Автореферат и диссертация по медицине (14.03.06) на тему:Фармакологическая коррекция последствий воздействия токсических факторов при беременности (экспериментальное исследование).

ДИССЕРТАЦИЯ
Фармакологическая коррекция последствий воздействия токсических факторов при беременности (экспериментальное исследование). - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Фармакологическая коррекция последствий воздействия токсических факторов при беременности (экспериментальное исследование). - тема автореферата по медицине
Яковлева, Ольга Александровна Санкт-Петербург 2010 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.03.06
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Фармакологическая коррекция последствий воздействия токсических факторов при беременности (экспериментальное исследование).

На правах рукописи

ЯКОВЛЕВА Ольга Александровна

ФАРМАКОЛОГИЧЕСКАЯ КОРРЕКЦИЯ ПОСЛЕДСТВИЙ ВОЗДЕЙСТВИЯ ТОКСИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ ПРИ БЕРЕМЕННОСТИ (ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ)

14.03.06 - фармакология, клиническая фармакология 14.01.01 - акушерство и гинекология

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Санкт-Петербург 2010

1 7 ИЮН 2010

004605837

Работа выполнена в Военно-медицинской академии имени С.М.Кирова

Научные руководители: доктор медицинских наук профессор Петр Дмитриевич Шабанов доктор медицинских наук Владимир Васильевич Русановский

Официальные оппоненты: доктор медицинских наук Павел Васильевич Родичкин доктор медицинских наук профессор Наталья Игоревна Тапильская

Ведущее учреждение:

Санкт-Петербургская государственная медицинская академия им. И.И. Мечникова

Защита диссертации состоится «22» июня 2010 года в 13.00 часов на заседании совета по защите докторских и кандидатских диссертаций Д 215.002.07 при Военно-медицинской академии им. С.М.Кирова (194044, Санкт-Петербург, ул. акад. Лебедева, д. 6).

С диссертацией можно ознакомиться в фундаментальной библиотеке Военно-медицинской академии им. С.М.Кирова

Автореферат разослан «_» мая 2010 г.

Ученый секретарь совета

доктор медицинских наук профессор Борис Николаевич Богомолов

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность исследования. В последние годы пристальное внимание исследователей привлекают проблемы нейробиологии развития. Традиционным направлением этих исследований является изучение нейромедиаторных систем, поскольку нейромедиаторы имеют качественно различные функции в течение онтогенеза нервной системы (Амстиславская М.Г., 2007; Байрамов A.A., 2008). Во взрослом организме медиаторы осуществляют передачу сигналов между клетками, однако в развивающейся нервной системе те же медиаторы могут образовывать морфогенетические градиенты, важные для формирования и дифференцировки различных областей нервной системы и нейромедиаторных систем соответственно (Угрюмов М.В., 2008).

Менее изучено развитие в онтогенезе общебиологических внутриклеточных процессов, таких, как перекисное окисление липидов (ПОЛ) и антиоксидантные системы (Шабанов П.Д. и др., 2009). Вместе с тем, именно эти процессы осуществляют важнейшие функции поддержания гомеостаза нервных клеток. Еще менее изучены механизмы, посредством которых процессы ПОЛ и антиоксидантные системы вовлекаются в ответ на воздействие различных токсических и психогенных факторов в раннем онтогенезе.

Среди токсических факторов, достаточно часто воздействующих на развивающийся организм, в частности, при беременности, следует выделить этанол и никотин, которые будущие матери употребляют как бытовые стимуляторы. Однако именно эти токсические воздействия в раннем онтогенезе могут привести к последующим поведенческим девиациям в подростковом и пубертатном периодах (Мещеров Ш.К., 2006). Возникает закономерный вопрос о возможностях предупреждения подобных нарушений с помощью различных фармакологических агентов, потенциально способных уменьшить токсическое воздействие этанола на развивающийся организм. В качестве таких средств рассматриваются растительные адаптогены, например, экстракты из элеутерококка колючего, травы полисциаса, корня женьшеня (Бурмистров С.О., 1990; Чуваев И.В., 1993), пептидные нейропротекторы (Воронина Т.А., 2007), некоторые синтетические средства антигипоксической направленности (Шабанов П.Д., 2008). К последним можно отнести новый отечественный препарат трекрезан (триэтаноламмониевую соль 2-метилфеноксиуксусной кислоты), представляющий собой высокоэффективное фармакологическое средство с адаптогенным и иммуностимулирующим действием (Казимировская В.Б. и др., 1996; Жумашева А.Б., 2009), и метапрот (2-этилтиобензимидазол, бемитил), обладающий антигипоксической, нейропротекторной и повышающей работоспособность активностью (Шабанов П.Д., 2008).

Целью настоящей работы явилось изучение процессов перекисного окисления липидов и системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и

потомства при нормальном онтогенезе и после внутриутробного действия этанола у крыс, а также фармакологическая коррекция последствий воздействия токсических факторов при беременности.

В задачи исследования входило:

1. Изучить уровень ПОЛ и системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при нормальном онтогенезе у крыс;

2. Изучить уровень ПОЛ и системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства после внутриутробного действия этанола у крыс;

3. Изучить состояние ферментов антиоксидантной защиты, уровней восстановленного глутатиона и ПОЛ мозга эмбрионов при острой алкогольной интоксикации и действии ацетальдегида у крыс;

4. Изучить действие трекрезана и метапрота на активность антиоксидантной системы и уровень ПОЛ мозга эмбрионов и потомства при внутриутробной алкоголизации у крыс;

5. Изучить действие трекрезана и метапрота на активность антиоксидантной системы и уровень ПОЛ мозга половозрелых крыс, алкоголизированных с 21-го дня жизни.

Научная новизна работы. Доказано, что процессы ПОЛ (малоновый диальдегид) и антиоксидантные системы (восстановленный глутатион, активность супероксиддисмутазы и каталазы) активно развиваются в третий триместр беременности крыс. В раннем постнатальном периоде (до 21-го дня жизни) их активность продолжает возрастать, за исключением каталазы, активность которой в постнатальном периоде падает. При алкоголизации беременных самок активируются процессы ПОЛ и системы антиоксидантной защиты в мозге эмбрионов. Следствием алкоголизации беременных самок является снижение числа родившихся крысят в помете, а также их массы тела и мозга, которые остаются пониженными вплоть до 7 недель постнатального развития. Этанол не только при хроническом, но и при однократном введении индуцирует повышение процессов ПОЛ с одновременным снижением уровня восстановленного глутатиона в мозге эмбрионов в третий триместр беременности. Отмена алкоголизации в конце беременности не полностью восстанавливает показатели ПОЛ и активность антиоксидантных систем в ранний постнатальный период (7-21-49 дни жизни). Сходная закономерность наблюдается и при отмене алкоголизации на 21-й день постнатального развития. Синтетический адаптоген трекрезан и антигипоксант метапрот, назначаемые в период внутриутробного развития и в ранний постнатальный период одновременно с алкоголизацией, уменьшают нарушения ПОЛ и активности антиокислительных систем как у эмбрионов, так и у крысят в постнатальный период (7-21-49 дни жизни). При этом наибольшую противоалкогольную активность проявляет трекрезан. Кроме того, трекрезан и, в меньшей степени, метапрот восстанавливают процессы перекисного окисления липидов и активность антиокислительных систем в мозге половозрелых крыс, хронически потреблявших этанол с 21-го дня жизни.

Теоретическая и практическая значимость работы. Полученные экспериментальные данные о нарушениях процессов ПОЛ и антиоксидантных систем под влиянием этанола в период беременности и лактации у крыс позволяют рассматривать эти показатели как важный дополнительный диагностический критерий возможного повреждения мозга в период гестации или ранний постнатальный период. Экспериментально доказано, что синтетический адаптоген трекрезан и, в меньшей степени, антигипоксант метапрот, назначаемые в период внутриутробного развития и в ранний постнатальный период одновременно с алкоголизацией, уменьшают нарушения ПОЛ и активности антиокислительных систем как у эмбрионов, так и у крыс в постнатальный период. Это позволяет рекомендовать трекрезан и метапрот для углубленного клинического исследования в качестве средств, обладающих антитератогенной активностью у беременных. Наконец, полученные данные о развитии процессов ПОЛ и антиоксидантных систем в онтогенезе расширяют теоретические и практические представления о формировании (созревании) нервной системы в раннем онтогенезе, что следует учитывать в педиатрической практике и при изучении девиантных форм поведения у подростков и в пубертатном периоде.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Системы ПОЛ (малоновый диальдегид) и антиоксидантные системы (восстановленный глутатион, активность супероксиддисмутазы и каталазы) активно развиваются в третий триместр беременности крыс и в раннем постнатальном периоде (до 21-го дня жизни), достигая значений, типичных для половозрелых особей.

2. Алкоголизация беременных самок активирует процессы ПОЛ и системы антиоксидантной защиты в мозге эмбрионов и потомства (до 7 недель жизни). Однократное введение больших доз этанола и ацетальдегида беременным самкам также способно индуцировать повышение процессов ПОЛ с одновременным снижением уровня восстановленного глутатиона в мозге эмбрионов.

3. Отмена алкоголизации в конце беременности или на 21-й день постнатального развития не полностью восстанавливает показатели ПОЛ и активность антиоксидантных систем в ранний постнатальный период вплоть до 7 недель.

4. Синтетический адаптоген трекрезан и, в меньшей степени, антигипоксант метапрот, назначаемые в период внутриутробного развития и в ранний постнатальный период одновременно с алкоголизацией, уменьшают нарушения ПОЛ и активности антиокислительных систем как у эмбрионов, так и у крысят в постнатальный период. Этот тип действия трекрезана и метапрота характерен и для половозрелых крыс, хронически потреблявших этанол с 21-го дня жизни.

Апробация и публикация материалов исследования. Материалы диссертации доложены на 4-й международной научной конференции «Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам» (Москва, 2006); на XX съезде физиологического общества им. И.П.Павлова (Москва, 2007), на заседании Санкт-Петербургского научного общества фармакологов (2008).

Апробация диссертации прошла на межкафедральном заседании кафедры фармакологии и кафедры акушерства и гинекологии Военно-медицинской академии им. С.М.Кирова.

Реализация результатов работы. Диссертационная работа выполнена в рамках плановой темы НИР Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова. Оригинальные авторские подходы методического характера реализованы в научно-исследовательской деятельности и учебном процессе кафедр фармакологии, нормальной физиологии и акушерства и гинекологии Военно-медицинской академии им. С.М.Кирова.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 9 научных работ, в том числе 4 статьи (1 статья в журнале, рекомендованном ВАК) и 5 тезисов.

Структура и объем диссертации. Материалы диссертации изложены на 153 страницах машинописного текста, иллюстрированы 12 таблицами и 6 рисунками. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, двух глав собственных исследований, обсуждения результатов исследований, выводов, практических рекомендаций, списка использованной литературы. Библиографический указатель содержит 413 наименований, в том числе 262 отечественных и 151 иностранных.

ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материалы и методы исследования

Общий дизайн исследования. Экспериментальные исследования выполнены на кафедре фармакологии Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова. Объектом исследования служили 74 половозрелые белые крысы самки Вистар массой 200-250 г. и 624 эмбриона и крысят самцов и самок разного возраста (эмбрионы 13-17 дня беременности, крысята в возрасте 1, 3 и 7 недель). Самки в течение всего периода беременности содержались на специальной диете, включавшей сухой брикетированный корм и 20%-ный раствор этанола в качестве единственного источника жидкости. Часть животных (23 крысы, 1-я группа) брали в опыт на 13-17 дни беременности, другую часть (29 крыс, 2-я группа) переводили на обычный питьевой режим на 20-й день беременности, в 3-й группе (22 крысы) животные потребляли этанол до конца лактации и вскармливания потомства

(период включал 21 день постнатального развития), в 4-й группе крысят алкоголизировали 20%-ным раствором этанола с 21-го дня жизни до половозрелое™ (до возраста 95-100 дней). Помет каждой самки составлял 812 крысят. В опытах оценивали массу мозга и тела эмбрионов и массу мозга и тела потомства. На 21-й день после рождения самок из 3-й группы отсаживали и крысят переводили на обычный рацион питания и потребления жидкости (воды). В опыт брали крысят самцов на 7-й, 21-й и 50-й дни постнатального развития.

Потомство половозрелых самок (возраст 95-100 дней) после отмены этанола на 20-й день беременности (2-я группа) тестировали на предпочтение потребления этанола и воды. Тестирование проводили в течение 10 дней в индивидуальных клетках при добровольном выборе между водой и 10%-ным раствором этанола.

В выборе животных, их содержании и подготовке к эксперименту руководствовались современными требованиями (Трахтенберг И.М. и др., 1991). Животных содержали в виварии в стандартных условиях освещения и питания. Исследования осуществлялись в соответствии с требованиями «Руководства по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / Под ред. В.П.Фисенко. М.: МЗ РФ, 2000».

Биохимические методы исследований. В цельном мозге эмбрионов и мозге взрослых крыс, замороженных в жидком азоте, определяли показатели перекисного окисления липидов и активности антиоксидантных систем.

О состоянии антиоксидантной системы мозга судили по активности СОД и содержанию восстановленного глутатиона в 10%-ном гомогенате мозга в 25 ммолярном трис-НС1 с 175 ммолярном КС1 буфере (рН 7,4). Активность СОД оценивали методом Е.Е. Дубининой и соавторов (1983) по степени ингибирования восстановления нитросинего тетразолия в присутствии феназинметасульфата и НАДН и относили к содержанию белка в пробах, которое определяли унифицированным методом О.Н. Ьо\угу и соавторов (1951). Содержание восстановленного глутатиона определяли по его реакции с избытком аллоксана (Путилина Ф.Е., 1982). Уровень ПОЛ ткани определяли методом содержания продуктов ПОЛ (малоновый диальдегид), реагирующих с 2-тиобарбитуровой кислотой (Стальная И.Д., 1977). Диеновые конъюгаты экстрагировали из навески ткани мозга массой 100 мг смесью гептана и изопропанола в соотношении 1:1 в объеме 2 мл и определяли по методу И.Д. Стальной (1977).

Фармакологические средства. В работе использовали адаптоген и иммуномодулятор трекрезан и антигипоксант метапрот (бемитил). Трекрезан (триэтаноламмониевая соль 2-метилфеноксиуксусной кислоты) создан в Иркутском институте органической химии СО РАН, прошел доклинические и клинические испытания и с 1994 г. разрешен к широкому применению. Препарат выпускается отечественной промышленностью в виде таблеток по 0,2 г (ЗАО «Витанта», Санкт-Петербург). Трекрезан представляет собой малотоксичное соединение, обладает различными

положительными свойствами, защищая организм от стресса (иммобилизационного, болевого, гиподинамического), ускоряет заживление поврежденных тканей (печень, миокард, мышцы), защищает внутренние органы от повреждающего действия токсинов, СВЧ-облучения, инфекционного фактора, проявляет выраженную антиоксидантную активность (Казимировская В.Б. и др., 1996).

Метапрот (2-этилтиобензимидазола гидробромид, бемитил) является производным бензимидазола - соединения, близкого по строению к пуриновым основаниям нуклеиновых кислот - аденину и гуанину. Выпускается отечественной промышленностью в виде капсул по 0,125 г и 0,25 г ЗАО «Фармпроект» по лицензии ЗАО «Антивирал» (Санкт-Петербург). Метапрот обладает репаративным действием, основанным на способности препарата активировать естественно протекающие в организме реакции протеинсинтеза. В лечебной практике метапрот используется в неврологии, психиатрии, кардиологии, кардиохирургии, токсикологии, отоларингологии, терапии, хирургической патологии кишечника и заболеваний верхних дыхательных путей. Назначают метапрот в качестве лечебно-реабилитационного средства для ускорения восстановления работоспособности и физической выносливости при астенических состояниях, угнетении иммунитета, нарушениях энергетического и пластического обмена (Шабанов П.Д., 2008, 2010). В качестве препарата неистощающего типа действия метапрот используется у здоровых лиц при утомлении, для повышения физической работоспособности и усиления процессов адаптации в экстремальных условиях (гипоксия, перегревание, психоэмоциональный стресс и др.).

В экспериментах трекрезан и метапрот вводили крысам в виде 0,05%-ного питьевого раствора, который смешивали с 20%-ным раствором этанола, потребляемым крысами в качестве единственного источника жидкости. Оптимальная эффективная доза трекрезана и метапрота составила 10 мг/сутки на крысу, или 50 мг/кг массы тела в сутки. Контрольные группы животных получали в эквивалентном объеме физиологический раствор. Структура и объем исследования представлены ниже:

1. Изучение уровня ПОЛ и системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при нормальном онтогенезе и после внутриутробного действия этанола (20 взрослых крыс, 170 эмбрионов и крысят в возрасте 1-7 недель);

2. Изучение состояния ферментов антиоксидантной защиты, уровней восстановленного глутатиона и ПОЛ мозга эмбрионов при острой алкогольной интоксикации и действии ацетальдегида (18 взрослых крыс, 152 эмбриона);

3. Изучение действия трекрезана и метапрота на активность антиоксидантной системы и уровень ПОЛ мозга эмбрионов и потомства при внутриутробной алкоголизации (18 крыс, 156 эмбрионов и крысят в возрасте 1-7 недель);

4. Изучение действия трекрезана и метапрота на активность антиоксидантной системы и уровень ПОЛ мозга половозрелых крыс, алкоголизированных с 21-го дня жизни (18 крыс, 146 крысят в возрасте 1-7 недель);

Статистическая обработка результатов исследования. Выборка для каждой группы животных составила не менее 10 крыс (эмбрионов). Математическую обработку результатов исследования проводили на персональном компьютере с использованием стандартного пакета программ STATISTICA for Windows по общеизвестным методам вариационной статистики с оценкой статистической значимости показателей и различий рассматриваемых выборок по t-критерию Стьюдента при р<0,05.

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Изучение уровня перекисного окисления липидов и системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при нормальном онтогенезе и после внутриутробного действия этанола

Влияние внутриутробного действия этанола на развитие потомства и предпочтение к алкоголю у крыс. Содержание беременных самок крыс на диете, содержащей 20%-ный этанол, приводит к изменению ряда общих и биохимических показателей эмбрионов и потомства крыс. В наших исследованиях внутриутробное действие этанола задерживало развитие, о чем свитетельствует снижение массы тела и мозга (14-17-дневные эмбрионы) на 14-19% (р<0,05). Отставание развития наблюдается и у потомства. При этом масса мозга и тела потомства самок, находившихся в условиях алкоголизации, была достоверно ниже контрольных величин вплоть до 21 дня постнатального развития (возраста 7 недель). Кроме того, наблюдали снижение числа крысят в потомствах крыс, получавших этанол во время беременности, до 8±1 против 11±1 в контроле, что указывает на увеличение внутриутробной гибели зародышей.

Тестирование на предпочтение воды и этанола потомства в возрасте 95-100 дней показало, что интактные крысы потребляют 29±5% раствора этанола от общего объема выпитой жидкости. Потомство алкоголизированных в период беременности крыс этого же возраста потребляло 45±6% раствора этанола от общего объема выпитой жидкости (Р<0,05).

Таким образом, полученные данные подтверждают наличие эмбриотоксического действия этанола у крыс, находившихся в условиях полупринудительной алкоголизации в период беременности, отмеченное и в других исследованиях (Кругликов Р.И., Майзелис М.Я., 1987; Бичевая Н.К., 1996; Ганапольский В.П., 2004).

Перекисное окисление липидов и активность системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при нормальном онтогенезе. В данном разделе изучены особенности формирования и реализации систем перекисного окисления липидов и антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при нормальном онтогенезе.

Динамика изменений уровня малонового диальдегида в раннем онтогенезе и у половозрелых крыс представлена в табл. 1.

Таблица 1

Динамика уровня малонового диальдегида в мозге эмбрионов и потомства крыс при нормальном онтогенезе

Дни развития Содержание малонового диальдегида в мозге (мкмоль/г белка)

Внутриутробное развитие

13-й день 0,22±0,05

14-й день 0,25±0,06

15-й день 0,31±0,06

16-й день 0,44±0,09

17-й день 1,73±0,21

Постнатальное развитие

7-й день (1 неделя) 6,57±0,22

21-й день (3 недели) 7,01±0,23

49-й день (7 недель) 3,52±0,19

98-й день (14 недель) 3,20±0,21

Видно, что уровень малонового диальдегида на 13-16-й дни внутриутробного развития малы и составляют 0,22-0,44 мкмоль/г белка. С 17-го дня гестации содержание малонового диальдегида начинает резко возрастать. Максимальные значения этого показателя наблюдали на 7-й и 21-й дни постнатального развития (6,57-7,01 мкмоль/г белка) с дальнейшим снижением вдвое через 7 недель до уровня 3,52±0,19 мкмоль/г белка, который сохранялся на этом уровне у половозрелых крыс.

Активность антиоксидантных систем оценивали по уровню восстановленного глутатиона и активности каталазы и СОД. Данные этих наблюдений представлены в табл. 2.

Внутриутробное действие этанола сопровождается рядом изменений со стороны антиокислительных систем.

Динамика активности СОД в целом повторяет динамику изменений малонового диальдегида. С развитием мозга эмбриона активность СОД возрастает от 0,46±0,07 на 13-й день до 1,71±0,28 А/мг белка на 17-й день пренатального развития. После рождения активность СОД продолжает расти, достигая максимума (3,76±0,40 А/мг белка) к концу 3-й недели

постнатального развития. В дальнейшем активность СОД несколько снижается и составляет у половозрелых крыс 1,41±0,24 А/мг белка, то есть близка к уровню новорожденных животных. Аналогичную с СОД картину наблюдали и в отношении восстановленного глутатиона. Уровень восстановленного глутатиона равномерно возрастает в период пренатального развития эмбриона (с 12,51±2,06 мкмоль/г на 13-й день до 19,57±4,01 мкмоль/г на 17-й день беременности) и продолжает расти после рождения, достигая максимума (31,04±7,11 мкмоль/г) в период половозрелости.

Таблица 2

Динамика уровня восстановленного глутатиона и активностей каталазы и супероксиддисмутазы в мозге эмбрионов и потомства крыс при нормальном

онтогенезе

Дни развития Восстановленный глутатион (мкмоль/г) Катал аза (мкмоль Н202/ мин-мг белка) Супероксидди смутаза (А/мг белка)

Внутриутробное развитие

13-й день 12,51±2,06 27,84±1,92 0,46±0,07

14-й день 14,07±2,91 38,17±2,19 0,56±0,09

15-й день 17,23±3,63 34,58±2,21 0,74±0,12

16-й день 19,02±3,06 33,13±1,89 1,37±0,22

17-й день 19,57±4,01 32,38±1,77 1,71±0,28

Постнатальное развитие

7-й день (1 неделя) 21,52±4,83 10,24±1,37 2,52±0,36

21-й день (3 недели) 27,06±6,03 8,63±1,18 3,76±0,40

49-й день (7 недель) 24,11±5,08 5,44±1,11 2,78±0,36

98-й день (14 недель) 31,04±7,11 4,21 ±0,82 1,41 ±0,24

Напротив, активность каталазы претерпевает динамику, прямо противоположную СОД и восстановленному глутатиону. На 13-й день беременности в мозге эмбрионов регистрируется активность, равная 27,84±1,92 мкмоль Н2О2/ мин-мг белка. В дальнейшем, на 14-17-й дни беременности активность каталазы колеблется в пределах 38,17-32,38 мкмоль Н202/ мин-мг белка. После рождения активность фермента снижается почти в 4 раза до 10,24±1,37 мкмоль Н202/ мин-мг белка на 7-й день постнатального развития и продолжает падать до 4,21±0,82 мкмоль Н202/ мин-мг белка у половозрелых крыс.

Обобщая приведенные данные, следует подчеркнуть, что в раннем постнатальном периоде (7-21-й дни) у крыс складывается стабильный статус антиоксидантной системы и уровня ПОЛ.

Перекисное окисление липидов и активность системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при алкоголизации матерей. Содержание беременных крыс на диете,

содержащей этанол, меняет показатели ПОЛ и антиоксидантных систем (табл. 3).

Таблица 3

Динамика уровня малонового диальдегида и активностей каталазы и супероксиддисмутазы в мозге эмбрионов крыс при алкоголизации беременных самок

Дни развития Малоновый диальдегид (мкмоль/г белка) Каталаза (мкмоль П202/ мин-мг белка) Супероксиддисмутаза (А/мг белка)

Нормальный онтогенез (контроль)

13-й день 0,22±0,05 27,84±1,92 0,46±0,07

14-й день 0,25±0,06 38,17±2,19 0,56±0,09

15-й день 0,31±0,06 34,58±2,21 0,74±0,12

16-й день 0,44±0,09 33,13±1,89 1,37±0,22

17-й день 1,73±0,21 32,38±1,77 1,46±0,19

Алкоголизация

13-й день 0,23±0,05 22,88±2,56 0,70±0,10

14-й день 0,32±0,05* 44,81±2,89* 0,90±0,07*

15-й день 0,40±0,06 38,38±2,43* 0,72±0,11

16-й день 0,65±0,08* 37,72±1,71* 1,63±0,21*

17-й день 2,28±0,24 40,54±2,19* 1,81±0,19*

Примечание. *р<0,05 по отношению к контролю.

Во-первых, начиная с 14-го дня эмбриогенеза, на 12-20% повышаются уровни малонового диальдегида (ПОЛ), которые сохраняются повышенными до 17-го дня беременности. При отмене этанола на 20-й день беременности содержание малонового диальдегида возвращается к норме. При сохранении потребления этанола до конца лактации уровень малонового диальдегида сохраняется повышенным на 16-21%.

Одновременно с повышением уровня малонового диальдегида в мозге алкоголизированных эмбрионов на 14-17-е сутки развития на 14-29% была повышена активность каталазы, что указывает на вероятность повышенного образования перекиси водорода в мозге при алкоголизации. Перекись водорода является высокотоксичным промежуточным продуктом восстановления кислорода, запускающего и поддерживающего ПОЛ.

Внутриутробная алкоголизация также инициировала повышение активности СОД на 15-40%, что проявлялось на 14-й, 16-й и 17-й дни развития (р<0,05). Интересно отметить, что повышенные значения СОД оставались и после отмены алкоголя на 7-21-49-й дни постнатального развития (табл. 4). При этом на 7-й и 21-й дни постнатального периода уровень активности СОД превышал соответствующие контроли на 32-36%

и

(р<0,01). Это указывает на выраженную активацию супероксид-генерирующей системы мозга этанолом. По-видимому, данные изменения наименее подвержены компенсации после отмены алкоголизации.

Таблица 4

Динамика уровня малонового диальдегида, восстановленного глутатиона и активностей каталазы и супероксиддисмутазы в мозге потомства крыс, рожденных от алкоголизированных беременных самок

Дни постнатального развития Малоновый диальдегид (мкмоль/г белка) Каталаза (мкмоль Н202/мин-мг белка) Супероксид- дисмутаза (А/мг белка) Восстановленный глутатион (мкмоль/г)

Нормальный онтогенез (контроль)

7-й день 6,57±0,22 10,24±1,37 2,52±0,36 21,52±4,83

21-й день 5,14±0,23 8,63±1,18 3,76±0,40 27,06±6,03

49-й день 3,52±0,19 5,44±1,11 2,78±0,36 24,11±5,08

Алкоголизация самок в период беременности

7-й день 6,29±0,24 12,72±2,18 3,33±0,32** 19,51±4,07

21-й день 4,09±0,23 8,19±1,28 5,12±0,29* 28,05±5,52

49-й день 3,31±0,18 5,13±1,19 3,82±0,29 23,09±5,38

Примечание. *р<0,05; **р<0,01 по отношению к контролю.

Нельзя исключить, что одной из причин повышения уровня ПОЛ в мозге эмбрионов является уменьшение содержания восстановленного глутатиона. На 15-й день эмбриогенеза мы регистрировали снижение уровня восстановленного глутатиона на 13% (р<0,05). В мозге потомства, не потреблявшего этанол после рождения, содержание восстановленного глутатиона нормализовалось к 7-му дню постнатального развития, не подвергаясь в дальнейшем изменениям. Если алкоголизацию не отменяли при вскармливании крысят, то уровень восстановленного глутатиона в мозге 7-дневных крысят возрастал на 34% (р<0,01; табл. 5). Данное увеличение содержания восстановленного глутатина свидетельствует об определенной напряженности функционирования антиоксидантной системы и повышении свободнорадикальных реакций, которые обеспечивают активацию системы ПОЛ в мозге в исследованные сроки наблюдений.

Таблица 5

Динамика уровня малонового диальдегида, восстановленного глутатиона и активностей каталазы и супероксиддисмутазы в мозге потомства крыс, рожденных от самок, алкоголизированных в период беременности и вскармливания, а также после отмены этанола на 21-й день постнатального

развития

Дни постнатального развития Малоновый диальдегид (мкмоль/г белка) Катал аза (мкмоль н2о2/ мин-мг белка) Супероксид-дисмутаза (А/мг белка) Восстановленный глутатион (мкмоль/г)

Нормальный онтогенез (контроль)

7-й день 6,54±0,22 14,52±2,58 2,57±0,33 21,52±4,83

21-й день 5,11±0,23 8,28±1,32 2,66±0,31 27,06±6,03

49-й день 3,49±0,19 5,22±1,14 2,72±0,30 24,11±5,08

Алкоголизация самок в период беременности и вскармливания

7-й день 7,76±0,25** 13,88±2,14 2,73±0,30 29,38±4,72**

21-й день 7,69±0,23** 8,62±1,39 4,38±0,27* 28,96±5,06

Отмена алкоголя

49-й день | 3,82±0,19 | 4,81±1,43 | 3,80±0,28* | 20,56±4,89

Примечание. *р<0,05; **р<0,01 по отношению к контролю.

Исходя из приведенных данных, можно констатировать, что повышенный уровень свободнорадикального окисления липидов в мозге эмбрионов, вызванный алкоголизацией, не в полной мере компенсируется повышением активности антиоксидантных ферментов (каталазы и СОД).

Одной из причин активации ПОЛ, как показано в исследованиях С.О. Бурмистрова (1990), является сниженный уровень восстановленного глутатиона в тканях. Наши опыты также подтверждают, что возможной причиной повышенного уровня ПОЛ в мозге эмбрионов при алкоголизации может быть сниженное содержание восстановленного глутатиона. Продолжение алкоголизации потомства после рождения сопровождается сохранением повышенной активности свободнорадикальных механизмов. Об этом в данном случае свидетельствует повышенный уровень ПОЛ и восстановленного глутатиона.

Перекисное окисление липидов и активность системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов при острой алкогольной интоксикации и действии ацетальдегида. Обзор литературы показывает,

что отдельные признаки эмбриотоксичности развиваются уже при эпизодическом или даже однократном действии этанола (Бурмистров С.О., 1990; Бичевая Н.К., 1996; Ганапольский В.П., 2004). Поэтому нами было исследовано влияние алкогольной интоксикации на ПОЛ и систему антиоксидантной защиты при однократном внутрибрюшинном введении беременным крысам (14-й день беременности) этанола в дозах 1 и 3 г/кг.

Однократное введение этанола (1 г/кг) беременным крысам на 39% повышало содержание малонового диальдегида и почти вдвое - активность СОД через 1 ч после введения алкоголя (табл. 6). Содержание восстановленного глутатиона и активность каталазы также возрастали, но в меньшей степени. Через 3 ч после введения этанола эти изменения сохранялись, хотя были выражены существенно меньше, и практически полностью возвращальсь к норме через 24 ч.

Сходное, но более выраженное действие на активность СОД оказывал этанол в дозе 3 г/кг. При этом максимальные изменения активности системы антиоксидантной защиты и ПОЛ наблюдали не через 1 ч, а через 3 ч после введения. Так, вместо повышения содержание малонового диальдегида через 1 ч уменьшалось на 20%, а через 3 ч - даже на 82% (р<0,01) при возрастании СОД на 69% и 116% соответственно.

Таблица 6

Влияние острого введения этанола беременным крысам на уровни малонового диальдегида, восстановленного глутатиона и активность каталазы и супероксиддисмутазы в мозге 14-дневных эмбрионов

Время после введения Малоновый диальдегид (мкмоль/г белка) Каталаза (мкмоль Н2Ог/ мин-мг белка) Супероксид-дисмутаза (А/мг белка) Восстановленный глутатион (мкмоль/г)

Контрольные животные

1 ч 0,25±0,06 38,22±2,19 0,56±0,09 14,07±2,83

Зч 0,29±0,05 37,67±2,08 0,57±0,08 15,12±3,06

24 ч 0,27±0,06 38,87±1,88 0,58±0,08 16,02±3,21

Этанол 1 г/кг

1 ч 0,25±0,06 39,08±2,12 1,04±0,10* 16,06±2,58

3 ч 0,35±0,05** 41,17±2,68 0,88±0,09* 19,61±3,17

24 ч 0,29±0,07 39,89±1,94 0,64±0,09 15,49±3,01

Этанол 3 г/кг

1 ч 0,20±0,06 41,57±2,21 0,95±0,09* 17,01±3,19

Зч 0,04±0,02** 48,58±3,22* 1,23±0,10** 22,55±3,07*

24 ч 0,24±0,05 40,24±2,14 0,70±0,10 18,38±3,29

Примечание. *р<0,05; **р<0,01 по отношению к контролю.

Последний факт (снижение ПОЛ через 3 ч после введения этанола 3 г/кг), по-видимому, связан с нарушением этанолом функции плаценты и

снабжения тканей зародыша кислородом. В этом случае нарушается деятельность окислительно-восстановительных реакций и нормальное восстановление кислорода, приводящее к нарушению ПОЛ. Кроме того, нельзя исключить, что в высокой дозе этанол сам способен стимулировать процесс образования ОН-радикалов, что может снижать интенсивность свободнорадикального окисления липидов.

Таким образом, этанол в дозе 1 г/кг активирует, а в дозе 3 г/кг подавляет свободнорадикальное окисление липидов в мозге 14-дневных эмбрионов. При этом повышение активности СОД указывает на усиленное образование супероксидных радикалов.

Известно, что токсические эффекты этанола на плод могут быть связаны с токсическим действием основного метаболита этанола -ацетальдегида. Нами исследовано влияние ацетальдегида при внутриамниотическом введении на содержание малонового диальдегида и активность антиоксидантных систем (СОД, каталаза, восстановленный глутатион) мозга 14-дневных эмбрионов.

Внутриамниотическое введение ацетальдегида (1,76 мг/зародыш, или 4 мкмоль/зародыш), сходно с этанолом (1 г/кг массы) повышало содержание малонового диальдегида в мозге на 55-69% через 1,5-3 ч после введения токсиканта (табл. 7). Параллельно регистрировали падение активности СОД, особенно выраженное через 3 ч после введения ацетальдегида. Этот факт связан, по-видимому, с повреждающим действием высокореактивного ацетальдегида на фермент, следствием чего и является повышение ПОЛ. Другой причиной активации ПОЛ может быть снижение в мозге эмбрионов под действием ацетальдегида уровня восстановленного глутатиона на 1618%.

Таблица 7

Влияние ацетальдегида при внутриамниотическом введении беременным крысам на уровни малонового диальдегида, восстановленного глутатиона и активность каталазы и супероксиддисмутазы в мозге 14-дневных эмбрионов

Время после введения Малоновый диальдегид (мкмоль/г белка) Каталаза (мкмоль Н2О2/ мин-мг белка) Супероксид-дисмутаза (А/мг белка) Восстановленный глутатион (мкмоль/г)

Контрольные животные

1,5 ч 0,25±0,06 37,18±2,21 0,56±0,09 14,07±2,82

Зч 0,29±0,05 38,74±2,04 0,57±0,08 15,12±2,06

Ацетальдегид 1,76 мкг/зародыш

1,5 ч 0,42±0,06* 38,89±2,18 0,42±0,06 11,75±1,58

Зч 0,45±0,05* 40,87±2,28 0,33±0,07* 12,31±2,17*

Примечание. *р<0,05 по отношению к контролю.

Изменение уровня ПОЛ и восстановленного глутатиона происходят при неизменной активности каталазы и сниженной активности СОД. Не исключено, что в данном случае не происходит активации свободнорадикальных продуктов. Следовательно, действие ацетальдегида в целом совпадает с эффектами этанола в дозе 1 г/кг, то есть с алкогольной интоксикацией животных. Это с высокой степенью уверенности позволяет утверждать, что токсические эффекты этанола на процессы ПОЛ и системы антиоксидантной защиты обусловлены ацетальдегидом.

Фармакологическая коррекция последствий внутриутробной алкоголизации, оцененная по уровню перекисного окисления липидов и системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства

Влияние трекрезана и метапрота на перекисное окисление липидов и активность системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при внутриутробной алкоголизации. Природные и синтетические антиоксиданты представляют собой пример возможного использования при нарушении процессов ПОЛ в мозге эмбрионов при внутриутробной алкоголизации. Так, показано (Бурмистров С.О., 1990; Чуваев И.В., 1993), что экстракты элеутерококка и родственного растения РоНвааз АНаАэНа защищают плод при алкоголизации беременных самок крыс. Подобным действием могут обладать и синтетические антиоксиданты, такие как метапрот (бемитил), трекрезан и другие. Несмотря на хорошие результаты, полученные с растительными антиоксидантами, все же остается не всегда решимой проблема их стандартизации, дозирования, традиций применения. Синтетические антиоксиданты просты с химической точки зрения, удобны в применении (таблетки, капсулы), не обладают выраженными побочными эффектами (Шабанов П.Д., 2008).

Нами выбраны два синтетических антиоксиданта - метапрот и трекрезан - для изучения возможностей нормализации нарушенной алкоголизацией системы ПОЛ и антиоксидантной системы у крыс. В этих опытах 0,05%-ный раствор метапрота или трекрезана добавляли в 20%-ный раствор этанола, которым алкоголизировали беременных самок крыс. Расчетная доза препаратов, которые получали крысы, была равна 50 мг/кг/сутки (крыса в среднем потребляет около 20 мл, в которых содержится 10 мг/сутки вещества на крысу).

Антиалкогольное действие трекрезана в наших опытах проявлялось увеличением числа крысят в пометах алкоголизированных пренатально крыс (табл. 8).

Таблица 8

Влияние внутриутробной алкоголизации и синтетических антиоксидантов на число новорожденных крысят в пометах

Группы крыс Число новорожденных крысят в пометах

Контроль (без алкоголизации) 11±1

Внутриутробная алкоголизация беременных крыс 8±1*

Алкоголизация + трекрезан 10±1#

Алкоголизация + метапрот 9±1

Примечание. *р<0,05 по отношению к контролю; #р<0,05 по отношению к группе алкоголизированных крыс.

Из таблицы видно, что в контрольной группе (без алкоголизации) число новорожденных крысят составило 11±1 на помет. Алкоголизация беременных самок с 1-го дня беременности снижала число новорожденных крысят до 8±1 (р<0,05). Трекрезан и, в меньшей степени, метапрот, вводимые на протяжении беременности алкоголизированным крысам, восстанавливали число новорожденных крысят до 10±1 и 9±1 соответственно.

Как уже отмечалось выше, внутриутробная алкоголизация крыс задерживала постнатальное развитие потомства, оцененное по массе тела и массе мозга, вплоть до 49-го дня развития (дефицит массы составил -1520%). В группах крыс, получавших этанол и трекрезан или этанол и метапрот, уже к 21-му дню постнатального периода крысята не отличались от контрольных по массе тела и массе мозга.

Влияние трекрезана и метапрота на перекиеное окисление липидов и активность системы антиоксидантной защиты мозга потомства, рожденного от самок, алкоголизированных в период беременности и лактации.

Полученные морфометрические данные были подтверждены и в биохимических исследованиях (табл. 9). Так, трекрезан в целом нормализовал вызванные этанолом изменения в активности ПОЛ и антиокислительных систем. Наиболее чувствительными показателями при этом оказались содержание малонового диальдегида и активность СОД при отсутствии значимых изменений в содержании восстановленного глутатиона и активности каталазы. В наших опытах трекрезан снижал повышенную алкоголизацией продукцию малонового диальдегида на 14-й и 15-й дни эмбриогенеза, а повышенную активность СОД - на 13-14-15-й дни развития

эмбрионов. Данный факт указывает на выраженное антиоксидантное действие трекрезана, проявляемое в период эмбриогенеза.

Таблица 9

Влияние трекрезана и метапрота на динамику уровня малонового диальдегида и активностей каталазы и супероксиддисмутазы в мозге _эмбрионов крыс при алкоголизации беременных самок_

Дни развития Малоновый диальдегид (мкмоль/г белка) Катал аза (мкмоль Н202/ мин-мг белка) Супероксиддисмутаза (А/мг белка)

Алкоголизация

13-й день 0,23±0,05 22,88±2,57 0,70±0,10

14-й день 0,32±0,05 44,76±2,87 0,90±0,07

15-й день 0,40±0,06 38,37±2,42 0,72±0,11

16-й день 0,65±0,08 37,67±1,66 1,63±0,21

17-й день 2,28±0,24 40,49±2,18 1,81±0,19

Алкоголизация + Трекрезан

13-й день 0,22±0,05 26,36±1,82 0,52±0,08*

14-й день 0,27±0,06* 50,17±2,09 0,69±0,09*

15-й день 0,30±0,06* 44,12±1,87* 0,96±0,13*

16-й день 0,45±0,09* 34,89±1,77 1,30±0,21

17-й день 1,71±0,18* 37,77±1,89 1,63±0,19

Алкоголизация + Метапрот

13-й день 0,21±0,05 26,87±1,92 0,63±0,09

14-й день 0,29±0,05 40,88±2,04 0,79±0,09

15-й день 0,35±0,06 40,09±1,83 0,66±0,11

16-й день 0,49±0,09* 36,46±2,03 1,33±0,20

17-й день 2,03±0,19 38,71±1,77 1,56±0,20

Примечание. *р<0,05 по отношению к алкоголизированным крысам. Метапрот в условиях наших исследований был менее активен, чем трекрезан. Он снижал лишь повышенное алкоголем содержание малонового диальдегида на 16-й день эмбриогенеза. Показатели антиоксидантных систем (активность СОД, каталазы, содержание восстановленного глутатиона) имели лишь тенденцию к положительным изменениям, хотя статистически достоверных результатов мы не отметили.

В постнатальный период (7-21-49-й дни) жизни крысят, рожденных от алкоголизированных в период беременности самок (отмена этанола на 20-й день беременности), показатели ПОЛ (содержание малонового диальдегида) и антиоксидантных систем, за исключением СОД, в мозге крысят существенно не отличались от контрольных животных. Активность СОД потомства, рожденного от алкоголизированных в период беременности крыс, была на 28-36% повышена во все исследуемые сроки. Трекрезан, назначенный в период алкоголизации крыс, нормализовал активность СОД в мозге 21-дневных крысят (табл. 10). На 7-й и 49-й дни жизни активность

СОД оставалась достоверно повышенной в сравнении с контролем, хотя отмечена явная тенденция к ее снижению. Сходное, но менее выраженное действие проявил и метапрот, также снижавший повышенную активность СОД в исследуемые сроки. При этом достоверное снижение активности СОД регистрировали и на 21 -й, как и в случае с трекрезаном, и на 49-й дни жизни крысят.

Таблица 10

Влияние трекрезана и метапрота на динамику уровня малонового диальдегида, восстановленного глутатиона и активностей каталазы и супероксиддисмутазы в мозге потомства крыс, рожденных от

Дни постнатального развития Малоновый диальдегид (мкмоль/г белка) Катал аза (мкмоль н2о2/ мин-мг белка) Супероксид-дисмутаза (А/мг белка) Восстановленный глутатион (мкмоль/г)

Алкоголизация

7-й день 6,29±0,24 12,66±2,18 3,33±0,32 19,61±4,07

21-й день 4,09±0,23 8,24±1,29 5,12±0,29 28,05±5,52

49-й день 3,31±0,18 5,14±1,18 3,82±0,29 23,09±5,38

Алкоголизация + Трекрезан

7-й день 5,84±0,20 11,43±2,56 3,15±0,32 18,63±4,73

21-й день 4,81±0,21 8,09±1,37 3,38±0,33* 24,08±5,07

49-й день 2,79±0,18 5,27±1,03 3,55±0,33 21,96±5,71

Алкоголизация + Метапрот

7-й день 6,12±0,19 12,42±2,19 3,22±0,35 20,81±5,19

21-й день 5,24±0,22 8,47±1,37 3,85±0,36* 28,12±5,77

49-й день 3,66±0,20 4,87±1,33 3,02±0,30* 25,52±6,22

Примечание. Отмена этанола на 20-й день беременности. *р<0,05 по отношению к группе алкоголизированных крыс.

Важной особенностью изменений ПОЛ и антиокислительных систем мозга потомства крыс (7-21-й дни жизни), алкоголизированных в пре- и постнатальный период, явилось существенное повышение уровня малонового диальдегида, восстановленного глутатиона и активности СОД при практически неизменном уровне активности каталазы. Повышенный уровень малонового диальдегида и активности СОД регистрировали и после отмены потребления этанола животными на 21-й день постнатального развития (после окончания периода лактации и вскармливания крысят). В наших опытах трекрезан нормализовал повышенные значения малонового диальдегида и восстановленного глутатиона в мозге потомства крыс при сохранении потребления этанола в постнатальный период (7-й и 21-й дни

жизни). Активность СОД, повышенная на 21-й день жизни, под действием трекрезана нормализовалась в мозге 49-дневных крысят (табл. 11).

Таблица 11

Влияние трекрезана и метапрота на динамику уровня малонового диальдегида, восстановленного глутатиона и активностей каталазы и супероксиддисмутазы в мозге потомства крыс, рожденных от самок, алкоголизированных в период беременности и вскармливания, а также после

отмены этанола

Дни постнатального развития Малоновый диальдегид (мкмоль/г белка) Каталаза (мкмоль Н202/ мин-мг белка) Супероксид-дисмутаза (А/мг белка) Восстановленный глутатион (мкмоль/г)

Алкоголизация самок в период беременности и вскармливания

7-й день 7,76±0,25 13,86±2,07 2,73±0,30 29,38±3,56

21-й день 7,69±0,23 8,56±1,38 4,38±0,27 28,96±5,06

49-й день 4,22±0,19 4,77±1,39 3,80±0,28 20,56±4,89

Алкоголизация + Трекрезан

7-й день 7,09±0,20* 12,77±2,27 3,10±0,32 24,13±2,81*

21-й день 6,51±0,19* 9,04±1,38 4,32±0,30 21,10±3,17*

49-й день 3,92±0,21 4,79±1,03 2,53±0,27* 17,37±3,61

Алкоголизация + Метапрот

7-й день 6,99±0,16* 14,16±2,08 2,69±0,31 24,95±4,17

21-й день 6,18±0,20* 8,77±1,07 4,11±0,27 22,35±3,44*

49-й день 3,89±0,17 5,52±1,04 2,94±0,24* 19,37±4,28

Примечание. Отмена этанола на 21-й день постнатального развития. *р<0,05; **р<0,01 по отношению к контролю.

Сходное с трекрезаном действие проявил и метапрот. Так, препарат, вводимый в период алкоголизации вместе с этанолом, нормализовал повышенную активность СОД в мозге 49-дневных крысят, устранял повышенное содержание малонового диальдегида и восстановленного глутатиона на 21-й день жизни животных. В случае восстановленного глутатиона трекрезан проявлял свое нормализующее действие уже на 7-й день постнатального развития.

Таким образом, трекрезан и метапрот в целом оказывали благоприятное действие на постнатальное развитие крысят в период 7-49 дней их жизни. Это действие проявлялось как при алкоголизации в период лактации, так и после отмены алкоголя. Наиболее выражено положительное действие трекрезана и метапрота сказывалось на активности СОД и содержании малонового диальдегида и восстановленного глутатиона. При этом трекрезан в одинаковых дозах был несколько активнее метапрота. В то же время следует отметить, что повышенная активность СОД при

алкоголизации сохраняется достаточно долго, и что отмена алкоголя лишь несущественно снижает эту активность. Данный биохимический показатель остается достаточно ригидным к действию исследованных препаратов (трекрезана и метапрота) на фоне алкоголизации, но его чувствительность повышается после отмены этанола.

Изучение антиоксидантных свойств трекрезана и метапрота у половозрелых крыс. В данном разделе исследований крыс самцов алкоголизировали в течение 3 месяцев, начиная с 21-го дня жизни (окончания периода лактации). Часть из них получала 0,05%-ный раствор трекрезана или метапрота. На 90-й день жизни животных декапитировали, выделяли мозг и определяли в нем уровени малонового диальдегида и восстановленного глутатиона, а также активность СОД и каталазы. Данные этой серии исследований представлены в табл.12

Таблица 12

Влияние трекрезана и метапрота на показатели перекисного окисления липидов и систему антиоксидантной защиты в мозге половозрелых алкоголизированных крыс

Показатели Интактные животные Алкоголизация Трекрезан Метапрот

Диеновые конъюгаты, мкмоль/г 21,14±0,38 29,44±0,66* 22,11±0,18# 24,02±0,26#

Малоновый диальдегид, мкмоль/г 3,49±0,09 9,10±0,12* 5,08±0,11*# 7,04±0,23*#

Восстановленный глутатион, мкмоль/ 34,96±0,35 20,56±0,23* 30,47±0,18*# 25,26±0,17*#

СОД, А/мг белка 2,32±0,08 3,02±0,07* 2,45±0,06# 2,84±0,05*#

Каталаза, мкмоль НгОг/мин-мг белка 4,51±0,37 6,5б±0,15* 6,32±0,17* 5,92±0,14*#

Примечание. *р < 0,05 в сравнении с группой интактных животных; #р < 0,05 в сравнении с группой алкоголизированных крыс.

Видно, что алкоголизация на 39% повышала содержание диеновых коньюгатов и почти в 3 раза малонового диальдегида, на 41% снижала уровень восстановленного глутатиона, на 30% повышала активность СОД и на 45% - активность каталазы в мозге.

Трекрезан восстанавливал исходный уровень диеновых коньюгатов и активность СОД, существенно уменьшал содержание малонового диальдегида и повышал уровень восстановленного глутатиона и активность каталазы. Метапрот был несколько менее активен в сравнении с трекрезаном, однако проявил четкую тенденцию к восстановлению всех измененных

алкоголизацией показателей. Их уровни немного не достигали контрольных значений.

Таким образом, трекрезан и метапрот восстанавливают нарушенные алкоголизацией показатели ПОЛ и антиоксидантных систем в мозге половозрелых крыс.

ВЫВОДЫ

1. Системы перекисного окисления липидов (малоновый диальдегид) и антиоксидантные системы (восстановленный глутатион, активность супероксиддисмутазы и каталазы) активно развиваются в третий триместр беременности крыс. В раннем постнатальном периоде (до 21 дня жизни) их активность продолжает возрастать, за исключением каталазы, активность которой в постнатальном периоде падает.

2. Алкоголизация беременных самок активирует процессы перекисного окисления липидов (содержание малонового диальдегида повышается) и системы антиоксидантной защиты (активность супероксиддисмутазы и каталазы повышается) в мозге эмбрионов в третий триместр беременности.

3. Алкоголизация беременных самок снижает число родившихся крысят в помете, а также их массу тела и мозга, которые остаются пониженными вплоть до 7 недель постнатального развития.

4. Этанол (1 г/кг системно) и ацетальдегид (1,76 мг /зародыш внутриамниотически) индуцируют повышение процессов перекисного окисления липидов с одновременным снижением уровня восстановленного глутатиона в мозге эмбрионов в третий трисместр беременности.

5. Отмена алкоголизации в конце беременности не полностью восстанавливает показатели перекисного окисления липидов и активность антиоксидантных систем в ранний постнатальный период (7-21-49 дни жизни): активность супероксиддисмутазы при этом остается значительно повышенной вплоть до 7 недель. Сходная закономерность наблюдается и при отмене алкоголизации на 21-й день постнатального развития.

6. Синтетический адаптоген трекрезан и антигипоксант метапрот, назначаемые в период внутриутробного развития и в ранний постнатальный период одновременно с алкоголизацией, уменьшают нарушения перекисного окисления липидов и активности антиокислительных систем как у эмбрионов, так и у крысят в постнатальный период (7-21-49 дни жизни). При этом наибольшую противоалкогольную активность проявляет трекрезан.

7. Трекрезан и, в меньшей степени, метапрот восстанавливают процессы перекисного окисления липидов и активность антиокислительных систем в мозге половозрелых крыс, хронически потреблявших этанол с 21-го дня жизни.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Показатели перекисного окисления липидов и антиоксидантных систем могут служить важным дополнительным диагностическим критерием

возможного повреждения мозга в период беременности и в ранний постнатальный период.

2. Синтетический адаптоген трекрезан и антигипоксант метапрот следует рекомендовать для углубленного клинического исследования в качестве средств, обладающих антитератогенной активностью у беременных.

3. Полученные данные о развитии процессов перекисного окисления липидов и антиоксидантных систем в онтогенезе следует учитывать в педиатрической практике при обучении дисциплинам, рассматривающим формирование (созревание) нервной системы в раннем онтогенезе.

ОСНОВНЫЕ ПУБЛИКАЦИИ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Шабанов П.Д. Модуляция пептидами самостимуляции латерального гипоталамуса у крыс при хронической алкоголизации / П.Д.Шабанов,

A.А.Лебедев, В.В.Русановский, Е.Е.Воеводин, В.П.Павленко, О.А.Яковлева // Наркология. 2006. №3. С.21-26.

2. Лебедев А.А. Блокада рецепторов кортиколиберина в миндалине астрессином устраняет подкрепляющие эффекты фенамина, морфина и лей-энкефалина на самостимуляцию мозга крыс / А.А.Лебедев, Е.Е.Воеводин,

B.Ф.Стрельцов, В.П.Павленко, В.В.Русановский, Г.В.Саблина, О.А.Яковлева, П.Д.Шабанов // Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам. Матер. 4-й междунар. конф. М., 2006. С.47.

3. Шабанов П.Д. Кортиколиберин и мозговая система подкрепления / П.Д.Шабанов, А.А.Лебедев, Е.Е.Воеводин, В.П.Павленко, В.В.Русановский, Г.В.Саблина, О.А.Яковлева // Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам. Матер. 4-й междунар. конф. М., 2006. С.80.

4. Lebedev А.А. The blockade of amigdaloid corticoliberin receptors by means of astressin diminishes the reinforcing effects of amphetamine, morphine and leu-enkephalin on self-stimulation of the rat brain / A.A.Lebedev, E.E.Voevodin, V.F.Streltsov, V.P.Pavlenko, V.V.Russanovsky, G.V.Sablina, O.A.Yakovleva, P.D.Shabanov // Biological basis of individual sensitivity to psychotropic drugs. Abstracts of 4lh Int. Conf. Moscow, 2006. P. 120.

5. Shabanov P.D. Corticolicoliberin and the reinforcing system of the brain / P.D.Shabanov, A.A.Lebedev, E.E.Voevodin, V.P.Pavlenko, V.V.Russanovsky, G.V.Sablina, O.A.Yakovleva // Biological basis of individual sensitivity to psychotropic drugs. Abstracts of 4lh Int. Conf. Moscow, 2006. P. 120.

6. Лебедев А.А. Модуляция центральных механизмов стресса в раннем онтогенезе введением кортиколиберина и белков теплового шока 70 кДа меняет поведенческие эффекты ноопепта и дилепта у половозрелых крыс / А.А.Лебедев, Г.В.Саблина, В.П.Стеценко, С.В.Марков, И.М.Воейков, Т.А.Гудашева, Р.У.Островская, О.А.Яковлева, Ш.К.Мещеров, П.Д.Шабанов // Психофармакол. и биол. наркол. 2006. Т.6. №3. С.1284-1291.

7. Авалиани T.B. Нарушение и коррекция двигательных и дофамин-зависимых форм поведения у потомства, матери которых подвергались стрессу до беременности // Т.В.Авалиани, Н.К.Белобокова, А.А.Лебедев,

B.В.Сизов, О.А.Яковлева // Психофармакол. и биол. наркол. 2006. Т.6. №3.

C.1292-1298.

8. Лебедев A.A. Модуляция центральных механизмов стресса введением кортиколиберина и БТШ 70 кДа в раннем онтогенезе / А.А.Лебедев, В.П.Стеценко, В.П.Ганапольский, С.В.Марков, И.М.Воейков, Г.В.Саблина, О.А.Яковлева, П.Д.Шабанов // XX съезд физиол. об-ва им. И.П.Павлова. М.: Русский врач, 2007. С.304.

9. Шабанов П.Д. Созревание оксидантных и антиоксидантных систем в раннем онтогенезе у крыс / П.Д.Шабанов, О.А.Яковлева, С.О.Бурмистров // Психофармакол. и биол. наркол. 2010. Т.10. №1. С.2681-2687.

Тираж 100 экз. Подписано в печать 12.05.10 г. Формат 60x84 Vie Объем 1,25 п.л. Заказ № 124

Отпечатано в типографии СПбПМА (190020, Санкт-Петербург, ул. Литовская, 2)

 
 

Оглавление диссертации Яковлева, Ольга Александровна :: 2010 :: Санкт-Петербург

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1. ОНТОГЕНЕЗ НЕЙРОМЕДИАТОРНЫХ И

МЕТАБОЛИЧЕСКИХ СИСТЕМ МОЗГА (обзор литературы)

1.1. Онтогенетическое развитие нейромедиаторных систем мозга

1.2. Развитие медиаторных систем мозга в онтогенезе: последствия фармакологических воздействий

1.3. Взаимодействие ацетилхолина с нейромедиаторными системами дофамина и серотонина

1.4. Перекисное окисление липидов и антиоксидантные системы в онтогенезе

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1. Общий дизайн исследования

2.2. Биохимические методы исследований

2.3. Характеристика использованпых фармакологических средств

2.4. Статистическая обработка результатов исследования 52 РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Глава 3. ИЗУЧЕНИЕ УРОВНЯ ПЕРЕКИСНОГО ОКИСЛЕНИЯ ЛИПИДОВ И СИСТЕМЫ АНТИОКСИДАНТНОЙ ЗАЩИТЫ

МОЗГА ЭМБРИОНОВ И ПОТОМСТВА ПРИ НОРМАЛЬНОМ ОНТОГЕНЕЗЕ И ПОСЛЕ ВНУТРИУТРОБНОГО ДЕЙСТВИЯ ЭТАНОЛА

3.1. Влиние внутриутробного действия этанола на развитие потомства и предпочтение к алкоголю у крыс t

3.2. Перекисное окисление липидов и активность системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при нормальном онтогенезе

3.3. Перекисное окисление липидов и активность системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при алкоголизации матерей

3.4. Перекисное окисление липидов и активность системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов при острой алкогольной интоксикации и действии ацетальдегида

Глава 4. ФАРМАКОЛОГИЧЕСКАЯ КОРРЕКЦИЯ ПОСЛЕДСТВИЙ ВНУТРИУТРОБНОЙ АЛКОГОЛИЗАЦИИ, ОЦЕНЕННАЯ ПО УРОВНЮ ПЕРЕКИСНОГО ОКИСЛЕНИЯ ЛИПИДОВ И СИСТЕМЫ АНТИОКСИДАНТНОЙ ЗАЩИТЫ

МОЗГА ЭМБРИОНОВ И ПОТОМСТВА

4.1. Влияние трекрезана и метапрота на перекисное окисление липидов и активность системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при внутриутробной алкоголизации ^

4.2. Влияние трекрезана и метапрота на перекисное окисление липидов и активность системы антиоксидантной защиты мозга потомства, рожденного от самок, алкоголизированных в период беременности и лактации •

4.3. Изучение антиоксидантных свойств трекрезана и метапрота у половозрелых крыс

Глава 5 ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

ВЫВОДЫ

 
 

Введение диссертации по теме "Фармакология, клиническая фармакология", Яковлева, Ольга Александровна, автореферат

Актуальность исследования

В последние годы пристальное внимание исследователей привлекают проблемы нейробиологии развития. Традиционным направлением этих исследований является изучение нейромедиаторных систем, поскольку нейромедиаторы имеют качественно различные функции в течение онтогенеза нервной системы (Амстиславская М.Г., 2007; Байрамов А.А., 2008). Во взрослом организме медиаторы осуществляют передачу сигналов между клетками, однако в развивающейся нервной системе те же медиаторы могут образовывать морфогенетические градиенты, важные для формирования и дифференцировки различных областей нервной системы и нейромедиаторных систем соответственно (Угрюмов М.В., 2008).

Менее изучено развитие в онтогенезе общебиологических внутриклеточных процессов, таких, как перекисное окисление липидов (ПОЛ) и антиоксидантные системы (Шабанов П.Д. и др., 2009). Вместе с тем, именно эти процессы осуществляют важнейшие функции поддержания гомеостаза нервных клеток. Еще менее изучены механизмы, посредством которых процессы ПОЛ и антиоксидантные системы вовлекается в ответ на воздействие различных токсических и психогенных факторов в раннем онтогенезе.

Среди токсических факторов, достаточно часто воздействующих на развивающийся организм, в частности, при беременности, следует выделить этанол и никотин, которые будущие матери употребляют как бытовые стимуляторы. Однако именно эти токсические воздействия в раннем онтогенезе могут привести к последующим поведенческим девиациям в подростковом и пубертатном периодах (Мещеров Ш.К., 2006). Возникает закономерный вопрос о возможностях предупреждения подобных нарушений с помощью различных фармакологических агентов, потенциально способных уменьшить токсическое воздействие этанола на развивающийся организм. В качестве таких средств рассматриваются растительные адаптогены, например, экстракты из элеутерококка колючего, травы полисциаса, корня женьшеня (Бурмистров С.О., 1990; Чуваев И.В., 1993), пептидные нейропротекторы (Воронина Т.А., 2007), некоторые синтетические средства антигипоксической направленности (Шабанов П.Д., 2008). К последним можно отнести новый отечественный препарат трекрезан (триэтаноламмониевую соль 2-метилфеноксиуксусной кислоты), представляющий собой высокоэффективное фармакологическое средство с адаптогенным и иммуностимулирующим действием (Казимировская В.Б. и др., 1996; Жумашева А.Б., 2009), и метапрот (2-этилтиобензимидазол, бемитил), обладающий антигипопоксической, нейропротекторной и повышающей работоспособность активностью (Шабанов П.Д., 2008).

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Целью настоящей работы явилось изучение процессов перекисного окисления липидов и системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при нормальном онтогенезе и после внутриутробного действия * этанола у крыс, а также фармакологическая коррекция последствий воздействия токсических факторов при беременности.

ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ В задачи исследования входило:

1. Изучить уровень ПОЛ и системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства при нормальном онтогенезе у крыс;

2. Изучить уровень ПОЛ и системы антиоксидантной защиты мозга эмбрионов и потомства после внутриутробного действия этанола у крыс;

3. Изучить состояние ферментов антиоксидантной 'защиты, уровней восстановленнрго глутатиона и ПОЛ мозга эмбрионов при острой алкогольной интоксикации и действии ацетальдегида у крыс;

4. Изучить действие трекрезана и метапрота на активность антиоксидантной системы и уровень ПОЛ мозга эмбрионов и потомства при внутриутробной алкоголизации у крыс;

5. Изучить действие трекрезана и метапрота на активность антиоксидантной системы и уровень ПОЛ мозга половозрелых крыс, алкоголизированных с 21-го дня жизни.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА РАБОТЫ

Доказано, что процессы ПОЛ (малоновый диальдегид) и антиоксидантные системы (восстановленный глутатион, активность супероксиддисмутазы и каталазы) активно развиваются в третий триместр беременности крыс. В раннем постнатальном периоде (до 21-го дня жизни) их активность продолжает возрастать, за исключением каталазы, активность которой в постнатальном периоде падает. При алкоголизации беременных самок активируются процессы ПОЛ и системы антиоксидантной защиты в мозге эмбрионов. Следствием алкоголизации беременных самок является снижение числа родившихся крысят в помете, а также их массы тела и мозга, которые остаются пониженными вплоть до 7 недель постнатального развития. Этанол не только при хроническом, но и при однократном введении индуцируют повышение процессов ПОЛ с одновременным снижением уровня восстановленного глутатиона в мозге эмбрионов в третий триместр беременности. Отмена алкоголизации в конце беременности не полностью восстанавливает показатели ПОЛ и активность антиоксидантных систем в ранний постнатальный период (7-21-49 дни жизни). Сходная закономерность наблюдается и при отмене алкоголизации на 21-й день постнатального развития. Синтетический адаптоген трекрезан и антигипоксант метапрот, назначаемые в период внутриутробного развития и в ранний постнатальный период одновременно с алкоголизацией, уменьшают нарушения ПОЛ и активности' антиокислительных систем как у эмбрионов, так и у крысят в постнатальный период (7-21-49 дни жизни). При этом наибольшую противоалкогольную активность проявляет трекрезан. Кроме того, трекрезан и, в меньшей степени, метапрот восстанавливают процессы перекисного окисления липидов и активность антиокислительных систем в мозге половозрелых крыс, хронически потреблявших этанол с 21-го дня жизни.

ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ И ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ РАБОТЫ

Полученные экспериментальные данные о нарушениях процессов ПОЛ и антиоксидантных систем под влиянием этанола в период беременности и лактации у крыс позволяют рассматривать эти показатели как важный дополнительный диагностический критерий возможного повреждения мозга в период гестации или ранний постнатальный период. Экспериментально доказано, что синтетический адаптоген трекрезан и, в меньшей степени, антигипоксант метапрот, назначаемые в период внутриутробного развития и в ранний постнатальный период одновременно с алкоголизацией, уменьшают нарушения ПОЛ и активности антиокислительных систем как у эмбрионов, так и у крыс в постнатальный период. Это позволяет рекомендовать трекрезан и метапрот для углубленного клинического исследования в " качестве средств, обладающих ^ антитератогенной активностью у беременных. Наконец, полученные данные о развитии процессов ПОЛ и антиоксидантных систем в онтогенезе расширяют теоретические и практические представления о ' формировании (созревании) нервной системы в раннем онтогенезе, что следует учитывать в педиатрической практике и при изучении девиантных форм поведения у подростков и в пубертатном периоде.

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ:

1. Системы ПОЛ (малоновый диальдегид) и антиоксидантные системы (восстановленный глутатион, активность супероксиддисмутазы и каталазы) активно развиваются в третий триместр беременности крыс и в раннем постнатальном периоде (до 21-го дня жизни), достигая значений, типичных для половозрелых особей.

2. Алкоголизация беременных самок активирует процессы ПОЛ и системы антиоксидантной защиты в мозге эмбрионов и потомства (до 7 недель жизни). Однократное введение больших доз этанола и ацетальдегида беременным самкам также способно индуцировать повышение процессов ПОЛ с одновременным снижением уровня восстановленного глутатиона в мозге эмбрионов.

3. Отмена алкоголизации в конце беременности или на 21-й день постнатального развития не полностью восстанавливает показатели ПОЛ и активность антиоксидантных систем в ранний постнатальный период вплоть до 7 недель.

4. Синтетический адаптоген трекрезан и, в меньшей степени, антигипоксант метапрот, назначаемые в период внутриутробного развития и в ранний постнатальный период одновременно с алкоголизацией, уменьшают нарушения ПОЛ и активности антиокислительных систем как у эмбрионов, так и у крысят в постнатальный период. Этот тип действия трекрезана и метапрота характерен и для половозрелых крыс, хронически потреблявших этанол с 21-го дня жизни. ■

Апробация материалов исследования

Материалы диссертации доложены на 4-й международной научной конференции «Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам» (Москва, 2006); на XX съезде физиологического общества им. И.П.Павлова (Москва, 2007), на заседании Санкт-Петербургского научного общества фармакологов (2008).

Апробация диссертации прошла на межкафедральном заседании кафедры фармакологии и кафедры акушерства и гинекологии Военно-медицинской академии им. С.М.Кирова.

РЕАЛИЗАЦИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ РАБОТЫ Диссертационная работа выполнена в рамках плановой темы НИР Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова. Оригинальные авторские подходы методического характера реализованы в научно-исследовательской деятельности и учебном процессе кафедр фармакологии, нормальной физиологии и акушерства и гинекологии Военно-медицинской академии им. С.М.Кирова.

ПУБЛИКАЦИИ

По теме диссертации опубликовано 9 научных работ, в том числе 4 статьи (1 статье в журнале, рекомендованном ВАК) и 5 тезисов.

СТРУКТУРА И ОБЪЕМ ДИССЕРТАЦИИ

Материалы диссертации изложены на 127 страницах машинописного текста, иллюстрированы 12 таблицами и 6 рисунками. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, двух глав собственных исследований, обсуждения результатов исследований, выводов, практических рекомендаций, списка использованной литературы.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Фармакологическая коррекция последствий воздействия токсических факторов при беременности (экспериментальное исследование)."

ВЫВОДЫ

1. Системы перекисного окисления липидов (малоновый диальдегид) и антиоксидантные системы (восстановленный глутатион, активность супероксиддисмутазы и каталазы) активно развиваются в третий триместр беременности крыс. В раннем постнатальном периоде (до '21 дня жизни) их активность продолжает возрастать, за исключением каталазы, активность которой в постнатальном периоде падает.

2. Алкоголизация беременных самок активирует процессы перекисного окисления липидов (содержание малонового диальдегида повышается) и системы антиоксидантной защиты (активность супероксиддисмутазы и каталазы повышается) в мозге эмбрионов в третий триместр беременности.

3. Алкоголизация беременных самок снижает число родившихся крысят в помете, а также их массу тела и мозга, которые остаются пониженными вплоть до 7- недель постнатального развития.

4. Этанол (1 г/кг системно) и ацетальдегид (4 мкмоль/зародыш внутриамниотически) индуцируют повышение процессов перекисного окисления липидов с одновременным снижением уровня восстановленного глутатиона в мозге эмбрионов в третий трисместр беременности.

5. Отмена алкоголизации в конце беременности не полностью восстанавливает показатели перекисного окисления липидов и активность антиоксидантных систем в ранний постнатальный период (7-21-49 дни жизни): активность супероксиддисмутазы при этом остается значительно повышенной вплоть до .7 недель. Сходная закономерность наблюдается и при отмене алкоголизации на 21-й день постнатального развития.

6. Синтетический адаптоген трекрезан и антигипоксант метапрот, назначаемые в период внутриутробного развития и в ранний постнатальный период одновременно с алкоголизацией, уменьшают нарушения перекисного окисления липидов и активности антиокислительных систем как у эмбрионов, так и у крысят в постнатальный период (7-21-49 дни жизни). При этом наибольшую противоалкогольную активность проявляет трекрезан.

7. Трекрезан и в меньшей степени метапрот восстанавливают процессы перекисного окисления липидов и активность антиокислительных систем в мозге половозрелых крыс, хронически потреблявших этанол с 21-го дня жизни.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Показатели перекисного окисления липидов и антиоксидантных систем могут служить важным дополнительным диагностическим критерием возможного повреждения мозга в период беременности и в ранний постнатальный период.

2. Синтетический адаптоген трекрезан и антигипоксант метапрот следует рекомендовать для углубленного клинического исследования в качестве средств, обладающих антитератогенной активностью у беременных.

3. Полученные данные о развитии процессов перекисного окисления липидов и антиоксидантных систем в онтогенезе следует учитывать в педиатрической практике при обучении дисциплинам, рассматривающим формирование (созревание) нервной системы в раннем онтогенезе.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2010 года, Яковлева, Ольга Александровна

1. АбрамченкоДЗ.В. Клиническая перинатология. СПб.,1996. 240с.

2. Абрамченко В.В. Антиоксиданты и антигипоксанты в акушерстве (оксидативный стресс в акушерстве и его терапия антиоксидантами и антигипоксантами ). СПб., 2001. 400 с.

3. Абрамченко В.В. Перинатальная фармакология. СПб.: Логос, 1994. 230 с.

4. Абрамченко В.В., Костюшов Е.В., Щербина Л.А. Антиоксиданты и антигипоксанты в акушерстве. СПб.: Jocos, 1995. 117 с.

5. Акмаев И.Г., Калимулина А.Б. Миндалевидный комплекс мозга // Функциональная морфология и нейроэндокринология. М., 1993.

6. Актуальньге,вопросы консервации органов / Под ред. В.И.Шумакова. М., 1982.184 с.

7. Амстиславская Т.Г., Попова Н.К. Нейроэндокринные механизмы регуляции полового мотивационного поведения самцов: эффекты неблагоприятных воздействий в разные периоды онтогенеза // Обзоры по клин, фармакол. и лек. терапии. 2009. Т.7, №2. С.3-14.

8. Анастасьева В.Г. Морфофункциональные нарушения фето-плацентарного комплекса при плацентарной недостаточности. Новосибирск, 1997.

9. Анисимов В.Н., Арутюнян А.В., Опарина Т.И. и др. Возрастные изменения активности свободнорадикалтных процессов в тканях и сыворотки крови крыс // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 1999. Т. 84. С. 502-507.

10. Антонов В.Ф. Липиды и ионная проницаемость мембран. М.: Наука. 1982. 151 с.

11. Арбузов С.Я., Пастушенков JI.B., Фармакологические средства, повышающие устойчивость к гипоксии (обзор литературы) // Фармакол. и токсикол. 1969. №1. С. 115-120.

12. Аржанова О.Н., Кошелева Н.Г., Ковалева Т.Г. и др. Плацентарная недостаточность: диагностика и лечение: Уч. Пособие / Под ред. Э.К. Айламазяна. СПб: ИЗДАТ НОРМЕД, 2000.

13. Афанасьев И.Б. Кислородные радикалы в биологических процессах // Успехи химии. 1979. Т. 48. С.977-986.

14. Ашмарин И.П., Каразеева Е.П. Нейропептиды // Нейрохимия / Под ред. И.П.Ашмарина, П.В.Стукалова. М.: Изд-во Ин-та биомед. химии РАМН, 2006.

15. Айламазян Э.К. Антиоксиданты в комплексной терапии позднего токсикоза и связанной с ним хронической гипоксии плода // Акушерство и гинекология. 1991. №3. С. 12-18.

16. Бабичев В.Н. Нейроэндокринология пола. М.: Наука, 1981. 150 с.

17. Байрамов А.А. Центральные холинергические механизмы регуляции половой функции (экспериментальное исследование): Автореф. дис. . д-ра мед. наук. СПб.: ВМедА, 2008. 48 с.

18. Байрамов А.А., Сапронов Н.С. Влияние холинотропных препаратов на пренатальное развитие моноаминергической системы головного мозга // Мед. акад. журн. 2007. Т.7, № 4. С.52-58.

19. Байрамов А.А., Мещеров Ш.К. Отдаленные нейрохимические эффекты пренатального воздействия селективных М- и Н-холинотропных препаратов // Психофармакой. и биол. наркол. 2008. Т.8, № 1. С.2286-2293.

20. Барабой В.А. Механизмы стресса и перикисного окисления липидов // Успехи совр. биол. 1991. T.l 11, Вып.6. С.923-931.

21. Барабой В.А. Растительные фенолы и здоровье человека. М.: Наука, 1984. 160 с.

22. Батуев А.С. Начальные этапы биосоциальной адаптации ребенка // Психофизиологические основы социальной адаптации ребенка. СПб., 1999. С. 8-13.

23. Батуев А.С., Соколова JI.B. Учение о доминанте как теоретическая основа формирования системы "мать-дитя" // Вестник СПбГУ. 1994. Т.2, № 10. С. 85102.

24. Безрукова О.Н. Родительский статус будущей матери и факторы, влияющие на позицию в воспитании ребенка // Психофизиологические основы социальной адаптации ребенка. СПб., 1999. С. 28-36.

25. Беледа Р.В., Фотина JI.A. Медико-психологические аспекты брака и семьи. Харьков, 1985. 81 с.

26. Бешкемпиров Е. Судебно-психиатрическая оценка при вариантах гипоталамических поражений органического происхождения // Клинические и биологические проблемы общей и судебной психиатрии. М.,-1988.

27. Биленко М.В. Теоретические и экспериментальные обоснованияприменения антиоксидантной терапии для профилактики острых ишемических повреждений в органах // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М.: Наука, 1982. Т. 57. С. 195-213.

28. Биленко М.В., Тельпухов В.И., Чуракова Т.Д., Комаров П.Г. Влияние ишемии и реперфузии головного мозга крыс на процессы перикисного окисления липидов и защитный эффект антиоксидантов // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1988. Т. 105, №4. С. 394-396.

29. Билибин Д.П. Дворников В.Е. атофизиология алкогольной болезни и наркоманий. М.: Ун-т дружбы народов, 1990. С. 104.

30. Бобков Ю.Г, Виноградов В.М, Катков В.Ф. и др. Фармакологическая коррекция утомления. М.: Медицина, 1984. 208 с.

31. Бобырев В.Н, Почерняева В.Ф, Стародубцев С.Г. и др. Специфичность систем антиоксидантной защиты органов и тканей основа дифференцированной фармакотерапии антиоксидантами // Эксперим. и клин, фармакол. 1994. Т. 57, № 1. С. 47-54.

32. Богач П.Г, Курский М.Д, Кучеренко Н.Е, Рыбальченко В.К. Структура и функции биологических мембран. Киев: В ища школа, 1981. С. 336.

33. Боголепов Н.Н. Доведова Е.Л, Герштейн Л.М. Влияние экспериментальной гипоксии на показатели окислительного и белкового метаболизма в мозге крыс // Гипоксия. Механизмы, адаптация, коррекция / Мат. Всерос. конф. М„ 1997. С. 34-35.

34. Болдырев А.А. парадоксы окислительного метаболизма мозга // Биохимия. 1995. Т. 60, Вып. 9. с. 1536-1542.

35. Болдырев А.А, Введение в биохимию мембран. М.: Наука, 1998.

36. Бояринов Г.А. Влияние антигипоксантов на обратимость патологических состояний при,лкровопотере: Автореф. дис. . д-ра мед. наук. Казань, 1987. 34 с.

37. Бугров С.А, Лозинский П.А, Некрасов В.И. Антиоксидантная система и перикисное окисление липидов при моделировании острой гипоксии // Модельные системы в медико-биологических исследованиях. Л, 1989. С. 5659.

38. Бурлакова Е.Б, Храпова Н.Г. Перекисное окисление мембран и природные антиоксиданты // Успехи химии. 1985. Т.54, №9. С.1540-1558.

39. Бурлев В. А. Свободно-радикальное окисление в системе мать—плацента-плод при акушерской патологии: Автореф. дис. д-ра мед. наук. М, 1992.

40. Бурлев В.А, Высоколян Э.И, Юсеф А, Галстян А.А. Перикисное окисление липидов в системе мать-плацента-плод при нефропатиях ирождении плодов с малой массой тела // Акушерство и гинекология. 1987. №8. С.27-30.

41. Бурмистров С.О. Антиоксидантная система и перекисное окисление липидов ткани мозга при пренатальном и раннем постнатальном воздействии этанола: Автореф. дис. . канд. биол. наук. JL: НИИЭМ РАМН СССР, 1990. 23 с.

42. Бурмистров С.О., Опарина Т.Н., Прокопенко В.М., Арутюнян А.В. Показатели процесса деградации белков и антиокислительной системы при нормальной беременности // Акушерство и гинекология. 2001. №6. С. 29-34.

43. Буров Ю.В".', Ведерникова Н.Н. Нейрохимия и фармакология алкоголизма. М.: Медицина, 1982.

44. Бурлакова Е.Б. Роль антиокислительной активности липидов в клеточном метаболизме // Витамины: биохимия витамина Е и селена. Киев, 1975. С. 37-42.

45. Вагнер Г., Грин Р. Метаболиты витаминов. М.: Медицина, 1985. 240 с.

46. Вейн A.M., Соловьева А.Д. Лимбико-ретикулярный комплекс и вегетативная регуляция. М., 1973.

47. Викторов И.В. Нейрохимические механизмы гипоксических / ишемических повреждений нейронов. Роль возбуждающих аминокислот и свободных радикалов // Гипоксия в медицине / Мат. 2-й междун. конф. М.: Hypoxia Medical, 1996. № 2. С. 22-23.

48. Виноградов В.М. Биохимические предпосылки к изысканию противогипоксических средств // Фармакол. и токсикол. 1966. Т.29. №5. С. 637.

49. Виноградов В.М. Фармакология адаптивных процессов. Л.: ВМедА, 1984. 27 с.

50. Виноградов В.М., Криворучко Б.И. Фармакологическая защита мозга от гипоксии // Психофармакол. и биол. наркол. 2001. Т 1, № 1. С. 27-37.

51. Виноградов В.М., Руднев М.И. Влияние некоторых антигипоксических средств на ряд'Чпоказателей углеводного обмена плода при экспериментальной гипоксии // Мат. II съезда фармакологов УССР. Киев, 1973. С. 35-36.

52. Виноградов В.М., Смирнов А.В. Антигипоксанты важный шаг на путиразработки фармакологии энергетического обмена // Антигипоксанты и »актопротекторы : итоги и перспективы / Мат. Рос. научн. конф. СПб., 1994. Вып. 1.С. 23.

53. Виноградов В.М., Урюпов О.Ю. Гипоксия как фармакологическая проблема // Фармакол. и токсикол. 1985. Т. 48. № 4. С. 9-20.

54. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы и антиоксиданты // Вестник РАМН. 1998. № 7. С. 43-51.

55. Владимиров Ю.А., Арчаков P.M. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. 252 с.

56. Владимиров Ю.А., Шерстнев М.П., Азимбаев Т. Оценка антиокислительной и антирадикальной активности веществ и биологических объектов//Биофизика. 1992. Т. 37. С. 1041-1047.

57. Воронина Т.А. Новые ноотропные препараты с нейропротекторной активностью // Психофармакол. и биол. наркол. 2002. Т. 2, № 3-4. С. 375.

58. Газиев А.И., Ушакова Т.Е., Подлуцкий А .Я. и др. Диетические антиоксиданты увеличивают продолжительность жизни мышей, снижают частоту мутаций и увеличивают экспрессию защитных генов // Успехи геронтологии. 1997. Вып. 1. С. 80-84.

59. Глазников JT.A., Буйнов JI. Г., Ястребов Д.В., Шабанов П.Д. Бемитилповышает статокинетическую устойчивость человека // Психофармакол. и биол. наркол. 2002. Т. 2, № 1-2. С. 225-230.

60. Горбачева И. А. Перспективы антиоксидантной протекции организма человека. Матер. II науч.-практ. конф. корпорации ВИТАМАКС. М., 1999.

61. Горнинченко И.И. Медико-психологические аспекты брака и семьи. Харьков, 1985. 129 с.

62. Гречко А.Т. Физиологические механизмы адаптации и ее фармакологическая коррекция « быстродействующими адаптогенами » // Междун. мед. обзоры. 1994. Т. 2, № 5. С. 330-333.

63. Грищенко В. И., Щербина Н. А. Совершенствование диагностики и терапии перинатальной патологии // Акушерство и гинекология. 1990. № 10. С.37-41.

64. Громова О.А., Скальный А.В., Бурцев Е.М. Структурный анализ ноотропов природного происхождения // 7-й Рос. конгресс «Человек и лекарство». М., 1998. С. 24-27.

65. Губский Ю. И., Сильченко И. А., Селезнева А. И. Роль антиоксидантных витаминов в ограничении токсинов // Биофизические и физико-химические исследования в витаминологии. М.: Наука, 1981.

66. Гуляева Н.В. Перикисное окисление липидов в мозге при адаптации к стрессу: Автореф. дис. д-ра биол. наук. М., 1989. 34 с.

67. Девяткина Т.А., Бречко В.В., Тарасенко JI.M. и др. Антиоксиданты как средства коррекции адаптации // Тез. докл. 6-го Всес. съезда фармакологов. Ташкент, 1988>С. 111-112.

68. Демченко А.Н., Бондаренко В.А., Берковская Т.Н. Половое воспитание, сексуальное здоровье и гармония брачно-семейных отношений // Тез. докл. респ. науч. практич. конф. Киев, 1990. С.148-149.

69. Дмитриев Л.Ф. Липидные радикалы возможные медиаторы переноса заряда и преобразования энергии ( гипотеза ) // Молекул, биол. 1983. Т. 17, Вып. 6. С. 1297-1305.

70. Дмитриев Л. Ф., Давлетина Л. Н., Иванов И. И. Взаимосвязь окислительного фосфорилирования и перекисного окисления липидов // Биол. мембраны. 1985. Т.2. № 8. С.862-867.

71. Дмитриева Т.Б., Игонин А.Л. и др. Острая интоксикация психоактивными веществами в общей и судебно-психиатрической практике: клинический обзор. М., 1997.

72. Доброхотова Т.А. Эмоциональная патология при очаговом поражении головного мозга. М., 1974.

73. Доброхотова Т.А., Брагина Н.Н. Асимметрия мозга и асимметрия сознания человека // Вопр. философии. 1993. № 4. С.123-134.

74. Доброхотова Т.А., Брагина Н.Н. Функциональная асимметрия и психопатология очаговых поражений. М., 1977.

75. Дынник В.В. Иерархия регуляторных механизмов во внутриклеточном обмене // Метаболическая регуляция физиол. состояния. Пущино, 1984. С. 1518.

76. Дюмаев "К.М., Воронина Т.А., Смирнов Л.Д. Антиоксиданты в профилактике и терапии патологий ЦНС. М., 1995. 272 с.

77. Ерин А.Н., Гуляева Н. В., Никушкин Е.В. Свободнорадикальные механизмы в церебральных патологиях // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1994. Т. 118, № ю. С. 343-348.

78. Журавлев А.И. Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М: Наука, 1982.

79. Зайцев В.Г., Островский О.В., Закревский В.И. Связь между химическим строением и мишенью действия как основа классификации антиоксидаптов прямого действия // Эксперим. и клин, фармакол. 2003. №4. С.66-70.

80. Зарубина И.В. Метаболические эффекты бемитила при адаптации крыс к интервальной гипоксической гипоксии // Hypoxia Medical J. 2001. Т. 9, № 1-2. С. 13-17.

81. Зарубина »И.В., Миронова О.П. Влияние бемитила на глутатионовую систему в печени крыс при острой гипоксии // Эксперим. и клин, фармакол.2002. Т. 65, №3. С. 28-30.

82. Зарубина И.В., Шабанов П.Д. Бемитил в качестве антиоксидантного средства при активации перикисного окисления липидов гипоксическим фактором: Метод, рекомендации для врачей. СПб.: ВМедА, 2002. 22 с.

83. Зарубина И.В., Шабанов П.Д. Молекулярная фармакология антигипоксанов. СПб.: H-JI, 2004. 368 с.

84. Зборовская И.А., Банникова М.В. Антиоксидантная система организма, ее значение в метаболизме. Клинические аспекты // Вестник РАМН. 1995. № 6. С. 53-60.

85. Зенков Н.К., Меныцикова Е.Б. Особенности развития окислительного стресса при патологиях нервной системы // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1994. Т. 113, №2. С. 207-211.

86. Зиматкин С.М. Окисление алкоголя в мозге. Гродно, 2006, 200 с.

87. Зиматкин С.М. Альдегиддегидрогеназы мозга и их роль в патогенезе алкоголизма. Гродно, ГрГМУ, 2008. 308 с.

88. Иванов К. П. О биологических условиях и физиологических механизмах снабжения кислородом тканей головного мозга // Успехи физиол. наук. 1974. №2. С. 128-144.

89. Иванов К.П. Основы энергетики организма: теоретические и практические аспекты. Т. 2. Биологическое окисление и его обеспечение кислородом. СПб.: Наука, 1993. 272 с.

90. Иванов К.П. Транспорт кислорода в тканях мозга в норме и при гипоксемии // Оксибиотические и аноксибиотические процессы при экспериментальной и клинической патологии. Киев, 1975. С. 94-95.

91. Имелинский К. Сексология и сексопатология. М., 1986.

92. Каган В.Е., Ритов В.Б., Котелевцев С.В. и др. Перекисное окисление липидов как фактор модификации мембранных структур клетки // Физико-химические основы функционирования мембранных структур клетки. М., 1974. С. 89-93.

93. Казимирко В.К., Мальцев В.И., Бутылин В.Ю., Горобец Н.И. Свободнорадикальное окисление и антиоксидантная терапия. Киев: Морион, 2004. 160 с.

94. Казимировская В.Б., Дьяков В.М., Воронков М.Г., Ковальчук С.Ф. Трекрезан: токсикология, фармакология, результаты клинических испытаний. Иркутск, 1996. 224 с.

95. Калуев А.В. К проблеме окислительных процессов в ишемическом мозге // Биохимия. 1996. Т. 61, Вып. 5. С. 939-941.

96. Каменская В.М., Брагина Н.Н., Доброхотова Т.А. К вопросу о функциональных связях правого и левого полушарий мозга с различными отделами срединных структур у правшей // Функциональная асимметрия и адаптация человека. М., 1976.

97. Карпова E.JI. Сравнительная стресс-протекторная эффективность растительных адаптогенов и синтетических пептидов: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Смоленск, 2002. 24 с.

98. Картовенко И.В., Голиков П.П., Давыдов Б.В., Андреев А.А. Состояние процессов перекисного окисления липидов и антиоксидантной системы у пострадавших с тяжелой сочетанной травмой // Пат. физиол. и эксперим. терапия. 2004. №1. С.8-10.

99. Катков В.Ф., Смирнов А,В., Андреев В.Б. и др. // Синтез, фармакология и клинические аспекты новых психотропных и сердечно-сосудистых средств // Тез. докл. Волгоград, 1989. С. 123-124.

100. Кения М.В., Лукаш А.И., Гуськов Е.П. Роль низкомолекулярных антиоксидантов при окислительном стрессе // Успехи совр. биол. 1993. Т. 113, Вып. 4 С. 456-470.

101. Климов А.Н., Никульчева Н.Г. Обмен липидов и липопротеидов и его нарушения. СПб., 1999.

102. Коваленко Е.А., Гринберг Л.Н. О критических концентрациях кислорода и тканевой адаптации к гипоксии // Пат. физиол. и эксперим. терапия. 1972. № 5. С.12-18.

103. Коган Л.А. Медико-психологические аспекты брака и семьи. Харьков, 1985. 84 с.

104. Коган- М.И, Терентьев Ю.В. Современные проблемы сексопатологии. Киев, 1986. С. 19-20.

105. Кожевников Ю.Н. О перекисном окислении липидов в норме и патологии // Вопр. мед. химии. 1985. № 5. С.2-6.

106. Кожечкин С.Н. Холинергическая природа гипоталамо-корковых возбуждающих эффектов // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1982. Т.93, №5. С. 1012.

107. Козлов Ю.П. Свободнорадикальное окисление липидов в биомембранах в норме и патологии// Биоантиокислители. М, 1975. С.5- 15.

108. Кольман Я, Рем К.Г. Наглядная биохимия: Пер. с нем. М.-: Мир, 2000. 469 с.

109. Кометиани П.А. Биохимические аспекты ишемии головного мозга (обзор) //Пат. физиол. и эксперим. терапия. 1980. № 5. С.79-84.

110. ИЗ. Конвай В.Д. Новые данные в пользу ксантиноксидазной гипотезы гиперфункции свободных радикалов // Структурно-функциональные механизмы патогенетических и крмплексновосстановительных реакций. Омск, 1994. С.29-32.

111. Конторщикова К.Н. Перекисное окисление липидов в норме и патологии: Уч. пособие. Н. Новгород, 2000. 24 с.

112. Конькова А.Ф, Магай И.А, Шехаева О.М. и др. Энергетический гомеостаз и адаптационные возможности человека в экстремальных условиях // Изв. АН СССР Сер. биол. 1987. № 4. С.506-518.

113. Кораблев М.В, Лукиенко П.И. Противогипоксические средства. Минск: Беларусь, 1976. 128 с.

114. Коробейникова Э.Н. Модификация определения продуктов перекисного окисления липидов в реакции с тиобарбитуровой кислотой // Лаб. дело. 1989. № 7. С.8-9.

115. Королюк М.А, Иванова А.И, Майорова И.Г. Метод определения активности каталазы // Лаб. дело. 1988. № 1. С. 16-19.

116. Косолапов В.А., Островский О.В. Влияние бемитила на показатели перикисного окисления липидов in vitro // От Materia Medica к современным медицинским технологиям. Матер, конф. СПб., 1998. С.78.

117. Косолашэв В.А., Степанов А.В., Спасов А.А. Антиоксиданты: современное состояние, проблемы. Создание на их основе церебропротекторных средств. // Тез. 2-го съезда Рос. науч. общ-ва фармакологов. М., 2003. С.263.

118. Костюк П.Г., Крышталь О.А. Механизмы электрической возбудимости нервной клетки. М., 1981. С.497-500.

119. Костюк В.А., Потапович А.И. Свободнорадикальное повреждение клетки и использование антирадикальных агентов в качестве защитных средств // Фармакологическая коррекция гипоксических состояний / Мат. конф. Гродно, 1991. Ч. 3. С.428-429.

120. Костюк В.А., Потапович А.И., Лунец Е.Ф. Спектрофотометрическое определение диеновых конъюгатов // Вопр. мед. химии. 1984. №4. С. 125-127.

121. Котрелл Дж.Е. Защита мозга // Анестез. и реаниматол. 1996. № 2. С.81-85.

122. Кратохвил С. Терапия функциональных сексуальных расстройств. М., 1985. 159 с.

123. Круглякова К.Е., Гендель Л.Я. Действие антиоксидантов на биологические структуры // Биоантиоксидант. Матер, междунар. симп. Тюмень: Изд-во ТюмГУ, 1997. С.4-5.

124. Круглякова К.Е., Шишкина Л.Н. Общие представления о механизме действия антиоксидантов // Исследование синтетических и природных антиоксидантов in vitro и in vivo / Под ред. Е.Б. Бурлаковой. М.: Наука. 1992. С.5-8.

125. Кулинский В.И., Ольховский И.А. // Успехи совр. биологии. 1992. Т. 112, вып. 5-6. С.697-713.

126. Кучеренко Н.Е., Васильев А.Н. Липиды. Киев: Вища школа, 1985. С.247.

127. Лабори А. Регуляция обменных процессов: Пер. с фр. М.: Медицина, 1970. 383 с.

128. Лебедев А. А. Подкрепляющие системы мозга // Наркомании: патопсихология, клиника, реабилитация / П.Д. Шабанов, О.Ю. Штакельберг. СПб.: Лань; 2001. С.143-176.

129. Лебедев Д.А., Шабанов П.Д. Сопоставление реакции самостимуляции и условного предпочтения места при введении фенамина у крыс // Журн. высш. нервн. деят. 1992. Т. 42, Вып. 4. С.692-698.

130. Лебедева Е.Н., Твердохлиб В.П., Спиричев В. Б. К вопросу о «витаминной цене » адаптации // Гипоксия в медицине / Тез. докл. II Интернац. конгр. М.: Hypoxia Medical, 1996. № 2. С. 105.

131. Лейбович Ф.А., Кожушко Л.Ф. О связанных с полом особенностях электроактивности головного мозга // Журн. невропатол. и психиатрии им. С.С.Корсакова. 1974. Т.74, № 6. С.801.

132. Ленинджер, А. Основы биохимии: В 3-х т. Т.2. М., Мир, 1985. 368 с.

133. Логинов А.А. Гомеостаз. Философские и общебиологические аспекты. Минск, 1979.

134. Лосев Н.А. (Losev N.A.) Interaction between m- and n-cholinoreactive systems: a further development of S.V.Anichkov's ideas // Вести HAH Белоруссии. Сер. мед.-биол.,наук. 2001. № 1. С.61-64.

135. Лужников Е.А. Злоупотребление алкоголем в России и здоровье населения // Острые отравления этиловым алкоголем и его суррогатами. Соматическая патология при хронической алкогольной интоксикации. М.: РАОЗ, 2000. С.53-61.

136. Лукьянова Л.Д., Балмуханов Б.С., Уголев А.Г. Кислородзависимые процессы вклетке и ее функциональное состояние. М., 1982.-301 с.

137. Лукьянова Л. Д., Власова И .Г. Нейрональная модель система для отбора антигипоксантов // Итоги науки и техники. Сер. Фармакология. Химиотерапевтические средства. Т. 27. Антигипоксанты / Под ред. Л.Д. Лукьяновой. М., 1991. С. 164-176.

138. Лукьянчук В.Д., Савченкова Л.В. Антигипоксанты: состояние и перспективы // Эксперим. и клин, фармакол. 1998. №4. С.72-79.

139. Лурия А.Р. Нейропсихология памяти. М., 1974.

140. Лурия А.Р. Об отношении нейропсихологии к проблеме личности // Нейропсихология. Тексты. М., 1984.

141. Лурия А.Р. Основы нейропсихологии. М., 1973.

142. Лыскова Т.И., Ассенцев С.Л., Федорович С.В. и др. Влияние факторов ишемического повреждения на перикисное окисление липидов в синаптосомах мозга крыс // Биофизика. 1997. Т. 42, Вып. 2. С.408-411.

143. Ляпков Б.Г. Ткачук Е.Н. Тканевая гипоксия: клинико-биологические аспекты // Воспр. мед. химии. 1995. Т. 41, Вып. 2. С.2-8.

144. Максютина Н. П., Комиссаренко Н. Ф., Прокопенко А. П. Растительные лекарственные средства. Киев: Здоров'я, 1985. 280 с.

145. Магомедов Н.М. Перикисное окисление липидов в структурно-функциональных нарушениях различных мембран при гипоксии и ишемии: Автореф. дис. . докт. мед. наук. М., 1993. 38 с.

146. Мажуль Л.М., Давидович К.К., Гулько В.В. Перекисное окисление липидов и травма мозга // Вопр. мед. химии. 1990. № 4. С. 10-11.

147. Маилян Э.С., Буравкова Л.Б., Коваленко Е.А. К проблеме тканевой адаптации к гипоксии // Пат. физиол. и эксперим. терапия. 1983. № 1. С. 14-17.

148. Мак-Мюррей У. Обмен вещеста у человека: Пер. с англ. М.: Мир, 1980. 368 с.

149. Маньковская И.Н. Механизмы активации перикисного окисления липидов при гипоксических состояниях различного генеза // Фармакологическая коррекция гипоксических состояний. Матер, конф. Гродно, 1991. Ч.З. С.444-445.

150. Маньковская И.Н., Вавилова Г.Л., Харламова О.Н. и др. Активность маркерных ферментов клеточных мембран у крыс при адаптации к гипоксической гипоксии // Укр. биохим. журн. 1997. Т. 69. № 2. С.79-87.

151. Маркизова Н.Ф., Гребенюк А.Н., Башарин В.А., Бонитенко Е.Ю. Спирты: СПб.: Фолиант, 2004. 112 с.

152. Матюшин И.А., Балабаньян В.Ю., Кудрин B.C. и др. Антирадикальная и антиоксидантная активность ряда нейротропных и антигипоксических средств // Тр. нац. науч.-практ. конф. «Свободные радикалы, антиоксиданты и болезни человека». Смоленск, 2001. С.46-48.

153. Марри Р., Бреннер Д., Мейес П., Родуэл В. Биохимия человека: В 2-х т. М., 1993.

154. Меерсон Ф.З. Адаптация, стресс и профилактика. М.: Наука, 1981.

155. Меерсон Ф.З. Адаптация к стрессу и гипоксия // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1994. № 1. С.574-575.

156. Мещеров Ш.К. Фармакологическая коррекция последствий социальной изоляции: Автореф. дис. . д-ра мед. наук. СПб.: ВМедА, 2004. 48 с.

157. Миронова О.П., Зарубина И.В. Механизмы антиоксидантного действия бемитила// психофармакол. и биол. наркол. 2002. Т. 1, № 1-2. С.219-224.

158. Морозов В.Г., Хавинсон В.Х. Пептидные биорегуляторы (25-летний опыт экспериментального и клинического изучения). СПб: Наука, 1996. 74 с.

159. Мышкин В.А., Кривоногов В.П., Гуляева И.Л. и др. Фармакологическая коррекция ПОЛ при экспериментальных интоксикациях химическими веществами // Сб. тез. 2-го съезда Рос. науч. общ-ва фармакологов. М., 2003. 4.2. С.40.

160. Наливаева Н.Н., Плеснева С.А., Чекулаева У.Б. и др. Влияние амтизола на биохимические показатели синаптосом коры больших полушарий мозга крыс в условиях гипоксии // Физиол. человека. 1994. Т. 20. № 6. С. 112-117.

161. Науменко Е.В., Дыгало Н.Н., Маслова Л.Н. Длительная модификация стрессорной реактивности воздействиями в пренатальном онтогенезе // Онтогенетические и генетико-эволюционные аспекты нейроэндокинной регуляции стресса. Новосибирск: Наука, 1990. С.28-40.

162. Никушкин Е.В. Перекисное окисление липидов в ЦНС в норме и при патологии // Нейрохимия. 1989. Т. 8. С. 124-145.

163. Никушкин Е.В., Сазонтова Т.Г., Бордюков М.М. Последствия некомпенсированной активации процесса перикисного окисления липидов для синаптических* мембран // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1994. Т. 117, № 2. С.214.

164. Нохуров А. Нарушения сексуального поведения: судебно-психиатрический аспект. М., 1988.

165. Нужный В.П. Внутриклеточные процессы при развитии наркотической зависимости // Вопр. наркологии. 1995. № 3. С.65-74.

166. Нужный В.П, Тезиков Е.Б, Успенский А.Е. // Вопр. наркологии. 1995. №2. С.51-59.

167. Обухова JI.K, Эмануэль Н.М. Роль свободнорадикальных реакций окисления в молекулярных механизмах старения живых организмов // Успехи химии. 1983. Т. 52. С.353-372.

168. Оковитый С.В, Смирнов А.В. Антигипоксанты // Эксперим. и клин, фармакология. 2001. Т.64, №3. С.76-80.

169. Осипов А.Н, Азизова О.А,Владимиров Ю.В. Активные формы кислорода и их роль в организме // Успехи биол. химии. 1990. Т. 31. С. 180-208.

170. Островская Р.У. Нейрофармакологическая характеристика класса ноотропов // Антидепрессанты и ноотропы / Труды ЛНИПНИ им. Бехтерева. Л., 1982. Т.101. С.101-113.

171. Островский О.В, Спасов А.А, Гаева Л.М. и др. Противогипоксические эффекты антиоксидантных веществ // Антиоксиданты и актопротекторы: итоги и перспективы. Матер. Рос. научн. конф. СПб, 1994. Вып. 1. С.75.

172. Отеллин В.А, Хожай Л.И, Ордян Н.Э. Пренатальное стрессирование и развивающийся мозг. Адаптивные механизмы, непосредственные и отсроченные эффекты. СПб.: Десятка, 2007. 265 с.

173. Парфенов Э.А, Смирнов Л.Д. Основные направления разработки антиоксидантов медицинского назначения // Тр. нац. научно-практ. конф. «Свободные радикалы, антиоксиданты и болезни человека». Смоленск, 2001. С.51-52.

174. Панин Л.Е. Биохимические механизмы стресса. Новосибирск: Наука, 1983. 232 с.

175. Пастушенков Л.В, Лесиовская Е.Е. Растения-антигипоксанты. Л, 1991.

176. Пескин А.В. Взаимодействие активного кислорода с ДНК // Биохимия. 1997. Т. 62. С.1571-1578.

177. Пескин А.В. Роль кислородных радикалов, образующихся при функционировании мембранных редокс-цепей, в повреждении ядерной ДНК // Биохимия. 1996. Т. 61, Вып. 1. С.65-72.

178. Плотников М.Б., Кобзева Е.А., Плотникова Т.М. Антиокислительные эффекты антигипоксантов при ишемии мозга // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1992. Т. 113, № 5. С.504-506.

179. Плотников М.Б., Плотникова Т.М., Якимова Т.В. и др. Фармакология и научно-технический прогресс. Ташкент, 1988. С.291.

180. Плотников М.Б., Стариков А.С., Плотникова Т.М. и др. Антигипоксические и антиокислительные свойства бемитила // Бюл. экперим. Биол. и мед. 1989. Т. 107, № 5. С.583-585.

181. Плотников М.Б., Хазанов В.А., Плотникова Т.М. и др. // Бюл. Томск, научн. центра АМН СССР. 1990. № 2. С. 17-28.

182. Польшин В.В., Мхитаров В.А. Мардалеишвили Г.Б. Зависимость электрической ^ активнсоти коры головного мозга белых крыс от половых гормонов //Журн. высш. нервн. деят. 1986. Т.36, №5. С.981-984.

183. Починок Т.В., Тараховский M.JL, Портнягина В.А. и др. Экспресс-метод определения антирадикальной активности лекарственных веществ // Хим.-фарм. журн. 1985. № 5. С. 565-569.

184. Плужников Н.Н., Софронов Г.А. антигипоксанты как усилители естественных защитно-адаптационных реакций организма на гипоксию // Антигипоксанты и актопротекторы: итоги и перспективы. Мат. Рос. научн. конф. СПб.; 1994. С.79.

185. Поваро^а О.В., Каленикова Е.И. и др. Антиоксиданты как нейропротекторы при ишемическом инсульте // Эксперим. и клин, фармакология. 2003. №3. С.69-73.

186. Пожаров В.П., Миняйленко Т.Д. Перекисное окисление липидов в условиях тяжелой гипоксии: возможные механизмы активации // Hypoxia Medical J. 1993. №3. С.13-17.

187. Полтавченко Г.М., Аксенова Н.В., Соколова Е.Н. // Фармакологическая коррекция гипоксических состояний. М., 1989. С.87-92.

188. Попова О.А., Замула С.В. Фармакологическая коррекция гипоксических состояний. М., 1989. С.155-159.

189. Радзинский В.Е., Смалысо П.Я. Биохимия плацентарной недостаточности. М.: Изд-во РУДН, 2001. 273 с.

190. Раевский К.С. Возбуждающие аминокислоты, патология ЦНС и пути ее фармакологичёской коррекции // Итоги науки и техники. Сер. Физиология человека и животных. М.: ВИНИТИ, 1989. Т. 36. С. 148-176.

191. Резников А.Г. Половые гормоны и дифференциация мозга. Киев: Наукова думка, 1982. 251 с.

192. Рэкер Э. Биоэнергетические механизмы: пер. с англ. М.: Мир, 1967. 291 с.

193. Рябинин Г.Б. Эффективность актопротекторов в лечении хронической гипоксии плода при гестозе. Дис. канд. мед. наук. СПб., 1999. 132 с.

194. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / Под ред. В.П.Фисенко. М.: МЗ РФ, 2000. С.281-286.

195. Рязанцев В'.В. Беседы о трезвости. Киев: Высшая школа, 1987.

196. Самойлов Н.Н. Фармакологическая коррекция физической работоспособности. М., 2002. 120 с.

197. Самойлова М.О. Реакции нейронов мозга на гипоксию. Л.: Наука, 1985. 190 с.

198. Самойлова М.О., Семенов Д.Г., Мокрушин А.А. и др. Механизмы внутриклеточной сигнальной трансдукции, вовлекаемые в формирование индуцируемых гипоксией адаптационных и патологических состояний мозга //

199. Гипоксия. Механизмы, адаптация, коррекция. Матер. Всерос. конф. М., 1997. С.106-197.

200. Сапронов Н.С., Федотова Ю.О., Байрамов А.А. Влияние ДГЭА на условнорефлекторную деятельность и моноаминергический статус у овариэктомированных крыс // Мед. акад. журнал. 2003. Т.З, №1. С.41-47.

201. Сейланов А.С. Попов Г.А., Конев В.В. Связь перикисного окисления липидов с дыханием и окислительным фосфорилированием // Журн. эксперим. и клинич. мед. АН АрмССР. 1983. Т.23, № 2. С.108-111.

202. Селезнев С.А. Патогенез циркуляторных гипоксий // Пат. физиол. и эксперим. терапия. 1981. № 4. С. 16-21.

203. Селиванов Е.А., Слепнева JI.B., Алексеева Н.Н. и др. Разработка препаратов антигипоксического действия на основе фумарата натрия // Антигипоксанты и актопротекторы: итоги и перспективы. Матер. Рос. научн. конф. СПб, 1994. Вып. 2. С.85.

204. Семиголовский Н.Ю. Антигипоксические средства в интенсивной терапии некоторых неотложных состояний (клинико-эксперименталыюе исследование): автореф. дис. .канд. мед. наук. JI, 1987. 21 е.

205. Середенко М.М. Некоторые итоги изучения проблемы гипоксии // Физиол. журн. СССР. 1984. Т.ЗО, № 3. С.355-362.

206. Симонов В.П. Эмоциональный мозг. М, 1981.

207. Симонов П.В. Мотивированный мозг. М.: Наука, 1987. 237 с.

208. Симонов П.В. О нервных центрах эмоций // Журн. высш. нервн. деят. им. И.П. Павлова. 1993. Т.43, №3. С. 19-23.

209. Симонов П.В. Светлое пятно сознания // Журн. высш. нервн. деят. им. И.П. Павлова. 1990. Т.40, № 6. С. 1040-1043.

210. Смирнов А.В. Роль глюконеогенеза при физической деятельности // Успехи совр. биол. 1984. Т. 97. № 3. С. 399-412.

211. Смирнов А.В. // Фармакология здравоохранению: Тез. докл. JI, 1976. С.194-195.

212. Смирнов А.В. // Успехи совр. биологии. 1988. Т. 106, № i. С.20-36.

213. Смирнов А.В. // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1985. № 7. С.81-83.

214. Смирнов А.В. // Фармакол. и токсикол. 1989. Т.52, № 4. С. 111-119.

215. Смирнов А.В., Гречко А.Т. // Синтез, фармакология и клинические аспекты новых психотроп, и сердечно-сосудистых средств. Тез. докл. Волгоград, 1989. С. 179.

216. Солонский А.В., Кутепова Н.А. Нейроморфологическая характеристика клеточных элементов мозга эмбрионов в норме и при алкоголизации матери Сибир. вестник психиатрии и наркологии. 2006. Прил. 41. С. 142-143.

217. Стальная И.Д. Метод определения диеновых конъюгантов ненасыщенных высших жирных кислот // Современные методы в биохимии / Под ред. В.Н. Ореховича. М.: Медицина, 1977. С.63-64.

218. Стальная И. Д., Горишвили Т.Г. Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты // Современные методы в биохимии / Под ред. В.Н. Ореховича. М.: Медицина, 1977. С. 66-68.

219. Судаков К.В. Биологические мотивации. М., 1971.

220. Темин П.А., Мухин К.Ю. Сексуальные нарушения при эпилепсии // Журн. невропатол. и психиатр. 1989. № 6. С.126-131.

221. Темин П.А., Мухин К.Ю., Новиков А.А., Маковецкий M.JT. Гипосексуальность у мужчин с эпилепсией // Журн. невропатол. и психиатрии им. С.С.Корсакова. 1988. № 6. С.46-48.

222. Тестов Б.В., Ефимов В.В., Сурнин А.Г. // Третье рабочее совещание «Новые медицинские технологии». Томск; Москва, 2000. С.35-39.

223. Тимохина О.А. Влияние различных форм острого летального кислородного голодания на содержание некоторых микроэлементов в различных отделахголовного и спинного мозга экспериментальных животных: автореф. дис. . .канд. мед. наук. Донецк, 1971. 15 с.

224. Трегубова И.А. Действие антиоксидантных веществ на Систему мать-плод при гипоксиче^ких состояниях (экспериментальное исследование): автореф. дисс. канд. мед. наук. Волгоград, 2000. 22 с.

225. Уайт А., Хендлер Ф., Смит Э. и др. Основы биохимии: пер. с англ. В 3-х тт. Т.2. М.: Мир, 1981.617 с.

226. Уайт А., Хендлер Ф., Смит Э. и др. Основы биохимии: пер. с англ. В 3-х тт. Т.З. М.: Мир, 1981.726 с.

227. Углов Ф.Г. Правда и ложь о разрешенных наркотиках. Л., 1994.

228. Успенский А.Е. Токсикологическая характеристика этанола // Итоги науки и техники ВИНИТИ. Сер. Токсикология. М., 1984. Т. 13. С.6-56.

229. Угрюмов М.В. Механизмы нейроэндокринной регуляции. М.: Наука, 1999. 247 с.

230. Федоров В. Н., Катаев В. В., Талашова С. В. и др. Особенности фармакологических испытаний современных фитопрепаратов // Новости здравоохранения. 2002. Вып.З. С.25-29.

231. Физиология адаптивных процессов. М.: Наука, 1986. 635 с.

232. Хаврель А.И., Сочень Е.Т., Лосев А.С., Прошин А.Д. Изучение некоторых сторон механизма действия психотропных препаратов при комбинированном воздействии гипоксических факторов // Гипоксия. Механизмы, адаптация, коррекция. М., 1999. С.80-81.

233. Хаит Н.З. Половые расстройства у мужчин при поражении гипоталамуса. Обнинск, 1993.

234. Хаит Н.З. Психоэндокринологические аспекты полового поведения при нарушении некоторых структур лимбической системы // Гормоны и мозг. М., 1979. С.91-102.

235. Хомская Е.Д., Батова Н.Я. Мозг и эмоции. М., 1992.

236. Хочачка П., Сомеро Дж. Биохимическая адаптация. М., 1988. С. 165-206.

237. Чемыртан H.A., Шаляпина В.Г. Значение сенсорной стимуляции в постнатальном развитии гипофизарно-адренокортикальной системы крыс // Вопросы эволюционной физиологии. Д.: Наука, 1986. 308 с.

238. Чепурнов С.А., Чепурнова Н.Е. Миндалевидный комплекс мозга. М., 1981.

239. Черницкий Е.А., Болодон В.Н., Воробей А.В. . Интенсификация перикисного окисления липидов при повреждении мембран клеток // Биофизика. 1991. Т. 36, Вып. 5. С.855-857.

240. Шабанов П.Д. Гормоны гипофизарно-надпочечниковой системы в механизмах мозгового подкрепления и зависимости // Основы нейроэндокринологии / Под ред. В. Г. Шаляпиной и П.Д. Шабанова. СПб.: Элби-СПб, 2005. С. 147-203.

241. Шабанов П.Д., Лебедев А.А., Мещеров Ш.К. Дофамин и подкрепляющие системы мозга. СПб.: Лань, 2002. 208 с.

242. Шабанов П.Д., Лебедев А.А., Русановский В.В.,. Стрельцов В.Ф. поведенческие эффекты кортиколиберина и его аналогов, вводимых в желудочки мозга крыс // Мед. акад. журн. 2005. Т. 5, № 3. С.59-67.

243. Шабанов П.Д. Психофармакология. СПб.: Н-Л, 2008. 416 с.

244. Шабанов П.Д., Ноздрачев А.Д., Лебедев А.А., Лебедев В.В. Нейрохимическая организация подкрепляющих систем мозга // Рос. физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 2000. Т. 86, № 8. С.935-945.

245. Шаляпина В.Г., Гарина И. А., Жуков Д. А., Ракицкая В.В. Трансрецепторные механизмы в действии кортикостероидных гормонов // Физиология гормональной регуляции. Л.: Наука, 1996. С.34:63.

246. Шаляпина В.Г., Ракицкая В.В., Абраменко В.В. Адренергическая иннервация матки. Л.: Наука, 1988. 143 с.

247. Шаляпина В.Г., Шабанов П.Д. Основы нейроэндокринологии. СПб.: Элби-СПб, 2005. 464 с.

248. Шанин Ю.Н, Шанин В.Ю, Зиновьев Е.В. Антиоксидантная терапия в клинической практике (теоретическое обоснование и стратегия поведения). СПб.: Элби-СПб, 2003. 128 с.

249. Шашков В.С, Ратнер Г.С, Коваленко Е.А. Противогипоксические средства (обзор литературы) // Фармакол. и токсикол. 1977. Т. 40. № 4. С.504-509.

250. Шепелев А.П, Спиглазов В.И, Шалаев В.Г. и др. Протективный эффект препаратов супероксиддисмутазы при церебральной ишемии // Человек и лекарство. Тез. докл. II Росс. нац. конгр. М, 1995. С.225.

251. Шефер Д.Г. Гипоталамические (диэнцефальные) синдромы. М, 1971.

252. Шиманко И.И, Габриэлян Н.И, Милашенко А.П. Оценка токсичности сред организма при острой эндогенной патологии // Тер. Арх. 1982. Т.9. С.8-11.

253. Шостакович Б.В, Маркова М.Н, Смирнова JI.K, Ткаченко А.А. Уровень половых гормонов у мужчин с нарушением сексуального поведения в виде эксгибиционизма// Журн. невропатол. и психиатрии им. С.С.Корсакова. 1990. Т.90, №5. С.112-116.

254. Эндерци Э. Центральная нервная регуляция системы гипоталамус-кора надпочечников // Современные вопросы эндокринологии. М, 1969. С.55-66.

255. Abe-Dohmae S, Tanaka R, Harada N. Cell type- and region-specific expression of aromatase mRNA in cultured brain cells // Brain Res. 1994. Vol. 24, № 1. P. 153-158.

256. Arevalo R., Castro R., Palarea M.D. & Rodriguez M. Tyrosine administration to pregnant rats induces persistent behavioral modifications in the male offspring // Physiol. Behav. 1987. Vol.39. P.477-481.

257. Arroyo-Cabrales L.M., Garza-Morales S., Hernandez-Pelaez G. Use of prenatal phenobarbital in the prevention of subependymal/intraventricular hemorrhage in premature infants // Arch. Med. Res. 1998. Vol. 29. P. 247-251.

258. Aston-Jones G., Shipley M.T., Grzanna R. The locus coeruleus, A5 and A7 noradrenergic cell groups. In: The Rat Nervous System. Eds:W, P. G., Academic Press, San Diego, CA: 1995. P. 183-237.

259. Audesirk Т., Cabell L. Nanomolar concentrations of nicotine and cotinine alter the development of cultured hippocampal neurons via non-acetylcholine receptor-mediated mechanisms//Neurotoxicology. 1999. Vol. 20. P. 639-646.

260. Bayer S.A., Altman J. Neocortical Development. New York:Raven Press, 1991.

261. Bazzett T.J., Eaton R.C., Thompson J.T., Markowski V.P., Lumley L.A., Hull E.M. Dose dependent D2 effects on genital reflexes after MPOA injections of quinelorane and apomorphine//Life Sci. 1991. Vol.48. P.2309-2315.

262. Bitran.D., Hull E. Pharmacological analysis of male rat. sexual behavior // Neurosci. Biobehav. Rev. 1987. Vol.11. P.365-89.

263. Blaschlce A.J, Weiner J.A, Chun J. Programmed cell death is a universal feature of embryonic and postnatal neuroproliferative regions throughout the central nervous system// J. Сотр. Neurol. 1998. Vol. 396. P. 39-50.

264. Bourgeois J.P, Goldman-Rakic P.S, Rakic P. Synaptogenesis in the prefrontal cortex of rhesus monkeys // Cereb. Cortex. 1994. Vol. 4. P. 78-96.

265. Boyson S.J, Adams C.E. D1 and D2 dopamine receptors in perinatal and adult basal ganglia //Pediatr. Res. . 1997. Vol. 41. № 6. P. 822-31.

266. Brazell M.P, Mitchell S.N, Gray J.A. Effect of acute administration of nicotine on in vivo release of noradrenaline in the hippocampus of freely moving rats: a dose-response and antagonist study //Neuropharmacology . 1991. Vol.30. P.823-833.

267. Busciglio J, Yankner B.A. Apoptosis and increased generation of reactive oxygen species in Down's syndrome neurons in vitro// Nature. 1995. Vol.378. P. 776-779.

268. Buznikov G.A, Shmukler Y, Lauder J.M. Changes in the physiological roles of neurotransmitters during individual development// Neurosci. Behav. Physiol. 1999. Vol.29. P. 11-21.

269. Campbell C.G, Seidler F.J, Slotkin T.A. Chlorpyrifos interferes with cell development in rat brain regions//Brain Res. Bull. 1997. Vol.43. P. 179-189.

270. Cantor J.M, Yitzchak M, Binik J, Pfaus G. Chronic fluoxetine inhibits sexual behavior in. the male rat:reversal with oxytocin- // Psychopharmacology. 1999. Vol.144. P.355-362.

271. Carey, R.J. & R. Schwarting: Spontaneous and drug-induced locomotor activity after partial dopamine denervation of the ventral striatum //Neuropsychobiol .1986. Vol. 16. P. 121-125.

272. Choi B.H. Methylmercury poisoning of the developing nervous system. I: Pattern of neuronal migration in the cerebral cortex //Neurotoxicology. 1986. Vol. 7. P. 591-600.

273. Clarke'P.B., Reuben M. Release of (3H)-noradrenaline from rat hippocampal synaptosomes Цу nicotine: mediation by different nicotinic receptor subtypes from striatal (3H)-dopamine release // Br. J. Pharmacol. 1996. Vol.117. P.595-606.

274. Cutler A.R., Wilkerson A.E., Gingras J.L., Levin E.D. Prenatal cocaine and/or nicotine exposure in rats: preliminary findings on long-term cognitive outcome and genital development at birth //Neurotoxicol. Teratol. 1996. Vol. 18. P. 635-643.

275. Dahlstrom A., Lundell B. Nicotine and cotinine concentrations in the nursing mother and her infant //Acta Paediatrica Scandinavica. 1990. Vol. 79. P. 142-147.

276. Egan T.M., North R.A. Actions of acetylcholine and nicotine on rat locus coeruleus neurons in vitro //Neuroscience. 1986.Vol.19. P.565-571.

277. Foreman M.M., Hall J.L., Love R.L. The role of the 5-HT2 receptor in the regulation of sexual performance of male rats //Life Sci. 1989. Vol.45. P. 1263-1270.

278. Frischer R.E., King J.A., Rose K.J., Strand F.L. Maturational changes in neonatal rat motor system with early postnatal administration of nicotine // Int. J. Dev. Neurosci. 1988. Vol. 6. P. 149-154.

279. Fung Y.K. Postnatal behavioural effects of maternal nicotine exposure in rats // J. Pharm. Pharmacol. 1988.Vol.40. P.870-872

280. Gallardo K.A., Leslie F.M. Nicotine-stimulated release of (3H)norepinephrine from fetal rat locus coeruleus cells in culture //J. Neurochem. l'998.Vol.70. P.663-670.

281. Garcia S.J., Seidler F.J., Slotkin T.A. Developmental neuro-toxicity elicited by prenatal or postnatal chlorpyrifos exposure: effects on neurospecific proteins indicate changing vulnerabilities //Environ. Health Perspect. 2003.Vol.111. P.297-303.

282. Gonzalez M.I., Farabollini F., Albonetti E., Wilson C.A. Interactions between 5-hydroxytryptamine (5-HT) and testosterone in the control of sexual and nonsexualbehaviour in male and female rats // Pharmacol. Biochem. Behav. 1994.Vol.47. P.591- 601.

283. Grifman M., Galyam N., Seidman S., Soreq H. Functional redundancy of acetylcholinesterase and neuroligin in mammalian neuritogenesis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. Vol. 95. P. 13935-13940.

284. Guerri C. Neuroanatomical and neurophysiological mechanisms involved in central nervous system dysfunctions induced by prenatal alcohol exposure // Alcohol Clin. Exp. Res. 1998. Vol. 22. P. 304-312.

285. Gupta R.C. Brain regional heterogeneity and toxicological mechanisms of organophosphates and carbamates //Toxicol. Mech. Meth. 2004.Vol.14. P.103-143.

286. Halgren E., Walter R.D., Cherlow D.G., Grandall P.H. Mental phenomena evoked by electrical stimulation of the human hippocampal formation and amygdala //Brain. 1978. Vol.101. P.83-117.

287. Hedou G., Homberg J., Martin S. et al. Effect of amphetamine on extracellular acetylcholine and monoamin. levels in subterritories of the rat medial prefrontal cortex //Eur. J. Pharmacol. 2000.Vol.390. P.127-136.

288. Herschkowitz N., Kagan J., Zilles K, Neurobiological bases of behavioral development in the first year //Neuropediatrics. 1997. Vol. 28. P. 296-306.

289. Hoffman P.L., Tabakoff B. To be or not to be: how ethanol-can affect neuronal death during development //Alcohol. Clin. Exp. Res. 1996. Vol. 20. P. 193-195.

290. Hull E.M., Meisel R.L., Sachs B.D. Male sexual behavior. In: Pfaff DW, Arnold AP, Etgen AM, Fahrbach SE, Rubin RT, editors. Hormones, brain, and behavior. New York. Academic Press: 2002. P. 133-137.

291. Hunter S.F., Leavitt J.A., Rodriguez M. Direct observation of myelination in vivo in the mature human central nervous system. A model for the behaviour of oligodendrocyte progenitors and their progeny // Brain. 1997. Vol.120 №11. P.2071-2082.

292. Icenogle L.M., Christopher С., Blackwelder W.P. et al. Behavioral alterations in adolescent and adult rats caused by a brief subtoxic exposure to chlorpyrifos during neurulation //Neurotoxicol. Teratol. 2004.Vol.26. P.95-101.

293. Isgor C.,' Sengelaub D.R. Prenatal gonadal steroids affect adult spatial behavior, CA1 and CA3 pyramidal cell morphology in rats // Horm. Behav. 1998. Vol.34. P. 183-198.

294. Iwasaki N., Hamano K., Okada Y. et al. Volumetric quantification of brain development using MRI //Neuroradiology. 1997. Vol. 39. P. 841-846.

295. Jackson D.M., Anden N.E., Dahlstrom A. A functional effect of dopamine in the nucleus accumbens and in some other dopamine-rich parts of the rat brain // Psychopharmacologia. 1975. Vol.45. P.139-149.

296. Richardson J.R., Chambers J.E. Neurochemical Effects of Repeated Gestational Exposure to Chlorpyrifos in Developing Rats // Toxicological Sciences. 2004. Vol. 77. P. 83-90.

297. Jones I,W„ Bolam J,P„ Wonnacott S, Presynaptic localisation of the nicotinic acetylcholine receptor beta2 subunit immunoreactivity in rat nigrostriatal dopaminergic neurones //J, Comp, Neurol, 2001. Vol.439. P.235-247.

298. Kawamoto J.C., Overmann S.R., Woolley D.E., Vijayan V.K. Morphometric effects of preweaning lead exposure on the hippocampal formation of adult rats // Neurotoxicology. 1984. Vol. 5. P. 125-148.

299. Langevin R. et al. Sexual sadism: Brain, Blood, and Behavior. In: Human Sexual aggression. An.New York Ac. Sci. - N.Y.: 1988. P. 172-182.

300. Lauder J.M, Moiseiwitsch J, Liu J, Wilkie MB. Serotonin in development and pathophysiology. In: Lou HC, Greisen G, Falck-Larsen J, editors. Brain Lesions in the Newborn. Alfred Benzon Symposium, vol. 37. Copenhagen: Munksgaard; 1994. p. 60-72. •

301. Lauder J.M. Ontogeny of the serotonergic system in the rat: serotonin as a developmental signal //Ann. N. Y. Acad. Sci. 1990. Vol. 600. P. 297-313.

302. Lauder J.M, Schambra U.B. Morphogenetic roles of acetylcholine // Environ. Health Perspect. 1999. Vol.107. №1. P.65-69.

303. Lebedev A.A, Voevodin E.E, Andreeva L.I, et al. Reinforcing properties of neuropeptides administered into the extended amygdala of chronically alcoholized rats //Eur. Neuropsychopharmacol. 2005. V.15. Supl.2. P.S294.

304. Leonard C.M, Rolls E.T, Wilson F.A.W, Baylis G.C. Neurons in the amygdala of the monkey with responses selective for faces //-Behav. Brain Res.1985. Vol.15. P.159-176. «'

305. Leranth C, Shanabrough M, Horvath T.L. Hormonal regulation of hippocampal spine synapse density involves subcortical mediation // Neuroscience. 2000. Vol.101. P.349-356.

306. Leranth C, Shanabrough M, Redmond D.E. Gonadal hormones are responsible for maintaining the integrity of spine synapses in the CA1 hippocampal subfield of female non-human primates // J. Сотр. Neurol. 2002. Vol.447. P.34-42.

307. Leranth C. et al. Gonadal Hormonal Effect on the Male Hippocampus // J. Neurosci. 2003. Vol.23. №5. P.1588-1592

308. Leslie F.M. Neurotransmitters as Neurotrophic Factors. In: Neurotrophic

309. Factors. Fallon, J. H. & Loughlin, S. E, Academic Press, San Diego. 1993.P.565-598.

310. Levin E.D, Addy N, Baruah A. et al. Prenatal chlorpyrifos exposure in rats causes persistent behavioral alterations // Neurotoxicol. Teratol. 2002. Vol.24. P.733-741.

311. Levin E.D., Addy N., Christopher N.C. et al. Persistent behavioral consequences of neonatal chlorpyrifos exposure in rats // Dev. Brain Res. 2001. Vol.130. P.83-89.

312. Levin E.D., Simon B.B. Nicotinic acetylcholine involvement in cognitive function in animals //Psychopharmacology. 1998. Vol. 138. P. 217-230.

313. Levin E.D., Wilkerson A., Jones J.P. et al. Prenatal nicotine effects on memory in rats: pharmacological and behavioral challenges // Brain Res. Dev. Brain Res. 1996. Vol.97. P.207-215.

314. Levitan E.S., Hemmick L.M., Birnberg N.C., Kaczmarelc L.K. Dexamethasone increases potassium channel messenger RNA and activity in clonal pituitary cells // Mol. Endocrinol. 1991. №5. P. 1903-1908.

315. Levitt P. Prenatal effects of drugs of abuse on brain development // Drug Alcohol Depend. 1998. Vol. 51. P. 109-125.

316. Lewis C., McEwen B.S., Frankfurt M. Estrogen-induction of dendritic spines in ventromedial hypothalamus and hippocampus: effects of neonatal blockade and adult GDX // Devi. Brain Res. 1995. Vol.87. P.91-95.

317. Lichtensteiger W., Ribary U., Schlumpf M. et al. Prenatal adverse effects of nicotine on the developing brain //Prog. Brain Res. 1988. Vol.73. P. 137-157.

318. Lidbrink P., Corrodi H., Fuxe K., Olson L. Barbiturates and meprobamate: decrease in catecholamine turnover on central dopamine and noradrenaline neuronal systems and the influence of immobilization stress // Brain Res. 1972. Vol.45. P.507-524.

319. Lidov H.G., Molliver M.E. Immunohistochemical study of the development of serotonergic neurons in the rat CNS // Brain Res. Bull. 1982.Vol. 9.№ 1-6.P. 559604.

320. Lieberburg I., McEwen B.S. Brain cell nuclear retention of testosterone metabolites, 5a-dihydrotestosterone and estradiol-17 in adult rats // Endocrinology. 1977. Vol.100. P.588-597.

321. Liesi P. Ethanol-exposed central neurons fail to migrate and undergo apoptosis //J. Neurosci. Res. 1997. Vol. 48. P. 439-448.

322. Li S., Givalois L., Pelletier G. Role of adrenal and gonadal steroids in the response of GnRH gene expression to the endogenous benzodiazepine receptor ligand octadecaneuropeptide in the male rat brain // Neuropeptides. 1997. Vol.315. P.463-468.

323. Lisk R. Increased sexual behavior in the male rat following lesion in the mamillary region //J. Exp. Zool. 1966. Vol.161. P.129-136.

324. Lisk R. Neural localization for androgen activation of copulatory behavior in the male rat //Endocrinology. 1967. Vol.80. P.754-761.

325. Lisk R., Greenwald D. Method for treating male sexual dysfunction // Neuroendocrinology. 1983. Vol.36. №3. P.211-217.

326. Lokwan S., Overton P., Berry M. et al. Stimulation of the pedunculopontine tegmental nucleus in the rat produces burst firing in A9 dopaminergic neurons // Neuroscience. 1999. Vol. 92. P. 245-254.

327. Lorrain D.S., Matuszewich L., Friedman R.D., Hull E.M. Extracellular serotonin in the lateral hypothalamic area is increased during the postejaculatory interval and impairs copulation in male rats // J. Neurosci. 1997. Vol.17. P.9361-9366.

328. Lorrain D.S., Riolo J.V., Matuszewich L., Hull E.M. Lateral hypothalamic serotonin inhibits nucleus accumbens dopamine: implications for sexual satiety // J. Neurosci. 1999. Vol.19. P.7648-7652.

329. Loughlin S.E., Foote S.L., Bloom F.E. Efferent projections of nucleus locus coeruleus: topographic organization of cells of origin demonstrated by three-dimensional reconstruction //Neuroscience. 1986. Vol.18. P.291-306.

330. Lowry O.H., Rosenbrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measuramant with the folin phenol reagents // J.Biol. Chem. 1951. Vol. 193. P.265-275.

331. Luck W, Nau H, Hansen R, Steldinger R. Extent of nicotine and cotinine transfer to the human fetus, placenta and amniotic fluid of smoking mothers // Dev. Pharmacol. Ther. 1985. Vol. 8. P. 384-395.

332. Luine V.N. Steroid hormone modulation of hippocampal dependent spatial memory // Stress. 1997. Vol.2. P.21-36.

333. Luine V.N. Estradiol increases choline acetytransferase activity in specific basal forebrain nuclei and projection areas of female rats // Exp. Neurol. 1985. №89. P.484-490.

334. Mack C.M, Fitch R.H, Cowell P.E. et al. Ovarian estrogen-acts to feminize thefemale rat's corpus callosum // Brain Res. 1993. Vol. 71. № l.P. 115-119. *

335. MacLean P.D. Chemical and electrical stimulation of hippocampus in unrestrained animals. Part II. Behavioral findings // Arch. Neurol. Psychiatr. 1957. Vol.78. P.128-142.

336. MacLusky N.J, Naftolin F. Sexual differentiation of the central nervous system // Science. 1981. Vol.211. P.1294-1302.

337. MacLusky N.J, Walters M.J, Clark A.S, Toran-Allerand C.D. Aromatase in the cerebral cortex, hippocampus, and mid-brain: ontogeny and developmental implications.// Mol. Cell Neurosci. 1994. Vol.5. P.691-698.

338. Mark G.P, Kinney A.E, Grubb M.C, Keys A.S. Involvement ofacetylcholine m the nucleus accumbens in cocaine reinforcement // Ann.N.Y.Acad.Sci. 1999. Vol.877. P.792-795.

339. Markowski V.P, Eaton R.C, Lumley L.A. et al. A D1 agonist in the MPOA facilitates copulation in male rats // Pharmacol. Biochem. Behav. 1994. Vol.47. P.483-486.

340. Marson L., List M.S., McKenna K.E. Lesions of the nucleus paragigantocellularis alter ex copula penile reflexes // Brain Res. 1992. Vol.592. P.l 87-192.

341. Marson L., McKenna K.E. Serotonergic neurotoxic lesions facilitate male sexual reflexes //Pharmacol. Biochem. Behav. 1994. Vol.47. P.883-888.

342. Marson L., McKenna K.E. The identification of a brainstem site controlling spinal sexual reflexes in male rats //BrainRes. 1990. Vol.515. P.303-308.

343. Martin, J.C., Becker R.F. The effects of nicotine administration in utero upon activity in the rat //Psychoneuron .1970. Vol.19. P.59-60.

344. Martinez-Morales J.R., Lopez-Coviella I., Hernandez-Jimenez J.G. et al. Sex steroids modulate luteinizing hormone-releasing hormone secretion in a cholinergic cell line from the basal forebrain // Neuroscience. 2001. Vol. 103. №.4. P. 1025-1031.

345. Mas M. Neurobiological correlates of masculine sexual behavior // Neurosci. Biobehav. Rev. 1995. Vol.l9:261-277.

346. Mas M., Fumero В., Gonzalez-Mora J.L. Voltammetric and microdialysis monitoring of brain monoamine neurotransmitter release during sociosexual interactions //Behav. Brain Res. 1995. Vol.71. P.69-79.

347. Mas M., Rodriguez D.C., Guerra M. et al. Neurochemical correlates of male sexual behavior //Physiol. Behav. 1987. Vol.41. P.341- 3.45.

348. Mattsson J.L., Maurissen J.J., Nolan R.J., Brzak K.A. Lack of differential sensitivity to cholinesterase inhibition in fetuses and neonates compared to dams treated perinatally with chlorpyrifos //Toxicol. Sci. 2000. Vol. 53. P. 438-446.

349. Maurissen J.J., Hoberman A.M., Garman R.H., Hanley T.R. Lack of selective developmental neurotoxicity in rat pups from dams treated by gavage with chlorpyrifos //Toxicol. Sci. 2000. Vol. 57. P. 250-263.

350. Michael R.P. The selective accumulation of estrogens in the neural and genital tissues of the cat. In: Proceeding of the First International Congresss on Hormonal Steroids, 1962. Vol. 2. New York, Acad. Press. P.469-581.

351. Millan M.J., Peglion J.L., Lavielle G., Perrin-Monneyron S. 5-HT2C receptors mediate penile erections in rats: actions of novel and selective agonists and antagonists // Eur. J. Pharmacol. 1997. Vol.325. P.9-12.

352. Museo E., Wise R.A. Locomotion induced by ventral tegmental microinjections of a nicotinic agonist //Pharmacol. Biochem. Behav. 1990. Vol.35. P.735-737.

353. Nadler L.S., Rosoff M.L., Hamilton SE. et al. Molecular analysis of the regulation of muscarinic receptor expression and function // Life Sci. 1999. Vol. 64. P. 375-379.

354. Navarro H.A., Seidler F.J., Whitmore W.L., Slotkin T.A. Prenatal exposure to nicotine via maternal infusions: effects on development of catecholamine systems // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1988. Vol.244. P.940-944.

355. Nisell M., Nomikos G.G., Hertel P. et al. Condition-independent sensitization of locomotor stimulation and mesocortical dopamine release following chronic nicotine treatment in the rat // Synapse 1996. Vol.22. P.369-381.

356. Nomikos G.G., Damsma G., Wenlcstern D., Fibiger H.C. Acute ejects of bupropion on extracellular dopamine concentrations in rat striatum and nucleus accumbens studied by in vivo microdialysis // Neuropsychopharmacology. 1989. Vol.2. P.273-279.

357. Norton S./Donoso J.A. Forebrain damage following prenatal exposure to low-dose X-irradiation //Exp. Neurol. 1985. Vol. 87 P. 185-197.

358. Prioux-Guyonneau M., Coudray-Lucas C. et al. Modification of Rat Brain 5-Hydroxytryptamine Metabolism by Sublethal Doses of Organophosphate Agents // Acta Pharmacologica et Toxicologica. 1982. Vol.51. №4. P.278-284.

359. Qiao D, Seidler F.J, Slotkin T.A. Oxidative mechanisms contributing to the developmental neurotoxicity of nicotine and chlorpyrifos // Toxicol. Appl. Pharmacol. 2005. Vol.206. P. 17-26.

360. Rausch J.L, Shah N.S. et al Platelet Serotonin Uptake in Depressed Patients: Circadian Effect //Biol. Psychiatry. 1982. Vol.17. №1. P.121-123.

361. Richardson J.R, Chambers J.E. Effects of gestational exposure to chlorpyrifos on postnatal central and peripheral cholinergic neurochemistry // J. Toxicol. Environ. Health. 2003. Vol.66. P.275-289.

362. Robinson Т.Е., Berridge K.C. The neural basis of drug craving: an incentive-sensitization theory of addiction //Brain Res. Rev. 1993. Vol.l 8. P.247-291.

363. Rodriguez-Manzo G, Fernandez-Guasti A. Reversal of sexual exhaustion by serotonergic and noradrenergic agents //Behav. Brain Res. 1994. Vol.62. P.127-134.

364. Rosen R.C, Lane R.M, Menza M. Effects of SSRIs on sexual function: a critical review //J. Clin. Psychopharmacol. 1999. Vol.19. P.67- 85.

365. Rosene D.L, Van Hoesen G.W. The hippocampal formation of the primate brain: a review of some comparative aspects of cytoarchitecture and connections. In: Jones E.G., Peters A. (Eds.), Cerebral cortex, Vol. 6. Plenum, New York, 1987. P.345-456.

366. Roy E.J, Buyer D.R, Licar V.A. Estradiol in the striatum. Effects on behavior and dopamine receptors but no evidence for membrane steroid receptors // Brain Res. Bull. 1990. №25. P.221-227.

367. Saper C.B, Chou T.C, Scammell Т.Е. The sleep switch: hypothalamic control of sleep and wakefulness //Trends Neurosci. 2001. Vol.24. P.726-731.

368. Sawin S, Brodish P, Carter C.S. et al. Development of cholinergic neurons in rat brain regions: Dose-dependent effects of propylthiouracil-induced hypothyroidism //Neurotox. Teratol. 1998. Vol.20. P.627-635.

369. Schmahl W, Funk R, Miaskowski U, Plendl J. Long-lasting effects of naltrexone, an opioid receptor antagonist, on cell proliferation in developing rat forebrain //Brain Res. 1989. Vol. 486. P. 297-300.

370. Seidler F.J., Levin E.D., Lappi S.E., Slotkin T.A. Fetal nicotine exposure ablates the ability of postnatal nicotine challenge to release norepinephrine from rat brain regions //Brain Res. Dev. Brain Res. 1992. Vol.69. P.288-291.

371. Shabanov P.D., Lebedev A.A., Meshcherov S.K. et al. CRH and emotiogenic reinforcing system of the brain in social isolation and alcoholization // 5th Int. Congr. of Pathophysiology. Abstracts. Beijing, China, 2006. P. 176.

372. Shabanov P.D., Lebedev A.A., Roik R.O. et al. Social isolation as a model of depression // П^ихофармакол. и биол. наркол. 2004. Т. 4. № 2-3. С. 704-705.

373. Sherman K.A., Kuster J.E., Dean R.L. et al. Presynaptic cholinergic mechanisms in brain of aged rats with cognitive impairment // Neurobiol. Aging. 1981. Vol.2. P.99-104.

374. Simon H., Taghzouti K., Le Moal M. Deficits in sp'atial-memory tasks following lesions of septal dopaminergic terminals in the rat // Behav. Brain Res. 1986. Vol. 19. P. 7-16.

375. Simpson K.L., Altman D.W., Wang L. et al. Lateralization and functional organization of the locus coeruleus projection to the trigeminal somatosensory pathway in rat //J. Сотр. Neurol. 1997. Vol. 385. P. 135-147.

376. Skakkebaek N.E., Bancroft J., Davidson D.W., Warner P. Androgen replacement with oral testosterone undecanoate in hypogonadal men: a double blind controlled study// Clin. Endocrinol. (Oxf). 1981 . Vol.14. №1. P.49-61.

377. Slotkin T.A. Cholinergic systems in brain development- and disruption by neurotoxicants: nicotine, environmental tobacco smoke, organophosphates // Toxicol. Appl. Pharmacol. 2004. Vol.198. P. 132-151.

378. Slotlcin Т. A., Cho H., Whitmore W.L. Effects of prenatal nicotine exposure on neuronal development: selective actions on central and peripheral catecholaminergic pathways //Brain Res. Bull. 1987. Vol.18. P.601-611.

379. Slotkin T.A., Greer N., Faust J. et al. Effects of maternal nicotine injections on brain development in the rat: ornithine decarboxylase activity, nucleic acids and proteins in discrete brain regions //Brain Res. Bull. 1986. Vol.17. P.41-50

380. Slotkin T.A., Lappi S.E., Tayyeb M.I., Seidler F.J. Chronic prenatal nicotine exposure sensitizes rat brain to acute postnatal nicotine challenge as assessed with ornithine decarboxylase //Life Sci. 1991. Vol.49. P.665-670.

381. Smith D.B., Goldstein S.G., Roomet A. A comparison of the toxicity effects of the anticonvulsant eterobarb (antilon, DMMP) and phenobarbital in normal human volunteers //Epilepsia. 1986. Vol. 27. P. 149-155.

382. Smith J. Dale's principle and communication between neurones. Oxford etc.: Univ. press,1983. p.143-159.

383. Smith M.D., Jones L.S., Wilson M.A. Sex differences in hippocampal slice excitability, role of testosterone//Neuroscience. 2002. Vol.109. №3. P.517-530.

384. Song X., Violin J.D., Seidler F.J., Slotkin T.A. Modeling the developmental neurotoxicity of chlorpyrifos in vitro: macromolecule synthesis in PC 12 cells // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1998. Vol. 151. P. 182-191.

385. Takahashi Т., Nowakowski R.S., Caviness V.S.J. Early ontogeny of the secondary proliferative population of the embryonic murine cerebral wall // J. Neurosci. 1995. Vol. 15. P. 6058-6068.

386. Tan M., Tan U. Effects of testosterone and clomiphene on spectral EEG and visual evoked response in a young man with posttraumatic epilepsy // Int. J. Neurosci. 2001. Vol.106. №12. P.87-94.

387. Van Luijtelaar E.L, Dirksen R, Vree T.B, van Наарш F. Effects of acute andchronic cocaine administration on EEG and behaviour in intact and castrated male »'and intact and ovariectomized female rats // Brain Res. Bull. 1996. Vol.40. №1. P.43-50.

388. Wallace S.J. Studies on the Effect of Anticonvulsant Drugs on the Developing Human Brain. Elsevier Science Publishers BV: Amsterdam. 1984. pp. 133-151.

389. Weiss J.M, Goodman P.A, Losito B.G. et al. Behavioral depression produced by an uncontrollable stressors: relationships to norepinephrine, dopamine and serotonin levels in various regions in the rat brain // Brain Res. Rev. 1981. Vol.3. P.43-49. .

390. Westfall T.C, Grant H, Perry H. Release of Dopamine and 5

391. Hydroxytryptamine from Rat Striatal Slices Following Activation of Nicotinic Cholinergic Receptors //General Pharmacol. 1983. Vol.14. №3. P.321-325.

392. Zagon I.S, McLaughlin P.J. Increased brain size and cellular content in infant rats treated with an opiate antagonist // Science. 1983. Vol. 221. P. 1179-1180. '

393. Zagon I.S, McLaughlin P.J. Naltrexone modulates body and brain development in rats: a role for endogenous opioid systems in growth //Life Sci. 1984. Vol.35. P. 2057-2064.

394. Zanoli.P, Truzzi C, Veneri C. et al. Methyl mercury during late gestation affects temporarily the development of cortical muscarinic receptors in rat offspring // Pharmacol. Toxicol. 1994. Vol. 75. P. 261-264.

395. Zoli M, Lena C, Picciotto M.R, Changeux J.P. Identification of four classes of brain nicotinic receptors using beta2 mutant mice // J. Neurosci. 1998. Vol.18. P.4461- 4472.