Автореферат и диссертация по медицине (14.01.12) на тему:ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ВАКЦИН МЕТОДОМ ELISpot

ДИССЕРТАЦИЯ
ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ВАКЦИН МЕТОДОМ ELISpot - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ВАКЦИН МЕТОДОМ ELISpot - тема автореферата по медицине
Никитин, Кирилл Дмитриевич Москва 2011 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.01.12
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ВАКЦИН МЕТОДОМ ELISpot

На правах рукописи

НИКИТИН

Кирилл Дмитриевич

ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ВАКЦИН МЕТОДОМ ЕЫБрс*

14.01.12 - онкология

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

2 1 АПР 2011

Москва -2011

4844140

Работа выполнена в Учреждении Российской академии медицинских наук Российском онкологическом научном центре имени Н.Н.Блохина РАМН (директор - академик РАН и РАМН, профессор М.И. Давыдов).

Научные руководители: доктор медицинских наук, профессор Барышников Анатолий Юрьевич кандидат медицинских наук Михайлова Ирина Николаевна

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор Бухман Владимир Михайлович доктор медицинских наук, профессор Голенков Анатолий Константинович

Ведущая организация:

ФГУ МНИОИ им. П.А. Герцена Росмедтехнологий

Защита состоится » 2011 г. в

часов

на заседании диссертационного совета Д. 001.017.02 РОНЦ им. Н.Н.Блохина РАМ по адресу: 115478 Москва, Каширское шоссе, д. 23.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке РОНЦ им. Н.Н.Блохина РАМН

Ученый секретарь диссертационного совета

доктор медицинских наук, профессор

Ю.А.Барсук

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы

Многочисленные исследования биологии опухолей и взаимодействий между злокачественными новообразованиями и организмом в целом показали, что опухоли иммуногенны, но антигенный состав каждой конкретной опухоли уникален и индивидуален. Это свойство злокачественных новообразований легло в основу специального метода терапии — иммунотерапии. Иммунотерапия в онкологии изучает возможность лечения злокачественных новообразований за счет активизации и/или усиления противоопухолевого иммунного ответа в организме больного.

Среди современных методов иммунотерапии значительное внимание уделяется применению дендритных клеток (ДК) и препаратов на их основе. Пилотные клинические исследования показали, что ДК, нагруженные опухолевыми антигенами, вызывают развитие иммунного ответа, специфичного против опухолеассоциированных антигенов (ОАА). Для нагрузки ДК опухолевыми антигенами разработаны различные методы, включая нагрузку синтетическими пептидами, опухолевыми лизатами, опухолевой РНК (Mayordomo J. et al., 1995; Celluzzi С. et al., 1996; Hsu F. et al., 1996; NestleF. et al, 1998; Koido S. et al, 2000; Paglia P. et al, 2000; Russo V. et al, 2000).

Принципиальным преимуществом иммунотерапии с применением ДК

является теоретическая возможность индукции противоопухолевого ответа

против всех антигенов, имеющихся в опухоли, без необходимости их

идентификации. Тем не менее, остается ряд нерешенных вопросов. Так,

традиционные критерии оценки эффективности терапии (опухолевый ответ,

выживаемость и др.), применяющиеся при исследовании лучевых,

хирургических и химиотерапевтических методов лечения, недостаточно

1

чувствительны для оценки эффективности иммунотерапевтических препаратов (Hoos A. et al., 2010). Кроме того, исследования новых противоопухолевых препаратов проводятся в первую очередь у больных с поздними стадиями онкологических заболеваний, после того, как остальные методы лечения себя исчерпали, то есть, у людей с высокой вероятностью иммунологических нарушений.

В связи с этим приобретает особую важность разработка новых методов для оценки эффективности иммунотерапии онкологических заболеваний.

Предложено несколько методов оценки иммунного ответа у онкологических больных — исследование иммунного статуса, пролиферативные и цитотоксические тесты с лимфоцитами, тетрамерный анализ. Одним из наиболее удобных в практическом отношении и при этом высокоточным методом представляется реакция ELISpot — Enzyme-Linked ImmunoSpot — твердофазная модификация метода иммуноферментного анализа, позволяющая идентифицировать изменения иммунореактивности организма на уровне отдельных клеток. Однако методика ELISpot изначально предложена для выявления В-лимфоцитов, продуцирующих специфические антитела, и широко используется для оценки вакцин для профилактики инфекционных заболеваний. Применение метода ELISpot для исследования противоопухолевых вакцин остается недостаточно изученным.

Цель исследования

Оценить с помощью метода ELISpot иммунный ответ у больных онкологическими заболеваниями при использовании терапевтических противоопухолевых вакцин.

Задачи исследования

• адаптировать метод ELISpot для оценки иммунного ответа у больных, получавших противоопухолевую иммунотерапию вакцинами на основе аутологичных дендритных клеток (аутоДК), нагруженных опухолевым лизатом, или аллогенных генно-модицифированных опухолевых клеток (гм-ОпК — вакцина «Мелавак»);

• изучить in vitro активацию лимфоцитов (увеличение числа интерферон [ИФН]-у-продуцирующих лимфоцитов) в ответ на стимуляцию аутоДК, нагруженными опухолевыми антигенами;

• предложить критерии оценки иммунного ответа у больных злокачественными новообразованиями и оценить на их основе активацию лимфоцитов больных меланомой кожи, получавших противоопухолевые вакцины на основе аутоДК или гм-ОпК в рамках клинического исследования;

• оценить связь между иммунным ответом на вакцинотерапию и другими клиническими и иммунологическими показателями.

Научная новизна работы

Впервые адаптирован метод ELISpot для исследования иммунных реакций у больных, получающих противоопухолевые вакцины на основе аутоДК и гм-ОпК.

Впервые с помощью метода ELISpot проведено исследование активации лимфоцитов при стимуляции аутоДК in vitro в ответ на применение противоопухолевых вакцин.

Впервые предложены критерии оценки иммунологических изменений, выявляемых методом ELISpot у больных, получающих вакцинацию

противоопухолевыми вакцинами на основе аутоДК и гм-ОпК.

3

Впервые оценен иммунный ответ у больных меланомой, получавших вакцины на основе аутоДК или гм-ОпК, в рамках клинического исследования.

Впервые исследована связь иммунного ответа с рядом клинических и иммунологических показателей.

Научно-практическая значимость работы

Результаты работы свидетельствуют о перспективности исследования новых иммунотерапевтических препаратов с помощью метода Е1Л8ро1. Получены важные сведения об исследованных вакцинах, показана целесообразность проведения клинического исследования противоопухолевой вакцины на основе ДК, слитых с опухолевыми клетками (дендритом).

Апробация работы

Апробация диссертационной работы состоялась 12 июля 2010 г. на совместной научной конференции лаборатории экспериментальной диагностики и биотерапии опухолей, лаборатории клеточного иммунитета, лаборатории радиоизотопных методов исследования, лаборатории разработки лекарственных форм, лаборатории фармакологии и токсикологии, лаборатории лучевых методов лечения опухолей, лаборатории медицинской биотехнологии НИИ экспериментальной диагностики и терапии опухолей РОНЦ им. Н.Н.Блохина РАМН и отделения биотерапии опухолей НИИ клинической онкологии РОНЦ им. Н.Н.Блохина РАМН.

По материалам диссертации опубликовано 10 работ: 4 оригинальные статьи, 3 литературных обзора и 3 тезиса докладов.

Структура работы

Диссертация изложена на 126 страницах машинописного текста, включая библиографию и иллюстрации. Состоит из введения, литературного обзора, общей характеристики материалов и методов исследования, двух глав описания собственных исследований, главы обсуждения результатов и выводов. Список литературы включает 162 источника, в том числе 146 публикаций зарубежных авторов. Диссертация иллюстрирована 14 рисунками и сопровождается 20 таблицами.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Проведенная работа может быть разделена на две основные части: 1) адаптация метода ELISpot и сравнительное исследование in vitro иммуногенности различных вариантов противоопухолевых вакцин на основе ДК, и 2) исследование иммунного ответа в клиническом исследовании у больных меланомой, получающих вакцины на основе аутоДК, нагруженных лизатом опухолевых клеток (ОпК) линии mel Kor, и на основе клеток линии mel Kor, модифицированных геном GM-CSF.

Метод ELISpot

Метод ELISpot широко применяется для оценки иммунного ответа у людей и животных. Метод разработан С. Czerkinsky в 1983. ELISpot представляет собой модифицированную версию метода иммуноферментного анализа ELISA.

Изначально ELISpot был разработан для подсчета В-лимфоцитов, продуцирующих специфические антитела, а затем был адаптирован для разных задач, в особенности для идентификации и подсчета цитокин-продуцирующих клеток с точностью вплоть до отдельных клеток. ELISpot позволяет визуализировать вещество, продуцируемое отдельными активированными

клетками. Чувствительность метода — менее 1 клетки на 100 ООО. Для учета результатов реакции используют автоматизированные системы — ELISpot-ридеры, с высокой точностью фотографирующие результат реакции и анализирующие полученную картину. Метод ELISpot широко применяется в разработке противовирусных вакцин, но также нашел применение и в онкоиммунологии (Hoos А. et al., 2007; Janetzki S et al., 2008).

Исследование изменений числа ИФН-у-продуцирующих лимфоцитов в ответ на стимуляцию ДК-вакцинами in vitro

Иммуногенность различных вариантов противоопухолевых вакцин на основе ДК (незрелые ДК, зрелые ДК, ДК, нагруженные опухолевым лизатом, и ДК, слитые с ОпК) оценивалась методом ELISpot на основании изменений числа ИФН-у-продуцирующих лимфоцитов в ответ на стимуляцию ДК in vitro. Схема эксперимента представлена на рис. 1. Незрелые ДК получали путем культивации адгезивных моноцитов периферической крови здоровых доноров. Неадгезивные лейкоциты (обогащенную лимфоцитарную фракцию) замораживали для последующих экспериментов. Незрелые ДК разделяли на несколько частей. Первую часть клеток оставляли незрелыми, без дополнительных воздействий. Индукцию терминальной дифференцировки второй части ДК вызывали с помощью инкубации в присутствии цитокинового коктейля. Третью часть незрелых ДК нагружали опухолевым лизатом, полученных из опухолевых клеток меланомы линии mel Kor. Наконец, последнюю часть незрелых ДК сливали с облученными опухолевыми клетками меланомы линии mel Kor. Эффективность слияния клеток оценивали с помощью проточной цитофлюориметрии.

После получения незрелых, зрелых и нагруженных ДК и дендритом их использовали для активации лимфоцитов. Для этого лимфоциты, полученные от того же донора (аутологичные лимфоциты), размораживали и помещали в

лунки 6-луночного планшета и смешивали со стимуляторами (незрелыми, зрелыми и нагруженными ДК или дендритомами) в нужном соотношении, подобранном в ходе предварительных опытов. После смешивания со стимуляторами планшеты с лимфоцитами инкубировали в течение 7 дней при 37°С в атмосфере 5% С02. Через 7 дней лимфоциты снимали с планшета и подсчитывали. Необходимое количество клеток отбирали и использовали для постановки реакции ЕЫБроС.

I

ELISpot

Сокультиоация: лимфоциты* ДК/дендритомы/ФГА {7 дней)

Культивация в присутствии GM-CSF и IL-4 (7 дней)

\

' У нагруженные

| ДК

-------- Спитые

^ Слитые ДК/ОпК (дендритомы)

Опухолевые клетки mel Ког

Рисунок 1. Схема эксперимента для оценки изменений числа ИФН-у-продуцирующих лимфоцитов в ответ на стимуляцию ДК in vitro. ДК — дендритные клетки, ОпК — опухолевые клетки.

Исследование иммунного ответа методом ELISpot у больных меланомой, получавших противоопухолевые вакцины

Метод ELISpot был использован для оценки иммунного ответа у больных меланомой, получающих противоопухолевые вакцины на основе аутоДК, нагруженных аллогенным опухолевым лизатом, или на основе аллогенных опухолевых клеток, трансфецированных геном GM-CSF. Больные получали противоопухолевую вакцину в адъювантном режиме внутрикожно в дозе 1*106 клеток. Интервалы между введениями составляли 2 недели. Вакцинацию продолжали вплоть до развития прогрессирования. По своей организации исследование было открытым и одноцентровым, проводилось в соответствии со стандартами GCP. У больных перед 1-й, 3-й, 5-й и 10-й вакцинациями производился забор образцов периферической крови (4-10 мл) — точки 0, 1, 2 и 3, соответственно (рис. 2). Образцы крови набирали в пробирку Vacutainer (Becton Dickinson, США) с антикоагулянтом и отправлялись в лабораторию, где в течение суток из них выделяли и замораживали лейкоциты.

После завершения вакцинотерапии образцы лейкоцитов, взятые у больного, размораживались, и оценивалось число лейкоцитов, активирующихся в ответ на стимуляцию лизатом аллогенных опухолевых клеток линии mel Ког. Активация оценивалась по продукции ИФН-у лейкоцитами с помощью метода ELISpot.

Рисунок 2. Схема исследования иммунного ответа у больных диссеминированной меланомой кожи, получавших противоопухолевую вакцинацию аутологичными дендритными клетками, нагруженными аллогенным опухолевым лизатом, или аллогенными опухолевыми клетками, трансфецированными геном ОМ-С5Р.

В качестве отрицательного контроля оценивалась фоновая секреция ИФН-у нестимулированными лейкоцитами. Положительным контролем служили лейкоциты, активированные неспецифическим стимулятором фитогемагглютинином (ФГА). Положительный контроль служил индикатором успешной постановки реакции. Для повышения точности исследования и исключения воздействия случайных факторов анализ каждой пробы (не стимулированные лимфоциты, лимфоциты + лизат и лимфоциты + ФГА) в каждой точке (0, 1,2 или 3) повторялся по возможности 6 раз, но не менее 3

раз. В зависимости от доступного количества лимфоцитов максимальное число повторов доходило у некоторых больных до 12.

Методы статистического анализа результатов работы

Результаты, полученные in vitro при сравнении разных противоопухолевых вакцин методом ELISpot, анализировали с помощью статистической программы BIOSTAT с использованием критериев Крускала— Уоллиса и Данна.

Изменения в числе клеток, активирующихся в ответ на стимуляцию опухолевым антигеном у больных, получавших вакцинацию ДК-вакциной, анализировались с помощью программы SPSS Statistics v.17.0 с использованием теста Фридмана.

Связь между наличием иммунного ответа и реакцией гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ) и прогрессированием заболевания у больных, получавших противоопухолевые вакцины, анализировали с помощью программы SPSS Statistics v.17.0 с использованием метода %2.

Различия во времени до прогрессирования между больными, у которых был или не был выявлен иммунный ответ, оценивались с помощью программы SPSS Statistics v.17.0 с использованием лог-рангового критерия.

Значимость изменений в уровне маркера S100 у больных меланомой в процессе вакцинации оценивалась с помощью программы SPSS Statistics v.17.0 с использованием критерия Вилкоксона.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Мы исследовали возможности метода ЕПБро! для оценки иммунного ответа в ответ на вакцинацию различными противоопухолевыми вакцинами на основе ДК и генетически модифицированных ОпК. Этот вопрос представляет определенную научную проблему. Во-первых, все чаще высказываются мнения о неприменимости традиционных критериев оценки эффективности противоопухолевой терапии к методам иммунотерапии. Во-вторых, исследования новых противоопухолевых препаратов по этическим соображениям проводятся, в первую очередь, у больных с поздними стадиями онкологических заболеваний, у которых все другие методы лечения исчерпали свою эффективность. Ожидать высокой эффективности нового препарата у таких больных в большинстве случаев не приходится. Поэтому важно зарегистрировать любые, даже самые минимальные изменения на клеточном и молекулярном уровне, происходящие в ответ на экспериментальное лечение, чтобы определить его перспективы и пути усовершенствования.

Адаптация метода ЕЫ8ро1

Проведенная работа свидетельствует, что метод ЕЫБро! — удобный и надежный способ оценки иммунного ответа. Нами выполнено более 70 тестов на образцах крови 30 больных меланомой и 4 здоровых доноров. Один тест может быть выполнен 1 исследователем за 2 дня, результаты хорошо воспроизводятся и отличаются значительной объективностью. Опыт показал дополнительное достоинство метода, чрезвычайно важное в клиническом исследовании: для его выполнения требуется минимальное количество клеток. При использовании выбранной нами схемы эксперимента для оценки иммунного ответа в каждой точке достаточно порядка 1-1,5 млн. мононуклеарных клеток периферической крови, в то время как для проведения, например, любого цитофлюориметрического исследования требуются

количества клеток порядка нескольких миллионов. Удобство метода подтверждается тем, что ни один тест не был сорван из-за нехватки клеток. Иногда получение достаточного объема крови у больных с поздними стадиями злокачественных новообразований может быть затруднено или противопоказано; для оценки иммунного ответа методом ELISpot достаточно 4-5 мл периферической крови.

Точность метода позволяет оценивать изменения на уровне отдельных клеток. В результате проведенных экспериментов мы выбрали оптимальное число клеток в одной пробе — 100 тыс. клеток на, при этом наблюдавшееся число клеток, продуцирующих ИФН-у в ответ на стимуляцию опухолевым лизатом, в большинстве случаев составляло от 0 до 10. Возможно, использование большего количества клеток в пробе (например, 1 млн. клеток на лунку) позволило бы повысить точность метода, но и соответствующим образом увеличило бы расход клеток.

Сравнительное исследование иммуногенности ДК-вакцин

В экспериментальной части работы мы сравнили активацию лимфоцитов в ответ на стимуляцию различными вариантами противоопухолевых вакцин на основе ДК, применение которых описывается в литературе: незрелые ДК, ДК, нагруженные опухолевым лизатом, и ДК, слитые с опухолевыми клетками (дендритомы). В клинических исследованиях показано, что незрелые ДК скорее вызывают иммунную толерантность, чем активацию противоопухолевого ответа (Roncarolo М. et al., 2001; Jonuleit Н. et al., 2000), в то время как нагрузка ДК опухолевым лизатом может повышать терапевтический эффект (Nestle F. et al., 1998; Holtl L. et al., 2002; Chang A. et al., 2002).

В Лаборатории экспериментальной диагностики и биотерапии опухолей

НИИ экспериментальной диагностики и терапии опухолей РОНЦ

им. Н.Н. Блохина РАМН разработана методика слияния опухолевых и

12

дендритных клеток с получением гибридных клеток — дендритом (по аналогии с гибридомами, т.к. для слияния клеток используется соответствующим образом модифицированная гибридомная технология). Предполагается, что при слиянии опухолевой клетки с дендритной весь спектр опухолевых антигенов, в том числе и пока что не идентифицированных, становится доступным для процессирования соответствующими внутриклеточными аппаратами дендритной клетки, и презентируется в комплексе с молекулами главного комплекса гистосовместимости I и II классов. Презентация антигена Т-лимфоцитам при этом происходит в сочетании со всем широким спектром костимулирующих молекул, синтезируемых и секретируемых ДК (Gong J. et al, 1998, 2000; Koido S. et al, 2002).

Эффективность слияния ДК с опухолевыми обычно не превышает 50% и в среднем колеблется в пределах 25-30% (Koido S. et al, 2002, 2007). Согласно нашим данным, после слияния ДК и ОпК с помощью полиэтиленгликоля (ПЭГ) образуется смесь клеток, содержащая приблизительно 38% слитых клеток (дендритом), 28% не слившихся ДК и 25% не слившихся облученных ОпК. На рис. 3 показаны результаты исследования эффективности слияния дендритных и опухолевых клеток. До слияния облученные опухолевые клетки окрашивали витальным красителем РКН 26, флюоресцирующим - зеленым цветом. Облученные ОпК сливали с ДК с помощью обработки ПЭГ. После слияния суспензию клеток окрашивали моноклональными антителами к CD 11с, конъюгированными с фикоэритрином (красная флюоресценция). В итоге после слияния и окраски ДК и ОпК образуется суспензия клеток, содержащая смесь окрашенных зеленым красителем ОпК, окрашенных красным красителем ДК и слитых клеток, несущих две метки — красную и зеленую. Число окрашенных клеток оценивали с помощью проточной цитофлюориметрии.

Мы показали, что in vitro зрелые ДК, нагруженные опухолевым лизатом, и

дендритомы вызывают статистически значимую активацию лимфоцитов,

13

причем отмечена тенденция к повышению активности дендритом по сравнению со всеми другими вариантами ДК-вакцин (рис. 4). Сравнивалось количество лимфоцитов, активирующихся в ответ на стимуляцию ДК, нагруженными лизатом melKor, незрелыми ДК, цитокин-активированными ДК и в ответ на стимуляцию дендритомами, полученными слиянием ДК с опухолевыми клетками линии mel Ког. Активация лимфоцитов оценивалась по продукции ими IFN-y и выявлялась с помощью реакции ELISpot.

Результаты нашего исследования свидетельствуют о перспективности проведения клинических исследований вакцины на основе дендритом и об удобстве метода ELISpot для экспериментальных исследований.

File: 12/12/08.005 Sampte ID: N Tube:

Acquisition Date: l2-Dec-08 Gated Events: 4419 X Parameter FL1-H (Log) Quad Location: 12. 22

Quadrant Statistics

Log Oata Units: Linear Values Patient ID: Panel; Gate: G1

Total Events: 7513 V Parameter: FL2-H (Log)

Quad Events % Gated % Total XMean X Geo Mean Y Mean Y Geo Mean

UL 1230 27.83 16.37 8.24 7.93 76.49 68.70

ив 1690 38.24 22.49 26.27 22.54 119.89 108.35

LU 414 9.37 5.51 6.08 5.33 7.34 4.75

LR 1085 24.55 14.44 50.60 42.50 2.07 1.35

Рисунок 3. Результаты проточной цитофлюориметрии. А — выбор гейта (субпопуляции клеток, чьи размер и плотность соответствуют исследуемым клеткам); В — оценка флюоресценции; С — данные о процентном соотношении клеток. IX, нижний левый квадрант — неокрашенные клетки; иЬ, верхний левый квадрант — дендритные клетки, окрашенные моноклональными антителами к СБ 11 с, конъюгированными с фикоэритрином (красная флюоресценция); ЬЯ, нижний правый квадрант — опухолевые клетки, окрашенные витальным красителем РКН 26 (зеленая флюоресценция); 1Ж, верхний правый квадрат — клетки, несущие двойную метку.

СТИМУЛЯТОРЫ

Рисунок 4. Результаты исследования активации донорских лимфоцитов в ответ на стимуляцию различными противоопухолевыми вакцинами.

* — группы, статистически достоверно отличающиеся по сравнению с негативным контролем (р<0,05, критерии Крускала—Уоллиса и Данна).

Далее, метод ELISpot был применен для оценки иммунного ответа в клиническом исследовании у больных меланомой, получающих вакцины на основе аутоК, нагруженных лизатом ОпК линии mel Kor, и на основе клеток линии mel Kor, модифицированных геном GM-CSF («Мелавак»). Всего в анализ включено 15 больных, получавших вакцину на основе аутоДК (8 мужчин и 7 женщин, средний возраст 53 года), и 7 больных, получавших вакцину «Мелавак» (2 женщины, 5 мужчин).

Критерии оценки иммунного ответа у больных

Нами были разработаны критерии оценки иммунного ответа у больных, получавших вакцинотерапию. Для исключения неспецифической (фоновой) активации, не связанной со стимуляцией клеток лизатом, была рассчитана разница (D) между средним числом клеток на 100 ООО лейкоцитов, активирующихся в ответ на стимуляцию лизатом (N„m), и числом клеток, продуцирующих ИФН-у в отсутствие стимуляции (iV„/CT):

D А/диз -А/ц/ст

Критерием наличия иммунного ответа на вакцинацию мы приняли увеличение разницы (D) между средним числом клеток на 100 ООО лейкоцитов, активирующихся в ответ на стимуляцию лизатом ([Nnm), и числом клеток, продуцирующих ИФН-у в отсутствие стимуляции (N„/ст), в процессе вакцинации. Иными словами, иммунный ответ констатировался у больных, у которых D хотя бы в одной из точек в процессе вакцинации (D\, D2 или Z)3) оказалось больше, чем D до вакцинации (Do).

Оценка иммунного ответа у больных, получавших вакцинотерапию

Результаты исследования иммунного ответа позволяют помочь в разрешении многих вопросов, остающихся открытыми. Так, по-прежнему нет единого мнения о том, какие именно ДК — зрелые или незрелые — более эффективны для терапевтического применения. Есть сведения, что незрелые ДК могут скорее вызывать анергию иммунной системы, чем иммунный ответ против опухоли, в то время как зрелые ДК, несущие большое количество молекул главного комплекса гистосовместимости и других ко стимулирующих факторов, вызывают и поддерживают специфический иммунный ответ (Dhodapkar М. et al., 2002; Butterfield L. et al., 2006). Эти сведения отчасти подтверждаются нашим экспериментальным исследованием — зрелые ДК

значительно сильнее стимулируют активацию лимфоцитов, чем незрелые (хотя наши результаты и не дают сведений о других эффектах ДК, как, например, развитие анергии при использовании незрелых ДК). В связи с этим в клиническом исследовании мы использовали ДК, чья терминальная дифференцировка была индуцирована цитокиновым коктейлем, включающим фактор некроза опухолей а — такая обработка ведет к образованию зрелых ДК с высокой экспрессией СВ83.

Остается нерешенным вопрос оптимального источника антигенов для нагрузки ДК, напрямую связанный с методом оценки иммунного ответа на них. Идентифицировано большое число белков, в той или иной степени ассоциированных с клетками меланомы, хотя ни один из них не специфичен. Исследования продолжаются, но уже можно предположить, что у человека не будет найдено антигенов, специфичных для злокачественных опухолей вообще или для какой-то отдельно опухоли в частности. В связи с этим перспективным будет поиск комбинированных схем терапии, как это происходит в области исследований низкомолекулярных ингибиторов опухолевых тирозинкиназ (сочетание нескольких таргетных препаратов против разных сигнальных путей, вовлеченных в канцерогенез, синергично повышает их эффективность) или разработка «политаргетных» иммунопрепаратов — терапевтических вакцин, направленных сразу против множества ОАА.

Примером такого препарата может служить исследованная нами вакцина на

основе ДК, нагруженных опухолевым лизатом. Преимущество подобного

подхода заключается в том, что ДК, нагруженные цельным белком, могут быть

более эффективны для индукции антиген-специфического иммунного ответа, за

счет активации как СБ4+ хелперов, так и СБ8+ цитотоксических Т-

лимфоцитов. Этот иммунный ответ может быть направлен против широкого

спектра антигенов, независимо от аллеля НЬА. Активация и СБ4+ хелперов, и

СБ8+ цитотоксических Т-лимфоцитов представляется необходимой для

18

развития эффективного иммунного ответа (Schumacher L. et al, 2004), а выработка Т-лимфоцитов против множества антигенов снижает вероятность ухода опухоли от иммунного ответа с помощью снижения экспрессии какого-то одного антигена.

В работе использованы клетки меланомы линии mel Kor, полученной в Лаборатории экспериментальной диагностики и биотерапии опухолей НИИ ЭДиТО. Клетки этой линии экспрессируют широкий спектр ОАА и удобны в использовании: быстрый рост клеток in vitro позволяет получать их в большом количестве. Таким образом, выбор этой линии был связан в первую очередь с практическими соображениями, и любая другая линия могла бы быть выбрана с равной вероятностью. От применения аутологичного опухолевого лизата решено было отказаться в связи со сложностью и непредсказуемостью его получения и возможными различиями в экспрессии антигенов между больными, не позволяющими получить стандартизованный продукт и ограничивающими исследование Т-клеточного ответа. Исследования других авторов подтверждают недостаточную эффективность применения HLA-рестрицированных пептидов, возможно, в связи с нехваткой активации CD4+ Т-лимфоцитов (Butterfield L. et al, 2006), и развитие клинического ответа — при использовании цельноклеточного лизата (Palmer D. et al, 2009). Некоторыми исследователями высказывается опасение, что применение цельноклеточного лизата может повышать вероятность аутоиммунных осложнений лечения, однако нам не удалось найти исследований, в которых сообщалось бы о случаях серьезных аутоиммунных нарушений. Могут повышаться титры аутоантител, описаны отдельные случаи развития витилиго (в том числе и в исследовании, проводившемся нами).

Для стимуляции клеток в реакции ELISpot мы использовали тот же

антиген, что и для нагрузки ДК — лизат клеток mel Kor. Такой подход имеет те

же преимущества, что использование этого лизата для вакцинации: имеется

19

теоретическая возможность выявления иммунных клеток, активирующихся в ответ на широкий спектр опухолеассоциированных антигенов, которые экспрессирует данная клеточная линия, вне зависимости от экспрессии аллеля HLA, в контексте которого презентируется тот или иной эпитоп. В то же время, такой подход не позволяет выявить клетки, реактивных по отношению к тому или иному антигену. В будущих исследованиях представляет интерес использование отдельных антигенных пептидов для стимуляции иммунных клеток в реакции ELISpot.

К сожалению, не существует единых стандартов исследования иммунного ответа с помощью метода ELISpot (Hoos et al., 2010). Каждая исследовательская группа использует свою модификацию теста, и если материалы и условия проведения в большинстве исследований относительно однородны, то критерии оценки ответа используются самые разнообразные. Помимо этого, прямые сравнения результатов исследований невозможны в связи с отличиями самих исследуемых препаратов. Большинство исследований выполнено на малых группах больных, а изучавшиеся вакцины и антигены, применявшиеся для стимуляции лимфоцитов в реакции ELISpot, принципиально отличались от использовавшихся в нашем исследовании (Matsumoto A. et al., 2007; Kim J. et al, 2007; Hirschowitz E. et al., 2007; Butterfield L, et al., 2008, Wheeler C. et al., 2008).

Согласно литературным данным, иммунный ответ методом ELISpot

выявляется у 30-70% больных, получавших иммунотерапию

противоопухолевыми вакцинами на основе ДК (Butterfield LH, et al., 2008;

Palmer DH. et al., 2009). Такой значительный разброс связан с небольшим

числом больных в большинстве исследований и различными, зачастую

принципиально отличными вариантами противоопухолевых вакцин,

оценивавшихся в исследованиях. Тем не менее, результаты нашего

исследования иммунного ответа у больных, получавших иммунотерапию, в

20

общем и в целом сопоставимы с результатами других сходных исследований: выявлено увеличение числа клеток, активирующихся в ответ на стимуляцию опухолевыми антигенами в процессе иммунизации вакцинами на основе аутоДК и гм-ОпК, наблюдалось приблизительно у трети больных с поздними стадиями меланомы (у 5 из 15 больных, получавших вакцину на основе аутоДК, и у 3 из 8, получавших вакцину на основе гм-ОпК).

Иммунный ответ и реакция гиперчувствительности замедленного типа

У части больных, получавших иммунотерапию противоопухолевой вакциной на основе аутоДК, нагруженных лизатом ОпК, наблюдалось развитие реакции гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ), проявлявшейся преимущественно изменениями в месте введения вакцины — покраснение, отек, зуд, жжение. В частности, ГЗТ наблюдалось у 6 (40%) из 15 больных, у которых был оценен иммунный ответ по данным метода ELISpot. При анализе данных с помощью метода л/2 установлено, что реакция ГЗТ наблюдалась достоверно чаще у больных с иммунным ответом (р<0,05). В целом, реакция ГЗТ часто встречается у больных, получающих вакцины на основе ДК (Escobar A. et al., 2005; Lopez М. et al., 2009). Однозначно трактовать этот феномен сложно в связи с неспецифичностью реакции ГЗТ. Возможно, это является проявлением повышенной иммунореактивности отдельных больных.

Прогрессирование заболевания и иммунный ответ

Средняя продолжительность наблюдения за 15 больными, получавшими вакцину на основе аутологичных ДК, составила 8,4±4 мес (медиана 8,5, от 3 до 18 мес).

Прогрессирование заболевания за время наблюдения у больных, получавших вакцину на основе аутоДК, наступило у 10 из 15 человек. Отмечена тенденция к увеличению времени до прогрессирования среди

21

больных с выявленным иммунным ответом, однако статистический значимости эти различия не достигли (рис. 5), что, впрочем, не удивительно с учетом поздней стадии заболевания у включенных в исследование больных. Отсутствие связи между иммунологической эффективностью вакцинотерапии и клиническими изменениями отмечают и некоторые зарубежные исследователи (Butterfield L. et al, 2008; Romero Р. et al, 2004).

p = 0,281 (лог-ранговый критерий)

-г-

to

т

15

I

Время до прогрессирования (мес)

Иммунного ответа нет

Иммунный ответ есть

Рисунок 5. Время до прогрессирования у больных меланомой, получавших противоопухолевую вакцину на основе аутологичных дендритных клеток, нагруженных опухолевым лизатом (п=15).

Уровень 8100 и иммунный ответ

У больных был исследован уровень опухолевого маркера 8100. Уровень маркера исследовался 2 раза: до вакцинации и во время нее (3-я точка во время вакцинации). Уровень 8100 по данным производителя тест-системы у здоровых лиц составляет в среднем 54 нг/л, по данным обследования здоровых добровольцев, проведенных в лаборатории ИНТЕРМЕД-Биоспектр, — 69,4±38,13 нг/л.

Значительный объем опухолевой ткани, прогрессирование заболевания и неблагоприятный прогноз у больных, включенных в исследование, подтверждаются изменением уровня опухолевого маркера 8100: уровень этого маркера был исходно высоким у большинства участников исследования и увеличивался на фоне вакцинации (рис. 6, 7).

У больных, получавших вакцину на основе аутологичных ДК, можно отметить достаточно закономерное явление: частота иммунных ответов была несколько выше среди больных с исходно низким уровнем маркера 8100, то есть можно предположить, что вакцинотерапия более эффективна у больных с исходно низкой активностью заболевания. Это наблюдение может иметь большое значение для дальнейших исследований иммунотерапевтических препаратов. Во-первых, этот факт свидетельствует о перспективности исследования методов иммунотерапии в адъювантном режиме и у больных на ранних стадиях злокачественных новообразований. Во-вторых, уровень белка 8100 может использоваться как возможный фактор, предсказывающий эффективность иммунотерапии.

Всего ИО есть (п=15) (п=5)

До вакцинации

В процессе вакцинации

Рисунок 6. Изменение уровня маркера S100 в процессе вакцинации в зависимости от наличия иммунного ответа по данным реакции ELISpot у больных, получавших аутологичные дендритные клетки, нагруженные опухолевым лизатом клеток линии mel Kor (п=15). ИО — иммунный ответ.

ио и<

есть (I

(п=3)

До вакцинации

Всего ИО ИО нет

(п=7) есть (п=4)

(п=3)

В процессе вакцинации

Рисунок 7. Изменение уровня маркера в 100 в процессе вакцинации в зависимости от наличия иммунного ответа по данным реакции ЕЫ8ро1 у больных, получавших опухолевые клетки линии те1 Ког, трансфецированные геном ОМ-СЗБ (вакцина «Мелавак», п=7). ИО — иммунный ответ.

Заключение

В заключение можно отметить, что метод ЕЫБро! — удобный способ оценки иммунного ответа у онкологических больных, получающих иммунотерапевтические препараты. Даже у больных с поздними стадиями злокачественных новообразований он позволяет выявить изменения в числе иммунореактивных клеток. Результаты исследования согласуются с другими иммунологическими показателями, отражающими общую иммунореактивность организма и опухолевую нагрузку, но, в отличие от них, дают также представление о развитии опухолеспецифических реакций.

Отличительной особенностью метода является его относительная простота, объективность, позволяющая получать воспроизводимые результаты, и удобство применения в рамках клинических исследований, когда количество исследуемого материала ограничено.

Значительной проблемой остается отсутствие единых стандартов проведения исследований с помощью метода ЕЫБро!, не позволяющее сравнивать между собой результаты разных авторов. В клинических исследованиях противоопухолевых вакцин на основе ДК и гм-ОпК метод ЕЫБро! является ценным инструментом оценки даже самых минимальных изменений в числе и функциональной активности опухолеспецифических иммунных клеток.

выводы

1. В результате проведенной работы метод ELISpot был успешно адаптирован и внедрен для оценки иммунного ответа у больных, получавших противоопухолевую вакцинотерапию.

2. Исследование in vitro показало статистически значимую активацию мононуклеарных клеток периферической крови (увеличение числа ИФН-у-продуцирующих лейкоцитов) в ответ на стимуляцию дендритомами и аутологичными дендритными клетками, нагруженными опухолевым лизатом.

3. Исследование иммунного ответа методом ELISpot у больных меланомой кожи, получавших противоопухолевую вакцинотерапию, выявило активацию мононуклеарных клеток периферической крови у 30-40% больных.

4. Связи между развитием иммунного ответа и временем до прогрессирования не выявлено; однако, отмечена статистически значимая связь между иммунным ответом и реакцией гиперчувствительности замедленного типа.

5. Выявлено увеличение частоты иммунного ответа у больных с низким уровнем опухолевого маркера S100, то есть с наименьшей опухолевой нагрузкой, и значительное увеличение уровня S100 на протяжении вакцинации у больных без иммунного ответа, что может служить критерием для отбора кандидатов на проведение иммунотерапии.

СПИСОК ПУБЛИКАЦИЙ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Никитин, К.Д. Комбинированная терапия меланомы с использованием дендритноклеточных вакцин и гипертермии / К.Д. Никитин // Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. — 2006. — Т. 5, №4, —С. 16.

2. Смирнова, А.В. Исследование роли экспрессии молекул HLA I и II классов в активации лимфоцитов / А.В. Смирнова, М.И. Лукашина, И.Н. Михайлова, Л.В. Демидов, Е.В. Огородникова, Л.Ю. Арустумян, К.Д. Никитин, А.Ю. Барышников // Российский биотерапевтический журнал. — 2006. — Т. 5, № 4. — С. 8-14.

3. Никитин, К.Д. Комбинация противоопухолевой вакцины на основе дендритных клеток и локальной гипертермии для терапии злокачественных новообразований / К.Д. Никитин, A.M. Козлов, М.И. Лукашина, А.В. Смирнова, А.Ю. Барышников // Российский биотерапевтический журнал. — 2007. — Т.6, № 1. — С. 61.

4. Никитин, К.Д. Противоопухолевые вакцины на основе белков теплового шока (обзор литературы) / К.Д. Никитин, А.Ю. Барышников // Российский биотерапевтический журнал. — 2007. —Т. 6, № 2. — С. 312.

5. Никитин, К.Д. Белки теплового шока — биологические функции и перспективы применения / К.Д. Никитин // Клиническая онкогематология. — 2008. — Т. 1, №2. — С. 125-130.

6. Nikitin, K.D. Study of hyperthermia-induced changes in dendritic cells immunophenotype (preliminary results) / K.D. Nikitin // Materials of IX international conference of young oncologists "Current problems of experimental and clinical oncology", Kiev, Ukraine. — 2008. — P. 122.

7. Барышников, А.Ю. Сравнительное исследование иммуногенности противоопухолевых вакцин на основе дендритных клеток и дендритом

in vitro / А.Ю. Барышников, К.Д. Никитин, А.Н. Никифорова, М.В. Рубцова // Аллергология и иммунология. — 2009. — Т. 10, №3. — С. 361-363.

8. Бармашов, А.Е. Оценка специфического противоопухолевого иммунитета методом ELISpot у больных, получающих вакцину «Мелавак» / А.Е. Бармашов, К.Д. Никитин, И.Н. Михайлова, Л.Ф. Морозова, А.Н. Иншаков, К.А. Барышников, JI.B. Демидов, А.Ю. Барышников // Российский биотерапевтический журнал. — 2010. — Т. 9, №3. — С. 3740.

9. Никитин, К.Д. Противоопухолевые вакцины на основе дендритом / К.Д. Никитин, М.А. Рубцова, И.А. Утяшев, А.Ю. Барышников // Российский Онкологический журнал. — 2010. — №2. — С. 48-53.

10. Михайлова, И.Н. Метод ELISpot для оценки иммунного ответа на противоопухолевые вакцины на основе аутологичных дендритных клеток, нагруженных опухолевым лизатом / И.Н. Михайлова, К.Д. Никитин, H.H. Петенко, И.А. Утяшев, К.А. Парсункова, М.А. Рубцова, Г.З. Чкадуа, К.А. Барышников, JI.B. Демидов, А.Ю. Барышников // Российский биотерапевтический журнал. — 2010, — Т. 9, №4. — С.55-60.

Подписано в печать 04.04.11 Формат 60x84/16 Бумага офсетная Гарнитура «Times»

Тираж 100 экз. Заказ №30061983

Отпечатано ОАО «Алекс-Дизайн»

 
 

Оглавление диссертации Никитин, Кирилл Дмитриевич :: 2011 :: Москва

СПИСОК ПРИНЯТЫХ В РАБОТЕ СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. Иммунотерапия злокачественных новообразований (обзор литературы).

1.1. Современное состояние иммунотерапии злокачественных опухолей.

1.2. Дендритные клетки.

1.3. Дендритомы.

1.4. Меланома — клиническая и иммунологическая характеристика.

1.5. Опухолевый маркер Б100.

1.6. Методы исследования иммунного ответа.

1.6.1. Метод ЕЬКро!.

1.6.2. Исследования иммунного ответа методом ЕЫ8ро1.

ГЛАВА 2. Использованные материалы и методы исследования.

2.1. Список использованных реагентов.

2.2. Методы получения клеточного материала.

1.6.3. Получение периферической крови и лейкоцитарной массы.

1.6.4. Выделение мононуклеарных клеток из периферической крови и лейкоцитарной массы.

1.6.5. Культивация незрелых дендритных клеток.

1.6.6. Культивация опухолевых клеток линии Ме1Ког.

2.3. Методы криоконсервации клеточного материала.

2.3.1. Замораживание мононуклеарных клеток периферической крови

2.3.2. Размораживание мононуклеарных клеток периферической крови

2.4. Методы получения опухолевого лизата.

2.4.1. Получение опухолевого лизата.

2.4.2. Определение концентрации белка в опухолевом лизате.

2.5. Методы получения дендритноклеточных вакцин.

2.5.1. Индукция терминальной дифференцировки дендритных клеток

2.5.2. Нагрузка дендритных клеток опухолевым лизатом.

2.5.3. Слияние опухолевых и дендритных клеток (получение дендритом)

2.5.3.1. Об лучение опухолевых клеток.

2.5.3.2.Получение дендритом.

2.6. Методы иммунологической оценки.

2.6.1. Проточная цитофлуориметрия.

2.6.1.1. Окрашивание клеток витальным красителем РКН67.

2.6.1.2. Реакция прямой поверхностной иммунофлуоресценции.

2.6.1.3. Проточная цитофлуориметрия.

2.6.2. Исследование уровня белка S100.

2.6.3. Оценка числа ИФН-у-продуцирующих лейкоцитов методом ELISpot.

2.7. Методы статистического анализа результатов работы.

ГЛАВА 3. Оценка изменений числа ИФН-у-продуцирующих лимфоцитов в ответ на стимуляцию дендритноклеточными вакцинами in vitro.

3.1. Схема эксперимента.

3.2. Исследование эффективности слияния опухолевых и дендритных клеток.

3.3. Исследование активации лимфоцитов.

ГЛАВА 4. Оценка иммунного ответа методом ELISpot у больных меланомой, получающих противоопухолевую вакцину на основе аутологичных дендритных клеток, нагруженных аллогенным опухолевым лизатом.

4.1. Краткое описание организации клинического исследования.

4.2. Критерии включения/невключения больных в исследование.

4.3. Цели исследования.

4.4. Исследование иммунного ответа на вакцинацию.

4.5. Характеристика больных.

4.6. Критерии оценки иммунного ответа.

4.7. Оценка иммунологических изменений.

4.8. Реакция гиперчувствительности замедленного типа и иммунный ответ.

4.9. Прогрессировать заболевания и иммунный ответ.

4.10. Уровень ЭКЮ у больных, получающих иммунотерапию.

ГЛАВА 5. Исследование иммунного ответа у больных меланомой, получающих противоопухолевую вакцину на основе опухолевых клеток, модифицированных геном СМ-С8Г.

5.1. Краткое описание организации клинического исследования.

5.2. Характеристика больных.

5.3. Исследование иммунного ответа на вакцинацию.

5.4. Уровень 8100 и иммунный ответ.

ГЛАВА 6. Обсуждение результатов исследования.

ВЫВОДЫ.

 
 

Введение диссертации по теме "Онкология", Никитин, Кирилл Дмитриевич, автореферат

Многочисленные исследования биологии опухолей и взаимоотношений между злокачественными новообразованиями и организмом в целом показали, что опухоли иммуногенны, но антигенный состав каждой конкретной опухоли уникален и индивидуален. Это свойство злокачественных новообразований легло в основу специального метода терапии — иммунотерапии. Иммунотерапия в онкологии изучает возможность лечения злокачественных новообразований за счет активизации и/или усиления противоопухолевого иммунного ответа в организме больного.

Среди современных методов иммунотерапии значительное внимание уделяется применению дендритных клеток (ДК) и препаратов на их основе. Пилотные клинические исследования показали, что ДК, нагруженные опухолевыми антигенами, вызывают развитие иммунного ответа, специфичного против опухолеассоциированных антигенов. Для нагрузки ДК опухолевыми антигенами разработаны различные методы, включая нагрузку синтетическими пептидами, опухолевыми лизатами, опухолевой РНК (Mayordomo J. et al., 1995; Celluzzi С. et al., 1996; Hsu F. et al., 1996; J. et al., 1997; Nestle F. et al., 1998; Gong Koido S. et al., 2000; Paglia P. et al., 2000; Russo V et al., 2000).

Принципиальным преимуществом иммунотерапии с применением ДК является теоретическая возможность индукции противоопухолевого ответа против всех антигенов, имеющихся в опухоли, без необходимости их идентификации. Тем не менее, остается ряд нерешенных вопросов. Так, традиционные критерии оценки эффективности лечения (опухолевый ответ, выживаемость и тому подобные), применяющиеся при исследовании лучевых, хирургических и химиотерапевтических методов лечения, недостаточно чувствительны для оценки эффективности иммунотерапевтических препаратов (Hoos et al., 2010). Кроме того, исследования новых противоопухолевых препаратов проводятся в первую очередь у больных поздними стадиями онкологических заболеваний, после того, как остальные методы лечения себя исчерпали, — то есть у людей с высокой вероятностью иммунологических нарушений.

В связи с этим приобретает особую важность разработка новых методов для оценки эффективности иммунотерапии онкологических заболеваний.

Предложено несколько методов оценки иммунного ответа у онкологических больных — исследование иммунного статуса, пролиферативные и цитотоксические тесты с лимфоцитами, тетрамерный анализ. Одним из наиболее удобных в практическом отношении и при этом высокоточным методом представляется реакция ELISpot — Enzyme-Linked ImmunoSpot — твердофазная модификация метода иммуноферментного анализа, позволяющая идентифицировать изменения иммунореактивности организма на уровне отдельных клеток. Однако, методика ELISpot изначально предложена для выявления В-лимфоцитов, продуцирующих специфические антитела, и широко используется для оценки вакцин для профилактики инфекционных заболеваний. Применение метода ELISpot для исследования противоопухолевых вакцин остается недостаточно изученным.

Цель исследования

Оценить с помощью метода ELISpot иммунный ответ при использовании терапевтических противоопухолевых вакцин.

Задачи исследования

• адаптировать методику ELISpot для оценки иммунного ответа у больных, получавших противоопухолевую иммунотерапию вакцинами на основе аутологичных дендритных клеток (аутоДК), нагруженных опухолевым лизатом, или аллогенных генно-модицифированных опухолевых клеток (гм-ОпК — вакцина «Мелавак»);

• изучить in vitro активацию лимфоцитов (увеличение числа интерферон [ИФН]-у-продуцирующих лимфоцитов) в ответ на стимуляцию аутологичными ДК, нагруженными опухолевыми антигенами;

• предложить критерии оценки иммунного ответа у больных злокачественными новообразованиями и оценить на их основе активацию лимфоцитов больных меланомой кожи, получаюших противоопухолевые вакцины на основе аутоДК или гм-ОпК в рамках клинического исследования;

• оценить связь между иммунным ответом на вакцинотерапию и другими клиническими и иммунологическими показателями.

Научная новизна работы

Впервые адаптирована методика ELISpot для исследования иммунных реакций у больных, получающих противоопухолевые вакцины на основе аутоДК и гм-ОпК.

Впервые с помощью метода ELISpot проведено исследование активации лимфоцитов in vitro в ответ на применение противоопухолевых вакцин на основе аутоДК.

Впервые предложены критерии оценки иммунологических изменений, выявляемых методом ELISpot у больных, получающих вакцинацию противоопухолевыми вакцинами на основе аутоДК и гм-ОпК.

Впервые оценен иммунный ответ у больных меланомой, получающих вакцины на основе аутоДК или гм-ОпК, в рамках клинического исследования.

Впервые исследована связь иммунного ответа с рядом клинических и иммунологических показателей.

Научно-практическая значимость работы

Результаты работы свидетельствуют о перспективности исследования новых иммунотерапевтических препаратов с помощью метода ЕЫБро!. Получены важные сведения об исследованных вакцинах, показана целесообразность проведения клинического исследования противоопухолевой вакцины на основе ДК, слитых с опухолевыми клетками (дендритом).

Публикации

По теме диссертации опубликовано 10 работ.

Объем и структура работы

Диссертация изложена на 127 страницах машинописного текста, включая библиографию и иллюстрации. Состоит из введения, литературного обзора, общей характеристики материалов и методов исследования, двух глав описания собственных исследований, главы обсуждения результатов и выводов. Список литературы включает 162 источника, в том числе 146 публикаций зарубежных авторов. Диссертация иллюстрирована 14 рисунками и сопровождается 20 таблицами.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ВАКЦИН МЕТОДОМ ELISpot"

ВЫВОДЫ

1. В результате проведенной работы метод ELISpot был успешно адаптирована и внедрена для оценки иммунного ответа у больных, получающих противоопухолевую вакцинотерапию.

2. Исследование in vitro показало статистически значимую активацию мононуклеарных клеток периферической крови (увеличение числа ИФН-у-продуцирующих лейкоцитов) в ответ на стимуляцию аутологичными дендритными клетками, нагруженными опухолевым лизатом, и дендритомами.

3. Исследование иммунного ответа методом ELISpot у больных меланомой кожи, получавших противоопухолевую вакцинотерапию, выявило активацию мононуклеарных клеток периферической крови у 30-40% больных (в зависимости от типа вакцины).

4. Связи между развитием иммунного ответа и временем до прогрессирования не выявлено; однако, отмечена статистически значимая связь между иммунным ответом и реакцией гиперчувствительности замедленного типа.

5. Выявлено увеличение частоты иммунного ответа у больных с низким уровнем опухолевого маркера S100 (то есть с наименьшей опухолевой нагрузкой) и значительное увеличение уровня S100 на протяжении вакцинации у больных без иммунного ответа, что может служить критерием для отбора кандидатов на проведение иммунотерапии.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2011 года, Никитин, Кирилл Дмитриевич

1. Барышников, А.Ю. Вакцинотерапия рака: от эксперимента к клинике / А.Ю. Барышников, Л.В. Демидов, И.Н. Михайлова, H.H. Петенко // Вестник Российской академии медицинских наук. 2007. - № 10. - С. 4648.

2. Демидов, Л.В. Профилактическая иммунотерапия метастатической меланомы (N1-2 МО) препаратом POLY-A/POLY-U после радикального хирургического лечения / Л.В. Демидов, И.Г. Богуш // Вестник РОНЦ им. Н. Н. Блохина РАМН. 1994. - Т. 5, № S. - С. 80-82.

3. Михайлова, И.Н. Первая фаза клинических испытаний противоопухолевой геномодифицированной вакцины, оценка иммунного статуса / И.Н. Михайлова, К.А. Барышников, О.С. Бурова, М.И. Лукашина, А.Л.

4. Смирнова, H.H. Петенко, И.А. Утяшев, JI.B. Демидов, А.Ю. Барышников // Российский биотерапевтический журнал. 2006. - Т. 5, № 3. - С. 51-54.

5. Бурова, A.B. Караулов, С.Л. Киселев, Л.В. Демидов, А.Ю. Барышников и1др. // Российский биотерапевтический журнал. 2009. - Т. 8, № 4. - С. 1316.

6. Михайлова, И.Н. Вакцинотерапия меланомы дендритными клетками / И.Н. Михайлова, H.H. Петенко, Л.В. Демидов // Российский биотерапевтический журнал. 2007. - Т. 6, № 3. - С. 8-18.

7. Хатырев, Т.К. Харатишвили, К.А. Парсункова, М.Д. Алиев, А.Ю. Барышников, JI.B. Демидов и др. // Российский биотерапевтический журнал. 2007. - Т. 6, №2. - С. 39-44.

8. Харкевич, Г.Ю. Интерфероны альфа в адъювантной терапии меланомы кожи неблагоприятного прогноза: проблемы и перспективы высокодозных режимов / Г.Ю. Харкевич, JI.B. Демидов // Фарматека. 2008. - № 18. - С. 34-41.

9. Шубина, И.Ж. Адоптивная иммунотерапия злокачественных новообразований / И.Ж. Шубина, А.Г. Блюменберг, С.М. Волков, JI.B. Демидов, М.В. Киселевский // Вестник Российской академии медицинских наук. 2007. - № 11.-С. 9-15.

10. Akasaki Y. Antitumor effect of immunizations with fusions of dendritic and glioma cells in a mouse brain tumor model. / Akasaki Y., Kikuchi Т., Homma S., Abe Т., Kofe D. and Ohno T. // J. Immunother. — 2001 — 24, 106-113

11. Akiyama Y. Clinical response in Japanese metastatic melanoma patients treated with peptide cocktail-pulsed dendritic cells /Akiyama Y, Tanosaki R, Inoue N et al. // J Transí Med — 2005 3:4

12. Avigan D. Fusion cell vaccination of patients with metastatic breast and renal cancer induces immunological and clinical responses / Avigan D, Vasir B, Gong J et al. // Clin. Cancer Res. 2004; 10: 4699-708.

13. Avigan D.E. Phase I/II study of vaccination with electrofused allogeneic dendritic cells/autologous tumor-derived cells in patients with stage IV renal cell carcinoma / Avigan D.E., Vasir В., George D.J., Oh W.K., Atkins M.B.,

14. McDermott D.F, Kantoff P.W, Figlin R.A, Vasconcelles M.J, Xu Y, Kufe D, Bukowski R.M. // J Immunother. 2007 0ct;30(7):749-61

15. Azuma T. Dendritic cell immunotherapy for patients with metastatic renal cell carcinoma: University of Tokyo experience / Azuma T, Horie S, Tomita K et al. // Int. J. Urol. 2002; 9: 340-6.

16. Balch CM. Prognostic factors analysis of 17,600 melanoma patients: validation of the American Joint Committee on Cancer melanoma staging system. / Balch CM, et al // J Clin Oncol — 2001 —19: 36223634

17. Baldo M. Spontaneous regression of subcutaneous metastasis of cutaneous melanoma / Baldo M, Schiavon M. // Plast. Reconstr. Surg. 1992. - 90. - P. 1073-6

18. Banchereau J. Immune and clinical responses in patients with metastatic melanoma to CD34(+) progenitor-derived dendritic cell vaccine. / Banchereau J, Palucka AK, Dhodapkar M et al. // Cancer Res — 2001 — 61:6451-6458

19. Banchereau J. Dendritic cells and the control of immunity / Banchereau J, Steinman RM // Nature 1998, 392:245-252.

20. Barbuto J. Dendritic cell-tumor cell hybrid vaccination for metastatic cancer / Barbuto JA, Ensina LF, Neves AR et al. // Cancer Immunol. Immunother. 2004; 53: 1111-18.

21. Bastiaannet E. Level of fluorodeoxyglucose uptake predicts risk for recurrence in melanoma patients presenting with lymph node metastases / Bastiaannet E, Hoekstra OS, Oyen WJ, Jager PL, Wobbes T, Hoekstra HJ. // Ann Surg Oncol. 2006;13:919-26

22. Bedrosian I. Intranodal administration of peptide-pulsed mature dendritic cell vaccines results in superior CD8+ T-cell function in melanoma patients / Bedrosian I, Mick R, Xu S et al // J Clin Oncol — 2003 —21:3826-3835

23. Boczkowski D. Dendritic cells pulsed with RNA are potent antigen-presenting cells in vitro and in vivo / Boczkowski D, Nair SK, Snyder D, Gilboa E. // J Exp Med 1996; 184:465-72.

24. Bodurtha A. Spontaneous regression of malig nant melanoma / Bodurtha A. // In: Clarke WH, Goldman M, Mastrangelo JM (eds) Human malignant melanoma. Grune & Stratton, New York, 1979. 227

25. Boon T. Human T cell responses against melanoma / Boon T, Coulie PG, Van den Eynde BJ, et al. // Annu Rev Immunol 24:175-208, 2006

26. Boon T. Human T-Cell Responses Against Melanoma / Boon T., Pierre C., Benoiit J. et al. // Annu. Rev. Immunol. 2006. - 24. - 6.1-6.3

27. Bruggen P. Tumor-specific shared antigenic peptides recognized by human T cells / Bruggen P., Zhang Y., Chaux P. et al. // Immunol. Rev. 2002. - 188. -P. 51-64;

28. Celluzzi C. Peptide-pulsed dendritic cells induce antigen-specific; CTL-mediated protective tumor immunity. / Celluzzi CM, Mayordomo JI, Storkus WJ, et al. // J Exp Med 1996;183:283-7

29. Cerundolo V. Dendritic cells: a journey from laboratory to clinic. / Cerundolo V, Hermans IF, Salio M. // Nat Immunol 2004;5:7-10

30. Chang AE. A phase I trial of tumor lysate-pulsed dendritic cells in the treatment of advanced cancer / Chang AE, Redman BG, Whitfield JR et al. // Clin. Cancer Res. 2002; 8: 1021-32.

31. Copier J. Improving the efficacy of cancer immunotherapy. / Copier J, Dalgleish AG, Britten CM, et al. // Eur J Cancer. 2009;45(8): 1424-1431.

32. Czerkinsky C. A solid-phase enzyme-linked immunospot (ELISPOT) assay for enumeration of specific antibody-secreting cells. / Czerkinsky C, Nilsson L,

33. Nygren H, Ouchterlony O, Tarkowski A. // J Immunol Methods — 1983 — 65 (1-2): 109-21

34. Dhodapkar MV. Antigen-bearing immature dendritic cells induce peptide-specific CD8(-)regulatory T cells in vivo in humans / Dhodapkar MV, Steinman RM. //Blood 2002;100:174-177

35. Dutoit V. Degeneracy of antigen recognition as the molecular basis for the high frequency of naive A2/Melan-A peptide multimer+ CD8+ T cells in humans / Dutoit V., Rubio-Godoy V., Pittet M. et al. // J. Exp. Med. 2002. -196.-P. 207-16

36. Eggermont MM. Randomized trials in melanoma: An update. / Eggermont MM // Surg Oncol Clin N Am 15:439-451, 2006

37. Eigentler TK. Palliative treatment of disseminated malignant melanoma: A systemic review of 41 randomised clinical trials / Eigentler TK, Caroli UM, Radny P, et al // Lancet Oncol 4:748-759, 2003

38. Escobar A. Dendritic cell immunizations alone or combined with low doses of interleukin-2 induce speciWc immune responses in melanoma patients / Escobar A, Lopez M, Serrano A et al. // Clin Exp Immunol — 2005 — 142:555-568

39. Eynde B.J. T cell defined tumor antigens / Eynde B.J., Bruggen P. // Curr. Opin. Immunol. 1997. - 9(5). - 684-93;

40. Finke LIT. Lessons from randomized phase III studies with active cancer immunotherapies—outcomes from the 2006 meeting of the Cancer Vaccine Consortium (CVC) / Finke LH, Wentworth K, Blumenstein B, et al. // Vaccine. 2007;25(suppl 2):B97-B109.

41. Gitlitz BJ. A pilot trial of tumor lysate-loaded dendritic cells for the treatment of metastatic renal cell carcinoma / Gitlitz BJ, Belldegrun AS, Zisman A et al. // J. Immunother. 2003; 26: 412-19.

42. Gogas H. Prognostic significance of autoimmunity during treatment of melanoma with interferon / Gogas, H., Ioannovich, J., Dafni, U., et al. // N Engl J Med 2006;354:709-18

43. Gong J. Induction of antigen-specific antitumor immunity with adenovirus transduced dendritic cells / Gong J, Chen L, Chen D, et al. // Gene Ther 1997;4:1023-8

44. Gong J. Reversal of tolerance to human MUC1 antigen in MUC1 transgenic mice immunized with fusions of dendritic and carcinoma cells / Gong J., Chen D., Kashiwaba M., et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1998; 95:6279-83

45. Gong J. Induction of antitumor activity by immunization with fusions of dendritic and carcinoma cells. / Gong J., Chen D., Kashiwaba M., Kufe D. // Nat. Med., 1997; 3:558-61

46. Gong J. Fusions of human ovarian carcinoma cells with autologous or allogeneic dendritic cells induce antitumor immunity / Gong J., Nikrui N., Chen D., et al. //J. Immunol., 2000; 165:1705-11

47. Guo G. Antitumor activity of a fusion of esophageal carcinoma cells with dendritic cells derived from cord blood / Guo G., Chen S., Zhang J., Luo L., Yu J., Dong H., Xu H., Su Z. Wu L. // Vaccine — 2005 — 23, 5225-5230

48. Guo HB. Clinical significance of serum SI00 in metastatic malignant melanoma / Guo HB, Stoffel-Wagner B, Bierwirth T, Mezger J, Klingmuller D. // Eur J Cancer. 1995;31 A:924-8

49. Hanagiri T. Analysis of one of the rare melanoma patients with a spontaneous CTL response to a MAGE-A3 peptide presented by HLA-A1 / Hanagiri T., Bar en N., Neyns B. et al. // Cancer Immunol Immunother. 2006. -55(2).-P. 178-8

50. Harris M. Monoclonal antibodies as therapeutic agents for cancer. / Harris M. // Lancet Oncol 2004; 5:292-302

51. Hauschild A. Predictive value of serum S100B for monitoring patients with metastatic melanoma during chemotherapy and/or immunotherapy / Hauschild A, et al. // Br J Dermatol — 1999 — 140: 1065-1071

52. Hersey P. Phase I/II study of treatment with dendritic cell vaccines in patients with disseminated melanoma / Hersey P, Menzies SW, Halliday GM et al. // Cancer Immunol Immunother — 2004 — 53:125-134

53. Hirschowitz EA. Immunization of NSCLC patients with antigen-pulsed immature autologous dendritic cells. / Hirschowitz EA, Foody T, Hidalgo GE, Yannelli JR. // Lung Cancer. 2007 Sep;57(3):365-72.

54. Hobeika AC. Enumerating antigen-specific T-cell responses in peripheral blood: a comparison of peptide MHC Tetramer, ELISpot, and intracellular cytokine analysis. / Hobeika AC, Morse MA, Osada T, et al. // J Immunother. 2005;28(l):63-72.

55. Holtl L. Allogeneic dendritic cell vaccination against metastatic renal cell carcinoma with or without cyclophosphamide / Holtl L, Ramoner R, Zelle-Rieser C et al. // Cancer Immunol. Immunother. 2005; 54: 663-70.

56. Holtl L. Immunotherapy of metastatic renal cell carcinoma with tumor lysate-pulsed autologous dendritic cell / Holtl L, Zelle-Rieser C, Gander H et al. // Clin. Cancer Res. 2002; 8: 3369-76.

57. Hoos A. A clinical development paradigm for cancer vaccines and related biologies. / Hoos A, Parmiani G, Hege K et al. // J Immunother — 2007 — 30:1-15

58. Hoos A. Improved Endpoints for Cancer Immunotherapy Trials. / Hoos, A., Eggermont, A., Janetzki, S., Wolchok, J. et al. // J Natl Cancer Inst. 2010 Sep 22; 102(18): 1388-1397.

59. Houghton N. Immunity against cancer: lessons learned from melanoma / Houghton N., Gold J., Blachere N. et al //Curr. Opin. Immunol. 2001. - 13(2). -P. 134-40

60. Hsu FJ. Vaccination of patients with B-cell lymphoma using autologous antigen-pulsed dendritic cells / Hsu FJ, Benike C, Fagnoni F, et al. // Nat Med 1996;2:52-8

61. Iinuma T. Prevention of gastrointestinal tumors based on adenomatous polyposis coli gene mutation by dendritic cell vaccine. / Iinuma T., Homma S., Noda T., Kufe D., Ohno T. and Toda G. // J. Clin. Invest. — 2004 — 113, 1307-1317

62. Jackel A. S-100 beta protein in serum, a tumor marker in malignant melanoma — current state of knowledge and clinical experience. / Jackel A, Deichmann M, Waldmann V, Bock M, Naher H. // Hautarzt. 1999;50:250-6

63. Janetzki S. MIATA—minimal information about T cell assays. / Janetzki S, Britten CM, Kalos M, et al. // Immunity. 2009;31(4):527-528.

64. Keilholz U. Immunologic monitoring of cancer vaccine therapy: results of a workshop sponsored by the Society for Biological Therapy. / Keilholz U, Weber J, Finke LH, et al. // J Immunother. 2002;25(2):97-138.

65. Kikuchi T. Results of a phase I clinical trial of vaccination of glioma patients with fusions of dendritic and glioma cells. / Kikuchi T, Akasaki Y, Irie M, Homma S, Abe T, Ohno T. // Cancer Immunol Immunother. 2001 Sep;50(7):337-44

66. Koido S. Induction of antitumor immunity by vaccination of dendritic cells transfected with MUC1RNA. / Koido S, Kashiwaba M, Chen D, et al. // J Immunol 2000;165:5713-9

67. Koido S. Dendritic cells fused with human cancer cells: morphology, antigen expression and T cell stimulation. / Koido S., Ohana M., Liu C., Nikrui N., Durfee J., Lerner A., Gong J. // Clin. Immunol., 2004; 113, 261-269

68. Koido S. The kinetics of in vivo priming of CD4 and CD8 T cells by dendritic/tumor fusion cells in MUC1 -transgenic mice. / Koido S., Tanaka Y., Chen D., Kufe D., Gong J. // J. Immunol. 2002; 168:2111-7

69. Kruijff S. S-100B concentrations predict disease-free survival in stage III melanoma patients. / Kruijff S, Bastiaannet E, Kobold AC, van Ginkel RJ, Suurmeijer AJ, Hoekstra HJ.// Ann Surg Oncol. 2009 Dec;16(12):3455-62

70. Kyte J. T cell responses in melanoma patients after vaccination with tumor-mRNA transfected dendritic cells. / Kyte JA, Kvalheim G, Lislerud K. //Cancer Immunol Immunother 56:659-675, 2007

71. Linette GP. Immunization using autologous dendritic cells pulsed with the melanoma-associated antigen gplOO-derived G280-9V peptide elicits CD8+ immunity. / Linette GP, Zhang D, Hodi FS et al // Clin Cancer Res — 2005 — 11:7692-7699

72. Liu Y. Hierarchy of alpha fetoprotein (AFP)-specific T cell responses in subjects with AFP-positive hepatocellular cancer. / Liu Y, Daley S, Evdokimova VN, Zdobinski DD, Potter DM, Butterfield LH. // J Immunol 2006; 177: 712-721

73. Lonchay C. Correlation between tumor regression and T cell responses in melanoma patients vaccinated with a MAGE antigen / Lonchay C., Bruggen P., Connerotte T. et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. - 101 (Suppl.2).-P. 14631-8

74. Lotze MT. Clinical effects and toxicity of interleukin-2 in patients with cancer. / Lotze MT, Matory YL, Rayner AA et al. // Cancer 1986; 58:2764-72.

75. Maecker HT. The role of immune monitoring in evaluating cancer immunotherapy. / Maecker HT. // In: Disis ML, eds. Cancer Drug Discovery and Development: Immunotherapy of Cancer.Totowa, NJ: Humana Press; 2005:5972.

76. Märten A. Allogeneic dendritic cells fused with tumor cells: preclinical results and outcome of a clinical phase I/II trial in patients with metastatic renal cell carcinoma. / Märten A., Renoth S., Heinicke T. et al. // Human Gene Therapy 14:483-494

77. Mayordomo JI. Bone marrow-derived dendritic cells pulsed with synthetic tumour peptides elicit protective and therapeutic antitumour immunity. / Mayordomo JI, Zorina T, Storkus WJ, et al. // Nat Med 1995; 1:1297-302

78. Moore A. Clinical significance of serum SI00 in metastatic malignant melanoma. / Moore et al. // Eur J Cancer — 1995 — 31A: 1898-1902

79. Morton D. Vaccine Therapy for Malignant Melanoma / Morton D., Barth A. // CA Cancer J. Clin. 1996. - 46(4). - P. 225A4

80. Nestle FO. Vaccination of melanoma patients with peptide-or tumor lysate-pulsed dendritic cells. / Nestle FO, Alijagic S, Gilliet M et al. // Nat. Med. 1998; 4: 328-32.

81. O'Neill D. Manipulating dendritic cell biology for the active immunotherapy of cancer. / O'Neill DW, Adams S, Bhardwaj N. // Blood 2004;104:2235-2246.

82. O'Rourke MG. Durable complete clinical responses in a phase I/II trial using an autologous melanoma cell/dendritic cell vaccine. / O'Rourke MG, Johnson M, Lanagan C, et al.// Cancer Immunol Immunother 52:387-395, 2003

83. Osanto S. Vaccine Trials for the Clinician: Prospects for Tumor Antigens/ Osanto S. // The Oncologist. 1997. - 2. - P. 284-99

84. Paglia P. Murine dendritic cells loaded in vitro with soluble protein prime cytotoxic T lymphocytes against tumor antigen in vivo. / Paglia P, Chiodoni C, Rodolfo, M, et al. // J Exp Med 183:317-322, 1996

85. Paglia P. Murine dendritic cells loaded in vitro with soluble protein prime cytotoxic T lymphocytes against tumor antigen in vivo. / Paglia P, ChiodoniC, Rodolfo M, Colombo MP. // J Exp Med, 1996; 183:317-22

86. Palucka AK. Single injection of CD34+ progenitor-derived dendritic cell vaccine can lead to induction of T-cell immunity in patients with stage IV melanoma. / Palucka AK, Dhodapkar MV, Paczesny S et al. // J Immunother — 2003 — 26:432—439

87. Palucka AK. Dendritic cells loaded with killed allogeneic melanoma cells can induce objective clinical responses and MART-1 specific CD8T-cell immunity. / Palucka AK, Ueno H, Connolly J, et al. // J Immunother 29:545557, 2006

88. Pandha HS. Dendritic cell immunotherapy for urological cancers using cryopreserved allogeneic tumour lysate-pulsed cells: a phase I/II study. / Pandha HS, John RJ, Hutchinson J et al. // BJU Int. 2004; 94: 412-18.

89. Porgador A. Bone marrow generated dendritic cells pulsed with a class I-restricted peptide are potent inducers of cytotoxic T lymphocytes. / Porgador A, Gilboa E. // J Exp Med 182:255-260, 1995

90. Rapoport AP. Restoration of immunity in lymphopenic individuals with cancer by vaccination and adoptive T-cell transfer. / Rapoport AP, Stadtmauer EA, Aqui N et al. // Nat Med — 2005—11:1230-1237

91. Reis e Sousa C. Dendritic cells as sensors of infection. / Reis e Sousa C. // Immunity —2001 — 14:495-498

92. Ribas A. Role of dendritic cell phenotype, determinant spreading, and negative costimulatory blockade in dendritic cell-based melanoma immunotherapy. / Ribas A, Glaspy JA, Lee Y et al // J Immunother. — 2004 — 27:354-367

93. Ribas A. Update on immunotherapy for melanoma. / Ribas A. // J Natl Compr Cane. Netw 2006, 4:687-694.

94. Ridolfi R. Improved overall survival in dendritic cell vaccination-induced immunoreactive subgroup of advanced melanoma patients. / Ridolfi R, Petrini M, Fiammenghi L et al. // J Transl Med — 2006 — 4:36

95. Romero P. Monitoring tumor antigen specific T-cell responses in cancer patients and phase I clinical trials of peptide-based vaccination. / Romero P, Cerottini JC, Speiser DE. // Cancer Immunol Immunother. 2004 Mar;53(3):249-55.

96. Roncarolo MG. Differentiation of T regulatory cells by immature dendritic cell. / Roncarolo MG, Levings MK, Traversari C. // J. Exp. Med. 2001; 193: F5-9.

97. Rosenberg SA. Observations on the systemic administration of autologous lymphokine-activated killer cells and recombinant interleukin-2 to patients with metastatic cancer. / Rosenberg SA, Lotze MT, Muul LM et al. // N Engl J Med 1985;313:1485-92.

98. Rosenberg SA. Combination therapy with interleukin-2 and alpha-interferon for the treatment of patients with advanced cancer. / Rosenberg SA, Lotze MT, Yang JC et al. // J Clin Oncol 1989; 7:1863-74.

99. Rosenberg SA. A new approach to the adoptive immunotherapy of cancer with tumour-infiltrating lymphocytes. / Rosenberg SA, Spiess P, Lafreniere R. // Science 1986; 233:1318-22.

100. Rosenberg SA. Cancer immunotherapy: moving beyond current vaccines. / Rosenberg SA, Yang JC, Restifo NP // Nat Med. 2004;10(9):909-915.

101. Rowse G. Tolerance and immunity to MUC1 in a human MUC1 transgenic murine model. / Rowse G. J., Tempero R. M., VanLith M. L., Hollingsworth M. A. and Gendler S. J. // Cancer Res. — 1998 — 58, 315-321

102. Russo V. Dendritic cells acquire the MAGE-3 human tumor antigen from apoptotic cells and induce a class I-restricted T cell response. / Russo V, Tanzarella S, Dalerba P, et al. // Proc Natl Acad Sci US A 2000;97:2185-90

103. Salcedo M. Vaccination of melanoma patients using dendritic cells loaded with an allogeneic tumor cell lysate. / Salcedo M, Bercovici N, Taylor R et al. // Cancer Immunol Immunother. — 2006 — 55:819-829

104. Salcedo M. Vaccination of melanoma patients using dendritic cells loaded with an allogeneic tumor cell lysate. / Salcedo M, Bercovici N, Taylor R, et al. // Cancer Immunol Immunother 55:819-829, 2006

105. Salcedo M. Vaccination of melanoma patients using dendritic cells loaded with an allogeneic tumor cell lysate / Salcedo M., Bercovici N., Taylor R. et al. // Cancer Immunol.Immunother. 2006. - 55. - P. 819-29

106. Schuler G. The use of dendritic cells in cancer immunotherapy. / Schuler G, Schuler-Thurner B, Steinman RM. // Curr. Opin. Immunol. 2003; 15: 138^7

107. Schultze JL. DCs and CD40-activated B cells: current and future avenues to cellular cancer immunotherapy. / Schultze JL, Grabbe S, von Bergwelt-Baildon MS // Trends Immunol 2004, 25:659-664.

108. Schumacher L. Human dendritic cell maturation by adenovirus transduction enhances tumor antigen-specific T-cell responses. / Schumacher L, Ribas A, Dissette VB, McBride WH, Mukherji B, Economou JS, et al. // J Immunother 2004;27: 191-200

109. Smit LH. Normal values of serum S-100B predict prolonged survival for stage IV melanoma patients. / Smit LH, Korse CM, Hart AA, Bonfrer JM, Haanen JB, Kerst JM, et al. // Eur J Cancer. 2005;41:386-92

110. Song W. Crystal dendritic cells genetically modified with an adenovirus vector encoding the cDNA for a model antigen induce protective and therapeutic antitumour immunity. / Song W, Kong HL, Carpenter H et al. // J Exp Med 1997; 186:1247-56.

111. Su Z. Immunological and clinical responses in metastatic renal cancer patients vaccinated with tumor RNA-transfected dendritic cells. / Su Z, Dannull J, Heiser A et al. // Cancer Res. 2003; 63: 2127-33.

112. Takahashi T. Dendritic cell vaccination for patients with chronic myelogenous leukemia. / Takahashi T, Tanaka Y, Nieda M et al. // Leuk. Res. 2003; 27: 795-802.

113. Tanaka Y. Vaccination with allogeneic dendritic cells fused to carcinoma cells induces antitumor immunity in MUC1 transgenic mice. / Tanaka Y., Koido S., Chen D., Gendler S. J., Kufe D. and Gong J. // Clin. Immunol. — 2001 — 101, 192-200

114. Trefzer U. Tumour-dendritic hybrid cell vaccination for the treatment of patients with malignant melanoma: Immunological effects and clinical results. / Trefzer U, Herberth G, Wohlan K, et al // Vaccine 23:2367-2373, 2005

115. Walker EB. Monitoring immune responses in cancer patients receiving tumor vaccines. / Walker EB, Disis ML. // Int Rev Immunol. 2003;22(3-4):283-319.sf/7 &

116. Wang J. Eliciting T cell immunity against poorly immunogenic tumors by immunization with dendritic cell-tumor fusion vaccines. / Wang J., Saffold S., Cao X. T., Krauss J. and Chen W. // J. Immunol. — 1998 — 161, 5516-5524

117. Wei Y. Dendritoma vaccination combined with low dose interleukin-2 in metastatic melanoma patients induced immunological and clinical responses. / Wei Y., Sticca R.P., Holmes L.M. et al. // International Journal Of Oncology 28: 585-593, 2006

118. Wheeler CJ. Vaccination elicits correlated immune and clinical responses in glioblastoma multiforme patients. / Wheeler CJ, Black KL, Liu G, et al. // Cancer Res 2008;68(14):5955-64.

119. Wierecky J. Immunologic and clinical responses after vaccinations with peptide-pulsed dendritic cells in metastatic renal cancer patients. / Wierecky J, Muller MR, Wirths S. // Cancer Res. 2006; 66: 5910-18.

120. Zippelius A. Thymic selection generates a large T-cell pool recognizing a self-peptide in humans / Zippelius A., Pittet M., Batard P. et al. // J. Exp. Med. -2002.- 195(4).-P. 485-94.

121. Zorn E. A MAGE-6-encoded peptide is recognized by expanded lymphocytes infiltrating a spontaneously regressing human primary melanoma lesion. / Zorn E, Hercend T. // Eur. J.Immunol. 1999. - 29. - P. 602-7.