Автореферат и диссертация по медицине (14.01.16) на тему:Эффективность кожного теста с аллергеном туберкулезным, содержащим рекомбинантный белок CFP10-ESAТ6, в диагностике, выявлении и определении активности туберкулезной инфекции.
Автореферат диссертации по медицине на тему Эффективность кожного теста с аллергеном туберкулезным, содержащим рекомбинантный белок CFP10-ESAТ6, в диагностике, выявлении и определении активности туберкулезной инфекции.
СЛОГОЦКАЯ Людмила Владимировна
ЭФФЕКТИВНОСТЬ КОЖНОГО ТЕСТА С АЛЛЕРГЕНОМ ТУБЕРКУЛЁЗНЫМ, СОДЕРЖАЩИМ РЕКОМБИНАНТНЫЙ БЕЛОК СГРЮ-ЕвАТб, В ДИАГНОСТИКЕ, ВЫЯВЛЕНИИ И ОПРЕДЕЛЕНИИ АКТИВНОСТИ ТУБЕРКУЛЁЗНОЙ ИНФЕКЦИИ
14.01Л6 - Фтизиатрия
АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук
1 2 Я Н В 2012
Москва 2011
005007080
Работа выполнена в Московском городском научно-практическом центре борьбы с туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы (директор - академик РАМН, профессор, доктор мед. наук Литвинов В.И.)
Научный консультант:
академик РАМН, профессор, доктор медицинских наук Литвинов Виталий Ильич
Официальные оппоненты:
доктор медицинских наук, профессор Эргешов Атаджан Эргешович доктор медицинских наук, профессор Стаханов Владимир Анатольевич доктор медицинских наук, профессор Григорьев Юрий Геннадиевич
Ведущая организация:
ГОУ ВПО Волгоградский государственный медицинский Университет Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию
Защита состоится 27 марта 2012 г. в 13 00 на заседании диссертационного совета Д 001.052.01 в учреждении Российской академии медицинских наук Центральном научно-исследовательском институте туберкулёза, по адресу: 107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ЦНИИТ РАМН (107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2)
Автореферат разослан «_» декабря 2011 г.
Ученый секретарь
Диссертационного совета
Заслуженный деятель науки,
доктор мед. наук, профессор Фирсова В.А.
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность исследования. Туберкулез остается наиболее распространенной инфекцией, ежегодно поражающей свыше 9 миллионов человек и вызывающей около 1,8 миллионов смертей [WHO,2009]. В течение века во всем мире для диагностики туберкулеза и выявления скрытой туберкулезной инфекции используется туберкулин [von Pirquet С., 1907, Mantoux M., 1912]. Основным недостатком туберкулиновой пробы является большое число ложноположительных реакций, в связи с перекрестными реакциями антигенов PPD, содержащихся во многих видах микобактерий и в штаммах бациллы Кальметта-Герена (BCG) [Маркузон В.Д. 1958; Похитонова М.П.,1965; Farhat M. et al., 2006]. Ограниченная специфичность туберкулиновой кожной пробы особенно актуальна при широком использовании вакцинации BCG и при высоком содержании микобактерий в окружающей среде, т.е. для большинства стран с повышенной заболеваемостью туберкулезом [Menzies R., Vissandjee В.,1992; Wang L., et al.,
Открытие антигенов, специфичных для Mycobacterium tuberculosis и отсутствующих в Mycobacterium bovis BCG и большинстве микобактерий окружающей среды, привело к разработке тестов in vitro, основанных на измерении продукции гамма-интерферона (ИНФу) (Interferon -Gamma Release Assays или IGRA), в ответ на стимуляцию этими антигенами [Andersen Р. et al., 2000; Mazurek G. et al. 2007; Diel R. et al., 2009]. Гены, кодирующие эти белки, находятся в регионе RDI (region of difference) генома, отсутствующем в геноме Mycobacterium bovis BCG и большинства нетуберкулезных микобактерий [Cole S. et al.,1998; Behr M., et al., 1999]. Эти тесты показали высокую чувствительность и почти абсолютную специфичность [Pai М. et al., 2004; Menzies D. et al.,2007; Steingart K. et al., 2009; Diel R., et al., 2009].
В течение последних лет исследования, связанные с продукцией ИНФу (IGRA), стали использоваться в различных клинико-эпидемиологических исследованиях для выявления заболевания туберкулезом или скрытой (так
2002].
называемой латентной) туберкулезной инфекции, а также для замены или дополнения к туберкулиновой кожной пробе [Baker С. et al. 2009; van Zyl-Smit R. et al. 2009; Pai M. et al. 2010]. Распространению применения IGRA во многих странах препятствует недостаточное финансирование, необходимость лабораторного оборудования и квалифицированного персонала [Ewer К. et al., 2006; Harada N.. 2006; Dheda К. et al. 2009; Doherty Т., et al, 2009; Vinton P. et al., 2009].
Для проведения кожной пробы не требуется специального лабораторного оборудования, необходим только холодильник для хранения реактивов. Сведения об использовании специфических антигенов in vivo ограничены. Внутрикожные инъекции ESAT6 позволили достоверно выявить скот, инфицированный Mycobacterium bovis. С помощью рекомбинантного ESAT6 были установлены выраженные кожные реакции повышенной чувствительности замедленного типа у морских свинок, инфицированных М. tuberculosis, и отсутствие реакции у инфицированных Mycobacterium avium или вакцинированных BCG [Elhay М., et al.1998; Weldingh К., Andersen P., 2008]. Недавно был получен рекомбинантный димер ESAT6, синтезированный в Lactococcus (rdESAT-6) [Wu X., et al. 2008]. В доклинических исследованиях на морских свинках, мышах, крысах и собаках внутрикожное или внутривенное введение одной или нескольких доз rdESAT6 животным с сохранным иммунитетом не привело к побочным реакциям.
Впервые в мире в России был получен препарат ДИАСКИНТЕСТ®(ДСТ), представляющий собой рекомбинантный белок CFP10-ESAT6, продуцируемый Escherichia coli BL21(DE3)/pCFP-ESAT [Киселев В.И.и соавт., 2008]. До того времени никто не использовал в кожных пробах 2 наиболее специфичных белка ESAT-6 и CFP-10, которые показали себя как наиболее приемлемые диагностические препараты в исследованиях IGRA.
Цель исследования — определить эффективность кожной пробы с аллергеном туберкулёзным рекомбинантным, представляющим собой белок
СРРЮ-ЕБАТб (ДИАСКИНТЕСТ®), в диагностике туберкулезной инфекции и разработать показания к его применению
Задачи исследования
1. Определить безопасность применения препарата ДИАСКИНТЕСТ®(ДСТ) в кожной пробе у здоровых добровольцев, больных туберкулезом и инфицированных микобактериями туберкулёза (взрослых и детей).
2. Определить чувствительность пробы с ДСТ у больных туберкулезом органов дыхания и внелегочных локализаций.
3. Определить чувствительность пробы с ДСТ у больных с сочетанием туберкулеза и ВИЧ-инфекции (взрослых).
4. Определить специфичность пробы с ДСТ у больных нетуберкулезными заболеваниями органов дыхания и внелегочной локализации.
5. Определить специфичность пробы с ДСТ у здоровых детей, вакцинированных ВСй.
6. Определить частоту положительной реакции в разных группах лиц с латентной туберкулезной инфекцией (ЛТИ), оценить использование пробы с ДСТ в качестве маркёра активности и сравнить с пробой Манту.
7. Определить безопасность повторных проб с ДСТ и оценить динамику кожных реакций в процессе лечения больных туберкулезом органов дыхания и лиц с латентной туберкулёзной инфекцией.
Научная новизна исследования. Впервые в мировой практике доказана высокая эффективность кожной пробы с рекомбинантным белком СРР10-Е8АТ6 (препарат ДИАСКИНТЕСТ®) для выявления и диагностики туберкулёзной инфекции, обладающая высокой (почти 100%) специфичностью и высокой чувствительностью. Установлена её безопасность у здоровых добровольцев, больных туберкулёзом и лиц с латентной туберкулёзной инфекцией. Установлено, что повторные пробы с ДСТ не вызывают
сенсибилизации на препарат, что позволяет использовать их в скрининговых ежегодных обследованиях для выявления туберкулеза.
Установлена высокая специфичность пробы с ДСТ: у детей, вакцинированных БЦЖ - 100%, при нетуберкулёзных заболеваниях: лёгких -94,6%, внелегочных локализациях - 98,5%; при неактивных посттуберкулёзных изменениях -100%.
Определена чувствительность (частота положительных реакций) пробы с ДСТ у больных туберкулёзом: у детей и подростков, больных ТОД - 97,3%, у взрослых при туберкулёзе внелёгочных локализаций - 89,7%, у взрослых с туберкулезом органов дыхания - 84,2%. Установлено, что частота положительных реакций достоверно выше у нелеченных больных туберкулезом, по сравнению с лицами, закончившими химиотерапию.
Установлено, что частота положительных реакций на пробу с ДСТ в группах риска лиц с латентной туберкулёзной инфекцией соответствует степени риска развития заболевания: самая высокая частота (94,9%) у детей и подростков с виражом реакций на пробу Манту из семейного контакта с больным туберкулёзом - бактериовыделителем
Установлено, что положительная реакция на пробу с ДСТ является маркером активности туберкулёзной инфекции как латентной, так и имеющей рентгенологические признаки болезни.
Показано, что динамика выраженности реакций на пробу с ДСТ позволяет судить о течении туберкулёзной инфекции как в сторону её прогрессирования, так и в сторону регрессии при положительных результатах лечения.
Установлена прямая зависимость между частотой положительных реакций на пробу с ДСТ и количеством СБ4+ Т-лимфоцитов у больных с сочетанием туберкулёза и ВИЧ-инфекции.
Практическая значимость
Доказана в широкой клинической практике возможность использования
препарата ДИАСКИНТЕСТ® в кожной пробе для диагностики активной туберкулезной инфекции.
Практическое здравоохранение получило принципиально новый, по сравнению с туберкулинодиагностикой, инструмент выявления активной туберкулёзной инфекции. Проба с ДСТ позволяет выявлять туберкулёз на ранних стадиях, дифференцировать поствакцинальную аллергию от туберкулёзной инфекции с высоким риском развития заболевания. Проба с ДСТ является маркером активной туберкулёзной инфекции и положительная реакция служит показанием для проведения превентивной химиотерапии. С её помощью появилась возможность проследить динамику туберкулёзного процесса с момента развития до потери активности. Проба позволяет провести дифференциальную диагностику туберкулёза и нетуберкулёзных заболеваний, поскольку обладает почти 100% специфичностью.
Положения, выносимые на защиту.
1. Кожная проба с препаратом ДИАСКИНТЕСТ® (ДСТ) (аллерген туберкулёзный рекомбинантный, содержащий белок CFP10-ESAT6) представляет собой принципиально новый, по сравнению с туберкулиновыми пробами, тест, обладающий высокой (почти 100%) специфичностью, поскольку реагирует на белки, специфичные для Mycobacterium tuberculosis при метаболической активности последних.
2. Кожная проба с ДСТ может быть использована для скрининговых ежегодных обследований на туберкулёз, поскольку она безопасна, не вызывает необычных общих, неспецифических местных реакций, и повторные пробы не вызывают сенсибилизации на препарат. Она обладает высокой чувствительностью - у детей с впервые выявленным туберкулёзом положительные реакции отмечались в 97,3% случаев.
3. Кожная проба с ДСТ может быть использована для дифференциальной диагностики туберкулёза с неспецифическими заболеваниями, а также латентной туберкулёзной инфекции с поствакцинальной аллергией, поскольку обладает почти 100% специфичностью: частота отрицательных реакций у детей после вакцинации БЦЖ составила 100%; при нетуберкулёзных заболеваниях лёгких у взрослых -
94,6%, у детей - 100%; при внелегочных нетуберкулёзных заболеваниях -98,5%; у лиц, излеченных от внелегочных форм туберкулёза -100,0%.
4. Кожная проба с ДСТ, в отличие от пробы Манту, является маркером активности туберкулёзной инфекции, и положительная реакция свидетельствует о наличии либо туберкулёза, либо латентной туберкулёзной инфекции (ЛТИ) с высоким риском развития заболевания, последнее является показанием для проведения превентивной химиотерапии.
5. Динамика реакций на пробу с ДСТ позволяет судить о развитии туберкулёзной инфекции. Уменьшение интенсивности реакций, вплоть до отрицательных значений, наблюдается при эффективной химиотерапии как активного туберкулёза, так и латентной туберкулёзной инфекции, появление положительных реакций свидетельствует о начавшемся развитии заболевания.
6. Кожная проба с ДСТ может быть использована для выявления и диагностики туберкулёза у больных ВИЧ-инфекцией - положительная реакция встречается достоверно чаще у больных с числом CD4+ Т-лимфоцитов более 200 в 1 мкл, чем у больных с наличием CD4+ менее 200 клеток: 55,3% и 22,0% соответственно.
Внедрение результатов исследования в практику.
Материалы диссертации отражены в следующих документах:
1. Инструкция по применению ДИАСКИНТЕСТ® (Аллерген туберкулезный рекомбинантный в стандартном разведении) раствор для внутрикожного введения
2. Пособие для врачей «Кожная проба с препаратом ДИАСКИНТЕСТ® (аллерген туберкулезный рекомбинантный 0,2 мкг в 0,1 мл раствор для внутрикожного введения) для идентификации туберкулезной инфекции» (составители Б.Л. Медников, Л.В. Слогоцкая).- М.- 2009.-32с.
3. Методические рекомендации Департамента здравоохранения города Москвы «Рекомендации по применению кожной пробы с препаратом аллерген туберкулезный рекомбинантный 0,2 мгк в 0,1 мл раствор для внутрикожного введения (ДИАСКИНТЕСТ®) для идентификации туберкулезной инфекции у детей из диспансерного наблюдения в противотуберкулезных учреждениях» (составители Овсянкина Е.С., Слогоцкая Л.В., Губкина М.Ф.) // М.:МНПЦБТ. -2010.-29 с.
4. Приказ Минздравсоцразвития РФ №855 от 29 октября 2009 года «О внесении изменения в приложение №4 к приказу Минздрава России от 21 марта 2003 г. №109»
5. Приказ Департамента здравоохранения города Москвы №173 от 10.02.2010 «О внедрении кожного теста с аллергеном туберкулёзным рекомбинантным (препаратом Диаскинтест)»
Апробация диссертации. Апробация работы проведена на научной конференции совместного заседания Ученого совета, сотрудников клинических и научных отделов Московского городского научно-практического центра борьбы с туберкулёзом, сотрудников кафедры фтизиатрии ГОУ ДПО РМАПО.
Материалы диссертации изложены автором в 14 докладах на Российских съездах, конгрессах, научно-практических конференциях, 10 докладах на международных конгрессах: XVI Российском Национальном Конгрессе «Человек и лекарство» 2009 г.; XIX Национальном Конгрессе по болезням органов дыхания, 2009 г.; IX съезде фтизиатров России, 2011 г., VII - XI Московских ассамблеях «Здоровье столицы» (2008-201 Irr); II и III Ежегодном Всероссийском ежегодном конгрессе по инфекционным болезням (2010, 2011гг.); совещании «Туберкулез и ВИЧ-инфекция. Вопросы эпидемиологического надзора, организации, проведения и оценки эффективности противоэпидемических мероприятий» (2011 г.,); Всерос. научно-практ. конф. с межд. участием (2010 г., СПб); Всероссийской науч.-практ. конференции «Совершенствование медицинской помощи больным туберкулезом»(2011,СПб.); Научно-практической конференции с международным участием «Туберкулез у детей и подростков», 2009 г.; 5th Congress of the International Union Against Tuberculosis and Lung Disease (Dubrovnik, Groatia, 2009); European Respiratory Society Annual Congress (Vienna Austria, 2009; Amsterdam Netherlands, 2011- 3 доклада); 29th, 30-th EAACI Congress European Academy of Allergy and Clinical Immunology (London, UK, 2010; Istanbul,Turkey, 2011 - 2 доклада); 9th, 10th International Congress on Pediatric Pulmonology (Vienna, Austria, 2010;Versailles, 2011)
Публикации. По материалам диссертации опубликовано 86 работ, 24 из них в рецензируемых журналах, рекомендованных ВАК Минобрнауки России.
Объём и структура диссертации
Диссертация изложена на 230 страницах машинописного текста, иллюстрирована 20 рисунками, 38 таблицами, состоит из введения, обзора литературы, 6 глав собственных исследований, заключения, выводов, практических рекомендаций, списка использованной литературы. Список литературы включает 390 источников отечественных и зарубежных авторов.
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ
Характеристика методов исследования и клинических наблюдений
Препарат ДИАСКИНТЕСТ® (ДСТ) представляет собой аллерген туберкулезный рекомбинантный в стандартном разведении, продуцируемый генетически модифицированной культурой Escherichia coli BL21(DE3)/pCFP-ESAT для постановки внутрикожной пробы с целью выявления туберкулезной инфекции. Особенностью белков CFP10 и ESAT6 является их отсутствие у Mycobacterium bovis BCG и большинства нетуберкулёзных микобактерий.
Состав и численность контингентов: всего обследовано 3788 человек
В главе «Изучение безопасности кожной пробы с препаратом ДИАСКИНТЕСТ® (ДСТ) в клинических исследованиях» приведены результаты обследования 148 человек:
1) взрослые (всем параллельно поставлена проба Манту с 2 ТЕ PPD-L и внутрикожно введен ДСТ в разных дозах: 0,1 мкг и 0, 2 мкг в 0,1 мл):
• здоровые добровольцы, доза ДСТ 0,1 мкг -10 и 0,2 мкг -11 человек;
• больные туберкулезом органов дыхания - с выраженной положительной рентгенологической динамикой процесса и прекращением бактериовыделения -доза ДСТ 0,1 мкг -10 человек и 0,2 мкг -10 человек;
• больные туберкулезом органов дыхания с активным процессом и бактериовыделением - доза ДСТ 0,2 мкг -18 человек;
• больные туберкулезом органов дыхания и ВИЧ- инфекцией, доза ДСТ 0,2 мкг - 6 человек;
• пациенты, у которых туберкулёзный процесс излечен и признаков активности не отмечалось, доза ДСТ 0,2 мкг - 7 человек;
2) дети и подростки (всем параллельно поставлена проба Манту с 2 ТЕ PPD-L, и внутрикожно введен препарат ДСТ в дозе 0, 2 мкг в 0,1 мл):
• больные туберкулезом органов дыхания, закончившие интенсивную фазу химиотерапии - 20 человек;
• больные туберкулезом органов дыхания, закончившие полный курс химиотерапии - 11 человек;
• пациенты, с излеченным туберкулёзным процессом - 4 человека;
и
• пациенты, наблюдаемые в группах риска ПТД, получившие полноценную превентивную химиотерапию - 28 человек;
• пациенты с виражом туберкулиновых реакций из семейного контакта с больными туберкулёзом-бактериовыделителями -13 чел.
В главе «Чувствительность и специфичность пробы сДСТу взрослых, больных туберкулезом и нетуберкулезными заболеваниями лёгких» приведены результаты обследования 598 человек: 425 больных активным туберкулезом органов дыхания, 37 лиц с сомнительной активностью туберкулеза, 111 лиц с неспецифическими заболеваниями лёгких, 5 больных микобактериозами, 20 сотрудников стационаров с ЛТИ.
Все больные туберкулёзом были обследованы и получали лечение в соответствии со стандартами в стационарах МНПЦБТ, туберкулезных больниц №6, №11
Больные саркоидозом наблюдались амбулаторно в МНПЦБТ, где им был поставлен диагноз. Никто из них не получал гормональной или иммуносупрессивной терапии.
Больные неспецифическими заболеваниями лёгких находились на стационарном лечении в пульмонологическом отделении Московской городской клинической больницы №11.
Больные микобактериозами наблюдались в МНПЦБТ, идентификация нетуберкулёзных микобактерий проводилась в микробиологической лаборатории МНПЦБТ с применением культуральных и молекулярно-биологических методов - 5 человек.
Сотрудники стационаров (врачи и медицинские сёстры) туберкулёзных больниц (МНПЦБТ и ТБ №11) и СПИД- центра, имевших ЛТИ - всего 20 человек.
Повторно в динамике поставлены пробы с ДСТ 72 больным туберкулёзом органов дыхания.
В главе «Чувствительность и специфичность пробы с ДСТ при туберкулёзе и латентной туберкулёзной инфекции у детей и подростков,
каналы выявления больных туберкулёзом» приведены результаты обследования 2815 детей и подростков, наблюдаемых в стационаре детского реабилитационного отделения МНПЦБТ и противотуберкулезных диспансерах г. Москвы. Пациенты были разделены на 13 групп, в 7 из них выделены 2 подгруппы: А) не получивших химиотерапию, Б) получивших химиотерапию.
Параллельно поставлены кожные пробы: Манту (с 2 ТЕ ПДД-Л) и с ДСТ (0,2 мкг в 0,1 мл).
637 детям тесты были сделаны дважды для оценки их динамики в процессе наблюдения.
В главе «Чувствительность пробы с ДСТ у больных туберкулезом и ВИЧ-инфекцией» приведены результаты обследования 88 больных туберкулёзом и ВИЧ-инфекцией:
Больные находились на лечение в стационарах московских городских туберкулёзных больниц №6 и №11. Диагноз туберкулёза установлен на основании всего комплекса клинико-инструментальных и лабораторных исследований, согласно приказу №109 от 21.03.03 «О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в Российской Федерации»
Диагноз ВИЧ-инфекции установлен на основании всего комплекса клинико-лабораторных данных, все больные проконсультированы в Московском городском СПИД - центре 2-й инфекционной больницы.
В главе «Чувствительность и специфичность пробы с ДСТ при внелегочной локализации туберкулеза и неспецифических заболеваний» приведены результаты обследования 139 больных: 48 туберкулезом без ВИЧ-инфекции и 23 - в сочетании с ВИЧ-инфекцией, а также 68 больных с нетуберкулёзными поражениями внелёгочной локализации. Всем были поставлены параллельно 2 кожные пробы: с ДСТ (0,2 мкг в 0,1 мл) и Манту с 2 ТЕ РРБ-Ь в 0,1 мл. У всех больных диагноз туберкулёза был верифицирован при цитологическом и гистологическом исследовании, в ряде случаев и бактериологически; нетуберкулёзные заболевания также верифицированы на основании всего комплекса исследований, необходимых для данной патологии.
Статистическую обработку данных проводили с помощью пакетов программ Microsoft Excel 2003 и Statistica 6.0. Оценивали частоту положительных реакций с расчетом 95%-пого доверительного интервала (95% ДИ). При оценке различий качественных признаков использовали критерий X2 или точный критерий Фишера, количественных — критерий Манна-Уитни либо t-критерий Стьюдента (при нормальном распределении признака). Различия количественных переменных в трех группах оценивали с помощью рангового анализа вариаций по Краскелу - Уолллису (при р<0,05 дополнительно проводили попарное сравнение групп с использованием теста Манна-Уитни). Для оценки взаимосвязи между переменными использовали коэффициент корреляции Спирмена (rs). Различия считали статистически значимыми при р<0,05.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.
I. Изучение безопасности кожной пробы с препаратом ДИАСКИНТЕСТ® (ДСТ) в клинических исследованиях
Исследования проводились в МНПЦБТ и начинались у здоровых добровольцев, первоначально с дозы 0,1 мкг, затем - 0,2 мкг. После этого обследованы взрослые больные туберкулезом органов дыхания, первая группа - с выраженной положительной динамикой процесса (клинической, рентгенологической и прекращением бактериовыделения), вторая - без динамики, с бактериовыделением. Дети и подростки обследованы только после получения результатов об отсутствии нежелательных побочных реакций у взрослых.
У здоровых добровольцев кожная проба с препаратом ДИАСКИНТЕСТ® показала безопасность и отсутствие общих и необычных местных реакций при применении дозы как 0,1 мкг, так и 0.2 мкг.
Из 10 больных, получивших интенсивную фазу химиотерапии с выраженной клинической и рентгенологической динамикой, прекращением бактериовыделения, у 6 реакция на пробу с ДСТ в дозе 0,1 мкг была
отрицательной и только у 4 - положительной (папулы 5- 20 мм). Ещё 10 пациентам дозу ДСТ повысили до 0,2 мкг - реакция была положительной у 5 из них.
Из 18 больных туберкулезом с сохраняющимся бактериовыделением, не завершивших интенсивной фазы терапии - у всех были положительные реакции на пробы с ДСТ и Манту. Средний размер папул составил соответственно 15,2±4,29 и 15,9±5,0 мм (различия статистически незначимы, />=0,98).
Вторую группу составили 6 больных с тяжелыми сопутствующими вирусными заболеваниями (ВИЧ-инфекция в сочетании с вирусными гепатитами В и С). У трех из них оказались отрицательными реакции на пробу с ДСТ, у четырех — на пробу Манту.
У 4 больных туберкулёзом лёгких с положительной динамикой и отсутствием бактериовыделения отмечены положительные реакции на пробу с ДСТ и Манту.
У всех 3 больных без признаков активности процесса реакция на пробу с ДСТ была отрицательной, реакция на пробу Манту у 2 из 3 больных была положительной.
Поскольку у взрослых больных не было выявлено необычных общих и местных реакций, исследование было продолжено сначала у подростков, затем у детей 6-13 лет.
У всех 20 больных активным туберкулезом реакция на пробу с ДСТ была положительной (средний размер папулы 18,4±0,96 мм). На пробу Манту реакция также у всех положительная (средний размер папулы - 15,65±0.74) (разница недостоверна, р>0,05). Гиперергические реакции в виде везикуло-некротических проявлений, лимфаденита, лимфангита были отмечены у 2 (10%) детей, как на пробу с ДСТ, так и на пробу Манту.
У всех 13 впервые инфицированных реакция на пробу с ДСТ была положительной (средний размер папулы 18,15±0,98 мм). Реакция на пробу Манту также у всех была положительной (средний размер папулы 13,27±0,59
мм), что достоверно меньше (р<0,01). Гиперергические реакции в виде везикуло-некротических проявлений, лимфаденита, лимфангита были отмечены у 3 из 13 (23,1%) на пробу с ДСТ и у 1 - на пробу Манту.
После успешного завершения химиотерапии реакции на пробу с ДСТ достоверно (р<0,001) менее выражены, чем у лиц, только начавших лечение (1,5±0,53 и 18,15±0,98 соответственно). Они также менее выражены, чем реакции на пробу Манту: соответственно 1,5±0,53 и 13,27±0,59 (р<0,001). В то же время реакции на пробу Манту в обеих группах была положительной и по размеру не отличалась у больных и излеченных: 15,65±0,74 и 13,27±0,59 соответственно (р>0,5).
Все 29 пациентов, получивших превентивную химиотерапию не менее года назад по поводу инфицирования, имели отрицательные реакции на пробу с ДСТ. При этом у 26 (89,7%) из них сохранялись положительные реакции на пробу Манту.
Таким образом, первые исследования препарата ДИАСКИНТЕСТ в разведении 0,1 мкг в 0,1 мл и 0,2 мкг в 0,1 мл показали, что:
• препарат безопасен, не вызывает неспецифических и общих реакций;
• кожная проба с ДСТ обладает высокой чувствительностью - практически у всех больных туберкулезом отмечена положительная реакция;
• при излеченном туберкулёзном процессе частота положительных реакций ниже, величина папулы - менее выраженная;
• у детей и подростков, больных туберкулезом, и впервые инфицированных, гиперергические реакции в виде везикуло-некротических проявлений, лимфаденита, лимфангита отмечены в 5 из 39 (12,8%) детей с положительными реакциями;
• проба с ДСТ обладает высокой специфичностью - здоровые добровольцы, лица, излеченные от туберкулёза и неинфицированные, имели отрицательную реакцию, в то время как на пробу Манту у большинства была положительная реакция;
• проба с ДСТ показала возможность использования ее в качестве маркера активной туберкулезной инфекции.
II. Чувствительность и специфичность пробы с ДСТ у взрослых, больных туберкулезом и нетуберкулезными заболеваниями лёгких
Всего обследовано 425 больных активным туберкулезом органов дыхания, 37 лиц с сомнительной активностью туберкулеза, 111-е неспецифическими заболеваниями лёгких, 5 больных микобактериозами, 20 сотрудников стационаров с ЛТИ, имевших профессиональный контакт с больными ТОД.
Больные активным туберкулёзом. Была проанализирована частота положительных реакций на пробу с ДСТ в трех группах больных, сроки лечения которых до проведения теста соответственно составили: менее 30 дней (первая группа), от 30 до 99 дней (вторая группа), 100 дней и более (третья группа). Результаты анализа представлены в таблице 1.
Таблица 1
Результаты кожной пробы с ДСТ в зависимости от длительности
лечения больных
№груп пы Число больных Длительность лечения, дни* Положительная реакция на пробу с ДСТ Размер папулы (для положительных реакций), мм**
Число больных (%) 95% ДИ
1 247 12 (1-29) 208 (84,2%) 79,7-88,8% 16,2±0,35
2 110 90 (30-99) 87(79,1%) 71,5-86,7% 16,4±0,55
3 68 147 (101-304) 38 (55,9%) 44,1-66,7% 14,5±1,21
Всего 425 21 (1-304) 333 (78,4%) 74,4-82,3% 16,1±0,65
* Данные представлены в виде медианы, макс, и мин. значений ; ** - данные представлены в виде среднего значения ± ЭЦ.
Отмечена слабая, но достоверная обратная взаимосвязь между размером папулы ДСТ и длительностью лечения (г, =-0,23, р<0,001). У больных третьей группы (с максимальной длительностью стационарного лечения)
положительная реакция на пробу с ДСТ встречалась достоверно чаще (р<0,001 по критерию % 2). Размер папулы в третьей группе был достоверно меньше по сравнению с больными других двух групп (р<0,001 по критерию Крускалла-Уоллиса; р2'3<0,001, р''3<0,001 по критерию Манна-Уитни).
Таким образом, проведенное исследование показало, что чем больше были сроки лечения, тем ниже была частота положительных реакций.
Отрицательные реакции на пробу с ДСТ среди лиц, лечившихся менее 30 дней, обнаружены у 39 чел. (15,8%, 95% ДИ 11,2-20,3%). В данной группе больных часто отмечались тяжелые распространенные процессы: диссеминированный - 9, фиброзно-кавернозный - 2, цирротический -1, инфильтративный - 23.
После 3-х месяцев лечения повторно проведены пробы с ДСТ у 72 больных туберкулезом органов дыхания, при этом реакции изменились следующим образом:
• уменьшение размеров папулы произошло у 32 (48,5%) из 66 больных, имевших изначально положительную реакцию - средний размер папулы при первой постановке пробы составил 18,4 ±1,0 мм, при второй -10,1 ±1,1 мм;
• увеличение реакции наблюдалось у 8 (11,1%) из 72 больных - в среднем с 13,0±2,0 мм до 20,0±2,1 мм;
• неизменно отрицательными оставались реакции при первой и повторной пробе у 6 из 72 (8,3%) больных;
• неизменно положительными оставались реакции у 26 из 72 (36,1%) больных.
Таким образом, за 3 месяца лечения динамика реакции на пробу с ДСТ в сторону уменьшения и ее реверсия произошла у 48,5% (32 из 66) пациентов (95% ДИ 33-56%). Очевидно, что 3 месяца лечения - недостаточный срок и требуется более длительное наблюдение для того чтобы получить реверсию реакции у большего процента пациентов.
Лица с сомнителыюй активностью туберкулезного процесса. Обследовано 37 человек. В процессе наблюдения диагноз очагового
туберкулеза без бактериовыделения был установлен у 8 больных, постгуберкулезные изменения - у 29. У 5 из 8 больных с рентгенологически подтвержденным активным очаговым туберкулезом, отмечена положительная реакция на пробу с ДСТ, а у всех лиц с постгуберкулезными изменениями реакция на пробу с ДСТ была отрицательной. Очевидно, что проба с ДСТ может служить дополнительным фактором для решения вопроса об активности.
Больные с неспецифическими заболеваниями легких. Обследовано 111 пациентов с пневмонией, саркоидозом и хроническими обструктивными заболеваниями легких (ХОБЛ), раком и др.
У 105 из 111 (94,6%) больных была отрицательная реакция на ДСТ {95% ДИ 90,4-98,8%), однако специфичность теста вероятно выше, поскольку положительные реакции у двух больных пневмонией были связаны с инфицированием микобактериями туберкулеза в результате профессионального контакта; у 3 больных раком лёгких данные рентгенологического и гистологического исследования указали на вероятность реактивации старых очагов туберкулёзной инфекции, расположенных в зоне развития рака лёгкого.
20 сотрудников стационаров, имевших профессиональный контакт с больными ТОД, все имели положительные реакции на пробу с ДСТ при отсутствии клинических и рентгенологических признаков заболевания. Таким образом, можно говорить о наличии у них ЛТИ.
Из 5 больных микобактериозом у 3 он был вызван М. avium, и реакция на ДСТ у них была отрицательной; у 2 - вызван М. kansasei, и реакция на ДСТ была положительной, что объяснимо, поскольку у последнего возбудителя присутствуют те же белки, что и в препарате ДСТ - ESAT6 и CFP10, а у М. avium они отсутствуют.
III. Чувствительность и специфичность пробы с ДСТ при туберкулёзе и латентной туберкулёзной инфекции у детей и подростков, каналы выявления больных туберкулёзом
Всего обследовано 2815 детей и подростков. Обследуемые пациенты были разделены на 12 групп, в 7 из которых выделены 2 подгруппы: получивших и не получивших химиотерапию.
637 детям пробы были сделаны дважды для оценки их динамики.
Дети и подростки, больные туберкулёзом органов дыхания (245 человек). На момент постановки пробы 200 из этих пациентов закончили только первую (интенсивную) фазу химиотерапии и продолжали лечение (подгруппа 1А). У 189 из них (94,5%) была положительная реакция на пробу с ДСТ (95% ДИ 83,0-97,9%), у 11 - отрицательная (с ограниченными очаговыми процессами в стадии рассасывания). Реакция на пробу Манту была положительной у всех 200 детей этой подгруппы.
45 человек закончили полный курс химиотерапии (подгруппа 1Б). У 27 (60,0%) из них наблюдалась положительная реакция на пробу с ДСТ (95% ДИ 42,8-83,8%). При выявлении ТОД у них были распространённые и осложнённые формы (эмпиема плевры, диссеминированный, инфильтративный с распадом и обсеменением и др.), в том числе, четверо были подвергнуты резекционным оперативным вмешательствам.
У 18 (40,0%) детей была отрицательная реакция на пробу с ДСТ - все они излечены от туберкулёза внутригрудных лимфатических узлов (ВГЛУ), находились под наблюдением более 18 месяцев от начала лечения, и получили курс противорецидивной терапии. Реакция на пробу Манту после завершения лечения стала отрицательной лишь у одного ребенка из 1Б подгруппы.
Таким образом, частота положительных реакций на пробу с ДСТ достоверно ниже у получивших полный курс химиотерапии (р<0,0001), на пробу Манту различий не отмечено.
Дети и подростки с виражом туберкулиновых реакций из семейного контакта с бактериовыделителем (74 человека). Не получали
превентивную химиотерапию 39 пациентов (2А группа), у 37(94,9%) из них реакция на пробу с ДСТ была положительной (95% ДИ 87,9-100%). Среди получивших превентивную терапию (2Б группа) - только у 12 (34,3%) из 35 человек (95% ДИ 18,5-50,0%) была положительная реакция (разница в частоте достоверна р<0,0001). При этом все лица с отрицательными реакциями на пробу с ДСТ, получавшие превентивную терапию, были изолированы от родителей и находились в санатории или реабилитационном отделении МНПЦБТ. Отрицательная реакция на пробу Манту отмечена только у одного пациента в этой подгруппе (после лечения).
Дети с виражом туберкулиновых реакций и неустановленным контактом (325 чел.). Не получали превентивную терапию 294 человека (ЗА подгруппа), получал в амбулаторных условиях - 31 (ЗБ подгруппа). Из не получавших терапию в 25 (8,5%) случаях реакция на пробу с ДСТ была положительной (95% ДИ 5,3-11,7%), из получавших - только у 3 (9,7%) (95% ДИ 0-20,1%). Реакция на пробу Манту у всех была положительной.
Дети и подростки с гиперергической реакцией на пробу Манту (153 человека). Из 106 детей и подростков, не получавших превентивной терапии (4А подгруппа), у 51 (48,1%) реакция на пробу с ДСТ была положительной (95% ДИ 42,6-62,5%), а из 47 детей (4Б подгруппа), получивших превентивную терапию амбулаторно, у 21 (44,7%) была положительная реакция (95% ДИ 30,4-58,9%). Реакция на пробу Манту у всех лиц обеих подгрупп была положительной.
Дети и подростки с усиливающейся туберкулиновой чувствительностью (184 человека). Из них 165 - не получали превентивную терапию (5А подгруппа), 19 - получали амбулаторно (5Б подгруппа). Из 165, не получавших терапию, у 25(15,1%) реакция на пробу с ДСТ была положительной (95% ДИ 9,6-20,5%), а из 19, получивших терапию, у 2 (10,5%) была положительной (95% ДИ 0-24,4%). Реакция на пробу Манту у всех, в том числе получавших лечение, была положительной.
Дети и подростки, длительно имевшие положительные
туберкулиновые реакции (342 человека). У них более 3 лет сохранялись «монотонно» положительные реакции на пробу Манту. Среди 309 человек, не получавших терапию, только у 8 (2,6%) была положительная реакция на пробу с ДСТ (95% ДИ 0,8-4,4%), а среди получавших - реакция была отрицательной у всех (100% 95%ЦИ 95,9-100,0%). Реакция на пробу Манту в обеих подгруппах была положительной.
Дети и подростки из семейного контакта с больным туберкулёзом без бактериовыделепия (60 человек). Среди 27 детей, не получивших превентивной терапии, (7А подгруппа), у 8 (29,6%) была положительная реакция на пробу с ДСТ (95% ДИ 12,4-46,9%), а среди получивших превентивную терапию амбулаторно - у 8 (24,2%) из 33 (95% ДИ 9,6-38,9%). Реакция на пробу Манту была положительной у 20 (74,1%) нелеченных (95%ЦИ 57,5-90,6%) и у 29 (87,9%) (95% ДИ 76,7-99,0%) - получивших превентивную химиотерапию.
Подростки из контакта в учебном заведении с больными туберкулёзом-бактериовыделнтелями (250 человек). Первоначально были обследованы 143 подростка - студенты двух колледжей, близко контактировавших в учебном заведении с больными туберкулёзом бактериовыделителями: 22 студента в первом колледже и 121 - во втором. Через 5 месяцев 90 подросткам из второго колледжа пробы с ДСТ были сделаны повторно и дополнительно обследовано ещё 107 подростков - из дальнего окружения заболевших. Пробы Манту проведены только у 131 подростка, поскольку родители остальных не дали согласия на её проведение.
В коллективе первого колледжа, где учатся подростки 15-18 лет, была выявлена больная инфильтративным туберкулезом легких с бактериовыделением. У неё реакция на пробу с ДСТ была 23 мм. Было обследовано 22 студента, близко с ней контактировавших, с помощью пробы с ДСТ, из них 20 - в сочетании с пробой Манту. Было установлено, что у 18 (90,0%) из 20 были положительные реакции на пробу Манту - папулы размером 8-19 мм (средний размер 11,7±2,9 мм), и только у 4(18,2%) из 22
были положительные реакции на пробу с ДСТ. УЗ из них были диагностированы локальные формы туберкулёза лёгких: у одного очаговый (реакция на пробу с ДСТ - 17 мм), у двоих - инфильтративный (размеры папул на пробу с ДСТ 22 и 23 мм соответственно). Только у одной студентки с положительной реакцией на пробу с ДСТ (19 мм) не выявлено изменений при рентгенологическом исследовании, включая КТ.
Во втором колледже выявлена девушка с диссеминированным туберкулёзом лёгких и бактериовыделением (реакция на пробу с ДСТ - 17 мм). С помощью пробы с ДСТ обследован 121 человек, близко с ней контактировавший, в т.ч. в сочетании с пробой Манту - только 111 (10 человек отказались от проведения пробы).
В коллективе, где обследован 121 подросток (все в возрасте 17 лет), у 4 (3,3%) из 121 выявлена положительная реакция на пробу с ДСТ (размеры 4, 12, 13 и 27 мм), у 84 (75,7%) из 111 учащихся - положительная реакция на пробу Манту (5-18 мм; средний размер 10,5±5,05 мм).
У двух из четырёх подростков с положительной реакцией на пробу с ДСТ выявлен туберкулёз: у одной учащейся диссеминированный туберкулёз лёгких с бактериовыделением (реакция на пробу Манту 18 мм, ДСТ - 12 мм), у второй - туберкулёз ВГЛУ (реакция на пробу Манту 11 мм, ДСТ - 13 мм). У 2 подростков с положительными реакциями на пробу с ДСТ (4 и 27 мм) изменений при рентгенологическом исследовании не выявлено.
Рентгенологически были обследованы сотрудники колледжей и учащиеся других групп, заболевания ни у кого не было выявлено.
Таким образом, положительные реакции на пробу Манту выявлены у 77,9% (102 из 131) (95%ЦИ 69,8-84,6%) подростков из близкого окружения и только 5,6% (8 из 143) (95%ЦИ 2,4-10,7%) - на пробу с ДСТ (табл. 2).
Среди 8 лиц с положительной реакцией на пробу с ДСТ туберкулёз был диагностирован у 5 (62,5%) (95%ЦИ 30,4-86,5%). Проба позволила выявить все случаи локальных форм туберкулеза как у источников заболевания, так и у контактов. У большинства (77,9%) детей была положительная реакция на
пробу Манту, ее размер у больных и здоровых детей не отличался, а заболевание выявлено только у 4,9% (95% ДИ 1,6-11,1%) из них.
Таблица 2
Частота положительных реакций на пробы Манту и ДСТ у подростков из контакта и доля лиц с активным туберкулёзом среди
Кожные пробы Число положительных реакций от количества проб % Туберкулёз среди контактов с положительными реакциями на пробы %
Манту Всего: 102/131 77,9 5/102 4,9
ДСТ Всего: 8/143 5,6 5/8 62,5
Повторные постановки проб проведены у 90 из 121 студента второго колледжа спустя 5 месяцев после изоляции источника инфекции. Они выявили следующую динамику: у одного подростка положительная реакция на пробу с ДСТ (4 мм) стала отрицательной, у 4 отрицательная - стала положительной. У этих же подростков изменились реакции на пробу Манту: у одного размер уменьшился с 17 до 11 мм, у троих - увеличился.
Всем им было проведено рентгенологическое обследование, включая КТ. Туберкулёз не выявлен ни у кого. У 85 подростков реакции на пробу с ДСТ остались отрицательными. В этой группе повторная проба Манту была проведена у 77 подростков. У 11 (14,3%) из 77 отмечен вираж туберкулиновых реакций (95%ДИ 7,35-24,1%). Размер папулы в среднем составил 7,6±1,44 мм (от 6 до 10 мм, медиана 7 мм). У 7 (9,1%) из 77 реакция на пробу Манту осталась отрицательной. Частота положительных реакций при повторном обследовании в целом составила 90,9% (70 из 77).
Было решено расширить количество обследованных контактов с помощью пробы с ДСТ за счет отдаленного окружения - пробы были сделаны ещё 107 лицам. Среди них положительные реакции отмечены у 2 (1,9%), ни у кого из них не было выявлено локальных форм туберкулёза.
Суммарно при двух обследованиях в ближнем окружении было 113 (86,3%) подростков с положительной реакцией на пробу Манту, в дальнем окружении - 92 (86,0%), т.е. частота среди близких и отдаленных контактов была сопоставимой (р=0,49 по критерию %2).,
Суммарно при двух обследованиях в ближнем окружении выявлено 12 (8,4%) подростков с положительной реакцией на пробу с ДСТ, в дальнем окружении - 2 (1,9%), т.е. частота положительных реакций среди близких контактов встречалась достоверно чаще, чем среди отдаленных контактов (р=0,039 по критерию XV- Заболевания у отдаленных контактов не было выявлено.
Таким образом, после изоляции источника инфекции необходим мониторинг реакций на пробы с ДСТ, по крайней мере, дважды с интервалом 6 мес.
Дети и подростки из контакта по учебному заведению с лицами, больными туберкулёзом без бактериовыделения (718 человек). Учащихся школ было 412 человек, колледжа - 306. У 16 (2,2%) из них были выявлены положительные реакции на пробу с ДСТ(95% ДИ 0,94-3,92%), а положительные реакции на пробу Манту отмечены у 603 из 700 (86,1%) (95% ДИ 82,8-89,5%)(родители остальных детей не дали согласия на пробу Манту.
Дети и подростки с нетуберкулёзными заболеваниями (пневмонией, бронхитом). Из 23 человек у всех были отрицательные реакции на пробу с ДСТ (95% ДИ 95,7-100,0%). У 16 (69,6%) были положительные реакции на пробу Манту (95% ДИ46,4-92,6%).
Дети и подростки, вакцинированные ВСО (226 человек).Обследовано 226 детей, у которых с момента вакцинации прошло 1-3 года. Средний возраст составил 2,23±0,73 лет. Реакция на пробу Манту была положительной у 97,3% (95% ДИ 95,2-99,4%), сомнительной - у 2,7% . Реакция на пробу с ДСТ у всех была отрицательной.
Дети и подростки, у которых после пробы с ДСТ диагностированы локальные формы туберкулёза (183 человека). В процессе обследования
детей и подростков с помощью пробы с ДСТ и последующего рентгенологического исследования были выявлены лица с локальными формами туберкулёза.
Каналы формирования контингента впервые выявленных больных туберкулёзом были следующими.
А. Диспансерные контингенты - составили 83 человека (45,4%).
Из контакта с больными туберкулёзом было 66 (36,1%) из 183 больных. У 61(92,4%) из 66 - были положительные реакции на пробу с ДСТ. Однако среди детей, впервые обследованных по контакту с больными туберкулёзом родителями, при рентгенологическом исследовании были выявлены больные туберкулёзом дети, имевшие отрицательные реакции на пробу с ДСТ — 5 из 66 (7,6%). Все они были вакцинированы при рождении, но при этом у двоих отмечались и отрицательные реакции на пробу Манту: у одного ребенка туберкулёз выявлен в возрасте 1 года, в связи с обследованием по контакту с бактериовыделителем (контакт был с рождения ребёнка). У другого ребёнка 4 лет, туберкулёз выявлен в связи с обследованием по двойному контакту с больными туберкулёзом - бактериовыделителями и одновременно ВИЧ-инфекцией. У ребёнка обнаружен диссеминированный туберкулёз лёгких в стадии неполного рассасывания.
У 3 детей с отрицательной реакцией на пробу с ДСТ и положительной -на пробу Манту туберкулёз выявлен в возрасте: 5 месяцев, 2-х и 3-х лет. У них также был контакт с родственниками, больными туберкулёзом -бактериовыделителями, причем один из родителей был одновременно болен ВИЧ-инфекцией.
С виражом реакций на пробу Манту и отрицательной реакцией на пробу с ДСТ бьио 6 (3,3%) детей, но при повторном (через 3 месяца) исследовании у них появилась положительная реакция на пробу с ДСТ. Им была выполнена КТ, при этом выявлены туберкулёзные изменения.
С положительными реакциями на пробу с ДСТ в течение 2-х лет наблюдались 9 (4,9%) детей. После первой положительной реакций
рентгенологическое исследование, включая KT, не выявило признаков локальных форм туберкулёза, и дети получили превентивную химиотерапию в условиях реабилитационного отделения МНПЦБТ. При повторном рентгенологическом исследовании, спустя год, был выявлен туберкулёз ВГЛУ уже в стадии начавшейся кальцинации. Таким образом, начавшаяся кальцинация позволят ретроспективно судить о наличии туберкулёза. Проведенная в условиях стационара превентивная химиотерапия помогла предотвратить прогрессирование заболевания.
2 (1,0%) подростка ранее наблюдались в течение нескольких лет в диспансере с гиперергической реакцией на пробу Манту, и только после проведения пробы с ДСТ и получения положительной реакции был выявлен туберкулёз.
Б. Впервые обследованные -100 человек (54,6%).
Ранее никогда не наблюдались в диспансерных группах 100 (54,6%) больных и им не делали пробу Манту, поскольку эти дети - из семей мигрантов. После первой же постановки пробы Манту они были направлены в диспансер с положительными реакциями, где им была сделана проба с ДСТ и получена положительная реакция. После проведения рентгенологического исследования, включая KT, был выявлен туберкулёз.
У 2 детей с положительными реакциями на пробу Манту и отрицательными - на пробу с ДСТ был диагностирован остит. Дети были в возрасте до 2-х лет, вакцинированы БЦЖ, идентификация выделенного возбудителя М. bovis BCG позволила установить диагноз БЦЖ-остита Таким образом, проба с ДСТ сыграла здесь роль диагностического критерия.
Было также выявлено 30 детей с туберкулёзными процессами в стадии кальцинации, при этом положительные реакции на пробу с ДСТ отмечены у 20 (66,7%). Возможно, активность туберкулёзного процесса у них ещё сохранилась.
Результаты повторной постановки пробы с ДСТ у детей и подростков. У 637 детей и подростков пробы с ДСТ были сделаны дважды.
Детям, больным ТОД, первая проба сделана не менее чем через 2 месяца от начала лечения (после завершения интенсивной фазы), повторная - спустя ещё 5-8 месяцев.
Детям из групп диспансерного наблюдения (в связи с риском развития туберкулёза) первая проба сделана до назначения превентивной химиотерапии, повторная - спустя 3-4 месяца (однако, часть детей превентивной химиотерапии не получила из-за отказа родителей).
485 человек имели отрицательную реакцию на первую пробу с ДСТ. У этих детей были положительные реакции на пробу Манту, в связи с чем они и наблюдались в группах риска: с виражом, гиперергией, усилением реакций, в связи с контактом с больными туберкулёзом.
При повторном исследовании с помощью пробы с ДСТ у 473 (97.5%) реакция осталась отрицательной. Конверсия реакции произошла у 12 (2,5%) детей - все они имели контакт с больными туберкулёзом и не получили превентивного лечения. Такие результаты дают основания повторять пробы с ДСТ у лиц из контакта, если предшествующая реакция была отрицательной. Вероятно, вакцинация БЦЖ может какое-то время препятствовать репликации микобактерий, однако массивное инфицирование при контакте может преодолеть защитный барьер и привести к развитию туберкулёзной инфекции и заболеванию. Кроме того, на белки размножающихся вирулентных микобактерий (СЕР-10-Е8АТ-6) должны выработаться Т-клетки памяти, которые позволят дать ответ на ДСТ по типу реакции ПЧЗТ, в то время как на туберкулин такая реакция сформировалась уже после вакцинации.
152 человека имели положительную реакцию на первую пробу с ДСТ: 108 детей и подростков с туберкулёзом органов дыхания, 44 - из групп риска (вираж, гиперергия, усиление реакций, контакт с больными туберкулёзом). У 29 (19,1%) из них при повторной постановке пробы с ДСТ реакция стала отрицательной. Это - дети, наблюдаемые в группах риска и получившие превентивную химиотерапию в условиях санатория, а также больные туберкулёзом, получившие лечение в стационаре. Ни у кого из них реакция на
пробу Манту не стала отрицательной. На первую пробу с ДСТ средний размер папулы был небольшой - 8,3±1,8 мм (Манту 15,3±2,3 мм).
У 123 детей реакция на пробу с ДСТ осталась положительной, при этом изначально у них отмечены гиперергические реакции (средний размер папулы 18,9±1,2 мм), на повторную постановку пробы с ДСТ реакции стали менее выраженными (средний размер составил 16,5±1,5 мм). Средний размер папулы на пробу Манту не изменился (16,5±1,1 мм).
Из 152 детей с первой положительной реакцией на пробу с ДСТ у 50 (32,9%) - повторная реакция на пробу с ДСТ уменьшилась более чем на 3 мм (у 38 - с туберкулёзом органов дыхания, у 12 - из групп риска). Изначально у них средний размер папулы на пробу с ДСТ был 20,8±3,4 мм, при повторном исследовании - 14,7±2,3 мм. Все дети получили адекватную терапию в условиях стационара МНПЦБТ, но негативации реакции не произошло, изначально реакция была гиперергической.
У 20 (13,1%) детей реакция усилилась. Из них один ребёнок наблюдался с гиперергическими реакциями на пробы Манту и ДСТ и не получил превентивного лечения, а 8 - это больные с хроническим течением туберкулёза (множественные туберкулёмы и туберкулёз ВГЛУ). У больных детей первая реакция на пробу с ДСТ была гиперергической (более 28 мм), и при повторной постановке пробы с ДСТ произошло её усиление: при сохранении размера папулы появились везикуло-некротические проявления. При этом общих реакций отмечено не было.
У 53 детей (34,9%) положительные реакции (все более 15 мм) не уменьшились в размерах или уменьшились менее чем на 3 мм. 40 из них - с хроническим течением туберкулёза ВГЛУ, 8 - из не разобщенного контакта с родителями-бактериовыделителями и 3 - с гиперергическими и усиливающимися реакциями на пробу Манту, не получившие превентивной химиотерапии. Первая реакция на пробу с ДСТ в среднем составила 18,5±1,9 мм, вторая —18,2±1,2 мм.
IV. Чувствительность пробы с ДСТ у больных туберкулезом и ВИЧ-инфекцией
Всего было обследовано 88 больных туберкулёзом и ВИЧ-инфекцией.
У всех больных диагноз был верифицирован либо положительным результатом посева на МВТ (87 человек), либо результатом гистологического исследования (при наличии внелегочной локализации процесса) (8 человек), обоими методами исследованиями - у 7.
У 53 больных с отрицательной реакцией на пробу с ДСТ медиана числа СЕ)4+Т-лимфоцитов составила 126,0 в 1 мкл (интерквартильный размах 26,0 -283,7; медиана числа С08+Т-лимфоцитов - 589,0 в 1 мкл (интерквартильный размах 421-853); медиана отношения CD4+/CD8+ - 0,25 (0,06-0,36). У 35 больных, с размером папулы более 5 мм эти показатели составили соответственно: 385,0 (203,0-576,0); 811,0 (519,8-1317,3) и 0,46 (0.38-0.79).
Выявлена достоверная прямая взаимосвязь между числом CD4+T-лимфоцитов и долей больных с положительными реакциями на пробу с ДСТ (rs =0,43; р<0,001), а также с размером папулы (rs=0,45; р<0,001).
Частота положительных реакций на пробу с ДСТ в группе больных с количеством СВ4+Т-лимфоцитов менее 200 клеток в 1 мкл составила 22 % (95% ДИ 9,3-34,7%) и была достоверно меньше, по сравнению с таковой в группе больных с числом CD4+ >200 в 1 мкл - 55,3%, (95%ЦИ 41,1-69,6%) (р<0,01 по критерию %2).
У 4 больных с генерализованными туберкулёзными процессами после постановки тестов, при наличии у трёх отрицательных реакций на пробу с ДСТ и у одного - положительной, отмечалось повышение температуры до 38°С. При этом отсутствовали очаговые реакции, как со стороны органов грудной клетки, так и со стороны внелёгочных локализаций (не отмечалось боли, усиления кашля, на рентгенограммах органов грудной клетки изменений не отмечено). Спустя 72 часа температура нормализовалась, и последующее наблюдение за больными в течение 2-х месяцев показало отсутствие отрицательной динамики процесса, они продолжили курс
противотуберкулезной терапии. Очевидно, такую общую реакцию можно расценивать как положительную на пробу с ДСТ.
V. Чувствительность и специфичность пробы с ДСТ при внелегочной локализации туберкулеза и неспецифических заболеваний.
В исследование включены 139 больных туберкулезом внелёгочных локализаций (48 - без ВИЧ-инфекции и 23 - в сочетании с ВИЧ-инфекцией), а также 68 больных с нетуберкулёзными поражениями внелегочной локализации.
Больные с туберкулезными поражениями без ВИЧ-инфекции
В процессе диагностики и лечения, включая хирургические методы, удалось получить диагностический материал из очага поражения и на основании гистологического, микробиологического и других методов исследования верифицировать диагноз. Больные туберкулезным менингоэнцефалитом находились на лечении в МНПЦБТ, у них была исследована спинномозговая жидкость.
Активность процесса устанавливали по клиническим, рентгенологическим данным и по результатам гистологического и микробиологического исследования. У больных с эффективной противотуберкулезной химиотерапией с последующим хирургическим лечением, со сроками наблюдения после этого более года, поражения расценены как неактивные.
Среди 48 больных внелёгочным туберкулёзом активная фаза установлена у 29 человек, неактивная - у 19 человек.
Локализация внелегочных туберкулезных поражений: костно-суставная система - 30, менингеальные оболочки - 4, периферические лимфатические узлы - 8, мезентериальные лимфатические узлы - 2, молочная железа - 2, почки - 2.
Положительные реакции на пробу с ДСТ отмечены у 26 из 29 (89,7%) больных активным туберкулезом (95% ДИ 75,2-100%); отрицательные реакции
отмечены у 3 больных: туберкулёзом молочной железы, периферического лимфатического узла и центральной нервной системы (менингоэнцефалит).
Положительные реакции на пробу Манту были отмечены у 26 из 29 (89,7%; больных (95%ДИ 75,2-100%).
Из 19 больных с неактивными процессами отрицательные реакции на пробу с ДСТ были у всех 19 больных (95% ДИ 94,8-100%). Отрицательные реакции на пробу Манту отмечены у 5 из 19 (26,3%) больных (95% ДИ 1,451,3%).
Таким образом, чувствительность проб Манту и ДСТ одинакова, однако, специфичность проб различается - с ДСТ 100%, а Манту - 26,3%. (Результаты обоих тестов не были согласованы друг с другом - коэффициент каппа составил -0,129, р=0,37).
Больные с нетуберкулёзными заболеваниями
Из 68 больных у 6 диагностирована опухолевая природа заболевания опорно-двигательного аппарата, у 4 - остеомиелит неспецифической этиологии, у 6 - постгравматические изменения опорно-двигательного аппарата, у 48 - воспалительные поражения неспецифического характера. У 3 больных с патологией периферических ЛУ установлен диагноз неспецифического реактивного лимфаденита, у одного больного - трофическая язва.
Из 68 больных с нетуберкулезными поражениями внелегочной локализации отрицательная реакция на пробу Манту была у 20 (29,4%) больных (95% ДИ 17,1-41,7%), а на пробу с ДСТ - у 67(98,5 %) (95% ДИ 94,2100%). Таким образом, специфичность теста Манту - 29,4%, ДСТ - 98,5 %. Результаты обоих тестов не были согласованы друг с другом (коэффициент каппа 0,012, р=0,52).
Таким образом, проба с ДСТ показала почти 100% специфичность - при нетуберкулезных заболеваниях и при неактивных туберкулезных поражениях. В то же время проба Манту показала низкую специфичность - отрицательные
реакции у 29,4% при нетуберкулезных заболеваниях и 26,3% - при неактивных поражениях туберкулёзного характера.
В процессе исследования особое внимание было обращено на общие, очаговые и местные реакции при проведении внутрикожных тестов. У одного пациента с туберкулезом грудинно-реберного сочленения и наличием свища была отмечена выраженная очаговая реакция в виде отека, гиперемии и болезненности в месте выхода свища.
Больные ВИЧ-инфекцией в сочетании с генерализованными и сочетанными локализациями туберкулеза
Особую группу больных по тяжести состояния и трудности диагностики представляют больные ВИЧ-инфекцией с сочетанными и генерализованными формами туберкулеза. Все они употребляли инъекционные наркотики, у всех был диагностирован вирусный гепатит С. Таких больных в нашем наблюдении было 23. Внелегочные локализации процесса были следующими: костей - у 7, периферических лимфатических узлов - у 10, кишечника - у 1, менингоэнцефалита - у 3, селезенки - у 2.
Положительные реакции на пробу с ДСТ (папулы от 10 до 21мм) отмечены у 10 из 23 (43,5%) больных (95% ДИ 23,2-45,5%), положительные реакции на пробу Манту (папулы от 7 до 22 мм) - у 13 из 23 (56,5%) больных (95%ДИ34,5-76,8%). Оба теста были отрицательными у 8 из 23 больных, у 5 из них число С04+Т-лимфоцитов было критически низким (от 4 до 24 в 1 мкл). Результаты были согласованы друг с другом - коэффициент каппа составил 0,401 (р<0,05). Таким образом, у больных ВИЧ-инфекцией пробы с ДСТ и Манту обладают сопоставимой чувствительностью. Степень согласия между ними увеличивается, если в качестве положительных учитывать результаты пробы Манту только с размером папулы более 10 мм (каппа 0,55, р=0,008).
Положительные реакции на пробу с ДСТ отмечались даже при критически низких числах СБ4+Т-лимфоцитов; корреляция между размером (наличием) папулы на пробу с ДСТ и числом СИ4+ Т-тшфоцитов отсутствовала (¡=0,23,
р=0,28). Таким образом, даже при резко выраженной иммуносупрессии можно использовать пробу с ДСТ для выявления туберкулезной инфекции.
ВЫВОДЫ
1. Кожная проба с препаратом ДИАСКИНТЕСТ® (аллерген туберкулезный, представляющий собой рекомбинантный белок СЕРЮ-ЕБАТб) безопасна - не наблюдалось необычных общих реакций и неспецифических местных проявлений. Повторные пробы не вызывают сенсибилизации на препарат.
2. Кожная проба с ДСТ обладает высокой специфичностью: частота отрицательных реакций у детей после вакцинации ВСв составила 100% (95% ДИ 98,3-100,0%); при нетуберкулёзных заболеваниях лёгких у взрослых -94,6% (95% ДИ 90,4-98,8%), у детей - 100% (95%ЦИ 95,7-100,0%); при внелегочных процессах нетуберкулёзной природы у взрослых - 98,5% (95% ДИ 94,2-100%); у лиц, излеченных от внелегочных форм туберкулёза - 100,0% (95% ДИ 94,8-100,0%).
3. Кожная проба с ДСТ обладает высокой чувствительностью: частота положительных реакций у детей и подростков с нелеченным туберкулёзом органов дыхания составила 97,3% (95% ДИ 94,9-99,6%); у взрослых, больных туберкулёзом органов дыхания - 84.2% (95% ДИ 79,7-88,8%); у взрослых, больных туберкулёзом внелегочных локализаций - 89,7% (95% ДИ 75,2100,0%).
4. Частота положительных реакций на пробу с ДСТ при латентной туберкулёзной инфекции у детей и подростков, наблюдаемых в диспансерных группах риска, соответствует степени риска развития заболевания, достигая максимума у лиц с виражом реакций на пробу Манту из семейного контакта с больными туберкулёзом - бактериовыделителями -94,9% (95% ДИ 87,9-100%) (при попарном сравнении со всеми другими группам р<0,001 по критерию % 2). Частота положительных реакций на пробу Манту в группах значимо не различалась, приближаясь к 100%.
5. Проба с ДСТ является маркером активности туберкулёзной инфекции: у подростков из близкого контакта с больными туберкулёзом-бактериовыделителями положительные реакции на пробу Манту отмечены у 77,9% (95%ЦИ 69,8-84,6%), из них туберкулёз выявлен у 4,9% (95%ДИ 1,611,1); положительные реакции на пробу с ДСТ отмечены у 5,6% (95%ДИ 2,410,7), а туберкулёз выявлен у 62,5% (95'УцЦИ 30,4-86,5) из них. У детей и подростков, контактировавших в учебном заведении с больными туберкулёзом без бактериовыделения, частота положительных реакций достоверно ниже ф<0,001 по критерию % 2) - 2,2% (95% ДИ 0,94-3,92%); на пробу Манту частота положительных реакций у них составила 86,1% (95% ДИ 82,8-89,5%), достоверно не отличаясь от таковой в группе контактов с бактериовыделителями (р=0,96).
6. Каналы выявления больных туберкулёзом детей и подростков при применении пробы с ДСТ были следующими: 45,4% из них ранее наблюдались в диспансерных группах риска, 54,6% лиц (преимущественно - из семей мигрантов) ранее не обследовались с помощью кожных проб. Положительная реакция на пробу с ДСТ позволила при дообследовании выявить у них туберкулёз.
7. Динамика реакций на пробу с ДСТ позволяет судить о развитии туберкулёзной инфекции. Уменьшение интенсивности, вплоть до отрицательной реакции, произошло у 52,0% детей и подростков, получивших полный курс контролируемой химиотерапии, и у 44,4% (95% ДИ 33-56%) взрослых, больных туберкулёзом органов дыхания, после 3 месяцев лечения; среди детей и подростков с первоначально отрицательной реакцией у 2,5% произошла конверсия (вираж) реакций на пробу с ДСТ - у не разобщенных контактов с бактериовыделителями.
8. Частота положительных реакций на пробу с ДСТ зависит от успешности лечения: у детей с нелеченым туберкулёзом органов дыхания она достоверно выше, чем среди закончивших полный курс химиотерапии -97,3% (95%ДИ 94,9-99,6%) и 60,0% (95%ДИ42,8-83,8%) соответственно,
(р<0,0001); на пробу Манту реакции практически у всех были положительными. У взрослых, больных туберкулёзом органов дыхания, с длительностью лечения менее 30 дней она достоверно выше, чем среди леченных более 100 дней: 84.2% (95% ДИ79,7-88,8%) и 55,9% (95%ДИ 44,166,7%) соответственно (р<0,001 по критерию % 2).
9. У лиц из контакта с бактериовыделителями и виражом реакций на пробу Манту частота положительных реакций на пробу с ДСТ достоверно ниже, если они получили контролируемую превентивную химиотерапию, чем у лиц, не получивших таковую: 60,0% и 94,5% соответственно (р<0,0001). Частота реакций на пробу Манту в этих группах не отличалась, так как была практически у всех положительной.
10. У больных туберкулёзом в сочетании с ВИЧ-инфекцией имеется достоверная разница (р<0,01 по критерию %2) в частоте положительных реакций на пробу с ДСТ при разном количестве СЭ4+Т-лимфоцитов в периферической крови: 55,3% у больных при CD4+ Т-лимфоцитов более 200 клеток в 1 мкл и 22,0% - при менее 200 клеток. Таким образом, у больных ВИЧ-инфекцией можно использовать кожную пробу с ДСТ, учитывая, что по мере увеличения иммуносупрессии эффективность ее снижается.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
ДИАСКИНТЕСТ® (Аллерген туберкулезный рекомбинантный в стандартном разведении) представляет собой рекомбинантный белок ESAT 6-CFP10, продуцируемый генетически модифицированной культурой Escherichia coli BL21(DE3)/pCFP-ESAT, присутствующий в вирулентных штаммах Mycobacterium tuberculosis и отсутствующий в вакцинном - Mycobacterium bovis BCG.
Практическое здравоохранение получило принципиально новый, по сравнению с туберкулинодиагностикой, инструмент выявления и диагностики активной туберкулёзной инфекции. Проба с ДСТ позволяет выявлять туберкулёз на ранних стадиях у детей, дифференцировать поствакцинальную аллергию от активной туберкулёзной инфекции с высоким риском развития
заболевания. Она является маркером активной туберкулёзной инфекции, позволяющий дифференцировать активный процесс от инфекции, перенесённой ранее. С её помощью появилась возможность проследить динамику туберкулёзного процесса как в момент её развития, так и при потере активности. Положительная реакция на пробу с ДСТ требует прицельного обследования на туберкулёз, включая КТ, и определяет показания к применению превентивной химиотерапии. Она может использоваться для выявления активной туберкулёзной инфекции у лиц с иммунодефицитными состояниями, в частности, вызванными ВИЧ - инфекцией.
Проба позволяет провести дифференциальную диагностику туберкулёза от нетуберкулёзных заболеваний, поскольку обладает почти 100% специфичностью.
Назначение:
• выявление и диагностика туберкулеза;
• оценка активности туберкулёзной инфекции и определение показаний к превентивной химиотерапии;
• дифференциальная диагностика туберкулёза;
• дифференциальная диагностика поствакцинальной и инфекционной аллергии;
• мониторинг развития инфекции и заболевания, в том числе в процессе лечения.
Список работ, опубликованных по теме диссертации
1. Чуканова В. П., Литвинов В. И., Поспелов Л. Е., Слогоцкая Л. В. Значение факторов наследственной предрасположенности в развитии и течении легочного туберкулеза // Вестник РАМН -1995. - №2. - С. 6-9.
2. Литвинов В.И., Романова Р.Ю., Пучкова Н.Г., Некрасов А.В., Слогоцкая Л.В., Мороз A.M. Новая противотуберкулезная вакцина адъювантного типа. Экспериментальный анализ, протективные и иммуногенные свойства // Аллергия, астма и клиническая иммунология. Материалы отчетной сессии Научного совета программы «Вакцины нового поколения и медицинские диагностические системы будущего». Новости науки и техники. Серия «Медицина».- М.,1999. - с. 19-21
3. Медников Б.Л., Слогоцкая Л.В., Ловачева О.В. Анализ результатов исследования резистентности микробактерий туберкулеза к противотуберкулезным препаратам у впервые выявленных больных// Материалы конференции, посвященные памяти М.М. Авербаха (к 75-летию со дня рождения) / Сборник "Туберкулез сегодня: проблемы и перспективы". - М.: МНПЦ БТ, 2000. - с. 77-79
4. Литвинов В.И., Леви Д.Т., Романова Р.Ю., Пучкова Н.Г., Некрасов A.B., Слогоцкая JI.B., Мороз А.М. Новая противотуберкулезная вакцина адъювантного типа. Сравнительный анализ ее протективных свойств с вакциной БЦЖ и с комплексным препаратом БЦЖ-полиоксидоний. Отчетные материалы по Программе «Вакцины нового поколения и медицинские диагностические системы будущего» // Аллергия, астма и клиническая иммунология. Новости науки и техники. Серия «Медицина». - М., 2001. - №1.-с. 20-22.
5. Иртуганова O.A., Смирнова Н.С., Слогоцкая JI.B. и др. Бактериологические методы определения лекарственной устойчивости микробактерий туберкулеза //Материалы конференции, посвященные памяти М.М. Авербаха (к 75-летию со дня рождения) / Сборник "Туберкулез сегодня: проблемы и перспективы". - М.: МНПЦ БТ, 2000. - с. 73-75
6. Литвинов В.И., Медников Б.Л., Ловачева О.В., Слогоцкая Л.В. и др. Резистентность микробактерий туберкулеза к антибактериальным препаратам // Сборник "Химиотерапия туберкулеза". - М.: МНПЦ БТ, 2000.- С. 49-50
7. Романова Р.Ю., Горелова Л.А., Слогоцкая Л.В., и др. Разработка нового противотуберкулезного вакцинного препарата: экспериментальные исследования // Материалы конференции, посвященные памяти М.М. Авербаха (к 75-летию со дня рождения) / Сборник "Туберкулез сегодня: проблемы и перспективы". - М.: МНПЦ БТ, 2000. - с. 44-45
8. Иртуганова O.A., Смирнова Н.С., Слогоцкая Л.В., Речкин О.И., Мороз А.М. Использование автоматизированной системы МВ/ВасТ для определения лекарственной чувствительности микробактерий туберкулеза // Сборник "Химиотерапия туберкулеза". - М.: МНПЦ БТ, 2000.- С. 92
9. Сельцовский П.П., Медников Б.Л., Ловачева О.В., Слогоцкая Л.В. Медико-экономическое обоснование определения лекарственной чувствительности микробактерий туберкулеза с применением различных питательных сред//Материалы конференции, посвященные памяти М.М. Авербаха (к 75-летию со дня рождения) // Сборник "Туберкулез сегодня: проблемы и перспективы". - М.: МНПЦ БТ, 2000. - с. 82-84
10. Сельцовский П.П., Медников Б.Л., Ловачева О.В., Слогоцкая Л.В., Иртуганова O.A. Определение лекарственной чувствительности микобактерий туберкулеза (медико-экономическое обоснование) // Сборник "X национальный конгресс по болезням органов дыхания". - СПб., 2000. - с. 274
11. Сельцовский П.П., Медников Б.Л., Ловачева О.В., Слогоцкая Л.В., и др. Медико-экономический аспект определения микобактерий туберкулеза // Сборник "X национальный конгресс по болезням органов дыхания". - СПб., 2000.- с. 275.
t
12. Иртуганова O.A., Смирнова Н.С., Слогоцкая JI.B., и др. Внедрение автоматизированных систем выявления возбудителя туберкулеза // Сборник "X национальный конгресс по болезням органов дыхания". - СПб., 2000.- с. 266
13. Владимирский М.А., Филиппов В.И., Иртуганова O.A., Слогоцкая Л.В. ДНК-технология выявления микобактерий туберкулеза в биопсийных материалах // Научные труды к 75-летию ведущего противотуберкулезного учреждения г. Москвы/ Под ред. В.И. Литвинова. М.: МНПЦ БТ, 2001 - с. 239240.
14. Сельцовский П.П., Иртуганова O.A., Слогоцкая Л.В., Смирнова Н.С. Комплексные научные исследования в изучении эффективности феназида // Проблемы туберкулеза. - 2001.- №8. - с. 29-32.
15. Медников Б.Л., Сельцовский П.П., Ловачева О.В., Слогоцкая Л.В. Майрин (Myrin) (рифампицин 150 мг, изониазид 75 мг, этамбутол 300 мг) : применение у больных туберкулезом легких. Методические рекомендации. -М: МНПЦБТ, 2001 - 10 с.
16. Ловачева О.В., Горюнов В.В., Сельцовский П.П., Слогоцкая Л.В., Черноусова Л.Н. Исследование воздушной среды фтизиатрического стационара на содержание микобактерий туберкулеза // Научные труды к 75-летию ведущего противотуберкулезного учреждения г. Москвы / Под ред. В.И. Литвинова. - М.: МНПЦ БТ, 2001. - с. 90-91
17. Литвинов В.И., Ловачева О.В., Горюнов В.В., Иртуганова O.A., Сельцовский П.П., Слогоцкая Л.В. и др. Способ индикации микобактерий туберкулеза в воздушной среде. - В сб.: Новости науки и техники. Серия «Медицина». Туберкулез. - М.: ВИНИТИ РАН, 2001. - №3. - с. 3-8.
18. Иртуганова O.A., Сельцовский П.П., Слогоцкая Л.В., Смирнова Н.С. Антимикобактериальная активность феназида в пробирочном эксперименте в автоматизированной системе ВАСТЕС MGIT 960 // Научные труды к 75-летию ведущего противотуберкулезного учреждения г. Москвы/ Под ред. В.И. Литвинова. - М.: МНПЦ БТ, 2001 - с. 228-230
19. Иртуганова O.A., Смирнова Н.С., Слогоцкая Л.В., Мороз A.M., Литвинов В.И. Автоматизированные методы культурального определения М. Tuberculosis на жидких средах // Проблемы туберкулеза. - №3.- 2001. - с. 53-55.
20. Черноусова Л.Н., Ловачева О.В., Иртуганова O.A., Слогоцкая Л.В. и др. Значение генотипирования микобактерий туберкулеза для фтизиопульмонологии // Материалы Международной конференции «Туберкулез - старая проблема в новом тысячелетии».- Новосибирск, 2002,- с. 305-307
21. Иртуганова O.A., Смирнова Н.С., Слогоцкая Л.В. Определение чувствительности Mycobacterium tuberculosis к пиразинамиду на бактериологическом анализаторе ВАСТЕС 960 // Проблемы туберкулеза.-№7.- 2003.- С.40-42.
22. Сельцовский П.П., Литвинов В.И., Слогоцкая Л.В. Влияние социальных факторов на смертность от туберкулеза, эффективность мер
медико-социальной защиты в г. Москве в XX столетии // Проблемы туберкулеза. - 2004. - №2. - с.8-12
23. Сельцовский П.П., Слогоцкая J1.B. Эпидемическая ситуация по туберкулезу и основные противотуберкулезные мероприятия в Москве за 1934-2003 гг // Проблемы туберкулеза.- №9.- 2005.- с. 17-22.
24. Дрожжин А.П., Слогоцкая Л.В., Ловачева О.В., Литвинов В.И. Клинические исследования во фтизиатрии и принципы доказательной медицины// Научные труды к 80-летию ведущего противотуберкулезного учреждения г. Москвы / Под редакцией академика РАМН В.И.Литвинова. -М.:МНПЦБТ, 2006. - с. 84-96
25. Дрожжин А.П., Ловачева О.В., Слогоцкая Л.В. Основные принципы, задачи и законодательная база клинических исследований во фтизиатрии // Проблемы туберкулеза и болезней легких.- М. - 2007.- №10. — с. 17-24
26. Чуканов В.И., Слогоцкая Л.В. Особенности диагностики и эффективности лечения больных туберкулезом легких без бактериовыделения // Проблемы туберкулеза и болезней легких. - М. -2007. - №11. - с.22-26
27. Ловачева О.В., Слогоцкая Л.В., Литвинов В.И. Особенности клинических исследований во фтизиатрии //Туберкулез в России. Год 2007: материалы VIII Российского съезда фтизиатров,— М., 2007. — с.58
28. Ловачева О.В., Слогоцкая Л.В., Смирнов В.Ю., Филиппов A.B., Литвинов В.И. Сравнительное исследование эффективности лечения больных туберкулезом легких, получавших сурфактант-БЛ на фоне противотуберкулезной терапии // Тезисы докладов VI Московской ассамблеи «Здоровье столицы» 13-14 декабря 2007 г. - М.:ГЕОС, 2007. - с. 132-133
29. Ловачева О.В., Корниенко И.И., Кулько А.Б., Слогоцкая Л.В., Литвинов В.И. Лечение итраконазолом в сустензии патологической колонизации грибами дыхательных путей у больных туберкулезом. Методические рекомендации №8. - М.:МНПЦБТ, 2007. - 18 с.
30. Литвинов В.И., Слогоцкая Л.В., Сельцовский П.П., и др. Исследование нового кожного теста «Диаскинтест» (DIASKINTEST®) для диагностики туберкулезной инфекции //Тезисы докладов VII Московской ассамблеи «Здоровье столицы» 18-19 декабря 2008 г. -М.:ГЕОС, 2008. - с. 148
31. Киселев В.И., Барановский П.М., Рудых И.В., Шустер А.М., Мартьянов В.А., Медников Б.Л., Демин A.B., Александров А.Н., Леви Д.Т., Слогоцкая Л.В., Овсяикина Е.С., Медуницин Н.В., Литвинов В.И., Перельман М.И., Пальцев М.А. Клинические исследования нового кожного теста «Диаскинтест» для диагностики туберкулеза // Проблемы туберкулеза и болезней легких. - М. - 2009. - №2. - с.11-17.
32. Литвинов В.И., Шустер А.М., Медников Б.Л., Слогоцкая Л.В., и др. Кожная проба с препаратом «Диаскинтест» (аллерген туберкулезный рекомбинантный 0,2 мкг в 0,1 мл раствор для внутрикожного введения) для идентификации туберкулезной инфекции. Пособие для врачей. - М., 2009. - 32 с.
33. Литвинов В.И., Шустер A.M., Слогоцкая Л.В. и др. Эффективность применения нового диагностического препарата «Диаскинтест» у детей для выявления и диагностики туберкулеза // Проблемы туберкулеза и болезней легких. - 2009. - №4. - с.19-23.
34. Литвинов В.И., Слогоцкая Л.В., Сельцовский П.П., и др. Новый кожный тест для диагностики туберкулезной инфекции // Российский медицинский журнал. - 2009. - №1. - с.52-56
35. Слогоцкая Л.В. Диаскинтест - новый кожный тест для выявления туберкулезной инфекции// Тезисы докладов VIII Московской Ассамблеи «Здоровье столицы» 17-18 декабря 2009 г. - М..ТЕОС, 2009. - с. 189
36. Овсянкина Е.С., Слогоцкая Л.В., Губкина М.Ф. Рекомендации по применению кожной пробы с препаратом аллерген туберкулезный рекомбинантный 0,2 мгк в 0,1 мл раствор для внутрикожного введения (ДИАСКИНТЕСТ®) для идентификации туберкулезной инфекции у детей и диспансерного наблюдения в противотуберкулезных учреждениях // Методические рекомендации,- М.: МНПЦБТ, 2010. - 29 с.
37. Овсянкина Е.С., Слогоцкая Л.В., Стахеева Л.Б., и др. Результаты примения диаскинтеста для формирования групп риска и выявления туберкулеза у детей г.Москвы // Мат. Всерос. научно-практ. конф. с межд. участием «Совершенствование медицинской помощи больным туберкулезом»,- СПб., 2010. - с. 58-59
38. Овсянкина Е.С., Слогоцкая Л.В., Губкина М.Ф. Клинические примеры применения кожной пробы с препаратом «ДИАСКИНТЕСТ®». - В кн.: Кожная проба с препаратом «Диаскинтест» - новые возможности идентификации туберкулезной инфекции/ под ред. Академика РАН и РАМН М.А.Пальцева. - М.: ОАО Издательство «Медицина», 2010. - с.126-130
39. Ловачева О.В., Ерохин В.В., Слогоцкая Л.В., Розенберг O.A. Эффективность нативного препарата сурфактант-БЛ на фоне химиотерапии деструктивного туберкулеза легких. - В кн.: Научные труды (к 85-летию со дня рождения заслуженного деятеля науки, профессора М.М.Авербаха). М.:МНПЦБТ, 2010. - с. 292-296.
40. Борисов С.Е., Лукина Г.В., Гунтупова Л.Д., Слогоцкая Л.В., и др. Опыт фтизиатрического сопровождения ревматологических больных, получающих блокаторы фактора некроза опухоли-a// Мат. Всерос. научно-практ. конф. с межд. участием «Совершенствование медицинской помощи больным туберкулезом»,- СПб, 2010.- с. 315-316.
41. Литвинов В.И., Сельцовский П.П., Слогоцкая Л.В., и др. Клинические исследования по применению кожной пробы с препаратом «ДИАСКИНТЕСТ®». - В кн.: Кожная проба с препаратом «Диаскинтест» -новые возможности идентификации туберкулезной инфекции/ под ред. Академика РАН и РАМН М.А.Пальцева. - М.: ОАО Издательство «Медицина», 2010. - с.89-97
42. Литвинов В.И., Слогоцкая Л.В., Сельцовский П.П., и др. Эффективность применения кожной пробы «ДИАСКИНТЕСТ®» для диагностики туберкулеза, высокой степени риска его развития,
дифференциальной диагностики с поствакцинальной аллергией и другими заболеваниями. - В кн.: Кожная проба с препаратом «Диаскинтест» - новые возможности идентификации туберкулезной инфекции/ под ред. Академика РАН и РАМН М.А.Пальцева. - М.: ОАО Издательство «Медицина», 2010. - с. 97-100
43. Литвинов В.И., Шустер A.M., Сельцовский П.П., Слогоцкая Л.В., и др. Возбудители микобактериальных инфекций: видовая идентификация, лабораторная диагностика вызываемой ими патологии // Сборник материалов XXIII (86-й) сессии Общего собрания РАМН «Проблемы молекулярной эпидемиологии инфекционных болезней». - М., 2010. - с.164-184
44. Слогоцкая Л.В., Литвинов В.И., Филиппов A.B., и др. Чувствительность нового кожного теста (ДИАСКИНТЕСТА) при туберкулезной инфекции у детей и подростков //Туберкулез и болезни лёгких. - 20Ю.-№1. - с. 10-15
45. Литвинов В.И., Слогоцкая Л.В., Сельцовский П.П., и др. Диаскинтест в диагностике туберкулезной инфекции. - В кн. Научные труды к 85-летию со дня рождения заслуженного деятеля науки, профессора М.М.Авербаха. -М..-МНПЦБТ, 2010. - с.26-39.
46. Литвинов В.И., Слогоцкая Л.В., Сельцовский П.П., и др. Диаскинтест® в диагностике туберкулезной инфекции у детей и подростков //Материалы VI съезда фтизиатров Республики Казахстан с международным участием .- Алматы, 2010. - с. 261-264
47. Слогоцкая Л.В., Филиппов A.B., Кочетков Я.А. Применение кожной пробы с препаратом «ДИАСКИНТЕСТ®» для диагностики туберкулезной инфекции у больных ВИЧ-инфекцией. - В кн.: Кожная проба с препаратом «Диаскинтест» - новые возможности идентификации туберкулезной инфекции/ под ред. Академика РАН и РАМН М.А. Пальцева. - М.: ОАО Издательство «Медицина», 2010. - с.130-136
48. Литвинов В.И., Слогоцкая Л.В., Сельцовский П.П., Кочетков Я.А., Синчихина О.Ю. Динамика реакций диаскинтеста в процессе лечения и наблюдения в диспансерных группах риска у детей // Мат. Всерос. научно-практ. конф. с межд. участием «Совершенствование медицинской помощи больным туберкулезом»,- СПб, 2010. - с. 153-155
49. Литвинов В.И., Сельцовский П.П., Слогоцкая Л.В., и др. Клинические исследования по применению кожной пробы с препаратом «ДИАСКИНТЕСТ®». - В кн.: Кожная проба с препаратом «Диаскинтест» -новые возможности идентификации туберкулезной инфекции/ под ред. Академика РАН и РАМН М.А.Пальцева. Второе издание, переработанное и дополненное.- М.: Издательство «Шико», 2011. - с. 125-134
50. Слогоцкая Л.В., Кочетков Я.А., Овсянкина Е.С. и др. Возможности применения «ДИАСКИНТЕСТа» при туберкулёзе у детей и взрослых®». - В кн.: Кожная проба с препаратом «Диаскинтест» - новые возможности идентификации туберкулезной инфекции/ под ред. Академика РАН и РАМН М.А.Пальцева. Второе издание, переработанное и дополненное.- М.: Издательство «Шико», 2011. - с.152-181
51. Слогоцкая JI.B., Филиппов A.B., Кочетков Я.А. Применение кожной пробы с препаратом «ДИАСКИНТЕСТ» для диагностики туберкулёза у больных ВИЧ-инфекцией/ под ред. Академика РАН и РАМН М.А.Пальцева. Второе издание, переработанное и дополненное.- М.: Издательство «Шико», 2011. - с.214-220
52. Овсянкина Е.С., Слогоцкая Л.В., Губкина М.Ф. Клинические примеры применения кожной пробы с препаратом «ДИАСКИНТЕСТ» / под ред. Академика РАН и РАМН М.А.Пальцева. Второе издание, переработанное и дополненное.- М.: Издательство «Шико», 2011. - с.233-236.
53. Борисов С.Е., Иванушкина Т.Н., Литвинова Н.В., Иванова Д.А., Гармаш Ю.Ю., Слогоцкая Л.В., и др. Пути повышения эффективности этиотропного лечения больных туберкулёзом. - В кн.: Научные труды к 70-летию В.И. Литвинова. - М..МНПЦБТ, 2011. - с. 70-97.
54. Слогоцкая Л.В, Овсянкина Е.С., Кочетков Я.А Стахеева Л.Б. Инфицированность туберкулёзом детей и подростков - взгляд через столетие // Туберкулез и болезни лёгких. - 2011. - №3. - с. 21-28.
55. Литвинов В.И., Слогоцкая Л.В. ДИАСКИНТЕСТ - новый иммунологический инструмент для диагностики туберкулёза // Физиология и патология иммунной системы. Иммунофармакогеномика. - 2011.- т. 15,- №2,-с.11-21
56. Слогоцкая Л.В., Филиппов A.B., Кочетков Я.А., Сельцовский П.П., Литвинов В.И. Чувствительность и специфичность диаскинтеста у больных туберкулезом и нетуберкулезными заболеваниями лёгких И Российский медицинский журнал. - 2011. - №4. - с. 15-19.
57. Слогоцкая Л.В., Филиппов A.B., Кочетков Я.А., Сельцовский П.П., Литвинов В.И. Чувствительность и специфичность Диаскинтеста при внелегочной локализации туберкулеза у больных с ВИЧ-инфекцией и без неё // Иммунология. - 2011. - том 32. - №3. - с.116-119.
58. Слогоцкая Л.В., Литвинов В.И., Кочетков Я.А., Синчихина О.Ю. Возможности нового кожного теста «Диаскинтест» в диагностике туберкулезной инфекции у детей Н Вопросы диагностики в педиатрии. -2011. - с.20-24
59. Слогоцкая Л.В., Кочетков Я.А., Сенчихина О.Ю., Сельцовский П.П., Литвинов В.И. Динамика кожной пробы (Диаскинтест) у детей при оценке активности туберкулезной инфекции // Туберкулез и болезни лёгких. - 2011. - №2.- с. 59-63.
60. Слогоцкая Л.В., Кочетков Я.А., Сенчихина О.Ю. Эффективность нового кожного теста (Диаскинтест) при выявлении инфицированных и заболевших подростков, среди контактировавших с больными туберкулезом // Вопросы современной педиатрии. - 2011. - т.10. - №3. - с. 813.
61. Слогоцкая Л.В., Кочетков Я.А., Филиппов A.B., и др. Возможности применения ДИАСКИНТЕСТа® при туберкулёзе у детей и взрослых// В кн.: Научные труды к 70-летию В.И. Литвинова. - М.:МНПЦБТ, 2011. - с.40-51
62. Слогоцкая JI.B., Литвинов В.И., Кочетков Я.А., Филиппов A.B., Сельцовский П.П. Диагностические возможности Диаскинтеста у детей и взрослых при туберкулезе и нетуберкулезных заболеваниях // Материалы III Ежегодного Всероссийского Конгресса по инфекционным болезням. - 2011. -с.343
63. Слогоцкая Л.В., Кочетков Я.А., Сенчихина О.Ю. Использование Диаскинтеста при обследовании социальных контактов с больными туберкулезом среди подростков // Туберкулез и болезни легких. - 2011. -№5.-С.163.
64. Слогоцкая Л.В., Литвинов В.И., Сельцовский П.П., и др. Применение кожной пробы с аллергеном туберкулезным рекомби-нантным (ДИАСКИНТЕСТ®) для диагностики туберкулезной инфекции у больных с ВИЧ-инфекцией // Пульмонология. - 2011. - №1. - с. 60-64.
65. Слогоцкая Л.В., Кочетков Я.В., Филиппов A.B. Диаскинтест® - новый метод выявления туберкулеза // Туберкулез и болезни лёгких.- 2011. -№6. - с. 17-22.
66. Борисов С.Е., Лукина Г.В., Слогоцкая Л.В., и др. Скрининг и мониторинг туберкулезной инфекции у ревматологических больных, получающих генно-инженерные биологические препараты // Туберкулез и болезни лёгких. - 2011. - №6. - с. 42-50.
67. Овсянкина Е.С., Стахеева Л.Б., Слогоцкая Л.В. и др. Туберкулёз у детей и подростков - мигрантов в г. Москве // Туберкулез и болезни лёгких. - 2011. - №9. - с.38-43.
68. Слогоцкая Л.В., Кочетков Я.А., Иванова Д.А., и др. Сравнительные результаты кожного теста с препаратом, содержащим рекомбинантный белок CFP-10-ESAT-6, и лабораторного теста QUANTIFERON // Материалы Всероссийской научно-практической конференции «Совершенствование медицинской помощи больным туберкулезом». - СПб., 2011. - с. 379-381.
69. Слогоцкая Л.В., Кочетков Я.А., Филиппов A.B., Сельцовский П.П., Литвинов В.И. Чувствительность и специфичность Диаскинтеста у больных туберкулезом и нетуберкулезными заболеваниями легких // Сборник тезисов 5-ой Международной научно-практической конференции по туберкулезу и заболеваниям легких,- Баку, 2011. - с. 11-12.
70. Слогоцкая Л.В., Литвинов В.И., Сельцовский П.П., и др. Динамика реакций Диаскинтеста в процессе лечения и наблюдения в диспансерных группах у детей// Сборник тезисов 5-ой Международной научно-практической конференции по туберкулезу и заболеваниям легких,- Баку, 2011. - с.50-51.
71. Слогоцкая Л.В., Филиппов A.B., Кочетков Я.А., и др. Эффективность диагностики внелегочных поражений при помощи Диаскинтеста// Сборник тезисов 5-ой Международной научно-практической конференции по туберкулезу и заболеваниям легких.- Баку, 2011. - с. 69-70.
72. Овсянкина Е.С., Слогоцкая Л.В., Стахеева Л.Б., и др.Результаты применения Диаскинтеста для формирования групп риска и выявления туберкулеза у детей Москвы// Сборник тезисов 5-ой Международной научно-
практической конференции по туберкулезу и заболеваниям легких.- Баку, 2011. -с.52
73. Слогоцкая JI. В., Литвинов В. И., Кочетков Я. А., Синчихина О. Ю. Возможности нового кожного теста "Диаскинтест" в диагностике туберкулезной инфекции у детей II Уральский медицинский журнал. -2011. - Т. 3.- N 2. - С. 20-24.
74. Слогоцкая Л.В., Кочетков Я. А., Филиппов А. В., Сельцовский П. П., Литвинов В. И. Чувствительность и специфичность Диаскинтеста у больных туберкулезом и нетуберкулезными заболеваниями легких И Тезисы докладов VIII Московской Ассамблеи «Здоровье столицы» 15-16 декабря 2011 г. - М., 2011.-с. 170
75. Овсянкина Е.С., Стахеева Л. Б., Слогоцкая Л.В., Сенчихина О. Ю., Кочетков Я. А., Залетина Е.Ю. Туберкулез детей и подростков в Москве и внедрение новых технологий диагностики этого заболевания II Тезисы докладов VIII Московской Ассамблеи «Здоровье столицы» 15-16 декабря 2011 г.-М., 2011.-с. 168
76. Lovacheva О., Tchemousova L., Goryunov V., Seltsovsky P., Slogotskaya L., Irtuganova O. Mycobacterium tuberculosis (МВТ) content in the air of in-patient facility for the management of pulmonary tuberculosis (ТВ) // European Respiratory Journal.- Vol.l6.-Suppl. 33.- Abstracts of the ll<h ERS Annual Congress.- Berlin, Germany, September 22-26.- 2001.- p.2255
77. Seltsovsky P., Litvinov V., Slogotskaya L. Role of a system of social-medical protection measures in a decrease in an epidemic wave of tuberculosis in Moscow in the twentieth century // Abstracts of the 14lh ERS Annual Congress. -Glasgow, Scotland.- 2004.- September 4-8,- p.1227.
78. Litvinov V., Slogotskaya L., Shuster A., et al. New skin testing with DIASKINTEST® (recombinant protein CFP10-ESAT6) in ТВ diagnosis// European Respiratory Journal.- Vol. 34.- Suppl. 56,- Abstracts of the 19 ,h ERS Annual Congress.- Vienna, Austria.- September 12-16,- 2009.- p.2155.
79. Litvinov V., Slogotskaya L., Shuster A., et al. Effectiveness of new skin testing with DIASKINTEST® (recombinant protein CFP10-ESAT6) in children for ТВ infection diagnosis//5th Congress of the International Union Against Tuberculosis and Lung Disease. Abstract Book. - May 27-30 2009.- Dubrovnik, Groatia -p.130.
80. Slogotskaya L, Litvinov V, Seltsovsky P, et al. New skin test DIASKINTEST® (recombinant protein CFP10-ESAT6) for ТВ infection diagnosis in children //Paediatric Respiratory Reviews. Abstracts of the 9th International Congress on Pediatric Pulmonology (Vienna, Austria, 19-21 June, 2010) - 2010.-Vol. 11.- Suppl. 1.- Page S106 (DOI:10.1016/S1526-0542(10)70158-5)
81. Slogotskaya L., Litvinov V., Seltsovsky P., et al. DIASKINTEST® (recombinant protein CFP10-ESAT6) is a New Skin Test in children for ТВ infection Diagnosis //Joint NIAID-ISTC Workshop: Research Opportunities in ТВ Drug Discovery and Diagnostics.- Moscow, Russia.- May 24-25, 2010,- p.51
82. Slogotskaya L., Litvinov V., Seltsovsky P. et al. New skin test DIASKINTEST® (recombinant protein CFP10-ESAT6) in children for ТВ infection
diagnosis.//European Academy of Allergy and Clinical Immunology 29th EAACI Congress, London, 5-9 June 2010. //DOI: 10.3252\pso.eu.29EAACI.2010
83. Slogotskaya L., Litvinov V., Seltsovsky P., et al. New skin test DIASKINTEST® (recombinant protein CFP10-ESAT6) in children for ТВ infection diagnosis.//Allergy. European Journal of Allergy and Clinical Immunology. - Vol. 65. suppl.- S. 92 (DOI: 10.111 l/j,1398-9995.2010.02396.x)
84. Slogotskaya L., Litvinov V., Seltsovsky P. et al. Sensitivity and specificity of new skin test - Diaskintest (recombinant protein CFP10-ESAT6) in patients with tuberculosis and individuals with non-tuberculous pulmonary diseases. //European Academy of Allergy and Clinical Immunology (EAACI) 30th Annual Congress, Istanbul, Turkey, June 11 -15, 2011//DOI: 10.3252/pso.eu.30eaaci.2011
85. Slogotskaya L., Ovsyankina E., Litvinov V., et al. Effectiveness of tuberculosis detection among adolescent student contacts with a new, specific skin test diaskintest which represents recombinant protein CFP10-ESAT6.//European Academy of Allergy and Clinical Immunology (EAACI) 30th Annual Congress, Istanbul, Turkey, June 11-15,2011// DOI: 10.3252/pso.eu.30eaaci.2011
86. Slogotskaya L., Litvinov V., Seltsovsky P. et al. Dynamics of Diaskintest (recombinant protein CFP10-ESAT6) reactions in children at repeated tests//Paediatric Respiratory Reviews. Abstracts of the 10th International Congress on Pediatric Pulmonology (Versailles, June 25 - 27, 2011).- 2011.- Vol. 12,- Suppl.1. - P. S73-74
Список сокращений
ВГЛУ - внугригрудные лимфатические узлы
ДИ - доверительный интервал
ДСТ - «ДИАСКИНТЕСТ®»
ИНФ-у - гамма-интерферон
КТ - компьютерная томография
ЛТИ - латентная туберкулёзная инфекция
МБТ - Mycobacterium tuberculosis
МНПЦБТ - Московский городской научно-практический центр борьбы с
туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы
ПТД - противотуберкулёзный диспансер
ПЧЗТ - повышенная чувствительность замедленного типа
ТОД - туберкулёз органов дыхания
ХОБЛ - хронические обструктивные болезни легких
ЦНС - центральная нервная система
BCG - Bacillus Calmette Guerin (бацилла Кальметга — Герена)
CFP10 - culture filtered protein (белок культурального фильтрата)
ESAT6 - early secreted antigenic target (ранний секретируемый белок М.
tuberculosis)
IGRA - Interferon -Gamma Release Assays (иммуноферментный метод определения антиген-стимулированной индукции гамма-интерферона) PPD - Purified protein derivative (препарат очищенного туберкулина) PPD-L - препарат очищенного туберкулина, полученный М.А.Линниковой WHO - Всемирная Организация Здравоохранения
Отпечатано в ООО "КопиМастерЦентр" Тираж ЮОэкз. 44 плосы
г.Москва, ул.Воронцовская, 35а, тел. (495) 956-62-63 www.copycenter.ru
Оглавление диссертации Слогоцкая, Людмила Владимировна :: 2012 :: Москва
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.
ВВЕДЕНИЕ.
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
1.1. Эпидемиологическая ситуация по туберкулезу в мире.
1.2. Туберкулинодиагностика.
1.2.1. Туберкулиновая кожная проба, туберкулиновые про- 14 дукты и га стандартизация.
1.2.2. Повышенная чувствительность замедленного типа 16 (ПЧЗТ).
1.2.3. Чувствительность туберкулиновой кожной пробы - 21 частота положительных реакций у лиц с активным заболеванием и латентной туберкулезной инфекцией
1.2.3.1. Чувствительность туберкулиновой пробы (час- 22 moma положительных реакций) у больных туберкулезом.
1.2.3.2. Чувствительность туберкулиновой пробы (час- 24 moma положительных реакций) при латентной туберкулезной инфекции.
1.2.4. Специфичность туберкулиновых тестов (частота 26 отрицательных реакций) у неинфщированных лиц
1.2.4.1. Сравнительные кожные пробы с различными сен- 28 ситинами.
1.2.4.2. Ложноотрицательные реакции.
1.2.5. Факторы, влияющие на результаты туберкулино- 29 вой кожной пробы.
1.2.6. Повторные тесты. «Бустер-эффект».
1.2.7. Связь протективного иммунитета против тубер- 35 кулеза с реакцией на туберкулиновую кожную пробу
1.2.7.1. Связь риска заболевания туберкулезом среди 35 невакцинированных лиц с результатами туберкулиновых проб.
1.2.7.2. Протективный иммунитет против реинфекции 35 микобактериями туберкулеза.
1.2.8. Чувствительность и специфичность туберкулино- 36 вой пробы у больных ВИЧ-инфекцией.
1.3. Геном М. tuberculosis, специфичные антигены для диагностики туберкулёзной инфекции.
1.3.1. Применение лабораторных тестов анализа 39 продукции IFN-y, использующих специфичные антигены М. tuberculosis.
1.3.2. Влияние иммуносупрессии на результаты тестов 47 IGRA.
1.4. Применение кожных тестов на основе новых антигенов для выявления туберкулезной инфекции.
ГЛАВА 2. ХАРАКТЕРИСТИКА МЕТОДОВ ИССЛЕДОВАНИЯ И 52 КЛИНИЧЕСКИХ НАБЛЮДЕНИЙ.
2.1. Характеристика препарата ДИАСКИНТЕСТ (ДСТ).
2.2. Туберкулин (РРО-Ь).
2.3. Методы обследования.
2.4. Состав и численность контингентов.
ГЛАВА 3. ИЗУЧЕНИЕ БЕЗОПАСНОСТИ КОЖНОЙ ПРОБЫ С 65 ПРЕПАРАТОМ ДИАСКИНТЕСТ® (ДСТ) В РАЗЛИЧНЫХ ДОЗАХ
В КЛИНИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЯХ.
3.1. Результаты испытания безопасности Диаскинтеста у здоро- 65 вых добровольцев.
3.2. Изучение безопасности и чувствительности пробы с ДСТ у 70 взрослых, больных туберкулезом легких в сравнении с пробой Манту с 2 ТЕ РРБ-Ъ.
3.3. Изучение безопасности пробы с ДСТ у взрослых, больных 77 туберкулёзом органов дыхания без рентгенологической динамики с сохранением бактериовыделения.
3.4. Изучение безопасности и чувствительности пробы с ДСТ у 80 детей и подростков а) с локальными формами туберкулёза, б) впервые инфицированных (вираж туберкулиновых реакций, в) получивших превентивную химиотерапию не менее года назад по поводу инфицирования.
ГЛАВА 4. ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ И СПЕЦИФИЧНОСТЬ ПРОБЫ
С ДСТ У ВЗРОСЛЫХ, БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ И НЕТУБЕРКУЛЕЗНЫМИ ЗАБОЛЕВАНИЯМИ ЛЁГКИХ.
4.1. Больные активным туберкулёзом.
4.2. Лица с сомнительной активностью туберкулезного процесса
4.3. Больные с неспецифическими заболеваниями легких.
ГЛАВА 5. ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ И СПЕЦИФИЧНОСТЬ ПРОБЫ 104 С ДСТ ПРИ ТУБЕРКУЛЁЗЕ И ЛАТЕНТНОЙ ТУБЕРКУЛЁЗНОЙ ИНФЕКЦИИ У ДЕТЕЙ И ПОДРОСТКОВ, КАНАЛЫ ВЫЯВЛЕНИЯ БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЁЗОМ.
5.1. Дети и подростки, больные туберкулёзом органов дыхания.
5.2. Дети и подростки с виражом туберкулиновых реакций из 110 семейного контакта с бактериовыделителями.
5.3. Дети с виражом туберкулиновых реакций и неустановлен- 111 ным контактом.
5.4. Дети и подростки с гиперергической реакцией на пробу 111 Манту.
5.5. Дети и подростки с усиливающейся туберкулиновой 112 чувствительностью
5.6. Дети и подростки, длительно имевшие положительные 112 туберкулиновые реакции.
5.7. Дети и подростки из семейного контакта с больными 113 туберкулёзом без бактериовыделения.
5.8. Подростки, наблюдаемые по контакту в учебном заведении 113 с больными туберкулёзом-бактериовыделителями.
5.9. Дети и подростки из контакта по учебному заведению с 120 лицами больными туберкулёзом без бактериовыделения.
5.10. Дети и подростки с нетуберкулёзными заболеваниями.
5.11. Дети и подростки, вакцинированные (ревакцинированные) 121 BCG.
5.12. Дети и подростки, у которых после пробы с ДСТ диагности- 121 рованы локальные формы туберкулёза.
5.13. Результаты повторной постановки пробы с ДСТ у детей и 133 подростков
ГЛАВА 6. ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ ПРОБЫ С ДСТ У БОЛЬНЫХ
ТУБЕРКУЛЕЗОМ И ВИЧ-ИНФЕКЦИЕЙ.
ГЛАВА 7. ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ И СПЕЦИФИЧНОСТЬ ПРОБЫ 153 С ДСТ ПРИ ВНЕ ЛЕГОЧНОЙ ЛОКАЛИЗАЦИИ ТУБЕРКУЛЕЗА
7.1. Больные с туберкулезными поражениями без ВИЧ-инфек- 153 ции.
7.2. Больные с туберкулезными поражениями и ВИЧ-инфекцией
7.3. Больные с нетуберкулёзными заболеваниями внелегочных 166 локализаций.
Введение диссертации по теме "Фтизиатрия", Слогоцкая, Людмила Владимировна, автореферат
Актуальность исследования
Туберкулез остается наиболее распространенной инфекцией, ежегодно поражающей свыше 9 миллионов человек и вызывающей около 1,8 миллионов смертей [WHO, 2009]. В течение века во всем мире для диагностики туберкулеза и выявления скрытой туберкулезной инфекции используется туберкулин [von Pirquet С., 1907; Mantoux M., 1912]. Основным недостатком туберкулиновой пробы является большое число ложноположительных реакций, в связи с перекрестными реакциями антигенов PPD, содержащихся во многих видах микобактерий и в штаммах бациллы Кальметта-Герена (BCG) [Маркузон В.Д. 1958; Похитонова М.П., 1965; Farhat M. et al., 2006]. Ограниченная специфичность туберкулиновой кожной пробы особенно актуальна при широком использовании вакцинации BCG и при высоком содержании микобактерий в окружающей среде, т.е. для большинства стран с повышенной заболеваемостью туберкулезом [Menzies R., Vissandjee В., 1992; Wang L. et al., 2002].
Открытие антигенов, специфичных для Mycobacterium tuberculosis и отсутствующих в Mycobacterium bovis BCG и большинстве микобактерий окружающей среды, привело к разработке тестов in vitro, основанных на измерении продукции гамма-интерферона (ИНФу) (Interferon-Gamma Release Assays или IGRA), в ответ на стимуляцию этими антигенами [Andersen P. et al., 2000; Mazurek G. et al., 2007; Diel R. et al, 2009]. Гены, кодирующие эти белки, находятся в регионе RDI {region of difference) генома, отсутствующем в геноме Mycobacterium bovis BCG и большинства нетуберкулезных микобактерий [Cole S. et al., 1998; Behr M. et al., 1999]. Эти тесты показали высокую чувствительность и почти абсолютную специфичность [Pai M. et al., 2004; Menzies D. et al., 2007; Steingart К. et al., 2009; Diel R. et al., 2009].
В течение последних лет исследования, связанные с продукцией ИНФу (IGRA), стали использоваться в различных клинико-эпидемиологических исследованиях для выявления заболевания туберкулезом или скрытой (так называемой латентной) туберкулезной инфекции, а также для замены или дополнения к туберкулиновой кожной пробе [Baker С. et al. 2009; van Zyl-Smit R. et al., 2009; Pai M. et al., 2010]. Распространению применения IGRA во многих странах препятствует недостаточное финансирование, необходимость лабораторного оборудования и квалифицированного персонала [Ewer К. et al., 2006; Harada N., 2006; Dheda К. et al., 2009; Doherty T. et al., 2009; Vinton P. et al., 2009].
Для проведения кожной пробы не требуется специального лабораторного оборудования, необходим только холодильник для хранения реактивов. Сведения об использовании специфических антигенов in vivo ограничены. Внутрикожные инъекции ESAT6 позволили достоверно выявить скот, инфицированный Mycobacterium bovis. С помощью рекомби-нантного ESAT6 были установлены выраженные кожные реакции повышенной чувствительности замедленного типа у морских свинок, инфицированных М. tuberculosis, и отсутствие реакции у инфицированных Mycobacterium avium или вакцинированных BCG [Elhay М. et al., 1998; Weldingh К., Andersen P., 2008]. Недавно был получен рекомбинантный димер ESAT6, синтезированный в Lactococcus (rdESAT-6) [Wu X. et al., 2008]. В доклинических исследованиях на морских свинках, мышах, крысах и собаках внутрикожное или внутривенное введение одной или нескольких доз rdESAT6 животным с сохранным иммунитетом не привело к побочным реакциям.
Впервые в мире в России был получен препарат ДИАСКИНТЕСТ®(ДСТ), представляющий собой рекомбинантный белок CFP10-ESAT6, продуцируемый Escherichia coli BL21(DE3)/pCFP-ESAT [Киселев В.И. и соавт., 2008]. До того времени никто не использовал в кожных пробах 2 наиболее специфичных белка ESAT-6 и CFP-10, которые показали себя как наиболее приемлемые диагностические препараты в исследованиях IGRA.
Цель исследования
Определить эффективность кожной пробы с аллергеном туберкулёзным рекомбинантным, представляющим собой белок СБРЮ-ЕБАТб (ДИАСКИНТЕСТ®), в диагностике туберкулезной инфекции и разработать показания к его применению
Задачи исследования
1. Определить безопасность применения препарата ДИАСКИНТЕСТ®(ДСТ) в кожной пробе у здоровых добровольцев, больных туберкулезом и инфицированных микобактериями туберкулёза (взрослых и детей).
2. Определить чувствительность пробы с ДСТ у больных туберкулезом органов дыхания и вне легочных локализаций.
3. Определить чувствительность пробы с ДСТ у больных с сочетанием туберкулеза и ВИЧ-инфекции (взрослых).
4. Определить специфичность пробы с ДСТ у больных нетуберкулезными заболеваниями органов дыхания и внелегочной локализации.
5. Определить специфичность пробы с ДСТ у здоровых детей, вакцинированных ВСв.
6. Определить частоту положительной реакции в разных группах лиц с латентной туберкулезной инфекцией (ЛТИ), оценить использование пробы с ДСТ в качестве маркёра активности и сравнить с пробой Манту.
7. Определить безопасность повторных проб с ДСТ и оценить динамику кожных реакций в процессе лечения больных туберкулезом органов дыхания и лиц с латентной туберкулёзной инфекцией.
Научная новизна исследования
Впервые в мировой практике доказана высокая эффективность кожной пробы с рекомбинантным белком СРР10-Е8АТ6 (препарат ДИАСКИНТЕСТ®) для выявления и диагностики туберкулёзной инфекции, обладающая высокой (почти 100,0%) специфичностью и высокой чувствительностью. Установлена её безопасность у здоровых добровольцев, больных туберкулёзом и лиц с латентной туберкулёзной инфекцией. Установлено, что повторные пробы с ДСТ не вызывают сенсибилизации на препарат, что позволяет использовать их в скрининговых ежегодных обследованиях для выявления туберкулеза.
Установлена высокая специфичность пробы с ДСТ: у детей, вакцинированных БЦЖ - 100,0%, при нетуберкулёзных заболеваниях: лёгких - 94,6%, внелегочных локализациях - 98,5%; при неактивных посттуберкулёзных изменениях - 100,0%.
Определена чувствительность (частота положительных реакций) пробы с ДСТ у больных туберкулёзом: у детей и подростков, больных ТОД - 97,3%, у взрослых при туберкулёзе внелёгочных локализаций -89,7%, у взрослых с туберкулезом органов дыхания - 84,2%. Установлено, что частота положительных реакций достоверно выше у нелеченных больных туберкулезом, по сравнению с лицами, закончившими химиотерапию.
Установлено, что частота положительных реакций на пробу с ДСТ в группах риска лиц с латентной туберкулёзной инфекцией соответствует степени риска развития заболевания: самая высокая частота (94,9%) у детей и подростков с виражом реакций на пробу Манту из семейного контакта с больным туберкулёзом - бактериовыделителем
Установлено, что положительная реакция на пробу с ДСТ является маркером активности туберкулёзной инфекции как латентной, так и имеющей рентгенологические признаки болезни.
Показано, что динамика выраженности реакций на пробу с ДСТ позволяет судить о течении туберкулёзной инфекции как в сторону её про-грессирования, так и в сторону регрессии при положительных результатах лечения.
Установлена прямая зависимость между частотой положительных реакций на пробу с ДСТ и количеством СЭ4+ Т-лимфоцитов у больных с сочетанием туберкулёза и ВИЧ-инфекции.
Практическая значимость
Доказана в широкой клинической практике возможность использования препарата ДИАСКИНТЕСТ в кожной пробе для диагностики активной туберкулезной инфекции.
Практическое здравоохранение получило принципиально новый, по сравнению с туберкулинодиагностикой, инструмент выявления активной туберкулёзной инфекции. Проба с ДСТ позволяет выявлять туберкулёз на ранних стадиях, дифференцировать поствакцинальную аллергию от туберкулёзной инфекции с высоким риском развития заболевания. Проба с ДСТ является маркером активной туберкулёзной инфекции и положительная реакция служит показанием для проведения превентивной химиотерапии. С её помощью появилась возможность проследить динамику туберкулёзного процесса с момента развития до потери активности. Проба позволяет провести дифференциальную диагностику туберкулёза и нетуберкулёзных заболеваний, поскольку обладает почти 100,0% специфичностью.
Положения, выносимые на защиту:
1. Кожная проба с препаратом ДИАСКИНТЕСТ® (ДСТ) (аллерген туберкулёзный рекомбинантный, содержащий белок CFP10-ESAT6) представляет собой принципиально новый, по сравнению с туберкулиновыми пробами, тест, обладающий высокой (почти 100,0%) специфичностью, поскольку реагирует на белки, специфичные для Mycobacterium tuberculosis при метаболической активности последних.
2. Кожная проба с ДСТ может быть использована для скрининго-вых ежегодных обследований на туберкулёз, поскольку она безопасна, не вызывает необычных общих, неспецифических местных реакций, и повторные пробы не вызывают сенсибилизации на препарат. Она обладает высокой чувствительностью - у детей с впервые выявленным туберкулёзом положительные реакции отмечались в 97,3% случаев.
3. Кожная проба с ДСТ может быть использована для дифференциальной диагностики туберкулёза с неспецифическими заболеваниями, а также латентной туберкулёзной инфекции с поствакцинальной аллергией, поскольку обладает почти 100,0% специфичностью: частота отрицательных реакций у детей после вакцинации БЦЖ составила 100,0%; при нетуберкулёзных заболеваниях лёгких у взрослых - 94,6%, у детей - 100,0%; при внелегочных нетуберкулёзных заболеваниях - 98,5%; у лиц, излеченных от внелегочных форм туберкулёза - 100,0%.
4. Кожная проба с ДСТ, в отличие от пробы Манту, является маркером активности туберкулёзной инфекции, и положительная реакция свидетельствует о наличии либо туберкулёза, либо латентной туберкулёзной инфекции (ЛТИ) с высоким риском развития заболевания, последнее является показанием для проведения превентивной химиотерапии.
5. Динамика реакций на пробу с ДСТ позволяет судить о развитии туберкулёзной инфекции. Уменьшение интенсивности реакций, вплоть до отрицательных значений, наблюдается при эффективной химиотерапии как активного туберкулёза, так и латентной туберкулёзной инфекции, появление положительных реакций свидетельствует о начавшемся развитии заболевания.
6. Кожная проба с ДСТ может быть использована для выявления и диагностики туберкулёза у больных ВИЧ-инфекцией - положительная реакция встречается достоверно чаще у больных с числом СБ4+ Т-лимфоцитов более 200 в 1 мкл, чем у больных с наличием СБ4+ менее 200 клеток: 55,3% и 22,0% соответственно.
Внедрение результатов исследования в практику
Материалы диссертации отражены в следующих документах:
1. Инструкция по применению ДИАСКИНТЕСТ® (Аллерген туберкулезный рекомбинантный в стандартном разведении) раствор для внутрикожного введения
2. Пособие для врачей «Кожная проба с препаратом
ДИАСКИНТЕСТ® (аллерген туберкулезный рекомбинантный 0,2 мкг в ОД мл раствор для внутрикожного введения) для идентификации туберкулезной инфекции» (составители Медников Б.Л., Слогоцкая Л.В.)// М.- 2009.-32 С.
3. Методические рекомендации Департамента здравоохранения города Москвы «Рекомендации по применению кожной пробы с препаратом аллерген туберкулезный рекомбинантный 0,2 мгк в 0,1 мл раствор для внутрикожного введения (ДИАСКИНТЕСТ®) для идентификации туберкулезной инфекции у детей из диспансерного наблюдения в противотуберкулезных учреждениях» (составители Овсянкина Е.С., Слогоцкая Л.В., Губкина М.Ф.)//М.:МНПЦБТ.-2010.-29 С.
4. Приказ Минздравсоцразвития РФ №855 от 29 октября 2009 года «О внесении изменения в приложение №4 к приказу Минздрава России от 21 марта 2003 г. №109».
5. Приказ Департамента здравоохранения города Москвы №173 от 10.02.2010 «О внедрении кожного теста с аллергеном туберкулёзным ре-комбинантным (препаратом Диаскинтест)».
Заключение диссертационного исследования на тему "Эффективность кожного теста с аллергеном туберкулезным, содержащим рекомбинантный белок CFP10-ESAТ6, в диагностике, выявлении и определении активности туберкулезной инфекции."
ВЫВОДЫ
1. Кожная проба с препаратом ДИАСКИНТЕСТ® (аллерген туберкулезный, представляющий собой рекомбинантный белок CFP10-ESAT6) безопасна - не наблюдалось необычных общих реакций и неспецифических местных проявлений. Повторные пробы не вызывают сенсибилизации на препарат.
2. Кожная проба с ДСТ обладает высокой специфичностью: частота отрицательных реакций у детей после вакцинации BCG составила 100% (95% ДИ 98,3-100,0%)-, при нетуберкулёзных заболеваниях лёгких у взрослых - 94,6%) (95% ДИ 90,4-98,8%), у детей - 100% (95%ДИ 95,7-100,0%)-, при внелегочных процессах нетуберкулёзной природы у взрослых - 98,5% (95% ДИ 94,2-100,0%))-, у лиц, излеченных от внелегочных форм туберкулёза- 100,0% (95% ДИ 94,8-100,0%).
3. Кожная проба с ДСТ обладает высокой чувствительностью: частота положительных реакций у детей и подростков с нелеченным туберкулёзом органов дыхания составила 97,3% (95% ДИ 94,9-99,6%); у взрослых, больных туберкулёзом органов дыхания - 84,2% (95% ДИ 79,788,8%); у взрослых, больных туберкулёзом внелёгочных локализаций -89,7% (95% ДИ 75,2-100,0%).
4. Частота положительных реакций на пробу с ДСТ при латентной туберкулёзной инфекции у детей и подростков, наблюдаемых в диспансерных группах риска, соответствует степени риска развития заболевания, достигая максимума у лиц с виражом реакций на пробу Манту из семейного контакта с больными туберкулёзом - бактериовыделителями -94,9% (95% ДИ 87,9-100,0%) (при попарном сравнении со всеми другими группам р<0,001 по критерию %2). Частота положительных реакций на пробу Манту в группах значимо не различалась, приближаясь к 100,0%.
5. Проба с ДСТ является маркером активности туберкулёзной инфекции: у подростков из близкого контакта с больными туберкулёзом-бактериовыделителями положительные реакции на пробу Манту отмечены у 77,9% О95%ДИ 69,8-84,6%), из них туберкулёз выявлен у 4,9% (95%ДИ 1,6-11,1); положительные реакции на пробу с ДСТ отмечены у 5,6% (.95%ДИ 2,4-10,7), а туберкулёз выявлен у 62,5% (:95%ДИ 30,4-86,5) из них. У детей и подростков, контактировавших в учебном заведении с больными туберкулёзом без бактериовыделения, частота положительных реакций достоверно ниже (р<0,001 по критерию х) - 2,2% {95% ДИ 0,943,92%); на пробу Манту частота положительных реакций у них составила 86,1% (95% ДИ 82,8-89,5%), достоверно не отличаясь от таковой в группе контактов с бактериовыделителями (р=0,96).
6. Каналы выявления больных туберкулёзом детей и подростков при применении пробы с ДСТ были следующими: 45,4% из них ранее наблюдались в диспансерных группах риска, 54,6% лиц (преимущественно -из семей мигрантов) ранее не обследовались с помощью кожных проб. Положительная реакция на пробу с ДСТ позволила при дообследовании выявить у них туберкулёз.
7. Динамика реакций на пробу с ДСТ позволяет судить о развитии туберкулёзной инфекции. Уменьшение интенсивности, вплоть до отрицательной реакции, произошло у 52,0% детей и подростков, получивших полный курс контролируемой химиотерапии, и у 44,4% (95% ДИ 33-56%) взрослых, больных туберкулёзом органов дыхания, после 3 месяцев лечения; среди детей и подростков с первоначально отрицательной реакцией у 2,5% произошла конверсия (вираж) реакций на пробу с ДСТ - у не разобщенных контактов с бактериовыделителями.
8. Частота положительных реакций на пробу с ДСТ зависит от успешности лечения: у детей с нелеченым туберкулёзом органов дыхания она достоверно выше, чем среди закончивших полный курс химиотерапии - 97,3% (95%ДИ 94,9-99,6%) и 60,0% (95%ДИ42,8-83,8%) соответственно, (р<0,0001); на пробу Манту реакции практически у всех были положительными. У взрослых, больных туберкулёзом органов дыхания, с длительностью лечения менее 30 дней она достоверно выше, чем среди леченных более 100 дней: 84,2% (95% ДИ79,7-88,8%) и 55,9% (95% ДИ 44,1-66,7%) соответственно (р<0,001 по критерию х )■
9. У лиц из контакта с бактериовыделителями и виражом реакций на пробу Манту частота положительных реакций на пробу с ДСТ достоверно ниже, если они получили контролируемую превентивную химиотерапию, чем у лиц, не получивших таковую: 60,0% и 94,5% соответственно (р<0,0001). Частота реакций на пробу Манту в этих группах не отличалась, так как была практически у всех положительной.
10. У больных туберкулёзом в сочетании с ВИЧ-инфекцией имеется достоверная разница (¿><0,01 по критерию %) в частоте положительных реакций на пробу с ДСТ при разном количестве С04+Т-лимфоцитов в периферической крови: 55,3%) у больных при СОА+ Т-лимфоцитов более 200 клеток в 1 мкл и 22,0% - при менее 200 клеток. Таким образом, у больных ВИЧ-инфекцией можно использовать кожную пробу с ДСТ, учитывая, что по мере увеличения иммуносупрессии эффективность ее снижается.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
ДИАСКИНТЕСТ® (Аллерген туберкулезный рекомбинантный в стандартном разведении) представляет собой рекомбинантный белок ESAT 6-CFP10, продуцируемый генетически модифицированной культурой Escherichia coli BL21(DE3)/pCFP-ESAT, присутствующий в вирулентных штаммах Mycobacterium tuberculosis и отсутствующий в вакцинном - Mycobacterium bovis BCG.
Практическое здравоохранение получило принципиально новый, по сравнению с туберкулинодиагностикой, инструмент выявления и диагностики активной туберкулёзной инфекции. Проба с ДСТ позволяет выявлять туберкулёз на ранних стадиях у детей, дифференцировать поствакцинальную аллергию от активной туберкулёзной инфекции с высоким риском развития заболевания. Она является маркером активной туберкулёзной инфекции, позволяющий дифференцировать активный процесс от инфекции, перенесённой ранее. С её помощью появилась возможность проследить динамику туберкулёзного процесса, как в момент её развития, так и при потере активности. Положительная реакция на пробу с ДСТ требует прицельного обследования на туберкулёз, включая КТ, и определяет показания к применению превентивной химиотерапии. Она может использоваться для выявления активной туберкулёзной инфекции у лиц с иммунодефицитными состояниями, в частности, вызванными ВИЧ - инфекцией.
Проба позволяет провести дифференциальную диагностику туберкулёза от нетуберкулёзных заболеваний, поскольку обладает почти 100% специфичностью.
Назначение:
• выявление и диагностика туберкулеза;
• оценка активности туберкулёзной инфекции и определение показаний к превентивной химиотерапии;
• дифференциальная диагностика туберкулёза;
• дифференциальная диагностика поствакцинальной и инфекционной аллергии;
• мониторинг развития инфекции и заболевания, в том числе в процессе лечения.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2012 года, Слогоцкая, Людмила Владимировна
1. Авербах М.М., Гергерт В.Я., Литвинов В.И. Повышенная чувствительность замедленного типа и инфекционный процесс// М.: Медицина.- 1974. 246 С.
2. Авербах М.М., Чернушенко Е.Ф., Литвинов В.И. и др. Клинико-иммунологические исследования при туберкулезе // В кн.: Иммунология и иммунопатология туберкулеза /под ред. М.М.Авербаха/ М.: Медицина.-1976.-с. 177-217.
3. Александрова E.H., Морозова Т.И., Паролина Л.Е., Докторова Н.П. Интерпретация комплексной когортной оценки результатов туберкулинодиагностики // Проблемы туберкулеза и болезней легких. -2008. №7-.— е.-23-26.
4. Алексеева Л. П. Особенности выявления, клинического течения и лечения больных туберкулезом и ВИЧ-инфекцией // Автореферат диссертации кандидата медицинских наук/ М.- 2008. 44 С.
5. Апт А. С., Кондратьева Т. К. Туберкулез: патогенез, иммунный ответ и генетика хозяина // Молекулярная биология. 2008. - № 42(5). - с. 880-890.
6. Асеев Д.Д. Значение туберкулиновых проб при дифференциальном диагнозе туберкулеза верхних дыхательных путей // Проблемы туберкулеза. 1940. - № 10. - с. 119-120.
7. Гранат Е.Е. Материалы поголовного обследования детей на туберкулез // В сб.: Иммунобиология, клиника и профилактика туберкулеза у детей /под ред. А.А.Киселя, В.Н.Иванова/ Л.: Практическая медицина,1928.-с. 274-281.
8. Еремеев В.В., Майоров К.Б. Взаимодействие макрофаг-микобактерия в процессе реакции микроорганизма на иммунный ответ при туберкулезной инфекции // Проблемы туберкулеза. 2002. - №3. - с. 54-58.
9. Ефимова A.A. Специфическая профилактика туберкулеза у детей // М.: Медицина.- 1968. 337 С.
10. Земскова З.С., Дорожкова И.Р. Скрыто протекающая туберкулезная инфекция // М.:Медицина. 1984. - 224 С.
11. Зильбер J1.A. Основы иммунологии // М., 1958. 599 С.
12. Каграманов А.И. Ранняя диссеминация туберкулезных бацилл в организме ребенка // В кн.: Туберкулез у детей раннего возраста/под ред. З.А.Лебедевой, А.Е.Рабухина. М.: Медгиз. - 1947. - с. 18-28.
13. Киселев В.И., Барановский П.М., Пупышев С.А., и др. Новый кожный тест для диагностики туберкулеза на основе рекомбинантного белка ESAT-CFP // Молекулярная медицина. 2008. - №4. - с. 4-6.
14. Кноринг Б.Е., Фрейдлин И.С., Симбирцев A.C. и др. Характер специфического иммунного ответа и продукция цитокинов мононуклеарами крови больных разными формами туберкулеза легких // Мед. иммунология 2001. - т. 3.- №1.- с. 61-68
15. Леви Д.Т. Современные препараты туберкулина методы получения, контроля, стандартизации и применения. // Дисс.докт.мед.наук. -М. - 1987.
16. Линникова М.А. Очищенный протеин-дериват // Проблемы туберкулеза. 1939. - №12. - с. 3-12.
17. Литвинов В.И. Иммуноморфология и иммунологическоезначение повышенной чувствительности замедленного типа при туберкулезе // Дис. докт мед. наук. М. - 1974. - 387С.
18. Литвинов В.И., Авербах М.М., Гергерт В.Я. и др. Повышенная чувствительность замедленного типа в противотуберкулезном иммунитете//В кн.: Иммунология и иммунопатология туберкулеза /под ред. М.М.Авербаха/ М.: Медицина.- 1976. с. 50-72.
19. Литвинов В.И., Макарова М.В., Краснова М.А. Нетуберкулезные микобактерии// М.: МНПЦБТ.- 2008. 256 С.
20. Литвинов В.И., Сельцовский П.П., Рыбка Л.Н. и др. Эпидемиологическая ситуация по туберкулёзу в городе Москве и организация противотуберкулёзной помощи населению (2009г.)// М.: МНПЦБТ.- 2010. -180 С.
21. Лядова И.В. Молекулы CD27: роль в дифференцировке и миграции Т-лимфоцитов // Иммунология. 2008. - т. 29. - № 4. - с. 244-249.
22. Маркузон В.Д. Клиника туберкулёза легких у детей и подростков // Практическое руководство для врачей /под ред. Д.И. Шифмана/ М.: Медгиз.- 1934.-400 С.
23. Маркузон В.Д. Туберкулёз у детей и подростков // Практическое руководство для врачей/ М.: Медгиз.- 1958. - 332 С.
24. Медовиков П.С. Туберкулёз в детском возрасте // Л.: Практическая медицина.- 1926. 252 С.
25. Мирзоян Э.З. Теория и практика туберкулинотерапии туберкулеза // М.: Медицина.- 1970. 207 С.
26. Митинская Л.А.' Туберкулинодиагностика. Руководство по внутренним болезням //М.-.Медицина. 1996. - с. 95-102.
27. Модель Л.М. Биология туберкулезных микобактерий и иммунология туберкулеза //М.: Медгиз.- 1958. 315 С.
28. Овсянкина Е.С. Актуальные проблемы противотуберкулезной помощи детям и подросткам // Проблемы туберкулеза и болезней легких. -2009. -№ 1.-С. 3-5.
29. Овсянкина Е.С., Кобулашвили М.Г., Губкина М.Ф., и др. Факторы, определяющие развитие туберкулёза у детей // Туберкулёз и болезни лёгких. 2009. - №11. - с. 19-22.
30. Овчинникова Ю.Э., Довгалюк И.Ф., Старшинова A.A., Бучацкая JI.A. Причины ронического течения туберкулёза внутригрудных лимфатических узлов у детей, особенности клинических проявлений и терапии // Туберкулёз и болезни лёгких. 2010. - №1. - с. 40-44.
31. Похитонова М.П. Клиника, лечение и профилактика туберкулеза у детей // М.: Медицина.- 1965. 304 С.
32. Приказ Минздравсоцразвития России №855 от 29 октября 2009г. «О внесении изменения в приложение №4 к приказу Минздрава России от 21 марта 2003 г. №109».
33. Приказ Министерства здравоохранения РФ №109 от 21.03.03 «О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в Российской Федерации».
34. Рабухин А.Е. Туберкулинодиагностика: от Пирке до наших дней // Проблемы туберкулеза. 1964. - №5. - с. 16-20.
35. Равич-Щербо В.А. Туберкулиновая реакция в свете вопросовтуберкулиновой терапии // Проблемы туберкулеза. 1938. - №1. - с. 41-52.
36. Савватимская Н.П. К вопросу о специфической диагностике туберкулеза у детей раннего возраста // В сб.: Иммунобиология, клиника и профилактика туберкулеза у детей /под ред. А.А.Киселя, В.Н.Иванова. / Д.: Практическая медицина.- 1928. с. 6-32.
37. Сиренко И.А., Шматько С.А., Марченко О.Ю., Подопригора Н.М. Особенности туберкулеза у детей -раннего возраста // Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2003. - №1. - с. 30-32.
38. Соркина Э.З. Первичная туберкулезная инфекция у детей. М.: Медгиз,- 1960. - 160 С.
39. Тригуб Н.И. Лечение детей фтивазидом и ПАСК в раннем периоде первичной туберкулезной инфекции // В кн.: Химиотерапия раннего периода первичного туберкулеза у детей и подростков / под ред. З.А.Лебедевой, И.П.Парфеновой / М.: Медгиз.- 1961. с. 47-69.
40. Тюлькова Т.Е., Корначев A.C., Чугаев Ю.П. и др. Прогностические критерии перехода латентного туберкулеза в клинически активный // Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2008. - №7. - с. 29-35.
41. Тюлькова Т.Е., Чугаев Ю.П., Андреева Л.В. и др. Туберкулиновая чувствительность у детей старшего возраста с впервые выявленным активным туберкулезом // Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2008. - №8. - с. 1922.
42. Фролова О.П., Кравченко A.B., Мартынов A.A., Батыров Ф.А. Организация противотуберкулезной помощи больным ВИЧ-инфекцией // Пособие для врачей. Тверь: ООО Изд. «Триада».- 2007. - 120 С.
43. Челнокова О.Г., Кибрик Б.С. Проблемы выявления туберкулёза у детей и подростков, контактирующих с больными туберкулёзом // Туберкулёз и болезни лёгких. 2010. - №1. - с. 31-34.
44. Шварцер И.С., Иванова Т.Н., Десятовский И.А. Сравнительная оценка результативности применения проб Пирке и Манту с 1, 2 и 5 ТЕдля массовой туберкулинодиагностики// Проблемы туберкулеза. 1974. -№4.-с. 16-19.
45. Шилова М.В. Туберкулез в России в 2008 году// М.- 2009.143С.
46. Эйнис B.JI. Туберкулез. Клиника, профилактика и лечение// М.: Медгиз.- 1961.-с. 88-92.
47. Яблокова Т.Б., Леви Д.Т., Кожевникова Т.П. Сравнительная оценка специфической активности отечественного и зарубежного туберкулинов // Проблемы туберкулеза. 1969. - №5. - с. 7-11.
48. Янченко Е.Н., Греймер М.С. (ред.). Туберкулез у детей и подростков// СПб.: «Гиппократ». 1999. - 336 С.
49. Яхнис Б.Л. Начальные формы туберкулёза у детей (к вопросу о клинике антеаллергичёского периода) // Проблемы туберкулёза. 1947. -№4. - с. 40-47.
50. Abebe F., Holm-Hansen C., Wiker H., Bjune G. Progress in serodiag-nosis of Mycobacterium tuberculosis infection // Skand. J. Immunol. 2007. -Vol.66. - p.176-191.
51. Ahmad S. Pathogenesis, immunology, and diagnosis of latent Mycobacterium tuberculosis infection. // Clinical and Developmental Immunology. -2010.-P. 1-17.
52. Altet M., Alcaide J.,"Plans P. et al. Passive smoking and risk of pulmonary tuberculosis in children immediately following infection. A case-control study // Tuber Lung Dis. 1996. - Vol. 77(6). - P. 537-544.
53. Andersen P., Andersen A., Sorensen A., Nagai S. Recall of long-lived immunity to Mycobacterium tuberculosis infection in mice // J Immunol. 1995. -Vol. 154(7).-P. 3359-72.
54. Andersen P., Doherty T. The success and failure of BCG- implications for a novel tuberculosis vaccine // Nat Rev Microbiol. 2005. - Vol. 3 (8). - P. 656-662.
55. Andersen P., Doherty T., Pai M., Weldingh K. The prognosis of latent tuberculosis: can disease be predicted? // Trends Mol Med. 2007. - v. 13(5). - p. 175182.
56. Andersen P., Munk M., Pollock J., Doherty T. Specific immune-based diagnosis of tuberculosis // Lancet. 2000. - Vol. 356. - P. 1099-1104.
57. Andersen P. Vaccine strategies against latent tuberculosis infection. // Trends Microbiol. 2006. - Vol. 10. - P. 1016.
58. Arend S., Andersen P., van Meijgaarden K. et al. Detection of active tuberculosis infection by T cell responses to early-secreted antigenic target 6-K^a protein and culture filtrate protein 10. // J. Infect. Dis. 2000. - Vol. 181. -P.1850-1854.
59. Arend S., Franken W., Aggerbeck H. et al. Double blind randomized Phase I study comparing rdESAT-6 to tuberculin as skin test reagent in the diagnosis of tuberculosis infection // Tuberculosis 2008. - Vol. 88. - P. 249261.
60. Arend S., Thijsen S., Leyten E. et al. Comparison of two interferon-gamma assays and tuberculin skin test for tracing tuberculosis contacts // Am J Respir Crit Care Med. 2007. - Vol. 175(6). - P. 618-627.
61. Arend S., van Meijgaarden K., de Boer K. et al. Tuberculin skin testing and in vitro T cell responses to ESAT-6 and culture filtrate protein 10 after infection with Mycobacterium marinum or M. kansasii II J Infect Dis. -2002. Vol. 186. - P. 1797-1807.
62. Ashley M., Siebenmann C. Tuberculin skin sensitivity following BCG vaccination with vaccines of high and low viable counts // Can Med Assoc J. -1967. Vol. 97(22). - P. 1335-1339.
63. Baassi L., Sadki K., Seghrouchni F. et al. Evaluation of a multi-antigen test based on B-cell epitope peptides for the serodiagnosis of pulmonary tuberculosis // Int. J. Tubercl. Lung Dis. 2009. - Vol.13. - 848-854.
64. Babu S., Bhat S., Kumar N. et al. Regulatory T cells modulate Thl7 responses in patients with positive tuberculin skin test results // J Infect Dis. -2010.-Vol. 201(1). P. 20-31.
65. Baker C., Thomas W., Stauffer W., et al. Serial testing of refugees for latent tuberculosis using the QuantiFERON-gold in-tube: effects of an antecedent tuberculin skin test. // Am J Trop Med Hyg. 2009. - Vol. 80. - P. 628633.
66. Bakir M, Millington K, Soysal A et al. Prognostic value of a T-cell-based, interferon-gamma biomarker in children with tuberculosis contact // Ann Intern Med. 2008. - Vol. 149(11). - P. 777-7787
67. Bass J., Serio R. The use of repeat skin tests to eliminate the booster phenomenon in serial tuberculin testing //Am Rev Respir Dis. 1981. - Vol. 123(4).-P. 394-396.
68. Bates M., Khalakdina A., Pai M. et al. Risk of tuberculosis from exposure to tobacco smoke: a systematic review and metaanalysis // Arch Intern Med. 2007. - Vol.l67(4). - P. 335-342.
69. Battershill J. Cutaneous testing in the elderly patient with tuberculosis // Chest. 1980. - Vol. 77. - P. 188-189.
70. Behr M., Wilson M., Gill W. et al. Comparative genomics of BCG vaccines by whole-genome DNA microarray // Science. 1999. - V. 284. - P. 1520-1523.
71. Bennet R., Eriksson M. Positive tuberculin reaction in children: from a life insurance to a ticking bomb. Latent tuberculosis should be treated to reduce the risk of active disease //Lakartidningen. 2004. - V. 101(18). - P.1604-1608.
72. Bergamini B., Losi'M., Vaienti F. et al. Performance of commercial blood tests for the diagnosis of latent tuberculosis infection in children and adolescents. //'Pediatrics. 2009. - Vol. 123. - P. 419-424.
73. Bergstedt W., Tingskov P., Thierry-Carstensen B. et al.1 First-in-man open clinical trial of a combined rdESAT-6 and rCFP-10 tuberculosis specific skin test reagent // PLoS One. 2010. - Vol. 5(6). - P. 11277.
74. Berkel G., Cobelens F., de Vries G. et al. Tuberculin skin test: estimation of positive and negative predictive values from routine data // Int J Tuberc Lung Dis. -2005.-Vol. 9(3).-P. 310-316.
75. Berthet F., Rasmussen P., Rosenkrands I. et al. Mycobacterium tuberculosis operon encoding ESAT-6 and a novel low-molecular-mass culture filtrate protein (CFP-10). // Microbiology. 1998. - Vol. 144(11). - P. 3195-3203.
76. Beskow R., Bleiker M., Dahlstrom G. et al. Tuberculin sensitivity in Swedish school children BCG vaccinated at birth // Bull International Union Against Tuberculosis. 1980. - V.78 (3-4). - P. 100-104.
77. Bleiker M., Pal D., Misljenovic O. Report of a study into skin sensitivity and into scar diameter after vaccination with BCG in 5,000 new-borns in Cakovec, Yugoslavia // Dev Biol Stand. 1986. - Vol. 58. - P. 725-730.
78. Bothamley G., Gibbs J., Beck J. et al. Delayed hypersensitivity and HLA in smear-positive pulmonary tuberculosis // Int Arch Allergy Immunol. -1995. Vol. 106(1). - P. 38-45.
79. Boussiotis V., Tsai E., Yunis E. et al. IL-10-producing T cells suppress immune responses in anergic tuberculosis patients // J Clin Invest. -2000.-Vol. 105(9).-P. 1317-1325.
80. Bozaykut A., Ipek I., Ozkars M. et al. Effect of BCG vaccine on tuberculin skin tests in 1-6-year-old children // Acta Paediatr. 2002. - Vol. 91. -P. 235-238.
81. Brock I., Münk M., Kok-Jensen A. et al. Performance of whole blood IFN-gamma test for tuberculosis diagnosis based on PPD or the specific antigens ESAT-6 and CFP-10 // Int. J. Tuberc. Lung Dis. 2001. - Vol.5. - P.462-467.
82. Brock I., Ruhwald M., Lundgren B. et al. Latent tuberculosis in HIV positive, diagnosed by the M. tuberculosis specific interferon-gamma test // Respir Res. 2006. - Vol.7. - P. 56.
83. Brock I., Weldingh K., Lillebaek T. et al. Comparison of tuberculin skin test and new specific blood test in tuberculosis contacts // Am J Respir Crit
84. Care Med. 2004. - Vol. 170. - P.65-69.
85. Bruins J., Gribnau J., Bwire R. Investigation into typical and atypical tuberculin sensitivity in the Royal Netherlands Army, resulting in a more rational indication for isoniazid prophylaxis // Tuber Lung Dis. 1995. - Vol. 76(6). - P. 540-544.
86. Brusasca P., Colangeli R., Lyashchenko K. et al. Immunological characterization of antigens encoded by the RD1 region of the Mycobacterium tuberculosis genome // Scand. J. Immunol. 2001. - Vol.54. - P.448-452.
87. Caceres N., Tapia G., Ojanguren I. et al. Evolution of foamy macrophages in the pulmonary granulomas of experimental tuberculosis models // Tuberculosis (Edinb). 2009. - Vol. 89(2). - P. 175-182.
88. Cain K., Haley C., Armstrong L. et al. Tuberculosis among foreign-born persons in the United States: achieving tuberculosis elimination // Am J RespirCritCareMed.^2007.-Vol. 175(1). P.-75-79.- - " -----------
89. Campos-Neto A., Rodrigues V., Pedral-Sampaio D. et al. Evaluation of DPPD, a single recombinant Mycobacterium tuberculosis protein as an alternative antigen for the Mantoux test// Tuberculosis (Edinb.). 2001. -Vol.81.-P. 353-358.
90. Camus J., Pryor M., Medigue C., Cole S. Re-annotation of the genome sequence of Mycobacterium tuberculosis H37Rv. // Microbiology. 2002. - Vol. 148 (10). - P. 2967-2973.
91. Canadian tuberculosis committee. Updated recommendations on interferon gamma release assays for latent tuberculosis infection. An Advisory Committee Statement (ACS) // Can Commun Dis Rep. 2008,- 34:1-13.
92. Cantwell M., McKenna M., McCray E., Onorato I. Tuberculosis and race/ethnicity in the United States: impact of socioeconomic status // Am J
93. Respir Crit Care Med. 1998. - Vol. 157(4). - P. 1016-1020.
94. Cauthen G., Snider D., Onorato I. Boosting of tuberculin sensitivity among Southeast Asian refugees // Am J Respir Crit Care Med. 1994. - Vol. 149(6).-P. 1597-1600.
95. Cecchini D., Ambrosioni J., Brezzo C. et al. Tuberculous meningitis in HIV-infected patients: drug susceptibility and clinical outcome // AIDS. 2007. - Vol. 21. - P. 373-374.
96. Chapman A., Munkanta M., Wilkinson K. et al. Rapid detection of active and latent tuberculosis infection in HIV-positive individuals by enumeration of Mycobacterium tuberculosis-specific T cells // AIDS. 2002. -Vol.16.-P. 2285-2293.
97. Chee C., Soh C., Boudville I. et al. Interpretation of the tuberculin skin test in Mycobacterium bovis fiCG-vaccinated Singaporean schoolchildren // Am J Respir Crit Care Med.-2001.-Vol. 164.-P. 958-961.
98. Chegou N., Black G., Kidd M. et al. Host markers in QuantiFERON supernatants differentiate active TB from latent TB infection: preliminary report // BMC Pulm Med. 2009. - Vol. 16. - P. 9-21.
99. Chen X., Zhang "M., Liao M^ et al. Reduced th 17 response in patients with tuberculosis correlates with IL-6R expression on CD4+ T Cells // Am J Respir Crit Care Med. 2010. - Vol. 181(7). - P. 734-742.
100. Cobelens F., Egwaga S., van Ginkel T. et al. Tuberculin skin testing in patients with HIV infection: limited benefit of reduced cutoff values // Clin Infect Dis. 2006. - Vol. 43(5). - P. 634-639.
101. Colditz G., Brewer T., Berkey C. et al. Efficacy of BCG vaccine in the prevention of tuberculosis. Meta-analysis of the published literature // JAMA. 1994. - Vol. 271(9). - P. 698-702.
102. Cole S., Brosch R., Parkhill J. et al. Deciphering the biology of Mycobacterium tuberculosis from the complete genome sequence // Nature. -1998. Vol. 393. - P. 537-544.
103. Comstock G. Identification of an effective vaccine againsttuberculosis // Am Rev Respir Dis. 1988. - Vol. 138(2). - P. 479-480.
104. Comstock G., Edwards L., Livesay V. Tuberculosis morbidity in the U.S. Navy: its istribution and decline // Am Rev Respir Dis. 1974. - Vol. 110.-P. 572-580.
105. Comstock G., Livesay V., Woolpert S. The prognosis of a positive tuberculin reaction in childhood and adolescence // Am J Epidemiol. 1974. -Vol. 99.-P. 131-138.
106. Connell T., Curtis N., Ranganathan S., Buttery J. Performance of a whole blood interferon gamma assay for detecting latent infection with Mycobacterium tuberculosis in children // Thorax. 2006. - Vol. 61. - P. 616620.
107. Connell T., Ritz N., Paxton G. et al. A three-way comparison of tuberculin skin testing, QuantiFERON TB Gold and T-SPOT.TB in children// PLoS. ONE 2008. - Vol. 3.-e2624. doi:10.1371/journal.pone.0002624.
108. Corbett E., Marston B., Churchyard G., De Cock K. Tuberculosis in sub- Saharan Africa: opportunities, challenges, and change in the era of antiretroviral treatment // Lancet. 2006. - Vol. 367(9514). - P. 926-937.
109. Corbett E., Watt C.,"" Walker N. et al. The growing burden of tuberculosis: global trends and interactions with the HIV epidemic // Arch Intern Med.-2003.-Vol. 163(9).-P. 1009-1021.
110. Covert B., Spencer J., Orme I., Belisle J. The application of proteomics in defining the T-cell antigens of Mycobacterium tuberculosis II Proteomics.-2001.-Vol. l.-P. 574-586.
111. Crump J., Tanner D., Mirrett S. et al. Controlled comparison of BACTEC 13 A, MYCO/F LYTIC, BacT/ALERT MB, and ISOLATOR 10 systems for detection of mycobacteremia // J Clin Microbiol. 2003. - Vol. 41. -P. 1987-1990.
112. Daley C. The typically 'atypical' radiographic presentation of tuberculosis in advanced HIV disease // Tuber Lung Dis. 1995. - Vol. 76. - P. 475-476.
113. Daniel T. The immunology of tuberculosis // Clin Chest Med. -1980.-Vol. 1(2).-P. 189-201.
114. Daniel T., Balestrino E., Balestrino O. et.al. The tuberculin specificity in humans of Mycobacterium tuberculosis antigen -5 //Amer. Rev. Resp. Dis.- 1982. Vol.126. - P.606-606.
115. Daniel T., Janicki B. Mycobacterial antigens: a review of their isolation, chemistry, and immunological properties // Microbiol Rev. 1978. -Vol. 42(1).-P. 84-113.
116. Daniel T., Anderson P. The isolation by immunoabsorbent affinity chromatography and physiochemical characterization of Mycobacterium tuberculosis antigen // Am. Rev. Respir Dis. 1978. - Vol. 117. - P. 533-539.
117. Dannenberg A. Immune mechanisms in the pathogenesis of pulmonary tuberculosis // Rev Infect Dis. 1989. - Vol. 2. - P. 369-378
118. Dannenberg A. Pathogenesis of pulmonary Mycobacterium bovis infection: basic principles established by the rabbit model // Tuberculosis (Edinb). 2001. - Vol. 81 (1 -2). - P. 87-96.
119. Detjen A., Loebenberg L., Grewal H., et al. Short-term Reproducibility of a Commercial Interferon-gamma Release Assay. // Clin Vaccine Immunol. 2009; 16(8): 1170-5.
120. Dheda K., van Zyl-Smit R., Badri M., Pai M. T-cell interferon-gamma release assays for the rapid immunodiagnosis of tuberculosis: clinical utility in high-burden vs. low-burden settings. // Curr Opin Pulm Med. 2009. -Vol. 15.-P. 188-200.
121. Di Perri G., Cazzadori A., Vento S. et al. Comparative histopathological study of pulmonary tuberculosis in human immunodefi ciencyvirusinfected and non-infected patients // Tubercle Lung Dis. 1996. - Vol. 77. - P. 244-249.
122. Diel R., Ernst M., Doscher G. et al. Avoiding the effect of BCG vaccination in detecting Mycobacterium tuberculosis infection with a blood test // Eur Respir J. 2006. - Vol. 28(1). - P. 16-23.
123. Diel R., Goletti D., Ferrara G. et al. Interferon-{gamma} release assays for the diagnosis of latent M. tuberculosis infection: A systematic review and meta-analysis. // Eur. Respir. J. 2010. - Vol. 37 (1). - P. 88-89.
124. Diel R., Loddenkemper R., Meywald-Walter K. et al. Comparative performance of tuberculin skin test, QuantiFERON-TB-Gold In Tube assay, and T-Spot. TB test in contact investigations for tuberculosis // Chest. 2009. - Vol. 135(4).-P. 1010-1018.
125. Diel R., Nienhaus A., Lange C. et al. Tuberculosis contact investigation with a new, specific blood test in a low-incidence population containing a high proportion of BCG-vaccinated persons // Respir Res. 2006. -Vol. 7.-P. 77.
126. Dillon D., Alderson M., Day C. et al. Molecular characterization and human T-cell responses to a member of a novel Mycobacterium tuberculosis mtb39 gene family // Infect. Immun. 1999. - Vol. 67. - P. 2941-2950.
127. Dillon D., Alderson M., Day H. et al. Molecular and immunological characterization of Mycobacterium tuberculosis CFP-10, an immunodiagnostic antigen missing in Mycobacterium bovis BCG. // J. Clin. Microbiol. 2000. -Vol. 38. - P.3285-3290.
128. Dinnes J., Deeks J., Kunst H. et al. A systematic review of rapid diagnostic tests for the detection of tuberculosis infection. // Health Technol. -2007.-Vol. 11-P. 1-196.
129. Dogra S., Narang P., Mendiratta D. et al. Comparison of a whole blood interferon-gamma assay with tuberculin skin testing for the detection of tuberculosis infection in hospitalized children in rural India // J Infect. 2006. -Vol. 146.
130. Doherty T., Andersen P. Vaccines for tuberculosis: novel concepts and recent progress // Clin Microbiol Rev. 2005. - Vol. 18(4). - P. 687-702.
131. Doherty T., Demissie A., Olobo J. et al. Immune responses to the Mycobacterium tuberculosis-specific antigen ESAT-6 signal subclinical infection among contacts of tuberculosis patients // J Clin Microbiol. 2002. -Vol. 40(2). - P. 704-706.
132. Doherty T., Wallis R., Zumla A. Biomarkers of disease activity, cure, and relapse in tuberculosis // Clin Chest Med. 2009. - Vol. 30(4). - P. 783-796.
133. Doherty T., Wallis R., Zumla A. Biomarkers for tuberculosis disease status and diagnosis // Curr Opin Pulm Med. 2009. - Vol. 15(3). - P. 181-187.
134. Dosanjh D., Hinks T., Innes J., et al. Improved diagnostic evaluation of suspected tuberculosis // Ann Intern Med. 2008. - Vol. 148. - P. 325-336.
135. Edwards L. Skin sensitivity to antigens made from various acid-fastbacteria // Am J Hyg. 1957. - Vol. 66. - P. 253-273.
136. Edwards L., Acquaviva F., Livesay V. Identification of tuberculous infected. Dual tests and density of reaction // Am Rev Respir Dis. 1973. - Vol. 108(6).-P. 1334-1339.
137. Edwards L., Comstock G., Palmer C. Contributions of northern populations to the understanding of tuberculin sensitivity // Arch Environ Health. 1968.-Vol. - 17(4).-P. 507-516.
138. Edwards P., Edwads L. Story of the tuberculin test from an epidemiologic viewpoint//Am Rev Respir Dis. 1960. - Vol. - 81(1). - P. 1-47.
139. Elhay M., Oettinger T., Andersen P. Delayed-type hypersensitivity responses to ESAT-6 and MPT64 from Mycobacterium tuberculosis in the guinea pig // Infect. Immun. 1998. - Vol. 66. - P. 3454-3456.
140. Ellner J., Goldberger M., Parenti D. Mycobacterium avium infection and AIDS: a therapeutic dilemma in rapid evolution //J Infect Dis. -1991.-Vol. 163.-P. 1326-1335.
141. Ewer K., Deeks J., Alvarez L. et al. Comparison of T-cell-based assay with tuberculin skin test for diagnosis of Mycobacterium tuberculosis infection in a school tuberculosis outbreak // Lancet. 2003. Vol. 361. - P. 1168-1173.
142. Ewer K., Millington K., Deeks J. et al. Dynamic antigen-specific T-cell responses after point-source exposure to Mycobacterium tuberculosis II Am J Respir Crit Care Med. 2006. - Vol. 174. - P. 831 -839.
143. Fairchok M., Rouse J., Morris S. Age-dependent humoral responses of children to mycobacterial antigens // Clin Diagn Lab Immunol. 1995. - Vol. 2(4). - P. 443-447.
144. Ferebee S. Controlled chemoprophylaxis trials in tuberculosis: a general review // Bibl Tuberc. 1970. - Vol. 26. - P. 28-106.
145. Ferebee S., Mount F. Tuberculosis morbidity in a controlled trial of the prophylactic use of isoniazid among household contacts // Am Rev Respir. -1962.-Vol. 85.-P. 490-510.
146. Ferrara G., Losi M., D'Amico R. et al. Use in routine clinical practice of two commercial blood tests for diagnosis of infection with Mycobacterium tuberculosis: a prospective study // Lancet. 2006. - Vol. 367. -P. 1328-1334.
147. Ferreira A., Ferreira Mde F., Macedo E. et al. BCG revaccination in school children: evolution of the lesion at the vaccination site between 48 hours and 10 weeks // J Pediatr (Rio J). 2002. - V. 78(4). - P. 289-294.
148. Fine P. Variation in protection by BCG: implications of and for heterologous immunity // Lancet. 1995. - Vol. 346(8986). - P. 1339-1345.
149. Fine P., Sterne J., Ponnighaus J., Rees R. Delayed-type hypersensitivity, mycobacterial vaccines and protective immunity // Lancet. -1994. Vol. 344(8932). - P. 1245-1249.
150. Floyd S., Ponnighaus J., Bliss L. et al. BCG scars in northern Malawi: sensitivity and repeatability of scar reading, and factors affecting scar size // Int J Tuberc Lung Dis. 2000. - Vol. 4(12). - P. 1133-1142.
151. Flynn J., Chan J. Immunology of tuberculosis // Annu Rev Immunol. 2001. - Vol. 19. - P. 93-129.
152. Friedland I. The booster effect with repeat tuberculin testing in children and its relationship to BCG vaccination // S Afr Med J. 1990. - Vol. 77(8). - P. 387-389.
153. Garcia-Sancho F., Garcia-Garcia L., Jimenez-Corona M. et al. Is tuberculin skin testing useful to diagnose latent tuberculosis in BCG-vaccinated children? // Int J Epidemiol. 2006. - Vol. 35(6). - P. 1447-1454.
154. Gardam M., Keystone E., Menzies R. et al. Anti-tumour necrosis factor agents and tuberculosis risk: mechanisms of action and clinical management // Lancet Infect Dis. 2003. - Vol. 3(3). - P. 148-155.
155. Girardi E., Angeletti C., Puro V. Estimating diagnostic accuracy of tests of latent tuberculosis infection without a gold standart among healthcare workers. // Euro Surveill. 2009. - Vol.14. - pii: 19373.
156. Goletti D, Stefania C, Butera O, et al. Accuracy ofimmunodiagnostic tests for active tuberculosis using single and combined results: a multicenter TBNET-Study // PLoS ONE 2008;3:e3417)
157. Goletti D., Weissman D., Jackson R. et al. Effect of Mycobacterium tuberculosis on HIV replication. Role of immune activation // J Immunol. -1996. Vol. 157. - P. 1271-1278.
158. Gordin F., Chaisson R., Matts J. et al. Rifampin and pyrazinamide vs. isoniazid for prevention of tuberculosis in HIV-infected persons: an international randomized trial // JAMA. 2000. - V. 283. - P. 1445-1450.
159. Grange J. The humoral immune response in tuberculosis: its nature, biological role and diagnostic usefulness// Adv Tuberc Res. 1984. - Vol. 21. -P.1-78.
160. Greveson K. Can ELISpot replace the tuberculin skin test for latent tuberculosis? // Br J Nurs. 2009. - Vol. 18(20). - P. 1248-1254.
161. Grzybowski S., Allen E. The challenge of tuberculosis in decline. A study based on the epidemiology of tuberculosis in Ontario, Canada // Am Rev Respir Dis. 1964. - Vol. 90. - P. 707-720.
162. Guld J. Correlation of tuberculin sensitivity before and after BCG vaccination // Bull World Health Organ. 1966. - Voi."35(4). - P. "479-482.
163. Guld J., Bentzon M., Bleiker M. et al. Standardization of a new batch of purified tuberculin (PPD) intended for international use // Bull World Health Organ. 1958. - Vol. 19(5). - P. 845-951.
164. Guld J., Waaler H., Sundaresan T. et al. The duration of BCG-induced tuberculin sensitivity in children, and its irrelevance for revaccination. Results of two 5-year prospective studies // Bull World Health Organ. 1968. - Vol. 39(5). - P. 829-836.
165. Gupta S., Bhatia R., Datta K. Serodiagnosis of tuberculosis// J. Commun. Dis. 1995. - Vol.27. - P.208-214.
166. Harada N. Characteristics of a diagnostic method for tuberculosis infection based on whole blood interferon-gamma assay // Kekkaku. 2006. -Vol. 81(11).-P. 681-686.
167. Harada N., Nakajima Y., Higuchi K. et al. Screening for tuberculosis infection using whole-blood interferon-gamma and Mantoux testing among Japanese healthcare workers // Infect Control Hosp Epidemiol. 2006. -Vol. 27. - P. 442-448.
168. Harboe M., Oettinger T., Wiker H. et al. Evidence for occurrence of the ESAT-6 protein in Mycobacterium tuberculosis and virulent Mycobacterium bovis and for its absence in Mycobacterium bovis BCG. // Infect. Immun. 1996. -Vol. 64. - P. 16-22.
169. Hart P. The value of tuberculin tests in man, with special reference to the intracutaneous test // Med Res Council Special Series. 1932. - Vol. 164. -P. 5-132.
170. Hart P., Sutherland I. BCG and vole bacillus vaccines in the prevention of tuberculosis in adolescence and early adult life // Br Med J. -1977. Vol. 2(6082). - P. 293-295.
171. Hassmiller K. The association between smoking and tuberculosis // Salud Publica Mex. 2006. - Vol. 48. - P. 201-216.
172. He X., Luo Y., Zhang X. Clinical evaluation of the recombinant 38 kDa protein of Mycobacterium tuberculosis II Scand. J. Infect. Dis. 2008. -Vol. 40.-P. 121-126.
173. Heimbeck J. BCG vaccination of nurses // Tubercle. 1948. - Vol. 29.-P. 84-88.
174. Heimbeck J. Incidence of tuberculosis in young adult women with special reference to employment // Br J Tuberc. 1938. - Vol. 32. - P. 154-166.
175. Hey worth B. Delayed hypersensitivity to PPD-S following BCG vaccination in African children-an 18-month field study // Trans R Soc Trop Med Hyg. 1977. - Vol.71(3). - P. 251-253.
176. Hill P., Brookes R., Adetifa I. et al. Comparison of enzyme-linked immunospot assay and tuberculin skin test in healthy children exposed to Mycobacterium tuberculosis II Pediatrics. 2006. - Vol. 117. - P. 1542-1548.
177. Hill P., Brookes R., Fox A. et al. Longitudinal assessment of an
178. ELISPOT test for Mycobacterium tuberculosis infection // PLoS Med. 2007. -Vol. 4(6).-P. 192.
179. Hill P., Fox A., Jeffries D. et al. Quantitative T-cell assay reflects infectious load of Mycobacterium tuberculosis in an endemic case contact model // Clin Infect Dis. 2005. - Vol. 40. - P. 273-278.
180. Holden M., Dubin M., Diamond P. Frequency of negative intermediatestrength tuberculin sensitivity in patients with active tuberculosis // N Engl J Med. 1971. - Vol. 285. - P. 1506-1509.
181. Holmes C., Hausler H., Nunn P. A review of sex differences in the epidemiology of tuberculosis // Int J Tuberc Lung Dis. 1998. - Vol. 2(2). - P. 96-104.
182. Horsburgh C. Mycobacterium avium complex infection in the acquired immunodefi ciency syndrome // N Engl J Med. 1997. - Vol. 324. - P. 1332-1338.
183. Horsburgh C. Priorities for the treatment of latent tuberculosis infection in the United States // N Engl J Med. 2004. - Vol. 350(20). - P. 2060-2067.
184. Horwitz O., Bunch-Christensen K. Correlation between tuberculin sensitivity after 2 months and 5 years among BCG vaccinated subjects // Bull World Health Organ. 1972. - Vol. 47(1). - P. 49-58.
185. Howard W., Klopfenstein M., Steininger W., Woodruff C. The lossof tuberculin sensitivity in certain patients with active pulmonary tuberculosis // Chest.-1970. Vol. 57(6). - P. 530-534.
186. Hsu K. Tuberculin reaction in children treated with isoniazid //Am J Dis Child. 1983. - Vol. 137(11). - P. 1090-1092.
187. Huebner R., Schein M., Bass J. The tuberculin skin test // Clin Infect Dis. 1993.-Vol. 17(6).-P. 968-975.
188. Huebner R., Schein M., Cauthen G. et al. Evaluation of the clinical usefulness of mycobacterial skin test antigens in adults with pulmonary mycobacterioses // Am Rev Respir Dis. 1992. - Vol. 145(5). - P. 1160-1166.
189. Huebner R., Schein M., Cauthen G. et al. Usefulness of skin testing with mycobacterial antigens in children with cervical lymphadenopathy // Pediatr Infect Dis J. 1992. - Vol. 11(6). - P. 450-456.
190. Ildirim I., Hacimustafaoglu M., Ediz B. Correlation of tuberculin induration with the number of Bacillus Calmette-Guerin vaccines // Pediatr Infect Dis J.- 1995.-Vol. 14(12).-P. 1060-1063.
191. Infuso A., Falzon D. European survey of BCG vaccination policies and surveillance in children, 2005 // Euro Surveill. 2006. - Vol. 11(3). - P. 611.
192. International Union Against Tuberculosis. Committee on Prophylaxis Efficacy of various durations of isoniazid preventive therapy for tuberculosis // Bull World Health Organ. 1982. - Vol. 60. - P. 555-564.
193. Jafari C., Ernst M., Kalsdorf B. et al. Rapid diagnosis of smear-negative tuberculosis by bronchoalveolar lavage enzyme-linked immunospot // Am J Respir Crit Care Med. 2006. - Vol. 174. - P. 1048-1054.
194. Jafari C., Lange C. Suttons's Law: local immunodiagnosis of tuberculosis // Infection. 2008. - Vol. 36. - P. 510 - 514.
195. Jentoft H., Omenaas E., Eide G., Gulsvik A. Tuberculin reactivity: prevalence and predictors in BCG-vaccinated young Norwegian adults // Respir Med. 2002. - Vol. 96(12). - P. 1033-1039.
196. Johnson H., Lee B., Doherty E. et al. Tuberculin sensitivity and the
197. BCG scar in tuberculosis contacts // Tuber Lung Dis. 1995. - Vol. 76(2). - P. 122-125.
198. Jones B., Young S., Antoniskis D. et al. Relationship of the manifestations of tuberculosis to CD4 cell counts in patients with human immunodeficiency virus infection // Am Rev Respir Dis. 1993. - Vol. 148. - P. 1292-1297.
199. Joos T., Miller W., Murdoch D. Tuberculin reactivity in bacille Calmette-Guerin vaccinated populations: a compilation of international data // Int J Tuberc Lung Dis. 2006. - Vol. 10(8). - P. 883-891.
200. Kaech S., Wherry E., Ahmed R. Effector and memory T-cell differentiation: implications for vaccine development // Nat Rev Immunol. -2002. Vol. 2(4). - P. 251-262.
201. Kampmann B, Whittaker E, Williams A, et al. Interferon-7 release assays do not identify more children with active tuberculosis than the tuberculin skin test // Eur Respir J . 2009. - Vol. 33. - P. 1371-1379.
202. Kanunfre K., Leite O., Lopes M. et al. Enhancement of diagnostic efficiency by a gamma interferon release assay for pulmonary tuberculosis. // Clin. Vaccine Immunol. 2008. - Vol.15. - P. 1028-1030.
203. Karalliedde S., Katugaha L., Uragoda C. Tuberculin response of Sri Lankan children after BCG vaccination at birth // Tubercle. 1987. - Vol. 68. -P. 33-38.
204. Kardjito T., Donosepoetro M., Grange J. The Mantoux test in tuberculosis: correlations between the diameters of the dermal responses and the serum protein levels//Tubercle. 1981.-Vol. 62.-P. 31-35.
205. Kim S., Choi S., Kim H. et al. Diagnostic usefulness of a T-cell based assay for extrapulmonary tuberculosis. // Arch. Intern. Med. 2007. -Vol.167.-P.2255-2259.
206. Kindler V., Sappino A., Grau G. et al. The inducing role of tumor necrosis factor in the development of bactericidal granulomas during BCG infection// Cell. 1989. - Vol. 56(5). - P. 731-740.
207. Koch R. An address on bacteriological research // Br Med J. -1890.-Vol. 2.-P. 380-383.
208. Kraut A., Coodin M., Plessis R., McLean D. Predictors of positive tuberculin skin test (TST) results after 2-step TST among health care workers in Manitoba, Canada // Clin Infect Dis. 2004. - Vol. 39(11). - P. 113-118.
209. Kuemmerer J., Comstock G. Sociologic concomitants of tuberculin sensitivity // Am Rev Respir Dis. 1967. - Vol. 96(5). - P. 885-892.
210. Laal S., Skeiky Y. Tuberculosis and the tubercle bacillus // In: Immune-based-methods. Washington: ASM Press, 2005. - P. 71-83
211. Lange C., Pai M., Drobniewski F., Migliori G. Interferon-y release assays for the diagnosis of active tuberculosis: sensible or silly? // Eur Respir J. -2009. Vol. 33. - P. 1250-1253
212. Larsson L., Bentzon M., Lind A. et al. Sensitivity to sensitins and tuberculin in Swedish children. Part 5: A study of school children in an inland rural area // Tuber Lung Dis. 1993. - Vol. 74(6). - P. 371-376.
213. Larsson L., Magnusson M., Skoogh B., Lind A. Sensitivity to sensitins and tuberculin in Swedish children. IV. The influence of BCGvaccination 11 Eur Respir J. 1992. - Vol. 5(5). - P. 584-586.
214. Larsson L., Skoogh B., Bentzon M. et al. Sensitivity to sensitins and tuberculin in Swedish children. II. A study of preschool children // Tubercle.- 1991 ,-v.72( 1 ).-p.3 7-42.
215. Lee J., Choi H., Park I-H. et al. Comparison of two commercial interferon^ assays for diagnosing Mycobacterium tuberculosis infection. // Eur. Respir. J. 2006. - Vol. 28. - P. 24-30.
216. Leung C., Yew W., Chang K. et al. Risk of active tuberculosis among schoolchildren in Hong Kong // Arch Pediatr Adolesc Med.- 2006.- v. 160(3).-p.247-51.
217. Liebeschuetz S., Bamber S., Ewer K. et al. Diagnosis of tuberculosis in South African children with a T-cell-based assay: a prospective cohort study // Lancet. 2004. - Vol. 364. - P. 2196-2203
218. Lienhardt C., Fielding K., Sillah J. et al. Risk factors for tuberculosis infection in sub-Saharan Africa: a contact study in the Gambia // Am J Respir Crit Care Med. 2003. - Vol. 168(4). - P. 448-455.
219. Lincoln E. Epidemics of TB // Advances in TB research. 1965. -Vol. 14.-P. 157-201.
220. Lind A., Larsson L., Bentzon M. et al. Sensitivity to sensitins and tuberculin in Swedish children. I. A study of schoolchildren in an urban area // Tubercle. 1991. - Vol. 72(1). - P. 29-36.
221. Mack U., Migliori G., Sester M. et al. LTBI: latent tuberculosisinfection or lasting immune responses to Mycobacterium tuberculosis? A TBNET consensus statement // Eur Respir J. 2009. - Vol. 33. - P. 956-973.
222. Magnus K., Edwards L. The effect of repeated tuberculin testing on postvaccination allergy; a preliminary note // Lancet. 1955. - Vol. 269(6891). - P.643-644.
223. Mahairas G., Sabo P., Hickey M. et al. Molecular analysis of genetic differences between Mycobacterium bovis BCG and virulent M. bovis II J. Bacteriol. 1996. -Vol. 178. - P. 1274-1282.
224. Mahomed H., Hughes E., Hawkridge T. et al. Comparison of mantoux skin test with three generations of a whole blood IFN-gamma assay for tuberculosis infection // Int J Tuberc Lung Dis. 2006. - Vol. 10. - P. 310-316.
225. Mantoux M. La voie intradermique en tuberculinothe'rapie // Presse Med. 1912. - Vol. 20. - P. 146-148.
226. Mariani F., Goletti D., Ciaramella A. et al. Macrophage responseto Mycobacterium tuberculosis during HIV infection: relationships between macrophage activation and apoptosis // Curr Mol Med. 2001. - V. 1. - P. 209216.
227. Markowitz N., Hansen N., Wilcosky T. et al. Tuberculin and anergy testing in HIV-seropositive and HIVseronegative persons. Pulmonary Complications of HIV Infection Study Group // Ann Intern Med. 1993. - Vol. 119(3).-P. 185-193.
228. Marks G., Bai J., Simpson S. et al. Incidence of tuberculosis among a cohort of tuberculin-positive refugees in Australia: reappraising the estimates of risk //Am J Respir Crit Care Med.-2000.-Vol. 162(5).-P. 1851-1854.
229. Mazurek G., Jereb J., Lobue P. et al. Guidelines for using the QuantiFERON-TB Gold test for detecting Mycobacterium tuberculosis infection,
230. United States // MMWR Recomm Rep. 2005. - Vol. 54. - P. 49-55.
231. Mazurek G., Weis S., Moonan P. et al. Prospective comparison of the tuberculin skin test and two whole-blood interferon-gamma release assays in persons with suspected tuberculosis. // Clin.Infect.Dis. 2007. - Vol.45. -P.837-845.
232. McKenna M., McCray E., Onorato I. The epidemiology of tuberculosis among foreign-born persons in the United States, 1986-1993 // N Engl J Med. 1995. - Vol. 332. - P. 1071-1076.
233. Meier T., Eulenbruch H., Wrighton-Smith P. et al. Sensetivity of a new commercial enzyme-linked immunospot assay (T SPOT-TB) for diagnosis of tuberculosis in clinical practice. // Eur.J.Clin.Microbiol.Infect.Dis. 2005. -Vol.24.-P.529-536.
234. Menzies D. Interpretation of repeated tuberculin tests. Boosting, conversion, and reversion // Am J Respir Crit Care Med. 1999. - Vol. 159(1). -P. 15-21.
235. Menzies D. Issues in the management of contacts of patients with active pulmonary tuberculosis // Can J Public Health. 1997. - Vol. 88(3). - P. 197-201.
236. Menzies D., Fanning A., Yuan L., FitzGerald J. Factors associated with tuberculin conversion in Canadian microbiology and pathology workers // Am J Respir Crit Care Med. 2003. - Vol. 167(4). - P. 599-602.
237. Menzies D., Joshi R., Pai M. Risk of tuberculosis infection and disease associated with work in health care settings // Int J Tuberc Lung Dis. -2007. Vol. 11(6). - P. 593-605.
238. Menzies D., Pai M., Comstock G. Meta-analysis: new tests for the diagnosis of latent tuberculosis infection: areas of uncertainty andrecommendations for research // Ann Intern Med. 2007. - Vol. 146. - P. 340354.
239. Menzies R. Tuberculin skin testing. In: Reichman LB, Hershfield ES, editors. Tuberculosis: a comprehensive international approach. New York: Marcel Dekker. Inc., 2000. - P. 279-322.
240. Menzies R., Vissandjee B. Effect of bacille Calmette-Guerin vaccination on tuberculin reactivity // Am Rev Respir Dis. 1992. - Vol. 145(3). -P. 621-625.
241. Menzies R., Vissandjee B., Amyot D. Factors associated with tuberculin reactivity among the foreign-born in Montreal // Am Rev Respir Dis. 1992. - Vol. 146(3). - P. 752-756.
242. Menzies R., Vissandjee B., Rocher I., St Germain Y. The booster effect in two-step tuberculin testing among young adults in Montreal // Ann Intern Med. 1994. - Vol. 120(3). - P. 190-198.
243. Miret-Cuadras P., Pina-Gutierrez J., Juncosa S. Tuberculin reactivity in Bacillus Calmette-Guerin vaccinated subjects // Tuber Lung Dis. -1996.-Vol. 77(1).-P. 52-58.
244. Moore D., Liechty C., Ekwaru P. et al. Prevalence, incidence and mortality associated with tuberculosis in HIV-infected patients initiating antiretroviral therapy in rural Uganda // AIDS. 2007. - Vol. 21. - P. 713-719.
245. Moreno S., Blazquez R., Novoa A. et al. The effect of BCG vaccination on tuberculin reactivity and the booster effect among hospital employees//Arch Intern Med. 2001. - Vol. 161(14).-P. 1760-1765.
246. Mori T., Sakatani M., Yamagishi F. et al. Specific detection of tuberculosis infection an interferon-y-based assay using new antigens. // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2004. - Vol.170. - P.59-64.
247. Morse D., Hansen R., Grabau J. et al. Tuberculin conversions in Indochinese refugees. An assessment of boosting and anergy // Am Rev Respir Dis. 1985.-Vol. 132(3).-P. 516-519.
248. Mtei L., Matee M., Herfort O. et al. High Rates of Clinical and
249. Subclinical Tuberculosis among HIV-infected Ambulatory Subjects in Tanzania // Clinical Infectious Diseases. 2005. - Vol. 40. - P. 1500-1507.
250. Munk M., Arend S., Brock I. et al. Use of ESAT-6 and CFP-10 antigens for diagnosis of extrapulmonary tuberculosis.// J. Infect Dis. 2001. -Vol.183 (1). -P.175-176.
251. Munoz F., Starke J. Tuberculosis in children. In: Reichman LB, Hershfield ES, editors. Tuberculosis: a comprehensive international approach. -New York: Marcel Dekker. Inc., 2000. P. 553-595.
252. Munoz-Barret J., Macias-Hernandez A., Hernandez-Ramos I. et al. Comparative tuberculin reactivity to two protein derivatives // Rev Invest Clin. -1996. Vol. 48(5). - P. 377-381.
253. Murthy K., Nair S., Gothi G., Chakraborty A. Incidence of tuberculosis among newly infected population and its relation to the duration of infected status // Indian J TB. 1976. - Vol. 23. - P. 3-7.
254. Nagai S., Nagasuga T., Matsumoto J., Koda K. Isolation of tuberculin skin test reactive proteins from heated culture filtrate of Mycobacterium tuberculosis H37Rv // Am Rev Respir Dis. 1974. - Vol. 109(1).-P. 17-28.
255. Nakaoka H., Lawson L., Squire S. et al. Risk for tuberculosis among children // Emerg Infect Dis. 2006. - Vol. 12. - P. 1383-1388.
256. Nakata K., Rom W., Honda Y. et al. Mycobacterium tuberculosis enhances human immunodeficiency virus-1 replication in the lung // Am J Respir Crit Care Med. 1997.-Vol.155.-P. 996-1003.
257. Nash D., Douglass J. Anergy in active pulmonary tuberculosis. A comparison between positive and negative reactors and an evaluation of 5 TU and 250 TU skin test doses // Chest. 1980. - Vol. 77(1). - P. 32-37.
258. Nyboe J. The efficacy of the tuberculin test: an analysis based on results from 33 countries // Bull World Health Organ. 1960. - Vol. 22. - P. 537.
259. Nyboe J. The immediate effects of BCG revaccination // Bull World Health Organ. 1969. - Vol. 41(1). - P. 63 - 73. Oct; 34(5): 1005-11.
260. Olsen A., Williams A., Okkels L. et al. Protective effect of a tuberculosis subunit vaccine based on a fusion of antigen 85B and ESAT-6 in the aerosol guinea pig model // Infect Immun. 2004. - Vol. 72. - P. 6148-6150.
261. Ordway D., Costa L., Martins M. et al. Increased Interleukin-4 production by CD8 and gammadelta T-cells in healthcare workers is associated with the subsequent development of active tuberculosis // J Infect Dis. 2004. -Vol. 190(4).-P. 756-766.
262. Orme I., Lee B., Appelberg R. et al. T-cell response in acquired protective immunity to Mycobacterium tuberculosis infection // Bull Int Union TubercLung Dis. 1991. - Vol. 66(1).-P. 7-13.
263. Orme M. The latent tuberculosis bacillus (I'll let you know if I ever meet one) // Int J Tuberc Lung Dis.-2001. Vol. 5(7). - P. 589-593.
264. Pai M, Minion J, Steingart K, Ramsay A. New and improved tuberculosis diagnostics: evidence, policy, practice, and impact. // Curr Opin Pulm Med.- 2010. Vol. 16(3). - P. 271-284.
265. Pai M. Interferon-gamma assays in the immunodiagnosis of tuberculosis: a systematic review // The Lancet infectious diseases. 2004. -Vol. 4(12).-P. 761-776.
266. Pai M., Joshi R., Dogra S. et al. Serial testing of health care workers for tuberculosis using interferon-gamma assay // Am J Respir Crit Care Med. -2006. Vol. 174(3). - P. 349-355.
267. Pai M., Kalantri S., Dheda K. New tools and emerging technologies for the diagnosis of tuberculosis: part I. Latent tuberculosis.// Expert Rev Mol Diagn. 2006. - Vol. 6. - P. 413-422.
268. Pai M., Kalantri S., Menzies D. Discordance between tuberculin skin test and interferon-gamma assays // Int J Tuberc Lung Dis. 2006. - Vol. 10.-P. 942-943.
269. Pai M., Riley L., Colford J. Interferon-gamma assays in the immunodiagnosis of tuberculosis: a systematic review // Lancet Infect Dis. -2004.-Vol. 4.-P. 761-776.
270. Palmer C. BCG vaccination and tuberculin allergy // Lancet. -1952.-Vol. 1(19).-P. 935-940.
271. Palmer C., Edwards L. Identifying the tuberculous infected. The dual-test technique // JAMA. 1968. - Vol. 205. - P. 167-169.
272. Palmer C., Edwards L. Tuberculin test in retrospect and prospect // Arch Environ Health. 1967. - Vol. 15(6). - P. 792-808.
273. Palmer C., Long M. Effects of infection with atypical mycobacteria on BCG vaccination and tuberculosis // Am Rev Respir Dis. 1966. - Vol. 94(4).-P. 553-568.
274. Palmer C., Meyer S. Research contributions of BCG vaccination programs. I. Tuberculin allergy as a family trait // Public Health Rep. 1951. -Vol. 66(9).-P. 259-276.
275. Parkash O., Singh B., Pai M.Regions of differences encoded antigens as targets for immunodiagnosis of tuberculosis in humans // Scand J Immunol. 2009. - Vol. 70(4). - P. 345-357.
276. Passalent L., Khan K., Richardson R. et al. Detecting latent tuberculosis infection in hemodialysis patients: a head-to-head comparison of the T-SPOT.TB test, tuberculin skin test, and expert physician panel // Clin J Am Soc Nephrol. 2006. - P. 1-6.
277. Patel S., Parsyan A., Gunn J. et al. Risk of progression to activetuberculosis among foreign-born persons with latent tuberculosis // Chest. -2007.-Vol. 131(6).-P. 1811-1816.
278. Piana F., Codecasa L., Cavallerio P. et al. Use of a T-cell-based test for detection of tuberculosis infection among immunocompromised patients // Eur Respir J. 2006. - Vol. 28. - P. 31 -34.
279. Plant A., Watkins R., Gushulak B. et al. Predictors of tuberculin reactivity among prospective Vietnamese migrants: the effect of smoking // Epidemiol Infect. 2002. - Vol. 128(1). - P. 37-45.
280. Pollock J., McNair J., Bassett H. et al. Specific delayed-type hypersensitivity responses to ESAT-6 identify tuberculosis-infected cattle // J. Clin. Microbiol. 2003. - Vol. 41. - P. 1856-1860.
281. Porsa E., Cheng L., Seale M. et al. Comparison of a new ESAT-6/CFP-10 peptide-based gamma interferon assay and a tuberculin skin test for tuberculosis screening in a moderate-risk population // Clin Vaccine Immunol. -2006.-Vol. 13.-P. 53-58.
282. Radhakrishna S., Frieden T., Subramani R. Association of initial tuberculin sensitivity, age and sex with the incidence of tuberculosis in south India: a 15-year follow-up // Int J Tuberc Lung Dis. 2003. - Vol. 7(11). - P. 1083-1091.
283. Rangaka M., Wilkinson K., Seldon R. et al. Effect of HIV-1 infection on T-cell-based and skin test detection of tuberculosis infection // Am J Respir Crit Care Med. 2007. - Vol. 175.-P. 514-520.
284. Reed C., von Reyn C., Chamblee S. et al. Environmental risk factors for infection with Mycobacterium avium complex II Am J Epidemiol. -2006. Vol. 164(1). - P. 32-40.
285. Reichman L., O'Day R. Tuberculous infection in a large urban population II Am Rev Respir Dis. 1978. - Vol. 117(4). - P. 705-712.
286. Richards B., Kozak R., Brassard P. et al. Tuberculosis surveillance among new immigrants in Montreal // Int J Tuberc Lung Dis. 2005. - Vol. 9(8).-P. 858-864.
287. Richards N., Nelson K., Batt M. et al. Tuberculin test conversion during repeated skin testing, associated with sensitivity to nontuberculous mycobacteria II Am Rev Respir Dis. 1979. - Vol.l20(l). - P. 59-65.
288. Ridell M. Cross-reactivity between Mycobacterium tuberculosis H37Rv and various actinomycetes and related organisms // Tubercle. 1983. -Vol. 64(3).-P. 211-216.
289. Rooney J., Crocco J., Kramer S., Lyons H. Further observations on tuberculin reactions in active tuberculosis // Am J Med. 1976. - Vol. 60(4). -P. 517-522.
290. Rust P., Thomas J. A method for estimating the prevalence of tuberculosis infection //Am J Epidemiol. 1975. - Vol. 101(4). - P. 311-322.
291. Saracino A., Scotto G., Fornabaio C. et al. QuantiFERON-TB Gold In-Tube test (QFT-GIT) for the screening of latent tuberculosis in recent immigrants to Italy // New Microbiol. 2009. - Vol. 32(4). - P. 369-376.
292. Schluger N., Rom W. The host immune response to tuberculosis // Am J Respir Crit Care Med. 1998. - Vol. 157(3Ptl). - P. 679-691.
293. Schwartzman K., Loo V., Pasztor J., Menzies D. Tuberculosis infection among health care workers in Montreal // Am J Respir Crit Care Med.- 1996.-Vol. 154(4Ptl). P. 1006-1012.
294. Selwyn P., Hartel D., Lewis V. et al. A prospective study of the risk of tuberculosis among intravenous drug users with human immunodeficiency virus infection // N Engl J Med. 1989. - V. 320. - P. 545-550.
295. Sepkowitz K. Tuberculin skin testing and the health care worker: lessons of the Prophit Survey // Tuber Lung Dis. 1996. - Vol. 77(1). - P. 8185.
296. Sepulveda R., Burr C., Ferrer X. et al. Booster effect of tuberculin testing in healthy 6-year-old school children vaccinated with Bacillus Calmette-Guerin at birth in Santiago, Chile // Pediatr Infect Dis J. 1988. - Vol. 7. - P. 578-581.
297. Sepulveda R., Heiba I., Navarrete C. et al. Tuberculin reactivity after newborn BCG immunization in mono- and dizygotic twins // Tuber Lung Dis. 1994. - Vol. 75(2). - P. 138-143.
298. Shi L., North R., Gennaro M. Effect of growth state on transcription levels of genes encoding major secreted antigens of Mycobacterium tuberculosis in the mouse lung // Infect Immun. 2004. - Vol. 72(4). - P. 2420-2424.
299. Sinha D., Bang F. Protein and calorie malnutrition, cell-mediated immunity, and B.C.G. vaccination in children from rural West Bengal // Lancet. 1976.-Vol. 2(7985).-P. 531-534.
300. Soborg B., Andersen A., Larsen H. et al. Detecting a low prevalence of latent tuberculosis among health care workers in Denmark detected by M. tuberculosis specific IFN-gamma wholeblood test // Scand J Infect Dis. -2007. Vol. 39(6-7). - P. 554-559.
301. Stead W. Management of health care workers after inadvertent exposure to tuberculosis: a guide for the use of preventive therapy // Ann Intern Med. 1995. - Vol. 122(12). - P. 906-912.
302. Stead W. The new face of tuberculosis // Hosp Pract. 1969. - Vol. 4.-p. 62-68.
303. Stead W., To T. The significance of the tuberculin skin test in elderly persons // Ann Intern Med. 1987. - Vol.107. - P. 837-842.
304. Steingart K., Dendukuri N., Henry M.et al. Performance of purified antigens for serodiagnosis of pulmonary tuberculosis: meta-analysis // Clinical and Vaccine Immunology. 2009. - N. 2. - Vol. 16. - P. 260-276.
305. Stephan C., Wolf T., Goetsch U. et al. Comparing QuantiFERON-tuberculosis gold, T-SPOT tuberculosis and tuberculin skin test in HIV-infected individuals from a low prevalence tuberculosis country // AIDS. 2008. - Vol. 22.-P. 2471-2479.
306. Styblo K. Recent advances in epidemiological research in tuberculosis // Adv Tuberc Res. 1980. - Vol. 20. - P. 1-63.
307. Styblo K. The relationship between the risk of tuberculosis infection and the risk of developing infectious tuberculosis // Bull Int Union Tuberc. 1985.-Vol. 60.-P. 117-119.
308. Suciliene E., Ronne T., Plesner A. et al. Infant BCG vaccination study in Lithuania // Int J Tuberc Lung Dis. 1999. - Vol. 3(11). - P. 956-961.
309. Sutherland I. Recent studies in the epidemiology of tuberculosis, based on the risk of being infected with tubercle bacilli // Adv Tuberc Res.1976.-Vol. 19.-P. 1-63.
310. Sutherland I. The evolution of clinical tuberclosis in adolescents // Tubercle. 1966. - Vol. 47. - P. 38.
311. Sutherland R., Yang H., Scriba T. et al. Impaired IFN-gamma-secreting capacity in mycobacterial antigen-specific CD4 T cells during chronic HIV-1 infection despite longterm HAART // AIDS. 2006. - Vol. 20. - P. 821829.
312. Swaminathan S., Subbaraman R., Venkatesan P. et al. Tuberculin skin test results in HIV-infected patients in India: implications for latent tuberculosis treatment // Int J Tuberc Lung Dis. 2008. - Vol. 12(2). - P. 168173.
313. Tanaka D., Niwatsukino H., Oyama T. et al. Progressing features of atypical mycobacterial infection in the lung on conventional and high resolution CT (HRCT) images // Radiat Med. 2001. - Vol. 19. - P. 237-245.
314. TB. A global emergency, WHO, July 1994 // Lepr Rev. 1995. -Vol. 66.-P. 270-271.
315. Teixeira L., Maciel E., Dutra M. et al. Simultaneous comparison of reactivity to purified protein derivative RT-23 and Tubersol in health care workers in Vitoria, Brazil // Int J Tuberc Lung Dis. 2000. - Vol. 4(11). - P. 1074-1077.
316. Thompson N., Glassroth J., Snider D., Farer L. The booster phenomenon in serial tuberculin testing // Am Rev Respir Dis. 1979. - Vol.119(4).-P. 587-597.
317. Thye T., Browne E., Chinbuah M. et al. IL10 Haplotype Associated with Tuberculin Skin Test Response but Not with Pulmonary TB // PLoS ONE. 2009. - Vol. 4(5). - P. e5420.
318. Tissot F., Zanetti G., Francioli P. et al. Influence of bacille Calmette-Guerin vaccination on size of tuberculin skin test reaction: to what size? // Clin Infect Dis. 2005. - Vol. 40 (2). - P. 211-217.
319. Tornell E. Post-examination of BCG-material // Acta Tuberc Scand. 1947.-Vol. 21.-P. 241-273.
320. Trini M. HIV and TB: Dual immunosuppressive diseases // HIV Clinician, Spring. 2010. - Vol. 22(2,1). - P. 4-5.
321. Triverio P., Bridevaux P., Roux-Lombard P. et al. Interferon-gamma release assays versus tuberculin skin testing for detection of latent tuberculosis in chronic haemodialysis patients // Nephrol Dial Transplant. -2009. Vol. 24(6). - P. 1952-1956.
322. Trunz B., Fine P., Dye C. Effect of BCG vaccination on childhood tuberculous meningitis and miliary tuberculosis worldwide: a meta-analysis and assessment of cost-effectiveness // Lancet. 2006. - Vol. 367(9517). - P. 11731180.
323. Tsiouris S., Austin J., Toro P. et al. Results of a tuberculosis-specific IFN-gamma assay in children at high risk for tuberculosis infection // Int J Tuberc Lung Dis. 2006. - Vol. 10. - P. 939-941.
324. Tukey J., Du F., Seibert F. Lack of sensitization following repeated skin tests with standard tuberculin (PPD-S) // Am Rev Tuberc. 1950. - Vol. 62(1-A). - P. 77-86.
325. Veening G. Long term isoniazid prophylaxis. Controlled trial on INH prophylaxis after recent tuberculin conversion in young adults // Bull Int Union Tuberc.- 1968.-Vol. 41. P. 169-171.
326. Veerapathran A., Joshi R., Goswami K., et al. T-cell assays for tuberculosis infection: deriving cut-offs for conversions using reproducibility data.// PLoS ONE. 2008;3:el850.
327. Vekemans J., Lienhardt C., Sillah J. et al. Tuberculosis contacts but not patients have higher gamma interferon responses to ESAT-6 than do community controls in The Gambia // Infect. Immun. 2001. - Vol. 69. - P. 6554-6557
328. Vukmanovic-Stejic M., Reed J., Lacy K. et al. Mantoux Test as a model for a secondary immune response in humans // Immunol Lett. 2006. -Vol. 107(2).-P. 93-101.
329. Vynnycky E., Fine P. Lifetime risks, incubation period, and serial interval of tuberculosis // Am J Epidemiol. 2000. - Vol. 152(3). - P. 247-263.
330. Wang L., Turner M., Elwood R. et al. A metaanalysis of the effect of Bacille Calmette Guerin vaccination on tuberculin skin test measurements // Thorax. 2002. - Vol. 57(9). - P. 804-809.
331. Watkins R., Brennan R., Plant A. Tuberculin reactivity and the risk of tuberculosis: a review // Int J Tuberc Lung Dis. 2000. - Vol. 4(10). - P. 895903.
332. Weldingh K., Andersen P. ESAT-6/CFP10 Skin Test Predicts Disease in M. tuberculosis-Infected Guinea Pigs // PLoS ONE. 2008. - Vol. 3(4).-P. 1978.
333. Westermann J., Pabst R. Distribution of lymphocyte subsets and natural killer cells in the human body // Clin Investig. 1992. - Vol. 70. - P. 539-544.
334. Whalen C. Diagnosis of latent tuberculosis infection: measure for measure // Jama. 2005. - Vol. 293. - P. 2785-2787.
335. Whalen C., Horsburgh C., Horn D. et al. Site of disease and opportunistic infection predict survival in HIV-associated tuberculosis // AIDS1997.-Vol.11.-P. 455-460.
336. Whelan A., Hope J., Howard C. et al. Modulation of the bovine delayed-type hypersensitivity responses to defined mycobacterial antigens by a synthetic bacterial lipopeptide // Infect. Immun. 2003. - Vol. 71. - P. 64206425.
337. WHO report 2008. Geneva, WHO, 2008 (WHO/HTM/TB/2008. 393; представлено на сайте: http: www.who.int/tb/publications/globalreport/ 2008/pdf/full report, pdf).
338. WHO report 2009. Geneva, WHO, 2009 (WHO/HTM/TB/2009. 411; представлено на cafiTe:http: www.who.int/tb/publications/globalreport/ 2009/pdf/full report, pdf).
339. WHO. Certain characteristics of BCG-induced tuberculin sensitivity // Bull World Health Organ. 1955. - Vol. 12(1-2). - P. 123-141.
340. WHO. Further studies of geographic variation in naturally acquired tuberculin sensitivity H Bull World Health Organ. 1955. - Vol. 12(1-2). - P. 63-83.
341. Wilcke J., Jensen В., Ravn P. et al. Clinical evaluation of MPT-64 and MPT-59, two pro-tiens secreted from Mycobacterium tuberculosis, for skin test reagents // Tubercle Lung Dis. 1996. - Vol. 77. - P. 250-256.
342. Wilkinson К., Коп O., Newton S. et al. Effect of treatment of latent tuberculosis infection on the T cell response to Mycobacterium tuberculosis antigens // J Infect Dis. 2006. - Vol.193. - P. 354-359.
343. Woldehanna S., Volmink J. Treatment of latent tuberculosis infection in HIV infected persons // Cochrane Database Syst Rev. 2004. -(1):CD000171.
344. Wood R., Maartens G., Lombard C. Risk factors for developing tuberculosis in HIV-1-infected adults from communities with a low or very high incidence of tuberculosis // J Acquir Immune Defic Syndr. 2000. - Vol. 23. -P. 75-80.
345. Wu X., Zhang L., Zhang J. et al. Recombinant early secretedantigen target 6 protein as a skin test antigen for the specific detection of Mycobacterium tuberculosis infection // Clin, and Experiment. Immunol. 2008. -Vol. 152.-P. 81-87.
346. Zellweger J., Zellweger A., Ansermet S. et al. Contact tracing using a new T-cell-based test: better correlation with tuberculosis exposure than the tuberculin skin test // Int J Tuberc Lung Dis. 2005. - Vol. 9. - P. 1242-1247.
347. Ziegler J., Edwards M., Smith D. Exogenous reinfection in experimental airborne tuberculosis // Tubercle. 1985. - Vol. 66(2). - P. 121128.