Автореферат и диссертация по медицине (14.00.21) на тему:Клинико-биохимическое обоснование применения гомеопатических препаратов при удалении третьих моляров

ДИССЕРТАЦИЯ
Клинико-биохимическое обоснование применения гомеопатических препаратов при удалении третьих моляров - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Клинико-биохимическое обоснование применения гомеопатических препаратов при удалении третьих моляров - тема автореферата по медицине
Шишкин, Сергей Владимирович Москва 2008 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.21
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Клинико-биохимическое обоснование применения гомеопатических препаратов при удалении третьих моляров

На правах рукописи 76.577 1

--1-ииУ

Шишкин Сергей Владимирович

КЛИНИКО-БИОХИМИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ ГОМЕОПАТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ ПРИ УДАЛЕНИИ ТРЕТЬИХ МОЛЯРОВ

14 0021 - «Стоматология»

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

3 О СЕН г

Москва - 2008

003447067

Работа выполнена в ГОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет Росздрава»

Научные руководители:

Доктор медицинских наук, профессор ЧЕРГЕШТОВ Юрий Иосифович Доктор медицинских наук, профессор ВАВИЛОВА Татьяна Павловна

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор Панин Андрей Михайлович

ГОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет Росздрава

член-корреспондент Российской Академии Медицинских Наук,

доктор медицинских наук, профессор Морозов Сергей Георгиевич

ГУ НИИ Биомедицинской химии им В Н Ореховича РАМН

Ведущее учреждение:

ФГОУ "Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи"

Защита состоится . 2008 года в « часов,

на заседании диссертационного совета Д 208.041 07 при ГОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет Росздрава» по адресу. 127473 Москва, ул Делегатская, д 20/1

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке университета по адресу г Москва, ул. Вучетича, д 10а

Автореферат разослан « 11» О 3 2008г

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат медицинских наук, доцент О.П Дашкова

Общая характеристика работы

Актуальность исследования

В практике хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии операция удаления третьих моляров является обычной процедурой (Sands Т., et al., 1993, Hattab F N, Abu Alhaya E.S J, 1999, Knutsson К, et al, 1996) Вместе с тем, данная манипуляция зачастую становится сложной хирургической операцией, которая травмирует окружающие зубы и ткани полости рта (Румянцев Ю М, 1977) Возникающий дефект костной ткани после удаления третьих моляров, особенно на нижней челюсти, характеризуется длительным периодом заживления и замещения дефекта костной тканью (Kugelberg С F, 1990, Quee ТА et al, 1985, Кап К W, et al, 2002) Статистические данные показывают, что в практике удаления третьих моляров послеоперационные осложнения встречаются чаще (20%), чем в ходе операции (18%) (Sands Т, et al, 1993, Phillips С ,et al, 2003). Они увеличиваются до 65% у лиц старше 45 лет (Bruce R А, et al, 1980, Knmmel М, Rernert S , 2000, Rothamel D, et al, 2006)

В течение трех-семи дней после удаления третьих моляров больной отмечает ухудшение общего и местного статуса (Savin J., OgdenGR , 1997; RutaDA et al., 2000, Phillips С ,et al., 2003) Более 65 % пациентов в послеоперационном периоде испытывают болевые ощущения, ограничение движения нижней челюсти, нарушение жевания и психологический дискомфорт (Song F, et al, 1997, McGrath С , Bedi R A, 1999, Goodey R D. et al, 2000), что связано с луночковым кровотечением, тризмом челюстей, альвеолитами, развитием инфекции, а также повреждениями нервных стволов и рядом стоящих зубов (Васильев ГА, 1973; Федяев И.М с соавт, 1986, Blackburn С W., Bramley Р.А, 1989) Более редко встречаются прободение верхнечелюстного синуса, отлом бугров верхней челюсти, перелом нижней челюсти (Goldberg М, 2003).

Анализ литературы показывает, что проблеме профилактики послеоперационных воспалительных осложнений при удалении третьих

3

моляров уделяется недостаточно внимания. Антибактериальные и противовоспалительные препараты, применяемые после хирургических вмешательств, не всегда достаточно эффективны и многие из них отрицательно влияют на иммунный статус организма (Pogrel М.А., et al, 2004, O'Riordan ВС, 2004, Renton T, et al, 2004). На фоне проводимой лекарственной терапии в полости рта развиваются стоматиты, гингивиты, глосситы, афты, эрозии и др. (Барер Г.М с соавт., 1999). Также следует отметить очевидный рост аллергизации населения. Все это требует поиска новых подходов к профилактике и терапии послеоперационных осложнений. Одним из которых и является антигомотоксическая терапия, основанная на использовании комплексных гомеопатических препаратов (Крылов Ю Ф., Зорян Е.В , 1998, Зорян А В , 2004; Зорян Е В , 2005)

Дель настоящего исследования:

Обосновать применение комплексных гомеопатических препаратов до и после удаления третьих моляров для ускорения заживления раневого дефекта и профилактики воспалительных осложнений в послеоперационном периоде

Задачи:

1 Изучить влияние комплексных гомеопатических препаратов на активность ферментов, катализирующих фосфорно-кальциевый обмен и катаболизм белков в костной ткани крыс при травматическом повреждении челюстей в эксперименте

2. Оценить состояние тканей в области операционной раны после удаления третьих моляров пациентов, получавших антагомотоксическую терапию

3 Исследовать в смешанной слюне пациентов, получающих комплексные гомеопатические препараты, активность супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы, кислой и щелочной фосфатаз, лактатдегидрогеназы, аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы, количество интерлейкинов -lß и 6, нистатина С, тканевых ингибиторов матриксных

4

металлопротеиназ -1, проферментов матриксных металлопротеиназ-1 в послеоперационном периоде при удалении третьих моляров

4 - Сравнить показатели смешанной слюны, отражающих изменения в гомеостазе полости рта в группах пациентов с интактным пародонтом и перикоронитом, получающих антибиотикотерапию и комплексные гомеопатические препараты

Научная новизна

Впервые в эксперименте и в клинической практике проведен анализ эффективности применения комплексных гомеопатических препаратов при удалении третьих моляров с целью профилактики воспалительных осложнений в послеоперационном периоде. Впервые исследованы показатели смешанной слюны у пациентов с перикоронитом и выявлены изменения в активности супероксиддисмутазы, количества профермента матриксных металлопротеиназ-1, интерлейкинов-1 (3 и -6, ингибиторов протеиназ -цистатина С и тканевых ингибиторов матриксных металлопротеиназ.

На основании клинико-биохимического исследования разработан алгоритм обследования и лечения пациентов в до и послеоперационном периоде при удалении третьих моляров Показано положительное влияние комплекса гомеопатических препаратов «Траумель С» и «Лимфомиозот» на течение послеоперационного периода у пациентов как с интактным пародонтом, так и в случае развития перикоронита

Практическая значимость работы

Данные экспериментальных и клинических исследований позволяют рекомендовать при удалении третьих моляров, включать в план предоперационной подготовки и в послеоперационном периоде назначение комплекса гомеопатических препаратов «Траумель С» и «Лимфомиозот» пациентам как при неизмененном состоянии тканей пародонта в области удаляемого зуба, так и в случае развития перикоронита

Проведенная работа позволила определить приоритетные направления в исследовании в оценке состояния тканей полости рта и эффективности применяемой терапии в послеоперационном периоде Результаты работы могут быть использованы в практической деятельности хирургов-стоматологов

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Количество ТИМП-1 и проММП-1, активность кислой и щелочной фосфатаз в костной ткани верхней и нижней челюстей крыс различно в норме и эти отличия сохраняются в процессе восстановления дефектов

2. Экспериментальные исследования, проводимые на крысах показали, что вводимые антигомотоксические вещества, как и антибиотики оказывали более выраженное действие к 7 дню опыта, а к 14 дню эксперимента исследованные метаболические процессы в костной ткани альвеолярных отростков челюстей обеих групп животных были сопоставимы между собой и приближались к физиологическим

3 При введении гомеопатических средств, а именно препарата «Траумель С» перед оперативным вмешательством и препарата «Лимфомиозот» в послеоперационном периоде при удалении третьих моляров у пациентов наблюдаются менее выраженные воспалительные явления в области дефекта как на нижней челюсти, так и на верхней.

4 Антигомотоксическая терапия, назначаемая в пред- и послеоперационный периоды может применяться в качестве альтернативы антибиотикотерапии при удалении третьих моляров с интактным пародонтом, а при воспалительных явлениях в ретромолярной области оправдано назначение пациентам противовоспалительных и антибактериальных препаратов в сочетании с комплексными гомеопатическими средствами

Внедрение результатов исследования

стоматологического комплекса МГМСУ, а также используются в научном и педагогическом процессах на кафедрах хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии ФПДО, биохимии МГМСУ

Личный вклад

Автором лично выбрана тема и инициировано проведение данной работы, организованно выполнение всех исследовательских экспериментальных изысканий, определены методы исследования и этапы выполнения Автором обследованы 81 пациент, у которых было удалено 103 третьих моляра Им разработана схема назначения гомеопатических препаратов в случае оперативного вмешательства. Проведен анализ полученных результатов, сделаны научные выводы

Апробация работы

Результаты исследования докладывались на Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные вопросы современной биохимии», посвященной 20-летию Кировской государственной медицинской академии (Киров, 2007), на 8-ом Международном конгрессе «Здоровье и образование в XXI веке», РУДН (Москва, 2007), на 8-ом Международном Европейском симпозиуме по слюне (8~ European Symposium on Saliva, Egmond aan Zee, Netherlands, 2008), на заседаниях кафедр хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии ФПДО, биохимии, госпитальной хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии стоматологического факультета МГМСУ

Публикации

По теме диссертации опубликовано 6 печатных работ, из них 2 публикации в журналах, рецензируемых ВАК Минобрнауки РФ.

Объём и структура диссертации

Материалы диссертации изложены на 143 страницах машинописного текста Диссертация состоит из введения, обзора литературы, главы материалы и методы, глав собственных исследований и обсуждения результатов исследования, выводов, практических рекомендаций и списка литературных источников, который включает 280 источников, из них 83 источника отечественных авторов и 197 зарубежных. Работа иллюстрирована 27 таблицами и 11 рисунками.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материалы и методы исследования.

Все исследования проводились в два этапа. На первом этапе в эксперименте изучалось влияние комплексных гомеопатических препаратов на метаболические процессы в костной ткани крыс после удаления моляров Эксперимент проводился на 80 белых крысах-самцах, одного возраста с массой тела 400 гр Контролем служили интактные крысы (п=20) Животным трёх опытных групп (по 20 крыс в каждой) под эфирным наркозом проводилось удаление моляров на правой половине верхней челюсти (ВЧ) и нижней челюсти (НЧ)

Перед оперативным вмешательством осуществлялась премедикация животных всех опытных групп седативным препаратом «Ветранквил» в дозе 0,0175 мл 1%-го раствора на 1г веса животного Операцию удаления моляров проводили под эфирным наркозом Крысам II и III опытных групп за 30 минут до удаления в переходную складку в области планируемого удаления зуба вводили 0,02 мл раствора гомеопатического препарата «Траумель-С»

В течение 3 дней после операции крысам I опытной группы внутрь per os вводилась эмульсия препарата «Амоксиклав» в дозе 4 мг на 1 кг массы животного 3 раза/сут. Крысам II опытной группы в течение 3 дней вводили внутрь per os по 0,5 мл водного раствора капель гомеопатического препарата

«Лимфомиозот» 3 раза/сут, а животным III опытной группы данный препарат вводили в течение 6 дней

Хирургическое лечение пациентов проводилось в амбулаторных условиях взрослого хирургического отделения стоматологического комплекса МГМСУ Обследован 81 пациент, у которых по показаниям и с их согласия общепринятыми методами удалялись третьи моляры Большая часть пациентов была в возрасте от 20 до 30 лет В исследовании участвовали две группы пациентов. 1-ая группа в послеоперационном периоде получала стандартную антибиотикотерапию, которая состояла из приема препарата «Амоксиклав» в дозе 625 мг х 3 раза/сут на протяжении 3-х дней Пациентам П-ой группы за 20 минут до анестезии вводили раствор гомеопатического препарата «Траумель С» 2,2 мл в виде инъекции в переходную складку в область зуба, предполагаемого для удаления, а в послеоперационном периоде назначался препарат «Лимфомиозот» перорально по 10 капель х 3 раза/сут на протяжении 3-х дней Из общего числа обследованных 21 человек обратился в амбулаторную клинику с симптомами развившегося перикоронита Все пациенты с перикоронитом по характеру медикаментозного лечения были также поделены на две группы одна группа (п=12) получала стандартную терапию препаратами «Амоксиклав» с нестероидным противовоспалительным средством «Кетанов», а пациентам другой группы (п=9) до оперативного вмешательства в область планируемого удаления за 20 минут до анестезии в переходную складку вводили 2,2 мл препарата «Траумель С», а после удаления третьего моляра назначался препарат «Кетанов» в дозе 10 мг в комплексе с гомеопатическими препаратами «Лимфомиозот» 10 капель х 3 раза/сут в течение 6 дней, а также на 3-й день инъекционно вводился «Траумель С» 2,2 мл

Методы исследования

Животных декапитировали на 7-ой и 14-ый дни опыта под эфирным наркозом с соблюдением правил эвтаназии, согласно Хельсинкской декларации о гуманном отношении к животным. Эти сроки забоя были

декларации о гуманном отношении к животным Эти сроки забоя были выбраны с учётом, что на 7 сутки с момента повреждения целостности альвеолярных отростков челюстей происходит созревание грануляционной ткани, а на 14 день формирование костно-хрящевых балочек и фиброзного рубца (Серов В.В., Шехтер А Б., 1981)

У крыс контрольной группы выделяли костные фрагменты интактных альвеолярных отростков ВЧ и НЧ в области моляров, а у крыс опытных групп фрагменты альвеолярных отростков в области оперативного вмешательства Очищенную от мягких тканей кость растирали в фарфоровой ступке с кварцевым песком на холоду в соотношении 1*1. Растворимые белки экстрагировали 0,5 М раствором №С1 в соотношении 1 : 10 Полученные гомогенаты центрифугировали при 3000 об/мин в течение 15 мин и в экстрактах костной ткани челюстей спектрофотометрическим методом исследовали содержание общего белка и активность щелочной (ЩФ) и кислой фосфатаз (КФ) Иммуноферментным методом содержание профермента матриксной металлопротеиназы -1 (проММП-1), тканевого ингибитора матриксной металлопротеиназы-1 (ТИМП-1) Активность ферментов выражали в МЕ/г белка, а содержание проММП-1 и ТИМП-1 в нг/мг белка.

У пациентов обеих групп до и через 3 и 7 дней после оперативного вмешательства собирали смешанную слюну (СС) без стимуляции, путём сплевывания в пробирку в течение 5 минут. Образцы хранили на холоду при 1=- 20°С, затем размораживали и подвергали центрифугированию при 3000 об/мин в течение 15 мин В надосадочной жидкости СС определяли активность супероксидцисмутазы (СОД), глутатионпероксидазы (ГПО),

лактатдегидрогеназы (ЛДГ), аспартатаминотрансферазы (АСТ), аланинаминотрансферазы (АЛТ), ЩФ и КФ Активность ферментов смешанной слюны выражали в МЕ/л Также в слюне иммуноферментным методом определяли содержание интерлейкинов -1(3 и -6 (пг/мл), проММП-1, ТИМП-1 и цистатина С (нг/мл).

Результаты клинического и лабораторного обследования были обработаны статистически на персональном компьютере с использованием пакета программ «Statistica», версия 6,0 компании Stat Soft Inc Определяли среднюю арифметическую ошибку - М, ошибку средней арифметической m Достоверность различий между средними величинами определяли по критерию Стьюдента при Р < 0,05 Нормальность распределения величин анализируемых признаков и сравнение относительных величин производили с использованием критерия %2.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ 1.1. Экспериментальные исследования Осмотр операционной раны на второй и последующий дни у крыс всех опытных групп не выявил отека ткани, кровоточивости и других признаков воспаления К 7-му дню на альвеолярном отростке сохранялся овальный дефект, покрытый тонким слоем эпителия неравномерной толщины На 14 день эксперимента в области раневой поверхности имелся незначительный дефект, покрытый равномерным слоем эпителия, отсутствовали признаки воспаления и наблюдалось органотипическое заживление раны Не обнаружено принципиальных внешних отличий в образовании рубца и эпителизации раны в условиях применения антибиотиков и комплексных гомеопатических препаратов независимо от длительности их применения.

Исследования количества ТИМП-1 и проММП-1 на 7-ой день эксперимента в костной ткани ВЧ показало, что содержание этих белков достоверно снизилось и это понижение было более значимым у крыс II и III групп, которым вводили гомеопатические препараты Это понижение сохранялось и на 14-ый день опыта (рис 1 и 2)

Таким образом, восстановление дефекта костной ткани ВЧ после травмы протекало на фоне уменьшения количества белков, участвующих в протеолизе, что может быть связано либо с подавлением синтеза ТИМП-1 и проММП-1, либо с повышенным образованием комплексов между протеиназами и их

контроль I группа II группа III группа

Рис. 1. Количество ТИМП -1 (нг/мг белка) в костной ткани верхней челюсти крыс после удаления моляров

контроль I группа If группа Ш группа

Рис. 2. Количество проММП-1-1 (нг/мг белка) в костной ткани верхней челюсти крыс после удаления моляров Напротив, в костной ткани НЧ содержание ТИМП-1 и проММП-1 достоверно возрастало на 7-ой день после операции во всех опытных группах (рис. 3 и 4). Это увеличение было менее выражено у крыс, получавших «Амоксиклав».

контроль I группа II группа Ш группа

Рис. 3. Количество ТИМП -1 (нг/мг белка) в костной ткани нижней челюсти крыс после удаления моляров

контроль I группа II группа III группа

Рис. 4. Количество проММП -1 (нг/мг белка) в костной ткани нижней челюсти крыс после удаления моляров

На фоне введения комплексных гомеопатических препаратов «Траумель С» и «Лимфомиозот» у крыс на 7-ой день опыта выявлялись различные изменения в количестве ТИМП-1 и проММП-1 костной ткани НЧ по отношению к группе животных, получающих «Амоксиклав».

К 14-му дню у крыс Н-ой и Ш-ей опытных групп процесс распада белков и его регуляция приближались к значениям контрольной группы. У животных

I группы, которым вводили антибиотики, количество ТИМП-1 в НЧ превалировало над содержанием проММП-1 и оно было достоверно выше (р>0,05) по отношению к значениям контрольной, П-й и III—й опытных групп.

Исследования активности ферментов, участвующих в отщеплении неорганического фосфата, в экстрактах костной ткани крыс, показали, что активность КФ значительно ниже, чем ЩФ. В костной ткани интактных крыс ВЧ активность обеих фосфатаз была выше по сравнению с показателями НЧ.

На 7-ой день эксперимента в костной ткани ВЧ активность ЩФ у крыс 1-ой опытной группы увеличилась в 3 раза, а КФ вдвое. В эти сроки у животных

II и III опытных групп активность ЩФ в ВЧ также достоверно выросла, а КФ недостоверно снизилась (р>0,05). На 14 день опыта активность обеих фосфатаз у крыс 1-ой группы в ВЧ достоверно понизилась, но активность ЩФ оставалась достоверно выше по отношению к контролю, а активность КФ приблизилась к физиологическим значениям. В костной ткани ВЧ крыс II и III опытных групп, напротив, активность ЩФ ещё более увеличивалась, а КФ приближалась к значениям контроля (рис.5 и 6).

□ 7 дней ■ 14 дней

контроль I группа II группа Ш группа

Рис. 5. Активность ЩФ (МЕ/г белка) в костной ткани верхней челюсти крыс после удаления моляров

□ 7 дней ■ 14 дней

контроль I группа II ггруппа II! группа

Рис. 6. Активность КФ (МЕ/г белка) в костной ткани верхней челюсти крыс после удаления моляров В костной ткани НЧ на 7-ой день опыта также возрастала активность ЩФ и КФ и это повышение также было более выраженным у крыс 1-ой опытной группы (рис.7 и 8).

1

УГ~

А

УГ

'1 . у hMW1

Q 7 дней ■ 14 дней

контроль I группа Ii группа II! группа

Рис. 7. Активность ЩФ (МЕ/г белка) в костной ткани нижней челюсти крыс после удаления моляров К 14 дню активность ЩФ в НЧ достоверно снижалась у крыс 1-ой группы и увеличивалась у крыс II и III опытных групп.

контроль I группа II группа III группа

Рис. 8. Активность КФ (МЕ/г белка) в костной ткани нижней челюсти крыс после удаления моляров Активность же КФ у крыс 1-ой группы достоверно понижалась по отношению к 7-му дню, а у животных II и III групп она существенно не менялась. При этом у всех 3-х опытных групп она оставалась достоверно повышенной по сравнению с контролем (р<0,01; р<0,05).

Таким образом, полученные результаты в эксперименте показали, что на ранних сроках у крыс, получавших комплексные гомеопатические препараты, активация фосфатаз была не очень выражена по сравнению с животными, получавшим антибиотик. К 14-му дню начинает превалировать повышение активности ЩФ, характерной для остеобластов над активностью КФ, свойственной остеокластам. Шестидневный срок применения комплексных гомеопатических средств по показателям метаболизма костной ткани практически не отличается от трёхдневного курса.

1.2. Клинические исследования Как следует из данных таблицы 1., осложнения в послеоперационном периоде получили 15 человек, что составило 25% от общего числа пациентов. Наибольшее количество осложнений было выявлено у пациентов I группы (52%), получавших антибиотикотерапию, против 5,8% осложнений у пациентов, получавших комплексные гомеопатические препараты.

Больные с развившимся перикоронитом поступили на амбулаторное лечение в удовлетворительном состоянии. На момент обращения в клинику у 15 человек (18,5%) были явления обострения хронического перикоронита, а 6 человек (7,4%) поступили в стадии ремиссии данного заболевания. Пациентам

с местными симптомами острого воспаления была назначена противовоспалительная терапия для купирования воспалительных явлений в области 38, 48 зубов для подготовки их к плановой операции удаления Через 3 дня и 7 дней после оперативного вмешательства был проведен осмотр операционного поля пациентов обеих групп с учетом проведенной медикаментозной терапии

Таблица 1

Распределение послеоперационных осложнений у пациентов I и II групп на 3-й день после удаления третьих моляров

осложнения Интактный пародонт Перикоронит

группы I (п=26) II (п=34) I (п=12) II (п=9)

альвеолит 5 1 3 1

Парастезия языка и губ 2 - - -

Отек окруж тканей 5 - 12 9

Наличие гематомы - 1 1 -

Затрудненное открыв рта 4 - 1 -

Повышение ГС 3 - - -

Вторичное кровотечение 1 - - -

Альвеолит развился у 1 пациента (2,9%) П-ой группы и 5 пациентов (20%) 1-ой группы с интактным пародонтом, что сопровождалось отеком окружающих тканей и затрудненным открыванием рта до 1,5 см Через 3 дня после удаления третьих моляров 6 человек (23%) в I группе и 16 человек (47%) во II группе не отмечали болевых ощущений К 3-му дню послеоперационного периода отсутствовали отечность и гиперемия в области операционной раны у 11 пациентов (32,3%) II группы и у 1 пациента (3,9%) I группы

Таким образом, полученные нами данные объективного и субъективного обследования пациентов с интактным пародонтом после удаления третьих моляров свидетельствуют о том, что пациенты II группы, получающие антигомотоксическую терапию, в течение 3-х дней послеоперационного периода имели меньше осложнений и чувствовали себя более комфортно. У них были менее выражены гиперемия, отек и болевые ощущения по сравнению с пациентами 1-ой группы, получавших антибиотики На 7-ые сутки было отмечено, что все пациенты как 1-ой группы, так и П-ой группы чувствовали себя удовлетворительно

Послеоперационные осложнения у пациентов с перикоронитом в виде развития альвеолита, выявлялись у 3 пациентов (25%) I группы и 1 пациента (11,1%) II группы. У всех 12 пациентов I группы (100%) и 5 пациентов II группы (55,5%) с перикоронитом через три дня после удаления третьих моляров сохранялся отек окружающих тканей Не отмечали болевые ощущения после удаления третьего моляра 2 пациента (16,6%) I группы и 4 пациента (44,4%) II группы Отсутствие гиперемии вокруг операционного поля отмечено у 1 пациента (8,3%) I группы и 1 пациента (11,1%) II группы На 7-ой день у 8 пациентов (88,8%) II группы отсутствовали боль, гиперемия, отек в области операционной раны, и только у одного пациента эти явления были слабо выражены. У 4 пациентов (33,3%) I группы в этот период обследования отек и гиперемия в области операционной раны были слабо выражены, а у остальных эти симптомы отсутствовали.

Таким образом, проведённое исследование хирургического статуса пациентов с перикоронитом, показывает, что дооперационный период у пациентов обеих групп была практически одинаков, но в послеоперационном периоде у пациентов, получающих в дополнение комплексные гомеопатические препараты, осложнения были менее выражены

Для объективной оценки состояния тканей полости рта при удалении третьих моляров были исследованы показатели смешанной слюны Данные представлены в таблицах 2,3 и 4

Согласно полученным данным активность исследованных ферментов у пациентов с интактным пародонтом до удаления находилась в пределах нормы и была сопоставима между группами (р>0,05, р>0,1)

Удаление третьих моляров при отсутствии воспаления в тканях пародонта во все сроки обследования существенно не сказывалось на активности СОД, ГПО, ACT, АЛТ, ЛДГ, ЩФ, КФ и содержании проММП-1 в СС. Активность этих ферментов также не зависела от характера проводимой медикаментозной терапии (табл 2)

Таблица 2.

Активность ферментов (МЕ/л) в смешанной слюне у пациентов с интактным пародонтом до и после удаления третьих моляров (М ± т)

Группы I (п=26) II (п=34)

Сроки До удаления После удаления До удаления После удаления

ферменты 3 дня 7дней 3 дня 7 дней

сод 310±100 190±30,0 250±70,0 230±50,0 200±30,0 225±60,0

ГПО 45,2±6,64 49,4±7,10 43,2±7,60 44,4±6,30 47,0±7,07 40,5±8,10

ЛДГ 155±84,6 239±94,2 170±65,5 153±72,3 336±146 158±75,5

ACT 57,1±7,19 73Д±12,4 49,8±8,15 41,6±6,87 44,6±11,2 42,5±12,1

АЛТ 29,4±8,13 24,4±6,55 27,6±7,28 36,2±5,80 35,8±7,40 29,8±8,20

ЩФ 72,9±30,7 84,0±29,5 65,5±30,1 79,0±34,7 88,0±28,5 79,2±29,9

КФ 30,8±6,45 18,4±3,24 22,6±5,20 25,0±5,52 22,2±3,70 22,0±4,00

проММП-1 (нг/л) 40,0±б,00 50,0±10,0 40,0±7,00 40,0±3,00 40,0±2,00 40,0±4,00

У пациентов с перикоронитом активность ферментов в СС до и после удаления третьих моляров менялась неоднозначно В СС этих пациентов до оперативного вмешательства была выявлена высокая активность СОД и повышенное содержание проММП-1 (табл. 3 и 4)

На 3-й день после удаления третьих моляров у пациентов I группы с перикоронитом наблюдалось достоверное снижение активности СОД и тенденция к понижению активности ГПО. В то же время у пациентов II

группы, получающих гомеопатические препараты, снижение активности обоих ферментов в СС было более выражено

Таблица 3.

Активность ферментов (МЕ/л) в смешанной слюне у пациентов I группы с перикороннтом до и после удаления третьих моляров (М ± ш)

Группы Интактный пародопт (п=26) Перикоронит (п=12)

Сроки До удаления После удаления

ферменты 3 дня 7 дней

сод 310±100 600±80,0* 220±40,0" 190±20,0

гпо 45,2±6,64 44,1±11,0 29,4±10,0 26,3±5,40**

лдг 155±84,6 85,6±22,6* 117±25,0 187±65,5

ACT 57,1±7,19 64,0±10,7 103±28,2 96,3±12,7**

АЛТ 29,4±8,13 31,4±14,0 38,1±18,6 57,3±13,5**

ЩФ 72,9±30,7 24,0±7,88* 111±33,6" 236±136**

КФ 30,8±б,45 31,9±5,58 20,9±3,07** 20,8±2,60

проММП-1 (нг/л) 40,0±6,00 60,0±1,00 50,0±10,0 50,0±5,00

*р<0,05 - по сравнению со значениями интактной группы,

** р<0,05 - по сравнению с исходными значениями

Таблица 4

Активность ферментов (МЕ/л) в смешанной слюне у пациентов П группы с перикороннтом до и после удаления третьих моляров (М ± т)

Группы Интактный пародонт (п=34) Перикоронит (п=9)

Сроки До удаления После удаления

ферменты 3 дня 7 дней

сод 230±50,1 530±90,0* 130±63,0** 210±45,6**

гпо 44,4±6,30 42,0±16,8 21,0±4,20 31,7±10,4

лдг 153±72,3 81,7±17,5 87,4±23,2 120±56,7

АСТ 41,6±6,87 66,6±13,2 43,4±12,5 45,3±11,2

АЛТ 36,2±5,80 24,7±10,2 17,8±5,36 28,6±4,78

ЩФ 79,0±34,7 21,8±3,44* 117±34,5** 87,4±23,1**

КФ 25,0±5,52 33,4±2,38 21,2±2,61 24,7±3,48

проММП-1 (нг/л) 40,0±3,00 60,0±20,0 40,0±2,00 40,0±10,0

* р<0,05 - по сравнению со значениями интактной группы,

** р<0,05 - по сравнению с исходными значениями

В слюне пациентов обеих групп независимо от проводимой терапии достоверно повышалась активность ЩФ и снижалась активность КФ К 7-му дню активность этих ферментов приближалась к значениям контрольной группы, что свидетельствовало о нормализации гомеостаза в ротовой полости.

Помимо активности ферментов у пациентов, которым удаляли третьи моляры, в СС было исследовано содержание белков, регулирующих реакцию белых клеток крови, процессы регенерации и обладающих защитным действием.

Таблица 5

Исследование содержания ингибиторов протеиназ (нг/мл) и интерлейкинов (пг/мл) в смешанной слюне пациентов с интактным

пародонтом до и после удаления третьих моляров

Группы I (п=26) II (п=34)

Дни До удаления После удаления До удаления После удаления

Белки 3 дня 7 дней 3 дня 7 дней

ТИМП-1 11,5*2,56 18,71±1,63* 14,5±3,60 13,8±1,10 20,2±2,97* 12,3±1,20

Цистатин С 1,73±0,08 2,12±0,55 1,80±0,10 1,67±0,62 зд1±о,зо* 1,82±0,40

ИЛ-1(3 0,04±0,003 0,31±0,02** 0,05±0,006 0,03±0,001 0,81±0,30** 0,05±0,004

ИЛ-6 1,98±0,10 12,6±2,01** 2,03±0,30 2,04±0,12 16,7±3,53** 2,15±0,22

*р <0,05, **р <0,01 по сравнению с исходными значениями

Наши данные показали, что содержание ингибитора матриксной металлопротеиназы-1 (ТИМП-1), выделяемой в полость рта слюнными железами, у пациентов с интактным пародонтом всех исследуемых групп было в 11-13 раз выше, чем проММП-1. После удаления третьих моляров содержание ТИМП-1 в слюне пациентов с интактным пародонтом как I, так и II групп на 3-й день достоверно увеличилось (р<0,05, р<0,001) по сравнению с исходными значениями (табл 5), при этом полученные значения содержания ТИМП-1 между группами достоверно не различались На 7-ой день после оперативного вмешательства количество ингибиторов протеиназ в слюне

Хирургическое вмешательство у пациентов I и II групп с интактным пародонтом сопровождалось достоверным повышением в слюне ИЛ-1Р (р<0,01). Количество этого интерлейкина у пациентов I группы возрастало в 58 раз, а II группы в 10-20 раз Одновременно у пациентов обеих групп наблюдалось увеличение содержания ИЛ-6 в 10-14 раз от исходных значений.

При развитии воспаления в ретромолярной области на фоне увеличения количества проММП-1 содержание ТИМП-1 достоверно понижалось (р<0,05), а количество цистатина С увеличивалось по сравнению с их содержанием в группе с интактным пародонтом (табл 6 и 7)

Таблица 6

Исследование содержания ингибиторов протеиназ (нг/мл) и интерлеикинов (пг/мл) в смешанной слюне пациентов I группы с

перикоронитом до и после удаления третьих моляров

Группы Интактный Пародонт (п=26) Перикоропит (п=12)

Белки До удаления После удаления

3 дня 7 дней

ТИМП-1 11,5±2,56 6,55*1,64* 19,7±2,15** 14,6±3,47

Цистатин С 1,73±0,08 3,90±0,06* 2,74±0,08 2,00±0,10**

ИЛ-10 0,04±0,003 0,06±0,003 31,9*3,45*** 20,5±4,10***

ИЛ-6 1,98±0,10 6,78±1,03 160±23,4*** 80,0±10,5***

*р<0,05 - по сравнению со значениями интактной группы, ** р<0,05;

*** р<0,001, - по сравнению с исходными значениями

После удаления третьих моляров у пациентов обеих групп с перикоронитом содержание ТИМП-1 в СС достоверно возрастало (р<0,05) по сравнению с исходными значениями После удаления количество цистатина С в обеих группах недостоверно снижалось (р>0,05), и приближалось к значениям, полученным у лиц с интактном пародонтом

Изучение количества провоспалительных цитокинов в СС пациентов обеих групп с перикоронитом показало, что содержание ИЛ-10 и ИЛ-6 достоверно увеличилось (р<0,001) по сравнению с группой с интактным пародонтом

После удаления на 3-й день количество ИЛ-1Р у пациентов с перикоронитом в I и II групп выросло в 500 раз Содержание ИЛ-6 выросло в 22 раза у лиц I группы, получавших антибиотикотерапию и в 20 раз у пациентов, которым назначали комплексные гомеопатические препараты

Таблица 7

Исследование содержания ингибиторов протеиназ (нг/мл) и интерлейкинов (пг/мл) в смешанной слюне пациентов II группы с

перикоронитом до и после удаления третьих моляров

Группы Интактный Пародонт (п=34) Перикоронвт (п=9)

Белки До удаления После удаления

Здня 7 дней

ТИМП-1 13,8±1,10 7,12±1,34* 24,1±3,99** 13,2±4,30

Цистатин С 1,67±0,62 3,45±0,02* 2,89±0,05 2,20±0,31**

ИЛ-1Р 0,03±0,001 0,06±0,001 32,6±5,75*** 18,7±6,30***

ИЛ-6 2,04±0,12 7,01±2,43 142±14,5*** 50,1±5,80***

*р<0,05 - по сравнению со значениями интактной группы, ** р<0,05, *** р<0,001, - по сравнению с исходными значениями

На 7-ой день количество провоспалительных цитокинов достоверно снизилось (р<0,05) в обеих группах, но оставалось повышенным по отношению к данным группы с интактным пародонтом и исходным значениям Таким образом, наши исследования показали, что развитие воспаления в области третьих моляров характеризуется изменением не только в активности ферментов смешанной слюны, но и сдвигами в количестве ТИМП-1, цистатина С и цитокинов. Поэтому при развитии перикоронита требуется назначение не только комплексных гомеопатических средств, но и противовоспалительного препарата «Кетанов» и др

выводы

1. В послеоперационном периоде у экспериментальных животных, независимо от проводимой медикаментозной терапии, в костной ткани верхней и нижней челюстей происходят сходные изменения в системе протеиназа - ингибитор 2 На ранних сроках у крыс, получавших гомеопатические препараты, в костной ткани не выражена активация кислой и щелочной фосфатаз по сравнению с животными, получавших антибиотик. К 14-му дню у этих животных превалирует повышение активности щелочной фосфатазы, характерной для остеобластов над активностью кислой фосфатазы, свойственной остеокластам

3. Введение пациентам с интактным пародонтом, у которых проводилось удаление третьих моляров, только комплексных гомеопатических препаратов позволяет уменьшить количество воспалительных осложнений в послеоперационном периоде до 4,6%

4 Комплексная терапия с включением гомеопатических препаратов пациентам с перикоронитом снижает количество осложнений в послеоперационном периоде в 44,4% случаев Пациенты I группы, которые получали только «Амоксиклав» и «Кетанов», послеоперационный период протекал с наибольшм количеством осложнений, которое достигало 83,4%. 5. Удаление третьих моляров у пациентов с интактным пародонтом всех обследуемых групп, независимо от вида проводимой лекарственной терапии, существенно не влияло в смешанной слюне на активность супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы, аспартатаминотрансферазы, аланинаминотрансферазы, лактатдегидрогеназы, щелочной и кислой фосфатаз, а также количества профермента матриксных металлопротеиназ-1. 6 Воспалительные явления в тканях ретромолярной области характеризуются достоверным повышением в смешанной слюне активности супероксиддисмутазы, количества профермента матриксных металлопротеиназ-1, интерлейкинов-1 р и -6, цистатина С и тканевого ингибитора матриксных металлопротеиназ-1.

7. Назначение комплексных гомеопатических препаратов и нестероидного противовоспалительного средства «Кетанов» пациентам с перикоронитом приводит к улучшению клинического статуса пациентов в послеоперационном периоде, достоверному снижению в слюне активности супероксиддисмутазы, кислой фосфатазы, а также к повышению активности щелочной фосфатазы, количества тканевого ингибитора матриксных металлопротеиназ-1 и интерлейкинов-1 р и -6

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Пациентам с интактным пародонтом рекомендуется за 20 минут до обезболивания при удалении третьих моляров вводить в переходную складку гомеопатический препарат «Траумель С» в количестве 2,2 мл После операции рекомендовать прием гомеопатического средства «Лимфомиозот» перорально в течение трёх дней три раза в сутки по 10 капель

2. При развившемся перикороните при удалении третьих моляров следует проводить комплекс лечебных мероприятий, включающий введение в переходную складку за 20 минут до обезболивания гомеопатического препарата «Траумель С» в количестве 2,2 мл, а в послеоперационном периоде назначение гомеопатического средства «Лимфомиозот» перорально в течение шести дней три раза в сутки по 10 капель в сочетании с нестероидными противовоспалительным средствами, на фоне введения на третьи сутки в переходную складку в области операционной раны «Траумель С» в количестве 2,2 мл

3. Для оценки состояния тканей полости рта после удаления третьих моляров необходимо включать определение в смешанной слюне содержания тканевых ингибиторов матриксных металлопротеиназ-1, цистатина С, а при перикороните маркеров воспаления - интерлейкинов-1(3 и -6

СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ, ОТРАЖАЮЩИХ СОДЕРЖАНИЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Вавилова Т.П, Китаев В А, Шишкин СВ, Пушкина А.В Сравнительный анализ содержания белков в костной ткани верхней и нижней челюстей //Ж. Вятский медицинский вестник. - 2007 - №4 - Материалы Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные вопросы современной биохимии», посвященной 20-летию Кировской государственной медицинской академии, 15-17 октября 2007, Киров - С. 87-88

2. Шишкин С В Анализ результатов хирургического лечения больных на амбулаторном приеме по поводу удаления третьих моляров //Материалы 8-го Международного конгресса «Здоровье и образование в XXI веке; концепции болезней цивилизации», РУДН Москва, 2007, С 708-709

3. Вавилова Т.П, Шишкин С В , Чергепггов Ю И, Гаверова Ю Г, Островская И.Г Изучение эффективности применения гомеопатических средств при удалении третьих моляров // X Российский национальный конгресс «Человек и лекарство», Москва, 2008 - С 62-62.

4 Вавилова Т П, Шишкин С В, Гаверова Ю.Г., Островская И.Г., Чергештов Ю И., Шишкин В С. О влиянии гомеопатических средств на метаболические процессы в костной ткани альвеолярных отростков крыс после удаления моляров //Ж Cathedra -2008 -Том 7, №1 -С. 23-26

5 TP Vavilova, Yu G Gaverova, I.G.Ostrovskaya S.V Shishkin, A V.Pushkma, D U Orechov. The study of content of protective proteins in mixed human saliva (Исследование содержания защитных белков в смешанной слюне человека) //8—European Symposium on Saliva., 14-17 May, Egmond aan Zee, Netherlands, 2008 -P 110-110.

6 Шишкин С В , Вавилова Т П, Чергештов Ю И, Гаверова Ю Г, Островская ИГ Опыт применения гомеопатических препаратов для предупреждения осложнений при удалении третьих моляров //Ж. Cathedra -2008 -Том 7,№2.-С26-30

Заказ № 442. Объем 1 п.л. Тираж 100 экз.

Отпечатано в ООО «Петроруш». г. Москва, ул. Палиха-2а, тел. 250-92-06 www.postator.ru

 
 

Оглавление диссертации Шишкин, Сергей Владимирович :: 2008 :: Москва

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Эпидемиология прорезывания третьих моляров.

1.2. Показания к удалению или сохранению третьих моляров.

1.3. Осложения, возникающие в ходе и после операции удаления третьих моляров.

1.4. Характер заживления раневой поверхности после удаления зуба.

1.5. Критерии качества жизни пациентов в послеоперационном периоде.

1.6. Об эффективности применения различных лекарственных средств в амбулаторной практике хирурга-стоматолога.

ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1. Моделирование раневой поверхности после удаления моляров у экспериментальных животных.

2.1.1. Методика операции.

2.2. Клинические исследования.

2.2.1. Общая характеристика пациентов.

2.2.2. Стоматологический статус хирургических пациентов.

2.2.3. Методы стоматологического обследования.

2.3. Методика удаления третьих моляров.

2.4. Биохимические методы исследования.

2.4.1. Подготовка материала для исследования.

2.4.2. Количественное определение общего белка в экстрактах костной ткани крыс.

2.4.3. Определение активности щелочной фосфатазы.

2.4.4. Определение активности кислой фосфатазы.

2.4.5. Определение содержания профермента матриксной металлопротеиназы-1.

2.4.6. Определение содержания тканевого ингибитора матриксной металлопротеиназы-1.

2.4.7. Определение активности лактатдегидрогеназы.

2.4.8. Определение активности супероксиддисмутазы.

2.4.9. Определение активности аспартатаминотрансферазы.

2.4.10. Определение активности аланинаминотрансферазы.

2.4.11. Определение активности глутатионпероксидазы.

2.4.12. Количественное определение интерлейкина-6.

2.4.13. Количественное определение интерлейкина-lp.

2.4.14. Определение содержания цистатина С.

2.5. Статистическая обработка данных.

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Влияние гомеопатических препаратов на состояние раневой поверхности после удаления моляров.

3.2. Исследование метаболических процессов в костной ткани крыс в динамике заживления раневого дефекта.!.

ГЛАВА IV. РЕЗУЛЬТАТЫ ПРИМЕНЕНИЯ АНТИГОМОТОКСИЧЕСКОЙ ТЕРАПИИ ПРИ УДАЛЕНИИ ТРЕТЬИХ МОЛЯРОВ У ПАЦИЕНТОВ С ИНТАКТНЫМ ПАРОДОНТОМ.

4.1. Характеристика течения послеоперационного периода при удалении третьих моляров у пациентов с интактным пародонтом.

4.2. Результаты исследования активности ферментов смешанной слюны при удалении третьих моляров у пациентов с интактным пародонтом.

4.3. Исследование содержания ингибиторов протеиназ в смешанной слюне пациентов с интактным пародонтом после удаления третьих моляров.

4.4. Исследование содержания провоспалительных цитокинов в смешанной слюне пациентов с интактным пародонтом после удаления третьих моляров.

ГЛАВА V. РЕЗУЛЬТАТЫ ПРИМЕНЕНИЯ АНТИГОМОТОКСИЧЕСКОЙ ТЕРАПИИ ПРИ УДАЛЕНИИ ТРЕТЬИХ МОЛЯРОВ У ПАЦИЕНТОВ С

ПЕРИКОРОНИТОМ.

5.1. Клиническая характеристика пациентов с перикоронитом.

5.2. Результаты исследования активности ферментов смешанной слюны у пациентов с перикоронитом.

5.3. Результаты исследования количества ингибиторов протеиназ в смешанной слюне пациентов с перикоронитом.

5.4. Результаты исследования количества провоспалительных цитокинов в смешанной слюне пациентов с перикоронитом.

ГЛАВА IV. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ.

ВЫВОДЫ.

 
 

Введение диссертации по теме "Стоматология", Шишкин, Сергей Владимирович, автореферат

Актуальность проблемы

В практике хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии операция удаления третьих моляров является обычной процедурой (Sands Т., et aL, 1993; Hattab F.N, Abu Alhaija E.S.J., 1999; Knutsson K., et al., 1996). Вместе с тем, данная манипуляция зачастую становится сложной хирургической операцией, которая травмирует окружающие зубы и ткани полости рта (Румянцев Ю.М., 1977). Возникающий дефект костной ткани после удаления третьих моляров, особенно на нижней челюсти, характеризуется длительным периодом заживления и замещения дефекта костной тканью (Kugelberg C.F., 1990, Quee Т.A. et al, 1985, Kan K.W., et al., 2002). Статистические данные показывают, что в практике удаления третьих моляров послеоперационные осложнения встречаются чаще (20%), чем в ходе операции (18%) (Sands Т., et al., 1993; Phillips C.,et al., 2003). Они увеличиваются до 65% у лиц старше 45 лет (Bruce R.A., et al., 1980; Krimmel M., Reinert S., 2000; Rothamel D., et al., 2006).

В течение трех-семи дней после удаления третьих моляров больной отмечает ухудшение общего и местного статуса (Savin J., Ogden G.R., 1997; RutaD.A. et al., 2000; Phillips C.,et al., 2003). Более 65 % пациентов в послеоперационном периоде испытывают болевые ощущения, ограничение движения нижней челюсти, нарушение жевания и психологический дискомфорт (Song F, et al., 1997; McGrath С., Bedi R. A., 1999; GoodeyR.D. et al., 2000), что связано с луночковым кровотечением, тризмом челюстей, альвеолитами, развитием инфекции, а также повреждениями нервных стволов и рядом стоящих зубов (Васильев Г.А., 1973; Федяев И.М. с соавт., 1986; Blackburn C.W., Bramley Р.А., 1989). Более редко встречаются прободение верхнечелюстного синуса, отлом бугров верхней челюсти, перелом нижней челюсти (Goldberg М., 2003).

Анализ литературы показывает, что проблеме профилактики послеоперационных воспалительных осложнений при удалении третьих моляров уделяется недостаточно внимания. Антибактериальные и противовоспалительные препараты, применяемые после хирургических вмешательств, не всегда достаточно эффективны и многие из них отрицательно влияют на иммунный статус организма (Pogrel М.А., et al., 2004; O'Riordan B.C., 2004; Renton Т., et al., 2004). На фоне проводимой лекарственной терапии в полости рта развиваются стоматиты, гингивиты, глосситы, афты, эрозии и др. (Барер Г.М. с соавт., 1999). Также следует отметить очевидный рост аллергизации населения. Все это требует поиска новых подходов к профилактике и терапии послеоперационных осложнений. Одним из которых и является антигомотоксическая терапия, основанная на использовании комплексных гомеопатических препаратов (Крылов Ю.Ф., Зорян Е.В., 1998; Зорян А.В., 2004; Зорян Е.В., 2005).

Совершенствование методов терапии воспалительных осложнений, возникающих после операции удаления третьих моляров и создание прогнозируемой регенерации костной и мягких тканей в области оперативного вмешательства, является актуальной проблемой в хирургической стоматологии. Цель исследования:

Обосновать применение комплексных гомеопатических препаратов до и после удаления третьих моляров для ускорения заживления раневого дефекта и профилактики воспалительных осложнений в послеоперационном периоде. Задачи исследования:

1. Изучить влияние комплексных гомеопатических препаратов на активность ферментов, катализирующих фосфорно-кальциевый обмен и катаболизм белков в костной ткани крыс при травматическом повреждении челюстей в эксперименте.

2. Оценить состояние тканей в области операционной раны после удаления третьих моляров пациентов, получавших антигомотоксическую терапию.

3. Исследовать в смешанной слюне пациентов, получающих комплексные гомеопатические препараты, активность супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы, кислой и щелочной фосфатаз, лактатдегидрогеназы, аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы, количество интерлейкинов -1р и 6, цистатина С, тканевых ингибиторов матриксных металлопротеиназ -1, проферментов матриксных металлопротеиназ-1 в послеоперационном периоде при удалении третьих моляров. 4. Сравнить показатели смешанной слюны, отражающих изменения в гомеостазе полости рта в группах пациентов с интактным пародонтом и перикоронитом, получающих антибиотикотерапию и комплексные гомеопатические препараты. Положения, выносимые на защиту

1. Количество ТИМП-1 и проММП-1, активность кислой и щелочной фосфатаз в костной ткани верхней и нижней челюстей крыс различно в норме и эти отличия сохраняются в процессе восстановления дефектов. j

2. Экспериментальные исследования, проводимые на крысах показали, что вводимые антигомотоксические вещества, как и антибиотики оказывали более 1 выраженное действие к 7 дню опыта., а к 14 дню эксперимента исследованные метаболические процессы в костной ткани альвеолярных отростков челюстей обеих групп животных были сопоставимы между собой и приближались к физиологическим.

3. При введении гомеопатических средств, а именно препарата «Траумель С» перед оперативным вмешательством и препарата «Лимфомиозот» в послеоперационном периоде при удалении третьих моляров у пациентов наблюдаются менее выраженные воспалительные явления в области дефекта как на нижней челюсти, так и на верхней.

4. Антигомотоксическая терапия, назначаемая в пред- и послеоперационный периоды может применяться в качестве альтернативы антибиотикотерапии при удалении третьих моляров с интактным пародонтом, а при воспалительных явлениях в ретромолярной области оправдано назначение пациентам противовоспалительных и антибактериальных препаратов в сочетании с комплексными гомеопатическими средствами.

Научная новизна

Впервые в эксперименте и в клинической практике проведён анализ эффективности применения комплексных гомеопатических препаратов при удалении третьих моляров с целью профилактики воспалительных осложнений в послеоперационном периоде. Впервые исследованы показатели смешанной слюны у пациентов с перикоронитом и выявлены изменения в активности супероксиддисмутазы, количества профермента матриксных металлопротеиназ-1, интерлейкинов-1 (3 и -6, ингибиторов протеиназ — цистатина С и тканевых ингибиторов матриксных металлопротеиназ.

На основании клинико-биохимического исследования разработан алгоритм обследования и лечения пациентов в до и послеоперационном периоде при удалении третьих моляров. Показано положительное влияние комплекса гомеопатических препаратов «Траумель С» и «Лимфомиозот» на течение послеоперационного периода у пациентов как с интактным пародонтом, так и в случае развития перикоронита. Практическая значимость работы

Данные экспериментальных и клинических исследований позволяют рекомендовать при удалении третьих моляров, включать в план предоперационной подготовки и в послеоперационном периоде назначение комплекса гомеопатических препаратов «Траумель С» и «Лимфомиозот» пациентам как при неизменённом состоянии тканей пародонта в области удаляемого зуба, так и в случае развития перикоронита.

Проведенная работа позволила определить приоритетные направления в исследовании в оценке состояния тканей полости рта и эффективности применяемой терапии в послеоперационном периоде. Результаты работы могут быть использованы в практической деятельности хирургов-стоматологов.

Внедрение результатов исследования

Результаты исследования внедрены в практическую деятельность поликлиники взрослого отделения хирургической стоматологии на базе стоматологического комплекса, а также используются в научном и педагогическом процессах на кафедрах хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии ФПДО, биохимии МГМСУ. Апробация работы

Результаты исследования докладывались на Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные . вопросы современной биохимии», посвященной 20-летию Кировской государственной медицинской академии. (Киров, 2007), на 8-ом Международном конгрессе «Здоровье1 и образование в XXI веке», РУДН (Москва, 2007), на 8-ом Международном Европейском симпозиуме по слюне (8~ European Symposium • on Saliva,, Egmond aan Zee, Netherlands, 2008), на заседаниях кафедр хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии ФПДО, биохимии, госпитальной хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии стоматологического факультета МГМСУ.

Объём и структура диссертации

Материалы диссертации изложены на 143 страницах машинописного текста. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, главы материалы и методы, глав собственных исследований и обсуждения результатов исследования; выводов, практических рекомендаций и списка литературных источников, который включает 280 источников, из них 83 источника отечественных авторов и 197 зарубежных. Работа иллюстрирована 27 таблицами и 11 рисунками. Публикации

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Клинико-биохимическое обоснование применения гомеопатических препаратов при удалении третьих моляров"

выводы

1. В послеоперационном периоде у экспериментальных животных, независимо от проводимой медикаментозной терапии, в костной ткани верхней и нижней челюстей происходят сходные изменения в системе протеиназа - ингибитор.

2. На ранних сроках у крыс, получавших гомеопатические препараты, в костной ткани не выражена активация кислой и щелочной фосфатаз по сравнению с животными, получавших антибиотик. К 14-му дню у этих животных превалирует повышение активности щелочной фосфатазы, характерной для остеобластов над активностью кислой фосфатазы, свойственной остеокластам.

3. Введение пациентам с интактным пародонтом, у которых проводилось удаление третьих моляров, только комплексных гомеопатических препаратов позволяет уменьшить количество воспалительных осложнений в послеоперационном периоде до 4,6%.

4. Комплексная терапия с включением гомеопатических препаратов пациентам с перикоронитом снижает количество осложнений в послеоперационном периоде в 44,4% случаев. Пациенты I группы, которые получали только «Амоксиклав» и «Кетанов», послеоперационный период протекал с наиболынм количеством осложнений, которое достигало 83,4%.

5. Удаление третьих моляров у пациентов с интактным пародонтом всех обследуемых групп, независимо от вида проводимой лекарственной терапии, существенно не влияло в смешанной слюне на активность супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы, аспартатаминотрансферазы, аланинаминотрансферазы, лактатдегидрогеназы, щелочной и кислой фосфатаз, а также количества профермента матриксных металлопротеиназ-1.

6. Воспалительные явления в тканях ретромолярной области характеризуются достоверным повышением в смешанной слюне активности супероксиддисмутазы, количества профермента матриксных металлопротеиназ-1, интерлейкинов-1 (3 и -6, цистатина С и тканевого ингибитора матриксных металлопротеиназ-1.

7. Назначение комплексных гомеопатических препаратов и нестероидного противовоспалительного средства «Кетанов» пациентам с перикоронитом приводит к улучшению клинического статуса пациентов в послеоперационном периоде, достоверному снижению в слюне активности супероксиддисмутазы, кислой фосфатазы, а также к повышению активности щелочной фосфатазы, количества тканевого ингибитора матриксных металлопротеиназ-1 и интерлейкинов-ip и -6.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Пациентам с интактным пародонтом рекомендуется за 20 минут до обезболивания при удалении третьих моляров вводить в переходную складку гомеопатический препарат «Траумель С» в количестве 2,2 мл. После операции рекомендовать приём гомеопатического средства «Лимфомиозот» перорально в течение трёх дней три раза в сутки по 10 капель.

2. При развившемся перикороните при удалении третьих моляров следует проводить комплекс лечебных мероприятий, включающий введение в переходную складку за 20 минут до обезболивания гомеопатического препарата «Траумель С» в количестве 2,2 мл, а в послеоперационном периоде назначение гомеопатического средства «Лимфомиозот» перорально в течение шести дней три раза в сутки по 10 капель в сочетании с нестероидными противовоспалительным средствами, на фоне введения на третьи сутки в переходную складку в области операционной раны «Траумель С» в количестве 2,2 мл.

3. Для оценки состояния тканей полости рта после удаления третьих моляров необходимо включать определение в смешанной слюне содержания тканевых ингибиторов матриксных металлопротеиназ-1, цистатина С, а при перикороните маркёров воспаления - интерлейкинов-1 р и -6.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2008 года, Шишкин, Сергей Владимирович

1. Абаджиди М.А., Лукушкина Е.Ф., Маянская И.В. и др. Уровень цитокинов в секрете ротовой полости у детей с бронхиальной астмой. //Цитокины и воспаление. -2002. -Т. 1 №3. - С.9-14.

2. Абакарова Д.С. Применение новой солкосерилсодержащей пленки Диплен-дента С при лечении травм слизистой оболочки рта. // Ж. Стоматология. — 2004. №4. - С. 33-36.

3. Абоянц Р.К., Истранов Л.П., Истранова Е.В., Курдюмов С.Г. Изделия из коллагена с гидроксиапатитом. Клинический опыт и проблемы коллагенопластики. М., 1999г.- С. 45.

4. Агеев А.С., Зайдман A.M., Сысолятин П.Г. Проблема остеорепарации в стоматологии (обзор литературы) /А.С. Агеев, A.M. Зайдман // Хирургия, морфология, лимфология:- 2006. Т. 3, № 5. - С. 36 — 40

5. Агеева Т.К. Новые подходы к лечению современной хронической патологии. М.: Русский салон периодики, 2000. - С. 144.

6. Агеева Т.К., Агеев С.Л. Современная гомеопатическая пропедевтика. — М: Российский салон, 1997. С. 94.

7. Акашкина Л.В., Киселёва Т.Л., Коровякова О.А. Гомеопатия в помощь специалисту: Приложение № 3-2001 к журналу «Новая аптека». М.: МЦФЭР, 2001.-С.208

8. Андреищев А.Р. Осложнения, связанные с нижними третьими молярами (патогенез, клиника, диагностика, лечение). Дисс. . канд. мед. наук. — СПб, 2005.-274 с.

9. Андреищев А.Р., Соловьев М.М. Тактика в отношении нижних третьих моляров при проведении остеотомии нижней челюсти у пациентов с сочетанными зубочелюстно-лицевыми аномалиями. // Стоматология. -2003. № 6. - С.34-37.

10. Артюхов А.В. Анатомические обоснования для проведения зубосохраняющих операций и возможности использования сегментовтретьих нижних моляров в ортопедической практике. Дисс. . канд. мед. наук. Н. Новгород, 2003. - С.56.

11. Ахмед С.Е.С.,Фомичев Е.В., Яковлев А.Т. Состояние иммунного статуса больных с атипично текущей флегмоной челюстно-лицевой области. // Бюлл. Волгоградского научного центра РАМН. — 2007. №1. - С.42-43.

12. Ахмедханов Ю.А. Роль третьих моляров для формирования зубоальвеолярных дуг и прикуса в норме и при патологии. Дисс. . канд. мед. наук. Москва, 2005. — С.78.

13. Барер Г.М., Зорян Е.В., Зорян А.В. Антигомотоксическая терапия: новый подход к лечению стоматологических заболеваний с использованием гомеопатии // Стоматология для всех.-1999.-№4.-С. 20-23.

14. Безвестный Г.В. Данные рентгеноцефалометрического анализа лицевого скелета при ретенции и истиной адентии зубов мудрости. Дисс. . канд.мед.наук. М., 1981. —~М-2с.

15. Безруков В.М., Григорян А.С. Гидроксиапатит, как субстрат для костной пластики: теоретические и практические аспекты проблемы. // Стоматология.— 1996. — С.7-12.

16. Белозёров М.Н., Агапов B.C., Аснина С.А., Воложин А.И. Применение остеопластического материала типа "Колапол" для заполнения костных полостей, материалы конф., III междунар. конф. Челюстно- лицевых хирургов и стоматологов, С.Пб., 1998г. С. 18-19.

17. Бурлакова Е.Б. Эффект сверхмалых доз. //Вестник РАН. 1994. — Т.64. -№5.-С. 425-431.

18. Бычков А.И. Профилактика и лечение воспалительных осложнений, связанных с удалением третьего нижнего моляра при затруднённом его прорезывании //Дисс.канд. мед. наук. — Москва., 1993. — С. 14

19. Бусыгин А.Т. Строение челюстных костей. — Ташкент, "Медгиз". 1962. — 108с.

20. Вавилова Т.П. Ферментные системы жидкостей и тканей полости рта при пародонтите. — Дисс. . докт. мед. наук. Москва, 1991. - С. 187

21. Вавилова Т.П. Биохимия тканей и жидкостей полости рта: учебное пособие -М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. С.159.

22. Васильев Г.А. Хирургия зубов с курсом челюстно-лицевой травматологии: 2-е издание. Москва: Медицина. - 1973. — С. 115.

23. Войтович А.В., Афиногенов Т.Е., Шубняков И.И. и др. Использование новых имплантационных материалов для восполнения дефектов костей // Сборник материалов конгресса травматологов-ортопедов России с международным участием, Ярославль, 1999г. С. 94-95.

24. Ганиев И.А. Роль нижних третьих моляров в возникновении зубочелюстных аномалий и деформаций. Дисс. . канд. мед. наук. СПб., 1993.- 155с.

25. Гланц С. Медико-биологическая статистика. Пер. с англ. — М., Практика, 1998.-С. 171

26. Гомеопатия и фитотерапия в лечении сердечно-сосудистых болезней. /Под ред. Киселёвой Т.Л., Карпеева А.А. М.: Мосгорпечать, 1997. - Т.1. — 279 е.; Т.2. - 686 с.

27. Гриншпун К.И. Применение глюкокортикоидного препарата «Дексаметазон» при хирургических стоматологических вмешательствах для лечения и профилактики воспалительных осложнений. Дисс. . канд.мед.наук. - Москва., 2004. - С. 31.

28. Гришина Е.Б. Влияние позиции моляров на формирование аномалий зубочелюстной системы. Дисс. . канд.мед.наук. Москва., 2005. - С.65.

29. Гурылёва М.Э, Журавлёва М.В., Алеева Г.Н. Критерии качества жизни в медицине и кардиологии. //Русский медицинский журнал. — 2006. том 14. -№10.-С. 761-763

30. Долгих В.Т., Матусов И.Е., Чесноков В.И., Солодников Н.Н., Таран Н.И., Корпачёва О.В. Клиническая патофизиология для стоматолога. Под ред.

31. Проф. В.Т. Долгих. М: Медицинская книга, Н. Новгород: Изд-во НГМА, 2000.-С. 105-106

32. Дробышев А.Ю. Экспериментальное обоснование и практическое применение отечественных биокомпозиционных материалов при костновосстановительных операциях на челюстях. // Дис докт. мед. наук. —1. Москва, 2001.-С. 76

33. Дубняк И.Н., Мальцева Е.А., Шаронов А.С., Дубняк Н.С. Влияние лекарственных препаратов на стабильность лизосомных мембран фагоцитирующих клеток //Ж. Аллергология и иммунология. — 2006. — Том 7, № 3. С. 440

34. Зенков Н.К., Панкин В.З., Менщикова Е.Б. Окислительный стресс. Биохимические и патофизиологические аспекты. М., Наука, 2001, С. 343.

35. Зилов В.Г., Судаков К.В., Эпштейн О.И. Элементы информационной биологии и медицины. М.: МГУЛ, 2000. - 248 с.

36. Зорян Е.В. Очерки по гомеопатии для стоматологов. М., Арнебия, 2005, 160 с.

37. Зорян Е.В, Зорян А.В. Гомеопатический метод лечения и возможность его использования в стоматологической практике // Клиническая стоматология.-2002.-№3.-С. 48-52;

38. Зухейр Ф.М.А. Профилактика и лечение осложнений затруднённого прорезывания третьих нижних моляров: Автореферат дис. к.м.н. /ГОУ «Восточно-сибирский научный центр сибирского отделения РАМН». — 2000.-25с.

39. Житницкий Г.Д. Осложнения затрудненного прорезывания нижнегоfтретьего моляра. Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Москва. 1966. — 14с.

40. Игнатьева Е.В. Использование биокомпозиционных материалов для профилактики послеоперационных осложнений при удалении третьих нижних моляров: Автореферат дис. к.м.н. / Московский государственный медико-стоматологический университет. 2005. - 20 с.

41. Изосимов А.А. Оптимизация комплексного лечения переломов нижней челюсти. Автореф. дисс. . канд. мед. наук., Пермь, 2007. 20 с.

42. Караулов А.В. Клиническая иммунология // Учебник для вузов. 1999. — С. 305

43. Кетлинский С.А., Симбирцев А.С., Воробьев А.А. Эндогенные иммуномодуляторы. СПб.: Гиппократ, 1992. — С. 43.

44. Киселёва Т.Л., Агеева Т.К., Цветаева Е.В. Гомеопатические лекарственные средства, разрешённые к медицинскому применению на территории Российской федерации: Учебно-справочное пособие. /Под ред. Т.Л. Киселёвой. 1-е изд. - М.: Велес, 2000. — 538 с.

45. Китаев В.А. Клинико-биохимическая оценка результатов дентальной имплантации: Автореферат дис. к.м.н. / Московский государственный медико-стоматологический университет. 2007. - 24 с.

46. Козлов В.А. Некоторые аспекты проблемы цитокинов //Цитокины и воспаление. 2002. - Т. 1. - № 1. - С. 5-8.

47. Кокряков В.Н. Биология антибиотиков животного происхождения. СПб.: Наука. - 1999.-С. 162.

48. Корляков, Д. В. Профилактика воспалительных осложнений и атрофии альвеолярного отростка после удаления зубов / Д. В. Корляков, Е. И. Дерябин // Сборник материалов конференции «К 90-летию В. С. Чудновой». Ижевск, 2005. - С. 190-192

49. Кочетов Г.А. Практическое руководство по энзимологии. М., Высшая школа, 1980.

50. Крылов Ю.Ф., Зорян Е.В. Использование противовоспалительных средств в пародонтологии// Стоматология. Спец. Выпуск.-1998.-С.49-50

51. Левицысий А. П., Макаренко О. А., Ходаков I. В., Зеленша Ю. В. Ферментативний метод оцшки стану kictkoboi тканини. //Одеський медичний журнал. 2006. - №3 (95) — с. 17-21

52. Лищук В.А. Жизнеспособность: принципы управления репарацией. // Валеология. 2000. - №3. - С. 4-9

53. Меладзе З.А., Гунько В.И,. Бутров А.В. Применение НПВП в амбулаторной хирургической стоматологии. // Тезисы докладов

54. Российской научно-практической конференции с международным участием "Клинические и теоретические аспекты боли". 15-16 мая 2001г. (г. Москва). С. 45

55. Мустафаев М., Гемонов В.В., Воложин А.И. Регенерация костной ткани нижней челюсти после нанесения механического дефекта и травмы мышц в эксперименте. //Ж. Проблемы нейростоматологии и стоматологии. — 1998. -№1.- С. 6-10

56. Острейковский И.Э., Кравчук И.В., Мхитарян К.Н. Альтернативная гомеопатия. — М.: Знак, 1994. С. 96.

57. Петренко В.А. Задержанные зубы и наблюдавшиеся при них заболевания. Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Киев, 1953. 12 с.

58. Пикалкж B.C., Мостовой С.О. Современные представления о биологии и функции костной ткани // Таврич. медико-биол. вест. 2006. — Т. 9. — № 3. -С. 186-194.

59. Платонов А.Е. Статистический анализ в медицине и биологии: задачи, терминология, логика, компьютерные методы. — М.: Изд-во РАМН, 2001. —4 52с.

60. Полежаев JI.B. Утрата и восстановление регенерационной способности органов и тканей у животных. — М.: Медицина, 1968. С. 67

61. Робустова Т.Г., Лебедев К.А.,. Понякина И.Д., Чукаева Н.А. Комплекс экспресс-микрометодов оценки общего и местного иммунитета для практической стоматологии / Т.Г.Робустова // Стоматология. — 1990. т. 69, №2.— С.22-25.

62. Робустова Т. Г., Карапетян И. С., Ромачева И. Ф. "Хирургическая стоматология" 3-е издание - Москва: Издательство "Медицина", 1996. - С. 479-483

63. Русак В.И. Использование не полностью прорезавшихся нижних зубов мудрости в несъемных мостовидных протезах: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Харьков, 1974. - 25 с.

64. Румянцев Ю.М. Частота осложнений при операции удаления зуба и их предупреждения. // Ж. Стоматология. — №3. — 1977. — С.37-38

65. Северин С.Е. Геном человека и фармакотерапия. //Человек и лекарство/Сб. трудов 7-ого Российского национального конгресса. — М., 2000. — С. 124148.

66. Середенин С.Б. Проблема индивидуальной чувствительности в фармакологии // Человек и лекарство/Сб. трудов 7-ого Российского национального конгресса. — М., 2000. — С. 96 124.

67. Сердюков Ю.П. Клиническое и анатомо-морфологическое обоснование лечения патологических процессов в ретромолярной области нижней челюсти: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Воронеж, 2002. — 23 с.

68. Серов В.В., Шехтер А.Б. Соединительная ткань (функциональная морфология и общая патология). М: Медицина, 1981. - С. 259

69. Сидельников П.В., Сенников О.Н. Эффективность местной иммунокоррегирующей терапии препаратом Имудон при проведении имплантации. //Современная стоматология. — 2002. №1. — С. 74-76

70. Стахеев И.А., Горбунова З.И., Кудрявцева И.Т., Иванцова Т.М. Особенности регенерации костной ткани при использовании биоситалла // Материалы конгресса травматологов-ортопедов России с международным участием, Ярославль, 1999г. С.766-767.

71. Турова А.Д. Лекарственные растения СССР и их применение, 2-е изд. — М.: Медицина, 1974. - 424 с.

72. Ушаков А.И., Божуков Д.А., Ушакова Т.М. Применение композитного материала на основе цианакрилатов при операциях на альвеолярных отростках челюстей // Ж. Стоматология.— 2000. №1. - С. 34-37

73. Федяев И. М., Архипов В. Д., Лихацкая А. И. "Современные методы лечения сочетанных повреждений челюстно-лицевой области" Москва: Издательство "Медицина", 1986. - с. 50-63

74. Хазен A.M. Происхождение и эволюция разума с точки зрения синтеза информации. //Подписная серия переизданных статей из журналов РАН и оригинальных публикаций. -М.: Кенди, 1993. Вып.2. - С. 3-20.

75. Хаитов P.M., Игнатьева Г.А., Сидорович И.Г. Иммунология: Учебник. М.: Медицина. - 2000. - С. 234.

76. Чергештов Ю.И., Губайдулина Е.Я., Цегельник Л.И. Клинико-рентгенологические аспекты диагностики и лечения синдрома болевой дисфункции височно-нижнечелюстных суставов.// Стоматология. 2000 -№1 - с. 27-30.

77. Чергештов Ю.И. Клинико-иммунологические основы лечения больных с переломами нижней челюсти, их воспалительными осложнениями и при восстановительных операциях с использованием трансплантантов. — Автореф. докт. дисс., М., МГМСУ, 2000, 32 с.

78. Чергештов Ю.И., Авагян А.А., Сашкина Т.И. Реакция иммунной системы после замещения дефекта нижней челюсти имплантатом на основе сополимера N-винилпирролидона и метилметакрилата. // Российский стоматологический журнал. 2000. - №3. - С. 13-15

79. Черешнев В.А., Юшков Б.Г., Гаврилова Т.В., Климин В.Г., Черешнева М.В., Гусев Е.Ю., Шилов Ю.И. От иммунологии к иммунопатофизиологии. //Ж. Аллергология и иммунология. 2006. - Том 7, №3. - С. 242-243

80. Abico Y., Nishimura М., Kaku Т. Defensins in saliva and the salivary glands. // J. Med. Electron. Microsc. 2003. - Vol.36; No.4. - P.247-252

81. Aimetti M., Pigella E., Romano F. Clinical and radiographic evaluation of the effects of guided tissue regeneration after extraction of impacted third molars. //Int. J. Periodont. Restor. Dent. 2007. - Vol. 27. - P. 51.

82. Al-Khateeb Т., El-Marsa F.A., Butler N. The relationship between the indications for the surgical removal of impacted third molars and the incidence of alveolar osteitis. // J. Oral Maxillofac. Surg. 1991. - Vol. 49. - P. 141-145.

83. Ailing C.C., Osbon D.B. Maxillofacial trauma. Philadelphia : Lea & Febiger., 1988

84. Amaratunga S and Chandrasekera A. A Survey of the Lower Wisdom Tooth with Special Reference to Impaction and Displacement. // J. Trap. Dent. — 1988. -Vol. 11.-P. 27-30.

85. Archer W.H. Oral Surgery: A Step-By-Step Atlas of Operative Techniques.W.B. Saunders Company, Philadelphia, 1966; 4th ed. Chapter 4. -P. 122-237.

86. Ash M., Costich E.R., Hayward R. A study of periodontal hazards of third molars. //J. Periodontol. 1962. - Vol. 33. -P.209.

87. Baek S.H., Kim S. Bone repair of experimentally induced through-and-through defects by Gore-Tex, Guidor, and Vicryl in ferrets: A pilot study // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 2001.- Vol. 6. - P. 710-714.

88. Barboza E.P., Lugao C.E. Treatment of a human transosseous mandibular defect by guided bone regeneration // J. Periodontol. 2001.- Vol. 4. - P. 538-541.

89. Bataineh A.B. Sensory nerve impairment following mandibular third molar surgery. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2001. - Vol. 59. - P. 1012.

90. Bataineh A.B, Albashaireh Z.S, Hazza'a A.M. The Surgical Removal of Mandibular Third Molars: A Study in Decision Making. //Quintessence Int. -2002.-Vol. 33.-P. 613-617.

91. Batge В., Diebold J., Stein H., Bodo M., Muller P.K. Compositional analysis of the collagenous bone matrix. A study on adult normal and osteopenic bone tissue.// Eur J Clin Inves.- 1992.- T. 22.-P. 805-812.

92. Beauchamp C., Fridovich I. Superoxide dismutase: Improved assay and an assay applicable to acrylamide gels. //Analyt. Biochem. 1971. Vol. 44. - P.276-287.

93. Begg P.R. Stone Man's Dentition. //Am J. Orthod. 1954. - Vol. 40. - P. 298312.

94. Bell G.W. Use of dental panoramic tomographs to predict the relation between mandibular third molar teeth and the inferior alveolar nerve. Radiological and surgical findings, and clinical outcomes. //Br. J. Oral Maxillofac. Surg. 2004. -Vol. 42.-P. 21.

95. Berge T.I. Complications requiring hospitalization after third-molar surgery. //Acta Odontol. Scand. 1996. - Vol. 54. - P. 24-28.

96. Bernard B. A. Ca binding alkaline phosphatase in mechanism of calcification // Calcium regulation and bone metabolism. Basis and clinical aspects. 1987. -Vol. 9. P. 413 -418.

97. Bjork A., Jensen E., Palling M. Mandibular growth and third molar impaction. //J. Acta Odontol. Scand. 1956. - Vol. 14. - P. 231-272.

98. Bishara S.E. Third molars: A dilemma! Or is it? // Am. J. Orthod. And Dentofac. Orthoped. 1999.-Vol. 115.- №6.- P.628-633.

99. Black K.P., Merril K.W., Jackson S., Kats J. Cytokine profiles in parotid saliva from HIV-1-infected individuals: changes associated with opportunistic infections in the oral cavity // Oral Microbiol. Immunol.- 2000. -Vol. 15.-№2. -P. 74-81.

100. Blackburn C.W. and Bramley P.A. Lingual nerve damage associated with the removal of lower third molars. //Br Dent J. 1989. - Vol. 167. - P. 103.

101. Blackburn C.W. Experiences in lingual nerve repair. //British Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 1992. - Vol. 30. - P. 72.

102. Blakey G.H., Marciani R.D., Haug R.H. et al. Periodontal pathology associated with asymptomatic third molars. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2002. - Vol. 60. -P. 1227.

103. Bloch-Zupan A., Decimo D., Loriot M., Mark M.P., Ruch J.V. Expression of nuclear retinoic acid receptors during mouse odontogenesis. //J. Differentiation. -1994. Vol. 57. №3. - P. 195-203

104. Bramante M.A. Controversies in orthodontics. //J. Dental Clinics of North America. 1990.-Vol. 34. №1.-P. 91-102.

105. Brandtzaeg P. History of oral tolerance and mucosal immunity. //Ann. NY Acad. Sci.~ 1996.-Vol. 778. P. 1-27

106. Brickley M., Kay E., Shepherd J.P., Armstrong R.A. Decision analysis for lower-third-molar surgery. //J. Med Decis Making. 1995. - Vol. 15. - P.143-151

107. Brinckerhoff C.E., Matrisian L.M. Matrix metalloproteinases: a tail of a frog that became a prince. Nat Rev Mol Cell Biol. -2002.- № 3.-P. 207-214.

108. Brown L.H/, Berkman S/, Cohen D/, Kaplan A.L/, et al; A Radiographic Study of the Frequency and Distribution of Impacted Teeth. //J. Dent. Assoc. S. Afr. -1982. Vol. 37.-P. 627-630.

109. Bruce R.A., Frederickson G.C., Small G.S. Age of patients and morbidity associated with mandibular third molar surgery. //JADA. 1980. - Vol. 101. — P. 240-245.

110. Bunyaratavej P., Wang H.L. Collagen membranes: a review // J. Periodontol. -2001.- Vol. 2.-P. 215-229.

111. Caiazza S., Colangelo P., Bedini R. Evaluation of guided bone regeneration in rabbit femur using collagen membranes // Implant. Dent. 2000.- Vol. 3. - P. 219-225

112. Chiapasco M, Crescentini M, Rmanoni G. Germectomy or delayed removal of mandibular impacted third molars: the relationship between age and incidence of complications.//J Oral Maxillofac. Surg. 1995.-Vol. 53.-P. 418-422.

113. Chossegros C., Guyot L., Cheynet F., et al.: Is lingual nerve protection necessary for lower third molar germectomy? A prospective study of 300 procedures. /ГШ. J. Oral Maxillofac. Surg. 2002. - Vol. 31. - P. 620.

114. Conklin W.W., Stafne E.C. A study of odontogenic epithelium in the dental follicle. //JADA. 1949. - Vol. 39. - P. 143-148.

115. Corruccini, R. Anthropological aspects of orofacial and occlusal variations and anomalies. In: Advances in Dental Anthropology, 1991. Chapter 17. Kelley, M.A. and Larson, C.S. (eds), Wiley-Liss, New York, p. 308.

116. Curran A.E., Damm D.D, Drummond J.F. Pathologically significant pericoronal lesions in adults: histopathologic evaluation. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2002. -Vol. 60.-P. 613-617.

117. Curran J.B., Kennett S., Young A.R. An assessment of use of profilactic antibiotics in third molar surgery // Int. J. Oral Surg. 1974. - Vol.3. - P. 1-3

118. Dachi S.F., Howell F.V. A survey of 3,874 routine full-mouth radiographs. II. A study of impacted teeth. //J.Oral Surg. 1961. - Vol. 14. - P. 1650-1169.

119. Davies D., Metzger H. Structural basis of antibody function // Annu. Rev. Immunol. 1983. - Vol. 1. - P. 87-96.

120. Dodson T. Management of mandibular third molar extraction sites to prevent periodontal defects. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2004. - Vol. 62. -P.1213.

121. Dodson Т. Is there a role for reconstructive techniques to prevent periodontal defects after third molar surgery. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2005. - Vol. 63. — P.891.

122. Eliasson S., Heimdahl A., Nordenram A. Pathological changes related to long-term impaction of third molars: A radiographic study. /Tint J Oral Maxillofac Surg. 1989. - Vol. 18. №4. - P. 210-212.

123. Flick W.G. The third molar controversy: framing the controversy as a public health issue. //J. Oral Maxillofac. Surg. 1999. - Vol. 57. - P. 438-444.

124. Frazier-Bowers S.A., Guo D.C., Cavender A., et al. A novel mutation in human PAX9 causes molar oligodontia. //J. Dent Res. 2002. - Vol. 81. №2. - P. 129133.

125. Fox P.C., Brennan M., Di Sun P. Cytokine expression in human labial minor salivary gland epithelial cells in health and disease. //Arch. Oral. Biol. 1999. — Vol. 44(Suppl.l).-P.49-S52.

126. Fox R.I., Kang H.I., Ando D., Abrams J., Pisa E. Cytokine mRNA expression in salivary gland biopsies of Sjogren's syndrome. //J. Immunol. 1994. - Vol. 152. - P.5532-5539.

127. Fox P.C., Brennan M., Di Sun P. Cytokine expression in human labial minor salivary gland epithelial cells in health and disease. //Arch. Oral. Biol. 1999. -Vol. 44(Suppl. 1 ).-P.49-S52.

128. Ganss С., Hochban W., Kielbassa A.M., Umstadt H.E. Prognosis of third molar eruption. //J.Oral Surgery, Oral Medicine, Oral Pathology. 1993. - Vol. 76(6). P. 688-693.

129. Gemmell E., Marshall R.I., Seymour G.J. Cytokines and prostaglandins in immune homeostasis and tissue destruction in periodontal disease. //J. Periodontol. 2000. - Vol.14. -P.l 12- 143.

130. Goldberg M.H, Nemarich A.N, Marco H.W.P. Complications after Mandibular Third Molar Surgery: a Statistical Analysis of 500 Consecutive Procedures in Private Practice. //J. Am. Dent. Assoc. 1985. - Vol. 11. - P. 277-279.

131. GoodeyR.D., Brickley M.R., Armstrong R.A., Shepherd J.P. The minor oral surgery outcome scale: a multi-attribute patient-derived outcome measure. //J. Oral Maxillofac Surg. 2000.-Vol. 58.-P. 1096-1101.

132. Gordon N.C., Laskin D.M. The effects of local hypothermia on odontogenesis. //J Oral Surg. 1979. - Vol. 37. - P. 235-244.

133. Guven O., Keskin A., Akal U.K. The Incidence of Cysts and Tumors around Impacted Third Molars. //Int. J. Oral Maxillofac. Surg. 2000. - Vol. 29. - P. 131-135.

134. Hall A., Ekiel I., Mason R.W., Kasprzykowski F., Grubb A., Abrahamson M. Structural basis for di.erent inhibitory specicities of human cystatins С and D. // J. Biochemistry. 1998. - Vol.37. - P. 4071-4079.

135. Harder J., Meyer-Ho.ert U., Teran L.M. et al. Mucoid Pseudomonas aeruginosa, TNF-a, and IL-lf3, but not IL-6, induce human a-defensin-2 in respiratory epithelia. //Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2000. - Vol. 22. - P. 714-721.

136. Haskell R. Personal communication. 1997. — P. 34

137. Harrington D.J. Bacterial collagenases and collagen-degrading enzymes and their potential role in human disease.// Infect Immun.-1996.- № 64,- P. 18851891

138. Hattab F.N, Abu Alhaija E.S.J. Radiographic Evaluation of Mandibular Third Molar Eruption Space. //Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. -1999.-Vol. 88.-P. 285-291.

139. Henskens Y.M.C., Veerman E.C.I., Mantel M.S., Van der Velden U., Nieuw Amerongen A.V. Cystatins S and С in human whole saliva and in glandular salivas in periodontal health and disease. //J. Dent. Res. 1994. - Vol.73. — P. 1606-1614.

140. Hicks E.P. Third molar management: a case against the routine removal in adolescent and young adult orthodontic patients. //J. Oral Maxillofac. Surg. -1999.-Vol. 57.-P. 831-836.- 151.Hillmann G. //Klin. Chem. Klin. Biochem. 1971. - Vol. 9. - P. 273

141. Hugoson A, Kugelberg CF. The prevalence of third molars in a Swedish population. An epidemiological study. //Community Dent Health. 1988. - Vol. 5. P. 121-138.

142. Ikeo Т., Goda S., Domae E. Metabolism of alveolar bone/ //Clin Calcium. -2006. Vol.16. №1. - P.l 17-121

143. Jimi E., Shuto Т., Koga T. Macrophage colony-stimulating factor and interleukin-la maintain the survival of osteoclast-like cells. //Endocrinology. -1995.- 136:808-811

144. Kato Т., Imatani Т., Minaguchi K., Saitoh E., Okuda K. Salivary cystatins induce interleukin-6 expression via cell surface molecules in human gingival fibroblasts //J. Mol. Immun. 2002. - Vol.39, Iss. 7-8. - P. 423-430

145. Kato Т., Imatani Т., Miura Т., Minaguchi K., Saitoh E. Okuda K. Cytokine-inducing activity of family 2 cystatins. // J. Biol. Chem. 2000. - Vol.381. — P. 1143-1147.

146. Karapataki S., Hugosos A., Kugelberg C. Healing following GTR treatment of bone defects distal to mandibular 2nd molars after surgical removal of impacted 3rd molars. //J. Clin. Periodontol. 2000. - Vol. 27. - P.325.

147. Konttinen Y.T., Xu J.W., Patiala H., et al. Cytokines in aseptic loosening of total hip replacement.// Curr Orthop.- 1997.- № 11.- P. 40-47.

148. Konttinen Y.T., Mandelin J., Li T.F., et al. Acidic cysteine endoproteinase cathepsin К in the degeneration of the superficial articular hyaline cartilage in osteoarthritis.//Arthritis Rheum.- 2002.- № 46.- P. 953-960.

149. Knutsson K., Brehmer В., Lysell L., Rohlin M. General dental practitioners' evaluation of the need for extraction of asymptomatic mandibular third molars. //J.Community Dent Oral Epidemiol. 1992. - Vol. 20. - P. 347-350.

150. Knutsson K., Brehmer В., Lysell L., Rohlin M. Pathoses associated with mandibular third molars subjected to removal. //Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 1996. - Vol. 82. - P. 10.

151. Krimmel M., Reinert S. Mandibular fracture after third molar removal. //J Oral Maxillofac Surg. -2000. Vol. 58. -P.l 110

152. Kronmiller J.E., Beeman C.S., Nguyen J., Berndt W. Blockade of the initiation of murine odontogenesis in vitro by citral, an inhibitor of endogenous retinoic acid synthesis. //J. Arch. Oral Biol. 1995. - Vol. 40. - P. 645-652.

153. Kronmiller J.E., Beeman C.S. Spatial distribution of endogenous retinoids in the murine embryonic mandible. //J. Arch. Oral Biol. 1994. - Vol. 39. - P. 1071— 1078.

154. Kruger E, Thomson W.M, Konthasinghe P. Third Molar Outcomes from Age 18 to 26 Findings from a Population Based New Zealand Longitudinal Study.// Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. - 2001. - Vol. 92. - P. 150-155.

155. Kugelberg C.F. Third molar surgery. //J. Oral Maxillofacial Surg. 1992. - Vol. 2. Tom III.-P. 9-16.

156. Kugelberg C.F., Ahlstrom V., Ericsson S., Hugoson A. Periodontal healing after impacted lower third molar surgery: A retrospective study. //Int. J. Oral. Surg. — 1985.-Vol. 14.-P. 29-40.

157. Kugelberg C.F. Periodontal healing two and four years after impacted lower third molar surgery: a comparative retrospective study. IIInt. J. Oral Maxillofac. Surg. 1990. - Vol. 19. - P. 341-345

158. Kugelberg CF, Ahlstrom U, Ericson S et al. Periodontal healing after impacted lower third molar surgery in adolescents and adults. A prospective study. //Int. J. Oral Maxillofac. Surg. 1991. - Vol. 20. - P. 18.

159. Kurten, В., 1982. Teeth, Form, Function and Evolution, Columbia University Press, New York.

160. Larsen РЕ. Alveolar osteitis after surgical removal of impacted third molars: identification of the patients at risk. //Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. — 1992. -Vol. 73.-P. 393-397.

161. Leone S.A., Edenfield M.J., Cohen M.E. Correlation of acute pericoronitis and the position of the mandibular third molar. //J.Oral Surg. 1986. - Vol. 62. - P. 245-250.

162. Libby P., Lee R.T. Matrix matters.// Circulation.-2000.- № 102.- P. 1874-1876.

163. Llano E., Pendas A.M., Knauper V., et al. Identification and structural and functional characterization of human enamelysin (MMP-20). // Biochemistry.- 1997.-№ 36.-P. 15101-15108.

164. Lopes V., Mumenya R., Feinmann C., Harris M. Third molar surgery: an audit of the indications for surgery, post-operative complaints and patient satisfaction. // J. Br. Oral Maxillofac. Surg. 1995. - Vol. 33. - P. 33-35.

165. Lysell L., Rohlin M. A study of indications used for removal of the madibular third molar. //Int. J. Oral Maxillofac. Surg. 1988. - Vol. 17. - P. 161-164.

166. Macho G.A., Moggi-Cecchi J. Reduction of maxillary molars in Homo sapiens sapiens; a different perspective. //Am. J. of Physical Anthropology. 1992. -Vol. 87. №2.-P. 151-159.

167. Main D.M.G. Follicular Cysts of Mandibular Third Molar Teeth: Radiological Evaluation of Enlargement. Dentomaxillofac. // J. Radiol. — 1989. Vol. 18. — P. 156-159.

168. Mauviel A. 1993 Cytokine regulation of metalloproteinase gene expression. //J. Cell Biochem. 53:288-29

169. McGrath C., BediR. The value and use of 'quality of life' measures in the primary dental care setting. //J.Primary Dent Care. 1999. - Vol. 6. — P. 53—57.

170. McCluskie M.J., Davis H.L. Mucosal immunization with DNA vaccines //Microbes Infect. 1991. - Vol. 1. -P. 685-698.

171. Mercier P., Precious D. Risks and benefits of removal of impacted third molars. //J Oral Maxillofac. Surg. 1992. - Vol. 21. - P. 17-27.

172. Mourshed F. A roentgenographic study in detecting dentigerous cysts in the early stages. //J.Oral Surg. 1964. - Vol. 18. - P. 47-53

173. Murate Т., Hayakawa T. Multiple functions of tissue inhibitors of metalloproteinases (TIMPs): new aspects in hematopoiesis. // J. Platelets. -1999.-Vol.10.-P. 5-16.

174. Murtomaa H., Turtola L., Ylipaavalniemi P., Rytomaa I. Status of Third Molars in the 20 to 21 Year Old Finnish University Population. //J. Am. Coll. Health. -1985. Vol. 34.-P. 127-129.

175. Niedzielska I.A. Panoramic radiographic predictors of mandibular third molar eruption. //Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 2006. - Vol. 102.-P.154.

176. Nitzan D. Keren T. Marmary Y. Does an impacted tooth cause root resoption of the adjacent one? //J. Oral Surg. 1981. - Vol. 51. P. 221-224.

177. Nemcovsky C., Libfeld H., Zubery Y. Effect of non-erupted 3rd molars on distal roots and supporting structures of approximal teeth. A radiographic survey of 202 cases. //J. Clin. Periodont. 1996. - Vol. 23. -P.810.

178. Nociti F.H., Cesar N.J., Carvalho M.D., Sallum E.A. Bone density around titanium implants may be influenced by intermittent cigarette smoke inhalation: a histometric study in rats. Mint J Oral Maxillofac Implants.- 2002.- № 17.- p. 347-352.

179. Nociti Junior F.H., Stefani C.M., Machado M.A. Histometric evaluation of bone regeneration around immediate implants partially in contact with bone: a pilot study in dogs // Implant. Dent. 2000. - Vol. 4. - P. 321-328.

180. Nordenram A., Hultin M., Kjellman O., Ramstrom G. Indications for surgical removal of the mandibular third molar: study of 2,630 cases. // J. Swed. Dent. -1987. Vol. 11(1-2). - P. 23-29.

181. Norholt S.E. Treatment of acute pain following removal of mandibular third molars: use of the dental pain model in pharmacological research and development of a comparable animal model. //Int J. Oral Maxillofac. Surg. -1998.-Vol. 27. № l.-P. 1-41.

182. Odusanya S.A, Abayomi I.O. Third Molar Eruption Among Rural Nigerians. //Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. 1991. - Vol. 71. - P. 151-154.

183. Oppenheim F.G. Preliminary observations on the presence and origin of serum albumin in human saliva. //Helv. Odontol. Acta. 1970. - Vol. 14. - P. 10-17.

184. Ol.O'Riordan B.C. Coronectomy (intentional partial odontectomy of lower third molars). //Oral Surgery, Oral Medicine, Oral Pathology, Oral Radiology and Endodontology. 2004. - Vol. 98. - P. 274.

185. Э2. Osborn T.P, Frederickson G., Small I.A, Torgerson S. A prospective study of complications related to third molar surgery. //J Oral Maxillofac. Surg. — 1985. -Vol. 43.-P. 767-769.

186. Pagila D.E., Valentine W.N//J. Lab.Clin. Med. 1967. - Vol. 70. - P. 158

187. Parameters of care for oral and maxillofacial surgery :a guide for practice, monitoring, and evaluation (AAOMS Parameters of Care-95) //J. Oral Maxillofac. Surg. 1995.-P. 53.

188. Pindborg J. Pathology of Dental Hard Tissues. Toronto: W.B. Saunders Co. 1970.

189. Pecora J.D., Sousa Neto M.D., Saquy P.C., Woelfel J.B. In vitro study of root canal anatomy of maxillary second premolars. // J. Braz. Dent. — 1992. Vol. 3. -P. 81-85.

190. Peltroche-Llacsahuanga H., Reichart E., Schmitt W. et al. Investigation of infectious organisms causing pericoronitis of the mandibular third molar. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2000. - Vol. 58. - P. 611.

191. Peters H., Neubuser A., Kratochwil K., Balling R. Pax 9-deficient mice lack pharyngeal pouch derivatives and teeth and exhibit craniofacial and limb abnormalities. //J. Genes Dev. 1998. - Vol. 12. - P. 2735-2747.

192. Peters T.J. //Clin. Chem. 1968. - Vol. 14. - P. 1147

193. Phillips C., White R.P., Shugars D.A., Zhou X.: Risk factors associated with prolonged recovery and delayed healing after third molar surgery. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2003. - Vol. 61. - P. 1436.

194. Pogrel M.A., Lee J.S., Muff D.F. Coronectomy: a technique to protect the inferior alveolar nerve. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2004. - Vol. 62. - P. 1447.

195. Poeschl P.W., Eckel D., Poeschl E. Postoperative prophylactic antibiotic treatment in third molar surgery — a necessity? //J. Oral Maxillofac. Surg. -2004. Vol. 62. №1. - P. 3-8.

196. Prakobphol A., Xu F., Hoang V.M. et al. Salivary agglutinin which binds Streptococcus mutans and Helicobacter pylori is the lung scavenger receptor cysteine-rich protein gp-340. //J. Biol. Chem. 2000. - Vol. 275. - P. 3986039866.

197. Punwutikorn J., Waikakul A., Ochareon P. Symptoms of unerupted mandibular third molars. //Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 1999. -Vol. 87.-P.305.

198. Quek S.L. Tay C.K. Tay K.H. Toh S.L, et al; Pattern of Third Molar Impaction in a Singapore Chinese Population: A Retrospective Radiographic Survey. //Int. J. Oral Maxillofac. Surg. 2003. - Vol. 32. - P. 548-552.

199. Richardson M.E. Changes in lower third molar position in the young adult. //Am. J. Orthod. Dentofac. Orthop. 1992. - Vol. 102. - P. 320-327

200. Richardson M. The Development of Third Molar Impaction. //British Journal of Orthodontics. 1975. - Vol. 2. №4. - P. 231-234.

201. Richardson M. The Etiology and Prediction of Mandibular Third Molar Impaction. //Angle Orthod. 1977. - Vol. 47. - P. 165-172.

202. Richardson D., Dodson T. Risk of periodontal defects after third molar surgery: an exercise in evidence-based clinical decision-making. //Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 2005. - Vol. 100. - P. 133.

203. Reinhardt R.A. Lee H., Schmid M., Payne J. В., Golub L.Relationship between gelatinases and bone turnover in the healing bone defect. // J Oral Maxillofac Surg. 2005. - Vol. 63. - P. 1455-60

204. Rhodus N. L., Cheng В., Bowles W., Myers S., Miller L., Ondrey F. Proinflammatory cytokine levels in saliva before and after treatment of (erosive) oral lichen planus with dexamethasone. //Oral Diseases. — 2006. Vol. 12.№2. — P.112-116.

205. Rocha LFC, Sousa Neto MD, Fidel SR, Costa WF, Pecora JD: External and internal anatomy of mandibular molars. //J. Braz. Dent. 1996. - Vol. 7. - P. 33-40.

206. Rood JP. Degrees of injury to the inferior alveolar nerve. //Br. J. Oral Surg. 1983. Vol. 21. P. 103-116.

207. Robinson R.J., Vasir N.S. The great debate: do mandibular third molars affect incisor crowding? A review of the literature. //J. Dental Update. 1993. - Vol. 20. №6. - P. 242-246.

208. Rothamel D., Wahl G., d'Hoedt B. et al. Incidence and predictive factors for perforation of the maxillary antrum in operations to remove upper wisdom teeth: Prospective multicentre study. //BR. J. Oral Maxillofac. Surg. Epub. ahead of print: 2006.

209. Ruhl S., Hamberger S., Betz R., Suklcar Т., Schmalz G., Seymour R.A., Hiller K.-A., Thomason J.M. Salivary Proteins and Cytokines in Drug-induced Gingival Overgrowth //J. Dent. Res. 2004. - Vol. 83. №> 4. - P. 322-326

210. RutaD.A, BissiasE., Ogston S., Ogden G.R. Assessing health outcomes after extraction of third molars: post-operative symptom severity (PoSSe) scale. //Br. J. Oral Maxillofac. Surg. 2000. - Vol. 38. - P. 480-^87.

211. Ryu O.H., Fincham A.G., Ни C.C., et al. Characterization of recombinant pig enamelysin activity and cleavage of recombinant pig and mouse amelogenins. //J. Dent. Res .- 1999.- № 78.- P. 743-750.

212. Sakai Т., Human evolution and wisdom teeth. //J. Dental Outlook. 1981. - Vol. 58. №4.-P. 615-623.

213. Samsudin A.R., Mason, A.D. Symptoms from impacted wisdom teeth. // British Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 1994. - Vol. 32. №6. - P. 380-383.

214. Sands Т., Pynn Br., Nenniger S. Third molar surgery: current concepts and controversies. Part 1. //J. Oral Health. 1993. - Vol. 83. №5. - P. 11-17

215. Sands T, Pynn Br, Nenniger S. Third molar surgery: current concepts and controversies. Part 2. //J. Oral Health. 1993. - Vol. 83. №5. - P. 19-30.

216. Savin J, Ogden GR. Third molar surgery-a preliminary report on aspects affecting quality of life in the early post-operative period. //Br J. Oral Maxillofac Surg. 1997. - Vol. 35. - P. 246-253.

217. Selinger L.R., Archer W.H., Thonard J.C. Inhibition of tooth development with a sclerosing agent, sodium tetradecyl sulfate. //J. Dent. Res. 1966. - Vol. 45. — P. 236-242.

218. Sixou J.L., Magaud C., Jolivet-Gougeon A. et al. Evaluation of the mandibular third molar pericoronitis flora and its susceptibility to different antibiotics prescribed in France. //J. Clin. Microbiol. 2003. - Vol. 41. - P. 5794.

219. Schenkels L.C.P.M., Veerman E.C.I, Nieuw Amerongen A.V. Biochemical composition of human saliva in relation to other mucosal uids. // J. Crit. Rev. Oral. Biol. Med. 1995. - Vol. 6. -P. 161-175.

220. Shear M. Singh S. Age Standardized Incidence Rates of Ameloblastoma and Detigerous Cyst on Witwatersrand. // J.Community Dent. Oral Epid. 1978. -Vol. 6.-P. 195-199.

221. Shepherd J P, Brickley M R. Surgical removal of third molars (Editorial). //J. Br Med. 1994. - Vol. 309.-P. 620-621.

222. Shepherd JP. The third molar epidemic. // J. Br. Dent. 1993. - Vol. 174. - P. 85

223. Shugars D.A., Elter J.R., Jacks M.T. et al. Incidence of occlusal dental caries in asymptomatic third molars. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2005. - Vol. 63. - P. 341.

224. Shugars D.A., Jacks M.T., White R.P., et al. Occlusal caries experience in patients with asymptomatic third molars. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2004. -Vol. 62.-P. 973.

225. Schwartzmann M. Use of collagen membranes for guided bone regeneration: a review// Implant. Dent. 2000. - Vol. 1.- P. 63-66.

226. Slade G.D., Foy S.P., Shugars D.A. et al. The impact of third molar symptoms, pain, and swelling on oral healthrelated quality of life. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2004. - Vol. 62.-P. 1118.

227. Song F., Landes D.P., Glenny A.M., Sheldon T.A. Prophylactic removal of impacted third molars: an assessment of published reviews. //Br. J. Den. 1997. -Vol. 182.-P. 339-346

228. Sorensen D.C., Preisch J.W. The effect of tetracycline on the incidence of postextraction alveolar osteitis. //J. Oral Maxillofac. Surg. 1987. - Vol. 45. -P. 1029-1033.

229. Southard Т.Е. Third molars and incisor crowding: when removal is unwarranted. //JADA. 1992.-Vol. 123.-P. 75-79.

230. Sorsa Т., Mantyla P., Ronka H., et al. Scientific basis of a matrix metalloproteinase-8 specific chair-side test for monitoring periodontal and peri-implant health and disease. //Ann N Y Acad Sci.- 1999. № 878.- P. 130-140.

231. Stanley H.R., Alatter M., Collett W.M. et al. Pathological sequelae of "neglected" impacted third molar. //J. Oral Pathol. 1988. - Vol. 17. - P. 113117.

232. Steele С, Fidel P.L. Cytokine and chemokine production by human oral and vaginal epithelial cells in response to Candida albicans // Infec. Immun. 2002. -Vol. 70.-№2.-P. 577-583.

233. Stoltenberg J. Prevalence of periodontal disease in a health maintenance organization and comparisons to the national survey of oral health. //J. Periodontol. 1993. - Vol. 64. - P. 853.

234. Stokes, C.R., Soothill, J.F., Turner, M.W. Immune exclusion is a function of IgA. //Nature. 1975.- Vol. 255. - P.745-746.

235. Swanson A.E. A, double-blind study on the effectiveness of tetracycline in reducing the incidence of fibrinolytic alveolitis. //J. Oral Maxillofac. Surg. -1989. Vol. 47. №2.-P. 165-167.

236. Takasugi M., Sugano M., Yamada K. Measurement of Total and Food Component-Specific IgA in Human Saliva //Food Sci. Technol. Res. — 2002. -Vol. 8. № 3. P. 273-275

237. Tate Т.Е. Impactions: observe or treat? //J. Calif Dent. Assoc. 1994. - Vol. 22. № 6. — P.59-64.

238. Tietz N.W. Clinical Guide to Lab. Tests. 2nd Ed. - Philadelphia, 1991

239. Tipton D.A., Dabbous M.K. Effects of nicotine on proliferation and extracellular matrix production of human gingival fibroblasts in vitro. //J Periodontol.- 1995.-№ 66.-P. 1056-1064.

240. Toth В. The appropriateness of prophylactic extraction of impacted third molars. A review of the literature. //Health Care Evaluation Unit, University of Bristol. -1993.-P. 34-41

241. Tulloch J.F, Andantczak Bouckoms A.A. Decision Analysis in the Evaluation of Clinical Strategies for the Management of Mandibular Third Molars. //J. Dental Educ. 1978.- Vol. 51(11).-P. 652-660.

242. Van der Linden W., Cleaton-Jones P., Lownie M. Diseases and lesions associated with third molars. Review of 1001 cases. Hi. Oral Surg. Oral Med.Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 1995. - Vol. 79. - P. 142-145.

243. Vasir N.S., Robinson R.J. The mandibular third molar and late crowding of the mandibular incisors a review. //Br. J. Orthodon. - 1991. - Vol. 18. — P. 59-66.

244. Venta I., Murtomaa H., Turtola L., Meurman J., Ylipaavalniemi P. Assessing the Eruption of Lower Third Molar on the Base of Radiographic Feature. //Br. J. Oral Maxillofac. Surg. 1991. - Vol. 29. - P. 259-262.

245. Veerman E.C.I., Van den Keijbus P.A.M., Vissink A., Nieuw Amerongen A.V. Human glandular salivas: their separate collection and analysis. //Eur. J. Oral Sci. 1996.-Vol.104.-P. 346-352.

246. Von Wowern N.V., Nielsen H.O. The fate of impacted lower third molars after the age of 20. //bit J. Oral Maxillofac. Surg. 1989. - Vol. 18(5). - P. 277-280.

247. Williams J. R. and Williams. Fractures of the Facial Skeleton. Edinburgh: Churchill Livingstone., 1994.

248. White R.P., Offenbacher S., Phillips C. et al. Inflammatory mediators and periodontitis in patients with asymptomatic third molars. //J. Oral Maxillofac. Surg. 2002.-Vol. 60.-P.1241

249. Worrall S.F., Riden K., Haskell R., Corrigan A.M. UK national third molar project: the intial report. //Br. J. Oral Maxillofac. Surg. 1998. - Vol. 36. - P. 14-18.

250. Ylipaavalniemi P., et al. Evaluating the need for third molar removals among 20 to 21 year old Finnish university students. //Proc. Finn. Dent. Soc. 1985. - Vol. 81.-P. 222-225.

251. Young D.S. Effects of Drugs on Clinical Laboratory Tests. 3rd Ed., 1997

252. Yuhara S., Kasagi S., Inoue A., Otsuka E., Hirose S., Hagiwara H. Effects of nicotine on cultured cells suggest that it can influence the formation and resorption of bone.//Eur. J. Pharmacol.- 1999.-Vol. 383.-P. 387-393.

253. Zitzmann N.U., Scharer P., Marinello C.P. Long-term results of implants treated with guided bone regeneration: a 5-year prospective study // Int. J. Oral. Maxillofac. Implants. -2001. Vol. 3. - P. 355-366.