Автореферат и диссертация по медицине (14.00.06) на тему:Коррекция окислительного стресса при транслюминальной коронарной ангиопластике и терапии ингибиторами ГМГ-КоА-редуктазы (клинико-экспериментальное исследование)
Автореферат диссертации по медицине на тему Коррекция окислительного стресса при транслюминальной коронарной ангиопластике и терапии ингибиторами ГМГ-КоА-редуктазы (клинико-экспериментальное исследование)
На правах рукописи
□03053336
Каминный Александр Иванович
КОРРЕКЦИЯ ОКИСЛИТЕЛЬНОГО СТРЕССА ПРИ ТРАНСЛЮМИНАЛЬНОЙ КОРОНАРНОЙ АНГИОПЛАСТИКЕ И ТЕРАПИИ ИНГИБИТОРАМИ ГМГ-КоА-РЕДУКТАЗЫ (клинико-экспериментальпое исследование).
14.00.06 - Кардиология 03.00.04 - Биохимия
АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук
Москва - 2007
003053936
Работа выполнена в НИИ кардиологии им.А.Л.Мясиикова ФГУ Российский кардиологический научно-проюводственпый комплекс
Росздрава
Научные руководители: Член-корреспондент РАМН,
доктор медицинских наук, профессор Валерий Владимирович Кухарчук Доктор биологических наук, профессор Вадим Зиновьевич Ланкин
Официальные оппоненты:
Доктор медицинских наук, профессор Виктор Алексеевич Люсов Доктор медицинских наук, профессор Анатолий Николаевич Бритов Доктор биологических наук, профессор Александр Александрович Болдырев
Ведущая организация:
ГОУ Московский Государственный медико-стоматологический Университет Росздрава
Защита состоится « » марта 2007 г. в 13 час. 30 мин. на заседании диссертационного совета К 208.073.02 по присуждению ученой степени доктора медицинских наук в ФГУ Российский кардиологический научно-производственный комплекс Росздрава (121552, г.Москва, 3-я Черепковская ул., дом 15а)
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГУ РКНПК
Росздрава
Автореферат разослан « » февраля 2007 года
Ученый секретарь диссертационного совета доктор медицинских наук, профессор
Сшпщын Валентин Евгеньевич
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность проблемы. В настоящее время патология сердечнососудистой системы занимает ведущее место среди неинфекционных заболеваний, в связи с чем весьма важен поиск рациональных подходов к ее терапии. В литературе имеется большое количество данных, указывающих на важную роль интенсификации свободнорадикальных процессов в этиологии и патогенезе ишемической болезни сердца (ИБС) и атеросклероза (Климов А.Н., Никульчева Н.Г., 1999; Панкин В.З, Тихазе А.К., Беленков Ю.Н., 2000-2004; Steinberg D., Witztum J.L., 2002; Lankin V., Tikhaze A., 2003; Madamanchi N.R. et al., 2005). Свободнорадикальное окисление липопротеидов низкой плотности (ЛНП) при атеросклерозе сопровождается модификацией апопротеина В в окисленных ЛНП (окси-ЛНП), причем окислительная модификация ЛНП способствует увеличению их атерогенности и активному захвату моноцитами-макрофагами в межэндотелиальном пространстве стенки сосуда с последующим образованием пенистых клеток (Климов А.Н., Никульчева Н.Г., 1999; Ланкин В.З, Тихазе А.К., Беленков Ю.Н., 2000-2004; Steinberg D., Witztum J.L., 2002; Madamanchi N.R. et al., 2005). Кластеризация пенистых клеток приводит к возникновению первичных липоидозных поражений стенки сосуда (липидные пятна), причем интенсивное накопление липидов в пенистых клетках вызывает их апоптоз с освобождением факторов, стимулирующих миграцию гладкомышечных клеток из медии в интиму и их последующую пролиферацию, что способствует созданию клеточной основы атеросклеротических бляшек, стенозированию артерий и появлению симптомов ИБС (Климов А.Н., Никульчева Н.Г., 1999; Ланкин В.З, Тихазе А.К., Беленков Ю.Н., 2000-
2004). В настоящее время для реваскуляризации коронарного русла наряду с аортокоронарным шунтированием широко применяется транслюминальная коронарная ангиопластика (ТКА). Тем не менее, одной из проблем, ограничивающих эффективность этого метода, является последующее рестенозирование (Watanabe К. et al., 1996; Беленков Ю.Н. и др., 2002). Важную роль в процессе рестенозирования играют тромбообразование и воспаление, причем продукты свободно-радикального окисления являются медиаторами и тромбообразования, и воспаления (Watanabe К. et al., 1996; Lankin V., Tikhaze A., 2003). Несмотря на отсутствие видимых успехов при попытках клинического использования витаминов-антиоксидантов, что может быть связано с объективными просчетами в проведении этих исследований (Ланкин В.З., Тихазе А.К., Беленков Ю.Н., 2003-2004; Madamanchi N.R. et al., 2005), целесообразность включения антиоксидантов в комплексную терапшо ИБС и атеросклероза обсуждается многими авторами (Ланкин В.З., Тихазе
A.К., Беленков Ю.Н., 2003-2004; (Грацианский H.A.,2002; Kuller L.H., 2001; Howes R.M., 2006). Широкое использование гиполипидемических препаратов из класса ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы (статины) выявило определенные трудности, возникающие при необходимости применения высоких доз этих препаратов, что связано с возможностью увеличения уровня печеночных трансаминаз в крови пациентов и повышением опасности развития миопатий, рабдомиолиза и почечной недостаточности (Alsheikh-Ali A.A. et al.,2005; Grundy S.M., 2005). Эти побочные эффекты статинов связаны с тем, что ингибиторы ГМГ-КоА редуктазы подавляют не только синтез холестерина (ХС), но и синтез таких важнейших природных антиоксидантов, как восстановленный коэнзим Q и антиоксидантный фермент Бе-содержащая GSH-пероксидаза (Bliznakov E.G., Wilkins D.J., 1998; Moosmann В., Behl С., 2004; Ланкин
B.З., Тихазе А.К., Беленков Ю.Н.,2004). Не вызывает сомнений, что любые попытки повысить эффективность терапии ИБС и атеросклероза
являются весьма актуальными. Исходя из этого, в настоящей работе мы изучали возможность применения низких доз синтетического фенольного антиоксиданта пробукола для уменьшения степени рестенозирования коронарных артерий после транслюминальной коронарной ангиопластики, а также исследовали возможность увеличения антиоксидантной защиты ЛНП при холестеринснижающей терапии больных ИБС путем дополнительного применения коэнзима Q.
Цель исследования: Разработка подходов к рациональной коррекции окислительного стресса при ТКА и гиполипидемической терапии ингибиторами ГМГ-КоА-редуктазы (статинами)
Задачи исследования:
1. Исследовать окисляемость ЛНП при введении высоких доз витамина Е и действие синтетического антиоксиданта пробукола в дозе 250 мг/сут на содержание продуктов свободнорадикального окисления и активность утилизирующего липопероксиды фермента GSH-пероксидазы в крови больных ИБС.
2. Изучить действие синтетического антиоксиданта пробукола в низкой суточной дозе (250 мг) на степень рестенозирования коронарных артерий после транслюминальной коронарной ангиопластики.
3. Исследовать эффективность антиоксидантного действия коэнзима Q на модели индуцированного окисления биомембран печени.
4. Изучить влияние ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы (симвастатина и аторвастатина) на окисляемость биомембран печени у интактных крыс и крыс с экспериментальной гиперхолестеринемией.
5. Исследовать влияние ингибитора ГМГ-КоА редуктазы симвастатина на синтез макроэгических фосфатов (АТФ и креатинфосфата) в миокарде крыс и на модели изолированного сердца изучить влияние
аторвастатина на сократительную функцию миокарда в норме и при моделировании окислительного стресса.
6. Исследовать влияние окислительного стресса на активность миокардиальных антиоксидантных ферментов супероксид-дисмутазы (СОД) и GSH-пероксидазы у интактных крыс, а также крыс, предварительно получавших коэнзим Q.
7. Изучить влияние факторов риска развития атеросклероза -гиперхолестеринемии и сахарного диабета 2 типа на уровень окси-ЛНП в плазме крови больных.
8. Изучить влияние ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы (правастатина, симвастатина и церивастатина) на уровень окси-ЛНП и активность GSH-пероксидазы в крови больных ИБС.
9. Исследовать уровень окси-ЛНП в плазме крови и активность эритроцитарной GSH-пероксидазы у больных ИБС при введении комбинации коэнзима Q с правастатином и пробукола с церивастатином.
Научная новизна исследования: Проведен критический анализ недостатков, отмеченных при проведении клинических исследований с использованием природных антиоксидантов, дана углубленная научно-обоснованная оценка результатов этих исследований и намечены основные пути преодоления существующих трудностей. В клинических исследованиях нами подтверждено, что высокие дозы витамина Е (400 МЕ/сут) не оказывают достоверного влияния fia окисляемость ЛНП в плазме крови больных ИБС и, следовательно, не могут быть использованы для эффективного подавления окислительного стресса при атеросклерозе. При проведении модельных экспериментов с использованием ЭПР-спектроскопии, а также в результате клинических исследований установлено, что синтетический антиоксидант пробукол в низкой суточной дозе (250 мг) не обладает гиполипидемическим
действием, однако, проявляет такую же антиоксидантную активность in vivo как и при использовании его в дозе 1000 мг/сут. Впервые показано, что использование пробукола в дозе 250 мг/сут сопровождается значительным снижением параметров, характеризующих окислительный стресс in vivo (уровень окси-ЛНП и МДА в ЛНП), повышает активность GSH-пероксидазы и существенно снижает степень рестенозирования коронарных артерий после транслюминальной коронарной ангиопластики. Установлено, что основные факторы риска развития атеросклероза - гиперхолестеринемия и сахарный диабет одновременно индуцируют образование окисленных ЛНП плазмы крови. В экспериментах на животных продемонстрировано, что восстановленная форма коэнзима Q является значительно более эффективным антиоксидантом, подавляющим свободнорадикальные процессы в биомембранах, чем комплекс витаминов-антиоксидантов и селена. Впервые обнаружено, что введение животным ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы, подавляющих биосинтез промежуточного переносчика электронов в митохондриальной цепи окисления - коэнзима Q, сопровождается достоверным снижением синтеза макроэргических фосфатов (АТФ и креатинфосфата) в миокарде экспериментальных животных, при одновременном снижении сократимости сердечной мышцы, причем в условиях окислительного стресса введение статинов приводит к более выраженному снижению сократимости миокарда. Впервые обнаружено, что при введении ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы окисляемость биомембран печени как у интактных животных, так и у животных с экспериментальной гиперхолестеринемией резко увеличивается, причем введение антиоксидантов способствует нормализации этих процессов. При проведении двойных слепых плацебо-контролируемых исследований впервые было установлено, что ингибиторы ГМГ-КоА редуктазы способны резко снижать активность зритроцитарной GSH-пероксидазы и провоцировать экстремальное
накопление окси-ЛНП в плазме крови больных ИБС, причем одновременное введение препарата коэнзима Q полностью подавляет процессы свободнорадикального окисления в ЛНП и в значительной степени способствуют сохранению исходной GSH-пероксидазной активности. Показано, что прооксидантное действие ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы возрастает в ряду: правастатин, симвастатин и церивастатин, что сопоставимо с увеличением гиполипидемической активности этих препаратов. Полученные данные подтверждают высказанные нами ранее предположения о целесообразности применения низких доз пробукола для снижения степени рестенозирования при ТКА, а также свидетельствуют о целесообразности введения коэнзима Q в комплексную холестеринснижающую терапию больных ИБС при условии биохимического тестирования основных параметров окислительного стресса.
Основные положения, выносимые на защиту:
1. Синтетический фенольный антиоксидант пробукол при применении в суточной дозе 250 мг эффективно подавляет свободнорадикальное окисление липидов в крови больных ИБС (снижает накопление окси-ЛНП и МДА в ЛНП) и увеличивает активность утилизирующей липопероксиды эритроцитарной GSH-пероксидазы, не влияя на показатели липидного обмена.
2. Снижение интенсивности свободнорадикальных процессов путем предварительного введения пробукола в дозе 250 мг/сутки за 7 дней до проведения TICA и в течение 6 месяцев после ТКА сопровождается снижением степени рестенозирования коронарных артерий.
3. Введение ингибиторов ГМГ-КоА-редукгазы экспериментальным животным (крысы) вызывает интенсификацию свободнорадикального окисления мембранных фосфолипидов печени, снижает
энергообеспечение миокарда и интенсивность сократительной функции изолированного сердца.
4. Применение ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы сопровождается накоплением окси-ЛНП и снижением активности утилизирующей липопероксиды GSH-пероксидазы, причем добавление к гиполипидемической терапии коэнзима Q подавляет прооксидантное действие статинов.
Практическая значимость работы:
1. Показано, что синтетический антиоксидант пробукол в дозе 250 мг/сут не оказывает достоверного влияния на липидный обмен, но полностью сохраняет антиоксидантные свойства, характерные для высоких доз (1000 мг/сут) этого препарата, что позволяет использовать его в качестве антиоксидантного препарата в клинике для комплексной терапии заболеваний, сопровождающихся интенсификацией свободнорадикальных процессов.
2. Установлено, что использование пробукола в дозе 250 мг/сут существенно снижает степень рестенозирования сосудов после транслюминальной коронарной ангиопластики, что повышает эффективность данного метода при минимальных дополнительных затратах.
3. Обоснована целесообразность добавления коэнзима Q к стандартной и, особенно, интенсивной терапии ингибиторами ГМГ-КоА редуктазы для снижения атерогенной окислительной модификации ЛНП.
Апробация работы и публикации: Основные положения и материалы диссертации были доложены или представлены на: 2-ом съезде биохимического общества РАН (Пущино, 1997); 10-ой международной конференции по химии органических и элементоорганических пероксидов
(Москва, 1998); 1-ой региональной конференции по медицинским наукам «Роль свободных радикалов в норме и при патологии» (Jerusalem, Israel& Amman, Jordan, 1998); международной конференции «Регуляция биологических процессов свободными радикалами» (Москва-Ярославль,
1998); 7-ом конгрессе европейского общества по исследованию атеросклероза (Geneva, Switzerland, 1998); 10-ой международной конференции по сосудистой биологии (Cairns, Australia, 1998), 5-ой международной конференции «Биоантиоксидант» (Москва, 1998); 1-ой Всероссийской конференции по проблемам атеросклероза, посвященной 100-летию со дня рождения А.Л.Мясникова (Москва, 1999); международной конференции «Антиоксиданты, адаптация и старение» (Dresden,Germany,
1999); национальной научно-практической конференции с международным участием «Свободные радикалы и болезни человека» (Смоленск, 1999); международном симпозиуме «Окислительный стресс и атеросклероз» (Oslo, Norway, 2000); 10-ой конференции международного общества по исследованию свободных радикалов (Kyoto, Japan, 2000); 6-ой международной конференции «Биоантиоксидант» (Москва, 2002); 17-ом международном конгрессе по тромбозам (Bologna, Itali, 2002); 11-ой конференции международного общества по исследованию свободных радикалов (Paris, France, 2002); 1-ом Российский съезде интервенционых кардиоангиологов (Москва, 2002); 73-ем конгрессе европейского общества по исследованию атеросклероза (Austria, Zalzburg, 2002); международной конференции «Активные формы кислорода и азота, антиоксиданты и болезни человека» (Смоленск, 2003); Российском национальном конгрессе кардиологов (Томск, 2004); 74-ом конгрессе европейского общества по исследованию атеросклероза (Seville, Spain, 2004); 12-ом Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (Москва, 2005); международном симпозиуме «Молекулярные механизмы регуляции функции клетки» (Тюмень, 2005); международном междисциплинарном конгрессе «Достижения современной медицины», (Судак, Крым, Украина, 2005); 75-ом
конгрессе европейского общества по исследованию атеросклероза (Prague, Czech Republic, 2005); 14-ой международной конференции «Новые информационные технологии в медицине, биологии, фармакологии и экологии», (Гурзуф, Крым, Украина, 2006); 14-ом международном симпозиуме по атеросклерозу (Rome, Italy, 2006).
Апробация диссертации была проведена 14 ноября 2006 г. на заседании Ученого Совета НИИ кардиологии им.А.Л.Мясникова ФГУ РКНПК Росздрава. По теме диссертации опубликовано 50 научных работ, включая 16 статей в журналах, рекомендованных ВАК РФ и 8 публикаций в зарубежных научных журналах.
Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 250 стр., состоит из 8 глав, разделов «Введение» и «Заключение», содержит 26 таблиц, 38 рисунков. Список литературы содержит 415 источников.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Клинические исследования. В клинические исследования было включено 277 пациентов (98% мужчины) в возрасте от 40 до 65 лет с гиперлипидемией 2А типа и семейной гиперхолестеринемией у которых исследовали основные параметры липидного обмена (общий ХС, ХС ЛНП, ХС ЛВП) и свободнорадикального окисления липидов (уровни окси-ЛНП и МДА в ЛНП, активности эритроцитарных СОД и GSH-пероксидазы). В различных сериях клинических исследований больные ИБС в течение 3-6 месяцев получали природный антиоксидант витамин Е (а-токоферилацетат, 400 мг/сут) или разные дозы (1000 мг/сут или 250 мг/сут) синтетического антиоксиданта пробукола («фенбутол» АО Акрихин).
Больные с гемодинамически значимыми стенозами коронарных артерий были рандомизированы на 2 группы, после чего им была проведена транслюминальная коронарная ангиопластика (в 92% случаев
со стентированием). Пациенты первой группы за 7 дней до проведения транслюминалыюй коронарной ангиопластики (ТКА) и в течение 6 месяцев после ТКА получали 250 мг/сут пробукола («алколекс» фирмы ICN Hungary) на фоне стандартной терапии, больные второй (контрольной) группы не получали каких-либо антиоксидантных препаратов как до, так и после проведения ТКА. До проведения ТКА и через 6 месяцев после ТКА всем больным проводили коронароангиографию (КАТ) и производили количественный коронарный анализ с определением минимального диаметра и степени сужения артерии на аппарате фирмы Siemens (Германия).
В первом двойном слепом плацебо контролируемом исследовании больным ИБС в течение 6 месяцев проводили терапию с включением ингибитора ГМГ-КоА-редуктазы правастатина («липостат» фирмы BristolMayers Squibb, 40 мг/сут), либо правастатина совместно с коэнзимом Q («биохинон» фирмы Pharma Nord, 60 мг/сут). Во втором двойном слепом плацебо контролируемом исследовании больным ИБС в течение 6 месяцев проводили терапию с включением ингибитора ГМГ-КоА-редуктазы церивастатина («липобай» фирмы Bayer, 0,4 мг/сут), либо церивастатина (исследование было проведено до запрета применения препарата) совместно с пробуколом («алколекс» фирмы ICN Hungary, 250 мг/сут). Кроме того, было проведено клиническое исследование в котором больные ИБС в течение 2 месяцев получали ингибитор ГМГ-КоА-редуктазы симвастатин («вазилип» фирмы KRKA, 20 мг/сут).
Транслюминальная коронарная ангиопластика. Коронарную ангиопластику проводили по стандартной методике. Выполняли предилятацию баллонном, диаметр которого подбирали согласно среднему диаметру участков артерии проксимальнее и дистальнее стеноза. Далее в пораженном сегменте либо позиционировался стент без лекарственного покрытия с его последующим расширением, либо
проводилась дальнейшая дилатация сегмента до достижения оптимального ангиографического результата. Номинальный диаметр стента соответствовал должному диаметру артерии в стенозированном участке. После проведения последней дилятации и удаления из коронарной артерии баллонного катетера и коронарного проводника выполнялось контрастирование дилятированного участка со съемкой минимум в 2-х ортогональных проекциях. При проведении контрольной КАГ, съемка выполнялась в тех же проекциях. Остаточный стеноз после стентирования составлял не более 10 %, после баллонной ангиопластики - не более 20%. Контрольная КАГ выполнялась всем пациентам через 6 мес после проведения ТКА. Исследование проводилось на аппарате «Goroscop 33» (Simens, Германия); съемка каждого стеноза проводилась как минимум в 2-х ортогональных проекциях для его лучшей визуализации. Последующий анализ полученных ангиограмм проводился с помощью системы компьютерного анализа Axiom Artis (Simens, Германия). Ангиографический рестеноз определялся как сужение артерии >50% в диаметре в месте дилятации или стентирования через 6 месяцев после проведения ТКА.
Экспериментальные животные. В экспериментальной части работы было использовано 207 половозрелых самцов крыс линии Wistar и линии WKY. Интактным крысам Wistar и крысам с алиментарной гиперхолестеринемией в течение 1 месяца через пищеводный зонд вводили симвастатин («вазилип» фирмы KRKA) или ловастатин («мевакор» фирмы MSD) соответственно, после чего в гомогенате печени исследовали кинетику аскорбат-зависимого свободнорадикального окисления мембранных фосфолипидов.
В другой серии экспериментов животным перорально в течение 1 месяца вводили симвастатин («зокор» фирмы MSD) и в миокарде определяли уровень макроэргических фосфатов. После предварительного
перорального введения аторвастатина («аторис» фирмы KRKA) в течение 1 мес на изолированном сердце крысы исследовали интенсивность сократительной функции миокарда до и после моделирования окислительного стресса путем введения в перфузат пероксида водорода. Активность миокардиальных антиоксидантных ферментов определяли до и после моделирования окислительного стресса в сердечной мышце интактных крыс линии WKY и животных той же линии, получавших в течение 6 недель 10 мг/кг солюбилизированной формы коэнзима Q («кудесан» АО Аквион).
Физиологические методы исследования. Изолированные сердца крыс перфузировали при 37° через аорту раствором Кребса-Хензелейта рН 7,4 , содержащим 11 мМ глюкозы и насыщенным карбогеном (5%С02+95%02). Перфузию осуществляли со скоростью, близко соответствующей величине 10 мл/мин/г. Через левое предсердие в левый желудочек (ЛЖ) сердца вводили латексный баллончик, заполненный физиологическим раствором. Объём баллончика устанавливали на уровне, при котором диастолическое давление в ЛЖ составляло 12-14 мм рт.ст. и поддерживали его на постоянном уровне. Давление в аорте и ЛЖ, а также dP/dt регистрировали при помощи электроманометров Gould Statham Р23 Db (США) на полиграфе Gould Brush 2400 (США). В условиях изоволюмического режима основными критериями силы сокращений миокарда и его энергорасхода были развиваемое давление и показатель интенсивности сократительной функции (ИСФ, произведение развиваемого давления и частоты сердечных сокращений), который прямо пропорционален величине потребления кислорода сердечной мышцей. Схема опыта включала определение максимальной ИСФ при градуальном повышении скорости перфузии в 2 раза, после чего не меняя скорость перфузии в миокарде индуцировали окислительный стресс посредством введения в перфузат 100 мкМ Н202 при помощи инфузионного насоса
Sage с регулируемой скоростью, позволяющей поддерживать постоянную концентрацию Н202. Исследования проводили совместно с сотрудниками лаборатории экспериментальной патологии сердца (руководитель - проф. В.И.Капелько) ФГУ РКНПК Росздрава.
Биохимические методы исследования. Для выделения ЛНП плазму крови больных подвергали двухкратному центрифугированию в градиенте плотности NaBr в течение 2 час, при 42000 об/мин. в угловом роторе 50Ti при 4° в рефрижераторной ультрацентрифуге Beckman L-8 (США) согласно методике Тертов В.В. и соавт.(2000). Окисление ЛНП инициировали при 37° введением в среду инкубации 30 мкМ CuS04 и через фиксированные интервалы времени измеряли кинетику накопления липогидропероксидов (конъюгированные диены) при 233 нм на спектрофотометре Hitachi 220А (Япония). Содержание липидных пероксидов в ЛНП, изолированных из плазмы крови больных, определяли специфичным колориметрическим методом, используя реакцию окисления ионов экзогенного Fe2+ липогидропероксидами и анализируя содержание стехиометрически образованного Fe3+ при помощи цветной реакции с ксиленолоранжем до и после специфичного восстановления органических (липидных) гидропероксидов трифенилфосфином (Nourooz-Zadeh J. et al., 1994; HermesLima M. et al., 1995).
Кинетику окисления эндогенных полиеновых липидов биомембран печени исследовали после индукции свободнорадикальных реакций при восстановлении эндогенного железа аскорбиновой кислотой по модифицированному методу Ланкина В.З. и Михеевой Л.П. (1975). Содержание МДА (продукты, реагирующие с 2-тиобарбитуровой кислотой) определяли, анализируя количество образовавшихся триметиновых комплексов на спектрофотометре Hitachi 220А (Япония) при 532 нм. Окисляемость биомембран печени характеризовали величиной, обратной продолжительности периода индукции -1/т.
Активность Бе-содержащей GSH-пероксидазы в тканях экспериментальных животных и эритроцитах человека определяли в сопряженной глутатионредуктазной системе по скорости окисления NADPH при 340 нм с гидропероксидом трет-бутила в качестве субстрата по модифицированному методу Ланкина В.З. и Гуревич С.М. (1976), используя химический анализатор FP-900 Labsystems Оу (Финляндия) в кинетическом режиме работы. Активность Си,7п-СОД в тканях экспериментальных животных и эритроцитах человека определяли по ингибированию восстановления синего нитротетразолия супероксидным радикалом, генерируемым в системе ксантин-ксантиноксидаза, определяя кинетику образования формазана на регистрирующем спектрофотометре Hitachi-557 (Япония) при 560 нм (Beauchamp С., Fridovich J., 1971).
Определение содержания убихинона Qa и Qw, и а-токоферола в сыворотке крови крыс проводили с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) с электрохимическим детектированием на приборе Coulochem II, («Environmental Scinces Associate, Inc.», США) с последующей обработкой данных при помощи компьютерной программы той же фирмы. Исследования проводили совместно с сотрудниками группы физико-химических методов исследования (руководитель - проф. Э.К.Рууге) ФГУ РКНПК Росздрава.
Для определения содержания макроэргических фосфатов крыс анестезировали уретаном и кусочки миокарда отбирали охлажденными в жидком азоте щипцами Волленбергера, после чего гомогенизировали в холодной 6% HCLO4 (10 мл/г ткани) в ледяной бане с помощью гомогенизатора Ultra-Turrax Т-25 (IKA-Labortechnik, США). Белки осаждали центрифугированием в рефрижераторной центрифуге Beckman 3-6В (США) при 3000g в течение 10 мин, супернатанты нейтрализовали 5 М К2СО3 до рН 7,4. Сухую массу образцов определяли взвешиванием части осадков после экстракции HCLO4 и высушивали в течение 12 часов при 110° до постоянной массы. Содержание АТФ и фосфокреатина (РСг) в тканевых экстрактах
определяли спектрофотометрически, используя глюкозо-6-фосфат-дегидрогеназу, гексокиназу и кретинкиназу (Р1багепко 0.1. й а1.,1996). Содержание АДФ определяли энзиматически с помощью пируваткиназы и лактагдегидрогеназы (Р15агепко 0.1 & а1.,1996), для определения уровня креатина (Сг) в тканях использовали реакцию с а-нафтолом и 2,3-бутандионом (Яетег К.А. а1.,1981). Анализы производили с использованием спектрофотометра Уапасо-2000 (Япония). Содержание общего креатина (£Сг) рассчитывали по формуле: 1Сг=РСг + Сг. Содержание адениннуклеотидов, фосфокреатина (РСг) и креатина (Сг) в тканях выражали в микромолях на 1 грамм сухой массы. Исследования проводили совместно с сотрудниками лаборатории метаболизма сердца (руководитель - д.б.н. О.И.Писаренко) ФГУ РКНПК Росздрава.
Содержание общего ХС и триглицеридов в плазме крови определяли при помощи энзиматического метода на химическом анализаторе РР-900 ЬаЬзуз1етз Оу (Финляндия) с использованием тест-наборов фирмы Вое1ищег. Содержание ХС в ЛВП определяли после осаждения ЛНП и ЛОНП марганцево-гепариновым реактивом.
Кроме особо оговоренных, все биохимические исследования проводили в лаборатории биохимии свободнорадикальных процессов ФГУ РКНПК Росздрава.
Биофизические методы исследования. Долгоживущие феноксильные радикалы пробукола в пробукол-содержащих частицах ЛНП выявляли методом ЭПР-спектрометрии. Для этого использовали ЛНП (2 мг белка/мл), изолированные из плазмы крови больных ИБС, получавших 250 мг/сут пробукола в течение 3-х месяцев. Ненасыщенные фосфолипиды наружного слоя ЛНП окисляли С-15 липоксигеназой ретикулоцитов кролика (Ьапкш V. еХ а!., 1985) до накопления 0,5 мкмолей ацилгидропероксидов/мг белка ЛНП, после чего гомолиз гидропероксидов с образованием алкоксильных лилидных радикалов инициировали путем
внесения в среду 25 мкМ гемина. Регистрацию спектров ЭПР феноксильных радикалов пробукола, образовавшихся при взаимодействии с алкоксильными радикалами фосфолипидов ЛНП, проводили согласно методу (Шумаев К.Б., Рууге Э.К. и др.,1997) на спектрометре Varian Е-109Е (США) в аэробных условиях при 25° и при модуляции магнитного поля 0,25 мТл (частота СВЧ-поля 100 кГц ; мощность - 100 мВт). Исследования проводили совместно с сотрудниками группы физико-химических методов исследования (руководитель - проф. Э.К.Рууге) ФГУ РКНПК Росздрава.
Статистическая обработка результатов. Статистическую обработку результатов исследований проводили с использованием пакета статистических программ STATISTICA 6.0. Оценку достоверности межгрупповых различий проводили с помощью непараметрического метода Манна-Уитни. Достоверность динамики показателей на фоне лечения проводили с помощью непараметрического метода по Вилкоксону. Для выявления взаимосвязи между степенью стенозирования коронарных артерий и биохимическими показателями применяли непараметрический метод корреляционного анализа по Spearmen. Результаты биохимических показателей представлены в виде среднего значения и ошибки среднего (M+SEM), ангиографических данных - в виде среднего значения и стандартного отклонения (M±STD); различия считали достоверными при р<0,05.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
Интенсификация процессов свободнорадикального окисления сопутствует развитию многих патологических состояний (Ланкин В.З., Тихазе А.К., Беленков Ю.Н., 2000-2001; Зенков Н.К. и др., 2001; Lankin V., 2003; Меньшикова Е.Б., Ланкин В.З. и др., 2006). В регуляции
свободнорадикальных процессов участвуют ферментные системы утилизации активных форм кислорода (супероксиддисмутаза - СОД, каталаза) и органических гидропероксидов (глутатионпероксидаза - вйИ-пероксидаза), а также природные низкомолекулярные антиоксиданты, такие как фенольная (восстановленная) форма коэнзима С? (0Н2) и витамины-антиоксиданты: а-токоферол (витамин Е, а-Т-ОН), Р-каротин (провитамин А) и аскорбиновая кислота (витамин С). Схема, иллюстрирующая роль основных природных антиоксидантов в регуляции свободнорадикальных реакций в организме представлена на рис. 1.
Рис.1. Основные пути неферментативной и ферментативной регуляции свободнорадикальных прог)ессов в клетке
Отсутствие выраженных клинических эффектов в работах по использованию витаминов-антиоксидантов в комплексной терапии ИБС и атеросклероза (см.обзоры Панкин В.З., Тихазе А.К., Беленков Ю.Н., 20032004; МасЬтапсЫ КЯ. е1 а1., 2005) вызвало определенное падение
интереса к продолжению такого рода исследований у отдельных научных групп как в нашей стране, так и за рубежом (Грацианский H.A., 2002; Kuller L.H., 2001; Howes R.M., 2006). Тем не менее, проведенный нами критический анализ результатов позволяет заключить, что при проведении этих работ были сделаны существенные упущения, не позволяющие однозначно трактовать полученные данные. Так, при клинических исследованиях эффективности витаминов-антиоксидантов в комплексной терапии ИБС и атеросклероза не проводили определения каких-либо параметров, характеризующих интенсивность свободнорадикальных процессов (например, уровень окси-ЛНП) у обследованных пациентов (Ланкин В.З., Тихазе А.К., Беленков Ю.Н., 2003-2004). При этом не учитывалось, что многократное превышение физиологических доз (соответствующих суточной потребности) при использовании витамина Е и других витаминов-антиоксидантов способно привести к инверсии антиоксидантного действия в прооксидантное, как это было продемонстрировано в экспериментах in vitro и in vivo (Ланкин В.З. и др., 1999; Ланкин В.З., Тихазе А.К., Беленков Ю.Н., 2003-2004). Более того, не были приняты к сведению данные о том, что а-токоферол (витамин Е), транспортируемый в периферические ткани частицами ЛНП, сравнительно слабо влияет на окисляемость этих липид-белковых структур, тогда как основная роль в защите частиц ЛНП от свободнорадикального окисления принадлежит другому природному жирорастворимому антиоксиданту - восстановленной (фенольной) форме коэнзима Q, который, в отличие от а-токоферола, способен синтезироваться в организме млекопитающих (Stocker R. et al., 1991). В соответствии с этими данными, в проведенном нами клиническом исследовании не было выявлено достоверных изменений окисляемости ЛНП после добавления фармакологической формы витамина Е - (а-токоферилацетата) к стандартной терапии больных ИБС в течение 3 месяцев в дозе многократно превышающей суточную потребность (400
мг/сут). Исходя из сказанного можно заключить, что для ограничения атерогенной окислительной модификации ЛНП при атеросклерозе целесообразно применять антиоксиданты отличные от витамина Е, причем весьма перспективны в этом отношении могут быть коэнзим Р-содержащие препараты. Кроме того, в каждой конкретной ситуации, вероятно, должны использоваться определенные антиоксиданты, выбор которых должен быть научно обоснован, а их антирадикальная эффективность должна быть подтверждена соответствующими экспериментальными исследованиями с использованием адекватных методов.
В настоящей работе с использованием биохимических и физико-химических методов было показано, что окислительный стресс, выражающийся в значительном накоплении окси-ЛНП у больных ИБС действительно имеет место при наличии фактора риска атеросклероза -гиперхолестеринемии, причем накопление окси-ЛНП, хотя и в значительно меньшей степени, возможно также у больных ИБС без признаков нарушения липидного обмена. Важно отметить, что наличие другого фактора риска атеросклероза - сахарного диабета 2 типа способствует развитию окислительного стресса у больных в еще большей степени, чем гиперхолестеринемия у больных ИБС. Таким образом, важнейшие факторы риска атеросклероза одновременно являются и факторами, стимулирующими интенсификацию свободнорадикальных процессов в организме. В связи с этим очевидно, что попытки ограничения окислительного стресса при ИБС могут внести существенный вклад в комплексную терапию этого заболевания.
Известно, что синтетический фенольный антиоксидант пробукол использовался в качестве холестеринснижающего препарата, хотя он обладал слабой гиполипидемической активностью (Ланкин В.З. и др., 1991; Кигиуа М., Кигиуа Б., 1993). В настоящее время необходимость в применении пробукола отпала в связи с созданием эффективных
холестеринснижающих препаратов из класса ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы. Тем не менее, в различных модельных системах и в экспериментах на животных пробукол проявляет антиоксидантные свойства (Ланкин В.З. и др., 1991; Kuzuya М., Kuzuya F., 1993), в связи с чем мы рассмотрели возможность его применения не в качестве гиполипидемического агента, а в качестве высокоэффективного нетоксичного антиоксиданта, для чего представлялось необходимым существенно снизить суточную дозу вводимого препарата. Исследовав влияние экзогенного пробукола на окисляемость ЛНП из плазмы крови больных ИБС in vitro мы показали, что в диапазоне концентраций 10-50 мкМ пробукол эффективно тормозит окисление нативных ЛНП, причем при увеличении содержания пробукола в среде инкубации до 100 мкМ было отмечено полное ингибирование их окисления. Поскольку фармакокинетика пробукола была хорошо изучена Зайцевой Т.М. и др. (1994), на основании результатов этих исследований и собственных экспериментальных данных мы рассчитали, что стационарная концентрация пробукола в циркулирующей крови, близкая 25-50 мкМ может быть достигнута путем двухкратного приема препарата по 125 мг с интервалом 12 часов. Следовательно, суточная доза пробукола 250 мг/сут, теоретически должна быть достаточной для обеспечения эффективной защиты ЛНП от окислительной модификации в кровяном русле in vivo. Выбор пробукола определялся также и тем, что как было неоднократно продемонстрировано (Тихазе А.К. и др., 1997; Kumar D. et al., 2001; Ланкин В.З. и др., 2004) in vivo он может действовать не только по прямому антиоксидантному механизму (как «ловушка радикалов»), но и опосредованно вызывая экспрессию активности утилизирующего липопероксиды фермента - GSH-пероксидазы в клетках и тканях. Проведенные нами исследования показали, что пробукол в суточной дозе 250 мг достоверно не влияет на изменение основных параметров липидного обмена, однако, существенно задерживает окисление ЛНП in
vivo, причем антиоксидантная эффективность пробукола в дозе 250 мг/сут по всем основным параметрам была сравнима с таковой в дозе 1000 мг/сут (рис.2А, 2Б и 2В). В частности, пробукол в суточной дозе 1000 мг или 250 мг в равной степени (различия статистически недостоверны) увеличивал продолжительность лаг-фазы свободнорадикального окисления ЛНП, снижал стационарную концентрацию окси-ЛНП (рис.2Е) и уровень МДА в крови, а также в равной степени способствовал увеличению активности утилизирующего липопероксиды фермента - эритроцитарной GSH-пероксидазы (рис.2В). При этом было показано, что при окислении пробукол-содержащих ЛНП из плазмы крови больных ИБС, получавших 1000 мг или 250 мг препарата, амплитуды сигналов ЭПР, соответствующие концентрации феноксильных радикалов в ЛНП не отличаются (рис.2А). Результаты этих исследований свидетельствуют о том, что пробукол в дозе 250 мг/сут встраивается в ЛНП в количествах, достаточных для эффективной детоксикации липидных алкоксильных радикалов в этих частицах.
Полученные данные дали возможность попытаться использовать низкие дозы пробукола (250 мг/сут) для подавления рестенозирования коронарных артерий после ТКА. Как известно, на процессы рестенозирования существенное влияние оказывают тромбоз и воспаление в зоне вмешательства. В связи с этим важно отметить, что по литературным данным образование природного антитромбогенного фактора - простациклина существенно зависит от уровня окси-ЛНП, поскольку липогидропероксиды являются мощными ингибиторами простациклинсинтазы (Ланкин В.З. и др., 2000-2001; Зенков Н.К. и др., 2001; Lankin V., 2003). Кроме того, активные формы кислорода и производные ферментативного свободнорадикального окисления арахидоновой кислоты (лейкотриены) являются медиаторами воспаления
О - 1000 мг/сут О - 250 мг/сут
3240 3280
магнитное поле, Г с
10 15 20 25 30 | Длительность терапии, недели
Начало лечения
10 15 20 25
| Длительность терапии, недели Начало лечения
В
Рис. 2. Сигналы ЭПР феноксильныхрадикалов пробукола в ЛНП больных ИБС, получавших 1000 мг/сут (сверху) или 250мг/сут (снизу) пробукола в течение 3 месяцев (А); изменение уровня окси-ЛНП (Б) и активности СБН-пероксидазы (В) в крови больных ИБС в процессе терапии разными дозами пробукола (за 1 принимали исходный уровень окси-ЛНП и
исходную активность ОБН-пероксидазы).
(Ланкин В.З. и др., 2000-2001; Зенков Н.К. и др., 2001). Исходя из вышесказанного, применение антиоксидантов для ограничения тромбогенеза и воспаления в зоне вмешательства при ТКА представляется вполне оправданным. Более того, до начала настоящей работы независимыми группами японских и канадских авторов было показано, что пробукол в суточной дозе 1000 мг способен снижать частоту рестенозов после ТКА (Yokoi H. et al., 1997; Tardif J.C. et al., 1997). Существенным недостатком цитированных работ явилось отсутствие данных об интенсивности свободнорадикальных процессов до и после проведения ТКА, что не давало возможности судить о механизме действия пробукола на процесс рестенозирования. На основании литературных данных и собственных результатов представлялось целесообразным изучить влияние низкой дозы пробукола (250 мг/сут) на рестенозирование коронарных артерий после ТКА с одновременным исследованием основных показателей, характеризующих интенсивность свободнорадикальных реакций (уровень окси-ЛНП и МДА в ЛНП, активность GSH-пероксидазы) в крови пациентов. В результате проведенных исследований было показано, что исходные уровни окси-ЛНП (рис.3) и МДА в ЛНП, равно как исходная активность GSH-пероксидазы (рис.3) в крови больных контрольной (ТКА без пробукола) и опытной (ТКА с пробуколом) групп достоверно не отличались, причем величины этих показателей в контрольной группе не претерпели достоверных изменений и через 6 месяцев наблюдения (рис.3). В то же время, 6 месячная терапия больных с использованием 250мг/сут пробукола после проведения ТКА сопровождалась достоверным снижением уровней окси-ЛНП (рис.3) и МДА в ЛНП (в 2,1 и 1,9 раза соответственно), а также существенным увеличением (в 1,7 раза) активности GSH-пероксидазы (рис.3) в крови больных.
Уровень липопероксидов
1,5-
Активность GSH-пероксидазы
1,0-
0,5'
0,0.
/
ЧЬ
rfi
гЬ
1,5
1,0
-0,5
0,0
исходно через исходно через 6 мес. 6 мес.
Рис. 3. Изменение уровня липогидропероксидов (окси-ЛНП) и активности GSH-пероксидазы в крови больных ИБС до и через б месяцев после ТКА [заштрихованные столбики - опытная группа (терапия пробуколом в дозе 250мг/сут); светлые столбики -контроль (за 1 приняты исходные значения исследуемых параметров; * - р<0,05)]
По данным ангиографического обследования в группе больных, получавших 250 мг/сут пробукола через 6 месяцев после проведения ТКА минимальный диаметр артерий был достоверно больше (рис.4) на 15% по сравнению с таковым в контрольной группе больных, не получавших пробукол (р<0,01). Аналогичные данные были получены при определении степени рестенозирования в группе больных, получавших 250 мг/сут пробукола и контрольной группы (рис.4), в которых остаточный стеноз коронарных артерий в среднем по группе составлял через 6 месяцев после проведения ТКА 19% и 32,5% соответственно (р<0,01).
исходно сразу через 6 мес после после ТКА ТКА
исходно сразу через 6 мес.
после после ТКА ТКА
Рис. 4. Изменения минимального диаметра сосуда и степени его сужения до и через б месяцев после транслюминальной коронарной ангиопластики (заштрихованные столбики - терапия пробуколом в дозе 250 мг/сут.; светлые столбики - контроль). * - р<0,01
Важно отметить, что у больных через 6 месяцев после проведения ангиопластики на фоне приема пробукола (250 мг/сут) выявлена достоверная положительная корреляция между содержанием вторичного продукта свободнорадикального окисления липидов (МДА в ЛНП) в крови и степенью рестенозирования коронарных артерий (г=0,54; р<0,001), а также обратная корреляция между содержанием МДА в ЛНП и минимальным диаметром коронарных артерий (г=0,49; р<0,01). Следовательно, полученные результаты позволяют утверждать, что наши теоретические предположения о возможности снижения рестенозирования коронарных артерий после ТКА путем подавления проявлений окислительного стресса с помощью антиоксидантов подтверждаются данными количественных биохимических и ангиографических исследований. Из этих данных также можно сделать вывод о
перспективности дальнейших исследований в этом направлении, что может привести к обоснованию практического применения пробукола (или других антиоксидантов) для увеличения эффективности ТКА.
Как уже было отмечено, важной проблемой, связанной с использованием антиоксидантов при ИБС и атеросклерозе является необходимость подавления атерогенной окислительной модификации ЛИП. Широкое применение ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы (статинов), наряду с большим прогрессом в лечении гиперлипидемий, с нашей точки зрения (В.ЗЛанкин, А.К.Тихазе, А.И.Каминный, Ю.Н.Беленков, 2004) и по мнению других исследователей (Bliznakov E.G., Wilkins D.J., 1998; Moosmann В., Behl С., 2004) таит в себе определенную опасность, поскольку одновременно с ингибированием синтеза ХС происходит ингибирование синтеза двух весьма эффективных природных антиоксидантов - фенольной формы коэнзима Q и антиоксидантного фермента GSH-пероксидазы (см. схему на рис.5). Проведенное нами исследование по оценке эффективности действия различных природных антиоксидантов показало, что на свободнорадикальное окисление биомембран печени крысы ß-каротин оказывал минимальное влияние, тогда как предварительное введение животным комплекса витаминов-антиоксидантов и селена, хотя и существенно тормозило окисление, но по своей эффективности было не сопоставимо с действием коэнзима Q, который проявлял наибольшую антиокислительную активность из всех испытанных нами природных антиоксидантов (рис.6). При исследовании влияния введения животным ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы на окисление биомембран в печени нативных крыс (симвастатин) и крыс с экспериментальной гиперхолестеринемией (ловастатин) было показано, что в обоих случаях введение ингибитора ГМГ-КоА редуктазы достоверно (р<0,05) увеличивает окисляемость биомембран в 1,9 и 2,1 раза соответственно (рис. 7А,Б).
Ацетоацетил-КоА
ß - Ги др о к с и - ß - м ети л г л i о т а р и л - К о А
Ингибиторы ГМГ-КоА редуктазы (стат1шы)
Мевалоновая кислота
V
Мевалонилпирофосфат
V
Изоиентилпирофосфат
Селенопротеин Геранилпирофосфат
I
Se-содержащая глутатпонпероксидаза
Фарнезилпирофосфат
Убихинон-10 (CoQio)
„ ft Сквален
J
Холестерин
Рис. 5. Схема подавления биосинтеза убихинона (CoQw) и холестерина при введении ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы (по данным Bliznakov E.G., Wilkins D.J., 1998 и Moosmann В., Behl С., 2004 с изменениями)
Известно, что при свободнорадикальном окислении мембранных фосфолипидов происходит существенное повреждение мембранных структур гепатоцитов, зачастую приводящее к их дезинтеграции (Панкин В.З., Тихазе А.К., Беленков Ю.Н.,2001; Зенков Н.К. и др., 2001). Можно предположить, что наблюдаемое нами значительное увеличение окисляемости биомембран печени лежит в основе ее повреждения при терапии ингибиторами ГМГ-КоА редуктазы (особенно при приеме
1 2 3
Рис. 6. Влияние перорального введения в течение 1 месразличных природных антиоксидантов в эквшюлярных количествах на ингибирование свободнорадикального окисления в биомембранах печени крысы (1 - каротин; 2 - Р-каротин+витамины Е+С+селен; 3 - коэнзим 0 * -р<0,05
фсля туты м/н/ты
Рис. 7. Влияние симвастатина (А) и ловастатина (Б) на кинетику свободнорадикального окисления биомембран печени интактных крыс (А) и крыс с алиментарной гиперхолестеринемией (Б); 1 - контроль, 2 - опыт (приведены характерные кинетические кривые; количественные данные см. текст на стр.28)
больших доз), что может быть причиной свободнорадикального повреждения печени, приводящего к повышению уровня печеночных трансаминаз в крови.
Можно полагать, что действие ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы оказывает определенное влияние на метаболизм миокарда. Прежде всего, это может проявляться в нарушении биоэнергетики миокарда, поскольку ингибиторы ГМГ-КоА редуктазы, подавляя синтез коэнзима Q -промежуточного переносчика электронов в митохондриальной дыхательной цепи, вероятно, способны воздействовать на процессы энергообразования в сердечной мышце. Действительно, в наших исследованиях, проведенных совместно с сотрудниками д.б.н. О.И.Писаренко, было показано, что введение ингибитора ГМГ-КоА-редуктазы симвастатина достоверно (р<0,05) снижает синтез основных макроэргических фосфатов - АТФ и фосфокреатина в миокарде на 13% и 18% соответственно. Это может иметь отношение к проявлению друтого побочного действия статинов - развитию миопатий, причем наиболее эффективные статины, вызывающие резкое подавление активности ГМГ-КоА редуктазы и, тем самым, резкое ингибирование биосинтеза коэнзима Q, создают наибольшую опасность проявления признаков миопатии с возможным развитием рабдомиолиза и почечной недостаточности (Alsheikh-Ali A.A. et al., 2005). Кроме того, снижение энергообеспечения миокарда, особенно в условиях окислительного стресса, не может не сказываться на его физиологической функции и, прежде всего, на его сократимости. В исследованиях, проведенных нами совместно с сотрудниками проф. В.И.Капелько (рис.8), было показано, что при введении аторвастатина сократимость изолированного сердца крысы достоверно снижается на 13% (р<0,05). В то же время, при введении в перфузат пероксида водорода (моделирование окислительного стресса) сократимость миокарда животных, получавших аторвастатин достоверно
снижалась на 39% (р<0,05) по сравнению с соответствующим контролем (миокард крыс без введения статина).
1,0-
>5
О
X
Л
С
0) ч:
к- 0)
Н н
«$
О. О
т о
о X
о н
л о
н о
о
X 3"
ш
О X X >> ■8-
ш
н
X
5
0,8-
0,6-
0,4-
0,2 J
0,0
Й
-статин +статин -статин +статин
норма
окислительныи стресс (40 мин.)
Рис. 8. Изменение интенсивности сократительной функции изолированного миокарда крысы до (норма) и после моделирования окислительного стресса у интактных животных и животных, получавших аторвастатин (за I принимали ИСФ интактных животных до моделирования окислительного стресса). *- р<0,05
В процессе индуцируемого пероксидом водорода окислительного стресса в изолированных сердцах крыс отмечено достоверное снижение активности ключевых антиоксидантных ферментов - СОД и СБН-пероксидазы (на 38% и 24,5% соответственно), что может быть связано с частичной инактивацией этих ферментов под действием активных форм кислорода (Панкин В.З., Тихазе А.К., Беленков Ю.Н., 2000). После
предварительного перорального введения животным в течение 1 мес препарата коэнзима СЬо его содержание в плазме крови крыс (по данным ВЭЖХ-анализа) возрастало в 9,8 раза, причем моделирование окислительного стресса в миокарде этих животных не приводило к достоверному изменению активности СОД и С8Н-пероксидазы. Более того, в миокарде крыс, получавших коэнзим <3, при моделировании окислительного пресса удалось выявить сильную положительную корреляцию между интенсивностью сократительной функции миокарда и активностью СОД или ОБН-пероксидазы в сердечной мышце (г=0,91 и г=0,94 соответственно; р<0,05), что указывает на ведущую роль коэнзима О и антиоксидантных ферментов в защите миокарда от окислительного стресса.
Приведенные выше данные явились экспериментальным обоснованием необходимости исследования проявлений окислительного стресса у больных, получающих терапию различными ингибиторами ГМГ-КоА редуктазы, которые согласно схеме на рис. 5 способны подавлять биосинтез коэнзима и, в соответствии с литературными данными (Ьаакзопеп И. е! а1, 1995; МоЛепзеп Б. е! а1, 1997) вызывают реальное снижение уровня коэнзима 0 в ЛНП больных. Исходя из этого, нами было проведено двойное слепое плацебо-контролируемое исследование, в котором больные ИБС получали в течение 6 месяцев либо ингибитор ГМГ-КоА редуктазы правастатин и плацебо коэнзима (2, либо правастатин совместно с коэнзимом СХ В результате было показано, что при монотерапии правастатином уровень окси-ЛНП в крови больных неуклонно увеличивается и к 6 мес достоверно (р<0,05) возрастает на 30% от исходного уровня (рис.9,10), тогда как в крови больных, получавших правастатин с коэнзимом С) уровень окси-ЛНП снижался более чем вдвое уже через 1 мес после начала терапии, а со 2 по 6 мес составлял не более 20-30% от исходного уровня (рис.9,10).
л =г
X
Ф
3 х л
о о
X
5
Рис. 9. Изменение уровня окси-ЛНП и активности СЪН-пероксидазы в крови больных, получавших в течение б месяцев правастатин+плацебо
коэнзима <2 (светлые столбики) или правастатин+коэнзим (2 (заштрихованные столбики); уровень показателей до терапии принят за
единицу, *-р<0,05
Монотерапия правастатином провоцирует не только увеличение уровня окси-ЛНП (рис.9), но и резкое снижение активности утилизирующего липопероксиды фермента - селен-содержащей ОБН-пероксидазы в крови больных (рис.9) в период с 4 по 6 мес наблюдения (почти на 80% от исходного уровня), что является экспериментальным подтверждением справедливости метаболической схемы, представленной на рис.5. В крови больных, получавших правастатин+коэнзим О активность ОБН-пероксидазы снижалась не столь резко и к 6 мес составляла около 60% от исходного уровня (рис.9). При монотерапии больных ИБС симвастатином в течение 2 месяцев уровень окси-ЛНП в крови больных также достоверно возрастал в 2,5 раза по сравнению с исходным (рис.10).
Рис.10. Уровень липопероксидов вЛНП (окси-ЛНП) в крови больных, получавших правастатин (2), симвастатин (3) и г/еривастатин (4) в течение 6, 2 и бмес соответственно по сравнению с соответствующими контролями (1); уровень окси-ЛНП в группе больных, не получавших статины, в каждом исследовании принят за единицу; * -р<0,05
Во втором двойном слепом плацебо-контролируемом исследовании больные ИБС получали в течение б мес либо ингибитор ГМГ-КоА-редуктазы церивастатин и плацебо пробукола, либо неривастатин совместно с пробуколом в суточной дозе 250 мг. Следует отметить, что наше исследование было проведено в 1999-2000 гг., т.е. в тот период, когда церивастатин широко использовался в клинической практике, до появления данных о повышенном риске миопатии и рабдомиолиза при применении этого препарата (2001 г.), что привело к прекращению его выпуска ((лтипс1у 8.М., 2005). Результаты проведенных нами исследований показали, что при монотерапии церивастатином содержание окси-ЛНП в крови больных резко увеличилось к 3-му мес лечения и оставалось до конца периода наблюдения (6 мес) на уровне в 6-7 раз превышающем
исходный (рис.10), тогда как в группе больных, получавших церивастатин с 250 мг/сут пробукола за 6 мес терапии не было отмечено достоверного изменения содержания окси-ЛНП по сравнению с исходным уровнем.
Суммируя результаты наших исследований можно утверждать, что полученные данные хорошо согласуются с метаболической схемой, представленной на рис.5 и свидетельствуют о том, что при терапии ингибиторами ГМГ-КоА-редуктазы в крови больных ИБС может происходить значительное накопление атерогенных окси-ЛНП вследствие подавления биосинтеза коэнзима Q, а также существенное снижение активности селен-содержащей GSH-пероксидазы вследствие подавления биосинтеза селенопротеинов. Из этого можно сделать вывод, что снижая биосинтез двух важнейших природных антиоксидантов (фенольная форма коэнзима Q, GSH-пероксидаза), ингибиторы ГМГ-КоА-редуктазы обладают прооксидантным действием и способны усиливать проявления окислительного стресса, имеющего место при ИБС и атеросклерозе (см. стр. 21). Как видно из представленных результатов, прооксидантное действие ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы было продемонстрировано нами в многочисленных физиологических и биохимических опытах с использованием экспериментальных животных, а также в разнообразных клинических исследованиях, что усиливает доказательную базу нашей работы. Данные диссертации позволяют сделать логичные предположения о механизме возникновения негативных эффектов, отмеченных при терапии ингибиторами ГМГ-КоА-редуктазы, таких как увеличение активности печеночных трансаминаз в крови пациентов, миопатия, рабдомиолиз и почечная недостаточность (Alsheikh-Ali A.A. et al.,2005). Полученные в нашей работе экспериментальные данные указывают также на потенциальную опасность снижения энергообеспечения миокарда и его сократительной функции при действии ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы. С другой стороны, результаты нашего исследования свидетельствуют о перспективности применения коэнзима Q для снижения уровня
атерогенных окси-ЛНП и защиты антиоксидантных ферментов при окислительном стрессе. По нашему мнению совместное применение ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы и коэнзима 0 для лечения больных ИБС позволит существенно снизить негативные побочные эффекты статинов (особенно при использовании высоких доз этих препаратов) и существенно повысить эффективность и безопасность холестеринснижающей терапии.
Выводы :
1. Синтетический антиоксидант пробукол в дозе 250 мг/сут не оказывает влияния на липидный обмен, но полностью сохраняет эффективность антиоксидантного действия, характерного для высоких (1000 мг/сут) доз этого препарата, тогда как природный антиоксидант витамин Е в дозе 400 мг/сут не оказывает достоверного влияния на окисляемость ЛНП плазмы крови больных ИБС.
2. Применение синтетического антиоксиданта пробукола в дозе 250 мг/сут сопровождается снижением выраженности окислительного стресса и уменьшением степени рестенозирования коронарных артерий после ТКА, причем выявлена достоверная корреляция между объективными показателями, характеризующими степень рестенозирования и уровнем вторичных продуктов свободнорадикального окисления в крови пациентов.
3. Обнаружено, что при инициированном окислении биомембран печени крыс коэнзим О является наиболее эффективным из исследованных природных антиоксидантов ф-каротин; комплекс витаминов-антиоксидантов и селена).
4. Установлено, что окисляемость биомембран печени под действием ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы (симвастатин и ловастатин) резко возрастает как у нативных крыс, так и у крыс с экспериментальной
гиперхолестеринемией, при этом, одновременное введение антиоксидантов способно полностью подавить индуцированный статинами окислительный стресс в печени.
5. Показано, что введение ингибитора ГМГ-КоА редукгазы симвастатина крысам сопровождается достоверным снижением синтеза макроэргических фосфатов (АТФ и креатинфосфат) в миокарде, причем при использовании модели изолированного сердца крысы обнаружено, что сократимость миокарда резко снижается у животных, предварительно получавших ингибитор ГМГ-КоА редуктазы аторвастатин, а индукция окислительного стресса приводит к еще большему снижению сократимости миокарда у этих животных.
6. Показано, что активность ключевых антиоксидантных ферментов (СОД и ОБН-пероксидазы) при окислительном стрессе в миокарде крыс резко снижается, но полностью сохраняется у животных, предварительно получавших коэнзим (3, причем у этих крыс выявлена сильная положительная корреляция между активностью антиоксидантных ферментов и показателем интенсивности сократительной функции миокарда.
7. Установлено, что интенсивность свободнорадикального окисления ЛНП существенно возрастает в крови больных ИБС при наличии таких факторов риска развития атеросклероза как гиперхолестеринемия и сахарный диабет 2 типа.
8. Обнаружено, что применение ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы (правастатин, симвастатин и церивастатин) сопровождается увеличением уровня атерогенных окси-ЛНП в плазме крови больных ИБС, при этом наиболее эффективный из исследованных холестеринснижающих препаратов церивастатин за 3-6 месяцев терапии увеличивает уровень окси-ЛНП в 6-7 раз по сравнению с исходным.
9. Показано, что при терапии больных ИБС с гиперхолестеринемией комбинирование ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы с антиоксидантами (правастатина с коэнзимом Q или церивастатина с пробуколом) предотвращает накопление атерогенных окси-ЛНП в плазме крови, причем при использовании одного правастатина активность GSH-пероксидазы резко снижается, но значительно возрастает при комбинировании правастатина с коэнзимом Q.
Практические рекомендации:
1. Определение уровня окси-ЛНП и активности эритроцитарной GSH-пероксидазы может быть использовано в качестве дополнительных критериев оценки тяжссти заболевания и контроля эффективности и безопасности проводимой терапии (особенно при интенсивной гиполипидемической терапии с использованием ингибиторов ГМГ-КоА редуктазы).
2. Для профилактики рестенозирования коронарных артерий после ТКА может быть рекомендовано применение синтетического антиоксиданта пробукола в дозе 250 мг в сутки за неделю до вмешательства и в течение последующих 6 месяцев.
3. Рекомендовать использование препарата коэнзима Q в дозе 60 мг/сут в комбинации с ингибиторами ГМГ-КоА редуктазы при проведении интенсивной терапии ингибиторами ГМГ-КоА редуктазы для снижения атерогенной окислительной модификации ЛНП.
СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ
1. Lankin V., Tikhaze A., Shumayev К., Nagler L., Kozachenko A., Kaminnyi A., Vyortkin A. - The action of antioxidants on the LDL free radical oxidatoin rate. Atherosclerosis, 1997, v. 134, № 1/2, p.204.
2. Тихазе A.K., Коновалова Г.Г., Михин В.П., Наглер Л.Г., Козаченко А.И., Каминный А.И., Каминная В.И., Верткин А.Л. - Перспективы использования антиоксидантов в комплексной терапии атеросклероза. В кн.: Биоантиоксидант, Изд-во ТГУ, Тюмень, 1997, с. 55-57.
3. Тихазе А.К., Коновалова Г.Г., Гуревич С.М., Козаченко А.И., Каминный А.И., Верткин А.Л., Ланкин В.З. - Влияние природных и синтетических антиоксидантов на чувствительность липопротеидов низкой плотности и биомембран к свободнорадикальному перекисному окислению. Тез. стенд, сообщ. 2-го съезда биохимич. общества РАН, ПНЦ РАН, Пущино, 1997, ч. 1, с. 239-240.
4. Тихазе А.К., Коновалова Г.Г., Козаченко А.И., Гуревич С.М., Наглер Л.Г., Зайцева Т.М., Каминный А.И., Титов В.Н., Кухарчук В В., Ланкин В.З. - Антиоксидант пробукол ингибирует накопление гидропероксидов в липопротеинах низкой плотности плазмы крови человека. Тез. 10-ой международной конф. по химии органич. и элементоорганич. пероксидов, ИХФ РАН, Москва, 1998, В 17.
5. Tikhaze A., Lankin V., Shumaev К., Gurevich S., Nagler L., Kozachenko A., Konovalova G., Kaminnyi A., Vyortkin A. - The influence of endogenous antioxidants on the susceptibility of LDL to free radical oxidation. Abstr. the 1-st Regional Meet, on Med. Sci. " The roles of free radicals in health and deseases ", Jerusalem, Israel & Amman, Jordan, 1998, p. 93.
6. Tikhaze A., Lankin V., Konovalova G., Gurevich S., Kozachenko A., Nagler 1., Shumaev K., Kaminnyi A., Kaminnaya V., Vyortkin A., Samuilov Ya. - Susceptibility of low dencity lipoproteins to free radical oxidation
during antioxidative therapy. Abstr. Int. Conf. "Regulation of biological processes by free radical", Moscow - Yaroslavl, 1998, L7.
7. Tikhaze A., Lankin V., Konovalova G., ICozachenko A., Gurevich S., Nagler L., Shumaev K., Kaminnyi A., Kaminnaya V., Vyortkin A. - The influence of in vitro antioxidants supplementation on the oxidative LDL susceptibility. Abstr. 7-th EAS Congr., Geneva, Switzerland, 1998, p. 156.
8. Tikhaze A., Lankin V., Konovalova G., Kozachenko A., Gurevich S., Nagler L., Shumaev K., Kaminnyi A., Kaminnaya V., Vyortkin A. - The natural and synthetic antioxidants in the prevention of atherogenic LDL modification. Abstr. 10-th Intern. Vascular Biol. Meet., Cairns, Australia, 1998,p.19.
9. Тихазе А.К., Коновалова Г.Г., Козаченко А.И., Гуревич С.М., Наглер Л.Г., Зайцева Т.М., Каминный А.И., Титов В.Н., Кухарчук В.В., Ланкин В.З. - Влияние антиоксиданта пробукола на свободнорадикальное окисление липопротеинов низкой плотности плазмы крови человека. Тез. 5-ой международн. конф. "Биоантиоксидант", ИБХФ РАН, Москва, 1998, с.32.
10.Тихазе А.К., Коновалова Г.Г., Гуревич С. М., Козаченко А.И., Наглер Л.Г., Каминный А.И., Рогинский В.А., Верткин А.Л., Самуилов Я.Д., Ланкин В.З. - Влияние природных и синтетических антиоксидантов на чувствительность ненасыщенных липидов мембран и липопротеидов к свободнорадикальному окислению. Тез. 5-ой международн. конф. "Биоантиоксидант", ИБХФ РАН, Москва, 1998, с.ЗЗ.
11.Tikhaze А.К., Lankin V.Z., Konovalova G.G., Kaminnyi A.I., Kaminnaya V.I. - The natural and synthetic antioxidants in the atherosclerosis therapy. Abstr. SFFR (Europe) Summer Meeting «Antioxidants, Adaptation, Aging», Dresden, Germany, 1999, PI04.
12.Тихазе A.K., Ланкин B.3., Каминный А.И., Шумаев К.Б., Кухарчук В.В. - Пробукол в терапии атеросклероза. Мат. 1-ой Всероссийск. конф. по
проблемам атеросклероза, посвященной 100-летию со дня рождения А.Л.Мясникова, Москва, 1999, сЛ 67.
13.Тихазе А.К., Ланкин В.З., Коновалова Г.Г., Шумаев К.Б., Каминный
A.И., Козаченко А.И., Гуревич С.М., Наглер Л.Г., Зайцева Т.М., Кухарчук В.В. - Антиоксидант пробукол является эффективной ловушкой липидных радикалов в липопротеинах низкой плотности in vitro и in vivo. Бюлл. эксп. биол. мед., 1999, т.128, № 8, с.186-189.
14.Тихазе А.К., Ланкин В.З., Коновалова Г.Г., Каминный А.И., Каминная
B.И. - Комплексная терапия атеросклероза с использованием природных и синтетических антиоксидантов. Цитология, 1999, т.41, №9, с.778.
15.Тихазе А.К., Ланкин В.З., Коновалова Г.Г., Каминный А.И., Каминная В.И. - Синтетические и природные антиоксиданты в предотвращении гиперлипопероксидемии при атеросклерозе. Сборник трудов национальной научно-практич. конф. с международным участием «Свободные радикалы и болезни человека», Смоленск, 1999, с. 108-109.
16.Ланкин В.З., Тихазе А.К., Каминная В.И., Каминный А.И., Коновалова Г.Г., Кухарчук В.В. - Интенсификация свободнорадикального окисления липопротеидов низкой плотности в плазме крови больных ИБС in vivo при терапии ингибитором ГМГ-КоА-редуктазы правастатином и подавление липопероксидации убихиноном Q-10. Бюлл. эксп. биол. мед., 2000, т.129, № 2, с.176-179.
17.Каминный А.И., Тутунов B.C., Каминная В.И, Тихазе А.К., Ланкин В.З. - Увеличение активности глутатионпероксидазы в крови больных ИБС при применении антиоксидантного препарата «Адрузен цинко». Бюлл. эксп. биол. мед., 2000, т.129, № 3, с.277-279.
18.Tikhaze A., Lankin V., Konovalova G., Kaminnyi A., Tutunov V., Kukharchuk V. - The using of different antioxidants in the atherosclerosis therapy. Abstr. Symp. «Oxidative stress & atherosclertosis», Oslo, Norway, 2000, № 048, p.59.
19.Tikhaze A., Lankin V., Konovalova G., Kaminnyi A., Kamiimaya V., Tutunov V., Kukharchuk V. - Prevention of LDL free radical oxidation during atherosclerosis by different antioxidants. Abstr. 10th Biennial Meeting of the Soc. for Free Radic. Res. Intern., Kyoto, Japan, 2000, № 010-7, p.51.
20.Lankin V., Tikhaze A., Konovalova G., Kaminnyi A., Kaminnaya V. - The antioxidative therapy of atherosclerosis with using of natural and synthetic antioxidants. Atherosclerosis, 2000, v.151, № 1, p.308.
21.Панкин B.3., Тихазе A.K., Коновалова Г.Г., Писаренко О.И., Каминный А.И., Тутунов B.C., Каминная В.И., Шепелькова Г.С., Кухарчук В.В. -Свободнорадикальное окисление липопротеинов низкой плотности in vivo при терапии атеросклероза ингибиторами р-гидрокси-р-метилглутарил-коэнзим А редуктазы (статинами) и защитное действие природных антиоксидантов. Тез.докл. 6-ой международн. конф. «Биоантиоксидант», ИБХФ РАН, 2002, с.339-341.
22.Каминный А.И., Панкин В.З., Самко А.Н., Тихазе А.К., Коновалова Г.Г., Левицкий И.В., Созыкин А.В., Проваторов С.И., Перепелица Е.И., Кухарчук В.В. - Антиоксидант пробукол как перспективный препарат для снижения опасности рестенозирования коронарных сосудов после баллонной ангиопластики. Тез.докл. 6-ой международн. конф. «Биоантиоксидант», ИБХФ РАН, 2002, с.229-231.
23.Коротаева А.А., Проваторов С.И., Самойлова Е.В., Каминный А.И.-Уровень секреторной фосфолипазы Аг в сыворотке крови как предиктор рестеноза после коронарной ангиопластики. Тер.Архив 2002, №4, с. 12-15.
24.Kaminnyi A.I., Kukharchuk V.V., Lankin V.Z., Samko A.N. - Effect of low dosage of an antioxidant probucol on the development of restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty (PTCA). Free Radic. Biol. Med., 2002, v.33(suppl.l), S226.
25.Kaminniy A.I., Kukharchuk V.V., Lankin V.Z., Samko A.N. - Influence of an antioxidant Probucol in a dosage of 250 mg/day on the frequency of
restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty (PTCA). Atherosclerosis, 2002, v.3, (suppl.2), p. 134.
26.Kaminniy А.1., Kukharchuk V.V., Levitsky I.V., Sozikin A.V., Lankin V.Z., Samko A.N. - Effect of low dosage of an antioxidant probucol on the development of restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty (PTCA). Abstr. of 17-th international congress on thrombosis, Bologna, Itali, 2002, p.61.
27.А.И. Каминный, И.В. Левицкий, A.B. Созыкин, Е.И. Перепелица, С.И.Проваторов, А.Н. Самко, В.З. Ланкин, В В. Кухарчук - Влияние антиоксиданта пробукола в дозе 250 мг/сут на частоту рестенозов после транслюминальной коронарной ангиопластики. Материалы 1-го Российского съезда интервенционных кардиоангиологов, Москва, 2002, с. 80.
28.Kaminniy A.I., Lankin V.Z., Samko A.N., Kukharchuk V.V. - Effect of antioxidant probucol in low dosage on the development of restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty (PTCA). - Abstr. of Int.Conf. " Reactive oxygen and nitrogen species, antioxidants and human health", Smolensk, Russia, 2003, p.61.
29.Lankin V.Z., Tikhaze A.K., Kukharchuk V.V., Konovabva G.G., Pisarenko O.I., Kaminnyi A.I., Shumaev K.B., Belenkov Yu.N. - Antioxidants decreases the intensification of low density lipoprotein free radical peroxidation during therapy with statins. Mol. Cell. Biochem., 2003, v. 249, №1/2, p.129-140.
30.Каминный А.И., Ланкин B.3., Кухарчук B.B. Самко А.Н. -Антиоксидантный эффект пробукола в дозе 250 мг/сут на частоту возникния рестенозов после транслюминальной баллонной коронарной ангиопластики. Кардиоваскулярная терапия и профилактика,2004, т.З, №4, с.211.
31.Недосугова Л.В., Тихазе А.К., Лисина М.О., Агеев Ф.Т., Арзамасцева Н.Е., Каминный А.И., Кухарчук В.В., Ланкин В.З. - Липопероксидация
липопротеидов низкой плотности при заболеваниях сердечнососудистой системы и сахарном диабете. Кардиоваскулярная терапия и профилактика, 2004, т.З, №4, с.354.
32.Kaminniy A.I., Lankin V.Z., Samko A.N., Kukharchuk V.V. - Antioxidant effect of low dosage of Probucol on the development of restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty (PTCA). Atherosclerosis, 2004, v.5,№l (suppl.), p. 126.
33.Lankin V.Z., Tikhaze A.K., Kaminniy A.I., Kukharchuk V.V.- Influence of statins on LDL in vivo peroxidation. Atherosclerosis, 2004, v.5, №1 (suppl.), p.131.
34.Панкин B.3., Тихазе A.K., Каминный А.И., Беленков Ю.Н. -Антиоксиданты и атеросклероз: критический анализ проблемы и направление дальнейших исследований. Патогенез, 2004, №1, с.71-86.
35.Лакомкин В.Л., Коновалова Г.Г., Каленикова Е.И., Заббарова И.В., Каминный А.И., Тихазе А.К., Ланкин В.З., Рууге Э.К., Капелько В.И. -Изменение антиоксидантного статуса миокарда под влиянием коэнзима Q-10 при окислительном стрессе. Биохимия, 2005, т.70, № 1, с.79-84.
36.Каминный А.И., Ланкин В.З., Самко А.Н., Созыкин А.В., Проваторов С.И., Коновалова Г.Г., Перепелица Е.И., Тихазе А.К., Кухарчук В.В., Беленков Ю.Н. - Антиоксидант пробукол в низкой суточной дозе снижает частоту и степень рестенозирования коронарных артерий после транслюмин&чьной баллонной ангиопластики. Бюлл. эксп. биол. мед., 2005, т.139, №2, с.183-185.
37.Ланкин В.З., Лисина М.О., Арзамасцева Н.Е., Коновалова Г.Г., Недосугова Л.В., Каминный А.И., Тихазе А.К., Агеев Ф.Т., Кухарчук В.В., Беленков Ю.Н. - Окислительный стресс при атеросклерозе и диабете. Бюлл. эксп. биол. мед., 2005, т.140, №1, с.41-43.
38.А.К.Тихазе, Г.Г.Коновалова, В.3.Ланкин, А.И. Каминный, В.И.Каминная, Э.К.Рууге, В.В.Кухарчук - Влияние убихинона Qio и витаминов-антиоксидантов на свободнорадикальное окисление
фосфолипидов биомембран печени крысы. Бюлл. эксп. биол. мед., 2005, т.140, №2, с.181-183.
39.Tikhaze А.К., Lankin V.Z., Kaminniy A.I., Kukharchuk V.V.- Statins and LDL in vivo modification. Atherosclerosis, 2005, v.6/1, №1 (suppl.), p.80.
40.Ланкин B.3., Тихазе A.K., Коновалова Г.Г., Каминный А.И., Арзамасцева Н.Е., Шепелькова Г.С. - Модификация белков при окислительном и карбонильном стрессе. Тез.докл. международн. междисциплинарного конгресса «Достижения современной медицины», Судак, Крым, Украина, 2005, с.108-110.
41.Тихазе А.К., Ланкин В.З., Коновалова Г.Г., Каминный А.И., Арзамасцева Н.Е., Кухарчук В.В. - Коэнзим Q и прооксидантный эффект холестеринснижающих препаратов из класса ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы. Труды Международного симпозиума "Молекулярные механизмы регуляции функции клетки", изд-во ТГУ, Тюмень, 2005, с.17-18.
42.Тихазе А.К., Ланкин В.З., Каминный А.И., Кухарчук В.В. -Возможность увеличения эффективности холестеринснижающих препаратов из класса ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы. Тез.докл. XII Российского национального конгресса «Человек и лекарство», Москва, 2005, с.566.
43.Korotaeva A., Samolova I., Kaminniy А.. - The catalitical activity secretory phospholipase A2 is involves in restenosis development after percutaneous transluminal coronary angioplasty (PTCA). Moll. Cell. Biochem., 2005, v.270, № 1/2, p. 107-113.
44.Каминный А.И., Ланкин B.3., Каминная В.И., Перепелица Е.И., Шувалова Ю.А., Самко А.Н., Кухарчук В.В. - Положительное влияние антиоксиданта пробукола на частоту и степень рестенозирования коронарных артерий после транслюминальной баллонной коронарной ангиопластики. Кардиоваскулярная терапия и профилактика, 2006, № 5, с.32-35.
45.Tikhaze A., Lankin V., Kaminnyi A., Arzamastseva N., Kukharchuk V. -Pro-oxidant action of statins. Atherosclerosis, 2006, v.7, issue 3, p.585.
46.Тихазе A.K., Коновалова Г.Г., Каминный А.И., Лакомкин В.Л., Капелько В.И. - Коэнзим Q как ингибитор прооксидантных эффектов холестерин-снижающих препаратов. Материалы XIV международн. конф. «Новые информационные технологии в медицине, биологии, фармакологии и экологии», Гурзуф, Крым, Украина, 2006, с.414-415.
47.Ланкин В.З., Тихазе А.К., Лисина М.О., Коновалова Г.Г., Арзамасцева Н.Е., Каминный А.И., Недосугова Л.В. - Окислительный стресс при ишемической болезни сердца и сахарном диабете 2 типа (обзор литературы). Пульмонология, 2006, №12
48.Каминный А.И., Ланкин В.З., Перепелица Е.И., Коновалова Г.Г., Самко А.Н., Тихазе А.К., Кухарчук В.В., Беленков Ю.Н.- Связь процессов свободнорадикального окисления липидов с эффективностью коронарной ангиопластики у больных ишемической болезнью сердца. Бюлл. эксп. биол. мед., 2007, т. , №2
49.Ланкин В.З., Иванова М.В., Коновалова Г.Г., Тихазе А.К., Каминный А.И., Кухарчук В.В. - Влияние ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы и витаминов-анти оксидантов на свободнорадикальное окисление липидов печени крыс. Бюлл. эксп. биол. мед., 2007, т. , №4
50.Лакомкин В.Л., Капелько В.И., Ланкин В.З., Коновалова Г.Г., Каминный А.И. - Влияние ингибитора ГМГ-КоА-редуктазы аторвастатина на сократимость изолированного сердца крыс в норме и при окислительном стрессе. Бюлл. эксп. биол. мед., 2007, т. ,№5
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ АДФ - аденозиндифосфат АТФ - аденозинтрифосфат
ВЭЖХ - высокоэффективная жидкостная хроматография
ИБС - ишемическая болезнь сердца
ИСФ - интенсивность сократительной функции миокарда
КАТ - коронароангиография
ЛВП - липопротеиды высокой плотности
ЛЖ - левый желудочек
ЛНП - липопротеиды низкой плотности
ЛОНП - липопротеиды очень низкой плотности
МДА - малоновый диальдегид
СОД - супероксиддисмутаза
ТКА - транслюминальная коронарная ангиопластика ТГ - триглицериды ХС - холестерин
ЭПР - электронный парамагнитный резонанс Сг - креатин
ОБН-пероксидаза - глутатионпероксидаза
ИАОРН - никотинамидадениндинуклеотидфосфат восстановленный РСг - фосфокреатин
Принято к исполнению 14/02/2007 Исполнено 15/02/2007
Заказ № 103 Тираж: 120 экз.
Тииография «11-й ФОРМАТ» ИНН 7726330900 115230, Москва, Варшавское ш., 36 (495) 975-78-56 www.autoreferat.ru
Оглавление диссертации Каминный, Александр Иванович :: 2007 :: Москва
Список сокращений . Введение.
Глава I. Свободнорадикапьное окисление при атеросклерозе.
Глава 2. Возможные причины неудач антиоксидантной терапии.33
Глава 3. Клиническое использование антиоксиданта пробукола и возможные перспективы этих исследований.
3.1. Результаты использования пробукола в экспериментальных моделях.54
3.2. Результаты клинического использования пробукола у больных ИБС.63
Глава 4. Эффективность пробукола в дозе 250 мг/сут в инвазивной кардиологии.79
Глава 5. Влияние ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы на процессы свободнорадикального окисления в печени экспериментальных животных.119
Глава 6. Влияние ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы на сократимость изолированного сердца и содержание макроэргических фосфатов в тканях экспериментальных животных.133
Глава 7. Атерогенная окислительная модификация липопротеидов низкой плотности и влияние на нее терапии статинами.
7.1. Содержание окси-ЛНП о плазм« крови пациентов с атеросклерозом., 151
7.2. Исследование по изучению возможности применения а-токоферола с цепью предотвращения процессов ПО Л ьортшизме.,„155
7.3. Влияние стати пои нд окисляемость ЛМП при тераннн больных ИБС.163
7.3.1. Влияние праиастатнна на окисляемость ЛМП при терапии больных ИБС.166
7.3.2. Влияние цернвастатнна на окисляемость ЛИП прн терапии больных ИБС .«.179
7.3.3. Влияние симвастатнна на окисляемость ЛИП при терапии больных
ИБС,.,,.188
Глава 8, Основные клинические инструментальные н лабораторные методы исследования.,,. . .„„,.„,196
Введение диссертации по теме "Кардиология", Каминный, Александр Иванович, автореферат
В настояшее время патология сердечно-сосудистой системы занимает ведущее место среди неинфекционных заболеваний, в связи с чем, весьма важен поиск рациональных подходов к ее терапии. В последние годы получено большое количество результатов, указывающих на важную роль окислительного стресса в этиологии и патогенезе заболеваний сердечнососудистой системы [4,27,28,36,354,400,406]. При атеросклерозе окислительная модификация атерогенных ЛНП способствует увеличению их атерогенности и активному захвату ЛНП моноцитами-макрофагами с последующим образованием пенистых клеток. При апоптозе макрофаги освобождают факторы, способствующие миграции гладкомышечных клеток из медии в интиму с их последующей пролиферацией, что способствует созданию клеточной основы атеросклеротичеекой бляшки, стенозированию артерии и появлению симптомов ИБС [117,242,312]. В настоящее время для реваскуляризации коронарного русла наряду с аортокоронарным шунтированием применяется транслюминальная коронарная ангиопластика (ТКА). Тем не менее, одной из проблем, ограничивающих эффективность этого метода, является последующее рестенозирование [389]. Важную роль в процессе рестенозирования играет тромбообразование и последующая воспалительная реакция, причем продукты свободнорадикального окисления являются медиаторами и тромбообразования, и воспаления [312]. Несмотря на отсутствие видимых успехов при попытках клинического использования антиоксидантов при ИБС, что может быть связано с объективными ошибками в планировании подобных исследований, теоретическая целесообразность их использования, подтвержденная в целом ряде работ является очевидной [27]. В настоящее время обсуждаются определенные трудности, возникающие при широком использовании статинов, особенно при необходимости применения высоких доз этих препаратов, что б сопровождается повышением уровня печеночных трансаминаз в крови пациентов, а также возможностью развития миопатий [56,304]. Эти осложнения объяснимы, учитывая, что статины, являясь ингибиторами ГМГКоА-редуктазы, одновременно подавляют не только синтез ХС, но и синтез важнейших природных антиоксидантов [122], таких как коэнзим Q ! 0 и антиоксидантный фермент глутатионпероксидазу (GSH-пероксидазу). Не вызывает сомнений, что любые попытки повысить эффективность терапии ИБС и атеросклероза являются весьма актуальными. Исходя из этого, в настоящем исследовании мы изучали возможность применения синтетического антиоксиданта пробукола для снижения степени рестенозирования коронарных артерий после транслюминальной коронарной ангиопластики и стентирования, а также рассмотрели вопрос о повышении эффективности холестеринснижающей терапии больных ИБС путем дополнительного введения коэнзим Q-содержащих препаратов.Цель исследования: Разработка подходов к рациональной коррекции окислительного стресса при ТКА и гиполипидемической терапии ингибиторами ГМГ-КоА-редуктазы (статинами) Задачи исследования: 1. Исследовать окисляемость ЛНП при введении высоких доз витамина Е и действие синтетического антиоксиданта пробукола в дозе 250 мг/сут на содержание продуктов свободнорадикального окисления и активность утилизирующего липопероксиды фермента GSHпероксидазы в крови больных ИБС.
2. Изучить действие синтетического антиоксиданта пробукола в низкой суточной дозе (250 мг) на степень рестенозирования коронарных артерий после транслюминальной коронарной ангиопластики.3. Исследовать эффективность антиоксидантного действия коэнзима Q на модели индуцированного окисления биомембран печени.4. Изучить влияние ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы (симвастатина и аторвастатина) на окисляемость биомембран печени у интактных крыс и крыс с экспериментальной гиперхолестеринемией.5. Исследовать влияние ингибитора ГМГ-КоА-редуктазы симвастатина на синтез макроэгических фосфатов (АТФ и креатин фосфата) в миокарде крыс и на модели изолированного сердца изучить влияние аторвастатина на сократительную функцию миокарда в норме н при моделировании окислительного стресса.6. Исследовать влияние окислительного стресса на активность миокардиальных антиоксидантных ферментов супероксид-дисмутазы (СОД) и GSH-пероксидазы у интактных крыс, а также крыс, предварительно получавших коэнзим Q.7. Изучить влияние факторов риска развития атеросклероза гиперхолестеринемии и сахарного диабета 2 типа на уровень оксиЛНП в плазме крови больных.8. Изучить влияние ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы (правастатина, симвастатина и церивастатина) на уровень окси-ЛНП и активность GSH-пероксидазы в крови больных ИБС.
9. Исследовать уровень окси-ЛНП в плазме крови и активность эритроцитарной GSH-пероксидазы у больных ИБС при введении комбинации коэнзима Q с правастатином и пробукола с церивастатином.Научная новизна исследования: Проведен критический анализ недостатков, отмеченных при проведении клинических исследований с использованием природных антиоксидантов, дана углубленная научнообоснованная оценка результатов этих исследований и намечены основные пути преодоления существующих трудностей. В клинических исследованиях нами подтверждено, что высокие дозы витамина Е (400 МЕ/сут) не оказывают достоверного влияния на окисляемость ЛНП в плазме крови больных ИБС и, следовательно, не могут быть использованы для эффективного подавления окислительного стресса при атеросклерозе. При проведении модельных экспериментов с использованием ЭПРспектроскопии, а также в результате клинических исследований установлено, что синтетический антиоксидант пробукол в низкой суточной дозе (250 мг) не обладает гиполипидемическим действием, однако, проявляет такую же антиоксидантную активность in vivo как и при использовании его в дозе 1000 мг/сут. Впервые показано, что использование пробукола в дозе 250 мг/сут сопровождается значительным снижением параметров, характеризующих окислительный стресс in vivo (уровень оксиЛНП и МДА в ЛНП), повышает активность GSH-пероксидазы и существенно снижает степень рестенозирования коронарных артерий после транслюминальной коронарной ангиопластики. Установлено, что основные факторы риска развития атеросклероза - гиперхолестеринемия и сахарный диабет одновременно индуцируют образование окисленных ЛНП плазмы крови. В экспериментах на животных продемонстрировано, что восстановленная форма коэнзима Q является значительно более эффективным антиоксидантом, подавляющим свободнорадикальные процессы в биомембранах, чем комплекс витаминов-антиоксидантов и селена. Впервые обнаружено, что введение животным ингибиторов ГМГКоА-редуктазы, подавляющих биосинтез промежуточного переносчика электронов в митохондриальной цепи окисления - коэнзима Q, сопровождается достоверным снижением синтеза макроэргических фосфатов (АТФ и креатинфосфата) в миокарде экспериментальных животных, при одновременном снижении сократимости сердечной мышцы, причем в условиях окислительного стресса введение статинов приводит к более выраженному снижению сократимости миокарда. Впервые обнаружено, что при введении ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы окисляемость биомембран печени как у интактных животных, так и у животных с экспериментальной гиперхолестеринемией резко увеличивается, причем введение антиоксидантов способствует нормализации этих процессов. При проведении двойных слепых плацебо-контролируемых исследований впервые было установлено, что ингибиторы ГМГ-КоА-редуктазы способны резко снижать активность эритроцитарной GSH-пероксидазы и провоцировать экстремальное накопление окси-ЛНП в плазме крови больных ИБС, причем одновременное введение препарата коэнзима Q полностью подавляет процессы свободнорадикального окисления в ЛНП и в значительной степени способствуют сохранению исходной GSHпероксидазной активности. Показано, что прооксидантное действие ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы возрастает в ряду: правастатин, симвастатин и церивастатин, что сопоставимо с увеличением гиполипидемической активности этих препаратов. Полученные данные подтверждают высказанные нами ранее предположения о целесообразности применения низких доз пробукола для снижения степени рестенозирования при ТКА, а также свидетельствуют о целесообразности введения коэнзима Q в комплексную холестеринснижаюшую терапию больных ИБС при условии биохимического тестирования основных параметров окислительного стресса.Основные положения, выносимые на защиту: 1. Синтетический фенольный антиоксидант пробукол при применении в суточной дозе 250 мг эффективно подавляет свободнорадикальное окисление липидов в крови больных ИБС (снижает накопление окси-ЛНП и МДА в ЛНП) н увеличивает активность утилизирующей липопероксиды эритроцитарной GSH-пероксидазы, не влияя на показатели липидного обмена.2. Снижение интенсивности свобод норади кал ьных процессов путем предварительного введения пробукола в дозе 250 мг/сутки за 7 дней до ю проведения ТКА и в течение 6 месяцев после ТКА сопровождается снижением степени рестенозирования коронарных артерий.3- Введение ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы экспериментальным животным (крысы) вызывает интенсификацию свободнорадикального окисления мембранных фосфолипидов печени, снижает энергообеспечение миокарда и интенсивность сократительной функции изолированного сердца.4. Применение ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы сопровождается накоплением окси-ЛНП и снижением активности утилизирующей липопероксиды GSH-пероксидазы, причем добавление к гиполипидемической терапии коэнзима Q подавляет прооксидантное действие статинов.Практическая значимость работы: 1. Показано, что синтетический антиоксидант пробукол в дозе 250 мг/сут не оказывает достоверного влияния на липидный обмен, но полностью сохраняет антиоксидантные свойства, характерные для высоких доз (1000 мг/сут) этого препарата, что позволяет использовать его в качестве антиоксидантного препарата в клинике для комплексной терапии заболеваний, сопровождающихся интенсификацией свободнорадикальных процессов.2. Установлено, что использование пробукола в дозе 250 мг/сут существенно снижает степень рестенозирования сосудов после транслюминальной коронарной ангиопластики, что повышает эффективность данного метода при минимальных дополнительных затратах.3. Обоснована целесообразность добавления коэнзима Q к стандартной и, особенно, интенсивной терапии ингибиторами ГМГ-КоАредуктазы для снижения атерогенной окислительной модификации лнп.
Заключение диссертационного исследования на тему "Коррекция окислительного стресса при транслюминальной коронарной ангиопластике и терапии ингибиторами ГМГ-КоА-редуктазы (клинико-экспериментальное исследование)"
Результаты исследования
ТерШИ* симластатнном в течение 8 недель привела к достоверному снижению уровня общего ХС с 7,5 ± 0,5 ммоль/я до 6.2 ± 0,9 ммоль/л (на 1 8%) и ХС ЛНП с 5,2 ± 0,8 ммоль/л до 4,9 ±0,7 ммоль/л (на 25%). За время лечения изменения концентрации ХС ЛВП н ТГ у пациентов исследованной группы были не достоверными. Следует отметить, что полученные нами результаты сопоставимы с данными других исследований, в которых изучалось гиполипндемнческос действие симвастатниа в аналогичной дозе.
При сравнении щполнцнлемнческого эффекта необходимо отметить более выраженную эффективность церивастатнна по сравнению с правастатином, Таким образом, наши предположения верны н одновременно с подавлением биосинтеза ХС происходит подавлен не биосинтеза убнхнноня О,*, и мы в нашем исследовании выявили более высокую интенсификацию процессов свободнорадикального окисления в ЛНП. чем в исследовании с использованием правастатина. Действительно, приведенные на рисунке 37 данные показывают, что при монотерапнн цернвастатином уровень лилогидролероксндов в ЛНП резко возрастал к 3-му месяцу терапии, увеличиваясь в 6-7 раз и при дальнейшей лечении существенно не изменялся. Следует отмстить, что в исследовании с использованием правастатина, уровень липогидропероксидов в ЛНП за 6 месяцев терапии возрастал всего на 30% (рис.37). Уровень МДА в результате терапии правастатином также увеличился почти на 40%.
Полученные результаты указывают на возможность резкой интенсификации процессов свободнорадикального окисления ЛНП in vivo при терапии цсривастатнном, что, несомненно, должно приводить к увеличению их атсрогенной модификации.
Относительная активность стнтииов а плане снижения уровня холестерина ЛНП выглядит следующим образом;
Аторвастатин > церивастатнн >симвастатнн > нравастагин и ловастатин > флувастатин, Следовательно, при применении симвастатииа можно было бы ожидать более высокую интенсификацию процессов свободнорадикального окисления ЛНГТ, чем при применении правастатнна, но меньшую, чем при применении цернвастатина.
Рисунок 37, Уровень лнпоперокендов в ЛНП (оксн-ЛНП) в крови больных, получавших лравастатнн (2), снмвастатин (3) и цернвастатнн (4) в течение 6, 2 и 6 мес соответственно но сравнению с соответствующими контролямп (I), уровень окси-ЛНП в группе больных, не получавших стати ны, в каждом исследовании принят за единицу; * - р<0.05
Действительно, результаты проведенного нами исследования показывают (рис.37), что 2~х месячная терапия ингибитором ГМГ-КоА-рслуктаэы снмвасгатнном в лозе 20 мгЛгут сопровождалась значительны*! накоплением липопероксидов в ЛИП Ln vivo, содержание которых возрастало в 2,5 раза. г?г
Изменение уровня МДА в ЛИП носили похожий характер: уровень МДА в ЛИП увеличился на 53% в результате терапии (ркс.38).
Q До качала терапии В Через 2 месяца терапии
Рисунок 38, Изменение содержания МДА в ЛИП (относит ед), выделенных из плазмы крови больных ИБС в процессе терапии с использованием ингибитора А'Гндроксн-Р-мстилглутарнл-гаэнзнм д редуктазы снмвастэтнна в дозе 20 мг/сут. (*р=0+ЕН),
Таким образом, с ростом гнполнпидсмнческой активности препарата возрастает уровень продуктов ПОЛ. Так, в исследований с использованием правастатина уровень липогидропероксидов в ЛИП за 6 месяцев терапии возрастал всего на 30% при одновременном снижении уровня холестерина ЛИП на 24%, применение симвастатина увеличило содержание липогидропероксидов в ЛИП а 2,5 раза, а терапия более
192 активным лштроювпг препаратом иернггдстатнном сопровождалась резким увеличением уроння лнпогндроперокендов {более чем в б раз) уже к 3 месяцу исследования.
Суммируя полученные в этой главе данные можно сделать несколько чрезвычайно важных выводов. Справедливость биохимической схемы, приведенной на рис.23, в главе 5 полностью подтверждается результатами наших исследований. Так, наши исследования свидетельствуют о подавлении биосинтеза коэнзима Q (о чем косвенно свидетельствует накопление оксн-ЛНП) и GSH-пероксндазы при терапии больных ИБС ингибиторами ГМГ-КоЛ-редукгазы (рис. 32,34,35,37). Кроме того, введение экзогенного коэнзима Q при терапии ингибиторами ГМГ-КоА-рсдуктазы способствует резкому снижению уровня окси-ЛНП а крови больных ИБС и увеличивает сохранность эрнтроцнтарной GSH-пероксилазы (риСг32,35). Важно отметить, что поскольку мы использовали стагины с разной гиполнпидемической эффективностью, тахис как правастатин. снмвастатин и «ерящтатин, нх влияние на уровень оксн-ЛНП (рис. 37) соответствовало литературным данным об их активности в подавлении ГМГ-КоА-редуктизы, т.е. правастатин вызывал наименьшее увеличение уровня окси-ЛНП. а церивастатнн - напротив вызывал экстремально высокое увеличение уровня оксн-ЛНП при одинаковом времени действия этих препаратов. Таким образом. проведенные исследования подтверждают возможность прооксидантного действия статинов не только в опытах на экспериментальных животных, как было показано в главах 5 и 6, но и при проведении клинических исследований. Стать хорошее совпадение основных результатов, полученных в экспериментальных и клинических исследованиях с нашей точки зрения не может быть случайным. Более того, полученные результаты убедительно подтверждают высказанную нами гипотезу о важной роли коэнзима Q в регуляции свободнораднкального окисления в организме и об опасности резкого снижения синтеза ХС при действии статинов в связи с возможностью резкого снижения синтеза важнейших природных аитноксндантов - убихииона Q и GSH-лсрокснлазы. Результаты наших исследований также убеждают в там, что введение коэнзнма Q в дополнение к гшюлнпидемнческой терапии ингибиторами ГМГ-КоА-редуктяЗЫ может быть оправданным и целесообразным, особенно при проведении «агрессивной» шполипндемическ&й терапии, когда увеличивается опасность мнопатнй и поражения печени.
В последние годы появились данные об антноксидантном действии статннов, связывая этот эффект с нх противовоспалительным действием и подавлением активности NADPH-эависнмой оксидазы в стенке сосуда, которая продуцирует супероксидный анион радикал. Эти данные получены в экспериментальных условиях и не всегда выполнены с использованием корректных методов, Чаше используется метод хемнлюминисценини, который при высокой чувствительности не всегда позволяет дать однозначную трактовку результатов. Кроме того, снижение генерирования супероксидного радикала не может рассматриваться как актноксндантнос действие (П ]. В любом случае мы в своей работе рассматриваем конечный • брутто эффект действия статиное. Даже при наличии ангноксидантиой активности наши данные об увеличении уровеня охси-ЛНП пр действии ста типов убедительно свидетельствуют о том, что in vivo статнны проявляют преимущественно лрооксидантны н эффект [11].
Следует отмепггь, что полученные нами данные после нх публикации нашли подтверждение и в работах других авторов 1225]. Таким образом, наши результаты свидетельствуют о возможности совершенствования подходов к терапии атеросклероза с целью обеспечения более безопасного применения иигнбиторов ГМГ-КоА-редуктазы. Очевидно, что коэнзнм Q может использоваться в качестве антидота, нивелирующего известные побочные эффекты статннов, В настоя шее время не ставится вопрос об отказе от применения статннов, для многих из которых клиническая эффективность достаточно обоснована, Разнитие исследований в предлагаемом нами направлении, в конечном итоге должно способствовать повышению эффективное™ и безопасности терапии с применением ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы. Следует отмстить, что фармкомпания Метек &. Со,, tnc. на основании результатов пилотных клинических исследований оформила два патента на использования коэнэнма Q в случаях повышения уровня трансаминаз в крови паднеитов и в случаях проявления у них признаков миопатии (патенты США №305140, 1989 и №298535,1989), Приведенные в настоящей главе и главах 5 и б данные, с нашей точки трения, еще более убедительно свидетельствуют о целесообразности включения коэнзнм содержащих препаратов в комплексную терапию ИБС с использованием ингибиторов ГМГ-КоА-редуктазы.
Глава 8.
Основные клинические* инстручентальиыг и лабораторные методы исследования. Клинические методы исследований.
Проводилось клиническое обследование каждого пациента, включающее в себя: осмотр, сбор анамнеза с учетом вредных привычек, факторов риска, диетологических привычек, заболевании родственников, антропометрическое исследование с последующим вычислением ИМТ Во время лечения проводилось наблюдение за общим состоянием больного, частотой приступов стенокардии, переносимостью и побочными эффектами препаратов.
Диетное основного заболевания был установлен на основании клннико-анамнестических данных, результатов инструментальных методов исследования (ЭКГ покоя. ВЭМ, суточного моннторированни ЭКГ). Диагноз постинфарктного кардиосклероза устанавливался при наличии в анамнезе документированного инфаркта миокарда или при наличии патологического зубца Q на ЭКГ. ЭКГ покоя регистрировалась всем пациентам в 12 стандартных отведениях на 4-х канальном электрокардиографе "MingOgraf" фирмы "Siemens" (Германия). С целью определения толерантности к физической нагрузке проводилась ВЭМ проба, Проба выполнялась на велоэргомстре "Multiscriptor "фирмы "Heilige" (Германия) по методике, принятой в НИИ кардиологии РКНПК МЗ РФ с регисграцней ЭКГ в 12 общепринятых отведениях. Диагноз гиперхолсстсринсмии основывался на двукратном определении содержания уровня лнлидов в плазме крови: до и через 2 мсс после соблюдения гнполипндемнческой диеты.
Коронарныйшщннрим и транслюмынальная коронарная ангиопластика, Коронарную ангиопластику' проводили по стандартной методике. Выполняли преднлятацию баллонном, диаметр которого подбирали согласно среднему диаметру участков артерии проксимальнес и дистальнсс стеноза,
Далее в поряженном сегменте либо позиционировался стент без лекарственного покрытия с его последующим расширением, либо проводилась дальнейшая днлатацня сегмента до достижения оптимального ангиографического результата. Номинальный диаметр сгента соответствовал должному диаметру артерии а стено~}нроваином участке. После проведения последней дилятапяи и удаления из коронарной артерии баллонного катетера и коронарного проводника выполнялось контрастирование дилятнрованного участка со съемкой минимум в 2-х ортогональных проекциях. При проведении контрольной КАГ, сьемка выполнялась в тех же проекциях. Остаточный стеноз после стеитнровання составлял не более 10 %, после баллонной ангиопластики - не более 20%, Контрольная КАГ выполнялась всем пациентам через б мес после проведения ТКА. Исследование проводилось на аппарате «tGoroscop 33» (Simens, Германия); съемка каждого стеноза проводилась как минимум в 2-х ортогональных проекциях для его лучшей визуализации. Последующий анализ полученных ангиограмм проводился с помощью системы компьютерного анализа Axiom Artis (Simcns, Германия). Антнографнческий рестеноз определялся как сужение артерии >50% в диаметре в месте днлятааии или стентнровання через 6 месяцев после проведения ТКА.
Б.иохи минские,биофншчеекне и физиологические методы исследования.
Выделение ЛИП, ил: медь-шшциирмтпое окисление in vitro и количественное определение дипогидроперокснйов в ЛИП in vivo. Для выделения ЛИП венозную кровь больных отбирали натощак в присутствии 1 мт/мл ЭДТА и плазму подвергали двухкратному це1гтрнфугированию в градиенте плотности Naßr в течение 2 ч при 42000 об'мнн. в угловом роторе 5QTi при 4°С в ультраЕ|ентрнфуге Bcckman L-8 согласно методике [46], после чего ЛИП диализовалн при 4"С в течение 16 час, ЧйСПШЫ ЛНП полученные по методу [46] были идентичны па элекгрофоретическому поведению, размеру и липидному составу ЛНП, полученным в соответствии с классическим методом Р-ТТщ^^геп [229) Содержание белка й лнп определяли по методу О.Н.Ьовдту е( а1. [235], после чего ЛНП рйзбавлялн до 50 мкг белка/мл раствором, содержащим 0,) 54 М N80 и 50 мМ фосфатный буфер рН 7,4. Окисление ЛНП инициировали при 37° введением 30 мкМ СиБО*, после чего через фиксированные интервалы времени намеряли накопление лнпогидроперокендов при 233 им на спектрофотометре Н]1асЫ 220А (исходные показания автоматически вычитали). По результатам исследований (ДОаз) строили кинетические кривые окисления ЛНП, из которых определяли продолжительность лаг-фазы (период индукции окисления - т. пропорциональный уровню антноксидантов в ЛНП) [25]. Окнсляемость ЛНП ш характеризовали величиной, обратной продолжительности периода индукции - !/т.
Содержание липндных пероксидов в ЛНП определяли специфичным колориметрическим методом, используя реакцию окисления ионов Ре1" в Ре*' а присутствии лнпогидроперокендов и анализируя содержание образованного стехиометрнчсскн Ре'1' при помощи цветной реакции с ксиленолоранжем до и после специфичного восстановления органических (липндных) гидропсроксидов (1*ООН)трифсннлфосфином (ТФФ) [155,272] в соответствии с уравнениями реакции: ЮОН + Рс(1!) + Н* -* №' + Ре(Ш) + Н30
Рс(Ш) + ху1епо1(оранжевый) Рс(Ш)-ху1епо1(краснокоричневый) LOOH + ТФФ восстановленный ЬОН + ТФФ окисленный Содержание вторичных продуктов свободнорадикального окисления (МДА н другие карбонильные соединения) в плазме крови определяли по реакции с 2-тиобарбитуровой кислотой в кислой среде как описано ранее [25], анализируя количество образовавшегося трнметннового комплекса на спектрофотометре 1-ШасЫ 220А при 532 км.
Исследование кинетики аскорбят-записи наго енобпднорлтикальною окислении мснасышснньа фосфолнинлои биомембран печени крысы.
Кинетику окисления эндогенных полненовых лниидов в гомогеватах печени исследовали путем индукции сиободнораднкальмык реакций при восстановлении эндогенного железа аскорбиновой кислотой (аскорбат-зависимое окисление) в соответствии с модифицированным методом [25]. Для утою крыс забивали деканнтаиней. после чего печень перфорировали охлажденным нзотоннчиым КС) и гомогенизировали при охлаждении в мнкроразмельчителе тканей Ultra-Turrax SDT-I810 фирмы Tekmar нз расчета 15 мг сырой ткани/мл раствора, содержащего 0,154 M NaC) и 50 мМ K,Na-фосфатный буфер рН 5,9. Полученные гомогенаты инкубировали при постоянном встряхивании в аэробных условиях в присутствии 0,5 мМ аскорбзта [25]. Через определенные интервалы времени (1-5 мин) отбирали пробы инкубационной смеси и выявляли в них содержание вторичных продуктов ПОЛ по реакции с 2-Тнобарбитуровой кислотой, после чего определяли оптическую плотность образцов при 532 им на спектрофотометре HHachi-220A. Исходное поглощение ТБК-реактивных продуктов (до начала инкубации) вычитали нз оптической плотности последующих проб н по результатам определения ДРда строили кинетические кривые, по которым рассчитывали продолжительность лаг-фазы (периода индукции) окисления ненасыщенных фосфолипнлоа биомембран [25].
Окисляеыостъ биомембран характеризовали величиной, обратной продолжительности периода индукции — 1/т.
Выявление фенокенльнмх радикалов пробукола в ЛНП с использованием Э П Р-сп с ктром етр и и. Для обнаружения долгожнвуших феноксильных радикалов пробукола при окислении пробукол-содержаших
I» частиц ЛНП метолом ЭПР-спектрометрии использовали ЛНП (2 мг белка/мл) из плазмы крови бальных, получавших 250 мг/сут пробукола в течение 3-х мес. Фосфолипиды наружного слоя ЛНП окисляли С-15 липокенгенаэой ретикулоцитов кролика [215] до накопления 0,5 мкмоль ацилгидроперокендов/мг белка, после чего гомолиз гидроперокендов с образованием алкоксильных лнпидных радикалов ндуинровали путем внесения 25 мкМ гемнна. Регистрацию спектров ЭПР фенокенльиых радикалов пробукола, образовавшихся при взаимодействии с алкоксн-пронзводными фосфат и пндов ЛНП, проводили как описано ранее [52} на спектрометре Van an E-I09E в аэробных условиях при 25°С и при модуляции магнитного поля 0,25 м'Гл {частота СВЧ-поля 100 кГц , мощность - 100 мВт),
Определение содержания лнпофильных природных антноксидантов в плазме крон и крыс Определение содержания убихинона Q? и Qio, и а-токоферола в сыворотке крови крыс проводили с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии {ВЭЖХ) с электрохимическим детектированием на приборе Coulochem II, («Environmental Scinces Associate, Inc.», США) с последующей обработкой данных при помошн компьютерной программы той же фирмы.
Определение активности внтнокенляктных ферментов в тканях животных и эрнтршппях Сольных. Селен-зависимая GSI 1-пероксидаза растворимой фракции клеток катализирует реакцию восстановления глутатионом (GSH) перекиси водорода и органических гидроперокендов, включая гидропероксиды полннснаеышенных жирных кислот (LOOH), которые превращаются при этом в стабильные соединения -соответствующие окси-кислоты (LOH), как следует из уравнения реакции: GSH-пероксидаза LOOH + 2 GSH-► LOH + GSSG + HiO
Другой фермент - глутатионрелуктаза (ОКЯО-рсдухтаза) в присутствии восстановленного ннкотннамидаденннлннуклеогидфосфата (ИАОРН) осуществляет регенерацию окисленного глутатнона (0880), образовавшегося в глутатнонпераксидвзной реакции:
0$$С-редукта?а ОЗБО + ЫАОРН + Н*-* 2 СБН + ЫАЭР'
Эти ферментативные реакции положены в основу метола определения липоиероксидаэной активности Зе-содержащей ОЗН-лероксндазы; при этом реакционная среда содержит избыток субстратов - 05Н. ЫАОРН и органический гндролерокенд, а также экзогенную СЗБО'рсдуктазу из дрожжей. В настоящей работе активность цнтозольиой 5е-солсржашей 08Н-перокендазы в тканях экспериментальных животных и эритроцитах человека определяли в сопряженной глутатмонредуктазиой системе по скорости окисления ЗЧАОРН при 340 нм с гндропсроксидом трст-бутила в качестве субстрата по методу 1282] в модификации [23], используя химический анализатор ГР-900 1,аЬ5ув[ет$ Оу в кинетическом режиме работы. При расчете начальной скорости вводили поправку на неферментатнвное окисление 08Н за время реакции. За единицу активности ОЯН-пероксидазы принимали количество фермента, необходимое для окисления I мкмоля С$Н за I мни в условиях эксперимента- Использованный нами вариант метода позволяет проводить анализ без ингнбнровання каталазной активности и определять активность всех 05Н-завнсимых пероксидаз крови, способных восстанавливать липилные гидролерокенды.
Си,2п-супероксидднсмугаза, обнаруженная в растворимой фракции всех исследованных клеток млекопитающих детокенцирует супероксидный анион-радикал (О/"), предотвращая его участие в реакциях, сопровождающихся образованием высоко токсичного гидрокенл-радикала (НО*), способного повреждать молекулы ненасыщенных липндов, углеводов, белков и нуклеиновых кислот: супероксиддисмутаэа 2 0Г+ 2 Н*-* НгСЬ +0г
Б настоящей работе активность Си^п-СОД в тканях экспериментальных животных н эритроцитах человека определяли согласно методу [64] по нншбнрованню восстановления синего нитротстразолня супероксидным радикалом, генерируемым в системе ксантнн-ксантиноксндзза, определяя кинетику образования формазана на регистрирующем спектрофотометре Н|1асЬМ57 при 560 им. За единицу активности СОД принимали количество фермента, необходимое для 50% подавления восстановления синего нитротетразолия в условиях определения. Перед определением активности СОД в эритроцитах проводили осаждение гемоглобина смесью этанол-хлороформ (3:5) [20],
Исследование параметров лниндлого обмена. Содержание общего ХС и трнглнцернлов в плазме крови определяли при помощи эизнматического метода на химическом анализаторе РР-900 [.аЬзуйепи Оу с использованием тест-наборов фирмы ВоеКг^ег. Содержание ХС в ЛВП определяли после осаждения ЛИП и ЛОНП марганисво-^париновым реактивом [47].
Исследование содержания млкрозргичсскнх фосфатов в миокарде. Крыс анестезировали уретэном (2 г/хг массы тела) и кусочки миокарда отбирали охлажденными в жидком азоте щипцами Волленбергера, после чего гомогенизировали в холодной 6% НСЬО* (10 мл/г ткани) в ледяной бане с помощью гомогенизатора "ШОв-Тиггах Т-25" (и!КА - ЬаЬоПесЬик?*), Белки осаждали центрифугированием в рефрижераторной центрифуге "Весктап Ь 6ВИ при ЗОООв в течение 10 мин, супернатанты нейтрализовали 5 М К1СО3 до рН 7,4. Сухую массу образцов определяли взвешиванием части осадков после эксграхцнн НСЬ04 после высушивания в течение 12 часов при ПО" С до постоянной массы. Содержание АТФ н РСг в тканевых экстрактах да определяли спсктро фотометрически. используя глюкозо-6* фосфатдегидрогсиазу, гексакнназу и кретинки назу [286]. Содержание АДФ определяли знзнматически с помощью пиру ватки пазы и лактатдегндрогеназы [286]. для определения уровня Сг в тканях использовали реакцию с а-кафтолом и 2,3-бутандноном. [301). Анализы производили с использованием спектрофотометра "Уапасо-2000'\ Содержание общего креатина (ЕСг) рассчитывали но формуле: ЕСг = РСг + Сг. Содержание аденнннуклеотндов, РСг и Сг в тканях выражали в мнкромолях на 1 грамм сухой массы.
Исследование сократимости изолированного сердца крысы и моделирование в нем окислительного стресса. Согласно методике [19] сердца у крыс удаляли под уретановым наркозом (1,7 г/кг) и нерфузнровалн через аорту раствором Кребса~Хензелейта рН 7,4 с II мМ глюкозы, насыщенным карбогеном (5%СОг+95%Ог) при 37°С. Перфузию осуществляли со скоростью, близко соответствующей величине 10 мл/мии/г. Через левое предсердие в левый желудочек сердца вводили латехеный баллончик, заполненный физиологическим раствором. ОбьЙм баллончика устанавливали на уровне, прн котором днастолнчсскос давление в ЛЖ составляло 12-14 мм рт.ст. н поддерживали его на постоянном уровне. Давление в аорте и ЛЖ, а также <1Р/А регистрировали прн помощи электроманометров Оои№ ЗтаЦшт Р23 ОЬ на полиграфе Ооик1 ВгийЬ 2400 (США), В условиях нзоволюмнческого режима основными показателями силы сокращений миокарда и его энергорасхода были развиваемое давление и показатель интенсивности сократительной функции (произведение развиваемого давления и частоты сердечных сокращений). Схема опыта включала определение максимальной ИСФ при градуальном повышении скорости перфузии в 2 раза, после чего в миокарде индуцировали окислительный стресс посредством введения в перфузат 100 мкМ Н^ при помощи инфуэнонного насоса Заве с регулируемой скоростью, позволяющей поддерживать постоянную концентрацию НД.
Статистическая обработка результатов. Статистическую обработку результатов исследований проводили с использованием пахста статистических программ STATTSTICA 6,0. Оценку достоверности межгрунповых различий проводили с помощью непарамстрнческого метода Майна-Унтни. Достоверность динамики показателей на фоне лечения проводили с помощью непарамстрнческого метода по Вилкоксону. Для выявления взаимосвязи между степенью етенозировання коронарных артерий н биохимическими показателями применяли ненарамстрнчееккй метод корреляционного анализа по Spearmen, Результаты биохимических показателей представлены в виде среднего значения и ошибки среднего (M1SEM), анхн о граф нческнх данных - в виде среднего значения и стандартного отклонения (M±STD); различия считали достоверными при р<а05.
Практические рекомендации:
1. Определение уровня окси-ЛНП к активности эрнтроцнтирной 0$Н-перохендазы может быть использовано в качестве дополнительных критериев оценки тяжести заболевания н контроля эффективности и безопасности проводимой терапии (особенно при интенсивной гиполипндемнческой терапии с использованием ингибиторов ГМГ-КоА-рсдуктазы).
2. Для профилактики рестенозирования коронарных артерий после ТКА может был. рекомендовано применение синтетического внтнокенданта пробукола в дозе 250 мг в сутки за неделю до вмешательства и в течение последующих 6 месяцев.
3. Рекомендовать использование препарата коэнзима У в дозе 60 мг/сут в комбинации с ингибиторами ГМГ-КоА-редуктазы при проведении интенсивной терапии ингибиторами ГМГ-КоА-редуктазы для снижения зтерогеиной окислительной модификации ЛНГТ
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2007 года, Каминный, Александр Иванович
1. Бакалова Р.А., Некрасов А.С, Ланкин В.З. и др. Механизм ингибирующего действия токоферола и его синтетических производных на окисление линолевой кислоты, катализируемое липоксигеназой из ретикулоцитов. Докл. АН СССР. 1988; 299: 1008-1011.
2. Беленков Ю.Н., Батыралиев Т.А., Першуков И.В. Инвазивная кардиология: фокус на рестеноз. Часть I. Кардиология 2002; 8:50-56.
3. Биленко М.В., Хильченко А.В., Коновалова Г.Г., Ланкин В.З. Влияние антиоксиданта пробукола на клеточ но опосредованное окисление ЛПНП in vitro и in vivo, Бюлл.экспер.биол.мед., 2003, 136(8): 145-147.
4. Болдырев А.А. Карнозин и защита тканей от окислительного стресса. 1999. Диалог-МГУ, Москва, 362 стр.
5. Бритов АН. Оценка сердечно-сосудистого риска у больных артериальной гипертонией. КарДНОВаскулярннЯ терапия и профилактика. - 2003. Том 2, №3.-С.9-16.
6. Бурлакова Е.Б.. Крашаков А., Храпова Н.Г. Роль токоферолов в пероксидном окислении липидов биомембран. Биол. мембраны, 1998, 15(2): 137-167.
7. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: «Наука», 1972, 252 с.
8. Гесслер Н.Н., Гомбоева СБ., Шумаев К.Б. и соавт. Свободнорадикальное окисление липидов подавляет ферментативную конверсию b-каротина в витамин А. Бюлл. экспер. биол. мед. 2001; 131(5): 532-535.
9. Грацианский Н.А. Гиполнпидемические средства. Кардиология 1994;3:49-69.
10. Грацианский Н.А. Очередное (окончательное?) подтверждение неэффективности антиоксидантных витаминов в профилактике коронарной болезни сердца и ее осложнений. Кардиология 2002; 42(2): 85-86.
11. Дриницина СВ., Затейщиков Д.А. Антиоксидантные свойства статинов. Кардиология, 2005,45(4): 65-72
12. Жданов B.C., Вихерт A.M., Стернби Н.Г. Эволюция и патология атеросклероза у человека. М.: «Триада-Х», 2002,143.
13. Зайцева Т.М., Лупанов В.П., Лякишев А.А. Фарнакокинетика и бнеэквивалентность таблеток феибутола и липомала, содержащих пробукол. Фармация 1994;3:45-47.
14. Зенков Н.К., Кандалинцева Н.В., Ланкии В.З., Меньшикова Е.Б., Просенко А.Е. Фенольные антиоксиданты. Новосибирск, Изд-во СО РАМН, 2003, 328 стр.
15. Зенков Н.К., Ланкин В.З., Меньшикова Е.Б. Окислительный стресс. Биохимический и патофизиологические аспекты. М.: МАИК «Наука / Интерпериодика». 2001, 378-349 с.
16. Климов А.Н.. Никульчева Н.Г. Обмен липидов и липопротеидов и его нарушения. Санкт-Петербург: «Питер», 1999, 291-360.
17. Лакомкин В.Л.,Коновалова Г.Г, Каленикова Е.И. и др.-Изменение антиоксидантного статуса миокарда под влиянием коэнзима Q10 при окислительном стрессе // Биохимия,2005, т. 70, № I р с. 79-84(2005).
18. Ланкин В. 3., Тихазе А.. К., Воронина Н. В., Вихерт A.M. О возможности исследования процессов липопероксидации в переживающих тканях. Бюлл. экспер. биол. мед., 1981,91(3): 327-328Л
19. Ланкин В.З., Вихерт A.M., Тихазе А.К., Согоян СМ.. Бондарь Т.Н. Роль перекисного окисления липидов в этиологии и патогенезе атеросклероза. Вопр. мед. химии, 1989, (3): 18-24.
20. Ланкин В.З., Лупанов В.П.. Лякишев А.А.. Ревенко В.М. Механизм антиатерогенного действия пробукола и перспективы его клинического применения. Кардиология, 199!, 31(6): 87-90.
21. Ланкин В.З., Михеева Л.П. Окисление эндогенных липидов в гомогенатах тканей животных-опухоленосителей. В кн.: «Биоантиокислители». М., 1975. 151-156.
22. Ланкин В.З., Рогинский В.А., Тихазе А.К. Антирадикальные и антиокислительные свойства пробукола и его структурных аналогов при окислении ненасыщенных фосфолипидов природных и искусственных мембран. Доклады академии наук. 1996т.351(4):554-557.
23. Ланкин В.З., Тихазе А.К., Беленков Ю.Н. Антиоксиданты в комплексной терапии атеросклероза: proet contra. Кардиология. 2004,44(2): 72-81.
24. Ланкин В.З., Тихазе А.К., Беленков Ю.Н. Свободнорадикальные процессы при патологии сердечно-сосудистой системы. Кардиология. 2000, 40(7): 48- 61.
25. Ланкин В.З.. Тихазе А.К., Коновалова Г.Г., Козаченко А.И. Концентрационная инверсия антиокеидантного и прооксидантного действия b-каротина в тканях in vivo. Бюлл. эксп. биол. мед. 1999; 128(9): 314-316.
26. Лупанов В.П. Влияние антиоксиданта пробукола на частоту рестенозов после чрескожной транслюминальной коронарной ангиопластики. Российский кардиологический журнал. 1998;3:47-55.
27. Люсов В.А., Волов Н.А., Кокорин В.А.. Проблемы и достижения в измерении артериального давления // Русский Медицинский журнал, 2003, т. 11, № 19 (191), 1093-1096
28. Лякишев А.Д., Лупанов В.П., Смирнов Л.Д. Гиполипидемический препарат - пробукол (механизмы действия, гиполипидемические эффекты и клинические исследования). Хим-фарм журнал 1995;10:3-8.
29. Меерсон ФЗ. Адаптация сердца к большой нагрузке и сердечная недостаточность. "Наука", Москва, 1975.
30. Меньшикова Е.Б., Зенков Н.К. Окислительный стресс при воспалении. Успехи современной биологии 1997; 117(2):155-171.
31. Меньшикова Е.Б., Ланкин В.З., Зенков Н.К.и соавт. Прооксиданты и антиоксиданты. Оксидативный стресс. Слово, Москва, 2006, стр.553
32. Нуралиев Э.Ю., Лупанов В.П., Творогова М.Г. Сравнительная оценка моно- и комбинированной терапии пробуколом и гемфиброзилом у больных ишемической болезнью сердца с гиперлипиемией. Кардиология 1997;9:10-14.
33. Осис Ю.Г., Формазюк В.Е., Ланкин В.З., Дудина Е.И., Вихерт A.M., Владимиров Ю А Хемилюминесцсиция липопротеидов разных классов сыворотки крови человека. Вопр. мед. химии, 1982, 28( 1): 122-126.
34. Панченко Е.П. Добровольский А.Б. Коагуляционные факторы риска ишемической болезни сердца. Кардиология 1993: 33(6):65-69.
35. Самко А.Н. Применение интракоронарных стентов для лечения больных ишемической болезнью сердца. Русский медицинский журнал, 1998; 6(14):923-927.
36. Самко А.Н. Савченко А.П. Современные направления в транслюмннальной коронарной ангиопластике. Кардиология, 1993; 33 (9), стр. 62-67.
37. Самко А.Н., Савченко А.П. - Применение интракоронарных стентов для лечения ишемической болезни сердца. Визуализация в клинике, 1996; 8: 17- 21.
38. Спиричев В. Б. Сколько витаминов человеку надо? М.: Ф.Хоффманн-Ля Рош Лтд., 2000, 185 с.
39. Тертов В.В. Множественно-модифицированные липопротеиды низкой плотности, циркулирующие в крови человека: Дис. докт. биол. наук., М., 2000.
40. Титов В.Н., Бренер Е.Д., Халтаев Н.Г., Задоя А.А.. Творогова М.Г. Метод и диагностическая значимость исследования содержания холестерина в а- липопротеидах. Лаб. дело, 1979, №1: 36-41.
41. Тихазе А.К., Коновалова Г.Г., Ланкин В.З. и др. Влияние убихинона Q10 и витаминов-антиоксидантов на свободнорадикальное окисление фосфолипидов биомембран печени крысы. //Бюлл.эксп.биол.мед.2005. Т.140, №2.С.181-183.
42. Тихазе А.К., Ланкин В.З., Михин В.П., Ревенко В.М., Лупанов В.П. Антиоксидант пробукол как регулятор интенсивности процессов свободнораликального перекисного окисления липидов в крови больных коронарным атеросклерозом. Тер.архив, 1997, 59(9): 35-41.
43. Флоря В.Г., Беленков Ю.Н. Ремоделирование сосудов как патогенетический компонент заболеваний сердечно-сосудистой системы. Кардиология 1996; 12:72-78.
44. Формазюк В.Е., Деев А.И., Владимиров Ю.А. Сывороточные липопротеиды человека в норме и патологии. Успехи биол. химии, 1985, 26: 218-245.
45. Шумаев К.Б.. Рууге Э.К.. Дмитровский А.А.. Быховский В.Я.. Кухарчук ВВ. Влияние антиоксидантов и продуктов перекисного окисления липидов на образование радикала пробукол а в липопротеидах низкой плотности // Биохимия, 1997, т.62, № 6, с.769-773.
46. Abete P., Napoli С , Santoro G. et al. Age-related decrease in cardiac tolerance to oxidative stress. Mol. Cell Cardiol. 1999. 31, 227-236
47. Adams PC. Lam JY. Badimon L, Chesebro JH, Fuster V. Interactions of platelets and vessels wall in the development of restenosis after coronary angioplasty. Ann N Y Acad Sci 1987;5I6: 602-620.
48. Alsheikh-Ali A.A., Ambrose M.S., Kuvin J.T., Karas R.H. The safety of rosuvastatin as used in common clinical practice. Circulation, 2005, 111: 3051- 3057.
49. Arora R, Liebo M. MaldonadO F. Statin-induced myopathy: the two faces of Janus-J Cardiovasc Pharmacol Ther. 2006 Jum 11 (2): 105-12.
50. Aruna R.V., Ramesh В., Kartha V.N. Effect of beta-carotene on protein glycosylation in alloxan induced diabetic rats. Indian.J. Exp. Biol., 1999, 37: 399- 401.
51. Assoian RK. Fleurdelys BE, Stevenson HC. Miller PJ, Madtes DK. Raines EW. Ross R, Sporn MB. Expression and secretion of type beta transforming growth factor by activated human macrophages. Proc Natl Acad Sci U S A . 1987; 84(17):6020-6024.
52. Berliner J.A.. Haberland M.E. The role of oxidized low-density lipoprotein in atherogenesis. Curr.Opin.Lipidology. 1993. 4: 373-381.
53. Boaz M.. Smetana S., Weinstein T. et al. Secondary prevention with antioxidants of cardiovascular disease in endstagc renal disease (SPACE): randomised placebo- controlled trial-Lancet 2000, 356: 1213-1218.
54. Bogoyevitch M.A., Ng D.C., Court N.W., et al. Intact mitochondnal electron transport function is essential for signalling by hydrogen peroxide in cardiac myocytes. J. Mol. Cell. Cardiol. 2000.32. 1469-1480.
55. Boston DR, Malouf A, Barry WH. Management of intracoronary thrombosis complicating percutaneous transluminal coronary angioplasty. Clin Cardiol. 1996;19(7):536-542.
56. Bowry V.W., Ingold K.U. Extraordinary kinetic behavior of the a-tocopheroxyl (vitamin E) radical. J.Org.Chem. 1995; 60: 5456-5467.
57. Bowry V.W., Ingold K.U., Stocker R. Vitamin E in human low-density lipoprotein. When and how antioxidant becomes a pro-oxidant. Biochem.J. 1992; 288: 341- 344.
58. Braunwald E. Shattuck Lecture - cardiovascular medicine at the turn of the millenium: triumphs, concerns, and opportunities. N.EngLJ.Med., 1997, 337:1360- 1369.
59. Brown BG, Zhao X-Q. Chait A et al. Simvastatin and niacin, antioxidant vitamins, or the combination for the prevention of coronary disease. N Engl J Med 2001; 345:1583-92
60. Brown M.S., Goldstein J.L. Lipoprotein metabolism in the macrophage: Implications for cholesterol deposition in atherosclerosis. Ann.Rev.Biochem., 1983,52:223-261.
61. Burchenal JE, Keaney JF Jr, Curran-Celentano J, et al. The lack of effect of beta- carotene on restenosis in cholesterol-fed rabbits. Atherosclerosis. 1996; 123(1- 2):157-167.
62. Burton G.W.. Ingold K.U. b-Carotene: an unusual type of lipid antioxidant. Science, 1984, 224(4649): 569-573.
63. Cannon CP, Steinberg BA, Murphy SA. at al. Meta-analysis of cardiovascular outcomes trials comparing intensive versus moderate statin therapy.// J. Am. Coll. Cardiol. 2006. Vol.48, N3. P.438^5. I
64. Carew Т. Role of biologically modified low density lipoprotein in atherosclerosis. Am. J- Cardiol.1989;64:18G-22G.
65. Carone D., Loverro G., Greco P., Capuano F., Selvaggi L. Lipid peroxidation products and antioxidant enzymes in red blood cells during normal and diabetic pregnancy. EurJ.Obstet.Gynecol.Reprod. Biol., 1993, 51: 103-109.
66. Carter AJ, Laird JR, Farb A. et al. Morphologic characteristics of lesion formation and time course of smooth muscle cell proliferation in a porcine proliferative restenosis model. J Am Coll Cardiol. 1994;24(5):1398-1405.
67. Cercek B, Fishbein MC, Forrester JS, et al. Induction of insulin-like growth factor I messenger RNA in rat aorta after balloon denudation. Circ Res. 1990;66:1755- 1760.
68. Ceriello A. Hyperglycaemia: the bridge between non-enzymatic glycation and oxidative stress in the pathogenesis of diabetic complications. Diabetes Nutr.Metab., 1999, 12:42-46.
69. Charatan F. Bayer decides to withdraw cholesterol lowering drug. BMJ 2001;323:359.
70. Chen MS, Xu FP, Wang YZ et al. Statins initiated after hypertrophy inhibit oxidative stress and prevent heart failure in rats with aortic stenosis. // J Mol Cell Cardiol. 2004. Vol.37, № 4. P.889-896.
71. Chen YL, Lin KF, Shiao MS, et al. Magnolol, a potent antioxidant from Magnolia officinalis, attenuates intimal thickening and MCP-1 expression after balloon injury of the aorta in cholesterol-fed rabbits. Basic Res Cardiol. 2001a: 96(4):353-363.
72. Chen YL, Yang SP, Shiao MS, Chen JW, Lin SJ. Salvia miltiorrhiza inhibits intimal hyperplasia and monocyte chemoiactic protein-1 expression after balloon injury in cholesterol-fed rabbits. J Cell Biochem. 2001 b; 83(3):484-493.
73. Chilnonczyk Z. Siluk D.,Kaliszan R at al.// Pur.Appl.Chem. 2001. Vol.73, N.9, P. 1445-1458.
74. Chisolm G.M. Cytotoxicity of oxidized lipoproteins. Curr.Opin.Lipidology, 1991, 2:311-316.
75. Chittar H.S., Nihalani K.D., Varthakavi P.K., Udipi S.A. Lipid peroxide levels in diabetics with micro- and macro-angiopathies. J.Nutr.Biochem., 1994, 5: 442-445.
76. Chmig I. M., Gold H. K., Schwartz S. M., Ikari Y., Reidy M. A.. Wight T. N. Enhanced extracellular matrix accumulasion in restenosis of coronary arteries after stent deployment. J. Am. Coll. Cardiol.. 2002.40. p. 2072 - 81.
77. Clowes AW, Reidy MA. Prevention of stenosis after vascular reconstruction: pharmacologic control of intimal hyperplasia--a review. J Vase Surg. 1991;13(6):885-891.
78. Condell R.A., Tappel A.L. Evidence for suitability of glutathione peroxidase as a protective enzyme: studies of oxidative damage, rcnaturation. and proteolysis. (1983) Arch. Biochem. Biophys. 223,407-416
79. Cote G, Tardif JC. Lesperance J. Effects of probucol on vascular remodeling after coronary angioplasty. Multivitamins and Protocol Study Group. Circu!ation.l999:99(l):30-35
80. Crabtree D.V.. Adler A.J. Is b-carotene an antioxidant? Med.Hypotheses 1997; 48: 183-187.
81. Cristol L.S., Jialal I., Grundy S.M. Effect of low-dose probucol therapy on LDL oxidation and the plasma lipoprotein profile in male volunteers. Atherosclerosis,1992;97;(l):ll-17.
82. Csonka С Pataki Т.. Kovacs P. et al. Effects of oxidative stress on the expression of antioxidative defense enzymes in spontaneously hypertensive rat hearts. Free Radic. Biol. Med. 2000, Oct 1, 29, 612-619
83. Cuzzocrea S., Riley D.P., Caputi A.P. Antioxidant therapy: A new pharmacological approach in shock, inflammation, and ischemia/reperfusion injury. Pharmacol. Rev., Mar 2001; 53: 135-159.
84. Daida H, Kuwabara Y, Yokoi H.. Effect of probucol on repeat revascularization rate after percutaneous transluminal coronary angioplasty (from the Probucol Angioplasty Restenosis Trial PART.). Am J Cardiol. 2000; 86(5):550-552, A9.
85. Dangas G., Fuster V. Management of restenosis after coronary intervention. Am Heart J 1996; 132:428-436.
86. De Pinieux G, Chariot P et al. Lipid-Lowering drugs and mitochondrial function: effects of HMG-CoA reductase inhibitors on serum ubiquinon and blood lactate/pyruvate ratio. Br. J. Clin. Pharmacol. 1996; 42:333-337.
87. Delbosc S, Cristol JP, Descomps В et al. Simvastatin prevents angiotensin II- induced cardiac alteration and oxidative stress. // Hypertension. 2002. Vol.40, № 2. P.142-147.
88. Delport R., Ubbink J.B., Human J.A., Becker P.J., Myburgh D.P., Vermaak WJ.H. Antioxidant vitamins and coronary artery disease risk in South African males. CIin.Chim.Acta 1998; 278:55-60.
89. Diamond MS. Garcia-Aguilar J, Bickford Ж , Corbi AL, Springer ТА. The I domain is a major recognition site on the leukocyte integrin Mac-1 (CD1 lb/CD 18) for four distinct adhesion ligands. J Cell Biol. 1993; 120(4):1031-1043.
90. Dianzani M.L). Biochemical effects of saturated and unsaturated aldehydes. In: Free Radicals, Lipid Peroxidation and Cancer, Acad.Press, London etc., 1982, 129- !58.
91. Dujovne С A..William S. Harris, Linda L. Comparison of effect probucol versus vitamin E on ex vivo oxidation susceptibility of lipoproteins in hyperlipoproteinemia. Am. J. Cardiol.1994.74:38-42.
92. Ebbecke M, Unterberg С, Buchwald A, Stohr S. Wiegand V. Antiproliferative effects of a c-myc antisense oligonucleotide on human arterial smooth muscle cells. Basic Res Cardiol. 1992;87:585-591.
93. El-Missiry M.A. Enhanced testicular antioxidant system by ascorbic acid in alloxan diabetic rats. Comp.Biochem.Physiol. Pharmacol.Toxicol.Endocrinol., 1999, 124; 233-237.
94. Endemann G., Stanton L.W., Madden K.S. et al. CD36 is a receptor for oxidised low density lipoprotein. J.Biol.Chem., 1993,268: 11811-11816.
95. Enslrom JE, Kanim LE, Klein MA. Vitamin С intake and mortality among a sample of the United States population. Epidemiology. 1992; 3: 194-202.
96. Esterbauer H., Gebicki J., Puhl H. et al. The role of lipid peroxidation and antioxidants in oxidative modification of LDL. Free Radic.Biol.Med., 1992, 13: 341-390.
97. Fan J, Watanabe T. Inflammatory reactions in (he pathogenesis of atherosclerosis. J Atheroscler Thromb. 2003;10(2):63-71.
98. Faruqi R, de la Motte C, DiCorleto PE. Alpha-tocopherol inhibits agonist-induced monocytic cell adhesion to cultured human endothelial cells. J Clin Invest. 1994; 94(2):592-600.
99. Feng AN, Chen YL, Chen YT, Ding YZ, Lin SJ. Red wine inhibits monocyte chemotactic protein-! expression and modestly reduces neoinlimal hyperplasia after balloon injury in cholesterol-Fed rabbits. Circulation. 1999; 100(22):2254- 2259.
100. Ferns GA, Forster L, Stewart-Lee A. Probucol inhibits neointimal thickening and macrophage accumulation after balloon injury in the cholesterol-fed rabbit.Proc Natl Acad Sci U S A . 1992; 89(23):11312-11316.
101. Ferrara N., Abete P., Ambrosio G. et al. Protective role of chronic ubiquinone administration on acute cardiac oxidative stress Pharmacol. Exp. Ther. 1995, Aug, 274, 858-865
102. Folkers K., Langsjoen P., Willis R., et al. Lovastatin decreases coenzyme Q levels I in humans. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1990;87:8931-8934
103. Frishman WH, Chiu R, Landzberg B, Weiss M. Medical Therapies for the prevention of restenosis after percutaneous coronary interventions. Current problems in cardiology. 1998; 23(10): 533-640.
104. Funikawa Y, Matsumori A, Ohashi N, et al. Anti-monocyte chemoattractant protein-1/monocyte chemolaclic and activating factor antibody inhibits neointimal hyperplasia in injured rat carotid arteries. Circ Res. 1999;84(3):306-314.
105. Gardner H. W., Kleiman R., Weisleder D., Inglen G. Cysteine adds to lipid hydroperoxide. Lipids, 1977,12; 655-660.
106. Garg UC, Hassid A. Nitric oxide-generating vasodilators and 8-bromo-cyclic guanosine monophosphate inhibit mitogenesis and proliferation of cultured rat vascular smooth muscle cells. J Clin Invest. 1989; 83(5);1774-1777.
107. Geng YJ, Wu Q, Muszynski M, Hansson GK, Libby P. Apoptosis of vascular smooth muscle cells induced by in vitro stimulation with interferon-gamma. tumor necrosis factor-alpha, and interleukin-1 beta. Arterioscler Thromb Vase Biol. I996;16(l):19-27.
108. Gey K.F., Puska P., Jordan P., Moser U.K. Inverse correlation between plasma vitamin E and mortality from ischemic heart disease in cross-cultural epidemiology. Am.J.Clin.Nutr. 1991, 53:326S-334S.
109. Gey K-F., Stahelin H.B., Eichholzer M. Poor plasma status of carotene and vitamin С is associated with higher mortality from ischemic heart disease and stroke; Basel Prospective Study. Clin.Invest. 1993; 71:3-6.
110. Ghirlanda G, Oradei A. Manto A et al. Evidens of plasma CoQIO -lowering effect by HMG-CoA reductase inhibitors: a double-blind, placebo- controlled study. J Clin. Pharmacol. 1993;33(3);226-229.
111. Gibbons GH, Dzau VJ. The emerging concept of vascular remodeling. N Engl J Med. 1994; 330(20): 1431-1438.
112. Giugliano D., Cerieilo A., Paolisso G. Diabetes mellitus. hypertension, and cardiovascular disease: which role for oxidative stress? Metaboiism, 1995,44: 363- 368.
113. Giugliano D., Ceriello A.. Paotisso G. Oxidative stress and diabetic vascular complications. Diabetes Care, 1996, 19: 257-267.
114. Glavind J., Hartmann S., Clemmensen J., Jessen K.E.. Dam H. Studies on the role of lipid peroxides in human pathology. Acta Pathol. Microbiol. Scand.. 1952. 30: 1-6.
115. Goldstein J.L., Brown M.S. Regulation of low density lipoprotein receptor: implications for pathogenesis and therapy of hypercholesterolemia and atherosclerosis. Circulation. 1987; 76: 504-507.
116. Goldstein J.L., Ho Y.K., Basu S.K.. Brown M.S. Binding site on macrophage that mediates uptake and degradation of acetylated low density lipoprotein, producing massive cholesterol deposition. Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 1979, 76: 333-337.
117. Goto Y. Lipid peroxides as a cause of vascular disease. In: Lipid Peroxides in Biology and Medicine, N.Y.: Acad. Press, 1982, 295-303.
118. Graier W.F., Posch K., Fleischhacker E. et al. Increased superoxide anion formation in endothelial cells during hyperglycemia: an adaptive response or initial step of vascular dysfunction? Diabetes Res.Clin.Pract., 1999,45: 353-160.
119. Granstrom E., Diczfalusy U., Hamberg M. The thromboxanes. In: Prostaglandins and related substances, Amsterdam-NY-Oxford: Elsevier, 1983,45-94.
120. Grundy S.M. The Issue of Statin Safety: Where do We Stand? Circulation. Jun 2005; 111:3016-3019.
121. Haddad JJ. Antioxidant and prooxidant mechanisms in the regulation of redox(y)- sensitive transcription factors. Cell Signal. 2002; 14(11):879-897.
122. Haramaki N, Stewart D.B, Aggarwal S. et al. Networking antioxidants in the isolated rat heart are selectively depleted by ischemia-reperfusion. Free Radic. Biol. Med. !998.Aug, 25, 329-339
123. Hardwick S.J., Carpenter K.L.H., LawN.S. et al. Toxicity of polyunsaturated fatty acid esters: the anomalous behaviour of cholesteryl linolenate. Free Radic.Res.. 1997,26:351-362.
124. Harjai KJ. Potential new cardiovascular risk factors: left ventricular hypertrophy, homocysteine, lipoprotein(a). triglycerides, oxidative stress, and fibrinogen. Ann. Intern. Med. 1999; 131:376-386.
125. Harman D. The free radical theory of aging. In: Free Radicals in Biol., 1982, 5: 255-275.
126. Hayashi K, Nakamura S, Morishita R.In vivo transfer of human hepatocyle growth factor gene accelerates ге-endothelialization and inhibits neointimal formation after balloon injury in rat model. Gene Ther. 2000;7(19): 1664-1671.
127. Hayashi S, Walanabe N, Nakazawa K, Suzuki J, Tsushima K. Tamatani T. Sakamoto S, Isobe M. Roles of P-seleclin in inflammation, neointimal formation, and vascular remodeling in balloon-injured rat carotid arteries. Circulation. 2000;102(14):1710-1717.
128. Heart Protection Study Collaborative Group. MRC/BHF Heart Protection Study of antioxidant vitamin supplementation in 20536 high-risk individuals: a randomised placebo-controlled trial. Lancet 2002; 360: 23-33.
129. Hegyi L., Skepper J.N., Cary N.R.B., Mitchinson M.J. Foam cell apoptosis and the development of the lipid core of human atherosclerosis. J.Pathol., 1996, 180: 423- 429.
130. Hehrlein C, Zimmermann M. Pill J, Kubler W, von Hodenberg E. The role of elastic recoil after balloon angioplasty of rabbit arteries and its prevention by stent implantation. Eur Heart J 1994;15:277-280.
131. Hennekens C, Burning J, Manson J et al. Lack of effect of long - term supplementation with beta - carotene on the incidence of malignant neoplasms and cardiovascular disease. N. Engl. J. Med. 1996; 334: 1145- 1149.
132. Hensley К, Robinson KA, Gabbita SP, Salsman S, Floyd RA. Reactive oxygen species, cell signaling, and cell injury. Free Radic Biol Med. 2000; 28(10):1456- 1462.
133. Hermes-Lima M., Willmore W.G., Storey K..B. Quantification of lipid peroxidation in tissue extracts based on Fe(III)xylenol orange complex formation. Free Radic. Biol.Med., 1995, 19(3): 271-280.
134. Hodis H.N., Chauhan A., Hasimoto S. Probucol reduces plasma and aortic wall oxysterol level in cholesterol fed rabbits independently of its plasma cholesterol lowering effect. Ahterosclerosis. 1996; 125-134.
135. Hodis HN, Mack WJ, LaBree L, Hemphill LC, Azen SP. Natural antioxidant vitamins reduce coronary artery lesion progression as assessed by sequential coronary angiography Abstract.. J. AM. Coll Cardiol. 1994: 23: 481A.
136. Hodis HN, Mack WJ, Olan D, Lin Ci-hua et al. Antioxidant vitamin intake reduces coronary progression of carotid artery intima media thickness. Circulation. 1996; 94:Suppll:1508.
137. Hogberg J., Bergstrand A., Jakobsson S.S. Lipid peroxidation of rat liver microsomes. Its effect on microsomal membrane and some membrane-bound microsomal enzymes. Europ.J. Biochem., 1973, 37: 51-59.
138. Honye J, Mahon DJ, Jain A, White CJ, Ramee SR, Wallis JB, Zarka A, Tobis JM. Morphological effects of coronary balloon angioplasty in vivo assessed by intravascular ultrasound imaging. Circulation 1992,85:1012-1025.
139. Howes R.M. The free radical fantasy. Ann.N.Y.Acad.Sci., 2006. 1067: 22-26.
140. Hsueh WA, Anderson PW. Hypertension, the endothelial cell, and the vascular complications of diabetes mellitus. Hypertension. 1992; 20(2): 253-263.
141. Ialenti A, Ianaro A, Maffia P. Role of nuclear factor-kappaB in a rat model of vascular injury. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 2001; 364(4):343-350.
142. Iannone A., Rota C , Bergamini S. et at. Antioxidant activity of carotenoids: an electron-spin resonance study on beta-carotene and lutein interaction with free radicals generated in a chemical system. J.Biochem.Mol.Toxicol. 1998; 12: 299- 304.
143. Ikeda H, Koga Y, Oda T. Free oxygen radicals contribute to platelet aggregation and cyclic flow variations in stenosed and endotheliurn-injured canine coronary arteries. J Am Coll CardioU994;24(7):!749-1756.
144. Inoue K, Cynshi O, Kawabe Y, Nakamura M. Effect of BO-653 and probucol on c- MYC and PDGF-A messenger RNA of the iliac artery after balloon denudation in cholesterol-fed rabbits. Atherosclerosis. 2002;161(2):353-363.
145. Inoue T, Sakai Y, Hoshi K, Yaguchi I, Fujito T. Adhesion molecule ilndtcates less vessel wall injury and might explain lower restenosis rate after cutting balloon angioplasty. Circulation. 1998;97:2511-2518.
146. Inouye M., Mio Т., Sumino K. Dicarboxylic acids as markers of fatty acid peroxidation in diabetes. Atherosclerosis, 2000, 148:197-202.
147. Inouye M., Mio Т., Sumino K. Formation of 9-hydroxy linoleic acid as a product of phospholipid peroxidation in diabetic erythrocyte membranes. Biochim.Biophys.Acta, 1999,1438: 204-212.
148. Inouye M., Mio Т., Sumino K. Glycated hemoglobin and lipid peroxidation in erythrocytes of diabetic patients. Metabolism, 1999,48: 205-209.
149. Inouye M., Mio Т., Sumino K. Link between glycation and lipoperoxidation in red blood cells in diabetes. CIin.Chim.Acta, 1999, 285: 35-44.
150. Iwata M., Koide Т., Maekawa K., Saito H.. Tanimoto Т., Okada S. Tocopherol acetate reference standart (control 001) of National Institute of Health Sciences. Kokuritsu Iyakuhin Shokuhin Eisei Kenkyusho Hokoku 2000; 118; 141-143.
151. Jackson CL, Pettersson KS. Effects of probucol on rat carotid artery responses to balloon catheter injury. Atherosclerosis. 2001154(2):407-414.
152. Jackson CL, Raines EW, Ross R, Reidy MA. Role of endogenous pi ate let-de rived growth factor in arterial smooth muscle cell migration alter balloon catheter injury. Arterioscler Thromb. 1993;13:1218-1226.
153. Jain S.K., Palmer M. The effect of oxygen radicals metabolites and vitamin E on glycosylation of proteins. Free Radic.Biol.Med., 1997, 22: 593-596.
154. Jensen S.K., Engberg R.M., Hedemann M.S. All-rac-a!pha-tocopherol acetate is a better vitamin E source than all-rac-alpha-tocopherol succinate for broilers. J.Nutr. 1999; 129:1355-1360
155. Jialal I., Fuller C.J., Huet B.A. The effect of alpha-tocopherol supplementation on
156. DL oxidation. Arterioscler.Thromb .Vasc.Biol. 1995; 15: 190-198.
157. Joms A., Tiedge M., Lenzen S., Munday R. Effect of superoxide dismutase, catalase, chelating agents, and free radical scavengers on the toxicity of alloxan to isolated pancreatic islets in vitro. Free Radic.Biol.Med., 1999, 26: 1300-1304.
158. Josephson R.A., Silverman H.S., Lakatta E.G., Stern M.D., Zweier J.L. Study of the mechanisms of hydrogen peroxide and hydroxyl free radical-induced cellular injury and calcium overload in cardiac myocytes. J. Biol. Chem. 1991, Feb 5; 266, 2354-2361
159. Jourdan A, Aguejouf O, Imbault P. Experimental thrombosis model induced by free radicals. Application to aspirin and other different substances. Thromb Res. 1995;79(1):109-123.
160. Julier K., Mackness М.1., Dean J.D., Durrington P.N. Susceptibility of low- and high-density lipoproteins from diabetic subjects to in vitro oxidative modification. DiabetMed., 1999, 16:415-423.
161. Kajinami К., Nishitsuji M.J'akeda Y. et al. Long - term probucol treatment result in regression of xanthomas, in progression of coronary ahterosclerosis in a heterozygous patient with familial hypercholesterolemia. Ahterosclerosis. 1996; 120:181-187.
162. Kakkar R.. Mantha S.V., Kalra J., Prasad K. Time course study of oxidative stress in aorta and heart of diabetic rat. Clin.Sci., 1996. 91: 441-448.
163. Kakuta T, Currier JW, Haudenschild CC, et al. Differences in compensatory vessel enlargement, not intimal formation, account for restenosis after angioplasty in the hyperchoiecterolemic rabbit model. Circulation 1994;89:2809-15.
164. Kar M., Chakraborti A.S. Release of iron from haemoglobin - a possible sourse of free radicals in diabetes mellitus. Indian.! Exp. Biol., 1999, 37: 190-192.
165. Khan A.U., Wilson T. Reactive oxygen species as cellular messengers. Chem.Biol., 1995,2:437-445.
166. Kim MH, Cha KS, Han JY, Kim HJ, Kim JS. Effect of antioxidant probucol for preventing stent restenosis. Catheter Cardiovasc Interv. 2002 Dec;57(4):424-8.
167. Kimura T, Kaburagi S, Tamura T, et al. Remodeling of human coronary arteries undergoing coronary angioplasty or atherectomy. Circulation. 1997; 96(2):475- 483.
168. Kita Т., NaganoY., Yokode M. et al. Prevention of atherosclerosis progression in Watanabe rabits by probucol. Amer. J. Cardiol. 1988;62:13V-19V.
169. Kiyose C, Muramatsu R., Kameyama Y., Ueda Т., Igarashi O. Biodiscrimination of alpha-tocopherol sterioisomers in humans after oral administration. Am.J.Clin.Nutr. 1997; 65: 785-789.
170. Klebanoff S.J. Inflammation: basic principles and clinical correlates. N.Y.Raven Press, 1992:541.
171. Klipstein-Brobusch K., Geleijnse J.M., den Breeijen J.H., Boeing H., Hofman A., Grobbee D.E., Witteman J.C.M. Dietary antioxidants and risk of myocardial infarction in the elderly: The Rotterdam Study. Am.J.Clin.Nutr. 1999; 69:261-266.
172. Knekt P., Reunanen A., Jarvinen R., Seppanen R., Heliovaara M., Aromaa A. Antioxidant vitamin intake and coronary mortality in a Longitudinal Population stady. Am.J.Epedimiol- 1994: 139:1180-1189.
173. Kodama Т., Freeman M.. Rohrer L. et al. Type 1 macrophage scavenger receptor contains a-helical and collagen-like coils. Nature, 1990, 343(6258): 531-535.
174. Kok FJ, De Bruijn A.M. Vermeeren R. et al. Serum selenium, vitamin antioxidants and cardiovascular mortality: a 9-year follow-up study in the Netherlands. Ara.J.Clin.Nutr. 1987; 45: 462-468.
175. Konneh MK, Rutherford C, Li SR, Anggard ЕЕ, Fems GA. Vitamin E inhibits the intimal response to balloon catheter injury in the carotid artery of the cholesterol- fed rat. Atherosclerosis. 1995;! 13{l):29-39.
176. Konz K.H., Haap M . Walsh R.A. et al. Selenium as a protector of diastolic function during oxidant stress. Trace Elem. Electrolytes Health Dis. 1991, Jun, 5, 87-93
177. Kubes P. Suzuki M, Granger DN. Nitric oxide: an endogenous modulator of leukocyte adhesion. Proc Natl Acad Sci U S A . 1991; 88(11):4651-4655.
178. Kugiyama K.. Kerns S.A., Morrisett J.D. et al. Impairment of endothelium- dependent arterial relaxation by lysolecithin in modified low-density lipoproteins. Nature, 1990,344:160-162.
179. Kuhn H., Belkner J., Suzuki H., Yamamoto S. Oxidative modification of human lipoproteins by lipoxygenases of different positional specificities. J.Lipid Res., 1994,35: 1749-1759.
180. Kuller L.H. A time to stop prescribing antioxidant vitamins to prevent and treat heart disease? Arterioscler.Tromb.Vasc.Biol., 2001, 21: 1253.
181. Kumar D., Palace V., Danelisen I. et al. Probucol induced antioxidants confers protectio against I-R injury. J.Mol.Cell.Cardiol., 2001, vol.33, p.A 62
182. Kushi LH, Folsom AR, Prineas KJ et al. Dietary antioxidant vitamins and death from coronary heart disease in postmenopausal women. N. Engl J. Med. 1996; 334:1156-1162.
183. Kuzuya M.. Kuzuya F. Probucol as antioxidant and antiatherogenic drug. Free I Radic.Biol.Med.1993; 14: 67-77.
184. Laaksonen R., Jokelainen K., Sahi Т., Tikkanen M.J., Himberg J.-J. Decreases in serum ubiquinone concentrations do not result in reduces levels in muscle tissue during short-term simvastatin treatment in humans. Clin. Pharmacol. Ther. 1995; 57:62-66.
185. Laaksonen R., Ojala J.-P., Tikkanen M.J.. HimbergJ.-J. Serum ubiquinone concentrations after short- and long-term treatment with HMG-CoA reductase inhibitors. EurJ.Clin.Pharmacol., 1994,46:313-317
186. Labinaz M, Hoffert C, Pels K. Infusion of an antialpha4 integrin antibody is associated with less neoadventitial formation after balloon injury of porcine coronary arteries. Can J Cardiol. 2000;16(2): 187-196.
187. Lankin V. The enzymatic systems in the regulation of free radical lipid peroxidation. In: "Free Radicals, Nitric Oxide, and Inflammation: Molecular, Biochemical, and Clinical Aspects. NATO Science Series. Amsterdam etc.: IOS Press, 2003, 344: 8-23.
188. Lankin V.Z., Antonovsky V.L., Tikhaze A.K. In: "Peroxides at the Beginning of the Third Millennium", New York : Nova Science Publishers, 2004. P.85-111.
189. Lankin V.Z., Kuhn H., Hiebsch С et al. On the nature of the stimulation of the lipoxygenase from rabbit reticulocytes by biological membranes. Biomed. Biochim. Acta, 1985, v. 44, № 5, p.655-664.
190. Lankin V.Z., Tikhaze A.K., Kukharchuk V.V. et al. Antioxidants decreases the intensification of low density lipoprotein in vivo peroxidation during therapy with statins.// Mol. Cell. Biochem. 2003. Vol.249.№l/2.P.129-140
191. Lau AK, Leichtweis SB, Hume P, Stocker R. Probucol promotes functional reendothelialization in balloon-injured rabbit aortas. Circulation. 2003; 107(15):2031-2036. .1
192. Lauridsen С Engel H., Craig A.M., Traber M.G. Relative bioactivity of dietary RRR- and all-rac-alpha-tocopheryl acetates in swine assessed with deuterium- labeled vitamin E. LAnim.Sci. 2002; 80: 702-707.
193. Lauridsen C, Hedemann M.S.. Jensen S.K. Hydrolysis of tocopheryl and retinyl esters by porcine carboxyl ester hydrolase is affected by their carboxylate moiety and acids. J.Nutr.Biochem. 2001; 12: 219-224.
194. Laurindo FR, da Luz PL, Uint L. Evidence for superoxide radical-dependent coronary vasospasm after angioplasty in intact dogs. Circulation. 1991; 83(5):1705-1715.
195. Lee JC, Kumar S, Griswold DE, et al. Inhibition of p38 MAP kinase as a therapeutic strategy. Immunopharmacology. 2000; 47(2-3): 185-201.
196. Lee SR, Kwon KS, Kim SR, Rhee SG. Reversible inactivation of protein-tyros ine phosphatase IB in A431 cells stimulated with epidermal growth factor. J Biol Chem. 1998; 273(25): (5366-15372.
197. Lee YJ, Daida H, Yokoi H, et al. Effectiveness of probucol in preventing restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty. Jpn Heart J. 1996; 37(3):327- 332.
198. Leichtweis S., and Л L.L. Glutathione deficiency intensifies ischaemia-reperfusion induced cardiac dysfunction and oxidative stress. Acta Physiol. Scand. 2001:172,1- 10
199. Levy H.B, Kohlhaas H.K. Considerations for Supplementing with Coenzyme Q10 During Statin Therapy. Ann. Pharmacother., Feb 2006; 40: 290 - 294.
200. Li. Т., Danelisen I., Singal. P.K. Early changes in myocardial antioxidant enzymes in rats treated with adriamycin. Mol. Cell Biochem. 2002, Mar, 232, (l-2),19-26
201. Libby P, Schwartz D, Brogi E, Tanaka H, Clinton SK. A cascade model for restenosis. A special case of atherosclerosis progression. Circulation. 1992; 86(6 Suppl):III47-52.
202. Lindgren FT. Preparative ultracentrifugal laboratory procedure suggestions for lipoprotein analysis. In: Analysis of Lipids and Lipoproteins, NY: Chamaign, 1975,204-224.
203. Littarru G.P., Tomasetti M., Alleva R. Relationship between coenzyme QIO content and peroxidability in low density lipoproteins // in: Pathophysiology of 1.ipid Peroxides and Related Free Radicals - Japan Sci. Press, Tokio etc., 1998, p.77-89.
204. Liu K.Z., Cuddy Т.Е., Pierce G.N. Oxidative status of lipoproteins in coronary disease patients. Am.Heart J., 1992,123: 285-290.
205. Liu RH, Hotchkiss JH. Potential genotoxicity of chronically elevated nitric oxide: a review. Mutat Res. 1995; 339(2):73-89.
206. Lorenzi M, Cagliero E, Toledo S. Glucose toxicity for human endothelial cells in culture Delayed replication, disturbed cell cycle, and accelerated death. Diabetes. 1985; 34(7): 621-627.
207. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with theFolm phenol reagent. J. Biol. Chem., 1951,193: 265-275.
208. Lumsden AB, Chen C, Hughes JD, Kelly AB, Hanson SR, Harker LA. Anti-VLA- 4 antibody reduces intimal hyperplasia in the endarterectomized carotid artery in nonhuman primates. J Vase Surg 1997;26(l):87-93.
209. Luo JD, Xie F, Zhang WW et al. Simvastatin inhibits noradrenaline-induced hypertrophy of cultured neonatal rat cardiomyocytes. // Br J Pharmacol. 2001. Vol.l32,№l.P.159-164.
210. Luoma J., Hiltunen Т., Sarkioja T. et al. Expression of a2-macroglobulin receptor/LDL-receptor related protein in normal and atherosclerotic human arteries. i J.Clin.Invest., 1994, 93: 2014-2021.
211. Lyons T.J. Glycation and oxidation: a role in the pathogenesis of atherosclerosis. AmJ.Cardiol., 1993, 71: 26B-31B.
212. Mackness MX, Durrington P.N. HDL, its enzymes and its potential to influence lipid peroxidation. Atherosclerosis, 1995, 115:243-253.
213. Madamanchi N.R., Vendrov A., Runge M.S. Oxidative stress and vascular disease. Arteriocler.Thromb.Vase.Biol., 2005, 25: 29-38.
214. Madtes DK, Raines EW, Sakariassen KS. et al. Induction of transforming growth factor-alpha in activated human alveolar macrophages. Cell. 1988;53(2):285-293.
215. Maltz H.C., Balog D.L., Cheigh J.S. Rhabdomyolysis associated with concomitant useofatorvastatin and cyclosporins Ann Phannacother I999;33:l 176-1179.
216. Marchant C.E., van der Veen C , Law N.S. et al. Oxidation of low-density lipoprotein by human monocyte-macrophages results in toxicity to the oxidising culture. Free Radic.Res., 1996, 24: 333-342.
217. Maxwell S.R.J., Thomason H., Sandler D. et al. Antioxidant status in patients with uncomplicated insulin-dependent and non-insulin-dependent diabetes mellitus. Eur.J.CIin.lnvest., 1997, 27: 484-490.
218. McNamara CA, Sarembock IJ, Gimple LW, et al. Thrombin stimulates proliferation of cultured rat aortic smooth muscle cells by a proteolytically activated receptor. J Clin Invest. 1993; 91: 94-98.
219. Meyer F., Bairati I.,Dagenais G.R. Lower ischemic heart disease incidence and mortality among vitamin supplement users. Can.J.Cardiol. 1996; 12:930-934.
220. Meyer M, Schreck R, Baeuerle PA. H202 and antioxidants have opposite effects on activation of NF-kappa В and AP-I in intact cells: AP-1 as secondary antioxidant-responsive factor. EMBO J. 1993; 12(5):2005-2015.
221. Miano JM, Vlasic N, Tota RR, Stemerman MB. Localization of Fos and Jun proteins in rat aortic smooth muscle cells after vascular injury. Am J Pathol. 1993; 142(3):715-724.
222. Miki S., Ashraf M., Salka S., Sperelakis N. Myocardial dysfunction and ultrastructural alterations mediated by oxygen metabolites. J. Mol. Cell. Cardiol. 1988,20,1009-1024
223. Mitchinson M.J. Are free radicals a major factor in atheroma ? Dialogues in Cardiovasc.Med., 1998, 3: 32-37.
224. Miyauchi K, Aikawa M, Tani T. et al. Related Effect of probucol on smooth muscle cell proliferation and dedifferentiation after vascular injury in rabbits: possible role of PDGF. Cardiovasc Drugs Ther. 1998;12(3):251-260.
225. Mohamed A.K., Bierhaus A.. Schiekofer S. et al. The role of oxidative stress and NF-kappaB activation in late diabetic complications. Biofactors, 1999, 10: 157- 167.
226. Mooradian A.D. Increased serum conjugated dienes in elderly diabetic patients. J.Am.Geriatr.Soc., 1991, 39: 571-574.
227. Moosmann B, Behl С Selenoproteins, cholesterol-lowering drugs, and the consequences: revisiting of the mevaionate pathway. Cardiovasc. Med. 2004. Vol.14, N7. P.273-81.
228. Morice M, Colombo A, Meier B, Serruys P. et al. Sirolimus- vs Paclitaxel-Eluting Stents in De Novo Coronary Artery Lesions: The REALITY Trial: A Randomized Controlled Trial JAMA. Feb 2006; 295: 895 - 904.
229. Morris D.L.. Kritchevsky S.B., Davis C.E. Serum carotenoids and coronary heart disease - The lipid research clinics coronary primary prevention trial and follow-up study. J.A.M.A. 1994;272:1439-1441.
230. Mortensen SA, Leth A. Agner E, Rohde M. Dose-related decrease of serum coenzyme QlO during treatment with HMG-CoA reductase inhibitors. Mol. Aspects Med. 1997; 18 Suppl:S137-144.
231. Mosca L., Rubenfire M., Mandel C. et al. Antioxidant nutrient supplementation reduces the susceptibility of low density lipoprotein to oxidation in patients with coronary artery disease. J. Am.Coil.Cardiol. 1997; 30: 393-399.
232. Muint P., Deeble D. J., Beaumont P. L., Blake S. M., Phillips G. O. The reactivity of varrions free radicals with hyaluronic acid: steady-state and pulse radiolysis studies. Biochim. Biophys. Acte, 1987,925,p. 194-202.
233. Nabel EG, Yang Z, Liptay S, et al. Recombinant platelet-derived growth factor В gene expression in porcine arteries induce intimal hyperplasia in vivo. J Clin Invest. 1993;9I(4):1822-1829.
234. NaganoY., Nacamura Т., Matsuzava Y. et. al. Probucol and atherosclerosis in Watanabe rabits - long term antiatherogenic effect and effect on esteblished plaques. Atherosclerosis. 1992;92:131-140.
235. Nair KS, Zingde SM. Adhesion of neutrophils to fibronectin: role of the cd66 antigens. Cell Immunol. 2001; 208(2): 96-106.
236. Nakagami H, Liao JK. Statins and myocardial hypertrophy.// Coron Artery Dis. 2004. VoU5,№5. P.247-250
237. Naruko T, Ueda M, Becker AE, Tojo O, Teragaki M, Takeuchi K, Takeda T. Angiographic-pathologic correlations afler elective percutaneous transluminal coronary angioplasty. Circulation 1993;88{part 1): 1558-1568.
238. Nielsen H. Reaction between peroxidized phospholipid and protein : I. Covalent binding of peroxidized cardiolipin to albumin. Lipids, 1978,13: 253-258.
239. Nishigaki I., Hagihara M , Tsunekawa H., Maseki M. Yagi K. Lipid peroxide levels of serum lipoprotein fractions of diabetic patients. Biochem.Med., 1991, 25: 373-378.
240. Noda-Heiny H, Sobel BE. Vascular smooth muscle cell migration mediated by thrombin and urokinase receptor. Am J Physiol. 1995;268(5 Pt 1):C1195-1201.
241. Noguchi N., Eniki E. Ingibition of oxidative modifications of low density lipoprotein by antioxidants. Pathophysiology of lipid peroxides and related free radicals. Basel.1998 P.91-10I.
242. Nomura S, Yamamura T. Yamamoto A. et al. The association between lipoprotein (a) and severity of coronary and cerebrovascular atherosclerosis, especially in non- hypercholesterolemic subjects. Cardiovascular Risk Factors. 1993; 3:336-343.
243. Nourooz-Zadeh J., Rahimi A., Tajaddini-Sarmadi J. et al. Relationships between plasma measures of oxidative stress and metabolic control in NIDDM. Diabetologia, 1997,40: 647-653.
244. Nourooz-Zadeh J., Tajaddmi-Sarmadi J.. Wolff S.P. Measurement of plasma hydroperoxide concentratios by the ferrous oxidation-xylenol orange assay in conjunction with triphenylphosphine. Analyt. Biochem., 1994, 220; 403-409.
245. Nugent HM, Edetman ER. Endothelial implants provide long-term control of vascular repair in a porcine model of arterial injury. J Surg Res. 2001;99(2):228- 234.
246. Numaguchi Y. Naruse K. Harada M. et al. Proslacyclin synthase gene transfer accelerates recndolhelialization and inhibits neointimal formation in ral carotid arteries after balloon injury. Arterioscler Thromb Vase Biol. 1999; 19(3):727-733.
247. Nunes GL, Sgoutas DS, Redden RA et al. Combination of vitamins С and E alters the response to coronary balloon injury in the pig. Arterioscler Thromb Vase Biol. 1995;15(1):156-165.
248. Oberley L.W. Free radicals and diabetes.Free Radic.Biol.Med.. 1988. 5: 113-124.
249. O'Keefe JH, Stone GW, McCallisler BD el al. Lovastatin plus probucol for prevention of restenosis after perculaneous transluminal coronary angioplasty. Am J Cardiol. 1996; 77(8):649-652.
250. Olson NE, Chao S, Lindner V, Reidy MA. Intimal smooth muscle cell proliferation after balloon catheter injury: the role of basic fibroblast growth factor. Am J Pathol. 1992;140:1017-1023.
251. Omenn G.S., Goodman G.E, Thomquist M.D. et al. Effects of a combination of beta carotene and vitamin A on lung cancer and cardiovascular disease. New Engl.J.Med.1996; 334: 1150-1155.
252. Onodera Т., Takemura G., Oguro Т., Ashraf M. Effect of exogenous hydrogen peroxide on myocardial function and structure in isolated rat heart. Can. J. Cardiol. 1992, 8, 989-997
253. Osterud B. Tissue factor expression by monocytes: regulation and pathophysiological roles. Blood Coagul Fibrinolysis. 1998: 9 Suppl l:S9-i4.
254. Paglia D.E.. Valentine W.N. Studies on the quantitative and qualitative characterization of erythrocyte peroxidase. J. Lab. Clin. Med.,1967, 70(1): 158- 243 i 169.
255. Palinski W.. Rosenfeld M.E.. Yla-Herttuala S. et al. Low density lipoprotein undergoes oxidative modification in vivo. Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 1989, 86: 1372-1376.
256. Pandey K.K.. Shekelle R., Selwyn B.J. et al. Dietary vitamin С and beta-carotene and risk of death in middle-aged men. J.Am. Epidemiol. 1995; 142: 1269-1278.
257. Pinzani P., Petruzzi E.. Orlando C, Gallai R., Serio M., Pazzagli M. Serum antioxidant capacity in healthy and diabetic subjects as determined by enhanced chemiluminescence. J.Biolumin.Chemilumin., 1998, 13: 321-325.
258. Pisarenko O.I., Tskitishvily O.V., Studneva I.M. Metabolic effects of ischemic preconditioning and adenosine receptor blockade in dogs. Ann. NY Acad.Sci. 1996; 793:85-97.
259. Plehn J.F., Davis B.R.. Sacks F.M. et al.. Reduction of Stroke Incidence After Myocardial Infarction With Pravastatin: The Cholesterol and Recurrent Events (CARE) Study. Circulation 1999;99:216-223.
260. Plotkin E, Bernheim J, Ben-Chetrit S. et al. Influenza vaccine - a possible trigger of rhabdomyolysis induced acute renal failure due to the combined use of cerivastatin and bezafibrate. Nephrol Dial Transplant 2000; 15: 740-741.
261. Pollman MJ, Hall JL. Gibbons GH. Determinants of vascular smooth muscle cell apoptosis after balloon angioplasty injury. Influence of redox state and cell phenotype. Circ Res. 1999;84( 1): 113-21.
262. Pongor S., Ulrech P.C., Bencsath F.A., Cerami A. Aging and proteins: isolation and identification of a fluorescent chromophore from the reaction of polypeptides with glucose. Proc.Natl.Acad.Sci.USA. 1984, 81: 2684-2688.
263. Quinn M.T., Parlhasarathy S., Fong L.G., Steinberg D. Oxidatively modified low- density lipoproteins: A potential role in recruitment and retention of monocyte/macrophages during atherosclerosis. Proc.Natl.Acad.Sci.USA. 1987, 84: 2995-2999.
264. Rabinovitch A., Suarez-Pinzon W.L., Strynadka K., Lakey J.R., Rajotte R.V. Human pancreatic islet beta-cell destruction by cytokines involves oxygen free radicals and aldehyde production. J.Clin.Endocrinol.Metab., 1996, 81: 3197-3202.
265. Radi R, Beckman JS, Bush KM, Freeman BA. Peroxynitrite-induced membrane lipid peroxidation: the cytotoxic potential of superoxide and nitric oxide. Arch Biochem Biophys. 1991; 288(2):481-487.
266. Raines EW, Dower SK, Ross R. Interleukin-1 mitogenic activity for fibroblasts and smooth muscle cells is due to PDGF-AA. Science. 1989; 243(4889):393-396.
267. Reaven P.D., Herold D.A., Barnett J., Edelman S. Effect of vitamin E on susceptibility of low-density lipoprotein and low-density lipoprotein subfractions to oxidation and on protein glication in NIDDM. Diabetes Care 1995; 18: 807-816.
268. Regnstrom J.,. Nilsson J., Motdeus P. et al. Inverse relation between the concentration of low-density lipoprotein vitamin E and severity of coronary artery disease. Am.J.Clin.Nutr., 1996, 63: 377-385.
269. Reidy MA, Clowes AW, Schwartz SM. Endothelial regeneration. V. Inhibition of endothelial regrowth in arteries of rat and rabbit. Lab Invest. 1983; 49(5): 569-575.
270. Reidy MA, Schwartz SM. Endothelial regeneration. III. Time course of intimal changes after small defined injury to rat aortic endothelium. Lab Invest. 1981;44(4):301-308.
271. Reimer K.A., Hill M.L., Jennings R.B. Prolonged depletion of ATP and adenine nucleotide pool due to delayed resynthesis of adenine nucleotides following reversible myocardial ischemic injury in dogs. J. Mol.Cell. Cardiol. 1981 ;13: 229- 239.
272. Reinoehl J., Frankovich D.. Machado C. et al. Probucol-associated tachyarhythmic events and QT prolongation: importance of gender. Am. Heart. J. 1996; 131 (6): 1184-1191.
273. Reynaert N.. Verhaegen F., Taeymans Y., Van Eijkeren M., Thierens H. Monte Carlo calculations of dose distributions around 32P and 198Au stents for intravascular brachytherapy. Med Phys 1999;26(8): 1484-1491.
274. Ricaurte B, Guirguis A, Taylor H C, Zabriskie D. Simvastatin-Amiodarone Interaction Resulting in Rhabdomyolysis. Azotemia, and Possible Hepatotoxicity Ann. Pharmacother., Apr 2006: 40: 753 - 757.
275. Rimm EB. Stampfer MJ. Ascheno A et al. Vitamin E consumtion and the risk of coronary heart disease in men. N. Engl J. Med. 1993; 328: 1450-1456.
276. Robinson KA, Stewart CA, Pye QN, et al. Redox-sensitive protein phosphatase activity regulates the phosphorylation state of p38 protein kinase in primary astrocyte culture. J Neurosci Res. 1999; 55(6):724-732.
277. Rodest J., Cote G, Lesperanse G. et. al. Preventing of restenosis after angioplasty in small coronary arteries with probucol. Circulation.! 998;97(5):429-436.
278. Rogers C, Edelman ER, Simon DI. A mAb to the beta2-leukocyte integrin Mac-1 (CDllb/CD18) reduces intimal thickening after angioplasty or stent implantation in rabbits. Proc Natl Acad Sci USA. 1998;95(17): 10134-10139.
279. Rogers C, Welt FG, Karnovsky MJ, Edelman ER. Monocyte recruitment and neointimal hyperplasia in rabbits. Coupled inhibitory effects of heparin. ArteriosclerThromb Vase Biol. 1996;16(10):1312-1318.
280. Ross R. The pathogenesis of atherosclerosis - an update. New Engl. J. Med., 1986, 314:488-500.
281. Ross R. Atherosclerosis - an inflammatory disease. N.Engl.J.Med., 1999, 340: 115- 126.
282. Ross R. The pathogenesis of atherosclerosis: a perspective for the 1990s. Nature. 1993; 362(6423): 801-809.
283. Rubins HB, Robins SJ.Collins , et al. Distribution of lipids in 8,500 men with coronary artery disease. Am. J. Cardiol 1995; 75:1196-1201.
284. Sabri A., Byron K.L., Samarel A.M., Bell J., Lucchesi P.A., Hydrogen Peroxide Activates Mitogen-Activated Protein Kinases and Na+-M+ Exchange in Neonatal Rat Cardiac Myocytes Circ. Res. 1998, 82,1053-1062.
285. Sagone A.L., Greenwald J., Kraut E.H., Bianchine J., Singh D. Glucose: a role as a free radical scavenger in biological systems. J.Lab.Clin.Med., 1983, 101: 97-104.
286. Sajithlal G.B., Chithra P., Chandrakasan G. Effect of curcumin on the advanced glycation and cross-linking of collagen in diabetic rats. Biochem.Pharmacol., 1998. 56:1607-1614.
287. Saias A., Panes J., Elizalde J.I., Granger D.N., Pique J.M. Reperfusion-induced oxidative stress in diabetes: cellular and enzymatic sources. J.Leukoc.Biol., 1999. 66: 59-66.
288. Salonen J.Т., Alfthan G., Huttunen J.K. et al. Association between cardiovascular death and myocardial infarction and serum selenium in a matched-pair longitudinal study. Lancet, 1982, H: 175-179.
289. Salonen JT, Yla-Herttuala S, Yamamoto R, Butler S, Korpela H, Salonen R, Nyyssonen K, Palinski W, Witztum JL. Autoantibody against oxidised LDL and progression of carotid atherosclerosis. Lancet. 1992; 339(8798):883-887.
290. Salvemini D, Bolting R. Modulation of platelet function by free radicals and free- radical scavengers. Trends Pharmacol Sci. 1993; 14(2):36-42.
291. Sarembock IJ, Gertz SD, Gimple LW, Owen RM, Powers ER, Roberts WC. Effectiveness of recombinant desulphatohirudin in reducing restenosis after balloon angioplasty of atherosclerotic femoral arteries in rabbits. Circulation. 1991 ;84( l):232-243.
292. Satoh K., Yamato A., Nakai T. Effects HMG-CoA reductase inhibitors on mitochondrial respiration in ischaemic dog hearts. Br.J. Pharmacol. 1995; 116(2): 1894-1898.
293. Schenk H, Klein M, Erdbrugger W, Droge W, Schulze-Osthoff K. Distinct effects of thioredoxin and antioxidants on the activation of transcription factors NF-kappa В and AP-1. Proc Natl Acad Sci U S A . 1994; 91(5): 1672-1676.
294. Schreck R, Albermann K, Baeuerle PA. Nuclear factor kappa B; an oxidative stress-responsive transcription factor of eukaryotic cells (a review).Free Radic Res Commun. 1992; 17(4):221-237.
295. Schroeff van der J.G., Havekes J., Weerhein A.M., Emeis FT., Vermeer B.J. Suppresion of cholesteryl ester accumulation in cultured human monocyte-derived macrophages by lipoxygenase inhibitors. Biochem.Biophys.Res.Commun., 1985, 12:366-372.
296. Schwartz RS, Henry TD. Pathophysiology of coronary artery restenosis. Rev Cardiovasc Med. 2002;3 Suppl 5:S4-9.
297. Schwartz SM, deBlois D, O'Brien ERM. The Intima. Soil for Atherosclerosis and Restenosis. Circulation Research. 1995;77:445-465.
298. Schwenke DC, Carew ТЕ. Initiation of atherosclerotic lesions in cholesterol-fed rabbits. I. Focal increases in arterial LDL concentration precede development of fatty streak lesions. Arteriosclerosis. 1989a;9(6}:895-907.
299. Schwenke DC, Carew ТЕ. Initiation of atherosclerotic lesions in cholesterol-fed rabbits. II. Selective retention of LDL vs. selective increases in LDL permeability insusceptible sites of arteries. Arteriosclerosis. 1989b; 9(6):908-918.
300. Sekiya M, Funada J, Watanabe K, Miyagawa M, Akutsu H. Effects of probucol and cilostazol alone and in combination on frequency of poststenting restenosis. Am J Cardiol. 1998; 82(2): 144-147.
301. Sentman M.L., Jonsson L.M., Marklund S.L. Enhanced alloxan-induced beta-cell damage and delayed recovery from hyperglycemia in mice lacking extracellular- 248 superoxide dismutase. Free Radic.Biol. Med., 1999, 27: 790-796.
302. Serruys PW, Jaegere P, Kiemeneij F. et al. A comparison of balloon-expandable- stent implantation with balloon angioplasty in patients with coronary artery disease. N Engl J Med. 1994;331:489-495.
303. Setsuda M, Inden M, Hiraoka N. et al. Probucol therapy in the prevention of restenosis after successful percutaneous transluminal coronary angioplasty. Clin Ther. 1993;15(2):374-82.
304. Shi Y, Fard A, Galeo A. et al. Transcatheter delivery of c-myc antisense oligomers reduces neointimal formation in a porcine model of coronary artery balloon injury. Circulation. 1994;90:944-951.
305. Shi Y, O'Brien JE, Fard A. et al. Adventitial myofibroblasts contribute to neointimal formation in injured porcine coronary arteries. Circulation. 1996;94{7):1655-1664.
306. Simionescu M, Simionescu N. Proatherosclerotic events: pathobiochemical changes occurring in the arterial wall before monocyte migration. FASEB J. 1993;7(14):I359-1366.
307. Simon DI, Dhen Z, Seifert P, Edelman ER, Ballantyne CM, Rogers С Decreased neointimal formation in Mac-1 mice reveals a role for inflammation in vascular repair after angioplasty. J Clin Invest. 2000;105(3):293-300.
308. Singal P. K., N. Khaper F. Farahmand, and A. Bello-Klein. Oxidative stress in congestive heart failure.Curr. Cardiol. Rep., May 2000, 2, 206-211
309. Singh R.B., Ghosh S., Niaz M.A. et ai. Dietary intake, plasma levels of antioxidant vitamins and oxidative stress in relation to coronary artery disease in elderly subjects. AmJ.Cardiol. 1995; 76:1233-1238.
310. Siu G.M., Draper H.H. Metabolism of malonaldehyde in vivo and in vitro. Lipids, 1982,17:349-355.
311. Skjelbakken Т., Valen G., Vaage J. Perfusing isolated rat hearts with hydrogen peroxide: an experimental model of cardiac dysfunction caused by reactive oxygen species. Scand. J. Clin. Lab. Invest. 1996, 56,431-439
312. Smith JD, Bryant SR, Couper LL. et al. Soluble transforming growth factor-beta type II receptor inhibits negative remodeling, fibroblast transdiffcrantiation, and intimal lesion formation but not endothelial growth. Circ Res. 1999;84(10): 1212- 1222.
313. Smith L.L., Johnson B.H. Biological activities of oxysterols. Free Rad. Biol.& Med., 1989, 7: 285-332.
314. Smith P.F., Eydelloth R.S., Grossman S.J. et al. Myopathy associated with HMG CoA reductase ingibitors (HMGRIs) and cyclosporin A: evaluation in rat model. Eur.Heart. J. 1992; 13 (suppl .B):2-6.
315. Stampfer MJ, Hennekens CH, Manson JE el al. Vitamin E consumtion and the risk of coronary disease in women. N. Engl J. Med. 1993; 328: 1444 - 1449.
316. Stanton L.W., White R.T., Bryant СМ., Protter A.A., Endemann G. The macrophage Fc receptor for IgG is also a receptor for oxidised low density lipoprotein. J.Biol.Chem., 1992, 267: 22446-22451.
317. Stauble B, Boscoboinik D, Tasinato A, Azzi A. Modulation of activator protein-1 (AP-1) transcription factor and protein kinase С by hydrogen peroxide and D- alpha-tocopherol in vascular smooth muscle cells. Eur J Biochem. 1994; 226(2):393-402.
318. Steinberg D, Parthasarathy S, Carew ТЕ, et al. Beyond cholesterol. Modifications of low-density lipoprotein that increase its atherogenicity. N. Engl. J. Med. 1989; 320:915-924.
319. Steinberg D. Antioxidants and atherosclerosis. Circulacion. 1991 ;84(3): 1420-1425
320. Steinberg D., Lewis A. Oxidative modification of LDL and atherogenesis. Circulation, 1997, 95: 1062-1071.
321. Steinberg D., Witztum J.L. Is the oxidative modification hypothesis relevant to human atherosclerosis? Do the antioxidant trials conducted to date refute the hypothesis? Circulation 2002; 105:2107-2111..
322. Stephens N, Parsons A, Schofield P et al. Randomized controlled trial of vitamin E in patients with coronary disease: Cambridge Heart Antioxidant Study (CHAOS). 1.ancet. 1996;347:781-786.
323. Stiko-Rahm A, Hultgardh-Nilsson A, Regnstrom J, et al. Native and oxidized LDL enhances production of PDGF AA and the surface expression of PDGF receptors in cultured human smooth muscle cells. Arterioscler Thromb 1992:12:1099-1109.
324. Stocker R, Keaney Jr. Role of Oxidative Modifications in Atherosclerosis. Physiol Rev.2004: 84:1388-1420
325. Stocker R., Bowry V.W., Frei B. Ubiquinol-10 protect human low density lipoprotein more efficiently against lipid peroxidation than does a-tocopherol. Proc.Natl.Acad.Sci. USA 1991;88:1646-1650.
326. Strauss BH, Chisholm RJ, Keeley FW, GotHeb Al, Logan RA, Armstrong PW. Extracellular matrix remodeling after balloon angioplasty injury in a rabbit model of restenosis. Circ Res. 1994;75(4):650-658.
327. Superko H. Beyond LDL cholesterol reduction. Circulation. 1996; 94:2351-2354.
328. Takahashi S, Oida K, Fujiwara R. Effect of cilostazol, a cyclic AMP phosphodiesterase inhibitor, on the proliferation of rat aortic smooth muscle cells in culture. J Cardiovasc Pharmacol. 1992; 20(6):900-906.
329. Tardif JC, Cote G, Lesperance J. Probucol and multivitamins in the prevention of restenosis after coronary angioplasty. Multivitamins and Probucol Study Group. N Engl J Med. 1997; 337(6): 365-372.
330. Tardif JC, Gregoirc J, Lavoie MA, L'Allicr PL. Pharmacologic prevention of both restenosis and atherosclerosis progression: AG1-1067, probucol, statins, folic acid and other therapies. CurrOpin Lipidol. 2003a; 14(6): 615-620.
331. Tardif JC, Gregoire J, Schwartz L, et al. Canadian Antioxidant Restenosis Trial (CART-l) Investigators. Effects of AGI-1067 and probucol after percutaneous coronary interventions. Circulation. 2003b; l07(4):552-558.
332. Tardif JC. Clinical results with AGI-1067: a novel antioxidant vascular protectant. Am J Cardiol. 2003; 91(3A):41 A-49A.
333. Tashiro H, Shimokawa H, Sadamatsu K, Aoki T, Yamamoto K. Role of cytokines in the pathogenesis of restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty. Coron Artery Dis. 2001; 12(2): 107-113.
334. Tavani A., Negri E., D'Avanzo В., La Vecchia С Beta-carotene intake and risk of nonfatal acute myocardial infarction in women. Eur.J.Epidemiol. 1997; 13:631- 637.
335. Tesfamariam B. Free radicals in diabetic endothelial cell dysfunction. Free Radic.Biol.Med., 1994,16: 383-391.
336. The alpha-tocopherol, beta-carotene cancer prevention study group. The effect of vitamin E and beta-carotene on the incidence of lung cancer and other cancers in male smokers. New Engl.J.Med. 1994; 330: 1029-1035.
337. The Lovastatin Study Group IV. A multicenter comparison of lovastatin and probucol for treatment of severe primary hypercholesterolemia. Am. J. Cardiol.1990;66:22B-30B.
338. Thompson G.R. A handbook of hyperlipidemia, London: Current Sci.. 1989,236 p.
339. Toole B. P., Wight T. N., Tammi M. J. Hyaluronan - cell interaction in cancer and vascular disease. J. Biol. Chem.,2002, 277, p. 4593 - 6.
340. Traber M.G., Eisner A., Brigelius-Flohe R. Synthetic as compared with natural vitamin E is preferentially excreted as alpha-CEHC in human urine: studies using deuterated alpha-tocopheryl acetates. FEBS Lett. 1998; 16: 145-148.
341. Tsuchihashi H., Kigoshi M., Iwatsuki M., Niki E. Action of b-carotene as an antioxidant against lipid peroxidation. Arch. Biochem. Biophys.. 1995, 323: 137- 147.
342. Uchiyama H., Dobashi Y., Ohkouchi K., Nagasawa K. Chemical change involved in the oxidative depolymeriration of hyaluronic acid. J. Biol. Chem., 1990, 265, p. 7753-9
343. Ursini F., Maiorino M., Sevanian A. Membrane hydroperoxides, in: Oxidative stress: oxidants and antioxidants. London: Acad. Press, 1991, 319-336.
344. Vaage J., Antonelli M., Bufi M„ et ai. Exogenous reactive oxygen species deplete the isolated rat heart of antioxidants. Free Radic. Biol. Med. 1997,22(l-2):85-92
345. Van Belle E, Bauters C, Asahara T, Isner JM. Endothelial regrowth after arterial injury: from vascular repair to therapeutics. Cardiovasc Res. 1998;38(l):54-68.
346. Violaris AG, Melkert R, Herrman JPR, Semiys PW. Role of Angiographically Identifiable Thrombus on Long-term Luminal Renarrowing After Coronary Angioplasty A Quantitative Angiographic Analysis. Circulation. 1996; 93:889- 897.
347. Virmani R., Farb A., Carter A.J., Jones R.M. Comparative pathology: radiation- induced coronary artery disease in man and animals. Semin Interv Cardiol 1998;3(3-4):163-172.
348. Viswanathan M, Stromberg C, Seltzer A. Saavedra JM. Balloon angioplasty enhances the expression of angiotensin 11 ATI receptors in neointima of rat aorta. J Clin Invest. 1992;90:1707-1712.
349. Wachowicz В, Olas В, Zbikowska HM, Buczynski A. Generation of reactive oxygen species in blood platelets. Platelets. 2002; 13(3): 175-182.
350. Walldius G., Erikson U, Olsson A.G. The effect of probuco! on femora! Ahterosclerosis: the Probucol Quantative Regression Swedish Triqal (PQRST). Am. J. Cardiol. 1994;74:875-883.
351. Watanabe K, Sekiya M, Ikeda S, Miyagawa M, Hashida K. Preventive effects of probucol on restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty. Am Heart 1996; 132(1 Pt l):23-29
352. Welt FG, Edelman ER, Simon DI, Rogers C. Neutrophil, not macrophage, infiltration precedes neointimal thickening in balloon-injured arteries. Arterioscler Thromb Vase Biol. 2000; 20(12):2553-2558.
353. Werner N, Junk S, Laufs U. et a!. Intravenous transfusion of endothelial progenitor cells reduces neointima formation after vascular injury. Circ Res. 2003;93(2):el7- 24.
354. West Scotland Coronary Prevention Study Group. Influence of pravastatin and plasmalipids on clinical events in the West Scotland Coronary Prevention Study (WOSCOPS). Circulation. 1998; 97:1440-1445.
355. Wight T. N., Merrilees M. J. Proteoglycans in atherosclerosis and restenosis. Key roles for versican. Circ. Res., 2004, 94, p. 1158-67
356. Wiklund O., Angelin В., Bergman M., et at. Pravastatin and gemfibrozil alone and in combination for the treatment of hypercholesterolemia. Am J Med 1993;94:13- 20.
357. Wills R., Folkers K., Lan Tucker J. et al. Induced neurocyioskdeial changes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990; 87: 8928-8930.
358. Windecker S., Remondino A., Eberli F. et al. Sirolimus-Eluting and Paclitaxel- 254 Eluting Stents for Coronary Revascularization N. Engl. J. Med.. Aug 2005; 353: 653 - 662.
359. Wissler R.W.. Vesselinovitch D. Combined effect of cholesleramin and probucol on regression of atherosclerosis in resus monkey aortas. Apl. Pathol. 1983;1:89-96.
360. Witting L.A. Vitamin E and lipid antioxidants in free-radical-initiated reactions. Free Radicals in Biol., 1980,4: 295-319.
361. Witz G. Biological interactions of a,b-unsaturated aldehydes. Free Radic.Biol.&Med., 1989, 7: 333-349.
362. Witztum J.L. The oxidation hypothesis of atherosclerosis. Lancet, 1994, 344: 793- 795.
363. Witztum J.L., Steinberg D. Role of oxidized low-density lipoprotein in atherogenesis. J.Clin.Invest, 1991, 88: 1785-1792.
364. Wohlfrom M. Hanke S, Kamenz J. Effect of the antioxidant Nicanartine on the proliferative and inflammatory response after experimental balloon angioplasty. Coron Artery Dis. 1998; 9(12):83I-7.
365. Xia Z., Gu J., Ansley D.M., Antioxidant therapy with Salvia miltiorrhiza decreases plasma endothelin-1 and thromboxane B2 after cardiopulmonary bypass in patients with congenita! heart disease. JThoracCardiovasc Surg 2003:126:1404-1410
366. Yagi K. A biochemical approach to atherogenesis. Trends Int. Biol. Sci.. 1986. 11: 18-19.
367. Yamakura F. Destruction of tryptophan residues by hydrogen peroxide in iron- superoxide dismutase. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1984, 122,635-641.
368. Yla-Herttuala S. Role of lipid and lipoprotein oxidation in the pathogenesis of atherosclerosis. Drugs Today, 1994. 30: 507-514.
369. Yla-Herttuala S., Palinski W., Butler S.W. et al. Rabbit and human atherosclerotic lesions contain IgG that recognizes epitopes of oxidized LDL. Artheriosclerosis Thromb., 1994,14: 32-40.
370. Yokoi H., Daida H., Kuwabara Y. et al. Effectivness of antioxidans in preventing restenosis after percutaneus transluminal coranary angioplasty: The probucol angioplasty restenosis Trial. JASS. 1997:30:855-862.
371. Yusuf S., Dagenais G., Pogue J., Bosch J., Sleight P. The Heart Outcomes Prevention Evaluation Study Investigators. Vitamin E supplementation and cardiovascular events in high-risk patients. New Engl J Med 2000; 342: 154-60.
372. Yutani C, Ishibashi-Ueda H, Suzuki T. Kojima A. Histologic evidence of foreign body granulation tissue and de novo lesions in patients with coronary stent restenosis. Cardiology. 1999;92{3): 171-177.
373. Zalewski A, Shi Y.Vascular myofibroblasts. Lessons from coronary repair and remodeling. Arterioscler Thromb Vase Biol. 1997;17(3):417-422.
374. Zapolska-Downar D, Zapolski-Downar A, Markiewski M. Selective inhibition by probucol of vascular cell adhesion molecule-1 (VCAM-1) expression in human vascular endothelial cells. Atherosclerosis. 2001; 155(1): 123-130.
375. Zheng X, Hu SJ. Effects of simvastatin on cardiac performance and expression of sarcoplasmic reticular calcium regulatory proteins in rat heart. Acta Pharmacol Sin. 2005. Vol.26, № 6. P.696-704
376. Ziegeihoffer A., Styk J., Ravigerova T. et al. Prevention of processes coupled with free radical formation prevents also the development of calcium-resistance in the diabetic heart. Life Sci., 1999, 65: 1999-2001.
377. Zou J, Huang Y, Cao K, YangG. Effect of resveratrol on intimal hyperplasia after endothelial denudation in an experimental rabbit model. Life Sci. 2000: 68(2):153- 163.