Автореферат и диссертация по медицине (14.00.36) на тему:Изменение показателей пролиферации и апоптоза в условиях лимфопении и восстановления Т-клеточного пула после аутологичной трансплантации стволовых кроветворных клеток
Автореферат диссертации по медицине на тему Изменение показателей пролиферации и апоптоза в условиях лимфопении и восстановления Т-клеточного пула после аутологичной трансплантации стволовых кроветворных клеток
ъг
На правах рукописи
/
ПРОНКИНА НАТАЛЬЯ ВИКТОРОВНА
Изменение показателей пролиферации и апоптоза в условиях лимфопении и восстановления Т-клеточного пула после аутологичной трансплантации стволовых кроветворных
клеток
14 00 36 - аллергология и иммунология АВТОРЕФЕРАТ
диссерт ации на соискание ученой степени кандидата биологических наук
Новосибирск 2007
□ОЗОВОУЭО
003060790
Работа выполнена в Государственном учреждении научно-исследовательском институте клинической иммунологии Сибирского отделения РАМН
Научный руководитель:
Доктор медицинских наук Кожевников Владимир Сергеевич Официальные оппоненты:
доктор биологических наук, профессор Аугеншлюс Александр Исаевич
кандидат биологических наук Силков Александр Николаевич
Ведущая организация:
Государственное учреждение Научно-исследовательский институт фармакологии Томского научного центра СО РАМН
Защита состоится «¿43» 2007 года в часов на заседании
диссертационного совета Д 001 001 01 ГУ НИИ клинической иммунологии СО РАМН по адресу 630099, г Новосибирск, ул Ядринцевская,14
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГУ НИИ клинической иммунологии СО РАМН
Автореферат разослан «_»_20071
Ученый секретарь
диссертационного совета
доктор биологических наук - Кудаева Ольга
Тимофеевна
ОБДИЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность. Постоянство численности клеток лимфоидных популяций обеспечивается балансом их образования (за счет пролиферации) и гибели (как правило, по механизму апоптоза) (Freitas А , et al 2000) Баланс между двумя этими процессами определяет Т-клеточный гомеостаз в организме Интенсивность пролиферации наивных Т-лимфоцитов (C.D45RA4) у взрослых людей минимальная С помощью определения маркера пролиферирующих клеток Ki-67 установлено, что m vivo пролиферирует около 1% наивных Т-клеток - в равной степени CD4+ и CD8+ (Hazenberg M D, 2003, Sachsenberg N ,1998) Количество наивных Т-клеток определяется выработкой IL-7 и содержанием дендритных клеток, несущих молекулы МНС классов I и II, а соотношение последних определяет баланс наивных Т-клеток CD8+ и CD4+ (Fry Т J, et al 2001, Vivien L , et al 2001, Mackall CrL,etal 2001, Kirberg J, et al 2001) Гомеостаз CD8+- клеток памяти реализуется с участием цитокинов, среди которых основная роль принадлежит IL-15, а вспомогательная IL-7 (Melchionda F , et al 2005, Alpdogan О , et al 2005) Гомеостаз клеток памяти (CD45RO+) минимально зависит от молекул МНС (Tanchot С , et al 1997, Cho В К , et al 2000) Механизмы гомеостатического контроля СШ+-клеток памяти мало изучены В условиях Т-лимфопении механизмы пополнения наивных Т-клеток отличаются от таковых при нормальном содержании Т-клеток Они проявляются в форме гомеостатической пролиферации, которая сопровождается сменой мембранного и функционального фенотипа на фенотип клеток памяти без промежуточного этапа активации и без дифференцировки в эффекторные клетки (Tough D F , et al 1994, Wu Z , et al 2003, Mahajan V S , et al 2005)
Численность ежедневных мигрантов из тимуса и Т-клеток, новообразованных в результате периферической экспансии, должна уравновешиваться числом Т-клеток, подвергающихся апоптозу (Tanchot С , et al 1997, Romanyukha А А , et al 2003) Зрелые Т-лимфоциты, подвергшиеся селекции, в покоящемся состоянии лишены мембранного Fas-рецептора и экспрессируют протоокоген Вс1-2, что определяет их устойчивость к индукторам апоптоза (Karawajew L, et al 2000) Положение меняется на обратное при активации лимфоцитов соответствующим антигеном или митогеном Активированные лимфоциты могут подвергнуться апоптозу при различных воздействиях -повторной стимуляции через перекрестное сшивание рецепторов или недостатке факторов роста (IL-2) и т д (Dooms H , et al 2004, Karas M, et al 1999) Апоптоз может развиться и в процессе активации - например, в случае предварительного связывания молекул CD4, при отсутствии костимуляции Т-клеток через CD28 (Prlic M, et al 2001) После дифференцировки Т-лимфоцитов в эффекторные клетки и Т-клетки памяти в них также экспрессируется Вс1-2, и они временно приобретают устойчивость к индукторам апоптоза В реализации и контроле апоптоза участвуют многочисленные внутриклеточные факторы и от его осуществления зависят многие важные процессы, реализуемые на уровне организма (Badley A D, et al 2000)
Изучению процессов, поддерживающих клеточный гомеостаз, посвящено много отечественных и зарубежных исследований, что в значительной степени определяется потребностью в точных знаниях о закономерностях восстановления популяций и субпопуляций лимфоцитов, что находит отражение в их функциональном состоянии, включая и соотношение Т1/Т2-отвеюв (Jameson S С 2002, Guimond M, et al 2005, Yusuf I, et al 2003) Это характерно при
заболеваниях (СПИД), после действия повреждающих факторов (облучение, химиопрепараты), а также после пересадки костного мозга При патологии изменяется процент клеток, подвергшихся апоптозу и процент клеток, вступивших в периферическую экспансию, а также изменяются взаимосвязи этих двух процессов Большой интерес вызывают процессы восстановления Т-клеток после их деплеции По данным литературы на апоптоз Т-клеток при ВИЧ-инфекции могут влиять моноциты (Oyaizu N, et al 1993, Sperber К, et al 2003), поэтому вызывает интерес параллельное исследование процессов гомеостаза моноцитов и Т-лимфоцитов Кроме того, интенсивно изучаются механизмы восстановления субпопуляций Т-лимфоцитов CD4+- и СВ8+-клеток, которые отличаются по скорости восстановления Как известно, С04+-клетки восстанавливаются через год и более после трансплантации костного мозга, а С08+-клетки - уже через 6 месяцев (Guillaume Т, et al 1998, Mackall Cr L et al 1997) Восстановление клеточного пула после ТКМ происходит в основном за счет клеток памяти, а они, как известно, более подвержены апоптозу, чем наивные клетки (Porrata L F , et al 2001, Mackall Cr L et al 2005) Являясь наиболее радикальным способом лечения гемобластозов, АТПСКК, тем не менее, не всегда приводит к излечению, и уже в течение первого года в 22 — 40% случаев возникает рецидив заболевания Возникновение рецидива связано со многими причинами Совокупность факторов, таких как, статус заболевания (полная, частичная ремиссия или резистентное течение) на момент трансплантации, его стадия, предлеченность, нозология заболевания и возраст больного имеет определенное прогностическое значение в исходе трансплантации (Cortelazzo S , et al 1999) В доступной нам литературе, тем не менее, нет данных о зависимости процессов восстановления Т-клеточного пула с исходом трансплантации, однако в литературе есть данные о разной репопулирующей способности С034+-клеток в зависимости от стадии клеточного цикла (Uchida N, et al 1997, VoermansC ,etal 2001)
Изучение взаимосвязей между пролиферацией и апоптозом CD4+- и CD8+-клеток у больных гемобластозами до и после АТПСКК (в разных временных точках восстановления гемопоэза), а также у ВИЧ-инфицированных пациентов, актуально для понимания процессов восстановления Т-клеточного гомеостаза Цель исследования Исследовать взаимосвязь апоптоза и пролиферации CD4+- и СБ8+-клеток периферической крови с процессами восстановления количественных и функциональных характеристик Т-лимфоцитов при лимфопении различного генеза и после аутологичной трансплантации периферических стволовых кроветворных клеток
Задачи исследования
1 Исследовать показатели апоптоза и фаз клеточного цикла CD4+- и CD8-- клеток и моноцитов у больных гемобластозами до и после АТПСКК и у ВИЧ-инфицированных пациентов
2 Оценить особенности показателей апоптоза и фаз клеточного цикла CD4+- и CD8+-клеток у пациентов с благоприятным и неблагоприятным течением заболевания после АТПСКК
3 Исследовать показатели фаз клеточного цикла стволовых кроветворных клеток продукта сепарации у больных гемобластозами с благоприятным и неблагоприятным течением заболевания после АТПСКК
4 Исследовать показатели наивных Т-клеток и Т-клеток памяти в периферической крови у больных гемобластозами до и после АТПСКК
5 Определить относительное количество CD4+ и CD8" Т-лимфоцитов периферической крови, продуцирующих IFN-y и IL-4 в ответ на неспецифическую поликлональную стимуляцию у больных гемобластозами до и после АТПСКК и относительно здоровых доноров Научная новизна В работе впервые показано, что как в норме, так и у больных гемобластозами после химиотерапии и у ВИЧ-инфицированных пациентов количество имму некомпетентных клеток (CD4 -, CD8 -клеток и моноцитов) в S,G2/M фазах клеточного цикла прямо взаимосвязаны между собой При этом положительная корреляционная взаимосвязь между показателями апоптоза и пролиферации CD4+-t0ieT0K характерна только для группы здоровых лиц Показано, что пролиферативная активность СЕМ+-клеток прямо зависит от выраженности лимфопении как у ВИЧ-инфицированных больных, так и у больных гемобластозами до АТПСКК
Впервые показано, что у больных с ранним рецидивом основного заболевания после АТПСКК, по сравнению с больными о благоприятным течением, при исследовании до курса мобилизации более выражена CD4+-лимфопения, повышено количество С04+-клеток в 8,02/М-фазах клеточного цикла, повышено количество CD4+CD45RA+-joieTOK, а также количество CD34+-клеток в S,G2/M-фазах клеточного цикла среди трансплантируемых клеток Показано также, что для этих больных характерно прогрессирующее снижение количества наивных CD4+CD45RA+-iaieTOK после АТПСКК
Научно-практическая значимость работы Полученные данные продемонстрировали однотипность изменения взаимосвязей апоптоза и пролиферации С1Э4+-клеток в условиях лимфопении различного генеза Важным итогом работы явилось также положение о разном соотношении механизмов восстановления Т-клеточного пула (гомеос гатической пролиферации, лимфопоэза, тимопоэза) при благоприятном исходе АТПСКК и при развитии раннего рецидива заболевания, которому предшествует недостаточное (по сравнению с благоприятным течением) восстановтение Т-клеток в количественном и функциональном плане
Результаты исследования обосновывают важность проведения у больных гемобластозами на этапах подготовки к АТПСКК дополнительных лабораторных исследований, включая показатели апоптоза и клеточного цикла субпопуляций иммунокомпетентных клеток Выявление различий механизмов восстановления Т-клеточного пула у больных гемобластозами с разным исходом трансплантации дает возможность прогноза эффективности АТПСКК и риска развития инфекционных осложнений в период восстановления кроветворения
Основные положения, выносимые на защиту
1 Повышение показателей апоптоза и S,G2/M фаз клеточного цикла Т-лимфоцитов периферической крови отражает активацию пролиферации клеток в процессе восстановления Т-клеточного пула как при лимфопении (при ВИЧ-инфекциии и после ПХТ при гемобластозах), так и после аутологичной трансплантации периферических стволовых кроветворных клеток
2 Благоприятный исход АТПСКК при гемобластозах характеризуется восстановлением Т-клеточного пула с участием наивных клеток и характеризуется возрастанием количества Т1-клеток (Th и Тс), тогда как развитие рецидива основного заболевания после АТПСКК происходит на фоне
прогрессирующего снижения количества наивных CD4+-клеток и срыва восстановления количества Т1-клеток (Th и Тс) 3 Различия механизмов восстановления Т-клеточного пула после АТПСБСК ассоциированы с его состоянием до трансплантации и с пролиферативной активностью трансплантируемых СБ34+-клеток Апробация работы Материалы диссертации доложены и обсуждены на Всероссийской научно-практической конференции посвященной 15-летнему юбилею Красноярского Краевого Центра по профилактике и борьбе со СПИД и другими инфекционными заболеваниями «Дни иммунологии в Сибири» (Красноярск 2005), на 7-ой отчетной конференции ГУ НИЙКИ СО РАМН «Иммунопатогенез и иммунотерапия основных заболеваний человека от эксперимента к клинике» (Новосибирск 2006) Апробация диссертации состоялась 3 апреля 2001т на семинаре клинического отдела ГУ НИИ Клинической Иммунологии СО РАМН
Публикации По материалам диссертации опубликовано 10 печатных работ, в том числе 2 статьи в журналах, рекомендованных ВАК для опубликования результатов работ соискателей ученой степени кандидата биологических наук
Объем и структура работы Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, трех глав собственных исследований, обсуждения полученных результатов и выводов Материал изложен на 129 страницах машинописного текста, включающего 15 рисунков и 23 таблицы Прилагаемая библиография содержит ссылки на 156 литературных источников, из них 139 зарубежных
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Объекты исследования Клинико-иммунологические исследования проведены в 3-х группах - в группе здоровых лиц, в группе больных гемобластозами и в группе ВИЧ-инфицированных пациентов Клинико-иммунологические исследования проведены у 40 больных гемобластозами, наблюдавшихся в период с 08 2003 по 05 2006 в отделении гематологии и ТКМ клиники ИКИ СО РАМН Группа обследованных больных включала 27 мужчин и 13 женщин, возрастной диапазон которых был от 7 до 55 лет (в среднем 31,5 лет) Морфологический вариант опухоли устанавливался на основании гистологического, цитологического и иммуноцито-(гисто)-химического исследования биоптатов опухоли в соответствии с ВОЗ-классификацией лимфопролиферативных заболеваний (Harns N L , 1997) Диагноз лимфомы Ходжкина (ЛХ) был установлен у 6 больных (15%), агрессивные варианты неходжкинских лимфом (НХЛ) были диагностированы у 13 (32,5%) больных, множественная миелома у 7 человек (17,5%) и у 14 человек (35%) был установлен острый лейкоз, из них 10 человек (25%) с острым лимфобластным лейкозом и 4 человека (10%) с острым миелобластным лейкозом Всем обследованным пациентам проводилась аутологичная трансплантация периферических стволовых кроветворных клеток (АТПСКК) На момент АТПСКК у 23 человек (57,5%) регистрировалась полная ремиссия, у 10 (25%) - частичная ремиссия, у 4 (10%) - не было ремиссии и 3 человека (7,5%) имели резистентное течение заболевания Обследование больных проводилось в 6 временных точках (2 точки до АТПСКК и 4 точки восстановления после АТПСКК) Первый забор крови производился у больных до начала курса мобилизации После курса мобилизации производилось сепарирование периферических стволовых кроветворных клиок Второй забор крови производился до режима кондиционирования, третий забор
крови был в момент восстановления кроветворения (примерно через 1 месяц после АТПСКК), четвертый - через 3 месяца после АТПСКК, пятый - через 6 месяцев после АТПСКК и шестой - через 9 месяцев после АТПСКК Также было обследовано 64 ВИЧ-инфицированных пациента, наблюдавшихся в период с 06 2003 по 12 2004 в Центре профилактики и борьбы со СПИД г Новосибирска Группа обследованных больных включала 47 мужчин и 17 женщин, возрастной диапазон которых был от 20 до 35 лет (в среднем 27,5 лет) Обследование ВИЧ-пациентов проводилось до начала курса антиретровирусной терапии В качестве группы сравнения обследовано 40 здоровых доноров Забор крови у доноров производился на станции переливании крови МКБ №1
Методы исследования. Определение относительного количества CD4+CP45RO+-. CD4+CD45RA+-. CD8*CD4SRO+- и СР8*СР45КА*-лимФопитов
Анализ содержания клеток (%), несущих маркеры (CD4+CD45RO+, CD4+CD45RA+, CD8+CD45RO+,CD8+CD45RA+) в лейковзвези проводилось методом лазерной проточной цитометрии на автоматическом счетчике FACS Calibur (Becton Dickinson, США) с использованием программы CellQuest1*0 (Becton Dickinson, США) Данный метод выполняли в соответствии с описаниями, представленными в инструкциях производителя антител и рекомендациями к проточному цитометру
Определение клеточного пикла в Т-лимфоцитах, моноцитах и СР34+-клетках.
Для определения клеточного цикла предварительно производилось поверхностное маркирование клеток моноклональными aHWi-CD4, анти-С08, анти-CD14, анти-С034 антителами Затем клетки фиксировались 1% раствором параформальдегида, пермеабилизировались 0,02$£, ..раствором _Твин-20 и инкубировались с РНКазой (20 мкг/мл) После этого производилась фиксация 5% формалином, содержащим пропидиум иодид (PI) в конечной концентрации 50 мкг/мл или 7-актиноаминомицин D (7-AAD) в конечной концентрации 20 мкг/мл Образцы анализировали на проточном цитометре FACS Cahbur (Becton Dickinson, США) с использованием программы CellQuest^10 (Becton Dickinson, США) Относительное содержание клеток с гипердиплоидным (кл'е'гки в S-M фазах клеточного цикла) и с гиподиплоидным (апоптотичсские клетки) набором ДНК определяли по степени флуоресценции внутриядерного красителя PI или 7-AAD Результаты выражали в виде процентного соотношения позитивных клеток к общему количеству лимфоцитов (не менее 10000) в исследуемой области (Philpott NJ.etal 1996,Nicoletti I et al 1991,Fruenauf S ,et al 1998) Определение внутриклеточных дитокинов в субпопуляпих Т-лимФопитов.
МБК периферической крови культивировали в течение 4 часов в присутствии стимулятора РМА (30 нгр/мл), кальциевого ионофора иономицина (1 мкгр/мл) и ингибитора белковой секреции брефелдина А (10мкгр/мл) при 37°С в атмосфере, содержащей 5% С02 После окончания культивационного периода производилось поверхностное маркирование клеток моноклональными aHTH-CD4-PerCP или анти-CD8-PerCP антителами Затем клетки фиксировались 1% раствором параформальдегида, и пермеабилизировались 0,02% раствором Твин-20 Далее производилось внутриклеточное маркирование моноклональными анти-IFN-y-FITC и анти-1Ь-4-РЕ антителами Фиксация производилась 5% раствором формалина Относительное количество цитокин-продуцирующих клеток определяли методом трехцветной проточной цитометрии
Статистические исследования проводили по общепринятым математический алгоритмам, с использованием пакетов программ "SUslisliea V, 6.0'* (Боровиков B.U., Боровиков И.П.. 1997), "Snedccor V. 4.0"( Южаков Л.И., Сорокин ОД., 2000; Сорокин О.Д., 2004), "Иммунотитг (Гсльфгзт Е.Л. и др., 1992).
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ I. Количественная характеристика I-клеток в группа больных гомобластозами до АТПСКК и и группе ВИЧ-инфицированных пациентов.
Для того, чтобы проанализировать особенности восстановления Т-кж-точного пула при разном исходе АТПСКК, мы разделили группу больных гемобластозами па две подгруппы: 1- группа пациентов с рецидивом основного заболевания в течение года после АТПСКК и 2 - группа пациентов в длительной ремиссии. IIa первом этапе работы .мы определяли абсолютное количество Т-хлетак и периферической крови у ¡зольных гемобластоза.чи ДО АТПСКК и > ВИ'Ч-инфицированных пациен тов.
Рис.! Абсолютное количество СШ*-(Меток. Pucj2 Абсолютное количество СПЯ-кзизток
воо
700 600 500 . 400 300 • 200 10С С -
Примечание: * - р<0.01 различия с группой доноров; ti - р<0.01 различия между Подгруппами больных гемобластозами
Обследованные больные характеризовались выраженной лимфопепией субпопулхпии С1УГ-лиифоци юн. Абсолютное содержание СD-клеток у больных гемоблас! очам и не отличалось, а в группе R ИЧ - и 11 ф и 11, и ро ва иных было достоверно повышено по сравнению с группой допоров, lio данным литературы, одним из Главных условий запуска Гомеосштк легкой пролиферации лштяегея наличие лимфопении. Значительна» димфопепия Г-клеток в группе больных гемо бластоза ми и ВИЧ-инфицированных пациентов теоретически позволяе! судить о наличии процесса периферической пролиферации, поэтому на следующем этапе был проанализирован процент Т-клеток. находящихся в S,G2.M фазах клеточного цикла и процент спонтанного апоптоза Т-.клеток в периферической крови.
2. Показатели фаз клеточного цикла и апоптоза Т-клеток в группе болшых гемобласюзами до АТПСКК и ВИЧ-инфициропапиых.
Рис. 3 Относительное количество Рис.4 Относительное количество
CD4 "-клеток в S,G2'M фалах клеточного цикла
СП8*-клеток в S.G2M ¡{max кле точного цикла
го
15 10 5
о
DJIH^íl □ Р Opív^CfH.i ■ Ен-
|__
Примечание: + - р<0.01 различия е (руиной доноров; И - р<0.01 различия между НОШ руппами больных гемобластогамн
Было установлено, что у больных гемоблаетозами до АТПСКК и у ВИЧ-инфицированных пациентов относи ¡ельиое количество Т-клеток (как С Г)*)- так и Ш58+-клеток) н .Ч,(.т2/М фазах клеточного цикла значительно нышс по сравнению с группой доноров При атом самый высокий показатель смотанной С1Н-кл сточной пролиферации регистрируется в группе больных гемобяа етозами с послед; нчпнм ранним рецидивом основного заболевания после АТПСКК.
Рис. 5 Относительное количество Рис. б Относительное количество
СШ+-К леток и аиоптозе. С08~-клсток в ал™нож
1 П^при и fdlpgut ■ г^чло
О l. .:"
Примечание: * - р<0.01 различия к i рунной доноров
Тенденция к увеличению показателя аиолгоза Т-клеток наблюдается но пссх Исследуемых группах пациентов. Достоверное повышение уровня апоптоза CD4 -клеток до АТПСКК по сравнению с группой доноров было установлено в группе больных revi облает о за ми с длительной ремиссией после трансплантации, Досгонерное повышение уровня апоптоза CDS -клеток но Сравнению с группой доноров выявлено* н группе ВИЧ-инфицированных пациентов.
После проведение корреляционного анализа было выявлено, что группа доноров характеризуется положительной корреляционной взаимосвязью между процентом С1)4+-клеток в S,G2/M фазах клеточного цикла и процентом этих клеток в апоптозе (R=0 906, р=0 005) Этот факт, по-видимому, отражает механизмы равновесия продукции и гибели Т-клеток в норме В группах больных с наличием лимфопении не обнаружено аналогичной корреляционной взаимосвязи Но в этих группах пациентов была обнаружена другая отрицательная корреляционная взаимосвязь между процентом СШ+-клеток в S,G2/M фазах клеточного цикла и процентной долей этих клеток в периферической крови (для группы гемобластозов - R- -0 486, р=0 006 для группы ВИЧ-инфицированных - R=-0 251, р=0 039) 3 Различия показателей в подгруппах больных гемобластозами до АТПСКК При сравнении средних величин показателей пролиферации Т-клеток и трансплантируемых стволовых кроветворных клеток, а также уровня наивных Т-клеток в подгруппах больных гемобластозами с разным исходом трансплантации, были установлены следующие различия этих показателей до АТПСКК (Рис 7)
Рисунок 7
Примечание представлены достоверные различия р<0 01 между подгруппами больных гемобластозами
До АТПСКК подгруппа больных гемобластозами с последующим ранним рецидивом основного заболевания после АТПСКК отличалась от подгруппы больных гемобластозами с благоприятным исходом трансплантации более выраженной лимфопенией СШ+-клеток, при этом процент этих клеток в 8,02/М фазах клеточного цикла и уровень наивных СМ+-клеток был повышен Также в продукте сепарации относительное количество СГ>34;-клеток в 8,02/М фазах клеточного цикла было достоверно выше, чем в подгруппе больных в длительной ремиссии после АТПСКК
4 Количественная характеристика Т-клеток в группе больных гемобластозами после АТПСКК
Рисунок 8
Абсолютное содержание С04+-клеток после АТПСКК
800 -| 700 -600 -500 -400 -300 -200 -100 -0 -
-Доноры -Рецидив - Ремиссия
через 1 месяц через 3 месяца через 6 месяцев через 9 месяцев
Как видно из рисунка 8, достоверно сниженное содержание СЕ)4+-клеток у больных гемобластозами сохраняется в течение всего периода наблюдения В группе больных гемобластозами с благоприятным исходом трансплантации наблюдается постепенное увеличение количества С134+-клеток (173±22,2, 211±32Д, 245±35,7, 307±63,8, по методу Фишера р=0,001) В группе больных гемобластозами с последующим ранним рецидивом такой тенденции не наблюдается Абсолютное содержание СШ+-клегок достоверно не отличалось от донорских значений на всех сроках исследования после АТПСКК в группах больных гемобластозами
4 Относительное количество СВ4 -клеток в 8,02/'М фазах клеточного цикла и в апоптозе у больных гемобластозами после АТПСКК
Рисунок 9
Рисунок 10
Относительное количество СМ+-клеток в S.G2/M фазах клеточного цикла после АТПСКК
л_Й_js-&—а_
й
Относительное количество CW+-клеток в апоптозе после АТПСКК
* * Ä
черев 1 месяц черв Э юсшр через 8 иесяцга чЕрез 9 месяц»
Примечание * - р<0 01 различия с группой доноров,
■ группа больных гемобластозами с последующим ранним рецидивом после АТПСКК □группа больных гемобластозами в длительной ремиссии после АТПСКК
Как видно из рисунка 8 достоверное увеличение относительного количества СВ4--клеток в 8Д2/М фазах клеточного цикла сохраняется на всех сроках исследования после АТПСКК В группе больных с последующим рецидивом
заболевания относительное количество СБ4+-клеток в апоптозе было достоверно повышено через 1,3 и 6 месяцев после АТПСКК по сравнению с группой доноров В группе больных в длительной ремиссии после трансплантации через 1 месяц после АТПСКК относительное количество СМ+-клеток в апоптозе достоверно не отличалось от группы доноров Но через 3, б, и 9 месяцев после АТПСКК уровень апоптоза СБ4+-клеток был достоверно выше донорского уровня (рис 10)
5 Относительное количество СГ)8+-клеток в 8,02/М фазах клеточного цикла и в апоптозе у больных гемобластозами после АТПСКК
Рисунок 11 Рисунок 12
Относительное количество С08*~клеток в б,С32ЛМ фазах клеточного цикла после АТПСКК
Ч1рю 1 месяц чврм Эмкяр чарм £ ыкяцщ шрм 9
Относительно« количество Сй8+-клеток в апоптозе после АТПСКК
4
3,5 3 2,5 2 1,5
1 4— 0 5 — О -
Ш
Примечание * - р<0 01 различия с группой доноров, # - р<0 01 различия между подгруппами больных гемобластозами
В - группа больных гемобластозами с последующим ранним рецидивом после АТПСКК СИ - группа больных гемобластозами в длительной ремиссии после АТПСКК
В группе пациентов с последующим рецидивом заболевания через 1 месяц после АТПСКК уровень СВ8+-клеток в 8,02/М фазах клеточного цикла был достоверно выше по сравнению с группой доноров В последующие месяцы исследования мы наблюдали тенденцию к снижению уровня С08+-клеток в 8,02/М фазах клеточного цикла в этой группе больных В группе пациентов в длительной ремиссии через месяц после АТПСКК уровень СБ8+-клеток в 8Д2/М фазах клеточного цикла также был достоверно выше по сравнению с группой доноров Через 3 месяца после АТПСКК в группе пациентов в длительной ремиссии сохраняется достоверно высокий уровень СВ8+-клеток в 8,02/М фазах клеточного цикла по сравнению с группой доноров и с группой пациентов с последующим ранним рецидивом заболевания Через 6 и 9 месяцев после АТПСКК сохраняется достоверно высокий уровень СИ8+-клеток в 8,С2/М фазах клеточного цикла в группе пациентов в длительной ремиссии по сравнению с группой доноров (рис 11) В группе больных с последующим рецидивом заболевания уровень апоптоза СБЗ-клеток после АТПСКК не отличался от группы доноров в течение всего
периода исследования В группе больных в длительной ремиссии через 1 месяц после АТПСКК уровень апоптоза С08+-клеток также достоверно не отличался от донорского уровня Через 3 месяца после АТПСКК показатель апоптоза CD8 -клеток в группе больных в длительной ремиссии был достоверно выше донорского показателя и показателя апоптоза СВ8+-клеток в группе больных с последующим ранним рецидивом заболевания Через 6 и 9 месяцев после АТПСКК в группе больных в длительной ремиссии апоптоз СБ8+-клеток не отличался от группы доноров(рис 12)
Таким образом, после АТПСКК были установлены различия в восстановлении субпопуляции CD8 -клеток в подгруппах больных с разным исходом трансплантации Через 3 месяца после АТПСКК в группе больных с последующим ранним рецидивом заболевания было выявлено резкое снижение показателей пролиферации и апоптоза CD8+-kttctok по сравнению с группой больных в длительной ремиссии после АТПСКК
Так как процесс гомеостатической пролиферации сопровождается изменением соотношения наивных Т-клеток и Т-клеток памяти в периферической крови, далее прослежены изменения соотношений субпопуляций наивных Т-клеток и Т-клеток памяти в подгруппах больных гемобластозами с разным исходом трансплантации
6 Соотношение наивных Т-клеток и Т-клеток памяти у больных гемобластозами до и после АТПСКК
Рисунок 13 Рисунок 14
Относительное количество CD4+CD45RA+
клетокдо и после АТПСКК
60 60
40 i *
30 •О
20
10
1 . 1 1
^Я. -"k
<3 ■ S' а- с
ч. X * ъ % ч
ч
— ■ Доноры — Рецидив — ■ Ремиссия" |
Относительное количество CD4 CD45RO "-клеток до ипосле АТПСКК
90 80 -1 70 60 50 40 30 20 10 о
%
ч
■ Доноры -
Примечание * - рО 01 различия между подгруппами больных гемобластозами У больных гемобластозами наблюдается дисбаланс показателей относительного количества наивных Т-клеток и Т-клеток памяти Уровень наивных СЛ>Г-клеток в подгруппах больных гемобластозами был меньше донорского уровня, а уровень С1Э4+-клеток памяти - выше До режима мобилизации подгруппы пациентов
достоверно различаются между собой по соотношению наивных С])4+-клеток и СБ4 '-клеток памяти Через 6 месяцев после АТПСКК в группе больных с последующим рецидивом заболевания уровень наивных С04+-клеток был достоверно ниже, а уровень С1Э4+-клеток памяти - достоверно выше по сравнению с группой больных в длительной ремиссии (рис 13 и рис 14) Повышение уровня Т-клеток памяти у больных гемобластозами, возможно, отражает наличие гомеостатической пролиферации Следует отметить, что в группе больных с последующим ранним рецидивом наблюдается постепенное снижение уровня наивных С04+-клеток (по методу Фишера р=0,00292), при этом в группе больных в длительной ремиссии после трансплантации уровень наивных С04+-клеток постепенно возрастает (по методу Фишера р=0,03854) Вероятно, это связано с разной степенью поражения тимуса (после предшествующих курсов ПХГ) в подгруппах больных гемобластозами
7 Относительное количество Т-клеток, продуцирующих ШБу в периферической
крови больных гемобластозами до и после АТПСКК
Рисунок 15 Рисунок 16
Примечание * - р<0 01 различия с группой доноров
Через 3 месяца после АТПСКК в подгруппе больных с последующим ранним рецидивом резко возрастает процент Т-хелперов 1 типа, в подгруппе больных в длительной ремиссии после АТПСКК наблюдается тенденция к увеличению этого показателя (рис 15) Также через 3 месяца после АТПСКК в группе больных с последующим ранним рецидивом происходит увеличение количества Т-цитотоксических клеток 1 типа в сравнении с группой доноров В группе больных в длительной ремиссии после АТПСКК количество Т-цитотоксических клеток 1 типа достоверно повышается через 6 месяцев после АТПСКК (рис 16) Было установлено, что наиболее выраженное изменение в соотношении Т-клеток, продуцирующих цитокины 1 типа, происходит через 3 месяца после АТПСКК в двух группах больных гемобластозами При этом наблюдаются выраженные
различия в количестве 'Г-клеток 1 типа у больных гшобластозами с разным исходом трансплантации В группе больных с благоприятным исходом трансплантации наблюдается тенденция увеличении Т-клеток, продуцирующих цитикины 1 типа, в га время как н группе больных с последующим рецидивом Основного заболевания через 6 месяцев после трансплантации происходит резкое снижение количества этих клеток.
8 Ассоциация показателен иммунного статуса с разлитием раннего рецидива, в течение года после АТПСКК у больных гемобпастозами.
Для нахождения критических значений показателей иммунного статуса, ассоциированных с достоверно повышенным/сниженным риском развития рецидива в течение года у больных гемоблаетозами после АТПСКК, были проанализированы 11 диапазонов каждого признака, па которые каждый из показателей был предварительно разбит с использованием алгоритма квантиль наго анализа по Моетеллеру и Тькжи. Для оценки прогностической значимости признаков вычислялась информативное гь каждою диапазона признака по соотношению двух вероятностей (Р(Хц/ А]) и £Р{Ху' А2). где А] и Л 2 -соответственно группы пациентов в ремиссии и с ранним рецидивом после АТПСКК. Данные оценки информативности лабораторных признаков для распознавания пациентов с риском развития раннего рецидива после АТПСКК представлены к таблице I -
Таблица 1
Диагностические признаки разви тия рецидива в течение года у больных
гемоблаетозами после АТПСКК _
Признак 1 Днлннлш ДК ... , Ш ■ SP :
■ : 1 : ..;кк; КО!ИЧ".;1П(> CD4-K.K: |Х>К ь S,( фазах клеточного ЦИК'¡' до АТПГ.КК >21.4% 10,2*» 50,0 % «,24 %
Отноонтельное количество СШ~-кттегок в S.G2/M фазах клеточного цикла '¡срез 3 месяца ггооле АТПСКК: <3,1 % 8,0** 62,5 % 90.0 %
ОШОСЯ KML}i(*J KC.lH'UCIl«i РЛОЛТОТЙЧЦСКЮЕ CDK-юи; шК iepC; 3 1'1 Vi [locjru ДТ14СКК: < Qf22 % 7.0* 50,0 % 90.0 %
Относительное количество СС4~СП451Ю~-клеток до АТПСКК: < 11.1% В. 1 * 40,0 % 93,8 %
Относительное количество CD8'CD45RO -клеток до АТПСКК: > 9,41 5,3® 63,64 % 81,25 %
Содержащие сыпорогэчлото lgM до ЛТПСКК <0,59 г/л 3,8* 63,64 % 73 ,(¡8 %
CDS "71,4* через 1 Meemi после ATTTCKK : % ■1.4* 83,33 % 70,0 %
Примечание: **. - достоверность различий соответственно р<0,05; р<0,01; ДК -диагностический коэффициент, .SN чувствительность; SP специфичность
Как видно из таблицы 1. большинство исследуемых нами показателей имели большую ипформатакпость и специфичность для прогноза развития раннего рецидива после АТПСКК. Положительное значение диагностического коэффициента отмечалось и случае преобладания вероятности Аз (наличие
рецидива). Ранний рецидив после АТПСКК чаще встречается у пациентов, имеющие до трансплантации показатель фаз клеточного цикла СП4 -
клеток более 21,4 % (ДК - 10,2), показатель Я.С+2/М фаз клеточного цикла СП8-клеток через 3 месяца после АТПСКК менее 3,1 % (ДК = 8,0).
Таблица 2
Диагностические признаки благоприятного исхода А'П 1СКК > больных __гемобластозами
Признак / Диапазон ДК КР
Относительное количество япоптотических С04+-клеток через 1 месяц после АТПСКК: < 0}08% -7,2* 43,75 % 91,67 %
Абсолютное количество СП! 6+ -клеток до АТПСКК >151 клмкл -2,5+ 811,1! % Я. 53%
Примечание: * - достоверность различий рО.ОЗ; ДК диагностический коэффициент, ЙЫ чу ист в иге ль I гость; 5Р - специфичность
Отрицательное значение диагностического коэффициента было в случае преобладания состояния А[ (пациенты в ремиссии). Например, относительное количество алсщтотичсских СИ4 -клеток через I месяц после АТПСКК менее 0,08 % (ДК=-7,2) и абсолютное количество СБ 16*"-клеток более 151 кл/мкл. (ДК--2,5) свидетельствуют в пользу благоприятного исхода АТПСКК у пациентов Гемобластозами с той или иной степенью вероятности.
Благоприятный исход трансплантации может также зависеть от отсутствия осложнений в период восстановления кроветворения после АТПСКК, поэтому далее, мы .установили. диагностические коэффициенты исследуемых показателей для возможности прогноза ряска развития тяжелых осложнений в этот период после АТПСКК.
9. Ассоциация показателей иммунного статуса с развитием осложнений на этапе восстановления кроне творении после АТПСКК у больных гемобластозами.
На следующем этапе работы мы разделили общую группу больных гемобластозами па подгруппы; А! - группа пациентов у которых восстановление кроветворения после АТПСКК происходило с осложнениями и А2 группа пациентов, у которых не наблюдалось тяжелых осложнений в период восстановления кроветворения после АТПСКК
Д.тя оценки прогностической значимости признаков вычислялась информативноеть каждого диапазона признака по соотношению двух вероятностей (Р(Ху/ Л]) и (Р(Ху/ А2), где А] и А2 соответственно группы пациентов с осложнениями и без осложнений. Данные оценки информативности лабораторных признаков для прогноза осложнений в процессе восстановления кроветворения у больных гемобластозами после АТПСКК представлены в таблице 3
Таблица 3.
Информативность параметров иммунного статуса для прогноза разьн тия осложнений в процессе восстановления кроветворения у больных гемобластозами
после АТПСКК
Признак / Диапазон признака Час" 1Ч(Х1 гота /Ак) Частота Р(Хц/Ак) ДК ем БР
А2 А1 а2 А1
Абсолютное количество СЛЭ4+-клеток >412 кл/мкл 8 1 42,1 7,7* -7,4 42,1% 92,3% 2,45
Относительное количество СБ8'-клеток в 8,02/М фазах клеточного цикла <6,85% >7,1% 13 6 2 10 68,4 31,6 16,7** 83,3** -6,1 4,2 68,4% 83,3% 83,3% 68,4% 2,04 1,4
Относительное количество апоптотических С08+-клеток >1,4% 11 3 55,0 20,0* -4,4 55,0% 80,0% 1,46
Относительное количество фагоцитирующих гранулоцитов <60 % >76% 8 4 1 8 40 20 6,7* 53,3* -7,8 4,3 40,0% 53,3% 93,3% 80,0% 1,3 1,42
Относительное количество фагоцитирующих моноцртов <49% <51% <60% >62% 8 10 12 8 1 2 3 12 40 50 60 40 6,7* 13,3* 20,0* 80,0* -7 8 -5,7 -4,8 3,0 40% 50% 60% 80% 93,3% 86,7% 80,0% 60% 2,58 1,91 1,58 1,0
Показатель активности моноцитов <1,79 у е 1 4 6,67 44,4* 8,2 44,4% 93,3% 2,74
Содержание сывороточного 1ЕА <0,85 г/л 3 7 15,8 58,3* 5,7 58,3% 84,2% 1,89
С04+1Ь4+ клетей < 1 43% >1 45% 10 3 1 7 76 9 23 1 12 5** 87.5** -79 58 76 9% 87 5% 87 5% 76 9% 2 62 1 92
*, **, - достоверность различий соответственно Р<0 05, <0 01, между группами А1 и А2 (точным методом Фишера)
Анализируя информативность параметров иммунного статуса для прогноза развития осложнений в процессе восстановления кроветворения у больных гемобластозами после АТПСКК, мы видим, что к прогностически значимым показателям добавляются параметры гуморального и макрофагального звеньев иммунной системы При этом повышенное количество фагоцитирующих гранулоцитов и моноцитов, но со сниженной продукцией перекиси водорода является риском развития осложнений Группа больных, у которых не было осложнений в период восстановления кроветворения после АТПСКК, характеризуется низким процентом фагоцитов, способных захватить чужеродные частицы, но с повышенной продукцией перекиси водорода В то же время больные, у которых процесс восстановления проходил с осложнением, характеризуются более высоким процентом фагоцитирующих клеток, но уровень продукции перекиси водорода снижен Также было установлено, что снижение сывороточного ^А и повышение количества ТЬ2 увеличивают риск развития осложнений в процессе восстановления клеточного пула после АТПСКК
На основании проделанной работы были сделаны следующие выводы
выводы
1 В периферической крови больных гемобластозами' До АТПСКК и • ВИЧ-инфицированных пациентов на фоне лимфопений СЩ^Клбток повышен процент CD4+-клеток в апоптозе и в 8,02/М-фазах клеточного цикла, который находится в обратной зависимости от общего количества СБ4+-клеток Это, наряду с нормальным (при гемобластозах) или повышенным количеством CD8T-icneTOK (при ВИЧ-инфекции, что сопровождается повышением процента СБ8+-клеток в апоптозе и в S,G2/M фазах клеточного цикла), отражает сходство процессов восстановления CD4+-клеток и различия - С08'-клеток в условиях лимфопении различного генеза
2 После АТПСКК у больных гемобластозами с благоприятным исходом трансплантации на фоне повышенного процента CD4+- и CD8+-KJie ioK в S,G2/M-фазах клеточного цикла и в апоптозе наблюдается постепенное увеличение абсолютного количества CD4+- и CD4+CD45RA+-KneTOK, а также повышение CD4+-и CD8+- клеток, продуцирующих INFy, что является проявлением эффективного восстановления количества и функциональных параметров Т-клеток
3 Признаками неэффективного восстановления количественных и функциональных характеристик Т-клеточного пула у больных с рецидивам после АТПСКК являются прогрессирующее снижение количества CD4+CD45RA+-клеток, а также значительное повышение (через 3 месяца после АТПСКК) с последующим резким снижением количества CD4+- и С08+-клеток, продуцирующих INFy - - -
4 Различия процессов восстановления количества и функциональных свойств Т-лимфоцитов у больных с разным течением после АТПСКК 'ассоциированы с исходным (до трансплантации) уровнем лимфоцешщ и" интенсивности пролиферации CD4+- и CD34+-raeTOK развитие рецидива чаще происходит у больных с выраженной лимфопенией, высоким процентом CD4+- и С034+-клеток в S,G2/M-фазах клеточного цикла
5 Повышение показателей апоптоза и 8,С2/М-фаз клеточного цикла CD4+- и CD8+-клеток периферической крови отражает активацию пролиферации этих субпопуляций в процессе восстановления Т-клеточного пула, индуцированного лимфопенией различного генеза, и в процессе восстановления кроветворения после АТПСКК Исследование данных показателей может быть информативным в оценке состояния Т-клеточного гомеостаза и прогнозе исхода АТПСКК при гемобластозах
Практические рекомендации
1 Для оценки риска возникновения рецидива в ранние сроки после АТПСКК у больных гемобластозами рекомендуется определять пролиферативную активность Т-клеток и количество Т-клеток памяти в периферической крови до трансплантации, а также показатели апоптоза и пролиферации Т-клеток в первые месяцы после трансплантации
2 Для оценки риска возникновения тяжелых инфекционных осложнений в период восстановления кроветворения после АТПСКК у больных гемобластозами рекомендуется определять абсолютное количество CD4+-ktctok, показатели пролиферации и апоптоза CD8+-KneTOK, а также показатели макрофатального звена иммунной системы до трансплантации
СПИСОК РАБОТ ,ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ,
1 Пронкина Н В , Кожевников В С , Лисуков И А , Кулагин А Д , Сизикова С А , Крючкова И В , Гилевич А В Изменение показателей клеточного цикла Т-лимфоцитов у пациентов с гемобластозами после аутологичной трансплантации периферических стволовых кроветворных клеток //Сибирский онкологический журнал - 2005 - №1(13) - С 36-39
2 Покровский А Г , Шинтяпина А Б , Пронкина Н В , Кожевников В С , Плясунова О А, Шульц Э Э, Толстиков Г А Активация апоптоза производными бетулиновой кислоты в опухолевых клетках человека in vitro // Доклады Академии наук - 2006 - Т 407 -№5 - С 697-701
3 Пронкина Н В, Орловский Е В, Орловский В Г, Кожевников В С Изменение показателей апоптоза и клеточного цикла иммунокомпетентных клеток до и после лечения ВИЧ инфекции //Дни иммунологии в Сибири Материалы Всероссийской научно-практической конференции - 2005 -С 141-143
4 Пронкина Н В , Романов В В , Кожевников В С Показатели апоптоза и клеточного цикла моноцитов больных туберкулезом легких в зависимости от продукции TNFa // Цитокины и воспаление - 2005 - Т 4 - №2 - С 97
5 Пронкина Н В , Кожевников В С , Лисуков И А , Кулагин А Д , Сизикова С А , Крючкова И В , Гилевич А В Изменение показателей клеточного цикла Т-лимфоцитов у пациентов с гемобластозами до и после аутологичной трансплантации периферических стволовых кроветворных клеток // Иммунопатогенез и иммунотерапия основных заболеваний человека от эксперимента к клинике -Новосибирск, - 2006г -с 194-196
6 Пронкина Н В, Орловский Е В, Орловкий В Г, Кожевников В С Показатели апоптоза и клеточного цикла иммунокомпетентных клеток в динамике комплексной антиретровирусной терапии больных ВИЧ инфекцинй // Иммунопатогенез и иммунотерапия основных заболеваний человека от эксперимента к клинике -Новосибирск, - 2006г - с 197-199
7 Пронкина Н В , Романов В В , Кожевников В С Снижение апоптоза в популяции моноцитов, продуцирующих TNFa, у больных туберкулезом легких // Иммунопатогенез и иммунотерапия основных заболеваний человека от эксперимента к клинике - Новосибирск, - 2006г - с 199-201
8 Сизикова С А , Кулагин А Д , Крючкова И В , Гилевич А В , Денисова В В , Коненкова Л П, Сизиков А Э , Шевела Е Я, Пронкина Н В , Кожевников В С, Лисуков И А Высокодозная иммуносупрессивная терапия с аутотрансплантацией стволовых кроветворных клеток при аутоиммунных заболеваниях клиническая эффективность и иммунная реконституция // Иммунопатогенез и иммунотерапия основных заболеваний человека от эксперимента к клинике - Новосибирск, - 2006г -с 278-281
9 Кащенко Э А , Селедцов В И, Ширинская А В , Селедцова Г В , Самарин Д М, Повещенко О В, Фельде М А , Пронкина Н В Изменение соотношения фаз клеточного цикла и пролиферативной активности спленоцитов и опухолевых клеток в результате воздействия физиотерапевтических факторов//Дни иммунологии в Сибири Материалы Всероссийской научно-практической конференции - 2005 -С 78-80
10 Lisukov I, Sizikova S , Kulagin A , Kruchkova I, Gilevich A , Denisova V, Konenkova L , Sentyakova T, Pronkina N, Kozhevmkov V, Chernykh E, Kozlov V Autologous stem cell transplantation for refractory autoimmune diseases clinical effects and immune reconstitution //Bone Marrow Transplantation -2006 -V37 - Supplement 1 -S131
Подписано к печати 18 05 2007 формат 60x84 - 1 печатный лист
Бумага офсетная Печать 1)ир1о ВР-ДЗЭ Тираж 100 экз Номер заказа № 549 Типография ООО "ЮГУС ПРИНТ" г Новосибирск, ул Залесского, 4
Оглавление диссертации Пронкина, Наталья Викторовна :: 2007 :: Новосибирск
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ:.
ВВЕДЕНИЕ.
ЧАСТЬ I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
Глава 1. Процессы апоптоза и пролиферации иммунокомпетентных клеток в норме.
1.1. Понятие Т-клеточного гомеостаза.
1.2. Пролиферация и апоптоз в формировании популяции Т-лимфоцитов.
1.3. Механизмы гомеостатического контроля иммунокомпетентных клеток в периферических отделах иммунной системы.
Глава 2. Процессы апоптоза и пролиферации иммунокомпетентных клеток при лимфопении.
2.1. Гомеостаз Т- и В-клеток в условиях лимфопении.
2.2. Индукция апоптоза Т-лимфоцитов.
Глава 3. Патологии с нарушением показателей апоптоза и пролиферации Т-клеточного звена иммунной системы.
3.1. Индукция апоптоза и клиническое значение нарушений Т-клеточного звена иммунной системы при проведении химиотерапии и ТСКК.
3.2. Нарушения клеточного и гуморального звеньев иммунной системы и индукция апоптоза при ВИЧ-инфекции.
ЧАСТЬ И. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.
Глава 1. Характеристика больных.
1.1. Характеристика больных гемобластозами.
1.2. Характеристика ВИЧ-инфицированных больных.
Глава 2. Методы лабораторных исследований.
2.1. Получение лейковзвеси из периферической крови.
2.2. Определение количества лимфоцитов.
2.3. Определение относительного количества CD4+CD45RO+-, CD4+CD45RA+-, CD8+CD45RO+- и CD8+CD45RA+-лимфоцитов.
2.4. Определение клеточного цикла в Т-лимфоцитах, моноцитах и CD34+-клетках.
2.5. Определение внутриклеточных цитокинов в субпопуляцих Т-лимфоцитов.
Глава 3. Методы статистических и информационных исследований.
ЧАСТЬ III. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.
Глава 1. Результаты исследований группы доноров.
1.1. Количественная характеристика, показатели апоптоза и фаз клеточного цикла иммунокомпетентных клеток и соотношение Т1/Т2 иммунного ответа в группе доноров.
1.2. Корреляционные взаимосвязи в группе доноров.
Глава 2. Результаты исследований больных гемобластозами до и после АТПСКК.
2.1. Количественная характеристика Т-клеток в группе больных гемобластозами до и после АТПСКК.
2.2. Показатели апоптоза и фаз клеточного цикла Т-клеток в группе больных гемобластозами до и после АТПСКК.
2.3. Соотношение наивных Т-клеток и Т-клеток памяти в группе больных гемобластозами до и после АТПСКК.
2.4. Корреляционные взаимосвязи в группе больных гемобластозами до и после АТПСКК.
2.5. Относительное количество Т-клеток, продуцирующих цитокины первого и второго типа в периферической крови больных гемобластозами до и после АТПСКК.
2.6. Ассоциация показателей иммунного статуса с развитием раннего рецидива в течение года после АТПСКК у больных гемобластозами.
2.7. Ассоциация показателей иммунного статуса с развитием осложнений па этапе восстановления кроветворения после АТПСКК у больных гемобластозами.
2.8. Оценка показателей клеточного цикла CD34+-клеток продукта сепарации у больных гемобластозами.
Глава 3. Результаты исследований ВИЧ-инфицированных пациентов до начала курса антиретровирусной терапии.
3.1. Количественная характеристика иммунокомпетентных клеток в группе ВИЧинфицированных пациентов.
3.2. Показатели апоптоза и фаз клеточного цикла в субпопуляциях иммунокомпетентных клеток ВИЧ-инфицированных пациентов.
3.3. Корреляционные взаимосвязи в группе ВИЧ-инфицированных пациентов.
ОБСУЖДЕНИЕ.
Введение диссертации по теме "Аллергология и иммулология", Пронкина, Наталья Викторовна, автореферат
Постоянство численности клеток лимфоидных популяций обеспечивается балансом их образования (за счет пролиферации) и гибели (как правило, по механизму апоптоза) (Freitas A., et al. 2000). Баланс между двумя этими процессами определяет Т-клеточный гомеостаз в организме. Интенсивность пролиферации наивных Т-лимфоцитов (CD45RA+) у взрослых людей минимальная. С помощью определения маркера пролиферирующих клеток Ki-67 установлено, что in vivo пролиферирует около 1% наивных Т-клеток - в равной степени CD4+ и CD8+ (Hazenberg M.D., 2003; Sachsenberg N.,1998). Количество наивных Т-клеток определяется выработкой IL-7 и содержанием дендритных клеток, несущих молекулы МНС классов I и II, а соотношение последних определяет баланс наивных Т-клеток CD8+ и CD4+ (Fry T.J., et al. 2001; Vivien L„ et al. 2001; Mackall Cr.L., et al. 2001; Kirberg J., et al. 2001). Гомеостаз С08+-клеток памяти реализуется с участием цитокинов, среди которых основная роль принадлежит IL-15, а вспомогательная IL-7 (Melchionda F,, et al. 2005; Alpdogan О., et al. 2005). Гомеостаз клеток памяти (CD45RO+) минимально зависит от молекул МНС (Tanchot С., et al. 1997; Cho В.К., et al. 2000). Механизмы гомеостатического контроля С04+-клеток памяти мало изучены. В условиях Т-лимфопении механизмы пополнения наивных Т-клеток отличаются от таковых при нормальном содержании Т-клеток. Они проявляются в форме гомеостатической пролиферации, которая сопровождается сменой мембранного и функционального фенотипа на фенотип клеток памяти без промежуточного этапа активации и без дифференцировки в эффекторные клетки (Tough D.F., et al. 1994; Wu Z., et al.2003; Mahajan V.S., et al. 2005).
Численность ежедневных мигрантов из тимуса и Т-клеток, новообразованных в результате периферической экспансии, должна уравновешиваться числом Т-клеток, подвергающихся апоптозу (Tanchot С., et al. 1997; Romanyukha A.A., et al. 2003). Зрелые Т-лимфоциты, подвергшиеся селекции, в покоящемся состоянии лишены мембранного Fas-рецептора и экспрессируют протоокоген Вс1-2, что определяет их устойчивость к индукторам апоптоза (Karawajew L., et al. 2000). Положение меняется на обратное при активации лимфоцитов соответствующим антигеном или митогеном. Активированные лимфоциты могут подвергнуться апоптозу при различных воздействиях - повторной стимуляции через перекрестное сшивание рецепторов или недостатке факторов роста (IL-2) и т.д. (Dooms Н., et al. 2004; Karas М., et al. 1999). Апоптоз может развиться и в процессе активации - например, в случае предварительного связывания молекул CD4, при отсутствии костимуляции Т-клеток через CD28 (Prlic М., et al. 2001). После дифференцировки Т-лимфоцитов в эффекторные клетки и Т-клетки памяти в них также экспрессируется Вс1-2, и они временно приобретают устойчивость к индукторам апоптоза. В реализации и контроле апоптоза участвуют многочисленные внутриклеточные факторы и от его осуществления зависят многие важные процессы, реализуемые на уровне организма (Badley A.D., et al. 2000).
Изучению процессов, поддерживающих клеточный гомеостаз, посвящено много отечественных и зарубежных исследований, что в значительной степени определяется потребностью в точных знаниях о закономерностях восстановления популяций и субпопуляций лимфоцитов, что находит отражение в их функциональном состоянии, включая и соотношение Т1/Т2-ответов (Jameson S.C. 2002; Guimond М., et al. 2005; Yusuf I., et al. 2003). Это характерно при заболеваниях (СПИД), после действия повреждающих факторов (облучение, химиопрепараты), а также после пересадки костного мозга. При патологии изменяется процент клеток, подвергшихся апоптозу и процент клеток, вступивших в периферическую экспансию, а также изменяются взаимосвязи этих двух процессов. Большой интерес вызывают процессы восстановления Т-клеток после их деплеции. По данным литературы на апоптоз Т-клеток при ВИЧ-инфекции могут влиять моноциты (Oyaizu N., et al. 1993; Sperber K., et al. 2003), поэтому вызывает интерес параллельное исследование процессов гомеостаза моноцитов и Т-лимфоцитов. Кроме того, интенсивно изучаются механизмы восстановления субпопуляций Т-лимфоцитов CD4+- и CD8+-mieTOK, которые отличаются по скорости восстановления. Как известно, СБ4+-клетки восстанавливаются через год и более после трансплантации костного мозга, а С08+-клетки - уже через 6 месяцев (Guillaume Т., et al. 1998; Mackall Cr. L. et al. 1997). Восстановление клеточного пула после ТКМ происходит в основном за счет клеток памяти, а они, как известно, более подвержены апоптозу, чем наивные клетки (Porrata L.F., et al. 2001; Mackall Cr. L. et al. 2005). Являясь наиболее радикальным способом лечения гемобластозов, АТПСКК, тем не менее, не всегда приводит к излечению, и уже в течение первого года в 22 - 40% случаев возникает рецидив заболевания. Возникновение рецидива связано со многими причинами. Совокупность факторов, таких как, статус заболевания (полная, частичная ремиссия или резистентное течение) на момент трансплантации, его стадия, предлеченность, нозология заболевания и возраст больного имеет определенное прогностическое значение в исходе трансплантации (Cortelazzo S., et al. 1999). В доступной нам литературе, тем не менее, нет данных о зависимости процессов восстановления Т-клеточного пула с исходом трансплантации, однако в литературе есть данные о разной репопулирующей способности СБ34+-клеток в зависимости от стадии клеточного цикла (Uchida N., et al. 1997; Voermans С., et al. 2001).
Изучение взаимосвязей между пролиферацией и апоптозом CD4+- и С08+-клеток у больных гемобластозами до и после АТПСКК (в разных временных точках восстановления гемопоэза), а также у ВИЧ-инфицированных пациентов, актуально для понимания процессов восстановления Т-клеточного гомеостаза.
Цель исследования: Исследовать взаимосвязь апоптоза и пролиферации CD4+- и CD8+-iaieTOK периферической крови с процессами восстановления количественных и функциональных характеристик Т-лимфоцитов при лимфопении различного генеза и после аутологичной трансплантации периферических стволовых кроветворных клеток. Задачи исследования:
1. Исследовать показатели апоптоза и фаз клеточного цикла CD4+- и CD8+-клеток и моноцитов у больных гемобластозами до и после АТПСКК и у ВИЧ-инфицированных пациентов.
2. Оценить особенности показателей апоптоза и фаз клеточного цикла CD4+- и CD8+-KneTOK у пациентов с благоприятным и неблагоприятным течением заболевания после АТПСКК.
3. Исследовать показатели фаз клеточного цикла стволовых кроветворных клеток продукта сепарации у больных гемобластозами с благоприятным и неблагоприятным течением заболевания после АТПСКК.
4. Исследовать показатели наивных Т-клеток и Т-клеток памяти в периферической крови у больных гемобластозами до и после АТПСКК.
5. Определить относительное количество CD4+ и CD8+ Т-лимфоцитов периферической крови, продуцирующих IFN-y и IL-4 в ответ на неспецифическую поликлональную стимуляцию у больных гемобластозами до и после АТПСКК и относительно здоровых доноров.
Научная новизна: В работе впервые показано, что как в норме, так и у больных гемобластозами после химиотерапии и у ВИЧ-инфицированных пациентов количество иммунокомпетентных клеток (CD4+-, С08+-клеток и моноцитов) в S,G2/M фазах клеточного цикла прямо взаимосвязаны между собой. При этом положительная корреляционная взаимосвязь между показателями апоптоза и пролиферации С04+-ютеток характерна только для группы здоровых лиц. Показано, что пролиферативная активность CD4+-клеток прямо зависит от выраженности лимфопении как у ВИЧ-инфицированных больных, так и у больных гемобластозами до АТПСКК.
Впервые показано, что у больных с ранним рецидивом основного заболевания после АТПСКК, по сравнению с больными с благоприятным течением, при исследовании до курса мобилизации более выражена CD4+лимфопения, повышено количество CD44-клеток в S,G2/M-(j)a3ax клеточного цикла, повышено количество CD4+CD45RA+-MieTOK, а также количество С034+-клеток в 8,02/М-фазах клеточного цикла среди трансплантируемых клеток. Показано также, что для этих больных характерно прогрессирующее снижение наивных CD4+CD45RA+-i0ieT0K после АТПСКК.
Научно-практическая значимость работы: Полученные данные продемонстрировали однотипность изменения взаимосвязей апоптоза и пролиферации С04+-клеток в условиях лимфопении различного генеза. Важным итогом работы явилось также положение о разном соотношении механизмов восстановления Т-клеточного пула (гомеостатической пролиферации, лимфопоэза, тимопоэза) при благоприятном исходе АТПСКК и при развитии раннего рецидива заболевания, которому предшествует недостаточное (по сравнению с благоприятным течением) восстановление Т-клеток в количественном и функциональном плане.
Результаты исследования обосновывают важность проведения у больных гемобластозами на этапах подготовки к АТПСКК дополнительных лабораторных исследований, включая показатели апоптоза и клеточного цикла субпопуляций иммунокомпетентных клеток. Выявление различий механизмов восстановления Т-клеточного пула у больных гемобластозами с разным исходом трансплантации дает возможность прогноза эффективности АТПСКК и риска развития инфекционных осложнений в период восстановления кроветворения.
Основные положения, выносимые на защиту:
1. Повышение показателей апоптоза и S,G2/M фаз клеточного цикла Т-лимфоцитов периферической крови отражает активацию пролиферации клеток в процессе восстановления Т-клеточного пула как при лимфопении (при ВИЧ-инфекциии и после ПХТ при гемобластозах), так и после аутологичной трансплантации периферических стволовых кроветворных клеток.
2. Благоприятный исход АТПСКК при гемобластозах характеризуется восстановлением Т-клеточного пула с участием наивных клеток и характеризуется возрастанием количества Т1 -клеток (Th и Тс), тогда как развитие рецидива основного заболевания после АТПСКК происходит на фоне прогрессирующего снижения количества наивных СБ4+-клеток и срыва восстановления количества Т1-клеток (Th и Тс).
3. Различия механизмов восстановления Т-клеточного пула после АТПСКК ассоциированы с его состоянием до трансплантации и с пролиферативной активностью трансплантируемых С034+-клеток.
Апробация работы. Материалы диссертации доложены и обсуждены на Всероссийской научно-практической конференции посвященной 15-летнему юбилею Красноярского Краевого Центра по профилактике и борьбе со СПИД и другими инфекционными заболеваниями. «Дни иммунологии в Сибири» (Красноярск 2005), на 7-ой отчетной конференции ГУ НИИКИ СО РАМН «Иммунопатогенез и иммунотерапия основных заболеваний человека: от эксперимента к клинике» (Новосибирск 2006). Апробация диссертации состоялась 3 апреля 2007г. на семинаре клинического отдела ГУ НИИ Клинической Иммунологии СО РАМН. По материалам диссертации опубликовано 10 печатных работ, в том числе 2 статьи в журналах, рекомендованных ВАК для опубликования результатов работ соискателей ученой степени кандидата биологических наук.
Объем и структура работы. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, трех глав собственных исследований, обсуждения полученных результатов и выводов. Материал изложен на 129 страницах машинописного текста, включающего 15 рисунков и 23 таблицы. Прилагаемая библиография содержит ссылки на 156 литературных источников, из них 139 зарубежных.
Заключение диссертационного исследования на тему "Изменение показателей пролиферации и апоптоза в условиях лимфопении и восстановления Т-клеточного пула после аутологичной трансплантации стволовых кроветворных клеток"
ВЫВОДЫ:
1. В периферической крови больных гемобластозами до АТПСКК и ВИЧ-инфицированных пациентов на фоне лимфопении СБ4+-клеток повышен процент СБ4+-клеток в апоптозе и в 8,С2/М-фазах клеточного цикла, который находится в обратной зависимости от общего количества CD4+-клеток. Это, наряду с нормальным (при гемобластозах) или повышенным количеством С08+-клеток (при ВИЧ-инфекции, что сопровождается повышением процента С08+-клеток в апоптозе и в S,G2/M фазах клеточного цикла), отражает сходство процессов восстановления СБ4+-клеток и различия - CD8'-клеток в условиях лимфопении различного генеза.
2. После АТПСКК у больных гемобластозами с благоприятным исходом трансплантации на фоне повышенного процента CD4+- и СБ8+-клеток в 8,02/М-фазах клеточного цикла и в апоптозе наблюдается постепенное увеличение абсолютного количества CD4+- и CD4+CD45RA+-i0ieT0K, а также повышение CD4+- и СБ8+-клеток, продуцирующих INFy, что является проявлением эффективного восстановления количества и функциональных параметров Т-клеток.
3. Признаками неэффективного восстановления количественных и функциональных характеристик Т-клеточного пула у больных с рецидивом после АТПСКК являются: прогрессирующее снижение количества CD4+CD45RA+-iaieTOK, а также значительное повышение (через 3 месяца после АТПСКК) с последующим резким снижением количества CD4+- и С08 -клеток, продуцирующих INFy.
4. Различия процессов восстановления количества и функциональных свойств Т-лимфоцитов у больных с разным течением после АТПСКК ассоциированы с исходным (до трансплантации) уровнем лимфопении и интенсивности пролиферации CD4+- и С034+-клеток: развитие рецидива чаще происходит у больных с выраженной лимфопенией, высоким процентом CD4+- и С034+-клеток в 8,02/М-фазах клеточного цикла.
5. Повышение показателей апоптоза и S,G2/M-<|>a3 клеточного цикла CD4+- и С08+-клеток периферической крови отражает активацию пролиферации этих субпопуляций в процессе восстановления Т-клеточного пула, индуцированного лимфопенией различного генеза, и в процессе восстановления кроветворения после АТПСКК. Исследование данных показателей может быть информативным в оценке состояния Т-клеточного гомеостаза и прогнозе исхода АТПСКК при гемобластозах.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. Для оценки риска возникновения рецидива в ранние сроки после АТПСКК у больных гемобластозами рекомендуется определять пролиферативную активность Т-клеток и количество Т-клеток памяти в периферической крови до трансплантации, а также показатели апоптоза и пролиферации Т-клеток в первые месяцы после трансплантации.
2. Для оценки риска возникновения тяжелых инфекционных осложнений в период восстановления кроветворения после АТПСКК у больных гемобластозами рекомендуется определять абсолютное количество CD4+-клеток, показатели пролиферации и апоптоза С08+-клеток, а также показатели макрофагального звена иммунной системы до трансплантации.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2007 года, Пронкина, Наталья Викторовна
1. Боровиков В.П., Боровиков И.П. STATISTICA Статистический анализ и обработка данных в среде Windows.- М.: Информ.-изд. дом "Филинъ", 1997.- 608 с.
2. Браверман Э.М., Мучник И.Б. Структурные методы обработки эмпирических данных.- М.: Наука, 1983.- 464 с.
3. Владимирская Е, Масчан А, Румянцев А. Апоптоз и его роль в развитии опухолевого роста. Гематология и трансфузиология 1997; 42(5): 4-9
4. Гельфгат E.JL, Туганбаева Д.А., Коненков В.И. Математические методы выявления иммунной гетерогенности популяции и типов иммунного статуса индивидов // Тезисы докл. I съезда иммунологов России (23-25 июня 1992 г).- Новосибирск, 1992.- С. 103.
5. Гублер Е.В. Вычислительные методы анализа и распознавания патологических процессов // Ленинград.- Медицина.- 1978.
6. Дубров A.M. Обработка статистических данных методом главных компонент.- М.: Статистика, 1978.- 135 с.
7. Кендалл М.Дж., Стьюарт А. Многомерный статистический анализ и временные ряды. М.: Наука, 1976.- 736 с.
8. Лакин Г.Ф. Биометрия. Москва, «Высшая школа» - 1990 г., - 352 с.
9. Ластед Л. Введение в проблему принятия решений в медицине: Пер. с англ.-М.,1971.
10. Ю.Мостеллер Ф., Тьюки Дж. Анализ данных и регрессия: (пер. с англ.).-М.: Финансы и статистика, 1982.- 497 с.
11. П.Плохинский Н. А. Биометрия. М.: 2-е изд. МГУ, 1970.—367 с.
12. Погорелов В, Козинец Г. Морфология апоптоза при нормальном и патологическом гемопоэзе. Гематология и трансфузиология 1995; 40(5): 17-25
13. Славин М.Б. Методы системного анализа в медицинских исследованиях. Москва: Медицина, 1989 г. 304 с. Стр. 82-83.
14. Сорокин О.Д. Прикладная статистика на компьютере. Краснообск, ГУП РПО СО РАСХН, 2004.- 162 с.
15. Чумаков П.М. Функция гена р53: выбор между жизнью и смертью //Биохимия, 2000. Т.65.№1. С.34-47.
16. Ярилин А.А. Апоптоз. Природа феномена и его роль в целостном организме // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 1998. - №2. - С.38-48.
17. Ahmadzaden М., Farber D.L., et al Functional plasticity of an antigen -specific memory CD4 T cell population // PNAS. 2002. - Vol.99 .N18.-P. 11802-11807.
18. Ahr В., Robert-Hebmann V., Devaux Ch., Biard-Piechaczyk M. Apoptosis of uninfected cells induced by HIV envelope glicoproteins // Retrovirology. 2004. - Vol. 1. - P.l-12.
19. Alimonti J.B., Blake Ball Т., Fowke K.R. Mechanisms of CD4+ T lymphocyte cell death in human immunodeficiency virus infection and AIDS //Jounal of General Virology. 2003. - Vol. 84. - P.1649-1661.
20. Almeida A.R.M., Borghans J.A.M., Freitas A.A. T Cell Homeostasis: Thymus Regeneration and Peripheral T Cell Restoration in Mice with a Reduced Fraction of Competent Precursors // J.Exp.Med. 2001. - Vol. 194. -P.591-599.
21. Almeida A.R.M., Rocha В., Freitas A.A., Tanchot C. Homeostasis of T cell numbers: from thymus production to peripheral compartmentalization andthe indexation of regulatory T cells // Sem. of Immunology. 2005. -Vol. 17.-P. 239-249.
22. Alpdogan O., Eng J.M., Muriglan S.J., Willis L.M., Hubbard V.M., et al. Interleukin-15 enhances immune reconstitution after allogeneic bone marrow transplantation // Blood. 2005. - Vol. 105.N2. - Р.865-873.
23. Ashton-Rickardt P.G.,Bandeira A., Delaney J.R., Van Kaer L., et al. 1994 Evidence for a differential avidity model of T-cell selection in the thymus. Cell 74:577.
24. Azuma M., Phillips J.H., Lanier L.L. CD28- T lymphocytes. Antigenic and functional properties. 1993 J Immunol 150: 1147-1159.
25. Baccala R., Gonzalez-Quintial R., Dummer W., Theofilopoulos A.N. Tumor immunity via homeostatic T cell proliferation: mechanistic aspects and clinical perspectives // Springer Semin Immunology. 2005. - Vol.27. -P. 75-85.
26. Badley A.D., Pilon A.A.,. Landay A, Lynch D.H. Mechanisms of HIV-associated lymphocyte apoptosis // Blood. 2000. - Vol.96. - №9. -Р.2951-2964.
27. Bell E.B., Sparshott S.M. 1997 The peripheral T-cell pool: regulation by non-antigen induced proliferation? Semin. Immunol. 9: 339-346.
28. Berzins S.P., Godfrey D.I., Miller J.F.A.P., Boyd R.L. A central role for thymic emigrants in peripheral T cell homeostasis //Immunology. 1999. -Vol.96.-P. 9787-9791.
29. Bhattacharyya S., Singla R., Dey A.B., Prasad H.K. Dichotomy of cytokine profiles in patients and high-risk healthy subjects exposed to tuberculosis // Infect Immun. 1999. - Vol. 67. N 11. - P. 5597-5603.
30. Bomberger С., Singh-Jairam М., Rodey G. et al. Lymphoid reconstitution after autologous PBSC transplantation with F ACS-sorted CD34+ hematopoietic progenitors. Blood 1998; 91: 2588-2600
31. Brink M.R.M., Alpdogan O., Boyd R.L. Strategies to enhance T-cell reconstitution in immunocompromised patients // Immunology. 2004. -Vol.4.-P. 856-867.
32. Browne MJ, Hubbard SM, Longo DL et al. Excess prevalence of Pneumocystis carinii pneumonia in patients treated for lymphoma with combination chemotherapy. Ann Intern Med 1986; 104: 338-344
33. Castelli J.C., Deeks S.G., Shiboski S., Levy J.A. Relationship of CD8+ T cell noncytotoxic anti-HIV response to CD4+ T cell number in untreated asymptomatic HIV-infected individuals // Blood. 2002. - Vol. 99. -№11. - P.4225-4227.
34. Chamond R.R., Anon J.C., Aguilar C.M., Pasadas F.G. Apoptosis and disease // Alergol Inmunol Clin. 1999. - Vol. 14. - P.367-374.
35. Chernykh H.R., Norkin M.N., Leplina O.Y., Khonina N.A., Tihonova M.A., Ostanin A.A. Peripheral T cell apoptosis and its role in generalized bacterial infections: a minireview // Russ J Immunol. 2001. - Vol. 6. N 2. -P. 131-146.
36. Cheson BD. Infectious and immunosuppressive complications of purine analog therapy. J Clin Oncol 1995; 13: 2431-2448
37. Cho B.K., Rao V.P., Ge Q., Eisen H.N., Chen J. Homeostasis-stimulated proliferation drives naive T cells to differentiate directly into memory T cells // J.Exp.Med. 2000. - Vol. 192.N4. - P.549-556.
38. Chung В., Burnham L.B., Barsky L., Weinberg K. Radiosensitivity of thymic interleukin-7 production and thymopoiesis after bone marrow transplantation //Blood. 2001. - Vol.98.N5. - P. 1601-1606.
39. Co D.O., Hogan L.H, Kim S.I., Sandor M. Mycobacterial granulomas: keys to a long-lasting host-pathogen relationship// Clin. Immunol. 2004. - Vol. 113(2)-P.130-136.
40. Cohen Stuart J.W.T., Slieker W.A.T., Rijkers G.T., Noest A., et al. Early recovery of CD4+ T lymphocytes in children on highly active antiretroviral therapy //AIDS. 1998. - Vol. 12. - P.2155-2159.
41. Dooms H., Kahn E., Knoechel В., Abbas A.K. IL-2 induces a competitive survival advantage in T lymphocytes // The J.of Immunology. 2004. -Vol.172. - P.5973-5979.
42. Dummer W., Ernst В., LeRoy E., Lee D-S., Surh Ch.D. Autologous regulation of naive T cell homeostasis within the T cell compartment // The J.of Immunology. 2001. - Vol.166. - P. 2460-2468.
43. Evan G.I., Vousden K.H. Proliferation, cell cycle and apoptosis in cancer // Nature. 2001. - Vol.411. - P.342-348.
44. Fisher DE. Apoptosis in cancer therapy: crossing the threshold. Cell 1994; 78(4): 539-542
45. Freitas A.A., Agenes F., Coutinho G.C. Cellular competition modulates survival and selection of CD8+ T cells // Eur.J.Immunology. 1996. -Vol.26.-P.2640-2649.
46. Freitas A.A., Rocha B.B. 1993 Lymphocute lifespan: homeostasis, selection and competition. Immunol. Today, 14: 25-29.
47. French J.D., Roark Ch.L., Born W.K., O'Brien L.O. y5 T cell homeostasis is established in competition with сф T cell and NK cells //PNAS. 2005. - Vol. 102.N41. - P. 14741 -14746.
48. Fry T.J., Christensen B.L., Komschlies K.L., Gress R.E., Mackall Cr.L. Interleukin-7 restores immunity in athymic T-cell-depleted hosts // Blood. -2001.-Vol.97.N6.-P. 1525-1533.
49. Fry T.J., Connick E., Fallon J., Lederman M.M., Liewehr D.J., et al. A potential role for interleukin-7 in T-cell homeostasis // Blood. 2001. -Vol.97.N10.-P 2983-2990.
50. Fukuda H., Nakamura H., Tominaga N., et al. Marked increase of CD8+S6F1+ and CD8+57+ cells in patients with graft-versus-host desease after allogeneic bone marrow transplantation. 1994 Bone Marrow Transpl 13: 181-185.
51. Ge Q., Rao V.P., Cho B.K., Eisen H.N., Chen J. Dependence of lymphopenia-induced T cell proliferation on the abundance of peptide/МНС epitopes and strength of their interaction with T cell receptors // PNAS. 2001. - Vol.98.N4. - P. 1728-1733.
52. Geginat J., Lanzavecchia A., Sallusto F., et al Proliferation and differentiation potential of human CD8+ memory T- cell subsets in response to antigen or homeostatic cytokines // Blood. 2003.-Vol.101.Nll. - P.4260-4266.
53. Goldrath A.W., Bogatzki L.Y., Bevan M.J., et al Naive T cells transiently acguire a memory like phenotype during homeostasis-driven proliferation // J.Exp.Med.- 2000. - Vol.l92.N.4.- P 557 - 564.
54. Goldrath A.W., Luckey C.J., Park R., Benoist Ch., Mathis D. The molecular program induced in T cells undergoing homeostatic proliferation // PNAS. 2004. - Vol. 101.N48. - P. 16885-16890.
55. Gougeon M-L. Apoptosis as an HIV strategy to escape immune attack // Nature Rev. Immunology. 2003. - Vol. 3. - P.393-404.
56. Gougeon M-L., Lecoeur H., Dulioust A., Enouf M-G., et al. Programmed cell death in peripheral lymphocytes from HIV-infected persons // Journal of Immunology. 1996. - Vol. 156. - P.3509-3520.
57. Guillaume Th., Rubinstein D.B., Symann M. Immune Reconstitution and Immunotherapy After Autologous Hematopoietic Stem Cell Transplantation // Blood. 1998. - Vol.92.N5. - P. 1471-1490.
58. Guimond M., Fry T.J., Mackall C.L. Cytokine signals in T-cell homeostasis // J.Immunother. 2005.- Vol.28.N4. - P. 289-294.
59. Hakim F.T., Gress R.E. Immunosenescence: immune deficits in the elderly and therapeutic strategies to enhance immune competence // Expert Rev. Clin. Immunol. 2005. - Vol.1 .N3. - P.443-458.
60. Hakim F.T., Memon S.A., Cepeda R., Jones E.C., Chow C.K., et al. Age-dependent incidence, time course, and consequences of thymic renewal in adults // The J. of Clinical Investigation. 2005. - Vol.115.N4. - P.930-939.
61. Hakim FT, Cepeda R, Kaimei S et al. Constraints on CD4 recovery post chemotherapy in adults: thymic insufficiency and apoptotic decline of expanded peripheral CD4 cells. Blood 1997; 90: 3789-3798
62. Hasan M.S., Kallas E.G., Thomas E.K., Looney J., Campbell M., Evans T.G. Effects of interleukin-15 on in vitro human T cell proliferation andactivation // J of Interferon & Cytokine Research. 2000. - Vol.20. N 2. -P. 119-124.
63. Hawkins Ch. J., Vaux D.L. The role of the Bcl-2 family of apoptosis regulatory proteins in the immune system // Sem. of Immunology. 1997. -Vol.9.-P. 25-33.
64. Haynes B.F., Markert M.L., Sempowski Gr.D., Patel D.D., Hale L.P. The role of the thymus in immune reconstitution in aging, bone marrow transplantation, and HIV-1 infection // Annu. Rev. Immunology. 2000. -Vol.18.-P. 529-560.
65. Hazenberg M.D., Otto S.A., van Rossum A.M.C., Scherpbier H.J., et al Establishment of the CD4+ Tcell pool in healthy children and untreated children infected with HIV-l//Blood.-2004.-Vol.l04.- Р.3513-3519.
66. Hazra R., Mackall Cr.M. Thymic function in HIV Infection // Curr HIV/AIDS Rep. 2005. - Vol.2.Nl. - P.24-28.
67. Heitger A., Neu N., Kern H., Panzer-Grumayer E-R., et al. Essential role of the thymus to reconstitute nai've (CD45RA+) T-helper cells after human allogeneic bone marrow transplantation // Blood. 1997. - Vol 90. - №2. -P. 850-857.
68. Heslop H, Gottlieb D, Bianchi A et al. In vivo induction of gamma interferon and tumor necrosis factor by interleukin-2 infusion following intensive chemotherapy or autologous marrow transplantation. Blood, Sep 1989; 74: 1374- 1380
69. Holtzman M.J., Green J.M., Jayaraman S., Arch R.H. Regulation of T cell apoptosis // Apoptosis. 2000. - Vol. 5. - Р.459-471.
70. Karas M., Zaks T.Z., LeRoith D. T cell receptor-induced activation and apoptosis in cycling human T cells occur throughout the cell cycle // Molecular Biology of the Cell. 1999. - Vol.10. - P 4441-4450.
71. Keane J., Balcewicz-Sablinska M.K., Remold H.G., Chupp G.L., Meek B.B., Fenton M.J., Kornfeld H. Infection by Mycobacterium tuberculosis promotes human alveolar macrophage apoptosis // Infect Immun. 1997. -Vol. 65. N 1. - P. 298-304.
72. Khaled A.R., Durum S.K. The Role of Cytokines in Lymphocyte Homeostasis // Bio Techniques. 2002. - Vol.33. - P.40-45.
73. Kieper W.C., Burghardt J.Th., Surh Ch.D. A role for TCR affinity in regulating naive T cell homeostasis // The J.of Immunology. 2004. -Vol.174.-P. 40-44.
74. Kirberg J., Boehmer H., Brocker Т., Rodewald H-R., Takeda S. Class II essential for CD4 survival // Nature Immunology. 2001. - Vol.2.N2. -P.136-137.
75. Konno A., Okada K., Mizuno K., Nishida M., Nagaoki S., Toma Т., et al CD8aa memory effector T cells descend directly from clonally expanded
76. CD8a+(3high TCRa(3 T cells in vivo // Blood. 2002. - Vol.100.N12. -P.4090-4097.
77. Lanzavecchia A., Lezzi G., Viola A. From TCR engagement to T-cell activation: a kinetic view of T-cell behavior. 1999 Cell 96:1.
78. Lapidot Т., Kollet O. The essential roles of the chemokine SDF-1 and its receptor CXCR4 in human stem cell homing and repopulation of transplanted immune-deficient NOD/SCID and NOD/SCID/B2mnu" mice // Leukemia. 2002. -№ 16. -P. 1992-2003.
79. Lazarevic V., Yankura D.J., Divito Sh. J., Flynn JA.L. Induction of Mycobacterium tuberculosis-specific primary and secondary T-cell responses in interleukin-15-deficient mice // Infection and Immunity. -2005. Vol.73. -№5. - P.2910-2922.
80. Lehrnbecher T, Foster C, Vazquez N et al. Therapy-induced alterations in host defense in children receiving therapy for cancer. J Pediatr Hematol Oncol 1997;19:399-417
81. London Ch.A., Lodge M.P., Abbas A.K. Functional responses and costimulator dependence of memory CD4+ T cells // The J.of Immunology. 2000. - Vol.l64. - P. 265-272.
82. Lotem J, Sachs L. Regulation by bcl-2, c-myc, and p53 of susceptibility to induction of apoptosis by heat shock and cancer chemotherapy compounds in differentiation-competent and -defective myeloid leukemic cells. Cell Growth Differ. 1993; 4: 41 47
83. Mackall C., Stein D., Fleisher T, et al. Prolonged CD4 depletion after sequential autologousperipheral blood progenitor cell infusion in children and young adults. Blood 2000; 96: 754-762
84. Mackall C.L, Hakim FT, Gress RE. Restoration of T-cell homeostasis after T-cell depletion // Immunology. 1997. - Vol.9. - P. 339-346.
85. Mackall C.L, Hakim FT, Gress RE. T-cell regeneration: all repertoires are not created equal. Immunol Today 1997; 18: 245-251
86. Mackall C.L., Granger L., Sheard M.A., Cepeda R., Gress R.E. T cell regeneration after bone marrow transplantation: Differential CD45 isoform expression on thymic-derived versus thymic-independent progeny. 1993 Blood 82: 2585-2594.
87. Mackall CM, Fleischer T, Brown M, Magrath I, Shad A, Horowitz M, Wexler L, Adde M, McClure L, Gress RE: Lymphocyte depletion during treatment with intensive chemotherapy for cancer. Blood 1994; 84: 222128
88. Mackall Cr. T-cell immunodeficiency following cytotoxic antineoplastic therapy: a review. The Oncologist 1999; 4: 370-378
89. Mackall Cr.L., Fleisher T.A., Brown M.R., Andrich M.P., Chen C.C., et al. Age, thymopoiesis, and CD4+ T-lymphocyte regeneration after intensive chemotherapy // The New England J.of Medicine. 1995. -Vol.332.N3. - P. 143-149.
90. Mackall Cr.L., Fry T.J., Bare C., Morgan P., Galbraith A., Gress R.E. IL-7 increases both thymic-dependent and thymic-independent T-cell regeneration after bone marrow transplantation // Blood. 2001. -Vol.97.N5. - P. 1491-1497.
91. Mahajanl V.S., Leskovl I.B., Chenl J. Homeostasis of T Cell Diversity // Cellular & Molecular Immunology. 2005. - Vol.2.Nl. - P. 110.
92. Maino V.C., Picker L.J. Identification of functional subsets by flow cytometry: intracellular detection of cytokine expression // Cytometry. -1998.-Vol. 34. N5.-P. 207-215.
93. Marleau A.M., Sarvetnick N. T cell homeostasis in tolerance and immunity // J.of Leukocyte Biology. 2005. - Vol 78. - P. 575-584.
94. McFarland R.D., Douek D.C., Koup R.A., Picker L.J. Idntification of a human recent thymic emigrant phenotype // PNAS. 2000. - Vol.97.N8. -P. 4215-4220.
95. Melchionda F., Fry T.J., Milliron M.J., McKirdy M.A., Tagaya Y., Mackall Cr.L. Adjuvant IL-7 or IL-15 overcomes immunodominance and improves survival of the CD8+ mmory cell pool // The J. of Clinical Investigation. 2005. - Vol. 115.N5. - P. 1177-1187.
96. Min В., Foucras G., Meier-Schellersheim M., Paul W.E. Spontaneous proliferation, a response of nai've CD4 T cell determined by the diversity of the memory cell repertoire // PNAS. 2004. -Vol.101.Nll.-P. 3874-3879.
97. Min В., Yamane H., Hu-Li J., Paul W.E., et al Spontaneous and homeostatic proliferation of CD 4 T cells are regulated by different mechanisms // The Journal of Immunology. 2005. - Vol.174.- P. 60396044.
98. Miyawaki Т., Uehara Т., Nibu R.et al. Differential expression of apoptosis-related Fas antigen on lymphocyte subpopulations in human peripheral blood. J. Immunol. 1992; 149: 3753-3758
99. Moniuszko M., Fry Т., Tsai W-P. Morre M., Assouline В., et al. Recombinant interleukin-7 induces proliferation of nai've macaque CD4+ and CD8+ T cell in vivo // J.of Virology. 2004. - Vol.78.N18. - P. 97409749.
100. Murali-Krishna K., Altman J.D., Suresh M., Sourdive D.J.D., Zajac A.J., et al Counting antigen specific CD 8 T cells: a reevaluation of bystander activation during viral infection // Immunity. - 1998. - Vol.8. -P.177-187.
101. Nagata, S., and P. Golstein. The Fas death factor. Science 1995; 267: 1449-1456.
102. Napolitano L.A. Approaches to immune reconstitution in HIV infection // International AIDS Society-USA. 2003. - Vol. 11. - P. 160163.
103. Nicoletti I., Migliorati G., Pagliacci M.C., Grignani F., Riccardi С. A rapid and simple method for measuring thymocyte apoptosis by propidium iodide staining and flow cytometry // Related Articles. 1991. -Vol.139.N2. -P.271-279.
104. Osborne B.A. Apoptosis and maintenance of homeostasis in the immune system. 1996 Curr. Opin. Immunol. 16-336.
105. Osborne B.A. Transcriptional control of T-cell development. 2000 Curr.Opin. Immunol.12:301.
106. Pedroza-Gonzalez A, Garcia-Romo G.S., Aguilar-Leon D. et al. In situ analysis of lung antigen-presenting cells during murine pulmonary infection with virulent Mycobacterium tuberculosisII Int. J. Exp. Pathol.-2004. Vol.85(3) - P.135-145.
107. Piedimonte G., Corsi D., Paiardini M., Cannavo G., Ientile R., Picerno I., et al. Unscheduled cyclin В expression and p34 cdc2 activation in T lymphocytes from HIV-infected patients // AIDS. 1999. - Vol.13. -Р.1159-1164.
108. Porrata L.F., Litzow M.R., Markovic S.N. Immune reconstitution after autologous hematopoietic stem cell transplantation // Mayo Clin Proc. -2001. Vol.76. - P. 407-412.
109. Prlic M., Blazar B.R., Khoruts A., Zell Т., Jameson S.C. Homeostatic expansion occurs independently of costimulatory signals // The J.of Immunology. 2001. - Vol.167. - P. 5664-5668.
110. Romanyukha A.A., Yashin A.I. Age related changes in population of peripheral T cells: towards a model of immunosenescence // Mechanisms of Ageing and Development. 2003. - Vol.124. - P. 433-443.
111. Sachsenberg N., Perelson A.S., Yerly S., et al. Turnover of CD4+ and CD8+ T lymphocytes in HIV-1 infection as measured by Ki-67 antigen // J.Exp.Med. 1998. - Vol.187.N8. - P. 1295-1303.
112. Saito Т., Dworacki G., Gooding W., Lotze T.M., Whiteside L.T., et al Spontaneous apoptosis of CD8+T lymphocytes in peripheral blood of patients with advanced melanoma // Clinical Cancer Research. 2000. -Vol.6.-P.1351-1364.
113. Sarin A, Wu ML, Henkart P. Different interleukin-l(3 converting enzyme (ICE) family protease requirements for the apoptotic death of T lymphocytes triggered by diverse stimuli. J Exp Med 1996; 184: 24452450
114. Seddon В., Mason D. The third function of the thymus // Rev. Immunology Today. 2000. - Vol.21.N2. - P. 95-99.
115. Shams H., Wizel В., Weis S.E., Samten В., Barnes P.F. Contribution of CD8(+) T cells to gamma interferon production in human tuberculosis // Infect Immun. 2001. - Vol. 69. N 5. - P. 3497-3501.
116. Sieling P.A., Sakimura L., Uyemura K., Yamamura M., Oliveros J., Nickoloff B.J., Rea Т.Н., Modlin R.L. IL-7 in the cell-mediated immune response to a human pathogen // Journal of Immunology. 1995. -Vol.154.-P.2775-2783.
117. Sperber K., Beuria P., Singha N., Gelman I., et al. Induction of apoptosis by HIV-1-infected monocytic cells// Journal of Immunology. -2003.-Vol. 170. P.1566-1578.
118. Spits H. Development of ар T cells in the human thymus // Immunology. 2002. Vol.2. - P. 760-772.
119. Stahnke K., Fulda S., Freisen C., et al. Activation of apoptosis pathways in peripheral blood lymphocytes by in vivo chemotherapy. Blood 2001;98:3066-3073
120. Stockinger В., Kassiotis G.,Christine Bourgeois Ch. Homeostasis and T cell regulation // Curr Opinion in Immunology. 2004. - Vol.16. - P. 775-779.
121. Surh Ch.D., Sprent J. Homeostatic T cell proliferation: how far can T cells be activated to self-ligands? // J.Exp.Med. 2000. - Vol.192.N4. -F9-F14.
122. Tanchot C., Lemonnier F.A., Perarnau В., Freitas A.A., Rocha B. Differential requirements for survival and proliferation of CD8 naive or memory T cells // Science. 1997. - Vol.276. - P. 2057-2062.
123. Tanchot C., Rosado M.M., Agenes F., Antonio A. Freitas A.A., Rocha B. Lymphocyte homeostasis // Immunilogy. 1997. - Vol.9. - P. - 331-337.
124. Tough D.F., Sprent J. Turnover of naive- and memory-phenotype T cells // J.Exp.Med. 1994. - Vol.179. - P. 1127-1135.
125. Uchida N., He D., Friera A.M., Reitsma M., Sasaki D., Chen В., Tsukamoto A. The unexpected G0/G1 cell cycle status of mobilized hematopoietic stem cells from peripheral blood // Blood. 1997. -Vol.89.N2. - P. 465-472.
126. Varadhachary A.S., Perdow S.N., Ни C., Ramanarayanan M., Salgame P. Differential ability of T cell subsets to undergo activation-induced cell death //Proc Natl Acad Sci USA.- 1997. Vol. 94. N 11. - P. 5778-5783.
127. Vella A.T., Dow S., Potter T.A., Kappler J., Marrack P. Cytokine-induced survival of activated T cells in vitrj and in vivo // Immunology. -1998.-Vol.95.-P. 3810-3815.
128. Vivien L., Benoist Ch., Mathis D. T lymphocytes need IL-7 but not IL-4 or IL-6 to survive in vivo // International Immunology. 2001. -Vol.13.N6.-P. 763-768.
129. Voermans C., Kooi M.L.K., Rodenhuis S., et al. In vitro migratory capacity of CD34+ cells is related to hematopoietic recovery after autologous stem cell transplantation //Blood. 2001. - Vol.97.N3. - P. 799-804.
130. Watanabe N., De Rosa S.C., Cmelak A., Hoppe R.,Herzenberg L.A., et al Long term depletion of naive T cells in patients treated for Hodgkin's disease // Blood. - 1997. - Vol.90.N9. - P.3662 - 3672.
131. Webb S., Morris C., Sprent J. 1990 Extrathymic tolerance of mature T cells: clonal elimination as a consequence of immunity. Cell. 63: 12491256.
132. Wu Z., Bensinger S.J., Zhang J., Chen Ch., Yuan X., Huang Z., Markmann J.F., et al. Homeostatic proliferation is a barrier to transplantation tolerance // Nature Medicine. 2003. - P. 1-6.
133. Yusuf I., Fruman D.A. Regulation of quiescence in lymphocytes // TRENDS of Immunology. 2003. - Vol.24.N7. - P.380-386.