Автореферат и диссертация по медицине (14.03.09) на тему:Клинико-иммунологические особенности ответа пациентов с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита на введение активированных Т-лимфоцитов
Автореферат диссертации по медицине на тему Клинико-иммунологические особенности ответа пациентов с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита на введение активированных Т-лимфоцитов
1Я1 - 3' ^
На правах рукописи
ШЕСТАКОВА НАТАЛЬЯ АЛЕКСЕЕВНА
Клинико-иммунологические особенности ответа пациентов с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита на введение активированных Т-лимфоцитов
14.03.09 - клиническая иммунология, аллергология
АВТОРЕФЕРАТ
диссертации на соискание учёной степени кандидата медицинских наук
Новосибирск 2010
Работа выполнена в Учреждении РАМН Научно-исследовательском институте клинической иммунологии Сибирского отделения РАМН
Научный руководитель:
доктор медицинских наук, профессор Кожевников Владимир Сергеевич
Официальные оппоненты:
доктор медицинских наук Колесникова Ольга Петровна
доктор медицинских наук, профессор Климов Владимир Васильевич
Ведущая организация:
ГНЦ Институт иммунологии ФМБА России
Защита состоится « /</ » /Ь/^'/Л 2010 г. в часов на заседании
диссертационного совета Д 001.001.01 НИИ клинической иммунологии СО РАМН по адресу: 630099, г. Новосибирск, ул. Ядринцевская, 14.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке НИИ клинической иммунологии СО РАМЫ
Автореферат разослан » ДМ'/!У 2010 г.
Ученый секретарь диссертационного совета
доктор биологических наук ЗС^^Я^-'/о-^- Ольга Тимофеевна
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность темы. Проблема атопического дерматита является чрезвычайно актуальной в связи с 2-Зкратным увеличением заболеваемости АД в индустриальных странах за последние 30 лет. АД страдают 10-20% детей и 1-3% взрослых [Ben-Gashir M.А., 2004, Leung D.Y.M., 2004]. Многочисленные исследования показали, что АД является полиэтиологичным заболеванием. Клинически заболевание реализуется при наличии генетической предрасположенности по аутосомно-доминантному типу, нарушении барьерной функции кожи, вегетативно-сосудистых, нейроэндокринных нарушений, локальных и системных изменений реакций иммунной системы и провоцирующих факторов окружающей среды [Ben-Gashir M.А.,2004, Leung D.Y.M, 2004]. АД является гетерогенным заболеванием. В зависимости от общего уровня IgE сыворотки крови различают аллергическую и неаллергическую форму АД [Novak N., Bieber T., 2003]. Изучение особенностей иммунологических механизмов развития каждой из форм является актуальной задачей аллергологов и иммунологов.
Стандартные методы лечения аллергических заболеваний, используемые в настоящее время, включают применение системных и топических препаратов, которые подавляют действие медиаторов воспаления. Единственным методом, который видоизменяет характер реагирования организма на аллерген, вмешиваясь в основные патогенетические звенья аллергического процесса, является аллерген-специфическая иммунотерапия и ее модификации [Akdis С.А., 1998, Francis J.N.,
2003, Gardner L.M., 2004, Алексеева Л.Г., 2007]. Однако недостаточная эффективность, а подчас и невозможность ее проведения при атопическом дерматите, является основанием для поиска новых направлений системной терапии данного заболевания.
Активное изучение регуляторных клеток при различных патологических состояниях в последнее десятилетие выявило снижение их активности при атопических заболеваниях. В частности показано, что у аллергиков при неизмененном количестве клеток в субпопуляции CD4+CD25+ преобладают не регуляторные, а активированные Т-клетки. Кроме того, в эксперименте было показано, что как естественно встречающиеся С04+С025+-регуляторные Т-клетки, так и индуцированные IL-10-продуцирующие аллерген-специфические Trl-клетки снижают активность аллерген-специфических эффекторных клеток, подавляют продукцию IgE и повышают уровень IgG4 и IgA, что способствует уменьшению симптомов аллергического заболевания [Fehérvary Z., 2004, Ling Е.М., 2004, Robinson D.S., 2004, Shi H.-Z., 2005].
В зависимости от поверхностных маркеров и профиля цитокиновой секреции к настоящему времени охарактеризованы различные группы регуляторных клеток, среди которых могут находиться как антиидиотипические, распознающие клоноспецифические детерминанты, так и антиэрготипические клетки, распознающие маркеры активации (так называемые эрготопы), например, молекулу CD25, молекулу белка теплового шока 60 [Cohen I.R., 2004, Fehérvary Z.,
2004, Sarantopoulos S., Kronenberg M., 2005, Beisser, S., 2006]. Показано, например, что субпопуляция CD4"CD25 'Foxp3 '-регуляторных клеток содержит в себе как антиидиотипические, так и антиэрготипические клоны [DeMoraes L.V., 2003, Sakaguchi S., 2004, Buenafe A.C., 2004, Hong J., 2006]. Эти данные позволяют предполагать изменения активности регуляторных клеток в результате индукции антиэрготипического ответа, что даст возможность корригировать дисбаланс с
преобладанием ТЬ2-клеток, характерный для атопических заболеваний, и уменьшить клинические проявления аллергии.
Иммунизация, нацеленная на усиление природной антиэрготипической регуляторной сети, впервые была применена в экспериментальных моделях для лечения аутоиммунных заболеваний [Lohse A.W., 1989, 1993, Mimran А., 2004, 2005], при которых было показано снижение антиэрготипического ответа [Hafler D.A., 1985, Mimran А., 2004]. Такое воздействие оказалось успешным. Так, введение антиэрготипических клеток или иммунизация самими эрготопами или полноразмерными последовательностями ДНК, кодирующими эти молекулы, контролировало такие аутоиммунные заболевания, как адьювантный артрит и экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит.
У человека стимуляция антиэрготипического ответа показана путем вакцинации антиген-реактивными Т-клетками при рассеянном склерозе, при котором отмечается его снижение [Hafler D.A., 1985, Correale J., 1997, Stinissen P., 1998, Zang Y.C., 2000]. Также стимуляция антиэрготипического ответа была получена у пациентов, страдающих диабетом I типа, при введении им пептида белка теплового шока 60 (HSP60) [Raz I., 2002, Huurman V.A., 2007].
Идея применения поликлональной Т-клеточной вакцины при атопическом дерматите заключалась в том, чтобы индуцировать именно антиэрготипический ответ, поскольку выявить антигенную специфичность клеток, участвующих в патогенезе АД, у большинства пациентов не удается. Феномен индукции антиэрготипического ответа путем введения поликлонально активированных Т-клегок ранее был показан только в эксперименте, поэтому не изучены возможные изменения клинических и иммунологических параметров больных в результате такой терапии.
Цель исследования. Изучить изменения клинических и иммунологических параметров пациентов с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита в процессе терапии активированными аутологичными Т-лимфоцитами. Задачи исследования:
1. Сравнить клинические проявления аллергической и неаллергической формы атопического дерматита, используя шкалу для оценки тяжести клинических симптомов АД (SCORAD) и индекс качества жизни (DLQI).
2. Исследовать особенности количественных и функциональных характеристик иммунной системы больных с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита, включая оценку числа теломерных повторов ДНК иммунокомпетентных клеток, их линейные и активационные маркеры, продукцию регуляторных и эффекторных молекул (цитокинов, Н202 и иммуноглобулинов).
3. Исследовать фенотипические характеристики in vitro активированных аутологичных Т-клеток больных атопическим дерматитом, предназначенных для введения с целью иммунотерапии.
4. Изучить переносимость и клиническую эффективность применения активированных аутологичных Т-лимфоцитов в лечении больных с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита.
5. В динамике оценить влияние иммунотерапии активированными аутологичными Т-лимфоцитами на количественные и функциональные параметры иммунной системы больных с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита.
Научная новизна.
В результате выполнения работы были получены новые данные, характеризующие больных с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита с точки зрения их общих и особенных свойств, клинических проявлений и иммунной системы.
Впервые показано, что при обеих формах заболевания наблюдаются изменения активности фагоцитоза, снижение количества КК-клеток, уменьшение числа теломерных повторов ДНК в субпопуляции СБ4+ Т-лимфоцитов, повышение продукции лимфоцитами факторов ингибиции миграции в реакции ГЗТ и активация гуморального звена иммунной системы.
Обнаружено, что для аллергической формы атопического дерматита характерна большая тяжесть заболевания и большее число нарушений в различных звеньях иммунной системы, включая увеличение числа -клеток и нарушение факторов врожденного иммунитета, обусловленные снижением продукции перекиси водорода моноцитами. В патогенезе этой формы большую роль играют реакции гиперчувствительности как I, так и IV типа. Установлена важная роль в развитии этой формы заболевания популяции С08+-лимфоцитов.
Впервые в лечении больных атопическим дерматитом для Т-клеточной вакцинации (ТКВ) были использованы поликлонально активированные аутологичные Т-лимфоциты. Обнаружено, что при аллергической форме АД положительная клиническая динамика от ТКВ сопровождается повышением числа С08+-клеток, снижением уровня ^Е и числа В-лимфоцитов периферической крови. При неаллергической форме нарастает число С08"С025+ Т-клеток, уменьшается количество В-лимфоцитов и повышается активность лимфоцитов в продукции факторов ингибиции миграции в реакции ГЗТ. При обеих формах заболевания в результате ТКВ восстанавливается фагоцитарная функция клеток моноцитарно-макрофагального звена иммунной системы.
Теоретическая и практическая значимость работы.
Полученные данные демонстрируют различия большего числа иммунных параметров пациентов с АД, чем только нормальное или повышенное содержание ^Е в сыворотке, причем более выраженные изменения иммунной системы при аллергической форме АД могут обусловливать и ее более тяжелое течение.
Нами разработан метод лечения атопического дерматита, основанный на индукции антиэрготипического ответа путем введения поликлонально активированных аутологичных Т-клеток. Показана безопасность и высокая клиническая эффективность такого подхода в лечении пациентов, как с аллергической, так и с неаллергической формой атопического дерматита. Были выявлены изменения иммунологических параметров больных с обеими формами заболевания в процессе такого воздействия.
Полученные данные позволяют рекомендовать внедрение иммунотерапии активированными аутологичными Т-лимфоцитами в клиническую практику, что позволит расширить возможности патогенетической терапии аллергических заболеваний, повысить ее эффективность и улучшить качество жизни таких больных.
Основные положения, выносимые на защиту
1. Более тяжелое течение аллергической формы атопического дерматита, в отличие от неаллергической, обусловлено как активацией гуморальных эффекторных функций и дисбалансом в моноцитарно-макрофагальном звене иммунной системы, характерных для обеих форм заболевания, так и участием в патогенезе заболевания реакций гиперчувствительности I и IV типов, активным участием CD4+- и С08+-субпопуляций Т-лимфоцитов и более глубокими нарушениями факторов врожденного иммунитета.
2. Использование активированных аутологичных Т-лимфоцитов в терапии атопического дерматита коррегирует дисбаланс в иммунной системе: подавляет гуморальный, активирует клеточный иммунный ответ и функции монофитарно-макрофагального звена. При аллергической форме заболевания положительная клиническая динамика сопровождается повышением числа С08+-клеток и прогрессивным снижением уровня общего IgE, при неаллергической - нарастанием числа CD8+CD25+ Т-клеток.
3. Использование активированных аутологичных Т-лимфоцитов в терапии больных атопическим дерматитом является безопасным и клинически высокоэффективным как при аллергической, так и при неаллергической форме заболевания и позволяет рекомендовать его в качестве метода патогенетической терапии.
Апробация результатов. Материалы диссертации были доложены и обсуждены на научно-практических конференциях «Дни иммунологии в Сибири» (г. Омск, 2007, г. Томск, 2008), на Объединенном иммунологическом форуме (г. Санкт-Петербург, 2008), на научном семинаре НИИ КИ СО РАМН (г. Новосибирск, 2009). Работа выполнена на базе лаборатории клинической иммунопатологии отдела клинической иммунологии и отделения аллергологии Клиники иммунопатологии НИИ КИ СО РАМН.
Публикации. По материалам исследования опубликовано 9 печатных работ, из них 6 статей, в том числе 1 статья в изданиях, рекомендованных ВАК для публикации результатов работ соискателей учёной степени кандидата наук, и 1 патент.
Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, трех глав собственных исследований, обсуждения полученных результатов и выводов. Материал изложен на 115 страницах машинописного текста, включающего 23 таблицы. Прилагаемая библиография содержит ссылки на 253 литературных источника, в том числе 242 иностранных.
Автор выражает искреннюю признательность участникам совместных исследований - научному руководителю, зав. лаб. клинической иммунопатологии д.м.н., профессору B.C. Кожевникову и всем сотрудникам лаборатории, зав. отд. аллергологии В.М. Непомнящих и всем врачам отделения.
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ
Материалы н методы исследования Объект исследования. В исследование было включено 42 пациента, страдающих АД (15 мужчин и 27 женщин) в возрасте от 17 до 49 лет (средний возраст 22,5±1,13 года), находящихся на лечении в аллергологическом отделении НИИ КИ СО РАМН в период с апреля 2006 по февраль 2008 года. В зависимости от уровня 1§Е пациенты были разделены на 2 группы. У больных первой группы уровень ^Е находился в пределах нормативных значений, у второй - был повышен. Так аллергическая форма заболевания была выявлена у 74%, неаллергическая - у 26% обследованных нами пациентов. В исследование были включены пациенты с площадью поражения кожи более 10% с умеренными и выраженными клиническими проявлениями заболевания. Характеристика пациентов с АД, включенных в исследование, представлена в таблице 1. Все пациенты получали стандартную терапию в виде мембраностабилизирующих препаратов. При необходимости назначались антигистаминные препараты II поколения и топические глюкокортикостероиды.
Таблица 1
Характеристика обследованных больных_
Показатели Неаллергическая форма АД N=11 (26%) Аллергическая форма АД N=31 (74%)
Возраст (годы) 20±1,1 23±1,4
Длительность заболевания (годы) 20±1,6 22±1,5
Пол:
мужчины 4 13
женщины 7 18
Степень тяжести:
средняя тяжелая 8 3 17 14
Степень выраженности
клинических проявлении:
умеренные 7 16
выраженные 4 15
ЗСОЯАО (баллы) 43±4,6 64±3,5
ОЬС>1 (баллы) 8±1,7 12±1,3
В качестве экспериментального метода лечения у больных АД проводилась иммунотерапия активированными аутологичными Т-лимфоцитами. Протокол клинических исследований «Иммунотерапия с использованием аутологичных активированных Т-клеток в лечении больных атопическим дерматитом» утвержден на ученом совете НИИ КИ СО РАМН №9 от 29.11.05. В группу, получивших клеточную терапию, было включено 29 пациентов (10 мужчин и 19 женщин) в возрасте от 17 до 49 лет (средний возраст 23±1,3 года). Длительность заболевания колебалась от 7 до 48 лет (средняя длительность заболевания 21±1,3 год). Обследуемые больные характеризовались средней (19 человек - 66%) и тяжелой степенью тяжести (10 человек - 34%) заболевания. Значения индекса БСОКАБ исходно составляло 51±4,2 балла, индекс качества жизни (ОЬ(21) был 9,5±1,5 баллов. С неаллергической формой заболевания было 6 пациентов (21%), с аллергической формой - 23 (79%).
После получения информированного согласия, пациентам подкожно вводили активированные аутологичные Т-лимфоциты с кратностью 1 раз в неделю - 4 инъекции, далее 1 раз в месяц, всего 10 инъекций. Протокол обследования и клеточной иммунотерапии соответствовал этическим стандартам и был разрешен Локальным этическим комитетом НИИ КИ СО РАМН.
Оценка состояния пациентов в процессе лечения проводилась по клиническим и лабораторным показателям. Отслеживалось возникновение местных и общих побочных реакций.
Для разных целей из венозной цельной или гепаринизированной крови выделяли стандартными методами лейковзвесь, мононуклеарные клетки и сыворотку. Количество лейкоцитов считали в камере Горяева.
Для поверхностного маркирования шшунокомпетентных клеток использовались моноклональные антитела к CD3, CD4, CD8, CD16, CD19, CD25, CD28, HLA-DR, CD45RO, CD45RA, меченные флюоресцеином изотиоцианатом (FITC), фикоэритрином (РЕ), перидинин хлорофилл протеином (РегСР) и аплофикоцианином (АРС) в количестве, рекомендуемом производителем (Сорбент и МедБиоСпектр, Москва, Россия; BD Biosciences Pharmingen, USA). Процент лимфоцитов определяли с помощью проточного цитометра FACSCalibur (Becton Dickinson, USA) в программе CellQuest (Becton Dickinson, USA), используя параметры прямого (FSC), бокового (SSC) светорассеяния и канала флюоресценции (FL-2).
Для определение внутриклеточных цитокинов в субпопуляцих Т-лимфог/итов МНК периферической крови культивировали в течение 4 часов в присутствии стимулятора РМА (30 нгр/мл), кальциевого ионофора иономицина (1 мкгр/мл) и ингибитора белковой секреции брефелдина А (10мкгр/мл) при 37°С в атмосфере, содержащей 5% COi После окончания культивационного периода производилось поверхностное маркирование клеток моноклональными анти-С04-РегСР или анти-CD8-PerCP антителами. Затем клетки фиксировались 1% раствором параформальдегида, и пермеабилизировались 0,02% раствором Твин-20. Далее производилось внутриклеточное маркирование моноклональными анти-IFN-y-FITC и анти-1Ь-4-РЕ антителами. Фиксация производилась 5% раствором формалина. Относительное количество цитокин-продуцирующих клеток определяли методом трехцветной проточной цитометрии.
Исследование фагоцитоза и продукции перекиси водорода использовался латекс, нагруженный гамма глобулином (Биопрепарат, Санкт-Петербург), меченный FITC. Иммуноцитометрию проводили с помощью проточного цитометра FACSCalibur (Becton Dickinson, USA).
Исследование продукции перекиси водорода фагоцитами проводили в 96-луночных планшетах для иммуноферментного анализа. Стимуляцию продукции перекиси водорода выражали как показатель активации нейтрофилов (ПАН) в пробах с лейкоцитами и показатель активации моноцитов (ПАМ) в пробах с мононуклеарами с помощью ИФА-ридера Multiscan MS (Labsystems, Финляндия). Активность эффекторов ГЗТ оценивали разработанными в лаборатории иммунопатологии НИИКИ СО РАМН методами. Лейковзвесь после образования осадка при 4°С инкубировали с антигенами или митогенами при 37°С с последующим удалением неприлипших клеток и учетом миграции по количеству прилипших клеток в опыте (субоптимальная доза - опыт I, оптимальная доза - опыт 2) и контроле (без антигена или митогена). Отношение количества клеток в опыте I к контролю оценивает ответ лейкоцитов на антиген усилением миграции (индекс
миграции), отношение количества клеток в опыте 2 к контролю - торможение миграции (индекс ингибиции миграции), отношение количества клеток в опыте 1 к таковому в опыте 2 составляет показатель эффекторных функций ГЗТ в ответ на данный стимул (ПЭФ) in vitro [Кожевников B.C., 1990, Лозовой В.П., 1990]. Уровень иммуноглобулиров А, М, G в сыворотке крови определялся на многоканальном спектрофотометре с использованием набора реагентов для определения содержания иммуноглобулинов А, М, G, (ЗАО «НПО СИНТЭКО», Россия) согласно инструкции. Уровень IgE определялся методом ИФА, используя набор реагентов согласно инструкции (ООО «Хема-Медика», Россия). Определение длины теломерных районов ДНК проводили методом Flow-FISH. В качестве клеток внутреннего контроля и стандарта гибридизации были использованы спленоциты мышей линии C57BL/6 (Питомник «Рассвет», г. Томск). Клетки после инкубации с мышиными биотинилированными анти-С04 и анти-С08 антителами (Becton Dickinson, США), отмывали ЗФР-БСА, затем проводили последовательные инкубации со стрептавидином, меченым флуорохромом Су5 и 4
мМ раствором BS (Bis(sulfosuccinimidyl)suberat, Pierce, USA). Для остановки
реакции в суспензию клеток добавляли 1 М Tris в конечной концентрации 20 мМ
реакции, отмывали ЗФР-БСА. Сначала определяли относительную длину
з
теломерных повторов ДНК на клетку, для чего 500x10 лейкоцитов смешивали с таким же количеством спленоцитов мыши и проводили гибридизацию с 300 мкл раствора, состоящего из 70% формамида (Sigma, США), 20мМ Tris (рН=7,1) (Sigma, США) и 1% БСА. Добавляли 0,3 мкг/мл флуоресцин-(СССТАА)з Peptide
Nucleic Acid (PNA) зонд (EUROGENTEC Ltd, Belgium), комплементарный к теломерной последовательности ДНК. Затем клетки переносили в пробирки для цитометрии (Falcon 2058), дважды отмывали 70% формамидом, содержащим 0,1% БСА, 0,1% Tween 20 (Sigma, США) и ЮмМ Tris (рН=7,1), и однократно ЗФР-БСА, содержащим 0,1% Tween 20. Осадок ресуспендировали в 0,5 мл ЗФР-БСА, содержащем 25мкл/мл РНКазы и 2мкл/мл 7-Аминоактиномицина D (7-AAD) (ICN Biomedicals Inc, США). Пробы анализировали на проточном цитофлуориметре FACS Calibur (Becton Dickinson, США). Сигнал флуоресценции теломер определяли как средний уровень флуоресценции клеток, находящихся в G()/G ( фазе
клеточного цикла, вычитанием фоновой аутофлуоресценции. Относительные значения определяли как отношение MFI исследуемого образца к MFI спленоцитов мыши. Оценка абсолютной длины теломерных повторов ДНК на клетку проводилась пересчетом по формуле у = 2042 + 28099*х («у»-абсолютная длина в парах нуклеотидов, «х»-длина теломерных повторов ДНК относительно клеток внутреннего контроля) [Борисов В.И., 2007].
Способ получения активированных аутологичных Т-лимфоцитов. Лейковзвесь, полученную из 200 мл периферической крови собирали, разбавляли забуференным физиологическим раствором с ЭДТА (ЗФР-ЭДТА), содержащим на 100 мл раствора 2 мгтиенама (MSD, Швейцария), 125 мкл гентамицина (KRKA) и 500 мкл FBS (Fetal Bovine Serum, HyClone); центрифугировали в градиенте фиколл-верографин (Sigma, Швеция). Образовавшееся кольцо мононуклеарных клеток собирали и отмывали трижды ЗФР-ЭДТА. Клеточный осадок ресуспендировали в 10 мл полной среды RPMI 1640 (ФГУП ГНЦ ВБ Вектор) (с добавлением 2 мг тиенама, 125 мкл гентамицина и 30 мг L-глутамина (ФГУП ГНЦ ВБ Вектор) на 100 ml среды) и подсчитывали количество клеток в камере Горяева. Полученные МНК садили в культуральные матрасы (NUNC, Италия) из расчета 2 млн клеток на 1 мл
полной среды с 10% FBS и активаторами (1 мкл/мл антиСОЗ антител (НПЦ МсдБиоСпектр) и 50 ед/мл IL-2 (ООО Биотех)). На 5-6 день (по состоянию культуры) заменяли 70% среды на новую с таким же составом. На 10-14 день клетки собирали, после осаждения фасовали 30 млн клеток на 1 мл в криопробирки, содержащие FBS и 10%DMSO (Riedel-deHaën, Германия). Хранили при -80° С. Перед введением к клеткам добавляли 10 мл физиологического раствора, осаждали в течение 5 минут при 1 тыс. об/мин, ресуспендировали в 2 мл физиологического раствора и в таком виде вводили пациентам. Статистические исследования проводили по общепринятым математическим алгоритмам с использованием пакетов программ "Statistica V. 6.0" [Боровиков В.П., 1997].
Результаты исследования н их обсуждение
/. Клинико-иммунологическая характеристика аллергической и
Сравнение тяжести клинических симптомов АД по шкале SCORAD показало, что у больных с аллергической формой АД течение заболевания более тяжелое, чем в оппозитной группе. Качество жизни этих пациентов ниже, но статистически достоверных различий показателя DLQI в зависимости от формы не выявлялось (рис.1), что может быть обусловлено тем, что этот показатель является полностью субъективным и не всегда коррелирует с тяжестью клинических проявлений.
Для выявления изменений в иммунной системе больных, обусловливающих
большую тяжесть клинической симптоматики при аллергической форме АД, мы изучали состояние эффекторных звеньев иммунитета. При обеих формах АД была выявлена активация гуморального звена иммунной системы, характеризующаяся увеличением количества CD19+- лимфоцитов и повышением уровней IgA и IgG (рис.2). Гиперактивация B-системы иммунитета характерна для всех аллергических заболеваний [Akdis С.А., 1999, Moreno Gimenez J.С., 2000], ее вероятной причиной при АД может являться IL-13, высокие уровни которого и увеличение чувствительности к которому B-клеток показаны у всех больных АД [Aman M.J., 1996].
При обеих формах заболевания было выявлено снижение индекса ингибиции миграции в реакции ГЗТ, а при аллергической форме снижался также индекс миграции гранулоцитов и моноцитов в ответ на ФГА и повышался ПЭФ (рис.2). Полученные результаты согласуются с работами других авторов, показавшими повышение MIF при аллергических заболеваниях, корреляцию его экспрессии с активностью ГЗТ и клеточного иммунитета [Bernhagen J., 1994, Rocklin R.E., 1970], его важную роль в активации и продукции цитокинов лейкоцитами и уровне сывороточного IgE [Rossi, A. G., 1998, Wang В., 2006]. Описаны другие белки,
иеаплергической формы АД.
*
Hh
-fcl Ш",ш щж. ш «р
т
ЪСОПЮ М.01
□ аллергическая форма АД
□ неаллергическая форма АД
Рис.1. Оценка выраженности клинических проявлений
заболевания при аллергической (п = 31) и неаллергической (п = II) форме АД. Примечание: * - р<0,01.
CD4+ (%) ИРИ CD19+ (%) CD16+ (%) lg А (г/л) G (г/я)
□ доноры □ аллергическая форма АД 0 неаллергическая форма АД
Рис.2. Характеристика параметров иммунной системы доноров и больных с аллергической (п = 31) и неаллергической (п = 11) формой АД. Примечание: * - р<0,05 в сравнении с донорами, ** - р<0,01 в сравнении с донорами, *** - р<0,001 в сравнении с донорами, # - р<0,05 в сравнении между группами больных АД.
обладающие свойствами MIF, среди них sCD23, экспрессирующийся В-клетками и моноцитами под влиянием 1L-4 и IL-13 [Bieber Т., 1991, Flores-Romo L., 1989]. Предположительно, более низкий ИММ и, следовательно, более высокая продукция факторов ингибиции миграции при аллергической форме АД обусловлены именно этими механизмами. Следовательно, в патогенезе аллергической, в отличие от неаллергической формы АД, реакции ГЗТ играют большую роль. Однако, одним из основных механизмов развития этой формы АД, вероятно, можно считать гиперчувствительность 1 типа. В пользу этого свидетельствуют повышение числа С04+-лимфоцитов и, соответственно, ИРИ (рис.2), а также снижение Тс1 клеток (рис.3) на фоне значительно повышенного уровня IgE при этой форме АД по сравнению с оппозитной группой.
JL
□ доноры
□ аллергическая форма АД
а н еал/i ергическая форма АД
□доноры
□ аллергическая форма АД
□ неаллергическая форма АД
CD8+IFNV*
СГ>8+СП45(?0+
C.nR+nD4ñRA+
Рис.3. Продукция IFNy С08+-клетками доноров (п=51) и больных аллергической (п=28) и неаллергической (п=6) формой АД.
Рис.4. Число наивных клеток и клеток памяти в субпопуляциях Т-лимфоцитов доноров (11=41) и больных с аллергической (п=13) и неаллергической (п=4) формой АД. Примечание: * - р<0,05 в сравнении с донорами; ** - р<0,01 в сравнении с донорами; # - р<0,05 в сравнении между группами больных АД.
При аллергической форме заболевания было выявлено снижение количества CD8+CD45RO+-клeтoк по сравнению с донорами (рис.4), происходящее, вероятно.
за счет усиления Fas-зависимого активационного апоптоза CLA+CD45RO+ Т-клеток при аллергической в отличие от неаллергической формы АД, показанное исследованиями Akdis М. с соавт. Апоптоз CLA CD45RO Т -клеток был более выражен в субпопуляции Т-клеток, продуцирующих цитокины именно Т1-профиля, что, вероятно, имеет значение для переключения ответа в сторону продукции цитокинов Т2-профиля [Akdis М., 1997, Akdis М., 2003].
Результаты проведенных исследований демонстрируют увеличение числа CD8+CD45RA+-KneTOK при аллергической форме АД, в отличие от неаллергической (рис.4), кроме того, показано уменьшение числа теломерных повторов ДНК на клетку в субпопуляции С08+-лимфоцитов (табл.2), свидетельствующее о более активной их пролиферации при аллергической форме АД в отличие от неаллергической. Полученные данные отражают активное участие субпопуляции С08+-лимфоцитов в патогенезе этой формы. Ранее было показано уменьшение числа теломерных повторов ДНК на клетку в CD4+-h С08+-субпопуляции Т-лимфоцитов [Wu К., 2000, Борисов В.П., 2007] и повышение уровня активности теломеразы при АД [Weng N.. 1996], однако исследования при каждой форме заболевания проведены не были.
Повышение числа С08+-клеток, экспрессирующих костимуляторную молекулу CD28 только при аллергической форме заболевания, по сравнению с донорами (рис.5), выявленное в нашем исследовании, отражает реакции гиперчувствительности I типа, т.к. взаимодействие рецептора CD28 Т-клеток и молекулы В7-2 на B-лимфоцитах и клетках Лангерганса является вспомогательной стимуляцией при распознавании МНС антигена для активации Th2 [Hofer М., 1998].
Множественные изменения различных показателей активности С08+-клеток указывают на значимость этих клеток в патогенезе аллергической формы АД наравне с СЭ4+-лимфоцитами.
Также при аллергической форме АД по сравнению с донорами отмечалось повышение числа CD4+CD25+briBhl -клеток (рис.5). Эти результаты согласуются с данными, описанными другими авторами [Ou L-S., 1991, Донецкова А.Д., 2008], которые, однако, не проводили сравнение численности этих клеток при разных формах АД. Но было показано, что супрессорная активность этих клеток при АД снижена, что свидетельствует о том, что в составе данной популяции находятся преимущественно
активированные, нежели регуляторные (Treg) клетки [Ou L-S., 1991, Донецкова А.Д., 2008].
При оценке системы врожденного иммунитета было выявлено снижение числа CD 16 -лимфоцитов (рис.2), фагоцитирующей активности гранулоцитов и моноцитов и повышение продукции перекиси водорода нейтрофилами в обеих
I
□ доноры
. йаллергическая форма АД
□ неалл ергическая форма АД
CD4+CD25+bright CD8+CD28-»
Рис.5. Экспрессия молекул CD25 и CD28 на Т-клетках доноров (п=51) и больных с аллергической (п=28) и неаллергической (п=6) формой АД. Примечание: ** - р<0,01 в сравнении с донорами.
группах больных АД по сравнению с донорами. Продукция перекиси водорода моноцитами была снижена, но достоверные различия по сравнению с донорскими значениями наблюдались только при аллергической форме заболевания при отсутствии различий между группами (табл.3). Следовательно, при обеих формах АД отмечается неполноценность системы врожденного иммунитета.
Таблица 2
Результаты сравнения числа теломерных повторов ДНК на клетку в СБ4+ и С08+ Т-лимфоцитах периферической крови доноров и больных с аллергической и
неаллергической формой АД
Показатели Доноры (п = 26) формы АД
аллергическая (п = 20) неаллергическая (п = 6) Рз-4
CD4 (пар нуклеотидов) 8576,021108,52 7645,58+458,86" 7491,38+346,66* >0,05
CD8 (пар нуклеотидов) 7846,96+121,08 7335,48+477,09" 7644,79+357,14 >0,05
- Ри < 0,05; - Рц < 0,01 - между донорами и больными АД
Таблица 3
Характеристика активности клеточных эффекторных функций доноров и _больных с аллергической и неаллергической формой АД_
Показатели Доноры (п= 120) формы АД
аллергическая (п = 31) неаллергическая Сп = 11) Рз-i
Фагоцитоз (Гр) 82±1,10 63+2,97"" 64+2,90*" >0,05
Фагоцитоз (Мн) 68±0,95 49+2,91""" 58+2,49"" >0,05
ПАМ 2,5±0,13 1,96+0,08"" 2+0,19 >0,05
ПАН 2,5±0,22 5,74+0,51"" 5,6+0,76"" >0,05
- Ри <0,001 - между донорами и больными АД
Таким образом, более тяжелое течение аллергической формы атопического дерматита, в отличие от неаллергической, обусловлено как активацией гуморальных эффекторных функций и дисбалансом в моноцитарно-макрофагальном звене иммунной системы, характерных для обеих форм заболевания, так и участием в патогенезе заболевания реакций гиперчувствительности I и IV типов, активным участием CD4+- и CD8+-субпопуляций Т-лимфоцитов и более глубокими нарушениями факторов врожденного иммунитета. Следовательно, к изучению механизмов развития АД необходимо подходить дифференцировано в зависимости от формы.
2. Характеристика активированных аутологичных Т-клеток, предназначенных для введения с целью иммунокоррекции.
После 10-дневного культивирования со стимуляторами, мы исследовали активированные клетки. В полученной ТКВ, по сравнению с нестимулированными клетками, выявлялось увеличение числа CD8+- и снижение С04+-лимфоцитов, снижение «дважды отрицательных» Т-клеток (рис.6). Определялось значительное увеличение экспрессии маркеров активации, CD25 и DR, на CD4 - и CD8 -лимфоцитах, более выраженное в субпопуляции С08+-клеток. Количество CD4 -клеток с высокой экспрессией молекулы CD25 снижалось. В результате активации достоверно снижалась экспрессия костимуляторной молекулы CD28 на CD4 -лимфоцитах активированных клеток (табл.4).
CU4+
Рис. 6. Характеристика субпопуляций Т-клеток больных АД (п=17) до (а) и после (б) 10-дневной стимуляции (% из СОЗ).
Таблица 4
Характеристика экспрессии маркеров активации и костимуляции на Т-клетках _больных АД после 10-дневной стимуляции_
Показатели Клетки периферической крови пациентов (п = 17) Клетки пациентов после стимуляции (ч=17)
CD4+CD25+ 17,50±1,48 34,67±2,63***
CD8+CD25+ 2,15±0,27 46,49±3,27***
CD4+CD25+ briglit 2,99±0,45 0,76±0,33*
CD4+DR+ 5,69±1,16 12,43±2,63***
CD8+DR+ 3,59±0,45 20,92±3,90***
CD4+CD28+ 55,15±1,63 37,45±4,49*
CD8+CD28+ 29,17±1,25 28,19±4,09
' - Ри < 0,05; "* - Ри <0,001
Таким образом, для индукции антиэрготипического ответа у больных АД была получена ТКВ, состоящая из активированных С04+- и С08+-лимфоцитов с преобладанием последних.
3. Динамика клинических и иммунологических показателей у больных АД на фоне терапии активированными аутологичными Т-ламфоцитами.
В процессе ТКВ возникновение побочных реакций при обеих формах заболевания было отмечено с одинаковой частотой. У 5 пациентов наблюдались местные побочные реакции в виде гиперемии, припухлости, болезненности, образования волдыря, у 11 больных - системные, в виде обострения основного заболевания, кратковременного субфебрилитета или астенического синдрома. Эти реакции возникали, как правило, на 2, 3 инъекции и быстро купировались назначением антигистаминных препаратов и, при необходимости, топических глюкокортикостероидов.
Сравнение эффективности ТКВ при обеих формах заболевания показало, что эффективность терапии у пациентов с неаллергической формой была выше, чем в оппозитной группе.
Таблица 5
Клиническая эффективность ТКВ при аллергической и неаллергической __форме АД_
Клиническая эффективность формы АД
аллергическая (п = 23) неаллергическая (ч = 6)
Более 85% 11 пациентов (47,83%) 4 пациента (66,7%)
50-85% 7 пациентов (30,43%) 2 пациента (33,3%)
Менее 50% 3 пациента (13,04%) -
Отсутствует 2 пациента (8,7%) -
Исходно через 1 через 6 мес. мес.
Исходно через 1 через 6 мес. мес.
-•-SCORAD—■— DLQI -SCORAD—•— DLQI
Рис. 7. Динамика индексов SCORAD и DLQI у пациентов с аллергической (а; п=23) и неаплергической (б; п=6) формой АД в процессе терапии активированными аутологичными Т-лимфоцитами.
Так у больных с неаллергической формой АД в 100% случаев отмечен положительный эффект от лечения, характеризующийся уменьшением клинических симптомов заболевания более, чем на 50%. При аллергической форме положительный клинический эффект наблюдался также в большом проценте случаев, более 78%, однако у 2 пациентов положительная клиническая динамика отсутствовала (табл.5). При этом достоверное уменьшение симптомов заболевания при неаллергической форме АД отмечено только через 6 месяцев терапии. В то время как при аллергической форме уже через месяц от начала ТКВ индекс SCORAD уменьшился в 3,5 раза, качество жизни улучшилось вдвое (рис.7).
Учитывая различие патогенетических механизмов развития аллергической и неаллергической формы АД, можно предположить, что воздействие активированных аутологичных Т-лимфоцитов на иммунную систему будет различаться при разных формах заболевания. Эти предположения подтвердились.
При исследовании динамики экспрессии молекул CD25 и DR мы не выявили изменения этих показателей при аллергической форме. Все изменения относились лишь к группе больных с неаллергической формой. Выявленное снижение числа CD4 CD25" Т-клеток, начиная с третьей недели ТКВ и сохраняющееся весь период лечения у больных с неаллергической формой АД, вероятно, отражает повышение числа клеток в субпопуляции CD4+CD25+, заметное также с третьей недели лечения, однако достоверное повышение последних отмечено только через 5 месяцев терапии (табл.6).
Таблица 6
Изменения экспрессии маркеров активации на CD4+ и CD8+ Т-клетках в процессе
ТКВ при неаллергической форме АД по сравнению с исходным уровнем (п=6)
Показа тели До ТКВ Через 1 нед. Через 2 нед. Через 3 нед. Через 1 мес. Через 2 мес. Через 3 мес. Через 4 мес. Через 5 мес. Через 6 мес.
CD4+ CD25" 48± 1,3 49,5± 5,66 38,2± 3,09" 43,9± 4,28 37,4± 3,48" 39± 2,62" 34,3± 1,85* 42,2± 2,61 35,8± 2,85* 38± 3,41"
CD4+ CD25+ 14, 9± 0,68 12± 1,87 18,2± 1,83 19,4± 1,89 19,5± 2,54 18,8± 1,61 20,1± 2,25 18,6± 2,31 21,3± 2,04* 20,3± 2,44
CD4+ CD25+br 1,26± 0,37 1,87± 0,33 1,5± 0,25 1,77± 0,29 3,27± 0,72 2,56± 0,36 2,29± 0,25 2,34± 0,45 1,44± 0,39 1,4± 0,45
CD8+ CD25" 36± 0,65 34,8± 5,96 42,5± 4,16 32,3± 3,25 36,6± 3,92 39,1± 3,69 41,3± 4,25 36± 3,48 37,4± 3,65 37± 3,63
CD8+ CD25+ 1,27± 0,07 3,68± 0,68 3,13± 0,39* 3,01± 0,26 2,68± 0,57* 2,03± 0,48* 3,67± 0,61* 2,34± 0,33* 2,76± 0,43* 3,09± 0,35*
- Ри < 0,05
Кроме того, выявлена прямая зависимость содержания CD4+CD25+ Т-клеток от содержания CD4+CD25+brl!;hl-ioieTOK (через 2 недели (г=0,83, р=0,04) и 5 месяцев (г=0,83, р=0,04) терапии), что является подтверждением нарастания числа именно регуляторных клеток в результате ТКВ при этой форме заболевания. У больных с неаллергической формой АД в процессе ТКВ же через 2 недели после первой инъекции отмечено достоверное увеличение числа С08+С025+-клеток, которое оставалось стабильно повышенным в течение всего лечения (табл.6), что вместе с высокой клинической эффективностью позволяет предполагать, что эти клетки также могут являться регуляторными.
Мы не тестировали субпопуляции CD4+CD25+- и С08+С025+-лимфоцитов на наличие маркеров, присущих регуляторным клеткам, наши предположения базируются на схожести полученных результатов с данными других авторов. Работы, проведенные как на экспериментальных моделях, так и у человека показали, что вакцинация активированными аутологичными Т-клетками или ДНК, кодирующей полноразмерную цепь CD25, приводила к индукции как CD4+, так и CD8+ антиэрготипических Т-клеток [Correale J., 1997, Stinissen P., 1998, Zang Y.C., 2000, Mimran A., 2004, Hong J., 2006]. Существуют также публикации, сообщающие о совпадении регуляторных и антиэрготипических Т-клеток [DeMoraes L.V., 2003, Sakaguchi S., 2004, Buenafe A.C., 2004, Baecher-Allan С., 2006]. Кроме того, к настоящему времени, по крайней мере, в двух исследованиях показано сходство С08+С025+-клеток с С04+С025+-регуляторпыми клетками [Cosmi L., 2003, Bienvenu В., 2005].
Таким образом, нашими исследованиями показано, что в процессе ТКВ у пациентов с неаллергической формой АД нарастает число CD4 CD25 и CD8+CD25+ Т-клеток, относящихся, вероятно, к регуляторным клеткам, которые определяют выраженную клиническую эффективность.
им иим ПЭФ
□ исходно Пчерез 1 мес. Очерезбмес.
1200 1000 800
Те
1дЕ(МЕ/мл) □ исходное через 1 мес. Ечерезбмес.
Рис. 8. Изменение реакции ГЗТ у больных с Рис. 9. Динамика уровня общего ^Е неаллергической формой АД (п=6) в сыворотки крови у пациентов с процессе ТКВ. Примечание: * - р<0,05. аллергической формой АД (п=23) в
процессе ТКВ. Примечание: * - р<0,05.
При неаллергической форме АД в результате ТКВ выявлено повышение активности лимфоцитов в продукции факторов ингибиции миграции, выражающееся в снижении индекса ингибиции миграции в реакции ГЗТ. Эти изменения наблюдались уже через месяц от начала терапии и сохранялись до конца
лечения (рис.8). Ранее индукция реакции ГЗТ в результате антиэрготипического ответа ранее была показана в эксперименте [Lohse A.W., 1989, Ильина H.A., 2007].
Изменения в реакции ГЗТ при неаллергической форме АД в совокупности с увеличением числа клеток, предположительно являющихся антиэрготипическими регуляторными клетками, является отражением эффекторных функций антиэрготипического ответа.
Мы предположили, что одним из механизмов эффективности при аллергической форме заболевания является переключение цитокинового профиля с Th2- на Thl-тип, что подтверждается выраженным прогрессивным снижением уровня общего IgE в процессе ТКВ (рис.9). Кроме того, нами была показана прямая зависимость содержания IgE от количества С04+-лимфоцитов, продуцирующих IL-4 (г=0,78, р=0,04) и обратная - от количества С04+-клеток, продуцирующих IFN-y (г=-0,78, р=0,04) у пациентов, получающих ТКВ. Известно, что воздействие цитокинов Thl-типа на B-клетки приводит к снижению числа активированных CD23+ B-лимфоцитов, несущих низкоаффинный рецептор IgE (FceRII), экспрессия которого зависит от IL-4 [Lucey D.R., 1999, Leung D.Y.M., 2004]. Следовательно, уменьшение числа CD19+ B-клеток в процессе ТКВ при аллергической форме заболевания (рис.10), возможно, происходит за счет уменьшения числа активированных CD23+ B-лимфоцитов. Выраженное снижение числа СD19" В-клеток при неаллергической форме заболевания (рис. 10) могло быть обусловлено иными механизмами. Ранее было показано подавление антителопродукции в процессе индукции антиэрготипического ответа у животных [DeMoraes L.V., 2003]. Возможным механизмом подавления реакций гуморального иммунного ответа при этом может являться способность антиэрготипических регуляторных клеток ингибировать хелперную активность Т-клеток, подавляя презентацию антигенов или пролиферацию Th-клеток. Значительное снижение числа B-клеток при неаллергической форме заболевания, вероятно, обусловлено тем, что только при этой форме в результате ТКВ происходит увеличение количества регуляторных клеток, способных подавлять гуморальный иммунный ответ.
if
20 15 10 5
0
ГЬ
т
CDS+ (%) ИРИ CD19+ (%)
CD19+ (%)
Оисходно □ через 1 мес. Ичерезбмес.
Рис. 10. Динамика субпопуляционного состава иммунокомпетентных клеток больных с аллергической (а; п=23) и неаллергической (б; п=6) формой АД в процессе ТКВ. Примечание: * - р<0,05.
Увеличение количества клеток в субпопуляции СЭ8+ при аллергической форме АД в процессе ТКВ (рис.10) свидетельствует в пользу активного участия этой субпопуляции клеток в антиэрготипическом ответе. Работами Соггеа1е I. с соавт. продемонстрировано появление в ответ на активированные Т-клетки
антиэрготипических С08+-клеток, обладающих цитолитической активностью против активированных аутологичных С04+-клеток [Correale J., 1997]. Сопоставляя полученные результаты с этими данными, мы предположили, что среди выявленных С08+-клеток присутствуют антиэрготипические, обладающие цитолитической активностью против активированных С04+-клеток, активно участвующих в патогенезе АД. Возможно, эти клетки подавляют реакции гиперчувствительности I типа, играющие важную роль в иммунопатогенезе этой формы заболевания, и переключают тип иммунного реагирования в сторону продукции цитокинов Thl-профиля, способствуя снижению уровня IgE, что и было получено в нашем исследовании (рис.9)
Выявленное увеличение фагоцитарной функции моноцитов, сниженной до лечения, при аллергической форме АД в процессе ТКВ (рис.10), свидетельствует об активации этих клеток. Такие клетки, мигрируя в кожные покровы и, превращаясь в тканевые макрофаги, обладающие значительным фагоцитарным
Фагоцитоз (Гр) Фагоцитоз (Мн} исходно Очерез1нес. Пчерез бмес.
Фагоцитоз (Гр) Фагоцитоз (Мн) исходно Очерез1мес. Шчерезбмес.
Рис. 11. Изменение клеточных эффекторных функций у больных с аллергической (а; п=23) и неаллергической формой АД (б; п=6) в процессе ТКВ. Примечание: * - р<0,05. потенциалом, могут принимать активное участие в очищении кожи от патогенной микрофлоры (в частности, Staphylococcus aureus), имеющей большое значение в поддержании и усугублении аллергического воспаления. У больных с неаллергической формой заболевания в результате ТКВ выявлено увеличение фагоцитоза гранулоцитами (рис.11), клетками, также принимающими активное участие в защите кожи от инфекции.
Таким образом, при аллергической форме АД положительная клиническая динамика от ТКВ сопровождалась повышением числа С08+-клеток, снижением уровня IgE и числа В-лимфоцитов периферической крови, усилением экспрессии молекул HLA-DR на моноцитах и повышением ими фагоцитоза. При неаллергической форме заболевания положительная клиническая динамика сопровождалась нарастанием числа CD8+CD25+ Т-клеток, уменьшением количества В-клеток. повышением активности лимфоцитов в продукции факторов ингибиции миграции в реакции ГЗТ и повышением фагоцитоза гранулоцитами.
Практические рекомендации.
Рекомендуется включение иммунотерапии аутологичными
активированными Т-лимфоцитами в стандартную схему лечения пациентов, как с аллергической, так и с неаллергической формой атопического дерматита.
выводы
1. При аллергической и неаллергической форме АД выявлен ряд общих изменений параметров иммунной системы, к которым относятся: а) активация гуморального звена иммунной системы, характеризующаяся повышением числа В-лимфоцитов и увеличением продукции IgA и IgG; б) нарушения в клеточном звене, характеризующиеся уменьшением числа теломерных повторов ДНК CD4+ Т-лимфоцитов, повышением продукции факторов ингибиции миграции в реакции ГЗТ; в) уменьшение количества NK-клеток; г) снижение фагоцитоза гранулоцитами и моноцитами и повышение продукции перекиси водорода нейтрофилами.
2. Аллергической форме АД присуще более тяжелое течение и более глубокие нарушения функций иммунной системы, которые, в отличие от неаллергической формы, проявляются развитием гиперчувствительности как немедленного типа, выражающейся гиперпродукцией IgE и снижением количества клеток, продуцирующих IFNy, так и замедленного типа, которая проявляется снижением индексов миграции, ингибиции миграции и повышением ПЭФ.
3. При аллергической форме АД выявляется больше изменений характеристик Т-лимфоцитов, включая уменьшение числа теломерных повторов ДНК С08+-клеток, повышение количества С08+-наивных клеток, увеличение экспрессии костимуляторной молекулы CD28 на С08+-лимфоцитах, уменьшение количества С08+-клеток памяти, а также увеличение числа CD4+CD25+briehl -клеток, что свидетельствует о более масштабном участии Т-звена в патогенезе данной формы АД.
4. При аллергической форме АД положительная клиническая динамика от ТКВ сопровождалась повышением фагоцитоза моноцитами, повышением числа С08+-клеток, снижением уровня IgE и числа В-лимфоцитов периферической крови.
5. При неаллергической форме заболевания положительная клиническая динамика сопровождалась нарастанием числа CD8+CD25+ Т-клеток, повышением активности лимфоцитов в продукции факторов ингибиции миграции в реакции ГЗТ, уменьшением количества В-лимфоцитов и повышением фагоцитоза гранулоцитами.
6. Аллергическая и неаллергическая формы АД имеют как общие, так и различные механизмы развития болезни, обусловливающие разную выраженность клинических проявлений. Использование активированных аутологичных Т-лимфоцитов в качестве патогенетического метода лечения является безопасным и эффективным при обеих формах АД.
СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ
1. Различия иммунологических параметров пациентов с атоническим дерматитом в зависимости от степени тяжести заболевания / H.A. Баровская, B.C. Кожевников, Н.В. Пронкина, И.В. Шишкова, О.Ю. Королькова, В.М. Непомнящих, М.И. Леонова, Д.В. Демина // Российский аллергологический журнал. 2007. №3, приложение 1. С.131-132.
2. Эффективность иммунотерапии с использованием активированных аутологичных Т-лимфоцитов в лечении больных атопическим дерматитом и псориазом / H.A. Баровская, О.Ю. Королькова, М.И. Леонова, Д.В. Демина, В.М. Непомнящих, B.C. Кожевников // Омский научный вестник. 2007. №3 (61). С.345-348.
3. Сокращение теломерных районов ДНК в субпопуляциях CD4+ и CD8+-лимфоцитов при заболеваниях атопической природы / В.И. Борисов, H.A. Баровская, С.А. Демаков, В.М. Непомнящих, М.И. Леонова, Д.В. Демина, B.C. Кожевников // Омский научный вестник. 2007. №3 (61). С.172-174.
4. Клипико-иммунологические показатели эффективности иммунотерапии с использованием активированных аутологичных Т-лимфоцитов у больных атопическим дерматитом / H.A. Баровская, О.Ю. Королькова, Н.В. Пронкина, И.В. Шишкова, М.И. Леонова, Д.В. Демина, В.М. Непомнящих, B.C. Кожевников // Актуальные проблемы фундаментальной и клинической иммунологии и аллергологии: материалы VI конференции иммунологов Урала. 2007. С. 111-112.
5. Активированные аутологичные Т-клетки в терапии атопического дерматита/ H.A. Баровская, В.В. Сенюков, О.Ю. Королькова, Н.В. Пронкина, И.В. Шишкова, Е.В. Труфакина, Д.В. Демина, М.И. Леонова, В.М. Непомнящих, B.C. Кожевников // Сибирский медицинский журнал. 2008. №3 (1). С.84.
6. Влияние иммунотерапии с использованием активированных аутологичных Т-лимфоцитов на рецепторные и функциональные характеристики иммунокомпетентных клеток больных атопическим дерматитом / H.A. Баровская, О.Ю. Королькова, Н.В. Пронкина, И.В. Шишкова, М.И. Леонова. Д.В. Демина, В.М. Непомнящих, B.C. Кожевников // Российский иммунологический журнал. 2008. т.2 (11). №2-3. С.210.
7. Способ лечения атопического дерматита / B.C. Кожевников, H.A. Баровская. 0.10. Королькова, В.М. Непомнящих, М.И. Леонова, Д.В. Демина // Патент № 2340348 от 10.12.2008.
8. Иммунологические особенности аллергической и неаллергической формы атопического дерматита / H.A. Шестакова, В.И. Борисов, Н.В. Пронкина, Е.В. Труфакина, И.В. Шишкова, Д.В. Демина, М.И. Леонова, В.М. Непомнящих, B.C. Кожевников // Медицинская иммунология. 2009. т. 11. №6. С.531-540.
9. Изменение параметров иммунной системы в процессе иммунотерапии активированными аутологичными Т-лимфоцитами пациентов с атопическим дерматитом / H.A. Шестакова, В.В. Сенюков, О.Ю. Королькова, Н.В. Пронкина. И.В. Шишкова, Е.В. Труфакина, Д.В. Демина, М.И. Леонова, В.М. Непомнящих, B.C. Кожевников // Клеточные технологии: теоретические й прикладные аспекты.: Сборник научных трудов / Под ред. В.А. Козлова, C.B. Сениикова. Е.Р. Черных, A.A. Останина. Новосибирск: Наука, 2009. С.289-299.
20091
Отпечатано в типографии ООО «ЕвроПресс» 660049, г. Красноярск, ул. Каратанова, 11, тел. 282-281-0 формат 60*84/16, объем 1,5 п.л, тираж 100 экз., заказ № 3048 подписано в печать 24.12.2009г.
2009197220
Оглавление диссертации Шестакова, Наталья Алексеевна :: 2010 :: Новосибирск
Клинико-иммунологические особенности ответа пациентов с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита на введение активированных Т-лимфоцитов
14.03.09 - клиническая иммунология, аллергология
Диссертация на соискание ученой степени кандидата медицинских наук
Научный руководитель: доктор медицинских наук, профессор Кожевников В.С.
Новосибирск
ОГЛАВЛЕНИЕ
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.
ВВЕДЕНИЕ.
ЧАСТЬ I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
Глава 1. Патофизиология АД.
1.1 .Определение.
1.2.Формы АД.
1.3.Иммунный ответ при АД.
1.3.1. Характеристика острой и хронической стадий АД.
1.3.2. Роль кератиноцитов.
1.3.3. Роль антиген-презентирующих клеток.
1.3.4. Роль лейкоцитов.
1.3.5. Роль регуляторных клеток.
Глава 2. Антиэрготипический ответ.
2.1 Эрготопы.
2.2. Клетки-мишени.
2.3. Антиэрготипические Т-клетки.
2.3.1. Антиэрготипический Т-клеточный ответ в неиммунизированном организме.
2.3.2. Антиэрготипический ответ в иммунизированном организме.
2.3.4. Антиэрготипический ответ в результате вакцинации.
2.4. Взаимодействие различных популяций регуляторных клеток.
ЧАСТЬ И. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.
ЧАСТЬ III. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.
Глава 1. Клинико-иммунологическая характеристика аллергической и неаллергической формы АД.
1.1. Общая характеристика клеточного и гуморального звена иммунной системы больных АД.
1.2. Оценка функционального состояния субпопуляций CD4+- и CD8+-клеток у больных АД.
1.3. Оценка функционального состояния клеток моноцитарно-макрофагальной системы у больных АД.
Глава 2. Характеристика активированных аутологичных Т-клеток, предназначенных для введения с целью иммунокоррекции.
Глава 3. Динамика клинических и иммунологических показателей у больных АД на фоне терапии активированными аутологичными Т-лимфоцитами.
3.1. Клиническая эффективность использования активированных аутологичных Т-лимфоцитов в терапии пациентов с АД.
3.2. Общая характеристика изменений в клеточном и гуморальном звене иммунной системы больных АД в процессе ТКВ.
3.3 Оценка изменений функционального состояния субпопуляций С04+ и С08+ Т-лимфоцитов у больных АД в процессе ТКВ.
3.4. Оценка изменений функционального состояния клеток моноцитарно-макрофагальной системы у больных АД в процессе ТКВ.
ОБСУЖДЕНИЕ.
Введение диссертации по теме "Клиническая иммунология, аллергология", Шестакова, Наталья Алексеевна, автореферат
Проблема атопического дерматита является чрезвычайно актуальной в связи с 2-3 кратным увеличением заболеваемости АД в индустриальных странах за последние 30 лет. АД страдают 10-20% детей и 1-3% взрослых [Ben-Gashir М.А., 2004, Leung D.Y.M., 2004]. Многочисленные исследования показали, что АД является полиэтиологичным заболеванием. Клинически заболевание реализуется при наличии генетической предрасположенности по аутосомно-доминантному типу, нарушении барьерной функции кожи, вегетативно-сосудистых, нейроэндокринных нарушений, локальных и системных изменений реакций иммунной ситемы и провоцирующих факторов окружающей среды [Ben-Gashir М.А.,2004, Leung D.Y.M, 2004]. АД является гетерогенным заболеванием. В зависимости от общего уровня IgE сыворотки крови различают аллергическую и неаллергическую форму АД [Novak N., Bieber Т., 2003]. Изучение особенностей иммунологических механизмов развития каждой из форм является актуальной задачей аллергологов и иммунологов.
Стандартные методы лечения аллергических заболеваний, используемые в настоящее время, включают применение системных и топических препаратов, которые подавляют действие медиаторов воспаления. Единственным методом, который видоизменяет характер реагирования организма на аллерген, вмешиваясь в основные патогенетические звенья аллергического процесса, является аллерген-специфическая иммунотерапия и ее модификации [Akdis С.А., 1998, Francis J.N., 2003, Gardner L.M., 2004, Алексеева Л.Г., 2007]. Однако недостаточная эффективность, а подчас и невозможность ее проведения при атопическом дерматите, является основанием для поиска новых направлений системной терапии данного заболевания.
Активное изучение регуляторных клеток при различных патологических состояниях в последнее десятилетие выявило снижение их активности при атопических заболеваниях. В частности показано, что у аллергиков при неизмененном количестве клеток в субпопуляции CD4+CD25+ преобладают не регуляторные, а активированные Т-клетки. Кроме того, в эксперименте было показано, что как естественно встречающиеся С04+СВ25+-регуляторные Т-клетки, так и индуцированные IL-10-продуцирующие аллерген-специфические Tri-клетки снижают активность аллерген-специфических эффекторных клеток, подавляют продукцию IgE и повышают уровень IgG4 и IgA, что способствует уменьшению симптомов аллергического заболевания [Fehiirvary Z., 2004, Ling Е.М., 2004, Robinson D.S., 2004, Shi H.-Z., 2005].
В зависимости от поверхностных маркеров и профиля цитокиновой секреции к настоящему времени охарактеризованы различные группы регуляторных клеток, среди которых могут находиться как антиидиотипические, распознающие клоноспецифические детерминанты, так и антиэрготипические клетки, распознающие маркеры активации (так называемые эрготопы), например, молекулу CD25, молекулу белка теплового шока 60 [Cohen I.R., 2004, Fehiirvary Z., 2004, Sarantopoulos S., Kronenberg M., 2005, Beisser, S., 2006]. Показано, например, что субпопуляция С04+С025+РохрЗ+-регуляторных клеток содержит в себе как антиидиотипические, так и антиэрготипические клоны [DeMoraes L.V., 2003, Sakaguchi S., 2004, Buenafe A.C., 2004, Hong J., 2006]. Эти данные позволяют предполагать изменения активности регуляторных клеток в результате индукции антиэрготипического ответа, что даст возможность корригировать дисбаланс с преобладанием ТЪ2-клеток, характерный для атопических заболеваний, и уменьшить клинические проявления аллергии.
Иммунизация, нацеленная на усиление природной антиэрготипической регуляторной сети, впервые была применена в экспериментальных моделях для лечения аутоиммунных заболеваний [Lohse A.W., 1989, 1993, Mimran А., 2004, 2005], при которых было показано снижение антиэрготипического ответа [Hafler D.A., 1985, Mimran А., 2004]. Такое воздействие оказалось успешным. Так, введение антиэрготипических клеток или иммунизация самими эрготопами или полноразмерными последовательностями ДНК, кодирующими эти молекулы, контролировало такие аутоиммунные заболевания, как адьювантный артрит и экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит.
У человека стимуляция антиэрготипического ответа показана путем вакцинации антиген-реактивными Т-клетками при рассеянном склерозе, при котором отмечается его снижение [Найег Б.А., 1985, Соггеа1е I., 1997, З^ШБзеп Р., 1998, Zang У.С., 2000]. Также стимуляция антиэрготипического ответа была получена у пациентов, страдающих диабетом I типа, при введении им пептида белка теплового шока 60 (ШР60) [Raz I., 2002, Ниигшап У.А., 2007].
Идея применения поликлональной Т-клеточной вакцины при атопическом дерматите заключалась в том, чтобы индуцировать именно антиэрготипический ответ, поскольку выявить антигенную специфичность клеток, участвующих в патогенезе АД, у большинства пациентов не удается. Феномен индукции антиэрготипического ответа путем введения поликлонально активированных Т-клеток ранее был показан только в эксперименте, поэтому не изучены возможные изменения клинических и иммунологических параметров больных в результате такой терапии.
ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ:
Изучить изменения клинических и иммунологических параметров пациентов с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита в процессе терапии активированными аутологичными Т-лимфоцитами.
ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ:
1. Сравнить клинические проявления аллергической и неаллергической формы атопического дерматита, используя шкалу для оценки тяжести клинических симптомов АД (8СОЯАО) и индекс качества жизни (ОЬС)1).
2. Исследовать особенности количественных и функциональных характеристик иммунной системы больных с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита, включая оценку числа теломерных повторов ДНК иммунокомпетентных клеток, их линейные и активационные маркеры, продукцию регуляторных и эффекторных молекул (цитокинов, Н2О2 и иммуноглобулинов).
3. Исследовать фенотипические характеристики in vitro активированных аутологичных Т-клеток больных атопическим дерматитом, предназначенных для введения с целью иммунотерапии.
4. Изучить переносимость и клиническую эффективность применения активированных аутологичных Т-лимфоцитов в лечении больных с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита.
5. В динамике оценить влияние иммунотерапии активированными аутологичными Т-лимфоцитами на количественные и функциональные параметры иммунной системы больных с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита.
НАУЧНАЯ НОВИЗНА;
В результате выполнения работы были получены новые данные, характеризующие больных с аллергической и 'неаллергической формой атопического дерматита с точки зрения их общих и особенных свойств, клинических проявлений и иммунной системы.
Впервые показано, что при обеих формах заболевания наблюдаются изменения активности фагоцитоза, снижение количества NK-клеток, уменьшение числа теломерных повторов ДНК в субпопуляции CD4+ Т-лимфоцитов, повышение продукции лимфоцитами факторов ингибиции миграции в реакции ГЗТ и активация гуморального звена иммунной системы.
Обнаружено, что для аллергической формы атопического дерматита характерна большая тяжесть заболевания и большее число нарушений в различных звеньях иммунной системы, включая увеличение числа CD4+CD25+bright-KneTOK и нарушение факторов врожденного иммунитета, обусловленные снижением продукции перекиси водорода моноцитами. В патогенезе этой формы большую роль играют реакции гиперчувствительности как I, так и IV типа. Установлена важная роль в развитии этой формы заболевания популяции СВ8+-лимфоцитов.
Впервые в лечении больных атопическим дерматитом для Т-клеточной вакцинации (ТКВ) были использованы поликлонально активированные аутологичные Т-лимфоциты. Обнаружено, что при аллергической форме АД положительная клиническая динамика от ТКВ сопровождается повышением числа CD8+-клеток, снижением уровня IgE и числа В-лимфоцитов периферической крови. При неаллергической форме нарастает число CD8 CD25 Т -клеток, уменьшается количество В-лимфоцитов и повышается активность лимфоцитов в продукции факторов ингибиции миграции в реакции ГЗТ. При обеих формах заболевания в результате ТКВ восстанавливается фагоцитарная функция клеток моноцитарно-макрофагального звена иммунной системы.
НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ РАБОТЫ:
Полученные данные демонстрируют различия большего числа иммунных параметров пациентов с АД, чем только нормальное или повышенное содержание IgE в сыворотке, причем более выраженные изменения иммунной системы при аллергической форме АД могут обусловливать и ее более тяжелое течение.
Нами разработан метод лечения атопического дерматита, основанный на индукции антиэрготипического ответа путем введения поликлонально активированных аутологичных Т-клеток. Показана безопасность и высокая клиническая эффективность такого подхода в лечении пациентов, как с аллергической, так и с неаллергической формой атопического дерматита. Были выявлены изменения иммунологических параметров больных с обеими формами заболевания в процессе такого воздействия.
Полученные данные позволяют рекомендовать внедрение иммунотерапии активированными аутологичными Т-лимфоцитами в клиническую практику, что позволит расширить возможности патогенетической терапии аллергических заболеваний, повысить ее эффективность и улучшить качество жизни таких больных.
ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ:
1. Более тяжелое течение аллергической формы атопического дерматита, в отличие от неаллергической, обусловлено как активацией гуморальных эффекторных функций и дисбалансом в моноцитарно-макрофагальном звене иммунной системы, характерных для обеих форм заболевания, так и участием в патогенезе заболевания реакций гиперчувствительности I и IV типов, активным участием СЮ4- и СЕ)8+-субпо1 гуляций Т-лимфоцитов и более глубокими нарушениями факторов врожденного иммунитета.
2. Использование активированных аутологичных Т-лимфоцитов в терапии атопического дерматита коррегирует дисбаланс в иммунной системе: подавляет гуморальный, активирует клеточный иммунный ответ и функции монофитарно-макрофагального звена. При аллергической форме заболевания положительная клиническая динамика сопровождается повышением числа С08+-клеток и прогрессивным снижением уровня общего 1§Е, при неаллергической - нарастанием числа СБ8+СБ25+ Т-клеток.
3. Использование активированных аутологичных Т-лимфоцитов в терапии больных атопическим дерматитом является безопасным и клинически высокоэффективным как при аллергической, так и при неаллергической форме заболевания и позволяет рекомендовать его в качестве метода патогенетической терапии.
ЧАСТЬ I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
Заключение диссертационного исследования на тему "Клинико-иммунологические особенности ответа пациентов с аллергической и неаллергической формой атопического дерматита на введение активированных Т-лимфоцитов"
выводы
1. При аллергической и неаллергической форме АД выявлен ряд общих изменений параметров иммунной системы, к которым относятся: а) активация гуморального звена иммунной системы, характеризующаяся повышением числа В-лимфоцитов и увеличением продукции 1ёА и 1§С; б) нарушения в клеточном звене, характеризующиеся уменьшением числа теломерных повторов ДНК СЭ4+ Т-лимфоцитов, повышением продукции факторов ингибиции миграции в реакции ГЗТ; в) уменьшение количества ЫК-клеток; г) снижение фагоцитоза гранулоцитами и моноцитами и повышение продукции перекиси водорода нейтрофилами.
2. Аллергической форме АД присуще более тяжелое течение и более глубокие нарушения функций иммунной системы, которые, в отличие от неаллергической формы, проявляются развитием гиперчувствительности как немедленного типа, выражающейся гиперпродукцией 1ёЕ и снижением количества клеток, продуцирующих 1Р№/, так и замедленного типа, которая проявляется снижением индексов миграции, ингибиции миграции и повышением ПЭФ.
3. При аллергической форме АД выявляется больше изменений характеристик Т-лимфоцитов, включая уменьшение числа теломерных повторов ДНК С08+-клеток, повышение количества СБ8+-наивных клеток, увеличение экспрессии костимуляторной молекулы С028 на С08+-лимфоцитах, уменьшение количества С08+-клеток памяти, а также увеличение числа С04+СВ25+ЬпёЬ1-клеток, что свидетельствует о более масштабном участии Т-звена в патогенезе данной формы АД.
4. При аллергической форме АД положительная клиническая динамика от ТКВ сопровождалась повышением фагоцитоза моноцитами, повышением числа СБ8+-клеток, снижением уровня и числа В-лимфоцитов периферической крови.
5. При неаллергической форме заболевания положительная клиническая динамика сопровождалась нарастанием числа С08+СЭ25+ Т-клеток, повышением активности лимфоцитов в продукции факторов ингибиции миграции в реакции ГЗТ, уменьшением количества В-лимфоцитов и повышением фагоцитоза гранулоцитами. 6. Аллергическая и неаллергическая формы АД имеют как общие, так и различные механизмы развития болезни, обусловливающие разную выраженность клинических проявлений. Использование активированных аутологичных Т-лимфоцитов в качестве патогенетического метода лечения является безопасным и эффективным при обеих формах АД.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
Рекомендуется включение иммунотерапии аутологичными активированными Т-лимфоцитами в стандартную схему лечения пациентов как с аллергической, так и с неаллергической формой атопического дерматита.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2010 года, Шестакова, Наталья Алексеевна
1. Алексеева Л.Г., Свирщевская Е.В. Новые направления иммунотерапии аллергических заболеваний. // Иммунология.- 2007.-№5.-с. 310-317.
2. Борисов В.И. Укорочение длины теломерных районов ДНК при иммунодефицитных, аллергических и аутоиммунных состояниях. // Автореф. дис. канд. мед. наук. Новосибирск.- 2007.-19 с.
3. Боровиков В.П., Боровиков И.П. STATISTICA Статистический анализ и обработка данных в среде Windows.- M.: Информ.-изд. дом «Филинъ», 1997.- 608 с.
4. Донецкова А.Д., Шарова Н.И., Литвина М.М., Бурменская О.В., Трофимов Д.Ю., Ярцев М.Н., Алексеев Л.П., Ярилин A.A. Регуляторные Т-клетки при аллергии у детей. Медицинская иммунология.- 2008.-№2-3,-с. 159-166.
5. Ильина H.A., Кожевников B.C., Гойман Е.В., Кудаева О.Т., Колесникова О.П. Развитие реакций гиперчувствительности замедленного типа в ответ на введение аутологичных активированных клеток. // Томский научный вестник.-2007.-ЖЗ (61), прил.2.-с. 188-190.
6. Кожевников B.C., Набиуллин P.P., Богидаев C.B., Лозовой В.П. Способ оценки клеточных иммунных реакций in vitro. // AC № 1575711, 1990.
7. Лакин Г.Ф. Биометрия. Москва, «Высшая школа», 1990,- 352 с.
8. Лозовой В.П., Кожевников B.C. Методы оценки клеточных эффекторных функций гиперчувствительности замедленного типа. Методические рекомендации МЗ СССР// Москва, 1990.-11с.
9. Сергеев Ю.В. Иммунные механизмы патогенеза и обоснование дифференцированных подходов к иммунокорригирующему лечению и профилактике атопического дерматита. // Автореф. дисс. докт. мед. наук. М.-1990.
10. Сергеев Ю.В., Новиков Д.К., Караулов A.B., Сергеев А.Ю. Атопический дерматит: гетерогенность клинических форм и разнообразие механизмовпатогенеза. // Иммунопатология, аллергология, инфектология.- 2001.-№3.-С. 61-73.
11. Ярилин А.А., Донецкова А.Д. Естественные регуляторные Т-клетки и фактор FOXP3. // Иммунология.- 2006.-№ З.-С. 176-188.
12. Achiron, A., Lavie, G., Kishner, I., Stern, Y., Sarova-Pinhas, I., Ben-Aharon, Т., Barak, Y., Raz, H., Lavie, M., Barliya, Т., et al. // Clin. Immunol.- 2004/-Vol.l 13.-P.155-160.
13. Akdis C.A., Blesken Т., Akdis M., Wuthrich В., Blaser K. Role of interleukin-10 in specific immunotherapy. //J. Clin. Invest.- 1998.-Vol.l02.-P.98-106.
14. Akdis M., Trautmann A., Klunker S., Daigle I., Kucuksezer U.C., Deglmann W. et al. T helper (Th) 2 predominance in atopic diseases is due to preferential apoptosis of circulating memory/effector Thl cells. // FASEB J.- 2003.-Vol.17.-P. 1026-35.
15. Aman M.J., Tayebi N., Obiri N.I., Puri R.K., Modi W.S., Leonard W.J. cDNA cloning and characterization of the human interleukin 13 receptor alpha chain. //J. Biol. Chem.- 1996.-Vol.271.-P.29265-29270.
16. Amano T., Nishihira J., Miki I. Blokade of macrophage migration inhibitory factor (MIF) prevents the antigen-induced response in murine model of allergic airway inflammation. // Inflamm. res.- 2007.-Vol.56.-P.24-31.
17. Annunziato F., Cosmi L., Liotta F., Lazzeri E., Manetti R., Vanini V. et al. Phenotype, localization, and mechanism of suppression of CD4(+)CD25(+) human thymocytes. // J. Exp. Med.- 2002.-Vol.-196.-P.379-387.
18. Azuma M., Yssel H., Phillips J.H., Spits H., Lanier L.L. Functional expression of B7/BB1 on activated T lymphocytes. // J. Exp. Med.- 1993.-Vol. 177,-P.845-850.
19. Bach J.F. The effect of infections on susceptibility to autoimmune and allergic diseases. N. Engl. J. Med.- 2002.-Vol.347.-P.930-931.
20. Baecher-Allan C., Brown J.A., Freeman G.J., Hafler D.A. CD4+CD25high regulatory cells in human peripheral blood. // J. Immunol.- 2001.-Vol. 167.-P. 1245-53.
21. Baecher-Allan C., Wolf E., Hafler D.A. MHC class II expression identifies functionally distinct human regulatory T cells. // J. Immunol.- 2006.-Vol.176.-P.4622-4631.
22. Beissert S., Schwarz A., Schwarz T. // J. Invest. Dermatol.- 2006.-Vol.126.-P. 15-24.
23. Bellinghausen I., Klostermann B., Knop J., Saloga J. Human CD4+CD25+ T cells derived from the majority of atopic donors are able to supress TH1 and TH2 cytocine production. // J. Allergy. Clin. Immunol.- 2003.-Vol.111.-P.862-868.
24. Ben-Gashir M.A., Seed P.T., Hay R.J. Predictors of atopic dermatitis severity over time. // J. Am Acad. Dermatol.- 2004.-Vol.50.-P. 349-356.
25. Ben-Nun A., Wekerle H., Cohen I.R. Vaccination against autoimmune encephalomyelitis with T-lymphocyte line cells reactiveagainst myelin basic protein. //Nature,- 1981.-Vol.292.-P.60.
26. Bernhagen J. et al. Purification, bioactivity, and secondary structure analysis of mouse and human macrophage migration inhibitory factor (MIF). // Biochemistry.- 1994.-Vol.33(47).-P. 14144-14155.
27. Bieber T., Delespesse G. gamma-interferon promotes the release of IgE-binding factors (soluble CD23) by human epidermal Langerhans cells. // J. Invest. Dermatol.- 1991.-Vol.97.-P.600-603.
28. Bienvenu B., Martin B., Auffray C., Cordier C., Becourt C., Lucas B. Peripheral CD8+CD25+ T lymphocytes from MHC class II-deficient mice exhibit regulatory activity. // J. Immunol.- 2005.-Vol.l75.-P.246-253.
29. Blackburn E.H. Structure and function of telomeres. // Nature.- 1991.-Vol.350.-P.569.
30. Blauvelt A., Hwang S.T., Udey M.C. Allergic and immunologic diseases of the skin. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2003.-Vol.111.-P.560-570.
31. Boguniewicz M., Leung D.Y.M. Atopic dermatitis. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2006.- Vol.117(2).- P.475-480.
32. Bolhaar S.T., Tiemessen M.M., Zuidmeer L. et al. Efficacy of birch-pollen immunotherapy on cross-reactive food allergy confirmed by skin tests and double-blind food challenge. // Clin. Exp. Allergy.- 2004.-Vol.34.-P.761-769.
33. Braun-Fahrlander C., Riedler J., Herz U., Eder W., Waswer M., Grize L. et al. Environmental exposure to endotoxin and its relation to asthma in school-age children. // N. Engl. J. Med.- 2002.-Vol.347.-P.869-877.
34. Breuhahn K., Mann A., Miller G. et al. Epidermal overexpression of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor induces both keratinocyte proliferation and apoptosis. // Cell. Growth. Differ.- 2000.-Vol.ll(2).-P.lll-121.
35. Buenafe A.C., Tsaknaridis L., Spencer L., Hicks K.S., McMahan R.H., Watson L., Culbertson N.E., Latocha D., Wegmann K., Finn T., et al. J. Neurosci. Res.-2004.-Vol.76.-P. 129-140.
36. Butcher E.C., Picker L.J. Lymphocyte homing and homeostasis. // Science.-1996.-Vol.272.-P.60-66.
37. Campbell J.J., Butcher E.C. Chemokines in tissue-specific and microenvironment- specific lymphocyte homing. // Curr. Opin. Immunol.-2000.-Vol. 12.-P.336-341.
38. Cassis L., Aiello S., Noris M. Natural versus adaptive regulatory T cells. Contrib. //NefroL- 2005.-Vol.l46.P.121-131.
39. Cavani A., Ottaviani C., Nasorri F. et al. Immunoregulation of hapten and drug induced immune reactions. // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol.- 2003.-Vol.3.-P.243-247.
40. Chatila T.A., Blaeser F., Ho N., Lederman H.M., Voulgaropoulos C., Helms C. et al. JM2, encoding a fork head-related protein, is mutated in X-linkedautoimmunity-allergic disregulation syndrome. // J.Clin.Invest.- 2000.-Vol.l06.-P75-81.
41. Chen W., Jin W., Hardegen N. et al. Conversion of peripheral CD4+CD25" naive T cells to CD4+CD25+ regulatory T cells by TGF-J3 induction of transcription factor Fox P3. // J. Exp. Med.- 2003.-Vol.l98.-P.1875-1886.
42. Chen Y., Kuchroo V.K., Inobe J., Hafler D.A., Weiner H.L. Regulatory T cell clones induced by oral tolerance: suppression of autoimmune encephalomyelitis. // Science.- 1994.-Vol.265.-P. 1237-1240.
43. Coffer P., Burgering M. Forkhead-box transcription factor and their role in the immune system. Nat. Rev. // Immunol.- 2004.-Vol.4.-P.889-899.
44. Cohen I.R. T-cell vaccination for autoimmune disease: a panorama. // Vaccine.- 2001 .-Vol.20.-P.706-710.
45. Cohen I.R., Quintana F.J., Mimran A. Tregs in T cell vaccination: exploring the regulation of regulation. // J. Clin. Invest.- 2004.-Vol.l 14.-P. 1227-1232.
46. Correale J., Lund B., McMillan M., Ko D.Y., McCarthy K., Weiner L.P. // J. Neuroimmunol.- 2000.-Vol.l07.-P.130-139.
47. Correale J., Rojany M., Weiner L.P. Human CD8+ TCRa/b+ and TCRg/d+ cells modulate autologous autoreactive neuroantigen-specific CD4+ T-cells by different mechanisms. // J. Neuroimmunol.- 1997.-Vol.80.-P.47-64.
48. DeMoraes L.V., Sun B., Rizzo L.V. Development of CD4+ T cell lines that suppress an antigen-specific immune response in vivo. // Clin. Exp. Immunol.-2003 .-Vol. 131 (1 ).-P. 17-25.
49. Dillon S.R., Sprecher C., Hammond A., Bilsborough J., Rosenfeld-Franklin M., Presnell S.R. et al. Interleukin 31, a cytokine produced by activated T cells, induces dermatitis in mice. //Nat. Immunol.- 2004.-Vol.5.-P.752-760.
50. Diveu C., Lak-Hal A.H., Froger J., Ravon E., Grimaud L., Barbier F. et al. Predominant expression of the long isoform of GP130-like (GPL) receptor is required for interleukin-31 signaling. // Eur. Cytokine Netw.- 2004.-Vol.l5.P.291-302.
51. Feger U., Tolosa E., Huang Y.-H., Waschbisch A., Biedermann T., Melms A., Wiendl H. HLA-G expression defines a novel regulatory T-cell subset present in human peripheral blood and sites of inflammation. // Blood.- 2007.-Vol.l 10.-P.568-577.
52. Fehérvary Z., Sakaguchi S. CD4+ Treg and immune control. // The Journal of Clinical Investigation.- 2004.-Vol.l 14(9).-P.1209-1217.
53. Fehérvary, Z., Sakaguchi, S. // J. Clin. Invest.- 2004.-Vol.l 14.-P.1209-1217.
54. Flores-Romo L. et al. Soluble fragments of the low-affinity IgE receptor (CD23) inhibit the spontaneous migration of U937 monocytic cells: neutralization of MIF activity by a CD23 antibody. // Immunology.- 1989.-Vol.67.-P.547-549.
55. Fontenot J.D., Rasmussen J.P., Williams L.M., Dooley J.L., Farr A.G., Rudensky A.Y. Regulatory T cell lineage specification by the forkhead transcription factor foxp3. // Immunity.- 2005.-Vol.22.-P.329-41.
56. Francis J.N., Till S.J., Durham S.R. Induction of IL-10+CD4+CD25+ T cells by grass pollen immunotherapy. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2003.-Vol. 111-P.1255-1261.
57. Fumeaux T., Pugin J. Role of interleukin-10 in the intracellular sequestration of human leukocyte antigen-DR inmonocytes during septic shock. // Am. J. Respir. Crit. Care Med.- 2002.-Vol.166.-P. 1475-1482.
58. Galli S.J., Nakae S., and Tsai M. Mast cells in the development of adaptive immune responses. //Nat. Immunol.- 2005.-Vol.6.-P. 135-142.
59. Gilliet M., Soumelis V., Watanabe N., Hanabuchi S., Antonenko S., de Waal-Malefyt R., et al. Human dendritic cells activated by TSLP and CD40L induce proallergic cytotoxic T cells. // J. Exp. Med.- 2003.-Vol. 197.-P. 1059-63.
60. Gri G., Piconese S., Frossi B., Manfroi V., Merluzzi S., Tripodo C., Viola A., Odom S., Rivera J., Colombo M.P., Pucillo C.E. CD4+CD25+ regulatory T cells supress mast cell degranulation and allergic responses through 0X40
61. OX40L interaction. //Immunity.- 2008.-Vol.29.-P.771-781.
62. Grewe M., Bruijnzeel-Koomen C.A., Schopf E., Thepen T., Langeveld-Wildschut A.G., Ruzicka T., et al. A role for Thl and Th2 cells in theimmunopathogenesis ofatopic dermatitis. // Immunol. Today.- 1998.-Vol.l9.-P.359-361.
63. Grewe M., Gyufko K., Schopf E., Krutmann J. Lesional expression of interferon-gamma in atopic eczema. // Lancet.- 1994.-Vol.343.-P.25-26.
64. Grewe M., Walther S., Gyufko K., Czech W., Schopf E., Krutmann J. Analysisof the cytokine pattern expressed in situ in inhalant allergen patch test reactionsof atopic dermatitis patients.// J. Invest. Dermatol.- 1995.-Vol. 105-P.407-410.
65. Groux H., O'Garra A., Bigler M. et al. A CD4+ T-cell subset inhibits antigen-specific T-cell responses and prevents colitis. //Nature/- 1997.-Vol.389.-P.737-742.
66. Gunther C., Bello-Fernandez C., Kopp T., Kund J., Carballido-Perrig N., Hinteregger S., et al. CCL18 is expressed in atopic dermatitis and mediatesskin homing of human memory T cells. // J. Immunol.- 2005.-Vol.174-P. 17231728.
67. Hafler D.A., Buchsbaum M., Weiner H.L. Decreased autologus mixed lymphocyte reaction in multiple sclerosis. // J. Neuroimmunol.- 1985.-Vol 9.-P.339-347.
68. Hanifin J., Chan S., Cheng J. Type 4 phosphodiesterase inhibitors have clinical and in vitro antiinflammatory effects in atopic dermatitis. // J. Invest. Dermatol.- 1996.-Vol. 107.-P.51 -56.
69. Harder J., Battels J., Christophers E, Schroder JM. A peptide antibiotic from human skin. // Nature.- 1997.-Vol.387.-P.861.
70. Harder J., Bartels J., Christophers E., Schroder J.M. Isolation and characterization of human beta -defensin-3, a novel human inducible peptide antibiotic. //J. Biol. Chem.- 2001.-Vol.276.-P.5707-5713.
71. Harding, F.A., McArthur J.G., Gross J.A., Raulet D.H. and Allison J.P. CD28-mediated signalling co-stimulates murine T cells and prevents induction of anergy in T-cell clones. // Nature.- 1992.-Vol.356.-P.607.
72. Harley C.B., Futcher A.B., Greider C.W.- 1990. Telomeres shorten during aging of human fibroblasts. //Nature.- 1990.-Vol.345.-P.458.
73. Harrison L.C., Dempsey-Collier M., Kramer D.R., and Takahashi K. Aerosol insulin induces regulatory CD8 g/d T cells that prevent murine insulindependent diabetes. // J. Exp. Med.- 1996.-Vol.l84.-P.2167-2174.
74. Harley C.B. Telomere loss: mitotic clock or genetic time bomb? // Mutat. Res.- 1991.-Vol.256.-P.271.
75. Hayday A.C. g/d cells: a right time and a right place for a conserved third way of protection. // Annu. Rev. Immunol.- 2000.-Vol.18.-P.975-1026.
76. Hennino A., Vocanson M., Toussaint Y., Rodet K., Benetiere J., Schmit A., Aries M., Berard F., Rozieres A.and Nicolas J. Skin-Infiltrating CD8+ T Cells Initiate Atopic Dermatitis Lesions. // J. Immunol.- 2007.-Vol.178.-P.5571-5577.
77. Higa S., Kotani M., Matsumoto M., Fujita A., Hirano T., Suemura M., et al. Administration of anti-interleukin 18 antibody fails to inhibit development of dermatitis in atopic dermatitis-model mice NC/Nga. // Br. J. Dermatol.- 2003.-Vol.l49.-P.39-45.
78. Hofer M., Jirapongsananuruk O., Trumble A., Leung D. Upregulation of B7.2, but not B7.1, on B cells from patients with allergic asthma. // J. Allergy Clin. Immunol.- 1998.-Vol. 101 .-P.96-102.
79. Homey B., Alenius H., Muller A., Soto H., Bowman E.P., Yuan W., et al. CCL27-CCR10 interactions regulate T cell-mediated skin inflammation. //Nat. Med.- 2002.-Vol.8.-P. 157-165.
80. Homey B., Steinhoff M., Ruzicka T., Leung D.Y.M. Cytokines orchestrate atopic skin inflammation. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2006.-Vol.l 18.-P.178-189.
81. Hong J., Zang Y.C.Q., Nie H., Zhang J.Z. CD4+ regulatory cell responses induced by T cell vaccination in patients with multiple sclerosis. // PNAS.-2006.-Vol.l 03.(13).-P.5024-5029.
82. Hori S., Nomura T., Sakaguchi S. Control of regulatory T cell development by the transcription factor Foxp3. // Science.- 2003.-Vol.299.-P.l057-1061 (Epub 2003, January 9).
83. Howell M.D., Novak N., Bieber T., Pastore S., Girolomoni G., Boguniewicz M., et al. Interleukin-10 down-regulates anti-microbial peptide expression in atopic dermatitis. // J. Invest. Dermatol.- 2005.-Vol.l25.-P.738-745.
84. Hsieh C.S., Zheng Y., Liang Y., Fontenot J.D., Rudensky A.Y. An intersection between the self-reactive regulatory and nonregulatory T cell receptor repertoires. //Nat. Immunol.- 2006.-Vol.7.-P.401^110 (Epub 2006, March 12).
85. Hsieh C.S., Rudensky A.Y. The role of TCR specificity in naturally arising CD25+CD4+ regulatory T cell biology. // Curr. Top. Microbiol. Immunol.-2005.-Vol.293.-P.25-42.
86. Huan J., Culbertson N., Spencer L., Bartholomew R., Burrows G.G., Chou Y. K., Bourdette D., Ziegler S. F., Offner H. and Vandenbark A.A. // J. Neurosci. Res.- 2005.-Vol.81.-P.45-52.
87. Hughes J., Rustin M. Corticosteroids // Clin. Dermatol.- 1997.-Vol.15.-P.715-721.
88. Jaffar Z., Sivakuru T., Roberts K. CD4+CD25+ T cells regulate airway eosinophilic inflammation by modulating the TH2 cell phenotype. // J. Immunol.- 2004.-Vol.l72.-P.3842-3849.
89. Jirapongsananuruk O., Hofer M., Trumble A., Norris D., Leung D. Enhanced expression of B7.2 (CD86) in patients with atopic dermatitis: a potential role in the modulation of IgE synthesis. // J. Immunol.- 1998.-Vol.l60.-P.4622-4627.
90. Kanda N., Watanabe S. Histamine enhances the production of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor via protein kinase C alpha andextracellular signal-regulated kinase in human keratinocytes. // J. Invest. Dermatol.- 2004.-Vol. 122.-P.863-872.
91. Kanangat S., Blair P., Reddy R., Daheshia M., Godfrey V., Rouse B.T. et al. Disease in the scurfy (sf) mouse is associated with overexpression of cytokine genes. // Eur. J. Immunol.- 1996.-Vol.26.-P.161-165.
92. Karagiannidis C., Akdis M., Holopainen P. et al. Glucocorticoids upregulate FoxP3 expression and regulatory T cells in asthma. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2004.-Vol.l 14.-P.1425-1433.
93. Karlsson M.R., Rugtveit J., Brandtzaeg P. Allergen-responsive CD4+CD25+ regulatory T cells in children who have outgrown cow's milk allergy. // J. Exp. Med.- 2004.-Vol.199.-P. 1679-1688.
94. Kerschenlohr K., Decard S., Darsow U., Ollert M., Wollenberg A. Clinical and immunologic reactivity to aeroallergens in "intrinsic" atopic dermatitis patients. //J. Allergy Clin. Immunol.- 2003.-Vol. 111.-P. 195-197.
95. King I.L., Segal B.M. IL-12 induces CD4+CD25- T cell activation in the presence of T regulatory cells. // J. Immunol.- 2005.-Vol.l75.-P.641-645.
96. Kraft S., Wessendorf H., Hanau D., Bieber T. Regulation of the high affinity receptor for IgE on human epidermal Langerhans cells. // J. Immunol.- 1998.-V0I.I6I.-P.IOOO-IOO6.
97. Kronenberg M. Toward an understanding of NKT cell biology: progress and paradoxes. //Annu. Rev. Immunol.- 2005.-Vol.23.-P.877-900.
98. Kumar V. //J. Clin. Invest.- 2004.-Vol.114.-P. 1222-1226.
99. Kumar V., Sercarz E.E. The involvement of T cell receptor peptidespecific regulatory CD4+ T cells in recovery from antigen-induced autoimmune disease. // J. Exp. Med.- 1993.-Vol.l78.P.909-916.
100. Laske N., Niggemann B. Does the severity of atopic dermatitis correlate with serum IgE levels? // Pediatric. Allerg. Immunol.- 2004.-Vol.l5(l)-P.86-88.
101. Laouini D., Alenius H., Bryce P.O., Oettgen H., Tsitsikov E., Geha R.S. IL-10 is critical for Th2 responses in a murine model of allergic dermatitis. // J. Clin. Invest.- 2003.-Vol. 112.-P. 1058-1066.
102. Leung D.Y. Atopic dermatitis: new insights and opportunities for therapeutic intervention. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2000.-Vol.l05.-P.860-876.
103. Leung D.Y., Bieber T. Atopic dermatitis. // Lancet.- 2003.-Vol.361.-P.151-160.
104. Leung D.Y.M., Boguniewicz M., Howell M.D., Nomura L, Hamid Q.A. New insights into atopic dermatitis. // J. Clin. Invest.- 2004.-Vol.l 13(5).-P.651-657.
105. Lider O., Beraud E., Reshef T., Friedman A. and Cohen I.R. // J. Autoimmun.-1989.-Vol.2.-P.87-99.
106. Lider O., Reshef T., Beraud E., Ben-Nun A., Cohen I.R. Anti-idiotypic network induced by T cell vaccination against experimental autoimmune encephalomyelitis. // Science.- 1988.-Vol.239.-P.181-183.
107. Lindsey J., McGill N., Lindsey L.A., Green D.K., and Cooke H. J. In vitro loss of the telomeric repeats with age in humans. // Mutat. Res.- 1991.-Vol.256.-P.45.
108. Linsley P.S., Ledbetter J.A. The role of the CD 28 receptor during T cell responses to antigen. // Annu. Rev. Immunol.- 1993.-Vol.11.-P. 191-212.
109. Liu Y.J. Thymic stromal lymphopoietin: master switch for allergic inflammation. // J. Exp. Med.- 2006.-Vol.203.-P.269-273.
110. Lohse A.W., Mor F., Karin N., Cohen I.R. Control of experimental autoimmune encephalomyelitis by T cells responding to activated T cells. // Science.- 1989.-Vol.244.-P.820-822.
111. Lohse A.W., Spahn T.W., Wolfel T., Herkel J., Cohen I.R., Meyer zum Buschenfelde K.H. Induction of the anti-ergotypic response. // Int. Immunol.-1993.-Vol.5.-P.533-539.
112. Lopez-Guerrero J.A., et al. Modulation of adjuvant arthritis in Lewis rats by recombinant vaccinia virus expressing the human 60-kilodalton heat shock protein. //Infect. Immun.- 1993.-Vol.61 .P.4225-4231.
113. Lopez-Guerrero J.A., Ortiz M.A., Paez E., Bernabeu C., and Lopez-Bote J.P. Therapeutic effect of recombinant vaccinia virus expressing the 60-kd heat-shock protein on adjuvant arthritis. // Arthritis Rheum.- 1994.-Vol.37.-P.1462— 1467.
114. Lucey D.R. Evolution of the Type-1 (Thl) Type-2 (Th2) cytokine paradigm // Infect. Dis. Clin, of North America.- 1999.-Vol.l3(l).- P.l-9.
115. Lucey D.R., Clerici M., Shearer G.M. Type 1 and Type 2 cytokine dysregulation in human infectious, neoplastic, and inflammatory diseases // Clin. Microbiol. Rev.- 1996.-Vol. 9(4)-P.532-562.
116. Macario A J, Conway de Macario E. Sick chaperones, cellular stress, and disease. //N. Engl. J. Med.- 2005.-Vol.353.-P.1489-501.
117. Mamessier E., Botturi K., Vervloet D., Magnan A. T regulatory lymphocytes, atopy and asthma: a new concept in three dimensions // Rev. Mai. Respir. -2005.-Vol.22.-P.305-311.
118. Mamessier E., Magnan A. Cytokines in atopic diseases: revisiting the Th2 dogma. // Eur. J. Dermatol.- 2006.-Vol.16.-P. 103-113.
119. Marshal J.S., Leal-Berumen I., Nielsen L., Glibetic M., Jordana M. // J. Clin. Invest.- 1996.-Vol.97.-P.l 122-1128.
120. Mazmanian S.K., Liu C.H., Tzianabos A.O., Kasper D.L. An immunomodulatory molecule of symbiotic bacteria directs maturation of the host immune response. // Cell.- 2005.-Vol. 122.-P. 107-118.
121. Medaer R., Stinissen P., Truyen L., Raus J., and Zhang J. Z. // Lancet.- 1995.-Vol.346.-P.807-808.
122. Mihara K., Kuratani K., Matsui T., Nakamura M., Yokota K. Vital role of the itch-scratch response in development of spontaneous dermatitis in NC/Nga mice. // Br. J. Dermatol.- 2004;151:335-45.
123. Mimran A., Mor F., Carmi P., Quintana F.J., Rotter V., Cohen I.R. DNA vaccination with CD25 protects rats from adjuvant arthritis and induces an antiergotypic response. // J. Clin. Invest.- 2004.-Vol.l 13.-P.924-32.
124. Mimran A., Mor F., Quintana F.J., Cohen I.R. Anti-ergotypic T cells in naive rats. // J. Autoimmun.- 2005.-Vol.24.-P. 191-201.
125. Mor F., Reizis B., Cohen I.R., Steinman L. IL-2 and TNF receptors as targets of regulatory T-T interactions: isolation and characterization of cytokine receptor-reactive T cell lines in the Lewis rat. // J. Immunol.- 1996.-Vol.157.-P.4855^4861.
126. Morales J., Homey B., Vicari A.P., Hudak S., Oldham E., Hedrick J., et al. CTACK, a skin-associated chemokine that-preferentially attracts skinhoming memory T cells. // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A.- 1999.-Vol.96.-P. 1447014475.
127. Moreno Gimenez J.C. Atopic dermatitis. // Alergol. Inmunol. Clin.- 2000.-Vol.l .-P.279-295.
128. Mottet C., Golshayan D. CD4+CD25+Foxp3+ regulatory T cells: from basic research to potential therapeutic use. // SWISS MED WKLY.- 2007.-Vol.137.-P.625-634.
129. Nagarajan U.M., Bushey A., Boss J.M. Modulation of gene expression by the MHC class II transactivator. // J. Immunol.- 2002.-Vol.l69.-P.5078-5088.
130. NagataN., OshidaT., YoshidaN. L., YuyamaN., SugitaY., Tsujimoto G., Katsunuma T., Akasawa A., Saito H. Analysis of highly expressed genes in monocytes from atopic dermatitis patients. // Int. Arch. Allergy Immunol.-2003.-Vol. 132(2).-P. 156-167.
131. Namekawa T., Wagner U.G., Goronzy J J., Weyand C.M.: Functional subsets of CD4 T cells in rheumatoid synovitis. // Arthritis Rheum.- 1998.-Vol.41.-P.2108-2116.
132. Nelson H.S. Advances in upper airway diseases and allergen immunotherapy. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2004.-Vol.l 13.-P.635-642.
133. Nishikawa H., Kato T., Tawara I. et al. Definition of target antigens for naturally occuring CD4(+)CD25(+) regulatory T cells. // J. Exp.Med.- 2005.-Vol.201.-P.681-686.
134. Nomura I., Gao B., Boguniewicz M., Darst M.A., Travers J.B., Leung D.Y. Distinct patterns of gene expression in the skin lesions of atopic dermatitis and psoriasis: a gene microarray analysis. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2003.-Vol.ll2.-P.l 195-1202.
135. Nomura I., Goleva E., Howell M.D., Hamid Q.A., Ong P.Y., Hall C.F., et al. Cytokine milieu of atopic dermatitis, as compared to psoriasis, skin prevents induction of innate immune response genes. // J. Immunol.- 2003.-Vol. 171.-P.3262-3269.
136. Novak N., Allam J.P., Bieber T. Allergic hyperreactivity to microbial components: a trigger factor of "intrinsic" atopic dermatitis? // J. Allergy Clin. Immunol.- 2003.-Vol. 112.-P.215-216.
137. Novak N., Bieber T., Leung D.Y.M. Immune mechanisms leading to atopic dermatitis. //J. Allergy Clin. Immunol.- 2003.-Vol. 112(suppl).-P. 128-139.
138. Novak N., Kraft S., Bieber T. Unraveling the mission of FceRI on antigenpresenting cells. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2003.-Vol.l 11.-P.38-44.
139. Novak N., Kruse S., Potreck J., Maintz L., Jenneck C., Weidinger S., et al. Single nucleotide polymorphisms of the IL18 gene are associated with atopic eczema. //J. Allergy Clin. Immunol.- 2005.-Vol.l 15.-P.828-833.
140. Novak N., et al. Evidence for a differential expression of the FcepsilonRIgamma chain in dendritic cells of atopic and nonatopic donors. // J. Clin. Invest.- 2003.-Vol.111.-P. 1047-1056.
141. Mittermann I., Aichberger K.J., Bunder R., Mothes N., Renz H., Valenta R. Autoimmunity and Atopic Dermatitis. // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol.-2004.-Vol.4(5).-P.367-371.
142. Ogoshi M., Takashima A., and Taylor R.S. Mechanisms regulation telomerase activity in murine T cells. // J. Immunol.- 1997.-Vol.158.-P.622.
143. Ong P.Y., Ohtake T., Brandt C., Strickland I., Boguniewicz M., Ganz T., et al. Endogenous antimicrobial peptides and skin infections in atopic dermatitis. // N. Engl. J. Med.- 2002.-Vol.347.-P.l 151-1160.
144. Ostroukhova M., Ray A. CD25+ T cell and regulation of allergen-induced responses. // Curr. Allergy Asthma. Rep.- 2005.-Vol.5.-P.35-41.
145. Ou L.-S., Goleva E., Hall C., Leung D.Y. T regulatory cells in atopic dermatitis and subversion of their activity by superaritigens. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2004.-Vol.l 13.-P.756-763.
146. Paus R., Schmelz M., Biro T., Steinhoff M. Frontiers in pruritus research: scratching the brain for more effective itch therapy. // J. Clin. Invest.- 2006.-V0I.II6.-P.1174-1186.
147. Peng S.L., Madaio M.P., Hayday A.C., and Craft J. Propagation and regulation of systemic autoimmunity by g/d T cells. // J. Immunol.- 1996.-Vol. 157.-P.5689-5698.
148. Pfister G., Stroh C.M., Perschinka H. et al. Detection of HSP60 on the membrane surface of stressed human endothelial cells by atomic force and confocal microscopy. //J. Cell. Sei.- 2005.-Vol.118.-P.1587-1594.
149. Quintana F.J., Cohen I.R. Heat shock proteins as endogenous adjuvants in sterile and septic inflammation. //J. Immunol.- 2005.-Vol.l75.-P.2777-2782.
150. Quintana F.J., Cohen I.R. Anti-ergotypic immunoregulation. // Scan. J. Immunol.- 2006.-Vol.64.-P.205-210.
151. Quintana F.J., Carmi P., Mor F., and Cohen I.R. Inhibition of adjuvant arthritis by a DNA vaccine encoding human HSP60. // J. Immunol.- 2002.-Vol.169.-P.3422—3428.
152. Ragno S., et al. Protection of rats from adjuvant arthritis by immunization with naked DNA encoding for mycobacterial heat shock protein 65. // Arthritis Rheum.- 1997.-Vol.40.-P.277-283.
153. Rattis F., Peguet-Navarro J., Staquet M. et al. Expression and function of B7-1 (CD80) and B7-2 (CD86) on human epidermal Langerhans cells. // Eur. J. Immunol.- 1996.-Vol.26.-P.449-53.
154. Revets H., Pynaert G., Grooten J., De Baetselier P. Lipoprotein I, a TLR2/4 ligand modulates Th2-driven allergic immune response. // J. Immunol.- 2005,-Vol.174.-P. 1097-1103.
155. Rivera V. M., Killian J., and Zhang J.Z. // Int. Immunol.-2003.-Vol.l5.-P. 1073-1080.
156. Robinson D. S., Larche M., Durham R. Treg and allergic disease. // The Journal of Clinical Investigation.- 2004.-Vol.l 14( 10).-P. 1389-1397.
157. Rocklin R.E. et al. In vitro lymphocyte response in patients with immunologic disorders: correlation of prediction of macrophage inhibitory factor with delayed hypersensitivity. //New Engl. J. Med.- I970.-Vol.282.-P.1349-1343.
158. Romagnani S. Immunologic influences on allergy and the TH1/TH2 balance. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2004.-Vol.l 13.-P.395-400.
159. Romagnani S. The increased prevalence of allergy and the hygiene hypothesis: missing immune deviation, reduced immune suppression, or both? // Immunology.- 2004.-Vol.l 12.-P.352-363.
160. Romagnani S. Regulatory T cells: which role in the pathogenesis and treatment of allergic disorders? // Allergy.- 2006.-Vol.61.-P.3-14.
161. Roncarolo M.G., Bacchetta R., Bordignon C., Narula S., Levings M.K. Type 1 T regulatory cells. // Immunol. Rev.- 2001.-Vol.182.-P.68-79.
162. Ruzicka T., Bieber T., Schopf E., Rubins A., Dobozy A., Bos J.D., et al. A short-term trial of tacrolimus ointment for atopic dermatitis. European Tacrolimus Multicenter Atopic Dermatitis Study Group. // N. Engl. J. Med.-1997.-Vol.337.-P.816-821.
163. Sakaguchi S. Regulatory T cells: key controllers of immunologic self-tolerance. // Cell.- 2000.-Vol.l 01 .-P.455-458.
164. Sakaguchi S. Naturally arising CD4+ regulatory T cells for immunologic self-tolerance and negative control of immune responses. // Annu. Rev. Immunol.2004.-Vol.22.-P.531-562.
165. Sakaguchi S. Naturally arising Foxp3-expressing CD25+CD4+ regulatory T cells in immunological tolerance to self and non-self. // Nature Immunology.2005.-Vol.6.-P.345-352.
166. Saint Mezard P., Berard F., Dubois B. et al. The role of CD4+ and CD8+ T cells in contact hypersensitivity allergic contact dermatitis. // Eur. J. Immunol.-2004.-Vol.14.-P. 131-138.
167. Salgame P., Abrams J.S., Clayberger C., et al. Differing lymphokine profiles of functional subsets of human CD4 and CD8 T cell clones. // Science.- 1991.-Vol. 254.-P. 279-282.
168. Sarantopoulos S., Lu L., Cantor H. Qa-1 restriction of CD8+ supressor T cells. //J. Clin. Invest.- 2004.-114:1218-1221.
169. Schandane, L., Alonso-Vega, C., Willems, F., Gerard, C., Delvaux, A., zVelu, N. et. al. //J. Immunol.- 1994.-Vol.l52.-P.4368-4374.
170. Schubert L.A., Jeffery E., Zhang Y. et al. Scurfin (FOXP3) act as a receptor of transcription and regulates T cell activation. // J. Biol. Chem.- 2001 .-Vol.276.-P.37672-37679.
171. Shevach E.M. Regulatory T cells in autoimmunity. // Annu. Rev. Immunol.-2000.-Vol. 18.-P.423-449.
172. Shi H.Z., Li S., Xie Z.F. et al. Regulatory CD4+CD25+ T lymphocytes in peripheral blood from patients with atopic asthma. Clin. Immunol.- 2004.-Vol.l 13.-P.172-178.
173. Shi H.-Z., Qin X.-J. CD4+CD25+ regulatory T lymphocytes in allergy and asthma. // Allergy.- 2005.-Vol.60.-P.986-995.
174. Shim Y.K., Kim B.S., Cho S.H., Min K.U., Hong S.J. Allergen-specific conventional immunotherapy decreases immunoglobulin E-mediated basophil histamine reusability. // Clin. Exp. Allergy.- 2003.-Vol.33.-P.52-57.
175. Schmelz M. Itch—mediators and mechanisms. // J. Dermatol. Sci.- 2002.-Vol.28.-P.91-96.
176. Schmidt D., Goronzy J.J., Weyand C.M. CD4+CD7"CD28 T cells are expanded in rheumatoid arthritis and are characterized by autoreactivity. // J. Clin. Invest.- 1996-Vol.97.-P.2027-2037.
177. Schmidt-Weber C.B., Blaser K. The role of the FOXP3 transcription factor in the immune regulation of allergic asthma. // Curr. Allergy Asthma Rep.- 2005.-Vol.5.-P.356-361.
178. Shevach E.M. CD4+CD25+ suppressor T cells: many questions than answers. // Annu. Rev. Immunol.- 2002.-Vol.2.-P.389-400.
179. Skapenko A., Niedobitek G.U., Kalden J.R., Lipsky P.E., Schulze-Koops H. IL-4 exerts a much more profound suppression of Thl immunity in humans than in mice. // J. Immunol.- 2004.-Vol.l72.-P.6427-6434.
180. Sonkoly E., Muller A., Lauerma A.I., Pivarcsi A., Soto H., Kemeny L., et al. IL-31: a new link between T cells and pruritus in atopic skin inflammation. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2006.-Vol.l 17.-P.411-417.
181. Spergel J.M., Paller A.S. Atopic dermatitis and the atopic march. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2003.-Vol.l 12(suppl).-P.l 18-127.
182. Steinhoff M., Bienenstock J., Schmelz M., Maurer M., Wei E., Biro T. Neurophysiological, neuroimmunological and neuroendocrine basis of pruritus. // J. Invest. Dermatol. In press.- 2006.
183. Steinhoff M, Neisius U, Ikoma A, Fartasch M, Heyer G, Skov PS, et al. Proteinase-activated receptor-2 mediates itch: a novel pathway for pruritus in human skin. // J. Neurosci.- 2003.-Vol.23.-P.6176-6180.
184. Stinissen P., Zhang J., Vandevyver C., Hermans G., Raus J. Gammadelta T cell responses to activated T cells in multiple sclerosis patients induced by T cell vaccination. //J. Neuroimmunol.- 1998.-Vol.87.-P.94-104.
185. Stock P., Akbari O., Berry G., Freeman G.J., DeKruyff R.H., Umetsu D.T. Induction of T helper type 1 -like regulatory cells that express Foxp3 and protect against airway hyper-reactivity. //Nat. Immunol.- 2004.-Vol.5.-P.l 1491156.
186. Strachan D.P. Hay fever, hygiene and household size. // Br. Med. J.- 1989.-Vol.299.-P. 1259-1260.
187. Soumelis V., Reche P.A., Kanzler H., Yuan W., Edward G., Homey B., et al. Human epithelial cells trigger dendritic cell mediated allergic inflammation by producing TSLP. //Nat. Immunol.- 2002.-Vol.3.-P.673-680.
188. Takahashi T., Tagami T., Yamazaki S. et al. Immunologic selftolerance maintained by CD25(+)CD4(+) regulatory T cells constitutively expressing cytotoxic T lymphocyte-associated antigen 4. // J. Exp. Med.- 2000.-Vol.192.-P.303-310.
189. Thornton A.M., and Shevach E.M. CD4+CD25+ immunoregulatory T cells suppress polyclonal T cell activation in vitro by inhibiting interleukin 2 production. // J. Exp. Med.- 1998.-Vol.l88.-P.287-296.
190. Thornton A.M., Shevach E.M. Suppressor effector function of CD4+CD25+ immunoregulatory T cells is antigen nonspecific. // J. Immunol.- 2000.-Vol. 164.-P. 183-190.
191. Till S.J., Francis J.N., Nouri-Aria K., Durham S.R. Mechanisms of immunotherapy. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2004.-Vol.l 13.-P.1025-1034.
192. Toda M., Leung D.Y., Molet S., Boguniewicz M., Taha R., Christodoulopoulos P., et al. Polarized in vivo expression of IL-11 and IL-17 between acute and chronic skin lesions. // J. Allergy Clin. Immunol.- 2003.-Vol.lll.-P.875-881.
193. Treter S., Luqman M. Antigen-specific T cell tolerance down-regulates mast cells responses in vivo. // Cell. Immunol.- 2000.-Vol.206.-P.l 16-124.
194. Van der Aa A., Hellings N., Medaer R., Gelin G., Palmers Y., Raus J., and StinissenP. //Clin. Exp. Immunol.- 2003.-Vol. 131.-P. 155-168.
195. Van Eden W., van der Zee R., Prakken B. Heat-shock proteins induce T-cell regulation of chronic inflammation. // Nat. Rev. Immunol.- 2005.-Vol.5.-P.318-330.
196. Vaziri H.,Schachter F., Uchida I., Wei L., Zhu X., Effros R., Cohan D., and Harley C.B. Loss of telomeric DNA during aging of normal and trisomy 21 human lymphocytes. //Am. J. Hum. Genet.- 1993.-Vol.52.-P.661.
197. Vaziri H., Dragowska W., Allsopp R.C., Thomas T.E., Harley C.B., and Lansdorp P.M. Evidence for a mitotic clock in human hematopoietic stem cells: loss of telomeric DNA with age. // Proc. Natl. Acad. Sei. USA.- 1994.-Vol.91.-P.9857.
198. Viglietta V., Baecher-Allan C., Weiner H.L., and Hafler D.A. // J. Exp. Med.-2004.-Vol.199.-P.971-979.
199. Wang B., Huang X., Wolters P.J., Sun J., Kitamoto S., Yang M., Riese R., and al. Deficiency of macrophage migration inhibitory factor impairs murine airway allergic responses. // J. Immunol.- 2006.-Vol.177.-P.5779-5784.
200. Wang L.-H., Lin Y.-H., Yang J., Guo W. Insufficient increment of CD4+CD25+ regulatory T cells after stimulation in vitro with allergen in allergic asthma. // Int. Arch. Allergy Immunol.- 2009.-Vol.148.-P. 199-210.
201. Weiner H.L., Friedman A., Miller A. et al. Oral tolerance: immunologic mechanisms and treatment of animal and human organ-specific autoimmune diseases by oral administration of autoantigens. // Annu. Rev. Immunol.-1994.-Vol. 12.-P.809-837.
202. Wood L.C., Elias P.M., Calhoun C., Tsai J.C., Grunfeld C., Feingold K.R. Barrier disruption stimulates interleukin-1 alpha expression and release from a pre-formed pool in murine epidermis. // J. Invest. Dermatol.- 1996.-Vol.106.-P.397-403.
203. Wood L.C., Jackson S.M., Elias P.M., Grunfeld C., Feingold K.R. Cutaneous barrier perturbation stimulates cytokine production in the epidermis of mice. // J. Clin. Invest.- 1992.-Vol.90.-P.482-487.
204. Wu K., Higashi N., Hansen E.R., Lung M., Bang K., Thestrup-Pedersen K. Telomerase activity is increased and telomere length shortened in T cells from blood of patient with atopic dermatitis and psoriasis. // J. Immunol.- 2000.-Vol. 165 .-P.4742-4747.
205. Yamashiro M.5 Okubo Y., Kato Y., Tamaki T., Koda M. The study of immunological markers in patients with "intrinsic" type atopic dermatitis. // Japan J. Allergol.- 2002.-Vol.51(7).-P.552-558.
206. Yazdanbakhah M., Kremsner P.G., van Ree R. Allergy, parasites, and the hygiene hypothesis. // Science.- 2002.-Vol.296.-P.490-494.
207. Yoo J., Omori M., Gyarmati D., Zhou B., Aye T., Brewer A., et al. Spontaneous atopic dermatitis in mice expressing an inducible thymic stromal lymphopoietin transgene specifically in the skin. // J. Exp. Med.- 2005.-Vol.202.-P.541-549.
208. Zhang J. Z., Medaer R., Stinissen P., Hafler D., and Raus J. // Science.- 1993.-Vol.261.-P.1451-1454.
209. Zhang J.Z., Vandevyver C., Stinissen P., and Raus J. // J. Immunol.- 1995.-Vol.l55.-P.5868-5877.
210. Zang Y.C., Hong J., Tejada-Simon M.V., Li S., Rivera V.M., Killian J. M., and Zhang J.Z. Th2 immune regulation induced by T cell vaccination in patients with multiple sclerosis. // Eur. J. Immunol.- 2000.-Vol.30.-P.908-913.
211. Zang Y.C., Hong J., Rivera V.M., Killian J., Zhang J.Z. Preferential recognition of TCR hypervariable regions by human anti-idiotypic T cells induced by T cell vaccination. // J. Immunol.- 2000.-Vol.164.-P.4011-4017.
212. Zhang J.Z. // Expert Rev. Vaccines.- 2002.-Vol. 1 .-P.285-292.
213. Zhang J.Z., Rivera V.M., Tejada-Simon M.V., Yang D., Hong J., Li S., Haykal H., Killian J., and Zang Y.C.Q. // J. Neurol.- 2002.-Vol.249.-P.212-218.
214. Zlotnik A., Yoshie O. Chemokines: a new classification system and their role in immunity. // Immunity.- 2000.-Vol.l2.-P.121-127.