пущино, 1993. С. 94-100.
60. Кузнецова И.Н. Биофизические механизмы газотранспортной функции эмульсий перфторорганических соединений// Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в военной медицине. СПб, 1997. С. 65-66.
61. Лебедзевич Ю.С., Байбуз Д., Сливкин А. Применение перфторана при острой крово-потере во время беременности. //Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в военной медицине. СПб, 1997. С. 70-72.
62. Ливанов Г.А., Колбасов С.Е., Мороз В.В. Применение перфторана в виде ингаляций для лечения токсического отека легких//Перфторуглеродные соединения в медицине и биологии. Пущино, 2003. С. 184-185.
63. Логинова Л.Н., Гласко E.H., Хохлова М.П., Апросин Ю.Д. Динамика кумуляции различных эмульсий ПФОС в эксперименте по данным морфометрии// Перфторуглерод-ные активные среды для медицины и биологии (новые аспекты исследований). Пущино, 1993.-С. 157-162.
64. Лубнин А.Ю., Шмигельский A.B., Мошкин А.Б. Применение перфторана в качестве гемоделютанта при проведении глубокой изоволемической гемодилюции у нейрохирургических больных. //Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1999.-С. 37-50.
65. Лукаш А.И., Внуков В.В., Ананян A.A., Милютина Н.П., Кваша П.Н. Металлосо-держащие соединения плазмы крови при гипербарической оксигенации (экспериментальные и клинические аспекты). Ростов-на-Дону, 1996, 108 с.
66. Е.И.Маевский Коррекция гипоксических состояний путем коррекции функций митохондрий. Автореф. дисс. д. м. н. Москва, 1998, с. 36.
67. Е.И.Маевский, О.Г.Аксенова, В.В.Мороз, Р.Я.Сенина, С.Ю.Пушкин, Г.Р.Иваницкий, -Анализ побочных и клинических эффектов, выявленных в ходе 1 и 2 фаз клинических исследований перфторана // Вестник службы крови России. 2001, декабрь, №4, с.20-23.
68. Медицинские лабораторные технологии (под ред. А.И.Карпищенко). СПб: «Интермедика», 1999. т. 2. - С. 243-285.
69. Юб.Меерсон Ф.З. Патогенез и предупреждение стрессорных и ишемических повреждений сердца. М.: «Медицина», 1984. 272 с.
70. Мирошников А.И., Темнов A.B., Исламов Б.И., Гришина Е.В., Брустовецкий H.H. Влияние эмульсии ПФОС на электрофоретическую подвижность эритроцитов. //Фторуглеродные газопереносящие среды. Пущино, 1984. С. 152-156.
71. О.Михайлов Г.М., Варыханов A.A., Веровский В.Е., Образцов В.В. Влияние эмульсии перфторан на системы биохимической защиты организма// Перфторуглеродные среды для биологии и медицины. Пущино, 1993. С 141 .-144.
72. Мороз В.В. Перфторан в профилактике и лечении гипоксии критических состояний. //Физиологическая активность фторсодержащих соединений (эксперимент и клиника). Пущино, 1995. С. 189-200.
73. Мороз В.В., Хрупкин В.И., Писаренко JI.B. Использование перфторуглеродов в местном лечении ран, осложненных хирургической инфекцией//Вестник хирургии. -1997.- №4.-С. 53-55.
74. Мороз В.В., Остапченко ДА., Шишкин Е.В. Применение перфторана у больных с тяжелой травмой груди. //Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в экспериментальной и клинической медицине. СПб, 1999. С.58-60.
75. Мороз В.В., Аскерханов Г.Р., Гусейнов А.Г., Голубев A.M. Местное применение перфторана в лечении больных с распространенным гнойным перитонитом. //Перфтороорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 2001. -С. 137-141.
76. Мороз В.В., Афонин Н.И., Афонин А.Н. Антиаритмический эффект перфторана. //Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в экспериментальной и клинической медицине. СПб., 2001. С. 50-52.
77. Пб.Катунян П.И., Щербакова И.В., Клюшник Т.П. и др. Показатели активности сывороточной эластазы при лечении перфтораном больных с травматическим повреждением спинного мозга// Перфторорганические соединения в медицине и биологии. Пущино, 2003.-С. 91-94.
78. Клиническое руководство по ультразвуковой диагностике /под ред. В.В.Митькова. -М.: «Видар», 1997.-371 с.
79. Лелюк С.Э. Лелюк В.Г. Основные принципы дуплексного сканирования магистральных артерий//Ультразвуковая диагностика. 1995. - № 3. - С. 23-27.
80. Лукомский Г.И., ШехтерА.Б., Эль-Сайд А.Х., Лопатин В.В., Миронова O.A., Чочия С.П. Капсулярные фиброзы и их лечение после маммапластики силиконовыми эндопротезами// Анналы пластической, реконструктивной и эстетической хирургии, 1997; 1:75—84.
81. Луцевич Э.В, Празднеиков Э.Н., Кузин A.B., и др. Комплексное лечение хронических дуоденальных язв с применением перфторана// Перфторуглеродные соединения в медицине и биологии. Пущино, 2003. С. 49-55.
82. Недашковский Э.В., Чебыкин Ю.В., Бобовник C.B. «Малообъемная реанимация» при тяжелой сочетанной травме. //Физиологически активные вещества на основе перфто-руглеродов в военной медицине. СПб, 1997. С. 79-81
83. Образцов В.В., Тараховский Ю.С. Ультрафрагментация биологических мембран на поверхности тефлона и эмульсии перфторорганических соединений. //Фторуглеродные газопереносящие среды. Пущино, 1984. С. 156-162.
84. Образцов В.В., Кабальнов A.C., Гросс У и др. Взаимодействие эмульси1 перфтоугле-родов с микросомальными мембранами печени//Перфторуглеродные активные среды для медицины и биологии. Пущино: ОНТИ ПНЦ РАН, 1993. С. 117-119.
85. Образцов В.В., Шехтман Д.Г., Склифас А.Н. разобщение монооксигеназной системы печени перфтоуглеродами in vivoZ/Биохимия 1994. - №т 8. - С. 1175-1181.
86. Онищенко H.A., Гульмуухамедов Б.А., Расулов М.Ф. и др. Индукция монооксидаз-ной активности печени перфтораном при перитоните// Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в военной медицине. СПб, 1997. С. 37-42.
87. Осипов А.П., Чашников В.А. Консервативное лечение препаратом перфторан анастомозов после операций на желудке и желчевыводящих путях. //Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1997. С. 200-202.
88. Пальцев М.А., Иванов A.A. Межклеточные взаимодействия. М.: Медицина, 1995. 224с.
89. Папуашвили М.Н., Ильина Н.И., Хаитов P.M. Новое качество перфторана при применении в комплексной терапии на фоне ВИЧ-инфекции. //Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в экспериментальной и клинической медицине. СПб, 1999.-С. 63.
90. Покручин В.И., Арисенко В.В., Савинов П.А. Использование перфторуглеродной эмульсии при лечении гнойных ран (предварительное сообщение). //Физиологическая активность фторсодержащих соединений (эксперимент и клиника). Пущино, 1995. -С. 218-219.
91. Покручин В.И., Савинов П.А. Кислотно-щелочное состояние при лечении гнойно-септических больных перфтораном. //Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1997. С. 197-198.
92. Розанов В.Е., Халимбеков Р.К. Роль перфторана в лечении острой массивной крово-потери. //Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в экспериментальной и клинической медицине. СПб., 2001. С. 67-68.
93. Розанов В.Е. Перфторан в комплексном лечении тяжелой механической сочетанной травмы. //Физиологически активные вещества на основе перфторуглеродов в экспериментальной и клинической медицине. СПб., 2001. — С. 65-66.
94. Рутберг P.A. Простой и быстрый метод одновременного определения скорости ре-кальцификации и фибрина крови//Лабораторное дело. 1961. - № 5. - С. 6-7.
95. Рябов Г.А. Синдромы критических состояний. М., «Медицина», 1994. 315 с.
96. Симоненков А.П., Федоров В.Д. Общность клинических проявлений синдрома серо-тониновой недостаточности и интокисикационного синдрома// Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 1997. № 6. - С. 604-613.
97. Скорик В.И., Новожилова А.П., Судус A.B. Шилов В.В. Морфологические изменения эритроцитов при воздействии перфтордекалина и оксигенации//Бюллетень экспер-ментальной биологии и медицины. 1995. -№11.- С. 535-539.
98. Соколов В.Н. Клинико-морфологическое обоснование восстановительно-реконстуктивных операций на голове и шее аутосомными трансплантатами. Дис. . д.м.н. М., 2001.-399 с.
99. Софронов Г.А., Ханевич М.Д., Васильева Т.П., Крылова Т.Г. Применение перфторана в военной медицине// Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1999.- С. 21-25.
100. Софронов Г.А., Селиванов Е.А., Ханевич М.Д., Вербицкий В.Г., Дудко С.М., Тика-надзе А.Д., Лазаренко Д.Ю. Применение перфторана при операциях на органах брюшной полости. //Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1999.-С. 32-37.
101. Стальная И.Д., Горишвили Т.Д. Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты//Современные методы в биохимии. М.: Медицина, 1977. С. 66-68.
102. Стальная И.Д. Метод определения диеновой конъюгации ненасыщенных ки-слот^Современные методы в биохимии. М.: Медицина, 1977. С. 63-64.
103. Терешина Е.В., Доронина H.H., Афонин Н.И. Некоторые особенности взаимодействия эмульсии перфторуглеродов с липидами. //Перфторуглеродные активные среды для медицины и биологии (новые аспекты исследований). Пущипо, 1993. С. 151-157.
104. Теселкин Ю.О., Бабенкова И.В., Люблицкий О.Б., Клебанов Г.И., Владимиров Ю.А. Ингибиррование сывороточными антиоксидантами оксиления люминола в присутствии гемоглобина и пероксида водородаУ/Вопросы медицинской химии. 1996. - № 5. -С. 87-93.
105. Усенко JI.B., Эстрин A.A., Перцева Т.А., Черкасова О.Г. Противоишемические эффекты перфторана у больных с острым инфарктом миокарда. //Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1997. С. 174-186.
106. Усенко JI.B., Клигуненко E.H., Криштафор A.A., Канюка Г.С. Перфторан и жизнь в обществе после перенесенной травматической и нетравматической ишемии головного мозга. //Перфтороорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 2001. -С. 156-163
107. Фришберг ИА. Косметические операции на лице.— М.: Медицина, 1984.— 208 с.
108. Ханевич М.Д., Вербицкий В.Г., Тиканадзе А.Д. Применение перфторана при лечении тяжелых гастродуоденальных кровотечений. //Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1997. С. 160-166.
109. Ханевич М.Д., Лазаренко Д.Ю. Изменение микроциркуляции и реологических свойств крови после инфузии перфторана у больных с интраоперационной кровопо-терей при реконструктивно-восстановительных операциях на толстой кишке.
110. Черкасова О.Г. Результаты ретроспективного наблюдения больных, перенесших острый инфаркт миокарда, в комплекс лечения которых был включен перфторан. //Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1999.-С. 141.
111. Чхеидзе М.И., Баханашвили Т.А., Гомарели Г.Г. Коррекция нарушений тромбоген-ных свойств стенки сосудов, системы гемостаза и микроциркуляции в профилактике
112. ДВС-синдрома у тяжелообожженных//Интенсивное лечение тяжелооббожженных. М., 1992. С. 26-267.
113. Шехтер А.Б., Серов В.В. Воспаление, адаптивная реакция и регенерация (анализ межклеточных взаимодействий). Арх. Пат— 1991; 7: 7—14.
114. Шехтман Д.Г., Сафонова В.Г., Склифас А.Н. и др. Модифицирующее влияние эмульсий ПФОСи других карпускуляпных сред на активность нейтрофи-лов//Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1997. С. 121-126.
115. Ярочкин B.C., Кочемасов В.В. Причина возникновения в посттрансфузионном периоде циркуляторной гипоксии и пути ее устранения. //Перфторорганические соединения в биологии и медицине. Пущино, 1997. С. 66-73.
116. Andree С., Swain W.F., Page С.Р., Macklin M.D.,Slama J., Hatzis D., Eriksson E. In vivo transfer and expression of a human epidermal growth factor gene accelerates wound repair// Proc Natl Acad Sci USA, 1994 Dec 6; 91(25): 12188—92.
117. Antoniades H.N. PDGF: a multifunctional growth factor// Bailleres Clin Endocrinol Metab, 1991;5:595-613.
118. Asko-Seljavaara S., Lahteenmaki Т., Wara Т., Sundell B. Comparison of latissimus dorsi and rectus abdominis free flaps // Brit. J. Plast. Surgery.- 1987.- Vol. 40, № 6,- P. 620-628.
119. Asmial Т., Talaat S. Pcdiclcd forearm Лар and the new forearm fascial Пар // Egypt. J. Plast. Reconstr. Surg.- 1985,- Vol. 9 (l).-P. 112-117.
120. Baek S.-M., Weinberg H. Song Y. €1 al. Experimental studies in the survival of venous island flaps without arterial inflow // Plast. reconstr. Surgery,— 1985.— Vol. 75— P. 8895.
121. Barid A., EschF., Mormede P., et al. Molecularcharacterization of fibroblast growth factor: distribution and biological activities in various tissues// Recent Prog Horm Res, 1989; 42: 143—205.
122. Batchelor A.G. A simplified pedicle delay for axial pattern flaps // Brit. J. Plast. Surg.-1987.- Vol. 40, № 5,- P. 540-541.
123. Batchelor J.S., RahimA., McGuinnessA. The anatomic basis for arteriovenous shunting in human lower leg fascial flaps // Plast. reconstr. Surgery.—1995.—Vol. 95, № 2,—P. 233— 239.
124. Bennett N.T., Schultz G.S. Growth factors and wound healing: Part II. Role in normal and chronic wound healing. Am J Surg, 1993Jul; 166(1): 74—81.
125. Benetos A., Rudnichi A., Safar M. Pulse pressure and cardiovascular mortality in normotensive and hypertensive subjects//Hypertension. 1998. - v. 32 - p.560-564.
126. Benetos A. Pulse pressure and cardiovascular risk//J. Hepertens. 1999. - v. 17. P. 21-24.
127. Bernheim B.M. Arteriovenous anastomosis. Followup after 18 years of «successful reversal of the circulation in all four extremities in the same individual* // JAMA.— 1931 — Vol. 96.-P. 1296-1297.
128. Berry R.B. Tan O.T. Cooke D.D. et al Transcutaneous oxygen tension as an index of maturity in hypertrophic scars treated by compression // Brit. J. Plast. Surg.— 1995.— Vol. 38, №2.—P. 163—173.
129. BerseB., Brown L.F., Van de Water L., DvorakH.F., SengerD.R. Vascular permeability factor (vascular endothelial growth factor) gene is expressed differentially in normal tissues, macrophages and tumors// Mol BilCetl. 1992; 2: 211— 220.
130. Bligh E., Dyer W.J. Rapid method of total lipid extraction fnd purification//Can. Biochem. Physiol. 1959. - v. 37. - № 8. - p. 911- 912.
131. Bonnel F. New concept on the arterial vascularization of skin and muscle//Plast.Reconsrct. Surg. 1985. -v.75. - № 4. - P 552-559.
132. Chang K.N., DeArmond S.J., Buncke H.J. Sensory reinnervation in microsurgical reconstruction of the heel // Plast. reconstr. Surg.- 1986.- Vol. 78, № 5.- P. 652-663.
133. Chen H. Tang Y., Wei F., Noordhoff S. Venous bridge used in free flap transfer for the lower leg in the presence of venous hypertension: a case report // Brit. J. Plast. Surg.— 1987,— Vol. 40, № 5.— P. 526-527.
134. ChocairM.M., Phillips T.J. What is new in clinical research in wound healing// Dermat Clin, 1997; 15:45-58.
135. Clark L., Gollan F. Survival of mammals breathing organic liquids equilibrated with oxygen at atmospheric pressure//Sciens. 1966. - v. 152. - №3730. - P. 1755-1756.
136. Clark R.A.F. Wound repair: overview and general consideration. In the Molecular and Cellular Biology of Wound Repair (Eds Clark R.A.F. and Henson P.M.), 1996, pp. 3—50.
137. Cormack G.C. Lamberty B.G.H. A classification of fascio-cutaneous flaps according to their patterns of vascularisation // Brit. J. Plast. Surg — 1984,- Vol. 37, № 1—P. 80—87.
138. Comack C.C. Lamberty B.G.H. Cadaver studies of correlation between vessel size and anatomical territory of cutaneous supply // Brit. J. Plast. Surg,-1986.-Vol. 39, № 3.-P. 300-306.
139. Cooper D.M., YuZ, Hennessey P., KoF.,Robson M.C. Determination endogenous cytokines in chronic wounds// Ann Surg, 1994; 4:, 688—691.
140. Cormack C.C. Lamberty B.G.H. A classification of fasciocutaneous flaps according to their patterns of vascularization // Brit. J. Plast. Surg.—1984.—Vol. 37, №1 —P. 80-87.
141. Cruz J. De medidas isoladas a medidas de monitorizacao e terapeutica// Arquivos de Neuro-Psiquiatria. 1997. - v. 51. - № 1. - p. 1-7.
142. Darby I., SkalliO., GabbianiG. Alpha-smooth muscle actin is transiently expressed by myofibroblasts during experimental wound healing// Lab Invest, 1990 Jul; 63(1): 21—9.
143. Darne B., Girerd X., Safar M. Pulsatile versus steady component of blood pressure: a cross-sectional analysis and a prospective analysis on cardiovascular mortality//Hypertension. -1999.-v. 12.-p. 392-400.
144. David R., Stephens, M.D. Scars and Scars // Reoperative Aesthetic & Reconstructive plastic surgery / Ed. by J.CGrotting.-Vol. 1 l.-St. Louis, Missouri, 1995.- P. 75-110.
145. DesmouliereA., RedardM., Darby I., GabbianiG. Apoptosis mediates the decrease in cellularity during the transition between granulation tissue and scar. Am J Pathol, 1995 Jan; 146(1): 56—66.
146. Deuel T.F., Kawahara R.S., Mustoe T.A. Pierce G.F. Growth factor and wound healing: plateletderived gowth factor as a model of a cytokine// Ann. Rev Med, 1991;42:567-584.
147. Down J. Treatment studies: effecacy vs. effectiveness//!, of Neurosurgery. 1994. - v. 80. -№ 5.-p. 956.
148. Drevillon C., Bricourt M.O., Rose A., Arsac M. Facteurs prognostiques des peritonites graves presentatun syndrom de detress respiratuare aique (SDRA) //Sem. Hop. 1997. - v. 63.-№26.-P. 2133-2135.
149. Ehrlich H.P., DesmouliereA., Diegelmann R.F., Cohen I.K, Compton C.C., Garner W.L., KapanciY., GabbianiG. Morphological and immunochermcal differences between keloid and hypertrophic scar//AmJ.Pathol, 1994 Jul; 145(1): 105—13.
150. Finselh F., Adelberg M.G. Prevention of skin flap necrosis by a course of treatment with vasodilator drugs // Plast. reconstr. Surg.- 1978.- Vol. 61, № 5.- P. 738-743.
151. Finscth F, Cutting C. An experimental neurovascular island skin flap for the study of the delay phenomenon // Plast. reconstr. Surg.- 1978,- Vol. 61, № 3.- P. 412-420.
152. FicherJ., WoodM.B. Late necrosis of a latissimus dorsi free flap // Plast. reconstr. Surg.-1984,-Vol. 74, № 2.-P. 274-278.
153. Fried R. Enzymatic and non-enzymatic assay of superoxide dismutase. //Biochemistry. -1975.-v. 87.-P. 657-666.
154. Franclin S., Khan S., Wang N. Is pulse pressure useful in predicting risk for coronary heart disease//Circu!ation. 1999. - v. 100. - p. 354-360.
155. Freedlander£., Dickson WA., McGroutherDA. The present role of the groin flap in hand trauma in the light of a long-term revieu // J. Hand Surg.- 1986.- Vol. II-B, № 2.- P. 187190.
156. GabbianiG., Ryan G.B., Majne G. Presence of modified fibroblasts in granulation tissue and their possible role in wound contraction//Experientia, 1971; 27 (5): 549-55.
157. Gelbtrman R.H., Blasingamc J.P. The limited Allen test // J. Trauma.- 1981.-Vol. 21, № 6.-P. 477-479.
158. Godina M., Bajec J., Baraga A. Salvage of the mutilated upper extremity with temporary ectopic implantation of the undamaged part // Plast. rcconstr. Surgery.- 1986.- Vol. 78, N8 3.- P. 295-299.
159. Grabb W.C., Argenta LC. The lateral calcaneal artery skin flap (the lateral calcaneal artery, lesser saphenous vein, and sural nerve skin Пар) // Plast. reconstr. Surg.— 1981.- Vol. 68, №5.-P. 723-730.
160. Gray, S.D. Pressure profiles in neonatal spontaneously hypertensive rats. Biological Neonate. 1997. v.45 -p.25-32.
161. Greenberg В., Mezrich Ht Prymak C. et al. Application of magnetic resonance imagine technique in determining canine muscle and human free-flap viability / / Plasl. reconstr. Surg.— 1987.- Vol. 79, № 6.- P. 959-965.
162. Gummine H., Lyons R.N. Brit. J. Surg. 1948. - v. 35. - p. 140-149.
163. Harii K., Iwaya Т., Kawagychi N. Combination myocutancous flap anil microvascular free flap // Plast. rcconstr. Surg — 1981.— Vol.68, №5.-P. 700-711.
164. Harrison D.H. Molt G. Impedance monitoringfor subcutaneous free flap transfers // Brit. J. Plast. Surg.- 1989.-Vol. 42, №3.-P. 318-323.
165. Hermanson A., Dalsgaard C.J., Arnander C., Lindblom U. Sensibility and cutaneous reinnervation in free flaps // Plast. reconstr. Surg.- 1987.- Vol. 79, № 3,— P. 422-425.
166. Jones N.F. Swartz W.M., Mean D.C. et al. The «double barrel» free vascularized fibular bone graft// Plast. reconstr. Surg.— 1988.- Vol. 81, № 3.- P. 378-385.
167. Jonhes B.M., Greenhalgh HM. The use of ultrasound Doppler Flowmelcr in reconst-ructive microvascular surgery // Brit. J. Plast. Surg.- 1983.- Vol. 36, № 2.- P. 245-253.
168. Katsaros J.Gilbert D., Russell R. The use of combined latissimus dorsigroin Jlap as a direct nap for reconstruction of the upper extremity // Brit. J. Plast, Surg.— 1983—Vol. 36, № 1.—P. 67-71.
169. Katsaros J., Gilbert D., Russell R. The use of a combined latissimus dorsi-groin flap as a direct flap for reconstruction of the upper extremity // BriL J. Plast. Surg.- 1983.- Vol. 36, № 1.- P. 67-71.
170. Kogure K., Hossmsnn K.A., Seisjo B.K. Neurobiology of ischemic brain damage. Progress in brain research. Amsterdam: Elsevier, 1993. v. 96. -283 p.
171. Kunimoto F. Morita T. Ogawa R., Fujita T. Inhibition of lipid peroxidalion improves survival rate of endotoxemic rats // Circ. Shock.- 1987.- Vol. 21, № 1.- P. 15-22.
172. KragC., Hesselfeldt-Nielsen J., Gothgen I. Late patency of clinical microvascular anastomoses to free composite tissue transplants. 2. Hemodynamical aspects // Scand. J. Plast. reconstr. Surg.- 1985,- Vol. 19, № 1.- P. 73-79.
173. Ladin D. The art and science of wound care letter., Plast Reconstr Surg, 1995 Sep: 96(3): 748.
174. Leach M.J., Swan J.H., Eisenthal D., Dopson M., Nobbs M. BW619C89, a glutamate release inhibitor, protects against focal cerebral ischemic damage//Stroke. 24(7): 1063-7, 1993 Jul.
175. Leibovich S.J., Ross R. The role of the macrophage in wound repair: a study of hydrocortisone and antimacrophage serum//Am J. Pathol, 1975; 78: 7—191.
176. Lawrence J.C. The aetiology of scars // Burns.— 1987.— Vol 13, № l.-P. 3—14.
177. LuY.C., Liu S., Gong Q.Z., Hamm R.J., Lyeth B.G. Inhibition of nitric oxide synthase potentiates hypertension and increases mortality in traumatically brain-injured rats//Molecular & Chemical Neuropathology. 30(l-2):125-37, 1997
178. Parsons R.W. Scar prognosis // Clin. Plast. Surg.— 1974.— Vol.4, № l.-P. 181-189.
179. Luck M. Catalase//Ed. By Bergmeyer H. Perg. Press. N-Y.-1966. p. 885-894.
180. McKay I.A., and Leigfl.M. Epidermal cytokines and their roles in cutaneous wound healin//. Br J. Dermatol, 1991; № 4:513—518.
181. McCoret J.M. The supcraxide free radical: its biochemistry and paihophysiology // Surgery.— 1983,— Vol. 94, № 3,— P. 412—417.
182. McLean D.H., Muncke HJ. Autotransplantation of omentum lo a large scalp defect, with microsurgical revascularization // Plast. rcconstr. Surg.— 1972.— Vol. 49, № 3.— P. 268— 274.
183. Marzella L, Jesudass R.R., Manson P.M. et at. Functional and structural evaluation of the vasculature of skin flaps after ischemia and repcrfusion // Plast. reconstr. Surgery.— 1988.-Vol. 81.-P. 742-750.
184. Mattson MP. Scheff SW. Endogenous neuroprotection factors and traumatic brain injury: mechanisms of action and implications for therapy//Journal of Neurotrauma. ll(l):3-33, 1994 Feb.
185. May J.W. iMkash F.N., Gallico G.G., Stirrat C. Removable thermocouple probe microvascular patency monitor: an experimental and clinical study // Plast. reconstr. Surg.— 1983.- Vol. 72, № 3,- P. 366-379.
186. MassagueJ. Transforming growth factor-family.//Annu Rev Cell Biol, 1990; 6: 597—603.
187. Myers B., Donovan W. An evaluation of eight methods of using fluorescein to predict the viability of skin flaps in the pig // Plast. rcconstr. Surg.- 1985,— Vol. 75, № 2.- P. 245-250.
188. Minami M., Yoshikama H. A simplitied method of superoxide dismutase activity for clinical use//Clin. Chim. Acta. 1979. - v. 92. - № 3. - p. 337-342.
189. MontandonD., GabbianiG., Ryan G.B., MajnoG. The contractile fibroblast. Its relevance in plastic surgery//Plast Reconstr Surg, 1973: 52(3): 286—90.
190. Montesano R., Ord L. Transforming growth factor beta stimulates collagen matrix contraction: implication wound healing. Proc Natl Acad Sci USA, 1988; 85: 4894-4897.
191. Murray J.F., Ord J.V.R. Cavelin G.E. The neurovascular island pedicle flap. An assessment of late results in sixteen cases // J. Bone Jt. Surg.- 1967.- Vol. 49JI, № 7.- P. 1285-1287.
192. Mutsaers S.E., Bishop J.E., McGrouther G,Laurent G.J. Mechanisms of tissue repair: from wound healing to fibrosis// Int J. Biochem Cell Biol, 1997; 29: 2—17.
193. Mustoe T.A., Ahn S. T., TarpleyJ.E. The effect of hypoxia on growth factor actions: Differential response of basic fibroblast growth factor in an ischemic wound model// Wound Rep Regen, 1994; 2: 277—283.
194. Myseros J.S., Bullock R. The rationale for glutamate antagonists in the treatment of traumatic brain injury (Review)//Annals of the New York Academy of Sciences. 1995 765:262-298
195. Nakajima H., Fujino T., Adachi S. A new concept of vascular supply to the skin and classification of skin flaps according to their vascularization // Ann. Plast. Surg.— 1986.— Vol. 16, № 1.- P. 1-17.
196. Nichter LS.t Sobieski M.W„ Edgerton M.T. Augmentation of critical skin flap survival following ibuprofen therapy // Amcr. Plast. Surgery.- 1986,-Vol. 16, № 4.-P. 305-312.
197. Okada T. Revascularization of free full thickness skin grafts in rubbits: a scanning electron microscope study of microvascular casts // Brit. J. Plast. Surg.- 1986.- Vol. 39, № 2,- P. 183-189.
198. Okamoto K, Yamori Y, Nagaoka A. Establishment of the stroke-prone spontaneously hypertensive rat (SHR). Circ Res. - 1974. - V.34&35. - p.143 -153
199. Pang C.Y., Forrest C.R., Neligan P.C., Lindsay W.K, Augmentation of blood flow in delayed random skin flaps in the pig: effect of length of delay period and angiogenesis // Plast, reconstr. Surg.— 1986,- Vol. 78, № 1.—P. 68—74.
200. Pierce G.F., MustoeT.A., Lingelbach J. Platelet-derived growth factor and trans forming growth factor renhance tissue repair activities by unique mechanisms// J Cell Biol, 1989; 109: 430^133.
201. Quick A.J. P Hemorrhagic Diseases and Thrombosis//J/Bioch.Chem. 1935. - v. 109. - P. 73-77.
202. Richard J.L, RichardC.P., DauresJ.P. Effect of topical a'pplied basic fibroblast growth factor on the healing of chronic diabetic neutropathic ulcer on the foot// Diabetes Care, 1995; 18: 64—69.
203. Riess J.G. Oxygen carries ("Blood Substitues") raison d'etre Chemisry , and Some Physilogy//Chem. Rev. - 2001. - v. 101. - P. 2739-2919.
204. Roberts J.O., Jonhes S.M., Grcenhagh R.M. An implanted ultrasound Doppler probe for microvascular monitoring: an experimental study // Brit. J. Plast. Surg.- 1986- Vol. 39. P. 118-124.
205. Robson M.C., Philips L.G., Cooper D.M. Safety and effect transforming growth factor 32 for treatment of venous stasis ulcers// Wound Rep Reg, 1995; 3: 157—167.
206. RobsonM.C., Philips L.G., Thomason A. Peer nbinant human platelet-derived growth factor (32 for the treatment of chronic pressure ulcers// Ann Plast Surg, 1992; 29: 193.
207. Ross R. Inflammation, cell proliferation ancconnective tissue formation in wound repair. IN: HumtT.K.ed. Wound Healing and Wound Infection: Theory anc. Surgical Practice. New York: Appleton-Century-Crofts, 1980; 1—8.
208. Rushmer R.F., Baker D. W., Slcgal H.F. Transcutaneous Doppler detection as a nondestructive technique // J. Appl. Phisiol.— 1966.—Vol. 21, P. 554-566.
209. Russell R.C. Roth A.C. Kucan J.C., Zook E.G. Repcrfiision injury and oxigen free radicals: a review // J. rcconstr. Microsurgery.- 1989.—Vol. 5, № 1,—P. 79-84.
210. Salon T„ Tsuchiya M., Harii K, A vascularized iliac musculopcriostcal free Flap transfer: a case report. // Brit. J. Plast. Surg,- 1983.-Vol. 36, № l.-P. 109-112.
211. Shan M., Foreman D.M., Ferguson M.W. Neutralisation of TGF-ß 1 and TGF-ß2or exogenous addition of TGF-ß3 to cutaneous rat wounds reduces scaring// J Cell Sei, 1995; 1080: 985-1002.
212. Shiuh-Yen Lu, Haw-Yen-Chiu. Tio-wu Lin, Ming-Ting Chen. Evaluation of survival in digital replantation with thermometric monitoring // Hand. Surg.- 1984.— Vol. 9A, № 6.-P. 805-809.
213. Sienusen S.O., Sjontoft E., Kofoed H. Olesen H.P. On the blood supply of muscle Pedicled bone: experimental study//Brit. J. Plast. Surg.- 1985.-Vol. 38, № 4.-P. 506-511.
214. Slavin J. The role of cytokines in wound healing// J. Pathol 1996; 178: 5—10.
215. Schmid B. Der Gailinger Gerusttest-Eine Belastungserprobung fur Berufe mit Absturzrisiko// Rehabilitation. 1993 - v.32. - № 4. - p.236-240.
216. Stanio-Coico L, KrugerG., Rubin J.S. Human keratinocyte growth factor effects in a porcine model of epidermal wound healing// J Exp Med, 1993; 178: 865—878.
217. Sullivan J.G. Kelleher J.C., Baibak G.J. et al. A primary application of an island pedicle flap in thumb and index finger injuries // Plast, reconslr. Surg.— 1967.—Vol. 39, № 5.— P. 488-492.
218. Su Ch.-Ts. Im M.J., Hops J.E. Tissue glicosae and lactate following vascular occlusion in island skin flaps // Plast, reconstr. Surgery,- 1982.- Vol. 70, № 2.— P. 202—210.
219. Sumi Y., Ueda M. Kaneda T. et al. Marginal vascular changes in pedicle skin flaps // Ann. Plast. Surg.—1986.—Vol. 16, № l.-P. 51-59/
220. Swam W.M., Mears D.C. The role of free tissue transfer in lower-extremity reconstruction // Plast, reconstr. Surg.— 1985.- Vol. 76, № 3,- P. 364-373.
221. Tamai S. Current status of orthopaedic microsurgery in Japan // Clin. Orthop. Rel. Res,- № 184, April.-P. 24-33.
222. Taylor G.I., Palmer J.H. The vascular territories (angiosomcs) of the body // Brit. J. Plast. Surg.— 1987.—Vol. 40, № 2.-P. 113-141.
223. Thatte R.L, Yelicar A.D., Chhajlani P., Thatte M.R. Successful detachment of cross-leg fasciocutaneous flaps on the tenth day: a report of 10 cases // Brit. J. Ptast. Surg.— 1986.— Vol.39, №4,-P. 491-497.
224. Theuvenet W.J., Koeyen G.I.Borghouts M.H.M. Thermographic asscsmcnt of perforating arteries // Scand. J. Plast. rcconstr. Surg,- 1986.- Vol. 20, № 1.— P. 25—29.
225. Thoma A. Storage of a free forearm flap for 55 hours// Plast. reconstr. Surgery.— 1986 — Vol. 78, № 1.—P. 91—95.
226. Thordstein M., Bagenholm R., Thiringer K., Kjellmer I. Scavengers of free oxygen radicals in combination with magnesium ameliorate perinatal hypoxic-ischemic brain damage in the rat//Pediatric Research. 34(l):23-6, 1998.
227. Tsai T.M., Ludwig L, Tonkin M. Vascularized fibular epiphiseal transfer: A clinical study // Clin. Orthop. Rel. Res.- 1986.-№210, Sept.-P. 228-234.
228. WahlS.M. Transforming growth factor beta (TGF-P) in inflammation: a causeanckacure//J Clin Immunol, 1993. 12:61—84.
229. Waries T. Rechardt L. Kyosola K. Reinnervation of human skin grafts: ahistochemicalstudy// Plast. reconstr. Surg.— 1983.— Vol. 72, № 4,- P. 439-445.
230. Vendecchia P., Schillaci G., Borgioni C. Ambulatory pulse pressure a potent predictor of total cardiovascular risk in hypertention//Ibid. 1998. - v. 32. - p. 983-988.
231. VialovS., GabbianiG., Kpanci Y. Rat alveolar myofibroblasts acquire smooth muscle actin expressionduring bleomycin-induced pulmonary fibrosis// Am J. Pathol, 1993; 143: 1754—65.
232. Vogt P.M., Thompsons., Andree C. Genetically modified keratinoyctes transplanted to wounds reconstitute the epidermis// Proc Natl Acad Sci USA, 1994; 91:93 07—9311.
233. WernerS., Peters K.G., Longaker M.T., Fuller Pace F., BandaM.J., Williams L. Large inducation of keratinocytes growth factor expression in the dermis during wound healing/ZProc Natl Acad Sci USA, 1991; 89: 6896-6900.
234. Warner K.G., Dubram-Smith G., Butler M. et al. Comparative response of muscle and subcutaneous tissue during arterial and venous occlusion in musculocutaneous flaps //Ann. Plast. Surgery,- 1989.-Vol. 22, № 2.-P. 108-116.
235. Young C.MJL, Hopewell J.W. The isotope clearance technique for the measuring skin blood flow// Brit. J. Plast. Surg— 1983.- Vol. 36. № 2,- P. 222-230.
236. Zbroduwski A., Marty P.M., Gumener R., Mantandon D. Blood supply of the subcutaneous tissue of the upper limb and its importance in the subcutaneous flap // J. Hand Surg.— 1987.-Vol. 12-B, № 2.- P. 189-193.
237. Zelt R.G., Olding M., Kerrigan C.L, Denial R.K. Primary and secondary critical ischemia times of myocutancous flaps / / Plast. rcconslr. surgery.— 1986.—Vol. 78, № 4.—-P. 498— 503.
238. Zhong-Jia Y. Combined transplantation of free tissues // Plast. reconstr. Surg.— 1987,- Vol. 79, №2.-P. 222-233.
239. Zhong-Jia Y. Reconstruction of a digitlcss hand // J. Hand Surg.- 1987.- Vol. 12A, № 5.- P. 722-726.