Автореферат и диссертация по медицине (14.00.39) на тему:Клинико-патогенетическое значение исследования активности ксантиноксидазы, ксантиндегидрогеназы, 5'-нуклеотидазы в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови у больных системной красной волчанкой

ДИССЕРТАЦИЯ
Клинико-патогенетическое значение исследования активности ксантиноксидазы, ксантиндегидрогеназы, 5'-нуклеотидазы в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови у больных системной красной волчанкой - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Клинико-патогенетическое значение исследования активности ксантиноксидазы, ксантиндегидрогеназы, 5'-нуклеотидазы в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови у больных системной красной волчанкой - тема автореферата по медицине
Хафиз, Эйса Сибхан Азраг Волгоград 2009 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.39
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Клинико-патогенетическое значение исследования активности ксантиноксидазы, ксантиндегидрогеназы, 5'-нуклеотидазы в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови у больных системной красной волчанкой

На правах рукописи

Хафиз Эйса Сибхан Азраг

КЛИНИКО-ПАТОГЕНЕТИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ АКТИВНОСТИ КСАНТИНОКСИДАЗЫ, КСАНТИНДЕГИДРОГЕНАЗЫ, 5'-НУКЛЕОТИДАЗЫ В ЛИЗАТАХ ЛИМФОЦИТОВ, ЭРИТРОЦИТОВ И ПЛАЗМЕ КРОВИ У БОЛЬНЫХ СИСТЕМНОЙ КРАСНОЙ ВОЛЧАНКОЙ

14.0039- ревматология

Авторефератдиссертации на соисканисуч кандидата медицинских наук

Волгоград-2009

003464969

Работа выполнена в Учреждении Российской академии медицинских наук «НИИ клинической и экспериментальной ревматологии РАМН» и ГОУ ВПО «Волгоградский государственный медицинский университет» Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию РФ

Научный руководитель: доктор медицинских наук, профессор

МАРТЕМЬЯНОВ Владислав Федорович

Официальные оппоненты: доктор медицинских наук, профессор

ЦЫБУЛИНА Екатерина Васильевна Волгоградский государственный медицинский университет

доктор медицинских наук, профессор ЗАВОДОВСКИЙ Борис Валерьевич НИИ клинической и экспериментальной ревматологии РАМН

Ведущая организация: ГОУ ВПО «Оренбургская государственная медицинская академия»

Защита состоится "_" _2009 г. в_часов на заседании диссертационного совета Д 208.008.02 в ГОУ ВПО «Волгоградский государственный медицинский университет» Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию РФ (400131, г. Волгоград, пл. Павших борцов, I).

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГОУ ВПО «Волгоградский государственный медицинский университет» Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию РФ.

Автореферат разослан "_"_2009 г.

Ученый секретарь

диссертационного совета

доктор медицинских наук,.профессор

А.Р. Бабаева

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. В последние годы достигнуты определенные успехи в борьбе с системной красной волчанкой (СКВ): увеличилась продолжительность жизни, повысилось ее качество, но, тем не менее, распространенность остается высокой, и отмечается тенденция к ее росту. Сложность как первичной диагностики СКВ, так и ее рецидивов с субклиническим течением, выраженное прогрессирующее течение с тяжелым поражением внутренних органов, длительная потеря трудоспособности, частая ранняя и стойкая инвалидизация, высокая летальность в относительно молодом возрасте, постоянный пожизненный прием лекарственных средств, значительный экономический ущерб для общества — все это создает значительные трудности в борьбе с данным заболеванием, и эта проблема весьма актуальна как в медицинском, так и социальном аспектах.

Новые комплексные методы лечения больных СКВ с включением больших доз глюкокортикоидов, иммунодепрессантов (пульс-терапия, синхронная интенсивная терапия) позволили выводить больных из тяжелых кризисных состояний, но добиться полной клинической ремиссии и не допустить рецидивов болезни в большинстве случаев не удается (М. Иванова, 1995; С. Соловьев, 2000; Е. Насонов, 2006). Во многом подобная ситуация связана с неясностью отдельных патогенетических механизмов СКВ и, вероятно, что общепринятая терапия больных, основанная на иммунной концепции патогенеза СКВ, не затрагивает неизвестные, но возможно очень значимые патогенетические звенья СКВ. Имеются сведения о многочисленных метаболических нарушениях при СКВ, особый интерес из которых представляют данные о нарушениях нуклеинового метаболизма, дисбалансе различных нуклеотидов и нуклеозидов, гиперпродукции антител к ДНК и РНК (Д. Лебедев и др., 1984; В. Насонова и др., 1998). Известно, что пуриновые метаболиты (аденозин, гуанозин) принимают активное участие в созревании, пролиферации и дифференциации иммунокомпетентных клеток — лимфоцитов, отвечающих за антителооб-разование и иммунологическую реактивность (Н. Дмитренко, 1984). Исходя их этого, можно предположить, что в развитии СКВ играют определенную роль не только иммунные нарушения, но и дефекты ферментного метаболизма пуринов, на основе которых формируются патологические иммунные реакции. Поэтому работы, направленные на изучение активности энзимов, регулирующих содержание пуриновых метаболитов, представляются перспективными, так как позволят приблизиться к пониманию отдельных звеньев патогенеза СКВ, причин иммунных нарушений.

Достаточно актуальными задачами остаются диагностика минимальной активности патологического процесса при СКВ при его хроническом течении, разграничение фаз клинической ремиссии и обострения,

дифференциальная диагностика СКВ с дискоидной красной волчанкой (ДКВ). Решению некоторых из этих задач и посвящена наша работа, в которой использовались, помимо общепринятых клинико-инструменталь-ных и лабораторных исследований, оригинальные методы исследований активности энзимов пуринового метаболизма (ПМ): ксантиноксидазы (КО), ксантиндегидрогеназы (КДГ) и 5'-нуклеотидазы (5'-НТ) в трех биологических средах (лизаты лимфоцитов, эритроцитов и плазма крови).

Цель исследования. Повышение качества диагностики активности патологического процесса при СКВ, дифференциальной диагностики СКВ и ДКВ, объективизации контроля эффективности проводимой терапии с использованием показателей активности КО, КДГ и 5'-НТ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови. Выявление особенностей ПМ при СКВ и ДКВ, способствующих выяснению патогенетических различий этих заболеваний.

Задачи исследования.

1. Изучить активность КО, КДГ и 5'-НТ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови здоровых людей, установить референтные пределы для активности этих энзимов у здоровых и изучить зависимость активности КО, КДГ и 5'-НТ в трех биологических средах от пола и возраста.

2. Изучить активность КО, КДГ, 5'-НТ, содержание мочевой кислоты (МК) у больных СКВ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови в процессе лечения: при поступлении на лечение, через 10-12 дней и перед выпиской из стационара.

3. Изучить особенности энзимного профиля крови у больных СКВ в зависимости от степени активности патологического процесса, характера течения, поражения почек и сердца.

4. Изучить корреляционные связи между активностями КО, КДГ, 5'-НТ у больных СКВ в трех биологических средах.

5. Выявить энзимологические особенности крови больных СКВ и ДКВ, способствующие их дифференциации.

6. Оценить возможность использования изученных энзимных показателей крови в качестве дополнительных критериев эффективности проводимой терапии больных СКВ.

Научная новизна. Впервые у больных СКВ в трех биологических средах (лизаты лимфоцитов, эритроцитов и плазма крови) проведено параллельное исследование активности трех энзимов ПМ: КО, КДГ и 5'-НТ, а также содержания МК в зависимости от степени активности патологического процесса, характера течения, эффективности проводимой терапии, наличия органных поражений и показано, что изученные энзимные показатели способствуют уточнению степени активности патологического

процесса, характера течения заболевания, объективизации оценки эффективности проводимой терапии. Также впервые были проведены сравнительные исследования активности КО, КДГ и 5'-НТ в трех биологических средах у больных СКВ и ДКВ и выявлены энзимологические особенности крови при этих двух заболеваниях. Изучены корреляционные связи между активностью энзимов в трех биологических средах в зависимости от активности патологического процесса у больных СКВ. Выдвинута гипотеза о возможности первичности нарушений ПМ и вторичности иммунных нарушений в патогенезе СКВ.

Практическая ценность.

Проведенные исследования показали, что определение активности КО, КДГ и 5'-НТ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови больных СКВ в комплексе с клиническими данными может оказать существенную помощь в выявлении минимальной активации патологического процесса, разграничении фаз клинической ремиссии и обострения заболевания, уточнении степени активности патологического процесса, объективизации оценки эффективности проводимой терапии больных СКВ. Исследования активности КО, КДГ и 5'-НТ в трех биологических средах способствуют дифференциации СКВ и ДКВ.

Внедрение в практику.

Методы определения активности КО, КДГ и 5'-НТ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови внедрены в работу муниципального учреждения здравоохранения "Городская клиническая больница № 25" г. Волгограда. С результатами энзимных исследований и возможностями энзимной диагностики при ревматических заболеваниях систематически знакомятся практические врачи па курсах усовершенствования, научно-практических конференциях, студенты старших курсов Волгоградского государственного медицинского университета.

Основные положения, выносимые на защиту.

Показатели активности КО, КДГ и 5-НТ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови у больных СКВ могут быть использованы в качестве дополнительных вспомогательных тестов для ранней диагностики обострения заболевания, уточнения степени активности патологического процесса, характера течения, объективизации оценки эффективности проводимой терапии, дифференциальной диагностики СКВ и ДКВ.

Публикации и апробация работы.

По теме диссертации опубликовано 4 печатных работ. Материалы диссертации докладывались на научных сессиях и конференциях НИИ клинической и экспериментальной ревматологии РАМН и Волгоградской государственной медицинской академии (2007-2008 гг.). Первичная экспертиза диссертации проведена на заседании ученого совета НИИ клинической и экспериментальной ревматологии РАМН и кафедры госпиталь-

ной терапии Волгоградского государственного медицинского университета 12 февраля 2009 г.

Объем и структура диссертации.

Диссертация изложена на 210 страницах компьютерного текста и состоит из введения; части I - обзора литературы, представленного одной главой, в которой изложены обобщенные сведения о значении ПМ и отдельных его энзимов в биологии и медицине; части II - собственных исследований, состоящей из 4 глав, содержащих клиническую характеристику больных, методы исследований, результаты исследований и их обсуждение, выводы и практические рекомендации.

Диссертация иллюстрирована 49 таблицами, 11 рисунками, 4 выписками из историй болезни. Библиографический указатель содержит 359 источников, из которых 99 отечественных и 260 зарубежных.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Под наблюдением в условиях стационара находились 54 больных СКВ, из которых 49 (90,7%) женщин и 5 (9,3%) мужчин. Возраст больных колебался в пределах 22-60 лет. Средний возраст больных — 39,9±1,2 (<т=8,9) лет. Преобладали больные в возрасте 31-40 лет (44,4%). Средняя продолжительность болезни — 7,19±0,54 (а=4,0) лет. Диагностика СКВ проводилась на основании всестороннего клинического обследования с использованием инструментальных, лабораторных методов, диагностических критериев Американской ревматологической ассоциации (АРА) и отечественных ученых-ревматологов (В. Насонова и др., 1989; М. Hochberg, 1997).

Степень активности патологического процесса при СКВ и характер течения заболевания определялись на основании клинических и лабораторных показателей в соответствии с отечественной классификацией, а также с использованием индексов SLAM (Systemik. Lupus Activity Measure), рекомендованных АРА (В.Насонова и др., 1989; Tan et al, 1982; Isenberg et al, 1998). I степень активности процесса установлена у 15 (27,8%) больных СКВ, И степень — у 30 (55,6%) и III степень — у 9 (16,7%) больных. Хроническое течение заболевания наблюдалось у 17 (31,5%) больных, подострое — у 32 (59,3%) и острое течение — у 5 (9,3%) больных. Хроническое течение преобладало при I степени (70,6%), подострое — при И степени (78,1%) и острое течение определялось только при III степени активности процесса.

В клинической картине заболевания наиболее часто наблюдались поражения кожи и суставов (94,4%), сердца, почек (51,9%), бронхо-легочного аппарата (42,6%). У большинства больных (85,2%) отмечались комбинированные поражения различных органов и систем. Всем больным проводилась комплексная гормонально-медикаментозная терапия. Доза

глюкокортикоидов варьировала от 15 до 90 мг (по преднизолону) в сутки и зависела от степени активности процесса и наличия висцеритов. Бо-лезньмодифицирующие средства (циклофосфамид, азатиоприн, метотрек-сат) использовались у 32 (59,3%) больных, пульс-терапия — у 8 (14,8%), плазмаферез - у 9 (16,7%) больных. НПВП и различные симптоматические средства использовались у большинства больных.

Контрольную группу составили 24 больных ДКВ, из которых 9 (37,5%) мужчин и 15 (62,5%) женщин. Средний возраст больных — 39,4±2,2 года, средняя продолжительность заболевания — 4,8±0,9 лет. Очаги поражения кожи чаще наблюдались на щеках и спинке носа (33,3%). Характерными признаками очагов были эритема, инфильтрация, фолликулярный гиперкератоз. У всех больных в очагах поражения кожи наблюдались явления эритемы, инфильтрации, что свидетельствовало об обострении процесса. Артралгии отмечались в 12,5% случаев. Лечение больных ДКВ проводилось в амбулаторных условиях опытным врачом-дерматологом. Энзимные и другие исследования проводились однократно в первые 2-3 дня при обращении к врачу.

Выделение клеток (лимфоцитов и эритроцитов) из венозной крови проводилось по методике, предложенной Bôyum (1968), с использованием лимфосепа (Lympho separation mudium) фирмы "JCN Biomedical" с плотностью раствора 1,077-1,079 г/мл. Лизаты клеток готовились путем замораживания-оттаивания-центрифугирования. Активность энзимов в лизатах лимфоцитов рассчитывалась в нмоль/мин/мл на 1 мл, содержащий 1 х 107 клеток, в эритроцитах — на 1 мл, содержащий 1х109 клеток, в плазме — на 1 мл.

Определение активности 5'-НТ. во всех трех биологических средах проводилось по методике R. Wood, Williams (1981), КО — по модифицированной методике Калькара (1973), КДГ— по методике Z. Devenui et al. (1987).

Референтные пределы активности энзимов для здоровых людей (условная норма) рассчитывалась по формуле: М±2а (95% вероятность). Энзимные исследования проведены у 33 практически здоровых людей (доноры станции переливания крови), из которых 18(54,5%) мужчин и 15 (45,5%) женщин. Средний возраст — 36,2±1,9 (сг=10,9) лет.

У всех больных СКВ энзимные и другие лабораторные исследования в процессе лечения проводились трижды: при поступлении, через 10-12 дней и перед выпиской из стационара.

Помимо оригинальных энзимных исследований, у больных определялись общепринятые показатели: общий анализ крови и мочи, аланино-вая и аспарагиновая трансаминазы, общий белок и белковые фракции крови, креатинин крови, сиаповые кислоты, мочевая кислота, СРБ, ЦИК, иммуноглобулины, АНФ, антитела к н-ДНК.

Статистическую обработку результатов проводили с помощью параметрических и непараметрических методов анализа с использованием программных пакетов «8ТАТ18Т1КА 6.0». При сравнении групп по количественному признаку использовались критерии Манна-Уитни, Стьюден-та, Вилкоксона, корреляционный анализ проводился по методу Пирсона.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Существенных различий показателей активности КО, КДГ и 5'-НТ у здоровых людей во всех трех биологических средах в зависимости от пола и возраста не выявлено.

При поступлении в стационар у больных СКВ (всей группы), по сравнению со здоровыми (табл. 1-3), в плазме крови выше активность КО, ниже активность КДГ и 5'-НТ (все р<0,001); в лизатах эритроцитов ниже активность 5'-НТ (р<0,001); в лизатах лимфоцитов ниже активность всех изученных энзимов (р<0,001).

Анализ корреляционных связей между активностями энзимов показал, что по сравнению со здоровыми, в плазме изменились как направления, так и прочность связей: между КО—КДГ обратные высокопрочные связи стали умеренными, между КО—5'-НТ умеренные прямые связи сменились на слабые обратные, а обратные связи между КДГ—5'-НТ сменились на прямые умеренные. В лизатах эритроцитов значительно уменьшилась прочность обратных связей между КО—КДГ, прямые умеренные связи между КО—5'-НТ изменились на слабые обратные, а между КДГ—5'-НТ слабые обратные связи поменялись на слабые прямые связи. В лимфоцитах, практически, не изменились прямые умеренные связи между КО—5'-НТ, между КО—КДГ умеренные обратные связи сменились на прямые высокопрочные, а между КДГ—5'-НТ умеренные обратные связи поменялись на прямые умеренные связи.

У больных СКВ с хроническим течением заболевания (всей группы) при поступлении на лечение (табл. 1-3) отмечалось в плазме повышение активности КО (р<0,001), КДГ (р=0,008) и 5'-НТ (р=0,036); в лизатах лимфоцитов снижение активности всех энзимов: КО, КДГ и 5'-НТ (все р<0,001); в лизатах эритроцитов повышение активности КО (р<0,001), снижение активности КДГ (р<0,001) и тенденция к повышению активности 5'-НТ (р=0,062).

У больных СКВ с подострым течением (всей группы) при поступлении, по сравнению со здоровыми (табл. 1-3), в плазме выше активность КО, ниже КДГ и 5'-НТ (все р<0,001); в лимфоцитах ниже активность всех энзимов (р<0,001); в эритроцитах ниже активность 5'-НТ (р<0,001) и определялась тенденция к повышению активности КО (р~0,062) и снижению активности КДГ (р=0,094).

У больных СКВ с острым течением (всей группы) при поступлении в стационар, по сравнению со здоровыми (табл. 1-3), в плазме выше активность КО, ниже КДГ и 5'-НТ (все р<0,001); в эритроцитах ниже активности КО, 5'-НТ и выше КДГ (все р<0,001); в лимфоцитах ниже активности всех энзимов (все р<0,001).

Между всеми вариантами течения заболевания выявлены существенные энзимные различия. Так, у больных с хроническим течением, по сравнению с подострым, в плазме ниже активность КО, но выше КДГ и 5'-НТ (все р<0,001), в эритроцитах выше активность КО, 5'-НТ и ниже КДГ (все р<0,001), в лимфоцитах выше активность всех энзимов (все р<0,001); по сравнению с острым течением, в плазме выше активность КДГ, 5'-НТ, но ниже КО (все р<0,001), в эритроцитах выше активность КО, 5'-НТ и ниже КДГ (все р<0,001), в лимфоцитах выше активность всех энзимов (все р<0,001).

У больных СКВ с подострым течением, по сравнению с острым, в плазме выше активность КДГ (р<0,001), 5'-НТ (р=0,033), ниже КО (р<0,001), в эритроцитах выше активность КО, 5'-НТ и ниже КДГ (все р<0,001), в лимфоцитах выше активность всех энзимов: КО и 5'-НТ (р<0,001), КДГ (р=0,008).

Вышеприведенный анализ энзимных показателей крови у больных СКВ был проведен без учета степени активности патологического процесса, и поэтому он является лишь отражением общей тенденции изменений активности изученных энзимов при этом заболевании. Учитывая, что степень активности процесса может оказать весьма существенное влияние на энзимный профиль крови, что было показано при большинстве ревматических заболеваний (Т. Брагина, 2006; Н. Ермолаева, 2007; О. Слюсарь, 2008), нами был проведен анализ энзимных показателей крови у больных СКВ при различных степенях активности процесса.

I степень активности процесса. При поступлении на лечение, по сравнению со здоровыми (табл. 1-3), в плазме выявлено повышение активности всех ферментов (все р<0,001), в лимфоцитах — снижение активности всех ферментов (все р<0,001), в эритроцитах — повышение активности КО (р<0,001), 5'-НТ (р=0,008) и снижение активности КДГ (р<0,001). Повышение уровня МК было несущественным (р=0,072). Если же учитывать не среднестатистические величины активности энзимов, а индивидуальные энзимные показатели, то в плазме крови за референтные пределы здоровых людей (М±2ст) активность КО выходила в 60% случаев (выше, чем у здоровых), активность КДГ была выше в 40%, 5'-НТ — в 13,3% случаев, в лимфоцитах активность КО была ниже в 26,7%, КДГ — в 33,3% и 5'-НТ в 80% случаев, в эритроцитах активность КО была выше в 86,7%, 5'-НТ — в 26,7%, а КДГ — ниже в 86,7% случаев.

В то же время у этих же больных за референтные пределы здоровых людей выходили показатели СОЭ, СРБ, ЦИК в 40%, гамма-глобулины, AT к н-ДНК, АНФ — в 46,7%, иммуноглобулины G — в 33,3% случаев.

То есть, показатели активности КО в плазме, 5'-НТ в лимфоцитах, КО и КДГ в эритроцитах оказались более чувствительными и информативными в индикации минимальной активности патологического процесса при СКВ, чем самые демонстративные в этом аспекте общепринятые острофазовые клинико-иммунно-биохимические показатели.

Анализ корреляционных связей показал наличие прямых умеренных связей между активностями всех энзимов в плазме и лимфоцитах, обратных умеренных связей между КО—КДГ, КДГ—5'-НТ и прямых умеренных связей между КО—5'-НТ в эритроцитах.

Выявлены также в плазме прямые умеренные связи между активностями КО, КДГ и IgG, ЦИК, AT к н-ДНК (г от 0,3 до 0,41). В лизатах эритроцитов между активностью КО и IgG, ЦИК и AT к н-ДНК определялись прямые умеренные связи (г от 0,44 до 0,65), а между КДГ и IgG, ЦИК и AT к н-ДНК — обратные умеренные связи (г от -0,42 до -0,72) и обратные слабые связи между 5'-НТ и IgG, ЦИК, AT к н-ДНК (г от -0,17 до -0,21). В лимфоцитах между активностью всех энзимов и всеми изученными иммунными показателями определялись обратные умеренные связи (г от -0,27 до -0,71).

Через 10-12 дней лечения наблюдалась положительная динамика некоторых энзимных показателей: в плазме снизилась активность 5'-НТ (р=0,034) и наметилась тенденция к снижению активности КО (р=0,072) и КДГ (р=0,053), в лимфоцитах повысилась активность 5'-НТ (р=0,037) и несколько повысилась активность КДГ (р=0,056) и КО (р=0,11), в эритроцитах наметилась тенденция к снижению активности 5'-НТ (р=0,068), КО (р=0,057) и повышению КДГ (р=0,053).

По окончании курса стационарного лечения (табл. 1-3), по сравнению с начальным этапом, наблюдалась положительная динамика клинического состояния больных, индекс SLAM уменьшился на 20,9% (р<0,001), в плазме снизилась, а в лимфоцитах повысилась активность всех энзимов (все р<0,001), в эритроцитах снизилась активность КО, повысилась активность КДГ и 5'-НТ (р<0,001). Практически, нормализовалась активность всех энзимов в плазме, активность КО и 5'-НТ в эритроцитах, КО и КДГ в лимфоцитах, содержание МК, но осталась сниженной активность КДГ в эритроцитах (р=0,008) и 5'-НТ в лимфоцитах (р=0,007).

У больных с хроническим течением заболевания, по сравнению со здоровыми, в плазме выявлено повышение активности всех энзимов (р<0,001); в лимфоцитах — снижение активности всех энзимов (р<0,001); в эритроцитах -— повышение активности КО, 5'-НТ и снижение активности КДГ (р<0,001).

Активность энзимов в плазме крови здоровых и больных СКВ

Контингент Кол-во Стат. КО КДГ 5'-НТ

6-ых шж-ли Пост. 10-12 дн. Вып Пост. 10-12 дн. Вып. Пост. 10-12 дн. Выи.

М 3,25 5,18 5,41

Здоровые 33 о ш 0,30 0,05 — ■— 0,26 0,05 — — 0,45 0,08 - -

М 5,18 4,71 3,67 4,62 4,75 5,01 5,04 5,11 5,27

СКВ, вся группа 54 с 1,00 0,78 0,34 0,78 0,57 0,23 0,62 0,42 0,17

1Т1 0,14 0,11 0,05 0,11 0,08 0,03 0,08 0,06 0,02

СКВ, 1 степень активности 15 М ст т 3,97 0,40 0,10 3,75 0,30 0,08 3,39 0,15 0,04 5,64 0,28 0,07 5,47 0,18 0,05 5,23 0,12 0,03 5,93 0,31 0,08 5,70 0,22 0,06 5,37 0,14 0.04

СКВ, II степень активности 30 М а т 5,36 0,53 0,10 4,88 0,48 0,09 3,68 0,32 0,06 4,46 ■ 0,29 0,05 4,66 0,22 0,04 5,01 0,14 0,03 4,75 0,21 0,04 4,94 0,18 0,03 5,29 0,15 0,03

СКВ, Ш «спечь активности 9 М ст т 6,60 0,32 0,11 5,74 0,19 0,06 4,06 0,17 0,06 3,48 0,20 0,07 3,87 0,17 0,06 4,63 0,10 0,03 4,49 0,18 0,06 4,69 0,14 0,05 5,07 0,10 0,03

СКВ, хроническое течение 17 М а т 4,07 0,47 0,11 3,82 0,34 0,08 3,38 0,15 0,04 5,50 0,43 0,11 5,37 0,29 0,07 5,23 0,10 0,02 5,74 0,51 0,12 5,58 0,32 0,08 5,40 0,14 0,03

СКВ, нодострое течение 32 М о т 5,51 0,58 0,10 5,00 0,50 0,09 3,76 0,32 0,06 4,36 0,42 0,07 4,58 0,34 0,06 4,96 0,18 0,03 4,77 0,31 0,06 4,94 0,25 0.04 5,25 0,13 0,02

СКВ. острое течение 5 М а 1П 6,84 0,21 0,09 5,88 0,13 0,06 4,06 0,21 0,09 3,34 0,11 0,05 3,76 0,09 0,04 4,62 0,08 0,04 4,36 0,11 0,05 4,60 0,10 0,05 5,00 0,07 0,03

Активность энзимов в лизатах эритроцитов здоровых и больных СКВ

Контингент Кол-во б-ых Стат. по к-л и КО кдг 5'-НТ

Пост. 10-12 дн. Вып Пост. 10-12 дн. Вып. Пост. 10-12 дн. Вып.

Здоровые 33 М а in 22 7 1,67 0,29 — — 47,9 I,71 0,30 45,8 II,9 1,62 — — 39,9 5,58 0,97 — —

СКВ, вея группа 54 М а m 24.0 5,28 0,72 23,2 4,02 0,55 12 1 1,16 0.16 46,1 8.78 1,19 48,2 3,17 0,43 32,9 8,88 1,21 33,7 6,36 0,87 36,7 3,03 0,41

СКВ, I степень активности 15 М а m 29,6 3,66 0.95 27,7 2,78 0,72 23,1 0,88 0,23 . 38,3 4,06 1,05 40,7 2,96 0,76 46,1 1,79 0,46 45,5 7,03 1,81 42,5 5,33 1,38 40,8 1,64 0,43

СКВ, 11 степень активности 30 М а m 23,7 2.14 0,39 22,8 1,66 0,30 22,0 0,74 0,13 43,3 8,37 1,53 44,3 6,13 1,12 48,0 1,96 0,36 28,8 1,75 0.32 30,9 1,49 0,27 35,8 1.34 0,24

СКВ, Ш степень активности 9 М а m 15,5 1,97 0,66 17,2 1,82 0,61 20,4 0,36 0,12 66,4 6,56 2,19 61,3 5,77 1,92 52,6 4,10 1,37 25,3 1,40 0,47 28,2 1,04 0,35 33,1 0,65 0,22

СКВ, хроническое течение 17 М а m 29,0 3,72 0,90 27,3 2,84 0,69 23,1 0,84 0,20 36,4 2,94 0,71 39,2 2,63 0,64 45,7 ' 1.75 0,42 43,5 8,52 2,07 41,1 6,34 1,54 40,3 2,09 0,51

СКВ, подо-строе течение '32 М о m 22,8 3,09 0,55 22,1 2,10 0,37 21,8 0,85 0,15 46,9 6,21 1,63 46,9 6,48 1,15 48,5 1,67 0,30 28,5 2,06 0,36 30,7 1,81 0,32 35,5 1,56 0,28

СКВ, острое Течение 5 М <7 m 14,4 1,88 0,84 16,1 1,78 0,80 20,3 0,43 0,19 70,4 5,53 2,48 64,7 5,09 2,28 54,9 4,10 1,83 24,3 0,69 0,31 27,5 0,55 0,25 32,7 0,35 0,16

Активность энзимов в лизатах лимфоцитов здоровых и больных СКВ

Контингент Кол-во б-ых Стат. ПОК-ЛИ КО КДГ 5'-НТ

Пост. 10-12 дн. Вып Пост. 10-12 дн. Вып. Пост. 10-12 дн. Вып.

Здоровые 33 М о m 20,2 2,12 0,37 — — 31,1 4,14 0,72 — — 35,9 2,39 0.42 • — —

СКВ, вся группа 54 М о in 13,8 2,24 0,31 15,0 1,67 0,23 18,8 0,94 0,13 16,4 5,05 0,69" 18,7 4,32 0,59 26,0 3,36 0,46 28,7 2,00 0,27 32,6 2,50 0,34 34,0 0,98 0,13

СКВ, I степень активности 15 М а m 16,9 1,26 0,33 17,2 1,03 0,27 19,7 0,57 0,15 23,9 2,07 0,54 25,2 1,54 0,40 30,4 0,94 0,24 30,5 1,58 0,41 31,9 1,34 0,35 34,4 0,96 0,25

СКВ, 11 степень aicniBHOCTii 30 М о in 13,1 0,85 0,16 ¡4,4 ■ 0,71 0,13 18,7 0,74 0,14 ¡4,2 1,23 0,22 16,7 1,30 0,24 24,6 2,09 0,38 28,6 1,31 0.24 30,5 1,15 0,21 34,3 .0,69 0,13

СКВ, III степень активности 9 М о m 11,2 0,70 0,23 13,0 0,39 0,13 17,6 0,43 0,14 11,1 0,54 0,18 14,8 0,65 0,22 23,3 2,46 0,82 25,9 0,81 0,27 28,0 0,74 0,25 32,7 0,66 0,22

СКВ, хроническое течение 17 М о m 16,5 1,62 0,39 16,7 1,40 0,34 19,4 0,88 0,21 22,1 4,17 1,01 23,7 3,60 0,87 28,6 2,95 0,72 30,8 1,13 0,27 32,2 0,87 0,21 34,8 0,65 0,16

СКВ, подострое течение 32 М о ш 12,9 1,02 0,18 14,3 0,99 0,17 18,6 0,82 0,14 14,2 2,61 0,46 16,9 2,62 0,46 24,8 3,00 0,53 28,1 1,23 0,22 30,0 1,13 0,20 33,9 0,80 0,14

СКВ, острое течение 5 М а m 10,8 0,69 0,31 13,1 0,53 0,24 17,9 0,28 0,13 10,8 0,46 0,21 14,8 0,19 0,08 24,3 1,03 0,46 25,3 0,64 0,28 27,5 0,68 0.30 32,4 0,68 0,30

После проведенного курса стационарного лечения нормализовались среднестатистические величины активности всех энзимов в трех средах.

У больных с подострым течением, по сравнению со здоровыми, в плазме крови выше активность КО (р<0,001); в эритроцитах выше активность КО (р<0,001), ниже КДГ (р=0,035) и 5'-НТ (р=0,048); в лимфоцитах ниже активность КО (р=0,006), КДГ (р=0,005) и 5'-НТ (р<0,001).

Среднестатистические величины активности всех энзимов во всех средах исследований по окончании курса лечения не имели существенных отличий от здоровых.

Сравнительные исследования показали, что при хроническом течении, по сравнению с подострым, в плазме ниже активность КО (р=0,006) и выше КДГ (р=0,004); в эритроцитах ниже активность КДГ (р<0,001) и выше 5'-НТ (р<0,001); в лимфоцитах выше активность КО (р=0,004), КДГ (р=0,008) и 5'-НТ (р=0,005). То есть, и при одинаковой степени активности процесса определяются существенные энзимные различия во всех трех средах исследований, что свидетельствует о значительном влиянии характера течения болезни на энзимный профиль крови, что необходимо учитывать в клинической практике.

II степень активности процесса. При поступлении на лечение индекс SLAM составил 4,42±0,07 баллов, а в плазме крови (табл. 1), по сравнению со здоровыми, определялось повышение активности КО и снижение активности КДГ и 5'-НТ (все р<0,001), повышение уровня МК (р=0,044); в эритроцитах (табл. 2) — повышение активности КО (р=0,042), снижение активности КДГ (р=0,006) и 5'-НТ (р<0,001); в лимфоцитах (табл. 3) — снижение активности всех энзимов (р<0,001).

В плазме выявлены умеренные обратные связи между КО—КДГ, КО—5'-НТ и прямые умеренные связи между КДГ—5'-НТ; в лимфоцитах

— прямые умеренные связи между КО—5'-НТ, КДГ—5'-НТ и прямые высокопрочные связи между КО—КДГ, в эритроцитах — обратные умеренные связи между КО—5'-НТ и прямые умеренные связи между КДГ— 5'-НТ.

Между КДГпл. и КДГлимф., 5'-НТпл. и 5'-НТлимф., 5'-НТлимф. и 5'-НТэр. определялись высокопрочные прямые связи, умеренные прямые

— между 5'-НТпл. и 5'-НТэр., обратные умеренные связи между КОпл. и КОлимф., а остальные связи были слабыми.

В лимфоцитах выявлены также обратные высокопрочные связи между активностями КО, КДГ и IgG, ЦИК и AT к н-ДНК (г от -0,75 до -0,85), обратные умеренные связи между 5'-НТ и IgG, ЦИК (г от 0,69 до -0,73), высокопрочные обратные связи между 5'-НТ и AT к н-ДНК (г=- 0,77).

Через 10-12 дней лечения в плазме снизилась активность КО (р<0,001), повысились ранее сниженные активности КДГ (р=0,006) и 5'-НТ (р<0,001); в эритроцитах повысилась активность 5'-НТ (р<0,001); в лимфоцитах повысились ранее сниженные активности всех энзимов (р<0,001).

После проведенного курса стационарного лечения (табл. 1-3) наблюдалась нормализация уровня МК, активности 5'-НТ в плазме и КДГ в эритроцитах, но осталась повышенной активность КО в плазме (р<0,001) и сниженной активность КДГ (р=0,007), в эритроцитах — сниженными активности КО (р=0,041) и 5'-НТ (р<0,001), в лимфоцитах — сниженными активности всех энзимов (р<0,001), что свидетельствовало о необходимости продолжения активной терапии в амбулаторных условиях. Индекс SLAM снизился на 24,9% (р<0,001).

У больных с хроническим течением, по сравнению со здоровыми, в плазме выше активность КО (р<0,001); в эритроцитах выше активность КО (р<0,001), ниже КДГ (р<0,001) и 5'-НТ (р=0,007); в лимфоцитах ниже активность всех энзимов (р<0,001).

По окончании курса лечения в плазме значительно снизилась активность КО и повысились активности КДГ и 5'-НТ (все р<0,001); в эритроцитах снизилась активность КО и повысились активности КДГ и 5'-НТ (все р<0,001); в лимфоцитах повысилась активность всех энзимов (р<0,001).

У больных с подострым течением, по сравнению со здоровыми, в плазме ниже активность КДГ, 5'-НТ и выше КО (все р<0,001); в эритроцитах ниже активность 5'-НТ (р<0,001), КДГ (р=0,043); в лимфоцитах ниже активность всех энзимов (р<0,001).

После проведенного курса лечения в плазме снизилась активность КО, повысились активности КДГ и 5'-НТ (все р<0,001); в эритроцитах снизилась активность КО (р=0,004), повысилась активность КДГ (р=0,009) и 5'-НТ (р<0,001); в лимфоцитах повысилась активность всех энзимов (р<0,001).

Сравнительный анализ показал, что у больных СКВ с хроническим течением, по сравнению с больными с подострым течением, в плазме ниже активность КО (р<0,001), но выше активности КДГ (р=0,038) и 5'-НТ (р=0,007); в эритроцитах выше активность КО, 5'-НТ (все р<0,001), ниже КДГ (р=0,037); в лимфоцитах выше активность КО (р=0,006), КДГ (р=0,004) и 5'-НТ (р<0,001).

III степень аетивностн процесса. При поступлении на лечение, по сравнению со здоровыми (табл. 1-3), в плазме значительно (в 2 раза) выше активность КО, ниже КДГ и 5'-НТ (все р<0,001); в эритроцитах ниже ак-

тивность КО, 5'-НТ и выше КДГ (все р<0,001); в лимфоцитах ниже активность всех энзимов (р<0,001). Индекс SLAM — 7,99±0,28 баллов.

В плазме выявлены прямые умеренные корреляционные связи между КДГ—5'-НТ, обратные между КО—КДГ (г=-0,78) и КО—5'-НТ (г=-0,47); в эритроцитах — прямые высокопрочные связи между КО—■ 5'-НТ, обратные высокопрочные связи между КДГ—5'-НТ и умеренные обратные связи между КО—КДГ; в лимфоцитах — прямые умеренные связи между КДГ—5'-НТ, КО—5'-НТ и высокопрочные прямые связи между КО—КДГ.

В лизатах лимфоцитов между активностью всех энзимов (КО, КДГ и 5'-НТ) и иммунными показателями (IgG, ЦИК и AT к н-ДНК) определялись обратные высокопрочные корреляционные связи (г от -0,76 до -0,88).

Через 10-12 дней лечения, по сравнению с исходным фоном, в плазме отмечалось снижение активности КО (р<0,001), повышение активности КДГ (р<0,001) и 5'-НТ (р=0,041); в эритроцитах — повышение активности 5'-НТ (р<0,001); в лимфоцитах — повышение активности всех энзимов (р<0,001).

По окончании курса лечения, по сравнению с начальным этапом (табл. 1-3), наблюдалась существенная положительная динамика всех энзимных показателей, но, тем не менее, большинство энзимных показателей не достигли уровня здоровых: остались повышенными в плазме активности КО (р<0,001), в эритроцитах — активности КДГ и КО (все р<0,001) и сниженными активности всех энзимов в лимфоцитах (р<0,001).

У больных СКВ с подострым течением, по сравнению с больными с острым течением, в плазме выше активность КДГ (р=0,029), 5'-НТ (р=0,003) и ниже активность КО (р=0,002), в лимфоцитах выше активность КО (р=0,041), КДГ (р=0,028) и 5'-НТ (р=0,024); в эритроцитах выше активность КО (р=0,034), 5'-НТ (р=0,005) и ниже активность КДГ (р=0,004).

Таким образом, проведенные исследования показали, что каждой степени активности процесса и варианту течения заболевания свойственны определенные этимологические профили крови. Сравнительные исследования показали, что у больных СКВ с 1 степенью активности процесса, по сравнению с больными с II степенью, в плазме выше активности КДГ и 5'-НТ, ниже активность КО (все р<0,001); в лимфоцитах выше активность всех энзимов (р<0,001); в эритроцитах выше активность КО (р<0,001), 5'-НТ (р<0,001), ниже активность КДГ (р=0,038); по сравнению с больными с III степенью, в плазме выше активности КДГ, 5'-НТ и ниже КО (все р<0,001), в лимфоцитах выше активность всех энзимов (р<0,001),

в эритроцитах выше активности КО, 5'-НТ и ниже активность КДГ (все р<0,001).

При II степени, по сравнению с III степенью, в плазме выше активность 5'-НТ (р=0,006), КДГ (р<0,001) и ниже активность КО (р<0,001), в лимфоцитах выше активность всех энзимов (р<0,001), в эритроцитах выше активности КО, 5'-НТ и ниже активность КДГ (все р<0,001).

Выявлена и определенная закономерность: чем выше степень активности процесса при СКВ, тем в плазме выше активность КО, но ниже активности КДГ и 5'-НТ, в лимфоцитах ниже активности всех энзимов, в эритроцитах выше активность КДГ, ниже КО и 5'-НТ.

В то же время выше было показано, что на энзимный профиль крови существенно влияет и характер течения: чем острее течение заболевания, тем в плазме выше активность КО, ниже активности КДГ и 5'-НТ, в лимфоцитах ниже активности всех энзимов, в эритроцитах ниже активности КО, 5'-НТ и выше активность КДГ.

То есть, отмечается определенная однонаправленность энзимных изменений при нарастании активности процесса и остроты течения заболевания, что может затруднить определение степени активности процесса, так как характер течения может «маскировать» степень активности процесса, накладывая свой отпечаток на энзимный профиль крови больных СКВ. Исходя из этого, перед нами встала задача: определить, что же в большей степени влияет на энзимный профиль крови — характер течения или степень активности процесса? Для решения этой задачи мы провели сравнительные исследования энзимных показателей крови больных СКВ с

I степенью активности процесса и подострым течением и больных СКВ с

II степенью и хроническим течением, исходя из предположения, что если характер течения оказывает значительно большее влияние на энзимный профиль крови, чем степень активности процесса, то энзимные показатели больных с подострым течением и I степенью не должны значительно отличаться от показателей больных с II степенью и хроническим течением.

Сравнительные исследования энзимных показателей этих двух групп больных выявили, практически, те же энзимные различия, которые определялись между I и II степенями активности процесса, что свидетельствовало о том, что на энзимный профиль крови значительно большее влияние оказывает степень активности процесса, чем характер течения заболевания. Исходя из этого, любой вариант течения заболевания не затрудняет уточнение степени активности процесса по энзимным показателям крови в комплексе с клиническими данными.

Энзимные показатели крови у больных СКВ с поражениями сердца и почек

Проведенные исследования у больных СКВ, независимо от степени активности процесса, показали, что у больных с поражением почек, по сравнению со здоровыми, в плазме выше активность КО, ниже КДГ и 5'-НТ (все р<0,001), в лизатах лимфоцитов ниже активность всех энзимов (все р<0,001), в эритроцитах ниже активность 5'-НТ (р<0,001), а по сравнению с больными без поражения почек, в плазме выше активность КО (р<0,001), ниже КДГ (р<0,01) и 5'-НТ (р<0,001), в лимфоцитах ниже активности всех энзимов (р<0,001), в эритроцитах ниже активность КО (р<0,01), 5'-НТ (р<0,001) и выше активность КДГ (р<0,01).

У больных СКВ с поражением сердца, по сравнению со здоровыми, в плазме выше активность КО (р<0,001), ниже КДГ (р<0,01) и 5'-НТ (р<0,05), в лимфоцитах ниже активность всех энзимов (р<0,001), в эритроцитах выше активность КО (р<0,01), ниже КДГ (р<0,05) и 5'-НТ (р<0,01), а по сравнению со всеми больными СКВ, в плазме существенных энзимных различий не определялось, в лимфоцитах выше активность КО (р<0,01) и 5'-НТ (р<0,001), в эритроцитах существенных энзимных различий не определялось.

У всей группы больных СКВ с поражением сердца, по сравнению с больными СКВ с поражением почек, в плазме ниже активность КО (р<0,01), но выше активность КДГ (р<0,05) и 5'-НТ (р<0,05), в лимфоцитах выше активность КО (р<0,01) и 5'-НТ (р<0,001), в эритроцитах выше активность КО (р<0,05), 5'-НТ (р<0,05) и ниже активность КДГ (р<0,05).

Учитывая, что поражения почек и сердца могут повлиять на завышение степени активности патологического процесса при СКВ, мы провели сравнительные исследования энзимных показателей у больных с поражением сердца и почек при 1 степени и у больных (всей группы) с 11 степенью. Исследования показали, что у больных с 1 степенью и патологией почек, по сравнению с больными с II степенью (всей группы), в плазме ниже активность КО, выше КДГ и 5'-НТ (все р<0,001), в лимфоцитах выше активности КО и КДГ (р<0,001), в эритроцитах выше активность КО и 5'-НТ (р<0,001).

При СКВ с поражением сердца и 1 степенью активности процесса, по сравнению с больными с II степенью (всей группы), в плазме ниже активность КО, выше КДГ и 5'-НТ (все р<0,001), в лимфоцитах выше активность КО, КДГ (р<0,001) и 5'-НТ (р<0,05), в эритроцитах выше активность КО, 5'-НТ (р<0,001).

То есть, выявленные энзимные различия в трех биологических средах между сравниваемыми группами больных СКВ, были практически такими же, какие определялись между больными с 1 и II степенями активно-

сти процесса, что свидетельствует о том, что влияние патологии как сердца, так и почек на энзимный профиль крови менее значимо, чем степени активности патологического процесса. Исходя из этого, можно заключить, что уточнению степени активности патологического процесса при СКВ по энзимным показателям крови не мешает наличие у больных поражения сердца и почек.

Таким образом, проведенные нами исследования энзимного профиля крови в трех биологических средах показали, что наибольшее воздействие на показатели активности КО, КДГ и 5'-НТ в крови больных СКВ оказывает интенсивность иммуновоспалительного процесса (степень активности процесса) и значительно меньшее влияние оказывают характер течения и поражения внутренних органов.

Анализируя результаты энзимных исследований у больных СКВ, можно отметить, что активность 5'-НТ повышена только при I степени и только в плазме и в эритроцитах, а при 1I-III степенях снижена в трех биологических средах. С чем может быть связано повышение активности 5'-НТ? Одной из возможных причин может быть повышенная клеточная проницаемость, ядерная деструкция и повышение уровня АМФ при СКВ (А. Белов, 1975; Т. Подзорова, 2000). Не исключено также, что повышение активности 5'-НТ является компенсаторной реакцией, направленной на сбалансированность иммунных процессов (JI. Филановская, 1987).

Возможных причин снижения активности 5'-НТ при СКВ достаточно много, из которых можно выделить следующие: 1. АМФ, являющаяся субстратом для 5'-НТ, расходуется за счет АМФ-дезаминазы для синтеза ИМФ и возникает дефицит АМФ для 5'-НТ. 2. 5'-НТ вследствие каких-то причин приобретает большое сродство к ИМФ или КМФ (также естественным альтернативным субстратам 5'-НТ). 3. Значительное количество АМФ за счет аденилаткиназы превращается в АДФ. 4. Активность 5'-НТ снижается за счет низкой активности аденинфосфорибозилтрансферазы, катализирующей превращение аденина в АМФ и будет некоторый дефицит АМФ. 5. За счет низкой активности аденилосукцинат-лиазы, превращающей аденилосукцинат в АМФ. 6. За счет ингибиции 5'-НТ супероксидными радикалами, уровень которых при СКВ повышен. 7. Высокие концентрации ионов магния, марганца, цинка (свыше 4 мкмоль) могут также ингибировать 5'-НТ.

Вероятно, что это не все причины, но их выяснение имеет хорошие перспективы, так как их знание предполагает и пути их устранения. В любом случае снижение активности 5'-НТ, особенно в лимфоцитах, носит негативный характер, так как нарушаются функции лимфоцитов, что может служить причиной иммунных расстройств при СКВ. Поэтому одним из альтернативных подходов в лечении больных СКВ может быть коррек-

ция активности 5'-НТ с помощью ее активаторов, из которых известны малые концентрации ионов магния, марганца, цинка (не свыше 2 мкмоль), глюкокортикоиды, простагландины Е2 (Т. Подзорова, 2000; СоЫс, 1995). Возможен н другой подход, заключающийся в стимуляции активности ферментов, поставляющих АМФ для 5'-НТ-реакции.

В результате наших исследований показано, что чем выше активность процесса, тем выше активность КО в плазме. С чем это может быть связано? КО является провоспалительным энзимом, и любой воспалительный процесс сопровождается повышением активности КО. В ходе катализируемой реакции КО, помимо образования МК, продуцирует супероксидные радикалы, оказывающие деструктивное влияние на клеточные мембраны. Поэтому воздействие различными путями на снижение активности КО в плазме может привести и к снижению активности воспалительного процесса. Исходя из этого, можно предположить, что использование ингибиторов КО: никотиновой кислоты, Д-пеницилламина, верапа-мила, седуксена, каптоприла, тенидапа может оказать определенное положительное влияние на купирование воспалительного процесса при СКВ и составить один из новых патогенетических подходов в лечении больных СКВ.

Своеобразие КО заключается в ее взаимосвязи с КДГ. По биохимической логике повышение активности КО сопровождается снижением активности КДГ и, наоборот, так как они используют один и тот же субстрат: ксантин или гипоксантин. В нашей работе мы получили подтверждение этой логике: повышение активности КО в плазме крови больных СКВ сопровождалось, особенно при 11-111 степени, снижением активности КДГ. Исходя из этого, для купирования воспалительного процесса при СКВ можно использовать как ингибиторы КО, так и активаторы КДГ или их комбинацию.

Аналогичные взаимосвязи между КО и КДГ выявлены и в эритроцитах больных. Но в лимфоцитах между КО и КДГ нами обнаружены совершенно другие взаимосвязи: понижение активности КО происходит на фоне снижения активности КДГ. Подобные взаимосвязи труднообъяснимы с классических биохимических позиций. Можно лишь предполагать, что при СКВ существенно нарушается метаболизм в лимфоцитах и нормальные взаимосвязи между энзимами.

Больные дискондной красной волчанкой

В клинической практике нередко, особенно на ранних этапах эволюции болезней, возникают определенные трудности при дифференциации СКВ и ДКВ, что связано с некоторой общностью клинических проявлений этих двух заболеваний. Для выявления энзимологических особенностей крови больных ДКВ мы провели исследования активности КО, КДГ и 5'-НТ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови и сравнили их с

результатами таких же энзимных исследований у больных СКВ. Под наблюдением в условиях поликлиники (диспансера) находились 24 больных ДКВ в фазе обострения заболевания.

При поступлении на лечение у больных ДКВ, по сравнению со здоровыми, в плазме определялась более высокая активность КО (р=0,036) и более низкая активность КДГ (р<0,001) и 5'-НТ (р<0,001); в эритроцитах выше активность КО (р=0,006), КДГ (р<0,001) и незначительно выше активность 5'-НТ (р=0,057); в лимфоцитах ниже активность всех энзимов: КО (р<0,001), КДГ (р=0,007) и 5'-НТ (р<0,001). Если сравнить энзимные показатели крови больных СКВ и ДКВ, то можно отметить достаточно много общего в изменениях энзимной активности при этих заболеваниях. В плазме как при СКВ, так и ДКВ активность КО выше, а КДГ и 5'-НТ ниже, чем у здоровых; в лимфоцитах активность всех энзимов снижена при ДКВ и СКВ. То есть, как при ДКВ, так и СКВ в плазме и лимфоцитах активность энзимов меняется в одном направлении.

Но в количественном выражении изменения активности этих энзимов неоднозначны. Если в плазме больных ДКВ активность КО повышена на 6,2%, активность КДГ и 5'-НТ снижена на 5,8% и 7,2%, соответственно, то в плазме больных СКВ активность КО повышена на 59,4%, а КДГ и 5'-НТ снижена на 10,8% и 6,8%, соответственно. В лимфоцитах больных ДКВ активности КО, КДГ и 5'-НТ снижены на 8,9%, 8,7% и 6,4%, соответственно, а у больных СКВ активности КО, КДГ и 5'-НТ снижены на 31,7%, 47,3% и 20,1%, соответственно.

В то же время в лизатах эритроцитов при СКВ и ДКВ отмечались и разнонаправленные изменения активности энзимов: у больных СКВ активности КО и КДГ не имели отличий от здоровых, активность 5'-НТ была ниже, чем у здоровых, а у больных ДКВ активность всех энзимов была выше, чем у здоровых.

Сравнительные исследования показали, что у больных ДКВ, по сравнению с больными СКВ (всей группы), в плазме ниже активность КО (р<0,001), в лизатах лимфоцитов выше активность КО, КДГ и 5'-НТ (все р<0,001), в лизатах эритроцитов выше активность КДГ (р-0,004), 5'-НТ (р<0,001).

Сравнения энзимных показателей крови больных ДКВ раздельно с больными СКВ с I, II и III степенями активности процесса выявили еще больше энзимных различий, чем при сравнении показателей активности ферментов у больных ДКВ (всей группы) и больных СКВ (всей группы). Причем, четко отмечалась определенная закономерность: чем выше активность процесса при СКВ, тем больше выявлялось энзимных различий между больными ДКВ и СКВ.

Энзимные показатели крови здоровых и больных ДКВ

Среда исследования Ста. пок-ли Активность энзимов

КО КДГ 5'-НТ

Здоровые

М 3,25 5,18 5,41

а 0,30 0,26 0,45

Плазма т п 0,05 30 0,05 30 0,08 30

медиана 3,30 5,20 5,40

квартили 3,0-3,5 4,9-5,4 5,0-5,7

М 20,2 31,1 35,9

а 2,12 4,14 2,39

Лизаты лимфоцитов ш п 0,37 30 0,72 30 0,42 30

медиана 20,4 32,2 36,2

квартили 19,3-22,3 26,8-34,5 33,6-38,2

М 22,7 47,9 39,9

о 1,67 1,71 5,58

Лизаты эритроцитов п1 п 0,29 30 0,30 30 0,97 30

медиана 22,5 47,5 40,7

квартили 21,2-24,4 46,6-49,4 35,0-44,6

Больные ДКВ

М 3,45 4,88 5,02

а 0,32 0,18 0,22

Плазма т п 0,07 24 0,04 24 0,05 24

медиана 3,40 4,90 5,00

квартили 3,25-3,65 4,7-5,0 4,9-5,2

М 18,4 28,4 33,6

о 1,00 1,29 1,00

Лизаты лимфоцитов т п 0,20 24 0,26 24 0,20 24

медиана 18,3 28,1 33,5

квартили 17,6-19,2 27,5-29,3 32,8-34,2

М 23,8 49,4 42,1

0 1,17 1,23 1,62

Лизаты эритроцитов П1 п 0,24 24 0,25 24 0,33 24

медиана 23,6 49,6 42,5

квартили 23,0-24,1 48,4-50,5 41,0-43,4

Наиболее демонстративным энзимным показателем, способствующим дифференциации СКВ и ДКВ, оказалась величина активности 5'-НТ в лизатах эритроцитов, которая при ДКВ была или в пределах нормы, или незначительно повышена, а при СКВ была всегда ниже, чем у здоровых.

Учитывая случаи трансформации ДКВ в СКВ, можно предположить угрозу этой трансформации у больных ДКВ в случаях появления у них в лизатах эритроцитов сниженной активности 5'-НТ и соответствующих клинических проявлений.

Таким образом, проведенные исследования активности КО, КДГ и 5'-НТ в трех биологических средах показали наличие существенных изменений их активности при СКВ, зависящие от клинических особенностей заболевания, возможность использования изученных энзимных показателей в оценке эффективности проводимой терапии и дифференциации СКВ и ДКВ.

ВЫВОДЫ

1. В лимфоцитах, эритроцитах и плазме крови больных СКВ выявлены существенные изменения активности энзимов пуринового метаболизма: КО, КДГ и 5'-НТ, зависящие от клинических особенностей заболевания: активности патологического процесса, характера течения и органной патологии.

2. У больных СКВ в активной фазе в плазме крови отмечалось повышение активности КО, снижение активности КДГ, 5'-НТ, увеличение содержания МК, в эритроцитах — снижение активности 5'-НТ и в лимфоцитах — снижение активности КО, КДГ и 5'-НТ.

3. У больных СКВ с I степенью активности патологического процесса в плазме выше, а в лимфоцитах ниже активность всех изученных энзимов, а в эритроцитах выше активность КО, 5'-НТ и ниже КДГ. Чем выше степень активности патологического процесса при СКВ, тем в плазме выше активность КО, ниже КДГ и 5'-НТ, в эритроцитах выше активность КДГ, ниже КО и 5'-НТ, в лимфоцитах ниже активности всех энзимов. Между всеми степенями активности процесса выявлены существенные энзимные различия.

4. Наиболее информативными в отражении минимальной активности процесса при СКВ оказались показатели активности КО в плазме, 5'-НТ в лимфоцитах, КО и КДГ в эритроцитах, которые в 60%, 80%, 86,7% и 86,7% случаев, соответственно, выходили за референтные пределы здоровых лиц.

5. Между всеми вариантами течения заболевания определяются существенные энзимные различия во всех трех биологических средах: лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови, что способствует их дифференциации. Чем острее течение заболевания, тем в плазме

выше активность КО, ниже КДГ и 5'-НТ, в эритроцитах ниже активность КО, 5'-НТ и выше КДГ, в лизатах ниже активность всех энзимов.

6. На энзимный профиль крови больных СКВ, помимо активности процесса, характера течения, существенное влияние оказывают поражения почек и сердца. У больных с поражением сердца, по сравнению с больными с поражением почек, выше активность КО во всех трех биологических средах, активность 5'-НТ выше в лимфоцитах, эритроцитах и ниже в плазме, активность КДГ выше в лимфоцитах, но ниже в плазме и эритроцитах. Степень влияния органных поражений на энзимный профиль крови статистически менее значима, чем активности патологического процесса.

7. Анализ корреляционных связей у больных СКВ показал в плазме наличие обратных умеренных связей между КО—КДГ, прямых умеренных между КДГ—5'-НТ, в эритроцитах - умеренных обратных связей между КО—КДГ, в лимфоцитах - прямых умеренных и высокопрочных связей между всеми энзимами. Направления и прочность корреляционных связей менялись в зависимости от степени активности процесса. В лизатах лимфоцитов определялись обратные умеренные и высокопрочные связи между активностью всех энзимов и уровнем иммуноглобулинов в, ЦИК и антител к н-ДНК.

8. У больных ДКВ, по сравнению со здоровыми, в плазме выше активность КО, ниже КДГ и 5'-НТ, в эритроцитах выше активность КО и КДГ, в лимфоцитах ниже активность всех энзимов, а по сравнению с больными СКВ, в плазме ниже активность КО, в эритроцитах выше активность КДГ и 5'-НТ, в лимфоцитах выше активность всех энзимов. Наиболее демонстративным энзимным показателем, способствующим дифференциации СКВ и ДКВ, оказалась активность 5'-НТ в эритроцитах, которая при ДКВ была или в пределах нормы, или слегка повышена, а при СКВ — всегда ниже, чем у здоровых.

9. Выявленные изменения активности энзимов в лимфоцитах больных СКВ свидетельствуют о существенных нарушениях пуринового метаболизма в иммунокомпетентных клетках, способных оказать воздействие на пролиферацию, дифференциацию, функции лимфоцитов, что может привести к иммунорегуляторным расстройствам и обусловить патогенетические механизмы СКВ.

10. В процессе лечения больных СКВ активность энзимов варьирует в зависимости от изменения клинического состояния больных и, вследствие этого, изученные энзимные показатели в комплексе с клиническими данными могут способствовать объективизации оценки эффективности проводимой терапии.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Референтные пределы (условная норма) активности энзимов для здоровых лиц, рассчитанные по формуле: М±2о, составили в плазме (нмоль/мин/мл) для активности КО: 2,65-3,85; КДГ: 4,66-5,7; 5'-НТ: 4,51-6,31; в лизатах эритроцитов (нмоль/мин/мл— 109клеток) для КО-. 19,4-26,0; КДГ: 44,5-51,3; 5'-НТ: 28,7-51,1; в лизатах лимфоцитов (нмоль/мин/мл — 107клеток) для КО: 16,0-24,4; КДГ: 22,8-39,4; 5'-НТ: 31,1-40,7. Содержание МК в плазме: 0,22-0,42 ммоль/л.

2. Для выявления минимальной активности патологического процесса при СКВ и ее разграничения с периодом клинической ремиссии целесообразно определять в лизатах лимфоцитов активность 5'-НТ, в лизатах эритроцитов активность КДГ, которые в 80% и 86,7% случаев, соответственно, ниже минимальной границы нормы, а также КО в эритроцитах, активность которой превышает верхнюю границу нормы в 86,7% случаев.

3. Для контроля эффективности проводимой терапии больных СКВ в первые 10-12 дней лечения больных с I степенью активности процесса рекомендуется ориентироваться на динамику 5'-НТ, активность которой в плазме, в случае улучшения клинического состояния, снижается, а в лизатах лимфоцитах повышается; у больных СКВ с II-III степенью — на динамику активности всех плазменных и лимфоцитарных энзимов, а также эритроцитарной 5'-НТ. Активность этих энзимов при улучшении клинического состояния меняется в сторону нормализации.

4. При дифференциации СКВ и ДКВ целесообразно, помимо клинических данных, ориентироваться на активность 5'-НТ в лизатах эритроцитов, которая при СКВ всегда ниже, чем у здоровых, а при ДКВ или в пределах нормы, или незначительно повышена.

ПУБЛИКАЦИИ

1. Зборовский А.Б., Хафис Эйса Сибхан, Мякишев М.В., Мартемьянов В.Ф., Чернов A.C. Активность энзимов последнего этапа пуринового метаболизма в плазме крови и лизатах эритроцитов больных системной красной волчанкой // Актуальные проблемы современной ревматологии. Сб. науч. работ / Под ред. акад. РАМН А.Б. Зборовского. — Вып. XXV. — Волгоград, 2008. — С. 46-47.

2. Мартемьянов В.Ф., Хафис Эйса Сибхан, Стажаров М.Ю., Бедина С.А., Ермолаева H.A. Показатели активности ксантиноксидазы, ксантинде-гидрогеназы и 5'-нуклеотидазы в лизатах лимфоцитов и плазме крови больных системной красной волчанкой и дискоидной красной волчанкой // Актуальные проблемы современной ревматологии. Сб. науч. ра-

бот / Под ред. акад. РАМН А.Б. Зборовского. — Вып. XXV. — Волгоград, 2008. —С. 70-71.

3. Хафис Эйса Сибхан, Мартемьянов В.Ф., Морозова Т.А., Корейская Е.Г., Стажаров М.Ю. Активность ксантиноксидазы, ксантиндегидро-геназы и 5'-нуклеотидазы в плазме крови больных системной красной волчанкой // Актуальные проблемы современной ревматологии. Сб. науч. работ / Под ред. акад. РАМН А.Б. Зборовского. — Вып. XXV. — Волгоград, 2008.—С. 121-122.

4. Мозговая Е.Э., Хафиз Эйса Сибхан, Мартемьянов В.Ф. Активность энзимов пуринового метаболизма в лимфоцитах и плазме крови в норме и при ревматической патологии // Аллергология и иммунология. - 2008. - Т.9, № 3. - С. 333.

клпнико-патогенетическое значение исследования активности ксаптииоксидазы, ксантиндегцдрогеназы, 5-нуклеотндазы в лизатах лимфоцитов, эритроцитов 11 плазме крови у больных системной красной волчанкой

Формат 60x90 1/16. Печать трафаретная. Бумага офсетная №1-65г/м2 Гарнитура «Тппевд.Усл. печ. л 1,62. Усл. изд. л. 1,51 Тираж 100 эй. Заказ № 2260 Отпечатано в ООО «Бланк». Лиц. №3550 400131. г. Волгоград, ул. Скосырева, 2а

 
 

Оглавление диссертации Хафиз, Эйса Сибхан Азраг :: 2009 :: Волгоград

ПЕРЕЧЕНЬ ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

Часть I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Глава 1. НЕКОТОРЫЕ АСПЕКТЫ ПУРИНОВОГО МЕТАБОЛИЗМА В БИОЛОГИИ И МЕДИЦИНЕ.

Часть II. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

Глава 2. КЛИНИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА БОЛЬНЫХ.

2.1. Больные системной красной волчанкой.

2.2. Больные дискоидной красной волчанкой (контрольная группа).

Глава 3. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Выделение лимфоцитов, эритроцитов и приготовление лизатов клеток крови.

3.2. Определение активности ксантиноксидазы в лизатах клеток и плазме крови.

3.3. Определение активности ксантиндегидрогеназы в лизатах клеток и плазме крови.

3.4. Определение активности 5'-нуклеотидазы в лизатах клеток и плазме крови.

Глава 4. АКТИВНОСТЬ ЭНЗИМОВ В КРОВИ ЗДОРОВЫХ

ЛЮДЕЙ.

Глава 5. ЭНЗИМНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРОВИ У БОЛЬНЫХ СИСТЕМНОЙ И ДИСКОИДНОЙ КРАСНОЙ ВОЛЧАНКОЙ

5.1. Больные системной красной волчанкой.

5.1.1. Энзимные показатели крови больных СКВ при I степени активности процесса.

5.1.2. Энзимные показатели крови больных СКВ при II степени активности процесса.

5.1.3. Энзимные показатели крови больных СКВ при III степени активности процесса.

5.1.4. Активность энзимов в зависимости от поражения сердца и почек.

5.2. Энзимные показатели крови у больных дискоидной красной волчанкой.

ОБСУЖДЕНИЕ.

ВЫВОДЫ

 
 

Введение диссертации по теме "Ревматология", Хафиз, Эйса Сибхан Азраг, автореферат

Системная красная волчанка (СКВ) является типичным представителем диффузных болезней соединительной ткани, которым свойственна системность поражений, выраженные аутоиммунные, иммунокомплексные, воспалительные процессы, метаболические нарушения. Несмотря на относительно небольшую распространенность СКВ (до 500 больных на 1 млн. населения), по сравнению с другими ревматическими заболеваниями, она характеризуется выраженным неуклоннопрогрессирующим течением, ранней и стойкой инвалидизацией и значительной летальностью, и поэтому борьба с этим заболеванием является одной из актуальных задач современной медицины.

Четко обозначенная клиническая картина СКВ не представляет трудности для диагностики. Но дебют заболевания нередко протекает под «масками» заболеваний почек, гипертонической болезни, пневмонии, артритов и других заболеваний. Поэтому на ранних стадиях болезни велик риск гиподи-агностики СКВ. Заболевание характеризуется выраженным клиническим полиморфизмом, и поэтому достаточно сложны не только первичная диагностика СКВ, но и определение степени активности процесса у больных с заведомо известным диагнозом, разграничение фаз клинической ремиссии и обострения заболевания, что затрудняет своевременное назначение адекватной терапии.

До настоящего времени в лечебном арсенале врачей не имеется средств, способных полностью остановить развитие патологического процесса при СКВ. Используемые препараты, такие как глюкокортикоиды, имму-номодуляторы, способны лишь замедлить прогрессирование заболевания, но не решают проблемы излечения подобных больных. Это во многом связано с недостаточностью знаний патогенеза СКВ и, вследствие этого, невозможностью создания лечебных препаратов, оперируя которыми можно было бы радикально воздействовать на наиболее важные патогенетические звенья и полностью остановить прогрессирование патологического процесса.

Большинство существующих теорий патогенеза СКВ базируется на нарушениях иммунного гомеостаза, отдельных звеньев гуморального и клеточного иммунитета (2, 38, 69, 71).

Тем не менее, признание первичности иммунологического дефекта в патогенезе СКВ не всегда объяснимо и доказуемо, так как иммунные патологические реакции развиваются на уже предварительно измененные компоненты соединительной ткани, причины метаморфоз которых чаще всего неясны. Известно, что характер дифференцировки стволовых лимфоидных клеток определяется микроокружением, которое создается соединительнотканными клетками, и если последние изменены, повреждены, то они могут влиять негативно на иммунологическую реактивность (51).

В то же время известно достаточно много работ, свидетельствующих о многочисленных нарушениях метаболизма при СКВ (8, 13, 32, 52, 68).

Учитывая, что по данным литературы при СКВ выявлены нарушения нуклеинового метаболизма, проявляющиеся как изменениями пуриновых нуклеотидов, так и гиперпродукцией антител к нуклеиновым кислотам (НК) (63, 70, 83), логично предположить возможные нарушения метаболизма пуринов как предшественников или составных элементов НК. Достаточно хорошо известно, что некоторые метаболиты пуринового цикла (аденозин, гуа-нозин) и энзимы, регулирующие их содержание, оказывают существенное влияние на созревание, пролиферацию и дифференцирование лимфоцитов и их функциональные свойства (90, 117, 136, 143, 151).

Исходя из этого, нам представляется весьма перспективным направление по изучению активности энзимов пуринового метаболизма (ПМ) в клетках крови больных СКВ как в плане диагностики активности патологического процесса, так и раскрытия отдельных патогенетических механизмов СКВ, обусловленных нарушениями ПМ в иммунокомпетентных клетках крови и, возможно, меняющих их иммунные свойства.

С учетом этих факторов нами и были проведены исследования активности некоторых энзимов ПМ: ксантиноксидазы (КО), ксантиндегидрогеназы

КДГ), 5'-нуклеотидазы (5'-НТ) в трех биологических средах (лизаты лимфоцитов, эритроцитов и плазма крови) у больных СКВ. А, учитывая, что СКВ по своим клиническим проявлениям весьма близка к дискоидной красной волчанке (ДКВ), нами были проведены и сравнительные исследования активности этих же энзимов и у больных ДКВ, что может способствовать дифференциальной диагностике СКВ и ДКВ.

Цель исследования

Повышение качества диагностики активности патологического процесса при СКВ, дифференциальной диагностики СКВ и ДКВ, объективизации контроля эффективности проводимой терапии с использованием показателей активности КО, КДГ и 5-НТ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови. Выявление особенностей пуринового метаболизма при СКВ и ДКВ, способствующих выяснению патогенетических различий этих заболеваний.

Задачи исследования

1. Изучить активность КО, КДГ и 5'-НТ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови здоровых людей, установить референтные пределы для активности этих энзимов у здоровых и изучить зависимость активности КО, КДГ и 5'-НТ в трех биологических средах от пола и возраста.

2. Изучить активность КО, КДГ, 5'-НТ, содержание мочевой кислоты (МК) у больных СКВ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови в процессе лечения: при поступлении на лечение, через 10-12 дней и перед выпиской из стационара.

3. Изучить особенности энзимного профиля крови у больных СКВ в зависимости от степени активности патологического процесса, характера течения, поражения почек и сердца.

4. Изучить корреляционные связи между активностями КО, КДГ, 5'-НТ у больных СКВ в трех биологических средах.

5. Выявить энзимологические особенности крови больных СКВ и ДКВ, способствующие их дифференциации.

6. Оценить возможность использования изученных энзимных показателей крови в качестве дополнительных критериев эффективности проводимой терапии больных СКВ.

Научная новизна работы

Впервые у больных СКВ в трех биологических средах (лизаты лимфоцитов, эритроцитов и плазма крови) проведено параллельное исследование активности трех энзимов ПМ: КО, КДГ и 5'-НТ, а также содержания МК в зависимости от степени активности патологического процесса, характера течения, эффективности проводимой терапии, наличия органных поражений и показано, что изученные энзимные показатели способствуют уточнению степени активности патологического процесса, характера течения заболевания, объективизации оценки эффективности проводимой терапии. Также впервые были проведены сравнительные исследования активности КО, КДГ и 5'-НТ в трех биологических средах у больных СКВ и ДКВ и выявлены энзимологические особенности крови при этих двух заболеваниях. Изучены корреляционные связи между активностью энзимов в трех биологических средах в зависимости от активности патологического процесса у больных СКВ. Выдвинута гипотеза о возможности первичности нарушений ПМ и вторичности иммунных нарушений в патогенезе СКВ.

Практическая ценность работы

Проведенные исследования показали, что определение активности КО, КДГ и 5'-НТ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови больных СКВ в комплексе с клиническими данными может оказать существенную помощь в выявлении минимальной активации патологического процесса, разграничении фаз клинической ремиссии и обострения заболевания, уточнении степени активности патологического процесса, объективизации оценки эффективности проводимой терапии больных СКВ. Исследования активности КО, КДГ и 5-НТ в трех биологических средах способствуют дифференциации СКВ и ДКВ.

Основные положения, выносимые на защиту

Показатели активности КО, КДГ и 5-НТ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови у больных СКВ могут быть использованы в качестве дополнительных вспомогательных тестов для ранней диагностики обострения заболевания, уточнения степени активности патологического процесса, характера течения, объективизации оценки эффективности проводимой терапии, дифференциальной диагностики СКВ и ДКВ.

Внедрение в практику

Методы определения активности КО, КДГ и 5'-НТ в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови внедрены в работу муниципального учреждения здравоохранения "Городская клиническая больница № 25" г. Волгограда. С результатами энзимных исследований и возможностями энзимной диагностики при ревматических заболеваниях систематически знакомятся практические врачи, на курсах усовершенствования, научно-практических конференциях, студенты старших курсов Волгоградского государственного медицинского университета.

Публикации и апробация работы

По теме диссертации опубликовано 4 печатных работ. Материалы диссертации докладывались на научных сессиях и конференциях НИИ клинической и экспериментальной ревматологии РАМН и Волгоградской государственной медицинской академии (2007-2008 гг.). Первичная экспертиза диссертации проведена на заседании ученого совета НИИ клинической и экспериментальной ревматологии РАМН и кафедры госпитальной терапии Волгоградского государственного медицинского университета 12 февраля 2009 г.

Объем и структура диссертации

Диссертация изложена на 210 страницах компьютерного текста и состоит из введения; части I - обзора литературы, представленного одной главой, в которой изложены обобщенные сведения о значении ПМ и отдельных его энзимов в биологии и медицине; части II — собственных исследований, состоящей из 4 глав, содержащих клиническую характеристику больных, методы исследований, результаты исследований и их обсуждение, выводы и практические рекомендации.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Клинико-патогенетическое значение исследования активности ксантиноксидазы, ксантиндегидрогеназы, 5'-нуклеотидазы в лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови у больных системной красной волчанкой"

выводы

1. В лимфоцитах, эритроцитах и плазме крови больных СКВ выявлены существенные изменения активности энзимов пуринового метаболизма: КО, КДГ и 5'-НТ, зависящие от клинических особенностей заболевания: активности патологического процесса, характера течения и органной патологии.

2. У больных СКВ в активной фазе в плазме крови отмечалось повышение активности КО, снижение активности КДГ, 5'-НТ, увеличение содержания МК, в эритроцитах — снижение активности 5'-НТ и в лимфоцитах — снижение активности КО, КДГ и 5'-НТ.

3. У больных СКВ с I степенью активности патологического процесса в плазме выше, а в лимфоцитах ниже активность всех изученных энзимов, а в эритроцитах выше активность КО, 5'-НТ и ниже КДГ. Чем выше степень активности патологического процесса при СКВ, тем в плазме выше активность КО, ниже КДГ и 5'-НТ, в эритроцитах выше активность КДГ, ниже КО и 5'-НТ, в лимфоцитах ниже активности всех энзимов. Между всеми степенями активности процесса выявлены существенные энзимные различия.

4. Наиболее информативными в отражении минимальной активности процесса при СКВ оказались показатели активности КО в плазме, 5'-НТ в лимфоцитах, КО и КДГ в эритроцитах, которые в 60%, 80%, 86,7% и 86,7% случаев, соответственно, выходили за референтные пределы здоровых лиц.

5. Между всеми вариантами течения заболевания определяются существенные энзимные различия во всех трех биологических средах: лизатах лимфоцитов, эритроцитов и плазме крови, что способствует их дифференциации. Чем острее течение заболевания, тем в плазме выше активность КО, ниже КДГ и 5'-НТ, в эритроцитах ниже активность КО, 5'-НТ и выше КДГ, в лизатах ниже активность всех энзимов.

6. На энзимный профиль крови больных СКВ, помимо активности процесса, характера течения, существенное влияние оказывают поражения почек и сердца. У больных с поражением сердца, по сравнению с больными с поражением почек, выше активность КО во всех трех биологических средах, активность 5'-НТ выше в лимфоцитах, эритроцитах и ниже в плазме, активность КДГ выше в лимфоцитах, но ниже в плазме и эритроцитах. Степень влияния органных поражений на энзимный профиль крови статистически менее значима, чем активности патологического процесса.

7. Анализ корреляционных связей у больных СКВ показал в плазме наличие обратных умеренных связей между КО—КДГ, прямых умеренных между КДГ—5'-НТ, в эритроцитах — умеренных обратных связей между КО—КДГ, в лимфоцитах — прямых умеренных и высокопрочных связей между всеми энзимами. Направления и прочность корреляционных связей менялись в зависимости от степени активности процесса. В лизатах лимфоцитов определялись обратные умеренные и высокопрочные связи между активностью всех энзимов и уровнем иммуноглобулинов G, ЦИК и антител к н-ДНК.

8. У больных ДКВ, по сравнению со здоровыми, в плазме выше активность КО, ниже КДГ и 5'-НТ, в эритроцитах выше активность КО и КДГ, в лимфоцитах ниже активность всех энзимов, а по сравнению с больными СКВ, в плазме ниже активность КО, в эритроцитах выше активность КДГ и 5'-НТ, в лимфоцитах выше активность всех энзимов. Наиболее демонстративным энзимным показателем, способствующим дифференциации СКВ и ДКВ, оказалась активность 5'-НТ в эритроцитах, которая при ДКВ была или в пределах нормы, или слегка повышена, а при СКВ — всегда ниже, чем у здоровых.

9. Выявленные изменения активности энзимов в лимфоцитах больных СКВ свидетельствуют о существенных нарушениях пуринового метаболизма в иммунокомпетентных клетках, способных оказать воздействие на пролиферацию, дифференциацию, функции лимфоцитов, что может привести к иммунорегуляторным расстройствам и обусловить патогенетические механизмы СКВ.

10. В процессе лечения больных СКВ активность энзимов варьирует в зависимости от изменения клинического состояния больных и, вследствие этого, изученные энзимные показатели в комплексе с клиническими данными могут способствовать объективизации оценки эффективности проводимой терапии.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Референтные пределы (условная норма) активности энзимов для здоровых лиц, рассчитанные по формуле: М±2а, составили в плазме (нмоль/мин/мл) для активности КО: 2,65-3,85; КДГ: 4,66-5,7; 5'-НТ: 4,516,31; в лизатах эритроцитов (нмоль/мин/мл — 109клеток) для КО: 19,426,0; КДГ: 44,5-51,3; 5'-НТ: 28,7-51,1; в лизатах лимфоцитов (нмоль/мин/мл — 107клеток) для КО: 16,0-24,4; КДГ: 22,8-39,4; 5'-НТ: 31,1-40,7. Содержание МК в плазме: 0,22-0,42 ммоль/л.

2. Для выявления минимальной активности патологического процесса при СКВ и ее разграничения с периодом клинической ремиссии целесообразно определять в лизатах лимфоцитов активность 5'-НТ, в лизатах эритроцитов активность КДГ, которые в 80% и 86,7% случаев, соответственно, ниже минимальной границы нормы, а также КО в эритроцитах, активность которой превышает верхнюю границу нормы в 86,7% случаев.

3. Для контроля эффективности проводимой терапии больных СКВ в первые 10-12 дней лечения больных с I степенью активности процесса рекомендуется ориентироваться на динамику 5'-НТ, активность которой в плазме, в случае улучшения клинического состояния, снижается, а в лизатах лимфоцитах повышается; у больных СКВ с II-III степенью — на динамику активности всех плазменных и лимфоцитарных энзимов, а также эритроцитарной 5'-НТ. Активность этих энзимов при улучшении клинического состояния меняется в сторону нормализации.

4. При дифференциации СКВ и ДКВ целесообразно, помимо клинических данных, ориентироваться на активность 5'-НТ в лизатах эритроцитов, которая при СКВ всегда ниже, чем у здоровых, а при ДКВ или в пределах нормы, или незначительно повышена.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2009 года, Хафиз, Эйса Сибхан Азраг

1. Агеев А.Н. Цитогенетические и иммунологические исследования при системной красной волчанке : Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Волгоград, 1987.-22с.

2. Бахтияров З.А. Изменение активности ксантиноксидазы у больных с недостаточностью кровообращения // Тер. архив. — 1989. — № 5. — С. 6869.

3. Бедина С.А., Левкина М.В. Мартемьянов В.Ф. и др. Диагностическое значение определения ферментов пуринового метаболизма при ревматоидном артрите // Актуальные проблемы современной ревматологии : Тез. докл. науч. конф. — Волгоград, 1999.— С. 14.

4. Бедина С.А., Мартемьянов В.Ф., Черных Т.П. и др. Энзимная диагностика клинических форм ревматоидного артрита // Актуальные проблемы современной ревматологии: Тез. докл. науч. конф. — Волгоград, 1999.1. С. 15.

5. Беседин А.Г. Клиническое значение исследования гликозоаминоглика-нов в сыворотке крови у больных системной красной волчанкой и системной склеродермией: автореф. Дисс. канд.мед.наук.- Волгоград, 1991.-21 С.

6. Бобоходжаев М.Х., Шукурова С.М., Шифрина М.М. Поражение печени при подагре // Тер. архив. — 1991. — № 2. — С. 64-68.

7. Большая медицинская энциклопедия. Под ред. Б.В. Петровского. — Изд. 3, том 21.-1983.-С. 407.

8. Борзенко Б.Г. Использование ферментативного теста при химиотерапии больных раком молочной железы // Клинич. медицина. — 1990. — № 11.1. С. 66-69.

9. Борзенко Б.Г., Горбачев А.А., Думанский Ю.В. и др. Активность ферментов метаболизма ДНК в сыворотке крови больных раком молочной железы // Вопр. онкологии. — 1990. — № 1. — С. 17-23.

10. Волкова З.Н.,Кайнова А.С. Лизосомальный аппарат клеток ретикулоэн-дотелиальной системы и патогенез системной красной волчанки // Вопр.ревматизма.- 1980.- № 3.-С.55-58.

11. Григоревский В.П., Короткина Р.Н., Карелина А.А. Роль ксантиноксида-зы в генезе острого панкреатита // Патол. физиол. и экспер. тер. — 1989.2.— С. 60-63.

12. Денисова С.Г. Активность 5'-нуклеотидазы и аденозиндезаминазы у больных ишемической болезнью сердца: Тр. Саратов, мед. ин-та. — Саратов, 1974. — Т. 88, Вып. 105. — С. 119-123.

13. Диксон М., Уэбб Э. Ферменты: Пер. с англ. — М.: Мир, 1982. — Т. 3. — 1118 с.

14. Дмитриенко Н.П. Внеклеточный аденозинтрифосфат и его влияние на функции клеток // Укр. биохимический журн. — 1990. — № 2. — С. 313.

15. Дмитриенко Н.П. Ферменты превращения внеклеточных адениннуклео-тидов // Укр. биохимический журн. — 1981. — № 1. — С. 114-123.

16. Дорофеев Г.И., Кожемякин JI.A., Ивашкин В.Т. Циклические нуклеоти-ды и адаптация организма. — JL, 1978. — 182 с.

17. Дячина Е.Г. Активность КО в сыворотке крови у больных с хирургическими заболеваниями печени, желчевыводящих путей и другими заболеваниями // Лаб. дело. — 1973. — № 11. — С. 647-649.

18. Егуткин Г.Г., Якубовский С.М., Гатцко Г.Г. Кинетические свойства 5'-нуклеотидазы в жировой ткани, печени и крови крыс разного возраста // Укр. биохим. журнал. — 1990. — № 3. — С. 95-98.

19. Елисеев В.В. Роль аденозина в регуляции сердечно-сосудистой системы (обзор) // Химико-фармацевтический журн. — 1987. — № 8. — С. 910919.

20. Елисеев В.В., Крылова И.Б., Евдокимова Н.Р. Влияние аденозина на размер экспериментального инфаркта миокарда и величину зоны невосстановления кровотока // Кардиология. — 1988. — Т. 12. — С. 98-99.

21. Елисеев В.В., Крылова И.Б., Овчинникова А.Г. и др. Гемодинамические и метаболические эффекты аденозина при экспериментальном инфаркте миокарда // Кардиология. — 1988. — № 11. — С. 103-106.

22. Елисеев В.В., Марихина Б.Л. Сравнительная оценка противогипоксиче-ских свойств некоторых нуклеозидов и нуклеотидов // Хим.-фарм. журн.1986. —С. 271-277.

23. Елисеев В.В., Овчинникова А.Г., Евдакимова Н.Р. Антиаритмическое действие аденозина при экспериментальном инфаркте миокарда // Кардиология. — 1987. — Т. 27, № 7. — С. 101-103.

24. Елисеев В.В., Слободская В.В, Ильин Г.И., Костин Э.Д. Влияние рибоксина, уридина, уридин-5-монофосфата и гуанозина на дистрофию миокарда // Хим.-фарм. журн. — 1985. — № 6. — С. 694-696.

25. Заводовский Б.В. Клинико-патогенетическое значение исследования метаболизма иммунокомпетентных клеток периферической крови при воспалительных ревматических заболеваниях : Автореф. дисс. . докт. мед. наук. Волгоград, 2004. - 45 с.

26. Заяц Т.Л., Андреев В.И., Карелин А.А. Изменения активности 5'-нуклеотидазы и аденилатциклазы печени крыс при термических ожогах // Вопр. мед. химии. — 1983. —№5. — С. 73-75.

27. Зборовская И.А.Клинико-патогенетическое значение антиоксидантной системы при воспалительных ревматических заболеваниях: дисс.докт. мед. наук. Волгоград, 1995.- 349 с.

28. Волгоград, 2005. —С. 60-61.

29. Зборовский А.Б., Заводовский Б.В., Бобичева Е.В. Антитела к 5'-нуклеотидазе при ревматических заболеваниях // Научно-практическая ревматология. — 2000. № 4. - С. 32-33.

30. Земсков В.М. Иммуномоделирующие эффекты нуклеозидов и их производных. Дефекты нуклеинового метаболизма и иммунодефициты // Иммунология. — 1990. — № 3. — С. 4-8.

31. Иванова М.М. Системная красная волчанка, клиника, диагностика и лечение // Клиническая ревматология. 1995. - № 1. - С. 2-19.

32. Иванова М.М., Насонова В.А., Бржезовский М.М.и др. Материалы к апробации диагностических критериев диффузных болезней соединительной ткани // Тер. архив. 1978. - № 8. - С. 73-76.

33. Кагава Я. Биомембраны : Пер. с японского. — М.: Высш. Школа, 1985. — 303 с.

34. Казаченко А.И., Наглер П.Г., Лепепдина О.Л. Реакция флуоресцеинби-меркуриацетата с молибденовым центром ксантиноксидазы из молока // Биохимия. — 1987. —№ 12. —С. 1948-1957.

35. Ковальский В.В., Воротницкая И.Е. Роль меди и молибдена в регулировании свойств ксантиноксидазы и уратоксидазы // Докл. АН СССР. —-1969.—№6. —С. 1422-1424.

36. Кожемякин JT.A., Бондаренко И.Г. Нестабильность генома и СПИД // Биохимия. — 1992. — № 9. — С. 1417-1426.

37. Кожемякин JT.A., Шелепина Е.П., Антонов В.Г. Ксантиноксидазная активность тимоцитов при лимфоцитолитическом действии гипоксантина // Вопр. мед. химии. — 1990. — № 1 — С. 87-90.

38. Кожемякин JI.A., Шелепина Е.П., Антонов В.Г., Краевой С.А. Ксантиноксидазная активность тимоцитов при действии рентгеновского облучения // Радиобиология. — 1989. — № 6. — С. 749-753.

39. Коркач В.И., Французова С.Б., Быченко И.Г. Влияние АТФ и инозина на энергетические процессы в сердечной и скелетной мышцах // Фармакология и токсикология. — 1979. — № 5. — С. 504-506.

40. Кузнецов В.И. Распределение 5'-нуклеотидазной и тромбопластической активности в тканях человека // Казан, мед. ж. — 1983. — № 1 — С. 3235.

41. Лебедев Д.А. Обмен соединительной ткани при системной склеродермии и ревматоидном артрите // Ревматология. 1988. - № 2. - С. 72-78.

42. Лебедев Д.А., Тихомиров Ф.В., Замораева Т.В. Некоторые биохимические аспекты патогенеза системной красной волчанки // Тер. Архив.-1984. -№ 5.-С. 126- 130.

43. Лемперт Б.А. Параметры определения ЦИК и специфичны ПЭГ-теста с использованием в качестве модели аггрегированного Jg G // Лаб. дело. — 1988. — № 1. — С. 28-29.

44. Логинов А.С., Исакова З.С., Скобелева Т.В., Карташова Н.А. Активность 5-нуклеотидазы крови при заболеваниях печени и желчевыводя-щих путей//Сов. мед. — 1989.—№ 1. —С. 10-12.

45. Луцевич А.Н., Бендер К.И., Решетько О.В. Изучение связи между кинетикой антипирина, содержанием серомукоида и активностью ксантиноксидазы в плазме крыс с острым и хроническим воспалением // Эксперим. и клинич. фармакология. — 1995. — №4. — С. 51-55.

46. Лызлова С.Н. Фосфагенкиназы. -— Л., 1974. — 168 с.

47. Марри Р., Гриннер Д., Мейес П., Родуэлл В. Биохимия человека: В 2-х томах. Пер. с англ. — Т. 2. — М.: Мир, 1993. — 245 с.

48. Мартемьянов В.Ф., Зборовский А.Б., Стажаров М.Ю. и др. Активность энзимов пуринового метаболизма при ревматоидном артрите, остеоарт-розе и подагре // Вестник ВМА. — Волгоград, 2000. — Т. 56, вып. 6. — С. 104-107.

49. Мартемьянов В.Ф., Стажаров М.Ю., Зборовская А.Б. Энзимная диагностика подагры // Тез. докл. юбилейной конф., посвященной 70-летию ассоциации ревматологов России и 40-летию института ревматологии РАМН. — Москва, 1998.— № 142. — С. 32.

50. Матулис А.А., Стайкайтене Д. Иммунные нарушения и иммунорегули-рующая терапия при ревматических болезнях. Вильнюс. : Мюсклас, 1982.- 152 С.

51. Медицинские лабораторные технологии. Справочник / Под ред. проф. А. И. Карпищенко. — СПб.: Интермедика, 2002. — 600 с.

52. Микунис Р.И., Богач Н.Т. Взаимосвязь между клиническими особенностями хронической ишемической болезни сердца и обменом адениннук-леотидов // Клинич. медицина. — 1982. — Т. 60, № 3. — С. 39-44.

53. Микунис Р.И., Богач Н.Г. Особенности обмена адениннуклеотидов при различных формах инфаркта миокарда // Кардиология. — 1981. — № 6.1. С. 93-97.

54. Мухаммед Нуруззаман. Клинико-патогенетическое значение некоторых звеньев креатинкиназной и аденилаткиназной систем энергообеспечения при диффузных болезнях соединительной ткани : дисс.канд. мед. наук. Волгоград, 1989.- 272 С.

55. Насонова В.А., Астапенко М.Г. Клиническая ревматология: Руководство для врачей. М.: Медицина, 1989. - 592 с.

56. Насонова В.А., Иванова М.М., Бржезовский М.М. и др. Диагностические критерии системной красной волчанки // Сов. Медицина. 1980. -№ 5. -С. 104-108.

57. Насонова В.А., Сигиднн Я.А. Патогенетическая терапия ревматических заболеваний. М., 1985. - 287 с.

58. Николенко Ю.И., Синяченко О.В., Дядык А.И. и др. Циклические нук-леотиды при подагре // Врачебн. дело. — 1988. — № 6. — С. 40-42.

59. Пересыпкин В.В. Клинико-патогенетическое значение элементов про- и антиоксидантной систем крови у больных остеохондрозом поясничного отдела позвоночника и их изменения в процессе комплексной терапии : Дис. . канд. мед. наук. —Волгоград, 2001. —216 с.

60. Подзорова Т.А. Клинико-патогенетическое значение исследования активности энзимов пуринового метаболизма у больных системной красной волчанкой и системной склеродермией : Дисс. канд. мед. наук. — Волгоград, 2000. — 232 с.

61. Подзорова Т.А., Мартемьянов В.Ф., Стажаров М.Ю., Зборовская И.А. Пуриновый метаболизм и системная склеродермия // Человек и лекарство: Мат. VII Российского национального конгресса. — Москва, 2000. — С. 248.

62. Рачинский Л.Ф. Сравнительная оценка эффективности антигипоксиче-ских препаратов в экспериментальной терапии острой кровопотери: Ав-тореф. дис. канд. мед. наук. Ленинград, 1974. - 27 с.

63. Романенко А.В. Захват аденозина нервными окончаниями и его регуляция // Нейрохимия. — 1985. — Т. 4, № 3. — С. 327-336.

64. Сакс В.А. Розенштраух Л.В. Современные проблемы энергетики клеток сердечной мышцы // Тер. архив. — 1977. — № 1. — С. 120-132.

65. Сергеев Н.С., Ананиади Л.И., Львов Н.П. Связь нитратредуктазной активности ксантиноксидазы с оксидазной и дегидрогеназной формами фермента // Докл. АН СССР. — 1983. — № 4. — С. 984-986.

66. Скрипкин Ю.К. Кожные и венерические болезни. М., 2000. - 655с.

67. Стажаров М.Ю. Клинико-патогенетическое значение исследования активности энзимов пуринового метаболизма и антиоксидантной системы крови у больных ревматоидным артритом, остеоартрозом и подагрой: Дис. . канд. мед. наук. — Волгоград, 1998. —220 с.

68. Стажаров М.Ю., Бедина С.А., Зборовская И.А. Взаимосвязи ферментов пуринового метаболизма у больных остеоартрозом // Актуальные проблемы современной ревматологии : Сб-к науч. работ. — Волгоград, 2001. —С. 147-148.

69. Стажаров М.Ю., Левкина М.В., Бедина С.А. и соавт. Изменение активности энзимов пуринового метаболизма и их изоформ при подагре // Актуальные проблемы совр. Ревматологии : Тез. докл. науч. конф.— Волгоград, 1999. —С. 93.

70. Уманский В.Ю., Ходуев С.Х., Залеток С.П. и др. Антиметастатический эффект L-лизин-оксидазы // Бюл. эксперим. биол. и медицины. — 1990. — №5. —С. 458-459.

71. Федоров Н.А. Биологическое и клиническое значение циклических нук-леотидов. —М.: Медицина, 1979. — 184 с.

72. Филановская Л.И., Блинов М.Н., Того А.В. Влияние пуриновых нуклео-зидов на лейкоциты в норме и при лейкозах // Экспериментальная онкология. — 1987. — Т. 9, № 3. — С. 39-43.

73. Фримель Г. Иммунологические методы. — М. : Наука, 1987. — 472 с.

74. Халфен Э.Ш, Денисова С.Г. Активность ферментов, ответственных за метаболизм аденозина, у больных ишемической болезнью сердца // Кардиология. — 1977. — № 6. — С. 106-111.

75. Чазов Е.И. Молекулярные основы сердечной недостаточности // Кардиология. — 1975. — № 10. — С. 12-17.

76. Черных Т.П., Мякишев М.В., Стажаров М.Ю. Клинико-патогенетическое значение ферментов пуринового обмена при остеоарт-розе // Актуальные проблемы современной ревматологии : Тез. докл. науч. конф. — Волгоград, 1999. — С. 111.

77. Шелепина Е.П., Антонов В.Г., Кожемякина JI.A. Молекулярный механизм трансформации активности ксантиноксидазы под действием субстрата // Биохимия. — 1990. — № 9. — С. 1707-1712.

78. Affonso О. The chemistry of the inhibition of blood xanthine oxidase by SH reagents // An. Acad. Brasil. Cienc. — 1976. — Vol. 48. — № 3. — P. 591595.

79. Aitken R.J., Buckingham D., Harkiss D. Use of a xanthine oxidase free radical generating system to investigate the cytotoxic effects of reactive oxygen species on human spermatozoa // J. Reprod. Fertil. — 1993. — Vol. 97. —№ 2. —P. 441-450.

80. Aleo M.F., Casella A., Distefano A. Nicotinic acid and liver xanthine oxidase // Acta Vitaminol. et enzymol. — 1981. — Vol. 3. — № 4. — P. 219-223.

81. Amouzadeh H.R., Quails C.W.Jr., Wyckoff J. H. et al. Biochemical and morphological alterations in xylazine—induced pulmonary edema // Toxicol. Pathol. — 1993. — Vol. 21. — № 6. — P. 562-571.

82. Anderson B.O., Moore E.E., Moore F.A. et al. Hypovolemic shock promotes neutrophil sequestration in lungs by a xanthine oxidase—related mechanism. // J. Appl. Physiol. — 1991. Vol. 71. № 5. — P. 1862-1865.

83. Andrew P.W., Lowrie D.B., Peters T.J. Properties and localisation of rabbit alveolar macrophage 5-Nucleotidase//Enzyme. — 1990. — Vol. 25. — № 3.1. P. 188-195.

84. Appelboom Т., Mandelbaum J., Vertongen F. Purine enzyme levels in rheumatoid arthritis // J. Rheumatol. — 1985. — Vol. 12. — № 6. — P. 10751078.

85. Arkesteijn C.L.M. A kinetic method for serum 5'-Nucleotidase using stabilized glutamate degydrogenase // Z. Klin. Chem. und Klin. Biochem. — 1976.1. Bd. 14.—№3. —S. 155-158.

86. Ashraf M., Samra Z.Q. Subcellular distribution of xanthine oxidase during cardiac ischemia and reperfusion: an immunocytochemical study // J. Submi-crosc. Cytol. Pathol. — 1993. — Vol. 25. — № 2. — P. 193-201.

87. Bailly Y., Schoen S.W., Delhaye—Bouchaud N. et al. 5'-Nucleotidase activity as a synaptic marker of parasagittal compartmentation in the mouse cerebellum // J. Neurocytol. — 1995. — Vol. 24. — № 11. — P. 879-890.

88. Bailyes E.M., Newby A.C., Siddle K., Luzio J.P. Solubilization and purification of rat liver 5'-Nucleotidase by use of a zwitterionis detergent and a monocloclonal—antibody immunoadsorbent // Biochem. J. — 1982. — Vol. 203. —№ 1. —P. 245-251.

89. Bailyes E.M., Soos M., Jackson P. et al. The existence and properties of two dimers of rat liver ecto-5-Nucleotidase // Biochem. J. — 1984. — Vol. 221.2.—P. 369-377.

90. Baiocchi C., Pesi R., Camici M. et al. Mechanism of the reaction catalysed by cytosolic 5'-Nucleotidase phosphotransferase: formation of a phosphorylatedintermediate // Biochem. J. — 1996. — Vol. 317. — № 4 — Pt 3. — P. 797801.

91. Bak M.I., Ingwall J.S. Acidosis during ischemia promotes adenosine triphosphate resynthesis in postischemic rat heart. In vivo regulation of 5'-Nucleotidase // J. Clin. Invrst. — 1994. — Vol. 93. — № 1. — P. 40-49.

92. Barbosa R.M., Oliveira E.A., Melo E.H. et al. Action of immobilized xanthine oxidase on purines // Braz. J. Med. Biol. Res. — 1995. — Vol. 28. — № 3. ■— P. 291-295.

93. Bastian J.F., Ruedi J.M., Mac Pherson G.A. et al. Lymphocyte ecto 5-nucleotidase activity in infancy: increasing activity in peripherial blood B-cells precedes their ability to synthesize Jg G in vitro // J. Jmmunol.-1984.-Vol.132, № 4.- P.1767-1772.

94. Battelli M.G.,Bionamici L., Abbondanza A. et al. Excitoxic increase of xanthine dehidrogenase and xanthine oxidase in the rat olfactory cortex // Brain Res.Dev.BrainRes.-1995.-Vol.86, № 1-2.-P.340-344.

95. Batelli M.G., Lorenzoni E., Stirpe F. Milk xanthine oxidase type D (dehydrogenase) and type О (oxidase) // Biochem. J. — 1973. — Vol. 131. — № 2. — P. 191-198.

96. Belfield A., Ellis G., Goldberg D.M. A specific colorimetric 5'-Nucleotidase assay utilizing the Berthelot reaction // Clin. Chem. — 1970. — Vol. 16. —№5. —P. 396-401.

97. Benoit J.N., Grisham M.B., Mesh C.L. et al. Hepatic oxidant and antioxidant systems in portacaval—shunted rats // J. Hepatol. — 1992. — Vol. 14. — № 2—3. —P. 253-258.

98. Bergamini C., Grazi E. Human platelets 5-Nucleotidase a cell membrane ec-toenzyme with a possible regulatory role in the aggregation reaction // Ital. J. Biochem. —1980. — Vol. 29. — № 4. — P. 273-288.

99. Berger R., Mezey E., Clancy K.P. Analysis of aldehyde oxidase and xanthine dehydrogenase/oxidase as possible candidate genes for autosomal recessivefamilial amyotrophic lateral sclerosis // Somat. Cell. Mol. Genet. — 1995. — Vol.21. —№2. —P. 121-131.

100. Berman R.S., Martin W. Arterial endothelial barrier dysfunction: actions of homocysteine and the hypoxanthine—xanthine oxidase free radical generating system // Br. J. Pharmacol. — 1993. — Vol. 108. — № 4. — P. 920-926.

101. Betz A.L., Randall J., Martz D. Xanthine oxidase is not a major source of free radicals in focal cerebral ischemia // Am. J. Physiol. — 1991. — Vol. 260. — № 2.— Pt 2. — P. H563-H568.

102. Bhide S.V., Shah S., Desai M.P. Arginase and xanthine oxidase activity in liver tissue in pathological conditions // Biochem. Med. — 1974. — Vol. 9.4. —P. 386-389.

103. Bodansky O., Schwartz M.K. 5'-Nucleotidase // Adv. Clin. Chem. — 1968.1. Vol. 11. —P. 277-328.

104. Bondaryenko J.G., Kozhemyakin L.A., Symonyenkova V.A. The pathogenetic significance of xanthine oxidase activity in acute viral hepatitis is humans // Histochem. J. — 1990. — Vol. 22. — № 3. — P. 174.

105. Boyum A. Isolation of mononuclear cells and granulocytes from human blood // Scand.I. Clin. Lab. Invest. — 1968. — Vol. 21. — Suppl. 97 (Paper IV) — P. 77-89.

106. Boyum A. Separation of white blood cells // Nature. — 1964. — Vol. 204. — P. 793-794.

107. Brown A.M., Benboubetra M., Ellison M. et al. Molecular activation-deactivation of xanthine oxidase in human milk // Biochim. Biophys. Acta. — 1995. — Vol. 1245. — № 2. — P. 248-254.

108. Burgess F.W., el—Kouni M.H.,,Parks R.E. Jr. 5'—Nucleotidase activities of human peripheral lymphocytes // Biochem. Pharmacol. — 1985. — Vol. 34.17.—P. 3061-3070.

109. Cabre F., Camela E.I. Purification, properties and functional groups of bovine liver xanthine oxidase // Biochem. Soc. Trans. — 1987. — Vol. 15. — № 3.1. P. 511-512.

110. Carcassi A., Marcolongo R. Jr., Marinello E. et al. Liver xanthine oxidase in gouty patients // Arthritis and Rheumat. — 1969. — Vol. 12. — № 1. — P. 17-20.

111. Castelli P., Condemi A.M., Brambillasca C. et al. Improvement of cardiac function by allopurinol in patients undergoing cardiac surgery // J. Cardio-vasc. Pharmacol. — 1995. — Vol. 25 — № 1. — P. 119-125.

112. Chalmers F.H.,Hare C., Wooley G., Fraser J.H. Lymphocyte ectoenzyme activity compared in healthy persons and patients seropositive to or et high risk of HIV infection // Jmmunol. Cell. Biol.- 1990.- Vol.68, № 2. P.81-85.

113. Chang W.S., Chang Y.H., Lu F.J., Chiang H.C Inhibitory effects of phenolics on xanthine oxidase // Anticancer. Res. — 1994. — Vol. 14. —• № 2A. — P. 501-506.

114. Chang W.S., Lee Y.J., Lu F.J., Chiang H.C. Inhibitory effects of flavonoids on xanthine oxidase // Anticancer. Res. — 1993. — Vol. 13. — № 6A. — P. 2165-2170.

115. Chang W.S., Wen P.C., Chiang H.C. Structure, activity relationship of caffeic acid analogues on xanthine oxidase inhibition // Anticancer. Res. — 1995. — Vol. 15. — № 3. — P. 703-707.

116. Chatham W.W., Baggott J.E., Loose L.D., Blackburn W.D. Jr. Effects of tenidap on superoxide—generating enzymes. Noncompetitive inhibition of xanthine oxidase // Biochem. Pharmacol. — 1995. — Vol. 50. — № 6. — P. 811-814.

117. Chow C.W., Clark M.P. , Rinaldo J.E., Chalkley R. Multiple initiators and C/EBP binding sites are involved in transcription from the TATA-less rat XDH/XO basal promoter // Nucleic. Acids. Res. — 1995. — Vol. 23. — № 16.—P. 3132-3140.

118. Christensen L.D., Andersen V. Natural killer cells lack ecto-5'-Nucleotidase // Nat. Immun. — 1992. — Vol. 11. — № 1. — P. 1-6.

119. Christensen L.D., Andersen V., Nygaard P., Bendtzen K. Effects of immuno-modulators on ecto—5'—Nucleotidase activity on blood mononuclear cells in vitro // Scand. J. Immunol. — 1992. — Vol. 35. — № 4. — P. 407-413.

120. Chuang Nin-Nin, Newby A.C. Characterization of molecular forms of 5'-NT in normal serum and in serum from cholestatic patients and bile-duct-ligated rats // Biochem. J. — 1984. — Vol. 224. — № 3. — P. 689-695.

121. Ciccarelli R., Dilorio P., Giuliani P. et al. Rat cultured astrocytes releas gua-nin-based purines in basal conditions and after hypoxia-hypoglicemia // Glia.1998. —Vol. 25. —№ 1. —P. 93-98.

122. Cighetti G., Del Puppo M., Paroni R., Galli K.M. Lack of conversion of xanthine dehydrogenase to xanthine oxidase during warm renal ischemia // FEBS Lett. — 1990. — Vol. 274. — № 1-2. — P. 82-84.

123. Clapperton M., McMurray J., Fisher A.C., Dargie H.J. Does luminol chemiluminescence detect free radical scavengers? // Br. J. Clin. Pharmacol.1995. — Vol. 39. — № 6. — P. 688-691.

124. Coetzee I.H., Lochner A. Free radical effects on myocardial membrane mi-croviscosity // Cardioscience. — 1993. — Vol. 4. — № 4. — P. 205-215.

125. Coudray C., Rachidi S., Favier A. Effect of zinc on superoxide-dependent hy-droxyl radical production in vitro // Biol. Trace. Elem. Res. — 1993. — Vol. 38—№3. —P. 273-287.

126. Devenui Z.J., Orchard J.L., Powers R.E. Xanthine oxydase activity in mause pan crease: effect of caerulein-induced acute pancreatitis // Biochem. and Bio-phys. Res. Commun. — 1987. —Vol. 149. —№3. —P. 841-843.

127. Dianzani U., Massaia M., Pileri A. et al. Differential expression of ecto-5-Nucleotidase activity by functionally and phenotypically distinct subpopula-tions of human Leu 2 + / T 8 + lymphocytes // J. Jmmunol.- 1986.- Vol.137, № 2,- P.484-489.

128. Dinda P. K., Kossev P. , Beck I.T., Buell M.G. Role of xanthine oxidase-derived oxidants and leukocytes in ethanol-induced jejunal mucosal injury // Dig. Dis. Sci. — 1996. — Vol. 41. — № 12. — P. 2461 -2470.

129. Dixon T.F., Purdom M. Serum 5'-nucleotidsae // J. Clin. Pathol. — 1954. — № 7.—P. 341-343.

130. Dreher D., Jornot L., Junod A.F. Effects of hypoxanthine/ xanthine oxidase on Ca stores and protein synthesis in human endothelial cells // Circ. Res. — 1995. — Vol. 76. — № 3. — P. 388-395.

131. Dwenger A., Funck M., Lueken B. et al. Effect of ascorbic acid on neutrophil functions and hypoxanthine/ xanthine oxidase-generated, oxygen-derived radicals // Eur. J. Clin. Chem. Clin. Biochem. — 1992. — Vol. 30. — № 4. — P. 187-191.

132. Dykens J.A., Shick J.M. Relevance of purine catabolism to hypoxia and recovery in euryoxic and stenoxic marine invertebrates, particularly bivalve molluscs // ComP. Biochem. and Physiol. — 1988. — Vol. 91. — № 1. — P. 35-41.

133. Edwards N.L., Mitchell B.S. Plasma membrane 5-Nucleotidase and other purine enzymes in murine lymphocytes // Purine Metabol. Man 4: Proc. 4th Int. SymP., Maastrich, 13-18 June, 1982. Pt B. New-York, London, 1984. — P. 129-132.

134. Ericson A., Niklasson F., Verdier C. Metabolism of guanosine in human ery-trocytes // Vox sang. — 1985. — Vol. 48. — № 2. — P. 72-83.

135. Fabiani R., Ronquist G. Association of some hydrolytic enzymes with the prostasome membrane and their differential responses to detergent and PIPLC treatment // Prostate. — 1995. — Vol. 27. — № 2. — P. 95-101.

136. Farr M., Garvey K., Bold A.M. et al. Significance of the hydrogen ion concentration in synovial fluid in rheumatoid arthritis // Clin. Exp. Rheumatol. — 1985. —Vol. 3. — № 2. — P. 99-104.

137. Farr M., Wainwright A., Salmon M. et al. Platelets in the synovial fluid of patients with rheumatoid arthritis // Rheumatol. Int. — 1984. — Vol. 4. — № 1.1. P. 13-17.

138. Fenoglio C., Scherini E., Vaccarone R., Bernocchi G. A re-evaluation of the ultrastructural localization of 5'-Nucleotidase activity in the developing rat cerebellum, with a cerium—based method // J Neurosci. Methods. — 1995.

139. Vol. 59. — № 2. — P. 253-263.

140. Flocke K. Isolation and characterization of 5-Nucleotidase of a human pancreatic tumor cell line // Biochim. et Biophys. Acta. Protein Struct, and Mol. Enzymol. — 1991. — Vol. 1076i — № 2. — P. 273-281.

141. Fouw N.J., Ma D.D., Michalevicz R. et al. Differential cytotoxicity of deoxy-guanosine and 8-aminoguanosine for human leukemic cell lines and normal bone marrow progenitor cells // Hematol. Oncol. — 1984. — Vol. 2. — № 2.1. P. 189-197.

142. Fox I.H., Marchant P. J. Purine catabolism in man: characterization of placental microsomal 5-Nucleotidase // Can. J. Biochem. —1976. — Vol. 54. — № 5.—P. 462-469.

143. Fox N.E., Van Kuijk F.J. Immunohistochemical localization of xanthine oxidase in human retina // Free Radic. Biol. Med. — 1998. — Vol. 24 — № 6. -P. 900-905.

144. Frederiks W.M., Bosch K.S., Kooij A. Quantitative in situ analysis of xanthine oxidoreductase activity in rat liver // J. Histochem. Cytochem. — 1995.

145. Vol. 43. — № 7. — P. 723-726.

146. Frederiks W.M., Marx F., Bosch K.S. et al. Duirnal variation in 5-NT activity in rat liver. A quantitative histochemical study // Histochemistry. — 1987. — Vol. 87. —№5. —P. 439-443.

147. Frederiks W.M., Marx F., Kooij A. The effect of ischaemia on xanthine oxidase activity in rat intestine and liver // Int. J. ExP. Pathol. — 1993. — Vol. 74. —№ 1. —P.21-26.

148. Fredholm B.B., Lindgren E. Inhibition of soluble 5'-Nucleotidase from rat brain by different xanthine derivatives // Biochem. Pharmacol. — 1983. — Vol. 32.—№ 18.—P. 2832-2834.

149. Fujiwara Т., Kato S., Itonaga I. et al. Fine structure and distribution of lymphatics in the synovial membrane of monkey and human knee joints. A study using an enzyme-histochemical method // Int. OrthoP. 1995. —Vol. 19. — № 6. — P. 396-402.

150. Fukano M., Amano S., Hazama F., Hosoda S. 5'-Nucleotidase activities in sera and liver tissues of viral hepatitis patients // Gastroenterol. Jpn. — 1990.

151. Vol. 25. — № 2. — P. 199-205.

152. Fukushima Т., Adachi Т., Hirano K. The heparin-binding site of human xanthine oxidase // Biol. Pharm. Bull. — 1995. — Vol. 18. — № 1. — p. 156158.

153. Furukawa K.,Hasunuma K., Shinohara Y. Characterization of Pi-repressible enzymes secreted in culture media by Neurospora Crassa wild-type cells and null-type mutants//J.Bacteriol.- 1987.-Vol. 169, №10.-P.4790-4795.

154. Fukuzawa К., Soumi К., Iemura M. et al. Dynamics of xanthine oxidase and Fe(3+)-ADP-dependent lipid peroxidation in negatively charged phospholipid vesicles // Arch. Biochem. Biophys. — 1995. — Vol. 316. — № 1. — P. 8391.

155. Galley H.F., Davies M.J., Webster N.R. Xanthine oxidase activity and free radical generation in patients with sepsis syndrome // Crit. Care. Med. — 1996. —Vol. 24. —№ 10. —P. 1649-1653.

156. Gatruli E., Aten R.F., Behrman H.R. Inhibition of gonadotropin action and progesterone synthesis by xanthine oxidase in rat luteal cells // Endocrinologi. — 1991.—Vol. 128.—№5 —P. 2252-2258.

157. Geiger J.D., Nagy J.I. Lack of adenosine deaminase deficiency in the mutant mouse wasted // FEBS Lett. — 1986. — Vol. 208. — № 2. — P. 431 -434.

158. Ghezzi P., Bianchi M.,Mantovani A.et al. Enhanced xanthine oxidase in mice treated with interferon inducers// Biochem.Biophys.Res.Commun.-1984.-Vol.ll9,Nl.-P.144-149.

159. Goldberg D.M., Belfield A. Reciprocal relationship of alkaline phosphatase and 5-Nucleotidase in human bone // Nature. — 1974. — Vol. 247. — № 5439. —P. 286-288.

160. Grober A.K., Agrawal D.K., Ahmad S. et al. Size of 5-Nucleotidase in smooth muscle // J. Biochem. — 1985. — Vol. 98. — № 2 — P. 573-575.

161. Guerciolini R., Szumlanski C., Weinshilboum R.M. Human liver xanthine oxidase nature and extent of individual variation // Clin. Pharmacol. Ther. — 1991. — Vol. 50. — № 6. — P. 663-672.

162. Guerri C., Esquifino A., Sanchis R., Grisolia S. Growth, enzymes and hormonal changes in offspring of alcohol-fed rats // Ciba. Found, symp. — 1984. — Vol. 105.—P. 85-102.

163. Gutensohn W., Thiel E. Prognostic implication of ecto-5'-Nucleotidase activity in acute lymphoblastic leukemia // Cancer. — 1990. — Vol. 66. — № 8.1. P. 1755-1758.

164. Gutteridge S., Malthouse J.P. G., Lamy M.T., Bray R.C. The molibdenum centre of xanthine oxidase and other molibdenum — containing enzymes // Biochem. Soc. Trans. — 1981. — Vol. 9. № 2 — P. 324.

165. Hanczycowa H., Lubczynska-Kjwalska W., Sekowska E. Aktywnosc 5'-nukleotydazy w surowicy krwi w przewlewfum zapaleniu trzustki // Pol. Tyd. Lek. — 1982. —Vol. 37. — № 13. — P. 375-377.

166. Hardonk M.J., Kordstaal J. 5-Nucleotidase. ГУ. Localization of 5-Nucleotidase and alkaline phosphatase isoenymes in the kidney of young and adult mice // Histochemie. — 1968. — Vol. 15. — № 4. — P. 290-299.

167. Hassoun P.M., Yu F.S., Zulueta J.J. et al. Effect of nitric oxide and cell redox status on the regulation of endothelial cell xanthine dehydrogenase // Am. J. Physiol. — 1995. — Vol. 268. — № 5. — P. L809-L817.

168. Hawes E.M., Watts J.A. Xanthine oxidase/dehydrogenase release following ischemia in isolated rat hearts // Am. J. Cardiovasc. Pathol. — 1993. — Vol. 4. №4.—P. 326-335.

169. Heinz F., Pilz R., Reckel S. et al. A new spectrophotometric method for the determination of 5'-Nucleotidase // J. Clin. Chem. and Clin. Biochem. — 1980. —Vol. 18. —№ 11. —P. 781-788.

170. Hellsten Westing Y. Immunohistochemical localization of xanthine oxidase in human cardiac and skeletal muscle // Histochemistry.-1993.-Vol. 100, №3.-P.215-222.

171. Hille R., Nishino T. Flavoprotein structure and mechanism. 4. Xanthine oxidase and xanthine dehydrogenase // FASEB. J. — 1995. — Vol. 9. — № 11.1. P. 995-1003.

172. Hir M. Le, Dubach U.C. Characterizatin of a soluble 5-Nucleotidase of rat kidney // Mol. Nephrol.: Biochem. Aspects Kidney Funct. Proc. 8th Int. SimP. Dubrovnic, Okt. 5-8. 1986. — Berlin, New-York, 1987. — P. 305-310.

173. Hir Michel Le, Dubach Ulrich C. An ATP-inhibited soluble 5'-Nucleotidase of rat kidney I I Amer. J. Physiol. — 1988. — Vol. 254. — № 2. — P. F191-F195.

174. Hochberg M.C. Updating the American College of Rheumatology revised criteria for the classification of systemic lupus erythematosus (Letter) // Arthritis Rheum.- 1997.-Vol. 40.-P. 1725.

175. Hopson S.B., Lust R.M., Su Y.S. et al. Allopurinol improves myocardial reperfusion injury in a xanthine oxidase-free model // J. Natl. Med. Assoc. — 1995. — Vol. 87. № 7. — P. 480-484.

176. Horton J.W., White DJ. Role of xanthine oxidase and leukocytes in postburn cardiac dysfunction // J. Am. Coll. Surg. — 1995. — Vol. 181. — № 2. — P. 129-137.

177. Hossain M.A., Hamamoto I., Todo S. et al. Comparison of warm and cold ischemia of the canine small intestine // Eur. Surg. Res. — 1995. — Vol. 27. — №4. —P. 234-240.

178. Howes B.D., Bray R.C., Richards R.L. et al. Evidence favoring molybdenum-carbon bond formation in xanthine oxidase action: 17Q. and 13C-ENDOR and kinetic studies // Biochemistry. — 1996. — Vol. 35. — № 5. — P. 14321443.

179. Ibrahim В., Stoward P.J. The histochemical localization of xanthine oxidase // Histochem. J. — 1978. — Vol. 10. — № 5. — P. 615-617.

180. Ichida K., Amaya Y., Noda K. et al. Cloning of the cDNA encoding human xanthine dehydrogenase (oxidase): structural analysis of the protein and chromosomal location of the gene // Gene. — 1993. — Vol. 133. — № 2. — P. 279-284.

181. Ikeda К., Sunose H., Takasaka Т. Effects of free radicals on the intracellular calcium concentration in the isolated outer hair cell of the guinea pig cochlea //Acta. Otolaryngol. Stockh. — 1993.—Vol. 113.—№2. — P. 137-141.

182. Jamal L., Afkham-Ebranimi A., Saggerson E.D. A novel assay for 5'-Nucleotidase using 1. N6-etheno-AMP as substrate, and comments on the properties of the reaction product, ethenoadenosine // Biochem J. — 1988. — Vol. 250.—№2. —P. 369-373.

183. Jankela J., Baranovska M., Antalikova J. Forms of xanthine oxidoreductase in the tissues of Japanese quail // Vet. Med. Praha. — 1993. — Vol. 38. — № 5. — P. 297-304.

184. Janssen M., Van der Meer P., de Jong J.W. Antioxidant defences in rat, pig, guinea pig, and human hearts. — comparison with xanthine oxidoreductase activity // Cardiovasc. Res. — 1993. — Vol. 27. № 11. — P. 2052-2057.

185. Jarasch E.D. Significance of xanthine oxidase in capillary endotelian cells // Acta Physiol. Scand. — 1986. — Vol. 126. — Suppl. № 548. — P. 39-46.

186. Jensen M.H., Iversen A., Hagerstrand I. The 5'-Nucleotidase activity in normal human serum. Electrophoretic patterns and substrate specificity // Clin. Chim. Acta. — 1980. —Vol. 104. —№2. —P. 221-226.

187. Joannidis M., Gstraunthaler G., Pfaller W. Xanthine oxidase: evidence against a causative role in renal reperfusion injury // Am. J. Physiol. — 1990. — Vol. 258. — № 2 — Pt. 2. — P. F232-F236.

188. Jsenberg D. Comparison of lupus activity indices // Clin. Exp. Rheumatol. -1990. Vol 8, Suppl. 5. - P. 37.

189. Jsenberg D., Gladman A. Assessing Lupus // Arthritis Rheum. 1998. - Vol. 41, № 12.-P. 2276-2278.

190. Kaiserling E., Caesar R. Elektronenmikroskopischer nachweis der 5'-Nucleotidase im keimzentrum der menschlichen tonsille // Z. Zellforch. — 1969. —Bd. 95. —№2. —S. 202-215.

191. Kalckar H.M. Differential spectrophotometry of purine compounds by means of specific enzymes. I. Determination of hydroxypurine compounds // J. Biol. Chem. — 1947. — Vol. 167. — № 2. — P. 429-443.

192. Kato S. Enzyme-histochemical identification of lymphatic vessels by light and backscattered image scanning electron microscopy // Stain. Technol. -— 1990. —Vol. 65. —№3. —P. 131-137.

193. Kato S., Yasunaga A., Uchida U. Enzyme-histochemical method for identification of lymphatic capillaries // Lymphology. —1991. — Vol. 24. — № 3. — P. 125-129.

194. Kefford R.F., Fox R.M. Purine nucleoside toxicity in nondividing human lymphoid cells // Cancer Res. — 1982. — Vol. 42. — № 1. — P. 324-330.

195. Kela U., Vijayvargiya R., Trivedi C.P. Inhibitory effects of methylxanthine oxidase // Life Sci. — 1980. — Vol. 27. — № 22. — P. 2109-2119.

196. Kerstens P.J., Stolk J.N., De Abreu R.A. et al. Azathioprine related bone marrow toxicity and lowactivities of purine enzymes in patients with rheumatoid arthritis// Arthritis. Rhem.-1995.- Vol.38, № 1.- P.142-145.

197. Kitakaze M., Hori M., Morioka T. et al. Alpha 1-adrenoceptor activation increases ecto-5'-Nucleotidase activity and adenosine release in rat cardiomyo-cytes by activating protein kinase С // Circulation. — 1995. — Vol. 91. — № 8. P. 2226-2234.

198. Kiviluoma K.T., Hiltunen J.K., Hassinen I.E., Peuhkurinen K.J. Subcellular distribution of myocardial 5'-Nucleotidase // J. Mol. and Cell. Cardiol. — 1990. —Vol. 22. —№7.-P. 827-835.

199. Kizaki H., Matsuo I., Sakurada T. Xanthine oxidase and guanase activities in normal and psoriatic epidermis // Clin. Chim. Acta. — 1977. — Vol. 75. — № 1. —P. 1-4.

200. Kizaki H., Sakurada Т. Simple micro-assay methods for enzymes of purine metabolism // J. Lab. and Clin. Med. —1977. — Vol. 89. — № 5. — P. 11351144.

201. Kjaeve J., Ingebrigtsen Т., Naess L. et al. Methylprednisolone attenuates airway and vascular responses induced by reactive oxygen species in isolated, plasma —perfused rat lungs // Free Radic. Res. — 1996. — Vol. 25. — № 5.1. P. 407-414.

202. Klip A., Ramlal Т., Douen A.G. et al. Insulin-induced decrease in 5'-Nucleotidase activity in skeletal muscle membranes // FEBS Lett. — 1988.

203. Vol. 238. — № 2. — P. 419-423.

204. Kocic G., Vlahovic P., Dordevic V. et al. Effects of growth factors on the enzymes of purine metabolism in culture of regenerating rat liver cells // Arch. Physiol. Biochem. 1995. —Vol. 103.—№6. —P. 715-719.

205. Kojima S., Icho Т., Kajiwara Y., Kubota K. Neopterin as an endogenous antioxidant // FEBS. Lett. — 1992. — Vol. 304. — № 2-3. — P. 163-166.

206. Konval P.J., Lin K.Y. Glycosuria and tubular glycogen deposition // Nephron.1974. —Vol. 13,—№6. —P. 464-471.

207. Kooij A., Schiller H.J., Schijns M. et al. Conversion of xanthine dehydrogenase into xanthine oxidase in rat liver and plasma at the onset of reperfu-sion after ischemia // Hepatology. — 1994. — Vol. 19. — № 6. — P. 14881495.

208. Kuwano K., Ikeda H., Oda T. et al. Xanthine oxidase mediates cyclic flow variations in a canine model of coronary arterial thrombosis // Am. J. Physiol.1996. — Vol. 270. — № 6. — Pt. 2. — P. H1993-H1999.

209. Latorraca S., Piersanti P., Tesco G. et al. Effect of phosphatidylserine on free radical susceNibility in human diploid fibroblasts // J. Neural. Transm. Park. Dis. Dement. Sect. — 1993. — Vol. 6. — № 1. — P. 73-77.

210. Laubach M.G., Woodward D.J. 5'-Nucleotidase in the rodent ventral striatum: relation to the distribution of leu-enkephalin, cell clusters, and infralimbiccortical innervation // J. ComP. Neurol. — 1995. —- Vol. 360. — № 1. — P. 49-58.

211. Laycock S.K., McMurray J., Kane K.A., Parratt J.R. Effects of the xanthine oxidase system on cardiac function in anaesthetised rats // Free. Radic. Biol. Med. — 1993. — Vol. 15. — № 3. — P. 249-255.

212. Lee H.S., Allan G. Bovine thyroidal xanthine oxidase // Int. J. Biochem. — 1978. — Vol. 9. — № 8. — P. 559-566.

213. Lin Y. Vasoactive intestinal polypeptide prevents injury of pulmonary vascular permeability lue to xanthine with xanthine oxidase// 1995.-Vol.10, № 3.-P.141-145.

214. Liochev S.J., Batinic-HaberleJ., Fridovich J. The effect of detergents on the reduction of tetrazolium salts// Arch.Biochem.Biophys.-1995.-Vol.324, №1.-P.48-52.

215. Litsky M.L., Hohl C.M. Luccas J.H., Jurkowitz M.S. Inosine and guanosine preserve neuronal and glial cell viability in mous during hypoxia // Biol. Chem.— 1987. — Vol. 21.-№2. — P. 134-136.

216. Litsky M.L., Holh C.M., Lucas J.H., Jurkowitz M.S. Inosine and guanosine preserve neuronal and glial cell viability in mouse spinal cord cultures during chemical hypoxia // Brain. Res. — 1999. — Vol. 821. — № 2. — P. 426-432.

217. Madrid-Marina V., Fox J. H. Human placental cytoplasmic 5'-Nucleotidase: kinetic properties and inhibition // J. Biol. Chem. ■— 1986. — Vol. 26 — P. 444-452.

218. Malthouse J.P. G., Gutteridge S., Bray R.C. Rapid type 2 molybdenum (У) electron-paramagnetic resonance signals from xanthine oxidase and the structure of the active centre of the enzyme // Biochem. J. — 1980. — Vol. 185. — №3. —P. 767-770.

219. Mao Y., Zang L., Shi X. Singlet oxygen generation in the superoxide reaction //Biochem. Mol. Biol. Int. — 1995.— Vol. 36. —№ 1. —P. 227-232.

220. Massaia M., Ma D.D., Boccadoro M. et al. Decreased ecto-5'-Nucleotidase activity of peripheral blood lymphocytes in human monoclonal gammo-pathies: correlation with tumor cell kinetics // Blood. — 1985. -— Vol. 65. — №3. —P. 530-534.

221. Matsubara Т., Musat-Marcu S., Misra H.P. , Dhalla N.S. Protective effect of vanadate on oxyradical-induced changes in isolated perfused heart // Mol. Cell. Biochem.—1995. —Vol. 153.—№ 1—2. —P. 79-85.

222. McManaman J.L., Shellman V., Wright R.M., Repine J.E. Purification of rat liver xanthine oxidase and xanthine dehydrogenase by affinity chromatography on benzamidine-sep-harose // Arch. Biochem. Biophys. — 1996. Vol. 332.—№ 1. —P. 135-141.

223. Meftah S., Prasad A.S., Lee D.Y., Brewer G.J. Ecto-5'-Nucleotidase (5'NT) as a sensitive indicator of human zinc deficiency // J. Lab. Clin. Med. — 1991. — Vol. 118. —№4. —P. 309-316.

224. Mekhfi H., Veksler V., Mateo P. et al. Creatine kinase is the main target of reactive oxygen species in cardiac myofibrils // Circ. Res. — 1996. — Vol. 78. —№6. —P. 1016-1027.

225. Menon I.A. Nature of the species generated by xanthine oxidase involved in secretory hystamine release from mast cells // Biochem. and Cell. Biol. — 1989. — Vol. 67. — № 8 — P. 397-403.

226. Miller D.M., Grover T.A., Nayini N., Aust S.D. Xanthine oxidase and iron dependent lipid peroxidation // Arch. Biochem. Biophys. — 1993. — Vol. 301. —№ 1. —P. 1-7.

227. Minelli A., Moroni M., Mezzasoma I. The dephosphorylation of AMP and IMP by a soluble low Km 5'-Nucleotidase from human seminal plasma: some regulatory aspects // Int. J. Biochem. Cell. Biol. — 1995. — Vol. 27. — № 10. —P. 1079-1083.

228. Misawa M., Nakano E. Airway constriction by xanthine/ xanthine oxidase in guinea pigs in vivo // J. Toxicol. Environ. Health. — 1993. — Vol. 39. — № 2. —P. 193-205.

229. Miyamoto Y., Akaike Т., Yoshida M. et al. Potentiation of nitric oxide-mediated vasorelaxation by xanthine oxidase inhibitors // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. — 1996. — Vol. 211. — № 4. — P. 366-373.

230. Mondal M.S., Mitra S. The inhibition of bovine xanthine oxidase activity by Hg2+ and other metal ions // J. Inorg. Biochem. — 1996. — Vol. 62. — № 4. — P. 271-279.

231. Moriwaki Y., Yamamoto Т., Suda M. et al. Purification and immunohisto-chemical tissue localization of human xanthine oxidase // Biochim. Biophys. Acta. — 1993. —Vol. 1164. — № 3. — P. 327-330.

232. Moriwaki Y., Yamamoto Т., Yamaguchi K. et al. Immunohistochemical localization of aldehyde and xanthine oxidase in rat tissues using polyclonal antibodies //Histochem. Cell. Biol. — 1996. — Vol. 105. — № 1. — P. 71-79.

233. Mousson В., Desjacques P., Baltassat P. Measurement of xanthine oxidase activity in some human tissues. An optimized method // Enzyme. — 1983. — Vol. 29. —№ 1. —P. 32-43.

234. Muindi J.F., Stevens Y.W., Warrell R.P.Jr., Young C.W. In vitro differential metabolism of merbarone by xanthine oxidase and microsomal flavoenzymes. The role of reactive oxygen species // Drug. Metab. Dispos. — 1993. — Vol. 21. —№3. —P. 410-414.

235. Murray J.L., Perez-Soler R., Bywaters D., Hersh E.M. Decreased adenosine deaminase (ADA) and 5'-Nucleotidase (5NT) activity in peripheral blood T cells in Hodgkin disease // Am. J. Hematol. — 1986. — Vol. 21. — № 1. — P. 57-66.

236. Musemeche C.A., Pizzini R.P., Andrassy R.J. Intestinal ischemia in the newborn: the role of intestinal maturation // J. Surg.Res. — 1993. — Vol. 55. — №6. — P. 595-598.

237. Naito Y., Lowenstein J.M. 5'-Nucleotidase from rat heart // Biochemistry. — 1981. —Vol.20. —№ 18. —P. 5188-5104.

238. Nakashima K., Kuroda N., Kawaguchi S. et al. Peroxyoxalate chemilumines-cent assay for oxidase activities based on detecting enzymatically formed hydrogen peroxide // J. Biolumin. Chemilumin. — 1995. — Vol. 10. — № 3. — P. 185-191.

239. Nalini S., Mathan M.M., Balasubramanian K.A. Oxygen free radical induced damage during intestinal ischemia/reperfusion in normal and xanthine oxidase deficient rats // Mol. Cell. Biochem. — 1993. — Vol. 124. — № 1. — P. 5966.

240. Nielsen V.G., McCammon A.T., Tan S. et al. Xanthine oxidase inactivation attenuates postocclusion shock after descending thoracic aorta occlusion and reperfusion in rabbits // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. — 1995. — Vol. 110. — №3. —P. 715-722.

241. Nielsen V.G., Tan S., Baird M.S. et al. Gastric intramucosal pH and multiple organ injury: impact of ischemia-reperfusion and xanthine oxidase // Crit. Care. Med. — 1996. —Vol. 24. —№ 8. —P. 1339-1344.

242. Nishikimi N., Rao N.A., Iagi K. The occurence of superoxide anion in the reaction of reduced phenazine methosulfate and zine molecular oxygen // Biochem. and Biophys. Res. Communs. — 1972. — Vol. 46. — № 2. — P. 849854.

243. Nishimura M., Yamaoka К., Yasui H. et al. Effect of temperature in perfusate on local hepatic disposition of BOF-4272. a new xanthine oxidase inhibitor // Biol. Pharm. Bull. — 1995. — Vol. 18. — № 7. — P. 980-983.

244. Nishio H., Takeshita K. Effect of concanavalin A on 5'-Nucleotidase activity of rabbit blood platelets // JaP. J. Pharmacol. — 1987. — Vol. 43. — № 2. — P. 230-233.

245. Novak L., Stipek S., Zima Т., Trojan S. Plasma xanthine oxidase and resistance to hypoxia: effect of purines and alcohol administration // Drug. Me-tabol. Drug. Interact. — 1991. — Vol. 9. — № 3—4. — P. 311-320.

246. Novo F.J., Louro M.O., Tutor J.C. A de-sialylated isoform of serum 5'-Nucleotidase: clinical and biological significance in hepatobiliary disease // Br. J. Biomed. Sci. — 1994.— Vol. 51. — № 2. — P. 119-123.

247. Oka H. Xanthine oxidoreductase activity in rat brain tissue: the changes after decapitation//No. To. Shinkei. — 1989. — Vol. 41. — № 6. — P. 575—81.

248. Okajima S. Mechanisms of reperfusion injury of rat kidney // Hokkaido. Igaku. Zasshi. — 1990. — Vol. 65. — № 3. — P. 277-284.

249. Orford M., Mazurkiewicz D., Saggerson D. Soluble 5'-Nucleotidase activities inratbrain//J.Neurochem. — 1991.—Vol. 56.— № 1.— P. 141-146.

250. Parks D.A., Granger D. Xanthine oxidase: biochemistry, distribution and physiology // Acta physiol. Scand. — 1986. — Vol. 126. — № 548. — P. 8789.

251. Pehlke D.M., McDonald J.A., Holmes E.W., Kelly W.N. Inosinic acid dehydrogenase activity in the Lesch—Nyhan syndrome // J. Clin. Invrst. — 1972. — Vol. 51. —P. 1398-1404.

252. Phillis J.W., Sen S., Cao X. Amflutizole, a xanthine oxidase inhibitor, inhibits free radical generation in the ischemic/reperfiised rat cerebral cortex // Neuro-sci. Lett. — 1994. — Vol. 169. — № 1-2. — P. 188-190.

253. Picard-Ami L.A Jr., MacKay A., Kerrigan C.L. Pathophysiology of ischemic skin flaps: differences in xanthine oxidase levels among rats, pigs, and humans // Plast. Reconstr. Surg. — 1991. — Vol. 87. — № 4. — P. 750-755.

254. Porras A.G., Palmer G.J. The room temperature potentiometry of xanthine oxidase. PH-dependent redox behavior of the flavin, molybdenum, and iron-sulfur centers // J. Biol. Chem. — 1982. — Vol. 257. — № 19. — P. 1161711626.

255. Povoa H., Sa L.D., Lessa V.M. Xanthine oxidase and triglycerides in serum of patients with hyperlipoproteinemia, type 4 //Biomed.Biochim.Acta.-1984.-Vol.43,№10.-P. 1201-1203.

256. Prasad K., Kalra J., Bharadwaj L. Cardiac depressant effects of oxygen free radicals // Angiology. — 1993. — Vol. 44. — № 4. — P. 257-270.

257. Prebis J.W., Gruskin A.B., Polinsky M.S., Baluarte H.J. Uric acid in childhood essential hypertension // J. Pediat. —1981. — Vol. 98. — № 5. — P. 702-707.

258. Prichard M., Ducharme N.G., Wilkins P. A. et al. Xanthine oxidase formation during experimental ischemia of the equine small intestine // Can. J. Vet. Res. — 1991. — Vol. 55. — № 4. — P. 310-314.

259. Punch J., Rees R., Cashmer B. et al. Xanthine oxidase: its role in the no-reflow phenomenon // Surgery. — 1992. — Vol. 111. — № 2. — P. 169-176.

260. Romo C.A., Lorente T.F., Salazar V.V. Primary immunodeficiencies and purine metabolesm // Rev. Clin. Esp. — 1985. — Vol. 177. — № 6. — P. 247-253.

261. Rootwelt Т., Almaas R., Oyasaeter S. et al. Release of xanthine oxidase to the systemic circulation during resuscitation from severe hypoxemia in newborn pigs // Acta.Paediatr. — 1995. — Vol. 84. — № 5. — P. 507-511.

262. Ross W.B., Huecksteadt T.P. , Panus P.C. et al. Regulation of xanthine dehydrogenase and xanthine oxidase activity by hypoxia // Am . J. Physiol. — 1996. —Vol. 270. —№6.— Pt. 1,—P. L941-L946.

263. Rousseau G.R., Cambron P.,Amar-Costesec A. Glucocorticoid receptor mediated stimulation of 5-Nucleotidase in human limphoblastoid JM-9 cells // FEBS Lett.- 1980.- Vol.121, №2.- P.249-252.

264. Rowland R.T., Meng X., Ao L. et al. Mechanisms of immature myocardial tolerance to ischemia: phenotypic differences in antioxidants, stress proteins, and oxidases // Surgery. — 1995. — Vol. 118. — № 2. — P. 446-452.

265. Russell N.H., Hoffbrand A.V., Bellingham A.J. Potential use of purine nucleosides and enzyme inhibitors for selective depletion of Thy-lymphoblasts from human bone marrow // Leuk. Res. — 1986. — Vol. 10. — № 3. — P. 325-329.

266. Sadasivudu В., Rao T.I. Studies on AMP-deaminase and 5'-Nucleotidase in rat brain under different experimental conditions // J. Neurosci. Res. — 1980.

267. Vol. 5. — № 4. — P. 281 -289.

268. Sah N.K., Kumar S., Subramanian M., Devasagayam T.P. Variation in the modulation of superoxide-induced single-strand breaks in plasmid pBR322 DNA by biological antioxidants // Biochem. Mol. Biol. Int. — 1995. — Vol. 35. —№2. —P. 291-296.

269. Sakai M., Yamagami K., Kitazawa Y. et al. Xanthine oxidase mediates paraquat—induced toxicity on cultured endothelial cell // Pharmacol. Toxicol.1995. — Vol. 77. — № 1. — P. 36-40.

270. Samra Z.Q., Oguro Т., Containe R., Ashraf M. Immunocytochemical localization of xanthine oxidase in rat miocardium // J. Submicrosc. Cytol. and Pathol. — 1991, —Vol. 23.—№3. —P. 379-390.

271. Sanderud J., Saugstad O.D. Oxygen radicals induce pulmonary vasoconstriction in pigs without acivating plasma proteolytic cassade systems // Eur. Surg. Res. — 1993. — Vol. 25. — № 3. — P. 137-145.

272. Sasaoka Т., Kaneda N., Norio T. Highly sensitive assay for xanthine oxidase activity by high-performance liquid chromatografy with fluorescence detection // J. Chromatogr. Biomed. Appel. — 1988. — Vol. 424. — № 2. — P. 392-397.

273. Saugstad O.D. Role of xanthine oxidase and its inhibitor in hypoxia: reoxy-genation injury // Pediatrics. — 1996. — Vol. 98. — № 1. — P. 103-107.

274. Schmid T.C., Loffing J., Le Hir M., Kaissling B. Distribution of ecto-5'-Nucleotidase in the rat liver: effect of anaemia // Histochemistry. — 1994. — Vol. 101.—№6. —P. 439-447.

275. Schneider I., Elstner E.F. Antioxidative properties of phenazone derivatives: differentiation between phenylbutazon and mofebutazon // Z. Naturforsch. C. — 1993. — Vol. 48. — № 7-8. — P. 542-544.

276. Seguira M., Kato K., Adachi T. et al. A new method for the assay of xanthine oxidase activity // Chem. and Pharm. Bull. — 1981. — Vol. 29. — № 2. P. 430-432.

277. Serre-Debeauvais F., Bayle F., Amirou M. et al. Hematotoxicity caused by azathioprine genetically determined and aggravated by xanthine oxidase deficiency in a patient following renal transplantation // Presse.Med. — 1995. — Vol. 10.—№21. —P. 987-988.

278. Serretti R., Core P., Muti S., SalaffI F. Influence of dichloromethylene di-phosphonate on reactive oxygen species production by human neutrophils // Rheumatol. Int. — 1993. — Vol. 13. —№4. —P. 135-138.

279. Shafi A.S., Devi A. Distribution of 5-Nucleotidase in vertebrate tissues // Broteria Cienc. Natur. — 1972. — Vol. 41. — № 3—4. — P. 113-117.

280. Shao Q., Matsubara Т., Bhatt S.K., Dhalla N.S. Inhibition of cardiac sar-colemma Na(+)-K+ ATPase by oxyradical generating systems // Mol. Cell. Biochem. — 1995. —Vol. 147. —№ 1-2, —P. 139-144.

281. Shi X., Dalai N.S. Vanadate-mediated hydroxyl radical generation from superoxide radical in the presence of NADH: Haber-Weiss vs Fenton mechanism // Arch. Biochem. Biophys. — 1993. — Vol. 307. — № 2. — P. 336341.

282. Shirley P.S., Wang P., Lawrence R., Waite M. Absence of the membrane marker enzyme 5'-Nucleotidase in human polimorphonuclear leukocytes // Biochem. Med. — 1976. — Vol. 15. — № 3. — P. 289-295.

283. Singh A.R. Properties of 5'-Nucleotidase from nodules of pigeonpea (Cajanus cajan) // Phytochemistry. — 1986. — Vol. 25. — № 10. — P. 2267-2270.

284. Singh N., Aggarwal S. The effect of active oxygen generated by xanthine/xanthine oxidase on genes and signal transduction in mouse epidermal JB6 cells // Int. J. Cancer. — 1995. — Vol. 62. — № 1. — P. 107-114.

285. Skibo E.B. Noncompetitive and irreversible inhibition of xanthine oxidase by benzimidazole analogues acting at the functional flavin adenine dinucleotide cofactor//Biochemistry. — 1986.— Vol. 25. —№ 15.—P. 4189-4194.

286. Smith J.K., Carden D.L., Korthuis R.J. Activated neutrophils increase microvascular permeability in skeletal muscle: role of xanthine oxidase // J. Appl. Physiol. — 1991. — Vol. 70. — № 5. — P. 2003-2009.

287. Spaapen L.J.M., Rijkers G.T., Staal G.E.J, et al. The effect of deoxyadenosine in human lymphocyte function // J. Immunol. — 1984. — Vol. 132 — № 5. — P. 2311-2317.

288. Spigelman A.D., Farmer K.C., Oliver S.et al.Caffeine phenotyping of cytochrome P 450 1A2, N-acetyltransferase and xanthine oxidase in patients with familial adenomatous polyposis // Gut.-1995.-Vol.36, №2.-P.251-254.

289. Stipek S., Novak L. Plasma xanthine oxidase activity correlated with the resistance to severe hypoxia in different species // Physiol. Bohemosl. — 1988.

290. Vol.37.— №2, — P. 107-113.

291. Stipek S., Novak L., Crkovska J. et al. Xanthine oxidoreductase. Biochemical, biological and pathogenic functions // Sb. Lek. — 1994. — Vol. 95. — № 4.1. P. 289-295.

292. Stolk J.N., Boerbooms A.M., De-Abreu R.A. et al. Purine enzyme activities in recent onset rheumatoid arthritis: are there differences between patients and healthy controls? // Ann. Rheum. Dis. — 1996. — Vol. 55. — № 10. — P. 733-738.

293. Stolk J.N.,Boerbooms A.M., De-Abreu R.A. et al. Redused thiopurine me-thyltransferase activity and development of side effects of azathioprine treatment in patients with rheumatoid arthritis // Arthritis.Rheum.- 1998.- Vol.48, № 10.- P.1858-1866.

294. Sunderman F.WJr. The clinical biochemistry of 5-NucJeotidase // Ann. Clin. Lab. Sci. — 1990. — Vol. 20. — № 2. — P. 123-139.

295. Swain J., Gutteridge J. M. Prooxidant iron and copper, with ferroxidase and xanthine oxidase activities in human atherosclerotic material // FEBS. Lett. — 1995. —Vol. 368.— №3. — P. 513-515.

296. Tabatabaie Т., Potts J. D., Floyd R.A. Reactive oxygen species-mediated in-activation of pyruvate dehydrogenase // Arch. Biochem. Biophys. — 1996. — Vol. 336. — № 2. — P. 290-296.

297. Tan E.M., Cohen A.S., Fries J.F. et al. The 1982 revised criteria for the classification of systemic lupus erythematosus // Arthritis Rheum. 1982. - Vol. 25.-P. 127101277.

298. Tan S., Gelman S., Wheat J.K., Parks D.A. Circulating xanthine oxidase in human ischemia reperfusion // South. Med. J. — 1995. — Vol. 88. — № 4.1. P. 479-482.

299. Tanaka H., Okada Т., Konishi H., Tsuji T. The effect of reactive oxygen species on the biosynthesis of collagen and glycosaminoglycans in cultured human dermal fibroblasts // Arch. Dermatol. Res. — 1993. — Vol. 285. — № 6.1. P. 352-355.

300. Tanaka J., Yuda Y. Lipid peroxidation in gastric mucosal lesions induced by indomethacin in rat // Biol. Pharm. Bull. — 1996. — Vol. 19. — № 5. — P. 716-720.

301. Tavenier M., Skladanowski A.C., de Abreu R.A., de Jong J.W. Kinetics of adenilate metabolism in human and rat myocardium // Biochem. Bio-phis.Acta. — 1995. — Vol. 1244. —№ 2-3. — P. 351-356.

302. Terada L.S., Arnold P.D. Xanthine oxidase does not mediate the antiproliferative effects of interferon—gamma in human umbilical vein endothelial cells // J. Interferon Res. — 1993. — Vol. 13. — № 6. — P. 419-422.

303. Thom S.R. Functional inhibition of leukocyte B2 integrins by hyperbaric oxygen in carbon monoxide—mediated brain injury in rats // Toxicol. Appl. Pharmacol. — 1993. — Vol. 123. — № 2. — P. 248-256.

304. Thompson-Gorman S.L., Zweier J. L. Evaluation of the role of xanthine oxidase in myocardial reperfusion injuri // J. Biol. Chem. — 1990. — Vol. 265.12.—P. 6656-6663.

305. Tomioka K., Endo K. Effect of substrate concentration on the inactivation velocity of carp muscle 5'—Nucleotidase by EDTA // Bull. JaP. Soc. Sci. Fish.1985.—Vol. 51, —№4. —P. 689.

306. Trangas Т., Courtis N., Gounaris A. et al. Patterns of adenosine deaminase, ecto-5'-Nuc!eotidase, poly (A) polymerase and surface light chain expression in chronic lymphocytic leukemias // Blut. — 1989. —- Vol. 58. — № 4. — P. 187-193.

307. Turner N.A., Doyle W.A., Ventom A.M., Bray R.C. Properties of rabbit liver aldehyde oxidase and the relationship of the enzyme to xanthine oxidase and dehydrogenase // Eur. J. Biochem. — 1995. — Vol. 232. — № 2. — P. 646657.

308. Tuttle J.V., Krenitsky T.A. Effects of acyclovir and its metabolites on purine nucleoside phosphorylase // J. Biol. Chem. — 1984. — Vol. 259. — № 7. — P. 4065-4069.

309. Urbanova D., Prerovsky I. Enzymes in the wall of normal and varicose viens. Histochemical study // Angiologia. —■ 1972. — Vol. 9. — № 1. — P. 53-61.

310. Vaziri N.D., Freel R.W., Hatch M. Effect of chronic experimental renal insufficiency on urate metabolism // J. Am. Soc. Nephrol. — 1995. — Vol. 6. — №4.—P. 1313-1317.

311. Verhoef V.L., Fridland A. Differential sensitivity of human T- and B-lymphoblasts to cytotoxic nucleoside analogs // J. Cell. Biochem. — 1982. — № 1079. —P. 381.

312. Villa P., Ghezzi P. Effect of N-acetyl-L-cysteine on sepsis in mice // Eur. J. Pharmacol. — 1995. —Vol. 292. — № 3-4. — P. 341-344.

313. Weinbroum A., Nielsen V.G., Tan S. et al. Liver ischemia/reperfusion increases pulmonary permeability in rat: role of circulating xanthine oxidase // Am. J. Physiol. — 1995. —Vol.268.—№6 —Pt 1. —P. G988-G996.

314. Wesson D.E., Elliott S.J. The H202-generating enzyme, xanthine oxidase, de2+creases luminal Ca content of the IP3-sensitive Ca2+ store in vascular endothelial cells // Microcirculation — 1995. — Vol. 2. — № 2. — P. 195-203.

315. White C.R., Darley-Usmar V., Berrington W.R., McAdams M. Circulating plasma xanthine oxidase contributes to vascular dysfunction in hypercholes-terolemic rabbits // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. — 1996. — Vol. 93. — № 16. —P. 8745-8749.

316. Wink D.A., Cook J.A., Pacelli R. et al. Nitric oxide (NO) protects against cellular damage by reactive oxygen species // Toxicol. Lett. — 1995. — Vol. 82—83.—P. 221-226.

317. Wolko R., Krawozynski J. Valeur diagnostique de la determination de Гас-tivite de la xanthine oxidase dans Thepatite virale // Mater. Med. Pol. 1974.

318. Vol. 6. — № 2. — P. 95-98.

319. Wood R.J., Williams D.G. Colorimetric determination of serum 5'-Nucleotidase without deproteinization // Clin. Chem. — 1981. — Vol. 27.3.—P. 464-465.

320. Woolfolk C.A., Downard J.S. Bacterial xanthine oxidase from Arthrobacter S-2 // J. Bacteriol. — 1978. — Vol. 135. — № 2. — P. 422-428.

321. Wortmann R.L., Veum J.A., Rachow J. W. Synovial fluid 5'-Nucleotidase activity // Arthritis and Rheumatism. — 1991. — Vol. 34. — № 8. — P. 10141020.

322. Xia Y., Zweier J. L. Substrate control of free radical generation from xanthine oxidase in the postischemic heart // J. Biol.Chem. — 1995. — Vol. 270. — № 32. —P. 18797-18803.

323. Yamamoto Т., Moriwaki Y., Takahashi S. et al. Determination of human plasma xanthine oxidase activity by high-performance liquid chromatography // J. Chromatogr. B. Biomed. Appl. — 1996. — Vol. 681. — № 2. — P. 395400.

324. Yoshikawa Т., Kokura S., Tainaka K. et al. A novel cancer therapy based on oxygen radicals // Cancer. Res. — 1995. — Vol. 55. — № 8. — P. 16171620.

325. Zachowski A., Evans W.H., Paraf A. Immunological evidence that plasma-membrane 5'-Nucleotidase is a transmembrane protein // Biochem. et Bio-phys. Acta. — 1981. —Vol. 644.—№ 1. —P. 121-126.

326. Zager R.A., Gmur D.J. Effects of xanthine oxidase inhibition on ischemic acute renal failure in the rat // Am. J. Physiol. — 1989. — Vol. 257. — № 6.1. Pt. 2. — P. F953-F958.

327. Zakrzewska В., Kaminski Z.W. Involvement of histidine residues in catalytic activity of xanthine dehydrogenase from hen liver // Int. J. Biochem. — 1992.

328. Vol. 24. — № 3. — P. 487-491.